Роль грамотрицательных условно-патогенных бактерий в развитии внутрибольничных инфекций в стационарах хирургического профиля г. Махачкала тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.02.03, кандидат наук Муталипова, Заира Магомедкамиловна

• Муталипова, Заира Магомедкамиловна
• кандидат наук
• 2014

Оглавление диссертации кандидат наук Муталипова, Заира Магомедкамиловна

2 Оглавление

ВВЕДЕНИЕ

ГЛАВА I. СОВРЕМЕННЫЕ АСПЕКТЫ

МИКРОБИОЛОГИЧЕСКОЙ ДИАГНОСТИКИ

ВНУТРИБОЛЬНИЧНЫХ ИНФЕКЦИЙ (обзор

литературы).

1.1. Понятие о внутрибольничных инфекциях и их роль в

патологии человека

1.2. Внутрибольничные инфекции в хирургии и методы их

профилактики

1.3. Особенности внутрибольничных инфекций в ОРИТ

хирургического стационара

1.4. Этиология возбудителей внутрибольничных инфекций

в хирургических стационарах

1.5. Особенности антибиотикочувствительности

госпитальных штаммов, возбудителей

внутрибольничных инфекций в хирургии

1.6. Способы идентификации микроорганизмов, возбудителей

внутрибольничных инфекций

ГЛАВА II. СОБСТВЕННЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ

МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ

2.1. Материалы

2.1.1. Объекты исследования

2.1.2. Исследуемые материалы

2.1.3. Питательные среды

2.1.4. Диагностические тест-системы

2.1.5. Антибактериальные препараты

2.2. Методы исследования

2.2.1. Бактериологическое изучение исследуемого материала

2.2.2. Методы исследования объектов внешней среды

2.2.3. Идентификация условно-патогенных микроорганизмов

2.3. Определение чувствительности микроорганизмов к

антибиотикам

2.4. Статистическая обработка результатов исследований

ГЛАВА III. МИКРОБИОЛОГИЧЕСКОЕ

ИССЛЕДОВАНИЕ ОБЪЕКТОВ ОКРУЖАЮЩЕЙ СРЕДЫ ХИРУРГИЧЕСКОГО СТАЦИОНАРА И ТРАВМАТОЛОГИЧЕСКОГО ЦЕНТРА

3.1. Изучение микрофлоры воздушной среды 50 хирургического и травматологического стационаров

3.2. Изучение микрофлоры объектов внешней среды 55 хирургического стационара

3.3. Микрофлора верхних дыхательных путей и кожи рук 62 медперсонала хирургического стационара

3.4. Изучение условно-патогенной микрофлоры 64 операционного блока хирургического стационара

3.5. Определение микрофлоры оборудования и персонала 68 ОРИТ травматологического стационара

3.6. Сравнительная характеристика микробиологического 74 пейзажа обследованных стационаров хирургического профиля

ГЛАВА IV. ЭТИОЛОГИЧЕСКАЯ СТРУКТУРА И 83 АНТИБИОТИКОРЕЗИСТЕНТНОСТЬ КЛИНИЧЕСКИ - ЗНАЧИМЫХ

ГРАМОТРИЦАТЕЛЬНЫХ ВОЗБУДИТЕЛЕЙ ВБИ, ВЫДЕЛЕННЫХ У ПАЦИЕНТОВ СТАЦИОНАРОВ ХИРУРГИЧЕСКОГО ПРОФИЛЯ.

4.1. Этиологическая структура возбудителей ВБИ органов 87 дыхания у пациентов ОРИТ хирургического стационара

4.2. Этиологическая значимость и 98 антибиотикорезистентность Р.aeruginosa, выделенных у пациентов ОРИТ травматологического центра

ГЛАВА V. УСОВЕРШЕНСТВОВАНИЕ СПОСОБА 111 ВЫДЕЛЕНИЯ И УСКОРЕННОЙ

ИДЕНТИФИКАЦИИ УПЭ, ВОЗБУДИТЕЛЕЙ ВНУТРИБОЛЬНИЧНЫХ ИНФЕКЦИЙ.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

ВЫВОДЫ

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

ПРИЛОЖЕНИЕ

160

СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ

АБП - антибактериальные препараты

АМП - антимикробные препараты

ВБИ - внутрибольничные инфекции

ВП - внутрибольничная пневмония

ГВЗ - гнойно-воспалительные заболевания

ГОБ - грамотрицательные бактерии

ВДП - верхние дыхательные пути

ИВЛ - искусственная вентиляция легких

НГОБ - неферментирующие грамотрицательные бактерии

НДОП - нижние отделы дыхательных путей

ОРИТ - отделение реанимации и интенсивной терапии

РКБ - Республиканская клиническая больница

ТБА - трахеобронхиальный аспират

ТБО - трахеобронхиальное отделяемое

ТБС - трахеобронхиальные смывы

ТЦ - Травматологический центр

УПБ - условно-патогенные бактерии

УПМ - условно-патогенные микроорганизмы

УПЭ - условно-патогенные энтеробактерии

ХПС - хромогенные питательные среды

ХС - хирургический стационар

ЭПС - экспериментально-производственные серии

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Роль грамотрицательных условно-патогенных бактерий в развитии внутрибольничных инфекций в стационарах хирургического профиля г. Махачкала»

ВВЕДЕНИЕ

Актуальность проблемы. В последние десятилетия значительное распространение получили различные формы внутрибольничных инфекций (ВБИ) или инфекций, связанных с оказанием медицинской помощи (ИСМП) [Г.Г.Онищенко, 2008; О.В.Шеховцова, Е.В.Шаталова, 2012; Ю.С. Светличная с соавт., 2014]. По оценкам исследователей средний процент ВБИ составляет от 3,0 до 35,5%, а в отделениях интенсивной терапии хирургических стационаров - до 63% [Е.М.Низовой, 2011]. Высокий уровень заболеваемости и значительный экономический ущерб, наносимый внутрибольничной инфекцией, ставят эту проблему в число первоочередных [Е.П.Ковалева, 2008]. Летальность при различных нозологических формах ВБИ колеблется от 3,6 до 60%, а при генерализованных формах инфекции достигает уровня доантибиотического периода [В.Г.Акимкин, 2004].

ВБИ чаще наблюдается в стационарах хирургического профиля и в первую очередь - в отделении реанимации интенсивной терапии (ОРИТ), которое считается отделением повышенного риска, вследствие плотности размещения тяжелых ослабленных больных с нарушениями иммунного статуса [Е.Б. Брусина, 2002]. У больных ОРИТ частота развития ВБИ в 5-10 раз выше и в среднем достигает 20%, что приводит к увеличению сроков госпитализации, искусственной вентиляции легких, ухудшению прогноза и способствуют селекции и распространению резистентных штаммов микроорганизмов [С.Г.Фоминых, В.Б.Белобородов, Ю.Б.Белоусов, 2011]. До 50% внутрибольничных инфекций в ОРИТ вызваны грамотрицательными микроорганизмами [Т.Х.Тимохина, 2011; И.В. Животнева, 2012].

Одним из наиболее серьезных внутрибольничных осложнений у хирургических больных является внутрибольничная пневмония (ВП), которая занимает третье место (15-18%) в структуре всех ВБИ в стационаре после инфекций мягких тканей и мочевых путей, но показатели летальности при ВП в 10 раз выше. Особенно остро проблема ВП стоит в ОРИТ, где

пневмония составляет почти половину случаев всех ВБИ [А.А.Голубкова, 2011].

Эпидемиологические исследования показывают, что удельный вес инфекций в области хирургических вмешательств в клиниках общей хирургии составляет 88,3% в кардиохирургических - 70,3%, травматологических - 75,7% [В.И.Покровский, Н.А.Семина, 2000].

По данным литературы, 2/3 случаев ВБИ вызваны условно-патогенными грамотрицательными микроорганизмами и более чем в 40% случаев причиной их возникновения становятся руки обслуживающего персонала [Н.П.Малечик, 2007].

При хирургических инфекциях в этиологической структуре преобладают Pseudomonas aeruginosa, Proteus spp., Escherichia coil , Klebsiella spp. и др. [С.А.Верещагина, 2005]. В стационарах травматологического, хирургического и гинекологического профиля нередко выделяют неспоровые формы анаэробов - бактероиды, пептококки, пептострептококки [Е.Б.Брусина, 2000].

В настоящее время, в Республике Дагестан в целом и в г. Махачкала в частности, недостаточно изучены вопросы диагностики и регистрации ВБИ в хирургических стационарах. В этой связи изучение этиологической роли и антибиотикорезистентности грамотрицательных возбудителей ВБИ в стационарах хирургического профиля позволит разработать мероприятия по контролю, профилактике и лечению этих заболеваний, адаптированных к местным условиям с учетом антибиотикорезистентности этиопатогенов [В.Б.Белобородов, 2011].

Выше изложенное определяет актуальность изучения региональных особенностей развития и диагностики ВБИ в хирургических стационарах, и послужат основой для проведения регионального микробиологического мониторинга за патологией.

Цель исследования: изучение этиологической роли и антибиотикорезистентности грамотрицательных УПБ, возбудителей ВБИ в стационарах хирургического профиля г. Махачкала.

Для достижения поставленной цели были определены следующие задачи:

1. Провести сравнительный анализ бактериальной обсемепенности госпитальной среды Хирургического стационара РКБ и Травматологического центра г. Махачкала.

2. Определить микроорганизмы, наиболее часто встречающиеся в госпитальной среде хирургического стационара, и установить видовой спектр возбудителей внутрибольничного инфицирования хирургических больных.

3. Выявить наиболее частые нозологические формы ВБИ в Хирургическом стационаре и определить этиологическую структуру возбудителей.

4. Изучить видовой состав возбудителей внутрибольничного инфицирования пациентов ОРИТ Травматологического центра и определить уровень резистентности основных возбудителей внутрибольничной пневмонии к антибактериальным препаратам.

5. Провести сравнительный анализ чувствительности к антибактериальным препаратам клинически-значимых возбудителей ВБИ, выделенных от больных и из госпитальной среды.

6. Апробировать усовершенствованный метод выделения и ускоренной идентификации условно-патогенных энтеробактерий - возбудителей ВБИ. Научная новизна работы:

• Впервые проведенные микробиологические исследования по изучению уровня заболеваемости ВБИ и обследование госпитальной среды в Хирургическом стационаре Республиканской КБ и ОРИТ Травматологического центра г. Махачкала Республики Дагестан показали превалирование грамотрицательных условно-патогенных микроорганизмов - более 50 % от выделенных микроорганизмов.

• Выявлены доминирующие виды грамотрицательных УПМ Р.аепщтова, К.рпеитошае, Е.соН и АЫпе1оЬас1ег эрр. и определена их роль в возникновении внутрибольничного инфицирования хирургических ран и органов дыхания. Определен уровень резистентности клинически-значимых возбудителей ВБИ к антимикробным препаратам, широко применяемым в хирургических стационарах.

• Получены данные об особенностях инфицирования пациентов хирургических стационаров госпитальными штаммами и антибиотикорезистентности выделенных микроорганизмов, с учетом которой корректировалась стратегия этиотропной антибактериальной терапии. Полученные данные характеризуют региональные особенности распространения ВБИ в стационарах хирургического профиля.

Практическая значимость.

Впервые для бактериологической диагностики госпитальных инфекций в стационарах хирургического профиля использован комплекс экспериментально-производственных серий отечественных хромогенных питательных сред и доказана диагностическая эффективность использования комплекса (сокращение продолжительности бактериологического исследования и идентификации возбудителя) как при проведении клинических исследований, так и при санитарно-микробиологическом контроле объектов окружающей среды, что подтверждено Актами внедрения в бактериологическую практику.

Внедрение результатов исследования в практику здравоохранения.

Усовершенствованный способ микробиологической диагностики нозокомиальных инфекций в хирургических стационарах с использованием хромогенных питательных сред внедрен в бактериологическую практику (акт внедрения №10-369 от 21.01.2011 г.), а также в деятельность лаборатории «Клинической микробиологии» ООО НПП «Питательные среды» (акт

внедрения №10-368 от 21.01.2011г.), что позволяет ускорить диагностику ВБИ, вызванных УПЭ.

По результатам диссертационных исследований составлено «Методическое пособие для врачей бактериологов», которое утверждено и рекомендовано в микробиологическую практику на заседании Объединенного Ученого Совета и Центральной проблемной комиссии ДГМА, и заседании Коллегии Минздрава РД. Протокол № 9 от 18 мая 2009 г.

Материалы диссертации внедрены в учебную деятельность кафедры микробиологии, вирусологии и иммунологии ГБОУ ВПО «Дагестанская государственная медицинская академия».

Основные положения, выносимые на защиту:

1. Грамотрицательные полирезистентные условно-патогенные знтеробактерии являются ведущими этиопатогенами внутрибольничного инфицирования и установлена их роль в развитии инфекций нижних отделов дыхательных путей у обследованных пациентов в стационарах хирургического профиля.

2. P. aerugenosa и К. pneumoniae преобладают в видовом составе грамотрицательных возбудителей внутрибольничной пневмонии у пациентов отделения интенсивной терапии Травматологического центра. Видовой спектр микроорганизмов, выделенных с объектов госпитальной среды, соответствует микрофлоре, выделенной из клинического материала.

3. Установлено, что антибиотикорезистентность клинически-значимых грамотрицательных УПМ возбудителей ВБИ, выделенных из госпитальной среды и у пациентов хирургических стационаров, совпадают.

Личный вклад автора:

Муталиповой З.М. проведено микробиологическое обследование пациентов, медицинского персонала и объектов окружающей среды ОРИТ двух стационаров хирургического профиля, включая сбор клинического материала и весь объем бактериологических исследований с выделением и идентификацией возбудителей, изучением их биологических свойств и

определением антибиотикорезистентности этиопатогенов.

Сформирована база данных мониторинга за циркуляцией в обследованных стационарах госпитальных штаммов - возбудителей ВБИ. Автором проведен анализ и статистическая обработка и полученных результатов, сформулированы выводы и практические рекомендации. Апробация материалов диссертации.

Материалы по теме диссертации доложены и обсуждены на Всероссийской научной конференции «Теоретические основы эпидемиологии. Современные эпидемиологические и профилактические аспекты инфекционных и массовых неинфекционных заболеваний» Санкт-Петербург, 2008; IV международной конференции «Идеи Пастера в борьбе с инфекциями», Санкт-Петербург, 2008; 2-й Всероссийской Научно -практической конференции «Антибиотикорезистентность и антимикробная химиотерапия», Махачкала, 2008, 2014 гг.; на XV, XVI и XVII Российском национальном конгрессе «Человек и лекарство», Москва, 2011 гг.

Апробация диссертационной работы состоялась на заседании межкафедральной научной конференции кафедр микробиологии и госпитальной и факультетской хирургии ГБОУ ВПО «Дагестанская госмедакадемия» МЗ РФ от 2 июля 2012 года.

Публикации: Основные положения диссертации отражены в 18 печатных работах, в том числе в 4 статьях в рецензируемых научных журналах, рекомендованных ВАК. Опубликованы методические рекомендации.

Работа выполнена на кафедре микробиологии, вирусологии и иммунологии ГБОУ ВПО «Дагестанская государственная медицинская академия» и лаборатории «Клинической микробиологии и вирусологии» ООО НПП «Питательные среды» и является фрагментом научно-исследовательской программы: «Изучение видового спектра, биологических свойств и антибиотикорезистентности возбудителей ВБИ в многопрофильных стационарах г. Махачкала».

Объем и структура диссертации.

Диссертация изложена на 162 страницах машинописного текста, состоит из введения, обзора литературы, 4 глав собственных исследований, включая главу описания материалов и методов исследования, заключения, выводов списка использованной литературы, включающего 123 работы отечественных и 133 - зарубежных авторов; работа иллюстрирована 28 таблицами и 28 рисунками.

ГЛАВА I. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ. СОВРЕМЕННЫЕ АСПЕКТЫ МИКРОБИОЛОГИЧЕСКОЙ ДИАГНОСТИКИ ВНУТРИБОЛЬНИЧНЫХ ИНФЕКЦИЙ

1.1. Понятие о внутриболышчных инфекциях и их роль в патологии

человека

Внутрибольничная (нозокомиальная, госпитальная) инфекция (ВБИ) -заболевание, заражение которым происходит в лечебно-профилактических учреждениях и является часто встречающейся и важнейшей проблемой современной медицины [10,54,91,114,116,117,142]. По данным ВОЗ внутрибольничными инфекциями заболевают 8% пациентов стационаров [218,248]. Ежегодный ущерб в США от ВБИ составляет 4,6 млрд. долларов [132]. В России ежегодно регистрируется 50-60 тыс. случаев ВБИ, однако по расчетным данным, эта цифра в 40-50 раз выше[3,105]. Присоединение ВБИ к основному заболеванию увеличивает в среднем на 6-8 суток продолжительность пребывания пациента в стационаре. По минимальным расчетам ущерб, наносимый ВБИ, ежегодно в России составляет 5,6 млрд. руб. [27, 51, 53, 76, 83, 94, 96,105,115].

В современных условиях не представляется возможным оценить масштабы заболеваемости и смертности населения от ВБИ, так как эта группа инфекционных заболеваний не подлежит обязательной регистрации [91,115,117]. Вместе с тем социально-экономическая значимость инфекций, вызываемых условно-патогенными микроорганизмами (УПМ), очень значительна. Такая неблагоприятная тенденция имеет место на фоне значительных успехов биологии и медицины, совершенствования методов диагностики и лечения инфекций, появления большого количества новых эффективных антибактериальных и профилактических препаратов [31,100,101].

Демографические и экологические процессы, происходящие в современном обществе, позволяют предполагать, что в XXI веке инфекции,

вызываемые УПМ, будут занимать одно из ведущих мест в структуре инфекционной патологии человека [31,75,81,82,83].

В последние десятилетия в экономически развитых странах отмечается снижение заболеваемости и смертности населения от классических острозаразных инфекционных заболеваний и увеличение удельного веса инфекций, вызываемых условно-патогенными микроорганизмами. Эти возбудители являются причиной возникновения более 100 различных нозологических форм гнойно-воспалительных заболеваний [7,13,31,58,59,71,72,112,116].

Внутрибольничные инфекции объединяют самые различные инфекционные заболевания, приобретенные больными во время обследования или лечения. Это довольно распространенный вид патологии. Только в хирургических стационарах ВБИ составляют одну треть, причиной почти половины летальных исходов после операций являются осложнения гнойно-воспалительного характера, уровень госпитальной хирургической инфекции составляет 4-6% общей заболеваемости [6,7,9,10,15,70,80,91].

В более широком понятии под ВБИ подразумеваются все инфекционные заболевания, которыми в связи с лечебной деятельностью заболевают больные, окружающие их лица, медицинский персонал или любое лицо, подвергшееся врачебному исследованию или вмешательству. Таким образом, под этим понятием подразумеваются не только инфекции, переносчиками которой является медперсонал, но и все инфекционные заболевания, обусловленные недостаточной подготовкой медицинского персонала или неудовлетворительным состоянием лечебного учреждения. К ВБИ следует причислить и заболевания больничного персонала, полученные в связи с уходом за больными, их лечением. Такие заболевания правильнее называются госпитальными профессиональными заболеваниями [1,2,3,19,45,111,124].

По данным официальной статистики в России ежегодно регистрируется 40-50 тысяч случаев ВБИ. В то же время материалы выборочных исследований свидетельствуют о том, что истинная частота нозокомиальных

инфекций в 50 раз выше. По мнению ведущих отечественных специалистов в этой области, ВБИ регистрируются в России у 7-8% госпитализированных пациентов, что составляет более 2-2,5 млн. случаев [3,53,76,100,115,116,117]. Развитие данной группы инфекций осложняет течение основного заболевания и увеличивает продолжительность пребывания пациентов в стационаре в среднем на 6-8 дней. Ежегодные экономические потери, связанные с внутрибольничными инфекциями, достигают 5 млрд. рублей [1,3,96].

Уровень заболеваемости ВБИ может служить критерием качества медицинской помощи населению, так как, ВБИ и связанная с ними летальность используются как показатели условий, в которых протекает госпитализация больных [50,80, 101, 115, 183].

Среди факторов, определяющих формирование внутрибольничных инфекций, в литературе последних лет обсуждаются два: изменение биологических свойств возбудителей (в частности, рост числа полирезистентных штаммов) и снижение естественной реактивности организма.

Источники заражения различаются в зависимости от этиологического агента внутрибольничных хирургических инфекций, где этиологическим фактором является внешняя среда [33,51]. Основными источниками инфекции служат больные и медицинский персонал (носители). Исследования, проведённые в урологических и травматологических клиниках показали, что при выделении Proteus spp. основными источниками явились больные с нагноениями раны, вызванными протеями различных серогрупп, в связи с чем были разработаны принципы эпидемиологического надзора за внутрибольничными инфекциями, нашедшими отражение в документе Минздрава СССР «Эпидемиологический надзор за внутрибольничными инфекциями» (1988 г) [9,27,38,45,91,115].

Микробиологический контроль за ВБИ также является обязательной частью надзора за лечебно-профилактическими учреждениями и включает исследования больных и медицинского персонала на бактерионосительство,

объектов окружающей среды и лекарственных препаратов с целыо установления их микробной контаминации, прежде всего больничными эковарами [2,101,115,117].

Для внутрибольничной инфекции характерным является вовлечение в эпидемический процесс большинства госпитализированных лиц, преимущественно в виде носительства. Инфекция приобретает выраженное течение у лиц, относящихся к контингентам риска: то есть у лиц, подвергающихся различным инструментальным, диагностическим или оперативным вмешательствам, при сниженной иммунной резистентности или сниженной колонизационной устойчивости организма [96,101,112].

Среди возбудителей ВБИ в последние годы все больший удельный вес приобретают условно-патогенные грамотрицательные микроорганизмы [31]. Изменение этиологических агентов требует изменений в характере и направленности микробиологических исследований окружающей среды в лечебных учреждениях, а таюке в комплексе профилактических и лечебных мероприятий. В этой связи основные направления исследований ведутся по обнаружению УПМ в окружающей среде стационаров. Вместе с тем, характер оперативного вмешательства, особенности клинического течения послеоперационного периода и назначаемой терапии, иммунологический статус больного во многом определяют вероятность развития гнойных инфекций в послеоперационном периоде, а тип хирургического стационара определяет частоту и закономерности эпидемического процесса госпитальной инфекции [15].

Еще в 70- 80 г. в США внутрибольничная инфекция была объявлена национальной проблемой. По данным Министерства здравоохранения США из 30 млн.человек, поступивших в различные стационары страны для лечения, у 300 тыс. была зарегистрирована ВБИ, вызванная грамотрицательными условно-патогенными микроорганизмами. Из этого числа заболевших, 100 тыс. погибли от септицемии [216,234,235].

В Англии внутрибольничная инфекция в той или иной форме регистрируется у 7-10% всех госпитализированных больных [221,225]. В Венгрии из 1,5 млп.больных, ежегодно госпитализируемых по стране, внутрибольничная инфекция выявляется примерно у 100 тыс.человек [221]. В Испании вопросы контроля при ВБИ были подняты в начале 70-х годов. В настоящее время системой эпидемиологического надзора охвачены 66% больниц. Количество ВБИ колеблется от 5 до 17%, составляя в среднем 11,2+0,5% [133].

В Италии в 1983 г. был создан Интернациональный Исследовательский Совет, объединяющий 21 исследовательскую группу. В задачу Совета входит изучение эпидемиологии ВБИ в стране, методов контроля и мер по ее предупреждению. Уровень ВБИ в среднем составлял 6,8 %, а в отделении интенсивной терапии доходил до 30,4% [144].

В ФРГ был принят закон, согласно которому все больницы обязаны информировать органы здравоохранения о всех вспышках ВБИ, когда заболевают одновременно 3 и более человек. В целом по стране из 10 млп.больных, поступающих в стационары на лечение, ежегодно у 500-800 тыс.человек выявляют ту или иную форму ВБИ. В Канаде уровень ВБИ составляет 7-8% от числа госпитализированных больных в год [185,221].

Таким образом, внутрибольничные инфекции являются проблемой для стран с высокоразвитой медициной; по заболеваемости и смертности ВБИ превосходит несчастные случаи на транспорте и раковые заболевания [10,51,54,72,73,91,94]. Приведенные данные свидетельствуют о том, что проблема внутрибольничной инфекции актуальна для всех стран и является одной из основных в медицине.

1.2. Внутрибольничные инфекции в хирургии и методы их

профилактики

Как отмечено в предыдущей главе литературного обзора в настоящее время в экономически развитых странах ВБИ стала серьезной клинической и экономической проблемой здравоохранения. Уровень ВБИ зависит от многих факторов и колеблется не только в различных странах, но и в отделениях

одного и того же госпиталя, и в большинстве случаев составляет 15-35% от общего числа больных, находящихся в стационарах [3, 30, 32, 33, 34, 70, 74, 84, 96, 102].

Проблема профилактики послеоперационных гнойных осложнений в хирургии связаны с возрастанием числа сложных операций, с применением современных технологий, увеличением объема и продолжительности оперативных вмешательств, с увеличение травматичности тканей и кровопотерь, что способствуют развитию послеоперационных инфекционных осложнений, в первую очередь - раневой инфекции, лечение которой требует дополнительных затрат и значительно увеличивает время пребывания больного в стационаре [27,30,38,39,40]:

Несмотря на повышение техники оперативных вмешательств и внедрение системы профилактических мероприятий, частота послеоперационной раневой инфекции продолжает оставаться высокой. Так, число послеоперационных гнойных осложнений в плановой хирургии составляет 6-8%; при этом, если при чистых операциях гнойные осложнения развиваются в 0,8-2%, то при контаминированных количество нагноений ран увеличивается до 20% [28, 35, 108].

Так, при выполнении лапароскопической холецистэктомии частота послеоперационных гнойных осложнений составляет 0,6-6%, а при лапаротомной холецистэктомии она возрастает до 5-26%. В структуре послеоперационных гнойно-воспалительных осложнений также небольшой процент (1,8%) занимают и операции селективной проксимальной ваготомии. Увеличение частоты раневых гнойных осложнений наблюдается после операций со вскрытием полых органов. При этом частота послеоперационных инфекционных осложнений значительно возрастает при резекции желудка и колеблется от 4 до 26%. Частота гнойных осложнений остается высокой при операциях на печени - 27-58%, на поджелудочной железе - 40-70% [17, 22, 24, 40, 63, 64, 132, 151].

Большое число (68%) послеоперационных гнойно-септических осложнений наблюдается при хирургических вмешательствах на толстой кишке. Наиболее тяжелым осложнением в абдоминальной хирургии является перитонит, частота развития которого колеблется от 3 до 70%, а летальность при этом достигает 20% [17, 22, 28, 30, 32].

По данным отчетов национальной системы наблюдения за ВБИ США, инфекция области хирургического вмешательства (ИОХВ) составляет от 14 до 16% всех ВБИ среди всех госпитализированных пациентов. Из общего числа ИОХВ две трети локализовались в области разреза и одна треть вовлекала органы или полости в области хирургического доступа. Несмотря на значительный прогресс в области предупреждения, диагностики и лечения хирургической инфекции ее развитие в США приблизительно удваивает стоимость госпитализации [216, 235].

Если ранее вопрос о целесообразности применения антибиотиков с профилактической целью в хирургии широко дискутировался, то в настоящее время большинство исследователей пришли к выводу о необходимости и важности применения данного метода [22, 30, 35, 39, 42, 102, 107, 108, 118, 155, 227]. Сегодня антибактериальная профилактика послеоперационных инфекционных болезней - обычная часть хирургической практики при чисто-загрязненных операциях, а также при некоторых чистых процедурах [164].

Под профилактическим применением антибиотиков в хирургии следует понимать предупреждение послеоперационных инфекционных осложнений путем дооперационного (предоперационного) назначения лекарственных средств, обладающих широким спектром антимикробного действия, что приводит к сокращению числа послеоперационных нагноений, смертности.

В литературе в последние годы отмечаются подходы к стандартному определению ИОХВ, что представляется возможным при сопоставлении инфекционных осложнений любого анатомического раздела организма, которые были вскрыты или подвергались манипуляциям в процессе операции

и которые могут явиться критерием эффективности предоперационного профилактического назначения антимикробных препаратов[1, 48, 177].

Следует отметить, что при поступлении в стационар пациент неизбежно сталкивается с госпитальными штаммами. При этом по мере увеличения сроков пребывания в лечебном учреждении возрастает вероятность замены собственной микрофлоры пациента на госпитальную. В связи с этим инфекционные процессы, развивающиеся у госпитализированных пациентов, могут быть вызваны как внеболышчной, так и госпитальной микрофлорой [40].

В соответствии с данными NNIS (США), а также отечественных исследователей распределение возбудителей, выделеных при ИОХВ, за последнее десятилетие существенно не изменилось, несмотря на то, что эти показатели в различных хирургических клиниках отличаются достаточным разнообразием [39,40, 123, 157].

Наиболее часто выделяемыми возбудителями являются: Staphylococcus aureus, коагулазонегативные стафилококки, Enterococcus spp. и Escherichia coli. Все большую роль в развитии ИОХВ стали играть резистентные к антимикробным препаратам возбудители - метициллинрезистентный S. aureus (MRSA), а также Candida albicans [32, 33, 34, 63, 64].

Список литературы диссертационного исследования кандидат наук Муталипова, Заира Магомедкамиловна, 2014 год

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

1. Акимкин, В. Г. Профилактика виутрибольничных инфекций / Акимкин, В. Г. //Бюллетень ЗН и СО.-1997.-№ 1.-С. 5-8.

2. Акимкин, В.Г. Основные направления использования дезинфицирующих средств в профилактике внутрибольничной инфекции // Главная медицинская сестра.-2003.- № 1 .-С. 123.

3. Акимкин, В.Г. Эпидемиологический надзор за внутрибольничными инфекциями и система социально-гигиенического мониторинга / Акимкин,

B.Г. // Гигиена и санитария. -2004.-№ 5.- С. 19-22.

4. Антонов, В.Б. Патогенез, диагностика и терапия микозов и ми-когенной аллергии / Тез.докл.З-го международного микологического симпозиума//СПБ.- 1995. -С. 17.

5. Бектемиров Т.А. Препараты для диагностики инфекционных заболеваний. / Медуницын Н.В. // Ж. клиническая лабораторная диагностика. - 1999.-№11.-

C.3-4.

6. Белобородов, В. Б. Проблема нозокомиальной инфекции в отделениях реанимации и интенсивной терапии и роль карбопенемов //Клиническая фармакология и терапия. -1988.- № 7(2). - С. 13-16. 16.

7. Белобородова, Н.В. Дискуссия о бактериемии и сепсисе //Антибиотики и химиотерапия. - 2002. - Т. 47. №8. - С. 20-27.

8. Белобородова Н.В. Алгоритмы антибактериальной терапии тяжелых инфекций. - 2000. - 30 с.

9. Бельский Д.В., Руднов В.А., Белкин A.A., Солдатов A.C., Черкасов Г.В., Язов O.A., Щеголев A.B., Пичугин А.И., Болтаев П.Г., Семенькова Г.В. Нозокомиальные инфекции в ОРИТ нейрохирургического профиля (многоцентровое исследование «НИНОР») // Журнал клиническая микробиология и антимикробная химиотерапия.- 2010. - Том 12.- №2 (приложение 1). - С.15.

10. А Беляков, В. Д. Госпитальная инфекция / В.Д. Беляков, А.П. Колосов, ПЛО. Остроумов, В.И. Немченко. - Л.: Медицина, 1976. - С.232.

11. Блинкова JI.П. Физиологические и биохимические свойства микроорганизмов. / Горобец О.Б., Мельникова В.А. // В кн. «Общая санитарная микробиология с техникой микробиологических исследований». Под ред. А.С.Лабинской. Л.П. Блинковой, А.С.Ещиной. - М.: Медицина, 2004.- С.135-197.

12. Богомолова Н.С., Большаков Л.В., Кузнецова С.М., Орешкина Т.Д. Неферментирующие грамотрицательные бактерии в реконструктивной хирургии: динамика частоты выделения и чувствительности к антибиотикам за 5-летний период (2005-2009 гг.) // Журнал клиническая микробиология и антимикробная химиотерапия.- 2010. -Том 12.- №2 (приложение 1).- С. 17.

13. Борисов, Л.Б. Медицинская микробиология, вирусология и иммунология. -M, 2001.-С.736.

14.Брискин Б.С., Хачатрян H.H., Ионов С. А., Хмелевский C.B. Антибактериальная терапия в комплексном лечении больных перитонитом. В кн.: Антимикробная терапия тяжелых инфекций в стационаре. М. -2003. - С. 34-45.

15. Брусина Е.Б., Лифшиц М.Л. Эпидемиология и нерешенные вопросы профилактики гнойно-септических инфекций в хирургии //Хирургия. - 1985. - п. 5. -С. 19-21.

16.Бухарин О.В. Механизмы выживания бактерий. М., Медицина, 2005.

17. Буянов В.М., Родоман Г.В. Проблемы профилактики нагноений послеоперационных ран. //Хирургия. - 1996. - N 9. - С. 132-135.

18. Венцел, В. П. Внутрибольничные инфекции.- М.: Медицина, 1990.- С. 655.

19. Веткина, И. Ф. Значение гигиенической обработки рук в профилактике внутрибольничных инфекций / И. Ф. Веткина, Л.И. Бородянский, Е.К. Иванова // Эффективная фармакотерапия. -2007.-Ж 3 - С. 34-38.

20. Галкин Д.В., Козлов P.C. Современные возможности терапии тяжелых инфекций: цефоперазон/сульбактам и его роль в преодолении резистентности возбудителей нозокомиальных инфекций. Фарматека 2006; 4(119): 18-27.

21. Галкин Д.В. Карбапенемы через 20 лет после открытия: современные микробиологические и клинические аспекты. Клин Микробиол Антимикроб Химиотер 2007; 9(2): 133-52.

22. Гельфанд Б.Р., Гологорский В.А., Бурневич С.З. и др. Антибактериальная терапия абдоминальной хирургической инфекции. - М. -2000, - С. 144.

23.Гельфанд Б. Р., Гологорский В. А., Белоцерковский Б. 3., Карабак В. И. и др. Нозокомиальная пневмония, связанная с искусственной вентиляцией легких (НПивл), у хирургических больных. М., 2000г; 12.

24.Гельфанд Б.Р., Бурневич С.З., Брюхов А.Н. Пухаев А.Д. Антибиотикопрофилактика и терапия при панкреонекрозе. В кн.: Антимикробная терапия тяжелых инфекций в стационаре. М. -2003. -С.46-58.

25. Гельфанд Б.Р., Белоцерковский Б.З., Проценко Д.Н. Нозокомиальные пневмонии в хирургии. Методические рекомендации. Инфекции и антимикробная терапия. 2003; 5 (6): 124-9.

26. Гельфанд Б.Р., Белоцерковский Б.З., Попов Т.В., Карабак В.И. Этиологическая и нозологическая структура госпитальной инфекции в отделениях реанимации хирургического профиля. Ж. Инфекции в хирургии, том 1,2003, №4, с. 2-11.

27. Гиршин С.Г. Клинические лекции по неотложной травматологии. М. АЗБУКА. 2005 г., 543 с.

28. Голубкова A.A., Богушевич Ю.А. Гнойно-септические инфекции у пациентов в клинике абдоминальной хирургии и мероприятия по их профилактике // Журнал клиническая микробиология и антимикробная химиотерапия.- 2010. -Том 12.- №2 (приложение 1).- С.22.

29. Госпитальная инфекция, обусловленная P.aeruginosa в отделении реанимации /М.М.Свирская, В.А.Строков, Н.Г.Анциферов, А.Ф.Мороз // Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. - 1986. - №5. -С. 7-11.

30. Гостищев В.К., Буянов С.H., Гальперин Э.И., Затевахин О.И. и др. Антибактериальная профилактика инфекционных осложнений в хирургии. Методические рекомендации. Glaxo Wellcome. -2000. -С. 18.

31. Гудкова Е.И., Адарченко A.A., Слабко И.Н., Ласточкина Т.М., Симоненко Л.И. Микробиологический мониторинг госпитальных эковаров условно-патогенных бактерий - возбудителей внутрибольничных инфекций. Мед Нов 2003; (3): 11-5.

32. Гуляев А.Е., Лохвицкий C.B., Ширинский В.Г. Антимикробная профилактика в хирургии. М. -2003. -С. 125.

33. Гучев И.А., Сидоренко C.B. Инфекции в хирургии. Фармакотерапия и профилактика. -Смоленск. -2004.

34. Деллинджер Э.П. Профилактическое применение антибиотиков в хирургии.//Клиническая микробиология и антимикробная химиотерапия. -2001. - N 3, - Том 3, - С. 260-265.

35. Дехнич AB, Эйдельштейн ИА, Нарезкина АД, и др. Эпидемиология резистентности нозокомиальных штаммов Staphylococcus aureus в России: результаты многоцентрового исследования. Клиническая микробиология и антимикробная химиотерапия 2002; 4(4):325-36.

36. Дмитренко, O.A. Особенности современных метициллинрезистентных штаммов стафилококков как возбудителей внутрибольничных инфекций. Идентификация эпидемических клонов, выделенных в стационарах г. Москвы / Дмитренко, O.A. // Материалы VIII съезда Всеросс. общества эпидемиологов, микробиологов и паразитологов. - 2002. - Т. 4. -С.83-84.

37. Егоров В.И., Цвилих С.М. Анализ послеоперационных осложнений лапароскопической холецистэктомии.//Эндоскопическая хирургия. - 1997. N 2. - С. 20-22.

38. Ерюхин И.А., Гельфанд Б.Р., Шляпников С.А. Хирургические инфекции. Руководство. Питер. -2003.

39 Ефименко H.A., Хрупкин В.И., Хвещук П.Ф. и др. Антибиотикопрофилактика и антибиотикотерапия основных форм хирургических инфекций: Методические рекомендации. М.: ГВМУ МО РФ, -2002. -50с.

40. Ефименко H.A., Гучев И.А., Сидоренко C.B. Инфекции в хирургии. Фармакотерапия и профилактика. -Смоленск. -2004.

41. Жданюк A.C., Стецюк О.У., Сивая О.В., Гудков И.В., Кречикова О.И. Нозокомиальная пневмония у травматологических больных: результаты проспективного наблюдательного исследования. Клин Микробиол Антимироб Химиотер 2010, том 12, №2, С. 106-116.

42. Зубков М.Н. Практическое руководство по клинической микробиологии и антимикробной терапии для врачей стационарной помощи. М.: МГУП. -2002. - С. 270.

43. Зубков М.Н. Диагностика и антимикробная терапия катетер-ассоциированных инфекций кровотока. Хирургия. 2008, 1: 18-22.

44. Зубков М.Н. Роль карбапенемов в условиях эскалации антибиотикорезистентности грамотрицательных бактерий. Рус Мед Журн 2008; 16(2): 106-16.

45. Зуева, Л.П. Стратегия борьбы с госпитальными инфекциями и пути ее реализации//Журнал медицинской академии. - 2005.- № 3.- С. 113-120.

46. Иванов Д.В., Бунятян Н.Д., Утешев Д.Б., Корсун Л.В. Особенности антибиотикочувствительности важнейших грамотрицательных возбудителей нозокомиальных инфекций. Вест Росс Гос Мед Универ 2009; (2):26-9.

47. Ильина Т.С., Романова Ю.М., Гинцбург А.Л. Системы коммуникаций у бактерий и их роль в патогенности. Мол. генетт, микробиол. вирусол. 2006,3: 22-29.

48. Карабак В. И. Микробиологический мониторинг за возбудителями нозокомиальных инфекций (на примере отделений реанимации и интенсивной терапии). Антибиотики и химиотерапия, 2000-№3, стр.20-23.

49.Ковалева, Е.ГТ. Эпидемиология и профилактика пневмоцистоза, как оппортунистической инфекции // Эпидемиология и вакцинопрофилактика.-2007.-№6.-С. 10-14.

50. Ковалева, Е.П. Профилактика внутрибольничных инфекций / Е.П. Ковалева, Н.А. Семина.- М., 1993.- 228 с.

51. Козлов Р.С. Нозокомиальные инфекции: эпидемиология, патогенез, профилактика, контроль. Клин Микробиол Антимикроб Химиотер 2000; 2(1:16-30).

52. Колпакова С.Д. Принципиальный новый подход к идентификации бактерий. / Колпакова Г.А., Савченко Р.П. // Ж. клиническая лабораторная диагностика. - 2005.- №9.- С.ЗЗ.

53. Коршунова Г.С. Эпидемиологическая ситуация по ВБИ в РФ в 19972001 г.г. (Доклад на 8-ом съезде эпидемиологов, микробиологов и паразитологов). // Эпидемиология и инфекционные болезни.- 2002.-№6.-С.22-24.

54. Кочеровец В.И. Решённые и нерешённые задачи клинической микробиологии в системе отечественного здравоохранения. / Сбойчаков В.Б. //Ж. клиническая лабораторная диагностика. - 2005. -№9. -С. 26.

55. Кузин М.И., Вандяев Г.К., Хлебников Е.П. и др. Профилактическое применение антибиотиков в плановой абдоминальной хирургии. //Хирургия. -1986,-N 3, -С.7-11.

56. Кузнецов М.В., Николаева Н.В., Розанова С.М., Карпунина Т.И. Формирование биопленок нозокомиальными штаммами Pseudomonas aeruginosa. Журн.микробиол., 2011, № 4, С. 8-14.

57. Лабинская А.С. Общая санитарная микробиология с техникой микробиологических исследований. / Блинкова Л.П., Ещина А.С. - М.: Медицина, 2004,- 576с.

58. Лабораторный контроль противоэпидемического режима стационаров и методика бактериологических исследований при возникновении гнойно-

септических инфекций (1Ш): Методические рекомендации / МЗ РСФСР: Сост. Л.П.Зуева, Б.Г.Хайсина, М.Н.Дьякова и др. - Л., 1985. - 95 с.

59. Лабораторные методы контроля противоэпидемического профиля и особенности лабораторных исследований при возникновении гнойно-воспалительных и септических заболеваний / Л.П.Зуева, Б.Г.Хайкина, Г.Е.Афиногенов и др. // Методические рекомендации. - Л. - 1981. - 79 с.

60. Меджидов М.М. Справочник по микробиологическим питательным средам. - М.: Медицина, 2003.-206с.

61. Меджидов М.М., Меджидов Ш.М., Омарова С.М. Микротест-системы в лабораторной диагностике инфекционных болезней. -М.: Медицина, 2006.-70с.

62. Меджидов М.М., Юнусова Р.Ю., Горелова В.Г., Степанова Э.Д., Омарова С.М. Оценка диагностической эффективности отечественных хромогенных питательных сред, использованных для выделения и идентификации уроинфекций. Труды научно-практической конференции «Лабораторная медицина в свете концепции развития здравоохранения России 2020». М., 2009.- С. 235-236.

63. Меньшиков Д.Д., Каншин H.H., Пахомова Г.В., Смирнова C.B., Воленко A.B., Лазарева Е.Б. Профилактика и лечение внутрибольничных гнойно-септических инфекций //Эпидемиология и инфекционные болезни.-2000.-№5.-С.44-46.

64. Меньшиков Д.Д., Астафьева Р.Ф., Курилин Б.Л., Груненкова И.В., Лашенкова Н.Н.,Куприков C.B., Меньшикова Е.Д., Васильев В А. Мониторинг возбудителей гнойно-септических заболеваний в стационаре скорой медицинской помощи // Микробиология.- 2003.- №1. -С. 10-13. 65. Методические рекомендации. Нозокомиальная пневмония у взрослых: практические рекомендации по диагностике, лечению и профилактике (пособие для врачей). Чучалин А.Г., Синопальников А.И., Страчунский Л.С. с соавт. Клин микробиол антимикроб химиотер. 2005, Том 7, № 1, С.4-32.

66. Методические рекомендации по микробиологической диагностике раневых инфекций в лечебно-диагностических учреждениях армии и флота. / В.М.Добрынин и др.- С-Пб. НИИ эпидемиологии и мкробиологии им.Пастера- С-Пб. - 1999.- с.75.

67. Методические указания по применению унифицированных микробиологических (бактериологических) методов исследования в клинико-диагностических лабораториях: Приложение 1 к приказу МЗ СССР № 535 от 22 апреля 1985 г.

68. Методические указания «Определение чувствительности микроорганизмов к антибактериальным препаратам». МУК 4.2.1890-04.

69. Митрохин С. Д. Гнойные экссудаты, раны и абсцессы. Современный алгоритм микробиологического исследования. Инфекции и антимикробная терапия, 2002 - №3.

70. Мишаров О.С, Бородин И.Ф. Внутригоспитальпая инфекция в хирургических стационарах. - Минск, 1986.

71. Мороз, А.Ф. Синегнойная инфекция. - М.: Медицина, 1988.

72. Никитюк, Н.Ф. Бактериологический мониторинг в деле профилактики внутрибольничных инфекций / Н. Ф. Никитюк, Н.В. Колесникова // Материалы VIII съезда Всероссийского, общества эпидемиологов, микробиологов и паразитологов. - 2002. - Т. 3. - С. 160-161.

73. Николаев Ю.Ф., Плакунов В.К. Биопленка-«город микробов» или аналог многоклеточного организма? Микробиология. 2007, 2: 149-163.

74. Онищенко Г.Г. Контроль за инфекционными заболеваниями -стратегическая задача здравоохранения России в XXI веке. // Ж. эпидемиология и инфекционные болезни. - 2002. - №6. - С. 4-16.

75. Онищенко Г.Г. Инфекционные болезни - важнейший фактор биоопасности. //Ж.эпидемиология и инфекционные болезни.- 2003. - №3.- С. 4-16.

76. Онищенко, Г.Г. Заболеваемость внутрибольничными инфекциями в РФ // Гигиена и санитария. -2008. -№3. -С.4-6.

77. Омарова С.М. Мониторинг микрофлоры госпитальных инфекций мочевыводящих путей при выборе эффективной антибактериальной терапии. / Ахмедова Э.М., Тагирова Г.М. // Материалы 2 Всероссийской научно-практической конференции «Антибиотикорезистентность и антимикробная химиотерапия». - Махачкала.- 2008. -С. 32-33.

78. Омарова С.М. Антибиотикорезистентность E.coli, выделенных у амбулаторных больных с инфекцией мочевыводящих путей. / Ахмедова Э.М., Тагирова Г.М., Нурмагомедова З.М. // Материалы 2 Всероссийской научно-практической конференции «Антибиотикорезистентность и антимикробная химиотерапия». - Махачкала.- 2008.- С. 33-35.

79. Пак С.Г. Лабораторные тесты в диагностике и мониторинге инфекционных заболеваний. / Малов В.А. // Ж. клиническая лабораторная диагностика. - 2002.-№12.-С.7-8.

80. Петраков A.A., Артучева A.A., Гладштейн А.И. Микроэкологи ческие аспекты профилактики внутрибольнинчной инфекции в трамато-лого-ортопедическом стационаре // В кн.: Профилактика и лечение ране вой инфекции у травматолого-ортопедических больных / Под ред. Ю.Г.Шапошникова. - М., 1991. -С.36-42.

81. Поздеев O.K. Энтеробактерии: Руководство для врачей. / Фёдоров Р.В. -М.:ГЕОТАР-Мед, 2007.-720с.

82.Покровский, В.И. Актуальные проблемы инфекционной патологии / Покровский В.И., Малеев В.В. // Эпидемиологические и инфекционные болезни, 1999.-№2.-С. 17-20.

83. Покровский, В. И. Национальная система надзора за внутриболышчными инфекциями / В.И. Покровский, H.A. Семина, Е.П. Ковалева // Эпидемиология и инфекционные болезни. - 2001.- № 3.-С.4-6.

84. Политика применения антибиотиков в хирургии 2003. Смоленск. -2003.

85. Попова Т.С., Шестопалов А.Е., Тамазашвили Т.Ш., Лейдерман И.Н. Нутритивная поддержка больных в критических состояниях. Москва. -2002-С.320.

86. Приказ МЗ СССР № 535 «Об унификации микробиологических (бактериологических) методов исследования, применяемых в клинико-диагностических лабораториях лечебно-профилактических учреждений».-М.:Медицина. - 1985. - 126 с.

87. Приказ №720 МЗ СССР (от 31 июля 1978 г.) «Об улучшении медицинской помощи больным с гнойными хирургическими заболеваниями и усилению мероприятий по борьбе с внутрибольничной инфекцией».- М.: Медицина, - 1978. - 46 с.

88. Рациональная антимикробная фармакотерапия. Руководство для практикующих врачей. (Ред. Яковлев В.П., Яковлев С.В.) М. -2003. - С. 1008.

89. Решедько Г.К., Рябкова Е.Л., Кречикова О.И., Сухорукова М.В., Шевченко О.В., Эйдельштейн М.В. Козлов Р.С., исследовательская группа РОСНЕТ. Резистентность к антибиотикам грамотрицательных возбудителей нозокомиальных инфекций в ОРИТ многопрофильных стационаров России. Клин Микробиол Антимикроб Химиотер 2008; Том 10, 2, С.163-178.

90. Решедько Г.К., Щебников А.Г., Морозов М.В., Решедько Л.A. Escherichia coli как возбудитель нозокомиальных инфекций в ОРИТ. Клин.микробиол. и антимикробн. Химиотерапия. 2011, том 13, №4, с.314-321.

91. Рычагов, И.П. Теоретические и организационные основы управления эпидемическим процессом внутрибольничных инфекций в хирургии//автореф.дисс.мед.наук - Кемерово, 2007. - С.38.

92. Рябкова Е.Л., Иванчик Н.В., Сухорукова М.В. с соавт. Резистентность нозокомиальных штаммов Escherichia coli в стационарах России. Клин микробиол атимикроб химиотер 2009; 11:161-9.

93. Самодова, О. В. Распространенность внутрибольничных инфекций в многопрофильной детской больнице / О. В. Самодова, А. Хайду// Детские инфекции.-2007.-№1.-С. 25-27.

94. Сафронова, С. О. Микробиологический мониторинг / С. О. Сафронова, Н. А. Никифорова // Тезисы докладов Международного конгресса «Практикующий врач». - Сочи, 2002. - С. 106.

95. Сбойчаков В.Б. Микробиология с основами эпидемиологии и методами микробиологических исследований.- С-Пб.: СпецЛит, 2007.- С. 359-362.

96. Семина, Н. А. Заболеваемость внутрибольничными инфекциями в Российской Федерации / Н.А. Семина, Н.С. Прямухина, Н. Я. Жилина // Журнал микробиологии, эпидемиологиии и инфекционных болезней. - 1995. - № 2. - С. 30-34.

97. Сидоренко С.В. Роль бактериальных биопленок в патологии человека. Инф. Хир. 2004,2(3): 16-20.

98. Сидоренко СВ, Резван СП, Еремина ЛВ, и др. Этиология и антибиотикочувствительность возбудителей тяжелых госпитальных инфекций в отделениях реанимации. Антибиотики и химиотерапия. 2005; 50(2-3): 33-41.

99. Скала Л.Э. Современные технологии в клинической микробиологии. / Лукин И.Н., Нехорошева А.Г. // Ж. клиническая лабораторная диагностика. -2005.-№9.-С. 27.

100. Соколова, В. И. Современные возможности и перспективы комплексного лечения больных с тяжелыми бронхолегочными заболеваниями / В. И. Соколова, В.А. Шендерович, В.А. Орлов, Л.В. Елагина //Антибиотики и химиотерапия. - 2002. - Т.47, № 8. -С 16-19.

101. Страгуненко, Л.С. Антибактериальная терапия. Механизмы антибиотикорезистентности: Практическое руководство / Л.С. Страгуненко, Ю.Б. Белоусова, С.Н. Козлова. - М., 2000. - С. 53.

102. Страчунский Л.С. Антибиотикопрофилактика в хирургии: взгляд клинического фармаколога.//Методические рекомендации «Рациональные подходы к профилактике инфекционных осложнений в хирургии», - 1997, -С. 12-21.

103. Страчунский ЛС, Решедько ГК, Стецюк ОУ, Андреева АС, Щебников АГ, Исследовательская группа РОСНЕТ. Сравнительная активность антисинегнойных антибиотиков в отношении нозокомиальных штаммов Pseudomonas aeruginosa, выделенных в отделениях реанимации и

интенсивной терапии России. Клин микробиол антимикроб химиотер. 2003; 5(1): 35-46.

104. Страчуиский JI.C., Решедько Г.К., Эйдельштейн М.В., Стецюк О.У., Рябкова E.JL, Андреева A.C., исследовательская группа POCHET. Сравнительная активность цефепима и других антибиотиков в отношении нозокомиальных грамотрицательных возбудителей инфекций в России. Клин микробиол антимикроб химиотер. 2003; 5(3): 259-74.

105. Федеральная служба государственной статистики. Демографический ежегодник России. 2008 г. http://www.gks.ru/

106. Федоровский В.В. Анализ микрофлоры и результаты теста на госпитальный штамм в хирургическом стационаре. / Афанасьева JI.H. // Материалы 5 Всероссийской конференции «Современные проблемы антимикробной химиотерапии». - М.-2003.-С.35.

107. Хелл К. Антибиотикопрофилактика в хирургии: препараты пролонгированного и непролонгированного действия.//Антибиотики и химиотерапия. 1992. Т.37. N 7. -С.38-42.

108. Хлебников Е.П., Блатун Л.А., Макаренкова Р.В. и др. Антибиотикопрофилактика в плановой хирургии.//Антибиотики и химиотерапия. - 1990.-N 5.-С. 42-43.

109. Хлебников Е.П., Кубышкин В.А., Елагина Л.В. и др. Применение цефуроксима для предупреждения послеоперационных осложнений при лапароскопической холецистэктомии. Эндоскопическая хирургия. - 2001. -N 4, - С.34-38., 40.

110. Хлебников Е.П., Елагина Л.В., Вишневский В.А., Кубышкин В.А. и др. Изучение предоперационного применения офлоксацина при очаговых образованиях печени. Антибиотики и химиотерапия. - 2002. - 47. - N 2. -С.24-28.

111. Храпунова, И. А. Риск возникновения внутрибольничных инфекций у медработников многопрофильной больницы //Эпидемиология и инфекционные болезни. - 2003 .-№ 4.- С. 18-23.

112. Чистякова, А. Ю. Профилактика внутрибольничного инфицирования гемконтактиыми инфекциями в отделениях диализа / А. Ю. Чистякова, С.В. Чужинов // Главная медицинская сестра.- 2004 - №9. - С. 107-113.

113. Чучапин А.Г., Синопальников А.И., Страчунский J1.C. с соавт. Нозокомиальная пневмония у взрослых: практические рекомендации по диагностике, лечению и профилактике. Клин Микробиол Антимикроб Химиотер 2005; 7: 4-31.

114. Чучалин А.Г., Гельфанд Б.Р., ред. Нозокомиальная пневмония у взрослых (Национальные рекомендации). Клин Микробиол Антимикроб Химиотер 2009; 11(2): 100-42.

115. Шагинян, H.A. Совершенствование системы эпидемиологического надзора за внутрибольничными инфекциями: триада мониторинга // Материалы VIII съезда Всероссийского общества эпидемиологов, микробиологов и паразитологов. - 2002.-Т.З. - С. 179-180.

116. Шагинян, Н. А. Неферментирующие грамотрицательные бактерии в этиологии внутрибольничных инфекций: клинические, микробиологические и эпидемиологические особенности / H.A. Шагинян, И.А. Чернуха И.А. // Клиническая микробиология и антимикробная химиотерапия - 2005. - №3. -С.271-286.

117. Шамсиддинов, А.Т. Обеспечение санитарно-эпидемиологической защиты от ВБИ пациентов в лечебно-профилактических учреждениях // Эпидемиология и вакцинопрофилактика. -2007.-№ 6- С.28-30.

118. Шевола Д., Дмитриева Н. Антибиотикопрофилактика в медицинской практике.-2001.-С. 128.

119. Шкарин В.В. Способ идентификации госпитальных штаммов синегнойной палочки, циркулирующих в хирургических стационарах. / Воробьёва О.Н., Никифоров В.А. // Ж. клиническая лабораторная диагностика. -1999.-№12.- С.21.

120. Шляпников СА, Ефимова ИС. Вторичный и третичный перитонит: роль антибактериальной терапии в комплексном лечении. Антибиотики и химиотер. 2001; 46 (12):35-41.

121. Юнусова Р.Ю., Горелова В.Г., Степанова Э.Д., Омарова С.М. Отечественная хромогенная среда для дифференциации клебсиелл. // Ж. клиническая лабораторная диагностика. -2010.- №3.- С.49-51.

122. Ягудина Р.И., Куликов А.Ю., Крысанов И.С. Фармаэкономический анализ стартовых эмпирических режимов антибактериальной терапии тяжелых нозокомиальных инфекций в отделении реанимации и интенсивной терапии. Русский медицинский журнал 2006; 14(21): 1505-11.

123. Яковлев С.В. Антибактериальная терапия интраабдоминальных инфекций: логика выбора режима эмпирической терапии. Consilium Medicum. - 2002. Экстравыпуск. - С. 3-6.

124. Adams B.G., Marrie T.J. Hand-carriage of aerobic Gram-negative rods by health care personal // J. of Hygiene Camb.-1982.-89.-P.23-31.

125. Alberti C. et. al. Epidemiology of sepsis and infection in ICU patients from an international multicentre cohort study. Intensive Care Med (2002) 28:108-121.

126. Altemeier W.A., Burke J.F., Pruitt B.A.Jr., Sanduskiy W.R. Manual on control of infection in surgical patients. Philadelphia:Lippincott, -1972, - P.20-32.

127. Bascomb S. Identification of bacteria measurements of enzyme activities and its relevance to the clinical diagnostic laboratory.// Soc. Appl. Bacteriol. Symp Ser. -1980.- 8:359-373.

128. Bauer R., et al. Functional expression of bacterial p-glucuronidase and its use as a reporter system in the yeast Yairowia lipolytica. Yeast: 1993.- Vol. 9.- Issue li - P.71-75.

129. Brawley R. L., Weber D. J., Samsa G. P., et al. Multiple nosocomial infections: an incidence study. Am J Epidemiol 1989; 130:769-780

130. Brown R. В., Hosmer D., Chen H. C., et al. A comparison of infections in different ICUs within the same hospital. Crit Care Med 1985; 13:472-476.

131. Burke A., Cunha M.D. Antibiotic essentials. Physicians' Press. -2003. -P.406.

132. Cameron J., Pitt H., Yeo Ch. et al. 145 consecutive pancreaticoduodenectomies without mortality. Ann. Surg., - 1993; -217: - P.430-438.

133. Carrasco M. Spanish activities in prevention and control of hospital infection // Chemioterapia.-1987.-V.6.-No.3 .-P. 164-1680.

134. Centers for Disease Control and Prevention. National Nosocomial Infections Surveillance (NN1S) System Report, data summary from January 1992 through June 2003, issued August 2003. Am J Infect Control. 2003; 31:481-98.

135. Chandrasekar P. H., Kruse J. A., Matthews M. F. Nosocomial infection among patients in different types of intensive care units at a city hospital. Crit Care Med 1986; 14:508-510.

136. Chien J. W., Kucia M. L.: Salata RA: Use of linezolid, an oxazolidinone, in the treatment of multidrug-resistant gram-positive bacterial infections. Clin Infect Dis 30:146-151,2000.

137. Classen D.C., Evans R.S., Pestotnik S.L., et al. The timing of prophylactic administration of antibiotics and the risk of surgical infection. N.Engl.J.Med. 1992;326:281-286.

138. Costerton J.W., Stewart P.S. Greenberg E.P. Bacterial biofilms: a common cause of persistent infection. Sciens. 1999,284: 1318-1322.

139. Collis C.M., Hall R.M. Expression of antibiotic resistance genes in the integrated cassettes of integrons. Antimicrob Agents Chemother 1995; 39:155-62.

140. Corbella X, Montero A, Pujol M, et al. Emergence and rapid spread of carbapenem resistance during a large and sustained hospital outbreak of multiresistant Acinetobacter baumannii. J Clin Microbiol. 2000; 38:4086-95.

141. Cosgrove SE, Sakoulas G, Perencevich EN, Schwaber MJ, Karchmer AW, Carmeli Y. Comparison of mortality associated with methicillin-resistant and methicillin-susceptible Staphylococcus aureus bacteremia: A Meta-analysis. Clin Infect Dis. 2003; 36:53-9.

142. Craven D.E., Palladino R., McQuillen D.P. Healthcare-associated pneumonia in adults: management principles to improve outcomes. Infect Dis Clin North Am 2004; 18:939-62.

143. Cruse P.J. Wound infection surveillance. Rev. Infect. Dis. 1981 ;4(3):734-737.

144. Dianzani F., Zampiepi A. The Italian National Research Council and Hospital Infection // Ghemioterapia.-1987.-6.-NO.3-P. 161-163.

145. De Waele J J., Vogelaers D., Blot S., Colardyn F. Fungal infections in patients with severe acute pancreatitis and the use of prophylactic therapy. Clin Infect Dis 2003;37:208-13.

146. Deitch E.A. The role of intestinal barrier failure and bacterial translocation in the development of systemic infection and multiple organ failure.// Arch. Surg. -1990. -Vol. 125. - P.403^104.

147. Deitch E.A., Berg R.D. Endotoxin but not malnutrition promotes bacterial translocation from the gut.// J.Trauma. - 1987. - Vol. 27. - P. 161-166.

148. Dellinger E.P., Gross P.A. Quality standard for antimicrobial prophylaxis in surgical procedures. Infect. Control Hosp. Epidemiol. -1994; - 15: - 182-188.

149. Donowitz L. G., Wenzel R. P., Hoyt J. W. High risk of hospital-acquired infection in the ICU patient. Crit Care Med - 1982; 10:355-357.

150. Edberg S.C. /Rapid and Economical identification and antimicrobial susceptibility test Methodology for Urinary Tract Pathogens. / Trepeta R.W. // J. Clin. Microbiol.- 1983.-18.-P.1287-1291.

151. Edge S.B., Schmieg R.E., Rosenlof L.R. et al. Pancreas Cancer Resection Outcome in American University Centers in 1989-1990. Cancer. - 1993; 71: 11:-P.3502-3508.

152. Edelstein M, Pimkin M, Edelstein I, Narezkina A, Stratchounski LS. High prevalence of nosocomial Escherichia coli and Klebsiella pneumoniae producing CTX-M-type extended spectrum b-lactamases (ESBLs) in Russian hospitals. Clin Microbiol Infect. 2002; 8 (Suppl 1): Abstr. P. 1398.

153. Edwards SJ, Emmas CE, Campbell HE. Systematic review comparing meropenem with imipenem plus cilastatin in the treatment of severe infections. Curr Med Res Opin. 2005; 21(5):785-94.

154. Edwards SJ, Campbell HE, Plumb JM. Cost-utility analy sis comparing meropen em with imipen em plus cilas tatin in the treat ment of se vere infec tions in intensive care. Eur J Health Econ. 2006; 7:72-8.

155. Ehrenkranz N.J. Antimicrobial Prophylaxis in Surgery: Mechanisms, Misconceptions, and Mischief. //Infection Control and Hospital Epidemiologi. -1993; -Vol.14: -N 2: -P.99-106.

156. Eggimann P., Francioli P., Bille J., et al. Fluconazole prophylaxis prevents intraabdominal candidiasis in high-risk surgical patients. Crit Care Med 1999;27:106672.

157. Emori T.G., Gaynes R.P. An overview of nosocomial infections, including the role of the microbiology laboratory. Clin. Microbiol. Rev. 1993;6(4):428-42.

158. Emmerson M. Antibiotic usage and prescribing policies in the intensive care unit. Intensive Care Med. 2000; 26:S26-30.

159. Estahbanati HK, Kashani PP, Ghanaatpisheh F. Frequency of Pseudomonas aeruginosa serotypes in burn wound infections and their resistance to antibiotics. Burns. 2002; 28(4):340-8.

160. Fabregas N., Ewig S., Torres A. et al. Clinical diagnosis of ventilator associated pneumonia revisited: comparative validation using immediate postmortem lung biopsies. Thorax 1999; 54: 867-73.

161. Fagon J.Y. Chastre J., Hance A.J., et al. Nosocomial pneumonia in ventilated patients: a cohort study evaluating attributable mortality and hospital stay. Am Med 1993; 94(3): 281-8.

162. Fridkin S. K., Welbel S. F., Weinstein R. A. Magnitude and prevention of nosocomial infections in the intensive care unit. Infect Dis Clin North Am 1997; 11:479-496.

163. Fridkin S. K., Gaynes R. P. Antimicrobial resistance in intensive care units. Clin Chest Med 1999; 20:303-316.

164. F.de Lalla. Surgical prophylaxis in practice.// Journal of Hospital Infection. -2002. -Vol.50. - Supplement A. - P.9-12.

165. FSHP commission on therapeutics. ASHP therapeutic guidelines on antimicrobal prophylaxis in surgery. Clin. Pharm. -1992; -11: -483-513.

166. Gadepalli R, Dhawan B, Sreenivas V, Kapil A, Ammini AC, Chaudhry R. A Clinico-microbiological Study of Diabetic Foot Ulcers in an Indian Tertiary Care Hospital. Diabetes Care. 2006; 29(8): 1727-32.

167. Garnacho-Montero J, Garcia-Garmendia J, Barrero-Almodovar A, et al. Impact of adequate empirical antibiotic therapy on the outcome of patients admitted to the intensive care unit with sepsis. Crit Care Med. 2003; 31:2742-5.

168. Garcia-Rodriguez J-A, Jones RN. Antimicrobial resistance in Gram-negative isolates from European intensive care units: data from the Meropenem Yearly Susceptibility Test Information Collection (MYSTIC) programme. J Chemother. 2002; 14(l):25-32.

169. Gleason TG, Crabtree TD, Pelletier SJ, et al. Prediction of poorer prognosis by infection with antibiotic-resistant gram-positive cocci than by infection with antibiotic-sensitive strains. Arch Surg. 1999; 134:1033—40.

170. Gonzalez C, Gonzalez C, Rubio M, et al. Bacteremic pneumonia due to Staphylococcus aureus: A comparison of disease caused by methicillin-resistant and methicillin-susceptible organisms. Clin Infect Dis. 1999; 29: 1171-7.

171. Harbarth S, Garbino J, Pugin J, Romand JA, Lew D, Pittet D. Inappropriate initial antimicrobial therapy and its effect on survival in a clinical trial of immunomodulating therapy for severe sepsis. Am J Med. 2003; 115 (7):529-35.

172. Hartemann-Heurtier A, Robert J, Jacqueminet S, et al. Diabetic foot ulcer and multidrug-resistant organisms:risk factors and impact.Diabet Med. 2004; 21:7105.

173. Heinrich S, Schafer M, Rousson V, Clavien PA. Evidence-based treatment of acute pancreatitis: a look at established paradigms. Ann Surg. 2006;243(2): 154-68.

174. Heyland D.K., Cook D.J., Griffith L. et al. The attributable morbidity and mortality of ventilator -associated pneumonia in critically ill patients. Am J Crit Care Med 1999; 159:1249-56.

175. Hilbert D.V. Uropatogenic Escherichia coli: The Pre-Eminent Urinary Tract Infection Patogen Nova Science Publishers 2004-2011 :p. 1-66.

176. Horan TC, Gaynes RP. CDC definitions of nosocomial surgical site infections, 1992: a modification of CDC definitions of surgical wound infections. Am J Infect Control. 1992; 20 (5):271-4.

177. Horan T.C., Gaynes R.P., Martone W.J., Jarvis W.R., Emori T.G. CDC definitions of nosocomial surgical site infections, 1992: a modification of CDC definitions of surgical wound infections. Infect. Control Hosp. Epidemiol. -1992. -13(10). -P.606-608.

178. Hospital-acquired Pneumonia Guideline Cjmmittee of the American Thoracic Society & Infectious Diseases Society of America. Guidelines for the management of adults with hospital-acquired, ventilator-associated, and healthcare-associated pneumonia. Am J Respir Crit Care Ved 2005; 171: 388-416.

179. Hyle EP, Lipworth AD, Zaoutis TE, Nachamkin I, Bilker WB, Lautenbach E. Impact of inadequate initial antimicrobial therapy on mortality in infections due to extended-spectrum beta-lactamase-producing enterobacteriaceae: variability by site of infection. Arch Intern Med. 2005; 165:1375-80.

180. Hubmayr R.D. Statement of the 4th International Consensus Conference in Critical Care in ICU-Acquired Pneumonia. Illinois, May 2002. Intensive Care Med 2002; 28:1521-36.

181. Ibelings MM, Bruinin HA. Methicillin-resistant Staphylococcus aureus: acquisition and risk of death in patients in the intensive care unit. Eur J Surg. 1998; 164: 411-8.

182. Ibrahim EH, Ward S, Sherman G, Schaiff R, Fraser VJ, Kollef MH. Experience with a clinical guideline for the treatment of ventilatorassociated pneumonia. Crit Care Med. 2001; 29:1109-15.

183. Igimi S., Atobe H., Tohya Y. Characterization of the most frequently encountered Staphylococcus sp. in cats//Vet. Microbiol. - 1994. - V. 39, № 3-4. P. 255-260.

184. Infection Control and Hospital Epidemiology. -1999. -Vol.20. -N4. -P.247-278.

185. 1 st du Haufigkeit noaokomiales Infektiones ein Qualitats kriterium / Z.Grosser, W.Kaufhold, jB.L.Grand et al. //Z.Med.Klinik.-1987.-42.-No.l9.-P. 1733-1735.

186. Jarvis W. R., Martone W. Predominant pathogens in hospital infections. J Antimicrob Chemother 1992; 29(suppl): 19-24.

187. Jaruratanasirikul S, Sriwiriyajan S, Punyo J. Comparison of the pharmacodynamics of meropenem in patients with ventilator-associated pneumonia following administration by 3-hour infusion or bolus injection. Antimicrob Agents Chemother. 2005; 49(4): 1337-9.

188. Jones R.N., Kirby J.T., Beach M.L., Biedenbach D.J., Pfaller M.A. Geographic variations in activity of broad-spectrum beta-lactams against Pseudomonas aeruginosa: summary of the worldwide SENTRY Antimicrobial Surveillance Program (1997-2000). Diagn Microbiol Infect Dis 2002;43(3):239-43.

189. Jones R.N. Microbial etiologies of hospital-acquired bacterial pneumonia and ventilator-associated bacterial pneumonia. Clin Infect Dis 2010; 51 (Suppl):S 81-7.

190. Kang CI, Kim SH, Park WB, et al. Bloodstream infections due to extended-spectrum?-lactamase-producing Escherichia coli and Klebsiella pneumoniae: risk factors for mortality and treatment outcome, with special emphasis on antimicrobial therapy. Antimicrob Agents Chemother. 2004; 48(12):4574-81.

191. Kilian M. Rapid identification of Enterobacteriaceae. / Bulow P. //Use of p-glucuronidase detecting agar medium (PGUA agar) for the identification o[ E.coli in Primory Cultures of Urine Samples.// Acta Pathol. Microbiol Scand.-1979.- B 87:.271-276.

192. Kirby JT, Mutnick AH, Jones RN, Biedenbach DJ, Pfaller MA. Geographic variations in garenoxacin (BMS284756) activity tested against pathogens

associated with skin and soft tissue infections: report from the SENTRY Antimicrobial Surveillance Program (2000). Diagn Microbiol Infect Dis. 2002; 43(4):303-9.

193. Kollef M.H. Prevention of hospital-associated pneumonia and ventilator-associated pneumonia, Crit Care Med 2004; 32:1396-405.

194. Kollef MH, Sherman G, Ward S, Fräser VJ. Inadequate antimicrobial treatment of infections: a risk factor for hospital mortality among critically ill patients. Chest. 1999; 115:462-74.

195. Komolafe O, James J, Kalongolera L, Makoka M. Bacteriology of burns at the Queen Elizabeth Central Hospital, Blantyre, Malawi. Burns.2003; 29(3):235-8.

196. Kopp BJ. Clinical and economic analysis of methicillin-susceptible and -resistant S. aureus infections. Ann Pharmacother. 2004; 38 (9): 1377-82.

197. Knauer A, Fladerer P, Strempfl C, Krause R, Wenisch C. Effect of hospitalization and antimicrobial therapy on antimicrobial resistance of colonizing Staphylococcus epidermidis. Wien Klin Wochenschr. 2004; 116(14):489-94.

198. Kuti JL, Dandekar PK, Nightingale CH, Nicolau DP. Use of Monte Carlo simulation to design an optimized pharmacodynamic dosing strategy for meropenem. (Erratum in: J Clin Pharmacol. 2005;45(3):357). J Clin Pharmacol. 2003; 43(10): 1116-23.

199. Lapage S.P. The orthonitrophenol (ONPG) test and acid from lactose in gram-negative genera./Efstratiou A., Hill L.R.//J. Clin. Pathol. -1973.- 26:821-825.

200. Leitao J.H., Fialho A.M., Sa-Correia I. Effects of growth temperature on alginate synthesis and enzymes in Pseudomonas aeruginosa variants. J. Gen. Microbiol. 1992, 138: 605-610.

201. Li TZ, Luo L, Xu YB, et al. Clinical significance of the predominant bacterial strains on burn wound during early postburn stage. Zhonghua Shao Shang Za Zhi. 2003; 19(2):71^1.

202. Lodise TP, McKinnon PS, Swiderski L, Rybak MJ. Outcomes analysis of delayed antibiotic treatment for hospital-acquired Staphylococcus aureus bacteremia. Clin Infect Dis. 2003; 36:1418-23.

203. Lorente L, Lorenzo L, Martin MM, Jimenez A, Mora ML. Meropenem by continuous versus intermittent infusion in ventilator-associated pneumonia due to gram-negative bacilli. Ann Pharmacother. 2006; 40(2):219-23.

204. Magnotti L.J., Croce M.A., Fabian T.C. Is ventilator-associated pneumonia in trauma patients an epiphenomenon or a cause of death? Surg Infect (Larchmt) 2004; 5(3): 237-42.

205. Manafi M. Fluorogenic and chromogenic substrates used in bacterial diagnostics./Kneifel W., Bascomb S.//MicrobioIogical Reviews.-1991.-55,335-348.

206. Manning S.D., H. Babcock, Heymann D.L. Escherichia coli infections. 2nd ed. Chelsea House, New York, 2010.

207. Manes G, Rabitti PG, Menchise A, Riccio E, Balzano A, Uomo G. Prophylaxis with meropenem of septic complications in acute pancreatitis: a randomized, controlled trial versus imipenem. Pancreas. 2003; 27(4):e79-e83.

208. Mariutin PV, Uchvatkin VG, Rybin EP, Grakh SI, Sokirskii EK. General and local antibiotic treatment with ceftriaxone of suppurative-septic diseases and complications. Anesteziol Reanimatol. 1997; (3): 14—8.

209. Mehta R.M., Niederman M.S. Резистентность к антибиотикам флоры, вызывающей инфекции у больных отделений реанимации и интенсивной терапии (ОРИТ). В кн.: Антимикробная терапия тяжелых инфекций в стационаре. Москва. -2003.

210. Mosdell DM, Morris DM, Voltura A, et al. Antibiotic treatment for surgical peritonitis. Ann Surg 1991;214:550-2.

211. McArthur RD, Miller M, Albertson T, et al. Adequacy of early empiric antibiotic treatment and survival in severe sepsis: experience from the MONARCS trial. Clin Infect Dis. 2004; 38:284-8.

212. Murga R., Miller J.M., Donlan R.M. Biofilm formation by gram-negative bacteria on central venous catheter connectors: effect of conditioning films in a laboratory model. J. Clin. Microbiol. 2001, 39:2294-2297.

213. Nasser S, Mabrouk A, Maher A. Colonization of burn wounds in Ain Shams University Burn Unit. Burns. 2003; 29(3):229-33.

214. Nosocomial Infections in the ICU* The Growing Importance of Antibiotic-Resistant Pathogens David J. Weber, Ralph Raasch, William A. Rutala Chest Volume 115. Number 3. March 1999.

215. Navas D, Caillon J, Batard E, et al. Trough serum concentrations of beta-lactam antibiotics in cancer patients: inappropriateness of conventional schedules to pharmacokinetic/pharmacodynamic properties of beta-lactams. Int J Antimicrob Agents. 2006; 27(2): 102-7.

216. National Nosocomial Infections Surveillance (NNIS) report. Data summary from October 1986-April 1997, issued May 1997: a report from the NNIS System. Am J Infect Control 1997; 25:477-487.

217. Naumovski L, Quinn JP, Miyashiro D, Patel M., Bush K., Singer S.B., Graves D., Palzkill Т., Arvin A.Met al. et al. Outbreak of ceftazidime resistance due to a novel extended-spectrum b-lactamase in isolates from cancer patients. Antimicrob Agents Chemother. 1992; 36:1991-6.

218. O'Toole G.F., Kaplan H.B., Kolter R. Biofilm formation as microbial development. Ann. Rev. Microbiol. 2000, 54: 49-79.

219. Osmon S, Ward S, Fraser VJ, Kollef MH. Hospital mortality for patients with bacteremia due to Staphylococcus aureus or Pseudomonas aeruginosa. Chest. 2004; 125:607-16.

220. Parrant F. Comparative evaluation of the new Albicans ID2 chromogenic medium with clinical specimens. / Roure C., Freydiere A.M., Gille Y. // 8 ECCMID, Laysanne.-1997.-Poster №347.- P.21.

221. Parker M.G. (Паркер М.Г.) Внутрибольничные инфекции // Руководство по лабораторным методам исследования. Серия. 4.ВОЗ. - Копенгаген. - 1979. - С. 3-Й.

222. Paterson DL, Yu VL. Extended-spectrum beta-lactamases: a call for improved detection and control. Clin Infect Dis. 1999; 29:1419-22.

223. Paterson DL, Ко WC, Von Gottberg A, et al. Outcome of cephalosporin treatment for serious infections due to apparently susceptible organisms producing

extended-spectrum beta-lactamases: implications for the clinical microbiology laboratory. J Clin Microbiol. 2001; 39(6):2206-12.

224. Pezzlo M. Detection of urinary tract infections by rapid methods.//Clinical Microbiology Reviews.-1988.- 1:268-280.

225. Pierce G.E. Pseudomonas aeruginosa, Candida albicans, and devicerelated nosocomial infection: implications, trends, and potential approaches for control. J.Ind. Microbiol. Biotechnol. 2005, 32 (7): 309-318.

226. Plowman R., Graves N., Griffin M.A.S., et al. The rate and cost of hospital-acquired infection occurring in patients admitted to selected specialties of a district general hospital in England and the national burden imposed. J Hosp Infect 2001; 47: 198-209.

227. Polk H.C., Lopez -Mayor J.F. Postoperative wound infection: a prospective study of determinant factors and prevention. Surgery. 1969; 66:97-103.

228. Pollak M. Pseudomonas aeruginosa. In: Mandell GL, Bennet JE, Dolin R, editors. Principles and practice of infectious diseases. 2nd ed. London: Churchill Livingston; 1995. p. 1980-2003.

229. Proven and unproven methods in hospital infection control in Intensive Care Units / P.D.M.D.Daschner, U.Prank, H.M. Just// Chemiotherapia.-1987.-6.-I\ro.3.-P. 184-189.

230. Pugin J., Clinical sing and scores for the diagnosis of ventilator-associated pneumonia. Minerva Aneatesiol 2002; 68(4):261-8.

231. Queenan A.M., Bush K. Carbapenemases: the versatile (^-lactamases. Clin Microbiol Rev 2007; 20:440-58.

232. Rello J., Ollendorf D.A., Oster C., et al, Epidemiology and outcomes of ventilator-associated pneumonia in a large US database. Chest 2002; 122:2115-21.

233. Rello J, Sole-Violan J, Sa-Borges M, et al. Pneumonia caused by oxacillin-resistant Staphylococcus aureus treated with glycopeptides. Crit Care Med. 2005; 33:1983-7.

234. Richards M. J., Edwards J. R., Culver D. H., et al. Nosocomial infections in medical intensive care units in the United States: National Nosocomial Infections. Surveillance System. Crit Care Med 1999; 27:887-892.

235. Richards M. J., Edwards J. R., Culver D. H., et al. Nosocomial infections in pediatric intensive care units in the United States: National Nosocomial Infections. Surveillance System. Pediatrics 1999; 103:39-45.

236. Schiappa DA, Hayden MK, Matushek MG, Hashemi F., Sullivan J., Smith K.Y., Miyashiro D., Quinn J.P., Weinstein R.A., Trenholme G.Met al. et al. Ceftazidime-resistant Klebsiella pneumoniae and Escherichia coli bloodstream infection: a case-control and molecular epidemiologic investigation. J Infect Dis. 1996; 174:529-36.

237. Schmidt K, Debus ES, St Jessberger U, Ziegler U, Thiede A. Bacterial population of chronic crural ulcers: is there a difference between the diabetic, the venous, and the arterial ulcer? Vasa 2000; 29:62-70.

238. Sganga G. New perspectives in antibiotic prophylaxis for intra-abdominal surgery .//Journal of Hospital Infection.-2002.-Vol.50. -Supplement A. - P. 17-21.

239. Sirvent J.M., Torres A., Vidaur L., et al. Tracheal colonization within 24h of intubation in patients with head trauma: risk factor for developing early-onset ventilator-associated pneumonia. Intensive Care Med 2000; 26:1369-72.

240. SHEA, APIC, CDC, SIS. Consensus paper on the surveillance of surgical wound infections. Infect. Control Hosp. Epidemiol.-l992.-13(10).-P.599-645.

241. Solomkin JS. Antibiotic resistance in postoperative infections. Crit Care Med 2001;29:97-9.

242. Solomkin JS, Reinhart HH, Dellinger EP, et al. Results of a randomized trial comparing sequential intravenous/oral treatment with ciprofloxacin plus metronidazole to imipenem/cilastatin for intra-abdominal infections. Ann Surg 1996;223(3):304-16.

243. Starakis I, Karravias D, Asimakopoulos C, et al. Results of a prospective, randomized, double blind comparison of the efficacy and the safety of sequential ciprofloxacin (intravenous/oral)+metronidazole (intravenous/oral) with ceftriaxone (intravenous) + metronidazole (intravenous/oral) for the treatment of intraabdominal infections. Int J Antimicrob Agents. 2003; 21 (1):49—57.

244. Stephen J., Mutnick A., Jones R.N. Assessment of pathogens and resistans (R) patterns among intensive care unit (ICU) patients of North America (NA): initial report from the SENTRY Antimicrobial Surveillans Program (2001). Proceedings of the 42nd Interscience Congress of Antimicrobial Agents and Chemotherapy. San Diego, USA, 2002; Abst.C 2-297.

245. Stetsiouk OU, Galkin DV, Ryabkova EL, Kretchikova 01, Stratchounski LS. Antimicrobial susceptibility of bacteria causing complicated intra-abdominal infections. Proceedings of the 13th European Congress of Clinical Microbiology and Infectious Diseases; 2003 May 10-13; p. 226, abst. P979.

246. Tam VH, Schilling AN, Neshat S, Poole K, Melnick DA, Coyle EA. Optimization of meropenem minimum concentration/MIC ratio to suppress in vitro resistance of Pseudomonas aeruginosa. Antimicrob Agents Chemother. 2005; 49(12):4920-7.

247. Tice AD, Hoaglund PA, Shoultz DA. Risk factors and treatment outcomes in osteomyelitis. J Antimicrob Chemother. 2003; 51: 1261-8.

248. Troillet N, Samore MH, Carmeli Y. Imipenem-resistant Pseudomonas aeruginosa: risk factors and antibiotic susceptibility patterns. Clin Infect Dis. 1997;25:1094-8.

249. Valles J, Rello J, Ochagavia A, Garnacho J, Alcala MA. Community-acquired bloodstream infection in critically ill adult patients: impact of shock and inappropriate antibiotic therapy on survival. Chest. 2003;123(5):1615-24.

250. Vincent J. L., Bihari D. J., Suter P. M., et al. The prevalence of nosocomial infection in intencive care units in Europe: results of the EPIC study. JAMA 1995; 274:639-644.

251. Vincent J.L. Nosocomial infections in adult intencivecare units. Lancet 2003; 361:2068-77.7.

252. Voigt K.D. Methods of Enzymatic Analysis. / Schmidt H. // Academic Press, New York..- 1994.- vol 4.

253. Wong PF, Gilliam AD, Kumar S, Shenfine J, O'Dair GN, Leaper DJ. Antibiotic regimens for secondary peritonitis of gastrointestinal origin in adults. Cochrane Database of Systematic Reviews 2005, Issue 2. Art. No.: CD004539.

254. Yellin AE, Hassett JM, Fernandez A, et al. Ertapenem monotherapy versus combination therapy with ceftriaxone plus metronidazole for treatment of complicated intra-abdominal infections in adults. Int J Antimicrob Agents. 2002; 20(3): 165-73.

255. York MK, Gibbs L, Chehab F, Brooks GF. Comparison of PCR detection of mecA with standard susceptibility testing methods to determine methicillin resistance in coagulase-negative staphylococci. J Clin Microbiol. 1996; 34:249-53.

256. Zaragoza R, Artero A, Camarena JJ, Sancho S, Gonzalez R, Nogueira JM. The influence of inadequate empirical antimicrobial treatment on patients with bloodstream infections in an intensive care unit. Clin Microbiol Infect. 2003; 9(5) :412-8.