«Экспериментальный морфогенез в культуре репродуктивных органов капусты белокочанной (Brassica oleracea L.) in vitro» тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.01.06, кандидат наук Киракосян Рима Нориковна

• Киракосян Рима Нориковна
• кандидат наук
• 2016

Оглавление диссертации кандидат наук Киракосян Рима Нориковна

ВВЕДЕНИЕ

Глава I. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

1.1 Роль капусты белокочанной в мировом сельском хозяйстве

1.2 Основные направления селекции капусты белокочанной

1.3 Применение методов биотехнологии в селекции капусты белокочанной (Brassica oleracea L.)

1.4 Морфогенез в культуре изолированных органов и тканей растений

рода Brassica

Глава II. ОБЪЕКТ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЙ

2.1. Условия культивирования изолированных эксплантов in vitro

2.2. Цитологические исследования

2.3. Получение растительных экстрактов из репродуктивных органов 44 капусты белокочанной

2.4. Биохимические исследования

2.5. Статистическая обработка данных

ГЛАВА III. МОРФОГЕНЕТИЧЕСКИЙ ПОТЕНЦИАЛ РЕПРОДУКТИВНЫХ ОРГАНОВ КАПУСТЫ БЕЛОКОЧАННОЙ (BRASSICA OLERACEA L.) IN VITRO

3.1 Влияние стадии развития микроспор и расположения бутонов в

соцветии на процесс морфогенеза растений капусты белокочанной

3.2. Влияние различных методов предобработки соцветий и изолированных эксплантов на морфогенез

3.3 Влияние гормонального состава питательной среды на процесс морфогенеза

3.4 Влияние растительных экстрактов, полученных из репродуктивных органов, на процесс морфогенеза капусты белокочанной (Brassica oleracea

L.) in vitro

3.5 Компетенция пыльников и завязей Brassica oleracea L. к морфогенному развитию in vitro

3.6 Цитологическое исследование растений-регенерантов капусты белокочанной (Brassica oleracea L.)

3.7 Адаптация растений-регенерантов капусты белокочанной in vivo

ГЛАВА IV. ФИЗИОЛОГО-БИОХИМИЧЕСКИЕ ОСОБЕННОСТИ РАТСЕНИЙ-РЕГЕНЕРАНТОВ КАПУСТЫ БЕЛОКОЧАННОЙ

(BRASSICA OLERACEA L.)

4.1. Общее содержание фенольных соединений в листьях растений

регенерантов капусты белокочанной (Brassica oleracea L.)

4.2 Цитотоксический эффект экстрактов капусты белокочанной на

линию опухолевых клеток М Н^а

ВЫВОДЫ

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

ПРИЛОЖЕНИЕ

Введение диссертации (часть автореферата) на тему ««Экспериментальный морфогенез в культуре репродуктивных органов капусты белокочанной (Brassica oleracea L.) in vitro»»

ВВЕДЕНИЕ

Актуальность темы. Капуста белокочанная (Brassica oleracea L.) является важным источником биологически активных соединений и питательных веществ таких, как витамины С и Е, растворимые волокна, ферменты с антиоксидантной активностью (каталаза, супероксид дисмутаза, пероксидаза и др.), каротиноиды, обладающие противовирусной, антибактериальной и противораковой активностью. Данная овощная культура также богата ценными метаболитами, которые включают антоцианы, терпены, сульфорафан, кумарины и глюкозинолаты, действующие в качестве модуляторов в защите ДНК от повреждения. Таким образом, мы можем сказать, что потребление капусты белокочанной и других овощей Brassica связано с предотвращением угроз развития хронических заболеваний таких, как болезни Альцгеймера, сахарный диабет, рак, сердечно-сосудистые заболевания и др. (Петрушко Ю.Н. и др., 2003).

В связи со сложившейся обстановкой на мировой арене, вызванной сокращением импорта ряда продовольственных товаров в Россию, приоритетной задачей отечественной селекции является разработка новых, перспективных и усовершенствование имеющихся методов при создании сортов и гетерозисных гибридов сельскохозяйственных культур. Для выведения нового сорта капусты с комплексом хозяйственно-ценных признаков важно иметь разнообразный исходный материал с богатой генетической основой. Сочетание традиционных и биотехнологических методов селекции является эффективным в создании новых сортов с одновременным повышением продуктивности и устойчивости растений к абиотическим и биотическим стрессам.

Впервые в нашей стране Р.Г. Бутенко подробно описала биотехнологические методы, включение которых в селекционный процесс позволит повысить ее эффективность. К таким методам относятся: соматическая гибридизация, получение гаплоидных растений in vitro, клеточная селекция и др. (Бутенко Р.Г., 1999).

Таким образом, для эффективного использования генетических ресурсов и реализации морфогенетического потенциала овощных культур, необходимо проведение исследований, направленных на усовершенствование или оптимизацию технологий in vitro и их интеграцию в селекционные схемы создания конкурентоспособных гибридов и сортов овощных культур.

Изучение морфогенеза является одним из важных направлений клеточной и генной инженерии растений, как для фундаментальных, так и прикладных исследований. Особое значение оно приобретает при культивировании репродуктивных органов растений in vitro. Реализация морфогенетического потенциала обуславливается комплексом взаимосвязанных факторов, которые необходимо учитывать при разработке технологий получения растений-регенерантов в зависимости от их генетических и физиологических особенностей.

Целью наших исследований является разработка регламента получения из репродуктивных органов капусты белокочанной (B. oleracea L.) растений - регенерантов и изучение их физиолого-биохимических особенностей.

Для достижения указанной цели были поставлены следующие задачи:

• иучить влияние предобработки соцветий различными БАВ и температур на процесс каллусо- и органогенеза;

• изучить влияние состава питательных сред на морфогенез репродуктивных органов капусты белокочанной;

• изучить влияние растительных экстрактов на основе разных растворителей на частоту каллусо- и органогенеза;

• изучить зависимость морфогенеза от типа первичного экспланта (пыльники или завязи) и совместного их культивирования;

• провести анализ содержания фенольных соединений в листьях растений-регенерантов капусты белокочанной (B. oleracea L.) разной плоидности;

• провести анализ цитотоксического действия экстрактов растений-регенерантов капусты белокочанной (B. oleracea L.) на раковые клетки линии М HeLa.

Научная новизна. Впервые проведены комплексные исследования по изучению влияния условий культивирования на морфогенетический потенциал изолированных репродуктивных органов (пыльников и завязей) капусты белокочанной (Brassica oleracea L.) in vitro. Показано, что для изучаемых гибридов и инбредных линий применение ступенчатой предобработки соцветий, включающая выдерживание их в течение 1 суток при низкой положительной температуре (+4-60С) без БАВ, в дальнейшем в течение 2-х суток с использованием раствора Дропп (10 мг/л) и последующее культивирование изолированных пыльников и завязей in vitro при температуре +320С в течение 1 суток, оказало стимулирующее действие на формирование каллусной ткани и морфогенных структур. Установлено, что культивирование изолированных эксплантов на питательной среде, содержащей препарат Дропп в концентрации 0,01 мг/л, НУК - 1,0 мг/л, аспарагин - 500 мг/л, тирозин - 100 мг/л и сахарозу 10 г/л приводит к повышению их морфогенетического потенциала и составляет 1,85% и 3,7%, в культуре пыльников и завязей соответственно.

Впервые для капусты белокочанной было изучено влияние различных растительных экстрактов, полученных из репродуктивных органов на основе разных растворителей, на морфогенетический потенциал пыльников и завязей. Установлено, что экстракты на основе DMSO в концентрации 1,0 мг/100 мл среды оказывают положительное влияние на процессы морфогенеза in vitro и формирование растений-регенерантов.

Впервые для изучаемых гибридов и инбредных линий было установлено положительное влияние совместного культивирования пыльников и завязей на процессы морфогенеза in vitro. При таком способе жизнеспособность и отзывчивость репродуктивных органов к органогенезу

повысилась в 2 раза по сравнению с культивированием пыльников и завязей по отдельности.

Впервые для капусты белокочанной было изучено суммарное содержание растворимых фенольных соединений, а также флаванов и флаванолов в листьях растений-регенерантов, имеющих разный уровень плоидности клеток (n, 3n, 5n). Экспериментально установлено, что с увеличением уровня плоидности уменьшается синтез фенольных соединений: у растений-регенерантов гаплоидных форм (n) он сохраняется на более высоком уровне по сравнению с диплоидными (2n), что, вероятно, свидетельствует об изменении фенольного метаболизма.

Впервые из растительной биомассы in vitro гаплоидных и диплоидных растений-регенерантов капусты белокочанной получены растительные экстракты, которые оказывают слабое ингибирующее действие (от 10 до 30%) на жизнеспособность клеток линии M HeLa (рак шейки матки человека). Однако наибольший цитотоксический эффект проявляется у экстрактов гаплоидных растений.

Практическая значимость. Разработанный регламент получения растений-регенерантов in vitro из репродуктивных органов может быть применен в исследованиях, направленных на создание гаплоидных растений рода Brassica.

Результаты можно использовать в учебном процессе при чтении лекций и проведении лабораторно-практических работ по дисциплинам: «Физиология растений», «Сельскохозяйственная биотехнология», «Прикладная биотехнология», «Культура клеток и тканей растений» для студентов, обучающихся по направлениям «Агрономия» и «Биотехнология».

Методология и методы диссертационного исследования. Диссертационная работа выполнена с использованием классических и современных методов культуры клеток и тканей, микроскопирования, биохимического анализа, на современном оборудовании. Подробно

методология и методы исследования отражены в разделе «Материалы и методы».

Положения, выносимые на защиту:

1. особенности получения растений-регенерантов капусты белокочанной (Brassica oleracea L.) из репродуктивных органов in vitro;

2. эффективность применения растительных экстрактов и совместного культивирования пыльников и завязей на процессы морфогенеза in vitro;

3. особенности содержания фенольных соединений в листьях миксоплоидных ратсений-регенерантов капусты белокочанной, полученых из репродуктивных органов in vitro;

4. действие растительных эсктрактов, полученных из листьев гаплоидных и диплоидных растений-регенерантов капусты белокочанной (Brassica oleracea L.) in vitro, на раковые клетки линии HeLa (рак шейки матки человека).

Апробация работы. Материалы диссертации были представлены на: X Международной конференции «Биология клеток растений in vitro и биотехнология» (Казань, 14-18 октября, 2013); 2-м Международном симпозиуме по вторичным метаболитам ISSMET (Москва, 17-22 мая, 2014); Международной научно-практической конференции молодых ученых и специалистов, посвященная созданию объединенного аграрного вуза в Москве (Москва, 3-4 июня, 2014); 15-ой Молодежной научной конференции «Биотехнология в растениеводстве, животноводстве и ветеринарии» (Москва, 8 апреля, 2015); IX Международном симпозиуме «Фенольные соединения: фундаментальные и прикладные аспекты» (Москва, 20-25 апреля, 2015); Международном симпозиуме «Биоразнообразие в Евразии» (SEAB-2015) (Баку, Азербайджан, 9-12 июня, 2015); Международной научной конференции молодых учёных и специалистов, посвящённой 150-летию РГАУ-МСХА имени К.А. Тимирязева (Москва, 3-4 июня, 2015); Международной научной конференции «Аграрное образование и наука в XXI веке: вызовы и проблемы развития» (Москва, 12 ноября, 2015),

Всероссийская научная конференция с международным участием «Растения в условиях глобальных и локальных природно-климатических и антропогенных воздействий» (Петрозаводск, 21-26 сентября, 2015).

Личный вклад автора. Работа является результатом исследований, проведенных лично автором на всех этапах работы: выбор, разработка программы и методов исследований, проведение экспериментов, обработка и анализ полученных данных, подготовка публикаций. Исследования по определению цитотоксичности растительных экстрактов были проведены совместно с кандидатом биологических наук, с сотрудником лаборатории молекулярной биологии Института проблем химической физики РАН А.А. Балакиной.

Публикации. По материалам диссертации опубликовано 12 работ, общим объемом 2,51 п.л., в том числе 2 статьи в журналах, рекомендованных ВАК РФ, а также получено положительное решение экспертизы на изобретение «Способ получения растений-регенерантов из репродуктивных органов Brassica oleracea L. in vitro» (заявка № 2015125094/10 (039053)).

Структура и объем диссертации. Диссертационная работа состоит из введения, литературного обзора, материала и методов исследований, экспериментальной части (главы 3 и 4), выводов, списка цитируемой литературы, а так же приложения. Работа изложена на 155 страницах машинописного текста, содержит таблицу, рисунков. Список цитируемой литературы содержит 340 источника, из которых 279 на иностранном языке.

ГЛАВА I. ЛИТЕРАТУРНЫЙ ОБЗОР

1.1 Роль капусты белокочанной в мировом сельском хозяйстве

Род Brassica включает в себя 35 различных видов, но в мире и сельском хозяйстве широко используются только шесть видов, которые составляют важную часть рациона человека. Они используются в виде овощей, приправ и масличных культур (Warwick, 1993). В то время как B.nigra в первую очередь выращивают в качестве приправы, 14 подвидов B.oleracea используют в виде овощей и кормовых культур, 10 подвидов B.rapa и B. juncea, а также 2 подвида B. napus и B. carinata используют в виде овощей, масличных и кормовых культур (Labana and Gupta, 1992).

Капуста белокочанная (Brassica oleracea L.) - универсальная культура, широкому распространению которой способствовали ее ценные хозяйственные свойства: высокая урожайность, наличие большого сортового разнообразия различной спелости, а также лежкоспособность используемых органов, что позволяет иметь свежую продукцию в течение почти круглого года. Биологические особенности капусты обуславливают возделывание ее на всей территории страны (Лизгунова, Т.В., 1984).

В последнее десятилетие, по данным ФАО, площади, занятые под производством капусты товарной в РФ в 2007 г. - 103,0 тыс. га, а в 2011 г. -около 123,3 тыс. га. По объемам производства капусты Россия занимает третье место после Китая и Индии - 3, 528 млн. т (по данным ФАО в 2011 г. это составляло примерно 6 % валового мирового сбора), а по урожайности уступает многим странам Европы и Азии - 28,6 т/га (47 место). При этом большая часть популярных и возделываемых сортов создана в первой половине ХХ века.

В ряде западноевропейских стран - Германии, Норвегии, Франции -капуста занимает первое место среди овощных растений. В Англии она является одной из основных овощных культур, занимая второе место по площади после овощного гороха, а по объему производства превосходит его.

Примечательно то, что на кладбище в Дорсете поставлен даже памятник в форме кочана капусты человеку, который впервые завез ее из Голландии. В США капусте принадлежит лишь шестое место. Выращивают ее также в Японии, Индии, Китае и других странах мира.

В кочанах капусты в обилии содержатся витамины Р, К, В1, В2, РР, С, инозит, фолиевая кислота, биотин. Все эти вещества и витамины полезны и необходимы для организма человека. Зеленые листья капусты служат источником каротина, переходящего в организме человека в витамин А. В капусте был также обнаружен витамин и, который употребляют в качестве эффективного быстродействующего средства для лечения язвенной болезни желудка и двенадцатиперстной кишки. Капуста богата полезными минеральными солями. Особенно много в ней калия, фосфора, кальция, железа, марганца. Капуста является так же источником сахаров и легкоусвояемых белков. По содержанию азотистых веществ она превышает брюкву, репу, морковь, свеклу. Клетчатка капусты способствует выведению из организма жироподобных веществ - холестерина (Петрушко Ю.Н., 2003).

В настоящее время существует ряд сортов, отличающихся не только высокими хозяйственными качествами, но и устойчивостью к заболеваниям. В Государственный реестр селекционных достижений Российской Федерации внесено 148 сортов капусты белокочанной. Это сорта селекции ВНИИССОК, РГАУ-МСХА имени К.А. Тимирязева, ФГБНУ ВНИИО.

1.2 Основные направления селекции капусты белокочанной

Предела совершенствованию нет, и те сорта капусты, которые раньше удовлетворяли запросам и вкусам людей, заменяются новыми, более совершенными. Концентрация овощеводства и перевод его на промышленную основу выдвинули новые требования к сортам.

В современном овощеводстве высоко ценятся гибриды капусты, так как они обладают рядом преимуществ перед сортами: они отличаются высокой урожайностью, транспортабельностью, фенотипической

однородностью, представлены большим разнообразием гибридов по скороспелости и лежкости.

Одним из главных направлений селекции капусты является селекция на устойчивость к заболеваниям. В узкоспециализированных хозяйствах всегда накапливаются и развиваются специфические болезни, с которыми предупредительные и агротехнические меры не в состоянии справиться. Радикальным способом преодоления вредности болезни является внедрение устойчивых сортов. Так, например, во ВНИИССОК ведется селекция на устойчивость к таким заболеваниям, как серой гнили, точечному некрозу и др. Практический весь сортимент сортов капусты белокочанной созданный в данном институте, районированный более полувека назад, в настоящее время служит уникальным генофондом при создании новых гетерозисных гибридов и сортов. Гетерозисные гибриды F1 Аврора и Снежинка были получены во ВНИИССОК на базе отечественных сортов.

Селекционерами станции имени Н.Н.Тимофеева РГАУ-МСХА имени К.А.Тимирязева создан гетерозисный гибрид F1 CБ-3 с использованием инбредных линий, полученных из сортопопуляций Слава и Белорусская 455.

Наиболее трудоемкой работой в выращивании капусты является уборка. Серьезным препятствием для разработки специальных машин остается отсутствие специализированных сортов. В связи с этим ведется селекция капусты на пригодность к механизированной уборке. Для этого сортам предъявляют определенные требования: размер кочана не должен превышать 23 см, вес не более 4 кг, наружная кочерга не выше 15 см. В качестве исходного материала используют лучшие сорта отечественного и иностранного происхождения, а также создаются самонесовместимые линии, из которых будут получены гибридные семена. Работа ведется в сотрудничестве селекционеров различных научно-исследовательских и учебных заведений: ВНИИССОК, ФГБНУ ВНИИО, РГАУ-МСХА имени К.А.Тимирязева. Так, например, были созданы сорта Амагер 611, Слава 1305,

Лосиноостровская, которые показали удовлетворительные результаты при испытании новой капустоуборочной машины.

Перед овощеводами нашей страны поставлена и другая задача -увеличить сортимент овощных культур, богатых различными биологически активными веществами, для обеспечения полноценного и разнообразного питания населения. Поэтому работы по созданию таких видов капусты, как брюссельская, кольраби, савойская, цветная, брокколи, краснокочанная, из которых с помощью специальной переработки в дальнейшем производят овощные продукты, сохраняющие пищевую ценность сырья, постоянно расширяются во многих селекционных учреждениях России.

Не менее актуальными остаются исследования по созданию капусты, обладающей разными сроками созревания и плотностью кочана. Если 5-8 лет назад были востребованы сорта или гибриды капусты очень позднего срока созревания, с хорошей лежкостью кочанов, то в настоящее время уже меняются требования к качеству товарной продукции: кочаны должны быть универсального использования, пригодными к хранению и переработке (квашению) (Бондарева Л.Л., 2013).

Спецификой капустных культур (перекрестное опыление, анатомо-морфологические особенности репродуктивной системы, длительный селекционный процесс) объясняется необходимость индивидуального подхода при разработке теоретических основ и методов селекции различных видов Brassica. Использование современных технологий и накопленный объем информации для решения конкретных задач в селекции и семеноводстве капустных культур позволяет проводить быстрый подбор и оценку полученного материала. Вместе с тем, создание современного конкурентоспособного производства невозможно без разработки энергосберегающих, малозатратных, эффективных технологий. При этом существенно возрастает роль биотехнологии в решении поставленных задач.

1.3 Применение методов биотехнологии в селекции капусты белокочанной (Brassica oleracea L.)

В настоящее время селекционеры практикуют как традиционные, так и биотехнологические методы создания новых форм, гибридов и сортов растений на основе использования новых или изменённых генетических признаков, нацеленных на отбор новых элитных сортов с улучшенной продуктивностью, адаптивностью к местным условиям, толерантностью к биотическому и абиотическому стрессам и т.д. Многие задачи по улучшению сортов капусты белокочанной не разрешимы классическими методами селекции из-за отсутствия доноров с желаемыми свойствами. Для решения этой проблемы, например, используют метод отдаленной гибридизации. Для растений рода Brassica с помощью данного метода был проведен ряд работ, направленных на повышение урожайности, устойчивости к вредителям и болезням, транспортабельности, а также получение большого разнообразия сортов по срокам созревания и лежкости (Лизгунова Т.В., 1967, 1975). Однако лишь ограниченное число межвидовых и межродовых скрещиваний в семействе Brassicaceae может привести к получению полноценных гибридных растений. Трудности создания отдаленных гибридов обусловлены барьерами несовместимости, которые выражены между растениями разных таксономических групп с момента опыления, а затем проявляются на протяжении всего онтогенеза гибридных растений (Котлярова Е.Б. и др.,2007).

Другим эффективным способом получения гибридных сельскохозяйственных растений является гетерозис, который позволяет получать F1 гибриды, обладающие высоким качеством урожая, фенотипической однородностью, транспортабельностью, скороспелостью и другими качествами.

Изучение особенностей проявления гетерозисного эффекта капусты белокочанной впервые в нашей стране было проведено Е.М. Поповой, Н.В.

Белороссовой и Р.Е. Химичем на Грибовской опытной станции (Монахос Г.Ф. и др., 2013). Для получения 100% -го гибридного потомства в 1963 году профессор Тимирязевской академии А.В. Крючков изучал явление самонесовместимости. В результате этого в 1984 году был создан первый четырехлинейный F1 гибрид капусты СБ-3, который в 1991 году был включен в Госреестр.

Работы в этом направлении продолжаются в РГАУ-МСХА имени К.А. Тимирязева и по настоящее время. Например, Г.Ф. Монахос с сотрудниками установили, что обработка цветков инбредных линий белокочанной капусты раствором хлорида натрия в концентрации 3,0-3,5% за 20-30 минут до опыления существенно снижает проявление самонесовместимости, тем самым повышая завязываемость семян (Монахос Г.Ф., Абдул Хамид, 2001).

В последнее время большое внимание уделяется практической разработке эффективных методов получения гибридных семян с цитоплазматической мужской стерильностью. У представителей семейства Вrаssicaceae наблюдается более сложное наследование ЦМС, что до недавнего времени отражалось на эффективности ее использования в гетерозисной селекции. Так, фенотипическое проявление мужской стерильности у капустных растений чаще обусловлено взаимодействием цитоплазмы с генами ядра, находящимися в гомозиготном состоянии. Поэтому, в отличие, например, от кукурузы, это требует создания специальных линий - закрепителей стерильности, что усложняет селекционно-семеноводческий процесс. В ряде стран, таких как Голландия, Дания, Бельгия, Франция, Япония и др. успешно проводятся селекционные работы по использованию форм капусты с ЦМС. В России в РГАУ - МСХА имени К.А. Тимирязева на Селекционной станции им. Н. Н. Тимофеева создан гибрид среднепоздней капусты Фаворит с использованием метода отдаленной гибридизации при передаче ЦМС из рапса (В. пария) в капусту пекинскую (В. ректвтИ) (Монахос Г.Ф., Куленкамп А.Ю., Абдул Хамид, 2000).

С развитием биотехнологии, в частности клеточной и генной инженерии, возникла возможность включения этих методов в схему классической селекции, с целью преодоления трудностей, возникающих при оплодотворении, развитии зародыша и формирования новых форм растений, устойчивых к различным факторам абиотической и биотической природы. К таким методам можно отнести: оплодотворение in vitro, культура изолированных зародышей, соматическая гибридизация, создание гаплоидных растений in vitro, проведение клеточной селекции, а также получение трансгенных растений.

Преодоление прогамной и постгамной несовместимости.

Для преодоления постамной и прогамной несовместимости растений существуют биотехнологические методы, заключающиеся в культивировании изолированных зародышей, завязей и семяпочек, а также оплодотворение в условиях in vitro, что позволяет получать фертильные растения многих важных сельскохозяйственных культур. Эти приемы были хорошо апробированы на озимой пшенице (Барабанова Е.А. и др., 1988), ржи (Першина Л.А.и др., 2003), хлопчатнике (Азизходжаев А., Даминова Д.М., 1988), кукурузе (Прасад М. Сатья и др., 1988), томате (Тодераш Л.Г., 1988), луке (Титова И.В., 1988) и других растениях.

Одним из перспективных методов преодоления прогамной несовместимости является искусственное опыление завязи и семяпочек пыльцой другого растения в контролируемых условиях in vitro. Этот метод применяется в том случае, когда пыльца не способна прорастать на рыльце пестика из-за физиологических (например, разные сроки созревания пыльцы) и морфологических (блокировка роста пыльцевой трубки на разных этапах развития) особенностей растений (Калашникова Е.А., 2012). Возможность оплодотворения в условиях культивирования изолированных семяпочек возрастает при удалении рыльца, столбика и стенок завязи (Першина Л.А., Шумный В.К., 1991).

Изучение эффективности использования методов изолированных семяпочек и завязей проводили на гибридах, полученных в скрещиваниях между различными подвидами В. campestris, видами В. oleracea, В. napus, В. juncea и Raphanus sativus. Оказалось, что культивирование семяпочек было предпочтительнее перед культивированием завязей по частоте образования гибридов при использовании В. oleracea в качестве женского компонента скрещивания. При использовании В. oleracea в качестве пыльцевого родителя культивирование семяпочек не привело к лучшим результатам, чем культивирование завязей (Takeshita, 1980). В работе Котляровой Е.Б. (2007) показано, что с помощью культуры семяпочек получены гибриды как в межвидовых скрещиваниях, например, между репой и капустой белокочанной (в качестве отцовской формы) (Diederichsen, Sacristan, 1994), капустой белокочанной (в качестве материнской формы) и репой (Hossain et al., 1988), так и межродовых между сурепицей яровой и репой (Kaneko et al., 1996), капустой белокочанной и сурепицей яровой (Hossain et al., 1990), рогачкой и капустой белокочанной (Sarmah В. К., Sarla, 1998).

Опыление и оплодотворение in vitro оказалось необходимым для создания отдаленных гибридов между Brassica napus и В. oleracea, Arabis caucasica, Diplotaxis tenuifolia, Moricandia arvensis, Sysymbrium loeselli и Sinapis alba. Оплодотворенные завязи, и развивающиеся зародыши культивировали на питательной среде MS с добавлением никотиновой кислоты и миоинозитола (Zenkteler, 1990).

С целью преодоления постгамной несовместимости во многих экспериментах по созданию отдаленных гибридов растений успешно используется метод культуры зародышей, или эмбриокультуры. Данный метод для получения межвидовых гибридов растений семейства Brassicaceae первым использовал в 1959 году Nishi S. (цит. по Gowers at al., 1999).

Список литературы диссертационного исследования кандидат наук Киракосян Рима Нориковна, 2016 год

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

1. Азизходжаев, А. Пути получения гибридных растений и семян при отдаленной межвидовой гибридизации хлопчатника / А. Азизходжаев, Д.М. Даминова // Биология культивируемых клеток и биотехнология. — Новосибирск, 1988, Т. 2. — С. 204—205.

2. Барабанова, Е.А. Регенерация растений из культивируемых зародышей озимой пшеницы / Е.А. Барабанова, В.П. Банникова, B.C. Гирко // Биология культивируемых клеток и биотехнология — Новосибирск, 1988, Т. 1. — С. 110.

3. Батыгина, Т.Б. От микроспоры - к сорту / Т.Б.Батыгина, Н.Н. Круглова, В.Ю. Горбунова., Г.Е. Титова, О.А. Сельдимирова .- М.: Наука. 2010г. 174 с.

4. Бахтенко, Е.Ю. Регуляция роста и развития растений: учебное пособие / Е.Ю. Бахтенко, П.Б.Курапов. - М: Мин-во образования и науки РФ: Вологодский гос. пед. ун-т. - Вологда: ВГПУ, 2014. - 192 с.

5. Бойчук, Ю.Н. Введение в культуру in vitro и разработка метода генетической трансформации рыжика посевного (Camelina sativa) / Ю.Н. Бойчук, Е.Н. Шиша, А.И. Емец, С.В. Исаенков, Я.Б. Блюм // Сборник материалов I конференции молодых ученых (с международным участием) «Биология растений и биотехнология». Белая Церковь, Украина, 2011. С. 107.

6. Бондарева Л.Л., Пивоваров В.Ф. Основные направления и результаты селекции и семеноводства капустных культур во ВНИИССОК// Овощи России, вып.3, 2013. С. 4-9.

7. Бутенко, Р.Г. Индукция морфогенеза в культуре тканей растений //Гормональная регуляция онтогенеза растений. М., 1984. - С. 42-54.

8. Бутенко, Р.Г. Биология клеток высших растений in vitro и биотехнологии на их основе: учебное пособие / Р.Г.Бутенко - М.: ФБК-ПРЕСС, 1999. - 160 с.

9. Головешкина, Е.Н. Создание дигаплоидных линий Brassica napus L. — доноров устойчивости к вирусу мозаики турнепса / И.А. Зубарева, Е.Н.Головешкина, С.В.Виноградова, Т.Н. Грибова, С.Г. Монахос, А.Н. Игнатов // Сельскохозяйственная биология - 2013.-№5.- С.122-125.

10. Гончарова, Н.В. Исследование физико-химических свойств экстрактов хвойных пород, извлеченных из растительного сырья растворителями различной природы методом дифференциально-сканирующей колориметрии (ДСК) / Н.В.Гончарова, Н.В. Сячинова, Е.А.Думнова // Кожа и мех в XXI веке: технология, качество, экология, образование, 2010. - С. 151-154.

11. Грибова, Т.Н. Создание гаплоидных растений масленичного рапса Brassica napus с использованием культуры микроспор / Т.Н. Грибова, А.Н. Князев, А.М. Камионская // Биотехнология- 2012.- №2.- С.59-65.

12. Доан, Т.Т. Особенности клонального микроразмножения редких и лекарственных растений (Euonymus nana Bieb., Dioscorea nipponica Makino., Dioscorea caucasia Lypsky. и Aristolochia manshuriensis Kom.): Автореф. дис ...канд биол. наук. - /РГАУ-МСХА им. К.А. Тимирязева.- Москва, 2013.-22 с.

13. Домблидес, Е.А. Развитие пыльников капусты брокколи in vivo и при культивировании in vitro / Е.А. Домблидес, Н.А. Шмыкова //Сб. науч. труд. Всероссийский НИИ селекции и семеноводства овощных культур.- 2002 г.-Выпуск 37.- С. 82-92.

14. Загоскина, Н.В. Уровень плоидности каллусных культур чайного растения и образование фенольных соединений / Н.В.Загоскина, В.Г.Федосеева, М.Н. Запрометов // Физиология растений. - 1997. - Т. 44 .- № 6. - С. 931.

15. Загоскина, Н.В. Полифенолы и их роль в защите растений от действия стрессовых факторов. VI Международный симпозиум "Новые и нетрадиционные растения и перспективы их использования: материалы / Н.В. Загоскина // Всерос. науч.-исслед. ин-т селекции и семеноводства овощных культур. - Москва, 2005- Т. 3. - С. 300-302.

16. Загоскина, Н.В. Низкотемпературный стресс и устойчивость растений / Н.В. Загоскина, Н.А. Олениченко // Биология в школе.- 2007. - № 6. - С. 13-16.

17. Запрометов, М.Н. Фенольные соединения и методы их исследования / М.Н. Запрометов // Биохимические методы в физиологии растений / Под ред. О.А. Павлиновой - М.: Наука,1971. - С.185-197.

18. Запрометов, М.Н. Основы биохимии фенольных соединений / М.Н. Запрометов. - М.: Высш. шк., 1974.- 214с.

19. Запрометов, М.Н. Фенольные соединения: распространение, метаболизм и функции в растениях / М.Н. Запрометов. - М.: Наука, 1993.272 с.

20. Запрометов, М.Н. Специализированные функции фенольных соединений / М.Н. Запрометов // Физиология растений. - 1993. - Т. 40 - С. 921.

21. Запрометов М.Н. Способность изолированных хлоропластов из листьев фасоли осуществлять биосинтез фенольных соединений / М.Н. Запрометов, Т.Н. Николаева // Физиология растений. - 2003. - Т. 50. - № 5. - С.699-702.

22. Зонтикова, С.А. Генетическая трансформация капусты для повышения устойчивости к фитопатогенам /С.А. Зонтикова, О.Ф. Шарафова, А.В. Поляков // Картофель и овощи. — 2009. — №7. — С.24-25.

23. Калашникова, Е.А. Клеточная селекция растений на устойчивость к грибным болезням: Дис. Док. Биол. наук: М.: ТСХА, 2003. - 279 с.

24. Калашникова, Е.А. Лабораторный практикум по сельскохозяйственной биотехнологии / Е.А. Калашникова, М.Ю. Чередниченко, Н.П. Карсункина, М.Р. Халилуев. Изд. 3-е, испр. и доп. Изд-во РГАУ-МСХА. - 2014. - 147 с.

25. Калашникова, E.A. Клеточная инженерия растений / E.A. Калашникова. М.: -Издат-во МСХА,, 2012, - 317 с.

26. Киракосян, Р.Н. Получение растений - регенерантов из репродуктивных органов растений капусты белокочанной (Brassica oleracea L.) in vitro / Р.Н. Киракосян, Е.А. Калашникова // Известия ТСХА. - М.: Изд-во РГАУ-МСХА им. К.А. Тимирязева. 2015. - Вып. 1. - С. 18-25.

27. Киракосян, Р.Н. Влияние растительных экстрактов на морфогенетический потенциал изолированных органов Brassica oleracea L. in vitro / Р.Н. Киракосян, Е.А. Калашникова, Л.Л. Бондарева // Овощи России. - М.:Изд-во ФГБНУ ВНИИССОК, 2015. - Вып.2. - С. 58-62.

28. Котлярова, Е.Б. Применение методов in vitro для получения межвидовых и межродовых гибридов растений семейства Brassicaceae (Обзор)/ Е.Б.

Котлярова, E.H. Жидкова, О.А. Подвигина // Вестник ВГУ, Серия: Химия. Биология. Фармация. - 2007. - № 2. - С. 64-70.

29. Лаврова, Н.В. Технологические аспекты создания андрогенных гаплоидов озимой мягкой пшеницы: монография / Н. В. Лаврова. - М.: Мин-во сельского хоз-ва Российской Федерации, ФГОУ ВПО "Российский гос. аграрный ун-т - МСХА им. К. А. Тимирязева". Москва, 2006.

30. Лизгунова, Т. В. Капуста / Т. В. Лизгунова. - Л.: Колос. - 1967 - 384с.

31. Лизгунова, Т. В. Культурная флора СССР. Т.11. Капуста / Т. В. Лизгунова. -Л.: Колос. - 1984 - 328с.

32. Лизгунова, Т. В. О яровизации капусты в семенах / Т. В.Лизгунова, А. П. Федулова // Тр. по прикл. бот., ген. и селекции. - Л.: Т. 31 (вып. 2). - 1957.-56с.

33. Литвинов, С.С. Овощеводство России и его научное обеспечение (состояние, приоритеты, перспективы) / С.С. Литвинов. - М.: ВНИИО. - 2003. - 35 с.

34. Малышенко, С.И. Получение трансгенных растений Brassica campestris, экспрессирующих ген gfp / С. И. Малышенко, Л.Г. Тюлькина, С.Д. Зверева и Г.Н. Ралдугина // Физиология растений. - 2003. - Т. 50. - № 2. - С. 309-315.

35. Май, Д.Ч. Совершенствование технологии получения гаплоидных и дигаплоидных растений рапса (Brassica napus l.) и белокочанной капусты (Brassica oleracea l.) in vitro: Автореф. дис .. .канд биол. наук. - /РГАУ-МСХА им. К.А. Тимирязева.- Москва, 2010.-23 с.

36. Минаева, В.Г. Флавоноиды в онтогенезе растений и их практическое использование / В.Г. Минаева. - Новосибирск. Наука. - 1978. - 255 с.

37. Монахос, Г.Ф. Влияние возроста бутона у самонесовместимых линий капусты назавязываемость при гейтеногамном опылении / Г.Ф. Монахос, А.Ю.Куленкамп, Абдул Хамид // М.: - 2000. - Докл. ТСХА. - Вып. 272.- С. 88-91.

38. Монахос, Г.Ф. Использование хлорида натрия при размножении самонесовместимых линий белокочанной капусты / Г.Ф. Монахос, Абдул Хамид // Известия ТСХА. - 2001. - Вып.2. - С. 73-80.

39. Монахос, Г.Ф. Селекция и семеноводство капусты в России на современном этапе / Г.Ф. Монахос, В.М. Баутин, С.Г. Монахос, Пацурия Д.В. // Картофель и овощи. - 2013. - Вып. 2.- С. 2-3.

40. Муромцев, Г.С. Основы сельскохозяйственной биотехнологии. /Г.С. Муромцев, Р.Г. Бутенко, Т.И. Тихоненко. - М.: Наука, 1990.- 176с.

41. Нам, И.Я. Оптимизация применения регуляторов роста и развития растений в биотехнолониях in vitro // Автореф. дис. докт. биол. наук. - М.: 2004. - 42с.

42. Ницше, В. Гаплоиды в селекции растений. /В. Ницше, Г. Венцель - М.: Колос. - 1980. - 128с.

43. Першина, Л А. Проблемы использования методов in vitro при отдаленной гибридизации злаков / Л А. Першина, В.К Шумный // Биология культивируемых клеток и биотехнология растений. - М.: 1991. — С. 102— 114.

44. Першина, Л.А. Влияние хромосом ржи на особенности каллусогенеза и регенерации в каллусной культуре незрелых зародышей пшенично-ржаных замещенных линий Triticum aestivum L. сорта Саратовская 29 х Secale cereale L. сорта Онохойская / Л.А. Першина, О.Б. Добровольская, Т.С. Раковцева, Л.А. Кравцова, А.И. Щапова, В.К. Шумный // Генетика. — 2003. — Т. 39, № 8. — С. 1073—1080.

45. Петрушко, Ю.Н. Белокочанная капуста. Современная ресурсосберегающая технология выращивания в условиях Приморского края / Ю.Н. Петрушко, В.И. Потемкина, В.П. Федяй - Уссурийск. - 2003. - 76 с.

46. Поляков, А.В. Основные направления использования биотехнологических методов в селекции овощных культур / А.В. Поляков // Селекция, семеноводство и биотех- нология овощных и бахчевых культур (Доклады III Международной конференции, посвященной памяти Б.В. Квасникова) / М.: ВНИИО.- 2003. - С. 29-33.

47. Прасад, М. Сатья. Действие генотипа и состава питательной среды на соматический эмбриогенез и регенерацию растений из незрелых зародышей / М. Сатья Прасад, А.Н. Кравченко // Биология культивируемых Применение

методов in vitro для получения межвидовых и межродовых гибридов растений семейства. — Новосибирск. - 1988. — Т. 1. — С. 154—155.

48. Ралдугина Г.Н., Соболкова Г.И. Генотипические различия при действии абсцизовой кислоты на каллусные культуры Brassica napus L. / Г.Н. Ралдугина Г.И. Соболкова // Физиология растений. - 1994. - Т. 41. № 5. - С. 702-706.

49. Ралдугина Г.Н., Соболкова Г.И. Факторы, влияющие на органогенез у семядольных эксплантов рапса / Г.Н. Ралдугина, Г.И. Соболкова // Физиология растений. - 1995. - T. 42. - С. 916-922.

50. Титова, И.В. Включение методов культуры in vitro в процесс создания исходного материала при межвидовой гибридизации лука / И.В. Титова // Биология культивируемых клеток и биотехнология.- Новосибирск. - 1988. — Т. 2. — С. 233.

51. Тодераш, Л.Г. Использование культуры in vitro зародышей томата в селекции растений / Л.Г. Тодераш // Биология культивируемых клеток и биотехнология. — Новосибирск. - 1988. — Т. 2. — С. 238—239.

52. Тюкавин, Г.Б. Основы биотехнологии моркови: Монография. ВНИИССОК. -М.: 2007. - 480 с.

53. Фрешни, Р.Я. Культура животных клеток / Р.Я. Фрешни // Практическое руководство. - 2011.

54. Хоанг, Т.Ж., Ралдугина Г.Н. Подход к проблеме образования химер у генетически трансформированных растений рапса (Brassica napus L.) / Т.Ж. Хоанг, Г.Н. Ралдугина // Тезисы докладов X молодежной научной конференции "Биотехнология в растениеводстве, животноводстве и ветеринарии". - Москва. - 2010. - С.57.

55. Шлык, А.А. Определение хлорофиллов и каротиноидов в экстрактах зеленых листьев // Биохимические методы в физиологии растений. М.: Наука.1971. С. 154-182.

56. Шмыкова, Н.А. Гаплоидия у томата. Перспективы создания гомозиготных линий на основе гиногенеза и андрогенеза in vitro / Н.А. Шмыкова // Овощи России. - 2009. - №1. - С.12-16.

57. Шмыкова Н.А. Индукция гиногенеза в культуре неопыленных семяпочек тыквы / Н.А. Шмыкова, Д.В. Шумилина, В.П. Кушнерёва, Химич Г.А. // Овощи России. - 2011. - № 1. - С. 28-31.

58. Шмыкова Н.А. Получение удвоенных гаплоидов у видов рода Brassica / Н.А. Шмыкова, Д.В. Шумилина, Т.П. Супрунова // Вавиловский журнал генетики и селекции. - 2015. - Т.19. - № 1. - С. 111-120.

59. Шумилина, Д.В. Изучение факторов, влияющих на эмбриогенез в культуре микроспор рода Brassica, и метаболизма брассиностероидов в растениях (научная стажировка в Max F. Perutz Laboratories, г. Вена) / Д.В. Шумилина // Овощи России. - 2009-2010. - № 4-1. - С. 44-46.

60. Шумилина Д.В. Влияние генотипа и компонентов среды на эмбриогенез в культуре микроспор капусты китайской Brassica rapa ssp. chinensis сорта Ласточка / Д.В. Шумилина, Н.А. Шмыкова, Л.Л. Бондарева, Т.П. Супрунова // Известия Российской академии наук. Сер. Биологическая. -2015.- № 4. - С. 368-375.

61. Энхтайван, А. Влияние условий культивирования на размножение растений рода Astragalus L. и синтез вторичных соединений в культуре in vitro :Автореф. дис ...канд биол. наук. - РГАУ-МСХА им. К.А. Тимирязева. -Москва, 2015.-23 с.

62. Agnihotri, A. Production of Eruca-Brassica hybrids by embryo rescue / A. Agnihotri, V. Gupta, M.S. Laksiimikumaran, K.R. Shivanna, S. Prakash, V. Jagannathan // Plant. Breed. — 1990. — Vol. 104, № 4. — P. 281—289.

63. Akbar, M.A. Resynthesis of Brassica napus for earliness and daylength iinsensitivity: Dissertation / M. A. Akbar. — Uppsala, 1987. — 75 p.

64. Ahmadikhah, A. Effects of genotype, explant type and nutrient medium components on canola (Brassica napus L.) shoot in vitro organogenesis / A.

Ahmadikhah, G.I. Karlov, Gh. Nematzadeh, K. Ghasemi Bezdi // African Journal of Biotechnology. - 2007. - Vol. 6 (7). - P. 861-867.

65. Arnison, P. G. Genotype-specific response of cultured broccoli (Brassica oleracea var. italica) anthers to cytokinins / P. G. Arnison, P. Donaldson, A.Jackson,

C.Semple, W. A. Keller // Plant Cell Tiss. Organ Cult. - 1990.- Vol. 20. - P. 217222.

66. Arumuganathan, K. Nuclear DNA content of some important plant species / K. Arumuganathan, E. D. Earle // Plant Mol. Biol. Rep. - 1991.- Vol. 9. - P.208-218.

67. Aslam, F. N. Rapid-cycling Brassica species: inbreeding and selection of B. campestris for anther culture ability / F. N. Aslam, M. V. MacDonald, P. Loudon,

D. S. Ingram // Ann. Bot. - 1990. - Vol. 65. - P.557-566.

68. Badani, A. G. Molecular mapping of loci controlling yellow seed colour in oilseed rape (Brassica napus) / A. G.Badani, M. Koch, R. Baetzel, W. Luehs, W. Friedt, H. Renate // Plant Animal and Microbe Genomes X Conference. - San Diego. -January 12-16; 2002. - P. 468 (Abstr.).

69. Bahorun, T. Total phenol, flavonoid, proanthocyanidin and vitamin C levels and antioxidant activities of Mauritian vegetables / T. Bahorun, A. Luximon-Ramma, A. Crozier, O.I. Aruoma // J. Sci. Food Agric. 2004. - Vol. 84. - P. 1553-1561.

70. Baillie, A. M. R. In vitro culture of isolated microspores and regeneration of plants in Brassica campestris / A. M. R. Baillie, D. J. Epp, D. Hucheson, W. A.Keller // Plant Cell Rep. - 1992. - Vol.11. - 234-237.

71. Barfield, D. G. Gene transfer in plants of Brassica juncea using Agrobacterium tumefaciens mediated transformation / D. G.Barfield, E. C. Pua // Plant Cell Rep. -1991. - Vol.10. - P. 308-314.

72. Barcicowska, B. On the way to yellow seeded Brassica napus L. hybrids of B. campestris x B. oleracea and of B. oleracea x B. carinata yellow-seeded / B. Barcicowska, E. Zwieczykowska, M. Baliska // 7th Int. Rapeseed Congress. — Poznan, 1987. — Vol. 2. — P. 492—495.

73. Barro, F. Response of different genotypes of Brassica carinata to microspore culture / F.Barro, A. Martin // Plant Breed. - 1999. Vol. 118. - 79-81.

74. Basu, C. Weed genomics: new tools to understand weed biology / C. Basu, M. D. Halfhill, C. N. Jr Stewart // Trends Plant Sci. - 2004. - (in press).

75. Batra, V. Intergeneric hybridization between Diplotaxis siifolia, a wild species and crop brassicas / V. Batra, S. Prakash, K.R. Shivanna // Theor. Appl. Gen. — 1990. — Vol. 80, № 4. — P. 537—541.

76. Blackshaw, R. E. Growth, yield and quality of canola expressing resistance to acetolactate synthase inhibiting herbicides / R. E. Blackshaw, D.Kanashiro, M. M. Moloney, W. L. Crosby // Can. J. Plant Sci. - 1994. - Vol.74. - P.745-751.

77. Blok, G. Fruits, vegetables, and cancer prevention: a review of the epidemiological evidence / G. Blok, B. Patterson and A. Subar // Nutr. Cancer. - 1992. - Vol.18. -P.1-29.

78. Brewer, E.P. Somatic hybridization between the zinc accumulator Thlaspi caerulescens and Brassica napus/ E.P. Brewer, J. A. Saunders, J. S. Angle, R. L. Chaney, M. S. Mcintosh // Theor. Appl. Genet. - 1999. - Vol.99. -P.761-771.

79. Brown, P. T. H. Analysis of single protoplasts and regenerated plants by PCR and RAPD technology / P. T. H. Brown, F. D. Lange, E. Kranz, H. Lorz // Mol. Gen. Genet. - 1993. - Vol.237. - P. 311-317.

80. Brown, J. Intergeneric hybridization between Sinapis alba and Brassica napus / J. Brown, A.P. Brown, J.B. Davis, D. Erickson // Euphytica. — 1997. — Vol. 93, № 2. — P. 163—168.

81. Burnett, L. Enhancement of shoot regeneration from cotyledon explants of Brassica rapa ssp. oleifera through pretreatment with auxin and cytokinin and use of ethylene inhibitors / L. Burnett, M. Arnoldo, S. Yarrow, B. Huang // Plant Cell Tiss. Organ Cult. - 1994. - Vol.37. - P.253-256.

82. Camargo, L. E. A. Mapping loci controlling flowering time in Brassica oleracea / L. E. A. Camargo, Osborn, T. C. // Theor. Appl. Genet. -1996. - Vol.92. P.610-616.

83. Cao, J. Transgenic broccoli with high levels of Bacillus thuringiensis Cry1C protein control diamondback moth larvae resistant to Cry1A or Cry1C / J. Cao, J.

D. Tang, N. Strizhov, A. M. Shelton, E. D. Earle // Mol. Breed. - 1999. - Vol.5. -P.131-141.

84. Cao, M. Q. Embryogenesis and plant regeneration of pakchoi (Brassica rapa L. ssp. chinensis) via in vitro isolated microspore culture / M.Q.Cao,Y.Li, F.Liu, C.Dore // Plant Cell Rep. - 1994. - Vol.13. - P.447-450.

85. Cao, M. Q. Application of anther culture and isolated microspore culture to vegetable crop improvement / M. Q. Cao,Y. Li, F. Liu, T. Jiang, G. S. Liu // Acta Hort. - 1995. - Vol.392. - P.27-38.

86. Cardi, T. Production of new CMS Brassica oleracea by transfer of Anand cytoplasm from B. rapa through protoplast fusion / T. Cardi, Earle E. D. // Theor. Appl. Genet. - 1997. - Vol.94. - P.204-212.

87. Cardoza, V. Increased Agrobacterium mediated transformation and rooting efficiencies in canola (Brassica napus L.) from hypocotyl explants / V. Cardoza, C. N. Jr.Stewart // Plant Cell Rep. - 2003. - Vol.21. - P.599-604.

88. Charne, D. G. Embryogenesis following cryopreservation in isolated microspores of rapeseed (Brassica napus L.) / D. G. Charne, P. Pukacki, L. S. Kott, W. D. Beversdorf // Plant Cell Rep. - 1988. -Vol.7. - P.407-409.

89. Chaudhary, S. Transgenic Brassica carinata as a vehicle for the production of recombinant proteins in seeds / S. Chaudhary, D. L.Parmenter, M. M.Moloney // Plant Cell Rep. - 1998. - Vol.17. - P.195-200.

90. Chen, J. L. Production of spontaneous diploid lines from isolated microspores following cryopreservation in spring rapeseed (Brassica napus L.) / J.L. Chen, W.D. Beversdorf // Plant Breed. - 1992. - Vol.108. - P.324-327.

91. Chen, B.Y. Resynthesis of Brassica napus L. through interspecifi c hybridization between B. alboglabra Bailey and B. campestris L. with special emphasis on seed color / B.Y. Chen, S.K Heneen, R. Jonsson // Plant Breeding. — 1988. — Vol. 101. — P. 52—59.

92. Chevre, A.M. Comparison of somatic and sexual Brassica napus — Sinapis alba hybrids and their progeny by cytogenetic studies and molecular characterization /

A. M. Chevre, F. Eber, E. Margale, M.C. Kerlan, C. Primard, F. Vedel, M. Delseny, G. Pelletier // Genome. — 1994. — Vol. 37, № 3. — P. 367—374.

93. Chi, G. L. Effect of AgNO3 and aminoethoxyglycine on in vitro shoot and root organogenesis from seedling explants of recalcitrant Brassica genotypes / G.L. Chi, D. G. Barfield, G. E. Sim, E. C. Pua // Plant Cell Rep. - 1990. - Vol.9. - P.195-198.

94. Chiang, M. S. Embryogenesis and haploid production from anther culture of cabbage (Brassica oleracea var. capitata L.) / M. S. Chiang, S. S. Frechette, C. G. Kuo, C. Chong, S. J.Delafield // Can. J. Plant Sci. - 1985. - Vol.65. - P.1033-1037.

95. Cho, H. S. Control of Lepidopteran insect pests in transgenic Chinese cabbage (Brassica rapa ssp. pekinensis) transformed with a synthetic Bacillus thuringiensis Cry1C gene / H.S. Cho,J. Cao, J.P.Ren, E.D. Earle // Plant Cell Rep. - 2001. -Vol.20. P.1-7.

96. Choi, P. S. Somatic embryogenesis and plant regeneration in cotyledonary explant cultures of Chinese cabbage / P.S. Choi, W.Y. Soh, J.R. Liu // Plant Cell Tiss. Organ Cult. - 1996. - Vol.44. P.253-256.

97. Chuong, P. V. Effects of donor genotype and bud sampling on microspore culture of Brassica napus / P.V.Chuong, C. Deslauriers, L. Kott, W.D. Beversdorf // Can. J. Bot. - 1988. - Vol.66. - P.1653-1657.

98. Chu, C.C. The N6 Medium and its Applications for Anther Culture of Cereal Crops /C.C. Chu //Proc. Plant. Tissue culture bening Geience Press. - 1978. - P. 43-50.

99. Chu, Y.H. Flavonoid content of several vegetables and their antioxidant activity / Y.H. Chu, C.L.Chang, H.F.Hsu // J. Sci. Food Agric. 2000. - Vol. 80. - P.561-566.

100. Cohen, J.H. Fruit and vegetable intakes and prostate cancer risk / J.H. Cohen, A.R. Kristal and J.L. Stanford // J. Natl. Cancer Inst. - 2000. - Vol.92 (1). - P.61-68.

101. Curtis, I. S. Transgenic radish (Raphanus sativus L. longipinnatus Bailey) by floral-dip method - plant development and surfactant are important in optimizing

transformation efficiency /I.S. Curtis, H.G. Nam // Trans. Res. - 2001. - Vol.10. P.363-371.

102. Da Silva, J.A.T. The effect of carbon source on In vitro organogenensis of Chrysanthemum thin cell layers. Bragantia Campinas. - 2004. - Vol. 63(2). -P.165-177.

103. Deane, C.R. Somatic embryogenesis in cauliflower (Brassica oleracea var. botrytis) / C.R. Deane, M.P. Fuller, P.J. Dix // Cruciferae Newslett. - 1997. -Vol.19. P.43-44.

104. De Block, M. Transformation of Brassica napus and Brassica oleracea using Agrobacterium tumefaciens and the expression of the bar and neo genes in the transgenic plants / M. De Block, D.De Brower, P. Tenning // Plant Physiol. - 1989. - Vol.91. - P. 694-701.

105. De Pascale, S. Sulphur fertilization may improve the nutritional value of Brassica rapa L. subsp sylvestris / S. De Pascale, A. Maggio, R. Pernice, V. Fogliano, G. Barbieri // Eur. J. Agron. - 2007. - Vol. 26. P.418-424.

106. Delounne, R. Intergeneric hybridization of Diplotaxis erucoides with B. napus. I. Cytogenetic analysis of F, and BC, progeny / R. Delounne, F. Eber, A.M. Chevre // Euphytica. — 1989. — Vol. 41, № 1—2. — P. 123—128.

107. Dias, J. S. Effect of silver nitrate on anther culture embryo production of different Brassica oleracea morphotypes / J. S Dias, M. G. Martins // Sci. Hort. - 1999. -Vol.82. - P.299-307.

108. Diederichsen, E. The use of ovule culture in reciprocal hybridization between B. campestris L. and B. oleracea L. / E. Diederichsen, M.D. Sacristan // Plant Breeding. — 1994. — Vol. 113. — P. 79—82.

109. Dunwell, J.M. Embryogenesis from pollen in vitro / J.M. Dunwell // Biotechnology in plant science. Orlando cts. - 1986. - P. 49-54.

110. Eapen, S. Enhancement in shoot regeneration from leaf discs of Brassica juncea L. Czern and Coss by silver nitrate and silver thiosulfate / S. Eapen, L.George // Physiol. Mol. Biol. Plants. - 1996. - Vol.2. - P.83-86.

111. Eapen, S. Plant regeneration from peduncle segments of oil seed Brassica species: influence of silver nitrate and silver thiosulfate / S. Eapen, L. George // Plant Cell Tiss. Organ Cult. - 1997. - Vol.51. - P.229-232.

112. Earle, E. D. Genetic engineering. In: Gomez-Campo, C., ed. Biology of Brassica coenospecies / E.D. Earle, V.C. Knauf // Amsterdam: Elsevier Science. - 1999. -P.287-313.

113. Earle, E.D. Advances in transformation technology for vegetable Brassica / E.D. Earle, T.D. Metz, R.T. Roush, A.M. Shelton // Acta Hort. - 1996. - Vol.407. -P.161-168.

114. Escalettes, V. In vitro adventitious shoot regeneration from leaves of Prunus spp. / V. Escalettes, F.Dosba // II Plant Science. - 1993. - V. 90. - P. 201-209.

115. Facciotti, M.T. Improved stearate phenotype in transgenic canola expressing a modified acyl-acyl carrier protein thioesterase / M.T. Facciotti, P.B. Bertain, L. Yuan // Nat. Biotechnol. - 1999. - Vol.17. - P.593-597.

116. Fahey, J.W. Sulforaphane inhibits extracellular, intracellular and antibioticresistant strains of Helicobacter pylori and prevents benzo [a] pyrene-induced stomach tumors / J.W. Fahey, X. Haristoy, P.M. Dolan, T. W.Kensler, I. Scholtus, and K.K. Stephenson // Proc Natl Acad Sci USA. - 2002. - Vol.99 (11). P. 7610-7615.

117. Fernandes, F. Chemical and antioxidative assessment of dietary turnip (Brassica rapa var. rapa L.) / F. Fernandes, P. Valentao, C. Sousa, J.A. Pereira, R.M. Seabra, P.B. Andrade // Food Chem. - 2007. - Vol.105. - P.1003-1010.

118. Ferreira, M.E. Mapping loci controlling vernalization requirement and flowering time in Brassica napus / M.E. Ferreira, J. Satagopan, B.S.Yandell, P. H. Williams, T. C. Osborn // Theor. Appl. Genet. - 1995. - Vol.90. - P.727-732.

119. Ferreres, F. Phenolic compounds in external leaves of tronchuda cabbage (Brassica oleracea L. var. costata DC) / F. Ferreres, P. Valentao, R.Llorach, C. Pinheiro, U.Cardoso, J.A. Pereira, C. Sousa, R.M. Seabra, P.B. Andrade // J. Agric. Food Chem. 2005. - Vol.53. - P. 2901-2907.

120. Ferreres, F. Chemical composition and antioxidant activity of tronchuda cabbage internal leaves / F. Ferreres, C.Sousa, V.Vrchovska, P.Valentao, J.A. Pereira, R.M. Seabra, P.B. Andrade // Eur. Food Res. Technol.- 2006. - Vol.222. - P.88-98.

121. Francisco, M. Simultaneous identification of glucosinolates and phenolic compounds in a representative collection of vegetable Brassica rapa /M. Francisco, D.A.Moreno, M.E.Cartea, F.Ferreres, C.Garcia-Viguera, P. Velasco // J. Chromatogr. - 2009. -Vol. 1216. - P.6611-6619.

122. Francisco, M. Cooking methods of Brassica rapa affect the preservation of glucosinolates, phenolics and vitamin C / M. Francisco, P.Velasco, D.A.Moreno, C. Garcia-Viguera, M.E. Cartea // Food Res. Int. 2010. - Vol.43. - P. 1455-1463.

123. Frandsen, K.J. The experimental formation of Brassica napus L. var. oleifera DC. and Brassica carinata Braun. / K.J. Frandsen // Dansk Bot. Arkiv. — 1947. — Vol. 12. — P. 1—16.

124. Fukuoka, H. Direct gene delivery into isolated microspores of rapeseed (Brassica napus L.) and the production of fertile transgenic plants / H. Fukuoka, T.Ogawa, M.Matsuoka, Y.Ohkawa, H. Yano // Plant Cell Rep. - 1998. - Vol.17. - P.323-328.

125. George, L. Yield, oil content and fatty acid composition evaluated in androgenetic plants in Brassica juncea / L. George, V.Abraham, D.R.Suryavanshi, A.T. Sipahimalani, V.T. Srinivasan // Plant Breed. - 1987. - Vol.98. - P.72-74.

126. Gage, T.B. Quantitative determination of certain Flavonol- 3-Glycoides / T.B. Gage, S.H. Wendei // Analitical chemistry. - 1950. - V.22. - P. 708- 711.

127. Gawlik-Dziki, U. Effect of hydrothermal treatment on the antioxidant properties of broccoli (Brassica oleracea var. botrytis italica) florets / U. Gawlik-Dziki // Food Chem. - 2008. - Vol.109. - P. 393-401. Molecules. - 2011. - Vol.16. - P.279.

128. Ge, X. 3, 3-Diindolylmethane induces apoptosis in human cancer cells / X. Ge, S.Yannai, G.Rennet, N.Gruener and F.A.Fares // Biochem. Biophys. Res. Comm. -1996. - Vol.228. - P. 153-158.

129. George, L. Yellow-seeded variants in in vitro regenerants of mustard (Brassica juncea cross var. Rai-5) / L. George, P. S. Rao // Plant Sci. Lett. - 1983. - Vol.30. -P.327-330.

130. Gerdemann, M. Attempts to transfer resistance to Phoma lingam from Brassica juncea and B. carinata to B. napus through interspecifi c hybridization followed by ovule culture / M. Gerdemann, M. Sacristan // Gen. Manipulat. Plant Breed., Proc. Int. Symp. — Berlin, New York, 1986. — P. 149—151.

131. Gerdemann-Knoerck, M. Utilization of asymmetric somatic hybridization for the transfer of disease resistance from Brassica nigra to Brassica napus I M. GerdemannKnoerck, M.D. Sacristan, C. Braatz, O. Scheider // Plant Breed. — 1994. — Vol. 113. — P. 106—113.

132. Gland, A. Gehalt und Muster der Glucosinolate in Samen von resynthetisierten Rapsformen I A. Gland // Z. Pfl anzenziicht. — 1982. — Vol. 88. — P. 242—254.

133. Glimelius, K. High growth rate and regeneration capacity of hypocotyls protoplasts in some Brassicaceae / K. Glimelius // Physiol. Plant. - 1984. - Vol.61. - P.38-44.

134. Gonzalez Padilla I.M., Webb K., Scorza R. Early antibiotic selection and efficient rooting and acclimatization improve the production of transgenic plum plants (Prunus domestica L.) ll Plant Cell Rep. - V. 22. - P. 38-45.

135. Gowers, S. Intercrossing Brassica napus and B. oleracea to introgress characters from kale to rape / S. Gowers, M.C. Christey // 10th Int. Rapeseed Congress. — Canberra. - 1999. — P. 1147—1149.

136. Goyal, R.K. Development of fertile Brassica juncea x B. tournefortii hybrids through embryo rescue / R.K. Goyal, J.B. Chowdhury, R.K. Jain // Cruciferae Newslett. Eucarpia. — 1997. — Vol. 19. — P. 19—20.

137. Grandcle'ment, C. Detection and analysis of QTLs based on RAPD markers for polygenic resistance to Plasmodiophora brassicae Woron in Brassica oleracea L / C. Grandcle'ment, G. Thomas // Theor. Appl. Genet. - 1996. - Vol.93. - P.86-90.

138. Grout, B. W. W. The origin and nature of shoots propagated from cauliflower roots / B. W. W. Grout, P. Crisp // J. Hort. Sci. - 1980. - Vol.55. - P.65-70.

139. Guo, Y.D. High-frequency embryogenesis in Brassica campestris microspore culture / Y.D. Guo, S. Pulli // Plant Cell Tiss. Organ Cult. - 1996. - Vol.46. -P.219-225.

140. Guo, B. Thidiazuron: a multi-dimentional plant growth regulator / B. Guo, B.H. Abbasi, A. Zeb, L.L. Xu, Y.H. Wei // African journal of biotechnology.- 2011. -Vol. 10 (45) - P. 8984-9000.

141. Gupta, V. Genetic transformation of Brassica nigra by Agrobacterium based vector and direct plasmid uptake / V. Gupta, G.L. Sita, M.S. Shaila, V. Jagannathan //Plant Cell Rep. - 1993. - Vol.12. - P.418-421.

142. Gyulai, G. Biotechnology of rapeseed (Brassica napus L.) / G. Gyulai, E. Kiss, L.E. Heszky // Acta Agronomica Hungarica. — 1992. — Vol. 41, № 3—4. — P. 277— 287.

143. Hachey, J. E. Efficient shoot regeneration of Brassica campestris using cotyledon explants cultured in vitro / J. E. Hachey, K.K.Sharma, M.M. Moloney // Plant Cell Rep. - 1991. - Vol. 9. - P.549-554.

144. Halfhill, M. D. Additive transgene expression and genetic introgression in multiple GFP transgenic crop J weed hybrid generations / M.D. Halfhill, R.J. Millwood, A.K. Weissinger, S.I.Warwick, C.N.Jr. Stewart // Theor. Appl. Genet. - 2003. -Vol. 107. - P.1533-1540.

145. Halfhill, M.D. Expression of GFP and Bt transgenes in Brassica napus and hybridization with Brassica rapa / M.D. Halfhill, H.A.Richards, S.A. Mabon, C. N. Stewart // Theor. Appl. Genet. - 2001. - Vol.103. - P.659-667.

146. Hammatt, N. Apparent rejuvenation of mature wild cherry (Prunus avium L.) during mieropropagation / N. Hammatt, N.J.Grant // J. Plant.Physiol. - 1993. - V. 141. №3.-P. 341-346.

147. Hansen, L.N. Novel flowering and fatty acid characters in rapid cycling Brassica napus L. synthesized by protoplast fusion / L.N. Hansen, E.D. Earle // Plant Cell Rep. - 1994. - Vol.14. - P.151-156.

148. Hansen, M. Marker-assisted selection of restored male-fertile Brassica napus plants using a set of dominant RAPD markers / M. Hansen, C.Hallden, N.O. Nisson, T. Sall // Mol. Breed. - 1997. - Vol.6. - P.449-456.

149. Hansen, L.N. Somatic hybrids between Brassica oleracea L. and Sinapis alba L. with resistance to Alternaria brassicae I L.N. Hansen, E.D. Earle // Theor. Appl. Gen. — 1997. — Vol. 94. — P. 1078—1085.

150. Harbaum, B. Identification of flavonolds and hydroxycinnamic acids in pak choi varieties (Brassica campestris L. ssp chinensis var. communis) by HPLC-ESI-MSn and NMR and their quantification by HPLC-DAD / B. Harbaum, E.M. Hubbermann, C.Wolff, R.Herges, Z.Zhu, K.Schwarz // J. Agric. Food Chem. -2007. - Vol.55. - P.8251-8260.

151. Hawkins, D. Characterization of acyl-ACP thioesterase of mangosteen (Garcinia mangosteena) seed and high levels of state production in transgenic canola / D. Hawkins, L. Kridl // Plant J. - 1998. - Vol. 13. - P.743-752.

152. Heath, D.W. Synthesis of Ogura male sterile rapeseed (Brassica napus L.) with cold tolerance by protoplast fusion and effects of atrazine resistance on seed yield /

D.W. Heath, E.D. Earle // Plant Cell Rep. - 1996. - Vol.15. - P.939-944.

153. Henzi, M.X. Factors that influence Agrobacterium rhizogenes-mediated transformation of broccoli (Brassica oleracea L. var. italica) / M.X. Henzi, M.C. Christey, D.L. McNeil // Plant Cell Rep. - 2000. - Vol. 19. - P.994-999.

154. Hiramatsu, M. A survey of microspore embryogenesis in leaf mustard (Brassica juncea) / M. Hiramatsu, K. Odahara, Y. Matsue // Acta Hort. - 1995. - Vol.392. -P.139-145.

155. Hoffmann, F. Anther culture as a breeding tool in rape. Progeny analysis of androgenetic lines and induced mutants from haploid cultures / F. Hoffmann,

E.Thomas, G.Wenzel // Theor. Appl. Genet. - 1982. - Vol.61. - P.225-232.

156. Holm, L. World weeds: natural histories and distribution / L. Holm, J. Doll, E. Holm, J. Pancho, J. Herberger // New York: John Wiley and Sons. - 1997.

157. Hossain, M.M. Intergeneric and interspecifi c hybrids through in vitro ovule culture in the Cruciferae / M.M. Hossain, H. Inden, T. Asahira // Plant Sci. — 1988. — Vol. 58, № 1. — P. 121—128.

158. Hossain, M.M. In vitro ovule culture of intergeneric hybrids between Brassica oleracea and Raphanus sativus / Hossain, H. Inden, T. Asahira// Sci. hort. (Neth.). — 1990. —Vol. 41, № 3. — P. 181—188.

159. Houmiel, K.L. Poly (beta-hydroxybutyrate) production in oilseed leukoplasts of Brassica napus / K.L. Houmiel, S. Slater, D. Broyles, L. Casagrande, S. Colburn, K. Gonzalez, T.A. Mitsky, S.E. Reiser, D .Shah, N.B. Taylor // Planta. - 1999. -Vol.209. - P.547-550.

160. Hu, Q. Production of fertile intergeneric somatic hybrids between Brassica napus and Sinapis arvensis for the enrichment of the rapeseed gene pool / Q. Hu, S.B. Anderson, C. Dixelius, L.N. Hansen // Plant Cell Rep. - 2002. - Vol.21. - P.147-152.

161. Hu, Q. Plant regeneration capacity of mesophyll protoplasts from Brassica napus and related species / Q. Hu, S.B. Anderson, L.N. Hansen // Plant Cell Tiss. Organ Cult. - 1999. - Vol.59. - P.189-196.

162. Huang, M.T. Cancer chemoprevention by phytochemicals in fruit and vegetables / M.T. Huang, T. Ferrero and C.T. Ho // American Chemical Society. - 1994. - P.2-16.

163. Huetteman, C.A. Thidiazuron: a potent cytokinin for woody plant tissue culture / C.A. Huetteman, J.E. Preece // Plant Cell, Tissue and Organ Culture. - 1993. -Vol. 33. - P.105-119.

164. Hwang, E.S. DNA damage, a biomarker of carcinogenesis: Its measurement and modulation by diet and environment / E.S. Hwang, Bowen P. // Crit Rev Food Sci Nutr. - 2007. - Vol.47 (1). - P.27-50.

165. Inomata, N. In vitro culture of ovaries of Brassica hybrids between 2x and 4x. I. Culture medium / N. Inomata // Jpn. J. Breed. 1968. — Vol. 18. — P. 139—148.

166. Inomata, N. Production of interspecifi c hybrids in Brassica campestris x B. oleracea by culture in vitro of excised ovaries. I. Development of excised ovaries

in the crosses of various cultivars / N. Inomata // Jap. J. Genet- 1978. — Vol. 53.

— P. 161—173.

167. Inomata N. Interspecifi c hybrids between Brassica campestris and B. cretica by ovary culture in vitro / N.Inomata // Cruciferae Newslett. Eucarpia. — 1985. — Vol. 10. — P. 92—93.

168. Inomata, N. Interspecifi c hybrids between Brassica campestris and B. bourgeaui by ovary culture in vitro. Cruciferae Newslett / N. Inomata // Eucarpia. — 1986. — Vol. 11. — P. 14—15.

169. Inomata, N. Interspecifi c hybrids between Brassica campestris and B. montana by ovary culture in vitro / N. Inomata // Cruciferae Newslett. Eucarpia. — 1987. — Vol. 12. — P. 8—9.

170. Iqbal, M.C.M. Biosynthesis of glucosinolates by microspore derived embryoids and plantlets in vitro of Brassica napus L / M.C.M. Iqbal, G. Robbelen, C. Mollers // Plant Sci. 1995. - Vol.112. - P.107-115.

171. Jagannath, A. Development of transgenic barstar lines and identification of a male sterile (barnase)/restorer (barstar) combination for heterosis breeding in Indian oilseed mustard (Brassica juncea) / A. Jagannath, N. Arumugam, V. Gupta, A. Pradhan, P.K. Burma, D.Pental // Curr. Sci. - 2002. - Vol.82. - P.46-52.

172. Jagannath, A. The use of a spacer DNA fragment insulates the tissuespecific expression of a cytotoxic gene (barnase) and allows highfrequency generation of transgenic male sterile lines in Brassica juncea L / A. Jagannath, P. Bandyopadhyay, N. Arumugam, V. Gupta, A. Pradhan, P.K. Burma, D.Pental // Mol. Breed. - 2001. - Vol8. - P. 11-23.

173. Jahangir, M. Health-Affecting Compounds in Brassicaceae / M. Jahangir, H.K. Kim, Y.H. Choi, R. Verpoorte // Compr. Rev. Food Sci. Food Saf. - 2009. - Vol.8.

- P.31-43.

174. Jain, R.K. Salt tolerance in Brassica juncea L. / R.K. Jain, S. Jain, H.S. Nainawatee, J.B. Chowdhury // In vitro selection, agronomic evaluation and genetic stability. Euphytica. - 1990. - Vol.48. - P.141-152.

175. Jain, R.K. High frequency regeneration and heritable somaclonal variation in Brassica juncea / R.K. Jain, D.R. Sharma, J.B. Chowdhury // Euphytica. - 1989. -Vol.40. - P.75-82.

176. Jain, S.M. Tissue cultured-derived variation in crop improvement / S.M. Jain // Euphytica. - 2001. - Vol.118. - P.153-166.

177. Jauhar, P.P. Haploid and doubled haploid production in durum wheat by anther culture. In: Maluszynski M et al (eds) / P.P. Jauhar // Doubled haploid production in crop plants. - Kluwer. - 2003. - P.167-172.

178. Jean, M. Genetic mapping of nuclear fertility restorer genes for the 'polima' cytoplasmic male sterility in canola (Brassica napus L.) using DNA markers / M. Jean, G.G. Brown, B.S. Landry // Theor. Appl. Genet. - 1997. - Vol.95. - P.321-328.

179. Jin, R.G. Development of transgenic cabbage (Brassica oleracea var. capitata) for insect resistance by Agrobacterium tumefaciens-mediated transformation / R.G. Jin, Y.B. Liu, B.E. Tabashnik, D. Borthakur // In Vitro Cell. Dev. Biol. Plant. -2000. - Vol.36. - P.231-237.

180. Johnson, I.T. Mechanisms and Anticarcinogenic effects of diet related apoptosis in the intestinal mucosa / I.T. Johnson // Nutra. Res. Rev. - 2001. - Vol.14. - P.229-256.

181. Kaneko, K. Production of interspecifi c hybrids between Brassica campestris and B. oleracea and intergeneric hybrids between Raphanus sativus and B. campestris by ovule culture / K. Kaneko, Y. Okafuji, O. Matsumoto // Bull. Yamaguchi Agr. Exp. Sta. - 1996. - Vol. 47. - P. 6-13.

182. Katiyar, R.K. A somaclone of Brassica juncea is processed into a variety and is released for commercial cultivation in India / R.K. Katiyar, V.L. Chopra // Cruciferae Newslett. - 1995. - Vol.17. - P.92-93.

183. Keller, W.A. Embryogenesis and plant regeneration in Brassica napus anther cultures / W.A. Keller, K.C. Armstrong // Can. J. Bot. - 1977. - Vol. 55. - P.1383-1388.

184. Keller, W.A. High frequency production of microsporederived plants from Brassica napus anther cultures / W.A. Keller, K.C. Armstrong // Pflanzenzu. echt. -1978. - Vol.80. - P.100-108.

185. Keller, W.A. Production of anther-derived dihaploid plants in autotetraploid marrowstemkale (Brassica oleracea var. acephala) / W.A. Keller, K.C. Armstrong // Can. J. Genet. Cytol. - 1981. - Vol.23. - P.259-265.

186. Keller, W. A.; Armstrong, K. C. Production of haploids via anther culture in B. oleracea var. italic / W.A. Keller, K.C. Armstrong // Euphytica. - 1983. - Vol.32. -P.151-159.

187. Kik, C. Protoplast culture and regeneration from Brassica oleracea 'rapid cycling' and other varieties / C. Kik, M.A.C.M. Zaal // Plant Cell Tiss. Organ Cult. - 1993. -Vol.35. - P.107-114.

188. Kirov, I. An easy "SteamDrop" method for high quality plant chromosome preparation / Ilya Kirov, Mikhail Divashuk, Katrijn Van Laere, Oleg Alexandrov, Alexander Soloviev, Ludmila Khrustaleva // Plant molecular cytogenetics in genomic and postgenomic era, Katowice, Poland. - 2014.- P. 61.

189. Kirti, P.B. Production of sodiumchloride- tolerant Brassica juncea plants by in vitro selection at the somatic embryo level / P.B. Kirti, S.Hadi, P.A. Kumar, V.L. Chopra // Theor. Appl. Genet. - 1991a. - Vol.83. - P.233-237.

190. Kirti, P.B. Production and characterization of intergeneric somatic hybrids of Trachystoma ballii and Brassica juncea / P.B. Kirti, S.B. Narasimhulu, S. Prakash, V.L. Chopra // Plant Cell Rep. - 1992. - Vol.11. P.90-92.

191. Kirti, P.B. Interspecific hybridization between Brassica juncea and B. spinescens through protoplast fusion / P.B. Kirti, S. Prakash, V.L. Chopra // Plant Cell Rep. -1991b. - Vol.9. P.639-642.

192. Kirti, P.B.Chloroplast substitution overcomes leaf chlorosis in a Moricandia arvensis-based cytoplasmic male sterile Brassica juncea / P.B. Kirti, K.S. Gaikwad, S. Prakash, V. Dinesh Kumar, S.R. Bhat, V.L. Chopra // Theor. Appl. Genet. -1998. - Vol.97. - P. 1179-1182.

193. Klimaszewska, K. High frequency plant regeneration from thin cell layer explants of Brassica napus / K. Klimaszewska, K.Keller // Plant Cell Tiss. Organ Cult. -1985. - Vol.4. - P.183-197.

194. Knutzon, D.S. Lysophosphatidic acid acyltransferase from coconut endosperm mediates the insertion of laurate at the sn-2 position of triacylglycerols in lauric rapeseed oil and can increase total laurate levels / D.S. Knutzon, T.R. Hayes, A.Wyrick, H. Xiong, H.M. Davies, T.A. Voelker // Plant Physiol. - 1999. -Vol.120. - P.739-746.

195. Koh, W.L. Direct somatic embryogenesis, plant regeneration and in vitro flowering in rapid-cycling Brassica napus / W.L. Koh, C.S. Loh // Plant Cell Rep. - 2000. -Vol.19. - P.1177-1183.

196. Kohlenbach, H.W. Regeneration of Brassica napus plantlets in cultures from isolated protoplasts of haploid stem embryos as compared with leaf protoplasts / H.W. Kohlenbach, G. Wenzel, F. Hoffmann // Z. Pflanzenphysiol. - 1982. -Vol.105. - P.131-142.

197. Kranz, E. Somatic embryogenesis in stationary phase suspension cultures derived from hypocotyl protoplasts of Brassica napus L. / E. Kranz // Plant Cell Tiss. Organ Cult. - 1988. - Vol.12. - P.141-146.

198. Kudou, R. Raising of Brassica interspecifi c hybrids by embryo culture / R. Kudou, Y. Fujime, N. Fukada // Acta Hort. — 1995. — Vol. 392. — P. 87—96.

199. Kumar, R. Interspecifi c hybridization in Brassica juncea and Brassica tournefortii through embryo rescue and their evaluation for biotic and abiotic stress tolerance / R. Kumar, J.B. Chowdhury, R.K. Jain // Indian J. Exper. Biol. — 2001. — Vol. 39, № 9. — P. 911—915.

200. Labana, K.S. Importance and Origin. In: Labana K.S., Banga S.S. and Banga S.K. (eds) / K.S. Labana, S.K. Gupta //Breeding oilseed brassicas. Narosa Publishing House, New Delhi. - P. 1-20.

201. Last, D.J. Embryo yield in wheat anther culture is influenced by the choice of sugar in the culture medium / D.J. Last , R.I.S. Brettell // Plant Cell Report - 1990. - Vol.9. - P.14-16.

202. Lazar, M.D. Combining abilities and heritability of callus formation and plantley regeneration in wheat (Triticum aestivum) anther culture /M.D. Lazar //Theor. Appl. Genet., - 1984. - V.68. - P.131-134.

203. Lelivelt, C.L. Transfer of resistance to the beet cyst nematode Heterodera schachtii Schm. into the Brassica napus L. gene pool through intergeneric somatic hybridization with Raphanus sativus L. / C.L. Lelivelt, F.A. Krens // Theor. Appl. Gen. — 1992. — Vol. 83. — P. 887—894.

204. Lelivelt, C.L. Transfer of resistance of the beet cyst nematode (Heterodera schachtii Schm.) from Sinapis alba L. (white mustard) to the Brassica napus L. gene pool by means of sexual and somatic hybridization / C.L.C. Lelivelt, E.H.M. Leunissen, H. J. Frederiks, J.P.F.G. Helsper, F.A. Krens // Theor. Appl. Gen. 1993. — Vol. 85. — P. 688—696.

205. Leroy, X.J. A rapid method for detection of plant genomic instability using unanchored-microsatellite primers / X.J. Leroy, K. Leon // Plant Mol. Biol. Rep. -2000. - Vol.18. - P.283a-283g.

206. Leroy, X.J. Cauliflower somatic embryogenesis and analysis of regenerant stability by ISSRs / X.J. Leroy, K. Leon, G. Charles, M. Branchard // Plant Cell Rep. -2000. - Vol. 19. - P. 1102-1107.

207. Leroy, X.J. Detection of in vitro culture-induced instability through inter-simple sequence repeat analysis / X.J. Leroy, K. Leon, J.M. Hily, P. Chaumeil, M. Branchard // Theor. Appl. Genet. - 2001. - Vol.102. - P.885-891.

208. Li, X.B. Transgenic plants of rutabaga (Brassica napobrassica) tolerant to pest insects / X.B. Li, H.Z. Mao, Y.Y. Bai // Plant Cell Rep. 1995. - Vol.15. - P.97-101.

209. Li, X.B. Insect-resistant transgenic plants of Brassica napus and analysis of resistance in the plants / X.B. Li, S.X. Zheng, W.B. Dong, G.R. Chen, H.Z. Mao, Y.Y. Bai // Acta Genet. Sin. - 1999. - Vol.26. P.262-268.

210. Lichter, R. Efficient yield of embryoids by culture of isolated microspores of different Brassicaceae species / R. Lichter // Plant Breed. - 1989. - Vol.103. -P.119-123.

211. Lionneton, E. Improved microspore culture and doubled-haploid plant regeneration in the brown condiment mustard (Brassica juncea) / E. Lionneton, W. Beuret, C.Delaitre, S. Ochatt, M.Rancillac // Plant Cell Rep. - 2001. - Vol.20. - P.126-130.

212. Liu Clarke, J.H. Characterization of sexual progenies of male-sterile somatic cybrids between Brassica napus and Brassica tournefortii / J.H. Liu Clarke, A.M. Chevre, M.Landgren, K.Glimelius // Theor. Appl. Genet. - 1999. - Vol.99. -P.605-610.

213. Liu, F. In planta transformation of pakchoi (Brassica campestris L. ssp. chinensis) by infiltration of adult plants with Agrobacterium / F. Liu, C.M. Qing, L. Yao, C. Robaglia, C. Tourneur // Acta Hort. - 1996. - Vol.467. - P.187-192.

214. Liu, J.W. Characterization of oil exhibiting high gamma-linolenic acid from a genetically transformed canola strain / J.W. Liu, S. DeMichele, M. Bergana, E.Bobik, C. Hastilow, L.T. Chuang, P. Mukerji, Y.S. Huang // J. Am. Oil Chem. Soc. - 2001. -Vol.78. - P.489-493.

215. Llorach, R. HPLC-DAD-MS/MS ESI characterization of unusual highly glycosylated acylated flavonoids from cauliflower (Brassica oleracea L. var. botrytis) agroindustrial byproducts / R. Llorach, A. Gil-Izquierdo, F. Ferreres, F.A. Tomas-Barberan // J. Agric. Food Chem. - 2003. - Vol.51. - P.3895-3899.

216. Mahmood, T. RFLP linkage analysis and mapping genes controlling the fatty acid profile of Brassica juncea using reciprocal DH populations / T. Mahmood, U. Ekuere, F. Yeh, A.G. Good, G.R. Stringam // Theor. Appl. Genet. - 2003. -Vol.107. - P.283-290.

217. Mante, S. Plant regeneration from cotyledons of Prunus persica, Prunus domestica and Prunus cerasus / S. Mante, R.Scorza, J.M. Cordts // Plant Cell Tiss.Org.Cult. -1989. - V.19.-P.1-11.

218. Mante, S. Agrobacterium-mediated transformation of plum (Prunus domestica L.) hypocotyl slices and regeneration of transgenic plants / S. Mante, P.H. Morgens, R. Scorza et al. // Biotechnology. - 1991. - V.9. - P.853-857.

219. Manzanares-Dauleux, M.J. Mapping of one major gene and of QTLs involved in resistance to clubroot in Brassica napus / M.J. Manzanares-Dauleux, R. Delourme, F. Baron, G. Thomas // Theor. Appl. Genet. - 2000. - Vol.101. - P.885-891.

220. Martinez-Sanchez, A. A comparative study of flavonoid compounds, vitamin C, and antioxidant properties of baby leaf Brassicaceae species / A. Martinez-Sanchez, A. Gil-Izquierdo, M.I. Gil, F. Ferreres // J. Agric. Food Chem. - 2008. -Vol.56. - P.2330-2340.

221. Mathias, R. Improved embryo rescue technique for intergeneric hybridization between Sinapis species and Brassica napus I R. Mathias // Cruciferae Newslett. — Eucarpia, 1991. — Vol. 14/15. — P. 90—91.

222. Metz, T.D. Agrobacterium tumefaciens-mediated transformation of broccoli (Brassica oleracea var italica) and cabbage (B. oleracea var capitata) / T.D. Metz, R.Dixit, E.D. Earle // Plant Cell Rep. - 1995a. - Vol.15. - P.287-292.

223. Metz, T.D. Transgenic broccoli expressing a Bacillus thuringiensis insecticidal crystal protein - implications for pest resistance management strategies / T.D. Metz, R.T. Roush, J.D. Tang, A.M. Shelton, E.D. Earle // Mol. Breed. - 1995b. -Vol.1. P.309-317

224. Moloney, M.M. High efficiency transformation of Brassica napus using Agrobacterium vectors / M.M. Moloney, J.M. Walker, K.K.Sharma // Plant Cell Rep. - 1989. - Vol.8. - P.238-242.

225. Mohapatra, D. Hybridization in Brassica juncea x B. campestris through ovary culture / D.Mohapatra, Y.P.S. Bajaj // Euphytica. — 1988. — Vol. 37, № 1. — P. 83—88.

226. Momotaz, A. Production of intergeneric hybrids between Brassica and Sinapis species by means of embryo rescue techniques / A. Momotaz, M. Kato, F. Kakihara // Euphytica. — 1998. — Vol. 103. — P. 123—130.

227. Murashige, T.A. Revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures / T. Murashige, F.Skoog // Physiologia Plantarum. - 1962. - V.15. -P.473-497.

228. Murch, S.J. Somatic cell fusion: relevance to medicinal plants / S.J. Murch, P.K. Saxena // Development of Plantbased Medicines: Conservation, Efficacy and Safety. - Dordrecht, Netherlands: Kluwer Academic Publishers. - 2001 b. - P. 167182.

229. Murch, S.J. Molecular fate of thidiazuron and its effects on auxin transport in hypocotyls tissues of Pelargonium x hortorum Bailey / S.J. Murch, P.K. Saxena // Plant Growth Regul. - 2001a. - Vol.35. - P.269-275.

230. Murphy, L.A. Inheritance of the vernalization response determined by doubled haploids in spring oilseed rape (Brassica napus L.) / L.A. Murphy, R. Scarth // Crop Sci. - 1998. - Vol.38. - P.1463-1467.

231. Murthy, B.N.S. Thidiazuron: A potent regulator of in vitro plant morphogenesis / B.N.S. Murthy, S.J. Murch, P.K. Saxena // In Vitro Cell Dev. Biol. Plant - 1998. -Vol.34. - P.267-275.

232. Musk, S.R. Allyl isothiocyanate is selectively toxic transformed cells of human colorectal tumor line HT29 / S.R. Musk, I.T. Johnson // Carcinogenesis. - 1993. -Vol.14. - P.2079-2083.

233. Narasimhulu, S.B. Shoot regeneration in stem explants and its amenability to Agrobacterium tumefaciens mediated gene transfer in Brassica carinata / S.B. Narasimhulu, P.B. Kirti, T. Mohapatra, S. Prakash, V.L. Chopra // Plant Cell Rep. - 1992. - Vol.11. - P.359-362.

234. Nehlin, L. Transient b-gus and gfp expression and viability analysis of microprojectile bombarded microspores of Brassica napus L. / L. Nehlin, C. Mollers, P. Bergman, K. Glimelius // J. Plant Physiol. - 2000. - Vol.156. - P.175-183.

235. Nielsen, J.K. Kaempferol tetraglucosides from cabbage leaves / J.K. Nielsen, R.Norbaek, C.E. Olsen // Phytochemistry. - 1998. - Vol.49. -P.2171-2176.

236. Nishi, S. On the breeding of interspecifi c hybrids between two genomes, c and a of Brassica through the application of embryo culture techniques / S. Nishi, J. Kawata, M. Toda // Japanese Journal of Breeding. — 1959. — Vol. 8. — P. 215— 222.

237. Nishi, S. Studies on the embryo culture in vegetable crops. II. Breeding of interspecifi c hybrids between cabbage varieties and Chinese cabbage varieties through the application of embryo culture techniques / S. Nishi, J. Kawata, M. Toda // Bull. Hort. Res. Sta. — 1962 — A, № 1. — P. 111—156.

238. Nishi, S. Studies on the embryo culture in vegetable crops. III. On the condition affect to embryoculture of interspecefi c hybrids between cabbage and Chinese cabbage / S. Nishi, M. Toda, T. Toyoda // Bull. Hort. Res. Sta. — 1970a, №9. — P.75—100.

239. Ockendon, D.J. Anther culture in Brussels sprouts (Brassica oleracea var. gemmifera). II. Effect of genotype on embryo yields / D.J. Ockendon // Ann. Appl. Biol. - 1985. - Vol.107. - P. 101-104.

240. Olsson, G. Undersokning av sjalvfertiliteten hos artifi ciell raps (Investigation of self compatibility of artifi cial rapeseed) / G. Olsson // Kungl. Lantbr. Akad. Tidskr. — 1953. — Vol. 92. — P. 394—402.

241. Olsson, G. Species crosses within the genus Brassica. I. Artifi cial Brassica juncea Coss. / G. Olsson // Hereditas. — 1960. — Vol. 46. — P. 171—222.

242. Ozminkowski, R.H. Comparing the resynthesis of Brassica napus L. by interspecifi c somatic and sexual hybridization 1. Producing and identifying hybrids / R.H. Ozminkowski, P. Jourdan // J. Am. Soc. Hortic. Sc. — 1994. — Vol. 119, №4. — P. 808—815.

243. O'Neill, C.M. The effects of proline, thioproline and methylglyoxal-bis-(guanyhydrazone) on shoot regeneration frequencies from stem explants of B. napus / C.M. O'Neill, A.E. Arthur, R.J. Mathias // Plant Cell Rep. - 1996. -Vol.15. - P.695-698.

244. Ono, Y. Effect of genotype on shoot regeneration from cotyledonary explants of rapeseed (Brassica napus L.) / Y. Ono, Y. Takahata, N. Kaizuma // Plant Cell Rep. - 1994. - Vol.14. - P.13-17.

245. Palmer, C.E. Enhanced shoot regeneration from Brassica campestris by silver nitrate / C.E. Palmer // Plant Cell Rep. - 1992. - Vol. 11. - P.541-545.

246. Palmer, C.E. Experimental haploidy in Brassica species. In: Jain, S. M.; Sopory, S. K.; Veilleux, R. E., eds. / C.E. Palmer, W.A. Keller, P.G. Arnison // In vitro haploid production in higher plants, Dordrecht: Kluwer Academic Publishers. -1996a. - Vol.2. - P.143-172.

247. Palmer, C.E. Utilization of Brassica haploids. In: Jain, S. M.; Sopory, S. K.; Veilleux, R. E., eds. / C.E. Palmer, W.A. Keller, P.G. Arnison // In vitro haploid production in higher plants. Important selected plants, Dordrecht: Kluwer Academic Publishers. - 1996b. - Vol. 3. - P.173-192.

248. Pelletier, G. In planta transformation. In: Stewart, C. N., Jr., ed. / G. Pelletier, N. Bechtold // Transgenic plants: current innovations and future trends. Wymondham, UK: Horizon Scientific Press. - 2003.- P.65-82.

249. Pental, D. Variation amongst Brassica juncea cultivars for regeneration from hypocotyls explants and optimization of conditions for Agrobacterium-mediated genetic transformation / D. Pental, A.K. Pradhan, Y.S. Sodhi, A. Mukhopadhyay // Plant Cell Rep. - 1990. - Vol.12. - P.462-467.

250. Perez-Tornero, D. Adventitious shoot regeneration from in vitro cultured leaves of apricot / D. Perez-Tornero, L. Burgos // Acta. Hort. - 2000. - V. 538. - P. 659-661.

251. Phogat, S.K. High frequency regeneration of Brassica napus varieties and genetic transformation of stocks containing fertility restorer genes of two cytoplasmic male sterility systems / S.K. Phogat, P.K. Burma, D. Pental // J. Plant Biochem. Biotechnol. - 2000. - Vol.9. - P.73-79.

252. Pilet, M.L. Identification of loci contributing to quantitative field resistance to blackleg disease, casual agent Leptosphaeria maculans (Desm.) Ces. et de Not., in winter rapeseed (Brassica napus L.) / M.L. Pilet, R. Delourme, N.Foisset, M. Renard // Theor. Appl. Genet. - 1998. - Vol.96. - P.23-30.

253. Plumper, B. Asymmetric somatic hybrids Sinapis alba x Brassica napus / B. Plumper, M.D. Sacristan // 9 Int. Rapeseed Congress. — Cambridge, 1995. - Vol. 4. - P.1240-1242.

254. Podsedek, A. Antioxidant capacity and content of Brassica oleracea dietary antioxidants / A. Podsedek, D. Sosnowska, M. Redzynia, B. Anders // Int. J. Food Sci. Technol. - 2006. - Vol.41. - P.49-58.

255. Podsedek, A. Natural antioxidants and antioxidant capacity of Brassica vegetables: A review / A. Podsedek // Lwt-Food Sci. Technol. - 2007. - Vol. 40. - P.1-11.

256. Poulsen, G.B. Genetic transformation of Brassica / G.B. Poulsen // Plant Breed. -1996. - Vol. 115. - P.209-225.

257. Prakash, I.S. A. Moricandia arvensis — based cytoplasmic male sterility and fertility restoration system in Brassica juncea// I S. Prakash, P.B Kirti, S.R. Bhat, K. Gaikwad, V.D.Kumar, V.L. Chopra // Theor. Appl. Gen. — 1998. — Vol. 97, № 3. — P. 488—492

258. Prasad, K.V.S.K. Transformation of Brassica juncea (L.) Czern with bacterial codA gene enhances its tolerance to salt and cold stress / K.V.S.K. Prasad, P. Sharmila, P.A. Kumar, P.P. Saradhi // Mol. Breed. - 2000. - Vol.6. - P.489-499.

259. Prestera, T. Electrophile and antioxidant regulation of enzymes that detoxify carcinogens / T. Prestera, P. Talalay // Proc Natl Acad Sci USA. - 1995. - Vol.92 (19). - P.8965-8969.

260. Price, K.R. Composition and content of flavonol glycosides in broccoli florets (Brassica oleracea) and their fate during cooking / K.R. Price, F. Casuscelli, I.J. Colquhoun, M.J.C. Rhodes // J. Sci. Food Agric. - 1998. - Vol77. - P.468-472.

261. Primard, C. Interspecifi c somatic hybridization between Brassica napus and Brassica hirta (Sinapis alba L.) / C. Primard, F. Vedel, C Mathieu // Theor. Appl. Gen. — 1988. — Vol. 75, № 4. — P. 546—552.

262. Pua, E.C. De novo shoot morphogenesis and plant growth of mustard (Brassica juncea) in vitro in relation to ethylene / E.C. Pua, G.L. Chi // Physiol. Plant. - 1993. - Vol.88. - P.467-474.

263. Pua, E.C. Synergistic effect of ethylene inhibitors and putrescine on shoot regeneration from hypocotyls explants of Chinese radish (Raphanus sativus L. var. longipinnatus Bailey) in vitro / E.C. Pua, G.E. Sim, G.L. Chi, L.F. Kong // Plant Cell Rep. - 1996. - Vol.15. - P.685-690.

264. Pua, E.C. Requirement for sorbitol (D-glucitol) as carbon source for in vitro propagation of Malus robusta / E.C. Pua, C. Chong. // Can. J. Bot. - 1984. -Vol.62.№ 5. P.1545-1549.

265. Qi, Q. Abscisic acid metabolism, 3-ketoacyl-coenzyme A synthase gene expression, and very-long-chain monounsaturated fatty acid biosynthesis in Brassica napus embryos / Q. Qi, P.A. Rose, G.D. Abrams, D.C. Taylor, S.R. Abrams, A.J. Cutler // Plant Physiol. - 1998. - Vol. 117. - P.979-987.

266. Qin, X. Chloroplast number in Guard cells as ploidy indicator of in vitro grown androgenic peper plantlets / X. Qin,G.L. Rotino // Plant Cell, Tissue Organ Cult. -1995. - V. 41. - P. 153-160.

267. Qing, C.M. Transformation of Pakchoi (Brassica rapa L. ssp chinensis) by Agrobacterium infiltration / C.M. Qing, L. Fan, Y. Lei, D. Bouchez, C. Tourneur, L. C. Yan, Robaglia // Mol. Breed. - 2000. - Vol.6. - P.67-72.

268. Quazi, M.H. Interspecific hybrids between Brassica napus L. and B. oleracea L. by embryo culture / M.H.Quazi // Theor. Appl. Gen. — 1988. — Vol. 75, № 2. — P. 309—318.

269. Radke, S.E. Transformation of Brassica napus L. using Agrobacterium tumefaciens: developmentally regulated expression of a reintroduced napin gene / S.E. Radke, B.M. Andrews, M.M. Moloney, M.L. Crouch, J.C.Krid, V.C. Knauf // Theor. Appl. Genet. - 1988. - Vol.75. - P.685-694.

270. Radke, S.E. Transformation and regeneration of Brassica rapa using Agrobacterium tumefaciens / S.E. Radke, J.C. Turner, D.Facciotti // Plant Cell Rep. - 1992. - Vol.11. - P.499-505.

271. Rangan, T.S. Ovary, ovule, and nucellus culture / T.S. Rangan // Experimental embryology of vascular plants. — 1982. — P. 105—129.

272. Ren, J.P. Improved resistance to bacterial soft rot by protoplast fusion between Brassica rapa and B. oleracea / J.P. Ren, M.H. Dickson, E.D. Earle // Theor. Appl. Genet. - 2000. - Vol.100. - P.810-819.

273. Ripley, Van L. Hybridization of Sinapis alba L. and. Brassica napus L. via embryo rescue / Van L. Ripley, P.G. Arnison // Plant Breed. — 1990. — Vol. 104, № 1. — P. 26 — 33.

274. Rudorf, W. Uber die erzeugung und die eigenschaften synthetischer Rapsformen / W. Rudorf // Zschr. Pf. Zucht. — 1950. — Vol. 29. — P. 35—54.

275. Sacristan, M.D. Different behavior of Brassica juncea and Brassica carinata as sources of Phoma lingam resistance in experiments of interspecifi c transfer to B. napus L. / M.D. Sacristan, M. Gerdemann // Plant Breed. — 1986. — Vol. 97, №

4. — P. 304—314.

276. Sarmah, B.K. Erucastrum abyssinicum x Brassica oleracea hybrids obtained by ovary and ovule culture / B.K. Sarmah, N. Sarla // Euphytica. — 1998. — Vol. 102. — P. 37—45.

277. Sasaki, H. Brassinolide promotes adventitious shoot regeneration from cauliflower hypocotyl segments / H. Sasaki // Plant Cell Tiss. Organ Cult. - 2002. - Vol.71. -P.111-116.

278. Sato, T. Plant regeneration from isolated microspore cultures of Chinese cabbage (Brassica campestris ssp. Pekinensis) / T. Sato, T. Nishio, M. Hirai // Plant Cell Rep. - 1989. - Vol.8. - P.486-488.

279. Sethi, U. Role of inhibitors in the induction of differentiation in callus cultures of Brassica, Datura and Nicotiana / U. Sethi, A. Basu, S.G. Mukherjee // Plant Cell Rep. - 1990. - Vol.8. - P.598-600.

280. Sharma, K.K. Factors affecting high frequency differentiation of shoots and roots from cotyledon explants of Brassica juncea L. / K.K. Sharma, S.S. Bhojwani, T.A. Thorpe // Czern. Plant Sci. - 1990. - Vol.66. - P.247-253.

281. Shewmaker, C.K. Seedspecific overexpression of phytoene synthase: increase in carotenoids and other metabolic effects / C.K. Shewmaker, J.A. Sheehy, M. Daley,

5. Colburn, D.Y. Ke // Plant J. - 1999. - Vol.20. - P.401-412.

282. Sigareva, M.A. Direct transfer of a cold-tolerant Ogura malesterile cytoplasm into cabbage (Brassica oleracea ssp. capitata) via protoplast fusion / M.A. Sigareva, E.D. Earle // Theor. Appl. Genet. - 1997. - Vol.94. - P.213-220.

283. Sigareva, M. Introgression of resistance to Alternaria brassicicola from Sinapis alba to Brassica oleracea via somatic hybridization and back—crosses / M. Sigareva, J. Ren, E.D. Earle // Cruciferae Newslett. — Eucarpia, 1999. — Vol. 21. — P. 135—136.

284. Sjodin, I.C. Brassica naponigra, a somatic hybrid resistant to Phoma lingam / I C. Sjodin, K. Glimelius // Theor. Appl. Gen. — 1989. — Vol. 77, № 5. — P. 651— 656.

285. Skarzhinskaya, M. Production of intertribal hybrids between Brassica napus L. and Lesquerella fendleri (Gray) / M. Skarzhinskaya, M. Landgren, K. Glimelius // Theor. Appl. Genet. - 1996. - Vol.93 - P.1242-1250.

286. Somers, D.J. Brassica napus DNA markers linked to white rust resistance in Brassica juncea / D.J. Somers, G. Rakow, S.R. Rimmer // Theor. Appl. Genet. -2002. - Vol. 104. - P. 1121-1124.

287. Spangenberg, G. Microculture of single protoplasts of Brassica napus / G. Spangenberg, H.U. Koop, R. Lichter, H.G. Schweiger // Physiol. Plant. - 1986. -Vol.66. - P.1-8.

288. Starzycki, M. Production of B. carinata x B. campestris hybrids from crosses made in fi eld and greenhouse conditions using in vitro embryo culture / M. Starzycki, J. Krzymanski // 7th Int. Rapeseed Congress. — Poznan, 1987. — Vol. 2. — P. 421—422.

289. Steinitz, B. Sugar alcohols display non-osmotic roles in regulating morphogenesis and metabolism in plants that do not produce polyols as primary photosynthetic products / B. Steinitz //J. Plant Physiol. - 1999. - Vol.155. - P.1-8.

290. Steinmetz, K.A. Vegetables, fruit, and cancer prevention: a review / K.A. Steinmetz, J.D. Potter // J. Am. Diet. Assoc. - 1996. - Vol.96. - P.1027-1039.

291. Stewart, C.N. Insect control and dosage effects in transgenic canola containing a synthetic Bacillus thuringiensis cry1Ac gene / C.N. Stewart, M.J. Adang, J.N. All, P.L. Raymer, S. Ramachandran, W.A. Parrott // Plant Physiol. - 1996. - Vol.112. -P.115-120.

292. Stewart, C.N.Jr. Transgene introgression from genetically modified crops to their wild relatives / C.N.Jr. Stewart, M.D. Halfhill, S.I. Warwick // Nature Rev. Genet. - 2003. - Vol.4. - P.806-817.

293. Stoutjesdijk, P.A. High-oleic acid Australian Brassica napus and B. juncea varieties produced by cosuppression of endogenous delta 12-desaturases / P.A. Stoutjesdijk, C. Hurlestone, S.P. Singh, A.G. Green // Biochem. Soc. Trans. -2000. - Vol.28. - P.938-940.

294. Sunderland, N. The concept of morphogenetic competence with referrence to anther and pollen culture / N. Sunderland // Plant cell culture in crop improvement. New York, London: Plenum press. - 1983. - P. 125-139.

295. Swain, T. The phenolic constituents of Prunus domestica / T.Swain, W.E. Hallis // J. Sci. Food Agric. -1995. - V.10. - P.63- 68.

296. Takeshita, I.M. Application of ovule culture to the production of intergeneric or interspecifi c hybrids in Brassica and Raphanus / I.M. Takeshita, M. Kato, S. Tokumasu // Jap. J. Genet. — 1980. — Vol. 55, № 5. — P. 373—387.

297. Talalay, P. Sulforaphane mobilizes cellular defenses that protect skin against damage by UV radiation / P. Talalay, J.W. Fahey, Z.R. Healy, S.L. Wehage, A.L. Benedict, C. Min // Proc Natl Acad Sci USA. - 2007. - Vol.104 (44). - P.17500-17505.

298. Tang, K. A comparison of ovary, ovule and embryo culture in producing hybrids from wide crosses among rapid cycling Brassica species and Raphanus I K. Tang, P. H. Williams // Cruciferae Newslett. — Eucarpia, 1988. — Vol. 13. — P. 82— 83.

299. Teo, W. Direct shoot formation and plant regeneration from cotyledon explants of rapidcycling Brassica rapa / P.Lakshmanan, P. Kumar, C.J. Goh, S. Swarup //In Vitro Cell. Dev. Biol. Plant. - 1997. - Vol.33. - P.288-292.

300. Teutonico, R.A. Mapping loci controlling vernalization requirement in Brassica rapa / R.A. Teutonico, T. C. Osborn // Theor. Appl. Genet. - 1995. - Vol.91. -P.1279-1283.

301. Torp, A. Albinism in microspore culture. In: Touraev A, Forster B.P, Jain S.M, editors / A. Torp, S. Andersen // Advances in haploid production in higher plants. Dordrecht: Springer. - 2009. - P.155-160.

302. Torres, K.C. Tissue culture techniques for horticultural crops / K.C. Torres, editor. // New York, London: Chapman and Hall. - 1989.

303. Tracy, K.S. Effect of Brassica vegetable juice on the induction of apoptosis and aberrant crypt foci in rat colonic mucosal crypts in vivo / K.S. Tracy, M. Richard, T.J. Ian // Carcinogenesis. - 2003. - Vol.24, 3. - P.491-495.

304. Turgut, K. Efficient shoot regeneration and somatic embryogenesis from immature cotyledons of Brassica napus L. / K. Turgut, M. Barghchi, R. Scott // Plant Breed. -1998. - Vol.117. - P.503-504.

305. Vallejo, F. Characterisation of flavonols in broccoli (Brassica oleracea L. var. italica) by liquid chromatography-UV diode-array detection electrospray ionisation mass spectrometry / F. Vallejo, F.A. Tomas-Barberan, F. Ferreres // J. Chromatogr. - 2004. - Vol.1054. - P. 181-193.

306. Vallejo, F.; Tomas-Barberan, F.A.; Garcia-Viguera, C. Potential bioactive compounds in health promotion from broccoli cultivars grown in Spain. J. Sci. Food Agric. 2002, 82, 1293-1297.

307. Velasco, P. Phytochemical fingerprinting of vegetable Brassica oleracea and Brassica napus by simultaneous identification of glucosinolates and phenolics / P. Velasco, M.Francisco, D.A. Moreno, F. Ferreres, C. Garcia-Viguera, M.E. Cartea // Phytochemical Analysis (in press). - 2010. - doi: 10.1002/pca. 1259.

308. Verhoeveven, D.T.H. A review of mechanisms underlying Anticarcinogenicity by Brassica vegetables / D.T.H. Verhoeveven, H.H. Verhagen, R.A. Goldbohm, P.A. Van der Brandt, G. Van Poppel // Chem. Biol. Interact. - 1997. - Vol.103. - P.79-129.

309. Wang, M. Ploidy of broccoli regenerated from microspore cultures versus anther culture / M. Wang, W. Farnham, J.S.P. Mannes // Plant Breed. - 1999. - Vol. 118. -P.249-252.

310. Wang, W.C. Development of a novel Agrobacterium mediated transformation method to recover transgenic Brassica napus plants / W.C. Wang, G.Menon, G. Hansen // Plant Cell Rep. - 2003. - Vol.22. - P.274-281.

311. Warwick, S.I. Guide to the wild germplasm of Brassica and allied crop: Part I -Taxonomy and gnome status in the tribe Brassicae (Cruciferae) / S.I. Warwick // Agriculture Canada Research Branch Technical Bulletin. - 1993. - 14E.

312. Waterer, D. Field evaluation of herbicide resistant transgenic broccoli / D. Waterer, S.Lee, G.Scoles, W. Keller // HortScience. - 2000. - Vol.35. - P.930-932.

313. Wenzel, G. Anther culture as a breeding tool in rape. 1. Ploidy level and phenotype of androgenetic plants / G. Wenzel, F. Hoffman, E. Thomas // Z. Pflanzenzucht. -1977. - Vol.78. - P.149-155.

314. Wiberg, E. The microspore derived embryo of Brassica napus L. as a tool for studying embryo-specific lipid biogenesis and regulation of oil quality / E. Wiberg, L. Rahlen, M. Hellman, E. Tillberg, K. Glimelius, S. Stymne // Theor. Appl. Genet. - 1991. - Vol.82. - P.515-52.

315. Williams, J. Effect of silver nitrate on long term culture and regeneration of callus from Brassica oleracea var. gemmifera / J. Williams, D.A.C. Pink, N.L. Biddington // Plant Cell Tiss. Organ Cult. - 1990. - Vol.21. - P.61-66.

316. Williams, P.H. Rapid cycling populations of Brassica / P.H Williams, C.B. Hill // Science. - 1986. - Vol.232. - P.1385-1389.

317. Williamson, G. Dietary quercetin glycosides: antioxidant activity and induction of the anticarcinogenic phase II marker enzyme quinone reductase in Hepalclc7 cells / G. Williamson, G.W.Plumb, Y. Uda, K.R. Price, M.J. Rhodes // Carcinogenesis. -1996. - Vol. 17 (11). - P.2385-2387.

318. Xiang, Y. Agrobacterium mediated transformation of Brassica campestris ssp. Parachinensis with synthetic Bacillus thuringiensis Cry1Ab and Cry1Ac genes / Y. Xiang, W.K.R. Wong, M. C Ma,. R.S.C. Wong // Plant Cell Rep. - 2000. - Vol.19. - P.251-256.

319. Xu, Z.H. Plant regeneration from root protoplasts of Brassica / Z.H. Xu, M.R. Davey, E.C. Cocking // Plant Sci. Lett. - 1982. - Vol.24. - P.117-121.

320. XuHan, X. Polyploidization in embryogenic microspore cultures of Brassica napus L. cv. Topas enables the regeneration of double haploid clones by somatic embryogenesis / H.C. Jing, X.F. Cheng, A. Iwanowska, H. Kieft, J.H.W. Bergervoet, S.P.C. Groot, R.J. Bino, A.A.M. van Lammeren // Protoplasma. -1999. - Vol.208. - P.240-247.

321. Yadav, R.C. Interspecifi c hybridization in Brassica juncea x Brassica tournefortii using ovary culture / R.C. Yadav, P.K. Sareen, J.B. Chowdhury // Cruciferae Newslett. Eucarpia. — 1991. — Vol. 14/15. — P. 84.

322. Yamagishi, H. Production of asymmetric hybrids between Arabidopsis thaliana and Brassica napus utilizing an efficient protoplast culture system / H. Yamagishi, M. Landgren, J. Forsberg, K. Glimelius // Theor. Appl. Genet. - 2002. - Vol.104. -P.959-964.

323. Yan, Z. Production of somatic hybrids between Brassica oleracea and the C3-C4 intermediate species Morticandia nitens / Z. Yan,Z.Tian, B.Huang, R. Huang, J.Meng // Theor. Appl. Genet. - 1999. - Vol.99. - P. 1281-1286.

324. Yancheva, S.D. Preliminary stadies on regeneration capacity of plum (Prunus domestica L.) somatic tissues in vitro / S.D. Yancheva, P.Gercheva // Biotechnol. and Biotechnol. - 1993.-V.7. № 1. - P. 49-52.

325. Yancheva, S.D. Preliminary stadies on regeneration and transformation of plum (Prunus domestica L.) / S.D. Yancheva //Acta. Hort. - 1994. - V.359. - P. 159-163.

326. Yang, M.Z. High frequency of plant regeneration from hypocotyl explants of Brassica carinata A.Br. / M.Z. Yang, S.R. Jia, E.C. Pua // Plant Cell Tiss. Organ Cult. - 1991. - Vol.24. - P.79-8.

327. Yokata, J. Tumor progression and metastasis / J. Yokata // Carcinogeneis. - 2000. - Vol.21 (3). - P.497- 503.

328. Yoshizawa, Y. Comparison of antiproliferative and antioxidant properties among nineteen apple cultivars / Y. Yoshizawa, K. Sakurai, S. Kawaii, M. Asari, J. Soejima, N. Murofushi // HortScience. - 2005. - Vol.40 (5). -P.1204-1207.

329. Yu, R. Chemopreventive isothiocyanate induce apoptosis and caspase-3-like protease activity / R. Yu, S. Mandlekar, K.J. Harvey, D.S. Ucker, A.N.T. Kong //

Cancer Res. - 1998. - Vol.58. - P.402-408. Journal of Al-Nahrain University. -March, 2013. - Vol.16 (1). - P.137-142.

330. Zenkteler, M. In vitro fertilization of ovules of some species of Brassicaceae / I M. Zenkteler // Plant Breed. — 1990. — Vol. 105, №3. — P. 221—228.

331. Zenkteler, M. In vitro fertilization of ovules of some species of Brassicaceae / I M. Zenkteler // Plant Breed. — 1990. — Vol. 105, №3. — P. 221—228.

332. Zhang, F.L. Medium and genotype factors influencing shoot regeneration from cotyledonary explants of Chinese cabbage (Brassica campestris L. ssp. pekinensis) / F.L. Zhang, Y. Takahata, J.B. Xu // Plant Cell Rep. - 1998. - Vol.17. - P.780-786.

333. Zhang, H.X. Engineering salt tolerant Brassica plants: characterization of yield and seed oil quality in transgenic plants with increased vacuolar sodium accumulation / H.X. Zhang, J.N. Hodson, J.P. Williams, E. Blumwald // Proc. Natl Acad. Sci. USA. - 2001. - Vol.98. - P. 12832-12836.

334. Zhang, C.G. Endogenous Hormonal levels in scutellaria baicalensis calli induced by thidiazuron / C.G. Zhang, W. Li, Y.F. Mao, D.L. Zhao, W. Dong, G.Q. Guo // Russ. J. Plant Physiol. - 2005. - Vol. 52. - P. 345-351.

335. Zhang, Y. A major inducer of anticarcinogenic protective enzymes from broccoli: isolation and elucidation of structure / Y. Zhang, P. Talalay, C.G. Cho, G.H. Posner // Proc Natl Acad Sci USA. - 1992. - Vol.89 (6). - P.2399-2403.

336. Zhang, G.Q. Plant regeneration from the hybridization of Brassica juncea and B. napus through embryo culture / G.Q. Zhang, W.J. Zhou, H.H. Gu, W.J. Song, E.J.J. Momoh // Journal of Agronomy and Crop Science. — 2003. — Vol. 189, № 5. — P. 347—350.

337. Zhao, J. Genetic analysis of loci associated with partial resistance to Sclerotinia sclerotiorum in rapeseed (Brassica napus L.) / J. Zhao, J. Meng // Theor. Appl. Genet. - 2003. - Vol.106. - P.759-764.

338. Zhao, J. High frequency production of doubled haploid plants of Brassica napus cv. Topas derived from colchicine-induced microspore embryogenesis without heat

shock / J. Zhao, D.H. Simmonds, W.Newcomb // Plant Cell Rep. - 1996. - Vol.15. - P.668-671.

339. Zhong, R. Oilseed rape transformation and the establishment of a bromoxynil-resistant transgenic oilseed rape / R. Zhong, F. Zhu, Y.L. Liu, S.G. Li, L.Y. Kang, P.Luo // Acta Bot. Sin. - 1997. - Vol.39. - P.22-27.

340. Zhung, Y. Anticarcinogenic activities of organic isothiocyanytes: chemistry and mechanisms / Y. Zhung // Cancer Res. - 1994. - Vol.54. - P.1976s- 1981s.

ПРИЛОЖЕНИЕ

_____(R)

/__ / _/ / _/

_/ / /_/ / /_/ 13.1 Copyright 1985-2013 StataCorp LP

Statistics/Data Analysis StataCorp

4905 Lakeway Drive College Station, Texas 77845 USA 800-STATA-PC http://www.stata.com 979-696-4600 [e-mail] 979-696-4601 (fax)

10-user Stata network perpetual license: Serial number: 301306243927 Licensed to: Stata1

RGAU-MSHA

Notes:

Checking for updates... (contacting http://www.stata.com) I/O error

http://www.stata.com did not respond or is not a valid update site unable to check for update; verify Internet settings are correct.

. import excel "F:\anova.xls", sheet("1") firstrow

. anova y1 variety

Number of obs = 60 R-squared = 0.4226 Root MSE = 3.33167 Adj R-squared = 0.2903

Source | Partial SS df MS F Prob > F -----------+----------------------------------------------------

Model | 389.933333 11 35.4484848 3.19 0.0026

I

variety | 389.933333 11 35.4484848 3.19 0.0026

I

Residual | 532.8 48 11.1 -----------+----------------------------------------------------

Total | 922.733333 59 15.639548 . oneway y1 variety, bonferroni scheffe sidak tabulate

| Summary of y1

variety | Mean Std. Dev. Freq. ------------+------------------------------------

1 | 1.8 1.7888544 5

2 | 1.4 1.6733201 5

3 | 5 3.8729833 5

4 | 4.8 1.4832397 5

5 | 5.4 3.0495901 5

6 | 5 2.3452079 5

7 | 7.8 4.3243497 5

8 | 7 5.3385391 5

9 | 9.2 4.9699095 5

10 | 6.6 4.2778499 5

11 | 1.8 1.7888544 5

12 | 1.4 1.3416408 5

Total | 4.7666667 3.9546868 60

Analysis of Variance Source SS df MS F Prob > F

Between groups 389.933333 11 35.4484848 3.19 0.0026 Within groups 532.8 48 11.1

Total 922.733333 59 15.639548

Bartlett's test for equal variances: chi2(11) = 18.7704 Prob>chi2 = 0.065

Row Mean-|