Выбор инфузионного раствора для поддержания оптимального коллоидно-онкотического давления при кардиохирургических вмешательствах тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 14.00.37, кандидат медицинских наук Ефремов, Сергей Михайлович

• Ефремов, Сергей Михайлович
• кандидат медицинских наук
• 2009

Оглавление диссертации кандидат медицинских наук Ефремов, Сергей Михайлович

Введение.

Глава I. Значение коллоидно - онкотического давления при проведении кардиохирургических вмешательств в условиях искусственного кровообращения. Обзор литературы.

1.1. Роль КОД и альбумина в поддержании гомеостаза.

1.2. Гемодилюция в кардиохирургии.

1.3. Виды инфузионных растворов, их характеристика и безопасность.

Глава И. Материал и методы исследования.

2.1. Общая клиническая характеристика больных.

2.2. Методика анестезии и искусственного кровообращения.

2.3. Методы исследования.

Глава III. Биохимические изменения крови при операциях коронарного шунтирования в условиях искусственного кровообращения с использованием различных инфузионных растворов.

3.1. Влияние физиологического раствора NaCl 0,9% на основные гомеостатические параметры и оксигенацию крови.

3.1.1. Динамика коллоидно-онкотического давления, общего белка и альбумина на этапах операционного и послеоперационного периодов.

3.1.2. Динамика содержания гемоглобина и гематокрита на этапах операционного и послеоперационного периодов.

3.1.3. Динамика градиента КОД-ДЗЛК на этапах операционного и послеоперационного периодов.

3.1.4. Динамика изменений респираторной функции легких и биохимические показатели раннего послеоперационного периода.

3.2. Влияние раствора модифицированного желатина (гелофузин) на основные гомеостатические параметры и оксигенацию крови.

3.2.1. Динамика коллоидно-онкотического давления, общего белка и альбумина на этапах операционного и послеоперационного периодов.

3.2.2. Динамика содержания гемоглобина и гематокрита на этапах операционного и послеоперационного периодов.

3.2.3. Динамика градиента КОД-ДЗЛК на этапах операционного и послеоперационного периодов.

3.2.4. Динамика изменений респираторной функции легких и биохимические показатели раннего послеоперационного периода. 5 7 3.3. Влияние раствора гидроксиэтилированного крахмала 130/0, волювен) на основные гомеостатические параметры и оксигенацию крови.

3.3.1. Динамика коллоидно-онкотического давления, общего белка и альбумина на этапах операционного и послеоперационного периодов.

3.3.2. Динамика содержания гемоглобина и гематокрита на этапах операционного и послеоперационного периодов.

3.3.3. Динамика градиента КОД-ДЗЛК на этапах операционного и послеоперационного периодов.

3.3.4. Динамика изменений респираторной функции легких и биохимические показатели раннего послеоперационного периода.

3.4. Влияние 10%раствора альбумина на основные гомеостатические параметры и оксигенацию крови.

3.4.1. Динамика коллоидно-онкотического давления, общего белка и альбумина на этапах операционного и послеоперационного периодов.

3.4.2. Динамика содержания гемоглобина и гематокрита на этапах операционного и послеоперационного периодов.

3.4.3. Динамика изменений респираторной функции легких и биохимические показатели раннего послеоперационного периода.

3.5. Активность систем перекисного окисления липидов и антиоксидантной защиты.

3.5.1. Динамика продуктов перекисного окисления липидов и системы антиоксидантной защиты при применении 10%раствора альбумина.

3.5.2. Динамика продуктов перекисного окисления липидов и системы антиоксидантной защиты в группе исследования раствора «Гелофузин».

3.6. Резюме.

Глава IV. Некоторые клинические показатели операционного и послеоперационного периодов при использовании различных инфузионных протоколов.

4.1. Показатели составляющих интраоперационного баланса жидкости.

4.2. Некоторые клинические показатели раннего послеоперационного периода.

4.3. Резюме.

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Выбор инфузионного раствора для поддержания оптимального коллоидно-онкотического давления при кардиохирургических вмешательствах»

Вопрос выбора оптимального раствора для первичного заполнения контура аппарата искусственного кровообращения (АИК) активно изучается на протяжении последних трех десятилетий. Однако на сегодняшний день нет убедительных данных, позволяющих принять однозначное решение в пользу того или иного раствора. Использование кристаллоидов приводит к эффективной гемодилюции, однако значительно снижает коллоидно— онкотическое давление (Boonstra P.W., et.al. 2004). Преимущество коллоидов перед кристаллоидами заключается в их способности повышать коллоидно-онкотическое давление плазмы крови и снижать тканевой отек (William H. et.al., 1980; Verheij J et.al., 2006). Однако применение коллоидных растворов связано с более высоким риском возникновения анафилактических реакций (Kannan S. et.al., 1999), почечной дисфункции (Cittanova M.L., 1996), а так же коагулопатий (Herwaldt L.A., et.al., 1998). Кроме того, острая нормоволемическая гемодилюция, широко использующаяся в предперфузионном периоде с целью сбережения аутокрови и снижения потребности в трансфузии компонентов донорской крови (Valter Casati, MD., 2004), может существенно изменять коллоидно-онкотическое давление.

В настоящее время среди кровезаменителей наибольшее распространение получили препараты альбумина, желатина и гидроксиэтилированных крахмалов (ГЭК). Применение альбумина ограничено ввиду его дороговизны. Кроме того, обсуждаются возможные причины негативного влияния альбумина на выживаемость. Они основаны на том, что инфузия этого препарата пациентам с повышенной проницаемостью капилляров может сопровождаться осложнениями вследствие его проникновения в интерстиций, приводя к отеку тканей и органов, нарушению оксигенации и развитию полиорганной б недостаточности (Berger А., 1998). Таким образом, показания к использованию альбумина сводятся к коррекции гипоальбуминемии. Согласно доступным литературным данным, использование ГЭК, по сравнению с желатинами обладают более выраженным и продолжительным волемическим эффектом, а также способствует снижению воспалительного ответа, сосудистой проницаемости и отека легких (Boldt J. et. al. 2008; Xiaomei Feng M.D. et. al., 2007; Katrin Lang M.D., 2003).

Несмотря на большое количество исследований, посвященных использованию различных инфузионных растворов при операциях в условиях ИК, вопрос о выборе оптимального раствора остается нерешенным. Кроме того, остается неизученным вопрос о влиянии альбумина на оксидативный стресс при операциях в условиях искусственного кровообращения.

Цель исследования

Выбор наиболее эффективного раствора для поддержания оптимального уровня коллоидно-онкотического давления при операциях реваскуляризации миокарда в условиях искусственного кровообращения.

Задачи исследования

1. Изучить влияние растворов модифицированного желатина (гелофузин), гидроксиэтилированного крахмала (волювен), альбумина и физиологического раствора на величину КОД крови на этапах операционного и послеоперационного периодов.

2. Изучить динамику респираторной функции легких на этапах операционного и послеоперационного периодов при использовании различных растворов для гемодилюции.

3. Определить влияние альбумина на активность перекисного окисления 7 липидов и ферментов системы антиоксидантной защиты при операциях в условиях искусственного кровообращения. 4. Дать сравнительную оценку клинического течения послеоперационного периода при использовании различных коллоидных и кристаллоидных растворов.

Научная новизна

Впервые установлено, что использование синтетических коллоидных растворов (раствор модифицированного желатина - Гелофузин и гидроксиэтилированного крахмала 130/0,4 - Волювен) с целью проведения ОНГ и в составе раствора первичного заполнения АИК обеспечивает более высокий уровень КОД на основных этапах операции по сравнению с 0,9% раствором натрия хлорида и 10% раствором альбумина.

Выявлено, что включение синтетических коллоидных растворов в состав раствора первичного заполнения АИК и при проведении ОНГ обеспечивает оптимальный уровень коллоидно-онкотического давления (16-18 мм.рт.ст.) в период выполнения основного этапа операции.

Показано, что применение 10% раствор альбумина в объеме первичного заполнения АИК и при проведении ОНГ, не снижает активность процессов пероксидации, уступает синтетическим коллоидным растворам с позиции онкотической активности, а также связано с выраженной задержкой жидкости, определяющей более частое использование ультрафильтрации во время основного этапа операции.

Практическая значимость работы и внедрение результатов в практику

На основании полученных данных установлено, что использование альбумина в составе раствора первичного заполнения АИК и при проведении ОНГ с целью снижения активности ПОЛ неэффективно.

Проведена оптимизация инфузионной стратегии, направленной на поддержание оптимального уровня КОД на операционных этапах анестезиологического обеспечения операций реваскуляризации миокарда в условиях ИК.

Результаты исследования внедрены в клиническую практику работы ФГУ «ННИИ патологии кровообращения имени академика Е.Н.Мешалкина» Росмедтехнологий.

Объем и структура диссертации

Работа состоит из введения, литературного обзора, описания материла, методов, 3-х глав собственного материала и их обсуждения, выводов, практических рекомендаций, списка литературы и приложения.

Диссертация изложена на 121 страницах машинописного текста и содержит 7 таблиц и 26 рисунков.

Указатель использованной литературы содержит перечень из 10 отечественных и 149 зарубежных авторов.

На защиту выносятся следующие положения

1. Для первичного заполнения аппарата искусственного кровообращения и при проведении острой нормоволемической гемодилюции целесообразно использование синтетических коллоидов (растоворы модифицированного желатина - Гелофузин и гидроксиэтилированных крахмалов 130/0,4 - Волювен), которые обеспечивают более высокий уровень коллоидно-онкотического давления (16-18 мм.рт.ст.)в период выполнения основного этапа операции по сравнению с 10% раствором альбумина и физиологическим раствором.

2. Нарушение дыхательной функции легких в послеоперационном периоде носит обратимый характер и не зависит от типа используемого раствора.

3. Использование экзогенного альбумина в составе раствора первичного заполнения аппарата искусственного кровообращения и при проведении гемодилюции не влияет на активность процессов перекисного окисления липидов.

Заключение диссертации по теме «Анестезиология и реаниматология», Ефремов, Сергей Михайлович

выводы

1. Использование синтетических коллоидов в составе раствора первичного заполнения АИК и при проведении ОНГ обеспечивает оптимальный уровень коллоидно-онкотического давления (16-18 мм.рт.ст.) в период выполнения основного этапа операции.

2. При проведении кардиохирургических операций, в условиях искусственного кровообращения, в результате гемодилюции с использованием физиологического раствора или альбумина происходит значительное снижение коллоидно-онкотического давления крови до 12,5 мм.рт.ст., нормализация которого наблюдается ко второму часу постперфузионного периода.

3. Использование синтетических коллоидов, альбумина и физиологического раствора, в составе раствора первичного заполнения и при проведении ОНГ, приводит к кратковременному, сопоставимому нарушению дыхательной функции легких, восстановление которого наблюдается ко второму часу постперфузионного периода.

4. Использование альбумина с целью ОНГ и в составе раствора первичного заполнения АИК не снижает активность оксидативного стресса.

5. Применение синтетических коллоидных растворов (Гелофузин и Волювен) с целью гемодилюции, приводит к меньшему положительному балансу искусственного кровообращения, что обусловливает меньший объем ультрафильтрации по сравнению с альбумином.

ПРАКТИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ

1. С целью поддержания КОД во время проведения ОНГ следует применять синтетические коллоидные растворы (Гелофузин, Волювен) в количестве, равном объему эксфузированной крови.

2. ОНГ в предоперационном периоде целесообразно проводить до достижения с целевых показателей ЦВД (8-10 мм.рт.ст.) и ДЗЛА (7-12 мм.рт.ст.).

3. С целью поддержания более высокого уровня КОД во время перфузионного этапа операции, в составе раствора первичного заполнения АИК следует использовать синтетические коллоидные растворы (Гелофузин, Волювен) в объеме 500 мл. В кчестве других компонентов первичного заполнения целесообразно использовать раствор натрия гидрокарбоната 4% 100 мл, раствор калия хлорида 5% 25 мл, маннит 15% 100 мл, гепарин 7500 ЕД, раствор Рингера 600 мл.

4. Использование альбумина в составе раствора первичного заполнения АИК нецелесообразно ввиду отсутствия его преимуществ перед синтетическими коллоидными растворами, снижения темпа интраоперационного диуреза и дороговизны препарата.

Список литературы диссертационного исследования кандидат медицинских наук Ефремов, Сергей Михайлович, 2009 год

1. Агаджанян Н. А., И. Г. Власова, И. В. Ермакова, В. И. Торшин. Основы физиологии человека Москва 2000 г. стр. 141.

2. Брин В. Б., И. А. Вартанян, С. Б. Данияров. Основы физиологии человека. Учебник для высших учебных заведений под редакцией акад. РАМН Б. И. Ткаченко. СПб., 1994. Т.1 стр. 62.

3. Грызунов Ю.А., И.О. Закс, В.В. Мороз, Г.Е. Добрецов, М.Н. Комарова, Г.Н. Мещеряков. Сывороточный альбумин: свойства, функции и их оценка при критических состояниях. Анестезиология и реаниматология 2004,№6, стр. 68-74.

4. Караськов А. М., Ломиворотов В. В. Биохимическая адаптация организма после кардиохирургических вмешательств. Новосибирск. Издательство СО РАН. Филиал «Гео», 2004.

5. Марри Р., Греннер Д., Мейес П., Родуэлл В. Биохимия человека том 1. Москва «МИР», 1993.

6. Меерсон Ф. 3., Пшенникова М. Г. Адаптация к стрессорным ситуациям и физическим нагрузкам. М., 1988.

7. Серебрийский И. И., Галстян Г.М., Боровкова Н.Б., Городецкий В.М. Критерии безопасности переливания коллоидных растворов у больных с острым повреждением легких. Анестезиология и реаниматология № 1. 2006, стр. 9-15.

8. Трубицина Е.С. Применение антиоксиданта мексидола у больных ишемической болезнью сердца, оперированных в условиях искусственного кровообращения. Авт. дисс.на соиск. уч. ст. к.м н. Новосибирск 2006.

9. Уайт А., Хандер Ф., Смит Э., Хиал Р., Лемон И. Основы биохимии. Том 3. Издательство «Мир», 1981г. стр. 1248.

10. Церетели Г.И. Тепловая денатурация коллагена в растворе и фибриллах. Биофизика 1982; 32: 251-260.

11. Albegger K, Schneeberger R, Franke V, Oberascher G, Miller K. Juckreiz nach Therapie mit Hydroxyathylstarke (HES) bei otoneurologischen Erkrankungen. Wien Med Wochenschr. 1992;142:1-7.

12. Alston R.P. Theodosiou C., Sanger K. Changing the priming solution from Ringer's to Hartmann's solution is associated with less metabolic acidosis during cardiopulmonary bypass. Perfusion, Vol. 22 No. 6, 385-389 (2007).

13. American Thoracic Society Consensus Statement. Evidence-based colloid use in the critically ill. American Journal of Respiratory and Critical Care Medicine. Vol. 170, pp 1247-1259, 2004.

14. Arif SK, Verheij J, Groeneveld AB, Raijmakers PG. Hypoproteinemia as a marker of acute respiratory distress syndrome in critically ill patients with pulmonary edema. Intensive Care Med. 2002 Mar;28(3):310-7.

15. Asimakopoulos G Systemic inflammation and cardiac surgery: an update. Perfusion 2001, 16:353-360.

16. Barron ME, Wilkes MM, Navickis RJ. A systematic review of the comparative safety of colloids. Arch Surg 2004;139:552-563.

17. Beattie HW, Evans G, Garnett ES, et al: Albumin and water fluxes during cardiopulmonary bypass. J Thorac Cardiovasc Surg 1974; 67: 926-931.

18. Beckmann SR, Carlile D, Bissinger RC, Burrell M, Winkler T, Shely WW. Improved coagulation and blood conservation in the golden hours after cardiopulmonary bypass. J Extra Corpor Technol. 2007 Jun;39(2): 103-8.

19. Belayev L, Liu Y, Zhao W, Busto R, Ginsberg MD. Human albumin therapy of acute ischemic stroke: marked neuroprotective efficacy at moderate doses and with a broad therapeutic window. Stroke 2001;32:553-560.

20. Berger A. Science commentary: Why albumin may not work. BMJ 1998;317:240.

21. Bicher HI, D'Angostino L, Doss LL Prevention of ionising radiation-induced liver microcirculation changes by the use of flow improvers. Adv Exp Med Biol 1977, 94:383-389.

22. Boldt J., von Borman B., Kling D. et al. Colloid osmotic pressure and extravascular lung water following extracorporeal circulation. Herz. — 1985. — Bd 10.N6.-S. 366-375.

23. Boldt J, Knothe C, Zickmann B, Andres P, Dapper F, Hempelmann G. Influence of different intravascular volume therapies on platelet function in patients undergoing cardiopulmonary bypass. Anesth Analg. 1993;76:1185-1190.

24. Boldt J, Muller M, Heesen M, Neumann K, Hempelmann GG Influence of different volume therapies and pentoxifylline infusion on circulating soluble adhesion molecules in critically ill patients. Crit Care Med 1996, 24:385-391.

25. Boldt J, Haisch G, Suttner S, Kumle B, Schellhaass A. Effects of a new modified, balanced hydroxyethyl starch preparation (Hextend®) on measures of coagulation. Br J Anaesth 2002;89:722-728.

26. Boldt J. New light on intravascular volume replacement regimens: what did we learn from the past three years? Anesth Analg 2003;97:1595-604.

27. Bonser RS, Dave JR, Davies ET, John L, Taylor P, Gaya H, Lennox SC, Vergani D Reduction of complement activation during bypass by prime manipulation. Ann Thorac Surg 1990, 49:279-283.

28. Brown JM, Beehler CJ, Berger EM. Albumin decreases hydrogen peroxide and reperfusion injury in isolated rat hearts. Inflammation. 1989; 13: 583-589.

29. Brudney CS, Gosling P, Manji M. Pulmonary and renal function following cardiopulmonary bypass is associated with systemic capillary leak. J Cardiothorac Vase Anesth. 2005 Apr;19(2):188-92.

30. Centre for Reviews and Dissemination. Colloids versus crystalloids as priming solutions for cardiopulmonary bypass: a meta-analysis of prospective, randomised clinical trials. Database of Abstracts of Reviews of Effects, 2005.

31. Choi PTL, Yip G, Quinonez LG, et al. Crystalloids vs. colloids in fluid resuscitation: A systematic review. Crit Care Med 1999; 27:200-210.

32. Christidis C, Mai F, Ramos J, et al. Worsening of hepatic dysfunction as a consequence of repeated hydroxyethylstarch infusions. J Hepatol. 2001;35:726-732.

33. Cittanova ML, Leblanc I, Legendre CH, Mouquet C, Riou B, Coriat P. Effect of hydroxyethylstarch in brain-dead kidney donors on renal function in kidney-transplant recipients. Lancet 1996;348:1620-1622.

34. Cohn L., ed. Extracorporeal Circulation: Organ Damage. Cardiac Surgery in the Adult. New York: McGraw-Hill, 2008, p. 389-414.

35. Cochrane injuries group albumin reviewers. Human albumin administration in critically ill patients: systematic review of randomized controlled trials. Br Med J. 1998;317:235-240.

36. Conhaim RL, AM McGrath, SD Cooler, DA DeAngeles, GA Myers and BA Harms. Lung lymph oncotic pressure may not modulate pulmonary vascular filtration in sheep. Am. J. Respir. Crit. Care Med., Vol 155, No. 3, 03 1997, 971977.

37. Dantzger D.R. Ventilation-perfusion ineguality in lung disease. Chest 1987; 91: 749-754.

38. De Jonge E, Levi M, Berends F, van der Ende AE, ten Cate JW, Stoutenbeek CP. Impaired haemostasis by intravenous administration of a gelatin-based plasma expender in human subjects. Thromb Haemost 1998;79:286-290.

39. Deitch EA. Shock resuscitation: is the glass half-empty or half full? CritCare Med 28:2665-2667., 2000.

40. Di Filippo A, Ciapetti M, Precipe D, Tini L, Casucci A, Ciuti R, Messeri D, Falchi S, Dani C Experimentally-induced acute lung injury: the protective effect of hydroxyethyl starch. Ann Clin Lab Sei 2006, 36:345-352.

41. Eklöf B, Neglen P, Thomson D Temporary incomplete ischemia of the legs caused by aortic damping in man: improvement of skeletal muscle metabolism by low molecular dextran. Ann Surg 1981, 193:99-104.

42. Emerson TE, Jr. Unique features of albumin: a brief review. Crit Care Med. 1989; 17: 690-694.

43. Fassio E, Terg R, Landeira G, et al. Paracentesis with Dextran 70 vs paracentesis with albumin in cirrhosis with tense ascites: results of a randomized study. J Hepatol. 1992;14:310-316.

44. Feng X, Yan W, Liu X, Duan M, Zhang X, Xu J Effects of hydroxyethyl starch 130/0.4 on pulmonary capillary leakage and cytokines production and NF-kappaB activation in CLP-induced sepsis in rats J Surg Res. 2006 Sep;135(l): 129-36. Epub 2006 Apr 17

45. Fisher AR, Jones P, Barlow P et. al. The influence of mannitol on renal function during and after open-heart surgery. Perfusion 1998 May; 13(3): 181-6.

46. Fritz HG, Brandes H, Bredle DL, Bitterlich A, Vollandt R, Specht M, Franke UF,

47. Wahlers T, Meier-Hellmann A. Post-operative hypoalbuminaemia and procalcitonin elevation for prediction of outcome in cardiopulmonary bypass surgery. Acta Anaesthesiol Scand. 2003 Nov;47(10): 1276-1283.

48. Gall H, Kaufmann R, von Ehr M, Schumann K, Sterry W. Persistierender Pruritus nach Hydroxyäthylstärke-Infiisionen: retrospektive Langzeitstudie an 266 Fällen. Hautarzt. 1993;44:713-716.

49. Gallandat Huet RC, Siemons AW, Baus D, van-Rooyen-Butijn WT, Haagenaars JA-, van Oeveren W, Bepperling F. A novel hydroxyethyl starch (Voluven) for effective perioperative plasma volume substitution in cardiac surgery. Can J Anaesth 2000;47:1207-1215.

50. George Asimakopoulos et. al. Lung injury and acute respiratory distress syndrome after cardiopulmonary bypass. Ann Thorac Surg 1999;68:1107-1115

51. Ginés A, Fernández-Esparrach G, Monescillo A, et al. Randomized trial comparing albumin, dextran 70, and polygeline in cirrhotic patients with ascites treated by paracentesis. Gastroenterology. 1996; 111:1002-1010.

52. Gonzalez ER, Kannewurf B. The clinical use of albumin. US Pharmacist 1998;23 :HS 15-HS26

53. GP, Pfauder M, Niemeyer M, Tassani P, Schad H, Bauernschmitt R, Lange R. Retrograde autologous priming: is it useful in elective on-pump coronary artery bypass surgery? Ann Thorac Surg. 2003 Jan;75(l):23-7.

54. Groeneveld AB. Albumin and artificial colloids in fluid management: where does the clinical evidence of their utility stand? Crit Care. 2000;4 Suppl 2:S16-20.

55. Han S.H., Ham B.M., Oh Y.S., Bahk J.H., Ro Y.J., Do S.H., Park Y.S. The effect of acute normovolemic haemodilution on cerebral oxygenation. Int J Clin Pract. 2004 Oct; 58(10): 903-6.

56. Herwaldt LA, Swartzendruber SK, Edmond MB, et al. The epidemiology of hemorrhage related to cardiothoracic operations. Infect Control Hosp Epidemiol. 1998;19:9-16.

57. Hett DA, Smith DC. A survey of priming solutions used for cardiopulmonary bypass. Perfusion 1994;9:19-22.

58. Himpe D, Van Cauwelaert P, Neels H, et al. Priming solutions for cardiopulmonary bypass: comparison of three colloids. J Cardiothorac Vase Anesth. 1991;5:457-466.

59. Hirakawa A, Sakamoto H, Misumi K, Kamimura T, Shimizu R. Assessment of pulmonary edema based on extravascular thermal volume in dogs. J Vet Med Sci. 1993 Dec;55(6):995-1000.

60. Hoeft A, Korb H, Mehlhorn U, Stephan H, Sonntag H. Priming of cardiopulmonary bypass with human albumin or Ringer lactate: effect on colloid osmotic pressure and extravascular lung water. Br J Anaesth 1991 Jan;66(l):73-80.

61. Huh PW, Belayev L, Zhao W, Busto R, Saul I, Ginsberg MD. The effect of high-dose albumin therapy on local cerebral perfusion after transient focal cerebral ischemia in rats. Brain Res 1998;804:105-113.

62. Jaeger K, Heine J, Ruschulte H, Jüttner B, Scheinichen D, Kuse ER, Piepenbrock S Effects of colloidal resuscitation fluids on the neutrophil respiratory burst. Transfusion 2001, 41:1064-1068.

63. Jansen PG, te Velthuis H, Wildevuur WR, Huybregts MA, Bulder ER, van der Spoel HI, Sturk A, Eijsman L, Wildevuur CR Cardiopulmonary bypass with modified fluid gelatin and heparin-coated circuits. Br J Anaesth. 1996 Jan;76(l):13-9.

64. Jill E. Knutson, Jane A. Deering, Frank W. Hall et al. Does Intraoperative Hetastarch Administration Increase Blood Loss and Transfusion Requirements After Cardiac Surgery?; Anesth Analg 2000;90:801-807.

65. Jurecka W, Szepfalusi Z, Parth E, et al. Hydroxyethylstarch deposits in human skin: a model for pruritus? Arch Dermatol Res. 1993;285:13-19.

66. Kato A, Yonemura K, Matsushima H, Ikegaya N, Hishida A. Complication of oliguric acute renal failure in patients treated with low-molecular weight dextran. Ren Fail. 2001 Sep;23(5):679-84.

67. Laks H, Standeven J, Blair O, Hahn J, Jellinek M, Willman V The effects of cardiopulmonary bypass with crystalloid and colloid hemodilution on myocardial extravascular water. J Thorac Cardiovasc Surg. 1977 Jan;73(l): 129-38.

68. Lang K, Suttner S, Boldt J, Kumle B, Nagel D Volume replacement with HES 130/0.4 may reduce the inflammatory response in patients undergoing major abdominal surgery. Can J Anaesth 2003, 50:1009-1016.

69. Lee YS, Kim SY, Kwon CW, Song HG, Lee YK, Kim HJ, Zang DY. Two cases of systemic capillary leak syndrome that were treated with pentastarch. Korean J Intern Med. 2007 Jun;22(2): 130-2.

70. Licker M., Ellenberger C., Sierra J., Kalangos A., Diaper J., Morel D. Cardioprotective effects of acute normovolemic hemodilution in patients undergoing coronary artery bypass surgery. Chest 2005 Aug; 128(2): 838-47.

71. Lilley A. The selection of priming fluids for cardiopulmonary bypass in the UK and Ireland. Perfusion 2002;17:315-319.

72. Liskaser F.J., Bellomo R., Hayhoe M., Story D., Poustie S., Smith B., Letis A., Bennett M. Role of pump prime in the etiology and pathogenesis of cardiopulmonary bypass-associated acidosis. Anesthesiology, 2000 Nov; 93(5): 1170-3.

73. Magnusson L; Zemgulis V; Wicky S; Tyden H; Thelin S; Hedenstierna G Atelectasis is a major cause of hypoxemia and shunt after cardiopulmonary bypass: an experimental study. Anesthesiology. 1997; 87(5):1153-63.

74. Martin R, McKenty S, Thisdale Y, Lavallee P, Teijeira J, Bonneau D, Tetrault JP. Hemolysis during cardiopulmonary bypass. J Cardiothorac Anesth. 1989 Dec;3(6):737-40.

75. Metz S, Keats A. Benefits of a glucose-containing priming solution for cardiopulmonary bypass. Anesth Analg 1991;72:428-34.

76. Michael E. Barron, MD; Mahlon M. Wilkes, PhD; Roberta J. Navickis, PhD ; A Systematic Review of the Comparative Safety of Colloids. Arch1. Surg. 2004;139:552-563.

77. Michel, C.C. Fluid movements through capillary walls. In: Handbook of Physiology. The Cardiovascular System. Microcirculation. Bethesda, MD: Am. Physiol. Soc., 1984, sect. 2, vol. IV, pt.l, p. 375-409.

78. Miller BE, Levy JH The inflammatory response to cardiopulmonary bypass J Cardiothorac Vase Anesth 1997, 11:355-366.

79. Modig J. Comparison of dextran-70 and Ringer's acetate on pulmonary function, hemodynamics, and survival in experimental septic shock. Crit Care Med 1988, 16:266-271.

80. Molicki J. S., MD, Draaisma BS, Verbeet N., et. al. Prime solutions for caediopulmonary bypass in neonates: Antioxidant capacity of prime based on albumin or fresh frozen plasma. J Thorac Cardiovasc Surg 2001; 122; 449-456.

81. Molina L, Mesa A, Pinto R, Gomez M, Quijano F. Changes in colloido-osmotic pressure in patients on extracorporeal circulation. Arch Inst Cardiol Mex. 1983 Mar-Apr; 53(2): 153-7.

82. Niemi TT, Suojaranta-Ylinen RT, Kukkonen SI, Kuitunen AH. Gelatin and hydroxyethyl starch, but not albumin, impair hemostasis after cardiac surgery. Anesth Analg. 2006 Apr; 102(4):998-1006.

83. Nohe B, Johannes T, Retershan J, Rothmund A, Haeberle HA, Ploppa A, Schroeder TH, Dieterich HJ Synthetic colloids attenuate leukocyte-endothelial interactions by inhibition of integrin function. Anesthesiology 2005, 103:759-767.

84. Ohqvist G, Settergren G, Bergstrom K, Lundberg S, Plasma colloid osmotic pressure during open-heart surgery using non-colloid or colloid priming solution in the extracorporeal circuit. Scand J Thorac Cardiovasc Surg. 1981;15(3):251-255.

85. Ohqvist G, Settergren G, Lundberg S, Pulmonary oxygenation, centralhaemodynamics and glomerular filtration following cardiopulmonary bypass with114colloid or non-colloid priming solution. Scand J Thorac Cardiovasc Surg. 1981;15(3):257-62.

86. Pacifico AD, Digerness S, Kirklin JW. Acute alterations of body composition after open intracardiac operations. Circulation 1970; 41:331.

87. Pasnik J. The significance of neutrophil in inflammatory response after cardiac surgery with cardiopulmonary bypass. Wiad. Lek. 2007;60(3-4): 171-7.

88. Percival M. Dr. Clinical nutrition insights. Advanced Nutrition Publications, Inc. 1998.

89. Perel P, Roberts I. Colloids versus crystalloids for fluid resuscitation in critically ill patients. Cochrane Database Syst Rev. 2007 Oct 17;(4):CD000567.

90. Persson E., Norderstorm J., Vinnars E. Plasma clearance of fat emulsion during continuous heparin infusion. Acta. Anaest. Scand. 1987. Vol. 31. P. 189-192.

91. Rackow EC; Fein IA; Leppo J. Colloid osmotic pressure as a prognostic indicator of pulmonary edema and mortality in the critically ill. Chest. 1977; 72(6):709-13.

92. Rackow EC, Fein IA. Fulminant noncardiogenic pulmonary edema in the critically ill. Crit Care Med. 1978 Nov-Dec;6(6):360-3.

93. Rackow E.C., Fein I.A., Siegel J. The relationship of the colloid osmotic-pulmonary artery wedge pressure gradient to pulmonary edema and mortality in critically ill patients. Chest. 1982. -Vol. 82. - P. 433-437.

94. Rainey TG, Read CA. Pharmacology of colloids and crystalloids. In: Chernow B (ed). The Pharmacologic Approach to the Critically 111 Patient Williams and Wilkins, Baltimore MD. 1994:272-290.

95. Raijmakers PG, Groeneveld AB, Schneider AJ, Teule GJ, van Lingen A, Eijsman L, Thijs LG. Trans vascular transport of 67Ga in the lungs after cardiopulmonary bypass surgery. Chest. 1993 Dec; 104(6): 1825-32.

96. Rhee P, Wang D, Ruff P, Austin B, DeBraux S, Wolcott K, Burris D, Ling G, and Sun L Human neutrophil activation and increased adhesion by various resuscitation fluids. Crit Care Med 28:74-78, 2000.

97. Rich MW, Keller AJ, Schechtman KB, Marshall WG Jr, Kouchoukos NT. Increased complications and prolonged hospital stay in elderly cardiac surgical patients with low serum albumin. Am J Cardiol 1989 Mar 15;63(11):714-8.

98. Roberts JS, Bratton SL. Colloid volume expanders: Problems, pitfalls, and possibilities. Drugs. 1998;55:621-630.

99. Rodriguez de Turco EB, Belayev L, Liu Y, Busto R, Parkins N, Bazan NG, Ginsberg MD. Systemic fatty acid responses to transient focal cerebral ischemia: influence of neuroprotectant therapy with human albumin. J Neurochem 2002;83:515-524.

100. Royster R.L., Buuterworth J.F., Prielipp R. C. et. al. A randomized blinded, placebo controlled evaluation of calcium chloride and epinephrine for inotropic support after emergence from cardiopulmonary bypass. Anesth Analg 1992; 74: 313.

101. Russell JA, Navickis RJ, Wilkes MM. Albumin versus crystalloid for pump priming in cardiac surgery: meta-analysis of controlled trials. J Cardiothorac Vase Anesth 2004;18:429-437.

102. Samira Najmaii, Daniel Redford, Douglas F Larsen. Hypergycemia as an effect of cardiopulmonary bypass: intra-operative glucose management. J Extra Corpor Technol. 2006 Jan; 38 (2): 168-73.

103. Sanchez de Leon R, Paterson JL, Sykes MK. Changes in colloid osmotic pressure with plasma albumin concentration associated with extracorporeal circulation. Br J Anaesth 1982; 4: 465-473.

104. Saunders CR, Carlisle L, Bick RL. Hydroxyethyl starch versus albumin in cardiopulmonary bypass prime solutions. Ann Thorac Surg. 1983;36:532-539.

105. Schierhout G, Roberts L. Fluid resuscitation with colloid or crystalloid solutions in critically ill patients: a systematic review of randomised trials. BMJ 1998; 316:961-964.

106. Schortgen F, Lacherade JC, Bruneel F, et al. Effects of hydroxyethylstarch and gelatin on renal function in severe sepsis: a multicentre randomised study. Lancet. 2001;357:911-916.

107. Sedrakyan A, Gondek K, Paltiel D, Eleñeriades JA. Volume expansion with albumin decreases mortality after coronary artery bypass graft surgery. Chest. 2003 Jun; 123(6): 1853-7.

108. Seghaye MC, Grabitz RG, Duchateau J, Busse S, Dabritz S, Koch D, et al. Inflammatory reaction and capillary leak syndrome related to cardiopulmonary bypass in neonates undergoing cardiac operations. J Thorac Cardiovasc Surg. 1996;112:687-97.

109. Sen CK, Atalay M, Hanninen O. Exercise-induced oxidative stress: glutathione supplementation and deficiency. J Appl Physiol 1994 Nov; 77(5): 2177-87.

110. Sharland C, Huggett A, Nielson MS, Friedmann PS. Persistent pruritis after pentastarch infusions in intensive care patients. Anaesthesia. 1999;54:500-501.

111. Sibbald W.J., Driedger A.A., Moffat J.D. et al. Pulmonary microvascular clearance of radiotracers in human cardiac and noncardiac pulmonary edema. J. Appl. Physiol. 1981. - Vol. 50, N 6. - P. 1337-1347.

112. Smith EEJ, Naftel DC, Blackstone EH, Kirklin JW. Microvascular permeability after cardiopulmonary bypass. J Thorac Cardiovasc Surg 1987; 94:225.

113. Steinbauer M, Harris A, Hoffmann T, Messmer K Pharmacological effects of dextrans on the postischemic leukocyte-endothelial interaction. Prog Appl Microcirc 1996, 22:114-125.

114. Taketani T, Motomura N, Toyokawa S, Kotsuka Y, Takamoto S. Beneficial effect of acute normovolemic hemodilution in cardiovascular surgery. Jpn J Thorac Cardiovasc Surg. 2005 Jan;53(l): 16-21.

115. Teelucksingh S, Padfield PL, Edwards CR. Systemic capillary leak syndrome. Q J Med. 1990;75:515-24

116. The SAFE Study Investigators. A comparison of albumin and saline for fluid resuscitation in the intensive care unit. N Engl J Med. 2004;350:2247-2256.

117. Tigchelaar I, Gallandat Huet RCG, Korsten J, Boonstra PW, van Oeveren W. Hemostatic effects of three colloids plasma substitutes for priming solution in cardiopulmonary bypass. Eur J Cardiothorac Surg 1997; 11:626-632.

118. Troweidge C. C. Stemmers A.H. Wood G.C. Murdock J.D. Klayman M. Yen B.R. Woods E. Gilberd C. Improved outcomes during cardiac surgery: a multifactorial enhancement of cardiopulmonary bypass techniques. J Extra Corpor Technol. 2005 Jun; 37(2); 165-72.

119. Velanovich V. Crystalloid versus colloid fluid resuscitation: a meta-analy sis of mortality. Surgery. 1989. -V. 105. -P. 65-71.

120. Videm V, Fosse E, Svennevig JL. Platelet preservation during coronary bypass surgery with bubble and membrane oxygenators: effect of albumin priming. Perfusion. 1993;8:409-415.

121. Vincent JL Plugging the leaks? New insights into synthetic colloids. Crit Care Med 1991, 19:316-318.

122. Vivienne Bernath. Colloid or crystalloid solutions for fluid resuscitation. Centre for Clinical Effectiveness. Evidence Centre. Evidence Report, 2001: Intervention.

123. Waitzinger J, Bepperling F, Pabst G, Opitz J. Hydroxyethyl starch (HES) 130/0.4., a new HES specification: pharmacokinetics and safety after multiple infusions of 10% solution in healthy volunteers. Drugs R D 2003;4:149-157.

124. Werner J, Schmidt J, Gebhard MM Superiority of dextran compared to other colloids and crystalloids in inhibiting the leukocyte-endothelium interaction in experimental necrotizing pancreatitis. Langenbecks Arch Surg 1996, 467-470.

125. Wiedermann Christian J Systematic review of randomized clinical trials on the use of hydroxy ethyl starch for fluid management in sepsis. BMC EmergMed. 2008; 8: 1.

126. Wilkes MM, Navickis RJ. Patient survival after human albumin administration: a meta-analysis of randomized, controlled trials. Ann Intern Med. 2001; 135: 149164.

127. Wilkes MM, Navickis RJ, Sibbald WJ. Albumin versus hydroxyethyl starch in cardiopulmonary bypass surgery: a meta-analysis of postoperative bleeding. Ann Thorac Surg 2001;72:527-533.

128. Wilkes NJ, WoolfRL, Powanda MC, Gan TJ, Machin SJ, Webb A, Mutch M,

129. Bennett-Guerrero E, Mythen M. Hydroxyethyl starch in balanced electrolytesolution (Hextend®) pharmacokinetic and pharmacodynamic profiles in healthy volunteers. Anesth Analg 2002;94:538-544.

130. William H. Noble. Pulmonary Oedema: A Review // Canadian Journal of Anesthesia, Vol 27, 1980, p. 286-302.

131. Wolon f R., Herndon D., Jagoor F., Miyoshi H., Wolfe M. Effect of severe burn enjury of substrate cycling by glucose and fatty acids. N. Engl. J. Med. 1987., Vol. 317. P. 403-308.

132. Yeoman PM, Vence-Pastor DE, Rithalia SV. Changes in colloid osmotic pressure in patients undergoing cardiothoracic surgery. Resuscitation. 1981 Dec;9(4):307-13.

133. Zabala MS, Leombruni E, and Di Stefano S. The effects of colloidal and crystalloidal fluids on acidosis and lactacidemia in cardiopulmonary bypass. Ann Ital Chir 64:387-391, 1993.

134. Zikria BA, Subbarao C, Oz MC, Shih ST, McLeod PF, Sachdev R, Freeman HP, Hardy MA. Macromolecules reduce abnormal microvascular permeability in rat limb ischemia-reperfusion injury. Crit Care Med 1989, 17:1306-1309.

135. Zoellner H, Hou JY, Lovery M, et al. Inhibition of microvascular endothelial apoptosis in tissue explants by serum albumin. Microvasc Res. 1999; 57: 162-173.