Картирование нелокализованных последовательностей ДНК курицы в геноме курицы и перепела тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.02.07, кандидат биологических наук Трухина, Антонина Владимировна

• Трухина, Антонина Владимировна
• кандидат биологических наук
• 2011

Оглавление диссертации кандидат биологических наук Трухина, Антонина Владимировна

ВВЕДЕНИЕ.

1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.

1.1 ОБЩАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА ГЕНОМОВ КУРИЦЫ И ПЕРЕПЕЛА.

1.2. ГЕНЕТИЧЕСКИЕ И ФИЗИЧЕСКИЕ КАРТЫ ХРОМО СОМ КУРИЦЫ И ПЕРЕПЕЛА.

1.3. МЕТОДЫ КАРТИРОВАНИЯ ГЕНОМОВ.

1.4. КРАТКАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА ГЕНОВ И МИКРО САТЕЛЛИТОВ КУРИЦЫ, ИСПОЛЬЗОВАННЫХ В РАБОТЕ.

2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ.

2.1. МАТЕРИАЛЫ.

2.2. МЕТОДЫ.

2.2.1. ПОЛУЧЕНИЕ КОМПЕТЕНТНЫХ КЛЕТОК

Е.СОЫ.

2.2.2.ТРАНСФОРМАЦИЯ ШТАММА ОН5[АЬРНА] Е.СОЫ.

2.2.3. БЫСТРЫЙ СКРИНИНГ РЕКОМБИНАНТНЫХ КЛОНОВ МЕТОДОМ ПЦР.

2.2.4. ВЫДЕЛЕНИЕ ДНК ИЗ ПЕЧЕНИ КУРИЦЫ.

2.2.5. ПОЛУЧЕНИЕ КОМПЕТИТОРНОЙ ДНК КУРИЦЫ

2.2.6. ВЫДЕЛЕНИЕ ДНК ВАС-КЛОНОВ МАКРОМЕ ТОДОМ.

2.2.7. МЕЧЕНИЕ ДНК ВАС-КЛОНОВ МЕТОДОМ МСК-ТРАНСЛЯЦИИ.

2.2.8. ОЦЕНКА ЭФФЕКТИВНОСТИ МЕЧЕНИЯ ДНК ВАС-КЛОНОВ.

2.2.9. ПРИГОТОВЛЕНИЕ ПРЕПАРАТОВ МИТОТИЧЕС КИХ ХРОМОСОМ ИЗ 96 (72)-ЧАСОВЫХ ЭМБ РИОНОВ ПТИЦ.

2.2.10. ДВУХЦВЕТНАЯ ИБН-ГИБРИДИЗАЦИЯ НА МИТОТИЧЕСКИХ ХРОМОСОМАХ ПТИЦ.

2.2.11. СКРИНИНГ ХРОМОСОМОСПЕЦИФИЧНЫХ ВАС-КЛОНОВ ПРАЙМЕРАМИ КАРТИРУЕ МОЙ ПОСЛЕДОВАТЕЛЬНОСТИ С ПОМОЩЬЮ ПЦР.

2.2.12. ОЦЕНКА ЭФФЕКТИВНОСТИ ГИБРИДИЗА

3. РЕЗУЛЬТАТЫ.

3.1. ПОИСК СООТВЕТСТВИЯ ГРУПП СЦЕПЛЕНИЯ Е26С13 ИЕ50С23 ОДНОЙ ИЗ ХРОМОСОМ КУРИЦЫ

МЕТОДАМИ ДВУХЦВЕТНОЙ FISH-ГИБРИДИЗАЦИИ И

3.2. ЛОКАЛИЗАЦИЯ ПЯТИ ГЕНОВ И ТРЕХ МАРКЕРОВ НА МИТОТИЧЕСКИХ ХРОМОСОМАХ КУРИЦЫ И ПЕРЕПЕЛА МЕТОДОМ FISH.

4. ОБСУЖДЕНИЕ.

4.1. ПОИСК СООТВЕТСТВИЯ ГРУППЫ СЦЕПЛЕНИЯ Е26С13 ОДНОЙ ИЗ ХРОМОСОМ КУРИЦЫ.

4.2. ПОИСК СООТВЕТСТВИЯ ГРУППЫ СЦЕПЛЕНИЯ Е50С23 ОДНОЙ ИЗ ХРОМОСОМ КУРИЦЫ.

4.3. ЛОКАЛИЗАЦИЯ МИКРОСАТЕЛЛИТА LEI0342, ПОСЛЕДОВАТЕЛЬНОСТИ cwOl, И ГЕНА fzfB МИТОТИЧЕСКИХ ХРОМОСОМАХ КУРИЦЫ.

4.4. ЛОКАЛИЗАЦИЯ МИКРОСАТЕЛЛИТА ADL0254 В МИТОТИЧЕСКИХ ХРОМОСОМАХ КУРИЦЫ.

4.5. ЛОКАЛИЗАЦИЯ ГЕНОВ maf, aldhlal, рпо И МИКРОСАТЕЛЛИТА MCW0330 В МИТОТИЧЕСКИХ ХРОМОСОМАХ КУРИЦЫ.

4.6. ЛОКАЛИЗАЦИЯ ОРТОЛОГИЧНЫХ ПОСЛЕДОВАТЕЛЬНОСТЕЙ ИЗУЧАЕМЫХ МОЛЕКУЛЯРНЫХ МАРКЕРОВ КУРИЦЫ НА МИТОТИЧЕСКИХ ХРОМОСОМАХ ПЕРЕПЕЛА. ЮЗ

5. ВЫВОДЫ.

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Картирование нелокализованных последовательностей ДНК курицы в геноме курицы и перепела»

Актуальность проблемы.

Построение цитогенетических карт необходимо для решения фундаментальных проблем генетики, эмбриологии, вирусологии, онкологии и практических целей селекции (Leroux et al., 2005; Morisson et al., 2005); кроме того, в будущем без этих карт будут невозможны исследования в области функциональной геномики (Burt et al., 2002).

Картирование геномов лабораторных и сельскохозяйственных животных — одно из приоритетных направлений в частной генетике этих видов. Генетические карты хромосом позволяют анализировать генотипическую структуру вида, а также исследовать общие закономерности генетического контроля биологически важных признаков. Кроме того, результаты сравнительного картирования необходимы при исследованиях в области эволюции геномов различных видов эукариотических организмов (Burt et al., 1999, 2002, Schmid et al., 2005). Сегодня принято считать, что конечной целью любого типа картирования геномов высших позвоночных животных является установление аналогии нуклеотидных последовательностей этого вида с геномами человека и мыши (Schmid et al., 2000).

Среди позвоночных животных класс Aves (Птицы) занимает особое положение по молекулярно-генетическим характеристикам своего генома. Одной из основных особенностей этого класса животных является почти втрое меньшее, по сравнению с плацентарными, содержание ДНК в ядре, что рассматривается современными авторами как приспособление птиц к полету (Burt et al., 1999). Варьирование количества ДНК в ядре у представителей самых разных таксономических групп выражено незначительно и колеблется от 1.7 до 3.5 пг, что вероятно связано с монофилетическим происхождением этого класса животных (Kadi et al., 1993).

Наиболее изученным с генетической точки зрения видом птиц является домашняя курица Gallus domesticus. К настоящему моменту выведено большое число пород курицы, обладающих уникальными биологическими свойствами (Rose, 2000; Schmid et al., 2000, 2005; Romanov et al., 2009). Несмотря на то, что курица стала первым животным, использованным в генетических исследованиях (Bateson, Saunders, 1902, цит. по Romanov et al., 2009), а также первым видом птиц, у которого был полностью' секвенирован геном (ICGSC, 2006), многие вопросы, связанные с картированием ее хромосом, остаются открытыми.

Японский перепел также является важным модельным объектом в ряде биологических дисциплин, но генетически изучен еще меньше, чем курица (Minvielle et al., 2007).

Кариотипы курицы и перепела очень сходны по своей структуре и состоят из 39 пар хромосом. Большинство из них (30 пар) — это мелкие трудноидентифицируемые микрохромосомы (Ohno, 1961; Bitgood, Shoffner, 1990, цит. по Romanov et al., 2009). Остальную часть кариотипа (8 пар аутосом и половые Z и W хромосомы) относят к группе макрохромосом. На основе дифференциального окрашивания разработана подробная цитологическая карта макрохромосом (Ladjali-Mohammedi, 1999), а также достаточно полная генетическая карта этой части кариотипа курицы (Romanov et al., 2009). К сожалению, карты микрохромосом еще далеки от насыщения. До сих пор существует проблема несоответствия числа групп сцепления (53) гаплоидному числу хромосом (п=40). К настоящему моменту из 53 групп сцепления к определенным хромосомам отнесена 31. Остальные 7

22 группы не "привязаны" к какой-либо хромосоме курицы и объединены в одну общую карту под названием "Chrun". Для этих групп необходима цитогенетическая локализация с правильным определением хромосомы (Schmid et al., 2005; Morisson et al., 2007; Douaud et al., 2008; Romanov et al., 2009).

В геноме перепела число картированных генов и маркеров меньше, чем у курицы. У перепела известно несколько генетических карт (AFLP-маркеры и микросателлиты), которые в последнее время интенсивно интегрируются. Генов на таких картах не очень много и не все хромосомы имеют маркеры. Например, хромосомы 8, W и 23 пары микрохромосом (Kayang et al., 2006; Sasazaki et al., 2006; Minvielle et al., 2007; Miwa 2007). В настоящее время геном перепела представлен в виде 66 групп сцепления вместо положенных 40 (гаплоидный набор хромосом) (Sasazaki et al., 2006).

До сих пор сохраняется проблема с насыщением цитогенетических карт этих объектов. Как правило, эта проблема касается группы самых мелких микрохромосом, для которых показана высокая транскрипционная активность, (McQueen et al., 1998; Burt, 2002), однако не найдены какие—либо генетические маркеры (Schmid et al., 2005). Прогресс в поиске маркеров для этой группы хромосом у курицы достигнут благодаря использованию ВАС-библиотек, содержащих огромное количество клонов E.coli (ВАС-клоны), несущих искусственные хромосомы с большими вставками из генома (Schmid et al., 2000; Delany et al., 2007; Douaud et al., 2008). На сегодня при помощи хромосомоспецифичных ВАС—клонов удалось идентифицировать 22 пары микрохромосом (Douaud et al., 2008).

Анализ генетической информации из баз данных, касающихся генома курицы показывает существование проблемы "спорной" локализации генов и маркеров (NCBI, ArkDB, Ensembl). Так, 8 например, 10% из 226 контигов имеет двойную локализацию одних и тех же маркеров (Schmid et al., 2005; Romanov et al., 2009), что приводит к необходимости повторной локализации «спорных» маркеров с привлечением других методов картирования. Цели и задачи исследования.

Целью исследования явилось дальнейшее насыщение и совершенствование цитогенетических карт курицы и перепела, а также сравнение результатов картирования у этих видов.

Для достижения цели были поставлены следующие конкретные задачи:

1. Определить соответствие групп сцепления Е26С13, Е50С23 митотическим хромосомам курицы. Осуществить локализацию с помощью SSCP-маркеров LEI0345 и LEI0336 из данных групп сцепления методами двухцветной FISH и ПЦР—реакции.

2. Локализовать гены maf aldhlal, pno, fzf cwOl и микросателлиты

ADL0254, LEI0342, MCW0330 на митотических хромосомах курицы и перепела с помощью двухцветной FISH.

3. Провести сравнительный анализ локализации генов maf aldhlal, pno, fzf cwOl и микросателлитов ADL0254, LEI0342, MCW0330 у курицы и перепела.

Научная новизна работы.

Впервые определено соответствие группы сцепления Е50С23 микрохромосоме 21 курицы и показано, что маркер LEI0345 не может быть использован в качестве маркера для определения соответствия группы сцепления Е26С13 и хромосомы курицы. Осуществлена локализация пяти новых генов-ортологов {maf, aldhlal, pno, fzf, cwOl) и трех микросателлитов (ADL0254, LEI0342 и MCW0330) в геноме перепела. Впервые осуществлена совместная локализация в 9 митотических хромосомах курицы и перепела следующих пар маркеров: та/—тс1г, аЫМа1—1%урБ, рпо-асаса, /г/-Ьтр7, см?01— иЬар2м>, М)Ь0254-ш.уг, ЬЕ10342-/мря5, МС\У0330-/25/?а5. Проведен сравнительный анализ локализации этих маркеров в хромосомах курицы, перепела и человека. Впервые применен метод ПЦР для локализации генов и маркеров с использованием хромосомоспецифичных ВАС-клонов. Показана необходимость применения для локализации маркеров нескольких методов картирования.

Теоретическая и практическая ценность работы.

Домашняя курица и японский перепел являются ценными сельскохозяйственными видами и модельными объектами. Полученные данные могут быть использованы в селекции, в позиционном клонировании, в медицинской генетике. Они полезны для решения фундаментальных проблем эмбриологии, иммунологии, вирусологии, онкологии, для определения консервативной синтении в геномах птиц, человека, мыши, а также для построения карт генома общего предка позвоночных животных и животных в целом. Данные по эволюционному консерватизму районов хромосом человека и домашней курицы могут быть использованы для моделирования хромосомных болезней человека. Сравнительное картирование геномов японского перепела и курицы помогут лучше разобраться в происхождении и эволюции этих видов. Результаты, полученные в работе, используются при чтении курсов лекций по генетике животных и при проведении практических занятий на кафедре генетики и селекции СПбГУ.

Апробация работы.

Материалы работы были представлены на 18-м Международном Коллоквиуме по Цитогенетике Животных и Картированию Генов (18th—ICACGM, Bucharest, Romania, 2008), 17-й Международной хромосомной конференции (17 ICC, Boone, NC, 2009), на V съезде ВОГиС (Москва, МГУ, 2009); 2-й Московской Международной Конференции «Молекулярная Филогенетика MolPhy-2», (Москва, МГУ, 2010).

1. Trukhina A.V., Smirnov A.F. Localization of markers from E26C13 and E50C23 linkage groups in chicken genome. Abstracts 18th international colloquium of animal cytogenetics and gene mapping. Bucharest. Romania. 2008.

2. Трухина A.B., Смирнов А.Ф. Сравнительное картирование некоторых функциональных генов и микросателлитов курицы (Gallus domesticus) на митотических хромосомах перепела (Coturnix japonica). Материалы V съезда ВОГиС, Москва, МГУ, 21-27 июня 2009.

3. Trukhina A.V., Smirnov A.F. Comparative mapping of chicken

Gallus domesticus) genes and microsatellites on quail (Coturnix th japonica) metaphase chromosomes. Abstracts 17 International Chromosome Conference. Boone, North Carolina June 23 - June 26,

2009.

4. Trukhina A. V., Smirnov A. F. Microchromosomes of Aves are genetically changeable. Abstracts 2nd International Conference "Molecular Phylogenetics MolPhy-2", Moscow, Russia, May 18-21,

2010.

Публикация результатов. 1. Трухина A.B., Смирнов А.Ф. Микросателлиты из групп сцепления

11

Е26С13 и Е50С23 локализованы на микрохромосомах 20 и 21 Gallus domesticus. // Генетика. 2010. Т.46, №4. С. 509-516. (Trukhina А. V. Smirnov A. F. Microsatellites from the linkage groups E26C13 and E50C23 are located on the Gallus gallus domesticus microchromosomes 20 and 21 // Russian Journal of Genetics. 2010. V. 46, No. 4. P. 449-455).

2. Трухина A.B., Смирнов А.Ф. Сравнительная локализация пяти функциональных генов и трех микросателлитов курицы на митотических хромосомах перепела методом двухцветной FISH. // Цитология. 2010. Т.52, №3. С. 248-253. (Trukhina А. V., Smirnov А. F. Comparative localization of chicken five functional genes and three microsatellites on quail mitotic chromosomes by two-color FISH hybridization // Cell and Tissue Biology. 2010. V. 4, №. 3. P. 228233).

3. Трухина A.B., Смирнов А.Ф. Микросателлит LEI0345 из группы сцепления Е26С13 локализован на микрохромосоме 20 Gallus domesticus. //Вестник СПбГУ. 2010. Сер. 3, вып. 4. С. 39-46.

Материалы, представленные в диссертации, были опубликованы в научных журналах "Chromosome research", "Russian Journal of Genetics", "Cell and Tissue Biology", "Генетика", "Цитология", "Вестник СПбГУ", в материалах V Съезда ВОГиС (Москва), в сборнике тезисов 2-й Московской Международной Конференции «Молекулярная Филогенетика MolPhy—2».

Всего по теме работы опубликовано 7 печатных работ, из них 3 статьи и 4 тезисов.

Структура и объем диссертации.

Диссертационная работа состоит из введения, обзора литературы, материалов и методов, результатов исследования, обсуждения,

Заключение диссертации по теме «Генетика», Трухина, Антонина Владимировна

5.ВЫВОДЫ.

1. Локализация маркера ЬЕЮЗЗб в микрохромосоме 21 позволяет отнести группу сцепления Е50С23 к данной хромосоме.

2. Выявленная множественная локализация маркера ЬЕ10345 указывает на невозможность использования его в качестве молекулярного маркера хромосом курицы.

3. ДНК-последовательность см?01, микросателлит ЬЕ10342 и ген /г/ курицы расположены на хромосомах 17 и 20, соответственно.

4. Микросателлит АОЬ0254 в геноме курицы имеет два сайта локализации: в микрохромосоме 28 и микрохромосоме большего размера.

5. Показано, что гены та/ аЫк1а1, рпо и микросателлит MCW0330 отсутствуют в хромосомах курицы 11, 15, 19 и 17, соответственно.

6. Локализация генов-ортологов /г/ последовательности см>01 и микросателлита ЬЕ10342 полностью совпадает у курицы и перепела; микросателлита АГ)Ь0254 — совпадает только частично; а генов-ортологов та/, аШк1а1, рпо и микросателлита МС\¥0330 — различается.

7. Высказано предположение, что различие в локализации маркеров связано с наличием перестроек в микрохромосомах перепела.

Список литературы диссертационного исследования кандидат биологических наук Трухина, Антонина Владимировна, 2011 год

1. Кузнецова H. H., Винтер В. Г. Методы генной инженерии: Учебное пособие. М., 1997. Биоинформсервис,. 180 с.

2. Рубцов Н. Б., Карамышева Т. В. Многоцветие современной цитогенетики, или multicolor FISH today // Инф. вестник ВОГиС. 1999. №11. С. 11-15.

3. Abdrakhmanov I., Lodygin D., Geroth P., Arakawa H., Law A., Plachy J., Korn В., Buerstedde J.M. A large database of chicken bursal ESTs as a resource for the analysis of vertebrate gene function // Genome Res. 2000. V. 10. P. 2062-2069.

4. Abu-Elheiga L., Almarzaortega D.B., Baldini A., Wakil S.J. () Human acetyl-CoA carboxylase 2-molecular cloning, characterization, chromosomal mapping, and evidence for two isoforms // J. Biol. Chem. 1997. V. 272, P. 10669-10677.

5. Aerts J. A., Veenendaal T., van der Poel J. J., Crooijmans R. P. M. A., Groenen M. A. M. Chromosomal assignment of chicken clone contigs by extending the consensus linkage map // Animal Genetics. 2005. V. 36. P. 216-222.

6. Baratti M., Alberti A., Groenen M., Veenendaal T., Fulgheri F.D. Polymorphic microsatellites developed by cross-species amplifications in common pheasant breeds // Anim. Genet. 2001. V. 32, №. 4. P. 222— 225(англ.)

7. Bitgood J. J., Somes R. G. Linkage relationship and gene mapping // In: Poultry breeding and genetics. Amsterdam. Elsevier. 1990. P. 469-495.

8. Bloom S. E, Bacon L. D: Linkage of the major histocompatibility (B) complex and the nucleolar organizer in the chicken: assignment to a microchromosome //J. Hered. 1985. V. 76. P. 146-154.

9. Briles W. E, Goto R. M, Auffray C, Miller M. M: A polymorphic system related to but genetically independent of the chicken major histocompatibility complex // Immunogenetics. 1993. V. 37. P. 408414.

10. Brocchieri L., Conway de Macario E., Macario A. J. L. hsp70 genes in the human genome: Conservation and differentiation patterns predict a wide array of overlapping and specialized functions // BMC Evolutionary Biology. 2008. V. 8. P. 19.

11. Brown W. R. A., Hubbard S. J., Tickle C., Wilson S. A. The chicken as a model for large-scale analysis of vertebrate gene function // Nature Reviews. Genetics. 2003. V. 4. P. 87-98.

12. Brush D., Dodgson J. B., Choi O. R., Stevens P. W., Engel J. D. Replacement variant histone genes contain intervening sequences // Mol. Cell. Biol. 1985. V. 5, № 6. P. 1307-1317.

13. Buitenhuis A., Crooijmans R., van Es Coppenraet B., Veenendaal A., Groenen M., van der Poel J. Improvement of the comparative map of chicken chromosome 13 // Animal Genet. 2002. V. 33. P. 249-254.

14. Burt D. W, Bruley C, Dunn I. C, Jones C. T, Ramage A, Law A. S, Morrice D. R, Paton I. R, Smith J, Windsor D, Sazanov A, Fries R, Waddington D. The dynamics of chromosome evolution in birds and mammals // Nature. 1999. V. 402, № 6760. P. 411-^413.108

15. Burt D. W. Origin and evolution of avian microchromosomes // Cytogenet. Genome Res. 2002. V. 96. P. 97-112.

16. Burt D. W. Chicken genome: current status and future opportunities //Genom. Res. 2005. V. 15. P. 1692-1698.

17. Celeda D, Bettag U, Cremer C. A simplified combination of DNA probe preparation and fluorescence in situ hybridization // Z. Naturforsch. 1992. V. 47, № 9-10. P. 739-747.

18. Clark M. S, Edwards Y.J, McQueen H. A, Meek S. E, Smith S, Umrania Y, Warner S, Williams G, Elgar G. Sequence scanning chicken cosmids: a methodology for genome screening // Gene. 1999. V. 227, № 2. P. 223-230.

19. Clayton D. F. Songbird genomics: methods, mechanisms, opportunities, and pitfalls // Ann. N.Y. Acad. Sci. 2004. V. 1016. P. 45-60.

20. Craig J. M., Bickmore W. A. Chromosome bands-flavours to savour // BioEssays. 1993. V. 15, № 5. P.

21. Crooijmans R. P. M. A., Dijkhof R. J. M., Van der Poel J. J., Groenen M. A. M. New microsatellite markers in chicken optimized for automated fluorescent genotyping // Anim. Genet. 1997. V. 28, № 6. P. 427-437.

22. Crooijmans R. P. M. A., Vrebalov J., Dijkhof R. J. M., van der Poel J. J., Groenen M. A. M. Two-dimensional screening of the Wageningen chicken BAC library // Mammal. Genome. 2000. V. 11. P. 360-363.

23. Deijusheva S, Kurganova A, Habermann F, Gaginskaya E. High chromosome conservation detected by comparative chromosome painting in chicken, pigeon and passerine birds // Chrom. Res. 2004. V. 12. P. 715-723.

24. Dodgson J. B., Yamamoto M., Engel J. D. Chicken histone H3.3B cDNA sequence confirms unusual 3' UTR structure // Nucleic Acids Res. 1987. V. 15, № 15. P. 6294.

25. Dodgson J. B. Chicken genome sequence: a centennial gift to poultry genetics // Cytogenet. Genome Res. 2003. V. 102. P. 291-296.

26. Dominguez-Steglich M., Meng G., Bettecken N., Muller G. R., Schmid M. The dystrophin gene is autosomally located on a microchromosome in chicken // Genomics. 1991. V. 8. P. 536-540.

27. Dominguez- Steglich M., Jeltsch J. M., Carrier A., Schmid M. In situ mapping of chicken progesterone gene and the ovalbumin gene // Genomics. 1992. V. 13. P. 1343-1344.

28. Dominguez-Steglich M, Robbins J, Schmid M. Mapping of the chicken N-CAM gene and a myosin heavy chain gene: avian microchromosomes are not genetically inert reserves of DNA // J. Exp. Zool. 1999. V. 265, №3. P. 295-300.

29. Edwards S. V, Gasper J, March M. Genomics and polymorphism of Agph-DABJ, an Mhc class II B gene in red-winged blackbirds {Agelaiusphoeniceus) //Mol. Biol. Evol. 1998. V. 15. P. 236-250.

30. E1 Khadir-Mounier C., Le Fur N., Powell R.S., Diot C., Langlois P., Mallard J., Douaire M. Cloning and characterization of the 58 end and promoter region of the chicken acetyl-CoA carboxylase gene // Biochem. J. 1996. V. 314. P. 613-619.

31. Falahatpisheh H., Nanez A., Montoya-Durango D., Qian Y., Tiffany-Castiglioni E., Ramos K. S. Activation profiles of HSPA5 during the glomerular mesangial cell stress response to chemical injury // Cell Stress & Chaperones. 2007. V. 12, № 3. P. 209-218.

32. Fechheimer N. Chromosomes of chickens // Adv. Vet. Sci. 1990. V. 34. P. 169-207.

33. Fillon V, Morisson M, Zoorob R, Auffray C, Douaire M, Gellin J, Vignal A. Identification of 16 chicken microchromosomes by molecular markers using two-coloiir fluorescence in situ hybridization (FISH) // Chrom. Res. 1998. V. 6. P. 307-313.

34. Fujiwara К. Т., Kataoka K., Nishizawa M. Two new members of the maf oncogene family, mafK and mafF, encode nuclear b-Zip proteins lacking putative trans-activator domain // Oncogene. 1993. V. 8, № 9. P. 2371-2380.

35. Giesel J.T., Brazeau D., Koppelman R., Shiver D. Ring-necked pheasant population genetic structure // Journal of Wildlife Management. 1997. V. 61, №. 4. P. 1332-1338 (англ.)

36. Griffin D. K, Robertson L. В., Tempest H. G., Vignal A., Fillon V., Crooijmans R.P.M.A., Groenen M. A. M, Deryusheva S., Gaginskaya

37. E., Carré W., Waddington D., Talbot R., Volker M., Masabanda J. S., Burt D. W. Whole genome comparative studies between chicken and turkey and their implications for avian genome evolution // BMC Genomics. 2008. V. 9. P. 168-184.

38. Groenen M. A, Crooijmans R. P, Dijkhof R. J, Acar R, van der Poel J. J. Extending the chicken-human comparative map by placing 15 genes on the chicken linkage map // Anim. Genet. 1999. V. 30, № 6. P. 418-422.

39. Groenen M. A. M., Cheng H. H., Bumstead N., Benkel В., Briles E., Burt D. W., Burke Т., Dodgson J., Hillel J., Lamont S., Ponce de Leon

40. F. A., Smith G., Soller M., Takahashi H., Vignal A. A consensus linkage map of the chicken genome // Genome Res. 2000. V. 10. P. 137-147.

41. Guttenbach M., Nanda I., Feichtinger W., Masabanda J.S., Griffin D.K., et al. Comparative chromosome painting of chicken autosomal paints 1-9 in nine different bird species // Cytogenet. Genome Res. 2003. V. 103. P. 173-184.

42. Ha J, Daniel S, Kong I. S, Park C. K, Tae H. J, Kim K. H. Cloning of human acetyl-CoA carboxylase cDNA // Eur. J. Biochem. 1994. V. 219. P. 297-306.

43. Haar F. M, Durm M, Aldinger K, Celeda D, Hausmann M, Ludwig H, Cremer C. A rapid FISH technique for quantitative microscopy // Biotechniques. 1994. V. 17, № 2. P. 346-353.

44. Hale M.L., Petrie M., Wolff K. Polymorphic microsatellite loci in peafowl (Pavo cristatus) II Molecular Ecology Notes. 2004. V. 4. P. 528-530.

45. Hanotte O., Burke T., Armour J.A., Jeffreys A.J. Hypervariable minisatellite DNA sequences in the Indian peafowl Pavo cristatus II Genomics. 1991. V. 9, №. 4. P. 587-597.

46. Hanotte O., Bruford M.W., Burke T. Multilocus DNA fingerprints in gallinaceous birds: general approach and problems // Heredity. 1992. V. 68, №. 6. P. 481-494.

47. Hansmann T., Nanda I., Volobouev V., Yang F., Schartl M., Haaf T., Schmid M. Cross-Species Chromosome Painting Corroborates Microchromosome Fusion during Kaiyotype Evolution of Birds // Cytogenet Genome Res. 2009. V. 126. P. 281-304.

48. Hansson B., Ljungqvist M., Dawson D.A., Mueller J.C., Olano-Marin J., Ellegren H., Nilsson J-A.°Avian genome evolution: insights from a linkage map of the blue tit (Cyanistes caeruleus) // Heredity. 2010. V. 104. P. 67-78.

49. Hoshino A., Koide M., Ono T., Yasugi S. Sex-specific and left-right asymmetric expression pattern of Bmp7 in the gonad of normal and sex-reversed chicken embryos // Develop. Growth Differ. 2005. V. 47. P. 65-74.

50. Huang W, Lu N, Eberspaecher H, de Crombrugghe B. A new long form of c-Maf cooperates with Sox9 to activate the type II collagen gene //J. Biol. Chem. 2002. V. 277. P. 50668-50675.

51. Huang Y, Zhao Y, Haley CS, Hu S, Hao J, Wu C, Li N. A genetic and cytogenetic map for the duck {Anas platyrhynchos) // Genetics. 2006. V. 173. P. 287-296.

52. Itoh Y, Arnold A. P. Chromosomal polymorphism and comparative painting analysis in the zebra finch // Chromosome Res. 2005. V. 13. P. 47-56.

53. Itoh Y., Replogle K., Kim Y.-H., Wade J., Clayton D. F., Arnold A. P. Sex bias and dosage compensation in the zebra finch versus chicken genomes: General and specialized patterns among birds // Genome Res. 2010. V. 20. P. 512-518.

54. Jensen P. Genomics: the chicken genome sequence // Heredity. 2005. V. 94. P. 567-568.

55. Kameda K., Goodridge A. G. Isolation and partial characterization of the gene for goose fatty acid synthase // J. Biol. Chem. 1991. V. 266. P. 419-426.

56. Kataoka K., Fujiwara K. T., Noda M., Nishizawa M. MafB, a new Maf family transcription activator that can associate with Maf and Fos but not with Jun // Mol. Cell. Biol. 1994. V. 14, № 11. P. 7581-7591.

57. Kato H., Okubo Y., Matsumura Y., Roberts C. T., Sugahara K., LeRoith D. The tyrosine kinase activity of the chicken insulin receptor is similar to that of the human insulin receptor //Biosci. Biotechnol. Biochem. 2000. V. 64, № 4. P. 903-906.

58. Katyal S., Gao Z., Liu R.-Z., Godbout R. Evolutionary conservation of alternative splicing in chicken // Cytogenet. Genome Res. 2007. V. 117. P. 146-157.

59. Kaufman J., Milne S., Gobel T. W., Walker B. A., Jacob J. P., et al: The chicken B locus is a minimal essential major histocompatibility complex // Nature. 1999. V. 401. P. 923-925.

60. Kayang B. B., Vignal A., Inoue-Murayama M., Miwa M., Monvoisin J. L., Ito S. A first-generation microsatellite linkage map of the Japanese quail // Animal Genetics. 2004. V. 35. P. 195-200.

61. Kellner W. A., Sullivan R. T., Carlson B. H., Thomas J. W. Uprobe: a genome-wide universal probe resource for comparative physical mapping in vertebrates // Genome Res. 2005. V. 15. P. 166-173.

62. Kerje S., Lind J., Schutz K., Jensen P., Andersson L. Melanocortin 1-receptor (MC1R) mutations are associated with plumage colour in chicken // Anim. Genet. 2003. V. 34, № 4. P. 241-248.

63. Kikuchi S., Fujima D., Sasazaki S., Tsuji S., Mizutani M., Fujiwara A., Mannen H. Construction of a genetic linkage map of Japanese quail {Coturnix japonica) based on AFLP and microsatellite markers // Anim. Genet. 2005. V. 36. P. 227-231.

64. Koritschoner N. P., Bartunek P., Knespel S., Blendinger G., Zenke M. The fibroblast growth factor receptor FGFR-4 acts as a ligand dependent modulator of erythroid cell proliferation // Oncogene. 1999. V. 18, №43. P. 5904-5914.

65. Krasikova A., Daks A., Zlotina A., Gaginskaya E. Polymorphic heterochromatic segments in Japanese quail microchromosomes // Cytogenet Genome Res. 2009. V. 126. P. 148-155.

66. Kulikova I.V., Chelomina G.N., Zhuravlev Yu.N. RAPD-PCR analysis of genetic diversity in the Manchurian pheasant // Russian Journal of Genetics. 2002. V. 38, №. 6. P. 699-703.

67. Lee E. J., Mannen H., Mizutani M., Tsuji S. Genetic analysis of chicken lines by amplified fragment length polymorphism (AFLP) // Anim. Sci. J. 2000. V. 71. P. 231-238.

68. Lemieux N., Dutrillaux B., Viegas-Pequignot E. A simple method for simultaneous R- or G-banding and fluorescence in situ hybridization of small single-copy genes // Cytogenet. Cell Genet. 1992. V. 59, № 4. P. 311-312.

69. Levin I., Santangelo L., Cheng H., Crittenden L. B., Dodgson J. B. An autosomal genetic linkage map of the chicken // J. Hered. 1994. V. 85, № 2. P. 79-85.

70. Lichter P., Boyle A. L., Cremer T., Ward D. C. Analysis of genes and chromosomes by nonisotopic in situ hybridization // Genet. Anal. Tech. Appl. 1991. V. 8, № 1. P. 2«3.

71. Liu G. Y., Xiong Y. Z. Molecular cloning and expression analyses of a novel swine gene-ARF4 // Mol. Biol. Rep. 2009. V. 36, № 3. P. 455460.

72. Lodge A. P., Howard M. R., McNamee C. J., Moss D. J. Co-localisation, heterophilic interactions and regulated expression of IgLON family proteins in the chick nervous system // Brain Res. Mol. Brain Res. 2000. V. 82, № 1-2. P. 84-94.

73. Longmire J. L., Hahn D. C., Roach J. L. Low abundance of microsatellite repeats in the genome of the brown-headed cowbird (Molothrus ater) II J. Hered. 1999. V. 90. P. 574-578.

74. Mannen H., Murata K., Kikuchi S., Fujima D., Sasazaki S., Fujiwara A., Tsuji S. Development and mapping of microsatellite markers derived from cDNA in Japanese quail (Coturnix japónica) II J. Poult. Sci. 2005. V. 42. P. 263-271.

75. Maridor G., Nigg E. A. cDNA sequences of chicken nucleolin/C23 and N038/B23, two major nucleolar proteins // Nucleic Acids Res. 1990. V. 18, №5. P. 1286.

76. McQueen H. A., Fantes J., Cross S. H., Clark V. H., Archibald A. L., Bird A. P. CpG islands of chicken are concentrated on microchromosomes//Nature. Genetics. 1996. V. 12. P. 321-324.

77. McQueen H. A., Siriaco G., Bird A. P. Chicken microchromosomes are hyperacetylated, early replicating, and gene rich // Genome Res. 1998. V. 8, № 6. P. 621-630.

78. Miller M. M., Goto R., Bernot A., Zoorob R., Auffray C., et al: Two Mhc class I and two Mhc class II genes map to the chicken Rfp-Y system outside the B complex // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1994. V. 91. P. 4397-4401.

79. Miller M. M., Bacon L. D., Hala K., Hunt H. D., Ewald S. J., et al: Nomenclature for the chicken major histocompatibility (B and Y) complex//Immunogenetics. 2004. V. 56. P. 261-279.

80. Minvielle F., Grossmann R., Gourichon D. Development and Performances of a Japanese Quail Line Homozygous for the Diabetes Insipidus (di) Mutation// Poultry Science. 2007. V. 86. P. 249-254.

81. Miwa M., Inoue-Murayama M., Kobayashi N., Kayang B. B., Mizutani M., Takahashi H., Ito S. Mapping of panda plumage color locus on the microsatellite linkage map of the Japanese quail // BMC Genet. 2006. V. 7. P. 2.

82. Miwa M., Inoue-Murayama M., Aoki H., Kunisada T., Hiragaki T., Mizutani M., Takahashi H., Ito S. Endothelin receptor B2 (EDNRB2) is associated with the panda plumage colour mutation in Japanese quail // Anim. Genet. 2007. V. 38. P. 103-108.

83. Modi W.S., Romanov M., Green E.D., Ryder O. Molecular cytogenetics of the California condor: evolutionary and conservation implications // Cytogenet Genome Res. 2009. V. 127. P. 26-32.

84. Moon D. A., Magor K. E. Construction and characterization of a fosmid library for comparative analysis of the duck genome // Anim. Genet. 2004. V. 35. P. 417-418.

85. Morisson M., Lemiere A., Bosc S., Galan M., Plisson-Petit F., Pinton P., Delcros C., Feve K., Pitel F., Fillon V., Yerle M., Vignal A. ChickRH6: a chicken whole-genome radiation hybrid panel // Genet. Select. Evol. 2002. V. 34. P. 521-533.119

86. Morkovsky L., Storchovâ R., Pobertlachy J., Ivânek R., Divina P., Hejnar J. The chicken Z chromosome is enriched for genes with preferential expression in ovarian somatic cells // J Mol Evol. 2010. V. 70. P. 129-136.

87. Nam K., Ellegren H. The chicken (Gallus gallus) Z chromosome contains at least three nonlinear evolutionary strata // Genetics. 2008. V. 180. P. 1131-1136.

88. Nanda I., Schmid M. Localization of the telomeric (TTAGGG)n sequence in chicken (Gallus domesticus) chromosomes // Cytogenet. Cell Genet. 1994. V. 65, № 3. P. 190-193.

89. Nie W., O'Brien P. C. M., Ng B. L., Fu B., Volobouev V., Carter N. P., Ferguson-Smith M. A., F. Yang. Avian comparative genomics: reciprocal chromosome painting between domestic chicken

90. Gallus gallus) and the stone curlew (Burhinus oedicnemus, Charadriiformes)—An atypical species with low diploid number // Chromosome Research. 2009. V. 17. P. 99-113.

91. Nishizawa M., Kataoka K., Vogt P. K. MafA has strong cell transforming ability but is a weak transactivator // Oncogene. 2003. V. 22, № 39. P. 7882-7890.

92. O 'Hare T. H., Delany M. E. Genetic variation exists for telomeric array organization within and among the genomes of normal, immortalized, and transformed chicken systems // Chromosome Research. 2009. V. 17. P. 947-964.

93. Ogino H., Yasuda K. Induction of lens differentiation by activation of a bZIP transcription factor, L-Maf// Science. 1998. V. 280, № 5360. P. 115-118.

94. Padanilam B.J., Solursh M. Identification and localization of a novel zinc finger gene in developing chick skin and feather buds // Biochem Biophys. Res. Commun. 1996. V. 220, № 1. P. 63-67.

95. Pimentel-Smith G. E, Shi L., Drummond P., Tu Z., Smith E.J Amplification of sequence tagged sites in five avian species using heterologous oligonucleotides // Genetica. 2000. V. 110. P. 219-226.

96. Reed K. M., Chaves L. D., Garbe J. R., Da Y., Harry D. E. Allelic variation and genetic linkage of avian microsatellites in a new turkey population for genetic mapping // Cytogenet. Genome Res. 2005. V. 102. P. 331-339.

97. Ren C., Lee M.-K., Yan B., Ding K., Cox B., Romanov M. N., Price J.A., Dodgson J.B., Zhang H.-B. A BAC-based physical map of the chicken genome // Genome Res. 2003. V. 13. P. 2754-2758.

98. Richards R. I., Wells J. R. Chicken globin genes. Nucleotide sequence of cDNA clones coding for the alpha-globin expressed during hemolytic anemia//J. Biol. Chem. 1980. V. 255, № 19, P. 9306-9311.

99. Romanov M. N., Price J. A., Dodgson J. B. Integration of animal linkage and BAC contig maps using overgo hybridization // Cytogenetic and Genome Research. 2003. V. 102, № 1-4. P. 277-281.

100. Romanov M. N., SazanovA. A., SmirnovA. F. First century of chicken gene study and mapping a look back and forward // World's Poultry Science Journal. 2004. V. 60. P. 19-41.

101. Romanov M. N., Daniels L. M., Dodgson J. B., Delany M. E. Integration of the cytogenetic and physical maps of chicken chromosome 17 // Chromosome Research. 2005. V. 13. P. 215-222.

102. Romanov M.N, Dodgson J. B. Cross-species overgo hybridization and comparative physical mapping within avian genomes // Anim. Genet. 2006a. V. 37. P. 397-399.

103. Romanov M.N., Sazanov A., Moiseyeva I. Genome mapping and genomics in animals II Poultry. 2009. V. 3. P. 75-141.

104. Roots E. H, Baker R. J. Distribution and characterization of microsatellites in the emu (Dromaius novaehollandiae) genome // J. Hered. 2002. V. 93. P. 100-106.

105. Rose S. P. God's organism? The chick as a model system for memory studies // Learn Mem. 2000. V. 7, № 1. P. 1-17.

106. Roussot O., Feve K., Plisson-Petit F., Pitel F., Faure J-M., Beaumont C., Vignal A. AFLP linkage map of the Japanese quail Coturnix japónica II Genet. Sel. Evol. 2003. V. 35. P. 559-572.

107. Rozen S., Skaletsky H. Primer3 on the WWW for general users and for biologist programmers. // Methods Mol. Biol. 2000. V. 132. P. 365368.

108. Ruyter-Spira C. P., de Groof A. J. C., van der Poel J. J., Herbergs J., Groenen M. A. M. The HMGI-C gene is a likely candidate for the autosomal dwarf locus in the chicken // J. of Heredity. 1998. V. 89, №4. P. 295-300.

109. Sambrook J., Fritsch E. F., Maniatis T. Molecular cloning: a laboratory manual. Cold Spring Harbor Laboratory Press, Cold Spring Harbor, New York, USA. 1989.

110. Sasazaki S., Hinenoya T., Fujima D., Kikuchi S., Fujiwara A., Mannen H. Mapping of EST markers with cDNA-AFLP method in Japanese quail (Coturnix japonica) // Anim. Sei. J. 2006a. V. 77. P. 42— 46.

111. Sasazaki S., Hinenoya T., Lin B., Fujiwara A., Mannen H. A comparative map of macrochromosomes between chicken and Japanese quail based on orthologous genes // Anim. Genet. 2006b. V. 37. P. 316320.

112. Schlueter J., Brand T. Left-right axis development: examples of similar and divergent strategies to generate asymmetric morphogenesis in chick and mouse embryos // Cytogenet. Genome Res. 2007. V. 117. P. 256-267.

113. Schmid M., Nanda I., Guttenbach M., Steinlein C., Hoehn H., Schartl M., Haaf T., Weigend S., Fries R., Buerstedde J., et al. First report on chicken genes and chromosomes // Cytogenetics Cell Genetics. 2000. V. 90. P. 169-218.

114. Schmid M., Nanda I., Burt D. Second report on chicken genes and chromosomes // Cytogenetic. Genome Research. 2005. V. 109. P. 415479.

115. Shaw E. M., Otis J. S., Guise K. S., Shoffiier R. N. Borate G-banding technique applicable to in situ deoxyribonucleic acid/ deoxyribonucleicacid hybridized chicken chromosomes // Poult. Sci. 1990. V. 69. P. 1046-1050.

116. Shaw E. M., Shoffiier R. N., Foster D. N., Guise K. S. Mapping of the growth hormone gene by in situ hybridization to chicken chromosome 1 //J. Hered. 1991. V. 82. P. 505-508.

117. Shetty S., Griffin D. K., Marshall Graves J. A. Comparative painting reveals strong chromosome homology over 80 million years of bird evolution // Chromosome Res. 1999. V.7. P. 289-295.

118. Shibusawa M., Minai S., Nishida-Umehara C., Suzuki T., Mano T., Yamada K., Namikawa T., Matsuda Y. A comparative cytogenetic study of chromosome homology between chicken and Japanese quail // Cytogenetics Cell Genetics. 2001. V. 95. P. 103-109.

119. Shiina T., Shimizu C., Oka A., Teraoka Y., Imanishi T., Gojobori T., Hanzawa K., Watanabe S., Inoko H. Gene organization of the quail major histocompatibility complex (MhcCoja) class I gene region // Immunogenetics. 1999. V. 49. P. 384-394.

120. Shiina T., Shimizu S., Hosomichi K., Kohara S., Watanabe S., et al: Comparative genomic analysis of two avian (quail and chicken) MHC regions // J. Immunol. 2004. V. 172. P. 6751-6763.

121. Smith J., Burt D. W. Parameters of the chicken genome (Gallus gallus) // Anim. Genet. 1998. V. 29, №4. P. 290-304.

122. Smyth J. R. Jr., Ponce de Leon A. F. Linkage relationship between the Pea Comb (P) and Extended black (E) loci of the chicken // Poultry Science. 1992. V. 71. P. 208-210.

123. Stapley J., Birkhead T. R., Burke T., Slate J. Pronounced inter- and intrachromosomal variation in linkage disequilibrium across the zebra finch genome // Genome Research. 2010. V. 20. P. 496-502.

124. Stock A. D, Bunch T. D The evolutionary implications of chromosome banding pattern homologies in the bird order Galliformes // J. Cell Biol. 1987. V. 105, № 4. P. 1493-1500.

125. Suchyta S. P., Cheng H. H., Burnside J., Dodgson J. B. Comparative mapping of chicken anchor loci orthologous to genes on human chromosomes 1, 4 and 9 // Animal Genet. 2001. V. 32. P. 12-18.

126. Suchyta S. P., Dodgson J. B. Remarkable similarity of chicken and human genome maps // Abstract. Plant and Animal Genome VIII. 2000.

127. Suzuki T., Kansaku N., Kurosaki T., Shimada K., Zadworny D., Koide M., Mano T., Namikawa T., Matsuda Y. Comparative FISH mapping on Z chromosomes of chicken and Japanese quail // Cytogenet. Cell Genet. 1999a. V. 87, №1-2. P. 22-26.127

128. Suzuki T., Kurosaki T., Agata K., Koide M., Shimada K., Kansaku N., Namikawa T., Matsuda Y. Cytogenetic assignment of 29 functional genes to chicken microchromosomes by FISH // Cytogenet. Cell Genet. 1999b. V. 87, №3-4. P. 233-237.

129. Takahashi R., Akahane K., Arai K. Nucleotide sequences of pigeon feather keratin genes // DNA Seq. 2003. V. 14. P. 205-210.

130. Takahashi H., TsudzukiM., Sasaki O., NiikuraJ., Inoue-Murayama M., Minezawa M. A chicken linkage map based on microsatellite markers genotyped on a Japanese Large Game and White Leghorn cross // Animal Genetics. 2005. V. 36. P. 463-467.

131. Takai T., Yokoyama C., Wada K., Tanabe T. Primary structure of chicken liver acetyl-CoA carboxylase deduced from cDNA sequence // J. Biol. Chem. 1988. V. 263. P. 2651-2657.

132. Tanaka M., Maeda K., Nakashima K. Chicken alpha-enolase but not beta-enolase has a Src-dependent tyrosine-phosphorylation site: cDNA cloning and nucleotide sequence analysis // J. Biochem. 1995. V. 117, № 3. P. 554-559.

133. Van Duijn P., van Prooijen-Knegt A.C, van der Ploeg M. The involvement of nucleosomes in Giemsa staining of chromosomes. A new hypothesis on the banding mechanism // Histochemistry. 1985. V. 82, № 4. P. 363-376.

134. Volker M., Backstrom N., Skinner B. M., Langley E. J., Bunzey S. K., Ellegren H., Griffin D. K. Copy number variation, chromosome rearrangement, and their association with recombination during avian evolution // Genome Res. 2010. V. 20. P. 503-511.

135. Volpicelli-Daley L. A., Li Y., Zhang C.-J., Kahn R. A. Isoform-selective effects of the depletion of ADPRibosylation factors 1-5 on membrane traffic // Molecular Biology of the Cell. 2005. V. 16. P. 4495-4508.

136. Waddington D., Springbett A. J, Burt D. W. A chromosomebased model for estimating the number of conserved segments between pairs of species from comparative genetic maps // Genetics. 2000. V. 154. P. 323-332.

137. Wallis J. W, Aerts J., Groenen M., Crooijmans R., Layman D., Graves T., Scheer D., Kremitzki C., Higgenbotham J., Gaige T., Mead K., Walker J., Albracht D., Davito J., Yang S.-P., Leong S., Chinwalla

138. A., Hillier L., Sekhon M., Wylie K., Dodgson J., Romanov M. N, Cheng H., de Jong P. J., Zhang H., McPherson J. D., Krzywinski M., Schein J., Mardis E., Wilson R., Warren W. C. A physical map of the chicken genome // Nature. 2004. V. 432. P. 761-764.

139. Weiss S., Gottfried I., Mayrose I., Khare S. L., Xiang M., Dawson S. J., Avraham K. B. The DFNA15 deafiiess mutation affects POU4F3 protein stability, localization, and transcriptional activity // Mol. Cell Biol. 2003. V. 23, №. 22. P. 7957-7964.

140. Yan R. Q., Li X. S., Yang T. Y., Xia C. Characterization of BF2 and b2m in three Chinese chicken lines // Veterinary Immunology and Immunopathology. 2005. V. 108. P. 417-425.

141. Yuasa-Kawada J., Suzuki R., Kano F., Ohkawara T., Murata M., Noda M. Axonal morphogenesis controlled by antagonistic roles of two

142. CRMP subtypes in microtubule organization // Eur. J. Neurosci. 2003. V. 17, № 11. P. 2329-2343.

143. Zartman D. L. Location of the pea comb gene // Poult. Sci. 1973. V. 52, № 4. P. 1455-1462.

144. Zhou H., Liu W., Lamont S.J. Genetic variation among chicken lines and mammalian species in specific genes // Poult. Sci. 2001. V. 80, № 3. P. 284-288.

145. Zimmer R., King W. A, Verrinder Gibbins A.M. Generation of chicken Z-chromosome painting probes by microdissection for screening large-insert genomic libraries // Cytogenet. Cell Genet. 1997. V. 78, №2. P. 124-130.