Генетическая характеристика новых типов скота бурой швицкой и сычевской пород Смоленской области по микросателлитам тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.02.07, кандидат биологических наук Горелов, Петр Валерьевич

• Горелов, Петр Валерьевич
• кандидат биологических наук
• 2010

Оглавление диссертации кандидат биологических наук Горелов, Петр Валерьевич

СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ

1. ВВЕДЕНИЕ

2. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

2.1. История создания новых типов скота сычевской и 10 бурой швицкой пород в Смоленской области

2.1.1. Смоленский тип бурого швицкого скота

2.1.2. Вазузский тип сычевского скота

2.2. Введение в геномный анализ

2.3. Определение и свойства микросателлитов

2.4. Эволюция микросателлитов

2.5. Методы анализа микросателлитов

2.6. Проблемы и ограничения использования МС

2.7. Выбор микросателлитных локусов

2.8. Области применения микросателлитов

2.9. Связь МС с признаками продуктивности 41 2.10 Заключение

3. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДИКА ИССЛЕДОВАНИЙ

3.1. Животные

3.2. Реактивы и оборудование

3.2.1. Реактивы и расходные материалы

3.2.2. Оборудование

3.3. Методы исследований

4. РЕЗУЛЬТАТЫ И ОБСУЖДЕНИЕ

4.1. Анализ продуктивных показателей коров Смоленского 55 и Вазузского типов

4.2. Характеристика аллелофонда изучаемых типов 63 крупного рогатого скота по микросателлитам

4.3. Характеристика генетической консолидированности 88 изучаемых типов крупного рогатого скота

4.4. Оценка уровня гетерозиготности и анализ показателей 97 F-статистики

4.5 Анализ генеалогических связей изучаемых типов крупного рогатого скота 4.6. Выявление связей аллелей МС с показателями молочной продуктивности изучаемых типов

4.6.1. Влияние аллелей МС на показатели молочной 107 продуктивности коров Смоленского типа бурой швицкой породы.

4.6.2. Влияние аллелей МС на показатели молочной 116 продуктивности коров Вазузского типа сычевской породы.

5. ВЫВОДЫ

6. ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Генетическая характеристика новых типов скота бурой швицкой и сычевской пород Смоленской области по микросателлитам»

Актуальность темы. Одним из путей генетического усовершенствования молочного скота является создание новых специализированных типов [Стрекозов II.И., Амерхаиов Х.А., ред., 2006]. Эффективным приемом, в этой связи, является «прилитие крови» высокопродуктивных пород с последующим целенаправленным отбором помесных животных разных долей кровности по улучшаемой породе и их разведением «в себе» [Вронский В.И., 1983, Дунин Н.М., 1990, Дмитриев Н.Г., 1981]. Такая стратегия обеспечивает, с одной стороны, сохранение ценных качеств улучшаемых пород, таких как хорошие адаптационные способности, приспособленность к разведению в определенной природно-климатической зоне, повышенная устойчивость к заболеваниям, качество молока, с другой стороны, позволяет привнести в породы такие ценные качества, как высокий уровень молочной продуктивности, приспособленность к промышленной технологии содержания, экстерьерные особенности [Дунпн И.М., 1990, Дмитриев Н.Г., 1978, 1981, Дмитриев Н.Г., Басовский Н.З., Бойков Ю.В., Шулъга Л.П., 1982].

В Смоленской области созданы два новых типа скота - Смоленский швицкой породы и Вазузский сычевской породы. Смоленский тип выведен методом сложного воспроизводительного скрещивания с использованием мирового генофонда бурых и джерсейской пород [Яковлева В. А., Листратенкова В.И., Петкевич Н.С. и др. 2003.]. Тип включен в Госреестр в 2003 г. Целью создания нового типа явилось повышение удоя, улучшение экстерьерных характеристик. Вазузский тип сычевской породы создан посредством улучшения старого типа сычевского скота быками голштинской красно-пестрой и симментальской пород. Целью создания Вазузского типа явилось повышение уровня молочной продуктивности, улучшение экстерьера, приспособленности к промышленной технологии [Чериушеико В. К., Листратенкова В.И., Петкевич Н.С., Майорова Г.В. и др. 2008]. Тип включен в Госреестр в 2008г.

Следует отметить, что с генетической точки зрения при создании новых типов может произойти утрата ценных качеств исходных пород. Такие изменения на уровне фенотипа могут быть оценены только в процессе дальнейшего разведения и использования новых типов. На уровне генотипа такие изменения могут быть оценены на любом из этапов разведения скота. Более того, оценка генотипа животных позволяет оценить состояние генетической структуры популяций, степень консолидации, а также проследить направление процессов изменчивости в динамике [Калашникова Л.А. и др., 1999, 2000, Букарое Н.Г., 1995, Букаров Н.Г., 2004; Стрекозов Н.К и др., 2009]. Идеальным инструментом в этой связи является использование микросателлитов (МС), благодаря относительно несложной методике их определения, высокому уровню полиморфизма и стабильному аутосомному кодоминантному наследованию [Taulz D., 1989, 1994].

МС находят широкое применение в оценке вопросов популяционной и эволюционной генетики, став наиболее распространенным типом маркеров, используемых для этих целей [Baumung R. et ai, 2004; Schloelterer С., 2004; Киселева Т.Ю., Подоба Б.Е., Заблудовскии Е.Е., Хромов-Борисов Н.Н. и др., 2009, Киселева Т.Ю., Подоба Б.Е., Заблудовскии Е.Е., Терлецкий В.П. и др., 2009]. Микросателлиты служат инструментом для определения степени родства индивидуумов или групп [Зиновьева Н.А. и др., 2008, Зиновьева Н.А. и др., 2009]. В ряде публикаций сообщается о наличии связи отдельных микросателлитов с фенотипическими признаками и с генетическими болезнями крупного рогатого скота [Lipkin Е., Mosig М.О., Darvasi A., Ezra Е., Shalom A., Friedmann A. and Soller М„ 1998, Weller J.I., 2007, Ron М., Kliger D., Feldmesser E., Seroussi E., Ezra E. and Weller J.I., 2001, Reinecke P., Reifimann M., Milller U., Abdel-Rahman S., 2005, Chen H. Г., Zhang O., Yin С. C., Wang C. K., Gong W. J., and Mei G., 2006, Rincon G., Farber E.A., Farber C.R., Nkrumah J.D. and Medrano J.E., 2009, Калашникова Л.A., 2003].

В ГНУ ВИЖ Россельхозакадемии разработана система, позволяющая выявлять различия, как между отдельными индивидуумами, так и между популяциями скота. Показана прикладная значимость МС в характеристике структуры и выявлении генетических различий между группами симментальского скота различного происхождения [Коновалова Е.Н. и др., 2006], в выявлении характера изменения генофонда скота отечественных пород, обусловленного прилитием крови скота голштинской породы [Эрнст Л.К. и др., 2008, Молофеева Л.А. и др., 2009], в характеристике аллелофонда и структуры стада черно-пестрого скота [Зиновьева Н.А. и др., 2008].

Характеризуя состояние исследований в области генодиагностики сельскохозяйственных животных и в частности в области исследования прикладной значимости МС крупного рогатого скота в Российской Федерации, следует отметить, что подобные исследования в России практически ранее не проводились. Результаты отдельных исследований по изучению микросателлитного профиля ограниченных массивов скота России, опубликованные в различных изданиях были выполнены зарубежными специалистами или российскими исследователями на базе зарубежных научных центров [Эрнст Л.К., Зиновьева Н.А., 2008].

Цель и задачи исследования. Целью настоящей работы является генетическая характеристика новых типов скота бурой швицкой (Смоленский тип) и сычевской (Вазузский тип) пород, созданных в Смоленской области, с использованием микросателлитов.

Для достижения поставленной цели были поставлены и решены следующие задачи:

1. Дать характеристику продуктивности коров Смоленского типа бурой швицкой породы и Вазузского типа сычевской породы.

2. Изучить аллелофонд изучаемых новых типов скота по 13 локусам микросателлитов в сравнении с другими породами, в т.ч. с породами, участвующими в формировании типов.

3. Выполнить анализ аллельных профилей микросателлитов изучаемых типов скота в зависимости от генеалогической линии, поколения (мать -дочь), пола.

4. Дать оценку генетической консолидированности изучаемых типов скота на основании анализа аллельных профилей.

5. Выполнить анализ популяционно-генетических параметров, рассчитанных, исходя из генотипа животных по микросателлитам.

6. Изучить генеалогические связи между изучаемыми типами скота и породами, участвующими в их формировании.

7. Изучить связь аллелей микросателлитных локусов с показателями молочной продуктивности коров.

Научная новизна исследований. Впервые на примере двух новых типов скота - Смоленского бурой швицкой породы и Вазузского сычевской породы показана прикладная значимость микросателлитов как инструмента для генетической характеристики новых типов скота. Дана характеристика аллелофонда двух новых внутрипородных типов по 13-и локусам микросателлитам (МС) скота. Охарактеризованы генеалогические связи между изучаемыми типами скота и породами, участвующими в их формировании.

Практическая значимость. С использованием в качестве инструмента МС, охарактеризована генетическая структура стад Смоленского типа бурой швицкой породы и Вазузского типа сычевской породы. Дана оценка генетической консолидированности изучаемых типов, а так же внутрипородных генеалогических линий. Выполнена оценка генетической изменчивости в поколениях мать - дочь. Установлено, что аллельные профили скота по МС могут служить критерием оценки уровня изменчивости продуктивных показателей в генеалогических линиях. Выявлены связи отдельных аллелей МС с показателями молочной продуктивности коров: удоем, содержанием жира и белка в молоке, количеством молочного жира и белка.

Апробация работы. Результаты исследований были доложены и обсуждены:

• 7-й международной научной конференции «Современные достижения и проблемы генетики и биотехнологии сельскохозяйственных животных», БиоТехЖ-2008, п. Дубровицы, 2008 г.;

• на Всероссийской научно-практической конференции молодых ученых «Актуальные проблемы сельскохозяйственной науки и практики в современных условиях и пути их решения», г. Казань, 2009 г.;

• на конференции Центра биотехнологии и молекулярной диагностики ГНУ ВИЖ Россельхозакадемии, п. Дубровицы, 2010 г.

Основные положения, выносимые на защиту:

1. Аллельные профили животных Смоленского типа бурой швицкой породы и Вазузского типа сычевской породы по МС как критерии генетической характеристики новых типов скота.

2. Генетическая консолидированность изучаемых типов скота Смоленской области.

3. Генеалогические связи между изучаемыми типами скота и породами, участвующими в их формировании.

4. Достоверные корреляционные зависимости между наличием (отсутствием) отдельных аллелей МС и показателями молочной продуктивности коров и породоспецифичный характер выявленных связей.

Публикации результатов исследований. Всего по теме диссертационной работы опубликовано 3 работы, в том числе 1 статьи в журналах, рекомендованных ВАК РФ («Сельскохозяйственная биология»).

Структура и объем работы. Диссертация написана на 153 страницах, состоит из следующих разделов: введение, обзор литературы, материалы и методы исследований, результаты и обсуждение, выводы, практические предложения, список литературы. Диссертационная работа содержит 49 таблицы и 34 рисунка. Список литературы включает 207 источников, в том числе 135 источников на иностранном языке.

Заключение диссертации по теме «Генетика», Горелов, Петр Валерьевич

5. ВЫВОДЫ

1. Смоленский тип бурой швицкой породы и Вазузский тип сычевской породы характеризуются высокой молочной продуктивностью: соответственно, по 1-й лактации уровень удоя составил 4142±135 и 4210±122 кг, содержание жира - 3,87±0,02 и 3,88±0,02%, содержание белка - 3,30±0,01 и 3,42±0,01%, количество молочного жира - 160,1±5,1 и 163,5±5,1, количество молочного белка - 136,6±4,4 и 144,1 ±4,3 кг; по 2-й лактации - 4699±128 и 4664±119 кг, 3,92±0,02 и 3,85±0,02%, 3,34±0,02 и 3,41±0,02%, 183,5±4,8 и 176,1±5,3 кг, 156,7±4,1 и 159,0±4,2 кг; по 3-й лактации - 5216±168 и 5152±113 кг, 3,90±0,03 и 3,82±0,02%, 3,37±0,02 и 3,40±0,01%, 203,0±6,6 и 197,3±4,7кг, 175,4±5,6 и 175,4±4,0. Показаны различия в уровне молочной продуктивности коров, принадлежащих к различным генеалогическим линиям.

2. Установлено высокое генетическое разнообразие животных новых типов по 13-и МС: среднее число аллелей на локус составило 7,38±0,18 против, 6,5-6,8 и 6,2-7,2 аллелей на локус у пород, участвующих в формировании Смоленского и Вазузского типов, соответственно; наблюдаемая степень гетерозиготности составила, соответственно, 73,8 и 69,2%. Показано, что аллелофонд новых типов скота по МС является отражением селекционной стратегии, используемой при их выведении.

3. Выявлена высокая генетическая консолидированность созданных типов скота, на что указывает формирование ими массивов, относительно обособленных от исходных пород. Вероятность отнесения индивидуума к собственной популяции по МС для Смоленского типа составила 96,7%), при этом у быков - 100%, для Вазузского типа - 91,2%.

4. Установлена генетическая близость новых типов скота к исходным породам: различия в аллелофонде МС между группами Смоленского типа, бурого швицкого скота отечественной и американской селекции составили 3,3%, между группами Вазузского типа, старого типа сычевского скота, голштинизированного сычевского скота, симментальского, симментальского голштинизированного и голштинского скота - 4,8%.

5. Охарактеризованы генеалогические связи между изучаемыми типами скота и породами, участвующими в их формировании. Кластерный анализ показал формирование группами скота Смоленского и Вазузского типов самостоятельных ветвей, отличных как от исходных пород, так и от улучшающих пород.

6. Установлены достоверные отрицательные корреляции между оцененной по МС степенью генетической консолидированности генеалогических линий коров и уровнем изменчивости показателей молочной продуктивности коров в изучаемых типах, что указывает на их консолидацию.

7. Выявлены отдельные аллели локусов МС, влияющие на показатели молочной продуктивности коров. У коров Смоленского типа бурой швицкой породы наличие в генотипе аллелей 210 локуса INRA023 и 81 локуса TGLA227 оказывает положительное влияние на содержание жира (г=+0,23 (р>0,999) и +0,37 (р>0,999) по 1- и 2-й лактациям, соответственно) и белка в молоке (г=+0,15 (р>0,90), +0,35 (р>0,999) и +0,28 (р>0,999) по 1-, 2- и 3-й лактациям, соответственно). У коров Вазузского типа сычёвской породы отсутствие в генотипе аллеля 214 локуса INRA023 и наличие аллелей 289 локуса ILST006, 137 локуса ВМ2113 и 266 локуса ВМ1818 положительно влияет на показатели молочной продуктивности по 1-, 2- и 3-й лактациям: уровень удоя (г=+0,58 (р>0,999), +0,55 (р>0,999) и +0,57 (р>0,999), соответственно), количество молочного жира (г=+0,55 (р>0,999), +0,39 (р>0,999) и +0,42 (р>0,999), соответственно) и количество молочного белка (г=+0,57 (р>0,999),+0,45 (р>0,999) и+0,43 (р>0,999), соответственно).

6. ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ

1. При создании новых типов скота в породах рекомендуем использовать микросателлиты в качестве инструмента характеристики аллелофонда, генетической структуры и степени генетической консолидированности типов.

2. Специалистам племобъединений и сельхозпредприятий рекомендуем в стадах Смоленского типа бурой швицкой породы использовать в качестве маркеров жирномолочности и белковомолочности «желательные» аллели 210 локуса INRA023 и 81 локуса TGLA227, а в стадах Вазузского типа сычевской породы использовать в качестве маркеров уровня удоя, количества молочного жира и белка «желательные» аллели 289 локуса ILST006, 137 локуса ВМ2113, 266 локуса ВМ1818 и «нежелательный» аллель 214 локуса INRA023.

2.10. Заключение

В соответствии с требованиями Федерального закона «О племенном животноводстве» на территории РФ должно осуществляться генетическое тестирование племенных животных. Основными задачами генетической экспертизы племенной продукции является проведение экспертизы происхождения племенных животных (материала) и выявление племенных животных с отягощенной наследственностью.

Происхождение каждого племенного животного должно быть точно известно. Это необходимо при отборе ремонтного молодняка, выделении продолжателей линии, оценке быков по потомству и в ряде других случаев.

Современные методы выявления особенностей генетической структуры животных на уровне ДНК позволяют использовать данные анализа в планировании селекционной работы в популяциях сельскохозяйственных животных.

Важным является также оценка генетической вариабельности в генофондных популяциях, которые являются носителями ценных комбинаций генов, утерянных в промышленных линиях и породах. Получение данных по генетическим взаимоотношениям в породах животных позволяет лучше понять породообразовательиый процесс, прогнозировать развитие пород и планировать селекционно-генетическую работу с существующими породами. Поддержание необходимой вариабельности в популяциях способствует сохранению генофонда [Гладырь и др., 2005].

Показано, что МС являются нейтральными в селекционном аспекте [Tachida Н., Izuka М., 1992]. Вместе с тем, следует отметить, что в литературных источниках имеется ряд публикаций, в которых показано сцепление микросателлитов с генами-кандидатами локусов количественных признаков [Weller J.I., 2007, Reinecke P., Reifimann M, Muller U., Abdel-Rahman S., 2005, Chen H. Y, Zhang Q., Yin С. C., et ai, 2006, Weimann et al., 2001, Ogorevs J. et al., 2009]. Поэтому необходимо лучше понять и изучить связь МС с хозяйственно-полезными признаками сельскохозяйственных животных.

3. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЙ

Исследования проводили в лаборатории молекулярной генетики и цитогенетики животных Центра биотехнологии и молекулярной диагностики ГНУ ВИЖ Россельхозакадемии в период с 2008 по 2010 гг. Схема исследований представлена на рисунке 8.

Новые типы скота Смоленской области

Смоленский тип бурой швицкой породы

Вазузский тип сычевской породы

Генетическая характеристика

Оценка аллелофонда

Анализ аллельных профилей

Характеристика генешческой консолидированности

Анализ популяционно-генетических параметров

Изучение генеалогических связей

Анализ продуктивности

По лактациям (1-я, 2-я и 3-я)

По линиям

В поколениях маг1 ерей-дочерей

Коррелящюипый анализ ал показателями молочн лелей микросателлитов с ой продуктивности

Анализ молочной продуктивности в группах с различными генотипами по микросателлитам

Рис. 8. Схема исследований.

3.1. Животные

Молекулярно-генетические исследования провели на коровах смоленского типа бурой швицкой породы СПК «Пригорское» и вазузского типа сычевской породы КФХ «Балтутино», относящихся, соответственно, к 5-и и 9-и генеалогическим линиям, а так же быки-производители, содержащиеся в ОАО «Смоленское» по племенной работе. Работа выполнена совместно с Смоленским НИИСХ (В.К. Чернушенко и В.И. Листратенкова). При исследовании изменения аллелофонда МС в поколениях выборка коров была представлена только парами мать-дочь. Данные о числе животных изучаемых типов, используемых в исследованиях, обобщены в таблице 3.

Список литературы диссертационного исследования кандидат биологических наук Горелов, Петр Валерьевич, 2010 год

1. Айала Ф. Введение в популяционную и эволюционную генетику / Ф. Айала. М.: Мир, 1984. 230 с.

2. Бронекий В.И. Ускорение процесса совершенствования бурых пород скота при чистопородном разведении. // Селекция, гибридизация и акклиматизация сельскохозяйственных животных / Всесоюз. Акад. С.-х. наук им. В.И. Ленина. М.: 1983. С. 50-56.

3. Брем Г., Кройслих X., Штранцингер Г. Экспериментальная генетика в животноводстве // М.: РАСХН, 1995. 326 с.

4. Букаров Н.Г. Использование полиморфизма антигенов эритроцитов и главного комплекса тканевой совместимости в разведении и совершенствовании крупного рогатого скота: дис. . д-ра биол. наук, Дубровицы, 1995. 300 с.

5. Вейр Б. Анализ генетических данных. М.: Мир, 1995. 400 с.

6. Глазко В.И. Проблемы выявления главных генов количественных признаков. 3-я международная научная конференция // «Современные достижения и проблемы биотехнологии сельскохозяйственных животных», ВИЖ, 18-19 ноября 2003.

7. Глазко В.И., Дунин И.М., Глазко Г.В., Калашникова Л.А. Введение в ДНК-технологии. М.: ФГНУ «Росинформагротех», 2001. 436 с.

8. Гладырь Е.А., Зиновьева Н.А., Брем Г. Характеристика генофонда и выявление генеалогических связей между породами овец России с использованием ДНК-микросателлитов // Доклады Российской академии сельскохозяйственных наук, 2004. №2. С. 26-29.

9. Гладырь Е.А., Зиновьева Н.А., Каплинская Л.И., Брем Г., Мюллер М. / Методические рекомендации по молекулярно-генетическому анализу овец с использованием микросателлитных маркеров. РАСХН, 2004. С. 3-30.

10. Данкверт С.А., Холманов A.M., Осадчая О.Ю. Скотоводство стран мира. М., 2007. 608 с.

11. Дмитриев Н.Г. Современные тенденции в методах совершенствования пород крупного рогатого скота. // Методы совершенствования скота и птицы Сборник научных трудов ВНИИ разведения и генетики с.-х. животных, Ленинград, 1978. С. 13-21.

12. Дмитриев Н.Г. Современные направления совершенствования существующих и создания новых пород молочного скота. // Современные методы селекции молочного скота. Сборник научных трудов. ВНИИ разведения и генетики с.-х. животных, Ленинград, 1981. С. 5-11.

13. Дмитриев Н.Г., Басовский Н.З., Бойков Ю.В., Шульга Л.П. Пути увеличения генетического потенциала молочных пород скота. // Вестник сельскохозяйственной науки, №1, 1982. С. 93-99.

14. Дунин И.М. Использование мирового генофонда пород молочного скота. // Научные труды ВНИИплем, М.: 1990. С. 4-13.

15. Дунин И., Спивак М., Прохоренко Л., Пархоменко Л., Князева Т., Зыскнова Р. Испытание пород на отличимость, однородность и стабильность. // Молочное и мясное скотоводство. №6, 1997. С. 26-28.

16. Животовский Л.А. Популяционная биометрия / Л.А. Животовский. -М.: Наука, 1991. 271 с.

17. Животовский JI. А. Микросателлитная изменчивость в популяциях человека и методы ее изучения // Вестник ВОГиС, 2006. Том 10, №1. С. 74-96.

18. Захаров И.А. Генофонды сельскохозяйственных животных: генетические ресурсы животноводства России / отв. Ред. И.А. Захаров. М.: Наука, 2006. С. 77-82, 138-407.

19. Зиновьева Н.А., Эрнст Л.К. Проблемы биотехнологии и селекции сельскохозяйственных животных. Дубровицы, ВИЖ, 2004. 316 с.

20. Зиновьева Н.А., Ларионова П.В., Тихомирова Т.И., Гладырь Е.А., Шавырина К.М. Генетическая характеристика свиней пород крупная белая и йоркшир различного происхождения с использованием ДНК-маркеров // Доклады РАСХН, 2008, № 2, с. 33-36.

21. Зиновьева Н.А., Стрекозов Н.И., Молофеева Л.А. Оценка роли ДНК-микросателлитов в генетической характеристике популяции черно-пестрого скота // Зоотехния, 2009, №1, С. 2-4.

22. Зиновьева Н.А., Костюнина О.В., Гладырь Е.А., Банникова А.Д., Харзинова В.Р., Ларионова П.В., Шавырина К.М., Эрнст Л.К. Роль ДНК -маркеров признаков продуктивности сельскохозяйственных животных // Зоотехния, 2010. №1. С. 8-10.

23. Зиновьева Н.А. Введение в ДНК-диагностику. Школа-практикум «Методы исследований в биотехнологии сельскохозяйственных животных», вып.4. — ВИЖ, 2005.- 134 с.

24. Зиновьева Н.А., Серов В., Адаменко В., Эрнст Л.К. Сохранение локальных пород // Животноводство России. №6, 2006. С. 46-47.

25. Зиновьева Н. А., Гладырь Е. А., Державина Г., Кунаева Е. Методы маркер-зависимой селекции // Животноводство России. №3, 2006. С. 29-31.

26. Зиновьева Н.А., Попов А.П., Эрнст Л.К., Марзанов Н.С., Бочкарев В.В., Стрекозов Н.И., Брем Г. Методические рекомендации по использованию метода полимеразной цепной реакции в животноводстве. Дубровицы: ВИЖ, 1998. 47 с.

27. Зиновьева Н.А., Гладырь Е.А., Эрнст Л.К., Брем Г. Введение в молекулярную генную диагностику сельскохозяйственных животных. ВИЖ, 2002. 112 с.

28. Калашникова Л.А. Нуклеиновые кислоты в органах и тканях крупного рогатого скота и их взаимосвязь с хозяйственно-племенными качествами. // Сельскохозяйственная биология, 1986. №1. С. 31-37.

29. Калашникова Л.А., Дунин И.М., Глазко В.И. Селекция XXI века: использование ДНК-технологий // Московская обл., Лесные поляны, ВНИИплем, 2000. 31 с.

30. Киселева Т.Ю, Подоба Б.Е., Заблудовский Е.Е., Терлецкий В.П., Воробьев Н.И., Kantanen J. Анализ 29 микросателлитных маркеров у локальных популяций крупного рогатого скота // Сельскохозяйственная биология.

31. Кленовицкий П.М. Генетика и биотехнология в селекции животных / П.М. Кленовицкий, Н.С. Марзанов, В.А. Багиров, М.Г. Насибов. М.: ФГУП «Эксплор», 2004. - 285 с.

32. Коновалова Е.Н., Сельцов В.И., Зиновьева Н.А. Характеристика симментальского скота различного происхождения с использованием ДНК-микросателлитов // Зоотехния, 2006. № 7. С. 6-9.

33. Кугелев И.М. Сравнительная оценка сычёвской и швицкой пород крупного рогатого скота в нечерноземной зоне России: дис. . канд. с.-х. наук, Дубровицы, 2001. С. 3-29.

34. Лакин Г.Ф. Биометрия: Учебное пособие для биологических специальностей вузов. -М.: Высшая школа, 1980. С. 291.

35. Левонтин Р. Генетические основы эволюции. // М.: Мир, 1978. 351с.

36. Листратенкова В.И., Чернушенко В.К., Петкевич Н.С., Кольцов Д.Н. Эти «немодные» бурые породы // Зоотехния. 2009. №7. С. 4-6.

37. Листратенкова В.И., Чернушенко В.К., Кольцов Д.Н., Петкевич Н.С., Майорова Г.В., Тюриков В.И. Отличимость, однородность и стабильность животных Вазузского типа сычевской породы крупного рогатого скота. // Зоотехния. 2009. №7. С. 10-11.

38. Марзанов Н.С. Микросателлиты и их использование для оценки генетического разнообразия животных / Н.С. Марзанов, М.Ю. Озеров, М.Г. Насибов, Л.К Марзанова // Сельскохозяйственная биология, 2004. №2. С. 104-111 с.

39. Меркурьева Е.А., Абрамова З.В., Бакай А.В. и др. Генетика. М., 1979.

40. Молофеева Л. А. Разработка мультилокусной системы генетического анализа крупного рогатого скота по микросателлитам и ее использование для характеристики генофонда черно-пестрого скота: дис. . канд. биол. наук, Дубровицы, 2009. 132 с.

41. Молочное скотоводство России (в рамках реализации приоритетного национального проекта «Развитие агропромышленного комплекса» России) / под ред. Н.И. Стрекозова и Х.А. Амерханова. М.: 2006. 573 с.

42. Никитина Т.В. Назаренко С. А. Микросателлитные последовательности ДНК: мутационный процесс и эволюция // Генетика, 2004. №10. С. 1301-1318.

43. Столповский Ю.А. Ключевой вопрос в сохранении «культурного» биоразнообразия животных сохранение породного многообразия // Известия ТСХА, 2007. С. 125-134.

44. Серебровский А.С. Генетический анализ. М.: Наука, 1970. С. 3-341.

45. Стрекозов Н.И., Чернушенко В.К., Цысь В.И. Интенсификация молочного скотоводства России. Смоленск, 1997. С.12.

46. Свердлов Е.Д. Очерки современной молекулярной генетики. // Молекулярная генетика. Микробиология и вирусология, 1995. №2. С. 3-15.

47. Сулимова Г.Е. ДНК- маркеры в генетических исследованиях: типы маркеров, их свойства и области применения. // Успехи современной биологии, 2004. Т 124. №3. С. 260.

48. Сулимова Г.Е. Полиморфизм длин рестрикционных фрагментов ДНК у сельскохозяйственных животных. Успехи современной генетики, 1993. С. 330.

49. Сулимова Г.Е. Молекулярно-генетический анализ генома животных и человека с использованием ДНК-маркеров: дис. . д-р биол. наук, М., 1998. 285 с.

50. Храброва JI.A. Маркер-вспомогательная селекция в коневодстве./ Л.А. Храброва // ВНИИ коневодства, 2002. С. 1-4. Режим доступа: (http://www.riihorses.ru).

51. Хедрик Ф. Генетика популяций. М.: Техносфера, 2003. 588 с.

52. Хемлебен В., Беридзе Т. Г., Бахман Л., Коварик Я., Торрес Р. Сателлитные ДНК // Успехи биологической химии, 2003. Т. 43. С. 267—306.

53. Чернушенко В.К., Листратенкова В.И., Тюриков В. Тип Смоленский // Молочное и мясное скотоводство, 2008. №2, С. 19.

54. Эрнст Л.К., Зиновьева Н.А. Биологические проблемы животноводства в XXI веке. М.: РАСХН, 2008. 508 с.

55. Adrian R.A., Taylor М., McKeown В. Compilation of a panel of informative single nucleotide polymorphisms for bovine identification in the Northern Irish cattle population//BMC Genet., 2010. 5(11): 1107-1127.

56. Archibald A.L., Haley J.F., Brown S. et. al., The PIG-MaP consortium linkage map of the pig (Sus scrofa). // Mamm. Genome, 1995, 6: 157-175.

57. Arranz J.J., Bayon Y. and San Primitivo F. Differentiation among Spanish sheep breeds using microsatellites. // Genet. Sel. Evol., 2001b, 33: 529-542.

58. Armstrong E., Postiglioni A., Martinez A., Rincon G. and Luis Vega-PIa J. Microsatellite analysis of a sample of Uruguayan Creole bulls (Bos taurus) // Genetics and Molecular Biology, 2006, 2: 267-272.

59. Ball A.O. and Chapman R.W. Population genetic analysis of white shrimp, Litopenaeus setiferus, using microsatellite genetic markers. // Mol. Ecol., 2003, 12:2319-2330.

60. Barton N.H. Genetic hitchhiking. Philos. Trans. R. Soc. Lond. В // Biol. Sci.,- 2000, 355: 1553-1562.

61. Barendse Wo, Armitage S.M., Kossarek L.M. et.al. A genetic map of the bovine genome. //Nature genet., 1994, 6: 227-235.

62. Balloux F. and Lugon-Moulin N. The estimation of population differentiation with microsatellite markers. // Mol. Ecol., 2002, 11: 155-165.

63. Beamount M. and Bruford M. Microsatellites in conservation genetics. In: Microsatellites Application and evolution. // Oxford University Press, Oxford, 1999.- 165-180.

64. Baumung R., Simianer H., Hoffmann I. Genetic diversity studies in farm animals-a survey. //J. Anim. Breed. Genet., 2004, 121: 361-373.

65. Beridze, T. Satellite DNA. Springer Verlag. Berlin, // Heidelberg, 1986:257-269.

66. Bicalho H.M.S., Pimenta C.G., Mendes I.IC.P., Репа H.B., Queiroz E.M., Pena S.D.J. Determination of ancestral proportions in synthetic bovine breeds using commonly employed microsatellite markers // Genet. Mol. Res., N. 5(3), 2006: 432437.

67. Bischop M.D., Kappes S.M., Keele J.W. et. al. A Genetic linkage map for cattle. Genetics. 1994, 136: 619-639.

68. Bostock, C. Phil. Trans. Roy.Soc. Lond .B, 312, 1986: 261-273.

69. Brookfield J.F.Y. A simple new method for estimating null allele frequency from heterozygote deficiency. // Mol. Ecol., 1996, 5: 453-455.

70. Brezinsky, L.S., Kemp, J., Teale, A.J. ILSTS005: a polymorphic bovine microsatellite. // Anim. Genet. 1993a, 24: 73.

71. Brezinsky, L.S., Kemp, J., Teale, A.J. ILSTS006: a polymorphic bovine microsatellite. // Anim. Genet. 1993b, 24: 73.

72. Brezinsky, L.S., Kemp, J., Teale, A.J. Five polymorphic bovine microsatellites (ILSTS010-014). // Anim. Genet. 1993c, 24: 75-76.

73. Callen D.F., Thompson A.D., Shen Y,, Phillips H.A., Richards R.I., Mulley J.C. and Sutherland G.R. Incidence and origin of "null" alleles in the (AC)n microsatellite markers. //Am. J. Hum. Genet., 1993, 52: 922-927.

74. Chakraborty R., De Andrade M., Daiger S.P. and Budowle B. Apparent heterozygote deficiencies observed in DNA typing data and their implications in forensic applications. //Ann. Hum. Genet., 1992. 56: 45-57.

75. Comuet J.-M., Piiy S., Luikart G., Estoup A. and Solignac M. New methods employing multilocus genotypes to select or exclude populations as origins of individuals.//Genetics. 2000, 153: 1989-2000.

76. Crawford A.M., Dodds K.G., Ede A.J., Pierson C.A., Montgomery G.W., Garmonsway H.G., Beattie A.E., Davies K., Maddox J.F., Kappes S.W. and. An autosomal genetic linkage map of the sheep genome. // Genetics. 1995, 140: 703724.

77. Csink AK, Henikoff S. Something from nothing: the evolution and utility of satellite repeats. Trends Genet. 1998 May; 14(5):200-41998

78. Charlier C., Denys В., Belanche J.l. et. al. Microsatellite mapping of the bovine roan locus: A major determinant of White Heifer Disease. Mamm. Genome, 1996, 7: 138-142.

79. Charlier C., Coppieters W.Y., Famir F. et. al. The mh gene causing doublemuscling in cattle maps to bovine Chromosome 2. Mamm. Genome, 1995, 6: 788-792.

80. Curi R.A., Lopes C.R. Evaluation of nine microsatellite loci and misidentification paternity frequency in a population of Gyr breed bovines. // Brazil J. Vet. Res. Anim. Sci., 2002, 39(3): 129 135.

81. Chen H. Y., Zhang Q., Yin С. C., Wang С. K., Gong W. J., and Mei G. Detection of Quantitative Trait Loci Affecting Milk Production Traits on Bovine

82. Chromosome 6 in a Chinese Holstein Population by the Daughter Design // J. Dairy Sci. 2006, 89: 782-790.

83. Dib C., Faure S., Fisanes C.et al. // Nature. 1996. - Vol. 380. - P. 152154.

84. Di Rienzo A., Peterson A.C., Garza J.C., Valdes A.M., Slatkin M. and Freimer N.B. Mutational processes of simple-sequence repeat loci in human populations. //Proc. Am. Soc. Anim. Sci. 1994, 91: 3166-3170.

85. Diehl S.R., Ziegle J., Buck G.A., Reynolds T.R., Weber J.L. // Amer. J. Hum. Genet. 1990. - V. 47. - P. 177.

86. Dover G.A. Molecular drive a cohesive mode of species evolution. // Nature 1982., 299:111-117.

87. Ede A.J. and Crawford A.M. Mutations in the sequence flanking the microsatellite at the Kap8 locus prevent the amplification of some alleles. // Anim. Genet., 1995- 26: 43-44.

88. Edwards A., Civitello A., Hammond H.A. and Caskey C.T. DNA typing and genetic mapping with trimeric and tetrameric tandem repeats. // Am. J. Hum. Genet., 1991 49: 746-756.

89. Estoup A. and Cornuet J.M. Microsatellite evolution: inferences from population data. In: Microsatellites Evolution and application. //Eds.: D. B. Goldstein and C. Schlotterer. Oxford University Press, Oxford, 1999 - 49-64.

90. Fries, R., Eggen, A., Womack, J.E. The bovine genome map. // Mamm. Genome 1993,4:405-428.

91. Goldstein D.B. and Pollock D.D. Launching Microsatellites: A review of mutation processes and methods of phylogenetic inference. // J. Hered., 1997, 88: 335-342.

92. Goldstein D.B., Schlotterer С. Microsatellites. Evolution and Applications. Oxford, 1999, 321 p.

93. Glowatzlci-Mullis M.-L., Gaillard C., Wigger G. and Fries R. Microsatellite-based parentage control in cattle. // Anim. Genet. 1995, 26: 7-12.

94. Georges M, Nielsen D, Mackinnon M, Mishra A, Okimoto R, Pasquino AT et al. Mapping quantitative trait loci controlling milk production in dairy cattle by exploiting progeny testing. // Genetics. 1995, 139: 907-920.

95. Georges M, Drinkwater R, King T, Mishra A, Moore SS, Nielsen D et al. Microsatellite mapping of a gene affecting horn development in Bos taurus. // Nature Genetics 1995b, 4: 206-210.

96. Hammond E.L., Lymbery A.J., Martin G.B., Groth D. and Wetherall J.D. Microsatellite analysis of genetic diversity in wild and farmed Emus (Dromaius novaehollandiae). //J. Hered., 2002 93, 376-380.

97. Hall J.G. and Bradley D.G. Conserving livestock breed biodiversity. // Trends Ecol. Evol. 1995, 10: 267-270.

98. Hancock J.M. Microsatellites and other simple sequences: genomic context and mutational mechanisms. In: Microsatellites Evolution and application. // Ed. D. B. Goldstein und C. Schlotterer. Oxford University Press, Oxford, 1999, 16.

99. Holm L.E., Loeschcke V. and Bendixen C. Elucidation of the molecular basis of a null allele in a rainbow trout microsatellite. // Mar. Biotechnol. 2001, 3: 555-560.

100. Hibert P., Lindpaintner K., Beckmann J.S., Serilcawa Т., Soubrier F., Dubay C., Cartwright P., De Gouyon В., Julier C., Takahasi S. // Nature. 1991. -353(6344) -521-529.

101. HeyenD.W., Beever J.E., Da Y., Evert R.E., Green C., Bates S.R.E.,Ziegle J.S. and Lewin H.A. Exclusion probabilities of 22 bovine microsatellite markers in flourescent multiplexes for semi-automated parentage testing. // Anim. Genet. 1997, 28, 21-27.

102. Hedrick P.W. Perspective: Highly variable loci and their interpretation in evolution and conservation. //Evolution 1999, 53: 313-318.

103. Ibeagha-Awemu E.M. and Erhardt G. Genetic structure and differentiation of 12 African Bos indicus and Bos taurus cattle breeds, inferred from protein and microsatellite polymorphisms. // J. Anim. Breed. Genet. 2005, 122: 1220.

104. Jeffreys A.J., Hyppervariable DNA and genetic fingerprints. // A.J. Jeffreys, J. Hillel, N. Hartley // Anim. Genet. 1987. - V.18. Suppl.l. - P.141.

105. Jorde L.B., Bamshad M.J., Watkins W.S. et al. // Am. J. Hum. Genet. -1995.-Vol.57.-P. 523-538,

106. Jones A.G., Stockwell C.A., Walker D. and Avise J.C. The molecular basis of a microsatellite null allele from the white sands pupfish. // J. Hered., 1998 -89: 339- 342.

107. Jesse W. Breinholt, Renee V. Buren, Olga R. Kopp and Catherine L. Stephen Population genetic structure of an endangered Utah endemic, Astragalus ampullarioides (Fabaceae) // American Journal of Botany. 2009, 96: 661-667.

108. Janik A., Zabek Т., Radko A., Natonek M. Evaluation of polymorphism at 11 microsatellite loci in Simmental cattle raised in Poland // Ann. Anim. Sci., Vol. 1, No. 2 (2001): 19-29.

109. Kappens M.S., Keele J.W., Stone R.T. et. al. A second-generation linkage map of bovine genome. // Genome Res., 1997, 73.: 235-249.

110. Kantanen J., Olsaker I., Holm L.E., Lien S., Vilkki J., Brusgaard K., Eythorsdottir E., Danell B. and Adalsteinsson S. Genetic diversity and population structure of 20 North European cattle breeds. // J. Hered. 2000, 91: 446-457.

111. Kemp S.J., Hishida О., Wambugu J., Rinlc A., Longeri M.L., Ma, R.Z., Da, Y., Lewin H.A., Barendse Wo. and Teale A.J. A panel of polymorphic bovine, ovine and caprine microsatellite markers. // Anim. Genet. 1995,26, 299-306.

112. Kevorkian S.E.M., Georgescu S.E., Manea M.A., Zaulet M., Hermenean A.O., Costache M. Genetic diversity using microsatellite markers in four Romanian autochthonous sheep breeds // Biotechnological Letters, 2010. 15(1): 125-133.

113. Kaukinen, J., Varvio, S.L. Eight polymorphic bovine microsatellites. // Anim. Genet. 1993,24: 148.

114. Kimura M. and Crow J.F. The number of alleles that can be maintained in finite populations. //Genetics, 1964. 49: 725-738.

115. Kimura M. and Otha T. Stepwise mutation model and distribution of allelic frequencies in a finite population. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1978 75: 2868-2872.

116. Koorey D.J., Bishop G.A. and McCaughan G.W. Allele non-amplification: a source of confusion in linkage studies employing microsatellite polymorphisms. //Hum. Mol. Genet., 1993 2: 289-291.

117. Lagercrantz U., Ellegren H. and Andersson L. The abundance of various polymorphic microsatellite motifs differs between plants and vertebrates. // NAR. 1993, 215.:1111-1115.

118. Levinson G. and Gutman G.A. Slipped strand mispairing: a major mechanism for DNA sequence evolution. // Mol. Biol. Ecol. 1987, 4: 203-221.

119. Lehmann Т., Hawley W.A. and Collins F.H. An evaluation of evolutionary constraints on microsatellite loci using null alleles. // Genetics, 1996 -144, 1155-1163.

120. Leroy G., Callede L., Verrier E. Genetic diversity of a large set of horse breeds raised in France assessed by microsatellite polymorphism. // Genetics Selection Evolution, 2009. 41: 1186-1297.

121. Litt M., Luty J.A. // Am. J Hum. Genet. 1989. - 44(3) -397-401.

122. Li YC, Korol AB, Fahima T, Beiles A, Nevo E. Microsatellites: genomic distribution, putative functions and mutational mechanisms: a review. // Mol Ecol. 2002, 11(12): 2453-2465.

123. Ma R.Z., Beever J.E., Da Y. et. al. A male linkage map of the cattle (Bos taurus) genome. //Y.J. of Heredity, 1996, 87: 261-271.

124. Mahtani M.M, Willard H.F. A polymorphic X-linked tetranucleotide repeat locus displaying a high rate of new mutation: implications for mechanisms of mutation at short tandem repeat loci. // Hum Mol Genet. 1993, 2(4): 431-437

125. Machugh D.E., Loftus R.T., Bradley D.G. et al. Microsatellite DNA variation within and among European cattle breeds. // Proc. R. Soc, Lond., 1994, 256: 25-31.

126. Mittal N., Dubey A.K. Microsatellite markers- A new practice of DNA based markers in molecular genetics // Genetics, 2009. 3(6): 235-246.

127. Mommens, G.W., Coppieters, A. et al. Dinucleotide repeat polymorphism at the bovine MM12E6 and MM8D3 loci. // Anim. Genet. 1994, 25: 368.

128. Moore, S.S., Byrne, K. Characterization of 65 bovine microsatellites // Mamm. Genome, 1994. 5: 84-90.

129. Moioli В., Napolitano F., Catillo G. Genetic diversity between Piedmontese, Maremmana, and Podolica cattle breeds // J. of Heredity 2004: 95(3):250-256.

130. Nickerson D.A., Taylor S.L., Weiss K.M., Clark A.G., Hutchinson R.G., Stengard J., Salomaa V., Vartiainen E., Boerwinlcle E. and Sing C.F. DNA sequence diversity in a 9.7-kb region of the human lipoprotein lipase gene. //Nat. Genet., 1998 19, 233-240.

131. Nei M. Genetic distance between populations. // Amer. Natur., 1972, 106(949): 283-291.

132. Nei M. The theory and estimation of genetic distance. In: Genetic structure of populations. // Ed. N. E. Morton. University Press of Hawaii, Honululu, 1973 a.

133. Nei M. Analysis of gene diversity in subdivided populations. // Proc. Natl. Acad.Sci. USA 1973b, 70: 3321-3323.

134. Nei, M. 1978. Estimation of average heterozygosity and genetic distance from a small number of individuals. // Genetics 89: 583-590.

135. Notter D.R. The importance of genetic diversity in livestock populations of the future. //J. Anim. Sci., 1999, 77: 61-69.

136. Ogorevs J., Kunej Т., Razpet A., Poyc P. Database of cattle candidate genes and genetic markers for milk production and mastitis. // Animal Genetics,1 2009, 6: 40-45.

137. Ozkan E., Soysal M. I., Ozder M., Koban E., Sahin O. and Togan I. Evaluation of parentage testing in the Turkish Holstein population based on 12 microsatellite loci//Livest. Sci., 2009, 124(1-3): 101-106.

138. Paetkau D., Slade R., Burdens M. et. al. Genetic assignment methods for the direct, real-time estimation of migration rate: a simulationbased exploration of accuracy and power. // Mol. Ecol., 2004, 13: 55-65.

139. Paetkau D., Calvert W., Stirling I. and Strobeck C. Microsatellite analysis of population-structure in Canadian polar bears. // Mol. Ecol., 1995, 4: 347354.

140. Pemberton J.M., Slate J., Bancroft D.R. and Barrett J.A. Nonamplifying alleles at microsatellite loci: a caution for parentage and population studies.// Mol. Ecol., 1995 4: 249-252.

141. Peakall, R., and P.E. Smouse. GENALEX 6: genetic analysis in Excel. Population genetic software for teaching and research. // Molecular Ecology, 2007. Notes 6: 288—295. Available: http://www.anu. edu. au/BoZo/GenAlEx/ genalex download.php.

142. Primmer C.R., Moller A.P. and Ellegren H. Resolving genetic relationships with microsatellite markers: a parentage testing system for the swallow Hirundo rustica. //Mol. Ecol., 1996-4: 493-498.

143. Richards R.I., Sutherland G.R. // Trends Biochem Sci. Nat Genet.1994. -6(2).- 114-116.

144. Rubinsznein D.C., Amos W., Leggo J., Goodburn S., Jain S., Li S.H., Margolis R.L., Ross C.A. and Ferguson-Smith M.A. Microsatellite evolution -evidence for directionality and variation in rate between species. // Nat. Genet.1995, 10: 337-343.

145. Rubinsztein D., Leggo J., Amos W. // Genomics.-1995.-Vol. 10 P. 3337-3431.

146. Rincon G., Farber E.A., Farber C.R., Nkrumah J.D. and Medrano J.E. Polymorphisms in the STAT 6 gene and their association with carcass traits in feedlot cattle. // Animal Genetics, 2009, V.40, P.6.

147. Reinecke P., ReiBmann M., Muller U., Abdel-Rahman S. Fine Mapping of milk yield QTL on chromosomes 6 and 20 in German Holstein population using Microsatellite Markers // Anim. Genet., 2005, 38: 25-33.

148. Ron M., Kliger D., Feldmesser E., Seroussi E., Ezra E. and Weller J. I. Multiple Quantitative Trait Locus Analysis of Bovine Chromosome 6 in the Israeli Holstein Population by a Daughter Design // J. Anim. Sci., 2001, Vol. 3, No. 3: 29-37.

149. Sadeghi R., Mahmoudi В., Babayev M.S., Rameshknia Y. and Daliri M. Genetic Analysis in Tali Goats Based on 13 Microsatellite Markers // Journal of Biological Sciences, 2009. 4 (6): 734-737.

150. Soheir M., El N., Amal A.H., Mossallam A.A., et. al. Analysis of genetic variation in different sheep breeds using microsatellites // African Journal of Biotechnology 2008, Vol. 7 (8), P. 1060-1068.

151. Schrooten C. Genomic variation in dairy cattle. Identification and use. // Animal Breeding and Genetics Group. Doctoral thesis, Netherland, 2004.

152. Schloetterer C. Evolutionary dynamics of microsatellite DNA. // Chromosoma 2000, 109:365-371.

153. Schloetterer C. Opinion: The evolution of molecular markers just a matterof fashion? // Nature Rev. Genet., 2004, 5: 63-69.

154. Schloetterer C. and Tautz D. Slippage synthesis of simple sequence DNA.//Nucleic Acids Res. 1992, 20: 211-215.

155. Smith C.L., Analyses of genome organization and rearrangements by pulsed field gradient gelelectrophoresies / C.L. Smith, P.E. Warburton, C. Cantor // Genetic engeneering N.Y.: Plenum press. 1986. - V. 8. - P. 45-70.

156. Strand M., Prolla T.A., Liskay R.M. and Petes T.D. Destabilization of tracts of simple repetitive DNA in yeast by mutations affecting DNA mismatch repair.//Nature, 1993 365: 274-276.

157. Solinas T.S., Fries, R. Physically mapped, cosmid-derived microsatellite markers as anchor loci on bovine chromosomes. // Mamm. Genome, 1993, 4: 720727.

158. Steffen, P., Eggen, A. Isolation and mapping of polymorphic microsatellites in cattle. Anim. Genet. 1993, 24: 121-124.

159. Sifuentes-Rincon A.M., Puentes-Montiel H., Parra-Bracamonte G.M. Assessment of genetic structure in Mexican charolais herds using microsatellite markers // Molecular biology and genetics. 2007, V. 10, N.4.

160. Soller M. Genetic mapping of the Bovine Genome Using Deoxyribonucleic Acid-Level Markers to Identify Loci Affecting Quantitative Traits of Economic Importance. J. Dairy Sci. 1990, 73: 2682-2646.

161. Slatkin M. Hitchhiking and associative overdominance at a microsatellite locus. //Mol. Biol. Ecol., 1995 b 12, 473-480.

162. Stallings R. L, Ford R., Nelson О et al Evolution and distribution of (GN)n repectitive sequences in mammalian genomes. Genomics, 1991, 10: 807-815.

163. Su Y., Chen G.H. DNA microsatellite analysis of genetic diversity among Chinese indigenous laying-type ducks (Anas platyrhynchos) // Czech J. Anim. Sci., 2009. 54: 128-135.

164. Tautz D. Hypervariability of simple sequences as a general source for polymorphic DNA markers / Tautz D. 1989. Vol.17. - P. 6463-6471.

165. Tautz D. and Schlotter C. Simple sequences. //Curr. Opin. Genet. Dev., 1994- 4: 832-837.

166. Tachida H. and Izuka M. Persistence of repeated sequences that evolve by replication slippage. //Genetics, 1992 131, 471-478.

167. Valdes A.M., Slatkin M. and Freimer N.B. Allele frequencies at microsatellite loci: The stepwise mutation model revisited. // Genetics, 1993 133, 737-749.

168. Vaiman, D., Osta, D. Characterisation of five new bovine microsatellite repeats. //Anim. Genet. 1992, 23: 537.

169. Vaiman, D., Mercier, D. A set of 99 cattle microsatellites: characterisation, synteny mapping, and polymorphism. // Mamm. Genome 1994, 5: 288-297.

170. Vilkki H.J., Koning D.J., Elo K. et. al. Multiple marker mapping of quantitative trait loci of Finnish dairy cattle by regression. // J. Dairy Sci., 1997, 801.: 198-204.

171. Waser P.M. and Strobeck C. Genetic signatures of interpopulation dispersal. // Trends in Ecology and Evolution 1998, 13: 43-44.

172. Weimann C., Leyhe-Horn В., Gauly M., Erhardt G. Suitability of microsatellites BM1329 and OarAElOl as markers for the introgression of the Fee (B) locus into different sheep breeds // Arch. Tierzucht 2001, 44, 435-440.

173. Weir B.S. and Cockerham C. Estimating F-statistics for the analysis of population structure. // Evolution, 1984, 38: 1358-1369.

174. Weber J.L, Wong C. Mutation of human short tandem repeats. // Hum Mol Genet. 1993, 2(8): 1123-1128.

175. Weber J.L. Abundant class of human DNA polymorphism which can be typed using the polymerase chain reaction / J.L. Weber, P.E. May // Am. J. Hum. Genet. 1989. -V. 44. - P. 388-396.

176. Weber J.L. Informativeness of human (dC-dA)n(dG-dT)n polymorphisms / Weber J.L. // Genomics. 1990. - Vol.7. - P. 524-530.

177. Weller J.L Current and Future Developments in Patents for Quantitative Trait Loci in Dairy Cattle // Institute of Animal Sciences, A. R. O., The Volcani Center, Israel, 2007, 69-76.

178. Wintero A. K., Fredholm M., Thomsen P. D. Variable (dG dT)n(dC -dA)n Sequences in the Porcine Genome, 1992, 12: 281-288.

179. Xin Xu, Mei Peng, Zhian Fang, Xiping Xu. The direction of microsatellite mutations is dependent upon allele length. // Nature Genetics. 2000, 24: 396 - 399.

180. Yinglei Lai and Fengzhu Sun The Relationship Between Microsatellite Slippage Mutation Rate and the Number of Repeat Units // Mol. Biol. Evol. 2003, 20(12): 2123-2131.

181. Ziegle J.S., Su Y, Corcoran KP, Nie L, Mayrand PE, Hoff LB, McBride LJ, Kronick MN, Diehl SR. Application of automated DNA sizing technology for genotyping microsatellite loci. // Genomics. 1992. 14: 1026-1031.