Разработка мультилокусной системы генетического анализа крупного рогатого скота по микросателлитам и ее использование для характеристики аллелофонда черно-пестрого скота тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.00.15, кандидат биологических наук Молофеева, Людмила Анатольевна

• Молофеева, Людмила Анатольевна
• кандидат биологических наук
• 2009

Оглавление диссертации кандидат биологических наук Молофеева, Людмила Анатольевна

СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ

ВВЕДЕНИЕ

1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

1.1. Определение и свойства микросателлитов

1.1.1. Сателлитные ДНК.

1.1.2. Определение микросателлитов

1.1.3. Происхождение микросателлитов

1.1.4. Области применения микросателлитов

1.2. Методы анализа микросателлитов

1.2.1. Проблемы и ограничения использования МС

1.2.2. Выбор микросателлитных локусов

1.2.3. Связь МС с признаками продуктивности

1.3. Микросателлиты крупного рогатого скота

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Разработка мультилокусной системы генетического анализа крупного рогатого скота по микросателлитам и ее использование для характеристики аллелофонда черно-пестрого скота»

3.1. Разработка системы анализа микросателлитов крупного рога- 42 того скота

3.1.1. Разработка мультилокусной панели анализа микросателлитов 42 крупного рогатого скота

3.2. Характеристика аллелофонда изучаемой популяции коров 47 черно-пестрой породы

3.3. Анализ влияния происхождения коров на некоторые популя- 52 ционно-генетические и продуктивные показатели

3.3.1. Влияние доли кровности коров по голштинам 52

3.3.1.1. Изучение связи доли кровности коров по голштинам с пока- 52 зателями молочной продуктивности

3.3.1.2. Изучение связи доли кровности коров по голштинам с попу- 58 ляционно-генетическими показателями, рассчитанными по

МС

3.3.2. Влияние линейной принадлежности 64

3.3.2.1. Изучение связи линейной принадлежности коров с показате- 64 лями молочной продуктивности

3.3.2.2. Изучение связи линейной принадлежности коров с популя- 67 ционно-генетическими показателями, рассчитанными по МС

3.3.3. Влияние типа подбора родительских пар 72

3.3.3.1. Изучение связи типа подбора родительских пар с показате- 73 лями молочной продуктивности

3.3.3.2. Изучение связи типа подбора родительских пар с популяци- 74 онно-генетическими показателями, рассчитанными по МС

3.3.4. Влияние линейной сочетаемости (О - ОМ) на показатели мо- 75 лочной продуктивности коров

3.4. Выявление связей аллелей МС с показателями молочной 77 продуктивности коров

3.4.1. Анализ аллелей МС, коррелирующих с уровнем удоя 79

3.4.2. Анализ влияния на молочную продуктивность коров аллелей 84 МС, коррелирующих с содержанием жира в молоке

3.4.3. Суммарное действие аллелей МС 93

3.4.3.1. Аллели, влияющие на удой коров 93

3.4.3.2. Аллели, влияющие на содержание жира в молоке 96

3.4.3.3. Суммарное действие аллелей МС, коррелирующих с уровнем 103 удоя и жирномолочностью

4. ВЫВОДЫ 106

5. ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ 109 БИБЛИОГРАФИЯ 110

СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ

MAS - (Marker-Assisted Selection) - маркерная селекция, программа генетического совершенствования животных

QTL - (quantitative trait loci) локусы количественных признаков SNP - (Single Nucleotide Polymorphism) точковая мутация п.о. - пар оснований ГТЦР - полимеразная цепная реакция ПДРФ - полиморфизм длин рестрикционных фрагментов праймеры - короткие последовательности нуклеотидов (чаще 20-25), комплементарные концевым участкам изучаемого гена STR - («short tandem repeats») - короткие тандемные повторы SSR - («simple sequence repeats») - простые повторы последовательности МС - микросателлиты

ISAG - Международное общество генетики животных GenBank, EMBL - Международный генный банк

LINEs - длинные интерсперсионные элементы, длиной более 1000 п.о. SINEs - короткие интерсперсионные элементы, длиной менее 500 п.о. VNTR (variable number of tandem repeats) - тандемные повторы с изменяющимся числом копий КРС - крупный рогатый скот ГУП - государственное унитарное предприятие ДНК - дезоксирибонуклеиновая кислота РНК - рибонуклеиновая кислота П.н. - пар нуклеотидов

Fis - коэффициент инбридинга у индивидуумов по отношению к субпопуляции (группе)

Fit - коэффициент инбридинга у индивидуумов по отношению ко всей выборке в целом

Fst - коэффициент инбридинга в субпопуляциях (группах) по отношению ко всей выборке в целом

ВВЕДЕНИЕ.

Актуальность темы.

В последние 15-20 лет произошли серьезные измеиения в структуре породного состава сельскохозяйственных животных. Практически во всех отраслях животноводства выделилось небольшое число пород, которые по численности занимают ведущее место. Этот объективный процесс обусловлен конкуренцией пород по основным хозяйственно-полезным признакам. На этом фоне резко снизился удельный вес других пород, ранее широко распространенных в стране (56).

В молочном скотоводстве страны широко распространенным приемом для повышения продуктивных качеств, в частности обильномолочности стало прилитие крови скота голштинской породы (39). С точки зрения популя-ционной генетики голштинизация в конечном итоге может привести к вымыванию уникальных, свойственных определенным породам аллелей, к снижению генетического разнообразия, к стиранию генетических различий между породами.

Одним из приемов выявления генетических различий между популяциями,. оценки структуры популяций является использование микросателлитов. Микросателлиты представляют собой короткие (100-200 п.о.) тандемно расположенные участки ДНК, обладающие высокой степенью полиморфизма (87, 199). Исследование крупного рогатого скота по микросателлитам и построение на их основе специфических ДНК-профилей пород, типов и линий позволяет использовать данные анализа в планировании селекционной работы в популяциях сельскохозяйственных животных. Необходимость применения методов анализа генетической изменчивости, основанных на изучении ДНК, диктуется тем обстоятельством, что ранее широко использовавшиеся для этой цели белковые системы не могут в полной мере адекватно отражать генетическое сходство в группах животных. Дело в том, что различия между синонимическими кодонами не меняют кодируемых аминокислот, а это значит, что процесс накопления мутаций не регистрируется анализом синтезируемых организмом белков. Анализ ДНК используется не только на отдельных особях, но и на целых популяциях животных. Таким путем можно проводить мониторинг состояния популяций.

Следует отметить, что проведение исследований крупного рогатого скота России по микросателлитам сдерживается отсутствием доступных по цене наборов для одновременного исследования нескольких локусов. Существующие мультилокусные наборы для крупного рогатого скота предлагаются на Российском рынке только компанией Applied Biosystems (США), и вследствие высокой стоимости (более 300 руб. за исследование одного животного без учета стоимости реактивов на выделение ДНК и проведение фрагментного анализа) практически не приемлемы для проведения массовых исследований, а так же непригодны для последующего практического внедрения. Таким образом, актуальность темы заключается в разработке муль-тилокусной системы, позволяющей проводить оценку состояния аллелофон-да крупного рогатого скота на основе микросателлитов и в оценке ее прикладной значимости в характеристике аллелофонда крупного рогатого скота.

Цели и задачи исследований.

Целью настоящей работы явилась разработка мультилокусной системы анализа крупного рогатого скота по микросателлитам и ее использование для характеристики аллелофонда черно-пестрого скота ГУП «Кленово-Чегодаево».

Для достижения цели работы были поставлены следующие задачи:

1. Изучить спектр микросателлитных маркеров крупного рогатого скота, выполнить теоретическое моделирование и экспериментальную апробацию мультилокусной системы анализа микросателлитов.

2. Изучить аллелофонд популяции голштинизированного черно-пестрого скота ГУП «Кленово-Чегодаево» по микросателлитам и оценить информативность разработанной системы.

3. Изучить влияние различных факторов па показатели молочной продуктивности коров и популяционно-генетические параметры, рассчитанные по микросателлитам.

4. Изучить связь отдельных аллелей микросателлитов с показателями молочной продуктивности коров.

Научная новизна. Разработана мультилокусная система анализа МС, позволяющая проводить одновременный анализ по семи локусам: ЕТН10, ЕТН225, ВМ1818, ВМ1824, ВМ2113, ТСЬА227, БРЭ115. Дана характеристика аллелофонда скота черно-пестрой породы по вышеназванным маркерам. Изучено влияние различных факторов: доли кровности по голштинам, линейной принадлежности (по отцу) и типа подбора (внутрилинейный, кросс линий) на изменение аллелофонда скота черно-пестрой породы. Изучена связь отдельных аллелей микросателлитных локусов с уровнем молочной продуктивности коров черно-пестрой породы.

Практическая значимость. Показана информативность разработанной мультилокусной системы анализа МС в характеристике аллелофонда крупного рогатого скота черно-пестрой породы ГУП «Кленово-Чегодаево». Выполнена оценка структуры стада коров черно-пестрой породы по МС. Показано, что степень консолидации линий, оцененная на основании их генотипа по МС, достоверно коррелирует с уровнем показателей молочной продуктивности коров. Выявлены аллели МС, которые могут быть использованы в качестве маркеров доли кровности по голштинской породе черно-пестрого скота. Установлены аллели МС, коррелирующие с показателями молочной продуктивности коров черно-пестрой породы - удоем за 305 дней лактации, процентным содержанием жира в молоке и выходом молочного жира за 305 дней лактации.

Апробация работы. Результаты исследований были представлены:

• на международной конференции «Вычислительная филогенетика и геносистематика, ВФГС 2007», посвященной 50-летию становления отечественной филогенетики и геносистематики, МГУ, Москва, 2007 г.;

• на 7-й международной научной конференции «Современные достижения и проблемы биотехнологии сельскохозяйственных животных: роль нанотехнологий в решении задач современной биотехнологии», БиоТехЖ-2008, ГНУ ВНИИЖ, п. Дубровицы, 2008 г.

• на конференции центра биотехнологии и молекулярной диагностики ГНУ ВНИИЖа, Дубровицы, 2009 г.

Основные положения, выносимые на защиту.

1. Мультилокусная система генотипирования крупного рогатого скота по семи микросателлитам.

2. Аллельные профили крупного рогатого скота черно-пестрой породы по микросателлитам.

3. Изменение аллелофонда и некоторых популяционно-генетических параметров по микросателлитам в зависимости от доли кровности голштин-ского скота, линейной принадлежности коров и типа подбора.

4. Корреляционные зависимости между аллелями микросателлитов и уровнем молочной продуктивности коров черно-пестрой породы.

Публикации результатов исследований.

По материалам диссертации опубликовано 3 научные работы, в т.ч. статья в журнале, рекомендованном ВАК РФ («Зоотехния», 2009 г., № 1, с. 2 -4).

Структура и объем работы.

Диссертация написана на 129 страницах, состоит из следующих разделов: введение, обзор литературы, материалы и методы исследований, результаты и обсуждение, выводы, практические предложения, список литературы. Работа содержит 48 таблиц и 12 рисунков. Список литературы включает 216 источников, в том числе 160 на иностранном языке.

Заключение диссертации по теме «Генетика», Молофеева, Людмила Анатольевна

4. ВЫВОДЫ.

1. Разработана и предложена мультилокуеная система генетического анализа крупного рогатого скота по МС, включающая 7 маркеров: ВМ1818, ВМ1824, ВМ2113, ЕТН10, ЕТН225, ТОЕА227, 8Р8115. Оценка системы, выполненная на голштинизированной популяции коров черно-пестрой породы (п=204), показала ее высокую информативность: среднее число аллелей на локус составило 9,00; среднее число информативных и эффективных аллелей, соответственно, - 5,57 и 4,30 аллелей на локус. Установлено, что вероятность совпадения генотипов коров по всем изучаемым локусам при случайном спаривании составляет 4,1 * 10"8, у сибсов - 1,6 * 10'3, что позволяет использовать разработанную систему для генетической паспортизации скота.

2. Изучен аллельный профиль популяции голштинизированного черно-пестрого скота ГУП «Кленово-Чегодаево» Московской области (средняя кровность по голштинам 76,2%). Сравнение полученных аллель-ных профилей с другими группами голштинского скота различного происхождения показало, что 79,4% всей изменчивости обусловлено внутрипопуляционным разнообразием и 20,6% приходится на межпо-пуляционные различия.

3. Изучено влияние доли кровности по голштинской породе па изменение популяционно-генетических параметров, рассчитанных по МС. Установлено повышение частоты встречаемости аллеля 264 локуса ВМ1818 (г=+0,22, Р>0,998) и снижение частот встречаемости аллелей 266 локуса ВМ1818 (г=-0,23, Р>0,998) и 133 локуса ВМ2113 (г=-0,25, Р>0,999) с увеличением доли кровности по голштинам, что позволяет рассматривать данные аллели в качестве маркеров доли кровности голштинского скота в стаде. Установлено высокое генетическое сходство аллельных профилей изучаемых групп коров с различной долей кровности по голштинам (12-50, 51-75 и 76-100%): Л/ =0,986.

4. Установлено влияние линейной принадлежности коров (по отцу) на изменение частот встречаемости некоторых аллелей МС. Показано, что принадлежность коров к собственной генеалогической линии на основании анализа их генотипа по МС (консолидированность) варьировала от 0,0 в линии Франса до 45,5% в линии Монтвик Чифтейна. Показано, что снижение степени генетической консолидированности линий связано с преимущественным использованием при получении коров кросса линий: 1-+0,76 (Р>0,95). Установлены отрицательные связи между степенью генетической консолидированности линий, оцененной по МС, и изменчивостью показателей молочной продуктивности коров по первой лактации: г=-0,78 (Р>0,90) по удою, г=-0,88 (Р>0,98) по % жира, г=-0,73 (Р>0,90) по количеству молочного жира, г—0,95 (Р>0,995) по % белка и 1--0,97 (Р>0,999) по количеству молочного белка.

5. Изучено влияние типа подбора пар на некоторые популяционно-генетические показатели, рассчитанные по МС. Установлен более низкий уровень гетерозиготности и больший дефицит гетерозигот в группах коров, полученных от внутрилинейных подборов по сравнению с кроссом линий: соответственно, 0,672 и 0,719; 9,4 и 2,0%.

6. Выявлены достоверные корреляции между уровнем удоя и наличием в генотипе коров аллелей 219 (г=+0,20, Р>0,995) и 221 (г=-0,17, Р>0,98) локуса ЕТН10, аллеля 148 локуса ЕТН225 (г=-0,15, Р>0,95)\ между содержанием жира в молоке и наличием аллелей 262 (1—+0,14, Р>0,95 -по 1-й лактации, г=+0,36, Р>0,95 - по 2-й лактации и г=+0,26, Р>0,995 -по 3-й лактации) и 266 (г=-0,10, Р>0,80 - по 1-й лактации, г=-0,28, Р>0,98 - по 2-й лактации и 1--0,37, Р>0,995 - по 3-й лактации) локуса ВМ1818, аллеля 135 локуса ВМ2113 (г=-0,19, Р>0,995\ аллеля 148 локуса ЕТН225 (г=-0,15, Р>0,95 - по 1-й лактации, г=-0,21, Р>0,90 - по 2-й лактации и I—-0,29, Р>0,95 - по 3-й лактации). Показано, что коровы, имеющие желательный комплексный генотип по локусам МС, связанным с уровнем удоя и содержанием жира в молоке, характеризуются более высокими продуктивными показателями, однако корреляционные зависимости носят менее выраженный характер: по уровню удоя -г=+0,18 (Р>0,99) по первой лактации, г=+0,12 по второй лактации и г=+0,24 (Р>0,95) по третьей лактации; по содержанию жира в молоке -r=+0,ll (Р>0,90), r=+0,16 и г=+0,35 (Р>0,99), соответственно; по количеству молочного жира - г=+0,21 (Р> 0,995), г=+0,19 и г=+0,40 (Р>0,998), соответственно; по количеству молочного белка - г=+0,14 (.Р>0,95'), г=+0,12 и г=+0,28 (Р>0,95), соответственно.

ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ.

1. Лабораториям молекулярно-генетической экспертизы рекомендуем использовать разработанную мультилокусную систему генетического анализа крупного рогатого скота по МС для характеристики генофонда племенного скота России.

2. Племобъединениям страны, руководителям хозяйств рекомендуем при составлении подборов в высокопродуктивных стадах использовать в качестве маркеров высоких удоев аллели 219 («желательный») и 221 («нежелательный») локуса ЕТН10, а в качестве маркеров высокой жирномолочности «желательный» аллель 262» локуса ВМ1818 и «нежелательные» аллели 135 локуса ВМ2113 и 148 локуса ЕТН225.

110

Список литературы диссертационного исследования кандидат биологических наук Молофеева, Людмила Анатольевна, 2009 год

1. Бакай A.B., И.И. Кочиш, Г.Г. Скриппиченко. Генетика. М.: КолосС, 2006. 448 с.

2. Вартапетян А.Б. ПЦР // Молекулярная биология. 1991. Том 25. №4. с. 926-936.

3. Вейр Б. Анализ генетических данных. М.: Мир, 1995. 400 с. Пер. с англ. Д.В. Зайкина, к.б.н. А.И. Пудовкина, А.Н. Татаренкова.

4. Генетика и биотехнология в селекции животных / П.М. Кленовиц-кий, Н.С. Марзанов, В.А. Багиров и др. М.: ФГУП «Эксплор», 2004. 285 с.

5. Гладырь Е.А. Анализ овец с использованием ДНК-микросателлитов // Методы исследований в биотехнологии сельскохозяйственных животных: школа-практикум. Дубровицы. 2003. Вып 2. с. 12-21.

6. Гладырь Е.А. Микросателлитный анализ коз зааненской породы // Современные достижения и проблемы биотехнологии сельскохозяйственных животных: международная научная конференция, 18-19 нояб. 2003. / ВИЖ. Дубровицы: РУЦ ЭБТЖ. 2003. 156 с.

7. Гладырь Е.А., Зиновьева H.A., Брем Г. Характеристика генофонда и выявление генеалогических связей между породами овец России с использованием ДНК-микросателлитов // Доклады Российской академии сельскохозяйственных наук. 2004. №2. с. 26-29.

8. Глазко В.И., Дунин И.М., Глазко Г.В. и др. Введение в ДНК-технологии. М.: ФГНУ «Росинформагротех», 2001. 436 с.

9. Глазко В.И., Глазко Г.В. ДНК-технологии в популяционно-генетических исследованиях сельскохозяйственных видов // Актуальныепроблемы биологии в животноводстве. Боровск. 2000. с. 387-389. (Сб. третьей международной конференции).

10. Глазко В.И. ДНК-технологии животных. К.: Нора -Принт, 1997.173с.

11. Жебровский Л.С. Селекция животных. СПб.: Издательство «Лань», 2002. 256 с.

12. Животовский Л.А. Микросателлитная изменчивость в популяциях человека и методы ее изучения // Вестник ВОГиС. 2006. Том 10. №1. 96 с.

13. Животовский Л.А. Популяционная биометрия. М.: Наука, 1991.271 с.

14. Зайцева М.А. Использование микросателлитных маркеров ДНК в контроле происхождения лошадей // Режим доступа (http://www. ruhorses. ru / genetic /articles, html 78 k ).

15. Зиновьева H.A., Попов А.П., Эрнст Л.К. и др. Методические рекомендации по использованию метода полимеразной цепной реакции в животноводстве. Дубровицы: ВИЖ, 1998. 47 с.

16. Зиновьева H.A., Гладырь Е. А., Эрнст Л.К. и др. Введение в молекулярную генную диагностику сельскохозяйственных животных. Дубровицы, ВИЖ, 2002. 112 с.

17. Зиновьева H.A., Эрист Л.К. Проблемы биотехнологии и селекции сельскохозяйственных животных. Дубровицы, ВИЖ, 2004. 316 с.

18. Зиновьева H.A. Методы исследований в биотехнологии сельскохозяйственных животных // Методы исследований в биотехнологии сельскохозяйственных животных: школа-практикум. Дубровицы. 2003, Вып 2. с. 53-59.

19. Зиновьева H.A. Введение в ДНК-диагностику // Методы исследований в биотехнологии сельскохозяйственных животных: школа-практикум. Дубровицы. 2005. Вып 4. С.38-41.

20. Зиновьева H.A. и др. Генетическая характеристика свиней пород крупная белая и йоркшир различного происхождения с использованием ДНК-маркеров //Доклады РАСХН. 2008. № 2. с. 33-36.

21. Калашникова Л.А., Дупин И.М., Глазко В.И. Селекция XXI века: использование ДНК-технологий. Московская обл, Лесные Поляны, ВНИИп-лем, 2000. 31 с.

22. Калашникова Л.А., Дунин И.М., Глазко В.И. и др. ДНК технологии оценки сельскохозяйственных животных. ВНИИплем, 1999. 148 с.

23. Кленовицкий П.М., Марзанов Н.С., Багиров В.А. и др. Генетика и биотехнология в селекции животных. М.: ФГУП «Эксплор», 2004. 285 с.

24. Кленовицкий П.М., Багиров В.А., Иванов В. А. и др. Современные проблемы зоотехнии. Дубровицы, 2005. 116 с.

25. Коновалова E.H., Сельцов В.И., Зиновьева H.A. Характеристика симментальского скота различного происхождения с использованием ДНК-микросателлитов // Зоотехния. № 4. 2006. с. 6-9.

26. Красота В.Ф., Лобанов В.Т., Джапаридзе Т.Г. Разведение сельскохозяйственных животных. М.: Агропромиздат, 1990. 463 с.

27. Марзанов Н.С., Насибов М.Г., Озеров М.Ю. и др. Аллелофонд у различных пород овец по микросателлитам. Дубровицы, 2004. 120 с.

28. Марзанов Н.С., Озеров М.Ю., Насибов М.Г. и др. Микросателлиты и их использование для оценки генетического разнообразия животных // Сельскохозяйственная биология. 2004. №2. с. 104-111 с.

29. Марзанов Н.С., Саморуков Ю.В., Ескин Г.В. и др. Сохранение биоразнообразия. Генетические маркеры и селекция животных // Сельскохозяйственная биология. 2006. №4. с. 3-19 с.

30. Марзанов Н.С., Саморуков Ю.В., Ескин Г.В. Генетические исследования животных в России и за рубежом // Мат. Междунар. науч.-практич. семинара. Быково. 2005. с. 6-10.

31. Машуров A.M. Генетические маркеры в селекции животных. М.: Наука, 1980. 315 с.

32. Меркурьева, Е. К. Биометрия в селекции и генетике животных. М.: Колос, 1970. 424 с.

33. Молочное скотоводство России (в рамках национального проекта «Развитие агропромышленного комплекса России»). / Н. И. Стрекозов и др. М., 2006. 604 с.

34. Никитина Т.В., Назаренко С.А. Микросателлитные последовательности ДНК: мутационный процесс и эволюция // Генетика. 2004. т. 40. с. 1301-1318.

35. Новиков A.A., Романепко Н.И. Генетическая экспертиза племенного материала // Зоотехния. 2001. № 7. с. 14-18.

36. Новиков A.A., Романенко НИ., Ананин В.Н. и др. Использование генетических маркеров для контроля направленности селекционных процессов. Киев: Нора принт, 1999. с. 109. (Тезисы докладов третьей международной конференции).

37. Озеров М.Ю., Марзанов Н.С., Насибов М.Г. и др. Генетический профиль у различных пород овец по микросателлитам // Вестник РАСХН. 2003. №5. с. 72-75.

38. Озеров М.Ю., Тапио М., Марзанов Н.С. и др. Микросателлитный анализ эволюционно-генетических связей у различных пород овец // Доклады Российской академии сельскохозяйственных наук. 2006. №2. с. 30-33.

39. Петухов В.Л., Эрнст Л.К., Гудилин И.И. и др. Генетические основы селекции животных. М.:Агропромиздат, 1989. 448 с.

40. Рузыбакиев P.M., Юлдашева Н.Ю // Журнал теоретической и клинической медицины. 2000. № 1.

41. Савенко H.A. Племенная работа в животноводстве Московской области. М.: МСХиП МО, 2006. 84 с.

42. Сердюк Г.Н. Иммуногенетика свиней: теория и практика. Спб, Лекс-Стар, 2002. 390 с.

43. Сулимова Г.Е., Зинченко В.В. Анализ полиморфизма ДНК с использованием метода полимеразной цепной реакции // Мет. пос. Москва. 1999. с.43.

44. Храброва JI.A. Маркер-вспомогательная селекция в коневодстве // ВНИИ коневодства. 2002. с. 1-4. Режим доступа: (http://www.ruhorses.ru).

45. Шибата Д.К. ПЦР и молекулярно-генетический анализ био-птатов. М.: Мир, 1999. 530 с.

46. Эйдригевич Е.В., Раевская В.В Интерьер сельскохозяйственных животных. М., Колос, 1978. 88 с.

47. Эрнст JI.K., Брем Г., Зиновьева Н.А. Генно-инженерные технологии новый путь развития животноводства // Зоотехния. 1994. № 5. с. 2-4.

48. Alford R.B., Hammond Н.А. Rapid and efficient resolution of parentage by amplification of short tandem repeats // Am. J. Hum Genet, 1994. Vol. 55. P. 190- 195.

49. Amos, W., S. J. Sawcer, R. W. Feakes microsatellites show mutational bias and heterozygote instability//Nat. Genet. 1996. Vol. 13. P. 390-391.

50. Arranz J.J., Bayon Y., San Primitivo F. // Anim. Genet. 1998. Vol. 29(6). P. 435-440.

51. Ashley C.T., Warren S.T. Trinucleotide repeat expansion and human disease // Annu. Rev. Genet, expansion. 1995. Vol. 29. P. 703 728.

52. Bailey E., Reid R.C., Skow L.C. Linkage of the gene for equine combined immunodeficiency disease to microsatellite markers HTG8 and HTG4; Syn-teny and FISH mapping to ECA9 // Animal Genetics. 1997. Vol. 28. P. 268-273

53. Ball A.O. and Chapman R.W. Population genetic analysis of white shrimp, Litopenaeus setiferus, using microsatellite genetic markers // Mol. Ecol. 2003. Vol. 12. P. 2319-2330.

54. Balloux F. The estimation of population of population differentiation with microsatellite markers // J. Molec. Ecol., 2002. Vol. 11. P. 155-165.

55. Balloux F. and Lugon-Moulin N. The estimation of population differentiation with microsatellite markers//Mol. Ecol. 2002. Vol. 11. P. 155-165.

56. Barendse W., Armitage S. M., Kossarek L. A genetic linkage map of the bovine genome // Nature Genetics. 1994. Vol. 6. P. 227-234.

57. Barton N.H. Genetic hitchhiking. Philos. Trans. R. Soc. Lond. B // Biol. Sci. 2000. Vol. 355. P. 1553-1562.

58. Baumung R., Simianer H., Hoffmann I. Genetic diversity studies in farm animals a survey//J. Anim. Breed. Genet. 2004. Vol. 121. P. 361-373.

59. Beamount M. and Bruford M. Microsatellites in conservation genetics.1.: Microsatellites Application and evolution. Oxford: Oxford University Press.,i1999. P. 165-180.

60. Beja-Perera A., Alexandrino P., Bessa I. Genetics characterization of south-western Europian bovine breeds: a historical and biogeographical reassessment with a set 16 microsatellites // J. Hered. 2003. Vol. 94. P. 243-250.

61. Beridse T. Satellite DNA. Berlin: Springer Verlag., Heidelberg, 1986.302 p.

62. Bishop M.D., Kappes S.M., Keele J.W. A genetic linkage map for cattle//Genetics. 1994. Vol. 136. P. 619-639.

63. Bostock C. Phil. Trans. // Roy. Soc. Lond .B. 1986. Vol. 312. P. 261273.

64. Brookfield J.F.Y. A simple new method for estimating null allele frequency from heterozygote deficiency // Mol. Ecol. 1996. Vol. 5. P. 453-455.

65. Brown, S.M. and Kresovich S. Molecular characterization for plantgenetic resources conservation in Genome Mapping in Plants. RG Landes Company, Georgetown, TX, 1996. P. 85-93.

66. Brownstein, M.J., Carptren, J.D. and Smith, J.R. Modulation of non-templated nucleotide addition by Taq DNA-Polymerase: Primer modifications that facilitate genotyping// Biotechniques. 1996. Vol. 20. P. 1004-1010.

67. Bruford M.W., Waine R.K. Microsatellites and their application to population genetic studies I I Curr. Opin. Develop. 1993. Vol. 3. P. 939-943

68. Buchanan F.C., Adams L.J., Littlejohn R.P. // Genomics. 1994. Vol. 22(2). P. 397-403.

69. Buitkamp J., Filmether P., Stear M. J. Class I and class II major histocompatibility complex alleles are associated with faecal egg counts following natural, predominantly Ostertagia circumcincta infection // Parasitol. Res. 1996. Vol. 82. P. 693-696.

70. Callen D.F., Thompson A.D., Shen Y. Incidence and origin of "null" alleles in the (AC)n microsatellite markers //Am. J. Hum. Genet. 1993. Vol. 52. P. 922-927.

71. Canon J., Checa M.L., Carleos C. // Anim. Genet. 2000. Vol. 31(1). 3948 p.

72. Chakraborty R., De Andrade M., Daiger S.P. Apparent heterozygote deficiencies observed in DNA typing data and their implications in forensic applications // Ann. Hum. Genet. 1992. Vol. 56 (Pt 1). P. 45-57.

73. Coppieters W., Van de Weghe A. Characterization of porcine polymorphic loci // J. Animal Genetics. 1993. Vol. 24. P. 163-170.

74. Cornuet J.M., Piry S., Luikart G. New methods employing multilocus genotypes to select or exclude populations as origins of individuals // Genetics.1999. Vol. 153(4). P. 1989-2000.

75. Crawford A.M., Cuthbertson R.P. Mutation in sheep microsatellites // Genom Research. 1996. Vol. 6. P. 876-879.

76. Cawford A.M., Dodds K.G. Ede An autosomal genetic linkage map of the sheep genome // Genetics. 1995. Vol. 140. P. 703-724.

77. Crooijmans R.P.M.A., Van der Poel J.J., Groenen M.A.M. Functional genes mapped on the chicken genome // Anim. Genet. 1995. Vol. 26. P. 73-78.

78. DeWoody, J. A., and J. C. Avise. Microsatellite variation in marine, freshwater and anadromous fishes compared with other animals // J. Fish Biol.2000. Vol. 56. P. 461-473.

79. Dib C., Faure S., Fisanes C. //Nature. 1996. Vol. 380. P. 152-154.

80. Diehl S.R., Ziegle J., Buck G.A. // Amer. J. Hum. Genet. 1990. Vol. 47. P. A177.

81. Diez-Tascon C., Dodds K.G., Krawford A.M. // Anim. Genet. 2000. Vol. 33(3). P. 229-230.

82. Dimsoski P., Hines H.C., Irvin K.M. Microsatellite variation in yorkshire and large white pigs // J. Anim Sci. 1996. P. 343-345.

83. Di Rienzo A., Peterson A.C., Garza J.C. Mutational processes of simple-sequence repeat loci in human populations // Proc. Am. Soc. Anim. Sci. 1994. Vol. 91. P. 3266-3179.

84. Dodgson J.B., Cheng H.H., Okimoto R. DNA Marker Technology: A Revolution in Animal Genetics // Poultry Science. 1997. Vol. 76, no. 8. P. 11081114.

85. Dover G.A. Molecular drive a cohesive mode of species evolution //Nature. 1982. Vol. 299. P. 111-117.

86. Ede A.J. and Crawford A.M. Mutations in the sequence flanking the microsatellite at the locus prevent the amplification of some alleles // Anim. Genet. 1995. Vol. 26. P. 43-44.

87. Edwards A., Civitello A., Hammond H.A. DNA typing and genetic mapping with trimeric and tetrameric tandem repeats // Am. J. Hum. Genet. 1991. Vol. 49. P. 746-756.

88. Edwards C.J., Dolf G., Loftus R.T. Relationships between the endangered Pusstertaler-Sprinzen and three related European cattle breeds as analysed with 20 microsatellite loci // Animal Genetics. 2000. Vol. 31. P. 329-332.

89. Estoup A. and Cornuet J.M. Microsatellite evolution: inferences from population data. In: Microsatellites Evolution and application // Eds.: D. B. Goldstein and C. Schlotterer. Oxford: Oxford University Press, 1999. 200 p.

90. Fan B. Genetic variation analysis withing and among Chinese indigenous swine populations using microsatellite // J. Animal Genetics. 2002. Vol. 33. P. 422-427.

91. FAO Swines. In: Secondary Guidelines for Development of National Farm Animal Genetics Resources Management Plants. Measurement of Domestic Animal Diversity (MoDAD): Recommended Microsatellite Markers. Rome: FAO, 1998. pp. 19-24.

92. Fischbein M. Isoagglutination in main and lower animals // J. Infect. Diseases. 1913. Vol. 12. P. 133-139.

93. Ganal M., Hemleben V. // Theor. Appl. Genet. 1986. Vol. 73. P. 129135.

94. Georges M., Dietz A.B., Mishra A. Microsatellite mapping of the gene causing weaver disease in cattle will allow the study of an associated quantitative trait locus// Proc. Natl. Acad. Sci. 1993a. Vol. 90. P. 1058-1062.

95. Gerbens F., Harders F.L., Groenen M. A. A dimorphic microsatellite in the porcine H-FABP gene at chromosome 6 // Anim Genet. 1998. Vol. 29(5). P. 408- 409.

96. Ginot F., Bordelais I., Nguyen S. Correction of some genotyping errors in automated flourescent microsatellite analysis by enzymatic removal of one base overhang // Nucleic Acids Res. 1996. Vol. 24. P. 540-541.

97. Glowatski Mullís M.L., Gaillard C., Wigger G. Microsatellite based parentage control in cattle // J. Animal Genetics. 1995. Vol. 26. P. 7-12.

98. Goldstein D., Linares A., Cavalli-Sforza L. // Genetics. 1995. Vol. 139. P. 463-471.

99. Goldstein D.B. and Pollock D.D. Launching Microsatellites: A review of mutation processes and methods of phylogenetic inference // J. Hered. 1997. Vol. 88. P. 335-342.

100. Goldstein D.B., Schlotterer C. Microsatellites. Evolution and Applications. Oxford, 1999. 321 p.

101. Grimaldi M.C., Claiton J., Pontarotti P. // Hum. Imunol. 1995. Vol. 51. P. 89-94.

102. Guo Li Zhou, Hai Guo Jin, Qi Zhu. Genetics diversity analisis of five cattle breeds native to China using microsatellites // Genetics. 2005. Vol. 84. no.l. P. 77-80.

103. Hammond E.L., Lymbery A.J., Martin G.B. Microsatellite analysis of genetic diversity in wild and farmed Emus (Dromaius novaehollandiae) // J. Hered. 2002. Vol. 93. P. 376-380.

104. Hancock J.M. Microsatellites and other simple sequences: genomic context and mutational mechanisms. In: Microsatellites Evolution and application // Ed. D. B. Goldstein und C. Schlotterer. Oxford: Oxford University Press, 1999. P. 1-6.

105. Henderson S.T., Peter T.D. Instability of simple sequence DNA in Sac-charomyces cerevisia // Molecular and Cell Biology. 1992. Vol. 12. P. 2749-2757.

106. Heme C., Ghosh S., Todd J. // Trends Genet. 1992. Vol. 8. P. 288-294.

107. Heyen, D.W., Beever, J.E., Da, Y. Exclusion probabilities of 22 bovine microsatellite markers in flourescent multiplexes for semi-automated parentage testing // Anim. Genet. 1997. Vol. 28. P. 21-27.

108. Heyer E., Puymirat J., Dietjes P. Estimating Y chromosome specific microsatellite mutation frequencies using deep rooting pedigrees // Hum. Mol. Genet. 1997. Vol.6. P. 799-803.

109. Hibert P., Lindpaintner K., Beckmann J.S. // Nature. 1991. Vol. 353(6344). P. 521-529.

110. Hohenhorst J. Use microsatellites for parentage control in pigs // J. Animal Genetics. 1994. Vol. 25 (2). P. 33.

111. Holm L.E., Loeschcke V. and Bendixen C. Elucidation of the molecular basis of a null allele in a rainbow trout microsatellite // Mar. Biotechnol. 2001. Vol. 3. P. 555-560.

112. Horng Y.-M. and Huang M.-C. Male-Specific Band in Random Amplified Microsatellite Polymorphism Fingerprints of Holstein Cattle // Proc. Natl. Sei. Counc. ROC (B). 2000. Vol. 24. no.l. P. 41-46.

113. Jeffrey A.J., Wilson V, Thein S.L. Individual specific fingerprints of human DNA//Nature. 1985. Vol. 316. P. 76-79.

114. Jeffreys A.J., Hillel J., Hartley N. Hyppervariable DNA and genetic fingerprints//Anim. Genet. 1987. Vol. 18. Suppl.l. P. 141.

115. Jeefreys, A.J., Tamaki, K., MaCLeod, A. Complex gene conversion events in germline mutation at human minisatellites // Nat. Genet. 1994. Vol. 6. P. 136-145.

116. Jones A.G., Stockwell C.A., Walker D. The molecular basis of a microsatellite null allele from the white sands pupfish //J. Hered. 1998. Vol. 89. P. 339342.

117. Jorde L.B., Bamshad M.J., Watkins W.S. // Am. J. Hum. Genet. 1995. Vol. 57. P. 523-538.

118. Kacirek S.L., Irvin K.M., Dimsoski P.I. Variation at microsatellite loci in the large white, Yorkshire and Hampshire breeds of swine // J. Research"and reviews. 1998. P. 41-43.

119. Kaempffer A. Über ein zweites Isoagglutinogen Agglutininpaar B in Schweineblut//Z. Rassenphysiol. 1932. Bd. 5. P. 53-58.

120. Kappes S.M., Keele J.W., Stone R.T. A second-generation linkage map of the bovine genome // Genome Research. 1997. Vol. 7. P. 235 249.

121. Kim T.H., Kim K.S., Choi B.H. Genetic structure of pig breeds from Korea and China using microsatellite loci analisis // J. Anim Sei. 2005. Vol. 83(10). P. 2255-2263.

122. Kimura M. and Crow J.F. The number of alleles that can be maintained in finite populations // Genetics. 1964. Vol. 49. P. 725-738.

123. Kimura M. and Otha T. Stepwise mutation model and distribution of allelic frequencies in a finite population // Proc. Natl. Acad. Sei. 1978. Vol. 75. P. 2868-2872.

124. Koorey D.J., Bishop G.A. and McCaughan G.W. Allele non-amplification: a source of confusion in linkage studies employing microsatellite polymorphisms//Hum. Mol. Genet. 1993. Vol. 2. P. 289-291.

125. Kumar P., Freeman A.R., Loftus R.T. Admixture analysis of South Asian cattle // Heredity. 2003. P. 243-250.

126. Lehmann T., Hawley W.A. and Collins F.H. An evaluation of evolutionary constraints on microsatellite loci using null alleles // Genetics. 1996. Vol. 144. P. 1155-1163.

127. Lenstra J. A., Van Boxtel J. A., Swaagstra K. A. Short interspersed nuclear element (SINE) sequences of the Bovidae // Anim. Genet. 1993. Vol. 24. P. 33-39.

128. Levinson G, Gutman G. A. // Mol. Biol. Evol. 1987. Vol. 4(3). P. 203221.

129. Levinson G., Gutman G. A. High frequencies of short frameshifts injpoly-CA/TG tandem repeats borne by bacteriophage M13 in Eschericha coli K12 // Nucleic Acid Research. 1987. Vol. 15. P. 5323-5328.

130. Li K., Fan B. , Zhao S. Analisis of diversity and genetic relationships between four Chinese indigenous pig breeds and one Australian commercial pig breed // J. Animal Genetics. 2000. Vol. 31. P. 322-325.

131. Li S.-J., Yang S.-H., Zhao S.-H. Genetic diversity analyses of 10 indigenous Chinese pig populations based on 20 microsatellites // J. Anim Genet. 2002. Vol. 83(10). P. 2255-2263.

132. Litt M., Luty J.A. // Am. J Hum. Genet. 1989. Vol. 44(3). P. 397-401.

133. Luca L., Cavali Sforza. The DNA revolution in population genetics // Trends Genet. 1998. Vol. 14. P. 60-65.

134. Luikart G. Statistical analisys of microsatellite DNA data // Trends in Ecology and Evolution. 1999. Vol. 14. P. 253-256.145. . Ma R. Z., Beever J. E., Da Y. // J. Hered. 1996. Vol. 87. P. 261-267.

135. MacHugh D.E., Loftus R.T., Cunningham P. // Anim. Genet. 1998. Vol. 29(5). P. 333-340.

136. Maddox J.F., Davis K.P., Crawford A.M. An enhanced linkage map of the sheep genome comprising more than 1000 Loci // Genome Res. 2001. Vol. 11. P. 1275-1289.

137. Martinez A.M., Delgado J.V., Rodero A. Genetic structure of the Iberian pig breed using microsatellites // J. Animal Genetics. 2000. Vol. 31. P. 295301.

138. Maudet C., Beja-Pereira A., Zeyl E. A standart set of polymorphic microsatellites for threatened mountain ungulates (Caprini, Artiodactila) // Molecular Ecology Notes. 2004. Vol. 4. P. 49-55.

139. Maynard Smith J. and Haigh J. The hitchhiking effect of a favourable gene//Genet. Res. 1974. Vol. 23. P. 23-35.

140. Metta M., Kanginakudru S., Gudiseva N. // BMC Genetics. 2004. Vol. 5. P. 16.

141. Moore S.S., Byrne K. Dinucleotide polymorphism at the bovine brain ribonuclease locus// Animal Genetics. 1992. Vol. 23. P. 574.

142. Moran C. Microsatellite repeats in pigs and chicken genomes // J. Hered. 1993. Vol. 84. P. 274-280.

143. Nechtelberger D., Kaltwasser C., Stur I. DNA microsatellite analisis for parentage control in Austrian pigs // Animal Biotechnology. 2000. Vol. 12(2). P. 141-144.

144. Nei M. Estimation of average heterozygosity and genetic distance from a small number of individuals // Genetics. 1978. Vol. 89. P. 583-590.

145. Nei, M., Koehn R. Genetic polymorphism and the role of mutation in evolution // Evolution Genes and Proteins. 1983. P. 165- 90.

146. Nickerson D.A., Taylor S.L., Weiss K.M. DNA sequence diversity in a 9.7-kb region of the human lipoprotein lipase gene // Nat. Genet. 1998. Vol. 19. P. 233-240.

147. Nowak Z., Charon K.M. Identification of fecundity gene (FecB) carriers using microsatellite markers and its effect on sheep weight // J. Appl. Genet. 2001. Vol. 42. P. 49-57.

148. Pazrec A. A., Flickinger G.H, Fontanezi L. Livestock variation of linked microsatellite markers in diverse swine breeds // J. Anim. Biotechnology. 1998. Vol. 9. P. 55-66.

149. Pemberton J.M., Slate J., Bancroft D.R. Nonamplifying alleles at microsatellite loci: a caution for parentage and population studies // Mol. Ecol. 1995. Vol. 4. P. 249-252.

150. Perez E., Martinez A.M., Vega J. L. Preliminary genetic characterization of Cuban Creole PIG using microsatellites // J. Arch. Zootec. 2004. Vol. 53. P. 349-352.i

151. Paetkau D., Slade R., Burdens M. Genetic assignment methods for the direct, real time estimation of migration rate: a simulation-base exploration of accuracy and power// Molecular Ecology. 2004. Vol. 13. P. 55 65.

152. Primmer C.R., Moller A.P. and Ellegren H. Resolving genetic relationships with microsatellite markers: a parentage testing system for the swallow Hi-rundo rustica // Mol. Ecol. 1996. Vol. 4. P. 493-498.

153. Pritchard J.K. Inference of population structure usingmultilocus genotype data // Genetics. 2000. Vol. 155. P. 945 959.

154. Polli M., Hefford C.G., Faddy M.J. Efficacy and reliability of paternity testing in cattle using DNA microsatellites // Animal Genetics. 1998. Vol. 29. P. 910.

155. Putnova L., Knoli A., Dvorak V. A novel porcine microsatellite panel for the identification of individuals and parentage control in the Czech Republic // Czech J. Anim Sci. Suppl. 48. 2003. Vol. 8. P. 307-314.

156. Rasad S.D. Abstammungs und Identitatskontrolle beim Schwein met-tels Microsatellitenanalyse. Gottingen: Cuviller, 2001. XIV. P. 125.

157. Richards R.I., Sutherland G.R. // Trends Biochem Sci. Nat Genet. 1994. Vol. 6(2). P. 114-116.

158. Richardson T., Cato S., Ramser J. Hybridization of microsatellites to RAPD: a new sourse of polimorphic marcers // Nucleic Acids Res. 1995. Vol. 23. P. 3798-3799.

159. Robic A., Dalens M., Wolossyn N. Isolation of 28 new porcine microsatellites revealing polymorphism // J. Mamtn, Genome. 1994. Vol. 5. P. 580-583.

160. Robison O.W. The influince of maternal effects on the efficiency of selection//Science. 1981. Vol. 8. P. 121-137

161. Rohrer G.A., Alexander L.J., Keel J.W. A mikrosatellite linkage map of the porcine genome // Genetics. 1994. Vol. 136. P. 231-245.

162. Rohrer G. A., Alexander L. J„ Hu Z. // Genome Res. 1996. Vol. 6. P. 371-391.

163. Rubinsztein D., Leggo J., Amos W. // Genomics. 1995. Vol. 10. P. 3373431.

164. Saiki R.K., Scharf S.J., Faloona F. Enzymatic amplification of B-globulin genomic sequences and restriction site analisis for diagnosis of sickle cell anemia // Science. 1985. Vol.230. P. 1350-1354.

165. Saison R. Report of a blood group system in swine // J. Immunol. 1958. Vol. 80. no.6. P. 463-467.

166. Saitbekova N., Gaillard C., Obexer-Ruff G. Genetic diversity in swiss goat breeds on microsatellite analisis // Anim. Genet. 1999. Vol. 30. P. 36-41.

167. Schlotter C. Microsatellites. Molecular Genetic Analysis of Population. A. Practical Approach. Second Editior, 1998. P. 238-261.

168. Schlotter C. Evolutionary dynamics of microsatellite DNA // Chromo-soma. 2000. Vol. 109. P. 365-371.

169. Schlotter C. Opinion: The evolution of molecular markers just a matter of fashion // Nature Rev. Genet. 2004. Vol. 5. P. 63-69.

170. Schlotter C. and Tautz D. Slippage synthesis of simple sequence DNA // Nucleic Acids Res. 1992. Vol. 20. P. 211-215

171. Schenkel F.S., Miller S. P., Jiang Z. Association of a single nucleotide polymorphism in the calpastatin gene with carcass and meat quality traits of beef cattle // Journal of Animal Science. 2006. Vol. 84. P. 291

172. Schmid M,, Saitbekova N., Gaillard C. Genetic diversity in Swiss cattle breeds //J. Anim. Breed. Genet. 1999. Vol. 116. P. 1-8.

173. Slatkin M. Hitchhiking and associative overdominance at a microsatellite locus // Mol. Biol. Ecol. 1995 b. Vol. 12. P. 473-480.

174. Smith G.P. Evolution of repeated DNA sequences by unequal crossover // Science 1976. Vol. 191. P. 528-535.

175. Smith C.A.B. A note on genetic distance // Ann. Human Genet. 1977. Vol. 21. P. 254-276.

176. Smith C., Simpson S.P. The use of genetic plimorphismsin liveshtock improvement // Journal of Animal Breeding Genetic. 1986. Vol. 103. P. 205.

177. Smith C.L., Warburton P.E., Cantor C. Analyses of genome organization and rearrangements by pulsed field gradient gelelectrophoresies // Genetic engeneeringN.Y.: Plenum press. 1986. Vol. 8. P. 45-70.

178. Smith J.R., Carpten J.D., Brownstein M.J. Approach to genotyping errors caused by nontemplated nucleotide addition by Taq DNA polymerase // Genome Res. 1995. Vol. 5. P. 312-317.

179. Solinas Toldo S., Fries R., Steffen P. Physically mapped cosmidderived microsatellite markers as anchor loci on bovine chromosomes // Mamm. Genome. 1993. Vol. 4. P. 720-727.

180. Soller M. Genetic mapping of the Bovine Genome Using Deoxyribonucleic Acid-Level Markes to Identify Loci Affecting Quantitative Traits of Economic Importance // J. Dairy Sci. 1990. Vol. 73. P. 2682-2646.

181. Stallings R. L, Ford R., Nelson O. Evolution and distribution of (GN)n repectitive sequences in mammalian genomes // Genomics. 1991. Vol. 10. P. 807815.

182. Steffen P., Eggen A., Diets A.B., Womack J.E., Stranzinger G. Isolation and mapping of polymorphic microsatellites in cattle // Anim. Genet. 1993. Vol. 24. P. 121-124.

183. Strand M,, Prolla T.A., Liskay R.M. Destabilization of tracts of simple repetitive DNA in yeast by mutations affecting DNA mismatch repair // Nature.1993. Vol. 365. P. 274-276.

184. Szymanowski L., Stetkewicz S, Walcher B. Les groupes serologiques dans le sang du pore et leur relation avec les groupes du sang human // C. r. soc. boil. 1926. Vol. 94.

185. Tachida H. and Izuka M. Persistence of repeated sequences that evolve by replication slippage // Genetics. 1992. Vol. 131. P. 471 -478.

186. Takezaki N., Neim M. Genetic distances and reconstruction of phylo-genetic trees from microsatellite DNA // Genetics. 1996. Vol. 144 (1). P. 389-399.

187. Tautz D. Hypervariability of simple sequences as a general source for polymorphic DNA markers // Genetics. 1989. Vol. 17. P. 6463-6471.

188. Tautz D. and Schlotter C. Simple sequences //Curr. Opin. Genet. Dev.1994. Vol.4. P. 832-837.

189. Vaiman D., Mercier D., Moazami-Goudarzi K. A set of 99 cattle microsatellites: characterization, synteny mapping, and polymorphism // Mamm. Genome. 1994. Vol. 5. P. 288-297.

190. Vaiman D., Immam-Chali M., Moazami-Goudarzi K. Conservation of a synthenic group of microsatellite loci between cattle and sheep // Mammalian Genome. 1996. P. 676-683.

191. Valdes A.M., Slatkin M. and Freimer N.B. Allele frequencies at microsatellite loci: The stepwise mutation model revisited //Genetics. 1993. Vol. 133. P. 737-749.

192. Van Zeveren A., Peelman A., Van de Weghe A. A genetic study of four Belgian pig population by mean of seven microsatellite loci // J. Anim. Breed Genet. 1995. Vol. 112. P. 191-204.

193. Vankan D.M., Hefford C.G., Faddy M.J. Efficacy and relialiability of paternity testing in cattle using DNA microsatellites // Animal Genetics. 1998. Vol. 29. P. 9-10.

194. Vogt P. Potential genetic function of tandem repeated DNA sequence blocks in human genome are based on highly conserved chromatine folding code //Human Genetics. 1990. Vol. 84. P. 301-336.

195. Waser, P.M. & Strobeck, C. Genetic signatures of interpopulation dispersal //Trends in Ecology and Evolution. 1998. Vol. 13. P. 43 44.

196. Weber J.L., May P.E. Abundant class of human DNA polymorphism which can be typed using the polymerase chain reaction // Am. J. Hum. Genet.1989. Vol. 44. P. 388-396.

197. Weber J.L. Informativeness of human (dC-dA)n(dG-dT)n polymorphisms // Genomics. 1990. Vol.7. P. 524-530.

198. Weber J.L., Wong C. Mutation of human short tandem repeats // Human Molecular Genetics. 1993. Vol. 2. P. 1123-1128.

199. Weimann C., Leyhe-Horn B., Gauly M. Suitability of microsatellites BM1329 and OarAElOl as markers for the introgression of the Fee (B) locus into different sheep breeds // Arch. Tierzucht. 2001. Vol. 44. P. 435-440.

200. Weising K., Atkinson R. and Gardner R. Genomic fingerprinting by microsatellite-primed PCR:a critical evalution // PCR Merhods Applic. 1995. Vol. 4. P. 249-255.

201. Williams J.CG.K., Kubelic A.R., Livac K.J. DNA polymorphism amplified by arbitrary primers are useful as genetic markers // Nucleic Acids Res.1990. Vol. 18. P. 6531-6535.

202. Wintero A. K., Fredholm M., Thomsen P. D. Variable (dG dT)n(dC -dA)n Sequences in the Porcine // Genome. 1992. Vol. 12. P. 281-288.

203. Ziegle J.S., Su Y., Corcoran K.P. // Genomics. 1992. Vol. 14. P. 10261031.