Биологические эффекты антимикробных веществ животного и бактериального происхождения тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 06.02.02, доктор наук Сычева Мария Викторовна

• Сычева Мария Викторовна
• доктор наук
• 2016

Оглавление диссертации доктор наук Сычева Мария Викторовна

ВВЕДЕНИЕ

I ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

1.1 Антимикробные пептиды - многофункциональные молекулярные факторы врождённого иммунитета животных

1.2 Общая характеристика и биологическая активность антимикробных пептидов из тромбоцитов и кровяных пластинок

1.3 Общая характеристика бактерий рода ЕМвтососсш

1.4 Бактериоцины энтерококков: разнообразие, свойства и практическое применение

II СОБСТВЕННЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ

2.1 Материалы и методы исследований

2.1.1 Получение кислотных экстрактов из тромбоцитов и кровяных пластинок животных и изучение их функциональной активности

2.1.2 Методы изучения биологических эффектов очищенных антимикробных пептидов из тромбоцитов

2.1.2.1 Масс-спектрометрический анализ антибактериальных фракций кислотного экстракта тромбоцитов

2.1.2.2 Оценка антибактериальной активности антимикробных пептидов из тромбоцитов

2.1.2.3 Флуоресцентная микроскопия и спектроскопия в оценке биологического действия антимикробных пептидов

2.1.2.4 Биолюминесцентное тестирование

2.1.2.5 Определение дзета-потенциала бактериальных клеток при воздействии антимикробных пептидов

2.1.2.6 Измерение концентрации внеклеточных ионов калия при воздействии антимикробных пептидов

2.1.2.7 Метод изучения морфофункциональной реакции микроорганизмов на воздействие антимикробных пептидов

2.1.3 Выделение и идентификация бактерий рода Е^втососсш

2.1.4 Методы изучения биологических свойств микроорганизмов

2.1.4.1 Определение факторов патогенности микроорганизмов

2.1.4.2 Определение факторов персистенции микроорганизмов

2.1.4.3 Определение антибиотикочувствительности микроорганизмов

2.1.4.4 Определение антагонистической активности микроорганизмов

2.1.4.5 Определение генетических детерминант вирулентности, персистенции, антибиотикорезистентности и бактериоциногении энтерококков

2.1.5 Метод воспроизведения экспериментальной листериозной инфекции

2.1.6 Методы статистической обработки результатов

2.2 Функциональные свойства АМП из тромбоцитов и кровяных пластинок животных

2.2.1 Спектр антимикробной активности кислотных экстрактов из тромбоцитов и кровяных пластинок животных

2.2.2 Влияние кислоторастворимых белков тромбоцитов и кровяных пластинок на персистентные свойства микроорганизмов

2.2.3 Оценка воздействия кислотных экстрактов из тромбоцитов и кровяных пластинок продуктивных животных на факторы вирулентности микроорганизмов

2.2.4 Характеристика антибиотикочувствительности микроорганизмов после соинкубирования с кислоторастворимыми белками тромбоцитов

и кровяных пластинок

2.2.5 Влияние кислотных экстрактов тромбоцитов и кровяных пластинок животных на чувствительность условно-патогенных микроорганизмов к антагонистически активным представителям нормальной микрофлоры

2.3 Разработка способа получения антимикробных пептидов из тромбоцитов курицы домашней (Gallus gallus)

2.4 Изучение биологических эффектов очищенных АМП из тромбоцитов курицы домашней и их механизмов в отношении микроорганизмов

2.4.1 Исследование механизма антибактериального действия фракций, выделенных из тромбоцитов G. gallus

2.4.1.1 Антимикробная активность пептидных фракций из тромбоцитов

G. gallus

2.4.1.2 Флуоресцентная микроскопия и спектроскопия в оценке биологического действия антимикробных пептидов

из тромбоцитов G. gallus

2.4.1.3 Биолюминесцентное тестирование

2.4.1.4 Изменение дзета-потенциала бактериальных клеток при воздействии антимикробных фракций из тромбоцитов курицы домашней

2.4.1.5 Морфофункциональная реакция микроорганизмов на воздействие антимикробных соединений из тромбоцитов курицы домашней

2.4.1.6 Изменение концентрации внеклеточных ионов калия при воздействии АМП

2.4.2 Исследование действия выделенных из тромбоцитов G. gallus пептидных фракций на биологические свойства микроорганизмов

2.4.2.1 Оценка воздействия АМП из тромбоцитов курицы домашней на персистентный потенциал микроорганизмов

2.4.2.2 Влияние АМП из тромбоцитов курицы домашней на факторы вирулентности микроорганизмов

2.4.2.3 Характеристика антибиотикочувствительности

микроорганизмов после соинкубирования с АМП из тромбоцитов

G. gallus

2.4.2.4 Влияние АМП тромбоцитов курицы домашней на чувствительность условно-патогенных микроорганизмов к антагонистически активным представителям нормальной микрофлоры

2.5 Биологические свойства энтерококков, выделенных от животных

2.5.1 Характеристика видового состава и факторов персистенции энтерококков, выделенных из клинического материала и фекалий продуктивных животных

2.5.2 Характеристика факторов патогенности энтерококков

2.5.3 Характеристика антибиотикорезистентности фекальных и клинических изолятов энтерококков

2.5.4 Разработка математической модели дифференциальной диагностики клинически значимых штаммов энтерококков и представителей нормальной микрофлоры животных

2.5.5 Антагонистическая активность энтерококков in vitro и in vivo

III ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ ИССЛЕДОВАНИЙ

ВЫВОДЫ

РЕКОМЕНДАЦИИ ПО ИСПОЛЬЗОВАНИЮ НАУЧНЫХ ВЫВОДОВ

СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ

БИБЛИОГРАФИЧЕСКИЙ СПИСОК

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Биологические эффекты антимикробных веществ животного и бактериального происхождения»

ВВЕДЕНИЕ

Актуальность темы исследования. В связи со значительными темпами роста устойчивости возбудителей инфекционных заболеваний к антибиотикам (Meunier O., 2015), активно обсуждается вопрос о создании альтернативных терапевтических средств, резистентность к которым у микроорганизмов будет развиваться ограниченно или полностью отсутствовать (Ashby M. et al., 2014). Такими средствами могут явиться антимикробные пептиды (АМП), синтезируемые организмами различного уровня организации и являющиеся одними из ключевых эффекторных молекул системы врожденного иммунитета, которая обеспечивает первую линию защиты от инфекций человека и животных и без которой невозможно выживание в среде, изобилующей потенциально патогенными микроорганизмами (Кокряков В.Н. и др., 2006). Эти соединения составляют важный молекулярный механизм врождённого иммунитета животных (Jenssen H. et al., 2006) и в перспективе могут рассматриваться в качестве дополнения и замены в медицинской и ветеринарной практике общепринятым антибиотикам микробного происхождения в силу ряда преимуществ: способность быстро убивать клетки-мишени, необычайно широкий спектр действия, активность в отношении штаммов, резистентных к другим антибиотикам, а также определённая трудность в селекции устойчивых мутантов in vitro (Hancock R.E.W., Lehrer R., 1998).

Выделение и структурно-функциональное изучение пептидных антибиотиков животного происхождения создаёт предпосылки для разработки и производства химически или биотехнологически синтезированных гомологов этих соединений (Кокряков В.Н., 2006).

Известно, что клетки крови, в частности кровяные пластинки, являются источником различных катионных пептидов, обладающих выраженной биологической активностью (Ivanov Y.B. et al., 2015). Однако имеющиеся данные о соединениях этой группы в основном ограничиваются сведениями об АМП кровяных пластинок человека. В то же время остаётся открытым вопрос о структуре

и функциональной активности пептидных антибиотиков из тромбоцитов и кровяных пластинок продуктивных животных; не изучен механизм их антимикробного действия.

В поисках решения задачи по изысканию альтернативных традиционным антибиотикам средств, способных обеспечить борьбу с инфекционными агентами, возрос интерес и к антимикробным субстанциям бактериального происхождения. Среди них особое место занимают бактериоцины - экскретируемые за пределы бактериальной клетки антимикробные пептиды, чаще всего катионной природы (Popaganni M., 2003; Похиленко В.Д., Перелыгин В.В., 2011; Himeno K. et al., 2015). Интерес учёных к микроорганизмам-продуцентам бактериоцинов определяется свойствами данной группы соединений: широким спектром антимикробного действия (Svetoch E. et al., 2008); активностью в отношении бактериальных патогенов в наномолярных концентрациях (Sang Y., Blecha F., 2008); медленным развитием у микроорганизмов резистентности к бактериоцинам (Lawton E.M. et al., 2007); индукцией иммунных реакций макроорганизма, повышающих его неспецифическую резистентность к инфекционным агентам (Duc le H. et al., 2004).

Учитывая вышеизложенное, поиск микроорганизмов-продуцентов бактериоцинов и изучение их биологических свойств представляется актуальным. Наиболее исследованной на сегодняшний день группой продуцентов бактериоцинов являются молочнокислые микроорганизмы, к числу которых относятся бактерии рода Lactobacillus и явившиеся предметом настоящего исследования бактерии рода Enterococcus. Несмотря на несомненные успехи, достигнутые при изучении микроорганизмов этого рода (Nigùtova K. et al., 2005; Dale J.L. et al., 2015), многое до сих пор остается неясным: в литературе нет данных комплексной оценки биологических свойств антагонистически активных энтерококков - продуцентов бактериоцинов по факторам вирулентности, персистенции и антибиотикорезистентности, что затрудняет дифференциацию штаммов - представителей нормофлоры от патогенных вариантов микроорганизмов, использование которых в составе антимикробных биопрепаратов невозможно. Недостаточно

исследована распространённость генов бактериоциногении в популяции фекальных энтерококков. Неизвестно, как модифицируется биологическая активность антагонистически активных Enterococcus spp. в условиях макроорганизма.

Всё вышеизложенное актуализирует постановку цели и задач нашей работы.

Целью настоящего исследования явилось изучение биологических эффектов антимикробных веществ животного и бактериального происхождения.

Для реализации этой цели были поставлены и решены следующие задачи:

1. Изучить антимикробные свойства кислотных экстрактов из тромбоцитов и кровяных пластинок сельскохозяйственных животных и разработать оригинальную схему очистки наиболее активных антимикробных пептидов.

2. Охарактеризовать биологические эффекты гомогенных препаратов антимикробных пептидов и механизмы их биологического действия в отношении патогенных и условно-патогенных микроорганизмов.

3. Изучить биологические свойства (антагонистическую активность, факторы патогенности, персистенции и антибиотикорезистентности на уровне фено- и генотипа) энтерококков, выделенных из клинического материала и из фекалий продуктивных животных.

4. На основе комплекса информативных биологических свойств разработать микробиологические критерии дифференциации бактерий рода Enterococcus, выделенных от животных, на патогенные штаммы и представителей нормальной микрофлоры.

5. Отобрать штаммы энтерококков - представителей нормальной микрофлоры с заданными биологическими свойствами и оценить их антагонистическую активность in vivo для рекомендации в качестве основы биопрепаратов.

Область исследования. Исследование проведено в рамках специальности 06.02.02 - ветеринарная микробиология, вирусология, эпизоотология, микология с микотоксикологией и иммунология, паспорта специальности ВАК РФ (биологические науки) по: п. 1. «Природа и происхождение, структура, химический состав, морфологические, биологические, физико-химические

свойства патогенных бактерий, вирусов и токсигенных грибов. Классификация возбудителей и вызываемых ими инфекционных болезней животных»; п. 9. «Активная специфическая профилактика инфекционных болезней животных, вакцины, вакцинология, способы вакцинации. Средства и методы лечения и лекарственной профилактики инфекционных болезней животных»; п. 14. «Иммунология животных, противоинфекционный иммунитет, иммунопатология и иммунодефициты. Иммунологический анализ в эпизоотологии. Серология, серопрофилактика и серотерапия инфекционных болезней животных».

Научная новизна исследований. Выявлено наличие антимикробных веществ в кровяных пластинках лошади, крупного рогатого скота, свиньи, собаки, козы. Впервые из тромбоцитов кур выделены антимикробные пептиды, характеризующиеся наибольшей микробоцидной активностью.

Показана модификация биологических свойств условно-патогенных микроорганизмов под действием тромболизатов сельскохозяйственных животных - повышение чувствительности к антибиотикам и антагонистическому действию нормальной микрофлоры кишечника животных, а также преимущественное ингиби-рование факторов персистенции и гемолитической активности. Установлено, что выраженность действия определяется видом животного, являющегося источником АМП, при этом наибольшую активность проявляют тромболизаты кур.

Разработан новый способ очистки, позволивший выделить в гомогенном виде бактерицидные субстанции из тромбоцитов крови кур и изучены спектр и механизмы их биологической активности.

Впервые установлены минимальные бактерицидные концентрации (МБК) очищенных АМП из тромбоцитов кур в отношении условно-патогенных микроорганизмов.

С использованием атомно-силовой микроскопии, флуоресцентной спектроскопии и биолюминесцентного анализа расшифрован механизм действия природных антимикробных пептидов из тромбоцитов кур на микроорганизмы, заключающийся в нарушении структурной организации клеточной стенки и энергетического метаболизма клеток бактерий. Пороподобные повреждения

поверхности бактерий позволили отнести АМП к классу пороформирующих катионных антимикробных пептидов.

Выявлена способность энтерококков, выделенных из кишечника и от больных гнойно-воспалительными заболеваниями животных, к инактивации факторов естественной резистентности хозяина и представлена сравнительная оценка диагностической значимости биологических свойств энтерококков. Полученные данные использованы при разработке математических диагностических моделей для дифференциации бактерий рода ЕЫвгососсш (Свидетельства о государственной регистрации программ для ЭВМ №2015616670, №2015619808, №2015619828).

На основании комплексной оценки фенотипических и генетических характеристик энтерококков, выделенных из кишечника здоровых животных, отобран штамм ЕМвгососсш faecium, обладающий генетическими детерминантами бактериоциногении (в^Р, вМЬ50Л, вМЬ50Б), выраженным антагонистическим эффектом в отношении листерий и не имеющий факторов вирулентности. Установлена способность данного штамма снижать летальность животных и микробную обсеменённость внутренних органов (селезенка, печень, кишечник и его содержимое) при экспериментальной листериозной инфекции у морских свинок (патент РФ № 2571852).

Теоретическая и практическая значимость работы. Получены новые сведения о биологических эффектах антимикробных соединений животного и бактериального происхождения.

Впервые выделены антимикробные пептиды из тромбоцитов курицы домашней. Изученный спектр антимикробной активности и установленный механизм их бактерицидного действия открывают перспективу для дальнейшего изучения этих эндогенных антибиотиков с целью использования в качестве антимикробного средства. Разработанный способ выделения и очистки антимикробных пептидов из тромбоцитов внедрён в научно-исследовательской работе Института клеточного и внутриклеточного симбиоза УрО РАН.

Сравнительное изучение биологических свойств энтерококков, выделенных

из кишечника животных и при инфекционно-воспалительных заболеваниях, позволило разработать программы для ЭВМ, дифференцирующие бактерии рода En-terococcus, которые используются в работе ГБУ «Оренбургская областная ветеринарная лаборатория», а также новый способ дифференциации энтерококков кишечной микрофлоры животных, основанный на изучении антикарнозиновой активности выделенных штаммов.

Материалы работы использованы в информационно-методическом письме Управления ветеринарии Министерства сельского хозяйства, пищевой и перерабатывающей промышленности Оренбургской области «Региональный регистр антибиотикорезистентности бактерий рода Enterococcus, выделенных от животных при инфекционно-воспалительных заболеваниях» (Оренбург, 2015).

Создана коллекция антагонистически активных культур энтерококков с изученными биологическими свойствами, перспективных для использования в качестве основы антимикробных биопрепаратов. На основании комплексной характеристики антагонизма in vitro и in vivo, факторов вирулентности и антибиотикорезистентности из коллекции культур энтерококков отобран новый штамм Enterococcus faecium, обладающий антагонистической активностью в отношении бактерий рода Listeria и вида Enterococcus faecalis (патент РФ № 2571852), а также штамм Enterococcus faecium, обладающий способностью снижать образование биопленок грибами рода Candida (решение о выдаче патента на изобретение по заявке №2015103576/10(005608) от 25.11.2015).

Основные положения, выносимые на защиту.

1. Полученные из тромбоцитов и кровяных пластинок животных кислотные экстракты обладают широким спектром микробоцидной активности и способностью модулировать биологические свойства микроорганизмов с наибольшей выраженностью у кислоторастворимых белков из тромбоцитов кур.

2. Из выделенных и изученных 8 пептидных фракций, для 3 характерна высокая антимикробная активность в отношении грамположительных и грамотрицательных микроорганизмов, а также способность подавлять/снижать биологические, в том числе персистентные свойства микроорганизмов. Механизм

бактерицидного действия тромбоцитарных АМП определяется их способностью нарушать целостность барьерных структур микробных клеток.

3. Способность антимикробных пептидов тромбоцитов снижать персистентный потенциал условно-патогенных микроорганизмов и повышать их чувствительность к антагонистическому действию автохтонной микрофлоры, определяет колонизационную резистентность кишечного биотопа.

4. Бактериоцин-продуцирующие энтерококки, характеризующиеся определенной совокупностью биологических свойств (патогенности, персистенции, антибиотикорезистентности), повышают устойчивость организма к листериозной инфекции.

Связь работы с плановыми исследованиями и научными программами. Диссертационная работа выполнялась в рамках тем открытого плана НИР ФГБОУ ВО «Оренбургский государственный аграрный университет»: «Функциональные свойства антимикробных пептидов из тромбоцитов сельскохозяйственных животных» (№ государственной регистрации 0120.1252048); «Биологические свойства условно-патогенной и нормальной микрофлоры организма животных в норме и при патологии» (№ государственной регистрации 0120.1450283).

Исследования были проведены при поддержке гранта РФФИ «Новые антимикробные пептиды, продуцируемые тромбоцитами животных и их биологическая активность в отношении различных групп микроорганизмов» (№14-04-97067 р_поволжье_а); грантов Оренбургского ГАУ по результатам конкурсов научно-технических и инновационных проектов «Прорыв» (Оренбург, 2011; 2013).

Апробация работы. Результаты научных исследований доложены и обсуждены на: Всероссийской научно-практической конференции «Современное состояние и перспективы развития патологии, морфологии и онкологии животных» (Новочеркасск, 2008); Международной научно-практической дистанционной конференции «Пути научного обеспечения национального проекта по животноводству» (пос. Персиановский, 2008); Всероссийской конференции с международным участием «Актуальные вопросы медицинской науки» (Ярославль, 2009); Международной научно-практической конференции

«Кадровое и научное обеспечение инновационного развития отрасли животноводства» (Казань, 2010); Международной научно-практической конференции «Ветеринарная медицина XXI века: инновации, опыт, проблемы и пути их решения» (Ульяновск, 2011); Международной научно-практической конференции «Аграрная наука и образование в условиях становления инновационной экономики» (Оренбург, 2012); Международной научно-практической интернет-конференции «Современные тенденции в ветеринарной медицине» (Ставрополь, 2012); II региональном молодежном инновационном конвенте Оренбургской области (Оренбург, 2012); Международной научно-практической конференции «Современные научные тенденции в животноводстве, охотоведении и экологии» (Киров, 2013); Международной научно-практической конференции «Проблемы устойчивости биоресурсов: теория и практика» (Оренбург, 2013); Международной научно-практической конференции «Современные проблемы животноводства и ветеринарии: состояние и пути решения» (Краснодар, 2013); ежегодной областной молодёжной научно-практической конференции «Молодые ученые Оренбуржья - науке XXI века» (Оренбург, 2013); II Всероссийской научно-практической конференции с международным участием «Современные достижения ветеринарной медицины и биологии - в сельскохозяйственное производство» (Уфа, 2014); VIII Всероссийской научно-практической конференции с международным участием «Молекулярная диагностика 2014» (Москва, 2014); Международной научно-практической конференции «Современные тенденции в развитии овцеводства и козоводства» (Оренбург, 2014); II Всероссийской молодежной научной школе-конференции «Микробные симбиозы в природных и экспериментальных экосистемах» (Оренбург, 2014); II Всероссийской школе-конференции молодых учёных «Современные проблемы микробиологии, иммунологии и биотехнологии» (Пермь, 2015); Международной научно-практической конференции «Проблемы устойчивости биоресурсов и адаптивно-ландшафтного природопользования в различных экологических условиях» (Крым-Ялта, 2015); VIII Российской научной конференции с международным участием

«Персистенция и симбиоз микроорганизмов» (Оренбург, 2015).

Итоги проведённых исследований доложены на расширенном заседании кафедры микробиологии и заразных болезней ФГБОУ ВО «Оренбургский ГАУ» (протокол № 7 от 26 ноября 2015 года).

Публикации. Основные научные результаты по теме диссертации опубликованы в 44 печатных работах, из них 25 - в изданиях, рекомендованных ВАК Министерства образования и науки РФ, получен 1 патент РФ на изобретение, решение о выдаче патента на изобретение и три свидетельства на регистрацию программ для ЭВМ.

Материалы диссертации были представлены на III Российском форуме «Российским инновациям - Российский капитал» (Ижевск, 2010); на областной выставке научно-технического творчества молодежи «НТТМ-2011» (Оренбург, 2011) и отмечены сертификатом победителя; на XII ярмарке профессиональных образовательных организаций и организаций высшего образования и науки «Российским инновациям - российский капитал» (Нижний Новгород, 2014) и удостоены медали и диплома.

Фрагменты работы были представлены на областных конкурсах научно-исследовательских работ и отмечены персональной стипендией (2013) и премией Правительства Оренбургской области для молодых учёных (2015).

Объём и структура диссертации. Работа изложена на 274 страницах компьютерной вёрстки, содержит 13 таблиц и 67 рисунков. Диссертация состоит из общей характеристики работы, обзора литературы, материалов и методов исследования, результатов исследований и их обсуждения, выводов и рекомендаций по их использованию, списка сокращений, библиографического списка, который включает 417 наименований, в том числе 314 работ иностранных авторов.

Ряд фрагментов работы выполнен совместно с сотрудниками ФГБУН Институт клеточного и внутриклеточного симбиоза УрО РАН (к.б.н. Т.М. Пашкова, к.б.н. А.С. Васильченко, к.т.н. Ю.А. Хлопко), ФГБОУ ВО «Оренбургский государственный аграрный университет» (к.б.н. Е.В. Шейда,

к.б.н. Л.Ф. Галиуллина, к.б.н. В.В. Дымова, Н.Е. Щепитова, Д.В. Пошвина, Ю.И. Пешкова), а также ФГБУН Институт биоорганической химии им. академиков М.М. Шемякина и Ю.А. Овчинникова РАН (к.х.н. Е.А. Рогожин).

I ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

Проблема антимикробной резистентности (АМР) в настоящее время приобрела критическое значение для гуманной и ветеринарной медицины. Доказательством этому являются ежегодные сообщения о выявлении новых случаев устойчивости бактерий (доклад ВОЗ, 2013). Возникновение АМР является естественным биологическим ответом на использование антибиотиков, которые создают селективное давление, способствующее отбору, выживанию и размножению резистентных штаммов микроорганизмов (Лазарев В.Н., Говорун В.М., 2010). Немаловажную роль играет безрецептурная доступность антимикробных препаратов (Козлов Р.С., 2014).

В настоящее время существует несколько подходов к решению проблемы преодоления антибиотикорезистентности микроорганизмов (Rice L.B., 2003; Дьяченко С.В., 2010). Одним из наиболее интересных и перспективных направлений является разработка нового класса антибактериальных препаратов на основе антимикробных пептидов и белков природного происхождения.

1.1 Антимикробные пептиды - многофункциональные молекулярные факторы

врождённого иммунитета животных

Коэволюция макро- и микроорганизмов привела к возникновению разнообразной группы пептидов и белков, которые составляют важный молекулярный механизм врождённого иммунитета животных (Sаnchez M.L. et al., 2013). Эндогенные антимикробные пептиды, продуцируемые грибами (Mygind P.H. et al., 2005; Oeemig, J.S. et al., 2012), растениями (Odintsova T.I. et al., 2008; Vieira M.E. et al., 2015), позвоночными (Levy O., 2010) и беспозвоночными животными (Х. Заре-Зардини и др., 2015; J. Zhuang et al., 2015) обеспечивают неотложное реагирование организма на инфекцию. Поскольку беспозвоночные организмы лишены приобретенного иммунитета, при контакте с патогенами они могут полагаться только на систему врожденного ответа, и, учитывая

«эволюционный успех» беспозвоночных, можно говорить о высокой эффективности сформировавшихся у них систем защиты (Пантелеев П.В. и др., 2014).

В настоящее время описано порядка четырёх тысяч различных АМП (Zhao X. et al., 2013), выделенных из живых существ различного уровня организации, что является убедительным доказательством универсальности и эволюционной древности этих элементов системы врождённого иммунитета.

Сочетание современных методов хроматографии, геномики и протеомики только в 2014 году позволило охарактеризовать 104 новых пептида с известной аминокислотной последовательностью и выраженной антимикробной активностью. Более половины новых АМП (69 пептидов) были выделены от животных. Одним из важных источников природных эндогенных антибиотиков остаются земноводные, из организма которых изолировано около 39% всех антимикробных пептидов, представленных в базе данных APD (Antimicrobial Peptide Database) (Wang G. et al., 2015).

Разнообразие антимикробных пептидов настолько велико, что единственный удобный вариант классификации основан на особенностях вторичной структуры молекулы. В соответствии с этой классификацией все АМП подразделяются на три структурных класса: пептиды, обладающие а-спиральной конформацией (LL37, магейнины, цекропины); линейные пептиды, не образующие а-спиралей и отличающиеся повышенным содержанием определенных аминокислотных остатков (глицин, пролин, гистидин, триптофан) (индолицидин), и пептиды, в структуре которых наблюдаются антипараллельные Р-тяжи (а-, Р-, 0-дефенсины, протегрины, тахиплезины и др.) (Zasloff M., 2002).

Несмотря на значительное многообразие аминокислотных последовательностей и структуры, все антимикробные пептиды имеют сходные черты: как правило, содержат от 12 до 50 аминокислот, обладают основными свойствами за счёт высокого содержания аргинина и лизина. Наличие в молекуле аминокислот с гидрофобными боковыми цепями (около 50%), пространственно разделенными с положительно заряженными группами, характеризует молекулы

АМП как амфипатические (Hancock R.E., 2001). Такие соединения являются активными мембранотропными агентами (Wu M., Hancock R.E., 1999) и способны взаимодействовать не только с фосфолипидами бактериальной мембраны за счёт электростатических свойств, но и внедряться в липидный бислой благодаря гидрофобным взаимодействиям (Selsted M.E. et al., 1993).

Однако АМП объединяют не только вышеописанные сходства, но и способность эффективно уничтожать клетки-мишени.

Установлено, что антимикробные пептиды характеризуются бактерицидной активностью in vitro и in vivo в отношении грамположительных и грамотрицательных микроорганизмов: Helicobacter pylori с множественной лекарственной устойчивостью (Narayana J.L. et al., 2015 (а); Narayana J.L. et al., 2015 (б)), Streptococcus pneumoniae (Le C.F. et al., 2015), Staphylococcus epidermidis (Piras A.M. et al., 2015), Klebsiella pneumoniae (Knappe D. et al., 2015), Listeria monocytogenes (Cheng C. et al., 2015), клинических мультирезистентных изолятов Mycobacterium tuberculosis (Ramírez-Carreto S. et al., 2015), Micrococcus luteus, Bacillus thuringiensis (Tonk M. et al., 2015), Enterococcus faecalis, Escherichia coli (Scudiero O. et al., 2015).

Доказана бактерицидная активность АМП в отношении Pseudomonas aeruginosa как in vitro (Sánchez-Gómez S. et al., 2015; Mangoni M.L. et al., 2015), так и in vivo в культуре эпителиальных клеток лёгких человека и на модели экспериментальной перитонеальной инфекции (Bucki R. et al., 2015) и сепсиса у мышей (Papareddy P. et al., 2015).

N. Raman et al. (2015) установили, что АМП, представляющие собой структурные миметики природных антимикробных a-пептидов, активны в отношении клинических изолятов и лекарственно-устойчивых штаммов C. albicans, а также других оппортунистических культур Candida spp. Причём АМП не только подавляли рост планктонных микроорганизмов, но и предотвращали формирование биоплёнок изолятами С. albicans, С. glabrata, С. parapsilosis и С. tropicalis, что указывает на терапевтический потенциал этого класса соединений в профилактике грибковых инфекций. Аналогичные результаты были

получены M. Scarsini et al. (2015) при изучении антимикотической активности кателицидинов в отношении планктонных и биоплёночных культур Candida spp., изолированных от больных с вульвовагинальным кандидозом.

Предметом специального изучения является антимикробная активность эндогенных антибиотиков в отношении полирезистентных микроорганизмов, среди которых основную проблему представляют метициллин-резистентные штаммы S. aureus (MRSA) (Гучев И.А., 2005); энтеробактерии, грамотрицательные неферментирующие бактерии, резистентные к

цефалоспоринам расширенного спектра и карбапенемам (Иванов Д.В., Егоров A.M., 2008); штаммы Enterococcus spp., устойчивые к ванкомицину (Fussen R., Lemmen S., 2015).

Исследования, проведённые L. Lin et al. (2015), свидетельствуют о способности антимикробного пептида LL-37, являющегося продуктом расщепления кателицидина hCAP-18, усиливать действие азитромицина в отношении карбапинем-резистентных изолятов P. aeruginosa, K. pneumoniae и Acinetobacter baumannii за счёт увеличения проницаемости наружной мембраны бактерий, что облегчает проникновение крупной молекулы антибиотика внутрь бактериальной клетки. Авторы считают, что дальнейшее изучение фармакодинамических взаимодействий между АМП и традиционными антибиотиками позволит разработать новые стратегии лечения больных с инфекционной патологией. Аналогичные данные были получены группой тайваньских учёных, продемонстрировавших высокую антимикробную активность писцидина (PCD)-1 в отношении карбапинем-резистентных A. baumannii и продуцирующей металло-бета-лактамазу K. pneumoniae (Pan C.Y. et al. 2015).

Список литературы диссертационного исследования доктор наук Сычева Мария Викторовна, 2016 год

БИБЛИОГРАФИЧЕСКИЙ СПИСОК

1. Алехина, Г.Г. Пробиотики - новый подход к старым проблемам / Г.Г. Алехина, А.Н. Суворов // Успехи современного естествознания. - 2007. - № 6. -С. 36-39.

2. Анисимов, А.П. Факторы возбудителя бубонной чумы, обеспечивающие циркуляцию и поддержание возбудителя чумы в экосистемах природных очагов / А.П. Анисимов // Молекулярная генетика. - 2002. - № 3. - С. 3-23.

3. Антикарнозиновая активность и ее роль в персистенции микроорганизмов / О.Л. Карташова, О.В. Бухарин, С.Б. Киргизова, Л.П. Потехина // Вестник Оренбургского государственного университета. - 2006. - № 12. - С. 2326.

4. Антимикробная активность бактериоцина S760, продуцируемого штаммом Enterococcus faecium LWP760 / Э.А. Светоч, Б.В. Ерусланов, В.П. Лев-чук и др. // Антибиотики и химиотерапия. - 2011. Т. 56. - С. 3-9.

5. Антмикробный комплекс пептидной природы Enterococcus mundtii PPHS-5/13 // В.М. Храмов, Т.А. Калмантаев, Г.Т. Садикова, Перелыгин и др. // Вестник Томского государственного университета. Биология. - 2015. - № 1. - С. 37-55.

6. Ашмарин, И.П. Статистические методы в микробиологических исследованиях / И.П. Ашмарин, А.А. Воробьев. - Л.: Гос. изд-во мед. лит. 1962. - 180 с.

7. Аюшев, О.Д. Влияние полипептидов из тромбоцитов на состояние систем гемостаза и иммуногенеза в опытах in vitro // О.Д. Аюшев, Б.И. Кузник, В.Х. Хавинсон // Гематология и трансфузиология. - 1989. - Т. 34. - № 6. - С. 4145.

8. Бактериоциноподобное вещество Bacillus circulans и способ его получения / Т.А. Калмантаев, Г.Т. Садикова, В.В. Перелыгин, В.Д. Похиленко // Вест-

ник Томского государственного университета. Биология. - 2012. - № 2(18). - С. 52-65.

9. Бала, С.С. Биологические свойства микрофлоры, выделенной их молока коров с клинической и субклинической формами мастита / C.C. Бала // Известия Оренбургского государственного аграрного университета. - 2010. - № 4(28). - С. 287-290.

10. Билимова, С.И. Характеристика факторов персистенции энтерококков / С.И. Билимова // Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. -2000. - № 4 (приложение). - С. 104-105.

11. Биологически активный пептид из насекомого Sphodromantis viridis, обладающий антибактериальным и антигрибковым действием: идентификация и биохимическая характеристика / Х. Заре-Зардини, А. Тахери-Кафрани, М. Ордуей и др. // Биохимия. - 2015. - Т. 80. - № 4. - С. 507-516.

12. Биологические свойства анаэробной микрофлоры репродуктивного тракта женщин / О.Л. Карташова, С.Б. Киргизова, А.Р. Абдрахманов, И.А. Павленко // Успехи современного естествознания. - 2004. - № 12. - С. 46.

13. Блинкова, Л.П. Бактреиоцины - антибактериальные биологически активные вещества пробиотических и клинических штаммов / Л.П. Блинкова // Биопрепараты. Профилактика. Диагностика. Лечение. - 2010. - № 3(39). - С. 48.

14. Бондаренко, В.М. Симбиотические энтерококки и проблемы энтерококковой оппортунистической инфекции / В.М. Бондаренко, А.Н. Суворов. - М.: Медицина, 2007. - 30 с.

15. Бухарин, О.В. Антимикробный белок тромбоцитов / О.В. Бухарин, В.А. Черешнев, К.Г. Сулейманов. Екатеринбург: УрО РАН, 2000. - 200 с.

16. Бухарин, О.В. Биология и экология энтерококков / О.В. Бухарин, А.В. Валышев. - Екатеринбург: УрО РАН. - 2012. - 227 с.

17. Бухарин, О.В. Взаимодействие бактерий и эритроцитов / О.В. Бухарин, Б.Я. Усвяцов, Е.А. Ханина // Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. - 2005. - № 4. - С. 89-95.

18. Бухарин, О.В. Лизоцим микроорганизмов / О.В. Бухарин, Н.В. Васильев, Б.Я. Усвяцов. - Томск: Изд-во Томского университета, 1985. - 212 с.

19. Бухарин, О.В. Механизмы выживания энтерококков в организме хозяина / О.В. Бухарин, С.И. Билимова, К.Л. Чертков // Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. - 2002. - №3. - С. 100-106.

20. Бухарин, О.В. Микробные ингибиторы лизоцима / О.В. Бухарин, А.В. Валышев // Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. - 2006. -№ 4. - С. 8-13.

21. Бухарин, О.В. Персистентный потенциал условно-патогенных микроорганизмов / О.В. Бухарин, А.В. Валышев, С.В. Черкасов // Эпидемиология и вакцинопрофилактика. - 2005. - № 4. - С. 43-48.

22. Бухарин, О.В. Персистенция бактериальных патогенов как результат отношений системы паразит - хозяин / О.В. Бухарин // Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. - 1997. - № 4. - С. 3-9.

23. Бухарин, О.В. Персистенция патогенных бактерий: монография / О.В. Бухарин. - М.: Медицина, 1999. - 366 с.

24. Бухарин, О.В. Природа и биологическая роль тромбоцитарного катионного белка / О.В. Бухарин, К.Г. Сулейманов // Успехи современной биологии. - 1997. - № 3. - С. 10.

25. Бухарин, О.В. Роль тромбоцитарного катионного белка (ТКБ) - бета-лизина в противоинфекционной защите / О.В. Бухарин, К.Г. Сулейманов // Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. - 1997. - № 1. - С. 36.

26. Бухарин, О.В. Способ определения антикарнозиновой активности микроорганизмов / О.В. Бухарин, О.Л. Чернова, С.Б. Матюшина // Патент РФ №2132879. - Бюл. №. 19, 1999.

27. Бухарин, О.В. Фотометрическое определение антилизоцимной активности микроорганизмов / О.В. Бухарин, А.В. Валышев, Н.Н. Елагина // Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. - 1997. - № 4. - С. 117-120.

28. Валышев, А.В. Бактериоциногения энтерококков кишечной микрофлоры человека / А.В. Валышев, Н.В. Герцен // Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. - 2013. - № 5. - С. 104-107.

29. Валышев, А.В. Роль антилактоферриновой активности бактерий в их персистенции / А.В. Валышев, И.В. Валышева // Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. - 2006. - № 4. - С. 23-25.

30. Валышева, И.В. Генетическая характеристика вирулентного потенциала энтерококков кишечной микробиоты человека / И.В. Валышева // Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. - 2012. - № 4. - С. 44-47.

31. Валышева, И.В. Генетическая характеристика вирулентного потенциала энтерококков кишечной микробиоты человека/ И.В. Валышева // Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. - 2012. - № 4. - С. 44-48.

32. Васильченко, А.С. Биологическая активность антимикробных пептидов ЕМвгососсш faecium / А.С. Васильченко, Е.А. Рогожин, А.В. Валышев // Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. - 2015. - №4. - С. 22-26.

33. Вахитов, Т.Я. Концепция пробиотического препарата, содержащего оригинальные микробные метаболиты / Т.Я. Вахитов, Л.Н. Петров, В.М Бондаренко // Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. - 2005.

- №5. - С. 108-114.

34. Вертиев, Ю.В. Токсин опосредованная обусловленность инфекционных заболеваний / Ю.В. Вертиев, И.М. Габрилович // Микробиология.

- 1987. - №3. - С. 86-93.

35. Возрастающая угроза антимикробной резистентности. Возможные меры. ВОЗ 2013. http://apps.who.int/iris/bitstream/10665/44812/16/ 9789244503188_rus.pdf

36. Гармашева, И.Л. Энтероцины - разнообразие, свойства и практическое применение / И.Л. Гармашева, Н.К. Коваленко // Мшробюл. журн. -2011. - Т. 73. - № 5. - С. 61-70.

37. Генетическая идентификация как способ выявления патогенных и симбиотических штаммов энтерококков / А.Е. Вершинин, В.В. Колоджиева, Е.И. Ермоленко и др. // Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. -2008. - №5. - С. 83-87.

38. Генная терапия хронических инфекционных заболеваний урогенитального тракта с использованием цитотоксических пептидов. Обзор / В.Н. Лазарев, В.М. Говорун, Н.М. Александрова и др. // Вопр. мед. химии. - 2000. - Т. 46. - № 3. - С. 324-331.

39. Горюхина, О.А. Выделение катионных белков из тромбоцитов крови кролика и изучение их бактериостатической активности / О.А. Горюхина, А.А. Ткаченко // Вопросы медицинской химии. - 1978. - № 1. - С. 17-22.

40. Гучев, И.А. Современные препараты в лечении инфекций, вызванных оксациллинустойчивыми стафилококками и энтерококками / И.А. Гучев // Инфекции и антимикробная терапия. - 2005. - № 7. - С. 43-55.

41. Действие дефенсинов на уровень кортикостерона в крови и иммунный ответ при стрессе / О.В. Шамова, М.П. Лесникова, В.Н. Кокряков и др. // Бюл. экспериментальной биологии и медицины. - 1993. - № 115 (6). - С. 646-649.

42. Дьяченко, С.В. Фармакоэпидемиологические основы антибактериальной терапии распространенных заболеваний / С.В. Дьяченко. -Хабаровск: Изд. центр ГОУ ВПО ДВГМУ, 2010. - 402 с.

43. Егоров, Е.С. Бактериоцины. Образование свойства, применение / Е.С. Егоров, И.Н. Баранова //Антибиотики и химиотерапия. - 1999. - № 6. - С. 33-40.

44. Ермоленко, Е.И. Бактериоцины энтерококков: проблемы и перспективы. Обзор литературы / Е.И. Ермоленко // Вестник Санкт-Петербургского университета. - 2009. - Сер. 11. - Вып. 3. - С. 184-201.

45. Жидкостная хроматография тромбоцитарных белков / Н.И. Горшков, И.И. Малахова, В.Д. Красиков и др. // Сорбционные и хроматографические процессы. - 2010. - Т. 10. - Вып. 5. - С. 661-668.

46. Зайцева, Е.А. Дифференциация штаммов Listeria monocytogenes методом мультиплексной полимеразной цепной реакции / Е.А. Зайцева, С.А. Ермолаева // Тихоокеанский медицинский журнал. - 2014. - № 3. - С. 40-42.

47. Замотринский, А.В. Систематический подход к изучению белков тромбоцитов человека. Построение двумерной карты / А.В. Замотринский, С.С. Шишкин // Биохимия. - 1991. - Т. 56. - Вып. 5. - С. 863-873.

48. Зианбетова, Л.Х. Антимикробная активность энтерококков, выделенных из различных источников / Л.Х. Зианбетова, И.В. Валышева // Вестник РГМУ. - 2009. - № 3. - С. 28.

49. Значение энтерококков в современной патологии человека и животных / М.И. Петрова, Т.Н. Гуменюк, Н.М. Колычев и др. // Актуальные вопросы ветеринарной медицины: материалы VIII Сиб. ветеринар. конф. Новосибирск. - 2008. - С. 251-254.

50. Зурочка, В.А. Влияние клеток фенотипа CD34+CD45DIM, различных дефенсинов и синтетических пептидов активного центра ГМ-КСФ на РБТЛ in vitro / В.А. Зурочка, А.В. Зурочка, Е.Г. Костоломова // Вестник уральской медицинской академической науки. - 2012. - № 4. - С. 200-201.

51. Иванов, Д.В. Распространение и механизмы резистентности микроорганизмов, продуцирующих бета-лактамазы. Молекулярные механизмы устойчивости к бета-лактамным антибиотикам штаммов клебсиелл выделенных при внутрибольничных инфекциях / Д.В. Иванов, A.M. Егоров // Биомедицинская химия. - 2008. - Т. 54. - № 1. - С. 104-113.

52. Иванов, Ю.Б. Влияние тромбодефенсинов на течение хронического стафилококкового дерматита in vivo / Ю.Б. Иванов, В.А. Гриценко, С.А. Мирошников // Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. -2014. - № 6 - С. 104-108.

53. Иванов, Ю.Б. Разработка технологии создания тест-систем нового поколения на основе тромбодефенсинов для экспресс-диагностики инфекционно-воспалительных заболеваний / Ю.Б. Иванов, А.С. Васильченко // Бюллетень

Оренбургского научного центра УрО РАН [электронный журнал]. - 2015. - № 1. -С. 5.

54. Иванов, Ю.Б. Способность анаэробной фекальной микрофлоры к инактивации антимикробного белка тромбоцитов / Ю.Б. Иванов, Н.Н. Елагина // Вестник Оренбургского государственного университета. - 2005. - № 6. - С. 135136.

55. Использование энтероцина S710 для профилактики и лечения экспериментальной сальмонеллёзной инфекции у мышей / Э.А. Светоч, А.И. Борзилов, Б.В. Ерусланов и др. // Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. - 2010. - № 5. - С. 44-48.

56. Исследование тромбоцитарных белков по составу и молекулярной массе транспортными методами / И.И. Малахова, О.С. Егорова, Н.И. Горшков и др. // Сорбционные и хроматографические процессы. - 2012. - Т. 12. - № 6. - С. 973-980.

57. Казеева, Т.Н. Неизвестные функции иммуноглобулинов А / Т.Н. Казеева, А.Б. Шевелев // Биохимия. - 2007. - Т. 72. - № 5. - С. 603-614.

58. Калина, Г.П. Идентификация энтерококков с использованием комбинированных питательных сред / Г.П. Калина // Лабораторное дело. - 1972. -№ 11. - С. 691-693.

59. Капустина, О.А. Устойчивость грибов рода Candida к факторам естественного иммунитета человека / О.А. Капустина, И.Н. Чайникова, О.Л. Карташова // Гигиена и санитария. - 2012. - № 3. - С. 27 - 29.

60. Катионные противомикробные пептиды как молекулярные факторы иммунитета: мультифункциональность / В.Н. Кокряков, Л.В. Ковальчук, Г.М. Алёшина, О.В. Шамова // Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. - 2006. - № 2. - C. 98-105.

61. Козлов, Р.С. Проблема антибиотикорезистентности в акушерстве и гинекологии / Р.С. Козлов // Русский медицинский журнал. - 2014. - Т. 22. - № 1. - С. 79.

62. Кокряков, В.Н. Катионные белки лизосом нейтрофильных гранулоцитов при фагоцитозе и воспалении / В.Н. Кокряков // Вопросы мед. химии. - 1990. - Т. 36. - № 6. - С. 13-16.

63. Кокряков, В.Н. Очерки о врождённом иммунитете / В.Н. Кокряков. СПб.: Наука, 2006. - 262 с.

64. Колычев, Н.М. Энтерококковая инфекция у телят / Н.М. Колычев, М.И. Петрова // Ветеринария сельскохозяйственных животных. - 2009. - № 4. - С. 56-58.

65. Красная, Ю.В. Значение бактерий рода Enterococcus в жизнедеятельности человека / Ю.В. Красная, А.С. Нестеров, Н.И. Потатуркина-Нестерова // Современные проблемы науки и образования [электронный журнал]. - 2014. - № 6.

66. Кудлай, Д.Г. Бактериоциногения / Д.Г. Кудлай, В.Г. Лиходед. - М.: Медицина, 1966. - 203 с.

67. Лазарев, В.Н. Антимикробные пептиды и их применение в медицине / В.Н. Лазарев, В.М. Говорун // Обзор. Биотехнология. - 2010. - № 3. - С. 11-25.

68. Методические указания МУК 4.2.1890-04 «Определение чувствительности микроорганизмов к антибактериальным препаратам»: (утв. гл. гос. санитар. врачом РФ 04.03.2004: введ. 04.03.2004). - М.: Минздрав России, 2005. - 62 с.

69. Микробная регуляция антагонистической активности бактерий / А.В. Семёнов, А.В. Сгибнев, С.В. Черкасов, О.В. Бухарин // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. - 2007. - Т. 144. - № 11. - С. 545-548.

70. Миллер, Дж. Эксперименты в молекулярной генетике / Дж. Миллер. -М.: Мир, 1976. - 350 с.

71. Мониторинг дзета-потенциала клеток человека при снижении их жизнеспособности и взаимодействии с полимерами / О.В. Бондарь, Д.В. Сайфуллина, И.И. Мавлютова, Т.И. Абдуллин // Acta Naturae. - 2012. - Т. 4. -№ 1. - С. 80-83.

72. Морфо-физиологические и физико-химические проявления адаптации эшерихий к желчи и катионным антимикробным пептидам / О.С. Журлов, В.А. Гриценко, Д.А. Черников и др. // Вестник Оренбургского государственного университета. - 2006. - № 12. - С. 16-19.

73. Нетрусов, А.И. Практикум по микробиологии / А.И. Нетрусов, М.А. Егорова, Л.М. Захарчук. - М.: Издательский центр «Академия», 2005. - 608 с.

74. Новый метод определения антилактоферриновой активности микроорганизмов / И.В. Валышева, А.В. Валышев, О.Л. Карташова и др. // Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. - 2003. - № 4. - С. 64-67.

75. Овчинников, Р.С. Этиопатогенез современных инфекций / Р.С. Овчинников // VetPharma. - 2015. - № 2(24). - C. 62-65.

76. Петровская, В.Г. Генетические основы вирулентности патогенных и условно-патогенных бактерий / В.Г. Петровская // Журнал микробиологии эпидемиологии и иммунобиологии. - 1984. - № 7. - С. 77-85.

77. Пинегин, Б.В. Роль антимикробного пептида LL-37 в патогенезе псориаза / Б.В. Пинегин // Российский журнал кожных и венерических болезней. -2012. - № 5. - С. 32-37.

78. Похиленко, В.Д. Бактериоцины, их биологическая роль и тенденции применения / В.Д. Похиленко, В.В. Перелыгин // Электронный научный журнал «Исследовано в России». - 2011. - С. 164-198. URL: http://zhurnal.ape.relarn.ru/articles/2011/016.pdf.

79. Пошвина, Д.В. Образование биоплёнок клиническими изолятами энтерококков / Д.В. Пошвина // Известия Оренбургского государственного аграрного университета. - 2015. - №1 (51). - С. 75-76.

80. Симбиоз и его роль в инфекции / О.В. Бухарин, Е.С. Лобакова, Н.Б. Перунова и др. Екатеринбург: УрО РАН, 2011. - 300 с.

81. Симонова, Е.В. Роль нормальной микрофлоры в поддержании здоровья человека / Е.В. Симонова, О.А. Пономарева // Сибирский медицинский журнал. - 2008. - Т. 83. - № 8. - С. 20-25.

82. Сипайлова, О.Ю. Исследование противоопухолевой активности тромбодефенсинов in vivo / О.Ю. Сипайлова, Г.И. Корнеев // Вестник Оренбургского государственного университета. - 2009. - № 6. - С. 344-347.

83. Способ диагностики мастита коров без заметных симптомов болезни / К.Г. Сулейманов, О.Л. Чернова, Е.И. Бритвина, О.В. Бухарин / Авторское свидетельство №1389045, 1987.

84. Способ контроля за выздоровлением больных острой дизентерией / О.В. Бухарин, А.Н. Волков, М.В. Скачков и др. // Авторское свидетельство СССР №923523, 1982.

85. Способ определения антииммуноглобулиновой активности микроорганизмов / О.В. Бухарин, И.Н. Чайникова, А.В. Валышев и др. // Патент РФ №2236465. - Бюл. №. 26, 2004.

86. Способ определения антитромбоцитарной катионно-белковой активности микроорганизмов / О.В. Бухарин, К.Г. Сулейманов, Ю.Б. Иванов и др. // Патент РФ №2120999. - Бюл. №. 30, 1998.

87. Способ прогнозирования обострения туберкулёзного процесса при туберкулинотерапии / О.В. Бухарин, Н.М. Протопопова, Г.С. Бессонова и др. // Авторское свидетельство СССР №1057016, 1983.

88. Способность микроорганизмов к инактивации бактерицидного действия тромбоцитарного катионного белка (Р-лизина) / О.В. Бухарин, К.Г. Сулейманов, О.Л. Чернова и др. // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. -1998. - № 7. - С. 66-67.

89. Справочник по микробиологическим и вирусологическим методам исследования / под ред. М.О. Биргера. - М.: Медицина, 1982. - 464 с.

90. Строение и биологические функции Р-шпилечных антимикробных пептидов / П.В. Пантелеев, И.А. Болосов, С.В. Баландин и др. // А^а Naturae. - Т. 7. - № 1 (24). - С. 39-50.

91. Структурные и функциональные особенности 1§Л1-протеаз / Т.Н. Казеева, А.Б. Шевелев, О.А. Леонович и др. // Современные проблемы науки и образования [электронный журнал]. - 2012. - № 1.

92. Суворов, А.Н. Поиск эффективных путей решения проблемы борьбы с бактериальной инфекционной патологией / А.Н. Суворов // Медицинский академический журнал. - 2010. - Т. 10. - №4. - С. 267-280.

93. Телесманич, H.P. Гемо-цитолизин Vibrio cholerae: механизмы действия in vitro и in vivo / H.P. Телесманич // Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. - 1999. - №3. - С. 89-93.

94. Устойчивость микроорганизмов к антибиотикам: резистома, ее объем, разнообразие и развитие / К.А. Виноградова, В.Г. Булгакова, А.Н. Полин, П.А. Кожевин // Антибиотики и химиотерапия. - 2013. - Т.58. - № 5-6. - С. 38-48.

95. Факторы персистенции Francisella tularensis / Н.В. Шеенков, Э.Ф. Опочинский, А.В. Валышев и др. // Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. - 2006. - №1. - С. 63-66.

96. Фалова, О.Е. Выраженность антилизоцимной активности Staphylococcus spp. микробиоценозов кожи на фоне хронических дерматозов / О.Е. Фалова, Н.И. Потатуркина-Нестерова // Международный научно-исследовательский журнал биологических наук. - 2012. - № 10. URL: http://research-j ournal .org/featured/biology/.

97. Червинец, Ю.В. Симбиотические взаимоотношения лактобацилл и микроорганизмов желудочно-кишечного тракта: дис. ... д-ра мед. наук: 03.02.03 / Червинец Юлия Вячеславовна. - М., 2012. - 263 с.

98. Черданцева, Г.А. Характеристика биологических свойств энтерококков различного происхождения / Г.А. Черданцева, С.И. Билимова // Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. - 2000. - № 4 (приложение). - С. 101-104.

99. Черных, О.Ю. Энтерококковая инфекция нутрий / О.Ю. Черных // Ветеринария. - 2009. - № 1. - С. 22-24.

100. Шендеров, Б.А. Медицинская микробная экология и функциональное питание. Том I. Микрофлора человека и животных и ее функции / Б.А. Шендеров. - Москва: ГРАНТЪ, 1998. - 416 с.

101. Щепитова, Н.Е. Биологические свойства антагонистически активных энтерококков, выделенных от животных / Н.Е. Щепитова // Материалы ежегодной областной научно-практической конференции «Молодые ученые Оренбуржья -науке XXI века». - Оренбург: Издательский центр ОГАУ, 2014. - С. 250-252.

102. Эффективность энтероцина S760 при лечении сибиреязвенной инфекции у мышей, вызванной Bacillus anthracis M-71 / Э.А. Светоч, А.И. Борзилов, Б.В. Ерусланов и др. // Антибиотики и химиотерапия. - 2011. - Т. 56. - № 9-10. -С. 13-18.

103. Ятусевич, А.И. Малоизученные инфекционные и инвазионные болезни домашних животных / А.И. Ятусевич, Н.Н. Андросик. - Мн.: Ураджай, 2001. - 332 с.

104. A bioinspired peptide scaffold with high antibiotic activity and low in vivo toxicity / F. Rabanal, A. Grau-Campistany, X. Vila-Farres et al. // Sci Rep. - 2015. -No. 5. - doi: 10.1038/srep10558.

105. A cecropin-like antimicrobial peptide with anti-inflammatory activity from the black fly salivary glands / J. Wu, L. Mu, L. Zhuang et al. // Parasit Vectors. - 2015. - Vol. 8. - No. 1. - P. 561.

106. A defensin from the model beetle Tribolium castaneum acts synergistically with telavancin and daptomycin against multidrug resistant Staphylococcus aureus / R. Rajamuthiah, E. Jayamani, A.L. Conery et al. // PLoS One. - 2015. - Vol. 10. - No. 6. -doi: 10.1371/journal.pone.0128576.

107. Activation of human mast cells by retrocyclin and protegrin highlight their immunomodulatory and antimicrobialproperties / K. Gupta, A. Kotian, H. Subramanian et al. // Oncotarget. - 2015. - Vol. 6. - No. 30. - P. 28573-28587.

108. Aktan, I. Equine platelets inhibit E. coli growth and can be activated by bacterial lipopolysaccharide and lipoteichoic acid although superoxide anion production does not occur and platelet activation is not associated with enhanced production by neutrophils / I. Aktan, B. Dunkel, F.M. Cunningham // Vet. Immunol. Immunopathol. -2013. - Vol. 152. - No. 3-4. - P. 209-217.

109. Aliphatic acid-conjugated antimicrobial peptides-potential agents with antitumor, multidrug resistance-reversing activity and enhanced stability / X. Deng, Q. Qiu, K. Ma et al. // Org. Biomol. Chem. - 2015. - Vol. 13. - No. 28. - P. 7673-7680.

110. American crows as carriers of vancomycin-resistant enterococci with vanA gene / V. Oravcova, L. Zurek, A. Townsend et al. // Environ. Microbiol. - 2014. - Vol. 16. - No. 4. - P. 939-949.

111. An antimicrobial peptide containing NGR motif has potent antitumor activity against CD13+ and CD13- tumor cells / Z. Zhang, L. Hou, L. Feng et al. // Tumour Biol. - 2015. - Vol. 36. - No. 10. - P. 8167-8175.

112. Anti-bacterial Activities of P-defensin 1 in Human Platelets: Suppression of Pathogen Growth and Signaling of Neutrophil Extracellular Trap Formation / N.B.F. Kraemer, R.A. Campbell, H. Schwertz et al. // PLoS Pathog. - 2011. - Vol. 7. - No. 11. - doi: 10.1371/journal.ppat.1002355.

113. Antibacterial, anti-inflammatory and probiotic potential of Enterococcus hirae isolated from the rumen of Bos primigenius / S. Arokiyaraj, V.I. Hairul Islam, R. Bharanidharan et al. // World J. Microbiol. Biotechnol. - 2014. - Vol. 30. - No. 7. - P. 2111-2118.

114. Antibiotic resistant enterococci-tales of a drug resistance gene trafficker / G. Werner, T.M. Coque, C.M. Franz et al. // Int. J. Med. Microbiol. - 2013. - Vol. 303. - No. 6-7. - P. 360-379.

115. Anticancer activity of the antimicrobial peptide scolopendrasin VII derived from the centipede, Scolopendra subspinipes mutilans / J.H. Lee, I.W. Kim, S.H. Kim et al. // J. Microbiol. Biotechnol. - 2015. - Vol. 25. - No. 8. - P. 1275-1280.

116. Antifungal activity of 14-helical P-peptides against planktonic cells and biofilms of Candida species / N. Raman, M.R. Lee, D.M. Lynn et al. // Pharmaceuticals (Basel). - 2015. - Vol. 8. - No. 3. - P. 483-503.

117. Antifungal activity of cathelicidin peptides against planktonic and biofilm cultures of Candida species isolated from vaginal infections / M. Scarsini, L. Tomasinsig, A. Arzese et al. // Peptides. - 2015. - No. 71. - P. 211-221.

118. Antimicrobial activity of novel synthetic peptides derived from indolicidin and ranalexin against Streptococcus pneumoniae / H.M. Jindal, C.F. Le, M.Y. Mohd Yusof et al. // PLoS One. - 2015. - Vol. 10. - No. 6. - doi: 10.1371/journal.pone.0128532.

119. Antimicrobial activity of synthetic cationic peptides and lipopeptides derived from human lactoferricin against Pseudomonas aeruginosa planktonic cultures and biofilms / S. Sánchez-Gómez, R. Ferrer-Espada, P.S. Stewart et al. // BMC Microbiol. - 2015. - No. 15. - doi: 10.1186/s12866-015-0473-x.

120. Antimicrobial delivery systems for local infection prophylaxis in orthopedic- and trauma surgery / G.J. ter Boo, D.W. Grijpma, T.F. Moriarty et al. // Biomaterials. - 2015. - No. 52. - P. 113-125.

121. Antimicrobial peptides and proteins in the face of extremes: Lessons from archaeocins / A. Besse, J. Peduzzi, S. Rebuffat, B. Kappe-Mlouka // Biochimie. - 2015. - No. 118. - P. 344-355.

122. Antimicrobial resistance and virulence factor gene profiles of Enterococcus spp. isolates from wild Arctocephalus australis (South American fur seal) and Arctocephalus tropicalis (Subantarctic fur seal) / N.A. Santestevan, D. de Angelis Zvoboda, J. Prichula et al. // World J. Microbiol. Biotechnol. - 2015. - Vol. 31. - No. 12. - P. 1935-1946.

123. Antimicrobial resistance, virulence determinants, and genetic profiles of clinical and non-clinical Enterococcus cecorum from poultry / C.R. Jackson, S. Kariyawasam, L.B. Borst et al. // Lett. Appl. Microbiol. - 2015. - Vol. 60. - No. 2. -P. 111-119.

124. Antimicrobial susceptibility of indicator bacteria isolated from chickens in Southeast Asian countries (Vietnam, Indonesia and Thailand) / M. Usui, S. Ozawa, H. Onozato et al. // J. Vet. Med. Sci. - 2014. - Vol. 76. - No 5. - P. 685-692.

125. Antimicrobial susceptibility of mastitis pathogens of dairy cows in Switzerland / F. Rüegsegger, J. Ruf, A. Tschuor et al. // Schweiz. Arch. Tierheilkd. - 2014. -Vol. 156. - No. 10. - P. 483-488.

126. Antimicrobial Susceptibility Patterns of Enterococcus faecalis and Entero-coccus faecium Isolated from Poultry Flocks in Germany / J. Maasjost, K. Mühldorfer, S. Cortez de Jäckel, H.M. Hafez // Avian Dis. - 2015. - Vol. 59. - No. 1. -P. 143-148.

127. Antimycobacterial activity of bacteriocins andtheir complexes with liposo mes / V. Sosunov, V. Mischenko, B. Eruslanov et al. // J. Antimicrob. Chemother. -2007. - Vol. 59. - No. 5. - P. 919-925.

128. Antitumor activity of Enterococcus faecalis FK-23 preparation against murine syngeneic tumors / K.Ohasi, K. Satonaka, T. Yamamoto et al. // Yakugaku Zasshi. -1992. - No. 113. - P. 396-398.

129. Applicability of a bacteriocin-producing Enterococcus faecium as a co-culture in Cheddar cheese manufacture / M.R. Foulquie Moreno, M.C. Rea, T.M. Cogan, L. De Vuyst // Int. J. Food Microbiol. - 2003. - Vol. 81. - No. 1. - P. 73-84.

130. Arginine-rich histones have strong antiviral activity for influenza A viruses / M. Hoeksema, S. Tripathi, M. White et al. // Innate Immun. - 2015. - Vol. 21. - No. 7. - P. 736-745.

131. Ashby, M. Cationic antimicrobial peptides as potential new therapeutic agents in neonates and children: A review / M. Ashby, A. Petkova, K. Hilpert // Current Opinion in Infectious Diseases. - 2014. - Vol. 27. - No. 3. - P. 258-267.

132. Assessment of spermicidal activity of the antimicrobial peptide sarcotoxin Pd: A potent contraceptive agent / H. Zare-Zardini, F. Fesahat, F. Anbari et al. // Eur. J. Contracept. Reprod. Health Care. - 2015. - No. 12. - P. 1-7.

133. B^bolewska, E. Human-derived cathelicidin LL-37 directly activates mast cells to proinflammatory mediator synthesis and migratory response / E. B^bolewska, E. Brzezinska-Blaszczyk // Cell Immunol. - 2015. - Vol. 293. - No. 2. - P. 67-73.

134. Bacteria May Cope Differently from Similar Membrane Damage Caused by the Australian Tree Frog Antimicrobial Peptide Maculatin 1.1 / M.A. Sani, S.T. Henriques, D. Weber, F. Separovic // J. Biol. Chem. - 2015. - Vol. 290. - No. 32. - P. 19853-19862.

135. Bactericidal activity of ceragenin CSA-13 in cell culture and in an animal model of peritoneal infection / R. Bucki, K. Niemirowicz, U. Wnorowska et al. // Antimicrob. Agents Chemother. - 2015. - Vol. 59. - No. 10. - P. 6274-6282.

136. Bacteriocinogenic potential of newly isolated strains of Enterococcus faecium and Enterococcus faecalis from dairy products of Pakistan / I. Javed, S. Ahmed, M.I. Ali et al. // J. Microbiol. Biotechnol. - 2010. - Vol. 20. - No. 1. - P. 153160.

137. Bacteriocins and Their Applications in Food Preservation / R. Ramu, P.S. Shirahatti, A.T. Devi et al. // Crit. Rev. Food Sci. Nutr. - 2015. [Epub ahead of print].

138. Bacteriocins reduce Campylobacter colonization and alter gut morphology in turkey poults / K. Cole, M.B. Farnell, A.M. Donoghue et al. // Poult. Sci. - 2006. -Vol. 85. - No. 9. - P. 1570-1575.

139. Band, V.I. Mechanisms of antimicrobial peptide resistance in gramnegative bacteria / V.I. Band, D.S. Weiss // Antibiotics (Basel). - 2015. - Vol. 4. - No. 1. - P. 18-41.

140. Banwo, K. Technological properties and probiotic potential of Enterococcus faecium strains isolated from cow milk / K. Banwo, A. Sanni, H. Tan // J. Appl. Microbiol. - 2013. - Vol. 114. - No. 1. - P. 229-241.

141. Beneficial influence of platelets on antibiotic efficacy in an in vitro model of Staphylococcus aureus-induced endocarditis / R.C. Mercier, R.M. Dietz, J.L. Mazzola et al. // Antimicrob. Agents Chemother. - 2004. - Vol. 48. - No. 7. - P. 25512557.

142. Beta-defensins: linking innate and adaptive immunity through dendritic and T cell CCR6 / D. Yang, O. Chertov, S.N. Bykovskaia et al. // Science. - 1999. - Vol. 286. - No. 5439. - P. 525-528.

143. Biofilm-specific cross-species induction of antimicrobial compounds in bacilli / L. Yan, K.G. Boyd, D.R. Adams, J.G. Burgess // Applied and Environmental Microbiology. - 2003. - Vol. 69. - P. 3719-3727.

144. Bradford, M.M. A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein-dye binding / M.M. Bradford // Anal. Biochev. - 1976. - Vol. 72. - P. 248-254.

145. Bredin, J. Propyl paraben induces potassium efflux in Escherichia coli / J. Bredin, A. Davin-Regli, J.M. Pages // J. Antimicrob. Chemother. - 2005. - Vol. 55. -No. 6. - P. 1013-1015.

146. Busing, K. Effects of oral Enterococcusfaecium strain DSM 10663 NCIMB 10415 on diarrhoea patterns and performance of sucking piglets / K. Busing, A. Zeyner // Benef Microbes. - 2015. - Vol. 6. - No. 1. - P. 41-44.

147. Cattoir, V. Twenty-five years of shared life with vancomycin-resistant en-terococci: is it time to divorce? / V. Cattoir, R.J. Leclercq // Antimicrob. Chemother. -2013. - Vol. 68. - No. 4. - P. 731-742.

148. Cellular responses to Pyrularia thionin are mediated by Ca2+ influx and phospholipase A2 activation and are inhibited by thionin tyrosine iodination / J. Evans, Y.D. Wang, K.P. Shaw et al. // Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. - 1989. - Vol. 86. - No. 15. - P. 5849-5853.

149. Census of the bacterial community of the gypsy moth larval midgut by using culturing and culture-independent methods / N.A. Broderick, K.F. Raffa, R.M. Goodman et al. // Applied and Environmental Microbiology. - 2004. - Vol. 70. - No. 1. - P. 293-300.

150. Characterization of antimicrobial resistance in enterococci of animal origin / L.A. Thal, J.W. Chow, R. Mahayni et al. // Antimicrob. Agents Chemother. - 1995. -Vol. 39. - No. 9. - P. 2112-2115.

151. Characterization of Bacillus probiotics available for human use / H. Duc le, T.M. Hong, J.A. Barbosa et al. // Applied and Environmental Microbiology. - 2004. -Vol. 70. - No. 4. - P. 2161-2171.

152. Characterization of the ebpfm pilus-encoding operon of Enterococcus faecium and its role in biofilm formation and virulence in a murine model of urinary tract infection / J. Sillanpaa, S.R. Nallapareddy, K.V. Singh et al. // Virulence. - 2010. -No. 1. - P. 236-246.

153. Characterization of veterinary hospital-associated isolates of Enterococcus species in Korea / Y.S. Chung, K.H. Kwon, S.J. Shin et al. // J. Microbiol. Biotechnol. - 2014. - Vol. 28. - No. 24(3). - P. 86-93.

154. Cheng, C. Controlling Listeria monocytogenes in cold smoked salmon with the antimicrobial peptide salmine / C. Cheng, F. Arritt, C. Stevenson // J. Food Sci. -2015. - Vol. 80. - No. 6. - P. 1314-1318.

155. Chernysh, S. Insect antimicrobial peptide complexes prevent resistance development in bacteria / S. Chernysh, N. Gordya, T. Suborova // PLoS One. - 2015. -doi: 10.1371/journal.pone.0130788.

156. Chitosan nanoparticles loaded with the antimicrobial peptide temporin B exert a long-term antibacterial activity in vitro against clinical isolates of Staphylococcus epidermidis / A.M. Piras, G. Maisetta, S. Sandreschi et al. // Front Microbiol. -2015. - No. 6. - P. 372. - doi: 10.3389/fmicb.2015.00372.

157. Clonal lineages, antibiotic resistance and virulence factors in vancomycin-resistant enterococci isolated from fecal samples of red foxes (Vulpes vulpes) / H. Radhouani, G. Igrejas, C. Carvalho et al. // J. Wildlife Diseases. - 2011. - Vol. 47. -No. 3. - P. 769-773.

158. Coburn, P.S. The Enterococcus faecalis cytolysin: a novel toxin active against eukaryotic and prokaryotic cells / P.S. Coburn, M.S. Gilmore // Cell Microbiol. - 2003. - Vol. 5 - No.10. - P. 661-669.

159. Colicins, spermine and cephalosporins: a competitive interaction with the OmpF eyelet / J. Bredin, V. Simonet, R. Iyer et al. // Biochem. J. - 2003. - Vol. 15. - P. 245-252.

160. Collagen degradation and MMP9 activation by Enterococcus faecalis contribute to intestinal anastomotic leak / B.D. Shogan, N. Belogortseva, P.M. Luong et al. // Sci. Transl. Med. - 2015. - Vol. 6. - No. 7(286). - doi: 10.1126/scitranslmed.3010658.

161. Contamination of milk by enterococci and coliforms from bovine faeces / D.M. Kagkli, M. Vancanneyt, P. Vandamme et al. // J. Appl. Microbiol. - 2007. - Vol. 103. - No. 5. - P. 1393-1405.

162. Contribution of individual Ebp Pilus subunits of Enterococcusfaecalis OG1RF to pilus biogenesis, biofilm formation and urinary tract infection / J. Sillanpaa, C. Chang, K.V. Singh et al. // PLoS One. - 2013. - Vol. 11. - No. 8(7). - doi: 10.1371/journal.pone.0068813.

163. Control of Listeria monocytogenes in fresh cheese using protective lactic acid bacteria / M.C. Coelho, C.C. Silva, S.C. Ribeiro et al. // Int. J. Food Microbiol. -2014. - Vol. 191. - P. 53-59.

164. Cotter, P.D. Bacteriocins: developing innate immunity for food / P.D. Cotter, C. Hill, R.P. Ross // Nature Microbiology Reviews. - 2005. - №3. - P. 777-788.

165. Da'dara, A.A. Schistosomes versus platelets / A.A. Da'dara, P.J. Skelly // Thromb. Res. - 2014. - Vol. 134. - No. 6. - P. 1176-1181.

166. Defensive remodeling: How bacterial surface properties and biofilm formation promote resistance to antimicrobial peptides / R. Nuri, T. Shprung, Y. Shai et al. // Biochim. Biophys. Acta. - 2015. - Vol. 1848. - No. 11. - P. 3089-3100.

167. Design and activity of a cyclic mini-P-defensin analog: a novel antimicrobial tool / O. Scudiero, E. Nigro, M. Cantisani et al. // Int. J. Nanomedicine. - 2015. -No. 10. - P. 6523-6539.

168. Design of imperfectly amphipathic a-helical antimicrobial peptides with enhanced cell selectivity / X. Zhu, N. Dong, Z. Wang et al. // Acta Biomaterialia. -2014. - Vol. 10. - No. 1. - P. 244-257.

169. Development of Multiplex PCR for the detection of asa1, gelE, cylA, esp, and hyl genes in Enterococci and survey for virulence determinants among European hospital isolates of Enterococcus faecium / V. Vankerckhoven, T. Van Autgaerden, C. Vael et al. // Journal of Clinical Microbiology. - 2004. - No. 42. - P. 4473-4479.

170. Devriese, L.A. Characterization and identification of Enterococcus species isolated from the intestines of animals / L.A. Devriese, A. Van de Kerckhove, R. Kilpper-Balz // International Journal of Systematic Bacteriology. - 1987. - Vol. 37. -No. 3. - P. 257-259.

171. Dhawan, V.K. Influence of in vitro susceptibility phenotype against throm-bin-induced platelet microbicidal protein on treatment and prophylaxis outcomes of ex-

perimental Staphylococcus aureus endocarditis / V.K. Dhawan, M.R. Yeaman, A.S. Bayer // J. Infect. Dis. - 1999. - No. 180. - P. 1561-1568.

172. Dhawan, V.K. Thrombin-induced platelet microbicidal protein susceptibility phenotype influences the outcome of oxacillin prophylaxis and therapy of experimental Staphylococcus aureus endocarditis / V.K. Dhawan, A.S. Bayer, M.R. Yeaman // Antimicrob. Agents Chemother. - 2000. - No. 44. - P. 3206-3209.

173. Dissemination of Enterococcus faecalis and Enterococcus faecium in a ri-cotta processing plant and evaluation of pathogenic and antibiotic resistance profiles / S. Fernandes Mda, G. Fujimoto, L.P. de Souza et al. // J. Food Sci. - 2015. - Vol. 80. -No. 4. - P. 765-775.

174. Distribution of the erm(B) gene, tetracycline resistance genes, and Tn1545-like transposons in macrolide- and lincosamide-resistant enterococci from pigs and humans / E. De Leener, A. Martel, A. Decostere et al. // Microb. Drug Resist. - 2004. -No. 10. - P. 341-345.

175. Diverse antimicrobial killing by Enterococcus faecium E 50-52 bacteriocin / E. Svetoch, B. Eruslanov, V. Perelygin et al. // J. Agric. Food Chem. - 2008. - Vol. 56. - No. 6. - P. 1942-1948.

176. Diversity and antibiotic susceptibility of autochthonous dairy enterococci isolates: are they safe candidates for autochthonous starter cultures? / A. Terzic-Vidojevic, K. Veljovic, J. Begovic et al. // Front Microbiol. - 2015. - doi: 10.3389/fmicb.2015.00954.

177. Diversity and antimicrobial properties of lactic acid bacteria isolated from rhizosphere of olive trees and desert truffles of Tunisia / I. Fhoula, A. Najjari, Y. Turki et al. // Biomed. Res. Int. - 2013. - doi: 10.1155/2013/405708.

178. Diversity of enterococcal species and characterization of high-level amino-glycoside resistant enterococci of samples of wastewater and surface water in Tunisia / L. Ben Said, N. Klibi, C. Lozano et al. // Sci. Total Environ. - 2015a. - No. 15. - P. 530-531.

179. Donor platelet plasma components inactivate sensitive and multidrug resistant Acinetobacter baumanniiisolates / C.M. Edelblute, O.N. Pakhomova, F. Li et al. // Pathog. Dis. - 2015. [Epub ahead of print].

180. Dosler, S. Antibacterial and anti-biofilm activities of melittin and colistin, alone and in combination with antibiotics against Gram-negative bacteria / S. Dosler, E. Karaaslan, A.A. Gerceker // J. Chemother. - 2015. - Vol. 24. -doi: 1973947815Y0000000004. [Epub ahead of print].

181. Dutka-Malen, S. Detection of glycopeptide resistance genotypes and identification to the species level of clinically relevant enterococci by PCR / S. Dutka-Malen, S. Evers, P. Courvalin // J. Clin. Microbiol. - 1995. - Vol. 33. - No. 1. - P. 24-27.

182. EbpA vaccine antibodies block binding of Enterococcus faecalis to fibrinogen to prevent catheter-associated bladder infection in mice / A.L. Flores-Mireles, J.S. Pinkner, M.G. Caparon, S.J. Hultgren // Sci. Transl. Med. - 2014. - Vol. 17. - No. 6(254). - doi: 10.1126/scitranslmed.3009384.

183. Effect of Streptococcus faecalis BIO-4R in intestinal flora of weanling piglets and calves / K. Ozawa, K. Yabu-uchi, K. Yamanaka et al. // Applied and Environmental Microbiology. - 1983. - Vol. 45. - P. 1513-1518.

184. Effect of combined physico-chemical preservatives on enterocin AS-

48 activity against the enterotoxigenic Staphylococcus aureus CECT 976 strain / S. Ananou, E. Valdivia, M. Martinez Bueno et al. // J. Appl. Microbiol. - 2004. - Vol. 97. - No.1. - P. 48-56.

185. Effects of Enterococcus faecalis for genes on production of gelatinase and a serine protease and virulence / X. Qin, K.V. Singh, G.M. Weinstock et al. // Infect. Immun. - 2000. - Vol. 68. - P. 2579-2586.

186. Efficacy of Synthetic Peptides RP-1 and AA-RP-1 against Leishmania Species In Vitro and In Vivo / M.C.B. Erfe, C.V. David, C. Huang et al. // Antimicrob. Agents Chemother. - 2012. - Vol. 56. - No. 2. - P. 658-665.

187. Efficacy of the antimicrobial peptide TP4 against Helicobacter pylori infection: in vitro membrane perturbation via micellization and in vivo suppression of host

immune responses in a mouse model / J.L. Narayana, H.N. Huang, C.J. Wu et al. // Oncotarget. - 2015. - Vol. 6. - No. 15. - P. 12936-12954.

188. Efficient Inactivation of Multi-Antibiotics Resistant Nosocomial Entero-cocci by Purified Hiracin Bacteriocin / M. Hassan, D.A. Brede, D.B. Diep et al. //Adv. Pharm. Bull. - 2015. - Vol. 5. - No. 3. - P. 393-401.

189. Emergence of epidemic multidrug-resistant Enterococcus faecium from animal and commensal strains / F. Lebreton, W. Van Schaik, A.M. McGuire et al. // MBio. - 2013. - Vol. 4. - P. 1-10.

190. Endocarditis and biofilm-associated pili of Enterococcus faecalis / S.R. Nallapareddy, K.V. Singh, J. Sillanpää et al. // J. Clin. Invest. - 2006. - No. 116. - P. 2799-2807.

191. Enhanced antimicrobial activity of peptide-cocktails against common bacterial contaminants of ex vivo stored platelets / K.V.K. Mohan, S.S. Rao, Y. Gao et al. // Clinical Microbiology and Infection. - 2014. - Vol. 20. - No.1. - P. 39-46.

192. Ennahar, S. Anti-Listerial effect of enterocin A, produced by cheese-isolated Enterococcus faecium EFMO1, relative to other bacteriocins from lactic acid bacteria / S. Ennahar, N. Descamps // J. Appl. Microbiol. - 2000. - Vol. 88. - No. 3. -P. 449-457.

193. Enterocin F4-9, a Novel O-Linked Glycosylated Bacteriocin / M.A. Maky, N. Ishibashi, T. Zendo et al. // Appl. Environ. Microbiol. - 2015. - Vol. 81. -No. 14. - P. 4819-4826.

194. Enterocin HZ produced by a wild Enterococcus faecium strain isolated from a traditional, starter-free pickled cheese / Z. Yildirim, H. Bilgin, H. Isleroglu et al. // J. Dairy Res. - 2014. - Vol. 81. - No. 2. - P. 164-172.

195. Enterococcal diversity in the environment of an Irish Cheddar-type cheesemaking factory / R. Gelsomino, M. Vancanneyt, S. Condon et al. // International Journal of Food Microbiology. - 2001. - No. 71. - P. 177-188.

196. Enterococcus faecalis adhesion, Ace mediates attachment to extracellular matrix proteins collagen type IV and laminin as well as collagen / S.R. Nallapareddy, X. Qin, G.M. Weinstock et al. // Infect. Immun. - 2000. - No 68. - P. 5218-5224.

197. Enterococcus faecalis bearing aggregation substance is resistant to killing by human neutrophils despite phagocytosis and neutrophil activation / R.M. Rakita, N.N. Vanek, K. Jacques-Palaz et al. // Infect. Immun. - 1999. - Vol. 67. - No. 11. - P. 6067-6075.

198. Enterococcus faecalis clones in poultry and in humans with urinary tract infections, Vietnam / L.L. Poulsen, M. Bisgaard, N. Son et al. // Emerging Infectious Diseases. - 2012. - Vol. 18. - No. 7. - P. 1096-1100.

199. Enterococcus faecalis senses target cells and in response expresses cytolysin / P.S. Coburn, C.M. Pillar, B.D. Jett et al. // Science. - 2004. - Vol. 24. - No. 306(5705). - P. 2270-2272.

200. Enterococcus faecalis Endocarditis Severity in Rabbits Is Reduced by IgG Fabs Interfering with Aggregation Substance / P.M. Schlievert, O.N. Chuang-Smith, M.L. Peterson et al. // PlosOne. - 2010. - No. 4. - DOI: 10.1371/journal.pone.0013194.

201. Enterococcus lactis sp. nov., from Italian raw milk cheeses / S. Morandi, P. Cremonesi, M. Povolo et al. // Int. J. Syst. Evol. Microbiol. - 2012. - Vol. 62. - Pt. 8. -P. 1992-1996.

202. Enterococcus silesiacus sp. nov. and Enterococcus termitis sp. nov. / P. Svec, M. Vancanneyt, I. Sedlacek et al. // International journal of systematic and evolutionary microbiology. - 2006. - No. 56. - P. 577-581.

203. Enterococcus ureilyticus sp. nov. and Enterococcus rotai sp. nov., two ure-ase-producing enterococci from the environment / I. Sedlacek, P. Holochova, I. Maslanova et al. // Int. J. Syst. Evol. Microbiol. - 2013. - Vol. 63. - Pt. 2. - P. 502510.

204. Enterococcus alcedinis sp. nov., isolated from common kingfisher (Alcedo atthis) // P. Frolkova, P. Svec, I. Sedlacek et al. // Int. J. Syst. Evol. Microbiol. - 2013. -Vol. 63. - Pt. 8. - P. 3069-3074.

205. Environmental waters as a source of antibiotic-resistant Enterococcus species in Belgrade, Serbia / K. Veljovic , N. Popovic , A.T. Vidojevic et al. // Environ Monit. Assess. - 2015. - Vol. 187. - No. 9. - doi: 10.1007/s10661-015-4814-x.

206. Epidemiological alteration in pathogens found in ground meat in Iran: unexpected predominance of vancomycin-resistant Enterococcus faecalis / N. Sadeghifard, H. Kazemian, R. Mohebi et al. // GMS Hyg. Infect. Control. - 2015. -No.14. - doi: 10.3205/dgkh000255.

207. Epidemiology and molecular typing of VRE bloodstream isolates in an Irish tertiary care hospital / L. Ryan, E. O'Mahony, C. Wrenn et al. // J. Antimicrob. Chemother. - 2015. - Vol. 70. - No. 10. - P. 2718-2724.

208. Epinecidin-1 antimicrobial activity: In vitro membrane lysis and in vivo efficacy against Helicobacter pylori infection in a mouse model / J.L. Narayana, H.N. Huang, C.J. Wu et al. // Biomaterials. - 2015. - No. 61. - P. 41-51.

209. Eurocin, a new fungal defensin: structure, lipid binding, and its mode of action / J.S. Oeemig, C. Lynggaard, D.H. Knudsen et al. // J. Biol. Chem. - 2012. - No. 287. - P. 42361-42372.

210. Evaluation of Enterococcus spp. from rainbow trout (Oncorhynchus mykiss, Walbaum), feed, and rearing environment against fish pathogens / C. Araújo, E. Muñoz-Atienza, P.E. Hernández et al. // Foodborne Pathog. Dis. - 2015. - Vol. 12. -No. 4. - P. 311-322.

211. Expression and antiviral activity of a beta-defensin-like peptide identified in the rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) EST sequences / A. Falco, V. Chico, L. Marroqui et al. // Mol. Immunol. - 2008. - No. 45. - P. 757-765.

212. Extracellular gelatinase of Enterococcus faecalis destroys a defense system in insect hemolymph and human serum / S.Y. Park, K.M. Kim, J.H. Lee et al. // Infect Immun. - 2007. - Vol. 75. - No. 4. - P. 1861-1869.

213. Family IV. Enterococcaceae fam. nov. Bergey's Manual of Systematic Bacteriology / W. Ludwig, K.H. Schleifer, W.B. Whitman et al. - 2nd. -Vol. 3. - New York: Springer, 2009. - 549 p. (The Firmicutes).

214. Feline urinary tract pathogens: prevalence of bacterial species and antimicrobial resistance over a 10-year period / R. Dorsch, C. von Vopelius-Feldt, G. Wolf et al. // Vet. Rec. - 2015. - Vol. 21. - No 176(8). - doi: 10.1136/vr.102630.

215. Ferdous, F. Bacterial and viral induction of chicken thrombocyte inflammatory responses / F. Ferdous, T. Scott // Dev. Comp. Immunol. - 2015. - Vol. 49. - No. 2. - P. 225-230.

216. Fleischmann, J. Opsonic activity of MCP-1 and MCP-2, cationic peptides from rabbit alveolar macrophages / J. Fleischmann, M.E. Selsted, R.I. Lehrer // Diagn. Microbiol. Infect. Dis. - 1985. - Vol. 3. - No. 3. - P. 233-242.

217. Fraqueza, M.J. Antibiotic resistance of lactic acid bacteria isolated from dry-fermented sausages / M.J. Fraqueza // Int. J. Food Microbiol. - 2015. - Vol. 6. -No. 212. - P. 76-88.

218. Functional Analysis of Genes Involved in the Biosynthesis of Enterocin NKR-5-3B, a Novel Circular Bacteriocin / R.H. Perez, N. Ishibashi, T.J. Inoue et al. // Bacteriol. - 2015. [Epub ahead of print].

219. Functions of Antimicrobial Peptides in Gut Homeostasis / S. Wang, P.A. Thacker, M. Watford , S. Qiao // Curr. Protein Pept. Sci. - 2015. - Vol. 16. - No. 7. - P. 582-591.

220. Fussen, R. Prevention of transmission of multidrug-resistant bacteria / R. Fussen, S. Lemmen // Internist. - 2015. - Vol. 56. - No. 11. - P. 1246-1254.

221. Gaggfa, F. Probiotics and prebiotics in animal feeding for safe food production / F. Gaggfa, P. Mattarelli, B. Biavati // Int. J. Food Microbiol. - 2010. - Vol. 141. - P. 15-28.

222. Genetic characterisation of antibiotic resistance and virulence factors in vanA-containing enterococci from cattle, sheep and pigs subsequent to the discontinuation of the use of avoparcin / S. Ramos, G. Igrejas, J. Rodrigues et al. // Vet. J. - 2012. -Vol. 193. - No. 1. - P. 301-303.

223. Genotypic diversity, antibiotic resistance and bacteriocin production of enterococci isolated from rhizospheres / N. Klibi, N. Ben Slimen, I. Fhoula et al. // Microbes. Environ. - 2012. - Vol. 27. - No. 4. - P. 533-537.

224. Ghrairi, T. Enhanced bactericidal effect of enterocin A in combination with thyme essential oils against L. monocytogenes and E. coli O157:H7 / T. Ghrairi, K. Hani // J. Food Sci. Technol. - 2015. - Vol. 52. - No. 4. - P. 2148-2156.

225. Giuliani, A. Antimicrobial peptides: the LPS connection / A. Giuliani, G. Pirri, A.C. Rinaldi // Methods Mol. Biol. - 2010. - Vol. 618. - P. 137-154.

226. Goh, H.F. Isolation and mode of action of bacteriocin BacC1 produced by nonpathogenic Enterococcus faecium C1 / H.F. Goh, K. Philip // J. Dairy Sci. - 2015. -Vol. 98. - No. 8. - P. 5080-5090.

227. Growth and adhesion of Enterococcus faecium L-forms / J. Jass, L.E. Phillips, E.J. Allan // FEMS Microbiol. Lett. - 1994. - Vol. 15. - No. 115(2-3). - P. 157162.

228. Gupta, K. Modulation of host defense peptide-mediated human mast cell activation by LPS / K. Gupta, H. Subramanian, H. Ali // Innate Immun. - 2015. - pii: 1753425915610643. [Epub ahead of print].

229. Halliday, E. Contribution of sand-associated enterococci to dry weather water quality / E. Halliday, D.K. Ralston, R.J. Gast // Environ. Sci. Technol. - 2015. -Vol. 6. - No. 49(1). - P. 451-458.

230. Hammerum, A.M. Enterococci of animal origin and their significance for public health / A.M. Hammerum // Clin. Microbiol. Infect. - 2012. - Vol. 18. - P. 619625.

231. Hancock, R.E. Cationic peptides: effectors in innate immunity and novel antimicrobials / R.E. Hancock // Lancet Infect. Dis. - 2001. - Vol. 1. - No. 3. - P. 156164.

232. Hancock, R.E.W. Cationic peptides: a new source of antibiotics / R.E.W. Hancock, R. Lehrer // Trends Biotechnol. - 1998. - Vol. 16. - P. 82-88.

233. Heat-denatured lysozyme inactivates murine norovirus as a surrogate human norovirus / H. Takahashi, M. Nakazawa, C. Ohshima et al. // Sci. Rep. - 2015. -No. 5. - doi: 10.1038/srep11819.

234. Heikens, E. Enterococcal surface protein Esp is important for biofilm formation of Enterococcus faecium E1162 / E. Heikens, M.J. Bonten, R.J. Willems // J.Bacteriol. - 2007. - Vol. 189. - No. 22. - P. 8233-8240.

235. Henning, C. Identification of Multiple Bacteriocins in Enterococcus spp. Using an Enterococcus-Specific Bacteriocin PCR Array / C. Henning, D. Gautam, P. Muriana // Microorganisms. - 2015. - Vol. 3. - P. 1-16.

236. Hierarchal clustering yields insight into multidrug-resistant bacteria isolated from a cattle feedlot wastewater treatment system / M.A. Jahne, S.W. Rogers, I.P. Ramler et al. // Environ. Monit. Assess. - 2015. - Vol. 187. - No. 1. - doi: 10.1007/s 10661-014-4168-9.

237. High inhibition of Paenibacillus larvae and Listeria monocytogenes by En-terococcus isolated from different sources in Tunisia and identification of their bacteriocin genes / I. Jaouani, M.S. Abbassi, V. Alessandria et al. // Lett. Appl. Microbiol. - 2014. - Vol. 59. - No.1. - P. 17-25.

238. Holmberg, A. Mature biofilms of Enterococcus faecalis and Enterococcus faecium are highly resistant to antibiotics / A. Holmberg, M. Rasmus-sen // Diagn. Microbiol. Infect. Dis. - 2015. - Vol. 18. - doi: 10.1016/j.diagmicrobio.

239. Horizontal transfer of antibiotic resistance from Enterococcus faecium of fermented meat origin to clinical isolates of E. faecium and Enterococcus faecalis / M. Jahan, G.G. Zhanel, R. Sparling, R.A. Holley // Int. J. Food Microbiol. - 2015. - Vol. 16. - No. 199. - P. 78-85.

240. Human Health Hazard from Antimicrobial-Resistant Enterococci in Animals and Food / O.E. Heuer, M. Anette, A.M. Hammerum et al. // Clinical Infectious Diseases. - 2014. - Vol. 43. - No. 7. - P. 911-916.

241. Human platelet gel supernatant inactivates opportunistic wound pathogens on skin / C.M. Edelblute, A.L. Donate, B.Y. Hargrave et al. // Platelets. - 2015. - Vol. 26. - No. 1. - P. 13-16.

242. Human platelets express Toll-like receptor 3 and respond to poly I:C / A.S. Anabel, P.C. Eduardo, H.C. Pedro Antonio et al. // Hum. Immunol. - 2014. - Vol. 75. -No. 12. - P. 1244-1251.

243. Identification and characterization of the first cathelicidin from sea snakes with potent antimicrobial and anti-inflammatory activity and special mechanism / L.

Wei, J. Gao, S. Zhang et al. // J. Biol. Chem. - 2015. - Vol. 290. - No. 27. - P. 1663316652.

244. Identification and expression analysis of a novel stylicin antimicrobial peptide from Kuruma shrimp (Marsupenaeus japonicus) / H.T. Liu, J. Wang, Y. Mao et al. // Fish Shellfish Immunol. - 2015. - Vol. 47. - No. 2. - P. 817-823.

245. Identification of candidate antimicrobial peptides derived from abalone hemocyanin / J. Zhuang, C.J. Coates, H. Zhu et al. // Developmental and Comparative Immunology. - 2015. - Vol. 49. - P. 96-102.

246. Identification, Characterization, and Three-Dimensional Structure of the Novel Circular Bacteriocin, Enterocin NKR-5-3B, from Enterococcus faecium / K. Himeno, K.J. Rosengren, T. Inoue et al. // Biochemistry. - 2015. - Vol. 54. - No. 31. -P. 4863-4876.

247. Immunomodulatory properties of Enterococcus faecium JWS 833 isolated from duck intestinal tract and suppression of Listeria monocytogenes infection / H.J. Choi, M.S. Shin, S.M. Lee et al. // Microbiology and Immunology. - 2012. - Vol. 56. -No. 9. - P. 613-620.

248. Impact of growth temperature and surface type on the resistance of Pseudomonas aeruginosa and Staphylococcus aureus biofilms to disinfectants / M. Abdallah, O. Khelissa, A. Ibrahim et al. // International Journal of Food Microbiology. - 2015. - Vol. 214. - P. 38-47.

249. In vitro activity of human and animal cathelicidins against livestock-associated methicillin-resistant Staphylococcus aureus / S. Blodkamp, K. Kadlec, T. Gutsmann et al. // Vet. Microbiol. - 2015. - doi: 10.1016/j.vetmic.2015.09.018.

250. In vitro properties of designed antimicrobial peptides that exhibit potent antipneumococcal activity and produces synergism in combination with penicillin / C.F. Le, M.Y. Yusof, H. Hassan et al. // Sci. Rep. - 2015a. - No. 5. - doi: 10.1038/srep09761.

251. In vitro resistance of Staphylococcus aureus to thrombin-induced platelet microbicidal protein is associated with alterations in cytoplasmic membrane fluidity /

A.S. Bayer, R. Prasad, J. Chandra et al. // Infect. Immun. - 2000. - Vol. 68. - No. 6. -P. 3548-3553.

252. In vitro resistance to thrombin-induced platelet microbicidal protein in isolates of Staphylococcus aureus from endocarditis patients correlates with an intravascular device source / V.G. Jr. Fowler, L.M. McIntyre, M.R. Yeaman et al. // J. Infect. Dis.

- 2000. - Vol. 182. - No. 4. - P. 1251-1254.

253. In vitro susceptibility to thrombin-induced platelet microbicidal protein is associated with reduced disease progression and complication rates in experimental Staphylococcus aureus endocarditis: microbiological, histopathologic, and echocardiography analyses / L.I. Kupferwasser, M.R. Yeaman, S.M. Shapiro et al. // Circulation. -2002. - Vol. 105. - No. 6. - P. 746-752.

254. In vivo efficacy and molecular docking of designed peptide that exhibits potent antipneumococcal activity and synergises in combination with penicillin / C.F. Le, M.Y. Yusof, M.A. Hassan et al. // Sci. Rep. - 20156. - Vol. 5. - doi: 10.1038/srep11886.

255. Incorporation of antimicrobial peptides on functionalized cotton gauzes for medical applications / A.P. Gomes, J.F. Mano, J.A. Queiroz et al. // Carbohydr. Polym.

- 2015. - No. 127. - P. 451-461.

256. Inhibition of porcine reproductive and respiratory syndrome virus by Cecropin D in vitro / X. Liu, C. Guo, Y. Huang et al. // Infect Genet Evol. - 2015. - No. 34. - P. 7-16.

257. Interactions between Innate Immunity, Microbiota, and probiotics / G. Giorgetti, G. Brandimarte, F. Fabiocchi et al. // J. Immunol. Res. - 2015. - doi: 10.1155/2015/501361.

258. Intracellular vesicles as reproduction elements in cell wall-deficient L-form bacteria / Y. Briers, T. Staubli, M.C. Schmid et al. // PLoS One. - 2012. - Vol. 7. No. 6.

- doi: 10.1371/journal.pone.0038514.

259. Investigation of Copper Nanoparticles Antibacterial Mechanisms Tested by Luminescent Escherichia coli Strains / D.G. Deryabin, E.S. Aleshina, A.S. Vasilchenko et al. // Nanotechnologies in Russia. - 2013. - Vol. 8. - No. 5-6. - P. 402-408.

260. Isolation and biochemical characterization of enterocins produced by en-terococci from different sources / M.R. Foulquié Moreno, R. Callewaert, B. Devreese et al. // Journal of Applied Microbiology. - 2003. - No. 94. - P. 214-229.

261. Isolation and identification of Enterococcus faecalis 2B4-1 containing antitumor substances / S.J. Park, D.S. Lim, S.K. Yoon et al. // Korean Journal of Applied Biotechnology. - 1998. - No. 26. - P. 471-475.

262. Isolation and purification of enterocin E-760 with broad antimicrobial activity against gram-positive and gram-negative bacteria / J. Line, E.A. Svetoch, B.V. Eruslanov et al. // Antimicrob. Agents and Chemother. - 2008. - Vol. 52. - No. 3. - P. 1094-1100.

263. Isolation, characterization and mechanism of action of an antimicrobial peptide from Lecythis pisonis seeds with inhibitory activity against Candida albicans / M.E. Vieira, I.M. Vasconcelos, O.L. Machado et al. // Acta Biochim. Biophys. Sin. -2015. - Vol. 47. - No. 9. - P. 716-729.

264. íspirli, H. Characterization of functional properties of Enterococcus faecium strains isolated from human gut / H. íspirli, F. Demirba§, E. Dertli // Can. J. Microbiol. - 2015. - Vol. 61. - No. 11. - P. 861-870.

265. Ivanov, Y.B. Comparative activities of cattle and swine platelet microbicidal proteins / Y.B. Ivanov, V.A. Gritsenko // Probiotics and Antimicrobial Proteins. - 2009. - Vol. 1. - No. 2. - P. 148-151.

266. Ivanov, Y.B. Distribution of secretory inhibitor of platelet microbicidal protein among anaerobic bacteria isolated from stool of children with diarrhea / Y.B. Ivanov, V.A Gritsenko // World J. Gastroenterol. - 2008. - Vol. 14. - No. 35. - P. 5428-5431.

267. Ivanov, Y.B. In vitro resistance to human platelet microbicidal protein among urethral staphylococcal and enterococcal isolates with its correlation with prostatitis / Y.B. Ivanov // Indian Journal of Medical Microbiology. - 2005. - Vol. 23. - No. 4. - P. 253-255.

268. Ivanov, Y.B. The effect of brief exposure to sub-therapeutic concentrations of chlorhexidine digluconate on the susceptibility of staphylococci to platelet

microbicidal protein / Y.B. Ivanov, V.A. Gritsenko, M.D. Kuzmin // Surg. Infect. (Larchmt). - 2015. - Vol. 16. - No. 3. - P. 263-266.

269. Jackson, C.R. Prevalence, species distribution and antimicrobial resistance of enterococci isolated from dogs and cats in the United States / C.R. Jackson, P.J. Fedorka-Cray, J.A. Davis // J. Appl. Microbiol. - 2010. - Vol. 107. - No.4 - P. 12691278.

270. Jackson, C.R. Use of a genus- and species-specific multiplex PCR for identification of enterococci / C.R. Jackson, P.J. Fedorka-Cray, J.B. Barrett // Journal of Clinical Microbiology. - 2004. - Vol. 42. - No. 8. - P. 3558-3565.

271. Jenssen, H. Peptide Antimicrobial Agents / H. Jenssen, P. Hamill, R.E.W. Hancock // Clin. Microbiol. Rev. - 2006. - Vol. 19. - No. 3. - P. 491-511.

272. Johansson, D. Virulence factors in isolates of Enterococcus faecalis from infective endocarditis and from the normal flora / D. Johansson, M. Rasmussen // Microb. Pathog. - 2013. - Vol. 55. - P. 28-31.

273. Kafil, H.S. Spread of Enterococcal Surface Protein in Antibiotic Resistant Enterococcus faecium and Enterococcus faecalis isolates from Urinary Tract Infections / H.S. Kafil, A.M. Mobarez // Open Microbiol. J. - 2015. - Vol. 26. - No. 9. - P. 14-17.

274. Kang, J.H. Characterization of a bacteriocin produced by Enterococcus faecium GM-1 isolated from an infant / J.H. Kang, M.S. Lee // Journal of Applied Microbiology. - 2005. - Vol. 98. - P. 1169-1176.

275. Katsu, T. Interaction between polyamines and bacterial outer membranes as investigated with ion-selective electrodes / T. Katsu, H. Nakagawa, K. Yasuda // Antimicrob. Agents Chemother. - 2002. - Vol. 46. - No. 4. - P. 1073-1079.

276. Keis, S. Characterization of a vancomycinresistant Enterococcus faecalis (VREF) isolate from a dog with mastitis: further evidence of a clonal lineage of VREF in New Zealand / S. Keis, J.M. Smith, G.M. Cook // J. Clin. Microbiol. - 2003. -Vol. 13. - P. 3331-3333.

277. Kim, S.M. Antimicrobial resistance, molecular, and phenotypic diversity of Escherichia coli isolates from fresh vegetable products in Korea / S.M. Kim, T. Oh,

H.J. Kim // Journal of the Korean Society for Applied Biological Chemistry. - Vol. 58.

- No. 5. - P. 745-750.

278. Klaenhammer, T.R. Genetics of bacteriocins produced by lactic acid bacteria / T.R. Klaenhammer // FEMS Microbiology Reviews. - 1993. - No. 12. - P. 39-86.

279. Knappe, D. Oncocin Onc72 is efficacious against antibiotic-susceptible Klebsiella pneumoniae ATCC 43816 in a murine thigh infection model / D. Knappe, K. Adermann, R. Hoffmann // Biopolymers. - 2015. - doi: 10.1002/bip.22668. [Epub ahead of print].

280. Korajkic, A. Investigation of human sewage pollution and pathogen analysis at Florida Gulf Coast beaches / A. Korajkic, M.J. Brownell, V.J. Harwood // J. Appl. Microbiol. - 2011. - Vol. 110. - No. 1. - P. 174-183.

281. Lactobacilli and streptococci induce inflammatory chemokine production in human macrophages that stimulates Th1 cell chemotaxis / V. Veckman, M. Miettinen, S. Matikainen et al. // J. Leukoc. Biol. - 2003. - Vol. 74. - P. 395-402.

282. LAMP: A Database Linking Antimicrobial Peptides / X. Zhao, H. Wu, H. Lu, Li G., Q. Huang // PLoS One. - 2013. - Vol. 8. - No. 6. - P. e66557.

283. Laukova, A. Use of bacteriocin-producing, probiotic strain Enterococcus faecium AL41 to control intestinal microbiota in farm ostriches / A. Laukova, A. Kandricakova, J. Scerbova // Lett. Appl. Microbiol. - 2015. - Vol. 60. - No. 6. - P. 531-535.

284. Lee, S.Y. Penicillin-induced killing and postantibiotic effect in oral streptococci are enhanced by platelet microbicidal proteins / S.Y. Lee, S.J. Choe // Int. J. Antimicrob. Agents. - 2004. - Vol. 23. - No. 5. - P. 457-461.

285. Levy, O. Antimicrobial proteins and peptides of blood: templates for novel antimicrobial agents / O. Levy // Blood. - 2000. - Vol. 96. - No. 8. - P. 2664-2672.

286. Lin, L. Azithromycin synergizes with cationic antimicrobial peptides to exert bactericidal and therapeutic activity against highly multidrug-resistant gram-negative bacterial pathogens / L. Lin, P. Nonejuie, J. Munguia // EBioMedicine. - 2015. - Vol. 2.

- No. 7. - P. 690-698.

287. Liquid storage of boar semen: Current and future perspectives on the use of cationic antimicrobial peptides to replace antibiotics in semen extenders / M. Schulze, M. Dathe, D. Waberski et al. // Theriogenology. - 2015. - doi: 10.1016/j.theriogenology. [Epub ahead of print].

288. L-Rhamnosylation of Listeria monocytogenes wall teichoic acids promotes resistance to antimicrobial peptides by delaying interaction with the membrane / F. Carvalho, M.L. Atilano, R. Pombinho et al. // PLoS Pathog. - 2015. - Vol. 11. - No. 5.

- doi: 10.1371/journal.ppat.1004919.

289. Lusti-Narasimhan, M. Moving forward in tackling antimicrobial resistance: WHO actions / M. Lusti-Narasimhan, C.L. Pessoa-Silva, M. Temmerman / Sex Transm. Infect. - 2013. - Vol. 89. - P. 57-59.

290. Mangoni, M.L. Fighting microbial infections: A lesson from amphibian skin-derived esculentin-1 peptides / M.L. Mangoni, V. Luca, A.M. McDermott // Peptides. - 2015. - No. 71. - P. 286-295.

291. Marra, A. Enterococcal virulence determinants may be involved in resistance to clinical therapy / A. Marra, F. Dib-Hajj, L. Lamb // Diagn. Microbiol. Infect. Dis. - 2007. - Vol. 58. - No. 1. - P. 59-65.

292. Mathew, B. Antimicrobial activity of human a-defensin 5 and its linear analogs: N-terminal fatty acylation results in enhancedantimicrobial activity of the linear analogs / B. Mathew, R. Nagaraj // Peptides. - 2015. - No. 71. - P. 128-140.

293. McEwen, S.A. Antimicrobial use and resistance in animals / S.A. McEwen, P.J. Fedorka-Cray // Clin. Infect. Dis. - 2002. - No. 34. - P. 93-106.

294. Mechanism of action of puroindoline derived tryptophan-rich antimicrobial peptides / E.F. Haney, A.P. Petersen, C.K. Lau et al. // Biochimica et Biophysica Acta.

- 2013. - Vol. 1828. - No. 8. - P. 1802-1813.

295. Mechanism study on a new antimicrobial peptide Sphistin derived from the N-terminus of crab histone H2A identified in haemolymphs of Scylla paramamosain / B. Chen, D.Q. Fan, K.X. Zhu et al. // Fish Shellfish Immunol. - 2015. - Vol. 47. - No. 2. - P. 833-846.

296. Membrane permeabilization by thrombin-induced platelet microbicidal protein 1 is modulated by transmembrane voltage polarity and magnitude / S.P. Koo, A.S. Bayer, B.L. Kagan, M.R. Yeaman // Infect. Immun. -1999. - Vol. 67. - No. 5. -P. 2475-2481.

297. Metagenomic analysis of the human distal gut microbiome / S.R. Gill, M. Pop, R.T. Deboy et al. // Science. - 2006. - No. 312. - P. 1355-1359.

298. Meunier, O. From the discovery of antibiotics to emerging highly drug-resistant bacteria / O. Meunier // Soins. - 2015. - doi: 10.1016/j.soin.2015.04.026.

299. Micota, B. The role of blood platelets in infections / B. Micota, B. Sadowska, B. Rózalska // Postepy Hig. Med. Dosw. (Online). - 2015. - No. 69. - P. 624-632.

300. Microbial stability and safety of traditional Greek Graviera cheese: characterization of the lactic acid bacterial flora and culture-independent detection of bacteriocin genes in the ripened cheeses and their microbial consortia / J. Samelis, A. Kakouri, E.C. Pappa et al. // J. Food Prot. - 2010. - Vol. 73. - No. 7. - P. 1294-1303.

301. Miller, W.R. Mechanisms of antibiotic resistance in enterococci / W.R. Miller, J.M. Munita, C.A. Arias // Expert. Rev. Anti Infect. Ther. - 2014. - Vol. 12. -No. 10. - P. 1221-1236.

302. Molecular and structural requirements of a lipoteichoic acid from Enterococcus hirae ATCC 9790 for cytokine-inducing, antitumor, and antigenic activities / H. Takada , Y. Kawabata , R. Arakaki et al. // Infect. Immun. - 1995. - Vol. 63. - No. 1. - P. 57-65.

303. Molecular characterization and antibiotic resistance of Enterococcus species from gut microbiota of Chilean Altiplano camelids / K. Guerrero-Olmos, J. Báez, N. Valenzuela et al. // Infect. Ecol. Epidemiol. [electronic journal]. - 2014. - Vol. 4.

304. Molecular mechanisms of quinolone, macrolide, and tetracycline resistance among Campylobacter isolates from initial stages of broiler production / D. Pérez-Boto, S. Herrera-León, F.J. García-Peña et al. // Avian Pathol. - 2014. - Vol. 43. - No. 2. - P. 176-182.

305. Monoassociation with probiotic Lactobacillus delbrueckii UFV-H2b20 stimulates the immune system and protects germfree mice against Listeria monocytogenes infection / L.M. dos Santos, M.M. Santos, H.P. de Souza Silva et al. // Med. Microbiol. Immunol. - 2011. - Vol. 200. - No. 1. - P. 29-38.

306. Morrison, B.J. Carbapenemase producing bacteria in the food supply escaping detection / B.J. Morrison, J.E. Rubin // PLoS One. - 2015. - Vol. 10. - No. 5. -doi: 10.1371/journal.pone.0126717.

307. Mortality in kittens is associated with a shift in ileum mucosa-associated enterococci from Enterococcus hirae to biofilm-forming Enterococcus faecalis and adherent Escherichia coli / A. Ghosh, L. Borst, S.H. Stauffer et al. // J. Clin. Microbiol. - 2013. - Vol. 51. - No. 11. - P. 3567-3578.

308. Multiple roles for Enterococcus faecalis glycosyltransferases in biofilm-associated antibiotic resistance, cell envelope integrity, and conjugative transfer / J.L. Dale, J. Cagnazzo, C.Q. Phan et al. // Antimicrob. Agents Chemother. - 2015. - Vol. 59. - No. 7. - P. 4094-4105.

309. Multiplex PCR for detection of aminoglycoside resistance genes in entero-cocci / S. Vakulenko, S.M. Donabedian, A.M. Voskresenskiy et al. // Antimicrob. Agents and Chemother. - 2003. - Vol. 47. - No. 4. - P. 1423-1426.

310. Mundy, L.M. Relationships between enterococcal virulence and antimicrobial resistence / L.M. Mundy, D.F. Sahm, M. Gilmore // Clin. Microbiol. Rev. - 2000. -Vol. 13. - No. 4. - P. 513-522.

311. Nes, I.F. Bacteriocin diversity in Streptococcus and Enterococcus / I.F. Nes, D.B. Diep, H. Holo // J. Bacteriol. - 2007. - Vol. 189. - No. 4. - P. 1189-1198.

312. Nigutova, K. Bacteriocin-like activity production and resistance in selected enterococci and streptococci of animal origin / K. Nigutova, P. Pristas, P. Javorsky // Archives. Animal. Nutrition. - 2005. - Vol. 59. - No. 3. - P. 205-211.

313. Nikiyan, H.N. Humidity-dependent bacterial cells functional morphometry investigations using atomic force microscope / H.N. Nikiyan, A.S. Vasilchenko, D.G. Deryabin // International Journal of Microbiology. - 2010. - doi: 10.1155/2010/704170.

314. NLF20: an antimicrobial peptide with therapeutic potential against invasive Pseudomonas aeruginosa infection / P. Papareddy, G. Kasetty, M. Kalle et al. // J. Antimicrob. Chemother. - 2015. [Epub ahead of print].

315. Novel antimicrobial peptide specifically active against Porphyromonas gingivalis / T. Suwandecha, T. Srichana, N. Balekar et al. // Arch. Microbiol. - 2015. -Vol. 197. - No. 7. - P. 899-909.

316. Novel antimicrobial peptides with high anticancer activity and selectivity / H.L. Chu, B.S. Yip, K.H. Chen et al. // PLoS One. - 2015. - Vol. 10. - No. 5. - doi: 10.1371/journal.pone.0126390.8167-8175.

317. Novel chimeric peptide with enhanced cell specificity and antiinflammatory activity / Y.M. Kim, N.H. Kim, J.W. Lee et al. // Biochem. Biophys. Res. Commun. - 2015. - Vol. 463. - No. 3. - P. 322-328.

318. Occurrence of genes coding for MSCRAMM and biofilm-associated protein Bap in Staphylococcus spp. isolated from bovine subclinical mastitis and relationship with somatic cell counts / E. Zuniga, P.A. Melville, A.B.S. Saidenberg et al. // Microbial Pathogenesis. - 2015. - Vol. 89. - P. 1-6.

319. O'Toole, G. Biofilm formation as microbial development / G. O'Toole, H.B. Kaplan, R. Kolter // Annu. Rev. Microbiol. - 2000. - No. 54. - P. 49-79.

320. Pathogenic nontuberculous mycobacteria resist and inactivate cathelicidin: implication of a novel role for polar mycobacterial lipids / J.R. Honda, T. Hess, K.C. Malcolm et al. // PLoS One. - 2015. - Vol. 10. - No. 5. - doi: 10.1371/journal.pone.0126994.

321. Penchovsky, R. Designing drugs that overcome antibacterial resistance: where do we stand and what should we do? / R. Penchovsky, M. Traykovska // Expert Opin. Drug. Discov. - 2015. - Vol. 10. - No. 6. P. 631-650.

322. Peptides from the scorpion Vaejovis punctatus with broad antimicrobial activity / S. Ramírez-Carreto, J.M. Jiménez-Vargas, B. Rivas-Santiago et al. // Peptides. -2015. - No. 73. - P. 51-59.

323. Peptoid-substituted hybrid antimicrobial peptide derived from papiliocin and magainin 2 with enhanced bacterial selectivity and anti-inflammatory activity / A.

Shin, E. Lee, D. Jeon et al. // Biochemistry. - 2015. - Vol. 54. - No. 25. - P. 39213931.

324. Peschel, A. Staphylococcal resistance to antimicrobial peptides of mammalian and bacterial origin / A. Peschel, L.V. Collins // Peptides. - 2001. - Vol. 22. - No. 10. - P. 1651-1659.

325. Peschel, A. The co-evolution of host cationic antimicrobial peptides and microbial resistance / A. Peschel, H.G. Sahl // Nat. Rev. Microbiol. - 2006. - Vol. 4. -No. 7. - P. 529-536.

326. Pharmacological synergism of bee venom and melittin with antibiotics and plant secondary metabolites against multi-drug resistant microbial pathogens / I. Al-Ani, S. Zimmermann, J. Reichling, M. Wink // Phytomedicine. - 2015. - Vol. 22. - No. 2. - P. 245-255.

327. Phenotypic and genotypic study of gelatinase and beta-haemolysis activities in faecal enterococci of poultry in Portugal / P. Poeta, D. Costa, N. Klibi et al. // J. Vet. Med. - 2006. - Vol. 53. - No. 5. - P. 203-208.

328. Photodynamic inactivation of virulence factors of Candida strains isolated from patients with denture stomatitis / C.A. Pereira, N. Domingues, M.P. Silva et al. // Journal of Photochemistry and Photobiology. - 2015. - Vol. 153. - P. 82-89.

329. Plasmid-mediated resistance to thrombin-induced platelet microbicidal protein in staphylococci: role of the qacA locus / L.I. Kupferwasser, R.A. Skurray, M.H. Brown et al. // Antimicrob. Agents Chemother. - 1999. - Vol. 43. - No. 10. - P. 23952399.

330. Platelet microbicidal activity is an important defense factor against viridans streptococcal endocarditis / J. Dankert, J. Krijgsveld, J. van Der Werff et al. // J. Infect. Dis. - 2001. - Vol. 184. - No. 5. - P. 597-605.

331. Platelet factor 4 activity against P. falciparum and its translation to nonpeptidic mimics as antimalarials / M.S. Love, M.G. Millholland, S. Mishra et al. // Cell Host Microbe. - 2012. - Vol. 12. - No. 6. - P. 815-823.

332. Platelet lysate induces in vitro wound healing of human keratinocytes associated with a strong proinflammatory response / E. R. Backly, V. Ulivi, L. Tonachini et al. // Tissue Eng. Part. A. - 2011. - Vol. 17. - No. 13-14. - P. 1787-1800.

333. Platelets display potent antimicrobial activity and release human beta-defensin / M. Tohidnezhad , D. Varoga, C.J. Wruck et al. // Platelets. - 2012. -Vol. 23.

- No. 3. - P. 217-223.

334. Plectasin is a peptide antibiotic with therapeutic potential from a saprophyt-ic fungus / P.H. Mygind, R.L. Fischer, K.M. Schnorr et al. // Nature. - 2005. - No. 437.

- P. 975-980.

335. Poeta, P. Detection of antimicrobial activities and bacteriocin structural genes in faecal enterococci of wild animals / P. Poeta, D. Costa, B. Rojo-Bezares et al. // Microbiological Research. - 2007. - Vol. 162. - P. 257-263.

336. Pomba, C. Treatment of a lower urinary tract infection in a cat caused by a multi-drug methicillin-resistant Staphylococcus pseudintermedius and Enterococcus faecalis / C. Pomba, N. Couto, A.J. Moodley // Feline Med. Surg. - 2010. - Vol. 12 -No. 10. - P. 802-806.

337. Popaganni, M. Ribosomally synthezed peptides with antimicrobial properties: biosynthesis, structure, function, and applications / M. Popaganni // Biotechnol. Adv. - 2003. - Vol. 21. - No. 6. - P. 465-499.

338. Prevalence and antibiotic resistance of Enterococcus spp. isolated from retail cheese, ready-to-eat salads, ham, and raw meat / G. Pesavento, C. Calonico, B. Ducci et al. // Food Microbiol. - 2014. - Vol. 41. - P. 1-7.

339. Prevalence of antimicrobial resistance in faecal enterococci from vet-visiting pets and assessment of risk factors / L. Leite-Martins, M.I. Mahu, A.L. Costa et al. // Vet. Rec. - 2015. - Vol. 27. - No. 176(26). - doi: 10.1136/vr.102888.

340. Prevalence of virulence genes of biofilm producing strains of Staphylococcus epidermidis isolated from clinical samples in Iran / S.M. Solati, E. Tajbakhsh, F. Khamesipour, H.C. Gugnani // AMB Express. - 2015. - Vol. 5. - doi: 10.1186/s13568-015-0134-3.

341. Prevalence, antimicrobial resistance and genetic lineages of Enterococcus spp. from vegetable food, soil and irrigation water in farm environments in Tunisia / L. Ben Said, N. Klibi, R. Dziri et al. // J. Sci. Food Agric. - 20156. - No. 19. - doi: 10.1002/jsfa.7264.

342. Prevalence, diversity and characterization of enterococci from three coraci-iform birds / P. Splichalova, P. Svec, A. Ghosh et al. // Antonie Van. Leeuwenhoek. -2015. - Vol. - 107. - No. 5. - P. 281-289.

343. Prevalence, resistance patterns, and risk factors for antimicrobial resistance in bacteria from retail chicken meat in Colombia / P. Donado-Godoy, B.A. Byrne, M. León et al. // J. Food Prot. - 2015. - Vol. 78. - No. 4. - P. 751-759.

344. Prevalence, seasonality, and growth of enterococci in raw and pasteurized milk in Victoria, Australia / C.M. McAuley, M.L. Britz, K.S. Gobius et al. // J. Dairy Sci. - 2015. - No. 14. - doi: 10.3168/jds.2015-9335.

345. Purification and in vitro activities of rabbit platelet microbicidal proteins / M.R. Yeaman, Y.Q. Tang, A.J. Shen et al. // Infect Immun. - 1997. - Vol. 65. - No. 3. - P. 1023-1031.

346. Purification and partial characterization of a thermostable antimicrobial protein from Bacillus subtilis FB123 / B. Shi, H. Zheng, J. Huang et al. // World J. Microbiol Biotechnol. - 2015. - Vol. 31. - No. 8. - P. 1285-1290.

347. Purification, primary structures, and antibacterial activities of beta-defensins, a new family of antimicrobial peptides from bovine neutrophils / M.E. Selsted, Y.Q. Tang, W.L. Morris et al. // J. Biol. Chem. - 1993. - Vol. 268. - No. 9. -P. 6641-6648.

348. PvD1 defensin, a plant antimicrobial peptide with inhibitory activity against Leishmania amazonensis / V.V. do Nascimento, O. Mello Éde, L.P. Carvalho et al. // Biosci Rep. - 2015. - Vol. 35. - No. 5. - doi: 10.1042/BSR20150060.

349. Quantitative assessment of faecal shedding of ß-lactam-resistant Escherichia coli and enterococci in dogs / C. Espinosa-Gongora, S.Q. Shah, L.R. Jessen et al. //Vet. Microbiol. - 2015. - doi: 10.1016/j.vetmic.2015.10.004. [Epub ahead of print].

350. Rathnayake, I.U. Antibiotic resistance and virulence traits in clinical and environmental Enterococcusfaecalis and Enterococcus faecium isolates / I.U. Rathnayake, M. Hargreaves, F. Huygens // Syst. Appl. Microbiol. - 2012. - Vol. 35. -No. 5. - P. 326-333.

351. Reduced susceptibility of Staphylococcus aureus to vancomycin and platelet microbicidal protein correlates with defective autolysis and loss of accessory gene regulator (agr) function / G. Sakoulas, G.M. Eliopoulos, V.G. Fowler et al. // Antimicrob. Agents Chemother. - 2005. - Vol. 49. - No. 7. - P. 2687-2692.

352. Resident cats in small animal veterinary hospitals carry multi-drug resistant enterococci and are likely involved in cross-contamination of the hospital environment / A. Ghosh, K. Kukanich, C.E. Brown et al. // Frontiers in Microbiology. - 2012. - No. 3. - P. 62.

353. Resistance to platelet microbicidal protein results in increased severity of experimental Candida albicans endocarditis / M.R. Yeaman, S.S. Soldan, M.A. Ghannoum et al. // Infect. Immun. - 1996. - No. 64. - P. 1379-1384.

354. Reuter, G. Present and future of probiotics in Germany and in central Europe / G. Reuter // Bioscience Microflora. - 1997. - Vol. 16. - P. 43-51.

355. Review antimicrobial peptides in 2014 / G. Wang, B. Mishra, K. Lau et al. // Pharmaceuticals. - 2015. - Vol. 8. - No. 1. - P. 123-150.

356. Rice, L.B Do we really need new anti-infective drugs? / L.B. Rice // Current Opinion in Pharmacology - 2003. - No. 3. - P. 459-463.

357. Safety and technological properties of bacteriocinogenic enterococci isolates from Tunisia / I. Jaouani, M.S. Abbassi, S.C. Ribeiro et al. // J. Appl. Microbiol. - 2015. - Vol. 119. - No. 4. - P. 1089-1100.

358. Sang, Y. Antimicrobial peptides and bacteriocins: alternatives to traditional antibiotics / Y. Sang, F. Blecha // Anim. Health. Res. Rev. - 2008. - Vol. 9. - No. 2. -P. 227-235.

359. Sarantinopoulos, P. Effect of Enterococcus faecium on microbiological, physicochemical and sensory characteristics of Greek Feta cheese / P. Sarantinopoulos,

G. Kalantzopoulos, E. Tsakalidou // International Journal of Food Microbiology. -2002. - No. 76. - P. 93-105.

360. Schleifer, K. H. Transfer of Streptococcus faecalis and Streptococcus faecium to the genus Enterococcus nom. rev. as Enterococcus faecalis comb. nov. and Enterococcus fuecium comb. nov. / K. H. Schleifer, R. Kilpper-Balz // Int. J. Syst. Bacteriol. - 1984. - No. 34. - P. 31-34.

361. Schwarz, S. Use of antimicrobials in veterinary medicine and mechanisms of resistance / S. Schwarz, E. Chaslus-Dancla // Vet. Res. - 2001. - No. 32. - P. 201225.

362. Screening of virulence determinants in Enterococcus faecium strains isolated from breast milk / C. Reviriego, T. Eaton, R. Martin et al. // Journal of Human Lact a-tion. - 2005. - No. 21. - P. 131-137.

363. Secretory leukocyte protease inhibitor binding to mRNA and DNA as a possible cause of toxicity to Escherichia coli / K.W. Miller, R.J. Evans, S.P. Eisenberg et al. // J. Bacteriol. - 1989. - No. 171. - P. 2166-2172.

364. Seed defensins of barnyard grass Echinochloa crusgalli (L.) Beauv. / T.I. Odintsova, E.A. Rogozhin, Yu.V. Baranov et al. // Biochemie. - 2008. - Vol. 90. - P. 1667-1673.

365. Shapiro, J.A. Thinking about bacterial populations as multicellular organisms / J.A. Shapiro // Annu. Rev. Microbiol. - 1998. - Vol. 52. - P. 81-104.

366. Skin secretion peptides: the molecular facet of the deimatic behavior of the four-eyed frog, Physalaemus nattereri (Anura, Leptodactylidae) / E.A. Barbosa, T. Iembo, G.R. Martins et al. // Rapid Commun. Mass. Spectrom. - 2015. - Vol. 29. - No. 21. - P. 2061-2068.

367. Soares-Santos, V. Characterization of Enterococci from Food and Food-Related Settings // V. Soares-Santos, A.S. Barreto, T. Semedo-Lemsaddek // J. Food Prot. - 2015. - Vol. 78. - No. 7. - P. 1320-1326.

368. Starke, I.C. Effects of the probiotic Enterococcus faecium NCIMB 10415 on selected lactic acid bacteria and enterobacteria in co-culture / I.C. Starke, J. Zentek, W. Vahjen // Benef. Microbes. - 2015. - Vol. 6. - No. 3. - P. 345-352.

369. Status of methods for assessing bacterial cell surface chargeq properties based on zeta potential measurements / W. Wilson, M. Wade, S. Holman, F.R. Champlin // J. Microbiol. Meth. - 2001. - Vol. 43. - P. 153-164.

370. Strains of Enterococcus faecalis differ in their ability to coexist in biofilms with other root canal bacteria / L.E. Chávez de Paz , J.R. Davies , G. Bergenholtz et al. // Int. Endod. J. - 2015. - Vol. 48. - No. 10. - P. 916-925.

371. Strompfová, V. Enterococci from Piglets - Probiotic Properties and Responsiveness to Natural Antibacterial Substances / V. Strompfová, A. Lauková // Folia Microbiol. - 2009. - Vol. 54. - No. 6. - P. 538-544.

372. Structural dissection of crotalicidin, a rattlesnake venom cathelicidin, retrieves a fragment with antimicrobialand antitumor activity / C.B. Falcao, C. Pérez-Peinado, B.G. de la Torre et al. // J. Med. Chem. - 2015. [Epub ahead of print].

373. Study of Lactic Acid Bacteria Community From Raw Milk of Iranian One Humped Camel and Evaluation of Their Probiotic Properties / N. Davati, F. Tabatabaee Yazdi, S. Zibaee et al. // Jundishapur J. Microbiol. - 2015. - Vol. 31. - No. 8(5). - doi: 10.5812.

374. Surveillance report of drug-resistant bacteria from 2007 to 2012 in Saga Prefecture, Japan / M. Kiyosuke, Z. Nagasawa, T. Hotta et al. // Rinsho Byori. - 2014.

- Vol. 62. - No. 6. - P. 546-551.

375. Susceptibilities of Cryptococcus neoformans strains to platelet binding in vivo and to the fungicidal activity of thrombin-induced platelet microbicidal proteins in vitro / S. Nail, R. Robert, F. Dromer et al. // Infect. Immun. - 2001. - Vol. 69. - No. 2.

- P. 1221-1225.