Внеклеточные лектины Lentinus edodes: характеристика, свойства и предполагаемые функции тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.00.04, доктор биологических наук Цивилева, Ольга Михайловна

• Цивилева, Ольга Михайловна
• доктор биологических наук
• 2008

Оглавление диссертации доктор биологических наук Цивилева, Ольга Михайловна

ВВЕДЕНИЕ.

1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

1.1. СВОЙСТВА И ФУНКЦИИ ЛЕКТИНОВ ГРИБОВ

1.1.1. Общее понятие о лектинах.

1.1.2. Предполагаемая роль лектинов грибов

1.1.3. Биологические свойства грибных лектинов.

1.1.4. Применение грибных лектинов

1.2. МОРФОЛОГО-КУЛЪТУРАЛЬНЫЕ И ФИЗИОЛОГО-БИОХИМИЧЕСКИЕ ОСОБЕННОСТИ LENTINGS EDODES (BERK.) SING

LENTINULA EDODES (BERK.) PEGLER]

1.2.1. Краткая характеристика Lehtinus edodes.

1.2.2. Lentinus edodes - гриб "белой" гнили

1.2.3. Питательные свойства и медицинское значение Lentinus edodes.

1.3. ЗНАЧЕНИЕ ЭКЗОГЕННЫХ НИЗКОМОЛЕКУЛЯРНЫХ СОЕДИНЕНИЙ В ЖИЗНЕДЕЯТЕЛЬНОСТИ МИЦЕЛИАЛЬНЫХ КУЛЬТУР

1.3.1. Соединения селена в процессах жизнедеятельности биотехнологически значимых грибных культур.

1.3.1.1. Селен - составляющая часть минерального питания грибов

1.3.1.2. Химия селена в живой клетке.

1.3.1.3. Влияние искусственных добавок селенсодержащих веществ на развитие грибных культур.

1.3.2. Соединения меди в биохимии микроорганизмов.

1.3.3. Фитогормон ß-индолил-З-уксусная кислота в искусственной культуре базидиомицетов.

2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ

2.1. ОБЪЕКТЫ ИССЛЕДОВАНИЯ, УСЛОВИЯ КУЛЬТИВИРОВАНИЯ

2.2. МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ

2.2.1. Получение чистой мицелиальной культуры и плодовых тел Ь. edod.es.

2.2.2. Пробоотбор грибных изолятов с плотных и жидких сред.

2.2.3. Определение ростовых характеристик грибной культуры.

2.2.4,Определение гемагглютинирующей активности.

2.2.5. Установление зависимости активности лектинов от условий культивирования.

2.2.6. Определение углеводной специфичности агглютининов.

2.2.7. Определение молекулярной массы белков.

2.2.8. Анализ аминокислотного состава.

2.2.9. Хроматографический анализ углеводов

2.2.10. Дериватизация углеводных фракций.

2.2.11. Анализ жирнокислотного состава.

2.2.12. Получение антител к лектинам.

2.2.13. Иммуноферментный анализ.

2.2.14. Определение индольных и фенольных соединений.

2.2.15. Рентгенофазовый анализ.

2.2.16. Спектральный анализ ЯМР 'Н.

2.2.17. РЖ спектральный анализ.

2.2.18. Расчетные методы квантовой химии и ОБАБ.

2.2.19. Статистическая обработка экспериментальных данных

3. РЕЗУЛЬТАТЫ И ОБСУЖДЕНИЕ

3.1. ОБНАРУЖЕНИЕ, ВЫДЕЛЕНИЕ, ОЧИСТКА, ОПРЕДЕЛЕНИЕ СПЕЦИФИЧНОСТИ ГЕМАГГЛЮТИНИНОВ ЬЕМТШиБ ЕВ О ВЕБ

3.1.1. Обнаружение внеклеточных лектинов!/. edodes.

3.1.2. Выделение и очистка, определение углеводной специфичности лектинов.

3.2. ЗАВИСИМОСТЬ ЛЕКТИНОВОЙ АКТИВНОСТИ ОТ УСЛОВИЙ КУЛЬТИВИРОВАНИЯ

3.2.1. Влияние температуры, дозы посевного мицелия, возраста культуры на лектиновую активность/,, edodes

3.2.2. Активность внеклеточных лектинов/,. edodes в зависимости от источников углерода и азота.

3.2.3. Эффект некоторых низкомолекулярных компонентов среды: эксперимент и квантовохимическое рассмотрение

3.2.3.1. Катионы двухвалентных металлов

3.2.3.2. Катионы металлов триады железа.

3.2.3.3. Селен в органической форме

3.2.4. Воздействие неблагоприятных факторов на лектиновую активность/,, edodes.

3.3. ФИЗИКО-ХИМИЧЕСКАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА ЛЕКТИНОВ LENTINUS EDODES

3.3.1. Внеклеточный гликопротеин L. edodes — лектин/,

3.3.2. Внеклеточный протеогликан L. edodes - лектин L

3.4. ЛЕКТИНЫ ШИИТАКЕ В ПРОЦЕССАХ МОРФОГЕНЕЗА

3.4.1. Лектиновая активность/,, edodes на разных стадиях . формирования плодовых тел.

3.4.2. Формирование пигментированной мицелиальной пленки в глубинной культуре шиитаке в зависимости от активности внеклеточных лектинов

3.4.3. Взаимосвязь углеводной специфичности лектинов и углеводного состава мицелия L. edodes на разных стадиях морфогенеза.

3.4.4. Изменение жирнокислотного состава общих липидов и лектиновой активности L. edodes в процессе морфогенеза.

3.5. ЛЕКТИНЫ ШИИТАКЕ ПРИ ВЗАИМОДЕЙСТВИИ С ЭКЗОГЕННЫМИ СОЕДИНЕНИЯМИ

3.5.1. Взаимодействие лектинов с органическими селенсодержащими веществами.

3.5.1.1. Влияние селенсодержащих соединений на активность внеклеточных пектинов Ь. ейойеБ

3.5.1.2. Изменение характеристик взаимодействия лектинов с селенорганическими соединениями в зависимости от стадии очистки препарата лектина.

3.5.1.3. Изменение характеристик взаимодействия лектинов с селенорганическими соединениями в зависимости от концентрации селенсодержащих соединений

3.5.1.4. Квантовохимические и ОБАИ свойства селенсодержащих соединений ряда

1,5-ди(4-К-фенил)-3-селенпентандионов-1,

3.5.1.5. Сравнительный анализ реакционной способности Х-цистеина и Х-метионина: некоторые теоретические предпосылки замещения атома серы на селен.

3.5.2. Взаимодействие лектинов с катионами меди (II).

3.5.3. Взаимодействие экзолектинов шиитаке с фитогормоном ИУК

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Внеклеточные лектины Lentinus edodes: характеристика, свойства и предполагаемые функции»

Актуальность темы данной работы определяется прежде всего ее направленностью на разрешение проблемы явного несоответствия между весьма ограниченным к настоящему времени уровнем информации о важных биологически активных соединениях, лектинах ксилотрофных базидиомицетов, и заинтересованностью исследователей в углубленном изучении этих углеводсвязывающих белков самого разного биологического происхождения. Грибы являются очень интересной в теоретическом и практическом плане группой живых организмов, в то же время внеклеточные грибные лектины практически не описаны.

Вопрос о возможности искусственного выращивания грибов уже свыше двух тысячелетий занимает человечество. Объектом научных исследований во всем мире являются более 100 тыс. видов. Промышленное производство высших грибов во многих странах мира выделилось в самостоятельную, интенсивно развивающуюся высокопроизводительную отрасль.

Общеизвестно функциональное значение грибов в различных биогеоценозах, где они благодаря широкому набору ферментов принимают активное участие в процессах деструкции и минерализации органического вещества. В настоящее время известно большое количество видов базидиальных грибов, которые представляют интерес в качестве продуцентов биологически активных веществ. К числу перспективных микологических объектов для поверхностного и глубинного культивирования с целью получения дополнительного источника белка, биологически активных соединений относится ксилотрофный базидиомицет Lentinus edodes.

Глубокие исследования физиологии высших грибов начались в последние три-четыре десятилетия. Происходящие при росте и развитии грибного организма сложные физиологические и биохимические процессы, их интенсивность, определяющиеся наследственными качествами самого организма и факторами внешней среды, требуют дальнейшего изучения. При этом кроме факторов, определяемых самим организмом, т.е. вид и штамм гриба, возраст культуры, способность к вегетативному размножению и образованию биологически активных веществ, интенсивность дыхания и др., необходимо учитывать и регулировать факторы внешней среды, влияющие на физиологические и биохимические процессы, как важнейшие факторы, определяющие активность гетеротрофных организмов [Дворнина, 1990].

Исследования роста базидиомицетов, в том числе L. edodes, на жидких средах направлены на изучение питательных потребностей и физиологии вида в чистой культуре, разработку технологии погруженного культивирования мицелия с целью получения биомассы кормового и пищевого назначения, препаратов, обладающих онкостатическим действием [Соломко и Митропольская, 1994]. Глубинное культивирование также предлагается как быстрый и эффективный метод производства посевного материала для грибоводства [Yang and Jong, 1989]. Значительно меньшее число работ посвящено биохимии глубинного культивирования, ее связи с физиологией роста и развития грибного организма в глубинной культуре. В частности, лектиновая активность высших грибов изучена явно недостаточно, лишь отдельные работы касаются изучения лектинов в связи с физиологическими аспектами, проблемами морфогенеза грибов. На стадиях, предшествующих плодоношению и характеризующихся у отдельных видов формированием специализированных вегетативных структур, таких как коричневая мицелиальная пленка шиитаке, исследование лектиновой активности приобретает особую актуальность, поскольку биохимические условия возникновения подобных особенностей морфогенеза и способов дальнейшего развития (перехода либо к нормальному плодоношению, либо к образованию недифференцированных базидиом) давно интересовали исследователей, оставаясь неопределенными.

Не обсуждалась роль лектинов при неблагоприятных условиях роста культур базидиомицетов, взаимодействие лектинов с важнейшими биологически активными соединениями (как антиоксидантной природы, так и вызывающими окислительный стресс; с соединениями фитогормональной природы, принимающими участие в цитодифференцировке у высших грибов). Не были выявлены регуляторы внеклеточной лектиновой активности, поэтому представляло интерес изучить не только эффекторы — компоненты синтетических сред культивирования, но и обнаружить какие-либо эндогенные низкомолекулярные регуляторы указанной активности, внешние условия их биосинтеза и проявления, что удалось реализовать в рамках настоящей работы.

Следовательно, ко времени начала наших исследований в этой области налицо был недостаток сведений по вопросам выявления лектиновой активности грибных культур, получения очищенных препаратов внеклеточных грибных лектинов, изучения их свойств и предполагаемых функций. Актуальным представляется наш посильный вклад в описание новой группы гликопротеинов ксилотрофных базидиомицетов, внеклеточных лектинов, физико-химические свойства которых важны для понимания их физиологической роли, морфогенетических функций в грибном организме как объекте микробиологических исследований. Учитывая вышеизложенные обстоятельства, нами было предпринято настоящее исследование.

Цель работы - характеристика внеклеточных лектинов культивируемого ксилотрофного базидиомицета Lentinus edodes и условий проявления их биологической активности.

Задачи исследования:

1. Провести скрининг штаммов Lentinus edodes на присутствие лектинов.

2. Выделить внеклеточные лектины L. edodes, изучить их химический состав, физико-химические свойства, углеводную специфичность.

3. Изучить зависимость лектиновой активности культуры L. edodes от условий выращивания. Выявить оптимальный состав жидкой среды выращивания с целью получения максимальной лектиновой активности. Разработать способ получения экзолектинов L. edodes F-249 с целью повышения выхода препаратов.

4. Исследовать влияние катионов металлов(И) на активность внеклеточных лектинов шиитаке с привлечением расчетных методов квантовой химии и QSAR.

5. Изучить влияние неблагоприятных внешних условий на лектиновую активность L. edodes во взаимосвязи с ростовыми характеристиками культуры.

6. Исследовать взаимосвязь активности внеклеточных лектинов L. edodes и морфогенеза (формирования коричневой мицелиальной пленки) в глубинной культуре.

7. Выявить взаимосвязь углеводного и жирнокислотного состава мицелия шиитаке на разных стадиях морфогенетического развития с лектиновой активностью и углеводной специфичностью лектинов культуры.

8. Исследовать влияние некоторых элементоорганических соединений (селен-, серу-, азотсодержащих) на активность внеклеточных лектинов шиитаке с привлечением теоретических представлений (пространственная и электронная структура молекул, QSAR свойства реактантов).

9. Исследовать биологические свойства лектинов: их способность к взаимодействию с веществами фитогормональной природы, с разными типами эритроцитов; антигенные свойства.

10. Изучить возможности использования глубинной культуры L. edodes при модифицированном способе ее выращивания в качестве технологически перспективного посевного материала.

Научная новизна работы

Впервые в культуральной жидкости и на поверхности мицелия ряда штаммов базидиомицета L. edodes обнаружены лектины, имеющие в зависимости от штамма различную специфичность к углеводам.

Выделены чистые препараты лектинов из культуральной жидкости L. edodes, изучены их физико-химические свойства, охарактеризована реакционная способность лектиновых препаратов.

Впервые показано, что максимальное повышение внеклеточной лектиновой активности базидиомицета наблюдается при условиях, отличных от оптимальных для выращивания культуры.

Впервые установлено участие лектинов в морфогенетических процессах и инициации плодообразования шиитаке. Выявлена взаимосвязь активности лектинов с формированием коричневой мицелиальной пленки в глубинной культуре; с процессами роста и развития грибного мицелия при твердофазном культивировании; с биосинтезом соединений, относящихся к важнейшим компонентам химического состава мицелия - липидам и углеводам.

Впервые на промежуточной стадии очистки одного из лектинов обнаружен и выделен необычный для макробазидиомицетов гликолипид моносахаридной природы, способный модифицировать активность внеклеточных лектинов шиитаке.

Впервые выявлено взаимодействие лектинов ксилотрофного базидиомицета с фитогормоном ИУК, сопровождающееся значительным увеличением лектиновой активности в системе "лектин-ИУК".

Научные положения работы расширяют и углубляют современные представления о разнообразии лектинов базидиомицетов и о физиолого-биохимических механизмах регуляции их биосинтеза и активности; позволяют с новых позиций подойти к изучению их функциональной роли в жизнедеятельности грибных культур, в адаптационных и морфогенетических процессах.

Практическая значимость исследования

Работа вносит вклад в развитие направления лектинологии, связанного с изучением лектинов высших грибов, в рамках которого положено начало новой области исследования препаратов внеклеточных лектинов ксилотрофных базидиомицетов.

Показана принципиальная осуществимость выделения и очистки внеклеточных лектинов из жидких синтетических сред культивирования ксилотрофных базидиомицетов. Разработана методика эффективной дифференциации хроматографических свойств двух внеклеточных лектинов, способствующей их более эффективному разделению. Выявлены низкомолекулярные вещества - эффекторы проявления внеклеточными лектинами их биологической активности, изучено взаимодействие лектинов с соединениями - антиоксидантами и индукторами окислительного стресса, с разными типами эритроцитов в реакции гемагглютинации; некоторые антигенные свойства. Подобная характеристика внеклеточных лектинов способствует перспективному использованию выделенных белков при проведении научных и прикладных исследований в области биохимии, энзимологии и иммунологии.

На основании результатов проведенного исследования выявлен ряд особенностей, проявляющихся при формировании неполноценных плодовых тел шиитаке в отсутствие характерной для данного вида коричневой мицелиальной пленки. Совокупность отличных от нормального плодоношения характеристик, в том числе по лектиновой активности, составу жирнокислотного и углеводного пула мицелия, могла бы служить дополнительным параметром биохимической оценки мицелия в процессе плодообразования. Полученные данные, свидетельствующие о существенных изменениях в направленности реакций синтеза, десатурации и элонгации жирных кислот у неполноценных плодовых тел, могут быть полезны и при обсуждении роли липидов в процессе морфогенеза.

Наше предположение и дальнейшее обоснование роли лектинов как потенциальных морфообразующих белков позволило внести определенный вклад в создание эффективного способа получения посевного мицелия шиитаке.

Материалы работы и препараты лектинов используются в учебном процессе и научно-исследовательской работе химического факультета СГУ, СВИРХБЗ, лаборатории микробиологии Института микробиологии HAH Беларуси. По результатам работы получен патент РФ, а также положительное решение формальной экспертизы. Подана заявка на предполагаемое изобретение (приоритет от 23.06.2006). Внедрение результатов диссертационной работы подтверждено соответствующими актами, представленными в Приложении к диссертации.

Основные положения, выносимые на защиту

1. В культуральной жидкости и на поверхности мицелия культур ряда штаммов Lentinus edodes присутствуют внеклеточные лектины, имеющие в зависимости от штамма различную специфичность к углеводам.

2. Культура L. edodes F-249 синтезирует два внеклеточных лектина, различающихся по своим физико-химическим свойствам, составу, углеводной специфичности, антигенным свойствам, агглютинации разных типов эритроцитов, реакционной способности в отношении низкомолекулярных биологически значимых соединений.

3. Активность и динамика образования внеклеточных лектинов L. edodes зависят от физико-химических условий культивирования. Наиболее значимыми факторами, влияющими на лектиновую активность глубинной культуры L. edodes, являются присутствие в среде культивирования аминокислотных источников азота, катионов металлов(Н), селена в органической форме.

4. При воздействии неблагоприятных для роста мицелия грибной культуры условий (температурного и питательного стресса) наблюдается значительное увеличение лектиновой активности, что можно связать со стабилизирующей, адаптогенной ролью лектинов L. edodes.

5. Лектины L. edodes принимают участие в морфогенетических процессах культуры. Установлена взаимосвязь внеклеточной лектиновой активности шиитаке с формированием коричневой мицелиальной пленки в глубинной культуре, с процессами роста и развития грибного мицелия при твердофазном культивировании, с синтезом соединений, относящихся к важнейшим компонентам химического состава мицелия — липидам и углеводам.

6. Одним из эндогенных регуляторов активности лектинов L. edodes является необычный для ксилотрофных базидиомицетов галактолипид S3, впервые выделенный из внеклеточных метаболитов L. edodes.

7. Экзогенными регуляторами внеклеточной лектиновой активности L. edodes могут служить низкомолекулярные соединения - индукторы окислительного стресса, а также антиоксиданты, в частности, селенорганические соединения, при взаимодействии с которыми сильно влияние электрофильных свойств реагента и гидрофобных взаимодействий.

8. Лектины L. edodes взаимодействуют с фитогормоном ИУК, при этом значительно увеличивается лектиновая активность в системе "лектин-ИУК". Продукты взаимодействия с ИУК для двух лектинов имеют, вероятно, одинаковую химическую природу.

9. Эффективным способом разделения двух внеклеточных лектинов шиитаке на основе дифференциации хроматографических характеристик и усиления биосинтеза одного из лектинов является воздействие Си(Н).

Работа выполнена в лаборатории микробиологии и микологии Института биохимии и физиологии растений и микроорганизмов РАН в соответствии с плановой тематикой "Съедобные культивируемые грибы: физиология и биохимия" (№ гос. регистрации 01970008158, научный руководитель темы: доктор биологических наук, старший научный сотрудник, зав. лабораторией В.Е. Никитина), "Роль углеводсвязывающих гликопротеинов в процессах жизнедеятельности бактерий и грибов " (№ гос. регистрации 01200606184, научный руководитель темы: доктор биологических наук, старший научный сотрудник, зав. лабораторией В.Е. Никитина).

Физико-химические задачи работы выполнены совместно с лабораторией структурных методов исследования ИБФРМ РАН (зав. лабораторией — к.х.н. Е.Е Федоров), с лабораторией биохимии (зав. лабораторией в период выполнения исследований — д.б.н. В.В. Игнатов), а также на кафедре аналитической химии и химической экологии Саратовского государственного университета им. Н.Г. Чернышевского (СГУ), при непосредственном участии д.х.н., профессора А.Н. Панкратова; на кафедре органической и биоорганической химии СГУ (зав. кафедрой - д.х.н., профессор А.П. Кривенько).

Частично данная работа получила финансовую поддержку:

- грант РФФИ "Лектины ксилотрофных базидиомицетов разных систематических групп" № 03-04-48129 (2003-2005 гг.)

- грант РФФИ-БРФФИ (РФФИ и Белорусского республиканского фонда фундаментальных исследований) "Гликополимеры и углеводсвязывающие белки ксилотрофных базидиомицетов: функции и биологическая активность" № 06-04-81042-Бела (2006-2007 гг.)

- грант Федерального агентства по науке и инновациям в рамках федеральной целевой научно-технической программы "Исследования и разработки по приоритетным направлениям развития науки и техники" на 20022006 годы (государственный контракт № 02.444.11.7331)

- программа Президиума РАН "Фундаментальные науки - медицине", совместный проект ИБФРМ РАН и ИРЭ РАН, 2007 г.

Апробация работы

Основные результаты работы были представлены на: 37th IUP AC Congr. Frontiers in Chemistry: Molecular Basis of the Life Sciences, 27th GDCh General Meeting (Berlin, Germany, Aug. 14-19, 1999); науч. конфер. "Фундаментальные и прикладные исследования саратовских ученых для процветания России и Саратовской губернии" (Саратов, 1999); 5th World Congr. of Theoretically Oriented Chemists - WATOC'99 (Imperial College, London, 1-6 Aug., 1999); 1-й регион, конфер. мол. ученых (Саратов, 26-27 марта 2002); Первом съезде микологов России "Современная микология в России" (Москва, 18-20 апреля 2002); межд. науч. конфер. "Физиология и биохимия культивируемых грибов" (6-8 июня 2002, Саратов); IV Всерос. конфер. мол. ученых (Саратов, 23-25 июня, 2003); Int. Symp. "Biochemical Interactions of Microorganisms and Plants with Technogenic Environmental Pollutants" (Saratov, 28-30 July, 2003); VIII Int. Conf. "The Biology of Plant Cells In Vitro and Biotechnology" (Saratov, September 9-13, 2003); 8-й Межд. Пущинской школе-конфер. мол. ученых "Биология -наука XXI века" (Пущино, 17-21 мая 2004); III Всерос. школе-конфер. "Химия и биохимия углеводов" (9-11 сентября 2004, Саратов); II Российской школе-конфер. "Молекулярное моделирование в химии, биологии и медицине" (Саратов, 13-16 октября 2004); Втором съезде Общества биотехнологов России (Москва, 13-15 октября 2004); Всерос. научно-практич. конфер. "Вавиловские чтения - 2004" (Саратов, 24-26 ноября 2004); II Всерос. симп. "Тест-методы химического анализа" (Саратов, 2004); 3-м Всерос. Конгрессе по Медицинской микологии (Москва, март 2005); 9-й Межд. Пущинской школе-конфер. мол. ученых "Биология - наука XXI века" (Пущино, 18-22 апреля 2005); Межд. конфер. "Проблемы биодеструкции техногенных загрязнителей окружающей среды" (Саратов, 14-16 сентября 2005); Всерос. конфер. "Молекулярные механизмы взаимодействия микроорганизмов и растений: фундаментальные и прикладные аспекты" (Саратов, 15-17 июня 2005); V Всерос. конфер. мол. ученых "Современные проблемы теоретической и экспериментальной химии"

Саратов, 22-24 июня 2005); Int. Conf. "Biocatalysis-2005: Fundamentals&Applications" (St. Petersburg, 19-23 June, 2005); II Межд. симп. "Разделение и концентрирование в аналитической химии и радиохимии" (Краснодар, 25-30 сентября 2005); 10-й Пущинской школе-конфер. мол. ученых "Биология - наука XXI века" (Пущино, 17-21 апреля 2006); 4-м Всерос. Конгрессе по Медицинской микологии (Москва, 29-31 марта 2006); Межд. науч. конфер. "Физиология микроорганизмов в природных и экспериментальных системах (памяти профессора М.В. Гусева)" (Москва, МГУ им. М.В. Ломоносова, биологический факультет, 16-19 мая 2006); III межрегион, конфер. мол. ученых "Стратегия взаимодействия микроорганизмов и растений с окружающей средой" (Саратов, 10-12 октября 2006); Межд. науч. конфер. "Современное состояние и перспективы развития микробиологии и биотехнологии" (Минск, 1-2 июня 2006); Втором Саратовском салоне изобретений, инноваций и инвестиций (Саратов, 2006); 5-м Всерос. Конгрессе по Медицинской микологии (Москва, март 2007); 4-й Росс, конфер. "Актуальные проблемы инноваций с нетрадиционными природными ресурсами и создания функциональных продуктов" (Москва, 4-5 июня 2007); VI Всерос. интерактивной конфер. мол. ученых "Современные проблемы теоретической и экспериментальной химии" (Саратов, июнь 2007); XV Congress of European Mycologists (St. Petersburg, 16-22 September 2007), а также на научных конференциях и семинарах ИБФРМ.

Личный вклад соискателя

Автору принадлежит идея, разработка путей экспериментального выполнения и теоретическое обоснование всех основополагающих задач, поставленных в диссертационной работе, ключевая роль на всех этапах исследования, интерпретации и теоретической обработки полученных результатов.

Благодарности

Следует отметить вклад в выполнение данной работы д.б.н., зав. лабораторией В.Е. Никитиной, явившейся вдохновителем самого факта проведения исследований с такими объектами, как Lentinus edodes и лектины этой культуры, а также организатором углубленных исследований важной морфогенетической структуры шиитаке - коричневой мицелиальной пленки и эффекта неблагоприятных условий внешней среды. Интересное и полезное обсуждение результатов было обеспечено со стороны В.Е. Никитиной на всем протяжении периода выполнения работы.

Правильная интерпретация полученных результатов в терминах физико-химических, спектроскопических, аналитической химии была бы крайне обеднена, а квантовохимическая интерпретация — невозможна, без сотрудничества с д.х.н., профессором кафедры аналитической химии и химической экологии СГУ им. Н.Г. Чернышевского А.Н. Панкратовым.

Публикации

По теме диссертации опубликовано 78 научных работ, в том числе 38 статей, список которых приведен в конце автореферата (включая 19 статей в рецензируемых иностранных изданиях и российских журналах, входящих в "Перечень периодических научных изданий, рекомендуемых ВАК .", 19 статей в сборниках научных трудов), 1 патент РФ, 1 положительное решение формальной экспертизы. Подана заявка на предполагаемое изобретение (приоритет от 23.06.2006).

Структура и объем работы

Диссертация состоит из введения, 3 основных глав и ряда подглав, включающих обзор литературы, описание материалов и методов исследования, изложение полученных результатов и их обсуждение, заключения, выводов, списка использованных источников литературы и приложения. Приложение содержит документальное подтверждение внедрения материалов диссертации в учебный процесс и практику научных исследований.

Заключение диссертации по теме «Биохимия», Цивилева, Ольга Михайловна

ВЫВОДЫ

1. В культуралыюй жидкости и на поверхности мицелия ряда штаммов базидиомицета Lentinus edodes обнаружены лектины, имеющие в зависимости от штамма различную специфичность к углеводам.

2. Культура L. edodes F-249 синтезирует два внеклеточных лектина, различающихся по составу и физико-химическим свойствам. Внеклеточный лектин L\ из L. edodes — гликопротеин с моносубъединичной структурой, молекулярной массой 43 кДа. L1 имеет в своем составе (10,5 ± 1,0) % (т/т) углеводов, представленных глюкозой. Внеклеточный лектин L2 — протеогликан с моносубъединичной структурой, молекулярной массой 37 к Да. L2 содержит в своем составе (90,3 ± 1,0) % (т/т) углеводов, представленных глюкозой (73% (т/т) углеводной части молекулы лектина) и галактозой (27% (т/т) углеводной части молекулы лектина). В L2 высоко содержание Asn: 42% (т/т) от суммы аминокислот. Этот факт наряду с составом углеводной части молекулы (Glc+Gal) позволяет отнести L2 к N-аспарагинсвязанным белкам.

3. Два лектина L1 и L2 различаются по углеводной специфичности. Оба белка специфичны к D-галактозе и D-лактозе при одинаковой для L1 и L2 минимальной ингибирующей концентрации этих углеводов (2,08 мМ Gal; 8,33 мМ Lac). Другие углеводы, к которым лектины проявляют более или менее высокое сродство: для L1 это Rha (4,16 мМ); для L2 - Ara (4,16 мМ) и МапОН (8,33 мМ).

4. Два лектина L1 и L2 различаются по антигенным свойствам, имея при этом общие антигенные детерминанты. Очищенные внеклеточные лектины L. edodes высоко избирательны при узнавании определенных структур на поверхности трипсинизированных эритроцитов кролика, не реагируя с эритроцитами других животных и человека.

5. Установлено, что активность и динамика образования лектинов L. edodes зависят от условий культивирования, а именно: температуры, количества посевного мицелия, возраста культуры, а также от состава среды глубинного культивирования: соотношения количеств углерода и азота, природы компонентов - источников углерода и азота, кислотности среды. Оптимальный состав жидкой среды выращивания с целью получения максимальной лектиновой активности шиитаке включает в качестве источника углерода L-арабинозу или D-глюкозу, источника азота - L-аспарагин.

6. Одним из значимых факторов, влияющих на лектиновую активность глубинной культуры L. edodes, является присутствие в среде культивирования катионов металлов(П). В отношении величин титров гемагглютинации и периодов проявления наибольшей лектиновой активности имеет значение не только концентрация катиона М2+, но и источник углеродного питания грибной культуры. Полученные данные для металлов, образующих эти катионы, позволяют составить следующий ряд в порядке уменьшения положительного эффекта на активность внеклеточных лектинов шиитаке: Mg>Ca>Cu>Fe>Mn>Zn~Sn>Co>Ni. Влияние двухзарядных катионов металлов триады железа на активность внеклеточных лектинов L. edodes изменяется симбатно с энергиями реакций хелатообразования гексааквокомплексов металлов с модельным бидентатным лигандом этиленгликолем.

7. При воздействии неблагоприятных для роста мицелия грибной культуры условий (температурного и питательного стресса) наблюдается значительное увеличение лектиновой активности, что можно связать со стабилизирующей, адаптогенной ролью лектинов L. edodes.

8. Прослеживается взаимосвязь активности внеклеточных лектинов шиитаке с формированием коричневой мицелиальной пленки в глубинной культуре, с процессами роста и развития грибного мицелия при твердофазном культивировании, с синтезом соединений, относящихся к важнейшим компонентам химического состава мицелия — липидам и углеводам, что может свидетельствовать об участии лектинов L. edodes в морфогенетических процессах и инициации плодообразования.

9. Изменения активности внеклеточных лектинов L. edodes при различных условиях взаимодействия препаратов лектинов с соединениями — представителями ряда 1,5-ди(4-11-фенил)-3-селенпентандионов-1,5 в зависимости от структуры селенсодержащего компонента реакционных смесей, его концентрации, от стадии очистки белков, позволяют выявить влияние электрофильных свойств реагента и гидрофобных взаимодействий в химических процессах с участием лектинов. При этом результаты квантовохимических расчетов и QSAR свойства косвенно подтверждают большую склонность Met замещать атом серы на селен в биохимических процессах по сравнению с Cys.

10. Выявлено взаимодействие лектинов L. edodes с фитогормоном ИУК, при этом значительно (в 8 - 64 раза) увеличивается титр гемагглютинации в системе "лектин-ИУК". Продукты взаимодействия с ИУК для двух лектинов имеют, вероятно, одинаковую химическую природу. Возможность взаимодействия в указанной системе in vivo может основываться на участии обоих компонентов (и лектинов, по данным нашей работы, и ИУК, по литературным данным) в процессах морфогенетической дифференцировки мицелия высших грибов.

11. Впервые из внеклеточных метаболитов Lentinus edodes выделен галактолипид 53, являющийся одним из эндогенных регуляторов активности внеклеточных лектинов L. edodes. Галактолипид представляет собой D-галактопиранозу (15% (т/т) 53 содержат сульфат-Gal), ацилированную остатками октадекановой или нонадекановой кислот в соотношении 28% (т/т) и 72% (т/т) от суммы двух ЖК соответственно.

12. Предложена методика эффективного разделения двух внеклеточных лектинов L. edodes, основанная на дифференциации их хроматографических свойств в присутствии Cu(II).

304

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

Несмотря на то, что Ьепйпт ейойеБ (шиитаке) занимает ведущие позиции по объему промышленного производства, известен своими ценными пищевыми качествами и перспективностью использования для получения медицинских препаратов, существуют значительные пробелы в изучении биохимических характеристик роста и развития Ь. ес1о(1еБ в глубинной культуре.

Глубинное (жидкофазное погруженное) культивирование считается эффективным методом получения посевного материала высших базидиомицетов для микологических исследований и широкомасштабного получения плодовых тел. Получение погруженной культуры в наиболее активном физиологическом состоянии требует изучения влияния добавок различной химической природы к известным жидким средам. Наши исследования при указанном способе выращивания Ь. ес1ос1е5 были направлены на изучение углеводсвязывающих белков — лектинов. Эти соединения, имеющие широкий спектр биологической активности, участвуют во внутриклеточных и межклеточных взаимодействиях, выступают в роли иммуномодуляторов и триггеров, широко используются в разных областях биологии, медицины. В то же время лектины высших ксилотрофных грибов малоизучены, а внеклеточные грибные лектины практически не описаны. Подавляющее большинство исследований лектинов высших грибов сосредоточено на определении их в экстрактах плодовых тел с целью использования этого признака в экологии и систематике. Поэтому важно изучение лектинов в связи с физиологическими аспектами, проблемами роста и развития грибов.

Вклад настоящей работы в биохимическую область знания состоит в описании новой группы гликопротеинов ксилотрофных базидиомицетов, внеклеточных лектинов, физико-химические свойства которых важны для понимания их физиологической роли, морфогенетических функций в грибном организме как объекте микробиологических исследований. Место настоящей работы в микробиологической области знания, способствующей созданию теоретических основ современных биотехнологий, следует рассматривать прежде всего в известных аспектах использования метода глубинного культивирования: выращивание посевного мицелия для получения плодовых тел; получение на основе культивирования мицелия съедобных грибов биологически активных и ценных химических веществ. К числу последних принадлежат и внеклеточные лектины L. edodes, как следует из результатов настоящей работы, при этом основным методом их накопления для дальнейшего выделения и очистки служит погруженное культивирование.

В ходе выполнения настоящей работы достаточно полно решены задачи, поставленные в связи с изучением активности внеклеточных лектинов Lentinus edodes в зависимости от условий глубинного культивирования, с оптимизацией состава жидкой среды выращивания для получения максимальной лектиновой активности и дальнейшего выделения внеклеточных лектинов. Известный подход введения добавок разнообразной химической природы в синтетические среды позволил не только провести указанную оптимизацию, но и выявить значительное увеличение лектиновой активности в условиях, неблагоприятных для роста мицелия - явление, свидетельствующее в пользу адаптогенной роли лектинов.

Несомненный интерес представляет исследование влияния ультрамикроэлементов, в том числе селена, на рост и развитие съедобных грибов, поскольку одним из наименее изученных аспектов биохимии и физиологии высших грибов справедливо считается их отношение к различным микроэлементам. Согласно взглядам многих исследователей, селен не только действует на процессы, происходящие в организме, но и сам активно включается в метаболизм. В последние годы отмечается отсутствие достаточно обоснованных сведений о физиологических и биохимических механизмах действия селена. Участие соединений селена в процессах роста, развития грибных культур как на вегетативной, так и на генеративной стадиях, важная роль в биохимических процессах живой клетки требуют дальнейшего внимания исследователей к этому ультрамикроэлементу во взаимосвязи с жизнедеятельностью грибных организмов наряду с другими биологическими системами.

Наше предположение и дальнейшее обоснование роли лектинов как потенциальных морфообразующих белков позволило внести определенный вклад в развитие вопроса об одной из стадий морфогенеза шиитаке, характерной для данного вида - коричневой мицелиальной пленке (МП). Отличительные биохимические особенности МП до сих пор были неизучены, хотя обнаружена интересная корреляция между появлением МП шиитаке и началом плодоношения, причем плодовые тела шиитаке также содержат коричневый пигмент. Проведенные нами исследования приводят к выводу, что лектиновая активность является важной биохимической характеристикой мицелия шиитаке на стадии МП. Во-первых, чем выше лектиновая активность мицелия, тем быстрее формируется МП; во-вторых, отмечается значительное увеличение лектиновой активности на этапе МП по сравнению с другими стадиями развития гриба. Лектины принимают участие в образовании МП и плодоношении. Мы в связи с этим предположили и доказали, что получение МП в глубинной культуре и использование этого мицелия в качестве посевного материала приводит к положительным результатам при последующем формировании плодовых тел. Данная часть работы завершена получением патента РФ.

Часть работы посвящена изучению взаимосвязи химического состава мицелия и лектиновой активности, углеводной специфичности агглютининов шиитаке в процессе плодообразования. Впервые для выявления возможных изменений химического состава мицелия перед плодообразованием исследовали биохимические особенности (углеводный и жирнокислотный состав мицелия во взаимосвязи с лектиновой активностью), проявляющиеся при формировании неполноценных плодовых тел у выбранных штаммов шиитаке. Внеклеточные лектины L. edodes можно отнести к группе морфообразующих. Это подтверждается следующим:

- изменением лектиновой активности на разных вегетативных и репродуктивных стадиях развития грибной культуры как на плотных, так и на жидких средах, активизацией процессов формирования пигментированной мицелиальной пленки в глубинной культуре шиитаке с повышенной лектиновой активностью;

- особенностями углеводного состава и лектиновой активности, проявляющимися в условиях формирования обычных и неполноценных плодовых тел, корреляциями состава углеводного компонента мицелия и углеводной специфичности лектинов. Увеличение лектиновой активности и содержания углеводов, к которым специфичны лектины культуры, на фоне роста количества маннита и снижения уровня инозита перед плодоношением, свидетельствуют в пользу предположения об участии лектинов в индукции процесса плодообразования;

- особенностями жирнокислотного состава и лектиновой активности, проявляющимися в условиях формирования обычных и неполноценных плодовых тел.

Сотрудничество с профессором кафедры аналитической химии и химической экологии Саратовского государственного университета А.Н. Панкратовым позволила в нескольких публикациях, пользуясь современными расчетными методами квантовой химии и QSAR (Quantitative Structure-Activity Relationships), представить теоретическое толкование полученных результатов. В частности,

- предложить одно из объяснений влияния катионов металлов(П) на лектиновую активность L. edodes с позиций квантовой химии на основе исследования динамики изменения активности внеклеточных лектинов в присутствии двухзарядных катионов металлов триады железа в составе жидкой синтетической среды культивирования;

- обосновать дифференциальный характер взаимодействия аминокислот -химических гомологов, аспарагина и глутамина, с двухзарядными катионами кальция или марганца как одну из причин избирательного положительного эффекта аспарагина в отношении формирования коричневой мицелиальной пленки L. edodes в глубинной культуре;

- рассмотреть возможные причины повышения активности препаратов лектинов шиитаке в присутствии селенсодержащих органических соединений, а именно 1,5-дифенил-3-селенпентандиона-1,5 и его алкилоксизамещенных с общим названием 1,5-ди(4-К-фенил)-3-селенпентандион-1,5, где R - метокси, этокси, м-октилокси группы; провести сравнительное квантовохимическое исследование электронного строения молекул и реакционной способности двух серусодержащих эссенциальных аминокислот - L-цистеина и L-метионина на начальном этапе взаимодействия с электрофильными реагентами для выяснения предпосылок замещения атома серы на селен именно в молекуле L-метионина.

На основании обнаруженных нами физико-химических свойств и реакционной способности внеклеточных лектинов шиитаке представляется возможным сделать предположения о некоторых аспектах их физиолого-биохимической роли. Прежде всего привлекает внимание способность L2 легко связывать органические соединения с образованием достаточно устойчивых комплексов, и в то же время это связывание обратимо. Как нам кажется, это до некоторой степени напоминает сигнальные образраспознающие рецепторы (pattern recognition receptors) (ОРР) [Лебедев и Понякина, 2006]. Каковы общие черты поведения ОРР и изучаемых нами гликопротеинов? Они могут узнавать определенные молекулярные структуры. В результате взаимодействия с чужеродными лигандами ОРР активируются, и далее активируют биохимический ответ организма (возможно, и грибного). Подобные рецепторы открыты в период с 1989 по 1999 годы не только на клетках животных, но и растений. С 2000 г. в работу по ОРР включились широкие массы исследователей. К сожалению, в России исследования по ОРР практически не начаты [Лебедев и Понякина, 2006].

Каждый ОРР имеет свои четко обозначенные агонисты, с которыми он связывается. До 2003 г. считалось, что такими агонистами могут быть только молекулярные структуры, отсутствующие в рассматриваемом организме (обладателе ОРР). Однако с 2003 г. нарастает количество публикаций, указывающих, что лигандами для ОРР могут являться даже синтетические соединения. Целый ряд веществ, появляющихся при стрессе организма, таких как антигены температурного шока и продукты разрушения клеток, также являются агонистами ОРР [Boasen et al., 2005; Takeda and Akira, 2005; Ohashi et al., 2000]. В настоящее время можно считать, что агонистами ОРР являются самые разнообразные вещества, нехарактерные для нормально функционирующих клеток и систем организма [Лебедев и Понякина, 2006].

С позиции экологической адаптации к стрессовым воздействиям можно следующим образом представить себе возникновение явления постоянного присутствия лектинов у необычного ксилотрофа (по удачному определению Л.В. Гарибовой, 1998) шиитаке. Процесс адаптации к неблагоприятным условиям среды путем повышения уровня экскреции лектинов сопровождается накоплением в мицелии короткоцепочечных жирных кислот - факторов автолизиса мицелия, наряду с веществами - факторами анабиоза (просто пока не выявленными у шиитаке, как мы уверены). Но если у типичных ксилотрофов синтез специализированных вторичных метаболитов связан только с экстремальной ситуацией и происходит (как основное условие) при торможении и прекращении ростовых процессов, то у шиитаке в процессе приспособительной эволюции возник новый феномен - способность образовывать лектины в течение интенсивно протекающих процессов формирования коричневой мицелиальной пленки. Эта морфологическая структура, оказывая протекторное действие на мицелий при подготовке к плодоношению, характеризуется повышенным содержанием лектинов и обеспечивает шиитаке возможность существования устойчивого сцепления между гифами с участием белок-углеводных взаимодействий. Шиитаке приспособились жить в условиях постоянной готовности к формированию коричневой мицелиальной пленки. Есть основания предполагать, что у шиитаке белки-лектины (возникающие de novo, характерные для стрессовых ситуаций белки) стали конститутивными, превратились в продукт нормального метаболизма этих организмов. Есть еще факты, которые подтверждают высказанное нами предположение о том, что с точки зрения биохимической эволюции лектиновую активность гриба следует рассматривать не как качественно новый феномен, а скорее как появление возможности постоянно использовать в экстремальных условиях существования все те адаптационные механизмы, которые функционируют и у обычных ксилотрофов. Однако у последних они функционируют временно и только в стрессовых состояниях, и не обеспечивают организму возможности нормально метаболизировать, а лишь существовать в течение очень краткого периода.

Экспериментальные данные, полученные в результате исследований, позволят расширить знания о роли лектинов в процессах биологического узнавания, их участии в межклеточных взаимодействиях, в жизнедеятельности ксилотрофных базидиальных грибов, в частности, добиться в выяснении связей "лектиновая активность - морфогенетическое развитие" несколько больших достижений, чем существующие к настоящему времени очень ограниченные представления. Роль лектинов высших грибов в плодообразовании остается невыясненной в настоящее время. Высказываются лишь догадки в отношении физиологической роли коричневой мицелиальной пленки шиитаке, морфологической структуры, характерной для Lentinus edodes и предшествующей плодоношению. Стабилизирующая, адаптогенная роль лектинов живых организмов, обсуждаемая в научной литературе, до сих пор практически не рассматривалась для микологических культур. Весьма интересен дальнейший поиск соединений — эффекторов внеклеточной лектиновой активности грибной культуры. Углубленные исследования в этих и сопутствующих им направлениях, как нам кажется, способны в перспективе значительно расширить представления о малоизученной пока группе внеклеточных белков с лектиновыми свойствами у ксилотрофных базидиомицетов. I

Список литературы диссертационного исследования доктор биологических наук Цивилева, Ольга Михайловна, 2008 год

1. Андреев B.C., Попов В.Г., Дронова H.B. Электробиохимический механизм регуляции физиологической деятельности микроорганизмов на популяционном уровне // Биотехнология. 1988. Т. 4, № 1. С. 32-36.

2. Ахмедова З.Р. Биодеградация растительных отходов грибом Pleurotus ostreatus II Биотехнология. 1992. Т. 26, вып. 3. С. 109-115.

3. Ахметов Н.С. Общая и неорганическая химия. М.: Высшая школа, 1998.743 с.

4. Бабицкая В.Г., Щерба В.В., Пучкова Т.А., Смирнов Д.А. Факторы, влияющие на образование полисахаридов Ganoderma licidum II Прикл. биохим. и микробиол. 2005. Т. 41, № 2. С. 194-199.

5. Бейдер Р. Атомы в молекулах: Квантовая теория / Пер. с англ. Е.С. Апостоловой, М.Ф. Боброва, К.Ю. Супоницкого, К.А. Лысенко, И.И. Воронцова; Под ред. М.Ю. Антипина, В.Г. Цирельсона. М.: Мир, 2001. 532 с.

6. Белова Н.В., Ефремова И.Я. Препараты из высших базидиальных грибов -объект патентно-правовой охраны // Микология и фитопатология. 1992. Т. 26, вып. 4. С. 321-324.

7. Белозерская Т. А., Гесслер H.H. Окислительный стресс и цитодифференцировка у Neurospora crassa II Микробиология. 2006. Т. 75, № 4. С. 497-501.

8. Беккер З.И. Физиология и биохимия грибов. М.: Изд-во Моск. ун-та, 1988.227 с.

9. Бисько H.A., Дудка И.А. Биология и культивирование съедобных грибов рода вешенка. Киев: Наукова думка, 1987. 148 с.

10. Бисько H.A., Фомина В.И., Володина Е.П., Билай В.Т. Изменениехимического состава субстрата при культивировании Pleurotus ostreatus // Микол. и фитопатол. 1986. Т. 20, вып. 5. С. 392-395.

11. Битюцкий Н.П. Микроэлементы и растение. СПб: Изд-во СПб ун-та, 1999. 230 с.

12. Блинохватов А.Ф. О селене, которого нам не хватает // Химия и жизнь. 1995. Т. 23, №3. С. 40-45.

13. Блинохватов А.Ф., Иванов А.И., Вихрева В.А., Денисова Г.В., Ильин Д.Ю., Хрянин В.Н. Значение селена для объектов биосферы // Эколого-экономическое развитие России (анализ и перспективы): Альманах, поев. 10-летию РАЕН. М., 2000. С. 145-152.

14. Блохин Д.Ю. Локализация белковых зон в полиакриламидном геле методом серебряного окрашивания // Лабораторное дело. 1988. № 8. С. 30-33.

15. Булах Е.М., Говорова O.K. Редкие и новые для России виды базидиальных грибов из Приморского края // Микол. и фитопатол. 2000. Т. 34, № 2. С. 21-25.

16. Бухало A.C. Влияние различных источников углерода и азота в синтетических средах на рост базидиомицетов // Микол. и фитопатол. 1972. Т. 6, вып. 3. С. 241-244.

17. Бухало A.C. Высшие съедобные базидиомицеты в чистой культуре. Киев: Наукова думка, 1988. 144 с.

18. Высшие съедобные базидиомицеты в поверхностной и глубиннойкультуре / Бисько H.A., Бухало A.C., Вассер С.П. и др. / Под общ. ред. Дудка И.А. Киев: Наукова думка, 1983. 312 с.

19. Гааль Э., Медъеши Г., Верецки А. Электрофорез в разделении биологических макромолекул. М.: Мир, 1982. 449 с.

20. Гарибова JI.B. Физиология питания культурного шампиньона (Agaricus bisporus Lange). 1. Углеродное питание // Науч. докл. высшей школы. Биол. науки. 1963. № 4. С. 137-140.

21. Гарибова JI.B. Барсукова Т.Н., Иванов А.И., Иманкулов М.О. Виды вешенок, перспективные для промышленного культивирования // Биол. науки. 1992. Вып. 3. С. 109-115.

22. Гарибова JI.B., Завьялова J1.A., Александрова Е.А., Никитина В.Е. Некоторые особенности биологии шиитаке Lentinus edodes (Berk.) Sing Lentinula edodes (Berk.) Pegler. // Материалы IV Междунар. конф. "Наука и практика грибоводства". М., 1997. С. 61-64.

23. Гарибова Л.В., Сидорова И.И. Грибы. Энциклопедия природы России. М.: ABF, 1997. 352 с.

24. Голдовский A.M. Анабиоз. Л.: Наука, 1981. 136 с.

25. Головлева Л.А., Леонтьевский A.A. Лигнинолитическая активность дереворазрушающих грибов // Микробиология. 1998. Т. 67, № 5. С. 581-587.

26. Голубев В.И., Кулаковская Т.В., Голубева E.B. Pseudozyma fusiformata ВКМ Y-2821 продуцент антифунгального гликолипида // Микробиология. 2001. Т. 70, № 5.С. 642-646.

27. Голубев В.И., Кулаковская Т.В., Кулаковская Е.В., Голубев Н.В. Фунгицидная активность внеклеточного гликолипида Sympodiomycopsis paphiopedili Sugiyama et al. // Микробиология. 2004. Т. 73, № 6. С. 841-845.

28. Дворнина A.A. Базидиальные съедобные грибы в искусственнойкультуре. Кишинев: Штиинца, 1990. 111 с.

29. Деви С.Р., Прасад M.H.B. Антиокислительная активность растений Brassica juncea, подвергнутых действию высоких концентраций меди // Физиология растений. 2005. Т. 52, № 2. С. 233-237.

30. Денисова Г.В. Влияние неорганических соединений селена на рост и развитие базидиальных макромицетов: Дис. канд. биол. наук. М., 1999. 130 с.

31. Денисова Г.В., Иванов А.И., Блинохватов А.Ф. Влияние неорганического соединения селена на рост и плодоношение грибов // Сб. тр. науч. конф. спец. сельского хоз-ва. Пенза, 1997. С. 84-85.

32. Дерфлинг К. Гормоны растений. Системный подход. М.: Мир, 1985. 304с.

33. Детерман Г. Гель-хроматография / Пер. с нем. П.Д. Решетова. М.: Мир, 1970. 252 с.

34. Днепровский A.C., Темникова Т.И. Теоретические основы органической химии. Строение, реакционная способность и механизмы реакций органических соединений. JL: Химия, 1991. 560 с.

35. Древко Б.И., Древко Р.И., Антипов В.А., Яковлев А.Н. Средство для лечения и профилактики инфекционных заболеваний и отравлений // Пат. РФ №2171110. Бюлл. изобрет. 2001. № 21.

36. Дудка И.А., Бисько H.A., Билай В.Т. Культивирование съедобных грибов. Киев, 1992. 160с.

37. Дьюар М. Теория молекулярных орбиталей в органической химии / Пер. с англ. A.A. Дяткиной; Под ред. М.Е. Дяткиной. М.: Мир, 1972. 592 с.

38. Дьяков Ю.Т. Грибы, их значение в жизни природы и человека // Соросовский образовательный журн. 1997. № 3. С. 38-45.

39. Дэннис Дж., Шнабель Р. Численные методы безусловной оптимизации ирешения нелинейных уравнений / Пер. с англ. О.П. Бурдакова; Под ред. Ю.Г. Евтушенко. М.: Мир, 1988. 440 с.

40. Ермаков В.В., Ковальский В.В. Биологическое значение селена. М.: Наука, 1974. 298 с.

41. Иванов А.И., Блинохватов А.Ф. О роли базидиальных макромицетов в трансформации ультрамикроэлементов в экосистемах. 1. Биоабсорбция селена // Микол. и фитопатол. 2003. Т. 37, вып. 1. С. 70-75.

42. Иванов А.И., Блинохватов А.Ф., Денисова Г.В., Ильин Д.Ю. Влияние соединений селена на рост и развитие грибов. И. Макромицеты // Микол. и фитопатол. 2000. Т. 34, вып. 5. С. 46-50.

43. Ильин Д.Ю. Влияние селена на рост и развитие микромицетов -продуцентов биологически активных веществ: Дис. канд. биол. наук. М., 2001. 126 с.

44. Карелина Л.В. Содержание селена в некоторых растения // Микроэлементы-регуляторы жизнедеятельности и продуктивности растений. Рига, 1971. 209 с.

45. Кефели В.И. Фитогормоны и природные ингибиторы в процессах роста растений. М.: Наука, 1975. С. 89-110.

46. Киричук В.Ф. Физиология крови. Саратов: Изд-во Сарат. гос. мед. ун-та, 2002. 69 с.

47. Кларк Т. Компьютерная химия: Практ. руководство по расчетам структуры и энергии молекулы / Пер. с англ. A.A. Коркина; Под ред. B.C. Мастрюкова, Ю.Н. Панченко. М.: Мир, 1990. 383 с.

48. Кобзарь Е.Ф., Сердюк О.П. Высокоэффективная жидкостная хроматография в анализе ауксинов // Биохимия. 1993. Т. 58, вып. 1. С. 50-61.

49. Коваленко Э.А. Аминокислотный и моносахаридный состав внеклеточных сиалоспецифичных лектинов бактрий рода Bacillus // Микробиологический журнал. 1997а. Т. 59, № 5. С. 3-6.

50. Коваленко Э.А. Углеводная специфичность внеклеточных лектинов бактерий рода Bacillus II Микробиологический журнал. 1997b. Т. 59, № 5. С. 713.

51. Ковальский В.В., Раецкая Ю.И., Грачева Т.И. Микроэлементы в растениях и кормах. М., 1971. 64 с.

52. Козловский А.Г., Желифонова В.П., Винокурова Н.Г., Озерская С.М. Влияние микроэлементов на биосинтез вторичных метаболитов грибом Pénicillium citrinum Thom ВКМ F-1079 // Микробиология. 2000. T. 69, № 5. С. 642-646.

53. Козловский А.Г., Соловьева Т.Ф. Влияние условий культивирования на биосинтез алкалоидов Pénicillium kapuscinskii // Микробиология. 1986. Т. 55, вып. 1.С. 34-40.

54. Кон В. Электронная структура вещества волновые функции и функционалы плотности // Успехи физич. наук. 2002. Т. 172, № 3. С. 336-348.

55. Конова И.В., Карпова Н.В., Ткачевская Е.П., Алексеев С.М. Фенолсодержащие гликолипиды в составе липидных фракций гетероталличных штаммов зигомицета Blakeslea trispora II Микробиология. 1991. T. 60, вып. 1. С. 85-91.

56. Коренман И.М. Органические реагенты в неорганическом анализе: Справочник. М.: Химия, 1980. 448 с.

57. Королев Н.П. Функции лектинов в клетках // Итоги науки и техники. Сер. Общие проблемы физ.-хим. биологии. Т. 1. М.: ВИНИТИ, 1984. С. 351.

58. Кочкина Г.А., Иванушкина Н.Е., Озерская С.М. Антимикробные свойства базидиального гриба Lentinula edodes (Berk.) Pegler II Материалы III Междунар. конгр. "Наука и практика грибоводства". Россия, Кашира, 1996. С. 87-89.

59. Краснопольская JI.M. Базидиомицеты перспективные источникилекарственных соединений // М.: НИИНА РАМН, 1997. С. 71-74.

60. Краснопольская Л.М., Белицкий И.В. Физиолого-биохимические основы использования культивируемых лекарственных базидиомицетов // Там же. С. 24-25.

61. Кудрин А.Н. Научные основы применения неорганических и органических соединений селена в медицинской практике // Витамины. 1975. Вып. 8. С. 128-134.

62. Кулаева О.Н. Новые направления в физиологии растений. М.: Наука, 1985. С. 62-83.

63. Кучменко Т. А. Применение метода пьезокварцевого микровзвешивания в аналитической химии. Воронеж: Изд-во Воронеж, гос. технол. акад., 2001. 280 с.

64. Кучменко Т.А., Аристов И.В., Десятов Д.Б. Применение методов планирования многофакторных экспериментов в аналитической химии. Воронеж: Изд-во Воронеж, гос. технол. акад., 1999. 101 с.

65. Лахтин В.М. Биотехнология лектинов // Биотехнология. 1989. Т. 5, № 6. С. 676-691.

66. Лахтин В.М. Молекулярная организация лектинов // Молекулярная биология. 1994. Т. 28, вып. 2. С. 245-273.

67. Лебедев К.А., Понякина И.Д. Новая иммунология — иммунология образраспознающих рецепторов // Изв. РАН. Серия биологическая. 2006. № 5.1. С. 517-529.

68. Лидин P.A., Андреева Л.Л., Молочко В.А. Справочник по неорганической химии. Константы неорганических веществ. М.: Химия, 1987. 320 с.

69. Лобанок А.Г., Бабицкая В.Г., Пленина Л.В., Пучкова Т.А., Осадчая О.В. Состав и биологическая активность глубинного мицелия ксилотрофного базидиомицета Lentinus edodes II Прикл. биохим. и микробиол. 2003. Т. 39, № 1. С. 69-73.

70. Ловкова М.Я., Бузук Г.Н., Пономарева С.М. Молекулярные уровни регуляции метаболизма изохинолинов, индолов и тропанов. Роль кобальта и цинка в их образовании // Прикл. биохимия и микробиология. 1995. Т. 31, № 1. С. 80-86.

71. Луцик А.Д., Детюк Е.С., Луцик М.Д. Лектины в гистохимии. Львов: Вища школа, 1989. 156 с.

72. Луцик М.Д., Панасюк E.H., Луцик А.Д. Лектины. Львов: Вища школа, 1981. 156 с.

73. Малахов H.H., Богданов A.A. Общение членов МАГ-участников «Дней российского грибоводства», проходивших с 19 по 22 июня 2001 года в Санкт-Петербурге // Школа грибоводства. 2001. № 4. С. 2.

74. Маркина Ж.В., Айздайчер H.A. Содержание фотосинтетических пигментов, рост и размер клеток микроводоросли Phaeodactylum tricornutum при загрязнении среды медью // Физиология растений. 2006. Т. 53, № 3. С. 343347.

75. Марков Е.Ю., Хавкин Э.Е. Лектины растений: предполагаемые функции // Физиол. растений. 1983. Т. 30, вып. 5. С. 852-867.

76. Маслова P.A. Влияние различных источников азота на рост дереворазрушающих грибов в культуре // Микол. и фитопатол. 1969. Т. 3, № 5. С. 452-457.

77. Методы белкового и аминокислотного анализа растений / Под ред. В.Г. Конарева. Л., 1973.

78. Методы экспериментальной микологии / Под ред. В.И. Билай. Киев: Наукова думка, 1982. 550 с.

79. Мехтиева H.A., Рабкрин H.A. Значение явления серно-селенового антагонизма в развитии почвенных гифомицетов и накопление ими селена // Селен в биологии. Баку: Элм, 1981. С. 252-255.

80. Мюллер Э., Лёффлер В. Микология / Пер. с нем. М.: Мир, 1995. 343с.

81. Налимов В.В., Чернова H.A. Статистические методы планирования экстремальных экспериментов. М.: Наука, 1965. 340 с.

82. Налимова A.A., Попова В.В., Цоглин Л.Н., Пронина H.A. Влияние меди и цинка на рост Spirulina platensis и аккумуляция клетками тяжелых металлов // Физиология растений. 2005. Т. 52, № 2. С. 259-265.

83. Негруцкий С.Ф. Физиология и биохимия низших растений. Киев: Вища школа, 1990. 200с.

84. Некоторые вопросы токсичности ионов металлов / Под ред. Зигель X., Зигель А. М.: Мир, 1993. 366 с.

85. Низковская О.П. Противоопухолевые свойства высших базидиомицетов // Микол. и фитопатол. 1983. Т. 17, вып. 1. С. 243-247.

86. Никитина В.Е. Лектины азоспирилл: свойства, биологическая активность и перспективы их практического использования: Дис. . докт. биол. наук. Саратов, 2001. 317 с.

87. Никитина В.Е., Богомолова Н.В. Использование бактериальных лектинов для решения некоторых проблем гематологии: Науч.-информ. пособие. Саратов: Изд-во Сарат. гос. мед. ун-та, 2000. 28 с.

88. Никитина В.Е., Итальянская Ю.В., Аленькина С.А. Оптимизация состава питательной среды для биосинтеза лектина Azospirillum lipoferum 59b // Микробиол. журн. 1997. Т. 59, № 2. С. 12-19.

89. Никитина В.Е., Цивилева О.М., Гарибова Л.В. Стимуляторы лектиновой активности Lentinus edodes на синтетических агаризованных средах // Биотехнология. 2004. № 3. С. 49-54.

90. Николаев Ю.А. Внеклеточные факторы адаптации бактерий к неблагоприятным условиям среды // Прикл. биохимия и микробиология. 2004. Т. 40, № 4. с. 387-397.

91. Николайчук Л.Ф., Шубина Е.Е., Розенцвет O.A., Козлов В.Г. Влияниеионов меди, свинца и кадмия на рост мицелия и состав липидов Pleurotus ostreatus II Микология и фитопатология. 2005. Т. 39, вып. 2. С. 56-61.

92. Октябрьский О.Н., Смирнова Г.В. Редокс-регуляция клеточных функций // Биохимия. 2007. Т. 72, вып. 2. С. 158-174.

93. Панкратов А.Н. Квантовохимическое описание региоселективности нитрования замещенных бензолов // Изв. вузов. Химия и хим. технол. 2004. Т. 47, вып. 9. С. 124-129.

94. Панкратов А.Н. Количественные соотношения «структура — свойство» в ряду катионов диазония полупродуктов синтеза аналитических форм и красителей // Журн. аналит. химии. 2005. Т. 60, № 2. С. 149-156.

95. Панкратов А.Н. Кислоты и основания в химии. Саратов: Изд-во Саратовск. ун-та, 2006. 196 с.

96. Панкратов А.Н., Остроумов И.Г. Установление строения молекул физическими методами. Саратов: Изд-во Саратовск. ун-та, 1995. 132 с.

97. Панкратов А.Н., Шалабай A.B. Квантовохимическая оценка протолитических свойств тиофенолов // Журн. структурн. химии. 2004. Т. 45, № 5. С. 800-806.

98. Панкратов А.Н., Щавлев А.Е. Протолитические, окислительно-восстановительные и полярные свойства реагентов ряда дифениламина: квантовохимическая оценка // Журн. аналит. химии. 2001. Т. 56, № 2. С. 143150.

99. Пат. РФ № 2239983. Способ выращивания съедобных грибов Lentinus edodes / В.Е. Никитина, О.М. Цивилева. Приоритет 21.03.2003.

100. Пецев Н., Коцев Н. Справочник по газовой хроматографии / Пер. с болг. В.М. Муллера; Под ред. В.Г. Березкина, К.И. Сакодынского. М.: Мир, 1987. 260 с.

101. Плужников К.А., Бочаров Д.Н., Кононова Н.В., Суханов C.B., Балашова

102. Т.А., Арсеньев A.C., Гришин E.B. Идентификация и структурный анализ гликофосфолипидного компонента из яда муравья Paraponera clavata // Биоорганическая химия. Т. 32, № 5. С. 530-537.

103. Поддубный A.B., Христофорова Н.К. Оценка качества среды по содержанию тяжелых металлов в опенке осеннем Armillaria mellea // Микология и фитопатология. 1999. Т. 33, вып. 4. С. 271-274.

104. Пономарева Е.Г., Аленькина С.А., Никитина В.Е. Воздействие неблагоприятных факторов на лектиновую активность Azospirillum brasilense и Azospirillum lipoferum II Биотехнология. 2000. № 5. С. 19-24.

105. Псурцева Н.В., Белова Н.В., Алехина И.А. Биотехнологические возможности использования коллекционных культур базидиомицетов // Биотехнология. 1994. № 7. С. 35-39.

106. Решетникова И.А. Накопление селена и фракционирование его изотопов микроорганизмами. М., 1997. 197 с.

107. Рокицкий П.Ф. Биологическая статистика. Минск: Вышэйшая школа, 1973. 320 с.

108. Руководство по гематологии / Под ред. А.И. Воробьева, Ю.И. Лорие. М.: Медицина, 1979. 584 с.

109. Сенцова О.Ю., Максимов В.Н. Действие тяжелых металлов на микроорганизмы //Успехи микробиол. 1985. Т. 20. С. 227-252.

110. Серегин И.В., Кожевникова А.Д. Физиологическая роль никеля и его токсическое действие на высшие растения // Физиология растений. 2006. Т. 53, № 2. С. 285-308.

111. Соломко Э.Ф., Митропольская Н.Ю. Получение посевного материала Lentinus edodes (Berk.) Sing, глубинным методом II Микол. и фитопатол. 1994. Т. 28, вып. 3. С. 34-39.

112. Сурова Т.В., Еняшин А.Н. Таутомерия и кислотные свойства Nнезамещённых бензогидроксамовых кислот: полуэмпирическаяквантовохимическая оценка // Журн. структурн. химии. 2003. Т. 44, № 2. С. 334337.

113. Тамбиев А.Х. Реакционная способность экзометаболитов. М.: Изд-во МГУ, 1984. С. 34-40.

114. Торшин С.П., Удельнова Т.М., Ягодин Б.А. Биогеохимия и агрохимия селена и методы устранения селенодефицита в пищевых продуктах и кормах // Агрохимия. 1996а. № 8-9. С. 127-144.

115. Торшин С.П., Ягодин Б.А., Удельнова Т.М., Голубкина H.A., Дудецкий A.A. Влияние микроэлементов Se, Zn, Mo при разной обеспеченности почвы микроэлементами и серой на содержание селена в растениях яровой пшеницы и рапса // Агрохимия. 1996b. № 5. С. 54-64.

116. Тишенков А.Д. Культивирование шиитаке // Школа грибоводства. 2000. №1. С. 6-11.

117. Упитис В.В. Макро- и микроэлементы в оптимизации минерального питания микроводорослей. Рига: Зинатне, 1983. 240 с.

118. Федоров В. В. Теория оптимального эксперимента. М.: Наука, 1971. 312с.

119. Феофилова Е.П. Биохимическая адаптация грибов к температурному стрессу: Обзор//Микробиология. 1994. Т. 63, № 5. С. 757-776.

120. Феофилова Е.П. Использование высших базидиальных грибов для создания лекарственных препаратов // Матер. III Междунар. конгр. "Наука и практика грибоводства". Россия, Кашира, 1996. С. 17-20.

121. Феофилова Е.П. Прогресс в области экспериментальной микологии как основа для создания современных биотехнологий // Микробиология. 1997. Т. 66, № з. с. 302-309.

122. Феофилова Е.П. Современные направления в изучении биологически активных веществ базидиальных грибов: Обзор // Прикл. биохим. и микробиол. 1998. Т. 34, № 6. С. 597-608.

123. Феофилова Е.П. Царство грибов: гетерогенность физиолого-биохимических свойств и близость к растениям, животным и прокариотам: Обзор // Прикл. биохим. и микробиол. 2001. Т. 37, № 2. С. 141-155.

124. Феофилова Е.П., Горнова И.Б., Меморская A.C., Гарибова JI.B. Липидный состав плодовых тел и глубинного мицелия Lentinus edodes (Berk.) Sing Lentinula edodes (Berk.) Pegler. // Микробиология. 1998. Т. 67, № 5. С. 655-659.

125. Феофилова Е.П., Дараган-Сущова М.В., Волохова М.В., Величко Б.А., Широкова Е.А., Синицин А.П. Изменения в химическом составе клеток в цикле развития Aspergillus japonicus // Микробиология. 1988. Т. 57, вып. 5. С. 778-784.

126. Феофилова Е.П., Михайлова М.В., Грязнова М.В., Горнова И.Б. Участие липидов в фотоспорогенезе Aspergillus japonicus // Докл. Акад. наук СССР. 1989. Т. 307, № 1. С. 234-236.

127. Феофилова Е.П., Терешина В.М., Гарибова Л.В., Завьялова Л.А., Меморская A.C., Марышова Н.С. Прорастание базидиоспор Agaricus bisporus // Прикл. биохим. и микробиол. 2004. Т. 40, № 2. С. 220-226.

128. Феофилова Е.П., Терешина В.М., Горнова И.Б. Изменения в углеводном составе клеток грибов в связи с адаптацией к температурному стрессу // Микробиология. 1994. Т. 63, № 5. С. 792-798.

129. Феофилова Е.П., Терешина В.М., Меморская A.C., Хохлова Н.С. О различных механизмах биохимической адаптации мицелиальных грибов к температурному стрессу: изменения в составе липидов // Микробиология. 2000. Т. 69, №5. С. 612-619.

130. Фомина В.И., Бисько H.A., Билай В.Т. Особенности роста мицелиев штаммов Lentinus edodes (Berk.) Sing на растительных субстратах // Микол. и фитопатол. 1998 Т. 32, вып. 4. С. 18-23.

131. Фомина В.И., Митропольская Н.Ю., Бисько H.A., Шевцова Л.В. Отбор высокопродуктивных штаммов Lentinus edodes // Микол. и фитопатол. 2003. Т. 37, вып. 2. С. 60-65.

132. Хроматография: Практ. приложение метода: В 2-х ч. Ч. 2 / Пер. с англ.

133. A.B. Родионова; Ред. пер. В.Г. Березкин / Под ред. Э. Хефтмана. М.: Мир, 1986. 422 с.

134. Хьюи Дж. Неорганическая химия. Строение вещества и реакционная способность / Пер. с англ. Л.Ю. Аликберовой, Н.И. Козловой, Н.С. Рукк, Е.В. Савинкиной, A.A. Цветкова; Под общ. ред. Б.Д. Степина, P.A. Лидина. М.: Химия, 1987. 696 с.

135. Цавкелова Е.А., Климова С.Ю., Чердынцева Е.А., Нетрусов А.И. Микроорганизмы стимуляторы роста растений и их практическое применение (обзор) // Прикладная биохимия и микробиология. 2006. Т. 42, №2. С. 133-143.S

136. Цивилева О.М., Никитина В.Е., Гарибова Л.В. Влияние состава среды культивирования на активность внеклеточных лектинов Lentinus edodes // Прикл. биохим. и микробиол. 2005. Т. 41, № 2. С. 200-203.

137. Цивилева О.М., Никитина В.Е., Гарибова Л.В., Завьялова Л.А., Игнатов

138. B.В. Гемагглютинирующая активность Lentinus edodes (Berk.) Sing Lentinula edodes (Berk.) Pegler. // Микробиология. 2000. Т. 69, № 1. С. 38-44.

139. Цивилева О.М., Никитина В.Е., Панкратов А.Н., Древко Б.И., Лощинина Е.А., Гарибова Л.В. Влияние селенсодержащего препарата ДАФС-25 на рост и лектиновую активность Lentinus edodes II Биотехнология. 2005. № 2. С. 56-62.

140. Чарыков A.K. Математическая обработка результатов химического анализа. Л.: Химия, 1984. 270 с.

141. Шнырева A.B. Иммуномодулирующие свойства полисахаридов высших базидиальных грибов // Успехи мед. микол. Т. 3. М.: Национальная академия микологии, 2004. С. 189-192.

142. Adachi Y., Okazaki М., Ohno N., Yadomae Т. Enhancement of cytokineproduction by macrophages stimulated with (1—>3)-beta-D-glucan, grifolan (GRN), isolated from Grifola frondosa II Biol. Pharm. Bull. 1994. V. 17. P. 1554-1560.

143. Ahmad N., Bansal R., Ahmad A., Rastogi A.K., Kidway J.R. purification of hemagglutinins from Agaricus bisporus by affinity chromatography // Indian J. Biochem. Biophys. 1984. V. 21. P. 237-240.

144. Akira N., Takao H., Takashi S. Uptake of copper ion by green microalgae // Agric. Biol. Chem. 1979. V. 43. P. 1455-1460.

145. Albergoni V., Piccini E., Coppelotti O. Response to heavy metals in organisms // Compar. Biochem. Physiol. 1980. V. 67. P. 121-127.

146. Alscher R.G. Biosynthesis and antioxidant function of glutathione in plants // Physiol. Plant. 1988. V. 77. P. 457-464.

147. Ander P.L., Eriksson K.E. Lignin degradation and utilization by microorganisms // Progress in industrial microbiology / Ed. M.J. Bull. Amsterdam: Elsevier, 1978. V. 14. P. 1-58.

148. Asada Y., Watanabe A., Ohtsu Y., Kuwahara M. Purification and characterization of an aryl-alcohol oxidase from the lignin-degrading basidiomycete Phanerochaete chrysosporium II Biosci. Biotech. Biochem. 1995. V. 59, № 7. P. 1339-1341.

149. Babilskaya V.G. Biologically active substances of mycelia and fruiting bodies of mushrooms Lentinus Fr. and Pleurotus (Fr.) P. Karst. // Intern. J. Med. Mushrooms. 2001. V. 3, №4. C. 42-43.

150. Bader R.F.W A Quantum Theory of Molecular Structure and Its Applications // Chemical Reviews. 1991. V. 91, № 5. P. 893-928.

151. Banerjee P.C., Ghosh A.K., Sengupta S. Hemagglutinating activity in extracts of mycelia from submerged mushroom cultures // Appl. Environ. Microbiol. 1982. V. 44. P. 1009-1011.

152. Barceloux D.G. Selenium II J. Toxicol. Clin. Toxicol. 1999. V. 37, № 2. P. 145-172.

153. Becke A.D. Density-Functional Thermochemistry. III. The Role of Exact Exchange //J. Chem. Phys. 1993. V. 98, № 7. P. 5648-5652.

154. Becke A.D. Density-Functional Exchange-Energy Approximation with Correct

155. Asymptotic Behavior 11 Physical Review A. 1988. V. 38, № 6. P. 3098-3100.

156. Besse D., Siedler F., Dierks T., Kessler H., Moroder L. The redox potential of selenocysteine in unconstrained cyclic peptides // Angew. Chem. Int. Ed. Engl. 1997. V. 36. P. 883-805.

157. Bettger W.J. Zinc and selenium, site-specific versus general antioxidation // Can. J. Physiol. Pharmacol. 1993. V. 71, № 9. P. 721-724.

158. Beveridge T.J., Murray R.C.E. Sites of metal deposition in the cell wall of Bacillus subtilis //J. Bacteriol. 1980. V. 141. P. 876-877.

159. Birkett J.A., Rowlands R.T. Chlorate resistance and nitrate assimilation in industrial strains of Pénicillium chrysogenium // J. Gen. Microbiol. 1981. V. 123. P. 281-285.

160. Blessing H., Kraus S., Heindl P., Bal W., Hartwig A. Interaction of selenium compounds with zinc finger proteins involved in DNA repair // Eur. J. Biochem. 2004. V. 271. P. 3190-3199.

161. Boasen J., Chisholrn D., Lebet L., et al. House dust extracts elicit Toll-like receptor-dependent dendritic cell responces // J. Allergy Clin. Immunol. 2005. V. 116. P. 185-195.

162. Bodor N., Gabanyi Z., Wong Chu-Kuok. A new method for the estimation of partition coefficient //J. Amer. Chem. Soc. 1989. V. Ill, № 11. P. 3783-3786.

163. Botton B., Guillot J. Purification d'une lectine a partir du basidiomycete Rigidoporus lignosus, parasite de l'hevea. implication possible de la molecule dans la différenciation des palmettcs du champignon. IVeme Reunion du Reseau Mycologie, Lyon, 1987.

164. Bourbonnais R., Paice M.G. Oxidation of non-phenolic substrates. An expanded role for laccase in lignin biodégradation // FEBS Lett. 1990. V. 267. P. 99102.

165. Bradford M.M. A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilising the principle of protein-dye binding // Anal. Biochem. 1976. V. 72, № 1-2. P. 248-254.

166. Breton A., Bernalier A., Dusser M., Fonty G., Gaillard-Martinie B., Guillot J. Anacromyccs mucronatus nov. gen., nov. sp. A new strictly anaerobic rumen funguswith polycentric thallus // FEMS Microbiol. Lett. 1990. V. 70. P. 177-182.

167. Bubela B., Powel T. Effects of copper on the composition of bacterial cell wall peptides // Zentr. Bl. Bakteriol. Abt. - 2.1973. V. 128. P. 457-466.

168. Buswell J.A., Odier E. Lignin biodégradation // CRC Crit. Rev. Biotechnol. 1987. V. 6. P. 1-60.

169. Cammue B.P., Peeters B., Peumans W.J. Isolation and partial characterization of an N-acetylgalactosamine-specific lectin from winter-aconite (Eranthis hyemalis) root tubers // Biochem. J. 1985. V. 227. P. 949-955.

170. Cannon, P.F. International Commission on the Taxonomy of Fungi (ICTF): name changes in fungi of microbiological, industrial and medical importance. 1 // Microbiol. Sci. 1986. V. 3, № 6. P. 168-171.

171. Cavet J.S., Borrelly G.P.M., Robinson N.J. Zn, Cu and Co in cyanobacteria: selective control of metal availability // FEMS Microbiol. Rev. 2003. V. 27. P. 165181.

172. Chang S.T. Mushrooms and food // Bioscience. 1980. V. 30. P. 399-401. Chang S.T., Miles P.O. A new look at cultivated mushrooms // Bioscience. 1984. V. 34, № 6. P. 358-362.

173. Chattaraj P.K., Schleyer P.v.R. An ab initio study resulting in a greater understanding of the HSAB principle // J. Amer. Chem. Soc. 1994. V. 116, № 3. P. 1067-1071.

174. Cheng Y., McNally D.J., Labbe C., Voyer N., Belzile F., Belanger R.R. Insertional mutagenesis of a fungal biocontrol agent led to discovery of a rarecellobiose lipid with antifungal activity // Appl. Environ. Microbiol. 2003. V. 69, № 5. P. 2595-2602.

175. Cheung W.M., Hui W.S., Chu P.W., Chiu S.W., Ip N.Y. Ganoderma extract activates MAP kinases and induces the neuronal differentiation of rat pheochromocytoma PC12 cells // FEBS Lett. 2000. V. 486. P. 291-296.

176. Chibata I., Okumura K., Takeyama S., Kotera K. Lentinacin: a new hypocholesterolemic substance in Lentinus edodes // Experimentia. 1969. V. 25, № 12. P. 1237-1238.

177. Chichara G., Hamuro J., Maeda Y., Arai Y. Fractionation and purification of the polysaccharides with marked antitumor activity, especially lentinan, from Lentinus edodes (Berk.) Sing, (an edible mushroom) // Cancer Res. 1970, № 30. P. 2776-2781.

178. Cochran K.W. Medical effects // The biology and cultivation of edible mushrooms / Eds. S.T. Chang, W.A. Hayes. New York etc.: Acad. Press, 1978. P. 169.

179. Colceag J., Mogos S., Hulea S. Studies on occurrence and characterization of phytolectins in some species of mushrooms // Rev. Roum. Biochim. 1984. V. 21. P. 263-266.

180. Coulet M., Bétail G., Guillot J. Etude des conditions d'action de deux hemagglutinines vegetales (Pisum sativum et Lactarius deliciosus) // Colloque sue les Applications en Immunologie. Technocon Symposia, Paris, 1969. P. 143-159.

181. Coulet M., Marche A.M. Presence d'une hemagglutinine spécifique chez l'Hydnacee Irpex sinuosus Fr. // C.R. Acad. Sci. 1962. V. 254. P. 3904-3905.

182. Coulet M., Mustier J. Presence d'une hemagglutinine non polyvalente chaz la Pleurotaceae Panus conchatus Fr. // C.R. Acad. Sci. 1964. V. 158. P. 2347-2350.

183. Coulet M., Mustier J., Guillot J. Les hemagglutinines des champignons // Revue de mycologie. 1970. V. 35. P. 71-89.

184. Crisan E.V., Sands A. Nutritional value // The biology and cultivation of edible mushrooms / Eds. S.T. Chang, W.A. Hayes. New York etc.: Acad. Press, 1978. P. 137-165.

185. Daniel G., Vole J., Kubatova E. Pyranose oxidase, a major source of H2O2during wood degradation by Phanerochaete chrysosporium, Trametes versicolor, and Oudemansiella mucida // Appl. Environ. Microbiol. 1994. V. 60. P. 2524-2532.

186. De Virgilio C., Piper P., Boiler T., Wiemken A. Acquisition of thermotolerance in Saccharomyces cerevisiae without heat shock protein hspl04 and in the absence of protein synthesis // FEBS Lett. 1991. V. 288, №1,2. P. 86-90.

187. De Vos C.H.R., Schat H., Voojis R., Ernst W.H.O. Copper-induced damage to the permeability barrier in roots of Silene cucubalus 11 J. Plant. Physiol. 1989. V. 135. P. 164-169.

188. De Vos C.H.R., Vonk M.J., Schat H. Glutathione depletion due to copper induced phytochelatin synthesis causes oxidative stress in Silene cucubalus // Plant. Physiol. 1992. V. 98. P. 853-858.

189. Debray H., Dus D., Hueso P., Radzikowski C., Montreuil J. Lectin-resistant variants of mouse Lewis lung carcinoma cells. II. Altered glycosylation of membrane glycoproteins // Clin. Exp. Metastasis. 1990. V. 8. P. 287-298.

190. Debray H., Montreuil J .Aleuria aurantia agglutinin. A new isolation procedure and further study of its specificity towards various glycopeptides and oligosaccharides // Carbohydr. Res. 1989. V. 185. P. 15-26.

191. Demirci A. Enhanced organically bound selenium yeast production by fed-batch fermentation // J. Agric. Food Chem. 1999. V. 47. P. 2496-2500.

192. Derouin F., Beauvais B., Lariviere M., Guillot J. Etude de la fixation de lectines marquees a la fluoresceine sur les trophozoites et les kystes de trois souches de Toxoplasma gondii // C. R. Soc. Biol. 1981. V. 175. P. 761-768.

193. Didier E., Didier P., Guillot J., Croisille Y., Fargeix N. The glycoconjugatesinvolved in cell and cell matrix interactions during urogenital morphogenesis in the chick embryo // Biol. Cell. 1984. V. 51. P. 9a.

194. Didier E., Didier P., Guillot J., Croisille Y.,Thiery J.P. Expression and distribution of carbohydrate sequences in chick germ cells: a comparative study with lectins and the NC-l/HNK-1 monoclonal antibody // Int. J. Dev. Biol. 1990. V. 34. P. 421-431.

195. Ditchfield R., Hehre W.J., Pople J.A. A Self-Consistent Molecular-Orbital Methods. IX. An Extended Gaussian-Type Basis for Molecular-Orbital Studies of Organic Molecules //J. Chem. Phys. 1971. Vol. 54, № 2. P. 724-728.

196. Dubovoy C., Calderon S., Herrera T. Investigation de fitohemagglutinas en algunas criptogamas // Ann. Inst. Biol. Univ. Mex. 1966. V. 37. P. 9-41.

197. Dus D., Debray H., Strzadala L., Rak J., Kusnierczyk H., Montreuil J., Radzikowski C. Lectin-resistant variants of mouse lung carcinoma cells. I. Selection and in vivo properties // Clin. Exp. Metastasis. 1990. V. 8. P. 277-285.

198. Dus D., Matuszyk J., Kusnierczyk H., Strzadala L., Radzikowski C. Tumorigenicity and metastatic ability of MmB16 mouse melanoma cell line and its two Aleuria aurantia agglutinin resistant variants // Arch. Immunol. Ther. Exp. 1992. V. 40. P. 263-269.

199. Elgavish S., Shaanan B. Lectin-Carbohydrate Interactions: Different Folds, Common Recognition Principles // Trends Biochem. Sci. 1997. V. 22. P. 462-467.

200. Endo T., Ohbayashi H., Kanazawa K., Kochibe N., Kobata A. Carbohydrate binding specificity of immobilized Psathyrella velutina lectin // J. Biol. Chem. 1992. V. 267. P. 707-713.

201. Epstein E. Studies of the biosynthesis of indigotin by the basidiomycete Schizophyllum commune. Ph.D. dissertation. State University of New York at Buffalo, 1966.

202. Epstein E., Miles P.G. Identification of indole-3-acetic acid in the basidiomycete Schizophyllum commune // Plant Physiol. 1967. V. 42. P. 911-914.

203. Eriksson K.E., Vallander L. Biomechanical pulping // Lignin biodégradation: microbiology, chemistry and potential application / Eds. T.K. Kirk et al. Boca Raton, Florida: CRS Press, 1980. V. II. P. 213-224.

204. Ewart R.B.L., Kornfeld S., Kepris D.M. Effet of lectins on hormone release from isolated rat islets of Langerhans // Diabetes. 1975. V. 24. P. 705-714.

205. Fargeix N. The glycoconjugates involved in cell and cell matrix interactions during urogenital morphogenesis in the chick embryo // Biol. Cell. 1984. V. 51. P. 9a.

206. Fargeix N., Didier E., Guillot J., Damez M. Utilisation de diverses lectines fluorescents dans l'etude des cellules germinales en migration chez l'embryon d'Oiseau // C.R. Acad. Sci. 1980. V. 290. P. 995-1002.

207. Feizi T. 'Glyco-epitope' assignments for the selectins: advances enabled by the neoglycolipid (NGL) technology in conjunction with synthetic carbohydrate chemistry // Adv. Exp. Med. Biol. 2001. V. 491. P. 65-78

208. Fernandes J.C., Henriques F.S. Biochemical, physiological and structural efects of excess copper in plants // Bot. Rev. 1991. V. 57. P. 246-273.

209. Ford W.W. The distribution of haemolysis agglutinins and poisons in fungi, especially the Amanitas, the Entolomas, the Lactarius and the Inocybes // J. Pharmacol. Exp. Ther. 1910. V. 2. P. 285-318.

210. Forrester I.T., Grabski A.C., Burgess R.R., Leatham G.F. Manganese, Mn-dependent peroxidases, and the biodegradationof lignin // Biochem. Biophys. Res. Commun. 1988. V. 157. P. 992-999.

211. Furue H., Kitoh I. Phase III study on Lentinan // Jpn. J. Cancer Chemother. 1981. V. 8. P. 944-960.

212. Gaillard-Martinie B., Breton A., Dusser M., Guillot J. Contribution to the morphological, cytological, and ultrastructural characterization of Piromyces mae, a strictly anaerobic rumen fungus // Curr. Microbiol. 1992. V. 24. P. 159-164.

213. Galagher J.T. Carbihydrate-binding properties of lectins: a possible approach to lectin nomenclature and classification // Biosci. Rep. 1984. V. 4. P. 621-632.

214. Galli-Vallerio B., Bornand M. Hamagglutinine und Hämolysine in getrockneten Pilzen // Z. Immunitatsforsch. Exp. Ther. 1916. V. 25. P. 154-162.

215. Ganther H.E. Selenium metabolism, selenoproteins and mechanisms of cancer prevention: complexities with thioredoxin reductase // Carcinogenesis. 1999. V. 20, №9. P. 1657-1666.

216. Gao Y., Zhou S. The immunomodulating effects of Ganoderma lucidum // Intern. J. Med. Mushrooms. 2002. V. 4. P. 1-17.

217. Gavezotti A. The Calculation of Molecular Volumes and the Use of Volume Analysis in the Investigation of Structured Media and of Solid-State Organic Reactivity //J. Amer. Chem. Soc. 1983. V. 105, № 16. P. 5220-5225.

218. Ghose A.K., Pritchett A., Crippen G.M. Atomic physicochemical parameters for three dimensional structure directed quantitative structure activity relationships. III. Modelling hydrophobic interactions // J. Comput. Chem. 1988. V. 99, № 1. P. 8090.

219. Giardina P., Aurilia V., Cannio R., Marzullo L., Amoresano A., Siciliano R., Pucci P., Sannia G. The gene, protein and glycan structures of laccase from Pleurotus ostreatus I I Eur. J. Biochem. 1996. V. 235. P. 508-515.

220. Giles N.M., Giles G.I., Jacob C. Multiple roles of cysteine in biocatalysis // Biochem. Biophys. Res. Commun. 2003a. V. 300, № 1. P. 1-4.

221. Giles N.M., Watts A.B., Giles G.I., Fry F.H., Littlechild J.A., Jacob C. Metal and redox modulation of cysteine protein function // Chem. Biol. 2003b. V. 10, № 8. P. 677-693.

222. Glenn J.K., Akileswaran L., Gold M.H. Mn(II) oxidation is the principal function of the extracellular Mn peroxidase from Phanerochaete chrysosporium // Arch. Biochem. and Biophys. 1986. V. 251. P. 688-696.

223. Glenn J.K., Gold M.H. Purification and characterization of an extracellular Mn(II)-dependent peroxidase from the lignin-degrading basidiomycete, Phanerochaete chrysosporium 11 Arch. Biochem. Biophys. 1985. V. 242. P. 329-341.

224. Glenn J.K., Morgan M.A., Mayfield M.B., Kuwahara M., Gold M.H. An extracellular ^(Vrequiring enzyme preparation involved in lignin biodégradation by the white-rot basidiomycete Phanerochaete chrysosporium // Biochem. and Biophys.

225. Res. Commun. 1983. V. 114. P. 1077-1083.

226. Glendening E.D., Reed A.E., Carpenter J.E., Weinhold F.A. NBO Version 3.1,1995.

227. Gold M.H., Kuwahara M., Chiu A.A., Glenn J.K. Purification and characterization of an extracellular diarylpropane oxygenase from the white-rot basidiomycete Phanerochaete chrysosporium // Arch. Biochem. and Biophys. 1984. V. 234. P. 353-362.

228. Golovleva L.A., Leontievsky A.A., Matseva O.V., Myasoedova N.M. Ligninolytic enzymes of the fungus Panus tigrinus 8/18: biosynthesis, purification and properties // J. Biotechnol. 1993. V. 30. P. 71-77.

229. Green R.V., Gold M.J. Fatty acid-coenzyme A oxidase activity and H2C>2 production in Phanerochaete chrysosporium mycelia // Biochem. and Biophys. Res. Commun. 1984. V. 118. P. 437-443.

230. Greene W. C., Fleisher T.A., Waldmann T.A. Suppression of human T and B lymphocyte activation by Agaricus bisporus lectin // J. Immunol. 1981. V. 126. P. 580-586.

231. Grossman A., Wendel A. Non-reactivity of the selenoenzymc glutathione peroxidase with enzymatically hydroperoxidized phospholipids // Eur. J. Biochem. 1983. P. 549-552.

232. Gruen H.E. Auxins and fungi // Ann. Rev. Plant. Physiol. 1959. V. 10. P. 405440.

233. Gryndler M., Hrselova H., Chavatalova I., Jansa J. The effect of selected plant hormones on in vitro proliferation of hyphae of Glomus fistulosum // Biologia Plantarum. 1998. V. 41, № 2. P. 255-263.

234. Gueugnot J. Recherches sur la lectines dans l'etude taxonomique des Trypanosomatidae des genres Critridia, Blastocritridia, Leishmania, Trypanosoma. These de Doctorat en Pharmacie, Clemont-Ferrand, 1980.

235. Gueugnot J., Guillot J., Damez M., Coulet M. Identification and taxonomy of human and animal leishmanias by lectin-mediated agglutination // Acta Tropica. 1984. V. 41. P. 135-143.

236. Gueugnot J., Petavy A.F., Guillot J., Damez M., Coulet M. Etude comparative de la fixation de lectines sur les membranes de quatre especes de Critidia // Protistologica. 1980. V. 16. P. 33-38.

237. Guha A.K., Banerjee A.B. Effect of indole-3-acetic acid and kinetin on submerged growth of Agaricus campestris // Acta Microbiologica Polonica. Ser. B. 1974. V. 6 (23), № 3. P. 133-134.

238. Guillot J. Contribution a l'etude de quelques hemagglutinines de Mycetes. These de Doctorat en Pharmacie. 1970. Clemont-Ferrand.

239. Guillot J., Breton A., Damez M., Dusser M., Gailard-Martinie B., Miller L. Use of lectins for a comparative study of cell wall composition of different anaerobic rumen fungal strains // FEMS Microbiol. Lett. 1990. V. 67. P. 151-156.

240. Guillot J., Genaud L., Gueugnot J., Damez M. Purification and properties of two hemagglutinins of the mushroom Laccaria amethystina // Biochemistry. 1983. V. 22. P. 5365-5369.

241. Guillot J., Giollant M., Damez M., Dusser M. Isolation and characterization of a lectin of the mushroom Lactarius deliciosus // J. Biochem. 1991. V. 109. P. 840845.

242. Guillot J., Giollant M., Damez M., Dusser M. Intervention des lectines fongiques dans les evenements precoces de reconnaissance arbre/champignon au cours de la formation des ectomycorhizes // Acta Bot. Gallica. 1994. V. 141. P. 443447.

243. Guillot J., Griffaut B., De Jaegher G., Dusser M. Isolement, caracterisation partielle et localisation d'une lectine de topinambour (Helianthus tuberosus L.) // C. R. Acad. Sci. 1991a. V. 312. P. 573-578.

244. Guillot J., Scandariato M., Coulet M. Essai d'application du pouvoir agglutinant des lectines a l'etude du genre Candida // Ann. Microbiol. (Inst. Pasteur). 1974. V. 125. P. 489-500.

245. Gunde-Cimerman N., Cimerman A. Pleurotus fruiting bodies contain theinhibitor of 3-hydroxy-3-mehtylglutaryl-coenzyme A reductase lovastin // Exp. My col. 1995. V. 19. P. 1-6.

246. Gustavsson S., Ohlson C., Karlson J.O. Glycoproteins of axonal transport: affinity chromatography of fucose-specific lectins // J/ Neurochem. 1982. V. 38. P. 852-855.

247. Halliwell B., Gutteridge J.M.C. Oxygen toxicity, oxygen radicals, transition metals, and disease // Biochem. J. 1984. V. 219. P. 1-14.

248. Hammel K.E., Moen M.A. Depolimerization of a synthetic lignin in vitro by lignin peroxidase// Enzyme Microbiol. Technol. 1991. V. 13. P. 15-18.

249. Harvey L., McNeil B. Production of lentinan by submerged cultivation of Lentinus edodes (Berk.) Sing // Intern. J. Med. Mushrooms. 2001. V. 3, № 5. P. 6163.

250. Hasel W., Hendrickson T.F., Still W.C. A rapid approximation to the solvent-accessible surface areas of atoms // Tetrahedron Computer Methodology. 1988. V. 1, №2. P. 103-116.

251. Hashimoto M, Saito Y., Seki H., Kamiya T. Hyphocholesterolemic alkaloids of Lentinus edodes. IV. Synthesis of three stereoisomers of eritadenine // Chem. Pharmacol. Bull. 1972. V. 20. P. 1374-1379.

252. Hauzer K., Ticha M., Kocourek J. Studies on lectins. XLIV. The pH dependence of lectin interactions with sugars as determined by affinity electrophoresis //Biochim. Biophys. Acta. 1979. V. 583. P. 103-109.

253. Hehre W.J., Radom L., Schleyer P.v.R., Pople J.A. Ab Initio Molecular Orbital Theory. Wiley: New York, 1986. 548 p.

254. Hellin H. Der giftige Eiweissekorper Abrin und dessen Wirkung auf das Blut. Inaug. Diss. Dorpat, 1891.

255. Hernandez E., Ortiz R., Lopez F., Masso F., Montano L.F., Marinage A., Zenteno E. Purification and characterization of a galactose-specific lectin from Psilocybe barreae//Phytochemistry. 1983. V. 32. P. 1209-1211.

256. Ho J.C.K., Sze S.C.W., Shen W.Z., Liu W.K. Mitogenic activity of edible mushroom lectins // Biochim. Biophys. Acta (BBA) General Subjects. 2004. V. 1671, № 1-3. P. 9-17.

257. Hobbs C. Medicinal mushrooms: Modern clinical uses overview // Intern. J. Med. Mushrooms. 2001. V. 3. P. 86.

258. Hohl H.R., Balsiger S. A model system for the study of fungus host surface interactions: adhesion of Phytophtora megasperma to protoplasts and mesophyll cells soybean // Nato Asi. 1986. V. 4. P. 259-272.

259. Houda Bouazizi, Jouili H., Ferjani E. Copper-induced oxidative stress in maize shoots (Zea mays L.): H202 accumulation and peroxidases modulation // Acta Biologica Hungarica. 2007. V. 58, № 2. P. 209-218.

260. Hsieh K.Y., Hsu C.I., Lin J.Y., Tsai C.C., Lin R.H. Oral administration of an edible-mushroom-derived protein inhibits the development of food-allergic reactions in mice // Clin. Exp. Allergy. 2003. V. 33, № li. p. 1595-1602.

261. Hu H., Ahn N.S., Yang X., Lee Y.S., Kang K.S. Ganoderma lucidum extract induces cell cycle arrest and apoptosis in MCF-7 human breast cancer cell // Intern. J. Cancer. 2002. V. 102. P. 250-253.

262. Jacob C., Giles G.I., Giles N.M., Sies H. Sulfur and selenium: the role of oxidation state in protein structure and function // Angew. Chem. Int. Ed. Engl. 2003. V. 42, № 39. P. 4742-4758.

263. Jacob C., Holme A.L., Fry F.H. The sulfinic acid switch in proteins // Org. Biomol. Chem. 2004. V. 2, № 14. p. 1953-1956.

264. Jacob C., Maret W., Vallee B.L. Selenium redox biochemistry of zinc-sulfur coordination sites in proteins and enzymes // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1999. V. 96, №5. P. 1910-1914.

265. Jefferies T.M., Choi S., Kirk T.K. Nutritional regulation of lignin degradation by Phanerochaete chrysosporium // Appl. Environ. Microbiol. 1981. V. 42. P. 290296.

266. Jeune K.H., Moon I.J., Kim M.K., Chung S.R. Studies on lectins from Korean higher fungi; IV. A mitogenic lectin from the mushroom Lentinus edodes I I Planta Med. 1990. V. 56. P. 592.

267. Jin M., Jung H.J., Choi J.J., Jeon H., Oh J.H., Kim B., Shin S.S., Lee J.K., Yoon K., Kim S. Activation of selective transcription factors and cytokines by water-soluble extract from Lentinus lepideus 11 Exp. Biol. Med. 2003. V. 228. P. 749-758.

268. Johansson T., Nyman P.O. A manganese (Il)-dependent peroxidase from the white-rot fungus Trametes versicolor//Acta Chem. Scand. 1987. V. 41. P. 762-765.

269. Jones D.P., Go Y.M., Anderson C.L., Ziegler T.R., Kinkade J.M. Jr., Kirlin W.G. Cysteine/cystine couple is a newly recognized node in the circuitry for biologic redox signaling and control // FASEB J. 2004. V. 18, № 11. p. 1246-1248.

270. Jong S.C., Birmingham J.M. The medicinal value of the mushroom Grifola // World J. Microbiol. Biotechnol. 1990. V. 6. P. 227-235.

271. Jong S.C., Birmingham J.M. Medicinal benefits of the mushroom Ganoderma // Adv. Appl. Microbiol. 1993b. V. 37. P. 101-127.

272. Jong S.C., Donovick R. Antitumor and antiviral substances from fungi // Adv.

273. Appl. Microbiol. 1989. V. 34. P. 183-262.

274. Jun Y., Yi L., Yong Т., Jianben L., Xiong C., Qin Z., Jiaxin D., Songsheng Q., Ziniu Y. The action of Cu2+ on Bacillus thuringiensis growth investigated by microcalorimetry II Прикл. биохимия и микробиология. 2003. Т. 39, № 6. С. 656660.

275. Kalberer P.P. Experiments on the cultivation of shiitake (Lentinus edodes) on sawdust // Mushroom Sci. 1987. V. 12. P. 231-244.

276. Kamisaka S., Yanagishima N., Masuda Y. Effect of auxin and gibberellin on sporulation in yeast // Physiol. Plant. 1967. V. 20. P. 90-97.

277. Kamiya Т., Saito Y., Hashimoto M., Seki H. Hypocholesterolemic alkaloids of Lentinus edodes (Berk.) Sing. I. Structure and synthesis of eritadenine // Tetrahedron. 1972. V. 28, № 4. P. 899-906.

278. Kaneda T, Tokuda S. Effects of various mushroom preparations on cholesterol levels in rats // J. Nutrition. 1966. V. 90. P. 371-376.

279. Kaneko Т., Oguri S., Kato S., Nagata Y. Developmental appcarance of lectin during fruit body formation in Pleurotus cornucopiae // J. Gen. Appl. Microbiol. 1993. V. 39. P. 83-90.

280. Kawagishi H., Mori H., Uno A., Kimura A., Chiba S. A sialic acid-binding lectin from the mushroom Hericium erinaceum I IFEBS Lett. 1994. V. 340. P. 56-58.

281. Kawagishi H., Nomura A., Mizuno Т., Kimura A., Chiba S. Isolation and characterization of a lectin from Grifola frondosa fruiting bodies // Biochim. et Biophys. Acta. 1990. V. 1034. P. 247-252.

282. Kilpatrick D.C. Handbook of animal lectins: properties and biomedical applications. London; New York et al.: Wiley, 2000. 480 p.

283. Kimura Y., Taniguchi M., Baba K. Antitumor and antimetastatic effects on liver of triterpenoid fractions of Ganoderma lucidum: mechanism of action and isolation of an active substance // Anticancer Res. 2002. V. 22. P. 3309-3318.

284. Kirk Т.К. Effects of microorganisms on lignin // Ann. Rev. Phytopathol. 1971. V. 9. P. 195-210.

285. Kirk Т.К. Degradation and conversion of lignocelluloses // The filamentous fungi / Eds. J.E. Smith et al. London: Advard Arnold Publ. Ltd., 1983. V. 4. P. 266

286. Kirk T.K., Connors W.J., Zeikus J.G. Requirement for a growth substrate during lignin decomposition by two wood rotting fungi // Appl. Environ. Microbiol. 1976. V. 32. P. 192.

287. Knoepfel L., Steinkuhler C., Carri M.T., Rotilio G. Role of zinc-coordination and of the glutathione redox couple in the redox susceptibility of human transcription factor Spl // Biochem. Biophys. Res. Commun. 1994. V. 201, № 2. P. 871-877.

288. Kobata A., Endo T. Immobilized lectin columns: useful tools for the fractionation and structural analysis of oligosaccharides // J. Chromatogr. 1992. V. 597. P. 111-122.

289. Kocourek J., Horejsi V. Defining a lectin // Nature. 1981. V. 290, № 5803. P.188.

290. Kocourek J., Horejsi V. A note on the recent discussion on definition of the term "Lectin"// Lectins: Biology, Biochemistry, Clinical Biochemistry. Vol. 3 / Eds. T.C. B0g-Hansen, G.A. Spengler. Berlin; New York: Walter de Gruytcr, 1983. P.3-6.

291. Kodama N., Komuta K., Sakai N., Nanba H. Effects of D-fraction, a polysaccharide from Grifola frondosa on tumor growth involve activation of NK cells // Biol. Pharm. Bull. 2002a. V. 25. P. 1647-1650.

292. Kodama N., Harada N., Nanba H. A polysaccharide, extract from Grifola frondosa, induces Th-1 dominant responses in carcinoma-bearing BALB/c mice // Jpn. J. Pharmacol. 2002b. V. 90. P. 357-360.

293. Konska G. Lectins in higher fungi. Thesis, Faculty of Pharmaceutical Sciences, Cracow (in Polish), 1985.

294. Konska G. A survey of domestic species of Basidiomycetes fungi for the presence of lectins in their carpophores // Acta Societatis Botanicorum Poloniae. 1988a. V. 57. P. 247-260.

295. Konska G. The lectin occurrence in selected Basidiomycetes species growing in south districts of Poland // Acta Mycol. 1988b. V. 24. P. 101-112.

296. Konska G., Guillot J., Dusser M., Damez M., Botton B. Isolation and characterization of an N-acetyllactosamine-binding lectin from the mushroom Laetiporus sulfureus // J. Biochem. 1994. V. 116, № 3. P. 519-523.

297. Kretz O. Isolement et etude des propriétés physico-chimiques, biologiques et toxicologiques de la bolesatine, toxine proteique glycoproteique extraite de Boletus satanas Lenz. These de Doctorat en Pharmacie, Strasbourg, 1992.

298. Kretz O., Creppy E.E., Boulanger Y., Dirheimer G. Purification and some properties of bolesatine, a protein inhibiting in vitro protein synthesis, from the mushroom Boletus setanas Lenz (Boletaceae) // Arch. Toxicol. Suppl. 1989. V. 13. P. 422-427.

299. Kretz O., Creppy E.E., Dirheimer G. Disposition of the toxic protein, bolesatine, in rats: its resistance to proteolytic enzymes // Xenobiotica. 1991a. V. 21. P. 65-73.

300. Kretz O., Creppy E.E., Dirheimer G. Characterization of bolesatine, a toxic protein from the mushroom Boletus satanas Lenz and its effects on kidney cells // Toxicology. 1991b. V. 66. P. 213-224.

301. Krishnan R., Binkley J.S., Seeger R., Pople J.A. Self-Consistent Molecular Orbital Methods. XX. A Basis Set for Correlated Wave Functions // J. Chem. Phys. 1980. V. 72, № 1. P. 650-654.

302. Krupe M. Blutgruppen spezifische Pflanzliche Eiweisskorper. F. Enke, Stuttgart, 1956.

303. Kubo K., Aoki H., Nanba H. Anti-diabetic activity in the fruit body of Grifola frondosa (Maitake)//Biol. Pharmaceut. Bull. 1994. V. 17. P. 1106-1110.

304. Kulkarni R.K. Mannitol metabolism in Lentinus edodes, the Shiitake Mushroom // Appl. Environ. Microbiol. 1990. V. 56. № 1. P. 250-253.

305. Kumar A. Biosensors based on piezoelectric crystal detectors: theory and application // JOM. 2000. V. 52. Exclusively on the web. http://www.tms.org/pubs/journals/JOM/0010/Kumar/Kumar-0010.html.

306. Kurashima Y., Tsuda M., Sugimura T. Marked formation of thiazolidine-4-carboxylic acid, an effective nitrite trapping agent in vivo, on boiling of dried shiitakemushroom {Lentinus edodes) // J. Agric. Food Chem. 1990. V. 38. P. 1945-1949.

307. Makela O. Studies in hemagglutinins of Leguminosae seeds. Academic Dissertation, Helsinki. 1957.

308. Makela J., Makela P., Krupe M. Zur Spezifität der anti-B-Phytahemagglutinine // Z. Immunitatstorsch. Exp. Ther. 1959. 117. 220-229.

309. Maltseva O.V., Golovleva L.A., Leontievsky A.A., Nerud F., Misurcova Z., Musilek V. Dynamics of enzymes generating hydrogen peroxide in solid-state fermentation of Panus tigrinus on wheat straw // Folia Microbiol. 1989. V. 34. P. 261-266.

310. Man Y.H., Yeng W.T, Chen L.C., Chang S. Physiology and ecology of Lentinus edodes (Berk.) Sing // Mushroom Sei. 1981. V. 11. P. 623-658.

311. Marzullo L., Cannio R., Giardina P., Santini M.T., Sannia G. Veratryl alcohol oxidase from Pleurotus ostreatus participates in lignin biodégradation and prevents polymerization of laccase-oxidized substrates //J. Biol. Chem. 1995. V. 270. P. 38233827.

312. Mazhoudi S., Chaoui A., Ghorbal M.H., Ferjani E.E. Response of antioxidant enzymes to excess copper in tomato (Ly copersicon esculentum Mill.) I I Plant Sci. 1997. V. 127. P. 129-137.

313. McLean A.D., Chandler G.S. Contracted Gaussian Basis Sets for Molecular Calculations. I. Second Row Atoms, Z = 11-18 // J. Chem. Phys. 1980. V. 72, № 10. P. 5639-5648.

314. Merrill W., Cowling E.B. Role of nitrogen in wood deterioration: amounts and distribution of nitrogen in tree stems // Can. J. Biol. 1966. V. 44. P. 1555-1580.

315. Miertus S., Scrocco E., Tomasi J. Electrostatic Interaction of a Solute with a Continuum. A Direct Utilization of Ab Initio Molecular Potentials for the Prevision of Solvent Effects // Chem. Phys. 1981. V. 55, № 1. P. 117-129.

316. Mikiashvili N., Elisashvili V., Wasser S.P., Nevo E. Comparative study of lectin activity of higher basidiomycetes // Int. J. Med. Mushrooms. 2006. V. 8. P. 3138.

317. Mizuno T. Bioactive biomolecules of mushrooms: food functions and medicinal effect of mushroom fungi // Food Rev. Intern. 1995a. V. 11. P. 7-21.

318. Mizuno T. Shiitake, Lentinus edodes\ functional properties for medicinal and food purposes. // Food Rev. Intern. 1995b. V. 11, № 1. P. 111-128.

319. Mizuno T. Yamabushitake, Hericium erinaceum: bioactive substances and medicinal utilization // Food. Rev. Intern. 1995c. V. 11. P. 173-178.

320. Mizuno T. The extraction and development of antitumor-active polysaccharides from medicinal mushrooms in Japan // Int. J. Med. Mushroom. 1999. V. 1. P. 9-29.

321. Molina F.I., Shen P., Jong S.C., Orikono K. Molecular evidence supports the separation of Lentinula edodes from Lentinus and related genera // Can. J. Bot. 1992. V. 70, № 12. P. 2446-2452.

322. Mori K., Kugimiya N. Analysis on the incompatible factors in natural population of Lentinus edodes II Jap. J. Genet. 1972. V. 47. P. 359.

323. Mori K., Toyomasu T., Nanba H., Kuroda H. Antitumor action of fruit bodies of mushrooms orally administrated to mice // Mushroom Sci. 1989. V. 12, part 1. P. 653-660.

324. Moroder L. Isosteric replacement of sulfur with other chalcogens in peptides and proteins // J. Pept. Sci. 2005. V. 11, № 4. P. 187-214.

325. Morton N., Hammond J.B.W., Dickerson A.G. The Agaricus bisporus mannitol pathway during sporophore growth // Trans. Br. Mycol. Soc. 1985. V. 85. P. 671-675.

326. Moulton J.E. Extraction of auxin from maize, from smut tumors of maize and from Ustilago zeae // Bot. Gaz. 1942. V. 103. P. 725-739.

327. Mullcr S., Scnn H., Gsell B., Vetter W., Baron C., Bock A. The formation of diselenide bridges in proteins by incorporation of selenocysteine residues:biosynthesis and characterization of (Se)2-thioredoxin // Biochemistry. 1994. V. 33. P. 3404-3412.

328. Mustier J., Coulet M. Localisation de Phemagglutinine de l'oeuf de Phallus impudicus L. ex Fr. // C. R. Soc. Biol. 1965. V. 159. P. 1566-1570.

329. Noctor G., Foyer C.H. Ascorbate and glutathione: keeping active oxygen under control // Annual Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol. 1998. V. 49. P. 249-279.

330. Nowell P.C. Phytohemagglutinin: as initiator of mitosis in cultures of normal lymphocytes // Cancer Res. 1960. V. 20. P. 462-466.

331. Ogra Y., Ishiwata K., Ruiz Encinar J., Lobinski R., Suzuki K.T. Speciation of selenium in selenium-enriched shiitake mushroom, Lentinula edodes // Anal. Bioanal. Chem. 2004. V. 379, № 5-6. P. 861-866.

332. Oguri S., Yoshida M., Nagata Y. Isolation, crystallization, and characterization of a 16.5-kDa protein from fruit bodies of a lectin-deficient strain of Pleurotus comucopiae // Biosci. Biotech. Biochem. 1994. V. 58. P. 502-506.

333. Ohashi K., Burkart V., Flohe S. Cutting edge: heat shock protein 60 is a putative endogenous ligand of the Toll-like receptor-4 complex // J. Immunol. 2000. V. 164. P. 558-561.

334. Ohlson C., Karlsson J.O. Glycoproteins of axonal transport. Polypeptides interacting with the lectin from Aleuria aurantia 11 Brain Res. 1983. V. 264. P. 99104.

335. Okazaki M., Adachi Y., Ohno N., Yadomae T. Structure-activity relationship of (1—>3)-beta-D-glucans in the induction of cytokine production from macrophages, in vitro //Biol. Pharm. Bull. 1995. V. 18. P. 1320-1327.

336. Okeke B.C., Paterson A., Smith J.E., Watson-Craik I.A. The relationship between phenoloxidase activity, soluble protein and ergosterol with growth of Lentinus species in oak sawdust logs // Appl. Microbiol. Biotechnol. 1994. V. 41. P. 28-31.

337. Olsnes S., Pihl A. // The specificity and action of animal, bacterial and plant toxins (Receptors and Recognition, Ser. B.V.I.) / Ed. P. Cuatrecasas. London: Chapmand and Hill, 1977. P. 131-141.

338. Onsager L. Electric Moments of Molecules in Liquids // J. Amer. Chem. Soc. 1936. V. 58, № 8. P. 1486-1493.

339. Ooi V.E., Liu F. Immunomodulation and anticancer activity of polysachcaride-protein complexes // Curr. Med. Chem. 2000. V. 7. P. 715-729.

340. Otien L., Blanchette R.A. Xylobolus frustulatus decay of oak: patterns of selective delignification and subsequent cellulose removal // Appl. Environ. Microbiol. 1984. V. 47. P. 670-676.

341. Paaventhan P., Joseph J.S., Seow S.V., Vaday S., Robinson H., Chua K.Y., Kolatkar P.R. A 1.7 A structure of Fve, a member of the new fungal immunomodulatory protein family // J. Mol. Biol. 2003. V. 332, № 2. P. 461-470.

342. Pajtasz E., Dus D., Debray H. Mitogenic stimulation of lymphoid cells by Aleuria aurantia agglutinin // Arch. Exp. Ther. 1988. V. 36. P. 133-139.

343. Pankratov A.N. Electrophilic aromatic substitution regioselectivity for benzene derivatives in terms of cationic localization energies from semiempirical quantum chemical computations // J. Mol. Struct. Theochem. 2000. V. 507, № 1-3. P. 239-244.

344. Pankratov A.N. Quantitative structure property relationships in the pyridine series // Heteroatom Chemistry. 2002. V. 13, № 3. P. 229-241.

345. Pankratov A.N. Azo-coupling reactions used in analytical chemistry: The role of reactants, intermediates, and aqueous medium // Helvetica Chim. Acta. 2004. V. 87, № 6. P. 1561-1573.

346. Pankratov A.N., Bilenko O.A., Mushtakova S.P. Oxidation of 4-amino-4methoxydiphenylamine in aqueous and organo-aqueous media // Afinidad. 2000a. V. 57, № 487. P. 201-208.

347. Pankratov A.N., Drevko B.I. An approach to quantum chemical consideration of the "hydride" transfer reactions // J. Serb. Chem. Soc. 2004. V. 69, № 2. P. 431439.

348. Pankratov A.N., Shalabay A.V. Benzenethiols: pKa values measured in solutions against quantum chemically computed gaseous-phase proton affinities // Phosphorus, Sulfur, Silicon and the Related Elements. 2003. V. 178, № 10. P. 10071019.

349. Pankratov A.N., Shchavlev A.E. Semiempirical quantum chemical PM3 computations and evaluations of redox potentials, basicities and dipole moments of the diphenylamine series as analytical reagents // Can. J. Chem. 1999. V. 77, № 12. P. 2053-2058.

350. Pankratov A.N., Tsivileva O.M. Mixed stationary phase polymethylsiloxanc-acrylic acid in gas chromatographic determinations // Rev. Roumaine Chim. 2003. V. 48, № 6. P. 491-498.

351. Pankratov A.N., Tsivileva O.M., Nikitina V.E. Laccase of Lentinus edodes catalyzed oxidation of amines and phenolic compounds: a semiempirical quantum chemical consideration // J. Biochem. and Mol. Biol. 2000b. V. 33, № 1. P. 37-42.

352. Pankratov A.N., Uchaeva I.M. A semiempirical quantum chemical testing of thermodynamic and molecular properties of arsenic compounds // J. Mol. Struct. Theochem. 2000. V. 498, № 1-3. P. 247-254.

353. Pankratov A.N., Uchaeva I.M. Thermodynamic properties and molecular dipole moments of antimony compounds from quantum chemical evaluations // Phosphorus, Sulfur, and Silicon and the Related Elements. 2002a. V. 177, № 5. P. 791-802.

354. Pardoe G.I., Uhlenbruck G., Anstee D.J., Reifenberg V. On the specificity ofbroad spectrum agglutinins. III. Heterophile agglutinins associated with anti-B-like specificity 11 Z. Immunitatsforsch. Allergie Klin. 1969. V. 139. P. 468-485.

355. Paszczynski A., Huynh V.-B., Crawford R.L. Enzymatic activities of an extracellular, manganese-dependent peroxidase from Phanerochaete chrysosporium // FEMS Microbiol. Lett. 1985. V. 29. P. 37-41.

356. Paszczynski A., Huynh V.-B., Crawford R.L. Comparison of ligninase-1 and peroxidase M-2 from the white-rot fungus Phanerochaete chrysosporium // Arch. Biochem. and Biophys. 1986. V. 244. P. 750-765.

357. Payne M.J., Campbell S., Patchett R.A., Kroll R.G. The use of immobilized lectins in the separation of Staphylococcus aureus, Escherichia coli, Listeria and Salmonella ssp. from pure cultures and foods // J. Appl. Bacteriol. 1992. V. 73. P. 4152.

358. Pearson R.G. Hard and soft acids and bases // J. Amer. Chem. Soc. 1963. V. 85, № 22. P. 3533-3539.

359. Pearson R.G. Theoretical models of chemical bonding / Ed. Z. Maksic. Berlin: Springer-Verlag, 1990. Part 2. P. 45.

360. Petavy A.F., Gueugnot J., Guillot J., Damez M., Coulet M. Fixation des lectines sur Leishmania tropics et Critridie luccilae // Protistologica. 1978. V. 14. P. 103-108.

361. Petavy A.F., Guillot J., Coulet M. Interet des lectines dans l'identification des Candida. Application a Candida ablicans; diagnostic positif et exclusion des especes affines. Bull. Soc. Mycol. Med. 1975. V. 19. P. 225-228.

362. Poulos T.L., Edwards S.T., Wariishi H., Gold M.H. Crystallographic refinement of lignin peroxidase at 2A // J. Biol. Chem. 1993. V. 268. P. 4429-4440.

363. Przybylowicz P., Donoghue J. Shiitake growers handbook: the art and science of mushroom cultivation. Dubuque: Kendall/Hunt Publ. Co., 1991. 217 p.

364. Ranque J., Nicoli R.M., Chefson J., Battaglini P.F. Sur quelques hemagglutinines aspecificues d'origine vegetale. Leur comportement en presence d'un polysaccharide le "dexlran" // Bull. Soc. Pharm. Marseille. 1962. V. 11. P. 1-3.

365. Raszeja S. Uber spezifische Phytagglutinine aus Laccaria laccata varietas proxima II Z. Arztl. Forblid. 1958. V. 14. P. 801-803.

366. Rcitherman R.W., Rosen S.D. , Frazier W.A., Barondes S.H. Cell surface specific high affinity receptor for discoidin: developmental regulation in Diclyostelium discoideum // Proc. Natl. Acad. Sei. USA. 1975. V. 72, № 9. P. 35413545.

367. Reshetnikov S.V., Wasser S.P., Tan K.K. Higher Basidiomycota as a source of antitumor and immunostimulating polysaccharides // Int. J. Med. Mushrooms. 2001. V. 3. P. 361-394.

368. Richard T. Contribution a l'etude de la lectine du champignon basidiomycete Rigoporus lignosus. Purification, propriétés physicochimiques et localisation de la lectine et de ses sites d'affinité II These de Doctorat en Sciences. Nancy, 1995.

369. Rokujo T., Kikuchi H., Tensho A., Tsukitani Y., Takenawa T., Yoshida K., Kamiya T. Lentysine: a new hypolipidemic agent from a mushroom. Lentinus edodes. // Life Sei. 1970. V. 9, № 7. P. 379-385.

370. Rosenfield R.E., Haber G.V. detection and measurement of homologous human hemagglutinins // Automation in Analytical Chemistry, Technicon Symposia. New York, 1965. P. 515.

371. Rosenzweig W.D., Ackroyd D. Binding characteristics of lectins involved in the trapping of nematodes by fungi // Appl. Environ. Microbiol. 1983. V. 46. P. 10931096.

372. Royse D.J., Schisler L.C. Mushrooms, their consumption, production and culture development // Interdise. Sei. Rev. 1980. V. 5, № 4. P. 324-332.

373. Rudiger H., Gabius H.-J. Plant lectins: occurrence, biochemistry, functions and applications // Glycoconjugate J. 2001. V. 18. P. 589-613.

374. Rypacek V., Sladky Z. The character of endogenous growth regulators in the course of development in the fungus Lentinus tigrinus // Mycopathologia et Mycologia applicata. 1972. V. 46. P. 65-72.

375. Rypacek V., Sladky Z. Relation between the level of endogenous growth regulators and the differentiation of the fungus Lentinus tigrinus studied in a synthetic medium// Biologia Plantarum (Praha). 1973. V. 15, № 1. P. 20-26.

376. Sage H.J., Vazquez J.J. Studies on a hemagglutinin from the mushroom Agaricus campestris // J. Biol. Chem. 1967. V. 242. P. 120-125.

377. Sasaki T., Takasuka N. Further study of the structure of lentinan, an anti-tumor polysaccharide from Lentinus edodes an edible mushroom. // Carbohydr. Res. 1976. V. 47, № 1. P. 99-104.

378. Sauerbrey G.G. Messung von Plattenschwingungen sehr kleiner Amplitude durch Lichtstrom-modulation // Z. Phys. 1964. Bd. 178. S. 457-471.

379. Savoie J.-M., Cesbron V., Delpech P. Induction of polyphenol-oxidases in the mycelium of Leniinula edodes // Science and cultivation of edible fungi. Vol. 2. / Ed. T.J. Elliott. Rotterdam: Balkema, 1995. P. 787-793.

380. Schlegel H.B., McDouall J.J. // Computational Advances in Organic Chemistry / Edited by C. Ogretir, I.G. Csizmadia. The Netherlands: Kluwer Academic, 1991. P. 167-185.

381. Schrauzer G.N. Selenomethionine and selenium yeast: appropriate forms of selenium for use in infant formulas and nutritional supplements // J. Med. Foods. 1998. V. 1. P. 201-206.

382. Schrauzer G.N. Selenomethionine: A review of its nutritional significance, metabolism and toxicity // J. Nutr. 2000. V. 130, № 7. P. 1653-1656.

383. Schwarz P.A., Foltz C.M. Selenium as an integral part of Factor 3 against dietary necrotic liver degeneration // J. Amer. Chem. Sci. 1957. V. 79. P. 3292.

384. Scott P.E., Gaucher G.M. A manganese requirement for patulin biosynthesis by cultures of Penicillium urticae // Biotechnol Lett. 1984. V. 6, № 4. P. 231-236.

385. Scroeder H.A., Frost O.V., Balassa J.J. Essential trace elements in man: selenium // J. Chron. Dis. 1970. V. 23. P. 227-243.

386. Seeger R., Wiedmann R. Zum Vorkommen von Hamolysen und Agglutininen in höheren Pilzen (Basidiomyceten) // Arch. Toxicol. 1972. V. 29. P. 189-217.

387. Shrift A. Metabolism of selenium by plants and microorganisms // Selenium compounds in nature and medicine. New York: Cornell University, 1961. 816 p.

388. Silicani V., Nicoli R.M., Ranque J., Battaglini P.F. Sur deux nouvelles agglutinines anti-H d'origine vegetale // Bull. Soc. Pharm. Marseille. 1962. V. 11. P. 1-3.

389. Simpson D.L., Thorne D.R., Loh H.H. Lectins: endogeneous carbohydrate-binding proteins from vertebrate tissues: functional role in recognition processes? // Life Sei. 1978. V. 22, №. 9. P. 727-748.

390. Sjostrom V.A. Wood chemistry. Fundamentals and applications / 2nd ed. N.Y.; London: Acad. Press, 1993.

391. Sladky Z., Tichy V. Stimulation of the formation of fruiting bodies of the fungus Lentinus tigrinus (Bull.) Fr. by growth regulators // Biologia Planlarum (Praha). 1974. V. 16, № 6. P. 436-443.

392. Sliva D. Ganoderma lucidum (reishi) in cancer treatment // Integr. Cancer Ther. 2003. V. 2. P. 358-364.

393. Sliva D., Labarrere C., Slivova V., Sedlak M., Lloyd F.P. Jr., Ho N.W. Ganoderma lucidum suppresses motility of highly invasive breast and prostate cancer cells // Biochcm. and Biophys. Res. Commun. 2002. V. 298. P. 603-612.

394. Song C.H., Cho K.Y., Nair N.G. A synthetic medium for the production of submerged cultures oiLentinus edodes // Mycologia. 1987. V. 79. P. 866-876.

395. Song C.H., Cho K.Y., Nair N.G., Vine J. Growth stimulation and lipid synthesis in Lentinus edodes II Mycologia. 1989. V. 81, № 4. P. 514-522.

396. Sosa-Morales M.E., Guevara-Lara F., Martinez-Juarez V.M., Paredes-Lopez O. Production of indole-3-acetic acid by mutant strains of Ustilago maydis (maize smut/huitlacoche) // Appl. Microbiol. Biotechnol. 1997. V. 48. P. 726-729.

397. Stamets P. Growing gourmet and medicinal mushrooms. Berkeley: Ten Speed Press, 1993. 552 p.

398. Stanley P. Selection of lectin-resistant mutants of animal cells // Methods Enzymol. 1983. V. 96. P. 157-183.

399. Stewart J.J.P. Optimization of Parameters for Semiempirical Methods. I. Method // J. Comput. Chem. 1989a. V. 10, № 2. P. 209-220.

400. Stewart J.J.P. Optimization of Parameters for Semiempirical Methods. II. Applications // J. Comput. Chem. 1989b. V. 10, № 2. P. 221-264.

401. Stewart J.J.P. Optimization of Parameters for Semiempirical Methods. III. Extension of PM3 to Be, Mg, Zn, Ga, Ge, As, Se, Cd, In, Sn, Sb, Te, Hg, Pb, and Bi // J. Comput. Chem. 1989c. V. 12, № 3. P. 320-341.

402. Still W.C., Tempczyk A., Hawley R.C., Hendrickson Th. Semianalytical treatment of solvation for molecular mechanics and dynamics // J. Amer. Chem. Soc. 1990. V. 112, № 16. P. 6127-6129.

403. Stillmark H. Uber Ricin, ein gifliges Ferment aus den Samen von Ricinus communis L. und Einigen anderen Euphorbiaceae. Inaug. Dissertation. Dorpat, 1888.

404. Stohs S., Bagchi D. Oxidative mechanisms in the toxicity of metal ions // Free Radic. Biol. Med. 1995. V. 18. P. 321-336.

405. Sueyoshi S., Tsuji T., Osawa T. Purification and characterization of four isolectins of mushroom (Agaricus bisporus) // Biol. Chem. Hoppe-Seyler. 1985. V. 366. P. 213-221.

406. Sun H., Zhao C.G., Tong X., Qi Y.P. A lectin with mycelia differentiation and antiphytovirus activities from the edible mushroom Agrocybe aegerita // J. Biochem. Mol. Biol. 2003. V. 36, № 2. P. 214-222.

407. Sundarmoorthy M., Kishi K., Gold M., Poulos T.L. The crystal structure of manganese peroxidase from Phanerochaete chrysosporium at 2.06 A resolution // J. Biol. Chem. 1994. V. 269. P. 32759-32767.

408. Suzuki S., Oshita S. Influence of shiitake (.Lentinus edodes) on human serum cholesterol // Mushroom Sci. 1974. V. 9. P. 463-467.

409. Taguchi T., Furue H., Kimura T., Kondo T., Hattori T., Itoh T., Osawa N. Endpoint results of phase III study of lentinan // Jpn. J. Cancer Chemother. 1985. V. 12. P. 366-380.

410. Takamura K., Hoshino H., Sugahara T., Amano H. Determination of vitamin D2 in shiitake mushroom {Lentinus edodes) by high-performance liquid chromatography //J. Chromatogr. 1991. V. 545, № 1. P. 201-204.

411. Takashima K. The hyphocholesterolemic action of eritadenin in the rat //Arteriosclerosis. 1976. V. 17. P. 491-502.

412. Takeda K., Akira S. Toll-like receptors in innate immunity // Intern. Immunol. 2005. V. 17. № 1. P. 1-16.

413. Taketo M.M. Cyclooxygenase-2 inhibitors in tumorigenesis. Part I // J. Natl. Cancer Inst. 1998a. V. 90. P. 1529-1536.

414. Taketo M.M. Cyclooxygenase-2 inhibitors in tumorigenesis. Part II // J. Natl. Cancer Inst. 1998b. V. 90. P. 1609-1620.

415. Takeuchi A., Okano T., Sayamoto M., Sawamura S., Kobayashi T. Distribution and existence forms of vitamin D2 and ergosterol in Shiitake (Lentinus edodes) // Vitamins (J. Vitamin Soc. Jap.) 1984. V. 58, № 12. P. 589-595.

416. Tanabe N., Sagawa I., Ohtsubo K., Iijima Y., Yanagi S.O. Comparison of phenoloxidase activities during the cultivation of several basidiomycetes // Agric. Biol. Chem. 1989. V. 53, № 11. P. 3061-3063.

417. The Lectins: Properties, Functions, and Applications in Biology and Medicine / Eds I.E. Liener, N. Sharon, I.J. Goldstein. Orlando: Acad. Press, 1986. 601 p.

418. Thruston C.F. The structure and function of fungal laccases // Microbiology. 1994. V. 140. P. 19-26.

419. Tien M., Kirk T.K. Lignin-degrading enzyme from the hymenomycete Phanerochaete chrysosporium Burds // Science. 1983. V. 221. P. 661-663.

420. Tien M., Kirk T.K. Lignin-degrading enzyme from Phanerochaete chrysosporium: purification, characterization, and catalytic properties of a unique H202-requiring oxygenase // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1984. V. 81. P. 2280-2284.

421. Togami M. Basidiomycetes. 1. Antitumor polysaccharide from bagasse medium on which mycelia of Lentinus edodes had been grown // Chem. Pharm. Bull. 1982. V. 30. P. 1134-1140

422. Tomsett A.B., Thurman D.A. Molecular biology of metal tolerances of plants // Plant Cell Environ. 1988. V. 11. P. 383-394.

423. Trigiano R.N., Fergus C.L. Extracellular enzymes of some fungi associated with mushroom culture // Mycologia. 1979. V. 71. P. 908-917.

424. Tritatana S., Tantikanjan T. Effects of some environmental factors on the morphology and yield of Lentinus edodes (Berk.) Sing I I Mushroom Sci. 1987. V. 12. P. 233-242.

425. Tsivileva O.M., Nikitina V.E., Garibova L.V., Ignatov V.V. Lectin activity of Lentinus edodes I I Intern. Microbiol. 2001. V. 4, № 1. P. 41-45.

426. Tsivileva O.M., Pankratov A.N., Nikitina V.E., Garibova L.V. Effect of media components on the mycelial film formation in submerged culture of Lentinus edodes (Shiitake) // Food Technol. and Biotechnol. 2005. V. 43, № 3. P. 227-234.

427. Tsuda M. Purification and characterization of a lectin from the mushroom Flammulina velutipes // J. Biochem. 1979. V. 86. P. 1463-1468.

428. Turan B., Fliss H., Desilets M. Oxidants increase the intracellular free Zn2+ concentration in rabbit ventricular myocytes // Am. J. Physiol. 1997. V. 272. C. 20952106.

429. Tworzydlo M. Recherche de lectines dans le mycelium cultive in vitro de certaines especes de champignons supérieurs. These en vue de la preparation du Diplôme d'Etudes Supérieures en Pharmacie. Cracow {in Polish), 1986.

430. Ugorski M., Pahlsson P., Dus D., Nilsson B. Glycosphingolipids in lectin-resistant variants of mouse Lewis lung carcinoma cells // Int. J. Cancer. 1989. V. 43. P. 93-101.

431. Vetter I. The biological effect of Lentinus edodes (Berk.) Sing // Микол. и фитопатол. 1993. Т. 27, вып. 6. С. 345-365.

432. Vinklarkova К., Sladky Z. Exogenous regulators in the mycelium of Pleurotus ostreatus after exogenous application // Folia Microbiol. 1978. V.23. P. 55-59.

433. Wang H.X., Ng T.B., Ooi V.E.C. Studies on purification of a lectin from fruiting bodies of the edible shiitake mushroom Lentinus edodes I I Intern. J. Biochem. Cell Biol. 1999. V. 31, № 5. P. 595-599.

434. Wariishi H., Akileswaran L., Gold M.H. Manganese peroxidase from the basidiomycete Phanerochaete chrysosporium: spectral characterization of the oxidized states and the catalytic cycle // Biochemistry. 1988. Vol. 27. P. 5365-5370.

435. Wasser S.P. Medicinal mushrooms as a source of antitumor and immunomodulating polysacharides // Appl. Microbiol. Biotechnol. 2002. V. 60. P. 258-274.

436. Wasser S.P., Nevo E., Sokolov D., Reshetnikov S.V., Timor-Tismenetsky M. Dietary supplements from medicinal mushrooms: diversity of types and variety of regulations // Int. J. Med. Mushrooms. 2000. V. 2. P. 1-19.

437. Wasser S.P., Weis A.L. Medicinal mushrooms. Lentinus edodes (Berk.) Sing (Shiitake mushroom). Haifa, Israel: Peledful Publ., 1997.

438. Wasser S.P., Weis A.L. Medicinal properties of substances occurring in higher basidiomycetes mushrooms: current perspectives: Review // Intern. J. Med. Mushrooms. 1999a. V. 1. P. 31-62.

439. Wasser S.P., Weis A.L. Therapeutic effects of substances occurring in higher

440. Basidiomycetes mushrooms: a modern perspective // Crit. Rev. Immunol. 1999b. V. 19, № 1. P. 65-96.

441. Welsh D.T. Ecological significance of compatible solute accumulation by micro-organisms: from single cells to global climate // FEMS Microbiol. Rev. 2000. V. 24, №3. P. 263-290.

442. Whanger P.D. Selenocompounds in plants and animals and their biological significance // J. Am. Coll. Nutr. 2002. V. 21, № 3. P. 223-232.

443. Wolf F.T. The production of indoleacetic acid by Ustilago zeae and its possible significance in tumor formation // Proc. Natl. Acad. Sci. 1952. V. 38. P. 106-111.

444. Wohler 1. Auxin-indole derivatives in soils determined by a colorimetric method and by high performance liquid chromatography // Microbiol. Res. 1997. V. 152. P. 399-405.

445. Yagi F., Tadera K. Purification and characterization of lectin from Auricidaria polytricha //Agric. Biol. Chem. 1988. V. 52. P. 2077-2079.

446. Yamashita K., Kochibe N., Ohkura T., Ueda I., Kobata A. Fractionation of L-fucose-containing oligosaccharides on immobilized Aleuria aurantia lectin I I J. Biol. Chem. 1985. V. 260. P. 4688-4693.

447. Yang Q.Y., Jong S.C. A quick and efficient method of making mushroom spawn // Mushroom Sci. 1989. V. 12. Part 1. P. 631-643.

448. Yaropolov A.I., Skorobogat'ko O.V., Vartanov S.S., Varfolomeev S.D. Laccase: properties, catalytic mechanism, and applicability // Appl. Biochem. Biotechnol. 1994. V. 49. P. 257-280.

449. Yazawa S., Furukawa K., Kochibe M. Isolation of fucosyl glycoproteins from human erythrocytes membranes by affinity chromatography using Aleuria aurantia lectin // J. Biochem. 1984. V. 96. P. 1737-1742.

450. Yazawa S., Kochibe M., Asao T. A simple procedure for isolation of tumor-associated antigens by affinity chromatography using fucose-specific Aleuriaaurantia lectin // Immunol Invest. 1990. V. 19. P. 319-327.

451. Yoshida M., Kato S., Oguri S., Nagata Y. Purification and properties of lectins from a mushroom Pleurotus cornucopiae // Biosci. Biotech. Biochem. 1994. V. 58, № 3. P. 498-501.

452. Yu L., Fernig D.G., Smith J.A., Milton J.D., Rhodes J.M. Reversible inhibition of proliferation of epithelial cell lines by Agaricus bisporus (edible mushroom) lectin // Cancer Res. 1993. V. 53. P. 4627-4632.

453. Yurekli F, Geckil H, Topcuoglu F. The synthesis of indole-3-acetic acid by the industrially important white-rot fungus Lentinus sajor-caju under different culture conditions // Mycol. Res. 2003. V. 107, Pt. 3. P. 305-309.

454. Yurekli F., Yesilada O., Yurekli M., Topcuoglu S.F. Plant growth hormone production from olive oil mill and alcohol factory wastewaters by white rot fungi // World J. Microbiol. Biotechnol. 1999. V. 15. P. 503-505.

455. Zhang J., Tang Q., Zimmerman-Kordmann M., Reutter W., Fan H. Activation of B lymphocytes by GLIS, a bioactive proteoglycan from Ganoderma lucidum // Life Sci. 2002a. V. 71, № 6. P. 623-638.

456. Zhang Y., Mills G.L., Nair M.G. Cyclooxygenase inhibitory and antioxidant compounds from the mycelia of the edible mushroom Grifola frondosa // J. Agric. Food Chem. 2002b. V. 50. P. 7581-7585.

457. Zhuang C., Murata T., Usui T., Kawagishi H., Kobayashi K. Purification and chracterization of a lectin from the toxic mushroom Amanita pantherina // Biochim. et Biophys. Acta (BBA). 1996. V. 1291. P. 40-44.

458. Zhuang C., Wasser S.P. Medicinal value of culinary-medicinal Maitake mushroom Grifola frondosa (Dicks.: Fr.) S.F. Gray (Aphyllophoromycetideae): Review // Intern. J. Med. Mushrooms. 2004. V. 6. P. 287-314.