ВЛИЯНИЕ СОСТАВА РАЦИОНА НА МИКРОБИОЛОГИЧЕСКИЕ ПОКАЗАТЕЛИ ЖЕЛУДОЧНО-КИШЕЧНОГО ТРАКТА ЦЫПЛЯТ-БРОЙЛЕРОВ ПРИ СКАРМЛИВАНИИ ПРЕПАРАТОВ СТАФАК-110 И ЦЕЛЛОБАКТЕРИН-Т тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 06.02.08, кандидат наук Грозина Алена Андреевна

• Грозина Алена Андреевна
• кандидат наук
• 2016

Оглавление диссертации кандидат наук Грозина Алена Андреевна

2.1 ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

2.1.1. Особенности физиологии желудочно-кишечного тракта птиц

2.1.2. Эффективность кормовых добавок, регулирующих микрофлору желудочно-кишечного тракта сельскохозяйственной птицы

2.1.2.1. Эффективность кормовых антибиотиков в птицеводстве

2.1.2.2. Эффективность пробиотиков в птицеводстве

2.1.3. Микрофлора желудочно-кишечного тракта сельскохозяйственной птицы

2.1.3.1. Общие сведения о микрофлоре желудочно-кишечного тракта

2.1.3.2. Сведения о микрофлоре желудочно-кишечного тракта птиц, полученные при помощи методов бактериологических высевов

2.1.3.3. Сведения о микрофлоре желудочно-кишечного тракта птиц, полученные при использовании молекулярно-генетических методов

2.1.4. Заключение по обзору литературы

2.2. МАТЕРИАЛ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЙ

2.2.1. Методика проведения научно-хозяйственных опытов

2.2.2. Методика T-RFLP-анализа микрофлоры желудочно-кишечного тракта цыплят-бройлеров

2.3. РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЙ

2.3.1. Микрофлора ЖКТ, физиологические и зоотехнические показатели

цыплят-бройлеров при использовании в рационе кормов животного происхождения в течение всего периода выращивания на фоне применения препаратов Стафак-110 и Целлобактерин-Т

2.3.1.1. Данные T-RFLP- анализа микрофлоры двенадцатиперстной кишки и слепых отростков цыплят-бройлеров

2.3.1.2. Результаты выращивания цыплят-бройлеров

2.3.2. Микрофлора ЖКТ, физиологические и зоотехнические показатели цыплят-бройлеров при использовании в рационе кормов животного происхождения до 15-дневного возраста с последующим их полным исключением до конца выращивания на фоне применения препаратов Стафак-

110 и Целлобактерин-Т

2.3.2.1. Данные T-RFLP-анализа микрофлоры двенадцатиперстной кишки и слепых отростков цыплят- бройлеров

2.3.2.2. Результаты выращивания цыплят-бройлеров

2.3.3. Микрофлора ЖКТ, физиологические и зоотехнические показатели цыплят-бройлеров при использовании в рационе кормов животного происхождения до 5-дневного возраста с последующим их полным

исключением до конца выращивания на фоне применения препаратов Стафак-

110 и Целлобактерин-Т

2.3.3.1. Данные Т-RFLP-анализа микрофлоры двенадцатиперстной кишки и слепых отростков цыплят-бройлеров

2.3.3.2. Результаты выращивания цыплят - бройлеров

2.3.4. Производственная проверка результатов применения препаратов Стафак-110 и Целлобактерин-Т при выращивании цыплят-бройлеров

2.3.5. Обсуждение результатов исследований

3. ЗАКЛЮЧЕНИЕ

3.1 Выводы

3.2 Предложения производству

3.3 Перспективы дальнейшей разработки темы

СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

ПРИЛОЖЕНИЕ

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «ВЛИЯНИЕ СОСТАВА РАЦИОНА НА МИКРОБИОЛОГИЧЕСКИЕ ПОКАЗАТЕЛИ ЖЕЛУДОЧНО-КИШЕЧНОГО ТРАКТА ЦЫПЛЯТ-БРОЙЛЕРОВ ПРИ СКАРМЛИВАНИИ ПРЕПАРАТОВ СТАФАК-110 И ЦЕЛЛОБАКТЕРИН-Т»

1. ВВЕДЕНИЕ

Актуальность темы. Птицеводство России является наиболее устойчивой и динамично развивающейся отраслью агропромышленного комплекса, сумевшей в короткие сроки увеличить объем птицеводческой продукции и обеспечить население высококачественными диетическими продуктами — яйцом и мясом. Высокие темпы мирового производства мяса птицы во многом связаны с последними достижениями в области генетики, селекции, кормления, технологии содержания и ветеринарной защиты. Так, современные кроссы обладают громадным генетическим потенциалом для роста и эффективной конверсии корма (Егоров и др., 2011; Фисинин и др., 2013; Бессарабов и др., 2014).

Однако промышленная технология выращивания цыплят-бройлеров фактически не учитывает роли микрофлоры желудочно-кишечного тракта в реализации генетического потенциала и возникает проблема формирования кишечной микрофлоры у цыплят в первые дни жизни, что ставит их существование в зависимость от санитарного состояния кормов, воды, условий содержания и не позволяет своевременно активизироваться процессам пищеварения (А.М. Первова, 2003; Г.Ю. Лаптев, 2012). Кроме того в процессе выращивания и содержания птицы происходит смена питательности комбикормов и замена одних компонентов на другие, практикуется использование комбикормов растительного типа, замена рыбной муки на мясокостную и т.п. Все это в той или иной степени оказывает влияние на состояние микрофлоры желудочно-кишечного тракта и, как следствие, на процессы пищеварения, рост птицы, жизнеспособность и конверсию корма.

Большая часть данных о микрофлоре желудочно-кишечного тракта сельскохозяйственной птицы была получена с помощью классических методов микробиологии, имеющих ряд существенных недостатков и без учета возрастной динамики, особенностей рациона, присутствия в комбикормах добавок, нормализующих микробиологический баланс. Кроме того,

зарубежными исследователями установлено, что значительная часть микробных ассоциаций представлена некультивируемыми видами, неспособными расти на существующих питательных средах (М.А. Тимошко, 1990; Л.А. Ильина, 2015; Engberg et al., 2000).

Оказалось, что общее количество разновидностей, представляющих микрофлору желудочно-кишечного тракта цыплят, приблизительно равнялось 640 видам из 140 родов, и лишь 10% из данных микроорганизмов, возможно, культивировать в лабораторных условиях (Zdunczik et al., 2015).

Появление и развитие современных молекулярно-генетических методов позволяет изучать разнообразие микроорганизмов, минуя стадию культивирования. К наиболее перспективным приемам в настоящее время относят полимеразную цепную реакцию (ПЦР), и в частности T-RFLP-анализ (Terminal restriction fragment length polymorphism) — молекулярно-генетический метод, основанный на оценке полиморфизма длин амплифицированных рестрикционных фрагментов ДНК микроорганизмов. Он предназначен для определения общей и относительной численности, а также таксономической принадлежности всех бактерий в микробной экосистеме, что дает возможность осуществлять широкомасштабное и детальное сравнительное изучение микробных сообществ в их развитии и изменении (Xiang et al., 2002; Amit-Romach et al., 2004).

Степень разработанности темы исследований. Препараты Стафак-110 и Целлобактерин-Т прошли ряд широких производственных испытаний в птицеводстве, свиноводстве и молочном скотоводстве на территории Российской Федерации и за рубежом (Первова, 2005; Пономаренко и др., 2009; Лаптев, 2010; Бушов и др., 2012; Хойцман и др., 2012). По результатам исследований для бройлерного птицеводства была установлена оптимальная дозировка, которая составляет для препарата Стафак-110 180г/т корма, а для Целлобактерина-Т - 1 кг/т.

Цель и задачи исследований. Главной целью диссертационной работы являлось изучение состава микрофлоры желудочно-кишечного тракта цыплят-бройлеров в возрастной динамике в зависимости от состава комбикорма и наличия в нем кормового антибиотика и пробиотика. Для достижения указанной цели были поставлены следующие задачи:

- изучить возрастную динамику микрофлоры желудочно-кишечного тракта цыплят с помощью метода T-RFLP-анализа, физиологические и зоотехнические показатели цыплят в зависимости от состава комбикормов;

- изучить микробиологические, физиологические и зоотехнические показатели цыплят-бройлеров при постоянном применении кормового антибиотика и пробиотика;

- определить экономическую эффективность использования кормового антибиотика и пробиотика при выращивании цыплят-бройлеров.

Положения, выносимые на защиту. На основании проведенных исследований на защиту выносятся следующие положения:

- характеристика возрастных изменений микрофлоры желудочно-кишечного тракта бройлеров в зависимости от состава комбикорма и наличия в нем кормового антибиотика и пробиотика;

- микробиологическое, физиологическое, зоотехническое и экономическое обоснование к использованию в комбикормах для бройлеров препаратов Стафак-110 и Целлобактерин-Т.

Научная новизна работы. Впервые был проведен комплексный анализ таксономической структуры микробного сообщества желудочно-кишечного тракта цыплят-бройлеров с помощью молекулярно-генетического метода Т-RFLP-анализа с учетом возрастной динамики в зависимости от состава комбикорма и использования кормового антибиотика и пробиотического препарата.

Теоретическая значимость работы. Получены новые данные о формировании микрофлоры в желудочно-кишечном тракте цыплят-бройлеров в

процессе роста и ее изменениях в зависимости от рецептуры комбикорма и использования кормового антибиотика и пробиотика.

Практическая значимость работы. С использованием метода T-RFLP-анализа в желудочно-кишечном тракте цыплят-бройлеров было выявлено множество микробных сообществ, установлена их связь с составом комбикорма, присутствием кормового антибиотика и пробиотика, физиологическими особенностями пищеварения и зоотехническими показателями, что позволило разработать способы регулирования микробиологических процессов в желудочно-кишечном тракте, направленные на повышение эффективности использования корма и продуктивности цыплят-бройлеров.

Материалы исследований были использованы при разработке методических рекомендаций «Руководство по использованию биопрепаратов и кормовых добавок для обеспечения здоровья и повышения продуктивности бройлеров (Сергиев Посад, ГНУ ВНИТИП, 2013), «Методика проведения научных и производственных исследований по кормлению сельскохозяйственной птицы. Молекулярно-генетические методы определения микрофлоры кишечника» (Сергиев Посад, ГНУ ВНИТИП, 2013), а также методического руководства «Молекулярно-генетические методы определения микрофлоры кишечника и установление нормы ее содержания в желудочно-кишечном тракте цыплят-бройлеров» (Сергиев Посад, ФГБНУ ВНИТИП, 2015).

Методология и методы исследования. Объектом исследования служили цыплята кросса «Cobb 500» с суточного до 36-дневного возраста. В результате исследований применялись различные методы изучения и анализа: статистические - при учете зоотехнических показателей, физиологические -при определении переваримости и использования питательных веществ корма, биохимические - при изучении состава кормов и помета, экономические - при определении экономического эффекта от применения препарата, аналитические - для сопоставления и анализа полученных результатов и их обсуждения.

Степень достоверности результатов проведенных исследований в

условиях ФГУП «Загорское ЭПХ ВНИТИП» характеризуется значимостью исследований для производства и экономической эффективностью от использования препаратов Стафак-110 и Целлобактерин-Т. Экспериментальные данные получены на большом фактическом материале, обработаны биометрически с применением методов вариационной статистики. Микробиологические и биохимические исследования проведены на сертифицированном оборудовании на базе ООО «Биотроф+» и ФГБНУ ВНИТИП.

Апробация работы. Материалы диссертации были доложены и обсуждены на семинаре молодых ученых «Современные проблемы в ветеринарной науке и практике» (Москва, МГАВМиБ им. Скрябина, 28 мая

2013 года), на 55-ой научно-практической конференции молодых ученых и аспирантов по птицеводству (Сергиев Посад, ФГБНУ ВНИТИП, 21 октября

2014 года), на XVIII международной конференции Всемирной научной ассоциации по птицеводству «Инновационное обеспечение яичного и мясного птицеводства России» (Сергиев Посад, 19-21 мая 2015 года), на 20-ом Европейском симпозиуме по кормлению птицы (Прага, Чешская Республика, 25-28 августа 2015 года), а также на техническом семинаре компаний Lohmann и Alltech «Физиология, кормление и качество скорлупы яичной птицы» (Санкт-Петербург, 19-22 октября 2015 года). Также работа приняла участие в международном конкурсе «Alltech young scientist» (Лексингтон, США, май 2015 года), где по результатам данной программы она заняла 1-е место среди российских публикаций и была отмечена медалью.

Публикации результатов исследований. По материалам диссертации опубликовано 12 научных работ, в том числе в журналах, рекомендованных ВАК РФ - 4, а также в иностранных изданиях - 2. Все публикации выполнены в рамках гранта российского научного фонда по научному проекту

«Современные представления о микрофлоре кишечника птицы при различных рационах питания: молекулярно-генетические подходы» № 14-16-00140.

Структура и объем диссертации. Диссертационная работа изложена на 181 странице машинописного текста, включает 34 таблицы, 12 рисунков, состоит из оглавления, введения, основной части диссертации, заключения, списка сокращений, списка литературы, включающего 199 источников, в том числе 131 на иностранных языках и приложения.

2. ОСНОВНАЯ ЧАСТЬ ДИСЕРТАЦИИ 2.1 ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

2.1.1. Особенности физиологии желудочно-кишечного тракта птиц

Желудочно-кишечный тракт птицы состоит из следующих отделов: глотка, пищевод, зоб, железистый и мускульный желудок, тонкий кишечник, слепые отростки, толстая кишка и клоака. Одной из особенностей желудочно-кишечного тракта птиц является отсутствие собственных ферментов, отвечающих за расщепление клетчатки и других некрахмальных полисахаридов. Вследствие этого гидролиз данных веществ в организме птицы происходит исключительно с участием микроорганизмов, содержащихся в слепых отростках ЖКТ (Redig, 1989).

Для цыплят несколько дней перед выводом и первые дни жизни являются критическими для развития и выживания. В этот период в их организме происходит метаболический и физиологический переход от питания в яйце за счет желтка к сухому корму. Поскольку именно кишечник является органом, обеспечивающим доставку питательных веществ в организм цыпленка и защищающим организм от патогенов, то чем быстрее он разовьется, тем быстрее цыплята смогут получить все необходимое для дальнейшего роста и развития (Фисинин и др., 2012).

У сельскохозяйственных животных и птицы слизистая оболочка кишечника формирует наибольшую поверхность контакта с внешней средой и играет важную роль во всасывании нутриентов, солей, воды (КаЬшшга et а1., 1993). Кроме метаболических функций, кишечный эпителий составляет первую линию защиты от патогенов. Таким образом, любые изменения в морфологии кишечника могут привести к подавлению всасывания, повышению секреции, диарее, снижению устойчивости к болезням и продуктивности в целом (Фисинин и др., 2013).

Желудочно-кишечный тракт имеет множество факторов защиты организма от различных негативных факторов. Первая группа факторов включает физические барьеры: наличие слизистого слоя, муцина, поддержание низких значений рН в железистом желудке и кишечнике, протективные свойства секретов поджелудочной железы и желчи, перистальтика и т.п. (Brandtzaeg, 2010).

Слизистая оболочка кишечника покрыта простым микроворсинчатым цилиндрическим эпителием (энтероциты). Эпителий имеет очень высокую способность самовозобновления, и полная замена эпителия происходит каждые 4-5 дней. Энтероциты обладают специфическими рецепторами апикальной мембраны, распознающими бактериальные антигены, активация которых приводит к локальным иммунным реакциям. Наряду с энтероцитами, гоблет-клетки (бокаловидные клетки) и клетки Паннета обеспечивают защиту от патогенов путем синтеза и секреции муцина, антимикробных пептидов и иммунорегулирующих факторов фер1апске, 2001).

Секретируемый бокаловидными клетками муцин действует как защитный барьер и система транспорта между содержимым кишечника и эпителиальными клетками. Секретируемый муцин покрывает поверхность энтероцитов двумя слоями - внутренним плотным и внешним более разжиженным. Такое взаимодействие затрудняет доступ бактерий к слизистой

оболочке и возможность их прикрепиться к клеткам эпителия. Следует также иметь в виду, что муциновый слой на поверхности слизистой служит источником нутриентов для многих кишечных организмов и некоторые виды бактерий, живущие в кишечнике, могут утилизировать полисахариды муцина (Kim, Ho, 2010).

В кишечнике птиц существует тонкая связь между количеством муцина и микрофлорой. Это доказывает тот факт, что гоблет-клетки могут менять состав секретируемого муцина в ответ на колонизацию Clostridium perfringens (Forder et al., 2007). При этом рН содержимого влияет на рост микроорганизмов, а также кормовые факторы. Например, наличие клетчатки в кормах способствует синтезу муцина. Подавление синтеза муцина у птиц может привести к снижению утилизации питательных веществ корма (Horn et al., 2009).

Огромную роль в поддержании гомеостаза организма у птиц играют антимикробные пептиды (AMP) - компоненты врожденного иммунитета, способные нарушать целостность мембран микроорганизмов. У цыплят хорошо изучены галлицины 10 типов от Ga-1 до Ga-10. При этом в кишечнике в основном синтезируются Ga-1 и Ga-2. Отмечено, что галлицины обладают сильной антибактериальной активностью в отношении Campylobacter spp., Salmonella spp., Clostridia spp., Listeria monocytogenes (Hong et al., 2012).

Большое значение имеют и лизоцим и иммуноглобулины. Лизоцим -фермент, катализирующий расщепление пептидогликана клеточной стенки. Он содержится в фагоцитарных и секреторных гранулах нейтрофилов, синтезируется моноцитами, макрофагами и эпителиальными клетками. Многие грамположительные бактерии очень чувствительны к действию лизоцима, в то время как на большинство грамотрицательных микроорганизмов он не действует (Muir et al., 2000). Функцию нейтрализации выполняют антитела IgG и IgA, которые синтезируются в печени и попадают в кишечник вместе с желчью или через бурсальный канал. Характерной особенностью антител

является их строгая специфичность, обусловленная предыдущими воздействиями антигенов на слизистую оболочку кишечника (Klipper et al., 2000).

Однако самую важную роль играет собственно лимфоидная система кишечника, состоящая из отдельных иммунных клеток в эпителиальном слое кишечника и подлежащих слоях. В мышечном и железистом желудке птиц отмечались небольшие скопления лимфоидной ткани, а в двенадцатиперстной кишке были обнаружены кольцевидные лимфоидные образования, называемые пилорическими миндалинами (Lillenhoj et al., 2004). Собственная пластинка кишечника у птиц содержит набор иммунных клеток всех типов, включая плазматические клетки, лимфоциты, макрофаги и гранулоциты (Olah et al., 1984).

В месте перехода подвздошной кишки в слепые отростки обнаруживаются Пейеровы бляшки, а слепые отростки содержат большое количество лимфоидной ткани. Ткань таких образований проникает в подслизистую оболочку и содержит главным образом Т - и В-лимфоциты. Интересен тот факт, что развитие лимфоидной ткани кишечника происходит одновременно с развитием пищеварительных структур и функций (Bar-Shira et al., 2005). Усиление лимфоидной функции связано с присутствием бактерий и совпадает по времени с развитием энтероцитов и ворсинок, а развитие тонкого кишечника происходит позже, чем толстого (Casteleyn et al., 2010).

Взаимодействие между иммунной системой пищеварительного тракта и микрофлорой кишечника цыплят начинается сразу же после вылупления и приводит к низкому уровню воспалительных процессов, характеризующихся увеличением экспрессии интерлейкинов. Такие процессы ведут к проникновению гетерофилов в базальную мембрану или эпителий пищеварительного тракта для нормализации иммунной системы организма (Bar-Shira et al., 2006).

Иммунная система кишечника реагирует не только на патогенную флору, но и на колонизацию нормальной микрофлорой. При этом экспрессия интерлейкинов -1; -8; -17; -18 и 22 изменялась в ответ, как на нормальную колонизацию пищеварительного тракта, так и в ответ на инфекцию. Выраженное повышение интерлейкинов выявлялось, как правило, на 4-ый день жизни цыплят. При этом на базальной мембране слепой кишки обнаруживались лимфоцитарные инфильтраты, что указывает на адаптацию иммунной системы к микрофлоре (Lillehoj et а1., 1992).

У цыплят, инфицированных в суточном возрасте S.еnteritidis, на 3-ий день после инфекции отмечалось значительное повышение интерлейкинов-1; -8; -17;

-18;-22 в слепой кишке по сравнению с контрольной группой. На 10-ый день после инфекции, гены были экспрессированы на уровнях в 35-40 раз превышающих значения у контрольной группы. С возрастом эти значения снижались лишь до 7-кратного увеличения. Таким образом, созревание иммунной системы организма приводит к ослаблению иммунного ответа к патогенам, что часто приводит к их персистенции в желудочно-кишечном тракте у взрослых особей (Сrhanova et а!, 2011).

2.1.2. Эффективность кормовых добавок, регулирующих микрофлору желудочно-кишечного тракта в птицеводстве

2.1.2.1. Эффективность кормовых антибиотиков в птицеводстве

Антибиотики - это вещества биологического происхождения, обладающие противомикробными свойствами. Антибиотики добавляли в корма для птиц и свиней, чтобы поддержать здоровье и экономическую эффективность производства за последние несколько десятилетий. Однако, из-за развития резистентности патогенными бактериями, которые могут воздействовать на общественное здоровье, антибиотики изымаются из рациона для птиц и свиней во всем мире, начиная со Швеции в 1986 году, поиск

альтернатив для замены кормовых антибиотиков получил возрастающий интерес в кормлении животных в последние годы (Dibner, Richards, 2005).

Применяемые в животноводстве кормовые антибиотики имеют ряд существенных недостатков: накопление их в продуктах животноводства, низкая эффективность в связи с развитием устойчивости микроорганизмов, нарушение баланса микроорганизмов при их длительном применении, нарушение баланса микроорганизмов в желудочно-кишечном тракте (Пономаренко и др., 2009).

Положительное действие кормовых антибиотиков на организм птицы выражается в следующем: они угнетают жизнедеятельность патогенных бактерий пищеварительного тракта и создают благоприятную среду для других видов кишечных бактерий. В результате повышается сопротивляемость животных стрессам и инфекциям (Фисинин, 2005).

Токсичность антибиотиков существенным образом зависит от механизма их действия. Для организма хозяина особенно токсичны те антибиотики, которые влияют на основные процессы обмена веществ. Кроме того, токсичность антибиотика в значительной мере зависит от способа его применения (Четли, 2005).

Все антибиотики и антибактериальные вещества классифицируются на группы согласно их химической структуре и воздействию на микроорганизмы: пенициллины, цефалоспорины, макролиды, тетрациклины, аминогликозиды, гликопептиды, фениколы, сульфониламиды, хинолоны, линкосамиды (Шчука, 2005).

Bedford (2000) указал, что усиливающие рост эффекты антибиотиков в кормах для животных тесно связаны с микрофлорой пищеварительного тракта, потому что они не проявляют полезного действия на состояние безмикробных животных.

Микрофлора пищеварительного тракта имеет существенное влияние на

питание организма, здоровье и скорость роста при взаимодействии с

переваримостью питательных веществ и развитием системы пищеварительного

тракта организма. Этот взаимодействие очень сложное и зависит от состава и активности микрофлоры пищеварительного тракта. Например, когда болезнетворные микроорганизмы внедряются в слизистую оболочку, нарушается целостность и сильно страдает ее функция и иммунная система, которой они угрожают (Neish, 2002).

Птенцы, выращенные в стерильной среде, растут на 15% быстрее, чем выращенные при обычных условиях. Кроме того, установлено, что микрофлора пищеварительного тракта была пищевым «бременем» у быстрорастущих цыплят бройлеров, так как у активного компонента микрофлоры может быть увеличенное энергетическое требование для функционирования и уменьшенная эффективность переваримости питательных веществ (Dibner, Richards, 2005).

Исследования научных университетов Австралии показали, что введение в рацион цыплят-бройлеров Бацитрацина цинка подавляло рост бактерий в желудочно-кишечном тракте, в особенности лактобацилл, клостридий и колиформ, а также снижало синтез муцина в кишечнике. Однако, по данным английских ученых, антибиотик значительно улучшал переваримость протеина, но наблюдалась тенденция к снижению переваримости крахмала (Yang et al., 2009; Chee et al., 2010).

Torok et al. (2011) сообщили, что введение в рацион цыплят-бройлеров антибиотиков авиламицина и флавофосфолипола оказывало значительное влияние на состав бактериальных сообществ подвздошной кишки. Изменчивость состава микрофлоры снижалась в среднем на 29% по сравнению с контрольной группой. При этом бацитрацин цинка не оказывал никакого влияния на изменчивость бактериальных сообществ.

Fairchild et al. (2005) провели испытания антибиотиков группы

тетрациклина на цыплятах-бройлерах. Оказалось, что введение в рацион

тетрациклина в дозировке 8 мкг/мл приводило к образованию резистентных

бактерий независимо от того, применялся ли препарат до этого или нет.

Штаммы Enterococcus spp., выделенные из кишечника птиц синтезировали tetM

(61%), tetL (25,4%), tetO (52,5%) детерминанты резистентности к тетрациклину,

15

а штаммы Escherichia coli - tetA (32,2%) и tetB (30,5%). Также были выделены резистентные Campylobacter jejuni.

Доказано, что у цыплят-бройлеров, получавших с кормом окситетрациклин с суточного возраста, в слепых кишках были идентифицированы устойчивые к тетрациклину Campylobacter jejuni в 65% случаев (Lu et al., 2003). Все положительные пробы содержали ген tetO ген резистентности к антибиотикам группы тетрациклинов. Также у этих цыплят из содержимого слепых кишок была выделена культура E. coli, которая в 53% случаев обладала tetB детерминантой и tetA детерминантой (25%) резистентности к тетрациклину. Таким образом, большинство резистентных к тетрациклину детерминант имеют низкую восприимчивость к окситетрациклину, хлортетрациклину, что также приводит к появлению устойчивых изолятов в мясе цыплят-бройлеров, патогенных для человека (Roberts, 1996; Gibreel et al., 2004).

Количество полезных бактерий в желудочно-кишечном тракте цыплят-бройлеров снижалось после использования кормовых антибиотиков. У птиц, получавших тилозин, через 5 суток в содержимом кишечника практически отсутствовали Bacterioides spp. и резко снижалась концентрация Lactobacillus spp., a Veilonella spp. была ниже в 100 раз по сравнению с контрольной группой. Также был обнаружен устойчивый к макролидам штамм Enterococcus faecalis (Poole et al., 2004).

Профилактическое и лечебное использование антибиотиков по контролю над возбудителями сальмонеллеза не рекомендуется вследствие развития резистентности к антибиотикам у патогенов, остаточного количества антибиотиков в продуктах животноводства и бессимптомному носительству (Yang et al., 2009).

В Греции на цыплятах-бройлерах кросса «Кобб», зараженных Salmonella

enteritidis, были проведены испытания антибиотика Авиламицина.

Микробиологический анализ содержимого слепого кишечника показал, что

добавление антибиотика было способно элиминировать сальмонеллу только в

16

50% случаев по сравнению с контрольной группой (Mountzouris et al., 2009). Smith and Tucker (1975) проводили исследования по оральному заражению цыплят культурой Salmonella typhimurium. Цыплята получали корма с содержанием ампициллина, неомицина, хлорамфеникола, окситетрациклина, полимиксина, спектиномицина, сульфадиазина или фуразолидона. Потери была сильно снижены, но когда антибиотики прекратили давать, потери увеличились до того же уровня, что и у цыплят, получавших рацион без добавок.

В странах ЕС антибактериальные препараты запрещено использовать в качестве специфического метода по профилактике сальмонеллеза у домашних птиц (Регламент 1177/2006). Из этого следует, что антибиотики не основной выбор для контроля сальмонеллы у поголовья бройлеров (Van Immerseel, 2009). В этих странах запрещены в животноводстве следующие антибиотики: авопарцин, бацитрацин, спирамицин, тилозинфосфат, вирджиниамицин, карбадос. Остаются разрешенными флавомицин, монензин, салиномицин (Пономаренко, 2009).

На бройлерной птицефабрике ОАО АПК «Орловщина» на цыплятах кросса «Смена-2» был проведен эксперимент по применению антибиотика Амоксиклав. При введении препарата в рацион с водой в дозе 20 г на 200 л увеличилась сохранность поголовья на 3,2%, однородность - на 15%, живая масса в 21-дневном возрасте - на 55,6 г (Роговнин и др., 2003). Имеются экспериментальные данные об эффективности применения антибиотика Энрадин в бройлерном птицеводстве. Отмечено, что введение препарата в рацион в дозе 200 г/т корма способствовало увеличению живой массы в 35-дневном возрасте на 2,1 %, снижению затрат корма на 5,2%, увеличению сохранности поголовья на 1,1% (Пономаренко, 2009).

Список литературы диссертационного исследования кандидат наук Грозина Алена Андреевна, 2016 год

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

1. Абдельрахман, В. Здоровый кишечник для яркого будущего/В. Абдельрахман//Комбикорма. - 2015.-№7.-С.76-77.

2. Ардатская, М.Д. Дисбактериозы кишечника: современные аспекты изучения проблемы, принципы диагностики и лечения/М.Д. Ардатская, О.Н. Минушкин//Терапевтический архив. -2001.-№2.- С.67-72.

3. Арсенюк, А.Ю. Исследование процесса L-трансформации в популяции сальмонелл методами электронной и лазерной интерференциальной микроскопии/ А.Ю.Арсенюк, И.Б. Павлова, П.С. Игнатьев// Сельскохозяйственная биология. -2013.-№6.- С.55-60.

4. Бабин, В.Н. Молекулярные аспекты симбиоза в системе хозяин-микрофлора/В. Н. Бабин, О. Н. Минушкин, А. В. Дубинин//Российский журнал гастроэнтерологии, гепатологии, колопроктологии. - 1998.-№6.-С. 76-82.

5. Бессарабов, Б.Ф. Клинические и лабораторные методы исследования сельскохозяйственной птицы при незаразных болезнях/ Б.Ф. Бессарабов, Л.В. Клетикова, С.А. Алексеева, С.А. Сушкова. - М.,«ЗооВетнига», 2014. - 310 с.

6. Бовкун, Г. Дисбактериозы молодняка - проблема актуальная/ Г. Бовкун, В. Трошин, Н. Малик // Птицеводство.-2005.-№6.-С.25-27.

7. Борознов, С.Л. Профилактика желудочно-кишечных заболеваний животных и птиц с применением пробиотиков и витаминно-минеральных препаратов/С. Л. Борознов, П.А. Красочко, М.П. Кучинский. - Минск, «Бизнесофест», 2008.- С. 3-27.

8. Блохина, И.Н. Дисбактериозы/ И.Н. Блохина, В.Т. Дорофейчук.- Л., «Медицина», 1979.- 275 с.

9. Брюханов, А.Л. Молекулярная микробиология/ А.Л. Брюханов, К.В. Рыбак, А.И. Нетрусов. - М., Издательство Московского университета, 2012. - 480 с.

10. Бушов, А. Целлобактерин в кормлении бройлеров/ А. Бушов, В. Курманаева// Животноводство России: спецвыпуск по птицеводству. -2012. - С. 63.

11. Георгиевский, В.И. Физиология сельскохозяйственных животных/ В.И. Георгиевский. - М., Агропромиздат, 1990.-511 с.

12. Гласкович, А.А. Уровень неспецифической защиты организма цыплят-бройлеров при введении в рацион препарата «Биофлор»/ А.А. Гласкович, В.М. Голушко, М.А. Гласкович//Био. - 2005. -№9. - С. 28-30.

13. Горская, Е. М. Механизмы развития микроэкологических нарушений в кишечнике и новые подходы к их коррекции: автореф. дисс. на соик. уч. степ. д-ра мед. наук: 03.00.07/Горская Елена Михайловна. - М., 1994.-27 с.

14. Егоров, И.А. Пробиотик «Бифидум-СХЖ»/И.А. Егоров//Птицеводство.-2003. - №3. - С.9.

15. Егоров, И.А. Биотехнология на страже здоровья кур-несушек/ И.А. Егоров, Н.И. Новикова, Л.А. Ильина// Животноводство России. Спецвыпуск по птицеводству.- 2011. - С.33.

16. Зон, Г.А. Аутохтоная микрофлора птицы / Г.А.Зон// Птицеводство.-1992.-№6. - С.20-22.

17. Ильина, Л.А. Микрофлора in ovo: возможности молекулярно-биологического метода T-RFLP/Л.А. Ильина, Е.А. Йылдырым, Н.И. Новикова//Вестник Российской сельскохозяйственной науки.- 2015.-№6.- С. 5-8.

18. Калоев, Б. Оптимизация микрофлоры кишечника у цыплят и кур/Б. Калоев//Птицеводство. - 2003. -№3.- С. 11.

19. Кислюк, С.М. Ферментативный пробиотик Целлобактерин - ответ на многие вопросы/ С.М.Кислюк, Н.И. Новикова, Г.Ю. Лаптев//РацВетИнформ.-2004.-№8.- С. 19

20. Крюков, О. Спорообразующий пробиотик при выращивании бройлеров/О.Крюков//Комбикорма. -2006. - №1. -С.75.

21. Куваева, И.Б. Дисбактериозы и эубиотики/И.Б. Куваева. - М., «Медицина», 1996. - 17 с.

22. Лобзин, Ю.В. Дисбактериоз кишечника/ Ю. В.Лобзин, В. Г. Макарова, Е.Р. Корвякова, С.М.Захаренко.- СПб, «Фолиант»,2006. - 265 с.

23. Лаптев, Г.Ю. Интродукция целлюлозолитической бактерии в рубец крупного рогатого скота для повышения переваримости клетчатки/ Г.Ю. Лаптев, Л.И. Эрнст, В.В. Солдатова//Сельскохозяйственная биология. -1994. -№4.-С.34-39.

24. Лаптев, Г.Ю. Использование спорообразующих целлюлозолитических бактерий в кормлении бройлеров/Г.Ю.Лаптев, Е.Л. Проворов//Материалы научно-практической конф. - Дубровицы, 2003. -С. 16-18.

25. Лаптев, Г. T-RFLP-анализ микрофлоры кишечника - основа выбора кормовых добавок для птицы/ Г. Лаптев, И. Никонов, Л. Кряжевских// Птицеводство.- 2010. -№9.- С. 25.

26. Лаптев, Г.Ю. Метагеномные исследования микрофлоры кишечника кур/Г.Ю.Лаптев// Материалы XVII международной конф. (ВНАП): Инновационные разработки и их освоение в промышленном птицеводстве. - Сергиев Посад, 2012.- С. 212-215.

27. Лебедева, И.А. Использование пробиотиков в кормлении цыплят-бройлеров/И.А. Лебедева, Н.И. Женихова, М.В. Новикова// Материалы 4-го международного симпозиума: Современные проблемы ветеринарной диетологии и нутрициологии. - СПб, ООО Типография береста, 2008. -С.81-83.

28. Ленкова, Т.Н. Стимулятор роста бройлеров/ Т.Н. Ленкова, И.А. Меньшенин, И.В. Гребнева// Птица и птицепродукты.-2007.-№6.- С.41-43.

29. Лысенко, С. Пробиотики для цыплят-бройлеров/ С.Лысенко, А. Баранников, А. Васильев//Птицеводство. - 2007. - №5.- С.31-32.

30. Лыско, С. Влияние пробиотиков на иммунную систему цыплят-бройлеров/ С. Лыско//Птицеводство. - 2008. - №7. -С. 15-16.

31. Маилян, Э.С. Некротический энтерит кур. Современное представление/ Э.С. Маилян// Материалы 3-го международного ветеринарного конгресса по птицеводству. - Москва, 2007.-С. 169-212.

32. Максимов, В.И. Лактулоза и микроэкология толстой кишки/ В.И. Максимов, В.Е. Ро домин, В. М. Бондаренко// Журнал микробиологии.-1998.-№5.- С.101-107.

33.Мазанкова, Л.Н. Оценка нарушений микробиоценоза при острых кишечных инфекциях у детей и их коррекция/ Л.Н. Мазанкова, Н.И. Ильина, О.А. Кондракова// Трудный пациент.-2004.-Т.2. -№9.-С. 11-16.

34. Манукян, В. Применение ферментативного пробиотика в кормлении цыплят-бройлеров/ В. Манукян, Э. Джавадов, М. Дмитриева и др.// Птица и птицепродукты. - 2013. -№5 -С. 22-24.

35. Методические наставления по использованию в комбикормах для птицы новых биологически активных, минеральных и кормовых добавок. Реком. разраб: Фисинин В.И., Околелова Т.М., Егоров И.А. и др. Под общ.ред. Околеловой Т.М. - Сергиев Посад, 2011.- 98 с.

36. Методика проведения научных и производственных исследований по кормлению сельскохозяйственной птицы. Молекулярно-генетические методы определения микрофлоры кишечника. Реком. разраб.: Егоров И.А., Манукян В.А., Ленкова Т.Н. и др. Под общ. ред. Фисинина В.И.Сергиев Посад, 2013. - 51 с.

37. Методические рекомендации по технологии производства мяса бройлеров. Разраб.: Фисинин В.И, Столляр Т.А., Лукашенко В.С. и др. Под общ.ред. Фисинина В.И. и Лукашенко В.С. - Сергиев Посад, 2008. -279 с.

38. Методическое руководство для зоотехнических лабораторий. Оценка качества кормов, органов, тканей, яиц и мяса птицы. Реком. разраб.: Фисинин В.И., Тишенков А.Н., Егоров И.А. и др. Под общ.ред. Фисинина

B.И. и Тишенкова А.Н. - Сергиев Посад, 2010. - 119 с.

39. Никонов, И.Н. Влияние аминокислотного состава комбикормов на микробный фон цыплят-бройлеров и кур-несушек/И.Н.Никонов//Материалы XVII международной конф. (ВНАП): Инновационные разработки и их освоение в промышленном птицеводстве. - Сергиев Посад, 2012.- С. 235-239.

40. Онищенко, Г.Г. Иммунобиологические препараты и перспективы их применения в инфектологии /Г.Г.Онищенко, В.А.Алешкин,

C.С.Афанасьев. - М., ГОУ ВУНМЦ МЗ РФ, 2002. - 542 с.

41. Павлова, Н. Значение нормальной микрофлоры пищеварительного тракта птиц для их организма/ Н. Павлова, Ф. Киржаев, Р. Лапискайте // Био.-2002-№1.-С.4-7.

42. Панин, А.Н. Пробиотики: теоретические и практические аспекты/ А.Н. Панин// Био.-2002.-№2.-С.4-7.

43. Парфенов, А.И. Клинические проблемы дисбактериоза/А. И.Парфенов// Гастроэнтерологический журнал. - 1999.-№4.-С.49-55.

44. Первова, А. Эффективность использования пробиотиков в промышленном птицеводстве/А. Первова// Сельскохозяйственная биология.-2003.-№ 4.- С. 24-28.

45. Первова, А.М. Целлобактерин в кормах для цыплят-бройлеров/ А.М. Первова// РацВетИнформ. - 2005. - №5. - С.15.

46. Пинегин, Б.В. Дисбактериозы кишечника/ Б.В. Пинегин, В.Н. Мальцев, В.М. Коршунов. - М.,«Медицина», 1984. - 144 с.

47. Пономаренко, Ю.А. Корма, кормовые добавки, биологически активные вещества для сельскохозяйственной птицы/Ю.А. Пономаренко, В.И. Фисинин, И.А. Егоров, В.С. Пономаренко. - Сергиев Посад, ВНИТИП, 2009. - 656 с.

48. Пономаренко, Ю.А. Безопасность кормов, кормовых добавок и продуктов питания/Ю.А. Пономаренко, В.И. Фисинин, И.А. Егоров. -Минск, «Экоперспектива»,2012. - 863 с.

49. Просвирина, Т.В. Формирование микрофлоры цыплят-бройлеров и микробиологическое исследование кормов на птицефабрике «Среднеуральская»/Т.В. Просвирина, И.А. Лебедева, Л.А. Носырева//Био.-2005.-№9.-С.11-12.

50. Роговнин, Ф.И. Амоксиклав и профилактика бактериальных инфекций бройлеров/ Ф.И. Роговнин, В.Ф. Иванова//Био.-2003.-№1.-С.16

51. Соколова, К.Я. Дисбактериозы/ К.Я. Соколова, И.В. Соловьева. - Н. Новгород, НГМА, 1999. - 199 с.

52. Степаненко И.П. Влияние пробиотического препарата стрептобифида форте на иммуногенез и формирование кишечного микробиоценоза цыплят: дисс. канд. биол. наук:16.00.03/Степаненко Иван Петрович. - М., 2001. - 150 с.

53.Тамм, А.О. Метаболиты кишечной микрофлоры в диагностике дисбактериоза кишечника/А.О.Тамм// Антибиотики и медицинская биотехнология.-1987.-№3.-С.191-195.

54. Тараканов, Б.В. Влияние микроцикола на микрофлору кишечника и продуктивность цыплят-бройлеров/Б.В. Тараканов, Т.А.Николичева//Ветеринария.-2005.-№9. - С.47-50.

55. Тимошко, М.А. Взаимодействие облигатной микрофлоры в кишечнике цыплят-гнотобионтов/ М.А. Тимошко. - Материалы всесоюзн. научно-практической конф. ВНИИТП, Кишинев, 1973.- №6.-С.258-260.

56.Тимошко, М.А. Микрофлора пищеварительного тракта молодняка сельскохозяйственных животных/ М.А. Тимошко. -Кишинев,«Штиинца», 1990.-189 с.

57. Агеечкин, А.П. Промышленное птицеводство/ А.П.Агеечкин, Ф.Ф.Алексеев, А.В.Аралов, Л.С. Белякова. - Сергиев Посад, ВНИТИП, 2005. - 599 с.

58. Фисинин, В. Эффективная защита от стрессов в птицеводстве: от витаминов к витагенам/В. Фисинин, П. Сурай//Птица и птицепродукты.-2011.-№5.-С. 23-24.

59. Фисинин, В. Первые дни жизни цыплят: от защиты от стрессов к эффективной адаптации/ В.Фисинин, П. Сурай//Птицеводство.-2012.-№2.-С.11-15.

60. Фисинин, В. Кишечный иммунитет у птиц: факты и размышления/ В. Фисинин, П. Сурай//Сельскохозяйственная биология.-2013.-№4.-С. 3-19.

61. Франк, Р. Еще раз о кормовых антибиотиках/Р. Франк, Н. Ревзина//Комбикорма.- 2006.-№2.- С.69.

62. Хойцман, А. Влияние препарата Stafac-110 на продуктивность цыплят-бройлеров/А. Хойцман, А. Старосельский, К. Тарасова//Животноводство России: спецвыпуск по птицеводству. - 2012.-№1.- С.52-53.

63. Чахава, О.В. Микробиологические и иммунологические основы гнотобиологии/ О.В. Чахава, Е.М. Горская, С.З. Рубан. - М., «Медицина», 1982. - 159 с.

64. Четли, Э. Антибиотики для животных: аспекты неправильного применения/ Э. Четли//Био.-2005.-№4.-С.8.

65. Шендеров, Б.А. Антимикробные препараты и нормальная микрофлора. Проблемы и возможные пути решения/ Б.А. Шендеров//Антибиотики и химиотерапия. -1988. - №12. - С.921-926.

66. Шендеров, Б.А. Медицинская микробная экология и функциональное питание: Т.1: Микрофлора человека и животных и ее функции/ Б.А. Шендеров. - М.,«Грантъ», 1998. - 288 с.

67. Шчука, Л. Резистентность бактерий к противобактериальным активным субстанциям и их применение в ветеринарии/ Л. Шчука//Био.-2005.-№4.-С.9-12.

68. Якубенко, Е.В. Бацелл - средство повышения резистентности и продуктивности птицы/Е.В. Якубенко, А.Г. Кощаев, А.И. Петенко//Ветеринария. - 2006.- №3. -С.14-15.

69. Aktan, S. An alternative litter material in broiler production/ S. Aktan, O. Sagdic// South.AfrJ.Anim.Sci.-2004. -V.34(2).- P.75-79.

70. Amit-Romach, E. Microflora ecology of the chicken intestine using 16S ribosomal DNA primers/E. Amit-Romach, D. Sklan, Z.Unil// Poult. Sci. -2004.-V. 83(7).-P. 1093-1098.

71. Apajalahti, J. Characteristics of the gastrointestinal microbial communities, with special reference to the chicken/ J. Apajalahti, A. Kettunen, H. Graham// World's Poult. Sci. J. - 2004.-V. 60(2). - P.223-232.

72. Auger, S. Autoinducer 2 affects biofilm formation by Bacillus cereus/ S.Auger, S. Krin, E. Aymerich// Appl. Environ. Microbiol. - 2006. -V.72(1).-P.937-941.

73. Bailey, J. Effect of fructooligosaccharide on Salmonella colonization of the chicken intestine/J. Bailey, L.C. Blankenship, N.A. Cox//Poult. Sci.-1991.-V.78.-P.2433-2438.

74. Bar - Shira, E. Impaired immune responses in broiler hatchling hindgut following delayed access to feed/ E. Bar - Shira, D. Sklan, A. Friedman// Vet. Immunol. Immunopathol. - 2005. - V.105. - P.33-45.

75. Bar - Shira, E. Development and adaptations of innate immunity in the gastrointestinal tract of the newly hatched chick/ E. Bar-Shira, A. Friedman// Dev.Comp.Immunol. - 2006. - V. 30. - P.930-941.

76. Barnes, E. The intestinal microbiota of poultry and game birds during life and after storage/ E. Barnes// J. App. Bacteriol.-1979.-V. 46.- P.407-419.

77. Bedford, M. Removal of antibiotic growth promoters from poultry diets: implications and strategies to minimize subsequent problems/M.Bedford//World's Poult. Sci., J.-2000.-V.56(4).-P. 347-365.

78. Bengmark, S. Pre-, pro- and symbiotics/S.Bengmark//Current Opinion in Clinical Nutrition and Metabolic Care. -2001.-V.4-P.571-579.

79. Berg, R. Bacterial translocation from the gastrointestinal tract/ R. Berg// Trends Microbiol.-1995.-V.3-P.149-154.

80. Bhatnagar, A. Bacterial flora from the respiratory tract of pigs/ A.Bhatnagar, N.B. Singh, B.S. Malik// The Indian Veter. J. - 1972. -V. 49(3).-P. 234-236.

81. Biggs, P. Effects of several oligosaccharides on growth performance, nutrient digestibility, and caecal microbial populations in young chicks/ P.Biggs, C.M. Parsons, G.C. Fahey//Poult. Sci. - 2007. -V.86. - P.2327-2336.

82. Bjerrum, L. The intestinal microbiota of broiler chickens/ L. Bjerrum// PhD Thesis, Denmark, 2005.-P.132-145.

83. Bojesen, A. Detection of Gallibacterium spp. in chickens by fluorescent 16S rRNA in situ hybridization/ A. Bojesen, H. Christensen, O.L. Nelsen et al.// J. Clin. Microbiol. - 2003. -V.41(11). - P.5167-5172.

84. Brandtzaeg, P. The mucosal immune system and its integration with the mammary glands/ P. Brandtzaeg// J.Pediatr. - 2010.-V.156. - P.8-15.

85. Casteleyn, C. Locations of gut-associated lymphoid tissue in the 3-month-old chicken: a review/ C. Casteleyn, M. Doom, E. Lambrechts et al.// Avian. Pathol. - 2010. - V.39(3). - P.143-150.

86. Chambers, J.R. The influence of complex carbohydrates on Salmonella typhimurium colonization, pH, and density of broiler ceca/J.R. Chambers, J.L. Spenser, H.W. Molder//Poult. Sci.-1997.-V.76 - P.445-451.

87. Chee, S.H. Characterization and response of intestinal microflora and mucins to manno-oligosaccharide and antibiotic supplementation in broiler chickens/S.H.Chee, P.A. Iji, M. Chost et al.//Br.Poult. Sci.-2010.-V.3.-P.368-380.

88. Chichlowski, M. Metabolic and physiological impact of probiotics or direct-fed microbials on poultry/M. Chichlowski, J. Croom, B.W. McBride et al.//Internation. J. Poult. Sci.-2007.-V. 6(10).- P.694-704.

89. Choudhary, A. Prebiotics and probiotics as health promoter/ A. Choudhary, S. Shinde, B.N. Ramteke//Veterinary World.-2008.-V.1(2)-P. 59-61.

90. Chung, C.H. and Day D.F. Glucooligosaccharides from Leuconostoc mesenterioides: a potential prebiotic/ C.H.Chung, D.F.Day//J.Ind. Microbiol. Biotechnol.-2002.-V.29(4).-P.196-199.

91. Cobb broiler management guide. Cobb 500//The Cobb breeding company LTD, United Hanningfield, 2010. - 26 P.

92. Crhanova, M. Immune response of chicken gut to natural colonization by gut microflora and to Salmonella enteritidis infection// M. Crhanova, H. Hradecka, M. Faldynova et al.//Infect. Immun. - 2011. - V.79(7). - P. 2755-2763.

93. Decroos, K. Repression of Clostridium population in young broiler chickens after administration of probiotic mixture/ K. Decroos, T. Vercauteren, G. Werquin//Commun. Agric.Biol. Sci. - 2004. - V.69(1). - P.5-13.

94. Deplancke, B. Microbial modulation of innate defence: goblet sells and the intestinal mucus layer/ B. Deplancke, H. Gaskins//Am. J. Clin. Nutr. - 2001.-V.73(6).- P.1131-1141.

95. Dibner, J.J. Antibiotic growth promoters in agriculture: history and mode of action/J.J. Dibner, J.D.Richards// Poult. Sci.-2005.-V.84.-P.634-643.

96. Dubos, R. Composition, alteration, and effects of the intestinal flora/ R. Dubos, R.W. Schaedler, R. Costello// Feed Proc.-1963.-V.22.-P.1322-1329.

97.Dubos, R. The microbiota of the gastrointestinal tract/R. Dubos// Gastroenterology. - 1966. - V. 51(5). - P.868-874.

98. Dunham, H.J. Lactobacillus reuteri immunomodulation of stressor-associated diseases in newly hatched chickens and turkeys/ H.J. Dunham, C. Williams, F.W. Edens et al.///Poult. Sci. - 1993. -V. 72. -P. 103.

99. Engberg, R.M. Effect of zinc bacitracin and salinomicin on intestinal microflora and performance of broilers/ R.M. Engberg, M.S. Hedemann, T.D. Lesser// Poult. Sci. - 2000. - V.79(9). - P.1311-1319.

100. Esmaeilipour, O. Effects of diet acidification and xylanase supplementation on performance, nutrient digestibility, duodenal histology and gut microflora of broilers fed wheat based diet/ O. Esmaeilipour, H. Moravej, M.Shivazad et al.// Br. Poult. Sci. - 2012. - V. 53(2). - P.235-244.

101. Fairchild, A.S. Effects of orally administered tetracycline on the intestinal community structure of chickens and on tet determinant carriage by commensal bacteria and Campylobacter jejuni/A.S. Fairchild, J.L. Smith, U. Idris et al.//Appl. Environ.Microbiol.-2005.-V.71(10).-P.5865-5872.

102. Fernandez, F. Dietary mannan-oligosaccharides and their effect on chicken caecal microflora in relation to Salmonella enteritidis colonization/ F. Fernandez, M.H. Hinton, B. Van Gils//Avian Pathol.-2002.-V.31(1).-P.49-58.

103. Flint, J.F. Feeding beneficial bacteria: a natural solution for increasing efficiency and decreasing pathogens in animal agriculture/ J.F. Flint, M.R. Garner// J. Appl. Poult. Res. - 2009. -V.18(2). -P.367-378.

104. Forder, R. Bacterial modulation of small intestinal goblet cells and mucin composition during early posthach development of poultry/ R. Forder, G. Howarth et al.//Poult. Sci. - 2007. - V.86. - P.2396-2403.

105. Franks, A.H. Variation of bacterial population in human feces measured by fluorescent in situ hybridization with group-specific 16S rRNA-targered oligonucleotide probes/ A.H.Franks, H.J. Harmsen, G. Jansen, G.C. Raangs et al.//Appl. Environ. Microbiol. -1998. - V. 64(9). - P. 3336-3345.

106. Fries, R. Microflora of two different types of poultry litter/ R. Fries, M. Akcan, N. Bandick//Br. Poult. Sci. - 2005. - V.46(6). - P.668-672.

107. Fukata, T. Inhibitory effects of competitive exclusion and fructooligosaccharide, singly and in combination, on Salmonella colonization of chicks/ T. Fukata, K. Sasai, T. Miyamoto// J. Food Protect. - 1999. - V. 62(3). - P. 229-233.

108. Fuller, R. Probiotics in man and animals/ R. Fuller//Jour. Appl. Bacteriol.-1989.-V.66.-P.365-378.

109. Garrido, M.N. Acidified litter benefits the intestinal flora balance of broiler chickens/ M.N. Garrido, M. Skjevheim, H. Opergaard//Appl. Environ. Microbiol. - 2004. - V.70(9). - P.5208-5213.

110. Gibreel, A. Incidence of antibiotic resistance in Campylobacter jejuni isolated in Alberta, Canada, from 1999 to 2002, with special reference to tet(O)-mediated tetracycline resistance/A.Gibreel, D.M. Tracz, L. Nodaka et al.//Antimicrob. Agents Chemother. - V. 48(9). - P.3442-3450.

111. Gibson, G.R. Dietary modulation of the human colonic microbiota: introducing the concept of prebiotics/ G.R. Gibson, M.B. Robenfroid//J. Nutr. - 1995. -V.125. - P.1401-1412.

112. Gong, J. Molecular analysis of bacterial populations in the ileum of broiler chickens and comparison with bacteria in the cecum/ J. Gong, R.J. Foster, H. Yu, et al.// FEMS Microbiol.Ecol.-2002. - V.41. - P. 171-179.

113. Guillot, J.F. Make probiotics work for poultry/ J.F. Guillot// World's Poult.Sci.J. - 2000. - V.16(7). - P. 18-21.

114. Guslis, C. Lactobacilli isolated from chicken intestines: potential use as probiotics/ C. Guslis, A. Perez Chaia, S. Gonsalez// J. Food Prot. - 1999. - V. 62(3). - P. 252-256.

115. Hanson, R.S. Methanotrophic bacteria/R.S. Hanson, T.E. Hanson// Microbiol. Rev. - 1996 -V.60(2).-P.439-471.

116. Hassanein, S.M. Effect of probiotic adding diets on intestinal microflora and performance of Hy-Line layers hens/ S.M. Hassanein and N.K. Soliman//J. Am. Sci.-2010.-V.6(11)-P.159-169.

117. Hassef, D. Bacterial adaptation to oxidative stress: implications for pathogenesis and interaction with phagocytic cells/ D. Hassef, M. Cohen// Faseb J. - 1989. - V.3. - P. 2514-2582.

118. Havenaar, R. Probiotics: a general view. The lactic acid bacteria/ R. Havenaar, J. Huis in't Veld//Elsevier Appl.Sci., Barking, 1992.-V.1-P.151-170.

119. Hong, Y.H. Differential gene expression profiles of b-defensins in the crop, intestine, and spleen using a necrotic enteritis model in 2 commercial broiler chicken lines/ Y.H. Hong, W. Song, S.H. Lee//Poult. Sci. - 2012. -V.91. - P.1081-1088.

120. Horn, N.L. Intestinal mucin dynamics: response of broiler chicks and White Pekin ducklings to dietary threonine/ N.L. Horn, J.S.Radcliffe, T.J. Applegate// Poult. Sci. - 2009. - V.88. - P.1906-1914.

121. Huang, M.K. Effects of Lactobacilli and acidophilic fungus on the production performance and immune responses in broiler chickens/ M.K. Huang, Y.J. Choi, R. Houde//Poult. Sci.-2004. -V. 83(5). -P. 788-795.

122. Hubener, K. Bacterial responses to different dietary cereal types and xylanase supplementation in the intestine of broiler chicken/ K. Hubener, W. Vahjen, O. Simon// Arch. Anim. Nutr.- 2002.-V.56(3).-P. 167-187.

123. Jernigan, M.A. Probiotics in poultry nutrition- a review/ M.A. Jernigan, R.D. Miles, A.S. Arafa// World's Poult. Sci. J. - 1985. - V.41. -P. 99-107.

124. Jin, L.Z. Effects of adherent Lactobacillus cultures on growth, weight of organs and intestinal microflora and volatile fatty acids in broilers/ L.Z. Jin, Y.W. Ho et al.//Animal feed Science and Technology. -1998. -V. 70(3). -P.197-209.

125. Jin, L.Z. Digestive and bacterial enzyme activities in broilers fed diets supplemented with Lactobacillus cultures/ L.Z. Jin, Y.W. Ho, N. Abdullah//Poult. Sci. - 2000. -V.79(6). - P.886-891.

126. Kalavathy, R. Effects of Lactobacillus cultures on growth performance, abdominal fat deposition, serum lipids and weight of organs of broiler chickens/ R. Kalavathy, N. Abdullah, S. Jalaludin// Br. Poult. Sci. - 2003. -V.44(1). - P.139-144.

127. Kennedy, M.P. Influences of dietary sucrose and urea on transfer of endogenous urea to the rumen sheep and numbers of epithelia bacteria/ M.P. Kennedy, L.P. Milligan//Br. J. Nutrit. - 1981.-V. 46. - P.541-553.

128. Khaksefidi, A. Effect of probiotic on performance and immunocompetence in broiler chicks/ A. Khaksefidi A., T. Ghoorchi// J. Poult. Sci. - 2006. - V.43. - P.296-300.

129. Khan, R.U. The application of probiotics in poultry production/ R.U. Khan, S. Naz//World's Poult. Sci. J.-2013.-V.69(3).- P.621-632.

130. Kim, Y.S. Intestinal goblet cells and mucins in heath and disease: recent insights and progress/ Y. S. Kim, S. B. Ho// Curr. Gastroenterol. Rep. - 2010. -V.12(5). - P.319-330.

131. Klipper, E. Immune response of chicken to dietary protein antigens/ E. Klipper, D. Sklan, A. Friedman// Vet. Immunol. Immunopathol. - 2000. -V.74(4). - P.209-223.

132. Koenen, M.E. Immunomodulation by probiotic lactobacilli in layer and meat-type chickens/ M.E. Koenen, J. Kramer, R. Van der Hulst//Br. Poult. Sci. - 2004. - V.45(3). -P.355-366.

133. Langendijk, P.S. Quantative fluorescence in situ hybridization of Bifidobacterium spp. with genus-specific 16S rRNA-targered probes and its application in fecal samples/ P.S.Langendijk, F. Schut, G.J. Jansen et al.// Appl. Environ. Microbiol. - 1995.-V.61(8). - P.3069-3075.

134. Lebeer, S. Functional analysis of luxS in the probiotic strain Lactobacillus rhamnosus GG reveals a central metabolic role important for growth and biofilm formation/ S. Lebeer, S.C.J. De Keersmaecker, T.L.A. Verhoeven et al.// J. Appl. Bacteriol. - 2007. - V.189(3). - P.860-871.

135. Lev, M. The gut flora of chick. The flora of newly hatched chicks/ M. Lev, C.A.E. Briggs// J. Appl. Bacteriol. - 1956. - V.19(1). - P.36-38.

136. Li, X.L. Effects of supplementation of fructooligosaccharide and/or Bacillus subtilis to diets on performance and intestinal microflora in broilers/ X.L. Li, L.Q. Liu, C.L. Xu//Archiv fur Tierzucht.- 2008.-V.51.-P.64-70.

137. Lillenhoj, H.S. Postnatal development of T-lymphocyte subpopulations in the intestinal intraepitelium and lamina propria in chickens/ H.S. Lillenhoj, K.S. Cheunk//Vet. Immunol.Immunopathol.- 1992. - V.31. - P. 347-360.

138. Lillenhoj, H.S. Recent progress on the cytokine regulation of intestinal immune responses to Eimeria/ H.S. Lillenhoj, W.G. Min, R.A. Dalloul// Poult.Sci. - 2004. - V. 83. - P. 611-623.

139. Line, J. Campylobacter and Salmonella populations associated with chickens raised on acidified litter/ J.Line// Poult. Sci. - 2002. - V.81(10). -P.1473-1477.

140. Lu, J. Diversity and succession of the intestinal bacterial community of the maturing broiler chicken/ J. Lu, U. Idris, B. Harmon et al.// Appl. Environ. Microbiol. - 2003. - V.69(11). -P.6816-6824.

141. Maiorka, A. Utilization of prebiotics, probiotics, or symbiotics in broiler chicken diets/ A. Maiorka, E. Santin, S.M. Sugeta et al.//Rev.Bras.Cienc.Avic.-2005.-V.3(1).-P.75-82.

142. McReynolds, J.L. Dietary lactose and its effect on the disease condition of necrotic enteritis/J.L.McReynolds, J.A. Byrd, K.J. Genovese et al.//Poult. Sci.-2007.-V.86(8).-P.1656-1661.

143. Mead, G.C. Some observations on the caecal microflora of the chick during the first two weeks of life/ G.C. Mead and B.W. Adams// Br. Poult. Sci.

- 1975. - V.16. - P.169-176.

144. Michael, B. SdiA of Salmonella enterica is a luxR homolog that detects mixed microbial communities/ B. Michael, J.N. Smith, F. Heffron// J.Bacteriol.

- 2001. - V.183(19). - P.5733-5742.

145. Miller, T.L. Methanogens in human and animal intestinal tracts/ T.L. Miller, M. J.Wolin// Syst. Appl. Microbiol. - 1986. - V.7. - P.223-239.

146. Molnar, A.K. Effect of different concentrations of Bacillus subtilis on growth performance, carcass quality, gut microflora and immune response of broiler chickens/A.K. Molnar, B. Podmaniczky, P. Kurti et al.//Br. Poult. Sci.-2011.-V.52(6).-P. 658-665.

147. Mountzouris, K.C. Evaluation of the efficacy of a probiotic containing Lactobacillus, Bifidobacterium, Enterococcus, and Pediococcus strains in promoting broiler performance and modulating caecal microflora composition and metabolic activities/ K.C. Mountzouris, P. Tsirtsikos, E. Kalamara et al.//Poult. Sci. - 2007. - V.86(2). -P.309-317.

148. Mountzouris, K.C. Effects of a multi-species probiotic on biomarkers of competitive exclusion efficacy in broilers challenged with Salmonella enteritidis/K.C. Mountzouris, C. Balaskas, I.Xanthakos et al.//Br.Poult. Sci.-2009.-V.50(4).-P.467-478.

149. Muir, W.I. Immunity, vaccination and the avian intestinal tract/ W.I. Muir, W.L. Bryden, A.J. Husband// Develop.Compar.Immunol. - 2000. -V. 24. - P.325-342.

150. Nabuurs, M.J. Villus height and crypt depth in weaned and unweaned pigs, reared under various circumstances in the Netherlands/ M.J. Nabuurs, A. Hoogendoorn, E.J. Van der Molen// Res. Vet. Sci.-1993.-V.55(1).-P. 78-84.

151. Neish, A.S. The gut microflora and intestinal epithelial cells: a continuing dialogue/ Neish A.S.//Micr. Infect.-2002.-V.4(3)-P.309-317.

152. Nelson, K.E. Phenotypic and phylogenetic characterization of ruminal tannin-tolerant bacteria/ K.E. Nelson, M. L. Thonney, T.K. Woolston et al.// Appl. Environ. Microbiol. - 1998. -V.64(10). - P.3824-3830.

153. Olah, I. A novel lymphoepithelial organ in the chicken/ I. Olah, B. Glick, R.T. Taylor// Anat. Rec. - 1984. - V.208(2). - P.253-263.

154. Ortiz, A. In vitro bactericide effect of Bacillus amyloliquefaciens/ A. Ortiz, E. Mateu, P. Honrubia//XIV-th European poultry conference, Stavanger, Norway. - P.490.

155. Pascual, M. Lactobacillus salivarius prevents Salmonella eneritidis colonization in chickens/ M. Pascual, M. Hugas, J.I. Badiola et al.//Appl. Environ. Microbiol. -1999. -V.65(11). -P.4981-4986.

156. Patel, J.B. 16S rRNA gene sequencing for bacterial pathogen identification in the clinical laboratory/ J. B. Patel// Mol. Diagn. - 2001. - V.6. - P.313-321.

157. Poole, T.L. Competitive exclusion of a glycopeptide-resistant Enterococcus faecium in the presence of vancomycin but not equivalent concentrations of tylosin or gentamicin/ T.L. Poole, K.J. Genovese, T. R. Callaway et al.//Poult. Sci. - 2004. - V.83(7). - P.1099-1105.

158. Priyankarage, N. Efficacy of probiotics and their effects on performance, carcase characteristics, intestinal microflora and Salmonella incidence in

broilers/ N. Priyankarage, S.S.P. Silva, S.P. Gunaratne et al.// Br. Poult. Sci. -V.44. - P. 26-27.

159. Qui, X. Evaluation of PCR-generated chimeras, mutations, and heteroduplexes with 16S rRNA gene-based cloning/ X. Qui, L. Wu, H. Huang et al.//Appl. Environ. Microbiol. - 2001.-V.67. - P. 880-887.

160. Ranjitkar, S. Influence of feeding whole kernel maize silage on microbial composition and gastro-intestinal fermentation in broilers/ S. Ranjitkar, R. Engberg// XIV-th European poultry conference: Stavanger, Norway. - P. 573.

161. Rantala, M. Prevention of the growth of Salmonella infantis in chickens by flora of the alimentary tract of chickens/ M. Rantala, E. Nurmi// Br. Poult. Sci. -1973. -V.14(6). - P.627-630.

162. Rebole, A. Effects of inulin and enzyme complex, individually or in combination, on growth performance, intestinal microflora, cecal fermentation characteristics, and jejunal histomorphology in broiler chickens fed a wheat-and barley-based diet/ A.Rebole, L.T. Ortiz, M.L. Rodriguez et al.//Poult. Sci.-2010.-V.89(2).-P.276-286.

163. Redig, P.T. The avian ceca: obligate combustion chambers or facultative afterburners? / P.T. Redig// J. Exp. Zool. -1989. - V.3 - P.66-69.

164. Rehman, H. Indigenous bacteria and bacterial metabolic products in the gastrointestinal tract of broiler chickens/ H. Rehman, W. Vanjen, W. Awad et al.// Arch. Anim. Nutr.-2007.-V.61.-P.319-335.

165. Rehman, H. Influence of fermentable carbohydrates on the intestinal bacteria and enteropathogens in broilers/H. Rehman, W. Vanjen, A. Kohl-Parizini et al.//World's Poult. Sci.J.-2009.-V.65(1).-P.75-90.

166. Revoledo, L. Prospects of Salmonella control: competitive exclusion, probiotics in avian intestinal immunity/ L. Revoledo, A.J.P. Ferreira, G.C. Mead// J. Appl. Poult. Res. - 2006. - V.15. - P.341-351.

167. Rigby, C. Some factors affecting Salmonella typhymurium infection and shedding in chickens raised on litter/ C. Rigby, J. Pettit//Avian Dis. - 1979. -V.23. - P.442-455.

168. Risoen, P.A. Characterization of a broad range antimicrobial substance from Bacillus cereus/ P.A. Risoen, P. Ronning, I.K. Hegna//J. Appl. Microbiol. - 2004. - V.96(2).- P.648-655.

169. Roberts, M.C. Tetracycline resistance detrminants: mechanisms of action, regulation of expression, genetic mobility, and distribution/ M.C. Roberts// FEMS Microbiol. Rev.-2006. - V.19. - P.1-24.

170. Salminen, S. Gut flora in normal and disordered states/ S. Salminen, E. Isolauri, T. Onela// Chemotherapy. - 1995. - V.41. -P.5-15.

171. Schaedler, R. W. The fecal flora of various strains of mice/ R.W. Schaedler, R.J. Dubos// J. Exp. Med. - 1962. -V.115(6). - P.1149-1160.

172. Schauder, S. The languages of bacteria/ S. Schauder, B.L. Bassler// Genes Develop. - 2001. - V.15(12). - P.1468-1480.

173. Schrezenmeir, J. Probiotics, prebiotics and symbiotics - approaching a definition/ J. Schrezenmeir, M. De Vrese//Am. J. Clin. Nutr. -2001.-V.73.-P.361-364.

174. Shang, H.M. Effect of inulin on performance, egg quality, gut microflora and serum and yolk cholesterol in laying hens/H.M.Shang, T.M.Hu, Y.J. Lu//Br. Poult. Sci.-2010.-V.51(6).-P.791-796.

175. Simon, O. Probiotic feed additives - effectiveness and expected modes of action/ O. Simon, A. Jadamus, W. Vanjen// J. Anim. Feed Sci.- 2001.-V.10. - P. 51-57.

176. Snel, J. dietary strategies to influence the gastrointestinal microflora of young animals, and its potential to improve intestinal health/ J. Snel, H. Harmsen, P. Wielen// Nutrit. Health Gastrointest. Tract.- 2002.-V.34.- P.37-69.

177. Smith, H.W. The effect of antibiotic therapy on the faecal excretion of Salmonella typhimurium by experimentally infected chickens/ H.W. Smith, J.F. Tucker//J. Hyg. (London).-1975.-V.75(2).-P.275-292.

178. Spring, P. The effects of dietary mannanoligosaccharides on cecal parameters and the concentrations of enteric bacteria in the ceca of Salmonella-challenged broiler chicks/ P.Spring, C. Wenk, K.A. Dawson//Poult. Sci.-2000. -V.79(2). -P.205-211.

179. Stark ,P.L. The microbial ecology of the large bowel of breast-fed and formula-fed infants during the first year of life/ P.L. Stark, A. Lee// J. Med. Microbiol.-1982. -V. 15. -P.189-203.

180. Torok, V.A. Application of methods for identifying broiler chicken gut bacterial species linked with increased energy metabolism/ V.A. Torok, K. Ophel-Keller, M. Loo// Appl. Environ. Microbiol. - 2008. -V.74(3). - P. 783791.

181. Torok, V.A. Influence of different materials on ceacal microbiota colonization in broiler chickens/ V. A.Torok, R.J. Hughes, K. Ophel-Keller et al.// Poultry Sci.-2009.-V.88(12).-P.2474-2481.

182. Torok, V.A. Identification and characterization of potential performance-related gut microbiota in broiler chickens across various feeding trials/ V.A. Torok, R.J. Hughes, L.L. Mikkelsen et al.// Appl. Environ. Microbiol. - 2011. - V. 77(17). - P.5868-5878.

183. Torok, V.A. Influence of antimicrobial feed additives on broiler commensal posthach gut microbiota development and performance/ V.A. Torok, G.E. Allison, N.J.Percy et al.//Appl. Environ. Microbiol. - 2011. -V.77(10). - P.3380-3389.

184. Ten Bruggencate, S.J.M. Dietary fructo-oligosaccharides dose-dependently increase translocation of salmonella in rats/ S.J.M. Ten Bruggencate, I.M.J. Bovee-Oudenhoven, M.L.G. Letting-Wissinket al.//J. Nutr. - 2003. -V.133. -P.2313-2318.

185. Van den Abbeele, P. Microbial community development in a dynamic gut model is reproducible, colon region specific, and selective for Bacteroides and Clostridium cluster IX/Van den Abbele P.//Appl. Environ. Microbiol. -2010. - V.76. - P.5237-5246.

186. Van Immerseel, F. Strategies to control Salmonella in the broiler production chain/ F. Van Imerseel, L. De Zutter, K. Houf et. al.//World's Poult. Sci. - 2007. - V.54. - P.34-49.

187. Vila, B. Probiotic microorganisms: 100 years of innovation and efficacy: modes of action/ B. Vila, E. Garcia, J. Brufau//World's Poult. Sci. J. - 2010. -V.66(3). - P.369-380.

188. Vollard, E.J. Influence of amoxicillin, erythromycin and roxitromycin on colonization resistance and appearance of secondary colonization in healthy volunteers/ E.J. Vollard, H. Clasener// J. Antimicrob. Chemother. - 1987. -V.13. - P.131-138.

189. Walker, W.A. Role of nutrients and bacterial colonization in the development of intestinal defence/ W.A.Walker// J. Ped. Gastroent. Nutr. -2000. -V.30. - P.2-7.

190. Wang, R.F. PCR detection and quantitation of predominant anaerobic bacteria in human and animal fecal samples/ R.F. Wang, W.W. Cao, C. E. Cerniglia//Appl. Environ. Microbiol. - 1996. -V. 62(4). - P.1242-1247.

191. Wise, M.G. Quantative analysis of the intestinal bacterial community in one- to three-week-old commercially reared broiler chickens fed conventional or antibiotic-free vegetable-based diets/ M.G. Wise, G.R. Siragusa// Jour. Appl. Microbiol. - 2007.-V.102(4). - P.1138-1149.

192. Xiang,Y. Zhu. 16SRNA- based analysis of microbiota from the cecum of broiler chickens/ Y. Xiang Zhu, T. Zhong, Y. Pandya et al.//Appl. Environ. Microb. - 2002. - V.68(1). - P.124-137.

193. Yang, Y. Effects of mannanoligosaccharide on growth performance, the development of gut microflora and gut function of broiler chickens raised on

new litter/ Y.Yang, P.A. Iji, A. Kotcher//Journ. Appl. Poult. Res. - 2007. -V.16. - P.280-288.

194. Yang ,Y. Dietary modulation of gut microflora in broiler chickens: a review of the role of six kinds of alternatives to in-feed antibiotics/ Y.Yang, P.A. Iji, M. Choct// World's Poult. Sci.J. - 2009. - V.65. - P. 97-114.

195. Wang, X. Effects of the in vitro fermentation of oligofructose and inulin by bacteria growing in the human large intestine/ X.Wang, G.R. Gibson//J. Appl. Bacteriol. - 1993. - V.75(4). - P.373-380.

196. Williams, J. The effects of fructo-oligosaccharides or whole wheat on the performance and digestive tract of broiler chickens/J.Williams, S. Mallet, M. Leconte et al.//Br. Poult. Sci. - 2008. - V.49(3). - P.329-339.

197. Zdunczyk, Z. Determinants and effects of postileal fermentation in broilers abd turkeys part 1: gut microbiota composition and its modulation by feed additives/Z. Zdunczyk, J. Jankowski, S. Kaczmarek//World's Poult. Sci.J. - 2015. - V.71(1). - P. 37-57.

198. Zhou, X. Effect of Lactobacillus cultures on growth performance, chemical composition, and meat quality of Guangxi Yellow chicken/ X. Zhou, Y. Wang, W. Li// Poult. Sci. - 2010. - V.89. - P.588-593.

199. Zulkifi, I. Growth performance and immune response of two commercial broiler strains fed diets containing Lactobacillus cultures and oxytetracycline under heat stress conditions/ I. Zulkifi, N. Abdullah, N.M. Azrin//Br. Poult. Sci. - 2000. - V. 41(5). - P.593-597.

УТВЕРЖДАЮ: УТВЕРЖДАЮ:

от « 01 у> _2015 года

о результатах производственной проверки по теме: «Влияние состава рациона на микробиологические показатели

желудочно-кишечного тракта цыплят-бройлеров при скармливании препаратов Стафак-110 и Целлобактерин-Т»

Комиссия в составе: главный зоотехник - Исаева Н.К., начальник вивария - Чинцова А.И., главный экономист - Самулеева Р.И. (ФГУП Загорское ЭПХ ВНИТИП), первый заместитель директора ФГБНУ ВНИТИП по НИР - Егоров И.А., аспирант отдела кормления ФГБНУ ВНИТИП Грозина A.A. составили настоящий акт о том, что в феврале-марте 2015 г. в условиях вивария ФГУП Загорское ЭПХ ВНИТИП была проведена производственная проверка на цыплятах-бройлерах кросса «Кобб 500».

Для проведения производственной проверки в суточном возрасте были сформированы 3 группы цыплят-бройлеров по 105 голов в каждой.

Первая группа служила контролем (базовый вариант) и получала основной рацион (ОР), сбалансированный по всем параметрам питательности. Новый вариант 1 являлся опытной группой и получал ОР базового варианта с добавкой антибиотика Стафак-110 в дозе 180 г/т корма на протяжении всего периода выращивания. Новый вариант 2 являлся опытной группой и получал ОР базового варианта с добавкой пробиотика

-1У?

Целлобактерина-Т в дозе 1 кг/т корма на протяжении всего периода выращивания цыплят. Все рационы были составлены соответственно рекомендациям по кроссу «Кобб 500», 2009 г. Результаты производственной проверки представлены в таблице 1.

Таблица 1.

Результаты производственной проверки

Показатель Варианты

Базовый Новый 1 Новый 2

Поголовье в начале опыта, гол. 105 105 105

Поголовье на конец опыта, гол. 105 105 105

Сохранность поголовья, % 100,0 100,0 100,0

Живая масса цыплёнка в суточном возрасте, г 43,5±0,35 43,2±0,31 43,4±0,33

Валовая масса цыплят, кг 4,567 4,536 4,557

Средняя живая масса в 36 дней, г 1983,2 ±38,0 2087,4 ±47,1 2079,6 ±46,3

Валовая живая масса, кг 208,236 219,177 218,358

Валовый прирост живой массы, кг 203,669 214,641 213,801

Среднесуточный прирост живой массы, г 55,42 58,40 58,17

Затраты корма на 1 голову, кг 3,50 3,63 3,58

Затраты корма на 1 кг прироста живой массы, кг 1,76 1,74 1,72

Цена 1 тонны комбикорма для первого периода выращивания, руб. 16802 16997 16972

Потреблено комбикорма с 1-го по 5-й день (первый период выращивания), кг 12,9 12,9 12,9

Стоимость потреблённого комбикорма за первый период выращивания, руб. 216,74 219,26 218,93

Цена 1 тонны комбикорма для второго периода выращивания, руб. 15901 16096 16071

Потреблено комбикорма с 6-го по 15-й день (второй период выращивания), кг 53,7 59,4 57,3

Стоимость потребленного комбикорма за второй период 853,88 956,11 920,86

выращивания, руб.

Цена I тонны комбикорма для

третьего периода выращивания, 15792 15987 15962

руб.

Потреблено комбикорма с 15-го

по 36-й день (третий период 301,5 309,3 306,0

выращивания), кг

Стоимость потребленного

комбикорма за третий период 4761,28 4944,78 4884,37

выращивания, руб.

Средняя стоимость 1 кг комбикорма, руб. 15,96 16,17 16,13

Производственные затраты на прирост живой массы, руб. 11693,27 12297,29 12177,13

в т.ч. зарплата, руб. 785,14 827,44 824,20

стоимость потребленного

комбикорма за время 5831,90 6120,15 6024,16

выращивания, руб.

прочие прямые затраты, руб. 3926,73 4138,27 4122,08

накладные расходы, руб. 1149,50 1211,43 1206,69

Себестоимость 1 кг прироста живой массы, руб. 57,41 57,29 56,95

Экономический эффект, руб. 25,91 97,85

Экономический эффект в расчете

на 1000 голов цыплят, сданных 246,76 931,90

на убой, руб.

Из таблицы 1 видно, что себестоимость прироста 1 кг живой массы бройлеров, складывающаяся из зарплаты, стоимости кормов, прочих прямых затрат и накладных расходов, в вариантах новый 1 и новый 2 была ниже по сравнению базовым вариантом.

Э = (Сб - Сн) х Ан , где СБ, Сн - себестоимость 1 кг прироста живой массы бройлеров (контрольная и опытная), руб.; Ан - количество произведенной продукции в новом варианте, кг.

Э, = (57,41 - 57,29) х 214,641-25,91 руб.

Э2 - (57,41 - 56,95) х 213,801= 97,85 руб.

В пересчете на 1000 голов цыплят-бройлеров экономический эффект от использования препарата Стафак-110 бройлерам составил 246,76 рублей, а

эффект от Целлобактерина-Т - 931,90 рублей относительно контрольной группы.

Члены комиссии:

от ФГУП Загорское ЭПХ

ВНИТИП

Главный зоотехник

Н.К. Исаева

Начальник вивария

А.И. Чинцова

Главный экономист

Р.И. Самулеева

от ФГБНУ ВНИТИП

Первый заместитель директора по НИР

Аспирант

И.А. Егоров

А.А. Грозина