Трансплантация мезенхимальных стромальных клеток костного мозга для лечения термических ожогов кожи (экспериментально-клиническое исследование) тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 14.00.41, доктор медицинских наук Расулов, Масрур Фазлетдинович

• Расулов, Масрур Фазлетдинович
• доктор медицинских наук
• 2007

Оглавление диссертации доктор медицинских наук Расулов, Масрур Фазлетдинович

СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ, ПРИНЯТЫХ В ТЕКСТЕ

ВВЕДЕНИЕ

ГЛАВА I. СОВРЕМЕНННЫЕ ПРЕДСТАВЛЕНИЯ О ПАТОГЕНЕЗЕ ОЖОГОВОЙ БОЛЕЗНИ И МЕТОДАХ ОБЩЕЙ И МЕСТНОЙ ТЕРАПИИ (обзор литературы)

I.1 Клннико-биологнческне закономерности развития ожоговоЛ болезни.—.-,,,,

1.1-1 Клиническая н морфологическая характеристика ожогового поражения кожи,.

1.1.2, Развитие инфекционных осложнений и дисфункций жизненно важных органов как проявление тяжелой неспецифической стресс - реакции организма 11а ожоговую травму.

12. Трапмционые методы лечения больных с ожоговой травмой—.„.

L2, ] Интенсивная терапия ожоговых болы1ых.—.

1.2-2- Очистка ожоговых ран и подготовка их к ^тодермоплаетике.

13. Транс плантация изолированных клеток И клеток в составе структурных компонентов ши- как новый метол местного и общего лечения бальных с ожоговой травмой.„

3.1. Использование дермалькых конструкций и бнодеграднруеиых мембран для закрытия ожоговых paw.

13.2. Трансплантация культивированных ^тогенных и аплогекных керзтнноцитов без и в составе дермального эквивалента.

1.3.3. Трансплантация культивированных аллогенных фнбробласто в-свободных н иммобилизованных на биодеграднруемых мембранах.

13,4. Современные представления о бнсикт стволовых клеток н возможностях применения стволовых и прогеннториых клеток костного мозга для лечения ожоговых ран.

ГЛАВА II МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ.

II.1 Общая характеристика экспериментального и клинического материала-^-—.—.-.—------—

1-2 Технология получения it веден ня клеточных культур.

D11. Технология получения культур фатальных фнброблэетои и покготош их к трансплантации.„

IL2.2 Технология получения н культивирования меэенхимальиых стромалыгых клеток mjcthoto мозга.

11.2.3. Технология иммобилизации фиброблаетоподобных мезенхн-мальиых стромальиых клеток на биодеграднруемых мембранах и подготовка этих биомонструкинй к трансплантации.—.,„—

ИЗ Техника моделирования термического ожога кики у крыс---—.

11,3 Л, Подготовка животных и анестезиологическое обеспечение.„.

1,3,2- Техника моделирования ожоговых ран (поверхностных и глубоких) и подготовка их к трансплантации клепж.——-----„

11.4.1 [одтотовка больных и ожоговых рай к клеточкой трансплантации в

О АI Техника трансплантации ФМСК на ожоговую поверхность

11-4.2. Тактика ведения ожоговых больных при проведении кпеточнойтерапии.——„———

II5. Мещды исследования-------~.

II.5.3 Методы кулыуралькых исследований,.„.

11,5-2. Методы идентификации клеток посте трансплантации иа поверхность ожоговых ран.„.

IL5.3, Методы оценки регенерации ожоговой раны в эксперименте.

11.5.4, Методы оценки регенерации ран и тяжести состояния ожоговых больных в клинике,-,——.—-----.

116 Методы статистической обработки экспериментального и клинического материала.—.—.„.„„—„—.„„.„.

ГЛАВА III ФЕНОТИПИЧЕСКАЯ И ФУНКЦИОНАЛЬНАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА КУЛЬТУР МЕЗЕНХИМАЛЬНЫХ СТРОМАЛЬНЫХ КЛЕТОК В НОРМЕ И ПРИ ОЖОГОВОМ ПОВРЕЖДЕНИИ культуралыгые исследования)—„—,^———----———

ГО. I - Оценка одаоромоста фенотилнческюгосостава культур.—,,.——

Ш.2. Оценка жизнеспособности н фуккцновальной активности культур клеток КМ обожженных н здоровых доноров.——,.„

ГЛАВА IV ЗАЖИВЛЕНИЕ ОЖОГОВЫХ РАН ПРИ ТРАНСПЛАНТАЦИИ ФЕТАЛЬНЫХ ФИБРОПЛАСТОВ И ФИБРОБЛАСТОПОДОБНЫХ МЕЗЕНХИМАЛЬНЫХ СТРОМАЛЬНЫХ КЛЕТОК КОСТНОГО

МОЗГА (экспериментальные исследования).,.Л

IV I Результаты применения суспензии клеток при обширных поверхностных ожогах.------—.———.

FV.2, Результаты применения суспензии клеток при обширных глубоких свистах-—

IV 3. Результаты трансплантации ФМСК, иммобилизованных на биодегралируемых мембранах при глубоких ооюогах.^^^.

ГЛАВА V ПРИМЕНЕНИЕ ФМСК КОСТНОГО МОЗГА В КЛИНИКЕ ДЛЯ ЛЕЧЕНИЯ ОЖОГОВЫХ РАН И ПОДГОТОВКИ БОЛЬНЫХ К

АУТОДЕРМОПЛАСТИКЕ.I

V.1, Трансплантация аллогсиних ФМСК й комплексном леченнн п о верхи о стиых ожогов

V.2. Трансплантация аллогсиных ФМСК прн лечяшн глубоких ожогов

V.3. Трансплантация аутогенных ФМСК для пластики длительно существующих дефектов кожи (демонстрация собственных клинических наблюдений).

ГЛАВА VI ОБСУЖДЕ!-JME ПОЛУЧЕННЫХ РЕЗУЛЬТАТОВ—- J

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Трансплантация мезенхимальных стромальных клеток костного мозга для лечения термических ожогов кожи (экспериментально-клиническое исследование)»

Ожоговые поражения кож» стали а современном мире одним hi наиболее социально значимых и распространенных типов травматических повреждений человека (Аэолов В В. к др., 1997, I999J.

Наряду с возросшей частотой термического поражения кожи в последние десятилетия резко повысилась нх тяжесть, (увеличилось число ожоговых бальных с сочетали ой механической и термоингаляннонной травмой), а также летальность (Багдатьев В.Е. и Др, 1996; Аэолов ВВ. и др., I999J, которая в России достигла 3,3% и продолжает увеличиваться [Герасимова ЛИ, 1999], особенно среди детей раннего возраста [Будкевич Л.И., 1998; Воздвиженский С И. и др., 1999]. Высокая летальность, а также ннвалидикщия больных после глубоких или обширных ожоговых поражений ножи, послужило поводом к совершенствованию интенсивной и летокенкацнонной терапии, применению антибиотиков и нммунокоррекгоров [Распугни П Г. н др., 1992. Багдатьев B E. и др., 1996; Адамян А А и др., 1998; Герасимова ЛИ, и др., 1996; 1999; Ведерникова O.JL и др-, 1999; Алексеев А,А. н др„ 1999, Reiniann РМ е( а!-, 1990, Dueling A, et al., I994J, а также методов раннего "закрытия" ожоговых поверхностей аутадермотрансплантатэмн для предотвраще-ння потерь организмом жидкости и плазменных белков и защиты ран oi инфекции [Смирнов С.В и др., 1998; Germann G et al-, 1995, Гришксвнч В М. и др., 1996; Воздвиженский СИ. и др., 1996, 1999; Тюрннко» Ю.И. и др., 1997),

Между тем, при обширных глубоких ожогах кожн (более 20-30 % поверхности тела) закрытие ожоговых ран при помощи перфорированных аутодермотранешмитаитов оказалось весьма травматичным и даже невозможным для пострадавшего из-за дефицита его донорских ресурсов [Матчнн Е.Н. и др., 1998, 2000, Qaiyoule S. et al. 2001; Erhlich HP el al-, 2004].

В последние двадцать лет для улучшения результатов лечения ожоговых ран и снижения трэвматичности хирургического лечения, сочетающегося с ауто-дермопластикрй. а также для снижения остроты дефицита донорского материала стали осуществлять трансплантацию кзеток кожи и биоинженерных конструкций с иммобилизованными клетками для ускоренной реабилитации ожоговых больных.

Первоначально ant трансплантации использовали культивированные ауто и аллогенные кератиноциты [Туманов В П. н др., 19Я9; O'Connor N E. с( aL, 1981; Aliulo К. й aL, 19fi2; Dc Lapp el aL. 1990; Duinslaeger L-A.Y. ct a]., J994; Wood P.M., 1996], затем стали применять культивированные аллофнбробласты кожи [Саркнеов Д.С. н др., 1991,1996, 1998] н фетальные фибробласты [Саидгалнн ГЗ., 2000; Фдапов АД, 2003J

Однако применение фстальных фнбробпктоа оказалось затруднительным в связи с нерешенностью этических, правовых и юридических проблем забора н использования этого материала; использование культивированных кератиношгтой и фибробластов ю кожи взрослого человека не получило широкого распространения и i- a высокой себестоимости процедуры наращивания клеточной массы в культуре В последние 5-8 лет в свяэи с развитием учения о стволовых клетках н, прежде всего, учения о мезенхнмалькых строыальных клетках (МСК) - костного мо:иа (КМ), появилась возможность их легитимного применения в практической ком-бустнологин для ускоренного закрытая ожоговых поверхностей н спасения больных с обширными и глубокими (критическими) ожогами,

Однако, в 2000 году приступая к исследованию результативности применения клеточных технологий в комбустнолошн. мы не обнаружили работ, касающихся применения преднфферендироваиых фибробластоподобных МСК аллогснного и аутогенного КМ для лечения ожоговых ран, а также для реанимации и реабилитации больных с ожогамн

Цслн и задачи исследовании. Цель исследования - изучить целесообразность трздеилантзднн фмбробллетолоаобных МСК, т.е- яреднфференциро-ванных мезенхнмальных стромальных (проге и игорных} клеток аллогснного и аутогенногокостногомозга для повышения эффективности лечения ожоговых ран и ускоренной реабилитации ожоговых больных.

Дая достижения поставленной цели бьши сформулированы следующие запачн 1 Воспроизвести модель поверхностного и глубокого термического ожога кожи со стандартно одинаковым размером юны повреждения для изучения терапевтических эффектов клеточной трансплантации.

2, Отработать технологию выделения мезеихимальных строгальных клеток ш костного мозг а. идентифицировать а культуре получение фюбробяасголодобгшх МСК и определить показания к применению аутогенных и аллогенных МСК для трансплантации на поверхность ран.

3 Отработан, технологию шмобшиош фиброблзстоподобных МСК КМ на биодегралнруемых мембранах и определить условия использования таких бноконструкцнй для заживления обширных ожоговых ран.

4. Сравнить и модельных опытах на крысах эффективность восстановитель-нот лечения поверхностных н глубоких ожоговых ран при трансплантант! феталь-ных фиброблаетов, а также алло и аутогенных фнбробластоподобных МСК КМ

5. Изучить особенности морфологии раневого процесса при использовании методов клеточной терапии.

Покатать на моделях термического ожога взаимосвязь активизации регенераторных процессов в ожоговой ране с присутствием в ней трансплантированных клеток (фстзльных фнбробластов, а также оллогсшшх и аутогенны* фибро-бластол сдобных МСК КМ).

7. Изучить влияние функциональной активности трансплантированных клеток аллогенных фнбробластотюдобных МСК на коррекцию клинических проявлений (детокенкация, нммун о коррекция) ожоговой болезни у больных с поверхностными и глубокими ожоговыми ранами.

8. Установить роль трансплантирован ных клеток для осуществления ранней яутадермопластики ожоговых ран и ускорения сроков приживления аушдермо-грансплантата,

9. Показать целесообразность ннтраоперацнониого использования аутологич-ных фибробластогюдобных МСК КМ для качественного приживления полнослой-иого лоскута аутокожи во время пластических онерашгй при лечении поздних после-ожоговых Рубцовых деформаций и при коррекции врожденных дефектов кожи

Научная новизна. В настоящей работе, выполнявшейся в рамках программы "Клеточные технологии - медицине" но заданию Росддрава (регистрационный номер-01.2.00 305442) представлены результаты изучения -эффективности при weнении прслиффсреншгрованных фнбробластоподобных МСК из алло н аутогенного КМ для местного лечения ожоговых ран н реабилитации ожоговых больных

Впервые в мировой практике для ускоренного заживления ожоговых ран применены культуры фнбробластоподобных меэенхнмадьных стромалвдых клеток из цветного мозга, идентифицированных морфологически. а также нммуногнстохи-мичееки по маркерам МСК - белку цнтоскелета - виментину. по поверхностному антигену - CD133 и по коллагену III типа.

Показано, что для получения стабильно высокою процента живых и активных фнбробластоподобных МСК (ФМСК) в культуре не следует использовать клетки ауталогнчного костного мотга от ожоговых больных в остром периоде; следует использовать ФМСК от аллогеиных доноров с 75-80 % монослоем этих клеток в культуре к с пассированием их не более 4*5 раз

Впервые на моделях термического повреждения кожи у крыс проведена сравнительная оценка темпов заживления ожоговых ран после трансплантации фетальных фибробластов. а также адлогенных и аутогенных фнбробдаетоподобн ых МСК КМ здоровых доноров. Установлено, что алло и аутогенные фнбробласто-полобнме МСК. так же как и фетальньге фнбро&члеш. достоверно повышают скорость регенерации поверхностных и глубоких ожоговых ран по сравнению со спонтанным их заживлением.

Показано, что при выборе клеточного материала предпочтение следует отдавать фибробласгоподобным МСК. а не фстальным фнбробластам. так как применение фнбробластоподобных клеток характеризуется более высоким темпом регенерации ожоговой раны, а на этапе культивирования более высоким темпом накопления клеточной массы но сравнению с фатальными фибробласгамн

С помощью рекомбинантиого аденовирусного вектора (содержащего l.ac-Z raiEcoli), внедренною в донорские клетки (фетатьные фибро&мсты, axio и аутогенные фибробластоподобные МСК) на этапе культивирования, доказано, что ускорение темпа регенерации ожоговых ран после трансплантации этих клеток связано с присутствием и функционированием (продукция ннтокинов) их в зонах термическою поражения (в сроках не менее 4 недель),

Показано, что у шэренне процесса заживления рш пол влиянием трансяланти-рованных клеток сопровождается существенным ускорением темпов разрастания сосудистой сети и формирования грануляционной ткани в области ожоговой раны Высказано предположение, что разрастание сосудистой сети предотвращает развитие грубых рубцовых изменений в зонах заживления ожоговой раны н сохраняет текстуру трансплантированной кожи

Установлено, что аллогеииые фнбробчастоподобные МСК КМ трансплантированные больным на глубокие ожоговые раны не только сокращают фазу деструктивных изменений в ране и способствуют осуществлению ранней ауп> дермопластики, но и приводят к более быстрому устранению клинических проявлений ожоговой болезни (восстановление функций органов детоксикацнн, снижение проявлений системной воспалительной реакции и иммунной яизрегуляцнн) Высказано предположение, что последнее связано с устранением цитокннового дисбаланса и продукцией противовоспалительных щпокинов.

Ускоренное заживление поверхностных н глубоких ожоговых ран в клинике связано со стимуляцией процесса образования микрососудов и созревания грануляционной ткаин, оптимизирующих условия >лнтели зашгн ожоговой раны.

Практическая значимость работы. Отработаны технологические режимы выделения и накопления в культуре фибробластоподобных МСК. Предложено для лечения ожоговых ран и ускорения их регенерации использовал, аллогенные, а для пластических операций аутологичные фнбробластоподобные МСК КМ,

Установлена целесообразность использования биодс градируемых пленок с иммобилизованными фнбробластонодобными МСК иа ранних этапах лечения ожоговых ран, при тгом клеточный монослой не должен превышать 80%,

Трансплантация агтогенных фнбробэотэлояобных МСК на поверхность глубоких ожоговых ран не только ускоряет темп нх заживления, но и ослабляет или лаже предотвращает возникающие проявления ожоговой болезни: эндотокенко-зы и поднорганную недостаточность.

Показано, «по трансплантация фибробластоподобных МСК способствует ускоренному осуществлению эутодермопластнкн ожоговой поверхности н повышает качество приживления кожного трансплантата

Положения, ввдпнгоемые «л защиту. Культивированные in vitro алло - и аутогенные фибробластоиодобные меэекхныАльные строшльные клетки из костного мозга, так же как и фетальные фнбробласты ускоряют темп регенерации ожоговых ран за счет длительного сохранения их жизнедеятельности в зонах трансплантации и продукции в раж биологически активных ростстнмулнрутшцнх факторов

Ускорение процесса заживления ран под влиянием трансплантированных фиброблаетоподобных мезеихимальиых стромальиых клеток сопровождается существенным ускорением темпов разрастания сосудистой сети и формирования грануляционной ткани в ОЖОГОВОЙ ране, что в свою очередь снижает вероятность образованна грубых рубцов в отдаленном послеоперационном периоде |ри выборе клеточного материала для трансплантации на ожоговую рану предпочтение следует отдавать аллогениым фнброблаетоподобным МСК из КМ, а не фетальнцм фнбробластам, так как их немользоваине способствует более высокому темпу регенерации ран. а на этапе подготовки клеточного материала к трансплантации отмечается более высокий темп нарастания клеточной массы

Иммобилизованные фибробластоиодобные МСК способствуют ускоренному заживлению ожоговой раны на раннем этапе раневою процесса, что связано с формированием в гаком монослое адекватных межклеточных взаимодействий, которые определяют более высокую функциональную активность иммобилизованных клеток.

Ток как фибробластополобные МСК КМ не являются продуцентами керзтино-цнгоа, то для окончательного закрытия глубоких ожоговых ран трансплантация этих клеток должна завершаться аутодерйтомдастнкой.

Внедрение результатов работы. Отработанные методики культивирования фиброблаетоподобных мезенхнмальных стромальиых клеток костного мозга использовались для получения клеточного материала и трансплантации пашен там травматологического отделения МУ ЦРБ г Оча Сахалинской обл., в Ожоговом центре большгны имени Н.В. Соловьева г. Ярославль, в ГО Российской детской клинической больнице Росздрава г, Москва

Аироби li 11 si диссертации, Л нробацпя работы состоялась ] 5 марта 2006 года на межлабораторной конференции в ФГУ НИИ трансплантологии и искусственных органов Федерального агентства по здравоохранению и социальному' развитию России,

Основные положения работы доложены и обсуждены: на конференции 'Новые оперативные технологии- (анатомические, экспериментальные н клинические аспекты) (Москва, нюнь 2002г.), на 11 Всероссийском съезде но трансплантологии н искусственным органам (Москва, октябрь 2002г.). на конференции Новые технологии - медицине. 1-я Всероссийская конференция "Стволовые клетки" и перспективы использования их в здравоохранении (Москва, май 2003г,}, на XXX Конгрессе Европейского общества искусственных органов (ESAO) (Германия Аахен, сентябрь 2003г,); на И ежегодном совещании Европейского общества по тканевой ннженерин (Италия. Генуя, сентябрь 2003г. К на Ученом сонете института пластической хирургии (Москва, январь 2603г.), на XIII Международной конференции по проблеме "Перфторуглеродные соединения в медицине и биологии" (Пущине, нюнь 2003г.), на Научном обществе травматологов и ортопедов Ярославской-Костромской'Вологодской областей (г Ярославль, март 2004г), на2-ой Международной конференции "Патофизиология и современная медицина", (Москва, апрель 2004г.), на конференции "Человек н лекарство" (Москва, май 2004г.), в Государственном комитете по науке и новым технологиям, (Москва, май 2004г.), на XIII и XV сессиях РАМН (Москва, февраль, ноябрь 2004г.). на III Российском конгрессе по патофизиологии (Москва, ноябрь 2004г.}, на Международной научно-практнческой конференции "Управление качеством медицинский помощи на основе стандартизации и доказательной медицины" (Красногорск, декабрь, 2004г.), на XV Европейской студенческой конференции будущих врачей и молодых ученых (Берлин, октябрь 2004г.), на I V и V Междунардном конгрессе Kocmetik international (Москва, февраль-сентябрь 2005г.), на Е Национальном конгрессе по биоэтике (Ташкент, сентябрь 2005г), на Ш Всероссийском съезде по трансплантологии и искусственным органам (Москва, октябрь 2005г.). на Конгрессе Европейской ожоговой ассоциации (Португалия - Эшторнл, сентябрь

2005с), на Международной конференции "Новые технологии в трансплантации фстальных клеток и их медиаторов" (Казахстан. г. Астана, ноябрь 2005г.).

Публикации. По теме диссертации опубликована 4] работа, in них 18 - в центральной печати. 7 - опубликованы за рубежом.

Объем и стру ктура работы. Диссертация изложена на 261 странице машинописного текста. Состоит из введения, 6 глав, заключения, выводов, практических рекомендаций, списка цитированной литературы (522 источник, нз них 160 -отечественных и 362 - зарубежных). Работа иллюстрирована 69 рисунками и 18 таблицами,

Заключение диссертации по теме «Трансплантология и искусственные органы», Расулов, Масрур Фазлетдинович

212 ВЫВОДЫ

1 Трансплантация фиброблаетоподобных клеток - продифференцированных мезенхи мальных стромальиых клеток аллогенного или аутогенного КМ взрослых практически здоровых доноров повышает эффективность лечения ожоговых больных, а также кожных ран и дефектов, требующих проведения аутодермопластикн.

2 Перед трансплантацией ФМСК из костного мозга на ожоговые раны необходимо осуществлять феиотнпическую идентификацию этих клеток и оценивать их пролифератнвную активность Идентификацию культур ФМСК из КМ следует Проводить морфологически, а также нммуногнстохнмнчески по бедку цнтоскелега - виментину, по поверхностному антигену - CD 133 н по коллагену 111 типа; для получения стабильно высокого процента живых и активно проднфернрующих ФМСК в культуре не следует использовал» клетки КМ от обожженных доноров в остром периоде; следует применять ФМСК от здоровых взрослых доноров с 7580% монослоем этих клеток н с повторением их пассажа не более 4-5 раз (при этой кратности не изменяется фенотнпнческий состав клеток),

3 Разработанная модель поверхностного и глубокого термического ожога кожи у животных со стандартно одинаковым размером зоны повреждения является адекватной для оценки эффективности лечения ОР методами клеточной трансплантации.

4, Лллогенные н аутогенные ФМСК нз КМ интахтных доноров так же, как ФФ, ускоряют темп регенерации поверхностных и глубоких ОР при моделировании термического повреждения кожи. При выборе клеточного материала предпочтение следует отдавать ФМСК, так как использование их характеризуется более высоким темпом регенерации ОР, а на этапе направленного культивирования МСК отмечается более высокий темп накопления клеточной массы. Отсутствие достоверных различий в регенерацпонной активности алло и ауто ФМСК практически здоровых доноров указывает на возможность использования зтих клеток для стимуляции заживления ОР

5. ФМСК, иммобилизованные на бномембранах, за счет сохранения нагивных свойств клеток в монослое ускоряют регенерацию ОР на ранних сроках после их применения по сравнению с суспензией ФМСК.

6. Ускорение темпа заживления ОР пол влиянием трансплантированных ФМСК достигается за счет ослабления выраженности деструктивно-воспалительной фазы раневого процесса и активизации иролнфератнвно-рспаратнвной фазы Заживление ОР сопровождается более быстрым темпом разрастания сосудистой сети (неоангногенез) и формирования грануляционной тканн, а также актнвизашгсй краевой эпнтелнзацнн. что уменьшает необходимость дополнительного забора аутокожн и снижает риск развития грубых рубнов в зонах глубокого повреждения кожи

7. Усиление пролиферативно-репаративной фазы раневого процесса при трансплантации ФМСК на ожоговую поверхность обусловлено присутствием и продолжающимся функционированием (продукция цитокинов) трансплантированных клеток в зонах повреждения (сохранение р-галактозндазной активности у клеток, предварительно меченых Lac Z геном Е- coli).

8. Пересадка аллогенных ФМСК у больных с глубокими ОР позволяет оптимизировать подготовку ОР к ранней аутодермопластике, ускорить сроки н улучшить результаты приживления расщепленного и перфорированного ЮЖНОГО аутотраисплантата за счет активнзащш в ране процессов: новообразования сосудов, формирования грануляционной ткани н краевой эшгтелнзацнн, ускоряющих закрытие перфорированных ячеек трансплантата эпидермисом. Аутщермотрзнсплантаты без подготовки ОР ФМСК могут подвергатся частичному лизнет

9- Аллогснныс ФМСК, трансплантированные больным с глубокими ОР, позволяют снизить тяжесть клинических проявлений ожоговой болезни (тяжелой эндотоксикацнн н иолнорганной недостаточности), а также предотвратить инфицирование ран

10, Аутолоптчные ФМСК целесообразно использовать для лучшего прижн в-леиня полнослойных трансплантатов аутокожн у планово-оперируюшнхея больных при лечении поздних послеожоговмх рубцовых деформаций н врожденных дефектов кожи.

ПРАКТИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ

I При моделировании термической деструкции кож» использование металлического полого цилиндра с полусогнутым срезом, через который постоянно циркулирует вода, нагретая до 97,7*47» создаст условия для получения стабильно воспроизводимых размеров ожоговой раны Время зкепознцнн через влажную двухслойную салфетку (для увеличения проникающей способности тепла), должно составлять 5-6 сек для поверхностных н 8-9 сек для глубоких ожогов.

2. Для точного определения (с погрешностью до 0,01 см1) плошали ожоговой раны необходимо производить фотографирование раны на фоне линейки н производить расчеты с использованием компьютерной программы "Вндсо ТссТ-Мастер 4 0 (ООО "ВндсоТесГ. С-Пб)"

3- При использовании суспензии культивируемых клеток количество пластик адгезивных клеток следует доводить до 80% монослоя, с пассажем до 4-5 раз. что может служить гарантией получения стабильно большого процента живых и активных ФМСК. При использовании биодеградируемой пленхн с иммобилизованными фибро&гастоподобными меэенхнмальныыи стромальнымн клетками - клеточный монослой также не должен превышал» 80%.

4. Биодеграпнруемые пленки следует удалял, с ожоговой раны на 2-3 сутки после их наложения, чтобы избежать осложнений, обусловленных преципитацией белюэв на биодеградируемой пленке, снижающей ей их диффузионные свойства.

5. Клеточная терапия должна применяться местно, чтобы через индукцию восстановительных процессов в ране уменьшать потерн белка и жидкости из организма а также снижать тяжесть ожогового шока и препятствовать развитию ожогового погашения организма,

6. При крупных ожоговых центрах необходимо создавал» криогенные банки атгогенных ФМСК н использовать эти клетки для сокращения сроков заживления поверхностных ОР н улучшения результатов приживления кожных ауттрансплан-тагов при глубоких ожогах.

7 Хорошее приживление свободного полнослойного кожного лоскута при лечении Рубцовых деформаций гаки и при выполнении косметических операций может быть обеспечено с помощью лугологнчных продифференцирован»lux ФМСК. предварительно иммобилизованных на раневую поверхность (2-3 суток).

Список литературы диссертационного исследования доктор медицинских наук Расулов, Масрур Фазлетдинович, 2007 год

1. Адамян А. А, Гогия BILL, Мурсщян РГ. Электростимуляцня при лечении реи М // Хирургия 1998. № I - С. 57-59.

2. Азолов В,В. Жегалов В.А., Перетягин С.П. Состояние и перспективы развития юэмбустиологии в России. И Эл. версия жури, Комбустнология -1999. №1.

3. Аэолов В В. Жегалов В.А., Дмитриев ПИ Термические поражения и нх последствия: прошлое, настоящее и будущее: Тез докл. VI съезда травматологов и ортопедов России, Н-Новгород, 1997,- С 53.

4. Алейннк Д.Я., Смирнов СВ., Жегалов В А., Куприянов В. А, Чарыи>ва И.Н. Опыт получения и использования культивированных аллофибробластов при лечении ожоговых ран у детей // Травматология и ортопедия России 1996. №1 - С, 19-22,

5. Алексеев А. А. Ожоговый сепсис: диагностика, профилактика, лечение. Автореф. дне. докг. мед наук. М., 1993.- 46 с.

6. Алексеев А.А., Крутиков М.Г. "Ожоговый сепсис: ранняя диагностика, профилактика, лечение" Сб. науч. тр.// II Конгресс хирургов Украины, 1998. С 443-444.

7. Алексеев АА., Крутиков М.Г, Еропкина А ,Г., Терехова РЛ, Гришина НА., Елагина Л.В., Павлова В,В,, Комиссарова ТВ Госпиталь мыс инфекции а ожоговом стаинонаре If Кл фармакология и терапия -1998, Т7, № 2. С. 57-60,

8. Алексеев АА„ Саркнсов Д.С., Яшин А,Ю„ Кашин ЮД, Крутиков М-Г. Восстановление кожных покровов на основе применения купьтвнрованкых аллофибробластов // Mai: научно-практ. конф. Новые медицинские технология в лечении тяжелообожженных. М. 1997, С. 52.

9. Альтшутгер EM, Салъский А,В., Гнедь MA, Бактсрнолопгчеекне аспекты ранней кскржтомнн Tcs доки. //Новые методы лечения ожогов с использованием пулы нитрованных клеток кожн Мат. II Меж. симп. Саратов 1998. -С 47-48.

10. Антонов Д В Комплеюлюе лечение j-нойно-воспалнтсльных заболеваний мягких тканей с использованием полисорба, стафилококкового бактериофага и озона в газовой фазе Авторсф. лисе. канд. мед наук. Пермь, 1999. -20с.

11. Атасов Н И. Пчастнчсская хирургия при ожогах и ранах И Маг. конф. М., I994.-C.9,

12. Атясов НИ., Лазарев В.А„ Магчнн Е,Н. Вливания в венозное русло печени в лечебных и диагностических целях у тяжслообожженных И Саранск: Изд-по Мордов. ун-т, 1993. С. 148.

13. Бабаев А.А., Чугуевский В.М., Гагуа А-К-,БазановС,В. Гипохлррнт натрия в лечении гнойных ран //Тез. докл. Всерос. конф. Актуальные вопросы гиойных осложнений н заболеваний в хирургической практике Новосибирск, 999. С. 170-171,

14. Бабаева А Г. Двуликий Янус организма. -М.: 2001. С. 137-142.

15. Бабаева А.Г. Единство и противоположность цнтогенстнческой активности лимфоцитов н их антителообразующей функции при восстановительных процессах в органах it БЭБМ, 1999 Ml 1. С 484-490

16. Бабаева А.Г Прошлое, настоящее и будущее проблемы лнмфоидной регуляции пролиферации нелимфоидных клеток /I БЭБМ., 1995. №9. С. 230-234

17. Бабаева А.Г. Регенерация и система иммуногенеза. -М.: Медицина. I985.-255C.

18. Бабаева А.Г., Шзхламов В.А., Алтухова В И., Гнммельфарб Е,И Морфологические эквиваленты лнмфоцнтарно-эпнтелнального взаимодействия при восстановительных процессах в почке и печени // Арх, патол. -1998. Т.бО, №5.-С. 58-61.

19. Багдатьсв В,Е-Г Гологорский В.А, Гельфанд Б-Р Респираторный дисстрссс-енндром взрослых // Весли. интенсив. терапии, -1996. №4. -С. 9-14,

20. Беклемишев НД, 1998 цит. по Гаркали ЛХ. Квакнна Е.Б. Кузьменко ТС Антнстрессорные реакции и актнвашюнная терши*. -М.: ИМЕДОС, 1998.- 655с

21. Белене» Ю Н., Агеев Ф.Т. Мареев ВТ., Савченко В.Г. Мобилизация стволовых клеток костного мозга в лечении больных с сердечной недостаточностью // Кардиология. -2003. № 3, -С, 7-12.

22. Бельнов А В Перфуэ конные методы комплексного интенсивного лечения перитонитов с использованием клеток печени н селезенки: Автореф. днее. . докт.мед щук. М-, 1992.- 41с.

23. Боженков Ю.Г. Криогенный метод прн обработке гнойных ран в амбулаторных условиях // Тез. докл Всерос конф. Актуальные вопросы гнойных осложнений к заболеваний в хирургической практике. Новосибирск, 1999. -С, 178-179.

24. Будкевнч Л.И- Современные методы хирургического лечения детей с тяжелой термической травмой; Авторсф. лис. док, мед. наук М, 1998, -39с

25. Бзлк Р. Патофизиология септического шока: Сб.научтр-/ Актуальные Проблемы анест. и реанимагол. Архангельск, 1995. С. 140-145,

26. Васильев А-В,, Емельянов А В ,Терских В,В, , Смирнов СВ. Создаиисбанка южных клеточных транаишитатов: принципы и перспективы //Мат. город нлуч -прак, конф. Новые мелниннекие технологии в лечении тяжелообожженных М 1997 -С-27.

27. Васильев H.B., Захаров ЮМ-, Коллда ПИ. Система крови и кеспе-цнфнческой резистентности в зхстримальных климатических условиях. Новосибирск. Наука, 1992- -256с,

28. Взсильчсннов АВ., Цып ни A Ji„ Горшеннн TJL, Гранкнн В.И. Природные цнтокины новые возможности иммунотерапии язвенной болезни желудка и двенадцатиперстной кишки // БЭБМ,- 2005. Т.140. №7,- С. 130-135.

29. Ведерникова О.Л., Верхней ВА, Аганнна ЕЛ. Результаты лечения больных с тяжелой термической травмой: В сб. Мат. VII Всерос. научно-практ. конф, по проблеме термических поражений- Челябинск, 1999. С. 12-13.

30. Верещагина Е С., Калеитьева Л-А. с соавт. Профилактика раннего сепсиса у тяжелообожженных детей, Тез. докл. VI съезда травматологов и ортопедов России, Н-Ноагород, 1997 С. 74,

31. Воздвиженский С И., Будкевнч Л И-, Шуроиа Л.В Организация этапной медицинской помощи детям раннего возраста с термической травмой: Тездокл VII Всерос научно- практ. конф. по проблеме термических поражений. Челябинск, 1999.-20с.

32. Волков А.В Краткий обзор коммерчески доступных клеточных продуктов для восстановления ложных покровов/УКлегочн-Трансллантол. н тканевая инженерия -2006.J&4. -С 62-65.

33. Гаркави ЛХ, Квакина Е.Б, Кузьменн» "ГС. Аитнстрессорные реакции н активэционная терапия. -М: ИМЕДИС 1998 655с.

34. Герасимова ЛИ,, Жкжнн ВН. Кижаев ЕВ., Путинцев АЛ Термические и радиационные ожоги -М.: Медицина 1996. -.244с

35. Герасимова Л.Ц., Проблема ожогов на пороге XXI века /Актовая речь (30 декабря 1999 года) -М 1999 Н Эл. версия жури Комбустидаогия.

36. Глани С Медико-биологическая статистика. Пер. с англ. -М.: Практика. !999.-459с,

37. Глушенко Е.В-, АлексеевА-А., Морозов С.С. и др. Использование клеточных культур при местном лечении ожоговых ран // Хирургия 1993- № 11- С. 26*30.

38. Глушенко Е.В., Алексеев А.А., Туманов В.П., Серов Г.Г. Лечение термических ожогов кожи с использованием культивированных фибробластов Архив патологии.- 1994. №5.- С. 30-33,

39. Гнетнев A.M. Позднякова Б.Я., Всгсле Л.С., Бабушкина И,В. Опыт успешного лечения гнойных осложнений повнлрголом и озоном ; Тез, докл. Вссрос гонф Актуальные вопросы гнойных осложнений и заболеваний в хирургической практике Новосибирск 1999. - С. 189.

40. Гостев А.П,, Черненко В,В. Хирургическое лечение обширных гранулирующих рай: Тез. докл. Вссрос. конф. Актуальные вопросы гнойных осложнений н заболеваний в хирургической практике. Новосибирск. 1999,-С. 190-191

41. ГостищевВ-К., Ханкн А Г Клнннкп-шпологнческие особенности местного лечения вялогранулнрующих ран мягких тканей 0Д% раствором куриознна во 11 фазе раневого процесса // Хирургия -1999. №10.- С. 72-74.

42. Грншкевич В.М., Мороз В,Ю Руководство по реабилитации обоженных -М. Медицина. 1996. С. 5-16,

43. Грищенко В И Клеточная и тканевая трансплантация / Институт Проблем Криобиологии и криомелицины Харьков. 2000. 68с

44. Долгушин И.И., Эберт Л Я. Лифшии Р.И. Иммунология травмы. Свердловск. Медицина. 1989 169с

45. Евтеева А А , Муразян Р.И , Смирнов С.В, Сочетай и ос энтеральное и парентеральное питание бальных с ожогами //Гематол. и трансфузиол.- 1983, №3-С. 49-52.

46. Жоголев К Д, Никитин В.Ю, Бутыльков Ю.И Изучение препаратов хитина и хнтозана на течение раневого процесса // Актуальные проблемы гнойно-салических инфекций СПб,- 1996 С, 36-37.

47. Жоголев К.Д, Никитин В.Ю., Цыган ВН. Препараты на основе хитина и хнтозана в медицине и рациональном питании // Мед. Иммунол,- 2001. Т 3. №2,- С 316-317.

48. Засц ТЛ., Кулсб рас-Фернандес ХМ. Тарасов А.В. и др. Использование различных питательных смесей для нормализации метаболических процессов у больных с ожогами прн зондовом энтералытом питании // Вопр. питания,- 1994. №1.-2.- С 10-13.

49. Зндьбср А.П. Питокииовые каскады и новая концепция критического состояния при септическом шоке //Актуальные проблемы медицины критических состояний. Петрозаводск^ 1995. Вып.2 -249с.

50. Зотнюв Е.А., Бабаева А Г, Порешина Л.П. Клеточный хнмернэм и химс-ризм клетки при трансплантации костного мозга. -М Хризостом. 2003,-110с.

51. Кальф-Калнф Я.Я., О лейкоцитарном индексе интоксикации и его практическом значении // Врачебное дело. JJfet.- С, 31-36.

52. Кисляиов В Д ., Барабаш ВН. Фролова ВВ. Сорбциошго-апплнкацнонная терапия гнойных ран Тех докл. Всерос. конф. Актуальные вопросы гнойных осложнений и заболеваний в хирургической практике Новосибирск, 1999, • С. 201-202

53. Козннец ПН. Слесареню С В, РвдэнпмскнЛ AJI, Повстяиой Н-Е-. Шейман Б.С. Ожоговая интоксикация -Киев -2004,254с

54. Колкер И И. Актуальные вопросы хирургии: Сб, науч.тр.- М, 1985.-С, 144-149,

55. Ко.ткер И.И. Актуальные проблемы иммунопрофилактики и иммунотерапии ожоговой болезни // Гематол. и трэнсфузнол,-1984, Ж?.- С. 3-8.

56. Колкер И И. Инфекция и иммунитет при термических поражениях // Хирургия1980. №5 С. 17-21.

57. Катонмьчикова ЕХ, Будкевич Л И, Боброаннков А.Э, Бадикова А.К., Туманов В.П. Морфологические изменения ожоговых ран после пересадки аллогениых фнброблаетов // БЭБМ.- 2001. Т. 131. Ni> L-C. 107- III.

58. Кузнецов Н-М-, Мазка О.Ц., Шанина Л.Н. с соавторами Применение культивированных клеток для закрытия дефектов кожи: Тез докл. II Межд. еимп. "Новые методы лечения ожогов с использованием культивированных клеток кожи". -Саратов, 1998 -С 20-21,

59. Кузько ЮЛ Экстракорпоральное подключение ксеногсиной селезенки и ни фузии спленоперфуэзтл в комплексном лечении тяжелообожженных детей. Авторсф. дис. канл мед. наук М. 1994.-20с.

60. Кухарчук АЛ., Радченко В.В., Сирман В,М. Стволовые клетки. Эксперимент, теория, клиника. Черниш, Золоп лнтаври., 2004.-504с.

61. Лавров В А., Алексеев А.А- Вопросы история// Эл. версия жури Комбусттюлогия,- 2002. №4.

62. Лавров В.А., Засц ТЛ., Марчук А,И. Среднемолекулярные пептиды и интоксикация у обожженных: Тез. докл. конф. Современные средства первой помощи и методы лечения ожоговой болезни.- 1986. С. 157-159.

63. Лебедева PH., Полуторнова Т.В. Неилорьае аспекты патогенеза и лечения ■юлиоргшиюй недостаточности Я Анест и реаннмагол,- 1995. №2,- С. 83-88.

64. Лейдерман И.Н, Синдром полиорганной недостаточности. Метаболические основы // Вестн. интенс. тераашн 1999. №2 - С.211-212.

65. Лейдерман И.Н., Руднов В.А., Клейн А.В. Николаев Э-К. Синдром птерметаболизма универсальное звено патогенеза критических состояний // Вестн иитенс. терапии,-1997 №3. - С. 17-23.

66. Лейсн А- Световая микроскопия в биологии Методы. -М. Мир, 1992 4&2с

67. Лукоянова Т.Н. Клиннко-нммуналогнческне критерии обоснования иоценки эффективности иммуннокоррегирующей терапии у больных ожоговой болезнью: Дис. кии . мед. наук, М, 1990. -21с.

68. Лупатов А Ю. Каралкин ПА.ХуздальиеваЮГ, Ярьгпш В.Н. Ярьпнн КН. Цитофлюорнметрическнй анализ фенотипов фнбробластоподобных клеток из костного мозга н пуповины человека Н Клеточн-технол, в биол и мед. 2006. Х*4. -С, 212-217,

69. Малахов С Ф„ Терских В В . Бакгин ЕА., Васн.лз>св А.В„ Парамонов Б,А, Лутогранспдантация вьфашенных вне организма эпидермапьных кератиношпов с целью лечения обширных ожогов // Вестн хнр. им И.И Грекова 1993-N?4.-C. 59-62.

70. Маремшюв A M Использование пептидов и донорской селезенки для коррекции восстановительных процессов в органах при критических состояниях: Автореф. дне.канд. мед мук. 2001.- 31с.

71. Мшчнн Е-Н-. Алексеев А А. Клин ико-морфологнческая оценка результатов комбинированной ауто-дермопластики с трансплантацией культивированных фибробтастов у обожженных// Эл. версия жури. Комбустнология.- 2000. Кг2.

72. Моянскнй Д.Н. Клетка Кунфера и система мононуклеарных фагоцитов-Иовоснбнрск. Наука, 1981. 169с.

73. Миронов П.И., Руднов В.А. Проблемы н перспективные направления коррекции меднаторного ответа при сепсисе И Ане ст. н реаннматол- 1999. №3-С. 54-59.

74. Момстрей С., Хбексема Х-, Депуйт К., Хамди М и др. Консервативное лечение глубоких ожоговых ран с использованием терапии поляризованным светом' / Британский журнал пластической хирургии 2002. С- 420-426.

75. Морозов В.Г, Хавинсон В.Х. Пептидные биорегуляторы (25-летннй опыт экспериментального и клинического имения). -СПб.: Наука, 1996. 172с,

76. Назаров И Г1., Попов А.А , Протопопов Б В,, Кокоулнна Ж,Н, Пути коррекция иммунной недостаточности парадных стадиях ожоговой болезни с целью профилактики и лечения сепсиса Н Аиест. н реаннмагол.- 1999. №1.- С. 63-68.

77. Нахаев В И Сравнительная оценка эфферентных методов детокенкацнн крови при острой печеночной недостаточности: Автореф дне,. докт, мед наук М„ 1995.-35с,

78. Николайчик В.В. Проблемы сорбционной детокенкацнн // Здравоохр. Белоруссии.- 1984 №4,-С. 20-23,

79. Никонов С Д Применение щттокинов в интенсивном лечении осложненных форм хирургических инфекций: Авторсф лис .докт. мед. наук Новосибирск, 2000. 40с.

80. Ноиак А,А,. Цыган В.Н Жоголев К.Д., Никитин Ю-В. Применение препаратов на основе хнтнна и хнтозан а в медицине N Проблемы окружающей среды н Природных ресурсов. -М ВИНИТИ 2000, вып. №8,- С. Е06.

81. Оншцекк» Н,А„ Казиева Ф.Х, Экстракорпоральное подключение систем биоискусственной поддержки печени в комплексном лечении гепатоиеребральной дистрофии // Вести. Трянсплантол и нскуствен. органов.- 1999. К?1,- С, 54-59.

82. Он н шеи ко Н.А., Крашенинников ME. Современные представления о биологии стволовых клеток костного мозга и крови в аспекте их клинического применения И Вести, трянсплантол.и искусствен, органов,- 2004. №3 С. 54-62.

83. ОннщенкоНА , Цыпин А.Б. Пептидная биорегуляция восстановительных процессов в поврежденных органлхЛВести транеллантол и нску ствен. органов.- 2001. №3,-С, 89-91.

84. Пальцев М.А,, Иванов А.А. Межклеточные взаимодействия. -М.: Медицина. 1995,-245с,

85. Пальцев М-А,, Иванов А,А,. Северин С Е Межклеточные взаимодействия в воспалении н репарации.- 2* издание. -М: Медицина. 2003.- 252с,

86. Парамонов Б.А-, ПорембскиЙ Я.О., Яблонский В-Г. Ожоги. -СПб., 2000.- 480с.

87. Петров C P Юшннко-иммунологнческая характеристика ожоговой болезни при комплексной терапии и нммунокоррекцнн: Авторсф. дне. . канд. мед. н^к. Одесса., 1986,-21с

88. Повстяной Н.Е. Структура и характер оперший кожной пластики при ожогах //Мат. VH Всерос. научно-практич. конф. по проблеме термических поражений, Челябинск. 1999, С. 194-196.

89. Повсгяной Н.Е., Козннец Г.П., Полншук С.А., Перехрсстенко 0,К„ Вартанян О,В. Местное лечение ожогов // Метод, рекоменд. Киев., 1985,-3-6с

90. Погано» В.Л. Клннвко-лабораторная оценка применения современ-ных методов восстановления кожных i юкронов у обожженных: Автореф. дне. канд. мед. наук. Тула -2001-20с.

91. Распугни П-Г, Кардовский А Г, Демьянова В,Т, Коетуноаа М£. Гемо-еяленоперфузня в комплексном лечении тяжелообожженных Тез. док. Межд. конф. Интенсивное лечение тяжелообожженных М, 1992. - С. 139-140.

92. Раеулов М.Ф., Вжснлшенков А.В., Онншенко НА. н лр, Первый опыт применения мезенхнмальных ствотоиых клеток юстаогомозга лл* лечения больной с глубокими ожоговыми ранами кожн // Клсточн. технол. в бнол. и мед. • 2005, №1. -С. 42-46.

93. Ремняковэ А В., Стяжхша СН., Ремггяков В В. Роль нммуткшоррекцпи jr дегокенкации при гнойно-септических заболеваниях почек // Эфферентные методы в клинической практике. Ижевск 1993- - С. 77-78,

94. Репин ВС-Сухих ГТ- Медицинская клеточная биология.-М.: нзд БЭБиМ-1998,-200с.

95. Репин В.С, Ржанннова АА-Г Шсмснков ДА. Эмбриональные стволовые клетки: Фундаментальная биология и медицина -М.: РеМеТекс, 2002, -220с.

96. Румянцев А Г , Масчан А. А , Трансплантация гемопоэтнческнх стволовых клеток у детей, -М-: Мед информ, Агентство, 2003,- 9.Ос,

97. Сажнн В,П. Бактериальные протеолнтнческне ферменты в лечении гнойных ран: Автореф. дис,, ,,каид мед. наук. М, 1988, 25с,

98. Саидгалнн ГЗ., Салистый П.В. Панова О.В., и соант. Аллофибробласты в лечении глубоких ожогов у детей" Сб, науч.тр. Комбустиология на руЧэеже веков М. 2000, - С. 166,

99. СаломщзЕН В,В„ Лютов А.Г-, Холодов А.Ю, и др. Влияние альфа 1 -кислого глнкопротеина на реологические показатели крови при экспериментальных термических ожогах// Патал. физиол. и экспер. терапия.-1992. № 1 ,-С. 35-37.

100. Саркисов ДС„ Глушенко ЕВ., Туманов В П и др. Опыт применения культуры фнбробластов прн лечении обожженных // Воен.-мед. жури. -1991. №10- С. 62-63.

101. Севастьянов В-Н, Егорова В. А., Немец ЕЛ., Перова Н.В., Оннщенкп Н. А., Медико-биологические свойства бнодегрэдируемого материала ЭластоПОБ "// Вести транспланшл. и искусствен, органов.- 2004. №2 С. 47-52.

102. Седов В.М., Гордеев Н. А-, Кривцова Г Б,, Самсонов С.Б. Лечение инфицированных ран и трофических язе ультразвуком низкой частоты // Хирургия,-1998 т -С 39-42.

103. Селиверстов ДВ„ Гяусмлн Б.Я., Пегруннн А, А. и др Сравнительная оценка клинической эффективности некоторых комбинированных мазевых препаратов прн лечении гнойных ран у больных сахарным диабетом// Хирургия -1997. m- С.43-46.

104. Смирнов СВ-. Киселев И В , Занншшнюва А,П .Васильев А В. Терских

105. Туманов В.П., Алексеев А.А., Будкевнч Л.И. Десятилетний опыт использования культивированных клеток кожи человека для лечения термических ожогов // Архив пагол,- 1999,- Т-61, №4-С.5-9

106. Туманов В.П., Глушенко Е.В-. Морозов СС, Саркнсов Д,С Использование культивированных фнбробластов rrpti лечении ожоговых ран И БЭБМ- 1990, №41. C, 400-402

107. Тюрникш ЮЛ, Евтесв А А Организация раннего хирургического лечения глубоких ожогов в условиях ожогового центра: Мат. город, научно-практ. конф. Новые медицинские технологии в лечении тяжелообожженных, -М 1997,- С. 13-17,

108. Уееико JIJB, KnHiyiKHKO Е.Н, ГулегаИ.Е. и др. Перфторан в интенсивной терапии критических состояний: Днепропетровск., 1999 44с

109. Фаязов АД. Современные аспекты хирургического лечения глубоких ожогов у тяжелообожженных // Мел, журн. Узбекистана.- 2003. №5.- С 29-30.

110. Федоров В.Д., Саркнсов Д.С., Алексеев А,А„ Туманов В.П, и др, Пластическое восстановление кожных покровов с использованием культивированных фнбробластш//Анналы хирургии.- 1996. .V? 4 С. 16-19.

111. Федоров ВД, Саркнсов Д. С, Туманов В.П, Глушенко Е В. Применение культивированных фнброблаетов при ожогах ножи.//1 Врачебное дело.- 1993 MI 1.-С 26-28

112. Федоров Н-А, Мовшев ЕЕ., Недмннвнна Р.В, Корякина И К. Ожоговая аутоинтоксикация. Пути иммунологического преодоления.-М. Медицина, 1985, С, 56-66.

113. Филимонов А,А, Колсанов А.В., Толстов А,В, Комбинированные антимикробные средства и ик'Елагенсодсржащнс раневые покрытия в лечении и профилактике местных инфекционных осложнении при ожоговой травме // Эл. версия журн, Комбустиология. 2003, №1.

114. Хнлъкнн А М„ Шсхтср А.Б. Истраиов ЛЛ., Леменев В Д. Коллаген и его применение в медицине -М Медицина, 1976,- 210с,

115. Чалснко В В. Классификация острых нарушений функций органов и систем при синдроме полноргаиной недостаточности // Анестеэнал и реаннмагал-1998 №2.- CJ25-30.

116. Шанин ЮН Бисснкоа Л.Н-, Замятин ММ и др, Общебиологические закономерности формирования послеоперационных осложнений у бальных с хирургической патологией легких И Анест и реанимзгол- 1998, №2,- С 30-35

117. Шано В.П, Польыамедов Ф.Ц., Нестеренко А.Н. и др. Варианты лечения критических состояний с учетом патогенеза SIRS синдрома системного воспалительного ответа К Анест. н реаннмяшл- 997. № 6 - С.48-53

118. Шано В.П,, Нестеренко A.R. Гюльмамедов Ф.И, Гюльмамедов П.Ф. Сепсис и синдром системного воспалительного ответа Н Анест. н реаннматол-1998 Ш.-С. 60-65.

119. Шахов В.П. Хлусов И.А. Дамбаев ГЦ. н др,//Введенне в методы #} стьтр юнровання кчспжбионюсснернм органов и тшЛ Пол редакцией Новицкого В.В., Шахова В.П .Хлусова ИА* Дамбаева ГЦ. н др. Томск. СТТ 2004. -386с.

120. Шляпников С. А Принцип шпокниокой терапии сепсис-синдрома Н Вести, хирургии им. ИЛ. Грекова,- 1997.- Т. 156, AKL-C. 51-54.

121. Шумаков В-И. Оннщенко Н А- Лечение печеночной недостаточности методами трансплантации и экстракорпорального подключения печени и других тканей (биологические и клинические аспекты) -М.: ВИНИТИ, 1994,- 141с.

122. Шумаков В.И., Оннщенко Н А., Расулов М.Ф. и др. Мезенхнмальные стволовые кдеткн костного мозга эффективнее эмбриональных фибробластов стимулируют регенерацию глубоких ожоговых ран // БЭБМ,- 2003 Том 136. т.- С. 220-223.

123. J63. Ai a, Su Y, Ym G , Wang M , LiuX, Xu H, Cheng T. The experimental study of bone marrow mesenchymal stem cells on the repair of skin wound combined with local radiation injury, Zhonghua Yi Xue ZaZhi 2002:- 82(23) -P 1632-1636.

124. Akashi К, Traver D, Kondo Mr Weissman I.L Lymphoid development from hematopoietic stem cells U Int J, l-Iematob 1999J& 69.-P. 217-226.

125. Akashi K.r Tmver D, Miyamoto Т., Weissman II. A donogenic common myeloid progenitor tliat gives rise to all myeloid lineages // Nature 2000 - 404 -P 193-197,

126. Alexander J.W. The evolution of immunojiutrition 4 J of Critical Care Num-tion.-1995-V3.-NI.-P. 14-20,

127. Alison M R., Poulsom R. Jefteiy R., Dhilton A,P., Quaglia A. Jacob J., Novell! M,, Prentice G., Williamsony and Wright N,A, Hepaiocytes from non-hepatic adult stem cells. Nature.- 2000.-406.-P 257.

128. AlitaJo K., Kuismaren E., Mullula R,ei al . Extracellular matrix proteins of human epidermal keratmocyies and feeder T3 cells //J.Cclt Biol.- 1982.- \bl 94.-P.409-505.

129. Alonso L., Fuchs £ Stem cells of the skin epithelium. Proc Nad Acad Sci U S A. 2003 Sep 30; 100 SuppI I,- P, 11830-5.

130. Alvarez-Dolado M., Pardal R., Garcia-Verdugo JM„ et al, Fusion of bone-marrow-derived cells with Purkinje neurons, cardiomyocytes and hepatocytes. Njflure. 2003 Od 12.

131. Andree C, Reimer C. Page CP, Slama J, Staik BG. Eriksson E. Basement membrane formation dunng wound healing is dependent on epidermal transplants // Plast Reconstr Surg.- 2001 Jan.-V 107 NI .-P97-I04,

132. Asahara T,, Murohara T„ Sullivan A., Silver M. Van der ZceR, Li Т. Wjt/enbichler B„ Schalteman G., and Isner. J.M. Isolation of putative progenitor endothelial cells for angiogcncsis H Science,- 1997. N275.- P. 964-967.

133. Assclinean D, Prunieras M. Reconstruction of simplified skin: control of fabrication//Brit J. of Detmatol.-1986,- Ш 27. N3.- P.219-222.

134. Badiavas E.V., Falanga V Treatment of chronic wounds with bone marrow-derived cells // Arch Dermatol.-2003.-Vbl 139.-N4.-R 510-516.

135. Bae SC . Lee KS., Zhang YW„ Ito Y Intimate relationship between TGF-beta' BMP signaling and rum domain transcription factor, PEBP2/CBF. J Bone Joint Suig Am 200I;83-A Suppl l{Pt 1 ):S48-55,

136. Bandt J.P., Qui MS., Memvann A. Cytokine response to bum injury: relationships with protein metabolism // J, Trauma-1994. N36,-R 624-628.

137. Barton R. Nutrition support in critical illness.// NCP. 1994. Vol. 9.127-139.

138. Bell E., Ertich H., Buttel D. Living tissue formed in vitro and accepted as skin equivalent tissue of full sickness I/ Science.- 1981- \Ы. 211. N 4486.- P. 1052-10Я

139. Bello VAt, Faiabrfla A.F., Baglstein W.H. Tissue-engineered skin. Cunent status in wound healing. Am, J. Clin. Dermatol. 2001; 2(5): 305-313.

140. Bernard-Beanbois К-, I lecquet С , Houeine O., Hayem G., Adolphe M- Culture and characterization of juvenile rabbit tenocytes // Cell Biol, Toxicol.- 1997. N13-R 103-113.

141. Beutler BA Orchestration of septic shock by cytokines: the role of cachectin (tumor necrosis factor). In; Roth BL, References N'ielsen ТВ, McKce AE, eds Molecular and Cellular Mechanisms of Septic Shock New York, Alan R. Liss. 19S9.-P 219-35.

142. Bianco P. Cossu G. Uno. nesstmo e centomila: searching for the identity of mesodermal progenitors // Exp. Cell Res.-1999., N 251- P. 257-263.

143. Banco P., RonimJCCf M, Gronthcw S , and Robey PG- Воле marrow stromal stem cells: nature, biology and potential applications // Stem Cells 2001, N19,-P. 180-192

144. Bianco P. Riminucci M., Kicmrtsov S. and Robey PG, Multipolenlial cells in the bone marrow stroma, regulation in the context of organ physiology И Crit, Rev. Eu-fcaiyotic. Gene Expr- t999, N 9 P. 159-173.

145. BjomsonC.RietzeR, Reynolds В. Magli M. and Vfescvi A. Turning brain into blood a hematopoietic fate adopted by adult neural stem cells in vivo // Science 1999., N283.P. 354-357.

146. Bonde J., Waldau T„ Antonsen К Recent advances in Wood gas measurment, analysis and interpretation // Inter J. of intensive Саге,- 1994.-Vol . 1 P 80-88

147. Bone RC The sepsis syndrome: definition and general approach to management H Clin Chest Med 1996.ЛЫ. 17„ N 2.-P 175-181.

148. Bosca A.R., Tinois E., Faure M. et al. Epithelial differentiation ofhuman skin equivalents after grafting onto nudcmice // J. Invest Dermatol- 1988-- Vol- 91. N2-P. 138-141.

149. Botha A.J. Moore E.E., Fontcs B. Postinjury neutrophil priming and activation stales therapeutic challenges // Shock .- 1995., N 3,- P. 157-166

150. Boyan B.D., Caplan AX, Heckman J.D., Lennon D P, Ehler W. Schwartz Z. Osteochondral progenitor cells in acute and chroruc canine nonunions // J Otlhop. Rcs -1999, N. 17-P. 246-255.

151. Boyce S.T., Hansbrough J.F, Biologic attachment, growth and differentiation of cultured human epidermal keratinocytcs on a grafiable collogen and chondrottin-6-sulfaie substrate // Surgery,-1988 \Ы 103,- P 421-426,

152. Boyce ST, Warden GD. Principles and practices for treatment of cutaneous wounds with cultured skin substitutes //Am J Surg.- 2002, Vol. 183.N 4.- P.445-156.

153. Boyle RJ., Savutecku J. Ethics of using preimpantation genetic diagnosis to scleet a stem cdl donor for an ©asiirrg person U B№- 2001 -Vol 323.- P 1240-1243.

154. Brain A N., Frame JD., Eye M D. Early lymphopenia in burned children with and without the toxic shock syndrome // Bums.-1988.- \bt. 14., N2.- P. 120-124.

155. Brave F, Pascal P, Bertin-Maghit M. Colpart JJ, Tissot E, Damour 0. Advances of using a bank of allogenic keratinocytcs for the rapid coverage of extensive and deep second-degree bums// Med Biol Eng Compute 2000. -W 38., N2.-P 248-252.

156. Brown EJ. Phagocytosis //Bioessays.- 1995.-N 17 -P 109-117.

157. Brown LF. Yeo K.T. Berse B. et al. Expression of vascular permeability factor (vascular endothelial growth lacior) by epidermal keratinocytcs during wound healing H J Exp. Med.- I992.-N 176,-P 137S-13 79,

158. Bugge Т.Н., Kombrinck К W, Flick MJ. Daugherty С С ,Danton MJ S.Dcgen J.L. Loss of fibrinogen rescues mice from the pleiotropic effects of plasminogen deficiency // Cell,-1996,, N 87,- p 709-719

159. Cairo M.S. Wagner JJL Placental and'or umbilical cord blood: an alternative source of hematopoietic stem sells for transplantation.// Blood,- 1997 , N. 90-P 4665-4678

160. Cap)an АЛ, The mesengenic process U Clin. Plast- Surg 1994 . N21.-P. 429-435.

161. Caplan AX. Mesenchymal stem cells If J Orthop Res 1991.- Vol 9 -P. 641-650.

162. Cascone MX}., Sim B. and Downes S, Blends of synthetic and natural polymers as drug delivery systems for growth hormone // Bionvaterials 1995.- Vol. 16,, N 7,-P, 569-574.

163. Селя F. Hypermetabolism organ failure syndrome metabolic response to m-juiy // Surgeiy.- 199 E- Vbl.185.- P 47-55.

164. Ccrra F Multiple organ failure syndrome I/ Hosp Pract 1990 - Vol, 2 5.-P. 169-176.

165. Chandy T, Rao GH, Wilson R.F, Das G.S. The development of porous alginate clatfin PEG composite matrix for cardiovascular engineering if J, Biomater- 2003.-Vol 17, N 4 -P 287-301.

166. Chen Jing, Zhon Yi-Ping, RongXin-Zhon, An expcnmental study on systemic inflammatory response syndrome induced by subesdiar tissue fluid H Bums 2000.-N 26-P 149-155.

167. Cheng L, Oasba P-, Vkiguri P. et al. Human mesenchymal stem cells support megakaryocyte and pro-platelet formation from CD34+ hematopoietic progenitor cells // J Cell Physiol,- 2000,, N. 184,-P 58-69.

168. Chichester C O., Fernandez M , Minguell J J. Extracellular matrix gene expression by human bone marrow stroma and marrow fibroblast-// Cell Adhes- Comroun.-1993.-N, 1 -P 93-99,

169. Chunmeng S. Tianmin C, Yongping S. Xinzc R, Ifae M, JifU Q, Shufen L, Нш X. Chengji L Effects of dermal mulnpotent cell transplantation on skin wound healing // J Surg Res 2004 -Vol. 121 -P. 13-19.

170. Cibelli J„ Stice S.I-, Rob! J.M et al. Transgenic bovine chimeric offsprings produced from somatic cell derived stem-like cells. // Nature Bioteehnol.- 1998,N 16.-P 642-646

171. Clark RAF. Ashcroft G.S, Spencer M-J, Larjava H., Ferguson M.WJ. Rcepithelialkation of normal human excisional wounds is associated with a switch from ayb5 to ayb6 integrins H Br J. Dermatol.- 1996.N 135.-P. 46-51.

172. Clark R A F, Lanigan i M. DellaPelle P. Manscau E„ Dvorak H F , Cohin RB. Fibronectin and fibrin provide a provisional matrix for epidermal cell migration during wound reepithelialization // J. Invest. Dermatol.-1982 JM. 79.-P 264-269.

173. Clark R.A.F. Fibronectin matrix deposition and fibronectin receptor expression in healing and normal skin // J, Invest Dermatol.- E990.-N, 94-PI28-1 34,

174. Clark R A F,, Nielsen L.D., Welch M I' , McPherson J.M. Collagen matneesattenuate the collagen-synthetic response of cultured fibroblasts to TGF-b // J. Cell Sci -1995 , N- 108.-P 1251-1261.

175. Clark R. A. Ft Folkvord J. M., Hart С. E r Murray M. J., McPherson J.M. Platelet isofomu of pfateH-dcnved growth factor stimulate fibroblasts to contract collagen matrices it J Clin Invest.-1989., R84.-P. 1036-40.

176. Clark R. A- F, Quinn J. Ji, Winn 11J, Lanigan J. M, Dellepelle P, Colvin R- B. Fibroocctin is produced by blood vessels in response to injury // J, Exp Med,- 1982., N.I56-P. 646-65 L

177. Colter D. et al. Rapid expansion of recycling stem cells in cultures of plastic-adherent cells from human bone marrow. Pvos, Nat. Acad Sci. USA, 2000; 97; 7: 3213-3218.

178. Colter D, Sefciya I, Prockop D. Identification of a subpopulation of rapidly seI {renewing and multipotential adult stem cells in colonies of human marrow stromal cells. Pvos NaL Acad. Sci USA, 2001; 98; 14: 7841-7845,

179. Conget P.A., Minguell JJ. Phtwxypical and functional properties of human bone marrow mesenchymal progenitor cells // J. Cell. Physiol -1999., N. 181 -P. 67-73.

180. Couchrnan J R., Rees D.A., Gteen M R, Smilh C.G, HI Cdl Biol,- 1982,, N93,- P. 402-410,

181. Currie LJ., Martin R, Sharpe J.R., James S.E. A comparison of keratinocyte cell sprays with and without fibrin glue//Bums 2003,-\fcl.29.,N. 7,-P 677-685,

182. Cynober L Can arginine and ornithine support gut functions // Bums.- 1994,-Vol 15,-P, 310-316.

183. DantzeT D., Ferguson P., Hill R P. Keating A, Kandcl R.A., Wunder J S., OSullivan В, Santlhu J., Waddell J., Bell R.S Effect of radiation and cell implantation on wound healing in a rat model. J. Sutg Oncol. 2003 Jul;83(3}; 185-90.

184. De Lapp, Dieekman DK Effect of bask fibroblast growth factors type 1 (IGF-1} and type II (IGF) on adult human kcraiinocyte growth and fibronectin secretion // J, Invesi DermatoL- 1990.- \Ы 94, N.6.- P. 817-822.

185. Dedovic Z, Koupikma I , Suchanek 1. Kerattnocjies as bioiogrcaJ dressing in the treatment of partial-thickness burns in children // Ann. Burns and Fine Disasters -1998 -\кЛ II,,N L-P.37-40.

186. Deng W., Han Q, Liao L , Li C„ Ge W. Zhao Z . You S, Deng R, Murad F-. Zhao R.C Engrafted bone marrow-derived ПкЧ!"1") mesenchymal stem cells regenerate skin tissue // Tissue Eng.- 2005.ЛЫ ll.,N.I-2.-P. 110-119.

187. Dennis J.E , Memam A., Awadallah A. et.al. A quadripotential mesenchymal progenitor cell isolated from the marrow of an adult mouse ti У Bone Miner Res,-1999,.N. 14,-P 700-709.

188. DeschampsA.A., Apeldoorn A.A., de Bmijn J,D., Grijpina D.W. Feijen J, Poly {ether ester amide) for tissue engineering //Biomaterials. 2003 Jul; 24(15). P. 2643-52.

189. Detmar M. Brown L.F., Bcrsc B. Hypoxia regulates the expression of vascular permeability factor/vascular endothelial growth factor (VPF/VEGF) and its receptors in human skin//J Invest. Dermatol.- 1997. Д I G8.-C. 263-268

190. Diiiesh K , Singh and Alok R. Ray Biomedical applications ofchitin and chitosan, and their derivatives //J. of macromol. Sci Reviews m chemistry and physics - 2000,- V 40.-N.I - P. 60-83.

191. Doilkm С J ,and Silver F.H. Collagen based wound dressing: Effect of hyaluronic acid and fibronectin on wound healing It Biomaterials- 1986.- Vbl.7- P. 3-8.

192. Doillon С J., Cote M.F, Pietrocha K, Laroche G„ Gaudreault R. C, Porosity and biological properties of polyethylene gly col-conjugated collagen materials.''1' J. Biomater. Set Polym Ed,- 1994 Vbl. 6-, N8,- P, 715-728.

193. Domen J., Weissman IX- Self-renewal, differentiation or deatli: regulation and manipulation of hematopoietic stem cell fate //Mol Med. Today-1999., N5 P 201-208

194. Dorling A,t Lechler R.l Prospects for xenografting // Current Opinion in Immunol. 1994 V.6., N5.- P.765-769

195. Ouinslaeger L„ Verbckcn G-, Reper P. et al. Use of lyophilised allogenic keratinocyte cultures in die treatment of third degree bum wounds //9 th Congress of the International Society for Bum Injuries, Pans, France. 1994,27 June I July.- P.213-215.

196. Dvorankova В., HoIikovaZ., VacikJ., Konigova R, Kapounkova Z., Michatek J., Pmdn M., Smetana К Jr, Reconstruction of epidermis by grafting of keratinocytes cultured on polymer support clinical study //Int. J. Dermatol - 2003.-Vol, 42., N.3.-P.2I9-223,

197. Ehrlich H.P. Understanding experimental biology of skin equivalent from laboratory to clinical use in patients with bums and chronic wounds. //Am, J Surg. 2004 May; 187(5 A)295-335.

198. Eiges R., Schuldiner M„ Drukker M„ Yanuka O., Itskovitz- Eldor J-, and BcnvcnLsty N. Establishment of human cm bryony slem cell-transduced clones canytng a marker of undifferentiated cetls // Curr BioL-2001, N.ll- P. 514-518.

199. Enk A.H., Katz SX Identification and induction of keratinocytc-derived IL-I0//J. Immunol- 1992-,N 149 -P. 92-91

200. ErdagG., Sheridan R L Fibroblasts improve performance of cultured composite skin substitutes on athymic mice // Burns,- 2004 ,-Vo\ 30.N.4- P322-328.

201. Falanga V., Margolis D-. Alvarez O, et al Rapid bcalinrg of venous ulcers and lack of clinical rejection with an allogeneic cultured human skin equivalent- Arch Dermatol1998;134:293-300,

202. Fathke С , Wl, Ison L, Huaer J„ Kapoor V, Smilh A „ Hock ing A-, Isik F. Contribution of bone marrow-derived cells to skin: collagen deposition and wound repair.// Stem Cells.- 2004,-Vol 22., N5 P,812-822

203. Ferrari G, Cusella-DcAngeles G, Coletta M , Paolucci E, Stomainolo A., Cossu G., Mavilio F. Muscle regeneration by bone marrow-derived myogenic progenitors// Science 1998-, N.279,- P. 1528-1530.

204. Fnedenstcin AJ-, Petrakova ICV., Kurolesova AX, and Frolova G.P . Heterotopic of bone marrow. Analysis of precursor cells for osteogenic and hematopoietic issues //Transplantation.-1968. N6.- P. 230-247.

205. Fnedenstcin AX, ChatLakhjan RK , Lalykma K.S. The development of fibroblast colonies in monolayer cultures of guinea-pig bone-marrow and spleen cells // Cdl Tissue Kinet- 1970., N 3.- P. 393-403

206. Fnedenstcin Al, Gorskaja J.E. Kulagina NN. Fibroblast precursors in normal and irradiated mouse hematopoietic organs // Exp Hematol 1976,, N 4.- P. 207-274.

207. Friedertstein AX. Piatetdty-Shapiro IX and Petrakova K.V. Osteogenesis in transplants of bone marrow cells // J, Embryol. Exp, Morphol 1966,, N 16, -R 381-390.

208. Fu X.B., Fang L J., Wing Y.X., Sun TZ. Cheng В Enhancing the repair quality-of skin injury on poicinc after allografting with the bone marrow mesenchymal stem cells, // Zhonghua Yi Xue Za Zhi.- 2004 ЛЫ 84.N11 .-P 920-924,

209. Gage F Mammalian CNSV Scicnce.- 2000.-N 287.-P 1433-1438.

210. Galico G.G. O'Connor ME, Compton C.C. et al. Permament coverage of large bum wounds with autologous cultured human epithcliumtfN. Engl. J. Med -1984.- Vbl.311. N 7,- P.448-4S4.

211. Gallin JL Degranulatmg stimuli decrease the negative surface charge and increase the adhesiveness of human neutrophils. //J Clin. Invest.-1980., N6S.-R29S-306.

212. Geer DJ., Swartz D.D., Andreadis ST. In vivo model of wound healing based on transplanted tissue-engineered skin. //Tissue Eng.- 2004 .-Vbl 10.N7-8.- P. 1006-1017.

213. Germann G„ Raff T. Homografl transplantation in severely burned patients. Principles, indications and possibilities- // Chirurg -1995,- Vcl66-N4-P 260-270.

214. Gilchrest В A., Karassik R.L., Wilkins L.M., Vrabel MA., Maciag T. Autocrine and paracrine growth stimulation of cells derived from human skin U J Cell Physiol,1983.-N117.- P135-240.

215. Gluckman £,, Rocha V', Boyer-Charnmard Aet al, Outcome ofcord-Wood transplantation from related and unrelated donors. Ш Engl. J. Med 1997.r N. 337, P.373-381.

216. Gmyr V. Kcrr-CorUe J., Belaich S, et al, Adult human cytokeratin 19-positive cells re-ekspftss insulin promoter Factor-1 in \-itro.// Diabetes 2000., N 49-P 1671-1680.

217. Goliger J.A., Paul D L. Wounding alters epidermal connextn expression and gap junction-mediated intercellular communication // Mol. Biol. Cell. 1995. JM 6 -P, 1491-1501,

218. Gomez-Cia Т., Jodar E-. Garrido M. a al. Diminution of sepsis in patients with severe bums with early enteral nutritional support // AbstrAbl 9th Congr, of the Intern Soc. for Bum Injuries. 2001.- P. 339.

219. Goodwin H, Bicknese A., Chien S et.al. Multilineage differentiation activity by cells isolated from umbilical cord blood: expression of bone, fat, arid neural markers-i1/ Biol. Blood Marrow Transplant 2001.ЛЫ7 - N11 - P 581-588.

220. Gorodetsky P., Vfecler A,, Mane G. Fibrin Microbeads (FMB) for Wound Mealing and Tissue Engineering of Skin. Cultured Human Keratinocytcs and Tissue Enginccred Skin Substitutes (ed. R E, Horch et al), Stuttgart; New York Thieme, 2001-P. 99-106.

221. Goshima j. Goldbeiy VM„ Caplan A.I. The origin of bone formed in composite grafts of porous calcium phosphate ceramic loaded with marrow cells, //Clin Qrthop, -1991.N 269,-P. 274-283,

222. L Goto H, Shuler FD, Lamsam C. et al. Transfer of lacZ marker gene to the meniscus // J. Bone Joint Surg. Am.-1999,- VoLSL- P 918-925.

223. Gray A J„ Bishop J.E, Reeves J .T,, Laurent G J, Aa and Bb chains of fibrinogen stimulate proliferation of human fibroblasts // J. Cell, Sci- 1993.- NI04.-P 409413.

224. Greenfield E, McManus A T Infectious complications: prevention and strategies for their control //Nurs Clin North. Am, -1997 -Vol 32., N2,- P, 297-309

225. Grading D., Clark R.A.F. Fibronectin provides a conduit for fibroblast transmigration from collagenous stroma into fibrin clot provisional matrix. //J. Cell. Sci. 1997; 130; 861-870.

226. Griffiths M, OjehN, Livingstone R, Price R, Navsana H Survival of Apligraf in acute human wourtdsV/Tissue Eng.- 2004 .- Vbl.10, N7- 8.-P, 1180-1195.

227. Gr/j bowski J, Kolodzicj W- et al, A new anti-infective collagen dressing containing antibodies// IBMR.-1999, N 36,- P. 163-166

228. Guenechea G, Gan O.I., DorrI С,, Dick J.E. Distinct classes of human stem cells that differ in proliferative and self-renewal potential // Nat. immunol 2001. N2.-P. 75-82

229. Hefton J M.r Caldwell D., Blazes D. G -. Balm A. K., Carter D. M Grafting of skin ulcers with cultured autologous epidermal cells // J Am Acad Dermatol. 1986, N14.-P. 399-405,

230. Meggers J P., Robson M.C. Prostaglandins and thromboxanes, in Nmneman J. Traumatic Injury; Infection and Other Immunologic Sequelae Baltimore. University Park Press. -1983. P,79-102,

231. Hehenberger K-, Heilbom J.D., Bnsmar K., Hansson A Increased lactate production tn chronic diabetic wound fibroblasts showing decreased cellular proliferation // Diabeiology,- 1997, N40, P. 466.

232. Holtmaat A. J. Hermens W. Т., Oestreicher A. B. et al. Efficient adenoviral vector-directed expression of a foreign gene to neurons and sustentacularcclls in the mouse olfactory neuroepithclium // Btain ResMol Brain Res. -1996- V.2.- p.248,

233. Holtzer H. Cell lineages, stem cells and the quanta!' «11 cycle concept. In: Stem cells and tissue homeostasis. Eds: Lord В. I., Potten GS„ and Cole RJ. Cambridge, New-York: Cambridge University Press 1978, N1,- P.28

234. Horeh R.E , Kopp J., Krieser U„ Beier J., Bach A-D. Tissue engineering of cultured skin substitutes. Щ. Cell, Mol. Med, 2005; 9(3); 592-608.

235. Hristov M . Eri W., Weber PC Endothelial progenitor cells: mobilization, differentiation and homing. //Arterioscler. Thromb Vase. Biol.- 2003, N33.-P 1185-1189.

236. Huang Y.C., Wang T.W., Sun J.S., Lin F.H. Cultured kcratinocytes and dermal fibroblasts on a doubfe-fayer scaffold with bi-medium culture system. //Biomed Set Instrum.-2003. N39 -P500-505

237. Igarashi A., Okochi 11 ., Bradham D.M., Grotendorst G R Regulation of connective tissue growth factor gene expression in human skin fibroblasts and during wound герокУ/ Mol. Biol. Cell.- 1993, N 4. P 637-645.

238. Ilan N. Mahooti S., Madri JA- Distinct signal transduction pathways arc utilized during the tube formation and Survival phases of in vitro angiogenesis //J Cell Sci 1998;111:3621-31

239. Iniela-Arispe M.L, Dvorak HF. Angiogenesis: a dynamic balance of stimulators and inhibitors, //Thromb Настои. -1997; N78. P. 672-677.

240. Iversen P.O., Hjeltnes N. Holm В , Flatebo T, Sirom-Gundetsen I et al. Depressed immunity and impaired proliferation of hematopoietic progenitor cells in patients with complete spinal cord injury, //Blood 2000 Sep 15; 96(6): 20S1-3.

241. Jaiswal R.K., Jaiswai N, Bruder S.P. et al. Adult human mesenchymal stem cell differentiation to the osteogenic or adipogenic lineage is regulated by mitogen-activatcd protein-kinase/M, Biol. Chent- 2000.- Vol. 275-, N 13.- P 9645-9652

242. Jansson K. Hacgcrstrand A., Kratz G. A biodegradable bovine collagen membrane as a dermal template for human in vivo wound healing //Scand J. Plast Reconstr Surg Hand Suig 2001. Dec, \Ш5. N4,- P. 369-375.

243. Jiang Y et al. Pluripolency of mesenchymal stem cells derived from adult marrow //Nature 2002,418; 41-49.

244. Kadiyala S„ Young R.G,, Thiedc MA, Bruder S.P Culture expanded canine masenchymal stem cells possess osteoehondrogenic potential in vivo and in vitro // Cell Transplant.- 1997,-N 6 P. 125-134.

245. Kataoka H, Lfrist M.R. Transplant of bone marrow and musde-derived connective tissue cultures in diffusion chambers for biossay of bone morphogenetic ptotein // din. Orthop.- 1993, N 286. P. 262-270.

246. Kataoka H., Medina R.J., Kagevama Т., Miyazaki M,, Yoshino T, Makino T, Huh N.H. Participation of adult mouse bone marrow cells in «constitution of skin //Am. J Pathol 2003.ЛЫ. 163, N 4 .-P. 1227-1231.

247. Kataranovski M, Kucuk J-, Colic M.et al. Post-traumatic activation of draining lymph node cells II. Proliferative and phenotypic characteristics // Bums. 1994. N21. P 210-215,

248. Keller G, "The hemangroWast" Cold Spring Harfcon, New York; Cold Spring Harbon Laboratory Press, 2001, p 329-348,

249. Khammo N. McPhie P, Settle J. A , Ingham E, Kearney1 J. N. Effect of bum patient serum on fibroblast and keratinocyte cell morphology // Bums. 1997. N23. P, 212-217.

250. Klein D,G.r Fritsch D.E., Amin S.G. Wound infection following trauma and bum injuries // Crit Care Nuns Clin North Am, 1995. Dec, W.7, N4. P.627-642.

251. Koide M„ Osaki K., Konisxhi J, et al. A new type of btomaterial for artificial skin: dehydrothermally cross-linked composites of fibrillar and denatured collagens // J.Biomedical Materials Research 1993 \bl.27 p.79-87.

252. Kopp J., Jeschke M.G„ Bach A.D., Kneser U. Hatch R.E Applied tissue engineering in the closure of severe bums and chronic wounds using cultured human autologous keratinocytes in a natural fibrin matrix // Cell Tissue Bank 2004; VbJ 5 N(2); 89-96,

253. Kroger C, Schott С, Obertacke U., Joka T at al. Setum CD14 levels in polytraumatized and severely burned patients // Clin. Exp. Immunol. 1991. Vol. 85-N2 R 297-301.

254. Kukurova E„ Hakos D., Koller J, Use of membranes based on collagen as tissue substitutes it Bratisl. Lek -Listy. 1999 W. 100. N10. P 560-566.

255. Kumagai M Clinical application of autologous cultured epithelia for the treatment of bum wounds and bum scars // Plast, ReconstrSurg. 1988 N 1 R99-111.

256. Kuroyanagi Y., Yamada N. Yamashita R-, Uchinuma E, Tissue-engineered product: allogeneic cultured derma. substitute composed of spongy collagen with fibroblasts, / /Aili f Organs. 2001 Mar. Vol 25 N(3): 1804,

257. Kuznetsov S.A., Friedenstdn Al, Robes' PG- Factors reguired for bone marrow fibroblast colony formation in vitro // Br J. Haematol. 1997.N 97: 561-570,

258. Kuznetsov SA., Mankani M.H., Gronthos S,, Satomura K,, Bianco P and Robey P.G Circulating skeletal stem cells //J. Cell Biol,-2001.-N153.-P.1133-1140.

259. Lamme EN., van Lccuwen R.T. Mckkes J.R., Middelkoop E, Allogeneic fibroblasts in dermal substitutes induce inflammation and scar formation /Wound Repair Regen,- 2002-, Vol.10 N3.- P. 152-160

260. Larjava H, SaloT, Hnapasalmi K,. Kramer RJL, Heino J. Expression of integrins and basement membrane components by wound keratinoctyes !t J. Clin. Invest.-1993., N 92.-P. 1425-1435.

261. Lee D.Y., Ahn H.T., Cho K.H. A new skin equivalent model: dermal substrate lhat combines de-epidemtized dermis with fibroblast-pcptilated coliagcn matrix//J Dennatol Sci 2000 -Vbl,23-, N2.-P.132-I37

262. Lee O.K., Kuo Т.К., Chen Warning etal. Isolation of multipotent mesenchymal stem cells from umbilical coid blood. U Blood. 2004 -Vol 103. N5 - P. 1669-1675

263. Lee W.K., Ichi Т., Ooya Т. Yamamoio T„ Katoh M„ Yui N. Novel poly (ethylene glycol) scaffolds crass linked by hydrolyzablc polyrolaxane for cartilage tissue engineering H J, Biomed Mater Res 2003. Dec 15.- Vbl. 67., N4P 1087-1092.

264. Lin X.S., Yang Z C„ Luo ZH-. Li A.N. Clinical significance of the change of btood monocytic interieukin-l production in vitra in severely burned patients H Burns-1994.- Vbl. 20,. N4.-P 302-306,

265. Lu H.K., LeeS-Y., Lin F.p, Elastic modulus. permeaLion time and swelling ratio of a new porcine dermal collagen membrane И J. Periodontal Res 1998.- Vol 33., N5.- P 243-248.

266. Lund EE-, Cockayne D A, Randall TD, Soivason N. Schubcr F, Howard M.C, CD38: a new paradigm in lymphocyte activation and signal transduction U Immunol Rev-1998, N.I61-P 79-93.

267. Mac Gregor G,R- // In; Methods in Molecular Biology. 1991 V.7. Gene Transfer and Expression Protocols, ed.Murphy E.J, The Humana Press, Inc. Clofton, N-Y.-P, 217.

268. Machens H.G., Berger Л.С, Mailaender P. Bioanirtcial skin // Cells Tissue-2000. N167 -P 88-94

269. Medawar PR. The cultivation of adult mammalian skin epithelium in vitro it QuartJ.Microsc. Sci, 1948. -\bl,89, - P187-196.

270. Madlener M. Parks WC, Werner S. Matnx metalbproteinases (MMPs) and their physiological inhibitors (TIMPs) are differentially expressed during excisional skin wound repair. //Exp Cell Res-1998, N 242.- P.201-10,

271. Majumdar M.K., Thiede MA, Mosca J.D, Moorman M, Gerson S.L. Pheno-typic and functional comparison of cultures of marrow-derived mesenchymal stem cells (MSCs) and stromal cells//J. Cell. Physiol.- 1998,N176.-P, 57-66.

272. Majumdar M.K, Hayneswotlh SE, Baber MA.Caplan A. I. Cytokine expression by human marrow-derived mesenchymal progenitor cells in vitro: Effects of dexani-ethasone and IL-I alpha ft I Cell. Physiol.-1996, N166.-P 585-592.

273. Malavasi F„ Fnnaro A, Roggero S-, Horenstein A, Caloeso L r Mehta K. Human C-038: a glycoprotein in search of a Junction Я Immunol today.- 1994,- \bl, 15, N3 -P. 95-97.

274. Mans bridge J.N, Hanawalt PC, Role of transforming growth factor beta in the maturation of human epidermal kcratinocytes //J. Invest, Dermatol.- 1988.,N90,-P. 336-341

275. Mansbndge J.N., Liu К., Pmney R,E, Patch R., RatclilTe A., Naughton G.K Growth factors secreted by fibroblasts: role in healing diabetic foot ulcers // Diabetes. Obes Metab.- 1999., N I.-R 265-279.

276. Manson W.L., Dijkema H„ Klasen HJ. Alteration of wound colonisation by selective intestinal decontamination in thermally injured mice ft Bums 1990,, N16.-P.166-168.

277. Manson W.L,, Klasen HJ., Sauer E W . Olieman A. Selective intestinal decontamination for prevention of wound colonization in severely burned patients; a retrospective analysts //Bums- 1992,,NI8.- P, 98-102.

278. Manson W.L,, Sauer E.W. Selective intestinal decontamination of the digestive tract: a tool for infection prophylaxis in bums It Ann. Medit Bums Club.- 1994 Vbl.7., N2.-P88-90.

279. Maquet V, Jerome R Design of macroporous biodegradable polymer scaffolds for cell transplantation // Materials Science Forum -1997,- Vol. 250.- P. 15-42.

280. Малого M.A., Fong Y, Moldawer LL. et al Scrum cachecdn tumor necrosis factor in critically ill patients with bums correlates w«h infection and mortality tt J. Slug. Gynecol Obstet- 1990 , N170 P 328.

281. Marescfu K-, Biasin E., Piacibello Wetal. Isolation of human mesenchymal Stem cells: bone marrow versus umbilical cord blood. !/ Haematologia, 2001, N86-P. 1099-1100

282. Matouskova E , Bucek S., Vbgiova D., Vesely P., Chaloupkova A-, Broz L, Singemova H , Kanigova R. Treatment of bums and donor sites with human allogenic keratinocytcs grown on acellular pig dermis H BrJ.Dermatol.- 1997.- Vol 136 , N 6 P. 901-907.

283. Matouskova E., Vogtova D, Konigova R. A recombined skin composed of human keratinocytes cultured on cell-free pig dermis tt Burns. 1993. - Vol.19-P 118-123.

284. McClain SA, Simon M, Jones E, Mesenchymal cell activation is the rate-limiting step of granulation tissue induction //Am J Pathol 1996, N149- P. 1257-270.

285. McCuskey RS, Urbaschek R, Urbaschek B. Themicro circulation during endotoxonia 11 Cardiol. Res, 1996, N32.-P 752-63.

286. Mignatti R. Rifltin DR. Wdgus H.G., Parks WC Proteinases and tissue remodeling. In. Clark R.A .F, ed. The molecular and cellular biology of wound repair. 2nd ed. New York: Plenum Press. t996,-P. 427-474,

287. Mills D. C., Lord W. D- Pmpofot for repealed bums dressings in child: A case report //Bums. 1992, - 18 - P 58-59.

288. Minguell J J. Is hyaluronic acid the "organizer" of die extracellular matrix in marrow stroma? //Exp. Hematol. 1993-, N21. -P. 7-8.

289. Minguell J J „ Erices A., Conget P Mesenchymal stem cells H Exp. Biol. Med. -2001 .- Vbl. 226. .N6.-P. 507-520.

290. Mis B, Roltand E. Ronfard V. Combined use of a collagen-based dermal substitute and a fibrin-based cultured epithelium: a step toward a total skin replacement for acute wounds // Bums.- 2004 -Vol 30„ N7.- P 713-719

291. Moore К , Ruge F., Harding K.G. T lymphocytes and the lack of activated macrophages in wound margin biopsies from chronic leg ulcers ft Br J. Dermatol.- 1997,, N137.-P. 188-194

292. Moran K., Munstcr A.M. Alterations of die host dc fence mechanism in burned patients //Surg. Clin. N. Amer- 19S7 -Vol.67., N2.- P.45-56.

293. Morimoto N. Saso Y., Tomihaia K., Taira T„ Takahashi Y., Ohta M„ Suzuki S. Viability and function of autologous and allogeneic fibroblasts seeded in dermal substitutes after implantation //J Surg Res- 2005- Vol. 125., N1- P 56-67.

294. Mousa H.A., Al-Badcr S.M., Hassan DA. Correlation between fungi isolated from bum wounds and bum care units // Bums 1999 , N 25.- P 145-147

295. Muhd Fakhruddin B.H., Aminuddin B.S., Mazlvzam AL, Ruszymah B.HThe effects of age on monolayer culture of human keratinocytes for future use in skin engineering// Med J. Malaysia 2004. - 59 Suppl - PI82-I83,

296. Munster AM,, Winchurch RA. Birmingham W.I., Keeling P. Longitudinal assay of limphocyte responsiveness in patients with major bums // Ann. Surg -1980. Vol, 192, N6,-P772-775,

297. Muraglia A., Ranieri С. Quarto R. Clonal mesenchymal progenitors from human borne marrow differentiate in vitro according to a hierarchical model //J. Cell Science 2000- 113, 1161-1166.

298. Muramatsu M-„ Mizutani Y-, Ohmori Y, Okumura I-i, Comparison of three nonviral transaction methods for foreign gene expression in eariy chicken embryos in ovo a Biocbem.Biophys.Res.Comm1997.- Vol230- P.376-380

299. Murry CM . Soonpaa M., Reinecke H. eLal. Haematopoietic stem cells do not trans-different/ate into cardiac myocytes in n>y ocanlial iniaretsV/ Nature- 2004. N428 p 664-668

300. Nakatake Y., Hoshikawa M„ Asaki Т., Kassai Y, Itoh N. Identification of a novel fibroblast growth factor, FGF-22, preferentially expressed in the inner root sheath of the hair follicle ft Biochim, Biophys. Acta.- 200L,N1S17.-P 460-463

301. Nanchahal J. Dover R., Otto W,R, Allogeneic skin substitutes applied to bums patients // Bums 2002 ,- Vol- 28., N3,- P254-257

302. Nanrvey L B., King LE Jr. Epidermal growth factor and transforming growth factor-a. In: Claric R.AF, ed The molecular and cellular biology of wound repair U 2nd ed. New York: Plenum Press. 1996,-P 171-194.

303. Nehrer S., Breinan H. A, et al. Canine chondrocytes seeded in type I and type II collagen implants investigated in vitro U J. B.M.R, (Appl- Biomater),- 1997. N38.-P 95-104.

304. Ng K.W,. Khor H.L Hutmacher D.W, In vitro charactenyation of natural and synthetic dermal matrices cultured with human dermal fibroblasts, ft Biomatcrials -2004VbL25. N 14.-P2807-2818.

305. Ninnemann J. Immunologic deffence against infection: alteration following thermal injury//J- Bum Caie Rehabil. 1982.- N3.- P 355.

306. NissenN.N., Poberinj PJ., Koch A.E, Volin M.V, Gamelli RJ., DiPietro LA Vascular endothelial growth factor mediates angiogenic activity during die proliferative phase of wound healing ft Am I Pathol. -1998,- N152.-P 1445-1452.

307. Nygrcn J., Jovinge S., Breitbach M. ctal Bone-nwrrow-derived hematopoietic cells generate card io myocytes at a low frequency through cell fusion, but not trans-difFer-entiationj'/ Nature Medicine. 2004, N 105 -R 494-501.

308. O'Connor N.E. Multrtkcn JB, Banks-Shlegel S el al- Grafting of bums with cultured epithelium prepared from autologous epidermal cells H Lancet.- 1981 Ш.1., N8210 - P.75-7B,

309. Odorieo Y.S. Kanlman D.S., Thomson Y.A. Multilincage differentiation from human ESC line// Stem Cells- 2001, N 19.-P 193-204.

310. Ohya Y, Matsunami H-, Yamabe E,, Ouchi T. Cell attachment and growth on films prepared from poly (depsipeptide-eo-lactide) having various functional groups И J Biomed Mater Res 2003.- \6\. 65, Nl -P 79-88

311. Orlic D., Kajstura J., Chimenti S. Jakonjuk J., Anderson S.M., Si B.r Pickel J,, McKey R„ Nadal-Ginard В. Bodine DM., Jere A,, and Anversa P Bone marrow cells regenerate mfarctod myocardium.// Nature,- 2001,N 410.- P. 701-705.

312. Ortega S., littuim Tsang S.H., Ehrlich M., Basilica C. Neuronal defects and delayed wound healing in mice tacking fibroblast growth factor 2. // Proc Natl. Acad. Sci USA 1998, N95 - P 5672-5677

313. Oshima H., Inouc H., Matsuzaki K,, Tanabe M. Kumagai N. Permanent restoration of human skin treated with cultured epithelium grafting wound healing by stem cell based tissue engineering // Hum Cell.- 2002 - W 15. Nl-P 118-128.

314. Owen M. Friedenstein A. Stromal stem cells: marrow-derived osteogenic precursors Celts and Molecular Biology of vertebrate Hard Tissues, Ciba Found Symp,-1988, N136,- P 42-60.

315. Pandit A.S., Feldtnun D.S., Caulfield J. In vivo wound healing response to a modified degradable fibrin scaffold // J Biomater 1998 .- Vol, 12., N3.- P 222-236.

316. Papini RP; Wilson /VP. Steer JA, McGrouther DA; Parkhouse N. Wound management in bum centres in the United Kingdom U J, Surg.- 1995.- Ш82,Ж-Р. 505-509.

317. Papini S, Cecchetti D, Casnpant D, Fitzgerald W, Grivd J.C, Chen S„ Margolis L, Revoltella R.P Isolation and clonal analysis of human epidermal keratinocyte stem cells in long-term culture // Stem Cells. 2003. - Vbl.2l, N4-P.48I-94

318. Perin E,C-r GengYJ, Willerson J,T. Adult stem cell therapy in perspective. // Circulation- 2003, N107. R 935-938.

319. Peteiro-Cartelle FJ-, Alvarez-Jorge A. Dynamic profiles of inierleukin-6 and the soluble fomi of CD25 in burned parents ff Bums.-1999- \Ы 25.- P. 487-491.

320. Phillips TJ. Culttffed epidermal allografts a temporary' or permanent solution / / Transplantation. -1991.- Vbl-51, N5.- P937-94I.

321. Phinney D. G, Ropen G, Righter W, Webster S, Tremain N„ Prockop D-) Donor variation in the growth propierties and osteogenic potential of human marrow stromal cells J/ J. Cell biochem.-1999, N 75.-P. 424-436.

322. Pilcher B.K., Dumin J.A., Sudbeck BD, Krone SJ&, Welgus H.G., Parks W.C. The activity of collagenase-1 is required for keralinocyte migration on a type I collagen matrix//J Cell. Biol. 1997, N137,- P 1445-1457

323. Pittenger M.F and Marshak D.R Mesenchymal stem cells of human adult bone marrow Marshak D,R„ Gardner DK, and Gottlieb, D. eds. (Cold Spring Harbor. New York: Cold Spring Harbor // Laboratory Press 200L-P,349-374.

324. Pensler J M, Hemdon DX, Ptak H , Bonds E, Rutan T.C, Desai M-H, Abston S Fungal sepsis: an increasing problem in major thermal injuries Bum Care, 7: 488-491, 1986.

325. Pittenger M.F, Mackay AM, Beck S-C, Jaiswal JtK, Douglas R, Mosea J.D., Moorman MA, Stmonctti D W„ Craig S., Marshak D.R. Multilineage potential of adult human mesenchymal stem cells H Science.-1999, N284.-P. 143-147.

326. Poofe T, Y, Finkebtcin EB, and Cox CM. The role of FGF and VEGF in angto-blast induction and migration during vascular development // Dev. Dyn.- 2001, N220-P, 1-17.

327. Price R.D., Das-Gupta V., Frame J.D., Navsaria H.A. A study to evaluate primary dressings for die application of cultured keratinocytes 11 Br. J, Plasi Surg. 2001 .-VqL 54, N8 P- 687-6%

328. Price RD, Das-Gupta V., Hams PA„ Leigh LM, Navsaria H.A. The role of allogenic fibroblasts in an acute wound healing model // Plast Rcconstr Surg, 2004. -Vblll3,N6.-P 1719-1729

329. Prockop D.J. Marrow stromal cells as stem celts for nonhematopoietic tissues // Science. 1997, N 276,- P. 71-74.

330. Pniitt В A., Jr,, McManus AT, Kim S. H,, Goodwin С W Bum wound infections: Current status It World J. Surg, -1998, N. 22. P. 135-145.

331. Pruitt В .A., J .MeManus AT, The changing epidemiology of infection in bum patients // World J Surg -1992 Ж16, N t P 57-67

332. Qaryoute S„ Mirdad I, Hamail AA. Usage of autograft and allograft skin in treatment of bums in children- //Bums 2001; 27; 6; 599-602

333. Reese J.S. Кос O.N., Geson S.L. Human mesenchymal stem cells provide stromal support for efficient CD34+ transduction. J. Hematother Stem Cell- Res. I999.N8: 5I5-52X

334. Rcimann P.M., Mason P.D, Plasmaphresis techniques and complications // intensive Care Mod 1990. - \bl.l6, - P.3-10.

335. Remenanayder J, et.al. Progress in Moscow children's in bum unit: a joint Russian-American collaboration if Bums -1995,- Ш 21, N 5 P. 323-335.

336. Reyes M, Lund Т. LenvikT, ct al. Purification and ex vivo expansion of postnatal human marrow mesodermal progenitor ceils Л Blood 2001, N98.-R 2615-2625.

337. Rheinwald J.G., Green H, Serial cultivation of stvains of human epidermal keratinocytes- the formation of keratinizing colonies from single cells tt Cells, 1975, -N6,-P. 331-344

338. Richards M. Hutbregtse B.A. Caplan A.l„ Goulet J A., Goldstein S,A. Marrow-derived progenitor cell injections enhance new bone formation during distraction,// J. Orthop Res, 1999, N17,- P 900-908.

339. Riches D.W.H- Macrophage involvement in wound repair, remodeling, and fibrosis In; Clark RJ\,F, cd- The molecular and cellular biology of wound repair 2nd cd. // New York: Plenum Press. 1996,- P 95-141

340. Robert L, Sheridan M.D. Infections in critically ill pediatric bum patients Semin . in Ped. !1 Inf. Dis January- 2000,. N 11P. 2301-2306.

341. Santin M., Motta A- et al. Changes in serum conditioning profiles of glutaralde-hyde-crosslinkcd collagen sponges after their treatment with calcification inhibitors // J. В M R.- 1998. N40 P. 434-441

342. Satoh R. Kishi К , Тапака T, Kubola Y. Nakajima T, Akasaka Y. Ishii T. Transplanted mesenchymal stem cells are effective for skin regeneration in acute cutaneous wounds // Cell Transplant- 2004,- Vol 13., N4,- P 405-112,

343. Schiro JA-, Chan BMC. Roswit WX, et al, Integrm a^ (VLA-2) mediates reorganization and contraction of collagen matrices by human ceils tf Cell. 1991.- N67-P. 403-410.

344. Schleiffenbaum В., Fehr J The tumor necrosis factor receptor and human neutrophil function. Deactivation and cross-deactivation of tumor necrosis factor-induced neutrophil responses by receptor down-regulation H J. Clin. Invest.- 1990, N t -P 184-195,

345. Scott PG, Tredgct E E Skin construct or biological bandage^ ''lancet 2005; 366: 788-789.

346. Seshi В., Kumar S„ Selers D, Human bone marrow stromal cell: coexpression of markers specific for multiple mesenchymal cell lineages it Btood cells. Molecules and Diseases 2000 - Vbl.26, N3.-P 234-246.

347. Shaked A-, Csete M-E., Drazan K.E et al. Adenovirus -mediated gene transfer m the transplant setting. II. Successful expression of transferred cDNA in syngenic liver grafts // Transplantation.- 1994,- Vol. 57. N10.- P 1508-1511.

348. Shapiro F., Koide S„ Glimcher MX Cell origin and differentiation in the repair of full-thickness defects of articular cartilage // J. Bone Joint Surg, Am.- 1993, N75 -P. 532-553.

349. Shehab Eldin S.A„ Aref S.E, Salama O.S. Assessment of certain neutrophil receptors, opsonophagocytosis and soluble intercellular adgesion molecule (ICAM-1) following thermal injury // Bums.- 1999,- Vol 25.N 5.- P. 395-401.

350. Shehab Eldin S A. Aref S£. Salama O S. Shouman O M. Scrum cytokines following diemial injury //Ann. of Bums and Fire Disasters.- 1996.- Vol IX, N.I.-P. 18-22.

351. Sheridan R.L., Morgan JR., Cusick J.L. Petras L.M., Lydon M M, Tompkins R,G, Initial expcnence with a composite autologous skin substitute HBums 2001.- Vol.27., N5. -P.421-4.

352. Shi С., Cheng X. Su Y„ Mai Y., Qu J., Lou S, Ran X, Xu H-, Luo С Transplantation of dermal multipotcnl cells promotes survival and wound healing in rats with combined radiation and wound injury I! Radial Res -2004\Ш62, N1 -P 56-63

353. Shi Q. Rafii S.f Wu МБ., Wijelath E.S, YuC, IshidaA, Fujita Y, Kothari S, Molile R., Sauvage LR, Moore M.A-, Storb R F and Hammond W.P Evidence for circulating bone marrow-derived endothelial cells // Blood.- 1998, N92.- P. 362-367.

354. Shoufeng Yang, Kah-Fai Leong, Zhaohui Du. Chee-Kai Chua. The design of scafFolds for use in tissue engineering. Part II Rapid prototyping techniques // Tissue Engineering, 2002. - Vol. 8, N 1, - P. 10- II.

355. Singer A.J, Clark R.A.F, Cutaneous wound healing //New Engl J. Med 1999 - \fcl.341,N10.- P 738-746.

356. Slack J.M. Stem cells in epithelial tissues.// Science 2000. N 267.- P. 1431-1433.

357. Soonpaa MR, Koh G.Y., Klug G.M., Field L 1 Formation of nascent intercalated disks between grafted fetal card «myocytes and host myocardium !l Scince 1994-Ш 263,- P. 98-101.

358. Staucr BE, Komowski R. Stem cell Питару in perspective-'1/ Ciculation. 2003. N107,- P. 929-934,

359. Stock UA, Vacanti J.P. Tissue engineering: current state and prospects // Ann. Rev Med. 2001, N52- - P- 443-451,

360. SloJJ S, Muller G, Kurimofo M. Production of IL-JS (JFNgamma-if»ducing factor) messenger RNA and functional protein by munne keiatinotytes //J Immunol.-1997, N159,-P. 298-302.

361. Stoof TJ, Boorsma D M , NrckoloflTB J. Keratinocytes and immunological cytokines In; Wan F,M, ed The Keratinocyte Handbook- Cambridge: Cambridge University Press.- I994.-P.365-399.

362. Stripeeke R., del Carmen Vilhcres M , Skelton DC. et al. Immune response Ю green fluorescent protein: implications for gene therapyV/ Gene Therapy. 1999. V.6. P. 1305-1312

363. Surhtankar A,Y„ Sengupta S.R. Cellular immunity in bums U Bums 1988,-\Ш. N2,- P. 168-171.

364. Svensjo Т., Yao F., Pomahac В., Eriksson E. Autologous keratinocyte suspensions accelerate epidermal wound healing in pigs H J. Surg Res 2001.- Vol.99, N2. -P. 211-221.

365. Svensjo 'Г., Yao F., Pomahac В., Winkler Т., Eriksson E, Cultured autologous fibroblasts augment epidermal repair It Transplantation 2002.-Vol ,73. N7 - P 1033-1041.

366. Temple S. and Alvarcs-Buylla A. Stem cells in the adult mammalian central nervous system, '7 Сип, OpLn. Neurobio Pathol 1999, N 9. - P. 135-141

367. Teodonayk-lnjeyan J A, Sparkcs B.G. LaUni S. et aJ. EL-2 regulation of soluble 1L-2 receptor levels following thermal injury t! Clin. Exp. Immunol. 1992 .-\fcL90,N I - P. 36-42

368. Tcramoto S.,Ito H.,Ouchi Y Variables affecting the transduction efficiency of adenovirus vectors in bovine aortic endothelial cells И Thromb. Res 1999.■ Vol 93, NIR35-42.

369. To LB , Hay lock D.H-, Simmons PJ., Juttner C.A. The biology and clinical used of blood stem cells U Blood.- 1997, N89,- P. 2233-2258

370. Tomita S., Li R.K. Jia Z.Q- et al Bone marrow cells transplanted in a cardiac scar induced cardiomyogencsis and angtogenesis and improved damaged heart function / / Circulation. 1999. - \bl. 100. N (suppl I). - P. 191-192.

371. Viessis A-, Bartos D, Muller P. Role of reactive 02 in phagocyte induced hyper-metabolism and pulmonary injury // J. Appi Physiol. 1995, - Ybl.78. N1. -P112-116.

372. Wang HJ, Pieper J, Schotel R, van Blittmwijk CA-, Lamme EN. Stimulation of sktn repair is dependent on fibroblast source and presence of extracellular matrix // Tissue Eng. 2004. - Vol. 10, N7-8. -P 1054*64.

373. Wang T. W, Huang YC, Sun IS„ Lin F.H. Organotypic kcrotinocyte-fibroblast cocultures on a bi layer gelatin scaffold as a model of skin equivalent // Biomcd Sci Instnim. 2003, N39. - P.523-528,

374. Washerman D., Schlotterer M., Toulon A. el al. Preliminaiy clinical studies of a biological skin equivalent in burned patients // Bums. 1988. - VW. 14, N 4. - P.326-330.

375. Weadock K, OLson R.M., and Silver F.H, Evaluation of collagen crosslinking techniques t! Biomat. Med Dev., An. Org -1983-84 VfcU 1,N4. - P. 293-318.

376. Weber J.M, Shendan R.L. Pastemack M S , Tompkins R.G Nosocomial infections in pediatric patients with bums// Am I Infect. Control, 1997, №25. - P 195-201.

377. Wcissman IX- Stem cells: uniis of development, units of regeneration, and units in evolution H Cell, 2000, N 100.-P. 157-168.

378. Welch M P, Odland G.F., Clark R.A.F Temporal relationships ofF-actin bundle formation, collagen and fibronectin matrix assembly, and fibroncetin receptor expression to wound contraction// J. Cell. Biol -1990, N110. P 133-145.

379. Werner S , Peters K G , Longaker MX, Fuller-Pace F., Banda MJ, Williams L.T. Large induction of keratitwcyte growth factor expression in the dermis during wound healing// Proc. Natl- Acad. Sci. USA. 1992. N89,- P. 6S96-6900.

380. Wemer S., Smola H., Liao X, The lunction of KGF in morphogenesis of epithelium and icepithelialization of wounds // Science 1994, N266. P. 819-822,

381. Wilkinson R-A-, Fishman J,A- Effect of thermal injury with pscudomonas aeruginosa infection on pulmonary' and systemic bacterial clearance // J Trauma.- 1999,-\bi47, N 5,-P 912-917,

382. Williams JT, Southerland S.S., Souza J , Calcutt A.F. Cartledge R.G. Cells isolated from adult human skeletal muscle capable of differentiating into multiple mesodermal phenotypes //Am. Surg- 1999, N65,- P. 22-26.

383. Wisser D., StefTes J Skin replacement with a collagen based dermal substitute, autologous kcratinocytes and fibroblasts in burn trauma // Burns. 2003, N29. P. 375-380

384. Wood F.M., Stoner MX. The use of cultured epilhelal autograft in pediatric bum management. Abstracts book of hirst tntemtional Congress /Current Concepts in Pediatric Bum Care.- 1996.- P. 88-89

385. Woodley D.T., Yamauchi M-, Wyrm КС , Mechanic G„ Bnggaman R.A, Collagen telopeptides (cross-linking sites) play a role in collagen gel lattice contraction // J Invest Dermatol. 1991, N97. - P5SO-585.

386. Workman S.A., Lovia M.F. T -lymphocyte policlonal prolifiration effect of stress and stress response style on medical students taking national examination // Clin. Immunol Immunopathol- 1987 \bl.43., NJ. -P 308

387. Xie W.G,, Tan H,, Zhao C.L. Wang H. The histological changes and the revascularization process in the grafted derma. substitutes. //Zhonghua Shao Shang Za Zhi. 2005. - Vbl.21, N1 - R37-39.

388. Xu J , Clark R.A.F. Extracellular matrix alters PDGF regulation of fibroblast integrins //J, Cell Biol- 1996. N132. R239-249.

389. Xu L.H., Jiao X.Y-, Л Z,L, Transplantation of cultured human keratinocyte on collagen sponge. H Zhongguo Xiu Fu Chong Jian Wai Ke Za Zhi,- 2001.- Vol,IS, N2.-PI 18-121,

390. Yamada Y„ Endo C. Inada К et al, Tumor necrosis factor- and TMF receptor I, II levels in patients with severe bums // Bums,- 2000. N. 26.- P 239- 244.

391. Yamazakt M., Nakajima F, Ogasawara A-, Moriga H., Majeska R.J., Einhom ТА. Spatial and distribution of CD44 and asteopontin in fracture callus. //J. Bone Joint Surg, Br,-1999, N81. P.508-515.

392. Yau TM-, Tomtta SH., Weisel RD. etal, Beneficial effect of autologous cell transplantation on infkreted heart function: comparison between bone marrow sromal cells and heart cells, //Aim, Thorac Surg.- 2003, N75. P. 169,177.

393. Yeh F.L., Lin W.L., Shen H.D., Fang RJi Changes in circulating levels of interleukin 6 in bumed patients//Bums- 1999., N.25,- PI31-136.

394. Youn Yeo-Kyu., La Londe Gi., Dcmling R, The role of mediators in the response to thermal injury // World J. Surg.-1992, N 16,- P 30-36.

395. YinA.H, Miraglia S„ Zanjani E.D , Almeida-Porada G. Ogawa M., Leary A.G., Olweus J, Kearney J., Buck D.W. AC 133, a novel marker for human hematopoietic stem and progenitor cells// Blood,- 1997.-\tol. 90, N 12. P.5002-5012

396. Young D.C., Kingsley S.D., Ryan KJV., Dutko FJ. Selective inactivation of eucariotic beta-gabctosidase in assays for inhibitors of HIV-1 TAT using bacterial bcta-galactosidase as a reporter enzyme // Analytical Biochemistry,- 1993 V.2I5 N1.-P24-30,

397. Young M.F-, Gchron Robey P Receptor tyrosine kinase expression in human bom mammy stromal cells 111. Cell Physiol.-1998. N177.- P.426-438.

398. Zhu G.R, Zhou X.Y., Lu H., Zhou J, W,, Li A.P, Xu W„ Li J.Y., Wang С Y Human bane marrow mesenchymal stem cells express multiple hematopoietic growth factors IIZhongguoShiYanXueYeXueZaZhi.-2003.-Vol II.N2-P 115-119

399. Zuk P. A,, Min Zhu. Mizuno H. et. al Multilincagc cells from human adipose tissue: implications for cell-based therapies it Tissue Engineering. 2001,- Vol.7, N2. -R211-228.