Теоретическое обоснование и приемы использования методов биотехнологии в селекции сахарной свеклы тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 06.01.05, доктор сельскохозяйственных наук Подвигина, Ольга Анатольевна

• Подвигина, Ольга Анатольевна
• доктор сельскохозяйственных наук
• 2003

Оглавление диссертации доктор сельскохозяйственных наук Подвигина, Ольга Анатольевна

ВВЕДЕНИЕ.

1. МАТЕРИАЛ, МЕТОДИКА И УСЛОВИЯ ПРОВЕДЕНИЯ ОПЫТОВ.

2. ИНДУЦИРОВАНИЕ ГАПЛОИДИИ ИЗ НЕОПЛОДОТВО

РЕННЫХ СЕМЯПОЧЕК САХАРНОЙ СВЕКЛЫ В УСЛОВИЯХ

IN VITRO.

2.1. Реакция генотипа на индукцию гаплоидии.

2.2. Влияние стадий развития зародышевого мешка и расположения экспланта на кусте свеклы.

2.3. Зависимость регенерационной способности неоплод отворенных семяпочек от сроков введения и условий культивирования

2.4. Влияние состава питательной среды.

2.5. Воздействие физическими факторами на экспланты.

3. ГАПЛОИДИЯ КАК УСКОРЕННЫЙ МЕТОД СОЗДАНИЯ ГОМОЗИГОТНЫХ ЛИНИЙ САХАРНОЙ СВЕКЛЫ.

3.1. Формирование гаплоидных линий in vitro.

3.2. Диплоидизация и создание реституционных линий.

3.3. Метод создания гомозиготных линий сахарной свеклы на основе индуцирования гаплоидии.

4. ЭМБРИОКУЛЬТУРА В СИСТЕМЕ IN VITRO.

4.1. Влияние возраста эксплан^та на процесс регенерации в условиях in vitro.

4.2. Влияние условий культивирования на жизнеспособность зародышей.

4.3. Возможность применения эмбриокультуры для получения межвидовых гибридов и апомиктичных форм.

5. СОХРАНЕНИЕ СЕЛЕКЦИОННОГО МАТЕРИАЛА В УСЛОВИЯХ IN VITRO.

5.1. Влияние состава питательной среды при длительном беспересадочном культивировании.

5.2. Роль химических ингибиторов при депонировании микроклонов сахарной свеклы.

5.3. Гистохимическое изучение микроклонов свеклы при длительном беспересадочном культивировании.

5.4. Рекультивирование растений сахарной свеклы после депонирования.

6. ОСОБЕННОСТИ МОРФОГЕНЕТИЧЕСКОГО РАЗВИТИЯ САХАРНОЙ СВЕКЛЫ.

6.1. Пути и способы воспроизведения растений сахарной свеклы в условиях in situ и in vivo.

6.2. Цитоэмбриологические особенности эмбрио- и эмбриоидо

Щ генеза сахарной свеклы в условиях in vitro.

6.3. Органообразовательные процессы в условиях in vitro.

6.4. Анатомо-морфологическое развитие растений сахарной свеклы в условиях in situ и in vitro.

ВЫВОДЫ.

РЕКОМЕНДАЦИИ.

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Теоретическое обоснование и приемы использования методов биотехнологии в селекции сахарной свеклы»

Актуальность проблемы. Одним из главных путей дальнейшего повышения продуктивности сахарной свеклы и производства сахара - создание и внедрение высокопродуктивных сортов и гибридов свеклы. Задачи селекции сахарной свеклы за последнее время сильно усложнились в связи с повышением требований производства к ряду признаков и с переходом к использованию регулируемого гетерозиса. В настоящее время необходимы прогрессивные научные решения, которые могли бы позволить максимально использовать эффект гетерозиса и создавать гибриды с высокой продуктивностью и комплексом полезных признаков.

Обычно селекционеры в своей работе применяют традиционные методы селекции - гибридизацию, отборы, полиплоидию, привлечение форм с ци-топлазмотической мужской стерильностью (ЦМС). Данные методы очень

Ч - » ' >' \ 1 . ■ трудоемки, затратны и ведут, как правило, к сужению генетической изменчи-Щ> вости и уменьшению многообразия исходного генетического материала

Кузьмин, Шевченко, Павлюк, 1995). Поэтому проблема получения нового исходного материала для селекции становится актуальной.

Многолетняя же практика показала, что основным направлением в селекции на гетерозис является получение гибридных материалов на основе использования форм с ЦМС. Однако гетерозисная селекция раздельноплод-* ной сахарной свеклы с использованием ЦМС требует глубоких теоретических и практических разработок по созданию, изучению исходного материала разных форм, поддержанию материалов прежде всего по хозяйственно-ценным признакам, таким как масса корнеплодов и их сахаристость, устойчивость к ^ болезням, скороспелость, качество семян и т.д.

Дальнейший прогресс в селекции сахарной свеклы требует усовершенt - ствования традиционных методов выведения гибридов, разработки прогрессивных способов создания компонентов скрещивания, их поддержания и улучшения в процессе репродуцирования. Для этого необходимы поиск и применение новых нетрадиционных подходов и методов, позволяющих выявлять все потенциальные возможности растительного организма и получать новые формы с искомыми и, с селекционной точки зрения, полезными признаками (Атанасов, 1993).

Данным направлением является биотехнология, представляющая собой ценное дополнение к ряду классических методов селекции и генетики. Применение методов биотехнологии не уменьшает значения методов селекционной практики, а наоборот, способствует ускорению и улучшению селекционного процесса путем расширения генетического спектра полученного исходного материала, оценки и отбора полезных комбинаций, что, в конечном счете, ведет к получению новых сортов с высокими биологическими и хозяйственными показателями.

Существующие методы культивирования изолированных клеток и тканей in vitro условно разделяются на две группы. Первая группа - это вспомогательные технологии, которые не подменяют обычную селекцию, а служат ей. К ним относятся: оплодотворение in vitro (преодоление прогамной несовместимости), культивирование семяпочек и гибридных зародышей (преодоление постгамной несовместимости), получение гаплоидов путем культивирования пыльников и микроспор, криосохранение изолированных клеток, тканей, органов, клональное микроразмножение отдаленных гибридов и другого материала. Вторая группа методов ведет к самостоятельному, независимому от традиционных методов селекции, получению новых форм и сортов растений: клеточная селекция с использованием каллусной ткани, соматическая гибридизация (слияние изолированных протопластов и получение неполовых гибридов), применение методов генной инженерии.

Из современных методов биотехнологии в растениеводстве интенсивно развиваются методы культуры клеток и тканей первой группы, а также генетическая инженерия. Во многих странах они достаточно широко используются в селекционно-генетических исследованиях как весьма эффективные. Более того, эти методы являются связующим звеном в экспериментах, проводимых на клеточном и молекулярном уровнях, а также на уровне целых растений.

Приемы биотехнологии и биоинженерии, основанные на данных молекулярной и клеточной биологии, позволяют установить эволюционную общность многих особенностей растительной клетки, моделировать уникальные генотипы и экспериментально исследовать феномен эпигенетической наследственности (Бутенко, 1999).

Все методы биотехнологии базируются на принципах управления системами размножения растений, поскольку именно через размножение реализуется неисчерпаемость биологических ресурсов, эволюция, филогенетическое бессмертие, отбор и становление новых признаков, в том числе желательных для человека (Тырнов, 1998).

В плане практического применения методы биотехнологии позволяют решать задачи получения новых важных форм и линий сельскохозяйственных растений, используемых в селекции на устойчивость, продуктивность и качество, размножения ценных генотипов, оздоровление растений от вирусов и т.д.

Наиболее изученным и широко применяемым методом биотехнологии является микроклональное размножение. Во многих странах мира биоиндустрия микроразмножения поставлена на поточную промышленную основу и представлена десятками активно функционирующих предприятий. Например, во Франции 94% всей продукции цветочных культур получают методом культуры изолированных тканей. В США более 100 комерческих предприятий получают посадочный материал декоративных, овощных, полевых, плодовых и лесных культур методом клонального микроразмножения. Ведущим производителем оздоровленного посадочного материала цветочных растений является Голландия, а подвоев яблони, сливы, персика - Италия (до 250-500 тыс. ежегодно). В нашей стране также ведутся интенсивные работы по оздоровлению и размножению многих декоративных, плодовых, овощных, древесных и других культур.

Для сахарной свеклы метод микроклонального размножения достаточно хорошо разработан и используется в селекционной практике (Амерханова, Рахимбаев, 1986; Славова, 1988; Ильенко, 1989; Знаменская, Жужжалова, 1989).

Широкое использование другого метода биотехнологии - получение гаплоидов, нашло в связи с быстротой получения гомозиготного материала. Практическая и теоретическая ценность данного метода состоит в том, что гаплоиды можно использовать для получения чистых линий, межвидовых гибридов, линий-восстановителей ЦМС, создания анеуплоидных форм, выявления рецессивных мутаций, проведения трансформации, проведения геномного анализа (картирование хромосом, данные о эволюции и сцеплении генов и т.д. (Атанасов, 1993).

При помощи метода гаплоидии в Канаде получен сорт ячменя Минго, являющися наиболее продуктивным сортом в Онтарио. В Китае получены высокоурожайные (80 ц/га риса) и устойчивые сорта пшеницы и риса, занимающие в 1999 году 170000 га (рис) и 70000 га (пшеница). В России (Одесса, Краснодар, Поволжье) созданы сорта ячменя, тритикале, табака, риса (Бутен-ко, 1999).

Исследования отдельных вопросов по индуцированию гаплоидии методом культуры неоплод отворенных семяпочек (Ильенко, Белоус, 1987; Славова, Рафаилова, 1991; Hosemans, Bossoutrot, 1983,1985; Van Geyt, Speckmann,

Halluin, 1987; Gibson Margaret, 1987; Lux, Herrmann, Claudia, 1990; Seman, Farago, 1990) проводились независимо друг от друга и не дали полного представления о преимуществах метода при получении гомозиготных линий сахарной свеклы.

Вместе с тем полученные в процессе исследований гомозиготные растения сахарной свеклы проходят генетико-селекционную оценку и включены в селекционные программы.

Сочетание методов культивирования зародышей, семяпочек и оплодотворения in vitro открывает широкие возможности для получения ценных комбинаций признаков при внутри- и межвидовой гибридизации. Данные методы способствуют преодолению несовместимости скрещиваемого материала, покоя семян, получению новых форм растений при отдаленной гибридизации и клеточной селекции. Метод эмбриокулыуры позволяет проводить исследования по цитоэмбриологии, генетике, физиологии растений. С помощью культуры изолированных зародышей получены межвидовые гибриды различных бобовых культур (Mallikaijuna Nalini, 1999), межвидовые гибриды ячменя и ржи (Aviv, Grosser, 1984), пшеницы и элимуса (Mujeeb-Kazi, Rodrigues, 1981), пшеницы с рожью, эгилопсом (Прилюк, 1984) и другие.

На сахарной свекле аналогичных работ нет.

Сохранение разнообразных коллекций зародышевой плазмы и возможность ее использования в любое время для теоретических и практических целей предоставляет метод криосохранения (нахождение меристематических клеток и тканей в жидком азоте при температуре -196° С). В настоящее время разработаны условия криосохранения для культивируемых клеток более 30 видов, каллусных культур около (10 видов), изолированных протопластов (8 видов), сохранения меристем (25 видов) и кончиков стебля (13 видов) (Сельскохозяйственная биотехнология, 1998).

Литературные данные о длительном сохранении микроклонов сахарной свеклы в условиях in vitro очень ограничены и свидетельствуют о недостаточной изученности данного вопроса. Имеются лишь сведения о субкультивировании растений свеклы при пониженных температурах в Нидерландах (Miedema, 1982) и в Германии при добавлении б среду пактобутразола (Lux Horst et.al., 1991). Культура сохранялась в течение 12-24 месяцев.

В последние годы значительное развитие получил метод генной инженерии, представляющий из себя дальнейшее развитие классических методов генетики, а также их ценное дополнение. Для сельскохозяйственного производства генная инженерия призвана создавать новые сорта растений, устойчивые к болезням, гербицидам, насекомым, стрессовым воздействиям. Возможности переноса и экспрессии в растительной клетке различных генов, ответственных за различные стороны метаболизма позволили создать трансгенные растения картофеля с повышенным содержанием глюкозы и фруктозы (Rober et.al., 1996), рапса с повышенным содержанием белка и жирных кислот (Vandekerckhove et.al., 1989), табака, устойчивые к болезням (Anzai, Yoneyama, Yamaguchi, 1989), формы растений, устойчивые к гербицидам (Comai, Sen, Stalker, 1983) и т.д. Получены формы сахарной свеклы, устойчивые к гербицидам (Левенко и др., 1993).

Однако возможности применения известных биотехнологических методов весьма ограничены, т.к. являются узкоспецифичными не только для различных видов растений, но даже для разных этапов культивирования экс-плантов одного вида. Поэтому необходима индивидуальная разработка специфических условий различных методов биотехнологии, позволяющих создавать новый и сохранять ценный селекционный материал в культуре изолированных тканей и органов такой важной культуры, как сахарная свекла.

В связи с этим возникает потребность теоретического обоснования воспроизведения растений в культуре in vitro с учетом тотипотентности клеток сахарной свеклы.

Поэтому наиболее актуальным является разработка режимов индукции гаплоидных и диплоидных регенерантов при культивировании неоплодотво-ренных семяпочек и зародышей, условий культивирования полученных гаплоидных, реституционных диплоидных и других новых материалов, режимов длительного беспересадочного культивирования микроклонов сахарной свеклы.

Методы гаплоидии, эмбриокультуры и длительного беспересадочного культивирования и их сочетание с традиционными методами селекции позволят повысить репродукционный потенциал системы размножения сахарной свеклы, получать новый исходный материал, обогощенный в генетическом отношении, длительно сохранять ценный генофонд в условиях in vitro и тем самым значительно сокращать селекционный прцесс, а следовательно и период создания новых сортов и гибридов.

Это определяет актуальность и необходимость проведения данной работы.

Цель и задачи исследований. Цель настоящей работы заключалась в разработке биотехнологических методов индукции и сохранения новых форм сахарной свеклы и установлении особенностей морфогенетического развития микроклонов в условиях in vitro.

В связи с этим были поставлены следующие задачи:

1 .Определить влияние экзогенных и эндогенных факторов на индукцию гаплоидных регенерантов сахарной свеклы из неоплодотворенных семяпочек.

2. Разработать оптимальные условия получения гаплоидных и реституционных диплоидных линий свеклы в условиях in vitro.

3. Установить лимитирующие факторы воспроизводства растений при культивировании незрелых и зрелых зародышей сахарной свеклы.

4. Разработать параметры длительного беспересадочного культивирования микроклонов сахарной свеклы.

5.Определить влияние ингибирующих веществ на морфофизиологиче-ское развитие клонов в период депонирования и после него.

6.Изучить пути морфогенеза растений свеклы в условиях in situ и in vitro.

Научная новизна. Впервые установлено влияние эндо- и экзогенных воздействий на индукцию гаплоидии in vitro из неоплодотворенных семяпоI чек. Экспериментально показано, что наибольшей склонностью к индукции гаплоидии обладают материалы от самоопыления и гибридного происхождения. Выявлена положительная корреляция между регенерационной способностью неоплодотворенных семяпочек сахарной свеклы в условиях in vitro и количественным выражением аномального развития мужских гамет, что может служить маркерным признаком при отборе донорского материала. Получены новые даные о взаимосвязи стадий развития зародышевого мешка с особенностями развития микрогаметофита, что можно использовать при от/ боре эксплантов с наибольшей склонностью к индукции гаплоидии. Показано стимулирующее действие рентгеновского облучения и пониженных температур на формирование гаплоидных структур из неоплодотворенных семяпочек свеклы. Получены оригинальные данные о влиянии физиологически активных веществ по индуцированию адвентивных побегов на гаплоидных проростках, расширяющие существующие представления о значении гормонов при культивировании растений в условиях in vitro. Впервые разработана последовательность чередования питательных сред на этапах стабилизации, микроразмножения гаплоидных и автодиплоидных линий сахарной свеклы. Установлен эффективный режим колхицинирования гаплоидных растений свеклы в условиях in vitro.

Впервые определены методические подходы эмбриокультуры незрелых зародышей сахарной свеклы, включающие оптимальные стадии развития эксплантов, состав питательной среды и температурно-световой режим культивирования.

Модифицирован состав питательной среды Гамборга , основанный на изменении осмотического, углеводного уровня и добавлении ингибирующих веществ, для беспересадочного культивирования микроклонов сахарной свеклы. Впервые показаны морфологические и биохимические изменения клеточных структур растений при длительном субкультивировании на ингибирующих средах и дальнейшем их рекультивировании. Экспериментально доказана возможность увеличения продолжительности хранения меристемно-го материала свеклы в течение 12-18 месяцев беспересадочного культивирования на модифицированных средах.

Впервые выявлены и описаны этапы морфогенетического развития адвентивных почек, незрелых и гаплоидных зародышей в условиях in vitro. Изучены и представлены пути морфогенеза при воспроизведении растений сахарной свеклы в условиях in situ, in vivo и in vitro. Определены морфо-анатомические отличия растений свеклы, выращенные в условиях in situ и in vitro, выражающиеся в образовании структурных изменений клеток черешка и листа, проводящей системы и паренхимных тканей.

Практическая значимость и реализация результатов исследований. Разработанный метод получения гомозиготного материала методом индуцирования гаплоидии в условиях in vitro позволил создать и передать на Льговскую ОСС 12 реституционных линий сахарной свеклы, что подтверждает возможность его использования в практической селекции.

Показано, что культивирование незрелых зародышей может быть использовано для получения растений от несовместимых и межвидовых скрещиваний и восстановления длительно хранившегося в семенах селекционного материала. С помощью данного метода восстановлены, размножены и переданы селекционерам ВНИИСС 9 линий (семена урожая 1981 года).

Для создания коллекции генофонда сахарной свеклы разработан метод длительного беспересадочного культивирования микроклонов на модифицированных питательных средах, позволяющий в течение длительного периода сохранять ценные селекционные генотипы в условиях in vitro. Данным методом в течение 3-х лет сохранялись 28 селекционных номеров, а затем 12 из них были переданы селекционерам для дальнейшей работы.

Разработанные в процессе исследований методические подходы могут использоваться в различных областях биотехнологии, в учебных программах по биологии, цитологии, селекции в ВУЗах. Полученный в результате изучения новый исходный материал сахарной свеклы также может использоваться в дальнейших фундаментальных и прикладных исследованиях

На защиту выносятся следующие положения.

1. Экспериментальное обоснование воздействия эндогенных и стимуляции экзогенных факторов на регенерационную способность неоплодотво-ренных семяпочек сахарной свеклы в условиях in vitro для получения гаплоидов.

2.Процесс формирования гаплоидных, автодиплоидных линий зависит от гормональной нагрузки питательной среды и морфогенетического развития регенерантов.

3.Регенерационная способность незрелых и зрелых зародышей в условиях in vitro определяется генетипическими различиями донорского материала, условиями культивирования (гормональный и углеводный состав среды, температурно-световой режим), стадией дифференциации тканей незрелых зародышей.

4.Установленные воздействия модифицированного состава питательной среды на рост и развитие микроклонов сахарной свеклы при субкультивировании позволяют увеличивать беспересадочный период и сохранять в чистоте селекционный материал в виде меристемных коллекций в течение длительного времени (2-5 лет).

5.Регуляция морфобиохимических изменений в росте, развитии и жизнеспособности эксплантов в период депонирования и после него обеспечивают высокую выживаемость и способность к дальнейшему размножению микроклонов сахарной свеклы.

6. Система воспроизведения растений сахарной свеклы в условиях in situ, in vivo и in vitro.

Заключение диссертации по теме «Селекция и семеноводство», Подвигина, Ольга Анатольевна

224 ВЫВОДЫ

1 .Определено влияние эндогенных факторов на индукцию гаплоидных регенерантов. Установлено, что наилучшей регенерационной способностью обладают генотипы гибридного и линейного происхождения (в среднем 5,5 и 4,9%). Снижение выхода гаплоидов наблюдается у донорского материала сортов-популяций и форм с ЦМС - 2,0%. Генотипические особенности формирования женского гаметофита определяются взаимодействиями с аномалиями развития мужского, что является надежным маркерными признаками при отборе донорского материала. Показана положительная корреляция между количественным выражением аномального развития мужских гамет и регенерационной способностью неоплодотворенных семяпочек сахарной свеклы в условиях in vitro. Регенерационная способность неоплодотворенных семяпочек зависит от стадий развития макрогаметофита и расположения экс-планта на семенном растении. Частота формирования гаплоидов 4,5% отмечалась у семяпочек, содержащих 7 клеточный /8ядерный зародышевый мешок и расположенных на центральном побеге цветущего растения свеклы.

2.Установлено влияние экзогенных факторов на регенерационную способность неоплодотворенных семяпочек сахарной свеклы в культуре репродуктивных органов. Увеличение выхода гаплоидных регенерантов до 4,9% отмечается при эксплантации семяпочек с растений, выращенных в открытом грунте. Холодовая преобработка семяпочек, изолированных с растений, выращенных в летний период, в течение 3-х суток вызывает 4,21% индукции гаплоидов. Обработка пониженной температурой эксплантов с тепличных растений при экспозиции 2 суток стимулирует развитие до 6,15% регенерантов. Рентгеновское облучение донорского материала в дозе до 3000 рентген индуцирует регенерационную способность неоплодотворенных семяпочек до 5,3%.

3.Гормональный состав питательной среды определяет индуцирование гаплоидии в условиях in vitro. Наличие в среде 2 мг/л гиббереллина вызывает развитие гаплоидного зародыша путем прямой регенерации непосредственно из клеток зародышевого мешка. Добавление 6-БАП или кинетина в концентрации 0,1-0,3 мг/л стимулирует развитие каллусогенеза. Комплексное действие гиббереллина, 6-БАП, ИМК индуцирует формирование адвентивных побегов (вторичная регенерация) на структурно измененных гаплоидных проростках в количестве 6-8 растений на один первичный эксплант.

4.Разработаны элементы стабилизации гаплоидных форм в зависимости от морфологического развития регенерантов. Для нормально развитых регенерантов, полученных путем эмбриоидогенеза, этап стабилизации и микроразмножения заключается в чередовании сред: ростовая (Гк,Кн, 6-БАП по 0,2 мг/л) - безгормональная - ростовая. Для менее развитых адвентивных побегов необходимо сначала культивирование на безгормональной, потом на ростовой среде. Это позволяет добиваться 96% выживаемости гаплоидных регенерантов.

5.Формирование реституционных линий сахарной свеклы определяется режимами колхицинирования и стабилизации. Диплоидизация с добавлением 0,005% колхицина в питательную среду и культивирование на ней в течение 2 суток ведет к удвоению хромосом у 83,3% гаплоидных растений. Окончательная диплоидизация обеспечивается при культивировании автодиплоидов на питательной среде с 0,25 мг/л кинетина.

6.Разработан метод получения гомозиготного материала путем индукции гаплоидии из неоплодотворенных семяпочек сахарной свеклы, включающий следующие этапы: подбор донорского материала и введение в культуру; индуцирование гаплоидии; стабилизация и микроразмножение гаплоидов; диплоидизация и стабилизация реституционных диплоидов; микроразмножение нового исходного материала; корнеообразование in vitro и пересадка в грунт.

7.Разработаны основные параметры культивирования незрелых зародышей. Лимитирующими факторами, обеспечивающими наибольший уровень регенерации является 8-12-ти дневный возраст зародыша в период активной дифференциации тканей, соблюдение температурно-светового режима - темновые условия в течение 4-х недель при температуре +23-25 С и состав питательной среды - наличие 40 г/л сахарозы и физиологически активных веществ.

8.Модифицирован состав питательной среды В5 для проведения депонирования микроклонов сахарной свеклы в течение 12-18 месяцев. Замена в питательной среде сахарозы глюкозой (10 г/л) позволяет при 7-ми месячном замедленном росте растений к 12 месяцам культивирования сохранить 44% листового аппарата и 80% живых клонов. Увеличение количества агара (13 г/л), повышающее плотность среды, при росте микроклонов в течение года сохраняет 60% листьев и 90% регенерантов. Добавление в питательную среду ретарданта ССС (2,5 мг/л) и салициловой кислоты (0,2 мг/л) оказывают влияние на замедление роста микроклонов, их максимальный среднемесячный прирост не превышает 0,2 см, и выживаемость растений после 12 месяцев депонирования составляет 90-95%.

9.Присутствие в питательной среде ингибиторов роста снижают активность жизнено важных физиологических процессов (активность дыхательных ферментов, аскорбиновой кислоты), тем самым замедляя рост микроклонов. В тоже время ингибирующие вещества способствуют накоплению белков, крахмала, лигнина, увеличивающих жизнеспособность эксплантов при длительном субкультивировании.

10.Длительное беспересадочное культивирование микроклонов сахарной свеклы на средах, содержащих ингибирующие вещества, способствовало накоплению их в тканях растений. Активное последействие этих веществ проявлялось в начальный период рекультивирования материала в виде торможения роста, снижения активности пролиферации пазушных побегов, измельчении листовых пластинок в условиях in vitro и в период вегетации в грунте в удлинении головки корнеплода.

11. Процесс морфогенетического развития растений сахарной свеклы в условиях in situ, in vivo определяется прежде всего генотипическими особенностями материала и проявляется в существовании двух способов воспроизведения - полового и бесполого и двух типов размножения - семенного и вегетативного. Направления морфогенеза в данном случае наблюдаются следующие: при семенном половом - эмбриогенез, при семенном бесполом - эмбриоидогенез, при вегетативном - гемморизогенез.

12. Морфогенетическое развитие эксплантов сахарной свеклы в уелоч виях in vitro определяется гормональным комплексом питательной среды и происходит путем: эмбриогенеза (культура незрелых зародышей), эмбриоидогенеза (культура неоплодотворенных семяпочек при индуцировании гаплоидии), органогенеза: 1 .геммогенеза (формирование адвентивных побегов на каллусе, черешке листа, гипокотиле регенеранта), 2. ризогенеза (образование корней на регенеранте и/или каллусе), 3. гемморизогенеза (формирование проростка с корнем на каллусе или сегменте растения).

228

РЕКОМЕНДАЦИИ ДЛЯ ПРАКТИЧЕСКОГО ПРИМЕНЕНИЯ

1. Разработанный метод получения гомозиготного материала сахарной свеклы рекомендуется широко использовать в селекционной практике для создания нового исходного материала и высокопродуктивных сортов и гибридов.

2. Для создания меристемных коллекций ценного селекционного материала свеклы рекомендовать метод длительного беспересадочного культивирования клонов на модифицированной питательной среде (увеличенное содержание агара до 13 г/л).

3. Разработанные параметры культивирования незрелых зародышей, следует использовать при получении гибридных растений от несовместимых и межвидовых скрещиваний и восстановлении длительно хранившегося в семенах селекционного материала.

4. При разработке новых селекционных программ ч технологий по ускоренному созданию нового исходного материала и высокопродуктивных гибридов рекомендуется широко применять разработанные для сахарной свеклы методы биотехнологии: получение гомозиготных линий методом гаплоидии, эмбриокультуры, длительного сохранения.

5. Полученный в результате проведенных исследований материал (гомозиготные линии, селекционные линии после 3-х летнего депонирования, восстановленный материал - урожай 1981 года) рекомендуется для включения в селекционный процесс.

Список литературы диссертационного исследования доктор сельскохозяйственных наук Подвигина, Ольга Анатольевна, 2003 год

1. Авунджян Э.С. Влияние хлорхолинхлорида на рост и обмен азотистых вешеств в проростках пшеницы / Э.С. Авунджян, Э.Х. Широкян // Физиология растений. 1973. -т.20, №5. - С. 936-941.

2. Агрохимия. Под ред. В.М. Клечковского, А.В. Петербургского. -М.: Колос, 1967. - 583с.

3. Азимов Е.Д. Культивирование in vitro зародышей ячменя, изолированных на разных стадиях развития / Е.Д. Азимов // Каз. ун-т.-Алма-Ата, 1989. -17 е.: ил.-Библиогр.: 16 назв. Деп. в КазНИИНТИ 04.11.89, № 2887-Ка 89.

4. Амерханова М.Б. Вегетативное размножение сахарной свеклы в культуре тканей / М.Б. Амерханов, И.Р. Рахимбаев // Вестник АН КазССР. -1986.-№3.-С. 49-54.

5. А.с. 1708210 СССР, МКИ А01Н1/04 Способ получения гомозиготных линий сахарной свеклы. Заявл. 12.03.90 № 4818227. Опубл. 30.01.92. Бюл. № 4. 6с. (Соавт. М.А. Богомолов, Т.П. Жужжалова, А.В. Корниенко, Т.П. Федулова, И.Р. Попова)

6. Асфандиярова P.P. Каллусогенез в культуре пыльников и незрелых зародышей гороха посевного / P.P. Асфандиярова, К.Р. Зиякаева //Биология культивируемых клеток и биотехнология.: Тез. докл. Международной конференции.- Новосибирск, 1988. С.220.

7. Атанасов А. Биотехнология в растениеводстве / А. Атанасов // Новосибирск, 1993. С. 241.

8. Бавина Т.В. Цветение растений и его регуляция /Т.В.Бавина, Т.Н. Константинова, Н.П. Аксенова // Биология развития растений. М.: Наука, 1975.-С. 158-182.

9. Банникова В.П. Межвидовая несовместимость у растений /В.П. Банникова. Наукова думка, 1986. - 230с.

10. Барханова Э.А. Сравнительное изучение влияния салициловой кислоты и (21-51) олигоаденилатов на синтез белка в клетках табака при тепловом шоке / Э.А. Барханова, А.Б. Федина, О.Н. Кулаева // Физиология растений. -1999. -Т.46, № 1. С. 16-22.

11. Батыгина Т.Б. Эмбриология пшеницы /Т.Б. Батыгина. Л.: Колос, 1974.-206с.

12. Батыгина Т.Б. О некоторых закономерностях морфогенеза при регенерации растений in vitro / Т.Б. Батыгина // Теоретические основы регенерации растений. Махачкала, 1978. - С. 13-14.

13. Батыгина Т.Б. Хлебное зерно / Т.Б. Батыгина. -Л.: Наука. 1987. -103с.

14. Биологический эпциклопедический словарь. М.: Сов. энциклопедия, 1986. - 832 с.

15. Биотехнология сельскохозяйственных растений. М., ВО Агро-промиздат, 1987. -302 с.

16. Боннер Дж. Молекулярная биология развития / Дж. Боннер. М.: Мир.- 1967.- 172 с.

17. Бормотов В.Е. Экспериментальная полиплоидия и гетерозис у сахарной свеклы / В.Е. Бормотов, Н.В. Турбин. -Минск: Наука и техника, 1972. -230 с.

18. Бугара A.M. Культура неоплодотворенных завязей семяпочек in vitro как способ получения гаплоидных растений / A.M. Бугара, Л.В. Русина // Физиология и биохимия культурных растений. 1988. - Т.20, № 5. - С. 419430.

19. Бугара A.M. Гаплоидный каллусогенез в культуре неоплодотворенных семяпочек шалфея мускатного / A.M. Бугара, Л.В. Русина // Физиология и биохимия культурных растений. 1989. - Т.21, № 6. - С. 544-560.

20. Будыкина Н.П. К вопросу об эффективности применения фиторе-гуляторов в условиях Карелии / Н.П. Будыкина, С.П. Дроздов, В.К. Курец, Л.В. Тимейко // Регуляторы роста и развития растений в биотехнологии.- М.: МСХА. 2001. -С. 217-218.

21. Бузанов И.Ф. Влияние климата на рост, сахаристость и химический состав сахарной свеклы / И.Ф. Бузанов // Биология и селекция сахарной свеклы. М.: Колос, 1968. - С. 548-553.

22. Бурмакина Н.В. Исследование мейоза у гаплоидов озимой пшеницы / Н.В. Бурмакина // Генетика: Приложение. 1994. - т.ЗО. - С.20.

23. Бутенко Р.Г. Культура изолированных тканей и клеток растений / Р.Г. Бутенко // Вестник АН СССР. 1963. - № 2. - С.2.

24. Бутенко Р.Г. Экспериментальный морфогенез и дифференциация в культуре клеток растений / Р.Г. Бутенко. М.: Наука, 1975. - 120 с.

25. Бутенко Р.Г. Физиологические аспекты получения, культивирования и гибридизации изолированных протопластов картофеля / Р.Г. Бутенко, А. Кучко // Физиология растений. 1979. - т.26, вып. 5. - С. 1110-1118.

26. Бутенко Р.Г. Биология клеток высших растений in vitro и биотехнология на их основе / Р.Г. Бутенко. М.: ФБК- Пресс, 1999. - 159с. -Библиогр.: С.147-159.

27. Вавилов Н.И. Генетика на службе социалистического земледелия (1932) /Н.И. Вавилов // М.: Колос, 1966. - С. 32-56.

28. Вайсман Н.Я. Мейотическая мутация "нередуцированные гаметы" у сахарной свеклы / Н.Я. Вайсман // Цитогенетика сельскохозяйственных растений: Теоретические и прикладные аспекты генетики растений. Новосибирск, 1989. - С. 18-24.

29. Витвицкий МА. Селекция и семеноводство / М.А. Витвицкий. -1979, № 2. С. 34-35. ,

30. Внучкова В.А. Получение гаплоидов из пыльников тритикале и их цитологическая характеристика / В.А. Внучкова // Докл.ВАСХНИЛ, 1979. -№10.-С. 8-10.

31. Воробьев Б.И. Изменчивость сортов форм сливы по способности образовывать фракцию нередуцированных пыльцевых зерен / Б.И. Воробьев, А.В. Исачкин, А.Л. Сильченко // Известия ТСХА, 1999. № 1. - С. 100-107.

32. Вутеева С. Влияние гамма-лучей и низких температур на индуцированный андрогенез D. Innoxia Mill / С. Вутева, Н. Загорска // Биологиякультивируемых клеток и биотехнология растений. М.: Наука, 1991. - С. 162-165.

33. Высоцкая О.Н. Длительное сохранение in vitro коллекции растений земляники / О.Н. Высоцкая // Физиология растений. 1994. - т. 41, № 6. -С. 935-941.

34. Высоцкая О.Н. Преимущество глюкозы перед сахарозой при криосохранении меристем земляники / О.Н. Высоцкая, А.С. Попов, Р.Г. Бу-тенко // Физиология растений. 1999. - т. 46, № 2. - С. 300-302.

35. Головин В.П. Получение гомозиготных линий кукурузы из гаплоидов / В.П. Головин // Цитогенетические основы селекции растений. Новосибирск: Наука, 1977. - С. 236-242.

36. Горя B.C. Алгоритмы математической обработки результатов исследований / B.C. Горя. Кишинев, 1978. - 180 с.

37. Гришина Е.В. Получение гаплоидов у кукурузы при воздействии химическими мутагенами и физиологически активными веществами / Е.В. Гришина, М.И. Зайцева // Апомиксис и цитоэмбриология растений. Саратов, 1968. - С. 65-68.

38. Гудвин Б. Временная организация клетки. Динамическая теория врунтенних процессов / Б. Гудвин. М.: Мир, 1966. - С. 25-33.

39. Давоян Н.И. Сравнительное изучение продолжительности мито-тического цикла у гаплоидов, диплоидов и тетраплоидов кукурузы /Н.И. Давоян, B.C. Тырнов, В.М. Суханов // Цитология и генетика. 1972. - № 3. - С. 59-63.

40. Давоян Н.И. Проблема диплоидизации гаплоидов / Н.И. Давоян, B.C. Тырнов // Гаплоидия у покрытосеменных растений. Саратов, 1974. -180 с.

41. Давоян Э.И. Получение гаплоидов у риса методом культивирования неоплодотворенных завязей в условиях in vitro / Э.И. Давоян // Доклады ВАСХНИЛ. 1985. - Вып. 3. - С. 15-16.

42. Давоян Э.И. Оптимизация условий оздоровления и хранения ген-банка картофеля методом культуры изолированной меристемы / Э.И. Давоян, Н.Н. Ефремова, Ю.В. Болонкина, Ахмед Махталат // Сельскохозяйственная биология. 1995. - № 5. - С. 52-55.

43. Демчинская Е.Н. К методике получения тетраплоидных форм сахарной свеклы / Е.Н. Демчинская // Основные выводы научно-исследовательских работ по сахарной свекле за 1966 год. Киев, 1968. - т.1. -С. 124-126.

44. Джеймс Е. Хранение клеток в условиях низких температур / Е. Джеймс // Биотехнология сельскохозяйственных растений. М.: ВО Агро-промиздат, 1987. -С. 153-175.

45. Добрецова Т.Б. О возможности получения диплоидных и гаплоидных форм сахарной свеклы из близнецовых растений / Т.Б. Добрецова, А.Н. Лутков, A.M. Манжос // Полиплоидия и селекция: труды совещания. -М.-Л., 1965а.-С. 232-238.

46. Добрецова Т.Б. Спонтанные полиплоидные и гаплоидные формы сахарной свеклы у близнецовых растений / Т.Б. Добрецова, А.Н. Лутков, A.M. Манжос // ДАН СССР. 1965 б. - т. 160, № 2. - С. 454-457.

47. Добросотсков В.В. Сочетание различных систем инбридинга при создании линейных материалов сахарной свеклы / В.В. Добросотсков, В.Г. Перетятько // Сельскохозяйственная биология. -1975. т. 10, № 1. - С. 26-31.

48. Добросотсков В.В. Изменчивость самонесовместимости / В.В. Добросотсков // Сахарная свекла. 1983. - № 3. - С. 31-33.

49. Домблидес Е.А. Влияние температур на развитие микроспор у представителей ряда Brassica / Е.А. Домблидес // Тез. докл. междунар. научной конф.молодых ученых овощеводов 28-29 марта 2000 г. М.: 2000. - С. 32-42.

50. Доспехов Б.А. Методика полевого опыта /Б.А. Доспехов. М.: Колос,1979. -416 с.

51. Дьячук Т.И. Культура пыльников пшеницы и ее использование в селекции / Т.И. Дьячук, П.А. Дьячук // Биология культивируемых клеток и биотехнология. : Тез. докл. Международной конференции. Новосибирск, 1988.-С. 207.

52. Дьячук Т.И. Культура пыльников злаков: современное состояние, проблемы, перспективы / Т.И. Дьячук, П.А. Дьячук // Сельскохозяйственная биология. 1989. - № 5. - С. 3-10.

53. Жужжалова Т.П. Полиэмбриония у сахарной свеклы / Т.П. Жуж-жалова Киев: Наукова думка, 1978. - ч. 3. - С. 26-27.

54. Жужжалова Т.П. Закономерности развития репродуктивных органов сахарной свеклы (Beta vulgaris L.): Автореф. дис. доктора биол.наук / Т.П. Жужжалова. Воронеж, 1999. - 40 с.

55. Жукова П.С. Гербициды и стимуляторы роста в овощеводстве / П.С. Жукова. Минск, 1976. - 86 с.

56. Зайковская Н.Э. Биология цветения, цитология и эмбриология сахарной свеклы / Н.Э. Зайковская; Под ред. И.Ф. Бузанова. Биология и селекция сахарной свеклыю - М.: Колос, 1968. - С. 137-206.

57. Зайковская Н.Э. Гаметогенез и развитие семян у триплоидных растений сахарной свеклы / Н.Э. Зайковская, Г.И. Ярмолюк // Докл. ВАСХ-НИЛ. 1968. - № 7. - С. 24-25.

58. Зайковская Н.Э. Апомиксис у форм сахарной свеклы / Н.Э. Зайковская, Н.А. Перетятько, Э.И. Ширяева, Г.И. Ярмолюк // Апомиксис и цито-эмбриология растений, вып.4. Саратов: Изд. Саратовского универс., 1978. -С. 39-40.

59. Знаменская В.В. Индукция гиногенеза у сахарной свеклы /В.В. Знаменская, Т.П. Жужжалова, О.А. Подвигина // Новые методы биотехнологии растений. Российский симпозиум, Пущино, 18-20 мая 1993г. Пущино, 1993.-С. 141.

60. Знаменская В.В. Микроклональное размножение сахарной свеклы (методические рекомендации) / В.В. Знаменская, Т.П. Жужжалова, А.И. Корниенко. Воронеж, 1995. - 23 с.

61. Знаменская В.В. Пути морфогенеза в культуре неоплодотворенных семяпочек Beta vulgaris /В. В. Знаменская, О.А. Подвигина // IV съезд общества физиологов растений России. Международная конф., Москва, 4-9 октября 1999 г.: Тез. докл. М., 1999. - С. 585.

62. Знаменская В.В. Регенерационная способность семяпочек сахарной свеклы /В.В. Знаменская, Подвигина О.А., Н.А. Таратонов // Сахарная свекла. 2001, № 6. - С. 16-18.

63. Иванова С.В. Биологические особенности гаплоидных растений томата / С.В. Иванова, Е.В. Кучковская // Изв. ТСХА. 1999. - № 3. - С. 5871.

64. Иванова С.В. Морфометрическая и цитогенетическая характеристика гаплоидов томата / С.В. Иванова, Л.И. Долгодворова, Г.И. Карлов, Е.В. Карлов, Е.В. Кучковская // Генетика. 2000. - т. 36. - № 1. - С. 52-61.

65. Ивановская Е.В. Строение эндосперма зерновок, полученных от опыления пшеницы (Triticum durum и Т. vulgare) элимусами (Elemus arenarius и Е. giganteus) /Е.В.Ивановская //Ботанический журнал. 1959. - т. 44. - С. 1934.

66. Ильенко И.И. Использование культуры незрелых зародышей при получении гаплоидных растений сахарной свеклы / И.И. Ильенко, В.Е. Белоус // Гаметная и зиготная селекция растений. Кишинев, 1987. - С. 156-158.

67. Калачеева Г.С. Состав жирных кислот Spirulina platensis в зависимости от возраста и минерального питания культуры / Г.С. Калачеева, Н.И. Сущик // Физиология растений. 1994. - т. 41, № 2. - С. 275-282.

68. Калинин Ф.Л. Регуляторы роста растений / Ф.Л. Калинин. Ю.Г.Мережинский. Киев: Наук, думка, 1965. - 406 с.

69. Калинин Ф.Л. Биологически активные вещества в растениеводстве /Ф.Л. Калинин. Киев: Наукова Думка, 1984. - 320 с.

70. Капля А.В. Кинетика роста побегов как критерий эффективности действия хлорхолинхлорида на плодовые культуры / А.В. Капля, Т.А. Мороз, A.M. Косян, А.Н. Двойное // Физиология и биохимия культурных растений. -1990.-т. 22, №4.-С. 366-371.

71. Карпеченко Г.Д. Экспериментальная полиплоидия и гаплоидия / Г.Д. Карпеченко // Теоретические основы селекции растений. М.: Л.: Сель-хозгиз, 1935. - т. 1. - С. 397-434.

72. Катаева Н.В. Клональное микроразмножение растений / Н.В. Катаева, Р.Г. Бутенко. М.: Наука, 1983. - 96 с.

73. Катаева Н.В. Особенности микроразмножения трудноукореняе-мых сортов яблони / Н.В. Катаева // Сельскохозяйственная биология. 1986.-№4.-С. 18-22.

74. Кашин А.С. Особенности развития мегагамет апомиктичных и половых форм Asteraccae в культуре неоплодотворенных завязей in vitro. /А.С. Кашин, Е.А. Блюднева, О.В. Седлецкая, В.В. Григорьева // Физиология растений. 2000. - т.47, № 4. - С. 548-554.

75. Кефели В.И. Природные ингибиторы роста и фитогормоны / В.И. Кефели. М.: Наука, 1974. - 24 с.

76. Кефели В.И. Рост растений / В.И.Кефели. М.: Колос, 1984. -175 с.

77. Киселева Н.С. Использование новых методов с целью создания исходного материала для селекции чая в Краснодарском крае: Автореф. дис. канд. биол. наук / Н.С. Киселева. Краснодар, 2000. - 25 с.

78. Кихара X. Цитоплазматическая мужская стерильность и селекция пшеницы / X. Кихара // Сельскохозяйственная биология. 1967. - т.2. - С. 214-225.

79. Книпл Я.С. Влияние кумарина и синтетических ретардантов роста на синтез РНК и белка в срезанных листьях ячменя в темноте и на свету / Я.С. Книпл, О.Н. Кулаева // Физиология растений. 1970. - т. 17, № 3. - С. 549-557.

80. Кобозева Л.Н. Биологический контроль за развитием и ростом свеклы / Л.Н. Кобозева // Боилогический контроль в сельском хозяйстве. М.: МГУ, 1962.-С.134-139.

81. Ковалевская М.Ф. Метод "раневых раздражений" в применении к сахарной свекле с целью получения мутаций / М.Ф. Ковалевская // Научные записки ВНИС . Киев, 1933. - С. 35-41.

82. Кожахметов К.К. Получение межвидовых гибридов пшеницы в эмбриокультуре / К.К. Кожахметов, А.Р. Искаков, Б.Ш. Алимгазинова // Биология кл. растений in vitro, биотехнология и сохранение генофонда: VIII Ме-ждунар. конференция. Москва, 1997. - С. 113.

83. Козлова Н.А. Воздействие гидразида малеиновой кислоты на мяту перечную / Н.А. Козлова, А.Е. Геращенков // Гидразид малеиновая кислота как регулятор роста растений. М.: Наука, 1973. - С. 190-196.

84. Константинова Т.Н. О способности каллусов стебля табака к образованию вегетативных и генеративных почек в культуре / Т.Н. Константинов, Н.П. Аксенова, Т.В. Баврина, Н.Х. Чайлахян // Докл. АН СССР. 1969. -187.-С. 466-472.

85. Копертех JI. Нативные фитогормоны экспланта и морфогенез пшеницы in vitro / Л. Копертех, Р. Бутенко // Физиология растений 1995. - т. 42, вып. 4. - С. 555-558.

86. Корак З.С. Некоторые причины пониженной всхожести семян диплоидной и тетраплоидной односемянной сахарной свеклы / З.С. Корак, Н.А. Неговский // Вопросы генетики, селекции и цитологии сахарной свеклы. -Киев, 1971.-С. 94-100.

87. Костов Д. Частота полиэмбрионии у ржи / Д. Костов // Докл. АН СССР. 1939. - т.24. - С. 468-471.

88. Кравченко А.Н. Методы гаметной и зиготной селекции томатов / А.Н. Кравченко, В.А. Лях, Л.Г. Тодераш, Т.И. Салтанович, М.К. Паскал. -Кишинев: Штиинца, 1988. 152 с.

89. Красочкин В.Т. Характеристика семейства маревых или солянко-вых Chenopodiaceae Less. / В.Т. Красочкин // Культурная флора СССР. Л.: Колос, 1971. - т.19 - С. 5-266.

90. Кузьмин Н.А. Селекция и семеноводство полевых культур / Н.А. Кузьмин, В.Е. Шевченко, Н.Т. Павлюк. Воронеж: Издательство ВГАУ, 1995. -352 с.

91. Кулаева О.Н. Цитокинины, их структура и функция / О.Н. Кулае-ва. М.: Наука, 1973.-262 с.

92. Кулаева О.Н. Достижения и перспективы в использовании фитогормонов / О.Н. Кулаева, М.Х. Чайлахян // По материалам XI Международной конфер. по ростовым веществам // Агрохимия. 1984.- № 1. - С. 106-128.

93. Кулаева О.Н. Экспрессия генома растений и ее регуляция / О.Н. Кулаева // Геном растений. Под ред. К.М. Сытника. Киев: Наукова думка, 1988.-С. 83-136.

94. Кунах В.А. Влияние кинетина на репродукцию клеток различной плоидности / В.А. Кунах, П.Г. Сидоренко, В.П. Зосимович // Успехи полиплоидии. Киев, 1977. - С. 205-215.

95. Курьята В.Г. Изменение в морфогенезе, состоянии покоя и морозостойкости малины при воздействии ретардантов / В.Г. Курьята, Т.М. Даби-жук, Г.А. Ременюк// Физиология и биохимия культурных растений. 1991. -т. 23, №3.-С. 257-263.

96. Кучеренко JI.A. Условия получения растений-регенерантов в культуре тканей риса / JI.A. Кучеренко // Сельскохозяйственная биология. -1984.-№4.-с. 70-72.

97. Кучеренко JI.А. Подходы к разработке технологии массовой регенерации растений in vitro / Л.А. Кучеренко // Биотехнология культивируемых клеток и биотехнология растений. М.: Наука, 1991. - С. 232-242.

98. Лазаричева С.Г. Земледелие и растениеводство / С.Г. Лазаричева. 1978, №1.-С. 214-215.

99. Лаханов А.П. Действие ССС на физиологические процессы, устойчивость и семенную продуктивность гречихи и фасоли / А.П. Лаханов // Регуляторы роста и развития растений в биотехнологии: Тез. докл. М.: Издательство ТСХА, 2001. - С. 256-257.

100. Левитес Е.В. Генетика изоферментов растений / Е.В. Левитес. -Новосибирск: Наука, 1986. 144 с.

101. Лукина Ю.А. Каллусогенез и морфогенез в культуре незрелых зародышей различных видов рода (Fagopyrum (polygonaccac) / Ю.А. Лукина, Н.И. Румянцева // Ботанический журнал. 1999. - 84, №3. - С. 74-80.

102. Лукьянюк С.Ф. Метод гаплоидии в селекции зерновых культур / С.Ф. Лукьянюк, С.А. Игнатова // Сельскохозяйственная биология. 1983. -№5.-С. 8-15.

103. Лутков А.Н. Методика получения полиплоидных гибридов сахарной свеклы / А.Н. Лутков, В.А. Панин, Е.Б. Панина, З.П. Карташова, Э.Н. Щипачева // Селекция и семеноводство. 1963. - № 4. - С. 58-61.

104. Мазлумов А.Л. Селекция сахарной свеклы / А.Л. Мазлумов. М.: Бета, 1996.-208 с.

105. Малецкая Е.И. Наследование признаков многосемянности и мно-гозародышевости у сахарной свеклы / Е.И. Малецкая // Генетика сахарной свеклы. Новосибирск: Наука, 1984. - С. 79-93.

106. Малецкий С.И. Наследование признака одно- и многосемяпочко-вости цветков свеклы / С.И. Малецкий, Е.И. Малецкая, М.А. Костыря // Од-норостковость свеклы (эмбриология, генетика, селекция). Новосибирск: Наука СО, 1988. - С.35-78.

107. Малюта Э.И. Получение мейотических тетраплоидов сахарной свеклы с помощью нередуцированных гамет / Э.И. Малюта // Генетика сахарной свеклы. Новосибирск: Наука, 1984. - С. 161-171.

108. Маринчик А.Ф. Межвидовые гибриды свеклы высокосахаристый материал для селекции / А.Ф. Маринчик // Основные выводы научно-исследовательских работ по сахарной свеклы за 1966 год. - Киев, 1968. - т.1. -С. 9-12.

109. Марьяхина И.Я. Возможность использования метода полиплои-дизации in vitro в селекции лука / И.Я. Марьяхина, И.В. Полумордвинова, Н.П.Шевченко // Сельскохозяйственная биология. 1994. - №5. - С.32-31.

110. Методические указания по цитоэмбриологическим исследованиям в селекции сахарной свеклы. Киев, 1984. - 62 с.

111. Миляева Э.Л. Формирование клубнелуковиц-регенерантов шафрана посевного в культуре in vitro / Э.Л. Миляева, Н.Ш. Азизбекова, Э.Н. Комарова, Д.Д. Ахундова// Физиология растений. 1995. - т. 42. С. 127-134.

112. Мишуренко А.Г. Применение гидразида малеиновой кислоты в виноградорстве / А.Г. Мишуренко, Н.И. Нагорный // Гидразид малеиновой кислоты как регулятор роста растений. М.: Наука, 1973. - С. 203-214.

113. Моисеева Н.А. Выявление антигенов-маркеров стеблевой меристемы табака / Н.А. Моисеева, А. Володарский, Р. Бутенко // Физиология растений. 1979. - Т. 26, вып. 3. - С. 479-484.

114. Моисеева Н.А. Молекулярные и клеточные механизмы морфогенеза в культуре клеток растений / Н.А. Моисеева // Биология культивируемых клеток и биотехнология растений. М.: Наука, 1991. - С. 166-185.

115. Мосина Н.Р. Получение тетраплоидных форм сахарной свеклы воздействием колхицина / Н.Р. Мосина // Наука производству. - Воронеж, 1967. - С. 17-20.

116. Молхова Е.М. Влияние генов мужской стерильности ms 32, ms-35/10 на развитие женского гаметофита и эмбриогенез томата / Е. Молхова, М. Михайлова, Б. Атанасова // Генетика и селекция. - 1990. - 23, № 4. - С. 298-300. '

117. Мочалова О.В. Основные пути формирования гаплоидных и полиплоидных микроспор в результате химических шоков у облепихи / О.В. Мочалова // Состояние и проблемы садоводства России: ч.1 / НИИ садоводство Сибири. Новосибирск, 1977. - С. 105-112.

118. Мураненко И.М. Каллусогенез и эмбриоидогенез в культуре пыльников картофеля / И.М. Мураненко, А.А. Кучко // Цитология и генетика. 1989. - 23, №3.-С. 48-51.

119. Муратова С.А. Влияние регуляторов роста на морфогенез в культуре листовых тканей сливы домашней / С.А. Муратова // Регуляторы роста в биотехнологии.- М., 2001. С. 180-181.

120. Муромцев Г.С. Основы химической регуляции роста и продуктивности растений /Г.С. Муромцев, Д.И. Чкаников, О.Н. Кулаева, К.З Гамбург. М.: Агрохимиздат, 1987. - 385 с.

121. Муромцев Г.С. Основы сельскохозяйственной биотехнологии / Г.С. Муромцев, Р.Г. Бутенко, И.Т. ТихоненкоИ.М. Прокофьев М.: Агро-промиздат, 1990. - С. 187.

122. Мюнцинг А. Генетические исследования / А. Мюнцинг. М.: Изд. иностранной литературы, 1963. - 488 с.

123. Мясоедов Н.А. Оптимизация питательной среды и выделение новых штаммов для культуры тканей женьшеня / Н.А. Мясоедов, З.Б. Шамина, Р.Г. Бутенко // Физиология растений. 1985. - т.32, №4. - С.800-806.

124. Навашин М.С. Новая возможность в селекции (об использовании гаплоидов) / М.С. Навашин // Ботанический журнал. 1934. - Т. 19, № 4. - С. 640-641.

125. Нежевенко Г.И. Близнецовый метод получения гаплоидных растений / Г.И. Нежевенко, В.К. Шумный // Генетика. 1970. -т.6. - С. 173-180.

126. Новак Ф.Й. Индукция гаплоидов в культуре тканей и их значение в селекции растений / Ф.Й. Новак // Культура клеток растений и биотехнология. М.: Наука, 1986. - С. 159-167.

127. Нуждина В.В. Изучение и разработка новых способов создания закрепителей стерильности у сахарной свеклы: Автореф. дис. канд. с.-х. наук / В.В.Нуждина. Киев, 1992. - 24 с.

128. Оканенко А.С. Химия вегетирующей свеклы второго года / А.С. Оканенко, В.И. Товарницкий // Физиология сельскохозяйственных растений. М.: МГУ, 1968. - т. 7. - С. 388-404.

129. Олейникова Т.В. Водоудерживающая способность и устойчивость к засухе видов и сортов пшеницы / Т.В. Олейникова // Тр. по прикл. ботанике, генетике и селекции, ВНИИ растениеводства. 1976. - 57, № 2. - С.46-58.

130. Определение числа хромосом и описание их морфологии в меристеме и пыльцевых зернах культурных растений: Методические указания ВИР.-Л., 1986.-62 с.

131. Ошевнев В.П. Образование пистилодий у сахарной свеклы / В.П. Ошевнев, Н.П. Грибанова, Т.П. Жужжалова, Э.И. Черепухин // Генетика. -1986.-т. 22,№4.-С. 889-891.

132. Павлова М.К. Культура неоплодотворенных завязей и семяпочек: возможности и перспективы (обзор) / М.К. Павлова // Сельскохозяйственная биология. 1987. -№ 1. - С. 27-33.

133. Паламарчук И.А. Учебное пособие по гистохимии /И.А. Паламар-чук, Т.Д. Веселова. М.: МГУ, 1965. - 108 с.

134. Парий Ф.Н. Повышение выхода гаплоидов у сахарной свеклы / Ф.Н. Парий, Л.О. Рябовол // Селекция и семеноводство. 1992. - № 6. - С.ЗО.

135. Паушева З.П. Практикум по цитологии растений / З.П. Паушева -М.: Колос, 1980.-304 с.

136. Перетятько В.Г. Ослабленный инбридинг в селекции / В.Г. Перетятько // Сахарная свекла, 1986. № 12. - С. 26-29.

137. Першина JT.A. Проблема использования методов in vitro при отдаленной гибридизации злаков / JI.A. Першина, В.К. Шумный // Биология культивируемых клеток и биотехнология растений. М.: Наука, 1991. - С. 102-113.

138. Петров Д.Ф. Передача апомиксиса от трипсакум к кукурузо-подобным гибридам / Д.Ф. Петров, Н.И. Белоусова, Е.С. Фокина // Отдаленная гибиридизация и апомиксис. Новосибирск, 1982. - С. 32-52.

139. Плаксина Т.В. Культура зародышей in vitro при селекции сибирских сортов вишни на иммунитет к коккомикозу / Т.В. Плаксина // Биология клеток растений in vitro, биотехнология и сохранение генофонда: VII Между-нар. конференция. М., 1997. - С. 151.

140. Плохинский Н.А. Алгоритмы биометрии / Н.А. Плохинский. М.: МГУ, 1980.- 150 с.

141. Подвигина О.А. Экспериментальное получение гаплоидных линий у сахарной свеклы / О.А. Подвигина, В.В. Знаменская, Т.П. Жужжалова // Апомиксис у растений: состояние, проблемы и перспективы исследований:

142. Труды междунар. симпозиума, Саратов, 21-24 июля 1994г. Саратов, 1994. -С.122-123.

143. Подвигина О.А. Депонирование селекционного материала сахарной свеклы на искусственных питательных средах / О.А. Подвигина, В.В. Знаменская, JI.A. Цупикова//Сахарная свекла. 2000. - № 12. - С.18-19.

144. Подлисских В.Е. О возможности использования в селекции картофеля фертильных дигаплоидных образцов доноров мейотических мутаций /В.Е. Подлисских, B.JI. Подлисских, Б.Ю. Аношенко // Сельскохозяйственная биология. - 1999. - № 3. - С. 54-60.

145. Полевой В.В. Физиология роста и развития растений / В.В. Полевой, Т.С. Саламатова. Л.: Изд-во Ленинград, ун-та, 1991.- 239 с.

146. Попов В.И. Условия культивирования изолированных апексов хмеля для клонального микроразмножения / В.И. Попов, В.А. Высоцкий, И.М. Туктагулов // Физиология растений. 1985. - т.32, вып.6. - С. 1191-1195.

147. Попович Е.А. Влияние цитокининов на регенерацию адвентивных побегов гипсофилы / Е.А. Попович, О.Н. Козлова, И.О. Брель // Регуляторы роста.-2001. С. 187.

148. Постон Т. Теория катастроф / Т. Постон, Ф. Стюард. М.: Мир, 1980.-С. 505-513.

149. Прилюк Л.В. Получение гибридов тетраплоидной пшеницы одно-зерняной и рожью / JI.B. Прилюк//Генетика. 1984,- т.20. - С.1344-1347.

150. Ракитин Ю.В. Гидразид малеиновой кислоты, природа его действия и практическое применение / Ю.В. Ракитин // Гидразид малеиновой кислоты как регулятор роста растений. М.: Наука, 1973. - С. 5-39.

151. Ралдугина Г.Н. Анализ роста культуры клеток сахарной свеклы семядольного происхождения в жидкой питательной среде / Г.Н. Ралдугина, И.Н. Смоленская//Физиология растений. 1983. - т. 30, вып.6. - С. 1156.

152. Редысо В.И. Реакция меристем сахарной свеклы на солевой стресс /В.И. Редько, Л.А. Редько, Л.А. Сахно // Биотехнологические методы в селекции сахарной свеклы. М., 1989. - С. 27-32.

153. Самойленко Н.А. Регуляция плодоносящих насаждений земляники на обработку плантации препаратом ССС / Н.А. Самойленко // Регуляторы роста и развития растений в биотехнологии.: Тез. докл. М.: ТСХА, 2001. - С. 273-274.

154. Сарапуу Л.П. Основные соединения и рост растений/ Л.П. Сара-пуу, В.И.Кефели // Фенольные соединения и их биологические функции. М.: Наука, 1968. - С. 129.

155. Сатарова Т.Н. Культивирование пыльников кукурузы /Т.Н. Сатарова // Биология культивируемых клеток и биотехнология.: Тез. докл. Международной конференции. Новосибирск, 1988. - С. 217.

156. Сафразбекян С.А. Роль сахарозы в регуляции морфогенеза каперса in vitro / С.А. Сафразбекян, В.В. Урманцева, Н.В. Катаева // Биология культивируемых клеток и биотехнология растений. М.: Наука, 1991. - С. 192-197.

157. Сеилова Л.Б. Эмбриология индуцированного апомиксиса у сахарной свеклы / Л.Б. Сеилова, А.А. Абдурахманов, Н.А. Хайленко // Цитология и генетика, 1984. № 2. - С.90-92.

158. Сеилова Л.Б. Пути формирования апомиктического потомства у сахарной свеклы с факультативным апомиксисом / Л.Б. Сеилова, А.А. Коновалов, И.Я. Балков // Цитология и генетика. 1994. - № 4. - С.45-47.

159. Сельскохозяйственная биотехнология. Под общ. ред. Шевелухи B.C. М.: Высшая школа, 1998. - 416 с.

160. Семан И. Результаты научного исследования биотехнологии сахарной свеклы / И. Семан, Ю. Фараго // Использования биотехнологических методов в селекции сахарной свеклы. Киев, 1989. - С. 58-63.

161. Семенов И.Л. Влияние осмотически активных веществ на поглощение и метаболизацию сахарозы тканями корня сахарной свеклы / И.Л. Семенов, В.И. Пузанов// Физиология растений. 1985. - т. 32, вып.5. - С. 876883.

162. Синнот Э. Морфогенез растений / Э. Синнот. М., 1963. - 603с.

163. Славова И.В. Разработка метода вегетативного размножения и получения гаплоидов в культуре in vitro у сахарной свеклы: Авто-реф.дис.канд. с.-х. наук / И.В. Славова. Пловдив, 1988. - 33 с.

164. Славова И.В. Получение гаплоидных растений из неоплодотворенных семяпочек сахарной свеклы Beta vulgaris L. в условиях in vitro / И.В. Славова, Е.Г. Рафаилова // Биология культивируемых клеток и биотехнология растений. М.: Наука, 1991. - С.285-287.

165. Слесаравичус А.К. Получение межродовых и трехродовых гибридов злаковых трав методом изолированных зародышей / А.К. Слесаравичус, Г.А. Дабкавиченс // Селекция и семеноводство. -1984. т.9. - С. 14-16.

166. Соловых Н.В. Оптимизация состава питательных сред для регенерации адвентивных побегов из листовых сегментов земляники / Н.В. Соловых // Регуляторы роста и развития растений в биотехнологии. 2001. - М.: Изд-во ТСХА, 2001. - С 193.

167. Стрибуль Т.Ф. Влияние криовоздействий на семена овощных культур / Т.Ф. Стрибуль, Т.К. Лесив // Криобиология. 1990. - № 2. - С. 39-43.

168. Стрибуль Т.Ф. Оптимизация метода криоконсервирования меристемы картофеля /Т.Ф. Стрибуль, С.Т. Олейник, А.Н. Новиков, А.И. Геращенко //Проблемы криобиологии. 1999. -№ 1. - С. 37-60.

169. Таратонов Н.А. Влияние экзогенных факторов на рост и развитие регенерантов в процессе формирования дигаплоидных форм сахарной свеклы: Автореф. дис. канд.с.-х.наук / Н.А. Таратонов. Рамонь, 1999. - 20 с.

170. Тарчевский И.А. Янтарная кислота миметик салициловой кислоты / И.А. Тарчевский, Н.Н. Максютова, В.Г. Яковлева, А.Н. Гречкин // Физиология растений. - 1999. - т. 46, № 1. - С.23-28.

171. Титова И.В. Преодоление постгамной несовместимости в скрещиваниях лука репчатого с дикими видами методом культуры зародышей / И.В. Титова // Культура клеток растений и биотехнологии, М.: Наука, 1986. -С. 195-199.

172. Тихонова В.А. Влияние замораживания на жизнеспособность семян некоторых культивируемых лекарственных растений / В.А. Тихоно-ва, Т.Н. Кружалин, Е.В. Шугаева // Растительные ресурсы. 1997. - № 1. - С. 6874.I

173. Тихонова В.А. Долговременное хранение семян / В.А. Тихонова // Физиология растений. -1999. т. 46, № 3. - С. 467-477.

174. Тодуа В.А. Индуцированный партеногенез у Nicotiana tabacum L. / В.А. Тодуа. Е.Г. Тавдумадзе, М.Ф. Терновский, Ю.Ф. Сарычев // Докл. АН СССР. 1967. - т. 177. - С. 449-459.

175. Тупик Н.Д. Некоторые биохимические процессы, протекающие в репродуктивных органах сахарной свеклы при воздействии гидразид малеичновой кислоты / Н.Д. Тупик, Ф.Л. Калинин. М.: Наука, 1973. - С. 211-214.

176. Турбин Н.В. Генетика гетерозиса и метода селекции растений на комбинационную способность /Н.В. Турбин // Генетические основы селекции растений. М.: Наука, 1971. - С. 112-155.

177. Турков В.Д. Сравнительная эффективность гамма- и ультрофио-летового облучения в получении гаплоидных семян у томатов Licopersicon esculentum / В.Д. Турков, А.П. Дубрава // Докл. АН СССР. 1968. - т.181. - С. 486-487.

178. Турков В.Д. Экспериментальный партеногенез у таматов / В.Д. Турков // II совещание по проблемам апомиксиса у растений и животных: Тез. докл. Новосибирск: Наука, 1968. - С. 63.

179. Тутаюк В.Х. Изучение онтогенеза и наследования процесса формирования надземных корнеплодов у сахарной свеклы / В.Х. Тутаюк, С.Д.

180. Алиев // Проблемы онкологии и тератологии растений. Л.: Наука, 1975. - С. 144-145.

181. Тырнов B.C. Гаплоидия у растений: научное и прикладное значение /B.C. Тырнов. М.: Наука, 1998. - 53 с. - Библиогр.: 40-51.

182. Уизерс Л.А. Хранение ткани при биотехнологии растений / Л.А. Уизерс // Биотехнология сельскохозяйственных растений. М.: Агропромиз-даг, 1987. - С. 176-205.

183. Федосенко В.А. Консервация семян культурных и диких видов картофеля при сверхнизкой температурой / В.А. Федосенко // Научно-технический бюллетень ВИР. 1980. - № 105. - С. 80-82.

184. Федулова Т.П. Изоферментные маркеры в идентификации гаплоидов сахарной свеклы / Т.П. Федулова, О.А. Подвигина // Молекулярно-генетические маркеры и селекция растений, Матер, конфер., Киев 10-13 мая 1994. Киев: Аграрна наука, 1994. - С. 69.

185. Фенина Н.А. Поддержание коллекции оздоровленных сортов картофеля in vitro / Н.А. Фенина // Биотехнология в картофелеводстве: Научн. тр. Рос. с.-х.акад. НИИ картофел. хоз-ва. М.:НИИКХ, 1991. - С. 22-24.

186. Физиология сельскохозяйственных растений / Под ред. Б.А. Рубина. М.: Изд-во Москов. ун-та, 1968. - т.7. - С. 426.

187. Халитов А.Х. Методические указания по использованию тура как средства повышения урожая зерновых культур и предотвращения их полегания / А.Х. Халитов. М.: Колос, 1974. - С. 26.

188. Харечко-Савицкая Е.И. Цитология и эмбриология сахарной свеклы / Е.И. Харечко-Савицкая // Свекловодство. т.1. - Киев: Госсельхозиздат, 1940.-С. 453-550.

189. Хасси Г. Размножение сельскохозяйственных культур in vitro / Г. Хасси // Биотехнология сельскохозяйственных растений. М.: Агропромиз-дат, 1987. - С. 105-133.

190. Хорошайлов Н.Г. Длительное хранение семян мировой коллекции ВИР / Н.Г. Хорошайлов, Н.В. Жукова // Научно-технический бюл.ВИР. -1978.-№77.-С. 9-19.

191. Хохлов С.С. Гаплоидия у покрытосеменных растений / С.С. Хохлов, Е.В. Гришина, М.И. Зайцева, B.C. Тырнов, Н.А. Малышева-Шишкинская . Изд. Саратовского университета, Саратов, 1970. - 137 с.

192. Хохлов С.С. Гаплоидия и селекция / С.С. Хохлов, B.C. Тырнов, Е.В. Гришина. М.: Наука, 1976. - 221 с.

193. Цветова М.И. Эффективность различных способов колхициниро-вания растений (на примере злаков) / М.И. Цветова, А.Т. Ишин // Сельскохозяйственная биология. 1999. - № 5. - С. 110-121.

194. Черемис Ю.К. Влияние недостатка минерального питания на фотосинтетический аппарат хлореллы / Ю.К. Черемис, А.В. Попова, А.А. Ару-тюнян, П.С. Венедиктов // Физиология растений. 1989. - т. 36, вып. 1. - С. 57-67.

195. Чуб В. Каллусогенез и морфогенез в культуре генеративных органов весеннецветущих видов Crocus L. / В. Чуб, Т. Власова, Р.Г. Бутенко / Физиология растений. 1994. - т. 41, вып. 6. - С. 815-820.

196. Шамина З.Б. Андрогенез и получение гаплоидов в культуре пыльников и микроспор / З.Б. Шамина // Культура клеток растений. М,: Наука, 1981. - С. 124-135.

197. Шатилов Ф.В. О совместном действии ГМК и аммиачной селитры на ростовые процессы вяза перистоветвистого / Ф.В. Шатилов, Н.К. Не-упокоева // Гидрозид мапеиновая кислота как регулятор роста растений. М.: Наука, 1973. - С. 180-187.

198. Шевелуха B.C. Рост растени и его регуляция в отногенезе / B.C. Шевелуха. М.: Наука, 1992. - 599 с.

199. Шевченко А.Г. Оптимизация системы технологических приемов безвысадочного семеноводства гетерозисных межлинейных гибридов сахарной свеклы: Автореф. дис. доктора с.-х. наук / А.Г. Шевченко. - Рамонь, 2002. - 46 с.

200. Ширяева Э.И. Гистохимическое и биохимическое изучение формирования семян у разных форм сахарной свеклы / Э.И. Ширяева // Современные проблемы физиологии и биохимии сахарной свеклы. Киев: Наукова думка, 1981.-С. 200-205.

201. Эмбриология цветковых растений. Терминология и концепции / -Под ред. Т.Б. Батыгиной.- С-Пб.: Мир и семья, 2000. т. 3. - 640 с.

202. Эмануэль Н.М. Физико-химические основы применения феноль-ных соединений в химии и биологии / Н.М. Эмануэль // Фенольные соединения и их биология. М.: Наука, 1968. - С. 311.

203. Юрцева В.Н. Методическое руководство к лабораторно-практическим занятиям по цитологической и эмбриологической микро технике / В.Н. Юрцева, В.А. Пухальский. М.: ТСХА, 1968. - 113 с.

204. Юсубов A.M. Создание полиплоидных форм сахарной свеклы / A.M. Юсубов, Н.Р. Мосина // Полиплоидия и селекция сахарной свеклы. М.: Наука, 1970.-С. 120-133.

205. Adams A.N. Elimination of viruses from the hop by therapy and meristem culture / A.N. Adams // Horticult. Sci. 1975. - v.50, № 2. - P.151.

206. Alleweldt G. Der Einflub von Wachstumsinhibitoren auf die Langzeitagerung von in-vitro-Kulturen der Rebe / G.A lleweldt //Harst-LangenbucherMargit. "Vitis", 1987. 2, № 2. - P. 57-64.

207. Anzai H. Transgenic Tobacco Resistant to a Bacterial Disease by the Detoxification of a Pathogenic Toxin / H. Anzai, K. Yoneyama, I. Yamaguchi // Mol.Gen.Genet. 1989. v.219. -P.492-494.

208. Ao G.M. Induction of Haploid plantlets from unpollinated maize ovaries in vitro / G.M. Ao, S.X. Zhao, G.H. Li // Acta Genetica Sinica. 1982. - 9, 4.-P. 281-283.

209. Asano Y. Studies on the crosses between distanty related species of Lilies. The culture of immature hybrid embiyos 0,3-0,4 mm long / Y. Asano // J Jpn SocHortic Sci. 1980.-49.-P. 114-119.

210. Augereau J.M. Long term storage of callus cultures at low temperatures or under mineral oil layer / J.M. Augereau, D. Courtois, V. Petiard // Nestle Res. News, 1986-1987. Veveiy, 1987. - P. 121-124.

211. Bajaj Y.P.S. Survival of Nicotiana and Atropa pollen embryos frozen at 196°C. / Y.P.S. Bajaj// Current Science (India), 1977a.-46. - 305-7.

212. Bajaj Y.P.S. Ciyobiology of plant cell cultures and establishment of gene banks / Y.P.S. Bajaj, J. Reinert// In Applied and Fundamental Aspects of Plant Cell, Tissue and Organ Culture. Berlin, 1977. -P.757-77.

213. Bajaj Y.P.S. Regeneration of shoots from bltra lou -frezen anthers of Primula obconia / Y.P.S. Bajaj // Scientia Horticulturae. - 1981. -14. - P. 93-5.

214. Bajaj Y.P.S. Induction of genetic variability in grain-legumes through tissue culture / Y.P.S. Bajaj, S.S. Gosal // Rao AN (ed) Proc COSTEO Symp. Tissue culture of economically important plants. Natl Univ Singapore. 1982. - P. 25-41.

215. Barro F. Response of different genotypes of Brassica carinata to microspore culture / F. Barro, A. Martin // Plant Breed. 1999. - 188, № 1. - P. 7981.

216. Belous V.E. Sugar beet embryos during cultivation of isolated non-^ pollinated ovules in vitro / V.E. Belous // Embryology and seed reproduction: XI1.t. symp., Leningrad, USSR, July 3-7, 1990. Leningrad. - 1990. - P. 19.

217. Blakeslee A.F. Chromosomal mutations in the jion weet, Datura stramonium / A.F. Blakeslee, J. Belling // J.Heredity. 1924. - v. 15. - P.195-206.

218. Blakeslee A.F. Methods of inducing doubling of hromosomes in plants /A.F. Blakeslee, A. Avery//J. Heredity. 1937.-v.28. - P. 393-411.

219. Bosemark N.O. Nove kierunki w hodowli genetyiznie jednonasiennych odmian buraka cukrowego / N.O. Bosemark // Biologia buraka cukrowego. -Warszawa, PNN. 1979. - P. 286-305.

220. Bossoutrot D. Gynogenesis in Beta vulgaris L.: From in vitro culture of unpollinated ovules to the production of doubled haploid plants in soil / D.

221. Bossoutrot, D. Hosemans // Plant Cell Repts. 1985. - 4, № 6. - P. 300-303.

222. Bothmer Roland Von. Haploid barley from the in :ergeneric cross Hordeum vulgare x Psathyrostachys fragilis / Roland Bothmer, Niels Jacobsen, Rikke Sorgensen, T. Linde-Laursen // Euphytica. 1984. - 33, № 2. - P.363-367.

223. Botrill D.E. The effects of nutrient deficiensies on photosynthesis and respiration in spinach PI. / D.E. Botrill, J.M. Possingham, P.E. Kriedeman // Soil. -1970. -v.32,№2.-P. 424.

224. Butenko R.G. Somatic embryogenesis in carrot tissue cultures under conditions of high salf concentrations in the medium / R.G. Butenko, B.P. Strogonov, Z.A. Babaeva//Dokl. Akad. Nayk SSSR. 1967. - P.l 179-1181.

225. Campion B. Spontaneous and induced chromosome doubling in gynogenic lines of onion (Allium сера L.) / B. Campion, E. Perri, M.T. Azzimonti, E. Vicini, M. Schiavi // Plant Breed. 1995. - 114, №3. - P.243-246.

226. Chase S.S. The monoploid of developing inbred lines / S.S. Chase // Proc. 6-th Annal. Hybrid Corn Industry Res. Corn. 1951. - 6. - P. 29-34.

227. Chan J.L. Regeneration of coconut (cocos nucifera L.) from plumule explants through somatis embryogenesis / J.L. Chan, L. Saenz, C. Talavera, R. Hornung, M. Robert, C. Oropeza // Plant Cell Repts. 1998. - 17, №6-7. - P. 515521.

228. Chekurov V.M. Effect of inbreeding and gromth regulators on the in vitro androgenesis of wheatgrass, Agropyron glaucum / V.M. Chekurov, E.P. Razmakhnin // Plant Breed. 1999. - 118, №6. - C. 571-573.

229. Chmielarz P. Research note: Gryopreservation of Norway spruce Picea abies (L) Karst. seeds for two years / P. Chmielarz // Plant Varieties and Seeds. -1998. 11,№2.-P. 129-130.

230. Coll Yamilet. Improvement of indica rice (Oryza sativa) in vitro regeneration efficiency from callus mtdiated by stress / Yamilet Coll, Mtrardo Pujol,

231. Damans Castillo, Annerys Gonzaltz, Julio Alfonso, Raul Armas // Cereal Res Commun. 1998.- 26, №2. - P. 153-160.

232. Collins G.B. Culture of embiyos / G.B. Collins, J.W. Grosser // Cell culture and comatic cell genetics of plants. L.: Aced. press. 1984. -P. 241-257.

233. Comai L. An Altered aroA Gene Product Confers Resistance to the Herbicide Glyphosate / L. Comai, L.C. Sen, D.M. Stalker // Science. 1983. -v.221. - P.370-373.

234. Cox E.A. In vitro culture of musa babbisiana colla embryos / E.A. Cox, G. Stetuky, R.D. Goos//Nature. 1960. - 185. - P. 403-404.

235. Chopra R.N. In vitro culture of ovules of Gynandropsis gynandra Brid and Impateins balsamina L. / R.N. Chopra, P.S. Sabharwal // Ma heshwavi. 1962. -P. 257-264.

236. D'Amato F. Chromosome number variations in culyured cell and regenerated plants / F. D'Amato // Troutiers of plant Tissue Culture. Calgary: Calgary University, 1978. - P. 287-296.

237. Dale P.J. Comparison of Callus Induction and Plant Regeneration from Different Esplants of Hordeum vulgare / P.J. Dale, E.A. Deambrogio // Pflanzenphysid. 1979. - v. 94. - P. 65-77.

238. Deanon J.R.Treatment of sweet corn silks with mallic hydrade and colhicine as means of increasing the frequency of monoploids / J.R. Deanon // Philipp. Agr. 1957. - 41. - P. 364-377.

239. De Maine M.J. Periderm cell size as a ploidy indicator in potato (Solanum tuberosum L. subspecies tuberosum) / M.J. De Maine // Ann. Appl. Biol. 1998.- 133,№2.-P. 307-312.

240. D'Halluin Katelijn. Production of haploid sugar beets (Beta vulgaris L.) by ovule culture / Katelijn D'Halluin, Birgit Keimer // Gen. Manipulat. Plant Breed: Proc. Int. Symp. Berlin: New York, 1986. - P. 307-309.

241. Doussinault Gerard L'avenir De La selection du bli tendre / D. Gerard // Ind cirial. 1983. - № 24. - P. 7-9.

242. Eid E.D. In vitro culture of Dature innoxia: Flawer bud stage and embryoid level of ploidy / E.D. Eid, E. Delanghe, I. Waterkeyn // Hereditas. 1973. -72.-P. 331-332.

243. Ernould L. L'Autopolyploidie experimental chez la betterave / L. Ernould // La Cellule. 1946. - P. 50-54.

244. Espinasse Ann. Factors controlling in vitro develooment of sunflower embryos / Ann. Espinasse, Charles Lay, C. Dybing // Dean. Agronomie. 1985. - 5, № 9. - P. 825-832.

245. Farrant J. General observation on cell Preservation / J. Farrant, M.J. Ashwood-Smith //Low Temperature Preservation in medicine and biology. 1980. -P. 1-18.

246. Ferguson N.H. Interspecific Trifolium hyprids produced by embryo and ovule culture / N.H. Ferguson, F.A. Rupert P.T. Evans // Crop Sci. 1990. - 30, № 5.-P. 1145-1149.

247. Fujimura T. Effects of varions growth regulators on the embiyogenesis in carrot cell suspension culture / T. Fujimura, A. Komamine // Plant Sci Lett. -1975. -5.-P.359-364.

248. Fukai Seiichi. Storage of chrusanthemum grandiflorum Kitamural plantiets in vitro / Seiichi Fukai, Masaharu Morii // Plant Tissue Cult. Lett. 1988. -v.5, № l.-P. 20-25.

249. Gadgil V.H. Effekts of change of medium, agar concentration and tissue distrirbance on the growth of hollyhock crown gall tummor tissue / V.H. Gadgil // Plant tissue and organ culture. Sumpl. Intern. Soc. Plant Morphol. Univ. Delhi, 1963.-P. 108.

250. Gallais A. Place de e'haploidiedans un schema de selection / A. Gallais // Selec. Frans. 1978. - № 26. - P. 39-49.

251. Gamborg O.L. Culture method and detection of gluconate in suspension cultures of wheat and barley // O.L. Gamborg, D. Eveling // Can.J.Biochem. 1968. - 46. - P. 417-421.

252. Gibson Margaret S. Dihaploid plant production from ovules cultures of sugarbeet/M.S. Gibson//Proc. N.D. .Acad Sci. 1987. - P. 41-44.

253. Gonzales -A.M.T. Cryopreservation of pineapple (ananas comosus) apices / A.M.T. Gonzales, M.M. Ravelo, C.U. Villavicencio, M.M. Montero, F.Engelmann // Cryo-Lett. 1998. - 19, №6. - P.375-382.

254. Grafe C. Inerease of in vitro regeneration in Malus Domestica by the application of phosphatase inhibitors / C. Grafe, G. Wrkke // Plant Breed. 1998. -117, №6.-P. 565-566.

255. Grout B.W.W. Survival of shoot-meristems of tomato seedlings frozen in liqued notrogen / B.W.W. Grout,R.J. Westcott, G.G. Henshaw // Cryobiology. -1978.-15.-P. 478-83.

256. Guha S. In vitro development of ovary and ovule of allium сера L. // S. Guha, B.M. John //Phytomorghology. 1966. - 16. - P. 353-364.

257. Hadi S. Variation in anther culture efficiency among donor plant tillers in rice / S. Hadi, S.K. Raina // Curr. Sci. (India). 1989. - 58, №24. - P. 1397-1398.

258. Halluin Katelijn. Production of haploid sugarbeets (Beta vulgaris L.) by ovule culture / Katelijn Halluin, Birgit Keimer // Gen.Manipulat. Plant Breed. Proc. Int. Symp., Berlin, 1985. New. York. - 1986. - P. 307-309.

259. Hansen A.L. Efficient in vitro chromosome doubling during Beta vulgaris ovule culture / A.L. Hansen, C. Plever, H.C. Pedersen, B. Keimer, S.B. Andersen // Plant Breed. 1994. - 112. - №2. - P. 89-95.

260. Hansen A.L. Antimicrotubule herbicides for in vitro chromosome doubling in Beta vulgaris L. ovule culture / A.L. Hansen, A. Gertz, M. Joersbo, S.B. Andersen //Euphytica. 1998. - 101, №2. - P. 231-237.

261. Hansen N.J.P. Efficient production of doubled Wheat plants by in vitro treatment of microspores with trifluralin or АРМ / N.J.P. Hansen, S.B. Andersen // Hypertension. 1998. - 32, №6. - P. 401-405.

262. Hansen N.J.P. In vitro chromosome doubling with colchicine during microspore culture in wheat (Triticum activim L.) / N.J.P. Hansen, S.B. Andersen // Euphytica. 1998. -102,№1. -P.101-108.

263. Hanzel J.J. Genotype and media effects on Callus Formation and Regeneration in Barley / J.J. Hanzel, J.P. Miller, M.A. Brinkman, E. Fendos // Crop Sci.- 1985.-v.25.-P. 27-31.

264. Harvey B.L. The Inheritance of Erucic Acid Content in Rapeseed (Brassica napus) / B.L. Harvey, R.K. Dawney // Can. J.Plant. Sci. 1964. - v.44. -P.104-111.

265. Herrmann Lutt. Haploiden-technik bei der zuckerrube / Lutt Herrmann, Claudia Wetzel, Horst Lux // Potsdam Porsch. B. 1988. - № 57. - P. 95-99.

266. Hirai D. Cryopreservation of vitro grown meristems of strawberry (Fragaria x ananassa Duch.) by encapsulation - vitrification / D. Hirai, K. Shirai, S. Shirai, A. Sakai//Euphytica. - 1998. - 101, №1. - P. 109-115.

267. Hitmi A Cryopreservation of Chrysanthemum cinerariaefolium shoot tips effects of pretreatment conditions and retention of biosynthetic capacity / A. Hitimi, C. Barthomeuf, H. Sallanon // Ciyo-Lett, 1999. - 20, №2. - P.109-120.

268. Hoffman G. Nachrichtenbl / G. Hoffman, D. Schuzke, E. Heyter et al // Pflanzenschutz DDR, 1974. 28, № 12. - P. 249-252.

269. Hosemans D. Induction of haploid plant from in vitro culture of unpollinated beet ovules (Beta vulgaris L.) / D. Hosemans, D. Bossoutrot // Z.Pflanzenzucht. 1983. - 91, № 1. - S.74-77.

270. Hosemans D. In vitro culture of unprollinated beet (Beta vulgaris L.) ovules of male sterile and male fertile plants and induction of haploid plants / D. Hosemans, D. Bossoutrot // The experimental manipulation of ovule tissues. 1985. - P. 79-88.

271. Huang Q.T. Embryological observations on ovary culture of unpollinated young blowers in Hordeum vulgare L. / Q.T. Huang, H.C. Vang, C. Zhou // Acta. Bot. sinca. 1982. - 24, № 3. p.295-300.

272. Indra K. Vasil Developing cell and tissue culture systems for the inprovement of cereal and grass crops / K. Vasil Indra // J. Plant Physiol. 1987. -128: 193.-P. 218.

273. Jakuezun H. Zastasowanie posrednich metod oxnaezania poziomu ploidaenosei ziemniaka /Jakuezun Henryka, Strzelezyk-Zyta Danuta, Narkiewicz Magdalena // Binl. Inst.Ziemn., 1997. 48, № 1. - P.91-98.

274. Jambhole N.D. Induced polyploids in senna a medicinal plant / N.D. Jambhale, H.K. Shiude, J.G. Patil, S.C. Patil // G. Mohorashtra Agz. Univ. 1997. -22, № 3. - P. 359-360.

275. Jassem В. Embryology and genetics of apomixis in the section Corollinae of the genus Beta / B. Jassem // Acta. Biol. Cracovensia. Ser. Botanica. -1976.-v.19.-P. 151-172.

276. John B.M. Growth responses of ovaries of Anethum, Foeniculum, Trachyspermum / B.M. Johri, C.B. Sehgal // Phytomorphology. 1966. - 16. - P. 364-378.

277. Johri B.M. Endosperm culture / B.M. Johri, P.S. Srivastava, A.P. Raste // Vasil I.K. (ed): Perspectives in plant cell and tissue culture. Intl Rew Cytol Suppl. B.Acadimic ress. - London New York, 1980. - P. 157-182.

278. Jones L.H. Long term suririal of embryos of carrot (Daucus carota L.) / L.H. Jones // Plant Scien ce Letters. 1974. - 2. - P. 221-4.

279. Kaul M.H. Mutant genes afFecling higher plant meiosis / M.H. Kaul, T.G.K. Murthy // Ther. and Appl. Genet. 1985. -70, №5. - P. 449-466.

280. Kaur Parampreet. Cajanus cajan Regeneration of haploid plants from microspore culture of pigeonpea (Cajanus cajan L.) /Parampreet Kaur, J.K. Bhalla // Indian J.Exp. Biol. 1998. - 36, № 7. - P. 736-738.

281. Keller J. Culture of unpollinated ovules, ovaries and flover buds in some species of the genus Allium and haploid induction via gynogenesis in onion (Allium сера L.) / J. Keller // Euphyfica. 1990. - 47, № 3. - P. 241-247.

282. Kihara H. Use of alien cytoplasms a new metod of producing haploids / H. Kihara, K. Tsunewaki // J.Genet. - 1962. - v. 37. - P. 310-313.

283. King M.W. The storage of Recalcitrant Seeds-Achievements and Possible approaches / M.W. King, E.H. Roberts // International Beard of Hant Genetic Resources (2BPGR) Repord, AGP: 2BPGR. 1979. - P. 44.

284. Kraeva Elena. Salicylic acid treatment of grape berries retards ripening / Elena Kraeva, C. Andary, A. Carbonneau, A. Deloire // Vitis. 1998.- 37, № 3. -P. 143-144.

285. Kruse A. Polyemryony in Brassica napus v. rapifera L. and Beta vulgaris L. / A. Kruse . Copenhagen: Yearbook, 1960 // Roy. Vet. and Agr.Coll. -1960.-P.37-46.

286. Kruse A. An in vivo/vitro embryo culture technique / A. Kruse // Hereditas. 1974. - v. 77. - P. 219-224.

287. Kruse A. The potential use of heterosis in Beta vulgatis / A. Kruse //1980 arsskrifi. Yeabook Jahrbuch Annuaire. Kobenhavn, 1980. P. 117-137.

288. Lakshmi Sita G. Triploid plants from endosperm culture of sandalwood by experimental embryogenesis / Sita G. Larshmi, Ram.N.V. Raghava, C.S. Vaidyanathan // Plant Sei Lett. 1980. - 20. - P. 63-69.

289. Laurie D.A. The production of haploid wheat plants from wheat x maize crosses / D.A. Laurie, M.D. Bennett // Theor. and Appl. Genet. 1988. - 76, № 3. - P. 393-397.

290. Lelley J. Geneties and cytology of unreduced gametes in cultivated rye (Secale cereole L.) / J. Lelley, A.A. Mahmoud, V. Lein // Genome, 1987. 29, № 4. - P. 635-638.

291. Levin R.L. Ciyobiology of isolated plant protoplasts / R.L.Levin, J.R. Ferguson, M.F. Dowgent, P.L. Stepenkus // Thermodynamic consider-ations (abstract.) Gryobiology. 1970. - 16. - P. 592.

292. Linacero R. Embryogenesis in Polyembrionic Secale cereale L. / R. Linacero, A.M. Varquenz // Plant Cell Rep. 1992. - v. 12.- P. 6-32.

293. Lovelock J.E. Heamolysis by thermal shock / J.E. Lovelock // British Journal ofHaematology. 1955. - 1. - P. 117-129.

294. Lux H. Production of haploid sugar beet (Beta vulgaris L.) by culturing unpollinated ovules / H. Lux, L. Herrmann, Claudia Wetzel // Plant Breed. 1990. -104, №3.-P. 177-183.

295. Luzrs R. Plant Regeneration in vitro from Embryogenic Cultures of spring and winter type Barley (Hordeum vulgare L.) Varieties / R. Luzrs, H. Lorz // Theor. Appl. Genet. - 1987. - v. 75. - P. 16-25.

296. Macleod R.A. Cold shock and freezing damage to microbes /R.A. Macleod, P.H. Calcott // Survival of vegetative microbes: Symp.26 of the society for General microbiology, Cambridge Universite Press. 1976. - P.81-109.

297. Mahapatra D. In vitro hybridization in an incompatible cross -Brassica juncea x Brassica hirta / D. Mahapatra, Y.P.S. Bajaj // Curr. Sci. 1984. - 53, № 9.- P. 489-490.

298. Mahapatra D. Hybridization in Brassica juncea x Brassica campestris through ovary culture/D. Mohapatra, Y.P.S. Bajaj // Euphytica. 1988. - 37, № 1.- P. 83-88.

299. Mallikarjuna Nalini. Ovule and embryo culture to obtain hybrids from interspecific incompatible pollinations in chickpea / Nalini Mallikarjuna // Euphytica. 1999. - 110, № 1. - P. 1-6.

300. Marciniak Karol. Effect of genotype, medium and sugar on triticale (Triticosecale Wittm.) anther culture response // Karol Marciniak, Zofia Banaszak, Matia Wedzony // Cereal Res. Commun. 1998. - 26, № 2. - P. 145-151.

301. Martinez Montero M.E. Cryopreservation of sugarcane embryogenic calluc using a simplified freezing process / M.E. Martinez-Montero, M.T. Gon-zalez-Arnaj, C. Borroto-Nordelo, C. Puentes-Diaz, F. Engelmann // Cryolett. -1998. - 19, №3.-P. 171-176.

302. Matsushima Tomoaki. Regeneration of plants by pollen culture in rice (Oryza sativa L.) / Tomoaki Matsushima, Shoshi Kikucni, Fumio Takaiwa, Kiyoharu Oono II Секубуцу сосики байе = Plant Tissue cult. Left. 1988. - 5, № 2.-P. 78-81.

303. Mazoti L.B. Haploides naturales en maiz / L.B.Mazoti, C.E.Muhlenberg // Rev. Agr. 1958. - v. 25. - P. 171-178.

304. Mdarhri-Alaoui Menem. Obtenion par gynogenese in vitro de plants haploides chlorophyliennes chez lenble dur / Meriem Mdarhri-Alaoui, Averil Chlyan, Hassan Chlyah // C.r.Acad. Sci. Ser. 3. 1998. - 321. - P. 25-30.

305. Mentewab A. Androgenic ability and chromosome doubling by different colchicine treatments in anther culture of hexaploid wheat genotypes (Triticum a estivum L.) / A. Mentewab. A. Sarrafi H Cereal Res. Commun. 1997. -25,№4.-P. 897-903.

306. Metwally E.I. Production of haploid plants from in vitro culture of unpollinated ovules of Cucurbita pepo / E.I. Metwally, S.A. Moustafa, B.I. El-Sawy,S.A. Haroun, T.A. Shalaby // Plant Cell, Tissue and Organ Cult. 1998. - 52, №3.-117-121.

307. Meyer R. Isolation and Characterisation of Potato Dioloid Clones Generating in Monohaploid or Homozygous Diploid Androgenetic Plants /R. Meyer, F. Salamini, H. Uhrig // Theor. Appl. Genet. 1993. - v. 85. - P. 905-908.

308. Miedema P. A tissue culture technique for vegetative propagation and low temperature preservation of Beta vulgaris / P.A. Miedema // Euphytica, 1982. - 31, № 3. - P. 635-643.

309. Mikami Tetsuo. Тэжай коэнюо кайхо / Tetsuo Mikami, Yukihiro Yanai, Toshiro Kinoshita // Proc. Sugar Beet Res. Assoc. 1990. - № 31. - P. 145450.

310. Miklovicova M. Anther culrure of triticale / M. Miklovicova // Acta fac. rerum. natur. Univ. comen. Genet. 1983. - 15. - P. 11-20.

311. Monnier Michel. Effect of ovular tissue on the development of Capsella embryos cultivated in vitro / Michel Monnier, Jean Lagriffol // J. Plant Physiol. -1986. 122, № 1. - P. 17-24.

312. Morris G.J. Effect of cooling rate on thermal shock haemolysis / G.J. Morris, J. Farrant // Cryobiology. 1973. - 10. - P. 119-25.

313. Morris G.J. Lipid loss and haemolysis by chermal shock: lack of correlation / G.J. Morris // Cryobiology. 1975. - 12. - P. 192-201.

314. Morris G.J. The cryopreservation of chlorella / G.J. Morris // Effect of growth temperature on freezing tolerance. Archives of Microbiology. 1976. - 107. -P. 309-12.

315. Mujeeb-Kazi A. An intergeneric hybrid of Triticum aestivum x Elymus giganteus / A. Mujeeb-Kazi, R. Rodriguez // J. Hered. -1981. v. 72. - P. 253-256.

316. Munerati O. Sull incrocio della barbabietola coltivata con la beta selvaggia della costa adriatica / O. Munerati // Ind. Sace. Ital. 1932. - v. 25. - P. 303-304.

317. Murashige T. A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures / T. Murashige, F. Skoog // Physiol plantarum. 1962. - v. 15.-P. 473-497.

318. Nacamura S. Somt Haploid plant in rice / S. Nacamura // Jour. Genet. Jap. 1933. - № 8. - P. 223-227.

319. Nagl W. Shift of DNA replication from diploid to poliploid cell in citocinin controlled differentiation / W. Nagl, W. Rucker // Cytobios. 1974. - v. 10. - 137p.

320. Negro V.Effect of selection and temperature stress on the production of 2n gametes in Lotus tenuis / V. Negro, G. Lemmi // Plant Breed. 1998. - 177, № 4. - P. 345-349.

321. Nitsch J.P. The in vitro culture of flowers and fruits / J.P. Nitsch. -(eds) Maheshwari P., Rangaswamy N.S. // Plant tissue and organ culture. A Symposium. Inte Soe Plant morphologists, Univ Delhi, 1963. - P.198-214.

322. Nogent S. Gynogenesis in sugarbeet, Beta vulgaris: Colloq. Impact Biotechnol. dans secteur veg. agro-aliment / S. Nogent, F. Dubois, P. Lenee // Bull. Soc. bot: Fr. Actual, bo. 1990. - 137, № 3-4. - P. 133.

323. Norstog K. Growth of zye grass endosperm in vitro / K. Norstog // Bot. Gaz. 1956. - 117. - P. 253-259.

324. Pat.285791, DDR, MKI5 с 12 N 5/04 Varfahren zur Langzeitlagerung bei Beta Ruben in vitro / Horst. Lux, Karin Lohmann, Anderas Kaiser, Johannes Oehme // Заяв. 06.07.89 № 3304780; Опубл. 03.01.91.

325. Paz M.M. Influence of culture medium and in vitro conditions on shoot regeneration in Solanum phureja monoplods and fertility of regenerated doubled monoploids / M.M. Paz, R.E. Veilleux // Plant Breed. 1999. - 18, №1. - P. 53-57.

326. Petolino J.F. Anther culture of elite genotypes of maize / J.F. Petolino, A.M. Jones // Crop Sci. 1986. - 26, № 5. - P. 1072-1074.

327. Polge C. Fruzing of spermatozoa / C. Polge // Temperature Preservation in medicine and Biology, ed M.J.Ashouood-Smith and J.Farrant. 1980. - P. 45-64.

328. Powling A. Restriction endonuclease analysis of mitochondrial DNA from sugar beet with normal and male sterile cytoplasms / A. Powling // Heredity/ -1982. v.49, №1. - P.l 17.

329. Pretova Anna. Cultivation of globular and heart stage flax embryos / Anna Pretova // Fert. and Embryogenes. Ovulated Plants. Proc. 7Int. Cytoembryol. Symp., High Tatra (Rackova dolina), June 14-17, 1982. Bratislava. - 1983. - P. 307-309.

330. Pundeva R.S. Using the method of tissue cultures for overcoming onterspecific incompatibility and hybrid sterility in genus Capsicum /R.S. Pundeva, N.A. Zagorska N.A. // Докл. Болг. АН. 1984. - 37, № 7. - P. 939-942.

331. Puri P. Growth in vitro of parthenogenetic embryos of Aerva tomentosa Forsk / P.Puri // Maheshwari R., Rangaswamy NS (eds) Plant Tissue and Organ culture A Symposium. Intl. Soc. Plant Morphologists, Univ. Delhi. - 1963. - P. 281-291.

332. Raghavan V. Experimental embryogenesis in vascular plants I V. Raghavan // Academic Rress, London- New York. 1979. - P. 75-89.

333. Ragot M. Genetic and environmental effects on chromosome doubling of sugarbeet (Beta vulgaris L.) haploids / M. Ragot, P. Steen // Euphytica. 1992. -63, №3.- P. 233-237.

334. Raina S.K. Crossability and in vitro development of hybrid embryos of Triticum durum x Secale cereale / S.K. Raina // Indian J. Genet, and Plant Breed. -1984, №3.-P. 429-437.

335. Rao A.N. Colyledon tissue culture of some tropical fruits / A.N. Rao // Rao A.N.(ed) Proc COSTED Symp. on Tissue culture of economically inportant plants NatP Univ Singapore. 1982. - P. 124-138.

336. Redha A. Improved production of doubled haploids by colchicine application to wheat (Triticun aestivum L.) anther culture / A. Redha, T. Attia, B.

337. Buter, S. Saisingtong, P. Stamp, J.E. Schmid // Plant Cell Repts. 1998. - 17, № 12. - P. 974-979.

338. Renoux H. Arboricult. fhiitiere /Н. Renoux. 1975. - 22, № 250/251. -P. 34-39.

339. Ritchie G.A. In vitro shoot regeneration from callus, leaf axils and petioles of sugar Beet (Beta vulgaris L.) / G.A. Ritchie, K.C. Short, M.R. Davey // J. of Experimental Botany, 1989. -v. 40, № 211. P.277-283.

340. Rober M. Synthesis of Fructans in Tubers of Transgenic Starch Deficient Potato Plants does not Result in an Increased Allocation of Carbohydrates / M. Rober, K. Geider, B. Muller-Rober, L. Willmitzer // Planta. \996. - v. 199. -P.528-536.

341. Rosenthal Ch. Ein Vergleich der Methoden zur Gewinnung polyploiden Ausgangsmaterials fur die Beta Rubenzuchtung Wiss / Ch. Rosenthal // Abh. dtsch. Akad. Landw. -1958. - 34. - P. 1-7.

342. Rongbai Li. Agromorphological characterilation of ovary culture-derived plants of rice (Oryza sativa L.) / Li Rongbai, M.P. Pandey, S.K. Pandey, D.K. Dwivedi // Euphytica. 1999. - 106, № 3. - P. 197-203.

343. Sabir A.A. Processing crop plant germplasm in vitro for mass production of regenerants: a case study with beet / A.A. Sabir, B.V. Ford-iloyd // J. of Biotechnology. -1991 17. - P. 257-268.

344. San Noeum L.H. Haploides d'Hordeum vulgare L. par culture in vitro d'ovaries non fecondes / L.H. San Noeum // Ann. Amelior. Plant. 1976. - 26, № 4. -P. 751-754.

345. San Noeum L.H. In vitro induction of gyhogenesis in higher plants / L.H. San Noeum // Broadening Genet. Base Crops. Proc. Conf. Wageningen. -1979.-P. 327-329.

346. Sares Sonia. Obtencion de plantas haploides en Oryza sativa L. / Sonia Sares // Cult. trop. 1986. - 8, № 3. - P. 9-16.

347. Sarkar Debabrata. Factors affecting minimal growth conservation of potato microplants in vitro / Debabrata Sarkar, Prakash Naik // Euphytica. 1998. -102, №2.-P. 275-280.

348. Savaskan C. Callus production and plant regeneration in Mi plant of barley (Hordeum vulgare L.) / C. Savaskan // Turk J. Nucl. Sci. 1997. - 24, № 1. -C. 57-66.

349. Savitsky H. Effect of low colchicine concentration on inducing tetraploidy in sugar beets / H. Savitsky // J. Amer. Soc. Sugar Beet Technol. 1968. -15.-P. 2-7.

350. Savitsky H.I. Production of homozypons nematode resistance plant lines in diploid Beta vulgaris procumbens hybrids / H.I. Savitsky // Genetics. -1981.-v. 97.-P. 94.

351. Seman I. The cloning of sugar beet (Beta vulgaris L.) in vitro / I. Seman / Biologia (Bratislava). 1984. - 39. - P. 49-54.

352. Seman I. Research biotechnological methods in sugar beet breeding in the research and breeding institute at Bucany / I. Seman, J. Farago // Potsdam. Forsh. B. 1988. -№57. -C. 51-56.

353. Seman I. In vitro cultivation of unfertilized ovules of sugar beet / I. Seman, J. Farago // Embryology and seed reproduction: XI Int. symp., Leningrad, USSR, july 3-4, 1990. Leningrad. - 1990. - C. 146.

354. Singh J. Freezing of isolated from coldhardened and non-hardened winter rye/J. Singh//Plant Scince Letters. 1979. - 16. -P. 195-201.

355. Sitbon M. Production of haploid Gerbera Jameesonii plants by in vitro culture unfertilized ovules / M. Sitbon // Agronomie. 1981. -1, № 9. - P. 807-812.

356. Skoog F. Chemical regulation of growth and organ formation in plant tissues cultured in vitro / F. Skoog, C.O. Miller // Biological Action of Growth Substances: Symposia of the Society for Experimental Biology. 1957. - 11.- P. 118.

357. Souter E.W. In pollen formation via parallel spindler in the potato cultivar Sebago / E.W. Soulter // Am Potato J. 1980. - v. 57, № 9. - P.449-455.

358. Srivastava P.S. Endosperm culture / P.S. Srivastava ; D.M.Jokri (ed). // Experimental embryology of vascular plants. Springer, Berlin Heidelberg New York, 1982.-P. 175-193.

359. Stalker D.M. Herbicide Resistance in Transgenic Plants Expressing a Bacterial Detoxification Gene / D.M. Stalker, K.E. McBride, L.D. Malyi // Science. 1988. v.242. - P.419-423.

360. Stanzel M. Transport of glucose, fructose and sucrose by Steptanthus torluosus / M. Stanzel, R.D. Siolung, E. Rower // Planta. 1988. - v. 174, №2. - P. 201-210.

361. Stocker 0. Contributions to the problem of drought resistance of plants / O. Stocker // Indian J. Plant Physiol, 1961. 4, №2. - P.87-102.

362. Subrahmahyam N.C. Haploidy from Hordeum in perspecific crossis. Part II: Dihaploids of H.brachvantherum and H.depressum / N.C. Subrahmahyam / Theor. and Appl. Genet. 1979. - 55, № 3. - P. 139.144.

363. Tillberg J.E. Effect of abscisic acid, salicilic acid and trans-cinnamic acid on phosphate up take / J.E. Tillberg // Physiol, plantarum. 1970. - 23. - P. 647.

364. Tilton Varien R. In vitro culture of immature soybean embryos / R. Varien Tilton, H. Sandra Russell // J. Plant Physiol. 1984. - 115, № 3. - P. 191200.

365. Towill Leigh E. Cryopreservation of sour cherry (Prunus cerasus L.) using a dormant vegetative bud method / E. Zecgh Towill, L. Phibip Forsline // Cryo-Lett. 1999. - 20, № 4. - P. 215-222.

366. Truong Andre I. Obtaining plants by in vitro culture of unfertilized maize ovaries (Zea mays L.) and preliminary studies on the Progeny of gynogenetic plant / I. Truong-Andre, V. Demarly // Z. Pflanzenzucht. - 1984. - 92, № 4. - P. 309-320.

367. Turgut K. Efficient shoot regeneration and somatic embryogenesis from immature cotyledons of Brassica napus L. / K. Turgut, M. Barghchi, R. Scott // Plant Breed. 1998. - 117, № 5. - P. 503-504.

368. Yang H.Y. In vitro induction of haploid plantlets from unpollinated young ovaries and ovules / H.Y. Yang, C. Zhou // Theor. Appl. Genet. 1982. - 63, №2-P. 97-104.

369. Yazawa S. Bulbil Formation of Dioscorea opposita cultured in vitro / S. Yazawa, T. Asahira // Mem. Coll. Agr. Kyoto Univ. 1979. - № 113. - P. 39-53.

370. Yu D. Is the High Basab Level of Salicylis acid Important for Disease4

371. Resistana in potato? / D. Yu // Plan Physiol. 1997. - v. 115. - P. 343-349.

372. Yi Hualin. Huanzheng nongye daxue xuebao / Hualin Yi, Xiuxin Deng // J.Huanzhong (Cent. China) Agr. Univ. 1998. - 17, № 1. - P 89-92.

373. Yoshida Shinya. Non-random gametoclonal variation in rice regenerants from callus subcultured for a prolonged period under high osmotic stress / Shinya Yoshida, Kazuhiko Watanabe, Morihiro Fujino // Eu-phytica. 1998. -104, № 2.-C. 87-94.

374. Van Geyt J. Induction of nuclear and cell divisions in microspores of sugarbeet (Beta vulgaris L.) / J. Geyt Van, K. D'Halluin, M. Jacobs // Pflanzen-zucht. 1985. - 95, № 4. - P. 325-335.

375. Van Geyt J. In vitro induction of hapliod plants from unpollinated ovules and ovaries of the sugarbeet (Beta vulgaris L.) / J. Geyt Van, Jr.G.J. Speckmann, K. D'Halluin, M. Jacobs // Theoretical and applied genetics. 1987.73. -P. 920-925.

376. Voelker T.A. Fatty Acid Biosynthesis Redirected to Medium Chains in Transgenic Oilseed Plants / T.A. Voelker, A.C. Worrell, L. Anderson, J. Bleibaum, C. Fan, D.J. Hawkins, S.E. Radke, H.M. Davies // Science. 1992. v.257. - P.7274.

377. Webber J.M. Cytoiogicae featres of Nicoriana glutinosa haploids / J.M. Webber // Jour. Agr. Res. 1933. - 47. - P. 845-867.

378. Westcott R. Tissue culture strorage of potato germplasm / R. Westcott // Potato Res. -1981. v. 24, № 3. . p. 331-352.

379. White Ph. Potentially unlimited growth of excised plant callus in an artificial nutrient / Ph.White // Amer. j. Bot., 1963. v. 26. - P. 59-64.

380. Wiberg E. Fatty Acid Distribution and Lipid Metabolism in Developing Seeds of Laurate-Producing Rape (Brassica napus L.) / E. Wiberg, A. Banas, S. Stymne//Planta. 1997.-v.203. - P.341-348.

381. Williams E.G. The use of embryo culture with transplanted nurse endosperm for the production of interspecific hybrids in pasture legumes / E.G. Williams, G. De Lautour // Bot. Gar. 1980. - 141. - P. 252-257.

382. Withers L.A. Freeze-preservation of plant cell cultures / L.A. Whters, H.E. Street // Plant Tissue Culture and its Bio-technological Application, ed. Bars.E.Reinhard, M.H.Zenk. Berlin, 1977. - P. 226-44.

383. Withers L.A. Freeze-preservation of somatic embryos and clonal plantlets of carota (Daucus carota L.) / L.A. Whters // Plant Physiology. 1979. -63.-P. 460-7.

384. Withers L.A. Tissue culture strage for Genetic Conservation / L.A. Withers // IBPGR Technical Report, AGP: 2BPGR, 1980. P. 8.

385. Wu В J. Cytological and embriological studies of haploid plant production from cultured unpollinated ovaries of Nicotiana tabacum L. / B.J. Wu, K.C. Chen // Acta. Bot. sinica. 1982. - 24, № 2. - P. 125-129.

386. Zagorska N.A. Induced androgensis in tomato (Lycopersicon esculentum Mill.) : I. Influence of genotype on androgenetic ability / N.A. Zagorska, A. Shtereva, B.D. Dimitrov, M.M. Kruleva // Plant Cell Repts. 1998. - 17, № 12.-P. 968-973.

387. Zhao De-pei. Межродовой гибрид Raphanus satlvus и Brassica pekinensis, полученный с помощью тканевой культуры / De-pei Zhao // Шнянь шэнъу сюэбао, Acta biol. exp. sin. 1983. - 16, № 1. - P. 21-29.

388. Zhou C. Studies on the in vitro induction of callus from embryo sacs of rice / C. Zhou, H.Y. Yang // Hereditas. 1981. - 3, № 5. - P. 10-12.

389. Zhou H.Huaping. Improvement of anther culture methods for haploid production in wheat / H. Huaping Zhou, S.F. Konzak // Crop. Sci. 1989. -29, № 3.-P. 817-821.

390. Zhu Z.C. In vitro induction of haploid plantlets from unpollinated ovaries of Triticum aestivum and Nicotiana tabacum / Z.C. Zhu, H.S. Wu // Acta genet, sinica. 1979. - 6, № 2. - P. 181-184.

391. Zhu Z.C. Induction of haploid plantlets from unpollinated wheat ovaries cultured in vitro / Z.C. Zhu, H.S. Wu, Q.K. An // Acta Genetica Sinica. -1981.-8, 4.-P. 386-390.

392. Российская Академия сельскохозяйственных наук Всероссийский Ордена Трудового Красного Знамени НАУЧНО-ИССЛЕДОВАТЕЛЬСКИЙ ИНСТИТУТ САХАРНОЙ СВЕКЛЫ И САХАРА1. ИМ. АЛ. МАЗЛУМОВА396030, ВНИИСС Воронежской области, Телефакс 2-19-93, Телефоны: 2-18-03,2-19-93,

393. Электронная почта: [e-mail]1 ■ ■ ■■ - ——— ■ ■ » II ■ I — ■ ■- ■ ■■ ■ ■■от « Ul&Ut'l- 2003 года1. СПРАВКА

394. Заведующий- отдёХом селекции полевБпс культур1. В.В.Нуждина

395. ГУП Льговская ордена " ЗНАК ПОЧЕТА " опытно-селекционная станция ВНИИСС РАСХН307720, п-о Селекционное Льговского района Курской области Телефон [phone], 93-2-36, факс 93-2-10«з " ^^ 2003г.и1. СПРАВКА

396. О ВНЕДРЕНИИ РЕЗУЛЬТАТОВ ИССЛЕДОВАНИЯ

397. Министерство сельского хозяйства Российской Федерации Ministry of Agriculture Russian Federation

398. Департамент кадровой политики и образования Department of Staff and Education394087, г. Воронеж, ул. Мичурина, 1 Тел.: 53-86-51, 53-81-33

399. К ГОСУДАРСТВЕННОЕ ОБРАЗОВАТЕЛЬНОЕ УЧРЕЖДЕНИЕ

400. Ul. Michurina, 1, Voronezh, 394087.1. Phone: 538651, 538133воронежским госыапрствЕнныйпгрлрный университет имени н. в. гпинни1. О/. 2Z 6 flq № от "

401. VORONEZH STATE AGRICULTURAL UNIVERSITYo3 20q3 г. No.Date1. СПРАВКА

402. Заведующий кафедройсе и семеноводства

403. Профессор кафедры селе: и семеноводства1. Шевченко1. Н.Т. Павлюк

404. Тип. ВГАУ. з. № 1835 2003 г. т. 3000.