Совместное культивирование видов рода Pleurotus (Fr.) P. Kumm. с дрожжами тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.02.12, кандидат биологических наук Новосёлова, Дарья Николаевна

• Новосёлова, Дарья Николаевна
• кандидат биологических наук
• 2011

Оглавление диссертации кандидат биологических наук Новосёлова, Дарья Николаевна

Список сокращений

Введение

Цель и задачи.

Глава 1. Обзор литературы.

1.1. Систематика, биология и экология видов рода Pleurotus (Fr.) P. Kumm.

1.1.1. Систематика видов рода Pleurotus (Fr.) P. Kumm.

1.1.2. Биология и экология видов рода Pleurotus (Fr.) P. Kumm.

1.2. Практическое значение видов рода Pleurotus (Fr.) P. Kumm.

1.2.1. Культивирование видов рода Pleurotus (Fr.) P. Kumm.

1.2.2. Применение грибов рода Pleurotus для утилизации отходов различных 22 отраслей промышленности.

1.2.3. Медицинские свойства грибов рода Pleurotus.

1.2.4. Летучие органические вещества, определяющие запах плодовых тел 25 грибов рода Pleurotus.

1.3. Систематика, биология и экология видов дрожжей, исследованных в работе.

1.3.1. Систематика видов дрожжей, исследованных в работе.

1.3.2. Биология и экология видов дрожжей, исследованных в работе.

1.4. Практическое значение видов дрожжей, исследованных в работе.

1.5. Совместные культуры грибов и микроорганизмов.

1.5.1. Совместные культуры грибов и микроорганизмов на различных 38 питательных средах.

1.5.2. Совместные культуры грибов и микроорганизмов, используемые в 43 промышленности.

Глава 2. Материалы и методы.

2.1. Объекты исследования.

2.2. Культивирование на агаризованных средах.

2.3. Получение плодовых тел.

2.4. Анализ аминокислотного состава плодовых тел.

2.5. Анализ летучих соединений, составляющих запах плодовых тел.

2.6. Методы микроскопирования.

2.7. Построение графиков.

2.8. Расчеты и статистическая обработка данных.

Глава 3. Изучение совместных культур вешенки и дрожжей на 59 агаризованных питательных средах.

3.1. Описание микроморфологических признаков мицелия 5 видов вешенки в 59 совместной культуре с дрожжами на голодном агаре.

3.2. Изучение взаимодействия вешенки и дрожжей при различных условиях 68 совместного культивирования на агаризованных средах.

3.2.1. Влияние концентрации суспензии дрожжей на скорость роста Р. о$1геШш 68 в совместной культуре на голодном агаре.

3.2.2. Сравнение макро-, микроморфологии и скорости роста мицелия Р. егущи 70 и Р. риЬпопапия в совместных культурах с дрожжами на различных агаризованных средах.

3.2.3. Сравнение микроморфологии мицелия вешенки в совместных культурах с 74 живыми и мертвыми клетками дрожжей.

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Совместное культивирование видов рода Pleurotus (Fr.) P. Kumm. с дрожжами»

Грибы рода Pleurotus широко распространены по всему Земному шару и занимают второе место в мире по объему культивирования в- промышленности. Исследованию1 биологии и условий культивирования видов вешенки посвящены обзоры и статьи-отечественных и зарубежных авторов (Бисько и др., 1983; Бисько, Дудка, 1987; Stamets, 2000). Вешенка богата белком, витаминами, микроэлементами, биологически активными, веществами, которые могут использоваться в пищевой и фармацевтической! промышленности, медицине и парфюмерии. Вешенка, как и другие ксилотрофные грибы, обладает высокой скоростью роста, обильно плодоносит, большинство видов неприхотливы к условиям культивирования и могут развиваться на широком спектре субстратов растительного происхождения. Грибы выращивают на соломе, растительных остатках, опилках, обрезках древесины, следовательно, производство грибов тесно связано с биологической конверсией отходов сельскохозяйственной и деревообрабатывающей промышленности (Philippoussis et al., 2000), что особенно важно для поддержания чистоты окружающей среды.

В природе вешенка обитает на различных породах живых и мертвых деревьев. Древесина состоит преимущественно из углеводов; она богата органическим углеродом, но бедна азотом, а значит, вешенка, как и все ксилотрофные грибы, развивается на древесине в условиях недостатка азота. В лабораторных условиях показана способность вешенки использовать клетки дрожжей, водорослей и бактерий, встречающихся на поверхности коры, в качестве дополнительного источника питания, а также активно захватывать нематод с помощью «ловчих» петель (Blanchette, Shaw, 1978; Hutchison, Barron, 1997; Barron, 2003). Механизмы таких взаимодействий описаны в серии работ Бэррона с соавторами. Однако большинство работ проведены на P. ostreatus и описывают совместные культуры вешенки, в основном, с бактериями на различных агаризованных средах. Крайне мало работ касается описания совместных культур вешенки с дрожжами, которые являются распространенным компонентом филлопланы и поверхности' древесины. Комплексные исследования взаимодействия различных видов Pleurotus с дрожжами на агаризованных средах и в процессе плодообразования гриба ранее не проводились.

Совместные культуры высших грибов, в том числе вешенки, и микроорганизмов используются для повышения выхода продукции биологически активных веществ мицелия (Паносян, Авакян, 1974; Экологическая роль., 1986), а также для увеличения выхода съедобной биомассы мицелия (Никитина, 2003). Свойство грибов использовать микроорганизмы в качестве источника питания представляет научный интерес для понимания взаимоотношений между различными организмами в природных условиях, а также открывает перспективу использования совместных культур съедобных мицелиальных грибов и нетоксичных для человека и животных штаммов дрожжей или бактерий в биотехнологии и грибоводстве.

Цель работы: провести морфофизиологическое исследование совместных культур пяти видов рода РкиШш и эпифитных дрожжей аскомицетного и базидиомицетного аффинитета и изучить влияние дрожжей на процесс плодоношения вешенки.

Для выполнения этой цели были поставлены следующие задачи:

1. Описать макро- и микроморфологические признаки мицелия вешенки в совместных культурах с дрожжами на различных агаризованных средах.

2. Определить из круга дрожжей пищевые предпочтения для каждого из пяти видов вешенки на агаризованных средах.

3. Изучить влияние дрожжей, определенных как пищевые предпочтения, на процесс плодоношения пяти видов вешенки.

4. Определить оптимальное сочетание объема и концентрации суспензии клеток дрожжей, вносимых в субстрат, для получения максимальной биомассы плодовых тел вешенки.

5. Провести биохимический анализ плодовых тел вешенки при совместном культивировании с дрожжами (анализ аминокислотного состава плодовых тел и спектра летучих органических веществ, определяющих запах плодовых тел).

Заключение диссертации по теме «Микология», Новосёлова, Дарья Николаевна

Выводы

1. Впервые проведено морфофизнологическое исследование совместных культур пяти видов рода Р1еиго1ш с клетками дрожжей аско- и базидиомицетного аффинитета в процессе вегетативного роста и плодообразования.

2. Выявлены отличные от монокультур признаки микроморфологии мицелия в совместных культурах видов рода Р1еиго1т с живыми клетками дрожжей на голодном агаре: специализированные структуры, обеспечивающие контакты с дрожжевыми клетками (сосочковидные выросты и коралловидные гифы) и увеличение частоты ветвления гиф мицелия в 2-8 раз.

3. Для каждого вида рода Р1еиШш определены пищевые предпочтения из круга используемых видов дрожжей. Наиболее широкий спектр пищевых предпочтений характерен для вида Р. ф'атог, наиболее узкий спектр - для вида Р. егущп.

4. Показано, что максимальная биомасса плодовых тел Р1еигоШ ф'атог и Р. оя^есЛт достигается при внесении суспензии клеток дрожжей в объеме 1,5-3% от объема субстрата в концентрации 106-108 клеток/мл.

5. Совместное культивирование видов рода РЫигоШз с дрожжами из круга пищевых предпочтений позволило увеличить выход биомассы плодовых тел вешенки в условиях климатической камеры в зависимости от вида на 22,8-108%, в условиях грибоводческого предприятия - на 52,8% (для Р ф'атог).

6. Продемонстрировано сходство в содержании общего белка и в составе аминокислот в плодовых телах Р1еиго1ив сИггпорИеаШв при совместном культивировании с клетками ЗассНаготусея сегеугягае и без них.

7. Выявлены качественные и количественные отличия в спектре летучих органических соединений, определяющих запах плодовых тел Р1еигоШз сИгторИеаШ, культивируемых совместно с БасскаготусеБ сегеугягае и без дрожжей. Только в плодовых телах, выращенных с применением дрожжей, были обнаружены 2-ноненаль, 5-метил-2-(4-пиридил)-индол, алкиламид, децен, октановая кислота, трибутилацетилцитрат. При выращивании плодовых тел совместно с дрожжами отмечено повышенное содержание 2-пентилфурана и производных индола по сравнению с контролем.

Заключение.

Биохимический анализ плодовых тел Р. сНгторИеаШ показал, что пищевая ценность плодовых тел, выращенных совместно с дрожжами & се/еушае и раздельно, была одинаковой: общее содержание белковой продукции составляло около 21%. Различий в содержании аминокислот в плодовых телах, выращенных без и с применением дрожжей, не было.

Результаты хромато-масс-спектрометрического анализа плодовых тел косвенно подтвердили данные органолептического анализа, полученные при социологическом опросе людей относительно изменения запаха грибов при выращивании их совместно с дрожжами. Наличие сладковатых «цветочных» тонов в запахе плодовых тел Р. сНгторИеШт, выращенных совместно с дрожжами, может быть обусловлено наличием октановой кислоты и повышенным содержанием производных индола, «рыбный» запах -наличием алкиламидов; усиление запаха может быть связано с содержанием трибутилацетилцитрата и повышенной концентрацией 2-пентилфурана.

Список литературы диссертационного исследования кандидат биологических наук Новосёлова, Дарья Николаевна, 2011 год

1. Бабицкая В.Г., Стахеев И.В., Костина A.M., Вадецкий Б.Ю. Образование белка смешанными культурами гриба Pénicillium digitatum 24П и дрожжей // Микробиологическая промышленность. - 1977. -№ 11. - С. 32-34.

2. Бабьева И.П. Что такое дрожжи? // Современные проблемы микологии, альгологии и фитопатологии (сборник статей). М.: МГУ - ИД «Муравей», 1998. - С. 142-144.

3. Бабьева И.П., Чернов И.Ю. Биология дрожжей. М.: Товарищество научных изданий КМК, 2004. - 221 с.

4. Барсукова Т.Н., Гарибова JI.B., Иванов А.И. Эколого-биологическая характеристика Pleurotus pulmonarius (Fr.) Quel. Il Микология и фитопатология, 1989.-Т. 23.-Вып. 1.-С. 14-19.

5. Биосинтез микроорганизмами нуклеаз и протеаз. М.: «Наука», 1979. - 294 с.

6. Бисько H.A., Бухало А.С, Вассер С.П. Высшие съедобные базидиомицеты в поверхностной и глубинной культуре. Киев: Наукова думка, 1983. - 312.

7. Бисько И.А., Дудка И.А. Биология и культивирование съедобных грибов рода вешенка. Киев: Наукова думка, 1987. - 145 с.

8. Богданов В.М. Микробиология молока и молочных продуктов. М.: Изд-во «Пищевая промышленность», 1969. 368 с.

9. Бухало A.C., Бисько H.A., Соломко Э.Ф., Билай В.Т., Митропольская Н.Ю., Поединок H.JL, Гродзинская A.A., Михайлова О.Б. Культивирование съедобных и лекарственных грибов / Под общей ред. Бухало A.C. / Киев: «Чернобыльинтеринформ», 2004. 128 с.

10. Виноградова С.П., Кушнир С.Н. Биосинтез гидролитических ферментов при совместном культивировании макро- и микромицетов // Прикладная биохимия и микробиология. 2003. - Т. 39. - № 6. - С. 573-575.

11. Гарибова Л.В., Сидорова И.И. Грибы. Энциклопедия природы России. М.: 1999. -352 с.

12. Герасименя В.П., Ефременкова О.В., Камзолкина О.В., Богуш Т.А., Соболев Л.А., Орлов А.Е., Конопля Е.Ф., Путырский Л.А., Милевич Т.И., Анисимов Д.Г.,

13. Капранов Г.Е. Препарат, влияющий на тканевой обмен, и применение штамма Pleurotus ostreatus 1137 для его получения. Патент РФ 2192873, 20.11.2002.

14. Денисова Н.П. Лечебные свойства грибов. Этномикологический очерк. СПб: Изд-во СПбГМУ, 1998. - 59 с.

15. Дворецкий M.J1. Пособие по вариационной статистике. Изд. 3-е, перераб. и доп. -М.: «Лесная промышленность», 1971. 104 с.

16. Блинов Н.П. Основы биотехнологии. СПб: Изд. фирма «Наука», 1995. - 600 с.

17. Егоров Н.С., Ландау Н.С. Биосинтез биологически активных соединений смешанными культурами микроорганизмов // Прикладная биохимия и микробиология. 1982. - Т. 18. - Вып. 6. - С. 835-849.

18. Зашеина H.A., Коваленко А.Е., Галынкин В.А., Дьяков Ю.Т., Тишенков А.Д. Основы биотехнологии высших грибов. СПб: «Проспект Науки», 2007. - 336 с.

19. Камзолкина О.В. Микроморфология и ультраструктура агарикоидных грибов на разных стадиях жизненных циклов. Мат. дис. на соискание ученой степени д.б.н. 2005. 225 с.

20. Краснопольская Л.М., Белитский И.В., Федорова Г.Б., Катруха Г.С. Pleurotus djamor. методы культивирования и1 антимикробные свойства // Микология и фитопатология. 2001. - Т. 35. - Вып. 1. - С. 56-62.

21. Лессо Т. Грибы. Определитель. М.: ООО «Издательство Астрель», 2003. - 304 с.

22. Лодыгин А.Д., Серов A.B., Рябцева А.Б. Теоретические предпосылки и технология получения производных лактозы галактоолигосахаридов // Вестник СевКавГТУ. - 2006. - № 3 (7). (Из science.ncstu.ru).

23. Мамеева О.Г., Нагорная С.С., Остапчук A.M., Подгорский B.C. Внеклеточные полисахариды дрожжей Cryptococcus albidus (Saito) Skinner // Микробиология и биотехнология. 2008. - № 1 (2). - С. 29-35.

24. Мир растений. В 7 томах. Т. 2. / Под ред. Горленко М.В. 2-е изд., перераб. - М.: Просвещение, 1991.-475 с.

25. Мишарина Т.А., Мухутдинова С.М., Жарикова Г.Г., Теренина М.Б., Крикунова Н.И. Влияние термической обработки на состав летучих компонентов белых грибов (Boletus edulis) II Химия растительного сырья. 2008. - № 3. - С. 97-101.

26. Паносян А.К. Авакян С.А. О синтезе ряда аминокислот при совместном развитии1 азотобактера и дрожжей из рода Candida и Torulopsis // Микробиология. 1974. -Т. 43. - Вып. 2. - С. 242-244.

27. Промышленная микробиология: Учебное пособие для ВУЗов / Под ред. Н.С. Егорова. М.: Высшая школа, 1989. - 688 с.

28. Решетникова И.А. Деструкция лигнина ксилотрофными макромицетами. Накопление селена и фракционирование его изотопов микроорганизмами. М., 1997.- 197 с.

29. Ризванов К. Исследование взаимоотношений Lactobacterium bulgaricum и Saccharomyces lactis II Микробиология. 1960. - Т. 29. - Вып. 4. - С. 536-543.

30. Семенов С.М. Лабораторные среды для актиномицетов и грибов. М.: Агропромиздат, 1990. - 240 с.

31. Сергеева М.Н. Грибы. М.: Изд-во «Культура и традиции», 2003. - 264 с.

32. Химия. Большой энциклопедический словарь / Гл. ред. И.Л. Клунянц. Большая Российская энциклопедия, 1998. - 792 с.

33. Храбрых O.JI., Барайщук Г.В., Kollar A., Jelkmann W. Дрожжи в борьбе с возбудителем заболевания серая гниль Botrytis cinerea II Аграрный вестник Урала, 2007,-№4.-С. 30-33.

34. Широков А.В., Актуганов Г.Э. Изучение взаимодействия бактерий-антагонистов Bacillus spp. с фитопатогенными грибами // «Биология наука XXI века»: Тезисы 7-й Пущинской школы-конференции молодых ученых. - Пущино, 14-18 апр. 2003. - С. 297-298.

35. Экологическая роль микробных метаболитов / Под ред. Д.Г. Звягинцева. М.: Изд-воМГУ, 1986.-240 с.

36. Яковлева Е.П. Совместное культивирование продуцентов биологически активных веществ с другими микроорганизмами // Прикладная биохимия и микробиология. -1983. Т. XIX. - Вып. 3. - С. 330- 346.

37. Alberts В., Johnson A., Lewis J., Raff М., Roberts К., Walter P. Molecular Biology of the Cell. 4th edition. New York: Garland Science, 2002. P. 879-964.

38. Barron G.L. Microcolonies of bacteria as a nutrient source for lignicolous and other fungi // Canadian Journal of Botany. 1988. - Vol. 66. - P. 2505-2510.

39. Barron G.L. Predatory fungi, wood decay, and the carbon cycle // Biodiversity. — 2003. — Vol. 4. P. 3-9.

40. Barron G.L., Dierkes Y. Nematophagous fungi: Hohenbuehelia, the perfect state of Nematoctonus II Canadian Journal of Botany. 1977. 55: 3054-3062.

41. Belern M.A.F., Lee B.H. Production of bioingredients from Kluyveromyces marxianus grown on whey: an alternative // Critical Reviews in Food Science and Nutrition, 1998. -38 (7): 565-598.

42. Belinky P.A., Masaphy S., Levanon D., Hadar Y., Dosoretz C.G. Effect of medium composition on l-octen-3-ol formation in submerged cultures of Pleurotus pulmonarius II Applied Microbiology and Biotechnology. 1994. - 40: P. 629-633.

43. Beltran-Garcia M.J., Estarron-Espinosa M., Ogura T. Volatile compounds secreted by the Oyster Mushroom (.Pleurotus ostreatus) and their antibacterial activities // J. Agric. Food Chem., 1997. 45 (10). P. 4049-4052.

44. Blanchette R.A., Shaw C.G. Associations among bacteria, yeasts, and Basidiomycetes during wood decay // Phytopathology. 1978. - Vol. 68. - P. 631-637.

45. Breheret S., Talou T., Rapior S., Bessiere J.-M. Monoterpenes in the Aromas of Fresh' Wild Mushrooms (Basidiomycetes) II Journal of agricultural and food chemistry. 1997. -45 (3): P: 831-836.

46. Buck J.W. In vitro antagonism of Botrytis cinerea by phylloplane yeasts // Canadian Journal of Botany. 2002. - Vol. 80. - P. 885-891.

47. Caballero R., Olguin P., Cruz-Querrero A., Gallardo F., Garcia-Garibay M., Gomez-Ruiz L. Evaluation of Kluyveromyces marxianus as baker's yeast // Food Research International, 1995. 28 (1): 37-41.

48. Carlos R., Gabor P. Biodiversity and ecophysiology of yeasts. Springer-Verlag Berlin Heidelberg, 2006. - 579 p.

49. Cheirsilp B., Shoji H., Shimizu Ii., Shioya S. Interactions between Lactobacillus kefiranofaciens and Saccharomyces cerevisiae in mixed culture for kefiran production.// Journal of Bioscience and Bioengineering. 2003. - Vol'. 96. - № 3. - P. 279-284.

50. Chen G. Studies on Extracellular Polysaccharide-Degrading Enzymes Secreted by Pleurotus Ostreatus Grown on Lupin Hull // Thesis Master Degree. Centre for bioprocessing and food technology, 1996. 228 p.

51. Cho Y.-S., Kim J.-S., Crowley D.E., Cho B.-G. Growth promotion of the edible fungus Pleurotus ostreatus by fluorescent pseudomonads // FEMS Microbiology Letters. 2003. -218: 271-276.

52. Clemen9on H. Cytology and Plectology of the Hymenomycetes // Bibliotheca Mycologica. 2004. - Vol. 199. - 488 p.

53. Combet E., Burton K.S., Eastwood D.C., Griffits G., Henderson J. Mushroom flavor biogenesis in A. bisporus II Science and cultivation of edible and medicinal fungi. Romine, Keil, Rinker and Royse (eds.) Penn State, 2004.

54. Dijkstra F.J. Submerged cultures of mushroom mycelium as sources of protein and flavour compounds. Dissertation. Delft, 1976.

55. Dijkstra F.J., Scheffers W.A., Wiken T.O. Submerged growth of the cultivated mushroom, Agaricus bisporus // Antonie van Leeuwenhoek. 1972. 38: 329-340:

56. Druvefors U.A., Passoth V., Schnurer J. Nutrient effects on biocontrol of Penicillium roqueforti by Pichia anomala J121 during airtight storage of wheat // Applied and Environmental Microbiology. 2005. - Vol. 71. - № 4. - P. 1865-1869.

57. Echavarri-Erasun C., Johnson E.A. Stimulation of astaxanthin formation in the yeast Xanthophyllomyces dendrorhous by the fungus Epicoccum nigrum II FEMS Yeast Research. 2004. - Vol. 4 (4-5). - P. 511- 519.

58. Faraco V., Palmieri G., Festa G., Monti M., Sannia G., Giardina P. A new subfamily of fungal subtilases: structural and functional analysis of a Pleurotus ostreatus member // Microbiology. 2005. - 151: P. 457-466.

59. Fredlund E., Blank L.M., Schnurer J., Sauer U., Passoth V. Oxygen- and glucose-dependent regulation of central carbon metabolism in Pichia anomala II Applied and Environmental Microbiology, 2004. 70 (10): 5905-5911.

60. Fries N., Swedjemark G. Sporophagy in hymenomycetes // Experimental mycology, 1985.-Vol. 9.-P. 74-79.

61. Grba S., Stehlik-Tomas V., Stanzer D., Vahcic N., Skrlin A. Selection of yeast strain Kluyveromyces marxianus for alcohol and biomass production on whey // Chemical and Biochemical Engineering Quarterly, 2002. 16 (1): 13-16.

62. Jong S.C., Birmingham J.M. Mushrooms as a source of natural flavor and aroma compounds // Mushroom Biology and Mushroom Products. Chinese University Press: Hong Kong, 1993. P. 345-366.

63. Hanson J.R. The chemistry of fungi. UK, Cambridge, Royal Society of Chemistry, 2008.-221 p.

64. Hu S.H., Liang Z.C., Chia Y.C., Lien J.L., Chen K.S., Lee M.Y., Wang J.C. Antihyperlipidemic and antioxidant effects of extracts from Pleurotus citrjnopileatus II Journal of Agricultural and Food Chemistry. 2006a. Vol. 54. P. 2103-2110.

65. Hu S.H., Wang J.C., Lien J.L., Liaw E.T., Lee M.Y. Antihyperglycemic effect of polysacchsaride from fermented broth of Pleurotus citrinopileatus I I Applied Microbial and Cell Physiology. 20066. Vol. 70. P. 107-113.

66. Hutchison L.J., Barron G.L. Parasitism of algae by lignicolous Basidiomycota and other fungi // Canadian Journal of Botany. 1997. - Vol. 75. - P. 1006-1 111.

67. Hutchison L.J., Barron G.L. Parasitism of yeasts by lignicolous Basidiomycota and other fungi // Canadian Journal of Botany. 1996. - Vol. 74. - P. 735-742.

68. Kirk P.M., Cannon P.F., David J.C., Stalpers J.A. Ainsworth & Bisby's Dictionary of the Fungi. 9th ed. Wallingford: CAB International, 2001. 655p.

69. Klis F.M., Boorsma A., De Groot P.W.J. Cell wall construction in Saccharomyces cerevisiae II Yeast. 2006. - 23: P. 185-202.

70. Kues U., Liu Y. Fruiting body production in basidiomycetes // Applied Microbiology and Biotechnology. 2000. 54: 141-152.

71. Kuske M., Romain A.-C., Nicolas J. Microbial volatile organic compounds as indicators of fungi. Can an electronic nose detect fungi in indoor environments? // Building and Environment. 2005.-40: 824-831.

72. Lemke G. Myzelwachstumsteste mit vier champignonstammen // Champignon, 1972. -№ 128: P. 1-5.

73. Ludovico P., Sansonetty F., Corte-Real M. Assessment of mitochondrial membrane potential in yeast cell populations by flow cytometry // Microbiology. 2001. 147. - P. 3335-3343.

74. Luo H., Mo M., Huang X., Li X., Zhang K. Coprinus comatus: A basidiomycete fungus forms novel spiny structures and infects nematode II Mycologia. 2004. - Vol. 96. - № 6.-P. 1218-1224.

75. Margaritis A., Bajpai P. Direct fermentation of D-xylose to ethanol by Kluyveromyces marxianus strains // Applied and Environmental microbiology, 1982. P. 1039—1041.

76. Nakagawa T., Nagaoka T., Miyaji T., Tomizuka N. Cold-active polygalacturonase from psychrophilic-basidiomycetous yeast Cystofilobasidium capitatum strain PPY-1 // Bioscience, biotechnology and biochemistry. 2005. - 69 (2): 419-421.

77. Nyegue M., Zollo P.H.A., Bessiere J.M., Rapior S. Volatile components of fresh Pleurotus ostreatus and Termitomyces shimperi from Cameroon 11 Journal of Essential Oil-Bearing Plants, 2003 (6). P. 153-160.

78. Okamura T., Ogata T., Minamimoto N., Takeno T., Noda H., Fukuda S., Ohsugi M. Characteristics of wine produced by mushroom fermentation // Bioscience. Biotechnology. Biochemistry. -2001.-65 (7). P. 1596-1600.

79. Pessoa JR A., Vitolo M. Inulinase from Kluyveromyces marxianus: culture medium composition and enzyme extraction // Brazilian Journal of Chemical Engineering, 1999. -16 (3): 237-245.

80. Petersson S., Schnurer J. Biocontrol of mold in high-moistuie wheat stored under airtight conditions by Pichia anomala, Pichia guilliermondii and Saccharomyces cerevisiae II Applied and Environmental Miciobiology. 1995. - Vol. 61. - P. 1027-1032.

81. Poppe J. Use of agricultuial waste materials in the cultivation of mushrooms // Science and cultivation of edible fungi. Van Griensven (ed.) Balkema, Rotterdam, 2000. P. 323.

82. Prasad K.K., Mohan S.V., Pati B.R., Sanna P.N. Immobilization of Pleurotus ostreatus 1804 on PUF cubes: Influence of mycelial growth pattern on laccase yield // Indian Jouranal of Biotechnology. 2006. - Vol. 5. - P. 84-88.

83. Rainey P.B. Effect of Pseudomonas putida on hyphal growth of Agaricus bisporus II Mycological Research. 1991. - Vol. 95. - P. 699-704.

84. Rangel-Castro J.I., Levenfors J.J., Danell E. Physiological and genetic characterization of fluorescent Pseudomonas associated with Cantharellus cibarius II Canadian Journal of Microbiology. 2002. - Vol. 48. - P. 739-748.

85. Rawlings N.D., Barrett A.J. Evolutionary families of peptidases // Biochemical Journal. -1993.-290: P. 205-218.

86. Ritschkoff A.-C. Decay mechanisms of brown-rot fungi. Technical Research Centre of Finland. Espoo, 1996. 67 p.

87. Ritschkoff A.-C., Ratto M., Buchert J., Viikari L. Effect of carbon source on the production of oxalic acid and hydrogen peroxide by brown-rot fungus Poria placenta I I Journal of Biotechnology. 1995.-40: 179-186.

88. Rodriguez Estrada A.E., Royse D.J. Pleurotus eryngii and P. nebrodensis: from the wild to commercial production // Mushroom News. Feb. 2008.

89. Ruhl M., Fischer C., Kues U. Ligninolytic enzyme activities alternate with mushroom production during industrial cultivation of Pleurotus ostreatus on wheatstraw-based substrate // Current Trends in Biotechnology and Pharmacy. 2008. 2 (4): 478-492.

90. Scbotic J., Trcek T., Popovic T., Brzin J. Basidiomycetes harbour a hidden treasure of proteolytic activity // Journal of Biotechnology. 2007. - 128: P. 297-307.

91. Silva S.O., Gomes da Costa S.M., Clemente E. Chemical composition of Pleurotus pulmonarius (Fr.) Quel, substrates and residue after cultivation // Brasilian Ai chives of Biology and Technology. -2002. Vol. 45 (4): 531-535.

92. Stamets P. Growing Gourmet and Medicinal Mushrooms. Third Edition. Ten Speed Press, Berceley. Toronto. 2000. - 574 p.

93. Tsugita A., Scheffler J.-J. A rapid method for acid hydrolysis of protein with a mixture of trifluoioacetic acid and hydrochloric acid // European Journal of Biochemistry, 2004. 124 (3): 585-588.

94. Urbonas V., Kalamees K., Lukin V. Conspectus florum agaricalium fungorum (Agaricales s.l.) Lithuaniae, Latviae et Estoniae. Vilnius: Mokslas, 1986. 138 p.

95. Velankar H., Heble M. Biotransformation of L-citronellal to L-citronellol by free and immobilized Rhodotorula minuta II Electronic Journal of Biotechnology. 2003. - Vol. 6 (2).-P. 90-103.

96. Venkateshwarlu G., Chandravadana M.V., Pandey M., Tewari R.P., Selvaraj Y. Volatile flavour compounds from oyster mushroom {Pleurotus floridd) in submerged culture // Flavour and Fragrance Journal. 2000. - 15: 320-322.

97. Wang J.C., Hu S.H., Liang Z.C., Yeh C.J. Optimization for the production of water-soluble polysaccharide from Pleurotus citrinopileatus in submerged culture and its antitumor effect // Applied Microbiology and Biotechnology. 2005a. Vol. 67. P. 759766.

98. Wang J.C., Hu S.H., Liang Z.C., Yeh C.J. Antigenotoxicity of extracts from Pleurotus citrinopileatus II Journal of the Science of Food and Agriculture. 20056. Vol. 85. P. 770-778.

99. Wasser S.P., Nevo E., Sokolov D., Timor-Tismenetsky M., reshetnikov S.V. The regulation of dietary supplements from medicinal mushrooms // International Journal of Medicinal Mushrooms. 2000 (2): 1-19.

100. Wasser S.P., Weis A.L. Medicinal properties of substances occurring in higher Basidiomycetes mushrooms: current perspectives // International Journal of Medicinal Mushrooms. 1999 (1): 31-62.

101. Wesenberg D., Kyriakides I., Agathos S.N. White-rot fungi and their enzymes for the treatment of industrial dye effluents // Biotechnology Advances. 2003. - 22: P. 161187.

102. Witzany G. Biocommunication of Fungal Organizms. Nature Precedings. 2008. (Из preceedings.nature.com)

103. Whitney K.D., Arnott H.J. Calcium oxalate crystal morphology and development in Agaricus bisporus И Mycologia. 1987. - 79(2): P. 180-187.

104. Wood W.F., Largent D.L., Henkel T.W. Headspace analysis identifies indole and 1-octen-3-ol as the "coal tar" odor of Tricholoma inamoenum II Mycological Progress. 2004.-3 (4): 325-328.

105. Wood W.F., Lefevre C. Changing volatile compounds from mycelium and sporocarp of American matsutake mushroom, Tricholoma magnivelarc II Biochemical Systematics and Ecology, 2007. Vol. 35. - P. 634-636.

106. Yamamoto Y., Osanai S., Fujiuchi S., Yamazaki K., Nakano H., Ohsaki Y., Kikuchi K. Extrinsic allergic alveolitis induced by the yeast Debaryomyces hansenii 11 European Respiratory Journal, 2002. 20. P. 1351-1353.

107. Zadrazil F., Compare G., Maziero R. Biology, cultivation and utilization of Pleurotus species // Science and cultivation of edible and medicinal fungi. Romine, Keil, Rinker and Royse (eds.) Penn State, 2004. P. 383-391.

108. Интернет-сайт ООО Кировская пищевая лаборатория http://foodstandart.ru/.

109. Интернет-сайт Министерства здравоохранения республики Беларусь http://www.minzdrav.by/med/docs/tnpa/Gigiena 231-2 2002 Sanpin Pril7.doc.

110. Интернет-сайт ООО «Экоцентр» http://ecocentr.ru/index.php?option=com content &view=article&id=6:2008-03-24-10-10-48&catid=3 :technologies&Itemid=4.

111. Интернет-сайт химической энциклопедии www.xumuk.ru.

112. Интернет-сайт Большой Советской Энциклопедии http://bse.sci-lib.com/article 084835.html.

113. Интернет-сайт энциклопедии овощеводства http://www.ovoschevodstvo.ru/.

114. Интернет-сайт энциклопедии научного бодибилдинга http://sportswiki.ru

115. Интернет-сайт American Biological Safety Association http://www.absa.org/ riskeroups/.

116. Интернет-сайт CABI (Commonwealth Agricultural Bureau International) Bioscience Databases of Fungal Names http : //www, indexfungorum. or g/.

117. Интернет-сайт http://chestofbooks.com/.

118. Интернет-сайт European Bioinformatics Institute http://www.ebi.ac.uk/.