Повышение эффективности антимикробных препаратов в отношении стафилококка в составе биопленки с помощью гидролитических ферментов тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 00.00.00, кандидат наук Байдамшина Диана Рафисовна

• Байдамшина Диана Рафисовна
• кандидат наук
• 2022

Оглавление диссертации кандидат наук Байдамшина Диана Рафисовна

СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ

ВВЕДЕНИЕ

Актуальность темы исследования

Цель и задачи исследования

Научная новизна полученных результатов

Методология и методы исследования

Достоверность результатов

Теоретическая и практическая значимость работы

Основные положения, выносимые на защиту

Апробация работы и публикации

Место выполнения работы и личный вклад автора

Связь работы с научными программами

Публикация результатов исследования

Объем и структура диссертации

1 ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

1.1 Инфекции, вызываемые бактериями Staphylococcus aureus и Staphylococcus epidermidis

1.1.1 Заболевания человека, вызываемые S. aureus

1.1.2 Заболевания, вызываемые S. epidermidis

1.2 Образование стафилококковых биопленок

1.3 Инфекции, связанные с образованием биопленок стафилококков

1.3.1 Образование биопленок на имплантатах

1.4 Проблемы ветеринарии, связанные с образованием стафилококковых биопленок

1.6 Бактериальные биопленки в пищевой промышленности

1.7 Альтернативные способы борьбы с биопленками

1.7.1 Применение наночастиц серебра

1.7.2 Бактериоцины как новые антимикробные препараты

1.7.3 Эрадикация биопленок эфирными маслами

1.7.4 Ферментативное разрушение бактериальных биопленок

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНАЯ ЧАСТЬ

2 МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ

2.1 Вещества, использованные в работе

2.2 Методы работы с бактериальными клетками

2.2.1 Штаммы

2.2.2 Среды и условия культивирования

2.2.3 Определение способности бактерий образовывать биопленки (с модификациями)

2.2.4 Определение минимальной подавляющей и бактерицидной концентраций

2.2.5 Количественное определение связанного Конго красного в жидкости

2.2.6 Оценка содержания клеточных и внеклеточных компонентов биопленки

2.2.7 Определение эффективности антимикробных веществ против бактерий

в составе биопленок

2.2.8 МТТ анализ жизнеспособности клеток

2.2.9 Подсчет КОЕ

2.3 Определение цитотоксичности

2.4 Методы микроскопии

2.4.1 Конфокальная лазерная сканирующая микроскопия

2.4.2 Сканирующая электронная микроскопия

2.4.3 Атомно-силовая микроскопия

2.5 Создание модели раневых повреждений кожи и изучение скорости заживления и микробной деконтаминации

2.5.1 Условия содержания животных

2.5.2 Создание раневых повреждений кожи у крыс

2.5.3 Распределение животных по группам

2.5.4 Оценка заживления ран и микробной деконтаминации

2.5.5 Гистологический анализ

2.6 Обработка изображений и статистический анализ

3 РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЙ

3.1 Ферментативная деструкция биопленок стафилококка гидролитическими ферментами

3.1.1 Сравнительный анализ деструкции стафилококковых биопленок различными гидролазами

3.1.2 Определение концентраций фицина, папаина и препарата Лонгидаза®, обеспечивающих двухкратное снижение биомассы биопленки

3.1.3 Сканирующая электронная и атомно-силовая микроскопия стафилококковых биопленок

3.1.4 Деструкция фицином, папаином и препаратом Лонгидаза® биопленок, образованных клиническими изолятами золотистого стафилококка

3.1.5 Разрушение смешанных бактериальных биопленок фицином, папаином и лекарственным препаратом Лонгидаза®

3.2 Исследование возможности повышения эффективности антибиотиков в отношении Staphylococcus aureus и Staphylococcus epidermidis в составе биопленок

3.3 Эффект иммобилизованных на хитозане фицина и папаина на биопленки стафилококка

3.4.1 Эффект сочетанного действия различных групп антибактериальных препаратов с иммобилизованными на хитозане фицином и папаином на биопленки стафилококка

3.5 Определение цитотоксичности соединений

3.6 Влияние ферментов, хитозана и иммобилизованного на хитозане фицина на заживление кожнораны у крыс

3.6.1 Влияние ферментов, хитозана и иммобилизованного на хитозане фицина на восстановление структуры тканей

3.6.2 Влияние фицина в комплексе с антибактериальными препаратами на заживление

4 ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

СПИСОК ИСПОЛЬЗОВАННЫХ ИСТОЧНИКОВ

СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ

БМ Питательная среда

ДМСО Диметилсульфоксид

КОЕ Колонии образующая единица

МБК Минимальная бактерицидная концентрация

МЛУ Множественная лекарственная устойчивость

МПК Минимальная подавляющая концентрация

AGEs Конечные продукты расширенного гликирования

NPs Наночастицы серебра

Tsc Тиосемикарбазид

ЭМ Эфирные масла

ДНКаза 1 Дезоксирибонуклеаза

LS Лизостафин

PIA Polysaccharide intercellular adhesion (полисахаридный

межклеточный адгезин)

PNAG поли-Ы-ацетилглюкозамина

CFS Бесклеточный супернатант

DFU Диабетические язвы стопы

ГХ-МС Газовая хроматография—масс-спектрометрия

QSI Ингибиторы кворум-сенсинга

LB Питательная среда Лурия-Бертани

LS Лизостафин

NPs Наночастицы серебра

MRSA Метициллинрезистентный золотистый стафилококк

MSCRAMMs Поверхностные компоненты, распознающие адгезивные молекулы матрикса

ВВЕДЕНИЕ

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Повышение эффективности антимикробных препаратов в отношении стафилококка в составе биопленки с помощью гидролитических ферментов»

Актуальность темы исследования

Существование в прикрепленной к различным поверхностям форме является преимущественным для большинства микроорганизмов, как составляющих нормальную микрофлору человека и животных, так и патогенных. Бактерии прикрепляются к слизистым оболочкам, зубам, коже и поверхностям медицинских приспособлений (катетеров, имплантатов) и формируют биопленки - трехмерные сообщества микроорганизмов, которые окружены внеклеточным матриксом, также называемым внеклеточным полимерным веществом (extracellular polymeric substance - EPS) [Roberts et al, 2015; Baishya, Banerjee, 2020]. Матрикс биопленок состоит из полисахаридов, внеклеточной ДНК (вкДНК) и/или белков [Pinto et al, 2019; Dengler et al., 2015]. Его состав и структура, а также биохимические и физиологические процессы в клетках, приводящие к развитию биопленки, зависят от множества факторов, таких как природа поверхности, на которой образуется биопленка, доступность различных питательных веществ, способ дыхания, и других параметров локальной микросреды [Kranjec et al., 2021].

Благодаря диффузному барьеру, создаваемому матриксом, в составе биопленки многократно повышается устойчивость бактериальных клеток к агрессивным факторам окружающей среды, таким как ионы тяжелых металлов, антимикробные вещества, иммунная система организма хозяина. Поэтому формирование биопленки патогенными бактериями значительно усложняет процесс их эрадикации и удлиняет сроки лечения заболевания. Более того, от биопленки отслаиваются скопления бактериальных клеток, которые также оказываются защищены от внешних факторов, и, переносясь в новые ниши, приводят к их колонизации и возникновению рецидивирующих хронических инфекций [Coenye, 2010; Hurlow et al., 2015; Vestby et al., 2020].

Условно-патогенные бактерии Staphylococcus aureus и Staphylococcus

epidermidis являются распространенными комменсалами человека. В

условиях слабого или подавленного иммунитета эти бактерии активно

7

развиваются и приводят к развитию тяжелых инфекционных заболеваний, часто со смертельным исходом [Friedrich, 2019; Monegro et al., 2020; Kranjec et al, 2021]. Так, S. aureus и S. epidermidis являются наиболее частой причиной внутрибольничных инфекций, связанных с образованием биопленки на поверхностях биомедицинских имплантатов, протезов и катетеров [Coenye, 2010; Roberts et al., 2015; Sharahi et al, 2019]. Также бактериальные биопленки возникают на поверхности ран, таких как ожоги, венозные язвы на ногах, пролежни и диабетические язвы стопы [Wu et al,

2019]. Поскольку иммунный ответ организма-хозяина и обычные противомикробные препараты часто оказываются неэффективными против бактерий в составе биопленки, возникает хроническое воспаление [Coenye, 2010; Sharahi et al, 2019].

Инфекции, связанные с биопленками, могут быть результатом колонизации не одним, а несколькими видами бактерий [Nair et al., 2014; Brunson et al., 2022]. Одним из таких примеров являются инфекции, связанные с муковисцидозом, где обнаружены смешанные биопленки, состоящие из S. aureus и Pseudomonas aeruginosa. Помимо муковисцидоза, существует ряд иных инфекций, связанных с полимикробными биопленками, в которых золотистый стафилококк представлен в сообществе с другими патогенными бактериями, например, инфекции мочевыводящих путей (S. aureus - E. faecalis, S. aureus - E. coli) [Nair et al., 2014; Banerjee et al.,

2020], катетер-ассоциированные инфекции (S. aureus - E. faecalis, S. aureus -E. coli, S. aureus - K.pneumoniae, S. aureus - P. aeruginosa) [Hamzah et al., 2020].

В последние годы уже существует понимание необходимости

учитывать сложности лечения инфекций, ассоциированных с образованием

биопленок. Следовательно, требуется разработка подходов, направленных на

повышение чувствительности бактерий в составе биопленок к

антимикробной терапии [Xu et al., 2021]. Так, для решения данной задачи

предлагается использовать наночастицы серебра (NPs), хорошо известные

8

своим антимикробным потенциалом и способностью уменьшать объем и биомассу бактериальной биопленки [de Faria et al., 2014; Fabrega et al., 2011; Chhibber et al., 2017; Montazeri et al., 2020]. Еще одним инструментом могут служить эфирные масла, которые действуют на бактериальную биопленку и способны многократно повышать эффективность ряда антибиотиков, таких как норфлоксацин, оксациллин и гентамицин, хотя механизм потенцирования остается неизвестным [Rosato et al., 2020]. Также в качестве альтернативных антимикробных препаратов активно исследуются бактериоцины, которые оказывают бактерицидное действие, вызывая повреждение мембраны и последующую гибель клеток [Hong et al., 2018]. Кроме того, были описаны синтетические производные 2(5Я)-фуранона, которые способствуют ингибированию образования биопленок грамположительных бактерий [Тризна, 2019]. Однако, несмотря на большое количество предложенных подходов для деструкции биопленок стафилококка, в настоящее время нет общепринятого эффективного инструмента.

Ферментативная деструкция матрикса биопленок является одним из привлекательных подходов к терапии благодаря таким свойствам ферментов, как биоразлагаемость, низкая токсичность в отношении клеток человека и отсутствие развития резистентности к ним у бактерий [Torres et al., 2011; Huang et al., 2014; Bulonza, 2022].

Матрикс биопленок стафилококков состоит из полисахаридов,

внеклеточной ДНК (вкДНК), поли-Ы-ацетилглюкозамина (PNAG) и белков

[Pinto et al., 2019; Dengler et al., 2019]. При этом PNAG и белки являются

основными составляющими биопленок стафилококка. В ряде экспериментов

была показана эффективность протеаз - протеиназы К, трипсина и

панкреатина для деструкции биопленок стафилококка [Coughlan et al., 2016;

Kranjec et al., 2021; Mahdi, Hasan, 2022]. Гликозидгидролаза дисперсин Б

была эффективна в отношении биопленок, содержащих большое количество

PNAG, которые обычно устойчивы к протеазам [Chaignon et al., 2007; Tuck et

al., 2022]. Растительная протеаза папаин способна подавлять образование

9

биопленок метициллин-резистентных штаммов стафилококков путем предотвращения первоначального связывания бактерий с различными поверхностями за счет разрушения фимбрий [Mohamed et al. 2018; Sharahi et al, 2019].

Несмотря на перспективность применения, ферменты обладают рядом недостатков, такими как низкая стабильность при хранении и подверженность деградации протеолитическими ферментами организма. Одним из решений данной проблемы является иммобилизация ферментов, которая позволяет повысить их стабильность в широких пределах рН, температуры, растворителей, загрязнения и примесей, а также дает возможность включения в перевязочный материал. Одной из эффективных водонерастворимых подложек для иммобилизации ферментов является хитозан, продукт деацетилирования хитина. Хитозан является биоразлагаемым, биосовместимым, нетоксичным, гидрофильным, дешевым носителем [Nunes et al., 2021] и обладает антибактериальными свойствами [Kulikov et al., 2009].

Цель и задачи исследования

Целью работы было выявить гидролитические ферменты, приводящие к максимальной деструкции биопленок стафилококка, и обосновать целесообразность их применения в растворимой и иммобилизованной форме для терапии наружных инфекций, ассоциированных с образованием бактериальной биопленки.

В работе решались следующие задачи:

1) Провести сравнительную оценку деструкции биопленок S. aureus и S. epidermidis, а также двувидовых биопленок, образованных S. aureus и рядом наиболее часто встречающихся ассоциантов, различными гидролитическими ферментами и определить наиболее эффективные препараты.

2) Охарактеризовать степень повышения эффективности антимикробных препаратов в отношении клеток стафилококков в составе биопленки при сочетанном действии антимикробных препаратов с гидролитическими ферментами.

3) Оценить возможность использования папаина и фицина, иммобилизованных на матрице хитозана, для разрушения матрикса стафилококковых биопленок, и определить степень повышения эффективности антимикробных препаратов в их присутствии в отношении стафилококков, погруженных в биопленку.

4) Получить модель инфицированного повреждения кожи у крыс и оценить на данной модели влияние фицина в растворимой и иммобилизованной на хитозане формах на эффективность антибиотикотерапии и скорость ранозаживления.

Научная новизна полученных результатов

В ходе выполнения работы впервые показано, что протеолитические ферменты фицин и папаин, а также коньюгат гиалуронидазы с полиоксидонием (препарат Лонгидаза®) способны разрушать матрикс стафилококковых биопленок. При этом остаточная биопленка составляет 2050% от исходной после 24 ч инкубации с данными ферментами с конечными концентрациями 1 мг/мл. Фицин и папаин в 2 раза снижают биомассу двувидовых биопленок S. aureus - E. coli и S. aureus - E. faecalis. Препарат Лонгидаза® в концентрации 750 МЕ/мл значимо снижает биомассу двувидовых бактериальных биопленок S. aureus - E. coli, S. aureus -E. faecalis, S. aureus - P. aeruginosa, и в меньшей степени разрушает биопленку S. aureus - K. pneumoniae.

Сочетанное применение протеаз с антимикробными препаратами

снижает в 2-8 раз концентрацию ципрофлоксацина, гентамицина и хлорида

бензалкония, необходимую для уменьшения на 3 порядка количества КОЕ

бактерий в составе биопленки (условие терапевтического эффекта). Препарат

11

Лонгидаза® способен потенцировать активность цефуроксима в отношении биопленок золотистого стафилококка (снижение МБК достигает 16 раз).

В работе впервые показано, что иммобилизованные на среднемолекулярном хитозане (М = 200 кДа) фицин и папаин приводят к разрушению стафилококковых биопленок и повышают эффективность антимикробных препаратов при сочетанном применении.

Установлено, что растворимая и иммобилизованая форма фицина способна повышать скорость заживления и очищения кожной раны у крыс при применении как отдельно, так и в комплексе с антибактериальными средствами. При этом применение иммобилизованного на хитозане фицина приводит к формированию структуры коллагена, по плотности и дисперсии тензора близкого к нативной ткани.

Методология и методы исследования

Для решения поставленных задач применяли комплекс микробиологических, биохимических и гистологических методов исследования. Для исследования структуры бактериальных биопленок применяли методы подсчета КОЕ и микроскопии (конфокальная лазерная сканирующая микроскопия, сканирующая электронная микроскопия). Работы с лабораторными животными проводили в соответствии с соблюдением Международных рекомендаций Европейской конвенции по защите позвоночных животных, используемых при экспериментальных исследованиях (Страсбург, 1986). Проведение исследования одобрено Локальным этическим комитетом Казанского (Приволжского) федерального университета (протокол № 14 от 08.02.2019 г.).

Достоверность результатов

Достоверность полученных результатов подтверждается большим

количеством биологических повторов, проведенных с использованием

современных и общепризнанных методов, применяемых на сегодняшний

12

день в лабораторной практике, и выполненных на современном оборудовании. Выносимые на защиту положения диссертации опубликованы в рецензируемых отечественных и зарубежных журналах, и представлены на всероссийских и зарубежных конференциях.

Теоретическая и практическая значимость работы

Полученные в ходе исследования результаты имеют как фундаментальный, так и практический интерес. Полученные в работе результаты расширяют теоретические знания об особенностях влияния различных ферментов на моно- и двувидовые биопленки, образованные стафилококками и другими условно-патогенными бактериями.

Показанные в ходе исследования деструкция фицином, папаином и препаратом Лонгидаза® биопленок, образованных S. aureus и S. epidermidis, а также двувидовых биопленок золотистого стафилококка с E. coli, E. faecalis, P. aeruginosa, K. pneumoniae, а также потенцирование антимикробных препаратов в отношении бактерий в составе данных биопленок при сочетании с данными ферментами, является теоретической основой для создания комплексных препаратов и принципов лечения для терапии наружных инфекций, ассоциированных с образованием биопленок. При этом, так как препарат Лонгидаза® разрешен к использованию в виде раствора и суппозиториев, данный фермент может быть использован для разрушения биопленок стафилококка в урогенитальном тракте.

Иммобилизованный на хитозане фицин и его растворимая форма, которые способствуют ранозаживлению и снижению микробной обсемененности кожных ран, представляют интерес для включения в перевязочные материалы для ускорения заживления ран, предотвращая их биообрастание и повышая эффективность антимикробного лечения инфицированных ран.

Таким образом, полученные в работе результаты могут быть

рекомендованы при разработке новых подходов для терапии инфекций,

13

ассоциированных с образованием бактериальных биопленок, и соответствует п. 20. в Стратегии научно-технического развития Российской Федерации (переход к персонализированной медицине, высокотехнологичному здравоохранению и технологиям здоровьесбережения, в том числе за счет рационального применения лекарственных препаратов (прежде всего антибактериальных), а также п.5 Стратегии предупреждения распространения антимикробной резистентности.

Основные положения и выводы диссертационного исследования представляют также фундаментальный интерес и могут быть использованы при разработке курсов «Общая микробиология», «Медицинская микробиология».

Основные положения, выносимые на защиту

• Растительные протеиназы фицин и папаин, а также препарат Лонгидаза® разрушают матрикс биопленок, образованных S. aureus и S. epidermidis, а также двувидовых биопленок золотистого стафилококка с E. coli, E. faecalis, P. aeruginosa, K. pneumoniae.

• Протеолитические ферменты фицин и папаин в растворимой и иммобилизованной на хитозане формах снижают МБК ципрофлоксацина, гентамицина и хлорида бензалкония до 8 раз в отношении клеток стафилококков, погруженных в матрикс биопленки.

• Растворимый и иммобилизованный на хитозане фицин повышает скорость заживления ран и микробной деконтаминации в модели инфицированного повреждения кожи у крыс. Обработка ран иммобилизованным на хитозане фицином приводит к формированию структуры коллагена, по плотности и дисперсии тензора близкого к нативной ткани.

Апробация работы и публикации

Материалы диссертационной работы представлены на 17 международных и российских конференциях, таких как Международная Пущинская школа-конференция молодых ученых «Биология наука XXI века» (Пущино, 2014, 2015, 2016); Международная научно-практическая конференция "Постгеномные методы анализа в биологии, лабораторной и клинической медицине" (Казань, 2014, 2018); Всероссийская школа-конференция студентов, аспирантов и молодых ученых «Материалы и технологии XXI века» (Казань, 2014, 2021); Международная конференция студентов, аспирантов и молодых учёных «Ломоносов» (Москва, 2017); Международная школа-конференция студентов, аспирантов и молодых ученых «Биомедицина, материалы и технологии XXI века» (Казань, 2015); III Международная школа-конференция студентов, аспирантов и молодых ученых «Материалы и технологии XXI века» (Казань, 2018); Всероссийская с международным участием школа-конференция молодых ученых «Биосистемы: организация, поведение, управление» (Нижний Новгород, 2019, 2020, 2021); II Всероссийский молодежный научный форум «Наука будущего - Наука молодых) (Казань, 2016); Международная научно-практическая конференция «Биотехнология: наука и практика» (Ялта, 2020); Научное собрание Европейского общества клинических исследований, онлайн собрание (2020, 2021).

Место выполнения работы и личный вклад автора

Работа выполнена на кафедре генетики и в научно-исследовательской

лаборатории «Молекулярная генетика микроорганизмов» Института

фундаментальной медицины и биологии ФГАОУ ВО Казанский

(Приволжский) федеральный университет. Непосредственный вклад

соискателя совместно с научным руководителем направлен на формулировку

цели и постановку задач исследований. Автором диссертации выполнена

основная экспериментальная часть работы, анализ результатов и

15

формулировка выводов. Публикации статей проводились совместно с соавторами.

Иммобилизация ферментов на хитозанах проводилась сотрудниками Воронежского государственного университета под руководством проф. В.Г. Артюхова.

Конфокальная лазерная сканирующая микроскопия проводилась в сотрудничестве с сотрудниками научно-исследовательской лаборатории «Бионанотехнологии» на базе центра коллективного пользования Казанского (Приволжского) федерального университета «Аналитическая микроскопия». Сканирующая электронная микроскопия проводилась сотрудниками центра коллективного пользования Лимнологического Института СО РАН.

Экспериментальная часть на моделях in vivo проводилась на базе НОЦ Фармацевтики «Отдел доклинических исследований» совместно с М.Н. Агафоновой.

Подготовка гистологических препаратов проведена доцентом кафедры Зоологии и общей биологии Института фундаментальной медицины и билогии КФУ А.Г. Порфирьевым. Обработка гистологических изображений по направлению ориентации коллагена проводилась к.ф.-м.н., доцентом Института математики и механики им. Н.И. Лобачевского КФУ О.А. Саченковым.

Связь работы с научными программами

Работа выполнена в рамках гранта РФФИ 19-34-90061 Аспирант (20192021), РНФ 15-14-00046 (2015-2017), при поддержке стипендии Президента Российской Федерации (2019-2021), в рамках Программы повышения конкурентоспособности Казанского (Приволжского) федерального университета и Программы стратегического академического лидерства «Приоритет 2030» Министерства науки и высшего образования Российской Федерации.

Публикация результатов исследования

По материалам работы опубликовано 7 статей в рецензируемых журналах, индексируемых в базах РИНЦ, Web of Science и Scopus.

Объем и структура диссертации

Диссертационная работа представлена в 154 страницах, содержит 25 рисунков и 3 таблицы, список литературы содержит 295 библиографических источников.

1 ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ 1.1 Инфекции, вызываемые бактериями Staphylococcus aureus и Staphylococcus epidermidis

1.1.1 Заболевания человека, вызываемые S. aureus

Золотистый и эпидермальный стафилококки (Staphylococcus aureus и

Staphylococcus epidermidis) считаются оппортунистическими патогенами,

которые способны вызывать большое количество тяжелых инфекционных

заболеваний, при этом нередко являясь частью нормальной микрофлоры

человека. Так, здоровые люди могут быть как постоянными (около 20%), так

и периодическими носителями (около 60%) S. aureus. Уровень

инфицирования повышается у пациентов, находящихся на гемодиализе,

потребителей запрещенных инъекционных препаратов, пациентов

хирургического профиля, а также у пациентов с инсулинозависимым или

плохо контролируемым диабетом [Moreillon et al., 2005].

Все более распространенными становятся внутрибольничные

инфекции, опосредованные штаммами MRSA, которые обычно вызывают

заболевания кожи и мягких тканей [Chambers, 2001; Lee et al., 2018].

Национальная система надзора США за нозокомиальными инфекциями

установила, что 60% внутрибольничных изолятов S. aureus

метициллинрезистентны (MRSA). У госпитализированных пациентов,

инфицированных S. aureus, риск внутрибольничной смертности в пять раз

выше по сравнению со стационарными пациентами, не колонизированными

данными микроорганизмами [Noskin, et al., 2005; Cascioferro et al., 2021].

Внутрибольничные метициллин резистентные штаммы стафилококка

способны вызывать различные кожные заболевания, постгриппозные

пневмонии, некротизирующий фасциит, пиомиозит, различные бактериемии

и синдром Уотерхауса-Фридериксена [Naimi et al., 2003; Lee et al., 2018].

S. aureus, опосредованно вырабатывая токсины, также может вызывать

синдром токсического шока и стафилококковый синдром ошпаренной кожи.

Лечение стафилококкового ожога кожи часто требует внутривенного

18

введения антибиотиков и дренирования поражений, которые являются следствием инфицирования штаммами, продуцирующими токсины [Kaplan, 2005; Silvestre, Vyas, 2022]. Синдром токсического шока проявляется в виде лихорадки, гипотензии, макулярной сыпи, которая позже десквамируется, нарушая функции многих органов.

Еще одним заболеванием, вызываемым S. aureus является диабетическая язва стопы. У пациентов с диабетом изменена функция полиморфноядерных клеток и нарушены фагоцитоз, хемотаксис и бактерицидная активность (связанные как с неокислительными, так и с окислительными механизмами), которые более очевидны при наличии высокой гипергликемии [Lecube, et al., 2011]. Определение микробиоты диабетической стопы подразумевает возможность отличить ее от микробиоты кожи, связанной с другими клиническими состояниями. По сравнению со стопами мужчин, не страдающих диабетом, у мужчин с диабетом наблюдалось увеличение S. aureus и увеличение бактериального разнообразия [Malone, et al., 2017; Verbanic, et al., 2020].

S. aureus ассоциируется с различными инфекциями кожи и мягких тканей, включая фолликулит, импетиго, фурункулы, карбункулы и пр. [Taylor, Unakal, 2021]. Лечение зависит от степени поражения, например, при небольших локализованных поражениях может потребоваться только уход за раной, однако при поражениях средней тяжести применяют антибиотики короткими курсами (до 14 дней). Крупные карбункулы или локализованные абсцессы требуют разреза и дренирования. В связи с растущим беспокойством по поводу распространения внутрибольничных MRSA, бактерии из гнойных поражений, требующих системной терапии, должны быть выделены в чистые культуры для дальнейшего проведения анализа штаммов на чувствительность к антимикробным

препаратам [Cascioferro et al., 2021].

Бактериемия S. aureus может привести к ряду осложнений, включая

инфекционный эндокардит, сепсис или метастатические очаги инфекции.

19

Примерно у 12% пациентов с бактериемией S. aureus развивается инфекционный эндокардит [Fowler et al., 2003]. Трансэзофагеальная эхокардиография превосходит трансторакальную эхокардиографию в диагностике перивальвулярного абсцесса, поражения протезированного клапана и распознавании небольших вегетаций. Трансторакальная эхокардиография помогает установить диагноз инфекционного эндокардита и предсказать серьезные внутрисердечные осложнения [Fowler et al., 1997; Carlsona et al., 2022].

В 2001 году руководство Американского общества инфекционных болезней рекомендовало удалять нетуннелированные центральные венозные катетеры, осложненные бактериемией S. aureus. Туннелированный (например, катетер Хикмана) или имплантируемое устройство следует удалить, если на месте выхода или вдоль туннеля есть нагноение или эритема, признаки карманной инфекции или если он связан с осложненной глубоко расположенной инфекцией. При оценке катетер-ассоциированных инфекций кровотока, рекомендуется использовать чреспищеводную эхокардиографию [Carlsona et al., 2022]. При отсутствии эндокардита, септического флебита или глубоко расположенной инфекции рекомендуется 14-дневная системная антимикробная терапия. Попытка спасти катетер у пациентов с неосложненными инфекциями должна включать антибиотикотерапию (при этом просвет катетера заполняется высокой концентрацией антибиотиков на несколько часов или дней) и двухнедельную парентеральную антимикробную терапию. Катетер должен быть удален при наличии стойкой бактериемии в течение 72 и более часов терапии, клиническом ухудшении или рецидиве бактериемии [Mennel et al., 2001; Lopez-Cortes et al., 2020].

S. aureus является наиболее часто выделяемым микроорганизмом при остеомиелите, и более одной трети этих изолятов могут быть MRSA [Lobati et al., 2001; Wu et al., 2022]. Лечение остеомиелита, вызванного S. aureus,

должно включать, по крайней мере, четыре-шесть недель антимикробной терапии [Bamberger, Boyd, 2005; Wu et al., 2022].

Легочные инфекции, опосредованные S. aureus могут быть вызваны гематогенным распространением или аспирацией. Пневмония, вызванная S. aureus, чаще возникает после гриппа, а также описаны случаи обнаружения MRSA, связанные с наличием у пациентов лейкоцидина Пантона-Валентина. Результаты рентгенографии грудной клетки могут иметь различную картину: от локализованной консолидации до абсцесса и многодолевых диффузных инфильтратов. В результате распространения местной пневмонии может возникнуть эмпиема. В таком случае, терапия включает дренирование грудной клетки трубкой, иногда требуется тораскопическое или открытое дренирование [Colice et al., 2000; Pickens, Wunderink, 2022].

1.1.2 Заболевания, вызываемые S. epidermidis

Staphylococcus epidermidis является наиболее часто выделяемым представителем группы коагулазоотрицательных стафилококков. Эта группа диагностически отличается от S. aureus неспособностью продуцировать коагулазу. Вместе с редко встречающимися коагулазоотрицательными стафилококками, S. epidermidis колонизирует кожу и слизистые оболочки тела человека и составляет большую часть нормальной бактериальной флоры этой среды обитания. Однако S. epidermidis требует предрасположенного хозяина, чтобы превратиться из нормального обитателя человеческой кожи в инфекционного агента, и поэтому его однозначно следует назвать оппортунистическим [Friedrich, 2019].

В отличие от S. aureus, S. epidermidis обычно не вызывает пиогенных инфекций у некомпрометированных пациентов, единственным исключением является эндокардит нативного клапана [Monegro et al., 2020]. Это связано с тем, что арсенал его токсинов значительно меньше по сравнению со S. aureus.

Однако, был выделен S. epidermidis, несущий ген, кодирующий лейкоцидин Пантона-Валентайна, который является одним из наиболее важных факторов вирулентности у S. aureus, и было показано, что он способен вызывать тяжелую кожную инфекцию [Halaji et al., 2017].

Список литературы диссертационного исследования кандидат наук Байдамшина Диана Рафисовна, 2022 год

СПИСОК ИСПОЛЬЗОВАННЫХ ИСТОЧНИКОВ

1) Максименя, Г. Г. Клинико-фармакологическая характеристика препаратов для обработки ран [Текст] / Г. Г. Максименя // Новые технологии в медицине. - 2014. - 105-115.

2) Tарасов, А. Ю. Основы токсикологии [Текст]/ А. Ю. Тарасов, С. Б. Белогоров, Д. В. Марченко // Учебное пособие для студентов. - 2015. - С.1-57.

3) Тризна, Е. Ю. Влияние in vitro изолированного и сочетанного с антибактериальными средствами применения бовгиалуронидазы азоксимер на целостность бактериальной биопленки и жизнеспосоность микроорганизмов [Текст] / Е. Ю. Тризна, Д. Р. Байдамшина, А. А. Виницкий, А. Р. Каюмов // Экспериментальная и клиническая фармакология. - 2020. -Т.83. - №.2. - С.38-44.

4) Шарафутдинов, И. С. Антимикробный эффект производных 2(5Н)-фуранона в отношении грамположительных бактерий [Текст]: дис. ... канд. биол. наук: 03.02.03: защищена 29.08.2019/ Автор И. С. Шарафутдинов. - Казанский федеральный университет, 2019. - 124с.

5) Abraham, N.M. Staphylococcus aureus clumping factor B mediates biofilm formation in the absence of calcium [Review] / N.M. Abraham, K.K. Jefferson // Microbiology. - 2012. - V.158. - P.1504-1512.

6) Achmit, M. In vitro antibacterial and biofilm inhibitory activity of the sawdust essential oil of Tetraclinis articulata (vahl) against catheter-associated Staphylococcus aureus clinical isolates [Text] /M. Achmit, N. Aoussar, F. Mellouki, R. A. Mhand, M. D. Ibanez, M.A. Blazquez, M. Akssira, K. Zerouali, N. Rhallabi // Current Research in Biotechnology. - 2021. - V.3. - P.1-5.

7) Acosta, A. T. Mastites em pequenos ruminantes no Brasil [Text] / L. B. G. Silva, E. S. Medeiros, J. W. Pinheiro, R. A. Mota // Pesquisa Veterinaria Brasileira. - 2016. - V.36. - P.565-573.

8) Akira, S. Pathogen recognition and innate immunity [Review] / S.

Akira, S. Uematsu, O. Takeuchi // Cell. - 2006. - V.124. - P.783-801.

118

9) Aljaafari, M. Essential Oils: Partnering with Antibiotics. In Essential Oils-Oils Nature [Text] / M. Aljaafari, M. S. Alhosani, A. Abushelaibi, K. S. Lai,

E. Lim, S.H. Capter // IntechOpen. - 2019.

10) Alma, M. H. Screening chemical composition and in vitro antioxidant and antimicrobial activities of the essential oils from Origanum syriacum L. growing in Turkey [Text] / M. H. Alma, A. Mavi, A. Yildirim, M. Digrak, T. Hirata // Biol Pharm Bull. - 2003. - V.26. - P.1725-1729.

11) Al-Shuneigat, J. Effects of wild Thymus vulgaris essential oil on clinical isolates biofilm-forming bacteria [Text] / J. Al-Shuneigat, S. Al-Sarayreh, Y. Al-Saraireh, M. Al-Qudah, I. Al-Tarawneh // IOSR-JDMS. - 2014. - V.1. -P.62-66.

12) Amankwah, S. Bacterial Biofilm Destruction: A Focused Review On The Recent Use of Phage-Based Strategies With Other Antibiofilm Agents [Text] / S. Amankwah, K. Abdella, T. Kassa // Nanotechnol Sci Appl. - 2021. - V.14. -P.161-177.

13) Ames, J. M. Determination of N epsilon-(carboxymethyl)lysine in foods and related systems [Text] / Annals of the New York Academy of Sciences. - 2008. - V.1126. - №.1. - P.20-24.

14) Anderson, J. M. Future challenges in the in vitro and in vivo evaluation of biomaterial biocompatibility [Text] / J. M. Anderson // Regen. Biomater. -2016. - V.3. - P.73-77.

15) Angoorani, P. Dietary consumption of advanced glycation products and risk of metabolic syndrome / P. Angoorani, H. S. Ejtahed, P. Mirmiran, S. Mirzaei,

F. Azizi //International journal of food sciences and nutrition. - 2016. - V.67. -№.2. - P.170-176.

16) Arciola, C. R. Biofilm formation in Staphylococcus implant infections. A review of molecular mechanisms and implications for biofilm-resistant materials [Review] / C.R. Arciola, D. Campoccia, P. Speziale, L. Montanaro, J.W. Costerton // Biomaterials. - 2012. - V. 33. - P.5967-5982.

17) Arciola, C. R. Biofilm-based implant infections in orthopaedics [Review] / C.R. Arciola, D. Campoccia, G.D. Ehrlich, L. Montanaro // Adv. Exp. Med. Biol. - 2015. - V.830. - P.29-46.

18) Arciola, C. R. Etiology of implant orthopedic infections: a survey on 1027 clinical isolates [Review] / C.R. Arciola, Y.H. An, D. Campoccia, M.E. Donati, L. Montanaro // Int. J. Artif. Organs. - 2005. - V.28. - P.1091-1100.

19) Arciola, C.R. Implant infections: adhesion, biofilm formation and immune evasion [Review] / C.R. Arciola, D. Campoccia, L. Montanaro, // Nature Reviews Microbiology. - 2018. - V.16. - P.397-409.

20) Assar, S. H. Determination of N e-(carboxymethyl) lysine in food systems by ultra performance liquid chromatography-mass spectrometry [Text] / S. H. Assar, C. Moloney, M. Lima, R. Magee, J. M. Ames // Amino acids. - 2009. -V.36. - №.2. - P.317-326.

21) Atkin, K.E. A different path: Revealing the function of staphylococcal proteins in biofilm formation [Review] / K.E. Atkin, S.J. Macdonald, A.S. Brentnall, J.R. Potts, G.H. Thomas // FEBS Lett. - 2014. - V.588. - P.1869-1872.

22) Baelo, A. Disassembling bacterial extracellular matrix with DNase-coated nanoparticles to enhance antibiotic delivery in biofilm infections [Text] / A. Baelo, R. Levato, E. Julián, A. Crespo, J. Astola, J. Gavaldá, E. Torrents // Journal of Controlled Release. - 2015. - V.209. - P.150-158.

23) Baidamshina, D. Anti-biofilm and wound-healing activity of chitosan-immobilized Ficin [Text] / D. R. Baidamshina, V. A. Koroleva, E. Yu. Trizna, S. M. Pankova, M. N. Agafonova, M.N. Chirkova, O. S. Vasileva, N. Akhmetov, V. V. Shubina, A. G. Porfiryev, E. V. Semenova, O. A. Sachenkov, M. I. Bogachev, V. G. Artyukhov, T. V. Baltina, M. G. Holyavka, A. R. Kayumov // International Journal of BiologicalMacromolecules. - 2020. - V.164. - P.4205-4217.

24) Baidamshina, D. Biochemical properties and anti-biofilm activity of

chitosan-immobilized papain [Text] / D. R. Baidamshina, V. A. Koroleva, S. S.

Olshannikova, E. Yu. Trizna, M. I. Bogachev, V. G. Artyukhov, M. G. Holyavka,

A. R. Kayumov // Marine Drugs. - 2021. - V.19. - №.4. - P.197.

120

25) Baidamshina, D. Targeting microbial biofilms using Ficin, a nonspecific plant protease [Text] / D. R. Baidamshina, E. Y. Trizna, M. G. Holyavka, M. I. Bogachev, V. G. Artyukhov, F. S. Akhatova, E. V. Rozhina, R. F. Fakhrullin, A. R. Kayumov // Sci. Rep. - 2017. - V.7. - P. 46068.

26) Baishya, R. Effect of Medicinal Plants on Biofilm-Forming Staphylococcus aureus from Tertiary Health Care Hospital and Characterization of Biofilm-Associated Extracellular Polymeric Substances (EPS) [Text] /R. Baishya, S. Banerjee //Advances in Bioprocess Engineering and Technology. -2021. - P. 189-197.

27) Bamberger, D. M. Management of Staphylococcus aureus infections [Text] / D. M. Bamberger & S. E. Boyd //American family physician. - 2005. -V.72. - №. 12. - P.2474-2481.

28) Banerjee, S. Photodynamic antimicrobial chemotherapy (PACT) using riboflavin inhibits the mono and dual species biofilm produced by antibiotic resistant Staphylococcus aureus and Escherichia coli [Text] / S. Banerjee, D. Ghosh, K. Vishakha, S. Das, S. Mondal, A. Ganguli //Photodiagnosis and Photodynamic Therapy. - 2020. - V. 32. - P.102002.

29) Baser, K. H. C. Handbook of essential oils: science, technology, and applications [Text] / K. H. S. Baser, G. Buchbauer // CRC press. - 2009.

30) Bastos, M. D. Lysostaphin: A staphylococcal bacteriolysin with potential clinical applications [Text] / M. D. Bastos, B. G. Coutinho, M. L. Coelho// Pharmaceuticals. - 2010. - V.3. - P.1139-1161.

31) Baumann, M. Role of advanced glycation and products in hypertension and cardiovascular risk: human studies [Text] / M. Baumann // Journal of the American Society of Hypertension. - 2012. - V.6. - №.6. - P.427-435.

32) Berry, K. A. Staphylococcus aureus adhesion to the host [Review] / K. A. Berry, M. T. A. Verhoef, A. C. Leonard, G. Cox // Ann NY Acad Sci. - 2022. -P.1-22.

33) Blackledge, M. S. Biologically inspired strategies for combating

bacterial biofilms [Text] / M. S. Blackledge, R. J. Worthington, C. Melander //

Current Opinion in Pharmacology. - 2013. - V.13. - №.5. - P.699-706.

121

34) Boels, G. Enzymatic removal of biofilms: a report [Text] / G. Boels // Virulence. - 2011. - V.2. - P.490-489.

35) Boland, T. Molecular basis of bacterial adhesion //Handbook of bacterial adhesion [Review] / T. Boland, R.A. Latour, F. J. Stutzenberger // Humana Press. - 2000. - P. 29-41.

36) Boles, B.R. Agr-Mediated Dispersal of Staphylococcus aureus Biofilms [Text] / B.R. Boles, A.R. Horswill // PLoS Pathog. - 2008. - V.4. - P.e1000052.

37) Bose, J.L. Contribution of the Staphylococcus aureus Atl AM and GL murein hydrolase activities in cell division, autolysis, and biofilm formation [Text] / J.L. Bose, M.K. Lehman, P.D. Fey, K.W. Bayles // PLoS ONE. - 2012. - V.7. -P.e42244.

38) Brauner, A. Distinguishing between resistance, tolerance and persistence to antibiotic treatment [Text] / A. Brauner, O. Fridman, O. Gefen, N. Balaban // Nat. Rev. Microbiol. - 2016. - V.14. - P.320-330.

39) Brunson, D. N. Dual species biofilms are enhanced by metabolite cross-feeding [Text] / D. N. Brunson, L. N. Lam, J. A. Lemos // Trends in Microbiology. - 2022.

40) Buhren, B. A. Hyaluronidase: from clinical applications to molecular and cellular mechanisms [Text] / B. A. Buhren, H. Schrumpf, N. P. Hoff, E. Bölke, S. Hilton, P. A. Gerber // European journal of medical research. - 2016. -V.21. - №.1. - P.1-7.

41) Bulonza, M. Enhancing Pseudomonas Aeruginosa Susceptibility to Antibiotics by Disrupting the Biofilms with Therapeutic Enzymes [Text]: Abstract doct. dis. ... doctoral dissertation / M. Bulonza. - Alfred University. - New York, 2022. - P.31.

42) Campoccia, D. The presence of both bone sialoprotein-binding protein gene and collagen adhesin gene as a typical virulence trait of the major epidemic cluster in isolates from orthopedic implant infections [Text] / D. Campoccia, P. Speziale, S. Ravaioli, I. Cangini, S. Rindi, V. Pirini, L. Montanaro, C. R. Arciola //

Biomaterials. - 2009. - V.30. - P.6621-6628.

122

43) Caputo, G.M. Native valve endocarditis due to coagulasenegative staphylococci: clinical and microbiologic features [Text] / G.L. Archer, S.B. Calderwood, M.J. DiNubile, A.W. Karchmer // Am. J. Med. - 1987. - V.83. - 619625.

44) Carlsona, S. Multimodality imaging for prosthetic valves evaluation: Current understanding and future directions [Text] / S. Carlsona, G. Habib, T. Chen, J. Leipsic, M. Enriquez-Sarano, J. L.Cavalcante // Progress in Cardiovascular Diseases. - 2022. - V.72. - P.66-77.

45) Cascioferro, S. Therapeutic Strategies To Counteract Antibiotic Resistancein MRSA Biofilm-AssociatedInfections [Text] / S. Cascioferro, D. Carbone,B. Parrino, C. Pecoraro,E. Giovannetti,C. Girolamo, D. Patrizia // ChemMedChem. - 2021. - V.16. - P.65-80.

46) Chaignon, P. Susceptibility of staphylococcal biofilms to enzymatic treatments depends on their chemical composition [Text] // Applied microbiology and biotechnology. - 2007. - V.75. - №.1. - P. 125-132.

47) Chambers, H. F. The changing epidemiology of Staphylococcus aureus? [Text] / H. F. Chambers // Emerging infectious diseases. - 2001. - V.7. -№. 2. - P.178.

48) Chambers, H. F. Waves of resistance: Staphylococcus aureus in the antibiotic era [Review] / H. F. Chambers, F. R. DeLeo // Nature Reviews Microbiology. - 2009. - V.7. - №.9. - P.629-641.

49) Chandanwale, A. A randomized, clinical trial to evaluate efficacy and tolerability of trypsin: chymotrypsin as compared to serratiopeptidase and trypsin: bromelain: rutoside in wound management / A. Chandanwale, D. Langade, D. Sonawane, P. Gavai // Advances in therapy. - 2017. - V.34. - №.1. - P.180-198.

50) Chen, L. The role of bacterial biofilm in persistent infections and control strategies [Review] / L. Chen, Y.M. Wen //Int J Oral Sci. - 2011. - V.3. -P.66-73.

51) Chhibber, S. A novel approach for combating Klebsiella pneumoniae biofilm using histidine functionalized silver nanoparticles [Text] / S. Chhibber, V.

123

S. Gondil, S. Sharma, M. Kumar, N. Wangoo, R. K. Sharma // Frontiers in microbiology. - 2017. - V.8. - P. 1104.

52) Christensen, G.J.M. Bacterial skin commensals and their role as host guardians [Text] / G. J. M. Christensen, H. Brüggemann // Benef. Microbes. -2014. - V.5. - P.201-215.

53) Cisar, E.A.G. Symmetric signalling within asymmetric dimers of the Staphylococcus aureus receptor histidine kinase AgrC [Review] / E.A.G. Cisar, E. Geisinger, T.W. Muir, R.P. Novick // Mol. Microbiol. - 2009. - V.74. - P.44-57.

54) Coenye, T. Response of sessile cells to stress: from changes in gene expression to phenotypic adaptation [Review] / T. Coenye // FEMS Immunol. Med. Microbiol. - 2010. - V.59. - P.239-225.

55) Coimbra, A. Biological properties of Thymus zygis essential oil with emphasis on antimicrobial activity and food application [Text] / A. Coimbra, S.Ferreira, A. P. Duarte // Food Chemistry. - 2022. - P.133370.

56) Colice, G.L. Medical and surgical treatment of parapneumonic effusions: an evidence-based guideline [Text] / G.L. Colice, A. Curtis, J. Deslauriers, J. Heffner, R. Light, B. Littenberg //Chest. - 2000. - V.118. - №. 4. -P. 1158-1171.

57) Corrigan, R.M. The role of Staphylococcus aureus surface protein SasG in adherence and biofilm formation [Text] / R.M. Corrigan, D. Rigby, P. Handley, T.J. Foster // Microbiology. - 2007. - V.153. - P.2435-2446.

58) Cotter, P.D. Bacteriocins: Developing innate immunity for food [Text] / P. D. Cotter, R.P. Ross, C. Hill, R. P. Ross // Food Microbiol. - 2005. - V.3. -P.777-788.

59) Cotter, P.D. Bacteriocins-a viable alternative to antibiotics? [Text] / P. D. Cotter, R.P. Ross, C. Hill, R. P. Ross // Nat. Rev. Microbiol. - 2013. - V.11. -P.95-105.

60) Coughlan, L. M New weapons to fight old enemies: novel strategies for the (bio) control of bacterial biofilms in the food industry [Text] / L. M. Coughlan,

P. D. Cotter, C. Hill, A. Alvarez-Ordonez // Frontiers in microbiology. - 2016. -V.7. - P.1641.

61) Cowan, D. A. Enhancing the functional properties of thermophilic enzymes by chemical modification and immobilization [Text] / D.A. Cowan, R. Fernandez-Lafuente // Enzym. Microb. Technol. - 2011. - V.49. - P.326-346.

62) Craigen, B. The use of commercially available alpha-amylase compounds to inhibit and remove Staphylococcus aureus biofilms [Text] / B. Craigen, A. Dashiff, D. E. Kadouri // The Open Microbiology Journal. - 2011. -V.5. - P. 21-31.

63) Cramton, S.E. The intercellular adhesion (ica) locus is present in Staphylococcus aureus and is required for biofilm formation [Text] / S.E. Cramton, C. Gerke, N.F. Schnell, W.W. Nichols, F. Götz // Infect. Immun. - 1999. - V.67. -P.5427-5433.

64) Cucarella, C. Bap, a Staphylococcus aureus surface protein involved in biofilm formation [Text] / C. Cucarella, C. Solano, J. Valle, B. Amorena, I. Lasa, J. R. Penades // Journal of bacteriology. - 2001. - V.183. - №.9. - P.2888-2896.

65) Cukjati, D. A reliable method of determining wound healing rate [Text] / D. Cukjati, S. Rebersek D. Miklavcic // Medical and Biological Engineering and Computing. - 2001. - V.39. - №.2. - P.263-271.

66) Darouiche, R. O. Antimicrobial and antibiofilm efficacy of triclosan and DispersinB® combination // R. O. Darouiche, M. D. Mansouri, P. V. Gawande, S. Madhyastha // Journal of Antimicrobial Chemotherapy. - 2009. -V.64. - №1. - P.88-93.

67) de Faria, A. Anti-adhesion and antibacterial activity of silver nanoparticles supported on graphene oxide sheets [Text] / A. de Faria, D. Martinez, S. M. M. Meira, A. de Moraes, A. Brandelli, A. G. Souza Filho, O. Alves // Colloids and Surfaces B: Biointerfaces. - 2014. - V.113. - P.115-124.

68) del Pozo, J. L. The challenge of treating biofilm-associated bacterial infections [Review] / J.L. del Pozo, R. Patel // Clin. Pharmacol. Ther. - 2007. -V.82. - P.204-209.

69) Delmain, E.A. Stochastic Expression of Sae-Dependent Virulence Genes during Staphylococcus aureus Biofilm Development Is Dependent on SaeS [Text] / E.A. Delmain, D.E. Moormeier, J.L. Endres, R.E. Hodges, M.R. Sadykov, A.R. Horswill, K.W. Bayles // MBio. - 2020. - V.11. - P.e03081-19.

70) Dengler, V. An Electrostatic Net Model for the Role of Extracellular DNA in Biofilm Formation by Staphylococcus aureus [Text] / V. Dengler, L. Foulston, A.S. de Francesco, R.M. Losick // J. Bacteriol. - 2015. - V.197. -P.3779-3787.

71) Dobson, A. Bacteriocin production: A probiotic trait? [Text] / A. Dobson, P. D. Cotter, R. Paul Ross, C. Hill // Appl. Environ. Microbiol. - 2012. -V.78. - P.1-6.

72) Dogné, S. Endothelial Glycocalyx Impairment in Disease: Focus on Hyaluronan Shedding [Review] / S. Dogné, B. Flamion // The American Journal of Pathology. - 2020. - V.190. - №6. - P.768-780.

73) Donelli, G. Synergistic activity of dispersin B and cefamandole nafate in inhibition of Staphylococcal biofilm growth on polyurethanes [Text] /G. Donelli, I. Francolini, D. Romoli, E. Guaglianone, A. Piozzi, C. Ragunath, J. B. Kaplan // Antimicrobial Agents and Chemotherapy. - 2007. - V.51. - №8. - P.2733-2740.

74) Dorman, H. Antimicrobial agents from plants: antibacterial activity of plant volatile oils [Text] / H. Dorman, S. Deans // J.Appl Microbiol. - 2000. -V.88. - P.308-316.

75) Eckhart, L. DNase1L2 suppresses biofilm formation by Pseudomonas aeruginosa and Staphylococcus aureus [Text] / L. Eckhart, H. Fischer, K. B. Barken, T. Tolker-Nielsen, E. Tschachler // British Journal of Dermatology. -2007. - V.156. -№6. - P.1342-1345.

76) Eraso-Cadena, M.P. Serological evidence of exposure to some

zoonotic microorganisms in cattle and humans with occupational exposure to

livestock in Antioquia, Colombia [Text] / M.P. Eraso-Cadena, L.P. Molina-

Guzmán, X. Cardona, J.A. Cardona-Arias, L.A. Ríos-Osorio, L.A. Gutierrez-

Builes// Cad. Saude Publica. - 2018. - V.34. - P.11

126

77) Ertas, A. A detailed study on the chemical and biological profiles of essential oil and methanol extract of Thymus nummularius (Anzer tea): Rosmarinic acid [Text] / A. Ertas, M. Boga, M. A. Yilmaz, Y. Yesil, G. Tel, H. Temel, N. Hasimi, I. Gazioglu // Ind Crops Prod. - 2015. - V.67. - P.336-345.

78) Fabrega, J. Impact of silver nanoparticles on natural marine biofilm bacteria [Text] / J. Fabrega, R. Zhang, J. C. Renshaw, W. T. Liu, J. R. Lead // Chemosphere. - 2011. - V.85. - №.6. - P.961-966.

79) Felipe, V. Chitosan disrupts biofilm formation and promotes biofilm eradication in Staphylococcus species isolated from bovine mastitis [Text] / V. Felipe, M. L. Breser, L. P. Bohl, E. R. da Silva, C. A. Morgante, S. G. Correa, C. Porporatto // International Journal of Biological Macromolecules. - 2019. -V.126. - P.60-67.

80) Fernández-Fernández, R. Bacteriocin-Like Inhibitory Substances in Staphylococci of Different Origins and Species With Activity Against Relevant Pathogens [Text] / R. Fernández-Fernández, C. Lozano, P. Eguizábal, L. Ruiz-Ripa, S. Martínez-Álvarez, I. N. Abdullahi, M. Zarazaga, C. T. Torres // Frontiers in microbiology. - 2022. - P. 1152.

81) Field, D. A bioengineered nisin derivative to control biofilms of Staphylococcus pseudintermedius [Text] / D. Field, N. Gaudin, F. Lyons, P. M. O'Connor, P. D. Cotter, C. Hill, R. P. Ross // PLoS ONE. - 2015. - V.10. - P.1-17.

82) Finch, R. A. Triapine (3-aminopyridine-2-carboxaldehyde thiosemicarbazone; 3-AP): an inhibitor of ribonucleotide reductase with antineoplastic activity [Text] / R. A. Finch, M. C. Liu, A. H. Cory, J. G. Cory, A. C. Sartorelli // Advances in enzyme regulation. - 1999. - V.39. - P 3-12.

83) Fisher, R. A. Persistent bacterial infections and persister cells [Review] / R.A. Fisher, B. Gollan, S. Helaine // Nat. Rev. Microbiol. - 2017. - V.15. -P.453-464.

84) Foster, T.J. Adhesion, invasion and evasion: the many functions of the surface proteins of Staphylococcus aureus [Text] / T.J. Foster, J.A. Geoghegan, V.K. Ganesh, M. Hook // Nat RevMicrobiol. - 2014. - V.2. - P.49-62.

85) Fowler, V. G. Clinical identifiers of complicated Staphylococcus aureus bacteremia [Text] / V. G. Fowler, M. K. Olsen, Corey, G. R., C. W. Woods, C. H. Cabell, L. B. Reller // Archives of internal medicine. - 2003. - V.163. - №. 17. -P. 2066-2072.

86) Fowler, V. G. Role of echocardiography in evaluation of patients with Staphylococcus aureus bacteremia: experience in 103 patients [Text] / V. G. Fowler, J. Li, G.R. Corey, J. Boley, K.A. Marr, A.K. Gopal // Journal of the American College of Cardiology. - 1997. - V.30. - №. 4. - P.1072-1078.

87) Fox, J. L. The business of developing antibacterials [Text] /J. L. Fox // Nat. Biotechnol. - 2006. - V.24. - P.1521-1528.

88) Friedrich, A.W. Control of hospital acquired infections and antimicrobial resistance in Europe: The way to go [Text] / A.W. Friedrich // Wiener Medizinische Wochenschrift. - 2019. - V.169. - №. 1. - P.25-30.

89) Fursova, K.K. Exotoxin diversity of Staphylococcus aureus isolated from milk of cows with subclinical mastitis in Central Russia [Text] / K. K. Fursova, M. P. Shchannikova, I. V. Loskutova, A.O. Shepelyakovskaya, A. G. Laman, A. M. Boutanaev, S. L. Sokolov, O. A. Artem'eva, D. A. Nikanova, N. A. Zinovieva, F. A. Brovko // J. Dairy Sci. - 2018. - V.101. - №5. - P. 4325-4331.

90) Galvez, A. Bacteriocin-based strategies for food biopreservation [Text] / A. Galven, H. Abriouel, R. L. Lopez, N. Omar // Int. J. Food Microbiol. - 2007. -V.120. - №.1-2. - P.51-70.

91) Garcia-Galan, C. Potential of different enzyme immobilization strategies to improve enzyme performance [Text] / C. Garcia-Galan, A. Berenguer-Murcia, R. Fernandez-Lafuente, R.C. Rodrigues // Advanced Synthesis & Catalysis. - 2011. - V.353. - P.2885-2904.

92) Gawande, P. V. Antibiofilm and antimicrobial efficacy of DispersinB®-

KSL-W peptide-based wound gel against chronic wound infection associated

128

bacteria [Text] / P. V. Gawande, K. P. Leung, S. Madhyastha // Current Microbiology. - 2014. - V.68. -№5. - P 635-641.

93) Geoghegan, J. A. Role of surface protein SasG in biofilm formation by Staphylococcus aureus [Text] / J. A. Geoghegan, R. M. Corrigan, D. Gruszka, P. Speziale, J. P. O'Gara, J. R. Potts, T. J. Fisher // J. Bacteriol. - 2010. - V.192. -№.21. - P.5663-5673.

94) Gerke, C. Characterization of the n-acetylglucosaminyltransferase activity involved in the biosynthesis of the Staphylococcus epidermidis polysaccharide intercellular adhesion [Text] / C. Gerke, A. Kraft, R. Süßmuth, O. Schweitzer, F. Götz // J. Biol. Chem. - 1998. - V.273. - P.18586-18593.

95) Gibreel, T.M. Synthetic epidermicin NI01 can protect Galleria mellonella larvae from infection with Staphylococcus aureus [Text] / T. M. Gibreel, M. J. Upton // J. Antimicrob. Chemother. - 2013. - V.68. - P.2269-2273.

96) Gonzalez-Pena, D. Genomic evaluation for wellness traits in US Jersey cattle [Text] / D. Gonzalez-Pena, N. Vukasinovic, J. J. Brooker, C. A. Przybyla, A. Baktula, S. K. DeNise // Journal of Dairy Science. - 2020. - V.103. - №.2. -P.1735-1748.

97) Götz, F. Epidermin and gallidermin: Staphylococcal lantibiotics [Text] / F. Götz, S. Perconti, P. Popella, R. Werner, M. Schlag // International Journal of Medical Microbiology. - 2014. - V.304. - №.1. - P.63-71.

98) Gross, M. Role of Teichoic Acid Net Charge in Staphylococcus aureus Colonization of Artificial Surfaces [Text] / M. Gross, S.E. Cramton, F. Götz, A Peschel // Key. Infect. Immun. - 2001. - V.69. - P.3423-3426.

99) Halliwell, S. A single dose of epidermicin NI01 is sufficient to eradicate MRSA from the nares of cotton rats [Text] / S. Halliwell, P. Warn, A. Sattar, J. P. Derrick, M. Upton // J. Antimicrob. Chemother. - 2017. - V.72. - P.778-781.

100) Hamzah, H. Efficacy of quercetin against polymicrobial biofilm on catheters [Text] / H. Hamzah, T. Hertiani, S. U. T. Pratiwi, T. Nuryastuti // Research Journal of Pharmacy and Technology. - 2020. - V.13. - №.11. -P.5277-5282.

101) Harrigan, T. P. Characterization of microstructural anisotropy in orthotropic materials using a second rank tensor [Text] / T. P. Harrigan, R. W. Mann // Journal of Materials Science. - 1984. - V.19. - №.3. - P.761-767.

102) Heilmann, C. Evidence for autolysin-mediated primary attachment of Staphylococcus epidermidis to a polystyrene surface [Text] / C. Heilmann, M.Hussain, G. Peters, F Götz // Mol. Microbiol. - 1997. - V. 24. - P.1013-1024.

103) Heilmann, C. Molecular basis of intercellular adhesion in the biofilm-forming Staphylococcus epidermidis [Text] / C. Heilmann, O. Schweitzer, C. Gerke, N. Vanittanakom, D. Mack, F. Götz // Molecular microbiology. - 1996. -V.20. - №.5. - P.1083-1091.

104) Hirschhausen, N. A novel staphylococcal internalization mechanism involves the major autolysin Atl and heat shock cognate protein Hsc70 as host cell receptor [Text] / N. Hirschhausen, T. Schlesier, M.A. Schmidt, F. Götz, G. Peters, C. Heilmann // Cell. Microbiol. - 2010. - V.12. - P.1746-1764.

105) Hoffmann, J. A. Innate immunity of insects [Text] / J. A. Hoffmann // Curr. Opin. Immunol. - 1995. - V.7. - P.4-10.

106) Honarmand, T. Does Conjugation of Silver Nanoparticles with Thiosemicarbazide Increase Their Antibacterial Properties? [Text] T. Honarmand, A. P. Sharif, A. Salehzadeh, A. Jalali, I. Nikokar // //Microbial Drug Resistance. -2022. - V. 28. - №. 3. - P. 293-305.

107) Hong, J. Purification and characterization of pasteuricin produced by Staphylococcus pasteuri RSP-1 and active against multidrug-resistant Staphylococcus aureus [Text] / J. Hong, J. Kim, L. H. Quan, S. Heu, E. J. Roh // J. Food Prot. - 2018. - V.81. - P.1768-1775

108) Huang, H. Aging biofilm from a full-scale moving bed biofilm reactor: characterization and enzymatic treatment study [Text] / H. Huang, H. Ren, L. Ding, J. Geng, K. Xu, Y. Zhang // Bioresource technology. - 2014. - V.154. -P.122-130.

109) Hurlow, J. Clinical biofilms: a challenging frontier in wound care [Text] / J. Hurlow, K. Couch, K. Laforet, L. Bolton //Advances in wound care. - 2015. -V.4. - №. 5. - P.295-301.

110) Ilyina, T. S. The Role of Bacterial Biofilms in Chronic Infectious Processes and the Search for Methods to Combat Them [Review] / T. S. Ilyina, Yu. M. Romanova // Mikrobiologiya i Virusologiya. - 2021. - №.2. - P.21-31.

111) Jahantigh, H. The Candidate Antigens to Achieving an Effective Vaccine against Staphylococcus aureus [Review] / H. Jahantigh, S. Faezi, M. Habibi, M. Mahdavi, A. Stufano, P. Lovreglio, K. Ahmadi // Vaccines. - 2022. -V.10. - №.2. - P.199.

112) Ji, G. Bacterial Interference Caused by Autoinducing Peptide Variants [Text] / G. Ji, R. Beavis, R.P. Novick // Science. - 1997. - V.276. - P.2027-2030.

113) Kaplan, J. B. Detachment of Actinobacillus actinomycetemcomitans biofilm cells by an endogenous ß-hexosaminidase activity [Text] / J. B. Kaplan, C. Ragunath, N. Ramasubbu, D. H. Fine // Journal of Bacteriology. - 2003. - V. -№16. - P.4693-4698.

114) Kaplan, J. B. Recombinant human DNase I decreases biofilm and increases antimicrobial susceptibility in staphylococci [Text] / J. B. Kaplan, K. LoVetri, S. T. Cardona, S. Madhyastha, I. Sadovskaya, S. Jabbouri, E. A. Izano // The Journal of antibiotics. - 2012. - V.65. - №3. - P.73-77.

115) Kaplan, S. L. Implications of methicillin-resistant Staphylococcus aureus as a community-acquired pathogen in pediatric patients [Text] / S. L. Kaplan // Infectious Disease Clinics. - 2005. - V.19. - №. 3. - P.747-757.

116) Karpanen, T. Antimicrobial efficacy of chlorhexidine digluconate alone and in combination with eucalyptus oil, tea tree oil and thymol against planktonic and biofilm cultures of Staphylococcus epidermidis [Text] / T. Karpanen, T. Worthington, E. Hendry, B. R. Conway, P. A. Lambert // J.Antimicrob Chemother. - 2008. - V.62. - P.1031-1036.

117) Katsutoshi, H. Bacterial adhesion: from mechanism to control [Review] / H. Katsutohi, M. Shinya // Biochem. Eng. J. - 2010. - V.48. - P.424-434.

118) Kazakova, R. R. Anesthetics for magnetic resonance studies in rodents (systematic review of experimental results) [Text] / R. R. Kazakova, D. T. Luong //Eksperimental'naia i Klinicheskaia Farmakologiia. - 2016. - V.79. - №.7. -P.39-44.

119) Kerekes, E. B. Anti-biofilm forming and anti-quorum sensing activity of selected essential oils and their main components on food-related micro-organisms [Text] / E. B. Kerekes, E. Deak, M. Tako, R. Tserennadmid, T. Petkovits, C. Vagvölgyi, J. Krisch // J.ApplMicrobiol. - 2013. - V.115. - P.933-942.

120) Khan, N. The giant staphylococcal protein Embp facilitates colonization of surfaces through Velcro-like attachment to fibrillated fibronectin [Text] / N. Khan, H. Aslan, H. Büttner, H. Rohde, Th. W. Golbek, S. J. Roeters, S. Woutersen, T. Weidner, R. L. Meyer // Microbiology and Infectious Disease. -2022.

121) Kharin, N. Determination of the orthotropic parameters of a representative sample by computed tomography [Text] / N. Kharin, O. Vorob'Yev, P. Bol'Shakov, O. Sachenkov // Journal of Physics: Conference Series. - 2019. -V.1158. - №.3. - P.032012.

122) Kim, Y. G. Essential oils and eugenols inhibit biofilm formation and the virulence of Escherichia coli O157: H7 [Text] / Y. G. Kim, J. H. Lee, G. Gwon, S. I. Kim, J. G. Park, J. Lee // Sci.Rep. - 2016. - V.6. - P.36377.

123) Klasen, H. J. A review on the nonoperative removal of necrotic tissue from burn wounds [Text] / H. J. Klasen // Burns. - 2000. - V.26. - P.207-222.

124) Kline, K. A. Bacterial adhesins in hostmicrobe interactions [Review] / K.A. Kline, S. Fälker, S. Dahlberg, S. Normark, B. Henriques-Normark // Cell Host Microbe. - 2009. - V.5. - P.580-592.

125) Kokai-Kun, J. F. The cotton rat as a model for Staphylococcus aureus nasal colonization in humans: Cotton Rat S. aureus Nasal Colonization Model [Text] / J. F. Kokai-Kun // Methods Mol. Biol. - 2007. - V.431. - P.241-254.

126) Kranjec, C. Staphylococcal Biofilms: Challenges and Novel Therapeutic Perspectives [Text] / C. Kranjec, D. Morales Angeles, M. Torrissen Márli, L. Fernández, P. García, M. Kjos, B. Diep. // Antibiotics. - 2021. - V.10. -P.131.

127) Krismer, B. The commensal lifestyle of Staphylococcus aureus and its interactions with the nasal microbiota [Text] / B. Krismer, C. Weidenmaier, A. Zipperer, A. Peschel // Nat. Rev. Microbiol. - 2017. - V.15. - P.675-687.

128) Kulikov, S. N. Antibacterial and antimycotic activity of chitosan: mechanisms of action and role of the structure [Rev] / S. N. Kulikov, T. IuA, R. S. Fassakhov, V. P. Varlamov // Zhurnal mikrobiologii, epidemiologii i immunobiologii. - 2009. - №.5. - P.91-97.

129) Lakshmi, S. A. Evaluation of antibiofilm potential of four-domain a-amylase from Streptomyces griseus against exopolysaccharides (EPS) of bacterial pathogens using Danio rerio [Text] / S. A. Lakshmi, R. Alexpandi, R. M. B. Shafreen, K. Tamilmuhilan, A. Srivathsan, Th. Kasthuri, A. Veera Ravi, S. Shiburaj, Sh. K. Pandian //Archives of Microbiology. - 2022. - V.204. - №.5. -P.1-10.

130) Landini, P. Molecular mechanisms of compounds affecting bacterial biofilm formation and dispersal [Text] / P. Landini, D. Antoniani, J. G. Burgess, J. R. Nijland //Applied microbiology and biotechnology. - 2010. - V.86. - №.3. -P.813-823.

131) Langeveld, W.T. Synergy between essential oil components and antibiotics: A review [Review] / W. T. Langeveld, E. J. A. Veldhuizen, S. A. Burt, Crit. Rev. Microbiol. - 2014. - V.40. - P.76-94.

132) Leclercq, R. EUCAST expert rules in antimicrobial susceptibility testing [Text] / R. Leclercq, R. Cantón, D.F. Brown, C.G. Giske, P. Heisig, A.P.

MacGowan, C.J. Soussy // Clinical Microbiology and Infection. - 2013. - V.19. -№2. - P.141-160.

133) Lee, A. S. Methicillin-resistant Staphylococcus aureus [Text] / A. S. Lee, H. de Lencastre, J. Garau, J. Kluytmans, S. Malhotra-Kumar, A. Peschel, S. Harbarth // Nature Reviews Disease Primers. - 2018. - V.4. - P.1-23.

134) Leite, J. A. B. J. Efficacy of three methods used to control staphylococcal mastitis in dairy goats [Text] / A. B. Leite, R. M. P. Araújo, R. M. Peixoto, D. M. Nogueira, M. M. Costa // Embrapa Semiárido-Artigo em periódico indexado (ALICE). - 2020. - V.41. - №6. - P.2825-2831.

135) Lenchenko, E. Morphological and adhesive properties of Klebsiella pneumoniae biofilms [Text] / E. Lenchenko, D. Blumenkrants, N. Sachivkina, N. Shadrova, A. Ibragimova // Vet. World. - 2020. - V.13(1). - P.197-200.

136) Lequette, Y. Using enzymes to remove biofilms of bacterial isolates sampled in the food-industry [Text] / Y. Lequette, G. Boels, M. Clarisse, C. Faille // Biofouling. - 2010. - V.26. - №.4. - P.421-431.

137) Leso, L. Invited review: Compost-bedded pack barns for dairy cows [Text] / L. Leso, M. Barbari, M. A. Lopes, F. A. Damasceno, P. Galama, J. L. Taraba, A. Kuipers // Journal of Dairy Science. - 2020. - V.103. - №.2. - P.1072-1099.

138) Li, G. Epidemiological Analysis of Staphylococcus aureus Food Poisoning Events in China during 2003-2015 [Text] / G. Li, G. Weiyun, G. Xueli, Y. Wang, S. Sisheng, Y. Xu, W. Mingming //Food Research and Development. -2018. - V.6. - №.39. - P.200-203.

139) Li, Q. Synergistic antibacterial activity and mechanism of action of nisin/carvacrol combination against Staphylococcus aureus and their application in the infecting pasteurized milk [Text] / Q. Li, S. Yu, J. Han, J. Wu, L. You, X. Shi, S. Wang // Food Chemistry. - 2022. - V.380. - P.132009.

140) Liese, A. Evaluation of immobilized enzymes for industrial applications [Text] / A. Liese, L. Hilterhaus // Chem. Soc. Rev. - 2013. - V.42. P.6236-6249.

141) Lina, G. Transmembrane topology and histidine protein kinase activity of AgrC, the agr signal receptor in Staphylococcus aureus [Text] / G. Lina, S. Jarraud, G. Ji, T. Greenland, A. Pedraza, J. Etienne, R.P. Novick, F. Vandenesch // Mol. Microbiol. - 1998. - V.28. - P.655-662.

142) Liu, J Discovery and control of culturable and viable but non-culturable cells of a distinctive Lactobacillus harbinensis strain from spoiled beer [Text] / J. Liu, Y. Deng, T. Soteyome, Y. J. Su, L. Li, B. M. Peters // Scientific Reports. -2018. - V.8. - №.1. - P.1-10.

143) Liu, J. Induction and Recovery of the Viable but Nonculturable State of Hop-Resistance Lactobacillus brevis. Frontiers in Microbiology [Text] / J. Liu, Y. Deng, T. Soteyome, Y. J. Su, L. Li, B. M. Peters // Frontiers in Microbiology. -2018. - P.2076.

144) Lobati, F. Herndon B., Bamberger D. Osteomyelitis: etiology, diagnosis, treatment and outcome in a public versus a private institution [Text] / F. Lobati, B. Herndon, and D. Bamberger //Infection. - 2001. - V.29. - №. 6. -P.333-336.

145) López-Cortés, L. E. Therapy of Staphylococcus aureus bacteremia: Evidences and challenges [Text] / L. E. López-Cortés, J. Gálvez-Acebal, J. Rodríguez-Bano // Enfermedades Infecciosas y Microbiología Clínica. - 2020. -V.38. - №.10. - P.489-497.

146) Lundeberg, T. C. M. Electrical nerve stimulation improves healing of diabetic ulcers [Text] / T. C. M. Lundeberg, S. V. Eriksson, M. Malm // Annals of Plastic Surgery. - 1992. - V.29. - №.4. - P.328-331.

147) Lynch, D. Identification and characterization of capidermicin, a novel bacteriocin produced by Staphylococcus capitis [Text] / D. Lynch, P. M. O'Connor, P. D. Cotter, C. Hill, D. Field, M. Begley // PLoS ONE. - 2019. - V.14. - P.0223541.

148) Ma, C. Bovine mastitis may be associated with the deprivation of gut Lactobacillus. Benef [Text] / C. Ma, J. Zhao, X. Xi, J. Ding, H. Wang, H. Zhang, L. Y. Kwok // Benef Microbes. - 2016. - V.7. - №1. - P.95-102.

135

149) Mack, D Association of biofilm production of coagulase-negative Staphylococci with expression of a specific polysaccharide intercellular adhesin [Text] / D. Mack, M. Haeder, N. Siemssen, R. Laufs // J. Infect. Dis. - 1996. -V.174. - P.881-883.

150) Magiorakos, A. P. Multidrug-resistant, extensively drug-resistant and pandrug-resistant bacteria: An international expert proposal for interim standard definitions for acquired resistance [Text] / A. P. Magiorakos, A. Srinivasan, R. B. Carey, Y. Carmeli, M. E. Falagas, C. G. Giske, S. Harbarth, J. F. Hindler, G. Kahlmeter, B. Olsson-Liljequist, D. L. Monnet // Clinical microbiology and infection. - 2012. - V.18. - №.3. - P.268-281.

151) Mahdi, E. A. Eradication of Biofilm Produced by Staphylococcus aureus and Pseudomonas aeruginosa in Wound Infection by Using Proteinase K Enzyme [Text] / E. A. Mahdi, S. S. Hasan // Indian Journal of Forensic Medicine & Toxicology. - 2022. - V.16. - №.1.

152) Mak, P. Staphylococcal Bacteriocins. In Pet-to-Man Travelling Staphylococci [Review] / Academic Press. - 2018. - P.161-171.

153) Mandlik, A. Pili in grampositive bacteria: assembly, involvement in colonization and biofilm development [Review] / A. Mandlik, A. Swierczynski, A. Das, H. Ton-That // Trends Microbiol. - 2008. - V.16. - P.33-40.

154) Manoharadas, S. Concerted dispersion of Staphylococcus aureus biofilm by bacteriophage and 'green synthesized'silver nanoparticles [Text] / S. Manoharadas, M. Altaf, A. F. Alrefaei, R. M. Devasia, A. Y. M. B. Hadj, M. S. A. Abuhasil // RSC Advances. - 2021. - V.11. - №.3. - P. 1420-1429.

155) Martin, A. Promising Antimicrobial Activity and Synergy of Bacteriocins Against Mycobacterium tuberculosis [Text] / A. Martin, M. J. Bland, H. Rodriguez-Villalobos, J. L. Gala, P. Gabant, P. // Microbial Drug Resistance. -2022.

156) Mashruwala, A.A. Impaired respiration elicits SrrAB-dependent programmed cell lysis and biofilm formation in Staphylococcus aureus [Text] /

vA.a. Mashruwala, A. van de Guchte, J.M. Boyd // eLife. - 2017. - V.6. -P.e23845.

157) Mashruwala, A.A. Saers is responsive to cellular respiratory status and regulates fermentative biofilm formation in Staphylococcus aureus [Text] / A.A. Mashruwala, C.M. Gries, T.D. Scherr, T. Kielian, J.M. Boyd // Infect. Immun. -2017. - V.85. - P.e00157-17.

158) Mateo, C. Advances in the design of new epoxy supports for enzyme immobilization-stabilization [Text] / C.Mateo, V. Grazu, B.C.C. Pessela, T. Montes, J.M. Palomo, R. Torres, F. Lopez-Gallego, R. Fernandez-Lafuente, J.M. Guisan // Biochem. Soc. Trans. - 2007. - V.35. - P.1593-1601.

159) Mazmanian, S. K. Staphylococcus aureus sortase mutants defective in the display of surface proteins and in the pathogenesis of animal infections [Text] / S.K. Mazmanian, G. Liu, E.R. Jensen, E. Lenoy, O. Schneewind //Proceedings of the National Academy of Sciences. - 2000. - V.97. - №. 10. - P.5510-5515.

160) McCarty, S. M. The role of endogenous and exogenous enzymes in chronic wounds: a focus on the implications of aberrant levels of both host and bacterial proteases in wound healing [Text] / S. M. McCarty, C.A. Cochrane, P.D. Clegg, S.L. Percival // Wound Repair and Regeneration. - 2012. - V.20. - №.2. -P.125-136.

161) Mechmechani, S. Hurdle technology using encapsulated enzymes and essential oils to fight bacterial biofilms [Review] / S. Mechmechani, S. Khelissa, A. Gharsallaoui, K. E. Omari, M. Hamze, N. E. Chihib //AppliedMicrobiology and Biotechnology. - 2022. - C. 1-25.

162) Mee, J. F. Assessing whether dairy cow welfare is "better" in pasture-based than in confinement-based management systems [Text] / J. F. Mee, L. A. Boyle // New Zealand veterinary journal. - 2020. - V.68. - №.3. - P.168-177.

163) Meireles, A. The current knowledge on the application of anti-biofilm enzymes in the food industry [Text] / A. Meireles, A. Borges, E. Giaouris, M. Simoes, // Food Research International. - 2016. - V.86. - P.140-146.

164) Menkin, V. Studies on inflammation: VII. Fixation of bacteria and of particulate matter at the site of inflammation [Review] / V. Menkin // J. Exp. Med. - 1931. - V.53. - P.647-660.

165) Mennel, L. A. Guidelines for the management of intravascular catheter-related infections [Text] / L. A. Mennel, B. M. Farr, and R. J. Sherert // Clin. Infect. Dis. - 2001. - V.32. - P.1249-72.

166) Miao, J. Biofilm Formation of Staphylococcus aureus under Food Heat Processing Conditions: First Report on CML Production within Biofilm [Text] / J. Miao, S. Lin, T. Soteyome, M. B. Peters, Y. Li, H. Chen, J. Su, l. Li, B. Li, Zh. Xu, E. M. Shirtliff, J. M. Harro // Scientific Reports. - 2019. - V.9. - P.1-9.

167) Miao, J. Formation and development of Staphylococcus biofilm: with focus on food safety [Text] / J. Miao, Y. Liang, L. Chen, W. Wang, J. Wang, B. Li, Z. Xu //Journal of food safety. - 2017. - V.37. - №.4. - P.e12358.

168) Michiels, J. E. Molecular mechanisms and clinical implications of bacterial persistence [Text] / J.E. Michiels, B. Bergh, N. Verstraeten, J. Michiels // Drug Resist. Updat. - 2016. - V.29. - P.76-89.

169) Mina, E. G. Interaction of Staphylococcus aureus persister cells with the host when in a persister state and following awakening [Text] / E.G. Mina, C.N. Marques // Sci. Rep. - 2016. - V.6. - P.31342.

170) Mohamed, J. A. Influence of origin of isolates, especially endocarditis isolates, and various genes on biofilm formation by Enterococcus faecalis [Review] / J.A. Mohamed, W. Huang, S. R. Nallapareddy, F. Teng, B. E. Murray // Infect. Immun. - 2004. - V.72. - P. 3658-3663.

171) Mohamed, S. H. Antibiofilm activity of papain enzyme against pathogenic Klebsiella pneumoniae [Text] / S. H. Mohamed, M. S. Mohamed, M. S. Khalil, W. S. Mohamed, M. I. Mabrouk // Journal of Applied Pharmaceutical Science. - 2018. - V.8. - №.06. - P.163-168.

172) Monegro, A.F. Hospital Acquired Infections [Text] / A.F. Monegro, V. Muppidi, H. Regunath // In StatPearls. - 2020.

173) Montanaro, L. Scenery of Staphylococcus implant infections in orthopedics [Text] / L. Montanaro, P. Speziale, D. Campoccia, S. Ravaioli, I. Cangini, G. Pietrocola, S. Giannini, C. R. Arciola // Future Microbiol. - 2011. -V.6. - P.1329-1349.

174) Montazeri, A. Effect of silver nanoparticles conjugated to thiosemicarbazide on biofilm formation and expression of intercellular adhesion molecule genes, icaAD, in Staphylococcus aureus [Text] / A. Montazeri, A. Salehzadeh, H. Zamani // Folia Microbiologica. - 2020. - V.65. - №.1. - P.153-160.

175) Moormeier, D.E. Temporal and Stochastic Control of Staphylococcus aureus Biofilm Development [Text] / D.E. Moormeier, J.L. Bose, A. R. Horswill, K.W. Bayles // mBio. - 2014. - V.5. - P.e01341-14.

176) Mootz, J.M. Staphopains Modulate Staphylococcus aureus Biofilm Integrity [Text] / J.M. Mootz, C.L. Malone, L.N. Shaw, A.R. Horswill // Infect. Immun. - 2013. - V.81. - P.3227-3238.

177) Moreillon, P. Staphylococcus aureus [Text] / Principles and practice of infectious disease // P. Moreillon, Y. Que, M. Glauser Elsevier-Churchill Livingstone. - 2005. - P.2321-2351.

178) Moretro, T. Bacteria on Meat Abattoir Process Surfaces after Sanitation: Characterisation of Survival Properties of and the Commensal Bacterial Flora [Text] / T. Moretro, S. Langsrud, E. Heir // Advances in Microbiology. -2013. - V.3. - №3. - P.255-264.

179) Moritz, M. The newest achievements in synthesis, immobilization and practical applications of antibacterial nanoparticles [Text] / M. Moritz, M. Geszke-Moritz // Chemical Engineering Journal. - 2013. - V.228. - P.596-613.

180) Mugita, N. Proteases, actinidin, papain and trypsin reduce oral biofilm on the tongue in elderly subjects and in vitro [Text] / N. Mugita, T. Nambu, K. Takahashi, P. L. Wang, Y. Komasa // Archives of Oral Biology. - 2017. - V.82. -P.233-240.

181) Nadell, C.D. The sociobiology of biofilms [Review] / C.D. Nadell, J.B. Xavier, K.R. Foster // FEMSMicrobiol. - 2008. - V.33. - P.206-224.

182) Naimi, T.S. Comparison of community-and health care-associated methicillin-resistant Staphylococcus aureus infection [Text] / T.S. Naimi, K. H. LeDell, K. Como-Sabetti, S. M. Borchardt, D. J. Boxrud, J. Etienne //Jama. -2003. - V.290. - №. 22. - P.2976-2984.

183) Nair, N. Impact of Staphylococcus aureus on pathogenesis in polymicrobial infections [Text] / N. Nair, R. Biswas, F. Götz, L. Biswas //Infection and immunity. - 2014. - V. 82. - №.6. - P.2162-2169.

184) Nakatsuj, T. Antimicrobials from human skin commensal bacteria protect against Staphylococcus aureus and are deficient in atopic dermatitis [Text] / J. N. Kim, A. Lockhart, T. Nakatsuji, T. R. Hata, P. C. Dorrestein, G. David, R. L. Gallo, F. Shafiq, H. Latif // Sci.Transl.Med. - 2017. - V.9. - №.378. -P.eaah4680.

185) Nasser, A. Staphylococcus aureus: Biofilm Formation and Strategies against it [Text] / A. Nasser, M. Dallal, Sh. Jahanbakhshi, T. Azimi, L. Nikouei // Current Pharmaceutical Biotechnology. - 2022. - V.23. - №.5. - P.664-678.

186) Nazzaro, F. Effect of essential oils on pathogenic bacteria [Text] / F. Fratianni, L. De Martino, R. Coppola, V. De Feo // Pharmaceuticals. - 2013. -V.6. - P.1451-1474.

187) Nejabatdoust, A. Synthesis, characterization and functionalization of ZnO nanoparticles by glutamic acid (Glu) and conjugation of ZnO@Glu by thiosemicarbazide and its synergistic activity with ciprofloxacin against multi-drug resistant Staphylococcus aureus [Text] / A. Salehzadeh, H. Zamani, Z. Moradi-Shoeili // J Clust Sci. - 2019. - V.30. - №.2. - P.329-336.

188) Neopane, P. In vitro biofilm formation by Staphylococcus aureus isolated from wounds of hospital-admitted patients and their association with antimicrobial resistance [Text] / P. Neopane, H.P. Nepal, R. Shrestha, O. Uehara, Y. Abiko // International Journal of General Medicine. - 2018. - V.11. - P. 2532.

189) Newstead, L. Staphylococcal-Produced Bacteriocins and Antimicrobial Peptides: Their Potential as Alternative Treatments for Staphylococcus aureus Infections [Text] / L. Newstead, K. Varjonen, T. Nuttall, K. Paterson // Antibiotics.

- 2020. - V.9. - №.2. - P.40.

190) Noskin, G. A. The burden of Staphylococcus aureus infections on hospitals in the United States: an analysis of the 2000 and 2001 Nationwide Inpatient Sample Database [Text] / G. A. Noskin, R. J. Rubin, J. J. Schentag, J. Kluytmans, E. C. Hedblom //Archives of internal medicine. - 2005. - V.165. - №. 15. - P.1756-1761.

191) Nostro, A. Effects of oregano, carvacrol and thymol on Staphylococcus aureus and Staphylococcus epidermidis biofilms [Text] / A. Nostro, A. S. Roccaro, G. Bisignano, A. Marino, M. A. Cannatelli, F. C. Pizzimenti, P. L. Cioni, F. Procopio // J.Med Microbiol. - 2007. - V.56. - P.519-523.

192) Nunes, Y. L. Chemical and physical Chitosan modification for designing enzymatic industrial biocatalysts: how to choose the best strategy? [Text] / Y. L. Nunes, F. L. de Menezes, I. G. de Sousa, A. L. G. Cavalcante, F. T. T. Cavalcante, K. da Silva Moreira, J. C. Dos Santos // International Journal of Biological Macromolecules. - 2021. - V.181. - P.1124-1170.

193) O'Neill, E. A Novel Staphylococcus aureus Biofilm Phenotype Mediated by the Fibronectin-Binding Proteins, FnBPA and FnBPB [Text] / E. ONeill, C. Pozzi, P. Houston, H. Humphreys, D.A. Robinson, A. Loughman, T.J. Foster, J.P. O'Gara // J. Bacteriol. - 2008. - V.190. - P.3835-3850.

194) O'Sullivan, J .N. Human skin microbiota is a rich source of bacteriocin-producing staphylococci that kill human pathogens [Text] / J. N. O'Sullivan, M. C. Rea, P. M. O'Connor, C. Hill, R. P. Ross // FEMS Microbiology Ecology. - 2019.

- V.95. - №.2. - P.fiy241.

195) Okamoto, Y. Effects of chitin and chitosan on blood coagulation [Review] / Y. Okamoto, R. Yano, K. Miyatake, I. Tomohiro, Y. Shigemasa, S. Minami // Carbohydrate Polymers. - 2003. - V.53. - №.3. - P.337-342.

196) Oliveira, H. L. Influence of papain in biofilm formed by methicillin-resistant Staphylococcus epidermidis and methicillin-resistant Staphylococcus haemolyticus isolates [Text] / H. L. Olivera, M. E. C. K. Fleming, P. V. Silva, G. R. PaulaD. O. Futuro, G. C. Velarde, L. A. Teixeira // Brazilian Journal of Pharmaceutical Sciences. - 2014. - V. 50. - № 2. P.261-267.

197) Olson, M.E. Staphylococcus aureus Nuclease Is an SaeRS-Dependent Virulence Factor [Text] / M.E. Olson, T.K. Nygaard, L. Ackermann, R.L. Watkins, O.W. Zurek, K.B. Pallister, S. Griffith, M.R. Kiedrowski, C.E. Flack, J.S. Kavanaugh // Infect. and Immun. - 2013. - P.81. - P.1316-1324.

198) Oshida, T. A Staphylococcus aureus autolysin that has an N-acetylmuramoyl-L-alanine amidase domain and an endo-beta-N-acetylglucosaminidase domain: Cloning, sequence analysis, and characterization [Text] / T. Oshida, M. Sugai, H. Komatsuzawa, Y.M. Hong, H. Suginaka, A. Tomasz // Proc. Natl. Acad. Sci. - 1995. - V.92. - P.285-289.

199) Otto, M. Staphylococcus aureus toxins [Text] / M. Otto // Current opinion in microbiology. - 2014. - V.17. - P.32-37.

200) Otto, M. Staphylococcus colonization of the skin and antimicrobial peptides [Text] / M. Otto // Expert Rev. Dermatol. - 2010. - V.5. - P.183-195.

201) Paharik, A.E. The metalloprotease SepA governs processing of accumulation-associated protein and shapes intercellular adhesive surface properties in Staphylococcus epidermidis [Text] / A.E. Paharik, M. Kotasinska, A. Both, T.-M.N. Hoang, H. Büttner, P. Roy, P. D. Fey, A.R. Horswill, H. Rohde // Mol. Microbiol. - 2017. - V.103. - P.860-874.

202) Paharik, A.E. The Staphylococcal Biofilm: Adhesins, Regulation, and Host Response [Review] / A.E. Paharik, A.R Horswill // Microbiol. Spectr. - 2016.

- V.4. - P.4.

203) Peacock, S. J. Mechanisms of Methicillin Resistance in Staphylococcus aureus [Rev] / S. J. Peacock, G. K. Paterson // Annu. Rev. Biochem. 2015. - V.84.

- P.577-601.

204) Periasamy, S. Phenol-soluble modulins in staphylococci [Review] / S. Periasamy, S.S. Chatterjee, G.Y.C. Cheung, M. Otto // Commun. Integr. Biol. -2012. - V.5. - P.275-277.

205) Perni, S., Success and failure of colloidal approaches in adhesion of microorganisms to surfaces [Text] / S. Perni, E.C. Preedy, P. Prokopovich // Adv. Colloid Interface Sci. - 2014. - V.206. - P.265-274.

206) Phophi, L. Antimicrobial resistance patterns and biofilm formation of coagulase-negative Staphylococcus species isolated from subclinical mastitis cow milk samples submitted to the Onderstepoort milk laboratory [Text] / L. Phophi, I. M. Petzer, D. N. Qekwana // BMC Vet. Res. - 2018. - V.15. - №1. - P.1-9.

207) Pickens, Ch. I. Methicillin-Resistant Staphylococcus aureus Hospital-Acquired Pneumonia/Ventilator-Associated Pneumonia [Review] / Ch. I. Pickens, R. G. Wunderink // Semin.Respir.Crit.CareMed. - 2022. - V.43. - №.2. -P.304-309.

208) Pinto, R.M. Impact of nanosystems in Staphylococcus aureus biofilms treatment [Text] / R.M. Pinto, D. Lopes-De-Campos, M.C.L. Martins, P. van Dijck, C. Nunes, S. Reis // FEMSMicrobiol. Rev. - 2019. - V.43. - P.622-641.

209) Pokrovskaya, V. Functional Characterization of Staphylococcus epidermidis IcaB, a De-N-acetylase Important for Biofilm Formation [Text] / V. Pokrovskaya, J. Poloczek, D.J. Little, H. Griffiths, P.L. Howell, M. Nitz // Biochemistry. - 2013. - V.52. - P.5463-5471.

210) Pollini, M. Combining Inorganic Antibacterial Nanophases and Essential Oils: Recent Findings and Prospects [Text] / M. Pollini, A. Sannino, F. Paladini, M. C. Sportelli, R. A. Picca, N. Cioffi, G. Fracchiolla, A. Valentini [Text] // Nanotechnology for Treatment of Microbial Diseases. - 2017. - P.279-293.

211) Powers, M. E. Igniting the fire: Staphylococcus aureus virulence factors in the pathogenesis of sepsis [Text] / M. E. Powers, J. B. Wardenburg // PLoS pathogens. - 2014. - V.10. - №.2. - P.e1003871.

212) Quinto, E. J. Food Safety through Natural Antimicrobials [Text] / E. J. Quinto, I. Caro, L. H. Villalobos-Delgado, J. Mateo, B. De-Mateo-Silleras, P. Redondo-del-r // Antibiotics. - 2019. - V.8. - №.4. - P.208.

213) Rabbani, N. Glycation research in amino acids: a place to call home [Text] / N. Rabbani, P.J. Thornalley // Amino acids. - 2012. - V.42. - №.4. -P.1087-1096.

214) Rafeeq, H. F. Study the Effect of Cinnamon and Tea Tree Oils on Biofilm Formation of Klebsiella Pneumoniae [Text]/ H. F. Rafeeq, Z. A. Sharba // Journal of Applied Sciences andNanotechnology. - 2022. - V.2. - №.2. - P.16-26.

215) Rahman, A. Proteome of Staphylococcus aureus Biofilm Changes Significantly with Aging [Text] / A. Rahman, A. Amirkhani, D. Chowdhury, M. Mempin, M. P. Molloy, A. K. Deva, K. Vickery, H. Hu // Int. J. Mol. Sci. - 2022. - V.23. - P.6415.

216) Raja, E. K. Acinetobacter baumannii extracellular matrix as an antibiofilm and anti-infection target [Text] / E. K. Raja, E. M. Soufiane, L. Asma, M. Rachida, H. Fatima // World Journal of Pharmaceutical Research. - 2022. -V.11 - P.10-35.

217) Rezanejad, M. Phenotypic and molecular characterization of antimicrobial resistance in Trueperella pyogenes strains isolated from bovine mastitis and metritis [Text] / M. Rezanejad, S. Karimi, H. Momtaz // BMC Microbiol. - 2019. - V.19. - №1. P.1-9.

218) Ribeiro, M. Infection of orthopedic implants with emphasis on bacterial adhesion process and techniques used in studying bacterial-material interactions [Text] / M. Ribeiro, F.J. Monteiro, M.P. Ferraz // Biomatter. - 2012. - V.2. -P.176-194.

219) Roberts, A. E. The limitations of in vitro experimentation in understanding biofilms and chronic infection [Review] / A.E. Roberts, K.N. Kragh, T. Bjarnsholt, S.P. Diggle // J. Mol. Biol. - 2015. - V.427. - P.3646-3661.

220) Römling, U. Biofilm infections, their resilience to therapy and innovative treatment strategies [Text] / U. Römling, C.J. Balsalobre // J Intern Med. - 2012. - V.272. - P.541-61.

221) Ronin, D. Current and novel diagnostics for orthopedic implant biofilm infections: a review [Review] / D. Ronin, J. Boyer, N. Alban, R. Natoli, A. Johnson, B. V. Kjellerup // Scandinavian Societies for Medical Microbiology and Pathology. - 2021. - V130. - P.59-81.

222) Rosato A. Anti-Biofilm Inhibitory Synergistic Effects of Combinations of Essential Oils and Antibiotics [Text] / A. Rosato, S. Sblano, L. Salvagno, A. Carocc, M. L. Clodoveo, F. Corbo, G. Fracchiolla // Antibiotics. - 2020. - V.9. -№10. - P.637.

223) Roy, S. Staphylococcus aureus biofilm infection compromises wound healing by causing deficiencies in granulation tissue collagen [Text] / S. Roy, S. Santra, A. Das, S. Dixith, M. Sinha, S. Ghatak, C. K. Sen // Annals of surgery. -2020. - V.271. - №.6. - P.1174.

224) Rudenko, P. Biocoenotic diagnostics of unfavorable factors in the cows infection of farms in the Moscow Region [Text] / P. Rudenko, V. Rudenko, Y. Vatnikov, A. Rudenko, E. Kulikov, N. Sachivkina, E. Sotnikova, N. Sturov, E. Rusanova, T. Mansur, S. Vyalov, N. Sakhno, S. Drukovsky // Syst. Rev. Pharm. -2020. - V.11. - №5. - P.347-254.

225) Rudenko, P. Role of microorganisms isolated from cows with mastitis in Moscow region in biofilm formation [Text] / P. Rudenko, N. Sachivkina, Y. Vatnikov, S. Shabunin, S. Engashev, S. Kontsevaya, A. Karamyan, D. Bokov, O. Kuznetsova, E. Vasilieva // Veterinary World. - 2021. - V.14. - №.1. - P.40.

226) Rutherford, S.T. Bacterial quorum sensing: Its role in virulence and possibilities for its control [Text] / S.T. Rutherford. B.L. Bassler // Cold Spring Harb PerspectMed. - 2012. - V.2. - P. a012427.

227) Sachivkina, N. P. Development of therapeutic transdermal systems for microbial biofilm destruction [Text] / N. P. Sachivkina, A. S. Karamyan, O. M.

Kuznetsova, V. M. Byakhova, I. B. Bondareva, M. A. Molchanova //FEBS Open Bio. - 2019. - V.9. - №.S1. - P.386-386.

228) Saha, A. Increased odds of metabolic syndrome with consumption of high dietary advanced glycation end products in adolescents [Text] / A. Saha, P. Poojary, L. Chan, K. Chauhan, G. Nadkarni, S. Coca, J. Uribarri // Diabetes & metabolism. - 2017. - V.43. - №.5. - P.469.

229) Sarvaiya, J. Chitosan as a suitable nanocarrier material for antiAlzheimer drug delivery [Review] / J. Sarvaiya, Y.K. Agrawal // Int. J. Biol. Macromol. - 2015. - V.72. - P.454-465.

230) Schierholz, J. Implant infections: a haven for opportunistic bacteria [Review] / J. Schierholz, M. Beuth // J. Hosp. Infect. - 2001. - V.49. - P.87-93.

231) Schilcher, K. Staphylococcal Biofilm Development: Structure, Regulation, and Treatment Strategies [Text] / K. Schilcher & A.R. Horswill // Microbiology and Molecular Biology Reviews. - 2020. - V.84. - №3. - P. e00026-19

232) Schroeder, K. Molecular Characterization of a Novel Staphylococcus aureus Surface Protein (SasC) Involved in Cell Aggregation and Biofilm Accumulation [Text] / K. Schroeder, M. Jularic, S.M. Horsburgh, N. Hirschhausen, C. Neumann, A. Bertling, A. Schulte, S. Foster, B.E. Kehrel, G. Peters // PLoS ONE. - 2009. - V.4. - P.e7567.

233) Semenova, E. Automatic processing and analysis of the quality healing of derma injury [Text] / E. Semenova, O. Gerasimov, E. Koroleva, N. Ahmetov, T. Baltina, O. Sachenkov // The International Conference of the Polish Society of Biomechanics. - 2018. - P.107-113.

234) Shah, D. The role of trypsin: chymotrypsin in tissue repair [Text] / D. K. Shah, K. Mital // Adv. Ther. - 2018. - V.35. - P.31-42.

235) Shandiz, S. Functionalization of Ag nanoparticles by glutamic acid and conjugation of Ag@ Glu by thiosemicarbazide enhances the apoptosis of human breast cancer MCF-7 cells [Text] / A. Montazeri, M. Abdolhosseini, S. H.

Shahrestani, M. Hedayati, Z. Moradi-Shoeili, A. Salehzadeh // Journal of Cluster Science. - 2018. - V.29. - №.6. - P.1107-1114.

236) Sharahi, J. Y. Advanced strategies for combating bacterial biofilms [Text] / J. Y. Sharahi, T. Azimi, A. Shariati, H. Safari, M. Tehrani, A. Hashemi // J. Cell Physiol. - 2019. - V.234. - P.14689-14708.

237) Sharifi, A. Antibacterial, antibiofilm and antiquorum sensing effects of Thymus daenensis and Satureja hortensis essential oils against Staphylococcus aureus isolates [Text] / A. Sharifi, T. Mohammadzadeh, Z. Salehi, P. Mahmoodi // Journal of Applied Microbiology. - 2017. - V.124. - P.379-388.

238) Shin, J. M. Biomedical Applications of nisin [Review] / J. M. Shin, J. W. Gwak, P. Kamarajan, J. C. Fenno, A. H. Rickard, Y. L. Kapila // Journal of applied microbiology. - 2016. - V.120. - №.6. - P.1449-1465.

239) Sieniawska, E. Antimicrobial efficacy of Mutellina purpurea essential oil and a-pinene against Staphylococcus epidermidis grown in planktonic and biofilm cultures [Text] / E. Sieniawska, R. Los, T. Baj, A. Malm, K. Glowniak // Ind Crops Prod. - 2013. - V.51. - P.152-157.

240) Silva, V. Molecular Mechanisms of Antimicrobial Resistance in Staphylococcus aureus Biofilms / V. Silva, J. L. Capelo, G. Igrejas, P. Poeta // Emerging Modalities in Mitigation of Antimicrobial Resistance. - 2022. - P.291-314.

241) Silvestre, C. Toxic shock syndrome: diagnosis and management [Review] / C. Silvestre, H. Vyas // Paediatrics and Child Health. - 2022. - V.32. -№.6. - P.226-228.

242) Simonetti, O. Role of daptomycin on burn wound healing in an animal methicillin-resistant Staphylococcus aureus infection model [Text] / O. Simonetti, G. Lucarini, F. Orlando, E. Pierpaoli, R. Ghiselli, M. Provinciali, O. Cirioni // Antimicrobial agents and chemotherapy. - 2017. - V.61. - №.9. - P.e00606-17.

243) SoHs-Cruz, B. Evaluation of chitosan and cellulosic polymers as binding

adsorbent materials to prevent aflatoxin B1, fumonisin B1, ochratoxin,

trichothecene, deoxynivalenol, and zearalenone mycotoxicoses through an in vitro

147

gastrointestinal model for poultry [Text] / B. Solis-Cruz, D. Hernández-Patlán, E. Beyssac, J. D. Latorre, X. Hernandez-Velasco, R. Merino-Guzman, R. López-Arellano // Polymers. - 2017. - V.9. - №.10. - P.529.

244) Southwood, R. T. Infection in experimental hip arthroplasties [Review] / J.L. Rice, P.J. McDonald, P.H. Hakendorf, M.A. Rozenbilds // J. Bone Joint Surg. Br. - 1985. - V.67. - P.229-231.

245) Souza, E. L. Biofilm formation by Staphylococcus aureus from food contact surfaces in a meat-based broth and sensitivity to sanitizers / E. L. Souza, Q. G. S. Meira, I. D. M. Barbosa, A J. A A Athayde, M. L. D. Conceit, M. L. D., J. P. D. Siqueira Júnior // Brazilian Journal of Microbiology. - 2014. - V.45. - №.1. - P.67-75.

246) Speziale, P. Structural and functional role of Staphylococcus aureus surface components recognizing adhesive matrix molecules of the host [Review] / P. Speziale, G. Pietrocola, S. Rindi, M. Provenzano, G. Provenza, A. Di Poto, L. Visai, C. R. Arciola // Future Microbiol. - 2009. - V.4. - P.1337-1352.

247) Spuria, L. Microbial agents in macroscopically healthy mammary gland tissues of small ruminants [Text] / E.Biasibetti, D. Bisanzio, I. Biasato, D. Meneghi, P. Nebbia, M.T. // Capucchio PeerJ. - 2017. - V.5. - P.e3994.

248) Stossel, P. Chitosan and other polyamines: antifungal activity and interaction with biological membranes [Review] / P. Stossel, J. L. Leuba // Chitin in nature and technology. - 1986. - P.215-222.

249) Swamy, M. K. Antimicrobial properties of plant essential oils against human pathogens and their mode of action: an updated review [Text] / M. K. Swamy, M. S. Akhtar, U. R. Sinniah // Evidence-based complementary and alternative medicine. - 2016. - V.2016.

250) Taglialegna, A. Staphylococcal Bap Proteins Build Amyloid Scaffold Biofilm Matrices in Response to Environmental Signals [Text] / A. Taglialegna, S. Navarro, S. Ventura, J.A. Garnett, S. Matthews, J.R. Penades, I. Lasa, J. Valle // PLoS Pathog. - 2016. - V.12. - P.e1005711.

251) Tan, Y. Enhancing the stability and antibiofilm activity of DspB by immobilization on carboxymethyl chitosan nanoparticles [Text] / Y. Tan, S. Ma, C. Liu, W. Yu, F. Han // Microbiological research. - 2015. - V.178. - P.35-41.

252) Tapia-Rodriguez, M. R. Carvacrol as potential quorum sensing inhibitor of Pseudomonas aeruginosa and biofilm production on stainless steel surfaces [Text] / M. R. Tapia-Rodriguez, A. Hernandez-Mendoza, G. A. Gonzalez-Aguilar, M. A. Martinez-Tellez, C. M. Martins, J. F. Ayala-Zavala // Food Control. - 2017. - V.75. - P.255-261.

253) Ta§, B. A. Lysostaphin-Functionalized Waterborne Polyurethane/Polydopamine Coatings Effective against S. aureus Biofilms [Text] / B. A. Ta§, E. Berksun, C. E. Ta§, S. Ünal, H. Ünal, H. // ACS Applied Polymer Materials. - 2022. - V.4. - P. 4298-4305.

254) Taylor, T. A. Staphylococcus aureus [Text] / T. A. Taylor, G. C. Unakal // StatPearls. - 2021.

255) Tetz, G. V. Effect of DNase and antibiotics on biofilm characteristics [Text] / G. V. Tetz, N. K. Artemenko, V. V. Tetz // Antimicrobial Agents and Chemotherapy. - 2009. - V.53. - №3. - P.1204-1209.

256) Thallinger, B. Antimicrobial enzymes: An emerging strategy to fight microbes and microbial biofilms [Text] / B. Thallinger, E. N. Prasetyo, Dr. S. Gibson Nyanhongo, G. M. Guebitz // Biotechnology Journ. - 2013. - V.8. - P. 97109

257) Thals0-Madsen, I. The Sle1 Cell Wall Amidase Is Essential for ß-Lactam Resistance in Community-Acquired Methicillin-Resistant Staphylococcus aureus USA300 [Text] / I. Thals0-Madsen, F.R. Torrubia, L. Xu, A. Petersen, C. Jensen, D. Frees // Antimicrob. Agents Chemother. - 2019. - V.64. - P.e01931-19.

258) Thomas, D. G. Mupirocin resistance in staphylococci: Development and transfer of isoleucyl-tRNA synthetase-mediated resistance In Vitro [Text] / D. G. Thomas, J. M. Wilson, M. J. Day, A. D. Russell // Journal of applied microbiology. - 1999. - V.86. - №.4. - P.715-722.

259) Thomas, K. J., Revised model of calcium and magnesium binding to the bacterial cell wall [Text] / K. J. Thomas, C. Rice //Biometals. - 2014. - V.27. -№.6. - P.1361-1370.

260) Tillaeva, G. U. The prospects of using enzyme preparations in combination with anti-inflammatory drugs in modern pharmacotherapy [Review] / G. U. Tillaeva, U. M. Tillaeva, Z. A. Raxmanova, Sh. A. Kasimova Sh, A. X. Nabiev // World Journal of Pharmaceutical Research. - 2022. - V.11. - №2. -P.811-827.

261) Timmerman, C.P. Characterization of a proteinaceous adhesin of Staphylococcus epidermidis which mediates attachment to polystyrene [Text] / C.P. Timmerman, A. Fleer, J.M. Besnier, L. de Graaf, F. Cremers, J. Verhoef // Infect. Immun. - 1991. - V.59. - P.4187-4192.

262) Tiwari, J. Trends in therapeutic and prevention strategies for management of bovine mastitis: an overview [Text] / J. Tiwari, C. Babra, H.K. Tiwari, V. Williams, S. De Wet, J. Gibson, T. Mukkur // Journal of Vaccines & Vaccination. - 2013. - V.4. - №. 1. - P.1-11.

263) Todd, O.A. Candida albicans and Staphylococcus aureus Pathogenicity and Polymicrobial Interactions: Lessons beyond Koch's Postulates [Review] / O.A. Todd, B.M. Peters // J. Fungi. - 2019. - V.5. - P. 81.

264) Tong, J. Microbiome and metabolome analyses of milk from dairy cows with subclinical Streptococcus agalactiae mastitis-potential biomarkers [Text] / J. Tong, H. Zhang, Y. Zhang, B. Xiong, L. Jiang // Front. Microbiol. -2019. - V.10. - P.2547.

265) Torres, C. E. Enzymatic treatment for preventing biofilm formation in the paper industry [Text] / C. E. Torres, G. Lenon, D. Craperi, R. Wilting, A. Blanco // Applied Microbiology and Biotechnology. - 2011. - V.92. - №.1. - P.95-103.

266) Trevan, J. The error of determination of toxicity [Review]/ John William Trevan // The royal society. - 1927. - P.483-514.

267) Trizna, E. Improving the Efficacy of Antimicrobials against Biofilm-Embedded Bacteria Using Bovine Hyaluronidase Azoximer (Longidaza®) [Text] / E. Trizna, D. Baidamshina, A. Gorshkova, V. Drucker, M. Bogachev, A. Tikhonov, A. Kayumov // Pharmaceutics. - 2021. - V.13. - №.11. - P.1740.

268) Tsai, G. U. O. Antimicrobial activity of shrimp chitin and chitosan from different treatments [Review] / G. U. O. Tsai, W. H. Su, H. C. Chen, C. L. Pan // Fisheries science. - 2002. - V.68. - №.1. - P. 170-177.

269) Tuck, B. Enhancing Biocide Efficacy: Targeting Extracellular DNA for Marine Biofilm Disruption [Text] / B. Tuck, E. Watkin, A. Somers, M. Forsyth, L. L. Machuca // Microorganisms. - 2022. - V.10. - P.1227.

270) Ugwu, I. Ch. Phenotypic characterization and antibiotic resistance in staphylococcus species associated with subclinical mastitis in goats [Text] / I. Ch. Ugwu, P. Ch. Nwankwo, Ch. C. Ugwu, E. Ch. Okwor, D. Ch. Eze // Songklanakarin Journal of Science an Technology (SJST). - 2022. - V.44. - №.1. - P.250-255.

271) Vaikundamoorthy, R. Development of thermostable amylase enzyme from Bacillus cereus for potential antibiofilm activity [Text] / R. Vaikundamoorthy, R. Rajendran, A. Selvaraju, K. Moorthy, S. Perumal // Bioorganic Chemistry. - 2018. - V.77. - P.494-506.

272) Vargas, R. T. Partial budget analysis of prepartum antimicrobial therapy and Escherichia coli J5 vaccination of dairy heifers and their effect on milk production and milk quality parameters [Text] / F. N. Souza, M. A. Brito, J. R. Brito, M. O. Leite, L. M. Fonseca, M. O. P. Cerqueira // Pesquisa Veterinaria Brasileira. - 2016. - V.36. - P.77-82

273) Vaz, A. K. Avalia?ao da vacina estafilococica como auxilio a antibioticoterapia de mastite subclinica durante a lacta?äo [Text] / A.K. Vaz, M.R. Paterno, A. Marca // A Hora Veterinaria. - 2001. - V.21. - №. 124. - P.68-70.

274) Veenstra, G. J. Ultrastructural organization and regulation of a biomaterial adhesin of Staphylococcus epidermidis [Text] / G.J. Veenstra, F.F.

Cremers, H. van Dijk, A. Fleer //Journal of bacteriology. - 1996. - V.178. - №.2. -P.537-541.

275) Vestby, L.K. Bacterial Biofilm and its Role in the Pathogenesis of Disease [Text] / L.K. Vestby, T. Granseth, R. Simm, L.L. Nesse // Antibiotics. -2020. - V.9. - P.59.

276) Villa, F. Plant-derived bioactive compounds at sub-lethal concentrations: towards smart biocide-free antibiofilm strategies [Text] / F. Villa, F. Cappitelli // Phytochem Rev. - 2013. - V.12. - P.245-254.

277) Vissio, C. Noninferiority study evaluating the efficacy of a teat disinfectant containing copper and zinc for prevention of naturally occurring intramammary infections in an automatic milking system [Text] / C. Vissio, A. Mella, L. Amestica, M. Pol // J. Dairy Sci. - 2020. - V.103. - №2. - P.1776-1784.

278) von Eiff, C. Emerging Staphylococcus species as new pathogens in implant infections [Text] / C. von Eiff, C. R. Arciola, L. Montanaro, K. Becker, D. Campoccia // Int. J. Artif Organs. - 2003. - V.29. - P.360-367.

279) Vuong, C. Staphylococcus epidermidis infections [Text] / C. Vuong & M. Otto // Microbes and Infection. - 2002. - V.4. - P.481-489.

280) Wahyuni, S. Isolation and caracterization of ficin enzyme from Ficus septica Burm F stem latex [Text] / S. Wahyuni, R. Susanti, R. S. Iswari // I.J. Biotech. - 2015. - V. 20. - P.161-166.

281) Wallis, J.K. Biofilm formation and adhesion to bovine udder epithelium of potentially probiotic lactic acid bacteria [Text] / J. K. Wallis, V. Krömker, J. H. Paduch // AIMS Microbiol. - 2018. - V.4. - №2. - P.209-224.

282) Wang, H. High-frequency transposition for determining antibacterial mode of action [Review] / H. Wang, D. Claveau, J.P. Vaillancourt, T. Roemer, T.C. Meredith // Nat. Chem. Biol. - 2011. - V.7. - P.720-729.

283) Wladyka, B. A peptide factor secreted by Staphylococcus pseudintermedius exhibits properties of both bacteriocins and virulence factors [Text] / B. Wladyka, M. Piejko, M. Bzowska, P. Pieta, M. Krzysik, L. Mazurek, I.

Guevara-Lora, M. Bukowski, A. J. Sabat, A. W. Friedrich, P. Mak // Sci. Rep. -2015. - V.5. - №.1. - P.1-15.

284) Wu, J.A. Lysostaphin disrupts Staphylococcus aureus and Staphylococcus epidermidis biofilms on artificial surfaces [Text] / J.A. Wu, C. Kusuma, J.J. Mond, J.F. Kokai-Kun // Antimicrobial agents and chemotherapy. -2003. - V.47. - №11. - P.3407-3414.

285) Wu, Y. Peptide Polymer-Doped Cement Acting as an Effective Treatment of MRSA-Infected Chronic Osteomyelitis [Text] / Y. Wu, Y. Lin, Z. Cong, K. Chen, X. Xiao, X. Wu, L. Liu, Y. She, S. Liu, R. Zhou, G. Yin, X. Shao, Y. Dai, H. Lin, R. Liu // Adv.Funct. Mater. - 2022. - V.32. - P.2107942.

286) Xiang, Y. Z. Antibacterial effect of bacteriocin XJS01 and its application as antibiofilm agents to treat multidrug-resistant Staphylococcus aureus infection [Text] / Y. Z. Xiang, G. Wu, L. Y. Yang, X. J. Yang, Y. M. Zhang, L. B. Lin, X.-Y. Deng, Q. L. Zhang // International Journal of Biological Macromolecules. - 2022. - V.196. - P.13-22.

287) Xie, Y. Antibacterial activity and mechanism of action of zinc oxide nanoparticles against Campylobacter jejuni [Text] / Y. Xie, Y. He, P. L. Irwin, T. Jin, X. Shi // Appl Environ Microbiol. - 2011. - V.77. - №.7. - P.2325-2331.

288) Xu, Q. Alternatives to Conventional Antibiotic Therapy: Potential Therapeutic Strategies of Combating Antimicrobial-Resistance and Biofilm-Related Infections [Text] / Q. Xu, X. Hu, Y. Wang // Molecular biotechnology. -2021. - V.63. - №.12. - P.1103-1124.

289) Yaikova, V. V. Automation of bone tissue histology [Text] / V. V. Yaikova, O. Gerasimov, A. Fedyanin, M. Zaytsev, M. Baltin, T. Baltina, O. Sachenkov // Frontiers in Physics. - 2019. - V.7. - P.91.

290) Ye, J. Effects of DNase I coating of titanium on bacteria adhesion and biofilm formation [Text] / J. Ye, C. Shao, X. Zhang, X. Guo, P. Gao, Y. Cen, Y. Liu // Materials Science and Engineering: C. - 2017. - V.78. - P.738-747.

291) Zhang, G. Determination of advanced glycation endproducts by LC-MS/MS in raw and roasted almonds (Prunus dulcis) [Text] / G. Zhang, G. Huang,

153

L. Xiao, A. E. Mitchell // Journal of Agricultural and Food Chemistry. - 2011. -V.59. - №.22. - P.12037-12046.

292) Zhu, T. Strategies for controlling biofilm formation in food industry [Text] / T. Zhu, Ch. Yanga, X. Bao, F. Chen, X. Guo // Grain & Oil Science and Technology. - 2022.

293) Zhu, X. Tunicamycin Mediated Inhibition of Wall Teichoic Acid Affects Staphylococcus aureus and Listeria monocytogenes Cell Morphology, biofilm formation and virulence [Text] / X. Zhu, D. Liu, A.K. Singh, R. Drolia, X. Bai, S. Tenguria, A.K. Bhunia // Front. Microbiol. - 2018. - V.9. - P.1352.

294) Zimmerli, W., Role of rifampin for treatment of orthopedic implant-related staphylococcal infections: a randomized controlled trial [Text] / W. Zimmerli, A. F. Widmer, M. Blatter, R. Frei, P. E. Ochsner // Jama. - 1998. -V.279. - №. 19. - P.1537-1541.

295) Zygadlo, J. A. Antibacterial and anti-biofilm activities of essential oils and their components including modes of action [Text] // Nanotechnology for Treatment of Microbial Diseases. - 2017. - P.99-126.