Паразитарные болезни рептилий: Гельминтозы, пентастомозы, их диагностика, терапия и профилактика тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.00.19, кандидат ветеринарных наук Васильев, Дмитрий Борисович

• Васильев, Дмитрий Борисович
• кандидат ветеринарных наук
• 2000

Оглавление диссертации кандидат ветеринарных наук Васильев, Дмитрий Борисович

1. ОБЩАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА РАБОТЫ.

2. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.

2.1. Видовой состав гельминтов у рептилий.

2.2. Биология гельминтов и их патогенное влияние на организм хозяина.

2.3. Терапия гельминтозов рептилий.

3. СОБСТВЕННЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ.

3.1. Материалы и методы.

3.2. Общая характеристика и структура коллекций рептилий, содержащихся в условиях зоопарков.

3.3 Гельминты и гельминтозы черных новогвинейских питонов

Morelia boeleni) в Московском зоопарке.

3.3.1 Видовой состав возбудителей гельминтозов черных новогвинейских питонов.

3.3.1.1. Цестоды - Ophiotaenia sp.

3.3.1.2. Нематоды - Ophidascaris papuanus, Herpetostrongylus pythonis и Capillaria longispicula.

3.3.2. Видовой состав и биология возбудителей пентастомозов черных новогвинейских питонов.

3.3.2.1. Пентастомы - Armillifer moniliformis.

3.3.3. Диагностика и терапия паразитарных болезней питонов.

3.3.3.1. Диагностика и терапия гельминтозов.

3.3.3.2. Диагностика и терапия пентастомозов и сопутствующих инфекционных болезней.

3.4. Терапия паразитарных болезней рептилий.

3.4.1. Терапия желудочно-кишечных гельминтозов рептилий. Применение ал-бендазола

3.4.2. Терапия легочных гельминтозов и пентастомозов рептилий. Применение аверсектина и моксидектина.

3.5. Профилактика паразитарных болезней рептилий. Методы дезинвазии.

3.5.1. Оценка дезинвазионной активности дезинфицирующих препаратов Вир-кон, Септабик и Бетадин.

4. ВЫВОДЫ.

5. ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ.

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Паразитарные болезни рептилий: Гельминтозы, пентастомозы, их диагностика, терапия и профилактика»

Актуальность проблемы

За последнее десятилетие усилился интерес к проблемам, связанным с содержанием и разведением рептилий в неволе. Это обусловлено рядом причин. В частности, природные популяции многих видов рептилий сократились за счет разрушения естественных биотопов, загрязнения внешней среды и, отчасти, коллекционирования. С другой стороны - возросла роль рептилий в экономике как источников для получения ядов, ферментов, биологически активных веществ, сырья для кожевенной и пищевой промышленности и т.д. Помимо этого, развитие террариумистики, то есть любительского содержания рептилий в неволе, увеличение стоимости перевозок, ограничения на отлов в природе и борьба с контрабандным вывозом обусловили повышение цен на рептилий на мировом рынке. Это повлекло за собой появление новых организаций, в том числе зоопарков, а также частных лиц, занимающихся содержанием, разведением и эксплуатацией рептилий. В настоящий период в странах СНГ только членами Евро-Азиатской ассоциации зоопарков и аквариумов (EAPАЗА) зарегистрировано 62 зоопарка, из которых 38 имеет рептилий в своих коллекциях.

Параллельно с этим ветеринарные специалисты стали больше внимания уделять низшим позвоночным, результатом чего явился ряд публикаций по болезням указанных видов животных. Однако многие аспекты патологии рептилий, в том числе, вызываемой гельминтозами при содержании животных в неволе, изучены недостаточно.

Гельминтофауну рептилий в местах их естественного обитания и на музейном материале изучали многие авторы в нашей стране и за рубежом. Однако в зоопарках эта проблема изучена недостаточно. Главным образом потому, что разные виды рептилий поступают в зоопарки из разных регионов тропического и субтропического поясов, а также от различных фирм-поставщиков и посредников. В связи с этим гельминтофауна рептилий, содержащихся в неволе, может быть очень многообразной и отличаться от естественной. В крупных зоопарках коллекция рептилий может превышать 200 видов и 700 экземпляров.

- 4

В Московском зоопарке на 1.01.99 г. содержалось 828 экземпляров рептилий, представленных 221 видом. Оценить паразитарную ситуацию, так же как и изучить гельминтофауну, в такой крупной и разнообразной ассоциации животных в одной работе не представляется возможным. Такие попытки до настоящего времени не предпринимались.

Между тем, в крупных зоопарках гельминтозы представляют серьезную проблему и являются второй по значимости причиной падежа рептилий (12-14%) после болезней бактериальной этиологии, составляющих 36,6% (Kaneene I.B., 1986). Гельминтозы могут играть существенную роль в развитии синдрома дисадаптации у рептилий, недавно отловленных в природе. Падеж рептилий, связанный с этим синдромом, достигает 60% от числа всех павших животных среди черепах и до 80% у змей (Cowan D.F, 1980).

В группах рептилий, содержащихся в промышленных серпентариях, падеж может достигать 90% за год.

Вопросы терапии гельминтозов рептилий изучали, главным образом, зарубежные авторы. В литературе сообщается о применении разных противопаразитарных препаратов. Это, как правило, эмпирические схемы, касающиеся отдельных случаев лечебной дегельминтизации при желудочно-кишечных гельминтозах. Практически не существует экспериментально проверенных схем для современных препаратов широкого спектра действия, которые можно было бы использовать для профилактической дегельминтизации рептилий, вновь поступающих в зоопарки. Сложности до сих пор возникают и при лечении легочных гельминтозов и, особенно, при инвазиях, вызванных пентастомами.

Вопросы профилактики гельминтозов в условиях зоопарков практически не изучались. Между тем, известно, что рептилии могут являться переносчиками возбудителей многих паразитарных болезней, опасных для других видов животных и человека. Эпизоотология паразитарных зооантропонозов изучена недостаточно. Вместе с тем, ветеринарный контроль при ввозе и вывозе рептилий во многих странах, в т.ч. в России, не является достаточно строгим.

В целом проблема диагностики, профилактики и лечения паразитарных болезней рептилий может выходить далеко за рамки зоопарков. Отчасти потому, что в на

-5 стоящее время только в Москве у любителей экзотических животных содержится более 300 ООО черепах, ящериц и змей. Они частично проходят транзитом за рубеж, а также остаются у местных зооторговых дилеров.

Цель и задачи исследований

Цель исследований - разработать комплекс мер по профилактике и лечению гельминтозов и пентастомозов рептилий, содержащихся в условиях зоопарков, а также других организаций, занимающихся карантинированием, содержанием, разведением и реализацией рептилий.

В связи с обозначенной целью были поставлены следующие задачи:

1. Изучить паразитарную ситуацию, гельминтофауну, фауну пентастом и патогенез при указанных паразитозах у черного питона (МогеНа Ьое1еш).

2. Разработать методы прижизненной диагностики гельминтозов и пентастомозов рептилий, содержащихся в условиях зоопарков.

3. Разработать основу профилактической и лечебной дегельминтизации рептилий препаратами широкого спектра при основных желудочно-кишечных и легочных гельминтозах и пентастомозах.

4. Разработать комплекс профилактических мероприятий против паразитарных болезней рептилий, содержащихся в условиях зоопарков.

5. Внедрить полученные результаты в практику зоопарков.

Научная новизна

Впервые изучена гельминтофауна рептилий, содержащихся в условиях неволи, в том числе - гельминтофауна редкого вида питонов МогеНа Ьое1еш, эндемика острова Новая Гвинея. Получены новые данные по морфологии и биологии гельминтов и пентастом у этого вида питонов, а также - по патоморфологическим изменениям в органах и тканях питонов, при смешанных паразитарных болезнях.

Впервые разработаны методы прижизненной диагностики паразитарных и сопутствующих инфекционных заболеваний питонов, содержащихся в неволе. Для оценки тяжести патологического процесса при паразитозах рептилий применены гематологические и бактериологические исследования.

Разработана оригинальная комплексная схема терапии паразитарных болезней черных питонов, содержащихся в условиях неволи.

Введено понятие "категории зараженности" для определения степени инвази-рованности рептилий в зависимости от технологии их содержания и кормления. Определен гельминтозный статус рептилий в коллекциях зоопарков и его изменения в связи с дегельминтизацией.

Разработан комплекс мер терапии и профилактики паразитарных болезней рептилий, содержащихся в зоопарках. Для профилактики и лечения желудочно-кишечных гельминтозов рептилий впервые предложен албендазол. Его разовая доза рассчитана по методу аллометрического скейлинга. Дозы препарата отработаны для различных систематических групп рептилий. Разработана схема лечения и профилактики легочных гельминтозов и пентастомозов рептилий аверсектином и моксидекти-ном, ранее не применявшимися для этих целей.

Применен оригинальный инъекционный метод введения препаратов живым или убитым грызунам, птицам, амфибиям и мелким рептилиям, предназначенным для кормления инвазированных животных.

Получены первые данные об эффективности современных дезинфицирующих средств (виркон, септабик и бетадин) для дезинвазии террариумов в зоопарках.

Практическая значимость.

Разработан и внедрен комплекс мер общей и специфической профилактики паразитарных болезней рептилий, содержащихся в условиях неволи.

Составными частями комплекса мер являются: разработанный унифицированный метод исследования эндотрахеального смыва для прижизненной диагностики пентастомозов змей; схема и метод применения вальбазена, впервые преложенного для терапии и профилактики желудочно-кишечных гельминтозов рептилий; методы и рекомендации по применению препаратов универм, авертель и цидектин для лечения и профилактики легочных гельминтозов и пентастомозов рептилий; испытанные и предложенные дезинфицирующие средства для дезинвазии помещений террариумов и герпетологического оборудования.

Апробация работы

Материалы диссертационной работы доложены на ежегодном VII Международном Конгрессе по проблемам ветеринарной медицины мелких домашних животных (Москва, апрель 1999), научных конференциях и отчетах по проблемам гельминтологии и паразитологии, проводимых в ВИГИС (1996, 1997, 1998, 1999 гг.), Секции "Инвазионные болезни животных" Отделения ветеринарной медицины РАСХН, декабрь 1999 г.

Материалы диссертации вошли в монографию: Д.Б. Васильев. Черепахи: болезни и лечение. Изд. "Аквариум", Научное издание, М., 1999 г.

Основные положения, выносимые на защиту

1. Фауна гельминтов, пентастом и патогенез при вызываемых ими болезнях у питонов, содержащихся в неволе.

2. Диагностика, лечение желудочно-кишечных и легочных гельминтозов и пентастомозов рептилий, содержащихся в неволе.

3. Система профилактики паразитарных болезней рептилий, содержащихся в условиях неволи.

Публикации

По материалам диссертации опубликовано 7 статей в научных трудах зоопарков (1995, 1996, 1997, 1999), трудах ВИГИС (1999), монография "Черепахи: болезни и лечение" (М., 1999).

Структура и объем диссертации.

Диссертация изложена на 185 страницах машинописного текста. Включает общую характеристику работы, 3 главы собственных исследований, выводы, список литературы. Работа иллюстрирована 41 рисунком, 35 таблицами. Список литературы включает 266 источников, в том числе 240 иностранных авторов.

2. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

В данной главе представлен обзор литературы, касающийся основных разделов диссертации и собственных исследований. Некоторые частные вопросы обзорного плана, со ссылкой на литературу, приводим в главе "Собственные исследования".

Заключение диссертации по теме «Паразитология», Васильев, Дмитрий Борисович

- 162 -4. ВЫВОДЫ

1. У черных питонов (Morelia boeleni), содержащихся в неволе, паразитируют четыре вида гельминтов (Ophiotaenia sp., Ophidascaris papuanus, Herpetostrongylus py-thonis, Capillaria longispicula) и один вид пентастом (Armillifer moniliformis), составляющих естественную гельминтофауну для указанного вида змей. Указанные виды эндопаразитов, кроме О. papuanus, обнаружены у черных питонов впервые.

2. Длина, ширина тела и величина отдельных морфометрических показателей у гельминтов, относящихся к видам Н. pythonis и С. longispicula, выходят за пределы изменчивости, установленные для этих видов паразитов, ранее выявленных у других дефинитивных хозяев.

3. Характерным видовым признаком у пентастом A. moniliformis является количество хитиновых колец на теле. Этот признак является одним из основных для дифференциации в пределах рода Armillifer.

4. Наиболее патогенными для черных питонов являются пентастомы A. moniliformis, и аскариды О. papuanus. Рептилии, инвазированные указанными видами паразитов, менее устойчивы к болезням бактериальной этиологии, и в большей степени подвержены развитию синдрома дисадаптации в условиях неволи.

5. Для диагностики легочных гельминтозов и пентастомозов змей и ящериц наиболее эффективным является метод исследования эндотрахеального смыва, взятого в первой фазе линьки рептилий. Копроскопический метод флотации с нитратом натрия обеспечивает наилучшие результаты при диагностике основных желудочно-кишечных гельминтозов рептилий. Для прижизненной оценки тяжести патологического процесса при паразитозах рептилий применим гематологический метод.

6. Эффективным препаратом при желудочно-кишечных гельминтозах рептилий, вызываемых цестодами подотряда Proteocephalata и нематодами семейств Strongy-lidae, Trichostrongylidae, Ascaridae, Angusticaecidae, Capillariidae, Spiruridae, Stron-gyloididae, является вальбазен в форме 2,5 % -ной суспензии в дозе 20 мг/кг по ДВ, обеспечивающий ИЭ близкую к 100 % при однократном применении.

7. Метод аллометрического скейлинга, использованный для расчета оптимальных терапевтических доз вальбазена при гельминтозах рептилий рационален для подобных расчетов относительно других противопаразитарных препаратов.

8. Эффективными препаратами для лечения легочных гельминтозов и пентастомо-зов рептилий являются универм и авертель в дозе 300 мкг/кг по ДВ (из расчета по аверсектину С), обеспечивающие ИЭ 100 %, и цидектин в дозе 200 мкг/кг по ДВ, ранее не применявшиеся для этой группы животных.

9. Долговременное применение только антипаразитарных препаратов вне комплекса других лечебно-профилактических мероприятий приводят к изменению видового состава эндопаразитов у рептилий, элиминации биогельминтов и доминированию геогельминтов, эктогенные стадии развития которых включают активную подвижную личинку (трихостронгилиды, рабдиазиды, стронгилоиды).

10. Современные дезинфицирующие средства виркон и септабик являются эффективными для дезинвазии террариумов и герпетологического оборудования в водных растворах при концентрации 2 и 0,1% и экспозиции 18 и 16 часов соответственно.

11. Разработанный комплекс лечебно-профилактических мероприятий против паразитарных болезней рептилий, содержащихся в неволе, улучшает адаптацию животных, поступивших из природы, обеспечивает сохранность поголовья, увеличивает продолжительность жизни и возможность репродукции рептилий, в том числе, редких и проблемных видов.

- 164

5. ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ

1. Предложен комплекс мероприятий по профилактике паразитарных болезней рептилий в зоопарках и других организациях, занимающихся содержанием, разведением, карантинированием и реализацией указанных животных.

2. Составными частями комплекса мер являются: методы прижизненной диагностики гельминтозов и пентастомозов, включая разработанный унифицированный метод эндотрахеального смыва; меры общей профилактики, включающие ряд зоогигие-нических требований, позволяющих исключить или значительно минимизировать реинвазию рептилий в неволе; рекомендации по применению испытанных дезинфицирующих средств из класса четвертичных аммониевых соединений и иодофоров для дезинвазии помещений предназначенных для содержания рептилий.

3. Меры специфической профилактики включают лечебную и профилактическую дегельминтизацию рептилий различными противопаразитарными препаратами, в том числе вальбазеном, универмом, авертелем и цидектином, ранее не применявшимися для этих целей.

4. Ветеринарно-санитарные и лечебно-профилактические мероприятия рекомендуется проводить с учетом биологии возбудителей паразитарных болезней и обоснованных в нашей работе категорий зараженности рептилий.

5. В части основных паразитарных болезней крокодилов, черепах, ящериц и змей, предложен комплекс мер, включающий их диагностику, терапию и профилактику указанных болезней, с учетом биологии рептилий и возбудителей паразитозов

6. Комплекс мероприятий отражен в рекомендациях: "Меры профилактики паразитарных болезней рептилий", одобренных Секцией "Инвазионные болезни животных" Отделения ветеринарной медицины РАСХН (09.12.1999) и Евро-Азиатской Региональной Ассоциации зоопарков и аквариумов, EAP АЗА (01.11.1999). Указанные предложения опубликованы в монографии "Черепахи: болезни и лечение", изд. "Аквариум", Научное издание, М. 1999.

7. Отдельные направления работы, касающиеся вопросов профилактики смешанных инвазий, исследования динамики паразитарного статуса и роли секундарных ин

Заключение

Таким образом, использование дезинфицирующих средств, в том числе, дорогостоящих, для дезинвазии нестандартных помещений и оборудования вполне применимо в зоопарках, где такие средства постоянно закупают и применяют для вынужденной, текущей и заключительной дезинфекции. Скрининг и определение активности таких препаратов в качестве средств дезинвазии террариумов является чрезвычайно перспективными.

Предварительные исследования показывают, что дезинфектанты, относящиеся к группам четвертичных аммониевых, перекисных соединений и иодофоров, особенно в комплексе с ПАВ, являются активными в отношении слабоустойчивых и устойчивых возбудителей гельминтозов в концентрациях рабочих растворов, рекомендуемых для дезинфекции, но при значительном увеличении времени экспозиции.

Из всех препаратов, активность которых определялась в экспериментах, наиболее эффективным оказался дезинфектант септабик. Предварительные данные показывают, что при воздействии 0,1% раствора септабика в течение 6-7 часов происходит гибель всех яиц 81гоп§уЫс1е5, а при продлении экспозиции до 16 - 18 часов гибнут яйца гельминтов, относящихся к устойчивым возбудителям инвазии (СарШапа ер.).

При обработке террариумов и оборудования препаратами из рассмотренных групп рекомендуется увеличение времени экспозиции до 24 часов (при возможности временного перемещения животных) в случае текущей и заключительной дезинфекции. В случае вынужденных дезинфекций, параллельную дезинвазию террариумов следует проводить по показаниям.

- 159

Значимость лечебно-профилактических мероприятий при паразитарных болезнях рептилий

Рептилии, содержащиеся в зоопарках и других условиях неволи, не являются продуктивными животными. Их ценность определяется возможностью экспонирования, разведения с научными или коммерческими целями и получения ценного сырья. Как правило, при содержании редких видов, их стоимость во много раз превышает возможные затраты на лечебно-профилактические мероприятия в период адаптации и при дальнейшем содержании животных. При успешном размножении редких видов рептилий в неволе, экономическая эффективность этих мероприятий повышается, так как реализация молодняка приносит определенную прибыль. Цена на рептилий, разведенных в неволе, обычно выше, чем на животных, отловленных в природе.

Как было показано в данной работе, паразитарные болезни способствуют развитию синдрома дисадаптации у вновь поступающих рептилий, снижают их продолжительность жизни в неволе, уменьшают репродуктивный потенциал в адаптированных группах животных и определяют до 12 - 14% падежа от общего числа павших животных за год.

Международные цены на крупных черепах и крокодилов достигают десятков тысяч долларов США за одну особь. Цены на редкие виды змей и ящериц обычно колеблются в пределах от одной до пяти тысяч долларов США за одну особь. Цены на других рептилий могут варьировать от двадцати до пятисот долларов США, в зависимости от вида. Стоимость коллекции рептилий Московского зоопарка превышает четыреста пятьдесят тысяч долларов США по ценам на декабрь 1999 г.

Падеж рептилий в Московском зоопарке составляет около 8 - 10% в год, а для большинства других зоопарков - 12 - 15% в год. При этом около 10% общего падежа обусловлено паразитарными болезнями и около 25% - синдромом дисадаптации. Таким образом, в Московском зоопарке только прямой убыток от паразитарных болезней составляет около 3600 долларов США ежегодно.

Затраты на ЛПМ против паразитарных болезней в коллекциях рептилий оказываются значительно ниже, чем в коллекциях других групп животных. Большинство видов рептилий, содержащихся в неволе, относятся к мелким и средним животным, с

- 160массой тела 100 - 1000 г. Средняя масса одной рептилии (без учета гигантских видов крокодилов и черепах) составляет всего около 400 г. Следовательно, общая масса абсолютного большинства всех рептилий в Московском зоопарке составляет не более 320 кг. Таким образом, использование даже дорогостоящих противопаразитарных препаратов и средств сопутствующей терапии ежегодно обходится дешевле, чем лечение одного крупного млекопитающего.

Наибольшие затраты в комплексе ЛПМ приходятся на дезинвазию помещений. Однако, как показано в нашей работе, использование современных дезинфицирующих средств для дезинвазии террариумов и герпетологического оборудования позволяет одновременно профилактировать и инфекционные, и инвазионные болезни. Закупка дезинфицирующих средств для борьбы с инфекциями в зоопарках производится в плановом порядке. Это позволяет полностью перевести статью расходов на дезинвазию в затраты на профилактику инфекций, так как по нашим данным, использование таких средств для дезинвазии не требует дополнительного расхода препаратов, а только увеличения времени экспозиции.

В качестве конкретного примера эффективности разработанных нами ЛПМ приведем расчет затрат на борьбу с паразитарными и сопутствующими инфекционными болезнями черных новогвинейских питонов. Затраты на ЛПМ на одну особь средней массой 5 кг составили около 11,41 доллара США в год при применении основных препаратов (вальбазен, панакур, авертель, байтрил, амикацин, В-комплекс, септабик, виркон) и около 10,4 доллара США за диагностические процедуры (по ценам на 1999 г). Ущерб от падежа одной особи черного питона стоимостью 2200 долларов США (по ценам на 1 декабря 1999 г.) значительно превышает стоимость всех затрат на ЛПМ. С 1991 по 1997 гг. до разработки плана ЛПМ для рептилий в Московском зоопарке пало 14 особей черных питонов, общей стоимостью около 42000 долларов США (по ценам на указанный период). Проведенные мероприятия позволили сохранить оставшееся поголовье из 6 особей черных питонов, добиться их нормальной адаптации и полного освобождения от пентастом A. moniliformis, представляющих опасность для обслуживающего персонала. Сохраненная группа этих питонов является самой крупной в мире и перспективна в плане размножения.

-161

Внедрение комплекса ЛПМ в Московском зоопарке позволило значительно улучшить паразитарную ситуацию. Показатель ЭИ снизился в 1999 г. с 52,20 до 7,61% (ТЧ = 92); показатель ИИ - с 35,40 до 7,14% (К = 48). Прямой падеж, вызванный паразитарными болезнями, снизился с 10,34% в 1998 г. (1чГ — 58) до 2,15% в 1999г. (Ы = 93).

Применение указанных лечебно-профилактических мероприятий позволило успешно адаптировать к условиям неволи и содержать в Московском зоопарке уже более 1,5 лет редкие виды индонезийских аспидов и бойг, танзанийских и кенийских древесных гадюк и хамелеонов, средняя продолжительность жизни которых в зоопарках мира пока не превышала 3-6 месяцев.

Список литературы диссертационного исследования кандидат ветеринарных наук Васильев, Дмитрий Борисович, 2000 год

1. Берзанцев Ю.И. Зоол. журн., вып.6.-1961.-т.40.-с.934-935.

2. Боровиков И.П. Statistica. Статистический анализ и обработка данных в среде Windows // Инф.-Изд. Дом "Филинъ".-1996.- Изд.2-е.-С.608.

3. Васильев Д.Б., Кудрявцев C.B. Содержание и разведение настоящих кобр, Naja, в Московском зоопарке // Сб. "Научные исследования в зоологических пар-ках".Вып.6.-1996.-с.26-51.

4. Догель В.А. Зоология беспозвоночных // Изд.7-е, М., "Высшая школа".-1981.- С. 429-430, 436.

5. Искова Н.И., Шарпило В.П., Шарпило Л.Д., Ткач В.В. Каталог гельминтов позвоночных Украины. Трематоды наземных позвоночных // Киев.-1995.-95С.

6. Камалов Н.Г. Глистная инвазия у сетчатых питонов (P. reticulatus) // Тр. Тбилисского зооп.-1948.-т.1.-с.77-78.

7. Краббе X. Ленточные (Cestodes). Путешествие в Туркестан А.П. Федченко. // Т.З. Зоогеографические исследования. 4.2. Черви (Vermes). Тетр.1. Изв. имп. о-ва любителей естествознания, антропологии и этнографии.-1879.-Т.34.-№1.-с.17-18.

8. Кудрявцев C.B., Фролов В.Е., Королев A.B. Террариум и его обитатели // "Лесная промышленность", М.-1991.-241С.

9. Кумбов П.К. Разработка средств дезинвазии животноводческих помещений и вы-гулов // Диссертация канд. вет. наук. М.-1998.

10. Лакин С.Ф. Биометрия: учебное пособие для биологических вузов // Высшая школа, М.-1990.-С.352.

11. Ланде Ю., Ярофке Д. Рептилии: болезни и лечение // Пер. с немецкого, "Аквариум ЛТД".,М.-1999.-317С.

12. Любимов М.И. Труды Тбилисского зоопарка.-1934.-№ 1.-е. 109-123.

13. Мозговой A.A. Аскаридаты животных и человека и вызываемые ими заболевания // Книга 1. Сер. "Основы нематодологии". Изд. Академии Наук СССР, М.-1953.-Т.2.-С.134-159.

14. Мозговой A.A., Шахматова В.И. Аскаридаты животных и человека и вызываемые ими заболевания // Книга 3. Сер. "Основы нематодологии". Изд. "Наука".-1973.-Т.23.-С.10-12.

15. Мусаев H.A., Зейниев Н.Р. К фауне кровепаразитов рептилий Азербайджана // Известия АН АзССР. Сер. биол. Н.-1989.-№ 6.-С.З-9.

16. Рыжиков K.M., Ахмеров А.Х., Контримавичус В.Л., Ройтман В.А. Исследования гельминтологической лаборатории АН СССР по фауне гельминтов (1942-1967) // Труды ГЕЛАН.-1968.-№19-с. 18-23.

17. Скрябин К.И., Шихобалова Н.П., Орлов И.В. Трихоцефалиды и капиллярииды животных и человека и вызываемые ими заболевания // Сер. "Основы нематодологии". Изд. Академии Наук СССР.-1957.-Т.6.

18. Скрябин К.И., Шихобалова Н.П., Шульц P.C. Трихостронгилиды животных и человека // Сер. "Основы нематодологии". Изд. Академии Наук СССР.-1954.-Т.З.

19. Фрезе В.И. Протеоцефаляты ленточные гельминты рыб, амфибий и рептилий // Сер. "Основы цестодологии". Изд. Академии Наук СССР,-1965.-т.5.

20. Цветаева Н.П. Болезни животных Московского зоопарка // Труды Московского зоопарка.Вып.2.-1941 .-т.2.-с.68-69.

21. Черепанов A.A., Кумбов П.К. Дезинвазия животноводческих помещений: состояние вопроса и перспективы исследований // Тр. Всерос. ин-та гельминтол.-1998.-Т.ЗЗ.-С.164-184.

22. Шарпило В.И. Паразитические черви пресмыкающихся фауны СССР // Киев. "Наукова Думка",- 1976.-286С.

23. Эвранова В.Г., Мосина С.К. Случай обнаружения паразитов при вскрытии тигрового питона Python molurus из Южного Китая // УЗКВИ.-1958.-т.74,-с. 119-121.- 168

24. Юрахно М.В. и др. О гельминтофауне рептилий бассейна Салгира (Крым) // Вест, зоол. №2.-1986.-с.35-37.

25. AAZV. Complied reptilian formulary // Ann. Conf. Proc. AAZV.-1992.

26. Abrahams R. Ivermectin as a spray for treatment of snake mites // Bull, of the Assoc. of reptilian and amphibian veterinarians.-1992.-V.2.-№l.-P.8.

27. Ali J.H., et al. Further observations of Blunt-Hooked Raillietiellids (Pentastomida: Cephalobaenida) from lizards with descriptions of three new species // Sys. Paraset.-1984.-№6.-P. 147-160.

28. Ali J.H., Riley J. Experimental life-cycle studies of Raillietiella frenatus: Pentastomid parasites of geckos utilizing insects as intermediate hosts // Parasitol.-1983.- №86.-P.147-160.

29. Amnu S., Krishnasamy H., Jeffery J. A study on endoparasites of some snakes in Peninsular Malaysia// Snake.- 1990.-V.22.-№2.-P.120-125.

30. Anderson N.L., Wack R.F., Calloway L., Hetherington Т.Е., Williams J.B. Cardiopulmonary effects and efficacy of propofol as an anesthetic agent in Brown Tree shakes, Boiga irregularis // Bull. Assoc. Rep. Amph. Vet.-1999.-V.9.№2.-P.9-15.

31. Ash L.R., Beaver P.C. A restudy of Ophidascaris labiatopapillosa occuring in the stomach of North American snakes // J. Parasitol.-1962.-V.-P. 48-41.

32. Baker M.R. Morphology and taxonomy of Rhabdias sp. (NematodarRhabdiasidae) from reptiles and amphibians of Southern Ontario // Can. J.Zool.- 1978.-V. 56.-P.2127-2141.

33. Baker M.R. Nematode parasites of the turtle Pelusios sinuatus (Pelomidusidae, Pleuro-dira) from Southern Africa// Syst. Parasitol.- 1983.-V. 5.-№3.-P.161-168.

34. Barker D.G., Barker T.M. Pythons of the world. Volume II: Indonesia and New Guinea // The Herpetological Library, Advanced Vivarium Systems, Lakeside, California.-1994.

35. Barnard S.M., Upton S.J. A veterinary guide to the parasites of reptiles // Krieger Publishing Co.-1994.-V.l.-154P.

36. Barns V., Kornalik F. On some interesting parasites of snakes (Ophidia) Bitis gabonica Dum., Vipera russeli Shaw., and Pyton molurus bivittatus // Schl. Ceskoslovenska Parasitologic.- 1963.-№ 10.-P. 61-71.

37. Benes E.S. Helminth parasitism in some Central Arizona lizards // Southwest Naturalist.- 1985.-№ 30.-P.467-473.-16940. Bennett 11.A. Reptilian surgery. Part 1. Basic principles // Compend. Cont. Ed. Pract. Vet.- 1989.-P. 11-10.

38. Bernstein J.J. A clinical view of some reptilian medical problems // J. Zoo Anim. Med.-1972.-73.-P.3-7.

39. Bilquees F.M., Siddiqui M.N., 1975. Three helminth parasites of the Wall lizard, Gecko sp. // Pakistan J. Sci. Ind. Res., 18: 261-264.

40. Blair D. Elytrophallus carettae sp.n. (Digenea:Hemiuridae) form the stomach of loggerhead turtles (Caretta caretta L.) from Australia // Proc. Helminthol. Soc. Washington.-1984.-V. 51.-№1.-P.135-139.

41. Blair D. Paramphistomes (Digenea:Paramphistomidae) parasitic in marine turtles (Rep-tilia: Chelonia) //Aust. J. Zool.- 1983.-V. 31.-№5.-P.851-867.

42. Bons I., Saint Girons H. Le cycle sexuel des reptiles males du Maroc et ses rapports avec la pepartition géographique et le climat // Bull. Soc. Zool. France.-1992.-V.107,-№l.-C.71-86.

43. Bosch H. Experimental life-cycle studies of Raillietiella Sambon, 1910 (Cephalobae-nida). The fourth stage larva is infective for the definitive host // Z. Parasitenkunde.-1986.-P. 673-680.

44. Bosch H. The pentastome Elenia Heymons, 1932, a parasite genus specific to monitors from the Australian region biology and aspects of host specificity // Mertensiella, Supplement zu Salamandra, Bonn.-1991.-№ 2.-P. 50-56.

45. Bouman D.D. Hexametra leidyi sp.n. (Nematoda: ascarididae) from North American pit vipers (Reptilia: Viperidae) //Prie. Helminthol. Sic. Washington, 1984.-V.51.-№1.-P.54-61.

46. Boyce W., et al. Sebekiosis in captive alligator hatchlings // J.A.V.M.A.-1984.- V.185.-№11.-P.1419-1420.

47. Boyer D.M. Adverse ivermectin reaction in the prehensile-tailed skink, Corucia zebrata //Bull, of the Assoc. Rep. Amph. Vet.-1992.-V. 2.-№2.-P.6

48. Boyer D.M., 1995. Snake mite (Ophionyssus natricis) eradication utilizing permectrin spray //Bull. Assoc. Rep. Amph. Vet.-V.5.-№1.-P. 4-5.

49. Brannian R.E., Greve J.H. Diseases and parasites of captive population of Tokay geckos // Proc. First Int. Conf. Zool and Avian Med.- 1987.-P. 481-486.

50. Bretland P.M. Armillifer armillatus infestation. Radiological diagnosis in two Chanaian soldiers // British Journal of Radiology. New series.- 1962.-№ 35.P.603-608.

51. Brongersma L.D. Notes on Liasis Boeleni Brongersma // // Proc. Ned. Acad. Wetn.-1969.- V.72.-№2.-P.124-128.

52. Brongersma L.D. Notes on New Guinean reptiles and amphibians // Proc. Ned. Acad. Wetn.-1953.-V.56.-№3.-P.317-325.

53. Brooks D.K. Platyhelminths // In Deseases of amphibians and reptiles Hoff G.L., Frye F.L., Jacobson E.R. (Eds.). N.Y., London, Plenum Press.- 1984,- P.247-259.

54. Brooks D.R., Overstreet R.M. The family Liolopidae (Digenea), including a new genus and two new species form Crocodilians // Int. J. Parasitol.- 1978.-№ 8.-P.267-273.

55. Brumpt E. Precis de parasitologic // T.2, 6-th Marson et Cie, Editeurs, Paris.- 1936.- P. 1106.

56. Bugnion E. Le pentastome du python (Porocephalus moniliformis Dies) // Bull, de la Societe Vaudoise des Sciences Naturelles.-1910.- V. 5.-№ 46.-P. 467-472.

57. Bursey C.R. Eustrongylides tubifex in the northern water snake, Nerodia sipedon // Proc. Helminthol. Soc. Washingon.- 1985.-V. 53.-№l.-P.128-134.

58. Bursey C.R., Goldberg S.R., Secor S.M. Hexametra boddaertii (Nematoda: Ascaridi-dae) in the sidewinder, Crotalus cerastes (Crotalidae), from Carifornia // Journ. Helmin-tholog. Soc. of Washington.- 1995.-V.62.-№l.-P.78-80.

59. Bush M. Reptilian medicine // Proc. Am. Assoc. Zoo Vet.-1974.-P.68-78.

60. Campbell T.W. Clinical pathology // In Reptile medicine and surgery. Mader D.R., W.B. Saunders Co.- 1996.-P.248-257.

61. Canavan W.P.N. Nematode parasites of vertebrates in the Philadelphia zoological garden and vicinity // Parasitology.- 1929.-№ 21.-P.63-102.

62. Cannon D.A. Linguatulid infestation of man // Annals of Tropical Medicine and Parasitology.- 1942.-№ 36.-P.160-167.- 171

63. Carter O.S., Etges F.G. Extraintestinal adult cestodes from Anolis carolinensis // J. Parasitol.-1973.-№59.-P.l 140-1141.

64. Chaboud S.G., Tcheprakoff R. Sur Chapiniella diazi n. sp., strongylide parasite de Testudo denticulata au Venezuela // Bull. Mus. Nat. Hist. (Paris).-1977.-Ser.3.-V.469.-№326.-P.765-769.

65. Chartres J.C. Radiological manifestations of parasitism by the tongue worms, flat worms and the round worms more commonly seen in the tropics // Brit. Journ. Radiology.- 1965.-№ 38.-P. 503-511.

66. Cherry R.H., Ayer A.L. Parasites of American alligators, A. mississippiensis, in South Florida// J. Parasitology.- 1982.-P.68-509.

67. Conn D.B., Etges F.G. Helminth parasites of Anolis carolinensis (Reptilia: Lacertilia) from Southeastern Louisiana // Proc. Helminthological Soc. of Washington.-1984,-№51.-P.367-369.

68. Cooper J.E. Disease in East African snakes associated with Kalicephalus worms (Nematoda: Diaphanocephalidae) //Vet. Ree.- 1971.-№.-№.89.-P.385-338.

69. Cooper J.E. Parasites form reptiles in Kenya, with notes on their significance and control//Brit. J. Herpetol.- 1974.-V. 5.-№3.-P.431-438.

70. Cooper J.E., Jackson O.F. Diseases of the Reptilia // Vol. 1-2.- London and New York, Academic Press.- 1981.-784P.

71. Corwin M. Treating parasites in savanna monitors, Varanus exanthematicus // Bull, of the Assoc. Rep. Amph. Vet.- 1992.-V. 2.-№2.-6.

72. Cosgrove G.E., Deakins D.E., Self J.T. Pentastomiases // In Diseases of amphibians and reptiles. Hoff G.L., Frye F.L., Jacobson E.R. (Eds.). N.Y., London, Plenum Press.-1984.-P. 205-212.

73. Coster P., Rodhain J. Localisation oculaire de nymphes de porocephales che un enfant indigene // Annales de la Societe Beige de Medecine Tropicale.-1951.-№31.-P.331-336.

74. Cowan D.F. Adaptation, maladaptation ans disease // In Reproductive biology and diseases of captive reptiles. Soc. Stud. Amph. Rep., Meseraull Print., Kansas.-1980.-P. 191196.

75. Crandall R.B. The life history and affinities of the turtle lung fluke, Heronimus chely-drae, Mc Callum, 1902 //J. Parasitai.- 1960.-№46.-P.289-307.

76. Crews D., Garrick L.D. Methods of inducing reproduction in captive reptiles // In Reproductive Biology and Diseases of Captive Reptiles.-Kansas.-1980.-P.49-70.

77. Dailey M., Balasz G.H. Digenetic trematodes as possible etiologic agent for fibropap-illomas in Hawaiian Green turtles (Chelonia mydas) // Proc. 18-th Int. Assoc. Aquatic An. Med. Monterey, CA.-1987.-P.46-50.

78. Daniels C.B., Simbotwe M.P. The biology of Acanthocephalan parasites of Australian skinks // J.Herpetol.-1984.-V.18.-№2.-P.211-213.

79. Deakins D.E. Diagnosis and treatment of parasites of amphibians and reptiles // Proc. Am. Anim. Holp. Assoc.-1972-1973.-P.37-48.

80. Deakins D.E. Pentastome pathology in captive reptiles // Ph.D. thesis, Univ. Oklahoma, Norman.-1973.

81. Deakins D.E. Pentastomes from Blackbeard Island, Georgia with notes on North American pentastomes // J. Parasitilogy.- 1971.-№57.-P. 1197.

82. Deakins D.E., Cosgrove G.E. Reptilian helminthiasis // Proc. of Wildlife Disease Symposium on the Diseases of Reptiles. Fort Collins, Colorado.-1978.-P.37-48.

83. Dolensek E.P., et al. Intestinal parasitic inhabitans in exhibited reptiles // J. Protozoology.-1976.-P. 23 : Abstr. 19 A.

84. Dopf A. Un cas de pneumonic a Porocephalus armillatus che un indigene du Dahomey // Annales de la Faculté Française de Medecine et de Pharmacie. Beyrouth.-1937.-№6.-P.112-115.

85. Doucet J. Contribution a letude anatomique, histologique et histochemique des pentastomes (Pentastomida) // Memories Office de la Recherche Scientifigue et Techique Outre-Mer, Paris.-1965 .-№. 14.-P. 1-150.

86. Doyle R.E., Moreland A.F. Diseases of Turtles // Lab. Anim. Digest.-1969.-74.-P.3-6.

87. Dujardin F. Memoire sur les helminthes des musaraignes et en particulier sur les Trichosomes, les Distomes et les Taenias, sur leurs metamorphoses et leurs transmigrations. //Ann. SieNatur.Zool.-1843.-V.2.

88. Esslinger J.H. Development of Porocephalus crotali (Humboldt, 1808) (Pentastomida) in experimental intermediate hosts // J. Parasitology.- 1962.-№48.-P. 631-638.

89. Evans E.E., Cowles R.B. Effect of temperature on antibody sinthesis in the reptiles, Dipsosaurus dorsalis // Proc. Soc. Exp. Biol. Med.-1959.-V.l 10.-P.482-483.

90. Fain A. Pentastomida of snakes: Their parasitological role in man and animal // Memor. Instit. Butantan. Sim. Int.-1966.- 733.-P.167-174.

91. Fantham H.B., Porter A. The endoparasites of certin South African snakes, together with some remarks on their strukture and effect on their hosts // Proc. Zool. Soc. Lon-don.-1950.- 7120.-P.599-647.

92. Fantham H.B., Porter A. The endoparasites of some North American snakes and their effects on the Ophidia // Proc. Zool Soc. London, 1953-1954,- 7123.-P.867-898.

93. Farooq M., Khan A.F. Helminth parasites from amphibians and reptiles of Pakistan -an illustrated check list // Proc. of Parasitology.-1994.-№.17.-P.8-67.

94. Faust E.C. Linguatulids (order Acarina) from man and other hosts in China // Am. Journ. Trop Med.-1927.-№7.- 311-325.

95. Fiennes R.N. Disease of snakes caused by internal parasites // Proc. Ill Int. Symp. Dis. Zoo Anim., Berlin.-1961.

96. Frank W. Die Pathogenen Wirkungen von Macdonaldius oscheri Chabaud et Frank 1961 (Filaroidea, Onchocercidae) bei Verscheridenen Arten von Schlangen (Reptilia, Ophidia) // Parasitenk.-1964.-№24.-P.249-275.

97. Frank W., Reichel K. Experience obtained from control of nematodes and cestodes in reptiles and amphibians // Proc. XIX Int. Symp. Dos. Zoo Anim., Poznan, Poland.-1977.-P.107-114.

98. Freeman R.S. Fatal human infection with metacercariae of the trematode Aralia americana// Am. J. Trop. Med. Hyg.-1976.-№25.-P.803-807.

99. Freitas T.J.F. e Lent H. Capillariinae de animales de sangue frio (Nematoda: Trichuroidea) // Mem. Inst. O. Cruz.-1935.-t.30,- P. 241-284.

100. Frye F.L. Biomedical and surgical aspects of captive reptile husbandry // First Ed. Edwardsville, KS, Veterinary Medicine Publishing Co., Inc.-1981

101. Frye F.L. Biomedical and surgical aspects of captive reptile husbandry // 2-nd enlarged edn. Krieger Publishing Co.-1991.-Vol.l-2.-637P.

102. Frye F.L., Williams D.L. Self-Assessment color review of reptiles and amphibians // Jowa State Univ. Press.-1995.-P.124.

103. Funk R.S. Herp. health hints and husbandry: Parasiticide dosages for captive amphibians and reptiles // Bull. Chicago Herpetol. Soc.-1988.-V.23.№2.-P.30.

104. Gabrische K. Diagnose und Therapie von Parasitosen bei Reptilien // Prakt. Tierarzt.-1976.-V. 57:Sdnz.-P. 37-40.

105. Glenn J.L., et al. Vermiplex, an anthelminthic agent for snakes // J. Zoo Anim. Med.-1973.-№.4.-P.3-7.

106. Goldberg S.K., Bursey C.R. Gastrointestinal helminths of the reticulated gila monster, Heloderma suspectum suspectum (Sauria: Helodermatidae) // J. Helminthol. Soc. Wach.-1991.-V.58.-№1.-P. 146-149.

107. Goldberg S.R. Larval cestodes (Mesocestoides sp.) in a Giant Spotted Whiptail, Cne-midophorus burti stictogrammus // J. Herp.- 1987.-V.21.-№4.-P 337.

108. Goldberg S.R., Bursey C.R. Helminths of the Bunch grass lizard, Sceloporus scalaris slevini (Iquanidae) // J. Helminthcl. Soc. Washington.-1992.-V. 59.-№l.-P.130-131.

109. Granfield M.R., Graczyk T., Wright K., Frye F.L., Raphael B., Garner M. Cryptospo-ridiosis //Bull. Assoc. Rep. Amph. Vet.-1999.-V. 9.-№3.-P.15-21.

110. Greiner E.C., et al. Helminthes of mariculture reared Green turtles form Grand Cayman//BWI. Proc. Helminthol. Soc. Washington.- 1977.-V.47.-№1.-P. 142-144.

111. Haffner K. Von. Die Sinnesorgane der Linguatuliden, nebst einer Betrachtung über die systematische Stellung dieser Tiergruppe // Zeitschrift fur Wissenschaftliche Zoologie.-1926.-№128.-S.201-252.

112. Hainsworth E.R. Animal physiology adaptations in function // Redding M.A., Addison-Wesley.- 1981 .-P. 155-172.

113. Hamir A.N. Aortitis caused by Ophidascaris papuanus in a python // J.A.N.M.V.A.-1980.-V.189.-№9.-P.l 129-1130.

114. Hartdegen R.W., Greve J.H. Identification of a gastrointestinal nematode in the Boe-len's python, Morelia boeleni // Bull. Assoc. Rep. Amph. Vet.-1988.-V.8.-№1.-P.8.

115. Harvey-Clark C. Efficacy of vercom in the treatment of oxyurid nematodes in green iguanas (Iguana iguana) //Bull. Assoc. Rep. Amph. Vet.-1991.-V.l.-№l.-P.7-8.

116. Harwood P.D. The helminths parasitic in the Amphibia and Reptilia of Houston, Texas and vicinity // Proc. U.S. Nat. Hist. Mus.-1932.-№.81.-P.l-71.

117. Hasegawa H. Helminths collected from amphibians and reptiles on Amamioshima Island, Japan // Mem. Nat. Sei. Mus.-1990.-№.23.-P.83-92.

118. Herman C.M. Parasites obtained from animals in the collection of the New York Zoological Park during 1938 // Zoologica. N.Y.-1939.-№24.-P. 481-485.

119. Herzog M., Hare C.B. Porocephalus constrictus in a native Filippins // Transactions of the American Microscopial Society.-1907.-№27.-P.41-45.

120. Hett M.L. On some new pentastomids from the Zoological Society's gardens // London. Proc. Zool. Soc. London.-1915.-P. 115-121.

121. Heymons R. Pentastomida // In Dr. H.G. Bronns, Klassen und Ordnungen des Tierreichs.- Vol. 5, See. 4, Book 1. Acagemische Verlag., Leipzig.-1935.-S.268.

122. Heymons R. Ueber eine Abnormität bei einer Pentastomide (Armillifer moniliformis Diesing) // Sitzungberichte der Gesellschaft Naturforschender Freunde zu Berlin.- 1932.-№ 3.-P.287-290.

123. Heymons R., Vitzthum H.G. Beitrage zur Systematik der Pentastomiden // Zeitschrift für Parasitenkunden.-1936.-№8.-S. 1 -103.

124. Highfield A.C. Practical encyclopedia of keeping and breeding tortoises and freshwater turtles // London, Carapace Press.-1996.

125. Hill H.R. The occurence of linguatulids in Pythons // Bull. Souther California Acad. Sce.-1934.-№33.-P.l 17-122.

126. Hoff G.L., Frye F.L., Jacobson E.R. Diseases of amphibians and reptiles. N.Y., Plenum Press.- 1984.-784P.

127. Holt P.E., et al. Strongyloides infection in snakes: three case reports // Vet. Rec.-1979.-№104.-P.213-214.

128. Holt P.E., Lawrence K. Efficacy of fenbendazole against the nematodes of reptiles // Vet. Rec.-1982.-№.110.-P.302-304.

129. Holz P.H. The reptilian renal portal system: A review // Bull. Assoc. Rep. Amph. Vet.-1999.-V.9.- № 1.-P.4-9.

130. Ippen R., Schröder H.D. Zu den erkrankungen der reptilien // Proc. XIX Int. Symp. Dis. Zoo Anim. Berlin, Academie Verlag.-1977.

131. Ippen R., Schröder H.D., Elze K. Handbuch der Zootierkrankheiten. Band 1. Reptilien // Academie Verlag. Berlin.-1985.-432 S.

132. Iverson I.B. Adaptation to herbivory in iguanine lizards // In Iguanas of the world. Burghard G.M. and Rand A.S. (eds) Noyes Publications, Park Ridge, N.Y.-1982.-P.6-76.

133. Jackson O.F. Helminth infestation in snakes // Vet. Rec.-1972.-№90.-P.51.

134. Jacobson E.R. Blood collection techniques in reptiles: Laboratory investigations // In Zoo and wild animal medicine: Current therapy. Fowler M.E. (ed.). W.B. Saunders Co., Philadelphia, PA.-1993.-P. 114.

135. Jacobson E.R. Diseases of the respiratory system of reptiles // Vet. Med. Smal.Anim. Clin.,1978.-№73.-P. 116-117.

136. Jacobson E.R. Pustular dermatitis caused by subcutaneous dracunculiasis in snakes // I. A.V.M.A.-1986.-V. 189.-№9.-P. 1133-1134.

137. Jacobson E.R. Reptilian formulary // Reptile medicine symposium. University of California at Davis.-1987.

138. Jacobson E.R. Use of ripercol-L for the treatment of lungworms in snakes // J. Zoo Anim. Med.-1976.-V.7.-№2.-P. 14-15.

139. Jacobson E.R., Flanagan J.P., Rideout B., Ramsay E.C., Morris P. Ophidian paramyxovirus // Bull. Assoc. Rep. Amph. Vet.-1999.-V.9.-№l.-P.15-22.

140. Jacobson E.R., Klingenberg R.J., Homer B.L., Mader D.R. Inclusion Body Disease // Bull. Assoc.Rep. Amph. Vet.-1999.-V.9.-№2.-P. 18-25.

141. Johnson-Delaney C.A. Reptile zoonoses and threats to public health // In Mader D.R. Reptile medicine and surgery. W.B. Saunders Co.-1996.-P.20-33.

142. Jones H.J. Gastrointestinal nematodes of the frillneck lizard, Chlamydosaurus kingii (Agamidae), with particular reference to Skrjabinoptera goldamanae (Spiru-rida:Physalopteridae)//Australian Journ. ofZoology.-1994.-V.42.-№3.-P.371-377.

143. Jones H.J. Speciation, distribution and host-specifity of gastric nematode in Australian varanid lizard // Mertensieila.-1994.-P. 195-203.

144. Kaneene I.B. Diseases pattern in the Detroit Zoo: A study of reptilian and amphibian population from 1973 thouth 1983 // Wildl. Dis. Review.- 1986.-V.4.-№1.-P.86-110.

145. Kevin M.W. Medical management of the Solomon Island prehensile-tailed skink, Corucia zebrata // Bull, of the Assoc. of reptilian and amphibian veterinarians.-1993.-V.3.-№l.-P.9-17.

146. Kiel I.L. A review of parasites in snakes // Southwest. Vet.-1975.-V.28.-№3.-P.209-220.

147. Klingenberg R.J. A comparison of fenbendazole and ivermectin for the treatment of nematode parasites in Ball pytnon, Python regius // Bull. Assoc. Rep. Amph. Vet.-1992.-V.2.-№2.-P.5-6.

148. Kozlowski S., Mirski В., Zolowski Z. An instance of generalized porocephalosis in monkey caused by nymphs of the species Armillifer moniliformis (Diesing, 1836) // Wiadomosci Parazytologiczne.-1958.-№4.-P.755-757.

149. Kutzer E., Grünberg W. Parasitologic und Pathologie der Spulwurmkrankeit der Schlangen//Zntlbl. Wet. Med.-1965.- 71.P.155-175.

150. Kuzmin Y. The free-living development and types of life cycles of Rhabdiasid nematodes (Nematoda: Rhabdiasidae) from Palearctic region // Паразитология в Украшь-Ктв.-1996.-стр. 133-138.

151. Ladds P.W., Mangunwirija H., Sebayang D., Daniels P.W. Diseases in young farmed crocodiles in Irian Jaya (Indonesia) //Vet. Rec.-1995.-V.136.-№50.-P.121-124.

152. Laszlo J. The notes of reproductive cycles of captive reptiles // International Zoo Yearbook 1979. London, Zool. Soc.-1979-V.19.

153. Lawrence K., Palmer G.H., Needham J.R.Use of carbenicillin in two species of tortoise (Testudo graeca and T. hermanni) // Res. Vet. Sci.-1986.-№ 40.-P.413-415.

154. Lesse A.S. Linguatula larva and peritonitis // J. of Tropical Vet. Science.-1911.-№6.-P.268-270.

155. Linder R.R. Retrospective X-ray survey for porocephalosis // Journ. Trop. Med. Hygiene.- 1965.-№68.-P.155-156.

156. Linstow O. Nematoden, Trematoden und Acanthocephalus gesammelt von Prof. Fed-tschenko in Turkestan // Arch. Naturgeschichte.-1883.-№49.-S. 274-313.

157. Mader D.K. Reptile medicine and surgery // W.B. Saunders Co.-1996.-512P.

158. Mader D.K., Rosenthal K. Laboratory sampling in reptile patients do's and don'ts // Proc. 5-th An. Conf. Assoc. Rep. Amph. Vet., Kansas City.- 1998.-P. 55-60.

159. Mader D.R. Antibiotic therapy // In Frye F.L. Biomedical and surgical aspects of captive reptile husbandry 2-nd ed. Krieger Publishing Co., Fl.-1991.-V. II.- P.621-637.

160. Mader D.R. Management of large reptile collection // In Mader D.R. Reptile medicine and surgery. W.B. Saunders Co.-1996.- P.459-463.

161. Mader D.R., Conzelman G.M., Bagget J.D. Effects of ambient temperature on the half-life and dosage regimen of amikacin in the Gofer shake // J. Am. Vet.Med. Assoc.-1985.-P.187-1134.

162. Marcus L.C. Parasitic diseases of captive reptiles // In Current Veterinary therapy. V. Ed. by Kirk R.W., W.B. Sounders Co, Inc., Philadelphia PA.-1974.-P.632-638.

163. Marcus L.C. Veterinary biology and medicine of captive reptiles // RA and Febiger, PA.-1981.

164. Mc. Allister C.T. Mesocestoides sp. tetrathyridia (Cestoidea: Cyclophyllidea) in the Iguanid lizard, Cophosaurus texanus and Sceloporus olivaceus form Texas // J. Wildl. Dis.-1988.-V.24.-№1.-P.160-163.

165. Mc. Allister C.T, Trauth S.E. Conn D.B,Helminth parasites of unisexual and bisexual whiptail lizards (Teiidae) in North America // Tex. J.Sci.-1991.-V.43.-№4.-P.391-397.

166. Mendeloff J. Healed granulomas of the liver due to tongue worm infection // Am. Journ. Clin. Path.-1965.-№43.-P.433-437.

167. Miller M.J. Use of Verkom Paste as an anthelminthic in reptiles // Bulletin of Chicago Неф. Soc.-1986.-V.22.-№44.-P.73-74.

168. Mohrner T. Personal report // Skansen Park, Stokholm, Sweden.-1995.

169. Mouchet R. Note sur Porocephalus monififormis // Bull, de la Soc. de Path. Esotique.-1914.-№7.-P .497-501.

170. Murphy J.B. A review of diseases and treatment of captive Chelonians // HISS News Journal.-1973.-B.l.-?5.-P. 139-150.

171. Murphy J.B., Collins J.T. Reproductive biology and disease of captive reptiles // Lawrence. KS, Soc. study of Amphibians and Reptiles.-1980.

172. Natt M.P., Herrick C.A. A new blood diluent for caunting the erythrocytes and leucocytes of the chicken // Poultry Sci.-1952.-№31.-P.735-738.

173. Navarro P., Izquerdo S., Perez P., Lluch J. Introductional humedas delà provincia de Alicante // I.Congr. nac. herpetolog. Progr. y res.-1986.-P.82.

174. Navarro P., Lluch J., Roca V. Sobre la helmintofauna de Natrix maura (Reptilia: Colubridae) en Valencia // I.Congr. nac. herpetolog. Progr. y res.-1986.-P.83.

175. Nelson D.J. A treatment for helminthiasis in Ophidia. Herpetologica //1950.-№6.-P.57-59.

176. Nicoli R.M. Phylogenese et systématique le phylum des Pentastomida // Annales de Parasitologic Humaine et Comparee.-1963.-№38.-P.483-516.

177. Nicoli R.M., Nicoli J. Biologie des pentastomides // Annales de Parasitologic Humaine et Comparée.-1966.-№41.-P.255-277.

178. Noonstein H.H. Porocephalus in pythons // Natuurweten- schappelijk Tijdschrift voor Nederlandsch Indie.-1941.-№101.-P. 148-149.

179. O'Shea M. A guide to the snakes of Papua New Guinea // Independent Group Pty Ltd, Port Moresby.-1996.-P.78.-160.- 181

180. Olson G.A., Hessler J.R., Faitih R.E. Techniques for blood collection and intravascular infusions in reptiles // Lab. Animal. Sci.-1975.-№ 25.-P.783.

181. Osche G. Die systematische Stellung und Phylogenie der Pentastomida. Embryologische und verleichend- anatomische Studien on Reighardia sternae // Zeitschrift fur Morphologie und Ökologie der Tiere.-1963.-№52.-P.487-586.

182. Page L.A. Diseases and infections of snakes: A review // Bull. Wildlife Dis. Assoc.-1966.-7 2.-P.111-126.

183. Paramananthan D.C. Nymphs of Armillifer moniliformis moniliformis Sambon, 1922 in civet cats and wild boar in Ceylon // Ceylon Journ. Med. Sci.-1962.-№1 l.-P. 23-27.

184. Penn G.H. J. The life hystory of Porocephalus crotali, a parasite of the Louisiana muscrat // H. Wildl, Management.-1942.-№ 5.-P. 13-14.

185. Pienaar V. de V. Hematology of some South African reptiles // Witwattersrand University Press.-1962.-P. 1-229.

186. Pugsley S.J. Observations on helminths and pentastome infestation in snakes and lizards//Herpetopatologia.-1989.-V.l.-№l.-P.l 13-119.

187. Raiti P. Use of nystatin to reduse suspected overgrowth of enteric fungal organisms in a Diamond python, Morelia spilota spilota and two Honduran milksnakes, Lampropeltis triangulum hondurensis //Bull. Assoc. Rep. Amph. Vet.-1998.-V.8.-№l.-P.4-8.

188. Raphael B., Clark C.H., Hudson R. Plasma concentration of gentamicin in turtles // J. Zoo Anim. Med.-1985.-№16.-P.136-139.

189. Reichenbach-Klinke H.H. Krankheiten der Reptilien // 2-nd Ed. Stuttgart, Fisher Ver-lag.-1965.

190. Reichenbach-Klinke H.H., Elkan E. The principal diseases of lower vertebrates // Academic Press, N.Y.-1965.-599P.

191. Reviere J.E., et al. (eds.). Handbook of comparative pharmacokinetics and residues of veterinary antimicrobials // Boca Raton, CRC Press.-1991.-P.22-23.- 182

192. Roca V. Helmintos parasitos de reptiles saurios en el levante iberico // I.Congr. nac. herpetol.,Progr. y res.-1986.-P.90

193. Roca V., Garcia-Adell G., Lopez E. Platelmintos parasitos de algunas especies de reptiles del archipelago Canario // I.Congr. nac. herpetol. Progr. y res.-1986.-P.92.

194. Roca V., Hornero M.J. Helmithofauna de Podarcis pityusensis, Bosca, 1883, (Sau-ria:Lacertidae) // Rev. Esp. Herpetol.-199 l.-No.5.-P.77-87.

195. Ross R.A. The Bacterial diseases of captive reptiles // Inst, of Herpetological research., California.-1984.

196. Ross R.A. The reproductive husbandry of pythons and boas // The Institute for Herpetological Research, Stanford, California.-1990.-P. 164-165.

197. Rosskopf W.I. Ivermectin as a treatment snake mites // Bull, of the Assoc. of reptilian and amphibian veterinarians.-1992.-V.2.-№l.-P.7.

198. Rosskopf. J. Use of enrofloxacin // Bui. Assoc. Rep. Amph. Vet.-1992.-V.2.-№1.-P. 56.

199. Rudolphi C.A. Entozoorum synopsis, cui accedunt mantissa duplex et indices licu-pletissimi // Berolini.-1819.

200. Saint Girons M.S. Morphology of the circulating blood cells // In Biology of the Reptilia. Gans C. (ed.), Vol.3., San Diego, Academic Press.-1970.-P. 73-91.

201. Saint Girons H. Reproductive cycles of male snakes and their ralationships with climat and female reproductive cycles // Herpetologica.-1982.-V.38.-№l.-P.5-16.

202. Salm A. Porocephalus moniliforme (Diesing, 1836) et Pentastomum constrictum (Bilh.- V.Sieb., 1851) // Gazette Hebdoma-daire. Ses Sciences Medicales de Bordeaux.-1907.-P.28-464.

203. Sambon L.W. A synopsis of the family Linguatulidae // Journ. Trop. Med. Hygiene.-1922.-№ 25.-P. 188-206.

204. Schacher J.F., Khalil C.M., Salman S. A field study of halzoun (Parasitic pharyngitis) in Lebanon // Journal of Tropical Medicine and Hygiene.-1965.-№68.-P. 226-230.

205. Schmidt-Nielsen K. Skaling: Why is animal size so important? // Cambridge University Press.-1984.-P. 139-141.

206. Sedgwick C.J., Haskell A., Pakras M.A. Scaling drug dosages for animals of diverse body sizes // Wilds. Rehab.-1986.-№5.-P.3-l 1.

207. Sedgwick C.J., Pakras M.A. Extrapolating rational drug doses and treatment periods by allometric scaling // Proc. Am. Anim. Hosp. Assoc. 55-th Ann. Meeting.-1988.-P.156-157.

208. Seidel B. Endoparasitoses in snakes // Proc. XIX. Int. Symp. Dis. Zoo Anim. Poznan, Poland.-1977.-P.115-120.

209. Self J.T., Kuntz R.E. Host-parasite relations in some Pentastomida // J.Parasitol.-1967.-№ 52.-P. 202-206.

210. Self V.T. Biological relationships of the Pentastomida: A bibliography of the Pentastomida // Exp. Parasitol.-1969.-№24.-P.63-119.

211. Shoop W.L., Janovy JJr. Adult cestodes from the coelomic cavity of the teiid lizard, Cnemidophorus sexlineatus // J.Helminthol.-1978.-№ 53.-P.248-251.

212. Simonsen P.E., Sarda R.K. Helminth and arthropod parasites of Hemidactylus ma-bouia from Tanzania // J.Herpetol.-1985.-V.19.-№3.-P.428-430.

213. Soifer F.K. Anthelmintics for exotic and Zoo animals // In Current veterinary therapy -V., R.W. Kirk (Ed)., Philadelphya, PA, W.B. Saunders CO.-1974.-P.622-625.

214. Sprent J.F.A. Ascaridoid nematodes // In "Diseases of amphibians and reptiles." Hoff G.L., Frye F.L., Jacobson E.R. (Eds.). N.Y., Plenum Press.-1984.-P.219-245.

215. Sprent J.F.A. Studies an ascaridoid nematodes of pytnons // A resume. In Lacerta Parasitológica en memoria del doctor Eduardo Caballero y Caballero. Instituto de Biologia, Mexico, Publ. Especiales.-1977.-№4.-P.477-485.

216. Sprent J.F.A. Studies an ascaridoid nematodes of pytnons: two new species from New Guinea // Parasitology.-1973.-№67.-P.229-244.

217. Sprent J.F.A., Mc Keown E.A. Studies on ascaridoid nematodes in pythons: Development in the definitive host // In Dynamic aspects of host-parasite relationships, A.Zuckerman (Ed.), Vol. 3.-Israel Univ. Press, Jerusalem.-1979.- 184

218. Stabler R.M., Self J.T. The binturong: A new host for the nymphs of Armillifer moniliformis (Diesing, 1836) // Journ. Parasitology.-1967.-P.53- 923.

219. Stahl S.J. Use of ivermectin in the Prehensile-tailed skink, Corucia zebrata // Bull. Assoc. Rep. Amph. Vet.-1992.-V.2.-№1.-P.7.

220. Stein G. Hematologic and blood chemistry values in reptiles // In Reptile medicine and surgery. Mader D.R., W.B., Saunders Co.-1996.-P.473-483.

221. Stein G. Reptile and amphibian formulary // In Reptile medicine and surgery. Mader D.R., W.B. Saunders Co.-1996.-P.465-472.

222. Teare J.A., Bush M. Toxicity and efficacy of ivermectin in Chelonians // Vet.Parasitol.-1983 .-№5 .-P. 137-144.

223. Telford S.R. A comparative study of endoparasitism among some Southern California lizard population // Am. Midi. Nat.-1970.-№83.-P.516-554.

224. Telford S.R. A study of filariasis in Mexican snakes // Jap. J. Exp. Med.-1965.-№35.-P.565-568.

225. Telford S.R. Parasitic diseas of reptiles // J. Am. Vet. Med. Assoc.-1971.-?159.-P.1644-1652.

226. Timm K.E., Picton J.S., Tylan B. Surface area to volume relationships of snakes support the use of allometric scaling for calculating dosages of pharmaceuticals // Lab. Anim. Sci.-1994.-P.44-60.

227. Toft J.D., Schmidt R.E. Pseudophyllidean tapeworms in Green Tree pythons (Chon-dropython viridis) // J.Zoo Anim.Med.-1975.-V.6.-№2.-P.25-26.

228. Veazey R.S., Stewart T.B., Snider T.G., III. Ureteritis and nephritis in a Burmese pyt-non // J. Zoo Wildl. Med.-1994.-V. 25.-№l.-P.l 19-122.

229. Velikanov V.P. Larval form of nematodes from the superfamily of Acuarioidea (Nematoda Spirurata) parasites in reptiles in Turkmenia // Vestn. Zool.-1984.-№l.-P.3-8.

230. Wallach J.D. Medical care of reptiles// J.A.V.M.A.-1969.-7115.-P.1017-1034.-185259. Wallach J.D, Boever W.Y. Diseases of exotic animals // Philadelphia, PA, W.B. Saunders Co.-1983.-P.949-1047.

231. Wang Pu Qin; Wang Yang Yin. Syropsis of trematodes and nematodes of amphibians and reptiles from China // Wuyi Science Journal.-1992.-№.9.-P.49-65.

232. Worrel E. A new Papuan python // Proc. Roy. Zool. Soc. New S.Wales.-1958,1956-57.-P.27.

233. Wyman J. Observations on Pentastoma armillata, from lungs of Python sebae // Proc. Boston Soc. Natur. Hist.-1865.-№9.-P.179-180.

234. Yamaguti S. Systema helminthum // Vol. II. The cestodes of vertebrates. Interscience Publ. Inc., N.Y, London.-1959.-P. 171-176.

235. Yamaguti S. Systema helminthum // Vol. III. The nematodes of vertebrates. Part I. Interscience Publ. Inc., N.Y, London.-1961.-P. 123-125.

236. Yamaguti S. Systema helminthum // Vol. I-V. Interscience Publ. Inc., N.Y, London.-1958-1963.

237. Zwart P. Treatment of Lungworm in snakes with tetramisole // Vet. Rec.-1969.-P.84-374.