Дифференциация возбудителей висна-маеди и артрита-энцефалита коз на основе анализа генома тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.02.02, кандидат биологических наук Барышникова, Елена Ивановна

• Барышникова, Елена Ивановна
• кандидат биологических наук
• 2011

Оглавление диссертации кандидат биологических наук Барышникова, Елена Ивановна

1. ВВЕДЕНИЕ.

1.1. Актуальность.

1.2. Степень разработанности проблемы.

1.3. Цель работы и задачи исследования.

1.4. Научная новизна работы.

1.5. Практическая значимость работы.

1.6. Публикации результатов.

1.7. Апробация работы.

1.8. Соответствие содержания диссертации паспорту специальности, по которой рекомендуется к защите.

1.9. Структура и объем диссертационной работы.131.10. Основные положения, выносимые на защиту.

1.11. Личный вклад автора.

2. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.

2.1. Определение болезни артрита-энцефалита коз и висна-маеди

2.2. Общая характеристика ретровирусов.

2.3. Филогенетический анализ лентивирусов мелких жвачных.

2.4. Морфология и химический состав вирусов артрита-энцефалита коз и висна-маеди.

2.5. Репликация лентивирусов мелких жвачных.

2.6. Устойчивость вирусов лентивирусов мелких жвачных к воздействию внешних факторов.

2.7. Эпизоотологические данные лентивирусов мелких жвачных.

2.8. Патологоанатомические изменения при лентивирусах мелких жвачных.

2.9. Диагностика лентивирусов мелких жвачных.

2.10. Дифференциальная диагностика лентивирусов мелких жвачных.

2.11. Культивирование вирусов артрита-энцефалита коз и висна-маеди.

2.12. Иммунитет при лентивирусах мелких жвачных.

2.13. Специфические средства лечения и профилактики.

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Дифференциация возбудителей висна-маеди и артрита-энцефалита коз на основе анализа генома»

j

1.1 Актуальность

Вирусы артрита-энцефалита коз (АЭК) и висна-маеди (ВМ) относятся к семейству Retroviridae, роду Lentivirus, в состав которого входит не только группа лентивирусов овец и коз, но и крупного рогатого скота (КРС), лошадей, кошек, приматов [1, 6, 147]. Многие исследователи объединяют возбудителей ВМ и АЭК под общим названием — лентивирусы мелких жвачных (ЛМЖ) [76, 113].

АЭК и ВМ' были зарегистрированы в странах Европы, Латинской Америки, Австралии [66, 113]. В Российской Федерации (РФ) в последнее время возрос интерес к козоводству, который связан с потребностью у населения в диетических продуктах питания и к козьему молоку в частности [6, 27]. Кроме того; формируются системы фермерских козоводческих и овцеводческих хозяйств, пополняющих генофонд за счет импорта животных. В настоящее время, в некоторых фермах РФ уже обнаружены случаи заболевания! коз и овец ЛМЖ; принтом*эпизоотологический анализ показал, что больные животные завезены из неблагополучных по ЛМЖ стран [3, 6]. Таким образом, можно сделать вывод об увеличении угрозы дальнейшего заноса и распространения ЛМЖ на территории нашей страны.

Возбудители АЭК и ВМ вызывают у животных медленные инфекции, представляющие серьезную проблему для животноводства в связи с их скрытым течением, летальным исходом, отсутствием средств лечения и профилактики. Для медленных инфекций не характерны сезонность, периодичность эпизоотий, географическая приуроченность [1]. Кроме этого, доказано, что ЛМЖ гетерогенны и могут инфицировать как овец, так и коз [27, 66]. Вирусы АЭК и ВМ* вызывают одинаковую клиническую картину, патологоанатомические изменения, что затрудняет постановку дифференциального диагноза и соответственно проведение противоэпизоотологических мероприятий [1, 27].

В связи с, вышеизложенным, дифференциация возбудителей АЭК и ВМ являетсяактуальной.

Заключение диссертации по теме «Вирусология», Барышникова, Елена Ивановна

6. выводы

1. Получен штамм диплоидных клеток синовиальной мембраны ягненка (СМЯ) и изучены его биологические свойства. Показана чувствительность клеток СМЯ к вирусам АЭК и ВМ: При этом уровень инфекционной активности штамма 75G-63 вируса АЭК составил 5,5 -6,0 lg ТЦД50/см3, штамма Тверской вируса АЭК - 4,5-5,0 lg ТЦД50/см3, штамма М-88 вируса ВМ - 4,0-5,5 lg ТЦД50/СМ3 и штамма К-796 вируса ВМ - 4,75-5,5 lg

ТЦЦзо/см3.

2. Показано, что серологические реакции (иммуноблотинг, РДП, ИФА) и» полипептидный электрофорез« в полиакриламидном геле не позволяют дифференцировать возбудителей АЭК и ВМ.

3. Разработана тест-система ПЦР с электрофоретической детекцией о с аналитической чувствительностью 2,5 lg ТЦД5о/см , позволяющая выявлять наличие генома,ЛМЖ (вирусов ВМ и, АЭК) в культуральном материале, в крови, молоке, молозиве инфицированных животных.

4. На основе подобранных ДНК-зондов разработана тест-система ПЦР в режиме реального-времени'с аналитической чувствительностью 1,5 lg ТЦД50/см3, позволяющая дифференцировать возбудителей* АЭК и ВМ.

5. На основании данных нуклеотидного секвенирования участков gag-, env-, ро1-генов и анализа филогенетических древ установлена наибольшая гомология вируса ВМ штамма М-88 и К-796 с группой-А, а вируса АЭК штамма Тверской - с группой,В ЛМЖ.

6. Анализ температурных пиков плавления (HRM-анализ) ПЦР-продуктов позволяет дифференцировать возбудителей АЭК и ВМ.

7. Установлена циркуляция ЛМЖ в хозяйствах Тверской, Ленинградской, Брянской, Ивановской, Калужской областей РФ.

7. ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ

1. Полученный штамм диплоидных клеток СМЯ рекомендуется для изучения вирусов АЭК и ВМ и пригоден для накопления вируссодержащего материала с целью получения вирусных антигенов и проведения молекулярно-генетических исследований.

2. «Методические положения по выявлению провирусной ДНК лентивирусов мелких жвачных методом полимеразной цепной реакции», рассмотренные на секции «Инфекционная патология животных» Отделения ветеринарной медицины Россельхозакадемии (23. 09. 2011г.) и утвержденные академиком-секретарем Отделения ветеринарной медицины РАСХН Смирновым A.M. (10.11.2011г.), рекомендуются для использования в специализированных ПЦР-лабораториях при проведении диагностических исследований и научно-исследовательских работ.

3. «Методические положения по выявлению и дифференциации ЛМЖ методом полимеразной цепной реакции в режиме реального времени» рассмотренные на секции «Инфекционная патология животных» Отделения ветеринарной медицины Россельхозакадемии (23. 09. 2011г.) и утвержденные академиком-секретарем Отделения ветеринарной медицины РАСХН Смирновым A.M. (10.11.2011г.), предлагаются для дифференциальной диагностики ЛМЖ в специализированных ПЦР-лабораториях.

Список литературы диссертационного исследования кандидат биологических наук Барышникова, Елена Ивановна, 2011 год

1. Архипов,Н.И. Медленные инфекции животных / Н.И. Архипов, И.А. Бакулов, Л.И. Соковых. -М.: Агропромиздат, 1987.- 190 с.

2. Бслоусова, Р.В. Ветеринарная вирусология /Р.В. Белоусова, Э;А. Преображенская, И.В. Третьякова. М.: КолосС, 2007. — 424 с.

3. ВИЧ и СПИД Тест на ВИЧ Электронный ресурс. — Режим доступа: http://www.aids74. com/ testnavich.html - 20Ю.-Загл. с экрана.

4. Волкова, И. Ю. Эпизоотологический; мониторинг и совершенствование мер борьбы с артритом-энцефалитом коз в.РФ: авт. дис. .канд. вет. наук / Волкова Ирина Юсупжановна. — Покров, 2008: — 25 с.

5. Госманов, P.F. Ветеринарная- вирусология / Р;Г. Госманов; Кольлев Н.М. М:::КолосС, 2006. - 304:с.

6. Гринин, A.C. Очистка, концентрирование и фракционирование вирусов животных / A.C. Гринин, И.Н. Титов. — М.: Колос, 1971.- 239 с.

7. Диагностика скрепи и висны овец / В.А. Шубин, B.C. Суворов, В.Л: Кувшинов, Р.Д: Поздеев, В.В. Исаев, А.К. Моругии // Ветеринария. -1994.-N2.-С. 6-11.

8. Животная клетка в культуре клеток (методы и применение в биотехнологии)/ под ред. Л.П. Дьяконова, В:Н. Ситькова. М.: Компания спутник+, 2000.-400 с.

9. Инфекционная патология животных: в 2-х т. / под ред. А.Я. Самуйленко, Б.В. Соловьева, Е.А. Непоклонова, Е.С. Воронина. М.: ИКЦ «Академкнига», 2006. — 190 с.

10. Исаев, В.В: Дополнительные способы диагностики висна-маеди овец / В.В. Исаев // Ветеринария. 2000. - N 2. - С. 19-22. '

11. Источник появления СПИДа найден? Вирус артрита энцефалита коз стал основой создания вакцины против СПИД Электронный ресурс. -Режим доступа: http://sciteclibrary.ru/rus/catalog/pages/4505.htmK- 2003'. -Загл. с экрана.

12. Кадымов; P.A. Инфекционные болезни овец / P.A. Кадымов, A.A. Кунаков, В.А. Седов. -М.: Агропромиздат, 1987. 303с.

13. Клиническая и патоморфологическая диагностика артрита-энцефалита коз / И.Ю. Волкова, А.Ю. Чичикин, A.A. Стрижаков, С.Ж. Цыбанов // Ветеринария. -N.T- 2007. С. 23-25«.

14. Караваев, Ю.Д. Диагностика и меры борьбы с висной-маэди / Ю.Д. Караваев, Б.Ф. Шуляк, Г.Ф. Коромыслов // Бюллетень ВИЭВ. М., 1986.-Вып. 62.-С. 59-61.

15. Коничев, A.C. Основные термины молекулярной биологии / A.C. Коничев, F.A. Севастьянова. -М.: Колос, 2006. 188с.

16. Кувшинов, B.JI. Висна овец романовской породы: гистологические изменения головного мозга / B.JI. Кувшинов, М.А. Смирнов // Российский ветеринарный журнал СХЖ. 2009. - N 1. - С. 38-41.

17. Лакин, Г.Ф. Биометрия / Г.Ф. Лакин. М. 1990. - 352 с.

18. Маниатис, Т. Молекулярное клонирование/ Т. Маниатис, Э. Фрич, Дж. Сэмбрук. М:: Мир, 1984.- С.97-120.

19. Методы вирусологии и молекулярной биологии / пер. с англ. и предисл. Л.Б. Меклера. М.: Мир, 1972. - 444 с.

20. ПЦР «в реальном времени»/ Д.В. Ребриков, Г.А. Саматов, Д.Ю. Трофимов, П.А. Семенов, A.M. Савилова, И.А. Кофиади, Д.Д. Абрамов.-М.: Бином. Лаборатория знаний, 2009.- 223с.

21. Санитарный кодекс наземных животных / МЭБ. 13-е изд. — М.; Париж, 2004. - С. 207-208.

22. Сергеев, В.А. Вирусные вакцины / В.А. Сергеев. Киев: Урожай, 1993.-368 с.

23. Сидельников, Г.Д. Биологические свойства вируса артрита-энцефалита коз: дис. . канд. вет. наук 16.00.03/ Сидельников Георгий Дмитриевич. Покров, 2009^ - 117с.

24. Сидельников, Г.Д. Выделение вируса артрита-энцефалита коз и разработка серологического метода диагностики инфекции / Г.Д. Сидельников, Д.В. Колбасов, С.Ж. Цыбанов // Российский ветеринарный журнал сельскохозяйственных животные. 2009. - №2. - С. 27-29.

25. Супотницкий, М.В. К вопросу о месте ВИЧ-инфекции и ВИЧ/СПИД- пандемии среди других инфекционных, эпидемических и пандемических процессов Электронный ресурс. .-Режим доступа: http://www.supotnitskiy. га/ book/ book4-l-l/htm.-3ara. с экрана.

26. Сюрин, В.Н. Ветеринарная вирусология / В.Н. Сюрин, Р.В. Белоусова, Н.В. Фомина. -М.: Колос, 1984.- 376 с.

27. Сюрин, В.Н. Частная ветеринарная вирусология/ В.Н. Сюрин, Н.Ф. Фомина.- М.: Колос, 1979.- 472с.

28. Шляхов, Э.Н; Иммунология; иммунодиагностика; иммунопрофилактика: инфекционных болезней / Э.Н. Шляхов. — Кишинев: Картя Молдовеняскэ, 1977. 424 с.

29. Шуляк, Б.Ф. Лентивирозы копытных. III. Патогенез? и, симптоматика / Б;Ф. Шуляк // Российский ветеринарный журнал. — 2006.- N 3.-С.2-4.

30. Шуляк, Б.Ф. Лентивирусы копытных. И. Лабораторные модели /t

31. Б.Ф. Шуляк // Российский ветеринарный журнал.- 2006.-N.- 2. С. 14-17.

32. Activation of caprine arthritis encephalitis virus expression during maturation of-monocytes to macrophages / O. Narayan, S. Kennedy-Stoscopf, D. Shefier, DiE.Griffin and-JiE. Clements // Infection and immunity. —1983. — Vol! 41.-P. 67-73.

33. Adair, B.M. Serological surveillance for maedi-visna virus and caprine arthritis encephalitis virus in Northern Ireland / B.M. Adair // The Veterinary Record. 1986. - Vol: 12. - P. 422-423.

34. Analysis of the antibody response to an immunodoninant epitope of the envelope glycoprotein of a lentivirus and its diagnostic potential / F.

35. Mordasisni, H.-R. Vogt, M.-L. Zahno, A. Maeschli, C. Nenci, R. Zanoni, G. Bertoni // J. Clin. Microbiol. 2006. - Vol.44, N. 3. - P. 981-991.

36. A new sensitive serological assay for detection of lentivirus infections in small ruminants / E. Saman, G.V. Eynde, L. Lujan // Clinical and diagnostic laboratory immunology. 1999-Vol.6, N. 5. - P. 734-740.

37. Application of PCR Technique in diagnosis of small ruminant lentivirus infection in sheep and' goats / A. Gil, M. Rola, J. Kuzmak // Pol. J: Vet. Sci.-2006.-Vol. 9, N. 4.-P. 213-217.

38. A transitional endogenous lentivirus from the genome of a> basal primate and implications for lentivirus evolution / R. J. Gifforda, Aris Katzourakisb, M. Tristemd, O. Pybusb, M.Wintersa, R. W. Shafer // PNAS. -2008. Vol. 105, N. 51. - P. 20362-20367.

39. Bertoni G., Caprine Arthritis Encephalitis Complex / G. Bertoni// Internation Veterinary Information Service. 2007.- 22p.

40. Blacklaws, B.A. Visna-Maedi Viruses / B.A. Blacklaws. 2008. - P. 423-432.

41. Braun, M.J. The visna virus genome: evidence for a hypervariable site in the env gene and sequence homology among lentivirus envelope proteins / M J. Braun, J.E. Clements, M.A. Gonda // J. of Virology. 1987. - Vol. 61, N.12. - P. 4046-4054.

42. Brinkhof, J. Evaluation of five enzyme-linked immunosorbent assays and an agar gel immunodiffusion test for detection of antibodies to small ruminant lentiviruses/ J. Brinkhof, C. van Maanen //Clin Vaccine Immunol. 2007. -Vol.14,N. 9.-P. 1210-1214.

43. Caprine arthritis-encephalitis / OIE, the center of the food Security and Public Health. 2007. - P. 1-5.

44. Caprine arthritis-encephalitis virus in semen of naturally infected bucks / C.E. Travassos, C. BenooAt, S. Valas, A.G. da Silva, G. Perrin // Small Ruminant Research. 1999. - Vol. 32. - P. 101-106.

45. Caprine arthritis-encephalitis. Virús isolation and identification in goat herds in Italy / P. Agrimi, F. Tolari, R. legrottaglie, G. Renzoni, M. Dawson // Microbiologica. 1987. - Vol. 10. - P. 353-361.

46. Carter, J. Virology (prunciples and applications) / J. Carter, V. saunders. Ltd ISBNs, 2007. - P. 185-21 k

47. Characterization, experimental infection and serological response to caprine retrovirus / T. Ellis, W. robinson G. Wilcox // Vet. J. 1983. - Vol. 60, N.ll-P. 321-326.

48. Characterization of a new 5' splice site within the caprine arthritis encephalitis virus genome: evidence for a novel auxiliary protein / S. Valas, M. Rolland, C. Perrin 1, G. Perrin, R. Z Mamoun // Retrovirology. 2008. - Vol.5, N. 22.-P. 1-17.

49. Characterization of an:Irish caprine lentivirus strain-SRLV phylogeny revisited / M. Rolland, J. Mooney, S. Valas, G. Perrin, RZ. Mamoun // Virus Res. -Vol. 85, N. l.-P. 29-39.

50. Chronic arthritis in goats caused by a retrovirus / T.B. Crawford, D.S. Adams, W.P. Cheevers, L.C. Cork// Science.- 1980. Vol. 207. - P. 997-999.

51. Clavijo, A. Application of polymerase chain reaction for the diagnosis of caprine arthritis-encephalitis / A. Clavijo, J. Thorsen // Small Ruminant Research. 1996. - Vol. 22'. - P. 69-77.

52. Clements, J.E. Molecular biology and pathogenesis of animal lentivirus infections / J.E. Clements, M.C. Zink // Clinical microbiology reviews. — 1996. Vol. 9, N. l.-P. 100-117.

53. Cutlip, R.C. Immunodiffusion test for ovine progressive pneumonia / R.C. Cutlip, T.A. Jackson, O.A. Laird // Am. J. Vet. Res. 1977. -Vol. 38, N.7. -P.1081 -1084.

54. Demonstration of coinfection with and recombination by caprine arthritis-encephalitis virus and maedi-visna virus in naturally infected goats / G. Pisoni, G. Bertoni, M. Puricelli, P. Moroni// J of Virology. 2007. - Vol. 81, N. 10.-P. 4948-4955.

55. Desfarges, S. Retroviral integration site selection / S. Desfarges, A. Ciuffi // Viruses. 2010. - Vol. 2. - P. 111-130.

56. Detection of antibodies caprine arthritis-encephalitis virus by protein G enzyme-linked immunosorbent assay and immunobloting / R. Zanoni, A. Grieg, E. Peterhans // Journal of clinical microbiology. 1989. - Vol. 27, N. 3. - P. 580582.

57. Detections of caprine arthritis-encephalitis virus by polymerase chain reaction / P. G. Rcddy, W.J. Sapp, W. Heneine*//Journal of clinical microbiology. -1993.-Vol-. 31,N. 11. —P. 3042-3043.

58. Development andi validation of an ovine progressive pneumonia vims quantitative PGR / E. M. Herrmann-Hoesing, S. N. White,, G. S. Lewis, M. R; Mousel, D. P. Knowlc // Clinical and vaccine immunology. 2007. - Vol. 14, N. 10.-P. 1274-1278.

59. Development of recombinant capsid antigen/transmembrane epitope fusion proteins.for serological diagnosis of animal lentivirus infections,/ S. Rosati,

60. M. Profiti, R. Lorenzetti, P. Bandecchi, A. Mannelli, M. Ortoffi, F. Tolari, IM Ciabatti I IJ Virol Methods. 2004. - Vol. 121, N. 1. - P. 73-78.

61. Diagnosis of human immunodeficiency virus (HTV) infection: multicenter evaluation of a newly developed anti-HIV 1 and 2 enzyme immunoassay / G. Hess, F. Avillez, M.H. Lourenco // Journal of clinical microbiology. 1994 - P. 403-406.

62. Elfahal, A.M. First report of caprine arthritis-encephalitis virus infection in Sudan / A.M. Elfahal, A.M. Zakia, A.M. El-Hussien // Journal of Animal and Veterinary Advances. 2010. - Vol. 9; N. 4. - P. 736-740.

63. Evaluation of an ELISA for detection of ovine progressive pneumonia antibodies using a recombinant transmembrane envelope protein / J. Kwang, J.

64. Keen, R. C. Cutlip, E. T. Littledike // J. Vet. Diagn. Invest. 1993. - Vol. 3. - P. 189-193.

65. Evaluation of three serological tests for diagnosis of maedi-visna virus•>infection using latent class analysis / N. Toft, J. Akerstedt, J. Tharaldsen, P. Hopp // Veterinary microbiology. 2007. - Vol. 120. - P. 77-86.

66. Evidence for interspecies transmission of small ruminant lentiviruses in sheep and goats in Poland / M. Olech, B. Croise, J. Kuzmak, S. Valas // Bull. Vet. Inst. Pulawy. 2009. - Vol. 53. - P. 165-168.

67. Experimental infection- of sheep with visna/maedi virus via the conjunctival*space / Hi Niesalla, TN McNeilly, M. Ross, SM Rhind, GD Harkiss // J. Gen Virol. — 2008. Vol. 89, N. 6. -P. 1329-1337.

68. Federico M, From Lentiviruses to Lentivirus vectors / Ml Federico // Lentivirus gene engineering protocols. — Humana Press, 2003. Vol. 229. - P. 315.

69. Field evaluation of gag/env geteroduplex mobility assay for genetic subtyping of small-ruminant lentiviruses / K. Germain, B. Croise, S. Valas // Virology. 20081 - Vol. 89. - P. 2020-2028'.

70. First partial characterization of small ruminant lentivirus from Greece / K. Angelopoulou, K. Karanikolaou, M. Papanastasopoulou, M. Koumpati-Artopiou, I. Vlemmas, O. Papadopoulos, G. Koptopoulos // Vet miclobiol. 2005. -Vol. 109, N. 1-2.-P. 1-9.

71. Genetic characterization of small-ruminant lentiviruses in Italian flocks: evidence for a novel genotype circulating in a local goat population / E.

72. Grego, L. Bertolotti; A. Quasso, M. Profiti et al.- // Virology. 2007. - Vol. 88. -P. 3423-3427.

73. Genetic and antigenetic characterization of the matrix protein of two genetically distinct ovine lentiviruses / E. Grego, L. Bertolotti, M:L. Carrozza, M. Profiti et al. // Veterinary microbiology. 2005. - Vol. 106. - P. 179-185.

74. Genetic: diversity of small-ruminant lentivirusesxharacterization of Norwegiandsolates of Caprinearthritis;encephalitis virus / B. Gjcrsct, A.K. Storsct, E; Rimstad // Journaliof General Virology. 2006,. Vol- 87. - P. 573-580.

75. Gil"; A. Genetic characterization of field of field isolates of maedi-visna virus (MVV) in sheep from Poland / A. Gil, J. Kuzmak, Y. Chebloune // Bull. Vet. Inst. Pulawy. 2006. - Vol. 50. - P. 413-420.

76. Gjerset, B. Genetic diversity of small-ruminants lentiviruses: characterization of Norwegian isolates of caprine arthritis encephalitis virus / B; Gjerset B., Anne K. Storset, E. Rimstad; // Virology. 2006. - Vol. 87. - P. .573580.

77. Host-virus interaction; as defined by amplification of viral DNA and serology in lentivirus-infected sheep/ SJ Brodie , LD Pearson , GD Snowdcr , JC De Martini // Arch Virol. 1993. - Vol. 130, N. 3-4. - P. 413-428.

78. Hotzel; I. Host, range of small ruminant lentiviruses cytopathic variants determined with a'- selectable caprine arthritis-encephalitis; virus, psevdotype system /1. Hotzel, W.P. Cheevers // J; of Virology. 2001. - Vol. 75, N: 16.-P: 7384-7391. ,

79. Impact: of natural sheep-goat transmission on detection and control of small ruminant lentiviruses'grope C infections / B. Gjeset, E. Rimstad; J. Teige, K. Soetaert, CM. Jonassen // Vet. Microbiol: 2009. - Vol. 135; N 3-4. -P. 231-238.

80. Improvements in the detection of small ruminant lentivirus infection in the blood of sheep by PGR / I. Leginagoikoa, E. Minguijon, E. Berriatua, RA Juste // Journal: of Virological Methods. 2009. - Voh 156, N. 1-2. -P. 145-149.

81. Isolation of caprine arthritis-encephalitis virus from goats in Mexico / M. D. Test, A. de la Concha-Bermejillo, L.E.L. Espinosa, E. L. Rubio, A.A. Setien// Vet. Res. 1999. - Vol.63.- P. 212-215.

82. Klevjer-Anderson, P. Caprine arthritis-encephalitis virus of caprine monocytes / P. Klevjer-Anderson, L.W. Anderson // J. Gen Virol. — 1982. -Vol. 58.-P. 195-198.

83. Laemmli, V.K. Cleavage of structural protection during the assemble of the bacteriophage T4 / V.K.Laemmli // Nature. 1970. - Vol. 27. - P. 680-685.

84. Lerondelle, C. Infection of primary cultures of mammary epithelial cells by small ruminant lentiviruses / C. Lerondelle, M, Godet, J.-F. Momornex // Vet. Res. 1999. - Vol. 30. - P. 467-474.

85. Maedi-visna and sheep pulmonary adenomatosis: a study of concurrent infection / M. Dawson, S.H. Done, C. Venables, C.E. Jenkins // Br. Vet. -1990.-Vol. 146. -P. 531-538.

86. Maedi-visna virus and caprine arthritis encephalitis virus genomes encode a vpr-like but no tat protein / S.Villet, B. A. Bouzar, T. Morin, Ge.rard Verdier, C. Legras, Y. Chebloune // Journal of Virology. 2003. - Vol. 77,N. 17.-P. 9632-9638.

87. Maedi-visna virus infection .in-sheep: a: review, / M. Pepin, C. Vitu, P. Russo, J.F. Mornex, E. Peterhans // Vet. Res. 1998. - Vol. 29, N. 3-4. -P. 341-367.

88. Maedi-visna vims infection of ovine mammary epithelial cells / R. Bolea, E. Monleon, L. Carrasco, A. Vargas, D. DE Andres, B. Amorena, J. J. Badiola, L. Luyan // Vet. Res. 2006. - Vol. 37. - P. 133-144.

89. Manual of diagnostic tests and vaccines for terrestrial animals. Chapter 2.4.4/5 Caprine Arthritis-Encephalitis and Maedi-Visna Электронный ресурс.-Режим доступа: http://www.oie.int. 2004.-Загл. с экрана.

90. Mcguire, Т.С. The immune response to viral antigens as a determinant of arthritis in caprine arthritis-encephalitis virus infection- / T.C. Mcguire // Veterinary immunology and immunopathology. 1987. - Vol. 17. — P. 465-470.

91. Modes of transmission of caprine arthritis-encephalitis virus infection/ N.E. East, J.D. Rowe, J.E. Dahlberg, G.H. Theilen, N.C. Pedersen // Small ruminant Research. 1993. Vol. 10. - P. 251-262.

92. Molincova, D. Purification of Escherichia coli-expressed HIS-tagged maedi-visna p25 core antigen by Ni -chelate affinity chromatography / D. Molincova // Vet.Med.-Czech. 2002. - Vol. 46. - P. 50-54.

93. Narayn, O. Biology and Pathogenesis of Lentiviruses / O. Narayn, J. Clenemts // J. gen. ViroL. 1989. - Vol. 70. - P. 1617-1639.

94. Nucleotide sequence and transcriptional analysis of molecular clones of CAEV wtich generate infectious virus/ M. Saltarelli, G. Querat, D.A. Konings, R. Vigner, J.E. Clements // Virology. 1990. - Vol. 179. - P. 347-364.

95. Palsson, P. Maedi-visna/ P. Palsson // J. Clin. Paht. 1998. -Vol. 6.-P. 115-120.

96. Pasick, J. Maedi-visna virus and caprine arthritis-encephalitis virus: distinct species or quasispecies and its implications for laboratory diagnosis / J. Pasick // J. Vet. Res. 1998. - Vol. 62. - P. 241-244.

97. Pasick, J. Use of recombinant maedi-visna virus protein ELISA for the serologic diagnosis of lentivirus infections in small ruminants / J. Pasick // J. Vet. Res. 1998. - Vol. 62. - P. 307-310.

98. PCR detection of lentiviral gag segment DNA in the white blood cells of sheep and goats / L.H. Wagter, A. Jansen, N.M. Bleumink-Pluym, J.A. Lenstra, DJ. Houwers // Vet. Res. Commun. 1998. - Vol. 22, N. 5. - P. 355362.

99. PCR for detection of lentiviruses from small ruminants / R.G. Zanoni, P. Cordano, I.M. Nauta, Peterhans // Schweiz Arch. Tierheilkd. Vol. 138,N. 2.-P. 93-98.

100. Phylogenetic analysis of small ruminant lentiviruses subtype B1 in mixed flocks: evidence for naturales transmission from goats to sheep / G.Pizoni, A. Quasso, P. Moroni // Virology. 2005. - Vol. 339, N. 2. - P. 147152.

101. Presence of pro-lentiviral DNA in male sexual organs and ejaculates of small ruminants / K. Peterson, J. Brinkhof, D.J. Houwers, B. Colenbrander, B.M. Gagella // Theriogenology. 2007. - Vol. 69, N. 4. - P. 433442.

102. Prevalence of antibodies against caprine arthritis-encephalitis virus in goat herds in »Norway / K. Nord, E. Rimstad, A. K. Storset, T. Loken // Small Ruminant Research. 1998. - Vol! 28. - P.l 15-1211.

103. Rapid and simple method for purification of nucleic acids/ R. Boom, SJ.A. Sol, M.M.M. Salimans, C.L. Jansen, P.M.E. Wertheim-van Dillen and J. van der Noordaa// J. of Clinical Microbiology. 1990. - Vol.28, N3. -P.495-503.

104. Replication and cytopathic effects of ovine lentivirus strains in alveolar macrophages correlate with in vivo pathogenicity / M.D. Leirmore, G.Y.

105. Akita, H.I. Russell, J.C. DeMartini // J. of Virology. 1987. - Vol. 61, N. 12. - P. 4038-4042.

106. Role of alveolar macrophages in respiratory transmission of visna/maedi virus / T.M. McNeilly, A. Baker, J.K. Brown, D. Collie, G. MacLachlan, S.M. Rhind, G.D. Harkiss // J. of Virology. -2008. Vol. 82, N. 3. -P. 1526-1536.

107. Schuljak, B.F. Lentivirus infections of ungulates: I General reatures. history and prevalence// Bulgarian Journal of Veterinary Medicine. — 2006.-Vol. 9N.3.-P. 175-181.

108. Seroconversion and seroreactivity patterns ofdairy goats naturally, exposed to caprine arthritis-encephalitis virus in Brazil / R.S. Castro, R.C. Leite, E.O. Azevedo, M. Resende, A.M. Gouveia // Cienc. Rural. 2002. -Vol. 32,N. 4.-P. 603-606.

109. Serological diagnosis of caprine lentivirus infection by recombinant immunoassays / J. Kwang, J. Keen, R.C. Cutlip, H.S. Kim, A. de la Concha-Bermejillo // Small Ruminant Reserrch. 1995. - Vol. 16. - P. 171-177.

110. Seven new ovine progressive pneumonia virus (OPPV) field isolates from Dubois Idaho sheep comprise part of OPPV clade II based on Surface envelope glycoprotein, (SU) sequences / L.M. Herrmann, I. Hotzel, W.P. Cheevers,

111. K. Pretty On Top, G.S. Levis, D.P. Knowles // Virus research. 2004. - Vol. 102. -P. 215-220.

112. Small ruminant lentivirus enhances PrPSc accumulation in cultured sheep microglial cells / J.B. Stanton, D.P. Knowles, K.I. O'Riurke, L.M. Herrmann-Hoesing, B.A. Mathison, T.V. Baszier // J. of Virology. 2008. - Vol. 82,N. 20.-P. 9839-9847.

113. Small ruminant lentivirus proviral sequences from wild ibexes in contact with domestic goats / E. Erhouma, F. Guiguen, Y. Chebloune, D. Gauthier, LM. Lakhal>et al. J; Gen. Virol. - 2008. - N. 89, N. 6. - P. 14781484.

114. Susceptibility of blood-derived monocytes and macrophages to aprine arthritis-encephalitis virus / L.W. Anderson, P. Klevjer-Anderson, H.D. Liggitt // Infection and immunity. 1983. - Vol. 41, N. 2. - P. 837-840.

115. Thepen, T The roe alveolar macrophages in regulation of lung inflammation / T. Thepen, G. Kraal, P.G. Holt // Ann. N.Y.Acad.Sci. 1994. -Vol. 725.-P. 200-206.

116. Thorman, H. Maedi-visna virus and its relationship to human immunodeficiency virus / H. Thorman // AIDS Rev. 2005. - Vol. 7, N. 4. - P. 233-245.

117. Transmission of small ruminant lentivirus / B.A. Blacklaws, E. Berriatua, S. Torsteinsdottir, N.J. Watt, D. de Andres, G.D. Harkiss // Veterinary microbiology. 2004. - Vol. 101. - P. 199-208.

118. Zanoni, R. G. Phylogenetic analysis of small ruminant lentiviruses / R. G. Zanoni // Journal of General Virology. 1998. - Vol. 79. - P. 1951-1961.