Биологические свойства изолятов вируса африканской чумы свиней, выделенных в различных регионах Российской Федерации от кабанов и домашних свиней тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 00.00.00, кандидат наук Власов Михаил Евгеньевич

• Власов Михаил Евгеньевич
• кандидат наук
• 2021

Оглавление диссертации кандидат наук Власов Михаил Евгеньевич

2. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

2.1 Краткая историческая справка

2.2 Структура и таксономия вируса АЧС

2.3 Современная эпизоотическая ситуация по АЧС

в Российской Федерации

2.3.1 Распространение АЧС в Российской Федерации

в 2007-2011 гг

2.3.2 Распространение АЧС в Российской Федерации с 2012 г.

по настоящее время

2.4 Распространение АЧС в странах Европы и Азии

2.5 Переносчики и способы передачи вируса АЧС

2.5.1 Свиньи

2.5.2 Клещи

2.5.3 Мухи

2.6 Сохраняемость вируса АЧС во внешней среде, его чувствительность

к физико-химическим факторам и дезинфицирующим средствам

2.7 Антигенная множественность вируса АЧС

2.8 Гемадсорбирующие свойства вируса

2.9 Определение серотиповой и генотиповой принадлежности

вируса АЧС

2.10 Патогенез АЧС

2.11 Патогенные свойства вируса АЧС

2.11.1 Клиническое проявление болезни

2.11.2 Патологоанатомические изменения

2.12 Мероприятия по борьбе с АЧС в Российской Федерации

2.12.1 Диагностика АЧС

2.12.2 Методы лабораторной диагностики АЧС

2.13 Заключение по обзору литературы

2

3.СОБСТВЕННЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ

3.1 Материалы и методы

3.1.1 Материалы

3.1.2 Методы исследований

4.РЕЗУЛЬТАТЫ СОБСТВЕННЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ

4.1.1 Патогенные свойства вируса АЧС,

выделенного в Российской Федерациия

4.1.2 Патогенные свойства изолята Владимир-Вязники/2017

вируса АЧС при последовательных пассажах на свиньях

4.1.3 Сравнительное изучение патогенности изучаемых изолятов

и штамма Ставрополь 01/08 при различных способах заражения

4.1.4 Накопление вируса АЧС в крови и органах павших свиней

4.1.5 Культуральные свойства изолятов вируса АЧС

4.1.6 Обнаружение вирус специфических антител

4.1.7 Определение серотиповой принадлежности

испытуемых изолятов вируса АЧС в РЗГАд

4.1.8 Определение генотиповой принадлежности

4.1.9 Паспортизация изолятов вируса АЧС

4.2.1 Сроки обнаружения вируса АЧС в крови,

секретах и экскретах инфицированных свиней

4.2.2 Изучение сохраняемости вируса АЧС в объектах внешней среды

4.2.3 Сохраняемость вируса АЧС в осенних жигалках и падальных мухах... 96 4.3 Обсуждение результатов исследований

5. ЗАКЛЮЧЕНИЕ

5.1 Итоги исследований

5.2 Практические предложения

5.3 Перспективы дальнейшей разработки темы

6.СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ

7. СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

8. ПРИЛОЖЕНИЯ

3

Приложение

Приложение

Приложение

Приложение

Приложение

Приложение

Приложение

Приложение

Приложение

Приложение

Приложение

Приложение

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Биологические свойства изолятов вируса африканской чумы свиней, выделенных в различных регионах Российской Федерации от кабанов и домашних свиней»

1. ВВЕДЕНИЕ

Актуальность темы исследования. Африканская чума свиней (АЧС, Pestis africana suum) - контагиозная вирусная болезнь свиней всех пород и возрастов, которая характеризуется лихорадкой, обширным цианозом кожных покровов, геморрагическим, дистрофическими и некротическими поражениями внутренних органах, и высокой смертностью [38, 110, 188].

Свиноводство в Российской Федерации, странах Европы и Азии является одной из наиболее значимых отраслей животноводства. Огромное влияние на её развитие в России оказывает эпизоотия африканской чумы свиней, которая продолжается с 2007 г. по настоящее время. [53, 141].

После заноса в 2007 г. АЧС в Грузию, болезнь быстро распространилась по странам Евразийского континента (Азербайджан, Армения, Беларусь, Бельгия, Россия, Украина, Латвия, Литва, Эстония, Польша, Румыния, Сербия, Германия, Китай, КНДР, Республика Корея и др.), где в ряде стран приянала эндемичный характер [101, 122, 178, 204, 208]. До 2011 г. заболевание преимущественно регистрировалось в Южном и Северо - Кавказском ФО, затем оно было занесено в центральные, западные и северо - западные регионы России. В 2017 г. АЧС была установлена в новых, восточных регионах страны - Омской, Иркутской, Тюменской, Челябинской областях, в Красноярском крае и Ямало - Ненецком автономном округе. В первичных очагах болезни, как правило, погибали все заразившиеся животные с характерными для острой и подострой форм клиническими и патологоанатомическими признаками. В течение этого времени (2007-2020) зарегистрировано 1815 вспышки АЧС в 40 субъектах РФ - 1077 среди домашних свиней и 738 среди кабанов, при этом прямые и косвенные убытки от этой болезни составили более 75 млрд. рублей [101].

Это явилось сдерживающим фактором дальнейшего развития отрасли свиноводства в неблагополучных регионах.

Факторами заноса заболевания на благополучные территории может являться нелегальная транспортировка свиней и продуктов свинного происхождения. Одним из факторов распространения АЧС в РФ и других странах является высокая устойчивость возбудителя к физико-химическим воздействиям, включая дезинфектанты, вследствие чего вирус в течение длительного времени может сохранять жизнеспособность в контаминированных объектах ветеринарно-санитарного надзора, секретах и экскретах инфицированных животных [53, 214]. Нелегальная транспортировка свиней и контаминированных вирусом АЧС продуктов свиноводства способствуют заносу возбудителя на значительные расстояния от первоначальной вспышки болезни. В природе возбудитель может передаватся также здоровым животным при прямом контакте с больными или павшими свиньями, клещами рода Omithodoros и механическими переносчиками (грызунами, птицами, хишниками, кровососушими насекомыми и др.) [44, 148, 185, 201]

Вирус АЧС не однороден и включает 24 генотипа и 9 серотипов [73, 145, 168, 179]. Домашнии свиньи и европейские дикие кабаны высоко восприимчивы к заболеванию и при первичном ее попадании в их популяцию отмечают, как правило, острую и подострую формы болезни, с высокой летальностью, достигающей 100% [42]. Вместе с тем на Африканском континенте заболевание не является смертельным для гигантских лесных, кистеухих, кустарниковых, аборигенных пород свиней, а также бородавочников [44, 54, 215].

После заноса АЧС в 2007 г. в Грузию, Армению, Республику Абхазия и Российскую Федерацию болезнь среди домашних свиней и кабанов протекала с признаками острой и подострой формы со 100% летальностью [2, 3, 37, 116, 225].

Вовлечение в эпизоотический процесс кабанов существенно затрудняет

проведение противоэпизоотических мероприятий при АЧС в

неблагополучных странах. Они выступают одним из основным фактором

6

распространения вируса в дикой природе, вследствие их миграции возникают очаги инфекции в новых регионах. [119]. Длительная циркуляция вируса среди поголовья кабанов может привести к изменениям его биологических и молекулярно-генетических свойств. Есть сообщения, что в странах ЕС начали выявлять серопозитивных диких кабанов, что свидетельствет о наличии у животных хронической и бессимптномной форм АЧС [129, 164]. Так в исследованиях Laura Zani et al. (2018г) было показано, что выделенный от кабанов вирус АЧС изолят «Estonia» вызывал переболевание у отдельных инфицированных свиней после заражения [152]. Сотрудниками ФИЦВИМ в 2014 г. в Калужской области от кабанов был выделен вирулентный вирус, который по клиническим признакам и выраженности патологоанатомических изменений отличался от изолятов вируса АЧС, циркулирующих на территории ЦФО [69]. Аналогичные данные были получены сотрудниками ВНИИЗЖ при изучение патогенных свойств в отношении некоторых изолятов вируса АЧС, выделенных в ЦФО в 2014-2015 гг. [31].

Эти результаты свидетельствуют об актуальности исследований по изучению биологических и молекулярно-генетических характеристик полевых изолятов вируса АЧС, выделенных от домашних свиней и кабанов в различных регионах РФ с целью их паспортизации и дальнейшего использования при проведении фундаментальных и прикладных исследований.

Степень разработанности проблемы. После заноса АЧС в 1957 г. в Европу, сначало в Португалию, а затем и другие страны, зарубежными и отечественными учеными проводились широкие исследования по изучению биологических свойств изолятов вируса, выделенных в эпизоотических очага инфекции от павших и больных домашних свиней [42, 70, 210, 221]. Были изучены патогенность вируса для домашних свиней и кабанов, формы течения болезни, его антигенные свойства и молекулярно-генетические характеристики. Установлена типовая гетерогенность выделенных изолятов,

разработаны методы культивирования вируса и диагностика болезни.

7

Начало новой эпизоотии АЧС в Европе, связана с заносом в 2007 г. вируса в Грузию, приняла в настоящее время угрожающие масштабы. В 2007-2020 гг. АЧС регистрировалась в 34 европейских и азиатских странах [101]. Рядом авторов было установлено, что полевые изоляты вируса АЧС, выделенные на территории РФ в 2007-2015 гг. от кабанов и домашних свиней вызывали, как правило, гибель животных с признаками острой и подострой формы болезни с характерными клиническими проявлениями и патоморфологическими изменениями [11, 19, 32]. Вместе с этим в 2014 г. в Калужской области от кабана был выделен вирус АЧС, который по ряду характеристик отличался от изученных ранее изолятов. Так он вызывал гибель домашних свиней на 9-11 сутки без характерных клинических признаков и паталогоанатомических измененний [69]. У заболевших животных отсутствовал цианоз кожных покровов, наблюдали гипертермию 41,2-41,7°С, угнетение, отказ от корма, одышку, нарушение со стороны центральной нервной системы, парезы задних конечностей. На вскрытии павших свиней регистрировали кровоизлияния внутренних органов, в грудной и брюшной полостях скопление серозно-геморрагического экссудата, междольковая ткань легких отечна с признаками серозно-геморрагической пневмонии. Лимфоузлы: подчелюстные, средостенные мезентериальные не увеличены или увеличены незначительно, с кровоизлияниями, желудочные и портальные - сильно увеличены, геморрагически воспалены, темного цвета, имеют вид сгустка крови, «дряблые». Селезенка незначительно увеличена, естественного цвета, под капсулой единичные точечные кровоизлияния. Печень и почки без выраженных патологических изменений, характерных для АЧС [69]. В течение этого времени (с 2007-2015 гг.) были изучены 32 изолята вируса АЧС, выделенныхе в различных регионах РФ, которые паспортизированы и депонированны в ГКМ ФГБНУ ФИЦВиМ. Сотрудниками ВНИИЗЖ при изучении полевых изолятов вируса АЧС показано снижение патогенности у

3-х изолятов, выделеных в 2014-2015 гг. в ЦФО - 0динцово-02/14, Антоново 07/14 и Лысогорье 07/14 [31].

Новые вспышки АЧС в ранее благополучных регионах России указывают на необходимость продолжения исследований по изучению биологических свойств изолятов вируса, выделенных от домашних свиней и кабанов с целью их депонирования в ГКМ ФИЦВиМ и дальнейшего использования при проведении научных и прикладных исследований.

Цель и задачи исследований. Целью исследований являлось изучение биологических свойств и молекулярно-генетических характеристик изолятов вируса АЧС, выделенных от домашних свиней и кабанов в 2016-2019 гг. в различных регионах РФ и депонирование их в ГКМ ФИЦВиМ.

Для достижения этой цели необходимо решить следующие задачи:

1. Изучить биологические свойства (патогенность, серотиповую принадлежность, культуральные свойства) и молекулярно-генетические характеристики изолятов вируса АЧС, выделенных в 2016-2019 гг. в различных регионах РФ от домашних свиней и кабанов.

2. Изучить характер течения АЧС у домашних свиней в зависимости от способа заражения животных.

3. Разработать методические положения по паспортизации и депонированию вируса АЧС в ГКМ ФИЦВиМ.

4. Паспортизировать и депонировать в ГКМ ФИЦВиМ, выделенные в РФ в 2016-2019 гг. от домашних свиней и кабанов изоляты вируса АЧС.

5. Изучить длительность сохранения инфекционного вируса АЧС в объектах внешней среды, секретах и экскретах инфицированных свиней.

6. Изучить длительность сохранения инфекционного вируса АЧС в осенних жигалках и падальных мухах.

Научная новизна результатов исследований. Изучены

биологические свойства 11 изолятов вируса АЧС, выделенных от домашних

свиней и кабанов в 2016-2019 гг. во Владимирской, Рязанской, Псковской,

Московской, Саратовской, Иркутской, Омской областях, Еврейской АО,

9

Республике Татарстан, Краснодарском и Приморском крае, которые паспортизированы и депонированы в ГКМ ФИЦВиМ.

Исследуемые изоляты вируса АЧС, выделенные от домашних свиней и кабанов, обладают сравнимыми биологическими свойствами: вызывают гибель свиней с признаками сверхострой, острой и подострой форм болезни, накапливаются в сопоставимых титрах в первичных культурах клеток костного мозга свиней (КМС) и лейкоцитов свиней (ЛС), и перевиваемой культуре клеток А4С2/9к, являются гемадсорбирующими (ГАд) и относятся к VIII серотипу. Все 11 изолятов вируса АЧС, на основании филогенетического анализа последовательностей гена B646L, отнесены ко II генотипу. Шесть из семи изученных изолятов на основании последовательностей межгенного региона I73R/I329L (ТЯ^ +/-) отнесены к варианту (ТЯ^ +) и 1 изолят к варианту (ТЯ^ -).

Установлены особенности течения АЧС у домашних свиней в зависимости от способа заражения изучаемыми изолятами.

Получены новые сведения о сроках выделения исследованных изолятов вируса из экскретов и секретов инфицированных свиней, а также длительности сохранения в них инфекционного вируса при различных температурах. Получены экспериментальные данные о вероятных механических переносчиках вируса АЧС - осенних жигалках и падальных мухах.

Теоретическая и практическая значимость работы. Паспортизированные

и депонированные в ГКМ ФИЦВиМ штаммы вируса АЧС, выделенные от

домашних свиней и кабанов в различных регионах РФ могут быть

использованы как в прикладных, так и фундаментальных исследованиях -

при изучении эволюционной изменчивости вновь выделенных изолятов,

отличающихся от депонированных по основным биологическим свойствам

(патогенности, течению болезни, типовой принадлежности, культуральным

свойствам). Сведения о длительности сохранения инфекционного вируса

АЧС в организме - осенних жигалках и падальных мухах, которые являются

10

механическими переносчиками вируса и теоретически могут заражать животных в естественных условиях, указывают на необходимость проведения обязательной дезинсекции в системе противоэпизоотических мероприятий при АЧС. Установлены сроки сохранения инфекционного вируса АЧС в контаминированной почве, водопроводной воде, моче и навозе свиней при различных температурах. «Методические положения по паспортизации и депонированию в коллекцию ГКМ ФИЦВиМ вируса АЧС» применяются при проведении коллекционной работы с новыми изолятами вируса, выделенными от домашних свиней и кабанов.

Методология и методы исследования. В работе использовали вирусологические (получение и культивирование первичных и перевиваемых культур клеток, культивирование и титрование вируса, инфицирование животных), серологические (реакция задержки гемадсорбции, реакция прямой и не прямой иммунофлуоресценции, твердофазный иммуноферментный анализ), молекулярно-биологические (выделение нуклеиновых кислот, ПЦР, секвенирование), а так же иммунохимические (иммуноблоттинг) методы, статистический анализ.

Основные положения диссертации, выносимые на защиту:

Выделенные от домашних свиней и кабанов в различных регионах РФ

в 2016-2019 гг. изоляты вируса АЧС вызывают гибель свиней с признаками острой и подострой форм болезни независимо от способа заражения. Изоляты Татарстан-Сосновка/2016 и Иркутск-2017 наряду с острой вызывают сверхострую форму АЧС.

Изученные изоляты вируса АЧС являются ГАд, размножаются в первичных (КМС, ЛС) и перевиваемой (А4С2/9к) культурах клетках в титрах 6,0-7,0 и 5,25-5,75 ^ ГАЕ50/см3 соответственно. По результатам РЗГАд они относятся к VIII серотипу, а по данным нуклеотидного секвенирования и филогенетического анализа последовательности гена В646L - ко II генотипу.

Выделенные в 2016-2019 гг. в различных регионах РФ от домашних свиней и кабанов изоляты вируса АЧС депонированы в ГКМ ФИЦВиМ и используются при проведении НИР.

В осенних жигалках и падальных мухах инфекционный вирус АЧС сохраняется не менее 5 суток, они являются механическими переносчиками вируса и могут рассматриваться в качестве вероятных источников заболевания восприимчивых животных.

Личный вклад соискателя. Диссертационная работа выполнена автором самостоятельно. Отдельные этапы исследований выполнялись при оказании консультативной и научно - методической помощи д-ра биол. наук, проф. Юркова С.Г. и д-ра биол. наук, проф., профессора Середы А.Д., а также кандидатов биологических наук Кольцовой Г.С., Титова И.А. и Лыска В.М., за что автор выражает им благодарность.

Степень достоверности и апробация результатов. Основные результаты диссертационной работы доложены и обсуждены на заседаниях Ученого совета ФГБНУ ФИЦВиМ, при защите научно-квалификационной работы на Государственной итоговой аттестации по окончанию аспирантуры, на Международной научно-практической конференции «Новое слово в науке и практике» ИГСХА им. ак. Д.К.Беляева (г. Иваново, 2018 г.).

Публикации. По материалам диссертации опубликовано 12 научных работ, в том числе 11 статей в рецензируемых научных изданиях, рекомендованных ВАК Министерства образования и науки для докторских и кандидатских диссертаций.

Объем и структура диссертации. Диссертация изложена на 149 страницах текста и содержит следующие разделы: введение, обзор литературы, собственные исследования, заключение, приложения: иллюстрирована 20 таблицами и 19 рисунками. Список использованной литературы включает 238 источников, из них 134 иностранных.

2 ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ 2.1 Краткая историческая справка

Африканская чума свиней (АЧС, болезнь Монтгомери, восточно-африканская лихорадка) - особо опасная контагиозная, склонная к природной очаговости вирусная болезнь свиней всех пород и возрастов, которая характеризуется лихорадкой, признаками токсикоза, септицемией, цианозом кожных покровов и обширными геморрагиями, дистрофическими и некротическими поражениями внутренних органов. Летальность у восприимчивых животных в первичных очагах болезни может достигать 100%, переболевшие свиньи пожизненно остаются вирусоносителями [38, 215, 217].

Впервые эту болезнь стали регистрировать в 1903 г. в Южной Африке

- Кении, где наблюдали заболевание и гибель иммунных против КЧС

европейских свиней после их контакта с местными аборигенными и дикими

свиньями. [123]. В 1921 г. болезнь описал английский исследователь - доктор

R. Моп^отегу [199]. Вначале разные авторы описывали это заболевание

под различными названиями - африканская свиная лихорадка, восточно -

африканская чума, болезнь Монтгомери и др. В 1965 г. на конференции,

созванной МЭБ и ФАО в Риме было решено называть эту болезнь

африканская чума свиней [42]. До середины ХХ века АЧС регистрировали

только на африканском континенте, в странах, расположенных южные

пустыни Сахары. В 1957 г. произошел первый занос возбудителя болезни за

пределы Африки, в Европу, вначале в Португалию, в 1960 г. в Испанию, а

затем и другие страны Европы и Карибского бассейна [14, 53, 126, 167, 187].

После заноса АЧС на Пиренейский полуостров, который только в 1995 г. был

признан свободным от АЧС, вспышки болезни регистрировали во Франции

(1964,1967 и 1974 гг.), на Мальте (1967 г.), в Италии (1967, 1978 и 1984 гг.),

Бельгии и Нидерландах (1985 и 1986 гг.), Кубе (1970 и 1980 гг.), в Бразилии

(1979 г.), Доминиканской республике и Гаити (1978— 1980 гг.). Искоренение

болезни в этих странах связано с тотальным уничтожением свинопоголовья в

13

очагах болезни и проведением других широкомасштабных дорогостоящих противоэпизоотичесских мероприятий. Так, борьба с АЧС в Бразилии, до окончательного искоренении болезни, велась на протяжении 8 лет [53, 105, 187].

До настоящего времени АЧС регистрируют на острове Сардинии среди кабанов, где она приобрела эндемичный характер [162, 182].

В 1977 г. АЧС была занесена в бывшей СССР - Одесскую область. Считают, что занос вируса АЧС в Одесскую область произошел из Испании с инфицированными свиными продуктами. Болезнь в хозяйствах Одесской области была ликвидирована в течение 7 месяцев, путем проведения жестких ветеринарно-санитарных мероприятий, при проведении которых было уничтожено более 360 тысяч голов свиней. В это же время вспышки болезни также регистрировали в Киевской и Свердловской областях [67].

Повторно, в 2007 г., через 50 лет после первичного заноса АЧС в Европу, заболевание вновь было занесено на европейский континент -вначале в Грузию, а затем и другие страны, включая РФ [3, 27, 49].

2.2 Структура и таксономия вируса АЧС Вирус АЧС — это большой, цитоплазматический, двух цепочечный ДНК-содержащий вирус диаметром 175—215 нм [98, 136, 173]. Размер генома варьирует в пределах 170-195 тысяч оснований. Структура генома обуславливает высокую вариабельность вируса АЧС. В настоящее время по результатам секвенирования гена B646L, кодирующего основной капсидный протеин ур72, различают 24 генотипа вируса [29, 98, 143, 168].

Двухслойный капсид состоит из 1892—2172 капсомеров. В геноме вируса АЧС различают от 150 до 200 открытых рамок считывания, кодирующих структурные и вирусспецифические белки [98, 158, 177]. Основными структурными вирусными протеинами являются р72, р30, р150, р37, р34, р35 и р15. Остальные протеины являются неструктурными, их количество и вид варьирует в зависимости от изучаемых изолятов [46, 83, 98, 113, 156, 223, 227].

Вирус АЧС содержит гены, кодирующие ферменты, вовлеченные в нуклеотидный метаболизм, репликацию, репарацию и транскрипцию ДНК. Вирус содержит несколько генов, кодирующих белки, имеющие гомологию с белками хозяина, что обеспечивает вирусу своеобразную мимикрию в отношении клеточных структур. В левой концевой области генома вируса АЧС расположены гены, кодирующие вирусспецифические белки, важные для фенотипического проявления иммунобиологических свойств вируса [81, 96, 117, 197, 232]. Схематически структура вируса АЧС приведена на рисунке 1.

Рисунок 1. Схема вириона Asfarviridae (вирус африканской чумы свиней) [233].

С 1975 г., вирус АЧС относили к семейству Iridoуiridae куда входили вирусы радужности насекомых, лимфоцитоза рыб и опухоли лягушек. В то же время наличие ДНК-зависимой РНК-полимеразы указывало на его некоторое сходство с поксвирусами [96]. С учетом этого в 1982 г. вирус АЧС был исключен из семейства Iridoуiridae и до 2000 г. оставался не классифицированным. В 2000 г. был выделен Международный комитет по таксономии вирусов в отдельное семейство Asfarуiridae, состоящее из одного рода Asfiуirus [157]. В 2020 г. вирус АЧС был включен в класс Pokkesуiricetes, отряд Asfuvirales так как он имеет общие структурные, геномные и репликативные характеристики с другими крупными ядерно-

цитоплазматическими ДНК-содержащими вирусами [228].

15

2.3 Современная эпизоотическая ситуация по АЧС в Российской

Федерации

Условно распространение АЧС после её заноса в 2007 г. в Россию можно разделить на 2 периода, до 2012 г., когда заболевание регистрировалось, в основном, в Южном и Северо - Кавказском ФО и после 2012 г. по настоящее время, когда болезнь широко распространилась в РФ, включая азиатскую часть страны [2, 101].

2.3.1 Распространение АЧС в Российской Федерации в 2007-2011 гг.

Новая эпизоотия АЧС в Европе началась в 2007 г. после заноса возбудителя болезни в Грузию, а из неё кабанами в РФ - республику Чечня [11, 25, 49]. Заболевание было впервые зарегистрировано в лесном массиве Шатойского района в пойме реки Шато-Аргунь, где были обнаружены павшие кабаны. В ходе эпизоотологического расследования, выполненного сотрудниками «ФГБУ ВНИИЗЖ» и ГНУ ВНИИВВиМ установлено, что занос вируса АЧС в республику Чечня из Грузии, вероятнее всего произошел, вследствие миграции инфицированных кабанов через Большой Кавказский хребет из эпизоотического очага, находящегося на расстоянии 62 километров от места гибели кабанов в Шатойском районе. При исследовании патматериала от павших кабанов во ВНИИВВиМ при постановке РПИФ и ПЦР был подтвержден диагноз на АЧС. Из исследуемых образцов был выделен вирус АЧС на культуре ККМС. Несколько позже вирус АЧС был выделен от внешне здорового кабана убитого вблизи первичного эпизоотического очага АЧС у села Урдахой [47, 48, 111, 116].

Всего в результате мониторинговых исследований, выполненных в

2007-2008гг, установлено 10 очагов АЧС в 5 районах Республики Чечня:

Шатойском, Урус-Мартановском, Сунженском, Курчалаевском и Ножай-

Юртовском [3]. Быстрая диагностика и проводимые противоэпизоотические

мероприятия не позволили купировать распространение эпизоотии АЧС.

Вирус продолжали выделять от павших и отстрелянных кабанов в 8

16

центральных и северных районах Республики, а также в Сунженском и Назрановском районах Республики Ингушетия. Заболеваемость и гибель кабанов в этих регионах составляла около 2,5% от их общего поголовья [5, 40, 47, 48].

В течение 2008 г. территории, где регистрировали вспышки АЧС в популяции кабанов, продолжали расширяться. Путем прямого контакта здоровых и инфицированных животных произошел вынос заболевания с мигрирующими кабанами в новые субъекты РФ. Случаи гибели кабанов от АЧС регистрировали в июне 2008 г. в республике Северная Осетия-Алания (РСО-А) и в декабре в Кабардино-Балкарской Республике (КБР). Заболевание регистрировалось практически во всех районах этих республик, чаще - в зимне-весенний период. Этому способствовала высокая плотность поголовья кабанов и их миграция по территории ЮФО. В 2008 г. вспышки болезни регистрировали уже в Ставропольском и Краснодарском краях среди домашних свиней. Быстрое распространение АЧС среди домашних свиней и кабанов в итоге привел к состоянию стационарного неблагополучия по данному заболеванию практически всего ЮФО. Болезнь регистрировали во многих административных районах Ставрополья, Краснодарского края и Ростовской области - регионов с развитым свиноводством [5, 26, 103].

В Ставропольском крае АЧС была установлена в октябре 2008 г. среди домашних свиней группы откорма в ТОО «Колхоз им. Ленина» Советского района [11]. Несмотря на принимаемые меры по ликвидации вспышек болезни и проведению противоэпизоотических мероприятий (отчуждение свинопоголовья, зонирование, карантинирование, ограничения на перемещение продукции), распространение АЧС на территории этого региона продолжилось. В Краснодарском крае вспышка заболевания впервые была зарегистрирована в ноябре 2008 г. В то же время в воинской части города Армавир было установлено АЧС, в мясе свиней, поступившее из Ставропольского края [41, 97].

Особенностью эпизоотического процесса АЧС в РФ являлось большое количество инфицированных объектов - мест обнаружения трупов свиней или кабанов на свалках, в лесополосах, предприятиях по переработке мяса, бойнях, складах и пунктах по реализации продуктов свиноводства на которых была выявлена инфицированная продукция. Такие объекты имеют особое значение в распространении инфекции путем алиментарной передачи возбудителя через пищевые отходы. Поддержание эпизоотического процесса среди кабанов, главным образом происходит при непосредственном контакте здоровых и инфицированных животных, которые часто заражаются от трупов домашних свиней. Такие случаи отмечали в Астраханской, Волгоградской, Ростовской областях, Краснодарском крае, а в последующие годы и в других субъектах ЦФО РФ. Особую опасность представляет несанкционированное перемещение инфицированных свиней и мясной продукции. Так, в 2008 г. из Армении в Оренбургскую область было завезено инфицированное мясо, вызвавшее вспышку АЧС в этом регионе [56, 57, 60]. В 2009 г. свиное инфицированное вирусом АЧС мясо, заготовленное в Северо-Кавказском регионе, поступило на склады воинской части Ленинградской области, а затем через столовую с пищевыми отходами вызвало АЧС в одном из подсобных хозяйств. Аналогичные случаи (инфицированные продукты свиного происхождения из южных регионов -воинская часть - подсобное хозяйство) возникновения АЧС отмечали в Архангельской, Мурманской и Саратовской областя. В период с 2007по 2010 гг. болезнь регистрировалась во всех субьектах Северо - Кавказского и Южного федеральных округов [103].

Список литературы диссертационного исследования кандидат наук Власов Михаил Евгеньевич, 2021 год

7. СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

1. Аншба, Э.А. Африканская чума свиней в Республике Абхазия / Э.А. Аншба // Ветеринария Кубани. - 2007. - № 5. - С. 4-5.

2. Аншба, Э.А. Эпизоотология африканской чумы свиней и меры борьбы с болезнью в Республике Абхазия: дис. ... канд. вет. наук: 06.02.02 / Аншба Эдуард Алексеевич. - Покров, 2013. - 148 с.

3. Африканская чума свиней - главная проблема свиноводства России / В.В. Куриннов, Д.В. Колбасов, С.Ж. Цыбанов [и др.] // Жизнь без опасностей. Здоровье. Профилактика. Долголетие. - 2010. - № 3. - С. 8287.

4. Африканская чума свиней // Инфекционная патология животных: в 2-х т. / под ред. А.Я. Самуйленко и др. - М: Академкнига, 2006. - Т.1. - С. 807817.

5. Африканская чума свиней в южном регионе России / В.В. Макаров, А.А. Гусев, Е.В. Гусева [и др.] // Эпизоотология, иммунология, фармакология, санитария. - 2010. - № 3. - С. 7-19.

6. Африканская чума свиней на территории российской федерации: экономические последствия / В.М. Гуленкин, И.М. Клиновицкая, О.Н. Петрова [и др.] // Ветеринария сегодня. - 2017. - № 4 (23). - С. 23-27.

7. Ашмарин, И.П. Быстрые методы статистической обработки и планирование экспериментов / И.П. Ашмарин, Н.Н. Васильев, В.А. Амбросов - Л.: Издательство Ленинградского университета, 1974. - 76c.

8. Балышев, В.М. Изучение гетеротиповых взаимодействий штаммов вируса АЧС in vitro и in vivo / В.М. Балышев, И.В. Федорищев, М.В. Салина // Вирусные болезни сельскохозяйственных животных. Тезисы докл/ ВНИИЗЖ. - Владимир, 1995. - С. 230-258.

9. Бейли, Н. Статистические методы в биологии / Н. Бейли - Москва: Изд-во иностранной литературы, 1962. - 260c.

10.Биологические свойства вируса африканской чумы свиней в Народной Республике Конго / Бадаев Ф.А., Рудобельский Э.В., Чевелев С.Ф. [и др.] // Материалы научной конференции ВНИИВВиМ.-1992.-С. 24-27.

11.Биологические свойства вируса африканской чумы свиней, выделенного в Российской Федерации / В.М. Балышев, В.В. Куриннов, С.Ж. Цыбанов [и др.] // Ветеринария. - 2010. - № 7. - С. 25-27.

12.Биологические свойства вируса АЧС / Ф.А. Бадаев, Э.В. Рудобельский, С.Ф. Чевелев [и др.] // Вопр. Ветеринарная вирусология, микробиология и эпозоотология: материалы научной конференции ВНИИВВиМ. - Ч. 1. -1992. - С. 24-27.

13.Биологические свойства и молекулярно-генетическая характеристика вируса африканской чумы свиней, выделенного в 2016-2017 гг. в различных регионах Российской Федерации / В.М. Балышев, М.Е. Власов, А.Р. Иматдинов [и др.] // Российская сельскохозяйственная наука. - 2018. - № 4. - С. 54-58.

14.Бурлаков, В.А. Иммунологические свойства вируса и проблемы разработки средств специфической профилактики АЧС: дис. ... д-ра. вет. наук / Бурлаков Валентин Александрович. - Покров, 1979. - 478 с.

15.В Германии подтвержден первый случай африканской чумы свиней / Россельхознадзор: Электронный ресурс. - Режим доступа: URL:https://fsvps.gov.ru/fsvps/asf/news/37326.html.

16.Валидация тест-системы для серодиагностики африканской чумы свиней методом иммуноблоттинга / О.А. Дубровская, А.Д. Середа, А.С. Казакова [и др.] // Сельскохозяйственная биология. - 2018. - Т. 53, №6. -С. 430-437.

17.Ветеринарные правила по осуществлению профилактических, диагностических, ограничительных и иных мероприятий, установления и отмены карантина и иных ограничений, направленных на предотвращение распространения и ликвидацию очагов африканской

чумы свиней. Москва 2016. [Электронный ресурс]. - Режим доступа: URL:https://mmjust.consultant.ra/documents/46574.

18.Ветеринарные правила по осуществлению профилактических, диагностических, ограничительных и иных мероприятий, установления и отмены карантина и иных ограничений, направленных на предотвращение распространения и ликвидацию очагов африканской чумы свиней. Москва 2021.

19.Вирулентность изолятов вируса африканской чумы свиней / С.А. Белянин, А.П. Васильев, Д.В. Колбасов [и др.] // Ветеринария Кубани. -2011. - №5. - С. 9-10.

20.Влияние некоторых физико-химических факторов на вирус африканской чумы свиней / И.В. Никишин, Ф.А. Бадаев, Э.В. Рудобельский [и др.]// Вопросы ветеринарной вирусологии, микробиологии и эпизоотологии: материалы научной конференции / ВНИИВВиМ. Ч.1. - Покров, 1992. -С. 48.

21.Выявление клинико-анатомических, гистологических изменений при АЧС и локализации вируса в органах инфицированных животных / И. Ю. Жуков, И. В. Шевченко, А. С. Иголкин, [и др.] // Российский ветеринарный журнал С.-х. животные. - 2015. - № 3.- С. 36-39.

22.Газаев, И.Х. Совершенствование методов индикации гена вируса африканской чумы свиней в объектах ветеринарного надзора: автореф. дис. ... канд. биол. наук / Газаев Исмаил Хизирович. - Покров, 2011. - 26 с.

23. ГОСТ 28573-90. Свиньи. Методы лабораторной диагностики африканской чумы. - М.: Стандартинформ, 2005. - 10 с.

24.Груздев, К.Н. Африканская чума свиней: современное состояние, эпизоотология и меры борьбы (аналитический обзор) / К.Н. Груздев, Н.И. Закутский, В.И. Диев // Ветеринарный врач. - 2017. - № 5. - С. 310.

25.Гулёнкин, В.М. Оценка экономического ущерба от африканской чумы свиней / В.М. Гулёнкин, Н.С. Бардина, А.А. Шевцов // Ветеринария. -2011. - №10. - С. 10-12.

26.Динамика распространения АЧС в Ростовской области с 2009 по 2013 гг. и опыт борьбы с ней / В.Н. Василенко, С.Н. Карташов, Л.П. Миронова [и др.] // Ветеринарная патология. - 2014. - № 1 (47). - С. 22-27.

27.Дудников, С.А. Африканская чума свиней картографический анализ распространения заболевания на территории Российской Федерации (2007-2012) / С.А. Дудников, О.Н. Петрова, Ф.И. Коренной // [Электронный ресурс]. - Режим доступа: URL:http ://www.arriah.ru/ sites/default/files/private/books/achs-kartograficheskii-anaHz-rasprostranemya-zabolevaniya-na-territorii-rossiiskoi-federatsii-vyp-/kniga_po_achs_1_izd.pdf.

28.Дудников, С.А. Прогноз по африканской чуме свиней в Российской Федерации на 2012 год / С.А. Дудников, О.Н. Петрова, А.С. Оганесян. -Владимир: ФГБУ «ВНИИЗЖ», 2011. - 35 с.

29.Елсукова, А.А. Генотипирование изолятов вируса африканской чумы свиней: дис.. .канд.биол.наук: 03.02.02 / Елсукова Александра Андреевна. - Покров, 2010. - 138 с.

30.Жестерев, В.И. Иммунобиологические свойства вакцинного штамма КК-262 ППК вируса АЧС II типа / В.И. Жестерев, В.А. Мищанин, Р.В. Кошелева // Тезисы докладов научной конференции ВНИИВВиМ. - Т.1.-Покров, 1986. - С. 386-389.

31.Жуков, И.Ю. Биологические свойства изолятов вируса африканской чумы свиней и особенности течения болезни при экспериментальном заражении: дис. ... канд. биол. наук: 03.02.02 / Жуков Иван Юрьевич. -Владимир, 2018. - 145 с.

32.Иголкин, А.С. Африканская чума свиней в России: текущая ситуация и меры борьбы / А.С. Иголкин // Актуальные проблемы биологии,

биотехнологии, экологии и биобезопасности: Междунар. научно-практ. конф. - Кордай, 2015. - С. 129-133.

33.Инактивирующее действие аэрозолей некоторых дезинфектантов на вирус африканской чумы свиней / В.М. Балышев, В.И. Балышева, М.В. Болгова [и др.] // Ветеринария. - 2016. - № 11. - С. 44-47.

34.Инструкция о мероприятиях по предупреждению и ликвидации африканской чумы свиней (Утверждена Главным управлением ветеринарии Министерства сельского хозяйства СССР 21 ноября 1980

г.).

35.Инфекционная активность вируса африканской чумы свиней в лабораторных образцах и пищевых продуктах при разных температурных режимах (с экстраполяцией на сохраняемость в природных условиях) / И.П. Синдрякова, Ю.П. Моргунов, А.Ю. Чичикин [и др.] // Сельскохозяйственная биология. - 2016. - Т51, № 4. - С. 467474.

36.Испытание средств и способов дезинфекции в отношении вируса Африканской чумы свиней / А.Д. Середа, Ю.О. Селянинов, И.Ю. Егорова [и др.] // Ветеринария. - 2015. - № 7. - С. 51-55.

37.Исследование инкубационного периода при остром течении африканской чумы свиней / В.В. Куриннов, В.М. Балышев, А.Э. Шкаев // Ветеринария Кубани. - 2015. - № 3. - С. 4-10.

38.Карантинные и малоизвестные болезни животных / под ред. И.А. Бакулова. - Москва: Колос, 1983. 299 с.

39.Клинико-анатомическое проявление африканской чумы свиней при заражении разными методами вирусом, выделенным от дикого кабана: научное издание / И.В. Шевченко, С.Г. Ремыга, А.С. Першин и др.// Современные проблемы патологической анатомии, патогенеза и диагностики болезней животных: Материалы 18-й Междунар. научно-методич. конф.. - Москва, 2014. - С. 82-84.

40.Клинические признаки и патоморфологические изменения у домашних свиней при подостром течение африканской чумы свиней на территории Российской Федерации / А.С. Белянин, Д.В. Колбасов, В.В. Куриннов [и др.] // Ветеринарная патология. - 2011. - № 4. - С. 36-39.

41.Клиновицкая, И.М. Африканская чума свиней в Краснодарском крае и ее экономические последствия / И.М. Клиновицкая, В.М. Гуленкин // Ветеринарный врач. - 2014. - № 4. - С. 23-28.

42.Коваленко, Я.Р. Африканская чума свиней / Я.Р. Коваленко, М.А. Сидоров, Л.Г. Бурба. - М.: Колос, 1972. - 199 с.

43.Коваленко, Я.Р. Сохраняемость вируса африканской чумы свиней во внешней среде / Я.Р. Коваленко, Л.Г. Бурба, М.А. Сидоров // Вестник сельскохозяйственной науки. - 1964. - № 3. - С. 62-65.

44.Козлова Д.И. Современные проблемы африканской чумы свиней / Д.И. Козлова, В.А. Бесхлебнов. - М.: ВНИИТЭИСХ, 1980. - 60 с.

45.Колбасов, Д.В. Итоги разработки живых вакцин против африканской чумы свиней / Колбасов Д. В., Балышев В. М., Середа А. Д. // Ветеринария.- 2014.-№ 8.-С. 3-8.

46.Колонцов, А.А. Локализация мажорных полипептидов вируса африканской чумы свиней и вирусассоциированных ферментов в структуре вирионов / А.А. Колонцов // Молекулярная генетика, микробиология и вирусология. - 1995. - № 3. - С. 34-38.

47.Куриннов, В.В. Диагностика и мониторинг при вспышках АЧС в республиках Кавказа / В.В. Куриннов // Ветеринария. - 2008. - № 10. - С. 20-25.

48.Куриннов, В.В. Диагностические и мониторинговые исследования при вспышках африканской чумы свиней в республиках Северного Кавказа в 2007-2008 гг / В.В. Куриннов // Инфекционная патология животных: материалы Междунар. науч.-практ. конф. - 2009. - С. 63-70.

49.Курнявко, Н.Ю. Африканская чума свиней в Грузии / Н.Ю. Курнявко, В.В. Макаров // Ветеринарный консультант. - 2007. - № 24. - С. 3-5.

115

50.Лакин, Г.Ф. Биометрия / Г.Ф. Лакин - Москва: Высшая школа, 1980. -352c.

51.Левченко М. А. Stomoxys calcitrans (díptera: muscidae): Ветеринарное значение. Обзор / М. А. Левченко, Е.А. Силиванова // Российский паразитологический журнал. -2020.-Т. 14.-№ 40-52.

52.Ликвидация африканской чумы свиней в республике Абхазия / В.Н. Герасимов С.А. Кукушкин, А.В. Мищенко [и др.] // Ветеринария. - 2008. - № 3. - С. 19-24.

53.Макаров В.В. Африканская чума свиней / В.В. Макаров. - М.: РУДН, 2011. - 268 с.

54.Макаров В.В. Африканская чума свиней: эпизоотический полиморфизм и контроль. Часть 3. Экономика и экстраполяция на РФ / В.В. Макаров,

B.А. Грубый // Ветеринария сегодня. - 2013. - №4. - С. 8-11.

55.Макаров, В.В. Африканская чума свиней: монография / В.В. Макаров. -М.: Российский университет дружбы народов, 2011. - 269 с.

56.Макаров, В.В. Вирус африканской чумы свиней / В.В. Макаров // Ветеринарная практика. - 2011. - №3. - С. 10-16.

57.Макаров, В.В. Вирусы / В.В. Макаров, В.М. Бондаренко // Бюллетень Оренбургского научного центра УрО РАН. - 2012. - № 2. - С. 1-13.

58.Макаров, В.В. Иммунологическая концепция африканской чумы свиней (некоторые итоги исследований) / В.В. Макаров // Ветеринарная практика. - 2013. - Т. 62, № 3. - С. 5-22.

59.Макаров, В.В. Система «Клещи рода Ornithodoros-вирус африканской чумы свиней»: биоэкология, вирусология, эпизоотология / В.В. Макаров, О.И. Сухарев, О.Б. Литвинов // Ветеринарная патология. - 2011. -№ 3. -

C. 16-27.

60.Мероприятия по ликвидации африканской чумы свиней в с. Черноречье

Оренбургского района Оренбургской области. / Упр. Федеральной

службы по ветеринарному и фитосанитарному надзору по Оренбургской

обл.: [Маслов М. Г. и др.]. - Оренбург: Союз-реклама, 2009. - 170 с.

116

61.Методические положения по типизации вируса африканской чумы свиней в реакции задержки гемадсорбции/ В.М. Балышев, М.В. Болгова, Л.Л. Черятников [и др.]// ВНИИВВиМ. - Покров, 2010.

62.Миколайчук, С.В. Сохраняемость вируса АЧС в различных объектах внешней среды и продуктов животного происхождения: дис. .канд. вет. наук / С.В. Миколайчук. - Покров, 1981. - 123 с.

63.Новые подходы и перспективы разработки эффективных вакцин против АЧС, вызываемой вирусом I серотипа / Ю.И. Петров, Н.И. Митин, Л.Л. Черятников [и др.] // Тезисы докладов научной конференции ВНИИВВиМ. - Т.1. - Покров, 1989.- С. 128-130.

64.Олигонуклеотидные праймеры и флюоресцентный зонд с внутренним гасителем, комплементарные участку гена Р30 (CP204L) вируса африканской чумы свиней, для использования в полимеразной цепной реакции в режиме реального времени/ Д.А. Кудряшов, Г.С. Бурмакина, И.А. Титов [и др.]// МПК7 С^ 1/68. ГНУ ВНИИВВ и М (РФ). № 2606253. Заявл.15.02.2016. Опубл. 10.01.2017. Бюл. № 1.

65.Опыт ликвидации Африканской чумы свиней в Ивановской области / В.Н. Герасимов, Е.Ф. Мужжавлев, А.В. Слугин [и др.] // Ветеринария. -2014. - № 11. - С. 11-15.

66.Опыт ликвидации африканской чумы свиней в Португалии / К.Н. Груздев, А.Б. Пономарев, А.В. Иванов [и др.] // Ветеринарный врач. -2011. - № 6. - С. 8-10.

67.Отчет о результатах изучения путей заноса и распространения африканской чумы свиней (АЧС) в Одесской области в 1977 году [Текст] / [Юрков Г.Г. и др.]; ВНИИВВиМ Россельхозакадемии - Покров: 2014. -63 с.

68.Паразитология и инвазионные болезни животных: учебное пособие / под ред. М.Ш. Акбаева. - Москва: Колос, 2000. - 2е изд., исправ. - 743 с.

69.Патент 2577997 Российская Федерация, Штамм «Калуга-2014» вируса

африканской чумы свиней для мониторинговых исследований и

117

изучения патогенеза болезни: заявл. 25.12.2014; опубл. 10.02.2016 / В.М. Балышев. - Бюл. №8. - 8с.

70.Патент № 2439152 - Штамм «Ставрополь 01/08» вируса африканской чумы свиней для вирусологических, молекулярно-генетических и мониторинговых исследований / В.М. Балышев // Электронный ресурс]. Режим доступа: URL: https://yandex.ru/patents/doc/ RU2439152C1_20120110.

71.Патогенетическая роль аллергических процессов при африканской чуме свиней / Ю.И. Петров, Н.И. Митин, В.М. Дубровин [и др.] // Вопросы ветеринарной вирусологии, микробиологии и эпизоотологии: материалы научной конференции / ВНИИВВиМ. - Ч.1. -Покров, 1992. - С. 21-24.

72. Перевиваемая сублиния клеток А4С2/9к и ее использование в исследованиях с вирусом африканской чумы свиней / В.И. Балышева, Е.Ю. Прудникова, Т.В. Гальнбек [и др.]// Вопросы вирусологии. - 2015. -Т.60, № 2. - С. 43-47.

73.Получение типовых задерживающих гемадсорбцию референс-сывороток к вирусу африканской чумы свиней / В.М. Балышев, М.В. Болгова, В.И. Балышева [и др.]// Вопросы нормативно-правового регулирования в ветеринарии. - 2015. - № 2. - С. 23-25.

74.Популяционная структура вируса африканской чумы свиней по признаку количественной гемадсорбции / В.В. Макаров, И.Ф. Вишняков, Н.А. Власов [и др.]// Вопросы вирусологии. - 1991. - № 4. - С. 321-324.

75.Развитие эпизоотии африканской чумы свиней (АЧС) в Тверской и Московской областях / В.И. Фертиков, А.В. Павлов, Д.В. Колбасов [и др.]// Вестник охотоведения. - 2013. - Т. 10. - № 2. - С. 218-229.

76.Разработка микрометода типизации вируса африканской чумы свиней / В.М. Балышев, И.В. Федорищев, М.В. Салина [и др.] // Актуальные вопросы ветеринарной вирусологии: материалы науч.-практ. конф. ВНИИВВиМ - Покров. - 1995. - С. 143-144.

77.Роль иксодофауны в эпизоотологии африканской чумы свиней / Ф.А. Бадаев, Э.В. Рудобельский, В.И. Никишин [и др.] // Вопросы ветеринарной вирусологии, микробиологии и эпизоотологии: материалы научной конференции / ВНИИВВиМ. - 1992. - Т. 1. - С. 45-46.

78.Роль клещей рода omithodoros в эпизоотической ситуации по ачс (обзор) / Першин А.С., Ремыга С.Г., Шевченко И.В. // Ветеринария сегодня.-2017.-№ 2 (21).- С. 39-44.

79.Рыжова, Е.В. Патоморфологические изменения у домашних свиней при остром и подостром течении африканской чумы свиней / Е.В. Рыжова // Российский ветеринарный журнал. Сельскохозяйственные животные. -2012. - № 1. - С. 10-13.

80.Селекция аттенуированнго варианта вируса АЧС 8 серотипа (шт. Родезия-2) после УФ-облучения / В.Г. Кротков, Н.И. Митин, Ю.И. Петров [и др.]// Тезисы докладов научной конференции ВНИИВВиМ. -1989. - С.133-134.

81.Селянинов, Ю.О. Вирус африканской чумы свиней: физическое картирование генома штаммов / Ю.О. Селянинов, В.М. Балышев, С.Ж. Цыбанов // Вестник РАСХН. - 2000. - № 5. - С. 75-76.

82.Середа, А.Д Антигенное разнообразие вируса АЧС / А.Д. Середа, В.М. Балышев // Вопросы вирусологии. - 2011. - № 4. - С. 38-42.

83.Середа, А.Д. Белки вируса африканской чумы свиней / А.Д. Середа, Д.В. Колбасов // Научный журнал КубГАУ. - 2012. - № 77 (03) [Электронный ресурс]. - Режим доступа: URL:http://ej.kubagro.ru/2012/03/pdf/48.pdf.

84.Середа, А.Д. Гемадсорбция при африканской чуме свиней / А.Д. Середа, А.Р. Иматдинов, В.В. Макаров // Сельскохозяйственная биология. - 2016. - Т. 51. - № 6. - С. 763-774.

85.Середа, А.Д. Определение серотиповой специфичности негемадсорбирующих штаммов вируса африканской чумы свиней / А.Д. Середа // Научый журнал КубГАУ. - 2010. - № 62. - С. 122-127.

86.Сероиммунологическая классификация природных изолятов вируса африканской чумы свиней / И.Ф. Вишняков, Н.И. Митин, Ю.И. Петров [и др.] // Актуальные вопросы ветеринарной вирусологии: материалы научной практической конференции/ - ГНУ ВНИИВВиМ Покров: -1995. - С. 141-143.

87.Сероиммунологическая принадлежность вируса африканской чумы свиней, выделенного в Российской Федерации / В.М. Балышев, Ю.Ф. Калантаенко, М.В. Болгова [и др.] // Доклады РАСХН. - 2011. - № 54. -С. 52-53.

88.Серологический мониторинг инфекционных болезней кабанов (sus scrofa) в Центральной Европейской части РФ (Смоленская, Московская и Тверская области) / О.М. Стрижакова, В.М. Лыска, А.А. Стрижаков [и др.] // Вестник охотоведения. - 2012. - Т. 9. - № 1. - С. 95-103.

89.Смирнов, A.M. Устойчивость возбудителя и меры борьбы с африканской чумой свиней / A.M. Смирнов, М.П. Бутко // Ветеринарный врач. - 2011. - № 6. - С. 2-7.

90.Сохраняемость вируса африканской чумы свиней в осенних жигалках и падальных мухах / М.Е. Власов, А.Д. Середа, В.М. Балышев // Ветеринария. - 2019, № 8. - С. 22-25. D0I:10.30896/0042-4846.2019.22.8.22-25.

91.Стрижакова, О.М. Валидация ифа-набора для обнаружения антител к вирусу африканской чумы свиней в крови и селезенке домашних свиней и диких кабанов / О.М. Стрижакова // Сельскохозяйственная биология. -2016. - Т. 51, № 6. - С. 845-852.

92.Сюрин, В.Н. Вирусные болезни животных / В.Н. Сюрин, А.Я. Самуйленко, Б.В. Соловьев [и др.]- М.: ВНИТИБП, 1998. - 787 с.

93.Трегубов, В.И. Организация комплексных мероприятий при ликвидации африканской чумы свиней в Ставропольском крае / В.И. Трегубов, А.Н. Кононов // Диагностика, лечение и профилактика заболеваний

сельскохозяйственных животных. Материалы 74-й научно-практической конференции- Ставрополь, 2010. - С. 63-66.

94.Ущерб от чумы свиней достигает 70 млрд рублей// [Электронный ресурс] . -Режим доступа: URL: https://www.agromvestor.ru/markets/news/27962-ushcherb-ot-chumy-sviney-dostigaet-70-mlrd-rubley/. (дата обращения ...)

95.Филогенетический анализ авирулентных штаммов вируса АЧС, депонированных в музее ГНУ ВНИИВВИМ / A.A. Елсукова, И.Х. Газаев, И.М. Калабеков [и др.] // Задачи ветеринарной науки в реализации доктрины продовольственной безопасности российской федерации: Международная научно-практическая конференция / ГНУ ВНИИВВиМ.-Покров. 2011. - С. 87-91.

96.Чумак, Р.М. Таксономическая принадлежность вируса АЧС / Р.М. Чумак // Вопросы ветеринарной вирусологии, микробиологии и эпизоотологии: материалы научной конференции. - 1992. - Ч.1. - С. 32-34.

97.Шевченко, А.А. Изучение превалентности и инцидентности африканской чумы свиней в Краснодарском крае / А.А. Шевченко, О.Ю. Черных, Г.А. Джаилиди // Труды Кубанского государственного аграрного университета. - 2014. - № 49. - С. 122-124.

98.Шевченко, И.В. Биологические свойства и анализ полных геномов российских изолятов вируса африканской чумы свиней, выделенных в 2013-2014 гг.: дис. ... канд. биол. наук: 03.02.02 / Шевченко Иван Вячеславович. - Владимир, 2017. - 145 с.

99.Шубина, Н.Г. Гиперчувствительность замедленного типа и патогенез вирусной геморрогичекой лихорадки (африканской чумы свиней) / Н.Г. Шубина, А.А. Колонцов, В.В. Макаров // Бюллютень экспериментальной биологии и медицины. - 1994. - Т. 118, № 8. - С. 168-170.

100. Экспериментальное воспроизведение АЧС у европейских диких свиней / С.А. Белянин, А.П. Васильев, Д.В. Колбасов [и др.] // Ветеринарная медицина. - 2011. - № 95. - С. 13-15.

101. Эпизоотическая ситуация по АЧС. Хронология // Россельхознадзор: официальный сайт. URL:https://fsvps.gov.ru/fsvps-docs/ra/iac/asf/2021/01-21/04.pdf (дата обращения: 21.01.2021).

102. Эпизоотологическая ситуация по АЧС в РФ, и странах Восточной Европы 2007-2017 гг. // [Электронный ресурс]. - Режим доступа: URL: https://www.fsvps.ru/fsvps-docs/ru/iac/asf/2017/12-29/05.pdf.

103. Эпизоотологическая ситуация по АЧС в РФ, странах Европы и Азии, 2007-2020 гг. / [Электронный ресурс]. - Режим доступа: URL: https://fsvps.gov.ru/fsvps-docs/ru/iac/asf/2020/09-21/05.pdf.

104. Эффективность дезинфицирующих препаратов против вируса африканской чумы свиней в почве и воде / В.М. Балышев В.И. Балышева, А.Д. Середа [и др.]// Ветеринария. - 2015. - № 12. - С. 35-38.

105. 38 Brazilian Congress of Veterinary Medicine Conbravet, 1978, Florianopolis. - Florianopolis, 1978.

106. A Greedy Algorithm for Aligning DNA Sequences / Z. Zhang, S. Schwartz, Wagner [et al.] // Journal of Computational Biology. - 2000. - Vol. 7, № (12). - P. 203-214.

107. A new recombinant live attenuated African swine fever virus with cross-protective capabilities / P. L. Monteagudo, A. Lacasta, E. López // J Virol. -2017. - Vol. 91, № 21. - P. 8-17.

108. African swine fever / A.D. Glock, R.D.W.L. Mengeling, R.H.C. Penny [et al.]// Diseases of Swine, 6th Edn. Ames. - 1986. - P. 237-245.

109. African swine fever / W. Plowright, J.W Davis, L.H Karstad [et al.]// Editors. Infectious diseases of wild mammals. 2nd ed. - Ames, Iowa: Iowa State University Press. - 1981. - P. 178-190.

110. African swine fever eradication: the Spanish model / M. Arias, J.M. Sanchez-Vizcaino, A. Morilla [et al.] // Trends in Emerging Viral Infections of Swine, Iowa State University Press. - 2002. - Р. 133-139.

111. African swine fever in the North Caucasus region and the Russian Federation in years 2007-2012 / A. Gogin, V. Gerasimov, A. Malogolovkin [et al.] // Virus Res. - 2013. - Vol. 173, № 1. - P. 198-203.

112. African swine fever virus encodes a CD2 homolog responsible for the adhesion of erythrocytes to infected-cells / J.M. Rodriguez, R.J. Yaoez, F. Almazan [et al.]// J. Virol. - 1993. -Vol. 67, №9. - P. 5312-5320.

113. African swine fever virus encodes a serine protein kinase which is packaged into virions / S.A. Baylis, A.H. Banham, S. Vydelingum [et al.] // J. Virol. -1993. - Vol. 67, - № 8. - P. 4549-4556.

114. African swine fever virus in pork Brought into South Korea by Travelers from China, August 2018/ H.J. Kim, M.J. Lee, S.K. Lee [et al.]//. Emerg. Infect. Diseas. - 2019. - Vol. 25, N 6. - P. 1231 - 1233.

115. African swine fever virus infection of bone marrow: lesions and pathogenesis / J.C. Gomez-Villamandos [et al.] // Veterinary Pathology Online. - 1997. - Vol. 34. - № 2, P. 97-107.

116. African swine fever virus isolate Georgia, 2007 / R.J. Rowlands, V. Michaud, L. Heath [et al.] // Emerg. Infect. Dis. - 2008. - Vol. 14, № 12. - P. 1870-1874.

117. African swine fever virus protein p17 is essential for the progression of viral membrane precursors toward icosahedral intermediates/ C. Suárez, J. Gutiérrez-Berzal, G. Andrés [et al.] // J. Virol. - 2010. - Vol. 84, N 15. - P. 7484-7499.

118. African swine fever virus proteins involved in evading host defence systems / L.K. Dixon, C.C. Abrams, G. Bowick [et al.] // Vet. Immunol. Immunopathol. - 2004. - Vol. 100, N 3-4. - P. 117-134.

119. African swine fever virus serodiagnosis: a general review with a focus on the analyses of African serum samples / C. Cubillos, S. Gómez-Sebastian, N. Moreno [et al.] // Virus Research. - 2013. - Vol. 173, №1. - P. 159-167.

120. African Swine Fever Virus, Siberia, Russia / D. Kolbasov, I. Titov, A. Gogin [et al.] // Emerg. Infect. Dis. - 2018. -Vol. 24, № 4. - P. 796-798.

123

121. African swine fever viruses with two different genotypes, both of which occur in domestic pigs, are associated with ticks and adult warthogs, respectively, at a single geographical site / C. Gallardo, E. Okoth, V. Pelayo [et al.] // J. Gen. Virol. - 2010. - № 92. - P. 432-444.

122. African swine fever: A re-emerging viral disease threatening the global pig industry / P.J. Sánchez-Cordón, M. Montoya, A.L. Reis [et al.] // Vet. J. -2018. - Vol. 233, - P. 41-48.

123. African swine fever: how can global spread be prevented? / S. Costard, B. Wieland, W. de Glanville [et al.] // Philosophical Transactions of the Royal Society B: Biological Sciences. - 2009. - Vol. 364, № 1530. - P. 2683-2696.

124. An analysis of the 1978 African swine fever outbreak in Brazil and eradication / J. A. Moura, C.M. McManus, F.E.M. Bernal, [et. al] // Rev. sci. tech. Off. int. Epiz., 2010, 29(3), 549-563.

125. An investigation into natural resistance to African swine fever in domestic pigs from an endemic area in southern Africa / M.L. Penrith, G.R. Thomson, A.D. Bastos [et al.] // Rev. Sci. Tech. - 2004. - Vol. 23, № 3. - P. 965-977.

126. Anderson, E.C. African swine fever virus infection of the bush pig (Potamochoerus porcus) and its significance in the epidemiology of the disease / E.C. Anderson, G.H. Hutchings, N. Mukarati // Vet. Microbiol. -1998. - Vol. 62, № 1. - P. 1-15.

127. Antigenic relationships among strains of african swine fever virus / J.D. Vigario, A.M. Terrinha, J. Moura [et al.] // Arch. ges. Virusforsch. - 1974. -Vol. 45, № 3. - P. 272 - 277.

128. Assessent of interactions between African swine fever virus, bushpigs (Potamochoerus larvatus), Ornithodoros ticks and domestic pigs in northwestern Madagascar / J. Ravaomanana, F. Jori, L. Vial [et al.] // Transbound. and Emerg. Dis. - 2011. - Vol. 58, № 3. - P. 247-254.

129. Assessment of African swine fever diagnostic techniques as a response to the epidemic outbreaks in Eastern European Union Countries: How to improve

surveillance and control programs / C. Gallardo, R. Nieto, A. Soler [et al.] // J. Clin. Microbiol. - 2015. - Vol. 53, № 8. - P. 2555-2565.

130. Biological characterization of African swine fever (ASF) moderate virulent isolates associated to wild boar cases occurred in Southern Estonia in 2015 / I. Nurmoja, A. Petrov, C. Breidenstein, [et al.] // Workshop on Laboratory Diagnosis and Control of CSF and ASF. - Madrid. - 2017. - Vol. 64, № 6. -P. 2034-2041.

131. Blome, S. Pathogenesis of African swine fever in domestic pigs and European wild boar / S. Blome,, C. Gabriel, M. Beer // Res. - 2013 - Vol. 173, № 1. - P. 122-130.

132. Boinas, F. The role of Ornithodoros erraticus in the epidemiology of African swine fever in Portugal / F. Boinas // Reading, University of Reading. - 1995. - P. 296-310.

133. Breese, S.S. Electron microscopy of African swine fever virus hemadsorbtion / S.S. Breese, W.R. Hess // J. Bacteriol. - 1966. - Vol. 92, № 1. - P. 272-274.

134. Carrasco, L. Development of microscopic lesions in splenic cords of pigs infected with African swine fever virus / L. Carrasco, M. Bautista, J. Gomez-Villamandos // Veterinary Research. - 1997. - Vol. 28, № 1. - P. 93-99.

135. Carrasco, L. Virus association with lymphocytes in acute African swine fever / L. Carrasco, F. Chacon-M de Lara, J. Martin de las Mulas // Veterinary Research. - 1996. - Vol. 27, № 3. - P. 305-312.

136. Carrascosa, A.L. Production and titration of African swine fever virus in porcine alveolar macrophages / A.L. Carrascosa, J.F. Santaren, E. Vinuela // Virol. Methods. - 1982. - Vol. 3, № 6. - P. 303-310.

137. Cellular immunity in ASFV responses / H.H. Takamatsu, M.S. Denyer, A. Lacasta [et al.] // Virus Res. - 2013. -Vol. 173, № 1. - P. 110-121.

138. Changes in macrophages in spleen and lymph nodes during acute African swine fever: expression of cytokines / F. J. Salguero, E. Ruiz-Villamor, M. J.

Bautista // Vet. Immunol. Immunopathol. - 2002. - Vol. 90, № 1-2. - P. 1122.

139. Chapman, D. Genomic analysis of highly virulent Georgia 2007/1 isolate of African swine fever virus / D. Chapman // Emerging Infectious Diseases. -2011. - Vol. 17, № 4. - P. 599-605.

140. Characteristics of African swine fever virus isolated from domestic pigs and wild boars in the Russian Federation and South Ossetia / M. Vlasov, A. Imatdinov, I. Titov [et al.] // Acta Veterinaria-Beograd. - 2020. - Vol. 70, № 1. - P. 58-70.

141. Characterization of African swine fever virus Caucasus isolate in European wild boars / C. Gabriel, S. Blome, A. Malogolovkin [et al.] // Emerg. Infect. Dis. - 2011. - Vol. 17, № 12. - P. 2342-2345.

142. Characterization of pathogenic and non-pathogenicAfrican swine fever virus isolates from Ornithodoros erraticus inhabing pig premises in Portugal / F.S. Boinas, G.H. Hutching, L.K. Dixon [et al.] // J Gen Virol. - 2004. - № 85. -P. 2177-2187.

143. Coggins, L. African swine fever virus. Pathogenesis. / L. Coggins // Prog. Med. Virol. - 1974. - Vol. 18, P. 48-63.

144. Coggins, L. Segregation of a non-hemadsorbing African swine fever virus in tissue culture / L. Coggins // The Cornell Veterinarian. - 1968. - Vol. 58, № 1. - P. 12-20.

145. Comparative Analysis of African swine fever virus genotypes and serogroups / A. Malogolovkin, G. Burmakina, I. Titov [et al] // Emerg. Infect. Dis. - 2015. -Vol. 21, № 2. - P. 312-315.

146. Comparative analysis of molecular and biological properties of African swine fever virus isolates collected in 2013 from Russian Federation / N. Vlasova, A. Varentsova, I. Shevchenko, [et. al.] // EPIZONE: Abstract 8th Annual EPIZONE Meeting «Primed for tomorrow».- Frideriksberg, 2014.-P.85

147. Comprison of the genome sequences of nonpathogenic and pathogenic African swine fever virus isolates / D.A.G. Chapman, V. Tcherepanov, C. Upton [et al.] // J. Get. Virol. - 2008. - Vol. 89. - P. 397-408.

148. Costard, S. Epidemiology of African swine fever virus / S. Costard // Virus Research. - 2013. - Vol. 173, № 1. - P. 191-197.

149. Course and transmission characteristics of oral low-dose infection of domestic pigs and European wild boar with a Caucasian African swine fever virus isolate / J. Pietschmann, C. Guinat, M. Beer [et al.] // Arch. Virol. -2015. - Vol. 160, № 7. - P. 1657-1667.

150. Current situation on ASF in China and Strategies China has adopted since ASF introduction. The field diagnostic report on first case of African swine fever in Jiangsu province / C. Changhai, D. Yongyi, K. Yan [et al.] // China Animal Health and Epidemiology Center National Research Center for Exotic Animal Diseases. - 2018. - P. 9-14.

151. De Tray, D. The incidence of African swine fever in warth hogs in Kenia / D E. Detray, D. Zaphiro, D. Hay // Vet. Med. Ass. - 1961. - P. 78-80.

152. Deletion at the 5'-end of Estonian ASFV strains associated with an attenuated phenotype / L. Zani, J. H. Forth , L. Forth // Sci. Rep. - 2018. -Vol. 8, № 1. - P. 1-11.

153. Detection of African swine fever antibodies in experimental and field samples from the Russian Federation: implications for control / L. Mur, A. Igolkin, A. Varentsova [et al.] // Transbound. Emerg. Dis. - 2016. - Vol. 63, №5. - P. 436-440.

154. Development of a nested PCR and its internal control for the detection of African swine fever virus (ASFV) in Ornithodoros erraticus / A. P. Basto, R. S. Portugal, R. J. Nix [et al.] // Arch. Virol. - 2006. - Vol. 151. - P. 819-826.

155. Development of a Taq Man PCR assay with internal amplification control for the detection of African swine fever virus / D.P. King, S.M. Reid, G.H. Hutchigs [et al.] // J. Virol. Methods. - 2003. - Vol. 107, № 1. - P. 53-61.

156. Dixon, L.K. African swine fever / L.K. Dixon, H. Sun, H. Roberts // Antiviral Res. - 2019. - Vol. 165. - P. 34-41.

157. Dixon, L.K. Family Asfarviridae. Virus Taxonomy: Classification and Nomenclature of Viruses / L.K. Dixon, J.V. Costa, J.M. Escribano // San Diego. - 2000. - P. 159-165.

158. Dixon, L.K. The structure and fraction of the African swine fever genome / L.K. Dixon // Rev. Sci., tech. Off. int. Epiz. - 1986. - Vol. 5, № 2. - P. 469475.

159. Edwards, J.F. The pathogenesis of thrombocytopenia and hemorrhage in African swine fever / J.F. Edwards // Dissertation Abstracts International. -1984. - Vol. 44, № 9. - P. 2675.

160. Emergence of African swine fever in China, 2018/ X. Zhou, N. Li, Y. Lu [et al.] // Transbound Emerg Dis. - 2018. - Vol. 65, N 6. - P. 1482-1484.

161. Epidemiological analysis of the two-first cases of ASF in wild boar in Poland / Z. Pejsak, M. Truszczynski, E. Kozak [et al.] // Med. Weter. - 2014. - Vol. 70, № 6. - P. 369-372.

162. Epidemiology of classical swine fever in Sardinia: a serological survey of wild boar and comparison with African swine fever / A. Laddomada, C. Patta, A. Oggiano [et al.] // Veterinary Record. - 1994. - Vol. 134, № 8. - P. 183187.

163. Escribano, J.M. Proteins specified by African Swine Fever virus: V.-Identification of immediate early, early and late proteins / J.M. Escribano, E. Tabarés // Arch. Virol. - 1987. - Vol. 92, N 3-4. - P.221-232

164. Experimental infection of domestic pigs with African swine fever virus Lithuania 2014 genotype II Field isolate / C. Gallardo, A. Soler, R. Nieto [et al.] // Transbound. and Emerg. Dis. - 2014. - Vol. 64, № 2. - P. 300-304.

165. First oral vaccination of Eurasian wild boar against African swine fever virus genotype II / J.A. Barasona, C. Gallardo, E. Cadenas-Fernández [et al.] // Front. Vet. Sci. - 2018. - № 6. - P. 137.

166. Functional significance of the hemadsorption activity of influenza virus neuraminidase and its alteration in pandemic viruses / J. Uhlendorff, T. Matrosovich, H.D. Klenk [et al.] // Arch. Virol. - 2009. - Vol. 154. - P. 945957.

167. Geering W. Manual on Procedures for Disease Eradication by Stamping Out/ W. Geering. - Rome: Animal Production and Health Div, 2001. - 139 p.

168. Genetic characterization of African swine fever virus isolates from soft ticks at the wildlife/domestic interface in Mozambique and identification of a novel genotype / C.J. Quembo, F. Jori, W. Vosloo [et al.]// Transbound. Emerg. Dis.

- 2018. - Vol. 65, № 2. - P. 420-431.

169. Genetic characterization of African swine fever viruses from outbreaks in southern Africa (1973-1999) / C.I. Boshoff, A.D. Bastos, L.J. Gerber [et al.] // Vet. Microbiol. - 2007. - Vol. 121, - № 1-2. - P. 45-55.

170. Genetic Variation among African Swine Fever Genotype II Viruses, Eastern and Central Europe // C. Gallardo, J. Fernández-Pinero, V. Pelayo [et al.] // Emerg. Infect. Dis. - 2014. - Vol. 20, № 9. - P1544-1547.

171. Genotyping field strains of African swine fever virus by partial p72 gene characterisation / A.D.S. Bastos, M.L. Penrith, C. Cruciere [et al.] // ArchVirol. - 2003. - Vol. 148, № 4. - P. 693-706.

172. Greig, A. The localization of African swine fever virus in the tick Ornithodoros moubata porcinus / A. Greig // Arch. Gesainte Virusforsch. -1972. - Vol. 39, № 1 - P. 240-247.

173. Greig, A.S. African Swine Fever V. Cultivation of the Virus in Primary Pig Kidney Cells // A.S. Greig, P. Boulanger, G.L. Bannister // Can. J. Comp. Med. Vet. Sci. - 1967. - Vol. 31, №1. - P. 24-31.

174. Hess W. // Adv. veter. sci. comp. med., 1981, 25, 39- 66.

175. Heuschele, W.R. Epizootiology of African swine fever virus in warthogs / W.R. Heuschele, L. Coggins // Bull. epiz. diseases. Afr. - 1969. - Vol. 17, №2

- P. 179-183.

176. Hinnebusch J. Linear plasmids of Borrelia burgdorferi have a telomeric structure and sequence similar to those of a Eukaryotic virus / J. Hinnebusch, A.G. Barbour // J. Bacterol. 1991 173(22). P. 7233 - 7239.

177. ICTV Virus Taxonomy Profile: Asfarviridae / C. Alonso, M. Borca, L. Dixon [et al.] // J. Gen. Virol. - 2018. - Vol. 99, N 5. - P. 613-614.

178. Identifiation of wild boar - habitat epidemiologic cycle in African swine fever epizootics/ E. Chenais, K. Stahl, V. Guberti [et al.] // Emerg Infect Dis. -2018. - Vol. 24, N. 4. - P.810-812.

179. Identification of a New Genotype of African Swine Fever Virus in Domestic Pigs from Ethiopia / J.E. Achenbach, C. Gallardo, E. Nieto-Pelegrin [et al.] // Transbound. Emerg. Dis. - 2016. - Vol. 64, № 5. - P. 1393-1404.

180. Identification of Clinical, Anatomical and Histological changes in the ASF and Localization of the Virus in Organs of Infected Animals / I. Yu. Zhukov, I.V. Shevchenko, A.S. Igolkin [et al.] // FarmAnimals. - 2015. - № 3. - P. 3639.

181. Immunological conception of African swine fever / V. Makarov, V. Nedosekov, A. Sereda [et al.] // Zoology and Ecology. - 2016. - Vol. 26, № 3. - P. 236-243.

182. Improved Strategy for Molecular Characterization of African Swine Fever Viruses from Sardinia, Based on Analysis of p30, CD2V and I73R/I329L Variable Regions / G. Sanna, S. Dei Giudici, D. Bacciu [et al.] // Transbound. Emerg. Dis. - 2017. - Vol. 64, № 4. - P. 1280-1286.

183. In vivo depletion of CD8+ T lymphocytes abrogates protective immunity to African swine fever virus / C.A.L. Oura, M.S. Denyer, H. Takamatsu [et al.] // J. Gen. Virol. - 2005. - № 86 (9). - P. 2445-2450.

184. In vivo experimental studies of genotype II African swine fever virus (ASFV) isolates currently circulating in two Estonian counties / C. Gallardo, A. Soler, V. Delicado [et al.] // Proc. 10th Annual Meeting EPIZONE, 27-29 September 2016. - Madrid, 2016. - P. 81.

185. Infection of pigs with African swine fever virus via ingestion of stable flies (Stomoxys calcitrans) / A.S. Olesen, L. Lohse, M.F. Hansen [et al.] // Transbound. Emerg. Dis. - 2018. -Vol. 65, № 5. - P. 1152-1157.

186. Introduction of African swine fever into the European Union through illegal importation of pork and pork products / S. Costard , B. A. Jones, B. Martinez-Lopez [et al.] // PloS One. - 2013. - Vol. 8, № 4. - P. 61-104.

187. Jori, F. Role of wild suids in the epidemiology of African swine fever / F. Jori, A. D. S. Bastos // EcoHealth. - 2009. - Vol. 6, № 2. - P. 296-310.

188. Larenaudie, B. La peste porcine africaine / B. Larenaudie, J. Haag, B. Lacaze // Enc. Vet. - 1964. - Vol. 21. - P. 172-177.

189. Malmquist, W.A. Hemadsorbtion and cytophatic effect produced by African swine fever virus in swine bone marrow and bufffy coat culture / W.A. Malmquist, D. Hay // Am. J. Vet. Res. - 1960. - № 21. - P. 104-108.

190. Malmquist, W.A. Serologic and immunologic studies with African swine fever virus. / W.A. Malmquist // Am. J. Vet. Res. - 1963. - Vol. 24. - P.450.

191. Maurer, F. Pathology of african swine fever-comparison with hog cholera / F. Maurer, R.J. Griesemer, T. Jones // Amer. J. Vet. Res. - 1958. - Vol. 19, № 72. - P. 517-539.

192. Mebdus, C.A. Additional characteristics of diseases caused by the African swine fever viruses isolated from Brazil and Dominican Republic / C.A. Mebdus, A.H. Dardiri // Proc. Ann. Meet. U.S. Anim. Health Asso. -1979. - Vol. 82. - P. 227-239.

193. Medus, C.A. African swine fever / C.A. Medus // Advances in Virus Research. - 1988. - Vol. 35. - P. 251-269.

194. Mellor, P.S. Mechanical transmission of capripox virus and African swine fever virus by Stomoxys calcitrans / P.S. Mellor, R.P. Kitching, P.J. Wilkinson // Res Vet Sci. - 1987. - Vol. 43, № 1. - P. 109-112.

195. Minguez, I. Double labeling immunohistological study of African swine fever virus-infected spleen and lymph nodes / I. Minguez // Veterinary Pathology Online. - 1988. - Vol. 25. - № 3. - P. 193-198.

131

196. Molecular characterization and phylogenetic study of African swine fever virus isolates from recent outbreaks in Uganda (2010-2013) / D.K. Atuhaire, M. Afayoa, S. Ochwo [et al.] // Virol. J. - 2013.- № 10. - Р. 247.

197. Molecular epidemiology of African swine fever in East Africa / B.L. Lubisi, A.D. Bastos, R.M. Dwarka [et al.] // Arch. Virol. - 2005. - Vol. 150, № 12. -P. 2439-2451.

198. Monoclonal anti-bodies specific for African swine fever virus DNA / A. Sanz, B. García-Barreno, M.L. Nogal [et al.] // Virology. - 1985. -Vol. 54, № 1. - Р. 199-206.

199. Montgomery, R. On a form of swine fever occurring in British East Africa (Kenya Colony) / R. Montgomery // Journal of Comparative Pathology and Therapeutics. - 1921. - Vol. 34, № 3. - P. 159-191.

200. Multiple Sequence Alignment Tool Электронный ресурс: URL: http://www.ebi.ac.uk/Tools/clustalw/index. html.

201. Mur, L. Risk of African swine fever introduction into the European Union through transport-associated routes: returning trucks and waste from international ships and planes / L. Mur, B. Martinez-Lopez, J.M. Sanchez-Vizcaino [et al.] // BMC Veterinary Research. - 2012. - Vol. 8, № 1. - P. 149.

202. OIE. Terrestrial Manual. African swine fever. - Paris, 2012. - Section 2.8,Chapter 2.8.1. - P. 1 - 13.

203. Ornithodoros porcinus ticks, bushpigs, and African swine fever in Madagascar / F. Roger, J. Ratovonjato, P. Vola [et al.] // Experimental & Applied Acarology. - 2001. - Vol. 25, № 3. - P. 263-269.

204. Outbreak of African Swine Fever, Vietnam, 2019/ V.P. Le, D.G. Jeong, S.W. Yoon [et al.] // Emerg Infect Dis. - 2019. - Vol. 2, N 7. - P. 1433-1435.

205. Pan, I.C. Virulence in African swine fever: its measurement and implications / I.C. Pan, W.R. Hess // Amer. J. Vet. Research. - 1984. - Vol. 45. - № 2. - P. 361-366.

206. Pathogenesis of highly virulent African swine fever virus in domestic pigs exposed via intraoropharyngeal, intranasopharyngeal, and intramuscular

132

inoculation, and by direct contact with infected pigs / E.B. Howey, V. O'Donnell, H.C. de Carvalho Ferreira [et al.] // Virus Res. - 2013. - Vol. 178, № 2. - P. 328-339.

207. Penrith, M.L. African swine fever / M.L. Penrith // Vet. Res. - 2009. - Vol. 76, № 1. - P. 91-95.

208. Phylogeographic analysis of African swine fever virus, Western Europe, 2018 / M. Garigliany, D. Desmecht, M. Tignon [et al.] // Emerg. Infect. Dis. -2019. - Vol. 25, № 1. - P. 184 - 186.

209. Pini, A. Isolation and segregation of non-hemadsorbing strains of African swine fever virus / A. Pini // Vet. Res. - 1976. - Vol. 99. - P. 479-480.

210. Plowright, W. Epizootology of African swine fever in Africa / W. Plowright, J. Parker, M.A. Peirce // Vet. Rec. - 1969. - Vol. 85, № 24. - P. 668-674.

211. Plowright, W. Manuel on procedures for disease eradication by stamping out, FAO. 2001 / Plowright W // African swine fever. «Infectious Diseases of livestock with special reference to Southern Africa». Cape Town-Oxford University Press. - 1994. - P. 567-599.

212. Plowright, W. Transovarial infection with African swine fever virus in the Argasid tick, Ornithodoros moubata porcinus / W. Plowright, C. T. Perry, M. A. Peirce // Walton. Res. Vet. Sci. - 1970. - Vol. 11, № 6. - P. 582-584.

213. Preclinical diagnosis of African swine fever in contact-exposed swine by a real-time PCR assay / L. Zsak, M.V. Borca, G.R. Risatti [et al.] // Clin. Microbiol. - 2005. - Vol. 43. - P. 112-119.

214. Sanchez-Botija, A.C. Reservorios del virus de la peste porcina africana. Investigación del virus de la P.P.A. en los artrópodos mediante la prueba de la hemoadsorción / A.C. Sanchez-Botija // Bulletin de la Office International des Épizooties. - 1963. - Vol. 60. - P. 895-899.

215. Sanchez-Botija, C. African swine fever. New developments / C. Sanchez-Botija // Rev. sci. tech. Off. int. Epiz. - 1982. - Vol.1, № 4. - P. 1065-1094.

216. Sanchez-Botija, C. Reservoirs of ASFV: a study of the ASFV in arthropods by means of haemadsorption / C. Sanchez-Botija // Bull. Off. Int. Epizoot. -1963. - Vol. 60. - P. 895-899.

217. Sanchez-Vizcaino, J.M. African swine fever / J.M. Sanchez-Vizcaino // Diseases of Swine. - 9th ed. - Ames, Iova, 2006. - P. 93-102.

218. Schlafer, D.H. The pathogenesis of African swine fever in pregnant sows, their fetuses and neonates / D.H. Schlafer // Dissertation Abstracts International. - 1983. - Vol. 43, № 6. - P. 1759.

219. Scientific review on African Swine Fever / J. Sanchez-Vizcaano, Beatriz Martinez-Lopez, Marta Martinez-Avilés [et al.] // CFP/EFSA/AHAW/2007/2.

- 2009. - 141 p.

220. Serological and immunohistochemical study of African swine fever in wild boar in Spain / J. Perez, A Fernández, M.A. Sierra [et al.] // Veterinary Record. - 1998. - Vol. 143, № 5. - P. 136-139.

221. Skott, J.R. African swine fever / J.R. Skott // Vet. Rec. - 1965. - Vol. 77. -P. 1421-1427.

222. Skott, J.R. The virus of African swine fever and its transmission / J.R. Skott // Bull. off. internat. epiz. -1965. - Vol. 63, № 5-6. - P. 645-647.

223. Suarez, C. African swine fever virus polyprotein p62 is essential for viral core development / C. Suarez, M. L. Salas, J.M. Rodriguez // J Virol. - 2010.

- Vol. 84, N 1. - P.176-187.

224. Suitability of faeces and tissue samples as a basis for non-invasive sampling for African swine fever in wild boar / H.C. de Carvalho Ferreira, E. Weesendorp, S. Quak [et al.] // Veterinary Microbiology. - 2014. - № 172. -P. 449-454.

225. Survival of African swine fever virus in Excretions from Pigs Experimentally Infected with the Georgia 2007/1 / K. Davies, L. C. Goatley, C. Guinat [et al.] // Isolate. Transbound Emerging. - 2017. - Vol. 64, № 2. -P. 425-431.

226. Systematic analysis of longitudinal serological responses of pigs infected experimentally with African swine fever virus / A.L. Reis, R.M. Parkhouse, A.R. Penedos [et al.]// J. Gen. Virol. - 2007. - № 88 (9). - Р. 2426-2434.

227. The African swine fever virus proteins p54 and p30 are involved in two distinct steps of virus attachment and both contribute to the antibody-mediated protective immune response / P. Gomez-Puertas, F. Rodriguez, J.M. Oviedo [et al.] // Virology. - 1998. - Vol. 243, № 2. - P. 461-471.

228. The cryo-EM structure of African swine fever virus unravels a unique architecture comprising two icosahedral protein capsids and two lipoprotein membranes/ G. Andres, D. Charro, T. Matamoros [et al.]// J Biol Chem. -2020. -Vol. 295. - P.1-12.

229. The non-haemadsorbing African swine fever virus isolate ASFV/NH/P68 provides a model for defining the protective anti-virus immune response / A. Leitao, C. Cartaxeiro, R. Coelho [et al.] // Journal of General Virology. -2001. - Vol. 81, № 1. - P. 513-523.

230. The pathogenesis of African swine fever in the resistant bush pig / C.A. Oura, P.P. Powell, E. Anderson [et al.] // Gen. Virol. - 1998. - Vol. 79, № 6. -P. 1439-1443.

231. Thomson, G.R. The epidemiology of African swine fever: the role of free-living hosts in Africa. Onderstepoort / G.R. Thomson // Vet. Res. - 1985. -Vol. 52, № 3. - P. 201-209.

232. Variable and constant regions in African swine fever virus DNA / R. Blasco, M. Aguero, J.M. Almendral [et al.] // Virol. - 1989. - Vol. 168, № 2. - P. 330338.

233. ViralZone [Электронный ресурс]. - Режим доступа: URL: http://expasv.org/viralzone/all by species/12.htmr.

234. Virological diagnosis of African swine fever—Comparative study of available tests / C.A.L. Oura [et al.] // Virus Research. - 2013. - Vol.133. -Р.150-158.

235. Wambura, P.N. Molecular epidemiology and diagnosis of African swine fever outbreaks in Tanzania / P.N. Wambura, J. Masambu, H. Msami // Veterinary Research Communications. - 2006. - Vol. 30. - P. 667-672.

236. Wardley, R.C. The association of African swine fever virus with blood components of infected pigs / R.C. Wardley, P.J. Wilkinson // Arch. Virol. -1977. Vol. 55. - P. 327-334.

237. Wilkinson, P.J. The distribution of African swine fever virus isolated from Ornithodoros moubata in Zambia / P.J. Wilkinson // Epidemiology and Infection. - 1988. - Vol. 101. - № 3. - P. 547-564.

238. Zsak, L. Regulation of apoptosis in African swine fever virus-inlccted macrophages / L. Zsak, J.G. Neilan // Scientific World Journal. - 2002. - Vol. 2, № 5. - P. 1186 -1195.

8. ПРИЛОЖЕНИЯ

ГНУВНИИВВиМ Россельхозакадемш пос. Вольгинский Владимирская обл.

ПАСПОРТ

ы

ft

1 Наименование возбудителя, его таксономия Вирус африканской чумы свиней сем. Asfarviridae, род Asfivirus

2 Название штамма, его № или условное обозначение Вирулентный штамм Татарстан-Сосновка/2016

3 Кем, когда и от какого животного получен штамм Во ВНИИВВиМ Балышевым В.М., Васильевым А.П., Власовым М.Е., Иматдиновым А.Р. из суспензии селезенки павшей домашней свиньи в д. Сосновка Нурлатского р-на Республики Татарстан

4 История пассирования Во ВНИИВВиМ - 1 пас. на свиньях

5 Из какого учреждения получен данный штамм и дата его получения ВНИИВВиМ - 8 ноября 2016г.

6 Производственный штамм в данное время или музейный Музейный

7 Примененный способ стабилизации и хранения штамма в учреждении Гепаринизированная вируссодержащая кровь. При температуре не выше минус 40°С.

8 Периодичность освежения штамма Один раз в 10 лет. При активности выше 4,5 1 я ГАЕк/гм3 срок храпения продлевается.

9 Серологические свойства У больных животных вызывает образование антител выявляемых в реакции непрямой ИФ. По результатам РЗГАд отнесен к 8-му серотипу.

10 Патогенность для лабораторных, с.-х. животных и КЭ При в/м и контактном инфицировании вызывает гибель свиней с признаками острой формы болезни.

11 Чувствительность культур клеток Репродуцируется в первичных культурах клегок KMC, JIC и перевиваемых - А4С2, АА/Эк с проявлением гемадсорбции, накопление до 6,07,5 и 5,5-6,5 lg ГАЕяуЬм3соответственно.

12 Дополнительные сведения о штамме Вируссодержащая кровь от 8.11.2016г,, по 1,0 см3 в крио пробирках. Не контаминирован бактериальной и грибной микрофлорой. Титр вируса б,75 lg ГАЕ5(/см3.

Штамм освежили и проверили

Зав. Коллекцией микроорганизмов

£

I ((Ufii <■ С" В.м. Балышев А.П. Васильев ■ М.Е.Власов

УЗ \

■Лш *<--,\ вм-Балышев

. ^СХ-*-^ & ¿¿J? ?

ГНУ ВНИИВВиМ Россельхозакадемии пос. Волытшский Владимирская обл.

{ш

/.У

ПАСПОРТ

1 Наименование возбудителя, его таксономия Вирус африканской чумы свиней сем. Asfarviridae, род Asfivirus

2 Название штамма, его № или условное обозначение Вирулентный пггамм Псков-Яшково/201 б

3 Кем, когда и от какого животного получен штамм Во ВНИИВВиМ Балышевым В.М., Васильевым А.П., Иматдиновым А.Р., Власовым М.Е. из селезенки диких кабанов павших в районе д. Яшково, Палкинского р-на, Псковской обл. (07.06.2016г.)

4 История пассирования Во ВНИИВВиМ - 1 пас. па свиньях

5 Из какого учреждения получен данный штамм и дата его получения ВНИИВВиМ - 25 октября 2016г.

6 Производственный штамм в данное время или музейный Музейный

7 Примененный способ стабилизации и хранения штамма в учреждении Гепаринизированная вируссодержащая кровь. При температуре не выше минус 40°С.

8 Периодичность освежения штамма Один раз в 10 лет. При активности выше 4,5 1 а ГАБ?/гм3 срок хранения прод левается.

9 Серологические свойства У больных животных вызывает образование антител выявляемых в реакции непрямой ИФ. По результатам РЗГАд отнесен к 8-му серотипу.

10 Патогенность для лабораторных, с.-х. животных и КЭ При в/м и контактном инфицировании вызывает гибель свиней с признаками острой формы болезни.

11 Чувствительность культур клеток Репродуцируется в первичных культурах клеток KMC, JIC и перевиваемых - А4С2, A4C2/9K с проявлением гемадсорбции, накопление до 6,07,5 и 5,5-6,5 lg ГАЕя/см3 соответственно.

12 Дополнительные сведения о штамме Вируссодержащая кровь от 25.10.2016г., по 1,0 cmj в крио пробирках. Не контаминирован бактериальной и грибной микрофлорой. Титр вируса 6,5 lg ГАЕ^/см3-

Штамм освежили и проверили

В.М. Балышев А.П. Васильев I.E. Власов

Зав. Коллекцией микроорганизмов Jdi'/u^CBM. Балышев

ГНУ ВНИИВВиМ Россельхозакадемии пос. Вольгинский Владимирская обл.

/ А'

Ш> L

3/fV

ПАСПОРТ

1 Наименование возбудителя, его таксономия Вирус африканской чумы свиней сем. Asfarviridae, род Asfivirus

2 Название штамма, его № или условное обозначение Вирулентный штамм Коломна-Песково/2016

3 Кем, когда и от какого животного получен штамм Во ВНИИВВиМ Балышевым В.М., Васильевым А.П., Иматдиновым А.Р., Власовым М.Е. из 10% суспензии селезенки отстрелянного кабана в Песковском лесничестве Коломенского р-на Московской обл.

4 История пассирования Во ВНИИВВиМ - 1 пас. на свиньях

5 Из какого учреждения получен данный штамм и дата его получения ВНИИВВиМ - 02 октября 2016г.

6 Производственный штамм в данное время или музейный Музейный

7 Примененный способ стабилизации и хранения штамма в учреждении Гепаринизированная вируссодержащая кровь. При температуре не выше минус 40°С.

8 Периодичность освежения штамма Один раз в 10 лет. При активности выше 4,5 12 ГАЕч/nvi3 срок хранения продлевается.

9 Серологические свойства У больных животных вызывает образование антител выявляемых в реакции непрямой ИФ. По результатам РЗГАд отнесен к 8-му серотипу.

10 Патогенность для лабораторных, с.-х. животных и КЭ При внутримышечном и контактном инфицировании вызывает гибель свиней с признаками острой формы болезни.

11 Чувствительность культур клеток Репродуцируется в первичных культурах клеток KMC, JTC и перевиваемых - А4С2, A4C2/9K с проявлением гемадсорбции, накопление до 6,07,5 и 5,5-6,5 lg ГАЕ^см3 соответственно.

12 Дополнительные сведения о штамме Вируссодержащая кровь от 02.10.2016г., по 1,0 см3 в крио пробирках. Не контаминирован бактериальной и грибной микрофлорой. Титр вируса 6,5 lg ГАЕ^см3-

Штамм освежили и проверили

^¿¿у В.М. Балышев А.П. Васильев ' * А'.?'. Иматдино.в

' / . ' \

, "'--Л

Зав. Коллекцией микроорганизмов В.М. Балышев

ffl&ficujt А .' \ [ / tffce'/c^cis'

ca-M^r^s тШ-

ФГБНУ ФИЦВиМ пос. Вольгапский Владимирская обл.

ПАСПОРТ

1 Наименование возбудителя, его таксономия Вирус африканской чумы свиней сем. Asfarvшdae, род Азйунцз.

2 Название штамма, его № или условное обозначение Вирулентный штамм Иркутск - 2017.

3 Кем, когда и от какого животного получен штамм В ФГБНУ ФИЦВиМ в 2017 г. Балышевым В.М, Власовым М.Е., Иматдииовым А.Р., из селезенки павшей свиньи, в поселке Хомутово, Иркутского района, Иркутской области

4 История пассирования В ФГБНУ ФИЦВиМ - 1 пас. на свиньях.

5 Из какого учреждения получен данный штамм и дата его получения ФГБНУ ФИЦВиМ-03.04. 2017 г.

6 Производственный штамм в данное время или музейный Музейный

7 11римененный способ стабилизации и хранения штамма в учреждении Гепаринизированная вируссодержащая кровь. При температуре не выше минус 40°С

8 Периодичность освежения штамма Один раз в 10 лет. При активности выше 4,5 1 g ГАЕ^с/см3 срок хранения нродтеваегся.

9 Серологические свойства По результатам РЗГАд отнесен к 8-му серотипу.

10 Патогенностъ для лабораторных, с.-х. животных и КЭ 1ри в/м инфицировании вызывает гибель -виней с признаками острой формы АЧС.

Репродуцируется в первичных кулыурах клеток KMC, ЛС и перевиваемых - А,С2, А)С2/9к с проявлением гемадсорбции, накопление до 6,57,5 и 5,0-6,0 lgTAEst/cM3 соответственно. Нативная вируссодержащая кровь от 03.04.2017 г по 1,0 см в криопробирках. Не контаминирован бактериальной и грибной микрофлорой. Титр вируса 7.51е ГАЕт/гч3_

Штамм освежили и проверили Ъ .М. Балышев

^тЖТ.: Власов

"л vf-'V А.Р. Иматдинов Начальник отдела ГКМ ФИЦВиМ ВЩ. Бал|шев

¿/¿Ьи^л ; I \ v'' ^ J

LfltnHu

ПАСПОРТ

1 Наименование возбудителя, его таксономия Вирус африканской чумы свиней сем. Asfarviridae, род Asfivirus

2 Название штамма, его № или условное обозначение Вирулентный штамм Омск - 2017

3 Кем, когда и от какого животного получен штамм В ФГБНУ ФИЦВиМ в 2017 г. Балышевым В.М., Власовым М.Е., Иматдиновым А.Р. из селезенки павшей домашней свиньи в деревне Верблюжье, Саргатского района, Омской области.

4 История пассирования В ФГБНУ ФИЦВиМ- 1 пас. на свиньях

5 Из какого учреждения получен данный штамм и дата его получения ФГБНУ ФИЦВиМ - 21.07.2017г.

6 Производственный штамм в данное время или музейный Музейный

7 Примененный способ стабилизации и хранения штамма в учреждении Гепаринизированная вируссодержащая кровь. При температуре не выше минус 40°С,

8 Периодичность освежения штамма Один раз в 10 лет. При активности выше 4,5 ' 1К ГАЕ^тч3 срок хранения продлевается.

9 Серологические свойства По результатам РЗГАд отнесен к 8-му серотипу.

10 Патогенность для лабораторных, с.-х. животных и КЭ При в/м инфицировании вызывает гибель свиней с признаками острой формы болезни.

11 Чувствительность культур клеток Репродуцируется в первичных культурах клеток KMC, J1C и перевиваемых - А4С2, АА/Эк с проявлением гемадсорбции, накопление до 6,57,5 и 5,0-6,0 lg ГАЕ^см3 соответственно.

12 Дополнительные сведения о штамме Нативная вируссодержащая кровь от 21.07.2017г., по 1,0 см3 в криопробирках. 11е контаминирован бактериальной и грибной микрофлорой. Титр вируса 7,0 lg ГАЕда'см3-

Штамм освежили и проверили {¡///¿¿¿¿у "В.М. Балышев

. -• -'Я&'М.Е. Власов УС /

ryW^A.P. Иматдинов Начальник отдела ГКМ ФИЦВиМ ур В.М. Балышев

fee/fsMJL Я '.

V

и

¿frf- ¿retype?

А* 5i

ФИШЗиЛЛ

ФГБНУ ФИЦВиМ п. Вольгинский Владимирская область

ПАСПОРТ

1 Наименование возбудителя, его таксономия Вирус африканской чумы свиней сем. Asfarviridae, род Asfivirus

2 Название штамма, его № или условное обозначение Вирулентный штамм Владимир - Вязники/2017

3 Кем, когда и от какого животного получен штамм Во ФГБНУ ФИЦВиМ в 2017 г.Малоголовкиным A.C., Бурмакиной Г.С., Моргуновым С.Ю., Власовым М.Е., Титовым И.А. из селезенки отстрелянного кабана во Владимирской обл. Вязнюсовского р-на, окрестности поселка Степанцева

4 История пассирования В ФГБНУ ФИЦВиМ- 1 пас. на свиньях

5 Из какого учреждения получен данный штамм и дата его получения ФГБНУ ФИЦВиМ -24.08.2017г.

6 Производственный штамм в данное время или музейный Музейный

7 Примененный способ стабилизации и хранения штамма в учреждении Гепаринизированная вируссодержащая кровь. При температуре не выше минус 40°С.

8 Периодичность освежения штамма Один раз в 10 лет. При активности выше 4,5 1еГАЕУгм3 срок хранения продлевается.

9 Серологические свойства По результатам РЗГАд отнесен к 8-му серотипу.

10 Патогенность для лабораторных, с.-х. животных и КЭ При в/м инфицировании вызывает гибель свиней с признаками острой формы болезни.

11 Чувствительность культур клеток Репродуцируется в первичных культурах клеток KMC, J1C с проявлением гемадсорбции, накопление до 6,5-7,5 и 5,0-6,0 lg ГАЕ^/см3 соответственно.

12 Дополнительные сведения о штамме Нативная вируссодержащая кровь от 24.08. 2017г., по 1,0 см3 в криопробирках. Не коншминирован бактериальной и грибной микрофлорой. Титр вируса 7,0 IgTAEsc/cM3, Генотип П (B646L). TRS-KI73RT329L)

Штамм освежили и проверили

Начальник отдела ГКМ ФИЦВиМ

¿A.C. Малоголовкин

тДП

. х Г.С. Бурмакина С.Ю. Моргунов

*у Л

Е. Власов Титов, у' В.М. Балышев

сwfefib/u. r-Ptm щ<: . Щг C7? -ь о и & iu а-

Федеральное государственное бюджетное научное учреждение федеральный исследовательский центр вирусологии и микробиологии (ФГБНУ ФИЦВиМ) 601125, Владимирская область, п. Вольгинский, ул. Академика Бакулова, стр. 1

ПАСПОРТ

1 Наименование микроорганизма, его таксономия Вирус африканской чумы свиней сем. Asfarviridae, род Asfivirus

2 Название штамма, его № или условное обозначение Приморский 8954/19 usd.J'.^l -Lf,f