Жидкостная цитология в диагностике опухолей тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 14.01.12, кандидат наук Тугулукова, Алевтина Алексеевна

• Тугулукова, Алевтина Алексеевна
• кандидат наук
• 2019

Оглавление диссертации кандидат наук Тугулукова, Алевтина Алексеевна

ОГЛАВЛЕНИЕ

СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ 3

ВВЕДЕНИЕ 4

ГЛАВА I. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ 10

1.1.История и современные представления о жидкостной цитологии 10

1.2. Системы в жидкостной цитологии 15

1.3. Традиционное цитологическое исследование 19

1.4.Сравнение традиционного и жидкостного методов 20 ГЛАВА II. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ 32 ГЛАВА III. РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЯ 44

3.1 Жидкостные технологии в исследовании жидкостей серозных полостей. 44

3.2 Жидкостные технологии в диагностике опухолевых и

неопухолевых процессов легкого. 61

3.3 Сравнение жидкостной и традиционной цитологии в диагностике заболеваний щитовидной железы. 72

3.4 Жидкостная цитология в диагностике заболеваний слюнных желез. 86

3.5 Жидкостные технологии в исследовании тонкоигольных аспирационных биопсий лимфатических узлов. 97

3.6 Жидкостная цитология в исследовании патологических процессов молочных желез. 115 ЗАКЛЮЧЕНИЕ 130 ВЫВОДЫ 141 ПРАКТИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ 143 СПИСОК ИСПОЛЬЗУЕМОЙ ЛИТЕРАТУРЫ 144

СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ

ТП - традиционный цитологический препарат

ЖЦ - жидкостная цитология

ИЦХ - иммуноцитохимическое исследование

CS - жидкостная технология Cytospin 4

EP - жидкостная технология E-Prep

SP - жидкостная технология SurePath

CRR - консервирующий раствор CytoRich Red

TP - метод жидкостной цитологии ThinPrep

MALT-L - лимфома, ассоциированная со слизистыми оболочками ЭМА - эпителиальный мембранный антиген

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Жидкостная цитология в диагностике опухолей»

ВВЕДЕНИЕ Актуальность проблемы

Повышение качества цитологической диагностики опухолевых заболеваний в настоящее время является важной задачей. Несмотря на то, что традиционное цитологическое исследование успешно и широко применяется более 7 десятилетий, возникла необходимость в разработке новых методов цитологической диагностики, которые нацелены на улучшение качества и адекватности цитологических препаратов, на повышение чувствительности исследований и улучшение продуктивности лабораторий. Использование жидкостных технологий позволяет получать цитологические препараты более высокого качества, транспортировать и архивировать материал, применять морфометрию и современные методы онкоморфологии, такие как ИЦХ и молекулярно-генетические исследования [3, 7, 14, 15].

ЖЦ занимает важное место наряду с традиционным методом исследования, дополняя его и улучшая качество цитологической диагностики. Метод ЖЦ в диагностике опухолей различных локализаций позволяет получать тонкослойные цитологические препараты со стандартной областью просмотра. Применение различных вариантов жидкостных технологий - цитоцентрифугирования, мембранной фильтрации, клеточного обогащения в градиенте плотности, совершенствует преаналитический и аналитический этапы приготовления цитологических препаратов [15, 23].

Анализ современного состояния эффективности цитологической диагностики злокачественных новообразований по ряду литературных источников показывает высокую разрешающую способность традиционного цитологического исследования. При раке легкого, желудка, пищевода, молочной и щитовидной желез, ЛОР-органов, мочевого пузыря, прямой кишки, шейки матки, совпадение цитологических заключений с результатами гистологического исследования, достигают 79-98 %. по данным разных авторов [18].

Практическая ценность традиционных цитологических исследований определяется высокой достоверностью и возможностью получить информацию вне зависимости от характера и степени распространённости опухолевого процесса, в том числе и на доклинической стадии [18].

Важным условием для точной оценки морфологии клеток при цитологическом исследовании является высокое качество и адекватность мазка. Качественный результат цитологической диагностики зависит от правильного получения материала, фиксации и окрашивания, методики просмотра препаратов, опыта цитолога, правильности интерпретации, правильной формулировки диагноза, использования дополнительных и современных методов исследования [5, 15, 23]. Совместное применение ЖЦ и традиционного метода исследования повышает эффективность цитологической диагностики. Использование метода ЖЦ позволяют проводить ИЦХ и молекулярно-генетические исследования [5, 26, 28, 32, 33, 36, 47, 71]. ЖЦ постоянно совершенствуется, появляются новые автоматизированные системы приготовления препаратов, изменяется состав фиксирующих растворов, обеспечивающих сохранность клеточного материала [29, 34, 53, 56, 65, 69, 103].

Сравнение диагностической эффективности жидкостных цитологических препаратов и ТП различных локализаций показало улучшение качества цитологической диагностики за счет снижения числа неинформативного материала, более чистого фона и лучшей визуализации клеточного материала. В то же время при различных способах обработки материала методом жидкостной цитологии возникают трудности, связанные с правильной трактовкой цитологической картины. По данным зарубежной литературы, новая методика приготовления стандартизированных цитологических микропрепаратов -жидкостная цитология - является наиболее перспективной, хотя мнение различных исследователей о целесообразности использования нового метода неоднозначно [27, 28, 35, 37, 41, 46, 49, 68, 74, 76, 81, 94].

По мнению одних авторов, препараты, приготовленные методом жидкостной цитологии, можно анализировать самостоятельно, по мнению других

- только совместно с традиционными мазками, так как в жидкостных препаратах отсутствует часть диагностически важных признаков, таких как значительное снижение или отсутствие фона, изменение размеров и формы клеток и клеточных структур [54, 73, 79, 91, 97].

Морфологические особенности и трудности, с которыми может столкнуться цитолог в оценке жидкостных препаратов, в литературе описаны недостаточно. В связи с этим становится актуальной разработка цитологических критериев различных опухолевых процессов на жидкостных цитологических препаратах, сравнение эффективности жидкостной и традиционной цитологии, определение возможности проведения ИЦХ. Морфологические критерии препаратов ЖЦ в литературе описаны недостаточно, поэтому пока не будет накоплен опыт, обязательно параллельно должен анализироваться традиционный цитологический препарат. Не определена эффективность жидкостных цитологических препаратов для опухолей различных локализаций. Не описаны возможности различных жидкостных методик для применения ИЦХ и молекулярно-генетических методов.

Успешное применение ЖЦ с методами уточняющей диагностики позволит расширить возможности использования цитологического метода диагностики в клинической практике. В связи с вышесказанным в данной работе будут рассмотрены актуальные вопросы, касающиеся внедрения нового метода жидкостной цитологии. Будут разработаны цитологические критерии различных опухолевых процессов на препаратах, приготовленных жидкостным методом, сравнение эффективности жидкостной и традиционной цитологии и возможности проведения ИЦХ.

Цель исследования

Повышение эффективности цитологической диагностики опухолей различных локализаций с использованием метода жидкостной цитологии.

Задачи исследования 1. Сравнить морфологическую характеристику различных опухолевых процессов при использовании метода жидкостной цитологии и традиционного цитологического метода исследования.

2. Выделить особенности морфологической картины при различных способах приготовления препаратов методом жидкостной цитологии.

3. Проанализировать возможности и ограничения метода жидкостной цитологии в зависимости от способа приготовления материала и локализации патологического процесса.

4. Провести сравнительный анализ эффективности жидкостной и традиционной цитологии в диагностике опухолей различных локализаций.

5. Оценить целесообразность проведения и особенности иммуноцитохимических реакций на препаратах, приготовленных методом жидкостной цитологии.

Научная новизна

Впервые на большом материале сопоставлены данные морфологической картины жидкостных и традиционных цитологических препаратов у пациентов с опухолями различных локализаций.

Показана диагностическая значимость различных методов жидкостной цитологии в морфологической диагностике в зависимости от локализации опухоли.

Разработаны цитологические дифференциально-диагностические признаки опухолей различных локализаций на препаратах жидкостной цитологии. Проведена оценка особенностей иммуноцитохимических реакций на цитологических препаратах, полученных с помощью различных жидкостных технологий.

Проведен сравнительный анализ эффективности жидкостной и традиционной цитологической диагностики.

Продемонстрирована эффективность комбинированного применения жидкостного и традиционного цитологических методов диагностики, выявлены преимущества совместного использования данных методов, что позволяет преодолеть ограничения каждого из них в отдельности, и, в целом, повысить эффективность цитологического метода исследования.

Практическая значимость

На основании полученных данных обоснована необходимость комбинированного применения жидкостного и традиционного методов клинической цитологии с целью повышения эффективности цитологической диагностики опухолевых процессов различных локализаций.

Проведенное сопоставление данных морфологической картины жидкостных и традиционных цитологических препаратов и разработка цитологических дифференциально-диагностические признаков для опухолей различных локализаций на препаратах жидкостной цитологии направлены на то, чтобы собранные данные помогли облегчить работу врача-цитолога в рутинной практике.

Полученные данные позволяют разработать рекомендации для практического здравоохранения о возможностях использования жидкостного цитологического метода в диагностике опухолей различных локализаций. Диссертационная работа позволит увеличить эффективность цитологической диагностики в клинической практике.

Основные положения, выносимые на защиту

1. Использование жидкостных технологий позволяет значительно расширить возможности цитологической диагностики опухолей, получить стандартизированные цитологические препараты высокого качества, это важно для более легкой визуализации материала, что облегчает и ускоряет работу врача-цитолога, позволяет транспортировать и архивировать материал, применить морфометрию и современные методы онкоморфологии, такие как иммуноцитохимические и молекулярно-генетические исследования.

2. При применении жидкостной цитологии отмечается улучшение качества цитологической диагностики за счет снижения числа неинформативного материала, более чистого фона и лучшей визуализации клеточного материала. В то же время, метод жидкостной цитологии в сравнении с традиционным, имеет свои морфологические особенности, которые следует знать и учитывать, чтобы избежать ошибочной трактовки цитологической картины.

3. Морфологические особенности и трудности, с которыми может столкнуться цитолог в оценке жидкостных препаратов, в литературе описаны недостаточно. В связи с этим становится актуальной разработка цитологических критериев различных опухолевых процессов на жидкостных цитологических препаратах.

4. Важно оценить целесообразность проведения и особенности иммуноцитохимических реакций на препаратах, приготовленных с использованием различных жидкостных технологий.

5. Совместное применение жидкостного и традиционного цитологических методов диагностики позволяет преодолеть ограничения при применении каждого из методов в отдельности и повысить эффективность цитологического метода исследования в диагностике опухолей различных локализаций.

Внедрение результатов исследования в практику

Результаты проведенного научного исследования внедрены в практическую работу отделения онкоцитологии МНИОИ имени П.А. Герцена - филиала ФГБУ «НМИЦ радиологии» Минздрава России. Полученные в ходе научного исследования данные, помогут внедрению метода жидкостной цитологии в России.

Апробация

Апробация работы проведена на межотделенческой научной конференции МНИОИ им П.А. Герцена 21 декабря 2017 года.

По теме диссертации опубликовано 11 печатных работ, из них 4 статьи в журналах, рецензируемых ВАК РФ.

Обьем и структура диссертации Диссертация изложена на 157 печатных страницах, иллюстрирована 137 рисунками и 11 таблицами, состоит из введения, трех основных глав, выводов, практических рекомендаций, списка сокращений, приложения и списка литературы, включающего 24 отечественных и 97 зарубежных источников.

ГЛАВА I.

ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ 1.1 История и современные представления о жидкостной цитологии.

В настоящее время в связи с активным развитием и использованием в медицине новых технологий возникает необходимость в совершенствовании традиционно сложившихся методов. Оптимизация качества и развитие современной цитологии послужило толчком к созданию новой технологии приготовления цитологических препаратов - жидкостной цитологии (ЖЦ). Метод ЖЦ - это инновационная технология приготовления цитологических препаратов из жидкой клеточной суспензии, разработанная с целью улучшения качества и стандартизации методики цитологического исследования [3, 6, 7, 10, 11, 15, 44, 61].

Процесс приготовления цитологических препаратов должен обеспечивать пригодность взятых образцов для диагностики и позволять наглядно демонстрировать интересующие нас клетки. Клетки должны быть сохранными, оптимально распределенными по стеклу, зафиксированными и окрашенными так, чтобы были видны хроматин и различия между клетками [44].

Использование жидкостной цитологии позволяет усовершенствовать преаналитический этап работы - длительно хранить, транспортировать материал из отдаленных лабораторий в централизованные, создавать архив и получать тонкослойные цитологические препараты со стандартной областью просмотра. Качественные, стандартизованные цитологические препараты улучшают аналитический этап цитологического исследования, ускоряя и облегчая работу цитолога. Стабилизирующий раствор позволяет сохранить клеточную суспензию для дальнейших контрольных и повторных исследований, в том числе для ИЦХ и молекулярно-генетических [5, 8, 9, 10, 15, 22, 31, 32, 35, 46, 58].

В 70-е годы прошлого века Германия профинансировала два научно-исследовательских проекта, основанных на компьютерном цервикальном скрининге: LEYTAS (Leyden Texture Analysis System) и FAZYTAN

(автоматизированная система визуальной оценки цитологических препаратов). При проведении этих исследований выяснилось, что для оценки клеточного материала с помощью автоматизированных технологий, цитологические препараты должны отвечать определенным критериям: изолированное, в одном оптическом поле размещение клеток в препарате, высокая контрастность между ядрами, цитоплазмой и фоном, четкий и чистый фон. Традиционный цитологический мазок не соответствовал этим требованиям. Проблема была решена благодаря получению тонкослойных цитологических препаратов путем сепарации и очищения клеток. Образец помещали в раствор, перемешивали для приготовления суспензии клеток, из которой клеточный материал с помощью специальных технологий наносили тонким слоем на стекло для дальнейшего микроскопического исследования. В результате появилась жидкостная цитология (liquid based cytology, LBC) [31].

Таблица №1. Цитологические препараты для использования машинами.

Требование Техническое решение

Изолированное размещение клеток Изолированное размещение клеток

Размещение в одной оптической плоскости (монослое) Монодисперсия

Высокая контрастность между ядром, цитоплазмой и фоном Выделение клеток и их очищение

Чистый фон препарата

Научные исследования по разработке и внедрению в практику автоматизированного цитологического анализа были актуальны и в нашей стране. В начале 70-х годов прошлого века проводятся комплексные исследования по ряду проблем, в том числе - автоматизации процессов диагностики злокачественных образований. 70-е годы ознаменованы разработкой и внедрением в практику методики взятия материала, приготовления и окраски цитологических препаратов, пригодных для автоматизированного исследования в

телевизионном анализаторе структур изображения - ТАСИ, созданном в Латвийской ССР. Пригодность препаратов, взятых путем смыва, приготовленных по методу суспензии на предметном стекле и окрашенных по способу Лейшмана в устройстве ТАСИ, оценивались по следующим показателям:

1) минимальная затрата времени для взятия и приготовления препаратов;

2) количество раздельно расположенных клеток;

3) соответствие спектра красителей спектральной характеристике видикона, примененного в автоматизированном устройстве ТАСИ, установленное при исследовании препаратов в фотоэлектрическом микроколориметре и цитоспектрофотометре;

4) степень выражения контраста фон - цитоплазма - ядро в препарате, определенная по 5-ти бальной системе;

5) возможность микроскопического исследования без дополнительного окрашивания [20].

Саккоманно предложил жидкостное приготовление цитологических препаратов в 1963 году (за 33 года до того как стала употребляться соответствующая терминология), когда он гомогенезировал законсервированный образец мокроты в смесителе, отцентрифугировал полученную суспезию, поместил несколько капель перемешанного клеточного концентрата на стекло и высушил его на воздухе. В качестве консервирующего раствора он использовал 50% этанол, 50% изопропанол в смеси 2% Карбоваксом 1540. В дальнейшем для приготовления препаратов ручным жидкостным методом стала использоваться модернизированная техника Саккоманно, которая требует только наличия центрифуги и вортекс-миксера [44].

Ручной жидкостный метод дает возможность получить адекватные в оценке жидкостные цитологические препараты. В процессе приготовления цитологических препаратов, клеточные элементы подвергаются минимальному воздействию физических факторов, это позволяет получить хорошего качества, не измененные по форме и объему клетки как плоского, так и железистого эпителия. Благодаря низкой стоимости, ручной метод жидкостной цитологии может стать

полезной альтернативой автоматизированным системам, в тех лабораториях, где установить автоматизированные системы не представляется возможным [19, 25, 28, 48, 77, 85, 89].

Впервые автоматизированная жидкостная технология для приготовления гинекологических мазков была утверждена для использования в США (Foodand Drug Administration, FDA) в 1996 г. для системы ThinPrep2000™; Hologic Co., USA, а в 1999 г. для системы SurePath™; TriPath (Becton Dickinson, USA). Hologic, Inc. ThinPrep Processor, Model TP 2000. PMA Number P950039. Decision Date: 20 May 1996.; Hologic, Inc. ThinPrep Processor, Model TP 2000. PMA Number P950039, Supplement 002. Decision Date: 25 Feb 1997.; TriPath Imaging. AutoCyte Prep System. PMA Number P970018. Decision date: 17 Jun 1999. В дальнейшем, метод жидкостной цитологии хорошо зарекомендовал себя и успешно используется не только в гинекологическом скрининге, но и в диагностике опухолей различных локализаций [1, 12, 21, 22, 30, 40, 46, 50, 53, 54, 75, 80, 91, 97, 100].

Термин «жидкостное приготовление препаратов» (liquid-based preparation) был введен в 1998 году. «Были предложены различные термины для описания методологии промывки образцов в консервирующих жидкостях, которые впоследствии транспортируют в лабораторию, затем (как правило) частично гомогенизируют и готовят тонкослойный препарат. Монослойный препарат -наилучший для микроскопии, но большинство препаратов не являются истинно монослойными. Тонкослойные препараты - более подходящее определение, чем монослойные, но некоторые традиционные мазки также могут быть тонкослойными. Поэтому был предложен термин «жидкостное приготовление препаратов», который исключает путаницу, связанную с применением коммерческих названий [44].

Жидкостная цитология постоянно совершенствуется, появляются новые, полностью автоматизированные системы приготовления препаратов, в которых используются фиксирующие растворы с разным составом, обеспечивающих сохранность клеточного материала [17, 69, 82, 93, 99, 102, 103, 115].

Правильная интерпретация любого исследуемого цитологического препарата зависит от качества приготовления мазка. Процедура забора образца для всех автоматизированных технологий практически одинакова. Выбор метода фиксации определяется видом материала. После забора клеточного материала ее рабочая часть отделяется щеточкой и помещается в контейнер с жидкостью. Состав жидкостей запатентован и является буферной средой с низким содержанием спирта (метанола), что соответствует требованиям к транспортной и фиксирующей среде клеток [17, 38, 44]. Фиксаторы модифицируют биоматериалы, сохраняют их целостность при последующих стадиях обработки. Пробы, полученные при использовании ЖЦ, могут быть двух типов: с фиксированным и нефиксированным клеточным материалом. Для получения проб используют специальные многокомпонентные растворы, в состав которых входят: фиксирующие спиртовые смеси 30-50% (этанол, метанол, изопропанол), которые также способствуют денатурации внеклеточных белков; муколитические вещества, разрушающие слизь; 2-3% растворы кетонов и альдегидов (фиксаторы клеточных структур); водно-солевые буферные растворы; полиолы и детергенты (дезагреганты и стабилизаторы жидких суспензий) [15, 44, 116].

Пробы с нефиксированным клеточным материалом могут быть окрашены по Романовскому, при необходимости использования этой окраски в цитологической диагностике патологических процессов [56].

Таблица №2.Преимущества и недостатки метода жидкостной цитологии -автоматизированные технологии.

Преимущества Недостатки

Стандартизированная подготовка препарата Более высокие требования к оборудованию и материально-техническому обеспечению

Снижение количества неудовлетворительных препаратов (почти все мазки могут быть Цитологические препараты, приготовленные методом жидкостной цитологии, отличаются от

исследованы) традиционных

Клетки обрабатываются осторожно с целью предупреждения повреждений, деформаций Врачам-цитологам необходима соответствующая подготовка

Возможность использования биологического материала из консервирующей жидкости для других исследований: цитометрии, иммуноцитохимии, молекулярной диагностики

Клетки на стекле распределяются монослоем

1.2 Системы жидкостной цитологии.

В настоящее время разработаны различные системы жидкостного приготовления тонкослойных цитологических препаратов, работа которых основана на разных физических принципах, таких как цитоцентрифугирование (Cytospin, PapSpin), двойная мембранная фильтрация (E-Prep), естественная седиментация и центрифугирование в градиенте плотности (SurePath). Методы ЖЦ отличаются друг от друга степенью автоматизации - ручной способ, полуавтоматический и автоматический.

Метод приготовления жидкостных препаратов с использованием системы CytoSpin. Цитоцентрифугирование, к которому относят системы CytoSpin (Thermo Shandon Inc), Cyto-System (Andreas Hettich GmbH), Cyto-Tek® ( Sakura Finetek), Cytopro (Wescor Inc., США) и аналогичные методы - это технология, при которой концентрация и уплощение клеток на стекле происходит под действием центробежной силы, то есть, перенос клеток из суспензии на поверхность стекла осуществляется цитоцентрифугированием, при этом получают тонкослойные высококачественные препараты. Монослойные препараты, полученные с использованием данного метода, сохраняют все типы

клеток используемой суспензии, сохранность клеток и структурного компонента. Универсальные, разной производительности лабораторные цитоцентрифуги при помощи специализированных роторов обеспечивают седиментацию клеток из жидких суспензий на покровные стекла (без потери клеток) для быстрого получения высококачественных образцов методом ЖЦ и достижения максимальной защиты оператора. Цитоцентрифугирование характеризуется простотой, удобством в работе, минимальными временными затратами, является гибкой системой, легко адаптируемой к конкретным задачам цитологического исследования. Специальная разновидность контейнеров для образцов позволяет получить жидкостные цитологические препараты с вариабельным диаметром окошка от 5 до 22 мм., работать с живыми клетками, использовать любые способы фиксации (любых фирм производителей разных составов, в том числе и самостоятельно приготовленную «среду накопления»), сохранить клеточный и структурный компоненты, удалять, мешающие микроскопии факторы, избежать потери диагностически значимых клеток, позволяет на одном слайде создавать от 1 до 8 зон для исследования, регулировать влажность препарата при помощи специальных фильтр-вставок, применять различные методики окраски (азур-эозином - различными модификациями метода Романовского, методом Папаниколау, проводить ИЦХ и молекулярно-генетические исследования. СБ-препараты готовятся достаточно быстро - в течение 5 минут можно приготовить 12 препаратов. Благодаря скорости Су1оврт4 удобен в срочной интраоперационной диагностике. В зависимости от количества и состава клеточной суспензии для каждого образца можно подобрать необходимый размер «окошка». Например, маленький - при небольшом количестве материала, большой при исследовании экссудатов, особенно если немногочисленные опухолевые комплексы расположены среди элементов воспаления и клеток мезотелия. Все это обеспечивает индивидуальный подход к образцу. Результаты исследований жидкостных препаратов, приготовленных методом

цитоцентрифугирования на цитоцентрифуге Cytospin4 показали, что морфологических изменений в строении клеток или их структурных образований

после пребывания в специальной «среде накопления» (реополиглюкин, среда Хенкса, альбумин), разработанной для иммуноцитохимии, не наблюдается. Применение «среды накопления» не позволяет полностью избавиться от фона (эритроцитов, слизи, элементов воспаления). Надо заметить, что система Citospin4 обеспечивает высокое качество мазков для приготовления ИЦХ реакций, но не гарантирует достаточного количества клеточного материала в мазке. Для адекватного количественного ИЦХ анализа требуется как минимум 250-300 клеток в препарате. Хороший пунктат - это главное условие полноценного как цитологического, так и иммуноцитохимического исследования. Клеточность в 10% цитоспиновых препаратов может быть низкой, не превышать 50 -80 клеток на одном стекле, что не зависит от способа приготовления, а объясняется плохим взятием материала. При анализе рутинных цитологических мазков удовлетворительное качество препаратов отмечается в 87% случаев, тогда как в 13% качество мазков не позволяет провести иммуноцитохимическое исследование. Подобные результаты подтверждаются целым рядом научных работ , где говорится о высоком качестве цитоспиновых препаратов и их высокой информативности. Технологии цитоцентрифугирования демонстрируют все преимущества жидкостной цитологии [5, 15, 44].

Список литературы диссертационного исследования кандидат наук Тугулукова, Алевтина Алексеевна, 2019 год

СПИСОК ИСПОЛЬЗУЕМОЙ ЛИТЕРАТУРЫ

1. Батороев Ю.К., Кислицина Л.Ю., Самарская О.С., Сосова Л.Л., Комиссарова Э.К., Галиакберова О.Н., Лисичникова И.В. Результаты жидкостной цитологии патологических изменений эндометрия // Новости клинической цитологии России. - 2017. Т.21, №1-2.- С. 22-23.

2. Березкина И.С., Саприна Т.В., Зима А.П., Исаева А.В., Латыпова В.Н., Мухамедов М.Р., Базилевич Л.Р., Попов О.С., Касоян К.Т., Брынова О.В., Бразовская Н.Г. Возможности традиционной и жидкостной цитологии в сочетании с иммуноцитохимической детекцией некоторых молекулярных маркеров в дооперационной диагностике высокодифференцированного рака щитовидной железы // Клиническая и экспериментальная тиреодология. - 2016. -T.12, №1.- C. 38-45.

3. Богатырев В.Н. Меньшиков В.В. Стандартизация технологий в клинической цитологии. Методические материалы. М.: Лабора. 2005. С. 24.

4. Брынова О.В., Касоян К.Т., Шабалова И. П., Зима А.П., Исаева А.В., Саприна Т.В. Метод жидкостной цитологии в диагностике заболеваний щитовидной железы // Клиническая лабораторная диагностика.- 2016. - Т.61, №4.-С. 225-228.

5. Волченко Н.Н., Савостикова М.В. Атлас цитологической и иммуноцитохимической диагностики опухолей. М.: «Репроцентр М», 2010.- 236с.

6. Волченко Н.Н., Славнова Е.Н., Тугулукова А.А. Сравнительное исследование различных вариантов приготовления жидкостных препаратов // Новости клинической цитологии России. - 2012. - №1-2. - С. 37-38.

7. Волченко Н.Н., Славнова Е.Н., Тугулукова А.А. Применение различных вариантов жидкостных технологий в цитологии. // Клиническая лабораторная диагностика. - 2013. - №6.- С. 23-40.

8. Волченко Н.Н., Славнова Е.Н., Тугулукова А.А. Жидкостная цитология в онкологии // Онкология. Журнал имени П.А. Герцена.- 2013. - Т.1, №5. - С.26-31.

9. Волченко Н.Н., Славнова Е.Н., Тугулукова А.А. Сравнительный анализ различных вариантов приготовления жидкостных препаратов // Новости клинической цитологии России. - 2013. - Т.17, № 1-2 - С. 3-8.

10. Волченко Н.Н., Славнова Е.Н., Тугулукова А.А. Метод жидкостной цитологии в диагностике опухолей легких // Справочник заведующего КДЛ. -2014. - №2. - С. 37-44.

11. Волченко Н.Н.,Славнова Е.Н.,Тугулукова А.А. Жидкостная цитология в диагностике опухолей. М.:ФГБУ «МНИОИ им.П.А.Герцена» Минздрава России. 2014. - 18с.

12. Волченко Н.Н., Борисова О.В. Диагностика злокачественных опухолей по серозным экссудатам. - М.: ГЭОТАР-Медиа, 2017. - 144 с.: ил.

13. Волченко Н.Н., Славнова Е.Н. Современная цитологическая диагностика заболеваний молочной железы. - Москва: Издательство МГТУ им. Н.Э. Баумана, 2014. - 198 с.: ил.

14. Клиническая лабораторная диагностика. Национальное руководство Под ред. Долгова, В. В. Меньшикова. - М.:ГЭОТАР-Медиа, 2012. - 928с.

15. Крюкова В.А. Преаналитические технологии в современных цитологических исследованиях // Справочник заведующего КДЛ. - 2008. - № 9. -С.11-16.

16. Костерина Н.Е., Гринберг Л.М., Николаева А.М. Методы жидкостной цитологии и цитоблок в морфологической диагностике опухолей легких. // Патоморфология. - 2016. - №3. - С.48-53.

17. Назарова И.В., Родионова О.М, Волков М.В., Богатырев В.Н. Первый опыт использования аппарата E PREP для жидкостной цитологии в России // Новости клинической цитологии России. - 2012. - Т. 16, №1-2. - С.3-5.

18. Ошибки в клинической онкологии : Руководство. для врачей. Под ред. Чиссова В.И., Трахтенберга А. Х. - М. : ГЭОТАР-Медиа, 2009. - 768 с.

19. Родионова О. М., Назарова И.В., Тихонов Я.Н. Жидкостная технология CLEAR PREP в цитологической диагностике заболеваний шейки матки. // Новости клинической цитологии России. - 2017. - Т.21, №1-2. - С. 75-76.

20. Рошонок М. П. Цитологический метод при массовых гинекологических профилактических осмотрах с применением автоматизированного устройства. ТАСИ. дис. ... канд. мед. наук. - Рига, 1979. - 22 с.

21. Сушинская Т.В., Волченко Н.Н., Доброхотова Ю.Э., Мельникова В.Ю., Петров А.Н., Тугулукова А.А., Вознесенский В.И., Поминальная В.М. Эффективность цитологической диагностики цервикальной интраэпителиальной неоплазии и рака шейки матки в зависимости от способа взятия материала // Онкогинекология. - 2017.- №3. - С. 51-59.

22. Шабалова И.П., Касоян К.Т. Цитология жидкостная и традиционная при заболеваниях шейки матки. Цитологический атлас. 4-е издание исправленное и дополненное. - М.: Тверь: ООО «Издательство «Триада», 2016. - 320с.:1122 ил.

23. Шабалова И.П., Касоян К.Т., Савостикова М. В. Жидкостная цитология в клинической практике (лекция) // Клиническая лабораторная диагностика. - 2011. - № 12. - С. 25-35.

24. Шейка матки, влагалище, вульва. Физиология, патология, кольпоскопия, эстетическая коррекция: руководство для практикующих врачей. Под. Ред. Роговской С.И., Липовой Е.В. - М.: Издательство журнала Status Praesens. 2014. -832с.

25. Alves V.A., Bibbo M., Schmitt F.C., Milanezi F., Longatto Filho A. Comparison of manual and automated methods of liquid-based cytology. A morphologic study // Acta Cytologica. - 2004. - №48(2). - P.187-193.

26. Apostolidou S., Hadwin R., Burnell M., Jones A., Baff D., Pyndiah N., Mould T., Jacobs I.J., Beddows S., Kocjan G., Widschwendter M. DNA methylation analysis in liquid-based cytology for cervical cancer screening // International Journal of Cancer. -2009. - №125(12). - P. 2995-3002.

27. Arbyn M., Bergeron C., Klinkhamer P., Martin-Hirsch P., Siebers A.G., Bulten J. Liquid compared with conventional cervical cytology: a systematic review and metaanalysis // Obstet Gynecol. - 2008. - №111(1). -P.167-177.

28. Aral P. Utility of manual liquid-based cytology and conventional smears in the evaluation of various fine-needle aspiration samples // J Cytol. - 2016. - № 33(4). -P.177-181.

29. Biscotti C.V., Shorie J.H., Gramlich T.L., Easley K.A: ThinPrep versus conventional smear cytologic preparations in analyzing fine-needle aspiration specimens from palpable breast masses // Diagn Cytopathol. - 1999. -№ 21. -P.137-141.

30. Bizzarro T., Martini M., Capodimonti S., Straccia P., Lombardi C.P., Pontecorvi A., Larocca L.M., Rossi E.D. Young investigator challenge: the morphologic analysis of noninvasive follicular thyroid neoplasm with papillary-like nuclear features on liquid-based cytology. Some insights into their identification // Cancer Cytopathol.-2016. - №124(10). - P.699-710.

31. Bollmann R: Liquid-based cytology for risk-adapted cervical screening // Gynakol Geburtsmed Gynakol Endokrinol. - 2008.- 4 (2). - P. 164-180.

32. Burendorf L. Multiprobe fluorescence in situ Hybridization (UroVysion) for the detection of urothelial carcinoma - FISHing for the right catch // Acta Cytologica. -2011. - №55. -P. 113-119.

33. Chang H., Lee H., Yoon S.O., Kim H., Kim A., Kim B.H. BRAF(V600E) mutation analysis of liquid-based preparation-processed fine needle aspiration sample improves the diagnostic rate of papillary thyroid carcinoma // Hum Pathol. - 2012. № 43(1). - P.89-95.

34. Chong Y., Baek K.H., Kim J.Y., Kim T.J., Lee E.J., Kang C.S. Comparison of EasyPrep(®) and SurePath(®) in thyroid fine-needle aspiration // Diagn Cytopathol. -2016. - №44(4). - P.283-290.

35. Chong Y., Ji S.J., Kang C.S., Lee E.J. Can liquid-based preparation substitute for conventional smear in thyroid fine-needle aspiration? A systematic review based on meta-analysis // Endocr Connect. - 2017.- №6(8). - P.817-829.

36. Cox J.T. Liquid-based cytology: evaluation of effectiveness, cost-effectiveness, and application to present practice // J Natl Compr Canc Netw. - 2004. -№ 2(6). -P.597-611.

37. Dadhich H., Toi P.C., Siddaraju N., Sevvanthi K. A comparative analysis of conventional cytopreparatory and liquid based cytological techniques (Sure Path) in evaluation of serous effusion fluids // Diagn Cytopathol. - 2016. - №44(11). - P.874-879.

38. Davis-Devine S., Day S.J., Freund G.G. New red blood cell lysing fixative for use in fine needle aspiration and fluid cytology // Acta Cytol.- 2003. - №47(4). - P.630-636.

39. Dey P., Luthra U.K., George G., Zuhairy F., George S.S., Haji B.I: Comparison of ThinPrep and conventional preparations on fine needle aspiration cytology material // Acta Cytologica. - 2000. - № 44. - P.46-50.

40. Fan Y.B., Wang Q.S., Ye L., Wang T.Y., Wu G.P. Clinical application of the SurePath liquid-based Pap test in cytological screening of bronchial brushing for the diagnosis of lung cancer // Cytotechnology. - 2010. - № 62. -P.53-59.

41. Feoli F., Ameye L., Van Eeckhout P., Paesmans M., Marra V., Arisio R: Liquid-based cytology of the breast: pitfalls unrecognized before specific liquid-based cytology training - proposal for a modification of the diagnostic criteria // Acta Cytologica. -2013. -№ 57. - P.369-376.

42. Geers C., Bourgain C. Liquid-based FNAC of the thyroid: a 4-year survey with SurePath // Cancer Cytopathology. - 2011. - №119(1). -P.58-67.

43. Gerhard R., Schmitt F.C.. Liquid-based cytology in Fine-Needle Aspiration of Breast Lesions: a review // Acta Cytologica. - 2014. - №58. - P.533-542.

44. Gill G. W. Cytopreparation: Principles & Practice. Springer. - New York. 2013.437 p.

45. Gong D., Chen T., Qiyuan L., Nian L., Xueying S.. Surepath liquid-based cytology combined with conventional bronchial brushing smears in the diagnosis of primary and secondary pulmonary malignant tumors // Int J Clin Exp Pathol. - 2017. -№10(4). - P.4115-4122.

46. Guo J., Cremer M., Maza M., Alfaro K., Felix J.C. Evaluation of a low-cost liquid-based Pap test in rural El Salvador: a split-sample study // J Low Genit Tract Dis.- 2014. - №18(2). - P.151-155.

47. Hansen T., Pedersen H., Brauner V., Hariri J. Control specimens for immunocytochemistry in liquid-based cytology // Cytopathology. - 2011. - №22(4). P.243-246.

48. Hegde V., Nambiar S., Yadav N. Efficacy of centrifuged liquid-based cytology over conventional cytology: A comparative study. J Cancer Res Ther. 2017 Oct-Dec;13(6):P951 -955.

49. Hoda R.S. Non-gynecologic cytology on liquid-based preparations: A morphologic review of facts and artifacts // Diagn Cytopathol. - 2007. - № 35(10). -P.621-634.

50. Hashimoto S., Taguchi H., Higashi M., Hatanaka K., Fujita T., Iwaya H., Nakazawa J., Arima S., Iwashita Y., Sasaki F., Nasu Y., Kanmura S., Ido A. Diagnostic efficacy of liquid-based cytology for solid pancreatic lesion samples obtained with endoscopic ultrasound-guided fine-needle aspiration: Propensity score-matched analysis // Dig Endosc. - 2017. - №29(5). - P.608-616.

51. Imura J., Abe K., Uchida Y., Shibata M., Tsunematsu K., Sathoh M., Miwa S., Nakajima T., Nomoto K., Hayashi S., Tsuneyama K.. Introduction and utility of liquid-based cytology on aspiration biopsy of peripheral nodular lesions of the lung // Oncol Lett. - 2014. - №7(3). - P.669-673.

52. Joseph L., Edwards J.M., Nicholson C.M., Pitt M.A., Howat A.J. An audit of the accuracy of fine needle aspiration using a liquid-based cytology system in the setting of a rapid access breast clinic // Cytopathology. - 2002. - №13. - P.343-349.

53. Jae Soo Koh, Soo Yeon Cho, Hwa Jeong Ha, Jung Soon Kim, Myung Soon Shin. Cytologic Evaluation of CellPrep(R) Liquid-based Cytology in Cervicovaginal, Body Fluid, and Urine Specimens: Comparison with ThinPrep // The Korean Journal of Cytopathology. - 2007. - №18(1). - P. 29-35.

54. Jung C.K, Lee A., Jung E.S., Choi Y.J., Jung S.L., Lee K.Y. Split sample comparison of a liquid-based method and conventional smears in thyroid fine needle aspiration // Acta Cytologyca. - 2008. - №52(3). - P.313-319.

55. Kim W.Y., Oh S.Y., Kim H., Hwang T.S. DNA degradation in liquid-based cytology and its comparison with conventional smear // Diagn Cytopathol. - 2016. - № 44(5). - P.450-8.

56. Kinoshita Y., Yuri T., Yoshizawa K., Takasu K., Emoto Y., Tsubura A., Shikata N. Romanowsky staining using liquid-based cytology: A pilot study using Cytolyt(®)/HESPANDER(®) processing solution for ThinPrep(®) preparations // Diagn Cytopathol. - 2015. - №43(12).- P.960-5.

57. Komatsu K., Nakanishi Y., Seki T., Yoshino A., Fuchinoue F., Amano S., Komatsu A., Sugitani M., Nemoto N: Application of liquid-based preparation to fine needle aspiration cytology in breast cancer // Acta Cytol. - 2008. - №52. - P.591-596.

58. Kontzoglou K., Moulakakis K.G., Konofaos P., Kyriazi M., Kyroudes A., Karakitsos P. The role of liquid-based cytology in the investigation of breast lesions using fine-needle aspiration: a cytohistopathological evaluation // J Surg Oncol. 2005. -№89. - P.75-78.

59. Konofaos P., Kontzoglou K., Georgoulakis J., Megalopoulou T., Zoumpouli C., Christoni Z., Papadopoulos O., Kouraklis G., Karakitsos P.The role ThinPrep cytology in the evaluation of estrogen and progesterone receptor content of breast tumors // Surg. Oncol. - 2006. - №15. - P.257-266.

60. Konofaos P., Tomos P., Malagari K., Karakatsani A., Pavlopoulos D., Lachanas E., Flessas M., Kostakis A., Karakitsos P. The role of ThinPrep cytology in the investigation of lung tumors // Surg Oncol. - 2006. - №15(3). - P. 173-178.

61. Koss L.G., Hoda R.S. Koss's Cytology of the Urinary Tract with Histopathologic Correlations. New York: Springer; 2012. - 125p.

62. Kumar M., Katiyar S., Sagar M., Kumari M., Goel M.M. Liquid-based cytology versus conventional cytology in fine-needle aspirates of salivary gland neoplasms // Indian J Pathol Microbiol. - 2018. - №61(1). - P.45-49.

63. Kwon H., Kim W.G., Eszlinger M., Paschke R., Song D.E., Kim M., Park S., Jeon M.J., Kim T.Y., Shong Y.K., Kim W.B. Molecular diagnosis using residual liquid-based cytology materials for patients with nondiagnostic or indeterminate thyroid nodules // Endocrinol Metab (Seoul). - 2016.- №31(4). - P. 586-591.

64. Lee H., Han M., Yoo T., Jung C., Son H.J., Cho M. Evaluation of nuclear chromatin using grayscale intensity and thresholded percentage area in liquid-based cervical cytology.// Diagn Cytopathol.- 2018. - №46(5). - P.384-389.

65. Lee Y.M., Hwang J.Y., Son S.M., Choi S.Y., Lee H.C., Kim E.J., Han H.S., An J.Y., Han J.H., Lee O.J. Comparison of diagnostic accuracy between CellprepPlus® and ThinPrep® liquid-based preparations in effusion cytology. // Diagn Cytopathol. - 2014.

- № 42(5). -P.384-390.

66. Lee Y.J., Kim D.W., Jung S.J., Baek H.J. Factors that influence sample adequacy in Liquid-Based Cytology after Ultrasonography-Guided Fine-Needle Aspiration of Thyroid Nodules: A Single-Center Study. // Acta Cytologica. - 2018. - №62(4). -P.253-258.

67. Leung C.S., Chiu B., Bell V: Compirison of Thin Prep and conventional preperations: nongynecologyc cytology evaluation. // Diagn Cytopathol. - 1997. - №16.

- P.368-371.

68. Li D., Wan T, Su Y., Ding M., Wu J., Zhao Y. Liquid-based cytological test of samples obtained by catheter aspiration is applicable for the bronchoscopic confirmation of pulmonary malignant tumors // Int J Clin Exp Pathol. - 2014. - №7. -P.2508-17.

69. Lopes-Cuervo Esquivias, J., Montalban Beltran, E., Cuadros Lopez J.L., Alonso Castillo, A., Nieto Sanchez T. Preliminary Study of a New, Fully Automated System for Liquid-Based Cytology: The NovaPrep® Processor System // Acta Cytologica.- 2011. -№55. - P.281-286.

70. Luu M.H., Fischer A.H., Pisharodi L., Owens C.L. Improved preoperative definitive diagnosis of papillary thyroid carcinoma in FNAs prepared withboth ThinPrep and conventional smears compared with FNAs prepared with ThinPrep alone // CancerCytopathol. - 2011. - №119(1). - P. 68-73.

71. Martini M., Capodimonti S., Cenci T., Bilotta M., Fadda G., Larocca L.M., Rossi E.D. To Obtain More With Less: Cytologic Samples With Ancillary Molecular Techniques-The Useful Role of Liquid-Based Cytology // Arch Pathol Lab Med. -2018. - №142(3). - P.299-307.

72. McGoogan E., Colgan T.J., Ramsy I., et al. Cell preparation methods and criteria for sample adequacy. IAC Task Force Summary // Acta Cytol. - 1998. - №42(1). -P.25-32.

73. Michael C.W., Hunter B. Interpretation of fine-needle aspirates processed by the Thin Prep technique: cytologic artifacts and diagnostic pitfalls // Diagn Cytopathol. -2000. - №23. - P.6-13.

74. Mishra S., Husain N., Awasthi N.P., Pradeep Y., Roohi R., Saxena S. Liquid-based cytology: do ancillary techniques enhance detection of epithelial abnormalities? // Arch Gynecol Obstet. - 2018. - №298(1). - P.159-169.

75. Naito Y., Kawahara A., Okabe Y., Ishida Y., Sadashima E., Murata K., Takase Y., Abe H., Yamaguchi T., Tanigawa M., Mihara Y., Kondo R., Kusano H., Nakayama M., Shimamatsu K., Yano H., Akiba J. SurePath® LBC improves the diagnostic accuracy of intrahepatic and hilar cholangiocarcinoma // Cytopathology. - 2018. -№9(4). - P.349-354.

76. Nalwa A., Walia R., Singh V., Madan K., Mathur S., Iyer V., Jain D. Comparison of Conventional Smear and Liquid-based Cytology Preparation in Diagnosis of Lung Cancer by Bronchial Wash and Transbronchial Needle Aspiration // J Cytol. - 2018. -№35(2). - P.94-98.

77. Nambiar S., Hegde V., Yadav N., Hallikeri K. Improvization of conventional cytology by centrifuged liquid-based cytology in oral exfoliative cytology specimen // J Cytol. - 2016. -№ 33(3). - P. 115-119.

78. Nasuti J.F., Tam D., Gupta P.K. Diagnostic value of liquid-based (Thinprep) preparations in nongynecologic cases // Diagn Cytopathol. - 2001. - №24. - P. 137-141.

79. Nishimura R., Aogi K., Yamamoto T., Takabatake D., Takashima S., Teramoto N., Kagawa A., Morita S. Usefulness of liquid-based cytology in hormone receptor analysis of breast cancer spesimens. // Virchows Arch. - 2011. - №458(2). - P.153-158.

80. Olms C., Hix N., Neumann H., Yahiaoui-Doktor M., Remmerbach T.W. Clinical comparison of liquid-based and conventional cytology of oral brush biopsies: a randomized controlled trial // Head Face Med. - 2018. - №14(1). -P.9.

81. Osugi M., Kinoshita K., Sugita A., Kito K., Maeda T. Expression of p63 immunostaining in liquid-based cytology (BD SurePath) of breast fine-needle aspiration // Diagn Cytopathol.- 2018. - №46(10). - P.845-852.

82. Pandey P., Agarwal S., Ralli M., Dixit A., Singh D. Oral brush liquid-based cytology: a study of concordance between a cytotechnologist and a cytopathologist // Acta Cytol. - 2018. - №62(2).- P.121-129.

83. Pazaitou-Panayiotou K., Mygdakos N., Boglou K., Kiziridou A., Chrisoulidou A., Destouni C. The Immunocytochemistry is a valuable tool in the diagnosis of papillary thyroid cancer in FNA's using liquid-lased cytology // J Oncol. - 2010.- 2010:963926.

84. Parfitt J.R., McLachlin C.M., Weir M.M. Comparison of ThinPrep and conventional smears in salivary gland fine-needle aspiration biopsies // Cancer. - 2007. - №111. - P.123-129.

85. Pawar P.S., Gadkari R.U., Swami S.Y., Joshi A.R. Comparative study of manual liquid-based cytology (MLBC) technique and direct smear technique (conventional) on fine-needle cytology/fine-needle aspiration cytology samples // J Cytol. - 2014. -№31(2). - P.83-86.

86. Perez- Reyes N., Mulford D.K., Rutkowski M.A., Logan- Young W., Dawson A.E. Breast fine-needle aspiration: a comparison of thin-layer and conventional preparation // Am J Clin Pathol. - 1994. - №102. - P.349-353.

87. Pretet J.L., Vidal C., Le Bail Carval K., et al. Novaprep Vial Test is suitable liquid-based cytology medium for high risk human papillomavirus testing by Hybrid Capture 2 // J Clin Virol.- 2010. - №49. -P.286-289.

88. Prigenzi K.C.K., Heinke T., Salim R.C., Focchi G.R.A. Dual p16 and Ki-67 Expression in Liquid-Based Cervical Cytological Samples Compared to Pap Cytology Findings, Biopsies, and HPV Testing in Cervical Cancer Screening: A Diagnostic Accuracy Study // Acta Cytol. - 2018. - №62(2). - P.104-114.

89. Rahangdale L., Budwit D., Asgari D., Ohadugha A.L. Manual Liquid-Based Cytology: A Clinical Pilot Study of the VitroPrep™ Cytology Processing Kit // Acta Cytol. - 2014. - №58(4). - P.373-7.

90. Ramieri M.T., Marandino F., Visca P., Salvitti T., Gallo E., Casini B., Giordano F.R., Frigieri C., Caterino M., Carlini S., Rinaldi M., Ceribelli A., Pennetti A., Alo P.L., Marino M., Pescarmona E., Filippetti M. Usefulness of conventional transbronchial needle aspiration in the diagnosis, staging and molecular characterization of pulmonary neoplasias by thin-prep based cytology: experience of a single oncological institute // J Thorac Dis. - 2016. - №8(8). - P.2128-37.

91. Rana S., Hoda M.D. Non-gynecologic cytology on liquid-based preparations: a morphologic review of facts and artifacts // Diagnostic Cytopathology. - 2007. - №35: - P.621-634.

92. Rarick J.M., Wasman J., Michael C.W. The utility of liquid-based cytology in salivary gland fine-needle aspirates: experience of an academic institution // Acta Cytol. -2014. - №58(6). -P.552-62.

93. Ren S., Solomides C., Draganova-Tacheva R., Bibbo M. Overview of nongynecological samples prepared with liquid-based cytology medium // Acta Cytol. -2014. - №58(6). - P.522-32.

94. Remmerbach T.W., Pomjanski N., Bauer U., Neumann H. Liquid-based versus conventional cytology of oral brush biopsies: a split-sample pilot study // Clinical Oral Investigations. - 2017. - №21(8). - P.2493-2498.

95. Reynolds J.P., Zhou Y., Jakubowski M.A., Wang Z., Brainard J.A., Klein R.D., Farver C.F., Almeida F.A., Cheng Y.W. Next-generation sequencing of liquid-based cytology non-small cell lung cancer samples // Cancer Cytopathol. - 2017. - №125(3). -P.178-187.

96. Robinson I. A. diagnostic head and neck fine needle aspiration service can be provided using liquid-based cytology only // Cytopathology. - 2017. -28(1). - P.24-30.

97. Rossi E.D., Mule A., Russo R.M., Pierconti F., Fadda G. Application of liquid-based preparation to non-gynaecologic exfoliative cytology // Pathologica. - 2008. -№100(6). - P.461-5.

98. Rossi E.D., Bizzarro T., Schmitt F., Longatto-Filho A. The role of liquid-based cytology and ancillary techniques in pleural and pericardic effusions: an institutional experience // Cancer Cytopathol. - 2015. - №123(4). - P.258-66.

99. Rozemeijer K., Naber S.K., Penning C., Overbeek L.I., Looman C.W., de Kok I.M., Matthijsse S.M., Rebolj M., van Kemenade F.J., van Ballegooijen M. Cervical cancer incidence after normal cytological sample in routine screening using SurePath, ThinPrep, and conventional cytology: population based study // BMJ. - 2017. -P.356:504.

100. Rozemeijer K., Penning C., Siebers A.G., Naber S.K., Matthijsse S.M., van Ballegooijen M., van Kemenade F.J., de Kok I.M. Comparing SurePath, ThinPrep, and conventional cytology as primary test method: SurePath is associated with increased CIN II+ detection rates // Cancer Causes Control. - 2016. - №27(1). - P.15-25.

101. Ryu H.S., Park I.A., Park S.Y., Jung Y.Y., Park S.H., Shin H.S: A pilot study evaluating liquid-based fine needle aspiration cytology of breast lesions: a cytomorphological comparison of SurePath liquid-based preparations and conventional smears // Acta Cytol. - 2013. -№ 57. -P. 391-399.

102. Scarpa Carniello J.V., Pareja F., Santos-Zabala M.L., Edelweiss M. Diagnostic dilemmas and pitfalls in ThinPrep® cytology of breast fine needle aspiration biopsy: Report of Six Cases with Histological Correlates // Diagn Cytopathol. - 2017. - №45(7).

- P.655-661.

103. Son S.M., Koo J.H., Choi S.Y., Lee H.C., Lee Y.M., Song H.G., Hwang H.K., Han H.S., Yun S.J., Kim W.J., Kim E.J., Lee O.J. Evaluation of urine cytology in urothelial carcinoma patients: a comparison of CellprepPlus® Liquid-Based Cytology and conventional smear // The Korean Journal of Pathology. - 2012. -№ 46. - P.68-74.

104. Singh P., Rohilla M., Dey P. Comparison of liquid-based preparation and conventional smear of fine-needle aspiration cytology of lymph node // J Cytol. - 2016.

- №33(4). -P.187-191.

105. Singh G., Agarwal P., Goel M.M., Kumar M., Singh D.P. Conventional vs. Liquid Based Cytology in Fine Needle Aspirates of Lung and Mediastinal Masses // J Pulm Respir Med. - 2017. - №7. - P.400.

106. Sun X., Liu X., Xia M., Yang S., Fei L., Zhang M., Ma H., Wang L., Chen S., Yu L. The combined application of urinary liquid-based cytology with fluorescence in situ hybridization and p16/Ki-67 dual immunostaining is valuable for improving the early

diagnosis of upper tract urothelial carcinomas // Diagn Cytopathol. - 2017. - №45(10). -P.895-902.

107. Suzuki A., Hirokawa M., Higuchi M., Takada N., Yamao N., Kuma S., Miyauchi A. Differentiating between benign follicular nodules and follicular neoplasms in thyroid liquid-based cytology preparations // Diagn Cytopathol. - 2016. - №44(8):659-64.

108. Suzuki A., Hirokawa M., Ito A., Takada N., Higuchi M., Hayashi T., Kuma S., Miyauchi A. Identification of Cytological Features Distinguishing Mucosa-Associated Lymphoid Tissue Lymphoma from Reactive Lymphoid Proliferation Using Thyroid Liquid-Based Cytology // Acta Cytol. - 2018. - №62(2). - P.93-98.

109. Thakur A., Bakshi P., Kaur G., Verma K. Liquid-based and conventional cytology for bronchial washings/bronchoalveolar lavages in the diagnosis of malignancy - An institutional experience // J Cytol. - 2017.- 34(3). - P.127-132.

110. Travis, W.D., Brambilla, E., Burke, A.P., Marx, A., Nicholson A.G. WHO Classification of Tumours of the Lung, Pleura, Thymus and Heart. - 4th edition/ Lion, France: IARC, 2015.- 412p.

111. Tripathy K., Misra A., Ghosh J.K. Efficacy of liquid-based cytology versus conventional smears in FNA samples // J Cytol. - 2015.- №32(1). - P.17-20.

112. Tyagi R., Gupta N., Bhagat P., Gainder S., Rai B., Dhaliwal L.K., Rajwanshi A. Impact of SurePath® liquid-based preparation in cytological analysis of peritoneal washing in practice of gynecologic oncology // J Cytol. - 2017. - №34(2). -P.95-100.

113. Valasoulis G., Koliopoulos G., Founta C., et al: Alteration in human papillomavirus-related biomarkers after treatment of cervical intraepithelial neoplasia// Gynecol Oncol. - 2011. - №121(1). -P.43-48.

114. Veneti S., Daskalopoulou D., Zervoudis S., Papasotiriou E., Ioannidou-Mouzaka L. Liquid-based cytology in breast fine needle aspiration. Comparison with the conventional smear // Acta Cytol. - 2003. -№ 47. -P. 188-192.

115. Vivero M., Renshaw A.A., Krane J.F. Adequacy criteria for thyroid FNA evaluated by ThinPrep slides only // Cancer. - 2017. - №125. - P.534-543.

116. Weidmann J., Chaubal A., Bibbo M. Cellular fixation. A study of CytoRich Red and Cytospin Collection Fluid // Acta Cytologica.- 1997. - №41(1). - P.182-7.

117. Xiong S., Liu N., Han Q., Jiang Y., Su X. Diagnostic value of endobronchial ultrasound-guided transbronchial needle aspiration combined with Surepath liquid-based cytology test for lung lesions and mediastinal lymphadenopathy // Zhonghua Bing Li Xue Za Zhi. - 2015. -№ 44(9). - P.633-8.

118. Yi-Bo Fan, Qing-Shan Wang, Lin Ye, Tian-Yu Wang, Guang-Ping Wu. Clinical application of the SurePath liquid-based Pap test in cytological screening of bronchial brushing for the diagnosis of lung cancer // Cytotechnology.- 2010. - №62. - P.53-59.

119. Zendehrokh N, Olejnicka B, Westman A, Dejmek A. Liquid-based cytology using CytoRich Red/Tripath is diagnostically equivalent to conventional smears for bronchial washings and brushings and reduces the cost // Diagn Cytopathol. - 2013. -№41(10). - P.876-84.

120. Zeppa P. Liquid-based cytology: A 25-year bridge between and the Pap smear and molecular cytopathology // Acta Cytologica. - 2014.- №58. -P.519-21.

121. Zhao H., Qiu T., Guo H., Ying J., Li J., Zhang Z. Detection of EGFR and KRAS gene mutations using suspension liquid-based cytology specimens in metastatic lung adenocarcinoma // Oncotarget. - 2017. - №8(63). - P.106685-10.