Влияние генотипов по генам MSTN, CAPN1 и LEP на показатели продуктивности крупного рогатого скота абердин ангусской породы тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 00.00.00, кандидат наук Евстафьева Лилия Валерьевна

• Евстафьева Лилия Валерьевна
• кандидат наук
• 2025

Оглавление диссертации кандидат наук Евстафьева Лилия Валерьевна

СОДЕРЖАНИЕ

ВВЕДЕНИЕ

ГЛАВА I. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

1.1. Современное состояние развития мясного скотоводства в России

1.2. Производство говядины: российский опыт

1.3. Современные методы оценки племенной ценности 16 абердин ангусской породы

1.4. Генетические маркёры продуктивных признаков мясного скота

1.4.1. Ген миостатина

1.4.2. Ген лептина

1.4.3. Ген кальпаина 39 ГЛАВА II. МАТЕРИАЛ И МЕТОДИКА ИССЛЕДОВАНИЙ 46 ГЛАВА III. РЕЗУЛЬТАТЫ СОБСТВЕННЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ

3.1. Полиморфизм генов MSTN, САРЫ и LEP у крупного рогатого 62 скота абердин ангусской породы в разных половозрастных группах

3.1.1. Полиморфизм генов MSTN, САРЫ и LEP 62 у быков-производителей

3.1.2. Полиморфизм генов MSTN, САРЫ и LEP у ремонтных бычков

3.1.3. Полиморфизм генов MSTN, САРЫ и LEP у коров

3.1.4. Полиморфизм генов MSTN, CAPN и LEP у ремонтных телочек

3.1.5. Полиморфизм генов MSTN, CAPN и LEP в целом по стаду в 68 ООО «КФХ «Хэппи Фарм» и АО «АПФ «Наша Житница»

3.2. Воспроизводительные качества и молочность коров абердин 70 ангусской породы разных генотипов по генам MSTN, CAPN и LEP

3.3. Динамика живой массы молодняка разных генотипов по MSTN, 75 CAPN и LEP

3.4. Мясная продуктивность бычков абердин ангусской породы 79 разных генотипов по MSTN, САРЫ и LEP

3.4.1. Убойные показатели

3.4.2. Оценка класса туш и химический анализ мяса

3.4.3. Микроструктурный анализ длиннейшей мышцы спины

3.5. Экономическая эффективность выращивания бычков разных 91 генотипов по генам САРЫ и LEP

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

ПРЕДЛОЖЕНИЯ ПРОИЗВОДСТВУ

ПЕРСПЕКТИВЫ ДАЛЬНЕЙШЕЙ РАЗРАБОТКИ ТЕМЫ

СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ И УСЛОВНЫХ ОБОЗНАЧЕНИЙ

СПИСОК ИСПОЛЬЗОВАННОЙ ЛИТЕРАТУРЫ

ПРИЛОЖЕНИЯ

ПРИЛОЖЕНИЕ 1. Структура рационов для разных половозрастных в ООО «КФХ «Хэппи Фарм», АО «АПФ «Наша Житница»

ПРИЛОЖЕНИЕ 2. Результаты бонитировки абердин ангусской породы за 2023 год в ООО «КФХ «Хэппи Фарм» и в АО «АПФ «Наша Житница»

ПРИЛОЖЕНИЕ 3. Результаты генотипирования крупного рогатого скота абердин ангусской породы ООО «КФХ «Хэппи Фарм» и АО «АПФ «Наша Житница»

ПРИЛОЖЕНИЕ 4. Акт о внедрении результатов исследования в деятельность ООО «КФХ «Хэппи Фарм»

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Влияние генотипов по генам MSTN, CAPN1 и LEP на показатели продуктивности крупного рогатого скота абердин ангусской породы»

ВВЕДЕНИЕ

Актуальность темы исследования. Повышение численности поголовья мясного крупного рогатого скота специализированных мясных пород, является одной из приоритетных задач агропромышленного комплекса страны. Для увеличения производства говядины необходимо постоянное совершенствование существующих пород и улучшение их генетического потенциала [4, 25, 34]. Маркер-ассоциированная селекция в качестве дополнительного метода может стать мощным инструментом селекционного отбора животных, характеризующихся желательными показателями продуктивности. На современном этапе развития российского мясного скотоводства использование информативных ДНК-маркеров, ассоциированных с продуктивными признаками, позволит выбрать эффективную стратегию контроля селекционного процесса и нарастить поголовье с высокими качествами говядины [6, 7, 8, 29]. К перспективным генам для мясного скота относятся гены миостатина (ЫБТЫ), лептина (ЬЕР) и кальпаина 1 (СЛРМ1) [14, 38, 55, 56, 60].

Известно, что ЫБТЫ связан с феноменом двойной мускулатуры у мясного скота, полиморфизм в гене ЬЕР ассоциирован с повышенной экспрессией мРНК гормона лептина и разным уровнем отложения в мышечной ткани жира, а разные аллельные варианты в гене СЛРЫ1 контролируют его распределение между мышечными волокнами, что в совокупности определяет признак «мраморность» говядины [49, 57, 61].

Поскольку в формировании признаков мясной продуктивности и качества говядины участвует несколько генов, то исследования, направленные на их вклад у разных пород мясного скота, имеют теоретическую и прикладную значимость. В связи с этим целью настоящего исследования явилось изучение полиморфизма генов миостатина (ЫБТЫ_Е94Ь)., лептина (Лrg4Cys_LEP) и кальпаина (СЛРЫ1316) и его влияние на показатели продуктивности абердин ангусского скота.

Степень разработанности темы. Научными коллективами ряда исследовательских центров, такими как ФГБНУ ФИЦ ВИЖ им. Л.К. Эрнста, ФГБНУ ФНЦ биологических систем и агротехнологий РАН, ФГБНУ ВНИИплем, а также научно-

производственными организациями ООО «Мираторг-Генетика», АО «Агроплем» проводятся молекулярно-генетические исследования в разных стадах мясного скота [32]. Накопленный массив данных свидетельствует о перспективности использования генетического маркирования в селекционных программах [8, 30, 32, 38, 65, 122].

ФГБНУ ФИЦ ВИЖ им. Л.К. Эрнста разработана тест-система для выявления полиморфизмов ЫБТЫ (с.282С>А), ЬБР в позиции с.466 С^Т, САРЫ1 расположенный на ВТА29 и заключающийся в однонуклеотидной замене c.947G>C. Вместе с тем данных о влиянии этих полиморфизмов на продуктивные качества абердин ан-гусской породы, разводимой в разных регионах России, недостаточно.

Цель и задачи исследований. Целью исследования явился анализ продуктивности крупного рогатого скота абердин ангусской породы племенных репродукторов ООО «КФХ «Хэппи Фарм» и АО «АПФ «Наша Житница» с учетом полиморфизма в генах ЫБТЫ, САРЫ1 и ЬБР для дальнейшего селекционного совершенствования стад.

Для достижения указанной цели были поставлены следующие задачи:

1. Изучить генетическую структуру двух популяций абердин ангусского скота в разрезе разных половозрастных групп по генам ЫБТЫ, САРЫ1, ЬБР.

2. Определить влияние разных генотипов по генам ЫБТЫ, САРЫ1, ЬБР на воспроизводительные качества и молочность коров абердин ангусского породы.

3. Выявить зависимость динамики живой массы ремонтного молодняка в разные возрастные периоды в зависимости от генотипов по генам ЫБТЫ, САРЫ1 и ЬБР.

4. Исследовать убойные качества, химические показатели мяса и гистологические характеристики мышечной ткани у бычков разных генотипов по генам САРЫ1 и ЬБР.

5. Рассчитать экономическую эффективность разведения откормочного молодняка разных генотипов по генам САРЫ1 и ЬБР.

Научная новизна исследования. Впервые комплексно по полиморфизмам в трех генах - ЫБТЫ, САРЫ1 и ЬБР, исследована частота встречаемости аллелей и

генотипов в стадах мясного скота абердин ангусской породы, разводимых в условиях центрального региона России. Установлено влияние разного состояния генов на показатели воспроизводства маточного поголовья, динамику живой массы потомства, мясные характеристики откормочного поголовья. Выявлены желательные генотипы в позициях ЫБТЫ ^94Ь, САРЫ1316 и Arg4Cys_ЬБP для использования в селекционном совершенствовании абердин ангусской породы.

Теоретическая и практическая значимость работы. Теоретическая значимость работы заключается в установлении положительной связи генотипа СА по ЫБТЫ ^94Ь с динамикой живой массы молодняка от рождения до возраста 15 месяцев, генотипов ТТ по Arg4Cys_ ЬБР и ОС по САРЫ1_316 с качественными характеристиками туш - меньшей потерей влаги, большей площадью мышечного глазка, большим содержанием белка и жира, меньшим - соединительной ткани, наибольшей оценкой мраморности.

Практическая значимость полученных данных заключается в перспективности отбора животных желательных генотипов для целенаправленного подбора родительских пар и получения большего числа потомков с генотипами СА по MSTN_F94L, ТТ по Arg4Cys_ LEP и GC по САРЫ1 _316 для повышения темпов воспроизводства, получения животных с большей мясной продуктивностью и говядины с высокими качественными показателями.

Данные, полученные в ходе научного исследования, могут быть использованы при подготовке специалистов зооветеринарного профиля.

Связь темы с планом научных исследований. Исследования проводились при проекте (Программа развития ФГБОУ ВО РГАУ-МСХА имени К.А. Тимирязева «Агропрорыв 2030» в рамках программы стратегического академического лидерства «Приоритет - 2030», конкурс «Научный фронтир»), номер гос. регистрации 124102100642-9. Полученные данные будут использоваться при селекционно-племенном отборе животных для дальнейшего разведения в племенных хозяйствах ООО «КФХ «Хэппи Фарм» Медынского района Калужской области и АО «АПФ «Наша Житница» Гагаринского района Смоленской области.

Методология и методы исследования. Методология выполнения исследования основывалась на анализе экспериментальных работ зарубежных и отечественных ученых в области применения маркер-ассоциированной селекции в мясном скотоводстве. Применением ПЦР-ПДРФ анализа и ДНК-чипов было геноти-пировано 952 животных. Изучение признаков продуктивности проводилось с использованием стандартных зоотехнических методов. Обработка экспериментальных данных выполнялась с использованием статистического, популяционно-гене-тического и биометрического методов анализа, реализованных в программах Microsoft Office, РорGen.

Степень достоверности и апробация результатов. Достоверность положений, выносимых на защиту, выводов и предложений производству подтверждена использованием в работе достаточного для биометрической обработки числа животных, применением апробированных зоотехнических методов, а также современного оборудования и генетико-статистического анализа экспериментальных данных с оценкой степени достоверности разности между животными разных генотипов с использованием соответствующего программного обеспечения.

Результаты работы опубликованы в рецензируемых научных журналах и апробированы на международных и российских конференциях: «Международная научная конференция молодых учёных и специалистов, посвящённая 135-летию со дня рождения А.Н. Костякова» (г. Москва, 2022 г.); на II Всероссийской школе-конференции «Клеточные и геномные технологии для совершенствования сельскохозяйственных животных» (г. Санкт-Петербург, 2022 г.); на Всероссийской научно-практической конференции с международным участием, посвященная 100-летию со дня рождения профессора А.В. Орлова (г. Москва, 2022 г.), на конференции «Международная научная конференция молодых ученных и специалистов посвященная 180-летию со дня рождения К.А. Тимирязева (г. Москва, 2023 г.); участие в конференции: X Международная научная конференция «Современные агро-технологии, экологический инжиниринг и устойчивое развитие» («Agritech-X-2024», г. Термез, Узбекистан, 2024 г.).

Положения, выносимые на защиту:

- носительство генотипов АА в гене MSTN и ТТ в гене LEP обеспечивает наилучшие показатели по выходу телят и их сохранности, генотипов СА в гене MSTN и GC в гене CAPN1 - наибольшую молочность коров абердин ангусской породы;

- генотипы СС и GT в генах LEP и CAPN1 ассоциированы с количественными показателями мясной продуктивности бычков абердин ангусской породы: предубойная масса и выход туш; генотип TT в гене LEP и GT в гене CAPN1 - качественными показателями: площадь мышечного глазка, выраженность мраморно-сти;

- носительство генотипов TT в гене LEP и GT в гене CAPN1 обеспечивает преимущество по содержанию мышечной и жировой ткани в мясе, а также по числу жировых вкраплений в мышечных волокнах на микроструктурном уровне;

- наиболее выгодно тиражирование животных генотипов TT в гене LEP и GT в гене CAPN1 для получения высококачественных туш с большей мраморно-стью.

Список работ, опубликованных по теме диссертации. По результатам научно-исследовательской работы опубликовано 13 научных статей, в том числе 2 - в изданиях, индексируемых в международной базе цитирования Scopus, 2 - в изданиях RSCI.

Статьи в российских журналах, входящих в RSCI и индексируемых в международных базах цитирования Scopus:

1. Коновалова, Е.Н. Связь полиморфизмов генов лептина и кальпаина-1 с эффективностью откорма и убойными качествами крупного рогатого скота мясных пород / Е.Н. Коновалова, Л.В. Евстафьева, М.И. Селионова, О.С. Романенкова, Е.А. Гладырь // Молочное и мясное скотоводство. - 2024. - №2. - С. 31-35.

2. Коновалова, Е.Н. ДНК-анализ полиморфизма генов миостатина, лептина и кальпаина 1 у российской популяции крупного рогатого скота абердин-ангусской породы / Е.Н. Коновалова, М.И. Селионова, Е.А. Гладырь, О.С. Романенкова, Л.В. Евстафьева // Сельскохозяйственная биология. - 2023. - Т. 58. -№ 4. - С. 622-637.

3. Konovalova E., Romanenkova O., Evstafeva L., Safonova S., Selionova M., Gladyr E Aberdeen angus beef quality and profitability in dependence of the genotypes E3S WEB of conferences. X International Conference on Advanced Agritechnologies, Environmental Engineering and Sustainable Development (AGRITECH-X 2024). Les Ulis, 2024. С. 02017.

4. Селионова, М.И. Влияние полиморфизма в гене лептина на качество говядины у бычков абердин ангусской породы / М.И. Селионова, Л.В. Евстафьева, // Молочное и мясное скотоводство. - 2024. - № 5. - С. 13-1S.

В других изданиях:

5. Коновалова, Е.Н. Пути повышения рентабельности отрасли мясного скотоводства России / Е.Н. Коновалова, М.И. Селионова, Е.А. Гладырь, О.С. Романен-кова, Л.В. Евстафьева // В сб.: Обеспечение технологического суверенитета АПК: подходы, проблемы, решения. Сборник статей Международной научно-методической конференции, посвященной 300-летию Российской академии наук. Екатеринбург - 2023. - С. 100-104.

6. Евстафьева, Л.В. Динамика живой массы телочек абердин ангусской породы разных генотипов по гену кальпаина / Л.В. Евстафьева, М.И. Селионова, Д.М. Евстафьев // В сб.: Международная научная конференция молодых учёных и специалистов, посвящённая 180-летию со дня рождения К.А. Тимирязева. Сборник статей. Москва - 2023. - С. 26S-2V2.

V. Селионова, М.И. Маркер-ассоциированная и геномная селекция мясного скота / М.И. Селионова, Л.В. Евстафьева, Е.Н. Коновалова, Е.В. Белая // Тимирязевский биологический журнал. - 2023. - № 2. - С. 37-4S.

S. Евстафьева, Л.В. Продуктивные качества телочек абердин ангусской породы разных генотипов по гену кальпастатина / Л.В. Евстафьева, М.И. Селионова, Д.М. Евстафьев // В книге: Клеточные и геномные технологии для совершенствования сельскохозяйственных животных. Материалы Всероссийской школы-конференции. Пушкин - 2022. - С. 1V-19.

9. Коновалова, Е.Н. Генетическая оценка российского поголовья крупного рогатого скота мясных пород / Е.Н. Коновалова, М.И. Селионова, О.С.

Романенкова, Л.В. Евстафьева // В сб.: Генетические ресурсы животноводства и растениеводства: состояние и перспективы в сфере сельского хозяйства. Сборник научных трудов международной научно-практической конференции. Махачкала -2022. - С. 17-25.

10. Коновалова, Е.Н. Перспективы использования генетической информации в мясном скотоводстве / Е.Н. Коновалова, М.И. Селионова, О.С. Романенкова, Л.В. Евстафьева // В сб.: От модернизации к опережающему развитию: обеспечение конкурентоспособности и научного лидерства АПК. - 2022. - С. 44-46.

11. Селионова, М.И. Международный опыт оценки мясной продуктивности скота на примере абердин ангусской породы / М.И. Селионова, Л.В. Евстафьева, Д.М. Евстафьев // В сб.: современные тенденции развития животноводства и зоотехнической науки. Сборник статей Всероссийской научно-практической конференции с международным участием, посвященной 100-летию со дня рождения профессора А.В. Орлова. - 2022. - С. 52-54.

12. Коновалова, Е.Н. Анализ полиморфизмов генов миостатина, лептина и кальпаина 1 в российской популяции крупного рогатого скота абердин-ангусской породы / Е.Н. Коновалова, О.С. Романенкова, М.И. Селионова, Л.В. Евстафьева // В сб.: Аграрная наука на современном этапе: состояние, проблемы, перспективы. Материалы V научно-практической конференции с международным участием. Вологда, 2022. - С. 54-59.

13. Евстафьева, Л.В. Полиморфизм гена кальпаина и его связь со скоростью роста телочек абердин ангусской породы / Л.В. Евстафьева, Д.М. Евстафьев // В сб.: Материалы Международной научной конференции молодых учёных и специалистов, посвящённой 135-летию со дня рождения А.Н. Костякова. - 2022. - С. 284288.

Структура, объем и содержание научно-квалификационной работы.

Диссертация изложена на 165 страницах машинописного текста и содержит 20 таблиц, 14 рисунков, приложения. Работа состоит из следующих разделов: введение, обзор литературы, материалы и методы исследования, результаты исследований, заключение, которое содержит выводы, практические предложения производству,

перспективы дальнейшего изучения данной темы, приложения. Список использованной литературы состоит из 175 источников, из них 106 на иностранных языках.

Личный вклад соискателя. Работа, под руководством научного руководителя, выполнена автором самостоятельно. Автором представлены материалы и методика разделов исследований, полностью выполнен весь объем экспериментальной части научно-исследовательских работ, проведен анализ и обработка первичных данных, сформированы выводы и практические предложения производству. Доля участия соискателя при выполнении диссертации составляет 80%. Представленная диссертация является завершенной научно-квалификационной работой и свидетельствует о личном вкладе автора диссертации в научное обоснование целесообразности использования генетических маркеров в мясном скотоводстве.

ГЛАВА I. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

1.1. Современное состояние развития мясного скотоводства в России

По данным мониторинга за 2022 год Российская Федерация с 52,8 тыс. т заняла девятое место в мире по уровню производства говядины, при этом потребление увеличилось на 3,4% (на 0,2 млн т). Лидирующей страной по производству говядины является США - 12,89 млн т, что составляет 20,4% от общемирового производства. Далее следует Бразилия - 10,35 млн т, затем Китай -7,18 млн т. Производство говядины в Китае значительно уступает объему внутреннего потребления, что свидетельствует о том, что страна является одним из главных импортёров говядины в мире [4, 41].

И этот посыл является тем аспектом, который будет способствовать развитию мясного скотоводства в нашей стране. На настоящий момент наибольшее поголовье мясных пород сосредоточено в Южном федеральном округе - 78,8 тыс. голов (22,0%), Центральном федеральном округе - 66,4 тыс. голов (18,5%), Сибирском федеральном округе - 62,8 тыс. голов (17,5%), Дальневосточном федеральном округе - 40,7 тыс. голов (11,48%) и Приволжском федеральном округе - 40,7 тыс. голов (11,4%) [53, 54].

Основными специализированными мясными породами, разводимыми на территории Российской Федерации, являются: абердин ангусская, герефордская, казахская белоголовая, калмыцкая, галловейская, симментальская мясного типа. При этом в последние десять лет отмечается смена породного состава в мясном скотоводстве: по состоянию на начало 2023 года основными стали абердин ангусская порода и герефордская, которые составляют 27,1% от общего поголовья племенного мясного скота [10, 26, 27]. Увеличение доли герефордской и абердин ангусской пород объясняется их хорошими адаптивными качествами, высокими привесами и хорошей сохранностью молодняка. Продукция от животных этих пород ценится за нежность, выраженную мраморность и вкусовые качества говядины [41].

Настоящее исследование выполнено в стадах абердин ангусской породы

Калужской и Смоленской областей, в связи с этим ниже приводится подробное описание истории создания и современного состояния этой породы.

Абердин ангусская порода выведена в XIX веке в Шотландии, в горных районах с суровым климатом, путём скрещивания чёрного комолого (безрогого) скота - графства Абердиншир и бурого - графства Ангус. В России породу используют с начала XX века для скрещивания с калмыцким скотом (помеси обладают высокими мясными качествами), а также для промышленного скрещивания с молочными и молочно-мясными породами. Животные абердин ангусской породы отличаются: лёгкими отёлами, высокой плодовитостью и сохранностью телят, ранним половым созреванием, высокой адаптационной пластичностью, доминированием комолости, в т. ч. при скрещивании с другими породами, развитым материнским инстинктом, хорошей молочностью. Кроме того, мясо этих животных имеет высокие потребительские качества - нежность, сочность, «мраморность» мяса [12, 46, 165].

Абердин ангусская порода разводится в степных районах Волгоградской, Брянской и Оренбургской областях, Ставропольского, Красноярского и Алтайского краях, Кабардино-Балкарии и Карачаево-Черкесии. В настоящее время в АПХ «Мираторг» Брянской области содержится самое большое стадо абердин ангусской породы численностью 19,7 тыс. гол. (3,2 тыс. гол. быков, 8,8 тыс. гол. коров), созданное на базе импортного поголовья (США и Австралия). Племенная ценность (EPD/EBV) скота в АПХ «Мираторг» по основным селекционным признакам (легкость отелов, рост, живая масса при отъеме, масса туши, мраморность мяса) выше средних оценок племенного скота в США и Австралии. Так же порода разводится в таких крупных холдингах как: ГК «Заречное» Воронежской области, ООО «Оренбив» Оренбургской области\, АХ «Долгов Групп» Калининградской области, ООО «Верхневолжский животноводческий комплекс» Тверской области, ООО «Спутник» Ленинградской области, АО «АПФ «Наша Житница» Смоленской области [10, 26, 27].

1.2. Производство говядины: российский опыт

В настоящее время мировой рынок мясной продукции считается одним из наиболее развивающихся и перспективных направлений аграрного производства. Проблема увеличения производства мяса и мясной продукции и наиболее полное удовлетворение потребительского спроса на эти продукты имеет важное значение и для России. Наличие в стране регионов с разнообразными природно-климатическими, хозяйственно - экономическими условиями требует совершенствование селекционной работы с породами мясного направления продуктивности и увеличение поголовья специализированного скота [10, 41, 47, 71].

Увеличение продуктивности крупного рогатого скота тесно связано с воспроизводительными качествами маточного поголовья. Актуальной проблемой в производственных условиях является выбор быков-производителей с целью использования для воспроизводства поголовья. Эффективность осеменения самок зависит от многих факторов, в том числе от качества спермопродукции, количества спермиев в дозе, времени и кратности осеменения с учетом выживаемости спермиев и яйцеклетки, метода введения спермы и т. п. Использование быков-производителей без учета воспроизводительной способности может нанести огромный экономический ущерб животноводству, так как спермой одного производителя могут осеменяться несколько голов коров. Организацию искусственного осеменения и естественных случек маточного поголовья необходимо проводить с учетом биологических особенностей животных. Для мясных пород оптимальны следующие периоды для случки и осеменения: абердин ангусская порода - май-август, герефордская порода: март-май и октябрь-декабрь. В мясном скотоводстве в системе корова-телёнок одной и единственной продукцией являются здоровые телята, выращенные к отъёму [44].

Исходя из опыта случных кампаний в разных хозяйствах и регионах особое внимание уделяется решению следующих задач:

- достижение оптимального интервала времени между случными кампаниями

для зимних и весенних отёлов;

- более эффективное использование быков-производителей;

- обеспечение быстрого роста и развитие молодняка на летних пастбищах до отъёма.

- использование эффективных приемов отъёма телят от матерей для снижения влияния стресса [44, 67].

Достижение высоких показателей воспроизводства является основным инструментом повышения объемов производства говядины от специализированных мясных пород. Также следует отметить, что эффективность отрасли во многом определяется качеством конечного продукта. И в этом огромное значение имеет технология разделки. На Российских предприятиях применяются разные схемы: австралийская, американская, южноамериканская, французская и немецкая. При этом, вкус, плотность, запах, текстура, количество жировой и мышечной ткани каждого отруба во многом зависят от выбранной схемы разделки туши [14, 18].

Основными принципами разделки по американскому способу NAMP (North American Meat Institute) - это разделение по мышцам, чтобы в дальнейшем мясо проще было нарезать поперек волокон [145]. Таким образом готовый продукт получается мягче и нежнее. В американской схеме разделки говядины выделяют 8 частей: шея, голяшка, покромка, пашина, кострец, тонкий край, толстый край и мякоть бедра. Деление туши на отруба позволяют сохранить качество и однородность продукта, стабилизировать вкусовые показатели мяса, а также выделить премиальные куски для реализации [3, 67].

При разделке туши по российскому способу, выделяют следующие части говядины: шейный отруб, лопаточный отруб, грудинка, часть со слоистой структурой и заметными жировыми вкраплениями; голяшка, толстый и тонкий край, покромка, говядина с прослойками жира, кострец, пашина и задний отруб. Далее из отрубов формируют мясные полуфабрикаты, которые в зависимости от технологии делятся на кусковые и рубленные. Следующим немаловажным показателем, который влияет на качество говядины, это степень вызревания мяса. Вызревание - это

ферментация, процесс самопроизвольного изменения химического состава, структуры и свойств мясного сырья после убоя животного, под воздействием собственных ферментов мяса [56].

1.3. Современные методы оценки племенной ценности абердин ангусской породы

Основной селекционной работой в мясном скотоводстве, и в частности, с абердин ангусской породой, является точно налаженная работа по сбору данных количественных и качественных показателей. В этой связи интересен международный опыт и рекомендации Американской и Канадской ассоциаций «Ангус» (American Angus Association, ААА) [3, 33].

Для оценки племенной ценности скота ААА учитывает данные с момента рождения животного и до момента его выбытия, при этом учитываются все события на протяжении всего продуктивного использования по единому протоколу оценки. Это позволяет с большой точность и эффективностью дать рекомендации об использовании быков, коров, телок для племенного разведения, или их выбраковки [67].

С 2010 года в эту оценку входят результаты геномных тестов, которые обновляются раз в год. Обновление включает в себя большую эталонную (референсную) популяцию, по которой ранжируются геномные показатели.

Для сбора данных о продуктивности животных, которые в последствии войдут в оценку, проводится группировка по полу, физиологическому состоянию, возрасту. Ответственность за достоверность данной информации возлагается на владельцев скота. Телята, рожденные в течение 90-ти дневного периода на одной ферме, могут быть сгруппированы вместе. Телята разного пола (бычки или телочки) автоматически разделяются по отдельным группам сверстников. Тип рождения (родился ли теленок в числе одинцов или двоен) также используется для разделения молодняка на группы. Телята, рождённые при использовании технологии пересадки эмбрионов, не группируются с телятами, рождёнными от естественного

осеменения. После оценки признаков продуктивности в годовалом возрасте группам молодняка присваиваются определенные коды показатели вносятся в протокол, где в левом верхнем углу указывается код группы. Данные направляются в AAA. Каждое животное сравнивают со средними показателями сверстников в определенной группе [3].

Для расчета племенной ценности каждого животного используется ряд показателей продуктивности. Первый и один из самых важных показателей - это вес теленка при рождении, Телята взвешиваются на весах, в течение первых 24 часов после рождения, оценка другими методами не допускается. В протоколе учета обязательно указывается регистрационный номер быка, номер теленка, пол, фактическая дата рождения (мм/дд/гг).

В течение 24 часов после рождения собираются данные о легкости отёла и форме сосков и вымени матери. Для оценки показателя легкости отелов используют следующую градацию: 1 - это отел без помощи человека; 2 - небольшая помощь в родовспоможении; 3 - сложные роды; 4 - кесарево сечение; 5 - неправильное предлежание плода [67].

Список литературы диссертационного исследования кандидат наук Евстафьева Лилия Валерьевна, 2025 год

СПИСОК ИСПОЛЬЗОВАННОЙ ЛИТЕРАТУРЫ

1. Абдельманова, А.С. Изучение аллельных вариантов SNPs, ассоциированных с ростом, в разных группах пород крупного рогатого скота / А. С. Абдельманова, М. С. Форнара, Н. В. Бардуков, А.А. Сермягин, А.В. Доцев, Н.А. Зиновьева // Повышение конкурентоспособности животноводства и задачи кадрового обеспечения: материалы XXVIII международной научно-практической конференции, п. Быково, Московская обл., 16 июня 2022 года. - п. Быково, Московская обл. - 2022.

- С. 153-156.

2. Алипкина, С.И. Лептин и его рецептор в норме и при патологии / С.И. Алипкина, Д.С. Налобин, А.А. Галиакберова, Д.В. Трошев [и др.] // Успехи современной биологии. - 2019. - Т. 4. - № 139. - С. 352-364. DOI: 10.1134/S0042132419040033

3. Американская ассоциация Ангус: [сайт]. URL: https://www.angus.org/performance/ContemporaryGrouping. (дата обращения: 26.05.2021). - Текст: электронный.

4. Амерханов, Х.А. Повышение производства говядины на основе селекционно-генетических и биотехнологических методов / Х.А. Амерханов, А.И. Клименко, В.В. Кулинцев, А.Ф. Шевхужев, М.П. Дубовскова [и др.] // Ставрополь: Ставрополь-Сервис-Школа, 2024. - С. 284. ISBN 978-5-605-11188-7

5. Андреевская, М.В. Лептин в регуляции потребления пищи / М.В. Андреевская, А.Т. Марьянович // Российские биомедицинские исследования. - 2019.

- №4. D01:10.17513/srbs.1222

6. Бейшова, И. С. Полногеномный поиск SNP для раннего прогнозирования потенциала продуктивности у казахской белоголовой породы / И. С. Бейшова, Е. В. Белая, Т. В. Ульянова [и др.] // Наука и образование. - 2023. - № 1-2(70). - С. 24-35. - DOI 10.52578/2305-9397-2023-1-2-24-34

7. Белая, Е.В. Биологические функции породоспецифичных SNP-марке-ров мясной продуктивности у крупного рогатого скота казахской белоголовой и

аулиекольской пород / Е.В. Белая // Генетика и разведение животных. - 2022. - № 2. - С. 33-39. DOI: 10.31043/2410-2733-2022-2-33-39 EDN: AUDAQH

8. Белая, Е.В. Породоспецифичные гены-кандидаты, маркирующие признаки мясной продуктивности у крупного рогатого скота казахской белоголовой породы / Е.В. Белая, А.М. Ковальчук, Ю.А. Юлдашбаев, М.И. Селионова // Зоотехния. - 2021. - № 12. - С. 7-10. DOI: 10.25708/ZT.2021.19.40.003 EDN: ZITXTV

9. Белоус, А.А. Идентификация генов, ассоциированных с цветовыми характеристиками мясной и жировой ткани скота абердин-ангусской породы/ А.А. Белоус, А.А. Сермягин, Н.П. Елаткин, Н.А. Зиновьева // Аграрная наука. - 2024. -383(6) - С. 68-76. DOI 10.32634/0869-8155-2024-383-6-68-76

10. Бутусов, Д.В. Состояние мясного скотоводства в Российской Федерации / Д.В. Бутусов, Г.И. Шичкин, Г.Ф. Сафина, В.В. Чернов [и др.] // В сб.: Ежегодник по племенной работе в мясном скотоводстве в хозяйствах Российской Федерации (2020). - Лесные Поляны. - 2021. - С. 3-16.

11. Бьюкенен, Ф.К. Ассоциация миссенс-мутации в гене бычьего лептина с содержанием жира в туше и уровнями мРНК лептина / Ф.К. Бьюкенен, С.Дж. Фицсиммонс, А.Г. Ван Кессель, Т.Д. Туэ, Д.С. Винкельман-Сим, С.М. Шмутц // Генетика, селекция, эволюция. - 2002. - № 34. - С. 105-116.

12. Габидулин, В.М. Генотипические, биологические, физиологические особенности скота абердин-ангусской породы / В.М. Габидулин, С.А. Алимова // Вестник мясного скотоводства. - 2017. - Т. 100. - №4. С. 18-24.

13. Габидулин, В. М. Селекционно-генетические параметры хозяйственно полезных признаков генотипированного молодняка абердин-ангусского скота по генам САРШ CAST и bGH* / В. М. Габидулин, С. А. Алимова // Известия Оренбургского государственного аграрного университета. - 2021. - № 6(92). - С. 289294. - DOI 10.37670/2073-0853-2021-92-6-289-294

14. Герасимов, Н.П. Оценка взаимосвязи послеубойных качеств животных крупного рогатого скота с наличием полиморфизмов LEP 528С/Т и LEP 73С/Т / Н.П. Герасимов, В.И. Колпаков, Д.Б. Косян, М.Ю. Сыромятников, О.В. Кван, Е.А.

Русакова // Животноводство и кормопроизводство. - 2020. - Т. 3. - №2 103. - С. 114126. DOI: 10.33284/2658-3135-103-3-114

15. Ганджа, А.И. Влияние полиморфизма генов LEP, TG5 И DGAT1 на убойные качества бычков мясных пород/ А.И. Ганджа, О.П. Курак, Н.В. Журина, М.А. Ковальчук, Л.Л. Леткевич, В.П. Симоненко, И.В. Кириллова // В сборнике: научное обеспечение животноводства Сибири. Материалы IV Международной научно-практической конференции. Материалы опубликованы в авторской редакции. - 2020. - С. 154-158.

16. Горлов, И.Ф. Исследование полиморфизма гена MSTN у монгольского скота / Горлов И.Ф., Федотова Г.В., Сложенкина М.И., Анисимова Е.Ю., Мосолова Д.А., Цицигэ // Известия НВ АУК - 2020. - Т. 58. - № 2. - С.196-205. DOI: 10.32786/2071 -9485-2020-02-20.

17. Горлов, И.Ф. Полиморфизм генов bGH, RORC и DGAT у мясных пород крупного рогатого скота России / И.Ф. Горлов, А.А. Федюнин, Г.Е. Сулимова, Д.А. Ранделин // Генетика. - 2014. - Т. 12. - № 50. - С. 1448-1454. DOI: 10.7868/80016675814120030

18. Горлов, И.Ф. Разработка и внедрение инновационных технологий производства, переработки и создания конкурентоспособной мясной и молочной продукции нового поколения: монография / И.Ф. Горлов, Н.И. Мосолова, Е.Ю. Зло-бина, Н.С. Пряничникова [и др.] // Волгоградское научное издательство. - 2015. -151 с. ISBN: 978-5-00072-111-7.

19. Горлов, И.Ф. Убойные качества чистопородных и помесных бычков казахской белой породы / И.Ф. Горлов, С.Н. Шлыков, М.И. Сложенкина, Д.А. Ранделин [и др.]. Под общей редакцией И.Ф. Горлова // Выдающиеся технологии животноводческого производства и продуктов питания на основе современных биотехнологических методов: Материалы Международной научно-практической конференции; Волгоград, 08-09 июня 2016 года. - Волгоград: ООО «СФЕРА» - 2016. -С. 44-47.

20. ГОСТ 33818-2016. Мясо. Говядина высококачественная. Технические условия. - Москва: Стандартинформ, 2013. - Текст: непосредственный.

21. ГОСТ 19496-2013. Мясо и мясные продукты. Метод гистологического исследования. - Москва: Стандартинформ, 2013. - Текст: непосредственный.

22. ГОСТ 25011-2017. Мясо и мясные продукты. Методы определения белка. - Москва: Стандартинформ, 2018. - Текст: непосредственный.

23. ГОСТ 9793-2016. Мясо и мясные продукты. Методы определения влаги - Москва: Стандартинформ, 2018. - Текст: непосредственный

24. ГОСТ 23042-2015. Мясо и мясные продукты. Методы определения жира. - Москва: Стандартинформ, 2019. - Текст: непосредственный.

25. Дубовскова, М. П. Генетическая структура и ассоциация полиморфизма генов гормона роста (L127V) и лептина (A80V) с продуктивностью в северокавказской популяции герефордской породы / М. П. Дубовскова, Н. П. Герасимов // Животноводство и кормопроизводство. - 2020. - Т. 103, № 3. - С. 91-101. - DOI 10.33284/2658-3135-103-3-91. - EDN ZNLSRY.

26. Дунин, И.М. Состояние мясного скотоводства в Российской Федерации: реалии и перспективы/ И.М. Дунин, С.Е. Тяпугин, Р.К. Мещеров, В.П. Ходы-ков, В.К. Аджибеков, Е.Е. Тяпугин, А.В. Дюльдина // Молочное и мясное скотоводство - 2020. - № 2. - С. 2-7. DOI: 10.33943/MMS.2020.40.30.001

27. Дунин, И.М. Состояние мясного скотоводства в Российской Федерации / И.М. Дунин, Д.В. Бутусов, Г.И. Шичкин, Г.Ф. Сафина [и др.] // В сборнике: Ежегодник по племенной работе в мясном скотоводстве в хозяйствах Российской Федерации (2019 год). пос. Лесные Поляны. - 2020. - С. 3-16. EDN: HKJJZT

28. Епишко, О.А. Убойные показатели герефорд х чёрно-пёстрых быков в зависимости от генотипов гена миостатина (MSTN) / О.А. Епишко, Н. А. Сонич, Т. И. Кузьмина, Л.А. Танана, О.В. Вертинская // Генетика и разведение животных. -2018. - № 2. - С. 56-60. DOI 10.31043/2410-2733-2018-2-56-60

29. Зиновьева, Н.А. Система геномной оценки скота: первые результаты / Н.А. Зиновьева, Н.И. Стрекозов, И.Н. Янчуков, А.Н. Ермилов, Г.В. Ескин // Животноводство России - 2015. - № 3. - С. 27-29. EDN: UIQXVB

30. Зиновьева, Н.А. Применение ДНК-диагностики для анализа генов-кандидатов локусов количественных признаков сельскохозяйственных животных /

Н.А. Зиновьева // Животноводство России - XXI век: сб. науч. тр. ВИЖ - 2001. -№ 61. - С. 225-228.

31. Игошин, А.В. Сравнительный анализ частот ДНК-полиморфизмов, ассоциированных с заболеваниями и хозяйственно важными признаками, в геномах российских и зарубежных пород крупного рогатого скота / А.В. Игошин, Г.А. Ромашов, Е.Н. Черняева, Н.П. Елаткин, Н.С. Юдин, Д.М. Ларкин // Вавиловский журнал генетики и селекции. - 2022. - Т. 26. - № 3. - С. 298-307. DOI: 10.18699/VJGB-22-28

32. Калашникова, Л.А. Полиморфизм генов TG5, GH, LEP у казахской белоголовой породы скота/ Л.А. Калашникова, Я.А. Хабибрахманова, А.В. Седов // В сборнике: Племенное животноводство, кормопроизводство и механизация сельского хозяйства в Российской Федерации. Тверь. - 2023. - С. 105-107.

33. Канадская ассоциация Ангус [сайт] URL: https://www.cdnangus.ca/adding-value/performance-program. дата обращения: 15.08.2022). - Текст: электронный

34. Каюмов, Ф. Г. Влияние SNP генов CAPN1 и LEP на морфологические и биохимические показатели крови бычков калмыцкой породы / Ф.Г. Каюмов, Р.Ф. Третьякова // Труды Кубанского государственного аграрного университета - 2024. - № 110. - С. 223-230. DOI: 10.21515/1999-1703-110-223-230

35. Климанова, Е.А. Полиморфизмы гена миостатина у животных (обзор) / Е.А. Климанова, Д.А. Александрова, Н.Н. Кочнев // Вестник НГАУ - 2024. - Т. -71. -№ 2. - С. 209-219. DOI 10.31677/2072-6724-2024-71-2-209-219

36. Коновалова, Е.Н. Анализ российских популяций крупного рогатого скота мясного направления продуктивности по полиморфизмам гена кальпаина 1 / Е.Н. Коновалова, О.С. Романенкова, Е.А. Гладырь // Животноводство и кормопроизводство - 2024. - Т. 107. - № 1. - С. 42-50. DOI: 10.33284/2658-3135-107-1-42

37. Коновалова, Е.Н. Генетическая оценка крупного рогатого скота породы галловей / Е.Н. Коновалова, О.С. Романенкова, Е.А. Гладырь, А.А. Сермягин // Достижения науки и техники АПК. - 2023. - Т. 37. - № 10. - С. 72-76. DOI 10.53859/02352451 2023 37 10 72

38. Коновалова, Е.Н. Мутации гена миостатина у крупного рогатого скота абердин-ангусской и бельгийской голубой пород российской популяции / Е.Н. Коновалова, О.С. Романенкова, О.В. Костюнина // Вопросы нормативно-правового регулирования в ветеринарии. - 2020. - № 1. - С. 311-314. DOI: 10.17238/issn2072-6023.2020.1.311

39. Коновалова, Е.Н. Определение распространенности генетических заболеваний крупного рогатого скота абердин-ангусской породы с использованием ДНК-тестов / Е.Н. Коновалова, О.В. Костюнина, О.С. Романенкова // Достижения науки и техники АПК. - 2020. - Т. 34. - № 2. - С. 39-42.

40. Коновалова, Е.Н. Генетическая оценка крупного рогатого скота галло-вейской породы / Е.Н. Коновалова, О.С. Романенкова, Е.А. Гладырь, А.А. Сермя-гин // Достижения науки и техники АПК. - 2023. - Т. 10. - № 37. - С. 72-76.

41. Костюк, Р.В. Мясное скотоводство России: проблемы, вызовы и решения / Р.В. Костюк // Мясные технологии. - 2018. - Т. 185. - № 5. - С. 12-15.

42. Косян, Д.Б. Взаимосвязь полиморфизма гена LEP/A80V с ростовыми характеристиками крупного рогатого скота/ Д.Б. Косян, Е.А. Русакова // Бюллетень Оренбургского научного центра УрО РАН. - 2019. - № 4. - С. 26.

43. Курак, О.П. Анализ полиморфизма генов LEP, DGAT1 и TG5 у бычков мясных пород крупного рогатого скота Беларуси/ О.П. Курак, А.И. Ганджа, Н.В. Журина, М.А. Ковальчук, Л.Л. Леткевич, В.П. Симоненко, И.В. Кириллова, С.В. Сидунов, Р.В. Лобан// В сборнике: Аграрная наука - сельскому хозяйству. Сборник материалов XIV Международной научно-практической конференции. В 2-х книгах. - 2019. - С. 159-161.

44. Левахин, В. Технология мясного скотоводства / В. Левахин // Молочное и мясное скотоводство. - 2011. - № 1. - С. 31-35.

45. Методические рекомендации по порядку и условиям проведения бонитировки племенного крупного рогатого скота мясного направления продуктивности / Под ред. И.М. Дунина. Лесные Поляны. - 2020. - 36 с.

46. Мысик, А.Т. Состояние и инновационное развитие селекционной работы мясного скотоводства с использованием геномной селекции по маркерам

ДНК с целью получения конкурентоспособных генотипов / А.Т. Мысик, Г.И. Шич-кин, Е.Е. Тяпугин, О.М. Мухтарова // Зоотехния. - 2022. - № 6. - С. 2-5.

47. Отаров, А.И. Оценка мясной продуктивности и качества мяса бычков разных генотипов в предгорной и горной зонах Кабардино-Балкарской Республики / А.И. Отаров, Ф.Г. Каюмов, Р.Ф. Третьякова // Животноводство и кормопроизводство. - 2021. - Т. 2. - №. 104. - С. 56-64. DOI: 10.33284/2658-3135-104-2-56

48. Пантюх, К. С. Разработка и внедрение геномной оценки племенной ценности. Подготовка данных / К. С. Пантюх, М. С. Круткина, И. В. Рукин // Генетика, селекция, биотехнология: интеграция науки и практики в животноводстве: Материалы международной научно-практической конференции, Пушкин, 01-03 декабря 2021 года. - Пушкин: Всероссийский научно-исследовательский институт генетики и разведения сельскохозяйственных животных РАСХН - 2021. - С. 120121.

49. Прохоров, И. П. Интенсивность накопления жира и его распределение в организме молодняка крупного рогатого скота / И. П. Прохоров, О. А. Калмыкова, В. Н. Лукьянов, Ю. В. Шошина // Главный зоотехник. - 2022. - № 12(233). - С. 311. - DOI 10.33920/sel-03-2212-01.

50. Ребриков, Д.В. ПЦР в реальном времени: практическое руководство / Д. В. Ребриков, Г. А. Саматов, Д. Ю. Трофимов, П. А. Семёнов, А. М. Савилова, И. А. Кофиади, Д. Д. Абрамов // под ред. д.б.н. Д. В. Ребрикова. 8-е изд., электрон. Москва: Лаборатория знаний - 2020. - 226 с. ISBN 978-5-00101-794-3.

51. Романишко, Е.Л. Исследование полиморфизма rs17872000 в генах кальпаина (CAPN1) и rs109221039 кальпастатина (CAST) у крупного рогатого скота мясного направления продуктивности / Е.Л. Романишко, А. И. Киреева, М. Е. Михайлова, Р. И. Шейко // Молекулярная и прикладная генетика. - 2022. - Т. 32. - С. 88-96.DOI: 10.47612/1999-9127-2022-32-88-96.

52. Рукин, И.В. Геномная селекция - будущее в разведении животных / И.В. Рукин, Е.С. Пантюх, Д.С. Груздев // Зоотехния. - 2013. - № 7 - С. 8-9

53. Сарански, С. Мясное скотоводство в России: дело за генетикой? / С. Сарански // Эффективное животноводство. - 2020. - Т. 158. - № 1. - С. 44-47.

54. Сафина, Г.Ф. Состояние мясного скотоводства в Российской Федерации / Г.Ф. Сафина, И.М. Дунин, С.Е. Тяпугин, Е.В. Герасимова [и др.] // Ежегодник по племенной работе в мясном скотоводстве в хозяйствах Российской Федерации (2022 год). Под. ред. Т.А. Мороз. Издательство ФГБНУ ВНИИплем Москва - 2023. - С. 7-12.

55. Седых, Т.А. Влияние полиморфизма гена лептина на продуктивность мясного скота / Т.А. Седых, Л.А. Калашникова, Р.С. Гизатуллин, В.И. Косилов // Российская сельскохозяйственная наука. - 2020. - № 5. - С. 54-58. DOI: 10.31857/S2500262720050130

56. Седых, Т.А. Технологические и генетические аспекты производства высококачественной говядины: по материалам Республики Башкортостан / Т. А. Седых, Л. А. Калашникова, Р. С. Гизатуллин, Ф.Р. Валитов и др. // Уфа: Башкирский НИИ сельского хозяйства УФИЦ РАН, БГПУ им. М. Акмуллы, ФГБОУ ВО Башкирский ГАУ, 2024. - 250 с. - ISBN 978-5-605-17008-2

57. Селионова, М.И. Особенности полиморфизма генов гормона роста (GH), кальпаина (CAPN1) быков-производителей мясных пород / М.И. Селионова, Л.Н. Чижова, М.П. Дубовскова, Е.С.Суржикова., Л.В. Кононова, Г.Н. Шарко // Вестник мясного скотоводства. - 2017. - Т. 98. - № 2. - С. 65-72. EDN YTOCOB.

58. Селионова, М.И. Перспективные генетические маркеры крупного рогатого скота / М.И. Селионова, Л.Н. Чижова, Г.Т. Бобрышова, Е.С. Суржикова, А.К. Михайленко // Вестник АПК Ставрополья. - 2018. - № 3. - С. 44-51.

59. Скачкова, О.А. Изучение альтернативного сплайсинга в генах LEPR, PRLR, GHR крупного рогатого скота в аспекте молочной продуктивности / О.А. Скачкова, А.А. Васильев, А.В. Бригида // Аграрный научный журнал. - 2022. - № 2. - С. 61-64. DOI: 10.28983/asj.y2022i2pp61 -64

60. Сонич, Н. А. Генетическая структура популяции крупного рогатого скота специализированных мясных пород по генам миостатина, тиреоглобулина и кальпаина и эффективность их использования в селекции / Н. А. Сонич // Сельское хозяйство - проблемы и перспективы: сборник научных трудов. Том 52. - Гродно: Гродненский государственный аграрный университет, 2021. - С. 137-147.

61. Сонич, Н. А. Динамика живой массы и среднесуточных приростов быков специализированных мясных пород / Н. А. Сонич // Сельское хозяйство - проблемы и перспективы: сборник научных трудов. Том 52. - Гродно: Гродненский государственный аграрный университет, 2021. - С. 147-158.

62. Столповский, Ю.А. Геномная селекция. I. Последние тенденции и возможные пути развития / Ю.А. Столповский, А.К. Пискунов, Г.Р. Свищева // Генетика. - 2020. - Т. 9. - № 56. - С. 1006-1017. DOI: 10.31857^0016675820090143

63. Столповский, Ю.А. Геномная селекция. II. Перспективные направления / Ю.А. Столповский, А.К. Пискунов, Г.Р. Свищева // Генетика. - 2020. - Т. 10. - № 56. - С. 1107-1114. DOI: 10.31857^0016675820100124

64. Столповский, Ю.А. Новая система генотипирования крупного рогатого скота на основе технологии ДНК-микрочипов / Ю.А. Столповский, С.Б. Кузнецов, Е.В. Солоднева, И.Д. Шумов // Генетика. - 2022. - Т. 58. - № 8. - С. 857871. DOI: 10.31857^0016675822080094

65. Суржикова, Е.С. ДНК-генотипирование по генам CAPN1, ОН, LEP ремонтного молодняка крупного рогатого скота мясного направления продуктивности/ Е.С. Суржикова, Д.Д. Евлагина, Т.Н. Михайленко, О.Н. Онищенко // Сельскохозяйственный журнал. - 2023. - № 2 (16). - С. 108-116.

66. Сурундаева, Л.Г. Ранняя диагностика аминокислотного состава мяса крупного рогатого скота по носительству мутации гена САРШ / Л.Г. Сурундаева, Д.Б. Косян, Е.А. Русакова, О.В. Кван, Е.В. Шейда // Современные проблемы науки и образования. - 2014. - № 2. - С. 511-515.

67. Усманова, Е.Н. Производство говядины в специализированном мясном скотоводстве США: монография / Е.Н. Усманова // Киров: Аверс. - 2019. - С. 104.

68. Федоренко, В.Ф. Передовые практики в отечественном племенном животноводстве: научный аналитический обзор / В.Ф. Федоренко, Н.П. Мишуров, Т.Н. Кузьмина, А.И. Тихомиров, С.В. Гуськова, И.Ю. Свинарев, В.А. Бекенев, Ю.А. Колосов, В.И. Фролова, И.В. Большакова // Москва: Российский научно-исследовательский институт информации и технико-экономических исследований по

инженерно-техническому обеспечению агропромышленного комплекса - 2018. -72 с.

69. Шарипов, А.А. Молекулярно-генетические аспекты селекции мясного скота по мраморности мяса / А.А. Шарипов, Ш.К. Шакиров, Ю.Р. Юльметьева, Л.И. Гафурова // Вестник мясного скотоводства. - 2014. - Т. 2. - № 85. - С. 59-64.

70. Шевхужев, А.Ф. Ассоциация однонуклеотидных полиморфизмов в генах LEP, SCD, FABP4 с живой массой у мясного скота калмыцкой породы / А.Ф. Шевхужев, А.А. Каниболоцкая, Л.Н. Скорых, Л.В. Кононова, Д.Н. Вольный // Сельскохозяйственный журнал. - 2023. - № 4(16). - С. 165-178. DOI: 10.48612/FARC/2687-1254/016.4.16.2023

71. Шушарин, В.Ф. Продовольственная безопасность России: направления обеспечения / В.Ф. Шушарин, М.Ю. Вышенский // Вестник Прикамского социального института. - 2020. - Т. 85. - № 1. - С. 115-122.

72. Adhikari, M. Genome-wide association study for carcass weight in pasture-finished beef cattle in Hawai'i / M. Adhikari, M.B. Kantar, R.J. Longman, C.N. Lee, M. Oshiro, K. Caires, Y. He // Frontiers in genetics. - 2023 - № 14. - pp. 1168150. DOI: 10.3389/fgene.2023.1168150

73. Aguilar, I. Frequentist p-values for large-scale-single step genome-wide association, with an application to birth weight in American Angus cattle / I. Aguilar, A. Legarra, F. Cardoso, Y. Masuda, D. Lourenco, I. Misztal // Genetics, selection, evolution. - 2019. - Vol. 51 - № 1. - p. 28. DOI: 10.1186/s12711-019-0469-3

74. Aguilar, I. Hot topic: a unified approach to utilize phenotypic, full pedigree, and genomic information for genetic evaluation of Holstein final score / I. Aguilar, I. Misztal, D.L. Johnson, A. Legarra, S. Tsuruta, T.J. Lawlor // Dairy Sci. - 2010. - Vol. 93. - № 2. - pp. 743-752. DOI: 10.3168/jds.2009-2730

75. Aiello, D. The myostatin gene: An overview of mechanisms of action and its relevance to livestock animals / D. Aiello, K. Patel, E. Lasagna // Animal Genetics. -2018. - № 49. - pp. 505-519. DOI: 10.1111/age.12696

76. Allais, S. The two mutations, Q204X and nt821, of the myostatin gene affect carcass and meat quality in young heterozygous bulls of French beef breeds / S. Allais,

H. Levéziel, N. Payet-Duprat, J.F. Hocquette, J. Lepetit, S. Rousset, C. Denoyelle, C. Bernard-Capel, L. Journaux, A. Bonnot, G. Renand // Animal Genetics. - 2010. - Vol. 88. - № 2. - pp. 446-454. DOI: 10.2527/jas.2009-2385

77. Ananko, E. A. GeneNet: a database on structure and functional organisation of gene networks // E. A. Ananko, N. L. Podkolodny, I. L. Stepanenko, E. V. Ignatieva, O. A. Podkolodnaya, N. A. Kolchanov // Nucleic Acids Res. - 2002. - Vol. 30. - № 1. -pp. 398-401. DOI: 10.1093/nar/30.1.398 EDN: LHNHBZ

78. Anwar, S. Detection of F94L mutation of the MSTN gene in four Indonesian local cattle breeds / S. Anwar, S. Volkandari, A. Wulandari, W. Putra, S. Said // Indonesian Tropical Animal Agriculture. - 2020. - № 45. - p. 7-14. DOI: 10.14710/jitaa.45.1.7-14

79. Baig, M.H. Myostatin and its Regulation: A Comprehensive Review of My-ostatin Inhibiting Strategies / M.H. Baig, K. Ahmad, J.S. Moon, S.Y. Park, J.Ho Lim, H.J. Chun, A.F. Qadri, Y.C. Hwang, A.T. Jan, S.S. Ahmad, S. Ali, S. Shaikh, E.J. Lee, I. Choi // Front Physiol. - 2022. - № 13. - p. 876078. DOI: 10.3389/fphys.2022.876078

80. Barendse, W. The growth hormone 1 GH1: c. 457C> G mutation is associated with intramuscular and rump fat distribution in a large sample of Australian feedlot cattle / W. Barendse, R.J. Bunch, B.E. Harrison, M.B. Thomas // Animal Genetics. -2006. - Vol. 37. - № 3. - pp. 211-214. DOI: 10.1111/j.1365-2052.2006.01432.x

81. Barendse, W. The effect of genetic variation of the retinoic acid receptorre-lated orphan receptor C gene on fatness in cattle / W. Barendse, R.J. Bunch, J.W. Kijas, M.B. Thomas // Genetics. - 2007. - Vol. 175. - № 2. - pp. 843-853. DOI: 10.1534/ge-netics.106.064535

82. Barton, L. Associations of polymorphisms in bovine DGAT1, FABP4, FASN, and PPARGC1A genes with intramuscular fat content and the fatty acid composition of muscle and subcutaneous fat in Fleckvieh bulls / L. Barton, D. Bures, T. Kott, D. Rehak // Meat Science. - 2016. - № 114. - pp. 18-23. DOI: 10.1016/j.meatsci.2015.12

83. Bhat, Z.F. Role of calpain system in meat tenderness: A review / Z.F. Bhat, J.D. Morton, S.L. Mason, A.E. Bekhit // Food Science and Human Wellnes. - 2018. -Vol. 7. - № 3. - pp. 196-204. DOI: 10.1016/j.fshw.2018.08.002

84. Bongiorni, S. Structural and Dynamic Characterization of the C313Y Mutation in Myostatin Dimeric Protein, Responsible for the "Double Muscle" Phenotype in Piedmontese Cattle / S. Bongiorni, A. Valentini, G. Chillemi // Frontiers in genetics, 2016. - № 7. - p. 14. DOI: 10.3389/fgene.2016.00014

85. Buchanan, F.C. Association of a missense mutation in the bovine leptin gene with carcass fat content and leptin mRNA levels / F.C. Buchanan, C.J. Fitzsimmons, A.G. Van Kessel, T.D. Thue, D.C. Winkelman-Sim, S.M. Schmutz // Genetics Selection Evolution. - 2002. - № 34. - pp. 105-116. DOI: 10.1186/1297-9686-34-1-105

86. Butler, A.A. Control of growth by the somatropic axis: growth hormone and the insulinlike growth factors have related and independent roles / A.A. Butler, D.L. Roith // Annual review of physiology. 2001. - Vol. 63. - № 1. - pp. 141-164. DOI: 10.1146/an-nurev.physiol .63.1.141

87. Buzanskas, M.E. Genome-Wide Association for Growth Traits in Canchim Beef Cattle // M.E. Buzanskas, D.A. Grossi, R.V. Ventura, F.S. Schenkel, M. Sargolzaei, S.L.C. Meirelles, F.B. Mokry, R.H. Higa, M.A. Mudadu, M.V.G.B. Silva, S.C.M. Niciura, R.A.A. Torres Júnior, M.M. Alencar, L.C.A. Regitano, D.P. Munari // PLoS ONE. - 2014. -Vol. 9. - № 4. - p. e94802. DOI: 10.1371/journal.pone.0094802

88. Casas, E. Effects of calpastatin and micro-calpain markers in beef cattle on tenderness traits / E. Casas, S. N. White, T. L. Wheeler, S. D. Shackelford, M. Koohmaraie, D. G. Riley, C. C. Chase, D. D. Johnson, T. P. Smith // Animal Science. -2006. - № 84. - pp. 520-525. DOI: 10.2527/2006.843520x

89. Ceccobelli, S. Effect of Myostatin Gene Mutation on Slaughtering Performance and Meat Quality in Marchigiana Bulls / S. Ceccobelli, F. Perini, M.F. Trombetta, S. Tavoletti, E. Lasagna, M. Pasquini // Animals. - 2022. - Vol. 12. - № 4. - p. 518. DOI: 10.3390/ani12040518

90. Chacko, E. Genome-wide analysis of alternative splicing in cow: implications in bovine as a model for human diseases / E. Chacko, S. Ranganathan // BMC Genomics. - 2009. - Vol. 10. - № 3. - S11. DOI: 10.1186/1471-2164-10-S3-S11

91. Chen, M.M. Regulation of myostatin on the growth and development of skeletal muscle / M.M. Chen, Y.P. Zhao, Y. Zhao, S.L. Deng, K. Yu // Frontiers in Cell and Developmental Biology. - 2021. - № 9. - p. 785712. DOI: 10.3389/fcell.2021.785712

92. Chung, H. Y. A DNA polymorphism of the bovine calpastatin gene detected by SSCP analysis // H. Y. Chung, M. E. Davis, H. C. Hines // Animal Genetics. 1999. -Vol. 30. - № 1. - pp. 80-81.

93. Cieploch, A. Genetic disorders in beef cattle: a review / A. Cieploch, K. Rutkowska, J. Oprz^dek, E. Polawska // Genes Genomics. - 2017. - Vol. 39. - № 5. -pp. 461-471. DOI: 10.1007/s13258-017-0525-8

94. Curi, R.A. Candidate SNPs for carcass and meat traits in Nelore animals and in their crosses with Bos taurus / R.A. Curi, M.M. Krauskopf, J.C. Hadlich, M. R. S. Fortes, D. M. Vankan, J. A.V. Silva, H. N. Oliveira, M. D. S. Mota // Pesquisa Agropecuaria Brasileira. - 2012. - № 47. - pp. 294-301. DOI: 10.1590/S0100-204X2012000200019

95. Daetwyler, H.D. Whole-genome sequencing of234 bulls facilitates mapping of monogenic and complex traits in cattle / H.D. Daetwyler, A. Capitan, H. Pausch et al. // Nature Genetics. - 2014. - Vol. 46. - № 8. - pp. 858-865. DOI: 10.1038/ng.3034

96. Davey, J.W. Genome-wide genetic marker discovery and genotyping using next-generation sequencing. Nature reviews / J.W. Davey, P.A. Hohenlohe, P.D. Etter, J.Q. Boone, J.M. Catchen, M.L. Blaxter // Genetics. - 2011. - Vol. 12. - № 7. - pp. 499510. DOI: 10.1038/nrg3012

97. Dunner, S. Haplotype diversity of the myostatin gene among beef cattle breeds / S. Dunner, M.E. Miranda, Y. Amigues, J. Canon, M. Georges, R. Hanset, J. Williams, F. Menissier // Genetics. Selection. Evolution. - 2003. - № 35. - pp. 103-118. DOI: 10.1186/1297-9686-35-1-103

98. Dzhulamanov, M. K. Influence of bull genotypes by genes CAPN1, CAST and TG5 on amino acid and fatty acid compositions of meat in descendants of the Kazakh white-headed breed / M. K. Dzhulamanov, A. S. Makaev, N. Gerasimov // Animal Husbandry and Fodder Production. - 2020. - Vol. 03. - № 4. - pp. 74-84. DOI: 10.33284/2658-3135-103-4-74

99. Dzhulamanov, K. Polymorphisms of CAPN1, CAST, GDF5, TG5 and GH genes in Russian Hereford cattle / M. K. Dzhulamanov, N. Gerasimov, M. Dubovskova, A. Baktygalieva // Bulgarian Journal of Agricultural Science. - 2019. - Vol. 25. - № 2. - pp. 375-379.

100. Elsik, C.G. The Genome Sequence of Taurine Cattle: A Window to Ruminant Biology and Evolution / C.G. Elsik, L. Tellam Ross, K.C. Worley et al. // Bovine Genome Sequencing and Analysis Consortium. Science. - 2009 - Vol. 324. - № 5926. -pp. 522-528. DOI: 10.1126/science.1169588

101. Esmailizadeh, A.K. Effects of the myostatin F94L substitution on beef traits / A.K. Esmailizadeh, C.D.K. Bottema, G.S. Sellick, A.P. Verbyla, C.A. Morris, N.G. Cul-len, W.S. Pitchford // Animal Science. - 2008 - Vol.86. - № 5. - pp. 1038-1046. DOI: 10.2527/jas.2007-0589

102. Evrony, G.D. Single-neuron sequencing analysis of L1 retrotransposition and somatic mutation in the human brain / G.D. Evrony, X. Cai, E. Lee, L.B. Hills, P.C. Elhosary, H.S. Lehmann, J.J. Parker, K.D. Atabay, E.C. Gilmore, A. Poduri, Park P.J., Walsh C.A. // Cell. - 2012. - Vol. 151. - № 3. - pp. 483-496. DOI: 10.1016/j.cell.2012.09.035

103. Foote, A.P. Relationship of leptin concentrations with feed intake, growth, and efficiency in finishing beef steers / A.P. Foote, K.E. Hales, Kuehn L.A. et al. // Animal Science. - 2015. - Vol. 93. - № 9. - pp. 4401-4407. DOI: 10.2527/jas.2015-9339

104. Georges, M. Mapping quantitative trait loci controlling milk production in dairy cattle by exploiting progeny testing / M. Georges, D. Nielsen, M. Mackinnon, A. Mishra, R. Okimoto, A.T. Pasquino, L.S. Sargeant, A. Sorensen, M.R. Steele, X. Zhao, J.E. Womack, L. Hoeschele // Genetics. - 1987 - 139. - pp. 907-920.

105. Gerasimov, N. Influence of single nucleotide polymorphisms LEP C528T and LEP C73T of the leptin gene on the assessment of the quality of carcasses and the yield of meat cuts in the Angus cows and heifers / N. Gerasimov, V. Kolpakov, M. K. Dzhulamanov, A. Lapshina // Animal Husbandry and Fodder Production. - 2020. - № 103. - pp. 96-108. DOI: 10.33284/2658-3135-103-4-96

106. Giblin, L. Association of bovine leptin polymorphisms with energy output and energy storage traits in progeny tested Holstein-Friesian dairy cattle sires / L. Giblin, S. Butler, B. Kearney, S. Waters, M. Callanan, D. Berry // BMC Genetics. - 2010. - № 11. - p. 73. DOI: 10.1186/1471-2156-11-73

107. Grobet, L. A deletion in the bovine myostatin gene causes the double-muscled phenotype in cattle / L. Grobet, L.J.R. Martin, D. Poncelet, D. Pirottin, B. Brouwers, J. Riquet, A. Schoeberlein, S. Dunner, F. Ménissier, J. Massabanda, R. Fries, R. Hanset, M. Georges // Nature Genetics. - 1997. - Vol. 17. - № 1. - pp. 71-74. DOI: 10.1038/ng0997-71

108. Hales, K.E. Effects of the F94L Limousin associated myostatin gene marker on metabolic index in growing beef heifers / K.E. Hales, R. Tait, L.P. Amanda, R.A. Cushman, H.C. Freetly, B.B. Tami, B. Gary // Animal Science. - 2020. - № 36. - pp. 851-856. DOI: 10.15232/aas.2020-02046

109. Hales, K.E. Effects of the F94L Limousin associated myostatin gene marker on metabolic index in growing beef heifers // K.E. Hales, R. G. Tait, A. K. Lindholm-Perry, R.A. Cushman, H.C. Freetly, T. M. Brown-Brandl, G. L. Bennett // Applied Animal Science. - 2020. - № 36. - pp. 851-856. DOI: 10.15232/aas.2020-02046

110. Higgins, M.G. GWAS and eQTL analysis identifies a SNP associated with both residual feed intake and GFRA2 expression in beef cattle / M.G. Higgins, C. Fitzsimons, M.C. McClure, C. McKenna, S. Conroy, D.A. Kenny, M. McGee, S.M. Waters, D.W. Morris // Scientific reports. - 2018. - Vol. 8. - № 1. - p. 14301. DOI: 10.1038/s41598-018-32374-6

111. Hou, G. Association of calpain 1 (CAPN1) and HRSP12 allelic variants in beef cattle with carcass traits / G. Hou, M. Huang, X. Gao, J. Li, H. Gao, H. Ren, S. Xu // African Journal of Biotechnology. - 2011. - Vol. 10. - № 63. - pp. 13714-13718. DOI: 10.5897/AJB11.338

112. Jahuey-Martinez, F.J. Signatures of selection in Charolais beef cattle identified by genome-wide analysis / F.J. Jahuey-Martinez, G.M. Parra-Bracamonte, A.M. Sifuentes-Rincon, V.R. Moreno-Medina // Anim. Breed. Genet. - 2019. - Vol.136. - № 5. - pp. 378-389. DOI: 10.1111/jbg.12399

113. Jiang, Z. Significant associations of stearoyl-CoA desaturase (SCD1) gene with fat deposition and composition in skeletal muscle / Z. Jiang, J.J. Micha, D.J. Tobey, T.F. Daniels, D.C. Rule, M.D. Macneil // International journal of biological sciences. -2008. - Vol. 4. - № 6. - pp. 345-351. DOI: 10.7150/ijbs.4.345

114. Keogh, K. Genome-wide association study of economically important traits in charolais and limousin beef cows / K. Keogh, T.R. Carthy, M.C. McClure, S.M. Waters, D.A. Kenny // Animal. - 2021. - Vol. 15. - № 1. - p. 100011. DOI: 10.1016/j.ani-mal.2020.100011

115. Khasanah, H. Polymorphism of Myostatin (MSTN) Promoter Gene and its Association with Growth and Muscling Traits in Bali Cattle / H. Khasanah, A. Gunawan, R. Priyanto, M. F. Ulum, J. Jakaria // Media Peternakan. - 2016. - № 39. - pp. 95-103. DOI: 10.5398/medpet.2016.39.2.95

116. Khatib, H. Single gene and gene interaction effects on fertilization and embryonic survival rates in cattle / H. Khatib, W. Huang, X. Wang, A.H. Tran, A.B. Bindrim, V. Schutzkus, R.L. Monson, B.S. Yandell // Dairy Science. - 2009. - Vol. 92. - № 5. -pp. 2238-2247. DOI: 10.3168/jds.2008-1767

117. Komisarek, J. Impact of leptin gene polymorphisms on breeding value for milk production traits in cattle / J. Komisarek, J. Szyda, Michalak A., Dorynek Z. // Animal and Feed Sciences. - 2005. - Vol. 14. - № 3. - pp. 491-500. DOI: 10.22358/JAFS/67042/2005

118. Konovalova, E. N. DNA analysis of the Russian populations of Aberdeen Angus, Hereford and Belgian Blue cattle / E. N. Konovalova, O. S. Romanenkova, V.V. Volkova, O.V. Kostyunina // Archives Animal Breeding. - 2020. - № 63. - pp. 409-416. DOI: 10.5194/aab-63-409-2020

119. Konovalova, E. The molecular bases study of the inherited diseases for the health maintenance of the beef cattle / E. Konovalova, O. Romanenkova, O. Kostyunina, E. Gladyr // Genes. - 2021. - Vol. 12. - № 5. DOI: 10.3390/genes12050678

120. Konovalova, E. Genetic variations and haplotypic diversity in the myostatin gene of different cattle breeds in Russia / E. Konovalova, O. Romanenkova, A. Zimina,

V. Volkova, A. Sermyagin // Animals. - 2021. - Vol. 11. - № 10. DOI: 10.3390/ani11102810

121. Kovalyuk, N.V. Influence of polymorphism of R25C and Y7F loci of the leptin gene on the duration of economic use of the Ayrshire cattle / N.V. Kovalyuk, E.V. Machulskaya, V.F. Satsuk, Yu.Yu. Shakhnazarova // Russian Agricultural Sciences. -

2017. - Vol. 43. - № 6. - pp. 494-496 DOI: 10.3103/S1068367417060064

122. Kolpakov, V. Analysis of Runs of Homozygosity in Aberdeen Angus Cattle / V. Kolpakov, A. Ruchay, D. Kosyan, E. Bukareva // Animals. - 2024. - Vol. 14. - № 15. - pp. 2153. DOI 10.3390/ani14152153

123. Kratzsch, J. Circulating soluble leptin receptor and free leptin index during childhood, puberty, and adolescence / J. Kratzsch, A. Lammert, A. Bottner, B. Seidel, G. Mueller, J. Thiery, J. Hebebrand, W. Kiess // Clinical Endocrinology and Metabolism. -2002. - Vol. 87. - № 10. - pp. 4587-4594. DOI: 10.1210/jc.2002-020001

124. Lai, S.J. Genetic diversity and origin of Chinese cattle revealed by mtDNA D-loop sequence variation / S.J. Lai, Y.P. Liu, Y.X. Liu, X.W. Li, Y.G. Yao // Molecular Phylogenetics and Evolution. - 2006. - № 38. - pp. 146-154.

125. Leal-Gutiérrez, J.D. Association of ^-calpain and calpastatin polymorphisms with meat tenderness in a Brahman-Angus population / J.D. Leal-Gutiérrez, M.A. Elzo, D.D. Johnson, T.L. Scheffler, J.M. Scheffler, R.G. Mateescu // Frontiers in Genetics. -

2018. - № 9. - p. 56. DOI: 10.3389/fgene.2018.00056

126. Lee, J. Muscle Hyperplasia in Japanese Quail by Single Amino Acid Deletion in MSTN Propeptide / J. Lee, D.H. Kim, K. Lee // International Journal of Molecular Sciences - 2020. - Vol. 21. - № 4. - pp. 1504. DOI: 10.3390/ijms21041504

127. Lee, J. Increasing the accuracy of genomic prediction in pure-bred Limousin beef cattle by including cross-bred Limousin data and accounting for an F94L variant in MSTN / J. Lee, D.H. Kim, D.J. Garrick // Animal Genetics. - 2019. - Vol. 50. - № 6. -pp. 621-633. DOI: 10.1111/age.12846

128. Legarra, A. A relationship matrix including full pedigree and genomic information / A. Legarra, I. Aguilar, I. Misztal // Dairy Science. - 2009. - № 92. - pp. 46564663. DOI: 10.3168/jds.2009-2061

129. Legarra, A. Single Step, a general approach for genomic selection / A. Le-garra, O.F. Christensen, I. Aguilar, I. Misztal // Livest. J. Science. - 2014. - № 166. - pp. 54-65. DOI: 10.1016/j.livsci.2014.04.029

130. Liefers, S. Association of leptin gene polymorphisms with serum leptin concentration in dairy cows / S. Liefers, M.T. Pas, R. Veerkamp, Y. Chilliard, C. Delavaud, R. Gerritsen, T. van der Lende // Mammalian Genome. - 2003. - № 14. - pp. 657-663 DOI: 10.1007/s00335-003-2275-y

131. Lines, D.S. Limousin myostatin F94L variant affects semitendinosus tenderness / D.S. Lines, W.S. Pitchford, Z.A. Kruk, C.D. Bottema // Meat science. - 2009. -Vol. 81. - № 1. - pp. 126-131. DOI: 10.1016/j.meatsci.2008.07.007

132. Lu, D. Accuracy of genomic predictions for feed efficiency traits of beef cattle using 50K and imputed HD genotypes / D. Lu, E.C. Akanno, J. Crowley, F. Schenkel, H. Li, M. De Pauw, S. Moore, Z. Wang, C. Li, P. Stothard, G. Plastow, S. Miller, J. Basarab // Animal Science. - 2016. - Vol. 94. - № 4. - pp. 1342-1353. DOI: 10.2527/jas.2015-0126

133. Lusk, J.L. Association of single nucleotide polymorphisms in the leptin gene with body weight and backfat growth curve parameters for beef cattle / J.L. Lusk // Animal Science. - 2007. - Vol. 85. - № 8. - pp. 1865-1872. DOI: 10.2527/jas.2006-665

134. Lysenko, N. G. Association of calpain and calpastatin genes with exterior traits of Aberdeen-Angus / N. G. Lysenko, A. I. Kolisnyk, I. V. Goraichuk, S. Y. Ruban, A. M. Fedota // Factors in Experimental Evolution of Organisms. - 2016. - 18. - pp. 111116.

135. Matsuhashi, T. Effects of bovine fatty acid synthase, stearoyl-coenzyme A desaturase, sterol regulatory element-binding protein 1, and growth hormone gene polymorphisms on fatty acid composition and carcass traits in Japanese Black cattle / T. Mat-suhashi, S. Maruyama, Y. Uemoto, N. Kobayashi, H. Mannen, T. Abe, Sakaguchi S., E. Kobayashi // Animal Science. - 2011. - Vol. 89. - № 1. - pp. 12-22. DOI: 10.2527/jas.2010-3121

136. Matukumalli, L.K. Development and Characterization of a High-Density SNP Genotyping Assay for Cattle / L.K. Matukumalli, C.T. Lawley, R.D. Schnabel, J.F.

Taylor, M.F. Allan, M.P. Heaton, J. O'Connell, S.S. Moore, T.P. Smith, T.S. Sonstegard, C.P. Van Tassell // PLOS ONE. - 2009. - 4. - № 4. - pp. 5350-5355. DOI: 10.1371/jour-nal.pone.0005350

137. McClure, M.C. Genome-wide association analysis for quantitative trait loci influencing Warner-Bratzler shear force in five taurine cattle breeds / M.C. McClure, H.R. Ramey, M.M. Rolf, S.D. McKay, J.E. Decker, R.H. Chapple, J.W. Kim, T.M. Taxis, R.L. Weaber, R.D. Schnabel, J.F. Taylor // Animal genetics. - 2012. - 43. - № 6. - pp. 662673.

138. McPherron, A.C. Double muscling in cattle due to mutations in the myostatin gene / A.C. McPherron, S.J. Lee // Proceedings of the National Academy of Science USA. - 1997. - № 94. - pp. 12457-12461.

139. Meuwissen, T.H. Prediction of total genetic value using genome-wide dense marker maps / T.H. Meuwissen, B.J. Hayes, M.E. Goddard // Genetics. - 2001. - Vol. 157. - № 4. - pp. 1819-1829. DOI: 10.1093/genetics/157.4.1819

140. Miszta, I. Shortage of Quantitative Geneticists in Animal Breeding / I. Miszta // Animal Breeding and Genetics. - 2018. - Vol. 124. - № 5. - pp. 255-256. DOI: 10.1111/j.1439-0388.2007.00679

141. Misztal, I. Current status of genomic evaluation/ I. Misztal, D. Lourenco, A. Legarra // Animal Science. - 2020. - № 98. - p. 32267923. DOI: 10.1093/jas/skaa101

142. Moravcikova, N. Analysis of selection signatures in the beef cattle genome / N. Moravcikova, R. Kasarda, L. Vostry, Z. Krupova, E. Krupa, K. Lehocka, B. Olsanska, A. Trakovicka, R. Nadasky, R. Zidek, L. Belej, J. Golian // Czech Journal of Animal Science. - 2019. - 64. - № 12. - pp. 491-503. DOI: 10.17221/226/2019-CJAS

143. Mota, L.F.M. Circulating leptin and its muscle gene expression in Nellore cattle with divergent feed efficiency / L.F.M. Mota, C.M. Bonafé, P.A. Alexandre, M.H. Santana, F.J. Novais, E. Toriyama, A.V. Pires, S.L. Silva, P.R. Leme, J.B.S. Ferraz, H. Fukumasu // Animal Science and Biotechnology. - 2017. - № 8. - p. 71. DOI: 10.1186/s40104-017-0203-3

144. Mrode, R. Genomic selection and use of molecular tools in breeding programs for indigenous and crossbred cattle in developing countries: current status and

future prospects (review article) / R. Mrode, J.M.K. Ojango, A.M. Okeyo, J.M. Mwacharo // Frontiers Genetics Section Livestock Genomics. - 2019. - № 9. DOI: 10.3389/fgene.2018.00694

145. NAMI (North American Meat Institute): [сайт]. URL: https://www.meatin-stitute.org/?p=578. (дата обращения: 12.11.2023). - Текст: электронный.

146. Negrini, R. Tuscany autochthonous cattle breeds: an original genetic resource investigated by AFLP markers / R. Negrini, E. Milanesi, R. Bozzi, M. Pellecchia, P. Ajmone-Marsan // Animal Breeding and Genetics. - 2006. - № 123. - pp. 10-16.

147. Page, B.T. Evaluation of single-nucleotide polymorphisms in CAPN1 for association with meat tenderness in cattle / B.T. Page, E. Casas, M.P. Heaton, N.G. Cullen, D.L. Hyndman, C.A. Morris, A.M. Crawford, T.L. Wheeler, M. Koohmaraie, J.W. Keele, T.P. Smith // Animal Science. - 2002. - 80. - Vol. 12. - pp. 3077-3085. DOI: 10.2527/2002.80123077x

148. Prihandini, P.W. Genetic variation in the first intron and exon of the myostatin gene in several Indonesian cattle populations / P.W. Prihandini, A. Primasari, A. Aryogi, J. Efendy, M. Luthfi, D. Pamungkas, D.N.H. Hariyono // Veterinary World. -2021. - Vol. 14. - № 5. - pp. 1197-1201. DOI: 10.14202/vetworld.2021.1197-1201

149. Ryan, C.A. Associations between polymorphisms in the myostatin gene with calving difficulty and carcass merit in cattle / C.A. Ryan, D.C. Purfield, S. Naderi, D.P. Berry // Animal Science. - 2023. - Vol.101 - p. skad371. DOI: 10.1093/jas/skad371

150. Saatchi, M. Large-effect pleiotropic or closely linked QTL segregate within and across ten US cattle breeds / M. Saatchi, R.D. Schnabel, J.F. Taylor, D.J. Garrick // BMC Genomics. - 2014. - № 15. - p. 442. DOI: 10.1186/1471-2164-15-442

151. Saiful, A. Status of the F94L mutation of the myostatin gene in cattle breeds in Indonesia / A. Saiful, K. Isyana, M. Tulus, S.W. Ari, D.V. Slamet, W. P. Koko, K. Titiek, P.B.P. Widya, S. Edy, S. Syahruddin // AIP Conf. Proc. - 2023. - Vol. 2606. - № 1. - p. 040015. DOI: 10.1063/5.0118379

152. Seabury, C.M. Genome-wide association study for feed efficiency and growth traits in U.S. beef cattle / Seabury C.M., Oldeschulte D.L., Saatchi M. J.E. Beever, J.E. Decker, Y.A. Halley, E.K. Bhattarai, M. Molaei, H.C. Freetly, S.L. Hansen, H.

Yampara-Iquise, K.A. Johnson, M.S. Kerley, J. Kim, D.D. Loy, E. Marques, H.L. Neibergs, R.D. Schnabel, D.W. Shike, M.L. Spangler, R.L. Weaber, D.J. Garrick, J.F. Taylor // BMC Genomic. - 2017. - Vol. 18. - № 1. - p. 386. DOI: 10.1186/s12864-017-3754-y

153. Sedykh, T.A. Influence of TG5 and LEP gene polymorphism on quantitative and qualitative meat composition in beef calves / T.A. Sedykh, L. Kalashnikova, I.V. Gusev, I. Yu. Pavlova, R.S. Gizatullin, I. Yu. Dolmatova // Iraqi Journal of Veterinary Sciences. - 2016. - № 30. - pp. 41-48. DOI: 10.33899/ijvs.2016.121382

154. Sellick, G.S. Effect of myostatin F94L on carcass yield in cattle: MSTN effects on beef yield / G.S. Sellick, W.S. Pitchford, C.A. Morris, N.G. Cullen, A.M. Crawford, H.W. Raadsma, C.D.K. Bottema // Animal Genetics. - 2007. - Vol. 38. - № 5. -pp. 440-446. DOI: 10.1111/j.1365-2052.2007.01623.x

155. Shakirov, S.K. Molecular and genetic aspects of meat cattle selection by marbling Bull / S.K. Shakirov // Meat Cattle Breeding. - 2014. - № 2. - pp. 59-64.

156. Smith, J.L. Genome-wide association and genotype by environment interactions for growth traits in US gelbvieh cattle / J.L. Smith, M.L. Wilson, S.M. Nilson, T.N. Rowan, D.L. Oldeschulte, R.D. Schnabel, J.E. Decker, C.M. Seabury // BMC Genomics. - 2019. - Vol. 20. - № 1. - pp. 926-1013. DOI: 10.1186/s12864-019-6231-y

157. Smith, T. Single nucleotide polymorphisms in Brahman steers and their association with carcass and tenderness traits / T. Smith, M.G. Thomas, T.D. Bidner, J.C. Paschal, D.E. Franke // Genetics and Molecular Research. - 2009 - Vol. 8. - № 1. - pp. 39-46. DOI: 10.4238/vol8-1gmr537

158. Srikanth, K. A gene-set enrichment and protein-protein interaction network-based GWAS with regulatory SNPs identifies candidate genes and pathways associated with carcass traits in hanwoo cattle / K. Srikanth, S. Lee, K. Chung, J. Park, G. Jang, M. Park, N. Kim, T. Kim, H. Chai, W. Park, D. Lim // Genes. - 2020. - Vol. 11. - № 3. - p. 316. DOI: 10.3390/genes 11030316

159. Stock, J. A Review of Genomic Models for the Analysis of Livestock Crossbred Data / J. Stock, J. Bennewitz, D. Hinrichs, R. Wellmann // Frontiers Genetics. -2020. - № 11. - p. 568. DOI: 10.3389/fgene.2020.00568

160. Sun, X. Effects of polymorphisms in CAPN1 and CAST genes on meat tenderness of Chinese Simmental cattle / X. Sun, X. Wu, Y. Fan, Y. Mao, D. Ji, B. Huang, Z. Yang // Arch. Anim. Breed. - 2018. - Vol. 61. - № 4. - pp. 433-439. DOI: 10.5194/aab-61-433-2018

161. Sycheva, I. Effect of TG5 and LEP polymorphisms on the productivity, chemical composition, and fatty acid profile of meat from Simmental bulls / I. Sycheva, E. Latynina, A. Mamedov, O. Tsibizova, Y. Kozak, D. Svistounov, I. Bystrenina, A. Or-ishev // Veterinary World. - 2023. - № 16. - pp. 1647-1654. D0I:10.14202/vet-world.2023. 1647-1654

162. Taniguchi, Y. Genomic structure and promoter analysis of the bovine leptin gene / Y. Taniguchi, T. Itoh, T. Yamada, Y. Sasaki // IUBMB Life. - 2002. - Vol. 53. -№ 2. - pp. 131-135. DOI: 10.1080/15216540211465

163. Terry, S.A. Strategies to improve the efficiency of beef cattle production / S.A. Terry, J.A. Basarab, L.L. Guan, T.A. McAllister // Can. Animal Science. - 2020. -№ 101. - pp. 1-19. DOI: 10.1139/cjas-2020-0022

164. Tian, J. Association of the leptin gene E2-169T>C and E3-299T>A mutations with carcass and meat quality traits of the Chinese Simmental-cross steers / J. Tian, Z. Zhao, L. Zhang, Q. Zhang, Z. Yu, J. Li, R. Yang // Gene. - 2013. - Vol. 518. - № 2. -pp. 443-448. DOI: 10.1016/j.gene.2012.11.071

165. Tousová, R. The selected factors influenced growth ability to weaning of Aberdeen Angus cattle / R. Tousová, J. Duchácek, L. Stádník, M. Ptácek, J. Beran // Acta Universitatis Agriculturae et Silviculturae Mendelianae Brunensis. - 2015. - Vol. 63. -№ 2. - pp. 457-461. DOI: 10.11118/actaun201563020457

166. Uriarte, J. S. Asociacion de polimorfismos en los genes CAPN y CAST con propiedades fisicoquimicas de la carne bovina una revision / J. S. Uriarte, I. S. C. Colca, D. Q. Clavel // CES Medicina Veterinaria y Zootecnia. - Vol. 16. - № 1. - pp. 8-28. DOI: 10.21615/cesmvz.16.1.1

167. Van Raden, P.M. Efficient methods to compute genomic predictions / P.M. Van Raden // Dairy Science. - 2008. - № 91. - pp. 4414-4423. DOI: 10.3168/jds.2007-0980

168. Van Tassell, C.P. SNP discovery and allele frequency estimation by deep sequencing of reduced representation libraries / C.P. Van Tassell, T.P. Smith, L.K. Matukumalli, J.F. Taylor, R.D. Schnabel, C.T. Lawley, C.D. Haudenschild, S.S. Moore, W.C. Warren, T.S. Sonstegard // Nature Methods. - 2008. - № 5. - pp. 247-252. DOI: 10.1038/nmeth.1185

169. Wang, L. Associations between UASMS2 polymorphism in leptin gene and growth, carcass and meat quality traits of cattle: a meta-analysis / L. Wang, S.H.A. Raza, L. Gui, S. Li, X. Liu, X. Yang, S. Wang, L. Zan, C. Zhao // Anim Biotechnol. - 2022. -Vol.33. - № 2. - pp. 279-288. DOI: 10.1080/10495398.2020.1805327

170. W^glarz, A. Associations of CAST, CAPN1 and MSTN genes polymorphism with slaughter value and beef quality, a review / A. W<?glarz, A. Balakowska, D. Kulaj, J. Makulska // Annals of Animal Science. - 2020. - Vol. 20. - № 3. - pp. 757-774. DOI: 10.2478/aoas-2020-0006

171. White, S.N. A new single nucleotide polymorphism in CAPN1 extends the current tenderness marker test to include cattle of Bos indicus, Bos taurus, and crossbred descent / S.N. White, E. Casas, T.L. Wheeler, S.D. Shackelford, M. Koohmaraie, D.G. Riley, C.C. Jr. Chase, D.D. Johnson, J.W. Keele, T.P.L. Smith // Animal Science. - 2005. - Vol. 83. - № 9. - pp. 2001-2008. DOI: 10.2527/2005.8392001x

172. Wiener, P. The effects of a mutation in the myostatin gene on meat and carcass quality / P. Wiener, J.A. Woolliams, A. Frank-Lawale, M. Ryan, R.I. Richardson, G.R. Nute, J.D. Wood, D. Homer, J.L. Williams // Meat Science. - 2009. - Vol. 83. - № 1. - pp. 127-134. DOI: 10.1016/j.meatsci.2009.04.010

173. Zhang, F. Genetic architecture of quantitative traits in beef cattle revealed by genome wide association studies of imputed whole genome sequence variants: I: feed efficiency and component traits / F. Zhang, Y. Wang, R. Mukiibi, L. Chen, M. Vinsky, G. Plastow, J. Basarab, P. Stothard, C. Li // BMC Genomics. - 2020. - Vol. 21. - № 36. DOI: 10.1186/s 12864-019-6362-1

174. Zhang, J. The soluble leptin receptor neutralizes leptin-mediated STAT3 signalling and anorexic responses in vivo / J. Zhang, P.J. Scarpace // British Journal of

Pharmacology. - 2009. - Vol. 158. - № 2. - pp. 475-482. DOI: 10.1111/j.1476-5381.2009.00246.x

175. Zhang, M. Leptin and leptin receptor gene polymorphisms are correlated with production performance in the Arctic fox / M. Zhang, X.J. Bai // Genetics and Molecular Research. - 2015. - Vol.14. - № 2. - pp. 5560-5570. DOI: 10.4238/2015.May.25.7

Структура рациона для ремонтного молодняка ООО «КФХ «Хэппи Фарм»

Корма Норма дачи на голову/сутки

Ремонтный молодняк в возрасте 4-10 месяцев

Сено разнотравное злаковое, кг 3,4

Силос кукурузный, кг (зимний период) 7,0

Травяная резка, кг (летний период) 10,0

Комбикорм, кг 3,4

БМВК, кг 0,1

Ремонтный молодняк в возрасте 11-18 месяцев

Сено разнотравное злаковое, кг 5,0

Силос кукурузный, кг (зимний период) 9,0

Травяная резка, кг (летний период) 15,0

Комбикорм, кг 4,4

БМВК, кг 2,0

ПРИЛОЖЕНИЕ 1

Структура рациона для маточного поголовья _ООО «КФХ «Хэппи Фарм»_

Корма Норма дачи на голову/сутки

Летний период

Травяная резка ,кг 40,0-45,05

Сено разнотравное злаковое, кг 5,0-6,0

БМВК, кг 2,0

Переходный период (весна-осень)

Сено разнотравное злаковое, кг 7,0

Сенаж разнотравный, кг 15,0

Зерносмесь, кг 3,0

БМВК, кг 2,5

Зимний период

Силос кукурузный, кг 8,0

Сенаж разнотравный, кг 11,0

Сено разнотравное злаковое, кг 7,0

Зерносмесь, кг 3,0

БМВК, кг 2,0

Структура рациона для ремонтного молодняка _АО «АПФ «Наша Житница»_

Корма Норма дачи на голову/сутки

Ремонтный молодняк в возрасте 4-10 месяцев

Сено разнотравное злаковое, кг 2,0

Силос кукурузный, кг 10,0

Сенаж разнотравный, кг 12,5

Травяная гранула, кг 1,0

Зерносмесь, кг ОД

БМВК, кг 0,5

Премикс КРС 462, для молодняка, кг 0,05

Ремонтный молодняк в возрасте 11-18 месяцев

Сено разнотравное злаковое, кг 6,0

Силос кукурузный, кг 15,5

Сенаж разнотравный, кг 21,5

Травяная гранула, кг 8,0

Зерносмесь, кг 2,5

БМВК, кг 2,0

Премикс КРС 462, для молодняка, кг 0,07

Структура рациона для маточного поголовья АО «АПФ «Наша Житница»

Корма Норма дачи на голову/сутки

Летний период

Трава искусственные пастбища, кг 50,0-55,0

Премикс пастбищный 1 %, кг ОД

Переходный период (весна-осень)

Сено разнотравное злаковое, кг 7,0

Сенаж разнотравный, кг 17,0

Зерносмесь, кг 4,0

Премикс КРС 463, 1 %, кг 0,4

Зимний период

Силос кукурузный, кг 20,0

Сенаж разнотравный, кг 8,0

Зерносмесь, кг 4,0

Премикс КРС 463, 1 %, кг 0,4

Результаты бонитировки абердин ангусской породы за 2023 год ООО «КФХ «Хэппи Фарм» и АО «АПФ «Наша Житница»

Породный и классный состав ООО «КФХ «Хэппи Фарм» за 2023 год

Информационно-аналитическая система животноводства. Мясной скот Область Калужски обл. Район Медынский

Кзтб! орияхозяйсгва Пгамрепродуктор Порода 76-Айердин ангусская

Хозяйство ООО "КФХ 'Хэппи Фарм"

Приложение!

ПОРОДНЫЙ И КЛАССНЫЙ СОСТАВ КРС В 2023 ГОДУ

В том числе распределено

Группажийотных Шифр Всего по породности по классам

чистопородные и ¡V покоя II! поколение II ПОКОЛЕНИЕ I поколение элита-рекорд элита 1 класс 2 класс вне класса

А в С 0 Е Р 5 Н I а К 1_

Всего крупного рогатого скога, гол, 01 209 209 м 70 51

В том числе: быки производители (старше 2 лег), гол. 02 3 3 3

бычки 0112 до 15 мес„ гш. 03

бычки старше 15 мвс, гш. 04 20 20 7 13

коровы, гол. 05 136 136 65 20 51

телки старше 15 мвс. и нетели, гол. 00 5 5 5

телки от 12 до 15 мвс., гол. 07 13 13 0 5

телки до 12 мес., гол. 08 10 10 10

бычки до 12 мвс., гол. 00 22 22 22

ООО РЦ 41ПИН0Р»

Пр.1

Породный и классный состав АО «АПФ «Наша Житница»

•ПЛИНОР" - ИАС "СЕЛЗКС МЯСНОЙ СКОТ Приложение 1

76-Лбсрдин аигусская 1. ПОРОДНЫЙ И КЛАССНЫЙ СОСТАВ СТАДА КРУПНОГО РОГАТОГО СКОТА

ао алф наша житница Дата отчета 01.01,2024

Группа животных Шифр Всего В том числе распределено

по породности по классам

чистопородные и IV покол. 1» поколение II поколение Г поколение элита -рекорд элита "1 класс 2 класс вне класса

А В С О Е Р в Н 1 Л К

Всего крупного рогатого окота, гол. 01 1049 1049 613 218 117 101

В том числе: быки производители (старше 2 лет), гол. □ 2 39 39 36 3

бычки от 12 до 15 мес., гол. 03

бычки старше 15 мес., гол, 04 50 50 49 1

коровы, гол. 05 617 617 344 65 107 101

телки старше 15 мес. и нетели, гол. 06 96 96 91 5

телки от 12 до 15 мес., гол. 07

телки до 12 мес., гол. 08 111 111 44 64 3

бычки до 12 мес , пол. 09 136 136 49 80 7

Результаты генотипирования крупного рогатого скота абердин ангусской породы (маточное поголовье)

ООО «КФХ «Хэппи Фарм» (п=124)

Дата тестиро- 20.10.2022

вания: 30.10.2022

№ п/п Инд.№ животного Ь94Ь МОТ Arg4Cys ЬЕР САРЫ1 316 Число селекционно значимых генетических маркёров

1 2 3 4 5 6

1 1 СА СС оо 1 аллель (1 гетерозигота) в 1 локусе

2 941 СА СС оо 1 аллель (1 гетерозигота) в 1 локусе

3 971 СА СТ оо 2 аллели (2 гетерозиготы) в 2 локусах

4 974 СА ТТ оо 3 аллели (2 гомозиготы, 1 гетерозигота) в 2 локусах

5 2017 СС СТ ос 2 аллели (2 гетерозиготы) в 2 локусах

6 9102 СА СС оо 1 аллель (1 гетерозигота) в 1 локусе

7 9105 СА СС оо 1 аллель (1 гетерозигота) в 1 локусе

8 9107 СА ТТ ос 4 аллели (1 гомозигота, 2 гетерозиготы) в 3 локусах

9 10052 СС СС оо Нет селекционно значимых маркёров

10 10102 СС ТТ оо 2 аллели (1 гомозигота) в 1 локусе

11 10145 СС СТ оо 1 аллель (1 гетерозигота) в 1 локусе

12 10198 СС ТТ ос 3 аллели (1 гомозигота, 1 гетерозигота) в 2 локусах

13 10271 СС СТ оо 1 аллель (1 гетерозигота) в 1 локусе

14 10585 СС СС оо Нет селекционно значимых маркёров

15 10832 СС СС ос 1 аллель (1 гетерозигота) в 1 локусе

16 10952 СС СТ оо 1 аллель (1 гетерозигота) в 1 локусе

17 11321 СС СТ оо 1 аллель (1 гетерозигота) в 1 локусе

18 11598 СС ТТ ос 3 аллели (1 гомозигота, 1 гетерозигота) в 2 локусах

19 11631 СС СС оо Нет селекционно значимых маркёров

1 2 3 4 5 6

20 11984 сс ст ос 2 аллели (2 гетерозиготы) в 2 локусах

21 20084 сс сс ос 1 аллель (1 гетерозигота) в 1 локусе

22 20091 сс ст оо 1 аллель (1 гетерозигота) в 1 локусе

23 20250 сс ст ос 2 аллели (2 гетерозиготы) в 2 локусах

24 20343 сс ст ос 2 аллели (2 гетерозиготы) в 2 локусах

25 20351 сс сс оо Нет селекционно значимых маркёров

26 20472 сс ст оо 1 аллель (1 гетерозигота) в 1 локусе

27 20833 сс сс оо Нет селекционно значимых маркёров

28 21104 сс ст оо 1 аллель (1 гетерозигота) в 1 локусе

29 21290 сс сс оо Нет селекционно значимых маркёров

30 21969 сс ст ос 2 аллели (2 гетерозиготы) в 2 локусах

31 30011 сс ст оо 1 аллель (1 гетерозигота) в 1 локусе

32 30123 сс ст оо 1 аллель (1 гетерозигота) в 1 локусе

33 30310 сс тт оо 2 аллели (1 гомозигота) в 1 локусе

34 30580 сс ст ос 2 аллели (2 гетерозиготы) в 2 локусах

35 30594 сс ст оо 1 аллель (1 гетерозигота) в 1 локусе

36 30834 сс сс оо Нет селекционно значимых маркёров

37 30946 сс ст ос 2 аллели (2 гетерозиготы) в 2 локусах

38 31312 сс сс оо Нет селекционно значимых маркёров

39 31961 сс сс ос 1 аллель (1 гетерозигота) в 1 локусе

40 40086 сс ст ос 2 аллели (2 гетерозиготы) в 2 локусах

41 40353 сс сс ос 1 аллель (1 гетерозигота) в 1 локусе

42 40508 сс сс оо Нет селекционно значимых маркёров

43 40546 сс тт оо 2 аллели (1 гомозигота) в 1 локусе

44 40588 сс тт оо 2 аллели (1 гомозигота) в 1 локусе

1 2 3 4 5 6

45 40595 сс тт оо 2 аллели (1 гомозигота) в 1 локусе

46 40827 сс сс оо Нет селекционно значимых маркёров

47 41290 сс ст оо 1 аллель (1 гетерозигота) в 1 локусе

48 41591 сс сс оо Нет селекционно значимых маркёров

49 41601 сс ст оо 1 аллель (1 гетерозигота) в 1 локусе

50 41634 сс ст оо 1 аллель (1 гетерозигота) в 1 локусе

51 41970 сс сс ос 1 аллель (1 гетерозигота) в 1 локусе

52 42003 сс тт ос 3 аллели (1 гомозигота, 1 гетерозигота) в 2 локусах

53 50197 АА ст ос 4 аллели (1 гомозигота, 2 гетерозиготы) в 3 локусах

54 50202 сс сс оо Нет селекционно значимых маркёров

55 50210 сс ст оо 1 аллель (1 гетерозигота) в 1 локусе

56 50240 сс ст ос 2 аллели (2 гетерозиготы) в 2 локусах

57 50265 сс тт ос 3 аллели (1 гомозигота, 1 гетерозигота) в 2 локусах

58 50266 сс сс оо Нет селекционно значимых маркёров

59 50318 сс ст оо 1 аллель (1 гетерозигота) в 1 локусе

60 50471 сс сс оо Нет селекционно значимых маркёров

61 50605 сс ст оо 1 аллель (1 гетерозигота) в 1 локусе

62 50828 сс сс ос 1 аллель (1 гетерозигота) в 1 локусе

63 50836 сс сс оо Нет селекционно значимых маркёров

64 50986 сс ст оо 1 аллель (1 гетерозигота) в 1 локусе

65 51107 сс ст оо 1 аллель (1 гетерозигота) в 1 локусе

66 51309 сс тт оо 2 аллели (1 гомозигота) в 1 локусе

67 51627 сс ст ос 2 аллели (2 гетерозиготы) в 2 локусах

68 60082 сс тт сс 4 аллели (2 гомозиготы) в 2 локусах

69 60107 сс ст оо 1 аллель (1 гетерозигота) в 1 локусе

1 2 3 4 5 6

70 60319 СС СТ ос 2 аллели (2 гетерозиготы) в 2 локусах

71 60567 СС СС ос 1 аллель (1 гетерозигота) в 1 локусе

72 60589 СС СТ оо 1 аллель (1 гетерозигота) в 1 локусе

73 60808 СС СТ ос 2 аллели (2 гетерозиготы) в 2 локусах

74 60814 СС СТ оо 1 аллель (1 гетерозигота) в 1 локусе

75 61284 СС СТ оо 1 аллель (1 гетерозигота) в 1 локусе

76 70092 СС СС оо Нет селекционно значимых маркёров

77 70141 СС СТ оо 1 аллель (1 гетерозигота) в 1 локусе

78 70190 СС СТ оо 1 аллель (1 гетерозигота) в 1 локусе

79 70200 СС СТ ос 2 аллели (2 гетерозиготы) в 2 локусах

80 70204 СС СТ оо 1 аллель (1 гетерозигота) в 1 локусе

81 70557 СС СТ оо 1 аллель (1 гетерозигота) в 1 локусе

82 70807 СС СТ ос 2 аллели (2 гетерозиготы) в 2 локусах

83 70988 СС СТ оо 1 аллель (1 гетерозигота) в 1 локусе

84 71293 СА СТ оо 2 аллели (2 гетерозиготы) в 2 локусах

85 71300 СА ТТ оо 3 аллели (2 гомозиготы, 1 гетерозигота) в 2 локусах

86 71310 СС СТ оо 1 аллель (1 гетерозигота) в 1 локусе

87 80036 СС СТ ос 2 аллели (2 гетерозиготы) в 2 локусах

88 80056 СА ТТ оо 3 аллели (2 гомозиготы, 1 гетерозигота) в 2 локусах

89 80076 СС СТ СС 3 аллели (1 гомозигота, 1 гетерозигота) в 2 локусах

90 80134 СС ТТ оо 2 аллели (1 гомозигота) в 1 локусе

91 80136 СС СТ оо 1 аллель (1 гетерозигота) в 1 локусе

92 80629 СА СТ оо 2 аллели (2 гетерозиготы) в 2 локусах

93 80808 СА СТ оо 2 аллели (2 гетерозиготы) в 2 локусах

94 80816 СА ТТ оо 3 аллели (2 гомозиготы, 1 гетерозигота) в 2 локусах

1 2 3 4 5 6

95 80967 сс ст ос 2 аллели (2 гетерозиготы) в 2 локусах