Усовершенствование методов выделения, идентификации индикации бактерий Pseudomonas Aeruginosa тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.02.03, кандидат биологических наук Шестаков, Андрей Геннадьевич

• Шестаков, Андрей Геннадьевич
• кандидат биологических наук
• 2010

Оглавление диссертации кандидат биологических наук Шестаков, Андрей Геннадьевич

СПИСОК УСЛОВНЫХ СОКРАЩЕНИЙ.

ВВЕДЕНИЕ.

1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.

1.1. Классификация бактерий рода Pseudomonas.

1.2. Биологические свойства Pseudomonas aeruginosa.

1.3. Устойчивость Pseudomonas aeruginosa к некоторым веществам.

1.3.1. Антибиотикочувствительность Pseudomonas aeruginosa.

1.4. Резервуар распространения Pseudomonas aeruginosa и вызываемые бактериальные инфекции.

1.5. Способность Pseudomonas aeruginosa к биодеструкции.

1.6. Идентификация Pseudomonas aeruginosa.

1.6.1. Бактериологические методы идентификации

Pseudomonas aeruginosa.

1.6.2. Генетические методы идентификации

Pseudomonas aeruginosa.

1.7. Фагодиагностика Pseudomonas aeruginosa.

1.7.1. Чувствительность бактериофагов Pseudomonas aeruginosa к инактивирующим факторам.

1.7.2. Развитие фаговых корпускул в клетке хозяина.

1.7.3. Реакция нарастания титра фага.

2. СОБСТВЕННЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ.

2.1. Объект материалы и методы исследований.

2.2. Результаты исследований и их обсуждение.

2.2.1. Тинкториальные свойства клеток Pseudomonas aeruginosa.

2.2.2. Рост референс-штаммов Pseudomonas aeruginosa на стандартных средах и образование пигментов.

2.2.3. Характеристики отечественных селективных сред, применяющихся для выделения Pseudomonas aeruginosa.

2.2.4. Биохимические свойства референс-штаммов

Pseudomonas aeruginosa.

2.2.5. Антибиотикочувствительность референс-штаммов

Pseudomonas aeruginosa.

2.2.6. Конструирование среды накопления УГСХА-Р.а.1.

2.2.7. Усовершенствование плотной селективной среды с цетримидом УГСХА-Р.а.2.

2.2.8. Конструирование тестов бактериологической дифференциации.

2.2.8.1. Конструирование теста «А».

2.2.8.2. Разработка теста «В».

2.2.8.3. Усовершенствование теста «С».

2.2.8.4. Усовершенствование теста «D».

2.2.9. Усовершенствование бактериологической схемы выделения и идентификации Pseudomonas aeruginosa.

2.2.10. Образование пигментов штаммами Pseudomonas aeruginosa, выделенных из объектов внешней среды, пищевого сырья и пищевых продуктов.

2.2.11. Основные биохимические свойства выделенных штаммов Pseudomonas aeruginosa.

2.2.12. Выделение бактериофагов Pseudomonas aeruginosa.

2.2.13. Характеристика выделенных фагов Pseudomonas aeruginosa.

2.2.14. Разработка технологических параметров изготовления и контроля биопрепарата для диагностики Pseudomonas aeruginosa.

2.2.15. Разработка оптимальных условий постановки реакции нарастания титра фага с применением диагностического биопрепарата.

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Усовершенствование методов выделения, идентификации индикации бактерий Pseudomonas Aeruginosa»

Актуальность темы*

Бактерии вида Pseudomonas aeruginosa вызывают заболевание «псевдо-моноз» к которому восприимчивы: крупный рогатый скот, свиньи, овцы, птица, пушные звери, пчёлы, рыбы, из лабораторных животных чувствительны белые мыши, морские свинки и кролики (Lipej et al., 1993; Прунтова и др., 1995; Покровский 2002). Диагноз ставят на основании лабораторных исследований на Р. aeruginosa. Источник возбудителя, больные животные, выделяющие его с различными выделениями, калом, мочой, молоком, со спермой. Факторы передачи возбудителя - инфицированные корма, пищевое сырьё, вода, почва, окружающая среда (Сидоров, 1995; Красильников, 1999). По существующим данным в окружающей среде Р. aeruginosa паразитирует в простейших (Ряпис, 1994; Бухарин, Розенберг, 2007). На особом месте стоит водный ареал распространения Р. aeruginosa (Смирнов, Киприанова, 1990; Афонин, 1999).

Отмечена высокая резистентность бактерии к антибиотикам и антимикробным веществам (Nikaido, 1978; Илюхин, 1985). Р. aeruginosa вызывает порчу белковых пищевых продуктов (в первую очередь мясомолочных) (Стефанов, 1997). Сообщается, что Р. aeruginosa вызывает деструкцию нефтепродуктов и углеродсодержащих веществ (Al-Hadhrami, Lapin-Scott, Ficher, 1995). Несмотря на то, что потребность в диагностике синегнойной инфекции очевидна, существующие бактериологические параметры схем, методов выделения, идентификации и индикации Р. aeruginosa в объектах внешней среды, пищевом сырье и пищевых продуктах не совершенны. Трудности диагностики Р. aeruginosa связаны с беспигментными штаммами и ассоциативной микрофлорой (Шуляк, 2003). В связи с этим исследования, посвященные методам быстрого и точного обнаружения Р. aeruginosa в объектах окружающей среды, пищевом сырье и пищевых продуктах являются актуальными и могут иметь значительный научный интерес и прикладное значение

Цель работы

Совершенствование методов выделения, идентификации и индикации бактерий вида Р. aeruginosa из объектов внешней среды, пищевого сырья и пищевых продуктов.

Задачи работы

1. Изучить основные биологические свойства штаммов Р. aeruginosa, выделенных из объектов внешней среды, пищевого сырья и пищевых продуктов.

2. Усовершенствовать среды для выделения и идентификации атипичных и беспигментных штаммов Р. aeruginosa.

3. Усовершенствовать схему бактериологической идентификации и дифференциации Р. aeruginosa из объектов внешней среды, пищевого сырья и пищевых продуктов на основе разработанных сред и тестов.

4. Выделить из объектов внешней среды, пищевого сырья и пищевых продуктов специфические бактериофаги бактерий Р. aeruginosa и изучить их основные биологические свойства; отобрать наиболее оптимальный специфический бактериофаг для конструирования биопрепарата.

5. На основе отобранного бактериофага создать биопрепарат и технологию его изготовления для индикации и идентификации бактерий вида Р. aeruginosa.

6. Усовершенствовать схему индикации бактерий Р. aeruginosa в объектах внешней среды, пищевого сырья и пищевых продуктов с помощью- биопрепарата бактериофага УГСХА-Р.а.№4, методом реакции нарастания титра фага.

Научная новизна

Проведены комплексные исследования по выделению и из объектов внешней среды, пищевого сырья- и пищевых продуктов, штаммов Р. aeruginosa. Получены новые данные о биологических свойствах атипичных и беспигментных штаммах, выделенных из объектов внешней среды, пищевого сырья и пищевых продуктов. Сконструирована новая специфическая среда накопления. Усовершенствована селективная среда с цетримидом для выделения атипичных и беспигментных штаммов Р. aeruginosa. Отобран« ряд наиболее информативных тестов и разработаны дополнительные тесты, позволяющие проводить видовую дифференциацию бактерий рода Pseudomonas с учётом существующих беспигментных штаммов.

Усовершенствована схема выделения и бактериологической идентификации бактерий вида Р. aeruginosa в объектах внешней среды, пищевом сырье и пищевых продуктах.

Выделены и изучены по заданным биологическим свойствам бактериофаги Р. aeruginosa, и отобран наиболее оптимальный специфический бактериофаг УГСХА-Р.а.№4 для создания диагностического биопрепарата.

Разработаны биотехнологические параметры изготовления диагностического биопрепарата и усовершенствована схема индикации Р. aeruginosa в объектах внешней среды, пищевого сырья и пищевых продуктов с применением специфического бактериофага УГСХА-Р.а.№4.

Практическая значимость работы

Предложенная в диссертационной работе схема бактериологической идентификации и дифференциации позволяет выделять и типировать атипичные, беспигментные штаммы Р. aeruginosa из объектов внешней среды, пищевого сырья и пищевых продуктов. Использование сконструированной нами среды накопления, усовершенствованной селективной среды и подобранных тестов бактериологической идентификации, позволяет выделять и типировать бактерии Р. aeruginosa до вида в течение 75 часов. Сконструирован диагностический биопрепарат на основе специфичного бактериофага и усовершенствована схема индикации бактерий Р. aeruginosa методом реакции нарастания титра фага (РНФ) в течение 19-20 часов.

Результаты усовершенствования бактериологической схемы выделения и идентификации Pseudomonas aeruginosa из объектов внешней среды, пищевого сырья, и пищевых продуктов, а также возможность использования диагностического биопрепарата специфичного бактериофага-УГСХА-Р:а.4 в схеме реакции нарастания титра фага, подтверждены актами комиссионных испытаний; в Ульяновской ГСХА от 22 января;20 Юг.

По материалам диссертационной работы разработаны и утверждены ректором УГСХА (от 10 феврвля 2010г) «Методические рекомендации по ускоренной индикации бактерий P. aeruginosa методом реакции нарастания титра фага в объектах санитарного надзора», «Методические рекомендации по изготовлению и контролю бактериофага УГСХА-Р.а.№4», а так же «Методические рекомендации по выделению и идентификации бактерий вида Р. aeruginosa в объектах санитарного надзора». Методические рекомендации разработаны для сотрудников медико-биологических научных учреждений и специалистов бактериологических лабораторий. Материалы диссертационной работы используются в учебном процессе при чтении лекций, для практических занятий студентов, работы аспирантов на кафедре микробиологии, вирусологии, эпизоотологии и ВСЭ Ульяновской государственной сельскохозяйственной академии.

Основные положения, выносимые на защиту

1. Среда накопления (УГСХА-P.a.l) способствует избирательному росту и размножению P. aeruginosa, при первичном посеве исследуемого материала. Плотная селективная среда (УГСХА-Р.а.2) является специфичной и обеспечивает преимущественный рост P. aeruginosa, угнетая рост возможных ассоциантов.

2. Использованные среды УГСХА-P.a.l и УГСХА-Р.а.2, а также подобранные тесты в усовершенствованной схеме бактериологической дифференциации дают возможность за 75 ч идентифицировать P. aeruginosa.

3:. Отобран штамм специфического бактериофага для целей идентификации и индикации P. aeruginosa в объектах внешней среды, пищевом сырье и пищевых продуктах.

4. Разработаны биотехнологические параметры по созданию диагностического биопрепарата специфического бактериофага УГСХА-Р.а.№4.

5. Усовершенствованная схема индикации Р.aeruginosa методом РНФ с применением диагностического биопрепарата бактериофага УГСХА-Р.а.№4 ускоряет определение видовой принадлежности Р. aeruginosa.

Апробация работы

Материалы диссертации были представлены на: Всероссийских научно-практических конференциях Ульяновской ГСХА (Ульяновск, 2005, 2008, 2009), Международной научно-практической конференции «Современное состояние и перспективы исследований по инфекционной и протозойной патологии животных, рыб и пчел» (Москва, 2008), Конференции молодых ученых «Актуальные проблемы инфекционной патологии ветеринарной медицины» (Покров, 2009).

Работа выполнена на кафедре микробиологии, вирусологии, эпизоотологии и ветеринарно-санитарной экспертизы ФГОУ ВПО «Ульяновская государственная сельскохозяйственная академия».

Публикации

По теме диссертации опубликовано 9 научных работ, из них 1 статья в журнале, рекомендованном ВАК РФ.

Структура и объем диссертации

Диссертация состоит из введения, двух глав: обзора литературы, собственных исследований, состоящих из материалов и методов, результатов исследований и их обсуждения, заключения, выводов, списка использованных литературных источников, приложений. Материалы диссертации изложены на 155 страницах, включают 33 таблицы и 21 рисунок. Список использованных литературных источников включает 203 наименования, в том числе 111 зарубежных.

Заключение диссертации по теме «Микробиология», Шестаков, Андрей Геннадьевич

127 ВЫВОДЫ

1. Показано, что сконструированная накопительная среда с сукцинатом* натрия, аргинином и фурадонином и усовершенствованная селективная среда с цетримидом, в комплексе обладают высокой специфичностью, позволяют выделять атипичные и беспигментные штаммы

P. aeruginosa, из объектов внешней среды, пищевого сырья и пищевых продуктов.

2. Усовершенствованая бактериологическая схема выделения и диффе ренциации P. aeruginosa, включающая специфичные среды и подоб ранные бактериологические тесты, основанные на утилизации ацета мида в анаэробных условиях, ингибировании солями бария, окислении глюкозы, разжижении желатина, позволила из внешней среды, пище вого сырья и пищевых продуктов выделить и идентифицировать 35 штаммов P. aeruginosa, в течение 75 часов.

3. Выделено 7 бактериофагов бактерий вида P. aeruginosa и изучены их изоляты, которые имели два типа колоний: с прозрачным центром и мутной переферией и мелкие прозрачные; литическая активность варьировала от 10"7 до 10"10 по методу Аппельмана и от 2 х 107 до 2 х Ю10 по методу Грациа. Изоляты бактериофагов проявляли устойчивость к хлороформу в течение 60 минут и инактивировались при температуре 75 °С в течение 30 минут.

4. В результате изучения биологических свойств бактериофагов, выбран один бактериофаг УГСХА — Р.а.№4 имеющий оптимальные для конструирования диагностического биопрепарата свойства: титр бактериофага составляет Ю"10 по методу Аппельмана и 2 х 10ю по методу Грациа; спектр литической активности 94.8 %.

5. Разработаны параметры постановки реакции нарастания титра фага для ускоренной индикации бактерий вида P. aeruginosa с использованием биопрепарата из бактериофага УГСХА-Р.а.№4, позволяющие обнаружить в исследуемом материале указанные бактерии в концентрации от

10 м.к. в 1г (1мл) в течение 19-20 часов. 6. Оптимальными технологическими показателями для изготовления специфического биопрепарата бактериофага УГСХА-Р.а.№4 с высокой литической активностью являются: соотношение количества фаговых корпускул к количеству бактериальных клеток индикаторного штамма Р. aeruginosa 1:5, оптимальное время инкубирования при температуре 37 °С — 6 часов, обработка фаголизата хлороформом в соотношении 1:10 в течение 30 минут.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

Проблема диагностики так.называемых неферментирующих бактерий,и в. частности Р. aeruginosa, во внешней среде, пищевом сырье и пищевых продуктах, наиболее актуальна (Афонин, 1999; Покровский, 2002; Шуляю 2003); Бактерии Р. aeruginosa вызывают заболевания у животных, что приводит к снижению экономического эффекта в животноводстве (Бовкун, Борисенкова, 1995).

Р. aeruginosa вызывает порчу пищевого сырья животного происхождения, а продукты питания, кроме того, являются одними из факторов передачи инфекций вызванных бактериями этого вида (Стефанов, 1997; Красильников, 1999).

Определенные проблемы, связанные с биодеградацией и ухудшением качества нефтяного сырья и нефтяных продуктов Р. aeruginosa представляет для нефтегазовой отрасли (Al-Hadhrami, Lapin-Scott, Ficher, 1995).

Инфекции, вызванные Р. aeruginosa в условиях госпитальных стационаров, представляют серьезную проблему для больных ожоговых отделений, родильных отделений, урологических и хирургических стационаров (Яковлев, 2001; Kirschke, 2003).

Устойчивость Р. aeruginosa во внешней среде, а так же способность длительное время сохранять свою жизнеспособность в субстратах бедных питательными веществами, способствуют циркуляции указанных бактерий в городах и в животноводческих комплексах (Bergen, 1981).

Проведение нерациональной антибиотикотерапии, а также безконтроль-ное применение антибиотиков в животноводстве, способствуют появлению штаммов Р. aeruginosa обладающих полирезистентностью к широкому спектру антибиотиков. Этому способствует наличие у Р. aeruginosa плазмид резистентности, отвечающих за устойчивость к определенным группам антибиотиков (Trevors, 1991).

При разработке накопительной УГСХА-Р.а.1 и усовершенствовании селективной среды УГСХА-Р.а.2, нами были использованы антимикробный препарат фурадонин и поверхностно-активное вещество цетримид, существенно не влияющие на рост клеток P. aeruginosa, но в комплексе обеспечивающие хороший селективный эффект. Чувствительность разработанной нами среды накопления УГСХА-Р.а.1, составляет 10 м.к./мл. Через 24 часа культивирования при температуре 37 °С количество бактериальных клеток P. aeruginosa увеличивается в 400 раз. Чувствительность селективной среды

-J

УГСХА-Р.а.2 составляет 10 м.к./мл. При дифференцированной чувствительности среды накопления УГСХА-Р.а.1 и селективной среды УГСХА-Р.а.2, появляется возможность визуализировать бактериальные колоний на плотной селективной среде и, кроме того, снижается риск лабораторных ошибок и случайного заражения среды второго этапа.

Типичные штаммы P. aeruginosa синтезируют различные пигменты, и идентификация пигментообразующих штаммов для бактериологов при проведении рутинных исследований не представляет серьезных трудностей. Однако 8% - 18% штаммов P. aeruginosa лишены пигментов (Мороз, 1988). Лабораторные ошибки при идентификации P. aeruginosa от неферментирую-щих бактерий других близких видов и родов создают трудности в своевременной диагностике этого возбудителя во внешней среде, пищевом сырье и пищевых продуктах (Meschede, 1986; Neu, 1985; Zierdt, 1985).

Нами предложено 4 теста бактериологической идентификации Р. aeruginosa, учитывающие их основные биохимические свойства. Тест «А» основан на способности Р. aeruginosa утилизировать ацетамид в анаэробных условиях, тест «В» основан на ингибировании роста Р. aeruginosa солями бария, тест «С» учитывает способность вышеуказанных бактерий окислять глюкозу с образованием кислоты и тест «D» выявляет протеолитические ферменты. Так же в бактериологическую схему добавлен биопрепарат бактериофага УГСХА-Р.а.№4, обладающий высокой специфичностью и широким спектром литической активности.

Таким образом, используя разработанные среды, тесты и специфичный бактериофаг УГСХА-Р.а.№4 в строгой последовательности, мы усовершенствовали схему выделения и идентификации P. aeruginosa с чувствительностью 10м.к./мл в исследуемом субстрате, высокой специфичностью и учетом непигментированных штаммов. Специфичность сконструированной схемы выделения и идентификации P. aeruginosa из объектов внешней среды, пищевого сырья и пищевых продуктов проверена на 16 штаммах бактерий других видов и родов. С использованием усовершенствованной нами схемы, из объектов внешней среды, пищевого сырья и пищевых продуктов выделено 35 штаммов P. aeruginosa, четыре из которых лишены пигментов, что согласуется с данными литературы. Общее время, затрачивающееся на бактериологическую схему выделения и идентификацию бактерий до вида Pseudomonas aeruginosa, составляет 75 часов.

Для быстрого и точного обнаружения Р. aeruginosa, ускоренная индикация в объектах внешней среды, пищевом сырье и пищевых продуктах приобретает важное значение. Однако, применение современных генетических и иммунологических методов для решения этих задач зачастую притерпевает трудности связанные с высокой стоимостью, либо сложностью выполнения данных исследований.

О возможности применения бактериофагов бактерий Р. aeruginosa с целью идентификации указанных бактерий сообщают некоторые исследователи (Postic, Finland, 1961; Graber, Latta,Vogel, Brame, 1962; Sjoberg, Lindberg, 1968).

Для достижения поставленной цели, из объектов внешней среды выделено 7 бактериофагов активных в отношении штаммов Р. aeruginosa. Для конструирования биопрепарата и разработки реакции нарастания титра фага нами были изучены основные биологические свойства выделенных бактериофагов, это морфология негативных колоний и литическая активность и на основании полученных данных отобран наиболее подходящий для- этих целей штамм бактериофага.

По морфологии негативных колоний выделенные бактериофаги разделены на две группы. К первой группе относятся бактериофаги, образующие негативные колонии диаметром 2мм и полностью прозрачные, ко второй группе относятся бактериофаги, имеющие диаметр 3-4мм с четким прозрачным центром и мутным ореолом по периферии.

Литическая активность выделенных бактериофагов P. aeruginosa варьи

7 1Л 7 1П ровала от 10" до 10" по методу Аппельмана и от 2x10 до 4x10 по методу Грациа.

Далее изучили спектр литической активности и специфичность действия выделенных и отобранных бактериофагов УГСХА- Р.а.№1 и УГСХА-Р.а.№4. Проведенные эксперименты показали, что оба фага являются высокоспецифичными по отношению к штаммам P. aeruginosa. Спектр литической активности составил у бактериофага УГСХА- Р.а.№1 - 76.9 %, а спектр литической активности бактериофага УГСХА- Р.а.№4 - 94.8 %. В настоящее время в России препараты бактериофагов выпускаются на производственных объединениях концерна «Микроген». Спектр литической активности комер-ческих бактериофагов составляет 48,4%. Препарат разработанный коллективом авторов Санкт-Петербурга, состоящий из нескольких бактериофагов, имеет совокупный спектр литической активности 81,7% (Асланов, Яфаев, Зуева, 2003).

Изучена температурная чувствительность и устойчивость к хлороформу бактериофага УГСХА- Р.а.№4. Оказалось что бактериофаг УГСХА- Р.а.№4 оказался устойчив к температуре 55 °С. При температуре выше 55 °С фаг УГСХА-Р.а.№4 терял свою физиологическую активность и погибал при температуре выше 75 °С. Литературные данные показывают, что фаги P. aeruginosa устойчивы к температуре 60 °С — 65 °С в течение 30 минут (Maillard, Hann, Perrin, 1998; Жиленков, 1998).

Результаты исследований устойчивости бактериофага УГСХА-Р.а.№4 к инактивирующему действию хлороформа (обработка 1:10 в течение 60 минут) определили их 100% устойчивость, а штаммы P. aeruginosa инактивиро-вались уже при экспозиции 30 минут. В результате анализа полученных данных было установлено, что при конструировании биопрепарата и постановки реакции; нарастания® титра фага, инактивировать фаголизаты целесообразно? хлороформом.

Таким образом по результатам изучения биологических свойств был отобран бактериофаг УГСХА-Р.а.№4, для изготовления биопрепарата с целью идентификации и индикации P. aeruginosa в объектах внешней среды, пищевом сырье и пищевых продуктах.

Определены оптимальные технологические параметры для изготовления биопрепарата с высокой литической активностью: соотношение количества фаговых корпускул к к количеству бактериальных клеток индикаторного штамма P. aeruginosa 1:5, время инкубирования при температуре 37 °С — 6 часов. Для освобождения фаголизата от жизнеспособных бактерий необходимо применение хлороформа в соотношении 1:10 в течение 30 минут.

Для ускоренной индикации P. aeruginosa в объектах внешней среды, пищевом сырье и пищевых продуктах, разработали биотехнологические параметры постановки реакции нарастания титра фага, включающие количественный показатель реакции, имеющий диагностическое значение и оптимальное время, обеспечивающее полноценное взаимодействие: фага с бактериями.

По результатам проведенных исследований установлено, что количественный показатель реакции нарастания титра фага для УГСХА-Р.а.№4 (увел личение количества корпускул фага более чем в 5 раз) составил 10 м.к./мл. Оптимальное время экспозиции выбирали из следующих параметров:

- предварительное подращивание исследуемого материала в течение 5, „ 16, 24 часов, с последующим инкубированием в течение 5 ч при температуре 37 °С.

- Увеличение времени контакта исследуемого материала с фагом до 7, 16, 24 часов при температуре 37 °G.

В результате проведенных исследований было установлено; что после предварительного подращивания исследуемого материала: в течение 5 часов удалось обнаружить P. aeruginosa гомологичные фагу УГСХА-Р.а.№4 в fy концентрации 10 м.к./мл.

Увеличение времени предварительной инкубации до 16 часов повысило чувствительность РНФ на один порядок. Подращивание материала при 24-часовой экспозиции существенно не повлияло на результаты РНФ.

Полученные экспериментальные данные позволяют считать, что наиболее оптимальным является режим РНФ при 7 часовой экспозиции исследуемого материала с фагом без подращивания. Такой режим позволяет провести индикацию P. aeruginosa в количестве 10 м.к./мл, в течение 24 часов. Однако увеличение времени инкубирования до 16 часов повышает чувствительность метода и биопрепарата на порядок и позволяет выявлять P. aeruginosa при наличии их в исходном исследуемом материале 10 м.к./мл.

РНФ как указывают В.Д. Тимаков и Д.М. Гольдфарб (1956), является чувствительным и специфическим методом диагностики, позволяющим за относительно короткий срок обнаружить искомые бактерии в субстрате, при наличии посторонней микрофлоры без выделения чистых культур.

Список литературы диссертационного исследования кандидат биологических наук Шестаков, Андрей Геннадьевич, 2010 год

1. Абдусаматов, М.А. Сравнительное изучение реакции нарастания титра фага и бактериологического метода при диагностике брюшного тифа у больных и реконвалесцентов / М.А Абдусаматов. // ЖМЭИ. — 1960. -№1. С. 23-27.

2. Аврех, В.В. О применении бактериофагов в диагностике сальмонелле-зов / В.В. Аврех // ЖМЭИ. 1954. - №7. - С. 93-96.

3. Азизбекян, P.P. Изменение наследственности бактерий путем фаговой конверсии / P.P. Азизбекян // В кн. Микробиология. Т.З. (Итоги науки и техники ВИНИТИ АН СССР). М. - 1974. - С. 191-233.

4. Алешня, Е.П. Способ идентификации Pseudomonas aeruginosa / Е.П. Алешня, В.В. Алешня // Открытия. 1977. - №36. - С. 70-72.

5. Ароне, P.M. Применение синтетических минеральных сред для выделения синегнойной палочки / P.M. Ароне, Т.В. Чурсина // Лаб. дело. -1976. -№3.- С. 179-180.

6. Арский, В.Г. Применение реакции нарастания титра фага для диагностики хронической дизентерии / В.Г. Арский, 3.3. Ахметов, А.В. Ясен-ский // Здравоохранение Таджикистана. — 1961. — №2. — С. 5-11.

7. Архангельский, И.И. Фаготипирование патогенных стафилококков, выделенных из молока коров / Б.А. Степанов, И.И. Архангельский // Ветеринария. 1966. - №3. - С. 27-29.

8. Асланов, Б.И. Пути рационального использования синегнойных бактериофагов в лечебной И'противоэпидемической практике / Б.И. Асланов, Р.Х. Яфаев, Л.П. Зуева // Микробиол. 2003. - №5. - С. 72-76.

9. Афонин, Э.А. Разработка бактериологического метода выделения и идентификации Pseudomonas aeruginosa / Э.А. Афонин // Автореф. дис. . канд. биол. наук. — Ульяновск, 1999 — 18 с.

10. Ашмарин, И.П. Статистические методы в микробиологических исследованиях / И.П. Ашмарин, А.А. Воробьев. — Л., 1962. — 261 с.

11. Байрак В*.А. Тесты патогенности и фаготипы стафилококков, выделенных при мастите коров / В.А. Байрак // Автореф. дис. .канд. биол. наук. — М., 1970;- 19 с.

12. Бейли, Н. Математика-в биологии и медицине / Н. Бейли. — М.: Мир, 1970.-326 с.

13. Бовкун Г.Ф. Биологические свойства синегнойной,палочки и ее роль в патологии птицы / Г.Ф. Бовкун, А.Н. Борисенкова // Ветеринария. — 1995.- №2.- С. 30-33.

14. Белов, Д. В. Физико-химические явления на поверхности алюминия и его сплавов при воздействии микроорганизмов / Д.В. Белов // Автореф. дис. канд. химич. Наук. Нижний-Новгород, 2007. — 23 с.

15. Бульканова, Е.А. Выделение и изучение основных биологических свойств бактериофагов Klebsiella, конструирование на их основе биопрепарата и разработка параметров их применения // Автореферат, дис. . канд. биол. наук. — Саратов. — 2006. — 20 с.

16. Бухарин, О.В. Биоиндикация экологического состояния равнинных рек / О.В. Бухарин, Г.С. Розенберг. М.: Наука, 2007. - 403 с.

17. Висконти, Р. Генетика бактериофага / Р. Висконти // Онтогенез вирусов. М. - 1956. - С. 141-142.

18. Владимиров, Добрецов Флюорисцентные зонды в исследовании биологических мембран / Ю.А. Владимиров, Г.Е. Добрецов // Наука. — М. — 1980.- С. 268-270.

19. Габрилович, И.М. Общая,характеристика бактериофагов / И.М. Габрилович // Основы бактериофагии. Минск. - 1973. — С. 5 - 24.

20. Ганюшкин, В.Я. Бактериофаги Salmonella choleraesuis, сравнительная характеристика и практическое применение / В.Я. Ганюшкин // Автореф. дис. .докт. вет. наук. — М. — 1984. — 34 с.

21. Гольдфарб, Д.М. Опыт применения реакции нарастания титра фага для диагностики дизентерии / Д.М. Гольдфарб, В.Н. Кузнецова // ЖМЭИ. — 1957.-№8.-С. 90-94.

22. Гольдфарб, Д.Mi Бактериофагия / Д.М. Гольдфарб // Mi: Медгиз. -1961.-299 с.

23. Гордина, Р.В. Фаготипирование паратифозных В бактерий: и действие на них бактериофагов / Р1В. Гордина // Автореф. дис. . докт. вет. наук. -М., 1954.-С. 24-27.

24. ГОСТ Р 26670-91. Продукты пищевые. Методы культивирования, микроорганизмов. Взамен ГОСТ 26670-85. - М.: Изд-во стандартов, 2008. -8 с.

25. ГОСТ Р 51426-99. Микробиология. Корма, комбикорма, комбикормовое сырье. Общее руководство по приготовлению разведений для микробиологических исследований. — М.: Изд-во стандартов, 2002. — 7 с.

26. ГОСТ Р 51446-99. Микробиология. Продукты пищевые. Общие правила микробиологических исследований. — введен 01.01.2001 до 01.01.2010.-М.: Изд-во стандартов, 2005 .-31 с.

27. Давиденко, Т.А. Фаготипирование S.typhimurium, выделенных в Киеве в 1966-1970 / Т.А. Давиденко, А.М. Зарицкий // В кн.: Кишечные инфекции. Киев. - 1972. - С. 41-43.

28. Домарадский, И.В. Методика быстрого обнаружения чумного микроба при помощи бактериофага / И.В. Домарадский, О.Н. Мосолова, JI.K. Денисенко // Иркутск. 1957. - С. 44-51.

29. Жарикова, М.С. Оценка эффективности питательных сред для обнаружения синегнойной палочки / М.С. Жарикова, А.Т. Козлова, Л.Г. Зимина//Лаб. дело. 1983. - №10. - С. 48-51.

30. Жиленков, Е.Л. Изучение начальных стадий взаимодействия умеренного фага phi04 с клеткой Pseudomonas aeruginosa / Е.Л. Жиленков // Микробиол. 1997. - Т.66. - №4. - С. 532-538;.

31. Золотухин, С.Н. Создание и разработка схем применения диагностических» биопрепаратов на основе выделенных и изученных бактериофагов энтеробактерий /■ С.Н. Золотухин // Автореф. дис. . д-ра биол. наук. -Ульяновск, 2007. 39 с.

32. Инфекция, вызванная Pseudomonas aeruginosa у шиншилл / Lipej Z. et al.. Hrv. Vet. Vjesn. - 1993. - V.21. - №3. - P. 73-77.

33. Применение РНФ для индикации дизентерийных бактерий флекснера в организме зараженных кроликов / А.Ю. Иллютович и др. // Бюлл. эксп. биол. и мед. 1958. - № 6. - С. 78-83.

34. Илюхин, В.И. Псевдомонадные инфекции в патологии человека / Илюхин, В.И. // Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 1985. - №2. - С. 110-114.

35. Калина, Г.П. Применение жидких сред накопления при поисках Pseudomonas aeruginosa в объектах окружающей среды и патологическом материале / Г.П. Калина, Н.Б. Комзолова // ЖМЭИ. — 1988. — №5. -С. 98-105.

36. Кандемия у пациентов в стационарах Санкт-Петербурга / Н.Н. Климко и др. // журнал клин, микробиол. и антимикр. химиотерап. — 2002. -Т. 4.- № 1. С. 15-21.

37. Капырина, Н.А. Идентификация возбудителя листериоза с помощью бактериофага / И.А. Бакулов, Н.А. Капырина // Симпозиум "Профилактика и меры борьбы с лептоспирозом и листериозом с/х животных". -Новочеркасск. — 1972. С. 76-78.

38. Усвоение додецилсульфата натрия бактериями рода Pseudomonas / Е.А. Киприанова и др. // Микробиол. 1978. - Т.40. - №4. - С. 503-505.

39. Кандемия у пациентов в стационарах Санкт-Петербурга / Н.Н. Климко и др. // Клин, микробиол. и антимикр. химиотерап. — 2002. — Т.4. — № 1.- С. 15-21.

40. Клюянова, М. Ä. Разработка основы.биопрепарата для диградации нефти при загрязнении природных сред / М.А. Клюянова // Автореф. дис. .канд. биол. наук. — Уфа, 2009. — 24 с.

41. Ковалева, E.H. Создание биопрепарата на основе выделенных и изученных бактериофагов Enteroccocus faecalis // Автореф. дис. .канд. биол. наук. Ульяновск, 2009. - 20 с.

42. Козелько, O.A. Применение метода РНФ для контроля качества дезинфекции в очагах кишечных инфекций / O.A. Козелько // ЖМЭИ. — 1961.-№2.-С. 36-40.

43. Кольпикова, Т.И. Фаготипирование листерий / Т.И. Кольпикова // Ветеринария. 1990. - №6. - С. 31-32.

44. Коритняк, Б.М. . Выделение и изучение основных биологических свойств бактериофагов Yersinia enterocolitica и их применение в диагностике // Автореф. дис. . .канд. биол. наук. Саратов, 2005. - 20 с.

45. Красильников, А.П. Микробиологический словарь — справочник / А.П. Красильников, Т.Р. Романовская // Минск: Асар. 1999. - С. 310-311.

46. Кременчук, Г.А. Применение реакции нарастания титра фага для исследования объектов внешней среды / Г.А. Кременчук, М.А. Гицевич, К.П. Бояршинова // ЖМЭИ. 1961. - № 7. - С. 124-126.

47. Кульба, A.M. Биологические свойства и нуклеотидный состав ДНК бактериофагов Pseudomonas / A.M. Кульба, A.C. Горелышев // Ж., Микробиология. 1981. - Т.50. - В.З. - С. 536-542.

48. Мац, Л.И. Вопросы санитарной бактериологии и вирусологии. — М.: Медицина. 1965. - С. 44-59.

49. Методические рекомендации: по выделению и диагностике псевдомо-ноза сельскохозяйственных животных. — ГУВ МСХ СССР, М., 1982.

50. Методы частной бактериологии / Д.А. Васильев и-др.. Ульяновск : Ульяновская ГСХ, 2004. - 233 с.

51. Молофеева, Н.И. Выделение и изучение основных биологических свойств бактериофагов Escherichia coli 0157 и их применение в диагностике: Автореф. дис. .канд. биол. наук. — Саратов, 2004. 20 с.

52. Мороз, А.Ф. Синегнойная инфекция / Мороз, А.Ф. Анциферова, Н.Г. Баскакова, Н.В. М. - Медицина, 1988. — 256 с.

53. Мороз, А.Ф. Питательная среда для выделения Pseudomunas aeruginosa / А.Ф. Мороз, Г.Е. Афиногенов, Б.М. Бекбергенов // Лаб. дело. — 1976. №5.- С. 302-303.

54. Общая и санитарная микробиология с техникой микробиологических исследований / под редакцией А.С. Лабинской, Л.П. Блинковой, А.С. Ещиной. -М.: Медицина, 2004. — 576 с.

55. Островская, Н.Н. Ускоренный метод диагностики брюшного тифа Vi-фага / Н.Н. Островская, Б.Н. Папкова // ЖМЭИ. 1951. - № 2. - С. 37-40.

56. Определитель бактерий Берджи / под редакцией Дж. Хоулта и др., 9-е издание. Т.1. М.: Мир, 1997. - 432 с.

57. Островская, Н:Н. К использованию метода нарастания* титра фага для выявления бруцелл во внешней среде / Н.Н". Островская, Д.М. Гольд-фарб // ЖМЭИ. 1961. - № 5. - С. 145-147.

58. Павлова, И.П. Изучение морфологии и биологических свойств фагов Вас. anthracis и Вас. Cereus / И.П. Павлова // ЖМЭИ. 1971«. - № 7. —1. С. 147-149.

59. Плетенева, Е.А. Изучение разнообразия в группе фагов вида РВ1 (Mio-viridae) Pseudomonas aeruginosa и их поведения на адсорбционно-устойчивых мутантах бактерий / Е.А. Плетенева, О.В. Шабурова // Генетика. 2008. - Т. 44. - №2. - С. 185-194.

60. Покровский, В.И. Медицинская микробиология / В.И. Покровский, O.K. Поздеев // М.: Гоэтар Медицина. 2002. - С. 343-348.

61. Покровский, В.И. Медицинская микробиология / В.И. Покровский, O.K. Поздеев // М.: Гоэтар Медицина. 1998. - С. 183-192.

62. Пожарникова, E.H. Выделение и изучение биологических свойств бактериофагов рода Enterobacter, конструирование на их основе биопрепарата и разработка параметров практического применения: Автореф. дис. . канд. биол. наук. — Саратов, 2006. — С. 4-19.

63. Поляк, М.С. Питательные среды для медицинской и санитарной микробиологии / М.С. Поляк СПб.: ЭЛБИ-СПб. - 2008. - С. 179-180.

64. Пульчеровская, Л.П. Выделение и изучение основных биологических свойств бактериофагов Citrobacter и их применение в диагностике: Автореф. дис. . канд. биол. наук. Саратов, 2004. — 21 с.

65. Ревенко И.П. К диагностике рожи свиней / И.П. Ревенко // Ветеринария. 1970. - № 6. - С. 13-23.

66. Ревенко И.П. Бактериофаги и их использование в ветеринарной практике. Киев: Урожай. - 1978. - С. 41-88.

67. Рожавин М.А. Меланинообразующие культуры Pseudomonas aeruginosa / М.А. Рожавин, П.Л. Тыдельская // Журн. микробиологии.-1979.- N2.-С. 21-23.

68. Результаты бактериологического обследования поросят различного возраста в свиноводческом комплексе / О. В. Прунтова и др. // Вирусные болезни с.-х. животных : тез. докл. Всерос. науч.-практ. конф. Владимир. — 1995. 175 с.

69. Рубашкина Б.К., Казакова С.Ф. Применение метода нарастания титрафага для исследования объектов внешней среды / Б.К. Рубашкина, С.Ф. Казакова // ЖМЭИ. 1959; - №6. - С. 110-112.

70. Ряпис, Л.А. Биологическая активность, музейных и свежевыделенных культур Pseudomunas aeruginosa и возможные* фазовые преобразования популяций возбудителя / Л.А. Ряпис и др.. — микробиол:, эпидемиол. и иммунобиол. — 1994. № 6. — С. 31-32.

71. Сергиенко Ф.Е. Новый метод бактерюлопчно д!агностики за допомо-гою бактерюфага / Ф.Е. Сергиенко // Мжробюл. журн. АН УССР. — 1936. -№1. -С. 85-112.

72. Сиволодский, Е.П. Тест идентификации бактерий рода Pseudomonas / Е.П. Сиволодский // Лаб. дело. 1988. - № 11. - С. 64-66.

73. Смирнов, В.В. Бактерии рода Pseudomonas / B.B. Смирнов, Е.А. Ки-прианова // Киев: Наук. Думка. — 1990. С. 65-69.

74. Стефанов, И. Распространение Pseudomonas aeruginosa в мякоти мясных продуктов / И. Стефанов // Вет. мед. — 1997. — №4. С. 256-257.

75. Стронговская, Н.В. Сравнительное изучение РНФ для выявления носи-тельства дизентерийных бактерий: Автореф. дис. . канд. мед. наук. — Симферополь. 1964. - С. 6-20.

76. Сидоров, М.А. Определитель зоопатогенных микроорганизмов, справочник / М.А. Сидоров, Д.И. Скородумов, В.Ф. Федотов. М.: Медицина, 1995.-319 с.

77. Тимаков, В.Д. Экспериментальное обоснование нового принципа обнаружения дизентерийных и брюшнотифозных бактерий с помощью фага / В.Д. Тимаков, Д.М. Гольдфарб // ЖМЭИ. 1956. - № 10. - С. 3-7.

78. Тимаков, В:Д: Об условиях взаимодействия фага и бактериальной клетки / В.Д. Тимаков, Д.М. Гольдфарб // Вестник АМН СССР. 1958. - № 2. — С. 37-43.

79. Тимаков, В.Д. Реакция нарастания титра фага (РНФ) / В.Д. Тимаков, Д.М. Гольдфарб. М., 1962. - 32 с.

80. Тихоненко, A.C. Ультраструктура вирусов бактерий. — М.: Наука.1968.-89 с.

81. Тыдельская, И.JI.Селективная среда для выделения Pseudomonas aeruginosa / И.Л. Тыдельская, М.А. Рожавин, В.В. Солозуб // Лаб. дело. 1980. - № 9. - С. 549-550.

82. Усвоение додецилсульфата натрия бактериями рода Pseudomonas / Е.А. Киприанова и др. // Микробиол. 1978. - Т. 40. - №4. - С. 503-505.

83. Феоктистова, Н.А. Выделение и изучение основных биологических свойств бактериофагов Proteus, конструирование на их основе биопрепарата и разработка параметров практического применения // Автореф. дис. . канд. биол. наук. — Саратов. — 2006. 22 с.

84. Цветков, К.И. Применение специфического фактериофага для диагностики паратифозного аборта кобыл / К.И. Цветков // Ветеринария. -1941.-№6.-С. 4-6.

85. Шуляк, Б.Ф. Руководство по бактериальным инфекциям собак. Том 2. Грамотрицательные бактерии / Б.Ф. Шуляк. — М.: «Олита», 2003. -283 с.

86. Щеглова, М.К. Некоторые свойства листериозного бактериофага / М.К. Щеглова // ЖМЭИ. 1962. - № 1. - С. 99-102.

87. Яковлев С.В. Современные подходы к антибактериальной терапии инфекций мочевыводящих путей / С.В. Яковлев // Consilium-medicum. — 2001.- №3.-С. 300-306.

88. Яковлев, С.В. Бактериальные инфекции в амбулаторной практике: выбор оптимального антибактериального препарата / С.В. Яковлев, Л.И.

89. Дворецкий, М.П. Суворова // Consilium medicum. 2002. — №4. - С. 10-21.

90. A second N-acylhomoserine lactone signal produced by Pseudomonas aeruginosa / J.P. Pearson et al. // Proc Natl Acad Sci U. S. A. — 1995. V. 92.-P. 1490-1492.

91. Aalam, S. High efficiency styrene biodégradation in a biphasic organic/water continuous reactor / S. Aalam, A. Pauss, J. Lebeault //Applied Microbiology Biotechnology. 1993. - №39. - P. 696-699.

92. Al-Hadhrami, M.N. Bacterial survival and n-alkane degradation within omani crude oil and a mousse / M.N. Al-Hadhrami, H.M. Lappin-Scott, P J. Fisher // Mar. Pollut. Bull. 1995. V. 30. - №6. - P. 403-408.

93. Barnes, H.J. Miscellaneous and sporadic bacterial infections / H.J. Barnes // In Y.M. Saif : Diseases of poultry, 11th edition. 2003. - P. 845-862.

94. Bonde, G. Bacterial Indicator of Water Pollution. / G. Bonde // Teknisk For-lag. Copenhagen. - 1963. - P. 164-167.

95. Boucadida, J. Molecular epidemiology of chronic pulmonary colonization by Pseudomonas aeruginosa in cystic fibrosis / J. Boucadida, M. de Montalembert, J. Lenoir // J. Med. Microbiol. 1993. - V. 38. - P. 29-33.

96. Bouza, E. A European perspective on nosocomial urinary tract infections. I. Report on the microbiology, work-load, etiology and antimicrobial susceptibility / E. Bouza, A. Voss, et al. // Clin Microbiol Infect. 2001. - V. 7. -P. 523-531.

97. Boyd, J. S. K. Bacteriophage and heredity / J. S. K. Boyd // Nature. 1954. -V. 173.-P. 50-51.

98. Burnet, F. M. Induced lysogenicity and mutation of bacteriophage within ly-sogenic bacteria / F. M. Burnet, D. Lush. // Australian J. Exptl. Biol. Med. Sei. 1936. - V. 14. - P. 27-38.

99. Byng, G. Variable enzymological pattering in tyrosine biosynthesis as a means of determining natural relatedness among the Pseudomonadaceae / G. Byng, R. Whitarer, Cherna et al. // J. Bacteriol. 1980. - V. 144. - №1. -P. 247-257.

100. Comparative Genomic Analysis of 18 Pseudomonas aeruginosa Bacteriophages / T. Kwan et al. // Journal of Bacteriology. 2006. - V. 188. - № 3. -P. 184-187.

101. Darreil, J.H. Pyocine-typing of hospital strains of Pseudomonas pyocyanea / J. H. Darrell, A.H. Wahba. // J. Clin. Pathol. 1964. - V. 17. - P. 236-242.

102. De Vos, P. Intrageneric and intergeneric similarities of ribosomal RNA cis-trons of the Genus Pseudomonas and the implications for taxonomy / P. De Vos // Antonie van Leeuwenhoek J. Microbiol, and Serol. 1980. — V. 46. — № l.-P. 96-99.

103. Ednie, L.M. Comparative activities of clinafloxacin against gram-positive and -negative bacteria / L.M. Ednie, M.R. Jacobs, P.C. Appelbaum // An-timicrob Agents Chemother. 1998. - V. 42. - P. 269-273.

104. Euzeby, J.P. List of Prokaryotic Names with Standing in Nomenclature -Genus Pseudomonas. http://www.bacterio.cict.fr/index.html.

105. Expression of Pseudomonas aeruginosa virulence genes requires cell-to-cell communication / L. Passador et al. // Science. 1993. - V.260. - P. 127130.

106. Feldman, M. Role of flagella inj pathogenesis of Pseudomonas aeruginosa pulmonary infection / M.' Feldman; R. Bryan, S. Rajan, L. Scheffler, S. Brunnert, H. Tang, et al. // Infect Immun. 1998. - V. 66. - P. 43-51.

107. Festl, H. DNA hybridization probe for the Pseudomonas fluorescens group/ H. Festl, W. Ludwig, K. H. Schleifer // Appl. And Environ. Microbiol. -1986.-V.52.- №5.- P. 190-194

108. Finegold, Bailey and Scott's Diagnostic Microbiology / Finegold // 7th ed., The C. V. Mosby Co., St. Louis. 1986.

109. Frank, D.W. Cloning and sequence analysis of a transregulatory locus required for exoenzyme S synthesis in Pseudomonas aeruginosa / D.W. Frank, B.H. Iglewski 11J Bacteriol. 1991. - V. 17. - №3. - P. - 460-468.

110. Freeman, V. J. Studies on the virulence of bacteriophage infected strains of Corynebacterium diphtheriae / V. J. Freeman // J. Bacteriol. 1951. - V. 61.-P. 675-688.

111. Frei, W. Uber Cytochrom and das Atmungssystem der Bakterien / W. Frei, L. Riedmuller, F. Almasy // Biochem. Z. 1934. - V.27. - №4. - P. 253267.

112. Fuerst, J.A. Surfase appendages similar to fimbriae (pili) von Pseudomonas cpecies / J.A. Fuerst, A. Hayward // J. Gen. Microbiology. 1969. - V. 58. -№ 2. - P. 227-237.

113. Fuqua, W.C. Quorum sensing in bacteria: the LuxR-LuxI family of cell density-responsive transcriptional regulators / W.C. Fuqua, S.C. Winans, E. P. Greenberg // J Bacteriol. 1994. -V. 17. - №6. - P. 269-275.

114. Gaby, W.L. Differential diagnosis of pseudomonas-like microorganisms in the clinical laboratory / W. L. Gaby, E. Free // J. Bact. 1958. - V.76. -№4. p. 442-444.

115. Gaby, W. L. Practical laboratory test for the identification of Pseudmnas aeruginosa / W. L. Gaby, C. Hadley // J. Bact. 1957. - V. 74. - P. 356-363.

116. Galloway, D.K: Pseudomonas aeruginosa elastase and elastolysis revisited: recent developments / D.R. Galloway I I Mol Microbiol: — 1991. — V.5. — №2.-P. 315-321.

117. Gambello, M:J. Cloning and characterization of the Pseudomonas aeruginosa lasR gene, a transcriptional activator of elastase expression / M.J. Gambello, B.H: Iglewski //J Bacteriol. 1991. - V. - 17. - №3. - P. - 3039.

118. Greta, B. Elaboraría Si Evaluaría Metodelor Rapide Pentru Diagnosticul La-borator AI Infectiilor Tractusulii Urinar / G. Balan, // Teza de doctor on medicina. Chisunai. - 2008.

119. Gould, W. New selective media for enumeration and recovery of Pseudomo-nads from various habitats / W. Gould, C. Hagertorn, T. Bardinelli, R. Zabrotoviwicz // Appl. and Envirion.Microbiol. — 1985. V. 45. - №1. - P. 28-32.

120. Garg, P.K. Incidence, spectrum and antibiotic sensitivity pattern of bacterial infections among patients with acute pancreatitis / P.K. Garg, S. Khanna, N.P. Bohidar, et al. // J. Gastroenterol Hepatol. 2001. - V.16. - P. 55-59.

121. Gilardi, G. L. Nonfermentative gram-negative bacteria encouatered in clinical specimens. J. Microbiol. Serol. - 1974. - V. 39. - №2. -P. 29-42.

122. Graber, C. D. Bacteriophage grouping of Pseudomonas aeruginosa / C. D. Graber, R. Latta, E. H. Vogel, R. Brame. // Amer. J. Clin. Pathol. 1962. -V.37.-P. 54-62.

123. Hancock, R. Antibiotic uptake in.Gram-negative bacteria / R.Hancock, A. Bell // Eur. J. Clin Microbiol Infect. Dis. 1988. - V.7. - P. 713-720.

124. Holloway, B. W. Genom organization in Pseudomonas / B. W. Holloway, A. F. Morgan // Ann. Rev. Microbiol: 1986. - V. 40. - P. 79-105.

125. Holloway, B.W. Lysogeny in Pseudomonas, aeruginosa / B.W. Holloway, J. B. Egan, M. Monk. // Aust. J: Exp. Biol. 1960. - V. 38. - P. 321-330.

126. Holloway, B. W. Lysogenic conversion in Pseudomonas aeruginosa / B. W. Holloway, G. N Cooper. II J. Bacteriol. 1962. -V. 84. - P. 321-324.

127. Hugh, R. The taxonomic significance of fermentative versus oxidative metabolism of carbohydrates by various Gram-negative bacteria / R. Hugh, E. Leifson // J. Bact. 1953. - V. 66. - №1. - P. 24-26.

128. Husson, M.O. Pseudomonas and Burkholderia / M.O. Husson, Mr. Hamze, S. Verhille, D. Izard //Clinical precis of bacteriology, Paris. 2000. - P. 259-285.

129. Iglewski, B.H. Pseudomonas. In: Baron's Medical Microbiology (Barron S et al, eds.) / B.H. Iglewski // 4th ed., Univ of Texas Medical Branch. 1996. -P. - 543-548.

130. Iglewski, B.H. Pseudomonas aeruginosa exoenzyme S: an adenosine diphosphate ribosyltransferase distinct from toxin A / B.H. Iglewski, J. Sadoff, M.J. Björn, E.S. Maxwell // Proc Natl Acad Sei USA.- 1978. V.75. -№3.-P. 211-215.

131. Jain, D.K. Effect of addition of Pseudomonas aeruginosa Ug2 inocula or biosurfactants on biodégradation of selected hydrocarbons in soil / D.K. Jain, H. Lee, J.T. Trevors // Journal of Industrial Microbiology. 1992. -V.lOi — №2. — P. 87-93.

132. Jessen, O. Pseudomonas aerugenosa and other green fluorescent pseudomo-nads / Jessen. O. // Munksgaad, Copenhagen. 1965 - P. 244-246.

133. Keeven, J. A new selective medium for isolation / J. Keeven, B. De Cicco // Abstr. Annu. Meet. Amer. Soc. Microbiol., 1987, 87tm Annu. Meet., AtlantaWashington, D.C. 1987.-P. 382-385.

134. Kirschke, D.L. Pseudomonas aeruginosa and Serratia marcescens contamination associated with amanufacturing defect in bronchoscopes / D.L. Kirschke, et. al. // The New England Journal of Medicine. — 2003. V. 348. -№3.- P. 214-220.

135. Klinge, K. Differential tehniques anB methods of isolation of Pseudomonas / K. Klinge // Journal of Applied Microbiology. 1960. - V. 23. - №3. - P. 442-462.

136. Kramer, G. Beitrage1 zum- sofortigen Nachweis von Oxydations-und Reduktionswirkungen der Bakterien auf Grund der neuen Methode von W. H. Schultze / G. Kramer // Zbl. Bakt. (Abt. 1 Orig.). 1912. - V.62.1. P. 394-399.

137. Krylov, V. Myoviridae bacteriophages of Pseudomonas aeruginosa: a long and complex evolutionary pathway / V. Krylov // Res Microbiol. — 2003. — V. 154.-P. 69-75.

138. Lazdunski, A. Factors of virulence of Pseudomonas aeruginosa and their regulation / A. Lazdunski // Med. Badly. Repugnant. 1998. - V. 28. - P. 109-118.

139. Levin, M.A. Membrane filter technique for enumeration of Pseudomonas aeruginosa / M.A. Levin, V.J. Cabelli // Appl. Microbiol. 1972. - V. 24. -P. 864-870.

140. Loele, W. Uber die Verwendbarkeit von Oxydationswirkungen mit Para-phenylendiamin in der Bakteriologie / Loele, W. // Zbl. Bakt. (Abt. 1 Orig.). — 1929. — V. 111.-P. 325-328.

141. MacFaddin, J.F. Media for Isolation Cultivation -Identification-Maintenance of Medical Bacteria / J.F. MacFaddin // Williams and Wilkins, Baltimore. - 1985. -V. 1. - P. 25-28.

142. Maillard, J.Y. Perrin R Resistance of Pseudomonas aeruginosa PAOl phage Fl 16 to sodium hypochlorite / J.Y. Maillard, A.C. Hann // J: Appl Microbiol. 1998. - V.85. - №5. - P. 799-806.

143. Mann, S. Ober melaninbildende Stamme von Pseudomonas aeruginosa / S. Mann // Arch. Microbiol. 1969. - V. 65. - №4. - P. 359-379.

144. Meschede, W. Pseudomonas aerugenosa / W. Meschede // Med. Welt. — 1986. -V. 37, №41. -P. 269-272.

145. Multiple antibiotics, resistance in Pseudomonas aeruginosa: evidence, for involvement of an efflux operone / K. Poole et al. // J: Bacteriol. 1993. -V. 175.-P. 363-372.

146. Neu, H.C. Ecology, clinical significance and antimicrobial susceptibility of Pseudomonas aerugenosa / H.C. Neu // Nonfermentative gram-negative rods.- 1985.-V. 16.-P. 117-159.

147. Nicas, T.I. The role of exoenzyme S in infections with Pseudomonas aeruginosa / T.I. Nicas, J. Bradley, J.E. Lochner, B.H. Iglewski // J Infect Dis. -1985.-№152.-P. 16-21.

148. Nikaido, H. Outer membranes of gram-negative bacteria. XIX. Isolation from Pseudomonas aeruginosa PAOl and use in reconstitution and definition of the permeability barrier / H. Nikaido, R.E. Hancock // J. Bacteriol. -1978.-V. 136.-№1.-P. 381-390.

149. Nikaido, H. Penetration of lipophilic agents with multiple protonation sites into bacteria cells; tetracyclines and fluoroquinolones as examples / H. Nikaido, D.G. Thanassi // Antimicrob Agents Chemother. — 1993. V. 37. -P. 393-399.

150. O'Calaghan, R.J. Physical stability and biological and physicochemical properties of twelve Pseudomonas aeruginosa bacteriophages / R.J. O'Calaghan, W. O'Mara, J. B. Grogan // Virology. 1969. - V.37. -P. 642-653.

151. Ojeniyi, B. Comparison of genome fingerprinting with conventional typing methods used on Pseudomonas aeruginosa isolates from cystic fibrosis patients / B. Ojeniyi, U. Steen-Petersen, N. Hoiby // APMIS. 1993". - V. 101. -P. 168-175.

152. Ogle, J.W. Characterization and use of a DNA probe as an epidemiological marker for Pseudomonas aeruginosa / J.W. Ogle, J.M. Janda, D.E. Woods, M.L. Vasil // J. Infect. Dis. 1987. -V. 155. - P. 119-126.

153. Olive, P.r B. Di Principles and applications of methods for DNA-based typing of microbial organisms / PI B. D. Olive // J. Olin Microbiol 1999. V. 37.-P. 661-669.

154. Osman, M.A.Pyocine typing of P. Aeruginosa / M.A. Osman // J. Clin. Pathol. 1965. - V. 18. - P. 200-202.

155. Palleroni, N.J. Doudoroff M. Nucleic acid homologies in the genus Pseudomonas / N.J. Palleroni, M. Doudoroff // Int. J. Syst. Bacteriol. 1973. - V. 23.-№4.-P. 333-339.

156. Palleroni, N.J. Genus Pseudomonas Migula 1984 / N.J. Palleroni // Bergey's manual of systematic bacteriology Ed. R. Noel, Krieg J. G. Holf.-Baltimore: London: Williams Wilkins. 1984. - V.l. - P. - 141-198.

157. Palleroni, N.J. The Pseudomonas group / N.J. Palleroni // Bushey: Meadow-field press Ltd. 1978. - 80 p.

158. Pesci, E.C. The chain of command in Pseudomonas quorum sensing / E.C. Pesci, B.H. Inglewski // Trends Microbiol. 1997. - V. 24. - P. 132-134.

159. Pickett, M.J. Manual of Clinical Microbiology / M.J. Pickett, D.G. Hollis, E. Bottone // 5th ed., ed. in chief A.Ballows. Washington: Am Soc Mirobiol. -1991.-P. 410-428.

160. Postic, B. Observations on bacteriophage typing of Pseudomonas aeruginosa / B. Postic, M. Finland // J. Clin. Invest.-1961. V.40. - №20. - P. 6475.

161. Premalatha, A. Pentachlorophenol degradation by Pseudomonas aeruginosa / A. Premalatha, G. S. Rajakumar // World Journal of Microbiology« and Biotechnology. 1994. -№10. - P. 334-337.

162. Roncero, C. Pseudomonas aeruginosa Transposable Bacteriophages D3112 and B3 Require Pili and Surface Growth for Adsorption / C. Roncero, A. Darzins, J. Malcolm // J. of Bact., Apr. 1990. P. 899-904.

163. Ryan, K.J. Sherris Medical Microbiology / K.J. Ryan, C.G. Ray // 4th ed., McGraw. 2004. - P. 236-239.

164. Shibata, N., Doi Y., Yamane K., Yagi T., Kurokawa H., Kato K.S.H.,.Kai. K., Arakawa Y. // Journal of Clinical Microbiology. 2003. - V. 41. - P. 407-411.

165. Schubert R., The use of arginine brilliant' green glucose peptone broth (ABGP medium) as a primary culture medium for Pseudomonas'aeruginosa / R. Schubert // Zbl.Bakt. B. 1989. - V.187. - №3. - P. 266-268.

166. Schultze, W.H. Uber eine neue Methode zum Nachweis von Reduktions-u. Oxydations-wirkungen der Bakterien / W.H. Schultze // Zbl. Bakt. (Abt. 1 Orig.). 1910. - V. 56. - P. 544-548.

167. Schwartz, D.C. and Cantor C.R. // Cell. 1984. -V. 37. -P. 67-75.

168. Sellers, W. Medium for differentiating the gram-negative, nonfermenting bacilli of medical interest / W. Sellers //J. Bact. 1964. - V.8. - P. 46-48.

169. Sjoberg, L. Phage typing of Pseudomonas aeruginosa / L. Sjoberg, A. A. Lindberg. // Acta Pathol. Microbiol. Scand. 1968. - V.74. - P. 61-68.

170. Srinivasan, A. An outbreak of Pseudomonas aeruginosa infection associated with flexible bronchoscopes / A. Srinivasan, et.al. // The New England Journal of Medicine. 2003. - V.348. -№3. - P. 221-227.

171. Stackrerbrandt, E. The evolution of prokaryotes / E. Stackrerbrandt, C.R. Woese // Molecular and cellular aspects of microbial evolution: Soc. Gen. microbiol. symp.- Cambridge: Univ. Press. — 1981. — P. 21-31.

172. Stanier, R. Y. The aerobic pseudomonads: a taxonomic study / R. Y. Stanier, N. J. Palleroni, M. Doudoroff. // J. Gen. Microbiol. 1966. -V. 43. P. 159271.

173. Steed, C.J. Common infections acquired in the hospital: the nurse's role in prevention / C.J. Steed. // Nurs Clin North Am. 1999. - V.34. - №2. - P. 43-61.

174. Stock, J.B. Protein phosphorylation and regulation of adaptive response in bacteria / J.B. Stock, A.J. Ninfa, A.M. Stock // Microbiol Rev 1989. V. 53. -P. 450-490.

175. Uetake, H. Conversion of somatic antigens in Salmonella by phage infection leading to lysis or lysogeny / H. Uetake // Virology. 1958. — V. 5. - P. 6891.

176. Van Dyke, M.I. Evaluation of microbial surfactants for recovery of hydrophobic pollutants from soil / M.I. Van Dyke, S.L. Gulley, H. Lee, J.T. Trevors // Journal of Industrial Microbiology. 1993. - №11. - P. 163-170.

177. Vidal, D.R. Immunosuppressive effects of Pseudomonas aeruginosa exotoxin A on human B-lymphocytes / D.R. Vidal, P. Garrone, J. Banchereau // Toxicon. 1993. - V.31. - P. 27-34.

178. Weber, D.J. Nosocomial infections in the ICU: the growing importance of antibiotic-resistant pathogens / D.J. Weber, R. Raasch, W.A. Rutala // Chest 1999.-V.115.-P. 34-41.

179. Welsh, J. Fingerprinting genomes using PCR with arbitrary primers / J. Welsh, M. McClelland // Nucleic Acids Res. 1990. - V. 18. - №72. - P. 13-18.

180. Wick, M.J. Analysis of the structure-function relationship of Pseudomonas aeruginosa exotoxin A / M.J. Wick, A.N. Hamood, B.H. Iglewski //Mol Microbiol 1990. V.4. -№5. - P. 27-35.

181. Williams, J.G.K. DNA polymorphism amplified by arbitrary primers useful as genetic markers / J.G.K. Williams, A.R. Kubelik, K.J. Livak, J.A. Rafal-ski, S.V. Tingey // Nucleic Acids Res. 1989. - V.18. -№6. -P. 531-535.

182. Woese, C.R. Phylogenetic definition of the major eubacterial taxa / C.R. Woese, E. Stackrerbrandt, T. Macre, J.E. Fox // Syst. Appl. Microbiol. -1985. V.6. -№1. — P. 143-151.

183. Woods, D.E. Toxins of Pseudomonas aeruginosa: new perspectives / D.E. Woods, B.H. Iglewski // Rev Infect Dis. 1983. - V.4. - №7. - P. 15-22.

184. Yahr, T.L. Identification of type III secreted products of the Pseudomonas aeruginosa exoenzyme S regulon / T.L. Yahr, L.M. Mende-Mueller, M.B. Friese, D.W. Frank // J. Bacteriol. 1997. - V.179. - №7. - P. - 165-168.

185. Zabransky, R.J. Day Pyocine typing of clinical strains of Pseudomonas aeruginosa / R.J. Zabransky, F.E. Day // Appl. Microbiol. 1969. — V. 17. -P. 293-296.

186. Zierdt, C.H. Pseudomonas aerugenosa: Serology, phase, pyocin / C.H. Zierdt // Nonfermentative gram-negative rods. New York; Basel. - 1985. - V. 15. -P. 283-241.