Трансформация растений осины (Populus tremula L. ) генами ugt и acb и излучение некоторых физиологических и биохимических параметров трансгенных растений тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.00.12, кандидат биологических наук Чепинога, Анастасия Валерьевна

• Чепинога, Анастасия Валерьевна
• кандидат биологических наук
• 2003

Оглавление диссертации кандидат биологических наук Чепинога, Анастасия Валерьевна

ВВЕДЕНИЕ.

1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.

1.1. Осина (Populus tremula L.) как объект исследований.

1.2. Клональное микроразмножение.

1.2.1. Этапы и факторы клонального микроразмножения.

1.2.2. Индукция развития пазушных меристем.

1.2.3. Растения рода Populus как объект для получения культуры тканей.:.

1.3. Создание трансгенных растений.

1.3.1. Методы переноса генетического материала.

1.3.1.1. Трансформация растений на основе агробактериального вектора.

1.3.1.2. Трансформация in planta.

1.3.2. Трансформации растений рода Populus.

1.4. Конъютирование ИУК.

1.4.1. Гликозильные конъюгаты ИУК.

1.4.1.1. УДФГ-трансфераза из кукурузы и ген ugt (iaglu), кодирующий этот фермент.1.

1.4.1.2. Трансформация растений геном ugt.

1.5. Гомеостаз ИУК.

1.5.1. Особенности инактивации ауксина в культуре клеток и тканей растений.

1.5.2. Гомеостаз ИУК на разных стадиях онтогенеза.

1.6. Растения с измененным ауксинсвым гомеостазом.

1.6.1. Мутантные растения арабидопсиса.

1.6.2. Трансформация растений генами бактериального пути биосинтеза ИУК.

1.7. Белки, связывающие ацил-Кофермент А.

1.7.1. Растительные белки, связывающие ацил-КоА.

2. ЦЕЛЬ И ЗАДАЧИ ИССЛЕДОВАНИЙ.

3. ОБЪЕКТЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЙ.

3.1. Объекты исследований.

3.1.1. Растительный материал.

3.1.1.1. Стерилизация исходных эксплантов.

3.1.1.2. Условия клонального микроразмножения растений.

3.1.1.3. Условия выращивания растений на фитотроне и в открытом грунте.

3.1.2. Бактериальные штаммы.

3.1.2.1. Условия культивирования бактериальных штаммов.

3.1.2.2. Трехродительское скрещивание.

3.2. Трансформация растений.

3.2.1. Условные обозначения трансформированных растений.

3.3. Селекция трансформированных растений.

3.4. Выделение плазмидной ДНК.

3.5. Выделение растительной ДНК.

3.6. Выделение тотальной РНК из растений.

3.7. Полимеразная цепная реакция.

3.8. Саузерн блот гибридизация.

3.8.1. Приготовление ДНК-блотов по Саузерну.

3.8.2. Приготовление меченого зонда.

3.8.3. Гибридизация по Саузерну.

3.9. Гибридизация РНК.

3.10.Определение активности Р-глюкуронидазы.

3.11. Количественное определение содержания ИУК.

3.12. Определение активности УДФГ-трансферазы.

3.13. Статистическая обработка данных.

3.14. Использованные реактивы.

4. РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЙ.

4.1. Получение трансконъюгантов и их анализ.

4.2. Получение трансформированных растений и отбор трансформантов по активности маркерных ферментов.

4.2.1. Введение в культуру in vitro растений осины.

4.2.1.1. Индукция корнеобразования у растений осины.

4.2.1.2. Влияние ИМК на корнеобразование осины.

4.2.1.3. Индукция развития пазушных меристем.

4.2.2. Устойчивость трансформированных растений к селективному антибиотику.

4.2.3. Изучение активности маркерного фермента р-глюкуронидазы в трансгенных растениях осины.

4.3. Молекулярно-биологические доказательства трансформации.

4.3.1. Доказательства интеграции гена acb в геном растений осины.

4.3.2. Доказательства интеграции и экспрессии гена ugt в трансгенных растениях осины.

4.4. Биохимические подтверждения состоявшейся трансформации.

4.4.1. Активность УДФГ-трансферазы в трансгенных растениях осины.

4.4.2. Изучение влияния трансформации на содержание свободной ИУК в трансгенных растениях.

4.4.3. Влияние ИУК на рост трансгенных растений осины.

4.5. Оценка физиологических параметров трансгенных растений.

4.5.1. Рост трансгенных растений осины in vitro.

4.5.2. Трансгенные растения в условиях фитотрона.

4.5.3. Рост трансгенных растений осины на полевой делянке.

4.5.4. Фенологические наблюдения за трансгенными растениями, произрастающими на полевой делянке.

5. ОБСУЖДЕНИЕ.

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Трансформация растений осины (Populus tremula L. ) генами ugt и acb и излучение некоторых физиологических и биохимических параметров трансгенных растений»

Генетическая инженерия растений открывает широкие возможности для изучения функционирования растительных организмов и регуляции протекающих в них биохимических и физиологических процессов. В перспективе это позволит влиять на свойства растений, изменять их характеристики или придавать новые свойства, включая самые разные направления: увеличение продуктивности, усиление резистентности к болезням, пестицидам, стрессам со стороны окружающей среды, качественные изменения состава плодов и семян и т.д. Сегодня накоплен большой опыт конструирования генетически модифицированных растений и имеются примеры успешного решения ряда задач (Кучук, 1997; Ку-рочкина, Картель, 1998; Hansen, Wright, 1999; Hammond et al., 2000; и др.).

Известно, что одну из систем регуляции и интеграции у целого растения представляет собой гормональная система (Полевой, Саламатова, 1991). Процессы роста и развития в целом, а также отдельные этапы онтогенеза и морфо-физиологические явления (регенерация, дифференцировка ксилемы, цветение, завязывание и рост плодов, образование клубней и луковиц) в значительной мере связаны с гормональным балансом, или гормональным статусом, который складывается из содержания и соотношения различных фитогормонов, ведущим из которых является ауксин (Гуськов, 1991).

Лесное хозяйство является перспективной областью применения методов генной инженерии. Одной из основных проблем лесоводства является интенсификация процессов выращивания деревьев (Sennerby-Forsse, 1986; Toivonen et al., 1994; Царев, Мироненко, 1997; Кулагин, Кагарманов, 1997; и др.). В настоящее время проблема управления ростом растений и поиск путей его ускорения относятся к числу наиболее важных.

С развитием технологии переноса генов в древесные растения, модификация баланса эндогенных фитогормонов с помощью генной инженерии является потенциальным инструментом для изучения гормональной регуляции роста, а также'для достижения желаемых модификаций свойств древесины.

ИУК является важным морфогеном в дифференциации сосудистой ткани, что было показано как в системе культуры клеток и тканей, так и в интактных растениях (Момот, Смирнова, 1978; Гамбург и др., 1990; Sachs, 1981; Jacobs, 1984; Aloni, 1987; Roberts et al., 1988; и др.). В древесных растениях полярный транспорт ИУК является критическим фактором для поддержания структуры и активности сосудистого камбия, который обусловливает вторичный рост стебля (Федорова, 1982; Меняйло, 1987). Известно также, что процесс ксилогенеза представляет собой одно из центральных по энергоемкости и аккумуляции органического вещества звеньев в онтогенезе древесного растения (Меняйло, 1987). Хотя молекулярные механизмы действия ИУК на эти процессы полностью не раскрыты, очевидно, что статус ИУК в древесных растениях является критическим фактором количества и качества образованной древесины (Tuomi-nenetal., 1995).

Ряд исследователей занимались изучением влияния фитогормонов на рост древесных растений, и была установлена прямая корреляция между интенсивностью роста и содержанием ауксина в органах древесных растений в физиологически оптимальных пределах (Mirov, 1967; Васильева, 1970; Федорова, 1982; Zakrzewski, 1991).

Рядом коллективов авторов были получены травянистые и древесные трансгенные растения, сверхэкспрессирующие гены бактериального пути биосинтеза ИУК (Пустовойтова и др., 2001; Klee et al., 1987; Sitbon et al., 1991; 1992a; 19926; Romano et al., 1993; Tuominen et al., 1995). Большинство полученных растений характеризовались высоким содержанием ИУК и аномальным фенотипом, проявляющимся вследствие гиперауксиноза. По предположению авторов, высокий уровень биосинтеза способствовал накоплению ИУК в токсических концентрациях вследствие того, что эффективность систем инактивации гормона (его конъюгирования) отставала от его биосинтеза.

Использование в данной работе для трансформации гена ugt из кукурузы представляло интерес в связи с тем, что кодируемый этим геном фермент УДФГ-трансфераза осуществляет обратимую реакцию конъюгирования ИУК с глюкозой, контролируя ключевой этап связывания свободного гормона. Интеграция в геном растений осины этого гена и его экспрессия должны приводить к изменению на определенных этапах метаболизма ауксина и оказать воздействие на пул свободной и конъюгированной ИУК, изменяя ауксиновый гомеостаз в растениях и регуляцию ростовых процессов.

Использование для трансформации различных генетических конструкций, содержащих ген acb из арабидопсиса, также представляет интерес, поскольку функции белка, связывающего ацил КоА, в растениях мало изучены, и введение дополнительной дозы гена "домашнего хозяйства" может оказать влияние на метаболизм липидов и связанные с ним процессы.

В данной работе представлены результаты трансформации растений осины генами ugt и acb. В полученных трансгенных растениях наблюдали увеличение активности УДФГ-трансферазы, содержания эндогенной ИУК, что коррелировало с более высокими ростовыми параметрами ряда вариантов опытных растений при выращивании in vitro и в полевых условиях. Представленные данные согласуются с данными других авторов по результатам получения трансгенных растений арабидопсиса, сверхэкспрессирующих собственный ген ugt (Jackson et al., 2002). Полученные результаты свидетельствуют о том, что трансформация с использованием данных конструкций генов приводит к изменению ауксинового статуса растений и вследствие этого изменению интенсив4 ности процессов роста.

Полученные в данной работе трансгенные растения могут являться модельными объектами для изучения влияния трансформации генами ugt и acb на древесные растения. Изучение физиологических и биохимических параметров трансформированных растений осины может способствовать пониманию роли белковых продуктов перенесенных трансгенов в метаболизме и процессах роста древесных растений, что обусловливает фундаментальное и прикладное значение работы. Полученные быстрорастущие растения осины могут использоваться для создания коротко-ротационных лесных плантаций. Накопленный опыт может послужить основой при дальнейшей работе с древесными растениями в целях получения форм с новыми полезными свойствами.

Автор выражает глубокую благодарность научным руководителям работы члену-корреспонденту РАН доктору биологических наук Рюрику Константиновичу Саляеву, доктору биологических наук Наталье Игоревне Рекослав-ской за постоянное внимание, всестороннюю помощь в работе и ценные замечания при написании рукописи. Сердечная благодарность за обсуждение результатов, помощь в работе и доброжелательную атмосферу всем сотрудникам лаборатории физиологии трансгенных растений СИФИБР СО РАН.

В тексте диссертации использованы следующие сокращения: АБК - абсцизовая кислота БАП - 6-бензиламинопурин БСА - бычий сывороточный альбумин 2,4-Д - 2,4-дихлорфеноксиуксусная кислота ДСН - додецилсульфат натрия ИАГлю - ЬО-индол-З-ил-ацетил-р-Б-глюкоза ИАИноз - индолил-3-ацетил-мио-инозит ИМК - индолил-3-масляная кислота ИУК - индолил-3-уксусная кислота КоА - кофермент А МЭ - меркаптоэтанол НУК - а-нафтилуксусная кислота оксИУК - оксиндол-3-уксусная кислота ПЦР - полимеразная цепная реакция ССР - стандартный солевой раствор УДФГ - уридин-5-дифосфат-глюкоза

УДФГ-трансфераза (ИУК-глюкозасинтаза) - УДФГ - индол-З-ил-ацетат-p-D-глюкозилтрансфераза

ЭДТА - этилендиаминтетрауксусная кислота

АСВР - белок, связывающий ацил-Кофермент А (от англ. acyl СоА binding protein) acb - ген, кодирующий АСВР gus (uidA) - ген, кодирующий фермент р-глюкуронидазу iaaM (от indolyl acetic acid, или tmsl от tumour morphology shooty, или ген 1) -ген, кодирующий триптофан-2-монооксигеназу iaaH (tms2, или ген 2) - ген, кодирующий индолил-3-ацетамидгидролазу nptll - ген, кодирующий неомицинфосфотрансферазу ugt (iaglu) - ген, кодирующий УДФГ-трансферазу ДЭПК - диэтилпирокарбонат

Заключение диссертации по теме «Физиология и биохимия растений», Чепинога, Анастасия Валерьевна

139 ВЫВОДЫ

1. Впервые проведена трансформация древесных растений генами ugt из кукурузы и acb из арабидопсиса (в смысловой и антисмысловой ориентациях).

2. Селекция на канамицине и активность P-глюкуронидазы свидетельствовали об интеграции и экспрессии маркерных генов в трансгенных растениях осины. .

3. С помощью молекулярно-генетических экспериментов установлена интеграция генов ugt и acb в геном растений осины в результате трансформации.

4. Результаты гибридизации РНК-дот-блотов и более высокая активность УДФГ-трансферазы в трансгенных растениях свидетельствовали об экспрессии гена ugt в трансгенных растениях.

5. Обнаружено, что трансгенные растения характеризовались увеличением содержания свободной ИУК, что обусловило отличия их ростовых параметров от нетрансформированных растений.

6. Трансгенные растения, полученные путем введения генетической конструкции с геном ugt, имели наиболее высокую скорость роста по сравнению с контрольными растениями в условиях in vitro.

7. Трансформация генами ugt и acb в смысловой ориентации (асЬ302, асЬЗОЗ, асЬ304, асЬ502) позволила получить растения, характеризующиеся более высокими ростовыми параметрами по сравнению с ^трансформированными растениями при выращивании в условиях вегетационного опыта и в полевых условиях.

8. У растений, подвергшихся трансформации генами ugt и acb в антисмысловой ориентации {асЬ402, асЬ404), происходило замедление процессов роста in vitro по сравнению с контролем и проявилась неспособность к выживанию на селективной среде и в условиях автотрофного питания.

Использование для трансформации древесных растений генетических кон струкций, включающих гены ugt и acb, является перспективным для направ ленного изменения свойств древесных растений.

141

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

В работе проведена трансформация растений осины генами ugt из кукурузы и acb из арабидопсиса. Трансформацию проводили методом in planta, исключающим этап культуры тканей и заключающимся во внесении агробактери-ального вектора с клонированными целевыми и маркерными генами при поранении пазушной почки растений и последующей регенерации побегов. Ранее этот метод использовался для трансформации травянистых растений. Полученные результаты позволяют сделать вывод о том, что данный метод трансформации пригоден и для древесных растений. Результаты определения активности ферментов неомицинфосфотрансферазы и Р-глюкуронидазы подтвердили интеграцию и экспрессию маркерных генов nptll и gus в трансгенных растениях. С помощью молекулярно-генетических исследований установлена интеграция генов acb и ugt в геном трансгенных растений осины. Результаты РНК-дот-блот гибридизации и определения активности УДФГ-трансферазы свидетельствуют об экспрессии гена ugt в трансгенных растениях.

Трансформация с использованием трансконъюганта трехродительского скрещивания вызывала стабильные изменения морфометрических'параметров трансгенных растений. С помощью конструкций с целевым геном ugt были получены трансгенные растения, характеризующиеся повышенной активностью УДФГ-трансферазы, увеличенным содержанием свободной ИУК и более высокими ростовыми параметрами в условиях in vitro, а также наибольшим диаметром ствола, длиной боковых ветвей и междоузлий при выращивании в полевых условиях. Введение при трансформации одновременно генов ugt и acb (в смысловой ориентации) не вызывало синергического эффекта, выраженного в увеличении ростовых параметров в условиях in vitro, но способствовало ускорению роста в условиях полевого эксперимента. При выращивании в полевых условиях эти растения по суммарной длине боковых побегов опережали нетранс-формированные в 2,5 раза. Полученные в результате трансформации антисмысловой конструкцией гена acb растения характеризовались замедлением ростовых процессов in vitro по сравнению с контролем, а также неспособностью их выживать в автотрофных условиях питания.

В трансгенных растениях происходило увеличение содержания свободной ИУК, что, вероятно, обусловило высокие ростовые параметры опытных растений вариантов ugt, ugt+acb302, ugt+acb303, ugt+acb304, ugt+acb502. Полученные результаты свидетельствуют о том, что эти изменения связаны с экспрессией трансгена ugt в растениях осины, и согласуются с данными, полученными другими авторами.

Результаты данного исследования показали возможность регуляции роста древесных растений с помощью трансформации геном ugt. Сведения, полученные в настоящей работе, могут быть использованы при поиске новых подходов для создания быстрорастущих форм древесных растений.

Приведенные в настоящей работе данные свидетельствуют о том, что использование для трансформации древесных растений генетических конструкций, включающих гены ugt и acb (в смысловых ориентациях) позволило получить растения осины, характеризующиеся ускоренным темпом роста как в условиях in vitro, так и в условиях открытого грунта.

Список литературы диссертационного исследования кандидат биологических наук Чепинога, Анастасия Валерьевна, 2003 год

1. Баврина Т.В., Ложникова В.Н., Махачкова И., Грянко Т.И. Трансформанты Табаков модель для изучения роли фитогормонов в цветении и плодоношении // Физиол. раст. - 1999. - Т. 46. - №. 2. - С. 226 - 230.

2. Баврина Т.В., Онджей М., Ложникова В.Н., Махачкова И., Дудка Н.Д. Крекуле Я. Трансгенные по цитокининам и ауксину растения длиннодневного табака сильвестрис {Nicotiana silvestris Spegar et Comes) // ДАН. 1996. - Т. 351.-№1.-С. 115-118.

3. Бакулин В.Т. Интродукция и селекция тополя в Сибири. Новосибирск, 1990.- 173 с.

4. Биотехнология растений: культура клеток / Пер. с англ. В.И. Негрука. -М.: Агропромиздат, 1989. 280 с.

5. Бутенко Р.Г. Применение метода культуры изолированных верхушечных почек для изучения процесса роста и органогенеза растений // Физиол. раст. — 1960. Т. 7, № 6. - С. 715 - 723.

6. Бутенко Р.Г. Биология клеток высших растений in vitro и биотехнологиина их основе. М.: ФБК-ПРЕСС, 1999. - 160 с.4

7. Быченкова Э.А., Давид А. Каллусообразование й органогенез в тканях листа Populus balsamifera L., культивируемого in vitro // Физиол. раст. 1978. — Т. 25.-Вып. 2.-С. 274-282.

8. Васильева Н.П. Физиологически активные вещества тополя душистого и некоторых его гибридов // Сб. работ по лесному хозяйству ВНИИ лесоводства и механизации лесного хозяйства. М., 1970. - Вып. 52. - С. 112-119.

9. Ващук Л.Н. Лесной фонд Иркутской области: К 100-летию организации первых лесничеств и лесоустройства в Иркутской губернии). Иркутск, 1994. -112 с.

10. Высоцкий В.А., Поликарпова Ф.Я., Трушечкин В.Г. Использование 6-бензиламинопурина для размножения плодовых и ягодных культур // Регуляторы роста и развития растений: Тез. докл. I Всесоюз. конф. М.: Наука, 1981. -С. 155-156.

11. Гамбург К.З. Биохимия ауксина и его действие на клетки растений. Новосибирск: Наука. Сиб. отд-ние, 1976. - 272 с.

12. Гамбург К.З. Метаболизм ауксина и его действие на культуры изолированных клеток растений: Дисс. . д-ра биол. наук. Иркутск, 1980. - 333 с.

13. Гамбург К.З., Рекославская Н.И., Швецов С.Г. Ауксины в культурах тканей и клеток растений. Новосибирск: Наука, 1990. - 243 с.

14. Гловер Д. (ред.) Клонирование ДНК. Методы (пер. с англ.). М.: Мир, 1988.-538 с.

15. Гуськов А.В. Метаболизм ауксинов в растениях и его регуляция // Итоги науки и техники ВИНИТИ. Сер. Физиол. раст. 1991. - Т. 8. - 151 с.

16. Дерфлинг К. Гормоны растений. Системный подход (пер. с англ.). М.: Мир, 1985.-304 с.

17. Дрейпер Дж., Скотт Р., Армитидж Ф., Уолден Р. (ред.) Генная инженерия растений. Лабораторное руководство (пер. с англ.). -М.: Мир, 1991. 408 с. '

18. Дутина О.П. Тополь душистый (Populus suaveolens Fisch.) и перспективы введения его в культуру в условиях южной части Средней Сибири. Автореф. дисс. . канд. биол. наук. - Иркутск, 1967. - 26 с.

19. Еникеев А.Г., Мишутина У.О., Паковски Р.С. Изучение функций растительных ацил-КоА связывающих белков методами генетической инженерии // Вестник Башкирского университета. 2000. - № 2(H). - С. 7 - 9.

20. Жукова В.М. Перенос и изучение экспрессии гена ugt (УДФГ-трансферазы) в растения картофеля. Автореф. дисс. . канд. биол. наук. - Иркутск, 1999.-34 с.

21. Катаева Н.В., Бутенко Р.Г. Клональное микроразмножение растений. -М.: Наука, 1983.-96 с.

22. Корзинников С.Н. Леса и лесная промышленность Иркутской области. -Иркутск: Иркут. обл. кн. изд-во, 1950. 94 с.

23. Кулагин А.Ю., Кагарманов И.Р. Рост тополей в условиях маточной плантации // Лесное хозяйство. -1997. - № 2. - С. 38.

24. Кулагин А.Ю., Кагарманов И.Р., Блонская Л.Н. Тополя в Предуралье: дендроэкологическая характеристика и использование. Уфа: Гилем, 2000. -124 с.

25. Кулаева О.Н. Цитокинины, их структура и функции. М.: Наука, 1973.264 с.

26. Культура тополей. Харьков, 1959. - 137 с.

27. Курочкина С.Д., Картель Н.А. Генетическая трансформация растений, процессы рекомбинации и регуляции экспрессии генов у трансгенных растений // Молекулярная генетика, микробиология и вирусология. 1998. - Т. 4. - С. 3 -12.

28. Кучук Н.В. Генетическая трансформация высших растений, опосредованная бактериями из рода Agrobacterium // Успехи современной биологии. 1997. - Т. 117. - Вып. 6. - С. 645 - 659.

29. Леса и лесное хозяйство Иркутской области / Л.Н. Ващук, Л.В. Попов, Н.М. Красный и др. / Под ред. Л.Н. Ващука. Иркутск, 1997. - 288 с.

30. Лутова Л.А., Павлова З.Б., Иванова М.М. Агробактериальная трансформация как способ изменения гормонального метаболизма у высших растений // Генетика. 1998. - Т. 34.-№ 2. - С. 165 - 182.

31. Меняйло Л.Н. Гормональная регуляция ксилогенеза хвойных. Новосибирск: Наука, 1987. - 184 с.

32. Миляева Э.Л., Баврина Т.В., Гурко Н.А., Новикова Т.Б., Романов Г.А. Сравнительные характеристики трансгенных растений Табаков с разнойстепенью стерильности пыльцы // Вестник Башкирского университета. 2001. -№2. С. 20-21.

33. Момот Т.С., Смирнова A.M. Органогенез отдельных органов лиственницы сибирской и даурской (Larix sibirica and L. dahurica Turcz.) // Изв. АН СССР. Сер. биол. 1978. - № 6. - С. 936 - 939.4

34. Николаевский B.C. Газоустойчивость растений. Новосибирск: Наука, 1980.-243 с.

35. Осипова Г.М. Рапс в Сибири (морфобиологические, генетические и селекционные аспекты). Новосибирск: Наука, 1998 - 168 с.

36. Пирузян Э.С. Основы генетической инженерии растений. М.: Наука, 1988.-304 с.

37. Плотников В.К., Бакалдина Н.Б., Ефимов В.А. Стабильность мРНК зеина кукурузы в условиях нормальной и высокой температур // Физиол. раст. — 1991. -Т. 38.-№5.-С. 981 -990.

38. Плохинский Н.А. Биометрия. 2-е изд. М.: Изд-во МГУ, 1970. - 368 с. Полевой В.В. Роль ауксина в системах регуляции у растений. - JL: Наука. Ленингр. отд-ние, 1986. - 80 с.

39. Полевой В.В., Саламатова Т.С. Физиология роста и развития растений: Уч. пособие. JL: Изд-во Ленингр. ун-та, 1991. - 240 с.

40. Пустовойтова Т.Н., Баврина Т.В., Жданова Н.Е. Особенности водного режима и гормонального статуса трансгенных растений табака генами iaaM и iaaH биосинтеза ауксина // Известия Башкирского университета. 2001. - № 2. -С. 27-28.

41. Рекославская Н.И., Гамбург К.З. Метаболизм ИУК в нормальных и автономных культурах растительных тканей // Физиол. раст. 1975. - Т. 22. - № 5. -С. 1025- 1030.

42. Рекославская Н.И., Гамбург К.З., Гаманец JI.B. Влияние эндогенных и экзогенных полифенолов на метаболизм и активность ИУК в суспензионной культуре ткани табака // Физиол. раст. 1974. - Т. 21. -№ 4. - С. 721 - 727.

43. Рекославская Н.И., Жукова В.М., Чеканова Е.Г., Саляев Р.К., Мапелли С.П., Гаманец JI.B. Ауксиновый статус трансформированных растений Solanum в связи с устойчивостью к 2,4-Д и продуктивностью // Физиол. раст. 1999. - Т. 46. -№ 5. -С. 699-710.

44. Рекославская Н.И., Юрьева О.В., Шибанова JI.A., Саляев Р.К. Образование и физиологическая роль D-триптофана при прорастании у пшеницы // Физиол. раст. 19976. - Т. 44. -№ 2. - С. 227 - 234.

45. Родин А.Р., Калашникова Е.А. Методы культуры тканей: перспективы использования // Лесное хозяйство. 1995. -№3.-С. 9-11.

46. Романова Э.П., Куракова Л.И., Ермаков Ю.Г. Природные ресурсы мира. -М.: Изд-во МГУ, 1993. 304 с.

47. Седых В.Н., Бакулин В.Т., Тараканов В.В. Оценка толерантности сибирских тополей по прорастанию семян на загрязненных отходами бурения почвах // Лесоведение. 2001. - № 5. - С. 72 - 76.

48. Сергейчук С.А. Древесные растения и окружающая среда. Минск: Ураджай, 1985.-111 с.

49. Старова Н.В., Васютин О.В. Плантационное выращивание сортовых ив на кормовое и энергетическое сырье // Лесная генетика, селекция и физиология древесных растений. М., 1989. - С. 142 - 143.

50. Уткин А.И., Замолодчиков Д.Г., Честных О.В., Коровин Г.Н., Зукерт Н.В. Леса России как резервуар органического углерода биосферы // Лесоведение. -2001. -№ 5. С. 8-23.

51. Федорова А.И. Фитогормоны и рост дерева (на примере лиственницы). -Новосибирск: Наука, 1982.-248 с. 4

52. Херрингтон С., Макги Дж. (ред.) Молекулярная клиническая диагностика. Методы (пер. с англ.). М.: Мир, 1999. - 558 с.

53. Царев А.П., Мироненко С.С. Возможности энергетических плантаций тополя в Центральной лесостепи // Лесное хозяйство. 1997. - № 2. - С. 35 - 36.

54. Царев, А.П., Царева Р.П., Мироненко С.С. Отбор клонов тополя для ми-ниротационных плантаций // Отбор и его использование в улучшении лесных пород. Воронеж, 1994. - С. 28-32.

55. Чумаков М.И. Механизм агробактериальной трансформации растений. -Саратов: Слово, 2001. 256 с.

56. Яблоков А.С. Воспитание и разведение здоровой осины. М.-Л.: Гослес-бумиздат, 1949.-276 с.

57. Alho Н., Fremeau R.T., Tiedge Н., Vilcox J., Bovolin P., Brosius J., Roberts4

58. J.L., Costa E. Diazepam binding inhibitor gene expression: Localization in brain and peripheral tissues in rat // Proc. Natl. Acad. Sci. (USA). 1988. - V. 85. - P. 7018 -7022.

59. Aloni R. Differentiation of vascular tissues // Annu. Rev. Plant Physiol. -1987.-V. 38.-P. 179-204.

60. Andersen K.V., Ludvigsen S., Mandrup S., Knudsen J., Poulsen F.P. The secondary structure in solution of acyl-Coenzyme A binding protein from bovine liver using 1H nuclear magnetic resonans spectroscopy // Biochem. 1991. - V. 30 . - P. 10654-10663.

61. Andersen K.V., Poulsen F.M. Three dimensional structure of acyl-Coenzyme A binding protein from bovine liver // J. Mol. Biol. 1992. - V. 226. - P. 1131 -1141.

62. Bent A.F., Clough S.J. Agrobacterium germ-line transformation: transformation of Arabodopsis without tissue culture // Plant Mol. Biol. Manual B7. 1998. - P. 1-14.

63. Bhalerao R.P., Eklof J., Ljung K., Marchant A., Bennett M., Sandberg G. Shoot derived auxin is essential for early lateral root emergence in Arabidopsis seedings // Plant J. 2002. - V. 29. - P. 325 - 332.

64. Bialek L., Michalczuk L., Cohen J.D. Auxin biosynthesis during seed germination in Phaseolus vulgaris II Plant Physiol. 1992. - V. 100. - P. 509 - 517.

65. Boerjan W., Cervera M., Delarue M., Beeckman Т., Dewitte W., Bellini C., Caboche M., Van Onckelen H., Van Montagu M., Inze D. Superroot, a recessive mutation in Arabidopsis, conferns auxin overproduction // Plant Cell. 1995. - V. 7. -P. 1405-1419.

66. Bourque J.E. Antisense strategies for genetic manipulations in plants // Plant Sciens. 1995. - V. 103. - P. 123 - 149.

67. Bradshaw H.D., Gordon J., Gordon M.P. Wound-responsive gene espression in poplars // Woody Plant Biotechnology (ed. by M.R. Ahuja). New York, 1991. P. 265-268.

68. Brown A.P., Johnson P., Rawsthorne S., Hills M.J. Expression and properties of acyl-CoA binding protein from Brassica napus // Plant Physiol. Biochem. 1998. -V. 36.-P. 629-635.

69. Bytchenkova E.A. The study of proliferation of cambium and parenchyma of branches from trees in cultures in vitro II Biol. Plant. 1963. - V. 5. - № 4. - P. 302 -309.

70. Casimiro I., Marchant A., Bhalerao R.P., Beeckman Т., Dhooge S., Swarup R., Ghragam N., Inze D., Sandberg G., Casero P.J., Bennett M. Auxin transport promotes Arabidopsis lateral root initiation // Plant Cell. 2001. - V. 13. - P. 843 - 852.

71. Chalupa V. Control of shoot formation and production of trees from poplar callus // Biol. Plant. 1974. - V. 16. - № 4. - P. 316 - 320.

72. Chang S.S., Park S.K., Kim B.C., Kang B.J., Kim D:U., Nam H.J. Stable genetic transformation of Arabidopsis thaliana by Agrobacterium inoculation in planta //Plant J. 1994.-V. 5.-№4.-P. 551 -558.

73. Cheema. O.S. Somatic embryogenesis and plant regeneration from cell suspension and tissue cultures of mature Himalayan poplar (Populus ciliata) // Plant Cell Rep. 1989. - V. 8. - № 2. - P. 124 - 127.

74. Chen L., Mamey P., Taylor N.J., Brizard J.-P., Espinoza C., D'Cruz P., Huet H., Zhang S., Kochko A., Beachy R.N., Fauquet C.M. Expression and inheritance of multiple transgenes in rice plants // Nature biotechnology. 1998. - V. 16. - P. 1060 -1064.

75. Chisnell J.R., Bandurski R.S. Translocation of radiolabeled indole-3-acetic-acid and indole-3-acetyl-myo-inositol from kernel to shoot of Zea mays L. // Plant Physiol. 1988. - V. 86. - P. 79 - 84.

76. Chye M.-L. Arabidopsis cDNA encoding a membrane-associated protein with an acyl-CoA binding domain // Plant Mol. Biol. 1998. - V. 38. - P. 827 - 838.

77. Chye M.-L., Huang B.-Q., Zee S.Y. Isolation of a gene encoding Arabidopsis membrane-associated acyl-CoA binding protein and immunolocalization of its gene product // Plant J. 1999. - V. 18. - P. 205 - 214.

78. Chye M.-L., Li H.-Y., Yung. M.H. Single amino acid substitutions at the acyl-CoA-binding domain interrupt 14C.palmitoyl-CoA binding of ACBP2, an Arabidopsis acyl-CoA-binding protein with ankyrin repeats // Plant Mol. Biol. 2000. - V. 44. -P. 711 -721.

79. Clough S.J., Bent A.F. Floral dip: a simplified method for Agrobacterium-mediated transformation of Arabidopsis thaliana II Plant J. 1998. - V. 16. - № 6. — P. 735-743.

80. Cohen J.D., Bandurski R.S. Chemistry and physiology of the bound auxins // Ann. Rev. Plant Physiol. 1982. - V. 33. - P. 403-430.

81. Coleman G.D., Ernst S.G. In vitro shoot regeneration of Populus deltoides: effect of cytokinin and genotype // Plant Cell Rep. 1989. - V. 8, № 8. - P. 459^162.

82. Confalonieri M., Balestrazzi A., Bisoffi S. Genetic transformation of Populus nigra by Agrobacterium tumefaciens II Plant Cell Rep. 1994. V. 13. - P. 256-261.

83. Delarue M., Prinsen E., Van Onckelen H., M. Caboche M., Bellini C. Sur2 mutations of Arabidopsis thaliana define a new locus involved in the control of auxin homeostasis // Plant J. 1998. - V. 14. - P. 603 - 611.

84. Domagalski W., Schulze A., Bandurski R.S. Isolation and characterisation of esters of indole-3-acetic acid from the liquid endosperm of the horse chestnut (Aes-cuius species) // Plant Physiol. 1987. - V. 84. - P. 1107 - 1113.

85. Douglas G.C. Formation of adventitious buds in stem internodes of Populus hybrid TT32 cultured in vitro: effects of sucrose, zeatin, IAA and ABA // J. Plant Physiol.- 1985.-V. 121.-№3.-P. 225-231.

86. Engeseth N.J., Pacovsky R.S., Newman Т., Ohlrogge J. Characterization of an Acyl-CoA-Binding protein from Arabidopsis thaliana II Arch. Biochem. Biophys. -1996.-V. 331.-P. 55-62.

87. Epstein E., Cohen J.D., Bandurski R.S. Concentration and metabolic turnover of indoles in germinating kernels of Zea mays L. // Plant Physiol. 1980. - V. 65. -P. 415-421.

88. Ernst S.G., Coleman G.D, The transition between shoot regeneration competence and callus determination in internodal stem explants of Populus deltoides II Woody plant Biotechnology (ed. by M.R. Ahuja). Plenum Press New York, 1991. -P. 23 - 29.

89. Feldmann K.A., Marks M.D. Agrobacterium-mQdizted transformation of germinating seeds of Arabidopsis thaliana: a non tissue culture aproach // Mol. G. Genet. 1987. - V. 208. - P. 1 - 9.

90. Fladung M. Gene stability in transgenic aspen (Populus). 1. Flanking DNA sequences and T-DNA structure // Mol. G. Genet. 1999. - V. 260. - P. 574 - 581.

91. Fladung M., Ahyja M.R. Excision of the maize transposable alement Ac in periclinal chimeric leaves of 35S-Ac-rolC transgenic aspen-Populus // Plant Mol. Biol. 1997. - V. 33. - P. 1097 - 1103.

92. Frary A., Hamilton C.M. Efficiency and stability of high molecular meight DNA transformation: an analysis in tomato // Transgenic Res. 2001. - V. 10. - P. 121-132.

93. Gamburg K.Z. Interrelations between the uptake and metabolism of auxin and growth of plant tissue cultures // Physiology and biochemistry of auxins in plants. -Praha: Academia, 1988. P. 33 - 44.

94. Gaudin V., Vrain Т., Jouanin L. Bacterial genes modifying hormonal balances in plants // Plant Physiol. Biochem. 1994. - V. 32. - P. 11 - 29.

95. Gelvin S.B. Multigene plant transformation: More is better! // Nature biotechnology. 1998. - V. 16.-P. 1009-1010.

96. Gelvin S.B., Liu Ch.-N. Genetic manipulation of Agrobacterium tumefaciens strains to improve transformation of recalcitrant plant species // Plant Mol. Biol. Manual. 1994. - B4. - P. 1 - 13.

97. Grunwald C., Deutsch F., Eckstein D. Wood formation on rolC transgenic aspen trees // Trees. 2000. - V. 14. - P. 297 - 304.

98. Hammond J., McGarvey P., Yusibov V. Biotechnology: new products and applications. Berlin: Springer Verlag, 2000. - P. 196.

99. Hansen G., Wright M.S. Recent advances in the transformation of plants // Trends in plant science. 1999. - V. 4 (6). - P 226 - 231.

100. Hawkins S., Samaj J., Lauvergeat V., Boudet A., Grima-Pattenati J. Cinnamyl Alcohol Dehydrogenase: Identification of new sites of promoter activity in transgenic poplar//Plant Physiol.-1997.-V. 113.-P.321 -325.

101. Hills M.J., Dann R., Lydliate D., Sharpe A. Molecular cloning of a cDNA from Brassica napus L. for a homologue of acyl-CoA-binding protein // Plant Mol. Biol. — 1994.-V. 25.-P. 917-920.

102. Jacobs W.P. Functions of hormone at tissue level of organization // TK Scott, ed, Hormonal regulation of development. II. Encyclopedia of Plant Physiology, New Series. V. 10. - Berlin: Springer Verlag, 1984. - P. 149 - 171.

103. Jackson R.G., Lim E.K., Li Y., Kowalczyk M, Sandberg G., Hoggett J., Ash-ford D.A., Bowles D.J. Identification and biochemical characterisation of an Arabidopsis indole-3-acetic acid glucosyltransferase // J. Biol. Chem 2001 - V. 276. - P. 4350-4356.

104. Jefferson R.A., Kavanagh T.A. Bevan M.W. GUS fusions: p-glucuronidase as a sensitive and versatile gene fusion marker in higher plants Л EMBO J. 1987. - V. 6. -№ 13. - P. 3901 -3907.

105. Karlin-Neumann G., Brusslan J., Tobin E. Phytochrome control of the tms2 gene in transgenic Arabidopsis: a strategy for selecting mutants in the signal transduction pathway // Plant Cell. 1991. - V. 3. - P. 573 - 582.

106. Keith C.S., Hoang D.O., Barret B.M., Feigelman В., Nelson M.C., Thai H., Baydorfer C. Partial sequence analysis of 130 randomy selected maize cDNA clones //Plant Physiol.-1993.-V. 101. P. 329 - 332.

107. Klee H.J., Horsch R.B., Hinchee M.A., Hein M.B., Hoffnam N.L. The effects of overproduction of two Agrobacterium tumefaciens T-DNA auxin biosynthetic gene products in transgenic petunia plants // Genes Dev. 1987. - V. 1. - P. 86 - 96.

108. Klopfenstein N.B., Thornburg R.W., McNabb H.S., Hall R.B., Hart E.R., Chun Y.W., Kernan A., Shi N.-Q. Transformation of Populus from system development to field plantings // Woody Plant Biotechnology (ed. by M.R. Ahuja). - New York, 1991.-P. 357-358.

109. Knudsen J. Acyl-CoA-binding protein (ACBP) and its relation to fatty acid-binding protein (FABP): An overview // Molec. Cell. Biochem. 1990. - V. 98. - P. 217-223.

110. Knudsen J., Mandrup S., Rasmussen J.T., Andreasen P.H., Poulsen F., Kris-tiansen K. The function of acyl-CoA-binding protein (ACBP)/diazepam binding inhibitor (DBI) // Molec. Cell. Biochem. 1993. - V. 123. - P. 129 - 138.

111. Kolmer M., Ross C., Tirronen M., Myohanen S., Alho H. Tissue-specific expression of the diazepam-binding inhibitor in Drosophila melanogaster: Cloning, structure and localization of the gene // Molec. Cell. Biol. 1994. - V. 14. - P. 6983 -6995.

112. Kowalczyk S., Bandurski R.S. Enzymic synthesis of l-o-(indol-3-yl acetyl) p-D-glucose. Purification of the enzyme from Zea mays, and preperation of antibodies to the enzyme // Biochem. J. 1991. - V. 279. - № 3. - P. 509 - 514.

113. Kowalczyk M, Sandberg G. Quantitative analysis of indole-3-acetic acid metabolites in Arabidopsis thaliana II Plant Physiol. 2001 - V. 127. - P. 1845 - 1853,

114. Kragelund B.B., Vilbour К., Madsen J.C., Knudsen J., Poulsen F.M. Three-dimensional structure of the complex between acyl-CoA binding protein and palmi-toyl-Coenzyme A // J. Mol. Biol. 1993. - V. 230. - P. 1260 - 1277.

115. Krasny M.E., Vogt K.A., Zasada J.C. Establishment of four Salicaceae species on river bars on interior Alaska // Holarctic ecology. 1988. - V. 11. - P. 210 - 219.

116. Magnus V., Nigovic В., Hangarter R.P. Good N.E. N-(indole-3-ylacetyl)amino acids as sources of auxin in plant tissue culture // Plant Growth Reg. 1992. - V. 11. -P. 19-28.

117. Mandrup S., Hummel R., Ravn S., Jensen G., Andreasen P.H., Gregersen N., Knudsen J., Kristiansen K. Acyl-CoA-binding protein/diazepam binding inhibitor gene and pseudogenes // J. Mol. Biol. 1992. - V. 228. - P. .1011 - 1022.

118. Marquardt H., Todaro G., Shoyab M. Complete amino acid sequences of bovine and human endozepines // J. Biol. Chem. 1986. - V. 261. - P. 9727 - 9731,

119. McCown B.H., McCabe D.E., Russell D.R., Robison D.J., Barton<K.A., Raffa K.F. Stable transformation of Populus and incorporation of pest resistance by electric discharge particle acceleration // Plant Cell Rep. 1991. - V. 19. - № 10. - P. 590 -594.

120. Michalczuk L., Ribnicky D.M., Cooke T.J., Cohen J.D. Regulation of indole-3-acetic acid biosynthetic pathways in carrot cell cultures // Plant Physiol. 1992. - V. 100.-P. 1346-1353.

121. Michalczuk L., Bandurski R. Enzymic synthesis of l-O-indol-3-ylacetyl-p-D-glucose and indol-2-ylacetyl-myo-inositol // Biochem. J. 1982. - V. 207. - P. 273 -281.

122. Mikkelsen J., Knudsen J. Acyl-KoA-binding protein from cow. Binding char-actreistics and cellular and tissue distribution // Biochem. J. 1987. - V. 248. - P. 709-714.

123. Mirov N.T. The Genus Pinus. N.Y., 1967. - 547 p.

124. Mocchetti I., Einstein R., Brosius J. Putative diazepam binding inhibitor peptide: cDNA clones from rat // Ргос/ Natl. Acad. Sci. (USA). 1986. - V. 83. - P. 7221 -7225.

125. Mudd J.B. Phospholipid biosynthesis // The biochemistry of plants / Ed. of P.K. Stumpf, E.E. Conn. New York: Academic Press, 1980. - V. 4. - P. 250 - 282.

126. Murashige Т., Skoog F. A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures // Physiol. Plant. 1962. - V. 15. - № 2. - P. 473 - 497.

127. Mysore K.S., Kumar C.T.R., Gelvin S.B. Arabidopsis ecotypes and mutants that are recalcitrant to Agrobacterium root transformation are susceptile to germ-line transformation // Plant J. 2000. - V. 21. - № 1. - P. 9 - 16.

128. Nikawa J., Tanabe Т., Ogiwara H., Shiba Т., Numa S. Inhibitory effects of long-chain acyl-Coenzyme A analogues on rat liver acetyl-Coenzyme A carboxylase // FEBS Lett. 1979. - V. 102. - P. 223 - 226.

129. Normanly J. Auxin metabolism // Physiol. Plant. 1997. - V. 100. - P. 431442.

130. Nowacki J., Bandurski R.S. Myo-inositol of indole-3-acetic acid as seed auxin precursors of Zea mays L. // Plant Physiol. 1980. - V. 65. - P. 422 - 427.

131. Ostin A., Kowalczyr M., Bhalerao R.P., Sandberg G. Metabolism of indole-3-acetic in Arabidopsis II Plant Physiol. 1998. - V. 118. - P. 285 - 296.

132. Ownes G., Sinha A., Sikela J., Hahn W. Sequence and expression of the murine diazepam binding inhibitor//Mol. Brain Res. 1989. - V. 6. - P. 101 - 108.

133. Pacovsky R.S. Arabidopsis thaliana acil-CoA binding protein: structure, function, genetics // A dissertation doctor of philosophy. Michigan State Univ. - 1996. -164 p.

134. Papadoupoulos V., Berkovich A., Krueger K.E. The role of diazepam binding inhibitor and its processing products at mitochondrial benzodiazepine receptors: regulation of steroid biosynthesis // Neuropharmacol. 1991. -V. 30 . - P. 1417 -1423.

135. Park J.G., Son S.H. In vitro shoot regeneration from leaf mesophyll protoplasts of hybrid poplar (Populus nigra x P. maximowiczii) // Plant Cell Rep. 1992. — V. 11.-P.2-6.

136. Pawlowski K., Kunze R., De Vries S., Bisseling T. Isolation of total, poly(A) and polysomal RNA from plant tissues // Plant Mol. Biol. Manual. 1994. - D5. - P. 1-13.

137. Poirier Y., Ventre G., Nawrath C. High-frequency linkage of co-expressing T-DNA in transgenic Arabidopsis thaliana transformed by vacuum-infiltration of Agro-bacterium tumefaciens II Theor. Ap. Genet. 2000. - V. 100. - P. 487 - 493.

138. Rasmussen J.T., Borchers Т., Knudsen J. Comparison of the binding affinities of acyl-CoA-binding protein (ACBP) and fatty acid dinding protein (FABP) for long-chain acyl-CoA esters // Biochem. J. 1990. - V. 265. - P. 849 - 855.

139. Rasmussen J.T., Rosendahl J., Knudsen J. Interactions of Acyl-CoA binding protein (ACBP) on processes for which asyl-CoA is a substrate, pruduct or inhibitor // Biochem. J. 1993. - V. 292. - P. 907 - 913.

140. Reddy A.S., Ranganathan В., Hailser R.M., Swize M.A. A cDNA encoding acyl-CoA-binding proteins from cotton // Plant Physiol. 1996. - V. 110: P. 2.

141. Rekoslavskaya N.I., Bandurski R.S. Indol as precursor of indol-3-acetic acid in Zea mays II Phytochemistry. 1994. - V. 35. - № 4. - P.905.

142. Rekoslavskaya N.I., Gamanezt L.V., Bryksina I.V., Mapelli S., Salyaev R.K. Obtaining transgenic tomato (Lycopersicon esculentum Mill.) and potato (Solanum tuberosum L.) by transfer of the ugt gene from corn // TGC Report. 1998. - V. 48.

143. Ribnicky D.M., Cohen J.D., Hu W.-S., Cooke T.J. An auxin surge following fertilization in carrots: a mechanism for regulating plant totipotency // Planta. 2002. -214(4).-P. 505-509.

144. Riemenschneider D.E., Haissig B.E. Mediated by Agrobacterium tumefaciens C58: a summary of recent research // Woody Plant Biotechnology (ed. by M.R. Ahuja). New York, 1991. P. 247 - 263.

145. Roberts L.W., Gahan P.B., Aloni R. Vascular differentiation and plant growth regulators. Berlin: Springer Verlag, 1988.

146. Romano C.P., Cooper M.L., Klee H.J. Uncoupling auxin and ethylene effects in transgenic tobacco and Arabidopsis plants // Plant Cell. 1993. - V. 5. - P. 181 -189.

147. Rose T.M., Schultz E.R., Todaro G.J. Molecular cloning of the gene for the yeast homolog (ACB) of the diazepam binding inhibitor (endozepine) acyl-CoA binding protein//Proc. Natl. Acad. Sci. (USA). 1992. - V. 89. - P. 11287 - 11291.

148. Rosendahl J., Ertbjerg P., Knudsen J. Characterization of ligand binding to acyl-CoA-binding protein // Biochem. J. 1993. - V. 290 . - P. 321 - 326.

149. Rutledge C.B., Douglas G.C. Culture of meristem tips and micropropagation of 12 commercial clones of poplar in vitro II Physiol. Plant. 1988. - V. 72. - № 2. - P. 367-373.

150. Sambrook J., E.F. Fritsch, T. Maniatis Molecular Cloning. A Laboratory Manual. 2nd ed. N.Y., Cold Spring Harbor Laboratory: Cold Spring Harbor, 1989.

151. Schmit F., Oakeley E.J., Jost J.P. Antibiotics induce genome-wide hypermeth-ylation in cultured Nicotiana tabacum plants // J. Biol. Chem. 1997. - V.272. - P. 1534- 1540.

152. Sennerby-Forsse L. Handbook for energy forestry. Sectoin for energy forestry; Department of ecology and enviromental research. Swedich University of Agricultural Sciences. UPsala, 1986. - 29 p.

153. Siren G., Sennerby-Forsse L., Ledin S., Energy plantations schort rotation forestry in Sweden // Boimass-regenerable energy. - Colchester. Wiley end Sons. 1987.-P. 119-143.

154. Sitbon F., Sundberg В., Olsson O., Sundberg G. Free and conjugated indoleacetic acid (IAA) contents in transgenic tobacco plants expressing the iaaM and iaaH4

155. A biosythesis genes from Agrobacterium tumefaciens II Plant Physiol. 1991. - V. 95.-P. 480-485.

156. Slovin J.P. Phytotoxic conjugates of indole-3-acetic acid. Potential agents for biochemical selection of mutants in conjugate hydrolisis // Plant Growth Regul. -1997. -V. 21.-P. 215 -221.

157. Snyder M.J., Feyereisen R. A diazepam-dinding inhibitor (DBI) homolog from the tobacco tornworm Manduca sexta II Mol. Cell. Endocrinol. 1993. - V. 94. - R1 -R4.

158. Szerszen J.B., Szczyglowski K., Bandurski R.S. iaglu, a gene from Zea mays involved in conjugation of growth hormone indole-3-acetic acid // Science. 1994. -V.265.-P. 1699-1701.

159. Tague B.W. Germ-line transformation of Arabidopsis lasiocarpa II Transgenic Research. 2001. - V. 10. - № 3. - P. 259 - 267.

160. Tam Y.Y., Epstein E., Normanly J. Characterisation of auxin conjugates in4

161. Arabidopsis. Low steady-state levels of indole-3-acetyl apartate, indole-3-acetyl-glutamate, and indole-3-acetyl-glucose // Plant Physiol. 2000. - V. 123. - P. 589 -595.

162. Taylor D.C., Weber N., Barton D.L., Underbill E.W., Hogge L.R., Weselake R.J., Pomeroy M.K. Triacylglycerol bioassembly in microspore-derived embryos of Brassica napus L. cv Reston // Plant Physiol. 1991. - V. 97: - P. 65 - 79.

163. Todaro G.J., Rose T.M., Shoyab M. Human DBI (endozepine): relationship to a homologous membrane associated protein (MA-DBI) // Neuropharmacol. 1991. — V. 30.-P. 1373-1380.

164. Topfer R., Marzeit V., Gronenborn В., Schell Jozef, Steinbiss H.-H. A set of plant expression vectors for transcriptional and translational fusions // Nucleic Acids Reserch. -1987.-V. 15.-№ 14.-P. 5890.

165. Tsai C.-J., Podila G.K., Chiang V.L. Agrobacterium-mediated transformation of quaking aspen (Populus tremuloides) and regeneration of transgenic plants // Plant Cell Rep. 1994. - V. 14. - P. 94 - 97.

166. Tsai C.-J., Popko J.L., Mielke M.R., Hu W.-J., Podila G.K., Chiang W.L. Sub-bression of O-methyltransferase gene by homologous sense transgene in quaking aspen causes red-brown wood phenotypes // Plant Physiol. 1998. 117. - P. 101 - 112.

167. Tzfira Т., Jensen C.S., Vainstein A., Altman A. Transformation and regeneration of transgenic aspen plants, via shoot formation from stem explants // Physiologia Plant. 1997. - V. 99. - P. 554 - 561.

168. Van de Loo F.J., Turner S., Somerville C. Expressed sequence tags from developing castor seeds // Plant Physiol. 1995. - V. 108. - P. 1141 - 1150.

169. Webb N.R., Rose T.M., Malik N., Marquardt H., Shoyab M., Todaro G.J. Bovine and human cDNA sequences encoding a putative benzodiazepine recepter ligand //DNA. 1987. - V. 6. - P. 71 - 79.

170. Winton L.L. Plantlets from aspen tissue cultures // Science. 1968. - V. 160 — №14.-P. 1234-1235.

171. Winton L.L. Shoot and tree production from aspen tissue cultures // Am. J. Bot. 1970. - V. 57. - № 8.-P. 904 - 909.

172. Wolter K.E. Root and shoot initiation in aspen callus cultures // Nature. — 1968. V. 219. - № 3. - P. 509 - 510.

173. Yangibashi K., Ohno Y., Kawamura M., Hall P.F. The regulation of interacel-lular transport of cholesterol in bovine adrenal cells: Purification of a novel protein // Endocrinol. 1988. - V. 123. - P. 2075 - 2082.

174. Yamashita A., Watanabe M., Tonegawa Т., Sugiura Т., Waku K. Acyl-CoA binding and acylation of UDP-glucuronosyltransferace isoforms of rat liver: their effect on enzyme activity//Biochem. J.-1995. V. 312. - P. 301 - 308.

175. Ye G.-N., Stone D., Pang S.-Z., Creely W., Gonzalez K., Hinchee M. Arabidopsis ovule is the target for Agrobacterium in planta vacuum infiltration transformation // The Plant J. 1999. - V. 19. - № 3. - P. 249 - 257.

176. Yisraeli J., Szyf M. Gene Methylation Patterns and Expression // DNA Meth-ylation. Biochemistry and Biological Significance (ed. by Ah. Razin et al.). Berlin etc.: Springer, 1984. 392 p.

177. Zakrzewski J. Hormonal control of cambial activity and vessel diffrentiation in Quercus robur I I Physiol. Plant. 1991. - V. 57. - P. 537 - 542.