Технологические особенности проведения высокодозного донорского тромбоцитафереза тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 14.00.29, кандидат медицинских наук Варламова, Светлана Васильевна

• Варламова, Светлана Васильевна
• кандидат медицинских наук
• 2009

Оглавление диссертации кандидат медицинских наук Варламова, Светлана Васильевна

ОГЛАВЛЕНИЕ.

СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ.,.

ВВЕДЕНИЕ.

ГЛАВА 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.

Актуальные вопросы донорского тромбоцитафереза.

1.1. Роль тромбоцитов в заместительной терапии.

1.2. Методы получения ТК.

1.2. 1 .История развития методов заготовки ТК.

1.2.2. Метод заготовки тромбоцитов из ОТП.

1.2.3. Методы заготовки тромбоцитов из J1TC.

1.2.4. Автоматический тромбоцитаферез.

1.3. Критерии качества ТК и сравнение морфофункциональных свойств тромбоцитов, заготовленных различными методами.

1.4. Сравнительная оценка аферезных технологий.

1.5. Факторы, влияющие на функциональные свойства тромбоцитов

1.5.1. Сравнение функг^иональной полноценности тромбоцитов, заготовленных на различных сепараторах клеток крови.

1.5.2. Влияние условий хранения на функциональную полноценность тромбоцитов.

1.6. Факторы, влияющие на безопасность и эффективность трансфузий тромбоцитов.

1.7. Переносимость ТЦФ и влияние ТЦФ на организм донора.

1.9. Экономические вопросы заготовки терапевтических доз тромбоцитов.

ГЛАВА 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ.

2.1. Характеристика групп доноров.

2.1.1. Критерии отбора доноров для заготовки терапевтических доз тромбоцитов.

2.2. Характеристика сепараторов клеток крови и аферезного ТЦФ.

2.2. Методы обследования доноров.

2.4. Методы исследования ТК.

ГЛАВА 3. РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЙ.

3.1. Методические особенности заготовки терапевтических доз тромбоцитов.

3.1.1. Критерии отбора доноров для заготовки терапевтических доз тромбоцитов.

3.1.2. Сравнительная характеристика ТЦФ в 3-х исследуемых группах.

3.1.3. Изучение факторов, влияющих на количество заготавливаемых доз тромбоцитов.

3.1.4. Исследование содержания тромбоцитов в крови доноров при заготовке терапевтических доз ТК.

3.1.5. Сравнительные результаты заготовки терапевтических доз тромбоцитов.

3.1.6. Характеристика интенсивного аппаратного ТЦФ.

3.1.7. Сравнительная характеристика эффективности интенсивного ТЦФ на различных сепараторах клеток крови.

3.2. Морфофункциональная характеристика тромбоцитов у доноров и в тромбоцитном концентрате.

3.2.1. Исследование морфологии тромбоцитов в сканирующем электронном микроскопе.

3.2.2. Исследование функциональных свойств тромбоцитов у доноров и в тромбоцитных концентратах.

3.3. Исследование переносимости донорами интенсивного ТЦФ.

3.3.1. Исследование показателей гемограммы.

3.3.2. Исследование цитометрических параметров тромбоцитов.

3.3.3. Изучение электрофоретической подвижности эритроцитов доноров при проведении интенсивных ТЦФ.

3.3.4. Изучение цитоархитектоники эритроцитов у доноров тромбоцитов в сканирующем электронном микроскопе.

3.3.5. Исследование уровня электролитов у доноров при проведении аппаратного ТЦФ.

3.3.6. Исследование коагуляционньгх показателей у доноров тромбоцитов

3.3.8. Исследование обмена железа у доноров при проведении интенсивного ТЦФ.

3.3.9. Исследование биохимических параметров у доноров при проведении интенсивного ТЦФ.

ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ.

ВЫВОДЫ.

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Технологические особенности проведения высокодозного донорского тромбоцитафереза»

Актуальность проблемы.

Постоянно возрастающая потребность в безопасных и эффективных компонентах крови при лечении онкогематологических больных — характерная черта современной гематологической клиники. Лечение больных с заболеваниями системы крови невозможно без гемокомпонентной терапии, особая роль в которой отводится тромбоцитам (6, 27). Трансфузии тромбоцитов, как средство заместительной терапии, являются в настоящее время общепринятым методом профилактики и лечения геморрагического синдрома при тромбоцитопении (1,8, 22). Для предупреждения спонтанной или приобретенной кровоточивости трансфузии тромбоцитов необходимы при проведении химио- и лучевой терапии, при трансплантации костного мозга и гемопоэтических клеток крови (2), при лечении больных с апластическим синдромом (92), а так же при различного рода тромбоцитопатиях (9, 36). Для успешного лечения гематологических больных особенно актуальным становится их обеспечение достаточным количеством тромбоцитных концентратов (ТК).

В последние годы актуальность приобретает проблема получения лечебных доз тромбоцитов от минимального числа доноров. Это связано с целым рядом причин, к которым можно отнести сохраняющийся кризис донорских кадров, увеличение передачи гемотрансмиссивных инфекций (ГТИ) при использовании тромбоцитов, заготовленных от многих доноров.

Это приводит к необходимости более тщательной селекции доноров, максимального и эффективного использования кадровых доноров с повторным привлечением к ТЦФ и увеличением кратности процедур. Важной проблемой в трансфузионной тактике остается предупреждение рефрактерности к тромбоцитам, вызванной иммунным компонентом, в частности, антителами против антигенов тромбоцитов (система HP А) и лейкоцитов (система HLA) (32, 84). Все это требует поиска новых методических подходов для получения оптимальных количеств тромбоцитов от одного донора за одну процедуру.

В настоящее время получение ТК в терапевтических дозах от одного донора возможно только с использованием аферезной технологии на сепараторах клеток крови. Поэтому в большинстве высокоразвитых стран безусловное предпочтение отдается методам заготовки аферезных ТК.

Существенные преимущества ТК, заготовленных на сепараторах клеток крови, состоят в возможности получения от одного донора до 2-х и 3-х лечебных доз тромбоцитов. При этом хранение тромбоцитов до 5 дней и при необходимости разделение двойной дозы ТК на два контейнера, создают возможность для пролонгированной трансфузионной поддержки больного с осуществлением принципа - «один донор — один реципиент» (18). Кроме того, аферезные тромбоциты содержат минимальную примесь лейкоцитов в ТК, при которой не требуется дополнительная фильтрация; обладают повышенной приживаемостью (106), меньшей бактериальной контаминацией по сравнению с тромбоцитами, заготовленными другими методами (296). Все это позволяет повысить эффективность и безопасность трансфузионной терапии тромбоцитами, снизить частоту аллоиммунизации больных, уменьшить посттрансфузионные осложнения (23, 24).

Тактика получения максимально эффективной и безопасной дозы тромбоцитов от одного донора соответствует современным клиническим требованиям и имеет экономические преимущества, так как сокращает потребность в донорах, повышает эффективность использования оборудования и приводит к уменьшению затрат на трансфузиологическое обеспечение больных (45, 94, 95).

В настоящее время нет регламентирующих документов для проведения аппаратного ТЦФ, единых методических подходов и критериев для безопасного проведения интенсивного ТЦФ в оптимальных режимах, позволяющих стабильно получать высокодозные ТК на сепараторах клеток крови.

Таким образом, актуальность работы обусловлена необходимостью разработки методических подходов проведения ТЦФ и критериев отбора доноров для заготовки больших доз тромбоцитов (двойных и тройных терапевтических доз) на сепараторах клеток крови. Цель работы:

Повысить эффективность аппаратного ТЦФ и изучить влияние интенсивных ТЦФ на организм донора.

Задачи исследования:

1. Разработать методические подходы проведения ТЦФ по заготовке двойных и тройных терапевтических доз тромбоцитов на сепараторах клеток крови.

2. Обосновать критерии отбора доноров, обеспечивающих безопасное проведение ТЦФ при получении двойных и тройных терапевтических доз тромбоцитов.

3. Провести сравнительный анализ эффективности сбора тромбоцитов на различных сепараторах клеток крови (Cobe Spectra, CS 3000 Plus, Amicus, MCS+).

4. Изучить морфофункциональные свойства заготовленных тромбоцитных концентратов.

5. Изучить переносимость донорами процедур интенсивного ТЦФ. Научная новизна.

Впервые изучено влияние интенсивного аппаратного ТЦФ у доноров на основанные показатели гемограммы, гемостаза, белкового состава, иммуноглобулинов, обмена железа. На основании полученных данных разработаны безопасные режимы интенсивного ТЦФ при заготовке двух и трех терапевтических доз тромбоцитов.

Предложенная технология получения высокодозных ТК, позволила повысить заготовку аферезных тромбоцитов и стабильно (в 92% случаев) получать двойные (59%) и тройные (33%) терапевтические дозы.

Впервые дана морфофункциональная оценка ТК, заготовленных в больших терапевтических дозах. Показано, что морфофункциональные характеристики тромбоцитов, заготовленных в больших дозах, соответствовали нормальным значениям и исходным параметрам донора.

Сделан сравнительный анализ ТЦФ при заготовке ТК в больших терапевтических дозах на 4-х сепараторах клеток крови (Cobe Spectra, Amicus, CS 3000 Plus, MCS+) по выходу тромбоцитов, эффективности сбора, основным параметрам ТЦФ. Полученные результаты показали высокую эффективность сбора тромбоцитов на всех аппаратах (74%). Вместе стем, больший выход клеток в ТК от одного донора за одну процедуру при проведении интенсивного ТЦФ отмечен на сепараторе Cobe Spectra (15 единиц ТК).

Научно-практическая ценность работы.

На основании полученных результатов показана безопасность и хорошая переносимость заготовки у доноров больших терапевтических доз аферезных тромбоцитов в интенсивном режиме ТЦФ.

Обосновано применение методических подходов, включающих введение критериев отбора доноров (исходное содержание тромбоцитов не менее 250x109/л, ОЦК не менее 5 л) и увеличение объема обработанной крови в среднем до 5,5±0,6 л при проведении аппаратного ТЦФ. Разработанные технологические особенности проведения ТЦФ дают возможность заготавливать более 600x109 тромбоцитов (двойную и тройную терапевтическую дозу) от одного донора за одну процедуру.

Полученные результаты будут способствовать более широкому внедрению метода интенсивного аппаратного ТЦФ в практику учреждений службы крови, что позволит повысить эффективность метода аппаратного ТЦФ, минимизировать количество доноров при заготовке ТК для реципиентов, нуждающихся в многократных трансфузиях. Заместительная терапия ТК, заготовлеными в режиме интенсивного ТЦФ в больших дозах от одного донора, поможет уменьшить риск передачи гемотрансмиссивных инфекций и посттрансфузионных осложнений. Внедрение в практику.

Метод получения двойных и тройных терапевтических доз тромбоцитов внедрен в отделении экстракорпорального очищения крови и отделении заготовки компонентов крови ГНЦ РАМН.

Результаты исследования используются в программе подготовки врачей по «Клинической трансфузиологии». Положения, выносимые на защиту.

1. Заготовка двух и трех лечебных доз аферезных тромбоцитов в интенсивном режиме ТЦФ не оказывает отрицательного воздействия на организм донора.

2. Технологические особенности ТЦФ при заготовке двойных и тройных доз тромбоцитов на сепараторах клеток крови заключаются в увеличении объема обрабатываемой крови в среднем до одного ОЦК донора, без значительного увеличения времени процедуры и объема вводимого антикоагулянта.

3. Минимально допустимым исходным содержанием тромбоцитов у доноров для получения двойных терапевтических доз установлено 250x10%; для заготовки тройных терапевтических доз тромбоцитов -290x109/л.

4. Уменьшение тромбоцитов после ТЦФ при заготовке высокодозных тромбоцитных концентратов в среднем до 149,6±3,2х 109/л является хорошим прогностическим признаком резервных и функциональных возможностей тромбоцитопоэза донора. Снижение тромбоцитов после ТЦФ менее 150х109/л не вызывает изменений в плазменно-тромбоцитарном звене гемостаза.

5. Высокая эффективность сбора двойных и тройных терапевтических доз тромбоцитов показана на всех сепараторах клеток крови.

6. Морфофункциональные характеристики тромбоцитов, заготовленных в больших дозах, соответствовали нормальным значениям и исходным показателям доноров. Апробация диссертации.

Апробация работы состоялась 11 сентября 2008г. на заседании проблемной комиссии ГНЦ РАМН «Проблемы донорства, производства и контроля качества компонентов и препаратов крови».

Материалы диссертации были доложены и обсуждены на ежегодных конференциях Московского общества гемафереза в 2004 и 2005г.; на симпозиуме Федеральной службы по надзору в сфере здравоохранения и социального развития «Безопасность переливания компонентов крови» (Москва, 2006г.); на съезде гематологов и трансфузиологов, посвященному 80-летию ЦОЛИПК (Москва, 2006г.); на VI съезде гематологов и трансфузиологов Республики Беларусь «Актуальные проблемы гематологии и трансфузиологии» (Минск, 2007г.); на научно-практических конференциях «Проблемы клинической трансфузиологии» (Москва, ГНЦ РАМН, 2007 и 2008 гг.). Публикации.

По материалам диссертации опубликовано 14 работ в отечественных и зарубежных изданиях, из них 3 - в журналах, рекомендованных ВАК. Объем и структура работы.

Диссертация изложена на 166 страницах печатного текста, иллюстрирована 30 таблицами, 31 рисунком, 3 диаграммами. Работа состоит из введения, обзора литературы, трех глав результатов собственных исследований, обсуждения результатов, выводов и списка литературы, включающего 304 источника, из них - 100 отечественных и 204 зарубежных.

Заключение диссертации по теме «Гематология и переливание крови», Варламова, Светлана Васильевна

выводы

1. Показана безопасность и хорошая переносимость донорами заготовки больших терапевтических доз аферезных тромбоцитов в интенсивном режиме ТЦФ. Не выявлено отрицательного влияния высокодозных ТЦФ на показатели гемограммы, гемостаза, белкового состава, соотношения классов иммуноглобулинов, обмена железа и морфофункциональные характеристики тромбоцитов доноров.

2. Разработаны методические подходы проведения тромбоцитафереза на сепараторах клеток крови (Cobe Spectra, Amicus, CS 3000 Plus, MCS+), позволившие увеличить заготовку доз тромбоцитов и стабильно (в 92% случаев) получать двойные (59%) и тройные (33%) терапевтические дозы тромбоцитов от одного донора за одну процедуру.

3. Определены дополнительные критерии отбора доноров тромбоцитов, обеспечивающие безопасную заготовку больших доз тромбоцитных концентратов: ОЦК не менее 5л, исходное содержание тромбоцитов не менее 250x109/л при получении двойных терапевтических доз и не менее 290x109/л — при заготовке тройных терапевтических доз тромбоцитов.

4. Показано, что при заготовке высокодозных тромбоцитных концентратов, после тромбоцитафереза происходит снижение тромбоцитов в среднем до 149,6±3,2хЮ9/л. Редукция тромбоцитов менее 150х109/л не вызывает у доноров достоверных изменений в тромбоцитарном и коа1уляционном звене гемостаза.

5. Установлена высокая эффективность сбора тромбоцитов на всех сепараторах клеток крови (в среднем 74%). Наибольший выход клеток в тромбоцитном концентрате от одного донора за одну процедуру получен при заготовке тромбоцитов на сепараторе Cobe Spectra - 15 единиц ТК (8,2±0,5х10п клеток).

6. Показано, что функциональная активность тромбоцитов, заготовленных в больших дозах, соответствовала нормальным значениям и исходным показателям доноров.

7. Морфологическая характеристика тромбоцитов в тромбоконцентратах, заготовленных в двойных и тройных терапевтических дозах, показала сохранность цитоархитектоники клеток. По данным сканирующей электронной микроскопии 70% тромбоциты имели дискоидную форму, 27% переходную и только 3% тромбоцитов имели необратимые формы (сфероидные и с длинными отростками).

ПРАКТИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ

1. При проведении ТЦФ в интенсивном режиме с заготовкой двойных и тройных терапевтических доз тромбоцитов необходима селекция доноров с формированием донорского пула для повторного привлечения к аппаратному ТЦФ.

Рекомендуемыми критериями отбора доноров для интенсивного ТЦФ являются: исходное количество тромбоцитов не менее 250x109/л для заготовки двойных терапевтических доз тромбоцитов, не менее 290x109/л для заготовки тройных терапевтических доз; ОЦК > 5л, масса тела > 75 кг.

2. Для допуска донора к интенсивному ТЦФ рекомендуется дополнительное исследование коагулограммы с агрегацией тромбоцитов.

3. Предлагаемый алгоритм проведения интенсивного ТЦФ у селективных доноров состоит из проведения 5 ТЦФ с интервалом в 14 дней с последующим перерывом в 3 месяца, повторением цикла из 5 ТЦФ (до 10 ТЦФ в год).

4. Методические особенности повышения эффективности заготовки терапевтических доз тромбоцитов на сепараторах клеток крови заключаются: 1) в увеличении объема обрабатываемой крови в среднем до 1 ОЦК донора (5,5±0,6 л) на сепараторах Cobe Spectra, Amicus, CS 3000 Plus; на MCS+ - 4,7±0,5 л (в среднем 11 циклов обработки крови);

2) оптимальной скорости эксфузируемой крови — 65-70 мл/мин.;

3) поэтапной коррекции соотношения кровь : антикоагулянт с 9:1 до 12:1, через каждый 1 литр перфузируемой крови.

5. Для проведения интенсивного ТЦФ целесообразно использование сепараторов 4 и 5 поколения с наиболее эффективными программами ТЦФ, эффективной лейкоредукцией, автоматической и индивидуальной подачей антикоагулянта, таких как Cobe Spectra и Amicus.

Список литературы диссертационного исследования кандидат медицинских наук Варламова, Светлана Васильевна, 2009 год

1. Абдиев К.М. Оптимизация тактики трансфузий концентратов тромбоцитов у больных с амегакариоцитарной тромбоцитопенией. Диссертация к.м.н. Москва, 1991.

2. Абдулкадыров К.М., Моисеев С.И. Гемокомпонентная терапия в практике лечения гематологических больных на современном этапе.

3. Ж. «Трансфузиология», 2001, 3, с. 15- 19.

4. Аграненко В.А., Балезина Л. В. Выделение концентрата тромбоцитов из лейкотромбослоя донорской крови и их консервирование.

5. Ж. «Гематология и трансфузиология», 1991, 3, с. 29-32.

6. Багдасаров А.А., Гусейнов Ч.С., Чернов Г.А., Бирюзова В.И. Консервирование тромбоцитов и их применение в клинике. Ж. «Советская медицина», 1960, 4, с. 17-24.

7. Байдун Л. В., Логинов А. В. Значение автоматического анализа крови в клинической практике. Ж. «Гематология и трансфузиология», 1996; 2, с. 36-41.

8. Байдурин С.А. Применение свежезаготовленной тромбоцитной массы при тромботических кровотечениях. (Обзор литературы). Ж. «Проблемы гематологии и переливания крови», 1980, 3, с. 33 40.

9. Балезина Л.В. Выделение и консервирование концентратов тромбоцитов из отдельных доз крови. Диссер. к.б.н. М., 1991., 141 с.

10. Баранов А.Е., Дорофеева Е.М., Калюта Б.А. Основные компоненты поддерживающей терапии при острой недостаточности костного мозга. Методические рекомендации МЗ СССР, М., 1977, 61 с.

11. Баркаган З.С. Геморрагические заболевания и синдромы. М.: Медицина, с. 59-112.

12. Ю.Буачидзе Л.Н., Чернов З.В. Использование сепаратора крови в клинической иммунологии. В кн.: Проблемы аутоаллергии в практической медицине. Таллин, 1975, с. 136. 11 .Бугланов А.А. Биохимическая и клиническая роль железа.

13. Ж. «Гематология и трансфузиология», 1991, 9, с. 36-37.

14. Васильев С.А., Джукаев А.А., Еременко JI.JL и др. Показатели функциональной активности тромбоцитов в крови доноров тромбоцитной массы. Ж. «Клиническая лабораторная диагностика», 1997, 5, с.60.

15. Волкова Р.И., Балезина JI.B., Аграненко В.А. и др. Консервирование концентратов тромбоцитов, выделенных их обогащенной тромбоцитами плазмы доноров крови. Ж. «Гематология и трансфузиология», 1992, 37(4), с. 32-34.

16. Волкова Р.И., Аграненко В.А. Рефрактерность и аллоиммунизация при переливании тромбоцитов. Ж. «Гематология и трансфузиология», 1992, 2, с. 16-21.

17. Волкова Р.И. Пороговое поведение системы свертывания крови при изменении концентрации кальция. Ж. «Биофизика», 1994, т.39, №4, с.713-719.

18. Воробьев А.И., Городецкий В.М. Тромбоцитная масса. Ж. «Проблемы гематологии и трансфузиологии», 1980, 10, с. 26-32.

19. Воробьев А.И., Бриллиант М.Д. Приобретенный иммунодефицит и принцип один донор один больной. Ж. «Терапевтический архив». 1985, 7, с. 3-6.

20. Гаврилов O.K. Фракционирование крови, 1981, 4, с.49.

21. Гаврилов O.K. Гравитационная хирургия крови. М. Медицина, 1984, с. 12

22. Гаврилов O.K., Козинец Г.И. Клиническое применение концентратов тромбоцитов. В кн. «Клетки костного мозга и периферической крови». М. Медицина, 1985, 280 с.

23. Головкина JI. JI. Генетический полиморфизм тромбоцитспецифических антигенов. Дисс. докт. М. 2008, 273 с.

24. Голосова Т.В., Никитин И.К. Гемотрансмиссивные инфекции. М., 2003, с. 40-45.

25. Городецкий В.М. Получение тромбоцитов от одного донора методом прерывистого тромбоцитафереза и их применение при амегакариоцитарной тромбоцитопении. Автореферат диссертации канд. мед. наук. Москва , 1981, 16 с.

26. Городецкий В.М., Воробьев А.И. Получение лечебной дозы тромбоцитов от одного донора. В сб. «Гравитационная хирургия крови», М. 1983, с. 153-154.

27. Городецкий В.М., Рыжко В.В., Петров М.М. Современные тенденции в заместительной терапии тромбоцитами. Актуальные вопросы гематологии и трансфузиологии: Материалы научно-практической конференции, СПб., 6-8 июня 2002г., с. 38-45.

28. Гутник Р.Б. Плазмаферез, цитаферез и их влияние на организм донора. Автореф. на соиск. д.м.н. Донецк, 1969, 28 с.

29. Гутник Р.Б. Получение концентратов тромбоцитов в небоксированных помещениях. В кн.: Рационализаторские предложения и изобретения в медицине. Киев, 1974, с. 133 134.

30. Дегтярева И.Н. Разработка эффективного метода получения лечебных доз тромбоцитов, обеспечивающего проведение курса гемокомпонентной терапии. Автореферат диссертации на соискание степени канд. мед. наук, 1986, 20 с.

31. Джукаев А.А. Влияние прерывистого тромбоцитафереза на организм донора. Диссер. на соискание ученой степени канд. мед. наук. М., 1997, 103 с.

32. Жибурт Е.Б. Инфекционная безопасность в трансфузиологии. Ж. «Новое в трансфузиологии», 2007, вып. 41, с.71-81.

33. Журавлев В.В. Прерывистый трехкратный тромбоцитаферез с применением новых комплектов полимерных контейнеров «600/400/400» и магистралей. Автореферат на соискание ученой степени к.м.н., 2005, 23 с.

34. Замулаева И.А., Виноградова Ю.Е., Корякин С.Н. и др. Разработка метода исследования молодых тромбоцитов с помощью проточной цитометрии. Ж. «Проблемы гематологии и переливания крови», 2000, 3, с. 10-15. ,

35. Захаров М.В. Оптимизация аппаратных методов получения компонентов крови в педиатрической практике. Автореферат на соискание ученой степени к. м. н., Москва, 2003, 23 с.

36. Идельсон Л.И. Тромбоцитопения. В кн.: Геморрагические заболевания и синдромы. М.: Медицина, 1980, с. 113 134.

37. Инструкция по фракционированию консервированной крови с использованием контейнеров оптипек, полуавтоматических плазмоэкстракторов Оптипресс и аппаратов для стерильного соединения трубок. МЗ РФ 29.06. 1999.

38. Инструкция по применению компонентов крови. М., 2002, 77 с.

39. Калинин Н.Н. Получение концентратов тромбоцитов и лейкоцитов с помощью сепаратора клеток крови и их применение при миелодепрессии. Автореф. дис. к.м.н. М., 1978, 28 с.

40. Калинин Н.Н. Плазма- и цитаферез на фракционаторах крови. Диссертация на соискание ученой степени докт. мед.наук. Москва, 1985.

41. Калинин Н.Н., Петров М.М., Варламова С.В., Штырева Е.М. 5-летний опыт работы с донорами-родственниками. Тезисы 4-ой конференции Московского общества гемафереза, 1996, с. 84.

42. Калюта Б.А., Ореховская Л.Б., Селидовкин Г.Д., Баранов А.Е. Массивный цитаферез на сепараторах клеток крови. Ж. «Проблемы гематологии и переливания крови», 1976, 12, с. 43-46.

43. Калюта Б.А., Баранов А.Е., Ореховская Л.Б. Модификация методов получения концентрата тромбоцитов для клинического применения. В кн.: Тезисы докладов научной конференции Московской клинической больницы № 6. М., 1977, с. 146-149.

44. Карташевский Н.Г. и др. Клиническое значение микросгустков переливаемой крови. Ж. «Хирургия», 1974, 12, с.56-60.

45. Клестова Т.В., Киселева Е.П., Потапнев М.П. Достоинства и недостатки использования автоматического гемафереза в системе заготовки крови. Материалы 16-ой научно-практической конференции Московского общества гемафереза, Москва, 27-28 мая 2008, с. 27.

46. Козинец Г.И. и др. Использование счетчика «Cobas Micros» в службе крови. Материалы конференции «Трансфузиология и Служба крови». Москва, 1998, с. 195-196.

47. Козинец Г.И., Погорелов В.М., Шмаров Д.А., и др. Клетки крови. Современные технологии их анализа. Москва, Триада-Фарм, 2002., с. 317-368.

48. Козинец Г.И., Попова О.В., Будник М.И. и др. Электрический заряд клеток крови, М., 2007, 207 с.

49. Козлов А.А., Качалова Н.Д., Простакова Т.М. О медицинском обследовании системы гемостаза у доноров. Ж. «Новое в трансфузиологии», 2006, вып. 41, с. 58-70.

50. Коленкин С.М. Некоторые особенности автоматического подсчета тромбоцитов крови. Методика контроля правильности работыанализатора. Ж. «Клиническая лабораторная диагностика», 2002, 8, с. 3335.

51. Компаниец A.M. Функциональная полноценность тромбоцитов, сохраняемых при различных температурных режимах. Автореферат диссертации к.м.н. 1980, 22 с.

52. Компаниец A.M., Аграненко В.А. Лечебная эффективность консервированных концентратов тромбоцитов. Ж. «Клиническая медицина», 1989, 12, с. 74-80.

53. Коробова Ф.В. Применение компьютерного морфометрического анализа тромбоцитов для контроля качества тромбоконцентратов. 8-я конференция Московского общества гемафереза, 2000, с. 77.

54. Коробова Ф.В. и др. Анализ тромбоцитов периферической крови — компьютерная цитометрия. Ж. «Клиническая лабораторная диагностика», 2000, 7, с. 36-40.

55. Костин А.И. Применение тромбоцитных концентратов у больных гемобластозами и депрессиями кроветворения. Диссертация на соискание ученой степени к.м.н., 2006, 117 с.

56. Климова К.Н., Рыжков С.В., Ионова А.И., Зайчик В.И. и др. Изменение функциональных систем организма доноров, подвергшихся аппаратномутромбоцитаферезу. Ж. «Гематология и трансфузиология», 1992, 3, с. 2729.

57. Лазаренко М.И., Чечеткин А.В., Слащев В.В., Чудаков Е.Б. Некоторые вопросы безопасности доноров и реципиентов (по материалам 59-ой конференции Американской ассоциации банков крови).

58. Ж. «Гематология и трансфузиология», 2007, т. 52, 3, с. 52-54.

59. Лаптев В.В., Чечеткин А.В. Вирусная безопасность и лейкофильтрационные технологии в Службе крови. Вестник службы крови России. 2007, 2, с. 26-28.

60. Левина А.А., Андреева Ф.П., Замчий Р.Ф. Определение концентрации ферритина в сыворотке крови радиоиммунным методом.

61. Ж. «Гематология и трансфузиология», 1984, 5, с. 57-58.

62. Левина Т.Н. Современный проточный счетчик. Диссертация к.м.н., 1999, 126 с.

63. Луговская С.А. Возможности гематологических анализаторов. Ж. «Клиническая лабораторная диагностика», 2007, 2, с. 6-9.

64. Матюшичев В.Б., Шамратова В.Г. Изменения показателей тромбоцитов периферической крови при железодефицитной анемии. Ж. «Гематология и трансфузиология», 2005, т.50, 2, с. 29-32.

65. Мельникова В.Н., Волкова С.Д., Монахенко И.В., Николаева JI.K. Интенсивный прерывистый плазмоцитаферез — перспективный метод обеспечения компонентной гемотерапии. Ж. «Гематология и трансфузиология», 1983, с. 13-16.

66. Никитин И.К., Орлова Г.К. Первый Оптицентр России (фракционирование консервированной крови с использованием Оптисистем). Ж. «Новое в трансфузиологии», М., 1996, вып. 16, с. 4953.

67. Никитин И.К., Расстригин Н.А., Орлова Г.К. Применение в клинике ГНЦ РАМН концентратов тромбоцитов, полученных с использованием Оптисистем. Ж. «Новое в трансфузиологии», 1996, вып. 16, с. 54-57.

68. Никитин И.К. Фракционирование крови с использованием полуавтоматических плазмоэкстракторов и контейнеров оптипек. Автореферат диссер. канд. мед.наук, 2002, 23 с.

69. Новодержкина Ю.К., Шишканова З.Г., Козинец Г.И. Конфигурация и поверхность клеток крови в норме и патологии. Изд. «Триада — фарм», Москва, 2004, с. 16-20.

70. Петере В.К. К методике подсчета тромбоцитов в камере.

71. Ж. «Лабораторное дело», 1976, 8, с. 495-496.

72. Перфильева Е.А., Плеская Л.Г., Калинин Н.Н. Совершенствование подсчета клеток в компонентах крови. Ж. «Гематология и трансфузиология», 2003, т.48, № 2, с. 44-46.

73. Петров В.Н. Физиология и патология обмена железа. JL, 1982.

74. Приказ МЗ РФ и РАМН № 244/№63 от 03.07.2001 г. «О внедрении в практику учреждений Службы крови устройств для удаления лейкоцитов из донорской крови».

75. Приказ МЗ РФ №311 от 04.08.2000 г. «О мерах по повышению безопасности гемотрансфузий».

76. Рыжко В.В., Городецкий В.М., Рогова Э.М. Эффективность различных способов сепарации крови. Ж. «Терапевтический архив», 1988, 5, 51-55.

77. Рыжко В. В. Применение тромбоцитов в клинической практике. Методические указания. М., 1998, с.7.

78. Савченко В.Г., Паровичникова Е.Н. и соавт. Результаты проводимых в течение 7 лет клинических исследований по лечению острых миелоидных лейкозов взрослых. Ж. «Терапевтический архив», 1999, 7, с. 13-20.

79. Савченко В.Г., Гармаева Т.Ц., Куликов С.М., Филатов Ф.П. и др. Эффективность и безопасность трансфузионной терапии гематологических больных. Ж. «Терапевтический архив», 2006, 7, с. 1218.

80. Селиванов Е.А., Данилова Т.Н., Дегтерева И.Н. и др. Служба крови в России в 2005 году. Ж. «Трансфузиология», 2006, 3, с. 4-26.

81. Селидовкин Г.Д., Калинин Н.Н., Калюта Б.А., Баранов А.Е. Опыт получения лейкотромбомассы при помощи сепаратора клеток крови. В кн.: Современные методы диагностики и терапии болезней крови. М., 1976, с. 29-35.

82. Сироткина О.В., Заботина A.M., Тараскина А.Е., Сиваченко Е.Б. и др. Участие гликопротеидов IIB — IIIA в спонтанной агрегации тромбоцитов. Ж. «Биллютень экспериментальной биологии и медицины», 2007, т. 143, 4., с. 398-401.

83. Совет Европы. Руководство по приготовлению, использованию и обеспечению контроля качества компонентов крови. 2002.

84. Стуклов Н.И., Козинец Г.И. Исследование тромбоцитов современные возможности. Ж. «Вестник гематологии», г. Санкт-Петербург, 2007, т. 3, 2, с. 82.

85. Сущенко И.Б., Калюта Б.А., Ореховская А.Б. и др. Массивный цитаферез и его влияние на организм донора в отдаленные сроки. В кн.: I Всесоюзный съезд гематологов и трансфузиологов: Тезисы докладов. М., 1979, с. 26-27.

86. Трапезников Н.Н., Буачидзе Л.Н., Чернов З.В. и др. Первый опыт применения сепаратора крови в онкологической практике. Ж. «Вопросы онкологии», 1976, 3, с. 37-40.

87. Файнштейн Ф.Э., Турбина Н.С., Абакумов Е.М. и др. Трансфузии компонентов крови как средство интенсивной терапии при депрессиях кроветворения. В кн.: Гемотрансфузионные среды при интенсивной терапии и реанимации. Киров, 1976, с. 13-14.

88. Филатов А.Н. Заготовка и переливание плазмы и сыворотки крови. Руководство по переливанию крови и кровезаменителей. М., Медицина, 1973, с. 205-220.

89. Фрегатова JI. М., Головачева А. А., Эстрина М. JI. и др. Методы заготовки концентратов тромбоцитов с помощью современных сепараторов крови. Ж. «Эфферентная терапия», 2003; 1, с. 127-128.

90. Фрегатова JI.M. Современные тенденции заготовки клеточных концентратов в службе крови. Ж. «Трансфузиология», 2006, 4, с. 34-40.

91. Хаметова Р.Н., Демидова Н.В. Состояние системы гемостаза у доноров при массивном селективном цитаферезе. Труды Всесоюзной конференции «Гравитационная хирургия крови», 1983, с. 150.

92. Хватов В.Б., Кобзева Е.Н., Трощанский Д.В. Основные числовые показатели при применении сепараторов для заготовки компонентов крови. Ж. «Новое в гематологии», 2006, вып. 12, с. 95-105.

93. Хан Чер. Лечебная эффективность трансфузий консервированных тромбоцитов у больных острыми лейкозами. Автореферат диссер. к.м.н. М., 1989.

94. Черняк Н.Б., Евлентьева Н.Е., Гуртовой И.М. и др. Применение пластикатных контейнеров для получения концентрата тромбоцитов при 22°С. Ж. «Проблемы гематологии и переливания крови», 1979, 11, с. 5456.

95. Шевченко О.П. Гомоцистеин. М.: Реафарм, 2002, 48 с.

96. Afenyi-Annan F., Brecher M.E., Bandarenko N. Update on multi-center clinical trials in the Unated States. Transfusion and Apheresis Science, 2007, v. 36, p. 5-12.

97. Aisner J., Schiffer C.A., Wolff J.H. A standardized texnique dor efficient platelet and leucocyte collection using model 30 blood processor. Transfusion, 1976, v. 16, №5, p. 437-445.

98. Alvarado J., Djirassi J., Farber S. Transfusion of fresh concentrated platelets to children with acute leukemia. J. Pediatric, 1965, v. 67, p. 13-22.

99. American Assotiation of Blood Banks. Technical manual. Bethesda, MD: AABB Publications, 2002, 294 p.

100. Arnold D.M., Crowther M.A., Cook R.J., Sigouin, Heddle N.M., Molnar L., Cook D.J. Utilization of platelet transfusions in the intensive care unit: indications, transfusion triggers and platelet count responses. Transfusion, 2006, v.46, p. 1286-1291.

101. Aye M.T., Palmer D.S., Giulvi A. et al. Effect of filtration of platelet concentrates on the accumulation of cytokines and platelet release factors during storage. Transfusion, 1995, v. 35, p. 117-124.

102. Avenport RD, Burdick M, Moore SA, Kunkel SL. Cytokine production in Ig G-mediated red cell incompatibility. Transfusion, 1993, v.33, p. 45-50.

103. Becker G.A., Tucelli M., Knnicki T. et al. Studies of platelets concentrates stored of 22° С and 4° C. Transfusion, 1973, v. 13, p. 61-68.

104. Becker J., Killion C. The effect of long term high frequency plateletdonation on baseline platelet count J. of Clinical Apheresis, v. 19, n. 1, 2004.th

105. Abstracts of the world Aperesis Association 10 Congress Hosted by the American Society for Apheresis at its 25th Annual Meeting, p. 85.

106. Benjiamin R.J., Rojas P., et al. Plateletpheresis efficiency: a comparision of the Spectra LRS and Amicus separators. Transfusion, 1999, v.39, p. 895-899.

107. Bolan C. D., Wesley R.A., Yau Y.Y. et al. Randomized placebo-controlled study of oral calcium carbonate administration in plasmapheresis: I. Association with donor symptoms. Transfusion, 2006, v. 43, p. 1403-1413.

108. Bongiovanni M.B., Katz R.S., Wurzel H. A. Long-term plateletpheresis of a donor. Transfusion, 1980, v. 20, №4, p. 465.

109. Born G.V.R. Aggregation of blood platelets by adenosine diphosphate and its reversal. Nature, 1962, 194, p. 927.

110. Borbeiy H. Blood cell separation: comparision of different techniques. In: XYII Congress of the International Society of Haematology. Abstracts of Papers. Paris, 1978, p. 849.

111. Brecher M.E., Taswell H.F., Clare D.E. et al. Minimal-exposure transfusion and the committed donor. Transfusion, 1990, v.30, № 7, p. 599-604.

112. Brecher, M., Goodnough, L. Clinical consequences of alterations in platelet transfusion dose: a prospective, randomized, double-bliend trial. Transfusion, 2000, v.40, №3, p. 383-384.

113. Buchta C., Bittner C., Hucker P. et al. Donor exposure to the plasticizer di (2-ethylhexyl) phthalate during plateletpheresis. Transfusion, 2003, v. 43, № 8, p. 1115-1120.

114. Burgstaler E. A., Pineda A. A., Potler В. M. Plateletapheresis with a next generation blood cell separator. J. of Clinical Apheresis, 1997; v. 12, p. 55-62.

115. Burgstaler E.A., Peneda A.A., Wollan P. Plateletpheresis: comparison of processing times, platelet yields, and white blood cell content with several commonly used systems. J. of Clinical Apheresis, 1997, v.12, p.170-178.

116. Burgstaler E.A., Winters J.L., Pineda A.A. Paired comparision of Gambro Trima Accel versus Baxter Amicus single-needle plateletpheresis. Transfusion, 2004, v. 44, p. 1612-1620.

117. Burgstaler E.A. Blood component collection by apheresis. J. of Clinical Apheresis, 2006, v. 21(2), p. 142-151.

118. Champion A.B., Chong С., Carmer R.A. Storage of platelets on flatbed agitators in polyvinyl chlorade blood bags plasticized with tri (2-ethylhexyl) trimellitate. Transfusion 1987; v. 27. p. 399-401.

119. Chaudhary R., Sekhar Das S., Agarwal P.et al. Guality systems in automated plateletpheresis in hospital-based blood transfusion service in North India. J. of Clinical Apheresis, 2005, v. 20, p.81-85.

120. Chetan M S. TRALI and platelets: strategies to improve platelet availability at your Blood Center. Transfusion, 2007, v. 47, n 3s, suppl., 232A.

121. Cid J., Lozano M. High-dose platelet transfusion increases the transfusion interval: results of meta-analysis. Vox Sanguinis, 2006, 91 (suppl. 3), p. 726.

122. Cid J., Lozano M: Lower or higher dose for prophylactic platelet transfusions: results of meta-analysis of randomized controlled trials. Transfusion, 2007, v. 47, p. 464-470.

123. Cloutier D. A., Patten C., Maylott J. et al. Plateletapheresis using different cell separator system. Abstracts from the American Society for Apheresis 26th annual meeting, april 27-30, 2005, Chicago, Illinois, p 27.

124. Coffe C., Coudurier N., Levy G. et al. Comparative study of four new automated donor plasmapheresis systems. Plasma Tran sfus Technol. 1986, v. 7, p. 49-55.

125. Connor J, Currie LM, Allan H, et al. Recovery of in vitro functional activity of platelet concentrates stored at 4° С and treated with second-messenger effectors. Transfusion, 1996, v. 36, p. 691- 698.

126. Daly P.A., Schiffer C.A, Aisner J., Wiernik P.H. A comparision of platelets prepared by the Haemonetics model 30 and multiunit bag plateletpheresis. Transfusion, 1979, v. 19, № 6, p. 778-781.

127. Day H.J., Holmsen H., Zucker M.B. Methods for separating platelets from blood and plasma. Thrombosis et Diathesis Haemorrhagics, 1975, v. 33, № 6, p. 648-652.

128. Dersens О., Hogman С.P., Jchanson A. Simple method of improving the quality of platelets concentrates and the impotance of production control. Transfusion, 1978, v. 18, № 3, p. 333-338.

129. Dettke M., Hlousek M., Kurz M., Leiter G. et al. Increase in thrombopoietin in healthy donors after automated plateletpheresis. Transfusion, 1998, v. 38, p. 449.

130. Dettke M., Buchta Ch., Bieglmaier Ch.et al. Effects of citrateanticoagulation on bone metabolism and bone morphology inth * plateletapheresis donors. E. S.F.H. 14 Congress of the interdisciplinary

131. European society for haemapheresis and hemotherapy. Prage, 10-131. September, 2003, p. 24.

132. Dillard G.H.L., Brecher G., Cronkite E.P. Separation, concentration and transfusion of platelets. Proc. Soc. Exp. Biol. Med. 1951, v.78, p.796.

133. Djerassi I., Alvarado J., Wolman I. Plateletpheresis and plasmapheresis in the routine operation of the childrens hospital blood bank. J. Clin. Pediat., 1964, v. 3, p. 466-471.

134. Eastlund Т., Anthoni F., Britten H., et al. Plateletpheresis donor safety, predonation platelet levels and mobilized platelets. Transfusion, 1988, v. 20, № 4, p. 477.

135. Eernisse JG, Brand A. Prevention of platelet refractoriness due to HLA antibodies by administration of leucocyte-poor blood components . Exp. Heamatol.,1981, v. 9, p. 77-83

136. Elias M.K., Wolf J. Th.M., Blom N. et al. Preparation and storage of «leucocyte-depleted single donor» platelet concentrate: a step forward in effective haemotherapy. J. of Clinical Apheresis, 1991, v. 6, p. 143-149.

137. Elias M.K, Blom N., Rijskamp L.et al. Evaluation of elutriated single donor platelet collected and stored in closed system. J. of Clinical Apheresis, 1992, v. 7, p. 183-190.

138. Ellis M., Brein С О. Trima Accel: significant increase in double platelet collection rate and reduced dircard rates. Transfusion, 2007, v. 47, n 3s, suppl., 231 A.

139. Eriksson L, Hogman CF. Platelet concentrates in an additive solution prepared from pooled buffy coats. 1. In vinro studies. Vox Sang , 1990, v. 59, p. 140-145.

140. Erikson M., Strupp A. TRALI reactions with male-predominant plasma. Transfusion, 2007, v. 47, n 3s, suppl., 104A.

141. Fisher M, Chapman JR, Ting A, Morris PJ. Alloimmunization to HLA antigens following with leucocyte-poor and purified suspension . Vox Sang, 1985, v. 49, p. 331-335.

142. Flip DJ, Aster RH. Relative hemostatic effectivness of human platelets stored at +4°C and 22°C. J. Lab. Clin. Med., 1978, v. 91, p. 618-624.

143. Fournel J., Zingzem J., Riggert J., et al. A multicenter of the routine use of a new white cell-reduction apheresis system for collection of platelets. Transfusion, 1997; v. 37, p. 487-492.

144. Freireich E.J., Kliman A., Gaydos L.S., Mantel N., Frei E. Response to repeated platelet transfusion from the same donors. Ann. Int. Med., 1963, v. 59, p. 277-287.

145. Gardner F. H. Use of platelet Transfusion polysensibilisierten patienten mit thrombozyten von HLA-typisierten einzelspendern. Schweiz. Med. Wschr., 1976, v. 106, № 40, p. 1358-1359.

146. Garner S.F., Jones C.J., Stephens J., Burns P et al. Apheresis donors and platelet responsiveness influences platelet quality. Transfusion, 2008, v. 48, p. 673-680.

147. Goounough L., Kuter D., Mc Cullough J. Apheresis platelets: emerging issues relaters to donor platelet count, apheresis platelet yield, and platelet transfusion dose. J. of Clin. Apheresis, 1998; v. 13, №3, p. 114-119.

148. Goodnouh L.T. Platelet transfusion therapy. J. of Clinical Apheresis, 2001, v. 16, p. 43-48.

149. Graw R.G., Hersig G.P., Eisel R. J., Perry S. Leucocyte and platelet collection from normal donors with continuons flow blood cell separator. Transfusion, 1971, v. 11, № 2, p. 94-101.

150. Gullemin C., Vigneron C., Sasaki S. et al. Serum and erythrocyte ferritin in regular blood donors. Nouv. Rev. Fr. Hematol. 1992, v.34, p. 259-262.

151. Gulliksson H, Sallander S, Pedajas I et al. Storage of platelets in additive solutions, a new method for storage using sodium chloride solution. Transfusion, 1992, v. 32, p. 435-440.

152. Gurak S., Arslan O. Efficacy of Fenwal Amicus blood cell separator in double dose platelet collection. Transfusion and Apheresis Science, 2007, v. 36, p. 69-72.

153. Gutensohn K., Dartsch N., Kuehnl P. Flow cytometric analysis of platelet membrane antigens during and after continuous-flow plateletpheresis. Transfusion, 1997, v. 37, 8, p. 809-815.

154. Haddad S.A., Lichtiger В., Klein H.G. In vivo efficacy of shipped HLA-matched platelets. Transfusion, 2006, v.46, p. 1306-1310.

155. Haque SF, Matsubayashi H, Isumi S et al. Sex difference in platelet aggregation detected by new aggregometry using light scattering.Endocr.-2001, v. 48, p. 33-41.

156. Harberg J.A., Akkok C.A., Lybery Т., Kjeldsen- Kragh J. Apheresis-induced platelet activation: comparison of three types cell separators. Transfusion, 2000, v. 40, p. 182-192.

157. Heal J.M., Horan P.K., Schmitt T.S., et al. Long-term follow-up of donors cytapheresis more than 50 times.Vox Sang., 1983, v.45, p. 14-24.

158. Heddle N, Blajchan M. The leucodepletion of celluler blood products in the prevention of HLA-alloimmunization and refractoriness to allogenic platelet transfusions. Blood, 1995, 85, v.3, p. 603-606.

159. Heddle N. Success in achieving a targeted platelet dose: what dose are we actually giving? Transfusion, 2003, 43, Suppl.:S101~040F.

160. Heddle NM: Controversy concerning platelet dose. IBST Since Series 2007; v. 2, p. 220-225.

161. Heddle NM. The value of evidence — based medicine. J. compilation, 2008 Blackwell Publishing Ltd. ISBT Since Series, v. 3, p. 1-7.

162. Herman J., Klumh T. Single-donor platelets reduce the risk of septic platelet transfusion reactions. Transfusion, 2002, v. 42, 4, p. 506-507.

163. Hester J.P., Ventura GJ. Modeling of platelet concentrate yield in continuous-flow cell separator devices. J. of Clinical Apheresis, 1988, v. 4, p. 188-193.

164. Hester J., Ventura G. Collection and transfusion of single donor platelets and their clinical response. Infusiostherapie 16: Supple.2, 1989, p. 4-9.

165. Hcak J.C., Koepke J.A. Platelets transfusion. Clin. Haematol., 1976, v. 5, № l,p. 69-79.

166. Hirsch E.O., Gardner F.H. The transfusion of human blood platelets. J. Lab. Clin. Med., 1952, v. 39, p. 556-561.

167. Hlyns A., Datenhorst P., Lotter M. Kinetics and mobilization from the spleen of indium lu-labeled platelets during plateletpheresis. Transfusion. 1985, v. 25, p. 215-218.

168. Hogman CF, Eriksson L et al. The Bottom and top system. A new technique for blood component preparation and storage. Vox Sang, 1988, v. 55, p. 203-207.

169. Hogman CF, Berseus 0, Eriksson L, Gulliksson H. Buffy-coat-derived platelet concentrates: Swedish experience. Transfus Sci 1997, v. 18, p. 32125.

170. Holland P.V., Klein H.G. Which are the principale established or potential risks for donors undergoing cytapheresis procedures and how can they be prevented? Vox Sang., 1980, v. 39, p. 176-177.

171. Holme S, Sawyer S, Heaton A, Sweeney JD. Studies on platelets exposed to or stored at temperatures below 20°C or above 24°C. Transfusion, 1997, v. 37, p. 5-11.

172. Huestis D.W. Guality control: single-donor platelets. J. of Clinical Apheresis, 1991, v. 6, p. 198-199.

173. Huestis D.W., White R.F., Inman M. Citrate anticoagulants for plateletpheresis. Transfusion, 1977, v. 17, n. 2, p. 151-155.

174. Huestis D.W., Price M.J., White R.F., Inman M. Use hydroxyethyl starch to improve granulocyte collection in the Latham blood processor. Transfusion, 1975, v. 16, n. 3, p. 255.

175. James L., Ortiz A., Wilcox C., Delaney G., Kendall C. Successful implementation of triple platelet product collections using Gambro BCT Trima Accel. Transfusion, 2007, v. 47, n 3s, suppl., 232A.

176. Jimenez-Marco M., Forteza A., Girona E., Sedeno M., Forteza A. Comparison of double doses platelet collections from two apheresis devices. Vox Sanguinis, 2006, v. 91 (suppl. 3), p. 664.

177. Johnson BJ, Vilay GS et al. Apheresis platelet concentrates (PC) with low level of WBC do not accumulete cytokines. Transfusion, 1997, v. 37, suppl. Abs.S39.

178. Julmy F., Amman R.A., Taleghani B.M., Fontana S. et al. Effects of high-yield thrombocytapheresis on the quality of platelet products. Transfusion, 2008, v. 48, p. 442-450.

179. Kalish R.I., Chambers L.A., Linden J.V. The effect of plateletapheresis on the Fenwal CS-3000 on donor platelet counts. J. of Clinical Apheresis, 1987, n. 3, p. 230.

180. Kelley D., Mangini J., Lopez-Plaza I., Triulzi D/ The utility of 3-dae-old whole-blood platelets in reducing the incidence of febrile nonhemolytic transfusion reactions. Transfusion, 2000, v. 40, 4, p. 439-442.

181. Kisker C.T., Straus R.G., Koepke J.A. et al. The effects of combained platelet and leurapheresis on the blood coagulation system. Transfusion, 1979, v. 19, issue2, p. 173.

182. Koepke J. A., Parks W.M., Goeken J.A. The safety of weekly plateletpheresis: effect on the donors lymphocyte population. Transfusion, 1981, v. 21, n. l,p. 59.

183. Klein E., Farber S., Djerassi I., Toch K., Freeman G., Arnold P. The preparation and clinical administration of lyophilized platelet material to children with acute leukemia and aplastic anemia. J. Pediatric, 1956, v.49, p. 517-522.

184. Kliman A., Gaydos L.A., Schroeder L.R., Freireich E.J. Repeated plasmapheresis of blood donors as a source of platelets. Blood, 1961, v. 11, p. 693-699.

185. Kliman A., Carbont P.P., Gaydos L.A. Effects of intensive plasmapheresis on normal blood donors. Blood, 1964, v.32, p. 647-656.

186. Kuter D.J. Thrombopoietin: biology, clinical applications, role in the donor setting. J. of Clinical Apheresis, 1996, v. 11, p. 149-159.

187. Ladenson J.H., Cler W.V., Shtrman L.A. Relationship of physical symptoms EKG, free Ca, find other blood chemistries in reinfusion with cytrated blood. Transfusion, 1977, v. 32, p. 20-25.

188. Laurencet F., Doucet A., Lydlate V. et al. Quality evaluation of plateletapheresis using the new Amicus cell separator: evaluation CD62 expression. J. of Clin. Apheresis, 1998; v. 13, p. 47-55.

189. Lazarus A.H., Wright J.F., Blanchette V. et al. Analysis of platelets by flow cytometry. Transfusion Scince, 1995; v. 16, p. 353-361.

190. Lee E. J., Schiffer C.A.Evidence for repid mobilization of platelets from the spleen during intensive plateletpheresis. Am. J. of HematoL, 1985, v. 19, p. 161-165.

191. Leiter G.C., Jilma-Stohlawets P., Stiegler G.et al. Quality of packed red blood cells and platelet concentrates collected by multicomponent collection using the MCS PLUS device. J. of Clinical Apheresis, 2003, v. 18, 21-25.

192. Lemos M., Santis G., Prado B. A. et al. Comparision of platelets collection using Cobe Spectra and Haemonetics MCS+. Abstracts from the American Society for Apheresis 26th annual meeting, april 27-30, 2005, Chicago, Illinois, p 52.

193. Levine P.H. Platelet function tests. Predictive valve. New. Engl. J. Med., 1975, v. 292, p. 1346-1347.

194. Makar Y.F., Butler M.O., Cockesole G.V. et al. National audit of citrate toxitty in plateletpheresis donor. Transfusion, 2002, v. 12, issue 3, p. 187.

195. Makroo R.N, Raina V., Kumar P., Gautam S. Prospective and randomized comparative study of plateletpheresis using two cell separators based on intermittent and continuous flow centrifugation. Vox Sanguinis, 2006, v. 91 (suppl. 3), p. 554.

196. Mannoni P., Braco C., Rodet M. Immunological aspect of platelet transfusions. In: XYII Congress of the International Society of the International Society of Haematology. Abstracts of Papers. Paris, 1978, p.

197. Marcus A.J. Platelet function. New. Engl. J. Med., 1969, v. 280, p. 12131220.

198. Maresh S., Randels M., Straus R. Comparision of plateletapheresis with a standard and an improved collection device. Transfusion, 1996; v 10. p. 835937.

199. Mc Cullough J., Weiblen В., Hadlock D. In vitro and in vivo survival of fresh and stored platelets collected using the continious flow centrifuge. Transfusion, 1975, v. 15, p. 354-359.

200. Meer P.F., Vrielink H., Pieterz N.I. Preparation and storage of blood cell-redused split apheresis platelet concentrates for pediatric use. Transfusion, 2005, v.45, p. 223-227.

201. McAteer M.J., Langley R. Multiple platelet component collection and donor selection using the plateletpheresis donors post procedure platelet count the Trima and Trima Accel algorithms. Transfusion, 2004; 44:9S:9A-10A.

202. McLeod B.C., McKenna R, Vernes A. et al. Plateletpheresis with the Cobe Spectra single needle access option. J. of Clinical Apheresis, 1991, 6, p. 2427.

203. Mendez A., Wagli F., Schmid I., Frey B.M. Frequent platelet apheresis donation in volunteer donors with hemoglobin <125 g/1 are safe and efficient.Transfusion and Apheresis Science , 2007, v. 36, p. 47-53.

204. Menitove J.E. Standards for blood banks and transfusion services. AABB, 1999.

205. Milman N., Sondergaard M. Iron stores in male blood donors evaluated by serum ferritin. Transfusion, 1984, v. 24, p. 464-468.

206. Mishler J.M., Jones A.W., Lowes B. The utilization of a new strength citrate anticoagulant during centrifugal plateletpheresis. Assesement of donor effects. Brit. J. Haematol., 1976, v. 34, № 3, p. 387-394.

207. Moog R., Muller N. White cell reduction during plateletpheresis: a comparision of three blood cell separators. Transfusion, 1999, v. 39, 572-577.

208. Moor R., Frochlich A., Mayaudon V. In Vitro evaluation of Com. Tec. Apheresis platelet concentrates using a preparation set and pathogen inactivation over a storage period of five days. J. of Clinical Apheresis, 2004, v. 19, p. 185-191.

209. Moroff G., Tich J., Dabay M. Validation of use of the Nageotte hemocytometer to count low levels of white cells in white cell-reduced platelet components. Transfusion, 1994, v. 34, p. 35-38.

210. Murphy S., Gardner F.M. Platelet preservation. Effect of storage temperature 011 maintenance of platelets viability. Deleterions effect of refrigerated storage. New Engl. J. Med., 1969, v. 280, p. 1094-1098.

211. Murphy S, Gadner F.H. Platelet storage at 22C. Role of gas transport across platelet containers in maintenance of viability. Blood, 1975, v. 46, p. 209-218.

212. Murphy S., Sayar S.M., Gardner F.M. Storage of platelet concentrates at 22° C. Blood, 1970, v. 35, p. 549-558. Transfusion, 1978, v. 18, № 1, p. 116-119.

213. Murphy S, Kagen L, Holme S et al. Platelet storage in synthetic media lacking glucose and bicarbonate. Transfusion, 1991, 1, p. 16-20.

214. Muylle L, Wouters E. et al. Reactions to platelet transfusion : the effect of the storage time of concentrates.Transfus. Med. 1992, 2, p. 289-293.

215. Nicogossian J В., Rosenthal B. Impact of implementation of a triple platelet procedure program on platelet production using the Fenwal Amicus separator. Transfusion, 2007, v. 47, n 3s, suppl., 226A.

216. Norfolk DR, Ancliffe PJ, Contreras M. et al. Consensus conference of platelet transfusion. Royal College of Physicians in Edinburgh, 27-28 November 1997, Br. J Haematol., 1997, v. 10, p. 609-617.

217. Nussbaumer W., Plattner R., Schoppel W. et al. PLT-30: an improvement for platelet collection on the Baxter CS-3000 Plus. J. of Clinical Apheresis, 1994, v. 9, p. 236-239.

218. Olson P. R., Cox C., McCullough J. Laboratory and clinical effects of the infusion of ACD solution during plateletpheresis. Vox Sang., 1987, v. 33, p. 9-87.

219. Palmer K., Rasso M., Vitek J. 7-days platelets (7DP) decrease outdate rate. Transfusion, 2007, v. 47, n 3s, suppl., 228A.

220. Patel A., Kaur A., Patel V. et al. Comparative study of plateletapheresis using CS 3000 plus and Haemonetics MCS. J. of Clin. Apheresis, 2004, v. 19, p. 137-141.

221. Pietersz R.N.I, Reesink H.W. et al. Preparation of leukocyte-poor platelet concentrates from buffy coats. 1. Spesial inserts for centrifuge cups. Vox Sang, 1987, v. 53, p. 203-207.

222. Prins H.L. Prevantioal of microaggrigate formation de removal of buffy coat. Vox Sang, 1987, v. 39, p. 48-51.

223. Prior R.B., Coghlan P.J., Hallet J.M. et al. In vitro stady of immunologic changes in long-term cytapheresis donors. J. of Clinical Apheresis, 1991, 6, p. 69-76.

224. Pulp DJ, Aster RH. Relative hemostatic effectiveness of human platelets stored at 4° and 22°C. J. Lab. Med., 1978, v. 91, p. 618-624.

225. Radonchjic Z., Vavic N., Srejic V. et al. Platelet yield using MCS 3P and MCS+ cell separators. 14 Cogress of the interdiscipeinary European society for hemotherapy. Praque, September 10-13, 2003, p. 38.

226. Randels M.J., Straus R.G., Raif T.J. Fingerstick blood samples in platelet donor screening: reliability and impact on predict yield programs. J. of Clinical Apheresis, 1997, v. 12, p. 105-109.

227. Rehacek V., Samkova H. Comparision of the LDP C5 and LDP C2 protocols for platelet concentrates preparation on Haemonetics MCS+ separator. 14th Cogress of the interdiscipeinary European society for hemotherapy. Praque, September 10-13, 2003, p. 38.

228. Ringwald J., Zimmermann R., Strasser E. et al. Storage of apheresis platelets in two new additive solutions. Transfusion, 2003; 43 (Suppl.): 63A -64A.

229. Rivera J, Lozano ML, Corral J. et al. Quality assessment of platelet concentrates supplemented with second-messenger effectors. Transfusion, 1999, v. 39, p.135-143.

230. Robert J. Van Kirk, Jr., Katharine A. Downes, Amanda Brosman et al.The hemoglobin-hematocrit conudrum in qualifying plateletpheresis donors.

231. Abstracts from the American Society for Apheresis 26th annual meeting, april 27-30, 2005, Chicago, Illinois, p. 42.

232. Rock G., Titley P., Sternbach M. et al. Repeat plateletpheresis: the effects on the donors and the yield. Vox sang., 1992, v. 63, p. 102-106.

233. Rubella P, Porreti L, Bertoliny F. et al. White cell-reduction red cells prepared by filtration .Transfusion, 1993, v. 33, p. 128-33.

234. Sakashita A M., Pereira R A., Kondo А Т., Cipolletta A N. et al. Cardiac arrhythmia after plateletpheresis in normal healthy donors: case reports. Transfusion, 2007, v. 47, n 3s, suppl., 47A.

235. Sanz C., Pepeira A., Ordinas A. Platelet activation and interval between plateletphtresis. Transfusion, 1998, v. 38, 3, p.319.

236. Schiffer C.A., Buchhols D.H., Wiernik P.H. Intensive multiunit plateletpheresis of normal donors. Transfusion, 1974, v. 14, № 4, p. 388-394.

237. Schiffer C.A. Issues in platelet transfusion therapy alloimmunization and refractoriness to platelet transfusion. Educational book ISH -EHA. Amsterdam, 1998, p. 14-16.

238. Sharma R., Karan K., Beenu В., Neelam N. Frequency of adverse events during plateletpheresis donations and its impact on donor retention. Vox Sanguinis, 2006, v. 91 (suppl. 3), p. 461.

239. Simon T.L., Kutvirt S., Levis S. Immune changes after long-term apheresis donations. 31 st. Annual Meeting of the American Hematology Society. Blood, 1974 (suppl. 1), abstract, 973.

240. Simon T.L., Henderson R., Seattle W.A. Coagulation factor activity in platelets concentrets. Transfusion, 1979, v. 19, № 2, p. 186-190.

241. Skripchenko A., Kurtz J., Wagner S J., Moroff G. Apheresis platelet products prepared with two cell separators undero plateler activation differently during storage. Transfusion, 2007, v. 47, n 3s, suppl., 379A.

242. Skikne B.S., Flowers c.h., Cook L. D. Serum transferring receptor: a quantitative measure of tissue iron deficiency. Blood, 1990, v. 75, p. 18701876.

243. Slichter S.J. Algorithm for managing the platelet refractory patient. J. of Clinical Apheresis, 1997, v. 12, p. 4-9.

244. Slichter SJ: Background, rationale, and design of a clinical trial to assess the effects of platelet dose on bleeding risk in thrombocytopenic patients. J. Clin. Apher, 2006; v. 21, p. 78-84.

245. Sloand E., Yu M., Klein H. Comparison of random-donor platelet concentrates prepared from whole blood units and platelet prepared from single-donor apheresis collections. Transfusion, 1996; v.36, p. 955-959.

246. Sniecinski I., St. Jean J., Nowicki B. Preparation of leucocyte-poor platelets by filtration. J. of Clinical Apheresis, 1989, 5, p. 7-11.

247. Soelter К L., Kakaiya R M., Tata R M., Faso J A. Donor reaction frequencies whole blood, double red cell, plateletpheresis and current plasma donations. Transfusion, 2007, v. 47, n 3s, suppl., 108A.

248. Stohlawetz P., Stiegler G., Jilma B.et al. Measurement of the levels of reticulated platelets after plateletpheresis on monitor activiny of thrombopoiesis. Transfusion, 1998, v. 19, issue 5, p. 588-93.

249. Strauss R.S., Halpern L.N., Eckermann I. Comparison of autosurge versus surge protocols for discontinuous-flow centrifiigation plateletpheresis. Transfusion, 1987, v. 27, p. 499-501.

250. Straus R.G., Ludwig G.A., Randels M.J. et al. Efficacy and safety of Fenwal CS 3000 plateletpheresis performed at a rapid donor blood flow rate: rapid plateletpheresis with Fenwal CS 3000. J. of Clinical Apheresis, 1991, 6, p.21-23.

251. Straus R. Clinical perspectives of platelets transfusions: defining the optimal dose. J. of Clin. Apheresis, 1995, v. 10, p.124-127.

252. Su L L., Paden C., Wacker D. TRALI risk reduction strategy: impact of screening by donor history versus screening by gender on the availability of plasma for transfusion. Transfusion, 2007, v. 47, n 3s, suppl., 103 A.

253. Sweeney J.D., Holme S., Heaton W.A.L. et al. Pseudothrombocytopenia in plateletapheresis donors. Transfusion 1995; v.35, p. 46-49.

254. Sweeney J.D., Holmer S., Stromberg R.R. et al. In vitro and in vivo effects of prestorage filtration of apheresis platelets. Transfusion 1995; v.35, p.125-130.

255. Szymanski I.O., Path K., Kliman A. Efficacy of the Latham blood processor to perform plateletphtresis. Transfusion, 1973, v. 13, p. 405-411.

256. Szymanski I.O. Ionised calcium during plateletpheresis. Transfusion, 1979, v. 19, №6, p. 701-708.

257. Szymanski I.O., Ciavarella D., Rososhansky S. et al. Evaluation of platelets collected by a new portable apheresis device. J. of Clinical Apheresis, 1993, 8, p. 66-71

258. Szymanski I.O. Ionized Ca during plateletpheresis. Transfusion, 1978, v. 18, p. 701.

259. Taga T.M., Ambruso D. Use of the Trima Accel automated blood collection system for collection of hyper concentrated platelet products. World Apheresis Association Abstracts Book, 2002; v. 41.

260. Thibault L., Beausejour A., Grandmont M.J., Lemieux R., Leblanc J.F. Characterisation of blood components prepared from whole-blood donations after a 24-Hour Hold with the platelet-rich plasma method. Transfusion, 2006, v.46, p. 1292-1299.

261. Tullis J. L., Eberle W. G., Bandanza P., Tinch R. Plateletphtresis. Description of a new technique. Transfusion, 1968, v. 8, № 1, p. 154.

262. Turner VS, Harris A, Mitchell SG, Hawker RJ. Inclusion of potassium in an additive solution enhances platelet storage. Trans. Med., 1996, 6 (Suppl 2, 33 (abstract).

263. Tynngard N., Lindahl Т., Trinks M., Studer M., Berlin G. Quality of apheresis platelet concentrates collected by Cobe Spectra or Trima Accel and stored for 7 days. Vox Sanguinis, 2006, v. 91 (suppl. 3), p. 663.

264. Urdahl S.G. Cobe Spectra apheresis system: designs, protocols and results. Infusiostherapie 16: Supple.2, p.30-43 (1989).

265. Valbonesi M., Frisoni R., Fella M. et al. Plateletpheresis with the new Fresenius AS 104 blood cell separator. J. of Clinical Apheresis, 1991, 6, p.84-87.

266. Valbonesi M., Frisoni R., Florio G. et al. Single-donor platelet concentrets produced along with packed red blood cells with the Haemonetics MCS+ 3p: preliminary results. J. of Clinical Apheresis, 1994, 9, p.195-199.

267. Valbonesi M., Frisoni R., Capra C. et al. Automated calcium supplementation during multicomponent collection. Abstracts from the American Society for Apheresis 26th annual meeting, april 27-30, 2005, Chicago, Illinois, p. 29.

268. Valeri C.R. Circulation and hemostatic effectiveness of platelets stored at 4°c or 22°C: studies in aspirin-treated normal volunteers. Transfusion, 1976, v. 16, № l,p. 20-25.

269. Van Marwijk, Kooy M, van Prooijen HC. et al. Use of leucocyte-depleted platelet concentrates for the prevention of refractorinesand primary HLA alloimmunization. Blood, 1992, v.77, p. 201-5.

270. Vries R.A., Bruin M., Hart H.Ch. et al. Viability of platelets collected by apheresis versus the platelet-rich plasma technique: a direct comparison. Transfusion Scince, 1993, v. 14, p. 391-398.

271. Wallace C., Joseph R., Mair D. Culnure results on platelets involved in transfusion reactions: one institutions 7-year experience. Transfusion, 2001, v. 41, 9S.

272. Watson D.K., Penny A.F., Marshall R.W. Citrate induced hypocalcaemia during cell separation. Brit. J. Haematol., 1980, v. 44, № 3, p. 503-509.

273. Weisbach V., Freidlein H., Glaser A. et al. The influence of automated plateletpheresis on systemic levels of hematopoietic growth factors. Transfusion, 1999, v.39, p. 889-894.

274. Wenz В. Leucocyte depletion filters shoud be used with apheresis platelets. J. of Clinical Apheresis, 1991, 7, p.149-150.

275. Wit J.J., Henrichs H.J., Odink J., Prins H.K. Experiments on the preparation of blood component with the IBM 2991 blood cell processor. Vox. Sang., 1975, v. 29, №. 5, p. 352-362.

276. Wysk J., Marx D., Schutter W. et al. Thrombophorese. Auswirkungen der thrombozytenseparation bein blutspender. Blut, 1977, № 5, s. p.387-394.

277. Wun Т., Paglieroni Т., Sazama K., Holland P. Detection of plasmapheresis-induced platelet activation using monoclonal antibodies. Transfusion, 1992, v. 32, 6, p. 534.

278. Yeh J.H., Chen W.H., Chiu H.C. Complications of double-filtration plasmapheresis. Transfusion, 2004, v.44, p. 1621-1625.

279. Yockey C., Murfy S., Eggers L. et al. Evaluation of Amicus separator in the collection of apheresis platelets. Transfusion, 1998; v. 38, p. 848-853.

280. Yuan S., Fernando L. Higher incidence of acute dinor advers events with concurrent RBC and platelet apheresis donations compared to platelet only or concurrent platelet and plasma collections. Transfusion, 2007, v. 47, n 3s, suppl., 35A.

281. Zimmerman R., Loew D., Weisbach V. et al. Plateletpheresis does not cause long-standing platelet-derived growth factor release into the donor blood. Transfusion, 2005, v. 45, p. 414-419.

282. Zingsem J., Glaser A., Zimmermann R.et al. Paired comparison of apheresis platelet function after storage in to containers. J. of Clinical Apheresis, 2001, v. 16, p. 10-14.