Обоснование организационных принципов и оптимизация технологии производства лейкофильтрованных гемокомпонентов при массовой заготовке донорской крови тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 14.00.29, кандидат медицинских наук Данилова, Анна Витальевна

• Данилова, Анна Витальевна
• кандидат медицинских наук
• 2009

Оглавление диссертации кандидат медицинских наук Данилова, Анна Витальевна

СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ И УСЛОВНЫХ ОБОЗНАЧЕНИЙ

ВВЕДЕНИЕ

ГЛАВА 1. ЛЕЙКОФИЛЬТРАЦИЯ КРОВИ И КОМПОНЕНТОВ В 15 ПРОИЗВОДСТВЕННОЙ ТРАНСФУЗИОЛОГИИ (ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ)

1 Л. Организационные и технологические аспекты лейкофильтрации 15 крови и компонентов в учреждениях службы крови

1.2. Влияние лейкофильтрации на морфофункциональные свойства 20 гемокомпонентов

1.2.1. Влияние лейкофильтрации на качество 22 эритроцитосодержащих компонентов

1.2.2. Влияние лейкофильтрации на качество плазмы

1.2.3. Влияние лейкофильтрации на морфофункциональные 30 свойства тромбоцитного концентрата

1.3. Роль лейкофильтрации в повышении качества и безопасности 36 гемокомпонентной терапии.

1.3.1. Роль лейкофильтрации в снижении риска передачи 37 гемотрансмиссивных инфекций

1.3.2. Роль лейкофильтрации в обеспечении иммунологической 39 безопасности гемотрансфузий

ГЛАВА 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ

2.1. Характеристика объектов исследования

2.2. Методики приготовления лейкофильтрованных компонентов

2.2.1. Приготовление лейкофильтрованных эритроцитосодержащих 47 трансфузионных сред

2.2.2. Приготовление лейкофильтрованного тромбоцитного 58 концентрата

2.2.3. Приготовление лейкофильтрованной плазмы.

2.3. Методы исследований

2.3.1. Гематологические методы исследования

2.3.2. Биохимические методы исследования

2.3.3. Иммунологические методы исследования

3.3.4. Морфологические методы исследования

2.3.5. Методы статистической обработки

ГЛАВА 3. СОВЕРШЕНСТВОВАНИЕ МЕТОДОВ

ПРИГОТОВЛЕНИЯ ЛЕЙКОФИЛЬТРОВАННЫХ

ЭРИТРОЦИТОСОДЕРЖАЩИХ КОМПОНЕНТОВ

3.1. Сравнительная оценка методов получения фильтрованной 68 эритроцитной взвеси

3.1.1. Приготовление эритроцитной взвеси из фильтрованной 69 консервированной крови

3.1.2. Фильтрация эритроцитной взвеси с помощью встроенных 85 лейкофильтров

3.1.3. Фильтрация эритроцитной взвеси с помощью внешних 92 лейкофильтров

3.2. Приготовление фильтрованной эритроцитной массы

ГЛАВА 4. СРАВНИТЕЛЬНАЯ ЭФФЕКТИВНОСТЬ МЕТОДОВ 107 ПОЛУЧЕНИЯ ЛЕЙКОФИЛЬТРОВАННОЙ ПЛАЗМЫ

4.1. Получение плазмы из лейкофильтрованной консервированной 107 крови

4.2. Получение плазмы из лейкофильтрованной ОТП

4.3. Фильтрация плазмы с помощью внешних лейкофильтров

ГЛАВА 5. ОПТИМИЗАЦИЯ ТЕХНОЛОГИИ ПОЛУЧЕНИЯ 125 ЛЕЙКОФИЛЬТРОВАННОГО ТРОМБОЦИТНОГО КОНЦЕНТРАТА ИЗ ДОЗЫ КОНСЕРВИРОВАННОЙ КРОВИ

5.1. Разработка оптимальных режимов получения тромбоцитного 125 концентрата для последующей фильтрации из дозы консервированной крови

5.1.1. Разработка оптимальных режимов получения тромбоцитного 125 концентрата из лейкотромбоцитарного слоя консервированной крови

5.1.2. Разработка оптимальных режимов получения тромбоцитного 131 концентрата из обогащенной тромбоцитами плазмы из дозы консервированной крови

5.1.3. Автоматизация методики приготовления тромбоцитного 135 концентрата из дозы консервированной крови

5.1.4. Качественные и количественные показатели эритроцитных и 136 плазменных компонентов, полученных из дозы консервированной крови после выделения тромбоцитного концентрата

5.2. Получение тромбоцитного концентрата из фильтрованной ОТП 139 с помощью встроенных фильтров

5.3. Динамика показателей качества тромбоцитного концентрата 144 при хранении

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Обоснование организационных принципов и оптимизация технологии производства лейкофильтрованных гемокомпонентов при массовой заготовке донорской крови»

Актуальность исследования. Иммунологическая и инфекционная безопасность являются основными принципами гемотрансфузионной терапии у раненых и больных. Производство безопасных гемотрансфузионных сред является важной составляющей частью профилактических мер по предупреждению посттранс фу зионных осложнений (Голубева А.В., 2001; Литманович К.Ю. и соавт., 2004; Masse М., 2001; Seftel M.D. et al., 2004; Krailadsiri P. et al., 2006). Лейкоциты являются важным фактором передачи гемоконтактных инфекций, в частности, вируса Т-клеточного лейкоза человека, Эпштейна-Барр, цитомегаловируса, а также возбудителя болезни Крейцфельдта-Якоба (Минеева Н.В., 2001; Барышев Б.А., 2002; Мельникова В.Н. и соавт., 2003; Bernvil S.S. et al., 1994; Gresens C.J. et al., 1999; Roback J.D., Hillyer C.D., 1999; Schonewille H. et al., 1999; Bux J., 2005; Goldman M„ Delage G., 1995; Qu L. et al., 2005).

Доказано, что лейкоциты, их фрагменты и вырабатываемые ими цитокины, содержащиеся в донорских гемокомпонентах, могут являться источником нежелательных иммунологических эффектов, таких как HLA-алло иммунизация, фебрильные негемолитические реакции, реакция "трансплантат против хозяина", острое трансфузионное поражение легких и других (Редчиц Е.Г., Парфенов А.С., 1989; Blajchman М.А., Bordin .Т.О., 1994; Ohto Н. et al., 2000; Machuca A., Hewlett L, 2003; Taylor C. et al., 2008) Традиционные методы производства гемокомпонентов (центрифугирование, криоконсервирование, отмывание) не позволяют получать высокоочищенные от лейкоцитов трансфузионные среды (Сидоркевич С.В., 2002; Taylor С. et al., 2008; Chudziak D. et al., 2008). Для профилактики лейкоцитопосредованных побочных эффектов при гемотрансфузиях используется удаление лейкоцитов из гемокомпонентов с помощью фильтров (Muller N., 2001; Plante J. et al., 2001). Как правило, лейкофильтрованные гемокомпоненты производятся на станциях переливания крови по предварительным заявкам лечебных учреждений. Применение универсальной лейкофильтрации трансфузионных сред является одним из перспективных направлений повышения безопасности гемотрансфузионной терапии (Masse М., 2001). Организационные, технологические и медицинские аспекты внедрения такой системы в производственную работу службы крови России практически не разработаны, а имеющиеся в литературе сведения не учитывают особенности массовой заготовки крови в выездных и стационарных условиях. Данные об оптимальных сроках и температурных условиях выполнения лейкофильтрации консервированной крови и ее компонентов являются разноречивыми (Rock G.A. et al., 1988; Williamson L.M. et al., 1999; A. Chabanel et al. (2003). Остаются неясными возможности использования отечественных лейко фильтров для приготовления фильтрованной эритроцитной взвеси, не проводилось сравнительного анализа использования различных фильтров на производственных этапах приготовления лейкофильтрованных гемокомпонентов при массовой заготовке крови.

Цель исследования: изучение организационных, медицинских и технологических особенностей приготовления фильтрованных гемокомпонентов из консервированной крови при ее массовой заготовке и разработка оптимальных режимов применения лейкофильтров для обеспечения высокого качества обедненных лейкоцитами трансфузионных сред.

Задачи исследования:

1) исследовать организационные особенности внедрения лейкофильтрационных технологий при переработке консервированной крови, заготовленной от доноров резерва;

2) определить пути обеспечения эффективности фильтрации и качества лейкофильтрованных эритроцитосодержащих гемокомпонентов при массовом донорстве;

3) провести сравнительную оценку организационно-технических и медицинских показателей при различных методах получения лейкофильтрованной плазмы из дозы консервированной крови;

4) разработать оптимальные технологические режимы получения лейкофильтрованного тромбоцитного концентрата из дозы консервированной крови;

5) изучить качество лейкофильтрованных гемокомпонентов, полученных с помощью отечественных и зарубежных фильтров, в течение нормированных сроков хранения.

Научная новизна. Впервые проведено комплексное исследование организационных и технологических особенностей производства лейкофильтрованных гемокомпонентов при массовой заготовке крови от доноров резерва с использованием зарубежных и отечественных лейкофильтров различной конфигурации в зависимости от этапа приготовления трансфузионных сред, сроков хранения и температурных условий, степени оснащения специальным медицинским оборудованием. Впервые научно обоснованы организационные принципы массовой заготовки крови в выездных и стационарных условиях с использованием полимерных контейнеров с встроенными лейкофильтрами и внедрения лейкофильтрационных технологий, в частности, с применением отечественных фильтров при переработке консервированной крови на компоненты. Выявлено, что массовая заготовка консервированной крови в полимерные контейнеры со встроенными лейкофильтрами и выполнение технологий лейкофильтрации сопряжены с увеличением трудозатрат, требующих привлечения дополнительного медицинского персонала и использования специального медицинского оборудования.

Разработана методика фильтрации эритроцитной взвеси после ее приготовления или с предварительной плазмофильтрацией с использованием отечественного комплекта устройств для удаления лейкоцитов и получения безлейкоцитных компонентов консервированной крови «Лейкосеп», позволяющая получать трансфузионную среду, обедненную лейкоцитами ниже 1x106 в дозе, отвечающую требованиям трансфузионной медицины.

Доказана необходимость повторной фильтрации предварительно обедненной лейкоцитами донорской плазмы перед применением системы для вирусинактивации с помощью метиленового синего.

Разработаны новые режимы получения фильтрованного тромбоцитного концентрата из дозы консервированной крови, заготовленной в выездных условиях в счетверенные полимерные контейнеры с встроенными фильтрами, и предложены алгоритмы действий медицинского персонала по выбору оптимальных параметров фракционирования консервированной крови. Выявлены новые закономерности зависимости технологических параметров и качества обедненной лейкоцитами плазмы, полученной из дозы фильтрованной консервированной крови, от температурных условий фильтрации донорской крови.

Практическая значимость. Доказано, что приготовленные лейкофильтрованные компоненты при массовой заготовке крови на СПК с помощью зарубежных и отечественных лейкофильтров соответствуют требованиям стандартов службы крови.

Конкретизирован состав выездной бригады СПК для массовой заготовки донорской крови в полимерные контейнеры, содержащие встроенные лейкофильтры, уточнены требования к оснащению рабочих мест для приготовления лейкофильтрованных гемокомпонентов из консервированной крови.

Доказано, что устройство-лейкофильтр отечественного производства «Лейкосеп» может применяться для приготовления фильтрованной эритроцитной взвеси с ресуспендирующим раствором SAGM и обеспечивать высокое качество трансфузионной среды во время ее хранения до 42 суток.

Установлено, что соблюдение температурного режима фильтрации и максимальное сокращение сроков предфильтрационного хранения консервированной крови и ее компонентов позволяет повысить качество лейкофильтрованных трансфузионных сред.

Показано, что использование в производственной деятельности СПК алгоритмов выбора режимов приготовления тромбоцитного концентрата с последующей лейкофильтрацией позволяет получать из консервированной крови трансфузионную среду, обедненную лейкоцитами ниже 1x103 на дозу, при сохранении ее биологической полноценности в течение 5 суток хранения.

Положения, выносимые на защиту

1. Организационными принципами внедрения метода лейкофильтрации в производственную деятельность станции переливания крови при массовой заготовке донорской крови являются:

- привлечение дополнительного медицинского персонала к заготовке крови в полимерные контейнеры со встроенными лейкофильтрами и приготовлению фильтрованных гемокомпонентов; оснащение рабочих мест специальным оборудованием для проведения фильтрации консервированной крови и ее компонентов;

- соблюдение температурного режима предфильтрационного хранения и выполнения фильтрации трансфузионных сред в зависимости от типа фильтра и получаемого компонента;

- максимальное сокращение сроков предфильтрационного хранения консервированной крови и ее компонентов.

2. Обеспечение эффективности фильтрации и качества лейкофильтрованных гемокомпонентов, полученных из консервированной крови, основывается на дифференцированном использовании систем полимерных контейнеров различной конфигурации с разными типами фильтров с учетом производственного этапа их применения, сроков и температурных условий хранения, степени внедрения специальных технических средств.

3. Методом выбора приготовления лейкофильтрованных гемокомпонентов при массовой заготовке донорской крови является использование систем полимерных контейнеров с встроенными лейкофильтрами, позволяющими получать из одной дозы консервированной крови обедненные лейкоцитами эритроцитную взвесь, плазму и тромбоцитный концентрат, качество которых соответствует требованиям национальных и международных стандартов на всем протяжении регламентированных сроков хранения.

Апробация работы. Основные материалы диссертации доложены на Втором съезде военных врачей медико-профилактического профиля Вооруженных Сил Российской Федерации (Санкт-Петербург, 2006), на съезде гематологов и трансфузиологов с международным участием «Совершенствование гематологии и трансфузиологии в современных условиях» (Москва, 2006), VIII Всероссийской научно-практической конференции «Актуальные вопросы клиники, диагностики и лечения больных в многопрофильном лечебном учреждении» (Санкт-Петербург, 2007), Российской научно-практической конференции «Актуальные вопросы гематологии и трансфузиологии» (Санкт-Петербург, 2007), заседании подсекции трансфузиологии Ученого Медицинского Совета ГВМУ МО РФ «Состояние и пути повышения качества производства и безопасности применения компонентов и препаратов крови в военно-лечебных учреждениях» (Москва, 2007), III Всероссийской конференции «Организация донорства и эффективное использование крови» (Москва, 2007), на сборе главных трансфузиологов видов Вооруженных Сил, округов и флотов Министерства обороны Российской Федерации ««О состоянии донорства крови и ее компонентов в Вооруженных Силах РФ и основных направлениях по его развитию» (Санкт-Петербург, 2008), IX Всероссийской научно-практической конференции «Актуальные вопросы клиники, диагностики и лечения больных в многопрофильном лечебном учреждении» (Санкт-Петербург, 2009), Российской научно-практической конференции «Актуальные вопросы гематологии и трансфузиологии» (Санкт-Петербург, 2009).

Материалы исследования реализованы при выполнении в рамках Гособоронзаказа научно-исследовательской работы «Исследования по разработке устройства для проведения фильтрации гемотрансфузионных сред в учреждениях службы крови МО РФ», шифр «Фильтрация», для нужд Минобороны РФ (Постановление Правительства РФ от 30.12.2004 г № 876-48 «О государственном оборонном заказе на 2005 год»).

Результаты исследования использованы в материалах 2 тем НИР, проводимых в соответствии с планом научной работы ГВМУ МО РФ:

Получение и клиническое применение лейкофильтрованных гемокомпонентов в военно-медицинских учреждениях» № VMA. 02.06.0507/0181;

- «Оптимизация получения и хранения тромбоцитного концентрата в военно-медицинских учреждениях», № VMA. 02.06.08/0170.

Основные материалы исследования опубликованы в 23 научных работах, из них 11 - опубликованы в журналах, рекомендованных перечнем ВАК.

По материалам диссертации внедрено 32 рационализаторских предложения.

Реализация работы. Результаты работы внедрены в практическую работу СПК ФГОУ ВПО «Военно-медицинская академия имени С.М.Кирова».

На основе материалов исследования подготовлены методические рекомендации, утвержденные начальником Главного военно-медицинского управления МО РФ:

1. Организация карантинизации свежезамороженной плазмы в военно-медицинских учреждениях (2007);

2. Организация работы станции переливания крови окружного военного клинического госпиталя (военно-морского клинического госпиталя флота) (2008).

Результаты работы используются в учебном процессе на факультете последипломного и дополнительного профессионального образования ВМедА на циклах усовершенствования «Избранные вопросы трансфузиологии», «Клиническая трансфузиология», профессиональной переподготовки «Трансфузиология».

Личное участие автора в получении результатов. Автор непосредственно выполняла сбор материала, разрабатывала и оценивала эффективность режимов приготовления гемокомпонентов, лично производила лейкофильтрацию трансфузионных сред, отбирала образцы для контроля качества и анализировала результаты лабораторных исследований, проводила статистический анализ полученных результатов и подготовку материалов к публикациям.

Заключение диссертации по теме «Гематология и переливание крови», Данилова, Анна Витальевна

выводы

1. Использование полимерных контейнеров со встроенными лейкофильтрами при массовой заготовке крови от доноров резерва сопровождается увеличением времени работы выездной бригады на 35-48% и требует дополнительного привлечения к работе как минимум одной медсестры-эксфузиониста и санитара.

2. Затраты рабочего времени при приготовлении лейкофильтрованной эритроцитной взвеси из консервированной крови увеличиваются в 2,4 раза, плазмы — в 1,6 раз, тромбоцитного концентрата — в 1,4 раза по сравнению с производством аналогичных нефильтрованных трансфузионных сред.

3. Эффективность производства лейкофильтрованных эритроцитосодержащих трансфузионных сред при массовой заготовке крови от доноров резерва определяется конфигурацией фильтрующих устройств I встроенные или присоединенные фильтры), этапом их применения (до или после фракционирования крови на компоненты), сроками проведения и использованием технических средств (специальных стоек, холодильных камер на +4°С), обеспечивающих фильтрацию.

4. Применение в выездных и стационарных условиях работы станции переливания крови встроенных в системы полимерных контейнеров или присоединенных лейкофильтров зарубежного и отечественного производства позволяет получать лейкофильтрованные эритроцитосодержащие гемокомпоненты, обедненные (ниже 1x106 в дозе) лейкоцитами, сохраняющие требуемое нормативными документами качество в течение срока, определяемого видом гемоконсерванта.

5. Производство обедненной лейкоцитами плазмы из лейкофильтрованной консервированной крови (лейкофильтрованной обогащенной тромбоцитами плазмы) с использованием встроенных лейкофильтров сопровождается меньшими затратами времени приготовления

164 I и более низкими потерями гемокомпонента по сравнению с использованием присоединенных фильтров при соответствующем требованиям качестве трансфузионной среды.

6. Разработанная методика фильтрации эритроцитной взвеси во взвешивающем растворе типа SAGM как после ее приготовления, так и с предварительно неразделенной плазмой, с использованием отечественного комплекта устройств для удаления лейкоцитов и получения безлейкоцитных компонентов консервированной крови «Лейкосеп» позволяет получать трансфузионную среду, обедненную лейкоцитами ниже 1x106 в дозе, отвечающую требованиям современной трансфузиологии при сроках хранения до 42 суток.

7. Проведение фильтрации консервированной крови при температуре 4±2°С не оказывает существенного влияния на степень элиминации лейкоцитов, но приводит к снижению концентрации свободного гемоглобина и содержания балластных эритроцитов в фильтрованной плазме по сравнению с фильтрацией при комнатной температуре (22+2° С).

8. Повторная фильтрация предварительно обедненной лейкоцитами донорской плазмы перед применением системы для вирусинактивации с помощью метиленового синего позволяет достичь уровня лейкоцитов 3,96±0,61х104 в дозе гемокомпонента, уменьшить содержание эритроцитов в 8 раз и свободного гемоглобина в 2 раза.

9. Приготовление обедненного лейкоцитами тромбоцитного концентрата из обогащенной тромбоцитами плазмы дозы консервированной крови, сопровождается увеличением затрат времени на 44% по сравнению со стандартными методоми производства нефильтрованных компонентов. Использование счетверенных полимерных контейнеров со встроенными лейкофильтрами позволяет получать в закрытой системе тромбоцитный концентрат с содержанием 0,82±0,21х105 лейкоцитов в дозе при сохранении его биологической полноценности в течение 5 суток хранения.

ПРАКТИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ

1. При организации работы выездной бригады по массовой заготовке крови (до 100 доноров) с использованием контейнеров с встроенными фильтрами в состав выездной бригады следует дополнительно включать одну медицинскую сестру-эксфузиониста и санитара-помощника эксфузиониста.

2. С целью обеспечения оптимальных параметров и сохранения высокого качества фильтрация консервированной крови и ее компонентов с помощью встроенных в полимерные контейнеры лейкофильтров должна осуществляться в возможно ранние сроки после гемоэксфузии. Для предупреждения накопления цитокинов в тромбоцитном концентрате следует проводить фильтрацию обогащенной тромбоцитами плазмы в течение 24 ч с момента заготовки консервированной крови.

3. Условиями формирования оптимальных медико-технических параметров лейкофильтрации консервированной крови и ее компонентов являются использование дозирующих устройств для заготовки крови, лейкофильтрационных стоек, вкладышей центрифужных стаканов, автоматических плазмоэкстракторов и холодильного оборудования для обеспечения температурного режима фильтрации.

4. Для приготовления фильтрованной эритроцитной взвеси в ресуспендирующем растворе со сроками хранения до 42 суток целесообразно использовать отечественный комплект устройств для удаления лейкоцитов и получения безлейкоцитных компонентов консервированной крови «Лейкосеп».

5. Для минимизации содержания балластных клеток (лейкоцитов и эритроцитов) и свободного гемоглобина в вирусинактивированной с помощью метиленового синего плазме необходимо обедненную лейкоцитами плазму подвергать повторной фильтрации перед процедурой I вирусинактивации.

6. При необходимости получения лейкофильтрованных эритроцитной взвеси, тромбоцитного концентрата и плазмы из одной дозы консервированной крови с последующим длительным (в зависимости от вида консерванта) хранением целесообразно заготовку крови от доноров резерва осуществлять в счетверенные полимерные контейнеры с двумя встроенными лейкофильтрами.

7. Для приготовления лейкофильтрованного тромбоцитного концентрата из консервированной крови целесообразно использовать счетверенные полимерные контейнеры с встроенными фильтрами для обогащенной тромбоцитами плазмы с использованием следующего режима фракционирования: для 1-ого центрифугирования - 454 g в течение 15 мин при температуре 22±2°С, для 2-ого центрифугирования - 4490 g в течение 25 мин при температуре 22±2°С.

Список литературы диссертационного исследования кандидат медицинских наук Данилова, Анна Витальевна, 2009 год

1. Абдулкадыров К.М. Приоритеты и опасности гемокомпонентной терапии / К.М. Абдулкадыров // Трансфузионная мед. 1995. - № 5. - С. 55 -58.

2. Аграненко В.А. Компонентная гемотерапия / В.А. Аграненко, С.М. Бахрамов, Л.А. Жеребцов М. Ташкент, 1995. - С. 64 - 69.

3. Аграненко В.А. Принципы трансфузионной тактики и компонентной гемотерапии / В.А. Аграненко // Клиническая трансфузиология. М.: Гэотар медицина, 1997. - С. 80-196.

4. Аграненко В.А. Принципы трансфузионной медицины / В.А. Аграненко // Вестн. службы крови России. 1998. - № 2.- С. 5-8.

5. Афонин Н.И. Современные принципы инфузионно-трансфузионной терапии острой кровопотери / Н.И. Афонин // Вестн. службы крови России. 2000. - № 2. - С. 13-16.

6. Балуда В.П. Лабораторные методы исследования системы гемостаза / В.П. Балуда, З.С. Баркаган, Е.Д. Гольдберг // Томск, 1980. 309 с.

7. Барышев Б.А. Методы удаления лейкоцитов из крови и ее компонентов / Б.А. Барышев // Трансфузиология. 2002. - № 1.- С. 54-58.

8. Белов Е.В. Качество продукции, стандарты pi служба крови / Е.В. Белов, И.К. Никитин // Трансфузиология и служба крови. Тез. докл. науч. конф.-М., 1998.-С. 188.

9. Боровиков В.П. Statistica. Искусство анализа данных на компьютере / В.П. Боровиков. СПб.: Питер, 2003. - 688 с.

10. Бутина Е.В. HLA-сенсибилизация — риск развития, посттрансфузионные осложнения, методы профилактики / Е.В. Бутина, Г.А. Зайцева, Ю.И. Югов // Гематол. и трансфузиол. 2003. - Т. 48, № 4. с. 2629.

11. Вечерко А.В. Современные аспекты удаления лейкоцитов из концентратов клеток и плазмы (обзор литературы) / А.В. Вечерко, О.В.

12. Баранова, Л.И. Каюмова, А.Б. Макеев // Трансфузиология. 2001. - № 5 - С. 117-124.

13. Воробьев А.А. Прионные инфекции: важнейшие медицинские и ветеринарные аспекты / А.А. Воробьев, В.В. Макаров // Вестн. РАМН. 1997. - № в.- С. 3-11.

14. Гайдукова С.Н. Гемотрансфузионные реакции: пути решения проблемы / С.Н. Гайдукова, Л.А. Ковалкина, С.В. Выдыборец, Л.А. Спивак // Гематол. и трансфузиол. 2001. - № 1. - С. 24-29. ,

15. Глазанова Т.В. Роль антигенов HLA в развитии посттрансфузионных реакций / Т.В. Глазанова, Л.Н. Бубнова // Трансфузиология. 2007. - № 1-2. - С. 40 - 41.

16. Голубева А.В. Совершенствование трансфузионной терапии раненных и пострадавших с гнойно-септическими осложнениями травм конечностей / А.В.Голубева // Автореф. дис. канд. мед. наук. СПб., 2001. -С. 15.

17. Гузовский Е.В. К вопросу о рациональном использовании плазмы / Е.В. Гузовский // Вестн. службы крови России. 1998. - № 1. - С. 27-28.

18. Гузовский Е.В. Рациональное использование красных клеток крови / Е.В. Гузовский // Новое в трансфузиологии. 1998. - № 21. - С. 40-42.

19. Гузовский Е.В. Аудит в трансфузионной практике / Е.В. Гузовский, В.Д. Шахсуваров, Н.И. Афонин // Вестн. службы крови России. -2000.-№1.-С. 34-38.

20. Данилова Т.Н. Состояние и перспективы развития донорства плазмы / Т.Н. Данилова, И.Е. Молоковская, И.В. Красилыцикова // Новое в трансфузиологии. 1999. - Вып. № 2. - С. 22 - 25.

21. Дойников Д.Н. Эффективность лейкофильтрационных систем при различных методиках интраоперационной реинфузии в ходе кардиохирургических операций. / Д.Н. Дойников, В.Э. Шарафутдинов, В.В.

22. Гриценко, Б.А. Барышев, О.Ю. Мочалов, С.В. Кузнецов // Трансфузиология. -2002. -№2-С. 46-50.

23. Елов А.А. ПЦР-диагностика цитомегаловирусной инфекции: распространение ЦМВ-носительства среди доноров СПК г. Москвы / А.А. Елов, Н.А. Федоров, Ю.С. Суханов // Трансфузиология и служба крови. Тез. докл. науч. конф. - М., 1998. - С.7.

24. Жибурт Е.Б. Потребность в гемотрансфузионных средствах и кровезаменителях при лечении раненых / Е.Б. Жибурт, В.В. Данильченко, Н.Н. Попова, В.Н. Вильянинов // Воен.- мед. журн. 1999. - № 9. - С. 46 - 51.

25. Жибурт Е.Б. Аутогемотрансфузии в клинической практике / Е.Б. Жибурт, С.П. Калеко, В.В. Данильченко // Трансфузиология. 2001. - № 3. -С. 35 - 52.

26. Жибурт Е.Б. Совершенствование лабораторной диагностики в службе крови / Е.Б. Жибурт // Трансфузиология. 2005. - № 2. - С. 100 - 105.

27. Карташова Н.М., Кидалов В.Н., Наумова Э.М., Хадарцев А.А Изменения конфигурации и ультраструктуры эритроцитов в экстремальных для клеток условиях// Вестник новых медицинских технологий. 2005. -T.XII. - .№ 1 . - С. 1 -5.

28. Кидалов В.Н., Хадарцев А.А., Якушина Г.Н., Игнатьев В.В. Современные технологии исследования эритрона в клинико-лабораторной практике / Тула; С-Пб.: ЗАО НПФ «Лидар». 2006. - 36 с.

29. Кирьянова Г.Ю. Разработка консервирующего раствора на основе модифицированного деионизированного желатина для пролонгированного хранения отмытых эритроцитов / Г.Ю. Кирьянова: Автореф. дис. . канд. мед. наук. СПб., 2005. - С. 31 - 34.

30. Козлов А.А. О стандартизации свежезамороженной плазмы и криопреципитата / А.А. Козлов, Н.Д. Качалова, Т.М. Простакова // Новое в трансфузиологии. — 2002. Вып. 30. - С. 73 - 76.

31. Колосков А.В. Обеспечение эффективной и безопасной гемотрансфузионной терапии в многопрофильном стационаре / А.В. Колосков // Автореф. дис. . д-ра мед. наук. СПб., 2005. - С. 32.

32. Кононенко С.Н. Обеспечение качества и безопасности полученной аферезом свежезамороженной плазмы в военно-медицинском учреждении / С.Н. Кононенко // Автореф. дис. канд. мед. наук. СПб., 2007. -С. 20.

33. Кузнецова Ю.В. Обзор научной литературы по проблеме удаления лейкоцитов из донорской плазмы / Ю.В. Кузнецова // Трансфузиология. 2005. - № 2. - С. 108-114.

34. Кузьмина Т.В. Влияние лейкодеплеции на гемостатический потенциал донорской плазмы / Т.В. Кузьмина, С.А. Садков, З.В. Пучкова, А.П. Морозова, ЯЗ. Лесь. // Вестн. службы крови России. 2008. - № 2 - С. 8 - 10.

35. Куликова О.В. Основные принципы эффективности трансфузий концентратов тромбоцитов при заболевании системы крови у детей / О.В. Куликова, В.А. Аграненко // Гематол. и трансфузиол. -1999. Т.44, № 3. - С. 35-37.i

36. Лаптев 'В.В. Отдаленные перспективы применения технологий лейкофильтрации крови / В.В. Лаптев, Н.М. Шишов, К.К. Кюрегян // Вестн. службы крови России. 2008. - № 4 - С. 8 - 10.

37. Литманович К.Ю. Проблемы безопасности и эффективности гемотрансфузионной терапии / К.Ю. Литманович, Е.А. Селиванов, И.Г. Дуткевич, В.Е. Солдатенков // Эфферентная тер. 2004. - Т. 10, № 3. - С. 37 -47.

38. Мельникова В.Н. Стандартизация средств гемокомпонентной терапии в отечественной службе крови / В.Н. Мельникова, В.Т. Плешаков, Т.Н. Данилова // Новое в трансфузиологии. 1997. - Вып. 17. - С. 55-58.

39. Мельникова В.Н. Метод получения эритроцитной среды, максимально лишенной примесей лейкоцитов и плазмы / В.Н. Мельникова,

40. B.Т. Плешаков, З.П. Беляева, Г.Ю. Кирьянова, С.Д. Волкова // Актуальные вопросы гематологии и трансфузиологии. Мат. Рос. науч.-практ. конф. — СПб, 2002. - С. 266 - 267.

41. Мельникова В.Н. Лейкофильтрация крови и ее компонентов: теоретические и практические аспекты / В.Н. Мельникова, В.Т. Плешаков, Е.Т. Селиванов, З.П. Беляева // Вестн. службы крови России. 2003. - № 1.1. C. 21-24.

42. Мельникова В.Н. Метод заготовки и консервирования лейкоредуцированной взвеси отмытых эритроцитов в препарате «Модежель-глюфосфат» / В.Н. Мельникова, В.Т. Плешаков, Е.А. Селиванов, Г.Ю. Кирьянова // Трансфузиология. 2004. - № 3. - С. 47-55.

43. Мельникова В.Н. Новый эффективный метод лейкодеплеции эритромассы и плазмы консервированной крови / В.Н. Мельникова, Е.А. Селиванов, В.Т. Плешаков // Актуальные вопросы гематологии и трансфузиологии. Мат. Рос. науч.-практ. конф. - СПб., 2004 - С. 159.I

44. Мигунов В.Н. Разработка отраслевого классификатора "Продукты крови, инфузионные и трансфузионные среды" / В.Н. Мигунов, Е.А Селиванов, Е.П. Сведенцов, Г.К. Орлова, М.И. Лазаренко, Л.Л.

45. Шумилова // Актуальные проблемы гематологии и трансфузиологии. Мат. Рос. науч.-практ. конф. - СПб., 2002. - С. 233 - 234.

46. Минеева Н.В. Иммунологические посттрансфузионные осложнения / Н.В. Минеева // Трансфузиология. 2001. - № 2. - С. 40-51.

47. Никитин И.К. Кровь, компоненты крови: хранение, фракционирование, качество и стандарты / И.К. Никитин, Г.И. Козинец // Гематол. и трансфузиол. 2004. - № 4. - С. 36 - 38.

48. Перфильева Е.А. Совершенствование подсчета клеток в компонентах крови / Е.А. Перфильева, Л.Г. Плесская, Т.В. Фокина, Н.Н. Калинин // Гематол. и трансфузиол. -2003. № 2. - С. 44-47.

49. Покровский В.И. Применение фильтрационных технологий в клинической и производственной трансфузиологии / В.И. Покровский, Е.А. Селиванов, В.Н. Мельникова, Ю.С. Суханов, В.А. Максимов. Н.М. Шишов// Вестн. службы крови России. 2003. - № 2. - С. 3-5.

50. Полякова И.И. Анализ результатов тестирования доноров на гемотрансмиссивные инфекции / И.И. Полякова, О.Д. Неклюдова, М.И. Лазаренко // Производственная трансфузиология на рубеже XXI века. Мат. науч.-практ. конф. -М., 1999. - С. 54-55.

51. Приказ МЗ СССР от 12.04.1990 г. № 155 «О совершенствовании деятельности учреждений службы крови в условиях нового хозяйственного механизма». М., 1990. - 52 с.

52. Приказ МЗ РФ от 04.08.2000 № 311 «О мерах по повышению безопасности гемотрансфузий». М., 2000. — 3 с.

53. Приказ МЗ РФ от 03.07.2001 № 244 «О внедрении в работу службы крови устройств для удаления лейкоцитов из донорской крови». — М., 2001.-6 с.

54. Приказ МЗ РФ от 14.09.2001 № 364 «Об утверждении порядка медицинского обследования донора крови и ее компонентов».- М., 2001. — 13 с.

55. Приказ МЗ РФ от 25.11.2002 № 363 «Об утверждении Инструкции по применению компонентов крови». — М., 2002. — 57 с.

56. Приказ МЗ РФ от 07.05.2003 года № 193 «О внедрении в практику работы службы крови в Российской Федерации методаIкарантинизации свежезамороженной плазмы». М.: ФГУП «Медсервис», 2003.-3 с.

57. Пугина Н.В. Оптимизация получения лейкофильтрованных эритроцитных гемокомпонентов и их применения в трансфузионной терапии операционной кровопотери / Н.В. Пугина // Автореф. дис. . канд. мед. наук. СПб., 2006. - С. 18.

58. Редчиц Е.Г. Реологические свойства лейкоцитов и их участие в микроциркуляции крови / Е.Г. Редчиц, А.С. Парфенов // Гематол. и трансфузиол. 1989. - № 12. - С. 40 - 45.

59. Русанов В.М. Вирусная безопасность донорской плазмы и лечебных препаратов крови / В.М. Русанов // Здравоохранение и мед. техника. 2004. - № 5 - С. 16 - 18.

60. Селиванов Е.А. Организация заготовки и применения аутологичной крови, ее компонентов для восполнения операционной кровопотери / Е.А. Селиванов, К.Ю. Литманович, В.Е. Солдатенков, В.В. Бураков // Трансфузиология. -2004. № 2. - С. 86 - 89.

61. Селиванов Е.А. Настоящее и будущее службы крови России / Е.А. Селиванов, Т.Н. Данилова // Пробл. гематол. и переливания крови. -2005.-№3.-С. 55.

62. Тотолян А.А. Иммуноглобулины в клинической и лабораторной диагностике / А.А. Тотолян, Н.А. Марфичева, Н.А. Тотолян // СПб.: АО «Стибиум плюс», 1996. -30 с.

63. Хаитов P.M. Геномика главного комплекса гистосовместимости: клинические аспекты / P.M. Хаитов, Л.П. Алексеев // Мед. кафедра. 2003. -№ 1. - С. 4-9.

64. Чечеткин А.В. Морфологические изменения эритроцитов лейкофильтрованных гемокомпонентов / А.В. Чечеткин, А.В. Голубева, Г.С. Крейчман, С.В. Иванов // Вестн. гематологии. 2005. - № 3. - С. 37 - 39.

65. Шевченко Ю.Л. Реакция "трансплантат против хозяина" в военной трансфузиологии / Ю.Л. Шевченко, В.В. Данильченко, Е.Б. Жибурт // Воен.-мед. журн .- 1997. Т. 318, № 2. - С. 32-35.

66. Ядзовский В.В. HLA-генетический профиль русской популяции / В.В. Ядзовский, А.В. Воронин, Л.П. Алексеев // Гематол. и трансфузиол. —1998. —Т.43, № 1.-С. 30-31.

67. Allain J.P. Protecting the blood supply from emerging pathogens: the role of pathogen inactivation / J.P. Allain, C. Bianco, M.A. Blajchman et al. // Trasfus. Med. Rev. -2005 -Vol. 19, №2.-P. 110-126.

68. Allen B.S. The role of leukodepletion in limiting ischemia/reperfusion damage in the heart, lung and lower extremity / B.S. Allen // Perfusion. 2002. -Vol. 17, Suppl.-P.il -22.

69. Andreu G. Prevention of HLA immunization with leukocyte-poor packed red cells and platelet concentrates obtained by filtration / G.Andreu, J. Dewailly, C.Leberre // Blood. 1988. - Vol.72, № 3. - P. 964 - 969.

70. Aye M.T. Effect of filtration of platelet concentrates on the accumulation of cytokines and platelet release factors during storage / M.T. Aye, D.S. Palmer, A. Giulivi, S. Hashemi // Transfusion. 1995. - Vol. 35, № 2. - P. 117 - 124.

71. Aznar J.A. Factor VIH/von Willebrand factor complex in methylene blue-treated fresh plasma / J.A. Aznar, R. Molina, J.M. Montoro // Transfusion.1999.-Vol. 39, №7. -P. 748-750. ,

72. Baeten M. The effect of methylene blue inactivation of whole blood plasma on Fc VIII related to storage time / M. Baeten , A. Rapaile, D.Donnay // Vox Sang. 2004. - Vol. 87, Suppl. 3. - P. 72.

73. Beard M.J. Variables determining blockage of WBC-depleting filters by Hb sickle cell trait donations / MJ. Beard, R. Cardigan, J. Seghatchian, P. Krailadsiri, L.M. Williamson // Transfusion. 2004. - Vol. 44, № 3. - P. 422 - 430

74. Beaujean F. Leukocyte depletion of red cell concentrates by filtration: influence of blood product temperature / F. Beaujean, J.M. Segier, C. le Forestier, N. Duedari // Vox Sang. 1992. - Vol. 62, № 2. - P. 242 - 243.

75. B6gue S. Leukocyte depletion / S. Begue // Transfiis. Clin. Biol. -1998-Vol. 5, №6. P. 411 -414.

76. Bellomo R. Interleukin-6 and interleukin-8 extration during continuous venovenous hemodiafitration in septic acute renal failure / R. Bellomo, P. Tipping, N. Boyce // Ren. Fail. 1995. - Vol. 17, № 4. - P. 457-466.

77. Bernvil S.S. Fresh frozen plasma contains viable progenitor cells -should we irradiate? / S.S.Bernvil, M. Abdulatiff, S. Al-Sedairy, F. Sasich // Vox Sang. 1994. - Vol. 67, № 4. - P. 405.

78. Blajchman M.A. Mechanisms of transfusion-associated immunosuppression / M.A. Blajchman, J.O. Bordin // Curr. Opin. Hematol. 1994. -Vol. 1, № 6. - P. 457- 461.

79. Blajchman M.A. The clinical benefits of the leukoreduction of blood products / M.A. Blajchman // J. Trauma. 2006. - Vol. 60, № 6, Suppl. - P. S83 -S90.

80. Blajman M.M. Bacterial contamination and proliferation during the storage of celluar blood products / M.M. Blajman // Vox Sang. 1998. - Vol. 74, Suppl. 2.-P. 155 - 159.

81. Bordin J.O. Clinical applications of leukocyte filters / J.O. Bordin, A. Fabron Junior // Rev. Assoc. Med. Bras. 1997. - Vol. 43, № 3. - P. 205 - 208.

82. Borrera M. Leukocyte reduction failures of TRIMA red blood cell filtered with the sepacell R 500 II / M. Borrera, S. Jrouye, M. Bordoc, D. Child // Transfusion. 2005. - Vol. 45, № 3S. - P. 66A - 67A. 1

83. Bowden R. The role of blood product filtration in the prevention of transfusion associated cytomegalovirus infection after marrow transplantation / R. Bowden, M. Sayers, M.J. Caus, S.J. Slitter // Transfusion. 1989. - Vol. 29, № 4, -P. 57S.

84. Bowden R. The risk of transfusion cytomegalovirus infection by fresh frozen plasma / R. Bowden, M. Sayers // Transfusion. 1990. - Vol. 30, № 4 - P. 762 - 763.

85. Bux J. Transfusion-related acute lung injury (TRALI): a serious adverse event of blood transfusion / J. Bux // Vox Sang. 2005. - Vol. 89, № 1. — P. 1 - 10.

86. Cardigan R. Evolution of a novel filter for leukocyte depletion of fresh plasma / R. Cardigan, J. Sutherland, M. Garwood, K. Swann, M. Stenning, M.J. Seghatchian, L.M. Williamson // Transfus. Med. 1999. - Vol. 9, № 1. - P. 47.»

87. Cardigan R. The effect of leucocyte depletion on the quality of fresh-frozen plasma / R. Cardigan, J. Sutherland, M. Garwood et al. // Br. J. Haematol. -2001. Vol. 114, № 2. - P. 233 - 240.

88. Cardo L.J. Leukodepletion filters reduce Leislimania in blood products when used at collection or at the bedside / L.J. Cardo, J. Salata, R. Harman, J. Mendez, P.J. Weina // Transfusion. 2006. - Vol. 46, № 6. - P. 896 -902.

89. Chabanel A. Quality assessment of seven types of fresh-frozen plasma leucoreduced by specific plasma filtration / A. Chabanel, I. Sensebe, M. Mas'se et al. // Vox Sang. 2003. - Vol. 84, №. 4. - P. 308 - 317.

90. Sireis, H.-U. Pfeiffer, R. Henschler, E. Seifried H. Bonig // Vox Sang. 2008. -Vol. 96, №. 2.-P. 163 - 166.

91. Creffaz D. Proteomics of methylene blue photo-treated plasma before and after removal of the dye by an absorbent filter / D. Creffaz, L. Sensebe, D.H. Vu et al. // Proteomics. 2004. - Vol. 4, № 3. - P. 881 - 891.

92. Da Ponte A. Pre-storage leucocyte depletion and transfusion reaction rates in cancer patients / A. Da Ponte, E. Bidoli, R. Talomini, A. Steffan, L. Abbruzese // Transfus. Med. 2005. - Vol. 15, № 1. - P. 37 - 43.

93. Davey RJ. Preparation of white cell-depleted red cells for 42-day storage usinge an integral in-line filter / R.J. Davey, R.A. Carmen, T.L. Simon // Transfusion. 1989. - Vol. 29, № 3. - P. 496 - 499.

94. Deslys J.P. Prions and risks for blood transfusion: the situation in 2003 / J.P. Deslys // Transfus. Clin. Biol. 2003. - Vol. 10, № 3. - P. 113 - 125.

95. Dzik W.H. Leukoreduction of blood components / W.H. Dzik // Curr. Opin. Hematol. 2002 - Vol. 9, № 6. - P. 521 - 526.

96. Dumont D.F. In vitro study of the MacoPharma MTL1 Leucoflex whole blood in-line filtration leukoreduction system / D.F. Dumont, R.A. Sacher, H.L. Taylor, J.E. Menitove, P. Hoppe // Transfusion. 2005. - Vol. 45, № 3S, Suppl. - P. 69A.

97. Edward L. Platelet storage — time to come in from the cold? / L. Edward, M.D. Snyder, M. Henry, M.D. Rinder // N. Engl. J. Med. 2003 - Vol. 48.-P. 2032-2033

98. Emery R.L. Preparation of leukoreduced platelet concentrate and buffy coat product from a prestorage leukoreduction bag system / R.L. Emery, B.E. Rahman, K.L. Seltman, J.R. Stubbs // Transfusion. 2005. - Vol. 45, № 3S, Suppl.-P. 71 A.

99. Engelfriet C.P. Universal leukocyte-depletion of blood components: cell-concentrates and plasma / C.P. Engelfriet., H.W. Reesink, R.N. Pieterz et al. // Vox. Sang.-2001. Vol. 81, № l.-P. 56-77.

100. Equitoni F. MB Photoinactivated FFP is effective and safe for treatment of coagulation and bleeding disordes I F. Equitoni, G.Mistretta, M. Hortencio de Medeiros 11 Vox Sang. - 2004. - Vol. 87, Suppl. 3. - P. 72.

101. Evans R.L. Peripheral human T-cells sensitized in mixed leukocyte culture sensitize and express la-like antigens / R.L. Evans, T.J. Faldetta, R.E. Humphreys // J. Exp. Med. 1978. - Vol. 148, № 5 - P. 1440-1443.

102. Farren T. W. Effect of storage at +4°C for 5 days on coagulation factors in FFP / T. W. Farren, T.A. Lofting, G. S. Dulay // Vox Sang. 2004. - Vol. 87, Suppl. 3.-P. 119.

103. Flegel W.A. Low cytokine contamination in buffy coat-derived platelet concentrates without filtration. / WA. Flegel, M. Wiesneth, D. Stampe, K. Koemer // Transfusion. 1995. - Vol. 35, № 11. - P. 917 - 920.

104. Floyd R.A. Methylene blue photoinactivation of RNA viruses / R.A. Floyd, J.E. Schneider, D.P. Dittmer // Antiviral Res. 2004. - Vol. 61, № 3. - P. 141-151.

105. Galel S.A. Hemolysis associated with Pall BPF4 filter / S.A. Galel, D.L. Anderle // Transfusion. 2005. - Vol. 45, № 3S. - P. 68A - 69A.

106. Garwood M. The effect of methylene blue photoinactivation and methylene blue removal on the quality of fresh-frozen plasma // M. Garwood, R.A. Cardigan, O. Drummond et al. // Transfusion. 2003. - Vol. 43, № 9. - P. 1238- 1247.

107. Gesinde M.O. Platelet production methods in the United Kingdom / M.O. Gesinde, D.H. Pamphilon, E.A. Robinson // Transfiis. Sci. 1997. - Vol. 18, № 1. - P. 15-18

108. Ghio M. Soluble HLA class I, HLA class II, and Fas ligand in blood components: a possible key to explain the immunomodulatory effects of allogeneic blood transfusions / M. Ghio, P. Contini, C. Mazzei // Blood. 1999. - Vol. 93, № 5.-P. 1770- 1777.

109. Glaser A. Effectiveness of white cell reduction by filtration with respect to blood storage time / A. Glaser, T. Erpenbeek, M. Bock et al. // Transfusion. 1993. - Vol. 33, № 4. - P. 536 - 537.

110. Goldman M. The role of leukodepletion in the control of transfusion-transmitted disease / M. Goldman, G. Delage // Transfus. Med. Rev. 1995. - Vol. 9,№ l.-P. 9-19. ,

111. Gresens C.J. T-cells in fresh frozen plasma are viable and can respond to mitogen, superantigen and allogeneic monocytes / C.J. Gresens, T.G. Paglieroni, C.B. Moss // Transfusion. 1999. - Vol. 39, № 1. - P. 99 - 102.

112. Guide to the preparation, use and quality assurance of blood components. Recommendation № R(95)15 / 12th edition, Council of Europe, 2008.-284 p.

113. Gutensohn K. Binding of activated platelets to WBCs in vivo after transfusion/ K. Gutensohn, K. Geidel, M. Brockmann, M. Siemensen, W. Krueger, N. Kroeger, P. Kuehnl // Transfusion. 2002. - Vol. 42, № 10. - P. 13 73. i

114. Heaton W.A.L. Effects of 3-5 log 10 prestorage leucocyte depletion on red cell storage and metabolism. / W.A.L. Heaton, S. Holme, K. Smith et al. // Br. J. Haematol. 1994. - Vol. 87, № 2. - P. 363 - 368.

115. Hiruma К. Effect of leucocyte reduction on the potential alloimmunogenicity of leucocytes in fresh-frozen plasma products / K. Hiruma, Y. Okuyama // Vox Sang. 2001. - Vol. 80, № 1 - P. 51 - 56.

116. Hogman C.F. International forum: Europe. Buffy-coat-derived platelet concentrates: Swedish experience / C.F. Hogman, O. Berseus, L. Eriksson, H. Gulliksson // Transfus. Sci. 1997. - Vol. 18, № 1. - P. 3 - 13.

117. Holmes D. Comparison of component yield and quality with l,5h and 24h hold of the whole blood unit using PRP-RC processing / D. Holmes, E. Greis, S. Holme // Transfusion. 2008. - Vol. 48, № 2S, Suppl. - P. 12A.

118. Hume H.A. Hypotensive reactions: a previously uncharacterized complication of platelet transfusion? / H.A. Hume, M.A. Popovsky, K. Benson, et al. // Transfusion. 1996. - Vol. 36, № 8. - P. 904 - 909.

119. Ну liner M. Complement activation in prestorage leucocyte-filtered plasma / M. Hyllner, M. Tylman, J.P. Bergston, L. Rydberg, A. Bergtsson // Transfus. Med. 2004. - Vol. 14, № 1. - P. 45 - 52.

120. Janetzko K. Fully automated processing of buffy-coat-derived pooled platelet concentrates / K. Janetzko , H. Kluter, G. van Waeg, H. Eichler // Transfusion. 2004. - Vol. 44, № 7. - P. 1052 - 1058.

121. Kazatchkine M.D. Activation of the complement system at the interface between blood and artificial surfaces / M.D. Kazatchkine, M.P. Carreno // Biomaterials. 1988. - Vol. 9, № 1. - P. 30 - 35.

122. Klos M. Immunomodulatory effect of blood components transfusions / M. Klos, J. Korsak // Pol. Merku. Lekarski. 2002. - Vol. 13, № 77. - P. 413 -416.

123. Kurup P.A. Modified formulation of CPDA for storage of whole blood and of SAGM for storage of red blood cells, to maintain the concentration of 2,3-diphosphoglycerate / P.A. Kurup, P. Aran, N.S. Gaycethri // Vox Sang. 2003. -Vol. 85, №4.-P. 253 -261.

124. Lane T.A. Leukocyte depletion of cellular blood components /Т.А. Lane // Curr. Opin. Hematol. 1994. - Vol. 1, № 6. - P. 443 - 451.

125. Larrea L. Automated processing of buffy-coat-derived pooled concentrates, evaluation of a new device / L. Larrea, Maria-Isabel Ortiz de Salazar, R.-J. Roig // Transfusion. 2008. - Vol. 48, № 2S, Suppl. - P. 148A -149A.

126. Lau P. The effect of centrifugation time on residues in fresh plasma / P. Lau, M. Sererat, M.V. Bartkowiak, V. Moore // Transfusion. 1983. - Vol. 23, №1.-P. 68-69.

127. Leytin V. Platelet activation and apoptosis are triggered sequentially during platelet storage / V. Leytin, A. Mutlu, D. Allen, E. Lyubimov, J. Freedman // Transfusion. Vol. 48, № 2S, Suppl. - 2008. - P. 154A.

128. Machuca A. Residual risk of human immunodeficiency virus infectioniin blood banks. Impact of screening with nucleic acid test / A. Machuca, I. Hewlett // Med. Clin. (Bare.). 2003. - Vol. 4, № 11. - P. 418-425.

129. Maddrey W.C. Hepatitis В an important public health issue / W.C. Maddrey // Clin. Lab. - 2001. - Vol. 47, № 1-2. - P. 51 - 55.

130. Massard S. Plasma leukoreduction with specific filtration using automatic pressure: assessment of a flexible filter Plasmaflex PLAS4 / S. Massard, I. Niel, G. Janus // Transfus. Clin. Biol. 2001. - Vol. 8, № 2. - P. 23IS.

131. Masse M. Universal leukoreduction of cellular and plasmacomponents: process control and performance of the leukoreduction process / M.i

132. Masse // Transfus. Clin. Biol. 2001. -Vol. 8, № 3. - P. 297 - 302

133. Mazeron M.C. Leukocyte depletion and infection by cytomegalovirus / M.C. Mazeron // Transfus. Clin. Biol. 2000. - Vol. 7, Suppl. 1. - P. 31s - 35s.

134. McGlasson D.L. Rapid removal of platelets from plasma utilizing the Hepcheck heparin removal filter / D.L. McGlasson, M. Ledford, L. Barna, H.A. Best, J.R. Hickman // Blood Coagul. Fibrinolysis. 1997. - Vol. 8, № 1. - P. 16 -20.

135. Mintz P.D. Assessment of the correlation of platelet morphology with in vivo recovery and survival / P.D. Mintz, G. Anderson, N. Avery, P. Clark, R.F. Bonner // Transfusion. 2005. - Vol. 45, № 2, Suppl. - P. 72S - 80S.

136. Mohr H. Photodynamic virus inactivation of blood components / H. Mohr, B. Lambrecht, A. Selz // Immun. Invest. 1995 - Vol. 24, № 2 - P. 73-85.

137. Muller N. Evalution of plasma quality prepared by in-line filtration / N. Muller // Transfus. Clin. Biol. 2001. - Vol. 8, № 3. - P. 23IS.

138. Muller-Steinhardt M. Transfusion of platelet concentrates from pooled buffy-coats: comparison of bedside vs. prestorage leukofiltration / M. Muller

139. Steinhardt , P. Schlenke , T. Wagner , H. Kluter //Transfus Med. 2000. - Vol. 10,il.-P. 59 65.

140. Muylle L. Effect of prestorage leukocyte removal on the cytokine levels in stored platelet concentrates / L. Muylle , M.E. Peetermans // Vox Sang. -1994.-Vol. 66, № l.-P. 14-17.

141. Muylle L. The role of cytokines in blood transfusion reactions / L. Muylle // Blood Rev. 1995. - Vol. 9, № 1. - P. 77-83.

142. Nielsen H.J. Leucocyte-derived bioactive substances in fresh frozen plasma / H.J. Nielsen, C. Reimert, A.N. Pedersen, E. Dybkjoer, N. Brunner, B. Alsbjorn, P.S. Skov //Br. J. Anaesth. 1997. - Vol. 78, № 5.- P. 548 - 552.

143. Ohto H. HLA antibodies after transfusions of FFP / H. Ohto, H. Yasuda, M. Yokota // Transfusion. 2000. - Vol. 40, № 6. - P. 613-614.

144. O'Neill E.M. Effect of 24-hour whole-blood storage on plasma clotting factors / E.M. O'Neill, J. Rowley, M. Hansson-Wicher // Transfusion. -1999.-Vol. 39, №4. P. 488-491.

145. Pellefier J.P. Pathogen inactivation techniques / J.P. Pellefier, S. Transue, E.L. Snyder // Best Pract. Res. Clin. Haematol. 2006. - Vol. 19, № 1. -P. 205 - 242. (

146. Pennington J., Taylor G.P., Sutherland J. et al. Persistence of HTLV-I in blood components after leukocyte depletion // Blood.- 2002.- Vol. 100, № 2. P. 677-681.

147. Perez-Pujol S. Effect of holding buffy coats 4 or 18 hours before preparing pooled filtered PLT concentrates in plasma / S. Perez-Pujol, M. Lozano, D. Perea, R. Mazzara, A. Ordinas, G. Escolar // Transfusion. 2004. - Vol. 44, № 2.-P. 202-209.

148. Plante J. Comparative study of plasma gravitational filtration versus under pressure filtration using Pall LPS1 filter / J. Plante, J.M. Reifenberg, C. Maugard, F. Girard // Transfus. Clin. Biol. 2001. - Vol. 8, № 2. - P. 220S.

149. Postma M.J. Cost-effectiveness of leucocyte depletion of red-cell transfusions for patients undergoing cardiac surgery / M.J. Postma, L.M^. van de Watering, R. de Vries // Vox Sang. 2003. - Vol. 84, № 1.- P. 65 - 69.

150. Qu L. Efficacy of Epstein-Barr virus removal by leukoreduction of red blood cells / L. Qu, S. Xu, D. Rowe, D. Trialzi // Transfusion. 2005. - Vo}. 45, №4. -P. 591 -595.

151. Rapaille A. Prestorage leukocyte reduction with in-line filtration of whole blood: evaluation of red cells and plasma storage / A. Rapaille, G. Moore, J. Siquet et al. // Vox Sang. 1997. - Vol. 73, № 1. - P. 28 - 35.

152. Richter E. In-line-filtration of erythrocyte concentrates using the Leukotrap-RC system / E. Richter, G. Matthes, U. Tofote, E. Rath // Beitr. Infusionsther Transfusionsmed. 1994. - Vol. 32. - P. 29 - 31.

153. Rider J.R. Differential leucocyte subpopulation analysis of leucodepleted red cell products / J.R. Rider, E.J. Want, M.A. Winter, J.R. Turton, D.H. Pamphilon, P. Nobes // Transfus. Med. 2000. - Vol. 10, № 1. - P. 49 - 58.

154. Rider J.R. Leucocytes can be eliminated from plazma be filtration prior to viral inactivation with methilen blue / J.R. Rider, M.A.Winter, J.M. Payrat // Vox Sang. 1998. - Vol. 74, № 3. - P. 209 - 210.

155. Riggert J. Filtration of methylene blue-photooxidized plasma: influence on coagulation and cellular contamination / J. Riggert, A. Humpe, T.J. Legler et al. // Transfusion. 2001. - Vol. 41, № 1. - P. 82 - 86.

156. Riggert J. Prestorage inline filtration of whole blood for obtaining white cell-reduced in-line filtration of whole blood / J. Riggert, D.W.M. Schwartz, J.U. Wieding // Transfusion. 1997. - Vol. 37, № 10. - P. 1039 - 1044.

157. Riggert J. Prestorage leukocyte depletion with in-line filtration of whole blood in comparison with blood component leukocyte depletion / J. Riggert , G. Simson , J. Dittmann , M. Kohler // Vox Sang. 1995. - Vol. 69, № 3.,- P. 201 -205.

158. Roback J.D. The role of leukocyte reduction in minimizing the risk of transfusion-transmission of cell-associated infections agents and immunomodulation / J.D. Roback, C.D. Hillyer // The safety of the blood supply. -New -York, 1999. P. 28-45.

159. Rock G.A. Effect of citrate anticoagulants on factor VIII levels in plasma / G.A. Rock, P. Tittley, V. Fuller // Transfusion. 1988. - Vol. 28, № 2. - P. 248 - 252.

160. Roh S.G. Effect of interrupted agitation and removal of leukocyte on platelet quality during the storage of platelet concentrates / S.G. Roh, U.S. Joung, W.C. Choi, J.H.Wee // Korean J. Lab. Med. 2008 - Vol. 28, № 3. - P. 221 - 229.

161. Runkel S. The impact of two whole blood inline filters on markers of coagulation, complement and cell activation / S. Runkel, J. Bach, H. Haubelt, C. Anders, W. Hitzler, P. Hellstem // Vox Sang. 2005. - Vol. 88, № 1. - P.l 7 - 21.

162. Saigo K. Accumulation of interleukin-1 receptor antagonist in blood products and the effect of pre-storage leukocyte reduction / K. Saigo, M. Hashimoto, M. Yamamoto // Transfus. Apheresis. Sci. 2003. - Vol. 29, № 2. - P. 187 - 188.

163. Salome M. Orbiasac platelet concentrates: analysis of two years routine quality data / M. Salome, R. Pacheco, A. Ramoa // Transfusion. 2008. -Vol. 48, № 2S, Suppl. - P. 153 A

164. Schonewille H. Alloimmunization after blood transfusion in patients with hematologic and oncologic diseases / H. Schonewille, H.L. Haak, A.M! van Zijl // Transfusion. 1999. - Vol.39, № 6. - P.763-771.

165. Schubert P. Blood platelet storage lesion: PI3-Kinase-depended Rapl activation mediates GPIIbllla activation and degranulation / P.Schubert, J. Thon, G. walsh, E. Moore, J. Kast, D. Devine // Transfusion. 2008. - Vol. 48, №2S, Suppl.-P. 11A

166. Scott M. What's so bad about old platelets? / M. Scott // Transfusion. -2002. Vol. 42, № 7. - P. 809.

167. Seghatchian J. Cytokines as quality indicators of leucoreduced red all concentrates / J. Seghatchian, P. Krailadsiri, H. Dilger // Transfus. Apheresis Sci. -2002. Vol. 26, № 1. - P. 43 - 46.

168. Shaiegan M. Generation of IL-8 and TNF-alpha in platelet concentrates during storage / M. Shaiegan, A.A. Pourfatollah, M. Namiri, G. Babaee //Arch. Iran Med. 2006. - Vol. 9, № 1. - P. 61 - 64.i

169. Silliman C.C. Plasma and lipids from stored packed red blood cells cause acute lung injury in an animal model / C.C. Silliman, N.F. Voelkel, J.D. Allard // J. Clin. Invest. 1998. - Vol. 101, № 7. - P. 1458 - 1467.

170. Skripchenko A. Platelet products prepared by different methods of sedimentation undergo platelet activation differently during storage / A. Skripchenko, J. Kurtz, G. Moroff, S J. Wagner // Transfusion. 2008. - Vol. 48, №7.-P. 1469- 1477.

171. Sonntag J. Complement activation during plasma production depends1on the apheresis technique / J. Sonntag, M. Emeis, A. Vornwald // Transfus. Med. -1998. Vol. 8, № 3. - P. 205 - 208.

172. Sowemimo-Coker S.O. Red blood cell hemolysis during processing / S.O. Sowemimo-Coker. // Transfusion medicine reviews. 2002. - Vol. 16, № 1. -P. 46-60.

173. Stefanou D.C. Leucodepletion during cardiopulmonary bypass reduces blood transfusion and crystalloid requirements / D.C. Stefanou, T. Gourlay, G. Asimakopoulos, K.M. Taylor // Perfusion. 2002 - Vol. 77, № 2. - P. 137-142.1

174. Steneker I. Histologic and immunohistochemical studies on the preparation of white cell-poor red cell concentrates: the filtration process usingthree different polyester filters / I. Steneker, J. Biewenga // Transfusion. 1991. -Vol. 31, № l.-P. 40-46.

175. Sweeney J. Clinical experience with whole blood derived pre pooled platelets manufactured from platelet rich plasma / J.Sweeney, T.Cheves // Transfusion. 2008. - Vol. 48, № 2S, Suppl. - P. 12A - 13A. (

176. Taylor C. Immunological complications of blood transfusion / C. Taylor, С Navarette, M. Contreras // Transf. alt. transf. med. 2008. - Vol. 10. -№ 3. - p. 112-126

177. Thibault L. Improved leucoreduction of red blood cell units prepared after a 24-h hold with the platelet-rich plasma method using newly developed filters / L. Thibault, A. Beausejour, A. Jacques, M.J. de Grandmont, R. Lemieux,

178. Y. Gregoire, E. Ducas, G. Boucher // Vox Sang. 2008. - Vol. 94, № 4. - P. 286 -91.

179. Thurlow P.J. Studies of the effect of Pall leucocyte filters LG6 and AV6 in an in vitro simulated extracorporeal circulatory system / P.J. Thurlow, L. Doolan, R. Sharp // Perfusion. 1995. - Vol. 10, № 5. p. 291 - 300.

180. Valeri C.R. Effect of WBC reduction and storage temperature on PLTs frozen with 6 percent DMSO for as long as 3 years / C.R. Valeri , R. Srey, J.P. Lane, G. Ragno //Transfusion. 2003. - Vol. 43, № 8. - P. 1162 - 1167. >

181. Vamvakas E.C. WBC-containing allogeneic blood transfusion and mortality: a meta-analysis of randomized controlled trials / E.C. Vamvakas // Transfusion. 2003. - Vol. 43, № 7. - P. 963-973.

182. Van Aken W.G. Leukodepletion of blood products: a requirement for improvement of quality and safety / W.G. Van Aken, A. Brand, C.L. Van der Poel // Ned. Tijdschr. Geneeskd. 2000. - Vol. 144, № 22. - P. 1033 - 1036.

183. Van der Meer P.F. Leukoreduction of platelet concentrates using a 'polishing' filter / P.F. Van der Meer, R.N. Pietersz, H.W. Reesink // Vox Sang. -2000. Vol. 79, № 1.-P. 27-33. 1

184. Van der Meer P.F. Interruption of agitation of platelet concentrates: effects on in vitro parameters / P.F. Van der Meer, H. Gulliksson, J.P. Aubuchon, C. Prowse, E. Richter, J.de Wildt-Eggen // Vox Sang. 2005. - Vol. 88, № 4. . p. 227 - 234.

185. Van der Meer P.F. Collection of heparinized plasma by plasmapheresis / P.F. Van der Meer, H. Vrielink, R.N. Pietersz // Vox Sang. -1999. Vol. 77, № 3. - P. 137 - 142.

186. Van der Meer P.F. The effect of whole-blood storage time on the number of white cells and platelets in whole blood and in white cell-reduced red cells / P.F. Van der Meer, J. de Wildt-Eggen // Transfusion. 2006. - Vol. 46, № 4.-P. 589-594.

187. Van Hust M. Cost-effectiveness of leucocyte-depleted erythrocyte transfusion in cardiac valve surgery / M. van Hust, Y. M. Bilgin, L. M. G. van der Watering // Transf. Med. 2005. - Vol. 15, № 3. - P. 209.

188. Vasconcelos E. Quality of platelet concentrates derived by platelet rich plasma, buffy coat and apheresis / E. Vasconcelos, A.C. Figueiredo, J. Seghatchian // Transfus. Apheresis Sci. 2003. - Vol. 29, № 1. - P. 13-16.

189. Vasova I. Biological effects of allogenic leukocytes and leukocyte-depleted blood cell products / I. Vasova, J. Mayer // Vnitr. Lek. 1995. - Vol. 41, № 10.-P. 713-718.

190. Vassallo R.R. A critical comparison of platelet preparation methods / R.R. Vassallo, S. Murphy // Curr. Opin. Hematol. 2006. - Vol. 13, № 5. - p! 323 -330.

191. Vignon D. Leukodepletion of labile blood products / D. Vignon // Ann. Pharm. Fr. 1999. - Vol. 57, № 1. - P. 61 - 67.

192. Vincent J.L. Anemia management in critical care / J.L. Vincent // Transfus. Alternativ. Transfus. Med. 2002. - Vol. 4, № 4. - P. 115.

193. Visconti M. R., Pennington J., Garner S.F. et al. Assessment of removal of human cytomegalovirus from blood components by leucocyte depletionfilters using real-time quantitative PCR // Blood. 2004. - Vol.103, №3. - P.l 137 i

194. Vlaar A. Outdated platelets, but not outdated red blood cells, have neutrophil-priming capacity / A. Vlaar, D. de Korte, A. Tool, N. Rienk, W. Kulik, M. Schultz, N. Juffermans // Transfusion. 2008. - Vol. 48, № 2S, Suppl. - P. 12 A.i

195. Vrielink H. Plasmapheresis with PCS 2: version G.l software / H. Vrielink, P.F. Van der Meer // Vox Sang. - 2004. - Vol. 87, Suppl. 3. - P. 119.

196. Wieding J.U. Contamination of fresh-frozen plasma with viable white cell and proliferable stem cells / J.U. Wieding, K. Vermeyer, J. Dittman // Transfusion. 1994. - Vol. 34, № 2. - P. 185 - 186.i

197. Williamson L.M. Bedside filtration of blood products in the prevention of HLA alloimmunization A prospective randomized study / L.M. Williamson, J.Z. Wiper's, P. Williamson // Blood. - 1994. - Vol. 83, № 7. - P. 3028-3035.

198. Williamson L.M. Evaluation of plasma and red cells obtained after leucocyte depletion of whole blood / L.M. Williamson, J.R. Rider, l.D. Swann et al. // Transfus. Med. 1999. - Vol. 9, № 1 - P. 51 - 61.

199. Willis J.I. White cells in fresh-frozen plasma: evaluation of a new white cell-reduction filter / J.I. Willis, J.A.G. Lown, M.C. Simpson, W.N. Erber // Transfusion. 1998. - Vol. 38, № 7. - P. 645 - 649

200. Xie R. The effect of two leukocyte depletion in-line filters on the efficiency of whole blood filtration / R. Xie, Y. Li, Y. Huang, Q. Mo, Y. Dai, W. Tang // Sheng Wu Yi Xue Gong Cheng Xue Za Zhi. 2007. - Vol. 24, № 4. - p. 817-819.