Сезонные изменения ультраструктуры клеток апикальной меристемы побега и мезофилла хвои Pinus sylvestris L. тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.00.05, кандидат биологических наук Котеева, Нурия Каюмовна

• Котеева, Нурия Каюмовна
• кандидат биологических наук
• 1999

Оглавление диссертации кандидат биологических наук Котеева, Нурия Каюмовна

ОГЛАВЛЕНИЕ

ВВЕДЕНИЕ

ГЛАВА I. Обзор литературы

I \

г

| 1.1. Концепция сезонных структурно-метаболических ритмов

! I

! 1.2. Сезонные изменения ультраструктуры меристематических

клеток

1.3. Сезонные изменения ультраструктуры

дифференцированных клеток

ГЛАВА 2. Материал и методы исследования

ГЛАВА 3. Результаты исследования

3.1. Формирование вегетативной почки и развитие побега ] сосны обыкновенной

I

| 3.2. Сезонные изменения размеров и формы апекса ' вегетативного побега сосны обыкновенной

3.3. Анатомическое строение хвоинки (данные световой микроскопии)

3.4. Ультраструктура клеток апикальной меристемы в годичном цикле, естественные условия

3.4.1. Июнь, июль (рост вегетативного побега и формирование почки)

1

с

* л

| 3.4.2. Сентябрь, октябрь

\

5 3.4.3. Ноябрь, декабрь

3.4.4. Январь, февраль

3.4.5. Март, апрель

3.4.6. Май

I

I

! 3.5. Ультраструктура клеток апикальной меристемы в

годичном цикле, оранжерея

3.5.1. Июнь, июль (рост вегетативного побега и формирование почки)

3.5.2. Ноябрь, декабрь

3.5.3. Февраль

3.6. Ультраструктура клеток мезофилла в годичном цикле,

| естественные условия

|

Г 3.6.1. Летний период

3.6.2. Сентябрь

3.6.3. Октябрь

3.6.4. Ноябрь, декабрь

3.6.5. Январь, февраль

3.6.6. Март, апрель

3.6.7. Май

I

| 3.5.8. Июль (второй год ясизни хвои)

I!

}

I 3.7. Ультраструктура клеток мезофилла в годичном цикле,

условия оранжереи

3.7.1. Летний период

3.7.2. Сентябрь, октябрь

3.7.3. Ноябрь, декабрь

3.7.4. Февраль, март

3.7.5. Июль (второй год эюизни хвои)

ГЛАВА 4. Обсуждение результатов

4.1. Ядро

4.2. Пластиды

4.2.1. Изменение положения пластид

4.2.2. Численность пластид

4.2.3. Размеры и форма пластид

4.2.4. Тилакоидная система пластид

4.2.5. Пластоглобулы, крахмал

4.3. Митохондрии

4.4. Пероксисомы

4.5. Эндоплазматический ретикулум

4.6. Клеточная стенка, аппарат Гольджи

4.7. Вакуоли

4.8. Липидные капли

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

ВЫВОДЫ

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

ПРИЛОЖЕНИЕ

Условные обозначения

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Сезонные изменения ультраструктуры клеток апикальной меристемы побега и мезофилла хвои Pinus sylvestris L.»

ВВЕДЕНИЕ

Актуальность темы. Изучение механизмов устойчивости и адаптации растений к изменениям условий среды является одной из наиболее актуальных проблем современной биологии. Среди подходов, ведущих к разрешению этой проблемы, важное значение имеет выяснение роли реакции клетки на изменение условий среды при естественной смене сезонов года. При этом особый интерес представляет период зимнего покоя в связи с проблемой морозоустойчивости.

Изучению сезонных изменений структуры клеток посвящено большое число исследований. Однако далеко не все аспекты этой проблемы достаточно глубоко изучены. В частности, не проводилось сравнительного изучения сезонных изменений структуры клеток меристемы побега и мезофилла листа. Вместе с тем, такой подход дает возможность выявить механизмы адаптации столь разных по структуре тканей.

До сих пор оставались неизученными факторы, инициирующие перестройки структуры растительных клеток при подготовке к условиям зимнего периода.

Весьма актуальна также проблема специфичности и неспецифичности реакций структуры растительной клетки и ее отдельных компонентов на стрессовые условия. Совершенно новые данные для дискуссии дает сравнение изменений структуры клеток двух типов в неблагоприятных условиях зимы.

Цель и задачи исследования. Целью нашего исследования явилось выявление особенностей ультраструктуры клеток апикальной меристемы сосны обыкновенной {Pinus sylvestris L.) на разных стадиях годичного цикла в сравнении со структурной динамикой клеток мезофилла.

В задачи работы входило:

выявление динамики структурных изменений на разных стадиях годичного цикла (активного роста, формирования почки и периода покоя) клеток апикальной меристемы побега;

выявление динамики структурных изменений на протяжении всего годичного цикла клеток мезофилла хвои сосны обыкновенной;

проведение сравнительного анализа сезонных изменений ультраструктуры меристематических и дифференцированных клеток;

проведение сравнительного изучения ультраструктуры клеток меристемы и мезофилла растений, выращиваемых в открытом и закрытом грунте, для выяснения факторов, инициирующих ультраструктурные перестройки при прохождении разных стадий годичного цикла.

Научная новизна работы. Впервые с применением морфометрических методов проведено детальное исследование структуры меристематической клетки в годичном цикле. Выявлен целый ряд новых фактов по динамике изменений как качественных, так и количественных структурных признаков клетки меристемы. Впервые описаны картины слияния пластид в клетках меристемы, выявлена сложная динамика накопления запасных веществ. Показаны основные признаки строения, характеризующие состояние пролиферативного покоя клеток меристемы.

Впервые проведен сравнительный анализ сезонных изменений ультраструктуры меристематических и полностью

дифференцированных клеток мезофилла. Благодаря такому сравнению оказалось возможным выявить специфичность для типа клетки сезонных изменений одних компонентов клетки (в частности, структуры ядрышек, пластид, эндоплазматического ретикулума, динамики содержания запасных веществ) и неспецифичность - других (например, структуры митохондрий).

Предпринята одна из первых попыток выявить факторы, инициирующие изменения ультраструктуры 4 при подготовке к условиям зимнего периода. Показано, что низкие температуры -основной фактор, индуцирующий адаптивные ультраструктурные перестройки клеток мезофилла, но не меристемы. Для меристематической клетки адаптивное к условиям зимнего периода значение имеет переход в состояние покоя, который, по всей вероятности, индуцируется коротким днем.

Практическая ценность работы. Результаты исследования могут быть использованы при изучении механизмов адаптации растительной клетки к условиям окружающей среды, в частности, в рамках разработки проблем морозоустойчивости растений. Полученные данные будут полезны при выяснении общих вопросов биогенеза клеточных органелл.

Новые данные могут быть использованы (и уже используются) как фактический материал для преподавании биологических дисциплин в высших учебных заведениях.

Апробация работы. Основные положения диссертационной работы докладывались на V и VI молодежных конференциях ботаников в Санкт-Петербурге (Санкт-Петербург, 1995, 1997), I Всероссийской конференции по Ботаническому Ресурсоведению (Санкт-Петербург, 1996), XI Европейском конгрессе по электронной микроскопии (Дублин, Ирландия, 1996), Международной конференции

по анатомии и морфологии растений (Санкт-Петербург, 1997), конференции «Проблемы ботаники на рубеже ХХ-ХХ1 веков» в рамках II (X) Делегатского съезда РБО (Санкт-Петербург, 1998).

Публикации результатов исследования. По теме диссертации опубликовано и сдано в печать 12 работ.

Заключение диссертации по теме «Ботаника», Котеева, Нурия Каюмовна

ВЫВОДЫ

1. Сезонные изменения ультраструктуры клеток апикальной меристемы побега и мезофилла хвои сосны обыкновенной в основном различны.

2. Структурные перестройки в клетках меристемы при переходе сосны в состояние покоя (сентябрь) не зависят от температуры. Уменьшение размеров, числа, доли гранулярного компонента ядрышек, агрегация ГЭР в виде стопок параллельно расположенных цистерн, минимальное число диктиосом свидетельствуют о пониженной метаболической активности меристематических клеток осенью-в начале зимы.

3. Подготовка к весенней реактивации меристематических клеток начинается в середине зимы. О повышении метаболической активности клеток свидетельствуют уменьшение содержания запасных веществ, разборка стопок цистерн ГЭР, повышение парциального объема ядрышек, реорганизация тилакоидной системы пластид.

4. Для клеток мезофилла основное адаптивное к низким температурам значение имеют структурные перестройки, ведущие к уменьшению оводненности клеток и, следовательно, связанные с повышением их морозоустойчивости. К таким структурным изменениям относятся уменьшение объема центральной вакуоли, повышение объема цитоплазмы, развитие трубчатой формы АЭР, активизация ядрышек и повышение плотности распределения рибосом.

5. Изменения структуры клеток мезофилла, связанные с повышением морозоустойчивости, индуцируются низкими температурами.

6. Увеличение числа митохондрий в осенне-зимнее время - общий признак для клеток меристемы и мезофилла. Пролиферация митохондрий индуцируется низкими температурами.

7. Явно выраженного адаптивного значения не имеют процессы деления и слияния пластид в клетках меристемы и мезофилла на протяжении периода зимнего покоя. Вполне возможно, что в данном случае имеют место структурные проявления прохождения пластидами определенной стадии своего онтогенеза.

8. Динамика сезонных изменений структуры ядрышек, пластид, эндоплазматического ретикулума, содержания запасных веществ для исследованных тканей носят специфичный характер. Структурные изменения митохондрий в годичном цикле неспецифичны. Г г ■ I

1 I

ЗАКЛЮЧЕНИЕ - 123 ¡'

Г ' £

1 реакцией, существенно снижающей возможность фотоингибирования и повреждения фотосинтетического аппарата в условиях зимы.

Для хлоропластов клеток мезофилла характерна сезонная динамика численности, причем изменения происходят в строго определенные календарные сроки. Летом число органелл минимально, затем увеличивается осенью, достигая максимальных значений в зимние месяцы; весной число пластид уменьшается и к середине лета становится примерно таким же, как и летом предыдущего года.

I Объясняется подобное явление увеличением числа делений

1 " Г хлоропластов осенью (повышение числа органелл), и увеличением числа слияний и разрушением части хлоропластов в середине зимы начале весны (понижение числа органелл). Причина четкого разделения во времени остается неизвестной. Однако, по-видимому, низкая температура может играть в этом некую роль, поскольку в оранжерее численность хлоропластов не изменяется, хотя картины и деления, и слияния встречаются круглый год. Значение интенсификации процессов деления и слияния хлоропластов на разных стадиях осенне-зимнего периода также неясно. Интересно, что в клетках меристемы делящиеся и сливающиеся пластиды также наблюдаются на протяжении периода зимнего покоя, но приуроченности к определенной стадии не обнаружено. Явно выраженного адаптивного значения эти процессы, вероятно, не имеют. Вполне возможно, что в данном случае мы имеем дело со структурными проявлениями прохождения пластидами определенной стадии своего онтогенеза.

Увеличение числа митохондрий в осенне-зимнее время - общий признак для клеток меристемы и мезофилла. У сосны, помещенной в оранжерею, пролиферации митохондрий не происходит, что | свидетельствует о температурной зависимости формирования этого признака. j Таким образом, оба типа клеток не инактивируются в холодное время: в них на протяжении этого периода происходят j ультраструктурные перестройки, отражающие периодические изменения интенсивности метаболизма и четко различающиеся в клетках меристемы и мезофилла.

Очевидно, что различия связаны в первую очередь со спецификой структуры и функционирования клеток меристемы и мезофилла.

Анализ литературы и собственные данные позволяют предположить, что инициирующие факторы, вызывающие структурные j перестройки клеток в годичном цикле, также различаются в мезофилле

I и меристеме.

Считается, что короткий день, характерный для осени, ведет к

I ингибированию ростовых процессов и индуцирует инициальную фазу i покоя (глубокого), которая контролируется внутренними факторами

Гродзинский и др., 1984; Lloyd et al., 1996; Welling et al., 1997, и др.). Переход саженцев сосны, находящихся в оранжерее, в покоящееся состояние в те же сроки, что и в естественных условиях, подтверждает преимущественное значение фотопериода в индуцировании покоя почки. Снижение или отсутствие пролиферативной активности меристематических клеток ранней осенью имеет адаптивное значение, и в этом заключается акклимация меристемы к будущим холодам. Ядра fi! ■ ~ меристематических клеток покоящейся почки находятся на fr:'

1 пролонгированной Gi (Go-i) стадии клеточного цикла (Nougarede et al.,

1973; Cottignies, 1979; Tepfer et al., 1981; Nougarede et al., 1996). Имеются сведения, что из всей популяции клеток апикальной меристемы наиболее устойчивы к отрицательным температурам те, которые находятся в Gi фазе; причем скопление клеток в Gi происходит при ингибировании роста коротким днем (Гродзинский и др., 1984).

Ультраструктура клеток меристемы в осенне-зимний период

1 имеет сходные признаки и в естественных условиях, и в оранжерее, т.е. t. это прежде всего структура покоящейся меристемы. Структура 1: Iядрышкового аппарата (свидетельствующая о снижении его активности), организация цистерн гранулярного эндоплазматического J ретикулума в виде стопок, утолщение клеточных стенок и накопление i липидов и крахмала - это признаки покоящейся клетки меристемы, формирование которых не зависит от температуры. Адаптивное к f :■

1 низким температурам значение эти признаки имеют только в том смысле, что само состояние покоя меристемы - основа морозоустойчивости.

Что касается ультраструктуры клеток мезофилла хвои, то структурные перестройки в его клетках при подготовке к зиме, ведущие к повышению их морозоустойчивости, начинаются в октябре, т.е. позже, чем в меристеме. Приблизительно в это время происходит выход почки из состояния глубокого покоя и переход к вынужденному. i j Согласно многочисленным литературным источникам, этот переход i г индуцируется понижением температуры (Little, Bonga, 1974; Lloyd et al., i 1996). г .

Нам представляется, что изменения ультраструктуры зрелых клеток, ведущие к увеличению их морозостойкости, не вызываются коротким днем (по крайней мере, непосредственно), основная роль в этом случае, скорее всего, принадлежит низким температурам. Известно, во всяком случае, что индуцирующим фактором для развития первичной морозоустойчивости тканей листа являются низкие ; температуры, и акклимация листьев к низким температурам

I происходит независимо от фотопериода (Gusta, Weiser, 1972).

I Сравнительный анализ структурных изменений в клетках мезофилла хвои сосен, произрастающих в естественных условиях и в оранжерее, показал, что именно низкие температуры, по всей вероятности, стимулируют уменьшение объема центральной вакуоли, развитие трубчатого агранулярного ЭР, реорганизацию тилакоидной системы пластид, передвижение хлоропластов в складки клетки и увеличение числа митохондрий. Уменьшение вакуолизации зимней 1

I ! клетки мезофилла связано с синтезом белков цитозоля; здесь наблюдается прямая корреляция с активизацией ядрышкового аппарата и увеличением плотности распределения рибосом. Таким образом, по крайней мере, часть структурных изменений в зрелой клетке мезофилла имеет четкую температурную зависимость и явное адаптивное к низким температурам значение.

I ■ I

I ■. I

Список литературы диссертационного исследования кандидат биологических наук Котеева, Нурия Каюмовна, 1999 год

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

1. Аветисова JI.B., Кадыков В.А. Структурные изменения ядер апикальной меристемы прорастающих зерновок пшеницы // Физиол. Биохим. Культ. Раст. 1993. Т. 25 (3). С. 226-233.

2. Агаев Ю.М. К вопросу об изменениях хлоропластов в зимний период // Цитологические основы приспособления растений к факторам среды. М., Л.: Наука. 1964. С. 155-167.

3. Агаев Ю.М. Ультраструктура клеток диплоидных и полиплоидных форм шелковицы. Баку: Элм, 1977. 109 с.

4. Алексеева О.А, Возрастные и сезонные изменения структуры хлоропластов и митохондрий в клетках мезофилла тиса остроконечного. Л. Дисс. на соиск. уч. степ, к.б.н., 1991.

5. Артемов В.А. Морфогенез побегов Pinaceae (вступление в микрофенологию). Сыктывкар. 1976. 56 с.

6. Балагурова Н.И., Дроздова С.Н., Тихова М.А., Сулимова Г.М. Изменение ультраструктуры клеток листьев овсяницы луговой при холодовом закаливании//Цитология. 1983. Т. 25 (5). С. 516-521.

7. Барская Е.И. Изменения хлоропластов и вызревание побегов в связи с морозоустойчивостью древесных растений. Москва: Наука, 1967. 224 с.

8. Буболо Л.С., Палеева Т.В., Кислюк И.М. Влияние температуры выращивания и кратковременной температурной акклиматизации на ультраструктуру клеток, фотосинтез и дыхание листьев Tradescantia albiflora (Commelinaceae) II Бот. Журн. 1988. Т. 73<1). С. 45-54.

9. Васильев А.Е. Ультраструктура зимующей хлоренхимы хвойных // Тез. Всес. Совещ. по Вопр. Адапт. Раст. 1971. С. 8-9.

10. Васильев А.Е. Изменение структуры ядра клеток мезофилла в ходе развития листа тополя//Цитология. 1989. Т. 31 (1). С. 15-22.

11. Васильев, А.Е., Гамалей, Ю.В., Данилова, М.Ф. Ксилема // Атлас ультраструктуры растительных тканей. Петрозаводск: Карелия, 1980. С. 141-186.

12. Васильев А.Е., Муравник Л.Е. Ультраструктурные преобразования тканей в жизненном цикле листа Populus deltoides (Salicaceae). I. Апикальная меристема побега // Бот. Журн. 1997а. Т. 82 (7). С. 1-17.

13. Васильев А.Е., Муравник Л.Е. Ультраструктурные преобразования тканей в жизненном цикле листа Populus deltoides (Salicaceae). II. Палисадный мезофилл в ходе роста // Бот. Журн. 19976. Т. 82 (9). С. 113.

14. Вознесенская Е.В. Структура фотосинтетического аппарата у представителей древесных форм высокогорий Восточного Памира // Физиол. Раст. 1996, Т. 43 (3). С. 391-398.

15. Гамалей Ю.В. Продолжительность жизни хлоропластов в клетках мезофилла листопадных и вечнозеленых растений // Цитология. 1975. Т. 17(11). С. 1243-1248.

16. Гамалей Ю.В., Куликов Г.В. Развитие хлоренхимы листа. Л.: Наука, 1978.192 с.

17. Гамалей Ю.В. Происхождение и локализация органелл растений // Физиол. Раст. 1997. Т. 44. С. 100-120.

18. Генкель П.А., Барская Е.И. О сезонных изменениях хлоропластов ели // Физиол. Раст. 1960. Т. 7 (вып. 6). С. 645-653.

19. Генкель П.А., Окнина Е.З. Состояние покоя и его значение в жизни растений // Матер, симп. по физиол. глуб. покоя древ. раст. Уфа. 1969. С. 9-11.

20. Гродзинский Д.М., Белецкая Е.К., Хилько Т.Д., Кравцова Л.И. Устойчивость клеточной популяции апикальной меристемы стебля озимой пшеницы к отрицательной температуре // Устойчивость растений к действию отрицательных температур, Киев: Наукова Думка, 1984. С. 20-36.

21. Данилова М.Ф. Структурные основы поглощения веществ корнем. JL: Наука, 1974. 206 с.

22. Данилова, М.Ф., Кашина, Т.К. Апикальные меристемы // Атлас ультраструктуры растительных тканей. Петрозаводск: Карелия, 1980. С. 17-40.

23. Кислюк И.М., Васьковский М.Д., Буболо JI.C., Палеева Т.В. Влияние температуры на строение листьев и фотосинтез Carex lugens (Cyperaceae) и Arctagrostis arundinaceae (Роасеае) // Бот. Журн. 1983. Т. 63 (10). С. 1325-1332.

24. Кислюк И.М., Мирославов Е.А., Палеева Т.В. Стимуляция дыхания листьев пшеницы и пролиферация митохондрий в их клетках под влиянием охлаждения//Физиол. Раст. 1995. Т. 42 (4). С. 603-606.

25. Климов C.B., Астахова Н.В., Бочарова М.А., Трунова Т.И. Различия в холодостойкости томата и огурца связаны ç низкотемпературной устойчивостью фотосинтеза и характером углеродного метаболизма // Физиол. Раст. 1996. Т. 43. С. 906-914.

26. Котеева Н.К. Эндоплазматический ретикулум клеток апикальной меристемы побега и мезофилла хвои сосны обыкновенной в годичном цикле // Тр. конф. "Проблемы ботаники на рубеже XX-XXI веков". 1998. Т. 1. С. 45-46.

27. Красавцев O.A., Туткевич Г.И. Ультраструктура клеток коровой паренхимы древесных растений в связи с их морозостойкостью // Физиол. Раст. 1971. Т. 18 (вып. 3). С. 601-607.

28. Кушниренко C.B., КурковаЕ.Б., Рогачева А.Я., Жолкевич В.Н. Влияние низких положительных температур на окислительное фосфорилирование и ультраструктуру митохондрий у Cucumis sativus II Физиол. Раст. 1969. Т. 16 (вып. 3). С. 482-487.

29. Ладанова Н.В. Сезонные и возрастные изменения ультраструктурной организации ассимиляционного аппарата ели // Тр. Коми фил. АН СССР. 1985. Т. 73. С. 35-45.

30. Ладанова Н.В., Тужилкина В.В. Структурная организация и фотосинтетическая активность хвои ели сибирской. Сыктывкар: Коми научный центр УрО РАН, 1992. 100 с.

31. Лакин Г.Ф. Биометрия. М.: Высшая школа, 1990. 352 с.

32. Левитт Дж. Повреждения и выживание после замораживания и связь с другими повреждающими воздействиями // Холодостойкость растений. Москва: Колос, 1983. С. 10-22.

33. Ли П.Х., Палта Дж.П. Морозостойкость клубненосных видов Solanum и действие на них замораживания // Холодостойкость растений. Москва: Колос, 1983. С. 46-63.

34. Машкин С.И., Назарова М.Н. Сезонная динамика числа и размеров ядрышек, ядер и ядерно-ядрышковых отношений у представителей подсем. Сливовых при их интродукции // Цитология. 1976. Т. 18 (12). С. 1438-1443.

35. Мирославов Е.А., Буболо Л.С. Ультраструктура клеток хлоренхимы листа некоторых представителей флоры Крайнего Севера // Бот. Журн. 1980. Т. 65. С. 1523-1530.

36. Мирославов Е.А., Алексеева O.A., Наумова Л.В. К проблеме обновления хлоропластов //Цитология. 1992. Т. 34 (8). С. 28-32.

37. Мирославов Е.А., Бармичева Е.М., Котеева Н.К. Анатомия листа и ультраструктура клеток мезофилла ранневесенних растений // Тр. конф. "Проблемы ботаники на рубеже XX-XXI веков". 1998. Т. 1. С. 56-57.

38. Мирославов Е.А., Бармичева Е.М., Котеева Н.К. Особенности строения хлоропластов ранневесенних эфемероидов (на примере Corydalis bracteata, Fumariaceae) II Бот. Журн. 1999. В печати.

39. Мирославов Е.А., Вознесенская Е.В., Буболо Л.С. Структура хлоропластов северных растений в связи с адаптацией фотосинтетического аппарата к условиям Арктики // Физиол. Раст. 1996. Т. 43(3). С. 374-379.

40. Муравник Л.Е., Васильев Ä.E., Потапова Я.Ю. Ультраструктурные аспекты функционирования пищеварительных железок Aldrovanda vesiculosa II Физиол. Раст. 1995. Т. 42 (1). С. 5-13.

41. Наумова J1.B. Ультраструктура клеток перидермы Phellodendron amurense (Rupr.). Л. Дисс. на соиск. уч. степ, к.б.н., 1986.

42. Наумова Л.В., Мирославов Е.А. Сезонные изменения ультраструктуры клеток феллодермы Phellodendron amurense (.Rutaceae) // Бот. Журн. 1986. Т. 71 (2). С. 200-206.

43. Нестерович Н.Д., Дерюгина Т.Ф., Лучков А.И. Структурные особенности листьев хвойных. Минск. 1986. 96 с.

44. Новицкая, Ю.Е. Физиологическая роль эндоплазматического ретикулума и гиалоплазмы клеток мезофилла хвойных растений (Pinus sylvestris, Picea abies) II Электронная микроскопия в ботанических исследованиях (Матер, к III Всес. Симп. по применению ЭМ в ботан. иссл.). Петрозаводск: КФ АН СССР, 1974. С. 78-82.

45. Новицкая, Ю.Е. Физиолого-биохимические механизмы адаптации хвойных растений к экстремальным факторам среды // Адаптация древесных растений к экстремальным условиям среды. Петрозаводск: КФ АН СССР, 1984. С. 42-52.

46. Новицкая, Ю.Е. Адаптация сосны к экстремальным факторам среды // Физиолого-биохимичекские основы роста и адаптации сосны на Севере. Л.: Наука, 1985. С. 113-131.

47. Новицкая, Ю.Е., Царегородцева, С.О., Чикина, П.Ф., Габукова, В.В Механизмы адаптации хвойных растений к экстремальным факторам среды // Вопросы адаптации растений к экстремальным условиям Севера. Петрозаводск: КФ АН СССР, 1975. С. 117-145.

48. Поленов А.Л., Онищенко Л.С., Красновская И.А. Морфофункциональный анализ ядерного аппарата нонапептидергических нейросекреторных клеток гипоталамуса позвоночных // Цитология. 1996. Т. 38 (11). С. 28-38.

49. Полякова, Р.Б., Преснухина, Л.П. Сезонные изменения ультраструктуры клеток хвои сосны обыкновенной // Сезонные и структурно-метаболические ритмы и адаптация древесных растений. Уфа: Изд-во БФАН СССР, 1977. С. 87-96.

50. Рожков A.C., Хлиманкова Е.С., Степанчук Е.С. Восстановительные процессы у хвойных при дефолиации. Новосибирск: Наука, Сибирское отд., 1991.

51. Сергеев Л.И., Сергеева К.А., Мельников В.К. Морфофизиологическая периодичность и зимостойкость древесных растений. Уфа: Изд-во БФАН СССР, 1961.222 с.

52. Сергеев, Л.И., Сергеева, К.А. Структурно-метаболические механизмы адаптации древесных растений к неблагоприятным факторам среды // Сезонные структурно-метаболические ритмы и адаптация древесных растений. Уфа: БФАН СССР, 1977. С. 11-36.

53. Сергеева К.А. Физиологические и биохимические основы зимостойкости древесных растений. Москва: Наука, 1971. 176 с.

54. Силаева A.M. Структура хлоропластов и факторы среды. Киев: Наукова думка, 1978. 204 с.

55. Силаева A.M., Силаев A.B. Методы анализа электронно-микроскопических изображений хлоропластов // Физиол. Биохим. Культ. Раст. 1979. Т. 11. N 6. С. 547-562.

56. Скупченко В.Б. Органогенез вегетативных и репродуктивных структур ели. Л.: Наука, 1985. 80 с.

57. Трунова Т.И. Физиология закаливания озимых злаков к морозу низкими положительными температурами // Автореф. дисс ... д.б.н., М. 1979.49 с.

58. Туманов И.И. Физиология закаливания и морозостойкости растений. М.: Наука, 1979. 350 с.

59. Уоринг Ф., Филлипс И. Рост растений и дифференцировка. М.: Мир, 1984.512 с.

60. Ходасевич Э.В. Фотосинтетический аппарат хвойных. Минск: Наука и техника, 1982. 199 с.

61. Холодова, В.Щ Болякина, Ю.П., Бузулукова, Н.Т. Запасающие ткани // Атлас ультраструктуры растительных тканей. Петрозаводск: Карелия, 1980. С. 347-384.

62. Чепик Ф.А. Морфогенез почки сосны обыкновенной // Межвуз. научн. тр.: Лесоводство, лес. культуры, охрана и защита. 1974. Разд.У. Вып.2. С. 155-160.

63. Черноморец М.В. Изменение основных компонентов углеводного комплекса в побегах винограда в связи с их морозостойкостью // Физиол. Раст. 1969. Т. 16 (вып. 3). С. 464-469.

64. Яценко-Хмелевский А.А., Аникушин Н.Ф. Морфологическая адаптация клеток фотосинтезирующей паренхимы сосны к длительным низким температурам // Тез. Всес. Совещ. по Вопр. Адапт. Раст. к экстрем, усл. среды в сев р-нах СССР, Петрозаводск. 1971. С. 67-69.

65. Ames J.H., Tepper Н.В. Seasonal changes in ultrastructure of aspen bark chloroplasts //Photosynthetica. 1978. V. 12 (1). P. 70-72.

66. Anderson J.M., Andersson B. The dynamic photosynthetic membrane and regulation of solar energy conversion // TIBS. 1988. P. 351-355.

67. Bachelard E.P., Wightman F. Biochemical and physiological studies on dormancy release in tree buds. I. Changes in degree of dormancy, respiratory capacity, and major cell constituents in overwintering vegetative buds of Populus balsamifera II Can. J. Bot. 1973. V. 51 (12). P. 2315-2326.

68. Bachelard E.P., Wightman F. Biochemical and physiological studies on dormancy release in tree buds. III. Changes in endogenous growth substances and a possible mechanism of dormancy release in overwintering vegetative buds of Populus balsamifera // Can. J. Bot. 1974. V. 52 (7). P. 1483-1489.

69. Ballantine J.E.M., Forde B.J. Antifreeze proteins in .winter rye //Am. J. Bot. 1970. V. 57(10). P. 1150-1159.

70. Bafión S., Fernández J.A., Ortuño A., Delrío J.A. Ultrastructural changes in the apical meristem of Liatris spicata cv calliopes during dormancy breaking // J. Hort. Sci. 1996. V. 71. P. 777-784.

71. Barnett J.R. Seasonal variation in the ultrastructure of the cambium in New Zealand grownPinus radiata D.Don//Ann. Bot. 1973. V. 37. P. 1005-1011.

72. Barnett J.R. Seasonal variation of organelle numbers in sections of fusiform cambium cells of Pinus radiata D.Don // N. Z. J. Bot. 1975. V. 13. P. 325332.

73. Berggren B. Ultrastructure of the histological zones in growing vegetative buds of Salix spp //Nord. J. Bot. 1984. V. 4 (6). P. 771-789.

74. Berggren B. Ultrastructure of dormant buds of Salix sp. in early winter // Nord. J. Bot. 1985. V. 5 (5). P. 475-488.

75. Berggren B. Structure and cytochemistry of the procambium in Salix buds during dormancy and dormancy breaking // Nord. J. Bot. 1987. V. 7 (2). P. 153-167.

76. Boasson R., Bonner J.J., Laetsch W.M. Induction and regulation of chloroplast replication in mature tobacco leaf tissue // Plant Physiol. 1972. V. 49. P. 97-101.

77. Bouvier-Durand M., Dereuddre J., Come D. Le reticulum endoplasmique dans le méristème radiculaire de l'embryon de Pommier (Pirus malus L.): son évolution pendant la levée de dormance au froid II C. R. Sei. Acad. Sei. Fr. 1981. V. 128(2). P. 91-98.

78. Butterfass Th. Reproduction and continuity of chloroplasts in spermatophytes //Bot. Rev. 1995. V. 61 (1). P. 1-27.

79. Catesson A.-M. Variation saisonnières du chondriome dans le cambium d'Acer pseudoplatanus (Acéracées) II C. R. Sei. Acad. Sei. Fr. 1961. V. 252 (17). P. 2588-2590.

80. Catesson A.-M. Le cycle saisonnièr des cellules cambiales chez quelques feuillus // C. R. Sei. Acad. Sei. Fr. 1981. V. 128 (2). P. 43-51.

81. Cecich R.A. Development of vacuoles and lipid bodies in apical meristems of Pinus banksiana II Am. J. Bot. 1979. V. 66 (8). P. 895-901.

82. Cecich R.A. The histochemistry and ultrastructure of jack pine microsporangia during winter//Am. J. Bot. 1984. V. 71. P. 851-864.

83. Cecich R.A., Horner H.T., Jr. An ultrastructural and microspectrophotometric study of the shoot apex during the initiation of the first leaf in germinating Pinus bansiana II Am. J. Bot. 1977. V. 64 (2). P. 207-222.

84. Cecich R.A., Lersten NR., Mikshce J.P. A cytophotometric study of nucleic acids and proteins in the shoot apex of white spruce // Am. J. Bot. 1972. V. 59 (5). P. 442-449.

85. Chabot J., Chabot В. Developmental and seasonal patterns of mesophyll ultrastructure in Abies balsamea II Can. J. Bot. 1975. V. 53 (3). P. 259-304.

86. Chaly N., Lord A., Lafontaine J.G. Nucleolar organization in the euglenoid Astasia longa as disclosed by selective staining, actinomycin D treatment, and cold shock// Can. J. Bot. 1979. V. 57. P. 2031-2043.

87. Chaly N, Possingham J.V. Structure of constricted proplastids in meristematic plant tissues // Biol. Cell. 1981. V. 41. P. 203-210.

88. Chaly N.M., Setterfield G. Organization of the nucleus, nucleolus, and protein-synthesizing apparatus in relation to cell development in roots of Pisum sativum II Can. J. Bot. 1975. V. 53. P. 200-218.

89. Champagnat P. Quelques réflexions sur la dormance des bourgeons des végétaux ligneux // Physiol. Veg. 1983. V. 21 (3). P. 607-618.

90. Chen P., Li P.H., Cunningham W.P. Ultrastructural differences in leaf cells of some Solanum species in relation to their frost resistance // Intern. J. Plant Sci. 1977. V. 138(3). P. 276-285.

91. Cottignies A. The blockage in the G1 phase of the cell cycle in the dormant shoot apex of ash//Planta. 1979. V. 147 (3). P. 15-19.

92. Cottignies A. Arrêt saisonnièr de la pré-synthèse de TADN en un point de restriction (Go, R) // C. R. Sci. Acad. Sci. Fr. 1981. V. 128 (2). P. 53-60.

93. Cragg F.J., Willison J.H.M. The ultrastructure of quiescent buds of Tilia europaea II Can. J. Bot. 1980. V. 58 (16). P. 1832-1843.

94. Deltour R., Mosen H. Proposal for the macromolecular organization of the higher plant nucleolonema // Biol. Cell. 1987. V. 60. P. 75-86.

95. Dereuddre J. Sur la présence, en hiver, de groupes de saccules appartenant au reticulum endoplasmique dans les méristèmes apicaux et les ébauches foliaires de bourgeons d'arbres // J. Microscopie. 1972. V. 14 (2). P. 35a.

96. Dereuddre J. Effets de deux types de refroidissements sur Mtrastructure des ébauches foliaires du Picea abies. I. Étude après fixation chimique // Can. J. Bot. 1980. V. 58 (16). P. 1832-1843.

97. Dereuddre J. Effets d'un traitement à 5oC sur l'organisation du réticulum I; endoplasmique dans les ébauches foliaires des bourgeons de Pirus malus L II

| C. R. Sci. Acad. Sci. Fr. 1981. V. 128 (2). P. 83-89.

î 98. Donnelly J.R. Seasonal changes in photosynthate transport within elongation

shoots of Populus grandidentata II Can. J. Bot. 1974. V. 52 (12). P. 25472559.

99. Duckett J.G., Ligrone R. Plastid-dividing rings in ferns // Ann. Bot. 1993. V. 72 (6). P. 619-627.

100. Ericsson A. Seasonal changes in translocation of 14C from different age-classes of needles on 20-year-old Scots pine trees (Pinus sylvestris) //

j Physiol. Plant. 1978. V. 43. P. 351-358.

\ j :

]■ 101. Esau K. Apparent temporary chloroplast fusions "in leaf cells of Mimosa

[ pudica IIZ. Pflanzenphysiol. 1972. V. 67. P. 244-254.

r *

| 102. Farrar J.J.., Evert R.F. Seasonal changes in the ultrastructure of the vascular

cambium of Robinia pseudoacacia // Trees-Structure & Function. 1997. V. 11. P. 191-202.

103. Felker F.C., Robitaille H.A., Hess F.D. Morphological and ultrastructural development and starch accumulation during chilling of sour cherry flower buds // Am. J. Bot. 1983. V. 70. P. 376-386.

104. Figueiredo-Ribeiro R.L., Isejima E.M., Dietrich S.M.C., Carrea J.B.C. ; Hemicellulosic polysaccharides from the xylopodium of Ocimum

I '

| nudicaule: changes in composition in dormancy arid sprouting // Ann. Bot.

i 1992. V. 70 (5). P. 405-408.

105. Fry D., Phillips J. Photosynthesis of conifers in relation to annual growth cycles and dry matter production. II. Seasonal photosynthetic capacity and mesophyll ultrastructure in Abies grandis, Picea sitchensis, Tsuga geterophylla and Larix leptolepis growing in S.W.England // Physiol. Plant. 1977. V. 40 (4). P. 300-306.

106. Fujikawa S., Takabe K. Formation of multiplex lamellae by equilibrium ; slow freezing of cortical parenchyma cells of mulberry and its possible

j. relationship to freezing tolerance // Protoplasma. 1996. V. 190. P. 189-203.

i. •

v ■ ' Ï t ■ f

J

*

107. Fujikawa S., Kuroda K., Ohtani J. Seasonal changes in dehydration tolerance of xylem ray parenchyma cells of Stylax obassia twigs that survive freezing temperatures by deep supercooling // Protoplasma. 1997. V. 197. P. 34-44.

108. Gazeau C.M. Influence de la température et de la durée d'un traitement cryoprotecteur sur la résistance au froid de plantules de Blé. Étude ultrastructurale des ébauches foliaires // Can. J. Bot. 1983. V. 61 (4). P. 1025-1039.

109. Giménez-Martín G., De La Torre C., López-Sáez J.F., Esponda P. Plant nucleolus: structure and physiology // Cytobiologie. 1977. V. 14 (2). P. 421462.

110. Gusta L.V., Weiser C.J. Nucleic acid and protein changes in relation to cold acclimation and freezing injury of Korean boxwood leaves // Physiol. Plant. 1972. V. 100. P. 327-332.

111. Guy C.L. Cold acclimation and freezing stress tolerance: role of protein metabolism // Annu. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol. 1990. V. 41. P. 187-223.

112. Harris W.M. Ultrastructural observation on the mesophyll cells of pine leaves//Can. J. Bot. 1971. V. 49. P. 1107-1109.

113. Hashimoto H. Involvement of actin filaments in chloroplast division of the alga Closterium chrenbergii I ! Protoplasma. 1992. V. 167. P. 88-96.

114. Hohtola A., Kupila-Ahvenniemi S., Ohtonen R. Seasonal changes in the cytoplasmic structures of sporogenous cells of the Scotch pine // Ann. Bot. Fenmci. 1984. V. 21. P. 143-149.

115. Holopainen J.K., Holopainen T. Cellular responses of Scots pine {Pinus sylvestris) seedlings to simulated summer frost // Eur. J. For. Path. 1988. V. 18. P. 207-216.

116. Hoss S., Wernicke W. Microtubules and the establishment of apparent cell wall invaginations in mesophyll cells of Pinus silvestris L. // J. Plant Physiol. 1995. V. 147. P. 474-476.

117. Hudalc G., Salai G. Seasonal changes in chloroplast structure in mesophyll cells of Prunus laurocerasus L I I Photosynthetica. 1990. V. 24 (1). P. 168172.

118.Jennane A., Landre P., Nougarede A. Nucleolus activation in pea cotyledonary buds during 24 hours after decapitation of the main stem: cytochemical studies //Protoplasma. 1987. V. 136 (1). P. 29-36.

119. Jian L.C., Li P.H., Sun L.H., Chen T.H.H. Alterations in ultrastructure and subcellular localization of Ca2+ in poplar apical bud cells during the induction of dormancy //J. Experim. Bot. 1997. V. 48 (311). P. 1195-1207.

120. Kidwai P., Robards A.W. On the ultrastructure of resting cambium of Fagus sylvatica L. // Planta. 1969. V. 89 (4). P. 361-368.

121. Kimball S.L., Salisbury F.B. Ultrastructural changes of plants exposed to low temperatures //Am. J. Bot. 1973. V. 60 (10). P. 1028-1033.

122. Klein S., Pollock B.M. Cell fine structure of developing lima bean seeds related to seed desiccation //Am. J. Bot. 1968. V. 55 (6). P. 658-672.

123. Kozlowski T.T. Carbohydrate sources and sinks in woody plants // Bot. Rev. 1992. V. 58(2).

124. Krasowski M.J., Owens J.N. Seasonal changes in the apical zonation and ultrastructure of coastal douglas fir seedlings (Pseudotsuga menziesii) // Am. J. Bot. 1990. V. 77 (2). P. 245-260.

125. Kupila-Ahvenniemi S. Effect of changes in the environment on the ribosome assembly in the buds of Scotch pine // Aquilo (Ser. Bot. ). 1985. V. 23. P. 17-22.

126. Kupila-Ahvenniemi S., Hohtola A. Structure of the nucleoli of developing microsporangiate strobili and root tips of Scotch pine // Protoplasma. 1979. V. 100(3-4). P. 289-301.

127. Kupila-Ahvenniemi S., Hohtola A. Nucleoli of the overwintering strobilal cells of Scotch pine//Protoplasma. 1980. V. 105 (1-2). P. 107-119.

128. Kupila-Ahvenniemi S., Hohtola A. Nuclear membranes and inclusions in overwintering sporogenous cells of Scotch pine // Hereditas. 1981. V. 94 (2). P. 149-152.

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ 141

: I ---

j:

1

j 129. Kupila-Ahvenniemi S., Pihakaski S., Pihakaski K. Wintertime changes in

the ultrastructure and metabolism of the microsporangiate strobili of the Scotch pine // Planta. 1978. V. 144. P. 19-29.

130. Kuroda H., Sagisaka S. Ultrastructural changes in cortical cells of apple (Malus pumila Mill.) associated with cold hardiness // Plant Cell Physiol. 1993. V. 34(2). P. 357-365. = 131. Kuroda H., Sagisaka S., Asada M., Chiba K. Peroxide-scavenging systems

j during cold acclimation of apple callus in culture // Plant Cell Physiol.

| 1991. V. 32(5). P. 635-641.

f 132. Kuroiwa T. The nuclei of cellular organelles and the formation of daughter

t

! organelles by the "plastid-dividing ring" // Bot. Mag. 1989. V. 102. P. 291-

329.

133. Leech R.M., Thomson W.W., Platt-Aloia K.A.- Observation on the mechanism of chloroplast division in higher plants // New Phytol. 1981. V. 87(1). P. 1-9.

134. Lewis F.G., Tuttle G.M. Osmotic properties of some plant cells at low temperatures //Ann. Bot. 1920. V. 34 (3). P. 405-416.

i 135. Lynch D.V., Rivera E.R. Ultrastructure of cells in the overwintering

1 dormant shoot apex of Rhododendron maximum L. // Intern. J. Plant Sci.

I 1981. V. 142(1). P. 63-72.

j 136. Lloyd A.D., Mellerowicz E.J., Riding R.T., Little C.H.A. Changes in

nuclear genome size and relative ribosomal RNA gene content in cambial region cells of Abies balsamea shoots during the development of dormancy // Can. J. Bot. 1996. V. 74. P. 290-298.

137. Maenpaa P., Andersson В., Sundby C. Difference in sensitivity to photoinhibition between photosystem II and appressed and non-appressed thylakoid regions //FEBS Lett. 1987. V. 215 (1). P. 31-36.

! , t

[j: 138. Maenpaa P., Aro E.-M., Somersalo S., Tyystjarvi E. Rearrangement of the

chloroplast thylakoid at chilling temperature in the light // Plant Physiol, j 1988. V. 87. P. 762-766.

139. Martin В., Martensson O., Oquist G. Effects of frost hardening and dehardening on photosynthetic electron transport and fluorescence

properties in isolated chloroplasts of Pinus silvestris II Physiol. Plant. 1978. V. 43. P. 297-305.

140. Martin B., Oquist G. Seasonal and experimentally induced changes in the

1

| ultrastructure of chloroplasts of Pinus silvestris II Plant Physiol. 1979. V. 46

| (1). P. 42-49.

!

¡ 141. Mellerowicz E.J., Riding R.T., Little C.H.A. Nuclear size and shape

changes in fusiform cambial cells of Abies balsamea during the annual cycle of activity and dormancy // Can. J. Bot. 1990. V. 68 (9). P. 18571863.

142. Mellerowicz E.J., Riding R.T., Little C.H.A. Cambial activity and dormancy in Abies balsamea is correlated with changes in nucleolar size and number // Am. J. Bot. 1992. V. 79(6). P. 41. :j 143. Mellerowicz E.J., Riding R.T., Little C.H.A. Nucleolar activity in the

I fusiform cambial cells of Abies balsamea (Pinaceae): effect of season and

| age//Am. J. Bot. 1993. V. 80(10). P. 1168-1174.

| 144. Mia A.J. Fine structure of active, dormant and aging cambial cells in Tilia

americana //Wood Science. 1970. V. 3 (1). P. 34-42.

145. Miroslavov E.A., Kravkina I.M. Comparative analysis of chloroplasts and mitochondria in leaf chlorenchyma from mountain plants grown at different altitudes // Ann. Bot. 1991. V. 68. P. 195-200.

146. Modrusan Z., Wrischer M. Seasonal changes in chloroplasts of blackberry leaves //Acta Bot. Croat. 1987. V. 46. P. 23-31.

j 147. Morcillo G., ., Krimer D.B., De La Torre C. Modification of nucleolar

| components by growth temperature in meristems It Exp. Cell Res. 1978. V.

! 115. P. 95-102.

' 148. Moreno F.J., Rodrigo R.M., Gracia-Navarro F., Garcia-Herdugo G.

Nucleolar component behavior in plant cells under different physiological conditions. A morphological, cytochemical and quantitative study // Biol. Cell. 1989. V. 65(1). P. 67-74.

149. Mousdale D.M. Seasonal variation and metabolism of abscisic acid in shoot bark and lateral buds of apple (Malus domestica Borkh.) // Biochem.

I Physiol. Pflanzen. 1983. V. 178. P. 503-510.

i

I :\ it'- ■

I

; - E

150. Murmanis L. Structural changes in the vascular cambium of Pinus strobus during annual cycle //Ann. Bot. 1971. V. 35. P. 133-141.

151. Nagle W. Nuclear ultrastructure: condensed chromatin in plant is species-specific (kariotypical), but not tissue-specific (functional) // Protoplasma. 1979. V. 100 (1).P. 53-71.

152. Nelson E.A., Dickson R.E. Accumulation of food reserves in cottonwood stems during dormancy induction // Can. J. Forest Res. 1981. V. 11. P. 14554.

153. Niki T., Sakai A. Ultrastructural changes related to frost hardiness in the cortical parenchyma cell from mulberry twigs // Plant Cell Physiol. 1981. V. 22(2). P. 171-183.

154. Nisyawati, Miyake H., Taniguchi T. Ultrastructural changes of chloroplasts in peanut mesophyll protoplasts treated with electric fields // Jap. J. Crop Sei. 1995. V. 64. P. 131-138.

155. Nougarède A. Infrastructure des axillaires cotylédonaires du Pisum sativum L. (Var. nain hâtif d'Annonay) durant le blocage en phase Gl (état inhibé) et après la reprise d'activité // C. R. Acad. Sc. Fr. 1977. T. 284. P. 25-28.

156. Nougarède A., Silveira CE., Rondet P. In nature dormant buds and in vitro dormant-like buds of Fraxinus excelsior L. // Protoplasma. 1996. V. 190. P. 16-24.

157. Nougarède A., Tepfer S., Tepfer M. Les bourgeons au cours de l'état perennant chez le Phytolacca decandra L. Modalités de conservation du plant durant l'hiver et reprise de l'activité printanière // C. R. Sei. Acad: Sei. Fr. 1973. V. 276. P. 957-960.

158. Park Y.I., Chow W.S., Anderson J.M. Chloroplast movement in the shade plant Tradescantia albiflora helps protect photosystem II against light stress // Plant Physiol. 1996. V. 111. P. 867-875.

159. Parker J. Changes in sugars and nitrogenous compounds of tree barks from summer to winter//Naturwissenschaften. 1958. V. 45 (6). P. 139-146.

160. Parker J., Philpott D.E. An electron microscopic study of chloroplast condition in summer and winter in Pinus strobus // Protoplasma. 1961. V. 53 (4). P. 575-583.

I 161. Parker J.S., Philpott D.E. Seasonal continuity of chloroplasts in white pine

and rhododendron // Protoplasma. 1963. V. 56 (2). P.:355-361.

162. Perry T.O. Dormancy of trees in winter // Science. 1971. V. 171 (3966). P. 29-36.

163. Pihakaski S. Seasonal changes in structure of mesophyll cells in subarctic Diapensia lapponica L. // Rep. Kevo Subarctic Res. Stat. 1981. V. 17. P. 67-80.

; 164. Pihakaski S. Quantitative seasonal variation in mitochondrial ultrastructure

| of mesophyll cells of Diapensia lapponica L. with reference to some effects

| of fixative osmolality//Protoplasma. 1986. V. 131. P. 107-117.

I 165. Pihakaski K. Seasonal changes in the chloroplast ultrastructure of

Diapensia lapponica II Nord. J. Bot. 1988. V. 8 (4). P. 361-367.

166. Pihakaski K., Luotola J. Seasonal changes in mitochondria of mesophyll cells of an evergreen plant // J. Ultrastr. Res. 1982. V. 81 (3). P. 378-383.

167. Pihakaski K., Pihakaski S., Karunen P., Kallio P. Seasonal changes in leaf lipids of Diapensia lapponica, with special reference to storage lipid bodies //Nord. J. Bot. 1987. V. 7 (3). P. 281-292.

! 168. Podbielkowska M., Zarska-Maciejewska B. Morphology of protoplast as

affected by an inhibition of respiration // Protoplasma. 1975. V. 83 (3). P. 201-208.

j 169. Pomeroy M.K. Ultrastructural changes during swelling and contraction of

mitochondria from cold-hardened and nonhardened winter wheat // Plant Physiol. 1977. V. 59. P. 250-255.

170. Pomeroy M.K., Andrews C.J. Effect of temperature on respiration of mitochondria and shoot segments from cold-hardened and nonhardened wheat and rye seedlings // Plant Physiol. 1975. V. 56. P. 703-706. | 171. Pomeroy M.K., Andrews C.J. Metabolic and ultrastructural changes in

j winter wheat during ice encasement under field conditions // Plant Physiol.

I: j'

j 1978a. V. 61. P. 806-811.

i •■ f :

| 172. Pomeroy M.K., Andrews C.J. Ultrastructural changes in shoot apex cells of

winter wheat seedlings during ice encasement // Can. J. Bot. 1978b. V. 56 (7). P. 786-794.

j 173. Pomeroy M.K., Siminovitch D. Seasonal cytological changes in secondary

j; phloem parenchyma cells in Robinia pseudoacacia in relation to cold

j. hardiness // Can. J. Bot. 1971. V. 49 (5). P. 787-795.

; ( :

j 174. Possingham J.V., Lawrence M.E. Control to plastid division // Int. Rev.

Cytol. 1983. V. 84. P. 1-56.

175. Pyke K.A., Leech R.M. A genetic analysis of chloroplast division and expansion in Arabidopsis thaliana II PI. Physiol. (Lancaster). 1994. V. 104. P. 201-207.

176. Rao K.S., Catesson A.-M. Changes in the membrane components of ;{ nondividmg cambial cells II Can. J. Bot. 1987. V. 65 (2). P. 246-254.

I 177. Rao K.S., Dave Y.S. Seasonal histochemical changes in the cambium of

!! ■: ■

| Tectona grandis L.f. and Gmelina arborea Roxb. //Biol. Plant. 1983. V. 25.

| P. 241-245.

178. Ristic Z., Ashworth E.N. Response of xylem ray parenchyma cells of red osier dogwood {Cornus sericea L.) to field freezing stress, and to freeze-thaw cycle//J. Plant Physiol. 1996. V. 149. P. 735-745.

179. Robards A.W., Kidwai P. A comparative study of the ultrastructure of resting and active cambium of Salix fragilis L. 11 Planta. 1969. V. 84 (3). P. 239-249.

j 180. Romberger J.A. Meristems, growth and development in woody plants //

I, Technical Bull. 1963. V. 1293.

| 181. Rose R.J. Changes in nucleolar activity during the growth and development

i»:'- 1

| of the wheat coleoptile // Protoplasma. 1974. V. 79. P. 127-143.

182. Rutter A.G. Studies in the growth of young plants of Pinus sylvestris L. I. The annual cycle of assimilation and growth //Ann. Bot. 1957. V. 21 (83). P. 399-425.

183. Sacher J.A. Structure and seasonal activity of the shoot apices of Pinus lambertiana and P. ponderosa II Am. J. Bot. 1954. V. 41 (9). P. 749-759.

184. Sagisaka S. Occurrence of unidentified bodies that resemble "plastid f initials" in poplar cells after breaking of dormancy in midwinter // Trees, lli/ 1991. V. 5. P. 143-148.

185. Sagisaka S. A cold environment is prerequisite for formation of "plastid initials" in winter buds of poplar // Plant Physiol. 1992. V. 99. P. 1657; 1663.

I 186. Sagisaka S., Araki T. Amino acid pools in perennial plants at the wintering

| stage and at the beginning of growth // Plant Cell Physiol. 1983. V. 24 (3).

| P. 479-494.

187. Sagisaka S., Asada M. Coordinate and noncoordinate changes in enzyme activities in pentose phosphate cycle in poplar: a control of enzyme activities in differentiated xylem // Plant Cell Physiol. 1981. V. 22 (8). P. 1459-1468.

188. Sagisaka S., Kuroda H. Changes in the ultrastructure of plastids after breaking of dormancy in perennials // Bioscien. Biotech. Biochem. 1991. V.

} 55 (6). P. 1671-1673.

y.

j 189. Sagisaka S., Asada M., Ahn Y.H. Ultrastructure, of poplar cortical cells

| during the transition from growing to wintering stages and vice versa II

| Trees. 1990. V. 4. P. 120-127.

190. Sagisaka S., Asada M., Kuroda H. Dormancy breaking is followed by mitochondria proliferation in poplar and apple trees in milieu of midwinter // Plant Cell Physiol. 1989. V. 30 (1). P. 79-84.

191. Salcai A. Relation of carbohydrate and water soluble protein to frostresistance m tree // Low Temp. Sci. Ser. B. 1957. V. 15. P. 17-29.

i 192. Salaj J. Structural changes in the mesophyll cells of needles of mature

i individuals of norway spruce (Picea abies (L.) Karst.) during winter I I Folia

|' Dendrol. 1990. V. 17. P. 357-368.

| 193. Sauter J.J., Wisniewski M., Witt W. Interrelationships between

I

; ultrastructure, sugar levels, and frost hardiness of ray parenchyma cells

i

I during frost acclimation and deacclimation in poplar (Populus x canadensis

moench [robusta]) wood // J. Plant Physiol. 1996. V. 149. P. 451-461.

194. Sennerby-Forsse L. Seasonal variation in structure and function of the vascular cambium and characteristics of the wood in Salix. Stokholm: Dissertation, 1987.

f.

195. Senser М., Beck Е. Frost resistance in spruce Picea abies (L.) Karst. IV: The lipid composition of frost sensitive spruce chloroplast // Intern. J. Plant Physiol. 1982. V. 105 (3). P. 241-255.

196. Senser M., Beck E. Correlation of chloroplast ultrastructure and membrane lipid composition to the different degrees of frost resistance achieved in leaves of spinach, ivy and spruce // J. Plant Physiol. 1984. V. 117 (1). P. 4155.

197. Senser M., Schotz F., Beck E. Seasonal changes in structure and function of spruce chloroplast // Planta. 1975. V. 126. P. 1-10.

198. Shaw P.J., Jordan E.G. The nucleolus // Ann. Rev. Cell Develop. Biol. 1995. V. 11. P. 93-121.

199. Siminovitch D. Evidence from increase in ribonucleic acid and protein synthesis in autumn increase in protoplasm during the frost-hardening of black locust bark cells // Can. J. Bot. 1963. V. 41 (6). P. 1301-1308.

200. Siminovitch D. Common and disparate elements in the processes of adaptation of herbaceous and woody plants to freezing, a perspective // Cryobiology. 1981. V. 18 (2). P. 166-185.

201. Siminovitch D., Resume В., Sachar R. Seasonal increasing in protoplasm and metabolic capacity in tree cells during adaptation to freezing // Molecular mechanisms to temperature adaptation. 1967. Washington: Am. Assoc. Adv. Sci. P. 3-40.

202. Siminovitch D., Singh J., Rocho I.A. Processes of frost hardening in the black locust tree // Abstr. of the papers, presented at the XII IBC. V. 2. 1975. P. 475. .

203. Soikkeli S. Seasonal changes in mesophyll ultrastructure of needles of Norway spruce {Picea abies) // Can. J. Bot. 1978. V. 56 (16). P. 1932-1940.

204. Soikkeli S. Ultrastructure of the mesophyll in Scots pine and Norway spruce seasonal variation and molarity of the fixative buffer // Protoplasma. 1980. V. 103. P. 241-252.

205. Szujko-Lacza J., Rakovan J.N, Fekete G., Horvath G. Anatomical, ultrastructural and physiological studies on the primary cortex of Euonymus

j список литературы ч 148

i

I г

(

I europaeus L. displaying photosynthetic activity. II. Seasonal changes //

I Acta Agron. Acad. Sei. Hung. 1972. V. 21 (1-2). P. 41-56.

206. Tepfer S.S., Nougarède A., Rondet P. Seasonal studies of vegetative buds of Helianthus tuberosus: concentration of nuclei in phase Gl during winter dormancy // Can. J. Bot. 1981. V. 59 (10). P. 1918-1927.

207. Tewinkel ML, Volkmann D. Observation on dividing plastids in the protonema of the moss Funaria hygrometrica Sibth. Arrangement of

; microtubules and filaments // Planta. 1987. V. 172 (3). P. 309-320.

j 208. Tort H., Lagarde J. Etudes ultrastructurales chez le Crosne du Japon cultivé

j en conditions contrôlées // C. R. Sei. Acad. Sei. Fr. 1981. V. 128. P. 99-109.

t . '

I 209. Vintéjoux С., Dereuddre J. Etude de quelques aspects de l'alternance

s saisonnière, chez les Végétaux // C. R. Sei. Acad. Sei. Fr. 1981. V. 128 (2).

: р. 7-21.

210. Walles В., Nyman В., Alden T. On the ultrastructure of needles of P. sylvestris L. // Stidia Forestalia Suecica. 1973. V. 106. P. 4-26.

211. Welling A., Kaikuranta P., Rinne P. Photoperiodic induction of dormancy and freezing tolerance in Betula pubescens - involvement of ABA and dehydrins//Physiol. Plant. 1997. V. 100. P. 119-125.

j 212. Wisniewski M.E., Ashworth E.N. Changes in the ultrastructure of xylem

j parenchyma cells of peach (.Prunus persica) and red oak (Quercus rubra) in

I response to a freezing stress //Am. J. Bot. 1985. V. 72. P. 1364-1376.