Селективный анализ кортикостероидных гормонов с помощью микроколоночной высокоэффективной жидкостной хроматографии тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.00.04, кандидат биологических наук Черкасова, Ольга Павловна

• Черкасова, Ольга Павловна
• кандидат биологических наук
• 1999

Оглавление диссертации кандидат биологических наук Черкасова, Ольга Павловна

ОГЛАВЛЕНИЕ

ВВЕДЕНИЕ

ГЛАВА 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

1.1. Биосинтез стероидных гормонов

1.2. Методы анализа кортикостероидых гормонов

1.2.1. Традиционные методы анализа

1.2.2. Хроматографические методы

1.2.3. Микроколоночная хроматография

1.3. Методы выделения кортикостероидных гормонов из биологических

образцов

1.3.1. Экстракция органическими растворителями

1.3.2. Твердофазная экстракция

1.3.3. Обработка надпочечников

1.4. Содержание кортикостероидных гормонов в крови и надпочечниках в

интактном состоянии и при различных воздействиях

1.4.1. Содержание кортикостероидных гормонов в отдельных надпочечниках (асимметрия надпочечников по массе и продукции гормонов)

1.4.2. Содержание кортикостероидных гормонов в надпочечниках животных при различных воздействиях

1.5. Постановка задачи исследования

ГЛАВА 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ

2.1. Схема эксперимента

2.2. Взятие анализируемого материала

2.3. Реактивы

2.4. Условия хроматографирования

2.5. Набивка хроматографических колонок

2.6. Вычисление площадей хроматографических пиков

2.7. Измерение времен удерживания

ГЛАВА 3. РЕЗУЛЬТАТЫ И ОБСУЖДЕНИЕ

3.1. Разработка методики селективного определения кортикостероидных гормонов в плазме крови и ткани надпочечника человека и животных

3.1.1. Подбор условий хроматографического разделения

3.1.2. Экстракция кортикостероидных гормонов из сыворотки крови человека

60

3.1.3. Определение кортикостероидных гормонов в плазме крови крыс

3.1.4. Определение кортикостероидных гормонов в ткани надпочечника

3.1.5. Обсуждение

3.2. Исследование содержания кортикостероидных гормонов в плазме крови и

ткани надпочечника у крыс в интактном состоянии и при хроническом воздействии

3.2.1. Концентрация кортикостерона и 11-дегидрокортикостерона в плазме крови крыс первой группы

3.2.2. Содержание кортикостероидных гормонов в надпочечниках животных первой группы

3.2.3. Масса левого и правого надпочечника у крыс первой группы

3.2.4. Обсуждение

3.3. Исследование содержания кортикостероидных гормонов в плазме крови и

ткани надпочечника у крыс, подвергнутых острому воздействию

3.3.1. Концентрация кортикостерона и 11-дегидрокортикостерона в плазме крови животных второй группы

3.3.2. Содержание кортикостероидных гормонов в надпочечниках крыс второй группы, подвергнутых острому оперативному вмешательству

3.3.3. Масса левого и правого надпочечника контрольных и подопытных животных второй группы при оперативном вмешательстве

3.3.4. Обсуждение 105 3.4. Исследование содержания кортикостероидных гормонов в плазме крови и

надпочечниках крыс через 6 месяцев после отмены хронического воздействия

3.4.1. Содержание кортикостерона и 11-дегидрокортикостерона в плазме крови крыс третьей группы

3.4.2. Содержание кортикостероидных гормонов в надпочечниках животных третьей группы

3.4.3. Масса левого и правого надпочечника контрольных и подопытных животных третьей группы

3.4.4. Обсуждение 119 ВЫВОДЫ 124 СПИСОК ЦИТИРУЕМОЙ ЛИТЕРАТУРЫ

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Селективный анализ кортикостероидных гормонов с помощью микроколоночной высокоэффективной жидкостной хроматографии»

ВВЕДЕНИЕ

Актуальность исследования

Кортикостероидные гормоны играют важную роль во всех процессах, происходящих в организме. От уровня функционирования гипоталамо-гипофизарно-надпочечниковой системы зависит существование самого организма. Поэтому своевременная и достоверная информация о функционировании надпочечников, о концентрации кортикостероидных гормонов в крови имеет большое научное и практическое значение.

Существует целый ряд хорошо известных и широко используемых в научной и медицинской практике методов анализа кортикостероидных гормонов. Среди них флюориметрические методы, радиоиммунный анализ и метод конкурентного белкового связывания. Все перечисленные методы анализа кортикостероидных гормонов недостаточно селективны, так как определяют суммарное значение целого ряда близких по структуре и функциям гормонов, что находит свое отражение в искажении результатов анализа как в научной, так и в клинической практике. Кроме того, существенным недостатком для всех перечисленных методов является то, что за одну процедуру определения упомянутые выше методы дают один показатель, для определения целого ряда гормонов необходимо большое количество крови, дополнительные временные и материальные затраты.

Наиболее селективными являются хроматографические методы анализа. Тонкослойная хроматография обладает низкой чувствительностью - около 100 нг на одно определение и требует большого количества крови или надпочечников от нескольких лабораторных животных. Анализ кортикостероидных гормонов газовой хроматографией требует получения летучих производных и проведения реакций дериватизации. Сложности возникают из-за того, что СП-боковая цепь является термически

неустойчивой и претерпевает деградацию при используемых повышенных температурах. Необходимость тщательной очистки гормонов, получение летучих производных, высокие требования к чистоте реактивов и дороговизна приборов ограничивают распространение методов газовой хроматографии как в научных, так и в клинических лабораториях.

Многие исследователи считают методы газовой хроматографии громоздкими и недостаточно точными и отдают предпочтение высокоэффективной жидкостной хроматографии, которая, используя те же закономерности разделения веществ, что и газовая, позволила существенно упростить пробоподготовку. Методы высокоэффективной жидкостной хроматографии лишены недостатков, характерных для всех упомянутых выше методов, не требуют, в большинстве случаев, реакций дериватизации, трудоемкой пробоподготовки.

В традиционной высокоэффективной жидкостной хроматографии используют аналитические хроматографические колонки длиной 250 мм и диаметром 4,6 мм и анализируют в крови человека, в основном кортизол, иногда кортизол и кортизон, а в крови крыс только кортикостерон.

Создание метода микроколоночной высокоэффективной жидкостной хроматографии открывает новые перспективы в количественном определении гормонов. Метод характеризуется высокой чувствительностью, селективностью и точностью анализа, оперативностью, что особенно важно в клинической практике. Одновременное уменьшение диаметра хроматографической колонки и ее длины привело к увеличению чувствительности в несколько раз по сравнению с традиционными методами высокоэффективной жидкостной хроматографии, снизило расход дорогостоящих сорбентов и растворителей. Поскольку прямое перенесение и воспроизведение условий хроматографии и обработки проб, описанных в литературе для традиционной высокоэффективной жидкостной хроматографии, невозможно для микроколоночной хроматографии, ее

развитие повлекло за собой необходимость создания адекватных методов определения кортикостероидных гормонов, которые, используя преимущества данного вида хроматографии, позволили бы одновременно в одной пробе определять целый спектр кортикостероидных гормонов и их метаболитов, что не позволяют сделать существующие методы анализа.

В связи с этим, цель работы состояла в разработке методики селективного определения кортикостероидных гормонов в биологических образцах с помощью микроколоночной высокоэффективной жидкостной хроматографии и ее применении в экспериментальных исследованиях.

Для достижения цели были поставлены следующие задачи:

1) Подобрать оптимальные условия хроматографирования и подготовки проб для количественного определения кортикостероидных гормонов в биологических жидкостях и тканях методом микроколоночной высокоэффективной жидкостной хроматографии.

2) Исследовать содержание кортикостероидных гормонов в крови и надпочечниках у крыс в интактном состоянии, при лапаротомии, потреблении безотрубевой диеты и при различном возрасте.

Научная новизна

Методика определения кортикостероидных гормонов в крови и надпочечниках человека и лабораторных животных с помощью микроколоночной высокоэффективной жидкостной хроматографии позволяет в одной пробе одновременно определять все классы кортикостероидных гормонов, секретируемых корой надпочечников: глюкокортикоиды, минералокортикоиды и андрогены. Селективность данной методики такова, что наиболее распространенные в гормональной кортикостероидной терапии препараты (дексаметазон и преднизолон) не влияют на определение эндогенных стероидных гормонов.

Получены оригинальные данные по содержанию кортикостерона и 11-дегидрокортикостерона в плазме крови крыс в интактных условиях, при лапаротомии и при различном возрасте .

Предложен оригинальный способ обработки надпочечников, благодаря которому в одном надпочечнике крысы одновременно можно определить альдостерон, дезоксикортикостерон, кортикостерон и 11-дегидрокортикостерон.

Прослежена динамика изменений глюко- и минералокортикоидной функции надпочечников у животных различного возраста и при лапаротомии.

Показана асимметрия надпочечников крыс по содержанию альдостерона, дезоксикортикостерона, кортикостерона и 11-дегидрокортикостерона, а также изменение характера асимметрии при различных воздействиях.

Показано влияние безотрубевой диеты на концентрации кортикостерона и 11-дегидрокортикостерона в плазме крови, а также содержание альдостерона, дезоксикортикостерона, кортикостерона и 11-дегидрокортикостерона в надпочечниках крыс.

Практическая ценность работы

Методика позволяет в одной пробе крови человека и животных оперативно определять концентрации целого ряда жизненно важных кортикостероидных гормонов, что имеет большое научное и практическое значение для биологии и медицины. Данная методика также позволяет определять содержание кортикостероидных гормонов в ткани надпочечниках, что имеет значение для дифференциальной диагностики.

При разработке диет и внедрении различных пищевых добавок в рацион человека и животных необходимо учитывать баланс глюкокортикоидной и минералокортикоидной функций надпочечников.

Внедрение результатов работы

Метод определения кортикостероидных гормонов в крови человека утвержден Министерством здравоохранения СССР в качестве методической рекомендации для клинического применения (решение № 10-11/37 от 01.04.91) и внедрен в ряде лечебно-профилактических и научно-исследовательских учреждений СНГ.

Основные положения, выносимые на защиту

1. Методика определения кортикостероидных гормонов с помощью микроколоночной высокоэффективной жидкостной хроматографии дает преимущества по сравнению с традиционной высокоэффективной жидкостной хроматографией в достижении более высокой селективности и чувствительности.

2. Существует асимметрия надпочечников по содержанию альдостерона, дезоксикортикостерона, кортикостерона и 11 -дегидрокортикостерона. Характер асимметрии изменяется при различных воздействиях.

3. Безотрубевая диета вызывает активизацию коры надпочечников и изменение характера асимметрии.

Апробация работы

Материалы диссертации обсуждены:

-на IV Всесоюзном симпозиуме по молекулярной жидкостной хроматографии (Алма-Ата, 1987г.)

-на 2-й международной конференции студентов и молодых ученых "Актуальные вопросы современной медицины" (Бишкек, 1995 г.)

-на международной конференции, посвященной 75-летию со дня рождения профессора М.Г.Колпакова "Эндокринные механизмы регуляции функций в норме и патологии" (Новосибирск, 1997 г.)

-на международной научно-практической конференции "Природные минералы на службе человека (минеральная среда и жизнь)" (Новосибирск, 1997 г.)

-на международном симпозиуме "Итоги и перспективы развития современной медицины в контексте XXI века" (Бишкек, 1998 г.)

-на 1-й международной конференции "Педагогические и медицинские проблемы валеологии" (Новосибирск, 1999 г.)

Публикации. По теме диссертации опубликовано 13 работ.

Структура и объем работы

Диссертация состоит из введения, обзора литературы (гл.1), описания материалов и методов исследования (гл.2), изложения результатов собственных исследований и их обсуждение (гл.З), выводов и списка цитируемой литературы. Материал диссертации изложен на 144 страницах машинописного текста, включая 22 таблицы и 18 рисунков. Список использованной литературы насчитывает 204 названий работ, из них 160 иностранных.

Заключение диссертации по теме «Биохимия», Черкасова, Ольга Павловна

124 ВЫВОДЫ

1. Методика определения кортикостероидных гормонов с помощью микроколоночной высокоэффективной жидкостной хроматографии, отличается от описанных в литературе методов высокой селективностью, а по сравнению с традиционной высокоэффективной жидкостной хроматографией и более высокой чувствительностью, что позволяет одновременно в одной пробе определять все классы кортикостероидных гормонов, секретируемых корой надпочечников.

2. С помощью данной методики установлены видовые особенности соотношений кортикостерона и 11-дегидрокортикостерона в плазме крови и надпочечниках крыс и их изменения при различных состояниях.

3. Лапаротомия вызывает увеличение концентрации кортикостерона в плазме крови без изменения концентрации 11 -дегидрокортикостерона, а также уменьшение содержания альдостерона и дезоксикортикостерона без изменения содержания кортикостерона и достоверное увеличение содержания 11-дегидрокортикостерона в надпочечниках крыс.

4. С возрастом у животных концентрация кортикостерона в крови достоверно уменьшается. Общее содержание кортикостерона, дезоксикортикостерона и альдостерона в надпочечниках крыс снижается, а содержание 11-дегидрокортикостерона увеличивается.

5. Потребление безотрубевой диеты приводит к достоверному повышению концентрации кортикостерона в плазме крови и 11-дегидрокортикостерона в надпочечниках подопытных животных. После отмены безотрубевой диеты сохраняется состояние повышенной функциональной активности надпочечников.

6. Показано, что наряду с асимметрией надпочечников по массе, существует и асимметрия надпочечников по уровню функционирования, что нашло свое отражение в различном содержании кортикостероидных гормонов в левом и правом надпочечнике как у интактных животных, так и при экспериментальных воздействиях.

Список литературы диссертационного исследования кандидат биологических наук Черкасова, Ольга Павловна, 1999 год

СПИСОК ЦИТИРУЕМОЙ ЛИТЕРАТУРЫ

Абрамов В.В., Абрамова Т.Я. Асимметрия нервной, эндокринной и иммунной систем., "Наука". Новосибирск. 1996 (а). 97 С. Абрамов В.В., Кармацких O.JL, Козлов В.А., Оськина И.Н. Функциональная асимметрия надпочечников у мышей (СВА х C57BL/6)Fi. // Доклады академии наук. 1996 (б). Т. 347, № 6. С. 831-833.

Балашов Ю.Г. Флюориметрический микрометод определения кортикостероидов: сравнение с другими методами. // Физиологический журнал СССР. 1990. Т.76. № 2. С. 280-283.

Банкова В.В., Кучеренко А.Г., Марков Х.М. Изменения артериального давления и биосинтеза кортикостероидов у крыс, находящихся в состоянии нейрогенного стресса. // Кардиология. 1974. Т. 16. № 9. С. 127-129. Барам Г.И. Развитие метода микроколоночной высокоэффективной жидкостной хроматографии и его применение для решения комплексных аналитических задач. Диссертация в виде научного доклада на соискание ученой степени доктора химических наук. Иркутск. 1997. 56 С. Беленький Б.Г., Ганкина Э.С., Мальцев В.Г. Капиллярная жидкостная хроматография. "Наука". Ленинград. 1987. 207 С.

Виноградов В.В. Стресс: морфобиология коры надпочечников. 1998. 319 С. Генес С.Г. Печень и кортикостероиды // Клиническая медицина. 1977. Т. LV. N 1. С. 9-15.

Герег Ш. Количественный анализ стероидов. Мир. М. 1985. 504 С. Горизонтов П.Д., Протасова Т.Н. Роль АКТГ и кортикостероидов в патологии (к проблеме стресса). "Медицина". М. 1968. 335 С. Иванов C.B., Рябов А.Г. Морфофункциональная диссимметрия надпочечников человека. Тезисы докладов 4-й обл. Научно-практической конференции молодых ученых и специалистов, 4-6 февраля 1990.

Ярославль.

Исии Д. Ведение в микромасштабную высокоэффективную жидкостную хроматографию. Мир. М. 1991. 240 С.

Казначеев В.П., Субботин М.Я. Морфология процессов адаптации клеток и тканей. М. 1971.

Кириллов О.И. Процессы клеточного обновления и роста в условиях стресса. "Наука". М. 1977. 120 С.

Коваленко Р.И., Чернышева М.П., Штылик A.B., Ноздрачев А.Д. Асимметрия периферических эффектов унилатерального интраназального введения окситоцина у самцов белых крыс. // Доклады академии наук. 1995. Т. 342. N 2. С. 269-272.

16. Крымская Л.Г., Игнатьева Е.В., Тинников A.A. и др. Комплексная оценка функциональной активности надпочечников у мышей в норме и после различных воздействий. Методические рекомендации. Новосибирск. 1992.24 С.

Колпаков М.Г., Колаева С.Г., Красс П.М. и др. Механизмы сезонных ритмов кортикостероидной регуляции зимоспящих. "Наука". Новосибирск. 1974. 160 С.

Лишшак К., Эндреци Э. Нейроэндокринная регуляция адаптационной деятельности. Будапешт. 1967. 219 С.

Марков Х.М., Банкова В.В., Кучеренко А.Г. Изменение биосинтеза кортикостероидов из прогестерона-С14 под влиянием простагландина Е2 у кроликов с вазоренальной гипертонией // Кардиология. 1974. Т. 16. № 9. С. 101-107.

Мосякина Л.И. Патогенетические принципы создания сбалансированных вегетарианских диет для коррекции обмена липидов. Тез.докладов конференции "Фундаментальные науки и альтернативная медицина", 22-25 сентября 1997 г.

Науменко E.B. Центральная регуляция гипофизарно-надпочечникового комплекса. "Наука". Ленинград. 1971. 162 С.

Нестеренко Г.А. Возраст и глюкокортикоидная функция коры надпочечников // Проблемы возрастной физиологии и биофизики. 1974. Киев. С. 169-174.

Панин Л.Е. Энергетические аспекты адаптации. "Медицина". Ленинград. 1978. 192 С.

Пугачев М.К. Функциональная морфология коры надпочечников и ее изменение в условиях локального теплового воздействия и общей гипертермии. Автореф. дисс. док. мед. н. Москва. 1991. 30 С. Пыцкий В.И. Кортикостероиды и аллергические процессы. "Медицина". М.

1976. 208 С.

Перельмутер В.М., Отражение функциональной асимметрии тимико-адреналовой системы в состоянии сетчатой зоны надпочечников при гомотрансплантации правой и левой половины тимуса. // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. 1997. Т. 124. N 11. С. 577-579. Резников А.Г. Методы определения гормонов. "Наукова думка". Киев. 1980. 400 С.

Рыжавский Б .Я. Постнатальный онтогенез коркового вещества надпочечников. "Наука". Новосибирск. 1989. 136 С.

Саркисов Д.С. Очерки по структурным основам гомеостаза. Медицина. М.

1977. 350 С.

Сергеев П.В. Стероидные гормоны. "Наука". М. 1984. 240 С.

Соффер Л., Дорфман Р., Гебрилав Л. Надпочечниковые железы человека.

"Медицина". М. 1966. 499 С.

Таранов А.Г. Лабораторная диагностика. Новосибирск. 1995. 123 С. Тинников A.A., Бажан Н.М. Анализ глюкокортикоидов в плазме крови и препаратах надпочечников методом конкурентного белкового связывания

гормонов без предварительной экстракции // Лаб.дело. 1984. № 12. С. 709713.

Торнуев Ю.В., В.Е.Пальчиков. Асимметрия электродермальной активности и ее динамика при трансмеридиональных перемещениях // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. 1997. Т. 123. N 4. С. 391-394. У гол ев A.M. Теория адекватного питания и трофология. "Наука". Санкт-Петербург. 1991. 272 С.

Хайдарлиу С.Х. Функциональная биохимия адаптации. Штиинца. Кишинев. 1984. 272 С.

Чард Т. Радиоиммунологические методы. Мир. М. 1981. 248 С.

Шатц В.Д., Сахартова О.В. Высокоэффективная жидкостная

хроматография. "Зинатне". Рига. 1988. 390 С.

Штылик А.В., Чернышева М.П., Коваленко Р.П., Ноздрачев А. Д. Латерализованное влияние окситоцина на функциональную активность парных висцеральных органов у крыс // Физиологический журнал им. И.М.Сеченова. 1995. Т.81. N 10. С. 89-97.

Юдаев Н.А. Биохимия стероидных гормонов коры надпочечников. Медгиз. М. 1956. 135 С.

Юдаев Н.А., Афиногенова С.А., Булатов А.А. и др., Биохимия гормонов и гормональной регуляции. "Наука". М. 1976. 380 С.

Юдаев Н.А. Современные методы определения стероидных гормонов в биологических жидкостях. "Медицина". М. 1968. 151 С. Agarwal А.К., Tusie-Luna М.Т., Monder С., White Р.С. Expression of 11 beta-hydroxysteroid dehydrogenase using recombinant vaccinia virus // Mol. Endocrinol. 1990. V. 1. N 12. P. 1827-1832.

Agarwal A.K., Mune Т., Monder C, White P.C. NAD(+)-dependent isoform of 11 beta-hydroxysteroid dehydrogenase. Cloning and characterization of cDNA from sheep kidney // J Biol. Chem. 1994. V. 269. N 42. P. 25959-25962.

Agarwal A.K., Mune T., Monder C., White P.C. Mutations in putative glyeosylation sites of rat 11 beta-hydroxysteroid dehydrogenase affect enzymatic activity // Biochim. Biophys. Acta. 1995 (a). V. 1248. N.l. P. 70-74. Agarwal A.K., Mune T., Monder C., White P.C. Cloning of cDNA encoding an NAD(+)-dependent isoform of 11 beta-hydroxysteroid dehydrogenase in sheep kidney // Endocr. Res. 1995 (6). V. 21. N 1-2. P. 389-397. Alfaidy N., Blot-Chabaud M., Robic D., Kenouch S., Bourbouze R., Bonvalet J.P., Farman N. Characteristics and regulation of 11 beta-hydroxysteroid dehydrogenase of proximal and distal nephron // Biochim. Biophys. Acta. 1995. V. 1243. N3. P. 461-468.

Althaus Z.R., Rowland J.M., Freeman L.P. Separation of some natural and synthetic corticosteroids in biological fluids and tissue by high-performance liquid chromatography //Journal of Chromatography. 1982. V. 227. P. 11-23. Alvinerie M., Toutain P.L. Simultaneous determination of corticosterone, hydrocortisone and dexamethasone in dog plasma using high-performance liquid chromatography // Journal of Pharmaceutical Science. 1982. V. 71. N 7. P. 816818.

Arts C.J., Govers C.A., Van den Berg H., Blankenstein M.A., Thijssen J.H. Effect of wheat bran on excretion of radioactively labeled estradiol-17 beta and estrone-glucuronide injected intravenously in male rats // J. Steroid. Biochem. Mol. Biol. 1992 (a). V. 42.N l.P. 103-111.

Arts C.J., Thijssen J.H. Effect of wheat bran on blood and tissue hormone levels in adult female rats // Acta Endocrinol. (Copenh). 1992 (6). V. 127. N 3. P. 271278.

Ballerini R., Chinol M., Ghelardoni M. Quantitative high-performance liquid chromatographic determination of A4-3-ketosteroids in adrenocortical extracts // Journal of Chromatography. 1980. V. 193. P. 413-420.

Baram G.I., Grachev M.A., Komarova N.I, Perelroyzen M.P., Bolvanov Yu.A.,

Kuzmin S.V., Kargaltsev V.Y., Kuper E.A. Micro-column liquid chromatography with multi-wave-length photometric detection // Journal of Chromatography. 1983. V. 264. P. 69-90.

Bell J.B., Gould R.P., Hyatt P.J., Tait J.F., Tait S.A. Properties of rat adrenal zona reticularis cells: production and stimulation of certain steroids // J Endocrinol. 1979. V. 83. N 3. P. 435-447.

Brem A.S., Bina R.B., King T., Morris D.J. Bidirectional activity of 11 beta-hydroxysteroid dehydrogenase in vascular smooth muscle cells // Steroids. 1995 (a). V. 60. N5. P. 406-410.

Brem A.S., Bina R.B., Klinger J.R., King T., Werner J.C. Glucocorticoid metabolism in the newborn rat heart // Proc Soc Exp Biol Med. 1995 (6). V. 209. N2. P. 146-151.

Brem A.S., Bina R.B., King T., Morris D.J. llBetaOH-progesterone affects vascular glucocorticoid metabolism and contractile response // Hypertension. 1997 (a). V. 3. Pt. 1. P. 449-454.

Brem AS, Bina RB, Hill N, Alia C, Morris DJ Effects of licorice derivatives on vascular smooth muscle function // Life Sci. 1997 (6). V.60. N 3. P.207-214. Brem A.S., Bina R.B., King T., Morris D.J. Localization of 11 beta-OH steroid dehydrogenase isoforms in aortic endothelial cells // Hypertension. 1998. V. 31. N 1, Pt. 2. P. 459-462.

Burton P.J., Waddell B.J. 11 beta-Hydroxysteroid dehydrogenase in the rat placenta: developmental changes and the effects of altered glucocorticoid exposure // J Endocrinol. 1994. V. 143. N 3. P. 505-513.

Carlin A.S., Prasad V. K. Analysis of prednisolone acetate and related corticoids in swine plasma by reversed-phase high-performance liquid chromatography.// Journal of Chromatography. 1988. V. 425. P. 162-168

Carson S.W., Jusko W.J. C. Simultaneous analysis of cortexolone and Cortisol by high-performance liquid chromatography for use in the metyrapone test. //

Journal of Chromatography. 1984. V. 306. P. 345-350.

Charlton B.G. Adrenal cortical innervation and glucocorticoid secretion // Journal of Endocrinology. 1990. V. 126. P. 5-8.

Culbreth P.H., Sampson E.J. Liquid chromatography measurement of Cortisol in methylene chloride extracts of aqueous solutions // Journal of Chromatography. 1981. V. 212. P. 221-228.

Dawson R., Kontur P. Monjan A. High-performance liquid chromatographic (HPLC) separation and quantitation of endogenous glucocorticoids after solidphase extraction from plasma. // Hormone Res. 1984. V. 20. P. 89-94. Diaz R., Brown R.W., Seckl J.R. Distinct ontogeny of glucocorticoid and mineralocorticoid receptor and 11 beta-hydroxysteroid dehydrogenase types I and II mRNAs in the fetal rat brain suggest a complex control of glucocorticoid actions // J. Neurosci. 1998. V. 18. N 7. P. 2570-2580.

Ebling W.F., Szefler J.S., Jusko W.J. Analysis of Cortisol, methylprednisolone, and methylprednisolone hemisuccinate // Journal of Chromatography. 1984. V. 305. P. 271-280.

Edwards C.R., Stewart P.M., Burt D., Brett L., Mclntyre M.A., Sutanto W.S., de Kloet E.R., Monder C. Localisation of 11 beta-hydroxysteroid dehydrogenase -tissue specific protector of the mineralocorticoid receptor // Lancet. 1988. V. 2 (8618). P. 986-989.

Edwards C.R. Renal 11 beta-hydroxysteroid dehydrogenase: a mechanism ensuring mineralocorticoid specifity // Horm. Res. 1990. V. 34. N 3-4. P. 114117.

Edwards C.R., Benediktsson R., Lindsay R.S., Seckl J.R. 11 beta-Hydroxysteroid dehydrogenases: key enzymes in determining tissue-specific glucocorticoid effects // Steroids. 1996. V. 61. N 4. P. 263-269.

Escher G., Meyer K.V., Vishwanath B.S., Frey B.M., Frey F.J. Furosemide inhibits 11 beta-hydroxysteroid dehydrogenase in vitro and in vivo.//

Endocrinology. 1995. V. 136. N 4. P. 1759-1765.

Feyereisen R. Regulation of juvenile hormone titer: synthesis // Comprehensive insect physiology, biochemistry and pharmacology. 1985. V. 7. P. 391-429. Frey F.J., Frey B.M., Benet L.Z. Liquid-chromatographic measurement of endogenous and exogenous glucocorticoids in plasma // Clin. Chem. 1979. V. 25. N 11. P. 1944-1947.

Galigniana M.D., Vicent G.P., Burton G., Lantos C.P. Features of the shuttle pair 11 beta-hydroxyprogesterone-ll-ketoprogesterone// Steroids. 1997. V. 62. N 4. P. 358-364.

Gerendai I., Halasz B. Neuroendocrine asymmetry. // Front Neuroendocrinol. 1997. V. 18. N3. P. 354-381.

Goehl T.J., Sundaresan G.M., Prasad V.K. Fluorometric High-Pressure Liquid Chromatographic Determination of hydrocortisone in human plasma // Journal of Pharmaceutical Sciences. 1979. V. 68. N 11. P. 1374-1376. Gomez-Sanchez C.E., Zhou M.Y., Cozza E.N., Morita H., Eddleman F.C., Gomez-Sanchez E.P. Corticosteroid synthesis in the central nervous system // Endocr. Res. 1996. V. 22. N 4. P. 463-470.

Gomez-Sanchez E.P., Ganjam V., Chen Y.J., Cox D.L., Zhou M.Y., Thanigaraj S., Gomez-Sanchez C.E. The sheep kidney contains a novel unidirectional, high affinity NADP(+)-dependent 11 beta-hydroxysteroid dehydrogenase (11 beta-HSD-3) // Steroids. 1997. V. 62. N 5. P. 444-450.

Gomez-Sanchez E.P., Cox D., Foecking M., Ganjam V., Gomez-Sanchez C.E. 11 beta-hydroxysteroid dehydrogenases of the choriocarcinoma cell line JEG-3 and their inhibition by glycyrrhetinic acid and other natural substances. // Steroids. 1996. V. 61.N3.P. 110-115.

Gotelli G.R., Wall J.H., Kabra P.M., Marton L.J. Fluorometric Liquid Chromatographic Determination of Serum Cortisol // Clin. Chem. 1981. V. 27. N 3. p. 441-443.

Goto J., Shamsa F., Goto N., Nambara T. The simultaneous determination of serum Cortisol and cortisone by high-performance liquid chromatography with fluorimetric detection // Journal of Pharmaceutical & Biomedical Analysis. 1983. V. 1.N1.P. 83-88.

Gover D.V. The biosynthesis of steroid hormones: an up-date // Hormones and their Action. Part 1. 1988. P. 3-28.

Häusler A., Monnet G., Borer C., Bhatnagar A.S. Evidence that corticosterone is not an obligatory intermediate in aldocterone biosynthesis in the rat adrenal // J.steroid Biochem. 1989. V. 34. N 1-6. P. 567-570.

Hesse V.C., Pietrzik K., Hötzel D. Spezifische Bestimmung von Corticosteron und Cortisol im Nanogramm-Bereich // Z.Klin.Chem.Klin.Biochem. 1974. V. 12.

5. 193-197.

Hirota N, Furuta T., Kasuya Y. Determination of Cortisol in human plasma by capillary gas chromatography-mass spectrometry using [ H5] Cortisol as internal standard//Journal of Chromatography. 1988. V. 425. P. 237-243. Holland O.B., Risk M., Brown H., Komes K., Dube P. High-performance liquid chromatography in radioimmunoassay of urinary tetrahydroaldosterone // Journal of Chromatography. 1987. V. 385. P. 393-396.

Holland O.B., Brown H., Risk M., Paone R., Dube P. Simplified method for the determination of plasma 18-hydroxycorticosterone // Journal of Chromatography. 1988. V. 426. P. 148-154.

Hundertmark S., Buhler H., Ragosch V., Dinkelborg L., Arabin B., Weitzel H.K. Correlation of surfactant phosphatidylcholine synthesis and 11 beta-hydroxysteroid dehydrogenase in the fetal lung // Endocrinology. 1995. V. 136 N

6. P.2573-2578..

Idrus R.B., Mohamad N.B., Morat P.B., Saim A., Abdul Kadir K.B. Differential effect of adrenocorticosteroids on 11 beta-hydroxysteroid dehydrogenase bioactivity at the anterior pituitary and hypothalamus in rats // Steroids. 1996. V.

61. N 8. Р.448-452.

Imaizumi N., Morimoto S., Kigoshi Т., Uchida K., Hosojima H, Yamamoto I. Application of reversed-phase high-performance liquid chromatography for radioimmunoassay of plasma 18-hydroxycorticosterone // Journal of Chromatography. 1984. V. 308. P. 295-300.

Imaizumi N., Yamamoto I., Kamei M., Yoshida I., Miyauchi E., Kigoshi Т., Hosojima H., Uchida K., Morimoto S. High-performance liquid chromatographic separation of corticosteroids in plasma of rats. // Hormone Res. 1987. V. 27. N 1. P. 56-60.

Ishii D., Asai K., Hibi K., Jonokuchi Т., Nagava M. A study of micro- highperformance liquid chromatography // Journal of Chromatography. 1977. V. 144. P. 157-168.

Jamieson J., Chapman K.E., Edwards C.R., Seckl J.R. 11 beta-hydroxysteroid dehydrogenase is an exclusive 11 beta- reductase in primary cultures of rat hepatocytes: effect of physicochemical and hormonal manipulations.// Endocrinology. 1995. V. 136. N 11. P. 4754-4761.

Jellinck P.H., Monder C., McEwen B.S., Sacai R.R. Differential inhibition of 11 beta-hydroxysteroid dehydrogenase by carbenoxolone in rat brain regions and peripheral tissues // J. Steroid Biochem. Mol. Biol. 1993. V. 46. N 2. P. 209-213. Jellinck P.H., Dhabhar F.S., Sakai R.R., McEwen B.S. Long-term corticosteroid treatment but not chronic stress affects 11 beta-hydroxysteroid dehydrogenase type I activity in rat brain and peripheral tissues // J. Steroid Biochem. Mol. Biol. 1997. V. 60. N 5-6. P. 319-323.

Kabra P.M. Clinical analysis of individual steroids by column liquid chromatography // Journal of Chromatography. 1988. V. 429. P. 155-176 Kant G.J., Leu J.R., Anderson S.M., Mougey E.H. Effects of chronic stress on plasma corticosterone, ACTH and prolactin // Physiology & Behavior. 1987. V. 40. P. 775-779.

Kawasaki T., Maeda M., Tsuji A. Determination of 17-oxosteroid glucuronides and sulfates in urine and serum by fluorescence high-performance liquid chromatography using dansyl hydrazine as a prelabeling reagent // Journal of Chromatography. 1982. V. 233. P. 61-68.

Kendall M.E., Cohen L.A. Effect of dietary fiber on mammary tumorigenesis, estrogen metabolism, and lipid excretion in female rats // In Vivo. 1992. V. 6. N 3. P. 239-245.

Kenouch S., Coutry N., Farman N., Bonvalet J.P. Multiple patterns of 11 beta-hydroxysteroid dehydrogenase catalytic activity along the mammalian nephron // Kidney Int. 1992. V. 42. N 1. P. 56-60.

Kittinger G.W. Quantitative gas chromatography of 17-deoxycorticosteroids and other steroids produced by the rat adrenal gland // Steroids. 1964. V. 3. N 1. P. 21-42.

Koshida H., Miyamori I., Miyazaki R., Tofuku Y., Takeda R. Falsely elevated plasma aldosterone concentration by direct radioimmunoassay in chronic renal failure // J. Lab. Clin. Med. 1989. V. 114. P. 294-300.

Koziol T., Grayeski M.L., Weinberger R. Determination of trace levels of steroids in blood plasma by liquid chromatography with peroxyoxalate chemiluminescence detection // Journal of Chromatography. 1984. V. 317. P. 355-366.

Kuhn R.W., Deyman M.E. Simultaneous quantification of natural glucocorticoids and progestins in serum // Journal of Chromatography. 1987. V. 421. P. 123-129. Lakshmi V., Sakai R.R., McEwen B.S., Monder C. Regional distribution of 11 beta-hydroxysteroid dehydrogenase in rat brain // Endocrinology. 1991. V. 128. N4. P. 1741-1748.

Lagana A., Rotatori M., Vinci G. Sample-pretreatment procedure for chromatographic assay of serum Cortisol // Talanta. 1986. V. 33. N 4. P. 325-328. Lamiable D., Vistelle R., Millart H., Sulmont V., Fay R., Caron J., Choisy H.

High-performance liquid chromatographic determination of dexamethasone in human plasma // Journal of Chromatography. 1986. V. 378. P. 486-491 Lesniewska B., Nowak M., Malendowicz L.K. Sex differences in adrenocortical structure and function // Horm. Meta. Res. 1990. V. 22. P. 378-381. Lewicka S., Bige K., Weindel K., Winter J., Pies W., Vecsei P. Production of 21-deoxyaldosterone by rat adrenal tissue in vitro; evidence for an alternative biosynthetic pathway of aldosterone //Acta Endocrinologica. 1990. V. 123. P. 225-230.

Li K.X., Obeyesekere V.R., Krozowski Z.S., Ferrari P. Oxoreductase and dehydrogenase activities of the human and rat 1 lbeta-hydroxysteroid dehydrogenase type 2 enzyme // Endocrinology. 1997. V. 138. N 7. P. 29482952.

Lieberman S. Pictorial endocrinology and empirical hormonology // J.Endocr. 1986. V. 111. P. 519-529.

Loche S., Porcelli F., Rosen M., Feffer M, Stoner E., New M.I. Clinical applications of the rapid high-performance liquid chromatographic determination of serum Cortisol // Journal of Chromatography. 1984. V. 317. P. 377-382 Lopez Bernal A., Craft I.L. Corticosteroid metabolism in vitro by human placenta, fetal membranes and decidua in early and late gestation // Placenta. 1981. V. 2. N4. P. 279-285.

Low S.C., Chapman K.E., Edwards C.R., Wells T., Robinson I.C., Seckl J.R. Sexual dimorphism of hepatic 11 beta-hydroxysteroid dehydrogenase in rat: the role of growth hormone patterns // J Endocrinol. 1994 (a). V. 143. N 3. P. 541548.

Low S.C., Assaad S.N., Rajan V., Chapman K.E., Edwards C.R., Seckl J.R. Regulation of 11 beta-hydroxysteroid dehydrogenase by sex steroids in vivo: further evidence for the existence of a second dehydrogenase in rat kidney // J. Endocrinol. 1993. V. 139. N 1. P. 27-35.

Low S.C., Chapman K.E., Edwards C.R., Seckl J.R. "Liver-type" 11 beta-hydroxysteroid dehydrogenase eDNA encodes reductase but not dehydrogenase activity in intact mammalian COS-7 cells // J. Mol. Endocrinol. 1994 (6). V. 13. N2. P. 167-174.

Maeda M., Tsuji A. Chemiluminescence with lucigenin as post-column reagent in high-performance liquid chromatography of corticosteroids and /?-nitrophenacyl esters // Journal of Chromatography. 1986. V. 352. P. 213-220. Mason P.A., Fraser R. Estimation of aldosterone, 11-deoxycorticosterone, 18-hydroxy-11-deoxycorticosterone, corticosterone, Cortisol and 11-deoxyCortisol in human plasma by gas-liquid chromatography with electron capture detection // J. Endocr. 1975. V. 64. P. 277-288.

Moisan M.P., Seckl J.R., Edwards C.R. 11 beta-Hydroxysteroid dehydrogenase bioactivity and messenger RNA expression in rat forebrain: localization in hypothalamus, hippocampus, and cortex // Endocrinology. 1990. V. 127. N 3. P. 1450-1455.

Monder C., Stewart P.M., Lakshmi V., Valentino R., Burt D., Edwards C.R. Licorice inhibits corticosteroid 11 beta-hydroxysteroid dehydrogenase of rat kidney and liver: in vivo and in vitro studies // Endocrinology. 1989. V. 125. N 2. P. 1046-1053.

Monder C., Miroff Y., Marandici A., Hardy M.P. 11 beta-Hydroxysteroid dehydrogenase alleviates glucocorticoid-mediated inhibition of steroidogenesis in rat Leydig cells // Endocrinology. 1994 (a). V. 134. N 3. P. 1199-1204. Monder C., Hardy M.P., Blanchard R.J., Blanchard D.C. Comparative aspects of 11 beta-hydroxysteroid dehydrogenase. Testicular 11 beta-hydroxysteroid dehydrogenase: development of a model for the mediation of Leydig cell function by corticosteroids // Steroids. 1994 (6). V. 59. N 2. P. 69-73. Morita H., Zhou M., Foecking M.F., Gomez-Sanchez E.P., Cozza E.N., Gomez-Sanchez C.E. 11 beta-Hydroxysteroid dehydrogenase type 2 complementary

deoxyribonucleic acid stably transfected into Chinese hamster ovary cells: specific inhibition by 11 alpha-hydroxyprogesterone // Endocrinology. 1996. V. 137. N6. P. 2308-2314.

Morita H., Cozza E.N., Zhou M.Y., Gomez-Sanchez E.P., Romero D.G.,Gomez-Sanchez C.E. Regulation of the 11 beta-hydroxysteroid dehydrogenase in the rat adrenal. Decrease enzymatic activity induced by ACTH // Endocrine. 1997. V. 7. N3. P. 331-335.

Morris D.J., Souness G.W. The 11 beta-OHSD inhibitor, carbenoxolone, enhances Na retention by aldosterone and 11-deoxycorticosterone // Am. J. Physiol. 1990. V. 258. N 3, Pt 2. P. F756-F759.

Musajo F., Neri G., Tortorella C., Mazzocchi G., Nussdorfer G.G. Intra-adrenal 11 beta-hydroxysteroid dehydrogenase plays a role in the regulation of corticosteroid secretion: an in vitro study in the rat // Life Sci. 1996. V. 59. N 17. P. 1401-1406.

Nacharaju V.L., Muneyyirci-Delale O., Khan N. Presence of 11 beta-hydroxysteroid dehydrogenase in human semen: evidence of correlation with semen characteristics // Steroids. 1997. V. 62. N 3. P. 311-314. Nakamura Y., Yakata M. Two-cycle liquid chromatographic quantitation of Cortisol in urine // J. Clin. Chem. 1982. V. 228. N 7. P. 1497-1500. Napolitano A., Voice M.W., Edwards C.R., Chapman K.E. llBeta-hydroxysteroid dehydrogenase 1 in adipocytes: expression is differentiation-dependent and hormonally regulated // J. Steroid Biochem. Mol. Biol. 1998. V. 64. N5-6. P. 251-260.

Naray-Fejes-Toth A., Watlington C.O., Fejes-Toth G. 11 beta-Hydroxysteroid dehydrogenase activity in the renal target cells of aldosterone // Endocrinology. 1991. V. 129. N l.P. 17-21.

Nussberger J., Waeber B., Brunner H.R., Burris J.F., Vetter W. Highly sensitive microassay for aldosterone in unextracted plasma: Comparison with two other

method 11 J. Lab .Clin. Med. 1984. V. 104. N 5. P. 789-796.

Pacha J., Miksik I. Distribution of 11 beta-Hydroxysteroid dehydrogenase along

the rat intestine // Life Sci. 1994. V. 54. N 11. P.745-749.

Pacha J., Miksik I. 11 beta-Hydroxysteroid dehydrogenase in developing rat intestine // J Endocrinol. 1996. V. 148. N 3. P.561-566.

Perlman S., Kirschbaum J.J. Enhanced peak responses due to solvent interactions in high-performance liquid chromatography.// Journal of Chromatography. 1986. V. 357. P. 39-48.

Prader A. Hereditary defects of adrenal cortical steroid biosynthesis // Endocrine Genetics and Genetics of Growth. 1985. P. 219-231.

Prasad V.K., Ho B., Haneke C. Simultaneous determination of prednisolone acetate, prednisolone, prednisone, cortisone and hydrocortisone in swine plasma using solid-phase and liquid-liquid extraction techniques // Journal of Chromatography. 1986. V. 378. P. 305-316.

Quirk S.J., Slattery J.A., Funder J.W. Epithelial and adipose cells isolated from mammary glands of pregnant and lactating rats differ in 11 beta-hydroxysteroid dehydrogenase activity // J. Steroid Biochem. Mol .Biol. 1990. V. 37. N 4. P. 529-534.

Rajan V., Edwards C.R., Seckl J.R. 11 beta-Hydroxysteroid dehydrogenase in cultured hippocampal cells reactivates inert 11-dehydrocorticosterone, potentiating neurotoxicity// J. Neurosci. 1996. V. 16. N 1. P. 65-70. Reardon G.E., Caldarella A.M., Canalis E. Determination of serum Cortisol and 11-deoxycortisol by liquid chromatography. // Clin. Chem. 1979. V. 25. N 1. P. 122-126.

Rick M., Holland O.B., Brown H. Rapid chromatographic purification of urinary steroid glucuronates for determination of aldosterone secretion rate // Journal of Chromatography. 1984. V. 317. P. 367-376.

Ricketts M.L., Shoesmith K.J., Hewison M., Strain A., Eggo M.C., Stewart P.M.

Regulation of 11 beta-hydroxysteroid dehydrogenase type I in primary cultures of rat and human hepatocytes // J. Endocrinol. 1998. V. 156. N 1. P. 159-168. Roland B.L., Funder J.W. Localization of 11 beta-hydroxysteroid dehydrogenase type 2 in rat tissues: in situ studies // Endocrinology. 1996. V. 137. N 3. P. 11231128.

Rusvai E., Naray-Fejes-Toth A. A new isoform of 11 beta-hydroxysteroid dehydrogenase in aldosterone target cells // J. Biol. Chem. 1993. V. 268. N 15. P. 10717-10720.

Saito Z. Minoh N., Hifumi S., Takeda R. Analysis of corticosteroids in human adrenal tissue by high pressure liquid chromatography. // Clinica Chimica Acta. 1983. V. 131. P. 239-246.

Sasaki Y., Tsuiki M., Higashimaki T. Simultaneous determination of glucocorticoids in bovine plasma by high-performance liquid chromatography // Nippon Naibumpi Gakkai Zasshi. 1982. V. 58. N 9. P. 1021-1030. Schoneshofer M., Fenner A., Dulce H.J. Assessment of eleven adrenal steroids from a single serum sample by combination of automatic high-performance liquid chromatography and radioimmunoassay // J.Steroid Biochem. 1981. V. 14. P. 377-386.

Scott N.R., Chakraborty J., Marks V. Determination of prednisolone, prednisone and Cortisol in human plasma by high-performance liquid chromatography // Analit. Biochem. 1980. V. 108. P. 266-268.

Seckl J.R. 1 lbeta-Hydroxysteroid dehydrogenase in the brain: a novel regulator of glucocorticoid action? // Front Neuroendocrinol. 1997. V. 18. N 1 P. 49-99. Seki T., Yamaguchi Y. New fhiorimetric detection method of corticosteroids after high-performance liquid chromatography using post-column derivatization with benzamidine//Journal of Chromatography. 1984. V. 305. P. 188-193. Seki T., Yamaguchi Y. New fluorimetric determination of 17-hydroxycorticosteroids after high-performance liquid chromatography using post-

column derivatization with glycinamide // Journal of Liquid Chromatography. 1983. V. 6. N6. P. 1131-1136.

Sheppard K.E., Funder J.W. Specific nuclear localization of 11-dehydrocorticosterone in rat colon: evidence for a novel corticosteroid receptor // Endocrinology. 1996. V. 137. N 8. P. 3274-3278.

Sheppard K.E., Khoo K., Krozowski Z.S., Li K.X. Steroid specificity of the putative DHB receptor: evidence that the receptor is not llbetaHSD // Am. J. Physiol. 1998. V. 275. N 1, Pt 1. P. E124-E131.

Shibata N. Hayakawa T., Takada K., Hoshino N., Minouchi T., Yamaji A. Simultaneous determination of glucocorticoids in plasma or urine by highperformance liquid chromatography with precolumn fluorimetric derivatization by 9-anthroyl nitrile. // Journal of Chromatography. 1998. V. 706. P. 191-199. Shimojo M., Condon J., Whorwood C.B., Stewart P.M. Adrenal 11-beta-hydroxysteroid dehydrogenase // Endocr. Res. 1996 (a). V. 22. N 4. P.771-780. Shimojo M., Whorwood C.B., Stewart P.M. 11 beta-Hydroxysteroid dehydrogenase in the rat adrenal // J. Mol. Endocrinol. 1996 (6). V. 17. N 2. P. 121-130.

Slight S.H., Ganjam V.K., Gomez-Sanchez C.E., Zhou M.Y., Weber K.T. High affinity NAD(+)-dependent 11 beta-hydroxysteroid dehydrogenase in the human heart. // J. Mol. Cell Cardiol. 1996. V. 28. N 4. P. 781-787. Stewart P.M., Whorwood C.B., Barber P., Gregory J., Monder C., Franklyn J.A., Sheppard M.C. Localization of renal 11 beta-dehydrogenase by in situ hybridization: autocrine not paracrine protector of the mineralocorticoid receptor //Endocrinology. 1991. V. 128. N4. P. 2129-2135.

Stewart P.M., Whorwood C.B., Mason J.I. Type 2 11 beta-hydroxysteroid dehydrogenase in foetal and adult life // J. Steroid Biochem. Mol. Biol. 1995. V. 55. N5-6. P. 465-471.

Stoner E., Loche S., Mirth A., New M.I. Clinical utility of adrenal steroid by

high-performance liquid chromatography in pediatric endocrinology. // Journal of Chromatography. 1986. V. 374. P. 358-362.

Sudo A. Analysis of Corticosteroids in Biological Fluids by high-performance liquid chromatography with fluorometric detection // Industrial Health. 1988. V. 26. P. 263-266.

Sugnaux F.R., Skrabalak D.S., Henion J.D. Direct liquid introduction microliquid chromatography - mass spectrometry coupling // Journal of Chromatography. 1983. V. 264. P. 357-376.

Takeda R., Takeda Y. 11 beta-hydroxysteroid dehydrogenase and steroid receptors // Nippon Naibunpi Gakkai Zasshi. 1992. V. 68. N 7. P. 658-664. Takeuchi T., Ishii D. Application of ultra-micro high-performance liquid chromatography to trace analysis //Journal of Chromatography. 1981. V. 218. P. 199-208.

Tannenbaum B.M., Brindley D.N., Tannenbaum G.S., Dallman M.F., McArthur M.D., Meaney M.J. High-fat feeding alters both basal and stress-induced hypothalamic-pituitary-adrenal activity in the rat // Am. J. Physiol. 1997. V. 237. N 6 Pt 1. P. E1168-E1177.

Taylor R.B., Kendle K.E., Reid R.G., Hung C.T. Chromatography of progesterone and its major metabolites in rat plasma using microbore highperformance liquid chromatography columns with conventional injection and detection systems // Journal of Chromatography. 1987. V. 385. P. 383-392. Tomsova Z., Gregorova I., Horky K. Dvorakova J. Gas chromatographic determination of 18-hydroxy-11 deoxycorticosterone // Journal of Chromatography. 1978. V. 145. P. 131-136.

Turpeinen U. Markkanen H., Valimaki M. Stenman U-H. Determination of urinary free Cortisol by HPLC.// Clinical Chemistry. 1997. V. 43. N 8. P. 13861391.

Ueshiba H., Segawa M., Hayashi T., Miyachi Y., Irie M. Serum profiles of steroid

hormones in patients with Cushing's syndrome determined by a new HPLC/RIA method. // Clin. Chem. 1991. V. 37. N 8. P. 1329-1333.

Van der Vies. Corticosteroid production in vitro as a test of adrenocortical function in rats // Acta Endocrinol. 1960. V. 33. N 1. P. 59. van Haarst A.D., Welberg L.A., Sutanto W., Oitzl M.S., de Kloet E. 11 beta-Hydroxysteroid dehydrogenase activity in the hippocampus: implications for in vivo corticosterone receptor binding and cell nuclear retention // J. Neuroendocrinol. 1996. V. 8. N 8. P. 595-600.

Vinson G.P., Rankin J.C. A comparison of steroid production in vitro and in vivo by the adrenal of the rat // J. Endocrinol. 1965. V. 33. N 2. P. 195. Vries C.R., Lomecky-Janousek M., Popp-Snijders C. Rapid quantitative assay of plasma 11-deoxycortisol and Cortisol by high-performance liquid chromatography for use in the metyrapone test. // Journal of Chromatography. 1980. V. 183. P. 87-91.

Walker S.W., Strachan M.W.J., Lightly E.R.T., Williams B.C., Bird I.M. Acetylcholine stimulates Cortisol secretion through the M3 muscarinic receptor linked to a polyphosphoinositide-specific phospholipase C in bovine adrenal fasciculata/reticularis cells // Molecular and Cellular Endocrinology. 1990. V. 72. P. 227-238.

Walker B.R., Campbell J.C., Williams B.C., Edwards C.R. Tissue-specific distribution of the NAD(+)-dependent isoform of 11 beta-hydroxysteroid dehydrogenase//Endocrinology. 1992. V. 131. N 2. P. 970-972. Watkins T.R., Smith A., Touchstone J.C. Reversed-phase thin-layer chromatography of estrogen glucuronides // Journal of Chromatography. 1986. V. 374. P. 221-222.

Weisman Y., Bar A. Root A., Spirer Z., Golander A. Rapid diagnosis of congenital adrenal hyperplasia by high-performance liquid chromatography. // Clinica Chimica Acta. 1984. V. 138. P. 1-8.

Whorwood C.B., Franklyn J.A., Sheppard M.C. Stewart P.M. Tissue localization of 11 beta-hydroxysteroid dehydrogenase and its relationship to the glucocorticoid receptor // J Steroid Biochem. Mol. Biol. 1992. V.41. N 1. P. 2128.

Whorwood C.B., Barber P.C., Gregory J., Sheppard M.C. Stewart P.M. 11 beta-hydroxysteroid dehydrogenase and corticosteroid hormone receptors in rat colon // Am. J. Physiol. 1993. V. 264. N 6, Pt 1. E951-E957.

Whorwood C.B., Ricketts M.L., Stewart P.M. Epithelial cell localization of type 2 11 beta-hydroxysteroid dehydrogenase in rat and human colon // Endocrinology. 1994. V. 135. N 6. P. 2533-2541.

de Wied D., Van der Wal B., van Goch J.J. Glucocorticoid and mineralcorticoid production in vitro as an index of in vivo adrenocortical activity // International Congress of Endocrinology 2d. London. 1964. P. 64.

Wintersteiger R., Gamse E. Quantitation of ketosteroids in pharmaceutical formulations and plasma in the picomole range // Proc. of the Symp. on the Analysis of Steroids, Eger, Hungary. 1981. P. 453-456.

Woodward C.J.H., Emery P.W. Determination of plasma corticosterone using high-performance liquid chromatography. // Journal of Chromatography. 1987. V. 419. P. 280-284.

Yahata T., Murazumi K., Kuroshima A. Stress- and cold-induced adrenocortical responses in repetitively immobilized or cold-acclimated rats. // Can. J. Physiol. Pharmacol. 1986. V. 65. P. 1448-1451.

Yau J.L., Van Haarst A.D., Moisan M.P., Fleming S., Edwards C.R., Seckl J.R. 11 beta-hydroxysteroid dehydrogenase mRNA expression in rat kidney // Am. J. Physiol. 1991. V. 260. N 5, Pt 2. P. F764-F767

Zhou M.Y., Gomez-Sanchez E.P., Cox D.L., Cosby D., Gomez-Sanchez C.E. Cloning, expression, and tissue distribution of the rat nicotinamide adenine dinucleotide-dependent 11 beta-hydroxysteroid dehydrogenase.// Endocrinology.

1995. V. 136. N 9. P. 3729-3734.