Роль липидов и белков в становлении биохимических адаптаций у эктотермных организмов тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.00.16, доктор биологических наук Смирнов, Лев Павлович

• Смирнов, Лев Павлович
• доктор биологических наук
• 2005

Оглавление диссертации доктор биологических наук Смирнов, Лев Павлович

Введение

Глава 1. Объекты и методы исследований

1.1 Общий список исследованных видов

1.2 Сбор материала и первичная обработка.

1.2.1 Сбор материала по микроорганизмам

1.2.2. Сбор материала по гельминтам и их хозяевам

Г.2.3. Сбор материала по низкомолекулярным пептидам

1.3. Методы исследований

1.3.1. Методы исследования липидов

1.3.2. Методы исследования белков и низкомолекулярных пептидов.

1.3.2.1. Жидкостная хроматография низкого давления (ЖХНД) на гелях ЗерЬаёех

1.3.2.2. Электрофорез белков

1.3.2.3. ЖХНД низкомолекулярных пептидов

1.3.2.4. Спектроскопический анализ пептидов

1.3.3. Получение препаратов лизосом

1.3.4. Определение активности ферментов

Глава 2. Влияние различных факторов на липиды и белки микроорганизмов

2.1. Введение (краткий обзор литературы)

2.2. Окружающая среда и липиды у различных видов микроорганизмов сем. У1Ьпопасеае

2.2.1. Липиды и жирные кислоты питательных сред

2.2.2. Липидный состав аэромонад, выращенных на разных средах

2.2.3. Экологическая вариабельность липидного состава разных штаммов А. 1гус1горЫ1а

2.2.4. Липиды представителей сем. У№попасеае, относящихся к разным ро

2.2.5. Экологическая вариабельность жирнокислотного состава A. hydrophila ^ и A. sobria

2.2.6. Жирнокислотный состав у штаммов A. hydrophila из разных географических зон и экологических ниш

2.2.7. Поиск видовых различий в жирнокислотных спектрах подвижных аэромонад

2.2.8. Жирнокислотный состав микроорганизмов, относящихся к разным ро-. дам сем. Vibrionaceae

2.2.9. Явление температурной преадаптации ЖК спектров у вибрионов

2.2.10. Подвижные аэромонады как биогенные экологические факторы (сравнительная биохимическая характеристика)

2.3. Белковый и ферментный комплексы некоторых видов подвижных аэромонад

2.3.1. Белковые спектры подвижных аэромонад, полученных из разных географических зон

2.3.2. Сравнительный анализ белкового состава и активности ферментов у вирулентного (77-18) и авирулентного (78-16) штаммов аэромонад

2.4. Стратегия создания вакцины против бактериальной геморрагической ML септицемии карповых рыб, вызываемой подвижными аэромонадами . 82 ^

Глава 3. Липиды и белки у гельминтов и их хозяев

3.1. Липиды и жирные кислоты у гельминтов

3.1.1. Липиды гельминтов (краткий обзор литературы)

3.1.2. Липиды гельминтов от холоднокровных и теплокровных хозяев

3.1.3. Характеристика липидного состава тканей палии и клуши

3.1.4. Характеристика липидного состава цестод E.crassum и D.dendriticum

3.1.5. Сравнительный анализ липидов цестод и их хозяев

3.2. Жирнокислотный состав липидов гельминтов и их хозяев.

3.2.1. Жирные кислоты гельминтов (краткий обзор литературы)

3.2.2. Жирнокислотный состав тканей палии (Salvelinus lepechini) и клуши {Larus fuscus) - среды первого порядка гельминтов E.crassum и D. dendriticum

3.2.3. Жирнокислотный состав цестод Е. crassum и D. dendriticum

3.2.4. Сравнительный анализ жирнокислотного состава Е. crassum, D. dendriticum и тканей их хозяев

3.2.5. Сравнительный анализ жирнокислотного состава некоторых видов гельминтов от теплокровных и холоднокровных хозяев

3.2.6. Влияние температурного шока на липиды и жирные кислоты плеро-церкоидов некоторых видов цестод

3.3. Жирные кислоты мембран лизосом цестод от холоднокровных и теплокровных хозяев

3.3.1. Лизосомы у гельминтов

3.3.2. Некоторые свойства лизосом гельминтов

3.3.3. Жирнокислотный состав мембран первичных лизосом Е. crassum и D. dendriticum

3.4. Белковый комплекс гельминтов от холоднокровных и теплокровных позвоночных и тканей их хозяев

3.4.1. Исследование белков гельминтов хроматографическими методами (краткий обзор литературы)

3.4.2. Водорастворимые белки цестод Е. crassum и D. dendriticum

3.4.3. Белковые спектры гельминтов, определяемые электрофоретическими методами (краткий обзор литературы)

3.4.4. Белковый состав цестод Е. crassum и D.dendriticum

3.4.5. Белковый состав первичных лизосом цестод Е. crassum и D.dendriticum

3.4.6. Белковые констелляции гельминтов и их хозяев.

3.4.6. Белковые констелляции у гельминта и хозяина, входящих в эктотермную и эндотермную системы "паразит-хозяин".

Глава 4. Влияние некоторых факторов среды на липиды и белки рыб

4.1. Липиды рыб при действии различных факторов

4.2. Жирнокислотный состав икры некоторых рыб, размножающихся при разных температурах

4.3. Влияние биотических факторов на липидный и жирнокислотный состав различных тканей карпа

4.3.1. Влияние микроорганизмов на фосфолипиды крови годовиков карпа

4.3.2. Влияние аэромонад на разных по физиологическому состоянию карпов

4.3.3. Влияние микроорганизмов на мембранные липиды питающихся и голодающих годовиков карпа

4.3.4. Влияние разных видов микроорганизмов на липидный и жирнокислотный состав крови карпа

4.3.5. Влияние гельминтов на липидный статус тканей рыб

4.4. Белки и пептиды рыб при действии различных факторов

4.4.1. Краткий обзор состояния проблемы

4.4.2. Влияние биотических факторов на белковый состав тканей карпа

4.4.2.1. Белковый состав тканей карпа при аэромонозе

4.4.2.2. Белковый состав тканей карпа при ихтиофтириозе

4.4.3. Влияние зимовки и активного плавания на количественное распределение водорастворимых белков мускулатуры карпа

4.4.4. Влияние техногенного загрязнения на состав водорастворимых белков мускулатуры сига

4.4.5. Влияние различных факторов среды на фракционный состав тканевых низкомолекулярных пептидов различных видов рыб

4.4.5.1. Металлотионеины и тионеинподобные белки рыб (краткий обзор литературы)

4.4.5.2. Применение спектрофотометрии при 250 нм вместо метода Эллмана для заключения о наличии сульфгидрильных групп в пептидах при решении задач эколого-биохимического тестирования

4.4.5.3. Качественные и количественные вариации состава низкомолекулярных пептидов мускулатуры окуня при аккумуляции разных концентраций ртути

4.4.5.4. Качественные и количественные вариации состава низкомолекулярных пептидов мускулатуры карася при аккумуляции разных концентраций р ртути

4.4.5.5. Вариации состава низкомолекулярных пептидов гепатопанкреаса карася при аккумуляции разных концентраций ртути

4.4.5.6. Сравнительный анализ реакции состава низкомолекулярных пептидов мускулатуры окуня и карася на интоксикацию ртутью

4.4.6. Влияние разных факторов окружающей среды на состав низкомолекулярных пептидов тканей рыб из естественных условий

4.4.6.1. Возрастные и половые вариации состава низкомолекулярных пептидов мускулатуры окуней из озер Чучъярви и Вуонтеленъярви

4.4.6.2. Возрастные изменения состава низкомолекулярных пептидов в мускулатуре самцов окуней

4.4.6.3. Количественные вариации состава низкомолекулярных пептидов печени самцов окуней двухлетнего возраста из озер Чучъярви и Вуонтеленъярви

4.4.6.4. Возрастные изменения состава низкомолекулярных пептидов в печени самок окуней из озер Чучъярви и Вуонтеленъярви

4.4.6.5. Сравнительный анализ динамики изменения состава низкомолекулярных пептидов печени самцов и самок в возрасте 2+ из оз. Чучъярви и Вуонтеленъярви

4.4.6.6. Фракционный состав пептидов мускулатуры окуней из разных по экологии озер Дарвиновского заповедника

4.4.6.7. Сравнительный анализ пептидов мускулатуры окуней из разных по экологии озер Дарвиновского заповедника и Карелии

4.4.7. Влияние техногенного загрязнения водоемов на фракционный состав низкомолекулярных пептидов тканей рыб

4.4.7.1. Количественная вариабельность состава низкомолекулярных пептидов печени сигов из водоемов с разным уровнем тяжелых металлов

4.4.7.2. Сравнительный анализ фракционного состава низкомолекулярных пептидов мускулатуры плотвы из Каскесозера и хвостохранилища Косто мукшского ГОКа

4.4.5.13. Сравнительный анализ фракционного состава низкомолекулярных пептидов мускулатуры щуки из Каскесозера и хвостохранилища Костомукшского ГОКа

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Роль липидов и белков в становлении биохимических адаптаций у эктотермных организмов»

Актуальность проблемы. Адаптация, представляющая собой способность живых организмов приспосабливаться к изменяющимся условиям окружающей среды с одновременным повышением вероятности выживания и самовоспроизводства, на клеточном и тканевом уровнях осуществляется включением биохимических механизмов, перестраивающих метаболизм за счет количественных и качественных преобразований (Харборн, 1985).

Вопросами изучения биохимических реакций, лежащих в основе приспособления организмов к экологическим условиям, как и аспектами механизмов биотрансформации ксенобиотиков занимается экологическая биохимия - наука, сформировавшаяся на стыке экологии и биохимии (Сидоров, ^ . 11983). Актуальность исследований в области экологической биохимии определяется не только возможностью получения данных об особенностях биохимической организации у разных по экологии групп животных и растений и изменения биохимических показателей в пределах нормы реакции при адаптациях к изменяющимся условиям среды, но также и данных, свидетельствующих о возникновении патологии в связи с ростом антропогенного воздействия на природу. Эти знания являются очень важными для понимания эволюции живых организмов, механизмов их адаптаций к разнообразным условиям существования, разработки проблем эволюции функций (Слоним, 1971; Шварц, 1980; Наточин, 1987; Наточин, Бройнлих, 1991), так как в основе морфологии и физиологии живых организмов лежит определенное своеобразие "химической организации во времени и пространстве" (Опарин, 1957). Изучение биохимического разнообразия ответных реакций необходимо и для решения задач, связанных с охраной природы, рациональным природопользованием, тестированием и мониторингом природных сред (Шульман, 1972; Лав, 1976; Биргер, 1979; Маляревская, 1979; Шатуновский, 1980; Щербина, 1980; Романенко и др., 1980, 1991; Сидоров , 1983; Лукья-ненко, 1983, 1987; Кошелев, 1984; Флеров, 1989; Хорунжая, 1989; Грубинко и др., 1995). Особенно отчетливо взаимосвязь между организмом и средой на биохимическом уровне можно проследить у эктотермных организмов, в частности у рыб, что связано с большей зависимостью холоднокровных животных от условий среды обитания. Тем не менее, изучению роли различных веществ, в том числе липидов и белков - главных компонентов химической основы любого живого существа, в развитии ответных реакций эктотермно-го организма на влияние внешних, в том числе антропогенных, факторов уделяется недостаточно внимания, хотя это очень важный аспект общей проблемы адаптаций. Поэтому концепция данной работы связана с выяснением роли липидов и белков у эктотермных организмов разной организации при их взаимодействии со средой обитания.

Цель и задачи исследования. Главная цель работы - установление причинно-следственных связей между различными абиотическими, биотическими, антропогенными факторами окружающей среды и качественной и количественной изменчивостью отдельных компонентов биохимического статуса эктотермных организмов, относящихся к различным классам, но в той или иной степени связанных с водной средой обитания: микроорганизмов, гельминтов и их хозяев, рыб.

Задачи исследования сводились к следующему: исследовать влияние температуры окружающей среды, географического распределения, гостальной специфичности на липидный и жирнокислот-ный состав микроорганизмов сем. УгЬпопасеае, являющихся обычным компонентом бактериальной флоры воды и важным биотическим фактором для рыб; выявить биохимические особенности микроорганизмов рода Аегото-паз на уровне липидов и белков, являющихся одной из патогенных компонент аэромонад, как биотического фактора и на основе этого создать бесклеточную вакцину против бактериальной геморрагической септицемии карповых и лососевых рыб, вызываемой подвижными аэромонадами; провести сравнительное изучение липидного и белкового составов гельминтов класса Сез1оёа, паразитирующих у холоднокровных и теплокровных позвоночных, тканей их хозяев на клеточном и субклеточном уровнях и выявить биохимические особенности, которые связаны с термическим фактором среды обитания; выявить у рыб изменения биохимических параметров, происходящие на уровне липидов, белков и низкомолекулярных соединений пептидной природы под действием некоторых факторов среды абиотического (температура), биотического (микроорганизмы, паразитические эукариоты) и антропогенного происхождения.

Научная новизна и теоретическое значение работы. Впервые проведено систематическое исследование изменений липидного и белкового состава разных групп эктотермных прокариотических и эукариотических организмов (микроорганизмов, гельминтов, рыб), обитающих в разных температурах по единой методической схеме. Получены новые данные на всех исследованных группах организмов, о соответствии степени ненасыщенности липидов температуре внутренней среды. Показано, что преадаптация эктотермных животных к вариабельному термическому режиму происходит на биохимическом уровне. Одним из способов реализации этого феномена является изменение качественных и количественных характеристик компонентов, входящих в состав организмов. На уровне липидов преадаптация реализуется через количественную модификацию спектра этих веществ, осуществляемую путем накопления соединений, физико-химические свойства которых соответствуют температурным условиям того или иного этапа онтогенеза эктотермного организма.

При изучении белковых спектров хроматографическими методами получены данные свидетельствующие в пользу высказанной ранее гипотезы, суть которой заключается в том, что белковый набор организма распределен по размерным группам, а не существует в виде "молекулярного континуума". Обнаружено, что количественный и качественный состав размерных белковых групп исследованных видов позвоночных животных имеет таксономический ранг.

Утверждается, что изменения на уровне белкового метаболизма у эу-кариотических организмов, сопровождающиеся ростом числа низкомолекулярных белков, могут быть связаны не только с эволюционным прогрессом в мире животных и растений, как постулировалось ранее (Благовещенский, 1966; Шульман, Куликова, 1966; Груздев и др., 1972; Смирнов 1977), но и с температурными различиями внутренней среды экто- и эндотермных животных.

Проведено широкое сравнительно-биохимическое изучение изменчивости показателей липидного и белкового обмена у рыб в ответных реакциях на воздействие факторов среды биотического происхождения (паразитических про- и эукариот). Ответные реакции на воздействие паразитических организмов на уровне липидного метаболизма реализуются через нарастание уровня фосфолипидов, содержащих полиеновые кислоты, происходящее в первые часы после контакта с биотическим фактором. В отличие от теплокровных позвоночных, у которых при контакте с патогеном варьирует содержание арахидоновой кислоты в липидах, у рыб наибольшей изменчивостью характеризуются более ненасыщенные эйкозапентаеновая и докозагек-саеновая кислоты.

Впервые исследован у рыб комплекс тканевых низкомолекулярных пептидов с молекулярными массами до 10 кДа. Показано, что фракционному составу пептидов у разных видов рыб присущи особенности таксономического ранга. Продемонстрирована количественная вариабельность пептидного пула под влиянием абиотических факторов среды естественного (процессы эвтрофикации водоемов) и искусственного (антропогенное загрязнение) происхождения.

Практическое значение работы.

Работа является частью многолетних исследований, проводимых в лаборатории экологической биохимии Института биологии Карельского научного центра РАН в рамках основных направлений исследования биологических наук РАН (5.15, 5.21). Полученные в ходе работы результаты изучения вариабельности показателей липидного и белкового метаболизма у рыб под влиянием различных абиотических и биотических факторов среды могут быть использованы при разработке систем эколого-биохимического мониторинга и тестирования экологической обстановки в водоемах.

На основе сравнительного анализа ряда биохимических характеристик (липидных и белковых спектров) разных штаммов аэромонад были определены подходы к созданию бесклеточных вакцин против бактериальных болезней рыб. Методическая и экспериментальная проработка вопроса позволила создать на базе вирулентного штамма Aeromonas sobria цитоплазмати-ческую вакцину ВЮС-2, обладающую поливалентными свойствами, т.е. высокоэффективную не только против микроорганизмов из группы подвижных аэромонад, но также проявившую протективные свойства в отношении неподвижных аэромонад и вибрионов и стимулирующую повышенную устойчивость рыб к воздействию Тг-микотоксина. На разработанный препарат получены 2 патента (патент (19) SU (11) 1839458 Al (51) 5 С 12 N1/20, А61К 39/02 от 23.01.1995 и патент (19) RU (И) 2080874 (13)С1 (51) 6 А61К39\02 от 10.06.1997).

Полученный материал может быть использован при чтении курса лекций «Экологическая биохимия животных» для студентов биологических факультетов ВУЗов.

Основные положения, выдвигаемые на защиту.

1. Эктотермные организмы разных систематических групп имеют общие механизмы биохимической адаптации к температуре окружающей среды на уровне липидного и белкового метаболизма.

2. Эктотермные организмы (микроорганизмы, гельминты, рыбы) приспосабливаются к значительным колебаниям термического режима окружающей среды путем реализации феномена преадаптации жирнокислотных радикалов липидов.

3. На уровне липидного метаболизма ответные реакции рыб на воздействие различных факторов среды биотического происхождения имеют как общие с теплокровными животными черты, так и специфические особенности.

4. Естественные и антропогенные факторы среды оказывают влияние на качественную и количественную вариабельность состава тканевых низкомолекулярных соединений пептидной природы у рыб.

Апробация работы. Основные результаты исследования были представлены на Всесоюзных, Всероссийских и региональных конференциях: IX сессии ученого совета "Биологические ресурсы Белого моря и внутр. водоемов Европейского севера", Петрозаводск, 1974; Науч. конф. биологов Карелии, поев. 250-летию АН СССР, Петрозаводск, 1974; Конф. молодых ученых и специалистов Карелии, Петрозаводск, 1975; III Всесоюз. конф. по экологической физиологии рыб, Киев, 1976; III Всесоюз. конф. по биохимии мышц, Ленинград, 1978; Всесоюз. конф. "Эвол. биохимия и происхождение жизни", Ереван, 1978; IV Всесоюз. конф. "Экологическая физиология и биохимия рыб", Астрахань, 1979; IV Всесоюз. биохимическом съезде, Москва, 1979; II Всесоюз. совещании по генетике, селекции и гибридизации рыб, Ростов-на-Дону, 1981; V Всесоюз. конф. по экологической физиологии и биохимии рыб, Севастополь, 1982; Всесоюз. конф. "Современные проблемы эволюционной биохимии и происхождения жизни", Петрозаводск, 1984; VI Всесоюз. конф. по экологической физиологии и биохимии рыб, Вильнюс, 1985; III Всес. симпозиуме "Структура и функции лизосом", Тбилиси, 1986; I симпозиуме по экологической биохимии рыб, Ярославль, 1987; VI Всесоюз. конф. по биохимии мышц, Тбилиси, 1989; VII Всесоюз. конф. по экологической физиологии и биохимии рыб, Ярославль, 1989; II симпозиуме по экологической биохимии рыб. Ярославль, 1990; IX Всесоюзное совещании по паразитам и болезням рыб. Ленинград, 1990; VIII науч. конф. по экологической физиологии и биохимии рыб, Петрозаводск, 1992; Всеросс. конф. "Биологические ресурсы Белого моря и внутренних водоемов Европейского Севера", Петрозаводск, 1995; Юбилейной науч. конф. "50 лет Карельскому научному центру Российской Академии наук", 1996; Всеросс. конф. "Экологическая физиология и биохимия осетровых рыб", Ярославль, 1997; Первом конгрессе ихтиологов России, Астрахань, 1997; конф. "Антропогенное воздействие на природу севера и его экологические последствия", Апатиты, 1998; IX Всероссийская конф. по экологической физиологии и биохимии рыб, Ярославль, 2000; IX Всероссийской конференции по экологической физиологии и биохимии рыб (Ярославль 2000); Всеросс. конф. "Проблемы воспроизводства, кормления и борьбы с болезнями рыб при выращивании в искусственных условиях", Петрозаводск, 2002; III Съезде биохимического общества, Санкт-Петербург, 2002; Всеросс. конф. "Проблемы патологии, иммунологии и охраны здоровья рыб и других гидробионтов", Москва, 2003; Российском симпозиуме по химии и биологии пептидов, Москва, 2003.

А так же и на международных конференциях: XVI conf. FEBS. Moscow, 1984; VII национальной конф. по паразитологии, Варна, Болгария, 1987; III International symposium "Problems of fish parasitology", Petrozavodsk, 1991; VII Intern. EAFP Conf., Spain, Palma de Mallorca, 1995; Межд. симпозиуме "Karelia and Norway: the main trends and prospects of scientifîc coopération", Petrozavodsk, 1997; 1 Межд. конф. Баренц Евро-Арктического региона "Биоиндикация и оценка повреждения организмов и экосистем", Петрозаводск, 1997; First Russia-USA symposium "Aquaculture and Fish Health". Moscow, 1998; II(XXV) Междунар. конф. "Биологические ресурсы Белого моря и внутренних водоемов Европейского Севера", Петрозаводск, 1999; 3 international Lake Ladoga symposium. Monitoring and sustainable management of Lake Ladoga and other large lakes, Petrozavodsk, 1999; Межд. конф. "Биологические основы изучения, освоения и охраны животного и растительного мира, почвенного покрова Восточной Фенноскандии", Петрозаводск, 1999; International Conference "Biodiversity of the European North" (Petrozavodsk, 2001); 3rd. International Symposium on Trace Elements in Human: New Perspectives (Athens, Greece, 2001); 11th International Symposium on Trace Elements in Man and Animals (California, USA, 2002); 21st Workshope "Essentiality and Toxicity of Macro, Trace and Ultratrace Elements" (Germany, 2002), XI Международном симпозиуме "Modern Problems of Bioindication and Biomonitoring", Syktyvkar, 2003.

Публикации. По теме диссертации опубликовано 130 работ, в том числе монография "Сравнительная биохимия гельминтов рыб: Аминокислоты, белки, липиды" JL: Наука. 1989. 152 с.

Структура и объем работы. Диссертация изложена на 411 страницах, в числе которых 70 таблиц и 52 рисунка. Она включает введение, информацию об объектах и методах исследования; 3 глав, состоящих из краткого обзора, описания результатов и их обсуждения; заключения, выводов и списка литературы, включающей 690 публикаций, из них 374 иностранных.

Заключение диссертации по теме «Экология», Смирнов, Лев Павлович

ВЫВОДЫ

1. Показан эффект биохимической преадаптации количественных соотношений жирнокислотных радикалов липидов к будущему термическому режиму среды обитания у эктотермных организмов разной организации от прокариот (микроорганизмов) до низших позвоночных эукариот (рыб), обитающих в средах с высокой вариабельностью температурных условий, либо онтогенез которых связан со сменой условий резко различающихся по температуре.

2. На разных группах микроорганизмов из сем. УгЬпопасеае (подвижных и неподвижных аэромонадах, вибрионах, псевдомонадах), типичных представителях бактериальной флоры, подтвержден факт таксономической значимости тотальных липидов, установленный ранее для других видов бактерий. Различия по липидным спектрам между исследованными микроорганизмами связаны также и с феноменом преадаптации к условиям окружающей среды, из которых они были изъяты, и сохраняются при длительном культивировании в лабораторных условиях.

3. Выявлена экологическая вариабельность состава жирных кислот у аэромонад, псевдомонад и вибрионов, но ее размах незначителен, поэтому количественная характеристика жирнокислотных спектров может быть использована как дополнительный хемотаксономический критерий родового ранга. Обнаружено, что долевое распределение между кислотами (в пределах таксономических границ), отражает, подобно составу тотальных липидов, экологическую приуроченность вида.

4. Сравнительный анализ электрофоретических белковых спектров 73 штаммов бактерий р. Аеготопаз, собранных в разных регионах России и Молдавии, показал, что набор белков с М.м. ниже 30 кДа является таксономической особенностью этого рода. Видовыми характеристиками являются качественные и, в основном, количественные различия в группе белков с М.м. 30-60 кДа.

5. Обнаружено, что вирулентность подвижных аэромонад связана с комплексом биохимических признаков, а именно: более высоким по сравнению с непатогенными или слабопатогенными штаммами уровнем нечетных жирных кислот в липидах, протеолитической активностью в широком диапазоне рН, концентрацией белков с молекулярными массами 30-60 кДа. Экспериментальное использование препаративно выделенного набора белков с М.м. 30-60 кДа в качестве протективных антигенов стимулировало у рыб развитие иммунитета против аэромонад. На базе этих исследований была создана поливалентная бесклеточная вакцина, показавшая высокую эффективность не только при бактериальной геморрагической септицемии, вызываемой подвижными аэромонадами, но и при фурункулезе и вибриозе лососевых, энте-росептических инфекциях смешанной этиологии, а также при отравлении Т2-микотоксином.

6. На разных уровнях (тканевом и мембранном) у гельминтов, паразитирующих у экто- и эндотермных позвоночных, показана четкая зависимость количественного состава жирных кислот суммарных липидов паразитов от температуры внутренней среды хозяев и подтвержден постулат о соответствии степени ненасыщенности липидов биомембран клеток окружающей температуре, абсолютно необходимом для эктотермных организмов, подавляющее большинство видов которых полностью зависит от термического режима среды обитания.

7. Установлено, что фракционный состав водорастворимых тканевых белков гельминтов и их хозяев, определяемый методами гель-хроматографии и электрофореза отражает, во-первых, таксономическую специфику; во-вторых, у паразитов и позвоночных, образующих систему "паразит-хозяин" существует сходство по физико-химическим свойствам белковых фракций, определяемое сопряженной эволюцией сочленов системы; в-третьих, между "низкотемпературной" и "высокотемпературной" системами "паразит-хозяин" выявлены различия, которые связаны с термических режимом внутренней среды исследованных организмов (уменьшение молекулярных масс белков, увеличение числа быстро мигрирующих компонентов) и подтверждают гипотезу о том, что эволюционный процесс направлен на поддержание соответствия конформационной гибкости белковых молекул температурным условиям существования вида через модификацию их строения.

8. Показано, что у рыб в процессе развития генеративных тканей количественный состав жирных кислот в липидах половых продуктов формируется в соотношениях, которые соответствуют генетически детерминированному диапазону термотолерантности воспроизводства, и в определенной степени, в отличие от такового соматических тканей, независим от реальных температурных условий, а преадаптирован к температуре размножения, специфичной для того или иного вида.

9. Адаптации рыб на уровне липидного и белкового метаболизма к воздействию биотических факторов среды (микроорганизмы, паразитические эука-риоты) реализуются через быструю количественную вариабельность основных фракций тотальных липидов и входящих в их состав жирных кислот, главным образом арахидоновой, эйкозапентаеновой и докозагексаеновой. Изменения в белковых спектрах происходят при длительном влиянии биотических факторов.

10. Установлено, что у рыб набор тканевых низкомолекулярных пептидов в диапазоне молекулярных масс 1-10 кДа имеет половую и таксономическую специфику, а их количественная вариабельность зависит от действия разнообразных факторов окружающей среды. Показано, что низкомолекулярные пептиды участвуют как в быстрых ответных реакциях организма на изменение условий внешней среды, так и при адаптациях к хроническому влиянию тех или иных факторов. Количественные модификации фракционного состава тканевых низкомолекулярных пептидов можно использовать как дополнительный индикатор состояния гидробионтов при эколого-биохимическом мониторинге и тестировании водоемов.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

Основной целью настоящей работы было выяснение особенностей изменений в липидных и белковых составах у эктотермных организмов разной организации - прокариотов и эукариотов (микроорганизмов, гельминтов, рыб), под действием различных факторов окружающей среды абиотического (температура, антропогенное воздействие) и биотического (взаимодействие рыб с паразитическими организмами) происхождения.

Эктотермные (пойкилотермные) организмы в большей степени, чем эндотермные (гомойотермные), зависимы от особенностей среды. Необходимость приспосабливаться к постоянно меняющимся внешним условиям сформировала в процессе эволюции у эктотермов способность адекватно реагировать на колебания экологических факторов путем использования различных биохимических адаптивных механизмов. Одним из таких механизмов является количественная вариабельность липидного состава. Именно липиды в силу особенностей химического состава и строения, жидкокристаллической структуры наилучшим образом подходят на роль главных участников адаптивных реакций на биохимическом уровне. Недаром Е.М. Крепе (1981) обозначил липиды как "молекулы адаптации". Как показали исследования, проведенные нами и другими авторами на эктотермных организмах разного уровня организации (микроорганизмах, гельминтах, рыбах), их липидный состав отличается высоким уровнем вариабельности под действием разнообразных факторов среды. В частности, нами обнаружены изменения в липидных спектрах микроорганизмов сем. УгЬпопасеае, связанные с определенной экологической приуроченностью - обитание в воде или полости тела рыбы. Выявлены различия между штаммами микроорганизмов, собранными в разных географических зонах. Учитывая темпы размножения бактерий и соответственно скорость, с которой масса генетических вариантов вступает в поле эволюционных преобразований, логично прогнозировать нивелировку количественных липидных соотношений в процессе продолжительного культивирования штаммов в лабораторных условиях. Тем не менее, полученные нами данные свидетельствуют, что количественная вариабельность липидных спектров у разных штаммов имеет отличия, определяемые спецификой той среды, к которой микроорганизмы были адаптированы в природе, и сохраняющиеся при стандартизированном режиме выращивания. Этот парадокс можно объяснить с позиций биохимической преадаптации липидных спектров бактерий к условиям существования, постулирующей, что количественная изменчивость липидных фракций колеблется в границах, определяемых "генетической памятью", то есть в процессе эволюции закрепилась естественным отбором и контролируется геномом. Если генетически закрепленные границы вариабельности не выходят за пределы нормы реакции генов, отвечающих за метаболизм липидов и не нарушают нормальной жизнедеятельности бактериальной клетки в новых условиях, например, при культивировании на искусственных средах, то они продолжают поддерживаться естественным отбором, что и показано нашими исследованиями.

Эффект преадаптации обнаруживается и при исследовании состава жирнокислотных радикалов липидов. Количественные соотношения жирных кислот изменяются под влиянием различных факторов, среди которых главным фактором, без преувеличения, является термический режим среды обитания. Несмотря на то, что процессы жизнедеятельности у пойкилотермных организмов сохраняются при температурах от —50 до +100°С (Озернюк, 1992), подавляющее большинство эктотермных животных адаптировано к термическому режиму, изменяющемуся от 0 до +45°С. При этом каждый вид обычно характеризуется определенным эволюционно сформированным диапазоном термотолерантности. Исследованные нами представители сем. Vi-brionaceae - это обычный микробиологический компонент водных биоценозов. Они являются факультативными психрофилами и обитают при температурах от 0 до +30°С. Проведенные нами исследования показали, что жирно-кислотные спектры у микроорганизмов вида Vibrio anguillarum в значительной степени преадаптированы к термическому режиму региона обитания того или иного штамма. Информация о температурнозависимой специфике количественных соотношениях жирных кислот, записанная в "генетической памяти" у этих бактерий, может, по-видимому, сохраняться неопределенно долго, поскольку не элиминируется при продолжительном лабораторном культивировании штаммов в стабильных условиях. I

Многочисленные литературные данные свидетельствуют о наличии соответствия степени ненасыщенности жирнокислотных радикалов липидов температуре внутренней среды организма (Крепе, 1981). Тем не менее,'мы получили данные, указывающие на существование у исследованных нами эктотермов (гельминтов и рыб) некоторых отличий, заключающихся в несоответствии количественных соотношений пула ненасыщенных жирных кислот в тканях реальному термическому режиму. На наш взгляд, это связано с эффектом преадаптации. Существование феномена биохимической преадап-тации количественных соотношений жирнокислотного пула липидов представляется совершенно необходимым для тех групп организмов, онтогенез которых сопряжен с очень быстрой, по сути мгновенной, сменой термических условий внешней среды. Например, у некоторых видов паразитов со сложным циклом развития чередование стадий сопровождается последовательной сменой сред, резко различающихся по температуре (холоднокровные и теплокровные хозяева). Например, состав жирных кислот у преимаги-нальных стадий цестод подотряда В1рку11оЬоШпа1а, развивающихся в холоднокровных хозяевах, в значительной мере соответствует температурам не промежуточных (рыбы — 10-15°С), а дефинитивных хозяев (птиц и млекопитающих - 40°С), то есть по этому биохимическому показателю инвазионная личинка преадаптирована к будущему термическому режиму среды обитания. Ранее рядом исследователей был установлен факт высокой ненасыщенности жирнокислотных радикалов тотальных липидов у ленточных гельминтов, паразитирующих у теплокровных позвоночных, не отвечающий вышеуказанной аксиоме. На имагинальных стадиях цестод р. и1рку11оЪо^гшт нами было установлено, что кажущееся несоответствие связано с преадаптаци-. ей количественных соотношений жирнокислотных спектров к низкой температуре будущей среды обитания у половых продуктов, синтезируемых в колоссальных количествах, поскольку существование этих видов ленточных гельминтов в природе обеспечивается путем реализации г-стратегии.

Для пресноводных рыб умеренных и северных широт России полигон термотолерантности ограничен значениями температур приблизительно от О до 25-38°С (Голованов и др., 1997). Размножение является уязвимым процессом, поскольку происходит в более узком термическом диапазоне, чем это необходимо для питания, роста и развития (Бигон и др., 1989). В процессе эволюции у рыб на уровне липидного обмена появились механизмы согласования процесса воспроизводства со специфичными для каждого вида температурными условиями размножения, одним из которых является пре-адаптация состава жирных кислот липидов генеративных тканей. Например, у карпа (нижний предел температуры размножения - +17-18°С) жирнокис-лотный состав икры перед нерестом становится более насыщенным, чем таковой соматических органов, а у озерного лосося (верхний лимит - +7°С) ненасыщенность липидов икры начинает превышать таковую других тканей.

Липиды, как "молекулы адаптации", участвуют в ответных реакциях организма на воздействие различных факторов среды абиотической и биотической природы у всех живых существ - прокариотов и эукариотов, экто-термных и эндотермных организмов путем альтерации жирнокислотных радикалов. Нами установлено, что у рыб при взаимодействии с биотическими факторами среды (паразитические про- и эукариоты) адаптивные реакции различного временного масштаба сопряжены в значительной мере с вариацией количественных соотношений эйкозапентаеновой (Сго^) и докозагек-саеновой (С22.6) кислот в тканевых липидах в отличие от таковых теплокровных млекопитающих, для которых в аналогичной ситуации характерна модуляция уровня арахидоновой (Сгсы) кислоты.

В отличие от липидов, набор белков с молекулярными массами 10 — 200 кДа, исследованных нами методами гель-хроматографии и диск-электрофореза видов прокариотов и некоторых групп эктотермных эукарио-тов, отличался высокой качественной стабильностью. На рыбах также продемонстрирована низкая количественная вариабельность этих соединений. По-видимому, высокомолекулярные полипептиды должны быть отнесены к группе веществ, слабо реагирующих на быстрые изменения экологической обстановки в окружающей среде, потому что именно на белки эволюцией возложена задача поддержания постоянства функционирования метаболических систем организма в нестабильных внешних условиях. Это фундаментальное свойство белковых молекул было использовано нами при выделении из высоко вирулентного штамма аэромонад группы белков с молекулярными массами 50-70 кДа и создании на их базе эффективной биохимической вакцины против бактериальной геморрагической септицемии карповых и лососевых рыб, также стимулирующей высокий протективный эффект при фурункулезе, вибриозе и интоксикации Тг-микотоксином.

При сравнительном изучении белковых составов гельминтов от холоднокровных и теплокровных позвоночных и их хозяев получены данные, свидетельствующие в пользу гипотезы В.Я. Александрова (1975) о конформа-ционном соответствии белков температуре окружающей среды, а именно: процесс эволюционной адаптации видов при освоении экологических ниш с разными температурными условиями сопровождается изменением размеров белковых молекул - уменьшением при высоких температурах или увеличением при низких.

В наших исследованиях была выявлена высокая чувствительность состава низкомолекулярных пептидов к воздействию разнообразных внешних факторов (включая наиболее часто встречающиеся загрязняющие вещества), что позволяет рекомендовать качественный и количественный анализ фракционного состава этих веществ в качестве одного из информативных показателей для системы эколого-биохимического мониторинга и тестирования водоемов. Несомненно полезным может быть такой подход при установлении токсичности промышленных стоков, выявлении основных загрязнителей, оценке физиологического состояния гидробионтов в водоемах, испытывающих антропогенную нагрузку.

Таким образом, проведенные исследования показали, что в основе ответных реакций эктотермного организма на изменение окружающих условий лежат разнообразные биохимические адаптационные механизмы, в реализации которых одну из главных ролей играют липиды и соединения пептидной природы (белки и олигопептиды). Изучение биохимических особенностей приспособительных реакций на уровне метаболизма липидов и белков позволяет глубже понять такое фундаментальное свойство живых существ, как персистенция в сильно изменчивых условиях среды обитания.

Список литературы диссертационного исследования доктор биологических наук Смирнов, Лев Павлович, 2005 год

1. Аврова Н.Ф., Обухова, Крепе Е.М. Ганглиозиды в мозгу рыб и представителей других классов позвоночных Н Физиология и биохимия пресноводных животных. Л.: Наука. 1980. С. 130-135.

2. Акулин В.Н., Чеботарева М.А., Крепе Е.М. Жирные кислоты фосфоли-пидов мозга, мышц и печени проходного лосося Oncorhynchus пегка в пресноводных и морских условиях // Журн. эвол. биохим. и физиол. 1969. Т. 5. С. 448-456.

3. Акулин В.Н., Карединт Е.П., Первунинская Т.А. Состав жирных кислот липидов крупных тихоокеанских зоопланктеров II Гидробиол. журн. 1975. Т. 11. С. 45-49.

4. Алабастер Д., Лойд Р. Критерии качества воды для пресноводных рыб. М.: Легкая и пищевая пром-сть. 1984. 343 с.

5. Александров В.Я. Клетки, макромолекулы и температура. М.: Наука. 1975.330 с.

6. Александров В.Я. Реактивность клеток и белки. Л.: Наука. 1985. 318 с.

7. Александров В.А., Кислюк И.М. Реакция клеток на тепловой шок: физиологический аспект // Цитология. 1994. Т. 36, №1. С. 5-59.

8. Алексеенко Л.П. Современные методы в биохимии. М.: Медицина, 1968 а. Т.2. С. 112.

9. Алексеенко Л.П. Современные методы в биохимии. М.: Медицина, 1968 б. Т.2.С. 130.

10. Алимова Е.К., Асвацатурьян А.Т., Жаров Л.В. Липиды и жирные кислоты в норме и при ряде патологических состояний. М.: Медицина, 1975.279 с.

11. Алтухов Ю.П., Рычков Ю.Р. Генетический мономорфизм вида и его возможное биологическое значение // Журн. общ. биол. 1972. Т. 33, №3. С. 281-300.

12. Аркинд М.В., Раева И.И. Мембранное (пристеночное) пищеварение у цестод // Журн. эволюц. биохимии и физиологии. 1971. Т. 7, № 4. С. 375-379.

13. Атлас пресноводных рыб России. М.: Наука. 2002. Т. 1. 380 с.

14. Афанасьев В.И. Аэромоноз рыб и меры борьбы с ним //Автореф. дисс. на соиск. уч. степени докт. вет. наук. М. 1979. 37 с.

15. Баллад Н.Е. Иммунохимическая характеристика антигенов, выделенных из личиночных стадий Taeniarhynchus saginatus II Мед. паразитол. и па-разитар. болезни. 1973. Т. 12, № 2. С. 131-136.

16. Бауер О.Н., Мусселиус В.А., Стрелков Ю.А. Болезни прудовых рыб. М. : Легкая и пищевая промышленность. 1981. 320 с.

17. Бахолдина С.И., Красикова И.Н., Шубин Ф.Н., Бузолева Л.С., Соловьева Т.Ф. Влияние способа культивирования и фазы роста на липидный состав Yersinia pseudotuberculosis II Биохимия. 2001. Т. 66, вып. 4. С. 511 — 519.

18. Безбородов A.M., Астапович Н.И. Секреция ферментов у микроорганизмов. М.: Наука, 1984. 69 с.

19. Беляев В.И., Николаев В.М., Шульман Г.Е., Юнева Т.В. Тканевый обмен. Киев: Наукова Думка, 1983.144 с.

20. Беляков В.Д., Ряпис Л.А., Илюхин В.И. Псевдомонады и псевдомонозы. М.: Медицина. 1990. 224 с.

21. Бережко В.К. Анализ белковых экстрактов из половозрелых Dictyocau-lus filaría и Dictyocaulus viviparus методом дискового электрофореза // Бюлл. ВИГИСа. 1969. Т. 3. С. 14-18.

22. Бережко В.К. Анализ антигенной структуры Dictyocaulus jilaria и Dictyocaulus viviparus 11 Тр. ВИГИСа. 1971. Т. 17. С. 281-282.

23. Берчфилд Г., Сторрс Э. Газовая хроматография в биохимии. М.: Мир. 1964. 620 с.

24. Бигон M., Харпер Дж., Таунсенд К. Экология особи, популяции и сообщества. М.: Мир. 1989. Т. 1. 667 с.

25. Биохимия молоди пресноводных рыб. Петрозаводск: Карельский филиал АН СССР. 1985. 144 с.

26. Биохимия молоди рыб в зимовальный период. Петрозаводск: Карельский филиал АН СССР. 1987. 144 с.

27. Биохимия экто- и эндотермных организмов. Петрозаводск: Карельский филиал АН СССР. 1989. 158 с.

28. Биохимические методы в экологических и токсикологических исследованиях. Петрозаводск: Карельский научный центр РАН. 1993. 234 с.

29. Биргер Т.Н. Метаболизм водных беспозвоночных в токсической среде. Киев: Наук, думка, 1979. 190 с.

30. Благовещенский A.B. Биохимическая эволюция цветковых растений. М.: Наука. 1966. 327 с.

31. Богдан В.В. Липиды молоди карпа в процессе зимовки // Автореф. дисс. на соиск. уч. степ. канд. биол. наук. Харьков. 1986. 16 с.

32. Богдан В.В., Лысенко П.В., Яржомбек A.A. Липидный состав печени и мышц годовиков карпа после зимовки // Сравнительная биохимия водных животных. Петрозаводск: Карельский филиал АН СССР. 1983. С. 66-72.

33. Богдан В.В., Смирнов Л.П. Влияние аэромонадной инфекции на мембранные липиды некоторых тканей питающихся и голодающих годовиков карпа Cyprinus carpió II Вопр. ихтиологии. 2000. Т. 40, № 1. С. 128132.

34. Богдан В.В., Смирнов Л.П., Сидоров B.C. Изучение белкового состава лизосомальных мембран печени рыб методом электрофореза в полиак-риламидном геле // Биохимия пресноводных рыб Карелии. Петрозаводск: Карельский филиал АН СССР, 1980. С. 74-81.

35. Богдан В.В., Смирнов Л.П., Сидоров B.C. Жирнокислотный состав бактерии Vibrio anguillarum II Прикладная биохимия и микробиология. 1998. Т. 34, №2. С. 183-185.

36. Богдан В.В., Смирнов Л.П., Сидоров B.C. Влияние аэромонад разной патогенности на жирнокислотный состав фосфолипидов крови карпа // Прикладная биохимия и микробиология. 1999. Т. 35. № 2. С. 236-238.

37. Богдан В.В., Смирнов Л.П., Немова H.H., Крупнова М.Ю., Юхименко Л.Н. Сравнительное изучение некоторых биохимических показателей у патогенного и непатогенного штаммов аэромонад // Изв. АН. Сер. биол. 2000. № 5. С. 533-537.

38. Богдан В.В., Смирнов Л.П., Рипатти П.О. Сравнительный анализ жир-нокислотных спектров бактерии Aeromonas hydrophila, выращенной на разных средах // Биохимия экто- и эндотермных организмов. Петрозаводск: Карельский филиал АН СССР, 1989а. С. 75-79.

39. Богдан В.В., Головина H.A., Смирнов Л.П., Юхименко Л.Н. Влияние аэромонадной инфекции на фосфолипиды крови годовиков карпа // Сборник научных трудов. Болезни рыб. М.: ВНИИПРХ. 1991. Вып. 63. С. 33-39.

40. Богдан В.В., Маркова Л.В. Определение липидного состава лимфоцитов крови карпов при бактериальных инфекциях // Биохимические методы в экологических и токсикологических исследованиях. Петрозаводск : Карельский научный центр РАН. 1993. С. 36 40.

41. Богдан В.В., Юхименко Л.Н., Смирнов Л.П. Влияние экспериментальной аэромонадной инфекции на тканевые липиды карпа // Тез. Докл. VII Всес. конф. по экологической физиологии и биохимии рыб. Ярославль. 19896. С. 52-53.

42. Болгова О.М. Липидный состав речной и заводской молоди лосося. Дисс. на соиск. уч. степ. канд. биол. наук. Ленинград. 1978. 155 с.

43. Болгова О.М. К вопросу о роли жирных кислот в адаптациях рыб // Теоретические аспекты экологической биохимии. Петрозаводск: Карельский научный центр РАН. 1993. С. 73-78.

44. Болгова О.М., Богдан В.В, Рипатти П.О. Влияние температурного фактора на жирнокислотный состав рыб // Сравнительная биохимия водных животных. Петрозаводск: Карельский филиал АН СССР. 1983. С. 52-61.

45. Болгова О.М., Рипатти П.О., Сидоров B.C. О жирнокислотном составе икры некоторых видов рыб // Сравнительные аспекты биохимии рыб и некоторых других животных. Петрозаводск : Карельский филиал АН СССР. 1981. С. 113-115.

46. Болгова О.М., Ефимова E.H., Лазарева И.П., Богдан В.В., Нефедова З.А., Гурьянова С.Д. Жирнокислотный состав кормов карпа // Биохимия молоди пресноводных рыб. Петрозаводск: Карельский филиал АН СССР. 1985. С. 23-27.

47. Бухарин О.В. Персистенция патогенных бактерий. М.: Медицина. 1999. 366 с.

48. Василев И., Осиковски Е. Сравнителни електрофоретични изследованияна водоразтворимите белтъци от филофталмуси събиране в България и Югославия // Изв. на централната хелминтол. лаборатория. 1974. Т. 17. С. 43-50.

49. Василев И., Командарев С., Михов JL, Канев И. Сравнителни електро-форетични изследования на някои видове от род Echinostoma с 37 шипа на яката // Хелминтология. 1978. Т. 6. С. 31-38.

50. Васильков Г.В., Грищенко Л.И., Енгашев В.Г., Канаев А.И., Ларькова З.И., Осетров В.С. Болезни рыб. Справочник. М.: Агропромиздат. 1989. 288 с.

51. Васюренко 3. П., Синяк К.М., Лукач И.Г. Дифференциация бактерий группы Proteus Providencia по жирнокислотному составу, определяемому газохроматографическим методом // Изв. АН СССР. Сер. биол. 1975. №6. С. 827-836.

52. Васюренко 3. П., Синяк К.М. Состав жирных кислот бактерий родов Escherichia, Salmonella и Shigella // Изв. АН СССР. Сер. биол. 1976. № 3. С. 410-417.

53. Васюренко 3. П., Синяк К.М., Гвоздяк Р.И., Кабашная Л.В. Дифференциация некоторых видов рода Erwinia по составу клеточных жирных кислот // Изв. АН СССР. Сер. биол. 1977. №1. С. 132 139.

54. Васюренко 3. П., Знаменский В.А. Состав жирных кислот бактерии рода Yersinia //Микробиол. журн. 1980. Т. 42, № 4. С. 462 469.

55. Васюренко 3. П. Жирнокислотный состав энтеробактерий как таксономический признак // Биохимия и биофизика микроорганизмов. Горький, 1982. Сб. 10. С. 54-59.

56. Васюренко З.П., Андреева 3. М., Ершова Е.Б. Особенности состава клеточных жирных кислот штаммов Klebsiella pneumoniae серовара kl // Ж. микробиологии. 1989. № 6. С. 25-30.

57. Ведемейер Г.А., Мейер Ф.П., Смит Л. Стресс и болезни рыб. М. : Легкая и пищевая пром-сть. 1981. 128 с.

58. Володин В.М. Влияние температуры и растворенной углекислоты на эмбриональное развитие леща // Бюлл. Ин-та биологии водохранилищ. 1960а. №7. С. 31-34.

59. Володин В.М. Влияние температуры на эмбриональное развитие щуки синца и густеры // Тр. Ин-та биологии водохранилищ АН СССР. М.; JI. 19606. Вып. 3(6). С. 321-237.

60. Воронец А.Н., Доброва Ю.Е. Химия и биохимия липидов (1963-1972). М.: Наука. 1972.315 с.

61. Высоцкая Р.У. Углеводный, липидный и аминокислотный состав некоторых гельминтов пресноводных рыб // Автореф. дис. . канд. биол. наук. Петрозаводск, 1973. 20 с.

62. Высоцкая Р.У., Сидоров B.C. О содержании липидов у некоторых гельминтов пресноводных рыб // Паразитология. 1973. Т. 7, №1. С. 51-57.

63. Выхрестюк Н.П., Ярыгина Г.В. Липиды цестоды Bothriocephalus scorpii II Журн. эволюц. биохимии и физиологии. 1982. Т. 18, № 4. С. 419-422.

64. Выхрестюк Н.П., Ярыгина Г.В., Андреева Л.И. Характеристика липидов у нематоды Mecistocirrus digitatus II Журн. эволюц. биохимии и физиологии. 1974. Т. 10, вып. 2. С. 153-157.

65. Выхрестюк Н.П., Ярыгина Г.В., Никитенко Т.Б. К вопросу о происхождении липидов у плоских паразитических червей // Тр. Биол.-почв. инта ДВНЦ АН СССР. 1977. Т. 47(150). С. 117-123.

66. Гагарин В.Г. Изменчивость степени гостальной специфичности в результате полиморфности видов-паразитов и их хозяев // Проблемы общей и прикладной гельминтологии. М.: Наука. 1973. С. 35-41.

67. Голованов В.К., Свирский A.M., Извеков Е.И. Температурные требования рыб Рыбинского водохранилища и их реализация в естественных условиях // Современное состояние рыбных запасов Рыбинского водохранилища. Ярославль: ИБВВ РАН. 1997. С. 92-116.

68. Головина H.A. Итоги и перспективы гематологических исследований в ихтиопатологии // Вопросы паразитологии и патологии рыб. Л., ЗИН. 1987. С. 115-125.

69. Горизонтов П.Д., Белоусова О.И., Федотова М.И. Стресс и система крови. М.: Медицина. 1983. 240 с.

70. Горошинская И.А., Сидоренко Ю.С., Голотина Л.Ю., Неродо Г.А., Бор-дюшков Ю.Н., Малютина Л.И., Нескубина И.В. // Микровязкость мембран лимфоцитов у больных раком яичников при химиотерапии. Второй съезд биохим. общ-ва РАН. Пущино. 1977. ч. И. С. 416-417.

71. Грубинко В.В., Смольский A.C., Коновец И.Н., Арсан О.М. Гемоглобин рыб при действии аммиака и солей тяжелых металлов // Гидробиол. журн. 1995. Т. 31, № 4. С. 82-87.

72. Груздев А.И., Сидоров B.C., Смирнов Ю.А. Применение метода диск-электрофореза в полиакриламидном геле для изучения сывороточных белков лососевых рыб // Лососевые (Salmonidae) Карелии. Вып. 1. Петрозаводск. 1972. С. 125-133.

73. Гулидов М.В., Попова К.С. Динамика вылупления и морфологические особенности вылупившихся зародышей плотвы Rutilus rutilus (L.) в зависимости от температур инкубации // Вопр. ихтиол. 1979. Т. 19, вып. 5(118). С. 868-873.

74. Гурин В.Н. Обмен липидов при гипотермии, гипертермии и лихорадке. Мн.: Беларусь. 1986. 190 с.

75. Гурьянова С.Д. Фосфолипидный состав плероцеркоидов рода Diphyllo-bothrium II Биологические проблемы Севера. Петрозаводск : Карельский филиал АН СССР. 1976. С. 127-129.

76. Гурьянова С.Д. Некоторые показатели липидного и белкового обмена мышц налима и окуня в норме и при инвазии плероцеркоидами лентецаширокого // Экологическая биохимия и физиология рыб. Астрахань. 1979. Т. 1.С. 75-76.

77. Гурьянова С.Д. Липидный состав отдельных тканей налима при заражении их гельминтами // Биохимия пресноводных рыб. Петрозаводск: Карельский филиал АН СССР. 1980. С. 36-40.

78. Гурьянова С.Д. Липидный и аминокислотный состав плероцеркоидов цестод рода Diphyllobothrium II Автореф. дисс. .канд. биол. наук. Л.: ЛГУ. 1982. 26 с.

79. Гурьянова С.Д., Сидоров B.C. Содержание липидов в плероцеркоидах лентеца широкого // Новое в физиологии и биохимии пушных зверей. Петрозаводск: Карельский филиал АН СССР, 1977. С. 110-114.

80. Гурьянова С.Д., Сидоров B.C. Влияние некоторых цестод на липидный состав тканей налима и колюшки // Паразитология. 1985. Т. 19, вып. 2. С. 152-156.

81. Гурьянова С.Д., Юхименко Л.Н., Рипатти П.О. Мусселиус В.А. Липид-ные показатели годовиков карпа при аэромонозе // Биохимия молоди пресноводных рыб. Петрозводск: Карельский филиал АН СССР. 1985. С. 58-62.

82. Гурьянова С.Д., Фрезе В.И. Содержание липидов в различных эко- и гостальных формах плероцеркоидов рода Diphyllobothrium II Экологическая биохимия животных. Петрозаводск: Карельский филиал АН СССР, 1978. С. 24-33.

83. Гурьянова С.Д., Фрезе В.И. Липидный состав личиночной и взрослой форм цестод // Сравнительные аспекты биохимии рыб и некоторых других животных. Петрозаводск: Карельский филиал АН СССР, 1981. С. 116-121.

84. Гурьянова С.Д., Фрезе В.И., Сидоров B.C. Содержание липидов у различных гостальных экоформ плероцеркоидов лентеца широкого // Науч. конф. биологов Карелии, посвященная 50-летию образования СССР: Тез. докл. Петрозаводск. 1972. С. 61-62.

85. Гусева Н.В. Иммунный ответ рыб объектов аквакультуры на вакцинацию против бактериальных заболеваний // Автореф. дисс. . канд. биол. наук. М. 1998. 25 с.

86. Дамска М.Н., Платпира В.П. Влияние гербицида 2,4-ДУ на фосфоли-пидный состав митохондрий печени карпа // Экспериментальная водная токсикология. Рига.: Зинатне. 1976. Вып. 6. С. 145-155.

87. Даскалов П., Командарев С., Михов JI. Върху белтъчните фракции на различните морфолигични типове женски Haemonchus contortus II Изв. Центр, хелминтол. лабор. Бълг. АН. 1972. Т. 15. С. 57-67.

88. Детерман Г. Гель-хроматография. М.: Мир, 1970. 252 с.

89. Дегтева Г.К., Блохина И.Н. Белковые спектры клетки бактерии в таксономическом аспекте // Усп. микробиологии. М. 1984. Т. 19. С. 3-34.

90. Догель В.А. Курс общей паразитологии. Л.: Учпедгиз, 1941. 288 с.

91. Дубинина М.Н. Ремнецы (Cestoda: Ligulidae) фауны СССР. М.-Л.: Наука. 1966. 261 с.

92. Дубинина М.Н. Состояние и очередные задачи систематики ленточных червей (Cestoidea Rud., 1808) // Паразитология. 1974. Т. 8, № 4. С. 281292.

93. Дьяконов Ю.Н., Бабаев Н.С. Дыхание и деятельность сердца молоди рыб в период зимовки // VI Всесоюзная конференция по экологической физиологии и биохимии рыб. Вильнюс. 1985. С. 69.

94. Евтушенко З.С., Белчева Н.Н., Лукьянова О.Н. Биохимические механизмы ответа морских организмов на воздействие тяжелых металлов // Экспериментальная водная токсикология. Рига. 1985. С. 20-28.

95. Езепчук Ю. В. Генетические и химические основы вирулентности бактерий: теоретические и практические аспекты. М.: Наука. 1972. С. 42

96. Езепчук Ю. В. Биомолекулярные основы патогенности бактерий. М., Наука, 1977.216 с.

97. Езепчук Ю.В. Патогенность как функция биомолекул. М.: Медицина, 1985. 240 с.

98. Журавлева Г.Ф., Металлов Г.Ф., Земков Г.В. Морфофункциональная оценка адаптации осетровых рыб в современных условиях обитания // VII научн. конф. по экологической физиологии и биохимии рыб. Петрозаводск. 1992. С. 104-105.

99. Замятнин A.A. Место карнозина среди физиологически активных веществ пептидной природы // Биохимия. 1992. Т. 57, вып. 9. С. 12961301.

100. Замятнин A.A. Специализированный банк данных Erop-Moscow о природных олигопептидах с internet-доступом // Российский симпозиум по химии и биологии пептидов. Москва. 2003. С. 3.

101. Захарова JI.K. Материалы по биологии размножения рыб Рыбинского водохранилища // Тр. биол. станции "Борок". М.; JI. 1955. Вып. 2. С. 200-265.

102. Заяц Р.Г. Некоторые факты, объясняющие гостальную специфичность гельминтов//Паразитология. 1978. Т. 12. С. 126-130.

103. Зезеров Е. Г., Еременко Ю. Д., Логинов В. С., Березнева А. С. Жирно-кислотный состав Rickettsia prowazekii IIЖМЭИ, 1990, N 2, С. 111-112.

104. Иммунология. М.: Мир. 1987. Т. 1. 476 с.

105. Калюк А.Н. ДНК-азная активность как один из тестов определения патогенности стафилококков // Лаб. дело, 1971. №1. С. 53.

106. Кантор Ч., Шиммел П. Биофизическая химия. М.: Мир. 1984. 496 с.

107. Ш.Карелин А.А. Тканеспецифические пептидные пулы как элемент информационной системы организма // Российский симпозиум по химии и биологии пептидов. Тез. докл. Москва. 2003. С. 19

108. Кашулин Н.А., Лукин А.А., Амундсен П.-А. Рыбы пресных вод субарктики как биоиндикаторы техногенного загрязнения. Апатиты: Кольский научный центр РАН. 1999. 142 с.

109. Кейтс М. Техника липидологии. М.: Мир. 1975. 322 с.

110. Кеныня В.А. Очистка и изучение свойств ингибиторов трипсина и хи-мотрипсина из нематоды Ascaridia galli II Изв. АН ЛатвССР. 1971. № 11. С. 292-297.

111. Кизеветтер И.В. Биохимия сырья водного происхождения. М.: Пищевая пром-сть. 1973. 432 с.

112. Кирилюк С.Д., Смирнов Л.П. Электрофоретические спектры водорастворимых белков мышц сигов из различных районов Кольского полуострова // Биологические исследования растительных и животных систем. Петрозаводск: КарНЦРАН. 1992. С. 124-130.

113. Клименко В.В. Фракционирование белковых экстрактов из Fasciola hepática методом гелевой фильтрации на колонках с сефадексом // Матер, к науч. конф. Всес. общ. гельминтол. М. 1966а. С. 108-114.

114. Клименко В.В. О возможности видовой дифференцировки гельминтов с помощью биохимических методов (видовые различия белкового состава Fasciola hepatica и Fasciola gigantica) // Матер, к науч. конф. Всес. общ. гельминтол. М. 19666. С. 114-118.

115. Клименко В.В. Метод электрофореза в полиакриламидном геле биохимический тест для дифференцировки гельминтов // Бюлл. ВИГИСа. 1967. Т. 1. С. 61-64.

116. Клименко В.В. Разделение и характеристика функциональных антигенов Fasciola hepatica и Fasciola gigantica II Тр. ВИГИС. 1971а. Т. 18. С. 129-141.

117. Клименко В.В. Фракционирование белков из Fasciola hepatica и Fasciola gigantica методами гель-фильтрации и электрофореза в полиакри-ламидном геле // Сб. работ по гельминтологии. М., 19716. С. 157-163.

118. Клименко В.В. Опыт использования метода гель-хроматографии в гельминтологии. Проблемы общей и прикладной гельминтологии. М.: Наука. 1973. С. 68-74.

119. Клименко В.В., Величко И.В. Возможность применения электрофореза в полиакриламидном геле для дифференциации парамфистомат (Trematoda) //Паразитология. 1972. Т. 6, № 3. С. 291-296.

120. Клименко В.В., Кеныня В.А. Биохимические критерии в систематике гельминтов // Проблемы паразитологии в Прибалтике. Рига: Зинатне, 1970. С. 152-155.

121. Клименко В.В., Сазанов A.M. Возможность дифференциации некоторых видов трематод и их промежуточных хозяев методом электрофореза в полиакриламидном геле // Тр. Всес. Ин-та гельминтол. 1972. Т. 19. С. 102-105.

122. Ковальчук Л.П., Донец А.Т., Разумовский П.Н. О биосинтезе липидов актиномицетами при культивировании на разных средах // Микробиология. 1973а. Т. 42, вып. 4. С. 637 642.

123. Ковальчук Л.П., Донец А.Т., Разумовский П.Н. Влияние предшественников и коферментов на биосинтез липидных фракций Actinomyces canosus 89 // Изв. АН Молд. ССР. 19736. №2. С. 54 56.

124. Ковальчук Л.П., Донец А.Т., Разумовский П.Н. Фосфолипиды Actinomyces canosus 89 // Изв. АН Молд. ССР. 1973в. № 6. С. 49 52.

125. Кокунин В.А. Статистическая обработка данных при малом числе опыtob // Укр. биохим. журн. 1975. Т. 47, № 6. С. 776-790.

126. Колупаев Б.И. Функционирование системы обеспечения газообмена у гидробионтов при действии абиотических факторов водной среды // Дисс. насоиск. . докт. биол. наук. Казань. 1991. 295 с.

127. Комов В.Т., Степанова И.К. Гидрохимическая характеристика озер Дарвиновского заповедника // Структура и функционирование экосистем ацидных озер. С.-Петербург: Наука. 1994. С. 31-42.

128. Котелкин А.Т., Разумов И.А., Локтев В.Б. Полипептидный состав главных антигенов и идентификация доминирующих иммуногенных белков у Opisthorchis felineus II Вестник Росс. Акад. Мед. наук. 1998. № 4. С. 29-33.

129. Котык А., Яначек К. Мембранный транспорт // М.: Наука. 1980. С. 284289.

130. Кошелев Б.В. Экология размножения рыб. М.: Наука, 1984. 310 с.

131. Крепе Е.М. Фосфолипиды клеточных мембран нервной системы в развитии животного мира: XXII Баховские чтения. Л.: Наука. 1967. 74 с.

132. Крепе Е.М. О путях развития эволюционной биохимии // Эволюционная физиология: Руководство по физиологии. Л.: Наука. 1979а. С. 394425.

133. Крепе Е.М. Клеточные липиды и их роль в адаптации водных организмов к условиям существования // Физиология и биохимия морских и пресноводных животных. Л.: Наука. 19796. С. 3-21.

134. Крепе Е.М. Липиды клеточных мембран. Л.: Наука. 1981. 339 с.

135. Крепе Е.М., Красильникова В.И., Патрикеева М.В., Смирнов A.A., Че-ныкаева Е.Ю., Чирковская Е.В. Фосфолипиды внутриклеточных частиц и миелиновых оболочек мозга в ряду позвоночных // Журн. эвол. биохим. и физиол. 1968. Т. 4. С. 211-223.

136. Крепе Е.М., Аврова Н.Ф., Забелинский С.А., Круглова Э.Э., Левитина

137. М.В., Обухова Е.Л., Помазанская Л.Ф., Правдина Н.И., Чеботарева М.А., Чирковская Е.В. О биохимической эволюции мозга позвоночных //Журн. эвол. биохим. и физиол. 1977. Т. 12. С. 556-569.

138. Куперман Б.И. Ленточные черви рода Triaenophorus паразиты рыб. Л.: Наука. 1973. 208 с.

139. Лав P.M. Химическая биология рыб. М.: Пищ. пром-сть, 1976. 348 с.

140. Лакин Г.Ф. Биометрия. М.: "Высшая школа". 1973. 343 с.

141. Лапин В.И. Некоторые закономерности динамики энергетических ресурсов у разных популяций речной камбалы (Platichtys flesus L.) // Ав-тореф. дисс. . канд. биол. наук. М.: МГУ. 1974. 23 с.

142. Лапин В.И. Специфика сезонной динамики липидного состава у различных подвидов и форм речной камбалы {Platichtys flesus L.) // Вопр. ихтиол. 1977. Т. 1. С. 96-100.

143. Лапин В.И., Шатуновский М.И. Особенности состава, физиологическое и экологическое значение липидов у рыб // Усп. соврем, биол. 1981. Т. 92. С. 380-394.

144. Лапина В.Н. Закономерности сезонной динамики физиолого-биохимических показателей некоторых карповых рыб // Автореф. дисс. . канд. биол. наук. М.: МГУ. 1979. 22 с.

145. Левицкий А.П., Барабаш Р.Д., Коновец В.М. Сезонные особенности активности рибонуклеазы и а-амилазы слюны и слюнных желез у крыс линии Вистар // Биохимическая эволюция. М.: Наука, 1973. С. 192-195.

146. Лейкина Е.С. Антигены гельминтов и их общность с антигенами хозяина // Мед. паразитология и паразитар. болезни. 1970. Т. 39, № 3. С. 349355.

147. Лизенко Е.И. Содержание липидов в органах крупной ряпушки Corego-nus albula в зависимости от некоторых экологических и физиологических факторов // Автореф. дисс. на соиск. . канд. биол. наук. Петрозаводск. 1973. 27 с.

148. Лизенко Е.И., Сидоров B.C., Потапова О.И. Липиды рыб. II. Сезонная динамика фосфатидов и триглицеридов крупной ряпушки Coregonus albula L. II Лососевые (Salmonidae) Карелии. Петрозаводск. 1972. С. 164169.

149. Лизенко Е.И., Сидоров B.C., Потапова О.И. О содержании липидов в гонадах ряпушки (Coregonus albula L.) Уросозера // Вопр. ихтиологии. 1973. Т. 13. С. 303-313.

150. Лизенко Е.И., Сидоров B.C., Потапова О.И. Сезонные изменения ли-пидного состава органов и тканей крупной ряпушки (Coregonus albula L.) озер Карелии //Вопр. ихтиологии. 1975. Т. 15. С. 519-526.

151. Лизенко Е.И., Сидоров B.C., Нефедова З.А., Потапова О.И. О содержании липидных компонентов в икре и молоках ряпушки Coregonus albula L. //Вопр. ихтиологии. 1979. Т. 19. С. 369-370.

152. Лозовик П.А., Маркканен С.Л., Морозов А.К., Платонов A.B. и др. Поверхностные воды Калевальского района и территории Костомукши в условиях антропогенного воздействия. Петрозаводск: Карельский научный центр РАН. 2001. 168 с.

153. Лукин A.A., Кашулин H.A. Сосотояние ихтиофауны водоемов в приграничной зоне СССР и Норвегии // Препринт. Апатиты. 1991. 52 с.

154. Лукьяненко В.И. Иммунобиология рыб. М.: Пищепром. 1971. 364 с.

155. Лукьяненко В.И. Общая ихтиотоксикология М.: Лег. и пищевая пром-сть, 1983. 320 с.

156. Лукьяненко В.И. Экологические аспекты ихтитоксикологии . М.: ВО "Агропромиздат", 1987. 240 с.

157. Лукьяненко В.И., Ермолин Г.А., Седов С.И., Попов A.B. Белковый спектр сыворотки крови осетровых по данным диск-электрофореза в полиакриламидном геле // ДАН СССР. 1967. Т. 174, №1. С.

158. Маляревская А.Я. Обмен веществ у рыб в условиях антропогенного ев-трофирования водоемов. Киев: Наук. Думка. 1979. 256 с.

159. Маляревская А.Я., Биргер Т.И., Арсан О.М. Влияние сине-зеленых водорослей на обмен веществ у рыб. Киев: Наук. Думка. 1978. 193 с.

160. Маурер Г. Диск-электрофорез. Теория и практика электрофореза в полиакриламидном геле. М.: Мир. 1971. 247 с.

161. Медьеши Г., Верецкеи Л., Гааль Э. Электрофорез в разделении биоло-гичяеских макромолекул. М.: Мир. 1982. 448 с.

162. Мельянцев В.Г. Рыбы (Животный мир Карелии). Петрозаводск: "Карелия". 1974. 120 с.

163. Мессинова О., Юсупова Д. Дезоксирибонуклеазы патогенных бактерий // ЖМЭИ. 1966. Т. 3. С. 39-43.

164. Мецлер Д. Биохимия. М.: Мир. 1980. Т. 1. 407 с.

165. Микряков В.Р., Балабанова Л.В. Клеточные основы иммунитета у рыб. В кн.: Физиология и паразитология пресноводных животных. Л.: Наука. 1979. С. 105-124.

166. Мунтян H.A. Диск-электрофоретический анализ эхинококковой жидкости, экстракта из сколексов и герминативной оболочки ларвоцисты Echinococcus granulosus II Мед. паразитол. и паразитар. болезни. 1973. Т. 12. С. 544-548.

167. Мур Дж., Рамамурти С. Тяжелые металлы в природных водоемах // М: Наука. 1987. 67 с.

168. Наточин Ю.В. Функциональная эволюция: истоки и проблемы // Журн. эволюц. биохим. и физиол. 1987. Т. 23, №3. С. 372-389.

169. Наточин Ю.В., Бройнлих X. Использование методов токсикологии в изучении проблемы эволюции функций почки (Проблемная статья) // Журн. эволюц. биохим. и физиол. 1991. Т. 27, №5. С. 584-589.

170. Наточин Ю.В., Чапек К. Методы исследования транспорта ионов и воды. Л.: Наука. 1976. 283 с.

171. Наумычева М.И. Препаративное фракционирование антигенов из гельминтов//Тр. ВИГИСа. 1971. Т. 17. С. 259-262.

172. Наумычева М.И., Сущенко Н.И. Белковые фракции из тканей половозрелых аскарид свиньи (мышцы, кутикула, матка, полостная жидкость, цельные аскариды) // Тр. ВИГИСа. 1969. Т. 15. С. 219-225.

173. Немова H.H. Свойства и физиологическая роль внутриклеточных про-теиназ в тканях рыб // Успехи современной биохимии. 1991. Т.П. Вып. 6. С. 948-954.

174. Нефедов Г.Н., Алферова Н.М., Герман С.М. Электрофоретическое исследование мышечных белков некоторых видов рыб семейств Merlucci-dae и Carangidae II Биохимическая генетика рыб. Мат-лы 1-го Всесоюз. Совещ. Л.: Художник РСФСР. 1973. С. 201-207.

175. Новиков Г.Г., Решетников Ю.С. Исследование белкового состава сы-вортки крови лососевых рыб // Вопр. ихтиологии. 1969. Т. 9. С.

176. Озернюк Н.Д. Механизмы адаптаций. М.: Наука. 1992. 272 с.

177. Оксенгендлер Г.Ц. Яды и организм. СП-б.: Наука, 1991. 180 с.

178. Опарин А.И. Возникновение жизни на Земле. М.: Изд-во АН СССР. 1957. 458 с.

179. Орехович В.Н., Елисеева Ю.Е., Павлихина JI.B., Локшина Л.А. Роль протеиназ в регуляции физиологических процессов в организме // Тез. докл. IV Всесоюз. симпоз. по мед. энзимологии. Алма-Ата, 1982. С. 3.

180. Оруджев А.М. Влияние температуры на эмбриональное развитие воблы, леща и сазана // Рыбн. хоз-во. 1975. № 79. С. 21-22.

181. Осиковски E., Камбуров П., Василев И. Сравнителни електрофоретични изследования на водоразтворимите белтъци на някои представители от p. Paramphistomum //Хелминтология. 1978. Т. 6. С. 68-74.

182. Остерман Л.А. Методы исследования белков и нуклеиновых кислот. Электрофорез и ультрацентрифугирование. М.: Наука. 1981. 288 с.

183. Остерман Л.А. Исследование биологических макромолекул электрофокусированием, иммуноэлектрофорезом и радиоизотопными методами. М.: Наука. 1983. 304 с.

184. Остерман Л.А. Хроматография белков и нуклеиновых кислот. М.: Наука, 1985.536 с.

185. Павлов А.В., Шишова-Касаточкина О.А., Волынская К.Б. О транспорте аминокислот у нематод // Паразитология. 1970. Т. 6. С. 231-236.

186. Пальшин Н.И., Сало Ю.А., Кухарев В.И. Влияние Костомукшского ГОКа на экосистему р. Кенти. Гидрологические и гидрохимические аспекты // Исследование и охрана водных ресурсов бассейна Белого моря (в границах Карелии). Петрозаводск. 1994. С. 140-161.

187. Пастер Е., Ходоровская С. Высеваемость энтеротоксигенных ДНК-азоположительных стафилококков из разных источников // Врачебное дело, 1975. №10. С. 140-143.

188. Петровская В.Г. Проблема вирулентности бактерий. JI. Медицина, 1967. 263 с .

189. Петухов С.А., Глубокое А.И., Горкин И.Н. Роль металлотионеина в концентрировании тяжелых металлов рыбами // Экологические аспекты химического и радиоактивного загрязнения водной среды. М.: Легкая и пищевая промышленность. 1983. С. 36-41.

190. Пинчук Г. П., Воронова H.H. Изучение бактериальных жирных кислот в таксономических целях // Биохимия и биофизика микроорганизмов. Горький, 1982. Сб. 10. С. 36-41.

191. Пинчук Г. П., Соколова К.Я., Залесских Н.В. Видовая идентификация протеев и провиденсий по профилям высших жирных кислот // Биохимия и биофизика микроорганизмов. Горький, 1982. Сб. 10. С. 6065.

192. Поверхностные воды озерно-речной системы Шуи в условиях антропогенного воздействия. Под ред. Лозовик П.А., Фрейндлинг В.А. // Петрозаводск. Карелия. 1991. 221 с.

193. Покровский A.A. Биохимические методы исследования в клинике. М.: Наука. 1969. 650 с.

194. Покровский A.A., Тутельян В.А. Лизосомы. М. Наука. 1976. 382 с.

195. Покровский A.A., Кравченко Л.В., Тутельян В.А. Исследование активности ферментов лизомоа при действии афлатоксина в и митомицина С

196. Биохимия. 1971. T. 36. Вып. 4. С. 690-696.

197. Полякова-Крыстева О., Кириллова Я. О происхождении, структуре и функции лизосом в тегументе Taenia hydaîigena II Тез. докладов Международного симпозиума "Структура и функции лизосом". М. 1976. С. 22-23.

198. Пронина C.B. Изменение аргирофильной стромы печени некоторых рыб при инвазии плероцеркоидами Triaenophorus nodulosus и Diphyllo-bothrium dendriticum II Паразитология. 1977. T. 11, № 4. С. 361-364.

199. Проссер K.JI. Акклимация к холоду метаболических процессов и центральной нервной системы у рыб // Клетка и температура среды. М.: Мир. 1964. С. 84-209.

200. Проссер K.JI. Сравнительная физиология животных. М.: Мир. 1977. Т. 1.607 с.

201. Протасова E.H. Ботриоцефаляты — ленточные гельминты рыб. М.: Наука. 1977.511 с.

202. Резниченко П.Н., Гулидов М.В. Зависимость выживания зародышей леща Abramis brama (L.) от температуры акклимации // Эколого-морфологические и эколого-физиологические исследования размножения рыб. М.: Наука. 1978. С. 108-114.

203. Ржавская Ф.М. Жиры рыб и морских млекопитающих. М.: Пищевая пром-сть. 1976. 470 с.

204. Риклефс Р. Основы общей экологии. М.: Мир. 1979. 424 с.

205. Рипатти П.О., Рабинович А.Л., Богдан В.В. Докозагексаеновая кислота температурный стабилизатор биомембран // Биохимия молоди пресноводных рыб. Петрозаводск: Карельский филиал АН СССР. 1985. С. 27-33.

206. Рипатти П.О., Михайлова Н.В., Антонова В.В. Замещение жирных кислот в субклеточных структурах печени и мышц лосося в зависимостиот температуры // Биохимия молоди рыб в зимовальный период. Петрозаводск: Карельский филиал АН СССР, 1987. С. 66 76.

207. Романенко В.Д. Печень и регуляция межуточного обмена (млекопитающие и рыбы). Киев: Наукова Думка. 1978. 183 с.

208. Романенко В.Д., Арсан О.М., Соломатина В.Д. Механизмы температурной акклимации рыб. Киев: Наук, думка, 1991. 192 с.

209. Романенко В.Д., Евтушенко Н.Ю., Коцарь Н.И. Метаболизм углекислоты у водных животных. Киев: Наук. Думка, 1980. 180 с.

210. Роуз Э. Химическая микробиология. М.: Мир, 1971. 294 с.

211. Рубан E.JI. Микробные липиды и липазы. М.: Наука, 1977. 218 с.

212. Рубан Е.Л. Физиология и биохимия представителей рода Pseudomonas. М.: Наука, 1986. 199с.

213. Селье Г. Очерки об адаптационном синдроме. М.: Медгиз. 1960. 254 с.

214. Сердюк A.B. Проблема стрептококкоза лососевых рыб в хозяйствах Европейского Севера России // Заполярная марикультура: Сб. науч. тр. ВНИРО. Мурманск: ПИНРО, 1994. С. 132-140.

215. Сеченова H.A. О поражении пеляди озера Пыжьян плероцеркоидами лентецов рода Diphyllobothrium И Болезни рыб Ледовитоморской провинции в пределах СССР: Тез. докл. Тюмень, 1971. С. 53-55.

216. Сидоров B.C. Основные достижения в исследованиях по биохимии рыб 1953-1967 г.г. // Биологические ресурсы Белого моря и внутренних водоемов Карелии. Петрозаводск. 1968. С. 56.

217. Сидоров B.C. Сравнительное изучение липидного состава у некоторых пресноводных рыб и их гельминтов // Рефераты науч. сообщ. III Всесо-юз. съезда биохимиков. Рига. 1974. Т. 1. С. 14.

218. Сидоров B.C., Лизенко Е.И., Болгова О.М., Нефедова З.А. К вопросу о содержании липидов в различных органах ряпушки озер южной Карелии // Экологические ресурсы Белого моря и внутренних водоемов Европейского Севера. Петрозаводск. 1969. С. 148-149.

219. Сидоров B.C., Лизенко Е.И., Болгова О.М., Нефедова З.А. Липиды рыб. I. Методы анализа. Тканевая специфичность липидов ряпушки Corego-nus albula L. II Лососевые (Salmonidae) Карелии. Петрозаводск: .1972. С. 150-161.

220. Сидоров B.C., Лизенко Е.И. Возрастные изменения содержания липидов в органах ряпушки (Coregonus albula L.) // Экологическая физиология рыб. М. 1973. С. 216-218.

221. Сидоров B.C., Лизенко Е.И. Сравнительно-эволюционное исследование липидов у пресноводных рыб // Тез. докл. всес. конф. "Эволюционная биохимия и происхождение жизни". Ереван. 1978. С. 67-68.

222. Сидоров B.C. Экологическая биохимия рыб. Липиды. Л.: Наука, 1983. 240 с.

223. Сидоров B.C. Эволюционные и экологические аспекты биохимии рыб // Автореф. дисс. на соиск. . уч. степ. докт. биологических наук. Москва. 1986. 50 с.

224. Сидоров B.C., Высоцкая Р.У., Быховская-Павловская И.Е. Аминокислотный состав некоторых паразитических гельминтов рыб // Лососевые {Salmonidae) Карелии. Вып. 1. Петрозаводск. 1972. С. 142-149.

225. Сидоров B.C., Болгова О.М., Яржомбек A.A., Лизенко Е.И. Жирнокис-лотный состав фосфатидилхолина у "слабых" и "сильных" годовиков карпа в конце зимовки // Биохимия молоди пресноводных рыб. Петрозаводск: Карельский филиал АН СССР. 1985. С. 5-14.

226. Сидоров B.C., Лизенко Е.И., Болгова О.М., Нефедова З.А. Липиды рыб. 1. Методы анализа. В сб.: Лососевые (Salmonidae) Карелии. Петрозаводск. 1972. С. 152-163.

227. Сидоров B.C., Лизенко Е.И., Рипатти П.О., Болгова О.М. Липиды рыб (литературный обзор) // Сравнительная биохимия рыб и их гельминтов.

228. Петрозаводск: Карельский филиал АН СССР. 1977. С. 5-56.

229. Сидоров B.C., Смирнов Л.П. Жирнокислотный состав некоторых гельминтов холоднокровных и теплокровных позвоночных // Журн. эвол. биохим. и физиол. 1980. Т. 16, №6. С. 551-555.

230. Сидоров B.C., Высоцкая Р.У., Смирнов Л.П., Гурьянова С.Д. Сравнительная биохимия гельминтов рыб: Аминокислоты, белки, липиды. Л. : Наука, 1989. 152 с.

231. Сидоров B.C., Фрезе В.И., Высоцкая Р.У., Гурьянова С.Д. Липидный состав гельминтов рыб Карелии // Тез. докл. на IV Междунар. Конгрессе по паразитологии. Варшава. 1978. С.106-108.

232. Сидоров B.C., Юровицкий Ю.Г., Кирилюк С.Д., Такшеев С.А. Принципы и методы эколого-биохимического мониторинга водоемов // Биохимия экто- и эндотермных животных в норме и при патологии. Петрозаводск : Карельский научный центр РАН. 1990. С. 5-27.

233. Силкина Н.И. Сезонная динамика липидов сыворотки крови и ее связь с иммунологической реактивностью рыб // Автореф. дисс. . канд. биол. наук. М. 1988. 17 с.

234. Слоним А.Д. Экологическая физиология животных. М.: Высшая школа, 1971.447 с.

235. Смирнов Л.П. Гель-хроматография белков печени и мышц некоторых позвоночных животных // Сравнительная биохимия рыб и их гельминтов. Петрозаводск: Карельский филиал АН СССР. 1977. С. 92-99.

236. Смирнов Л.П. Гель-хроматография и диск-электрофорез белков гельминтов // Сравнительные аспекты биохимии рыб и некоторых других животных. Петрозаводск: Карельский филиал АН СССР. 1981. С. 87103.

237. Смирнов Л.П. Применение двойного окрашивания гелей после диск-электрофореза для количественного определения белка на денситометре "Хромоскан" // Биохимия молоди пресноводных рыб. Петрозаводск: Карельский филиал АН СССР. 1985. С. 85-88.

238. Смирнов Л.П. Влияние зимовки и активного плавания на количественное распределение водорастворимых белков мускулатуры сеголеток карпа // Биохимия молоди рыб в зимовальный период. Петрозаводск: Карельский филиал АН СССР. 1987. С. 46-49.

239. Смирнов Л.П. Влияние экологических факторов на белковый состав эк-тотермных животных // Теоретические аспекты экологической биохимии. Петрозаводск: Карельский научный центр РАН. 1993. С. 139-146.

240. Смирнов Л.П., Богдан В.В. О липидном составе некоторых тканей песцов в норме и при дифиллоботриозе // Новое в физиологии и биохимии пушных зверей. Петрозаводск: Карельский филиал АН СССР. 1977. С. 115-118.

241. Смирнов Л.П., Богдан В.В. Изучение белкового состава лизосом печени некоторых рыб методом гельхроматографии // Биохимия пресноводных рыб Карелии. Петрозаводск: Карельский филиал АН СССР, 1980. С. 8186.

242. Смирнов Л.П. Богдан В.В. Лизосомы цестод // Паразитология. 1989. Т. 23, N3. С.260-263.

243. Смирнов Л.П., Богдан В.В. Жирнокислотный состав лизосомальных мембран цестод Eubothrium crassum и Diphyllobothrium dendriticum // Паразитология. 1992. Т. 26, № 3. С. 234-239.

244. Смирнов Л.П., Богдан В.В. Влияние термошока на липидный составплероцеркоидов некоторых цестод//Паразитология. 1997. Т. 31, №6. С. 543-549.

245. Смирнов Л.П., Киршпок С.Д. Влияние загрязнения окружающей среды на фракционный состав низкомолекулярных пептидов из различных тканей сигов // Серия биологическая. 1994. № 4. С. 617-622.

246. Смирнов Л.П., Сидоров B.C. Сравнительное изучение белковых спектров цестод и их хозяев методами гель-хроматографии и диск-электрофореза // Паразитология. 1984. Т. 18, № 6. С. 430-435.

247. Смирнов Л.П., Тойвонен Л.В. Анализ сывороточных белков карпа методом электрофореза в гомогенном и градиентном полиакриламидных гелях // Биохимия экто- и эндотермных организмов. Петрозаводск: Карельский филиал АН СССР. 1989. С. 144-148.

248. Смирнов Л.П., Юхименко Л.Н. Временные методические рекомендациипо сравнительному анализу штаммов аэромонад методом электрофореза в полиакриламидном геле в присутствии додецилсульфата натрия. M.: ВНИИПРХ. 1988. 14 с.

249. Смирнов Л.П., Юхименко Л.Н. Белковые спектры различных штаммов аэромонад // Биохимия экто- и эндотермных организмов в норме и при патологии. Петрозаводск : Карельский научный центр АН СССР. 1990. С. 111 115.

250. Смирнов Ю.А. Лосось Онежского озера. Биология, воспроизводство и пользование. Л.: Наука. 1971. 143 с.

251. Современное состояние водных объектов республики Карелия. По результатам мониторинга 1992-1997 гг. Под ред. H.H. Филатова, Т.П. Куликовой, П.А. Лозовика. Петрозаводск: Карельский научный центр РАН. 1998. 188 с.

252. Сорвачев К.Ф. Биологическая химия. М.: Наука. 1971. 570 с.

253. Сорвачев К.Ф. Основы биохимии питания рыб. М.: Легкая и пищевая пром-сть. 1982. 247 с.

254. Сравнительная биохимия водных животных. Петрозаводск: Карельский филиал АН СССР. 1983. 192 с.

255. Стадниченко А.П. Фосфолипиды в пищеварительной железе моллюсков, инвазированных личинками трематод // Паразитология. 1968. Т. 2. С. 35-37.

256. Стадниченко А.П. Патогенное действие партенит трематод на пресноводных моллюсков // Гидробиол. журн. 1977. Т. 13, № 1. С. 117-124.

257. Стейниер Р., Эдельберг Э., Ингрэм Дж. Мир микробов. М.: Мир. 1979 а. Т. 1.320 с.

258. Стейниер Р., Эдельберг Э., Ингрэм Дж. Мир микробов. М.: Мир. 1979 б. Т.2. 334 с.

259. Степанова И.Т., Комов В.Т. Накопление ртути в рыбе из водоемов Вологодской области // Экология. 1997. Т. 28. № 4. С. 196-202.

260. Степанова И.Т., Комов В.Т. Ртуть в абиотических и биотических компонентах озер Северо-Запада России // Экология. 1996. Т. 27. № 3. С. 198-203.

261. Стрельникова А.П., Стрельников A.C., Ляшенко Г.Ф. Условия воспроизводства рыб в Рыбинском водохранилище и его притоках // Современное состояние рыбных запасов Рыбинского водохранилища. Ярославль: ИБВВ РАН. 1997. С. 38-91.

262. Строганов Н.С. Экологическая физиология рыб. М.: Наука. 1962. 444 с.

263. Суховская И.В., Смирнов Л.П, Немова H.H., Комов В.Т. Влияние ртути на фракционный состав низкомолекулярных пептидов мускулатуры окуней Perca ßuviatilis L. // Вопросы ихтиологии. 2001. Т.41. № 5. С. 699-703.

264. Сущенко Н.И. Анализ белковых экстрактов из тканей и отдельных фракций Ascaris suum II Тр. ВИГИСа. 1971. Т. 17. С. 283-284.

265. Теоретические аспекты экологической биохимии. Петрозаводск: Карельский научный центр РАН. 1993. 212 с.

266. Тодоров И. Клинические лабораторные исследования в педиатрии. София: Медицина и физкультура. 1968. 1068 с.

267. Толстиков Г.А., Мифтахов М.С., Лазарева Д.Н., Помойнецкий В.Д., Сидоров H.H. Простагландины и их аналоги в репродукции животных и человека. Уфа: БНЦ УрО АН СССР, 1989. 419 с.

268. Трувеллер К.А., Алферова Н.М., Масленникова H.A. Электрофоретиче-ское исследование белков сельдей Clupea harengus s.l. // Биохимическая генетика рыб. Мат-лы 1-го Всесоюз. Совещ. Л.: Художник РСФСР. 1973. С. 188-194.

269. Уильяме В., Уильяме X. Физическая химия для биологов. М.: Мир. 1976. 600 с.

270. Федько Л.В. Липидный обмен при экспериментальном дифиллоботрио-зе // Тр. ЛСГИ. 1974. Т. 104. С. 74-76.

271. Флеров Б.А. Эколого-физиологические аспекты токсикологии пресноводных животных. Л.: Наука, Ленингр. отд-ние, 1989. 144 с.

272. Фрезе В.И. Лентецы Европы (экспериментальное изучение полиморфизма). В кн.: Цестоды и трематоды (морфология, систематика и экология). Тр. ГЕЛАН. 1977. Т. 27. С. 174-204.

273. Фреймане Т.Х., Грундуле М.В. Количественные сдвиги липидных фракций в организме карпа под влиянием 2,4-Д-Ка // Экспериментальная водная токсикология. Рига: Зинатне. 1973. Вып. 5. С. 38-43.

274. Фреймане Т.Х., Грундуле М.В. Количественные сдвиги липидных фракций в организме карпа под воздействием лантана и ДДТ // Экспериментальная водная токсикология. Рига: Зинатне. 1976. Вып. 6. С. 248254.

275. Фреймане Т.Х., Платпира В.П. Количественные сдвиги липидных фракций в скелетной и сердечной мускулатуре карпа под влиянием 3,4-Д-Na // Экспериментальная водная токсикология. Рига: Зинатне. 1971. Вып. 2. С. 28-30.

276. Фукс Б.Б., Стерлина А.Г. Исследования механизма действия природных липидных иммуномодуляторов // Докл. АН СССР. 1984. Т. 279, № 5. С. 1261-1263.

277. Харборн Дж. Введение в экологическую биохимию. М.: Мир, 1985. 312 с.

278. Хлебович В.В. Акклимация животных организмов. Л.: Наука. 1981. 136 с.

279. Хорунжая Т.А. Перспективы использования биохимических функций в биомониторинге пресных вод // Гидробиол. журн. 1989. Т. 25, № 5. С. 47-52.

280. Хочачка П., Сомеро Дж. Стратегия биохимической адаптации. М.: Мир. 1977.398 с.

281. Хочачка П., Сомеро Дж. Биохимическая адаптация. М.: Мир. 1988. 568 с.

282. Цыганов Э.Г. Метод прямого метилирования липидов после тонкослойной хроматографии без элюирования с силикагеля // Лаб. дело. 1971. №8. С. 490-493.

283. Шатуновский М.И. Сравнительное изучение липидов сыворотки трески, наваги, речной и полярной камбалы Белого моря // Докл. АН СССР. 1969. Т. 184. С. 1207-1209.

284. Шатуновский М.И. Экологические закономерности обмена веществ морских рыб. М.: Наука, 1980. 283 с.

285. Шатуновский М.И. Экологические закономерности возрастной и сезонной динамики обмена веществ у рыб // Биологические основы рыбоводства: актуальные проблемы экологической физиологии и биохимии рыб. М.: Наука. 1984. С. 28-44.

286. Шварц С.С. Экологические закономерности эволюции. М.: Наука, 1980. 280 с.

287. Шишова-Касаточкина O.A. Биохимия гельминтов. В кн.: Шульц P.C., Гвоздев Е.В. Основы общей гельминтологии. М.: Наука, 1972. Т. 2. С. 372-450.

288. Шишова-Касаточкина O.A., Лев H.A. Специфика потребления белков свиной аскаридой // Проблемы паразитологии в Прибалтике. Рига: Зи-натне. 1970. С. 103-104.

289. Шишова-Касаточкина O.A., Леутская З.К. Биохимические аспекты взаимоотношений гельминта и хозяина. М.: Наука, 1979. 280 с.

290. Шкарин A.B., Мудров В.М., Ильина Е.А., Киреева Т.В. Возможность применения газожидкостной хроматографии для идентификации но-кардий //Пробл. туберкул. 1995. № 4. С. 40-42.

291. Шорм Ф. Белки, их структура и функции. М.: Наука. 1961. 342 с.

292. Шульман Г.Е. Физиолого-биохимические особенности годовых циклов рыб. М.: Пищ. пром-сть, 1972. 368 с.

293. Шульман Г.Е., Куликова Н.И. О связи белкового состава крови крупных таксономических категорий рыб с их филогенией и экологией // Усп. совр. биол. 1966. Т. 62, № 1(4). С. 50-60.

294. Шульман Г.Е. Липиды иих использование при плавании рыб // Элементы физиологии и биохимии общего и активного обмена у рыб. Киев : Наукова Думка. 1978. С. 100-121.

295. Щепкина A.M. Влияние зараженности Contracaecum aduncum на ли-пидный состав тканей черноморской хамсы // Биология моря. 1978. Т. 45. С. 109-112.

296. Щепкина A.M. Особенности липидного состава тканей хамсы, бычка-кругляка в Черном и Азовском морях на протяжении годового цикла и при поражении гельминтами // Автореф. дисс. . канд. биол. наук. Севастополь: ИнБЮМ АН УССР. 1980. 24 с.

297. Щербина М.А. Физиологические закономерности пищеварения у рыб в связи с морфологическими особенностями пищеварительного тракта и экологическими условиями: Автореф. дис. . докт. биол. наук. М., 1980. 52 с.

298. Юрьев Ю.К. Практические работы по органической химии. Вып. 1 и 2. М. Изд-во МГУ. 1964. С. 44-71.

299. Юхименко JI.H. Современные задачи изучения бактериальных болезней рыб // Тр. Зоол. Ин-та АН СССР. 1987. Т. 171.С. 68-81.

300. Юхименко Л.Н., Смирнов Л.П. Вакцина для профилактики бактериально-геморрагической септицемии рыб // Патент RU 2080874 С1 6 А 61К39/02. Бюлл. № 16 от 10.06.97.

301. Юхименко Л.Н., Смирнов Л.П., Викторова В.Ф., Богдан В.В., Немова H.H. Штамм бактерии Aeromonas sobria продуцент протективного ан-тигена//Патент SU 1839458 Al 5С 12 N1/20, А61К 39/02. 23.01.1995.

302. Юхименко Л.Н., Смирнов Л.П., Койдан Г.С., Гусева Н.В. Специфическая профилактика бактериальной геморрагической септицемии рыб // Рыбное хоз-во. Сер. Аквакультура. Информпакет "Болезни рыб". М.: ВНИЭРХ. 1998. Вып. 2. С. 14-21.

303. Яржомбек A.A., Пинчуков Л.А. Элементы жирового обмена карпа в норме и при истощении // Сб. научных трудов ВНИПРХ. 1979. Вып. 23. С. 209-219.

304. Ярыгина Г.В. Липиды трематоды Paramphistomum cervi // Исследование по фауне, систематике биохимии гельминтов Дальнего Востока. Владивосток, 1972. С. 199-203.

305. Abbas M.K., Foor W.E. Ascaris suum: free amino acids and proteins in the pseudocoelom, seminal vesicle and glandular vas deferens // Exp. Parasitol. 1978. Vol. 45. P. 263-273.

306. Abbas M.K., Foster L.A., Cain G.D. Soluble proteins from Schistosoma mansoni and japonicum: a comparative biochemical and immunological analysis // Comp. Biochem. Physiol. 1989. Vol. 93B, N 3. P. 635-642.

307. Abeck D., Johnson A.P., Ballard R.C. et al. Effect of cultural conditions on the protein and lipopolysaccharide profiles of Haemophylus ducreyi analyzed by SDS-PAGE // FEMS Microbiol. Lett. 1987. Vol. 48. P. 397-399.

308. Abraham S., Hansen H.J., Hansen F.V. The effect of prolonged fasting on total lipid synthesis and enzyme activities in the liver of european eel (An' guilla anguilla) Comp. Biochem. Physiol. 1984. Vol. 79B, N 2. P. 285-289.

309. Ackman R.G., Burgher R. D. Cod liver oil fatty acids as secondary reference standards in the GLC of polyunsaturated fatty acids of animal origin: analysis of a dermal oil of the Atlantic leatherback turtle // JAOCS. 1965. Vol. 42. P. 38-42.

310. Ada G. Overview of vaccines // Mol. Biotechnol. 1997. Vol. 8, N 2. P. 123134.

311. Alabaster J.S., Lloyd R. Water quality criteria for freshwater fish. London. 2nd edition. 1982. 362 p.

312. Allam A.F., el Agamy E., Helmy M.H. Molecular and immunological characterisation of Fasciola species // Br. J. Biomed. Sci. 2002. Vol. 59, N 4. P. 191-195.

313. Anadu D.I., Chapman G.A., Curtis L.R., Tubb R.A. Effect of zinc exposure on subsequent acute tolerance to heavy metals in rainbow trout // Bull. Environ. Contam. Toxicol. 1989. Vol. 43. No. 4. P. 329-336.

314. Angelow R.V,, Nicholls D.M. The effect of mercury exposure on liver mRNA translatability and metallothionein in rainbow trout // Comp. Bio-chem. Physiol. 1991. Vol. 100C. No. 3. P. 439 444.

315. Ashour A.A., Taha H.A., el Mohammad A. Comparative SDS-page protein patterns of four ascaridid nematodes // J.Egypt.Soc.Parasitol. 1995. Vol. 25, N 3. P. 761-767.

316. Baer K.N., Thomas P. Influence of capture stress, salinity and reproductive status on zinc associated with metallothionein-like proteins in the livers of three marine teleost species // Mar. Environ. Res. 1990. Vol. 29. No. 4. P. 277-287.

317. Baker D.G., Gershwin L.J. SDS-PAGE profiles of somatic proteins from third-stage infective larvae of Ostertagia ostertagi and Cooperia oncophora II Vet. Parasitol. 1993. Vol. 50, N 1-2. P. 157-160.

318. Bailey H.H., Fairbairn D. Lipid metabolism in helminth parasites. V. Absorption of fatty acids and monoglycerids from micellar solution by Hyme-nolepis. diminuta (Cestoda) I I Comp. Biochem. Physiol. 1968. Vol. 26. P. 819-836.

319. Bajpai P., Bajpai P.K. Eicosapentaenoic acid (EPA) production from microorganisms: a review//J. Biotechnol. 1993. Vol. 30, N 2. P. 161-183.

320. Baksi S. M., Libbus N., Frazier J.M. Induction of metal binding proteins in striped bass, Morone saxatilis, following cadmium treatment // Comp. Bio-chem. and Physiol. 1988. Vol. C91. No 2. P. 355-363.

321. Baldwin J., Hochachka P.W. Functional significance of isoenzymes in thermal acclimation: acetylcholinesterase from trout brain // Biochem. J. 1970. Vol. 116. P. 883-887.

322. Barrett J. Biochemistry of parasitic helminths. London: Basingstoke, 1981. 308 p.

323. Barrett J., Gain G.D., Fairbairn D. Sterols in Ascaris lumbricoides (Nema-toda), Macracanthorhynchus hirudinacaeus and Moniliformis dubius (Acanthocephala) and Echinostoma revolutum (Trematoda) // J. Parasitol. 1970. Vol.56. P. 1004-1009.

324. Bartlett J.C., Iverson J.L. Estimation of fatty acid composition by gas chromatography using peak heights and retention time // J. Assoc. Offic. Analyt. Chemists. 1966. Vol. 49. N 1. P. 21-27.

325. Beach D.H., Sherman I.W., Holz G.G.Ir. Incorporation of docosahexaenoic acid into the lipids of marine elasmobranches // J/ Parasitol. 1973. Vol. 59. P. 655-666.

326. Beach D.H., Holz G.G.Ir., Sempervivo L.H., Honigberg B.M. Temperature-dependent fatty acyl group changes in phospholipids of 37°C-adapted Leishmania donovani promastigotes // J. Parasitol. 1982. Vol. 68. P. 10041009.

327. Beames C.G. Phospholipids of Ascaris lumbricoides with special reference to the fatty acids and aldehydes // Exp. Parasitol. 1964. Vol. 15. P. 357-396.

328. Beames C.G. Neutral lipids of Ascaris lumbricoides with special reference to the esterified fatty acids // Exp. Parasitol. 1965. Vol. 16. P. 291-299.

329. Beames C.G., Fischer F.M. A study of the neutral lipids and phospholipids of the Acanthocephala, M. hirudinaceus and M. dubius II Comp. Biochem. Physiol. 1964. Vol. 13. P. 401-412.

330. Beames C.G., King G.A. Movement of long chain fatty acids across the midgut of Ascaris lumbricoides suum II 44-th annual meeting of the Amer. Soc. of Parasitologists. Washington, D.C. 1969. P. 35-41.

331. Benex J. Fractionment D'un antigene delipide de Fasciola hepatica // Ann. Inst. Pasteur. 1967. Vol. 113. P. 815-822.

332. Benex J. Analyse et evaluation de divers antigens extraits de kystes D'echi-nococcus granulosus // Ann. Inst. Pasteur. 1970. Vol. 118. P. 49-60.

333. Benex J. Communautés antigeniques entre Taenia saginata et Echinococcus granulosus II Bull. Soc. Pathol. Exot. 1972(1973). Vol. 65. P. 563-569.

334. Bessey O., Lowry O.H., Brock M.J. A method of the rapid determination of alkaline phosphatase with five cubic millimeters of serum // J. Biol. Chem. 1946. Vol. 164. P. 321-329.

335. Betka M., Callard G.V. Stage-dependent accumulation of cadmium and induction of metallothionein-like binding activity in the testis of the Dogfish shark, Squalus acanthias II Biol Reprod. 1999. Vol. 60. P. 14-22.

336. Boe B., Gjerde J. Fatty acid patterns in the classification of some representatives of the families Enterobacteriaceae and Vibrionaceae II J. Gen. Microbiol. 1980. Vol. 116. P. 41-49.

337. Bonwick G.A., Fielden P.R., Davies D.H. Hepatic metallothionein levels in roach (Rutilus rutilus L.) continuously exposed to water-borne cadmium // Comp. Biochem. Physiol. C. 1991. Vol. 99. No. 1-2. P. 119-125.

338. Botero H., Reid W.M. Raillietina cesticillus: fatty acid composition // Exp. Parasitol. 1969 . Vol. 25. P. 93-100.

339. Boulanger Y., Lallier R., Cousineau G. Isolation of enterotoxigenic Aeromo-nas from fish // Can. J. Microbiol. 1977. Vol. 23, N 9. P. 1161 1164.

340. Braga V.M., Tavares C.A., Rumjanek F.D. Protein characterization of sexually mature and immature forms of Schistosoma mansoni II Comp. Biochem. Physiol. 1989. Vol. 94 B, N 3. P. 427-433.

341. Branch S.J. Accumulation of amino acids by Moniliformis dubius (Acantho-cephala) // Exp. Parasitol. 1970. Vol. 27. P. 95-99.

342. Brand T. The nature of the metabolic activities of intestinal helminth in their natural habitat: aerobiosis or anaerobiosis // Biodynamica. 1938. Vol. 41. P. 1-13.

343. Brand T. Chemical physiology of endoparasitic animal. N.Y., 1952. 339 p.

344. Brand T. Biochemistry of parasites. N.Y.: Academic Press, 1966. 430 p.

345. Brand T. Biochemistry of parasites. 2-nd ed. N.Y.: Academic Press, 1972. 449 p.

346. Brand T. Biochemistry of helminths // Z. Parasitenk. 1974. Vol. 45. P. 109124.

347. Bremner I., Davies N.T. Induction of metallothionein in rat liver by zinc injection and restriction of food intake // Biochem. J. 1975. Vol. 149. P. 733738.

348. Bremner I., Marshall R. B. Hepatic Cu- and Zn-binding proteins in ruminants. 2. Relationship between Cu and Zn concentrations and the occurencs of a metallothionein-like fraction // Br. J. Nutr. 1974. Vol. 32. P. 283-291.

349. Brichon G., Capelle S., Zwingelstein G. Phospholipids composition and metabolism in the hemolymph of Carcinus maenas (Crustacea, Decapoda) effect of temperature // Comp. Biochem. Physiol. 1980. Vol. 67B. P. 647-652.

350. Brondz I., Olsen I. Fatty acid contents of the yeast and mycelial phase of

351. Candida albicans II J. Chromatogr. Biomedical Applications. 1990. Vol. 533. P. 152-158.

352. Brouwer M., Brouwer-Hoexum T. Interaction of copper-metallothionein from the American lobster, Homarus americanus, with glutation // Arch. Biochem. Biophys. 1991. Vol. 290. No 1. P. 207-213.

353. Brown D.A., Bay S.M., Hershelman G.P. Exposure of scorpionfish (Scor-paena guttata) to cadmium: Effect of acute and chronic exposures on the cytosolic distribution of cadmium, copper and zinc // Aquat. Toxicol. 1990. Vol. 16. No. 4. P. 295-310.

354. Bunton T.E., Frazier J.M. Extrahepatic tissue copper concentrations in white perch with hepatic copper storage // J. Fish. Biol. 1994. Vol. 45. No. 4. P. 627-640.

355. Buteau G.H., Simmons J.E., Fairbairn D. Lipid metabolism in helminth parasites. IX. Fatty acid composition of shark tapeworms and their hosts // Exp. Parasitol. 1969. Vol. 26. P. 209-213.

356. Buteau G.H., Simmons J.E., Beach D.H., Holz G.G., Sherman I.W. The lipids of cestodes from Pacific and Atlantic coast triakid sharks // J. Parasitol. 1971. Vol.57. P. 1272-1278.

357. Butler D.G. Hormonal control of gluconeogenesis in the North American eel (Anguilla rostrata) II Gen. Comp. Endocr. 1968. Vol. 10. P. 85-91.

358. Butterworth J. Studies on the phosphomonoesterases of Ascaris suum (Goeze, 1782) // Ph. D. Thesis: University of Wales. 1970. 90 p.

359. Buttreworth J., Probert A.J. Nonspecific phosphomonoesterases of Ascaris suum. I. Effect of inhibitors, activators and helators // Exp. Parasitol. 1970.1. Vol. 28. P. 557-565.

360. Bylund J. Pathogenic effects of a diphyllobothriids plerocercoid on its host fishes // Comment, biol. Soc. sci. fenn. 1972. Vol. 58, N 11. P. 135-140.

361. Bylund G., Djupsund B.M. Protein profiles as an aid to taxonomy in the genus Diphyllobothrium IIZ. Parsitenk. 1977. Vol. 51. P. 241-247.

362. Caldwell R.S., Vernberg F.J. The influence of acclimation temperature on the lipid composition of fish cell mitochondria // Сотр. Biochem. Physiol. 1970. Vol.34. P. 179-191.

363. Canonica F.P., Pisano M.A. // J. Clin. Microbiol. 1985. Vol. 22, N 6. P. 1061-1062.

364. Carpene E., Cortesi P., Tacconi S., Cattani O., Isani G., Serrazanetti G.P. Cd-metallothionein and metal-enzymes interactions in the goldfish Carassius auratus II Сотр. Biochem. Physiol. 1987. Vol. 86C. No. 2. P. 267-272.

365. Carpene E., Vasak M. Hepatic metallothioneins from goldfish (Carassius auratus L.) // Сотр. Biochem. Physiol. B. 1989. Vol. 92B. No. 3. P. 463468.

366. Carter C.E., Colley D.G. An electrophoretic analysis of Schistosoma man-soni soluble egg antigen preparation // J/ Parasitol. 1978. Vol. 64. P. 385390.

367. Castro C.A., Fairbairn D. Carbohydrates and lipids in Trichinella spiralis larvae and their utilization in vitro // J. Parasitol. 1969. Vol. 55. P. 51-58.

368. Cavier R., Savel J., Monteoliva M. Nature et repartition selons sexe des substances lipidiques chez Ascaris lumbricoides Linne, 1758 // Bull. Soc. Chim. Biol. 1958. Vol. 40. P. 177-187.

369. Cesari I.M. Schistosoma mansoni: distribution and characteristics of alkaline and acid phosphatase // Exp. Parasitol. 1974. Vol. 36. P. 405-414.

370. Chappel L.H., Arme C., Read C.P. Studies of membrane transport. V. Transport of long chain fatty acids in Hymenolepis diminuta (Cestoda) II Biol.

371. Bull. 1969. Vol. 136. P. 313-326.

372. Chatteijee S., Bhattacharya S. Inductive changes in hepatic metallothionein profile in the climbing perch, Anabas testudineus (Bloch) by industrial pollutants // Indian J. Exp. Biol. 1986. Vol. 24. No 7. P. 455-457.

373. Chatteijee A., Maiti I.B. Induction and turnover of catfish (Heteropneustes fossilis) metallothionein //Mol. Cell. Biochem. 1991. Vol. 108. No. 1. P. 2938.

374. Cheng T.C., James H.A. The histopatology of Crepidostomum sp. Infection in the second intermediate host Sphaerium striatinum II Proc. Helminthol. Soc. Wash. 1960. Vol. 27. P. 44-48.

375. Cheng R.W., Ko R.C. Purification of larval Taenia solium antigens by gel filtration//Vet.Parasitol. 1992. Vol. 43, N 1-2. P. 65-73.

376. Chopra A.R., Jain S.K., Vinyak V.R. Khulnum J.R. Phospholipid composition of Dipilidium caninum II Experientia. 1978. Vol. 34, N 11. P. 14571458.

377. Chung Y.B., Lee M., Yang H.J., Chung B.S., Lee S.Y., Choi M.H., Hong S.T. Characterization of partially purified 8 kDa antigenic protein of Clonorchis sinensis II Korean J.Parasitol. 2002. Vol. 40, N 2. P. 83-88.

378. Ciccini T., Belli M., Nesseri E., Passi S. I lipisi della "Taenia saginata" II Ann. Sclavo. 1976. Vol. 18. N 1. P. 82-90.

379. Cmelik S., Bartle Z. Zusammensetzung der lipide von Taenia saginata H Z. physiol. Chem. 1956. Vol. 305. P. 170-176.

380. Cossins A.R. Adaptation of biological membranes to temperature. The effect of temperature acclimation of goldfish upon the viscosity of synaptosomalmembranes // Biochim. biophys. Acta. 1977. Vol. 470. P. 395-411.

381. Cossins A.R., Prosser C.L. Evolutionary adaptations of membranes to temperature // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1978. Vol. 75. P. 2040-2043.

382. Cutillas C., Espina C., Spakulova M., Arias P. Differential diagnosis of lung nematode parasites from livestock by electrophoretic techniques // Int. J. Parasitol. 1995. Vol. 25, N 2. P. 215-220.

383. Dalai R., Bhattacharya S. Effect of.chronic non-lethal doses of non-metals and metals on hepatic metallothionein in Channa punctatus (Bloch) // Indian J. Exp. Biol. 1991. Vol. 29. No. 7. P. 693-694.

384. Damian R.T. Molecular mimicry: antigen sharing by parasite and host and its consequences II Amer. Nat. 1964. Vol. 98. P. 129-149.

385. Damian R.T., Greene N., Hubbard J. Occurrence of mouse a2-macroglobulin antigenic determinants on Schistosoma mansoni adults with evidence of their nature // J. Parasitol. 1973. Vol. 59. P. 69-73.

386. Daugherty J.W. Intermediary protein metabolism in helminths. IV. The active absorption of metionine by the cestoda Hymenolepis diminuta II Exp. Parasitol. 1957. Vol. 6. P. 60-67.

387. Daugherty J.W., Foster W.B. Comparative studies on amino acid absorption of cestodes // Exp. Parasitol. 1958. Vol. 7. P. 99-107.

388. Davis B.J. Disc-electrophoresis. II. Method and application to human serum proteins // Ann. N.Y. Acad. Sci. 1964. Vol. 121. P. 404 427.

389. Davis B.J., Lindsay G.K. Disc-electrophoretic analysis of molluscan individuals and populations // Malacologia. 1967. Vol. 5. P. 311-334.

390. Delahunty G., Vlamingt V.L. Photoperiod-temperature interactions on liver plasma metabolites in the goldfish Carassius auratus II Comp. Biochem. Physiol. 1980. Vol. 66A. P. 507-512.

391. De Tong D.W., Olson A.C., Hawkev K.M. Tansen E.F. Effect of cultivation temperature in peroxidasoenzymes of plant cells grown in suspension // Plant

392. Physiol. 1968. Vol.43, N 5. P. 841-844.

393. Dineen J.K. Antigenic relationship between host and parasite // Nature. 1963. Vol. 197, N 4896. P. 471-472.

394. Dissous C., Capron A. Schistosoma mansoni and its intermediate host Biom-phalaria glabrata express a common 39 kilodalton acidic protein // Mol. Biochem. Parasitol. 1989. Vol. 32, N 1. P. 49-56.

395. Doering G.N., Palincsar E.E. Acid phosphatase isozyme profiles in the life cycle of the nematode Panagrellus silusiae II Trans. 111. State Acad. Sei. 1977. Vol. 70. P. 57-65.

396. Duquesne S., Degros N., Janquin M.A., Richard A. Hepatic metal-binding proteins in two species of marine flatfish: Dab (Limanda limanda) and lemon-dab (Microstomas kitt) II Oceanis Doc. Oceanogr. 1991. Vol. 17. No. 3. P. 225.

397. Elliott J.M. Some aspects of thermal stresses on freshwater teleosts // Stress in fish. London: Academic Press. 1981. P. 209-249.

398. Ellman G.L. Tissue sulfhydryl groups // Arch. Biochem. Biophys. 1959. Vol. 82. P. 70-75.

399. Enders A., Notzel H. Spezifische Veränderungen im Kleinhirn bei chronischer oraler Vergiftung mit Sublimat // Arch. Exp. Path. Pharmacol. 1965. Vol. 225. P. 346.

400. Eveleigh E.S. A comparison of soluble proteins fractions in two acantho-cephalan genera// Can. J. Zool. 1974. Vol. 52. P. 823-825.

401. Fairbairn D. Lipids of the female reproduction organs in Ascaris lumbricoi-des II Can. J. Biochem. Physiol. 1955a. Vol. 33. P. 31-37.

402. Fairbairn D. Embryonic and postembryonic changes in the lipids of Ascaris lumbricoides egg // Can. J. Biochem. Physiol. 1955b. Vol. 33. P. 122-129.

403. Fairbairn D. The muscle and integument lipids in female Ascaris lumbricoides II Can. J. Biochem. Physiol. 1956. Vol. 34. P. 39-45.

404. Fairbairn D. The in vitro hatching of Ascaris lumbricoides eggs // Can. J. Zool. 1961. Vol.39. P. 120-126.

405. Fairbairn D., Jones R. Cholesterol from Ascaris lumbricoides (Nematoda) I I Can. J. Chem. 1956. Vol. 34. P. 566-574.

406. Fairbairn D., Passey R.F. Occurrence and distributin of tregalose and glico-gen in the eggs and tissue of Ascaris lumbricoides II Exp. Parasitol. 1957. Vol. 6. P. 566-574.

407. Fairbairn D., Wertheim G., Harpur R.P., Schuller E.L. Biochemistry of normal and irradiated strains of Hymenolepis diminuta II Exp. Parasitol. 1961. Vol. 11, N 3. P. 248-263.

408. Faure-Fremiet E. Le cycle geminatif eher l'Ascaris megalocephala // Arch. Anat. Microscop. 1913. Vol. 15. P. 435-457.

409. Faust F., Talqvist T.W. Uber die Ursachen der Bothriocephalus Anaemie auf Physiologisch chemischer Grundlage // Archiv f. Exp. Pathol, u. Pharmacol. 1907. Vol.57. P. 367-385.

410. Fitzhugh O.G., Nelson A.A., Lang E.P., Kunze F.M. Chronic oral toxicities of mercuri-phenil and mercuric salt // Salt. Hyg. Occup. Med. 1950. Vol. 2. P. 433.

411. Flodin P. Dextran gels and their application in gel filtration // Ph. D. Thesis. Uppsala. 1962. 90 p.

412. Flury F. Zur Chemie und Toxicologic der Ascariden // Arch. Exp. Path. Pharmacol. 1912. Vol. 67. P. 275-392/

413. Folch J., Lees M., Sloan-Stanley G.H. A simple method for the isolation and purification of total lipids from animal tissue (for brain, liver and muscle)

414. J. Biol. Chem. 1957. Vol. 226, N 1. P. 497-509.

415. Fountoulakis M., Takacs B., Langen H. Two-dimensional map of basic proteins of Haemophilus influenzae II Electrophoresis. 1998. Vol. 19, N 5. P. 761-766.

416. Freeman T. Smith J. Human serum protein fractionation by gel filtration // BiochemJ. 1970. Vol. 118. No 5. P. 869-873.

417. Fukumoto S., Takechi M., Kamo H., Yamaguchi T. Comparative studies on soluble protein profiles and isozyme patterns of seven Trichinella isolates // Parasitoses. 1987. Vol. 73, N 4. P. 352-357.

418. Fukushima T., Abe K., Nakagawa A., Yamane Y. Fatty acid composition of plerocercoid and adult of Spirometra erinacei and the host-parasite relationship // Int. J. Parasitol. 1988. Vol. 18, №1.P. 27-31.

419. Fukushima H., Martin C.E., Iida H., Kitajima Y., Thompson G.A., Nozawa Y. Changes in membrane lipid composition during temperature adaptation by a termotolerant strain of Tetrahymena pyriformis II Biochim. byophys. acta. 1976. Vol. 431, № LP. 165-179.

420. Gagne F., Marion M., Denizeau F. Metal homeostasis and metallothionein induction in rainbow trout hepatocytes exposed to cadmium// Fundam. Appl. Toxicol. 1990. Vol. 14. No 2. P. 429-437.

421. Gailly C., David F., Sandra P., Laneelle M.A., Cocito C. Lipid compositionof leprosy-derived corynebacteria, a distinct group of corynebacteria, and of a reference Corynebacterium // Biotechnol.Ther. 1993. Vol. 4, N 1-2. P. 99116.

422. Garate T., Rivas L. Comparative study on polypeptide patterns of larvae of Trichinella isolates by two dimensional electrophoresis // J. Helmintol. 1987. Vol. 61, N3. P. 228-238.

423. Gedamu L. Regulation of rainbow trout metallothionein genes by heavy metals // Mar. Environ. Res. 1993. Vol. 35. No 1-2. P. 215-216.

424. George S.G. Cadmium effects on plaice liver xenobiotic and metal detoxica-tion systems: Dose-response // Aquat. Toxicol. 1989. Vol. 15. No 4. P. 303310.

425. George S., Burgess D., Leaver M., Frerichs N. Metallothionein induction in cultured fibroblasts and liver of a marine flatfish, the turbot, Scophthalmus maximus //Fish Physiol. Biochem. 1992. Vol. 10. No 1. P. 43-54.

426. George S., Todd K., Tytler P., Wright J. Expression of the metallothionein gene in marine flatfish: Studies of its ontogeny and heavy metal inducibility // 3rd International Marine Biotechnolodgy Conference, Tromsoe, Norway. 1994. P. 82.

427. Ginger C.D., Fairbairn D. Lipid metabolism in helminth parasites. I. The lipids of Hymenolepis diminuta (Cestoda) I I J. Parasitol. 1966a. Vol. 52. P. 1086-1096.

428. Ginger C.D., Fairbairn D. Lipid metabolism in helminth parasites. II. The major origins of the lipids of Hymenolepis diminuta (Cestoda) // J. Parasitol. 1966b. Vol. 52. P. 1097-1107.

429. Glynn A.W., Olsson P. E. Cadmium turnover in minnows (Phoxinus phox-inus) preexposed to waterborne cadmium // Environ. Toxicol. Chem. 1991. Vol. 10. No 3. P. 383-394.

430. Goil M.M. Fat metabolism in trematode parasites // Z. Parasitenk. 1958. Vol. 18. P. 320-323.

431. Goil M.M. Physiological studies in trematodes. Lipid fraction in Gastrotylax crumenifer II Parasitology. 1964. Vol. 54. P. 81-85.

432. Goil M.M. Phosphatase systems in Fasciolopsis buski Lankaster, 1857 and Gastrodiscus aegyptiacus Cobbold, 1876 // Parasitology. 1973. Vol. 67. P. 197-204.

433. Goodfellow M., Minnikin D.E. Chemical methods in bacterial systematics // Academic Press, London. 1985. 235 p.

434. Gore R.W., Sadun E.H., Hoff R. Echinococcus granulosus and E. multilocularis soluble antigen fluorescent antibody test // Exp/ Parasitol. 1970. Vol. 28. P. 272-279.

435. Grandini S. Copper and cadmium in teleost tissues // Il-Pesce. 1993. No. 4. P. 54-73.

436. Greenwalt D.E., Borchers H.A. An electrophoretic study of caecal proteins of Clinostomum marginatum (Trematoda) // J. Minn. Acad. Sei. 1977. Vol. 43. P. 18-20.

437. Gupta S.P., Gupta R.C. Phosphatase activity in Ganeo tigrinum from Rana tigrina II Z. Parasitenk. 1977. Vol. 54. P. 89-94.

438. Hamer D.H. Metallothionein // Annu. Rev. Biochem. 1986. Vol. 55. P. 913951.

439. Hamza-Chaffai A., Amiard-Triquet C., El Abed A. Metallothionein-like protein: is it an efficient biomarker of metal contamination? A case study based on fish from the Tunisian coast // Arch. Environ. Contam. Toxicol. 1997. Vol. 33. P. 53-62.

440. Hansen N., Freney L., Lable M., Renoud F., Yourassowsky E. Gas-liquid chromatographic analysis of cellular fatty acid methyl esters in Aero-monas species //Lbl. Bacteriol. 1991. Vol. 275, #1. P. 1-10.

441. Harrington G. The lipid content of Hymenolepis diminuta and Hymenolepis citelli II Exp. Parasitol. 1965. Vol. 17, N 2. P. 287-295.

442. Haynes W.D.C. Taenia crassiceps: uptake of basic and aromatic amino acids by larvae II Exp. Parasitol. 1970. Vol. 27. P. 256-264.

443. Hazel J.R. The regulation of cellular function by temperature induced alterations in membrane composition // Eff. Temp. Ecthotermic Organisms. Berlin. 1973. P. 55-67.

444. Hazel J. R. Influence of thermal acclimation of membrane lipid composition of rainbow trout liver // Amer. J. Physiol. 1979. Vol. 236. P. R91-R101.

445. Hazel J.R., Prosser C.L. Molecular mechanisms of temperature compensation in poikilotherms // Physiol. Rev. 1974. Vol. 54. P. 620-677.

446. Heat-shock proteins: from bacteria to man. Berlin etc. 1982. 450 p.

447. Herzig A., Winkler H. Der einfluB der tempertur und die embryonalle einwicklung der Cypriniden // Ost. Fish. 1985. Bd. 38. S. 182-196.

448. Higham D.P., Sadler P.J., Scawen M.D. Cadmium-Resistant Pseudomonas putida Synthesizes Novel Cadmium Proteins // Science. 1984. Vol. 225. P. 1043-1045.

449. Hillyer G.V., Pelley R.D., del Llano de Diaz A. Solubilisation of antigens of Fasciola hepatica which react with antibodies to Schistosoma mansoni II J. Parasitol. 1979. Vol. 65. P. 55-60.

450. Hillyer G.V., Garcia Rosa M.I., Alicea H., Hernandez A. Successful vaccination against murine Schistosoma mansoni infection with a purified 12 Kd Fasciola hepatica cross-reactive antigen // Am. J. Trop. Med. Hyg. 1988. Vol. 38, N l.P. 103-110.

451. Hobson J.F., Birge W.J. Acclimation-induced changes in toxicity and induction of metallothionein-like proteins in the fathead minnow following sublethal exposure to zinc // Environ. Toxicol. Chem. 1989. Vol. 8. No 2. P. 157-169.

452. Hochachka P.W., Clayton-Hochachka B. Glucose-6-phosphate dehydrogenase and thermal acclimation in the mullet fish // Mar. biol. 1973. Vol. 18, N 4. P. 251-259.

453. Hogstrand C., Haux C. Induction of metallotionein by cadmium in blue stripped grunt (Haemulon sciurus) II Mar. Environ. Res., 1989. Vol. 28. No 1-4. P. 191-194.

454. Hogstrand C., Haux C. A radioimmunoassay for perch (Perca fluviatilis) metallothionein//Toxicol. Appl. Pharmacol. 1990. Vol. 103. No 1. P. 56-65.

455. Holton R.W., Blecker H.H., Onore M. Effect of growth temperature on the fatty acid composition of blue-green alga // Phytochemistry. 1964. Vol. 3. P. 595-602.

456. Hopkins C.A., Callow P. Methionine flux between a tapeworm {Hymenolepis diminuta) and its environment // Parasitology. 1965. Vol. 55. P. 653-666.

457. Howard A.G., Nickless G. Protein binding of cadmium, zinc and copper in environmentally insulted limpets Patella vulgata. J. Chromatogr. 1975. Vol. 104. No 2. P. 457-459.

458. Hussain S., Slikker W. Jr., Ali S.F. Role of metallothionein and other antioxidants in scavenging superoxide radicals and their possible role in neuroprotection//Neurochem Int. 1996. Vol. 29. P. 145-152.

459. Hylland K., Haux C., Hogstrand C. Hepatic metallothionein and heavy metals in dab Limanda limanda from the German Bight // Mar. Ecol. Prog.-Ser.1992. Vol. 91. No 1-3. P. 89-96.

460. Hylland K., Haux C., Hogstrand C., Sletten K., Andersen R.A. Properties of cod metallothionein, its presence in different tissues and effects of Cd and Zn treatment //Fish Physiol. Biochem. 1994. Vol. 13. No 1. P. 81-91.

461. Hylland K., Haux C, Hogstrand C. Immunological characterization of metallothionein in marine and freshwater fish //Responses of Marine Organisms to Pollutants Primo 7. 1995. Vol. 39. No 1-4. P. 111-115.

462. Hyllner S.J., Andersson T., Haux C., Olsson P.E. Cortisol induction of metallothionein in primary culture of rainbow trout hepatocytes // J. Cell. Physiol. 1989. Vol. 139. No 1. P. 24-28.

463. Isseroff H., Read C.P. Studies on membrane transport. VI. Absorption of amino acids by facioliid trematodes // Comp. Biochem. Physiol. 1969. Vol. 30. P. 1153-1159.

464. Jacobsen N.S., Fairbairn D. Lipid metabolism in helminth parasites. III. Biosynthesis and interconversion of fatty acids by Hymenolepis diminuta (Ces-toda) // J. Parasitol. 1967. Vol. 53. P. 335-361.

465. James A.T. Determination of the degree of unsaturation of long chain fatty acids by gas liquid chromatography // J. Chromatogr. 1959. Vol. 2. P. 552561.

466. Jamieson G.R., Reid E.H. The analysis of oils and fats by gas chromatography. Correlation of retention data with polarity of stationary phase // J. Chromatogr. 1969. Vol. 42, N 3. P. 304-310.

467. Jamieson G.R. GLC-identification techniques for long-chain unsaturated fatty acids // J. Chromatogr. Sci. 1975. Vol. 13, N10. P. 491-497.

468. Jangaard P.M., Ackman R.G., Sipos J.C. Seasonal changes in fatty acid composition of cod liver, flesh, roe and milt lipids // J. Fish. Res. Board Canada. 1967. Vol. 24. P. 613-627.

469. Jezyk P.F. Glycerolipid metabolism in Ascaris lumbricoides II Canad. J. Biochem. 1968. Vol. 46. P. 1167-1173.

470. Jimenez L., Fernandez-Velasco D.A., Willms K., Landa A. A comparative study of biochemical and immunological properties of triosephosphate iso-merase from Taenia solium and Sus scrofa // J.Parasitol. 2003. Vol. 89, N2. P. 209-214.

471. Jordan S.A., Bhatnagar M.K., Bettger W.J. Combined effects of methylmer-cury, lead, and cadmium on hepatic metallothionein and metal concentrations in the pekin duck // Arch. Environ. Contam. Toxicol. 1990. Vol. 19. No 6. P. 886-891.

472. Jowko G., Jezirska B. The effect of starvation on the chemical composition of the body of carp fry (Cyprinus carpio) // Pol. Arch. Hydrobiol. 1984. Vol. 32, #2. P. 135-144.

473. Kagi J.H.R., Vallee B.L. Metallothionein: a cadmium and zinc-containing protein from equine renal cortex // J. Biol. Chem. 1961. Vol. 236. P. 2435.

474. Kagi J.H.R., Himmelhoch S.R., Wanger P.D., Bethue J.D., Vallee B.L Equin hepatic and renal metallothionein. Purification, molecular weight, amino acid composition and metal content. J. Biol. Chem. 1974. Vol. 249. P. 3537-3542.

475. Kammann U. Metallothioneins and polychlorinated biphenyls in fish from the river Elbe and the North Sea // Schr. Bundesforschungsanst. Fisch. Hamb. 1995. P. 101.

476. Kaneda T. Fatty acids in the genus Bacillus. 2. Similarity in the fatty acid compositions of Bacillus thuringiensis, Bacillus anthracis and Bacillus cereus // J. Bacterid. 1968. Vol. 95, N 6. P. 2210-2216,

477. Kassell B. Proteolytic enzyme inhibitors from Ascaris lumbricoides II Methods of enzymology. N.Y. 1970. Vol. 19. P. 872-883.

478. Kassis A.I., Frayha G.J. Lipids of the cysticerci of Taenia hydatigena (Ces-toda) II Comp. Biochem. Physiol. 1973. Vol. B46. P. 435-443.

479. Kasuga-Aoki H., Tsuji N., Suzuki K., Isobe T., Yoshihara S. Identification ofsurface proteins and antigens from larval stages of Ascaris suum by two-dimensional electrophoresis // Parasitology. 2000. Vol. 121, Pt 6. P. 671-676.

480. Katsuhiko K., Takashi A., Tadatoshi K. Immersion vaccination water-borne challenge of ayu (Plecoglossus altivelis) against vibriosis // Te6e iohkio, Fish pathol. 1983. V. 18, N3. P. 143-149.

481. Kaulenas M.S., Fairbairn D. Introduction of permeability in infective and uninfective eggs of Ascaris lumbricoides II J. Parasitol. 1967. Vol. 53. P. 121-126.

482. Kemp P., Smith M.W. Effect of temperature acclimatization on the fatty acid composition of goldfish intestinal lipids // Biochem. J. 1970. Vol. 117. N 1. P. 9-15.

483. Kennedy M.W., Maizels R.M., Meghji M., Young L., Qureshi F., Smith H.V. Species-specific and common epitopes on the secreted and surface antigens of Toxocara cati and Toxocara canis infective larvae // Parasite Immunol. 1987. Vol. 9, N4. P. 407-420.

484. Kent N.H. Comparative immunochemistry of larval and adult forms of S. mansoni II Ann. N.Y. Acad. Sci. 1963a. Vol. 113. P. 110-113.

485. Kent N.H. Fractionation, isolation and definition of antigens from parasitic helminths //Ann. J. Hyg., Monographic series. 1963b. Vol. 22. P. 30-45.

486. Kilejan A., Ginger C.D., Fairbairn D. Lipid metabolism in helminth parasites. IV. Origins of the intestinal lipids available for absorption by Hyme-nolepis diminuta II J. Parasitol. 1968. Vol. 54. P. 63-68.

487. Kille P., Stephens P.E., Kay J. Elucidation of cDNA sequences for metal-lothioneins from rainbow trout, stone loach and pike liver using the polymerase chain reaction // Biochem. Biophys. Acta. 1991. Vol. 1089. No 3. P. 407-410.

488. Kille P., Kay J., Leaver M., George S. Induction of piscine metallothionein as a primary response to heavy metal pollutants: Applicability of new sensitive molecular probes // Aquat. Toxicol. 1992a. Vol. 22. No 4. P. 279-286.

489. Kille P., Kay J., Sweeney G. Molecular biology and environmental induction of piscine metallothionein // Mar. Environ. Res. 1995. Vol. 39. No 1-4. P. 107-110.

490. Kim S.I., Cho S.Y. Protein composition and antigenicity of the tegument from Paragonimus westermani I I Korean J. Parasitol. 2003. Vol. 31, N 3. P. 269-276.

491. Kito H., Ose Y., Mizuhira V., Sato Т., Ishikawa Т., Tazawa T. Separation and purification of (Cd, Cu, Zn)-metallothionein in carp hepato-pancreas // Сотр. Biochem. and Physiol. 1982a. Vol. C73. No 1. P. 121-127.

492. Kito H., Tazawa Т., Ose Y., Sato Т., Ishikawa T. Formation of metallothionein in fish // Сотр. Biochem. and Physiol. 1982b. Vol. C73. No 1. P. 129-134.

493. Kito H., Ose Y., Sato T. Cadmium-binding protein (metallothionein) in carp // Environ. Health Perspect. 1986. Vol. 65. P. 117-124.

494. Klavercamp J. F., Duncan D.A. Acclimation to cadmium toxicity by white suckers: cadmium binding capacity and metal distribution in gill and liver cytosol // Environ. Toxicol, and Chem. 1987. Vol. 6. No 4. P. 275-289.

495. Knipprath W.G., Mead J.F. The effect of environmental temperature on the fatty acid composition and in vivo incorporation of 1-C14 acetate in gold fish (Carassius auratus L.) II Lipids. 1968. Vol. 3. P. 121-128.

496. Koizumi N., Miyajima M., Susukida M. Variation of zinc and copper in met-allothionein-like protein in killifish (Oryzias latipes) exposed to cadmium //

497. Chemosphere. 1992. Vol. 24. No 12. P. 1799-1803.

498. Kong Y., Chung Y.B., Cho S.Y., Choi S.H., Kang S.Y. Characterization of three neutral proteases of Spirometra mansoni plerocercoid // Parasitology. 1994. Vol. 108, Pt 3. P. 359-368.

499. Kotsonis F.N., Klassen C.D. Comparison of methods for estimating hepatic metallothionein in rats // Toxicol. Appl. Pharmacol. 1977. Vol. 42. P. 583588.

500. Kuroshima R Comparison of cadmium accumulation in tissues between carp Cyprinus carpio and red sea bream Pagrus major II Nippon Suisan Gakkai-shi Bull. Jap. Soc. Sci. Fish. 1992. Vol. 58. No 7. P. 1237-1242.

501. Kuroshima R Hepatic metallothionein and glutathione levels in red sea bream // Comp. Biochem. Physiol. 1995. Vol. 110C. No 1. P. 95-100.

502. Kuroshima R., Kimura S., Date K., Yamamoto Y. Kinetic analysis of cadmium toxicity to red sea bream, Pagrus major II Ecotoxicol. Environ. Saf. 1993. Vol. 25. No 3. P. 300-314.

503. Kusel J.R. Protein composition and protein synthesis in the surface membranes of Schistosoma mansoni II Parasitology. 1972. Vol. 65. P. 55-59.

504. Laemmli U.K. Cleavage of structural proteins during assembly of the head of bacteriophage T4II Nature. 1970. Vol. 227. P. 680-685.

505. Lagerspetz K.Y.H., Kohonen J., Tirr R. Temperature acclimation of the ATP-ase activities in the nerve cord of the earthworm Lumbricoides ter-restris L. // Comp. Biochem. Physiol. 1973. Vol. 44B. P. 823-827.

506. Lambert M.A. Hickman-Benner F.W., Farmer III J .J., Moss C.W. Differentiation of Vibrionaceae species by their cellular fatty acid composition // Int.

507. J. Syst. Bacterid. 1983. Vol. 33. P. 777-792.

508. Laqueux R. Presence de larves plerocercoides de Diphyllobothrium (Ces-tode), sur la truite de Quebec // Natur. Canad. 1966. Vol. 23. P. 440-441.

509. Larson A., Lewander K. Metabolic effects of starvation in the eel, Anguilla anguilla L. // Comp. Biochem. Physiol. 1973. Vol. 44A. P. 344-367.

510. Laurent T.S., Killander J. A theory of gel filtration and its experimental verification//J. Chromatogr. 1964. Vol. 14. P. 317-330.

511. Lee D.L. The physiology of nematodes. Edinburgh @ London: Oliver @ Boyd, 1965. 154 p.

512. Lee Y.H., Shaikh Z.A., Tohyama C. Urinary metallothionein and tissue metal levels of rats injected with cadmium, mercury, lead, copper or zinc // Toxicology. 1983. Vol. 27. P. 337-345.

513. Lee K.S., Chun K.J., Kim K.C., Choi Y.H., Kim J.K. Biomonitoring of uranium and heavy metal pollution. Cleveland: CRC Press. 1992. 65 pp.

514. Lee H.J., Lee C.S., Kim B.S., Joo K.H., Lee J.S., Kim T.S., Kim H.R. Purification and characterization of a 7-kDa protein from Clonorchis sinensis adult worms // J. Parasitol. 2002. Vol. 88, N 3. P. 499-504.

515. Lehman A. J. Chemical in foods: a report to the Association of Food and Drug Officials on current developments. II. Pesticides // Quart. Bull. Ass. Food Drug. Officials U.S. 1951. Vol. 15. P. 122.

516. Lewis R.W. Temperature and pressure effects on the fatty acids of some marine ectotherms // Comp. Biochem. Physiol. 1962. Vol. 6. P. 75-98.

517. Lin Lih Yuan, Huang P.C. Complete homology in metallothionein from two genera of ducks and their hybrids // Biochem. Biophys. Res. Commun. 1990.

518. Vol. 168. No l.P. 182-187.

519. Love R.M. The chemical biology of fishes. London. 1982. Vol.2. 943 p.

520. Lovern J.A. Fat metabolism in fishes. IV. Mobilization of depot fat in the salmon // Biochem. J. 1934. Vol. 28. P. 1955-1960.

521. Lovern J.A. The composition of the depot fats of aquatic animals // Great Britain Dep. Sci. Industr. Res. Food Invest. Board Spec. Rep. 1942. Vol. 51. P. 72.

522. Lovern J.A. The lipids of marine organisms // Oceanogr. Mar. Biol. 1964. Vol. 2. P. 169-191.

523. Lowry O.H., Rosebrough N.J., Farr A.Z., Randall RJ. Protein measurement with the Folin phenol reagent // J. Biol. Chem. 1951. Vol. 193. P. 265-275.

524. Lumsden R.D., Harrington G.W. Incorporation of linoleic acid by the ces-tode Hymenolepis diminuta (Rudolphi, 1819) // J. Parasitol. 1966. Vol. 52. P. 695-700.

525. Maclinika-Roguska B. Preparation of Taenia saginata antigens and chemical analysis of antigens fractions // Acta parasitol. Pol. 1965. Vol. 13. P. 337347.

526. Malencik D., Claus W., Heizmann E., Fischer H. Structural protein of dogfish skeletal muscle // Biochem. J. 1975. Vol. 14. P. 715-721.

527. Maclinika-Roguska B. Studies on Moniezia expansa antigens. I. Isolation and chemical analysis I I Acta parasitol. Pol. 1970. Vol. 18. P. 267-276.

528. Malik V.S. // Advances in applied microbiology. 1989. V. 34. P. 263 306.

529. Margoshes M., Vallee B.T. A cadmium protein from equine kidney cortex// J. Amer. Chem. Soc. 1957. Vol. 79. P. 4813-4814.

530. Matskasi I., Nemeth I. Ligula intestinalis (Cestoda: Pseudophyllidae): studies on the properties of proteolytic and protease inhibitor activities of plero-cercoid larvae // Intern. J. Parasitol. 1979. Vol. 9, N 3. P. 221-227.

531. Maule A.G., Tripp R.A. Kaatari S.L., Schreck C.B. Stress alters immunefunction and disease resistance in chinook salmon (Oncorhynchus tchawytscha) II J. Endocrinol. 1989. V. 120, N1. P. 135-142.

532. Mclnnes J., Trust T.J., Crosa J.H. Deoxyribonucleic acid relationship among members of the genus Aeromonas II Can. J. Microbiol. 1979. Vol. 25, N 5. p. 579-586.

533. Mc Magon P.A. Phospholipids of larval and adult Taenia taeniaeformis II Exp. Parasitol. 1961. Vol. 11. P. 156-160.

534. Mercury in the environment. Cleveland. CRC. Press. Ed. Friberg L., Vostal J. 1972.216 pp.

535. Meyer F., Kimura S., Mueller I.F. Lipid metabolism in the larval and adult form of the tapeworm Spirometra mansonoides II J. Biol. Chem. 1966. Vol. 241, N 18. P. 4224-4232.

536. Meyer F., Meyer H., Bueding E. Lipid metabolism in the parasitic and free living flatworms, Schistosoma mansoni and Dugesia dortocephala II Bio-chim. Biophys. Acta. 1970. Vol. 210. P. 257-266.

537. Mikulikova L. Studies on species specificity of proteins in Ascaris lumbri-coides and Ascaris suum II Folia parasitol. 1976. Vol. 23. P. 45-50.

538. Miller V.L., Gould C.J., Polley D. Some chemical properties of phenylmer-cury acetate in relation to fungicidal performance // Phytopatology. 1957. Vol. 47. P. 722.

539. Miller N.G.A., Hill M.N., Smith M.W. Positional and species analysis of membrane phospholipids extracted from goldfish adapted to different environmental temperatures // Biochim. biophys. acta. 1976. Vol. 455. P. 644654.

540. Mills C.K., Kent N.H. Excretions and secretions of Trichinella spiralis and their role in immunity// Exp. Parasitol. 1965. Vol. 16. P. 300-310.

541. Monteoliva M. Estudio comparativo de las fracciones lipidicas de Ascaris lumbricoides y Ascaris galli II Rev. iber. Parasitol. 1960. Vol. 20. P. 573589.

542. Monteoliva M. Biochimica del Ascaris lumbricoides del cerdo. I. Components de liquido perivisceral // Rev. iber. Parasitol. 1973. Vol. 33. P. 407425.

543. Nakagawa A., Fukushima T., Fukumoto S. Fatty acid composition of Di-phyllobothrium cestodes with reference to their hosts // Yonago Acta medica. 1987. Vol. 30, №1. P. 65-80.

544. Nasset E.S. Role of the digestive system in protein metabolism // Fed. Proc. 1965. Vol. 24. P. 953-958.

545. Needham P.R., Behnke R.J. The effect of Nematode (Philonema) and Ces-toda (Diphyllobothrium) parasites in rainbow trouts of Tebay Lake, Alaska // Trans. Amer. Fish. Soc. 1965. Vol. 94, N 2. P. 184-196.

546. Newman S.G. Immunization of salmonids against furunculosis // Te6e k3h-kio, Fish pathol. 1985. V. 20, N 2-3. P. 403-411.

547. Noel-Lambot F., Gerday C., Disteche A. Distribution of Cd, Zn and Cu in liver and gills of the eel Anguilla anguilla with special reference to metal-lothioneins//Comp. Biochem. Physiol. 1978. C 61. P. 177-187.

548. Nordberg M., Trojanovska B., Nordberg G.F. Studies on metal-binding proteins of low molecular weight from renal tissues of rabbits exposed to cadmium or mercury // Environ. Physiol. Biochem. 1974. Vol. 4. P. 149-158.

549. Nordberg G.F., Goer R.A., Nordberg M. Comparative toxicity of cadmium cloride on mouse kidney // Arch. Pathol. 1975. Vol. 99. P. 192-197.

550. Norey C.G., Cryer A., Kay J. Cadmium uptake and sequestration in the pike (Esox lucius) // Comp. Biochem. Physiol., C. 1990. Vol. 95C. No 2. P. 217

551. Oh S. H., Deagen J. T., Whanger P. D., Weswig P. H. Biological function of metallothionein. V. Its induction in rats by various stresses. // Am. J. Physiol. 1978. Vol. 234. P. E282-285.

552. Oldenborg V., Van Vugt F., Van Golde L.M.G. Composition and metabolism of phospholipids of Fasciola hepatica, the common liver fluke // Biochim. Biophys. Acta. 1975. Vol. 398. P. 101-110.

553. Olsson P.E., Hogstrand C. Subcellular distribution and binding of cadmium to metallothionein in tissues of rainbow trout after exposure to su-per(109)Cd in water // Environ. Toxicol. Chem. 1987. Vol. 6. No. 11. P. 867874.

554. Olsson P.E., Haux C., Foerlin L. Variations in hepatic metallothionein, zinc and copper levels during an annual reproductive cycle in rainbow trout, Salmo gairdneri II Fish Physiol. Biochem. 1987. Vol. 3. No 1. P. 39-47.

555. Olsson P.E., Larsson A., Haux C. Metallothionein and heavy metal levels in rainbow trout («Salmo gairdneri) during exposure to cadmium in the water // Mar. Environ. Res. 1988. Vol. 24. No 1-4. P. 151-153.

556. Olsson P.E., Zarfarullah M., Gedamu L. A role of metallothionein in zinc regulation after oestradiol induction of vitellogenin synthesis in rainbow trout, Salmo gairdneri // Biochem. J. 1989. Vol. 257. No 2. P. 555-559.

557. Olsson P.E., Zafarullah M., Foster R., Hamor T., Gedamu L. Developmental regulation of metallothionein mRNA, zinc and copper levels in rainbow trout, Salmo gairdneri II Eur. J. Biochem. 1990. Vol. 193. No 1. P. 229-235.

558. Omar M.S., Kulow F. Localization of acid phosphatase in microfilariae of Zoa loa and Dipetalonema perstans from Cameroon // Tropenmed. Und Parasitol. 1977. Vol. 28. P. 552-553.

559. Omar M.S, Shulz-Key H. Acid phosphatase activity in the larval stages of Onchcerca volvulus developing in the vector Simulium damnosum II Tropenmed. und Parasitol. 1978. Vol. 29. P. 359-363.

560. Oriol R., Williams J.E., Perez E., Oriol C. Purification of lipoprotein antigens of Echinococcus granulosus from sheep hydatid fluid // Amer. J. Trop. Med. Hyg. 1971. Vol. 20. P. 569-579.

561. Overnell J., Coombs T.L. Purification and properties of plaice metal -lothionein, a cadmium-binding protein from the liver of the plaice (Pleuro-nectesplatessa) II Biochem. J. 1979. Vol. 183. No 2. P. 277-283.

562. Overnell J., Mcintosh R., Fletcher T.C. The levels of liver metallothionein and zinc in plaice, Pleuronectes platessa L., during the breeding season, and the effect of oestradiol injection II J. Fish Biol. 1987. Vol. 30. No 5. P. 539546.

563. Overnell J., Abdullah M.I. Metallothionein and metal levels in flounder Platichthys flesus from four field sites and in flounder dosed with waterborne copper II Mar. Ecol. Prog. Ser. 1988. Vol. 46. No 1-3. P. 71-74.

564. Overnell J., Mcintosh R. The effect of supplementary dietary copper on copper and metallothionein levels in the fish, dab, Limanda limanda II Mar. Environ. Res. 1988. Vol. 26. No 4. P. 237-247.

565. Overnell J., Fletcher T.C., Mcintosh R. The apparent lack of effect of supplementary dietary zinc on zinc metabolism and metallothionein concentrations in the turbot, Scophthalmus maximus (Linnaeus) // J. Fish Biol. 1988a. Vol. 33. No 4. P. 563-570.

566. Overell J., Fletcher T.C., Mcintosh R. Factors affecting hepatic metallothionein levels in marine flatfish // Mar. Environ. Res. 1988b. Vol. 24. No1.4. P. 155-158.

567. Pantosti A., Cerquetti M., Gianfrilli P.M. Electrophoretic characterization of Clostridium difficile strains isolated from antibiotic-associated colitis and other conditions // J. Clin. Microbiol. 1988. Vol. 26, N 3. P. 540-543.

568. Parshad V.R., Guraya S.S. Correlative biochemical and histochemical observations of the lipids of Centrorhynchus corvi (Acanthocephala) II Ann. biol. anim., biochim., biophys. 1977. Vol. 17, N 6. P. 953-959.

569. Patnaik M.M., Ray S.K. A histopathologic study of Limnea auricularia var. rufescens infected with larval stages of Echinostoma revolutum II Jap. J. Med. Sci. Biol. 1966. Vol. 19. P. 44-56.

570. Peanasky R.Y., Szucs M.M. Further purification of a chymotrypsin inhibitor from Ascaris lumbricoides and its reactions with chymotrypsins a and p // J. Biol. Chem. 1964. Vol. 239. P. 2525-2529.

571. Pietrori W. Zastosowanie elektriforetycznego rozdzialu bialek w Taksonomii i diagnostyce Parazytologicznej // Biul. Lubelsk. towarz. nauk. B. 1982. Vol. 24. N l.P. 51-55.

572. Piscator M. On cadmiumin normal human kidney together with a report on the isolation of metallothionein from livers of cadmium exposed rabbits. // Nord. Hyg. Tisdkr. 1964. Vol. 45. P. 76-82.

573. Popoff M., Veron M.A. A taxonomic study of the Aeromonas hydrophila -Aeromonaspunctata group // J. Gen. Microbiol. 1975. Vol. 94. P. 11 22.

574. Popoff M., Coynault C., Kiredjian N., Lemelin M. Polynucleotide sequence relatedness among motile Aeromonas species // Curr. Microbiol. 1981. Vol. 5, N2. P. 109-114.

575. Porter G., Pratt J., Awczarsak A. Histopathological effects of the trematode Nanophyetus salmincola (Chapin) on the hepatopancreas of its snail host, Ovytrehia siliqua (Gould) // Trans. Amer. Microsc. Soc. 1967. Vol. 86, N 3. P. 48-62.

576. Pozzuoli R., Musiani P., Arru E., Pianetti M. Echinococcus granulosus', isolation and characterisation of sheep hydatid fluid antigens // Exp. Parasitol. 1972. Vol. 32. P. 45-55.

577. Prasada Rao P.V.V., Jordan S.A., Bhatnagar M.K. Combined nephrotoxicity of methylmercury, lead, and cadmium in pekin ducks: Metallothionein, metal interactions, and histopathology // J. Toxicol. Environ. Health. 1989. Vol. 26. No 3.P. 327-348.

578. Probert A.J., Lwin T. Kinetic properties and location of non-specific Phosphomonoesterase in subcellular fractions of Fasciola hepatica II Exp. Parasitol. 1974. Vol. 35. P. 253-261.

579. Probert A.J., Lwin T. Fasciola hepatica: the presence of particle-associated and soluble non-specific acid phosphatase // Exp. Parasitol. 1976. Vol. 40. P. 206-211.

580. Raetz C.R.H., Dowhan W. Biosynthesis and function of phospholipids in Escherichia coli II J. Biol. Chem. 1990. Vol. 268, N 3. P. 1235 1238.

581. Rajendran N., Venkatesvaran K., Rajendran R., Hashimoto H., Urushigawa Y., Matsuda O. Cellular fatty acid composition in Vibrio cholerae I I Microbios Letters. 1990. Vol. 43. P. 141-147.

582. Rauser W. E., Curvetto N. R. Metallothionein occurs in roots of Agrostis tolerant to excess copper // Nature. 1980. Vol. 287. P. 563-564.

583. Read C.P., Simmons J.E., Campbell J.W., Rothman A.H. Permeation and membrane transport in parasitism: studies on a tapeworm-elasmobranch symbiosis//Biol. Bull. I960. Vol. 119. P. 120-123.

584. Read C.P., Rothman A.H., Simmons J.E. Studies on membrane transport, with special reference to parasite-host integration // Ann. N. Y. Acad. Sei. 1963. Vol. 113. P. 154-205.

585. Rema L.P., Philip B. Metallothioneins or metallothionein-like and hevy metal toxicity in Oreochromis mossambicus (Peters) // Indian J. Exp. Biol.1996. Vol. 34. P. 527-530.

586. Resch K., Ferber E. The role of phospholipids in lymphocyte activation // Immune recognition. N.Y.: Academic press. 1975. P. 281-312.

587. Richards M.P., Cousins R.J. Mammalian zinc homeostasis: requirement for RNA and metallothionein synthesis // Biochem. Biophys. Res. Commun. 1975. Vol. 16. No 64. P. 1215-1223.

588. Richards M.P., Cousins R.J. Isolation of an intestinal metallothionein induced by parenteral zinc // Biochem. Biophys. Res. Commun. 1977. Vol. 75. No 2. P. 286-296.

589. Ridlington J.W., Fowler B.A. Isolation and partial characterization of a cadmium-binding protein from the american oyster (Crassostrea virginica) I I Chem. Biol. Interact. 1979. Vol. 2. P. 127-138.

590. Ringo E.P.D.S., Birkbeck H., Andrew B. Production of eicosapentaenoic acid (20:5 n-3) by Vibrio pelagius isolated from turbot (Scophtalmus pela-gius L.) larvae // Appl. Environ Microbiol. 1992. Vol. 58. N 11. P. 37773778.

591. Roch M., McCarter J.A. Survival and hepatic metallothionein in developing rainbow trout exposed to a mixture of zinc, copper and cadmium // Bull. Environ. Contam. and Toxicol. 1986. Vol. 36. No 2. P. 168-175.

592. Rothman A.H., Fischer F.M. Permeation of amino acids in Moniliformis and Macracanthorhynchus (Acanthocephala) // J. Parasitol. 1964. Vol. 50. P. 410-414.

593. Rothman I.P., Moois G.W. Separation and comparative immunoassay (DASS ELISA) with antigens from adult Schistosoma mansoni II Trans. Roy. Soc. Trop. Med. Hyg. 1980. Vol. 74, N 4. P. 463-468.

594. Rothstein M. Nematode biochemistry. XI. Biosynthesis of fatty acids by Caenorabditis briggsae and Panagrellus redivivus II Int J. Biochem. 1970. Vol. l.P. 422-428.

595. Rothstein M., Gotz P. Biosynthesis of fatty acids in the free living Turbatrix aceti 11 Arch. Biochem. Biophys. 1968. Vol. 126. P. 131-140.

596. Ruff M.D., Verner J.K., Davis G.M. Effect of extraction procedures on disc electrophoretic patterns of Schistosoma japonicum proteins // Jap. J. Parasitol. 1971. Vol. 20. P. 341-358.

597. Ruff M.D., Davis G.M., Verner J.K. Schistosoma japonicum: disc electrophoretic patterns of the Japanese, Philippine and Formosan strains // Exp. Parasitol. 1973. Vol. 33. P. 437-446.

598. Ruppel A., Cioli D. A comparative analysis of various developmental stages of Schistosoma mansoni with respect to their protein composition // Parasitology. 1977. Vol. 75. P. 339-343.

599. Salisbury L.F., Andersen R.Y. Concerning to the chemical composition of Cysticercus fasciolaris // J. Biol. Chem. 1939. Vol. 129. P. 505-517.

600. Santos Y., Toranzo A.E., Dopazo C.P., Nieto T.P., Barja J.L. Relationships among virulence for fish, enterotoxigenicity, and phenotypic characteristics of motile Aeromonas II Aquaculture. 1987. Vol. 67, N 1-2. P. 29-39.

601. Sawada T., Williams J.E., Takei K., Sato S., Moose J.W. Studies on the substance responsible for complement fixation and the skin tests on clonorchia-sis // Proc. of the 1st International Congress of Parasitology. 1964. Vol. 1. P. 137-138.

602. Sawada T., Takei K., Williams J.E., Moose J.W. Isolation and purification of antigen from adult Clonorchis sinensis for complement fixation and precipitin tests // Exp. Parasitol. 1965. Vol. 17. P. 340-349.

603. Sawada T., Sato S., Takei K., Moose J.W., Williams J.E. Immunodiagnosis of schistosomiasis. III. Further purification af antigen SSCI by DEAE-sephadex A-50 column chromatography // Exp. Parasitol. 1968. Vol. 23. P. 238-243.

604. Scudiero R., Prisco P.P. de Camardella L., d'Avino R., Prisco G. di Parisi E.

605. Apparent deficiency of metallothionein in the liver of the Antarctic icefish Chionodraco hamatus. Identification and isolation of a zinc-containing protein unlike metallothionein // Comp. Biochem. Physiol. B. 1992. Vol. 103B. No 1. P. 201-207.

606. Sephadex gel filtration in theory and practice. Uppsala, Sweden. 1969. 30 P

607. Shaw D.H., Hodder H.J. Lipopolysaccharides of motile Aeromonads: core oligosaccharide analysis as an acid to t axonomic classification // Can. J. Microbiol. 1978. Vol. 24. P. 864 868.

608. Shears M.A., Fletcher G.Z. Hepatic metallothionein in the winter flounder (Pseudopleuronectes americanus) // Can. J. Zool. 1985. Vol. 65. No 7. P. 1602-1609.

609. Sheridan M.A., Allen W.V., Kerstetter T.H. Seasonal variations in the lipid composition of the steelhead trout, Salmo gairdneri Richardson, associated with the parr-smolt transformation // J. Fish Biol. 1983. Vol. 23, N 2. P. 220224.

610. Siddiqui J., Siddiqui A.H., Itoh T., Marsunito T. Characterization of sterols of three digenetic trematodes of buffalo // Mol. Biochem. Parasitol. 1985. Vol. 15, N2. P. 143-148.

611. Siles-Lucas M., Cuesta-Bandera C. Echinococcus granulosus in Spain: strain differentiation by SDS-PAGE of somatic and excretory/secretory proteins // J. Helminthol. 1996. Vol. 70, N 3. 253-257.

612. Sinski E. Immunodiffusion and electrophoretic analysis of antigens from Strongyloides papillosus II Bull. Acad. pol. sci., Ser. sci. biol. 1975. Vol. 23. P. 199-203.

613. Sivapalan P., Jenkins W.R. Phospholipids and long chain fatty acid composition of the nematode Panagrellus redivivus II Proc. Helmintol. Soc. Wash. 1966. Vol. 33, N2. P. 149-151.

614. Smitiers S.R., Terry R.J., Hockley D.T. Host antigens in schistosomiasis // Proc. Roy. Soc. 1969. Vol. 171. P. 483-494.

615. Smyth J.D. The physiology of trematodes. Edinburgh @ London: Oliver @ Boyd, 1966. 256 p.

616. Smyth J.D. The physiology of cestodes. Edinburgh @ London: Oliver @ Boyd, 1969. 279 p.

617. Smyth T.M., Brooks T.J. Lipid fraction in adult Schistosoma mansoni II J. Parasitol. 1969. Vol. 59. P. 293-298.

618. Smyth T.M., Brooks T.J., While H.B. Thin-layer and gas-liquid chromatography analysis of lipids from cercariae Schistosoma mansoni II Amer. J. Trop. Med. Hyg. 1966. Vol. 15. P. 120-126.

619. Sobocinski P. Z., Canterbury W. J., Mapes C. A., Dinterman R.E. Involvement of hepatic metallothioneins in hypozincemia associated with bacterial injection//Am. J. Physiol. 1978. Vol. 243. P. E399-E406.

620. Somero G.N., Hochachka P.W. The effect of temperature on catalytic and regulatory functions of piruvate kinases of the rainbow trout and the antarctic fish Trematomus bernacchii II Biochem. J. 1968. Vol. 110, N 3. P. 395400.

621. Sorof S., Young E., McBride R., Coffey C. Size classes of soluble liver mac-romolecules//Arch. Biochem. Biophys. 1966. Vol. 113. P. 83-96.

622. Spolski R.J., Corson J., Thomas P.G., Kuhn R.E. Parasite-secreted products regulate the host response to larval Taenia crassiceps II Parasite Immunol. 2000. Vol.22, N 6. P. 297-305.

623. Sprent J.F.A. Parasitism. Brisbane, 1963. 219 p.

624. Steadman B.L. Xenobiotic metabolism in rainbow trout: Toxicology, biochemistry and biomonitoring // Diss. Abst. Int. Pt. B-Sci. And Eng. 1987. Vol. 47. No 7. P. 182.

625. Steadman B.L., Farag A.M., Bergman H.L. Exposure-related patterns of biochemical indicators in rainbow trout exposed to No. 2 fuel oil // Environ. Toxicol. Chem. 1991. Vol. 10. No 3. P. 365-374.

626. Stokdale P.H.G., Baker N.F., Fisk R.A. Disk electrophoresis with homogen-ates of Obeliscoides cuniculi and Ostertagia circumcincta II Am. J. Vet. Res. 1974. Vol.35. P. 819-822.

627. Subramaniam D., Vankatesan S. On the phospholipids of Ascaris lumbricoi-des II Comp. Biochem. Physiol. 1968. Vol. 25. P. 733-739.

628. Svedberg P. The ultracentrifuge. Oxford: Oxford Univ. Press. 1940. 50 p.

629. Takeda H., Shimuzu G. Existence of the metallothionein-like protein in various fish tissues // Bull. Jap. Soc. Sci. Fish. 1982. Vol. 48. No 5. P. 711-715.

630. Tallandini L., Turchetto M., Coppellotti O., Marcassa C. Cd uptake in fish: metabolic effects and Cd complexes // Mar. Environ Res. 1989. Vol. 28. No 1-4. P. 222-223.

631. Tailliez R., Korach S. Les antigens de Fasciola hepatica. I. Isolement et characterization d'un antigene spécifique du genre II Ann. Inst. Pasteur. 1970. Vol. 118. P. 61-78.

632. Tailliez R., Mangalo R., Korach S. Isolement d'un antigene spécifique de la grande douve du foie (Fasciola hepatica L.) Il C. R. Acad. Sci. Paris. 1967. Vol. 265. P. 466-469.

633. Tanner C.E. Immunochemical study of the antigens of Trichinella spiralis larvae. IV. Purification by continuous-flow paper electrophoresis and column chromatography//Exp. Parasitol. 1970. Vol. 27. P. 116-135.

634. Tompson M., Mosetting E., Brand T. Unsaponifiable lipids of Taenia taeni-aeformis and Moniezia sp. II Exp. Parasitol. 1960. Vol. 9. P. 127-130.

635. Umminger B.L. Physiological studies on supercooled killifish (Fundulus heteroclitus). II. Serum organic constituents and the problem of supercooling //J. exp. Zool. 1969. Vol. 171. P. 409-423.

636. Van Den Thillart G., De Bruin G. Influence of environmental temperature on mitochondrial membranes // Biochim. biophys. acta. 1981. Vol. 640. P. 439447. ""

637. Vannieuwenhuyze E., Sandra P. Selectivity optimisation for the capillary gas chromatographic analysis of bacterial cellular fatty acids // Chromatographia. 1987. Vol. 23, N 11. P. 850-855.

638. Vargas-Parada L., Solis C.F., Laclette J.P. Heat shock and stress response of Taenia solium and T. crassiceps (Cestoda) // Parasitology. 2001. Vol. 122, Pt 5. P. 583-588.

639. Vasak M., Kagi J.H.R., Hill H., Allen O. Zinc (II), cadmium (II), mercury (II) thiolate transitions in metallothionein // Biochemistry. 1981. Vol. 20. P. 2852-2858.

640. Vasilev I., Komandarev S., Michov L. Comparative electrophoretic studies of water soluble proteins certain ascarids // Comp. Rendus de l'Acad. Bulg. des Sci. 1972. Vol. 25. P. 121-129.

641. Vasilev I., Komandarev S., Michov L. Comparative electrophoretic studies of certain species of the Notocotylus genus I I Comp. Rendus de l'Acad. Bulg. des Sci. 1975. Vol:28. P. 1543-1545.

642. Vessal M., Zekavat S.J., Mohammadzadeh-k A.A. Lipids of Echinococcus granulosus protoscolices // Lipids. 1972. Vol. 7. P. 289-296.

643. Viarengo A., Pertica M., Mancinelli G., Palmero S., Zanicchi G., Orunesu M. Synthesis of Cu-binding proteins in different tissues of mussels exposed to the metal // Mar. Pollut. Bull. 1981. Vol. 12. No 10. P. 347-350.

644. Viarengo A., Nott J.A. Mechanisms of heavy metal cation homeostasis in marine invertebrates // Comp. Biochem. Physiol. C. 1993. Vol. 104C. No 3.1. P. 355-372.

645. Vilas R., Sanmartin M.L., Paniagua E. Temporal allozyme divergence in in-frapopulations of the hemiurid fluke Lecithochirium fusiforme II J. Parasitol. 2004. Vol. 90, N 1. P. 198-201.

646. Wagner G.J. Characterization of a Cadmium-Binding Complex of Cabbage Leaves // Plant Physiol. 1984. Vol.76. P. 797-805.

647. Warren M. Studies on the lipid metabolism of cestodes. Ph. D. Thesis. Houston: The Rice Institute. 1957. 90 p.

648. Webb R.A., Mettrick D.F. Pattern of incorporation of 32P into the phospholipids of the rat tapeworm Hymenolepis diminuta II Can. J. Biochem. 1971. Vol. 49. P. 1209-1212.

649. Webb R.A., Mettrick D.F. The role of glucose in the lipid metabolism of the rat tapeworm Hymenolepis diminuta II Int. J. Parasitol. 1975. Vol.5. P. 107112.

650. Wedemeyer G. The role of stress in the disease resistance of fishes // Symp. on Disease of Fishes and Shellfishes, Spec. Publ. Am. Fish. Soc. N 5. Washington D.C. 1970. P. 30-35.

651. Wieser W. Physiological energetics and ecophysiology // Cyprinid Fishes. Systematics, Biology and exploitation (Winfield I.J. & Nelson L.S. eds). L. -N.Y.-T.-Melb. Madras. 1991. P. 427-453.

652. Wicklund-Glynn A., Haux C., Hogstrand C. Chronic toxicity and metabolism of Cd and Zn in juvenile minnows (Phoxinus phoxinus) exposed to a Cd and Zn mixture // Can. J. Fish. Aquat. Sci. 1992. Vol. 49. No 10. P. 2070-2079.

653. Woodworth J., Pascoe D. Induction of cadmium-binding protein in the three-spined stickleback // Aquat. Toxicol. 1983. Vol. 3, N2. P. 141-148.

654. Wossene A., Tsuji N., Kasuga-Aoki H., Miyoshi Т., Isobe Т., Arakawa Т., Matsumoto Y., Yoshihara S. Lung-stage protein profile and antigenic relationship between Ascaris lumbricoides and Ascaris suum II J.Parasitol. 2002. Vol. 88, N4. P. 836-828.

655. Wright S.T.C. An observation suggesting that the molecular weights of enzymes can be arranged in three geometric series // Nature. 1962. Vol. 193. P. 934.

656. Yamamoto Y., Date K. Protective role of metallothionein against acute cadmium toxicity in rainbow trout // Nippon suisan gakkaishi Bull. Jap. Soc. Sci. Fish. 1987. Vol. 53. No 5. P. 833-839.

657. Yamamoto Y., Ishii Т., Ikeda S. Изучение метаболизма меди у рыб. III. Существование металлотионеин-подобного белка в гепатопанткреасе карпа // Nippon suisan gakkaishi, Bull. Jap. Soc. Sci. Fish. 1978. Vol. 44. No 2. P. 149-153.

658. Yoshida Y., Kondo K., Okada et al. Сравнительное изучение Ancylostoma brasiliensae, Ancylostoma ceylanicum. IV. Диск-электрофоретическое сравнение белков цельных гельминтов // Jap. J. Parasitol. 1977. Vol. 26. P. 68-74.

659. Yoshimura K. Disc electrophoretic comparison between Schistosoma japonicum and S. mansoni adult worms // Jap. J. Parasitol. 1968. Vol. 17. P. 382394.

660. Yoshimura K. Paragonimus: electrophoretic fractionation of whole body proteins as an aid in specific identification of a species from Sado Island // Jap. J. Parasitol. 1969a. Vol. 18. P. 107-117.

661. Yoshimura K. Paragonimus westermanni, P. ohirai and P. myasakii: electrophoretic comparison of whole body proteins // Exp. Parasitol. 1969b. Vol. 25. P. 118-130.

662. Yoshimura K., Hishinuma Y., Sato M. Disc electrophoretic patterns of adult Paragonimus iloktuensis Chen, 1940, with special reference to P. ohirai Mi* yasaki, 1939 // Jap. J. Parasitol. 1969. Vol. 18. P. 249-257.

663. Yoshimura K., Hishinuma Y., Sato M. A preliminary study on the disc electrophoretic patterns of Paragonimus kellicotti Ward, 1908, adult worms // Res. Bull. Megiro Parasitol. Mus. 1970. N 3. P. 12-17.

664. Zafarullah M., Olsson P. E., Gedamu L. Endogenous and heavy-metal-ion-induced metallothionein gene expression in salmonid tissues and cell lines // Gene. 1989. Vol. 83. No 1. P. 85-93.

665. Zafarullah M., Olsson P.E., Gedamu L. Differential regulation of metallothionein genes in rainbow trout fibroblasts, RTG-2 // Biochem. Biophys.

666. Acta. 1990. Vol. 1049. No 3. P. 318-323.

667. Zhang Y.S., Schlenk D. Induction and characterization of hepatic metallothionein expression from cadmium-induced channel catfish (Ictalurus punctatus) // Environ. Toxicol. Chem. 1995. Vol. 14. No 8. P. 1425-1431.