Развитие стероидсекреторных клеток в гонадах круглоротых и рыб в раннем онтогенезе тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.00.10, кандидат биологических наук Мосягина, Марина Васильевна

• Мосягина, Марина Васильевна
• кандидат биологических наук
• 2006

Оглавление диссертации кандидат биологических наук Мосягина, Марина Васильевна

1. ВВЕДЕНИЕ

2. СТЕРОИДОГЕНЕЗ У РЫБ (Обзор литературы).

2.1. Половые стероидные гормоны: биосинтез, динамика, функция

2.2. Морфология и функция стероидсекреторных клеток (СК) в гонадах молоди рыб

2.3. Ранний гонадо- и гаметогенез лососевых, осетровых и круглоротых - объектов исследования

3. МАТЕРИАЛ И МЕТОДИКА

4. РАЗВИТИЕ СТЕРОИДСЕКРЕТОРНЫХ КЛЕТОК В ГОНАДАХ У МОЛОДИ ЛОСОСЕВЫХ РЫБ В ПЕРИОД ДИФФЕРЕНЦИРОВКИ ПОЛА

4.1. Радужная форель

4.1.1. Гистоморфологический анализ состояния гонад

4.1.2. Ультраструктурный анализ состояния СК

4.2. Горбуша

4.2.1. Гистоморфологический анализ состояния гонад

4.2.2. Ультраструктурный анализ состояния СК

5. СОСТОЯНИЕ ПОЛОВЫХ ЖЕЛЕЗ И СТЕРОИДСЕКРЕТОРНЫХ КЛЕТОК В ГОНАДАХ ТИХООКЕАНСКИХ ЛОСОСЕЙ В

ПЕРИОД КАТАДРОМНОЙ МИГРАЦИИ

5.1. Сравнительный гистоморфологический анализ состояния гонад у молоди горбуши, кеты и симы

5.2. Ультраструктурный анализ состояния СК в яичниках

5.3. Ультраструктурный анализ состояния СК в семенниках

6. ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНЫЙ АНАЛИЗ РОЛИ СТЕРОИДСЕКРЕТОРНЫХ КЛЕТОК В РЕГУЛЯЦИИ ГАМЕТОГЕНЕЗ А У ЛОСОСЕВЫХ РЫБ 109 6.1. Влияние тестостерона на гаметогенез горбуши в период протогинической феминизации гонад у зародышей

6.2. Влияние эстрадиола на гаметогенез горбуши в период естественной инверсии пола

6.3. Влияние эстрадиола на гаметогенез горбуши после завершения периода естественной инверсии пола

6.4. Влияние эстрадиола на гаметогенез кижуча в период дифференцировки пола

6.5. Влияние эстрадиола на гаметогенез симы в период формирования у самок старшей генерации ооцитов

6.5.1. Исследование молоди в возрасте 0+

6.5.2. Исследование молоди в возрасте 1+

7. СОСТОЯНИЕ ГОНАД И СТЕРОИДСЕКРЕТОРНЫХ КЛЕТОК В ГОНАДАХ ЛИЧИНОК РЕЧНОЙ МИНОГИ

7.1. Гистоморфологический анализ состояния гонад

7.2. Ультраструктурный анализ состояния CK

8. СОСТОЯНИЕ ГОНАД, СТЕРОИДСЕКРЕТОРНЫХ КЛЕТОК В ГОНАДАХ И СОДЕРЖАНИЕ ПОЛОВЫХ СТЕРОИДНЫХ ГОРМОНОВ В ПЛАЗМЕ КРОВИ У МОЛОДИ ОСЕТРОВЫХ

8.1. Ленский осетр

8.1.1. Гистоморфологический и ультраструктурный анализ состояния гонад

8.1.2. Содержание половых стероидных гормонов в крови

8.2. Стерлядь

8.2.1. Гистоморфологический и ультраструктурный анализ состояния гонад

8.2.2. Содержание половых стероидных гормонов в крови

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Развитие стероидсекреторных клеток в гонадах круглоротых и рыб в раннем онтогенезе»

Регуляция функции воспроизводительной системы животных осуществляется под контролем нейроэндокринной и эндокринной систем. Центральное место в комплексе этих структур занимает ось гипоталамус -гипофиз - стероидогенные элементы гонад (Баранникова, 1975а, 1984, Баранникова и др., 1991; Шаляпина, 1991; Donaldson, 1973; de Vlaming, 1974; Pottinger, 1995; Jalabert et al., 2000; Devlin, Nagahama, 2002). К настоящему времени накоплены обширные сведения о работе гипоталамических центров головного мозга и гипофиза (Гербильский, 1941, 1965; Поленов 1975; Федоров, 1985; Баранникова, 1955; Баранникова, Дюбин, 1992; Гарлов, Поленов, 1996; Яковлева, 2000; Гарлов, 2002; Pickford, Atz, 1957; Peter et al., 1986; Pierantoni et al., 2002), строении, функции и динамике гонадотропных гормонов (Бурлаков, 1997; Христофоров, Мурза, 1998; Idler et al., 1975;

Kawauchi et al., 1988; Swanson, 1991; Miwa et al., 1994; Planas, Swanson, 1995; t

Swanson et al., 2003). Большое внимание также уделяется изучению гонад как эндокринной железы. Современные методы исследования дают возможность проследить динамику половых стероидных гормонов в жизненном цикле рыб (Ахундов, 1997; Баюнова, 2001; Груслова, 2004; Баранникова и др., 2000, 2003; Fostier et al., 1983; Nagahama, 1989, 1999; Miura, 2003), определить локализацию стероидного синтеза в гонадах с помощью гистохимических (Дюбин, 1986; Семенов 1989; Hoar, 1969; Kagawa et al., 1981; Kobayashi et al., 1996; Trant et al., 1999) и иммунноцитохимических (Piferrer et al., 1995; Morrey et al., 1998; Nakamura et al., 1998, 2005; Baroiler et al, 1999; Devlin, Nagahama, 2002) реакций на специфические ферменты, выявить особенности строения стероидсекреторных клеток - СК (Васильева, 1980; Семенов 1989,1996; Арбузова, 1995; Lofts, Bern, 1972; Guraya, 1976а,б, 1994; Nagahama et al., 1982; Fostier et al, 1983; Nakamura, Nagahama, 1993; Nakamura et al., 1998; Pierantoni et al., 2002). Однако, при анализе такого огромного количества работ, посвященных исследованию стероидогенной функции гонад, можно отметить, что большая часть из них посвящена завершающим этапам созревания гонад и нересту. Интерес к исследованиям именно этих этапов развития половой системы вполне оправдан как с теоретической, так и с практической точки зрения. Репродуктивная система определяет главные параметры динамики численности вида, такие как соотношение полов и возрастная структура нерестовых популяций, потенциальная и конечная плодовитость (Гербильский, 1967; Грачев, 1971; Персов, 1963, 1975; Иванков, 1985; Мурза, Христофоров, 1991). Знание механизмов регуляции репродуктивной функции необходимо для понимания пластичности и надежности репродуктивной системы, и, в то же время, открывает возможности управления процессом размножения у рыб в аквакультуре (Гербильский, 1941; Баранникова и др., 1983; Душкина, 1998). Меньшая изученность стероидогенеза у молоди во многом может объясняться методическими сложностями исследования. Небольшие размеры личинок, и молоди, при которых проходят ранние этапы гонадогенеза, слабая дифференцированность органов и низкие концентрации гормонов „ в периферической крови - все это делает неэффективными обычные патофизиологические и биохимические методики анализа. Становится невозможной, в частности, оценка содержания половых стероидных гормонов j в плазме крови.

Основная доля исследований стероидогенеза в раннем возрасте посвящена изучению роли половых гормонов и стероидсекреторных клеток гонад в регуляции процесса дифференцировки пола (Федоров и др., 1990; Ахундов 1991, 1997; Van den Hurk et al., 1982; Nakamura, Nagahama, 1985; Nakamura et al., 1998, 2005; Devlin, Nagahama, 2002). Считается, что половые стероидные гормоны являются первичными индукторами дифференцировки пола у рыб (Yamamoto, 1969). Андрогены определяют развитие гонад по пути семенников, а эстрогены - яичников. Однако, активные по уровню цитологической дифференцировки и морфо-функциональному состоянию СК были обнаружены в гонадах только после завершения этого процесса

Takahashi, Iwasaki, 1973; Van den Hurk, 1974; Satoh, 1974; Kanamori et al., 1985; Nakamura, Nagahama, 1993). Несомненный теоретический интерес в связи с определением пола представляет такое явление как ювенильный гермафродитизм. Существует много видов рыб как, например: морской карась Acanthopagrus schlegeli, (Chang, Yueh, 1990; Chang et al., 1994), серебристый пагель Pagellus acarne (Алексеев, 1969; Reinboth et al., 1986), рифовая рыба Amphiprion melanopus (Godwin, 1994), которые являются протандрическими ювенильными гермафродитами, или некоторые виды губановых - Pseudolabrus japonicus, Thalassoma duperrey (Hourigan et al., 1991, Morita et al., 1997), горбуша Oncorhynchus gorbuscha (Персов, 1975), которые являются протогиническими гермафродитами. Однако локализация СК и динамика их морфо-функционального состояния в гонадах молоди таких рыб не изучены.

Помимо дифференцировки и инверсии пола на ранних этапах развития гонад происходят еще и такие процессы, как формирование фонда половых клеток, становление моно- или полициклии, превителлогенный рост ооцитов. Механизмы, определяющие развитие единственной генерации ооцитов в яичниках, например, у тихоокеанских лососей или миноги, во многом не известны. Роль СК и половых стероидных гормонов в определении темпа гаметогенеза у молоди рыб также практически не исследована. Даже у сходных по типу оогенеза рыб, например, осетровых и тиляпии Saratherodon niloticus были обнаружены принципиальные различия в развитии стероидсекреторных клеток. В гонадах тиляпии наблюдалось постепенное развитие СК и увеличение их количества в процессе дифференцировки пола (Nakamura, Nagahama, 1985; Nakamura et al., 1998), а у осетровых - происходит полная замена одних типов СК другими (Семенов, 1989,1996).

Таким образом, сведения о происхождении, дифференцировке, функциональной морфологии и изменении секреторной активности СК в раннем онтогенезе рыб на ключевых этапах формирования половых желез: закладке, анатомической и цитологической дифференцировке пола, начале превителлогенеза либо отсутствуют, либо носят отрывочный и случайный характер. Регуляция же таких процессов, как темп гаметогенеза, формирование фонда половых клеток, становление моно- и полициклии вообще не ясна. Первым шагом на пути понимания механизмов регуляции этих процессов может стать сравнительный анализ состояния стероидсекреторных клеток в гонадах на ранних этапах развития у молоди разных видов рыб в норме, а также при экспериментальных гормональных воздействиях.

Главная проблема, на решение которой нацелена данная работа - изучение роли стероидных клеток в регуляции раннего гаметогенеза. Непосредственной же целью было исследовать развитие стероидсекреторных клеток в гонадах у молоди круглоротых и рыб разных систематических групп с разным темпом гаметогенеза и цикличностью воспроизводства.

Для реализации поставленной цели были определены следующие задачи:

1) исследовать развитие стероидсекреторных клеток в яичниках самок моноцикличной горбуши и полицикличной радужной форели до-,, в период и после дифференцировки пола.

2) сравнить особенности развития секреторных клеток на ранних стадиях развития гонад у самцов с прямым определением пола на примере форели и у самцов с естественной инверсией пола на примере горбуши.

3) сравнить состояние секреторных клеток в гонадах у самок и самцов нескольких видов тихоокеанских лососей с разным темпом развития гонад.

4) сравнить особенности морфологии секреторных клеток у видов, далеких друг от друга в систематическом отношении (круглоротые, осетровые и лососевые).

5) исследовать морфо-функциональные изменения секреторных клеток при гормональных воздействиях на молодь лососевых рыб.

6) изучить корреляцию функционального состояния стероидсекреторных клеток с содержанием половых стероидных гормонов в крови у молоди

I осетровых рыб.

Заключение диссертации по теме «Ихтиология», Мосягина, Марина Васильевна

10. выводы.

1. Клетки с признаками стероидного синтеза, находящиеся в состоянии цитодифференцировки, обнаруживаются в эпителии и стромальной ткани гонад у круглоротых и рыб на самых ранних этапах гонадогенеза - в период индифферентного развития половых желез.

2. У самок в период цитологической дифференцировки пола увеличивалось количество и функциональная активность стероидсекреторных клеток в строме яичника, что свидетельствует об их участии в регуляции перехода гониев в раннюю профазу мейоза.

3. В период превителлогенеза максимум стероидогенной активности последовательно смещался из стромы яичников в фолликулярные оболочки. Активность стероидогенных клеток в этих оболочках связана с темпом протоплазматического роста ооцитов. Экзогенные половые стероидные гормоны подавляли рост и стероидогенную функцию превителлогенных фолликулов. Выявленные закономерности согласуются с представлениями о важной роли стероидсекреторных клеток яйцевых оболочек в регуляции превителлогенного роста ооцитов.

4. У молоди форели и осетровых рыб (в отличие от миноги и тихоокеанских лососей) активные стероидсекреторные клетки присутствовали в эпителии яичника как до, так и в период превителлогенеза, что указывает на участие стероидогенных элементов в определении структуры фонда ооцитов как основы становления моно- или полицикличного типа оогенеза у самок.

5. В семенниках молоди рыб с прямым определением пола (гонохористов) стероидсекреторные клетки дифференцируются в стромальной ткани гонад. Их функциональная активность постепенно увеличивается с возрастом рыб. У самцов ювенильного протогиниста - горбуши активность этих клеток существенно и кратковременно возрастает в период естественной передифференцировки яичников в семенники, что связано с ролью стероидогенного звена в регуляции инверсии пола.

6. Семенники, в отличие от яичников, компетентны к полоопределяющему действию экзогенного эстрадиола. Феминизация гонад происходила при повышении функциональной активности стероидсекреторных клеток в строме, а позднее - в оболочках новообразованных превителлогенных ооцитов.

9. ЗАКЛЮЧЕНИЕ В ходе проведенных исследований были выявлены как видовые, так и половые различия в становлении и функционировании стероидогенной системы гонад, поэтому обобщения полученных данных целесообразно проводить раздельно для самок и самцов.

Самки. При ультраструктурном исследовании яичников выявлены четыре области локализации СК: покровный эпителий и строма гонад, фолликулярный эпителий (гранулеза) и соединительно-тканная оболочка (тека) превителлогенных ооцитов. У самок моноцикличных лососевых рыб и миноги СК в герминативном эпителии яичников немногочисленны и обнаруживаются здесь только до начала периода превителлогенеза. В то же время у самок полицикличных видов - радужной форели и осетра - СК в эпителии яичников обнаруживаются некоторое время и в период превителлогенного роста ооцитов. Объяснить этот факт на основе имеющихся данных пока не представляется возможным. Однако, подобное совпадение результатов,, полученных при исследовании различных видов моноцикличных рыб и миноги, с одной стороны, и полицикличных рыб, с другой стороны, дает основание предполагать участие СК, расположенных в эпителии яичников, в становлении полицикличности воспроизводства, а конкретно - в регуляции пополнения фонда ооцитов.

В строме яичников СК располагаются уже в индифферентный период развития гонад. Наибольшее их число и пик биосинтетической активности совпадают с появлением ооцитов ранней профазы мейоза, т.е. с цитологической дифференцировкой пола. С появлением активных секреторных клеток в оболочках превителлогенных фолликулов СК в строме практически исчезают. Смещение локализации стероидного синтеза в направлении «строма->оболочки ооцита» в ходе развития яичников характерно для самок всех исследованных видов. Надо отметить, что дефинитивные СК у взрослых самок находятся именно в оболочках овариальных фолликулов (вигау, 1976а;

Fostier et al., 1983; Devlin, Nagahama, 2002; Nakamura et al., 2005). Появление функционально активных CK в гранулезе и теке задолго до начала вителлогенеза само по себе свидетельствует о роли этих клеток в регуляции превителлогенного роста ооцитов. Важное значение СК в оболочках ооцитов подтверждается и при исследовании естественной инверсии пола у самцов горбуши. Отсутствие СК в оболочках превителлогенных ооцитов в гонадах генотипических самцов приводит к последующей резорбции этих половых клеток.

Из сопоставления полученных на молоди тихоокеанских лососей данных видно, что степень развития стероидогенной функции гонад (число СК, их локализация и уровень секреторной активности) находится в тесной связи с темпом протоплазматического роста ооцитов. У намного ранее других созревающего вида - горбуши - была и наиболее дифференцированной и функционально активной стероидогенная система овариального фолликула.

Воздействие экзогенными половыми стероидными гормонами на молодь лососевых рыб существенно повлияло на состояние СК в яичниках. При подавлении оогенеза у горбуши, кижуча и симы как тестостероном, так и эстрадиолом, наблюдали повышение активности СК, расположенных в строме яичников. Вместе с тем достоверные уменьшения размеров митохондрий и объемов агранулярной сети в цитоплазме СК, локализованных в теке, наряду со значительным сокращением количества этих клеток, свидетельствовало о снижении стероидогенной активности в оболочках ооцитов у подопытных самок. Таким образом, при искусственном подавлении оогенеза происходило усиление активности СК в строме яичников и понижение активности СК в составе теки фолликулов превителлогенных ооцитов. Такая направленность изменений в локализации стероидогенной активности носит прямо противоположный характер тем, которые наблюдались при естественном ходе развития яичников.

Данные о локализации и активности СК в яичниках молоди исследованных видов рыб при естественном развитии гонад и гормональном воздействии позволяют составить представление об их возможной роли в регуляции некоторых процессов раннего гонадогенеза. Эстрогенизация приводит к стимуляции СК в строме и подавлению СК в фолликулярных оболочках. Это может быть опосредовано гипоталамо-гипофизарной нейросекреторной системой через стимуляцию синтеза андрогенов стероидсекреторными клетками, расположенными в строме, которые в свою очередь тормозят дифференцировку ооцитов и СК в фолликулярных оболочках. Это предположение подтверждают результаты комплексных исследований гонад, секреторных клеток и содержания половых стероидных гормонов в крови осетровых. Так, при сравнении состояния СК в яичниках самок молоди стерляди с разной концентрацией половых гормонов в плазме крови оказалось, что чем выше была концентрация тестостерона, тем меньшее число СК обнаруживалось в составе теки фолликулов превителлогенных ооцитов, а у самки стерляди с самым большим содержанием тестостерона в плазме крови (22,5 нг/мл) СК были расположены только в строме яичника.

Самцы. Как и при индифферентном состоянии гонад, в семенниках у молоди всех исследованных видов СК обнаруживали в составе эпителия и стромы. Активность и количество СК в составе эпителия семенников снижается по мере развития желез, а в строме семенников стероидогенная активность возрастает. У видов с непрямым определением пола, как, например горбуша, развитие СК в семенниках при сохранении общей тенденции происходит несколько сложнее. Так, на этапе протогинической феминизации у самцов, как и у самок, в гонадах присутствуют ооциты периода ранней профазы мейоза, и СК расположены в строме. Сразу после завершения инверсии СК обнаруживаются уже исключительно в эпителии семенников. Позднее, у более крупной молоди, секреторные клетки вновь обнаруживали только в строме гонад. Судя по ультраструктуре и количественным характеристикам, наиболее активными были СК в период инверсии пола в строме семенников.

У молоди старших возрастных групп (форель 116 сут, горбуша 90 сут, сима, стерлядь) дифференцированные, активные СК располагаются исключительно в строме, там же, где и у взрослых половозрелых самцов (Арбузова, 1995; Van den Hurk, 1973; Guraya, 19766, 1994). Как показал сравнительный анализ, у самцов тихоокеанских лососей на сходном этапе гонадогенеза степень развития СК (локализация и уровень активности) зависит от размеров семенников. Крупнее всего они были у покатной молоди симы и существенно меньше - у покатной молоди горбуши. Соответственно только в семенниках симы были обнаружены активные СК в строме, у кеты - в строме и эпителии семенников, а у горбуши - только в эпителии.

При индуцированной экзогенным эстрадиолом феминизации гонад сначала увеличивалось количество СК в строме семенников (опыты 5 и 6, сима), затем с появлением в гонадах ооцитов на стадии ранней профазы мейоза возрастала активность этих клеток (опыт 3, горбуша). С появлением в гонадах подопытных самцов превителлогенных ооцитов активные СК располагаются уже в составе гранулезы этих ооцитов. Активность СК в строме таких гонад достоверно снижалась по сравнению с СК в строме гонад контрольных рыб (опыты 2 и 4, горбуша и кижуч). Таким образом, развитие стероидогенной системы в инвертированных гонадах подопытных самцов происходило так же, как и в яичниках у интактных самок.

Основываясь на полученных в работе данных о локализации и активности СК в ходе естественного развития семенников и при гормональной обработке молоди, можно составить представление о функции этих клеток. Так, обработка рыб тестостероном вызвала активизацию стероидсекреторных клеток в строме семенников. Эстрадиол также стимулирует развитие секреторных клеток в строме семенников на первом этапе их реакции - до завершения ранней профазы мейоза в ооцитах. Позднее, с появлением превителлогенных ооцитов, продолжающаяся эстрогенизация приводила к подавлению секреторных клеток в строме и стимуляции их развития в оболочках ооцитов, что обеспечивало успешный ход оогенеза у подопытных самцов. Это позволяет говорить о том, что экзогенный эстрадиол, увеличивая общую концентрацию эстрадиола, либо повышая соотношение эстрадиол/тестостерон в крови самцов, прямо или опосредованно, стимулирует мейотические деления гониев в семенниках.

Необходимо отметить, что средний диаметр ооцитов периода протоплазматического роста в гонадах феминизированных самцов был всегда меньше, чем у самок. На всем протяжении опытов подавления роста ооцитов и стероидогенной активности СК в их оболочках не происходило, как это наблюдали у подопытных самок. Это может означать, что «включение» отрицательной обратной связи гонады-гипофиз, когда избыток эстрадиола в крови подавляет развитие ооцитов, может происходить только при определенной степени развития превителлогенных ооцитов и всей железы в целом.

Суммируя результаты наблюдений по нормальному развитию и экспериментальному материалу, полученные на самках и самцах, можно заключить, что СК стромы гонад участвуют в регуляции мейотических циклов, а СК оболочек овариальных фолликулов - в регуляции начальных этапов протоплазматического роста ооцитов. Отсутствие СК в оболочках ооцитов приводит их к гибели, как это происходит в ходе инверсии пола у генотипических самцов горбуши.

Широкий выбор объектов исследования и сравнительный анализ СК на строго определенных этапах гонадогенеза позволили выявить их видовые и характерные для биологических и таксономических групп морфо-функциональные особенности. Оказалось, что в ранг видовых или групповых различий можно выделить такой показатель, как размеры СК. Так, у личинок миноги секреторные клетки, локализованные в составе теки, были в два раза меньше, чем у молоди горбуши с ооцитами такого же диаметра. Достоверно меньше были размеры митохондрий и канальцев эндоплазматической сети. В свою очередь у самок стерляди с ооцитами еще меньшего диаметра секреторные клетки, также расположенные в теке, были в два раза больше, чем у горбуши. При этом диаметр митохондрий был достоверно меньше, а диаметр канальцев эндоплазматической сети намного больше. Таким образом, размеры стероидсекреторных клеток в гонадах молоди осетровых в норме существенно больше, чем у молоди лососевых и круглоротых в любом из исследованных возрастов. Надо отметить также, что у молоди осетровых рыб в секреторных клетках независимо от их активности и места локализации диаметр митохондрий лишь незначительно превышал диаметр канальцев эндоплазматической сети. В отличие от этого, во всех секреторных клетках у молоди лососевых рыб, как интактных, так и подопытных, диаметр митохондрий в 4-5 раз превышал диаметр канальцев эндоплазматической сети. Помимо количественных различий в ультраструктуре СК в гонадах исследованных видов круглоротых и рыб обнаружено и качественное отличие. Только в СК осетровых всегда присутствует большое количество липидных включений. У миноги и лососевых рыб (за исключением кижуча), не подвергнутых гормональной обработке, их практически нет. Вероятно, наличие такого количества липидов связано со специфическим метаболизмом гонад у осетровых, которые являются местом формирования жировых отложений, образующих анатомически выраженное жировое депо. По совокупности полученных данных можно заключить, что такие различия не связаны с активностью стероидсекреторных клеток, а отражают видовые различия в их ультраструктурной организации.

182

Список литературы диссертационного исследования кандидат биологических наук Мосягина, Марина Васильевна, 2006 год

1. Айзенштадт Т.Б. Цитология оогенеза. М.: Наука. 1984. 247с.

2. Алексеев Ф.Е. Гермафродитизм и регуляция половой структуры популяции у Pagellus acame (Risso) в некоторых районах северо-западного побережья Африки// Тр. АтлантНИРО. 1969. Вып.22. С.50-71.

3. Алешин С.А. Ранний гаметогенез радужной форели при различных пищевых и температурных режимах. Автореф. канд. дис. 1987. Л. 16с.

4. Апекин B.C. Выделение активных фракций ганадотропина из гипофиза осетра и получение к ним специфических иммунных сывороток// Онтогенез. 1975. Т.6, №4. С.ЗЗ 1-337.

5. Арбузова Л.Л. Морфофункциональная характеристика клеток Лейдига семенников горбуши Oncorhynchus gorbuscha в период нерестовой миграции// Морфология. 1995. Т. 108, №3. С. 72-75.

6. Ахундов М.М. Влияние экологических факторов на ранний гамето- и гонадогенез осетровых рыб: Канд. дис. 1991.221с.

7. Ахундов М.М. Пластичность дифференцировки пола у осетровых рыб. Баку: Элм. 1997.200с.

8. Ахундов М.М., Федоров К.Е. Влияние гипофизарных инъекций на развитие половых желез у молоди стерляди/ В сб.: «Проблемы надежности функционирования репродуктивной системы у рыб» СПб.: изд-во СПбГУ -1997-стр.117-126.

9. Ахундов М.М., Федоров К.Е. Ранний гамето- и гонадогенез осетровых рыб. 1. О критериях сравнительной оценки развития половых желез молоди на примере русского осетра Acipenser gueldenstadti // Вопр. ихтиол. 1990. Т.30. Вып.6. С.963-973.

10. Ахундов М.М., Федоров К.Е., Касимов Р.Ю. Развитие гонад у молоди персидского осетра, получавшей с пищей половые стероидные гормоны// Онтогенез 1995 - т.26, N2 - с. 170-173.

11. Бабушкин Ю.П. Сперматогенез и половые циклы самцов радужной форели // Сб. науч. тр. ГосНИИ озер, и реч. рыб. хоз-ва. 1976. Вып. 117. С. 51-63.

12. Баранникова И.А. Гистология и гонадотропная функция гипофиза у осетровых различных внутривидовых биологических групп. Автореф. канд. дис. JL, 1955.16с.

13. Баранникова И.А. Гонадотропные и половые гормоны и их роль в регуляции функции воспроизводительной системы у пойкилотермных животных// Труды ВНИРО 1975а - t.CXI - с.34-54.

14. Баранникова И.А. Функциональные основы миграции рыб. 19756. Д.: Наука. 210с.

15. Баранникова И.А. Гормональная регуляция репродуктивной функции у рыб с различной экологией./ В кн.: Биологические основы рыбоводства. 1984. М. с. 186-202.

16. Баранникова И.А., Баюнова JI.B., Семенкова Т.Б., Груслова А.Б. Стероиды в регуляции миграции у рыб// Рос. физиол. журнал им. Сеченова. 2003. Т.89, №11. С.1380-1387.

17. Баранникова И.А., Боев A.A., Буковская О.С., Ефимова H.A. Гормональная регуляция репродуктивной функции у осетровых и биотехника стимуляции созревания производителей в осетроводстве/ В кн.: Биологические основы осетроводства. М.: Наука. 1983. С.22-42.

18. Баранникова И.А., Буковская О.С. Влияние люлиберина на состояние гонадотропоцитов гипофиза и динамику содержания гонадотропного гормона в сыворотке крови севрюги Acipenser stellatus// Вопр. ихтиол. 1990. Т.30, Вып.1. С.126-136.

19. Баранникова И.А., Буковская О.С., Боев A.A., Дюбин В.П. Гормональная регуляция репродуктивной функции рыб (теоретические и практические аспекты)./ В кн.: Эндокринология репродукции. 1991. СПб.: Наука. С.147-190.

20. Баранникова И.А., Васильева Е.В., Дюбин В.П., Краснодембская К.Д. Влияние гипофизэктомии, солевых и гормональных воздействий на состояниеинтерреналовой железы сибирского осетра// Цитология. 1983. Т.25, N2. С.168-175.

21. Баранникова И.А., Дюбин В.П. Становление регуляции гонадотропной функции гипофиза в эволюции позвоночных// Онтогенез. 1992. Т.23, №3. С.260-267.

22. Баранникова И.А., Дюбин В.П., Баюнова Л.В., Семенкова Т.Б. Стероиды в регуляции репродуктивной функции рыб// Рос. физиол. журнал им. Сеченова. 2000. Т.86, №8. С.968-978.

23. Баюнова JI.B. Роль стероидных гормонов в осуществлении жизненного цикла севрюги (Acipenser stelatus Pallas) в природе и при искусственном воспроизводстве. Автореф. дисс. канд. биол. наук. СПб. 2001. 17с.

24. Беляева В.Н., Черфас Н.Б. О процессах созревания и оплодотворения в яйцеклетках вьюна (Misgurnus fossilis L.)// Вопр. ихтиол. 1965. Т.5,,Вып. 1(34). С.45-58.

25. Берг JT.C. Рыбы пресных вод СССР и сопредельных стран. 1948. M.-J1. Изд-во АН СССР. 4.1.466с.

26. Берг JT.C. Экологические параллели между миногами и лососевыми/ В кн.: Очерки по общим вопросам ихтиологии. 1953. M.-J1. Изд-во АН СССР. С.118-121.

27. Богданова JI.C. Сранительная характеристика процесса перехода на активное питание у личинок разных видов и экологических форм осетра// Тр. ЦНИОРХ. 1967. Т.1 С. 196-201.

28. Боев A.A. Особенности гормональной регуляции созревания осетровых и карповых в связи с перспективой развития промышленного рыбоводства. Автореф. дисс. канд. биол. наук. JI. 1984.22с.

29. Буковская О.С. Роль гонадотропина и половых гормонов в регуляции заключительных этапов репродуктивного цикла севрюги и осетра. Автореф. дисс. канд. биол. наук. Л. 1986.22с.

30. Бурлаков А.Б. Половая специфичность гипофизарных гонадотропинов у икромечущих рыб. М.: Изд-во МГУ. 1997.208с.

31. Бурлаков А.Б., Емельянова Н.Г., Годович П.Л. Изменение гормонального статуса самок белого толстлобика Hypophthalmichthys molitix в перднерестовый период// Вопр. ихтиол. 1995. Т.35, №1. С.105-113.

32. Буцкая H.A. Некоторые особенности функции семенников у рыб с различными типами нереста/ В Сб.: Экологическая, пластичность половых циклов и размножения рыб. 1975. Л.: Изд-во ЛГУ. С. 108-122.

33. Васильева Е.В. Ультраструктура интерреналовой железы молоди белуги в пресной воде и в процессе солевой адаптации// Цитология. 1980. Т.22, №2. С.144-147.

34. Васильева Е.В. Влияние гипофизэктомии, гормональных и солевых воздействий на функцию интерреналовой железы осетровых. Автореф. дис. канд. биол. наук. Л.: ЛГУ. 1983.18 с.

35. Воловик С.П., Ландышевская А.Е. Некоторые вопросы биологии осенней кеты Сахалина// Изв. ТИНРО. 1968. Т.65. С.108-118.

36. Гарлов П.Е. Морфофункциональная основа пластичности нейросекреторных клеток// Цитология. 2002.44, №8. С.747-767.

37. Гарлов П.Е., Мосягина М.В. Структура и функция миоидно-секреторных (стероидсекретирующих) клеток теки фолликулов яичника осетровых рыб в период нереста//Цитология. 1998. Т.40, №6. С.502-513.

38. Гарлов П.Е., Поленов А.Л. Функциональная цитоморфология преоптико-гипофизарной нейросекреторной системы рыб// Цитология. 1996. Т.38, №3. С.275-299.

39. Гербильский Н.Л. Метод гипофизарных инъекций и его роль в рыбоводстве/ В кн.: Метод гипофизарных инъекций и его роль в воспроизводстве рыбных запасов. 1941. Л. С.1-35.

40. Гербильский Н.Л. Сложные формы поведения как элемент видовых адаптаций/ В кн.: Сложные формы поведения. 1965. М.; Л. С.5-9.

41. Гербильский H.JI. Изучение функциональных основ внутривидовой эволюции в связи с поблемой численности и ареала в рыбном хозяйстве// Вестник ЛГУ. 1967. Вып.З, №15. С.5-21.

42. Гербильский Н.Л. Теория биологического прогресса осетровых и ее применение в практике осетрового хозяйства// В Сб.: "Осетровые и проблемы осетрового хозяйства". М.: Пищевая промышленность. 1972. С. 101-112.

43. Гончаров Б.Ф. Гормональная регуляция вителлогенеза и созревания у рыб и амфибий/ В кн.: Современные проблемы оогенеза. М.: Наука. 1977. С. 173200.

44. Гончаров Б.Ф., Кузнецов A.A., Бурзава-Жерар Э. Анализ гетерогенности гонадотропного гормона гипофиза севрюги// Биохимия. 1980. Т.45, №3. С.455-462.

45. Горбунова М.П. Клетки с необычными митохондриями в щитовидной железе старой крысы// Цитология. 1979. Т.21. С.786-792.

46. Грачев Л.Е. Изменение количества ооцитов в морской период жизни у некоторых представителей тихоокеанских лососей рода Oncorhynchus в процессе формирования их плодовитости. Автореф. канд. дис. М., 1971.25с.

47. Грачев Л.Е. Изменение количества ооцитов у горбуши Oncorhynchus gorbuscha (Walbaum) в морской период жизни. Вопр.ихтиол., 1971, Т. 11, В.2(67). С. 248-257.

48. Грачев Л.Е. Изменение количества овоцитов у кеты Oncorhynchus keta (Walb.) во время морского периода жизни// Вопр. ихт. 1971. Т.П. Вып.4(69). с.686-696.

49. Гриценко О.Ф. К вопросу об экологическом параллелизме между миногами и лососями//Изв. ТИНРО. 1968. Т.65. С.157-169.

50. Груслова А.Б. Стероидные гормоны в осуществлении репродуктивной функции русского осетра (Acipenser gueldenstaedtii Вг.) в природе и в искусственных условиях. Автореф. дисс. канд. биол. наук. СПб. 2004.16с.

51. Детлаф Т.А. Межклеточные влияния в процессе созревания ооцитов осетровых рыб/ В кн.: Межклеточные взаимодействия в дифференцировке и росте. 1970. М. С.241-243.

52. Детлаф Т.А., Скоблина М.Н., Давыдова С.И. Межклеточные влияния в процессе созревания ооцитов осетровых рыб// Тез. докл. симп. «Межклеточные взаимодействия в дифференцировке и росте». Тбилиси. 1968. С.5-7.

53. Дорофеева Е.А. Лососи и форели Евразии: сравнительная морфология, систематика и филогения. Автореф. дис. доктора биол. наук. Санкт-Петербург. 1999, 55 с.

54. Душкина Л.А. Биологические основы марикультуры. М.: Изд-во ВНИРО. 1998. 320с.

55. Дюбин В.П. Изучение интерреналовой железы осетровых (сем. Acipenseridae) в связи с регуляцией уровня ионов в крови. Автореф. дисс. канд. биол. наук. Л. 1979.20с.

56. Дюбин В.П. Гистохимическое исследование стероидогенной ткани гонад русского осетра//Цитология. 1986. Т.26, №4. С.448-451.

57. Ефанов В.Н., Кочнева З.П. О вторичной поимке половозрелового самца горбуши в возрасте менее одного года// Биология моря. 1980. №2. С.88.

58. Журавлева Т.Б., Прочуханов P.A., Иванова Г.В., Ковальский Г.Б., Ростовцева-Байдаченко Т.И. Функциональная морфология нейроэндокринной системы. Л., 1976.198с.

59. Заварзин A.A., Харазова А.Д. Основы общей цитологии. Л.: Изд-во ЛГУ. 1982.240с.

60. Заварзин A.A., Харазова А.Д., Молитвин М.Н. Биология клетки: общая цитология. СПб: Изд-во СПбГУ. 1991. 320с.

61. Заки М.И., Эль-Гарабави М.М., Камиль С.С. Сезонные изменения гонадотропного и половых стероидных гормонов в сыворотке крови лобана Mugil cephalus в лагуне Эль-Бардавиль Средиземного моря// Вопр. ихтиол. 1994. Т.34, Вып.6. С.827-830.

62. Захарова Н.И. Морфофункциональные закономерности раннего гаметогенеза радужной форели (Salmo gairdneri Rich.) при различном температурном режиме и рентгеновском облучении. Автореф. дис. канд. биол. наук. Л.: ЛГУ. 1984.20с.

63. Захарова Н.И. Влияние рентгеновского облучения на развитие половых желез в раннем онтогенезе радужной форели/ В кн.: «Экология и гистофизиология размножения гидробионтов». Л. 1989. С.90-107.

64. Зеленников О.В. Гаметогенез радужной форели Onchorynchus mykiss, выращенной в системе с оборотным водоснабжением от вылупления до полового созревания при оптимальной температуре// Вопр. ихтиол. 1999. Т.39, Вып. 1. С.89-97.

65. Зеленников О.В. Сравнительный анализ состояния яичников у молоди тихоокеанских лососей в связи с проблемой становления моноциклии// Вопр. ихтиол. 2003. Т. 43, Вып. 4. С.490-498.

66. Зеленников О.В. Ускорение и дифференциация оогенеза как форма адаптивной реакции репродуктивной системы рыб на кислотный стресс// ДАН. 1996. Т.346, N2 с.570-572.

67. Зеленников О.В., Федоров К.Е. Ранний гаметогенез горбуши Oncorhynhus gorbuscha Walbaum. при ее естественном и заводском воспроизводстве на островах Сахалин и Итуруп // Вопр. Ихтиол. 2005. Т.45. №5. С.653-664.

68. Зубова С.Э. Сроки диференцировки гонад и соотношение самцов и самок у молоди волжской стерляди// Вопр. ихтиол. 1971. Т. 11, Вып.З. С.524-526.

69. Зубова С.Э. Экспериментальный анализ раннего гаметогенеза и гонадо-гипофизарных связей в онтогенезе осетровых (на примере стерляди). Автореф. дисс. канд. биол. наук. JI. 1976. 20с.

70. Иванков В.Н. О причинах изменчивости плодовитости и возраста полового созревания у моноцикличных рыб на примере лососей p.Oncorhynchus// Вопр. ихтиол. 1983. Т.23, Вып.5. С.805-812.

71. Иванков В.Н. Плодовитость рыб. Методы определения, изменчивость, закономерности формирования: Уч. пособие. Владивосток, 1985. 87с.

72. Иванков В.Н., Чикина В.С. Формирование плодивитоти у моноцикличных рыб с разновременным созреванием на приммере симы// Биология моря. 1977. №3. С.57-63.

73. Иванков В.Н., Митрофанов Ю.А., Бушуев В.П. Случай созревания горбуши Oncorhynchus gorbuscha (Walb) в возрасте менее одного года// Вопр. Ихтиол. 1975. Т.15. Вып.З. С.556-557.

74. Иванков В.Н., Митрофанов Ю.А., Омельченко В.Т. Половозрелость горбуши на первом году жизни// Биология моря. 1987. №1. С.28-31.

75. Иванков В.Н., Падецкий С.Н., Флоран В.С., Чурикова Н.И., Гавренков Ю.И. Неотенические самки симы Oncorhynchus masu (Brewerot) из реки Кривая (Южное приморье)// Вопр. ихтиол. 1981. Т.21, Вып.5. С.938-942.

76. Иванов М.Ф. О закономерностях развития яйцевых клеток рыб// Вестник ЛГУ. 1951. №3. С.59-76.

77. Иевлева М.Я. Гистологическое строение гонад лососей в период морских миграций/ В сб.: «Лососевое хозяйство Дальнего Востока». 1964. М.:изд-во «Наука». С.127-141.

78. Иевлева М.Я. К методике раннего прогнозирования возрастной структуры половозрелой части стада красной Oncorhynchus nerka (Walbaum) (Salmónida) р.Озерная (Камчатка)//Вопр. ихтиол. 1982. Т.22, Вып.6. С.949-965.

79. Иевлева М.Я. Оогенез и динамика потенциальной плодовитости у молоди красной в оз. Дальнем//Тр. ТИНРО. 1974. Т.90 С.17-37.

80. Иевлева М.Я. Оценка темпа полового развития смолтов нерки Oncorhynchus nerka (Walbaum) (Salmónida) р.Озерная (Камчатка) при прогнозировании возрастной структуры половозрелой части популяции// Вопр. ихтиол. 1985. Т.25, Вып.З. С.452-458.

81. Иевлева М.Я. Состояние гонад у молоди красной в период ее миграции из реки в море // Известия ТИНРО. 1970. Т.73. С.54-71.

82. Казанский Б.Н. Ядерные изменения в ооцитах осетра при переходе организма в нерестовое состояние после гипофизарной инъекции// ДАН СССР. 1954. Т.98, №6. С.1045-1047.

83. Киселева Е.В., Шилов А.Г., Христолюбова Н.Б. Методы оценки основных стереологических параметров/ В сб.: «Применение стереологических методов в цитологии» (под ред. Груздева А.Д.). 1974. Новосибирск. С.33-54.

84. Ковтун А.А. Возраст и линейный рост осенний кеты (Oncorhynchus keta) Сахалина//Вопр. ихтиол. 1981. Т.21, Вып.6. С.1030-1038.

85. Комачкова З.К. Морфофункциональная характеристика гипоталамо-гипофизарной нейросекреторной системы (ГТНС), тиреотропных клеток гипофиза и щитовидной железы мальков волжского и куринского осетра. Автореф. дис. канд. биол. наук. Баку. 1972.

86. Крыхтин M.JI. Материалы о речном периоде жизни симы// Изв. ТИНРО. 1962. Т.48. С.84-132.

87. Крыхтин M.JL, Смирнов А.Г. Численность и качественные показатели стад амурских рыб// Вопр. ихтиол. 1962. Т.2, Вып.1. С.29-41.

88. Кузнецов Ю.К. Исследование функции яичников в связи с явлением карликовости у рыб и круглоротых на примере представителей родов Osmerus (Lacepede) и Lampetra (Gray). Канд. дис. 1986. JI. 249с.

89. Кузнецов Ю.К. О половом развитии и продолжительности жизни у миног Lampetra fluviatilis (L.) и Lampetra planeri (Bloch)// Тр. Калинингр. техн. ин-та рыбн. пром-ти и х-ва. 1971. Вып.ЗО. С.61-103.

90. Кузнецов Ю.К., Горчннский К.В., Романюк О.В. Сравнительный анализ функции яичников у форм вида Osmerus eperlanus (L.), различающихся по скорости полового созревания//Тр. ГосНИОРХ. 1982. Вып.183. С.28-57.

91. Кузнецов Ю.К., Мосягина М.В., Насека A.M. О формировании фонда ооцитов у моно- и полицикличных лососевых рыб// Вестник СПбГУ. Сер.З. 1997. Вып.З, №17. С.8-30.

92. Кэтти Д., Райкундалиа Ч. Иммуноферментный анализ (ИФА)/ В кн: Антитела. Методы. (Пер. с англ. под ред. Д. Кэтти). 1991. М.: «Мир». Кн.2. С. 152-239.

93. Лагунова B.C. Щитовидная железа и нейрогипофиз молоди севрюги и осетра в период ее миграции из реки в море/ В кн.: Физиология и биохимия онтогенеза. 1977. Л.: Наука. С. 109-113.

94. Лейбсон Л.Г. Происхождение и эволюция эндокринной системы// В кн.: Эволюционная физиология. 1987. Л.: Наука. 4.2. С.3-52.

95. Лукина H.A., Свимонишвили Т.Н., Городилов Ю.Н. Гаметогенез у кеты Oncorhynchus keta (Walb.) в зародышево-личиночный период и при подращивании молоди в режимах разных постоянных температур// Тр. ГосНИОРХ. 1988. Т.10, Вып.4. С.742-745.

96. Межнин Ф.И. Интерреналовая и хромафинная ткань пресноводных рыб// Вопр. ихтиол. 1972. Т.12, Вып.4(75). С.733-747.

97. Миронов A.A., Комиссарчик Я.Ю., Миронов В.А. Методы электронной микроскопии в биологии и медицине. 1994. СПб: Наука. 400с.

98. Моисеева Е.Б. Морфофизиологическая характеристика гипофиза бычка-кругляка (Gobius melanostomus Pallas) в связи с репродуктивным циклом// Архив анат. гистол. эмбр. 1969. Т.54, №3. С.89-96.

99. Моисеева Е.Б. Морфофизиологическое исследование гипофиза бычка-мартовика Gobius batrachocephalus Pall, в связи с репродуктивным циклом// Вопр. ихтиол. 1970. Т.10, Вып.3(62). С.420-433.

100. Моисеева Е.Б. Гистофизиология аденогипофиза костистых рыб// Успехи совр. биол. 1975. Т.70, Вып.1. С.95-110.

101. Морозов В.И., Чайковская B.C., Прияткин С.А., и др. Радиоиммунологический анализ стероидов. Научно-практические аспекты.// Физиол. Журнал. 1988. Т.74. С.1049-1077.

102. Мосягина М.В., Кузнецов Ю.К. Гистологическое исследование яичников молоди кеты Oncorhynchus keta (Walbaum) из рек о.Итуруп// Тр. БиНИИ. 1997. Вып.44. С. 18-28.

103. Мурза И.Г., Христофоров O.J1. Определение степени зрелости гонад и прогнозирование возраста достижения половой зрелости у атлантического лосося и кумжи. JI. 1991.102с.

104. Озернюк Н.Д. Рост и воспроизведение митохондрий. 1978. М.: Наука. 267с.

105. Озирская Е.В., Туманова H.J1. Атипичные митохондрии в нейронах круглого ядра черепахи// Цитология. 1973. Т.15, №8. С.976-980.

106. Панасенко Н.М. Состояние воспроизводительной системы и потенциальноая плодовитость молоди осенней кеты в еприод миграции в русло р.Амур// Тез докл. II Всес. конф. «Вопросы раннего онтогенеза рыб». Киев. 1978. С.85-86.

107. Персов Г.М. Возраст и рост организма и состояние гонад у стерляди в период до дифференцировки пола/ В кн.: Биологические основы рыбного хоз-ва. Томск: изд-во Томского ун-та. 1959. с.56-63.

108. Персов Г.М. Дифференцировка пола у лососевых в условиях облучения// Матер, сесс. учен. сов. ПИНРО. 1967. Вып.8. С.162-166.

109. Персов Г.М. Дифференцировка пола у рыб. 1975. Л.: Изд-во ЛГУ. 148 с.

110. Персов Г.М. «Потенциальная» и «конечная» плодовитость рыб на примере горбуши Oncorhunchus gorbuscha (Walb.), акклиматизируемой в бассейне Белого и Баренцевого морей// Вопр. ихтиол. 1963. Т.З, №3. С.490-496.

111. Персов Г.М. Развитие половых желез у молоди горбуши в ранний период жизни/ Матер, рыбохоз. исслед. северного бассейна. 1965. В.5. С.128-136.

112. Персов Г.М. Ранний период гаметогенеза у проходных лососей// Тр. ММБИ. 1966. Вып. 12(16). С.7-44.

113. Персов Г.М. Формирование половой системы и гаметогенез у осетров в первые месяцы их жизни// Тез. докл. на отчета, сессии ЦНИОРХ. Астрахань. 1966. С.63-66.

114. Персов Г.М. Характеристика раннего периода развития половых желез горбуши в связи с использованием ее как объекта акклиматизации // Матер, совещ. по вопросам рыбоводства. 1960. M. С.89-92.

115. Платик М.М., Кузик В.В., Данилова O.A. Влияние адреналина на стимуляцию гипоталамическими нейрогормонами функциональной активности итерреналовой железы стерляди in vitro // Бюл. эксперим. биол. и мед. 1999. Т. 128, №7. С.54-55.

116. Поленов A.JI. Гипоталамическая нейросекреция. 1968. Л.: Наука. 159с.1

117. Поленов А.Л. Гипоталамический контроль процессов размножения у рыб// Тр. ВНИРО. 1975. T.CXI. С.54-68.

118. Поленов А.Л., Гарлов П.Е. О миоидно-секреторных (стероидогенных) клетках соединительнотканной оболочки (теки) фолликулов яичника половозрелых осетровых рыб// Цитология. 1989. Т.31, №2. С.161-168.

119. Поленов А.Л., Кулаковский Э.Е. Происхождение и эволюция нейроэндокринных клеток и нейрогормональной регуляции у Metazoa/ В кн.: Нейроэндокринология. 1993. СПб. 4.1. Кн.1. С.13-31.

120. Полуэктова О.Г. Морфология гипофиза горбуши на разных стадиях зрелости гонад/ В кн.: Особенности биологии рыб северных морей. 1983. Л. С.76-85.

121. Попова Т.А., Толстяк Т.И. Некоторые морфофизиологические -показатели молоди красной (Oncorhynchus nerka Walbaum), выращиваемой сиспользованием тепла геотермальных источников/ В сб.: «Марикультура на Дальнем Востоке». 1986. Изд-во ТИНРО. С.13-17.

122. Привольнев Т.И. Эколого-физиологические особенности личинок речной миноги (Lampetra fluviatilis L.)// Изв. ГосНИОРХ. 1964. Т.58. С.180-185.

123. Пукова Н.В. Особенности строения и развития репродуктивной системы кеты Oncorhynchus keta (Walbaum) в жизненном цикле. Автореф. дисс. на соиск. уч. ст. к. б. н. М. 2002. 23 с.

124. Райкова Е.В. Морфология ядрышек в период роста ооцитов осетровых рыб// Журн. общ. биол. 1968. Т.29, №3. С.316-333.

125. Розен В.Б. Рецепция гормонов клеткой и принцип саморегуляции в инициации гормонального эффекта/ В кн.: Механизмы гормональных регуляций и роль обратных связей в явлениях развития и гомеостаза. 1981. е.?

126. Розен В.Б. Основы эндокринологии. 1984. М.: Высш. шк. 336с.

127. Розен В.Б. Рецепторы в молекулярных механизмах действия гормонов// Пробл. эндокринол. 1985. Т.31, №5. С.21-26.

128. Романов A.A. Развитие гонад и соотношение полов у заводской молоди осетровых//Рыбное хоз-во. 1986. №7. С.38-42.

129. Романов A.A., Зубова С.Э., Пискунова JI.B. Развитие гонад и соотношение полов у заводской молоди осетраУ/ Рыбное хоз-во. 1984. №2. С.27-29.

130. Ромейс Б. Микроскопическая техника. 1953. М.: Иностр. лит-ра. 718с.

131. Рязанцева М.В., Сакун О.Ф. Половые клетки и развитие гонад карпа Ciprinus carpio L. в раннем онтогенезе// Вопр. ихтиол. 1980. Т.20, Вып.3(122). С.524-533.

132. Саенко И.И. Исследование каудальной нейросекреторной системы у Chondrostei и Teleostei. Автореф. дис. канд. биол. наук. 1972. JI.19c.

133. Саенко И.И. Каудальная нейросекреторная система рыб/ В кн.: Нейроэндокринология. 1993.4.1. Кн.1. С.123-139.

134. Сакун О.Ф. Проблема гонадотропной активности гипофиза у рыб и физиология оогенеза// Тр. БиНИИ. 1970. Т.20. С.121-133.

135. Сакун О.Ф. Участие гормонов в регуляции некоторых фаз мейотического процесса при оогенезе у рыб// Тр. БиНИИ. «Механизмы регуляторных процессов». 1972. Т.21. С.147-157.

136. Семенов В.В. Возможное происхождение, структура и локализация стероидсекретирующих клеток в яичнике молоди осетровых рыб// Цитология. 1989. Т.31, №1. С.34-41.

137. Семенов В.В. Пополнение фонда половых и секреторных клеток в гонадах половозрелых самок русского осетра Acipenser gueldenstaedti// Вопр. ихтиол. 1995. Т.35, №4. С.487-495.

138. Семенов В.В. Развитие половых и секреторных клеток яичника в раннем онтогенезе осетровых рыб//Цитология. 1996. Т.38, №4/5. С.445-455.

139. Семенов В.В., Федоров К.Е., Ахундов М.М. Ультраструктурный анализ закладки и половой дифференцировки гонад у стерляди и ленского осетра/ В сб.: «Проблемы надежности функционирования репродуктивной системы у рыб» 1997. СПб.: Изд-во СПбГУ С.7-17.

140. Сергеев Т.В. Стероидные гормоны. 1984. М. 240с.

141. Скляров В.Я., Гамыгин Е.А., Рыжков Л.П. Кормление рыб. 1984. М.: Легкая и пищ. пром-ть. 120с.

142. Смирнов А.Н. Биология, размножение и развитие тихоокеанских лососей. М.: МГУ. 1975. 336с.

143. Смирнов Е.В. Взаимосвязь размеров тела с уровнем развития яичников у сеголеток карпа, полученных в разные сроки одного вегетативного сезона// Тр. ГосНИОРХ. 1982а. Вып.178. С.121-133.

144. Смирнов Е.В. Возрастные изменения соотношения между размерами тела и уровнем развития яичников у самок карпа и их хозяйственное значение// Тр. ГосНИОРХ. 19826. Вып. 187. С.108-117.

145. Смиттен H.A., Шаляпина В.Г. Периферическая нейроэндокринная хромафинная система позвоночных/ В кн.: Нейроэндокринология. 1993. СПб. Кн.2. С.362-381.

146. Суворов Е.К. Основы ихтиологии. 1948. Изд-во Советская наука. ?с.

147. Теппермен Дж., Теппермен X. Физиология обмена веществ и эндокринной системы. 1989. М.: Мир. 653с.

148. Толстяк Т.И. Воздействие стероидных гормонов на репродуктивную систему молоди кижуча// Тез. 5-го Всерос. совещ. «Систематика, биология и биотехника разведения лососевых рыб». СПб. 1994. С. 190-194.

149. Травкина Г.Л. Влияние гормонов гипофиза и повышенной температуры на пополнение фонда ооцитов у ерша Acerina cernua L. (Teleostei)// Докл. АН СССР. 1971. Т.204, №4. С. 1006-1008.

150. Травкина Г.Л. Анализ реакции яичников самок ерша на воздействие препарата гипофиза в различных дозах// Науч. докл. высш. шк. Биол. науки. 1972. №2. С.7-10.

151. Турдаков А.Ф. Воспроизводительная система самцов рыб. Фрунзе. Изд-во «Илим». 1972.280 с.

152. Уголев А.М. Эволюция пищеварения и принципы эволюции функций. 1985. Л.: Наука. 544с.

153. Уикли Б. Электронная микроскопия для начинающих. 1975. М.: Изд-во «Мир». 326с.

154. Фалеева Т.И. Локализация клеток, вырабатывающих гонадотропный гормон, в гипофизе ерша Acerina cernua (L.) и изменения их в норме и при нарушении условий размножения// Тр. ВНИРО. 1975. T.CXI. С.97-105.

155. Фаллер Дж.М., Шилдс Д. Моллекулярная биология клетки, (под ред. акад. И.Б. Збарского). 2004. М.: «Бином-пресс». 272с.

156. Федоров К.Е. Становление секреторной функции гипофиза радужной форели в раннем постэмбриональном развитии// Тр. ГосНИОРХ. 1985. Вып.235. С.50-65.

157. Федоров К.Е. Гормональные аспекты регуляции раннего гамето- и гонадогенеза рыб/ В сб.: «Проблемы надежности функционирования репродуктивной системы у рыб». 1997. СПб.: изд-во СПбГУ. С. 100-117.

158. Федоров К.Е., Зубова С.Э., Семенов В.В., Бурлаков А.Б. Стероидсекреторные клетки в гонадах молоди стерляди Acipenser ruthenus L. в период дифференцировки пола//Вопр. ихтиол. 1990. Т.30, Вып.1. С.65-75.

159. Хоревин Л.Д. Изменение плодовитости кеты Юго-Западного Сахалина в результате ее искуственного разведения// Биология моря. 1990. №1. с.60-66.

160. Хоревин Л.Д. Оценка эффективности искусственного разведения лососей, их биологического состояния в 1998г. и прогноз возможного вылова кеты на рыбоводных заводах в 1999г.// Отчет СахНИРО. 1999. № гос. регистрации 01825005276.

161. Христофоров О.Л. Состояние гонад в осенний период ,у кижуча Oncorhynchus kisutch (Walb.) объекта заводского воспроизводства в бассейне р. Тымь (северный Сахалин)// Тр. ЗИН. 1986. Т. 154. С.99-107.

162. Христофоров О.Л., ЛеГак Ф., Мурза И.Г. Гормональный статус анадромных мигрантов атлантического лосося летней и осенней биологических групп// Мат. V Всерос. совещ. «Систематика, биология и биотехника разведения лососевых рыб». 1994. СПб. С.206-208.

163. Христофоров О.Л., Мурза И.Г. Репродуктивная функция и ее контроль у атлантического лосося/ В кн.: Атлантический лосось. 1998. СПб.: Наука. С.75-127.

164. Чернышева М.П. Гормоны животных. Введение в физиологическую эндокринологию: учебное пособие. 1995. СПб.: Глаголь. 296с.

165. Чистова М.Н. Гормональное воздействие на темп вителлогенеза и плодовитость у тиляпии (Tilapia mosssambica Peters)// Докл. АН СССР. 1971. Т.200, №6. С.1473-1482.

166. Чистова М.Н. Изменение плодовитости у тиляпии Tilapia mosssambica Peters при гормональном воздействии на самок III стадии зрелости// Вопр. ихтиол. 1973. Т. 13, Вып.6(83). С.1121-1191.

167. Чмилевский Д.А. Влияние рентгеновских лучей на оогенез тиляпии Tilapia mossambica Peters. 3. Облучение личинок в возрасте 20 суток// Онтогенез. 1985. Т.16, №4. С.416-420.

168. Чубарева JI.A. Цитологическое и цитохимическое изучение развития, созревания и оплодотворения яйца речной миноги (Lampetra fluviatilis)// Вестник ЛГУ. Сер. Биол. 1957. Вып.2. С.83-98.

169. Чубарева Л.А. Цитологическое и цитохимическое исследование сперматогенеза у речной миноги (Lampetra fluviatilis)// Докл. АН СССР. 1958. Т.121, №1. С.165-168.

170. Широкова М.Я., Плюхин Г.В. Сезонные изменения в пополнении резервного фонда ооцитов у молоди радужной форели// Тр. ГосНИОРХ. 1986. Вып.253. С.94-98.

171. Юдаев Н.А., Афиногенова С.А., Булатов А.А. Биохимия гормонов и гормональной регуляции. М., 1976. 386с.

172. Яковлева И.В. Нейроэндокринологические аспекты раннего онтогенеза круглоротых и рыб. 2000. СПб.: ООО «Изд-во Петрополис». 132с.

173. Amirante G.A. Immunochemical studies on rainbow trout, Salmo gairdneri R., lipovitellin// Acta Embriol. Exp., Suppl. 1972 - p.373-383.

174. Andersen O., Skibeli V., Haug E., Gautvik K.M. Serum prolactin and sex steroids in Atlantic salmon (Salmo salar) during sexual maturation// Aquaculture -1991 v.95 -p.169-178.

175. Ashby K.R. The effect of steroid hormones on the brown trout (Salmo trutta) during the period of gonadal differentiation//!. Embryol. Exp. Morphol. 1957. V.3. P.225-249.

176. Attardi G., Schatz G. Biogenesis of mitochondria// Ann. Rev. Cell Biol. 1988. v.4 -p.234-241.

177. Bahr J., Kao L., Nalbandov A.V. Role of catecholamines and nerves in ovulation//Biol. Reprod. 1974. V.10. P.273-290.

178. Bara G. Histochemical demonstration of 30-, 110- and 17P-hydroxy-steroid dehydrogenases in the testis of Fundulus heteroclitus// Gen. Comp. Endocrinol. 1969. V.13. P. 189-200.

179. Bara G. Location of steroid hormone production in ovary of Trahurus mediterraneus//Acta Histochem., Suppl. 1974. V.51. P.90-101.

180. Barannikova I.A., Bayunova L.V., Gruslova A.B., Semenkova T.B. Serum androgens in male beluga and russian sturgeon (Acipenseridae) at final maturation// Abs. 21th Conf. European Comp. Endocrinol. 2002. Bonn. P.69.

181. Baroiller J.-F., Guiguen Y., Fostier A. Endocrine and environmental aspects of sex differentiation in fish// Cell. Mol. Life Sci. 1999. V.55. P.910-931.

182. Barr W.A. Patterns of ovarian activity/ In: Perspectives in endocrinology. Ac. Pr. L., N.-Y. 1968. P. 164-239.

183. Belsare D.K. On the evolution of testicular endocrine tissue in some teleosts// Z. Mikrosk.-Anat. Forsch. 1973. V.87. P.610-618.

184. Berchtold J.P. Ultracytochemical demonstration and probable localization of 3b-hydroxysteroid degydrohenase activity with a ferrycyani technique// Histochemistry. 1977. V.50. P.175-190.

185. Berlind A. Caudal neurosecretory system: a physiologist view// Am. Zool. 1973. V.13. P.759-770.

186. Bhandari R.K., Higa M., Komuro H., Nakamura S., Nakamura M. Aromatase inhibitor induces complete sex change in protogynous honeycomb grouper (Epinephelus merra)// Abstr. 7th Intern. Symp. Reprod. Physiol. Fish. 2003. Mie, Japan. P.40.

187. Bhandari R.K., Komuro H., Higa M., Nakamura M. Sex inversion of sexually immature honeycomb grouper (Epinephelus merra) by aromatase inhibitor// Zool. Sci. 2004. V.21, №3. P.305-310.

188. Bhattacharya S., Halder S., Manna P.R. Current status of endocrine aspects of fish reproduction// Proc. Indian Acad. Sei. B. 1994. V.60. P.33-44.

189. Billard R., Jalabert B., Breton B. Les cellules de Sertoli des poissons teleosteens. I. Etude ultrastructurale// Ann. Biol. Anim. Biochim. Biophys. 1972. V.12. P. 19-32.

190. Boell E.J., Greenfield P.C. Mitochondrial differentiation during animal development/ In: The biochemistry of animal development (Eds. Weber R.). N.Y.: Acad, press. 1975. V.3. P.337-386.c

191. Bonga S.E.W. The stress response in fish// Physiol. Rew. 1997. V.77, №3. P.591-625.

192. Borg B. Androgens in teleost fishes. Mini review// Comp. Biochem. Physiol. 1994. V.109, №3. P.219-245.

193. Bottticelli C.R., Hisaw F.L., Roth W.D. Estradiol-17ß, estron and progesterone in the ovaries of lamprey (Petromyzon marinusO// Proc. Soc. Exp. Biol. Med. 1963. V.114. P.255-257.

194. Bouma J., Cloud J.G., Nagler J.J. Estradiol-17ß causes proliferation of interstitial cells in the pre-spermatogenic rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) testis// Abstr. 7th Intern. Symp. Reprod. Physiol. Fish. 2003. Mie, Japan. P.52.

195. Breton B., Fostier A., Zohar Y., Le Bail P.Y., Billard R. Gonadotropine glycoproteique et estradiol-17ß pendant le cycle reproducteur chez la truite fario (Salmo trutta) femelle// Gen. Comp. Endocrinol. 1983. V.49. P.220-231.

196. Burzawa-Gerard E., Fontaine Y.A. Vertebrates reprodaction. Part II: The gonadotropins of lower vertebrates// Gen Comp. Endocrinol. Suppl.3. 1972. P.328-338.

197. Busson-Mabillot S. Le différenciation sexuelle chez la Lamproie de planer (Lampetra planeri Bl.)//Bull. Soc. Zool. de France, Paris. 1965. T.90, №1. P.27-31.

198. Busson-Mabillot S. Structure ovarienne de la lamproie adulte (Lampetra planeri Bloch). II. Les enveloppes de l'ovocyte: cellules folliculaires et stroma ovarienne// J. Microscopie. 1967. V.6. P.807-838.

199. Callard G.V., Petro Z., Ryan KJ. Conversion of androgen to estrogen and other steroids in the vertebrate brain// Am. Zool. 1978. V.18. P.511-523.

200. Callard G.V., Petro Z., Ryan K.J. Biochemical evidence for aromatization of androgen to estrogen in the pituitary// Gen. Comp. Endocrinol. 1981. V.44. P.359-364.

201. Callard G.V., Schlinger B.A., Pasmanik M. Non-mammalian vertebrate models in studies of brain-steroid interaction//J. Exp. Zool. Suppl. 1990. V.4. P. 142-144.

202. Campbell C.M., Fostier A., Jalabert B., Truscott B. Identification and quantification of steroids in the serum of spermiating or ovulating rainbow trout// J. Endocrinol. 1980. V.85. P.371-378.

203. Campbell C.M., Walsh J.M., Idler D.R. Steroids in the plasma of the winter flounder Pseudopleuronectes americanus W. A seasonal study and investigation of steroid involvement in oocyte maturation// Gen. Comp. Endocrinol. 1976. V.29. P. 14-20.

204. Cardwell J.R., Liley N.R. Hormonal control of sex and color change in the stoplight parrotfish, Sparisoma viridaJ I Gen. Comp. Endocrinol. 1991. V.81, №1. P.7-20.

205. Cedard L., Fontaine M. Sur la presence de steroides sexuels dans les corpuscules de Stannius du Saumon atlantique Salmo salar L.// C. R. Hebd. Seanses Acad. Sci., Ser. D. 1963. V.257. P.3095-3097.

206. Chang C.F., Yueh W.S. Annual cycle of gonadal histology and steroid profiles in the juvenile males and adult females of the protandrous black porgy Acanthopagrus schlegeli//Aquaculture. 1990. V.91. P. 179-196.

207. Chang C.F., Lee M.F., Chen G.R. Estradiol- 17-beta associated with the sex reversal in protandrous black porgy Acanthopagrus schlegeli// J. Exp. Zool. 1994. V.268. P.53-58.

208. Chang Y.S., Huang C.J., Huang F.L., Lin C.S., Lo T.B. Purification, characterization and molecular cloning of gonadotropin subunits of silver carp (Hypophthalmichthys molitrix)// Gen Comp. Endocrinol. 1990. V.78, №1. P.23-35.

209. Chieffi G., Pierantoni R. Regulation of ovarian steroidogenesis/ In: Hormones and reproduction in fishes, amphibians, and reptiles. Plenum Press. New York and London. 1987. P. 117-144.

210. Christensen A.K., Gillim S.W. The correlation of fine structure and function in steroid-secreting cells, with emphasis on those of the gonads/ In: The gonads. 1969. McKerns K. W. (ed.) Noth-Holland Publ. Co., Amsterdam. P.415-488.

211. Cochran R.C., Grier H.J. Regulation of sexual succession in the protogynous black sea bass Centropristis striatus Osteichthyes Serranidae// Gen. Comp. Endocrinol. 1991. V.82. P.69-77.

212. Colombo L., Burighel P. Fine structure of the testicular gland of the black goby, Gobius jozo L.// Cell Tiss. Res. 1974. V.154. P.39-49.

213. Colombo L., Colombo Belvedere P. Steroid biosynthesis by the ovary of the european eel, Anguilla anguilla L. at the silver stage// Gen. Comp. Endocrinol. 1976. V.28. P.371-385.

214. Colombo L., Colombo Belvedere P. Gonadal steroids in teleost fishes// Inv. pesq. 1977. V.41, №1. P.147-164.

215. Colombo L., Colombo Belvedere P., Andrea M. Biochemical and functional aspects of gonadal biosynthesis of steroid hormones in teleost fishes// Hormonal Steroids Fish: Proc. Satellite Symp. 1979. New Delhi. P.443-451.

216. Devlin R.H., Nagahama Y. Sex determination and sex differentiation in fish: an overview of genetic, physiological, and environmental influences// Aguaculture. 2002. V.208. P. 191-364.

217. Dodd J.M. Gonadal and gonadotrophic hormones in lower vertebrates/ In: Marshall's physiology of reproduction. 1960, London. V. I. P.417-582.

218. Dodd J.M. The endocrine regulation of gametogenesis and gonad maturation in fishes// Gen. Comp. Endocrinol. 1972. Suppl.3. P.675-687.

219. Dombrowicz D., Sente B., Reiter E., Closset J., Hennen G. Pituitary control of proliferation and differentiation of Leydig cells and their putative precursors in immature hypophysectomized rat testis// J. Androl. 1996. V.17, № 6. P.639-650.

220. Donaldson E.M. Reprodactive endocrinology of fishes// Amer. Zool. 1973. V.13, №3. P.909-931.

221. Ekengren B., Peute J., Fridberg G. The distribution and nature of gonadotropic cells in the rostral pars distalis of the Atlatic salmon, Salmo salar// Ann. Biol. anim. Bioch. Biophys. 1978. V. 18, №4. P.799-804.

222. Emmersen J., Korsgaard B., Petersen I. Dose response kinetics of serum vitellogenin, liver DNA, RNA, protein and lipid after induction by estradiol-170 in male flounders (Platichthys flesus L.)// Comp. Biochem. Physiol. B. 1979. V.63. P.l-6.

223. Feist G., Schreck C.B., Fitzpatrick M.S., Redding J.M. Sex steroid profiles of coho salmon (Oncorhynchus kisutch) during early development and sexual differentiation// Gen. Comp. Endocrinol. 1990. V.80. P.299-313.

224. Fishelson L. Comparison of testes structure, spermatogenesis, and spermatocytogenesis in young, aging, and hybrid cichlid fish (Cichlidae, Teleostei)// J. Morphol. 2003. V.253, №3. P.285-300.

225. Fitzpatrick M.S., Redding J.M., Ratti F.D., Schreck C.B. Plasma testosterone concentration predicts the ovulatory response of coho salmon (Oncorhynchus kisutch) to gonadotropin-releasing hormone anlog// Can. J. Fish. Aquat. Sci. 1987. V.44. P.1351-1357.

226. Follenius E., Porte A. Cytologie fine des cellules interstitielles du testicule de poisson Leistes reticulatus R.// Experientia. 1960. V.16. P. 190-192.

227. Fontaine Y. A. Les hormones gonadotropes de l'hypophyse: biochimie et biologie comparées, spécificité et evolution// Reprod. Nutr. Develop. 1980. V.20, №2. P. 381-418.

228. Fostier A., Breton B. Binding of steroids by plasma of a teleost: The rainbow trout Salmo gairdneri//J. Steroid Biochem. 1975. V.6. P.345-351.

229. Fostier A., Jalabert B. Physiological basis of practical means to induce ovulation in fish// Proc. Int. Symp. Reprod. Physiol. Fish. 1982. Wageningen, Netherlands. P.164-173.

230. Fostier A., Jalabert B., Billard R., Breton B. The gonadal steroids// Fish physiol. 1983. V.IXA. P.277-372.

231. Fostier A., Weil C., Terqui M., Breton B., Jalabert B. Plasma estradiol-170 and gonadotropin during ovulation in rainbow trout Salmo gairdneri// Ann. Biol. Anim., Biochem., Biophys. 1978. V.18. P.929-936.

232. Foucher J.L., Le Bail P.Y., Le Gac F. Influence of hypophysectomy castration fasting and spermiation on Spb concentration in male rainbow trout Oncorhynchus mykiss// Gen. Comp. Endocrinol. 1992. V.84. P.101-110.

233. Freeman H.C., Idler D.R. Transcortin binding of Cortisol in Atlantic salmon (Salmo salar) plasma// Gen. Comp. Endocrinol. 1966. V.7, №1. P.37-43.

234. Freeman H.C., Idler D.R. Binding affinities of blood proteins for sex hormones and corticosteroids in fish// Steroids. 1971. V. 17, №2. P.233-250.

235. Freeman H.C., Sangalang G.B., Burn G., Menemy M.Mc. The blood sex hormone levels in sexually mature male Atlantic salmon (Salmo salar) in the Westfield river (pH 4,7) and the Medway river (pH 5,6), Nova Scotia// Sci. Tot.Environ. 1983. V.32. P.87-91.

236. Funk J.D., Donaldson E.M. Indaction of precocious sexual maturity in male pink salmon (Oncorhynchus gorbuscha)// Can. J. Zool. 1972. V.50, №11. P.1413-1420.

237. Godwin J. Behavioural aspects of protandrous sex changein the anemonefish, Amphiprion melanopus, and endocrine correlates// Anim. Behav. 1994. V.48. P.551-567.

238. Goetz F.W., Donaldson E.M., Hunter G.A., Dye H.M. Effects of estradiol-170 and 17-amethyltestosterone on gonadal differentiation in the coho salmon, Oncorhynchus kisutch//Aquaculture. 1979. V.17. P.267-278.

239. Gopesh A., Srivastava P. Caudal neurosecretory system in an exotic species of catfish Clarias gariepinus// Nat. Acad. Sci. Lett. 2003. V.26, № 1-2. P.47-48.

240. Grier H.J. Cellular organisation of the testis and spermatogenesis in fisnes// Am. Zool. 1981. V.21. P.345-357.

241. Guraya S.S. Recent advances in the morphology, histochemistry, and biochemistry of steroid-synthesizing cellular sites in the nonmammalian vertebrate ovary//Int. Rev. Cytol. 1976a. V.44. P.365-409.

242. Guraya S.S. Recent advances in the morphology, histochemistry, and biochemistry of steroid-synthesizing cellular sites in the testes of nonmammalian vertebrates// Int. Rev. Cytol. 1976b. V.47. P.99-136.

243. Guraya S.S. Gonadal development and production of gametes in fish// Proc. Indian Acad. Sci. B. 1994. V.60. P. 15-32.

244. Guraya S.S., Kaur S. Cellular sites of steroid synthesis in the oviparous teleost fish (Cyprinus carpio L.): A histochemical study// Proc. indian Acad. Sci. Anim. Sci. 1982. V.91, №6. P.587-597.

245. Hardisty M.W. Duration of larval peliod in the brook lamprey (Lampetra planeri)//Nature. 1951. V.167. P.38-39.

246. Hardisty M.W. The growth of larval lampreys// J. Animal Ecol. 1961. V.30, №2. P.357-371.

247. Hardisty M.W. The fecundity of lampreys//Arch. f. Hudrobiol. 1964. V.60, №3. P.340-357.

248. Hardisty M.W., Barnes K. Steroid 3P-ol-dehydrogenase activity in the cyclostome gland// Nature. 1968. V.218. P.880.

249. Higa M., Ogasawara K., Sakaguchi A., Nagahama Y., Nakamura M. Role of steroid hormones in sex chage of protogynous wrasse// Abstr. 7th Intern. Symp. Reprod. Physiol. Fish. 2003. Mie, Japan. P.42.

250. Higashino T., Miura T., Miura C., Yamauchi K. Effects of several sex steroid hormones on early oogenesis in japanese huchen (Hucho perryi)// Abstr. 7th Intern. Symp. Reprod. Physiol. Fish. 2003. Mie, Japan. P.86.

251. Hishida T. O. Reversal of sex-differentiation in genetic males of the medaka (Oryzias latipes) by injecting estrone-16-C14 and diethylstilbestrol-(monoethyl-l-C14) into the egg// Embiyologia. 1964. V.8. P.234-246.

252. Hishida T. O. Hydroxysteroid dehydrogenase in larval gonad of the medaka, Oryzias latipes// Zool Mag., Tokyo. 1969. V.78. P.25.

253. Hoar W.S. Comparative physiology: hormones and reproduction in fishes// Ann. Rev. Physiol. 1965. V.27. P.51-70. -oscs;

254. Hoar W.S. Reproduction// Fish physiology. 1969. V.3. P. 1-72. Hoar W.S., Nagahama Y. The cellular sources of sex steroids in teleost gonads// Ann. biol. anim. biochim. biophys. 1978. V.18. P.893-898.

255. Hoar W.S., Randall D.J. Fish physiology. 1969. N.-Y., London.: Acad. Presss. V.2.444p.

256. Hori S.H., Kodama T., Tanamasmi K. Induction of vitellogenin synthesis in goldfish by massive doses of androgens// Gen. Comp. Endocrinol. 1978. V.37. P.306-320.

257. Jalabert B., Baroiller J.-F., Breton B., Fostier A., Le Gas F., Guiguen Y., Monod G. Main neuro-endocrine, endocrine and paracrine regulation of fish reproduction, and vulnerability to xenobiotics//Ecotoxicology. 2000. V.9, №1-2. P.25-40.

258. Jalabert B., Goetz F.W., Breton B., Fostier A., Donaldson E. Precocious induction of oocyte maturation and ovulation in coho salmon, Oncorhynchus kisutch//J. Fish. Res. Bd. Canada. 1978. V.35. P.1423-1429.

259. Johnson A.K., Thomas P., Wilson Jr.R.R. Seasonal cycles of gonadal development and plasma sex steroid levels in Epinephelus morio, a protogynous grouper in the eastern Gulf of Mexico// J. Fish Biol. 1998. V.52. P.502-518.

260. Kagawa H., Takano K. Ultrastructure and histochemistry of granulosa cells of pre- and post-ovulatory follicles in the ovary of the medaka, Oryzias latipes// Bull. Fac. Fish., Hokkaido Univ. 1979. V.30. P. 191-204.

261. Kagawa H., Takano K., Nagahama Y. Correlation of plasma estradiol-17(3 and progesterone levels with ultrastructure and histochemistry of ovarian follicles in the white-spotted char, Salvelinus leucomaenis// Cell Tiss. Res. 1981. V.218. P.315-329.

262. Kagawa H., Young G., Adachi S., Nagahama Y. Estradiol-17(3 production in amago salmon Oncorhynchus rhodurus ovarian follicles: role of thecal and granulosa cells// Gen. Comp. Endocrinol. 1982. V. 44. P. 440-448.

263. Kagawa H., Young G., Nagahama Y. Reletion between seasonal plasma estradiol-17 and testosteron levels and in vitro production by ovarian follicles of amago salmon (Oncorhyncus rhodurus)// Biol. Reprod. 1983. V.29. P.301-309.

264. Kanamori A., Adachi S., Nagahama Y. Developmental changes in steroidogenic responses of ovarian follicles of amago salmon (Oncorhynchus rhodurus) to chum salmon gonadotropin during oogenesis// Gen. Comp. Endocrinol. 1988. V.72, №1. P. 13-24.

265. Kanamori A., Nagahama Y. Developmental changes in the properties of gonadotropin reseptors in the ovarian follicles of amago salmon (Oncorhynchus rhodurus) during oogenesis// Gen. Comp. Endocrinol. 1988. V.72, №1. P.25-38.

266. Kanamori A., Nagahama Y., Egami N. Development of the tissue architecture in the gonads of the medaka Oryzias latipes// Zool. Sci. 1985. V.2. P.695-706.

267. Kavaliers M. The pineal organ and circadian rhythms of fishes/ In.: Environmental physiology of fishes. 1980. New-York. London. P.631-645.

268. Kawauchi H., Suzuki K., Itoh H., Swanson P., Nozaki M., Naito N., Nagahama Y. The duality of teleost gonadotropins// Fish Physiol. Biochem. 1989. V.7. P.29-38.

269. Kime D.E. The hepatic catabolism of Cortisol in teleost fish adrenal origin of 11-oxotestosterone precursors// Gen. Comp. Endocrinol. 1978. V.35. P.327-328.

270. Kime D.E., Lone K.P., Al Marzouk A. Seasonal changes in serum steroid hormones in a protandrous teleost the sobaity Sparidentex hasta Valenciennes// J. Fish Biol. 1991. V.39.P.745-754.

271. Kroon F.J., Liley N.R. The role of steroid hormones in protogynous sex change in the blackeye goby, Coryphopterus nicholsi (Teleostei: Gobididae)//-Gen; Comp. Endocrinol. 2000. V.118. P.273-283.

272. Kwain W., Kere S.L. Return of 1-year-old pink salmon in Michipicoten River eastern Lake Superior// Noth Amer. J. Fish. Management. 1984. V.4. №3. P.335-337.

273. Marshall A.J., Lofts B. The leydig-cell homologue in certain teleost fishes// Nature. 1956. V.177. P.704-705.

274. Mayer I., Borg B., Berglund I., Lambert J.G.D. Effects of castration and androgen treatment on aromatase activity in the brain of mature male Atlantic salmon (Salmo salar L.) parr// Gen. Comp. Endocrinol. 1991. V.82. P.86-92.

275. Meduri G., Charnaux N., Driancourt M.A., Combettes L., Granet P., Vannier B., Loosfelt H., Milgrom E. Follicle-stimulating hormone receptors in oocytes?// J. Clin. Endocrinol. Metab. 2002. V.87, №5. P.2266-2276.

276. Mendishandagama S.M.L.C. Luteinizing hormone on leydig cell structure and function// Histol. Histopathol. 1997. V. 12, №3. P.869-882.

277. Migaud H., Taylor J.F., Davie A., Sprague M., North B.P., Bromage N.R. Spectral and light intensity sensitivity of in vitro pineal melatonin production in salmon and sea bass//.

278. Miura T. Molecular control mechanisms of fish spermatogenesis// Abstr. 7th Intern. Symp. Reprod. Physiol. Fish. 2003. Mie, Japan. P.51.

279. Miura T., Yamauchi K., Takahashi H., Nagahama Y. The role of hormones in the acquisition of sperm motility in salmonid fish// J. Exp. Zool. 1992. V.261, №3. P.359-363.

280. Miwa S., Yan L., Swanson P. Localization of two gonadotropin receptors in the salmon gonad by in vitro ligand autoradiography// Biol. Reprod. 1994. V.50, №6. P.629-642.

281. Miyana M., Ito Y., Fujihira S., Matsuo T., Ueno H., Mori H. Restoration of Leydig cells after repeated administration of ethane dimethanesulfonate in adult rats//Pathol. Int. 1997. V.47, №7. P.478-488.

282. Moore G.A. The germ cells of the trout (Salmo irideus Gibbons)// Trans. Amer. Micr.Soc. 1937. V.56, №1. P.105-112.

283. Morita S., Matsuyama M., Kashiwagi M. Seasonal changes of gonadal histology and serum steroid hormone levels in the bambooleaf wrasse Preudolabrus japonicus// Bull. Jpn. Soc. Sci. Fish./ Nippon suissan Gakkaishi 1997. V.63. P.694-700.

284. Morrey C.E., Nakamura M., Kobayashi T., Gau E.G., Nagahama Y. P450SCC-like immunoreactivity throughout gonadal restructure in the protogunous hermaphrodite Thalassoma duperrey // Int. J. Develop. Biol. 1998. V.42. P.811-816.

285. Mugiya Y., Ichii T. Effects of estradiol-170 on brachial and intestinal calcium uptake in the rainbow trout Salmo gairdneri// Comp. Biochem. Physiol. A 1981. V.70. P.97-101.

286. Munor E., Fogal T., Dominguer S., Scardapane L., Gazman J., Piezzi R.S. Seasonal changes of the Leydig cells of Vicacha (Lagostomus maximus maximus) a light and electron microscopy study// Tissue Cell. 1997. V.29, №1. P. 119-128.

287. Nagahama Y. Gonadotropin action on gametogenesis and steroidogenesis in teleost gonads// Zool. Sci. (Jap.). 1987a. V.4. P.209-222.

288. Nagahama Y. Endocrine control of oocyte maturation/ In: Hormones and reproduction in fishes, amphibians, and reptiles. (Eds. Norris D.O., Jones R.E.). 1987b. New York: Plenum Press. P. 171-202.

289. Nagahama Y. 17a,20p-Dihydroxy-4-pregnen-3-one: a teleost maturation induciong hormone//Develop Growth Differ. 1987c. V.29, №1.P.1-12.

290. Nagahama Y. Regulation of gametogenesis in teleosts// Zool. Sci. (Jap.). 1989. V.5. P.1071.

291. Nagahama Y., Chan K., Hoar W.S. Histochemistry and ultrastructure of pre-and postovulatory follicles in the ovary of the goldfish Carassius auratus// Can. J. Zool. 1976. V.54. P.l 128-1139.

292. Nagahama Y., Clarke W.C., Hoar W.S. Ultrastructure of putative steroid-producing cells in the gonads of coho (Oncorhynchus kisutch) and pink salmon (Oncorhynchus gorbuscha)//Can. J. Zool. 1978. V.56. P.2508-2519.

293. Nagahama Y., Kagawa H., Young G. Cellular sources of sex steroids in teleost gonads // Can. J. Fish. Aquat. Sci. 1982. V.39. P.56-64.

294. Nagahama Y., Yoshikuni M., Yamashita M., Tokumoto T., Katsu Y. Regulation of oocyte growth and maturation in fish// Curr. Top. Dev. Biol. 1995. V.30. P. 103145.

295. Nakamura M. Effects of 11-ketotestosterone on gonadal sex differentiation in Tilapia mosambica// Nippon suisan gakkaishi, Bull. Soc. Sci. Fish 1981. V.47, №10. P.1323-1327.

296. Nakamura M., Kobayashi T., Chang X.-T., Nagahama Y. Gonadal sex differentiation in teleost fish // J. Exp. Biol. 1998. V.281. P.362-372.

297. Nakamura M., Kusakbe M., Young G. Regulation of steroidogenic enzyme mRNAs in rainbow trout (Oncorhynchus mikiss) ovarian follicles in vitro// Abstr. 7th Intern. Symp. Reprod. Physiol. Fish 2003. Mie, Japan. P.90.

298. Nakamura M., Nagahama Y. Differentiation and development of Leydig cells, and change of testosterone levels during testicular differentiation in tilapia Oreochromis niloticus//Fish Physiol. Biochem. 1989. V.7. P.211-251.

299. Nakamura M., Nagahama Y. Steroid producing cells during ovarian differentiation of tilapia, Sarotherodon niloticus// Dev. Growth Differ. 1985. V.25, №6. P.701-708.

300. Nakamura M., Nagahama Y. Ultrastructural study on the differentiation and development of steroid-producing cells during ovarian differentiation in the amago salmon Oncorhynchus rhodurus // Aquaculture. 1993. V.l 12. P.237-251.

301. Nakamura M., Speker J., Nagahama Y. Innervation of steroid-producing cells in the ovary of tilapia Oreochromis niloticus// Zool. Sci. 1996. V.13. P.603-608.

302. Nakamura M., Takahashi H., Hiroi 0. Sex differentiation of the gonad in the masu salmon, Oncorhynchus masou// Sci. rep. Hokkaido Salmon Hatchery. 1974. №28. P. 1-6.

303. Ng T.B., Idler D.B. Gonadotropic regulation of androgen in flounder and salmonids// Gen. Comp. Endocrinol. 1980. V.42. P.25-38.

304. Ngamvongchon S., Kok L.Y., Takashima F. Changes in endocrine profiles and spermiation response in carp after LHRH analogue injection// Bull. Jpn. Soc. Sci. Fish. 1987. V.53. P.229-234. ,',„.

305. Nicholls T.J., Graham G.P. The ultrastructure of lobule boundary cells and leydig cell homologs in the testis of a Cichlid fish, Cichlasoma nirofasciatum// Gen. Comp. Endocrinol. 1972. V.19. P.133-146.

306. Nuner S., Trant J.M. Regulation of interrenal gland steroidogenesis in the Atlantic stingray (Dasyatis sabina)// J. Exp. Zool. 1999. V.284, №5. P.517-525.

307. O'Halloran M.J., Idler D.R. Identification and distribution of the leydig cell homolog in the testis of sexually mature Atlantic salmon Salmo salarII Gen. Comp. Endocrinol. 1970. V.15. P.361-364.

308. Okkelberg P. The early history of the germ cells in the brook lamprey, Entosphenus wilderi (Gage), up to and including the period of sex differentiation// J. Morphol. 1921. V.35.P.1-152.

309. O'Malley B.W. Mechanism of action of steroid hormones// N. Engl., J. Med. 1971. V.287, №7. P.370-377.

310. Oota I., Yamamoto K. Interstitial cells in the immature testes of the rainbow trout//Annot. Zool. Jpn. 1966. V.39.142-148.

311. Pandian T.L., Sheela S.G., Kavumpurath S. Endocrine sex reversal in fishes: masculinization evokes greater stress and mortality// Curr. Sci. (India). 1994. V.66, №3. p.240-243.

312. Patino R., Thomas P., Yoshizaki G. Regulation and mechanisms of oocyte maturational competence// Abstr. 7th Intern. Symp. Reprod. Physiol. Fish. 2003. Mie, Japan. P.78.

313. Perez F., Fuenzalida A., Mendez E., Cerisola H. Myoid and Leydig-type interstitial cells are simultaneously innervated in the testes of the clingfish Sicyases sanguines (Teleostei)//Arch. Biol. Med. Exp. 1983. V.16. P. 177.

314. Peter R.E., Chang J.P., Nahorniak C.S., Omeljaniuk R.J., Sokolowska M., Shih S.H., Billard R. Interactions of catecholamines and GnRH in regulation of gonadotropin secretion in teleost fish// Progr. Hormon. Res. 1986. V.42. P.513-548.

315. Pickford G. E., Atz J.W. The physiology of the pituitary gland of the fishes. Zool. Soc. New-York. 1957. 310p.

316. Pierantoni R., Cobellis G., Meccariello R., Fasano S. Evolutionary aspects of cellular communication in the vertebrate hypothalamo-hypophysio-gonadal axis// Int. Rev. Cytol. 2002. V.218. P.69-141.

317. Planas J.V., Swanson P. Maturation-associated changes in the respons of the salmon testis to the steroidogenic action of gonadotropins (GTH I and GTH II) in vitro//Biol. Reprod. 1995. V.52, №6. P.697-704.

318. Pottinger T.G. Androgen binding in the skin of mature male brown trout, Salmo trutta L.// Gen. Comp. Endocrinol. 1987. V.66. P.224-232. .

319. Pottinger T.G. Seasonal variation in in specific plasma- and target-tissue binding of androgens, relative to plasma steroid levels, in the brown trout, Salmon trutta L.// Gen. Comp. Endocrinol. 1988. V.70. P.334-344.

320. Pottinger T.G. The effects of stress on broodstock quality// Trout news. 1995. V.20. P.121-126.

321. Pottinger T.G., Balm P.H.M., Pickering A.D. Sexual maturity modifies the responsiveness of the pituitary-interrenal axis to stress in male rainbow trout// Gen. Comp. Endocrinol. 1995. V.98. P.311-320.

322. Reinboth B. The effects of testosterone on female Coris julis a wrasse with spontaneous sex-inversion// Gen. Comp. Endocrinol. 1962. V.2. P.39.

323. Reinboth B. Varying effects with different ways of hormone administration of gonad differentiation in teleost fish// Gen. Comp. Endocrinol. 1969. V.13. P.527-528.

324. Rosenstrauch A., Weil S., Degen A.A., Friedlander M. Leidig cell functional structure and plama androgen level during the decline in fertility in aging roaster// Gen. Comp. Endocrinol. 1998. V.109, №2. P.251-258.

325. Rothbard S., Moav B., Yaron Z. Changes in steroid concentrations during sexual ontogenesis in tilapia// Aquaculture. 1987. V.61. P.59-74.

326. Saidapur S.k., Nadkarni V.B. Steroid synthesizing cellules sites in the ovary of catfish Mystus cavasius: A histochemical study// Gen. Comp. Endocrinol. 1976. V.30. P.457-461.

327. Sangalang G.B., Freeman H.C. Effects of sublethal cdmium on maturation and testosterone and 11-ketotestosterone production in vivo in brook trout// Biol. Reprod. 1974. V.l 1. P.429-435.

328. Sangalang G.B., Freeman H.C. In vitro biosynthesis of 17oc-20p-dihydroxy-4-pregnen-3-one by the ovaries, testes, and head kidneys of the Atlantic salmon Salmo salar// Gen. Comp. Endocrinol. 1988. V.69. P.230-234.

329. Sangalang G.B., Freeman H.C., Flemming R.B. A simpie technique for determining the sex of fish radioimmunoassay using 11-ketotestosterone antiserum// Gen. Comp. Endocrinol. 1978. V.38. P. 187-193.

330. Satoh N. An ultrastructural study of sex differentiation in the teleost Oryzias latipes//J. Embriol. Exp. Morphol. 1974. V.32. P.195-215.

331. Schreck C.B., Hopwood M.L. Seasonal androgens and estrogens patterns in the goldfish, Carassius auratus// Trans. Am. Fish Soc. 1974. V.2. P.375-378.

332. Schreck C.B., Lackey R.T., Hopwood M.L. Plasma oestrogen levels in rainbow trout Salmo gairdneri Richardson// J. Fish Biol. 1973. V.5. P.227-230.

333. Schreibman M.P., Berkowitz E.J., Van den Hurk R. Histology and histochemistry of the testis and ovary of the platyfish, Xiphophorus maculatus, from birth to sexual maturity// Cell Tiss. Res. 1982. V.224. P.81-87.

334. Schreibman M.P., Leatherland J.F., McKeown B.A. Functional morphology of the teleost pituitary gland//Amer. Zool. 1973. V.3, №3. P.719-742.

335. Schulz R.W., Andriske M., Lembke P.J., Blum V. Effects of salmon gonadotropic hormone on sex steroids in male rainbow trout: plasma levels and testicular secretion in vitro// J. Comp. Physiol. 1992. B162. P.224-230.

336. Scott A.P., Sumpter J.P., Hardiman P.A. Hormone changes during ovulation in the rainbow trout (Salmo gairdneri R.)// Gen Comp. Endocrinol. 1983. V.49. P. 128134.

337. Scott A.P., Bye V.J., Baynes S.M. Seasonal variations in sex steroids of female rainbow trout Salmo gairdneri Richardson// J. Fish. Biol. 1980. V.17. P.587-592.

338. Shedpure M., Pati A.K. Do thyroid and testis modulate the effects of pineal and melatonin on haemopoetic variables in Clarias batrachus// J. Biosciences. 1996. V.21, №6. P.797-808.

339. Sower S.A., Schreck C.B. Steroid and thyroid hormones during sexual maturation of coho salmon (Oncorhynchus kisutch) in sea water or fresh water// Gen. Comp. Endocrinol. 1982. V.47. P.42-53.

340. Srivastava S. Ultrastructural evidence for the presence of secretory cells in the pineal parenchyma of Heteropneustes fossilis// J. Biosci. 1999. V.24, №2. P. 193198.

341. Stacey N.E. Hormones, pheromones, and reproductive behavior// Abstr. 7th Intern. Symp. Reprod. Physiol. Fish. 2003. Mie, Japan. P.65.

342. Stanley H., Chieffi G., Botte V. Histological and histochemical observations on the testis of Gobius paganellus// Z. Zellforsch. Mikrosk. Anat. 1965. V.65. P.350-362.

343. Sterba G. Endocrinology of the lampreis// Gen. Comp. Endocrinol. Suppl. 2. 1969. P.500-509.

344. Sterba G. Fluoreszenmikroscopische Untersuchungen iiber die Neurosecretion beim Bacheunauge (Lampetra planeri Bloch.)// Z. Zellforsch. Mikrosk. Anat. 1961. V.55. P.763-789.

345. Stuart-Kregor P.A.C., Sumpter J.P., Dodd J.M. The involvement of gonadotropin and sex steroids in the control of reproduction in the parr and adults of Atlantic salmon, Salmo salar L.// J. Fish. Biol. 1981. V. 18. P.59-72.

346. Sufi G.B., Mori K., Sato R. Histochemical study of dehydrogenases related to steroidogenesis in the tissues of the fty and juvenile of chum salmon Oncorhynchus keta// Tohoku. J. Agr. Res. 1978. V.29, №1. P.44-61.

347. Sugimoto Y., Takahashi H. Ultrastructural changes of testicular interstitial cells of silver Japanese eels Anguilla japonica, treated with human chorionic gonadotropin//Bull. Fac. Fish., Hokkaido Univ. 1979. V.30. P.23-33.

348. Sun B., Pankhurst N.W. Correlation between oocyte development and plasma levels of steroids and vitellogenin in greenback flounder Rhombosolea tapirina// Abstr. 7th Intern. Symp. Reprod. Physiol. Fish. 2003. Mie, Japan. P.95.

349. Swanson P. Salmon gonadotropins: reconciling old and new ideas// Proc. 4th Intern. Symp. Reproduct. Physiol. Fish. 1991. Sheffield (U.K.). P.2-7.

350. Swanson P., Dickey J.T., Campbell B. Biochemistry and physiology of fish gonadotropins// Fish Physiol, and Biochem. 2003. V.28, №1. P.53-59.

351. Takahashi H., Iwasaki Y. The occurrence of histochemical activity of 3p-hydroxysteroid dehydrogenase in the developing testes of Poecilia reticulataII Dev. Growth Differ. 1973. V.15. P.241-253.

352. Thian O.Th., Mattei X. Natural degenerating mitochondria in ovarian follicles of a cyprinodontidae fish, epiplatys spilargyreus (Teleostei)// Mol. Reprod. Dev. 1992. V.32, №1. P.67-72.

353. Thomas P., Pinter J., Das S. Upregulation of the maturation-indusing steroid membrane receptor in spotted seatrout ovaries by gonadotropin during oocyte maturation and its physiological significance// Biol. Reprod. 2001. V.64, №1. P.21-29.

354. Trant J.M., Kumar S., Ponthier J. Seasonal changes in ovarian expression of steroidogenic enzymes and gonadotropin resepters in the channel catfish, Ictalurus punctatus// Abstr. 6th Intern. Symp. Reprod. Physiol. Fish. 1999. Bergen, Norway. P.53.

355. Tyler Ch. Vitellogenesis in salmonids// Proc. 4th Intern. Symp. Reproduct. Physiol. Fish. 1991. Sheffield (U.K.). P.295-299.

356. Uchida K., Murakami Y., Kuraki Sh., Hirano Sh., Kuratani Sh. Development of the adenohypophysis in the lamprey: evolution of epigenetic patterning programs in organogenesis// J. Exp. Zool. B. 2003. V.30, №1. P.32-47.

357. Upadhyay S.N., Breton B., Billard R. Ultrastructure studies on experimentally induced vitellogenesis in juvenil rainbow trout Salmo gairdneri// Ann. Biol. Anim., Biochim., Biophys. 1978. V.18. P.1019-1026.

358. Van Bohemen C.G., Lambert J.G.D. Steroidogenesis in the ovary of the rainbow trout, Salmo gairdneri//J. Endocrinol. 1979. V.80. P.37-38.

359. Van den Hurk R. The localization of steroidogenesis in the testes of oviparous and viviparous teleosts//Proc. K. Ned. Akad. Wet., Ser. C. 1973. V.76. P.270-279.

360. Van den Hurk R. Steridogenesis in the testis and gonadotropic activity in the pituitary during postnatal development of the black molly Mollienisia latipinna// Proc. K. Ned. Akad. Wet., Ser. C. 1974. V.77. P.193-200.

361. Van den Hurk R., Lambert J.G.D., Peute J. Steroidogenesis in the gonads of rainbow trout fry (Salmo gairdneri) before and after the onset of gonadal sex differentiation//Reprod. Nutr. Develop. 1982. V.22, №2. P.413-425.

362. Van den Hurk R., Meek J., Peute J. Ultrastructural study of the testis of the black molly Mollienisia latipinna. II. Sertoli cells and leydig cells// Proc. K. Ned. Akad. Wet., Ser.C. 1974. V.77. P.470-476.

363. Van den Hurk R., Peute J. Cyclic changes in the ovary of the rainbow trout, Salmo gairdneri, with special reference to sites of steroidogenesis// Cell Tiss. Res. 1979. V.199. P.289-306.

364. Van den Hurk R., Slof G.A. A morfological and experimental study of gonadal sex differentiation in the rainbow trout, Salmo gairdneri// Cell Tiss. Res. 1981. V.218. P.487-497.

365. Van der Kraak G., Wade M.G. Comparative data on the mechanisms of actionthof gonadotropins in vertebrates// Abstr. 12 Intern. Congr. Comp. Endocrinol. 1993. Toronto (Canada). A-166.

366. Wallace R.A. Vitellogenesis and oocyte growth in nonmammalian vertebrates// Dev. Biol. 1985. V.l. P.127-177.

367. Weibel E.R. Stereological principles for morphometry in electron microscopic cytology// Internat. Rev. Cytol. 1969. V.26. P.235-302.

368. Weissenberg R. Das Reifewachstum der Gonaden dei Lampetra fluviatilis und Lampetra planeri// Zeitschr. f. mikr.-anat. Forsch. 1927. Bd.8. P. 193-249.

369. Wiegand M.D., Idler D.R. Impairment of early ovarian growth in landlocked atlantic salmon by an antibody of carbohydrate-rich gonadotropin// Gen. Comp. Endocrinol. 1983. V.42, №2. P.210-219.

370. Wiegand M.D., Peter R.E. Effects of testosterone, oestradiol-17p and fasting on plasma free fatty acids in the goldfish, Carassius auratus// Comp. Biochem. Physiol. A. 1980. V.66. P.323-326.

371. Whitehead C., Bromage N.R., Foster J.R. Seasonal changes in reproductive function of the rainbow trout Salmo gairdneri// J. Fish Biol. 1978. V.5. P.227-230.

372. Wingfield J.C. Sex steroid-binding proteins in vertebrate blood/ In.: «Hormones, adaptation and evolution» (Eds. Ishii S., Hirano T., Wada M.). Tokyo: Jap. Sci. Press; Berlin: Springer Verlag. 1980. P.135-144.

373. Wingfield J.C., Grimm A.S. Seasonal changes in plasma Cortisol, testosterone and oestradiol-17P in the plaice, Pleuronectes platessa L.// Gen. Comp. Endocrinol. 1977. V.31.P.1-11.

374. Yamamoto T. Hormonic factors affecting gonadal sex differentiation in fish// Gen. Comp. Endocrinol. Suppl. 1.1962. P.341-345.

375. Yamamoto T. Sex differentiation// Fish Physiology. 1969. V.3. P.l 17-158.

376. Yamamoto T., Onozato H. Steroid producing cells in the ovary of the zebrafish, Brachydanio rerio// Annot. Zool. Jpn. 1968. V.41. P.l 19-128.

377. Yaron Z., Terkatin-Shimony A., Shaham Y., Salser H. Occurrence and biological activity of estradiol-17p in the intact and ovariectomized Tilapia aurea (Cichlidae teleostei)// Gen. Comp. Endocrinol. 1977. V.33. P.45-52.

378. Young G. Effects of hypophysectomy on coho salmon interrenal: maitenance of steroidogenic pathway and restoration of in vitro responsiveness to adrenocorticotropin after handling// Gen. Comp. Endocrinol. 1993. V.92. P.428-438.

379. Young G., Adachi S., Nagahama Y. Role of ovarian thecal and granulosa layers in gonadotropin-induced synthesis of salmon maturation-inducing substance (17a,20p-dihydroxy-4-pregnen-3 -one)// Develop. Biol. 1986. V.l 18. P.l-8.

380. Young G., Kagawa H., Nagahama Y. Role of ovarian thecal and granulosa cells in the production of maturation-inducing steroid by ovarian follicles of salmonid fishes// Gen. Comp. Endocrinol. 1984. V.53. P.455.

381. Youngson A.F., Webb J.H. Thyroid hormone levels in Atlantic salmon (Salmo salar) during the return migration from the ocean to spawn// J. Fish Biol. 1993. V.42, №2. P.293-300.

382. Zelennikov O.V., Mosyagina M.V., Fedorov K.E. Oogenesis inhibition, plasma steroid levels, and morphometric changes in the hypophysis in Russian sturgeon (Acipenser gueldenstaedti Brandt) exposed to low environment pH// Aq. Toxicol. 1999. V.46. P.33-42.

383. Zhu Y., Rice C.D., Pang Y., Pace M., Thomas P. Cloning, expression and characterization of a membrane progestin receptor and evidence it is an intermediary in meiotic maturation of fish oocytes// Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2003. V.l00, №5. P.2231-2236.