Оогенез рыб в норме и при экстремальных воздействиях тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.00.10, доктор биологических наук Чмилевский, Дмитрий Алексеевич

• Чмилевский, Дмитрий Алексеевич
• доктор биологических наук
• 2000

Оглавление диссертации доктор биологических наук Чмилевский, Дмитрий Алексеевич

ВВЕДЕНИЕ

ГЛАВА 1. МАТЕРИАЛ И МЕТОДЫ

1.1. Объекты исследования, условия их содержания и сбора

1.2. Воздействия, использованные в работе, и условия постановки экспериментов

1.3. Методики фиксации и обработки материала

ГЛАВА 2. МОРФОФУНКЦИОНАЛЬНЫЕ ОСОБЕННОСТИ РАЗВИТИЯ ПОЛОВЫХ КЛЕТОК У РЫБ

2.1. Введение

2.2. Первичные половые клетки

2.2.1. Происхождение ППК у рыб

2.2.2. ППК на ранних этапах онтогенеза мозамбик-ской тиляпии

2.3. Гонии

2.4. Особенности морфологии и биосинтетических процессов в развивающихся ооцитах рыб

2.4.1. Ооциты ранней профазы мейоза (процессы биосинтеза и особенности морфологии)

Синтез РНК, преобразования хромосом и ядрышек в развивающихся ооцитах костистых

2.4.3. Морфология цитоплазматических структур, синтез белков и полисахаридов

2.4.3.1. Цитоплазма ооцитов периода превител-логенеза

2.4.3.2. Синтез мукополисахаридов и формирование кортикальных гранул

2.4.3.3. Формирование желточных зерен 65 2.5. Фолликулярные клетки

3. ВЛИЯНИЕ РЕНТГЕНОВСКОГО ОБЛУЧЕНИЯ НА 00- И

Г0НАД0ГЕНЕЗ У РЬБ

3.1. Введение

3.2. Влияние рентгеновского облучения на гаметои гонадогенез мозамбикской тиляпии

3.2.1. Облучение личинок 6-суточного возраста

3.2.2. Опыт с двукратным облучением рыб в 6- и 55-суточном возрасте

3.2.3. Облучение личинок 10-суточного возраста (ППК, гонии)

3.2.4. Облучение личинок 15-суточного возраста (ППК, гонии)

3.2.5. Облучение личинок 20-суточного возраста (гонии и ооциты ранней профазы мейоза)

3.2.6. Облучение рыб 30- и 60-суточного возраста (ооциты начала и середины периода превителло-генеза)

3.2.7. Облучение рыб в возрасте 100 суток ооциты фазы первоначального накопления желтка)

3.3. Влияние различных доз рентгеновского облучения на развитие половых желез тиляпии

3.4. Влияние рентгеновского облучения на гаметои гонадогенез радужной форели

3.4.1. Облучение рыб в возрасте 5,5 месяцев после вылупления но

4. ВЛИЯНИЕ ПОНИЖЕННОЙ ТЕМПЕРАТУРЫ НА 00- И

ГОНАДОГЕНЕЗ РЫБ

4. 1 4.

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Оогенез рыб в норме и при экстремальных воздействиях»

Влияние пониженной температуры на оогенез мозамбикской тиляпии

122

1. Воздействие на рыб в возрасте 15 суток (ППК, гонии в незначительном количестве)

2. Воздействие на рыб в возрасте 22 суток оогонии и ооциты на стадии лептотены)

3. Воздействие на рыб в возрасте 30 и 60 суток (ооциты в фазе начала и середины периода превителлогенеза)

4. Воздействие на рыб в возрасте 106 суток (ооциты в фазе первоначального накопления желтка)

5. Влияние пониженной температуры на морфологию и синтез РНК в развивающихся ооцитах мозамбикской тиляпии

Влияние пониженной температуры на оогенез радужной форели

1. Воздействие на рыб в возрасте 13 суток после вылупления (ППК)

2. Воздействие на рыб в возрасте 5,5 месяцев (ооциты периода превителлогенеза)

127

130

135

137

142

142

147

ВЛИЯНИЕ ПОВЫШЕННОЙ ТЕМПЕРАТУРЫ НА 00- И Г0НАД0ГЕНЕЗ РЫБ 154

Оогенез тиляпии при постоянном воздействии повышенной температуры 154

Влияние повышенной температуры на различные периоды и фазы оогенеза тиляпий 156

- 5

5.3. Влияние повышенной температуры на оогенез радужной форели

161

ГЛАВА 6. ВЛИЯНИЕ ЭКСТРЕМАЛЬНЫХ ВОЗДЕЙСТВИЙ НА РОСТ тиляпий

176

6.1. Влияние рентгеновых лучей на рост тиляпий 177

6.1.1. Рост тиляпий после рентгеновского облучения на различных этапах онтогенеза 180

6.1.2. Влияние облучения в различных дозах на рост тиляпий 183

6.2. Рост тиляпий при пониженной и повышенной температурах 187

6.2.1. Влияние пониженной температуры на рост тиляпий 188

6.2.2. Рост тиляпий при воздействии повышенной температуры 193

6.2.3. Масса самок и самцов тиляпий после экстремальных воздействий 196

ГЛАВА 7. О ВЗАИМОСВЯЗЯХ ПРОЦЕССОВ РОСТА И СОЗРЕВАНИЯ

У РЬБ 206

ГЛАВА 8. ООГЕНЕЗ РЬБ КАК ЧУВСТВИТЕЛЬНАЯ ТЕСТ-СИСТЕМА 212

ГЛАВА 9. ПЕРИОДИЗАЦИЯ ООГЕНЕЗА РЬБ С ИСПОЛЬЗОВАНИЕМ ПОЛУ

- 7 -ВВЕДЕНИЕ

Несмотря на почти вековую историю изучения гаметогенеза рыб интерес к дальнейшему познанию этого процесса продолжает сохраняться (Персов,1975;Wallace, Selman,1981; Кошелев,1984; Gura-уа,1986; Иванков,1987) Это можно объяснить рядом причин. Во-первых, большим разнообразием адаптаций, связанных с размножением у рыб - самого многочисленного класса среди позвоночных, населяющего обширные акватории рек, морей и океанов с разнообразными абиотическими и биотическими условиями. В этом смысле понятен интерес к оогенезу рыб в плане эмбриологических и сравнительно-эволюционных исследований. Во-вторых, большинство видов рыб являются объектами промысла и интенсивной аквакультуры и, в связи с этим, одним из основных источников белка для населения нашей планеты. Многие виды отнесены к рангу редких и исчезающих, поэтому их сохранение и изучение является одной из задач современных исследователей.

Одним из основных процессов, обеспечивающих динамику численности вида, является его размножение. В настоящее время очевидно, что без изучения гаметогенеза, половых циклов и экологии размножения рыб невозможно рационально вести промысел, осуществлять природоохранные мероприятия и заниматься аквакультурой. В связи с изменившийся экологической обстановкой особенно остро стоит проблема получения зрелых половых продуктов от многих промысловых видов рыб и управления сроками созревания с помощью различных экологических и гормональных факторов (Гербильский, 1941; Казане

- 8 кий,1956; Баранникова,1976; 1984). С целью интенсификации товарного рыбоводства широко используются разнообразные способы изменения взаимосвязи между ростом и созреванием: различные формы стерилизации рыб, их гибридизация, а также методы реверсии пола, позволяющие получать однополые популяции (Donaldson, Hunter, 1982). В настоящее время на ооцитах рыб широко используются методы хромосомной (получение полиплоидных видов, Valenti,1975; Solar et al.,1984) и генной инженерии (Claud,1986: Rahman,1997). Использование и дальнейшая разработка этих методов невозможна без фундаментальных исследований процесса оогенеза и его хронологии у основных объектов аквакультуры.

Процессы размножения оогониев, роста ооцитов и атрезии части из них являются основополагающими при формировании фонда половых клеток и, в последующем, плодовитости рыб - одной из важнейших составляющих динамики их численности. Поэтому разработка методов прогнозирования плодовитости и сроков икрометания рыб является перспективной в построении моделей долгосрочных прогнозов динамики их численности (Сакун,Свирский, 1992; Witthames,2000).

В настоящей работе сделана попытка изучить влияние трех видов экстремальных воздействий (рентгеновского облучения, пониженной и повышенной температуры) на развитие гонад у самок рыб. Такие воздействия нарушают нормальные взаимосвязи в развитии разных органов и позволяют лучше понять функции каждого из них. Изучение механизмов устойчивости функции гонад, как исследование их чувствительности к различным неблагоприятным воздействиям, является однймШетодологических подходов к изучению скрытых возможностей в

- 9 функционировании воспроизводительной системы рыб и ее надежности (Персов, 1972).

Цели и задачи работы. Целью настоящей работы являлось изучение морфофункциональных особенностей оогенеза и адаптационных процессов, происходящих в ооцитах, гонадах и организме (изменение массы) рыб под влиянием использованных экстремальных воздействий и обеспечивающих их высокие репродуктивные возможности.

В соответствии с поставленной целью были намечены следующие задачи работы:

1. Используя методы световой и электронной микроскопии и гистохимии, изучить морфологию ППК, гониев и развивающихся ооцитов рыб: а) хромосомно-ядрышковый аппарат, б) цитоплазму и цитоплазматические включения,

2. С помощью метода авторадиографии изучить биосинтетическую активность ядра и цитоплазмы в развивающихся ооцитах рыб.

3. На примере мозамбикской тиляпии исследовать особенности морфо логии и пролиферации клеток фолликулярного эпителия.

4. На модельном объекте - мозамбикской тиляпии описать хронологию развития ооцитов путем изучения динамики их процентного соотношения.

5. Изучить дифференциальную радиочувтвительность развивающихся ооцитов мозамбикской тиляпии и радужной форели.

6. Выяснить влияние различных доз рентгеновского облучения на развитие гонад мозамбикской тиляпии.

- 10

7. Изучить влияние пониженной температуры на морфологию и динамику числа ооцитов мозамбикской тиляпии и радужной форели.

8. Используя метод авторадиографии, изучить влияние пониженной температуры на синтез РНК в развивающихся ооцитах мозамбикской тиляпии.

9. Выяснить влияние повышенной температуры на оогенез мозамбикской тиляпии и радужной форели.

10. Изучить рост мозамбикской тиляпии и радужной форели при использовании рентгеновского облучения, пониженной и повышенной температуры.

11. Изучить репродуктивные показатели мозамбикской тиляпии (плодовитость, вес икринки и сроки наступления нереста) после воздействия рентгеновского облучения, пониженной и повышенной температуры.

Научная новизна. Впервые проведено всестороннее авторадиографическое изучение оогенеза рыб, которое позволило охарактеризовать основные биосинтетические процессы в развивающихся ооцитах ( синтез ДНК, РНК, белков и полисахаридов) и их временную последовательность. Экспериментально установлено неизвестное ранее явление ускорения процесса оогенеза (т.н. парадоксальный эффект) как следствие активных восстановительных процессов, происходящих после воздействия повреждающих факторов - рентгеновского облучения и пониженной температуры на ранние стадии развития гонад. Впервые установлен чувствительный к рентгеновскому облучению период в раннем гаметогенезе рыб (переход оогониев к ранней профазе мейо

- и за), воздействуя на который можно в значительной степени подавлять процесс оогенеза и тем самым изменять соотношение между ростом и созреванием, а также изучен рост рыб при использованных экстремальных воздействиях. Впервые обнаружены начальные этапы температурной реверсии пола у радужной форели при воздействии экстремальной повышенной температуры. Впервые показано, что морфологические преобразования ооцитов, наблюдаемые после воздействия пониженной температуры, происходят на фоне снижения метаболизма РНК.

Научно-практическое значение работы. Углубленное изучение морфологии и биосинтетических процессов в развивающихся ооцитах послужит основой для разработки новых методов регуляции гамето- и гонадогенеза у рыб и создания более точной периодизации процесса оогенеза. Знание чувствительных и устойчивых фаз оогенеза к использованным воздействиям будет способствовать разработке новых методов изменения взаимосвязей между ростом и созреванием (различные способы стерилизации рыб и реверсии пола). Использование оогенеза рыб как чувствительной тест-системы к воздействию различных экологических, а также других факторов (генетические, пищевые и различные загрязняющие вещества) улучшит мероприятия, связанные с биотехникой выращивания рыб, охраной водной среды и обоснованием ПДК загрязняющих веществ. Данные об изменении плодовитости и сроков нереста после температурного и радиационного воздействий на рыб с различным состоянием гонад можно использовать при создании более совершенных моделей динамики численности рыб. Полученные материалы могут быть использованы в курсах лекций по общей ихтиологии, эмбриологии, цитологии и физиологии рыб.

12

Заключение диссертации по теме «Ихтиология», Чмилевский, Дмитрий Алексеевич

ВЫВОДЫ:

В результате изучения функциональной морфологии и влияния экстремальных воздействий (рентгеновского облучения, пониженной и повышенной температуры) обнаружены некоторые ранее не известные закономерности оогенеза и адаптационные процессы, происходящие в ооцитах, гонадах и организме рыб, обеспечивающие стабильность функционирования их воспроизводительной системы.

1. При изучении морфологии и динамики ППК в раннем онтогенезе мозамбикской тиляпии установлены два периода в их развитии: 1.Период относительного покоя (число ППК сохраняется постоянным, в их цитоплазме обнаруживается гликоген). 2.Период активного митотического размножения, в результате которого появляются гонии.

2. Методами световой и электронной микроскопии и авторадиографии на представителях костистых рыб: ерше (СутпосерПа1из сегпиа и, мозамбикской тиляпии (ОгеосПгопиэ тоззатМсиэ) и хрящевых ганоидов - стерляди (Ас1репзег ги^етв Ь.) изучена морфология гониев и ооцитов ранней профазы мейоза. По размерам и морфологическим особенностям можно выделить две группы оогониев: крупные -покоящиеся, напоминающие сперматогониям типа А млекопитающих и мелкие - размножающиеся, располагающиеся группами, которые можно сравнить со сперматогониями типа В.

- 251

3. В ооцитах пахитенной стадии у изученных видов отмечалось формирование гетерохроматической шапочки и преимущественное включение в нее Н3-тимидина, что соответствует процессу амплификации рибосомных генов. В начале диплотенной стадии синтез ДНК прекращается.

4. Установлено, что в ооцитах периода превителлогенеза РНК синтезируется преимущественно хромосомами, а ядрышки, образованные фибриллами, слабо активны в этом процессе. С переходом к ви-теллогенезу отмечается активизация синтеза РНК в ядрышках, появление в них наряду с фибриллами гранулярного компонента и активное выведение синтезированной РНК в цитоплазму. Для развивающихся ооцитов рыб характерно функционирование ядрышек до конца фазы миграции ядра.

5. В превителлогенных ооцитах отмечен слабый синтез белка в цитоплазме, появление полирибосом и телец, образованных концентрическими мембранами гладкого эндоплазматического ретикулума, а также желточного ядра.

6. Синтез кислых мукополисахаридов и формирование кортикальных гранул, происходящие при участии комплекса Гольджи, начинаются в фазе вакуолизации цитоплазмы и продолжаются до конца витело-генеза.

7. С переходом к желткообразованию происходит активизация синтеза белка в цитоплазме ооцитов. В ооцитах фазы позднего вителлогенеза отмечено два способа поступления белков экзогенного происхождения.

8. Наиболее активное размножение клеток фолликулярного эпителия происходило в фазе первоначального накопления желтка, что зачастую ведет к формированию ложной многорядности фолликулярной оболочки. С переходом к активному вителлогенезу изменяется форма фолликулярных клеток и прекращается их размножение.

9. Установлено неизвестное ранее явление "парадоксального эффекта в действии отрицательного фактора," сущность которого заключается в том, что при воздействии рентгеновского облучения и пониженной температуры на личинок рыб, в гонадах которых были

ППК, сначала происходит подавление развития гонад, затем - в результате активных восстановительных процессов за более короткий срок достигается уровень нормы.

10. Гонады рыб, содержащие гонии последних генераций, наиболее чувствительны к рентгеновскому облучению и пониженной температуре. Воздействие на рыб такого состояния ведет к подавлению развития их гонад ко времени созревания и стимуляции роста.

11. Установлена избирательная чувствительность ооцитов рыб к некоторым факторам в определенной дозе. Так при воздействии пониженной температуры на рыб, в гонадах которых были превителлогенб ные ооциты, отмечалось появление в их цитоплазме темно-окрашенных зон, образованных миохондриями и рибосомами. Температура, при ко

- 253 торой происходит возникновение таких зон, специфична для каждого вида и, очевидно, может быть использована как его характеристика. Повышенная температура ведет к ускорению ранних стадий развития гонад, но к атрезии ооцитов, близких к созреванию. Экстремальная повышенная температура ведет к реверсии пола рыб или к их стерильности.

12. На основании полученных данных внесены некоторые уточнения в существующую периодизацию оогенеза рыб. Сделана попытка прогнозирования плодовитости и роста рыб при воздействии некоторых факторов в определенной дозе на рыб с различным состоянием гонад.

13. Сделана попытка прогнозирования плодовитости и роста рыб после воздействия использованных факторов в определенной дозе на рыб с различным состоянием гонад.

14. Сформулировано положение об основных процессах, обеспечивающих высокую устойчивость репродуктивной системы самок рыб к экстремальным воздействиям. Это следующие процессы:

1. Отбор поврежденных определенным фактором половых клеток;

2. Возможность длительных задержек на определенных фазах развития

3. Способность гонад к быстрому восстановлению; 4.Отсутствие сто-го детерминированной взаимосвязи между возрастом и массой при половом созревании и быстрое изменение этих соотношений. 5. Синтез ооцитом под влиянием экстремальных воздействий новых соединений.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

В результате всесторонних морфологических и авторадиографи-чеких исследований изучены основные биосинтетические процессы, обеспечивающие развитие ооцитов рыб: синтез экстахромосомной ДНК, формирование периферических ядрышек и их биосинтетическая активность в синтезе РНК, активность хромосом в этом процессе. Параллельно с этим охарактеризованы морфологические преобразования ядра, цитоплазмы и фолликулярных клеток ооцитов, синтез белков и полисахаридов, формирование кортикальных гранул и желточных зерен. Впервые установлено, что в ооцитах периода превителлогенеза синтез РНК осуществляется преимущественно хромосомами, а ядрышки проявляют слабую активность. В фазе раннего превителлогенеза наряду с активным синтезом РНК хромосомами происходит ее быстрое выведение в цитоплазму. По высокой биосинтетической активности в синтезе РНК ооциты фазы раннего превителлогенеза отличаются от ооцитов фаз среднего и позднего превителлогенеза. В течение периода превителогенеза происходит постепенное нарастание синтеза белка в цитоплазме, который значительно активизирутся с переходом ооцитов к вителлогенеза. Впервые обнаружено, что синтез кислых мукополисахаридов и формирование кортикальных гранул происходят в течение всего вителлогенеза. В ооцитах фазы позднего вителлогенеза впервые обнаружены два способа поступления белков экзогенного происхождения. При одном из них, отмеченном для мозамбикской ти

- 248 ляпии, из этих белков под оболочкой ооцита формируется множество мелких желточных зерен (первичные желточные зерна), которые мигрируют в центр ооцита и сливаются с уже имеющимися зернами желтка. При другом - обнаруженном для ооцитов ершей, содержащихся при пониженной температуре, меченые белки перемещаются по цитоплазме к центру ооцита и затем поступают в желточные зерна.

Экстремальные воздействия - рентгеновское облучение и температура (пониженная и повышенная) блокируют развитие половых и соматических клеток в состоянии повышенной физиологической активности и размножения. Наиболеечувствительными к воздействию указанных факторов оказались оогонии, вступающие в раннюю профазу мейоза и размножающиеся фолликулярные клетки. Также чувствительны ооциты в фазе раннего превителлогенеза, хромосомы которых активно синтезируют РНК. В отношении других процессов, обеспечивающих нормальный ход оогенеза необходимы дополнительные исследования. Обнаружена избирательная чувствительность определенных фаз развития ооцитов к действию некоторых факторов. Так массовая гибель поврежденных радиацией половых клеток происходит в ходе ранней профазы мейоза. Этот же процесс наблюдается и после воздействия экстремальных температур, но менее выражен. Ооциты периода превителлогенеза избирательно реагируют на воздействие пониженной температуры появлением темно-окрашенных зон, которые образованы скоплением митохондрий и рибосом. Температуры, вызывающие их возникновение, специфичны для каждого вида рыб и,очевидно, являются одной из его характеристик, аналогичных критерию теплоустойчивости (Ушаков,1964 ). Ооциты, близкие к созреванию, чувствительны к воз

- 249 действию повышенной температуры.

Отмеченные повреждения активно восстанавливаются, как засчет процессов, происходящих в самих половых клетках, так и на уровне всей гонады ( активное размножение оогониев и их дальнйшее развитие). Изучение этого процесса, являющегося несомненно функцией всего организма, представляет особый интерес для дальнейших исследований.

Установлены чувствительные этапы в онтогенезе рыб, гонады которых содержат половые клетки определенного состояния. Воздействие на рыб с такими гонадами экстремальными факторами может приводить к стерильности и значительным задержкам гамето- и гонадо-генеза, но стимуляции роста.Обнаружено неизвестное ранее явление парадоксального эффекта в действии отрицательного фактора, когда при воздействии на определенные этапы гаметогенеза несмотря на первоначальное подавление развития гонад, затем, засчет активных восстановительных процессов, за короткий срок достигается уровень нормы. Внесены некоторые уточнения в существующую периодизацию оогенеза рыб.

250

Список литературы диссертационного исследования доктор биологических наук Чмилевский, Дмитрий Алексеевич, 2000 год

1. Алешин С.А. Ранний гаметогенез радужной форели при различных пищевых и температурных режимах. Канд. дисс. Л. 1987. 157 с.

2. Арронет В.Н. Белковые гранулы и сферы в оогенезе рептилий// ■Цитология. 1975. Т. 17. N2. С. 137-143

3. Ахундов М.М. Пластичность дифференцировки пола у осетровых рыб. Баку-ЕЛМ.1997.199с.

4. Баранникова И.А. Гормональная регуляция размножения у осетровых// Тр. ВНИРО.1976. Т.СХХХ. С.6-16.

5. Баранникова И.А. Гормональная регуляция репродуктивной функции у рыб с различной экологией// Биол. основы рыбоводства. М. Наука. 1984. С.178-218.

6. Беляева В.Н., Черфас Н.Б. О процессах созревания и оплодотворения в яйцеклетках вьюна (Mlsgurnus fossilis L.)// Вопр. ихтиол.1965. Т. 5. Вып.1. С.82-90.

7. Богданова В.А. Нарушения оогенеза у гиногенетических и гибридных форм сиговых рыб// Труды БиНИИ. 1997. Т44. С.91-99.

8. Богданов Ю.Ф., Ляпунова H.A., Шерудило А.Н., Антропова E.H. Разобщение синтеза ДНК и гистона перед ранней профазой 1 мейоза у сверчка// Цитология. 1967. Т. 9. С. 987-990.

9. Богданов Ю. Ф. Ультраструктура хромосом в мейозе и синоптоне- 255 мальнътй комплекс// В кн,,: Цитология н ^еттит .мейоза-J975.1. М. Наука. С. 58-95.* ■

10. Буцкая H.A. О массовой интерсексуальности ерша Acerina сег-nua L. в восточной части Финского залива// Вопр. ихтиол. 1976. Т. 16. ВЫП. 5. С. 812-821.

11. Васецкий С.Г. Влияние внешних факторов на мейоз// В кн.: Современные проблемы оогенеза. М. Наука.1977. 319с.

12. Вотинов Н.П. Биологические основы искусственного воспроизводства обского осетра// В сб.: Искуственное разведение осетровых и сиговых рыб в Обь-Иртышском бассейне. 1963. Тюмень. С. 5-102.

13. Габаева Н.С. О морфодинамике фолликулярного эпителия в ооге-незе пластинчатожаберных рыб// Арх. анат., гистол., эмбриол. 1980. Т. 78. Вып. 4. С.70-79.

14. Габаева Н.С., Ермолина Н.0. Об изменении фолликулярного эпителия и формировании яйцевых оболочек в ходе оогенеза морского сома// Арх. анат., гистол.,эмбр.1972. Т.63. Вып.8. С. 97-106.

15. Габаева Н.С., Боглазова Е.К. О морфодинамике и пролифератив-ной активности фолликулярного эпителия в оогенезе меченосца Xip-hophorus heller!// Научн. докл. высшей школы. Сер. биол. науки. 1977. Т. 8. С.59-65.

16. Гагинская Е.Р., Грузова М.Н. Особенности оогенеза зяблика// Цитология. 1969. Т.Н. N10. С. 1241-1251.

17. Гербильский H.J1. Возрастные и сезонные изменения в ооцитах зеркального карпа// Арх., анат., гистол., эмбриол. 1939. Т.21. N2. С.241-247.

18. Гербильский Н.Л. Метод гипофизарных инъекций и его роль в рыбоводстве// В сб.: Метод гипофизарных инъекций и его роль в воспроизводстве рыбных запасов. Изд. ЛГУ. 1941. С. 5-45.

19. Гинзбург A.C. Оплодотворение у рыб и проблема полиспермии. 1968. М. Изд-во Наука. 358 с.- 256

20. Головинская К.А., Ромашов Д. Д. Действие ионизирующей радиации на развитие и размножение рыб// Вопр. ихтиол. 1958. Вып.11. С.16-38.

21. Гомельский Б.Н. Гормональное переопределение пола у рыб и возможности его применения в рыбоводстве (литературный обзор)// Сб. Трудов ВНИПРХ. 1980. Вып.28. С.117-136.

22. Грузова М.Н. Некоторые аспекты мейоза в овогенезе// Цитология и генетика мейоза. 1975. М., Наука. С.113-136.

23. Дэвидсон Э. Действие генов в раннем развитии. М. Мир. 342 с.

24. Детлаф Т. А., Детлаф А.А. О безразмерных характеристиках продолжительности развития в эмбриологии// ДАН СССР.1960. Т.134.1. С.199.

25. Европейцева И.В. Развитие, относительная численность и вопрос о значении карликовых самцов у экологически различных представителей рода Salmo// Вопросы экологии. 1962. Т.5. С.60.

26. Емельянова Н.Г. Ультраструктура оогониев и ооцитов у белого толстолобика// Онтогенез.1979. Т.10. С.145-151.

27. Емельянова Н.Г. Сезонные изменения цитоплазмы ооцитов периода превителлогенеза у толстолобика Hypophthalmichthys molitrlx Valenciennes// Вопр. ихтиол.1985. Т. 25. Вып. 2. С.248-255.

28. Емельянова Н.Г., Макеева А. П. Изменение фолликулярной оболочки ооцитов белого толстолобика Hypotalmicus molitrlx (Val.) в начале периода большого роста// Виол, науки. 1980.N12. С.33-38.

29. Емельянова Н.Г., Макеева А. П. Влияние температуры на состояние превителлогенных ооцитов некоторых карповых рыб// Вопр. ихтиол. 1988. Т.28. Вып.3. С.446-452.- 257

30. Жинкин J1.H. Применение радиоактивных изотопов в гистологии. В сб.: Радиоактивные индикаторы в гистологии. Изд-во АМН СССР. Л. 1959. С. 5-33.

31. Захарова Н.И. Развитие половых желез радужной форели Salmo gairdneri Rich, в пострадиационный период. 1.Облучение личинок в возрасте 24 суток после вылупления// Вопр. ихтиол.1983.Т.23. Вып.6. С.951-960.

32. Захарова Н.И. Морфофункциональные закономерности раннего га-метогенеза радужной форели Salmo gairdneri (Rich.) при различном температурном режиме и рентгеновском облучении. Канд. дисс. Л. 1984. 160 с.

33. Захарова Н.И. Дифференцировка пола у байкальского омуля при различных температурных режимах выращивания// Проблемы надежности функционирования репродуктивной системы у рыб. Тр. БиНИИ. 1997. Т. 44. С.65-73.

34. Захарова Н.И., Чмилевский Д.А. Влияние пониженной температуры на развитие гонад радужной форели (Salmo gairdneri). 1. Воздействие на рыб в возрасте 13 суток после вылупления// Сб. научн. тр. ГосНИИ озер, и реч. рыб. хоз-ва. 1983. Вып. 203. С. 40-46.

35. Захарова Н.И.,Чмилевский Д.А. Влияние пониженной температуры на развитие гонад радужной форели (Salmo gairdneri). И.Воздействие на рыб в возрасте 5,5 месяца после вылупления// Сб. научн. тр. ГосНИИ озер, и реч. рыб. хоз-ва. Вып.1985. 229. С.95-104.

36. Зеленников О.В. Влияние закисления воды на становление и развитие воспроизводительной системы рыб в раннем онтогенезе.

37. Автореф. канд. дисс. Санкт-Петербург. 1997. 20 с.- 258

38. Зотин А.И. Физиология водного обмена у зародышей рыб и круг-лоротых// 1961.М. Изд-во АН СССР. 318 с.

39. Зыбина Е.В. Поведение хромосомно-ядрышкового аппарата в период большого роста ооцитов кролика// Цитология. 1969. Т.Н. N 1. С.25-31.

40. Иванков В.Н. Строение яйцеклеток и систематика рыб.1987.Владивосток.158 с.

41. Иванков В.Н., Падецкий С.Н., Флоряк В.С.6 Чурикова Н.И., Гавренков Ю. Н. Неотенические самки симы Oncorhyncus masu (Brevo-od) из реки Кривая (Южное Приморье)// Вопр. ихтиол. 1981. Т.21. Вып.5. С. 938-942.

42. Игнатьева Г.М. Радужная форель, Salmo galrdneri Richardson 1836// Объекты биологии развития. Изд-во Наука. 1975. С.

43. Ивойлов A.A. Модельные группировки тиляпий и анализ их размножения в связи с проблемой полициклического выращивания в установках с замкнутым циклом водоснабжения/ Автореф. канд. дис.1988. Л.18 с.

44. Казанский Б.Н. Особенности функций яичников и гипофиза у рыб с порционным икрометанием// Тр. лаб. основ рыбоводства. 1949. Т. 2. С. 64-120.

45. Казанский Б.Н.Оогенез и адаптации связанные с размножением у рыб/ Автореф. дисс.докт.биол.наук. 1956. Л. 36с.

46. Казанский Б.Н. Смены фаз регуляции и эколого-физиологическая стадийность гаметогенеза рыб// Бюлл. изобретений открытий и товар. знаков. 1963.N19. С.71-72.

47. Казанский Б.Н. Эколого-физиологические основы и методика управления гаметогенезом и сезонностью размножения рыб// Тез. докл. 3-ей Всесоюз. конф. "Экологическая физиология рыб". 1976. Т.1. Киев. С.14-19.- 259

48. Казанский Б.Н. Эколого-эволюционные принципы организации осетрового хозяйства в бассейнах южных морей СССР// Биологические основы развития осетрового хозяйства в водоемах СССР. М. Наука. 1979. С. 22-33.

49. Каменева Т.О. Изучение транскрипционной активности ядрышек ооцитов стерляди методами авторадиографии и серебрения// Цитоло-гияЛ987. Т. 33. С. 3-9.

50. Кирпичников B.C. Гибридизация европейского карпа с амурским сазаном и селекция гибридов. Автореф.докт. дисс.1967. Л.71 с.

51. Кондратьев А.К. Функциональная морфология ооцитов периода превителлогенеза у сибирской стерляди (Acipenser ruthenus marsig-11i Brandt) в разные периоды ее годового биологического цикла// Вопр. ихтиол. 1977. Т.17. С.912-921.

52. Кондратьев А.К. Цитоэкологическое исследование оогенеза сибирской стерляди. 1.Сезонная динамика распределения структур, богатых РНК, в развивающихся ооцитах периода превителлогенеза// Цитология. 1979. Т.21. С.1397-1402.

53. Кошелев Б.В. Экология размножения рыб. 1984. М.Наука. 309 с.

54. Кузин A.M. Структурно-метаболическая гипотеза в радиобиологии. М. Наука. 1970.

55. Кузьмин А.Н. Развитие воспроизводительной системы у карпов, обитающих в разных широтах// Изв.ВНИОРХ.1957.Т.43. Вып.1. С.3-65.

56. Кузнецов Ю.К., Горчинский К.В., РоманюкО.В. Сравнительный анализ яичников у форм вида Osmerus eperlanus (L.) различающихся по скорости полового созревания// Сб. научн. трудов ГосНИИ озер, и реч. рыб. хоз-ва.1982. Вып.183. С.28-57.- 260

57. Кузнецов Ю.К. Исследование функции яичников в связи с явлением карликовости у рыб и круглоротых на примере родов Osmerus lacepede и Lampetra grey. Автореф. канд. дисс. Л. 1986. 21 с.

58. Лаврова Т.В., Чмилевский Д. А. Влияние повышенной температуры на оогенез тиляпии Oreochromis mossambicus (Peters)// Изв. ГосНИ-ОРХ. 1987. Вып.259. С.134-143.

59. Лапкин В.В., Свирский A.M., Голованов В.К. Возрастная динамика избираемых и летальных температур рыб// Зоол. журн. 1981. Т. 10. N12. С. 1784-1792.

60. Латиф А. О некоторых особенностях предовуляционных изменений ядра в ооцитах ерша (Acerina cernua L.)// Вестник ЛГУ. 1966. Т.9. С.44-48.

61. Ли Д.Е. Действие радиации на живые клетки. М. Госатомиздат. 1963. 288 с.

62. Лобашев М.Е. Генетика/ 1987. Изд-во ЛГУ. 751 с.

63. Лукина Н.А. Ультраструктурное и светооптическое исследование фолликулярного эпителия ската на ранних стадиях оогенеза// Цитология. 1984а. Т. 26. N5. С. 507-513.

64. Лукина Н.А. Взаимоотношения между ооцитом и фолликулярными клетками на ранних стадиях оогенеза ската// Цитология. 19846. Т.26. N6. С.643-647.

65. Лукина Н.А. Ультраструктурное исследование ранних стадий оогенеза акулы катрана Squalus acanthias// Цитология.1987. Т.29. N5. 0.531-536.

66. Макеева A.n., Емельянова Н.Г. Периодизация оогенеза у карповых рыб// Вопр. ихтиол. 1989. Т.29. Вып.6.С.931-943.- 261

67. Малиновская М.В. Состояние воспроизводительной системы самок карася при содержании в различных температурных условиях по показателям липидного обмена// Тез. докл. У Всесоюзн. конф. по раннему онтогенезу рыб.Астрахань.1991. С.191-192.

68. Медников Б.М. Температура как фактор развития// Внешняя среда и развивающихся организм// М., Наука. 1977. С.7-52.

69. Межнин Ф.И. Развитие половых желнз в раннем онтогенезе обыкновенного окуня Perca fluviatilis// Вопр. ихтиол. 1978. Т.18. Вып.1 (108). С.84-100.

70. Мейен В.А. К вопросу о годовом цикле изменений яичников костистых рыб// Изв. АН. СССР. 1939. Сер. биол. N3. С. 17-27.

71. Мейен В.А. Изменение полового цикла самок костистых рыб под влиянием экологических условий// Изв. АН СССР. 1944. сер. биол. наук. N2. С.65-76.

72. Мина М.В., Клевезаль Г.А. Рост животных. Анализ на уровне организма. М.1976. 291 с.

73. Миронова Н.В. О возможном темпе нарастания численности и суммарной биомассы тиляпии (Tilapia mossambica Peters)// ДАН СССР.1966.Т.166.4. С.968-969.

74. Мосевич Т.Н. Эндоплазматическая сеть// В кн.: Руководство по цитологии. 1965. Т.1. С.173-181. Наука. М-Л. 571 с.- 262

75. Мурза И.Г. Особенности гормональной регуляции созревания карликовых самцов атлантического лосося Salmo salar// Труды ВНИ-РО.1978. Т. 130. N4. С. 60-70.

76. Мурза И.Г., Христофоров 0.J1. Морфо-функциональные особенное*ти соматотропных и пролактиновых клеток гипофиза ювенильной молоди и карликовых самцов атлантического лосося Salmo salar L. в природных условиях// Сб. научн. трудов ГосНИОРХ Вып.190. С.44-61.

77. Мурза И.Г., Христофоров 0.JI. Периодизация гаметогенеза и шкалы зрелости половых желез самок и самцов кумжи// Изв. ГосНИОРХ. 1984. Вып.220. С.19-40.

78. Натали В.Ф. Влияние лучей рентгена на плодовитость и изменчивость Lebistes reticulatus// Учен. зап. Гос. пед. ин-та. 1940а Т.22. Вып.1. С. 5-29.

79. Натали В. Ф. Влияние лучей рентгена на половую железу самцов Lebistes reticulatus// Учен. зап. Гос. пед. ин-та. 19406. Т.22. Вып.1. С.30-41.

80. Негоновская И.Т. Цитоморфологические данные о процессах созревания яиц севанской форели гегаркуни// Цитология. 1960. Т. 2. N5. С.536-546.

81. Неелов A.B., Травкина Г.Л., Ермолин Е.В. Оогенез и динамика развития ооцитов у ледяной рыбы, Chaenocephalus aceratus (Lonn-berg)// Вестник СПбГУ.1997. Серия 3. Вып.2. С. 24.

82. Нооритс Т.К. Особенности репродуктивных циклов леща в различных водоемах (на примере озер Ясхан и Выртсъярв)// Особенности репродуктивных циклов у рыб в водоемах разных широт.1985 С.78-87. Изд-во Наука. 166 с.- 263

83. Объекты биологии развития/1975. Изд-во Наука М. 572 с.

84. Одум Ю. Основы экологии. М. Мир. 1975. 740 с.

85. Озернюк Н.Д., Пальмбах Л. Р. Связь между митохондриями и эндоплазматическим ретикулумом в ооцитах вьюна Misgurnus fossilis L.// Онтогенез. 1974. Т5(4). С. 404-407.

86. Парибок В.П. Особенности лучевого повреждения// В кн.: Руководство по цитологии. Т.2. Изд-во Наука. М-Л. 1966.674 с.

87. Персов Г.М. Ранний период гаметогенеза у проходных лососей// Воспроизводство и акклиматизация лососевых в Баренцовом и Белом морях. Л. Наука. 1966. С. 7-44.

88. Персов Г.М. Надежность функционирования воспроизводительной системы рыб// Вопр. ихтиол. 1972. Т.12. Вып. 2(73). С. 258-272.

89. Персов Г.М. Дифференцировка пола у рыб. Л.: Изд-во ЛГУ. 1975. 147 с.

90. Персов Г.М., Абросимов Л.М. Экспериментальные данные по радиостимуляции темпа роста молоди куринского осетра, бестера и радужной форели// Радиация и проблемы размножения рыб и роста рыб. Л. 1978. С.163-167.

91. Подушка С.Б. Экспериментальный анализ сезонности размножения плотвы и трехиглой колюшки в связи с эколого-физиологической периодизацией оогенеза костистых рыб. Автореф. дис. канд. биол. наук. 1976. Л. ЛГУ. 20 с.

92. Привезенцев Ю.А. Тиляпия в тепловодном рыбоводстве// Рыбоводство и рыболовство. 1976. N3. С. 10-12.

93. Райкова Е.В. Морфология ядрышек в период роста ооцитов осетровых рыб в конце периода превителлогенеза// Журн. общ. биол.1968 Т. 30. С. 5-18.- 264

94. Райкова E.B. Ультраструктура гоний волжского осетра// Цитология. 1970. Т.12. N 7. С.827-833.

95. Райкова Е.В. Ультраструктура ооцитов осетровых рыб в конце периода превителлогенеза. Сообщение 1. Ультраструктура ядра// Онтогенез. 1972. Т.З. С. 78-84.

96. Райкова Е.В. Ультраструктура ооцитов осетровых рыб в период превителлогенеза. И.Ультраструктура цитоплазмы// Цитология. 1973. Т.15(11). С.1352-1361.

97. Расулов А.X. Выяснение особенностей размножения сазана кай-ракумского водохранилища на основании гисто-экологического исследования гонад// Особенности репродуктивных циклов у рыб в водоемах разных широт.1985. М. Наука. 165 с.

98. Романов А. А., Шевелева Н. Н. Нарушение морфогенеза у осетровых Каспия// Рыбное х-во.1993. N4. С.27-28.

99. Ромашов Д.Д, Головинская К. А. Радиационная биология и генетика рыб// Итоги наук. Биол. науки 1960. Вып. 3. С. 324-343.

100. Рязанцева М.И., Сакун О.Ф. Половые клетки и развитие гонад карпа Cyprinus carpió в раннем онтогенезе// Вопр. ихтиол. 1980. Т.20. ВЫП.3(122). С.524-533.

101. Саат Т.В. Хронология созревания ооцитов вьюна и становление у них способности к развитию// Онтогенез.1982. Т.13. N3. С.257-265

102. Сакун О.Ф. Химическая природа и значение включений в ооцитах костистых рыб// Архив анат., гистол., эмбриол. Т.38. N1. С. 38-42.

103. Сакун О.Ф. Проблема гонадотропной активности гипофиза у рыб и физиология оогенеза// Труды БиНИИ. 1970. N20. С.121-133.

104. Сакун О.Ф., Буцкая H.A. Определение стадий зрелости и изуче- 265 ние половых циклов рыб. Мурманск. 1968. 47 с.

105. Сакун О.Ф., Свирский В.Г. Дегенерация ооцитов периодов превителлогенеза и вителлогенеза в годовом цикле дальневосточной сардины ЗагсИпорз sagax Ме1апозИс1а// Вопр. ихтиол. 1992. Т. 32. Вып. 3. С. 52-60.

106. Самохвалова Г.В. Влияние рентгеновых лучей на половую железу и вторичные половые признаки Lebistes геиаЯаШэ// Тр. по динамике развития. 1935. Т.10. С.213-229.

107. Самохвалова Г.В. Влияние рентгеновских лучей на рыб// Виол, журн.1938. Т. 7. С.1023-1034.

108. Свердлов А.Г. Опосредованное действие ионизирующего облучения. М. Атомиздат.1968.

109. Селюков А. Г. Ранний гаметогенез пеляди Со^опиэ ре1ей (Сше-11п)// Вестн. ЛГУ. 1985.N 17. С.26-32.

110. Селюков А.Г. Оогенез и половые циклы пеляди Coregonus ре1еб (ОтеПп) озера Ендырь (бассейн Оби)// Вопр. ихтиол. 1986. Т.26(2). С.294-302.

111. Семенов В.В. Особенности вителлогенеза у морских сельдей и сиговых рыб// Автореф. канд. дисс. М.1983. 21 с.

112. Семенов В.В., Федоров К.Е., Ахундов М.М. Ультраструктурный анализ закладки и половой дифференцировки гонад у стерляди и ленского осетра// Проблемы надежности функционирования репродуктивной системы у рыб. Тр. БиНИИ. 1997. Т. 44. С.7-17.

113. Семенова-Тян-Шанская А.Г. Первичные половые клетки зародышей человека в период миграции к зачаткам гонад// Арх. анат. гистол. эмбриол. 1969. Т.56. N 6. С. 3-8.- 266

114. Семенова-Тян-Шанская А.Г., Кнорре А.Г. Половой зачаток (го-нобласт). Его происхождение и эволюция// Итоги науки и техники. Морфология человека и животных. Антропология. 1980. Т.9. С. 9-32. с.

115. Светлов П. Г. Физиология (механика) развития. J1. 1978. 279 с.

116. Смирнов Е.В. Взаимосвязь размеров тела и уровня развития яичников у сеголеток карпа, полученных в разные сроки одного вегетационного сезона// Сб.научн. тр. ГосНИОРХ. 1982а. Вып 178. С.121-135.

117. Смирнов Е.В. Возрастные изменения соотношения между размерами тела и уровнем развития яичников у самок карпа и их хозяйственное значение// Сб. научн. тр. ГосНИОРХ. 19826. Вып.187. С. 108-117.

118. Смирнов Е.В. Созревание разноразмерных самок карпа в условиях садкового содержания на Черепетском водоеме охладителе// Сб. научн. тр, ГосНИОРХ. 1982в. Вып.191. С. 60-66.

119. Строганов Н.С.,Телитченко М.М. Хроническое влияние малых доз урана-238 на гонады уклеек// Бюл. МОИП. 1958. Т. 63.Вып.4. С.164.

120. Строганов Н.С. Экологическая физиология рыб. М. Изд-во МГУ.1962. 443 с.

121. Тарусов Б.Н. Первичные процессы лучевого поражения М. Ато-миздат.1962.

122. Тимофеев-РессовскийЛ1.-В., Иванов В. И., Корогодин В. И. Применение принципа попадания в радиобиологии. М. Атомиздат.1968.

123. Травкина Г.Л. Влияние гонадотропных и половых гормонов на динамику развития половых клеток при переходе самок ерша Acerina- 267 cernua L. в нерестное состояние. Автореф. канд. дис. J1.1975. 23с.

124. Турдаков А.Ф. Происхождение и миграция первичных половых клеток у рыб// Изв. АН Киргизской ССР.1969. 4. С.61-67.

125. Тыонг Фам Мань Исследование плодовитости и роста Tilapia mossambica Peters после воздействия лучами Рентгена в малых дозах/ Автореф. дисс. .канд. биол. наук.1970.Л.28 с.

126. Ушаков Б.П. Анализ теплоустойчивости клеток и белков пойки-лотермных животных в связи с проблемой вида. Автореф. дисс. докт. биол. наук. Л. 1964. 80 с.

127. Фалин Л.И. Развитие половых желез и происхождение половых клеток в эмбриогенезе человека// Арх. анат. гистол. эмбриол. 1968. Т. 54. N 2. С. 3-29.

128. Федоров К.Е. Гистофизиологический анализ развития гипофиза тиляпии в раннем онтогенезе в норме и в пострадиационный период// Радиация и проблемы размножения и роста рыб.1978. С.37-52. Л.208 с.

129. Феклов Ю.А. Эколого-гистофизиологический анализ оогенеза пеляди// В сб.: Проблемы надежности функционирования репродуктивной системы у рыб. 1997. Труды БиНИИ. Вып.44. С.39=49. .

130. Фроленко Г.И. Эмбриональное развитие осенней кеты и горбуши в заводских условиях// Изв. ТИНРО.1959. Т.47. С.100-110.

131. Хочачка П., Сомеро Дж. Стратегия биохимической адаптации. М., Мир.1977. 398 с.

132. Хуг 0., Келлер А. Стохастическая радиобиология. М. Атомиз-дат.1969.- 268

133. Черфас Н.Б. Радиационное поражение гонад карпа// Вопр. ихтиол. 1962. Т.2. Вып.1. С.104-115.

134. Чистова М.Н. Функциональные механизмы формирования плодовитости у тиляпии, Tilapia mossambica Peters. Автореф. канд. дисс. 1976. Л. 18с.

135. Чмилевский Д.А. Синтез ДНК в раннем оогенезе ерша// Цитология. 1970. Т.12. N5. С.676-678.

136. Чмилевский Д.А. Синтез РНК в оогенезе ерша// Материалы 13 конф. студентов и аспирантов морфологических кафедр г.Ленинграда. 1970. С. 74.

137. Чмилевский Д.А. Микроскопическое изучение комплекса Гольджи в ходе оогенеза пескаря (Gobio gobio cynocephalus Dybowski)// Ученые записки ДВГУ. 1971. Т.ХУ (3). С.67-70.

138. Чмилевский Д.А. Синтез РНК и развитие ядрышкового аппарата в оогенезе ерша// Цитология.1971. Т.13. С.1233-1241.

139. Чмилевский Д.А. Особенности синтеза белков и полисахаридов в развивающихся ооцитах ерша// Цитология. 1972. Т.14. С.277-283.

140. Чмилевский Д.А. Влияние лучей Рентгена на оогенез тиляпии (Tilapia mossambica Peters).1.Облучение личинок в возрасте 6 суток// Радиация и проблемы размножения и роста рыб. 1978. л. С.21-36. с.

141. Чмилевский Д.А. Влияние рентгеновых лучей на оогенез тиляпии- 269

142. Oreochromis mossambicus Peters). 2.Облучение личинок в возрасте 15 суток//Онтогенез.1982. Т.13.4. С.441-445.

143. Чмилевский Д.А. Влияние рентгеновых лучей на оогенез тиляпии (Oreochromis mossambicus Peters). 3. Облучение личинок в возрасте 20 суток// Онтогенез. 1985. Т.19.4. С.418-420.

144. Чмилевский Д.А. Влияние рентгеновых лучей на оогенез тиляпии (Oreochromis mossambicus Peters). 5. Облучение рыб в возрасте 100 сут // Онтогенез.1998. Т.29.3.С.188-194.

145. Чмилевский Д.А. Влияние пониженной температуры на оогенез тиляпии Oreochromis mossambicus (Peters). 2. Воздействие на рыб в возрасте 22 суток после вылупления// Вопр. ихтиол.1994. Т.34. 5.0.266-272.

146. Чмилевский Д. А. Влияние пониженной температуры на оогенез тиляпии (Oreochromis mossambicus Peters) 3.Воздействие на рыб в возрасте 30 и 60 суток после вылупления// Вопр. ихтиол.1995. Т. 35. 2. С. 266-272.

147. Чмилевский Д.А. Влияние пониженной температуры на оогенез тиляпии (Oreochromis mossambicus Peters). 4.Воздействие на рыб в возрасте 106 суток после вылупления//Вопр.ихтиол.1996. Т.36. N5 С 647-652.

148. Чмилевский Д.А. Влияние экстремальных воздействий на оогенез рыб (итоги и перспективы исследований)// Проблемы надежности функционирования воспроизводительной системы у рыб. 1997. С.49-54 Л. ЛГУ.

149. Чмилевский Д.А. Влияние рентгеновых лучей на рост тиляпий (Oreochromis mossambicus Peters)//Вестник СПбГУ.1997.- 270 1. Сер. 3. Вып. 2. С.24-36.

150. Чмилевский Д.А. Влияние пониженной температуры на рост тиля-пиЙ//Вопр.ихтиол.1998.Т.38.N1.С.92-99.

151. Чмилевский Д.А. Влияние повышенной температуры на оогенез тиляпии при воздействии на его различные периоды и фазы// Вопр. ихтиол. 1998. Т. 38.N5. С. 676-683.

152. Чмилевский Д.А. Влияние повышенной температуры на рост ти-ляпий//Вопр. ихтиол. 1999.T.39.N2. С. 548-553.

153. Чмилевский Д.А., Райкова Е.В. Включение ЗН-тимидина в ооциты ранней профазы мейоза стерляди// Цитология. 1976. Т.18. N 6. С.689-692.

154. Чмилевский Д.А., Ивойлов А. А. Влияние облучения на ранний гаметогенез у тиляпии// Цитология. 1978. Т.20. N11. С. 1264-1265.

155. Чмилевский Д.А., Иосифова Т.Е. Развитие половых желез в раннем онтогенезе тиляпии// Вопросы раннего онтогенеза рыб. Киев: Наук, думка.1978. С.89-90.

156. Чмилевский Д.А., Захарова Н.И. Развитие половых желез радужной форели Salmo gairdneri в пострадиационный период. 11. Облучение рыб в возрасте 5,5 месяца после вылупления// Сб. научн. тр. Гос.НИИ. озерн. и реч. рыб. х-ва.1987. Вып.259. С.30-39.

157. Чмилевский Д.А., Иосифова Т.Е. Морфология и динамика числа половых клеток в раннем онтогенезе мозамбикской тиляпии// Цитология 1999. Т.41. N2. С.134-139.

158. Чмилевский Д.А., Мельникова И. В. Влияние рентгеновых лучей на оогенез тиляпии (Oreochromis mossambicus Peters).4.Облучение рыб в возрасте 30 и 60 суток//0нтогенез. 1988. Т.19.2. С.157-164.- 271

159. Чмилевский Д.А.Лаврова Т.В. Влияние пониженной температуры на оогенез тиляпии Oreochromis mossambicus ( Peters)//Вопр. ихтиол. Т.31.Вып. 1. С.76-78.

160. Чмилевский Д.А.,Ивойлов А.А.Опыт радиационного подавления развития гонад у самок мозамбикской тиляпии Oreochromis mossambicus с целью стимуляции их роста//Вопр. ихтиол. 1993. Т.33.N5. С.732-735.

161. Чмилевский Д.А., Васьков А.А. Влияние различных доз рентгеновского облучения на оогенез тиляпии (Oreochromis mossambicus Peters)// Вестн. СПбГУ.1994. Вып.4(24). С. 41-49.

162. Чмилевский Д.А., Каменева Т.О. Оогенез мозамбикской тиляпии. 1.0огонии и ооциты ранней профазы мейоза// Цитология. 20001 14: N9. С. 8^6-902. '

163. Чмилевский Д.А., Каменева Т.О. Оогенез мозамбикской тиляпии. 2. Синтез РНК и развитие ядрышкового аппарата// Цитология 2000, в печати.

164. Шеханова И. А. Радиоэкология рыб. М. Легкая и пищевая промышленность. 1983. 208 с.

165. Широкова М.Я. Гаметогенез и структура нерестовой популяции балтийской трески (Gadus morhus callarles L.) Автореф. канд. дисс. Калининград. 1971. 21 с.

166. Штерман Л.Я. Осмотическое давление крови у сеголеток карпа во время зимовки// Научн. тех. бюл. ГосНИИ озер, и реч. рыб. хоз-ва. 1960. С. 38-40.

167. Шмальгаузен И.И. Определение основных понятий и методика исследования роста// Рост животных. М.-Л.1935.367 с.

168. Ярмоненко С.П. Радиобиология человека и животных. М.Высшая школа.1977. 368 с.

169. Allanson B.R., Bok A., van Wyk N. I. The influence of exposure to low temperaturejxi Tilapia mossambica Peters (Cichlidae).i 7 íid'FiBljl V* P .}•!-: ^- 272

170. Angelier N. Moreau N., Da E.A., Lautredou N. F. Coldinduced changes in amphibian oocytes// Exp. Cell. Res. 1989. V.183. P.508-513.

171. Arndt E. Über die Rindenvacuolen der Teleosteeroocyten// Zeit. Zellforsch. 1960a. V.51. P.209-224.

172. Arndt E. Die Aufgaben des Kerns whrend der Oogenese der Te-leosteer// Zeit. Zellforsch. 1960b. V.51. P.356-378.

173. Aronson L. Factors influencing the spawning frequency in the female cichlid fish Tilapia macrocephala// Amer. Mus. Novität. 1951. N 1484. P. 1-26.

174. Azevedo C., Coimbra A. Evolution of nucleoli in the course of oogenesis in a viviparous teleost (Xiphophorus helleri)// Biologie Cellulaire.1980. V.38. N1. P.43-48.

175. Bakken A., McClanahan M. Patterns of RNA synthesis in early meiotic prophase oocytes from fetal mouse ovaries// Chromosoma. 1978. V.67. P.21-40.

176. Beams H., Kessel R. Oocyte structure and early vitellogene-sis in the trout, Salmo gairdneri// Amer. Journ. Anatomy. 1973. V. 136. P.

177. Belsare D.K. Changes in gonad and thyroid gland after hypo-hysectomy In Ophiocephalus punctatus Bloch// J.Exp. Zool.1965.- 273 1. V.158. P.105-122.

178. Bird A., Birnstiel M. The relationship between protein synthesis and ribosomal DNA amplihication in Xenopus laevis// Bioc-him. Biophys. Acta. 1973. V.247. P.157-163.

179. Blackler A.W. Transfer of primordial germ-cells between two subspecies of Xenopus laevis// J. Embryol. Exp.Morphol. 1962. V. 10. P. 641-651.

180. Bogdanov Yu., Antropova E. Delayed termination of histone doubling after premeiotic DNA synthesis in Triturus vulgaris male meiosis// Chromososma. 1971. V.35. P.353-373.

181. Bohi U. Beitrage zur Entwichlungsgeschichte der Leibeshohle und der Genitalanlage bei den Salmoniden// Gegenbaurs Morphologisches Jb.1903-1904. Bd.32. N 1-4. S.505-586.

182. Bounoure L. L, origine des cellules reproductrices et le Probleme de la lignee germinal. Gauthiers-Villars. Paris.271 p.

183. Blaylock B.G., Frank M.L. Effect of chronic low-level irrad-tation on Gambusia affinis// Radiation effects on Aquatic organisms. Tokyo.1980. P.105-117.

184. Brown L.A., Richards R.H. Surgical gonadectomy of fish: a technique for veterinary surgeons// Veterinary Ree. 1979. V.104. P.1-215.

185. Browne C., Wiley S., Dumont J. Oocyte-follicle gap-janctions in Xenopus laevis and the effect of gonadotropin on their permeability// Science. 1979. V.203(4376) P.182-183.

186. Brummett A., Dumont J. Intracellular transport of vitellogenin in Xenopus oocytes: an autoradiographic study// Develop, bi- 274 ol. V.60. P.482-486.

187. Brusle S. Etude ultrastructurale des cellules germlnales primordiales et de leur différenciation chez Mugil cephalus// Bull. Ass. Anatom. 1980. V. 64. P.207-217.

188. Brusle S. Fine structure of early previtellogenic oocytes in Mugil (Lisa) auratus Risso, 1810 (Teleostei, Mugilidae)// Cell Tiss. Res.1980. V.207. P.123-134.

189. Chiquoine A.D. The identification, origin and migration of the primordial germ cells in the mouse embryo// Anat. Rec. 1954. V. 118. P.135-140.

190. Chouinard L.A. Sites of formation of the extra nucleoli during early oocyte growth in the freshwater teleost Salvelinus fontinalis Mitchell// Canad. J.Zool. 1963. V.41. P. 997-1010.

191. Claud J.G.Strategies for introducing foreign DNA into the germ line of fish// J. Reprod. Fert. Suppl.1990. V.41. P.107-116.

192. Coggins L., Gall G. The timing of meiosis and DNA synthesis during early oogenesis in the toad Xenopus laevis// J. Cell Biol. V. 52. P. 569-576.

193. Denis H., Wegnez M. Biochemical research on oogenesis. Oocytes and liver cells in the teleost fish Tinea tinea contain different kinds of 5S RNA// Develop. Biol.1977. V.59. P.228-236.

194. Donaldson E.M., Hunter G.A. Sex control in fish with particular refernce to salmonids// Can. J. Fish. Aquat. Sci.1982. V. 39. P. 99-110.

195. Droller N., Roth T. An electron microscope study of yolk formation in Lebistes reticulatus gyppi// J. Cell Biol.1966.- 275 1. V. 28. P. 209-232.

196. Dziewiatkowski D. Autoradiographic studies with 35S-sulfa-te// Intern, rev. cytol. V.7. P.159-191.

197. Eddy E.M. Fine structural observation on the form and distribution of nuage in the germ cells of the rat// Anat. Reac. 1974. V. 172. P.731-758.

198. Egami N. Radiation effects on aquatic organisms. Japan Scientific Societies Press, Tokyo, University Park Press, Baltimore. 1980. 292 pp.

199. Egami N., Etoh H. Effect of X-irradiation during embryonic stage on life span in the fish, Oryzias latipes// Exp. Geront. 1973. V.8. P. 219-222.

200. Egami N., Hama A. Dose-rate effects on survival of^-irradiated embryos of the fish, Oryzias latipes// Radiat. Res. 1975. V.16. N1. P.71.

201. Egami N., Hyodo-Taguchi Y. Hermaphroditic gonads produced in Oryzias latipes by X-irradiation during embryonic stages// Copea. 1969. N1. P.195-196.

202. Fankhauser G., Humphrey R. The relation between number of nucleoli and number of chromosome sets in animal cells// Proc. Nat. Acad. Sci. USA. 1943. V.29. P. 203-224.

203. Fujimoto T., Myayama J., Fujita M. The origin, migration and fine morphology of human primordial germ cells// Anat. Rec. 1977. V. 188. P.315-330.

204. Fujimoto T., Ninomiya T., Ukeshima A. Observations of the- 276 primordial germ cells in blood samples from the chick embryo// Develop. Biol. 1976a. V.49. P. 278-282.

205. Fujimoto T., Ukeshima A., Kiyofuji R. The origin, migration and morphology of the primordial germ cells in the chick embryo// Anat. Rec. 1976b. V.185. P.139-154.

206. Gamo H. On the origin of germ cells and formation of gonad primordia on the medaka, Oryzias latipes// Jap. J. Zool. 1961. V.13. P.101-115.

207. Gevers P., Dulos J., Boogart J., Timmermans L.A. A study on cell lineage, especially germ cell line in embryos of the teleost fish, Barbus conchonius// Roux, s Arch. Develop. Biol. 1992 a. Vol.201. P. 275-283.

208. Gevers P., Dulos J., Schipper H., Timmermans L. Origin of primordial germ cells as characterized by presence of nuage in embryos of the teleost fish Barbus conchonius// Eur. J. Morphol. 1992b. Vol.30. P.195-204.

209. Glawson D.C., Domm L.V. The glicogen content of the primordial germ cells in the white leghorn chick embryo// Anat. Rec. 1963. V.145. P.218-219.

210. Gopal Dutt N. H. The yolk-nucleus in the oocytes of Anabas scandens (Teleostei)// Quart. J.Micr. Sci. 1964. V.105(3). P.349-352.

211. Guraya S. The Cell and Molecular Biology of Fish Oogenesis.(986 221 p.

212. Hama A., Egami N., Arai R., Shiotsuki K. Note of chromosome abnormalities found in irradiated Oryzias latioes// J. Fac.Sci.- 277

213. University of Tokyo.1976. Sec.4. V.13. P.405-408.

214. Hamaguchi S. Changes in radiation responses of oogenesis in the embryo and fry of the fish Oryzias latipes// Intern. J. Radiat. Biol. 1976. V.29. P.565-570.

215. Hamaguchi S. Differential radiosensetivity of germ cells according to their developmental stages in the teleost, Oryzias latipes// Radiation effects on aquatic organisms. Baltimore; Tokyo: Univ. Park Press; Jap. Sci. Soc. Press. 1980. P. 119-128.

216. Hecht N. DNA polymerase activity during meiosis// Exptl. Cell Res. 1971. V.70. P.248-250.

217. Hotta Y., Ito M., Stern H. Synthesis of DNA during meiosis// Proc.Nat. Acad. Sci. USA. 1966. V.66. P.1184-1191.

218. Hotta Y., Stern H. DNA-binding protein in meiotic cells of Lilium// Develop. Biol. 1971. V.26. P.87-99.

219. Howell S., Stern H. The appearance of DNA breakage and repair activities in the synchronous meiotic cycle of LiIlium// J.Mol. Biol. 1971. V. 55. P. 357-378.

220. Sci. 1988. V.5. P. 353-373.

221. Jana B.B., Basu Mala. X-rays induced changes in growth of Mozambique tilapia// Prog. Fish. Cult.1995. V.57. P.44-51.

222. Johnston P. The embryonic history of the germ cells of the large-mouth black bass, Micropterus salmoides (Lacepede)// J.Morphol. 1951. V.88. N3. P.471-542.

223. Jonson J.M. A study of nucleolar vacuoles in cultured tobacco cells using radiography, actinomycin D and electron microscopy// J. Cell Bioi'^"v. 43. P. 197-206.

224. Kagawa H., Gen K. and Okuzawa K. Proliferation of ovarian follicle cells at different developmental stages of oocytes in red seabream, Pagrus major// In: Reproductive physiology of Fish. Bergen. 2000. P.273-280.

225. Kalt M. Ultrastructural observations on the germ line of Xe-nopus laevis// Z.Zellforsh. 1978. Bd.138. P. 41-62.

226. Kalt M., Gall J. Development and premeiotic ribosomal DNA amplification in Xenopus laevis// J. Cell Biol. 1974. V.62. P.460-472.

227. Kellokumpu-Lehtinen Pirkko-Liisa, Kari-Ove-Soderartrom. Occurence of nuage in fetal human germ cells// Cell and Tissue Res. 1978. V.194. N1. P.171-177.

228. Ken-Ichi-Ijiri, Egami N. Mitotic activity of germ cells during normal development of Xenopus laevis tadpoles// J. Embryol. Exp. Morphol. 1974. V.34. P.687-694.

229. Kindshi G.A. Effect of intermittent feeding on growth of rainbow trout, Salmo gairdneri Richardson// Aquaculture and Fishe- 279 ries Management.1988. V.19. P.213-215.

230. Kjesbu a, Kryvi H. Oogenesis in cod, Gadus morhua L., studied by light and electron microscopy// J.Fish.Biol. 1989. V.34. P.735-746.

231. Korfsmeier K.H. Zur genese der DotteJtsystem in der oocyte von Brachydanio rerio. Autoradiographishe Untersuchungen// Zeit. Zellforsch. 1966. V.71. P.283-296.

232. Kraft A., Peters H. Vergleichende Studien über die Oogenese in der Gattung Tilapia (Cichlidae, Teleostei)// Zeit. Zellforsh. 1963. V.61. N3. P. 479-486.

233. Kuwana T. Migration of avian primordial germ cells toward the gonadal anlage// Develop. Growth. Differ. 1993. V.35. P.237-243.

234. Kyriazakis I., Emmans G.S. The growth of mammals following a period of nutritional limitation// J. Theor. Biol. 1992. V.156. P.485-498.

235. Mairy von Frenckell A. Synthese du RNA au cours de 1, Oogenese// Afch. Intern. Physiol. Biochem. 1970. V.78. P.393-397.

236. Mairy M., Denis H. Synthese et accumulation du RNA pendant 1,oogenese de Xenopus laevis// Arch. Intern. Physiol. Biochem. 1970. V.78. P. 599-601.

237. Mahon E., Hoar W. The early development of chum salmon On-corhynchus keta (Walb.).// J. Morphol. 1956. V.98. P. 1-48.

238. Marechal J. Über die morphologische Entwickelung der Chromosomen im Teleostierei// Anat.Anz.1905. P.641-652.

239. Mazabraud A., Wegnez M., Denis H. Biochemical research on oogenesis. RNA accumalation in the oocytes of the Teleosts// Develop. Biol. V.44. P.326-332.

240. McKay D.G., Hertig A.T., Adams E.C., Danzier S. Histochema-cal observations on the germ cells of human embryos// Anat. Rec. 1953. V.117. P.201-219.

241. Miller O.L., Carrier R.F., von Borstel R. C. In situ and in vitro breakage of lumpbrush chromosomes by X-irradiation// Nature. 1965. V.206. P.905-908.

242. Moore G. The germ cells in the trout (Salmo irideus G.)// Trans. Amer. Micr. Soc. 1937. V.56. P.105-112.

243. Moses M. Synaptinemal complex. Annual. Rev. Genet. 1968.- 281 1. V. 2. P. 363-442.

244. Nashimune Y., Okabe M. Mammalian gametogenesis: growth, differentiation and maturation of gem cells// Develop. Growth. Differ. 1993. V.35(5). P.479-486.

245. Nedelea N. Steopoe I. Origine, caracteres, et comportement des gonocytes primaires pendant 1, embryogenese et chez les Jeunes larves de Cyprinus carpio L. (Teleosteens)// Anat. Anz. 1970. V.127. P.338-346.

246. Nayyar R.P. The yolk nucleus of fish oocytes// Quart. J.micr.sci. 1964. V. 105 (3). P. 353-358.

247. Nelson S.,Anderson A.,Momeni N.,Yeo R. Attempted sterilization of sexually undifferentiated fry of Tilapia zilli by Cobalt 60 gamma-rays irradiation// Progr. Fish. Cult. 1976. V.38. P.131-134.

248. Onozato H. Diploidization of gynogenetically activated sal-monid eggs using hydrostatic pressure// Aquaculture. 1984. V.43. P.91-97.

249. Osanai K. On the ovarian eggs of the loach, Lefua echigonia, with special reference to the formation of the cortical alveoli// Sci. repts Tohoku Univ. 1956. Ser.4. V.22. N4. P. 181-188.

250. Permentier H., Timmermans L. The differentiation of germ cells and gonads during development of carp (Cyprinus carpio L.). A study with active sperm monoclonal antibodies// J. Embryo1. Exp. Morphol. 1985. V. 90. P.13-32.

251. Peters H., Levy E., Crone M. Oogenesis in rabbit// J. Ex- 282 per. Zool. 1965. V.2. P. 169-180.

252. Peterson N. Leblond C. Synthesis of complex carbohydrates in the Goldgi region as shown radioautography after injection of labeled glucose// J. Cell. Biol. 1964. V.21. P.143-148.

253. Raikova E.V. Evolution of nucleolar apparatus during oogenesis in Acipenseridae// J.Embryo1. Exp. Morph. 1974. V.32. N1. P.195-215.

254. Rahman A., Maclean N. Growth enhanced transgenic tilapia (Oreochromis niloticus)// In; Proceedings from the Forth International Symposium on Tilapia in Aquaculture.1997. Orlando, Florida. P.97-105.

255. Richards A., Tompson J. The migration of the primary sex-cells of Fundulus heteroclipus// Biol. Bull. 1921. V. 40. P.325-348.

256. Satoh N. An ultrastructural study of sex differentiation in the teleost Oryzias latipes// J. Embryol. Exp. Morphol. 1974. V.32. P. 195-215.

257. Satoh N., Egami N. Sex differentiation of germ cells in the teleost, Oryzias latipes, during normal embryonic development// J. Embryol. Exp. Morphol. 1972. V.28. P.385-395.

258. Selman K., Wallace R., Sarka A. and Xiaoping Q. Stages of oocyte development in the Zebrafish, Brachydanio rerio// J. of Morphology. 1993. V.218. P.203-224.

259. Scharrer B., Wurzelman S. Ultrastructural study on nucle-ar-cytoplasmic relationships in oocytes of the african lungfish, Protopterus aethiopicus. 1.Nucleo-cytoplasmic pathways// Ze- 283 it.Zellforsch. 1969. V.96. P.325-343.

260. Schoefl G. The effect of actinomycin on the fine structure of the nucleolus// J.Ultrastruct Res. 1964. V.10. P. 224-243.

261. Shafland P.L., Pestrak J.M. Lower lethal temperatures for fourteen non-native fishes in Florida// Env. Fish. Biol. 1982. V.7. P.149-156.

262. Snow M. The effect of actinomycin D in vivo upon peripheral nucleoli and other nuclear organelles in oocytes of Triturus cristatus// J. Cell.Sci. 1972. V.10. P.833-855.

263. Solberg A.N. The susceptibility of germ cells of Oryzias latipes to X-radiation and recovery after treatment// J.Exptl. Zo-ol. 1938.78. 4. P. 417-469.

264. Stanley J. Manipulation of development events to produce mo-nosex and sterile fish. Rapp. P.-V. Cons. Int. Explor. Mer. V.173. P.485-491.

265. Steopoe I., Ionescu-Varo M., Vlad M. Presence d,une calotte nucleohlstonique extrachromosomoque dans les noyaux des oocytes des teleosteens et des acipenserides// Acta Histochem. 1970. V.38. P.311-317.

266. Stern H., Hotta Y. Biochemical control of meiosis// Ann.rev. genet. 1973. V.7. P. 37-66.

267. Sutassurya L. A., Nieuwkoop P.D. The induction of the primordial germ cells in the urodeles// W. Roux,Arch. Entwicklung. smech. Organism. 1974. Bd.175. S.199-200.

268. Taranger G., Hansen T. Ovulation and egg survival following exposure of Atlantic salmon, Salmo salar L. broodstock to diffe- 284 rent water temperatures// Aquacult. Fish. Manag. 1993. V.24. N2. P.151-156.

269. Tashiro F. Effects of irradiation Co gamma-rays on the maturation of rainbow trout// Bull. Jap. Soc. Fish. 1972. V.38. P.793-797.

270. Timmermans L. Origin and differentiation of primordial germ cells in vertebrates, especially fishes// Nether. J. Zool. 1996. V.46. P.147-162.

271. Timmermans L., Taverne N. Segregation of primordial germ cells: their numbers and fate during early development of Barbus conchonius (Cyprinidae, Teleostei) as indicated 3H-thymidine incorporation// J.Morphol. 1989. V.202. P.225-237.

272. Thomas Ch. Ribonucleic acids and ribonucleoproteins from small oocytes of Xenopus laevis// Biochim. biophys. acta. 1970. V.224. P.99-114.

273. Tosoriero J. The distribution and fate of 3H-glucose and 3H-galactose in oocytes of Ozyzias latipes. Formation of the cortical alveoli// Cell Tissue Res. 1990. V.209. P.117-129.

274. Tyler C.R., Santos E.M., Prat F. Unscrambling the egg-cellular biochemical molecular and endocrine advances in oogenesis// In: Reproductive Physiology of Fish, Bergen 2000. P.273-280.- 285

275. Ukeshima A., Fujimoto T. Ultrastructure of primordial germ cells in the early chick embryo// Ultrastructure of reproduction. The Hague. 1984. 273 p.

276. Ulrich E. Etude des ultrastructures on cours de l.ovogenese d,un poisson teleosteen le danio, Brachydanio rerio// Journ. de microscopie. 1969. V.8. P.447-478.

277. Valenti R.I. Induced polyploidy in Tilapia aurea (Staindach-ner) by means temperature shock treatment// J. Fish. Biol. V.7. P.519-528.

278. Van Gansen P. Incorporation of 3H-uridine and 3H-thymidine during the phase of nuclear multiplication in Xenopus oogenesis: a high-resolution autoradiographic study// J. Cell Sci.1976. V. 14. P. 85-103.

279. Vincent W., Halvorson H., Chen H.and Shin D. Ribosomal RNA cistron in single and multinucleolate oocytes// Biol. Bull. 1968. V.135. P.141-148.

280. Vlad M. Nucleolar DNA in oocytes of Salmo irideus (Gibbons)// Cell and Tissue Research. 1976. V.167. P.407-424.

281. Wallace R., Selman K. Cellular and dynamic aspects of oocyte growth in teleost// Amer. Zool. 1981. V. 21. N2. P.325-342.

282. Welander A. Some effects of X-irradiation on different embryonic stages of the trout (Salmo gairdneri)// Growth.1954. V.18. N4. P.227-255.

283. Welander A.,Donaldson L., Foster R., Bohham K., Seymour A. The effects of roentgen on the embryos and larvae of the Chinook salmon// Growth.1948. V.12. P.203-242.- 286

284. Winkoop A., Booms G.H., Dulos G., Timmermans L. Ultrastructural changes in primordial germ cells during early gonadal development of common carp (Cyprinus carpio L., Teleostei)// Cell Tissue Res. 1992. V.267. P.337-346.

285. Witthames P.R., Greenwood L., Lyons B. Ovarian atresia in Solea solea (L). In: Reproductive Physiology of Fish. Bergen. 2000. P. 106.

286. Wylie C.C., Bancroft M., Heasman J. The formation of the gonadal ridge in Xenopus laevis// J. Embryo1. Exp. Morphol. 1976. V. 35. P. 139-148.

287. Wylie C.C., Roos T.B. The formation of the gonadal ridge in Xenopus laevis. 111. The behavior of isolated primordial germ cells in vitro.// J. Embryol. Exp. Morphol. 1976. V.35. P.149-157.

288. Yamazaki F. On the multiplication of follicular cells in the oocytes on the gold fish Carassius auratus// Bull. Fac. Fish. Hokkaido univ.1963. V.14. N1-2. P.41-45.

289. Yamomoto K. Studies the formation of fish eggs. Y. The chemical nature and the origin of the yolk vesicle in the oocytes of the herring, Clupea pallasii// Annot. zool. Jap.1955a. V.28. N3. P.158-162.

290. Yamomoto K. Studies on the formation of fish eggs. Yl. The chemacal nature and the origin of the yolk vesicle in the oocyte of the smelt, Hypomesus japonicus// Annot. zool. jap. 1955b V.28. N4. P.233-237.

291. Yamomoto K. Studies on the formation of fish eggs. 111. Lo- 287 calization of polysaccharides in oocytes of Liopsetta obscura// J.Fac. Sci. Hokkaido univ. 1956b. Ser.6. V. 12. N3. P. 391-399.

292. Yamomoto K. Studies on the formation of fish eggs. 1Y. The chemical nature and the origin of the yolk vesicles in the oocyte of the flounder, Liopsetta obscura// Jap. J.Zool. 1956c. V. 11. N5. P.567-577.

293. Yamomoto K. Studies on the formation of fish eggs. Yll. The fate of the yolk vesicle in the oocytes of the herring, Clupea pallasii, during vitellogenesis// Annot. zool. Jap. 1956d. V.29. N2. P.91-96.

294. Yamomoto K. Studies on the formation of fish eggs. Ylll. The fate of the yolk vesicle in the oocytes of the smelt, Hypomesus japonicus, during vitellogenenis// Embryologia. 1956e.V.3. N2. P.131-138.

295. Yamomoto K. Studies on the formation of fish eggs. IX. The fate of the yolk vesicle in the oocytes of the flounder, Liopsetta obscura, during vitellogenesis// Bull. Fac. Fish. Hokkaido Univ. 1956f. V.7. N3. P.208-217.

296. Yamomoto K. Studies the formation of fish eggs. 11. Changes in the nucleus oocyte of Liopsetta obscura with special reference to the activity of the nucleolus// J. Fac. Sci. Hokkaido Univ. 1956. Ser. Yl. V.12. P.375-389.

297. Yamomoto K., Onozato H. Electron microscopic study on the goldfish oocytes during the first growth phase// Memoires Fac. Fish. Hokkaido Univ. 1965. V.13. P.79-106.

298. Yamomoto M. An electron microscopic study of radiation dama1. П Г V . О Ж Е H И Е- 291

299. СХШ постановки основных опытов на радужной Форелирис.4,рис.б.