Ранняя диагностика инфекционных процессов в сердце и сосудах методом ПЭТ/КТ с 18F-фтордезоксиглюкозой тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 00.00.00, доктор наук Пурсанова Диана Манолисовна

• Пурсанова Диана Манолисовна
• доктор наук
• 2021

Оглавление диссертации доктор наук Пурсанова Диана Манолисовна

Введение

ГЛАВА I. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

1.1. Введение

1.2. Эпидемиология

1.3. Этиология и патогенез

1.4. Диагностические критерии

1.5. Клинико-лабораторные данные

1.6. Методы диагностической визуализации

1.6.1. Эхокардиографическое исследование

1.6.2. Компьютерная томография

1.6.3. Магнитно-резонансная томография

1.6.4. Радионуклидная диагностика

1.7. ПЭТ/КТ с 18Б-ФДГ в диагностике инфекционных процессов в сердце и сосудах

1.7.1. ПЭТ/КТ с 18Е-ФДГ в диагностике инфекционного эндокардита протезированного клапана

1.7.2. ПЭТ/КТ с 18Е-ФДГ в диагностике инфекционного эндокардита нативного клапана

1.7.3. ПЭТ/КТ с 18Е-ФДГ в диагностике инфекции имплантированных электронных внутрисердечных устройств

1.7.4. Результаты ПЭТ/КТ с 18Е-ФДГ в объединенных и смешанных группах больных

1.7.5. Причины получения ложных результатов ПЭТ/КТ с 18Е-ФДГ в диагностике инфекционных процессов в сердце

1.7.6. Особенности интерпретации результатов ПЭТ/КТ с 18Е-ФДГ при подозрении на инфекционный процесс в сердце

1.7.7. ПЭТ/КТ с 18F-ФДГ в диагностике инфекции сосудистых протезов

1.7.8. Возможности ПЭТ/КТ с 18Е-ФДГ в диагностике других очагов воспаления и неопластических процессов

1.7.9.Диагностика других инфекционных процессов в сердце и сосудах по данным ПЭТ/КТ с 18F-ФДГ

ГЛАВА II. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ

2.1. Общая характеристика обследованных больных

2.2. Методика проведения ПЭТ/КТ исследования с 18Б-ФДГ при подозрении на инфекционные процессы в сердце и сосудах

2.3. Методы анализа ПЭТ/КТ изображения

2.4. Статистический анализ

ГЛАВА III. ОСНОВНЫЕ РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЯ

3.1. Методические особенности ПЭТ/КТ с 18Б-ФДГ при подозрении на инфекционные процессы в сердце и сосудах

3.1.1. Оценка степени блокировки физиологического накопления 18F-ФДГ в миокарде

3.1.2. Особенности визуальной оценки результатов ПЭТ/КТ с 18Е-ФДГ при подозрении на инфекционные процессы в сердце и сосудах

3.2. ПЭТ/КТ с 18Б-ФДГ в диагностике инфекционного эндокардита протезированного клапана

3.2.1. Материалы и методы

3.2.2. Результаты

3.2.3. Полуколичественная оценка результатов ПЭТ/КТ в зоне протезированного клапана

3.3. ПЭТ/КТ с 18Б-ФДГ в диагностике инфекционного эндокардита нативного клапана

3.3.1. Материалы и методы

3.3.2. Результаты

3.3.3. Полуколичественная оценка результатов ПЭТ/КТ в зоне нативного клапана

3.4. ПЭТ/КТ с 18Б-ФДГ в диагностике инфекции имплантированных электронных внутрисердечных устройств

3.4.1. Материалы и методы

3.4.2. Результаты

3.4.3. Полуколичественная оценка результатов ПЭТ/КТ в зоне имплантированного электронного внутрисердечного устройства

3.5. ПЭТ/КТ с 18Б-ФДГ в диагностике инфекции сосудистых протезов

3.5.1. Материалы и методы

3.5.2. Результаты

3.5.3. Полуколичественная оценка результатов ПЭТ/КТ в зоне сосудистого протеза

3.6. ПЭТ/КТ с 18Б-ФДГ в диагностике инфекционных процессов в сердце и сосудах в анализируемой группе в целом

3.6.1. Результаты

3.6.2. Оценка информативности ПЭТ/КТ с 18Е-ФДГ в диагностике инфекционных процессов в сердце и сосудах

3.6.3. Анализ факторов, влияющих на точность результатов ПЭТ/КТ с ieF-ФДГ

3.6.4. Анализ подгруппы с дополнительно выполненной высокодозной КТ с внутривенным контрастированием и ЭКГ-синхронизацией

3.6.5. ПЭТ/КТ с 18F-ФДГ в диагностике инфекционного поражения грудины

3.6.6. ПЭТ/КТ с 18F-ФДГ в оценке эффективности консервативного лечения инфекционных процессов в сердце и сосудах

ГЛАВА IV. ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ ИССЛЕДОВАНИЯ

4.1. ПЭТ/КТ с 18Б-ФДГ в диагностике инфекционных процессов в сердце и сосудах

4.2. ПЭТ/КТ с 18Б-ФДГ в диагностике инфекции имплантированных электронных внутрисердечных устройств

4.3. ПЭТ/КТ с 18Б-ФДГ в диагностике инфекционного эндокардита протезированного клапана

4.4. ПЭТ/КТ с 18Б-ФДГ в диагностике инфекции сосудистых протезов

4.5. ПЭТ/КТ с 18Б-ФДГ в диагностике инфекционного эндокардита нативного клапана

4.6. Особенности интерпретации результатов ПЭТ/КТ с 18Б-ФДГ при подозрении на инфекционный процесс в сердце и сосудах

4.6.1. Визуальная оценка

4.6.2. Полуколичественная оценка

4.7. Расширение протокола ПЭТ/КТ с выполнением высокодозной КТ с внутривенным контрастированием и ЭКГ-синхронизацией

4.8. Возможности ПЭТ/КТ с 18Б-ФДГ в диагностике инфекционного поражения грудины

4.9. Причины получения ложных результатов ПЭТ/КТ с ^F-ФДГ в диагностике инфекционных процессов в сердце и сосудах

4.9.1. Физиологическое накопление 18¥-ФДГ в миокарде

4.9.2. Короткий временной интервал между предшествующим хирургическим лечением и выполнением ПЭТ/КТ

4.9.3. Низкая активность воспалительного процесса

4.9.4. Другие причины ложных результатов ПЭТ/КТ с 18Е-ФДГ при диагностике инфекционных процессов в сердце и сосудах

4.10. Возможности ПЭТ/КТ с 18F-ФДГ в диагностике других очагов воспаления и неопластических процессов

4.11. Роль ПЭТ/КТ с 18Б-ФДГ в алгоритме диагностики ИПСС

ВЫВОДЫ

ПРАКТИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ

Список сокращений

Список литературы

ПРИЛОЖЕНИЯ

Приложение

Приложение

Приложение

Приложение

Приложение

Введение

Ранняя диагностика инфекционных процессов в сердце и сосудах (ИПСС) является чрезвычайно актуальной и сложной проблемой современной клинической медицины. Число пациентов с протезированными клапанами (ПК), различными имплантированными электронными внутрисердечными устройствами (ИЭВСУ), такими как электроды электрокардиостимулятора, кардиовертер-дефибриллятора и др., а также сосудистыми протезами (СП) неуклонно растет, что связано с расширением клинических показаний к указанным видам лечения. Частота инфекционных осложнений среди перечисленных категорий больных, несмотря на использование высокотехнологичных хирургических методик в комбинации с адекватной антибактериальной терапией (АБТ), не имеет тенденции к снижению за последние 30 лет [1-4]. Частота инфекционного эндокардита (ИЭ) в Российской Федерации имеет высокие показатели и достигает 46,3 человека на 1 миллион населения в год, при этом треть случаев составляет ИЭ ПК и/или инфекция ИЭВСУ [1, 3]. Инфекция сосудистых протезов (СП) после реконструкции аорты и/или артерий наблюдается у 1-6% пациентов [5, 6]. Летальность при ИПСС достигает 1659% в зависимости от клинической ситуации и выбора лечения [1-3].

Пациенты с ИЭ ПК, диагностированным на ранних стадиях заболевания, с быстрым антибактериальным ответом, небольшими вегетациями и отсутствием выраженной дисфункции протеза являются кандидатами на консервативное лечение. Однако при распространении инфекции на парапротезные ткани, наличии абсцесса корня аорты, рецидивирующей эмболии, даже если пациент является гемодинамически стабильным, одной АБТ недостаточно, и необходимо хирургическое вмешательство [1-3, 7]. Хирургическое лечение ИЭ ПК, по сравнению с

медикаментозной терапией, ассоциировано с более низкими показателями летальности и лучшими показателями выживаемости [2-4, 7].

Лечение инфекции ИЭВСУ также зависит от степени распространенности процесса - вовлечения в процесс ложа, экстра- и интракардиальных отделов электродов. В большинстве случаев требуется полное удаление ИЭВСУ, с последующей длительной АБТ [2, 4, 8, 9]. Однако в ряде случаев, если инфекционный процесс ограничен поверхностными отделами ложа без вовлечения ИЭВСУ, объем хирургического лечения можно ограничить санацией ложа с последующей АБТ без необходимости удаления самого устройства и электродов [2, 4, 8, 10].

Методом лечения инфекции СП также является хирургическое вмешательство и системная АБТ. При этом АБТ без хирургического вмешательства сопровождается высокой летальностью [11].

Таким образом, ранняя и точная диагностика инфекционного процесса, а также оценка его распространенности у больных с подозрением на ИПСС крайне важна и является определяющей в тактике лечения данной категории пациентов [1-4, 7-11].

ИПСС имеют атипичную клиническую картину, в связи с чем постановка диагноза крайне сложна и осуществляется многопрофильной командой специалистов в области кардиологии, кардиоторакальной хирургии, инфекционных заболеваний и диагностической визуализации [2, 12, 13]. В настоящее время диагностика ИПСС в рутинной практике основывается на клинических и анамнестических данных, а также результатах лабораторных и инструментальных исследований [1-3]. Постановка диагноза ИЭ осуществляется с использованием «больших» и «малых» модифицированных критериев Duke [2, 14, 15]. На основании различных сочетаний указанных критериев ставится диагноз «подтвержденного», «возможного» или «исключенного» ИЭ.

Первоначально критерии Duke были разработаны для стандартизации включения пациентов в клинические и эпидемиологические исследования. Впоследствии они оказались удобными и для клинической диагностики ИЭ с достаточно высокими показателями чувствительности и специфичности - порядка 80% [2]. Хорошо известно, что использование критериев Duke имеет высокую чувствительность в диагностике ИЭ нативного клапана, однако у больных с подозрением на ИЭ ПК или ИЭВСУ - их применение ограничено, особенно на ранних этапах заболевания [2]. Общепринятые рекомендации по диагностике больных с инфекцией СП отсутствуют [5, 6].

Основными критериями постановки диагноза ИПСС являются наличие лихорадки неясного генеза, положительные посевы крови и результаты исследований традиционными методами диагностической визуализации - эхокардиографии (ЭхоКГ), трансторакальной (ТТ) и/или чреспищеводной (ЧП), а также компьютерной томографии (КТ) с внутривенным контрастированием и магнитно-резонансной томографии (МРТ) [1-3]. Указанные методы имеют высокую информативность в оценке морфофункциональных изменений в органах и тканях у большинства больных, однако у пациентов с ПК и ИЭВСУ - получение информативных результатов возможно только на стадии выраженных анатомических изменений, которые развиваются на поздних сроках заболевания [16, 17]. Оценку зон интереса также значительно затрудняют артефакты от высокоплотностных клапанов и электродов (особенно при наличии двух и более), а также их колебания [2, 18]. Так, при наличии ПК или ИЭВСУ показатели чувствительности и специфичности в диагностике ИЭ при ТТ и ЧП ЭхоКГ снижаются до 20% и 44-89%, соответственно [2, 18]. Кроме того, ни ЭхоКГ, ни КТ не позволяют оценить состояние экстракардиальных отделов электродов. Таким образом, отрицательные результаты, полученные традиционными методами диагностической

визуализации - ЭхоКГ и КТ с внутривенным контрастированием - не исключают наличия ИПСС.

Бактериемия может встречаться без инфекционного поражения ПК, ИЭВСУ или СП, и, напротив, ИПСС может протекать при стерильных посевах крови, особенно в случае начала АБТ по поводу лихорадки неясного генеза [19]. Даже при тщательном соблюдении всех условий -забора необходимого количества проб и их объема, а также при исключении из анализа пациентов с предшествующей АБТ - у 2-7% больных с ИЭ посевы крови остаются стерильными [2].

Таким образом, во многих случаях диагноз ИПСС остается неподтвержденным [20, 21]. При этом сроки постановки диагноза крайне важны - у большей части больных поздняя постановка диагноза сопряжена с назначением неправильной эмпирической АБТ и несвоевременным хирургическим лечением, что, в свою очередь, приводит к ухудшению прогноза [1-5, 22-25].

Все вышеперечисленное привело к необходимости поиска новых точных методов диагностики ИПСС. В последние годы для визуализации воспалительных процессов стали применять методы радионуклидной диагностики, отличительной особенностью которых является возможность получения функциональных изображений, характеризующих строго определенные физиологические и патофизиологические процессы на клеточном уровне. Наибольший интерес в настоящее время представляют однофотонная эмиссионная компьютерная томография с меченными лейкоцитами и позитронно-эмиссионная томография с 18F-фтордезоксиглюкозой, совмещенная с КТ (ПЭТ/КТ с 18Б-ФДГ). Первый метод основан на визуализации лейкоцитарного инфильтрата и обладает высокой специфичностью, однако имеет целый ряд недостатков. К ним относятся сложности, связанные с необходимостью радиофармакологической обработки крови, значительная продолжительность

исследования (выполняется через 1 ч и 20 ч после внутривенной инъекции меченных клеток), а также невысокое пространственное разрешение используемой диагностической аппаратуры [26, 27].

ПЭТ/КТ с 18F-ФДГ является современным высокоинформативным неинвазивным методом гибридной молекулярной визуализации, позволяющим одновременно оценивать метаболические и структурные изменения в органах и тканях. Наиболее широко ПЭТ/КТ с 18F-ФДГ применяется в онкологии, однако в последние годы метод все чаще используется для диагностики различных воспалительных процессов и оценки эффективности их лечения: активное накопление 18F-ФДГ в фагоцитирующих клетках позволяет с высокой точностью визуализировать очаги воспаления и инфекции [16, 28, 29].

В последние годы в зарубежной литературе появились данные о многообещающих результатах ПЭТ/КТ с 18F-ФДГ для выявления ИПСС у больных после кардиохирургических вмешательств [13, 16, 17, 26]. В России на данный момент исследование ПЭТ/КТ с 18F-ФДГ не включено в диагностический алгоритм ИПСС, и настоящее исследование является пионерским.

Цель и задачи исследования

Целью данного исследования явилось разработать методические основы использования ПЭТ/КТ с 18F-ФДГ в алгоритме комплексного обследования пациентов с подозрением на инфекционные процессы в сердце и сосудах.

Для достижения указанной цели были поставлены следующие задачи: 1. Изучить возможности ПЭТ/КТ с 18F-ФДГ в диагностике инфекционных процессов в сердце и сосудах: инфекционного эндокардита протезированного и нативного клапана, инфекции имплантированных электронных внутрисердечных устройств и сосудистых протезов.

2. Разработать и внедрить в радиологическую практику методику ПЭТ/КТ с 18F-ФДГ при подозрении на инфекционные процессы в сердце и сосудах.

3. Изучить особенности визуальной и полуколичественной оценки результатов ПЭТ/КТ с 18F-ФДГ у пациентов с инфекционными процессами в сердце и сосудах.

4. Изучить факторы, влияющие на получение ложных результатов ПЭТ/КТ с 18Б-ФДГ у пациентов с инфекционными процессами в сердце и сосудах.

5. Изучить возможности ПЭТ/КТ с 18F-ФДГ в диагностике очагов воспаления другой локализации у пациентов с инфекционными процессами в сердце и сосудах.

6. Определить значение результатов ПЭТ/КТ с 18Б-ФДГ в постановке диагноза инфекционных процессов в сердце и сосудах при их включении в диагностические критерии и разработать диагностический алгоритм обследования указанной категории больных.

7. Проанализировать значение результатов ПЭТ/КТ с 18F-ФДГ для оптимизации тактики лечения больных с подозрением на инфекционные процессы в сердце и сосудах.

Научная новизна

Ранняя диагностика инфекционных процессов в сердце и сосудах является чрезвычайно актуальной проблемой для кардиологов, кардиохирургов и лучевых диагностов во всем мире. Представленное исследование по изучению информативности ПЭТ/КТ с 18F-ФДГ в диагностике инфекционных процессов в сердце и сосудах в России является пионерским.

В настоящей работе впервые в России оценены диагностические возможности ПЭТ/КТ с 18Б-ФДГ у больных с подозрением на ИПСС

после кардиохирургических вмешательств - протезирования клапанов сердца, имплантации ИЭВСУ, а также протезирования аорты и/или артерий. Впервые на большом клиническом материале (в анализ включены результаты 101 исследования) подтверждены высокие показатели чувствительности и точности данного метода.

Впервые доказано, что, в отличие от других методов диагностической визуализации, ПЭТ/КТ с 18F-ФДГ в режиме обследования «всего тела» позволяет за одно исследование:

- определить точную локализацию воспалительного процесса, а также диагностировать его распространенность и наличие инфекционных осложнений;

- исключить ИПСС при получении данных, свидетельствующих о наличии альтернативного инфекционного или неопластического процесса, объясняющего симптомы болезни.

На примере полученного материала впервые изложены основы метаболической ПЭТ-визуализации с 18F-ФДГ у больных с подозрением на ИПСС - в зоне ПК, НК, ИЭВСУ и СП - как с наличием инфекционного процесса, так и без него. Впервые сопоставлены результаты визуальной и полуколичественной оценки ПЭТ/КТ с 18F-ФДГ у данных категорий больных.

Впервые разработаны рекомендации по методике выполнения ПЭТ/КТ с 18F-ФДГ у пациентов с подозрением на ИПСС: особенности подготовки пациентов, протокол сканирования, определение объема исследования - целесообразность дополнительного проведения высокодозного КТ-сканирования области сердца с внутривенным контрастированием с ЭКГ-синхронизацией.

Впервые выработаны практические рекомендации для выполнения ПЭТ/КТ с 18F-ФДГ у больных с подозрением на ИПСС: подтверждена необходимость выполнения ПЭТ/КТ с 18F-ФДГ всем пациентам с

отрицательными или сомнительными результатами лабораторно-инструментальных исследований, определены показания к выполнению исследования у больных с подтвержденным диагнозом ИПСС, определены оптимальные сроки проведения ПЭТ/КТ после кардиохирургических вмешательств.

Впервые показана возможность оценки эффективности АБТ у пациентов с ИПСС по результатам ПЭТ/КТ с 18Б-ФДГ.

Таким образом, в настоящей работе впервые в рамках одного исследования на основании систематизации и анализа собственных данных даны ответы на ряд вопросов, активно изучаемых в современной мировой научной литературе.

Практическая значимость

Использование ПЭТ/КТ с 18F-ФДГ существенно расширяет возможности неинвазивной диагностики ИПСС на ранних этапах.

Результаты ПЭТ/КТ с 18F-ФДГ позволяют исключить необходимость выполнения повторных лабораторно-инструментальных обследований, сократить сроки постановки окончательного диагноза ИПСС, диагностировать на ранних этапах и предотвратить развитие осложнений заболевания, а также способствуют своевременному проведению кардиохирургического лечения и улучшению его непосредственных и отдаленных результатов. Таким образом, внедрение ПЭТ/КТ с 18F-ФДГ в диагностический алгоритм обследования указанной категории больных позволяет повысить эффективность лечения ИПСС.

Разработанная методика проведения исследования, включающая специальную подготовку больных и алгоритм интерпретации результатов ПЭТ/КТ, а также практические рекомендации позволят внедрить использование ПЭТ/КТ с 18F-ФДГ в рутинную клиническую практику ПЭТ-центров.

Таким образом, своевременная диагностика и оценка распространенности ИПСС по данным ПЭТ/КТ с 18F-ФДГ позволяет реализовать концепцию персонализированной терапии данной категории больных, что позволит снизить экономические затраты здравоохранения на диагностику, лечение, профилактику осложнений и реабилитацию этих пациентов.

Положения, выносимые на защиту

1. ПЭТ/КТ с 18F-ФДГ является высокоинформативным методом ранней неинвазивной диагностики инфекционных процессов в сердце и сосудах у больных после кардиохирургических вмешательств - с протезированными клапанами, имплантированными электронными внутрисердечными устройствами и сосудистыми протезами.

2. Возможности ПЭТ/КТ с 18F-ФДГ в диагностике инфекционного эндокардита нативного клапана ограничены - отсутствие накопления РФП не исключает наличия инфекционного процесса - однако высокая положительная прогностическая ценность метода свидетельствует о целесообразности его использования у пациентов с сомнительными результатами других методов диагностики.

3. Методика ПЭТ/КТ с 18F-ФДГ при подозрении на инфекционные процессы в сердце и сосудах должна включать: специальную подготовку для блокировки физиологического накопления 18F-ФДГ, сканирование в режиме обследования «всего тела», интерпретацию изображений с использованием визуальной и полуколичественной оценки.

4. При интерпретации результатов ПЭТ/КТ обязательна оценка двух типов изображений - с коррекцией атеннуации и без коррекции атеннуации. Для инфекционного процесса характерен фрагментарный тип накопления 18F-ФДГ высокой интенсивности. Дополнение визуальной

оценки полуколичественным анализом повышает точность результатов ПЭТ/КТ в диагностике инфекционных процессов в сердце и сосудах.

5. Основными факторами, снижающими точность результатов ПЭТ/КТ с 18Б-ФДГ при диагностике инфекционных процессов в сердце и сосудах, являются интенсивное физиологическое накопление 18Б-ФДГ в миокарде, а также интервал менее 2 месяцев между протезированием клапанов сердца и выполнением ПЭТ/КТ. Низкая активность воспалительного процесса и выполнение ПЭТ/КТ на фоне длительной антибактериальной терапии не влияют на точность результатов ПЭТ/КТ.

6. Выполнение ПЭТ/КТ с 18F-ФДГ в режиме обследования «всего тела» позволяет с высокой точностью оценить распространенность инфекционного процесса, диагностировать невыявленные ранее очаги инфекции вне зон интереса (сердца и сосудов), выявить альтернативные воспалительные, а также неопластические процессы.

7. Сочетанное использование результатов ПЭТ/КТ с 18F-ФДГ и диагностических критериев позволяет повысить точность диагностики инфекционного процесса в сердце и сосудах - корректно реклассифицировать случаи с исходно «возможным» и «исключенным» диагнозом.

8. Результаты ПЭТ/КТ с 18Б-ФДГ позволяют скорректировать лечебную тактику при подозрении на инфекционные процессы в сердце и сосудах, а также оценить эффективность антибактериальной терапии у пациентов, не подлежащих повторному хирургическому лечению.

Внедрение результатов исследования

Оригинальные методики и разработки, сделанные в ходе выполнения диссертации, успешно внедрены в клинико-диагностический процесс ФГБУ НМИЦ ССХ им. А.Н.Бакулева МЗ РФ (24.09.2020г.), а также используются в учебном процессе на кафедры лучевой диагностики Института ПКВКиПО ФГБУ НМИЦ ССХ им. А.Н.Бакулева МЗ РФ.

Полученные результаты включены в отчет о научно-исследовательской работе по теме «Разработка и внедрение новых технологий радионуклидной диагностики ишемических и воспалительных заболеваний сердца и сосудов» (номер гос. регистрации 115021210142).

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Ранняя диагностика инфекционных процессов в сердце и сосудах методом ПЭТ/КТ с 18F-фтордезоксиглюкозой»

Апробация работы

Основные положения диссертации доложены и обсуждены:

- на ежегодных конгрессах Европейской ассоциации ядерной медицины (Дюссельдорф, Германия, 2018; Барселона, Испания, 2019г.; виртуальный, 2020),

- на ежегодных конгрессах Европейского общества кардиологов (виртуальный, 2020), 26 Ежегодном съезде Азиатского общества сердечнососудистых и торакальных хирургов (Москва, 2018),

- на ежегодных конгрессах Российского общества рентгенологов и радиологов (Москва, 2018; Москва, 2019),

- XXIV-XXVI Всероссийских съездах сердечно-сосудистых хирургов (Москва 2018; Москва, 2019г.; Москва, 2020г.),

XXIII Ежегодной сессии НМИЦ СССХ им. А.Н.Бакулева МЗ РФ с Всероссийской конференцией молодых ученых (Москва, 2019),

- XI и XII Международном конгрессе Невский радиологический форум (Санкт-Петербург, 2019; Санкт-Петербург, 2021), победитель конкурса молодых ученых в рамках конгресса 2021,

- XIII и XIV Всероссийском национальном конгрессе лучевых диагностов и терапевтов Радиология 2019 и 2020 (Москва, 2019; Москва, 2020),

- У-УШ Международных конгрессах и школах для врачей Кардиоторакальная радиология (Москва, 2018; Санкт-Петербург, 2019; Москва, 2020; Санкт-Петербург, 2021).

Апробация диссертации состоялась на объединенной конференции отдела ядерной диагностики, отделения кардиохирургии приобретенных пороков

сердца, отделения неотложной хирургии врожденных пороков сердца у детей раннего возраста и рентгенодиагностического отдела ФГБУ «НМИЦ ССХ им. А.Н.Бакулева» Минздрава России. Номер и дата протокола: №16 от 11.11.2020 года.

Публикации

Основное содержание диссертационного исследования полностью отражено в 35 опубликованных печатных работах, в том числе в 15 статьях в ведущих рецензируемых научных журналах, рекомендованных ВАК Минобрнауки России для публикации материалов диссертации на соискание учёной степени.

Личный вклад автора

Дизайн исследования, постановка цели и задач диссертационной работы, методический подход к их выполнению разработаны лично автором. Весь материал, представленный в диссертации, получен, обработан и проанализирован лично автором.

Объем и структура диссертации

Диссертация изложена на 339 страницах компьютерного текста, состоит из введения, обзора литературы, 4 глав, посвященных результатам собственных исследований и их обсуждению, выводов, практических рекомендаций и списка использованной литературы. Работа иллюстрирована 89 рисунками и 20 клиническими примерами, содержит 46 таблиц и 5 приложений. Список литературы включает 231 источник из них 75 отечественных и 156 зарубежных.

Глава I Обзор литературы

1.1. Введение

Инфекционные процессы в сердце и сосудах занимают 4-е место по летальности среди инфекционных заболеваний после сепсиса, пневмонии и абдоминального хирургического сепсиса [30, 31]. Заболеваемость ИЭ по данным разных авторов, составляет от 1,7 до 11,6 случаев на 100 тыс. населения в год [2]. Показатели заболеваемости и летальности от ИПСС не имеют тенденции к снижению за последние 30 лет [2-4, 32]. Неуклонный рост заболеваемости ИПСС обусловлен целым рядом причин, основными из которых являются увеличение в развитых странах доли возрастного населения, рост числа пациентов с врожденными пороками сердца и с ранее выполненными операциями на сердце и сосудах, широкое использование при операциях различных чужеродных материалов, рост численности инъекционных наркоманов, расширение спектра инвазивных вмешательств, сопровождающихся транзиторной бактериемией [33-38].

Среди ИПСС, помимо ИЭ НК, у больных после кардиохирургических вмешательств выделяют ИЭ ПК, инфекцию ИЭВСУ и инфекцию СП. Диагностика ИПСС является актуальной и сложной проблемой современной кардиологии, кардиохирургии и лучевой диагностики и требует мультидисциплинарного подхода [12, 13, 25]. Подтвержденный диагноз в большинстве случаев является абсолютным показанием к хирургическому лечению по жизненным показаниям [1-3, 7]. Сложность выявления ИПСС связана с полиморфной клинической картиной, а также отсутствием «золотого стандарта» для постановки диагноза. Диагностика ИПСС основывается на сочетании больших и малых критериев, основными из которых являются лихорадка неясного

генеза, положительные посевы крови, а также результаты рутинно используемых ТТ и ЧП ЭхоКГ, КТ с внутривенным контрастированием и МРТ. Тем не менее, отрицательные данные лабораторно-инструментальных данных не исключают наличия ИПСС. Это ведет к необходимости поиска новых методов диагностической визуализации, одним из которых является ПЭТ/КТ с 18F-ФДГ.

1.2. Эпидемиология

Выполнение протезирования клапанов сердца позволило существенно улучшить прогноз и качество жизни больных с врожденными и приобретенными пороками сердца. Однако наряду с положительными сторонами таких вмешательств возникли и отрицательные последствия в виде ИЭ ПК, который является самой тяжелой формой инфекционного эндокардита. В данном контексте пророчески звучит цитата, принадлежащая Е. Рапопорту, который ещё в 1978 году писал: «Иронично, что кардиохирургия на неинфицированном сердце создала условия для значительного повышения числа случаев инфицирования сердца» [39].

Частота ИЭ у больных после протезирования клапана составляет 0,3-1,2% пациентов в год, что соответствует 3-6% всех больных в течение первых 5 лет после операции [40-42]. ИЭ ПК является основной причиной повторных операций на клапанах сердца у 55-82% пациентов [2, 8]. Доля ИЭ ПК среди всех случаев заболевания ИЭ составляет от 10% до 30%, у больных старше 70 лет - достигает 52%. При этом риск заболеть особенно высок в первые 6 месяцев после операции [3]. Частота инфицирования механических и биологических протезов приблизительно одинакова, однако по локализации протезы аортального клапана (АК) поражаются примерно в 2-5 раз чаще, чем митрального клапана (МК) [3].

ИЭВСУ, такие как электрокардиостимуляторы (ЭКС), кардиовертер-дефибрилляторы и устройства для сердечной ресинхронизирующей терапии, играют важную роль в лечении брадиаритмий, тахикардий, предотвращении внезапной сердечной смерти, а также в процессе терапии сердечной недостаточности [2]. Увеличение продолжительности жизни и расширение клинических показаний к имплантации таких устройств ведет к неуклонному росту количества больных с ИЭВСУ, и, соответственно, пропорциональному росту числа инфекционных осложнений [2, 4, 36]. Ежегодно по всему миру имплантируется от 1,2 до 1,4 миллионов ИЭВСУ [4]. По данным различных источников, распространенность инфекций, связанных с ИЭВСУ, составляет 0,8% при установке кардиовертер-дефибрилляторов и достигает 20% для ЭКС [2, 4, 8, 43]. При инфекционном поражении электродов внутригоспитальная смертность составляет 29%, в течение первого года наблюдения после удаления инфицированного ИЭВСУ умирает 15% пациентов [44, 45].

За последние два десятилетия в лечении заболеваний аорты и ее ветвей (аневризм, стенозов) помимо «открытых» вмешательств все чаще стали применять эндоваскулярные методы с использованием СП. Частота указанных процедур неуклонно растет с связи с более широкой, по сравнению с «открытыми» вмешательствами, доступностью «закрытого» метода лечения и возможностью его использования у пациентов старшей возрастной группы [46]. Однако вместе с тем растет и частота редкого, но грозного осложнения - инфекции СП, которая развивается у 1-6% больных после реконструкции аорты и артерий [6].

Тяжесть состояния пациентов с ИПСС в большинстве случаев связана с несвоевременным выявлением заболевания и поздним направлением на хирургическое лечение. Так, правильный диагноз ИЭ ставится в первые 3 месяца от начала заболевания лишь в 24%. Остальные

пациенты длительное время лечатся по поводу «активизации ревматического процесса» (53%), пневмонии, лихорадки неясного генеза и т.д. [3, 23, 25, 47-52].

По данным Ракова А.Л. и соавт. (п = 113) диагноз ИЭ установлен в течение месяца со времени появления клинических проявлений заболевания у 50,4%, двух месяцев - у 13,5%, трех месяцев — у 14,3%, в срок до 6 месяцев и более - у 21,8%. Авторы также установили, что летальность возрастала с увеличением срока диагностики [53].

Несмотря на значительные достижения в области медикаментозной и хирургической помощи, смертность при ИПСС остается одной из самых высоких в кардиохирургии и достигает 16-80% в зависимости от клинической ситуации и выбора лечения [1-3, 22, 54-56].

1.3. Этиология и патогенез

Возникновению ИЭ могут способствовать различные эндогенные и экзогенные факторы, изменяющие реактивность организма, восприимчивость и устойчивость к инфекции. Первым этапом в развитии ИЭ является прикрепление бактерий к поврежденной поверхности эндокарда клапана [34]. Бактерии начинают делиться, их присутствие стимулирует процесс тромбообразования, колонии бактерий чередуются со слоями фибрина - таким образом появляются достаточно быстро увеличивающиеся в размерах вегетации. Разрастаясь, вегетации обусловливают дальнейшую деструкцию окружающих тканей вплоть до образования абсцесса и отрыва клапана, а также могут становиться источником инфицированных тромбоэмболов [57].

Инфекционный эндокардит протезированного клапана

Инфицирование во многом определяется физическими свойствами

и химическим составом имплантируемого клапана, способностью бактерий к адгезии на шовном материале. Кроме того, известно, что после имплантации ПК миокард становится более восприимчивым к инфекции

[3].

Для протезирования клапанов сердца используются механические (дисковые или двустворчатые) и биологические протезы. Биологические ПК могут быть на каркасе и бескаркасные, из алло- или ксеноткани.

Наиболее уязвимым местом механического ПК при инфекции является пришивное кольцо, т.к. биологическая ткань, которая его покрывает (фибрин, соединительная ткань), нередко вовлекается в инфекционный процесс. ИЭ механического ПК трудно поддается лечению, достаточно быстро возникают фистулы (параклапанная регургитация), вплоть до отрыва протеза с развитием острой сердечной недостаточности. Такому осложнению чаще подвержена аортальная позиция - для этой локализации свойственно распространение абсцесса фиброзного кольца на миокард, а также вовлечение в патологический процесс проводящих путей сердца. Этим обусловлена необходимость как можно более раннего хирургического лечения - до развития тяжелых гемодинамических нарушений [3].

При ИЭ биологического ПК фистулы возникают значительно реже, в процесс чаще вовлекаются створки протеза, инфекция несколько легче поддается лечению - это позволяет оперировать пациентов повторно в плановом порядке.

Инфекция имплантированного электронного внутрисердечного устройства

При инфекции ИЭВСУ следует дифференцировать локальную инфекцию (отграниченную ложем ИЭВСУ) и ИЭ ИЭВСУ, при котором процесс распространяется по электродам, створкам клапанов или поверхности эндокарда. В свою очередь, инфекция ложа ИЭВСУ по

распространенности может вовлекать как изолированно-поверхностные отделы, так и глубокие прилежащие мягкие ткани. Оценка распространенности инфекционного процесса, связанного с ИЭВСУ, является определяющей в выборе тактики лечения.

Известны два основных пути инфицирования ИЭВСУ: из его ложа -с дальнейшим распространением по электродам вплоть до интракардиальных отделов, - и гематогенный - из отдаленного очага.

По времени возникновения ИЭ ПК и/или ИЭВСУ разделяют на ранний - развившийся в течение 12 месяцев после операции, и поздний -развившийся спустя год и более [2]. Деление на ранний и поздний ИЭ ПК определяется не только и не столько сроком возникновения, сколько различием этиологических факторов, путей инфицирования, микробиологических, клинических и диагностических данных, а также течением и прогнозом заболевания [58].

Инфекция сосудистого протеза

Патогенез инфицирования СП включает прямой (во время оперативного вмешательства), гематогенный или лимфогенный пути. Риск инфицирования всегда выше у возрастных пациентов, имеющих серьезный коморбидный фон: сахарный диабет, сердечную, легочную и почечную недостаточность, ожирение, заболевания печени, трофические нарушения в области нижних конечностей, использование иммуносупрессантов. Следует упомянуть также факторы риска, связанные непосредственно с оперативным вмешательством - несоблюдение принципов асептики и антисептики, технические погрешности во время вмешательства, ее ургентный и/или повторный характер, длительное нахождение пациента в стационаре до оперативного лечения, отсутствие адекватной послеоперационной антибиотикопрофилактики и др. Кроме того, риск инфицирования СП существенно повышают нагноение послеоперационной раны или лимфорея [59].

Микробиология

Наиболее частой причиной раннего инфекционного эндокардита ПК и/или инфекции ИЭВСУ является стафилококк (28-68%), чаще золотистый, реже эпидермальный, энтерококк (16%), грамотрицательные возбудители (16%), сапрофитный стафилококк (8%), реже - грибы [37, 6064]. Причинами позднего ИЭ ПК чаще становятся стрептококковая и стафилококковая инфекция [57, 61, 63, 65]. Смертность при ИЭ ПК и/или инфекции ИЭВСУ, вызванных золотистым стафилококком, составляет 8690%, эпидермальным - 52-60% [57]. Наиболее распространенными инфекционными агентами при инфекции СП являются золотистый и эпидермальный стафилококк, которые высеваются в 70-90% случаев [3, 57, 63].

Как отмечено выше, эндокардиальные вегетации при ИЭ представляют собой сложную микробно-тромбоцитарно-фибриновую структуру, в составе которой микроорганизмы защищены от действия факторов иммунной защиты, антибиотиков и антисептиков. При этом выживают субпопуляции микроорганизмов с наиболее устойчивым фенотипом, формирующимся в результате длительного воздействия повреждающих факторов [57].

Другой причиной неэффективности АБТ при ИПСС может быть формирование микробных биопленок на поверхности синтетических СП и шовного материала с формированием хронического очага инфекции. Биопленка представляет собой слой внеклеточной матрицы, содержащей патогенную флору, которая защищает микроорганизмы от иммунной реакции организма и действия антибиотиков [34, 65, 66]. Госпитальная микрофлора, обладая устойчивостью к большинству антибиотиков, является крайне неблагоприятным фоном для течения заболевания и приводит к более высоким показателям заболеваемости и смертности [32, 39, 57].

1.4. Диагностические критерии

В современной мировой клинической практике диагностика ИПСС основывается на клинических, анамнестических и морфологических данных, а также результатах лабораторных и инструментальных исследований [1-3]. Основными критериями постановки диагноза являются наличие лихорадки, положительные посевы крови, а также данные методов диагностической визуализации - ТТ и ЧП ЭхоКГ, КТ с внутривенным контрастированием и МРТ [1-3, 12-15, 54]. В последние десятилетия для диагностики ИПСС стали также применять радионуклидные методы исследования.

Диагностические критерии для ИЭ

Для диагностики ИЭ широко используются модифицированные критерии Duke, разработанные в 1994г. научно-исследовательской группой в Университете Duke (г.Дарем, США), пересмотренные и модифицированные в 2000г., а также дополненные группой экспертов Европейского общества кардиологов (ESC) в 2015г. (табл.1) [2, 14, 15].

К «большим» критериям относятся положительные результаты посевов крови и данные традиционных методов исследования - ЭхоКГ и КТ с внутривенным контрастированием. К «малым» критериям -лихорадка неясного генеза, анамнестические данные, сосудистые симптомы, иммунологические феномены, а также данные микробиологических исследований и изменения при ЭхоКГ, не отвечающие большим критериям.

На основании сочетания «больших» и «малых» критериев (в соответствии с их диагностической значимостью) ставится диагноз «подтвержденного», «возможного» и «исключенного» ИЭ (табл.2) [2, 14, 15].

Таблица 1. Модифицированные критерии Duke согласно действующим рекомендациям Европейского общества кардиологов [2]

Большие критерии

1. Положительные результаты посевов крови:

• типичные для ИЭ возбудители, выделенные из двух раздельно взятых проб крови: зеленящие стрептококки, Streptococcus bovis, HACEK-группа (Haemophilus spp., Actinobacillus actinimycetemcomitans, Cardiobacterium hominis, Eikenella spp., Kingella kingae), Staphylococcus aureus, или внебольничные энтерококки при отсутствии первичного очага, или

• согласующиеся с ИЭ возбудители, выделенные из гемокультуры при следующих условиях: как минимум два положительных результата исследования проб крови, взятых с интервалом не менее 12 ч, или три положительных результата из трех, или большинство положительных результатов из четырех проб крови и более (интервал между взятием первой и последней пробы должен составлять как минимум 1 ч), или

• однократный высев C. burnetii или титр IgG-антител > 1:800._

2. Критерии по результатам исследований методами диагностической

визуализации:_

• положительные результаты ЭхоКГ: вегетация, абсцесс, псевдоаневризма, внутрисердечная фистула, перфорация клапана или аневризмы, новая частичная несостоятельность протеза клапана

• наличие парапротезных осложнений по данным КТ с внутривенным контрастированием

• патологическое накопление РФП в зоне протеза клапана по данным ПЭТ/КТ с _ieF-ФДГ или ОФЭКТ с «меченными» лейкоцитами_

Малые критерии

• предрасположенность: кардиогенные факторы или частые внутривенные инъекции лекарственных средств/наркотиков

• температура тела > 38°С

• сосудистые феномены (в том числе выявленные только по данным диагностической визуализации): эмболии крупных артерий, септические инфаркты легкого, микотические аневризмы, внутричерепные кровоизлияния, геморрагии на переходной складке конъюнктивы, пятна Джейнуэя

• иммунологические феномены: гломерулонефрит, узелки Ослера, пятна Рота, ревматоидный фактор

• микробиологические данные: положительные посевы крови, не удовлетворяющие большим критериям (см. выше), или серологическое подтверждение активной

_инфекции, обусловленной потенциальным возбудителем ИЭ_

Диагноз «подтвержденного» ИЭ правомерен при наличии инфекционных изменений при исследовании операционного или аутопсийного материала, либо определенной совокупности критериев: 2 больших, либо 1 большого и 3 малых, либо 5 малых. Диагноз «возможного» ИЭ ставится в тех случаях, когда имеющаяся клиническая

картина и данные дополнительных исследований в целом соответствуют данному заболеванию, но в то же время не набирается достаточного числа критериев для «подтвержденного» ИЭ - наличие 1 большого и 1 малого, либо 3 или 4 малых критериев. И, наконец, диагноз ИЭ считается «исключенным» при выявлении у больного альтернативного заболевания, имеющего сходную с ИЭ клиническую картину (например, онкопатология), или при полном регрессировании симптомов болезни при краткосрочной (4 дня и менее) АБТ.

Таблица 2. Диагностика инфекционного эндокардита на основании модифицированных критериев Duke согласно действующим рекомендациям Европейского общества кардиологов [2]

«Подтвержденный» ИЭ Патологические критерии:

• микроорганизмы, выделенные из вегетаций, эмболов или миокардиальных абсцессов,

• патоморфологические изменения - вегетации или абсцессы миокарда, подтвержденные гистологически

Клинические критерии:

• два больших критерия или

• один большой и три малых критерия или

• пять малых критериев_

«Возможный» ИЭ

• один большой и один малый критерий или

• три малых критерия_

«Исключенный» ИЭ

• точный альтернативный диагноз

• регрессирование симптомов болезни при антибиотикотерапии до 4 дней

• отсутствие патоморфологических признаков ИЭ в операционном или аутопсийном материале при антибиотикотерапии до 4 дней

• недостаточно критериев для «возможного» ИЭ_

Чувствительность модифицированных критериев Duke в диагностике ИЭ НК достаточно высока и достигает 80% [2]. Однако у пациентов после имплантации ПК или ИЭВСУ, особенно на ранних этапах заболевания, возможности использования указанных критериев ограничены. Именно группа больных с диагнозом «возможного» ИЭ на

сегодняшний день представляет наибольший клинический интерес.

Диагностические критерии инфекции сосудистого протеза

Рандомизированные контролируемые исследования по инфекции СП отсутствуют, основные публикации по данной тематике представлены исследованиями крупных серий случаев. Поэтому, если для лечения инфекций других хирургических протезов (например, клапанов сердца и суставов) имеются прочно утвердившиеся руководства, основанные на доказательной базе, то общепринятые рекомендации по ведению больных с инфекцией СП отсутствуют. Тем не менее, группа MAGIC (The Management of Aortic Graft Infection Collaboration) из Великобритании, объединяющая экспертов по ведению инфекции СП, в 2016г. разработала три основных категории критериев для постановки диагноза: клинические и интраоперационные, радиологические, а также лабораторные [67]. В каждую из трех категорий по аналогии с ИЭ включены большие и малые критерии.

К большим критериям первой категории относятся визуализация гноя вокруг СП интраоперационно, а также наличие прямого контакта СП с нестерильным участком - с открытой раной, наличие фистулы, установка СП в инфицированные ткани (например, при микотической аневризме). К малым критериям первой категории относятся местные признаки инфекции (покраснение, боль, отек, гнойное отделяемое) и лихорадка более 380С без установленной другой причины.

Большие радиологические критерии включают выявление в парапротезном пространстве воздуха или жидкости по данным КТ (более чем через 7 недель и 3 месяца после операции, соответственно), а также увеличение объема воздуха при повторных исследованиях. Малые радиологические критерии включают другие изменения, выявленные при КТ и/или радионуклидной визуализации.

К большим критериям третьей категории относятся выявление по

данным микроскопии микроорганизмов в интраоперационном материале или аспирате парапротезной жидкости (при чрескожной пункции под контролем лучевых методов диагностики), к малым критериям -положительные посевы крови или наличие неспецифических маркеров воспаления (лейкоцитоз, повышение СОЭ, С-реактивного белка).

Диагноз «подтвержденной» инфекции СП правомерен при наличии одного большого критерия в сочетании с любым дополнительным (большим или малым) из другой категории. Диагноз «возможной» инфекции СП ставится при наличии одного большого, либо двух и более малых критериев из различных категорий.

1.5. Клинико-лабораторные данные

Клиническая картина ИПСС отличается значительным многообразием симптомов, что предопределяет сложность их диагностики.

Частым симптомом ИПСС является лихорадка неясного генеза, которая встречается у 95-97% больных и сопровождается ознобом различной выраженности [2, 3, 15, 48, 50, 68]. Данный симптом является малым критерием как по классификации Duke, так и для диагностики инфекции СП. В то же время температура тела может быть субфебрильной (и даже нормальной) у пожилых и истощенных пациентов, при застойной недостаточности кровообращения, печеночной и/или почечной недостаточности. В ряде случаев характерны значительная потливость, быстрая утомляемость, прогрессирующая слабость, анорексия, быстрая потеря массы тела (до 10-15 кг).

Ранний ИЭ ПК протекает остро, по типу сепсиса, в то время как поздний ИЭ ПК имеет более доброкачественное течение и стертую клиническую картину [3, 58]. Сердечная недостаточность, обусловленная

инфекционно-токсическим миокардитом и параклапанными фистулами, формируется у подавляющего большинства больных при раннем ИЭ ПК и только у трети пациентов — при позднем. Септический шок встречается у 33% больных с ранним и у 10% с поздним ИЭ ПК [3, 58]. Нарушения атриовентрикулярной проводимости регистрируются на ЭКГ в 15-20% случаев раннего и в 5-10% позднего ИЭ ПК. Спленомегалию отмечают у 26% пациентов с ранним и у 44% с поздним ИЭ ПК. Частота развития тромбоэмболических осложнений составляет 10-11% при раннем ИЭ ПК и 23-28% при позднем ИЭ ПК [3, 58, 63].

У пациентов с инфекцией ИЭВСУ и СП при поражении ложа или области пункции могут быть местные признаки инфекции - покраснение, боль, отек, гнойное отделяемое - малые критерии диагностики инфекции СП.

У лихорадящего пациента с ИПСС могут встречаться лабораторные признаки инфекции, такие как повышение уровня С-реактивного белка, лейкоцитоз, повышение скорости оседания эритроцитов. В критерии диагностики ИЭ лабораторные маркеры воспаления не включены, при диагностике инфекции СП входят в категорию лабораторных в качестве малых.

В последние годы также активно изучаются другие возможные лабораторные маркеры для ИПСС, принимающие активное участие в модулировании воспалительной реакции. К ним относятся различные цитокины, интерлейкины, циркуляторный секреторный иммуноглобулин А, матриксные металлопротеиназы-2, -7 и др. [69-73]. Однако первоначальные результаты свидетельствуют, что данные изменения неспецифичны для ИПСС и не всегда отражают остроту воспалительного процесса [48, 69-73].

«Периферические» симптомы заболевания, описываемые при классической клинической картине ИЭ, в настоящее время встречаются значительно реже, в основном при длительном и тяжелом течении болезни

у пожилых пациентов. Однако геморрагические высыпания на коже, слизистых оболочках и переходной складке конъюнктивы (симптом Лукина), узелковые плотные болезненные гиперемированные образования в подкожной клетчатке пальцев кистей или на тенаре ладоней (узелки Ослера), мелкие эритематозные высыпания на ладонях и подошвах (повреждения Джэйнуэя), а также овальные с бледным центром геморрагические высыпания на глазном дне (пятна Рота), несмотря на их низкую встречаемость (от 5 до 25%), по-прежнему сохраняют свою диагностическую значимость и относятся к малым критериям Duke.

Список литературы диссертационного исследования доктор наук Пурсанова Диана Манолисовна, 2021 год

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

1. Клинические рекомендации Министерства здравоохранения Российской Федерации. Кнфекционный эндокардит. 2016. https://racvs.ru/clinic/files/201 б/infective-endocarditis.pdf

2. Habib G., Lancellotti P., Antunes M.J., Bongiorni M.G., Casalta J.P., Del Zotti F., et al. ESC Scientific Document Group. 2015. ESC Guidelines for the management of infective endocarditis: The Task Force for the Management of Infective Endocarditis of the European Society of Cardiology (ESC). Endorsed by: European Association for Cardio-Thoracic Surgery (EACTS), the European Association of Nuclear Medicine (EANM). Eur Heart J. 2015; 3б: 3075-128. DOI: 10.1093/eurheartj/ehv319.

3. Муратов Р.М., Бабенко С.К. Рекомендации по профилактике и лечению инфекционного эндокардита. ННПЦССХ им. А.Н.Бакулева. Москва. 2018. 32с.

4. Kusumoto F.M., Schoenfeld M.H., Wilkoff B.L., Berul C.I., Birgersdotter-Green U.M., Carrillo R., et al. 2017 HRS expert consensus statement on cardiovascular implantable electronic device lead management and extraction. Heart Rhythm. 2017;14:e503-e51. DOI:10.1016/j.hrthm.2017.09.001.

5. Абдулгасанов Р.А. Кнфекция сосудистых протезов. Комплексные проблемы сердечно-сосудистых заболеваний. 201б;5(1): 12-7. DOI: 10.17802/230б-1278-201б-5-1-12-17.

6. Wilson W.R., Bower T.C., Creager M.A., Amin-Hanjani S., O'Gara P.T., Lockhart P.B., et al. Vascular graft infections, mycotic aneurysms, and endovascular infections: A scientific statement from the American Heart Association. Circulation 2016;134:e412-60. DOI: 10.1 161/CIR.0000000000000457.

7. Mihos C.G., Capoulade R., Yucel E., Picard M.H., Santana O. Surgical Versus Medical Therapy for Prosthetic Valve Endocarditis: A Meta-Analysis of 32 Studies. Ann Thorac Surg. 2017;103(3):991-1004. D01:10.1016/j.athoracsur.2016.09.083.

8. Klug D., Lacoix D., Savoye C., Goullard L., Grandmougin D., Hennequin J.L., et al. Systemic infection related to endocarditis on pacemaker leads: clinical presentation and management. Circulation. 1997; 95:2098-107. DOI: 10.1161/01.cir.95.8.2098.

9. Подоляк Д.Г., Кипренский А.Ю., Миронович С.А. Современные подходы к трансвенозной экстракции электродов. Российский кардиологический журнал. 2020;25(7):115-23. D0I:10.15829/1560-4071-2020-4012.

10. Baddour L.M., Epstein A.E., Erickson C.C., Knight B.P., Levison M.E., Lockhart P.B., et al. Update on cardiovascular implantable electronic device infections and their management: a scientific statement from the American Heart Association. Circulation. 2010;121:458-77. DOI: 10.1161/circulationaha.109.192665.

11. Saleem B.R., Meerwaldt R., Tielliu I.F., Verhoeven E.L., van den Dungen J.J., Zeebregts C.J. Conservative treatment of vascular prosthetic graft infection is associated with high mortality. Am J Surg. 2010; 200(1):47-52. D0I:10.1016/j.amjsurg.2009.05.018.

12. Gomes A., Glaudemans A.W.J.M., Touw D.J., van Melle J.P., Willems T.P., Maas A. H. et al. Diagnostic value of imaging in infective endocarditis: a systematic review. Lancet Infect Dis. 2017;17(1):e1-14. D0I:10.1016/S1473-3099(16)30141-4.

13. Erba A.P., Pizzi M.N., Roque A., Salaun E., Lancellotti P., Tornos P., Habib G. Multimodality Imaging in Infective Endocarditis An Imaging Team Within the Endocarditis Team. Circulation. 2019;140:1753-1765. DOI: 10.1161/CIRCULATIONAHA.119.040228.

14. Durack D.T., Lukes A.S., Bright D.K. New criteria for diagnosis of infective endocarditis: utilization of specific echocardiographic findings. Duke Endocarditis Service. American Journal of Medicine. 1994;96(3):200-9. PubMed ID: 8154507. D01:10.1016/0002-9343(94)90143-0.

15. Li J.S., Sexton D.J., Mick N., Nettles R., Fowler V.G.Jr., Ryan T., et al. Proposed modifications to the Duke criteria for the diagnosis of infective endocarditis. Clin Infect Dis. 2000;30(4):633-8. DOI: 10.1086/313753

16. Chen W., Kim J., Molchanova-Cook O.P., Dilsizian V. The Potential of FDG PET/CT for Early Diagnosis of Cardiac Device and Prosthetic Valve Infection Before Morphologic Damages Ensue. Curr Cardiol Rep. 2014;16:459. DOI: 10.1007/s11886-013-0459-y.

17. Swart L.E., Gomes A., Scholtens A.M., Sinha B., Tanis W., Lam M.G. et al. Improving the Diagnostic Performance of 18F-Fluorodeoxyglucose Positron-Emission Tomography/Computed Tomography in Prosthetic Heart Valve Endocarditis. Circulation. 2018;138(14):1412-27. DOI: 10.1161/CIRCULATI0NAHA.118.035032.

18. Habib G., Badano L., Tribouilloy C., Vilacosta I., Zamorano J.L., Galderisi M., et al. Recommendations for the practice of echocardiography in infective endocarditis. Eur J Echocardiogr. 2010;11(2):202-19. DOI: 10.1093/ejechocard/jeq004.

19. Данилов А.И., Козлов Р.С., Козлов С.Н., Евсеев А.В. Практика проведения микробиологической диагностики инфекционного эндокардита в Российской Федерации. Вестник Смоленской государственной медицинской академии. 2019;18(1):90-94.

20. Topan A., Carstina D., Slavcovici A., Rancea R., Capalneanu R., Lupse M. Assesment of the Duke criteria for the diagnosis of infective endocarditis after twenty years. An analysis of 241 cases. Clujul Med. 2015;88:321-6. DOI: 10.15386/cjmed-469baddour.

21. Baddour L.M., Wilson W.R., Bayer A.S., Fowler V.G.Jr., Tleyjeh I.M., Rybak M.J., et al. American Heart Association Committee on Rheumatic Fever, Endocarditis, and Kawasaki Disease of the Council on Cardiovascular Disease in the Young, Council on Clinical Cardiology, Council on Cardiovascular Surgery and Anesthesia, and Stroke Council. Infective endocarditis in adults: diagnosis, antimicrobial therapy, and management of complications: a scientific statement for healthcare professionals From the American Heart Association. Circulation. 2015;132:1435-1486. DOI: 10.1161/CIR.0000000000000296

22. Пономарева Е.Ю., Ландфанг С.В. Анализ госпитальной летальности при инфекционном эндокардите. Фундаментальные исследования. 2015;(1): 1222-5.

23. Будневский А.В., Есауленко И.Э., Гречкин В.И., Ромашов Б.Б. Дифференциальная диагностика лихорадочных состояний в больнице скорой медицинской помощи. Клин. мед. 2016;94(6):445-449. DOI: 10.18821/0023-2149-2016-94-6-445-449.

24. Байтингер А.Я., Жмуров В.А., Рогожкина Ю.А. Диагностика и лечение инфекционного эндокардита на фоне обструктивного левостороннего гнойного пиелонефрита и острого повреждения почек в условиях современного стационара. 2019;5(1):59-61.

25. Дворецкий Л.И., Яковлев С.В. Инфекционная патология в клинике внутренних болезней. Терапевтический архив. 2019;90(11): 112-9. DOI: 10.26442/terarkh20189011#-119.

26. Ahmed F.Z., James J., Memmott M.J., Arumugam P. Radionuclide Imaging of Cardiovascular Infection. Cardiol Clin. 2015;34(1):149-65. DOI: 10.1016/j.ccl.2015.06.004.

27. Erba A., Conti U., Lazzeri E., Sollini M., Doria R., de Tommasi S.M., et al. Added value of 99mTc-HMPAO-labeled leukocyte SPECT/CT in the characterization and management of patients with infectious endocarditis. J Nucl Med. 2012;53(8): 1235-43. DOI:10.2967/jnumed.111.099424.

28. Rouzet F., Chequer R., Benali K., Lepage L., Ghodbane W., Duval X., et al. Respective performance of 18F-FDG PET and radiolabeled leukocyte scintigraphy for the diagnosis of prosthetic valve endocarditis. J Nucl Med. 2014;55(12): 1980-5. DOI: 10.2967/jnumed.114.141895.

29. Манукова В.А., Асланиди И.П., Мухортова О.В., Катунина Т.А., Рудас М.С., Новиков П.И., и соавт. Позитронно-эмиссионная томография с 18F-фтордезоксиглюкозой в ранней диагностике гигантоклеточного артериита. Клиническая фармакология и терапия. 2016;25(5):34-39.

30. Чипыгина Н.С. Инфекционный эндокардит - трудный диагноз. Opinion leader. 2020;33(4):30-35.

31. Пономарев В.В., Пономарева Е.Ю. Частота встречаемости и характер висцеральных поражений у пациентов инфекционным эндокардитом В.В. Пономарев. Бюллетень медицинских интернет-конференций. 2014;4(5):497.

32. Гуревич М.А., Стефанова С.Я. Особенности современного лечения и профилактики инфекционного эндокардита. Клиническая медицина. 1997;12:59-62.

33. Голышко В.С., Снежицкий В.А., Матиевская Н.В., Прокопчик Н.И. Частота и характеристика сердечно-сосудистых заболеваний у ВИЧ-инфицированных пациентов (по данным аутопсии). 2017;95(10):928-34.

34. Петухова И.Н., Соколовский А.В., Григорьевская З.В., Багирова Н.С., Терещенко И.В., Варлан Г.В., и др. Инфекции, связанные с установкой инородных материалов (протезы, сетки, импланты). Злокачественные опухоли. 2017;7(3,спецвыпуск1):57-60. DOI: 10.18027/2224-5057-2017-7-3s1-57-60.

35. Данилов А.И., Осипенкова Т.А., Козлов Р.С. Современные особенности инфекционного эндокардита в Российской Федерации. Лечащий врач. 2018;(11):54.

36. Новиков А.В., Сергуладзе С.Ю. Инфекционные осложнения и трикуспидальная недостаточность после имплантации устройств для постоянной кардиостимуляции. Анналы аритмологии. 2019;16(4):226-34. DOI:10.15275/annaritmol.2019.4.5.

37. Уланова В.И., Мазуров В.И., Цинзерлинг В.А. Клинико-морфологическая характеристика инфекционного эндокардита. Клиническая медицина. 2020;98(2): 110-121. DOI: 10.30629/0023-21492020-98-2-115-121.

38. Демидова Ю.П., Садриева Е.В., Зуевская Т.В., Игнатов С.В., Латынцева А.С., Губина А.Е. Клинический случай инфекционного эндокардита аортального клапана с абсцедированием корня аорты. STUDNET. 2020;3(11):59. DOI: 10.24411/2658-4964-2020-10303.

39. Гуревич М.А. Проблема некоронарогенных заболеваний миокарда в клинической практике. Русский медицинский журнал. 1998;6(24):1523-31.

40. Бокерия Л.А., Белобородова Н.В. Инфекция в кардиохирургии. М.: НЦССХ им. А.Н. Бакулева РАМН, 2007. 582 с.

41. Бокерия Л. А., Гудкова Р. Г. Сердечно-сосудистая хирургия - 2015. Болезни и врожденные аномалии системы кровообращения. М.: НЦССХ им. А.Н. Бакулева РАМН; 2016.

42. Della Corte A., Di Mauro M., Actis Dato G., Barili F., Cugola D., Gelsomino S. et al. Surgery for prosthetic valve endocarditis: a retrospective study of a national registry. Eur J Cardiothorac Surg. 2017;52(1): 105-11. DOI: 10.1093/ejcts/ezx045.

43. Klug D., Balde M., Pavin D., Нidden-Lucet F., Grandbastien B., Kaset S. Factors related to infections of implanted pacemakers and cardioverter -defibrillators: result of a large prospective study. Circulation. 2007;116:1349-55. DOI: 10.1161/CIRCULATIONAHA.106.678664.

44. Viganego F., O'Donoghue S., Eldadah Z., Shah M.H., Rastogi M., Mazel J.A., et al. Effect of early diagnosis and treatment with percutaneous lead extraction on survival in patients with cardiac device infections. Am J Cardiol. 2012;109:1466-71. D01:10.1016/j.amjcard.2012.01.360.

45. Deharo J.C., Quatre A., Mancini J., Khairy P., Dolley Y., Casalta J.P., et al. Long-term outcomes following infection of cardiac implantable electronic devices: a prospective matched cohort study. Heart. 2012;98:724-31. DOI: 10.1136/heartjnl-2012-301627

46. Li H.L., Chan Y.C., Cheng S.W. Current evidence on management of aortic stent-graft infection: A systematic review and meta-analysis. Ann Vasc Surg. 2018;51:306-13. D0I:10.1016/j.avsg.2018.02.038.

47. Бурдули Н.М., Ранюк Л.Г., Тадеева Т.А. Дебют инфекционного эндокардита с неврологической симптоматикой. Клин. мед. 2016;94(9):701-4. DOI 10.18821/0023-2149-2016-94-9-701-704.

48. Перцев А.В., Гречкин В.И., Будневский А.В., Малыш Е.Ю. Лихорадочные состояния: возможности ранней диагностики на этапе поликлиника-приемное отделение-стационар. Практическая медицина. 2016;101(9):37-40.

49. Дворецкий Л.И., Ваколюк Р.М., Каптаева А.К., Дорощук С.А. Инфекции, ассоциированные с имплантацией кардиостимуляторов. Архивъ внутренней медицины. 2017;7(2):233-240. D0I:10.20514/2226-6704-2017-7-3-233-240.

50. Дробышева В.П., Дёмин А.А., Осипенко М.Ф. Гастроинтестинальный дебют острого стафилококкового эндокардита. Экспериментальная и клиническая гастроэнтерология. 2018; 160(12):80-6. DOI: 10.31146/1682-8658-ecg-160-12-84-86.

51. Балуцкий В.В., Литвиненко В.Д. Клинический случай: что скрывалось за маской рака печени? Гастроэнтерология. Хирургия.

Интенсивная терапия. Consilium medicum. 2019;(1):54-6. DOI: 10.26442/26583739.2019.1.190225.

52. Бушманова Г.М., Зорина И.Г., Терлецкий А.В., Ахмерова Л.Г. «Новый» клинический феномен XX-XXI вв. - первично хронический септический эндокардит - как аргумент против диагноза «ревматизм». Терапия. 2020;2:34-45. D0I:10.18565/therapy.2020.2.34-45.

53. Раков А.Л., Тюрин В.П., Филатов В.В. Лечебно-профилактические вопросы. Актуальные вопросы медицинской помощи при инфекци-онном эндокардите. Воен.-мед. журн. 2002;(11):28-31.

54. Lyons O.T., Patel A.S., Saha P., Clough R.E., Price N., Taylor P.R. A 14-year experience with aortic endograft infection: management and results. Eur J Vasc Endovasc Surg. 2013;46:306e13. DOI: 10.1016/j.ejvs.2013.04.021.

55. Laser A., Baker N., Rectenwald J., Eliason J.L., Criado-Pallares E., Upchurch Jr.G.R. Graft infection after endovascular abdominal aortic aneurysm repair. J Vasc Surg. 2011;54:58-63. D0I:10.1016/j.jvs.2010.11.111.

56. Murphy E.H., Szeto W.Y., Herdrich B.J., Jackson B.M., Wang G.J., Bavaria J.E., et al. The management of endograft infections following endovascular thoracic and abdominal aneurysm repair. J Vasc Surg. 2013;58:1179-85. DOI: 10.1016/j.jvs.2013.04.040.

57. Попов Д.А. Купряшов А.А. Глава 4.4. Инфекционный эндокардит. Сепсис: избранные вопросы диагностики и лечения. Практическое руководство. Под редакцией Н.В. Дмитриевой, И.Н. Петуховой, Е.Г. Громовой. Москва, 2018. Издательство: Издательский дом "АБВ-пресс" (Москва). С. 347-70.

58. Ведерко Н.М., Малаева Е.Г., Цырульникова А.Н., Грищенко В.А. Инфекционный эндокардит: эволюция возбудителей и клиники, диагностика, тактика и стратегия лечения. Проблемы здоровья и экологии. 2014:45-51.

59. Романович А.В., Хрыщанович В.Я.. Парапротезная инфекция в сосудистой хирургии: Современное состояние проблемы. Новости хирургии. 2017;25(3):292-9.

60. Скопин И.И., Мироненко В.А., Алиев Ш.М., Попов Д.А., Беридзе И.З. Хирургическое лечение протезного эндокардита клапанов сердца. Хирургия. Журнал им. Н.И. Пирогова. 2006(8):33-7.

61. Сулейманов Б.Р., Муратов Р.М. Современные подходы к хирургическому лечению инфекционного эндокардита аортального клапана, осложненного деструкцией корня аорты. Грудная и сердечнососудистая хирургия. 2012;(2):7—11.

62. Тюрин В.П. Инфекционные эндокардиты: руководство. - 2- изд., доп. и перераб. М.: ГЭОТАР-Медиа, 2012. 368 с.

63. Пелиновская Л.И.. Особенности современного течения протезного и электродного эндокардитов. Сибирское медицинское обозрение. 2015(1): 104-9.

64. Синицкий М.Ю., Асанов М.А., Тхоренко Б.А., Одаренко Ю.Н., Понасенко А.В. Микрофлора периферической крови пациентов с инфекционным эндокардитом. Клиническая лабораторная диагностика. 2018;63(10):636-40. D0I:10.18821/0869-2084-2018-63-10-636-640

65. Корниенко М.А., Копыльцов В.Н., Шевлягина Н.В., Диденко Л.В., Любасовская Л.А., Припутневич Т.В., Ильина Е.Н. Способность стафилококков различных видов к образованию биопленок и их воздействие на клетки человека. Молекулярная генетика, микробиология и вирусология. 2016;34(1): 18-25. D0I:10.18821/0208-0613-2016-34-1-18-25.

66. Казаева Н.А., Суджаева С.Г., Юдина О.А., Солодкая О.И. Морфология эндокарда и аквапориновая система транспорта жидкости в сердце у пациентов с хронической ревматической болезнью сердца, подвергающихся операциям на клапанах сердца. «Кардиология в Беларуси». 2018;10(4):454-69.

67. Lyons O.T., Baguneid M., Barwick T.D., Bell R.E., Foster N., Homer-Vanniasinkam S. Diagnosis of Aortic Graft Infection: A Case Definition by the Management of Aortic Graft Infection Collaboration (MAGIC). Eur J Vasc Endovasc Surg. 2016;52(6):758-63. DOI:10.1016/j.ejvs.2016.09.007.

68. Мартынов А.Ю., Орквасов М.Ю., Агафошина Е.В., Политидис Р.Р. Патология сердца у молодой женщины в отдаленные сроки после химиолучевой терапии лимфогранулематоза. Трудности в диагностике. 2017;(4):44-54.

69. Каргальцева Н.М., Кочеровец В.И., Миронов А.Ю., Борисова О.Ю., Бурбелло А.Т. Маркёры воспаления и инфекция кровотока (обзор литературы). Клиническая лабораторная диагностика. 2019;64(7):435-42. DOI: 10.18821/0869-2084-2019-64-7-435-442.

70. Мальцева Н.В., Лапутенко Т.А., Архипова С.В., Смирнова А.Ш., Лыкова О.Ф., Горбатовский Я.А., Мещерякова О.А. Циркуляторный секреторный иммуноглобулин А при септических заболеваниях. Медицинская иммунология. 2018;20(5):711-20. DOI:10.15789/1563-0625-2018-5-711-720.

71. Бахарева Ю.С., Потеряева О.Н., Чапаева Н.Н., Щербакова Л.В. Исследование активности матриксных металлопротеиназ и реактантов воспаления у пациентов с эндокардитами. Клиническая лабораторная диагностика. 2018;63(5):272-6. DOI:10.18821/0869-2084-2018-63-5-272-276.

72. Асанов М.А., Понасенко А.В. Роль комплекса IL-33/ST2 в модуляции иммунного ответа при инфекционном эндокардите (обзор литературы). Бюллетень сибирской медицины. 2020;19(2): 120-31. DOI:10.20538/1682-0363-2020-2-120-131.

73. Колесникова Н.В., Самойленко Е.С. Роль цитокинов в патогенезе инфекционного эндокардита. Иммунология. 2020;41(3):262-8. DOI:10.33029/0206-4952-2020-41-3-262-268.

74. Глазун Л.О. Ультразвуковая диагностика инфекционного эндокардита. Здравоохранение Дальнего Востока. 2019;81(3):49-56. 001:10.33454/1728-1261-2019-3-49-56.

75. Щукин Ю.В., Терешина О.В., Рябов А.Е., Ирбахтина И.С., Айдумова О.Ю. Трудности диагностики электродного эндокардита. Российский кардиологический журнал. 2020;25(4):3775. Б01:10.15829/1560-4071-2020-3775.

76. Данилов А.И., Абраменкова Н.Ю., Осипенкова Т.А.. Значение эхокардиографического исследования при диагностике инфекционного эндокардита. Терапия. 2019;6(32):94-9.

77. Дорофеев Е.В. Влияние программы диагностики абсцедирующих форм инфекционного эндокардита на операционную тактику: дисс. к.м.н. -Москва, 2017. - 114 с.

78. Алехин М.Н., Перова Е.Р. Ошибочная диагностика вегетаций на неизмененном аортальном клапане. Ультразвуковая и функциональная диагностика. 2019;(1):45-52. Б01:10.24835/1607-0771-2019-1-45-52.

79. Данилов А.И., Абраменкова Н.Ю., Милягин В.А. Современные методы визуализации поражения клапанного аппарата сердца при инфекционном эндокардите. Трудный пациент. 2019;17(10): 10-12. Б01:10.24411/2074-1995-2019-10068.

80. Сургуцкая М.С., Осипова И.В., Антропова О.Н., Борисова Л.В., Буловитская А.В. Сложность диагностики инфекционного эндокардита при ложно-негативных результатах трансторакальной эхокардиографии. Сибирское медицинское обозрение. 2018;(5):95-8. Б01: 10.20333/25001362018-5-95-98.

81. Бокерия Л.А., Машина Т.В., Голухова Е.З. Трехмерная эхокардиография. М.; 2002.

82. Сокольская Н.О., Савельева Е.М. Современные возможности трехмерной эхокардиографии. Клиническая физиология кровообращения. 2016;13(2):93-101.

83. Нарциссова Г.П., Караськов А.М., Малахова О.Ю. Трехмерная эхокардиография в реальном времени в диагностике пороков сердца. Патология кровообращения и кардиохирургия. 2008;(1):75-78.

84. Binder T. Three-dimensional echocardiography - principles and promises. J Clin Basic Cardiol. 2002; 5(2):149-152.

85. Lang R.M., Tsang W., Weinert L., Mor-Avi V., Chandra S. Valvular heart disease. The value of 3-dimensional echocardiography. J. Am. Coll. Cardiol. 2011;58(19): 1933-44. DOI: 10.1016/j.jacc.2011.07.035.

86. Алехин М.Н., Сидоренко Б.А. Использование в клинической практике трехмерной эхокардиографии в реальном времени. Кардиология. 2008;48(6):4-10.

87. Мильченко М.В., Цеханович В.Н., Сорокина Е.А., Ярославская Е.И., Шохина Л.В., Сартова Е.А. Современные подходы к диагностике инфекционного эндокардита нативных и протезированных клапанов сердца. Омский научный вестник. 2007;53(1):74-81.

88. Hubert S., Thuny F., Resseguier N., Giorgi R., Tribouilloy C., Le Dolley Y., et al. Prediction of symptomatic embolism in infective endocarditis: construction and validation of a risk calculator in a multicenter cohort. J Am Coll Cardiol. 2013;62:1384-92. DOI:10.1016/j.jacc.2013.07.029.

89. García-Cabrera E., Fernández-Hidalgo N., Almirante B., Ivanova-Georgieva R., Noureddine M., Plata A., et al; Group for the Study of Cardiovascular Infections of the Andalusian Society of Infectious Diseases; Spanish Network for Research in Infectious Diseases. Neurological complications of infective endocarditis: risk factors, outcome, and impact of cardiac surgery: a multicenter observational study. Circulation. 2013;127:2272-84. DOI: 10.1161/CIRCULATIONAHA.112.000813.

90. Grob A., Thuny F., Villacampa C., Flavian A., Gaubert J.Y., Raoult D., et al. Cardiac multidetector computed tomography in infective endocarditis: a pictorial essay. Insights Imaging. 2014;5:559-70. D0I:10.1007/s13244-014-0353-1.

91. Feuchtner G.M., Stolzmann P., Dichtl W., Schertler T., Bonatti J., Scheffel H., et al. Multislice computed tomography in infective endocarditis: comparison with transesophageal echocardiography and intraoperative findings. J Am Coll Cardiol. 2009;53:436-44. D0I:10.1016/j.jacc.2008.01.077.

92. Entrikin D.W., Gupta P., Kon N.D., Carr J.J. Imaging of infective endocarditis with cardiac CT angiography. J Cardiovasc Comput Tomogr. 2012;6: 399-405. DOI: 10.1016/j.jcct.2012.10.001.

93. Colen T.W., Gunn M., Cook E., Dubinsky T. Radiologic manifestations of extra-cardiac complications of infective endocarditis. Eur Radiol.2008;18:2433-45. D0I:10.1007/s00330-008-1037-3.

94. Сухова М.Б., Медведев А.П. Ранняя контрастная многосрезовая компьютерная томографическая диагностика септической эмболии легочной артерии и случай успешного хирургического лечения. Вестник рентгенологии и радиологии. 2019;100(5):304-8. D0I:10.20862/ 0042-46762019-100-5-304-308.

95. Абдуллаев Ф.З., Багиров И.М., Гейбатов И.Д., Шихиева Л.С., Самедов Р.Р. Изолированный эндокардит клапана легочной артерии. Грудная и сердечно-сосудистая хирургия. 2019;61(2): 132-6. D01:10.24022/0236-2791 -2019-61-2-132-136.

96. Goddard A.J., Tan G., Becker J. Computed tomography angiography for the detection and characterization of intra-cranial aneurysms: current status. Clin Radiol. 2005;60:1221-36. D0I: 10.1016/j.crad.2005.06.007.

97. Qvarfordt P.G., Reilly L.M., Mark A.S., Goldstone J., Wall S.D., Ehrenfeld W.K., et al. Computerized tomographic assessment of graft

incorporation after aortic reconstruction. Am J Surg. 1985;150:227-31. DOI: 10.1016/0002-9610(85)90125-4.

98. O'Hara P.J., Borkowski G.P., Hertzer N.R., O'Donovan P.B., Brigham S.L., Beven E.G. Natural history of periprosthetic air on computerized axial tomographic examination of the abdomen following abdominal aortic aneurysm repair. J Vasc Surg. 1984;1:429-33. D0I:10.1067/mva.1984.avs0010429.

99. Orton D.F., LeVeen R.F., Saigh J.A., Culp W.C., Fidler J.L., Lynch T.J., et al. Aortic prosthetic graft infections: radiologic manifestations and implications for management. Radiographics 2000;20:977-93. D0I:10.1148/radiographics.20.4.g00jl12977.

100. Williamson M.R., Boyd C.M., Shah H.R. Prosthetic vascular graft infections: diagnosis and treatment. Crit Rev Diagn Imaging. 1989;29:181-213.

101. Rossi P., Arata F.M., Salvatori F.M., Bezzi M., Speziale F., Lauri D., et al. Prosthetic graft infection: diagnostic and therapeutic role of interventional radiology. J Vasc Interv Radiol. 1997;8:271-7.

102. Macedo T.A., Stanson A.W., Oderich G.S., Johnson C.M., Panneton J.M., Tie M.L. Infected aortic aneurysms: imaging findings. Radiology. 2004;231:250-7. DOI: 10.1148/radiol.2311021700.

103. Pham N., Zaitoun H., Mohammed T.L., DeLaPena-Almaguer E., Martinez F., Novaro G.M., et al. Complications of aortic valve surgery: manifestations at CT and MR imaging. Radiographics 2012;32:1873-92. DOI: 10.1148/rg.327115735.

104. Dursun M., Yilmaz S., Yilmaz E., Oflaz H., Dindar A. The utility of cardiac MRI in diagnosis of infective endocarditis: preliminary results. Diagn Intervention Radiol. 2015;21:28-33. DOI:10.5152/dir.2014.14239.

105. Akins E.W., Slone R.M., Wiechmann B.N., Browning M., Martin T.D., Mayfi eld W.R. Perivalvular pseudoaneurysm complicating bacterial endocarditis: MR detection in five cases. Am J Roentgenol 1991;156:1155-58.

106. Vilacosta I., Gomez J. Complementary role of MRI in infectious endocarditis. Echocardiography 1995;12:673-76.

107. Бачурин В.А., Кузьменко Е.А. Место магнитно-резонансной томографии сердца в клинической практике. Медицинский альманах. 2010;(2):69-72.

108. Hoey E.T., Gulati G.S., Ganeshan A., Watkin R.W., Simpson H., Sharma S. Cardiovascular MRI for assessment of infectious and inflammatory conditions of the heart. AJR Am. J. Roentgenol. 2011;197(1): 103-12. D0I:10.2214/AJR.10.5666.

109. Choo W.S., Steeds R.P. Cardiac imaging in valvular heart disease. The British Journal of Radiology. 2011;84:245-257. D0I:10.1259/bjr/54030257.

110. Myerson S.G. Heart valve disease: investigation by cardiovascular magnetic resonance. Journal of Cardiovascular Magnetic Resonance. 2012; 14(7): 1-23. DOI: 10.1186/1532-429X-14-7.

111. Wassmuth R., Schulz-Menger J. Cardiovascular magnetic resonance imaging of myocardial inflammation. Expert Rev Cardiovasc Ther. 2011 ;9(9): 1193-201. DOI: 10.1586/erc. 11.118.

112. Cooper H.A., Thompson E.C., Laureno R., Fuisz A., Mark A.S., Lin M., Goldstein S.A. Subclinical brain embolization in left-sided infective endocarditis: results from the evaluation by MRI of the brains of patients with left-sided intracardiac solid masses (EMBOLISM) pilot study. Circulation. 2009;120:585-91. DOI: 10.1161/CIRCULATI0NAHA.108.834432

113. Okazaki S., Yoshioka D., Sakaguchi M., Sawa Y., Mochizuki H., Kitagawa K. Acute ischemic brain lesions in infective endocarditis: incidence, related factors, and postoperative outcome. Cerebrovasc Dis. 2013;35:155-62. DOI: 10.1159/000346101.

114. Бахарева Ю.С., Чапаева Н.Н. Тромбоэмболический синдром: связь между неинфекционным тромботическим эндокардитом и острым нарушением мозгового кровообращения. Лечебное дело. 2016;(4):40-44.

115. Duval X., Iung B., Klein I., Brochet E., Thabut G., Arnoult F., et al. Effect of early cerebral magnetic resonance imaging on clinical decisions in infective endocarditis: a prospective study. Ann Intern Med. 2010;152:497-504,W175. DOI: 10.7326/0003-4819-152-8-201004200-00006.

116. McAfee J.G, Thakur M.L. Survey of radioactive agents for in vitro labeling of phagocytic leukocytes. I. Soluble agents. J. Nucl. Med. 1976;17(6):480-487.

117. Rennen H.J., Boerman O.C., Oyen W.J. Imaging infection/inflammation in the new millennium. Eur J Nucl Med. 2001;28(2):241-52. DOI: 10.1007/s002590000447.

118. Boerman O.C., Rennen H., Oyen W.J. Radiopharmaceuticals to image infection and inflammation. Semin Nucl Med. 2001;31(4):286-95. DOI:10.1053/snuc.2001.26189.

119. Сазонова С.И., Лишманов Ю.Б. Радиофармпрепараты для сцинтиграфической визуализации очагов воспаления. Медицинская радиология и радационная безопасность.2007;52(4):73-82.

120. Leners N., Ferrant A., Jamar F. Evaluation of two 111In-oxinate formulations for labelling of white blood cells. Int J Rad Appl Instrum. 1991;18(7):727-33.

121. Chianelli M., Mather S. J., Martin-Comin J., et al. Radiopharmaceuticals for the study of inflammatory processes: a review. Nucl Med Commun. 1997;18(5):437-55.

122. Peters A.M., Danpure H.J., Osman S., et al. Clinical experience with 99mTc-hexamethylpropylene-amineoxime for labelling leucocytes and imaging inflammation. 1986;25(2):946-9.

123. Сазонова С.И., Илюшенкова Ю.Н., Лишманов Ю.Б. Современные возможности однофотонной эмиссионной компьютерной томографии в диагностике инфекционного эндокардита. REJR. 2020;10(1): 178—90. DOI: 10.21569/2222-7415-2020-10-1-178-190.

124. deVries E.F., Roca M., Jamar F. Guidelines for the labelling of leucocytes with (99m)Tc-HMPA0. Inflammation/Infection Taskgroup of the European Association of Nuclear Medicine. Eur J Nucl Med Mol Imaging. 2010;37(4):842-8. D0I: 10.1007/s00259-010-1394-4.

125. Roca M., de Vries E.F., Jamar F., Israel 0., Signore A. Guidelines for the labelling of leucocytes with (111)In-oxine. Inflammation/Infection Taskgroup of the European Association of Nuclear Medicine. Eur J Nucl Med Mol Imaging. 2010;37(4):835-41. D0I:10.1007/s00259-010-1393-5.

126. Gomes A., van Geel P.P., Santing M., et al. Imaging infective endocarditis: adherence to a diagnostic flowchart and direct comparison of imaging techniques. J Nucl Cardiol. 2018;27(2):592-608. D0I:10.1007/s12350-018-1383-8.

127. Сазонова С.И. Гамма-сцинтиграфическая визуализация воспалительных поражений сердца: методология и проблемы топической диагностики: дисс. д.м.н. Томск, 2015. 278 с.

128. Petruzzi N., Shanthly N., Thakur M. Semin. Synthesis and experimental study of norfloxacin labeled with technecium-99m as a potential agent for infection imaging. Nucl. Med. 2009;39(2):115-23.

129. Hess S, Alavi A, Werner T, et al. Molecular imaging of bacteria in patients is an attractive fata morgananot a realistic option. J Nucl Med. 2018;59:716-7. D0I:10.2967/jnumed.117.207001.

130. Chen W., Dilsizian V. Molecular Imaging of Cardiovascular Device Infection: Targeting the Bacteria or the Host-Pathogen Immune Response? J Nucl Med. 2020;61(3):319-26. D0I:10.2967/jnumed.119.228304.

131. Sarda L., Cremieux A.C., Lebellec Y., Meulemans A., Lebtahi R., Hayem G., et al. Inability of 99mTc-Ciprofloxacin Scintigraphy to Discriminate Between Septic and Sterile 0steoarticular Diseases. J Nucl Med. 2003; 44 (6): 920-6.

132. Sarma S., Thripathi M., Karba S.K. et al. Prospective evaluation of 99mTc-ciprofloxacin in pyrexia of unknown origin. Eur J Nucl Med. 2005;32(1):53.

133. Jamar F., Buscombe J., Chiti A., Christian P.E., Delbeke D., Donohoe K.J., et al. EANM/SNMMI guideline for 18F-FDG use in inflammation and infection. J Nucl Med 2013;54:647-58. DOI: 10.2967/jnumed.112.112524.

134. Graziosi M., Nanni C., Lorenzini M., Diemberger I., Bonfiglioli R., Pasquale F., et al. Role of 18 F-FDG PET/CT in the diagnosis of infective endocarditis in patients with an implanted cardiac device: a prospective study. Eur J Nucl Med Mol Imaging. 2014;41(8):1617-23. D0I:10.1007/s00259-014-2773-z.

135. Pizzi M.N., Roque A., Fernandez-Hidalgo N., Cuellar-Calabria H., Ferreira-Gonzalez I., Gonzalez-Alujas M.T., et al. Improving the diagnosis of infective endocarditis in prosthetic valves and intracardiac devices with 18F-FDG-PET/CT-angiography: initial results at an infective endocarditis referral center. Circulation. 2015;132(12): 1113-26. DOI: 10.1161 /circulationaha.115.015316.

136. Granados U., Fuster D., Pericas J.M., et al. Diagnostic Accuracy of 18F-FDG PET/CT in Infective Endocarditis and Implantable Cardiac Electronic Device Infection: A Cross-Sectional Study. J Nucl Med. 2016;57:1726-32. DOI: 10.2967/jnumed.116.173690.

137. Pizzi M.N., L. Dos-Subira, Roque A., Fernandez-Hidalgo N., Cuellar-Calabria H., Ferreira-Gonzalez I., Domenech A.P., et al. 18F-FDG-PET/CT-angiography in the diagnosis of infective endocarditis in and cardiac device infection in adult patients with congenital heart disease and prosthetic material. Int J Cardiol. 2017;248:396-402. D0I:10.1016/j.ijcard.2017.08.008.

138. Camargo R.A., Siciliano R.F., Paixao M.R., de Matos A.S., Soares J.Jr., Felicio M.F., et al. Diagnostic value of positron emission tomography (PET CT)

in native and prosthetic infective endocarditis. Eur Heart J. 2017;38(Issue Sul 1): 1010.

139. Шавман М.Г. Количественная оценка миокардиального кровотока и коронарного резерва методом позитронно-эмиссионной томографии с DN-аммонием у пациентов с ИБС: дисс. к.м.н. - Москва, 2019. - 173с.

140. Бокерия Л.А., Асланиди И.П., Шурупова И.В., Гранов А.М., Тютин Л.А., Рыжкова Д.В., Деревянко Е.П., Катунина Т.А., Екаева И.В., Рогова Т.В. Позитронно-эмиссионная томография в кардиологии и сердечнососудистой хирургии. Москва. Национальный научно-практический центр сердечно-сосудистой хирургии имени А.Н. Бакулева. 2010. 236с.

141. Бокерия Л.А., Асланиди И.П., Шурупова И.В., Ключников И.В., Каралкин А.В. Возможности радионуклидных методов в оценке жизнеспособности миокарда у больных ишемической болезнью сердца. Радиационная онкология и ядерная медицина. 2011;(2):55-70.

142. Рыжкова Д.В., Салахова А.Р. Технические основы и клиническое применение позитронной эмиссионной томографии для оценки перфузии миокарда как самостоятельной процедуры в составе гибридных систем. Трансляционная медицины. 2015;2(5): 113-22.

143. Saby L., Laas O., Habib G., Cammilleri S., Mancini J., Tessonnier L., et al. Positron emission tomography/computed tomography for diagnosis of prosthetic valve endocarditis: increased valvular 18F-fluorodeoxyglucose uptake as a novel major criterion. J Am Coll Cardiol. 2013; 61(23): 2374-82. DOI:10.1016/j.jacc.2013.01.092.

144. Balmforth D, Chacko J, Uppal R. Does positron emission tomography/computed tomography aid the diagnosis of prosthetic valve infective endocarditis? Interact Cardiovasc Thorac Surg. 2016;23:648-52. DOI: 10.1093/icvts/ivw177.

145. Millar B.C., Prendergast B.D., Alavi A., Moore J.E. 18FDGpositron emission tomography (PET) has a role to play in the diagnosis and therapy of

infective endocarditis and cardiac device infection. Int J Cardiol. 2013;167:1724-36. DOI: 10.1016/j.ijcard.2012.12.005.

146. Kouijzer I.J.E, Berrevoets M.A.H., Aarntzen E.H.J.G., de Vries J, van Dijk A.P.J., Oyen W.J.G., et al. 18F-fluorodeoxyglucose positron-emission tomography combined with computed tomography as a diagnostic tool in native valve endocarditis. Nucl Med Commun 2018;39:747-52. DOI: 10.1097/MNM.0000000000000864.

147. de Camargo R.A., Bitencourt M.S., Meneghetti J.C., Soares J., Gonçalves L.F.T., Buchpiguel C.A., et al. The role of 18F-FDG-PET/CT in the diagnosis of left-sided endocarditis: native vs. prosthetic valves endocarditis. Clin Infect Dis. 2019;70(4):583-94. D0I:10.1093/cid/ciz267. [Epub ahead of print]

148. Ricciardi A., Sordillo P., Ceccarelli L., Maffongelli G., Calisti G., Di Pietro B., et al. 18-Fluoro-2-deoxyglucose positron emission tomography-computed tomography: an additional tool in the diagnosis of prosthetic valve endocarditis. Int J Infect Dis. 2014;28:219-24. D0I:10.1016/j.ijid.2014.04.028

149. Kestler M., Muñoz P., Rodríguez-Créixems M., Rotger A., Jimenez-Requena F., Mari A., et al. Role of (18)F-FDG PET in Patients with Infectious Endocarditis. J Nucl Med. 2014;55:1093-98. D0I:10.2967/jnumed.113.134981.

150. Salomaki S.P., Saraste A., Kemppainen J., Bax J.J., Knuuti J., Nuutila P., et al. 18F-FDG positron emission tomography/computed tomography in infective endocarditis. J Nucl Cardiol. 2017;24(1):195-206. D0I:10.1007/s12350-015-0325-y

151. Sarrazin J.F., Philippon F., Tessier M., Guimond J., Molin F., Champagne J. et al. Usefulness of fluorine-18 positron emission tomography/computed tomography for identification of cardiovascular implantable electronic device infections. J Am Coll Cardiol. 2012;59:1616-25. D0I:10.1016/j.jacc.2011.11.059.

152. Juneau D., Golfam M., Hazra S., Zuckier L.S., Garas S., Redpath C. Positron Emission Tomography and Single-Photon Emission Computed Tomography Imaging in the Diagnosis of Cardiac Implantable Electronic Device Infection. A systematic review and meta-analysis. Circ Cardiovasc Imaging. 2017; 10(4):e005772. D01:10.1161/circimaging.116.005772.

153. Cautela J., Alessandrini S., Cammilleri S., Giorgi R., Richet H., Casalta J.P., et al. Diagnostic yield of FDG positron-emission tomography/ computed tomography in patients with CIED infection: a pilot study. Europace. 2013;15:252-7. D0I:10.1093/europace/eus335.

154. Bensimhon L., Lavergne T., Hugonnet F., Mainardi J.L., Latremouille C., Maunoury C., et al. Whole body [(18) F] fluorodeoxyglucose positron emission tomography imaging for the diagnosis of pacemaker or implantable cardioverter defibrillator infection: a preliminary prospective study. Clin Microbiol Infect. 2011;17:836-44. D0I:10.1111/j.1469-0691.2010.03312.x.

155. Ahmed F.Z., James J., Cunnington C., Motwani M., Fullwood C., Hooper J. Early diagnosis of cardiac implantable electronic device generator pocket infection using 18F-FDG-PET/CT. Eur Heart J Cardiovasc Imaging. 2015;16:521-30. D0I:10.1093/ehjci/jeu295.

156. Mahmood M., Kendi A.T., Farid S., Ajmal S., Johnson G.B., Baddour L.M., et al. Role of 18F-FDG PET/CT in the diagnosis of cardiovascular implantable electronic device infections: a metaanalysis. J Nucl Cardiol 2017;26(3):958-70. D0I:10.1007/s12350-017-1063-0.

157. Fagman E., van Essen M., Freden Lindqvist J., Snygg-Martin U., Bech-Hanssen 0., Svensson G. 18F-FDG PET/CT in the diagnosis of prosthetic valve endocarditis. Int J Cardiovasc Imaging. 2015;32:679-86. D0I:10.1007/s10554-015-0814-8.

158. Ploux S., Riviere A., Amraoui S., Whinnett Z., Barandon L., Lafitte S., et al. Positron emission tomography in patients with suspected pacing system

infections may play a critical role in difficult cases. Heart Rhythm. 2011;8:1478-81. DOI:10.1016/j.hrthm.2011.03.062.

159. Scholtens A.M., Verberne H.J., Budde R.P., Lam M.G.E.H. Additional heparin preadministration improves cardiac glucose metabolism suppression over low-carbohydrate diet alone in 18F-FDG PET imaging. J Nucl Med 2016;57:568-73. DOI: 10.2967/jnumed.115.166884.

160. Бокерия Л.А., Вахромеева М.Н., Клюева А.Ф. и соавт. Диагностика жизнеспособного миокарда по данным позитронной эмиссионной томографии при отборе больных ишемической болезнью сердца на трансмиокардиальную лазерную реваскуляризацию. Грудная и сердечнососудистая хирургия. 2003;(1):18-22.

161. Бокерия Л.А., Асланиди И.П., Шурупова И.В., Ключников И.В., Каралкин А.В. Возможности радионуклидных методов в оценке жизнеспособности миокарда у больных ишемической болезнью сердца. Радиационная онкология и ядерная медицина. 2011;(2):55-70.

162. Рыжкова Д.В. Позитронная эмиссионная томография в комплексной диагностике ишемической болезни сердца: дисс. д.м.н. -Санкт-Петербург, 2008. - 342 с.

163. Knuuti M.J., Nuutila P., Ruotsalainen U., Saraste M., Harkonen R., Ahonen A., et al. Euglycemic and hyperinsulinemic clamp and oral glucose load in stimulating glucose myocardial utilization during positron emission tomography. J Nucl Med. 1992;33:1255-62.

164. Aguade B.S., Roque P.A., Cuellar C.H., Pizzi M.N. Cardiac 18F-FDG PET/CT procedure for the diagnosis of prosthetic endocarditis and intracardiac devices. Rev Esp Med Nucl Imagen Mol. 2018;37:163-71. DOI:10.1016/j.remn.2018.01.002.

165. Scholtens A.M., Swart L.E., Verberne H.J., Tanis W., Lam M.G.E.H., Budde R.P.G. Confounders in FDG-PET/CT imaging of suspected prosthetic

valve endocarditis. JACC Cardiovasc Imaging 2016;9:1462-5. D01:10.1016/j.jcmg.2016.01.024.

166. Leccisotti L., Perna F., Lago M., Leo M., Stefanelli A., Calcagni M.L., et al. Cardiovascular implantable electronic device infection: delayed vs standard FDG PET-CT imaging. J Nucl Cardiol. 2014;21:622-32. D0I:10.1007/s12350-014-9896-2.

167. Chang C.Y., Chang C.P., Shih C.C., Yang B.H., Cheng C.Y., Chang C.W., et al. Added value of dual-time-point 18F-FDG PET/CT with delayed imaging for detecting aortic graft infection: an observational study. Medicine (Baltimore) 2015;94:e1124.

168. Mathieu C., Mikail N., Benali K., Iung B., Duval X., Nataf P., et al. Characterization of 18F-fluorodeoxyglucose uptake pattern in noninfected prosthetic heart valves. Circ Cardiovasc Imaging. 2017;10:e005585. D0I:10.1161/CIRCIMAGING.116.005585.

169. Mahmood M., Kendi A.T., Ajmal S., Saira F., O'Horo J.C., Chareonthaitaweeet P., et al. Meta-analysis of 18F-FDG PET/CT in the diagnosis of infective endocarditis. J Nucl Cardiol. 2017;26(3):922-35. D0I:10.1007/s12350-017-1092-8.

170. Amraoui S., Tlili G., Sohal M., Berte B., Hindié E., Ritter P. Contribution of PET Imaging to the Diagnosis of Septic Embolism in Patients with Pacing Lead Endocarditis. JACC Cardiovasc Imaging. 2016;9(3):283-90. D0I:10.1016/j.jcmg.2015.09.014.

171. Jimenez-Ballve A., Perez-Castejon M.J., Delgado-Bolton R.C., Sánchez-Enrique C., Vilacosta I., Vivas D., et al. Assessment of the diagnostic accuracy of 18F-FDG PET/CT in prosthetic infective endocarditis and cardiac implantable electronic device infection: comparison of different interpretation criteria. Eur J Nucl Med Mol Imaging 2016;43:2401-12. D0I:10.1007/s00259-016-3463-9.

172. Memmott M.J., James J., Armstrong I.S., Tout D., Ahmed F. The performance of quantitation methods in the evaluation of cardiac implantable electronic device (CIED) infection: A technical review. J Nucl Cardiol. 2016;23:1457-66. DOI: 10.1007/s12350-015-0106-7.

173. Hess S., Hansson S.H., Pedersen K.T., Basu S., H0ilund-Carlsen P.F. FDG-PET/CT in Infectious and Inflammatory Diseases. PET Clin. 2014. DOI: 10.1016/j.cpet.2014.07.002.

174. Adams M.C., Turkington T.G., Wilson J.M., Wong T.Z. A systematic review of the factors affecting accuracy of SUV measurements. AJR Am J Roentgenol. 2010;195(2):310-20. DOI:10.2214/AJR.10.4923.

175. Абдурахманов Д.Т., Абузарова Г.Р., Агеева Т.А., Алексеев С.М., Аль-Ради Л.С., Асланиди И.П., и др. Российские клинические рекомендации по диагностике и лечению лимфопролиферативных заболеваний. - Москва, 2018г. - 356с.

176. Bruggink J.L., Glaudemans A.W., Saleem B.R., Meerwaldt R., Alkefaji H., Prins T.R., et al. Accuracy of FDG-PET-CT in the diagnostic work-up of vascular prosthetic graft infection. Eur J Vasc Endovasc Surg. 2010;40:348-54. DOI:10.1016/j.ejvs.2010.05.016.

177. Saleem B.R., Berger P., Vaartjes I., de Keizer B., Vonken E.J., Slart R.H., et al. Modest utility of quantitative measures in (18)F-fluorodeoxyglucose positron emission tomography scanning for the diagnosis of aortic prosthetic graft infection. J Vasc Surg.2015;61:965-71. DOI:10.1016/j.jvs.2014.11.005.

178. Berger P., Vaartjes I., Scholtens A., Moll F.L., De Borst G.J., De Keizer B., et al. Differential FDG-PET uptake patterns in uninfected and infected central prosthetic vascular grafts. Eur J Vasc Endovasc Surg. 2015;50:376-83. DOI:10.1016/j.ejvs.2015.06.007.

179. Sah B.R., Husmann L., Mayer D., Scherrer A., Rancic Z., Puippe G., et al. Diagnostic performance of 18F-FDG-PET/CT in vascular graft infections. Eur J Vasc Endovasc Surg 2015;49:455-64. DOI:10.1016/j.ejvs.2014.12.024.

180. Husmann L., Huellner M.W., Ledergerber B., Anagnostopoulos A., Stolzmann P., Sah B.R., et al. Comparing diagnostic accuracy of (18)F-FDG-PET/CT, contrast enhanced CT and combined imaging in patients with suspected vascular graft infections. Eur J Nucl Med Mol Imaging. 2018;46(6): 1359-68. DOI: 10.1007/s00259-018-4205-y.

181. Kim S.J., Lee S.W., Jeong S.Y., Pak K., Kim K. A systematic review and meta-analysis of (18)F-fluorodeoxyglucose positron emission tomography or positron emission tomography/computed tomography for detection of infected prosthetic vascular grafts. J Vasc Surg. 2019;70:30713. D0I:10.1016/j.jvs.2019.01.051.

182. Einspieler I., Mergen V., Wendorff H., Haller B., Eiber M., Schwaiger M., et al. (in press) Diagnostic performance of quantitative and qualitative parameters for the diagnosis of aortic graft infection using [18F]-FDG PET/CT. J Nucl Cardiol. 2020 Jan 6. D0I:10.1007/s12350-019-02011-4. Online ahead of print.

183. Fukuchi K., Ishida Y., Higashi M., Tsunekawa T., Ogino H., Minatoya K., et al. Detection of aortic graft infection by fluorodeoxyglucose positron emission tomography: comparison with computed tomographic findings. J Vasc Surg. 2005;42:919-25. D0I:10.1016/j.jvs.2005.07.038.

184. Guenther S.P., Cyran C.C., Rominger A., Saam T., Kazmierzcak P.M., Bagaev E., et al. The relevance of 18F-fluorodeoxyglucose positron emission tomography/computed tomography imaging in diagnosing prosthetic graft infections post cardiac and proximal thoracic aortic surgery. Interact Cardiovasc Thorac Surg. 2015;21:450-8. D0I:10.1093/icvts/ivv178.

185. Keidar Z., Engel A., Hoffman A., Israel O., Nitecki S. Prosthetic vascular graft infection: the role of 18F-FDG PET/CT. J Nucl Med. 2007;48:1230-6. DOI: 10.2967/jnumed.107.040253.

186. Reinders F.E.I., Von Meijenfeldt G.C.I., Van der Laan M.J., Glaudemans A.W.J.M., Slart R.H.J.A., Saleem B.R., et al. Diagnostic imaging

in vascular graft infection: A systematic review and metaanalysis. Eur J Vasc Endovasc Surg 2018;56:719-29. D01:10.1016/j.ejvs.2018.07.010.

187. Treglia G., Riemer Slart H.A., Andor W. J. M. Glaudemans. Diagnostic performance and image interpretation of 18F-FDG PET/CT in aortic graft infection: Two sides of the same coin. J Nucl Cardiol. 2020. DOI: 10.1007/s12350-020-02029-z. Online ahead of print.

188. Rojoa D., Kontopodis N., Antoniou S.A., Ioannou C.V., Antoniou G.A. 18F-FDG PET in the diagnosis of vascular prosthetic graft infection: A diagnostic test accuracy meta-analysis. Eur J Vasc Endovasc Surg. 2019;57:292-301. D0I:10.1016/j.ejvs.2018.08.040.

189. van den Hoff J., Lougovski A., Schramm G., Maus J., Oehme L., Petr J., et al. Correction of scan time dependence of standard uptake values in oncological PET. EJNMMI Res. 2014;4:18.

190. Sorensen M., Mikkelsen K.S., Frisch K., Bass L., Bibby B.M., Keiding S. Hepatic galactose metabolism quantified in humans using 2- 18F-fluoro-2-deoxy-D-galactose PET/CT. J Nucl Med. 2011;52:1566-72. DOI: 10.2967/jnumed.111.092924.

191. Szopa I.G.K., d'Amico A., Jarza^b B. Is there a necessity of Standard Uptake Value correction in liver reference level? In: Do'ssel O, Schlegel WC, editors. World Congress on Medical Physics and Biomedical Engineering, September 7-12, 2009, Munich, Germany. Berlin: Springer; 2009:627-9

192. Orvin K., Goldber E., Bernstine H., Groshar D3, Sagie A4, Kornowski R, et al. The role of FDG-PET/CT imaging in early detection of extracardiac complications of infective endocarditis. Clin Microbiol Infect. 2015;21:69-76. DOI:10.1016/j.cmi.2014.08.012.

193. Van Riet J., Hill E.E., Gheysens O., Dymarkowski S., Herregods M.C., Herijgers P., et al. (18)F-FDG PET/CT for early detection of embolism and metastatic infection in patients with infective endocarditis. Eur J Nucl Med Mol Imaging. 2010;37:1189-97. DOI:10.1007/s00259-010-1380-x.

194. Mikail N., Benali K., Mahida B., Vigne J., Hyafil F., Rouzet F., et al. 18F-FDG-PET/CT Imaging to diagnose septic emboli and mycotic aneurysms in patients with endocarditis and cardiac device infections. Curr Cardiol Rep. 2018;20:14. DOI: 10.1007/s11886-018-0956-0.

195. Третьякова Н.А., Суханин В.С., Вдовушкина Т.А. Спондилит как осложнение перенесенного уросепсиса и инфекционного эндокардита (клиническое наблюдение). РМЖ. 2020;8:37-40.

196. Hariri H, Tan S, Martineau P, et al. Utility of FDG-PET/CT for the detection and characterization of sternal wound infection following sternotomy. Nucl Med Mol Imaging. 2019;53(4):253-62. D0I:10. 1007/s13139-019-00599-6.

197. Sohail M.R., Uslan D.Z., Khan A.H., Friedman P.A., Hayes D.L., Wilson W.R., et al. Risk factor analysis of permanent pacemaker infection. Clin Infect Dis. 2007;45:166-73. D0I:10.1086/518889.

198. Sinan U.Y., Dirlik Serim B., Yildrnm R., Çetinarslan O., Kucukoglu M.S. Endarteritis of coarctation of the aorta diagnosed with PET-CT. Turk Kardiyol Dern Ars. 2018;46:66-8. DOI:. 10.5543/tkda.2017.68246.

199. Braquet P., Baptista G., Ilonca D.A., Roubille F., Le Moing V., Jeandel C., et al. FDG-PET in a myocardial tuberculoma. Age Ageing. 2015;44:173-4. DOI: 10.1093/ageing/afu147.

200. Litmathe J., Fussen R., Heinzel A., Müller M., Sucker C., Tewarie L., et al. An unusual agent for an unusual localization of infective endocarditis. Perfusion. 2017;32:691-4. DOI:10.1177/0267659117712406.

201. von Olshausen G., Hyafil F., Langwieser N., Laugwitz K.L., Schwaiger M., Ibrahim T. Detection of acute inflammatory myocarditis in Epstein Barr virus infection using hybrid 18F-fluoro-deoxyglucose positron emission tomography/magnetic resonance imaging. Circulation. 2014;130:925-6. DOI: 10.1161/CIRCULATIONAHA.114.011000.

202. Sperry B.W., Oldan J.D., Hsich E.M., Reynolds J.P., Tamarappoo B.K. Infectious myocarditis on FDG-PET imaging mimicking sarcoidosis. J Nucl Cardiol. 2015;22:840-4. D01:10.1007/s12350-015-0160-1.

203. Roosens B., Argacha J.F., Soens L., Ilsen B., Cosyns B. Left ventricuar pseudo-aneurysm as a source of recurrent septicaemia. Eur Heart J Cardiovasc Imaging. 2017;18:94. D0I:10.1093/ehjci/jew140.

204. Zhang Y., Williams H., Pucar D. FDG-PET identification of infected pulmonary artery conduit following tetralogy of Fallot (TOF) repair. Nucl Med Mol Imagng. 2017;51:86-7. D0I:10.1007/s13139-016-0424-y.

205. Bonou M., Kapelios C.J., Samarkos M., Benetos G., Tampaki M., Pianou N., et al. Early diagnosis of right ventricle-pulmonary artery conduit endocarditis by PET/CT. Int J Infect Dis. 2018;68:24-5. DOI: 10.1016/j.ijid.2017.12.020.

206. Dell'Aquila A.M., Avramovic N., Mastrobuoni S., Motekallemi A., Wisniewski K., Scherer M., et al. Fluorine-18 fluorodeoxyglucose positron emission tomography/computed tomography for improving diagnosis of infection in patients on CF-LVAD: onging for more 'insights'. Eur Heart J Cardiovasc Imaging. 2018;19:532-43. D0I:10.1093/ehjci/jex158.

207. Akin S., Muslem R., Constantinescu A.A., Manintveld O.C., Birim O., Brugts J.J., et al. 18F-FDG PET/CT in the diagnosis and managemeof continuous flow left ventricular assist device infections: a case series and review of the literature. ASAIO J. 2018;64:e11-9. DOI: 10.1097/MAT.0000000000000552.

208. Kim J., Feller E.D., Chen W., Liang Y., Dilsizian V. FDG PET/CT for early detection and localization of left ventricular assist device infection: impact on patient management and outcome. JACC Cardiovasc Imaging. 2018;12(4):722-729. DOI:10.1016/j.jcmg.2018.01.024.

209. de Vaugelade C., Mesguich C., Nubret K., Camou F., Greib C., Dournes G., et al. Infections in patients using ventricular-assist devices: comparison of

the diagnostic performance of 18F-FDG PET/CT scan and leucocyte-labeled scintigraphy. J Nucl Cardiol. 2018;26(1):42-55. D01:10.1007/s12350-018-1323-7.

210. Kanapinn P., Burchert W., Ko'rperich H., Korfer J. 18F-FDG PET/CT-imaging of left ventricular assist device infection: a retrospective quantitative intrapatient analysis. J Nucl Cardiol. 2018;6(4):1212-21. D0I:10.1007/s12350-017-1161-z.

211. Калинин Д.А., Михайлов Е.Н., Рыжкова Д.В., Гиндин К.Г., Гуреев С.В., Коношкова Р.Л., и соавт. Трудности диагностики при ассоциированном с инфекцией электродов электрокардиостимулятора сепсисе в пожилом возрасте: роль позитронной эмиссионной томографии. Вестник аритмологии. 2019;26(2):55-7. D0I:10.35336/VA-2019-2-55-57.

212. Tlili G, Amraoui S., Mesguich C., Rivière A., Bordachar P., Hindié E., et al. High performances of (18)F-fluorodeoxyglucose PET-CT in cardiac implantable device infections: A study of 40 patients. J Nucl Cardiol. 2015;22(4):787-98. D0I:10.1007/s12350-015-0067-x.

213. Кокоев М.Б., Мироненко В.А., Рычин С.В., Косарева Т.И., Умаров В.М., Гарманов С.В. Случай инфицирования синтетического кондуита восходящей аорты при интактном механическом протезе аортального клапана после операции Бенталла-Де Боно. Бюллетень НЦССХ им. А.Н. Бакулева РАМН. Сердечно-сосудистые заболевания. 2016;17(S3):30.

214. Scholtens A.M. 18F-Fluorodeoxyglucose PET/Computed Tomography in Endocarditis. PET Clin. 2020;15(2):187-95. D0I:10.1016/j.cpet.2019.11.003.

215. Spacek M., Belohlavek 0., Votrubova J., Sebesta P., Stadler P. Diagnostics of "non-acute" vascular prosthesis infection using 18F-FDG PET/CT: our experience with 96 prostheses. Eur J Nucl Med Mol Imaging. 2009;36:850-8. D0I:10.1007/s00259-008-1002-z.

216. Arnaoutoglou E., Kouvelos G., Koutsoumpelis A., Patelis N., Lazaris A., Matsagkas M. An update on the infammatory response after endovascular repair

for abdominal aortic aneurysm. Mediat Infamm. 2015. DOI: 10.1155/2015/945035.

217. Morris M., Chen W. 18F-FDG PET/CT for cardiac implantable electronic device infection. Appl Radiol. 2017;46(6):16-9.

218. Zogala D., Rucka D., Ptacnik V., Cerny V., Trnka J., Varejka P., et al. How to recognize stent graft infection after endovascular aortic repair: the utility of 18F- FDG PET/CT in an infrequent but serious clinical setting. Annals of Nuclear Medicine. 2019;33:594-605. DOI: 10.1007/s12149-019-01370-9.

219. Tanis W, Scholtens A., Habets J., van den Brink R.B.A., van Herwerden L.A., Chamuleau S.A.J., et al. CT angiography and (1)(8)F-FDG-PET fusion imaging for prosthetic heart valve endocarditis. JACC Cardiovasc Imaging. 2013;6(9):1008-13. D0I:10.1016/j.jcmg.2013.07.004.

220. Roque A., Pizzi M.N., Cuellar-Calabria H., Aguade-Bruix S. 18F-FDG-PET/CT angiography for the diagnosis of infective endocarditis. Curr Cardiol Rep. 2017;19(2):15. DOI: 10.1007/s11886-017-0824-3.

221. Hariri H., Tan S., Martineau P., Lamarche Y., Carrier M., Finnerty V., et al. Utility of FDG-PET/CT for the detection and characterization of sternal wound infection following sternotomy. Nucl Med Mol Imaging. 2019;3(4):253-62. DOI: 10.1007/s13139-019-00599-6.

222. Hickeson M., Abikhzer G. Review of physiologic and pathophysiologic sources of fluorodeoxyglucose uptake in the chest wall on PET. PET Clin. 2011;6:339-64. DOI:10.1016/j.cpet.2011.04.004.

223. Rosenbaum S.J., Lind T., Antoch G., Bockisch A. False-positive FDG PET uptake-the role of PET/CT. Eur Radiol. 2006;16:1054-65. DOI: 10.1007/s00330-005-0088-y.

224. Osborne M.T., Hulten E.A., Murthy V.L., Skali H., Taqueti V.R., Dorbalaet S., et al. Patient preparation for cardiac fluorine-18 fluorodeoxyglucose positron emission tomography imaging of inflammation. J Nucl Cardiol. 2017;24(1):86-99. DOI:10.1007/s12350-016-0502-7.

225. Kumita S., Yoshinaga K., Miyagawa M., Momose M., Kiso K., Kasaiet T., et al. Recommendations for (18)F-fluorodeoxyglucose positron emission tomography imaging for diagnosis of cardiac sarcoidosis-2018 update: Japanese Society of Nuclear Cardiology recommendations. J Nucl Cardiol. 2019;26(4): 1414-33. DOI:10.1007/s12350-019-01755-3.

226. Scholtens A.M., Swart L.E., Verberne H.J., Budde R.P.J., Lam M.G.E.H. Dual-time-point FDG PET/CT imaging in prosthetic heart valve endocarditis. J Nucl Cardiol. 2017;25(6):1960-7. D0I:10.1007/s12350-017-0902-3

227. Schouten L.R., Verberne H.J., Bouma B.J., Mulder B.J.M. Surgical glue for repair of the aortic root as a possible explanation for increased F-18 FDG uptake. J Nucl Cardiol 2008;15:146-7. D0I:10.1016/j.nuclcard.2007.11.009.

228. Gupta A., Madani R., Mukhtar H. Streptococcus bovis endocarditis, a silent sign for colonic tumour. Colorectal Dis. 2010;12:164-71. D0I:10.1111/j.1463-1318.2009.01814.x.

229. Diemberger I., Bonfiglioli R., Martignani C., Graziosi M., Biffi M., Lorenzetti S., et al. Contribution of PET imaging to mortality risk stratification in candidates to lead extraction for pacemaker or defibrillator infection: a prospective single center study. Eur J Nucl Med Mol Imaging. 2019;46(1):194-205. DOI: 10.1007/s00259-018-4142-9.

230. García J.R., Fortunyb C., Riazac L., Solera M., Bassaa P., Rieraa E.. Diagnóstico mediante 18F-FDG PET/TC de endocarditis infecciosa, estadificación y monitorización de tratamiento antibiótico tras transposición de grandes vasos corregida quirúrgicamente. Rev Esp Med Nucl Imagen Mol. 2015;35(2):115-7. D0I:10.1016/j.remn.2015.10.007.

231. Scholtens A.M., van Aarnhem E.E.H.L., Budde R.P. Effect of antibiotics on FDG-PET/CT imaging of prosthetic heart valve endocarditis. 2015;16(11): 1223. doi: 10.1093/ehjci/jev186.

ПРИЛОЖЕНИЯ

Приложение 1 Памятка для пациента Методика подготовки пациентов к проведению ПЭТ/КТ исследования всего тела с 18Г-фтордезоксиглюкозой при подозрении на инфекционные процессы в сердце и сосудах

Дата _

(дата, день недели, время)

В случае госпитализации предупредить лечащего врача о планируемом исследовании!

Подготовка к исследованию

1. Строгая безуглеводная диета за 48 часов до исследования:

(дни недели)

НЕЛЬЗЯ: МОЖНО:

мучные и хлебобулочные изделия, мясо, рыба, курица, яйца, грибы,

макароны, крекеры, конфеты, все молочные изделия без сахара и

крупы (рис, гречка, овсянка), добавок (сыр, творог, кефир,

колбасные изделия, ВСЕ фрукты, йогурты), чистая питьевая вода (не

овощи (картофель, свекла, морковь, сладкая и не газированная), черный

помидоры, кукуруза), соусы, кофе и чай без сахара

приправы, искусственные

подсластители, жевательные резинки, соки

отменить внутривенное введение препаратов, содержащих раствор глюкозы!

2. Прекратить прием пищи за 15 часов до исследования:

накануне после 18:00 и в день исследования разрешается пить только чистую питьевую воду (не сладкую и не газированную)

3. В день исследования:

взять с собой 1 литр воды (несладкой и негазированной);

одеться в удобную, теплую одежду без металлических элементов (молний,

пуговиц, заклепок и т.д.).

Методика проведения ПЭТ/КТ исследования всего тела с 18Р-ФДГ при подозрении на инфекционные процессы в сердце и сосудах

• В день исследования проводится сбор анамнеза по заболеванию, на наличие аллергических реакций, заболеваний щитовидной железы и почек. Пациенты подписывают информированное согласие с порядком проведения исследования и сопряженной с ним лучевой нагрузкой;

• после беседы с врачом пациент находится в комнате ожидания для больных, где принимает удобное положение, закрывает глаза и максимально расслабляется - период релаксации составляет 40-60 минут до введения РФП, затем продолжается до начала сканирования;

• для достижения адекватной гидратации перед введением РФП в течение 30-60 минут пациент пьет воду (800-1200 мл в зависимости от веса) и ходит в туалет;

• после гидратации проводится определение уровня глюкозы в крови

18

и введение F-ФДГ в кубитальную вену через предварительно установленный катетер с последующим введением 10-15 мл физиологического раствора. Количество вводимого РФП (по активности) рассчитывается в зависимости от площади поверхности тела пациента (роста и веса) и находится в диапазоне от 170 до 220 МБк (в среднем 195 МБк);

• одновременно с РФП для достижения адекватной дегидратации при отсутствии противопоказаний внутривенно вводится 20-40 мг лазикса;

• пациент возвращается в комнату ожидания и продолжает расслабляться, сидя в удобной позе, закрыв глаза, при необходимости ходит в туалет - происходит распределение РФП в организме;

• через 90 минут после введения РФП после опорожнения мочевого пузыря выполняется сканирование по протоколу в режиме обследования «всего тела» от уровня глазниц до верхней трети бедра, в положении пациента лежа на спине с поднятыми руками и продолжается 21-27 минут; по клиническим показаниям протокол расширяется с включением в сканирование нижних конечностей;

• протокол сканирования. 1) топограмма в прямой проекции для определения области интереса; 2) низкодозное КТ-сканирование (170 тА, 120 кУ, FOV 700 мм, с толщиной среза 5,0 мм и перекрытием срезов 3,0 мм); 3) ПЭТ-сканирование в режиме 3D: сбор данных осуществляется в статическом режиме при 7-8 последовательных перемещениях диагностического стола относительно гентри (3-х минутные сканы для каждого положения стола сканера); коррекция атеннуации ПЭТ-данных (коррекция эмиссионных данных на поглощение и рассеивание излучения окружающими тканями) осуществляется по данным КТ;

*4) при расширении протокола проводится высокодозное КТ-сканирование области сердца с ЭКГ-синхронизацией и болюсным внутривенным контрастированием с введением 90 мл йод-содержащего контрастного вещества со скоростью 5,0 мл/с и такого же объема 0,9% раствора натрия хлорида; для адекватного сопоставления полученных изображений с ПЭТ-опцией пациент делает неглубокий вдох с целью минимизации подъема грудной клетки;

• после завершения сканирования пациент проводится в комнату ожидания, врач предварительно оценивает полученные результаты; при необходимости после основного сканирования требуется проведение короткого дополнительного сканирования области интереса (3-6 минут), которое выполняется примерно через час.

Методика интерпретации результатов ПЭТ/КТ с 18Р-ФДГ при подозрении на инфекционные процессы в сердце и сосудах

Обработка результатов сканирования осуществляется на базе многофункциональной рабочей станции с использованием стандартного пакета программного обеспечения. Интерпретация ПЭТ/КТ изображений проводится с использованием визуального (качественного), количественного и полуколичественного методов оценки.

Визуальный анализ:

• проводится по виртуальному трехмерному ПЭТ-изображению, а также по всем трем типам изображений (КТ, ПЭТ и фузионированному ПЭТ/КТ), каждый из которых анализируется в трех проекциях (коронарной, трансаксиальной и сагиттальной); для оценки фузионированного изображения рекомендуется использовать фильтр «Warm metal 16 bit»;

• первоначально оценивается качество полученного изображения, для его улучшения осуществляется отсечка тканевого фона; анализируются особенности физиологического распределения ^F-ФДГ и интенсивность накопления РФП в отдельных органах; оценивается степень блокировки физиологического накопления ^F-ФДГ в миокарде (интенсивное накопление, фрагментарное накопление, полная блокировка); очаги повышенного накопления РФП (гиперметаболизма), не связанные с его физиологическим распределением, расцениваются как патологические;

• у пациентов с наличием высокоплотностных материалов - ПК, ИЭВСУ и СП для исключения артефактов, связанных с реконструкцией изображения проводится анализ двух типов ПЭТ-изображений - с коррекцией атеннуации и без коррекции атеннуации; за положительный результат (наличие инфекционного процесса по данным ПЭТ/КТ) принимается патологическое накопление ^F-ФДГ в зоне интереса, определяющееся на двух указанных типах изображений;

• оценивается характер накопления ^F-ФДГ на изображениях с коррекцией атеннуации - фрагментарный или диффузный, а также его интенсивность, по сравнению с фоновым накоплением в прилежащих структурах; для инфекционного процесса более характерно фрагментарное накопление РФП высокой интенсивности.

Количественный анализ используется для характеристики патологических структур, выявленных по КТ-данным. По трансаксиальным срезам в двух взаимно перпендикулярных плоскостях оцениваются размеры (мм) выявленных изменений, а также их плотность (Ни). Результаты количественной оценки сопоставляются с данными ПЭТ. При расширении протокола ПЭТ/КТ-исследования с выполнением высокодозной КТ с внутривенным контрастированием на вдохе для точного сопоставления КТ- и ПЭТ-данных фузионирование выполняется в ручном режиме.

Полуколичественный анализ:

• проводится с расчетом индекса накопления РФП в патологическом очаге, который определялся как соотношение значений БИУтах в зоне интереса к среднему БИУтеап в референтной зоне; для каждой зоны интереса целесообразно использовать определенную референтную зону: . по пулу крови в аорте для протеза клапана (пороговое значение 2,05) и электронного внутрисердечного устройства (1,75); у пациентов с ИЭВСУ индекс накопления по аорте измеряется и рассчитывается для каждого из отделов электродов: по ходу экстра- (1,85) и интракардиальных (1,7) отделов электродов; оценка ложа ИЭВСУ высокоинформативна по данным визуального анализа, поэтому проведение дополнительной полуколичественной оценки нецелесообразно; . по паренхиме печени для нативного клапана (1,25); . по паренхиме легких для сосудистого протеза (13,25).

• в нисходящей аорте зона интереса выделяется на уровне бифуркации трахеи; для исключения повышенного накопления, связанного с атеросклеротическими изменениями, очерчивание проводится без захвата сосудистой стенки;

• в паренхиме печени и легких зона интереса очерчивается с учетом отсутствия структурных изменений по данным КТ.

Алгоритм интерпретации результатов ПЭТ/КТ с 18F-ФДГ при подозрении на инфекционные процессы в сердце и сосудах

*ИН - индекс накопления

Образец протокола описания ПЭТ/КТ всего тела с ^F-ФДГ при подозрении на инфекционные процессы в сердце и сосудах

Ф.И.О. Л. (Клинический пример 11) Год рождения / возраст: 19 г. / л. Пол: ж. Вид исследования: позитронно-эмиссионная томография, совмещенная

с мультисрезовой спиральной компьютерной томографией

Название прибора: Biograph- 64, «Siemens» Режим сканирования: 3D Препарат, активность: ^F-ФДГ, 185 МБк, внутривенно Эффективная доза: 8,7 мЗв Сахар крови: 4,6 ммоль/л

Подготовка: 1000 мл 3% раствора ксенетикса per os + 1,0 мл лазикса в/в Исследование выполнено: через 90 минут после введения препарата Дата исследования: 12.04.2018г.

Исследование проведено по поводу подозрения на инфекционный эндокардит, состояние после многокурсовой антибактериальной терапии (завершена 01.04.2018г.);

в анамнезе состояние после радикальной коррекции Тетрады Фалло в 1989г., протезирования аортального клапана в 2009г., имплантации двухкамерного ЭКС в 2010г. и реимплантации ЭКС в 09.2017г.;

подъемы температуры тела до 380С с 10.10.2017г.; результаты Эхо-КГ и чреспищеводной Эхо-КГ от 03.04.2018г. отрицательные, многократные посевы крови в 01-03.2018г. стерильные.

На серии томограмм всего тела (от уровня глазниц до верхней трети бедра) определяется патологическое накопление 18Б-ФДГ (сохраняются на изображениях с коррекцией атеннуации):

- фрагментарно в области протеза аортального клапана, наиболее выраженное в области левой коронарной створки (SUVmax = 3.4 при SUVmean в нисходящей аорте = 1.4; индекс накопления = 2.4);

- фрагментарно по ходу электрода в полости правого желудочка (SUVmax = 2.7; индекс накопления = 1.9); по ходу других отделов электрода без признаков патологического гиперметаболизма.

Других патологических очагов гиперметаболической активности не выявлено.

В ложе ЭКС в правой подключичной области отмечено локально повышенное накопление 18Б-ФДГ- не определяется на изображениях без коррекции атеннуации -обусловлено артефактом.

Грудина постоперационно изменена, с наличием фиксирующих скоб, без признаков патологического гиперметаболизма.

Измененного состояния лимфатических узлов на изученном уровне не выявлено. В легких без очаговых и инфильтративных изменений. В плевральных полостях и перикардиальной сумке выпота нет.

Во всех отделах костного мозга отмечается диффузно повышенное накопление 18F-

ФДГ.

В головном мозге, ротоглотке, почках, мочевом пузыре, а также по ходу желудочно-кишечного тракта отмечается физиологическое накопление 18Б-ФДГ.

Заключение: получены данные о наличии воспалительного процесса в области протезированного аортального клапана, а также по ходу электрода в правом желудочке.

Постоперационные воспалительные изменения в ложе ЭКС в правой подключичной области и в грудине.

Данных о наличии активной специфической (neo) ткани не получено.