«Продуктивные качества и биологические особенности цыплят-бройлеров при комплексном использовании препаратов йода, селена и лактоамиловорина» тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 06.02.10, кандидат наук Пенькова София Наиловна

• Пенькова София Наиловна
• кандидат наук
• 2018

Оглавление диссертации кандидат наук Пенькова София Наиловна

Введение

1 Обзор литературы

1.1 Использование йодсодержащих препаратов в птицеводстве

1.2 Влияние селенсодержащих препаратов на продуктивность и обмен веществ у птиц

1.3 Применение пробиотиков при выращивании сельскохозяйственной птицы

1.4 Заключение по обзору литературы

2 Материалы и методы исследований

2.1 Материалы и условия выполнения исследований

2.2 Используемые методы и методики в проведении исследований

3 Результаты собственных исследований

3.1 Определение наиболее эффективного варианта скармливания препаратов цыплятам (первый научно-хозяйственный опыт)

3.1.1 Характеристика условий кормления молодняка

3.1.2 Продуктивные показатели цыплят -бройлеров

3.1.3 Гематологические показатели цыплят-бройлеров

3.2 Изучение влияния препаратов йода, селена и лактоамиловорина на зоотехнические, физиолого-биохимические и экономические показатели при выращивании цыплят-бройлеров (второй научно - хозяйственный

опыт)

3.2.1 Динамика живой массы и сохранность птиц

3.2.2 Переваримость питательных веществ корма

3.2.3 Обмен энергии рациона в организме цыплят

3.2.4 Использование азота, кальция и фосфора рациона цыплятами

3.2.5 Физиолого-биохимические показатели цыплят-бройлеров

2.6 Мясная продуктивность цыплят

3.2.6.1 Результаты контрольного убоя птиц

3.2.6.2 Химический состав мяса цыплят-бройлеров

3.2.6.3 Концентрация йода и селена в органах и тканях цыплят-бройлеров 84 3.2.7 Производственная апробация совместного использования йод-, селенсодержащих препаратов и лактоамиловорина при

выращивании цыплят-бройлеров

4 Обсуждение полученных результатов

5 Заключение

6 Предложение производству

7 Перспективность темы исследования

8 Список литературы

9 Приложения

Введение

Актуальность темы исследования. В интенсификации производства продукции птицеводства особое значение имеет выращивание здорового молодняка, способного полноценно реализовать генетический потенциал продуктивности. Необходимо широко внедрять разработанные наукой и проверенные практикой прогрессивные технологии основанных на достижениях в области содержания и кормления, поскольку они определяют эффективность не только всей цепи процессов производства, но и качество, и рентабельность конечного продукта (И.А.Егоров и др., 2015). Одним из основных факторов повышение продуктивности сельскохозяйственных птиц является использование биологически активных веществ, среди которых важная роль принадлежит микронутриентам. Особое место в этом ряду занимают селен и йод. Микроэлемент йод является строительной основой, из которой образуются основные гормоны щитовидной железы -трийодтиронин и тетрайодтиронин, контролирующие течение большинства метаболических процессов в организме. Селен оказывает действие на протекание метаболизма с помощью поддержания приемлемой интенсивности свободно радикальных процессов и сбалансированности функционирования иммунной, антиоксидантной и монооксигеназной систем организма. Авторы, проводившие исследования с селеном, сравнивают его с пребиотиком (В.А.Галочкин, В.П.Галочкина, 2011).

Оба микроэлемента (йод и селен) взаимосвязаны между собой, так как второй входит в состав ферментов йодтирониндейодиназ, которые обеспечивают трансформацию тироксина в трийодтиронин, а также глутатионперокси-даз, участвующих в защите биомембран тироцитов от повреждающего действия пероксида водорода. Поэтому при недостатке селена микроэлемент йод плохо усваивается в организме птиц, что затрудняет его полноценное функционирование. Сотрудниками института питания РАМН установлено, что в целом по России и, в частности в Оренбургской области, наблюдается недостаток йода и селена в организме человека (Т.И.Бурцева, Н.А.Голубкина,

С.А.Мирошников, А.В.Скальный, 2013). В связи с этим, актуальным вопросом является возможность коррекции йодного и селенового статуса населения посредством функциональных продуктов питания (В.И.Фисинин, П.Сурай, 2013).

При промышленной технологии производства птицеводческой продукции не происходит передача иммунитета от матери к потомству, что приводит к низкой резистентности цыплят к различным заболеваниям, особенно инфекционным. При этом наблюдается большой процент падежа и выбраковки в первые дни жизни, а так же по причине незаразных заболеваний желудочно-кишечного тракта (ЖКТ). Создать схему защиты микрофлоры кишечника цыплят в промышленных условиях можно при помощи полезных микроорганизмов пробио-тических препаратов. Пробиотические препараты в настоящее время активно применяются для оптимизации физиолого-биохимических процессов у молодняка сельскохозяйственной птицы в результате нормализации качественного и количественного состава микробного биоценоза. В животноводстве они используются с целью коррекции дисбактериозов, регулирования микробиологических процессов в пищеварительном тракте, профилактики и лечения заболеваний желудочно-кишечного тракта, а также для развития неспецифического иммунитета. В результате их применения наиболее полно используются питательных веществ корма, улучшается их конверсия, увеличивается продуктивность, снижается де-токсикационный эффект, тем самым можно избежать токсикологическую нагрузку неорганических соединений селена на организм. Одним из таких препаратов является лактоамиловорин (Б.В.Тараканов и др., 2010; А.А.Торшков, Ю.П.Фомичёв, 2010; А.Н.Панин и др., 2012; Т.М.Околелова и др., 2012; Е.С.Петраков и др., 2013; Л.Ю.Топурия и др., 2014; В.Н.Никулин и др., 2015; Н.Садовникова, И.Рябчик 2016; Г.А.Ноздрин и др., 2017; С.Ф.Суханова, 2017).

Всё вышеизложенное указывает на целесообразность совместного использования йода и селена на фоне пробиотика с целью повышения продуктивности сельскохозяйственной птицы и улучшения качества мяса за счет

накопления в нем вышеуказанных микроэлементов.

Степень разработанности темы. Одним из основных факторов улучшения генетического потенциала сельскохозяйственной птицы является обеспеченность эссенциальными микронутриентами - йодом и селеном. Введение данных препаратов в рацион кормления птицы способствует повышению их продуктивности (Б.Д.Кальницкий и др., 2010; Е.В.Шацких и др., 2011). Для обогащения микробного биоценоза в наше время все чаще применяются пробиотические препараты, которые оказывают влияние на жизнедеятельность микроорганизмов кишечника, что приводит к улучшению микробного баланса в нем и положительно отражается на устойчивости организма к воздействию негативных внешних факторов, сохранности и продуктивности птиц (С.Лыско, 2008; А.А.Овчинников и др., 2013; В.Левахин и др., 2013; В.А.Антипов и др., 2013; И.А.Бабичева и др., 2014; Р.Б.Темираев и др., 2016; А.Г.Кощаев, Ю.А.Лысенко, В.А.Мищенко и др., 2017).

К настоящему времени данных о воздействии пробиотических препаратов на метаболизм одновременно йода и селена в организме птицы крайне мало, при этом среди них можно встретить противоречия. Остается малоизученным вопрос о влиянии комплексного применения йодида калия и селенита натрия на фоне пробиотика на мясную продуктивность и физиолого-биохимические показатели цыплят-бройлеров, что и послужило основанием для проведения исследований.

Цель и задачи исследований. Целью исследований являлось изучение влияния комплексного использования препаратов йода, селена и лактоамило-ворина на продуктивность и метаболизм в организме цыплят-бройлеров.

Для достижения поставленной цели решались следующие задачи:

1. Установить наиболее эффективный вариант использования микроэлементов и лактоамиловорина при выращивании цыплят-бройлеров.

2. Определить динамику живой массы и сохранность молодняка при скармливании микронутриентов и пробиотика.

3. Проанализировать влияние применения йодида калия, селенита натрия и лактоамиловорина на переваримость, а также на баланс азота, кальция, фосфора и энергии корма у цыплят-бройлеров.

4. Выявить изменения морфологических и биохимических показателей крови, а также состояние общей резистентности организма.

5. Изучить мясную продуктивность и качество мяса цыплят-бройлеров при использовании испытуемых препаратов.

6. Рассчитать экономическую эффективность комплексного применения йодида калия, селенита натрия и лактоамиловорина.

Научная новизна. Впервые установлено положительное влияние комплексного применения йодида калия, селенита натрия и пробиотика лак-тоамиловорин на мясную продуктивность и физиолого-биохимические показатели цыплят-бройлеров. Выявлены закономерности изменения обменных процессов в организме птицы, способствующие лучшему перевариванию и использованию питательных веществ и энергии рациона. Был установлен оптимальный вариант скармливания минеральных добавок и пробиотика. Доказана экономическая эффективность применения йодида калия, селенита натрия и лактоамиловорина при выращивании цыплят-бройлеров.

Теоретическая значимость работы. Полученные данные существенно дополняют имеющиеся сведения о факторах, участвующих в регуляции процессов метаболизма, формирования продуктивности и качества мяса птиц.

Экспериментальные данные позволили подтвердить целесообразность комплексного применения йодида калия, селенита натрия и лактоамиловорина при выращивании цыплят-бройлеров, что будет использовано для усовершенствования системы питания птицы при интенсивном выращивании, повышения эффективности использования компонентов корма и улучшения качества производимой продукции.

Выявленные особенности белкового, углеводного, липидного, минерального обменов, а также неспецифической резистентности, антиоксидант-

ного статуса при применении йодида калия, селенита натрия и лактоамилово-рина в рационе цыплят - бройлеров могут быть использованы в научно-исследовательской работе для поиска методов раннего прогнозирования потенциала роста, развития и формирования мясной продуктивности птиц.

Практическая значимость работы. Использование препаратов йода и селена на фоне лактоамиловорина при скармливании цыплятам-бройлерам способствовало увеличению сохранности на 2 %, живой массы - на 4,1-5,3 %, рентабельности производства - на 3,4 %, обеспечивая тем самым раскрытие дополнительных резервов генетического потенциала птиц и повышение качества получаемой продукции.

Результаты зоотехнических, физиолого - биохимических и экономических исследований позволили разработать и рекомендовать схему использования препаратов йода, селена и лактоамиловорина при выращивании цыплят - бройлеров.

Методология и методы исследования. Методология проведенных исследований основывается на научных положениях, изложенных в трудах отечественных и зарубежных ученых по изучаемой теме. Объектом исследований являлись цыплята-бройлеры кросса «Смена 7», их кровь, помет, мышечная ткань. Предметом исследований являлись зоотехнические, физиолого-биохимические показатели характеризующие целесообразность применения йода, селена и лактоамиловорина.

В экспериментальных исследованиях использовались стандартные зоотехнические, физиолого-биохимические и статистические методы исследования с применением современного оборудования.

Положения, выносимые на защиту:

- комплексное использование йодида калия, селенита натрия и лактоа-миловорина способствует повышению живой массы и сохранности птицы;

- совместное применение йода, селена и лактобактерий оказывает положительное влияние на использование питательных веществ и энергии кор-

ма, оптимизирует метаболические процессы в организме птиц, стимулирует интенсивность роста молодняка и повышает биологическую ценность мяса;

- применение йод- и селенсодержащих солей на фоне пробиотика, при выращивании цыплят-бройлеров в промышленных условиях, позволяет снизить расход корма на единицу продукции и увеличить рентабельность производства мяса птицы.

Степень достоверности и апробация результатов исследований. Выводы и предложения основаны на научных исследованиях, проведенных с использованием современных методов анализа и расчета. Основные материалы диссертационной работы доложены на расширенном заседании научных сотрудников и специалистов кафедры химии и биотехнологий Оренбургского государственного аграрного университета.

Материалы результатов диссертационной работы обсуждались и были одобрены на: II Международной научно-практической конференции «Зоотехшчна наука: iсторiя, проблеми, перспективи» (Каменец-Подольский, 2012), III Всероссийской интернет-конференции «Современные проблемы анатомии, гистологии и эмбриологии животных» (Казань, 2012), 8-ой Международной телеконференции «Актуальные проблемы современной науки» (Томск, 2012), всероссийской научно-практической конференции «Современные научно-практические достижения в ветеринарии» (Киров, 2013), I Международной научно-практической интернет-конференции «Липидология -наука XXI века» (Казань, 2013), Международной научно-практической конференции, посвященной памяти доктора биологических наук, профессора, Заслуженного деятеля науки РФ Булатова Анатолия Павловича (Курган, 2018).

Реализация результатов исследований. Полученные экспериментальные данные послужили основой для создания научного проекта «Биотехнология, основанная на использовании микронутриентов», отмеченного дипломом лауреата на областной и Всероссийской выставках научно-технического творчества молодежи «НТТМ - 2012» (Оренбург, 2012).

Результаты исследований внедрены в ЗАО «Птицефабрика Оренбургская» Оренбургского района Оренбургской области и ООО «ПлемРепродукт» Бугульминского района республики Татарстан, а также используются в учебном процессе ФГБОУ ВО Оренбургского ГАУ при изучении дисциплин «Птицеводство», «Кормление животных», «Биохимия животных», на семинарах по повышению квалификации специалистов птицеводческих предприятий.

Публикация результатов исследований. Результаты исследований изложены в 14 научных работах, в том числе 8 - в ведущих рецензируемых изданиях, установленных Министерством образования и науки Российской Федерации.

Структура и объем работы. Диссертационная работа изложена на 133страницах компьютерной верстки и включает введение, обзор литературы, материалы и методы исследований, результаты собственных исследований, обсуждение полученных результатов, заключение, предложение производству, перспективность темы исследования, приложения. Список литературы включает 269 источника, из них 69 зарубежных авторов. Материалы диссертации включают 29 таблиц и иллюстрированы 11 рисунками.

1 Обзор литературы

1.1 Использование йодсодержащих препаратов в птицеводстве

Результаты многочисленных исследований обосновывают существенную роль микроэлементов при выращивании сельскохозяйственной птицы.

Йод - эссенциальный микроэлемент, главной физиологической ролью которого является участие в синтезе тиреоидных гормонов (М.Е.Маменко, 2013). Он в природе встречается практически повсеместно, преимущественно в форме йодида. В организм животных йод поступает с кормом, водой, а также с дополнительно вводимыми минеральными препаратами в органической и неорганической формах. Например, попадая в организм йодид калия, практически полностью абсорбируется в желудке и двенадцатиперстной кишке, при этом йодат калия в кишечнике преобразуется до йодида, в форме которого и абсорбируется, йод же, встроенный в органические соединения, обычно преобразуется в желудочно-кишечном тракте (ЖКТ) в йодид. Далее, всосавшийся йод поступает во внеклеточную жидкость в пул неорганического йода, из которого поступает в щитовидную железу (ЩЖ), где используется для синтеза гормонов. Дополнительный пул неорганического йода пополняется за счет дейодирования гормонов щитовидной железы как в тканях, так и в ЩЖ, а также в результате выделения тиреоцитами йода, не использованного для синтеза гормонов или высвободившегося при катаболизме моно- и дийодтирози-нов (рис.1) (Я.В.Благосклонная и др., 2007; Е.А.Трошина и др., 2008; М.Е.Маменко 2013).

Самый большой пул органического йода находится в щитовидной железе: в запасенных в тиреоглобулине йодированных тирозинах и тиреоидных гормонах. При постоянном обмене йода между неорганическим пулом, ЩЖ, йодом, высвобождающимся при метаболизме гормонов, сохраняется равновесие между количеством поступившего неорганического йода и равным ему выведением из организма (М.Е.Маменко, 2013). Около /3 поступившего в ор-

ганизм йода выводится почками, и лишь менее 20% избирательно извлекаются из циркулирующей крови тиреоцитами и используются для синтеза тиреоид-

Выделение (Моча)

Иодидный пул (внеклеточная жидкость)

Ткани (печень, мышцы и др.)

Гормональный пул (Т3+Т4)

Желчь

Рисунок 1 - Обмен йода в организме (Б.И.Ткаченко, 2005)

Введение диссертации (часть автореферата) на тему ««Продуктивные качества и биологические особенности цыплят-бройлеров при комплексном использовании препаратов йода, селена и лактоамиловорина»»

Поступление

ЖКТ

Выделение (Фекалии)

ных гормонов, а после в составе ЩЖ гормонов возвращается в кровь (Г.А.Герасимов и др., 2002). Следовательно, обмен йода можно рассматривать как один из ключевых факторов гормонообразовательной функции в щитовидной железе.

Из вышеизложенного следует, что важное значение на обмен йода оказывает микрофлора ЖКТ, которая влияя на процессы реабсорбции Т3 и осуществляя бактериальный гидролиз Т3 - коньюгатов, уменьшает потери йода с калом (В.В.Курушкин, 2009).

Йод выполняет свою биологическую функцию как составная часть тирео-идных гормонов, вследствие этого в организме принимает участие в регуляции:

• дифференцировки тканей, процессов роста, физического и нервно-психического развития организма;

• скорости биохимических реакций;

• энергетического обмена, температуры тела;

• белкового, жирового, водно-электронного обмена;

• метаболизма ряда витаминов;

• потребления кислорода тканями (А.В.Скальный и др., 2004). Образование тиреоидных гормонов в щитовидной железе представляет собой сложный многостадийный процесс, включающий ряд этапов, объединенных в единое целое фолликулярным аппаратом (рис. 2) (В.Б.Розен, 1994).

Апикальная мембрана

/

Базальная мембрана

Предшественник тиреоглобулина

н2°2

1

Пероксидаза +

Пероксидаза

Йодинация ► ТГ и

сопряжение

ЗР Аппарат Гольджи

Т Секреция -

Протеазы Капля коллоида

Пиноцитоз ^-Тд

J

У

Клетка фолликула Просвет фолликула

Рисунок 2 - Биосинтез тиреоидных гормонов (В.В.Потемкин, 1999)

Биосинтез тиреоидных гормонов складывается из следующих этапов: 1) захват йодидов крови щитовидной железой и их окисление тиреоперокси-дазой (К.Ф. 1.11.1.8) до молекулярного йода; 2) йодирования тирозиновых остатков тиреоглобулина; 3) образования гормональных йодтиронинов на молекуле тиреоглобулина, освобождения гормонов щитовидной железы из молекулы тиреоглобулина и поступления в кровь (В.Б.Розен, 1994).

Йод (органический и неорганический) поступает в организм и всасывается в кишечнике, где превращается в йодиды и далее попадает в кровь, благодаря которой поступает в щитовидную железу (В.В.Потемкин, 1999), где

транспортируется через базальную мембрану тироцита, путем активного энергозависимого процесса: йодид поступает из среды с меньшей концентрацией (плазма крови) в среду с высокой концентрацией (ткань щитовидной железы), проходящего с участием №+-, К+- АТФазы (М.И.Балаболкин, 1998) и особого белка переносчика - №+/ I - симпортера, находящегося внутри клеточной мембраны (Р.А.Бшашк, 1996). Далее, поступившие из эпителиальной клетки фолликула в его внутреннее пространство йодид ионы окисляются тиреопе-роксидазой до молекулярного йода (2 I - 2е ^12) (В.Б.Розен, 1994). После окисления йодид присоединяется к остаткам аминокислоты тирозина (орга-нификация йода) полипептидной цепи тиреоглобулина.

Тиреоглобулин (ТГ) - гликопротеин щитовидной железы, в состав которого входят йодированные производные аминокислоты тирозина, тем самым является формой хранения тиреоидных гормонов. На его поверхности происходит синтез тиреоидных гормонов. Секрецию тиреоглобулина контролирует тиреотропный гормон (ТТГ) (И.М.Скударкова др., 2006).

Иодирование тиреоглобулина происходит внутри тироцита, на границе между апикальной его частью и коллоидом, заполняющим полость фолликула. Вначале йодированию подвергается третье положение ароматического кольца, а затем - пятое с образованием монойодтирозина (МИТ) и дийодтиро-зина (ДИТ). Иодирование и окисление тирозиновых остатков ускоряются ти-реопероксидазой (Б.А.Р18Ьег, 1996, Б.МоНпа е! а1., 1996, К.Впх е! а1., 1996).

В заключительной стадии гормоносинтеза происходит процесс конденсации МИТ и ДИТ под влиянием окислительных ферментов (тиреопероксида-зы). При конденсации двух субъединиц ДИТ происходит образование Т4, а субъединиц ДИТ и МИТ - Т3, которые затем поступают в полость фолликула и там накапливаются. Как образование, так и конденсация МИТ и ДИТ осуществляется на мембране в апикальной части тиреоцита (Р.Марри и др., 1993).

Биологически активны только свободные Т3 и Т4: именно они проникают в клетки - мишени, тогда как связанные с белками обеспечивают их резерв

и высвобождение по мере утилизации свободных (А.В.Кудрин и др., 2000; М.П.Чернышева, 1995; В.И.Кандрор, 2005).

Содержание йода в теле птиц (включая щитовидную железу) примерно 0,3-0,7 мг на 1 кг живой массы. По концентрации йода ткани можно расположить в следующем (убывающем) порядке: щитовидная железа, кожа, шерсть, яичник, селезёнка, печень, почки, мышцы, кости, лёгкие, кровь. С возрастом происходит некоторое уменьшение концентрации йода в теле, что обусловлено снижением функциональной активности щитовидной железы. При оптимальных условиях содержания и кормления животных йод в организме распределяется следующим образом: щитовидная железа - 70-80 %, мышцы - 10- 12 %, кожа -3-4 %, скелет - 3%, прочие органы - 5- 10 % (В.И.Георгиевский и др., 1979).

Влияние тиреоидных гормонов на организм многообразно, так как они воздействуют на все виды обменных процессов (С.А.Краснова и др., 2007).

Главная метаболическая функция гормонов щитовидной железы состоит в повышении поглощения кислорода, что, возможно путем индуцирования ими митохондриальной а- глицеро-фосфатдегидрогеназы (Р.Марри и др., 1993).

Поскольку многие процессы протекают в митохондриях, при высоком уровне тиреоидных гормонов активность этих органелл сильно повышается, и они увеличиваются в размерах, что приводит к образованию аденозинтрифос-фата - источника энергии клетки, поэтому существует прямая зависимость между интенсивностью основного обмена и концентрацией тиреоидных гормонов в крови (Р.Шмидт и др., 2005).

Гормоны щитовидной железы повышают эффективность №+/Ка+-АТРазного насоса, увеличивая количество составляющих его единиц. Поскольку все клетки обладают таким насосом, и практически каждая из них реагирует на тиреоидные гормоны, повышенная утилизация АТР и связанное с нею увеличение потребления кислорода в процессе окислительного фосфорилирования могут представлять собою основной механизм действия этих гормонов (Р.Марри и др., 1993).

Тиреоидные гормоны способствуют синтезу белков, вероятно, путем связывания трийодтиронина с рецепторами в ядре клетки и воздействия его на геном, вызывая усиление транскрипции и трансляции (Р.Шмидт и др., 2005).

Согласно Б.1.8Ып и др. (2003), между тиреоидными гормонами и ли-пидным обменом существует тесная связь, путем воздействия данных гормонов на, так называемый, стерол - связывающий регуляторный белок-2 (8ЯЕБР-2), приводящее к активизации экспрессии аполипопротеинов В- и Е-рецепторов в гепатоцитах, ведущие к быстрому извлечению липопротеинов низкой плотности из плазмы с последующим переводом холестерола в желчь клетками печени, а также гена рецептора липопротеина низкой плотности в печени.

Г.Г.Щербаков и А.А.Ефимов (2002) указывают на стимулирование ти-реоидных гормонов активности Са++-зависимой АТФазы плазматических мембран и других мембранных кальций-переносящих белков, путем прямого взаимодействия данных гормонов с мембранными липидами и белками.

По данным В.М.Смирнова (2002), тиреоидные гормоны оказывают стимулирующее воздействие на эритропоэз.

Известно о воздействии тиреоидных гомонов на Т- и В-лимфоциты, макрофаги, нейтрофилы и т.д. Помимо этого тиреоидные гормоны стимулируют повышение содержания ИЛ-18 и ИЛ-2 (Н.Н.Дыгало и др., 1998; Л.Бо1е11а-Сагге1его е! а1., 2005).

Установлено, что тиреоидные гормоны участвуют в регуляции роста костной ткани (О.Я^11Пат8 е! а1., 1998).

В большей степени йододефициту подвержены птицы. Это связано с тем, что размеры и масса щитовидной железы птиц по отношению к соответствующим параметрам всего тела очень малы (Л.А.Пыхтина, 2001). При нехватке йода у птиц наблюдается ослабление иммунной системы, что влечет за собой повышение смертности (В.Е.Улитько и др., 2001).

Применение йода в птицеводстве получило широкое распространение как за рубежом так и в нашей стране. Ниже приведены примеры использования йода в птицеводстве.

Из опытных данных по использованию йодсодержащего препарата было отмечено увеличение гемоглобина в крови, повышение уровня естественной резистентности, об этом указывает возрастание в сыворотке крови концентрации лизоцима и бактерицидной активности (Л.М.Гаврикова, 2007).

Под действием йодида калия у цыплят-бройлеров наблюдалось увеличение фагоцитарной реакции (С.В.Кожевников, 2010).

В опыте А.А.Шапошникова и др. (2007) установлено позитивное влияние йодсодержащих препаратов на фосфорно-кальциевый обмен.

Т.Герасимова (2006), З.Б.Комарова и др. (2012), В.Н.Хаустов и др. (2013) утверждают, что дополнительное внесение йода в рацион кур-несушек способствует повышению яичной продуктивности, яйценоскости и массы яиц.

О.С.Цыганова и др. (2008), основываясь на результатах проведенных исследований, установили, что введение йода в рацион цыплят увеличивало в сыворотке крови содержание тироксина.

Согласно данным Н.А.Невинской и др. (2008), введение йодсодержаще-го препарата цыплятам приводило к повышению уровня естественной резистентности.

Н.Евхутич и др. (2006), Л.В.Растопшина и др. (2007), , А.М.Булгаков и др. (2011), В.Н.Никулин и др. (2014) в своих работах отмечали, что внесение йода в качестве добавки в кормосмеси для цыплят-бройлеров оказало влияние на повышение живой массы, скорости роста и сохранности молодняка.

А.М.Булгаков и В.Д.Кузнецов (2011) сообщают, что применение йода способствовало повышению в сыворотке крови птиц общего белка и у-глобулинов.

Резюмируя вышеизложенное, можно отметить, что роль йода в животном организме велика и связана с синтезом и обменом тиреоидных гормонов,

осуществляющих регуляцию скорости биохимических процессов во всех клетках органов и тканей.

1.2 Влияние селенсодержащих препаратов на продуктивность и обмен

веществ у птиц

Потребляемый птицей корм содержит минеральные вещества, выполняющие в организме разнообразные функции.

Селен (Se) - эссенциальный элемент, основной биологической функцией которого является антиоксидантная защита (Г.Д.Фадеенко и др., 2010). Первое упоминание об использовании селена в животноводстве появилось в 1930-х годах, когда были выявлены клинические признаки селеноза, выражающиеся в нарушении целостности копыт и прочности костяка у крупного рогатого скота. Селен получил свое первое признание в качестве токсического вещества, и только в 1957 году Schwartz и Foltz продемонстрировали, что селен является жизненно необходимым элементом (В.Фисинин и др., 2008).

Основными источниками селена для птицы в естественных условиях являются селенсодержащие аминокислоты - селенметионин и селенцистеин, при искусственном вскармливании - неорганические соединения - селениты и селенаты.

Преимущественным местом всасывания селенометионина является двенадцатиперстная кишка, тогда как транспорт неорганических солей селена локализован преимущественно в дистальных отделах тонкого кишечника (подвздошной кишке) (И.В.Гмошинский и др., 2006).

Всасывание селена энтероцитами зависит от огромного разнообразия его форм в кормах. Селенометионин и селеноцистеин активно транспортируют те же переносчики, что и серосодержащие - метионин и цистеин. Селениты абсорбируются в результате комбинации простой диффузии и диффузии, облегченной восстановленным глутатионом (GSH), который является необходимым фактором этого процесса (M.Brinkman et al., 2006).

Доступность селена организмом зависит от компонентов рациона: по-

вышается под влиянием белков, больших доз витаминов А и Е, снижается при дефиците витаминов группы В, метионина, при избыточном поступлении с кормами тяжелых металлов.

Метаболизм селена окончательно не изучен, вместе с тем предложена его обобщенная схема (рис. 3).

Метаболизм неорганических соединений селена отличается от метаболизма органических его производных (Л^ипёе, 1990; В.А.Тутельян и др., 2002).

Рисунок 3 - Метаболизм селена (R. Sunde, 1990)

В организме селенат и селенитанионы вступают в реакцию с GSH содержимого кишечника с образованием селенидиглутатиона (GSSeSG), который служит субстратом для гамма-глутамилтрансферазы энтероцитов (К.Ф. 2.3.2.2) (таким образом селен переходит через мембраны клеток) и далее восстанавливаются (при физиологических значениях рН) до гидроселенид аниона (Же ), являющегося общей регулируемой формой селена в организме. (Д.Оберлис и др., 2008). Последний присоединяется к селенсодержащим бел-

кам, создавая обменный пул селена, а часть фосфорилируется с участием АТФ, образуя селенфосфатсинтетазу, которая в результате реакции с РНК включается в процесс синтеза Бе - специфических селенопротеинов, в числе которых находятся компоненты жизненно важных антиоксидантных систем (МЛ.Беггу е! а1., 1995; О.Б.СотЬ, 2001; вХасоигаеге е! а1., 2002; Х.-М.Хи е! а1., 2007). Избыточное количество селеноводорода экскретируется из организма с мочой или дыханием в виде метилированных форм (метилгидроселе-нида, диметилселенида и катиона триметилселенония), образованных путем ферментативного метилирования ^.С.БЬеп е! а1., 1995; Т.Татига е! а1., 2004; Л.Н.Третьяк и др., 2007). Утилизация селеноводорода в организме ограничена и в связи с избыточным количеством поступающего неорганического селена, он может накапливаться в тканях в токсической форме селена - свободного гидроселенид аниона.

Органическая форма Бе-Ме! трансаминируется с образованием аланина и метилгидроселенида, который далее либо метилируется и экскретируется, либо деметилируется до селенида, включаемого в лабильный пул селена организма и может расходоваться на синтез селензависимых белков. Иной путь метаболизма - транссульфурация с образованием селеноцистеина, который может, во-первых, неспецифически включаться в тканевые белки вместо цис-теина, во-вторых, часть селеноцистеина деселенируется с образованием либо селенита, либо селеноводорода под действием зависимой от витамина В6 се-леноцистеинлиазы и с промежуточным образованием при этом нульвалентно-го селена (Я.БаЬег е! а1., 1992; Л.Н.Третьяк и др., 2007). Все известные селе-нопротены высших организмов содержат только селено-цистеин, так как своего кодона и своей транспортной РНК для селенометионина не найдено.

Неорганические селенит и селенид лучше метаболизируются и являются более предпочтительными предшественниками селенопротеинов, чем селенометионины (С.В.Шабунин и др., 2008), так как селен селенита и селенида включается не непосредственно в селеноцистеин, а в другую

аминокислоту - серин, являющийся предшественником селеноцистеина. Отсюда следует, что организм сам синтезирует de novo селеноцистеин, используя углеродный скелет серина и минеральный селен. Сам же селеноцистеин не имеет метаболических путей включения непосредственно в селенопептиды, так как сначала проходит стадию превращения в минеральный селен и только через серин превращается в селеноцистеин (В.А.Галочкин и др., 2008).

В работе J.T.Rotruck et al. (1973) доказали, что селенит и селенцистеин имеют одинаковую эффективность в коррекции живой массы и восполнения элемента в рационе, однако С.Н.Зорин и др. (2008) утверждали, что максимальные концентрации селена в крови и печени животных были получены при добавлении селенита натрия в отличие от органических форм селена.

Главным путем экскреции является выделение с мочой. Из этого следует, что почки являются основным органом, ответственным за гомеостаз селена в организме. С фекалиями выводится в основном не всосавшийся селен (рис.4).

Органические и неорганические соединения селена пищи

Абсорбированные формы Метаболиты селена

Неабсорбированные формы (элементарный селен, отдельные селенсодержащие белки - выведение с калом)

I

Селен желчи Респираторный

селен Селен мочи Селен волос

Биологически активные формы (селенсодержащие ферменты)

Депо селена (селенометионин)

Рисунок 4 - Схема утилизации селена организмом (В.А.Тутельян и др., 2002)

Селен селенометионина выделяется почти вдвое медленнее, чем селен селенитов или селеноцистеина (Д.Оберлис др., 2008).

Распределение селена по тканям и органам варьируется и определяется типом ткани, формой и количеством содержащегося в пище селена, видом

животного (Д.Оберлис и др., 2008). Так, по количеству селена в органах и тканях птиц можно расположить в следующем порядке: печень > селезенка > сердечная мышца > яйцо > кровь > грудные мышцы (независимо от дозы и источника селена) (П.Сурай и др., 2013).

Биохимические функции селена реализуют через систему селенопротеи-нов, их выделено более 100, однако биологические функции многих еще не выяснены. К основным селензависимым белкам относятся: глутатионперок-сидазы (К.Ф. 1.11.1.9), тиоредоксинредуктазы (К.Ф. 1.6.4.5), йодтирониндейо-диназы (К.Ф. 3.8.1.4), селенофосфатсинтетазы (К.Ф. 2.7.9.3), а также селено-протеины P, W, T, M и др. (D.Behne et al., 2001; V.N.Gladyshev et al., 2006; R.Negro, 2008; M.A.Reeves , et al., 2009; A.A.Turanov et al., 2009;).

Основная функция селенопротеинов — предотвращение активации и генерации свободных форм кислорода и гидроперекисей, кроме этого регулирование функции комплексов редуктаз (M.Bjornstedt et al., 1997; D.Mustacich et al., 2000; R.F.Burk et al., 2003; Г.Д.Фадеенко и др., 2010).

Ключевой биохимической функцией селена является участие в строении и функционировании глутатионпероксидазы (GPx, ГПО).

Физиологическая роль ГПО состоит в том, что она осуществляет разложение и детоксикацию пероксида водорода, восстанавливая его до воды, гидропероксидов и органических (прежде всего липидных и фосфолипидных) пероксидов, восстанавливая пероксидную группу в спиртовую, то есть в защите мембранных клеточных структур, не допуская их деформации и нарушений в структуре ДНК, митохондрий, от перекисного окисления липидов (В.А.Барабой, 2004):

H2O2 + 2GSH = GSSG + 2Н2О LOOH + 2GSH = GSSG + H2O + LOH Селен принимает участие в метаболизме тиреоидных гормонов, поскольку является компонентом 5'- йодтирониндейодиназы щитовидной железы типа I (семейство дейодиназ представлено в виде 3 типов), физиологическая роль кото-

рой заключается в дейодировании в периферических тканях (щитовидная железа, печень, почки, кишечник, мозг, мозжечок, кожа, гипофиз, бурая жировая ткань, плацента) тетрайодтиронина, отщепляя от него одну молекулу йода, и превращении его в трийодтиронин (.Ш.ЯоЬеГз е! а1., 1998; В.И.Мурох и др., 2002;), определяя тем самым эффективность воздействия тиреоидных гормонов на клетку.

Роль селена в функционировании тканевых дейодиназ указывает на его тесную связь с метаболизмом тиреоидных гормонов и йода (Р^.Еёеш е! а1., 2001).

Ключевую роль в метаболизме селена играет фермент селенофосфатсинте-таза, который катализирует образование селенофосфата из селенида при участии АТФ, переводя селен в биологически активную форму (Ю.В.Преображенская и

др., 2011).

Известно, что технология выращивания цыплят-бройлеров в современных условиях оказывает стрессовое воздействие на птиц, сопровождающееся активацией процессов перекисного окисления липидов, это приводит к изменениям, проявляющимся в снижении продуктивности, ее воспроизводительных качеств и ухудшении качества продукции, тем самым уменьшая реализацию генетического потенциала современных промышленных кроссов. Кроме этого, развитие кишечника птиц в первые дни после вывода сопровождается с его усиленной метаболической активностью, что способствует избыточному образованию свободных радикалов, которые способны вызывать повреждения основных типов биологических молекул, включая липиды, белки и ДНК.

Основные стрессы в птицеводстве можно разделить на средовые (отклонение от оптимальной температуры, нарушение вентиляции, транспортировка), кормовые (изменение состава рациона) и внутренние (вакцинации, дис-бактериоз в кишечнике, энтериты, синдром внезапной смерти, асциты и т.д.).

Один из путей решения данной задачи - антиоксиданты, положительно влияющие на организм цыплят и качественные показатели получаемой от них продукции, одним из таких является селен.

В исследованиях с применением селенсодержащих препаратов, проведенных на различных животных (коровы, быки, свиноматки, овцы, утки, гуси и пр.), показано увеличение концентрации глюкозы в крови. По мнению Н.Ю.Русецкой (2014), повышение содержания глюкозы происходит за счет селенсодержащих белков, приводящее к усилению синтеза ферментов глюко-неогенеза в печени.

Селенопротеины приводят окисленные остатки метионина в активное состояние, защищая белки от окисления и атаки пероксинитрита (В.Фисинин и др., 2008).

Селен принимает участие в регуляции гена, контролирующего синтез активной формы витамина Б (Б - 1,25-(ОН)2Б3) (К.БсЬш^е и др., 1999).

Селенсодержащие ферменты предохраняют гемоглобин от окислительного гемолиза (Л.П.Никитина и др.,1995).

Селен необходим для нормального функционирования иммунной системы как клеточного, так и гуморального звена: он стимулирует функцию естественных киллеров (Е.М.Кг1уо8Ьееуа е! а1, 2012); повышает продукцию ин-терлейкина - 1 и интерлейкина - 2; модулирует фагоцитарную функцию лейкоцитов; блокирует транскрипцию вирусов (А.Б.1^1о1 е! а1., 1996, М.Р.Яаутап, 2000).

Известно, что селенсодержащие вещества способствуют синтезу белка, РНК, ДНК в клетках, повышая тем самым интенсивность роста и развития животных (С.Т.Кохан и др., 2012).

Установлено, что использование селена в кормлении молодняка крупного рогатого скота активизирует целлюлозолитические микроорганизмы в рубце и ускоряет расщепление клетчатки (М.Г.Маликова и др., 2010).

Селен также обладает гепатопротекторным эффектом, проявляющимся в нейтрализации активных форм кислорода и контроле внутриклеточного редокс-потенциала в клетках печени (гепатоцитах) (С^ар1е1а1 е! а1., 2008). Так, В.В.Вапиров и др. (2000) утверждают, что в гепатоцитах в присутствии глута-

тиона глутатионпероксидаза катализирует восстановление мембранотоксич-ных гидропероксидов - превращение гидроперекиси линолеата в гидрокси-кислоту с последующим восстановлением окисленного глутатиона ОББв до вБИ.

Выявлено защитное действие селена в отношении тяжёлых металлов, так как известно, что И2Бе способен вступать в реакцию с металлами, образуя нерастворимые комплексы, понижающие биологическую доступность селена и металла (Н.А.Голубкина и др., 2011). Доказано протективное действие селена при накоплении в организме кадмия, ртути и ванадия (О.К.БсЬга^ег, 2003).

Известно, что селен регулирует усвоение и расход витаминов А, Д, Е и К. Кроме этого, селен является синергистом витамина Е и способствует повышению его антиоксидантной активности (В.В.Калашников и др., 2011).

Селен способен замещать серу в серосодержащих аминокислотах, так как он в химическом отношении близок к сере, с образованием селеноамино-кислот, которые активнее в биологическом отношении и являются более сильными протекторами ионизирующей радиации, чем серосодержащие аминокислоты (Н.А.Голубкина и др., 2011).

В работах 1.Я.ЛпЬиг, ОЛ.ВескеИ (1994), Я.С.СпИепёеп (1999), Я.ВеЫ е! а1. (1997), Б.Ьеуапёег е! а1. (2001) отмечено, что селен положительно влияет на жизнеспособность нормальной микрофлоры кишечника, выполняя функцию пребиотика.

Известно, что у цыплят 5-30-суточного возраста процессы выведения и накопления в органах селена происходит интенсивнее, чем у взрослых птиц, что свидетельствует о более высокой потребности их в этом элементе.

Недостаток поступления селена вызывает одну из разновидностей гипо-микроэлементозов, называемую гипоселенозом. Дефицит селена у птиц может привести к появлению беломышечной болезни, экссудативному диатезу, атрофии поджелудочной железы и поражению сердца (Ф.Д.Онищук и др., 2007).

С целью профилактики селеновой недостаточности у птиц им дополнительно вводят неорганические или органические соединения селена. Из неорганических соединений наиболее широко применяют селенит натрия, селенит бария, селенат натрия. В качестве органических соединений селена используется целый ряд соединений: селенометионин, селеноцистеин, диацетофено-нилселенид, селенопиран, селекор и т.д. (А.С.Ерохин, 2008).

По мнению Б^оИтат (2000), Е.В.Шацких и др. (2008), Н.А.Голубкиной и др. (2011), селенит натрия обладает наибольшей биодоступностью по сравнению с другими селенсодержащими соединениями. Кроме этого, известно, что некоторые микроорганизмы (бифидобактерии, пропионовокислые бактерии и т.д.) способны ассимилировать селен, переводя его в органическую форму, и передавать на более высокие уровни пищевой цепи (В.В.Курушкин, 2009).

Р.Муртазаева и др. (2006), С.Ф.Суханова и др. (2008), Т.Околелова (2009), О.А.Невзорова и др. (2010), И.Егоров в своих исследованиях показали, что применение селенсодержащих препаратов обеспечило повышение яичной продуктивности птиц, а также оказало положительное влияние на инкубационные качества яиц.

Т.Т.Папазян Т.Т. и др. (2005), И.Яппаров и др. (2006), И.Рябчик (2009), О.А.Невзорова и др. (2010), Т.В.Олива и др. (2013) в своих экспериментах установили, что дополнительное использование селена в составе корма для цыплят-бройлеров увеличивало живую массу, прирост и сохранность птиц.

Выявлено, что введение селена в органической и неорганической формах в комбикорм цыплятам-бройлерам оказывало положительное влияние на биологическую полноценность мяса (О.В.Зеленская, 2009).

Л.И.Перепелкина (2008), В.Бурдакшина (2011) в своих работах отмечали, что включение селена в состав комбикорма цыплят способствовало повышению мясной продуктивности.

Было обнаружено, что применение селеносодержащих добавок увеличивало количества общего белка в сыворотке крови птиц (С.Ф.Суханова,

Список литературы диссертационного исследования кандидат наук Пенькова София Наиловна, 2018 год

/ / / / / /

М" * /

/ / / * / ! / / ✓

/ ' ? / / /

/ ; » / / / .•' ^ / /

*

••■■*■■■ контрольная группа — И — I опытная группа —Д— II опытная группа

14 21 28 35 Возраст, сут

42

Рисунок 9 - Концентрация неорганического фосфора в сыворотке крови цыплят-бройлеров, ммоль/л

Количество кальция и фосфора в сыворотке крови цыплят исследуемых групп находилось в пределах физиологической нормы.

Уровень кальция и фосфора у цыплят II опытной группы был выше, по сравнению с контрольной и I опытной группами. Вероятнее всего, улучшение всасывания минеральных веществ связано с подкислением микросреды около

кишечных клеток и бактерий, контактирующих с кишечными клетками, за счет действия пробиотика, благодаря этому увеличивается растворение минеральных веществ и, следовательно, способность организма усваивать их.

И.А.Яппаров и Т.Н.Родионова (2006) отмечают, что в организме птицы, быстрорастущей и высокопродуктивной, очень часто стали отмечать дефицит биоантиокислителей. В организме при распаде жиров образуются перекиси, которые являются сильными окислителями, ускоряющими разрушение жиров и жирорастворимых витаминов, что влечет за собой образование свободных радикалов (супероксид, гидроксильные радикалы и др.), пагубно влияющих на организм птицы, как известно, защитой от них являются антиоксиданты (Ю.А.Владимиров, 1972; (Ф.В.Эденс и др., 2008; Ф.Драганов и др., 2009).

Глутатионпероксидаза (ГПО) - это селеносодержащий антиоксидантный фермент, который инициирует перекисное окисление липидов, белков, нуклеиновых кислот и других соединений, катализируя реакцию восстановления перекиси водорода, являющейся токсическим веществом, до воды (А.И.Каминный и др., 2000). Противоокислительный фермент ГПО является главным фактором антиоксидантной защиты в постнатальном онтогенезе птиц, отвечающий за эффективную их адаптацию к изменяющимся условиям внешней среды.

В проведенном нами исследовании видно, что по активности ГПО между цыплятами контрольной и опытными группами имелись различия, представленные в таблице 20.

Таблица 20 - Активность ГПО в гемолизатах эритроцитов цыплят, Ед/г ^

Возраст, Группа

сутки контрольная I опытная II опытная

1 52,9±2,29

7 56,8±2,46 58,4+2,25 59,9+2,18

14 55,2±2,31 57,6+2,53 59,2+2,87

21 51,9+2,35 55,4+2,62 57,7+2,23

28 45,9±2,17 53,2+2,39* 54,8+2,56*

35 46,8+2,79 53,9+2,48 56,5+3,14*

42 45,7+2,64 54,3+2,41* 57,1+2,67*

Активность ГПО в гемолизатах эритроцитов цыплят испытуемых групп в суточном возрасте составила 52,9+2,29 Ед/г В возрасте 7 суток активность ГПО в гемолизатах эритроцитов птиц опытных групп, по сравнению с контрольной группой, увеличивалась на 2,82 и 5,46% соответственно; в 14-суточном возрасте величина показателя цыплят I и II опытных групп повышалась соответственно на 4,4 и 7,3%; к 3-недельному возрасту активность ГПО увеличивалась в I опытной группе на 6,74 %, во II опытной - на 11,18%; в 28-дневном возрасте значения показателя возрастали на 15,9 (Р<0,05) и 18,3% (Р<0,05) соответственно; в 35-дневном возрасте активность ГПО в гемолиза-тах эритроцитов молодняка опытных групп повышалась на 15,2 и 20,7% (Р<0,05) соответственно. К концу эксперимента значения показателя увеличивались в I опытной группе на 18,8% (Р<0,05), во II опытной - на 24,9 % (Р<0,05), в отличие от аналогов контрольной группы.

Анализ активности ГПО цыплят испытуемых групп показал, что в опытных группах на протяжении исследуемых периодов, по сравнению с аналогами из контроля, активность фермента была выше. Активность ГПО цыплят подопытных групп не выходила за рамки физиологической нормы.

Тиреоидные гормоны (ТГ) регулируют энергетический обмен и влияют на дифференцировку и деление клеток, определяя тем самым рост и развитие организма, также контролируют скорость поглощения кислорода.

Общий трийодтиронин (Т3) - показатель, отражающий общую концентрацию свободного и связанного с белками трийодтиронина, использующийся в диагностике тиреотоксикоза и гипотиреоза. Трийодтиронин считается самым биологически активным тиреоидным гормоном щитовидной железы, который в основном образуется в результате конверсии Т4 в периферических тканях: печени, почках, мышцах.

Возрастная динамика содержания общего Т3 в сыворотке крови цыплят испытуемых групп представлена на рисунке 10.

Рисунок 10 - Содержание общего Т3 в сыворотке крови цыплят-бройлеров, нмоль/л

По содержанию общего трийодтиронина цыплята I и II опытных групп превосходили аналогов из контроля в 7-дневном возрасте на 4,65 и 7,49%, в 14-суточном - на 14,1 (Р<0,05) и 21,8% (Р<0,05), в возрасте 21 дня - на 12,6 и 18,4%, в 4-недельном - на 20,3 и 26,7% (Р<0,05), в 35-суточном - на 15,7 и 20,5 % и в 42-дневном возрасте - на 15,0 и 22,2% соответственно.

Способностью влиять на обмен веществ обладает только свободный тироксин, поэтому диагностически важным является определение именно содержания свободного Т4. Его концентрация не меняется при тяжелых заболеваниях, не связанных с деятельностью ЩЖ. Следовательно, исследование данного гормона отражает функциональную активность щитовидной железы.

Возрастные изменения концентрации свободного тироксина в сыворотке крови цыплят исследуемых групп представлены на рисунке 11.

В сыворотке крови молодняка I и II опытных групп наблюдалось повышение концентрации Т4 , по сравнению с контрольной группой, в 7-суточном возрасте на 1,34 и 1,8%, 14-дневном - на 2,8 и 5,8%; 21-суточном - на 3,4 и

9,35% (Р<0,01), 28-дневном - на 5,39 (Р<0,05) и 7,7% (Р<0,05); в возрасте 5 недель - на 7,6 (Р<0,05) и 13,3% (Р<0,01), в 42-суточном возрасте - на 4,8 и 12,3% (Р<0,01) соответственно.

Возраст, сут

Рисунок 11 - Содержание свободного Т4 в сыворотке крови цыплят-бройлеров, пмоль/л

Вышеприведенные данные свидетельствуют о том, что с возрастом содержание свободного Т4 в сыворотке крови цыплят исследуемых групп увеличивалось.

Концентрации общего Т3 и свободного Т4 в сыворотке крови цыплят экспериментальных групп находились в рамках физиологических норм.

Организм располагает рядом неспецифических средств защиты, способных самостоятельно или в сочетании друг с другом вызывать нейтрализацию чужеродных факторов. К числу наиболее важных неспецифических факторов резистентности относят тканевые и гуморальные: лизоцим, гликопротеиды, комплемент, бактерицидная активность сыворотки крови, в-лизин, фагоцитарная активность лейкоцитов и другие.

Бактерицидная активность сыворотки крови (БАСК) представляет собой

интегративный показатель антимикробной активности всех присутствующих антимикробных веществ, как термолабильных, так и термостабильных (комплемент, пропердин, нормальные антитела, лизоцим, в-лизин) (Б.Ф.Бессарабов, 2010).

Возрастные изменения бактерицидной активности сыворотки крови цыплят подопытных групп представлены в таблице 21.

Таблица 21- Бактерицидная активность сыворотки крови цыплят-бройлеров, %

Возраст, Группа

сутки контрольная I опытная II опытная

1 48,7±0,51

7 50,5±0,62 50,8±0,69 51,5+0,72

14 47,3±0,54 48,7±0,61 50,7±0,86*

21 50,2±0,78 50,9±0,92 51,8+0,58

28 52,7±0,57 53,9±0,76 55,2+0,67*

35 53,5±0,87 55,3±0,97 55,9+0,94

42 52,1±0,78 55,7±1,21* 57,2+0,98**

В 7-суточном возрасте в сыворотке крови птиц исследуемых групп наблюдалось увеличение БАСК. В контрольной группе на 1,8 %, в I опытной группе - на 2,1 % и во II - на 2,8 %. В возрасте 14 суток БАСК в сыворотке крови цыплят подопытных групп уменьшалась: в контроле - на 3,2 %, в I опытной группе - на 2,1 % и во II - на 0,8 %. В период с 21- по 35-дневный возраст БАСК в крови молодняка испытуемых групп повышалась в среднем соответственно на 2,1; 2,2 и 1,73 %. В 6-недельном возрасте величина показателя у контрольных птиц уменьшалась на 1,4 %, а у аналогов опытных групп, наоборот, наблюдалось повышение соответственно на 0,4 и 1,3 %.

Из полученных во время исследования данных о бактерицидной активности следует, что у цыплят опытных групп значения показателя были выше, чем у молодняка контрольной группы в 7-дневном возрасте на 0,3 и 1%, в 14-суточном - на 1,4 и 3,4% (Р<0,05), в 3-недельном - на 0,7 и 1,6%, в возрасте 28 дней - на 1,2 и 2,5% (Р<0,05), в 35-дневном - на 1,8 и 2,4%, в 42-дневном - на 3,6% (Р<0,05) и 5,1% (Р<0,01) соответственно.

Лизоцим - это фермент, избирательно гидролизирующий гликозидные связи в муреине - сложном биополимере, из которого построены стенки бактерий (преимущественно это грамположительные микроорганизмы) (Л.Ю.Карпенко и др., 2007). Лизоцим в сыворотке крови оказывает антимикробное действие на широкий круг микробов сапрофитов, разрушая в их клеточных стенках мукопротеидные вещества, а также участвует в реакциях приобретенного иммунитета (Б.Ф.Бессарабов, 2010).

В 7-дневном возрасте в сыворотке крови цыплят исследуемых групп наблюдалось снижение лизоцимной активности: в контрольной группе - на 3,7%, в I опытной группе - на 1,3 % и во II - на 1,94 %. К 2-недельному сроку выращивания в контроле и II опытной группе наблюдалось увеличение значения показателя на 0,44 и 2,0 %, а у аналогов в I опытной группе понижалось на 0,29 %. В период с 21- по 28-дневный возраст происходило увеличение ЛАСК птиц испытуемых групп в среднем на 3,32; 3,4 и 3,3 % соответственно. В возрасте 5 недель значение показателя у цыплят подопытных групп понижалось на 1,2; 1,39 и 1,8 % соответственно. В возрасте 42 суток лизоцимная активность в сыворотке крови цыплят подопытных групп увеличивалась: в контроле - на 1,4 %, в I опытной группе - на 2,0 и во II - на 1,9 % (таблица 22). Таблица 22 - Лизоцимная активность сыворотки крови цыплят - бройлеров, %

Возраст, Группа

сутки контрольная I опытная II опытная

1 35,89±0,58

7 32,23±0,89 34,58±0,95 33,95±0,62

14 32,67±0,92 34,29±0,56 35,98±0,79*

21 36,91±0,59 39,32±0,84* 39,84±1,41

28 39,35±0,76 40,91±0,73 42,58±1,13*

35 38,15±0,95 39,52±1,27 40,78±0,69*

42 39,56±1,16 41,49±1,49 42,73±0,97

Вышеприведенные данные свидетельствуют, что у цыплят контрольной и опытных групп в первые две недели лизоцимная активность была ниже, чем в суточном возрасте.

Цыплята I и II опытных групп по лизоцимной активности превосходили аналогов из контроля. Так, в 7-, 14-, 21- ,28-, 35- и 42-дневном возрасте разница составила 2,4 и 1,7%; 1,6 и 3,3% (Р<0,05); 2,4 (Р<0,05) и 2,3%; 1,6 и 3,2% (Р<0,05); 1,4 и 2,6% (Р<0,05); 1,9 и 3,2% соответственно. Во II опытной группе уровень лизоцимной активности был выше, чем в других группах. Очевидно, это произошло за счет продуцирования лактобациллами лизоцима, небольшое количество которого могло проникнуть в кровеносное русло.

Показатели неспецифической резистентности не выходили за рамки физиологической нормы.

3.2.6 Мясная продуктивность цыплят 3.2.6.1 Результаты контрольного убоя птиц

Мясо птицы является лучшим источником питательных веществ, которые легко усваиваются организмом. Результаты анатомической разделки цыплят представлены в таблице 23.

Таблица 23- Результаты контрольного убоя птицы

Показатель Группа

контрольная I опытная II опытная

Предубойная живая масса, г 2047,4+22,31 2119,1+22,84* 2132,2+20,79*

Масса потрошеной тушки, г 1368,5+17,19 1427,6+21,78 1447,5+21,11*

Убойный выход, % 66,8 67,4 67,9

Масса мышц, г 993,5+8,79 1019,2+12,85 1028,9+10,81*

Масса съедобных частей тушки, г 1136,1+17,38 1185,1+14,42* 1194,9+15,67*

Масса несъедобных частей тушки, г 911,3+15,46 934+15,94 937,3+13,47

Масса костей, г 365,9+11,43 396,7+12,29 413,5+11,68*

Отношение съедобных частей к живой массе, % 55,5 55,9 56,0

Отношение несъедобных частей к живой массе, % 44,5 44,1 43,0

Отношение съедобных частей к несъедобным,% 24,7 26,9 27,4

Следует отметить, что применение препаратов йода, селена и лактоами-ловорина благоприятно отразилось на изучаемых показателях мясной продуктивности птицы.

Анализ приведенных данных показывает, что предубойная живая масса цыплят I опытной группы превышала контрольных на 3,5%, аналоги II опытной - на 4,2%. Масса потрошеной тушки цыплят-бройлеров опытных групп, так же была выше таковой аналогов из контроля на 4,3 и 5,8 % (Р<0,05) соответственно. Одним из важнейших показателей продуктивности птиц является убойный выход, где контрольная группа уступала значениям опытных групп соответственно на 0,6 и 1,1%. Установлено, что по содержанию мышечной ткани цыплята опытных групп превосходили контрольных, так в I опытной группе на 4,5 %, во II - на 5,7 % (Р<0,05). У цыплят, дополнительно получавших препараты, масса съедобных частей соответственно составила 1185,1±14,42 г и 1194,9±15,67, что на 4,3 (Р<0,05) и 5,2 (Р<0,01) % выше, по сравнению с контролем. По массе несъедобных частей птицы опытных групп превосходили аналогов контроля на 2,5% и 2,9% соответственно. Масса костей у птиц контрольной группы составила 365,9±11,43г, что меньше, чем у аналогов опытных групп соответственно на 3,0 и 4,8 %. По отношению съедобных частей к живой массе птицы опытных групп имели преимущество над аналогами контрольной группы, что составило 0,4 % и 0,5% соответственно. Разница между опытными и контрольной группами в отношении несъедобных частей к живой массе составила 0,4% и 0,5% соответственно в пользу последних. Значение отношения съедобных частей к несъедобным в I и II опытных группах соответственно составило, что было выше контроля на 2,2% и 2,7% соответственно.

Таким образом, цыплята, получавшие кормовую добавку в составе рациона в виде йодида калия, селенита натрия и пробиотика лактоамиловорина, имели более высокую убойную массу и убойный выход по сравнению с другими группами.

3.2.6.2 Химический состав мяса цыплят-бройлеров

Качество и пищевую ценность мяса определяют по его химическому составу, зависящему от характера обменных процессов в организме птиц. Основная наиболее ценная масса мышц сосредоточена у птиц в области груди и бедер (О.М.Мармурова и др., 2011). Поэтому для оценки эффективности использования исследуемых добавок после убоя цыплят-бройлеров изучили химический состав грудных и бедренных мышц (таблица 24).

Таблица 24 - Химический состав мышц цыплят-бройлеров, %

Показатель Группа

контрольная I опытная II опытная

Грудные мышцы

Энергетическая ценность, ккал 123,89+1,19 129,20+1,13 128,44+1,17

Общая влажность 74,43+1,32 73,39+1,19 73,19+1,56

Сухое вещество 25,27+0,22 26,41+0,35* 26,81+0,29**

Белок 19,85+0,24 20,83+0,38* 21,62+0,71*

Сырой жир 4,57+0,10 4,71+0,13 4,28+0,07*

Сырая зола 0,85+0,09 0,87+0,11 0,91+0,07

Индекс качества мяса (соотношение протеина к жиру) 4,34 4,42 5,05

Бедренные мышцы

Энергетическая ценность, ккал 133,16+1,24 137,38+1,21 135,29+1,16

Общая влажность 74,55+1,16 73,68+1,45 73,59+1,27

Сухое вещество 25,45+0,27 26,32+0,18* 26,41+0,13**

Белок 18,71+0,32 19,36+0,26 19,91+0,37*

Сырой жир 6,07+0,18 6,24+0,21 5,77+0,15

Сырая зола 0,67+0,05 0,72+0,08 0,73+0,03

Индекс качества мяса (соотношение протеина к жиру) 3,08 3,10 3,45

Из результатов проведенного химического анализа мяса птицы следует, что цыплята опытных групп по энергетической ценности превышали аналогов контрольной группы на 4,3 и 3,7 % соответственно. Анализируя такой показа-

тель как общая влажность, видно, что в контрольных группах он составил 74,43±1,32%, тогда как в I опытной группе он был равен 73,39±1,19%, во II группе - 73,19±1,56%, что больше на 1,04 и 1,24 % соответственно. По содержанию сухого вещества в грудных мышцах цыплята опытных групп превосходили аналогов из контроля на1,14 (Р<0,05) и 1,54 % (Р<0,01) соответственно. Уровень белка в грудной мышце бройлеров опытных групп был выше, чем у контрольных аналогов соответственно на 0,98% (Р<0,05) и 1,77 % (Р<0,05). При изучении уровня липидов в подопытных группах, выявлено, что у птиц I опытной наблюдалось их увеличение на 0,17 %. Мясо аналогов II опытной группы отличалось высокой диетической ценностью, так как уровень жира снижался на 0,3 % (Р<0,05), по сравнению с контролем, к тому же коэффициент соотношения протеина к жиру был наиболее высоким. Кроме того, процентное содержание золы в мышцах бройлеров опытных групп превышало значения аналогов из контроля в I опытной группе на 0,02%, во II - на 0,06%. Следует отметить, что наиболее высокие значения индекса качества мяса цыплят-бройлеров были в опытных группах и составили 4,34 и 4,42 %, что больше контроля на 0,08% и 0,71 % соответственно. Аналогичная закономерность прослеживалась и в мышцах бедра.

Следовательно, исходя из полученных данных, можно утверждать, что включение препаратов и пробиотика лактоамиловорина в состав комбикормов способствовало улучшению качества мяса цыплят-бройлеров.

Аминокислотный состав мяса характеризует качественное и количественное содержание белков в нем и определяет биологическую ценность пищевого продукта. Содержание основных аминокислот в грудных и бедренных мышцах подопытных птиц представлено в таблицах 25 и 26.

В грудных и бедренных мышцах по количеству аминокислот цыплята опытных групп существенно не отличались от аналогов контрольной группы, однако содержание аргинина, треонина, гистидина, лейцина и изолейцина, ме-тионина, тирозина, глицина было несколько выше, чем в контроле.

Таблица 25 - Аминокислотный состав грудных мышц цыплят-бройлеров (г),

в 100 г белка мяса

Аминокислота Группа

контрольная I опытная II опытная

Аргинин 6,16+0,15 6,40±0,23 6,22±0,17

Лизин 6,58±0,28 6,54±0,19 6,43±0,21

Треонин 4,23±0,09 4,31±0,06 4,26±0,04

Фенилаланин 3,86±0,22 3,75±0,12 3,48±0,15

Гистидин 2,07±0,25 2,59±0,27 2,24±0,18

Лейцин+ изолейцин 4,11±0,16 4,47±0,12 4,27±0,09

Валин 3,92±0,14 3,87±0,19 3,98±0,23

Метионин 1,87±0,08 1,91±0,17 1,96±0,11

Пролин 2,93±0,11 3,24±0,25 3,09±0,18

Тирозин 2,38±0,28 2,45±0,13 2,52±0,17

Аланин 4,26±0,17 3,81±0,15 4,17±0,06

Глицин 2,89±0,08 3,12±0,09 3,19±0,14

Сумма 45,26 46,46 45,81

По сумме аминокислот в белках мяса цыплят-бройлеров опытные группы превышали таковые показатели в контроле.

Таблица 26 - Аминокислотный состав бедренных мышц цыплят-бройлеров (г), в 100 г белка мяса

Аминокислота Группа

контрольная I опытная II опытная

Аргинин 6,32±0,18 6,63±0,15 6,85±0,13

Лизин 6,59±0,23 6,85±0,32 6,76±0,19

Треонин 4,29±0,06 4,43±0,12 4,64±0,17

Фенилаланин 3,36±0,14 3,62±0,19 3,26±0,27

Гистидин 1,85±0,19 1,92±0,24 2,18±0,12

Лейцин+ изолейцин 4,02±0,13 3,84±0,19 4,19±0,17

Валин 3,76±0,18 3,59±0,11 3,45±0,16

Метионин 1,90±0,13 1,97±0,15 2,04±0,09

Пролин 2,27±0,16 2,11±0,14 2,32±0,23

Тирозин 2,45±0,21 2,79±0,11 2,58±0,19

Аланин 3,39±0,08 3,23±0,06 3,04±0,15

Глицин 2,38±0,10 2,75±0,17 2,56±0,13

Сумма 42,58 43,73 43,87

Установлено, что общий уровень аминокислот в грудных мышцах I и II опытных групп составил 46,46 и 45,81, бедренных 43,73 и 43,87 соответственно, что также незначительно превышало аналогичные значения в контрольной группе.

Следовательно, использование микроэлементов и пробиотика не оказало существенного влияния на аминокислотный состав мяса птиц.

О качестве мяса цыплят-бройлеров можно судить не только по общему содержанию белка, но и количестве в нем полноценных и неполноценных аминокислот: триптофана и оксипролина (таблица 27).

Таблица 27 - Биологическая ценность мяса (БКП) цыплят

Показатель Группа

контрольная I опытная II опытная

Триптофан, мг% 408,62+2,95 416,28+3,51 419,86+2,63*

Оксипролин, мг% 49,14+0,44 47,75+0,28* 47,61+0,52*

БКП, ед 8,32 8,72 8,81

Установлено, что у молодняка опытных групп количество триптофана было выше соответственно на 1,9 и 2,75 % (Р<0,05), а оксипролина - меньше на 2,83 (Р<0,05) и 3,1% (Р<0,05) в сравнении с аналогами контроля.

Интегрированным показателем, определяющим белковую полноценность мяса, является белково-качественный показатель (БКП), отражающий отношение концентраций триптофана к оксипролину.

Белково-качественный показатель птиц опытных групп составил 8,72 и 8,81 единицы соответственно, что больше, чем у молодняка контрольной группы на 0,4 и 0,49 % соответственно.

Таким образом, применение минеральных добавок и пробиотика не оказало существенного влияния на сумму определяемых аминокислот, в то же время были выявлены различия по количеству триптофана и оксипролина, что оказало положительное влияние на белково-качественный показатель.

3.2.6.3 Концентрация йода и селена в органах и тканях цыплят-бройлеров

В последнее десятилетие уделяется большое внимание поиску селен- и йодсодержащих веществ для введения их в продукты питания. Применяемые нами минеральные добавки позволяют повысить содержание йода и селена в мясе и продуктах убоя бройлеров, что делает их биологически более полноценными.

Изменения содержания йода в органах и тканях цыплят-бройлеров исследуемых групп представлены в таблице 27.

Таблица 27 - Концентрация йода в органах и тканях цыплят-бройлеров, мкг/г

Ткань Группа

контрольная I опытная II опытная

Кожа 0,415+0,024 0,566+0,019 0,574+0,027

Грудная мышца 0,224+0,027 0,327+0,015** 0,342+0,029*

Бедренная мышца 0,283+0,031 0,392+0,025* 0,418+0,046*

Щитовидная железа 193,8+2,13 203,9+2,61* 207,5+2,85**

Печень 0,432+0,047 0,513+0,034 0,537+0,039

Почки 0,512+0,038 0,619+0,026* 0,637+0,031*

Кровь 0,116+0,019 0,167+0,029 0,169+0,010*

По количеству йода цыплята опытных групп превосходили аналогов контрольной группы в коже на 36,4 и 38,3%, в грудной и бедренной мышцах - на 46 (Р<0,01) и 52,7% (Р<0,05), 38,5 (Р<0,05) и 47,7% (Р<0,05), в щитовидной железе - на 5,2 (Р<0,05) и 7,1% (Р<0,01), в печени - на 18,8 и 24,3%, в почках - на 20,9 (Р<0,05) и 24,4% (Р<0,05), в крови - на 44,0 и 45,7% (Р<0,05) соответственно.

Концентрация селена в органах и тканях цыплят-бройлеров исследуемых групп отражена в таблице 28.

Количество селена у цыплят опытных групп, по сравнению с контрольными аналогами, оказалось достоверно выше в грудной мышце на 32,9 (Р<0,05) и 41,6 % (Р<0,05), печени - на 18,0 (Р<0,05) и 23,5 % (Р<0,05), почках - на 14,7 (Р<0,05) и 17,6 % (Р<0,01) и крови - на 35,3 (Р<0,05) и 39,1%

(Р<0,01), в коже и бедренной мышце статистически достоверных различий не обнаружено.

Таблица 28 - Концентрация селена в органах и тканях цыплят-бройлеров,

мкг/г

Ткань Группа

контрольная I опытная II опытная

Кожа 0,154+0,016 0,187+0,026 0,189+0,021

Грудная мышца 0,149+0,014 0,198+0,012* 0,211+0,023*

Бедренная мышца 0,213+0,026 0,265+0,013 0,273+0,011

Печень 0,635+0,032 0,749+0,025* 0,784+0,037*

Почки 0,647+0,017 0,742+0,038* 0,761 +0,025**

Кровь 0,289+0,026 0,391+0,021* 0,402+0,023**

Из выше приведенных данных следует, что комплексное использование микроэлементов и пробиотика обеспечивало более высокую степень усвоения йода и селена из корма, что обеспечило их более высокий уровень в тканях и органах. Таким образом, можно получить продукты питания с заданными свойствами.

3.2.7 Производственная апробация совместного использования йод-, селенсодержащих препаратов и лактоамиловорина при выращивании цыплят-бройлеров

Анализ зоотехнических и физиолого-биохимических показателей выявил преимущество совместного использования йодида калия, селенита натрия и лактоамиловорина. В связи с этим, мы посчитали целесообразным провести производственную проверку на контрольной и II опытной группах.

Производственное испытание проводилось на базе ЗАО «Птицефабрика Оренбургская» Оренбургского района Оренбургской области на двух группах цыплят-бройлеров кросса «Смена-7» суточного возраста, сформированных по принципу групп-аналогов, по 1170 голов в контрольной и опытной группах. Продолжительность выращивания - 43 дня. Цыплятам подопытных групп были созданы одинаковые условия содержания в соответствии с зоогигиениче-скими требованиями. Кормление осуществляли полноценным комбикормом, с

параметрами питательности, соответствующими периодам выращивания (таблица 29).

Таблица 29 - Результаты производственной проверки

Показатели Контрольная группа Опытная группа

Количество цыплят на начало опыта, гол. 1170 1170

Количество цыплят на конец опыта, гол. 1121 1149

Сохранность за период выращивания, % 95,8 98,2

Живая масса, г 2036,1 2128,3

Абсолютный прирост, г 1993,2 2085,4

Затраты корма на кг прироста, кг 1,86 1,78

Валовой прирост живой массы, кг 2210,5 2371,1

Себестоимость 1 кг прироста, руб. 44,8 44,1

Убойный выход, % 67,1 67,4

Получено тушек I сорта, % 86% 92%

Получено тушек II сорта, % 14% 8%

Выручено, руб. 117887,4 127985,0

Прибыль, руб. 18855,5 23419,5

Дополнительная прибыль, руб. - 4564,0

Уровень рентабельности, % 19,0 22,4

В отличие от цыплят контрольной группы, молодняк из опытной группы дополнительно получал йодид калия в дозе 0,7 мг/кг комбикорма в пересчете на элемент, селенит натрия - 0,2 мг/кг комбикорма в пересчете на элемент и лактоамиловорин - 1 г/кг комбикорма. На протяжении всего опыта проводились плановые ветеринарные мероприятия. Также в исследуемых группах осуществлялось наблюдение за физиологическим состоянием птицы, показавшее, что вводимые препараты молодняку опытной группы не оказали негативного влияния, и поедаемость кормосмеси была полнее, чем в контроле.

Из полученных данных следует, что у цыплят опытной группы, по сравнению с контролем, падеж сократился на 2,4 %, живая масса одной головы увеличилась на 4,6 %, уровень расхода корма на 1 кг прироста живой массы снизился на 4,3 %, что позволило снизить себестоимость килограмма прироста на 0,7 руб.

По оценке специалистов планового отдела ЗАО «Птицефабрика Оренбургская», обогащение комбикорма предложенными препаратами позволило извлечь дополнительную прибыль, с учетом затрат, в размере 4564 рублей в расчете на 1000 голов.

Таким образом, результаты проведенных исследований показали, что обогащение комбикормов, предназначенных для откармливания цыплят, йо-дидом калия и селенитом натрия на фоне лактоамиловорина, приводило к улучшению физиолого-биохимических показателей крови и качества мяса за счет накопления в нем вводимых микроэлементов, что позволило полнее реализовать биологические ресурсы их организма и использовать куриное мясо как полноценный источник йода и селена в питании человека, а также повысить продуктивность и снизить расход корма на единицу продукции, тем самым увеличить уровень рентабельности производства на 3,4 %, что является экономически целесообразным.

4 Обсуждение результатов исследований

В последние годы во всем мире врачи-диетологи уделяют большое внимание коррекции недостатка селена и йода у различных групп населения. Обогащение ими рационов кормления животных и птиц - один из способов решения этой проблемы. При скармливании селена и йода получается продукция с повышенной концентрацией в ней этих элементов, что дает возможность восполнить их дефицит в питании человека (Т.Т.Папазян 2005).

Необходимо отметить, что ранее не достаточно изучалось комплексное влияние селена и йода на продуктивность и обмен веществ сельскохозяйственных животных и птицы, хотя в отдельных источниках отмечается, что одновременный дефицит этих микроэлементов приводит к более высокой степени гипотиреоидизма, чем дефицит в составе рациона одного йода (J.R.Arthur, GJ.Beckett, 1994).

Известно, что среди локальных и системных функций микробиоты кишечника животных важное место занимает улучшение всасывания различных соединений, включая микроэлементы. В экспериментах на животных и клинических исследованиях установлено, что нарушение формирования кишечной среды негативно сказывается на всасывании нутриентов и, особенно, на усвоении минеральных веществ, витаминов, и, в конечном итоге, на состоянии иммунитета (А.В.Васильев, А.Б.Петухов, Г.Ю.Мальцев, 2004).

В последнее десятилетие пробиотические препараты в кормлении сельскохозяйственных животных широко применяются с целью нормализации пищеварительных и обменных процессов, а также стимуляции повышения их продуктивных качеств. Известно, что для всасывания селена и йода важное значение имеет рН среды содержимого кишечника, в регуляции которого принимает участие микрофлора. Чаще всего в кишечнике уменьшается количество лактобактерий, которые выполняют ряд важных функций: защищают слизистую от проникновения в кровь патогенных и условно-патогенных микроорганизмов, в процессе жизнедеятельности синтезируют антибиотикопо-

добные вещества, органические кислоты, препятствующие развитию патогенов (Ф.Цогоева и др., 2015).

Совместное использование микронутриентов селена и йода в рационах сельскохозяйственных животных на фоне скармливания пробиотиков в условиях биогеохимических зон России, в том числе и в Оренбургской области, способствует повышению продуктивности и качеству получаемой продукции.

Поэтому целью наших исследований являлось изучение влияния комплексного использования препаратов йода, селена и лактоамиловорина на метаболизм и продуктивность цыплят-бройлеров с определением: наиболее эффективного варианта комбинирования микроэлементов и лактоамиловорина; динамики живой массы и сохранности молодняка; переваримости и использования основных питательных веществ, баланса азота, энергии, кальция и фосфора; морфологических и биохимических показателей крови; состояние общей резистентности организма; мясной продуктивности и экономической эффективности.

Для решения поставленных задач на базе вивария и межкафедральной комплексной аналитической лаборатории факультета ветеринарной медицины и биотехнологий, также кафедры химии и биотехнологий ФГБОУ ВО «Оренбургский ГАУ», комплексной аналитической лаборатории ФГБНУ «Всероссийский НИИ мясного скотоводства» и в условиях птицефабрики ЗАО «Птицефабрика Оренбургская» Оренбургского района Оренбургской области были проведены исследования на цыплятах-бройлерах суточного возраста. Цыплята контрольной группы в период выращивания получали только основной рацион, аналогам опытных групп к комбикорму вводили предназначенные для исследования препараты: йодид калия (Ю) в дозе 0,7 мг/кг комбикорма, селенит натрия (Ка28е03) - 0,2 мг/кг комбикорма в пересчете на элемент и лактоамиловорин (ЛАВ) - 1 г/кг комбикорма. Содержание птицы клеточное.

В первом опыте при определении наиболее эффективного варианта комбинирования добавок в кормлении цыплят выяснилось, что наилучший

эффект был достигнут при скармливании птице полнорационных комбикормов, обогащенных йодидом калия и селенитом натрия, а также препаратами йода и селена совместно с лактоамиловорином. В результате этого, во втором опыте подробно будем рассматривать только VI и VII опытные группы (именуемые соответственно I и II опытные группы), сравнивая полученные результаты с контролем.

Среди цыплят-бройлеров, получавших препараты йода и селена отдельно и совместно с лактоамиловорином, наибольшей живой массой отличался молодняк II опытной группы. В конце эксперимента они превосходили сверстников из контрольной и I опытной групп соответственно на 84,8 (4,2%) и 13,1 г (0,6%).

Абсолютный прирост живой массы цыплят-бройлеров на протяжении всего опыта был выше при скармливании препаратов йода и селена совместно с лактоамиловорином. Последние по данному показателю превосходили сверстников из контрольной и I опытной группы на 84,8 (4,2%) и 13,1 г(0,6%). Среднесуточный прирост живой массы в контрольной группе составил 47,69 г, в то время как в I опытной группе он увеличился до 49,40 г, а во II - за счет совместного использования препаратов йода, селена и лактоамиловорина повысился до 49,71 г, то есть был выше аналогов контрольной группы на 4,2% (Р<0,001) аналогичные результаты были получены Гавриковой Л.М. (2007), Егоровым И. А. (2017), Кальницким Б. Д. (2010) при использовании йода и селена в рационе цыплят-бройлеров.

Сохранность цыплят подопытных птиц за период выращивания в I опытной группе оказалась равной с контролем, а во II опытной группе она превышала данный показатель на 2,0 %.

Основными биологическими факторами продуктивности животных являются: переваривание и всасывание питательных веществ, их метаболизм и эффективность использования для продуктивных целей. Исследования показали, что наибольшее усвоение протеина корма было у цыплят опытных групп

- соответственно 6,7 и 7,3 %. Исходя из полученных данных, наибольшие значения показателя наблюдались у птиц II опытной группы. Возможно, основанием этому явилось применение лактоамиловорина, так как сами бактерии в результате лизиса, под действием лизоцима и трипсина могли быть источником белка, кроме этого, микроорганизмы микрофлоры кишечника способствуют синтезу аминокислот. Наряду с этим, у цыплят II опытной группы наблюдалось снижение усвоения липидов корма на 8,7% . Это объясняет и снижение процентного содержания в-глобулиновой подфракции у цыплят II опытной группы, так как, в данной подфракции содержится около 75% всех липидов плазмы крови. Очевидно, понижение усвоение липидов в данном случае обусловлено воздействием лактобактерий на желчные кислоты, которые смешиваясь с липидами, помогают его переваривать. Бактерии же де-коньюгируют эти кислоты, препятствуя нормальному усвоению липидов из кишечного тракта, что подтверждается в работах В.Н.Никулина, Т.В.Синюковой (2008), О.Ю.Ширяевой и др. (2008).

Результаты исследования по обмену энергии показали, что уровень потребленной валовой и обменной энергии цыплятами опытных групп был выше аналогов контроля на 2,35; 3,29 % и на 5,26; 9,87 % соответственно. Использование чистой энергии, относительно опытных групп, цыплятами контрольной группы оказалось меньше на 6,17 и 11,1 % соответственно. Исходя из полученных данных, наиболее эффективное использование энергии оказалось у цыплят II опытной группы.

Использование препаратов йода, селена и лактоамиловорина у цыплят-бройлеров II опытной группы, в сравнении с I опытной и контрольной, снизила потери азота с пометом до 1,35 г, что составило 0,18 (Р<0,05) и 0,08 г и увеличило его отложение в теле на 0,27 (Р<0,05) и 0,12 г (Р<0,05), достигнув величины 1,86 г. При этом его использование в расчете от принятого с кормом возросло на 6,98 и 3,05% (Р<0,001), составив 57,94%.

Физиолого-биохимические показатели крови у подопытных птиц не вы-

ходили за границы физиологической нормы (Н.В.Садовников, 2009). Это свидетельствует о том, что эксперименты проводились на клинически здоровых цыплятах, а также об отсутствии негативного влияния вносимых препаратов в комбикорм на состояние здоровья птиц.

Включение в рацион цыплят опытных групп йода, селена, а также лак-тоамиловорина способствовало повышению содержания эритроцитов на 1,711,1 % и 3,5-15,7 % и гемоглобина на 8-15,6 % и 7,5-16,3 % соответственно, по сравнению с контролем. Аналогичные результаты были получены Б.Д.Кальницким и др. (2010), Т.В.Оливой и др. (2013), Б.В.Таракановым, В.Н.Никулиным, В.В.Герасименко (2005), Г.А.Ноздриным и др. (2008).

Повышение содержания эритроцитов у цыплят опытных групп происходит благодаря тиреоидным гормонам, поскольку в работе В.М.Смирнова (2002) сообщалось, что данные гормоны оказывают стимулирующее воздействие на эритропоэз за счет повышения почечной продукции эритропоэтина, а также, исходя из работы Л.П.Никитиной и др. (1995), за счет селеносодержа-щего фермента - глютатионпероксидазы, предохраняющего гемоглобин от окислительного гемолиза. Вероятно, данные факторы и послужили причиной увеличения уровня гемоглобина в крови цыплят. По содержанию эритроцитов и гемоглобина цыплята второй группы оказались на лидирующей позиции, по - видимому, за счет положительного влияния лактоамиловорина на эритрон.

Содержание лейкоцитов в сыворотке крови цыплят опытных групп, по сравнению с контролем, уменьшалось, однако у птиц II опытной группы значения данного показателя были ниже остальных групп, возможно, за счет благотворного воздействия лактоамиловорина на микрофлору кишечника, как "органа" иммунитета. Уменьшение количества лейкоцитов в опытных группах указывает на мобилизацию защитных и восстановительных процессов в организме птицы. Полученные данные согласуются с работами С.А.Шевченко (2004), Е.А.Кузнецовой и др. (2013).

Цыплята опытных групп по содержанию общего белка в сыворотке кро-

ви превышали контроль соответственно на 3,3-4,6% и 5,3-8,4%. Возможно, этому могли способствовать тиреоидные гормоны. Так, по данным Р.Шмидта и др. (2005), трийодтиронин путем связывания с рецепторами в ядре клетки и воздействия его на геном вызывает усиление транскрипции и трансляции определенных генов, способствуя тем самым синтезу белка. Также причиной, вероятно, стало стимулирующее действие селена на синтез иммуноглобулинов. Кроме этого, по данным В.Фисинина и др. (2008), селенопротеин приводит окисленные остатки метионина в активное состояние, защищая белки от окисления. Данное предположение подтверждается работами Б.Д.Кальницкого и др. (2010), С.Ф.Сухановой и А.Г.Малахова (2008). Они утверждают, что под действием селенсодержащих добавок происходило увеличение количества общего белка в сыворотке крови птиц. Однако птицы второй опытной группы по содержанию общего белка превосходили аналогов остальных групп. Вероятно, причиной данного факта является лучшее усвоение протеина корма за счет лактобактерий. По данным С.Лыско (2008), применение пробиотика способствовало повышению уровня общего белка в сыворотке крови цыплят.

Кроме этого, у птиц опытных групп на фоне повышения содержания общего белка наблюдалось понижение концентрации мочевой кислоты, в сравнении с контролем, что свидетельствует о более высоком уровне усвоения аминокислот из корма в желудочно-кишечном тракте.

Установлено, что уровень глюкозы в сыворотке крови цыплят опытных групп был выше, чем у аналогов из контроля. Возможно, причиной этому является прямая Т3 - зависимая активация синтеза фермента глюконеогенеза на ядерном уровне. Помимо этого Y.J.Hei и др. (1999) утверждал, что соединения селена способствуют стимулированию поглощения глюкозы путем транслокации переносчиков глюкозы в мембране. Из всех групп содержание глюкозы в сыворотке крови цыплят II опытной группы было самым высоким. Это связано с отличительной особенностью штамма Lactobacillus paracasei В-6253,

которая состоит в их способности к ферментации крахмала корма и стимуляции микроорганизмов, гидролизующих сложные полисахариды.

Также наблюдалось снижение количества общего холестерола в сыворотке крови цыплят II опытной группы на 10,7-19,8%, этому способствовали те же обстоятельства, что и понижению усвоения липидов корма. Содержание холестерола у цыплят II опытной группы было меньше, чем у аналогов других групп. При этом у аналогов I опытной группы происходило увеличение концентрации холестерола на 9,4 %.

Отмечено, что цыплята опытных групп по содержанию кальция и фосфора в сыворотке крови превосходили контроль соответственно на 7,4-11,3 %; 11,2 % и 8,5-14,2 %; 7,1-14,56 %. Увеличение данных показателей в сыворотке крови цыплят опытных групп можно объяснить двумя причинами. Во-первых, стимулированием тиреоидными гормонами активности кальций-переносящих белков, путем прямого взаимодействия гормонов с мембранными липидами и белками. Помимо этого, Г.Г.Щербаков и А.А.Ефимов (2002) установили, что применение йода способствовало значительному увеличению поглощения фосфора в тонком кишечнике in vitro. И, во-вторых, N.Schutze и др. (1999) утверждают, что селен участвует в регуляции гена, контролирующего синтез активной формы витамина D (D - 1,25-(OH)2D3).

Стоит отметить, что содержание в сыворотке крови и усвоение кальция и фосфора, а также усвоение азота и концентрация йода и селена в органах и тканях цыплят, которым дополнительно включали пробиотик, были выше, чем у остальных птиц. Скорее всего, данное увеличение элементов происходит благодаря нормализации микробиоценоза кишечника за счет действия на него лактоамиловорина. При этом, происходит изменение значений рН в благоприятную сторону, препятствуя образованию нерастворимых солей, тем самым улучшая всасывание минеральных веществ. Полученные результаты согласуются с работой А.А.Шапошникова и др. (2007).

Установлено увеличение основных показателей естественной резистент-

ности в сыворотке крови птиц опытных групп: БАСК - на 8,45 и 4,7-9,8 % и ЛАСК - на 6,5 и 6,9-10,1 % соответственно. Вероятно, это связано с воздействием тиреоидных гомонов на Т- и В-лимфоциты, макрофаги, нейтрофилы и т.д., кроме этого, со стимулирующим влиянием селена на интерлейкины - 1 и - 2, на продукцию и метаболизм эйкозаноидов. Однако, БАСК и ЛАСК у цыплят второй опытной группы были выше, так как важную роль в этом сыграл лактоамиловорин, за счет пептидогликанов, освобождающихся при переваривании клеточных стенок лактобацилл. Подобное увеличение естественной резистентности прослеживается в работах Л.М.Гавриковой, 2007, Н.А.Невинской и др. (2008), С.Ф.Сухановой и др. (2008), С.Лыско (2008), Г.А.Ноздрина и др. (2008), Е.В.Григорьевой и Л.Ю.Топурия (2011).

Благодаря включению препаратов в рацион молодняка опытных групп, отмечается повышение процентного содержания у-глобулинов в I опытной группе на 1,72 % и во II - на 2,5-3,6 %. Однако у цыплят II опытной группы уровень у-глобулинов был выше. Повышение содержания данного показателя у птиц при скармливании йодистых добавок наблюдали в своих работах А.М.Булгаков и др. (2011), С.Н.Аухатова (2006).

Полученные данные о БАСК, ЛАСК и содержанию у-глобулинов указывают на стимулирующее влияние вводимых препаратов на иммунную систему птиц, тем самым цыплята опытных групп, по сравнению с аналогами из контроля, потенциально более устойчивы к воздействию неблагоприятных факторов внешней среды.

Цыплята опытных групп по активности глутатионпероксидазы - фермента антиоксидантной защиты превосходили контрольных на 15,9-18,8% и 18,3-24,9% соответственно, при этом самая высокая активность ГПО наблюдалась у птиц второй группы. Полученные данные можно объяснить действием тиреоидных гормонов на антиоксидантную систему птиц. Антиоксидант-ный эффект йодтиронинов, по-видимому, может быть результатом мембрано-тропного действия тиреоидных гормонов, приводящим к уменьшению содер-

жания основных субстратов перекисного окисления липидов. Помимо этого, известно, что в активном центре ГПО содержится 4 ковалентно связанных атома селена в форме селеноцистеина. Следовательно, дополнительное введение селена в корм привело к увеличению данного показателя. Этому также способствует действие пробиотика за счет продуцирования ими биологически активных соединений, способных активизировать функциональную деятельность антиоксидантной системы защиты организма.

Повышение активности ферментной антиоксидантной системы эритроцитов молодняка способствует увеличению продуктивности птиц.

Было установлено увеличение содержания тиреоидных гормонов в сыворотке крови цыплят опытных групп. Так, количество общего трийодтиро-нина было выше на 14,1 и 21,8-26,7 %, свободного тироксина - на 5,4-7,6% и 7,7-25,2 % соответственно.

Масса потрошеной тушки цыплят-бройлеров опытных групп оказалась выше аналогов контроля на 4,3 и 5,8 % (Р<0,05), убойный выход увеличился на 0,6 и 1,1%, содержание мышечной ткани повысилось на 3,91 и 5,5 % (Р<0,05) по массе съедобных на 5,2 и 7,9 %. Превосходство было за II опытной группой по данным показателям в сравнении с I опытной - на 1,4%, 0,5%, 1,6%, 2,5%.

По содержанию незаменимых и заменимых аминокислот в грудных и бедренных мышцах молодняк опытных групп от контроля существенно не отличался. Однако, сумма изученных аминокислот у цыплят-бройлеров опытной группы была несколько выше, чем у аналогов контрольной группы.

Положительно влияние кормовые добавки оказали на химический состав мяса птицы. Так, в сухом веществе было отмечено повышение уровня белка у цыплят опытных групп на 7,0 и 8,9 % соответственно. Наблюдалось снижение уровня жира у птиц II опытной группы на 6,3 %. Наши данные согласуются с результатами исследований, проведенными С.Н.Рассоловым, А.М.Ерановым (2012). Однако в группе, где скармливали только микроэлементы, уровень жира оказался выше контрольных значений, что согласуется с данными,

полученными И.Н.Ахметовой (2008), А.А.Кистиной и др. (2008).

Содержание йода и селена в органах и тканях молодняка, дополнительно потреблявшего данные элементы, было выше, чем в контроле. У птиц опытных групп, относительно аналогов из контроля, количество йода было выше в грудной мышце на 46,0 и 52,7 %, в бедренной мышце - на 38,5 и 47,7%, щитовидной железе - на 5,2 и 7,1 %, почках - на 20,9 и 24,4 % и в крови - на 51,7 и 45,7 %. Содержание селена, по сравнению с контрольной группой, у цыплят опытных групп увеличивается в грудной мышце - на 32,9 и 41,6 %, печени - на 18 и 23,5 %, почках - на 17,4 и 18,2 % и крови - на 35,2 и 39,1%. Следовательно, накопление данных микронутриентов происходит и в продукции, что позволяет восполнить их недостаток в питании людей.

При комплексном внесении в рацион цыплят-бройлеров йода, селена и лактоамиловорина установлено, что у молодняка опытной группы, по сравнению с контролем, падеж сократился на 2,4 %, живая масса одной головы увеличилась на 4,6 %, уровень расхода корма на 1 кг прироста живой массы снизился на 4,3 %, что позволило снизить себестоимость килограмма прироста на 0,7 руб. По оценке специалистов планового отдела ЗАО «Птицефабрика Оренбургская», обогащение комбикорма предложенными препаратами позволило извлечь дополнительную прибыль, с учетом затрат, в размере 4564 рублей в расчете на 1000 голов.

Исходя из результатов исследований следует, что применение йодида калия и селенита натрия у цыплят вызывает активацию обменных процессов, увеличение количества йода и селена в органах и тканях, усиление естественной резистентности и антиоксидантной активности, однако при совместном использовании микроэлементов и пробиотика был достигнут максимальный биологический эффект. Следовательно, совместное использование йода, селена и лактоамиловорина оказало наибольшее положительное влияние на зоотехнические, физиолого-биохимические и экономические показатели цыплят-бройлеров.

5 Заключение

В диссертационной работе приведены результаты зоотехнических, фи-зиолого - биохимических и экономических исследований по изучению влияния совместного использования препаратов йода, селена и лактоамиловорина.

Полученные экспериментальные данные, а также комплексный анализ полученных результатов позволяет сделать следующие выводы:

1. Наиболее эффективным вариантом при выращивании цыплят-бройлеров является комплексное применение йодида калия-0,7 мг/кг, селенита натрия-0,2 мг/кг и лактоамиловорина - 1 г/кг комбикорма.

2. Скармливание цыплятам йода, селена в комплексе с лактоамиловори-ном способствовало увеличению живой массы птицы соответственно на 4,2% и 0,6% и сохранности - на 2,0 %, по сравнению с контрольной и I опытной группами.

3. Включение в рацион цыплят йодида калия, селенита натрия в комплексе с лактоамиловорином способствовало увеличению усвоения сухого вещества на 6,89 и 4,07%, протеина - на 7,30 и 3,61%, клетчатки - на 1,48 и 2,90%. Использование обменной и чистой энергии рациона было выше на 9,87 и 4,38% и 11,1% и 4,65%. Усвоение азота возросло на 6,98% и 3,05%, кальция - на 7,95% и 3,39%, фосфора - на 6,34% и 4,07% по сравнению с контрольной и I опытной группами.

4. Наиболее высокий уровень окислительно-восстановительных процессов в организме цыплят-бройлеров был отмечен при добавлении к комбикорму микроэлементов совместно с лактоамиловорином: содержание гемоглобина было выше на 7,5-16,3% и 2,1%, чем у цыплят контрольной и I опытной групп, количество общего белка - на 5,3-8,4% и 4,52%, глюкозы - на 6,0-6,41 % и 3,6%, повысилась БАСК на 2,5-5,1 % и 1,5%, ЛАСК - на 2,6-3,3% и 3,2%, концентрация - ГПО на 18,3-24,9% и 5,2%. Концентрация гормонов щитовидной железы возрастала, так Т4 на 7,7-13,3% и 7,1% и Т3 на 21,8-26,7% и 1,1%.

При этом отмечено снижение количества лейкоцитов на 2,8-4,6 и 4,0%, мочевой кислоты - на 13,8-14,2 и 7,72%, холестерола - на 10,7-19,8 и 22,1%.

5. Использование в комбикормах йодида калия в дозе 0,7 мг/кг, селенита натрия - 0,2 мг/кг в сочетании с лактоамиловорином - 1 г/кг оказало положительное влияние на мясную продуктивность и качество мяса цыплят-бройлеров: предубойная живая масса был выше на 4,2% и 0,62%, масса потрошённой тушки - на 5,8% и 1,4%, убойный выход- на 1,1% и 0,5%, содержание мышечной ткани - на 5,7% и 1,1%, масса съедобных частей - на 5,2% и 0,8%, масса несъедобных частей - на 2,9% и 0,4%, масса костей - на 4,8% и 1,8%, отношение съедобных частей к живой массе - на 0,5% и 0,1%, отношение несъедобных частей к живой массе - на 0,5% и 0,1%, отношение съедобных частей к несъедобным - на 2,7% и 0,5 % соответственно, по сравнению с аналогами контрольной и I опытной групп.

6. Химический состав грудных и бедренных мышц показал, что во II опытной группе по сравнению с контрольной и I опытной группами содержалось больше сухого вещества на 1,54% и 0,4%, белка - на 1,77% и 0,79%, сырой золы - на 0,06 и 0,04% и соответственно. Мясо цыплят-бройлеров II группы отличались высокой диетической ценностью, так как уровень жира был ниже на 0,29 %, по сравнению с контролем. БКП мышц цыплят-бройлеров II опытной группы в сравнении с контролем и I опытной группой был выше на 0,49% и 0,09%.

7. По концентрации йода птицы II опытной группы превышали значения контрольной и I опытной групп: в грудной мышце на 52,7% и 4,6%, в бедренной мышце - на 47,7 % и 6,6%, в почках - на 24,4% и 2,9%. Содержание селена у цыплят II опытной группы также было выше: в грудной мышце на 41,6% и 6,6%, в печени - на 23,5% и 6,7%, в почках - на 17,6% и 2,6%.

8. Цыплята-бройлеры, получавшие йодид калия и селенит натрия совместно с лактоамиловорином, по основным показателям продуктивности и экономической эффективности превосходили контрольных сверстников. Расход

корма на 1 кг прироста живой массы при этом уменьшился на 4,3 %, себестоимость 1 кг прироста снизилась на 1,6%, прибыль возросла на 24,2%, что обеспечило повышение рентабельности производства продукции на 3,4 %.

6 Предложение производству

В целях повышения производства мяса цыплят-бройлеров и улучшения его качества; получения экологически безопасной птицеводческой продукции, обогащенной йодом и селеном, с пониженной жирностью; снижения себестоимости получаемой продукции рекомендуется дополнительное включение к основному рациону цыплят йодида калия в дозе 0,7 мг/кг (в пересчете на элемент), селенита натрия - 0,2 мг/кг (в пересчете на элемент) в сочетании с лактоамиловорином - 1 г/кг. Это позволяет повысить сохранность молодняка на 2,0%, интенсивность его роста на 4,2% и рентабельность производства мяса птицы на 3,4%.

7 Перспективность темы исследования

На основании результатов выполненных исследований было установлено, что комплексное использование в рационах цыплят-бройлеров препаратов йода, селена совместно с пробиотиком лактоамиловорином является перспективным направлением в вопросе повышения продуктивности птицы и рентабельности производства мяса цыплят-бройлеров. Ранее накопленные научные данные отечественных и зарубежных ученых свидетельствуют о положительных результатах использования в комплексе данных препаратов и пробиотика для повышения продуктивности, сохранности поголовья и снижении затрат на единицу произведенной продукции. В то же время научных данных по использованию препаратов йода, селена совместно с пробиотиком лактоамило-ворином и их влияния на зоотехнические, физиологические, биохимические и экономические показатели еще не достаточно.

На основании данных проведенных исследований необходимо дальнейшее изучение эффективности использования в рационах цыплят-бройлеров препаратов йода, селена совместно с пробиотиком лактоамиловорином, входящих в состав полнорационных комбикормов. Например, разработать дифференцированную схему применения препаратов, расширив исследования по изучению зоотехнических, физиолого-биохимических показателей, как основу повышения продуктивности и сохранности поголовья в условиях промышленной технологии производства продукции птицеводства.

8 Список литературы

1. Азарнова, Т.О. Концепция стимуляции белкового обмена у эмбрионов кур как способ оптимизации морфофункционального состояния печени при использовании селен и витамин с-содержащего препарата / Т.О. Азарнова, И.И. Кочиш, Д.Л. Богданова, И.Г. Сильвестрова, А.А. Антипов, М.С. Найденский, С.Ю. Зайцев // Аграрная Россия. - 2016. - № 11. - С. 26-29.

2. Александров, В.А. Методика изучения откормочных и мясных качеств крупного рогатого скота /В.А. Александров. М., 1951. 53с.

3. Алексанров Ю.А. Биохимические показатели яиц кур-несушек разных кроссов и их влияние на инкубационные качества и пищевую ценность/ Ю.А. Алексанров // Вестник Марийского государственного университета. - 2015. - № 2. - С. 5-9.

4. Антипов, В.А. Воздействие пробиотического препарата бифилакт на биоценоз пищеварительного тракта птицы / В.А. Антипов, Т.И. Каблучеева-Пашник, Н.Г. Амбулова, Т.В. Кушнир // Труды кубанского государственного аграрного университета. - 2013. - № 45. - С. 165-168.

5. Антипов, В.А. Препараты йода в ветеринарии / В.А. Антипов, В.Ф. Тала-новский. - Краснодар, 1997. - 47 с.

6. Аухатова, С.Н. Влияние йода на метаболические процессы в организме / С.Н. Аухатова // Успехи современного естествознания. - 2006. - №1. - С. 32-33.

7. Ахметова, И.Н. Мясная продуктивность и экономическая эффективность при использовании Сел-Плекса в рационах бычков / И.Н. Ахметова // Кормление сельскохозяйственных животных и кормопроизводство. -2008. - № 11. - С. 14-15.

8. Бабичева, И. А. Эффективность использования пробиотических препаратов при выращивании и откорме бычков / И.А. Бабичева, В.Н. Никулин // Известия ОГАУ. - 2014. - № 1. - С. 167-168.

9. Балаболкин, М.И. Эндокринология / М.И. Балаболкин уч. - 2-е изд., пере-раб. и доп. - М.: Универсум паблишинг, 1998. - 416 с.

10. Барабой, В.А. Биологические функции, метаболизм и механизмы действия селена / В.А. Барабой // Успехи современной биологии. - 2004. - Т. 124. - № 2. - С. 157-168.

11. Бараников, В.А. Использование пробиотиков при выращивании индюшат кросса «BIG -6» / Бараников В.А. // Аграрный вестник Урала. - 2014. - № 6. - С. 46-50.

12. Бессарабов, Б.Ф. Естественная резистентность и продуктивность птицы / Б.Ф. Бессарабов // Сучасне птах1вництво. - 2010. - № 1-2. - С. 12-14.

13. Благосклонная, Я.В. Эндокринология / Я.В. Благосклонная, Е.В. Шляхто, А. Ю. Бабенко.- СПб. : СпецЛит, 2007. - 400 с.

14. Болодурина, И.П. Математическое моделирование взаимодействия микроэлементов в организме человека / И.П. Болодурина, О.С. Арапова // Вестник ОГУ. - 2010. - № 9. - С. 10-15.

15. Бондаренко, В.М. Пробиотики и механизмы их лечебного действия / В.М. Бондаренко, Р.П. Чупринина, Ж.И. Аладышева и др. // Экспериментальная клиническая гастроэнтерология - 2004. - № 3. - С. 83-87.

16. Булгаков, А.М. Использование йодистого крахмала цыплятам - бройлерам / А.М. Булгаков, В. Д. Кузнецов // Кормление сельскохозяйственных животных и кормопроизводство. - 2011. - № 1. - С. 35-41.

17. Бурдашкина, В. Селенопиран улучшает качество мяса / В. Бурдашкина // Животноводство России. - 2011. - № 4. - С. 57.

18. Бурцева Т.И. Содержание селена в мясе животных и птицы, произведенных на территории оренбургской области / Т.И. Бурцева, Н.А. Голубкина, С.А. Мирошников, А.В. Скальный // Вопросы питания. - 2013. - № 5. - С. 64-67.

19. Бухарин, О.В. Свойства и функции тромбоцитарного катионного белка / О.В. Бухарин, К.Г. Сулейманов // Успехи современной биологии. - 1998. - № 2. - С. 194-204.

20. Бушов, А.В. Ростстимулирующее действие биопрепаратов в технологии выращивания цыплят - бройлеров / А.В. Бушов, В.В Курманаева // Вестник Ульяновской ГСХА. - 2014. - № 4. - 105-109.

21. Буяров, В.С. Применение пробиотиков в бройлерном птицеводстве / В.С. Буяров, В.А. Беленихин // Аграрная наука. - 2008. - № 11. - С. 29-30.

22. Вапиров, В.В. Селен. Некоторые аспекты химии, экологии и участия в развитии патологии (обзор) / В.В. Вапиров, М.Э. Шубина, Н.В. Вапирова, В.И. Беличенко и др. Петрозаводск: ПетрГУ, 2000. - 68 с.

23. Вишняков А.И. Последствия антропогенного влияния на состав крови цыплят-бройлеров / А.И. Вишняков, А.А. Торшков // Известия Оренбургского государственного аграрного университета. - 2009. - Т. 4, № 24. - С. 166-167.

24. Владимиров, Ю.А. Перекисное окисление липидов в биологических мембранах / Ю.А. Владимиров, А.И. Арганов. - М.: Наука, 1972. - 252 с.

25. Гаврикова, Л.М. Способ использования йода в кормлении цыплят - бройлеров / Л.М. Гаврикова // Зоотехния. - 2007. - № 4. - С. 13-15.

26. Гадзаонов, Р.Х. Использование пробиотика в профилактике диспепсии у новорожденных телят / Р.Х. Гадзаонов, И.В. Пухаева, Д.Ю. Хекилаев // Известия Горского ГАУ. - 2015. - Т 52. - № 4. - С. 168-172.

27. Галочкин, В.А. Органические и минеральные формы селена, их метаболизм, биологическая доступность и роль в организме / В.А. Галочкин, В.П. Галочкина // Сельскохозяйственная биология . - 2011. - № 4. - С. 3-15.

28. Галочкин, В.А. Метаболические трансформации селена и биологическая функция селенопирана / В.А. Галочкин, В.П. Галочкина // Проблемы биологии продуктивных животных. - 2008. - № 4. - С 3-20.

29. Георгиевский, В.И. Минеральное питание животных / В.И. Георгиевский, Б.Н. Анненков, В.Т. Самохин. - М.: Колос, 1979. - 471 с.

30. Герасименко, В.В. Использование лактобактерий при выращивании брой-

леров / В.В. Герасименко, Т.В. Коткова, М.Г. Шмаль, Е.С. Петраков // Известия Оренбургского государственного аграрного университета. - 2013. - № 4. - С. 239-240.

31. Герасимов, Г.А. Йододефицитные заболевания в России. Простое решение сложной проблемы / Г. А. Герасимов, В.В. Фадеев, Н.Ю. Свириденко и др. - М.: Адамантъ, 2002. 168 с.

32. Герасимова, Т. Йодис концентрат для кур / Т. Герасимова // Птицеводство. - 2006. - № 9. - С. 25-26.

33. Гиндуллин, А.И. Возможности применения пробиотиков на основе лак-тобактерий в птицеводстве / А.И. Гиндуллин // Ученые записки Казанской государственной академии ветеринарной медицины им. Н.Э. Баумана. - 2013. - Т. 215. - С. 74-77.

34. Гмошинский, И.В. Минеральные вещества в питании человека. Селен: всасывание и биодоступность / И.В. Гмошинский, В.К. Мазо // Вопросы питания. - 2006. -Т. 75. - № 5. - С. 15-21.

35. Голубкина, Н.А. Содержание селена в донных отложениях и растениях северной части Каспийского моря / Н.А. Голубкина, О.А. Чиженкова, В.Ф. Зайцев и др. // Вестник АГТУ. - 2011. - № 1. - С. 10-12.

36. Горелов, А.В. Современный взгляд на место пробиотических продуктов в профилактике заболеваний и сохранении здоровья человека / А.В. Горелов, Д.В. Усенко // Лечение и профилактика. - 2011. - № 1. - С. 56-64.

37. Григорьева, Е.В. Влияние олина на иммунологические показатели цыплят-бройлеров / Е.В. Григорьева, Л.Ю. Топурия // Известия ОГАУ. -2011. - № 3. - С. 357-358.

38. Грозина, А.А. Морфологическая оценка стенки кишечника цыплят кросса «Кобб 500» на фоне применения антибиотика и пробиотика / А. А. Грози-на, В.В. Пронин, М.С. Дюмин // Российский ветеринарный журнал. Сельскохозяйственные животные. - 2014. - № 4. - С. 16-17.

39. Драганов, И.Ф. Выращивание и откорм бычков с использованием антиок-сиданта агидола кормового / И.Ф. Драганов, Е.В. Коробицына // Докл. ТСХА / Рос. Гос. Аграр. Ун-т - МСХА имени К.А. Тимирязева. - 2009. -№. 281. - С. 405-407.

40. Дубинина, Е.Е. Окислительная модификация белков сыворотки крови человека, метод ее определения / Е.Е. Дубинина, С.О. Бурмистров, Д.А. Ходов и др. // Вопросы медицинской химии. - 1995. - № 1. - С. 24-26.

41. Дыгало, H.H. Регуляция экспрессии адренергических рецепторов стероидными гормонами / H.H. Дыгало, Т.С. Калинина, A.B. Носова и др. // Рос. Фи-зиол. журн. им. И.М. Сеченова. - 1998. - Т. 84. - № 10. - С. 1115-1120.

42. Евхутич, Н. Йодказеин повышает пищевую ценность птицепродукции / Н. Евхутич, Л. Евхутич // Птицеводство. - 2006. - № 8. - C. 26-27.

43. Егоров, И. Селен в комбикормах для мясных кур / И. Егоров, Р. Мурта-заева, М. Когут и др. // Птицеводство. - 2006. - № 6. - С. 13-14.

44. Егоров, И.А. Инновационные подходы к использованию биологически активных веществ в бройлерном птицеводстве / И.А. Егоров, Е.Н. Прянишникова // Интенсивные технологии производства продукции животноводства: сборник статей Международной научно-практической конференции. - Пенза: РИО ПГСХА, 2015. - 136 с.

45. Егоров И.А. Применение нового пробиотика в комбикормах для цыплят-бройлеров / И.А. Егоров, В.Г. Вертипрахов, В.А. Манукян, Т.Н. Ленкова, Т.А. Егорова, А.А. Грозина, Е.Ю. Байковская // Птицеводство. - 2017. - № 9.- С. 13-17.

46. Ермоленко, Е.И. Антимикробное действие лактобацилл / Е.И. Ермоленко, О.В. Рыбальченко // Медицина XXI век. - 2007. - № 5. - С. 41-48.

47. Ерохин, А.С. Селен и репродуктивная функция животных / А.С. Ерохин. М.: ВНИИплем, 2008. 142 с.

48. Ерпулёва, Ю.В. Еще раз к вопросу о пробиотиках / Ю.В. Ерпулёва // Лечащий врач. - 2011. - № 6. - С. 70-72.

49. Ершова, И.Б. Значение лактобактерий в организме человека и тактика правильного выбора эубиотика / И.Б. Ершова, Л.И. Гаврыш, Е.Н. Кунеги-на и др. // Здоровье ребенка. - 2008. - № 1. - С. 51-54.

50. Зеленская, О.В. Эффективность использования разных селеносодержа-щих препаратов в рационах цыплят-бройлеров с высоким перекисным числом / О.В. Зеленская // Аграрный вестник Урала. - 2009. - № 12. - С. 58-59.

51. Злепкин, А.Ф Влияние препарата «Карцесел» отдельно и совместно с ферментным препаратом «Целлолюкс f» на интенсивность роста и развитие репродуктивных органов ремонтного молодняка кур / А.Ф. Злепкин, В.А. Злепкин, Т.А. Байер // Известия нижневолжского агроуниверситет-ского комплекса: наука и высшее профессиональное образование. - 2014. - № 33. - С. 137-140.

52. Зорин С.Н. Оценка биодоступности органических и неорганических форм селена в опытах на растущих крысах / С.Н. Зорин, В.В. Печева, А.В. Бу-чанова, И., B. Гмошинский и др. // Вопросы питания. - 2008. - Т. 77. - № 6. - С. 72-74.

53. Иванов, А.А. Рост, развитие и формирование скелета цыплят - бройлеров при включении в рацион кофакторов минерального обмена / А. А. Иванов, А.Н. Ильяшенко // Известия ТСХА. - 2011. - № 4. - C. 114-130. Иванов, С.М. Качественные показатели инкубационных яиц при использовании в рационах птицы родительского стада тыквенного жмыха, обогащенного биодоступной формой йода / С.М. Иванов, З.Б. Комарова, Т.В. Берко, А.Н. Струк // Известия нижневолжского агроуниверситетского комплекса: наука и высшее профессиональное образование.- 2016. - № 41. - с. 141-148.

54. Иркитова, А.Н. Практическое значение и желчеустойчивость коллекционных штаммов Lactobacillus acidophilus / А.Н. Иркитова // Известия Алтайского государственного университета. - 2014. - Т. 1. - № 3. - С. 29-33.

55. Кабисов, Р.Г. Влияние пробиотиков на микрофлору желудочно-кишечного тракта цыплят-бройлеров / Р.Г. Кабисов // Известия Горского ГАУ. - 2012. - Ч. 4, Т. 49. - С. 382-385.

56. Калашников, А.П. Нормы и рационы кормления сельскохозяйственных животных: Справочное пособие / Под ред. А.П. Калашникова, В.И. Фи-синина, В.В. Щеглова, Н.И. Клейменова. - Москва, 2003. - 456 с.

57. Калашников, В.В. Кормление лошадей / В.В. Калашников, И.Ф. Драга-нов, В.Г. Мемедейкин. - М.: ГЭОТАР - Медиа, 2011. - 224 с.

58. Кальницкий, Б.Д. Использование разных форм соединений селена при выращивании цыплят - бройлеров / Б.Д. Кальницкий, Е.В. Шацких // Кормление сельскохозяйственных животных и кормопроизводство. -2010. - № 3. - C. 38-43.

59. Каминный, А.И. Увеличение активности селеновой глутатионпероксидазы в крови больных ИБС при использовании селеносодержащего антиокси-дантного препарата ADRUSEN ZINCO / А.И. Каминный, B.C. Тутунов, В.И. Каминная и др. // Бюл.экспер.биол. и мед. - 2000. - № 129. - С. 277-279.

60. Кандрор, В.И. Гормоны щитовидной железы: биосинтез и механизмы действия / В.И. Кандрор // Российский химический журнал. - 2005. - Т. 69. -№ 1. - С. 75-83.

61. Карпенко, Л.Ю. Влияние препарата «Гемобаланс» на факторы неспецифической резистентности лошадей / Л.Ю. Карпенко, Ю.А. Эйсмонт, А.Б. Андреева // Био-инфо. - 2007. - № 5. - С. 17-18.

62. Кистина, А.А. Влияние селеноорганических препаратов на интенсивность роста и мясные качества бычков /А.А. Кистина, Ю.Н. Прытков // Достижения науки и техники АПК. -2008. - № 8. - С. 59-61.

63. Кожевников, С.В. Морфологические и биохимические показатели крови цыплят - бройлеров при использовании йодида калия / С.В. Кожевников / Вестник АПК Верхневолжья. - 2010. - № 1. - C. 49-52.

64. Козловский, Ю.Е. Нормальная микрофлора желудочно-кишечного тракта и ее роль в поддержании гомеостаза / Ю.Е. Козловский, А.Н. Овчарова, М.М. Кузнецова и др. // Кролиководство и звероводство. - 2013. - № 2. -С. 27-31.

65. Комарова, З.В. Получение пищевых яиц с заданными функциональными свойствами / З.Б. Комарова, С.М. Иванов, Д.Н. Ножник и др. // Известия Нижневолжского агроуниверситетского комплекса. - 2012. - № 4. - С. 120-123.

66. Кондрахин, И.П. Методы ветеринарной клинической лабораторной диагностики / И.П. Кондрахин. Справочник. - М.: Колос, 2004. - 520 с.

67. Конев, Ю.В. Дисбиозы и их коррекция / Ю.В. Конев // Consilium medicum. - 2005. - № 6. - С. 432-443.

68. Кононский, А.И. Биохимия животных / А.И. Кононский. - Изд. 3-е, пе-рераб. И доп. - М.: Колос, 1992. - 526 с.

69. Косов, А.В. Эффективность использования новой витаминно - минеральной добавки для цыплят - бройлеров / А.В. Косов, Н.В. Картамышева // Агромир. - 2004. - № 1. - С. 31-37.

70. Коткова, Т.В. Влияние лактобактерий в комплексе с селеном на минеральный обмен цыплят - бройлеров / Т.В. Коткова, Е.С. Петраков // Вестник АПК Ставрополья. - 2015. - № 1. - С. 120-123.

71. Кохан, С.Т. Восстановление антиоксидантной и иммунной защиты организма селеносодержащими средствами при экспериментальном гипосе-ленозе / С.Т. Кохан, Е.В. Фефелова, М.В. Максименя // Фундаментальные исследования. - 2012. - № 11. - С. 837-841.

72. Кощаев, А.Г. Интенсификация процесса культивирования физиологически-адаптированных лактобацилл как основа создания биопрепаратов микробного происхождения для птицеводства / А.Г. Кощаев, Ю.А. Лысенко, В. А. Мищенко, А.В. Лунева, В.В. Радченко, Н.Л. Мачнева, А.Н. Гнеуш // Политематический сетевой электронный научный журнал ку-

банского государственного аграрного университета. - 2017. - № 128. -С. 1102-1115.

73. Крамарев, С.А. Защитные функции микрофлоры кишечника / С.А. Кра-марев, О.В. Выговская, Д.С. Янковский и др. // Новости медицины и фармации. Гастроэнтерология. - 2008. - № 251. - С. 62-67.

74. Краснова С.А. Гормональная терапия. Не навреди / С.А. Краснова, П.Г. Макарова, В.С. Тундалева и др. - М.: Эксмо, 2007. - 320 с.

75. Кудрин, А.В. Иммунофармакология микроэлементов / А.В. Кудрин, А.В. Скальный, А.А. Жаворонков. М.: КМК, 2000. - 537 с.

76. Кузнецова, Е.А. Производство продуктов птицеводства, обогащенных органической формой йода и селена / Е.А.Кузнецова, З.Б. Комарова, Е.Ю. Злобина, С.П. Косинов // Известия Нижневолжского агроуниверситетско-го комплекса: наука и высшее профессиональное образование. - 2013. -№ 4. - С. 140-144.

77. Кузьменко, В.В. Функция микрофлоры кишечника и ее участие в регуляции иммунных процессов организма человека / В.В. Кузьменко, Е.В. Ко-черова, А. А. Кочеров и др. // Научно- медицинский вестник центрального черноземья. - 2008. - № 34. - С. 107-115.

78. Куликов, Н. Экономическое обоснование применение пробиотика в бройлерном птицеводстве / Н. Куликов, А. Беденко // Комбикорма. -2009. - № 3. - С. 73-74.

79. Курушкин, В.В. Влияние йода и селена на рост Е.СОЫ Б 5/98, входящей в состав пробиотика микроцикол, используемого в птицеводстве / В.В. Курушкин // Известия ОГАУ. - 2009. - Т 3. - № 23. - С.84-85.

80. Курушкин В.В. Неспецифическая резистентность кур-несушек на фоне применения пробиотика и препарата йода / В.В. Курушкин // Известия ОГАУ. - 2014. - № 1. - С. 171-173.

81. Ланкин В.З., Гуревич С.М. // Докл. АН СССР. - 1976. - Т. 226, № 3. - С. 705-708.

82. Левахин, В. Эффективность использования пробиотика «Бацелл» при выращивании бычков на мясо / В. Левахин, Л. Ворошилова, Ю. Петрунина, И. Бабичева и др. // Молочное и мясное скотоводство. - 2013. - № 2. - С. 16-17.

83. Ленкова, Т.Н. Больше полезной микрофлоры - выше продуктивность / Т.Н. Ленкова, Т. А. Егорова, И.Г. Сысоева и др. // Птицеводство. - 2015. -№ 5. - С. 7-10.

84. Ли, И.А. Изменение микробиоценоза кишечника и метаболизма липидов после гемиколэктомии / И.А. Ли, Л.Б. Лазебник // Экспериментальная и клиническая гастроэнтерология. - 2011. - № 2. - С. 44-47.

85. Лыско, С. Влияние пробиотиков на иммунную систему цыплят - бройлеров / С. Лыско // Птицеводство. - 2008. - № 7. - С. 15-16.

86. Малик, Н.И. Пробиотики: теоретические и практические аспекты / Н.И. Малик // Птицефабрика. - 2006. - № 1. - С. 20-26.

87. Маликова, М.Г., Скорость расщепления клетчатки микроорганизмами рубца при использовании органического селена в рационах бычков / М.Г. Маликова, И.Н. Ахметова // Известия ОГАУ. - 2010. - № 3. - С. 189-190.

88. Маменко, М.Е. Йодный дефицит и йоддефицитные заболевания: стоит ли ставить знак равенства / М.Е. Маменко // Медицинские аспекты здоровья женщины. - 2013. - № 3. - С 64-72.

89. Мармурова, О.М. Ветеринарно - санитарные и биотехнологические характеристики мяса кур на фоне применения селеносодержащего препа-рарта ДАФС - 25 / О.М. Мармурова, В.И. Котарев, С.В. Шабунин и др. // Вестник Воронежского ГАУ. - 2011. - № 4. - С. 123-125.

90. Марри, Р. Биохимия человека / Р. Марри, Д. Греннер, П. Мейес и др. Т.2. Пер. с англ.:- М.: Мир, 1993. - 415 с.

91. Маслиева О.В. Анализ качества кормов и продуктов птицеводства.// М.: Колос, 1970. 176 с.

92. Маслянко, Р.П. Иммунологические методы исследования в животноводстве / под ред. Р.П. Маслянко- Львов, 1987. - 48 с.

93. Миронова, И.В. Переваримость основных питательных веществ рационов сверхремонтными телками казахской белоголовой породы при скармливании им пробиотической добавки «Биодарин» / И.В. Миронова, Н.В. Ги-затова // Научный медицинский вестник. - 2015. - № 1. - С. 69-75.

94. Мотовилов, К.Я. Влияние кормовых добавок на рост и сохранность цыплят-бройлеров / К.Я. Мотовилов, О.В. Иванова // Кормление сельскохозяйственных животных и кормопроизводство. - 2011. - № 5. - С. 36-43.

95. Мурох, В.И. Роль селена в организме животного и человека / В.И. Мурох, Н.Д. Коломиец, В.С. Петрова и др. // Весщ нацыянальнай акадэмп навук Беларуси - 2002. - № 3. - С. 99-105.

96. Мурсалимов, М.М. Российское птицеводство: состояние и перспективы развития / М.М. Мурсалимов // Известия ОГАУ. - 2015. - № 51. - С. 212-216.

97. Невзорова, О.А. Эффективность использования селеносодержащих препаратов в рационах гусынь и гусят - бройлеров / О.А. Невзорова, Ю.А. Кармацких // Кормление сельскохозяйственных животных и кормопроизводство. - 2010. - № 3. - С. 50-53.

98. Невинская, Н.А. О воздействии йода на сельскохозяйственную птицу / Н.А. Невинская, А.М. Булгаков // Вестник Российской академии сельскохозяйственных наук. -2008. - № 5. - С. 76-77.

99. Никитина, Л.П. Селен в жизни человека и животных / Л.П. Никитина, В.Н. Иванов. - М., 1995. - 242 с.

100. Николаева, Е.А. Влияние пробиотических культур на рост и развитие цыплят-бройлеров / Е.А. Николаева, А.Г. Незавитин, А.Н. Швыдков // Вестник НГАУ. - 2012. - № 2. - С. 68-74.

101. Никулин, В.Н. Влияние комплекса пробиотика на основе лактобактерий и селенита натрия на некоторые показатели антиоксидантной защиты макроорганизма / В.Н. Никулин, В.В. Герасименко, Т.В. Коткова и др. //

Известия Оренбургского государственного аграрного университета. -2013. - № 3 (41). - С. 254-257.

102. Никулин, В.Н. Использование тетралактобактерина при выращивании сельскохозяйственной птицы / В.Н. Никулин, В.В. Герасименко, Т.В. Коткова и др. // Известия Самарской государственной сельскохозяйственной академии. - 2015. - № 1. - С. 134-137.

103. Никулин, В.Н. Особенности биохимического статуса кур-несушек при комплексном использовании йодида калия и пробиотика лактоамилово-рина / В.Н. Никулин, Т.В. Синюкова // Известия Оренбургского государственного аграрного университета. - 2008. - Т. 4. - № 20. - С. 179-180.

104. Никулин, В.Н. Реализация биологического потенциала кур-несушек путём использования лактоамиловорина / В.Н. Никулин, О.П. Лысенкова // Известия Оренбургского государственного аграрного университета. -2012. - Т. 4. № 36. - С. 249-252.

105. Никулин, В.Н. Эффективность комплексного использования лактоамиловорина и йодида калия при выращивании цыплят-бройлеров / В.Н. Никулин Т.В. Коткова И. А. Колесникова // Известия Оренбургского государственного аграрного университета. - 2014. - № 1. - С. 168-171.

106. Новик, Г.И. Научные основы биотехнологии производства пробиотиков нового поколения / Г.И. Новик, Н.И. Астапович, М.А. Каврус // Сельское хозяйство - проблемы и перспективы: сборник научных трудов / Академия наук Беларуси, Министерство сельского хозяйства и продовольствия Республики Беларусь, Учреждение образования "Гродненский государственный аграрный университет". - Гродно, 2003. - Т.1, Ч. 2. - С. 343-346.

107. Новокшонов, А. А. Физиологические функции лактобактерий в организме и эффективность их применения в составе пробиотиков в педиатрической практике / А.А. Новокшонов, Н.В. Соколова // Эпидемиология и инфекции. - 2012. - № 1. - С. 52-58.

108. Ноздрин, Г.А. Действие пробиотиков ветом 1.1 и ветом 13.1 на некоторые показатели морфологии крови и естественной резистентности гусей / Г.А. Ноздрин, А.И. Леляк, А.И. Шевченко // Вестник Новосибирского государственного аграрного университета. - 2008. - № 8. - С. 24-26.

109. Ноздрин, Г.А. Оценка эффективности превентивного применения жидкой формы пробиотика ветома 3.22 цыплятам-бройлерам в условиях фермерского хозяйства гусей / Г.А. Ноздрин, Д.А Пекушов., А.А. Леляк, А.Г. Ноздрин // Вестник Новосибирского государственного аграрного университета. - 2017. - № 2. - С. 94-99.

110. Оберлис, Д. Биологическая роль макро- и микроэлементов у человека и животных / Д. Оберлис, Б. Харланд, А., Скальный. Из-во: Наука СПб, 2008. - 544 с.

111. Овчинников, А.А. Сравнительное применение пробиотиков в птицеводстве /А.А. Овчинников, Ю.В. Пластинина, В. А. Ишимов // Зоотехния. -

2008. - № 5. - С. 8-10.

112. Овчинников, А.А. Эффективность использования фермента авизима и пробиотика в рационах цыплят-бройлеров / А.А. Овчинников, О.О. Ша-мин // Кормление сельскохозяйственных животных и кормопроизводство. - 2013. - № 10. - С. 43-48.

113. Околелова, Т.М. Микробиологический баланс в желудочно-кишечном тракте и продуктивность бройлеров при использовании в комбикормах пробиотика и фитобиотика / Т.М. Околелова, Г.Ю. Лаптев, В.Н. Большаков, И.Н. Никонов // Инновационные разработки и их освоение в промышленном птицеводстве XVII Международная конференция всемирной научной ассоциации по птицеводству (ВНАП) Сергиев Посад, 15-17 мая 2012 г. - С. 239-241.

114. Околелова, Т. Препарат селена для кур / Т. Околелова // Комбикорма. -