Получение растений сахарной свеклы и капусты белокочанной с устойчивостью к микробным патогенам тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.01.05, кандидат биологических наук Пиголева, Светлана Васильевна

• Пиголева, Светлана Васильевна
• кандидат биологических наук
• 2012

Оглавление диссертации кандидат биологических наук Пиголева, Светлана Васильевна

ОГЛАВЛЕНИЕ

Стр

Список сокращений

Введение

1. Обзор литературы

1.1. Влияние стрессовых факторов внешней среды на морфогенез растений и способы их защиты

1.1.1. Окислительный стресс и система защиты растений

1.1.2. Влияние антропогенных факторов

1.1.3. Воздействие абиотических факторов

1.1.4. Действие биотических факторов среды

1.1.4.1. Влияние фитопатогенных грибов на растения

1.1.4.2. Влияние фитопатогенных бактерий на растения

1.1.4.3. Влияние вирусов на растения

1.1.4.4. Влияние фитопаразитов и насекомых на растения

1.2. Болезни сахарной свеклы и капусты белокочанной

1.3. Методы защиты растений от патогенов и вредителей

1.3.1. Химические методы защиты растений

1.3.2. Биологические методы защиты растений

1.4. Колонизация растений ассоциативными микроорганизмами

1.4.1. Ризосферные бактерии рода Pseudomonas, механизмы их положительного влияния на растения

1.4.2. Факторы, влияющие на колонизацию Pseudomonas

ризосферы растений

1.4.3. Использование бактерий рода Pseudomonas для защиты растений от фитопатогенов

1.4.4. Аэробные метилотрофные бактерии рода Methylobacterium

1.4.5. Перспективы использования метилотрофных бактерий

1.5. Совершенствование сортов сельскохозяйственных растений методами генной инженерии

1.5.1. Методы трансформации растений

1.5.1.1. Методы прямого переноса ДНК в растения

1.5.1.2. Методы агробактериальной трансформации растений

1.5.2. Использование генов антибактериальных пептидов для получения транс генных растений

1.5.2.1. Использование генов цекропинов для повышения

устойчивости трансгенных растений к фитопатогенам

1.5.3. Генетическая инженерия и биотехнология сахарной свеклы

1.5.4. Генетическая инженерия и биотехнология капусты белокочанной

1.5.5. Актуальность получения безмаркерных трансгенных

растений

2. Материалы и методы

2.1. Материалы и оборудование

2.1.1. Растительный материал

2.1.1.1. Характеристика биологических объектов

2.1.2. Бактериальные штаммы

2.1.3. Оборудование

2.1.4. Реактивы, среды, антибиотики

2.2. Методы

2.2.1. Культивирование растений in vitro

2.2.2. Регенерация побегов растений

2.2.3. Агробактериальная трансформация сахарной свеклы

и капусты белокочанной

2.2.4. Выделение геномной ДНК из листьев растений in vivo

2.2.5. Выделение ДНК из растений in vitro для ПЦР

2.2.6. Анализ геномной ДНК трансгенных растений методом ПЦР

2.2.7. Электрофорез ДНК в полиакриламидном геле

2.2.8. Электрофорез ДНК в агарозном геле

2.2.9. Приготовление компетентных клеток Е. coli и их

трансформация плазмидной ДНК

2.2.10. Приготовление компетентных клеток А^гоЪа^егшт Ште/аЫет и их трансформация плазмидной ДНК

2.2.11. Вестерн-блот анализ

2.2.12. Анализ антибиотической активности экстрактов трансформированных растений

2.2.13. Колонизация растений ассоциативными микроорганизмами

2.2.14. Биотесты на изолированных листьях и целых растениях

2.2.15. Измерение переменной флуоресценции хлорофилла

2.2.16.Тестирование антибиотической активности

метилобактерий к эрвиниям

2.2.17. Выделение ферментов-антиоксидантов из растительных

клеток

2.2.18. Определение активности супероксиддисмутазы в

экстрактах растительных клеток

2.2.19. Определение активности каталазы в экстрактах растительных клеток

2.2.20. Определение активности гвояколовой пероксидазы

2.2.21. Определение перекисного окисления липидов

2.2.22. Определение перекиси водорода в клетках растений

2.2.23. Определение содержания свободного пролина

3. Результаты и обсуждение

3.1. Разработка методов микроклонального размножения растений

3.1.1. Микроклональное размножение сахарной свеклы

3.1.1.2. Регенерация побегов сахарной свеклы через

промежуточную каллу сную фазу

3.1.2. Микроклональное размножение капусты белокочанной

3.2. Агробактериальная трансформация растений

3.2.1. Оценка чувствительности капусты к канамицину

3.2.2. Оценка чувствительности сахарной свеклы к канамицину

3.2.3. Агробактериальная трансформация растений сахарной свек-

лы и капусты белокочанной

3.2.4. Молекулярно-генетический анализ трансгенных растений

3.2.5. Разработка метода получения безмаркерных трансгенных растений

3.3. Колонизация сахарной свеклы и капусты ассоциативными микроорганизмами Methylovorus mays и Pseudomonas aureofasiens

3.3.1. Исследование влияния трансгенных растений, экспресси-рующих антимикробный пептид цекропин PI на полезные ассоциативные микроорганизмы

3.3.2. Исследование роста колонизированных растений в

условиях стресса

3.3.3. Анализ функционирования фотосинтетического аппарата растений

3.3.4. Тестирование устойчивости к патогенам трансгенных растений и растений, колонизированных Р. aureofasiens

3.3.5. Тестирование устойчивости к патогенам растений, колонизированных М. mays растений

3.3.6. Тестирование антибиотической активности метилобактерий

к Е. carotovora

3.3.7. Тестирование устойчивости колонизированных растений сахарной свеклы к окислительному стрессу

Заключение

Выводы

Список литературы

Благодарности

СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ

БАП - 6-бензиламинопурин

НУК - а -нафтилуксусная кислота

2,4 Д - 2,4 -дихлорфеноксиуксусная кислота

ИМК - (З-индолил-З -масляная кислота

ИУК - индолилуксусная кислота

gus - ген ¡3- глюкуронидазы

сес Р1 - ген цекропина Р1

т.п.н., kb - тысяча пар нуклеотидов

As - ацетосирингон

Cf - цефотаксим

Km - канамицин

МС - среда Мурасиге Скуга

LB - среда Luria-Bertani

В5 - среда Гамборга

WPM - среда Woody Plant Media

кДа - килодальтон

CaMV - вирус мозаики цветной капусты

PGPR - Plant Growth-Promoting Rhizobacteria - ризобактерии,

способствующие росту растений

ФСП - фотосистема II

БСА - бычий сывороточный альбумин

ЭДТА - этилендиаминтетрауксусная кислота

SDS - додецилсульфат натрия

ФМСФ - фенилметилсульфонилфторид

ДТТ - дитиотриетол

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Получение растений сахарной свеклы и капусты белокочанной с устойчивостью к микробным патогенам»

ВВЕДЕНИЕ

Повышение продуктивности сельскохозяйственных растений и их устойчивости к различным биотическим и абиотическим стрессовым факторам внешней среды является важнейшей задачей современной агробиотехноло-гии. Эта задача решается классическими селекционно-генетическими методами, методами генной инженерии и с помощью микробиологических методов. Селекционно-генетические методы способствуют созданию сортов и гибридов, обладающих комплексной устойчивостью к грибным, бактериальным и вирусным патогенам, повышению устойчивости к неблагоприятным абиотическим факторам среды. Недостатком классического селекционно-генетического метода является большая продолжительность времени для получения одного сорта (в среднем 10 лет), при этом происходит случайная комбинация генов растения и, как следствие, невелик выход нужных генотипов. Кроме того, невозможно переносить гены (признаки) из филогенетически отдаленных видов.

Ускорение селекционного процесса и повышение его эффективности может обеспечить использование генно-инженерных методов. Современные достижения генетической инженерии и молекулярной биологии позволяют переносить в растения гены, контролирующие ряд важнейших хозяйственно-ценных признаков без нарушения генетической целостности сорта и получать растения с повышенной устойчивостью к фитопатогенам за более короткие сроки.

В мире растет популярность биологических методов защиты растений от вредителей, сорняков и патогенов. Достоинства биологических методов заключаются в мягком подавлении патогенов (в отличие от химических средств), возможности предупреждать их размножение, в длительности действия методов и их безвредности для человека. Одним из эффективных и экологически чистых методов защиты растений от фитопатогенов является использование природных микроорганизмов, одни из которых являются антагонистами фитопатогенов, другие являются ассоциативными микроорга-

низмами, положительно влияющими на рост растений. Ассоциативные микроорганизмы способствуют эффективному потреблению растениями минеральных веществ, снабжают их витаминами и регуляторами роста и защищают от фитопатогенов и вредителей. В настоящее время уже применяются экологически чистые бактериальные препараты для стимуляции роста сельскохозяйственных растений и их защиты от болезней. К сожалению, список микроорганизмов невелик и ограничен некоторыми представителями бактерий родов Rhizobium, Azotobacter, Arthrobacter, Pseudomonas, Bacillus, микоризными грибами и грибами рода Trichoderma. Расширение этого списка является актуальной задачей современной биотехнологии.

Одними из важнейших сельскохозяйственных культур, которые поражаются рядом фитопатогенных микроорганизмов, являются сахарная свекла и капуста белокочанная.

Сахарная свекла (Beta vulgaris L.) является основным продуцентом сахара в зонах умеренного климата. Более 37% мирового сахара получают из этой культуры. Проводимые с сахарной свеклой селекционно-генетические работы направлены на повышение продуктивности и на обеспечение растений устойчивостью к фитопатогенам и различным стрессовым факторам. Относительно медленные темпы классической селекции новых сортов сахарной свеклы связаны с ее биологическими особенностями - высокой гетерозигот-ностью, перекрестной опыляемостью и двухлетним циклом развития. В настоящее время открывается возможность повышения устойчивости растений к фитопатогенам новыми микробиологическими методами, а также создание сортов методами генетической инженерии. Описанные примеры получения трансгенных растений сахарной свеклы немногочисленны, так как, сахарная свекла относится к трудным для экспериментов in vitro видам растений. Разработка методов трансформации и регенерации целых растений из тканей в культуре in vitro является одним из важных условий для получения трансгенных растений.

Капуста белокочанная ценная овощная культура, обладающая высокими вкусовыми качествами и лечебными свойствами. За последние годы в результате селекционной работы значительно повысились агрохозяйственные качества этой культуры, что привело к повышению урожайности. Однако важно решать вопросы, связанные с повышением устойчивости растений капусты к грибным и бактериальным заболеваниям. Необходимо совершенствовать систему защиты растений данной культуры с помощью методов генетической инженерии и микробиологических методов с применением штаммов-антагонистов и природных ассоциативных штаммов бактерий.

В связи с этим целью нашей работы явилась разработка биологически безопасные методы защиты растений сахарной свеклы и капусты белокочанной от микробных фитопатогенов. Для этого были поставлены следующие задачи:

1. Оптимизировать методы культивирования in vitro перспективных отечественных линий сахарной свеклы и капусты белокочанной. Оценить ре-генерационный потенциал различных типов эксплантов.

2. Провести генетическую трансформацию сахарной свеклы и капусты белокочанной искусственным геном антимикробного пептида цекропина PI ОcecPl).

3. Разработать метод получения трансгенных растений, не содержащих селективных генов устойчивости к антибиотикам.

4. Подобрать условия и провести колонизации растений сахарной свеклы и капусты белокочанной in vitro бактериями Methylovorus mays и Pseudomonas aureofaciens.

5. Исследовать влияние ассоциативных бактерий М. mays и Р. aureofaciens на морфогенез растений и повышение их устойчивости к фитопатоге-нам.

Заключение диссертации по теме «Физиология и биохимия растений», Пиголева, Светлана Васильевна

ВЫВОДЫ

1. Разработаны протоколы регенерации и генетической трансформации растений сахарной свеклы и капусты белокочанной.

2. Получены трансгенные растения сахарной свеклы и капусты белокочанной, экспрессирующие искусственный ген антибактериального пептида цекропина PI.

3. Разработан метод получения безмаркерных растений, основанный на использовании антибиотической активности цекропина PI.

4. Показана повышенная устойчивость трансгенных растений сахарной свеклы и капусты белокочанной к патогенам Erwinia carotovora, Pseudomonas syringae и Sclerotinia sclerotiorum.

5. Колонизация растений ассоциативными метилобактериями и псевдомонадами оказывает положительное влияние на морфогенез растений и повышает их устойчивость к фитопатогенам Erwinia carotovora, Pseudomonas syringae и Sclerotinia sclerotiorum.

6. Трансгенные растения, экспрессирующие антибактериальный пептид цекропин PI, экологически безопасны и сохраняют способность к колонизации полезными ассоциативными микроорганизмами.

121

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

Защита растений от фитопатогенов является актуальной задачей современной физиологии и биотехнологии растений. В настоящее время в сельском хозяйстве для этого используются различные комплексные подходы, такие как методы традиционной селекции, химические средства защиты, методы генной инженерии, а также микробиологические методы. С учетом биологической безопасности, применение двух последних стратегий при их совершенствовании представляется наиболее перспективным.

В данном исследовании изучались два подхода для повышения устойчивости культурных растений к фитопатогенам. Первый - создание биобезопасных трансгенных растений, несущих ген цекропина Р1, продукт которого является пептидным антибиотиком. Второй подход - колонизация растений полезными микроорганизмами, которые образуют с растением ассоциативную связь и способствуют повышению устойчивости растений к различным биотическим стрессовым факторам.

Важным предварительным этапом работы с растительной культурой является оптимизация регенерации побегов из эксплантов у различных линий и сортов. Показано, что линии сахарной свеклы 332, 328, 330, 325 характеризовались различным регенерационным потенциалом, частота регенерации побегов определялась генотипом сорта и гормональным составом среды. Наилучшие результаты для линий 328 и 330 были получены при использовании а-нафтилуксусной кислоты (НУК), для линий 325 и 332 - (З-индолил-З-масляной кислоты (ИМК). Максимальная частота регенерации побегов из черешковых эксплантов линии 332 - 29,2%; линии 330 - 44,4%, линии 328 -23,5%; линии 325 - 46,7%. Регенерация побегов сахарной свеклы из каллусов начиналась через 15-20 дней их культивирования на среде МС, содержащей 2,0 мг/л БАП. Регенерация побегов из листовых дисков сахарной свеклы отсутствовала. Для последующей трансформации были отобраны линии 325, 330 с высоким регенерационным потенциалом.

Высокая частота регенерации белокочанной капусты сорта Зимовка 1474 (55,5%) и сорта Слава 1305 (93%) была отмечена на среде MC с добавлением 2 мг/л зеатина, 0,1 мг/л НУК и 1 мг/л AgN03.

Несмотря на усовершенствование протоколов регененации растений, при трансформации сахарной свеклы методом кокультивации с агробактериями выход трансгенных растений был минимален. Трансгенные растения капусты белокочанной методом кокультивации с агробактериями получить не удалось. Более эффективным методом трансформации растений оказался метод вакуумной инфильтрации. Наличие гена cecPl в трансгенных растениях было подтверждено ПЦР анализом, а его экспрессия показана антибиотической активностью растительных экстрактов и вестерн-блот анализом. Показано, что полученные трансгенные растения проявляли повышенную устойчивость к бактериальным и грибным фитопатогенным микроорганизмам - Е. carotovora, Р. syringae и S. sclerotiorum, по сравнению с контрольными растениями.

В настоящее время актуальной задачей является получение растений, не содержащих селективных маркерных генов (гены устойчивости к антибиотикам и гербицидам, гены-репортеры). Создание безмаркерных трансгенных растений позволяет избежать риска неконтролируемого переноса селективных генов другим растениям. Разработан метод получения безмаркерных трансгенных растений с устойчивостью к микробным фитопатогенам, основанный на использовании антибиотической активности цекропина PI. С помощью метода агроинфильтрации семян получили и проанализировали 400 растений, которые анализировали группами по десять. Антибактериальную активность исследуемого экстракта оценивали по наличию зоны отсутствия роста бактерий Е. carotovora на агаризованной среде вокруг лунок. Далее был проведен поиск в этих группах индивидуальных растений, синтезирующих антимикробный пептид цекропин PI с помощью ПЦР и вестерн-блот анализов. Эффективность трансформации этого метода - около 6,3 %. Полученные безмаркерные cecPl-растения синтезировали цекропин PI на среднем уровне около 0,005% от общего растворимого белка клетки, что делает возможным надежное применение использованных нами методов обнаружения таких растений в выборке из нескольких сотен регенерантов. Безмаркерные растения показали повышение устойчивости к фитопатогенам - бактерии Е. carotovora и грибу S. sclerotiorum. Таким образом, ген cecPl можно использовать одновременно в качестве целевого гена и скринингового маркера.

Колонизация растений ассоциативными микроорганизмами является перспективным методом защиты растений от фитопатогенов, поскольку применяемые для защиты от патогенов микроорганизмы часто не являются колонизаторами растений, устанавливающими с ними ассоциативную связь, поэтому они проигрывают в борьбе с болезнетворной микрофлорой. В нашей работе исследовано влияние ассоциативных псевдомонад Р. aureofaciens и метилотрофных бактерий М. mays на рост и развитие растений, адаптацию к условиям in vivo, устойчивость к фитопатогенам и ксенобиотикам. Микробиологическое и микроскопическое исследование колонизированных растений, показало наличие прочной ассоциативной связи между растениями и бактериями. Показано, что колонизированные М. mays. растения отличались по физиолого-морфогенетическим характеристикам от контрольных растений. Экспланты колонизированных растений обладали повышенной частотой регенерации побегов, у растений увеличивалась скорость корнеобразования, стимулировался рост. Функциональная активность фотосистемы II у колонизированных метилотрофами растений при длительном выращивании в условиях in vitro сохранялась на уровне оптимальных значений, что может свидетельствовать о полноценной работе их фотосинтетического аппарата, в то время как у контрольных растений отмечалось значительное снижение фотохимической активности ФС-2. Колонизированные метилотрофами растения более устойчивы к окислительному стрессу, чем контрольные. У них отмечена меньшая повреждаемость мембран, более низкий уровень перекиси водорода в тканях.

Отмечено повышение активности ферментов-антиоксидантов у колонизированных растений, по сравнению с контрольными.

При колонизации растений штаммом P. aureofaciens заметной стимуляции роста в условиях in vitro не наблюдалось, но значительно повышалась устойчивость к фитопатогенным микроорганизмам - Е. caroto-vora, P. syringae и S. sclerotiorum.

Отмечено, что растения, колонизированные в условиях in vitro как псевдомонадами, так и метилобактериями, при переносе в условия in vivo (теплицу) проявляли повышенную скорость роста по сравнению с неколонизированными. Преимуществом предложенного метода колонизации растений in vitro ассоциативными полезными микроорганизмами является возможность его применения при культивировании любых видов растений и, в сочетании с клональным микроразмножением, он может быть перспективным экологически безопасным методом защиты растений от фитопатогенов.

Проведено исследование биологической безопасности трансгенных растений. Показано, что трансгенные растения, экспрессирующие ген антимикробного пептида цекропина PI, сохраняли способность к колонизации полезными ассоциативными микроорганизмами.

Таким образом, полученные результаты указывают на перспективность использования биобезопасных трансгенных растений, несущих ген цекропина PI, а также колонизированных ассоциативными полезными микроорганизмами растений для повышения устойчивости растений к различным биотическим и абиотическим стрессовым факторам.

Список литературы диссертационного исследования кандидат биологических наук Пиголева, Светлана Васильевна, 2012 год

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

1. Аверьянов A.A. Активные формы кислорода и иммунитет растений // Успехи современной биологии. 1991. Т.111. С. 722-737.

2. Архипова Т. Н., Веселов С. Ю., Мелентьев А. И., Мартыненко Е. В., Ку-доярова Г. Р. Влияние микроорганизмов, продуцирующих цитокинины, на рост растений // Биотехнология. 2006. № 4. С. 50-55.

3. Барабой В.А. Механизмы стресса и перекисное окисление липидов // Успехи современной биологии. 1991. Т. 111. С. 923-931.

4. Бабушкина Н.П., Черепанова М.В Влияние экологических факторов на развитие детского организма // монография. Владивосток, издат. ВГУЭС. 2006. 192 с.

5. Богдарина И.Г., Рукавцова Е.Б., Шматченко В.В. Зинкевич В.Е., Север И.С., Асланян Е.М., Исангалин Ф.Ш., Бурьянов Я.И., Баев A.A. Экспрессия гена дельта - эндотоксина Bacillus thuringiensis в трансгенных растениях Nicotiana tabacum 11 Докл. АН СССР. 1990. Т. 315. С. 1489-1492.

6. Воронин A.M. Ризосферные бактерии рода Pseudomonas, способствующие росту и развитию растений // Соросовский образовательный журнал. 1998. № 10. С. 25-31.

7. Боронин A.M., Кочетков В.В. Эффективный биофунгицид для защиты растений // Arpo XXI. 2003. № 1-6. С. 64-66.

8. Бурцева С.А., Ткачук О.Ф., Растимешина И.О., Тофилат С.Д. Стимуляция корнеобразования черенков винограда экзометаболитами Streptomyces levoris II Международная научная конференция «Микроорганизмы и биосфера». Москва. 2007. С. 18-19.

9. Бурьянов Я.И. Успехи и перспективы генно-инженерной биотехнологии растений // Физиология растений. 1999. Т. 46. № 6. С. 930-944.

10. Бурьянов Я.И., Кадо К.И. Стратегия создания растений с устойчивостью к фитопатогенам и вредителям // Биорганическая химия. 1999. Т.25. № 12. С. 903-910.

11. Бутенко Р.Г. Биология клеток высших растений in vitro и биотехнологии на их основе // М: МГУ. ФБК - Пресс, 1999. 160 с.

12. Ванюшкин В. А. Выращивание семян белокочанной капусты в пленочных теплицах Приморского края. Дис. канд. с. х. наук. М., 1990. 166 с.

13. Василос JI.B. Количественная оценка влияния пестицидов на заболеваемость детей // Педиатрия. 1991. № 5. С. 27-29.

14. Грибова Т.Н. Камионская A.M., Манахос Г.Ф., Скрябин К.Г. Создание трансгенных растений капусты белокочанной Brassica oleracea var. capitata с новыми агротехническими свойствами // Биотехнология. 2005. № 6. С. 12-19.

15. Грибова Т.Н., Камионская A.M., Скрябин К.Г. Оптимизация способа получения трансгенных растений капусты белокочанной Brassica oleracea var. capitata II Прикладная биохимия и микробиология. 2006. Т. 42. № 5. С. 593-598.

16. Губанова Н.Я., Дубровская О.В., Чугункова Т.В. Комплексная селекция in vitro на устойчивость клеточных линий кормовой свеклы к токсину возбудителя бактериоза к низким температурам // Биополимеры и клетка. 2000. Т.16. №.2. С 138-144.

17. Гулько Л.Б., Дьяков H.A., Окорокова H.A., Вейко В.П., Дебатов В.Г. Конструирование гена слитого белка стрептовидин-щелочная фосфотаза и его экспрессия в Escherichia coli. Изучение секреции гибридного белка в периплазматическое пространство клеток Е. coli // Биотехнология. № 4. 1999. С. 3-8.

18. Данилова С.А. Методы генетической трансформации зерновых культур // Физиология растений. 2007. Т. 54. № 5. С. 645-658.

19. Дмитриев А.П. Сигнальные молекулы растений для активации защитных реакций в ответ на биотический стресс // Физиология растений. 2003. Т.50. №3. С. 465-474.

20. Доронина Н.В., Биоразнообразие и таксономия аэробных метилобакте-рий // Автореф. дис. на соискание ученой степени докт. биол. наук. Пу-

щино. Институт Биохимии и Физиологии Микроорганизмов РАН, 1999. 33с.

21. Доронина Н.В., Ежов В.А., Троценко Ю.А Аэробная биодеградация формальдегида, метанола, метиламина иммобилизированными клетками Methylovorus extorquens // Прикладная биохимия и микробиология. 1997. Т. 33. №2. С. 164-167.

22. Доронина Н.В., Кудинова JI.B., Троценко Ю.А. Methylovorus mays-шъът вид аэробных облигатных метилобактерий, ассоциированных с растениями // Микробиология. 2000. Т. 69. С. 712-716.

23. Доценко A.C. Закономерности проявления гнилей корнеплодов сахарной свеклы и пути ограничения их вредоносности в Киргизской ССР. Эффективные меры защиты сахарной свеклы от болезней при индустриальной технологии ее возделывания. Под ред. Зубенко В.Ф. Киев: ВНИС, 1985. С. 37-41.

24. Духовский П., Юкнис Р., Бразайтите А., Жукаускайте И. Реакция растений на комплексное воздействие природных и антропогенных стрессоров // Физиология растений. 2003. Т. 50. № 2. С. 165-173.

25. Дьяков Ю.Т., Озерецковская O.JI., Джавахия В.Г., Багирова С.Ф. Общая и молекулярная фитопатология. М: МОО «Общество фитопатологов», 2001.302 с.

26. Ермолаева Н.И., Иванова H.H., Скворцова Н.П. и др. Применение биометода в открытом и защищенном грунте: Использование ризосферных бактерий рода Pseudomonas для предпосевной обработки огурцов, капусты и картофеля // Защита растений. 1992. № 8. С. 24-25.

27. Захарченко Н. С., Рукавцова Е. Б., Гудков А. Т., Бурьянов Я. И. Повышенная устойчивость к фитопатогенным бактериям у трансгенных растений табака с синтетическим геном антимикробного пептида цекропина PI //Генетика. 2005. Т. 41. № 11. С. 1445-1452.

28. Захарченко Н. С., Рукавцова Е. Б., Школьная JI.A., Юхманова A.A., Бурьянов Я. И. Экспрессия искусственного гена антимикробного пептида

цекропина PI повышает устойчивость растений картофеля к фитофторо-зу и белой гнили // Доклады Академии наук. 2007. Т. 415. № 1. С. 129131.

29. Зиновьева C.B., Васюкова Н.И., Озерецковская O.JI. Биохимические аспекты взаимодействия растений с паразитическими нематодами // Прикладная биохимия и микробиология. 2004. Т. 40. № 2. С. 133-142.

30. Иванова Е.Г. Ассоциация аэробных метилотрофных бактерий с растениями // автореф. канд. биол. наук. 03.00.07- микробиология. Пущино. 2006. 24 с.

31. Иванова Е.Г., Доронина Н.В., Троценко Ю.А. Аэробные метилобактерии синтезируют ауксины //Микробиология. 2001. Т. 70. № 4. С. 452-458.

32. Иванова Е.Г., Доронина Н.В., Троценко Ю.А. Труды Института микробиологии имени С.Н. Виноградского РАН. М: Наука, 2006. С. 263-285.

33. Иванова Е.Г., Доронина Н.В., Шепеляковская А.О., Ламан А.О., Бровко Ф.А., Троценко Ю.А. Факультативные и облигатные аэробные метилобактерии синтезируют цитокинины // Микробиология. 2000. Т. 69. № 6. С.764-769.

34. Игнатова A.A., Ветрова A.A., Лисов A.B., Филонов А.Е., Пунтус И.Ф., Воронин A.M. Динамика численности и взаимодействие псевдомонад, стимулирующих рост растений и разрушающих нафталин в ризосфере горчицы белой // Биотехнология. 2006. № 6. С. 35-43.

35. Каляева М. А., Захарченко Н. С., Доронина Н. В., Рукавцова Е. Б., Иванова Е. Г., Алексеева В. В., Троценко Ю. А., Бурьянов Я. И. Стимуляция роста и морфогенеза растений in vitro ассоциативными метилотрофными бактериями // Физиология растений. 2001. Т. 48. № 4. С. 596-599.

36. Каляева М.А., Захарченко Н.С., Бурьянов Я.И. Способность однодольных растений индуцировать процессинг агробактериальной Т-ДНК // Физиология и биохимия культурных растений. 2000. Т.32. №3. С. 209218.

37. Картель Н.А., Забенькова К.И., Манешина Т.В., Аблов С.Е. Растения ячменя с введенным геном канамицинустойчивости // Докл. АН БССР. 1990. Т. 34. №3. С. 261-263.

38. Квасников Б.В., Черемисина Е. Д., Арсеньева Н. Е. Сорта капусты, устойчивые к бактериозу // Картофель и овощи. 1979. № 1. С. 35.

39. Ковальчук М.В Протекторы властивост1 бактерш роду Pseudomonas за умов клонального мкророзмноження та товарного виробництва картопл1 (Solanum tuberosum L.) Автореф. дис. канд. бюл. наук: 03.00.20 НАН Укра'ши. 1н-т молекуляр. бюлогп та генетики. К., 2005. 19 с.

40. Копылов Е.П. Определение видовой принадлежности бактерий рода Azospirillum с использованием методов молекулярно-генетического анализа // Международная научная конференция «Микроорганизмы и биосфера». Москва 2007. С. 66-67.

41. Королюк М. А., Иванов Л.И., Майорова М.Г., Токарева В.Е. Метод определения активности катал азы // Лаб. дело. 1988. № 1. С. 16-19.

42. Кузнецов В.В., Шевякова Н.И. Пролин при стрессе: биологическая роль, метаболизм, регуляция // Физиология растений. 1999. Т. 46. № 2. С. 321336.

43. Кузьмина Л.Ю., Струнина Т.Б., Мелентьев А.И. Возможность подавления Septoria nodorum Berk - возбудителя септориоза пшеницы аэробными спорообразующими бактериями // Международная научная конференция «Микроорганизмы и биосфера». Москва 2007. С. 71-73.

44. Лукаткин А.С., Шаркаева Э.Ш., Зауралов О.А. Изменения перекисного окисления липидов в листьях теплолюбивых растений при различной длительности стресса// Физиология растений. 1995. Т. 42. С. 607-611.

45. Лукаткин А.С. Вклад окислительного стресса в развитие холодового повреждения в листьях теплолюбивых растений. 1. Образование активных форм кислорода при охлаждении растений // Физиология растений. 2002. Т. 49. № 5. С. 697-702.

46. Лущак В.И. Окислительный стресс и механизмы защиты от него у бакте-рш // Биохимия. 2001. Т. 66. № 5. С. 592-609.

47. Ляпкова Н. С., Лоскутова H.A., Майсурян А.Н., Мазин В.В., Кораблева Н.П., Платонова Т.А., Ладыженская Э.П, Евсюнина A.C. Получение генетически модифицированных растений картофеля, несущих ген защитного пептида амаранта // Прикладная биохимия. 2001. Т. 37. № 3. С. 349354.

48. Максимов Н. А. Водный режим и засухоустойчивость растений // Избранные работы по засухоустойчивости и зимостойкости растений. М: Изд-во АН СССР 1952, т. 1. 575 с.

49. Марковская Е.Ф., Сысоева М.И., Харькина Т.Г., Шерудило Е.Г. Влияние кратковременного снижения ночной температуры на рост и холодостойкость растений огурца // Физиология растений. 2000. Т. 47. № 4. С. 511515.

50. Машара Н. А., Войтенкова Л. И., Ульянова И. Г. Ускоренная оценка капусты на устойчивость к слизистому бактериозу // Резервы увеличения производства продукции растениеводства в Приморском крае. сб. науч. тр. Уссурийск. 1997. С. 177.

51. Медведев С. С. Физиология растений: Учебник. Издательство С.-Петерб. университета, 2004. 293 с.

52. Мелентьев А.И., Усанов Н.Г., Логинов О.Н. Штамм бактерий Bacillus sp. 739 для получения препаратов против грибных возбудителей болезней злаковых культур: Патент № 1743019 (РФ) // Б.И. 1994. № 14.

53. Мельников H. Н., Пестициды. Химия, технология и применение, М., 1987

54. Механтьев И.И., Шабаева О.Н., Игнатова Т.В. О путях утилизации непригодных и устаревших пестицидов в области // Материалы научно-практических мероприятий V Всероссийского форума «Здоровье нации -основа процветания России». Том 1: Всероссийская научно-практическая конференция «Санитарно-эпидемиологическое благополучие населения Российской Федерации » Москва. 2009. С. 45-47.

55. Мордухова Е.А., Кочетков В.В., Поликарпова Ф.Я., Воронин А.М. Синтез индолил-3-уксусной кислоты ризосферными псевдомонадами: Влияние плазмид биодеградации нафталина // Прикл. биохимия и микробиология. 1998. Т. 34. № з. С. 287-292.

56. Мурзаева C.B., Действие тяжелых металлов на проростки пшеницы; активирование антиоксидантных ферментов // Прикладная биохимия и микробиология. 2004. Т. 40. № 1. С. 114-119.

57. Нефедов Л.И., Колычев О.И., Петровский О.Н., Базарова М.И. Результаты изучения эколого-зависимых отклонений состояния здоровья детей // Педиатрия. 1991. № 8. С. 88-94.

58. Парашина Е.В., Сердобинский Л.А., Калле Е.Г., Лаврова Н.В., Аветисов В.А., Лунин В.Г., Народицкий Б.С. Получение трансгенных растений рапса и томата, экспрессирующих ген дефензина редьки// Физиология растений. 2000. Т. 47. № 3. С.471-478.

59. Парашина Е.В., Шаденков A.A., Лаврова Н.В., Аветисов В.А. Использование гена защитного пептида (дефензина) из семян редьки для повышения устойчивости томатов к заболеваниям, вызываемым грибами // Биотехнология. 1999. № 6. С. 35-41.

60. Перковская Г. Ю., Кравчук Ж. Н., Гродзинский Д.М., Дмитриев А.П. Индукция активных форм кислорода и фитоалексинов в культуре клеток лука(А11шш cera) биогенными элиситорами из гриба Botrytis cinerea // Физиология растений. 2004. Т. 51. № 5. С. 680-685.

61. Пермякова Н.В., Шумных В.К., Дейнеко Е.В. Агробактериальная трансформация растений: перенос фрагментов векторной ДНК в растительный геном // Генетика. 2009. Т. 45. № 3. С. 305-317.

62. Полесская О.Г. Растительная клетка и активные формы кислорода: учебное пособие / Под ред. И.П. Ермакова. - М.: КДУ, 2007. 140 с.

63. Пожар З.А. Болезни всходов сахарной свеклы // Свекловодство. Киев. 1959. С. 385-410.

64. Пороховина Е.А., Лутова Л.А. Молекулярно-генетические механизмы устойчивости высших растений к патогенам // Сельскохозяйственная биология. 2000. № 5. С. 20-30.

65. Радчук В.В., Блюм Я.Б., Рышка У., Шуман, Клоке Э. Изучение регенерации и получение трансгенных растений у различных сортов белокочанной капусты // Физиология растений. 2000. Т. 47. № 3. С. 453-460.

66. Радюкина Н. Л., Шашукова А. В., Макарова С. С., Кузнецов В. В. Экзогенный пролин модифицирует дифференциальную экспрессию генов су-пероксиддисмутазы в растениях шалфея // Физиология растений. 2011. Т. 58. № 1. С.49-57.

67. Рафикова Г. Ф. Сравнительная характеристика микобиот почв разных типов при загрязнении нефтью и биорекультивации // автореф. канд. биол. наук. 03.00.16, 03.00.23- экология. Уфа. 2009. 24 с.

68. Рукавцова Е.Б., Захарченко Н.С., Пиголева C.B., Юхманова A.A., Чеботарева Е.А., Бурьянов Я.И Получение безмаркерных трансгенных растений // Доклады Академии Наук. 2009. Т.426, №1, С. 261-264.

69. Свердлов Е.Д. РНК-интерференция - новый механизм регуляции экспрессии генов и новый метод исследования их функций // Биорганиче-ская химия. 2001. Т. 27. № 3. С. 237-240.

70. Смирнов В.В., Киприанова Е.А. Бактерии рода Pseudomonas. Киев: Наук, думка, 1990. С. 84-111.

71. Смирнов К. С. Чем опасен церкоспороз и как с ним бороться? // Сахарная свекла. 2005. №5. С. 14-15.

72. Старкова H.H., Королева Е.П., Ротанова Т.В. Внутриклеточный протео-лиз. Сигналы селективной деградации белков // Биорганическая химия. 2000. Т. 26. № 2. С.83-96.

73. Степанова А.Ю., Терешонок Д.В., Осипова Е.С., Гладков Е.А., Долгих Ю.И. Получение трансгенных растений пшеницы методом агробактери-альной трансформации // Биотехнология. 2006. № 2. С. 20-27.

74. Стогниенко О. И. Вредоностность церкоспороза в условиях Воронежской области // Сахарная свекла. 2008. N 6. С. 24-25.

75. Суббайя Ч.С., Сакс М.М. Опосредованные кальцием реакции растений кукурузы на аноксию // Физиология растений. 2003. Т. 50. № 6. С. 841851.

76. Сухорукова, Н.С. Методика оценки и селекционного отбора капусты белокочанной на устойчивость к сосудистому бактериозу: автор, дис. на соиск. уч. степ. канд. с.-х. наук/Москва. 1987. 15с.

77. Таланова В.В., Титов А.Ф., Боева Н.П. Влияние ионов кадмия и свинца на рост и содержание пролина и АБК в проростках огурца // Физиология растений. 1999. Т. 46. С. 164-167.

78. Тарчевский И.А. Сигнальные системы клеток растений М: Наука, 2002. 294 С.

79. Троценко Ю.А., Доронина Н.В., Ли Ц.Д., Решетников A.C. Умеренно га-лоалкалофильные аэробные метилобактерии // Микробиология. 2007. Т. 76. №3. С. 293-305.

80. Троценко Ю.А., Доронина Н.В., Хмеленина В.Н. Биотехнологический потенциал аэробных метилотрофных бактерий: настоящее и будующее // Прикладная биохимия и микробиология. 2005. т. 41. № 5. С. 495-503.

81. Хадеева Н.В., Дридзе И.Л., Майсурян А.Н. Выделение солеустойчивых форм риса путем прямой и непрямой селекции в культуре ткани // Биотехнология. 2000. № 3. С. 27-35.

82. Черных А.М. Угрозы здоровью человека при использовании пестицидов // Гигиена и санитария. 2003. № 5. С. 11-15.

83. Четина Е.В., Троценко Ю.А. Активность окислительного фосфорилиро-вания в мембранах метилотрофных бактерий // Микробиология. 1986. Т. 55. №4. С. 539-542.

84. Чумаков М.И., Рожок H.A., Беликов В.А., Тырнов B.C., Волохина И.В. Трансформация кукурузы путем инокуляции агробактериями пестичных in planta // Генетика. 2006. Т. 42. № g. С. 1083-1088.

85. Шакирова Ф.М., Безрукова М.В. Индукция салициловой кслотой устойчивости пшеницы к засолению среды // Серия биологическая. 1997. № 2. С. 149-153.

86. Шевякова Н.И., Бакулина Е.А., Кузнецов В.В. Антиоксидантная роль пролина у галофита хрустальной травки при действии засоления и пара-квата, инициирующих окислительный стресс // Физиология растений. 2009. Т. 56. № 5. С. 736-742.

87. Шевякова Н.И., Рощупкин Б.П., Парамонова Н.В., Кузнецов В.В. Стрес-сорный ответ клеток Nicotiana sylvestris L. на засоление и высокую температуру. 1. Аккумуляция пролина, полиаминов, бетаинов, Сахаров // Физиология растений. 1994. Т. 41. С. 558-565.

88. Цавкелова Е.А., Климова С.Ю., Чердынцева Т.А., Нетрусов А.И. Микроорганизмы - продуценты стимуляторов роста растений и их практическое применение (обзор) // Прикладная биохимимя и микробиология. 2006. Т. 42. №2. С. 133-143.

89. Янушевский В.Я. Капустная тля (Brevicoryne brassicae L.) в Белорусской ССР. (Биология и особенности распространения): Автореф. дис. канд. сельск. наук. Минск: ГУ. 1966. 25 с.

90. Abel P.P., Nelson R.S., De В., Hoffmann N., Rogers S.G., Fraley R.T., Beachy R.N.. Delay of disease development in transgenic plants that express the tobacco mosaic virus coat protein gene // Science. 1986. V. 232: P. 738 -743.

91. Able A.J., Guest D.J., Sutherland M.W. Hydrogen Peroxide Yields during the Incompatible Interaction of Tobaco Suspension Cell Inoculated with Phy-tophthora nicotianae // Plant Physiol. 2000. V. 124. P. 899-910.

92. Angenon G., Dillen W., van Montagu M. Antibiotic-resistance markers for plant transformation // Plant molecular biology manual // Eds. Gelvin S.B.,

93.Ansai H., Yoneyama K., Yamaguchi I. Mol. Cen. Genet 1989. V. 219, P. 492494.

94. Armaleo D., Ye.G.N., Klein T.M., Shark K.B., Sanford J.C., Johnston S.A., Biolistic nuclear transformation of Saccharomyces cerevisiae and ofher fungi. // Current Genet 1990. V.17. P. 97-103.

95. Babithaa M. P., Bhath S. G., Prakasha H. S., Shettya H. S. Different induction of superoxide dismutase in downy mildew-resistant and -susceptible genotypes of pearl millet // Plant Pathol. 2002. V. 51. P. 480-486.

96. Baldarelli R.M., Lengyel J.A. Transient expression of DNA after ballistic introduction into Drosophila embryos. // Nucl. Acids. Res. 1990. V. 18. P. 59035904.

97. Beauchamp C.O., Fridovich I. Superoxide dismutase: Improved assays and an assay applicable to acrylamide gels. //Anal. Biochem. 1971. V. 44. P. 276-287.

98. Bellincampi D, Dipierro N, Salvi G, Cervone F, De Lorenzo G. (2000) Extracellular H202 induced by oligogalacturonides is not involved in the inhibition of the auxin-regulated rolB gene expression in tobacco leaf explants. Plant Physiology. 2000. V. 122. P. 1379-1385.

99. Barea J.M., Brown M.E. Effects of plant growth produced by Azoto-bacter paspali related to synthesis of plant growth regulating substances // J. Appl. Bacteriol. 1974. V. 40. P. 583-599.

100.Barker R.F., Idler K.B., Thompson D.V., Kemp J.D. Nucleotide sequense of the T-DNA region from the Agrobacterium tumefaciens octopin Ti plasmid pTi 15955 // Plant Molecular Biology. 1983. V. 2: P. 335-350.

101. Barry G.F., Pogers S.G., Fraley R.T., Brand L. Identification of a cloned cy-tokinin biosynthetic gene. // Prog. Natl. Acad. Sci. 1984. V. 81: P. 4776-4780.

102. Bates L., Waldren P.P., Teare J.D. Rapid Determination of Free Proline of Water Stress Studies // Plant Soil. 1973. V. 39. P. 205-207.

103.Bhalla P.L., Singh M.B. Agrobacterium-mediatGd transformation of Brassica napus and Brassica oleracea //Nature Protocols 2008. V. 3. P. 181-189.

104.Boman H. Cecropin: antibacterial peptides from insects and pigs // Phyloge-netic Perspectives in Immunity: The Insect-Host Defense. 1994. P. 24-37.

105.Bower R., Birch R.G. Transgenic sugarcane plants via microprojectile bombardment // Plant J. 1992. V.2. P.409-416.

106.Bradford M.M. A rapid and sensitive method of the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein dye binding // Anal. Bio-chem. 1976. V. 72. P. 248-254.

107.Brederode F.T., Linthorst H.J., and Bol J.F. Differential induction of acquired resistance and PR gene expression in tobacco by virus infection, ethephon treatment, UV light and wounding. // Plant Mol Biol. 1991. V. 17(6). P. 111725.

108.Breitler J.C., Meynard D., Van Boxtel J. et al. A novel two T-DNA binary vector allows efficient generation of marker-free transgenic plants in three elite cultivars of rice (Oryza sativa L.) // Transgenic Res. 2004. V. 13. P. 271287.

109.Broekaert W.F., Marien W., Terras F.R.G. Antimicrobial peptides from Ama-ranthus coudatus seed with sequens homology to the cysteine/glycine- rich domainof chotin- binding proteins // Biochemistry. 1992. V. 31. P. 4308-4314.

110. Broekaert W.F., Terras F.R.G., Cammue B.P.A. Plant defensin: novel antimicrobial peptides as components of the host defense system // Plant Physiology. 1995. V. 108 P. 1353- 1358.

111. Brogie K., Chut I., Holliday M., Cressman R., Biddle P., Brodlie R. // Science. 1991. V. 254. P. 1194-1197.

112. Caboche M., Deshayes A. Utilization de liposomes pour la transformation de protoplastes de mesophylle de E.coli leur conferant la resistance a la kanamy-cine // C. R. Acad. Sci. 1984. Ser. III. P. 663-666.

113.Carr J.P., Lomonossoff G.P., Sekiya M.E., Zaitlin M., Resistance to tobacco mosaic virus induced by the 54-kDa gene sequence requires expression of the 54-kDa protein // Mol. Plant-Microbe Interact. 1992. V. 5. P. 397-404.

114. Catlin D.W. The effect of antibiotics on the inhibition of callus induction and plant regeneration from cotyledons of sugarbeet (Beta vulgaris L.) // Plant Cell Reports. 1990. №.9. P. 285-288.

115.Chance B., Maehly A.C. Assays catalase and peroxidase. Methods in Enzy-mology. N.Y. // Academic Press. 1955. P. 764-775.

116.Charity J.A., Holland L., Donaldson S.S., Grace L., Walter C. Agrobacterium-mediated transformation of Pinus radiata organogenic tissue using vacuum-infiltration // Plant Cell, Tissue and Organ Culture. 2002. V. 70. N. 1. P. 5160.

117.Chen C., Chen Z. Potentiation of developmentally regulated plant defense response by AtWRKY18, a pathogen-induced Arabidopsis transcription factor // 2002. Plant Physiol. V. 129. C. 706-716.

118.Chen J.L., Beversdorf W.D. A combined use of microprojectile bombardment and DNA imbibition enhances transformation frequency of canola (Brassica napus L.) // Theor. Appl. Genet 1994. V. 88. P. 187-192.

119.Cheng-Wei L., Chin-Chuhg L., Jinn-Chin Y., Jeremy C., Menq-Jiau T. Expression of Bacillus thuringiensis toxin (cry lAb) gene in cabbage (Brassica oleracea L. var. capitata L.) chloroplasts confers high insecticidal efficacy against Plutella xylostella // Theoretical and Applied Genetics. 2008. V. 117. 5. P. 829-829.

120.Christou P., Ford T., Kofron M. The development of a variety-independent genetransfer method for rice // Trends Biotech. 1992. V. 10. P. 239-246.

121.Chen L., Marmey P., Taylor N.J., Brizard J.P., Espinoza C., D'Cruz P., Huet H., Zhang S., de Kochko A., Beachy R.N., Fauquet C.M. Expression and inheritance of multiple transgenes in rice plants // Nat Biotechnol. 1998. V. 16(11). C. 1060-1064.

122.Cook R.J., Baker K.F. The Nature and Practice of Biological Control of Plants Pathogens // St. Paul (Minn.): Amer. Phytopathol. Soc. 1989. P. 1-539.

123.Cuozzo M., O' Connel K.M., Kaniewski W.K., Chua N.-H., Turner N.E., BioTechnology. 1988. V. 6. P. 549-557.

124.Curtis I.S., Nam H.G. Transgenic radish (Raphanus sativus L. longipinnatus Bailey) by floral-dip method - plant development and surfactant are important

in optimizing transformation efficiency // Transgenic Res. 2001. V. 10. P. 363371.

125.D' Halluin K., Bossut M., Bossut M., Bonne E., Mazur B., Leemans J., Botterman J. Transformation of sugarbeet (Beta vulgaris L.) and evalvation of herbicide resistance in transgenic plants // Boitechnology. 1992. V. 10. P. 309314.

126. Day A., Debuchy R., Van Dillewijn J., Purton S., Rochaix J.D. Studies on the maintenance and expression of cloned DNA fragments in the nuclear genome of the griin alga Chlamydomonas reinhardtii II Physiol.Plantarum. 1990. V. 78. P. 254-260.

127.De Block M., Botterman J., Vanderviele M., Dockx J., Van Montagu M., Teemans J. Engineering herbicide resistance in plants by expression of a detoxifying enzyme // EMBO J. 1987. V. 6. P. 2513-2518

128.De Cosa B., Moar W., Lee S., Miller M., Daniell H. Overexpression of Bt cry2Aa2 operon in chloroplasts leads to formation of insecticidal crystals // Nature Biotechnol. 2001. V. 19. P. 71-74.

129.De Greef W., Jacobs M. In vitro culture of the sugarbeet: description of a cell line with high regeneration capacity // Plant Science Letters. V. 17. 1979. P. 55-61.

130.De Leo F., Bonade Bottino M.A., Ceci L.R., Gallerani R., Jouanin L. // Insect Biochem. Mol. Biol. 2001. V. 31. № 6-7. P. 593-602.

131.De Neve M., De Loose M., Jacobs A., Van Houdt H., Kaluza B., Weidle U., Van Montagu M., Depicker A. Assembly of an antibody and its derived antibody fragment in Nicotiana and Arabidopsis // Transgenic Res. 1993. V. 2. P. 227-237.

132.Draper J., Scott R., Armitage P., and Walden R. // Plant Genetic Transformation and Gene Expression. Blackwell Sci.Publ., Oxford. 1988. P. 353-354.

133.Dunne C., Delaney I., Fenton A., O'Gara F. Mechanisms involved in biocon-trol by microbial inoculants // Agronomie. 1996. V. 16. P. 721-729.

134.Earnshaw D.J., Gait M.J. Progress toward the structure and therapeutic use of the hairpin ribozyme // Antisence Nucleic Drug Dev. 1997. V. 7. P. 403-411.

135.Ebinuma H., Sugita K., Matsunaga E., Yamakado M. Selection of marker-free transgenic plants using the isopentenyl transferase gene // Proc.Natl. Acad. Sci. USA. 1997. V. 94. P. 2117-2121.

136.Edelbaum O., Stein D., Holland N. et al. Expression of active human interferon-beta in transgenic plants // J. of Interferon Res. 1992. V. 12. P. 449-453.

137.Edwards K., Johnston C., Thompson C. A simple and rapid method for the preparation of plant genomic DNA for PCR analysis // Nucleic Acids Res. 1991. V.19. P. 1349.

138.Endo S, Sugita K, Sakai M, et al. Single-step transformation for generating marker-free transgenic rice using the ipt-type MAT vector system // Plant J. 2002. V. 30. P. 115-122.

139.Fall R. Cycling of methanol between plants, methylotrophs and atmosphere // Microbial growth on CI compoundsz Dordrecht: Kluwer. Acad. 1996. P. 343350.

140.Florack D., Allefs S., Bollen R., Bosch D., Visser B., Stiekema W. Expression of giant silkmoth cecropin B genes in tobacco // Transgenic Res. 1995. V. 4(2) P. 132-141.

141.Frank R.W., Gennaro R., Schneiderr K., Przybylski M., Romeo D. Aminoacid sequences of 2 proline-rich bactenecins - antimicrobial peptides of bovine neutrophils // J.Biol. Chem. 1990. Y. 265. P. 18871-18874.

142.From M.E., Marrish F., Armstrong C., Williams R., Thomas J., Klein T.M. Inheritance and expression of chimeric genes in the progeny of transgenic maize plants // Biotechnology. 1990. V. 8. P. 833-839.

143. Galbally I. E., Kirstine W. The production of methanol by flowering plants and the global cycle of methanol // J. Atmos. Chem. 2002. V. 43. C.195- 229.

144.Gatehouse A.M.R., Davison G.M., Newell C.A., Merryweather A., Hamilton W.D.O., Burgess E.P.J., Gilbert R.J.C., Gatehouse J.A. // Mol. Breeding. 1997. V. 3.№ l.P. 49-63.

145.Gelvin S. B. Agrobacterium-Mediated Plant Transformation: the Biology behind the "Gene-Jockeying" Tool // Microbiol. Mol. Biol. Rev. 2003. V. 67 C. 16-37.

146.Gerlach W. L, Llewellyn D., Haseloff J. //Nature. 1987. V. 328. P. 802-805.

147.Giddings G., Allison G., Brooks D., Carte A. Transgenic plants as factors for biopharmaceuticals //Nature Biotechnol. 2000. V. 18. P. 1151-1155.

148.Golembowski D.W., Lomonossoff G.P., Zaitlin M., Plants Transformed With a Tobacco Mosaic Virus Nonstructural Gene Sequence are Resistant to the Virus // Proc. Natl. Acad/ USA. 1990. V. 87. P. 6311 -6315.

149. Gonsales D., Chee P., Providenti R. Comparison of coat protein-mediated and genetically derived resistance in cucumber to infektion by cucumber mosaic virus under field condition with natural challenge inoculation by vectors // Bio.Thech. 1992. V. 10. P. 1562-1570.

150.Graham J., Gordon S.C., McNicol R.J. // Ann. Appl. Biol. 1997. V. 131. № 2. P. 133-139.

151.Greenway H., Munns R.: Mechanisms of salt tolerance in nonhalophytes.// Annu Rev Plant Physial. 1980. V. 31. P. 149-190.

152.Greisbach R.J. Protoplast microinjection // Plant. Mol. Biol. Report. 1983. V. l.P. 32-37.

153.Guerche P., Jouanin L., Pelletier G. Genetic transformation of oilseed rate (Brassica napus) by Agrobacterium rhizogenes and analysis of inheritance of the transformed fenotipe //Mol. Cen. Genet 1987. V. 206. P. 382-386.

154.Hain R., Bieseler B., Kindl H., Schroder G., Stocker R., Expression of a stilbene synthase gene in Nicotiana tabacum results in synthesis of the phytoalexin resveratrol // Plant Mol. Biol. 1990. V. 15. P. 325-335.

155. Hanson A.D., Roje S. One-carbon metabolism in higher plants // Annu Rev Plant Physiol Plant Mol Biol. 2001 V.52. C. 119-137.

156.Hare P.D., Chua N-H. Excision of selectable marker genes from transgenic plants // Nat Biotechnol. 2002. V. 20. P. 113-122.

157.Hauptmann R. M., Oxias-Akins P., Vasil V. et al. Transient expression of electroporated DNA in monocotyledonous and dicotyledonous species // Plant Cell Report. 1987. V. 6. N.4. P. 265-270.

158.Hemenway C., Fang R.-X., Kaniewski W.K., ChuaN.-H., Turner N.E., Analysis of the mechanism of protection in transgenic plants expressing the potato virus X coat protein or its antisense RNA // EMBO J. 1988. V. 7. P. 12731280.

159.Henzi M.X., Christey M.C., McNeil D.L. Factors that influence Agrobacte-rium rhizogenes- mediated transformation of broccoli (Brassica oleracea L. var. italica) II Plant cell reports 2000. V. 19. P. 994-999.

160.Hiatt A., Caffercey R., Bowdish K. Production of antibodies in transgenic plants //Nature. 1989. V. 342, P. 76-78.

161.Hightower R., Baden C., Renzes E., Dunsmuir P. The expression of cecropin peptide in transgenic tobacco does not confer resistance to Pseudomonas sy-ringae pv tabaci // Plant cell reports. 1994. V. 13. N. 5. P. 295-299.

162.Hilder V.A., Gatehouse A.M.R., Sherman S.E., Barker R.F., Boulter D. A novel mechanism for insect resistance engineered into tobacco // Nature. 1987. V. 300. P. 160-163.

163.Hong S.-W. Vierling E. Mutants of Arabidopsis thaliana defective in the acquisition of tolerance to high temperature stress // PNAS. 2000. V. 97. C. 4392 - 4397.

164.Horsch R.B., Fry J., Hoffmann N., Rogers S.G., Fralev R.T. A simple and general method for transferring genes into plants // Science. 1985. V. 227. P. 1229-1231.

165.Huang S., Gilbertson L.A., Adams T H. et al. Generation of marker-free transgenic maize by regular two-border Agrobacterium // Plant Mol boil. 2004. V. 14. P. 61-72.

166.Huang Y., Nordeen R. O., Di M., Owens L. D., McBeath J. H.. Expression of an engineered cecropin gene cassette in transgenic tobacco plants confers dis-

ease resistance to Pseudomonas syringae pv. tabac. //Phytopathology. 1997. V. 87. P. 494-499.

167. Jacq B., Tetu T., Sangwan R.S., Laat A.D., Sangwan-Norreel B.S. / Plant regeneration from sugarbeet (Beta vulgaris L.) hypocotyls culture in vitro and flow cytometric nuclear DNA analysis of regenerants // Plant Cell Reports. 1992. V. 11. P. 329-333.

168. Jaubert S., Laffaire J.-B., Abad P., Rosso M.-N., A polygalacturonase of animal origin isolated from the root-knot nematode Meloidogyne incognita // FEBS Lett. 2002. V. 552. P. 109-112.

169.Jaynes J.M., Nagpala P., Destefano-Beltran L., Huang J.H., Kim J.H., Denny T., Cetiner S. Expression of a Cecropin B lytic peptide analog in transgenic tobacco confers enhanced resis tanceto bacterial wilt caused by Pseudomonas solanacearum II Plant Science. 1993. V. 89. P. 43-53.

170.Jocq B., Tetu T., Sangwan R.S., Laat A., Sangwan-Norreel B.S. / Effient Production of Uniform Plants from Cotyledon Explants of Sugarbeet (Beta vulgaris L.)//Plant Breeding. 1993. V. 110. P. 185-191.

171 .Irie K., Hosoyama H., Takeuchi T., Iwabuchi K., Watanabe H., Abe K., Arai

S. // Plant Mol. Biol. 1996. V. 30. № l.P. 149-157. 172.Ivic-Haymes S.D., Smigocki A.C. Biolistic transformation of highly regenerative sugar beet (Beta vulgaris L.) leaves // Plant Cell Rep. 2005. V. 23(10-11). P. 699-704.

173.Kado C.I. Molecular mechanisms of crown gall tumorigenesis // Grit. Revs. Plant Sei. 1991. V.10. N. 1. P. 1-32.

174.Kapila J., Riet De Rycke, Marc Van Montagu, Geert Angenon. An Agrobacte-ra/m-mediated transient gene expression system for intact leaves // Plant Science. 1997. V. 122. P. 101-108.

175.Khalid A., Arshad M., Zahir Z.A. Screening plant growth-promoting rhizobac-teria for improving growth and yield of wheat // J. Appl. Microbiol. 2004. V. 96(3). C. 473-480.

176.Khoudi H., Laberge S., Ferullo J.M., Bazin R., Darveau A., Castonguay Y., Allard G., Lemieux R., Vezina L.P. Production of a diagnostic monoclonal antibody in perennial alfalfa plants // Biotechnol Bioeng. 1999. V. 64. P. 135— 143.

177.Klein T. M., Fromm M., Weissinger A., Tomes D., Schaaf S., Sletten ML, San-ford J. C. Transfer of foreign genes into intact maize cells with high-velocity microprojectiles // Proc. Nat. Acad. Sci. 1988. V. 85. C. 4305-4309.

178.Komari T., Hiei Y., Saito Y., et al. Vectors Carrying Two Separate T-DNAs for Co-Transformation of Higher Plants Mediated by Agrobacterium tumefa-ciens and Segregation of Transformants Free from Selection Markers // Plant J. 1996. V. 10. P. 165-174.

179.Koziel M.G., Beland G.L, Bowman C. et al. Field Performance of Elite Transgenic Maize Plants Expressing an Insecticidal Protein Derived from Bacillus thuringiensis//Biotechnology. 1993. V. 11. P. 194-200.

180.Krens F.A., Zijlsta C., Molen W.V. D.l. Transformation and regeneration in sugar beet (Beta vulgaris L.) induced by "shooter" mutants of Agrobacterium tumefaciens // Euphytica. 1988. V. 39. N. 2. P. 185-194.

181 .Kunik T., Salomon R., Zamir D., Navot N., Zeidan M., Michelson I., Gafni Y., Czosnek H. Transgenic tomato plants expressing the tomato yellow leaf curl virus capsid protein are resistant to the virus // Bio/Technology. 1994. V. 12. P. 500-504.

182.Kusnadi A. Production of recombinant proteins in transgenic plants: practical considerations // Biotechnology and Bioen-gineering. 1997. V. 56. P. 473-484.

183.Lawrence W.A., Davies D.R. A method for microinjection and culture of protoplasts at very low densities // Plant Cell Reports. 1985. V. 4. P. 33-35.

184. Lawson C., Kaniewski W., Haley L. Engineering resistannce to mixed virus infection in a commercial potato cultivar: resistance to potato virus X and potato virus Y in transgenic Russet Burbanch II Bio. Techn. 1990. V. 8. P. 127134.

185.Lecardonnel A., Chauvin L., Jouanin L., Beaujean A., Prevost G., Sangwan Norreel B // Plant Sei. 1999. V. 140. № 1. P. 71-79.

186. Lee J-Y., Boman A., Chvanxin S., Andersson M., Jornvall H., Mutt Y., Bo-man H.G. Antibacterial peptides from pig intestine: isolation of a mammalian cecropin // Proc. Natl. Acad. Sei. USA. 1989. V. 86. P. 9159-9162.

187.Lee S.I., Lee S.H., Koo J.C., Chun H.J., Lim C.O., Mun J.H., Song Y.H., Cho M.J. // Mol. Breeding. 1999. V. 5. № 1. P. 1-9.

188.Lehrer R.I., Ganz T. Defensins - endogenous antibiotic peptides from human leukocytes. - In Secondary Metabolites: Their Function and Evolutiion. Ciba Foundation Symposia. 1992. V. 171. P. 26-293.

189.Lei J.J., Yang W.J., Yuan S.H., Ying F.Y., Qiong L.C. Study on transformation of cysteine proteinase inhibitor gene into cabbage {Brassica oleracea var. capitata L) II Acta Hort. (ISHS) 706: IV International Symposium on Brassi-cas and XIV Crucifer Genetics Workshop. 2006. P. 231-238.

190.Lindsey K., Gallois P. Transformation of Sugarbeet (Beta vulgaris) by Agro-bacterium tumefaciens II J. Exp. Bot. 1990. V. 41 C. 529 - 536.

191 .Liu J Zhu J-K.: A calcium sensor homolog required for plant salt tolerans // Science. 1998. V. 280. P. 1943- 1945.

192. Liu J., Zhu J-K. An arabidopsis mutant that requires increased calcium for potassium nutrition and salt tolerans // Prog. Natl. Acad. Sei. USA 1997. V. 94. P. 14960- 14964.

193. Lopez-Bucio J., de La Vega O.M., Guevara-Garcia A., Herrera-Estrella L. Enhanced phosphorus uptake in transgenic tobacco plants that overproduce citrate // Nat Biotechnol. 2000. V. 18(4). C. 450-453.

194.Lucy M., Reed E., Glick B.R. Applications of free living plant growth-promoting rhizobacteria // Antonie Van Leeuwenhoek. 2004. V. 86(1). C. 125.

195.Ma J.K.-C., Hiatt A., Hein M., Vine N.D., Wang F, Stabila P., van Dollewerd C., Mostov K., Lehner T. Generation and assembly of secretory antibodies in plants // Science. 1995. V. 268. P. 716-719.

196. Mairapetion A., Todevossion N., Petrosion M. Detection analysis of orga-nochlorine pesticides in human milk samples // Abst. of Pittcon's 99 conference. 1999. Orlando, Florida. № 23. P. 11.

197.Maksymiec W. Effect of Copper on Cellular Processes in Higher Plants//Photosynthetica. 1997. V. 34. P. 321-342.

198.Malyshenko S.I., Kondakova O.A., Nazarova J.V. Kaplan I.B., Taliansky M.E., Atabekov J.G. Reduction of tobacco mosaic virus accumulation in transgenic plants producing non-functional viral transport proteins // J.Gen Virol. 1993. V. 74. P. 1149-1156.

199. Mann A., Matzk A., Sautter C., Schiemann J. Transient gene expression in shoot apical meristems of sugarbeet seedlings after particle bombardment // J. Exp. Bot. 1995. V. 46. P. 1625 - 1628.

200.Mannerlof M., Lennerfors B.-L., Terming P. Reduced titer of BNYVV in transgenic sugar beets expressing the BNYVV coat protein // Euphyica. 1996. V. 90. P. 293-299.

201.Martemyanov K.A., Shirin A.S., Gudkov A.T. Synthesis, cloning and expression of genes for antibacterial peptides: cecropin, magainin, and bombinin // Biotechnology letters. 1996. V.18. №.12. P. 1357-1362.

202.Martemyanov K.A., Shirokov V.A., Kurnasov O.V., Gudkov A.T., Spirin A.S. Cell-free production of biologically active polypeptides: application to the synthesis of antibacterial peptide cecropin // Protein Expr. Purif. 2001. V. 21(3) P. 456-461.

203.Mauch F., Mauch-Manie B., Boiler T., Antifungal Hydrolases in Pea Tissue : II. Inhibition of Fungal Growth by Combinations of Chitinase and -1,3-Glucanase // Plant Physiol. 1988. V. 88. P. 936-942.

204.McCown B.H., Lloyd G. Woody Plant Medium (WPM) - a mineral nutrient formulation for microculture for woody plant species // Hort. Sci. 1981. V. 16 P. 453.

205.Menassa R., Nguyen V., Jevnikar A. et al. A self-contained system for the field production of plant recombinant inter-leukin-10 // Mol. Breeding. 2001. V. 8. P. 177-185.

206.Miki B, McHugh S. Selectable marker genes in transgenic plants: applications, alternatives and biosafety // J. Biotechnol. 2004. V. 107. P. 193-232.

207.Mittova V., Tal M., Volokita M., Guy M.. Up-regulation of the leaf moto-chondrial and peroxisomal antioxidative systems in response to salt-induced oxidative stress in the wild salt-tolerant tomato species Lycopersicon pennellii // Plant Cell Envir. 2003. V. 26. P. 845-856.

208.Murakami, Y., Tsuyama, M., Kobayashi, Y., Kodama, H. and Iba, K. Trienoic fatty acids and plant tolerance of high temperature // Science. 2000. V. 287. P. 476-479.

209.Murashige T., Skoog F. A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco cultures // Physiol. Plant. 1962. V. 15. P. 473-497.

210.0hshima M., Mitruhara I., Okamoto M. et al. Enhanced resistance to bacterial diseases of transgenic tobacco plants overexpressing sarcotoxin IA, a bactericidal peptide of insect // Biochem. 1999. V. 125. P. 431-435.

21 l.Osuky, M., G. Zhou, L. Osuska, R. E. Hancock, W. W. Kay, and S. Misra. Transgenic plants expressing cationic peptide chimeras exhibit broadspectrum resistance to phytopathogens //Nat. Biotechnol. 2000. V. 18. P. 162-1166.

212.Paul H., Zijlstra C., Leeuwangh J.E., Krens F.A., Huizing H.J. Reproduction of the beet cyst nematode Heterodera schachtii Schm. on transformed root cultures of Beta vulgaris L. // Plant Cell Reports. 1987. V. 6. P. 379-381.

213.Pena A., Lozz H., Shell J. Transgenic rye plants obtained by injection DNA into young floral tillers // Nature. 1987. V. 325. P. 274-276.

214.Perlak F.G., Stone T.B., Muskopf Y.M. et al. Genetically Improved Potatoes: Protection from Damage by Colorado Potato beetles // Plant Mol. Biol. 1993. V. 22. P. 313-321.

215.Pershagen J., Pylander E., Nirberg S. et al. Air pollution involving nitrogen dioxide and exposure and wheezing bronchitis in children // Intern. J. Epidemiol. 1995. V. 24. № 6. P. 1147-1153.

216.Pius P.K., Achar P.N. Agrobacterium-m&d^mX&d transformation and plant regeneration of Brassica oleracea var. capitata II Plant Cell Reports. 2000. V. 19. P. 888-892.

217.Potrykus I., Spangenberg G. Gene transfer to plants. Berlin. Springer. 1995.

218.Puchta H. Gene replacement by homologous recombination in plants // Plant Mol. Biol. 2002. V. 48. P. 173-182.

219.Queitsch C., Hong S.-W., Vierling E., Lindquist S. Heat shock protein 10 plays a crucial role in thermotolerance in Arabidopsis II Plant Cell. 2000. V. 12. P. 479-492.

220.Rasmussen J., Rasmussen O.S. PEG mediated DNA uptake and transient GUS expression in carrot, rapeseed and soybean protoplasts // Plant Scil. 1993 V. 89. P. 199-207.

221. Roussi I., Dubois F., Sangwan R. S., Sangwan-Norreel B.S. In planta 2,3,5-triiodobenzoic acid treatment promotes high frequency and routine in vitro regeneration of sugarbeet (Beta vulgaris L.) plants // Plant Cell Reports. 1996. V. 16. P. 142-146.

222.Russel C., Clarke L. Recombinant proteins for genetic disease // Clinical Genet 1999. V. 55. P. 389-394.

223.Sanchis V., Agaisse H., Chaufaux J., Lereclus D.A. Recombinase Mediated System for Elimination of Antibiotic Resistance Gene Markers from Genetically Engineered Bacillus thuringiensis Strains // Appl. Environ. Microbiol. 1997. V. 63. P. 779-784.

224.Sambrook J., Fritsch E. and Maniatis T. // Molecular Cloning: A Laboratory Manual, Cold Spring Harbor, New York: Cold Spring Harbor Lab. 1989 P. 1626.

225.Sanders P. R., Sammons B., Kaniewski W. Field resistance to transgenic tomatoes expressing the tobacco mosaic virus or tomato mosaic coat protein genes // Phytopathol. 1992. V. 82. P. 683-690.

226.Sawahel W., Onde S., Knight C., Cove D. Transfer of foreigh DNA into Phys-comitrella patens protonemal tissue by using the gene gun // Plant Mol. Biol. Rep. 1992. V. 10. P. 314-315.

227.Schroth M.N., Hancock J.G. Disease - Suppressive Soil and Root-Colonizing Bacteria// Science. 1982. V. 216. P. 1376-1381.

228. Sharma A., Sharma R., Imamura M., Yamakawa M., Machii H. Transgenic expressionof cecropin B, antibacterial peptide from Bombyx mori, conters enhanced resistance to bacterial leaf blight rice // FEBS Letters. 2000. V. 484. P. 7-11.

229.Sharp J.M, Doran P.M. Strategies for enhancing monoclonal antibody accumulation in plant cell and organ cultures // Biotechnol Prog. 2001. V. 17(6). P. 979-992.

230.Shimoda N., Toyoda-Yamamoto A., Nagamine J., Usami S., Katayama M., Sakagami Y., Machida Y.Control of expression of Agrobacterium vir genes by synergistic actions of phenolic signal molecules and monosaccharides // Proc. Natl. Acad. Sci. 1990. V. 87. P. 6684-6688.

231 .Sijmons P., Dekker B., Schrammeijer B. et al. Production of correctly

processed human serum albumin intransgenic plants // Bio Technology. 1990. V. 8. P. 217-221.

232.Simmaco M., Mignogna G., Canofeni S., Miele, Mangoni M.L., Barra D.Temporins, antimicrobial peptides fom the European red frog Rana tempo-raia. - Eur.J.Biochem. 1996. V. 242. P.788-792.

233. Smeianov V., Scott K., Gregor R. Activity of cecropin PI and FA-LL-37 against urogenital microflora // Microbes and Infection. 2000. V. 2. P. 773777.

234.Smith F.D., Harpending P.R., Sanford J.C. Biolistic transformation of proca-ryotes: factors affecting biolistic transformation of veri small cells // J. Gen. Microbiol. V. 138. 1992. P. 239-248.

235.Spangenberg G., Neuhaus G., Schweiger H.G. Expression of foreign genes in a higher plant cell after electrofusion-mediated cell reconstitution of a micro-injected karyoplast and a cytoplast // Eur. J. Cell. Biol. 1986. V. 42. P. 236238.

236.Staub J., Garcia B., Graves J. Hajdukiewicz P.T.J., Hunter P., Nehra N., Paradkar V., Schlittler M., Carroll J.A., Spatola L., Ward D., Ye G., Russell D. A. High-yield production of a human therapeutic protein in tobacco chlorop-lasts // Na-ture Biotechnol. 2000. V. 18. P. 333-338.

237.Steinbiss H., Stabel P. Protoplast derived tobacco cells can survive capillart microinjection of fluorescent dye Lucifer Yellow // Protoplasma. 1985. V. 16. P. 223-227.

238.Sugita K., Kasahara T., Matsunaga E., Ebinuma H. A. Transformation vector for the production of marker-free transgenic plants containing a single copy transgene at high frequency // Plant J. 2000. V. 22. P. 461-469.

239.Takahashi M., Nakanishi H., Kawasaki S., Nishizawa N.K., Mori S. Enhanced tolerance of rice to low iron availability in alkaline soils using barley nicotia-namine aminotransferase genes //Nat Biotechnol. 2001. V. 19(5) P. 466-469.

240.Tang K., Tinjuangiun P., Xu Y., Sun X., Gatehouse J.A., Ronald P.C., Qi H., Lu X., Christou P., Kohli A. Particle - bombardment -mediated co-transformation of elite Chinese rice cultivars with genes conferring resistance to bacterial blight and sap-sucking insect pests // Planta. 1999. V. 208. P. 552563.

241.Terakawa T., Takaya N., Horiuchi H., Koike M., Takagi M. // Plant Cell Rep. 1997. V. 16. P. 439-443.

242.Topfer R., Matzeit V., Gronenborn B., Schell J., Steinbiss H. A set of plant expression vectors for transcriptional and translational fusions // Nucl. Acids Res. 1987. V. 15. P. 5890.

243.Uchiyama M., Mihara M. Determination of malonaldehyde precursor in tissue by thiobarbituric acid test // Analytic. Biochem. 1978. Vol. 86. P. 287-297.

244.Usami S., Morikawa S., Takedo J., Machida Y. Absence in monocotyledonous plants of the diffusible plant factors inducing T-DNA circularization and vir gene expression in Agrobacterium //Mol. Gen. Genet 1987. V. 209. P. 221-226.

245.van Engelen F.A., Molthoff J.W., Conner A.J., Nap J.P., Pereira A., Stiekema W.J. pBINPLUS: an improved plant transformation vector based on pBIN19 // Transgenic Res. 1995. V. 4. P. 288-290.

246.van Engelen F.A., Schouten A., Molthoff J.W., Roosien J., Salinas J., Dirkse W.G., Schots A., Bakker J., Gommers F.J., Jongsma M.A. Coordinate expression of antibody subunit genes yields high levels of functional antibodies in roots of transgenic tobacco // Plant Mol Biol. 1994. V. 26(6). P. 1701-1710.

247. Van Wordragen M., Shakya R., Verkerk R., Peytavis R., van Kämmen A., Zabel P. Liposome-mediated transfer of YAC-DNA to tobacco cells // Plant Molecular Biology Manual. 1998. P. 1-15.

248.Vandekerckhove J. Enkephalines produced in transgenic plants using modified 2S storage proteins // Bio Technology. 1989. V. 7. P. 929-932.

249.Van Larebeke N., Engler N. G., Holsters M., Vanden Aisacker S., Zaenen I., Schilperoort R. A., Schell J Large plasmid in Agrobacterium tumefaciens essential for crown gall-inducing ability // Nature. 1974. V. 252. C. 169-170.

250.Vereijssen J., Possible root infection of Cercospora beticola in sugar beet/ J. Vereijssen, J.H.M. Schneider, A.J. Termoschuizen // Europishe Journal Plant Pathology. 2004. V. 110. № 1. P. 103-106.

251.Walter C., Grance L.J., Donaldson S.S., Moody J., Gemmell J.E., van der Maas S., Kvaalen An efficient biolistic transformation protocol for Picea abies embryogenic tissue and regeneration of transgenic plants // Can. J. For. Res. 1999. V. 29. P. 1539-1546.

252.Walter C., Grance L.J., Wagner A., White D.W., Walder A.R., Donaldson S.S. et al. Stable transformation and regeneration of transgenic plants of Pinus ra-diata D. Don // Plant Cell Rep. 1998. V. 17. P. 460-468.

253.Wang W.C., Menon G., Hansen G. Development of a novel Agrobacterium-mediated transformation method to recover transgenic Brassica napus plants // Plant Cell Rep. 2003. V. 22. P. 274-281.

254. Whitham S., McCormic S., Beker B. The N gene of tobacco confers resistance to tobacco mosaic virus in transgenic tomato // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1996. V. 93. P. 8676-8781.

255. Williamson V.W., Gleason C.A. Plant-nematode interactions // Current Opinion Plant Biol. 2003. V. 6(4). P. 327-333.

256. Wolf P.F., Verreet J.A. Factors affecting the onset of cercospora leaf spot epidemics in sugar beet and establishment of disease-monitoring thresholds // Phytopathology. 2005. V. 95(3) C. 269-274.

257.Wu F., Zhang G., Dominy P. Four barley genotypes respond differently to cadmium: lipid peroxidation and activities of antioxidant capacity // Environ. Exp. Bot. 2003. V. 50 P. 67-78.

258.Wu S-J., Zhu J-K. SOS1, A genetic locus essential for salt-tolerance and potassium acquisition // Plant cell. 1996. V. 8. P. 17-627.

259. Yevtushenko D.P., Romero R., Forward B.S., Hancock R.E., Kay W.W., Mi-sra S. Pathogen-induced expression of a cecropin A-melittin antimicrobial peptide gene confers antifungal resistance in transgenic tobacco // J. Exp. Bot. 2005. V. 56. P. 1685-1695.

260.Yoneyama K., Ansai H. Biothechnology in Plant Disease Control, Chet, I., Ed., New York: Wiley-Liss. 1993. P. 115-137.

261.Zhou, G.Y., J. Weng, Y.S. Zeng, J.G. Huang, S.Y. Qian and G.L. Liu. 1983. Introduction of exogenous DNA into cotton embryos // Methods in Enzymolo-gy / Eds. Wu R., Grossman L., Moldave K. New York. Academic press. V. 101. P. 433-481.

148

БЛАГОДАРНОСТИ

Приношу глубокую благодарность своему руководителю Наталье Сергеевне Захарченко за всестороннюю помощь и неоценимый вклад в осуществление этой работы. Выражаю признательность заведующему лабораторией биотехнологии растений Филиала Института биоорганической химии имени академиков М.М. Шемякина и Ю.А. Овчинникова Ярославу Ивановичу Бурьянову за мудрые советы, консультации и внимательное прочтение работы.

Благодарю Елену Борисовну Рукавцову за ценные советы и критическое обсуждение работы, Алексея Петровича Фирсова за помощь в постановке некоторых экспериментов, Валерию Витальевну Алексееву за моральную поддержку и творческое сотрудничество, а также всех сотрудников лаборатории биотехнологии растений за помощь и поддержку в процессе выполнения работы.