Патогенные микромицеты бодяка щетинистого (Cirsium setosum (W; Ud. ) Bess.) и осота полевого (Sonchus arvensis L. ) и биологические особенности потенциальных агентов биоконтроля - грибов Septoria cirsii Niessl. и Ascochyta tussilaginis Oud. тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.00.24, кандидат биологических наук Берестецкий, Александр Олегович

• Берестецкий, Александр Олегович
• кандидат биологических наук
• 1999

Оглавление диссертации кандидат биологических наук Берестецкий, Александр Олегович

Введение

Глава 1. Обзор литературы

1.1. Стратегии биологической борьбу с сорными растениями при помощи фитопатогенных грибов

1.2. Современные метода изучения фитопатогенных грибов -потенциальных микогербицндов

1.3. Водяк полевой и осот полевой как объекты биоконтроля: таксономия, биология, экология, вредоносность, меры борьбы

1.3.1. Бодяк полевой

1.8.2. Осот полевой

Глава Z. Материалы и методе исследований

2.1. Методы микофлористических и таксономических исследований

2.2. Изучение морфолого-культуральных свойств

2.2.1. Выделение в чистую культуру

2.2.2. Среды

2.2.3. Описание морфолого-культуральных свойств

2.2.4. Определение споропродуктивности

2.2.5. Методика определения фитотоксичности

2.3. Изучение биоэкологических свойств патогенов

2.3.1. Подготовка растительного материала

2.3.2. Подготовка патогенов

2.3.3. Изучение инфекционного процесса

2.3.4. Изучение условий для прорастания конидий in vitro

2.3.5. Изучение патогенных свойств грибов

Глава 3. Микобиота растений родов Cirsium Mill, и Sonchus L. на территории Европейской части России

3.1. Ннкобиота растений рода Cirsium Mi. XX *

3.2. Грибы рода Septoria Sacc.» s паразнтирумгрзе на растениях рода Cirsium Hill.

3.3. Микобиота растений рода Sonchus L.

3.4. Виды рода Ascochyta Lib., паразитирующие на растениях рода Sonchus L.

Глава 4. Биоэкологические особенности гриба

4.1. Мор^олого- культуральные свойства Зер1ог1а здгеН

4.1.1. Морфолого-куль туральные свойства на различных средах

4.1.2. Влияние температуры на рост и споропродуктивность З.С1гбИ

4.1.3. Подбор сыпучих субстратов для получения инокулюма Б.шгбН

4.1.4. Оптимизация сыпучего субстрата по степени увлажненности

4.1.5. Влияние источников азота к углерода на рост и развитие Б.с,1гз1.

4.1.6. Влияние витаминов на рост и спороншение Б.сз-гзп

4.1.7. Влияние концентрации источника углерода (сахарозы) и азота (аспарагина) на рост и спороношение Б.слгбН

4.1.8. Изучение динамики физиологических процессов

4.1.9. Обсуждение

4.2. Жсловш заражения бодяка пскавваго грибом 8ер1ог1а вдгеН и его шаът'етж т&Шшт

4.2.1. Изучение оптимальных условий для прорастания конидий З.сдгзп

4.2.2. Особенности инфекционного процесса

4.2.3. Влияние концентрации инокулюма, продолжительности росяного периода., температуры и возраста растений на заражение бодяка и последующее развитие болезни 4.2.3.1. Влияние продолжительности росяного периода на развитие септориоза 4.2.3,3. Влияние температуры во время росяного периода на развитие септориоза

4.2.3.3. Влияние концентрации инокулюма на развитие септориоза

4.2.3.4. Возрастная (онтогенетическая) специализация З.сДгзИ

4.2.4. Подбор стимулирующих развитие болезни веществ

4.2.5. Изучение спектра изменчивости различных географических изолитов Б.с1г5И по признаку агрессивности

4.2.6. Изучение биохимических изменений в тканях пораженных септориозом растений бодяка полевого

4.2.?. Филогенетическая (хозяиикая) специализация 5. шгбП 4.2.8. Обсуждение

Глава 5. Биоэкологические особенности гриба Азсосйуйа (л^Пад!?^ 0ш1.

5.1. Морфолого-культураль ные свойства АБСОсЬу1а 1лх55Паё!ш£

5.1.1. Влияние температуры на морфологию, рост и споропродуктивность А. 1иззПае1гпз

5.1.2. Влияние света на морфологию, рост и споропродуктивность АЛиэБНартз

5.1.3. Влияние источников азота и углерода на морфологию, рост и споропродуктивность А. ■ЬиББПа^тБ

5.1.4. Влияние концетрации и соотношения источников азота и углерода на морфологию, рост и споропродуктивность А.'ЬизБПадМБ

5.1.5. Изучение динамики физиологических процессов у АЛиззИа^гиг

5.1.6. Подбор сыпучих субстратов для получения инокулюма А. 1изз11а£з.тз

5.1.7. Обсуждение

5.2. Условия заражения осота полевого грибом Азсос}1у1а Ъ.кзБПаедгп£ и его патогенные свойства

5.2.1. Изучение условий для прорастания конидий А. 1изз11а£ртз

5.2.2. Особенности инфекционного процесса

5.2.3. Влияние концентрации инокулюма, продолжительности росяного периода и температуры на заражение осота грибом А.1изз11ад-1п1з и последующее развитие болезни

5.2.3.1. Влияние концентрации инокулюма на развитие аскохитоза

5.2.3.2. Влияние продолжительности росяного периода на развитие аскохитоза

5.2.3.3. Влияние температуры во время росяного периода на развитие аскохитоза

5.2.5. Филогенетическая (хозяинная) специализация АЛиззПадз-ГИБ

5.2.6. Обсуждение

Выводы

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Патогенные микромицеты бодяка щетинистого (Cirsium setosum (W; Ud. ) Bess.) и осота полевого (Sonchus arvensis L. ) и биологические особенности потенциальных агентов биоконтроля - грибов Septoria cirsii Niessl. и Ascochyta tussilaginis Oud.»

В сельском хозяйстве России до сих пор одной из наиболее актуальных проблем является высокая засоренность полей (Kislin, Ermolova, 1995). Причины этого и экономические (дороговизна зарубежных гербицидов, дефицит отечественных препаратов), и биологические (появление устойчивости сорняков к гербицидам, обновление и смена сорной флоры). Одним из решений этой проблемы может стать использование природных ресурсов (естественных врагов, явления аллелопатии) для борьбы с сорными растениями.

Сомнительна экономичность и экологическая безопасность противоположного подхода - полного уничтожения сорняков при помощи неселективных гербицидов в посевах устойчивых к ним трансгенных культур (Падеш-мас и др., 1994). При этом забывается, что сорные растения при определенной плотности произрастания предотвращают эрозию почвы, создают определенный микроклимат в посевах, являются источником дополнительного питания и стацией переживания неблагоприятных условий для энтомофагов (Саломе, 1980; Müller-Scharer, 1995). Кроме того, высокая физиологическая активность и относительная стабильность гербицидов при систематическом применении создают определенный селективный прессинг в агроэ-косистемах: это ведет к отбору устойчивых к гербицидам форм и видов сорных растений, сдвигам в микрофлоре почвы (Круглов, 1984; TeBeest et al., 1992). Поэтому, видимо, нет смысла в полном уничтожении сорной растительности. Необходимо сдерживать численность сорняков на допустимом уровне (Ульянова, 1990).

Этому условию отвечает биологический метод борьбы с сорными растениями - научно обоснованное применение их естественных врагов и патогенов с целью снижения численности популяций сорняка-объекта биоконтроля ниже экономически ощутимого уровня (Müller-Schärer, 1995).

- 6

Включение его в интегрированную защиту растений снижает пестицидную нагрузку на почву, ослабляет конкурентную способность сорных растений. Немаловажно, что его разработка обходится примерно на порядок дешевле, чем химических средств борьбы с сорняками (Ижевский, 1989; Могtensen,

1997).

По сравнению с другими агентами биоконтроля (насекомыми-фитофаг а-ми, бактериями и нематодами) в настоящее время значительно расширены исследования по использованию фитопатогенных грибов в борьбе с сорняками (Соколов и др., 1991): микромицеты очень удобны для исследований, накоплен значительный опыт по их использованию в биологической борьбе с вредными насекомыми и созданию искусственных инфекционных фонов при отборе устойчивых к болезням сортов (Hasan, 1983). По последним данным (Mortensen, 199?) более 130 таксонов фитопатогенных грибов изучены или изучаются в качестве потенциальных агентов биоконтроля сорных растений.

Ввиду высокой избирательности микогербицидов их разрабатывают только против наиболее вредоносных доминирующих сорняков (TeBeest, 1996). Исходя из этого, в качестве объектов исследований нами избраны бодяк щетинистый (Cirsium setosum (Willd.) Bess.) и осот полевой (Sonchus arvensis L.), которые являются трудноискоренимыми засорителями посевов по всей территории европейской части России (Ульянова,

1998). Эти виды устойчивы к механической обработке почвы, и для полного их уничтожения требуется долгосрочный комплекс мероприятий, включающий применение повышенных доз гербицидов (Михайлова, Тарасов, 1989; Lemna, Messersmith, 1992). Биопрепаратов для борьбы с ними не создано.

Специальных исследований по изучению микобиоты бодяка и осота не проводилось, хотя некоторые материалы можно почерпнуть из ряда сводок (Oudemans, 1923; Ellis, Ellis, 1985; Farr et al., 1989). Сведения же о

- ? видовом составе грибов на растениях родов Cirsium Mill, и Sonchus L., обнаруженных на территории СНГ, разбросаны по различным литературным источникам и не систематизированы.

Принимая во внимание, что научной основой для разработки микогер-бицидов является тщательное изучение видового состава микромицетов, вызывающих болезни сорных растений, и биоэкологии высоко агрессивных патогенов (Горленко, 1972; Charudattan, 1989; Бедная, 1992), перед нами были поставлены следующие цели и задачи.

Цель работы: определить видовой состав патогенных микромицетов на бодяке щетинистом и осоте полевом и на основе изучения биологических особенностей наиболее вредоносных патогенов отобрать виды грибов, перспективные для разработки микогербицидов.

Задачи исследований: 1) изучить патогенную микобиоту растений родов Cirsium Mill, и Sonchus L. на территории европейской части России; 2) провести идентификацию возбудителей септориозов растений рода Cirsium и аскохитозов растений рода Sonchus; 3) изучить морфолого-ку ль ту-ральные свойства грибов Septoria cirsii Niessl и Ascochyta tussilagi-nis Oud.; 4) оценить влияние сред и условий культивирования S.cirsii и A.tussilaginis на их споровую продуктивность и физиологические свойства; 5) выявить оптимальные условия для заражения бодяка щетинистого грибом S.cirsii и осота полевого - грибом A.tussilaginis; 6) установить специализацию S.cirsii и A.tussilaginis и их безопасность для культурных растений.

Научная новизна работы. Впервые в России проведено целенаправленное изучение патогенной микобиоты растений родов Cirsium и Sonchus, на которых идентифицировано 50 (соответственно, 33 и 17 видов) микромицетов. На Sonchus arvensis обнаружены два новых для науки вида рода Ascochyta. Выявлены новые растения-хозяева: Cirsium arvense для Fusarium

- 8 oxysporum и Puccinia dioica (О, I), Sonchus arvensis - для Alternaria Chrysanthemi. Впервые сообщается об обнаружении на территорий России Septoria с i rs i i-heterophyIii на Cirsium esculentum, G.vulgare и C.he-terophyllum и Puccinia opizii (О, I) - на Sonchus arvensis. Изучены морфолого-культуральные и физиологические свойства, биоэкология и па-тогенность грибов Septoria cirsii и Ascochyta tussilaginis - возбудителей листовых пятнистостей, соответственно, бодяка щетинистого и осота полевого.

Практическое значение работы. Создана коллекция чистых культур фитопатогенных грибов, поражающих бодяк щетинистый и осот полевой; разработаны методы получения инокулюма грибов Septoria cirsii и Ascochyta tussilaginis, имеющих потенциал для разработки микогербицидов; выполнены исследования по оптимизации сред для изучения фитотоксичес-ких свойств патогенов; изучены условия заражения и, соответственно, разработаны методики инокуляции бодяка и осота указанными возбудителями болезней в лабораторных и полевых условиях. Полученные данные могут быть использованы в селекции штаммов на агрессивность, при проведении полевых испытаний патогенов и создания препаративных форм биогербицидов.

Апробация работы. Материалы диссертации были представлены на Всероссийском съезде по защите растений " Защита растений в условиях реформирования агропромышленного комплекса: экономика, эффективность, экологичность" (С.-Петербург, декабрь 1995); на Всероссийском научно-- производственном совещании "Состояние и пути совершенствования интегрированной защиты посевов сельскохозяйственных культур от сорной растительности" (Голицыне, июнь 1995); на Бюро Отделения защиты растений РАСХН (С.-Петербург, 5 марта 1996 г.); на VI Молодежной конференции ботаников в Санкт-Петербурге (май 1997); на Третьем совещании

- 9

Компьютерные базы данных в ботанических исследованиях" (С.-Петербург, май 1997); на 10-м Съезде Европейского гербологического общества (Познань, Польша, июль 1997); на научных конференциях профессорско-преподавательского состава Санкт-Петербургского государственного аграрного университета (январь 1996, 1998).

Публикации. По теме диссертации опубликовано 11 работ.

Исследования выполнены при поддержке грантов РФФИ N 96-04-50287а, 96-04-9306бк, ФЦП "Интеграция" N 326.14 и ГНТП "Биологическое разнообразие".

- 10

Заключение диссертации по теме «Микология», Берестецкий, Александр Олегович

Вывода

1. При проведении микофлористических исследований в 20 областях Российской Федерации собрано 350 образцов больных растений родов Cirsium Mill, и Sonchus L.» на которых идентифицировано 50 (соответственно, 33 и 17) видов патогенных микромицетов.

2. На Sonchus arvensis L. обнаружены два новых вида рода Ascochy-ta: A.uspenskajae Berestetski sp.nov. и A.novotelnovae Berestetski sp.fiov.

3. В качестве новых растений-хозяев выявлены: Cirsium arvense для "usarium oxysporum и Puccinia dioica, Sonchus arvensis - для Alternaría Chrysanthemi. Впервые сообщается о находке на территории России "риба Septoria cirsi i-heterophyIii, обнаруженного на 0.heterophy11um, 3.vulgare и C.esculentum» и эцидиальной стадии Puccinia opizii - на Sonchus arvensis.

4. На основании изучения морфологии конидий» морфолого-культу-)альных свойств и изоферментного анализа уточнены таксономические кри-7ерии для разграничения видов рода Septoria, обнаруженных на Cirsium >рр.» и видов рода Ascochyta - на Sonchus spp.

5. Для роста и развития Septoria cirsii предпочтительны полусин-•етические среды, либо синтетические среды» содержащие тиамин (100 ¡кг/л); максимальное спороношение развивается при 25°С. Для Ascochyta ussilaginis предпочтительны полусинтетические среды, пикниды образуйся при облучении культур УФ-светом; для образования спороношения оп-имальна температура 23°С, микросклероциев - 25°С. Для получения кони

- 129 диальыого инокулша обоих патогенов в качестве природного субстрата рекомендуется использовать дробленые верна овса.

6. S.cirsii и A.tussilaginis отзывчивы на концентрацию и соотношение источников углерода и азота в среде. Спороношение обоих грибов формируется при соотношении сахарозы и аспарагина 5:1.

6. Оптимальными условиями для заражения бодяка возбудителем сеп-ториоза являются: 36-48-ч росяной период при 20~28°С, концентрация инокулюма 5x1О5 конидий/мл. Наиболее восприимчивой стадией развития бодяка является фаза розетки. В популяциях Septoria cirsii преобладают слабоагрессивные клоны (до 40%), высокоагрессивные клоны редки (3.3X).

7. Оптимальными условиями для заражения осота возбудителем аско-хитоза являются: 24-48-4. росяной период, температура 20-32°С, концентрация инокулюма 5x1О6 конидий/мл. Патоген •способен заражать только молодые слабокутинизированные вегетативные органы осота.

9. Гриб S.cirsii имеет узкую специализацию в пределах рода Cirsi-urn. Гриб A.tussilaginis, выделенный из растений осота желтого, менее специализирован: он поражал растения родов Sonchus и Lactuca и вызывая скрытую инфекцию у некоторых других растений семейства Asteraceae. Оба патогена не поражали экономически важные полевые культуры и поэтому могут считаться потенциальными агентами биологической борьбы с бодяком и осотом.

Список литературы диссертационного исследования кандидат биологических наук Берестецкий, Александр Олегович, 1999 год

1. Абсеитова Ж.Р. Электронно-микроскопическое исследование конидио-генеза Ascochyta levistici (Lebed.) Mein, и A.physalina Sacc. Микология и фитопатология, 1991, т. 25, в. 6, с. 465-468.

2. Азбукина З.М. Ржавчинные грибы Дальнего Востока. м., Наука, 1974, 528 с.

3. Азбукина З.М. Определитель ржавчинных грибов советского Дальнего Востока. М., Наука, 1984, 288 с.

4. Алипбекова Ч.А. Биологические особенности септориоза (Septoria nodorum Berk, и S. tritici Rob. et. Desm. ) и их использование в иммуно-селекции. Автореф. . к.с.-х.н. Алматы, 1993, 23 с.

5. Андреев Л.Н., Плотникова Ю-M. Ржавчина пшеницы: цитология и физиология. М, Наука, 1989, 304 с.

6. Андрианова Т.В. Экспериментально-таксономическое исследование видов рода Septoria S.L. Киев, 1989, 71 с.

7. Андрианова Т.В. Особенности развития некоторых видов рода Septoria Sacc. в культуре. Микология и фитопатология, 1986, т. 20, в. 1, с. 5-11.

8. Анискин Г.А. Борьба с осотом и овсюгом. Земледелие, 1964, No 4, с. 25-30.

9. Бедная С.М. Грибы на сорняках, и возможность их использования для биологического контроля. Микология и фитопатология, 1992, т. 26, No 5, а. 329-336.

10. Беккер З.Э. Физиология грибов и их практическое использование. Й., МГУ, 1963, 268 с.

11. Берестецкий А.О. Этапы исследований при разработке классической и биогербицидной стратегий биологической борьбы с сорными растениями. Сельскохозяйственная биология. 1997а, No 1, с. 3-15.

12. Берестецкий А.О. Микобиота бодяка полевого и родственных ему видов на территории европейской части России. Микология и фитопатология. 19976, том 31, вып. 4, с. 39-45.

13. Берестецкий А.О., Гасмч Е.Л., Жаров В, Р., Титова Ю.А. База данных по микобиоте сорных растений. Компьютерные базы данных в ботанических исследованиях. Сборник научных трудов под ред. Д.В. Гельтмана и O.P. Роскова, Санкт-Петербург, 1997, с. 10-12.

14. Берестецкий O.A., Боровков A.B. Микробные фитотоксины модели уш синтеза новых гербицидов. Тр. ВНИИ с/х микробиологии. Микробиологические способы повышения эффективности сельскохозяйственного произ- 131 водства, Л.:, 1985., т. 55, с. 5-10.

15. Верестецкий О.А. Фитотоксины почвенных микроорганизмов и их экологическая рож. В сб.: Фитотоксины почвенных микроорганизмов, Л. 1978, с. 7-30.

16. Билай В.И. (ред.) Методы экспериментальной микологии. Киев, На-укова думка, 1982, 550 с.

17. Вмлам В.И. Фузарии. Киев, Наукова думка, 1977, 442 с.

18. Вондаревская Ф.Г., Голованова Л.Ф., Минаев Л,И., Мирчинк Т.Г. Гербицидные свойства рубратоксина В, выделенного из гриба PenlciШшп purpurogenum Stoll A 1/4. В сб.: Фитотоксины почвенных микроорганизмов, Л.:, 1978, с. 205-212.

19. Бондардев А.С. Трутовые грибы Европейской части СССР и Кавказа. М.-Л., АН СССР, 1953, 1106 с.

20. Бровдий В.М., Попова И.В., Слободянюк В.Я. Для борьбы с осотом розовым. Защита растений, 1988, No 11, с. 28.

21. Бронштейн Д.Г. Методические указания по испытанию биологического метода борьбы с заразихами (сем. Orobanchaceae). М.:, Колос, 1970, 17 с.

22. Брызгалова В.А. Влияние ржавчинного гриба Puccinia suaveolens (Pers.) Rostr. на развитие сорняка Cirsium arvense. Болезни растений, 1928, т. 17, No 3-4, с. 101-118.

23. Вурдюкова Л.И., Дудка И. А. Виды рода Albugo на новых и редких питающих растениях в УССР. Микология и фитопатология, 1982, т. 16, в. 4, с. 289-294.

24. Вызова S.M., В&оягина М.П.» Деева Н.Г.» Кашмбетов Б. К., Писарева Н.Ф., Шварцман С.Р. Несовершенные грибы-Fungi imperfect i (Deutero-nycetes) L Sphaeropsidales. Флора споровых растений Казахстана, Ал-via-ATa, АН КазахССР, 1967, т. 5, книга 1, 340 с.

25. Вызова З.М., Васягзша М.П., Деева Н. Г., Кашмбетов В. К.» Писарева Н.Ф., Шварцман с. Р. Несовершенные грибы-Fungi imperfect i (Deutero-nycetes) 2. Sphaeropsidales. Флора споровых растений Казахстана, Ал-аа-Ата, АН КазахССР, 1968, т. 5, книга 2, 382 с.

26. Вызова З.М., Васягзша М.П.» Деева Н.Г,, Кашмбетов Б. К., Писарева Н.Ф.» Шварцман С.Р. Несовершенные грибы-Fungi imperfecti (Deutero-nycetes) 3. Sphaeropsidales. Флора споровых растений Казахстана, Ал~ ¿а-Ата, АН КазахССР, 1970, т. 5, книга 3, 557 с.

27. Вавилов Н.И. Учение об иммунитете культурных растений к инфекционным заболеваниям. Теор. основы селекции растений. М-Л, 1935, т. L

28. Васильевский Н.И., Каракулин Б.П. Паразитные несовершенные грм-Зы. 4.1 Гифомицеты. М.-Л., Изд. АН СССР, 1937, 517 с.

29. Вимба Э.К. Грибы рода Ramularia Sacc. в Латвийской ССР. Рига, Зинатне, 1970, 200 с.

30. Вишневская Н.А. Динамика и структура популяции фитопатогенного- 132 гриба VerticiIlium dahliae Kleb, в почве и на корнях хлопчатника. Ав-тореф. . к.б.н. СПб., 1999, 17 с.

31. Воеводин A.B. и др. Методические указания по испытанию гербицидов в растениеводстве. М.:, Колос, 1969, 40 с.

32. Вялых А.К., Жерягин ВюГю, . Условия заражения амброзии полынно-листной (Ambrosia artemísiifolia) возбудителем белой ржавчины. Микология и фитопатология, 1977, т. 11, No 2, с. 135-140.

33. Гасич Е.Л. Микобиота сорных растений европейской части России и биологические особенности видов Septoria, паразитирующих на Convolvulus arvensis L. Автореф. . к.б.н. СПб, 1998, 20 с.

34. Гасич Е.Л., Титова Ю.А., Верестецкий А.О., Жаров В.Р. Микобиота сорных растений европейской части России: итоги исследований 1993-1998 гг. (ред. Мельник В.А. и Черепанова Н.П.), СПб, 1999, 84 с.

35. Гойман 3. Инфекционные болезни растений. М, йзд-во ин. л-ры, 1954, 608 с.

36. Голубев A.A. Морфология, специализация и характер патогенности возбудителя аскохитоза культурных видо трибы Vicieae Bronn. Вюл. ВИР, 1971, в. 18, с. 27-32.

37. Горленко М.В. Биологический метод борьбы с болезнями и сорняками (итоги и перспективы). Вестн. МГУ, 1972, т. 27, No 6, с. 52-57.

38. Груздев Г.С., Туликов A.M. Особенности вегетативного размножения осота желтого (Sonchus arvensis L.) и осота розового (Cirsium se-tosum M.B.). Известия ТСХА, М, Колос, 1966, в. 6, с. 83-95.

39. Давыдова Е.Л., Кваснюк Т.Ф., Паленкова С.И. Влияние различных источников углерода и азота на спорообразование Septoria tritici Rob. et Desm. при глубинном куль тивировании. Микология и фитопатология, 1989, т. 23, в. 5, с. 422-424.

40. Дешкова А.Д., Кулик М.Ф. Влияние различных величин pH среды на рост и развитие грибов VerticiIlium в культуре. Инфекционные заболевания культурных растений в Молдавии, Кишинев, 1971, в. 8, с. 58-63.

41. Дмитриев А.П. Самоограничение численности ржавчинных грибов в связи с экологией хозяина. Вид и его продуктивность в ареале, СПб, 1993, с. 303-304.

42. Долидзе М.И. Биология и экология возбудителя белой пятнистости помидоров Septoria lycopersici Speg. в условиях Грузии. Автореф. . к.б.н. Тбилиси, 1971, с. 26.

43. Енкина Т.В. Патогенные грибы на лекарственных растениях Новосибирской области. Природные комплексы низших растений Западной Сибири, Новосибирск, Наука, 1977, с. 184-193.

44. Железко В.И. О методах приготовления инокулюма Septoria glycines Hemmi при селекции на искусственном инфекционном фоне. Вюлл. НТИВ-НИИЗКК, Орел, 1979, т. 24, с. 47-49.

45. Жербеле И.Я. Грибы рода Ascochyta в Прибалтике. Автореф. к.б.н. Л., 1963, 26 с.- 133

46. Ижевский G.G. Использование фитофагов в борьбе с сорными растениями. М.» 1985, 40 с.

47. Исаева Е.В.Шестопал 3. А. Атлас болезней плодовых и ягодных культур. Киев, Урожай, 1991» 144 с.

48. Исаева Л.И. Использование разных методов в интегрированной борьбе с сорняками. Обзор MC Агропроминформ. М., 1989, 52 с.

49. Ищенко Л.А., Мелькумова Е.А. Влияние токсинов возбудителя сеп-ториоза на различные по устойчивости сорта смородины. Микология и фитопатология, 1978» т. 12, в. 1, с. 23-26.

50. Каталог мировой коллекции ВИР. Л., Изд-во ВИР» 1988, вып. 468, 112 с.

51. Кирай 3., Клемент 3., Шоймоши Ф., Вереш Й. Методы фитопатологии. М» Колос, 1974, 343 с.

52. Кобыльский Г.И.» Бочарова Е.В. Фитотоксины гриба Septoria nocio-rum и их возможная роль в патогенезе септориоза пшеницы. Вестник с/х науки Казахстана, 1989, No 4, с. 40-41.

53. Кобыльский Г.И., Алипбеков O.A., Герцог Н.М. Биосинтез индоли-яуксусной кислоты фитопатогенным грибом Septoria nodorum Berk. Вестник з.-х. науки Казахстана» 1990, No 8, с. 37-39.

54. Ковалев О.В. Биологическая борьба с сорняками и ее перспективы в COOP. Биологический метод защиты растений. Тр. ВИЗР» Л.:, Колос, 1968, в. 31, с. 415-430.

55. Коваленко С.Н. Культуральные и морфологические особенности Septoria tritici Desm. Укр. бот. журнал» 1977» т. 34» No 1, с. 51-54.

56. Корочкин Л.И.» Серов 0.Л.» Пудовкин А.И., и др. Генетика изо-|юрментов. М., Наука, 1977, 278 с.

57. Костицын В.В., Попов В.И. Влияние источников питания и некото-эых фунгицидов на рост и спорообразование Ascochyta agropyrina (Fa-Irin.) Trott, и Drechslera dictyoides (Drechsl.) Shoemaker. Микология и фитопатология, 1982, т. 16, в. 4, с. 325-330.

58. Кошникович В.И. Культуральные особенности возбудителя септориоза томатов Septoria lycopersici Speg. Тр. Новосиб. СХИ, Новосибирск, 978, т. 116, с. 21-30.

59. Круглов Ю.В. Микробиологические аспекты применеия гербицидов в вельском хозяйстве. Автореф. . д.б.н. Л.:, 1984, 30 с.

60. Кужантаева Ж.Ж. Морфолого-культуральные особенности видов рода Septoria Sacc. Микология и фитопатология, 1991, т. 25, в. 6, с. 502-507.

61. Купревич В.Ф.» Ульянищев В.И. Определитель ржавчинных грибов- 134

62. СССР. Минск, Наука и техника, 1975, 334 с.

63. Лети Джое, Калашникова Е. А. Влияние гриба Septoria nodorum и его метаболитов на прорастание семян пшеницы. Изв. ТСХА, 1996, в. 4, с. 150-155.

64. Лилли В., Барнет В. Физиология грибов. М, Изд-во ин. л-ры,1953, 531 с.

65. Листопадова Н.С., Успенская Г.Д. Влияние температуры и состава питательных сред на рост и развитие возбудителя аскохитоза огурцов. Вестник МГУ. Сер. Биология. Почвоведение, 1970, No 4, с. 39-45.

66. Лузгина В.А. Осот желтый и меры борьбы с ним. Труды Уральского НИИСХ, Свердловск, 1967, т. 7, с. 75-79.

67. Мальцев А.И. Атлас важнейших видов сорных растений СССР. Селъ-хозгиз. Лен. отд. 1937, 167 с.

68. Марланд А.Г. Критический обзор рода Septoria применительно к флоре Эстонии. Учен. зап. Тарт. ун-та, 1948, вып. 4, 228 с.

69. Мельник В.А. Определитель грибов России. Класс Coelomycetes. Вып. 1. Редкие и малоизвестные виды. СПб, Наука, 1997, 281 с.

70. Мельник В.А. Определитель грибов рода Ascochvta Lib. Л., Наука. Лен. отд. 1977, 246 с.

71. Мельник В.А. Изучение таксономической ценности культуральных признаков у грибов рода Ascochyta. Тезисы докладов IV Закавказского совещания по споровым растениям. Ереван, 1972, с. 215-218.

72. Методы оценки устойчивости селекционного материала и сортов женицы к септориозу (сост. Пыжикова Г.В. и др.). М., 1989, р. 43.

73. Михайлова Н.Ф., Тарасов A.B. К вопросу о характере зарослей бодяка полевого (Cirsium arvense, Asteraceae). Бот. журнал, 1989, т. 74, to 4, с. 509-514.

74. Морозов Ю.М,, Плотникова Ю.М. Гистологическое исследование растений риса, пораженных пирикуляриозом. Микология и фитопатология, 1989, т. 23, в. 6, с. 576-580.

75. Морочковський С.Ф., Зерова М.Я., Лавитьска З.Г., Смицька М.Ф. Зизначник грибiв Украши.Аскомщети. Ки1в, Наукова думка, 1969, т. 2, 518 с.

76. Морочковський С.Ф., Радз1евский Г.Г., Зерова М.Я., Дудка 1.0., Смицька М.Ф., Роженко Г.Л. Визначник грибiв Укради.Незавершен! гр1би. (Hiв, Наукова думка, 1971, т. 3, 696 с.

77. Мурашева В.Н. Биологические особенности гриба Fusarium oxyspo-"um (Schlecht.) Snyd. et Hans. var. orthoceras (Appl. et Wr.) Bilai и iro перспективы в борьбе с заразихами. Автореф. . к.б.н., М., 1994,- 135 о с.

78. Муромцев Г.С., Зольникова Н.В., Боровков A.B. Использование ;лореллы в качестве объекта при выделении микроорганизмов, обладающих, штотоксической активностью. Докл. ВАСХНМ, 1974, т. 40, No 1, с. 2.

79. Наумов H.A. Методы микологических и фитопатологических исследований. Л., Сельхозгиз, 1937, 320 с.

80. Наумова H.A. Пятнистость стеблей льна, вызываемая Ascochyta П-licola Naoumov et Nevodovski. Труды по защите растений, 1935, т. 5, в. , с. 141-160.

81. Нигманова 0. Биология возбудителя аскохитоза люцерны в Узбекистане и меры борьбы с ним. Автореф. . к.б.н. Ташкент, Наука, 1965, 14

82. Николаева А.Е. Результаты изучения Cirsium arvense Scop, и jonchus arvensis L. на опытных учатсках в Старом Петергофе Ленинграде-сой губернии. В сб.: Защита растений от вредителей. Л.:, 1929, с. '19-755.

83. Николаева М.И., Наумова E.G., Султаева И.В. Особенности цикла развития гриба Septoria glycines. Микология и фитопатология, 1988, т.j о« «

84. Падешмас Л., Шульга O.A., Скрябин К.Г. Создание трансгенных растений Nicotiana tabacum и Solanum tuberosum, устойчивых к гербициду юсфинотрицину. Молекулярная биология, 1994, т. 28, No 2, с. 437-443.

85. Плац М.Ш. Биологические особенности некоторых ржавчинных грибов \ их перспективность в борьбе бодяком. В кн: Микробиологический метод защиты растений от вредителей, болезней и сорняков, Кишинев, Штиинца, 1989, с. 106-111.

86. Плешков Б.П. Практикум по биохимии растений. М.: Агропромиздат, 985, 255 с.

87. Полозова Н.Л. К изучению биологии возбудителя септориоза овса. *аучн. докл. высшей школы. Биол. науки, 1972, No 8, с. 112-115.

88. Полукарова P.A. Биологические особенности поведения грибов рода Ascochyta Lib. в почве. Автореф. . к.б.н. Москва, МГУ, 1977, с. 22.

89. Поляков П.П. Систематика и происхождение сложноцветных. Алла-Ата, Наука Казахской ССР, 1967, 335 с.- 136

90. Потапов А.И. Биологический метод борьбы с осотом. Иркутск., 1925, 17 с.

91. Природный генофонд дикорастущих родичей культивируемых растений флоры СССР и его охрана (аннотированный перечень). (Сост. Коровина О.Н.). Л.:, ВИР, 1986, 126 с.

92. Пыжикова Г.В., Карасева Е.В. Методика изучения возбудителей септориоза на изолированных листьях пшеницу. Сельскохоз. биология, 1985, с. 112-114.

93. Рязанцева Г.Н. Прорастание микросклероциев гриба Verticilliura dahliae Kleb. Физиология иммунитета растений, Москва, Наука, 1968, с. 145-149.

94. Саломе A.C. Роль сорняков в развитии полезной энтомофауны. Сельское хозяйство за рубежом, 1980, No 4, с. 27-29.

95. Санина A.A., Анциферова Л.В. Способы выделения и хранения возбудителей септориоза пшеницы. Микология и фитопатология, 1989, т. 23,в. 2, с. 172-175.

96. Семан Э.0. Изменчивость культуральных и морфологических признаков у грибов ~ возбудителей вертициллезного увядания хлопчатника. Автореф. . к.б.н. Л., 1971, 19 с.

97. Семыкина А.Г. Биологические особенности осота розового и меры борьбы с ним в условиях Курганской области. Автореф. . к.б.н. Саратов, 1967, 20 с.

98. Скрипка О.В., Примаковская М.А. Влияние культуральных фильтратов Septoria linicola на семена и проростки льна. В кн.: Карантинные и другие опасные болезни растений, М., 1981, в. 5, с. 67-69.

99. Соколов М.С., Вялых А.К., Исаева Л.И. Состояние, проблемы и зерспективы применения экологически безопасных пестицидов в растениеводстве . Агрохимия, 1991, No 4, с. 139-157.

100. Степанов K.M. Грибные эпифитотии. М, 1962, 471 с.

101. Tapp С. Основы патологии растений. Москва, Мир, 1975, 587 с.

102. Таслачьян М.Г. О специализации пикнидиальных грибов из родов ^hyllosticta и Ascochyta и связи их с сумчатыми стадиями. Мат. Закавказской конф. по споровым растениям, Баку, Изд-во АН АрмССР, 1965, с. Г/-102.

103. Тетеревникова-Бабаян Д.Н. Грибы рода Септория в СССР. Изд. АН- 137

104. Арм. ССР, Ереван, 1987, 478 с.

105. Томилин Б.А. Определитель грибов р, Mycosphaerella Johans. Д., Наука, 1979, 320 с.

106. Туликов A.M. Биологическое воздействие полевых культур на осот полевой (Sonchus arvensis L.). Доклады ТСХА. Биология, земледелие и растениеводство, 1971, в. 168, с. 184-189.

107. Туликов A.M. Комплексные меры борьбы с осотом. Работы молодых ученых. Земледелие, почвоведение, агрохимия и защита растений, М, Колос, 1968, в. 1, с. 204-210.

108. Туликов A.M. Действие производных 2,4-Д на осот желтый Sonchus arvensis L. Известия ТСХА, M, Колос, 1972, в. 2, с. 160-170.

109. Ульянищев В.И. Определитель ржавчинных грибов СССР. 4.2. Наука, Л., 1978, 384 с.

110. Ульянова Т.Н. Сорные растения во флоре России и других стран СНГ. СПб:, ВИР, 1998, 233 с.

111. Ульянова Т.Н. Некоторые морфобиологические особенности сеге-гальных растений. Сб.: Актуальные проблемы современной гербологии. Л:, 1990, с. 9-12.

112. Усольдева М.Ю. К изучению аскохитоза и других пятнистостей аевера красного. Интегрированная защита растений от вредителей и болезней. Сб. научн. тр. ЛСХИ, Л., 1985, с. 61-63.

113. Успенская Г.Д., Полукарова Г.А., Орлова Г.И. Поведение диаспор Ascochyta cucumeris Fautг. et Rouïïî. в почве. Микология и фитопатология, 1976, т. 10, в. 4, с. 328-331.

114. Успенская Г.Д. Морфолого-культуральные и физиологе-биохимические свойства грибов рода Ascochyta Lib. Биология, экология, география шоровых растений Средней Азии, Ташкент, Фан, 1971, с. 323-324.

115. Успенская Г.Д., Муравьева Т.И. Изучение аминокислотного состава суммарного белка некоторых видов рода Ascochyta Lib. Бюлл. Моск. )бщ~ва Испытателей Природы. Отд. биологии. 1969, т. 74, No 5, с. .29-133.

116. Успенская Г.Д., Никишова В.В. Некоторые особенности физиологии •рибов рода Ascochyta Lib. Микология и фитопатология, 1967, т. 1, в.- 138 4, с. 303-30?.

117. Федоринчик H.С. Методические указания по испытанию биопрепаратов для защиты растений от вредителей, болезней и сорняков. М.:, Колос, 1973, 43 с.

118. Филиппов В.В., Башмаков P.A. 0 роли витаминов в процессе роста и питания различных штаммов возбудителя вертициллезного увядания хлопчатника. Физиология иммунитета растений, Москва., Наука» 1968» с. 135-142.

119. Филиппов В. В.» Андреев JI.H., Базилинская Н.В. Фитопатогенные грибы рода Verticil!ium. M., Наука, 1980, 447 с.

120. Флентже Н.Т. Физиология проникновения паразита и заражения хозяина. Проблемы и достижения фитопатологии, М, Колос, 1962» с. 69-84.

121. Флора Европейской части СССР. T. VIÏ. Колл. авторов. Отв. ред. и ред. тома Н.Н.Цвелев. СПб:, Наука» 1994, 317 с.

122. Хотянович A.B.» Муромцев Г.С. Искусственные инфекционные фоны в селекции сельскохозяйственных культур на устойчивость к корневым болезням. Сельскохозяйственная биология» 1975, т. 10» No 4» с. 595-598.

123. Хохряков М.К. Методические указания по экспериментальному изучению фитопатогенных грибов. Ленингр.» ВИЗР, 1979» 78 с.

124. Двелев H.H. Заметки о родах Erygeron L. s.1. и Cirsium Mill. (Asteraceae) в европейской части СССР. Новости систематики высших растений, СПб» Наука» 1991, т. 28, с. 147-152.

125. Черепанов С.К. Сосудистые растения России и сопредельных государств. С.-Петербург» "Мир и семъя-95"» 1995, 990 с.

126. Черепанова Н.П. Заметки о видах Leptosphaeria Ces. et de Not и Dphiobolus Ri ess. Грибы паразиты низших и высших растений. Тр. БиНКИ ПТУ» Л:» Изд. Ленингр. У-та. No 29» с. 71-81.

127. Шварцман С.Р.» Васягина М.П., Писарева Н.Ф. » Вызова 3.M. Несовершенные грибы-Fungi imperfecti (Deuteromycetes) Moni liai es. Флора споровых растений Казахстана» Алма-Ата, АН КазахССР, 1973» т. 8» 526с.

128. Шмстина Г.Е. Некоторые морфолого-физиологические особенности зозбудителей вертициллезного вилта. Автореф . к.б.н. М.: » МГУ» 1970» 17 с.

129. Щекочихина P.M. Роль токсинов Не lsmint hospor i um sativum Pamm. »- 139

130. King, et Вакке в патогенезе корневой гнили пшеницы. Микология и фитопатология, 1975, т. 9, в. 6, с. 518-523.

131. Эль-Шанауани М.З. Изучение таксономической ценности некоторых признаков грибов рода Phoma Sacc. и Ascochyta Lib. Автореф. . к.б.н. М, МГУ, 1978, 22 с.

132. Abbas H.K., Vesonder R.F. Boyette C.D., Peterson S.W. Phyto-toxity of AAL-toxin and other compounds produced by Alternaria alter-nata to jimsonweed (Datura stramonium). Canadian J. Botany, 1993, v. 71, No 1, p. 155-160.

133. Adams E.B., Line R.F. Epidemiology in the parasitism of Scele-ton weed by Puccinia chondrillina. Phytopathology, 1984, v. 74, No 6, p. 745-748.

134. Ahmad I., Bisset J., Malloch D. Influence of bioherbicide phosphinot.hriсin on interactions between phytopathogenes and their antagonists. Canad. J. Bot. 1995, v. 73, No 11, p. 1750-1760.

135. Andersen R.N., Walker L.N. Colletotrichum coccoides: a pathogen of eastern black nightshade (Solanum ptycanthum). Weed Sei, 1985, v. 33, No 6, p. 902-905.

136. Aptroot A. A monograph of Didymosphaeria. Studies in mycology, 1995, No 37, 160 p.

137. Armstrong J.L., Harris D.L. Biased DNA integration in Colletotrichum gloeosponoides f. sp. aeschynomene transformants with beno-Tiy 1 resistance. Phytopathology, 1993, v. 83, No 3, p. 328-332.

138. Bailey J.A., Nash C., Morgan L.W., O'Connel R. J., TeBeest D.O. Molecular taxonomy of Colletotrichum species causing anthracnose on the Malvaceae. Phytopathology, 1996, v. 86, p. 1076-1083.

139. Balakrishna H.K., Rai P.V. Biological and chemical properties )f a toxic glycopeptide produced by Septoria lycopersici. Indian Phy-lopathol. 1978, v. 31, No 4, p. 458-462.

140. Baudoin A., Bruckart W.L. Seasonal dinamics of Puccinia cardu-эгш on musk thistle. Phytopathology, 1994, v. 84, No 10, p. 1126.

141. Bell A.R., Nalewaja J.D., Alam S., Schooler A.B., Hsien T.S. lerbicide responce and morphology of interspecific sowthisties crosses. Weed Science, 1973, v. 21, No 3, p. 189-193.

142. Berestetsky A.O., Smolyaninova N. V. The study of the mycobiota )f Sonchus arvensis for developing a bioherbicide. Abstr. IV Int. Bio-lerbicide Workshop. Glasgow, The Univ. of Stratchclyde, 1998, p. 27.

143. Bourdot G.W.9 Harvey I.e., Hurrel G. A., Saville D.J. Demographic and biomass conseqences of inundative treatment of Cirsium arvense fith Sclerotinia sclerotiorum. Biocontrol Sei. and Technology, 1995,5, No 1, p. 11-25.

144. Boyette C.D., Walker H.L. Evaluation of Fusarium lateritium as )io.logical herbicide for controlling velvetleaf (AbutiIon theophrasti) ¡nd prickly sida (Sida spinosa). Weed Sei, 1986, v. 34, No 1, p.- 140 106.109.

145. Braun U., Melnik V. A. Cercosporoid fungi from Russia and adjacent countries. Тр. Вот. ин-та им.В.Л. Комарова, Санкт-Петербург,1997, v. 20, 112 р.

146. Braun У. The Powdery mildews (Erysiphales) of Europe. Jena; Stuttgart; New York: G. Fischer, 1995a, 337 p.

147. Braun U. A monograph of Cercosporella, Ramularia and allied genera (Phytopathogemc Hyphomycet.es). Vol, l. Muenchen» IHW-Verlag, 1995b, 310 p.

148. Braun U. A monograph of Cercosporella, Ramularia, and allied genera (Phytopathogenic Hyphomycet.es). Vol. 2. Muenchen, IHW-Verlag,1998, 493 p.

149. Brooker N.L., Lydon J., Mischke C.F. Transformation of Colletotrichum gloeosporioides f. sp. aeschynomene with the bialophos resistance gene. Phytopathology, 1993, v. 83, No 12, p. 1379.

150. Brooker N.L., Mischke C.F,, Patterson C.D., Mischke S., Bruckart W.L., Lydon J. Pathogenicity of bar-transformed Colletotrichum gloeosporioides f.sp. aeschynomene. Biological Control, 1996, v. 7, No 2, p. 159-166.

151. Brosten B.S. , Sands D.O. Field trials of Sclerotinia sclerotiorum to control Canada Thistle (Cirsium arvense). Weed Sc. 1986, v. 34, No 3, p. 377-380.

152. Bruckart W. L., Johnson D.R., Frank J.R. Bentasol reduces rust-induced disease in yellow nutsedge, Cyperus esculentus. Weed Techno1. 1988, v. 2, No 3, p. 299-303.

153. Bruckart W.L. Host range determination of Puccinia jaceae from fellow Starthistle. Plant Dis. 1989, v. 73, No 2;) p. 155-160.

154. Bruckart W.L., Turner S.K.» Sutker E.M.* Vonmmos R., Secllar L., Defago G. Relative virulence of Melampsora euphorblae from Central Europe toward North American and European spurge. Plant Dis. 1986, v. TO, No 9, p. 847-850.

155. Bruckart W.L., Peterson G.L. Comparison of Puccini a spp. from Carduus thistles using isozyme analysis. Proc. VI I Int. Symp. Biol. Uontr, Weeds, 6-11 March 1988, Rome, Italy. (Delfosse E.S.,' ed.). Rone, 1989, p. 445-448.

156. Brun L., Sheppard A.W., Lopes V. Variation of isolates of Cer-:.ospora spp. attacking Heliotropium spp. Ann. appl. Biol. 1996, v. L28, p. 565-570.

157. Bruzesse E., Buxton R. J., Heap J. Aspects of the biology of ;he spear thistle rust, fungus in Victoria, Australia. Proc. VI I Int. Symp. Biol. Contr. Weeds, 6-11 March 1988, Rome, Italy. (Delfosse S.S., ed.), Rome, 1989, p. 449-454.

158. Bruzzese E. Recent work on the assessment of the biological control agents of European blackberry (Rubus fruticosus). Proc. British141 1.op Protection Conference-Weeds 2, 1982, p. 787-790.

159. Bubak Fr. Neue oder kritische Pilze. Annales Mycology, 1908,6, p. 24-25.

160. Buchanan P.K. A reapprasial of Ascochytula and Ascochytella Coelomycetes). Mycological Papers, 1987, No 156, 110 p.

161. Burpee L.L. A method for assessing the efficacy of a biologi-sal agent of dandelion (Taraxacum officinale). Weed Technol. 1992, v. i. No 2, p. 401-403.

162. Calpouzos L., Lapis D.B. Effects of light on pycnidiurn forma-,ion, sporulation and tropism by Septoria nodorum. Phytopathology, 970, v. 60, No 5, p. 791-794.

163. Capasso R., Evidente A., Cutignano A., Vurro M., Zonno M.C., tottalico A. Fusaric and 9,10-dehydrofuaric acids and their methyl es-.ers from Fusarium nygamai. Phytochemistry, 1996, v. 41, No 4, p. .035-1039.

164. Carraway M.0., Evans R.C. Fungal nutrition and physiology« NY, JhiChester, John Wiley and sons, 1984, 401 p.

165. Cartwright R. D., Tempieton G.E. Biological limitations of 'rotomyces gravidus as a mycoherbicide for giant regweed, Ambrosia .rifida, Plant Dis. 1988, v. 72, No 7, p. 580-582.

166. Chaboudez P., Burdon J.J. Frequency-dependent selection in a riId plant pathogen system. Oecologia, 1995, v. 102, No 4, p.

167. Chandramohan S., Charudattan R. Host specific responce of patlogens in a mixture on different weed host: an electron microscopic study. Phytopathology, 1998, v. 88, s. 15.

168. Charudattan R. Bioherbicides: The role of plant pathogens in ntegrated pest management. Proceedings of 10th EWRS (Europeaan Weed Research Society) Symposium, Poznan, 1997, p. 144.

169. Charudattan R. Assessment of efficacy of mycoherbicide candi-iates. Proc. VII Int. Symp. Biol. Contr. Weeds, 6-11 March 1988, Rome, Italy. (Delfosse E.S., ed.), Rome, 1989, p. 455-464.

170. Chiang M.Y.» Dyke C.G. van, Leonard K.J. Evaluation of endemic oliar fungi for potential biological control of johnsongrass (Sorghum lalepense): screening and host rang tests. Plant Dis. 1989, v. 73, No >, p. 459-464.

171. Ciotola M., Watson A.K., Hallet S.G. Discovery of an isolate )f Fusarium oxysporum with potential to control Striga hermontica in ifrica. Weed Research, 1995, v. 35, No 4, p. 303-309.

172. Cisar C.R., Thornt.on A.B., D.O.TeBeest. Isolates of Colletot--ichum gloeosporioides (teleomorph: Glomerella cingulata) with different host specifities mate on northern jointvetch. Biological Control, .996, v. 7, No 1, p. 75-83.

173. Cohen L., Eyal Z. The hystology of process associated with the- 142 infection of resistant and susceptible wheat cultivars with Septoria tritici. Plant Pathology, 1993, v. 42, No 5, p. 737-743.

174. Cooke B.M., Jones D.G. The effect of near-ultraviolet irradiation and agar medium on the sporulation of Septoria nodorum and S.tritici. Trans. Br. mycol. Soc. 1970, v. 54, No 2, p. 221-226.

175. Constantinescu 0. Taxonomic revision of Septoria-like fungi parasitic on Betulaceae, Trans. Br. mycol. Soc. 1984, t. 83, No 3, c. 383-398.

176. Covey R.P. Mode of action of Septoria linicola. Phytopathology, 1962, v. 52, No 11, p. 1229-1230.

177. Cutler H.G. Perspectives on discovery of microbial phytotoxins with herbicidal activity. Weed Technology, 1988, v. 2, No 4, p. 525-532.

178. Defago 8., Kern H., Sedlar L., Potencial control of weedy spurges by the rust Uromyces scutellatus. Weed Sci. 1985, v. 33, Mo 6, p. 857-860.

179. Diagle D.J., Cotty P,J. Stability of Col1etotrichum truncatum in culture influences mvcoherbicide efficacy. Mycologya, 1994, v. 86, Mo 3, p. 399-400.

180. Diagle D.J., Connick W.J., Quimby P.C., Evans J., Trask-Morrel 3., Fulgham F.E. Invert emulsions: carrier and water source for the nycoherbicide, Alternarla cassiae,, Weed Technol. 1990, v. 4,. No 2, p. 327-331.

181. Donovan A., Isaac S., Collin H.A., Velkamp C.J. Ultrastructure dí infection of excized leaves of celery by Septoria aplicóla, causalagent of leaf spot disease. Mycological Research, 1990, v. 94, No 4, 3. 548-552.

182. Egley G.H., Boyette C.D. Water-corn oil emulsion enhances colidia germination and mycoherbicidal activity of Colletotrichum truncatum. Weed Sci. 1995, v. 43, No 2, p. 312-317.

183. Ellis M.B. Dematiaceous Hyphomycetes. Kew, 1971, 608 p.

184. Ellis M.B., Ellis J.P. Microfungi on land plants (An identification handbook). London & Sidney, Croom Helm, 1985, 818 p.

185. Ende G. van den, Frantzen J., Timmers T. Teleutospores as origin of systemic infection of Cirsium arvense by Puccinia punctiformis. Jetherl. J. Plant Pathol. 1987, v. 93, No 5, p. 233-239.

186. Evidente A., Capasso R., Cutignano A., Tagli alate1a-Scafat i )., Vurro M., Zonno M.C., Motta A. Ascaulitoxin, a phytotoxic bis-ami-io-acid n-glucoside from Ascochyta caulina. Phytochemistry, 1998, v 18, No 7, p. 1131-1137.

187. FarrD.F., Bills G.F., Chamuris G.P., Rossman A.Y. Fungy on úants and plant products in the United States. APS Press, 1989, .252 p.

188. Fernando W.G.D., Watson A.K., Paulitz T.C, A simple techni- 143 que to observe conidial germination on leaf surfaces. The Mycologist, 1993, V, 7, No p. 4, p. 188-189.

189. Frantzen J. The effect of temperature on the germination of teliospores of Puccinia punctiformis. Phytopathology, 1994, v. 84, No 10, p. 1043-1046.

190. Frantzen J., Muller-Scharer H. Biological control using rust fungi. European J. Plant Pathol. Proc. 8th Intern. Plant Prot. Congress. the Hague, 1995, abstr. 592.

191. Frantzen J., Van der Zweerde W. Quantitative resistance of Cirsium arvense to root bud infection by Puccinia punctiformis. Bio-control Science and Technology, 1994, v. 4, p. 223-228.

192. Frantzen J. An epidemiological study of Puccinia punctiformis (Str.) Röhl as a stepping-stone to the biological control of Cirsium arvense (1.) Scop. New Phytologist, 1994, v. 127, p. 147-154.

193. Frantzen J. The effect of temperature on the germination of teliospores of Puccinia punctiformis. Phytopathology, 1994, v. 84, No 10, p. 1043-1046.

194. Frantzen J. The role of clonal growth in the pathosystem Cirsium arvense Puccinia puctiformis. Can. J. Botany, 1994, v. 72, p. 332-836.

195. Frantzen J., Hatcher P.E. A fresh view on the control of the annual plant Senecio vulgaris. Integerated Pest Management Review, 1997, v. 2, p. 77-85.

196. French R.C., Nesten S.E., Binder R.G. Volatiles from germination Canada thistle seeds and root cuttings that stimulate germination )f teliospores of the Canada thistle rust fungus. J.Agric. and Food, 'hem. 1994, V. 42, p. 2937-2941.

197. Gabel A., Salazar C. Pathogenicity of Septoria aquilinae iso-ated from Black Hill bracken. J. Iowa Acad. Sei. 1996, vol. 103, No ;/4, p. 74-79.

198. Gardner D.E. Pathogenicity of Fusarium oxysporum f. sp. pas-Iflorae to bananes poka and other Passiflora spp. in Hawaii. Plant is. 1989, v. 73, No 6, p. 476-478.

199. Gauemann E. Fusaric acid as a wilt toxin. Phytopathology, 957, v. 47, No 3, p. 342-357.

200. Greaves M.P., Bailey J.A., Hargreaves J.A. Mycoherbicides: 0p~ Drtunities for genetic manipulation. Pesticide Sei. 1989, v. 26, No , p. 93-101.

201. Greaves M.P., Potyka I., Lawrie J. Formulation of microbial- 144 erbicides. European J. Plant Pathol. Proc. 8th Intern. Plant. Prot. Congress. The Hague, 1995» abstr. 25.

202. Greaves M.P.» Sargent J.A. Herbicide-Induced invasion of plant •oots. Weed Sei (Suppl. 1)., 1986, v. 34, p. 50-53.

203. Green G.J., Dickson J.G. Pathological histology and varietal tactions in Septoria leaf blotch of barley, Phytoparthology, 1957, v. Г/, No 1, p. 73-79.

204. Green S., Stewart-Wade S.M., Boland G.J., Teshler M.P., Liu s.H. Formulating microorganisms for biological control of weeds. 4ant-microbe interactions and biological control/ ed. by Boland G.» <uykendal 1 L.D. New York, 1997, p. 462-80.

205. Griffits E., Ao H.C. Variation in Septoria nodorum. Ann. appl. 3iol. 1980, v. 94, No 2, p. 294-296.21?. Grove W.B. British stem- and leaf-fungi (Coelomycetes). Cambridge, 1935, v. 1» 488 p.

206. Quske S., Boyle C., Schulz В. New aspects concerning biological control of Cirsium arvense. IÜBS/WPRS Bull. 1996, v. 19, No 7, p. 281-290.

207. Hahn M., Deising H., Struck C., Mendgen K. Fungal morphogenesis and enzyme secretion during pathogenesis. Resistance of crop plants against fungi/ ed. by Hartleb H. Jena; Stutgart;, Lübeck; Ulm: G.Fischer, 1997» p. 33-55.

208. Hallet S.G,» Ayres P.G. Invasion of rust (Puccinia lagenopho-rae) aecia on groundsel (Senecio vulgaris) by secondary pathogens: death of the host. Mycol. Res. 1992, v. 96, Mo 2, p. 142-144.

209. Hallett S.G., Paul N.D.» Ayres P.G. Botrytis cinerea kills groundsel1 (Senecio vulgaris) infected by rust (Puccinia lagenopho-rae). New Phytologist, 1990, v. 114, No 1, p. 105-109.

210. Hartati S.Y., Djiwanti S.R. The control of rust disease of Sonchus with fungicides (Abstract). Edisti khusus penelitian tanaman rempah dan obat, Индонезия, 1986» v. 11, No 2, p. 55-59.

211. Hasan S. Plant, pathogens and biological control of weeds. Plant pathologist pocket-book,. Kew, Surrey, UK, CM I» 1983, p. 269-274.

212. Hatcher P.E., Paul N.D., Ayres P.S.» Whittaker J.B. The effect of an insect herbivore and a rust fungus individually, and combined in sequence, on the growth of two Rumex species. New Phytologist, 1994» v. 128» No 1, p. 71-78.

213. Heale J.B., Isaac I. Dwiromental factors in the production of dark restingstructures in VerticiIlium alboatrum, V.dahliae and V.tri- 145 corpus. Trans. Brit, mycol Soc. 1965, v. 48, No 1, p. 39-50.

214. Heiny D.K., Templeton G.E. Effects of spore concentration, temperature and dew period on disease of field bindweed caused by Pho-iia proboscis. Phytopathology, 1991, v. 81, p. 905-909.

215. Heiny D.K., Tempieton G.E. Method and composition for the bioLogical control of field bindweed, U.S. Patent N 5391538, 1995, 8 p.

216. Herschenhorn J., Vurro M., Zorino M.C., Stierle A., Strobe 1 G. Septoria cirsii a potential biocontrol agent of Canada thistle and its Phytotoxin heta-nitropropion1c acid. Plant Sei, 1993, v. 94, p. 227-234.

217. Hershenhorn J., Park S.H., Stierle A., Strobe1 G.A. Fusarium avenaceum as a novel pathogen of spotted knapweed arid its Phytotoxins, acetamino-butenolide and enniatin B. Plant Sei, 1992, v. 86, No 2, p. 1.55-160.

218. Hildebrand P.D., Jensen K.I.N. Potential for the biological control of St. John's-wort (Hypericum perforatum) with an endemic strain of Colletotrichum gloeosporioides. Canad. J. Plant Pathol. 1991, v. 13, No 1, p. 60-70.

219. Hoagland P.E. Alternaria cassiae alters phenilpropanoid metabolism in sicklepod (Cassia obtusifolia). J. Phytopatol. 1990, v. 130, Mo 3, p. 177-187.

220. Hodgson J.M. Lipid deposition on leaves of Canada thistle eco-types. Weed Science, 1973, v. 21, No 3, p. 169-172.

221. Hodson R.H., Snyder R.H. Thidiasuron and Colletotrichum cocco-des effects on ethylene production by velvetleaf (AbutiIon theophras-ti) and prickly sida (Si da spinosa). Weed Sei. 1989, v. 37, No 3, p. 484-489.

222. Holmes S.J.I., Colhoum J. Infection of wheat by Septoria nodo-rum and S.tritici in relation to plant age, air temperature and relative humidity. Trans. Br. mycol. Soc. 1974, v. 63, No 2, p. 329-338.

223. Holmston-Ruddick B., Mortensen K. Factors affecting pathogenicity of a benomy1-resistant atrain of Colletotrichum gloeosporioides f. sp. malvae. Mycological Research, 1995, v. 99, No 9, p. 1108-1112.

224. Hoppe H.-H. Fungal Phytotoxins. Resistance of crop plants against fungi/ ed. by Hartleb H. Jena; Stutgart;, Lübeck; Ulm: G.Fischer, 1997, p. 54-82.

225. Huber-Meinicke G., Defago G., Sedlar L. Ramularia rubella (Bon.) Nannf. as a potencial mycoherbicide against Rumex weeds. Botanica Helvetica. 1989, v. 99. No 1, p. 81-89.

226. Hutchinson I., Colosi J., Lewin R.A. The biology of Canadian weeds. 63. Sonchus asper (L.) Hill, and S.oleraceus L. Canadian Journal of Plant Science, 1984, v. 64, No 3, p. 731-744.

227. Irvine J.I.M., Borge M.N., McElwee M. Association of Phoma aquilina and Ascochyta pteridis with curl-tip disease of bracken. Ann.- 146 appl. Biol. 198?, Y. 110, No 1, p. 25-31.

228. Jackson M. A.,, Schisler D.A. Liquid culture production of mic-rosclerotia of Colletotrihuin truncatum for use as bioherbicidal propa-gules. Mycol. Res. 1995, v. 99, No 7, p. 879-884,

229. Jennings D., Ayres P.6. The effects of temperature on the respiratory responces of groundsel (Senecio vulgaris) to infection by rust (Puccinia lagenophorae). J. Phytopathol. 1990, v. 37, No 3, p. 235-240.

230. Jhorar 0.P,, Butler D.R., Mathauda S.S. Effects of leaf wetness duration, relative humidity, light and dark on infection and sporulation by Didymella rabiei on chickpea. Plant Pathology, 1998, v. 47, No 5, p. 586-594.

231. Jones D.G., Lee N.P., , . Production of secondary conidia by Septoria tritici in culture. Trans. Br. mycol. Soc. 1974, v. 62, No 1, p. 212-213.

232. Jones R.W., Lanini W.T., Hancock J.G. Plant growth responce to the phytotoxin viridol produced by the fungus Gliocladium virens. Weed Sci, 1988, v. 36, No 5, p. 683-687.

233. Jorstad I. Septoria and septoroid fungi on Dicotyledones in Norway. Oslo, Oslo Univ. Press, 1965, 110 p.

234. Kent S.S., Strobe1 G.A. Phytotoxin from Septoria nodorum. Trans. Brit, mycol. Soc. 1976, v. 67, No 2, p. 354-358.

235. Khodayari K., Smith R.J. A mycoherbicide integrated with fungicides in rice (Oryza sativa). Weed Techno1. 1988, v. 2, No 3, p. 281-285.

236. Kislin E., Ermolva N. Species composition of weed populationin South Russia. 9th EWRS (European Weed Research Society) Symposium. Proceedings. Budapest., 1995, v. 1, p. 143-147.

237. Klerk R.A., Smith R.J., TeBeest D.O. Integration of microbial herbicide into weed and pest control programs in rise (Oryza sativa). Weed Sci. 1985, v. 33, p. 95-99.

238. Kremer R.J., Spenser N.R. Interaction of insects, fungi and burial on velvetleaf (Abutilón theophrasti) seed viability. Weed Techno!. 1989, v. 3, No 2, p. 322-328.

239. Kremer R.J., Schulte L.K. Influence of chemical treatment and Fusarium oxysporum on velvetleaf (Abutilón theophrasti). Weed techno1. 1989, V. 3, No 2, p. 369-374.

240. Leach C.M., Trione E.J. An action spectrum for light induced sporulation in the fungus Ascochyta pisi. Plant Physiology, 1965, v. 40, No 5, p. 808-812.- 147

241. Lee G.A. Integrated control of rush sceletonweed (Chondrilla lunceae) in the Western US. Weed Sei (Suppl. 1), 1986, v. 34, p. 2-6.

242. LemnaW.K., Messersmith G.G. The biology of Canadian weeds. 94. Sonchus arvensls L. Canadian Journal of Plant. Science, 1990, v. 70, No 2, p. 509-532.

243. Lepoivre P. Sensitivity of peas cultivars to ascochitine and the possible role of the toxin in the pathogenicity of Ascochyta pisi Lib. Phytopathol. 2. 1982, v. 103, No 1, p. 25-34.

244. Lidert Z., Williams S.F., Holmes A.B. Synthesis of a monocyclic analogue of bipolartoxin, a Phytotoxin of fungal origin. Tetrahedron Letters, 1988, v. 29, No 12, p. 1347-1350.

245. Luo Y., TeBeest D.O. Analysis of infection components on several mutantans and wild type isolates of Colletotrichum gloeosporioides f.sp. aeschinomene. Phytopathology, 1994, v. 84, No 10, p. 1113.

246. Luster D.G., Bruckart W.L. DNA fingerprinting of weed pathogens for biological control. Proc. 7th Int. Cogr. Plant Pathol. Edinburgh, Scotland, 1998, abstr. No 3.5.9.

247. Main D., Bürge M.N. Field trials of a potential mycoherbicide for control of bracken. IV Intern. Bioherbicide Workshop, Glasgow, The Univ. of Stratchclyde, 1998, p. 21.

248. Makowski R.M.D. Effect of inoculum concentration, temperature, dew period, and plant growth stage on disease of round-leaved mallow and velvetleaf by Colletotrichum gloeosporioides f. sp. malvae. Phytopathology, 1993, v. 83, No 11, p. 1229-1234.

249. Massion C.L., Lindow S.E. Effects of Sphacelotheca holci infection on morphology and competitiveness of Johnsongrass (Soryhum ha-lepense). Weed Sei. 1986, v. 34, No 6, p. 883-888.

250. Massion C.L., Lindow S.E. Effects of Sphacelotheca holci infection on morphology and competitiveness of Johnson grass (Sorghum halepense). Weed Sc. 1986, v. 34., No 6, p. 883-888.

251. Mazaheri A., Moazami N., Vaziri M., Moayed-Zadeh N. Utilization of Fusarium solani (Mart.) Sacc. for microbial control of broomrape in tobacco fields. Iran. J. Plant Pathol. 1993, v. 29, No 1-4, p. 123-124.

252. Menzies B.P. Studies on the systemic fungus, Puccinia suaveo-lens. Ann. Bot., N.S. 1953, v. 68, No 10, p. 551-568.

253. Miller R.V., Ford E. J., Sands D.C. A nonsclerotial pathogenic, mutant of Sclerotinia sclerotiorum. Canadian J. Microbiol. 1989, v. 35, No 4, p. 517-520.

254. Moore R,J., Frankton C. The thistles of Canada. Ottawa, 1974,- 148 p. 112.

255. Morin L., Watson A.K.Reeleder R.D. Efficacy of Phomopsis convolvulus for control of field bindweed (Convolvulus arvensis). Weed Sci. 1989» v. 37, No 8, p. 830-835.

256. Morin L., Watson A.K., Reeleder R.D. Production of conidia by Phomopsis convolvulus. Can.J.of Microbiol. 1990, v. 36, No 2, p. 86-91.

257. Morin L., Derby J.L., Kokko E.G. Infection process of Colle-totrichum gloeosporioides f. sp. malvae on Malvaceae weeds. Mycologi-cal Research, 1996, v. 100, No 2, p. 165-172.

258. Mortensen K. Biological control of weeds using microorganisms. Plant-microbe interactions and biological control/ ed. by Boland G., Kuykendall L.D. New York, 1997, p. 442-462.

259. Muller-Scharer H. Weeding with insects and pathogens prospects for European crops. 9th EWRS (European Weed Research Society) Symposium. Proceedings. Budapest, 1995, v. 1, p. 21-27.

260. Nelson P.E., Toussoun T.A., Marasas W.F.0. Fusarium species. An illustrated manual. The Pennsilvania State Univ. Press, 1983, 193p.

261. Norman D.J., Trujillo E.E. Development of Colletotrichum glo-eosporioides f.sp. clidemiae and Septoria passifloraem into two myco-herbicides with extended viability. Plant Disease, 1995, v. 79, No 10, p. 1029-1032.

262. Norman D.J., Truviillo E.E. Development of Colletotrichum glo-eosporioides f. sp. clidemiae and Septoria passiflorae into two myco-herbicides with extended viability. Plant Dis. 1995, v. 79, No 10, p. 1029-1032.

263. O'Connel R.J., Uronu A.B., Waksman G., Nash C., Keon J.R.R., Bailey J.A. Hemibiotrophic infection of Pisum sativum by Colletotric-hum truncatum. Plant Pathology, 1993, v. 42, No 5, p. 774-783.

264. Oh J.H. Effects of leaf maturity on the disease progress of Septoria brown spot in soybean (abstract). Korean J. Plant Pathol. 1987, v. 3, No 4, p. 285-290.

265. Okoli C.A.N., Shilling D.G., Smith R.L., Rewick T.A. Genetic diversity in purple nutsedge (Cyperus rotundus L.) and yellow nutsedge (Cyperus esculentus L.). Biological Control, 1997, v. 8, No 2, p. 111-116.

266. Oku H., Nakanishi T. A toxic metabolite from Ascochyta fabae having antibiotic activity. Phytopathology, 1963, v. 53, No 10, p.i it »- 14.9

267. Oku H., Nakanishi T. Mode of action of an antibiotic ascochy-tine, with reference to selective toxity. Phytopathol. Z. 1966, v. 55, No 1, p. 1-14.

268. Ormeno-Nunez J., Reeleder R.D., Watson A.K. A foliar disease of field bindweed (Convolvulus arvensis) caused by Phomopsis convolvulus. Plant Disease, 1.988, v. 72, p. 338-342.

269. Oudemans C.A.J.A. Enumerate systematica fungorum. 1923, v. IV, p. 1232.

270. Panetta F.D., Dodd J. Sceleton weed: how serious a threat in Western Australia. J. Australian Agric. 1984, v. 85, No 1, p. 37-41.

271. Paul N.D., Ayres P.G. Effects of rust infection of Senecio vulgaris on competition with lettuce. Weed Res. 1987, v. 27, p. 431-442.

272. Perisic M., St03anovic S. Prilog proucavanju Septoria chrysanthemella Sacc. prouzrokovaca erne lisne pegavosti hrizanteme. Arhiv za poljoprivredne, 1978, v. 31, No 113, p. 133-139.

273. Petrak E. Mykologische Notizen. VI11. Annales Mycologici, 1925, v. 23, No 1/2, p. 87.

274. Pfirter H.A., Defago G. The potential of Stagonospora sp. as a mycoherbicide for field bindweed. Biocontrol Sci and Technol., 1998, v. 8, No 1, p. 93-101.

275. Politis P.I., Bruckart W.L. Infection of musk thistle by Puccinia carduorum influenced by conditions of dew and plant age. Plant Dis. 1986, v. 70, No 4, p. 288-290.

276. Politis D.J., Watson A.K., Bruckart W. L. Suceptibility of musk thistle and related composites to Puccinia carduorum. Phytopathology, 1984, v. 74, No 6, p. 687-691.

277. Punithaiingam E. Graminicolous Ascochyta species. Mycol. Papers, 1979, No 142, 214 p.

278. Punithaiingam E., Holliday P. Ascochyta pisi. CIO Descriptions of pathogenic fungi and bacteria, 1972a, v. 34, No 332.

279. Punithaiingam E., Holliday P. Ascochyta rabiei. CMI Desr. of pathogenic fungi and bacteria, 1972b, v. 34, No 337.

280. Punithaiingam E.s Holliday P. Septoria glycines. CMI Desr. of pathogenic, fungi and bacteria, 1972c, v. 34, No 339.

281. Punithai ingam E., Holliday P. Mycosphaerella pinodes. CMI Desr. of pathogenic fungi and bacteria, 1972d, v. 34, No 340.

282. Punithaiingam E. Septoria humuli. CMI Desr. of pathogenic fungi and bacteria, 1985, v. 83, No 829.

283. Quimby P.C. Responce of common cocklebur ( Xanthium strumari- 150 urn) to Alternaria he li ant hi. Weed Technology, 1989, v, 3, No 1, p. 177-181.

284. Roger G., Tivoli В., Huber L. Effects of temperature and moisture on disease and fruit body development of Mycosphaerella pinodes on pea (Pisum sativum). Plant Pathology, 1999, v. 48, No 1, p. 1-9.

285. Rogers P.G. Canada thistle and Russian knapweed and their control. Bulletin N 348, Fort Collins, Colorado exp. st. 1928, p. 44.

286. Roundhi11 S.J., Fineran B.A., Cole A.L.J., Ingerfeld M. Structural aspects of Ascochyta blight of lentil. Can. J. Botany, 1995, v. 73, p. 485-497.

287. Schadler D.L., Bateman D.F. Ascochyta chrysanthemi toxin: production and properties. Phytopathology, 1974, v. 64, No 6, p. 779-784.

288. Scheepens P.C. Joint action of Cochliobolus lunatus and atra-zine on Echinochloa crus-galli (L.) Beauv. Weed Res. 1987, v. 27, p. 43-47.

289. Scheepens P.C., Hoogerbrugge A. Host specificity of Pucccinia canaliculata, a potential biocontro1 agent for Cyperus esculentus. Nether1. J. Plant Pathol. 1991, v. 97, No 4, p. 245-250.

290. Scheepens P.C., Kempenaar C., van der Zweerde W. Integrating biological control of Chenopodium album in weed management system. Abstr. IV Int. Bioherbicide Workshop. Glasgow, The Univ. of Stratc-hclyde, 1998, p. 41,

291. Schisler D.A., Jackson M. A. Germination of soi1-incorporated microsclerotia of Colletotrichum truncatum and colonization of seedlings of the weed Sesbania exaltata. Can. J. Microbiology, 1996, v. 42, No 10, p. 1032-1038.

292. Schubiger F.X., Defago G., Kern H., Sedlar L. Damage to Rumex crispus L. and Rumex obtusifolia L. caused by rust fungus Uromyces ru-micis (Shum.) Wint. Weed Res. 1986, v. 26, No 5, p. 347-350.

293. Scott J.K., Shivas R.G., Yeon P.B. Integration of biological and other weed control in annual pasture. European J. Plant Pathol. Proc. 8th Intern. Plant Prot. Congress, the Hague, 1995, abstr. 454.

294. Semenchenko G.V,, Tiorerbaev K.S., Dolgovskaya M., Schultz M. T., McCarthy M.K., Sands D.C. Phy t opat. hogeniс Fusarium strains in biological control of Cannabis sativa. Phytopathology, 1995, v. 85, No 10, p. 1200.

295. Sharon A. Genetic engineering of fungal pathogens as an aid to biological weed control. Abstracts of XlVth Int. Plant Prot. Congress (IPPC), Jerusalem, Israel, viuly 25-30, 1999, p. 147.

296. Singh P.J., Pal M., Prakash N. Ultrastructural studies of со-nidiogenesis of Ascochyta rabiei, the causal organism of chickpea blight. Phytoparasitica, 1997, v. 25, No 4, p. 291-304.

297. Slonovschi V., Chirita N., Ivancea V. Stuidies on the action of some pathogenic agents (fungi and insects) for biological control- 151 of Cirslum arvense. Proceedings of 10th EWRS (Europeaan Weed Research Society) Symposium, Poznan, 199?, p. 169.

298. Sohl H.S., Sokhi S.S. Morphological, physiological and pathological studies in Septoria lycopersici. Indian Phytopathology, 1973, v. 26, No 4, p. 666-673.

299. Sugawara F., Uzawa J., Esumi Y. et al. Phytotoxins from Septoria sp. plant pathogenic fungus on leafy spurge. Biosc. Biotechnol.Bi-ocem. 1998, vol. 62, No 4, p. 638-642.

300. TeBeest D.O. Issues and prospects confronting biological control of weeds with plant pathogens in the future. Phytoparasitica, 1996, v. 24, No 2, p. 91-95.

301. TeBeest D.O., Tempieton G.E. Mycoherbicides in the biological control of weeds. Plant Dis. 1985, v. 69, No 1, p. 6-10.

302. TeBeest D.O., Yang X.B., Oisar C.R. The status of biological control of weeds with fungal pathogens. Ann. Rev. Phytopathol. 1992, v. 30, p. 637-657.

303. Tempi eton 6. E. Use of Colletotrichum strains as rnycoherbici-des. In: Bailey J.A., Jeger M.J. Colletotrichum.Biology, Pathology and Control.C.A.B International, 1992, p. 388.

304. Tempieton G.E., Te Beest D.O., Smith R.J. Biological weed control with mycogerbicides. Rev. Phytopath. 1979, v. 17, p. 301-310.

305. Tempieton G.E. Biological herbicides: discovery, development, deployment. Weed Sei, 1982, v. 30, No 4, p. 430-433.

306. Thronton A.B., Cisar C.R., TeBeest D.O. Mating of Colletotrichum gloeosporioides isolates with different hosts specifities on a parental host. Phytopathology, 1994, v. 84, No 10, p. 1150.

307. Tietjen K.G., Schal1er E., Matern U. Phytotoxins from Alternaria carthami Chowdhurry: structural identification and physiological significance. Physiol. Plant Pathol. 1983, v. 23, No 3, p. 387-400.

308. Trantrizos Y.S., Ogilvie K.K., Watson A.K. Phytotoxic metabolites of Phomopsis convoivulus< a host-specific pathogen of field bindweed. Can. J. Chem. 1992, v. 70, No 8, p. 2276-2284.

309. Truj illo E.E., Aragaki M., Shoemaker R.A. Infection disease delvelopment and axenic culture of Entyloma compositarum, the cause of hamakua pamakani blight in Hawaii, Plant Dis. 1988, v. 72, No 4, p. 355-357.

310. Turner S.K., Fay P.K., Sharp E.L., Sands D.C. Resistans of Canada thistle (Cirsium arvense) ecotypes to a rust, pathogen (Puccinia obtegens). Weed Sei. 1981, v. 29, No 6, p. 623-624.- 152

311. Turner S.K., Kwiatkowski A., Fay P.K., Sands D.C. Factors affecting germination of teliospores of Puccinia obtegens. Plant Dis. 1988, v. 70, No 5, p. 390-391.

312. Venkatasufbaiah P., Chilton W.S. Phytotoxins of Ascochyta hya-lophora causal agent of lambsquarters leaf spot. Natur Prod. 1992, v. 55, No 4, p. 461-467.

313. Volker K., Boyle C. Bean rust as a model system to evaluate efficiency of teliospore induction, especially in the potential myco-herbicide Puccinia punctiformis. Weed Res. 1994, v. 34, No 4, p. 280-281.

314. Vurro M., Evidente A., Andolfi A., Zonno M.C., Giordano F., Motta A. Brefeldin A and alfa, beta-dehydrocurvularin, two phytotoxins from Alternaria zinniae, a biocontrol agent of Xanthium occidentale. Plant Science, 1998, v. 138, No 1, p. 67-79.

315. Waddell H.T., Weber G.F. Physiology and pathology of Septoria species on Chrysanthemum. Mycologia, 1963, v. 55, p. 442-452.

316. Walker H.L. Factors affecting biological control of spurred anoda (Anoda cristata) with Alternaria macrospora. Weed Sci. 1981, v. 29, No 4, p. 505-507.

317. Walker L.N., Sciumbato G.L. Evaluation of Alternaria macrospora as a potential biocontrol agent for spurred anoda (Anoda cristata) .* host range studies. Weed Sci, 1979, v. 27, No 6, p. 612-624.

318. Wapshere A.I., Delfosse E.S., Cullen J.M. Recent developments in biological control of weeds. Crop protection, 1989, v. 8, No 4, p. 227-250.

319. Watson A.K. Current advances in bioherbicide research. Brighton crop protection conference. Weeds. 1989, p. 987-995.

320. Weidemann C.J., TeBeest D.0., Cartwright K.D. Host specificity of Colletotrichum gloeosporioides f.sp. aeschynomene and C.truncatum in the Leguminosae. Phytopathology, 1988, v. 78, No 7, No 986-, p. 990.

321. Weidemann G. J., Tempieton G.E. Control of Texas gourd Cucurbita texana with Fusarium solani f. sp. cucurbitae. Weed technol. 1988, V. 2, No 3, p. 271-274.

322. Wilson R.G. Germination and seedling of Canada thistle. Weed Sci, 1979, v. 2, No 27, p. 146-151.

323. Winder R.S., Dyke C.G. van. Field testing of two Bipolaris species as mycoherbicides for aohnsongrass (Sorghum halepense). Proc. VII Intern. Symp. Biol. Control Weeds, 1989, p. 565-570.- 153

324. Winder R.S., Dyke C.G. van. The pathogenicity, virulence, and biocontrol potential of two Bipolaris species on 3 ohnsongrass (Sorghum halepense). Weed Sci, '1990, v, 38, No 1, p. 89-94.

325. Winder R.S. The in vitro effect of allelopathy and various fungi on marsh red grass (Calamagrostidis canadiensis). Canadian J. Botany, 199?, v. 75, No 2, No 236-, p. 241.

326. Wymore L.A., Watson A.K. Interaction between a velvet leaf isolate of Colletotrichum coccodes and thiazuron for velvet leaf (Abutilon theophrasti) control in the field. Weed Sci. 1989, v. 37, No 3, p. 478-483.

327. Yang S.M., Johnson D.R., Dowler W.M. Pathogenicity of Alternaria angustiovoidea on leafy spurge. Plant Dis. 1990, v. 74, No 8, p. 601-604.

328. Yang X.B., TeBeest D.C. Competitiveness of mutant and wild-type isolates of Colletotrichum gloeosporioides f. sp, aeschynomene on northern jointvetch. Phytopathology, 1995, v. 85, No 6, p. 705-710.

329. Ymaguchi K.,, Masanobu Arita,, Masatoshi Gohbara,, Tatsuo Shinmi,, Keiko Fukui,, Emi Toshyama. Strains of Drechslera spp. for controlling grass. US Patent N 5332573, 1994.

330. Zhang W., Watson A.K, Host range of Exserichium monoceras, a potential bioherbicide for the control of Echinchloe species. Canadian J. Botany, 1997, v. 75, No 5, p. 685-692.

331. Zonno M.C., Vurro M. Effect of fungal toxins on germination of Striga hermontica seeds. Weed Research, 1999, v. 39, No 1, p. 15-20.

332. Строение репродуктивных и покоящихся структур

333. Ascochyta sppM наблюдаемое при помощи сканирующего электронного микроскопа (к п. 3.4.)1. Фото 21. Фото 4

334. Фото 1. Пикниды Ascochyta tussilaginis (шт. At-82) в чистой культуре; в полоске 120 мкм.

335. Фото 2. Микросклероций (пропикнида) Ascochyta tussilaginis; в полоске, 60 мкм.

336. Фото 3. Пикнида Ascochyta sonchi (шт. А-86) в чистой культуре; в полоске 150 мкм.

337. Фото 4. Формирующаяся пикнида Ascochyta uspenskajae (шт. Au-84) в полоске 75 мкм.

338. Особенности заражения листьев бодяка щетинистого грибом Эер^па с/ге//, наблюдаемые при помощи светового микроскопа (к п. 4.2.2.)1. Фото 7 Фото 8

339. Особенности заражения листьев бодяка щетинистогогрибом 8вр(опа а'гвИ, наблюдаемые при помощи электронного сканирующего микроскопа (к п. 4.2.2.)1. Фото 91. Фото 10

340. Фото 5. Проникновение ростковой трубки Зер1.ог1а с1гэП в устьице нижней поверхности листа бодяка щетинистого, х 1000.

341. Фото 6. Ростковая трубка "не узнает" устьице на верхней поверхности листа, х 1000.

342. Фото 7. Ростковая трубка растет по направлению от закупоренного аморфным веществом устьица к открытому устьицу, х 1300.

343. Фото 8. Анастомозирующие ростковые трубки Б.спгзП на верхней поверхности листа бодяка (стрелка), х 1000.

344. Проникновение ростковой трубки Бер^Па с1гбП в устьице нижней поверхности листа бодяка щетинистого; в полоске 10 мкм.

345. Фото 10. Ростковая трубка "не узнает" устьице на верхней поверхности листа; в полоске 10 мкм.1. Фото

346. Морфологические особенности прорастания конидий Septoria cirsii в зависимости от состава жидкой средык п. 4.2.4.)фото 12 фото 13

347. Формирование микросклероциев Ascochyta tussilaginis в зависимости от условий культивирования (к п. 5.1.1.)

348. Фото 14. Формирование микросклероциев Ascochyta tussilaginis на агаре Чапека в зависимости от температуры: 1 17, 2 - 20, 3 - 23, 4 - 25, 5 - 28°С.

349. Фото 15. Формирование микросклероциев Ascochyta tussilaginis в зависимотк от освещенности: 1 темнота, 2 ~ ы постоянное освещение люминисцентными лампами, 3 -облучение в течение суток эритермной лампой, 4-2 сут 5-3 сут.

350. Особенности заражения листьев осота полевогогрибом Азсос11у1а ^вПадт^в, наблюдаемые припомощи светового микроскопа (к п. 5.2.2.)1. Фото 161. Фото 171. Фото 191. Фото 18

351. Особенности заражения листьев осота полевого грибом АЛи^адит,наблюдаемые при помощи электронного сканирующего микроскопа (к п.5.2.2.)1. Фото 211. Фото 23

352. Фото 16. Проникновение ростковой трубки АзсосЬу1а ииззПа^гиБ в ткань листа осота через соединение эпидермальных клеток, х 1500.

353. Фото 17. Проникновение ростковой трубки А.1изз11а&1гиз в ткань листа осота через устьице, х 1500.

354. Фото 18. Поведение ростковых трубок А. и^эПа^Шз на поверхности старых листьев осота, х 250.

355. Фото 19. Аппрессорий на конце ростковой трубки А. 1иззПад1п1з, х 1500.

356. Фото 20. Прорастание конидий А. идаПавШБ.

357. Фото 21. Матрикс. на конце ростковой трубки А. ^ззПаё^гпз.

358. Фото 22. Появление ростковой трубки из продольной щели на конидии.

359. Фото 23. Проникновение ростковой трубки АзсосЬуЬа 1иззПад1тз в ткань листа осота через соединение эпидермальных клеток.

360. Фото 24. Растворение эпидермальной оболочки листьев.

361. Фото 25. Деградация ростковых трубок на поверхности старых листьев осота (стрелка).

362. На фото 20-25 в полоске 10 мкм.