Особенности экологии растений - паразитов на примере повилики японской: Cuscuta japonica Choisy тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.00.16, кандидат биологических наук Леусова, Наталья Юрьевна

• Леусова, Наталья Юрьевна
• кандидат биологических наук
• 2006

Оглавление диссертации кандидат биологических наук Леусова, Наталья Юрьевна

Cuscuta L.)»

1.1. Систематика

1.2. Эволюция паразитизма Cuscutaceae Dumort.

1.2.1. Ареал

1.2.2. Круг хозяев

1.3. Особенности биологии Cuscutaceae

1.3.1. Прорастания семян

1.3.2. Особенности роста и развития

1.3.3. Образование гаусторий

1.4. Физиология и биохимия Cuscutaceae

1.5. Особенности взаимодействия повилики с растениями-хозяевами

1.5.1. Влияние на углеводный обмен растения-хозяина

1.5.2. Влияние на обмен липидов растения-хозяина

1.6. Практическое значение Cuscutaceae

1.6.1. Вредоносность повилики

1.6.2. Применение повилики в медицине

1.6.3. Фармакологическое действие препаратов из повилик

1.6.4. Использование в биотехнологии

ГЛАВА 2. МАТЕРИАЛ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ

2.1. Материал исследования материал, реактивы, приборы и оборудование

2.2. Способы преодоления твердосемянности

2.3. Экстракция липидов, пигмептов и определение концентрации хлорофиллов

2.4. Кариологический и гистологический анализ проростков

2.5. Выделение и анализ ДНК

2.6. Приготовление пластинок для микро-ТСХ

2.7. Разделение липидов методом микро-ТСХ

2.8. Обнаружение липидов на хроматограммах

2.9. Количественное определение фосфолипидов

РЕЗУЛЬТАТЫ И ОБСУЖДЕНИЕ

ГЛАВА 3. КРУГ ХОЗЯЕВ ПОВИЛИКИ ЯПОНСКОЙ

ГЛАВА 4. ПОКОЙ И ПРОРАСТАНИЕ СЕМЯН ПОВИЛИКИ ЯПОНСКОЙ

4.1. Покой семян и способы его преодоления

4.2. Влияние выделений растений-хозяев 75 на прорастание семян повилики японской

4.3. Влияние степени зрелости семян на прорастание повилики японской

4.4. Микотрофные микроорганизмы и прорастание семян в естественных условиях

4.5. Долговременное хранение семян

ГЛАВА 5. ОСОБЕННОСТИ РАЗВИТИЯ И РОСТА ПРОРОСТКОВ

ПОВИЛИКИ ЯПОНСКОЙ

5.1. Цитологические особенности строения проростка повилики

5.2. Кариологическое исследование С. japonica

ГЛАВА 6. ФИЗИОЛОГИЧЕСКИЕ И БИОХИМИЧЕСКИЕ

ОСОБЕННОСТИ СЕМЯН И ПРОРОСТКОВ ПОВИЛИКИ

6.1. Содержание пигментов и фотосинтез проростков повилики японской

6.2. Липиды семян и проростков повилики японской

6.3. Повилика- модель для исследования ростовых процессов и апоптоза у растений

ВЫВОДЫ

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Особенности экологии растений - паразитов на примере повилики японской: Cuscuta japonica Choisy»

Более половины видов и гораздо больше, чем половина, общего числа всех организмов на Земле - паразиты и возбудители болезней (Христофорова, 1999). Для организмов, ведущих паразитический образ жизни, другой организм - хозяин, на котором или в котором они поселяются, служит специфической средой обитания. Любой организм в естественных условиях заражен теми или иными паразитами, ".паразиты - это такие организмы, которые используют другие живые организмы в качестве среды обитания и источника пищи, возлагая при этом (частично или полностью) на своих хозяев задачу регуляции своих взаимоотношений с окружающей внешней средой" (Догель, 1962, С. 8.). Для растений явление паразитизма имеет свои особенности, поскольку размеры паразита часто сравнимы с размерами хозяина и поселяется паразит на поверхности последнего, что приближает растения-паразиты скорее к хищникам. К паразитным покрытосеменным растениям относятся все растения, чье питание связано с использованием принципа фагобиоза (питание живыми организмами, чужеядность) и осуществляется путем облигатных индивидуальных контактов (Терехин, 1977). Явление паразитизма у цветковых растений вторично. Переход к паразитированию можно наблюдать на примере некоторых семейств растений. Так, среди растений семейства норичниковых {Scrophulariaceae Juss.) представлен весь спектр переходов от автотрофного к гетеротрофному питанию. Многие виды рода Striga Lour, являются абсолютными паразитами. Наряду с автотрофами (вероника, льнянка) в семействе широко представлены факультативные паразиты марьянник {Melampyrum L.), мытник {Pedicularis L.). Интересные варианты переходов от автотрофного к гетеротрофному питанию отмечены у рода Tozzia L., где на разных стадиях растение развивается то как полупаразит, то как абсолютный паразит.

Во флоре Дальнего Востока России растения- паразиты и полупаразиты представлены 83 видами, принадлежащими к 15 родам и 5 семействам (Крылов, Леусова, 2006). Наиболее многочисленно семейство норичниковых - 9 родов, 58 видов. В дальневосточном регионе паразитные растения отмечены в семействах Santalaceae R. Br., Viscaceae Miers., Cuscutaceae Dum., Orobanchaceae Vent., Scrophulariaceae Juss.

Повиликовые, состоящие всего из 1 рода Cuscuta L., насчитывают во Флоре РФ до 40 (в таблице для определения 36) видов (Бутков, 1953). Для Дальнего Востока сообщается о 7 видах повилик (Баркалов, 1991; Ворошилов, 1966; Воробьев и др., 1966; Воробьев, 1982). В Уссурийском районе еще В.А. Комаровым и Е.Н. Клобуковой-Алисовой (1932) описана повилика китайская С. chinensis Lam., которая была обнаружена на сухих склонах в районе г. Хабаровска. В более позднее время на культурных растениях не встречалась. Аборигенный вид повилика японская С. japonica Choisy отмечена в Нижне-Зейском, Буреинском, Амгунском, Уссурийском флористических районах. Другие виды повилик заносные.

В ходе приспособления к паразитическому образу жизни произошли изменения морфологического строения и метаболизма повилики: редукция листьев и корневой системы; редукция фотосинтетического аппарата, включая снижение в содержании хлорофилла или полное его отсутствие; появление видоизмененных выростов стебля - гаусторий, благодаря которым устанавливается контакт между сосудистыми элементами хозяина и паразита; усиление активности гидролитических ферментов, за счет которых паразит размягчает ткани растения-хозяина, значительное повышение плодовитости. Растение характеризуется высокой плодовитостью: когда повилика паразитирует на травах, число семян у нее выражается в четырехзначных, на древесных - пятизначных числах (Тарр, 1975; Бейлин, 1986).

Воздействие, которое оказывает повилика на растение-хозяина, определяет вред, причиняемый ею сельскохозяйственным и лесным культурам. Повилика относится к карантинным объектам. Кроме прямого повреждения растения и питания за его счет, паразит также способствует распространению вирусов, которые переходят с больного растения на здоровое через сосудистую систему паразита, атакующего одновременно оба растения (Тарр, 1975; Бейлин, 1986). Поедание растений, зараженных повиликой, может привести также к отравлению животных (Бейлин, 1986).

Однако практическое значение повилики не ограничивается негативным влиянием на культурные растения. Паразитизм, как явление природы, играет важнейшую роль в эволюции видов. Имея большую скорость размножения, чем хозяева, паразитические организмы эволюционно лабильны и обладают хотя бы по этой причине намного большей способностью адаптации к окружающей среде (Астафьев, Петров, 1992). Паразиты обогащают генофонд популяции свободноживущих и паразитических организмов, стимулируют его к дальнейшему развитию и совершенствованию. Кроме того, повилика издавна используется в восточной медицине и является объектом фармакологических исследований.

Утверждение, что биология паразитических растений исследована недостаточно (Цвелев, 1981; Stewart, Press, 1990) справедливо и для Дальнего Востока, и в частности для повилик. Многие сведения по биологии, физиологии этого паразитического растения все еще остаются фрагментарными. Более того, идентификация растений повилики по морфологическим признакам зачастую вызывает затруднения, что определяет необходимость поиска новых диагностических признаков для целей систематики.

Актуальность работы. Важность изучения паразитических растений диктуется в первую очередь поражением ими сельскохозяйственных и лесных культур. И. Г. Бейлин (1966) отмечал, что в отношении изученности болезней растений «беспризорными» оказались вызываемые паразитами из высших растений - омелой, заразихами, повиликами. Вред, причиняемый паразитическими цветковыми растениями в целом сравнительно невелик, но некоторые из них могут быть причиной довольно существенных потерь, это в первую очередь относится к стриге и повилике (Тарр, 1975). Повилика наносит существенный ущерб сельскому хозяйству в районах орошаемого земледелия, где обилие тепла и систематические поливы способствуют прорастанию семян в течение 7-8 месяцев в году (Бейлин, 1986). Одной из особенностей повилики как паразита является большое количество семян, которое исчисляется тысячами на одно растение. Семена могут накапливаться на полях в результате обсеменения и служат источником засорения посевов. Знание условий прорастания семян и особенностей биологии раннего развития проростков облегчит борьбу с этим сорняком.

По нашему мнению, значение повилики как патогена недооценено. В современных условиях антропогенного воздействия на биосферу идет постепенное усиление иммунодепрессивного состояния человека, животных, растений (Астафьев, Петров, 1992). Кроме того, интенсивное развитие генетики (например, появление трансгенных растений) способствует все большей гомогенности популяций. Существенно изменяющаяся среда обитания животных, растений, человека, способствует возникновению паразитарных, инфекционных заболеваний. В связи с этим, возрастает риск заражения новыми инфекциями и инвазиями, к которым нет необходимой адаптации.

Особенности биологии и физиологии повилики как облигатного паразита делают ее привлекательной моделью для изучения молекулярных механизмов ростовых процессов и запрограммированной гибели клеток (ЗГК) у растений, а также взаимодействия фитопатогенных организмов с хозяевами. Поскольку для исследования биологических процессов часто используется не все растение, а только отдельные его органы, повилика удобна тем, что ее проросток не дифференцирован на органы. Развитие проростка повилики имеет ряд особенностей. Так, на этапе до прикрепления к растению-хозяину повилика развивается за счет питательных веществ, отложенных в семени, и это самостоятельное питание может длиться до нескольких недель. В этот период рост осуществляется только за счет апикального полюса, тогда как базальный полюс (корешок) отмирает на ранних стадиях развития. Возможно, что отмирание базального полюса проростка повилики происходит по типу апоптоза - запрограммированной гибелью отдельных клеток и тканей (Ванюшин и др., 2002; Замятнина и др., 2002). Сведения об апоптозе у растений все еще очень фрагментарны (Замятнина и др., 2002). До сих пор еще не сложилось целостное представление о типичной апоптозной растительной клетке. Поэтому, на наш взгляд, повилика японская может быть удобной моделью для изучения процессов ЗГК у растений.

Морфологически виды рода Cuscuta достаточно сложно определяются. Одним из надежных методов является определение хромосомных чисел. Сведения о хромосомных числах повиликовых в Российской Федерации отсутствуют, по данным зарубежных авторов приводятся разные числа для рода Cuscuta L. (Pazy, 1997; Garcia, 2001), что требует уточнения.

Цель и задачи исследований. Целью наших исследований было изучение особенностей экологии паразитического растения Cuscuta japonica Choisy.

Для достижения цели были поставлены следующие задачи:

1.Оценить кариологические данные с целью выявления дополнительных диагностических признаков вида.

2. Изучить процессы прорастания семян повилики как явление адаптации и факторы, влияющие на прорастание.

3. Исследовать особенности ростовых процессов у проростков повилики.

4. Исследовать круг хозяев повилики японской.

Научная новизна. Изучены особенности развития повилики японской на стадии до прикрепления к растению-хозяину (ювенильный период). Впервые определен состав липидов семян и проростков повилики японской. Определена фотосинтетическая активность проростков повилики. Впервые установлены числа хромосом С. japonica (2п=4х=32). Показаны особенности взаимодействия повилик и растений семейства Роасеае. Предложена новая модель - проростки повилики японской на стадии до прикрепления к хозяину -для изучения ростовых процессов и апоптоза у растений

Практическая значимость. Данные по хромосомному числу С. japonica, полученные в ходе исследования, могут быть использованы для целей систематики. Сведения по прорастанию семян данного вида повилики позволяют рекомендовать для выведения семян повилики из состояния покоя в очагах распространения и засорения полей многократное мульчирование почвы для повреждения семенной оболочки. Предложенная методика, способствующая преодолению твердосемянности, позволяет получить количество проростков в массе, что способствует оптимизации их разностороннего исследования. Проросток повилики предлагается в качестве отличной от известных моделей изучения молекулярных механизмов ростовых процессов и апоптоза у растений.

Апробация работы. Результаты работы были представлены на региональной научной конференции студентов, аспирантов и молодых ученых (Благовещенск 2002, 2003, 2005); VIII, IX молодежной конференции ботаников (Санкт- Петербург, 2004, 2006); региональной научной конференции по актуальным вопросам химии и биологии (Владивосток, МЭС, 2003, 2004,2005) .

Публикации. По теме диссертации опубликовано 14 работ.

Структура и объем работы. Диссертация состоит из введения, 6 глав, выводов, списка литературы (194 источника, из которых 116 на иностранном

Заключение диссертации по теме «Экология», Леусова, Наталья Юрьевна

110 Выводы:

1. В результате исследований, проведенных в полевых условиях, установлен круг растений-хозяев повилики японской в Амурской области. Обнаружено образование гаусторий повилики японской на вейнике Роасеае (Calamagrostis angustifolia Кош.). Наши наблюдения противоречат данным мировой практики, когда культуру некоторых злаковых (риса, кукурузы) рекомендуют как компонент севооборота в борьбе с засорением посевов повиликой. Внедрения гаусторий в ткани растения Calamagrostis angustifolia не происходило.

2. Показано, что выделения растений-хозяев не влияют на прорастание семян повилики японской, вопреки общепринятым представлениям, которые не являются общими для всех паразитов.

3. Обнаружены изменения клеточных структур в различных зонах проростка; на основании строения клеток и тканей проросток повилики можно разделить на четкие зоны: меристематическая - зона деления, средняя - зона растяжения, и базальная - зона отмирания. Проросток повилики является привлекательной моделью для изучения молекулярных механизмов ростовых процессов и апоптоза у растений.

4. Показано наличие хлорофилла в клетках проростка повилики японской. Содержание хлорофилла в проростках повилики примерно в 3 раза ниже количества хлорофилла в проростках нормально фотосинтезирующих растений.

5. Определен качественный и количественный состав фосфолипидов семян и проростков повилики японской. Мы не обнаружили отличий качественного состава фосфолипидов семян повилики и других фотосинтезирующих растений, что еще раз подтверждает вторичность паразитизма повиликовых. Достоверное снижение содержания ФХ и ФГ может отражать гидролиз этих структурных фосфолипидов с накоплением ФК. Снижение уровня ФГ возможно связано с деградацией мембран хлоропластов проростков повилики японской.

6. Впервые определены хромосомные число для Cuscuta japonica: 2n = 32. Вид является тетраплоидным (х=8).

7. Семена повилики японской С. japonica Choisy находятся в глубоком органическом покое в состоянии твердосемянности, связанном с непроницаемостью семенных покровов. Процент прорастания при длительном выдерживании (в течение 2-х лет) семян при благоприятных условиях оставался на уровне 3-5%. Что говорит в пользу гетероспермии семян повилики японской. Семена повилики японской очень медленно утрачивают свою жизнеспособность, и даже семена, хранившееся длительное время (10 лет) дают достаточно высокий процент прорастания.

8. Предложены способы преодоления твердосемянности повилики японской. Поверхностная механическая скарификация, стратификация не показали значительного увеличения прорастания по сравнению с контролем. Высокий процент (99-100%) обеспечивает воздействие конц. H2SO4 и жесткая механическая скарификация.

Список литературы диссертационного исследования кандидат биологических наук Леусова, Наталья Юрьевна, 2006 год

1. Антипов Н.И. О некоторых физиологических особенностях петрова креста и повилики // Учен. зап. Владимирск., гос. пед. инст. 1968. вып. 1.С. 29-39.

2. Астафьев Б.А., Петров О.Е. Эволюционное-генетическая теория паразитизма // Успехи соврем, биол. 1992. Т. 112, № 2. С. 163-175.

3. Баркалов В.Ю. Сем. Повиликовые Cuscutaceae Dum. Сосудистые растения советского Дальнего Востока. - СПб.: Наука, 1991.- Т.7. С.-279-284.

4. Батыгина Т.Б. Генетическая геретогенность семян: эмбриологические аспекты.//Физиология растений. 1999. Т.46, №3. С.438-454.

5. Бейлин И.Г. Цветковые полупаразиты и паразиты.- М.: Наука, 1966. -118с.

6. Бейлин И.Г. Паразитизм и эпифитотиология.- М.: Наука, 1986.-351с.

7. Бендер К.И., Гоменюк Г.А., Фрейдман С.Л. Указатели по применению лекарственных растений в научной и народной медицине. Саратов: Изд-во Саратовского ун-та, 1988. - 112 с.

8. Биологически активные вещества растительного происхождения. В 3 т. / Головкин Б.Н., Руденская Р.Н., Трофимова И.А. и др. / Под. ред. В.Ф. Семихова. М.: Наука, 2001. - Т. 1, 2 - 764 с.

9. Биологически активные вещества растительного происхождения. В 3 т. / Там же. 2002. - Т. 3 - 216 с.

10. Бутков А.Я. Повиликовые Cuscutaceae Choisy. Флора СССР. М.-Л. Изд. АН СССР. 1953. Т. 19. С. 37-76.

11. Бухов Н.Г., Бондар В.В., Дроздова И.С. Действие низкоинтенсивного синего и красного света на содержание хлорофиллов а и b и световые кривые фотосинтеза у листьев ячменя // Физиология растений. 1998. Т. 45, № 3. С. 507-512.

12. Ванюшин Б.Ф., Сингх С.С., Сонвол Г. Изменение метилирования ДНК люцерны при поражении кускутой и тканевые различия в ДНК паразитического растения // Биохимия. 1979. Т.44, № 5. С. 864-867.

13. Ванюшин Б.Ф, Шорнинг Б.Ю., Середина А.В., Александрушкина Н.И. Влияние фитогормонов и 5-азацитидина на апоптоз у этиолированных проростков пшеницы // Физиология растений. 2002. Т. 49, №4. С. 558-564.

14. Воробьев Д.П., Ворошилов В.Н., Горовой П.Г., Шретер А.И. Определитель растений Приморья и Приамурья.- М.-Л.: Наука, 1966.-490 с.

15. Воробьев Д.П. Определитель сосудистых растений окрестностей Владивостока. Л.: Наука, 1982. - 252с.

16. П.Ворошилов В.Н. Флора советского Дальнего Востока. М. Наука. 1966.-478 с.

17. Ганешин С.С. Повилики европейской части СССР // Тр. по прикладной ботанике, генетике и селекции. 1927 1928. Т. 8, №. 1. С. 273-300.

18. Гриневич М.А. Информационный поиск перспективных лекарственных растений: (опыт изучения традиционной медицины стран Восточной Азии с помощью ЭВМ). Л.: Наука, 1990. - 141

19. Грязев Н.Д. О льняной повилике (Cuscuta epilinum Weihe) и мерах борьбы с нею // Тр. по прикладной ботанике, генетике и селекции. 1927 1928. Т.8, № 1. С. 259-272.

20. Гудвин Т., Мерсер Э. Введение в биохимию растений.- М.: Мир. 1986.-Т.1. С. -392.

21. Догель В.А. Общая паразитология. JL: Изд-во ЛГУ, 1962. - 464 с.

22. Еленев JI.K. Некоторые вопросы питания повилики // Физиология растений. 1956. Т. 3, № 5. С. 470-479.

23. Ефимов JT.JI. Карантинные сорняки. М.: Изд. сектора карантина Наркомзема СССР, 1939. - 44 с.

24. Жук А.В. Морфогенез и происхождение гаусторий у видов рода Cuscuta (Cuscutaceae) // Бот. журн. 1997. Т. 82, № 5. С. 1-15.

25. Заворуева Е.Н., Ушакова С.А., Волкова Э.К., Тихомиров А.А., Могильная О.А., Медведев С.Е. Тонкая структура хлоропластов листьев огурца и гороха, сформировавшихся на красном свету // Физиология растений. 2000. Т. 47, № 6. С. 843-851.

26. Замятнина В.А., Бакеева JI.E., Александрушкина Н.И., Ванюшин Б.Ф. Апоптоз у этиолированных проростков пшеницы. 1. Характерная ультраструктура апоптозной клетки // Физиология растений. 2002. Т. 49, № 6. С.828 838.

27. Замятнина В.А., Бакеева Л.Е., Александрушкина Н.И., Ванюшин Б.Ф. Апоптоз у этиолированных проростков пшеницы. 2. Влияние антиоксиданта (ВНТ) и перекисей // Физиология растений. 2003. Т. 50, № 2. С. 280-290.

28. Золотая книга восточной медицины. Секреты Авиценны / Сост. В.Л. Сабуров. М.: Вече, 2004. - 400 с.

29. Зотикова А.П., Зайцева Т.А. Влияние белого и красного света на содержание пигментов и функциональную активностьхлоропластов сосны // Физиология растений. 2000. Т. 47, № 6. С. 852-857.

30. Каменский К.В. Клеверные повилики // Тр. по прикл. ботанике, генетике и селекции. 1927 1928. Т.8, № .1. С. 217-257.

31. Комаров B.JL, Клобукова-Алисова Е.Н. Определитель растений Дальневосточного края. JL: Изд. АН СССР, 1932. Т. 1-2. 1174 с.

32. Крылов А.В. Леусова Н.Ю. Растения паразиты во Флоре Российского Дальнего Востока // Вестник ДВО. 2006. № 2. С.64-69.

33. Ладыгин В.Г. Биосинтез каротиноидов в хлоропластах водорослей и высших растений // Физиология растений. 2000. Т.47, № 6. С. 904-923.

34. Леусова Н.Ю., Некрасов Э.В. Использование видов рода повилика (Cuscuta L.) в медицине и биотехнологии // Бюл. физиол. патол. дыхания. 2004. Вып. 19. С. 87-93.

35. Лилиенштерн М. Ф. Физиологическое исследование над Cuscuta monogyna Vahl. // Журн. Р. Бот. Общ. 1928. Т. 13, №. 1. С. 13.

36. Лилиенштерн М. К физиологии иммунитета растений к повилике // Журн. Р. Бот. Общ. 1931. Т. 16, № 4. С. 279-287.

37. Махлаюк В.П. Лекарственные растения в народной медицине. -Саратов: Приволжское книжное изд-во, 1991. 544 с.

38. Меликян А.П., Ханджян Н.С. Анатомия стеблей некоторых видов Cuscuta L. в связи с их систематикой // АН Армянской ССР. Б иол. Журнал Армении. 1968. Т.21, № 7. С. 79-86.

39. Мельникова Р.Д. О жизнеспособности семян повилик в воде // Доклады Академии наук УзССР. 1956. №4. С. 41-44.

40. Мельникова Р.Д. Некоторые биологические особенности повилики китайской Cuscuta chinensis Lam. // Вопросы ботаники. 1958. Вып. 3. С. 31-32.

41. Мещеряков Н.Н. Некоторые наблюдения над повиликой (Cuscuta) // Бот. журн. 1954. №11. С. 1664-1665

42. Митрофанова Н.С. О значении зародыша в систематике Cuscuta L. // Бот. журн. 1961. Т.46, № 2. С. 259-262.

43. Москаленко Г.П. Карантинные сорные растения России. М. : Росгоскарантин, 2001. - 279с.

44. Нанушьян Е.Р., Мурашев В.В. Индукция многоядерных клеток в апикальных меристемах Allium ссера возмущением геомагнитного поля // Физиология растении. 2003. Т.50. № 4. С. 587-592.

45. Натальина О.Б. Некоторые биологические особенности повилики хмелевидной на малине//Бот. журн. 1961. №7. С. 1032-1038.

46. Натальина О.Б. О степени паразитизма повилик и классификации паразитизма цветовых паразитов // Науч. Докл. В.Ш. 1964. №3. С. 99- 102.

47. Некрасов Э.В. Фосфолипаза D растений. Распространение, возможная физиологическая роль: дис. . канд. биол. наук / Тихоокеан. ин-т биоорган. Химии ДВО РАН. Владивосток, 2000. -136с.

48. Физиология и биохимия покоя и прорастания семян / ред. М.Г. Николаева, Н.В. Обручева. М.: Колос, 1982.-495с.

49. Николаева М.Г., Разумова М.В., Гладкова В.Н. Справочник по проращиванию покоящихся семян. JL: Наука, 1985. - 348 с.

50. Николаева М.Г. Особенности прорастания семян в зависимости от филогенетического положения растений и эколого-географических условий обитания // Физиология растений. 1999. Т. 46, № 3. С. 432437.

51. Николаева М.Г. Эколого физиологические особенности покоя семян (итоги исследований за последнее столетие) // Бот. Журн. 2001. Т. 86, №12. С.1-14.

52. Олифиренко В.И. Некоторые наблюдения над повиликой // Бот. Журн. 1959. Т. 44, № 11. С.1664-1665.

53. Прищепо Н.Н. Особенности прорастания семян повилики полевой и их сохраняемость в почве. // Сб. Карантинные сорные растения и борьба с ними. М., 1983. С. 62-67.

54. Растительные ресурсы СССР: Цветковые растения, их химический состав, использование; Семейства Caprifoliaceae-Plantagiaceae / Под ред. П.Д. Соколова. Л.: Наука, 1990. - 328 с.

55. Рахимов М.М., Мадьяров Ш.Р., Джанбаев Н.Р., Юлдашев П.Х. Характеристика липолитических ферментов семян хлопчатника // Химия природных соединений. 1970. №6. С. 738-744.

56. Родионов B.C. Изменение состава глицеролипидов листьев в зависимости от факторов среды и вида растений: автореф. дис. . д-ра биол. наук. Киев, 1989.- 42с.

57. Самуилов В.Д. Проблемы энергетики в эволюции живого // Биохимия. 2005. Т. 70, № 2. С. 302-307.

58. Смирнов Ю.А. Ускоренный метод исследования соматических хромосом плодовых // Цитология. 1968. Т.10, № 12. С. 160.

59. Справочник по карантинным сорным растениям. Инструкции и методические материалы.- Новосибирск: ЦЭРИС, 1997.-104с.

60. Тарр С. Основы патологии растений. М.: Мир, 1975. - 587с.

61. Тарчевский И.А. Сигнальные системы клеток растений. М.: Наука, 2002. - 294с.

62. Тахтаджян A.JI. Система и филогения цветковых растений. М.-Л.: Наука, 1966.-611 с.

63. Тахтаджян А.Л. Семейство повиликовые (Cuscutaceae). Жизнь растений. М. Просвещение. 1981. Т. 5, № 2. С. 389.

64. Тахтаджян А.Л. Система могнолиофитов. Л.: Наука, 1987. - 439с.

65. Терехин. Э.С. Паразитные цветковые растения: эволюция онтогенеза и образа жизни. Л.: Наука, 1977. - 220 с.

66. Тихонова В.Л. Долговременное хранение семян. // Физиология растений 1999. Т.46, № 3. С. 467-476.

67. Усманов П.Д. Старение семян Arabidopsis thaliana и его преодоление // Физиология растений. 1999. Т.46. № 3. С. 492-494.

68. Хотимченко С.В. Липиды морских водорослей макрофитов и трав: структура, распределение, анализ. - Владивосток: Дальнаука, 2003. -234 с.

69. Христофорова Н.К. Основы экологии. Владивосток: Дальнаука, 1999.-516 с.

70. Цвел ев Н.Н. Определитель сосудистых растений северо-запада России. -СПб: СПХФА, 2000. 781с.

71. Черепанов С. К. Сосудистые растения СССР. JL: Наука, 1981. — 509 с.

72. Шапанова Л.Г. Некоторые особенности углеводного обмена повилики полевой, паразитирующей на сахарной свекле / Физиолога биохимические особенности сахарной свеклы в условиях Киргизии. Фрунзе. 1977. с.34 -41.

73. Шлык А.А. определение хлорофиллов и каротиноидов в экстрактах зеленых листьев // Биохимические методы в физиологии растений / под ред. Павлиновой О.А. М.: Наука, 1971. С. 154-171.

74. Якушкина Н.И., Бахтенко Е.Ю. физиология растений. М.: Гуманитар. Изд. центр ВЛАДОС, 2005.- 463с.

75. Agha A.M., Sattar Е.А., Galal A. Pharmacological study of Cuscuta campestris Yuncker// Phytother. Res. 1996. Vol. 10, № 2. P. 117-120.

76. Anis E., Anis I., Ahmed S. et al. a-Glucosidase inhibitory constituents from Cuscuta rejlexa II Chem. Pharm. Bull. 2002. Vol. 50, № 1. P. 112114.

77. Awasthi L.P. The purification and nature of an antiviral protein from Cuscuta rejlexa plants // Arch. Virol. 1981. Vol. 70, № 3. P. 215-223.

78. Bakos A., Borsics Т., Toldi O., Babos K., Lados M. Evidence for somatic embryogenesis during plant regeneration from seedling-derived callused dodder (Cuscuta trifolii Bab. et Gibs) // Plant Cell Reports. 2000. Vol. 19, №5. P. 525-528.

79. Bao X., Wang Z., Fang J., Li X. Structural features of an immunostimulating and antioxidant acidic polysaccharide from the seeds of Cuscuta chinensis II Planta Med. 2002. Vol. 68, № 3. P. 237 -243.

80. Bar Nun N., Mayer A.M. Culture of pectin methylesterase and polyphenoloxidase in Cuscuta campestris I I Phytochem. 1999. Vol. 50, № 5. P. 719-727.

81. Bar Nun N., Мог A., Mayer A.M. A cofactor requirement for polygalacturonase from Cuscuta campestris II Ibid. Vol. 52, № 7. P. 1217-1221.

82. Bhattachrya M.K. Growth requirements of Cuscuta reflexa // Biologia Plantarum. 1976. Vol. 18, № 6. P. 415-420.

83. Bennet C.W. Acquisition and transmission of viruses by dodder (Cuscuta subinclusa) // Phytopathology. 1940. Vol. 30, № 1. P. 2.

84. Benvenuti S., Dinelli G., Bonetti A., Catizone P. Germination ecology, emergence and host detection in Cuscuta campestris // Weed Research. 2005. Vol. 45,270-278.

85. Borsics Т., Lados M. cDNA cloning of a mechanical/abiotic stress-inducible calmodulin-related gene from dodder-infected alfalfa // Plant Cell Environ. 2001. Vol. 24, №6. P. 649-656.

86. Borsics Т., Lados M. Dodder infection induces the expression of a pathogenesis-related gene of the family PR-10 in alfalfa // J. Exp. Bot. 2002. Vol. 53, №375. P. 1831-1832.

87. Bungard R.A., Ruban A.V., Hibberd J.M., Press M.C., Horton P., Scholes J.D. Unusial carotenoid composition and a new type of xanthophylls cycle in plants // Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 1999. Vol.96, №3. P. 1135-1139.

88. Bungard R.A. Photosynthetic evolution in parasitic plants: insight from the chloroplast genome // Bio Essays. 2004. Vol. 26, P.325-347.

89. Chang M. and Lynn D.G. Haustoria and the chemistry, of host recognition in parasitic angiosperms // J. Chem. Ecol. 1986. Vol. 12, P. 561-579.

90. Charles D.J., Singh M. Sanwal G.G. Biochemical changes during germination and seedling growth in Cuscuta campestris // Physiol. Plant. 1982. Vol. 56, №2. P. 211-216.

91. Choudhury N.K., Sahu D. Photosynthesis in Cuscuta reflexa: A total plant parasite // Photosynthetica. 1999. Vol. 36, № 1-2. P. 1-9.

92. Dawson J.H., Musselman L.J., Wolswinkel P. and Dorr I. Biology and Control of Cuscuta //Rev. Weed Sci. 1994. Vol. 6, P. 265-317.

93. Deeks S.J., Shamoun S.F., Punja Z.K. Tissue culture of parasitic flowering plants: methods and applications in agriculture and forestry // In Vitro Cell. Dev. Biol.-Plant. 1999. Vol. 35, № 5. P. 369-381.

94. Doom W.G., Woltering E.J. Many ways to exit? Cell death caregories in plants // Trends in Plant Science. 2005. Vol. 10, № 3. P. 117-122.

95. Dowhan W. Molecular basis for membrane phospholipids diversity: Why are so many lipids ? // Annu. Rev. Biochem. 1997. № 66. P. 199232.

96. Fosbery R. Dodder and hops // J. Biol. Educ. 1990. Vol. 24, № 4. P. 223.

97. Furuhashi K., Kanno M., Morita T. Photocontrol of parasitism in parasitic flowering plant, Cuscuta japonica Choisy, cultured in vitro // Plant Cell Physiol. 1995. Vol. 36, № 3. P. 533-536.

98. Furuhashi K., Tada Y., Okamoto K. et al. Phytochrome participation in induction of haustoria in Cuscuta japonica, a holoparasitic flowering plant // Plant Cell Physiol. 1997. Vol. 38, № 8. P. 935-940.

99. Gaertner E. E. Studies of seed germination, seed identification, and host relationships in Dodders, Cuscuta spp. // Mem. Cornell Agr. Exp. Sta. 1950. Vol. 294, № 1. P. 1-56.

100. Gaertner E. E. Dormancy in the seed of Cuscuta europea II Ecology 1956. Vol. 37, №3. p. 389.

101. Garsia M. A new western Mediterranean species of Cuscuta (Convolvulaceae) confirms the presence of holocentric chromosomes in subgenus Cuscuta И Bot. J. Linnean Soc. 2001. Vol. 135, № 2. P. 169178.

102. Gepstein S., Daube N. The photosynthetic components of parasitic plant, Cuscuta // Plant Physiol. 1993. Vol.102, № 1. P. 138.

103. Guo C., Zhang Z., Zheng H. et al. Studies of the herbal and botanical origins of seman Cuscutae II Zhongguo Zhong Yao Za Zhi = China J. Chin. Mater. Med. 1990. Vol. 15, № 3. P. 138-140. Кит. яз., рез. Англ.

104. Anti-steroidogenic activity of methanolic extract of Cuscuta reflexa Roxb. stem and Corchorus olitorius Linn, seed in mouse ovary / Gupta M., Mazumder U.K., Pal D.K., Bhattacharya S. // Indian J. Exp. Biol. 2003. Vol. 41, №6. P. 641-644.

105. Gupta M., Mazumder U.K., Pal D. et al. Studies on brain biogenic amines in methanolic extract of Cuscuta reflexa Roxb. and Corchorus olitorius Linn, seed treated mice // Acta Pol. Pharm. 2003. Vol. 60, № 3. P. 207-210.

106. Haidar M.A., Iskandarani N., Sidahmed M., Baakbaki R. Response of field dodder (Cuscuta campestris) seeds to soil solarization and chicken manure // Crop Protection. 1999. Vol.18, P.253-258.

107. Haidar M.A., Orr G.L., Westra P. The response of dodder {Cuscuta spp.) seedlings to phytohormones under various light regimes // Ann. Appl. Biol. 1998 Vol. 132, № 2. P. 331-338.

108. Haupt S., Oparka K.J., Sauer N., Neumann S. Macromolecular trafficking between Nicotiana tabacum and the holoparasite Cuscuta reflexa II J. Exp. Bot. 2001. Vol. 52, № 354. P. 173-177.

109. Hibberd J.M., Bungard R.A., Press M.C., Jeschke W.D., Scholes J.D., Quick W.P. Localization of photosynthetic metabolism in the parasitic angiosperm Cuscuta reflexa II Planta. 1998. Vol.205, № 5. P.506-513.

110. Hsieh T.C., Lu X., Guo J. et al. Effects of herbal preparation Equiguard on hormone-responsive and hormone-refractory prostate carcinoma cells: mechanistic studies // Int. J. Oncol. 2002. Vol. 20, № 4. P. 681-689.

111. Hutchison J. M., Ashton F. M. Effect of desiccation and scarification on the permeability and structure of seed coat of Cuscuta campestris II Amer. J. Bot. 1979. Vol. 66, №1. P. 40-46.

112. Effect of Cuscuta chinensis glycoside on the neuronal differentiation of rat pheochromocytoma PC 12 cells / Jian-Hui L., Bo J., Yong-Ming В., Li-Jia A. // Int. J. Dev. Neurosci. 2003. Vol. 21, № 5. P. 277-281.

113. Johry B.M. and Tiagi B. Floral morphology and seed formation in Cuscuta reflexa Roxb // Phytomorphology. 1957. Vol.2, № 2. P. 162180.

114. Julie S., Daniel M. Chemical changes induced by Cuscuta reflexa on Streblus asper Lour // Natl. Acad. Sci. Lett.-India. 1996. Vol.19, № 9-10. P. 185-187.

115. Kala C.P., Farooquee N.A., Dhar U. Prioritization of medicinal plants on the basis of available knowledge, existing practices and use value status in Uttaranchal, India // Biodiver. Conserv. 2004. Vol. 13, № 2. P. 453-469.

116. Kates M. Techniques of lipidology: isolation, analysis and identification of lipids. Amsterdam, New York: Oxford, Elsevier, 1986.-465 p.

117. Kelly C.K., Harris D., Perez-Ishiwara R. Is breaking up hard to do? Breakage, growth, and survival in the parasitic clonal plant Cuscutacorymbosa (Convolvulaceae) // Amer. J. of Bot. 2001. Vol. 88, № 8. P.1458-1468.

118. Khalid A.N. Iqbal S.H. Mycotrophy in a vascular stem parasite Cuscuta reflexa II Mycorrhiza. 1996. Vol. 6, № 1. P. 69-71.

119. Kooij T.A.W., Krause K., Dorr I., Krupinska К Molecular, functional and ultrastructural characterization of plastids from six species of the parasitic flowering plant genus Cuscuta // Planta. 2000. Vol. 210, № 6. P. 701-707.

120. Lados M. Effect of temperature, pH and host plant extract on thegermination of Cuscuta trifolii and C. campestris seeds // Novenytermeles. 1999. Vol. 48, № 4. P. 367-376.

121. Lane H.C. and Kasperbauer M.J. Photomorphogenic responses of dodder seedlings // Plant Physiol. 1965. Vol. 40, № 1. P. 109-116.

122. Lee K.B., Lee C.D. The structure and development of the haustorium in Cuscuta australis // Can. J. Bot. 1989. Vol. 67, № 10. P. 2975-2982.

123. Loffler C., Czygan F.C., Proksch P. Phenolic constituents as taxonomicmarkers in the genus Cuscuta (Cuscutaceae) // Biochem. Syst. Ecol.1997. Vol. 25, №4. p. 297-303.

124. Loffler С., Czygan F.C., Proksch P. Role of indole-3-acetic acid in the interaction of the phanerogamic parasite Cuscuta and host plants // Plant Biol. 1999. Vol. 1,№ 6. P. 613-617.

125. Lyshede O.B. Morphological and anatomical features of Cuscuta pedicellata and C. campestris II Nord. J. Bot. 1985. Vol. 5, № 1. P. 6577.

126. Lyshede O.B. Studies on mature seeds of Cuscuta pedicellata and C. campestris by electron microscopy // Ann. Bot. 1992. Vol. 69, № 4. P. 365-371.

127. Machado M.A. Zetsche K. A structural, functional and molecular analysis of plastids of holoparasites Cuscuta rejlexa and Cuscuta europaea I/1990. Vol. 181, № 1. P. 91-96.

128. Mackinney G. On the plastid pigments of marsh dodder // The J. of Biol, chemistry. 1936. Vol. 112, № 1. P. 421-424.

129. Mahmood N., Piacente S., Burke A. et al. Constituents of Cuscuta rejlexa are anti-HIV agents // Antivir. Chem. Chemother. 1997. Vol. 8, №1. P. 70-74.

130. Marambe В., Wijesundara D.S.A., Tennakoon K.U., Pindenia D., Jayasinghe C. Growth and development of Cuscuta chinensis Lam. and its impact on selected crops // Weed Biology and Management. 2002. Vol.2, №l.P.79-83.

131. HO.Mehra B.K., Hiradhar P.K. Cuscuta hyalina Roth., an insect development inhibitor against common house mosquito Culex quinquefasciatus Say. // J. Environ. Biol. 2002. Vol. 23, № 3. P. 335339.

132. Hl.Mishra S., Sanwal G.G. Alterations in lipids composition of seed oil from Brassica juncea upon infection by Cuscuta reflexa // J. Agric. Food Chem. 1992. Vol. 40, №.1. P.52-55.

133. Munnik Т., Irvine R.F., Musgrave A. Phospholipids signaling in plants // Biochim. Biophys. Acta. 1998. Vol. 1389, № 3. P. 222-272.

134. Nakahara K., Trakoontivakorn G., Alzoreky N.S. et al. Antimutagenicity of some edible Thai plants, and a bioactive carbazole alkaloid, mahanine, isolated from Micromelum minutum И J. Agric. Food Chem. 2002. Vol. 50, № 17. P. 4796-4802.

135. Neyland R. A phylogeny inferred from large ribosomal subunit (26S) rDNA sequences suggests that Cuscuta is a derived member of Convolvulaceae I/BRITTONIA. 2001. Vol. 53, № 1. P. 108-115

136. Nisa M., Akbar S., Tariq M., Hussain Z. Effect of Cuscuta chinensis water extract on 7,12-dimethylbenza.anthracene-induced skin papillomas and carcinomas in mice // J. Ethnopharmacol. 1986. Vol. 18, № 1. P. 21-31.

137. Pal D.K., Gupta M., Majumdar U.K., Bhattacharya S. Evaluation of antifertility activities of methanol extract of Cuscuta reflexa Roxb. stem and Corchorus olitorius L. seed in male mice // Drug Metabol. Rev. 2003. Vol.35, SU.2.-P.419.

138. Pal D., Panda C., Sinhababu S. et al. Evaluation of psychopharmacological effects of petroleum ether extract of Cuscuta reflexa Roxb. stem in mice // Acta Pol. Pharm. 2003. Vol. 60, № 6. P. 481-486.

139. Papan K., Wang X. Molecular and biochemical properties and physiological role of plant phospholipase D // Biochim. Biophys. Acta. 1999. Vol. 1439, №2. P. 151-166.

140. Pazy B. Supernumerary chromosomes and their behaviour in meiosis of the holocentric Cuscuta babylonica Choisy // Bot. J. Linnean Soc. 1997. Vol. 123, №2. P. 173-176.

141. Pazy В., Plitmann, U. New perspectives on the mechanisms of chromosome evolution in parasitic flowering plants // Bot. J. Linnean Soc. 2002. Vol. 138, № 1. P. 117-122.

142. Poliyath G., Maheshwari R, Mahadevan S. Initiation of haustoria in Cuscuta by citokinin application // Curr. Sci. 1978. Vol. 47, P. 427-429.

143. Perez Amador M.C., Arreola L., Marquez Guzman J.M. Taxanomic markers of the family Convolvulaceae in four species of Cuscuta // Phyton-Int. J. Exp. Bot. 1996. Vol. 58, № 1-2. P. 115-118.

144. Effects of flavonoids from Semen Cuscutae on the reproductive system in male rats / Qin D.N., She B.R., She Y.C., Wang J.H. // Asian J. Androl. 2000. Vol. 2, №1. P. 99-102.

145. Ramsubramanian T.S., Paliyath G., Rajagopal I., Maheshwari R. and Mahadevan S. // Hormones and Cuscuta development: in vitro induction of haustoria by cytokinin and its inhibition by other hormones // J. Plant Growth Regl. 2005. Vol. 7, P. 133-144.

146. Robinson R.D., Williams L.A., Lindo J.F. et al. Inactivation of Strongyloides stercoralis filariform larvae in vitro by six Jamaican plant extracts and three commercial anthelmintics // West Indian Med. J. 1990. Vol. 39, №4. P. 213-217.

147. Ryerson D., Heath M.C. Cleavage of nuclear DNA into oligonucleosomal fragments during cell death induced by fungal infection or by abiotic treatments // The Plant Cell. 1996. Vol. 8, № 3. P. 393-402.

148. Sanders I.R., Koide R.T., Shumway D.L., Mycorrhizal stimulation of plant parasitism // Can. J. Bot.-Rev. Can. Bot. 1993. Vol. 71, № 9. P. 1143-1146.

149. Sasa S., Lori K. Monophyly of the Convolvulaceae and circumscription of their major lineages based on DNA sequences of multiple chloroplast loci // Amer. J. Bot. 2002. Vol. 89, № 9. P. 1510.

150. Setty P.R., Krishnan R.L., Parasitism by Orobanche and Cuscuta // Plant Physiol. 1970. Vol. 60, № 3. P. 332-333.

151. Setty Mattoo P.R., Mattoo R.L. Studies on sequential parasitism by Orobanche and Cuscuta on Petunia hybrida // Plant Physiol. 1977. Vol. 59, №1. P. 30-32.

152. Srivastava S., Nighojkar A., Kumar A. Purification and characterization of starch phosphorylase from Cuscuta reflexa filaments // Phytochemistry. 1995. Vol. 39, № 5. P. 1001-1005.

153. Srivastava S., Nighojkar A., Kumar A. Demethoxylation of pectin using immobilized Cuscuta reflexa pectin methylesterase // Genet. Eng. Biotechnol. 1996. Vol. 16, № 2. P. 73-80.

154. Srivastava S., Nighojkar A., Kumar A. Immobilization of Cuscuta reflexa starch phosphorulase: Production of glucose-1-phosphate using bioreactors // J. Ferment. Bioeng. 1996. Vol. 81, № 4. P. 354-356.

155. Srivastava U.S., Jaiswal A.K., Mamta. An insect growth regulatory factor in Cuscuta-reflexa Roxby // Natl. Acad. Sci. Lett.-India. 1990. Vol. 13, №9. P. 361-363.

156. Stanilova S.A., Zhelev Z.D., Dobreva Z.G. Preliminary studies on the immunodulatory effect of the C3 binding glycoprotein from Cuscuta europea II Int. J. Immunopharmacol. 2000. Vol. 22, № 1. P. 15-24.

157. Stanilova S., Dobreva Z., Zhelev Z. Changes in serum levels of cytokines in mice injected with an immunostimulator C3bgp isolated from Cuscuta europea II Int. Immunopharmacol. 2001. Vol. 1, № 8. P. 1597-1604.

158. Stewart G.R., Press M.C. The physiology and biochemistry of parasitic angiosperms // Annu. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol. 1990. Vol. 41, P. 127-151.

159. The metabolism, structure and function of plant lipids / Eds P.K. Stumpf, J.B. Mudd, W.D. Ness. New York: Plenum, 1987.- 650p.

160. Svetashev V.I., Vaskovsky V.E. A simplified technique for thin-layer microchromatography of lipids // J. Chromatogr. 1972. Vol. 67, № 2. P. 376-378.

161. Tada Y., Sugai M., Furuhashi K. Haustoria of Cuscuta japonica, a holoparasitic flowering plant, are induced by the cooperative effects of far-red light and tactile stimuli // Plant Cell Physiol. 1996. Vol. 37, № 8. P. 1049-1053.

162. Thompson J.E., Froese C.D., Madey E., Smith M.D., Hong Y. Lipid metabolism during plant senescence // Prog. Lipid Res. 1998. Vol. 37, № 2/3. P.l 19-141.

163. Varrelman F.A. Cuscuta not a complete parasite // Science 1937. Vol.85, №1. P. 101.

164. Vaskovsky V.E., Latyshev N.A. Modified Jungnickel's reagent for detecting phospholipids and other phosphorus compounds on thin -layer chromatograms // J. Chromatogr. 1975. Vol. 115, №1. P. 246-249.

165. Vaskovsky V.E., Kostetsky E.Y., Vasendin I.M. A universal reagent for phospholipid analysis // J. Chromatogr. 1975. Vol. 114, № 1. P. 129-141.

166. Vaskovsky V.E., Terekhova Т.A. HPTLC of phospholipid mixtures containing phosphatidylglycerol // J. High Resol. Chromatogr. 1979. Vol. 2, № 11. P. 671-672.

167. Vaughn K.C. Attachment of the parasitic weed dodder to the host // Protoplasma. 2002. Vol. 219, № 3-4. P. 237-237.

168. Wang Z, Fang JN, Ge DL, Li XY. Chemical characterization and immunological activities of an acidic polysaccharide isolated from the seeds of Cuscuta chinensis Lam // Acta Pharmacol. Sin. 2000. Vol. 21, № 12. P.l 136-1140.

169. Wang Z, Fang JN. An antioxidant acidic polysaccharide from Cuscuta chinensis II Acta Bot. Sin. 2001. Vol.43, P.243-248.

170. Ye М., Li Y., Yan Y. et al. Determination of flavonoids in Semen Cuscutae by RP-HPLC // J. Pharm. Biomed. Anal. 2002. - Vol. 28, № 3-4.-P. 621-628.

171. Zaroug M.S. and Ito K. Host range and susceptibility of some cultivated plants to dodder {Cuscuta japonica Choisy) in Hokkaido // Weed Res. Japan. 1988. Vol. 33, P. 129-135.

172. Zaroug M.S. and Ito K. Notes on the germination of Japanese dodder {Cuscuta japonica Choisy) // Journ.Jap.Bot. 1987. Vol.62, № 4. P. 140143.

173. Studies on chemical constituents of Cuscuta chinensis / Ye M., Yan Y.N., Qiao L., Ni X.M. // Zhongguo Zhong Studies on chemical constituents of Cuscuta chinensis / Ye M., Yan Y.N., Qiao L., Ni X.M.

174. Zhongguo Zhong Yao Za Zhi = China J. Chin. Mater. Med. 2002. Vol. 27, № 2. P. 115-117. Кит. яз., рез. англ.

175. Zhelev Z.D., Stanilova S.A., Carpenter B.G. Isolation, partial characterization and complement inhibiting activity of glycoprotein from Cuscuta-europaea II Biochem. Biophys. Res. Commun. 1994. Vol. 202, № l.P. 186-194.

176. Zimmermann C.E. Autotrophic development of dodder (Cuscuta pentagona Engl.) in vitro // Crop Sci. 1962. Vol. 2, P. 449- 450.

177. Zitterfield N.A., Pattce, Allred K.R. Movement of sugars in the alfalfa-dodder association // Weeds. 1996. Vol.14, № 1. P. 52-54.