Разработка консервирующего раствора на основе модифицированного деионизированного желатина для пролонгированного хранения отмытых эритроцитов тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 14.00.29, кандидат медицинских наук Кирьянова, Галина Юрьевна

• Кирьянова, Галина Юрьевна
• кандидат медицинских наук
• 2005

Оглавление диссертации кандидат медицинских наук Кирьянова, Галина Юрьевна

Введение

Глава 1. Современное состояние проблемы заготовки и консервирования эритроцитных сред (обзор литературы)

1.1. Клиническое значение присутствия примесей аллогенных лейкоцитов, тромбоцитов и белков плазмы в эритроцитных средах

1.1. Методы получения эритроцитных сред, обедненных лейкоцитами, тромбоцитами и плазменными белками

1.2. Изменения физических и биохимических параметров эритроцитов в процессе консервирования, методы их исследования

1.3. Консервирующие растворы и механизм действия их основных компонентов

Глава 2. Объекты, материалы и методы исследований

2.1. Объекты, материалы и объем исследований

2.2. Методы исследований

2.2.1. Методы оценки консервирующих свойств эритроконсервантов и эффективности удаления лейкоцитов и плазмы

2.2.2. Методы оценки реологических свойств взвесей эритроцитов и консервированной крови

2.2.3. Методики, использованные для изучения безвредности эритроконсерванта для отмытых эритроцитов

2.3. Статистическая обработка результатов исследований

Глава 3. Разработка ресуспендирующего и консервирующего раствора для отмытых эритроцитов

3.1. Изучение возможности использования препарата Модежель для хранения отмытых эритроцитов при 4°С

3.2. Исследование возможности хранения отмытых эритроцитов в консерванте Модежель-АФ при 4°С

3.3. Выбор рецептуры консерванта для отмытых эритроцитов

Глава 4. Изучение свойств препарата Модежель-глюфосфат как средства для консервирования отмытых эритроцитов

4.1. Исследование морфофункциональных и физико-химических особенностей взвеси отмытых эритроцитов в консерванте Модежель-глюфосфат

4.2. Изучение сохранности морфофункциональных свойств взвеси отмытых эритроцитов в растворе Модежель-глюфосфат в процессе хранения при 4°С

4.3. Изучение реологических свойств взвеси отмытых эритроцитов в консерванте Модежель-глюфосфат

Глава 5. Доклиническое изучение препарата Модежель-глюфосфат

5.1. Общетоксическое действие эритроконсерванта Модежель-глюфосфат

5.1.1. Острая токсичность

5.1.2. Хроническая токсичность

5.1.3. Местнораздражающее действие

5.2. Изучение специфической активности препарата Модежель-глюфосфат

5.2.1. Аллергизирующее действие

5.2.2. Тератогенность и канцерогенность эритроконсерванта Модежель-глюфосфат

Глава 6. Разработка метода заготовки и изучение морфофункциональных свойств взвеси профильтрованных и отмытых эритроцитов в консерванте Модежель-глюфосфат в процессе хранения при 4°С

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Разработка консервирующего раствора на основе модифицированного деионизированного желатина для пролонгированного хранения отмытых эритроцитов»

Актуальность проблемы

Отмывание эритроцитов в настоящее время является наиболее доступным и эффективным методом удаления из эритроцитных трансфузионных сред плазмы, а также способом обеднения их лейкоцитами и тромбоцитами - теми компонентами крови, которые могут стать причиной возникновения постгрансфузионных реакций и осложнений.

Переливаемая в составе эритрокомпонентов плазма может явиться причиной гемолитических осложнений у больных с комплементзависимыми анемиями (пароксизмальная ночная гемоглобинурия), аллергических и анафилактических реакций, острого поражения легких, синдрома аллогенной крови, стать источником гемотрансмиссивных инфекций (И.А. Лисуков и соавт., 1999; C.B. Toth et al., 1998).

Наличие лейкоцитов и продуктов их деградации в компонентах крови может привести к развитию неспецифических и иммунологических негемолитических температурных реакций, а также таких осложнений, как рефрактерность к алло-генным тромбоцитам, острая легочная недостаточность, болезнь «трансплантат против хозяина» (Е.Б. Жибурт, 2000; Н.В. Минеева, 2001; Е.М. Wood et al., 2000; А.Е. Biedler et al., 2002). Перелитые лейкоциты в дозе более 1х106 могут вызвать аллоиммунизацию реципиента, иммуномодуляцию (иммуносупрессию) и, вследствие этого, привести к активации дремлющей вирусной и бактериальной инфекции, генерализации опухолевого процесса (И.К. Никитин, Г.И. Козинец, 2002; Hong Chang et al., 2000; J. D. Smith, S.F. Leitman, 2000).

Важно отметить, что лейкоциты могут служить непосредственными переносчиками ассоциированных с ними вирусов и бактерий (В.Н. Мельникова и соавт., 2002; И.К. Никитин и соавт., 2001; J.D. Roback, C.D. Hiller, 1999).

В современной трансфузионной терапии применение отмытых эритроцитов занимает весьма значительное место (К.М. Абдулкадыров, С.И. Моисеев, 2001). Это объясняется тем, что взвесь отмытых эритроцитов практически не содержит чужеродного реципиенту плазменного белка и значительно обеднена лейкоцитами и тромбоцитами. В связи с этим отмытые эритроциты представляют собой среду со сниженной (по сравнению с ЭМ и ЭК) иммуногенностью и реактогенностью, практически не содержащую микросгустков. В детской практике, у трансфузионнозависимых пациентов (гематологических, онкологических больных) и даже в общей хирургии применение отмытых эритроцитов в значительной степени вытесняет использование других эритроцитных сред. Так, по мнению С.Е. Ь^тап (1999), использование взвеси отмытых эритроцитов в комбинации с кровезаменителями может полностью обеспечить возмещение операционной кровопотери.

Для снижения уровня белых клеток в дозе отмытых эритроцитов ниже иммуногенного представляется необходимой их предварительная фильтрация с использованием специальных лейкофильтров. Полученную среду можно применять не только у пациентов, которым противопоказано введение плазменных белков, но и у больных с наличием анти-НЬА, а также специфичных антигранулоцитарных и антитромбоцитарных антител; ее переливание исключает аллоиммунизацию и перенос цитомегаловирусной инфекции (С.Р. Еп^еШе!:, 2001).

Потребности в этих трансфузионных средах значительно выше реально используемых в настоящее время объемов. Одна из важных причин подобного положения связана с невозможностью хранения отмытых эритроцитов, что не позволяет проводить их предварительную заготовку. Основным препятствием этому не является опасность бактериальной контаминации отмытых эритроцитов при их заготовке, как считалось до последнего времени. Этот рубеж сейчас можно считать преодоленным благодаря применению системы из трех-четырех спаренных контейнеров для отмывания красных клеток и специальных устройств для стерильного подсоединения к контейнерам с исходным эритроконцентратом (эритромассой) и растворами для отмывания и консервирования. Включение в эту систему лейкоцитарного фильтра позволит стерильно получить среду, максимально лишенную не только плазмы и тромбоцитов, но и лейкоцитов.

Главной проблемой хранения является быстро наступающий гемолиз и потеря функциональной полноценности эритроцитов при 4°С в изотоническом растворе натрия хлорида, который используется (в нашей стране и за рубежом) в качестве отмывающего и ресусиендирующего раствора. Срок хранения отмытых эритроцитов в физиологическом растворе, согласно действующей инструкции, ограничен 24 часами.

Отсутствие эффективного консервирующего раствора, позволяющего длительно хранить отмытые, а тем более профильтрованные и отмытые клетки без потери их жизнеспособности, препятствует широкому использованию этих сред. В единичных сообщениях на уровне лабораторных исследований за рубежом предлагались эритроконсерванты на солевой основе, содержащие аденин, которые не получили применения в практике. По результатам наших предшествующих исследований, основой такого препарата может стать раствор модифицированного деионизированного желатина.

Согласно вышеизложенному, создание специального консерванта для пролонгированного хранения отмытых нативных эритроцитов при 4°С является важной научной проблемой, разрешение которой будет способствовать повышению эффективности, а также иммунологической и инфекционной безопасности гемотрансфузионной терапии многих патологических состояний.

Решение этого вопроса делает реальной и разработку метода получения и хранения отмытых профильтрованных эритроцитов.

Цель и задачи исследования

Целью настоящей работы явилась разработка эффективного ресуспен-дирующего и консервирующего раствора на основе модифицированного деионизированного желатина (Модежеля) для получения и продленного хранения при 4°С взвеси отмытых эритроцитов, в том числе подвергнутых лейкофильтрации.

В процессе исследования решались следующие задачи:

1. Разработка рецептуры консерванта на основе препарата Мо деже ль.

2. Изучение физико-химических свойств предложенного консерванта Модежель-глюфосфат.

3. Исследование морфофункциональных свойств отмытых эритроцитов, взвешенных в новом консерванте, в процессе их хранения при 4°С.

4. Изучение реологических свойств взвеси эритроцитов в препарате Модежель-глюфосфат in vitro в процессе хранения.

5. Экспериментальное изучение безвредности нового консерванта для отмытых эритроцитов на лабораторных животных (определение острой и хронической токсичности, местнораздражающего и аллергизирующего действия препарата).

6. Разработка метода получения максимально обедненной примесями лейкоцитов (путем лейкофильтрации) и плазмы эритроцитной среды. Определение возможности и допустимых сроков ее хранения в консерванте Модежель-глюфосфат.

Научная новизна исследования

Впервые разработан консервант для отмытых эритроцитов на коллоидной основе, обеспечивающий сохранность морфофуякциональных свойств красных клеток в течение грех недель их хранения при 4°С.

Показано, что взвесь отмытых эритроцитов в консерванте Модежель-глюфосфат по реологическим свойствам практически не отличается от консервированной на «Глюгшщре» донорской крови первых суток хранения, и динамика этих свойств в процессе хранения незначительна.

Новый консервант на основе Модежеля, обладающего гемодинамическим, реологическим и детоксическим действием, позволяет использовать взвесь лишенных плазмы эритроцитов в течение 21-х суток хранения (вместо 24 часов по действующей инструкции).

В экспериментах на животных доказана безвредность нового консерванта (отсутствие острой и хронической токсичности препарата при внутривенном введении, отсутствие аллергизирующего, анафилактогенного и местно-раздражающего действия).

Разработан новый метод получения эритроцитной среды, максимально лишенной примеси как лейкоцитов (путем лейкофильтрации), так и плазмы (путем последующего отмывания). Получены новые данные о влиянии лейкофильтрации и отмывания на сохранность при 4°С морфофункциональных свойств эритроцитов при консервировании их в растворе Модежель-глюфосфат. Доказана возможность хранения при 4°С в предложенном консерванте отмытых после предварительной лейкофильтрации эритроцитов в течение трех недель.

Практическая значимость работы

Разработанный эритроконсервант Модежель-глюфосфат обеспечит возможность хранения отмытых, а также профильтрованных и отмытых эритроцитов в течение 3-х недель (вместо 24-х часов) при 4°С и создания их запасов для проведения не только плановых, но и экстренных трансфузий. Пролонгированное хранение этих сред расширит возможности их реализации, снизит потери ценной фракции крови и позволит удовлетворить клинические потребности в обедненных лейкоцитами и плазмой эритрокомпонентах.

Проведение предварительной лейкофильтрации при заготовке отмытых эритроцитов предотвратит накопление продуктов распада лейкоцитов и провоспалительных цитокинов в процессе хранения, позволит значительно повысить иммунологическую и инфекционную безопасность трансфузий этой эритроцитной среды, а также эффективность гемокомпонентной терапии анемий и кровопотери, особенно у аллосенсибилизированных и трансфузионнозависимых больных.

Предложенный эритроконсервант Модежель-гшофосфат производят из доступного, недефицитного и недорогого сырья, технически возможно его получение в едином технологическом цикле с препаратом «Модежель», производство которого осуществлялось с 1994 г.

Основные положения, выносимые на защиту:

1. Раствор модифицированного деионизированного желатина является оптимальной основой консервантов для нативных, отмытых и профильтрованных эритроцитов. Введение в состав эритроконсерванга и кровезаменителя Модежель глюкозы (в концентрации 7 г/л) и натрия фосфата двузамещенного (4 г/л) повышает его консервирующие свойства в отношении отмытых эритроцитов и обеспечивает сохранность (при изучении in vitro) их морфофункциональных и реологических свойств в течение 21-х суток (вместо 24-х часов в изотоническом растворе натрия хлорида) при условии хранения взвеси при 4°С.

2. Разработанный эритроконсервант Модежель-гшофосфат обусловливает гемодинамическое, реологическое и детоксическое действие взвеси отмытых эритроцитов.

3. Новый препарат обеспечивает возможность хранения при 4°С не только отмытых нативных эритроцитов, но и наименее иммуногенной и реактогенной эритроцитной среды - профильтрованных и отмытых эритроцитов - в течение 3-х недель. Взвесь профильтрованных отмытых эритроцитов в Модежель-глюфосфате после 21 суток хранения практически не содержит микросгустков и продуктов деградации лейкоцитов (миелопероксидазы и лактоферрина).

4. Морфофункциональная полноценность предлагаемых эритроцитных сред и безвредность нового консерванта обусловливают их пригодность для переливания больным. Эффективная лейкоредукция взвеси отмытых эритроцитов, подвергнутых предварительной фильтрации через отечественные лейкофильтры, обеспечивает ее максимальную иммунологическую и инфекционную безопасность.

Апробация и реализация результатов работы. По теме диссертации опубликовано 11 печатных работ. Материалы исследования обсуждены на научно-практической конференции «Актуальные вопросы гематологии и трансфузиологии» (Санкт-Петербург, 6-8 июня 2000 г.), на Российской научно-практической конференции, посвященной 70-летию РосНИИГТ (Санкт-Петербург, 18-20 июня 2002 г.) и на Российской научно-практической конференции «Актуальные вопросы гематологии и трансфузиологии» (Санкт-Петербург, 8-10 июня 2004 г.).

После разрешения ФК МЗ РФ на медицинское применение и промышленный выпуск и утверждения 08.11.2001 г. специализированной комиссией по инструкциям и номенклатуре изменения названия консерванта (Пр. № 40) разработана «Инструкция по медицинскому применению препарата Модежель-глюфосфат», представленная в ФК.

Препарат запатентован (патент на изобретение №2225692), зарегистрирован в Государственном реестре изобретений РФ 20.03.2004 г.

Разработана «Временная инструкция по методу заготовки эритроцитной массы, максимально лишенной примесей лейкоцитов (путем фильтрования) и плазмы (путем отмывания)», одобренная решением Ученого совета и утвержденная директором РосНИИ гематологии и трансфузиологии 20.11.2001г.

Структура и объем работы

Диссертация изложена на 168 страницах машинописи и состоит из введения, шести глав, заключения, выводов и практических рекомендаций. Библиографический указатель содержит 103 отечественных и 196 иностранных источников литературы. Работа иллюстрирована 2 рисунками и 34 таблицами.

Заключение диссертации по теме «Гематология и переливание крови», Кирьянова, Галина Юрьевна

139 Выводы

1. Впервые разработан консервант для отмытых эритроцитов на коллоидной основе, обеспечивающий сохранность морфофункциональных свойств лишенных плазмы красных клеток крови в течение 21-х суток хранения при 4°С.

2. В экспериментах на 5-ти видах лабораторных животных доказана безвредность нового эритроконсерванта на основе модифицированного деионизированного желатина (отсутствие острой и хронической токсичности препарата при внутривенном введении, отсутствие аллергизирующего, анафилактогенного и местнораздражающего действия).

3. Предложенный консервант на основе Модежеля, обладающего гемо-динамическим, реологическим, буферным и детоксическим действием, открывает перспективу применения взвеси отмытых эритроцитов в течение трех недель при условии ее хранения при 4°С (вместо 24 часов при использовании изотонического раствора натрия хлорида) и расширяет показания к применению этой среды для лечения не только анемий, но и острой кровопотери.

4. Разработана технология получения новой эритроцитпой среды, максимально лишенной примесей не только плазмы и тромбоцитов, но и лейкоцитов путем лейкофильтрации, последующего отмывания и взвешивания красных клеток в предложенном консерванте, позволяющая обеспечить иммунологическую и инфекционную ее безопасность. Обоснована возможность хранения этой среды при 4°С в течение трех недель.

5. Доказано, что удаление лейкоцитов резко замедляет процессы образования микросгустков и накопления продуктов деградации лейкоцитов (в частности миелопероксидазы и лактоферрина) во взвеси профильтрованных и отмытых эритроцитов в Модежель-глюфосфате в процессе хранения.

6. Внедрение в практику нового раствора для отмытых и профильтрованных-отмытых эритроцитов, значительно продлевающего сроки их хранения, позволит удовлетворить клинические потребности в обедненных лейкоцитами и плазмой эритроцигных средах и максимально снизить риск развития посттрансфузионных реакций и осложнений, а также откроет новые перспективы для оптимальной утилизации этих сред и создания их запасов.

Практические рекомендации

1. Внедрение в практику эритроконсерванта Модежель-глюфосфат позволит рекомендовать СПК и ОПК более широкое использование взвесей отмытых красных клеток крови (в течение 3-х недель хранения вместо 1-х суток) и создание запасов отмытых эритроцитов, в первую очередь, группы 0 (I), которые можно использовать не только по предварительным заявкам, но и при оказании экстренной трансфузиологической помощи.

2. Взвесь отмытых эритроцитов в консерванте Модежель-глюфосфат показана анемизированным пациентам, имевшим в анамнезе посттрансфузионные температурные реакции негемолитического типа, аллергические реакции на введение плазменных белков, больным ПНГ, талассемией, аутоиммунными анемиями, при врожденном дефиците ^Аи др., а также, при наличии резерва ЭВ, в экстренных ситуациях широкому контингенту хирургических больных для возмещения острой кровопотери.

3. Взвесь профильтрованных отмытых эритроцитов в предложенном консерванте рекомендуется пациентам, сенсибилизированным не только к белкам плазмы, но и при наличии анти-НЬА, специфичных антигранулоцитарных и анти-тромбоцитарных антител; трансфузионнозависимым больным с целью профилактики аллоиммунизации и острого поражения легких; иммуно-компрометированным лицам для предупреждения переноса ряда вирусных инфекций, а также по дифференцированным показаниям больным с острой кровопотерей.

Список литературы диссертационного исследования кандидат медицинских наук Кирьянова, Галина Юрьевна, 2005 год

1. Абдулкадыров K.M. Приоритеты и опасности гемокомпонентной терапии при заболеваниях системы крови // Трансфуз. медицина. 1995. - № 5. - С. 55 - 58.

2. Абдулкадыров K.M., Моисеев С.И. Гемокомпонентная терапия в' практике лечения гематологических больных на современном этапе // Трансфузиология. -2001. -№3.-С. 7-31.

3. Аграненко В.А., Голубева B.JI. Цитроглюкофосфат эффективный консервирующий раствор для крови // Советская медицина. - 1979. - № 8. - С. 19 - 22.

4. Аграненко В.А., Фирсов H.H. Реологическая характеристика консервированной крови и эритроцитарной массы // Проблемы гематол. и трансфузиол. — 1981. № 5.-С. 24-28.

5. Аграненко В.А., Маркова H.A., Тибилова H.H., Суворова И.А.,Голубева B.JL, Крипггоф А.Н. и др. Восстановление полноценности консервированной крови после длительного хранения // Гематология и трансфузиология. 1983. - № 10. -С. 53-54.

6. Аграненко В.А. Общие принципы компонентной гемотерапии // Гравитационная хирургия крови. М.: Медицина. - 1984. - С. 223 - 229.

7. Аграненко В.А., Крижевская Ю.В. Передача вирусных инфекций при переливании крови и ее компонентов // Гематология и трансфузиология. 1991. - №6. - С. 25-27.

8. Аграненко В.А., Кавешникова Б.Ф. Трансфузионная медицина современные проблемы и перспективы // Гематол. и трансфузиол. - 1994. - №1. - С. 41- 44.

9. Аграненко В.А. Современные подходы к переливанию эритроцитов и тромбоцитов у детей // Гематол. и трансфузиол. 1996. - Т. 41, № 2. - С. 41- 44.

10. Аграненко В.А., Суханов Ю.С., Алексеев В.Е. Служба 1фови и трансфузиология на пути в XXI столетие (состояние, задачи, перспективы) // Вестник службы крови России. 1999. - № 4. - С.З - 10.

11. Аграненко В.А., Токарев Ю.Н. Проблема лейкофильтрации и безопасность гемотрансфузий // Вестник службы крови России. 2002. - №1. - С. 7 - 9.

12. Афонин А.Н. К вопросу об удалении лейкоцитов из гематрансфузионных сред // Вестник службы крови России. 1999. - № 3. - С.35 - 36.

13. Богомолова Л.Г, Знаменская Т.В., Суслов B.C. и др. Получение сухого желатиноля и изучение его свойств // Пробл. гематол. 1976. - №8. - С. 28 - 30.

14. Ганапиев A.A., Моисеев С.И., Осипов В.К., Шатров В.А. Реологические аспекты отмытых донорских эритроцитов // Гематология и трансфузиология. -1989. № 12. - С. 7 - 9.

15. Головин Г.В., Дуткевич И.Г., Шапкин А.Г., Чанчиев З.М. Реологические свойства крови и их значение в трансфузиологической практике // Вестник хирургии. 1985. - Т.134, № 2. - С. 142 - 146.

16. Голубева В.Л., Трошина В.М., Суворова И.А. и др. Эффективные методы получения эритроцитной массы, обедненной лейкоцитами и тромбоцитами // Второй Всероссийский съезд гематологов и трансфузиологов: Тез. докл. -Челябинск. 1986. С. 101 - 102.

17. Голубева В.Л., Суворова И.А., Трошина В.М., Тибилова H.H., Маркова H.A., Шлимак В.М., Аграненко В. А. Усовершенствование гемоконсерванта цитроглюко.фосфат // Гематология и трансфузиология. 1989. - № 1. - С. 47 - 50.

18. Гузовский Е.В., Афонин А.Н., Суханов Ю.С. Трансфузии компонентов крови: рациональные подходы // Вестник службы крови России. 1999. - № 3. - С. 30 -34.

19. Жибурт Е.Б. К внедрению лейкоцитарных фильтров // Трансфузиология. -2000. -№ 1.-С.83 —97.

20. Жибурт Е.Б., Вечерко A.B., Кузьмин Н.С. Национальные и Европейские стандарты качества гемотрансфузионных сред // Трансфузиология. 2001. - № 4. -С. 66-91.

21. Зайцева Г.А., Железнова А.И., Моисеева В.Г., Арибжанова И.М. и др. Профилактика реакций негемолитического типа при переливании крови и ее компонентов //Пробл. гематол. 1984. - № 3. - С. 24 - 27.

22. Захарова Н.Б., Целик Н.И., Клячкин M.JI. Методы изучения деформируемости эритроцитов (обзор литературы) // Лабораторное дело. 1983. - № 9. - С. 3 - 6.

23. Иванов К.П. Успехи и неудачи в создании искусственной крови // Трансфу-зионная медицина. 1995. - № 5.- С. 99 - 103.

24. Инструщия по заготовке эритроцитной массы, обедненной лейкоцитами и тромбоцитами Москва, 1987. - 18 с.

25. Инструщия по применению устройства лейкофильтра однократного применения для удаления лейкоцитов из донорской крови и других эритроцитных сред УЛЛ-01 «Интероко» // Вестник службы крови России. -1999.-№4.-С. 53.

26. Касьянов А.Д., Вечерко A.B., Игнатович Г.П., Голубева A.B., Калеко С.П. Морфо-функциональные изменения «балластных» лейкоцитов при хранении эритроцитных концентратов // Трансфузиология. 2001. - №3. — С. 88 - 98.

27. Климов А.Н., Никифорова A.A., Кузьмин A.A., Рихтер В. Цитрат натрия -стабилизатор липопротеидов в консервированной донорской крови // Гематол. и трансфузиол. 1997. - Т.42, № 6. - С. 6 - 9.

28. Колб В.Г., Камышев B.C. Справочник по клинической химии. Минск: Беларусь, 1982. - С. 167-168.

29. Кочетыгов Н.И. Кровезаменители при кровопотере и шоке. Л.: Медицина. -1984.-160 с.

30. Кровезаменители, консерванты крови и костного мозга / Под ред. Г.Н. Хлябича. -М.: Медицина, 1997. 192 с.

31. Левина A.A., Цветаева Н.В., Колошейнова Т.И. Клинические, биохимические и социальные аспекты железодефицитной анемии // Гематол. и трансфузиол. -2001. Т.46, № 3. - С. 51 - 55.

32. Левтов В.А., Регирер С.А., Шадрин Н.Х. Реология крови. М.: Медицина, 1982.-270 с.

33. Лисовская И.Л., Шурхина Е.С., Атауллаханов Ф.И. и др. Фильтрационно-осмотичеысий метод оценки распределения эритроцитов по реологическим параметрам. Обоснование и практические приложения // Гематол. и трансфузиол. 1999. - Т.44, № 3. - С.20 - 24.

34. Лисуков И.А., Крючкова И.В., Кулагин А.Д. и др. Случай пароксизм ал ьной ночной гемоглобинурии с ответом на терапию циклоспорином А // Гематол. и трансфузиол. 1999. - Т.44, № 3. - С.41 - 42.

35. Луганова И.С., Сейц И.Ф. Свободные аденонуклеотиды в лейкоцитах человека // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. 1971. - № 6. - С. 41-43.

36. Луганова И.С., Блинов М.Н. Определение 2,3-дифосфоглицериновой кислоты неэнзиматическим методом и содержание 2,3-дифосфоглицерата и АТФ в эритроцитах больных хроническим лимфолейкозом // Лабораторное дело. -1975.- № 11.-С. 652-654.

37. Малахов С.Ф., Плешаков В.Т. Эффективность применения гемотрансфу-зионных сред на основе декальцинированного желатиноля // Акт!. вопросы трансфузиол.: Материалы науч. конференции. Л., 1987. - С. 49 -50.

38. Масчан A.A., Богачева Н.Ю., Байдун Л.В., Логинов A.B. и др. Синдром пароксизмальной ночной гемоглобинурии у детей с приобретенной апласти-ческой анемией // Гематол. и трансфузиол. 1996. - Т.41, № 3. - С.20 - 25.

39. Мельникова В.Н. К методике приготовления взвеси отмытых эритроцитов для переливания по дифференцированным показаниям // Вопросы гематологии, консервирования крови и тканей: Труды ЛНИИ переливания крови. 1961. -Вып. 13.- С. 253 -258.

40. Мельникова В.Н., Плешаков В.Т., Беляева З.П. и др. Методика исследования функциональных свойств капельно-фильтрующих узлов устройств для переливания крови // Химико-фармацевтический журнал. 1991. - № 9. - С. 80 - 82.

41. Мельникова В.Н., Плешаков В.Т., Беляева З.П. Удаление лейкоцитов и тромбоцитов из эритроцитных сред эффективный способ предупреждения образования микросгустков при хранении // Новое в трансфузиологии. - 1999. -Вып. 24.-С. 39-43.

42. Мельникова В.Н., Плешаков В.Т., Чеботкевич В.Н., Селиванов Е.А. Лейкофильтрация крови как метод профилактики вирусных инфекций при гемотрансфузиях // Русский журнал ВИЧ/СПИД и родственные проблемы. С.Петербург, 2002. - Т.6, № 1. - С. 127.

43. Мельникова В.Н., Плешаков В.Т., Селиванов Е.А., Беляева З.П. Лейкофильтрация крови и ее компонентов: теоретические и практические аспекты // Акт. вопросы гематол. и трансфузиол. С.-Петербург, 2002. - С. 56 - 59.

44. Минеева H.B. Иммунологические постгрансфузионные осложнения // Трансфузиология. 2001. - № 2. - С. 40 - 51.

45. Мовшев Б.Е., Витвицкий В.М., Лисовская И.Л., Атауллаханов Ф.И. Трансфузионные среды: прикладные и фундаментальные аспекты // Гематол. и трансфузиол. 2001. - Т.46, № 3. - С.74 -82.

46. Молчанов И.В., Михельсон В.А., Гольдина O.A., Горбачевский Ю.В. Современные тенденции в разработке и применении коллоидных растворов в интенсивной терапии // Вестник службы крови России. -1999. №3. - С.43 - 50.

47. Муравьев A.B., Тихомирова И.А. Анализ влияния плазменных и клеточных факторов на агрегацию эритроцитов разных возрастных популяций // Физиология человека. 2002. - № 4. - С. 118 - 122.

48. Натан Д.Г., Зифф К.А. Регуляция кроветворения // Гематол. и трансфузиол. -2001. Т.46, №3.-С. 3-10.

49. Нестерова И.В., Колесникова Н.В. Цитокиновая регуляция и функционирующая система нейтрофильных гранулоцитов // Гематол. и трансфузиол. -1999. Т.44, № 2. - С. 43 - 47.

50. Никитин И.К., Козинец Г.И., Лобовская Л.В Вирусная и бактериальная инактивация клеточных компонентов крови (обзор литературы) // Гематол. и трансфузиол. 2001. - Т.46, № 3. - С. 91 - 95.

51. Никитин И.К., Козинец Г.И. Кровь, компоненты крови: хранение, фракционирование, качество и стандарты // Гематол. и трансфузиол. 2002. -Т.47, № 4. - С. 36 - 39.

52. Оловникова Н.И. Иммуногематология в трансфузиологии в начале XXI века // Гематол. и трансфузиол. 2001. - Т.46, № 3. - С. 95 - 99.

53. Основы трансфузиологии / Под ред. М.Ф. Заривчацкого. Пермь: Изд. Перм. ун-та., 1995.-318 с.

54. Петров М.М. Уровень кислород-транспортной функции эритроцитов, консервированных в разных условиях// Пробл. гематол. 1981. - № 3. - С. 33 - 40.

55. Попов В.И., Тулупов А.Н. Устройство для определения деформируемости эритроцитов // Вестник хирургии. 1988. - Т. 140, № 5. - С. 117-118.

56. Редчиц Е.Г., Климанова Э.Л., Семавин И.Е., Руденко Г.Р., Парфенов A.C. Фильтруемость цельной крови (роль лейкоцитов и эритроцитов) // Лаб. дело. -1990.-№6.-С. 20-23.

57. Рождественская М.А. Определение гемоглобина в плазме консервированной крови // Актуальные вопросы переливания крови. 1955. - Вып. 4. - С. 55 - 57.

58. Ройтман Е.В., Перевертин К.А. Использование метода математического моделирования для изучения агрегатного состояния крови. Модель гемо-реологической кривой // Гематология и трансфузиология. 1996. - Т.41, № 3. -С. 36-40.

59. Рокицкий П.Ф. Основы вариационной статистики для биологов. Минск: Изд. БГУ им. В.И. Ленина, 1961.-222 с.

60. Руководство по приготовлению, использованию и гарантии качества компонентов крови. — 8-е изд. Совет Европы, 2002. - 263 с.

61. Руководство по трансфузионной медицине /под ред. Е.П. Сведенцова. — Киров, 1999.-716 с.

62. Селезнев С.А., Назаренко Г.И., Зайцев B.C. Клинические аспекты микроциркуляции. Л.: Медицина, 1985. - 208 с.

63. Селиванов Е.А., Мельникова В.Н., Плешаков В.Т., Шабалин В.Н. Создание трансфузионных сред на основе эритроцитов и плазмозамещающих растворов // Гематол. и трансфузиол. 1990. - № 5. - С. 23 - 25.

64. Селиванов Е.А., Плешаков В.Т., Мельникова В.Н., Ханевич М.Д., Дуткевич И.Г., Декстер Б.Г. и др. Модежель при лечении острых гастродуоденальных кровотечений // Вестник хирургии. 1995. - № 4-6. - С. 76 - 79.

65. Селиванов Е.А., Мельникова В.Н., Плешаков В.Т. и др. Эритроконсервант «Модежель» как кровезаменитель в эксперименте и клинике // Вестник хирургии. 1996. - № 1. - С. 71 - 74.

66. Селиванов Е.А., Данилова Т.Н., Деггерева И.Н. и др. Основные показатели деятельности службы крови России в 2002 году // Трансфузиология. 2003. -Т.4, № 4. - С: 7 - 28.

67. Серова Л.Д., Войтенко Л.М., Мишина Л.В. Индивидуальный подбор крови и ее компонентов как метод профилактики постгрансфузионных осложнений // Профилактика и лечение постгрансфузионных осложнений. Л., 1980. - С. 26 - 30.

68. Сидоркевич С.В., Калеко С.П., Жибурт Е.Б. К вопросу о совершенствовании организации работы станции переливания крови // Трансфузиология. 2000. -№1.-С. 28-46.

69. Соколова В.А. Актуальные вопросы клинической трансфузиологии. -Новосибирск, 1998. 83 с.

70. Соловьев Г.М., Радзивил Г.Г. Кровопотеря и регуляция кровообращения в хирургии. Москва: «Медицина», 1973. - 335 с.

71. Справочник по клиническим и лабораторным методам исследования /под ред. Коста Е.А. М.: «Медицина». - 1968. - 436 с.

72. Суханов Ю.С., Русанов В.М. Концепция обеспечения страны вирусбезопасными компонентами и препаратами крови // Вестник службы крови России. 2002. - № 4. - С. 3 - 9.

73. Титов В.Н., Творогова М.Г. Методические аспекты определения содержания общего белка сыворотки крови // Клиническая лабораторная диагностика. -1995. №3. - С. 15-18.

74. Тибилова H.H., Голубева B.JL, Черненко Г.Т., Смирнов A.B., Лопарева О.И., Аграненко В.А. Биохимические механизмы восстановления (омолаживания) эритроцитов // Гематол. и трансфузиол. 1983. - № 1. - С. 18-21.

75. Тибилова H.H. Метаболизм эритроцитов в процессе хранения и оптимизация методов консервирования: Автореф. дисс. . докт. биол. наук. М., 1991. - 59 с.

76. Трошина В.М., Ермольчук О.Н. Морфофункциональная полноценность эритроцитов и тромбоцитов, выделенных из крови, заготовленной на гемо-консерванте «Циглюфад» // Гематол. и трансфузиол. 1988. - № 10. - С. 56 - 62.

77. Федорова З.Д., Бессмельцев С.С., Котовщикова М.А. Методы исследования агрегации, вязкости и деформируемости эритроцитов: Методические рекомендации. Л., 1989.- 12 с.

78. Фиала Я. К вопросу получения крови с низким содержанием лейкоцитов // Проблемы гематологии и переливания крови. 1980 . - №10. - С. 59 - 60.

79. Филатов Ф.П., Голосова Т.В. Общие принципы национальной концепции вирусной безопасности гемотрансфузий // Гематол. и трансфузиол. 2001. -Т.46, № 3. - С. 84-86.

80. Ханевич М.Д., Селиванов Е.А., Мамаев А.Е. Опыт применения Модежеля в комплексном лечении больных разлитым гнойным перитонитом // Terra Medica. -1997.-№3.-С. 42-44.

81. Холлан С.П. Показания к переливанию крови // Гематол. и трансфузиол. 1989. -№ 8.-С. 47-53.

82. Чертков И.Л., Дризе Н.И. Взлеты и падения клеточной гематологии за три четверти века // Гематол. и трансфузиол. 2001. - Т. 46, № 3. - С. 10-14.

83. Шабалин В.Н., Серова Л.Д. Клиническая иммунология Л.: Медицина, 1989. -311 с.

84. Шевченко ЮЛ., Жибурт Е.Б., Серебряная Н.Б. Иммунологическая и инфекционная безопасность гемокомпонентной терапии СПб.: Наука. - 1998. -228 с.

85. Шевченко Ю.Л., Шабалин В.Н. и др. Руководство по общей и клинической трансфузиологии. СПб.: ООО «Изд. Фолиант», 2003. - 608 с.

86. Шестопалов А.Е., Пасько В.Г. Объемзамещающая терапия волемических нарушений препаратом «Гелофузин» у хирургических больных // Вестник службы крови России. 1999. - № 4. - С. 31 - 34.

87. Шторх X. Вирусологическая безопасность клеточных и плазменных компонентов крови // Гематол. и трансфузиол. 1997. - Т.42, № 1. - С. 32 - 34.

88. Яицкий Н.А., Афанасьев Б.В., Барышев Б.А, Воинов В.А. и др. Достижения трансфузиологии в коррекции нарушений гомеостаза // Эфферентная терапия. -2004. — Т. 10, № 3. С. 19-25.

89. Akahoshi М., Takanashi М., Masuda М. et al. A case of transfusion-associated graft-versus-host disease not prevented by white cell-reduction filters // Transfusion. -1992. V.32, № 2. - P. 169 - 172.

90. Ali A., Lyn P., Bordossy L., Richardson H., Blajchman M. Reduction by in-line leukocyte filtration of bacterial contaminants is more effective after an 8-hour hold at 22° С than at 4°C // Transfusion. 1997. - V.37 (Suppl.) - S.45.

91. Allain J-P. Emerging viruses and transfusion // Transfiis. Clin. Biol. 2001. - V.8, №3.-P.211 -215.

92. Ambruso D., Gorlin J., Elfath D., Menitove J., McAteer. The Cobe TRIMA™ Automated blood component collection system. The US clinical experience // Transfusion. 1997. - V.37(suppl.). - S.362.

93. Anderson K.C.,Weinstein H.J. Transfusion-associated graft-versus-host disease // N. Engl. J Med. 1990. - V. 323. - P. 315 - 318.

94. Aran P., Padmakumaran N., Manojkumar V., Deepadevi K.V., Lakshmi L.R, Kurup P.A. Decreased hemolysis and lipid peroxidation in blood during storage in the presence of nicotinic acid // Vox Sang. 1999. - V.76, №4. - P.220 - 225.

95. Aulmann M., Neppert J. Transfusion von Blutkomponenten bei immun-supprimierten Patienten // Symposium von 20. Blutfiltration bei immunsuprimierten Patienten. Februar. 1991. - S. 1 - 24.

96. AuBuchon J.P., Elfath M.D., Popovsky M.A., Stroberg R.R., Picard C., Herschel L., Whitley P., McNeil D., Arnold N. Evaluation of a new prestorage Ieukoreduction filter for red blood cell units//Vox Sang. 1997.-V.72,№1.-P.101 - 106.

97. AuBuchon J.P., Pickard C., Herschel L., Brantigan B., Gudino M., Giesler R. Application of portable spinning membrane apheresis technology for collection of red blood cells and plasma // Transfusion. 1997. - V.37 (suppl.). - S.363.

98. Avail A., Hyllner M., Bengtson J.P. et al. Postoperative inflammatory response after autologous and allogeneic blood transfusion // Anesthesiology. 1998. - V.88, №5.-P.1407- 1408.

99. Aye M.T., Palmer D.S., Giulivi A., Hashemi S. Effect of filtration of platelet concentrates on the accumulation of cytokines and platelet release factors during storage//Transfusion. 1995,- V.35, №2.-P. 117- 124.

100. Babcock J.G., Lippert L.E., Derse-Anthony C.P., Mechling M., Hess J.R. A hypotonic storage solution did not prolong the viability of RBCs // Transfusion. -2000. V.40, № 8. - P. 994 - 999.

101. Bareford D., Chandler S.T., Hawker R.L. Jackson N„ Smith M., Boughton B.J. Splenic platelet-sequestration following routine blood transfusion is reduced byfiltered / washed blood products // Brit. J. Haematol. 1987. - V.67, № 2. - P. 177180.

102. Baskurt O., Meiselman H. Cellular determinants of lowshear blood viscosity // Biorheology. 1997. - V. 34, № 13. - P. 235.

103. Biedler A.E., Schneider S.O., Seyfcrt U., Rensing H. et al. Impact of alloantigens and storage-associated factors on stimulated cytokine response in an in vitro model of blood transfusion // Anesthesiology. 2002. - V.97, № 5. - P. 1102 - 1109.

104. Beutler E. Liquid preservation of red cells // Principles of transfusion medicine / Ed. Rossi E.C., Simon T.L., Moss G.S., Gould S.A. Baltimore: Williams & Wilkins, 1996.-952 p.

105. Beutler E. Back to the future in RBC preservation. // Transfusion. 2000. - V. 40, № 8. - P. 893 - 895.

106. Bijou H., Brady M.T., Fortes P., Hawkins E.P. Inconsistent leukocyte removal by IBM 2991 blood cell processor // Transfusion 1983. - V.23, № 3. - P. 260 - 261.

107. Blajchman M.A. Allogeneic blood transfusions, immunomodulation, and postoperative bacterial infection. Do we have the answers yet? // Transfusion. 1997. - V.37, № 2. - P. 121-125.

108. Blajchman M.A., Hebert P.C. Red blood cell transfusion strategies // Transfus. Clin. Biol. 2001. - V.8, № 3. - P. 207 - 210.

109. Blumberg N., Heal J.M. Effects of transfusion on immune function: cancer recurrence and infection // Arch. Pathol. Lab. Med. 1994. - V.l 18, № 4. - P. 371 -379.

110. Blumberg N., Heal J.M., Chuang C. et al. Furtner evidence supporting a cause and effect relationship between blood transfusion and cancer recurrence // Ann. Surguinis. 1988. - V.207, № 3. -P. 410 -415.

111. Boisseau M.R., Roudaut M.F., Taccoen A. Red cell aggregation and microcirculation // Clin. Hemorheol. 1995. - V 15, № 3. - P. 428 - 434.

112. Bordin J.O., Bardossy L., Blajchman M.A. Experimental animal model of refractoriness to donor platelets: the effect of plasma removal and the extent of white cell reduction on allogenic alloimmunization // Transfusion. 1993. - V.33. - P.798 - 801.

113. Bordin J.O., Heddle N.M., Blajchman M.A. Biologic effects of leukocytes present in transfused cellular blood products // Blood. 1994. - V.84, № 6. - P. 1703 - 1721.

114. Bowden R.A., Sayers M. The rick of transmitting cytomegalovirus infection by fresh frozen plasma // Transfusion. 1990. - V.30, № 8 - P.762 - 763.

115. Brand A. Leukocyte-poor blood: arguments and guidelines // Vox Sang. State of the Art Lectures. XXIII-rd Congress of the International Society of Blood Transfusion. -Amsterdam., 1994.-P. 129-131.

116. Bratosin D., Leszczynski S., Sartiaux C., Fontaine O. et. al. Improved storage of erythrocytes by prior leukodepletion: flow cytometric evaluation of stored erythrocytes // Cytometry. 2001. - V.46, № 6. - P. 351 - 356.

117. Brubaker D. B. Immunopathogenic mechanisms of posttransfusion graft-versus-host disease // Proc. Soc. Exp. Biol. Med. 1993. - V. 202. - P. 122 - 125.

118. Buchholz D.H., Charette J.R., Bove J.R. Preparation of leukocyte-poor blood cells using the IBM 2991 blood cell processor // Transfusion. 1978. - V.l 8. - P. 653 -662.

119. Buren N.L., Stroncek D.F., Clay M.E., McCuIlough L., Dalmasso A.P. Transfusion-related acute lung injury caused by an NB2granuIocyte-specific antibodyin a patient with thrombotic thrombocytopenic purpura // Transfusion. 1990. - V.30. -P. 30-35.

120. Chalandon Y., Mermillod B., Beris P. et. al. Benefit of prestorage leukocyte depletion of single-donor platelet concentrates // Vox Sang. 1999. - V.76. - P.27 -37.

121. Chien S., Dormandy J.A., Ernst E., Matrai A. Clnical hemorheology. M. Nijhoff Publ., 1987-641 p.

122. Chin J. Present and future dimensions of the HIV/AIDS pandemic // Science Challenging AIDS, Basel. 1992. - P. 33 - 50.

123. Chin-Yee I., Keeney M., Krueger L., Dietz G., Moses G. Supernatant from stored red cells activates neutrophils // Transfus. Med. 1998 - V.8, № 1. - P. 49 - 56.

124. Collaerts A.J., Gielis M.L., Sprengers E.D., Muylle L. The mechanism of white cell reduction by synthetic fiber cell filters // Transfusion. 1993. - V.33, N2. - P.134 - 138.

125. Cook D., Stassinopoulos A., Merritt J. et al. In vivo analysis of packed red blood cells treated with S-303 to inactivate pathogens // Blood. 1998. - V.92 (suppl.l). -P.503a.

126. Corash L. Strategies for pathogen inactivation: The safety of the blood supply. -Baxter Healthcare Corporation, 1999. V.2 - P. 46 - 57.

127. Decary F., Ferner P., Giavedoni L. et al. An investigation of non-hemolytic transfusion reactions // Vox Sang. 1984. - V. 46, № 3. - P. 277 - 285.

128. Demmler G.J., Brady M.T., Bijou H. et al. Posttransfusion cytomegalovirus infection in neonates: role of saline- washed red blood cells // J. Pediatr. 1986. - V. 108.-P. 762-765.

129. Dumaswala U.J., Rugg N., Greenwalt T.J. The effect of amino acids on RBC preservation // 5th Regional (4lh European) Congress Abstracts, Venezia (Italy), 2nd-5th July 1995.-P. 71.

130. Dumaswala U.J., Wilson M.J., Jose T., Daleke D.L. Glutamine- and phosphatc-containing hypotonic storage media better maintain erythrocyte membrane physical properties // Blood. 1996. - V.88, № 2. - P. 697 - 704.

131. Dzik W.N. Is the febrile response to transfusion due to donor or recipient cytokine? // Transfusion. 1992. - V.32, №6. - P.594.

132. Dzik W.N., Blajchman M.A., Blumberg N. et al. Current research on immunomodulatory effect of allogeneic blood transfusion // Vox Sang. 1996. - V.70, №2.-P. 187- 194.

133. Engelfriet C.P., Rcesink H.W., Pieterz R.N.L., Schwartz D.W.M., Mayr W.R., Blajchman M.A., Goldman M. et al. Universal leukocyte-depletion of blood components: cell-concentrates and plasma: Intern. Forum // Vox Sang. 2001. - V. 81, N 1. - P. 56-77.

134. Ericson A., Niklasson F., de Verdier C-H. Metabolism of guanosine in human erythrocytes // Vox Sang. 1985. - V. 48, № 1. - P. 72 - 83.

135. Farrugia A., Tan Y., Romeo A., Martin L. et al. Relative efficiency of leukocyte removal procedures for the production of leukocyte-poor red concentrates assessed by flow cytometry // Vox Sang. 1994. - V.66, № 3. - P. 153 - 160.

136. Ferrara J.L.M., Abhyankar S., Gilliland D.O. Cytokine storm of graft-versus-host disease: A critical effector role for interleukin-1 // Transplant. Proc. 1993. - V.25, № 10.-P. 1216 - 1221.

137. Flegel W.A., Wiesneth M., Stampe D., Koerner K. Low cytokine contamination in buffy coat-derived platelet concentrates without filtration // Transfusion. 1995. -V.35, №11.-P. 917-920.

138. Freedman J.J., Blajchman M.A., McCombie N. Canadian Red Cross Society Symposium on Leukodepletion: Report of Proceedings // Transfus. Med. Rev. 1994. - № 8. - P. 1.

139. Ghio M., Contini P., Mazzei C. et al. Soluble HLA-class I, HLA class II, and Fas ligand in blood components: a possible key to explain the immunomodulatory effects of allogeneic blood transfusions // Blood. 1999. - V.93. - P. 1770 - 1777.

140. Goldfinger D., Lowe C. Prevention of adverse reaction to blood transfusion by the administration of saline-washed red blood cells // Transfusion. 1981. - V.21, № 3. -P. 277-280.

141. Gong J., Hogman C.F., Hambraeus A., Johansson C.S., Eriksson L. Transfusion-associated Serratia marcescens infection. Studies of the mechanism of action // Transfusion. 1993. - V.33, № 7. - P. 802 - 808.

142. Grass J.A., Hei D.J., Metchette K. et al. Inactivation of leukocytes in platelet concentrates by photochemical treatment with psoralen plus UVA // Blood. 1998. -V.91. - P. 2180 - 2188.

143. Gray E., Baxter A., Laberge A., Rock G. Preparation of leukocyte-poor blood: a comparison of IBM 2991 washing and Huggins freeze-thawing // Vox Sang. — 1981. — V.40, № 5. P. 323-328.

144. Greenwalt T.J., Zehner Stostok C., Dumaswala U.J. Studies in red blood cell preservation. I. Effect of the other formed elements // Vox Sang. 1990. - V.58, № 2. -P. 85-100.

145. Greenwalt T.J., Dumaswala U.J., Dhingra N. Studies in red blood cell preservation. 7. In vivo and in vitro studies with a modified phosphate-ammonium additive solution// Vox Sang. 1993. - V.65, № 2. - P. 87 - 94.

146. Guide to the preparation, use and quality assurance of blood components. Council of Europe Press, 1995. - 196 p.

147. Gunthel C.J., Ng V., McGrath M. et al. Association of Epstein-Barr virus types 1 and 2 with acquired immunodeficiency syndrome-related primary central nervous system lymphomas // Blood. 1994. - V.88, N 2. - P. 618 - 619.

148. Hamasaki N., Yamamoto M. Red blood cell function and blood storage // Vox Sang. — 2000. V.79, № 4. - P. 191 - 197.

149. Heal J.M. Do white cells in stored blood components reduce the likelihood of posttransfusion bacterial sepsis // Transfusion. 1991. - V.31, № 7. - P. 581 - 583.

150. I-Ieaton W.A., Holme S., Smith K.,Brecher M.E., Pineda A., AuBuchon J.P., Nelson E. Brit Effects of 3-5 logio pre-storage leucocyte depletion on red cell storage and metabolism // Br. J. Haematol. 1994. - V.87. - P. 363 - 368.

151. Heddle N.M. The efficacy of leukodepletion to improve platelet transfusion response: a critical appraisal of clinical studies // Transfus. Med. Rev. 1994. - V.8. -P. 15-28.

152. Heddle N.M., Soutar R.L., O'Hoski P.L. et al. A prospective study to determine frequency and clinical significance of alloimmunisation posttransfusion // Brit. J. Haematol. 1995. - V.91, № 4. - P. 1000- 1005.

153. Heddle N.M. Pathophysiology of febrile nonhemolytic transfusion reactions // Curr. Opin. Hematol. 1999. - V.6, №6. - P. 420 - 426.

154. Hess J.R., Rugg N., Knapp A.D., Gormas J.F., Silberstein E.B., Greenwalt T.J. Successful storage of RBC for 10 weeks in a new additive solution // Transfusion. -2000.-V. 40,№8.-P. 1012-1016.

155. Hess J.R., Rugg N., Knapp A.D., Gormas J.F., Silberstein E.B., Greenwalt T.J. Successful storage of RBC for 9 .weeks in a new additive solution // Transfusion. -2000.-V. 40, №8.-P. 1007- 1011.

156. Hess J.R., Hill H.R., Oliver C.K., Lippert L.E., Greenwalt T.J. The effect of two additive solutions on the postthaw storage of RBCs // Transfusion. 2001. - V. 41, №7. - P. 923 - 927.

157. Hiruma K., Okuyama Y. Effect of leucocyte reduction on the potential alloimmunogenicity of leucocytes in fresh-frozen plasma products // Vox Sang. -2001. V.80, №1. - P. 51-56.

158. Hogman C.F., Eriksson L., Hedlund K., Wallvik J. The bottom and top system: A new technique for blood component preparation and storage // Vox Sang. 1988. -V.55, №3. - P. 211 - 217.

159. Hogman C.F., Gong J., Eriksson L., Hambraeus A., Johansson C.S. White cells protect donor blood against bacterial contamination // Transfusion. 1991. - V.31, №7. - P. 620 - 626.

160. Hogman C.F., Gong J., Hambraeus A., Johansson C.S., Eriksson L. The role of white cells in the transmission of Yersinia enterocolitica in blood components // Transfusion. 1992. - V.32, № 7. - P. 654 - 657.

161. Hogman C.F. Recent advances in the preparation and storage of red cells // Vox Sang. 1994. - V.67, №3. - P. 243 - 246.

162. Hogman C.F., Engstrand L. Factors influencing growth of Yersinia enterocolitica in cellular blood products I I Transfus. Med. Rev. 1996. -V. 10. - P. 259 - 275.

163. Hogman C.F., Eriksson L., Wallvik J., Payrat J.M. Clinical and laboratory experience with erythrocyte and platelet preparations from a 0.5CPD Erythro-Sol Opti System // Vox Sang. 1997. - V.73, № 3. - P. 212 - 219.

164. Hogman C.F., Meryman H.T. Storage parameters affecting RBC survival and function following transfusion // Trans. Med. Rev. 1998. - V. 12. - P. 116 - 123.

165. Hogman C.F. Preparation and preservation of red cells // Vox Sang. 1998. - V.74 (Suppl. 2).-P. 177- 187.

166. Hogman C.F. Liquid-stored red blood cells for transfusion // Vox Sang. 1999. -V. 76, №2.-P. 67-77.

167. Hong Chang, G.A. Hall, W.H. Geerts, C. Greenwood, R.S. McLeod, G.D. Sher Allogenic red blood cell transfusion is an independent risk factor for the development of postoperative bacterial infection // Vox Sang. 2000. - V.78, № 1. - P. 13 - 18.

168. Houbiers J.G.A., van de Velde C.J., van de Watering L.M.G. Transfusion of red cells is associated with increased incidence of bacterial infection after colorectal surgery. A prospective study // Transfusion. 1997. - V.37, № 2. - P. 126 - 134.

169. Hovav T., Yedgar S., Manny N., Barshtein G. Alteration of red cell aggregability and shape during blood storage // Transfusion. 1999. - V.39, №3. - P. 277 - 281.

170. Hughes A., Mijovic V., Brozovic B., Davies T.D. Leukocyte-depleted blood: a comparison of cell-washing techniques // Vox Sang. 1982- V. 42, № 3. - P. 145 — 150.

171. James J., Matthews R.N., Holdsworth R.F., Fulton A., Tauro G.P. et al. The role of filtration in the provision of leukocyte poor red cells to multitransfiised patients // Pathology 1986,-V. 18,№ l.-P. 127- 130.

172. Jensen L.S., Andersen A J., Christiansen P.M. Postoperative infection and natural killer function following blood transfusion in patients undergoing elective colorectal surgery//Brit. J. Surg. 1992. - V.79, № 5. - P. 513-516.

173. Kay A., Beutler E. The effect of ammonium, phosphate, potassium, and hypotonicity on stored red cells // Transfusion. 1992. - V. 32, № 1. - P. 37 - 41.

174. Knutson F., Loof H., Frank V., Joie M., Hogman C.F. A new method for combined red cell and plasma apheresis // Infusion. Transfusionsmed. 1997. - V. 24. -P. 288.

175. Dc Korte D., Gouwerok C.W.N., Veldman H.A., Loos J.A. In vitro characterization of erythrocytes during storage in PAGGS-MANNITOL // 5th Regional (4th European) Congress Abstracts, Venezia (Italy), 2nd-5th July 1995. P. 71.

176. Kothe F.C., Platencamp G.-J. The use of sterile connecting device in transfusion medicine // Transfus. Med. Rev. 1994. - V.8. - P. 117 - 122.

177. Ledent E., Berlin G. Factors influencing white cell removal from red cell concentrates by filtration // Transfusion. 1996. - V.36, № 7. - P. 714 - 718.

178. Luban N.L.C., Williams A. E., McDonald M.C., Mikesell G.T., Williams K.M., Sacher R.A. Low incidence of acquired cytomegalovirus infection in neonates transfused with washed red blood cells // A.J.D.C. 1987. - V. 141. - P. 416 - 419.

179. Masse M., Naegelen C., Pellegrini N., Segier J.M., Marpaux N., Beaujean F. Validation of a simple method to count very low white cell concentrations in filtered red cells or platelets // Transfusion. 1992. - V.32, № 6. - P. 565 - 571.

180. Masse M. Universal leukoreduction of cellular and plasma components: process control and performance of the leukoreduction process // Transfus. Clin. Biol. — 2001. V.8. - P.297 - 302.

181. Matthes G., Richer E., Tofote U., Pawlow I., Kucera W., Lerche D. Rejuvenation of autologous blood preserved by washing in glucose-adenine-phosphate- and citrate containing solution // Beitr Infus. Transfusionsmed. 1994. - V. 32. - P. 498 - 501.

182. Mazor D., Dvilansky A., Meyerstein N. Prolonged storage of red cells with ammonium chloride and mannitol // Transfusion. 1990. - V.30, №2. - P. 150 - 153.

183. Menitove J.E., McElligot M.C., Aster R.H. Febrile transfusion reaction: what blood component should be given next? // Vox Sang. 1982. - V.42, № 6. - P. 318 -321.

184. Meryman II.T., Bross J., Lebovitz R. The preparation of leukocyte-poor red blood " cells: a comparative study // Transfusion. 1980. - V. 20, № 3. - P. 285 - 292.

185. Meryman H.T., Hornblower M. The preparation of red cells depleted of leukocytes (Review and evaluation) // Transfusion. 1986. - V. 26, № 1. - P. 101 - 106.

186. Meryman H.T., Hornblower M., Syring R.L. Prolonged storage of red cells at 4°C // Transfusion. 1986. - V. 26, № 4. - P. 500 - 505.

187. Meryman H.T. Transfusion-induced alloimmunization and immunosuppression and effects of leukocyte depletion // Transfus. Med. Rev. 1989. - V.3. - P.180 - 193.

188. Meryman H.T., Hornblower M., Keegan T., Syring R., Heaton A., Mesbah-Karimi N., Bross J. Refrigerated storage of washed red cells // Vox Sang. 1991. - V.60, № 1. - P. 88 -98.

189. Meryman H.T., Hornblower M. Manipulating red cell intra- and extracellular pH by washing // Vox Sang. 1991. - V.60, № 2. - P. 99 - 104.

190. Meryman H.T., AuBuchon J.P. Residual donor leukocytes in stored, washed red cells can cause post-transfusion red cell loss // Transfusion Today. 1995. - V.25. -P. 4 - 6.

191. Mincheff M., Meryman H.T., Kapoor V., Alsop P., Wotzel M. Blood transfusion and immunomodulation. A possible mechanism // Vox Sang. 1993. - V.65, № 1. -P. 18-24.

192. Mincheff M., Loukinov D., Zoubak S., Hammett M., Meryman H. Fas and Fas ligand expression on human peripheral blood leukocytes // Vox Sang. 1998. - V.74, № 2. — P. 113-121.

193. Mincheff M. Changes in donor leukocytes during blood storage. Implications on post-transfusion immunomodulation and transfusion-associated GVHD // Vox Sang. -1998. V.74 (Suppl 2). - P. 189 - 200.

194. Mollison P.L., Engelfriet C.P., Contreras M. Blood transfusion in clinical medicine. 8th ed. - London: Blackwell Scientific Publication, 1987. - 1033 p.

195. Moog R., Franck V., Pierce J.A., Muller N. Evaluation of a concurrent multicomponent collection system for the collection and storage of WBC-reduced RBC apheresis concentrates // Transfusion. 2001. - V.41, № 9. - P.l 159 - 1164.

196. Moog R., Bartsch R., Muller N. Concurrent collection of in-line filtered platelets and red blood cells by apheresis // Ann. Hematol. 2002. - V.81, №6. - P. 322 - 325.

197. Moore G.L., Hess J.R., Lcdford M.E. In vivo viability studies of two additive solutions in the postthaw preservation of red cells held for 3 weeks at 4°C // Transfusion. 1993. - V.33, № 9. - P.709 - 712.

198. Moroff G., Holme S., Keegan T., Heaton A. Storage of ADSOL-preserved red cells at 2,5° and 5,5° C: comparable retention of in vitro properties // Vox Sang. -1990. V.59, № l.-P. 136- 139.

199. Muylle L., Peltermans M. Effect of prestorage leukocyte removal on the cytokine levels in stored platelet concentrates // Vox Sang. 1994. - V.66, №1. - P. 14 - 17.

200. Muylle L. The role of cytokines in blood transfusion reactions // Blood Rev. -1995. V.9, №2. - P.77 - 83.

201. Muylle L., Wouters E., Peltermans M.E. Febrile reactions to platelet in transfusion. The effect of increased intertleukin 6 levels in concentrates prepared by the platelet-rich plasma method // Transfusion. 1996. - V.36, № 9. - P. 886 - 890.

202. Myhre B.A., Marcus C.S. The extension of 4°C storage time of frozen-thawed red cells // Transfusion. 1992. - V.32, № 3. -P.344 - 348.

203. Nemo G.J., McCurdy P.R. Prevention of platelet alloimmunization // Transfusion.- 1991.-V. 31, №4-P. 584 587.

204. Neppert J. Washing and filtration of blood components: which indications are established? // Beitr Infusionsther. 1993. - V.31. - P. 64 - 69.

205. Nikolov C., Milev A. Method for removing leukocytes and trombocytes from preserved blood and packed red cells // Folia Haematol. 1980. - V. 107, №1. - P. 137- 141.

206. Nordhagen R., Conradi M., Dromtorp S.M. Pulmonary reaction associated with transfusion of plasma containing anti-5b. // Vox Sang. 1986. - V. 51, № 2. - P. 102 -104.

207. Norol F., Bachir D., Bernaudin F. et al. Frozen blood and transfusion-transmittedihepatitis C virus // Vox Sang. 1993. - V. 64, № 2. - P. 150 - 153.

208. Nowak J., Graczyk E., Klos M. Own experiences with resuspended red blood cells concentrates // 5th Regional (4th European) Congress Abstracts, Venezia (Italy), 2nd-5th July 1995.-P. 73.

209. Ohto H., Yasuda H., Noguchi M., Abe R. Risk of transfusion-associated grafit-versus-host disease as a result of directed donations from relatives // Transfusion. -1992.-V. 32,№5.-P. 691 -695.

210. Oksanen K., Kekomaki R., Ruutu T. et al. Prevention of alloimmunization in patients with acute leukemia by use of white cell-reduced blood components a randomized trial // Transfusion. - 1991. -V. 31, № 5. - P. 588 - 594.

211. De Palma L., Luban N.L. Transmission of human T-lymphotrophic virus type I infection to a neonatal infant by transfusion of washed and irradiated red cells // Transfusion. 1993. - V.33, № 7. - P. 582 - 584.

212. Parravicini A., Rebulla P., Apuzzo J., Wens B., Sirchia G. Preparation of leukocyte-poor red cells for transfusion by a simple cost-effective technique // Transfusion. 1984. - V. 24, № 6. P. 508 - 510.

213. Perkins H.A., Payne R., Ferguson J., Wood M. Non-hemolytic febrile transfusion reactions. Quantitative effects of blood components with emphasis on isoantigenic incompatibility of leukocytes //Vox Sang. 1966. - V.l 1. - P. 578 -600.

214. Perkins H.A. Is white cell reduction cost-effective? // Transfusion. 1993. - V.33, №8.-P. 626-627.

215. Pinto V., Telenti M., Palomo C., de Quiros J.F.B. Transfusion associated sepsis caused by Candida parapsilosis // Vox Sang. 2000. - V.79, №1. - P. 57-58.

216. Prince H.E. The significance of T lymphocytes in transfusion medicine // Transfus. Med. Rev. 1992. - V.6. - P. 32 - 36.

217. Ramos R.R., Curtis B.R., Duffy B.F., Chaplin H. Low retention of white cell fragments by polyester fiber white cell-reduction platelet filter // Transfusion. 1994. -V. 34, № 1.-P. 31-34.

218. Rapaille A., Moore G., Siquet J., Flament J., Sondag-Thull D. Prestorage leukocyte reduction with in-line filtration of whole blood. Evaluation of red cells and plasma storage // Vox Sang. 1997. - V.73, № 1. - P. 28 - 35.

219. Rawal B.D., Busch M.P., Endow R., Carcia-de-Lomas J., Perkins H.A., Schwadron R., Vyas G. N. Reduction of human immunodeficiency virus-infected cells from donor blood by leukocyte filtration // Transfusion. 1989. - V.29, № 4. - P. 460-462.

220. Rebulla P. Leukodepletion, methods and current indication: European school of transfusion medicine. Current problems of transfusion medicine in clinical practice. -St.Petersburg (Russia), 6-8 Sept. 1993. - P. 55 - 58.

221. De Rie M., Van der Plas-Van Dalen C.M., Engelfriet C.P. et al. The serology of febrile transfusion reactions // Vox Sang. 1985. - V.49, № 2. - P. 126 - 134.

222. Riggert J., Simson G., Dittmann J., Kohler M. Prestorage leukocyte depletion with in-line filtration of whole blood in comparison with blood component leukocyte depletion // Vox Sang. 1995. - V. 69, № 3. - P. 201 - 205.

223. Riggert J., Schwartz D.W.M., Wieding J.U., Mayr W.R., Kohler M. Prestorage inline filtration of whole blood for obtaining white cell-reduced blood components // Transfusion. 1997. -V. 37, №10. - P. 1039 - 1044.

224. Roback J.D., Hillyer C.D. The role of leukocyte reduction in minimizing the risk of transfusion-transmission of cell-associated infectious agents and immunomodulation: The safety of the blood supply. Baxter Health. Corporation, 1999. - V.2 -P. 28-45.

225. Rot A. Some aspects of NAP-1 pathophysiology: Lung-damage caused by a blood-borne cytokine // Adv. Exp. Med. Biol. 1991. - V.88. - 1362 - 1369.

226. Rugg N., Brantigan B., Gudino M., Giesler R., Greenwalt T. Evaluation of ACD-A/Adsol combination solution for storage and transfusion of red blood cells collected with Mini Autopheresis C system // Transfusion. 1997. - V. 37 (suppl.) - S. 46.

227. Sachs V., Dtirner R., Rehder V. Washed erythrocyte concentrates. A contribution to the problem of the effect of wash procedures and storage time on erythrocytes in the preparation of blood // Infusionstherapie. 1988 - V. 15, № 6. - P. 240 - 243.

228. Sadoff B.J., Dooley D.C., Kapoor V., Law P. et al. Methods for measuring a 6 logio white cell depletion in red cells // Transfusion. 1991. - V. 31, № 2 - P.150 -155.

229. Sakalas V., van Waeg G., Love E. Correlation between nageotte and flow cytometer methods for the estimation of residual white blood cells in leucodepleted platelet concentrates // Transfus. Med. 1996. - № 6. - P. 31.

230. Sally C.D, Brozovic M. Transfusion of red cells // Brit. Med. J. 1990. - V. 300, №6719.-P. 248-252.

231. Schiffer C.A. Prevention of alloimmunization against platelets // Blood. 1991. — V. 77, № 1 -P.l-8.

232. Scornik J.C., Salomon D.R., Howard R.J., Pfaff W.W. Prevention of transfusion-induced broad sensitization in renal transplant candidates // Transplantation. 1989. -V.47.-P. 617-621.

233. Scornik J.C., Brunson M.E., Howard R.J., Pfaff W.W. Alloimmunisation, memory and the interpretation of cross-match results for renal transplantation // Transplantation. 1992. - V.54. - P. 389 - 394.

234. Seeger W., Schneider U., Kreusler B., Witzleben E.V., Walmrath D., Grimminger F., Neppert J. Reproduction of transfusion-related acute lung injury in an ex vivo lung model // Blood. 1990. - V. 76. - P. 1438 - 1442.

235. Serrick C.J., Scholz M., Melo A., Singh O., Noel D. Quality of red blood cells using autotransfusion devices: a comparative analysis // J. Extra Corpor. Technol. -2003. V.35, №1. - P. 28-34.

236. Shoemaker W.C., Wo C.C.J. Circulatory effects of whole blood, packed red cells, albumin, starch, and crystalloids in resuscitation of shock and acute critical illness // Vox Sang. 1998. - V. 74 (Suppl. 2). - P. 69 - 74.

237. Silbert J.A. The storage of washed human erythrocytes in a protein-free medium // Transfusion 1983,-V.23,№ l.-P. 8- 10.

238. Simon T.L., Marcus C.S., Myhre B.A., Nelson E.J. Effects of AS-3 nutrient additive solution on 42 and 49 days of storage of red cells // Transfusion. 1987. -V.27, № 2. - P. 178- 182.

239. Sirchia G., Parravicini A., Rebulla P., Fattori L., Milani S. Evaluation of three procedure for the preparation of leukocyte-poor and leukocyte-free red blood cells for transfusion // Vox Sang. 1980. - V.38, № 4. - P. 197 - 204.

240. Skripchenko A., Wagner S.J. Inactivation of WBCS in RBC suspensions by photoactive phenothiazine dyes: comparison of dimethylmethylene blue and MB // Transfusion 2000. - V.40. - P. 970 - 975.

241. Smith K.J., Sierra E.R., Nelson E.J. Histamine IL-lp and IL-8 increase in packed RBCs stored for 42 days but not in RBSs leukodepleted pre-storage // Transfusion. -1993.-V.33 (Suppl.).-S.202.

242. Smith J.D., Leitman S.F. Filtration of red cell units: effect of storage time and temperature on filter performance // Transfusion. 2000. - V.40. - P.521 - 526.

243. Stack G., Snyder E.L. Cytokine generation in stored platelet concentrates // Transfusion. 1994. - V.34, №1. - P. 20 - 25.

244. Standards Committee of the American Association of Blood Banks: Standards for Blood Banks and Transfusion Services. ed.17. - Bethesda, American Association of Blood Banks, 1996. -p.13.

245. Standards for blood banks and transfusion services / ed. Menitove J.E. American Association of Blood Banks, 1999.

246. Strauss D., Stark E., Seidel B. Gewaschenes erytrozytenkonzentrat, reinheitsgrad und zellivitalitat // Z. Ges. Inn. Med. 1981. - V.36, № 13. - P. 443 - 448.

247. Strauss D., Shannon J.A., Sepulveda P.S., Holland P.V. Comparison of two preparation techniques for white cell-poor red cells // Transfusion. 1988. - V. 28, №5.-P. 507-508.

248. Takahashi K., Juji T., Miyazaki H. Post-transfusion graft-versus-host disease occurring in non-immunosuppressed patients in Japan // Transfus. Sei. 1991. - V. 12.- P.281 -284.

249. Toth C.B., Kramer J., Pinter J., Thek M., Szabo J.E. IgA content of washed red blood cell concentrates // Vox Sang. 1998. - V.74, № 1. - P. 13 - 14.

250. Tsiroyianni P., Politis C., Malliari K., Richardson C., Katiforis E. Laboratory evaluation of the new pre-storage filter system Leukotrap R.C. and W.B. // Infusionsther Transfiisionsmed. 1997. - V.24. - P.284.

251. Usry R.T., Moore G.L., Manalo F.W. Morphology of stored, rejuvenated human erythrocytes //Vox Sang. 1975. - V.28, №2. - P. 176 - 183.

252. Valeri C.R., Pivacek L.E., Cassidy G.P., Ragno G. The survival, function, and hemolysis of human RBCs stored at 4 degrees C in additive solution (AS-1, AS-3, or

253. AS-5) for 42 days and then biochemically modified, frozen, thawed, washed, and stored at 4 degrees C in sodium chloride and glucose solution for 24 hours // Transfusion. -2000. -V.40,№ 11. -P. 1341 1345.

254. Valeri C.R., Pivacek L.E., Cassidy G.P., Ragno E.G. 24-hour 5!Cr post-transfusion survival, 5lCr life span and haemolysis of red blood cells stored at 4°C for 56 days in AS-3 // Vox Sang. 2001. - V.80, № 1. - P. 48 - 50.

255. Valeri C.R., Pivacek L.E., Cassidy G.P., Ragno G. In vitro and in vivo measurements of gamma-radiated, frozen, glycerolized RBCs // Transfusion. 2001. -V.41, № 4. - P. 545-549.

256. Vamvakas E.C. Transfusion-associated cancer recurrence and postoperative infection: meta-analysis of randomized, controlled clinical trials // Transfusion. -1996. V.36, № 2. - P. 175 - 186.

257. Vogelsang G.B. Transfusion-associated graft-versus-host disease in nonimmuno-compromised hosts // Transfusion. 1990. - V. 30, № 2. - P. 101 - 103.

258. Wagner S.J., Skripchenko A., Robinette D., Mallory D.A. Preservation of red cell properties after virucidal phototreatment with dimethylene blue // Transfusion. -1998. V.38, №8. - P.729 - 737.

259. Walker R.H. Special report: transfusion risk // Am. J. Clin. Phatol. 1987. - V.88. -P. 374-378.

260. Walter R., Brand B., Mark M., Schnyder L. et al. Effects of leucocyte depletion on rheologic properties of CPDA-1 blood // Vox Sang. 2000. - V.79. - P.151 - 155.

261. Watering L.M.G., Houbiers J.G.A., Hermans J., Harvey M.S., Bouter H., Boer F., Huysmans H.A., Brand A. Leukocyte depletion reduces postoperative mortality in patients undergoing cardiac surgery // Vox Sang. 1996. - V.70 (S.2). - P. 37.

262. Wegener S., Barz D., Schunemann M., Obereder H. Removal of cytomegalovirus DNA from donor by prestorage leukocyte depletion of red cell concentrates with inline filtration // Vox Sang. 1998. - V.74, SI. - Pos. 1278.

263. Weisbach V., Wanke C., Zingsem J. et al. Cytokine generation in whole blood, leukocyte-depleted and temporarily warmed red blood cell concentrates // Vox Sang. -1999. V.76, № l.-P. 100-106.

264. Wenz B., Apuzzo J.H., Ahuja K. The preparation of leukocyte-poor red cells from liquid stored blood: on evaluation of the Haemonetics-102 cell washing system // Transfusion. 1980. - V.20, № 3. - P. 306 - 310.

265. Wenz B. Microaggregate blood filtration and febrile transfusion reaction. A comparative study // Transfusion. 1983. - V. 23, № 2. - P. 85 - 98.

266. Wenz B. Clinical and laboratory precautions that reduce the adverse reactions, alloimmunization, infectivity, and possibly immunomodulation associated with homologous transfusion // Transfus. Med. Rev. 1990. - № 4. - P. 3 - 7.