Научные основы индуцированного синтеза алкалоидов в клеточной культуре CATHARANTHUS ROSEUS L.(DON) тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.00.23, доктор технических наук Величко, Надежда Александровна

• Величко, Надежда Александровна
• доктор технических наук
• 2004

Оглавление диссертации доктор технических наук Величко, Надежда Александровна

ВВЕДЕНИЕ

Глава 1 .Культура клеток и тканей растений - как источник биологически активных соединений

1.1 .Каллусная ткань в изолированной культуре

1.2.Вторичный метаболизм в растениях in vivo и in vitro

1.2.1 .Продукты вторичного метаболизма в культуре ткани Catharanthus roseus L.

1.3.Условия и способы культивирования растительных клеток и синтез биологически активных веществ

1.3.1. Физико-химические факторы среды 20 1.4.Элиситоры как индукторы вторичного метаболизма в клеточной культуре ткани

1.4.1 .Механизмы воздействия элиситоров на биосинтетические способности растительной клетки

1.4.2.Воздействие элиситоров на регуляцию метаболизма алкалоидов 47 1.5.Способы культивирования и их влияние на вторичный синтез в культуре ткани 59 1.5.1 .Культивирование интактных растений 5 9 1.5.2.Глубинное культивирование клеток растений в жидкой питательной среде (суспензионные культуры) 60 1.5.3 .Культивирование иммобилизованных клеток 62 Выводы

Глава 2.0бъект и методы исследования 68 2.1 .Объект исследования

2.2.Введение в культуру Catharanthus roseus L.

2.3.Получение каллусных тканей Catharanthus roseus L.

2.4.Получение суспензионной культуры

2.5.Иммобилизация тканей Catharanthus roseus L. на инертный носитель

2.6.Методы оценки физиологического состояния культуры

2.7.0пределение содержания тяжелых металлов

2.8.Элиситоры в качестве биотического воздействующего фактора в культуре ткани Catharanthus roseus L.

2.9.Определение содержания протеина в каллусных тканях Catharanthus roseus L.

2.10.0пределение флавоноидов в каллусной ткани Catharanthus roseus L.

2.11. Определение сапонинов

2.12.Количественное определение свободных аминокислот 82 2.13.Определение суммарного содержания алкалоидов 83 2.14.Разделение алкалоидов Catharanthus roseus L. высокоэффективной жидкостной хроматографией

2.15.Определение содержания хлорофилла

2.16.Определение ферментативной активности ферментов шикиматного пути хинатдегидрогеназы и шикиматдегидрогеназы

2.17,Определение химического состава плодового тела гриба Pleurotus ostreatus (Fr Kumm)

2.18.Методы исследования водных экстрактов древесной зелени

2.19.Культивирование дереворазрушающего высшего гриба Pleurotus ostreatus (Fr. Kumm) на послеэкстракционном остатке каллусной ткани Catharanthus roseus L.

ГлаваЗ .Введение в культуру Catharanthus roseus L. 93 3.1 .Получение интактных стерильных растений Catharanthus roseus L. в культуре in vitro

3.2.Получение каллусной ткани и суспензионной культуры Catharanthus roseus L.

3.3.Влияние физико-химических параметров на процессы роста и развития каллусной ткани Catharanthus roseus L. 110 3.3.1.Влияние уровня освещенности на процессы роста и развития каллусной ткани Catharanthus roseus L.

3.3.2.Влияние концентраций сахарозы на рост и развитие каллусной ткани Catharanthus roseus L.

3.3.3.Влияние инозита и гидролизата казеина на рост ткани и накопление алкалоидов

3.3.4.Влияние гормонального состава среды на рост и развитие каллусной ткани Catharanthus roseus L.

3.3.5.Влияние модуляторов вторичного метаболизма на активности ключевых ферментов шикиматного пути

3.3.6.Влияние минерального состава среды на рост и структуру каллусной ткани Catharanthus roseus L.

3.3.7.Влияние фосфатного компонента на рост каллусной ткани и накопление алкалоидов

Глава 4.Способы получения клеточной культуры Catharanthus roseus L. 165 4.1 .Суспензионная культура Catharanthus roseus L.

4.2.Иммобилизация каллусной ткани Catharanthus roseus L. на пенополиуретановые пластины

4.3.Влияние способа культивирования на рост и развитие каллусной ткани Catharanthus roseus L.

Глава 5.Влияние элиситоров различной природы на биосинтетическую способность клеточной культуры Catharanthus roseus L.

5.1.Динамика роста и накопление индольных димерных алкалоидов в клеточной культуре Catharanthus roseus L. под действием элиситоров мицелиальных, дрожжевых грибов и хвойных экстрактов

5.2.Качественный и количественный состав свободных аминокислот в каллусной ткани Catharanthus roseus L.

5.3.Содержание биологически активных веществ в каллусной ткани Catharanthus roseus L. после элиситации

5.4.Активность ферментов шикиматного пути

5.5.Химический состав плодового тела гриба Pleurotus ostreatus

Fr. Kumm)

5.6.Состав водных экстрактов древесной зелени сосны

5.7.Питательная среда на основе хвойного водного экстракта сосны

Глава б.Проблема регуляции и стратегии контроля процессов вторичного синтеза в культуре in vitro

Глава 7.Технология получения алкалоидов из растительного сырья 237 7.1.Технологический процесс получения каллусной ткани и алкалоидов из каллусной ткани Catharanthus roseus L. 238 7.2.0птимизация процесса извлечения алкалоидов из каллусной ткани Catharanthus roseus L. 242 7.2.1.Химический состав каллусной ткани Catharanthus roseus L. после культивирования дереворазрушающего гриба Pleurotus ostreatus

Fr Kumm)

ВЫВОДЫ

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Научные основы индуцированного синтеза алкалоидов в клеточной культуре CATHARANTHUS ROSEUS L.(DON)»

Растительная клетка - уникальный источник ценных биологически активных веществ разной химической природы, которые обладают не только широким спектром лечебного действия, но и применяются в парфюмерии, пищевой промышленности, сельском хозяйстве. Химические аналоги данных веществ, как правило, содержат сопутствующие примеси, проявляющие негативное действие на организм человека и животных. Кроме того, многие специфические биологически активные вещества, такие как алкалоиды, являются продуктами отдаленного синтеза у растений и их искусственное получение затруднено в связи с многостадийностью процесса, низким выходом основного продукта и его дороговизной [1,2].

Поиск альтернативных источников и разработка методов получения биологически активных веществ растительного происхождения, по эффективности сопоставимых или превосходящих использование традиционного сырья определяет актуальность этой проблемы. Одним из таких методов является культура клеток и тканей растений in vitro.-Культивируемые клетки высших растений способны синтезировать традиционно используемые продукты растительного происхождения, создавать принципиально новые вещества, трансформировать дешевые предшественники в ценный продукт. Преимуществами данного метода является возможность получения продукта независимо от внешних климатических, почвенных условий, круглогодично и сохраняя при этом естественные ареалы ценных лекарственных растений [3,4,5].

Основной проблемой метода культуры тканей и клеток высших растений в аспекте получения ценных вторичных метаболитов является низкий конечный выход продукта. Это обусловлено тем, что в условиях in vitro клетки выходят из-под организменного контроля, присущего целому растению, и образуют специфическую биологическую систему с иной, чем в целом организме "сверхзадачей". Актуальным при использовании культур тканей и клеток высших растений с целью получения ценных вторичных веществ является поиск условий, при которых обеспечивался бы оптимальный рост и оптимальное содержание вторичных веществ в биомассе. Основными факторами, регулирующими эти процессы в культуре in vitro, являются искусственные регуляторы роста и способы культивирования тканей и клеток.

Роль искусственных регуляторов роста в процессах деления клеток in vitro изучена достаточно глубоко. Однако, существенное влияние на выбор вида регулятора, его концентрации оказывает видовая принадлежность, генотип, а также эпигенетические факторы [6]. Поэтому подход к каждой конкретной культуре остается эмпирическим. Данные по влиянию регуляторов роста на процессы вторичного синтеза в разных культурах весьма противоречивы. Этот вопрос требует дальнейшего серьезного изучения [7].

Применение того или иного способа культивирования существенным образом определяет как скорость роста биомассы, так и интенсивность биосинтетических процессов. Традиционные методы культивирования (поверхностное и глубинное) имеют ряд существенных недостатков. Иммобилизация клеток на инертный носитель является перспективным подходом для биотехнологического использования культур высших растений. Преимуществами создаваемых клеточных культур по сравнению с традиционным растительным сырьем (дикорастущие или выращиваемые на плантациях растения) являются: 1) получение продукта независимо от внешних климатических, почвенных условий и возможность культивирования клеток тропических растений; 2) оптимизация и стандартизация условий выращивания; 3) перспективы полной автоматизации и компьютеризации процессов.

Культивирование тканей и клеток высших растений in vitro (в частности Catharanthus roseus L. Don) с целью их промышленного использования для получения соединений специализированного обмена определяет актуальность данного исследования.

Заключение диссертации по теме «Биотехнология», Величко, Надежда Александровна

1 .Разработана концепция направленного синтеза алкалоидов в клеточной культуре Catharanthus roseus L. в условиях in vitro, позволяющая повысить эффективность биотехнологического производства.2.Установлено влияние минерального состава среды на процессы приживаемости, роста и регенерации введенных in vitro эксплантов.«Пассивное» снижение минеральных компонентов среды коррелирует с получением маточных стерильных укорененных интактных растений Catharanthus roseus L. в условиях in vitro,

3.Разработаны методы получения быстрорастущих клеточных линий Catharanthus roseus L. способных к вторичному синтезу.4.Установлены закономерности формирования и развития каллусной ткани Catharanthus roseus L. в зависимости от типа экспланта и его локализации в интактном растении. Показано, что наиболее высокой была инициация каллусообразования из почек Catharanthus roseus L. на средах, содержащих а НУК и 6-БАП (10 мг/л и 1 мг/л соответственно).5.Образование индольных димерных алкалоидов в тканях Catharanthus roseus L.зависит от структуры ткани. Формирование индольных димерных алкалоидов происходит в эмбриогенном каллусе, рост и развитие которого определяется в свою очередь сбалансированным гормональным составом питательной среды.Гормональный состав среды, содержащей а-НУК и 6-БАП (10 и 1 мг/л) соответственно, обусловливает не только быстрый рост ткани, но и накопление индольных димерных алкалоидов.б.Определено влияние углеводного компонента на структуру, цвет каллусной ткани, накопление биомассы и алкалоидов. Полученные результаты позволили сформировать культуру Catharanthus roseus L. с требуемыми характеристиками и повышенным содержанием алкалоидов.7.Дана оценка воздействия органических добавок (гидролизата казеина,

мезоинозита) на тканевый эмбриогенез и характер структурной организации клеточной культуры Catharanthus roseus L.8.Установленая отрицательная корреляционная связь между содержанием протеина и алкалоидов свидетельствует о том, что протеин расходуется на поддержание роста и образование эмбриоидных структур.Накопление алкалоидов связано с процессами дифференциации каллусной ткани и образованием соматических эмбриоидов.9.Показано влияние минерального состава среды на рост, цвет, структуру каллусной ткани Catharanthus roseus L. Увеличение концентрации микроэлементов цинка, магния, марганца, бора в два раза стимулировало рост и способствовало образованию структурированной ткани с повышенным содержанием эмбриоидов.10. Для поддержания активного роста эмбриогенного каллуса Catharanthus roseus L. и высокого синтеза индольных димерных алкалоидов наилучшим является поверхностный способ культивирования иммобилизованной на пенополиуретан ткани, что обеспечивает увеличение выхода винкристина.11 .Впервые были использованы для повышения биосинтетического потенциала экстракты хвойных пород Сибири и элиситор из плодового тела дереворазрушающего гриба Pleurotus ostreatus. Реакция элиситации вызывала активный синтез винкристина в каллусных культурах Catharanthus roseus L. Во всех вариантах его концентрация была выше, чем в контроле. Наиболее эффективно влияние элиситора из плодового тела дереворазрушающего гриба Pleurotus ostreatus. Максимальное накопление алкалоидов наблюдали при культивировании с 0,5 %-ным экстрактом гриба, что позволило увеличить выход винкристина в 6,1 раз.12.0пределены условия извлечения алкалоидов из каллусной ткани Catharanthus roseus L.13.Интенсивный синтез алкалоида обеспечивается активацией шики-матного пути, по которому синтезируются его предшественники. Показано, что разные факторы приводят к координированному повышению активности ферментов фенилпропаноидного метаболизма. Установлено активируюш;ее действие элиситоров на работу ключевых ферментов шикиматного пути. Использование ингибиторов и модуляторов активности ферментов вторичного метаболизма позволяет перераспределить предшественники с первичных метаболических путей на вторичный синтез.14.0пределены основные пути регуляции и стратегии контроля процессов вторичного синтеза в культуре ткани Catharanthus roseus L.15.Разработана технологическая схема получения индольньпс димерных алкалоидов из каллусной ткани Catharanthus roseus L.1 б.Метод культивирования in vitro эмбриогенной каллусной ткани Catharanthus roseus L. позволяет получать индольные димерные алкалоиды в количествах сопоставимых с интактными растениями, при сохранении природных популяций.

Список литературы диссертационного исследования доктор технических наук Величко, Надежда Александровна, 2004 год

1. Альферман А.И. и др. Пер. с англ. В.И. Негрука Биотехнология сельскохозяйственных растений. М.:Агропромиздат, 1987. 5-7.

2. Бутенко Р.Г. Клеточные технологии для получения экономически важных веществ растительного происхождения //Культура клеток растений и биотехнология. М.: Наука, 1986. 3-28. З.Бутенко Р.Г. Культура тканей и физиология морфогенеза растений. М.: Наука, 1964.-272с.

3. Бутенко Р.Г. Культура тканей и клеток растений. М.: Знание. 1971.- 46с. З.Бутенко Р.Г. Экспериментальный морфогенез в культуре клеток растений. М.: Наука, 1975.-87с. б.Гамбург К.З., Рекославская Н.И., Швецов Г. Ауксины в культурах тканей и клеток растений. Новосибирск: Наука. Сиб.отд-ние.- 1990. 243с. 7.3апрометов М.Н. Вторичный метаболизм в культурах клеток и тканей растений //Культура клеток растений. М.: Наука, 1981.- З7-51.

4. Fuller M.W. Chemicals from plant cell cultures some biochemical and physiological pointers //Chemistry and industry.- Oxford 1984.- Vol.23.- P.825833.

5. Гаммерман А.Ф., Кадаев Г.Н., Яценко-Хмелевский A.A. Лекарственные растения: Справ, пособие 4-е изд. М.: Высшая школа, 1990. -543 с. Ю.Крендель Ф.П. ЬСлеточная биотехнология, как экологический принцип охраны лекарственных растений //«Экологические аспекты в фармации»:Тез. док. Междунрод. симп. М 1990. 64. И.Черепанов К. Сосудистые растения России и сопредельных государств. С Пт., 1995.-990 с.

6. Вольф Э.К. Быстрая оценка «горячих точек» Зеленый мир.- 1995.- №24. 14-15. 1 З.Бутенко Р.Г. Культура изолированных клеток и тканей в решении задач физиологии растений //Новые направления в физиологии растений. М.: 252

7. Бутенко Р.Г. Рост и дифференциация в культуре клеток растений Рост растений и природные регуляторы. М.: Наука, 1977. 697-710 1 З.Глеба Ю.Ю. Биотехнология растений /«Биология клеток растений in vitro, биотехнология и сохранение генофонда»: Тез.докл.7-ой Международ, конф. Москва, 1997.- 6-7.

8. Виестур У.Э., Шмите И.А., Жилевич А.В. Биотехнология. Рига: Зинатне, 1987.-257с.

9. Бутенко Р.Г. Клеточная инженерия. М.: Наука, 1987. 122 с.

10. Муромцев Г.С, Чекаников Д.И., Кулаева О.Н., Гамбург К.З. Основы химической регуляции роста и продуктивности растений. М.: Агропромиздат, 1987.-С.316-322.

11. Бутенко Р.Г. Физиология клеточных культур, состояние и перспективы //Физиология растений. 1978. Т.25.-№5.-С.1009-1024.

12. Бутенко Р.Г. Экспериментальный морфогенез в культуре клеток растений. М.: Наука, 1975.-87 с.

13. Машкина О.С, Табацкая Т.М., Стародубцева Л.М. Эффект длительного черенкования in vitro для массового размножения березы и тополя «Биология клеток растений in vitro, биотехнология и сохранение генофонда»: Тез. докл. 7ой Международ. Конф. Москва, 1997.- 437-438.

14. МомотТ.С.Технология изолированных культур для микроразмножения лесных древесных растений //Тез. докл. 7-ой Международной конференции «Биология клеток растений in vitro, биотехнология и сохранение генофонда». Москва, 1997. -С.441-442.

15. Нечаева М.Ю., Бурдаева Л.М. Опыт введения в культуру in vitro омоложенного селекционного материала дуба чешуйчатого. //«Биология клеток растений in vitro, биотехнология и сохранение генофонда»: Тез. докл. VII. Международ, конф. Москва, 1997.- 447-448. 253

16. Кучеренко Л.А. Подходы к разработке технологии массовой регенерации растений in vitro /Биология культивируемых клеток и биотехнология растений. М.: Наука, 1991. 232-235.

17. Аветисов Л.А,, Горбунов А.Б., Клюева Г.Э. Создание коллекции сортов и форм клюквы методом клепального микроразмножения //«Биология клеток растений in vitro, биотехнология и сохранение генофонда»: Тез. докл. VII. Международ, конф. Москва, 1997. 391-392. 27.ВЫСОЦКИЙ В.А. Регенерационная способность изолированных меристематических верхушек черной смородины и вишни и методы получения из них целых растений. Л.: ВИР, 1978.-С.28-34.

18. Биотехнология. Принципы и применение /Г.Бич Д.Бест К.Брайерли и др.: Пер. с англ. Под ред.И.Хиггинса М.: Мир, 1988. 480 с.

19. Глеба Ю.Ю., Сытник К.М. Клеточная инженерия растений. Киев.: Наукова думка, 1984.- 160 с. ЗО.Запрометов М.Н. Фенольные соединения: Распространение, метаболизм и функции в растениях. М.: Наука, 1993. 272 с. ЗО.Шамков Н.В., Зайцева Г.В., Белоусава Н.М., Отработка режимов культивирования клеток женьшеня на опытно-промышленной установке. Омутинский химический завод //Биотехнология. -1992.№1.- 384-386.

20. Yeoman М.М., Miedzybrodzka М.В., Lindey К., McLauchlan W.R. The synthetic potential of cultured plant cell //Plant cell cultures: Result and perspectives. Amsterdam ets.: Elsevier, 1980.- P.327-344.

21. Чулафич Л. Клональное микроразмножение диоскореи балканской эндемичного вида флоры Югославии //Биология культивируемых клеток и биотехнология растений. М.: Наука, 1991.- 209-213.

22. Steinitz В., Lilien-Kipnis Н. Control of preococious gladiolus com and cormel formation in tissue culture. //J.Plant Physiology. 1989. Vol. 135. P.495-500. 254

23. Gautheret R.J. Culture du tissue cambial //C.R.Acad. Sci., 1934. D.I98. №24.P.2195-2196.

24. Бутенко Р.Г. Рост и дифференциация в культуре клеток растений Рост растений и природные регуляторы. М.: Наука, 1977.-C.6-21.

25. Кубалакова М., Гавел Л. Использование культур тканей в процессе селекции у Lilium L. //Биология культивируемьк клеток и биотехнология растений. М.: Наука, 1991.-С.206-209.

26. Скрипаченко В.В. Культивирование in vitro тканей хвойных Сибири: Автореф.дис.канд.биол. наук. -Красноярск, 1992. 30 с.

27. Olsozowska О., Furmanowa М. Micropropagation of Culuria geoides by axillary shoots //Plantamed.- 1986. -Vol. 52.- P.521 -524.

28. Pamawat K.G. Raj Gansali R., Arya H.C. Soot formation in Catharanthus roseus callus culture //Curr. Sci,-1978.- Vol. 47. P.93-94. 42.ДИКСОН P.A. Изолирование и поддержание каллусньк и суспензионньк культур клеток //Биотехнология растений: культура клеток. М.: Агропромиздат, 1989.-C.8-31.

29. Носов A.M. Регуляция синтеза вторичных соединений в культуре клеток растений //Биология культивируемых клеток и биотехнология растений. М.: Наука, 1991.-С.5-20.

30. Fuller K.V. Chemicals from plant cell cultures some biochemical and physiological pointers //Chemistry and industry. Oxford, 1984.- Vol. 23.- P.825-833.

31. Alfermann A.W. Syntheses by plant cells //Biocatalysts in organ syntheses. Netherlands, 1985. P.225-238.

32. Tsuyoshi E. Alkaloid production in root and soot cultures of Catharanthus roseus //Planta med.-1987. -Vol. 53. 5. P.479-482. 255

33. Shuler M.L. Production of secondary metabolites from plant tissue culture problem and perspectives //Ann NY Acad Sci..- 1981.- Vol.369.- P.65-79.

34. Morris P., Rudge K., Cresswell R., Fowler M.W. Regulation of product synthesis in cell cultures of Catharanthus roseus. V Long-term maintenanance of cells on a production medium //Plant cell, tissue and organ culture. -1989. Vol. 17.- 2.C.79-90.

35. Bailey СМ., Nicholson H., Stafford A., Smart NJ. Catharanthus roseus L.Don. A model for the biosynthethsis of indol alkaloids by cell suspensions //Appl. Biochem. Biotechnol.- 1986.- Vol 12.-№ 3.- P.215-227.

36. Бузук Г.Б., Ловкова М.Я Метаболизм алкалоидов: регуляция на молекулярном уровне, пространственная организация //Прикладная биохимия и микробиология.- 1995.-Т. 31.-№ 5.- 467-479.

37. Гудвин Т., Мерсер Э. Введение

38. Мецлер Д. Биохимия. Химические реакции в живой клетке. М.: Мир. 1980.-Т. 3.-487 с.

39. Лекарственные средства: свойства, применение, противопоказания: Справочник /Под ред. Клюева М.А. М.: Русская книга, 1993. 576 с.

40. Misawa М. Production of useful metabolites by plant tissue culture Biomass Convers. Technol. Prinsiples and Pract. -1987.- P. 193-199. 256

41. Berlin J., Mollenschott C DiCosmo F. Comparison of various strateggies designed to optimize indole alkaloid accumulation of cell suspension culture of Catharanthus roseus //Naturforesch..- 1987.- Vol.42. 9.- p.i 101-1108.

42. Yoshida F., Kohono H. Regulations of mineral and especially nitrogen nutrition to growth rate of plant cell cultures //Plant cell culture.- 1987. -Vol. 4.- 2- P.53-59.

43. Simpson A.P., Kelly S.L. Cytochrome P-450 inducer/inhibitor effects on cell cultures of Catharanthus roseus Plant Sci. Vol.50, 2.- P.231-236.

44. Kochs G., Welle R., Grisebach H. Differential induction of enzyme in soybean cell cultures by elicitor or osmotic stress J. Planta. 1987. Vol. 171- 4. P.519524.

45. Ukajai Т., Aschihara H. Changes in levels of cellular components in suspension culture of Catharanthus roseus associated with inorganic phosphate depletion /Naturforesch.- 1986.-Vol. 41.-№ 11-12.-P.1045-1051.

46. Goodchild J., Givan C. Influence of ammonium and extracellular pH on the amino and organic acid contents of suspension culture cell of Aser pseudoplatanus //Phisiol. Plant. 1990. 78.- №1.- P.29-37. бб.Савина T.A. Изучение поглощения азота, фосфора, калия суспензион-ной культурой Стефании гладкой Тр. 9 Конф. молод, ученых НПО ВНИИ лекарств, раст. Москва 1989. 139-143.

47. Носов A.M., Пауков В.Н., Бутенко Р.Г. Физиологическая регуляция синтеза стероидов культурой клеток диоскореи дельтовидной //Культура клеток растений и биотехнология. М.: Наука, 1986.- 76-79.

48. Носов A.M. Функции вторичных метаболитов растений in vivo и in vitro //Физиология растений.- 1994.- Т.41. 6. -С.876-878. 69.3апрометов М.Н. Фенольные соединения и их роль в жизни растениия. М.: Наука, 1996. 56 с.

49. Brodelius Р., Linsefors L. Immobilised plant cell in plant hormone studies Symp .Young Scl .Phisiol and biochim Plants. 1987. 4.14.- 16 p. 257

50. Morris Р. Regulation of production synthesis in cell culture of Catharanthus roseus. Alkaloid metabolism in cultured leaf tissue and primary callus //Planta med.1986.-№2.-P.127-132.

51. Dalton C.C, Peel E. Product formation and plant cell specialization: A case of photosynthetic development in plant cell cultures //Progr.Indust. Microbiol.- 1983. Vol.17.-P.109-166.

52. Гудвин Т., Мерсер Э. Введение

53. Карначук Р.А., Протасова Н.Н., Добровольский М.В. Физиологическая адаптация листа левзеи к спектральному составу света //Физиология растений.1987.-Т.34.-С.51-59. 76.3агоскина Н.В. Особенности метаболизма фенольных соединений гетеротрофных и фотомиксотрофных каллусных культур чайного растения (Camellia sinensis L.):Автореферат дисс.. .докт биол.наук, 1997.- 49 с.

54. Tsuyoshi Е., Goodbody А., Masanaru М. Alkaloid production in root and shoot cultures of Catharanthus roseus //Planta med.- 1987.- Vol.53.-№ 5.- P.778-482.

55. Генкель Г.А, Физиология растений с основами микробиологии. М.: Мир, 1988. 463 с.

56. Лебедев СИ. Физиология растений.- М.: Колос. 1982.- 463 с.

57. Биологическая роль микроэлементов и их применение в сельском хозяйстве и медицине /Под ред. Я.В.Пейве. М.: Наука, 1974. 438 с.

58. Грин П., Стаут У., Тейлор Д. Биология В 3-х т. /Пер. с англ.. под ред. Р.Сопера. М.: Мир, 1990. 368 с.

59. Hiroshi А, Xiao Ni, Toshibo U. Effect of inorganic phosphatebon the cultuvated cells of biosynthesis of pyramiding nucleotides in suspension Catharanthus roseus.//Ann bot.- 1988.-Vol.61. №2.- P.225-232. 258

60. Метаболизм алкалоидов: регуляция на молекулярном уровне /О. А. Заботина, О. Г. Мурьянов и др.//Физиология растений. 1995. Т. 31, №5-С. 467 479.

61. Бузук Г.Н. Влияние микроэлементов на биосинтез алкалоидов Растительные ресурсы. 1986. Т.22. №2. 272-279.

62. Курсанов А.Л. К вопросу о регулировании белкового обмена в живой растительной клетке //Синтез органических веществ и роль витаминов в растениях. М.: Изд-во АН СССР, 1940. 45-49.

63. Гринкевич Н.И., Сорокина А.А. Роль геохимических факторов среды в продуцировании растениями биологически активных веществ //Биологическая роль микроэлементов. М.: Наука, 1983. 187-191

64. Гринкевич Н.И., Ловкова М.Я., Бузук Г.Н. Изучение биогенеза алкалоидов Glaucium flavum crantz и путей его регуляции //Растительные ресурсы. 1982, №3. 367-372.

65. Щигельский 0,А., Воллосович А.Г., Ященко В.К. Влияние меди и марганца на биосинтез алкалоидов в культуре изолированной ткани Rauwolfia serpentina Benth. //Растительные ресурсы. 1974, Т,10, №4, 563-566.

66. Ддров Б.Н,, Дмитрук У., Батурин В.Г. Влияние меди, марганца и кобальта на продуктивность культуры изолированной ткани Datura Innoxia Mill, //Растительные ресурсы, 1978, Т,14, №3, С,408-411, 92,Ловкова М,Я,, Бузук Г,Н,, Сабирова Н,С, Фармакогностическое изучение мачка желтого //Фармация. 1987. №5. 31-34. 259

67. Мироненко А.В. Влияние микроэлементов на накопление алкалоидов и продуктивность люпина //Биохимия люпина. Минск.: Наука и техника, 1975. С 174-192.

68. Регуляция минерального питания и продуктивность растений Е.С.Ткачук, Л.М.Кузьменко, В.Ф.Нижко и др.; Отв.ред. Л.К.Островская; АН УССР, Ин-т физиологии растений и генетики. Киев.: Наукова думка, 1991. 172 с.

69. Ковальский В.В., Гринкевич Н.И., Грибовская И.О. Геохимическая экология лекарственных растений //Биологическая роль микроэлементов и их применение в сельском хозяйстве и медицине. М Наука, 1974. 150-156.

70. Гудков И.Н. Регуляция поступления и транспорта элементов минерального питания в растении //Регуляция минерального питания /Отв. ред. И.Тома Кишинев: Штиинца, 1989. 3-25.

71. Бузук Г.Н. Влияние микроэлементов на биосинтез алкалоидов. Растительные ресурсы.- 1986.- Т.22. 2 272-279.

72. Биотехнология растений культура клеток. Пер. с англ./Г.П.Болвелл К.К.Вуд, Р.А.Гонзалес и др.-М., 1989. 280 с. ЮО.Эргашев А.К., Ефимков В.А. Шелковица как объект в биотехнологических исследованиях Биология культивируемых клеток и биотехнология растений. М.: Наука, 1991.-С.36-39.

73. Нойман К.Х. фотосинтез и фотоавтотрофные культуры растительных клеток //Биология культивируемых клеток и биотехнология растений. М.: Наука, 1991-С.56-75.

74. Drew S.W., Demain A.L. Effect of primary metabolites on secondary metabolism. //Annual revies of microbiology.- I990.-Vol. 31.- P.346-356.

75. Kodja H., Liu D., Merillon J-M. et all. Stimulation par les suspensions cellulaires de Catharanthus roseus //Acad. Sci Ser.-1989. -Vol.3 10. P.453-458. 260

76. Morris P.Regulation of product synthesis in cell culture of Catharanthus roseus Cimparison of production mtdia //Planta med.- 1986.- №2. P. 121-126.

77. Veropoorte R., Hejden R Hoge J. H., Yoopen Y. J. Plant cell biotechnology for the production of secondary methabolites //Pure and Appl. Chem.-1994.- Vol.10. -P.2307-2310.

78. Merillon J-M.. Ouelhazi L., Dorireau P., Chenieux J-C, Rideau M. Methabolic changes and alkaloid production in habituated and non- habituated cells of Catharanthus roseus grown in hormon-free medium. Comparing hormone-deprived nonhabituated cells with habituated cells. //J. Plant physiol.- 1989. Vol.134.- №1. P.54-60.

79. Seitz H.U., Eilert U., De Luca V., Kurtz W.G.W. Eliscitor-mediated induction phenylalanine ammonia lyase and triptophan decarboxilase: Accumulation of phenols and indole alkaloids in cell suspension culture of Catharanthus roseus. Plant cell, tissue and organ culture. -1989.- Vol.18.- 1.- C.71-78.

80. Aldington S. and Frusc /Advances in Botanical Research.- 1993. Vol.19. -P.l101. llS.Liskova D., Auxtova O., Kakoniova D., Kubacrova M., Karacsonyis and Bilisics //Planta.-1995.- Vol.196.- P. 425-429.

81. ColeF and HahnM//Plant Mol. Biol. 1994.-Vol .26.-P. 1379-1411.

82. Ракитин В.Ю., Долгих Ю.И., Шайкина С Ю Кузнецов В.В. Ингибирование олигосахаридом синтеза этилена и стимуляция соматического эмбриогенеза в культуре клеток хлопчатника. //Физиология растений.- 2001. Т.48.- №5.С.728-732.

83. Тарчевский И.А. Элиситор индуцируемые сигнальные системы и их взаимодействие. //Физиология растений.- 2000. -Т.47.- №2.- 321-331. 122.3аботина 0.,Аюпова Д., Гурьянов О., Ибрагимова Н., Николаева О., Федина Е.,Торощанина Т., Заботин А. Биоактивные растительные олигосахариды: структура и функции //Тез.докл. Всероссийской конф."Химия и технология растительных веществ". Сыктывкар. 2000.- 65-66. 262

84. Increased secondary product formation in plant cell culture after treatment with carbohydrate preparation /G. Funk, P. Brodelius Phytochemistry. 1987. Vol. 26. P 401-405. 126.0зерцковская О.Л., Переход E.A. Фукозилсодержащие олигосахариды и фитофтороустойчивость картофеля //Физиология растений. 1997. Т.44. №6. -С.893-896.

85. Ловкова М.Я., Бузук Г.Б. Выделение олигосахаридов из побегов гороха и их физиологическая активность //Физиология растений.- 1995. Т.42. №3. 415-422. 128.3аботина О.А., Гурьянов О.П. Метаболизм алкалоидов: регуляция на молекулярном уровне //Физиология растений.- 1995.- Т.31. №5. 467-479.

86. Соколов B.C. Алкалоидоносные растения М.: Высш. шк,1982. 176 с.

87. Вардапетян Г.Р., Киракосян А.Б., Оганесян А.А., Пересян А.Р., Альферман А.В. Накопление лигнанов в каллу сных культурах Linum austnacum L. под действием элиситоров //Биотехнология. 2002. №3. 37-41.

88. Dmitriev А. Р., Kravchuk Z. N., Dyachok J. V. Regulation of fitoalexinproduction in suspension cell culture of onion //Biotechnology Approaches for exploitation and Preservation of Plant Recourceiltemational Symposium, Yalta, Ukraine.- Yalta, 2002.- P. 49.

89. HocoB A.M. Функции вторичных метаболитов //Физиология растений. 1994. Т.41. №6. 873-878.

90. Moreno Р. R., Heijden R., Verpoorte R. //Planta cell Reports. 1994.- Vol. 14.- P. 188-191. 263

91. Ильинская Л.И., Васюкова Н.И., Озерцковская О.Л. Биохимические аспекты интродуцированной устойчивости и восприимчивости растений Итоги науки и техники. Серия «Защита растений». ВИНИТИ.- 1991.- Т.7.-196 с.

92. Чалова Л.И., Авдюшко А., Караваева К.А. и др. Активное начало индуктора защитных реакций картофеля //Прикладная биохимия и микробиология.- 1988.- Т.24.- Вып.6.- 789.

93. Лукнер М. Вторичный метаболизм микроорганизмов, растений и животных. М.: Мир. 1979. 548 с.

94. Девочкин Л.А, Шампиньоны. М., Агропромиздат, 1989.- 174с.

95. Кутафьева Н.П., Цепалова И.Э. Биохимический состав съедобных грибов Сибири //Растительные ресурсы.- 1989. №2. 278-282.

96. Псурцева возможности Н.В., Белова Н.В., Алехина И.А. Биотехнологические использования коллекционных культур базидиомицетов Биотехнология.- 1994.- 7.- 35-39.

97. Морозов А.И. Грибы: руководство по разведению. Д.: Сталкер, 2000. 304с.

98. Белова Н.В., Псурцева Н.В.,.Мнухина А.Я., .Алехина И.А. Современные направления экспериментального исследования базидиомицетов.//Микология и фитопатология.- 1997.- Т.31.- Вып.6 64-75.

99. Piuz L.M. Sanchex J.B. Cultivation of Lentinus edods in tropical mexico Abstr. Of the International Mycological congress. Vancouver, Canada, Ougust.Vancouver, 1994.- P. 183.

100. Багдалян СМ., Дако П., Рапкор С Жакот М., Андарм К., Мнацоконян В.А., Арутюнян Л.С, Гарибова Л.В.. Химическое и фармакологическое исследование высших грибов. Сравнительное иззение химического состава плодовых тел и культурно-морфологических признаков у некоторых видов рода Namataloma (Fr)P. Karst//Микология и фитопатология,- 1996. -Т.ЗО.- Вып.4,-С.79-86. 264

101. Кохреидзе Н.Г,, Элисашвили В.И. Лигноцеллюлолитическая активность Pleшotus ostreatus ИБК-191 при твердофазной ферментации отходов чайного производства //Прикладная биохимия и микробиология.- 1983.- Т.29. -Вьш.2. 227-232.

102. Ахмедова З.Р., Белецкая О.П. Целлюлазы и лигназы базидиомицетов Прикладная биохимия и микробиология.- 1993.- Т.29.- Вьш.6.- 823-828.

103. Лобанок А.Г., Бабицкая В.Г., Богдановская Ж.Н. Микробный синтез на основе целлюлозы: белок и другие ценные продукты. Минск.: Наука и техника, 1988.-261С 1 ЗО.Элисашвили В.И.. Биосинтез и свойства целлюлаз и ксиланаз высших базидиомицетов.//Прикладная биохимия и микробиология- 1993. -Вып.З.- Т.29.С.340-353.

104. Bender F. Food from waste //Wood agro logist.- 1975.-Vol.4.- 3.-P.16.

105. Бисько H.A., Дудко И.А. Биология и культивирование съедобных грибов рода вешенка.- Киев: Научк.думка, 1987.- 145с.

106. Клечак И.Р,, Бисько Н.А., Билай В.Г. Особенности биодеструкции виноградной выжимки в процессе роста лищелия Lentinus edodes.//Mикoлoгия и фитопатология.- 1999.- Вьш.1.- Т.ЗЗ.- 44-46.

107. Величко Н.А., Репях СМ. Биоконверсия лигноцеллюлозных материалов. //Химико-лесной комплекс научное и кадровое обеспечение в 21 веке. Проблемы и решения. Сб.ст. по материалам Международ, науч. практ. Конф.Красноярск, 2000. -С.263-267. 265

108. Бабицкая В.Г., Стахеев И.В., Щерба В.В., Костина Л.М., Вадецкий Б.Ю.. Трансформация костры льна в белок мицелиальными грибами. //Микология и фитопатология. -1986.- Т.20.- 2.- 113-119.

109. Клечак И.Р., Бисько Н.А., Билай В.Г. Особенности биодеструкции виноградной выжимки в процессе роста мицелия Lentenus Edodes. //Микология и фитопатология.- 1999.-Т.ЗЗ.-Вып.1.- 44-46.

110. Краснопольская Л.М., Белицкий И.В., Федорова Г.Б., Китеуха Г.С.. Pleurotus djamor: Способы культивирования и антимикробные свойства. //Микология и фитопатология.- 2001.-Т.35.- Вып.1.- 62-67.

111. Феофилова Е.П. Современные направления в изучении БАВ базидиальных грибов //Микробиология.- 1998. -Т.34. №6. 597-608.

112. Краснопольская Л.М, Белицкий И.В., Федорова Г.Б., Китеуха Г.С. Pleurotus djamor: способы культивирования и антимикробные свойства Микология и фитопатология.-2001.-Т.35.-ВЫП.1.-С.62-67.

113. Кочетова Г.И., Мануковский Н.С, Панькова И.М., Трубачев И.Н., Калачева Г.С, Грибовская И.В .Биохимический состав Pleurotus Florida и Panus Tigrinus при культивировании на пшеничной соломе и возможности повторного использования недоокисленного субстрата //Микология и фитопатология.1988.- Т.22.-ВЫП.1.- 51-54.

114. Капич А.Н. Биосинтетическая при глубинном способность культивировании. дереворазрушающих //Микология и базидиомицетов фитопатология.- 1990.-Т.24,-Вып.5.-

115. Капич А.Н., Романовец Е.С., Войт СП. Содержание

116. Соломко Э.Ф., Елисеева Т.С, Рябчук В.А., Пчелинцева Р.К. Состав плодовых тел и мицелия гриба Pleurotus ostreatus //Прикладная биохимия и микробиология. -1987.- Т.23.- Вьш.2.- 180-236. 266

117. Вильнер 3.A., Медников Ф.А. применение в животноводстве и птицеводстве биоактивных продуктов, полученных из хвойной лапки Продукты переработки древесины сельскому хозяйству. Рига Зинатне, 1973.Т.1.-С.61-68.

118. Дагис И., Матейкене И., Заянчкаускене М. Динамика витаминов биогруппы в надземных органах сосны обыкновенной в течение года и применение этих витаминов для повышения урожайности. В кн: Регуляция роста и питание растений. Минск Ураджай, 1972.- 47-56.

119. Судачкова Н.Е. Метаболизм хвойных и формирование древесины Новосибирск Наука, 1977.-229 с.

120. Медведева А., Иванова З., Тюкавкина Н.А. Фенолокислоты и их гликозиды в хвое некоторых видов Pinaceae //Химия древесины.-1977.- №3.С.93-95.

121. Дубицкая Д., Мамонова Л.П. Потребность в витаминах.// Кормовые дрожжи на не пищевых средах. Алма-Ата Наука Каз.ССР, 1974. 30-32.

122. Карасевич Ю.П. Утилизация ароматических соединений дрожжами рода Debaryomyces.//Mикpoбиoлoгия.- 1978.-Вып.6.- 985-991.

123. Капуцелеви Ю.Г., Близник К.М.. Новая смешанная культура дрожжей продуцентов кормового белка на основе гидролизатов древесины, способная вытеснить из производственных популяций условно патогенные штаммы Candida tropicalis. //Биотехнология.-1999.-№2.-С.41-45.

124. Степень Р.А. Летучие фитоорганические продукты древесных пород.//Экстрактивные вещества 1977.-С.91-118.

125. Kowalski Т. Antogonistic effects of Candida sp on Scots pine needes -cast pathogenes and other fungi in vitr.//European Journal of forest pathology.- 1983 .-Vol .13.-P.l 15-129. древесных пород средней Сибири Красноярск, 267

126. Agiinag I. J., Huser R. Determination of organic compounds in needles of spruse and pine. Anales de Edafologia у Agrobiologia.- 1981.- Vol. 40.-№ 9/10.- P. 14851495.

127. Музалева Л.Д., Ганюшкина Л.Т. Динамика Сахаров и крахмала в годичном цикле развития сосны и ели. Учен. зап. Петрозаводск. Ун-та; 1967.- Т. 16.- №1, -С.32-35. 178.0сетрова Г.В. Годичная динамика углеводов у сосны обыкновенной в связи с периодичностью их роста.- Красноярск, 1973. 68-69.

128. Горохова В.Г., Тюкавкина Н.А, Запесочная Г.г. и др. Жидкостная хроматография растительных фенольных соединений //Химия древесины.1979.-№4.-С.76-80.

129. Медведева А., Иванова З., Тюкавкина Н.А. Фенолорсислоты и их гликозиды в хвое некоторых видов Pinaceae //Химия древесины,- 1977, №3. 93-95.

130. Осипов В.И. Гидроароматические кислоты в жизнедеятельности хвойных.Новосибирск.: Наука, 1979. 111с

131. Бабкин В.А. и др. Жидкостная хроматография растительных фенольных соединений. //Химия древесины. -1979.- №5. 100-102.

132. Тюкавкина Н.А., Горохова В.Г., Запесочная Г.г. и др. Жидкостная хроматография растительных фенольных соединений. Обращенно-фазовая хроматография флавоноидных агликонов. //Химия древесины. 1979. №2.С. 105-109. 184.Н.А.Тюкавкина, В.Г.Горохова, В.А.Бабкин Жидкостная хроматография стильбенов. //Химия древесины. 1979. №4. 81-85.

133. Мунтян Л.Н. Потребности в витаминах дрожжей Candida при росте на глюкозе и н-алканах: Автореф. дисс... канд. биол. наук, 1977. 23 с. 268

134. Wellenforf H., Kavfraann V. Thin layerchromatography of fluorescent phenolic compaunds in needles Geographic variation in Picea sitchensis, //Carr Forest tree improment ArboretetHorsholm. -1977.- 11.-21 p.

135. Репях СМ., Рубчевская Л.П. Химия и технология переработки древесной зелени.- Красноярск. 1994. 320 с.

136. Кефели В.И., Турецкая Р.Х. Участие фенольных соединений в ингибировании аБСТивности ауксинов и в подавлении роста побегов ивы, Физиология растений.- 1965.- Т. 12. Вып.4. 638-645.

137. Шуберт Г.А., Кравченко Н.Т. Физиологическая роль и цис-трансизомерия в ряду оксикоричных кислот. Фенольные соединения и их биологические функции.- М Наука, 1968. 138-142.

138. Воронков Л. А. Ингибирование ангтоцианами ауксинооксидазной активности пероксидазы. //Сельскохозяйственная биология. 1970. Т.5. №1.С.58-63

139. Ciertych М. М, Growth regulator changes in relation to growth of Pinus resinosa.//Act.-Canad J. Bot .-1966.-Vol. 44.- №6. P. 717-738.

140. Протопопов В.В., Никитенко Л.А. Влияние водных экстрактов из хвои различных пород на прорастание семян лиственницы сибирской. /В сб. Лиственница. Красноярск, 1964.- С194-197.,

141. Эрнст Л.К., Науменко Э.М. Биомасса леса и ее кормовое использование. М.: Наука.-1977.-90 с.

142. Мезенцева В.Г,, Попова И.И., Дерюжкин Р.И. Динамика содержания микроэлементов в хвое отдельных экотипов лиственницы сибирской в течение вегетации. //Биологические науки. 1976. №11. 96-102. 269

143. Репях СМ., Науменко Н.К, Голикова О.В. Состав минеральных компонентов хвои сосны. //Химия древесины.- 1981- №2. С103-106.

144. Ивашин А., Писарев В.Д., Олиференко Г.И. и др. Микроэлементы хвои и шишки Pinus sibirica. //Химия природных соединений. 1981.- №5. 675.

145. Sheedu G.Mineral composition of foliage of two groups of jack pine stands according to geographical location.// Memoire cervice de la Recherohe Forestieve.Oubec, 1980.-68.-36 p.

146. Митрофанов Д.П. Химический состав лесных растений Сибири- Новосибирск Наука, 1977. 119 с.

147. Роуз Э. Химическая микробиология. М.: Мир, 1971. 294 с.

148. Кудрина P.M. Влияние молибдена на накопление биомассы кормовых дрожжей Использование микроорганизмов в кормопроизводстве. Алма-Ата Наука Каз.ССР, 1970- С112-115.

149. Хрычева A.M. Влияние микроэлементов на нпакопление биомассы пекарских дрожжей //Прикладная биохимия и микробиология.- 1970.- Вып.З.С.307-312.

150. Schiel О., Witte L., Berlin J. Geraniol-10-hydroxylase activity and its suspension cultures of Catharanthus roseus //J.Naturforesch.-1987.- Vol.42.- №9.-p. 1075-1081. 206.3апрометов M.H., Загоскина H.B., Стрекова В.Ю., Морозова Г.А. Образование фенольных соединений и процесс дифференциации в каллус-ной культуре чайного растения //Физиология растений.- 1979- Т.26.- 485-491.

151. Ментел СТ., Смит Т. Факторы культивирования, влияющие на накопление вторичных метаболитов в культуре клеток и тканей растений Биотехнология сельскохозяйственных растений. М.: Агропром-издат, 1987.-С 154-198

152. Archambault J., Volesky В., Kurtz W.G.W. production of indol alkaloids by Surface immobilized Croseus cells //Biochemical engineering research unit Monreal.- 1990.- Vol.35.- P.660-667. 270

153. Miura Y., Hirata К. Kurano N. Formation of vinblastine in multiple soot culture of Catharanthus roseus //Planta med.-1968. -Vol.54. P. 18-20. 211.В0ЛЛОСОВИЧ А.Г., Бутенко Р.Г. Культура ткани раувольфии змеиной как продуцент алкалоидов //Культура изолированных органов, тканей и клеток растений. М.: Наука, 1981.- 235-257.

154. Dhruva В., Ramakrishnan Т., Vaidynthan C.S. et al. Studies on Catharanthus roseus callus cultures, callus initiation and differentiation //Curr.Sci.- 1977 -Vol. 46.P.364-365.

155. Hirata K., Yamaka A., Kurano N. et al. Production of indole alkaloids in multipile soot culture of Catharanthus roseus L. Don, //Agr and Biol. Chem. -1987.Vol.51.-P.1311-1317.

156. Sakuta M., Komamine A. Cell growth and accumulation of secondary methabolites //Cell culture and somatic cell genetics of plants. Acad. Press. 1987. P.97-114. 21 З.Архангельская H.B., Кестнер А.И. Иммобилизованные растительные клетки //Иммобилизованные клетки в биотехнологии. Пуш;ино,1987.- 40-43

157. Биология. Большой энциклопедический словарь./Гл. ред. М.С.Гиляров.- 3-е изд. М.: Большая Российская энциклопедия, 1999. 865 с.

158. Ареалы лекарственных и родственных им растений СССР. Л.: Изд-во ЛГУ, 1983.-208 с.

159. Sigma Chemical Company Cataloglog P. О. Box 14508, st Louis, Mo.- 63178 USA,1991.-P.1078.

160. Рабинович A.M., Толкачев O.H. О целесообразности изучения и использования целебных растений республики Конго //Труды 1 Всероссийской конференции по ботаническому ресурсоведению. Санкт-Петербург, 1996. 35-36. 271

161. Высоцкая Е.Ф., Гамбург К.З. К вопросу о природе кондиционирования при изолированной культуре растительных клеток //Физиология растений.- 1975. Т.22.-ВЫП.1.-С.63-69.

162. Кретович В.Л. Биохимия растений. М.:Высшая школа, 1986. 356-357.

163. Гродзинский A.M., Гродзинский Д.М. Краткий справочник по физиологии растений. КиевгНаукова думка, 1973. 380 с.

164. Данилов А.В., Зайцева Г.В., Константинова В.А. и др. Влияние интенсивности массообмена на рост суспензионной культуры клеток женьшеня. //Физиология растений.- 1981. Т.28.- Вьш.5. 1072-1077.

165. Lemsohn Е., Worden Е,, Croteau R. Monoterpene cyclases in grand fir callus cultures modulation by elisitor and growth regulation //Phytochemistr.- 1994. Vol.36.-№3._p.651-656.

166. Левин Э.Д., Миронов П.В. Современные физико-химические методы исследования. -Красноярск СТИ, 1988.- 20.

167. Химический анализ лекарственных растений /Под ред.Н.И.Гринкевич Л.Н.Сафронович М Высш. Шк., 1983. 175 с.

168. Методы белкового и аминокислотного анализа растений: Методические указания. Л.: Наука, 1973. 69 с.

169. ЕрмаковА.И., Ярош Н.П. Методы биохимических исследований растений. Л.: Наука, 1972.-455 с.

170. Осипов В.И., Александрова Л.П. Изучение метаболизма хвойных методом пульсовой метки. /Исследование обмена веществ древесных растений. Новосибирск Наука, 1985. 5-14.

171. Кейтс М. Техника липидологии. М.: Мир, 1975. 322 с.

172. Рубчевская Л.П. Липиды хвойных растений семейства. Дисс.докт. хим. наук(05.21.03).- Красноярск, 1997.-431 с.

173. Ермаков А.И., Ярош Н.П. Методы биохимических исследований растенийЛ.: Наука, 1972. 455 с. 272

174. Клесов А.А. Ферментативное превращение целлюлозы //Итоги науки и техники.- М.:МГУ, 1983.

175. Ферментативный гидролиз целлюлозы /А.А.Клесов, М.Л.Рабинович, А.П.Синицын и др. //Биоорганическая химия. 1980.- Т.6.- №8.- 1225-1242. 237.0пределение использованием глюкозы в патоке калия глюкооксидазным В.Д.Щербухин, методом с ферроцианида Л.И.Миронова, А.В.Кондырева и др. //Прикладная биохимия и микробиология. 1970..- 476480.

176. Биохимические методы в физиологии растений. М.:Наука. 1971.- 227 с.

178. Ягодин В.И. Основы химии и технологии переработки древесной зелени. Л.: Изд-во Ленинггр. ун-та. 1981. 223 с.

179. Оболенская А.В., Леонович А.Л. Лабораторные работы по химии древесины и целлюлозы. М.: Экология, 1991. 320 с.

180. Стеновая определение Л.П., Холькин Ю.И., Зенькович А.Н. Количественное методом углеводного состава технических гидролизатов газожидкостной хроматографии //Гидролизное производство.- 1970. Вып.1. 3-11.

181. Евдокимова Г.А., Косоногова Л.В., Фридлянд И.Г. Исследование органических кислот гидролизатов торфа методом ГЖХ //Химия древесины.1976.-№3.-С.113-116.

182. Плешков В.Д. Практикум по биохимии растений.- М.: Колос. 1976. 254 с.

183. Биохимические методы в физиологии растений М.: Наука, 1971. -227с. 246.3апрометов М.Н. Основы биохимии фенольных соединений. М.: Высш. шк.-1974.-211 с.

184. Методы определения регуляторов роста и гербицидов. М.: Наука. 1966. 199 с. 273

185. Sacuta М., Comamine А. Cell growth and accmnulation of secondary methabolites //Cell culture and comatic cell geneticsof plante. Аса. Press., 1987.- P. 97-114.

186. Архангельская H. B. Алкалоиды клеточных культур Papaver somniferum Известия АН ЭССР. Химия.- 1989.- Т.38.- 4. 282-283.

187. Кочетова Г.И., Мануковский Н.С, Панькова И.М., Трубачев И.Н., Pleurotus Florida и Калачева Г.С, Грибовская И.В. Биохимический состав Panus Tigrinus при культивировании на пшеничной соломе и возможности повторного использования недоокисленного субстрата //Микология и фитопатология. 1988.- Т.22.-Вып.1 -С.51-53

188. Волчатова И.В., Медведева А., Бабкин В.А. Электронно- микроскопические исследования древесины.//Микология и фитопатология. 1998. Т.32. Вып.1- 55-60. 253,Багдалян СМ., Доко Л., Рапиар С Жакоб М., Андари К., Мнацаконян В.А., Арутюнян В.А., Гарибова Л.В. Химическое и фармакологическое исследование высших грибов //Микология и фитопатология. 1996. Т.ЗО. Вьш.4. 7386.

189. Багдалян СМ., Доко Л., Рапиар С Жакоб М., Андари К., Мнацаконян В.А., Арутюнян В.А., Гарибова Л. В. Химический состав и фармакологическое исследование плодовых тел Coriinarius armillatus (Fr:Fr)Fr.// Микология и фитопатология.- 1996. -Т.ЗО.- Вьш.З. 37-42.

190. Riuz L.M Sancek J.E., Calvo L.A. Cultivation of Lentinus edodes in tropical Mexico //Abstr. of Canada,-1994.-P.187.

191. Горшина B.C., Скворцова B.B., Бирюков В.В. Технология получения биологически активной субстанции лекарственного гриба кориола опушенного. //Биотехнология. -2003. №2 45-53. the VI International mycological Congress. Vanoovever.- 274

192. Клесов А.А., Григораш СЮ. Ферментативный гидролиз целлюлозы. //Биоорганическая химия. -1981. Т.7.- №10. 1538-1552.

193. Иванова Г.С, Белецкая О.П., Окунев О.Н. и др. Фракционирование целлюлазного комплекса гриба Aspergillus ter. микроьиология. 1983. -Т. 19.- Вып.З.- 362-368.

194. Варфоломеев Д., Гуревич К.Г. Биокинетика. -М.:Наука, 1999.-715 с.

195. Lamed R., Leikus J. //J. Bacteriol. -1980.- 141.- P. 1251-1257.

196. Swith M.R, binder S.H., Moh R.A..// Process Biochem. -1980. 15. P.34-39.

197. Клесов А.А. Химическая энзимология. М.: МГУ, 1983.- 189-250

198. Воллосович А.Г., Бутенко Р.Г. .Культура ткани раувольфии змеиной как продуцент алкалоидов Культура изолированных органов, тканей и клеток растений. М.: Наука, 1981.- 235-257.

199. Кириллова Н.В., Орехова И.А., Комов В.П. Влияние фитогормонов на метаболизм ферментов антиоксидантной системы в культуре ткани раувольфии змеиной «Биология клеток растений in vitro, биотехнология и сохранение генофонда». Тез.докл. VII Международ, конф. -Москва, 1997. 25-26.

200. Носов A.M. Регуляция синтеза вторичных соединений в культуре клеток растений //Биология культивируемых клеток и биотехнология растений. -М.: Наука, 1991.-C.5-20.

201. Моррис П. Образование продуктов вторичного метаболизма в суспензионных культурах клеток. М.: ВО Агропрмиздат, 1987.- 154-203.

202. Муромцев Г.С, Чекаников Д.И., Кулаева О.Н., Гамбург К.З. Основы химической регуляции роста и продуктивности растений. М.: Агропромиздат, 1987.-С 316-322.

203. Ржержабек П., Горелова О.А. Влияние количестваи форм азота на рост клеток и накопление стероидных соединений в суспензионной культуре Solamun laciniatum Ait //Культура клеток растений и биотехнология .М.:Наука.-1986.- 70-76. //Прикладная биохимия и 275

204. Kobayashi Y., Fukui H., Tabata M. Effect of carbon dioxide and ethylene on berberine production and cell browning in Thalictrum minus cell cultures //Plant Cell Reports,- I99I.-V0I. 9- P.469-499.

205. Pissarra J., Santos I. Effect of ammonium on growth and lignin content of cultured callus tissue //Sciens biol.mol and cell.- 1988. -13. 3-4. P. 125. 273.0hlsson A., Berglund T. Effect of high MnS04 levels on cardenolide accumulation by digitalis lanata tissue in light and darkness //J. Plant physiol. -1989.Vol. 135.-.№4--P.505-507.

206. Yoshida F., Kohono H. Regulations of mineral and especially nitrogen nutrition to growth rate of plant cell cultures Plant cell culture. -1987. 4.- 2. P.53-59.

207. Albersheim P. Oligosaccharins that regulate growth, developments and defense responses in plant //Glycobiology.-1992.- Vol 2.- 3 P. 181 -198.

208. Brodelius P. Use of fungal to induce or enhance secondary metabolism in plant cells cultures //World Biotech. Rept- 1989.- Vol. 1. P. 123-128.

209. Dittrich berberine H., Kutchan T. Molecular cloning, expression, and induction of bridge enzyme, an enzyme essential to the formation of benzophenanthridine alcaloids in the response of plants to pathogenic attack //Proc. Nat. Acad. Sci. USA.-1991.- Vol. 88.- P. 9989-9973.

210. Gugler K., Funk Ch„ Brodelius P. Elisitor-induced tyrosine decarboxylase in berberine-synthesizing suspension cultures of Thalictrum rugosum //Eur. J. Biochem. -1988.-Vol. 170.-P.661-666.

211. Kobayshi Y., Fukui H., Tabata M. Effect of oxygen supply on berberine .production in cell suspension cultures and immobilized cells of Thallictum minus T, V //Plant Cell Reports.- 1989.- Vol. 8.- P.225-228.

212. Kobayshi Y., Fukui H., Tabata M. Effect of carbon dioxide and ethylene on berberine protection and cell browning in Thallictum minus, /Plant Cell Reports. 1989.- Vol. 8,- P.225-228. 276

213. Chasan R. Phytochemical Forecasting //Plant Cell.- 1994.-Vol.6-.NI.-P.3-9.

214. Cordell G. A.// Introduction to Alcaloids./ John Wiley.NewYork,-1981.

215. Калашникова Е.А. Морфо-физиологические особенности пробирочных растений каллусных тканей и суспензионной культуры картофеля, solani обусловленные действием экзометаболитов гриба Rhixoctonia //Биотехнология. 2003.- №3.- 33-41.

216. Могепо Р., Poulsen С Van der Heijden R., Verpoorte R. Effect of different secondary metabolic pathways in Catharanthus roseus cell suspension cultures //Enzyme microb. Technol. 1996. 18.-P. 99-107.

217. Lastra Humberto, Risco Gladus del, Cuela Armando.Meтoды получения катарантина и виндолина у листьев Catharanthus roseus Hetodo раса obtencion de catharantina у vindolina a partir del Catharanthus roseus.//Rev. Cub. Form.-1986. -20.-№2.-P.181-185. 288,Волков C.K., Гродницкая Е.И. Количественный анализ винбластина в Catharanthus roseus //Журнал физической химии.- 1991.- Т.65. №10.- 28602861.

218. Волков К. Методы анализа некоторых противоопухолевых алкалоидов катарантуса розового //Химико-фармацевтический журнал. 1996.- Т.ЗО.- №6. 36-43.

219. Ситхина Д.Е., Садовина К.И. Организация и планирование производства на лесохимических и гидролизных предприятиях. М.: Лесная пром-сть. 1984. 1984.-224с. 277