Моноклональные антитела в диагностике инфекций, вызванных микобактериями тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 14.00.36, доктор биологических наук Черноусова, Лариса Николаевна

• Черноусова, Лариса Николаевна
• доктор биологических наук
• 1998

Оглавление диссертации доктор биологических наук Черноусова, Лариса Николаевна

Список сокращений.

Введение.

Часть I. Обзор литературы.

Глава I. Иммунный ответ на микобактерии и его эндогенная регуляция.

1.1. Субпопуляции клеток-помощников (Тх).

1.2. Эффекторные функции продуктов Тх1 и Тх2.

1.3. Роль цитокинов в развитии заболеваний, вызванных микобактериями.

1.4. Специфические механизмы иммунитета к микобактериям.

1.5. Клиническое значение динамики антителообразования к определенным антигенным детерминантам микобактерий.

Глава 2. Серодиагностика туберкулеза и других микобактериозов.

2.1. Иммуноферментный анализ в диагностике туберкулеза.

2.2. Механизм развития ложноотрицательных и ложноположительных антительных реакций.

Глава 3. Анализ экспрессии эпитопов, выявляемых МкАТ на антигенах микобактерий.

Часть II Собственные исследования.

Глава 4. Материалы и методы.

Глава 5. Получение и характеристика моноклональных антител (МкАТ).

5.1. Получение МкАТ к Mycobacterium tuberculosis complex.

5.2. Получение МкАТ к Mycobacterium bovis.

5.3. Получение МкАТ к Mycobacterium avium.

5.4. Получение МкАТ к атипичным микобактериям.

5.4.1. Оптимизация первичного скрининга гибридом, продуцирующих антитела к атипичным микобактериям.

5.4.2. Получение МкАТ к Mycobacterium kansasii и Mycobacterium smegmatis.

5.5. Характеристика панели МкАТ к антигенам микобактерий.

Глава 6. Использование МкАТ для определения антител и антигенов при диагностике заболеваний, вызываемых микобактериями.

6.1. Определение антител в сыворотках больных туберкулезом легких к аффинноочищенным на МкАТ антигенам.

6.2. Эффективность использования конкурентного ИФА с МкАТ 1D для серодиагностики M.avium - инфекции у людей.

6.3. Определение антигенов микобактерий туберкулеза в спинномозговой и плевральной жидкостях больных туберкулезом методом ингибиции с МкАТ 10D6.

6.4. Обнаружение антигенов микобактерии в культуральной среде методом «двойного антительного сэндвича» с МкАТ 10D6.

Глава 7. Видовая идентификация микобактерий методом Western blot с моноклональными антителами.

Глава 8. Изучение особенностей антигенной структуры микобактерий туберкулезного комплекса методом Western blot с моноклональными антителами.

Часть III. Обсуждение результатов.

Глава 9. Повышение эффективности серодиагностики микобактериозов с помощью моноклональных антител.

Глава 10. Эпитопное картирование микобактериальных антигенов - новый подход в идентификации микобактерий.

Выводы.

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Моноклональные антитела в диагностике инфекций, вызванных микобактериями»

Заболеваемость туберкулезом и смертность от него в России снижались в текущем столетии до конца 70-х годов, когда оба показателя вышли на плато. Задача ликвидации туберкулеза к 2000 году сейчас не ставится, это заболевание остается серьезной проблемой для всего человечества. По утверждению академика А.Г. Хоменко это обусловлено многими причинами - эпидемией ВИЧ-инфекции, широким распространением алкоголизма и наркомании, растущей нищетой, волной иммиграции из регионов с высоким риском туберкулеза, снижением качества программ по борьбе с туберкулезом (26). В настоящее время в мире насчитывается около 1,7 млрд. больных туберкулезом, ежегодно от него умирают около 3 млн. человек. По мнению G.Barlett инфицирование Mycobacterium tuberculosis - ведущая причина смерти от инфекционных заболеваний, на долю которой приходится 6% от общего числа смертельных исходов (6).

Однако, помимо указанных факторов, проблема туберкулеза, как отмечает академик А.Г. Хоменко (28), существует до сих пор в силу сложности надежной ранней лабораторной диагностики, значение которой в последнее время возросло в связи с преобладанием экстрапульмонарного туберкулеза (до 70%) у ВИЧ-инфицированных лиц и полирезистентного туберкулеза (26, 306, 364).

Известно, что у лиц со СПИДом наибольшее поражения вызывает микобактериальная инфекция (115). Из крови, фекалий, лимфоузлов и других тканей таких больных выделяют кроме М. tuberculosis, М. avium, такие атипичные микобактерии, как М. kansasii, М. xenopi, М. scrofiilaceum, М. fortuitum и другие (329, 379). По данным М. Salfinger (1995 г) за шестилетний период наблюдения в клинике число случаев выделения нетуберкулезных микобактерий увеличилось с 0,4 до 0,9 на 100 тысяч человек, причем легочные микобактериозы преобладали у пожилых, женщин (79%) и некурящих (88%) пациентов (329, 390).

По мнению ведущих исследователей в области фтизиатрии и микобактериологии ранняя диагностика - основной фактор, определяющий исход лечения (357).

На современном этапе в лабораторной диагностике микобактериозов помимо комплекса традиционных бактериологических, морфологических и цитологических методов, широко внедряются новые, основанные на достижениях биотехнологии и молекулярной генетики. К ним относятся иммунохимический анализ, ДНК-гибридизация, полимеразная цепная реакция (10, 328, 352)

Иммунохимический анализ, основанный на выявлении у больных как антигенов микобактерий, так и антител к ним, получил широкое распространение в силу его доступности, достаточной чувствительности и специфичности (16, 126, 155, 205). Эффективность иммунохимических методов зависит от чистоты реагентов (препаратов антигенов и антител). С развитием гибридомной технологии появилась реальная возможность получения моноклональных антител, которые являются идеальным реагентом для иммунохимических реакций. Успех использования их связан с накоплением большого разнообразия моноклональных антител по специфичности и с созданием банка гибридом.

Исходя из этого, целью настоящего исследования было получение моноклональных антител к антигенам микобактерий и использование их для повышения эффективности лабораторной диагностики инфекций, вызываемых микобактериями. При этом были поставлены следующие задачи:

1. Получить и охарактеризовать моноклональные антитела (МкАТ) к микобактериям различных видов;

2. Аффинно на моноклональных антителах выделить узкоспецифические микобактериальные антигены (МАГ);

3. Оценить эффективность использования МАГ в диагностике туберкулеза легких и МкАТ - в диагностике M.avium-микобактериоза при определении антител в сыворотках больных;

4. Изучить диагностическую ценность МкАТ при выявлении микобактериальных антигенов в плевральном экссудате и спинномозговой жидкости больных туберкулезом;

5. Исследовать возможность раннего обнаружения с помощью МкАТ микобактериальных антигенов в культуральной среде при посеве мокроты больных туберкулезом легких;

6. Изучить особенности антигенной структуры микобактерий методом Western blot с моноклональными антителами;

7. Провести видовую идентификацию микобактерий, основанную на Western blot анализе с моноклональными антителами.

Научная новизна данной работы заключается в том, что:

- Создана панель моноклональных антител к Mycobacterium tuberculosis complex и к некоторым видам атипичных микобактерий.

- Показано, что использование моноклональных антител в различных вариантах иммуноферментного анализа повышает специфичность определения антител в сыворотках больных, инфицированных микобактериями (M.tuberculosis и М.avium), а также антигенов микобактерий в спинномозговой и плевральной жидкостях больных туберкулезом.

- Выявлены наибольшие перекрестные реакции у антигенов микобактерий следующих видов: у M.bovis с M.tuberculosis, М.avium, M.kansasii; у M.avium с M.leprae, M.bovis, M.tuberculosis; у M.kansasii с M.bovis, M.smegmatis; у M.smegmatis с M.tuberculosis, M.bovis, M.kansasii.

Показаны особенности антигенной структуры микобактерий туберкулезного комплекса методом Western blot с моноклональными антителами.

- Создана эпитопная карта антигенов микобактерий М. tuberculosis, М. bovis, М. avium, М, kansasii и М. smegmatis.

Научная значимость работы заключается в обосновании целесообразности использования метода эпитопного картирования для идентификации микобактерий и исследования их штаммовых особенностей. С помощью данного метода показано, что экспрессия эпитопов на полипептидах определенной молекулярной массы является характеристическим признаком, уникальным для конкретного вида микобактерий.

Практическая значимость работы заключается:

- в получении уникальных специфических реагентов - МкАТ к микобактериям и узкоспецифических МАГ .

- в оптимизации первичного скрининга гибридом к атипичным микобактериям, заключающейся в выбраковке не только негативных клонов, но и клонов, продуцирующих антитела к антигенам с максимальной перекрестной реактивностью.

- в создании тактики лабораторной диагностики туберкулеза с применением МкАТ и МАГ, позволяющей повысить специфичность диагностики и сократить сроки постановки диагноза;

- в разработке высокочувствительных и специфичных иммунологических методов идентификации микобактерий и исследовании их штаммовых особенностей.

Основные положения, которые выносятся на защиту

1. Получена панель моноклональных антител к микобактериям .tuberculosis, М. bovis, М. avium, М, kansasii и М. smegmatis, направленных к эпитопам, общим для широкого спектра микобактерий, к эпитопам, характерным для М. tuberculosis complex, и к эпитопам, уникальным для M.bovis bovinus 8, М. avium, М. smegmatis.

2. Использование полученных моноклональных антител и очищенных микобактериальных антигенов в иммуноферментном анализе существенно повышает эффективность лабораторной диагностики заболеваний, вызываемых микобактериями (туберкулеза легких, туберкулезного плеврита и менингита, микобактериоза, вызванного М. avium), и сокращает сроки обнаружения роста микобактерий в культуральной среде.

3. Western blot микобактерий с полученными моноклональными антителами позволяет изучить особенности антигенной структуры и создать эпитопную карту антигенов M.tuberculosis, M.bovis, M.avium, M.kansasii , M. smegmatis.

4. Анализ экспрессии эпитопов на антигенах определенной молекулярной массы выявляет штаммовые различия микобактерий M.tuberculosis complex.

5. Эпитопное картирование микобактерий с помощью моноклональных антител позволяет иммунологически идентифицировать клинические изоляты микобактерий M.tuberculosis, M.bovis, M.avium, M.kansasii, M.smegmatis в 62,2 -100% в зависимости от вида микобактерий.

Апробация диссертации

Материалы диссертации были доложены на 7 Иммунологическом конгрессе, г. Берлин (1988 г.), 1 Всесоюзном съезде иммунологов, г. Дагомыс (1989 г.), 2 Всесоюзном симпозиуме «Реабилитация иммунной системы» г. Дагомыс (1990 г.), 13 Конференции европейского общества микобактериологов, г. Регенсбург (1992 г.), 14 Конференции европейского общества микобактериологов, г. Куопио (1993 г.), 4 Национальном конгрессе по болезням органов дыхания, г. Москва (1994 г.), II (XI) съезде фтизиатров, г. Саратов (1994 г.), научно-практической конференции «Молекулярные основы патогенеза и диагностики туберкулеза и другой легочной патологии» г. Москва (1995 г.), Всероссийской конференции «Иммунологический мониторинг патологических состояний и иммунореабилитация», г. Москва (1995 г.), VII съезде Всероссийского общества эпидемиологов, микробиологов и паразитологов им. И.И. Мечникова (1997 г.), заседаниях секции микробиологии и иммунологии туберкулеза Московского отделения Всероссийского научно-практического общества эпидемиологов, микробиологов и паразитологов им. И.И. Мечникова (16 декабря 1996 г.,16 июня 1997 г.), объединенной конференции отделов иммунологии, микробиологии, патоморфологии и биохимии ЦНИИТ РАМН 23 марта 1997 г.

Объем и структура диссертации.

Диссертационное исследование состоит из введения, трех глав обзора литературы, пяти глав собственных исследований, двух глав обсуждения, выводов, практических рекомендаций и списка литературы. Работа изложена на 199 страницах машинописи, иллюстрирована 30 таблицами и 16 рисунками. Список литературы содержит 29 отечественных и 400 зарубежных источников.

Заключение диссертации по теме «Аллергология и иммулология», Черноусова, Лариса Николаевна

Выводы

1. Получена панель моноклональных антител, включающая МкАТ, направленные к общему для всех изученных микобактерий эпитопу ЗНЗ, к общим для М. tuberculosis complex эпитопам D4, 10G10, 1F9, 4Н4, к перекрестным для некоторых видов M.tuberculosis complex и атипичных микобактерий эпитопам 10D6, 3D3, 2В2 и к эпитопам, уникальным для М. bovis - 4С1, М. avium - 1D3, М. smegmatis - 2Н10 и 2С10.

2. Выявлены наибольшие перекрестные антигенные реакции у M.bovis с M.tuberculosis, M.avium, M.kansasii; у M.avium с M.leprae, M.bovis, M.tuberculosis; у M.kansasii с M.bovis, M.smegmasis; y M.smegmatis с M.tuberculosis, M.bovis, M.kansasii, что позволило оптимизировать скрининг гибридом к атипичным микобактериям.

3. Аффинно на моноклональных антителах, специфичных к Mycobacterium tuberculosis complex, из сониката микобактерий M.tuberculosis H37Rv получены очищенные антигены. Электрофоретический анализ в ПААГ с ДСН показал, что антиген 4С1 содержал полипептид молекулярной массой 16 кДа, антиген 10D6 - 19-20 кДа, антиген 10G10 - 32 кДа, и 1F9 27/60 - 70 кДа, антиген D4 - 55/60 - 70.

4. Использование очищенных антигенов для иммуноферментного выявления антител в сыворотках больных туберкулезом легких позволило повысить специфичность метода по сравнению с использованием комплексного антигена (сониката M.tuberculosis H37Rv) до 91,7-93,4% в зависимости от антигена (при 81,7% с соникатом).

5. Сравнительный анализ диагностической значимости очищенных антигенов при определении антител у абациллярных больных показал, что большей диагностической ценностью обладали антигены 1F9 и D4, которые выявляли 53,6% и 57,1% соответственно больных туберкулезом по сравнению с 10G10, 10D6 и 4Н4, максимум чувствительности которых достигал 42,9%.

6. ИФА с МкАТ 1D3 обнаруживал антитела у 66,4% больных с M.avium-инфекцией, при 100% специфичности (отсутствии положительных реакций у больных туберкулезом и здоровых лиц), что может быть использовано для скрининга М. avium-инфицирования в здоровой популяции.

7. ИФА с МкАТ 10D6 выявлял антигены микобактерий в спинномозговой жидкости у 80% больных с туберкулезным менингитом и в плевральной жидкости у 69,5% больных туберкулезным плевритом при 12,5% и 5,9% у больных с менингитом и плевритом нетуберкулезной этиологии соответственно.

8. Сроки обнаружения микобактерий в культуральной жидкости при использовании ИФА с МкАТ 10D6 были сокращены по сравнению с традиционными бактериологическими исследованиями. Достоверные различия (р<0,05) начинались уже со второй недели после посева мокроты больных туберкулезом.

9. Анализ антигенных особенностей микобактерий в Western blot с моноклональными антителами продемонстрировал, что каждый вид микобактерий характеризуется совокупностью уникальных и перекрестных эпитопов. Экспрессия этих эпитопов на полипептидах с определенной молекулярной массой может быть обозначена как эпитопная карта.

10. Изучение антигенной структуры штаммов М. tuberculosis и М. bovis методом Western blot с моноклональными антителами, специфичными к M.tuberculosis complex, выявило эпитопы как стабильные для вида, так и характеризующие штаммовые различия.

11. Результаты видовой идентификации 179 культур микобактерий, основанной на Western blot-анализе с моноклональными антителами, совпадали с данными комплексной микробиологической идентификации микобактерий, выделенных из мокроты больных туберкулезом и патологического материала крупного рогатого скота при тестировании М. tuberculosis в 84,4%, M.bovis в 77,5%, М.avium в 62,2%, M.kansasii в 100%, М. smegmatis в 90%.

Практические рекомендации

Для практического применения в области фтизиатрии, пульмонологии, микобактериологии и иммунологии рекомендуется использовать:

1. Метод ингибиции иммуноферментного анализа с МкАТ 10D6 для обнаружения антигенов микобактерий в спинномозговой и плевральной жидкостях, так как это повышает специфичность лабораторной диагностики туберкулеза при достаточной чувствительности метода.

2. Метод конкурентного иммуноферментного анализа с МкАт 1D3 для скрининга М. avium-инфицирования в здоровой популяции, так как при 100% специфичности (отсутствии положительных реакций у больных туберкулезом и здоровых лиц) это выявляет 66,4% больных.

3. Непрямой твердофазный иммуноферментный анализ с афинно очищенными антигенами 4Н4, D4 и 1F9 для определения противотуберкулезных антител в сыворотках людей, так как это при 91,7% специфичности позволяет выявлять антитела у 72,3% больных.

4. Метод двойного антительного сэндвича с МкАТ 10D6 для обнаружения микобактерий в культуральной среде после посева мокроты, так как это сокращает сроки выявления микобактерий по сравнению с традиционными бактериологическими методами.

5. Для изучения антигенной структуры микобактерий туберкулезного комплекса использовать Western blot с моноклональными антителами 10D6, D4, 10G10, 4Н4, так как это позволяет выявлять эпитопы как стабильные для вида, так и характеризующие штаммовые различия.

6. Для идентификации культур диких штаммов микобактерий использовать Western blot с МкАТ 10D6, 4С1, ЗНЗ, 4Н4, 1D3, 2Н10, ЗС10, так как показано, что каждый вид микобактерии характеризуется своей эпитопной картой, которая определяется совокупностью эпитопов, экспрессированных на полипептиде определенной молекулярной массы.

Список литературы диссертационного исследования доктор биологических наук Черноусова, Лариса Николаевна, 1998 год

1. Авербах М.М. Иммунология и иммунопатология туберкулеза. М.: Медицина. - 1976. - 311 с.

2. Авербах М.М. Иммунологические аспекты легочной патологии. // М.: Медицина. 1980. - 277 с.

3. Андросова М.В., Алексеева Г.И., Владимирский М.А. Иммунологический метод идентификации М. tuberculosis и М. bovis (BCG) на основе применения моноклональных антител. // Пробл. туб. 1989. - № 5. - с. 43-46.

4. Андросова М.В., Владимирский М.А, Алексеева Г.И. Иммунологический метод идентификации М. tuberculosis и М. bovis BCG на основе применения моноклональных антител // Пробл. туб. 1989. - № 6. - с. 43-45.

5. Бартлет. Дж. Новое в изучении инфекционных болезней. // Международный журнал медицинской практики. 1998 - № 1 - с. 20-21

6. Брок Й. Иммуносорбенты. В кн: Иммунологические методы. Под ред. Г. Фримеля. М. Медицина. - 1987. - с. 429-430.

7. Вербов В.Н., Якутова O.A., Шендерова Р.И. и соавт. Сравнительная оценка иммуноферментной тест-системы для серодиагностики туберкулеза и нетуберкулезных заболеваний. // Пробл. туб. 1990. - № 10. - с. 60-62.

8. Владимирский М.А., Андросова М.В., Шипина JI.K. и соавт. Методы иммуноферментного анализа в серологической диагностике туберкулеза и видовой идентификации возбудителей туберкулеза. // Метод, рекомендации. -М. 1988.- 78 с.

9. Зыков М.П., Ильина Т.Б. Потенциально патогенные микобактерии и лабораторная диагностика микобактериозов. М., Медицина, 1978. - с. 175176.

10. Калинина О.А. Гуморальный иммунитет при заражении и иммунизации микобактериями комплекса Mycobacterium avium М. intracellulare - М. scrofulaceum (MAIS). //Автореф. дис. канд. мед. наук. - М. - 1992. - 19 с.

11. Калинина О.А., Черноусова JI.H., Куликовская Н.В. и соавт. Гуморальный иммунный ответ у зараженных и иммунизированных микобактериями комплекса MAIS людей и животных. // Пробл. туберк. 1994. - № 2. - с. 47-49.

12. Копнина Е.О., Лазовская А.А. Серологические исследования при заболеваниях, вызванных микобактериями. // Тр. Казах. НИИ туберкулеза. -1981. Вып. 74. - с. 120.

13. Литвинов В.И., Гильбурд Б.Ш., Черноусова Л.Н. и др. Радиоиммунологическое и иммуноферментное определение противотуберкулезных антител // Пробл. туб. 1988. - № 7. с. 71-73.

14. Литвинов В.И., Гильбурд Б.Ш., Черноусова Л.Н. и соавт. Антигены миокбактерий туберкулеза. // Пробл. туб. 1989. - № 10. - с. 68-72.

15. Литвинов В.И. Моноклональные антитела против антигенов микобактерий. .//Пробл. туб. 1990. -№ 5. - с. 71-75.

16. Литвинов В.И., Чуканов В.И., Тухтаев М.Т. и соавт. Противотуберкулезные антитела, определяемые с помощью иммуноферментного теста у больных туберкулезом легких. //Пробл. туб. -1991. № 11. - с. 67-69.

17. Литвинов В.И., Черноусова Л.Н., Куликовская Н.В. и др. Принципы и методы иммунодиагностики туберкулеза // Вестн. РАМН. 1995. - № 7. - с. 913.

18. Найманов А.Х., Овдиенко Н.П., Энгишев O.K. Иммунодиагностика микобактериозов овец при экспериментальном и естественном заражении. // Пробл. туберкулеза. 1995. - № 2. - с. 55.

19. Романова Р.Ю. Иммуногенные свойства и диагностическая ценность антигенов микобактерий БЦЖ. // Автореф. дисс. докт. биол. наук. М. - 1991. -43 с.

20. Рудой Н.М., Макаревич Н.М., Осипова Т.В. Эпидемиология и клиника микобактериоза легких//Пробл. туб. 1987. - № 6. - с. 17-20.

21. Хоменко А.Г. Туберкулез как международная проблема (По материалам XXVII международного конгресса и рабочего совещания ВОЗ) // Пробл. туб. -1991. № 1. - с. 4-8.

22. Хоменко А.Г. Туберкулез сегодня и завтра проблемы и пути решения // Пробл. туб. - 1995. - № 1. - с. 4-8.

23. Хоменко А.Г. Современные проблемы туберкулеза // Вестн. РАМН. 1995. -№ 7. - с. 3-6.

24. Юрин Б.Л., Смирнова Е.Я. Получение моноклональных антител против антигенов микобактерий. // Пробл. туб. 1987. - № 6. - с. 64-67.

25. АЬе С., Hirano К., Wada М. et al. Detection of Mycobacterium tuberculosis in clinical specimens by polymerase chain reaction and Gen-Probe Amplified Mycobacterium Tuberculosis Direct Test // J. Clin. Microbiol. 1993. - v. 31. - p. 3270-3274.

26. Abe C., Saito H., Tomioka H. et al. Production of a monoclonal antibody specific for M. avium and immunological activity of the affinity-purified antigen. // Infect. Immun. 1989. - v. 57. - № 4. - p. 1095-1099.

27. Afonso L.C., Scharton T.M., Vieira L.Q. et. al. The adjuvant effect of interleukin -12 in a vaccine against Leishmania major. Science - 1994. - v. 263. - p. 235.

28. Ahmad A., Afghan S., Raykundalia C. et al. Study the presence of fibronectin binding protein (FnBp) in tuberculosis (ТВ) patients by elisa. // JAMA J. Pak. Med. Assoc. 1996 Jan. - v. 46. - № 1. - p. 5-7.

29. Aide S.L.M., Pinasco H.M., Pelosi F.R. et al. Evaluation of ELISA using an IgG antibody to M. tuberculosis Antigen 5 in the Diagnoses of Active Tuberculosis in children. // Am. Rev. Respir. Dis. 1989. - v. 139. - p. 748-751.

30. Ameglio F., Giannarelli D., Cordiali Fei P. et al. Use of discriminant analysis to assess activity in pulmonary tuberculosis with a panel of specific and nonspecific serum markers. //Am. J. Clin. Pathol. 1994 Jun. - v. 101(6). - p. 719-725.

31. Amicosante M., Paone G., Ameglio F. et al. Antibody repertoire against the A60 antigen complex during the course of pulmonary tuberculosis. // Eur. Respir. J. -1993 Jun.-v. 6(6).-p. 816-22.

32. Andersen A.B., Andersen P. Ljungqvist L. Structure and function of a 40,000-molecular-weight protein antigen of Mycobacterium tuberculosis. // Infect. Immun. -1992 Jun. v. 60(6). - p. 2317-2323.

33. Andersen A.B., Hansen E.B. Structure and mapping of antigenic domains of protein antigen b a 38000 molecular-weight protein of Mycobacterium tuberculosis // Infect. Immun. 1989. - v. 57. - p. 2481-24

34. Andersen A.B., Thybo S., Godfrey-Faussett P., Stoker N.G. Polymerase chain reaction for detection of Mycobacterium tuberculosis in sputum // Eur. J. Clin. Microbiol. Infect. Dis. 1993. - v. 12. - p. 922-927.

35. Andersen A.B., Yuan Z.-L., Haslov K. et al. Interspecies reactivity of five monoclonal antibodies to M. tuberculosis as examined by immunoblotting and ELISA. // J. Clin. Microbiol. 1986. - v. 23. - № 3. - p. 445-451.

36. Andersen P., Askgaard D., Gottschau A. et al. Identification of immunodominant antigens during infection with Mycobacterium tuberculosis. // Scand. J. Immunol. -1992 Dec. v. 36(6). - p. 823-831.

37. Araj G.F., Fahmawi B.H., Chugh T.D. et al. Improved detection of mycobacterial antigens in clinical speciments by combined enzyme-linked immunosorbent assay. // Diagn. Microbiol. Infect. Dis. 1993 Aug.-Sept. - v. 17(2). - p. 119-127.

38. Armitage R.J., Macduff B.M., Eisenman S. et al. IL-15 has stimulatory activity for the induction of B cell proliferation and differentiation. - J. Immunol. - 1995. - v. 154.-№2.-p. 483-490.

39. Armitage R.J., Macduff B.M., Sprrigss M.K. et al. Human B cell proliferation and Ig secretion induced by recombinant CD40 ligand modulated by soluble cytokines. //J. Immunol. 1993. - v. 150. - p. 3671.

40. Arya A., Batra H.V. Sahai P. et al. Production and characterization of new murine monoclonal antibodies reactive to Mycobacterium tuberculosis. // Hybridoma. -1994 Feb. v. 13(1). - p. 21-30.

41. Ashkenase P.W., Van Loveran H. Delayed-type-hypersensitivity: activation of mast cells by antigen specific T cell factors initiates of cascade of cellular interaction. -Immunol. Today. 1985. - v. 4. - p. 259-261.

42. Ashtekar M.D., Dhalla A.S., Mazarello T.S., Samuel A.M. A Study of Mycobacterium tuberculosis antigen and antibody in cerebrospinal fluid and blood in tuberculosis meningitis // Clin. Immunol. Immunopathol. 1987. - v. 45. - p. 2934.

43. Ausina V., Barrio J., Luquin M et al. Mycobacterium xenopi infections in the acquired immunodeficiency syndrome. // Ann. Intern. Med. 1988 - v. 109 - p. 927928.

44. Averill L.E., Cavallo U., Wallis R.S. et al. Screening of a cosmid library of Mycobacterium bovis BCG in Mycobacterium smegmatis for novel T-cell stimulatory antigens. // Res. Micribiol. 1993 Jun. - v. 144(5). - p. 349-362.

45. Baelden M.C., Vanderelst B., Dieng M. et al. Serological analysis of human tuberculosis by an ELISA with mycobacterial antigen A60. // Scand. J. Infect. Dis. -1990. v. 22. - p. 63-67.

46. Bahrmant A., Bakacv B., Madani H., Saifi M. Identification of mycobacteria isolates using polymerase chain reaction // Tubercle Lung Dis. 1995. - v. 76. - № 2.-p. 19.

47. Baig M.M., Pettengell K.E., Simjee A.E. et al. Diagnosis of tuberculosis by detection of Mycobacterial antigen in pleural effusion and ascitis // S. Afr. Med. J. -1986. v. 69. - p. 1-3.

48. Baird M.A., Hart D.N., Abernethy N., Watson J.D. Dendritic cell presentation of PPD and 19 kDa protein of Mycobacterium tuberculosis and emergent T helper cell phenotype. //Immunol. Cell. Biol. 1995 Dec. - v. 73. - № 6. - p. 537-543.

49. Balden M.-C., Vanderelst B., Dieng M. et al. Serologial analysis of human tuberculosis by an ELISA with mycobacterial antigen 60. // Scand. J. Infect. Dis. -1990.-v. 22.-p. 63-73.

50. Balestrino E.A., Daniel T.M., de Latini M.D.S. et al. Serodiagnosis of pulmonary tuberculosis in Argentina by ELISA of IgG antibody to M. tuberculosis antigen 5 and tuberculin protein derivate. // Bull. WHO. 1984. - v. 62. - p. 755-761.

51. Banica D., Algeorge G. The possibilities of improving the serological diagnosis of active tuberculosis by using the technics of immunofluorescence and ELISA. // Pneumoftiziologia. 1993 Jan.-Jun/ - v. 42 (1-2). - p. 1-6.

52. Barker R.N., Webb G.R., Thompson S.J. et al. Differential effects of immunization with mycobacterial 65 kDa heat shock protein on two models of autoimmunity. // Autoimmunity. 1992. - v. 14(1). - p. 73-77.

53. Barnes F.F., Abrains J.S., Lu S. et al. Patterns of cytokine production by mycobacterium-reactive human T-cell clones. // Infect. Immun. 1993 Jan. - v. 61(1).-p. 197-203.

54. Barnes F.F., Fong S.J., Brennan et al. Local production of tumor necrosis factor and INF-y in tuberculosis pleuritis. // J. Immunol. 1990. - v. 145. - p. 149-154.

55. Barnes F.F., Mehra V., Rivoire B. et al. Immunoreactivity of a 10-kDa antigen of Mycobacterium tuberculosis. // J. Immunol. 1992 Mar. 15. - v. 148(6). - p. 18351840.

56. Bassey E.O., Catty D., Kumararatne D.S., Raykundalia C. Candidate antigens for improved serodiagnosis of tuberculosis. // Tuber. Lung. Dis 1996 Apr. - v. 77. - № 2.-p. 136-145.

57. Bassey E.O., Life P.F., Catty D. et al. T-cell response to mycobacterial proteins: a comparative study of tuberculous and control immunoblots of Mycobacterium tuberculosis and M. bovis BCG. //Tuber. Lung. Dis 1996 Apr. - v. 77. - № 2. - p. 146-153.

58. Bech Nielsen S., Shulaw W.P., Frandsen F.L. et al. Use of a dot enzyme-linked immunosorbent assay on absorbed sera for the diagnosis of bovine paratuberculosis. //Rev. Sei. Tech. 1993. Jun. - v. 12(2). - p. 617-627.

59. Benjamin R.G., Daniel T.M. Serodiagnosis of tuberculosis using the Enzyme-linked Immunosorbent assay (ELISA) of antibodies to Mycobacterium tuberculosis antigen 5. // Am. Rev. Resp. Dis. 1982. - v. 126(6). - p. 1013-1016.

60. Benjamin R.G., Debanne S.M., Ma Y. et al. Evaluation of mycobacterial antigens in an ELISA for the serodiagnosis of tuberculosis. // J. Med. Microbiol. 1984. - v. 18. - p. 309-318.

61. Bermudez L.E., Wu M., Enhel H. et al. Naturally occurring antibodies against M. avium complex. // Ann. Clin. Lab. Sci. 1989. - v. 19 - № 6 - p. 435-443.

62. Bhargava D.K., Dasarathy S., Shriniwas M.D. et al. Evaluation of enzyme-linked immunosorbent assay using mycobacterial saline-extracted antigen for the serodiagnosis of abdominal tuberculosis. // Am. J. Gastroenterol. 1992 Jan. - v. 87(1).-p. 105-108.

63. Bhaskar A., Pradhan P., Chaturvedy P. et al. Immunodiagnosis of childhood pulmonary and extrapulmonary tuberculosis using Mycobacterium tuberculosis ES antigen by penicillinase ELISA. //Ann. Tpop. Paediatr. 1994. - v. 14(1) - p. 25-30.

64. Bhaskar S., Jain N.K., Mukherjee R. Slide agglutination test for the diagnosis of pulmonary and extra-pulmonary tuberculosis. // Tuber. Lung. Dis. 1996 Apr. - v. 77. -№2. - p. 160-163

65. Bhattachraya A., Ranadive S.N. et al. Antibody-based Enzyme-linked immunosorbent assay for determination of immune complexes in clinical tuberculosis //Amer. Rev. Respir. Dis. 1986. - v. 134. - № 2. - p. 205-209.

66. Biere F., Servet-Delprae G., Bridon J.M. et al. Human IL-10 induced naive surface immunoglobulins D+S IgD + B cells to secrete IgGl and IgG3. J. Exp. Med. -1994.-v. 179.-p. 757.

67. Blanchard D.K., McMillen S., Hoffman S.L. et al. Mycobacterial induction of activated killer cells: possible role of tyrosine kinase activity in interleukin-2 receptor alpha expression. // Infect. Immun. 1992 Jul. - v. 60(7). - p. 2843-2849.

68. Bothamley G.H., Rudd R.M. Clinical evaluation of a serological assay using a monoclonal antibody (TB72) to the 38 kDa antigen of Mycobacterium tuberculosis. // Eur. Respir. J. 1994 Feb. - v. 7(2). - p. 240-246.

69. Bothamley G.H., Rudd R.M., Festenstein F. et al. Clinical value of the measurement of Mycobacterium tuberculosis specific antibodies specific antibody in pulmonary tuberculosis. // Thorax. 1992 Apr. - v. 47(4). - p. 270-275,

70. Bothanley G.H., Schreuder G.M. Human leukocyte antigen, tuberculosis, and Mycobacterium tuberculosis-specific antibody letter. // J. Infect. Dis. 1992 Mar. -v. 165(3). - p. 598.

71. Böttger E.C., Teske A., Kirshner P. et al. Disseminated "Mycobacterium genavense" infection in patients with AIDS. // Lancet 1992. - v. 340. - p. 76-80.

72. Britton W.J., Hellqvist L., Basten A. et al. Separate antigenic determinants on cell wall associated with carbohydrate antigens of M. leprae defined with monoclonal antibodies. // J. Immunol. 1985. - v. 135. - p. 4171-4177.

73. Britton W.J., Hellqvist L., Ivanyi J. et al. Immunopurification of radiolabeled antigens of M. leprae and M. bovis BCG with monoclonal antibodies. // Scand. J. Immunol. 1987. - v. 26. - p. 149-152.

74. Brostoff J., Lenzini L., Rottoli P. et al. Immune complex in the spectrum of tuberculosis // Tubercle. -1981. v. 62. - p. 162-173.

75. Bruneteau M., Perret J., Vanlinden F. et al. Composition and immunogenicity of the polysaccharide components of the thermostable macromolecular antigen group of mycobacterial antigens. // Med. Microbiol. Immunol. Berl. 1992. - v. 181 (1). - p. 13-23.

76. Butler L.D., Miller S.D., Claman H.N., Chiller J.M. Unresponsiveness in hapten -specific cytotoxic lymphocytes. Cell. Immunol. - 1983. - v. 76. - p. 94-104.

77. Carr R.J., Chacraborty A.K., Brumola M.J. et al. Immune Complex and antibodies to BCG in sera from patients with mycobacterial infection. // J. Clin. Exp. Immunol. 1980. - v. 38,-p. 562-566.

78. Castro A.P., Aguas A.P., Silvia M.T. Adjuvant treatment increases the resistance to Mycobacterium avium infection of mycobacteria susceptible BALB/c mice. // Clin. Exp. Immunol. 1993 Jun. - v. 92(3). - p. 466-472.

79. Chandramuki F., Allen P.R.I., Keen M., Ivanyi J. Detection of Mycobacterium antigen and antibodies in the cerebrospinal fluid of patients with tuberculous meningitis // J. Med. Microbiol. 1985. - v. 20. - № 2. - p. 239-247.

80. Chann J.J., McKitrick J.C., Klein R.S. Mycobacterium gordonae in the acquired immune deficiency syndrome. //Ann. Intern. Med. 1984. - v. 101. - p. 400.

81. Cher D.J. and Mosmann T.R. Two types of murine helper T cell clone. II. Delayed-type hypersensitivity is mediated by Thl clones. J. Immunol. - 1987 - v. 138. - p. 3688-3694.

82. Chiang C.S., Yeh S.Z., Chang T.L. et al. Detection of specific antybody to mycobacterial antigen 60 in tuberculous pleural effusion. // Chung. Hua I Hsueh Tsa Chin. Taipei. 1994 Apr. - v. 53(4). - p. 204-207.

83. Cho S.N. Contemporary approaches to the serology of tuberculosis. // Bull. Int. Union Tuberc. LungDis. 1990/1991. - v. 66. - p. 59-61.

84. Cho S.N., Shin J.-S., Kim J.-D. et al. Production of monoclonal antibodies to lipoarabinomannan-B and use in the detection of mycobacterial antigens in sputum. II Yonsei Med. J. 1990. - v. 31. - p. 333-338.

85. Chua A.O., Chizzonite R., Desai B.B. et al. Expression cloning of a human IL-12 receptor component: a new member of the cytokine receptor superfamily with strong homology to gpl30. J. Immunol. - 1994. - v. 153. - p. 128.

86. Chugh I.B., Kansal R., Vinayak V.K. et al. Protective efficacy of different cellwall fractions of Mycobacterium tuberculosis. // Folia Microbiol. Praha. 1992 - v. 37(6).-p. 407-12.

87. Chugh I.B., Khuller G.K. Immunoprotective behaviour of liposome entrapped cell wall subunit of Mycobacterium tuberculosis against experimental tuberculous infection in mice. // Eur. Respir. J. 1993 Jun. - v. 6(6). - p. 811-815.

88. Chugh I JB., Vinayak V.K., Khuller G.K. Host response to Mycobacterial cell wall subunit during experimental tuberculosis in mice. // Folia Microbiol. Praha. 1993. -v. 38(4). - 345-348.

89. Claydon E.J., Coker R.J., Harris J.R.W. Mycobacterium malmoense infection in HIV positive patients. // J. Infect. 1991 - v. 23. - p. 191-194.

90. Coates A.R., Hewitt J., Allen B. et al. Antigenic diversity of M. tuberculosis and M. bovis detected by means of monoclonal antibodies. // Lancet. -1981. v. 25. - p. 167-169.

91. Cocito C. Properties of the Mycobacterial Antigen Complex A60 and its Applications to the Diagnosis and Prognosis of Tuberculosis (review) // Chest. -1991.-v. 100.-p. 1687-1693.

92. Cocito C., Baelden M.C., Benoit C. Immunological properties of antigen 60 of BCG: induction of humoral and cellular immune reactions. // Scand. J. Immunol.1987. v. 25. - p. 579-584.

93. Cocito C., Vanlinden F. Preparation and properties of antigen 60 from Mycobacterium bovis BCG. // Clin. Exp. Immunol. 1986. - v. 66. - p. 262-272.

94. Coffman R.L., Seymour B.W., Lebman D.A. et al. The role of helper T cell products in mouse B cell differentiation and isotype regulation. Immunol. Rev.1988.-v. 102.-p. 5-28.

95. Cole S.T. Why sequence the genome of Mycobacterium tuberculosis? // Tubercl. Lung. Dis. 1996. - v. 77. - p. 486-490.

96. Colebunders R.L., Ryder R.W., Nzilambi N. et al. HIV infection in patients with tuberculosis in Kinshasa, Zaire. //Am. Rev. Respir. Dis. 1989. - v. 139. - p. 10821085.

97. Collins F.M. Mycobacteria as cofactors in AIDS. // Res. Microbiol. 1992. - v. 143. - p. 369-372.

98. Converse P.J., Ottenhoff T.N., Gebre N. et al. cellular humoral, and gamma interferon responses to Mycobacterium leprae and BCG antigens in healthy individuals exposed to leprosy. // Scand. J. Immunol. 1988. - v. 27. - p. 515-525.

99. Corner L.A., Nicolacopoulos S. comparison of media for the primary isolation of Mycobacterium bovis by Veterinary and Medical Diagnostic Laboratories. // Aust. Vet. J.- 1988.-v. 65.-p. 202-205.

100. Da Costa C.T., Khanolkar Young S., Elliott A.M. et al. Immunoglobulin G subclass responses to mycobacterial lipoarabinomannan in HIV-infected and non-infected patients with tuberculosis. // Clin. Exp. Immunol. 1993 Jan. - v. 91(1). - p. 25-29.

101. Daffe M., Lacave C., Laneelle M.-A. et al. Structure of the major triglycosyl phenol-phthiocerol of Mycobacterium tuberculosis (strains Canetti). // Eur. J. Biochem. 1987. - v. 167. - p. 155-160.

102. Damiani G., Biano A., Beltrame A. et al. Generation and characterization of monoclonal antibodies to 28-, 35-, and 65-Kilodalton proteins of M. tuberculosis. // Infect. Immun. 1988. - v. 56. - № 5. - p. 1281-1287.

103. D'Andrea A., Rengaraju M., Valiante N.M. et. al. Production of natural killer cell stimulatory cell factor (interleukin 12) by peripheral blood mononuclear cells. J. Exp. Med. - 1992. - v. 176. - p. 1387.

104. Daniel T.M. Antibody and antigen detection for the immunodiagnosis of tuberculosis: Why not? What more is needed? Where do stand today? // J. Infect. Dis. 1988. - v. 158. - p. 678-680.

105. Daniel T.M., Anderson P.A. The isolation by immunoabsorbent affinity chromatography and physicochemical characterization of Mycobacterium tuberculosis antigen 5 //Amer. Rev. Respir. Dis. 1978. - v. 117. - p. 533-539.

106. Daniel T.M., Debanne C.M. The serodiagnosis of tuberculosis and the other mycobacteria disease by enzyme-linked immunosorbent assay. // Am. Rev. Respir. Dis. 1987. - v. 135. - p. 1137-1151.

107. Daniel T.M., Janitcky B.W. Mycobacterial antigens: a review of their isolation chemistry and immunology properties. // Microbiol. Rev. 1979. - v. 42. - p. 87113.

108. Daniel T.M., Olds G.R. Demonstration of a shared epitope among mycobacterial antigens using a monoclonal antibody. // Clin. Exp. Immunol. 1985. - v. 60. - № 2. -p. 249-258.

109. Dannenburg Jr. A.M. Delayed type hypersensitivity and cell mediated immunity in the pathogenesis of tuberculosis. // Immunol. Today. 1991. - v. 12. - p. 228-233.

110. Dannenburg Jr. A.M. Immune mechanisms in the pathogenesis of pulmonary tuberculosis. // Rev. Infect. Dis. 1989. - v. 12 (Suppl 2): S369-77.

111. Daugelat S., Guile H., Schoel B. Secreted antigens of Mycobacterium tuberculosis: characterization with T lymphocytes from patients and contacts after two-dimensional separation. // J. Infect. Dis. 1992 Jul. - v. 166(1). - p. 186-190.

112. David H.L. The spectrum of tuberculosis and leprosy: What can be the significance of specific humoral responses? // 5th forum in microbiology. 1990. - p. 197-206.

113. De Bruyn. J., Bosnians R., Nyabenda J. et al. Effect of zinc deficiency of two immunodominant protein antigens (32 kDa and 65 kDa) in culture filtrates of mycobacteria. // J. Gen. Microbiol. 1989. - v. 135. - p. 79-84.

114. Debnath J.C., Mallick B.B., Das S.K. Enhanced production of antibody with specific antigen. // Indian. J. Exp. Biol. 1992 Feb. - v. 30(2). - p. 73-76.

115. Defrance T.B., Vanbrvliet B., Rriere F. et al. Interleukin 10 and transforming growth factor-cooperate to induced anti CD40-activated naive human B cells to secrete immunoglobulin A. J. Exp. Med. -1991. - v. 175. - p. 671.

116. Denis M., Ghadirian E. IL-10 neutralization augments mouse resistance to systemic Mycobacterium avium infections. // J. Immunol. 1993 Nov. 15. - v. 151(10). - p. 5425-5430.

117. Desai B.B., Truitt T., Hosanoge S. et al. Expression of functional IL-12R on a human IL-2-dependent T cell line. J. Immunol. - 1993. - v. 150. - p. 207a (Abstr.).

118. Deshpande R.G., Khan M.B., Navalkar R.G. Immunological evaluation of a 12-kilodalton protein of Mycobacterium tuberculosis by enzyme-linked immunosorbent assay. // Tuber. Lung Dis. 1993 Dec. - v. 74(6). - p. 382-387.

119. Dhand R., Ganduly N.K., Vaishnavi C. et al. False-positive reactions with Enzyme-linked Immunosorbent assay of Mycobacterium tuberculosis antigens in pleural fluid. // J. Med. Microbiol. 1988. - v. 26. - p. 241-243.

120. Donald P.R., Cooper R.C. Enzyme-linked immunosorbent assay for the detection of mycobacterial antigens in the cerebrospinal fluid in tuberculosis meningitis // S. Aft. Med. J. 1987. - v. 71. - p. 699-700.

121. Drowart A., Cambiaso C.L., Huygen K. et al. Detection of mycobacterial antigens present in short-term culture media using particle counting immunoassay. // Am. Rev. Respir. Dis. 1993 Jun. - v. 147(6 Pt 1). - p. 1401 - 1406.

122. Drowart A., Hygen K., De Bruyn J. et al. Antibody levels to whole culture filtrate antigens and to purified P32 during treatment of smear positive tuberculosis. // Chest. 1991 - v. 100. - p. 685-687.

123. Drowart A., Selleslaghs J., Yernault J.C. et al. The humoral immune response after BCG vaccination: an immunoblotting study using two purified antigens. // Tuber. Lung. Dis. 1992 Jun. - v. 73(3). - p. 137-140.

124. Dundar V., Baran R., Akgul A. et al. Diagnostic value of ELISA for determining the occurrence of antibodies to antigen A60 active pulmonary tuberculosis. // Mykrobiol. Bui. 1992 Oct. - v. 26(4). - p. 320-328.

125. Durupinar B., Yanbeyi S., Leblebicioglu H. et al. Importance of the enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) for the serologic diagnosis of tuberculosis. // Microbiol. Bui. 1992 Oct. - v. 26(4). - p. 338-343.

126. Eisenach K.D., Sifford M.D., Cave M.D. et al. Detection of Mycobacterium tuberculosis in sputum samples using a polymerase chain reaction. // Am. Rev. Respir. Dis. -1991. v. 144. - p. 1160.

127. Elsaghier A., Prantera C., Bothamley G. et al. Disease association of antibodies to human and mycobacterial hsp70 and hsp60 stress proteins. // Clin Exp. Immunol. -1992 Aug. v. 89(2). - p. 305-309.

128. Engers H., Abe M., Bloom B.R. et al. Results of a World Health Organization (WHO) sponsored workshop on monoclonal antibodies to Mycobacterium leprae. // Infect. Immun. 1985. - v. 48. - p. 603-605.

129. Engers H., Houba V., Bennedsen J. et al. Results of World Health Organization (WHO) sponsored workshop to characterise antigens recognised by mycobacteria -specific monoclonal antibodies. // Infect. Immun. 1986. - v. 51. - p. 718-721.

130. Engvar E., Perlman P. Enzyme-linked Immunosorbent assay (ELISA). Quantitative assay of immunoglobulin G. // Immunochemistry. 1971. - v. 8 (9). - p. 871-874.

131. Ewing G., Kuhnen E., Niese D. et al. Tubercilose und atypiske Mykobacteriosen bei HIV-Infektion: Ergebnisse des Zentrums Bonn 1985 bis 1989. // Med. Klin. -1990. -v. 85. -p. 355-360.

132. Fadda G., Grillo R., Ginesu F. et al. Serodiagnosis and follow up of patients with pulmonary tuberculosis by enzyme-linked immunosorbent assay. // Eur. J. Epidemiol. 1992 Jan. - v. 8(1). - p. 81-87.

133. Faith A., Schellenberg D.M., Rees A.D. et al. Antigenic specificity and subset analysis of T cells isolated from the bronchoalveolar lavage and pleural effusion of patients with lung disease. // Clin. Exp. Immunol. 1992 Feb. - v. 87(2). - p. 272278.

134. Fifis T., Corner L.A., Rothel J.S. et al. Cellular and humoral immune responses of cattle to purified Mycobacterium bovis antigens. // Scand. J. Immunol. 1994 Mar. -v. 39(3). - p. 267-274.

135. Figueiredo J.F., Machado A.A. Reduced anti-Mycobacterium tuberculosis antibody response in tuberculosis patients with acquired immunodeficiency syndrome. // Braz. J. Med. Biol. Res. 1992. - v. 25(6). - p. 611-618.

136. Fiorentino D.F., Bond M.W., Mosmann T.R. Two types of mouse T-helper cell IV: Th2 clone secrete a factor that inhibits cytokine production by Thl clones. J. Exp. Med. - 1989. - v. 170. - p. 2081.

137. Fischer H.P., Sharrock C.E., Panayi G.S. High frequency of cord blood lymphocytes against mycobacterial 65-kDa heat-shock protein. // Eur. J. Immunol. -1992 Jun. v. 22(6). - p. 1667-1669.

138. Fontalin L.N., Novikova T.K., Chernousov A.D. Mechanisms of cyclophosphamide induced toleranse: clonal deletion and suppression in b. cellular and molecular mechanisms of immunologic tolerance. - Ed.: H.T. Hasek, M. Deker inc., 1980. - p. 337-343.

139. Gangopadhyay N.N., Mallick B.B. Polyclonal B-lymphocyte activation of sheep by Mycobacterium phlei against sheep pox virus. // Indian J. Exp. Biol. 1992 Mar.- v. 30(3) p. 247-249.

140. Garbe T., Harris D., Vordermeier M. et al. Expression of the Mycobacterium tuberculosis 19-kilodalton antigens in Mycobacterium smegmatis: immunological analysis and evidence of glicosylation. // Infect. Immun. 1993 Jan. - v. 61(1). - p. 260-267.

141. Gaston J.S. Are heat shock proteins involved in autoimmunity? // Int. J. Clin. Lab. Res.- 1992.-v. 22(2).-p. 90-94.

142. George K.L., Falkinham J. Identification of cytoplasmic membrane protein antigens of Mycobacterium avium, M. intracellulare and M. scrofulaceum. // Can. J. Microbiol. 1989. - v. 35. - p. 529-533.

143. Gernann T., Gately M.K., Schoenhaut D.S. et al. Interleukin- 12/T-cell stimulating factor, a cytokine with multiple effects on T helper type 1 (Thl) but not Th2 cells. -Eur. J. Immunol. 1993. - v. 23. - p. 1762.

144. Gevaudan M.J., Bollet C., Charpin D. et al. Serological response of tuberculosis patients to antigen 60 of BCG. // Eur. J. Epidemiol. 1992 Sep. - v. 8(5). - p. 666676.

145. Gilot P., Misonne M.C. Mycobacterium paratuberculosis and Escherichia coli share common antigenic determinants. // Vet. Microbiol. 1994 Apr. - v. 39(3-4). -p. 353-360.

146. Godfrey H.P. T cell fibronectin and mycobacterial adversarial strategy. // Int. J. Clin. Lab. Res. 1993. - v. 23(3). - p. 121-123.

147. Godfrey H.P., Feng Z., Mandy S. et al. Modulation of expression of delayed hypersensitivity by mycobacterial antigen 85 fibronectin-binding proteins. // Infect. Immun. 1992 Jun. - v. 60(6). - p. 2522-2528.

148. Goren M.B. Sulfolipid of Mycobacterium tuberculosis, strains H37Rv. I. Purification and properties. Biochim. Biophis. Acta. 1970. - v. 210.-p. 116-126.

149. Graham N.M.H., Chaisson E. Tuberculosis and HIV infection: epidemiology, pathogenesis, and clinical aspects. //Ann. Allergy. 1993. - v. 71. - p. 421-428.

150. Grange J.M. Humoral immunity in tuberculosis // Advans. Tubercl. Res. 1984. -v. 21. - p. 3-78.

151. Grange J.M., Gibson J., Batty A., Kardijito T. The specificity of the humoral immune response to soluble mycobacterial antigens in tuberculosis // Tubercle. -1980.-v. 61,-№3,-P. 153-156.

152. Grange J.M., Kardjito T. Serological tests for tuberculosis: Can the problem of low specificity be overcome? // Indian. J. Chest. Dis. 1982. - v. 24. - p. 108-117.

153. Gupta S., Kumari S., Banwalikar J.N. et al. Diagnostic utility of the mycobacterial Antigen A60 specific immunoglobulins IgM, IgA and IgG in the sera of cases of adult human tuberculosis. // Tuberc. a Lung Disease 1995 - v. 76. - № 5. - p. 418424.

154. Gupta S.K., Ram G.C., Bansal M.P. Antigenic characterization of Mycobacterium bovis BCG soluble antigens. // Vet. Microbiol. 1994 Jan. - v. 38(3). - p. 227-240.

155. Gustafsson B. Monoclonal antibody-based Enzyme-linked immunosorbent assay for identification and serotyping of Vibrio cholerae 01 // J. Clin. Microbiol. 1984. -v. 20.-p. 1180-1185.

156. Haanen J.A.B.G., de Waal M.R., Res P.C.M. et al. Selection of human T-helper type 1-like T-cell subsets by mycobacteria. // J. Exp. Med. 1991. - v. 174. - p. 583-592.

157. Haga S., Nakagawa M., Nagai S et al. Purification of MPB70 and production of specific monoclinal antibodies. // Hybridoma. 1992 Aug. - v. 11(4). - p. 483-492.

158. Hajime Saito, Haruaki Tomioka, Katsumasa Sato, Satoshi Dekio. In vitro and in vivo activities of clarithromycin against the Mycobacterium avium complex. // Int. J. Antimicrob. Agents. 1994 - v. 4. - p. 175-181.

159. Hanna J., Neill S.D., O'Brien J.J. ELISA tests for antibodies in experimental bovine tuberculosis. // Vet. Microbiol. 1992 Jul. - v. 31(2-3). - p. 243-249.

160. Harboe M., Nadai S., Patarroyo M.E. et al. Properties of proteins, MPB 64, MPB 70, and MPB 80 of Mycobacterium bovis BCG // Infect. Immun. 1986. - v. 52. - p. 293-302.

161. Harboe M., Wiker H.G. The 38-kDa protein of Mycobacterium tuberculosis: a review. // J. Infect. Dis. 1992 Oct. - v. 166(4). - p. 874-884.

162. Harris D.P., Vordermeier H.M., Brett S.J. et al. Epitope specificity and isoforms of mycobacterial 19-kilodalton antigen. // Infect. Immun. 1994 Jul. - v. 62(7). - p. 2963-2972.

163. Hoeppner V., Jackett P., Beck J. et al. Appraisal of the monoclonal antibody-based competition test for the serology of tuberculosis in Indonesia. // Serodiagn. Immunother. 1987. - № 1. - p. 69-77.

164. Hou W., Wu Q.X., Zhang P.Z. Detection of antibodies to sulpholipid IV from Mycobacterium tuberculosis in pulmonary tuberculosis patients. // Chung Hua Chieh Ho Ho Hu Hsi Tsa Chin. 1993 Aug. - v. 16(4). - p. 225-227, 253.

165. Hsieh C.S., Macatonia S.E., Tripp C.S. et al. Development of Thl CD4+ T cells through IL-12 produced by listeria induced macrophages. - Science. - 1993. - v. 260. - p. 547.

166. Hubbard R.D., Flory C.M., Collins F.M. et al. Immunization of mice with the antigen A60 of Mycobacterium bovis BCG. // Clin. Exp. Immunol. 1992 Apr. - v. 88(1).-p. 129-131.

167. Huebner R.E., Schein M.F., Cauthen G.M. et al. Evaluation of the clinical usefulness of mycobacterial skin test antigens in adults with pulmonary mycobacterioses. //Am. Rev. Respir. Dis. 1992 May. - v. 145(5). - p. 1160-1166.

168. Hunter S.W., Gaylord H., Brennan P.J. Structure and antigenicity of the phosphorylated lipopolysaccharide antigens from the leprosy and tubercle bacilli. // J. Biol. Chem. 1986. - v. 261. - p. 12345-12351.

169. Jackett P.S., Bothamley G.H., Batra H.V. et al. Specificity of antibodies to immunodominant mycobacterial antigens in pulmonary tuberculosis. // J. Clin. Microbiol. 1988. - v. 26. - p. 2313-2318.

170. Jalgaonkar S.V., Tankhiwale S.B., Pathak A.A. et al. Effect of H37Rv on FNA-induced migratory inhibition of leukocytes in patient of tuberculosis. // Indian. J. Pathol. Microbiol. 1992 Oct. - v. 35(4) - p. 319-325.

171. Janssen R., Wauben M., van der Zee R. et al. Immunogenicity of a mycobacterial T-cell epitope expressed in outer membrane protein PhoE of Escherichia coli. // Vaccine. 1994 Apr. - v. 12(5). - p. 406-409.

172. Jeanson A., Cloes I.-M., Bouchet M. R. Comparison of conjugation procedures for the preparation of monoclonal antibody-enzyme conjugates. // J. Immunol. Meth. 1988 -v. 111. -№2. - p. 261-270.

173. Johnson B.J., McMurray D.N. Cytokine gene expression by cultures of human lymphocytes with autologous Mycobacterium tuberculosis-infected monocytes. // Infect. Immun. 1994 Apr. - v. 62(4). - p. 1444-1450.

174. Kadival C.C., Chaparas S.D. Production, characterization and species specifity of five monoclonal antibodies to M. tuberculosis. // J. Clin. Microbiol. 1987. - v. 25. -p. 76-80.

175. Kadival G.V., Mozarelo T., Chaparas S.D. Sensitivity and specificity of enzyme-linked immunosorbent assay in the detection of antigen in tuberculous meningitis cerebrospinal fluids // J. Clin. Microbiol. 1986. - v. 23. - № 5. - p. 901-904.

176. Kadival G.V., Samuel A.H., Mozarelo T. et al. Radioimmunoassay for detection Mycobacterium tuberculosis antigen in cerebrospinal fluids of patients with tuberculous meningitis // J. Infect. Dis. 1987. - v. 155. - № 4. - p. 608-611.

177. Kalish S.B., Radin R.C., Phair J.B. et al. Use of enzyme-linked immunosorbent assay technique in differential diagnosis of active pulmonary tuberculosis in humans. //J. Infect. Dis. 1983. - v. 147. - p. 523-530.

178. Kalish S.B., Radin R.C., Levitz D. et al. The enzime-linked immunosorbent assay method for IgG antibody to purified protein derivative in cerebrospinal fluid of patients with tuberculous meningitis. // Ann. Intern. Med. 1983. - v. 99. - p. 630633.

179. Kansal R., Singhal R., Khuller G.K. Correlation between antibodies to mannophosphoinositides and detection of antigen in circulating immune complexes in patients with pulmonary tuberculosis. // Indian J. Med. Res. 1992 Mar. - v. 95. -p. 54-58.

180. Kaustova J., Chmelik M., Ettlova D. et al. Disease due to Mycobacterium kansasii in the Czech Republic: 1984-89. // Tuberc. a Lung Disease 1995 - v. 76. - № 3. -p. 205-209.

181. Kawamura I., Tsukada H., Yoshikawa H. et al. INF-gamma-producing ability as a possible marker for protective T cells against Mycobacterium bovis BCG in mice. // J. Immunol. 1992 May 1. - v. 148(9). - p. 2887-2893.

182. Kennet R.H., Denis K.A., Tung A.S. et al. Hybrid plasmacytoma production. Fusions with adult spleen cells, and human spleen cells. // Curr. Top. Microbiol. Immunol. 1978. - v. 88. - p. 77-80.

183. Kiehn T.E., Cammarata R. Laboratory diagnosis of mycobacterial infections in patients with Acquired Immunodeficiency syndrome // J. Clin. Microbiol. 1986. -v. 24.-p. 708-711.

184. Kocklin R.E., Bendtzen E.K., Greineder D.K. Mediator of immunity: lymphokines and monokines. // Adv. Immunol. 1980. - v. 29. - p. 55-136.

185. Kolk A.H.J, Kox L.F., Lecuwen J. et al. Use of advanced technology in routine mycobacteriology: quality control and cost benefit aspects // Tubercl. Lung Dis. -1995. v. 76. - № 2. - p. 144.

186. Kolk A.H.J., Ho M.L., Klaster P.R. et al. Production and characterization of monoclonal antibodies to Mycobacterium tuberculosis, M. bovis (BCG) and M. leprae. // Clin. Exp. Immunol. 1984. - v. 58. - p. 511-521.

187. Kolk A.H.J., Ho M.L., Klaster P.R. et al. Production of monoclonal antibodies against Mycobacterium leprae and armadillo-derived mycobacteria. // Ann. Inst. Pasteur Microbiol. 1985. - v. 136B. - p. 217-224.

188. Kolk A.H.K., Minh Ly Ho, Klatser P.R. et al. Production and characterization of monoclonal antibodies against M. tuberculosis, M. bovis (BCG) and M. leprae.

189. Kolk A.H.J., van Leeumen J., Gilis H. et al. Use of a monoclonal antibodies in the identification of mycobacterial antigens. // Heals Cooperation Papers. 1986. - v. 7 -p. 101-106.

190. Krambovitis E. Detection of antibodies by Enzyme-linked Immunosorbent assay. // J. Med. Microbiol. 1986. - v. 21. - p. 257-261.

191. Krambovitis E., Harris M., Hughes D. Improved serodiagnosis of tuberculosis using two assay test // J. Clin. Pathol. 1986. - v. 39. - p. 779-785.

192. Kramnik I., Radzioch D., Skamene E. T-helper 1-like subset selection in Mycobacterium bovis bacillus Calmette-Guerin-infected resistant and susceptible mice. // Immunology. 1994 Apr. - v. 81(4). - p. 618-625.

193. Kyhse-Andersen J. Electroblotting of multiple gels a simple apparatus without fuller tank for rapid transfer of proteins from Polyacrylamide to NC. // J. Biochem. Biophys. Meth. 1984. - v. 10. - p. 203-209.

194. Ladron de Guevara M.C., Beitran M., Gutierrez A. et al. Effect of chemotherapy on the antibody response to A60 antigen. // Enfern. Infecc. Microbiol. Clin. 1992 Jan.-v. 10(1).-p. 26-28.

195. Ladron de Guevara M.C., Gonzalez A., Ortega A. et al. Serological diagnosis of pulmonary tuberculosis using ELISA and the A60 antigen. // Enfern. Infecc. Microbiol. Clin. 1992 Jan. - v. 10(1). - p. 17-19.

196. Ladron de Guevara M.C., Gonzalez A., Saz J.V. Antibodies against mycobacterial antigens in patients with non-tuberculous pathology. // Rev. Clin. Esp. 1992 Apr. -v. 190(7)-v. 349-51.

197. Laemmli U.K. Cleavage of structural proteins during the assemblage of the head of bacteriophage T4. //Nature, London. 1970. - v. 226. - p. 680-685.

198. Lambertus M.W., Mathisen G.E. Mycobacterium marinum infection in a patient with cryptosporidiosis and the acquired immunodeficiency syndrome. // Cutis. -1988.-v. 42.-p. 38-40.

199. Lathigra R., Zhang Y., Hill M. et al. Lack of production of the 19-kDa glycolipoprotein in certain strains of Mycobacterium tuberculosis. // Res. Microbiol.- 1996 May. v. 147. - № 4. - p. 237-249.

200. Lau J.H.K., Leong J.C.Y., Stroebel A.B. A longitudinal study of antibody titers to antigens 6 in patients with bone and joint tuberculosis. // Int. Orthop. 1983. -v.l.- p. 205-208.

201. Leao S.C. Tuberculosis: new strategies for the development of diagnostic testes and vaccines. // Braz. J. Med. Biol. Res. 1993 Aug. - v. 26(80). - p. 827-833.

202. Leung K.N., Ada G.L., Two T-cell populations mediate delayed type hypersensitivity to murine influenza virus infection. - Scand. J. Immunol. - 1980. - v. 12.-№6.-p. 481-487.

203. Levi-Frebault V., Pangon B., Bure A. et al. Mycobacterium simiae and Mycobacterium avium M. intracellular mixed infection in acquired immune deficiency syndrome. // J. Clin. Microbiol. - 1987. - v. 25. - p. 154-157.

204. Lodam A.N., Reddy M.V., Narang P. et al. Fractionation, analysis and diagnostic utility of Mycobacterium tuberculosis H37Ra excretory-secretory antigen in pulmonary tuberculosis. //Indian J. Biochem. Biophys. 1996 Feb. - v. 33. - № 1. -p. 66-71.

205. Lorgan F., Keraan M.M., Ress S.R. Compartmentalization of the cellular immune response to the recombinant 65 kDa protein of Mycobacterium bovis BCG in patients with tuberculous pleuritis. // Reg. Immunol. 1992 Jan.-Feb. - v. 4(1). - p. 12-17.

206. Lu X.D., Sun H.P., Zhang Y.H. Application of western blotting technique in the serodiagnosis of Mycobacterium tuberculosis infection. // Chung. Hua. Chien. Ho. Ho. Hu. Hsi. Tsa. Chin. 1993 Dec. - v. 16(6). - p. 357-359, 375-376.

207. Lurie M.B. Resistance of tuberculosis: experimental studies in native and acquired defensive mechanisms. // Cambridge, Mass: Harvard University Press, 1964.

208. Ma Y., Wang Y.-M., Daniel T.M. ELISA using M. tuberculosis antigen 5 for the diagnosis of pulmonary tuberculosis in China. // Am. Rev. Respir. Dis. 1986. - v. 134. - p. 1273-1275.

209. Maes R., Homasson I.P., Kubin M., Bayer M. Development of enzyme immunoassay for serodiagnosis of tuberculosis and mycobacteriosis. // Immunology. 1989-v. 179. - p. 323-335.

210. Mahajan M., Singh N.P., Gadre D.J. et al. Detection of IgM antibodies in pulmonary tuberculosis by ELISA using A60 antigen. // J. Commun. Dis. 1996 Sep.-v. 28.-№3.-p. 176-180

211. Mathai A., Radhakrishnan V.V., Sehgal S. Characterization of mycobacterial antigens by Elisa and immunoblot methods. // Indian J. Pathol. Microbiol. 1995 Jul. - v. 38. -№3. - p. 299-303

212. Mattar S., Broquetas J.M., Gea J et al. Antigenic response against PPD and antigen 60 in tubercular patients: single antigen versus the combined test. // Enfern. Infecc. Microbiol. Clin. 1992 May. - v. 10(5). - p. 272-276.

213. Mauch H., Brehmer W., Sonneborn H.-H. et al. Monoclonal antibodies selectively directed against the cell wall surface of M. tuberculosis. // J. Clin. Microbiol. -1983. v. 26. - № 9. - p. 1691-1694.

214. Mazurec G.H., Reddy V., Murphy D., Ansari T. Detection of Mycobacterium tuberculosis in cerebrospinal fluid following immunomagnetic enrichment. //J. Clin. Microbiol. 1996 Feb. - v. 34. - № 2. - p, 450-453

215. Mazzaccaro R.J., Gedde M., Jensen E.R. et al. Major histocompatibility class I presentation of soluble antigen facilitated by Mycobacterium tuberculosis infection. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1996 Oct 15 - 93. - № 21. - p. 11786-11791.

216. McDonough J.A., Sada D.-E., Sippola A.A. et al. Microplate and dot immunoassays for the serodiagnosis tuberculosis. // J. Lab. Clin. Med. 1992 Aug. -v. 120(2).-p. 318-322.

217. Mehra V., Bloom B.R., Torigian V.K. et al. Characterization of Mycobacterium leprae cell wall-associated proteins using T lymphocyte clones. J. Immunol. -1989. - v. 142. - p. 2873.

218. Mehta P.K., Khuller G.K. Sérodiagnostic potentialities of Enzyme-linked Immunosorbent assay using Mannopyranoside of Mycobacterium tuberculosis H37Rv. //Med. Microbiol. Immunol. 1988. - v. 177. - p. 285-292.

219. Mendez Samperio P. Chemically unrelated mycobacterial peptides as antigens and competitors in antigen recognition by human T cells. // Rev. Latinoam. Microbiol. -1992 Oct.-Dec. v. 34(4). - p. 299-304.

220. Merioe L., Pettersson K., Loevgren T. Monoclonal antibody-based duallabel time-resolved fluorometric assays in a simplified one-step format // Clin. Chem. 1996. -v. 42.-№9.-p. 1513-1517.

221. Miguel A.Y., Coppola M.P., Russo D.A. et al. Determination of Mycobacterial antigens in sputum by Enzyme immunoassay. // J. Clin. Microbiol. 1986. - v. 62. -p. 822-825.

222. Milman N., Andersen A.B. Detection of antibodies in serum against M. tuberculosis using western blot technique. Comparison between sarcoidosis patients and healthy subjects. // Sarcoidosis. 1993 Mar. - v. 10(1). - p. 29-31.

223. Minden P., Kelleher P. J., Freed J.H. et al. Immunological evaluation of component isolated from M. bovis BCG with a monoclonal antibody to M. bovis BCG. // Infect. Immun. 1984. - v. 46. - p. 519-525.

224. Miorner H., Sjobring U., Nayak P., Chandramuki A. Diagnosis of tuberculosis meningitis: a comparative analysis of 3 immunoassays, an immune complex assay and the polymerase chain reaction. // Tuberc. a Lung Disease 1995 - v. 76. - № 5. -p. 381-386.

225. Modlin R.L., Kato H., Mehra V. et al. Genetically restricted supressor T-cell clones derived from lepromatous leprosy lesions. Nature - 1986. - v. 322. - p. 459.

226. Morris S.L., Mackall J.C., Malik A. et al. Skin testing with recombinant Mycobacterium intracellulare antigens. // Tuber. Lung. Dis. 1992 Jun. - v. 73(3). -p. 129-133.

227. Morris S.L., Rouse D.A., Hussong D. et al. Isolation and characterization of recombinant A,gtll bacteriophages expressing four different M. intracellulare antigens. // Inf. Immun. 1990. - v. 58. - № 1. - p. 17-20.

228. Mosmann T.R., Coffman R.L. Heterogeneity of cytokine secretion patterns and functions of helper T cells. Adv. Immunol. - 1989. - v. 46. - p. 111-147.

229. Mosmann T.R., Cherwinski H., Bond M.W. et al. Two types of murine helper T cell clone. I. Definition according to profiles of lymphokine activities and secreted proteins. J. Immunol. - 1989. - v. 136. - p. 2348-2357.

230. Mosmann T.R., Moore K.W. The role of IL-10 in cross-regulation of Thl and Th2 response. Immunol. Today. -1991. - № 12. - p. 49.

231. Münk M.E., De Bruyn J., Grass H. et al. The Mycobacterium bovis 32-kilodalton protein antigen human cytotoxic T-cell responses. // Infect. Immun. 1994 Feb. - v. 62(2).-p. 726-728.

232. Nakane P.K., Kawavi A. Peroxidase-labeled antibody: A new method of conjugation. //J. Histochem. Cytochem. 1974. - v. 22. - p. 1084-1091.

233. Nardell E.A. Needles in haystacks: diagnosing tuberculosis under low prevalence conditions. // Tubercle and Lung Disease. 1996. - v. 77. - p. 389-390.

234. Nardell E.A., Boutotte J., Sharnprapai S. et al. Tuberculosis without culture conformation (abstract). Am. J. Resp. Care Med. 1995. - v. 151. - p. 336.

235. Nassau E., Parson E.R., Johnson G.D. The detection of antibodies to Mycobacterium tuberculosis by microplate Enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) // Tubercle. 1976. - v. 57. - p. 67-70.

236. Neill S.D., Hanna J.,. Mackie D.R. et al. Isolation of Mycobacterium bovis from the respiratory tracts of skin test-negative cattle. // Vet. Ree. 1992 Jul 18. - v. 131(3)-p. 45-47.

237. Park M.M., Davis A.L., Schluger N.W. et al. Outcome of MDR-TB, 1983-1993. Prolonged survival with appropriate therapy. // Am. J. Respir. Crit Care Med -1996.-v. 153-p. 317-324.

238. Patil S.A., Giurie Devi M., Anand A.R. et al. Significance of mycobacterial immune complex (IgG) in the diagnosis of tuberculous meningitis. //Tuber. Lung. Dis. 1996 Apr. - v. 77. - № 2. - p. 164-167.

239. Peetermans W.E., Raats C.J., Langermans J.A. et al. Mycobacterial heat-shock protein 65 induced proinflammatory cytokines but does not activate human mononuclear phagocytes. // Scand. J. Immunol. 1994 Jun. - v. 39(6). - p. 613-617.

240. Perez-Fernandez L., Garcia-Latorre E., Sosa de Martinez C et al. Utilidad de la tecnica de inmunoensayo enzimatico ELISA en el diagnostico de la tuberculosis pulmonar en el nino. // Acta. Pediatr. Mex. 1994. - v. 15. - p. 55-63.

241. Pherwani A.V., Patwari V.A. Bronchial challenge with purified protein derivative of Mycobacterium tuberculosis in asthma. // Indian Pediatr. 1992 Jul. - v. 29(7). -p. 867-870.

242. Pilkington C., Costello A.M., Rook G.A. et al. Development of IgG responses to mycobacterial antigens. //Arch. Dis. Child. 1993 Dec. - v. 69(6). - p. 644-649.

243. Pithis A.D., Rahelu M., Kumararatne D.S. et al. Generation of cytolytic T cells in individuals infected by Mycobacterium tuberculosis and vaccinated with BCG. // Thorax. 1992 Sep. - v. 47(9). - p. 695-701.

244. Powrie F. and Coffman R.L. Cytokine regulation of T-cell function: potential for therapeutic intervention. Immunol. Today - 1993. - v. 14. - p. 270-274.

245. Radhakrishnan V.V., Mathai A. Detection on mycobacterial antigens in patients with chronic meningitis by inhibition ELISA. // Indian J. Med. Res. 1990. - v. 91. -p. 355-359.

246. Rambukkana A., Das F.K., Witkamp L. Antibodies to mycobacterial 65-kDa heat shock protein and other immunodominant antigens in patients with psoriasis. // J. Invest. Dermatol. 1993 Jan. - v. 100(1). - p. 87-92.

247. Rambukkana A., Das P.K., Krieg S. et al. Mycobacterial 56,000 MW heat-shock protein shares a carboxy-terminal epitope with human epidermal cytokeratin 1/2. // Immunilogy. 1992 Oct. - v. 77(2). - p. 267-276.

248. Ramkisson A., Coovadia Y., Coovadia H. A competition ELISA for detection of mycobacterial antigen in tuberculosis exudates // Tubercle. 1988. - v. 69. - № 3. -p. 209-212.

249. Rastogi N., McFadden J., Ottenhoff T.H. et al. First International Conference of the Pathogenesis of Mycobacterial Infections: a summary. // Clin. Infect. Dis. 1992 Jan.-v. 14(1).-p. 308-312.

250. Rattan A., Gupta S.K., Singh S. et al. Detection of Mycobacterium tuberculosis in patients of infertility by monoclonal antibody based sandwiched enzyme linked immunosorbent assay (ELISA). // Tuber. Lung. Dis. 1993 Jun. - v. 74(3). - p. 200203.

251. Reggiardo Z., Middlebrook G. Serologically active glycolipid families form Mycobacterium bovis BCG. I. Extraction, purification and immunologic studies. // Am. J. Epidemiol. 1975. - v. 100. - p. 469-476.

252. Reid J.D., Chiodini R.J. Serologic reactivity against Mycobacterium paratuberculosis antigens in patients with sarcoidoses. // Sarcoidosis. 1993 Mar. -v. 10(1).-p. 32-35.

253. Reiner S.L., Zheng S., Wang Z. et al. Leishmania promastigotes evade interleukin 12 (IL-12) induction by macrophages and stimulate a broad range of cytokines from CD4+ T cells during initiation of infection. J. Exp. Med. - 1994. - v. 179. - p. 447.

254. Richeldi L., Barnini S., Saltini C. Molecular diagnosis of tuberculosis. // Eur. Respir. J. 1995. - 8, Suppl. 20, 689s-700s.

255. Ridel M. Serodiagnosis of tuberculosis. // Eur. J. Resp. 1988. - v. 1. - p. 587588.

256. Ridell M. Cross-reactivity between M. tuberculosis H37Rv and various Actinomycetes and related organisms. // Tubercle. 1983. - Vol. 64. - p. 211-216.331 .Ridell M. Serodiagnosis of tuberculosis. // Eur. J. Resp. Dis. 1988. - v. 1. - p. 587-588.

257. Ridell M., Wallerstrom G., Minnikin D.E. et al. A comparative serological study of antigenic glycolipids from Mycobacterium tuberculosis. // Tuber. Lung. Dis. -1992 Apr.-v. 73(2).-p. 101-105.

258. Ridge S.E., Vizard A.L. Determination of the optimal cutoff value for a serological assay: an example using the Johne's Absorbed EIA. //1. Clin. Microbiol. 1993 May. -v. 31(5). -p. 1256-1261.

259. Ridley D.S. and Jopling W.H. Classification of leprosy according to immunity: a five-group system. Int. J. Lepr. - 1966. - v. 34. - p. 255.

260. Roberts G.D., Bottger E.C., Stockman L. Methods of the rapid identification of mycobacterial species. In: Clinics in Laboratory medicine. Clinical Mycobacteriology by ed. L. Heifets. 1996. - v. 16. - № 3. - p. 604.

261. Rojas-Espinosa 0. Active humoral immunity in absence of cell-mediated immunity in murine leprosy: lastly an explanation. // Int. J. Leprosy. 1994. - v. 62. -№ 1. - p. 147.

262. Rojas-Espinosa O., Vega R., Oltra A. et al. Transitory macrophage activation in the granulomatous lesions of Mycobacterium lepraemurium-induced lepromatoid leprosy in the mouse. Int. J. Lepr. - 1988. - v. 56. - p. 428-436.

263. Rook G.A.W. Role of activated macrophages in the immunopathology of tuberculosis. // Br. Med. Bull. 1988. - v. 44. - p. 611-623.

264. Rouse P.A., Morris S.L., Malik A. et al. Production, characterization and species specificity of monoclonal antibodies to Mycobacterium avium complex protein antigens. // Infect. Immun. 1990. - v. 58. - № 5. - p. 1445-1449.

265. Rumschlag H.S., Yakrus M.A., Cohen M.L. et al. Immunological characterization of 35-Kilodalton recombinant antigen of M. tuberculosis. // J. Clin. Microbiol. -1990.-v. 28. -№3. -p. 591-595.

266. Sacilic S.C. Lates development in the serodiagnosis of tuberculosis. // Microbiol. Bui. 1993 Jan. - v. 27(1): - p. 85-88.

267. Sack J.B. Disseminated infection due to Mycobacterium fortuitum in a patient with AIDS. // Rev. Infect. Dis. 1990 - v. 12. - p. 961-963.

268. Sada E., Aguilar D., Torres M. et al. Detection of lipoarabinomannan as a diagnostic test for tuberculosis. // J. Clin. Microbiol. 1992 Sep. - v. 30(9). - p. 2415-2418.

269. Sada E., Ruiz-Palacios G.M., Lopez-Vidal Y., Ponte de Leon S.P. Detection of Mycobacterial antigens in cerebrospinal fluid of patients with tuberculosis meningitis by Enzyme-linked immunosorbent assay // Lancet. 1983. - v. 2. - p. 651-652.

270. Saltini C., Amicosante M., Li Bianchi E. et al. Mycobacterium tuberculosis. From the gene to the diagnosis. // Recenti Prog. Med. 1992 Jan. - v. 83(1). - p. 38-45.

271. Salvetti M., Buttinelli C., Ristori G. et al. T-lymphocyte reactivity to the recombinant mycobacterial 65- and 70-kDa heat shock proteins multiple sclerosis. // J. Autoimmun. 1992 Dec. - v. 5(6). - p. 691-702.

272. Sarnaik R.M., Sharma M., Kate S.K. et al. Serodiagnisis of tuberculosis: assessment of kaolin agglutination test. // Tuber. Lung. Dis. 1993 Oct. - v. 74(6). -p. 405-406.

273. Saz J.V., Ladron de Guevara M.C. IgG against A60 antigen and the tuberculin test in healthy individuals and tubercular patients. // Enfern. Infecc. Microbiol. Clin. -1992 Oct. v. 10(8). - p. 477-480.

274. Schluger N. W., Rom. W. N. Current approaches to the diagnosis of active pulmonary tuberculosis. // Am. J. Respir. Crit. Care. Med. 1994. - v. 149. - p. 264267.

275. Schou C., Yuan Z.L., Andersen A.B. et al. Production and partial characterization of monoclonal hybridoma to M. tuberculosis. // Acta path, microbiol. immunol. scand. Sect. C. 1985. - v. 93. - p. 265-272.

276. Schurr E., Malo D., Radzioch D. et al. Genetic control of innate resistance to mycobacterial infections. // Immunol. Today. -1991. v. 12.A42-5.

277. Scott B, Schmid M, Nettleman M.D. Early identification and isolation of inpatients at high risk for tuberculosis. // Arch. Intern. Med. 1994. - v. 154. p. 326330.

278. Simonney N., Labrousse H., Ternynck T., Lagrange P.H. Recycling of ELISA plates for the serological of tuberculosis using a Mycobacterium tuberculosis -specific glycolipid antigen. // J. Immunol. Methods. 1996 Nov 29. - v. 199 - № 1. -p. 105-111.

279. Singh M., Andersen A.B., McCarthy J.E. et al. The Mycobacterium tuberculosis 38-kDa antigen: overproduction in Escherichia coli, purification and characterization. // Gene. 1992 Aug. - v. 117(1). - p. 53-60.

280. Singh A.P., Khuller G.K. Liposomes as a carrier for mannophosphoinositide antigens of mycobacteria. // Indian J. Biochim. Biophis. 1993 Jun. - v. 30(3). - p. 160-165.

281. Small P., Shafer R.W., Hopewell P.C. et al. Exogenous reinfection with multidrug resistant Mycobacterium tuberculosis in patients with advanced HIV infection. //N. Engl. J. Med. 1993. - v. 328. - p. 1137-1144.

282. Splowski I.B., Fu S.M., Lipsky B.E. Immunoregulatory role CD40 in human B cell differentiation. J. Immunol. - 1993. - v. 150. - p. 1276.

283. Steele B.A., Daniel T.M. Evaluation of the potential role of serodiagnosis of tuberculosis in a clinic in Bolivia by decision analysis. // Am. Rev. Respir. Dis. -1991. v. 143 - p. 713-716.

284. Stern A.S., Podlaski F.J., Hulmes J.D. et al. Purification to homogeneity and partial characterization of cytotoxic lymphocyte maturation factor from human B-lymphoblastoid cells. Proc. Natl. Acad. Sei. USA. - 1990. - v. 87. - p. 6808.

285. Stevens T.R., Bossie A., Sanders V.M. et al. Regulation of antibody isotype secretion by subsets of antigen-specific helper T cells. Nature (Lond.). - 1988. - v. 334. - p. 255-258.

286. Stevens T.R., Winrow V.R., Blake D.R. et al. Circulating antibodies to heat-shock protein 60 in Chron's disease and ulceration colitis. // Clin. Exp. Immunol. 1992 Niv.-v. 90(2).-p. 271-274.

287. Subash S., Mosmann T.R. Single IL-2 secreting precursor CD4 T cell com develop into either Thl or Th2 cytokine secretion phenotype. J. Immunol. - 1994. -v. 153,-№8.-p. 3514-3522.

288. Surcel H.M., Troye Blomberg M., Paulie S. et al. Thl/Th2 profiles in tuberculosis, based on the proliferation and cytokine response of blood lymphocytes to mycobacterial antigens. // Immunology. 1994 Feb. - v. 81(2). - p. 171-176.

289. Sussman G., Wadee A.A. Supernatants derived from CD8+ lymphocytes by mycobacterial fractions inhibits production. The role of interleukin-6. // Biotherapy. 1992.-v. 4(2).-p. 87-95.

290. Telenti A., Lowrie D., Matter L. et al. Detection of rifampicin-resistant mutations in Mycobacterium tuberculosis. // Lancet. 1993. - v. 341. - p. 617-620.

291. Thierry D., Brisson-Noel A., Vincent-Levy-Frebault V. et al. Characterization of a Mycobacterium tuberculosis insertion sequence, IS6110, and its application in diagnosis. // J. Clin. Microbiol. 1990. - v. 28. - p. 2668.

292. Thoen C.O., Eacret W.G., Himes E.M. An enzyme-labeled antibody test for detection antibodies in chiken infected with Mycobacterium avium serotype 2. // Avian Dis. 1978. - v. 22. -№ 1. - p. 162-166.

293. Tortoli E., Tullia Simonerri M., Dionisio D. et al. Cultural studies on two isolates of "Mycobacterium genavense" form patients with acquired immunodeficiency syndrome. // Diagn. Microbiol. Infect. Dis. 1994. - v. 18. - p. 7-12.

294. Towbin H., Staehelin T., Gordon J. Electrophoretic transfer of proteins from Polyacrylamide gells to nitrocellulose sheets. // Proc. Natl. Acad. Sei. USA. 1979. - v. 76. - p. 4350-4354.

295. Trinchieri G.B. Interleukin-12 and its role in generation of Thl cells. Immunol. Today. - 1993. - v. 14. - p. 335.

296. Tsubara E., Azuma I., Yne H. Murostasin, a muramyl dipeptide derivative. -Arzeneim Frsch Drug Res. - 1988. - v. 38. - p. 951-952.

297. Tsuyuguchi T. Production of monoclonal antibodies for M. tuberculosis AOYAMA-B and immunological activity of the affinity-purified antigens. // Kekkaku. 1989. - v. 64. - № 12. - p. 761-774.

298. Tumeer M., Van Nerom E. Serological comparison of purified antigens 60 and 85A (P32) of Mycobacterium bovis BCG, and purified proteins derivative, in active pulmonary tuberculosis. // Eur. J. Epidemiol. 1993 Sep. - v. 9(5). - p. 541-546.

299. Ulklistaia T.A., Vinnik L.A., Trubnikov G.A. The diagnostic importance of determining tuberculosis antibodies by immunoenzyme analysis in exudative pleurisy. // Ter. Arkh. 1996. - v. 68. - № 3. - p. 71-73.

300. Uyemura K., Deans R.J., Band H. et al Evidence for clonal selection of T cells in response to a human pathogen. J. Exp. Med. - 1991. - v. 174. - p. 683.

301. Valainis G.T., Cardona L.M., Greer D.L. The spectrum of Mycobacterium kansasii disease associated with HIV-1 infected patients. // J. AIDS. 1991. - v. 4. -p. 516-520.

302. Van Loveran H., Kato K., Meade R. et. al. Characterization of two different Lyt I T cell population that mediate delayed - type hypersensitivity. - J. Immunol. -1984.-v. 133.-p. 2402-2407.

303. Van Vooren J.P., Turner M., Yernault J.C. A multidot immunobinding assay for the serodiagnosis of tuberculosis. Comparison with an Enzyme-linked Immunosorbent assay. // J. Immunol. Methods. 1988. - v. 113. - p. 45-49.

304. Verbon A., Hartskeerl R.A., Moreno C. et al. Characterization of B cell epitopes on the 16K antigen of Mycobacterium tuberculosis. // Clin. Exp. Immunol. 1992 Sept.-v. 89(3).-p. 395-401.

305. Verbon A., Hartskeerl R.A., Schuitema A. et al. The 14,000-molecular-weight antigen of M. tuberculosis is related to the alpha-crystallin family of low-molecular-weight heat shock proteins. // J. Bacteriol. 1992. - v. 174. - p. 1352-1359.

306. Verbon A., Kuijper S., Jansen H.M. et al. Antigens in culture supernatant of Mycobacterium tuberculosis: epitopes defined by monoclonal and human antibodies. // J. of General Microbiol. v. 136, p. 000-000

307. Verbon A., Weverling G.J., Kuijper S. et al. Evaluation of different test for the serodiagnosis of tuberculosis and the use of likelihood ratios in serology. // Am. Rev. Respir. Dis. 1993. - v. 148. -№ 2 - p. 378-384.

308. Verstijnen C.P.H.J, Ly H.M., Polman K. et al. Enzyme-linked immunosorbent assay using monoclonal antibodies for identification of mycobacteria from early cultures // J. Clin. Microbiol. -1991. v. 29. - p. 1372-1375.

309. Verstijnen C.P.H.J., Schoningh R., Kuuper S. et al. Rapid identification of cultured Mycobacterium tuberculosis with a panel of monoclonal antibodies in western blot and immunofluorescence. // Research in Microbiology. 1989.

310. Vordermeier H.M., Harris D.P., Lathigra R. et al. Recognition of peptide epitopes of the 16,000 MW antigen of Mycobacterium tuberculosis by murine T cells. // Immunology. 1993 Sep. - v. 80(1). - p. 6-12.

311. Vordermeier H.M., Harris D.R., Mehrotra F.K. et al. M. tuberculosis complex specific T-cell stimulation and DTH reactions induced with a peptide from the 38-kDa protein.

312. Wagner S., Klause U., Mauch H. Production and analysis of specific monoclonal antibodies against the cell wall of Mycobacterium avium. // Med. Microbiol. Immunol. Berl. 1992 - v. 181(1). - p. 25-33.

313. Wallis R.S., Aide S.L.M., Havlir D.V. et al. Identification of antigens of Mycobacterium tuberculosis using human monoclonal antibodies. //J. Clin. Invest. -1989.-v. 84.-p. 214-219.

314. Wang H.C., Lu J.Y., Liang L. et al. Evaluation of the potential of enzyme-linked immunosorbent assay in serodiagnosis of tuberculosis. // Chung. Hua I Hsueh Tsa Chin. Taipei. 1993 Jul. - v. 52(1). - p. 9-14.

315. Wang H.C., Chiang C.D., Chu J.J. Serodiagnosis of tuberculosis by enzyme-linked immunosorbent assay using mycobacterial antigen 60. // Chung. Hua I Hsueh Tsa Chin. Taipei. 1992 Jul. - v. 50(1). - p. 14-18.

316. Watt G., Zaraspe G., Bautista S. et al. Rapid diagnosis of tuberculosis meningitis by using an enzyme-linked immunosorbent assay to detect mycobacterial antigen and antibody in cerebrospinal fluid. // J. Infect. Dis. v. 158. - № 4. - p. 681-686.

317. Wayne L.G., Hollander D., Anderson B et al. Immunoglobulin A (IgA) and IgG serum antibodies to mycobacterial antigens in Crohn's disease patients and their relatives. // J. Clin. Microbiol. 1992. - v. 30. -№ 8. - p. 2013-2018.

318. Wayne L.G., Young L.S., Bertram M. Absence of mycobacterial antibody in patients with acquired immune deficiency syndrome. // Eur. J. Clin. Microbiol. -1986. v. 5. -№3. - p. 363-365.

319. Wierenga E.A., Snock M., de Croot C. et al. Evidence for compartmentalization of a functional subsets of CD2+ T lymphocytes in atopic patients. J. Immunol. -1990.-v. 144.-p. 4651.

320. Wiker H.C., Marboe M., Wagai S. et al. Quantitative and Qualitative studies on the major extracellular antigen of M. tuberculosis H37Rv and M. bovis BCG. // Am. Rev. Resp. Dis. 1990. - v. 141. - p. 830-838.

321. Wilson S., McNerney R., Nye P. et al. Progress toward a simplified polymerase chain reaction and its application to diagnosis of tuberculosis. // J. Clin. Microbiol. -1993.-v. 31.-776-782.

322. Winter W.D., Cox K.A. Serodiagnosis of tuberculosis by radioimmunoassay. Am. Rev. Respir. Dis. 1981 - v. 125. - p. 582-584.

323. Wisingerova E., Janota J., Havelkova M. et al. Characterization of a monoclonal antibody to Mycobacterium kansasii. // Zbl. Bakt. Hyg. 1988. - v. 268. - p. 470475.

324. Wisingerova E., Krestanpol M., Krejcikova S. et al. Use of the immunoblotting method in serodiagnosis of M. kansasii mycobacteriosis. // Cesk. Epidemiol. Mikrobiol. Imunol. 1992 Sep. - v. 41(4). - p. 193-200.

325. Wood P.R., Ripper J., Radford A.J. et al. Production and characterization of monoclonal antibodies specific for M. bovis. // J. Gen. Micro. 1988. - v. 134. - p. 2599-2604.

326. Worsae A., Ljungqvist L., Haslov K. et al. Allergenic and blastogenic reactivity of three antigens from M. tuberculosis in sensitized guinea pigs. // Infect. Immun. -1987. v. 55. - № 12. - p. 2922-2927.

327. Worsae A., Ljungqyist L., Heron I. Monoclonal antibodies produced in BALB.B10 mice define new antigenic determinants in Culture filtrate preparations of M. tuberculosis. // J. Clin. Microbiol. 1988. - v. 26. - № 12. - p. 2608-2614.

328. Wright E.P., Kolk A.H.J., Rastogi N. Monoclonal antibodies and mycobacteria. // In B. Swaminathan and G. Prakash (ed.), Nucleic acid and monoclonal antibody probes. Marcel Dekker, Inc., New York. 1989. - p. 517-556.

329. Wu C.H., Funn M.C., Lun I.J. Detection of mycobacterial antigens in cerebrospinal fluid by ELISA. // Tubercle. 1989. - v. 70. - p. 37-43.

330. Yamaguchi R., Matsuo K., Yamazaki A. et al. Cloning and expression of the gene for the Avi-3 antigen of Mycobacterium avium and mapping of its epitopes. // Infect. Immun. 1992 Mar. - v. 60(3). - p. 1210-1216.

331. Yanagida T., Kato T., Igarashi O. et al. Second signal activity of IL-12 on the proliferation and IL-12 expression of T helper cell-1 clone. J. Immunol. - 1994. -v. 152.-p. 4919.

332. Yanez M.A., Coppola M.P., Russo D.A. et al. Determination of Mycobacterial antigens in sputum by enzyme immunoassay // J. Clin. Microbiol. 1986. - v. 23. -№5. - p. 822-825.

333. Yang Z.Z. Application of of enzyme-linked immuno-electrophoresis for the diagnosis of tuberculosis. // Chung Hua Chen Ho Ho Hu Hsi Tsa Chin. 1992 Apr. -v. 15(2).-p. 72-74, 125.

334. Young D.B., Kent L., Rees F. et al. Immunological Activity of a 38-kilodalton Protein Purified from Mycobacterium tuberculosis // Clin. Exp. Immunol. 1986. -v. 54.-p. 177-183.

335. Young D.B., Kaufmann S.H.E., Hermans P.W.M. et al. Mycobacterial protein antigens. // Mol. Microbiol. 1992. - v. 6. - p. 133-147.

336. Young L.S., Inderlied C.B., Berlin O.G. et al. Mycobacterial infections in AIDS patients with an emphasis on the Mycobacterium avium complex // Rev. Infect. Dis. 1986. - v. 8. - p. 1024-1033.

337. Zhang K.E., Clark A., Suxon A. CD-40 stimulation provides an IFN-y independent and IL-4 dependent differentiation directly to human B cell for IgE production. J. Immunol. - 1994. - v. 146. - p. 1836.