Микромицеты Бурятии и их биологическая активность тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.02.12, кандидат биологических наук Дарханова, Татьяна Андреевна

• Дарханова, Татьяна Андреевна
• кандидат биологических наук
• 2010

Оглавление диссертации кандидат биологических наук Дарханова, Татьяна Андреевна

Введение.

Глава I. Обзор литературы.

1. Почвенные сапротрофные микромицеты лесной зоны.

1.1. Сапротрофные микромицеты.

1.1.1. Распространение сапротрофных микромицетов.

1.1.2. Сообщества сапротрофных микромицетов.

1.1.3. Антропогенное влияние на микобиоту наземных экосистем.

1.2. Нематофаговые гифомицеты.

1.2.1. Распространение и среда обитания.

1.2.2. Особенности питания.

1.3. Изучение почвенных микромицетов в Республике Бурятия.

2. Микромицеты как продуценты новых биологически активных соединений.

2.1.Продуценты новых антибактериальных антибиотиков.

2.2. Продуценты новых антигрибных антибиотиков.

2.3. Продуценты новых антивирусных соединений.

2.4. Продуценты фармакологически активных соединений.

2.4.1. Соединения с иммуносупрессивной активностью.

2.4.2. Соединения с другими фармакологическими свойствами.

2.5. Поиск ингибиторов системы кворум сенсинг бактерий.

2.5.1. Кворум - сенсинг и регуляция факторов вирулентности патогенных бактерий.

2.5.1.1. "LuxI-LuxR''-зависимая регуляция биолюминесценции Vibrio fischeri.

2.5.1.2 Регуляция факторов вирулентности системой кворум-сенсинг у грамотрицательных бактерий.

2.5.1.3. Регуляции факторов вирулентности системой-кворум сенсинг у грамположительных бактерий.

2.5.1.4. Кворум - сенсинг эукариотических организмов.

2.5.1.5. Кворум-сенсинг в многоклеточных образованиях. Биопленки.

2.5.2. Живые организмы как продуценты ингибиторов системы кворум-сенсинг

Глава II. Материалы и методы.

1. Регион исследования.

2. Сбор материала.

3. Методы изучения видового разнообразия грибов.

3.1. Выделение нематофаговых гифомицетов.

3.2 Выделение сапротрофных микромицетов.

3.3 Количественная характеристика микобиоты.

4. Исследование биологической активности штаммов грибов.

4.1. Определение антимикробной активности.

4.1.1. Определение антибактериальной активности.

4.1.2. Определение антигрибной активности.

4.2. Изучение антигрибного антибиотика штамма Tolypocladium inflation 2.

4.2.1.Морфологическое описание продуцента.

4.2.2. Биосинтез и получение биологически активного комплекса.

4.2.3. Определение антибиотической активности.

4.2.4. Изучение антигрибного антибиотика методами ТСХ, ВЭЖХ.

4.3. Ингибирование системы кворум-сенсинг и факторов вирулентности бактерий

4.3.1. Биосинтез и выделение биологически активных комплексов.

4.3.2. Ингибирование образования пигмента виолацеина.

4.3.3. Ингибирование стафилолитической активности.

4.3.4. Ингибирование образования пигмента — антибиотика пиоцианина .:.

4.3.5. Метод оценки подавления образования биоплёнок у штамма Pseudomonas aeruginosa

4.3.6. Изучение биологически активных компонентов штаммов Aspergillus ustus 21 и Pénicillium chermesinum 26.

4.4. Метод оценки гемолитической активности биологически активных соединений

4.5. Метод оценки фибринолитической и активаторской активностей.

5. Питательные среды.

Глава III. Результаты и обсуждение.

1. Биоразнообразие нематофаговых и сапротрофных микромицетов.

1.1. Общее число видов микромицетов, обнаруженных за весь период работы.

1.2. Анализ видового состава микромицетов, выделенных из образцов, собранных с площадки.

1.3. Нематофаговые гифомицеты.

2. Биологическая активность исследуемых грибов.

2.1 Спектр антибиотической активности исследуемых грибов.

2.2. Идентификация грибного антибиотика штамма Tolypocladium inßatum 2.

2.3. Анализ ингибирования системы кворум-сенсинг и факторов вирулентности бактерий.

2.3.1. Оценка активности экстрактов, ингибирующих пигментацию природного штамма Chromobacterium violaceum 1.

2.3.2. Оценка активности экстрактов, ингибирующих пигментацию мутантного штамма Chromobacterium violaceum CV

2.3.3. Ингибирование пиацианазной активности Pseudomonas aeruginosa

2.3.4. Ингибирование стафилолитической активности Pseudomonas aeruginosa 71.

2.3.5. Оценка способности отобранных экстрактов подавлять образование биопленок у Pseudomonas aeruginosa 71.

2.3.6. Анализ биологически активных комплексов штаммов Aspergillus ustus 21 и Pénicillium chermesinum 26.

2.4. Оценка гемолитической активности исследуемых грибов.

2.5. Оценка фибринолитической активности нематофаговых гифомицетов

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Микромицеты Бурятии и их биологическая активность»

Актуальность темы исследования. Изучение биоразнообразия — одно из приоритетных направлений современной биологии. Сообщества почвообитающих грибов являются относительно мало изученным компонентом биоценозов (Ilawksworth, Rossman, 1997; Gams 2007), всестороннее исследование которого имеет важное теоретическое и практическое значение (Zak, Visser, 1996; Hawksworth, 2004). В настоящее время грибы рассматриваются как наиболее перспективные продуценты соединений с разнообразной биологической активностью (Bérdy, 2005).

Проблемой медикаментозного лечения инфекционных заболеваний является постоянный рост устойчивости патогенных микроорганизмов к применяемым в медицинской практике антибиотикам (Bérdy, 2005). В связи с этим ведется интенсивный поиск и создание новых препаратов, активных, прежде всего, в отношении клинических резистентных штаммов. В настоящее время проводятся исследования возможности создания препаратов с новыми механизмами действия, оказывающие влияние на системы кворум-сенсинг (QS) и вирулентность патогенных микроорганизмов (Hentzer et al., 2003). Развитие биотехнологии, основанной на использовании потенциала микроорганизмов в получении лекарственных препаратов, является стратегическим направлением современной мировой фармакологии (Newman, 2003).

При проведении поисковых исследований особое внимание уделяют микроорганизмам, выделенным из экстремальных местообитаний и из экологически чистых районов, мало исследованных к настоящему времени (Bérdy, 2005; Пивкин, 2010). Республика Бурятия является регионом, почвенная микобиота которого на сегодняшний день крайне слабо изучена.

Цель и задачи исследования

Цель работы - изучение разнообразия почвообитающих микроскопических грибов Республики Бурятия и оценка их потенциала как продуцентов биологически активных веществ для фармакологии.

Для ее достижения были поставлены следующие задачи: 1) изучение видового состава и создание коллекции сапротрофных и нематофаговых микромицетов, выделяемых из почвы и смежных с нею субстратов;

2) определение спектра антимикробной активности соединений, продуцируемых изучаемыми штаммами грибов;

3) поиск продуцентов ингибиторов системы кворум-сенсинг, регулирующей факторы вирулентности бактерий;

4) оценка физико-химических и биологических свойств отобранных соединений.

Научная новизна. Полученные данные о видовом разнообразии сапротрофных и нематофаговых микромицетов имеют фундаментальное значение для дальнейших исследований микобиоты Бурятии. В результате проведенных исследований выявлено 88 видов почвенных микромицетов, принадлежащих к 33 родам. Показано, что 38 штаммов из 57 исследуемых (66%) являются продуцентами биологически активных соединений. Обнаружены продуценты антибиотиков, активных в отношении клинически важных возбудителей инфекционных заболеваний. Был получен продуцент циклоспорина с необычным соотношением компонентного состава. Выявлены 12 штаммов, продуцирующих ингибиторы сигнальной системы кворум-сенсинг грамотрицательных бактерий, среди которых штаммы Aspergillus ustus №21, Pénicillium chermesinum №26 проявили наибольшую активность. Показана их способность к подавлению факторов вирулентности клинического штамма Pseudomonas aeruginosa 71. Отобраны нематофаговые гифомицеты, продуцирующие соединения с фибринолитической и плазминоген-активаторной активностями.

Научно-практическая значимость. Отобраны штаммы, образующие антибиотики, соединения с фибринолитической и плазминоген-активаторной активностями, ингибиторы факторов вирулентности патогенных грамотрицательных бактерий. Полученные культуры представляют интерес для биотехнологии как продуценты биологически активных соединений. Редкие и практически значимые штаммы переданы в коллекцию Государственного Научного Центра по антибиотикам (ГНЦ по антибиотикам, г. Москва), во Всесоюзную Коллекцию Микроорганизмов при Институте Биохимии и Физиологии Микроорганизмов имени Г.К. Скрябина РАН (ИБФМ РАН, г. Пущино) и в коллекцию Государственного Научного Центра Прикладной Микробиологии и Биотехнологии (ФГУН ГНЦ ПМБ, г. Оболенск).

Заключение диссертации по теме «Микология», Дарханова, Татьяна Андреевна

выводы

1. На территории Республики Бурятия выявлено 88 видов, принадлежащих к 33 родам из отделов Zygomycota, Ascomycota и группы анаморфных грибов. Наиболее богат видами род Pénicillium. Из них наиболее обильны P. janczewskii, P. aurantiogriseum, P. funiculosum, P. rubrum, P. aculeatum. Широко представлены виды родов Trichoderma и Phoma. Обнаружено 9 видов нематофаговых гифомицетов, из которых часто встречались Arthrobotrys oligospora и A. cladodes.

2. Отобраны штаммы, продуцирующие антибактериальные вещества широкого и узкого спектра действия, а также антигрибные антибиотики. 6 штаммов обладали антибиотической активностью в отношении метициллинрезистентного Staphylococcus aureus 43300 (MRSА) и S. aureus АТСС 29213. Отобрано 5 штаммов, активных в отношении грамотрицательных бактерий. Установлена антигрибная активность у 14 штаммов, из которых, отобрано 2 штамма, подавляющие рост клинического изолята Candida krusei 60ОМ.

3. Отобран штамм Tolypocladium inflatum № 2, продуцирующий комплекс циклоспоринов с необычным соотношением компонентного состава. Содержание циклоспоринов А,В и С Т. inflatum №2 составляет 54-67%, 10-39.7% и 3.2-23% соответственно, установлено заметное количество циклоспорина (Leu 4) Cs (3.1%).

4. Показана способность 12 штаммов ингибировать систему кворум-сенсинг у бактерии Chromobacterium violaceum.

5. Показана способность штаммов Aspergillus ustus №21, Pénicillium chermesinum № 26 образовывать соединения, ингибирующие систему кворум-сенсинг и факторы вирулентности грамотрицательных бактерий:

• подавляют синтез виолацеина штаммов Chromobacterium violaceum 7 и С. violaceum CV026;

• ингибируют образование фактора вирулентности пигмента пиоцианина клинического изолята Pseudomonas aerugonosa 71;

• подавляют активность протеазы LasA, определяющей высокую вирулентность Pseudomonas aeruginosa 71;

• подавляют образование биопленок Pseudomonas aeruginosa 71.

6. Показана способность АпкгоЪо^ух о1що$рога № 45 и А. с1айос1е$ № 48 продуцировать соединения, осуществляющие фибринолиз тромбов крови, то есть проявляющие фибринолитическую и плазминоген-активаторную активности.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

При анализе видового состава микроскопических грибов, выделенных из образцов почвы и смежных с нею субстратов, собранных на территории Республики Бурятии выделено 88 видов из 33 родов. Первичный поиск, проведенный среди 57 штаммов, относящихся к 52 видам из 23 родов, показал, что 66% (38 штаммов) микромицетов являются продуцентами антибиотических соединений различного спектра действия, комплекса циклоспоринов, ингибиторов системы кворум-сенсинг. Отмечены культуры, высокоактивные в отношении метициллинрезистентного стафилококка, культуры, обладающие избирательной активностью в отношении грамотрицательных бактерий, в отношении Aspergillus niger, Candida spp., в том числе клинического изолята. Обнаружены штаммы, обладающие широким спектром, действия. Выделенный нами штамм Tolypocladium injlatum № 2 продуцирует комплекс циклоспоринов с неописанным ранее соотношением компонентного состава. Культура представляет интерес как для изучения свойств отдельных циклоспоринов, так и может быть использована для разработки аналогов циклоспорина А. Представленные в работе данные подтверждают, что образование комплекса циклоспоринов является дополнительным признаком при I идентификации грибов рода Tolypocladium. Способность культуры продуцировать те или иные соединения позволяет четко дифференцировать грибы родов Tolypocladium и Beauveria и является таксономическим признаком (Kadlec et al., 1994). Выявлены культуры нематофаговых гифомицетов, продуцирующие соединения, с фибринолитической и активаторной активностями.

Широкий пул биологически активных веществ, образуемый грибами способствует успеху микроскопических грибов в конкурентной борьбе за субстрат и определяет их ведущую роль в формировании микробных комплексов. Одной из таких особенностей является ингибирование системы кворум-сенсинг бактерий, которая выявлена у 12 штаммов из 57 исследованных. Штаммы Aspergillus ustus № 21 и Penicillium chermesinum № 26 проявили наибольшую активность в ингибировании системы кворум-сенсинг и способность подавлять факторы вирулентности клинического изолята Pseudomonas aeruginosa 71.

Таким образом, изучение микроскопических грибов Бурятии позволило выявить широкое разнообразие грибов-продуцентов различных биологически активных соединений.

Список литературы диссертационного исследования кандидат биологических наук Дарханова, Татьяна Андреевна, 2010 год

1. Александрова A.B. Грибы рода Trichoderma Pers.: Fr. Таксономия, географическое распространение и экологические особенности. Автореф. . к.б.н. М.: МГУ. 2000. 20 с.

2. Бабьева E.H., Сизова Т.П. Микромицеты в почвах арктотундровой экосистемы // Почвоведение. 1983. № 19. С. 98-101.

3. Бабьева И.П., Чернов И.Ю. Биология дрожжей. М.: Товарищество научных изданий КМК. 2004. 221 с.

4. Б аз ар ж ап о в Б. Б. Эколого — биохимическая характеристика микроорганизмов термальных источников Баргузинской долины (Северное Прибайкалье). Дис. . к.б.н. Улан-Удэ: БГУ. 2005. 113 с.

5. Бибикова М. В., Спиридонова И. А. и др. Способ выделения циклоспорина А. Патент № 1655115 от 7.07.1989.

6. Бибикова М.В., Бондарева Н.С. Препараты микробного происхождения для лечения атеросклероза. Антибиотики и химиотерапия. 1998. №8. С. 34-39.

7. Билай В.И. Фузарии. Киев: Наукова думка. 1977. 442 с.

8. Биоразнообразие Байкальской Сибири. Под ред. И.Ю. Коропачинского, В.М. Корсунова. Новосибирск: Наука. 1999. 350 с.

9. Ю.Борисова В. Н. Гифомицеты лесной подстилки в различных экосистемах. Киев: наукова думка. 1988. 252 с.

10. Бубнова E.H. Изменение комплексов почвообитающих грибов при переходе от зональных почв к морским экотопам (на примере побережья Кандалакшского залива Белого моря). Дис. к.б.н., М.: МГУ. 2005. 160 с.

11. Бурятия: Природные ресурсы. Под ред. К.Ш. Шагжиева, Б.Б. Ральдина, Б.Л. Раднаева. Улан-Удэ: БГУ. 1997. 176 с.

12. Великанов Л.Л., Сидорова И.И., Успенская Г.Д. Полевая практика по экологии грибов и лишайников. М.: Изд-во МГУ. 1980. 112 с.

13. Великанов Л. Л. Роль грибов в формировании мико- и микробиоты почв естественных и нарушенных биоценозов и агросистем: Дис. д.б.н. М., 1997. 547 с.

14. Великанов JI. Л., Сидорова И.И. Роль грибов в формировании мико и микробиоты почв естественных биоценозов // Труды биологической Звенигородской биологической станции. Т.З. 2001. С. 61-71.1

15. Власов Д.Ю., Зеленская М.С., Франк-Каменецкая О.В. Микромицеты на мраморных памятниках музейных некрополей Александро-Невской лавры (Санкт-Петербург) // Микология и фитопатология. Т. 36. Вып. 3. 2002. С. 7-10.

16. Гаранкина В.П., Дагурова О.П., Дамбаев В.Б., Бурюхаев С.П. Распространение и активность микроорганизмов в заливе провал озера Байкал // Вестник Бурятского госуниверситета. 2009. Вып. 4. С. 84-88.

17. Георгиева M.JI. Микромицеты щелочных засоленных почв. Дис. . к.б.н. М.: МГУ. 2006. 167 с.

18. Головченко А.В., Добровольская Т.Г., Семенова Т.А., Богданова О.Ю., Кухаренко О.С. Влияние температуры на структуру микробных сообществ верхового торфяника (модельный опыт) // Вестник ТГПУ. 2010. Вып. 3. №93. С. 92 100.

19. Грузина В.Д. Коммуникативные сигналы бактерий // Антибиотики и химиотерапия. 2003. Т. 48. № 10. Р. 32-39.

20. Гущин Ф.Л. Получение биопрепарата хищных грибов для борьбы с фитогельминтами. Автореферат дис. к.б.н. М.: 1986. С. 1-15.

21. Егорова Л.Н. Почвенные грибы Дальнего Востока. Гифомицеты. Л.: Наука. 1986. 185 с.

22. Егоров II.C. Основы учения об антибиотиках. М.: МГУ. 2004. 528 с.

23. Завильгельский Г Б., Манухов И.В. "Quorum sensing" или как бактерии "разговаривают" друг с другом // Молекуляр. биология. 2001. Т. 35. С. 268-277.

24. Звягинцев Д. Г, Бабьева И. П., Зенова Г. М. Биология почв. М.: МГУ. 2005. 439 с.

25. Кириленко Т.С. Определитель почвенных сумчатых грибов. Киев: Наукова думка. 1978.263 с.

26. Кирцидели И. Ю., Воробьев Н. И. Терешенков О. М. Сообщества микромицетов из почв подзоны типичных тундр в районе северного побережья Таймырского озера // Микология и фитопатология. 1996. Т. 30. Вып. 2. С. 9-13

27. Козловский А. Г., Марфенина О. Е., Винокурова Н. Г., Желифонова В. П., Аданиш В.М. Микотоксины микроскопических грибов рода Pénicillium, выделенных изпочв естественно и антропогенно нарушенных экосистем // Микробиология. 1997. Т. 66. № 2. С. 206-210.

28. Кондратюк Т.А., Жданова H.H. Развитие микромицетов на произведениях станковой живописи // Микология и фитопатология. 2002. Т. 36. Вып. 2. С. 53-58.

29. Лаврентьева Е.В., Раднагуруева A.A., Намсараев Б.Б., Дунаевский Я.Е. Биохимические характеристики микроорганизмов щелочных гидротерм Прибайкалья // Вестник Бурятского госуниверситета. 2009. Вып. 3. С. 11 14.

30. Липасова В.А., Атамова Э.Э., Веселова М.А., Тарасова H.H., Хмель И.А. Экспрессия гена N-ацилгомосеринлактоназы aiiA влияет на свойства ризосферного штамма Pseudomonas chlor or aphis 449 II Генетика. 2009. Т. 45. № 1. С. 38-42.

31. Максимов В.В., Щетинина Е.В., Крайкивская О.В., Максимова Э.А. Реакция микробных сообществ Байкала на воздействие экстремальных температур // Микробиология. 2006. Т. 75. № 6. С. 752-757.

32. Марфенина O.E. Антропогенная экология почвенных грибов / О. Е. Марфенина. — М.: Медицина для всех. 2005. 195 с.

33. Методы почвенной микробиологии и биохимии. Под ред. Звягинцева Д.Г. М.: Изд. МГУ. 1991.294 с.

34. Мехтиева H.A. Хищные нематофаговые грибы-гифомицеты. Баку: Изд. Элм. 1979. 243 с.

35. Мигунова В.Д. Выбор трофической стратегии хищным нематофаговым грибом Arthrobotrys oligospora Fresenius. Автореф. . к.б.н. М.: МГУ. 2002. 24с.

36. Милько А. А. Определитель мукоральных грибов. Киев: Наукова думка. 1974. 306 с.

37. Мирчинк Т. Г. Почвенная микология. М.: МГУ. 1988. 220 с.

38. Мишустин E.H., Пушкинская О.И. Эколого-географические закономерности в распространении почвенных микроскопических грибов. Известия АН СССР. сер. Биология. 1960. 5: 641-660.

39. Мовчан Д. Д., Великанов Л. Л., Александрова А. В. Влияние сплошной санитарной вырубки хвойного леса на комплекс почвенных микроорганизмов // микология и фитопатология. 2005. Т. 39. Вып. 2. С. 27-33.

40. Мэг г ар ан Э. Экологическое разнообразие и его измерение. М.: Мир. 1992. 184 с.

41. Мюллер Э., Леффлер В. Микология. М.: Мир. 1995. 343 с.

42. Нетрусов А.И., Егорова М.А., Захарчук Л.М. Практикум по микробиологии. М.: Академия. 2005. 608 с.

43. Нюкша Ю. П. Образование сообществ грибов, развивающихся на бумаге // Микология и фитопатология. 1974. Т. 8. вып. 6. С. 478-482.

44. Олескин А.В., Ботвинко И.В., Цавкелова Е.А. Колониальная организация и межклеточная коммуникация у микроорганизмов // Микробиология 2000. Т. 69. № 3. С. 309-327.

45. Определитель растений Бурятии. Под ред. Аненхонова О.А. Улан-удэ: Изд-во Респ. типография. 2001. 670 с.

46. Петрова-Никитина А.Д., Мокеева Л.В., Желтикова Т.М., Чекунова Л.Н., Антропова А.Б., Мокроносова М.А., Биланенко Е.Н., Сизова Т.П. Микобиота домашней пыли г. Москвы // Микология и фитопатология. 2000. Т. 34. Вып. 3. С. 25-33.

47. Пивкин М.В., Зверева Л.В. Грибы родов Alternaría и Ulocladium в акватории залива Петра Великого (Японское море) // Микология и фитопатология. 2000. Т. 34. Вып. 6. С. 38-43.

48. Пивкин М. В. Вторичные морские грибы Японского и Охотского морей. Автореф. . д.б.н. М.: ТИБ ОХ ДВО РАН. 2010. 40 с.

49. Потапова З.М., Намсараев Б.Б. Экофизиология накопительной культуры, выделенной из термального источника УРО (Прибайкалье, Республика Бурятия). Вестник Бурятского госуниверситета. 2009. Вып 4. С 95-97.

50. Пужевская Т. О. Скрининг микромицетов, продуцирующих соединения гиполипидемического, антибактериального и антиоксидантного действия. Дис. . к.б.н. М.: НИИ вакцин и сывороток РАМН. 140 с.

51. Раднагуруева А.А., Лаврентьева Е.В., Дунаевский Я.Е. Протелитическая активность алкалофильных микроорганизмов водных систем Забайкалья // Вестник Бурятского госуниверситета. 2009. Вып. 4. С. 98 101.

52. Санданова И.Б. Микробиологическая деструкция растительного опада степных экосистем юго-восточного Забайкалья. Автореф. . к.б.н. Улан — Удэ: БГУ. 2007. 20 с.

53. Сизова Т. П. Географическая зональность в распространении пенициллов и эволюция в пределах этого рода. Бюллетень МОИП. Отд. Биологии. 1953. 58: 7175.

54. Смоляницкая О. Л. Микромицеты как потенциальные агенты биоповреждения культурных ценностей и стратегия защиты от них в Государственном Эрмитаже. Автореф. к.б.н. СПб. 2007. 26 с.

55. Сопрунов Ф. Ф. Хищные грибы-гифомицеты и их применение в борьбе с патогенными нематодами. Ашхабад: АН Туркменской СССР. 1958. 367 с.

56. Теплякова.Т. В. Биологические аспекты изучения и использования хищных грибов-гифомицетов. Новосибирск. 1999. Стр. 252.

57. Терехова В. А., Трофимов С.Я. Влияние перекрестной интродукции микромицетов на минерализацию подстилки ненарушенных южнотаежных ельников // микология и фитопатология № 35. Том 4. 2001 г. С 53-58.

58. Терехова В. А. Значение микологических исследований для контроля качества почв // Почвоведение. 2007. № 5. С. 643-648.

59. Тертов В. В., Бибикова М. В., Спиридонова И. А., Катлинский А. В., Чмель Я. В. Скрининг природных соединений с- гиполипидемической активностью //Антибиотики и химиотерапия. 2004. N 8. С.8-12

60. Тренин A.C. Резистентность к гликопептидным антибиотикам. //Антибиотики и химиотерапия. 1996. Т.41. №5. с.49-60.

61. Тренин А. С., Олсуфьева Е. Н. Механизм резистентности к гликопептидным антибиотикам как основа создания новых производных, способных к преодолению резистентности (обзорная статья) // Биоорг. химия.1997. Т. 23. №11. Р. 851-867

62. Туркова З.А., Титкова O.A. Влияние кислотообразования на антогонистические свойства грибов, применяемые при испытаниях изделий медицинской техники // Микология и фитопатология. 1979. Т. 3. Вып. 4. С. 305-308.

63. Хо-ван-кыу. Биологически активные вещества хищных грибов. Автореф. к.б.н. М.: МГУ. 1968. 13 с.

64. Цыбжитов Ц. X., Убугунова В. И. Генезис и география таежных почв бассейна озера Байкал. Улан-Удэ.: Бурятское кн. изд-во. 1992. 240 с.

65. Цыбжитов Ц. X., Цыбикдоржиев Ц. Ц., Цыбжитов А. Ц. Почвы Бассейна озера Байкал: Генезис, география и классификация каштановых почв. Новосибирск: Наука. Сиб. отд-ие. 1999. Т. 1. 128 с.

66. Цыбжитов Ц. X., Цыбжитов А. Ц. Почвы Бассейна озера Байкал: Генезис, география и классификация степных и лесостепных почв. Улан-Удэ. Изд.: БНЦ СО РАН. 2000 а. Т.2. 165 с.

67. Цыбжитов Ц. X., Цыбжитов А. Ц. Почвы Бассейна озера Байкал: Генезис,география и классификация таежных почв. Улан-Удэ. Изд.: БНЦ СО РАН. 2000 б. Т.З. 173 с.

68. Цыренова Д. Д., Намсараев Б. Б., Брянская А. В. Анализ таксономического спектра цианобактерий солоноватых и соленых озер южного Забайкалья // Вестник бурятского госуниверситета. 2009. Вып. 4. С. 105-108.

69. Чигинева Н. И., Александрова А. В., Сидорова И. И., Тиунов А. В. // Влияние легкодоступного углерода на состав сообщества микромицетов и скорость деструкции растительного опада в почве // Микология и фитопатология. 2007. Т. 40. Вып. 5. С. 428 435.

70. Чигинева Н. И., Александрова А. В., Сидорова И. И., Тиунов А. В. // Таксономическая структура сообществ, микромицетов на растительном опаде при разных уровнях доступности углерода // Микология и фитопатология. Т. 42. Вып. 6. 2008. С. 541-551.

71. Шагинян И. А., Чернуха М. Ю. Неферментирующие грамотрицательные бактерии в этиологии внутрибольничных нфекций: клинические, микробиологические и эпидемилогические особенности // Клин. Микробиол. Антимикроб. Химиотер. 2005. Т. 7. №3.

72. Шаркова Т.С., Максимова Р.А., Теплякова Т.В. Физиологические особенности Arthrobotrys longa Mecht. в связи с образованием фибринолитических ферментов // Микология и фитопатология. 1988. Т. 22. С. 149-152.

73. Шаркова Т.С., Максимов В.Н. Изучение физиологии хищного гриба Arthrobotrys longa продуцента лонголитина в связи с длительным хранением культуры в лабораторных условиях // Микология и фитопатология. 1999. Т. 33. С. 338-339.

74. AleS Husek. High-performance liquid chromatographic analysis of cyclosporin A and its oral solutions Journal of Chromatography A. 1997. V. 759. № 1-2. P. 217-224.

75. Ames L.M. A Monograph of the Chaetomiaceae. Arme research offise. 1961. 135 p.

76. Arai M, Tomoda H, Okuda T, et al. Funicone-related compounds, potentiators of antifungal miconazole activity, prodused byTalaromyces flavus FKI-0067. // J Antibiot. 2002. V.55. 172-180.

77. Awazu N., Ikai K., Yamamoto J., Nishimura K., Mizutani S., Takesako K., Kato I. Structures and antifungal activities of new aureobasidins // Journal of Antibiotics. 1995. V. 48. P. 525-527.

78. Barnett H.L. Illustrated genera of Imperfect Fungi. Burgess Publ. Compani. 1972. 218p.

79. Barron G.L. The nematode-destroing fungi. Canadian Biological Publications. Ontario. 1977. 140 p.

80. Barron G.L., Dierkes Y. Nematophagous fungi Hohenbuehelia, the perfect state of Nematoctonus. CanJ.Bot. 1979. Vol. 55. P.3054-3062.

81. Barron G.L. Lignolytic and cellulolytic fungi as predators and parasites // In the fungal community, its organization and role in the ecosystem. Marcel Dekker wc. New York. 1992. P.311-326.

82. Beedholm-Ebsen R, van de Wetering K, Hardlei T, Nexo E, Borst P, Moestrup S.K. Identification of multidrug resistance protein 1 (MRP1/ABCC1) as a molecular gate for cellular export of cobalamin// Blood. 2010. V. 115. № 8. P. 1632-1639.

83. B er dy J. Bioactive Microbial Metabolites // J. Antibiot. 2005. V. 58. P. 1-26.

84. Booth C. The genera Fusarium. Klw, Surrey, England: Commonvealth Mycological Inst. 1971.237 p.

85. Bradley E. P., Rath A., Deber C. M. The Assembly Motif of a Bacterial Small Multidrug Resistance Protein // The Journal of biological chemistry. 2009. V. 284. P. 9870-9875.

86. Breinbauer R., Manger M., Scheck M., Waldmann H. Natural product guided compound library// Curr. Med. Chem. 2002 a. V.9. P. 2129-2145.

87. Breinbauer R., Vetter I.R., Waldmann H. From protein domains to drug //Chem. Int. Ed. 2002 b. V.41.P. 2878-2890.

88. Buchta M., Jegorov A.L. Cvak. L., Havlic ek V., Sinsky M. B., SedmeraP. A cyclosporin from Mycelium sterilae // Phytochemistry. 1998. №7. V.48. P. 1195-1198.

89. Bugni T.S., Bernan V.S., Greenstein M. et al. Brocaenols AC: Novel polyketides from a marine-derived Penicillium brocae //J. Org. Chem. 2003. V.68. P. 2014-2017 .

90. Byers J.T., Lucas C., Salmond G.P., Welch M. Nonenzymatic turnover of an Erwinia carotovora quorum-sensing signaling molecule // J. Bacteriol. 2002. V.84. №4. P.1163-1171.

91. Chen H., Fujita M., Feng Q., Clardy J., Fink G. R. Tyrosol is a quorum-sensing molecule in Candida albicans//PNAS. 2004. V. 101. № 14. P. 5048-5052.

92. Christensen M. A view of fungal ecology. Mycologia. 1989. V. 81. №1. P. 1-19.

93. Cooke R.C. The predaceous activity of nematode-trapping fungi added to soil // Ann. appl. Biol. 1963. P. 295-299.

94. Cooke R.C., Godfrey B.E.S. A key to the Nematode-destroying fungi // Trans. Brit. Mycol. Soc. 1964. V. 47. №1. P. 61-74.

95. Davies J.E. Origins, acquisition and dissemination of antibiotic resistance determinants. In: Chadwick D.J. editor. Antibiotic resistance: origins, evolution, selection and spread. Chinester (UK): John Wiley and Sons Ltd. 1997. P. 15-35.

96. Davies D.G., Parsek M.R., Pearson J.P., Iglewski B.H., Costerton J.W., Greenberg E.P. The involvement of cell-to-cell signals in the development of bacterial biofilm // Science 1998. V. 280. P. 295-298.

97. Davies D. Understanding biofilm resistance to antibacterial agents // Nature Reviews drug discovery. 2003. 2. P. 114-122.

98. Domsch K.H., Gams W., Anderson T. Compendium of soil fungi. London: Academic Press. 2007. V. 672 p.

99. Dong Y-H., Xu J-L., Li X-Z., Zhang L-H. AiiA, an enzyme that inactivates the acylhomoserine lactone quorum-sensing signal and attenuates the virulence of Erwinia carotovora // PNAS. 2000. V. 97. № 7.

100. Dong Yi-Hu, Wang Lian-Hui, Xu Jin-Ling, Zhang Hai-Bao, Zhang Xi-Fen, Zhang Lian-Hui. Quenching quorum-sensing-dependent bacterial infection by an yV-acyl homoserine lactonase//Nature. 2001. 411. P.813-817.

101. Dong Yi-Hu, Zhang Xi-Fen, Xu Jin-Ling, Zhang Lian-Hui. Insecticidal Bacillus thuringiensis silences Erwinia carotovora virulence by a new form of microbial antagonism, signal interference// J. Biol. Chem. 2004. 2;279(14): 13645-51.

102. Drechsler C. New zoopagaceae destructive to soil rhizopods // Mycologia. 1937a. V. 29. P. 229-249.

103. Drechsler C. Some Hyphomycetes that pray on free-living terricolous nematodes // Mycol. 1937b. V. 29. №4. P. 447-552.

104. Drenkard E., Ausubel F.M. Pseudomonas biofilm formation and antibiotic resistance are linked to phenotypic variation //Nature. 2002. 416:740-743.

105. Dreyfuss M., Ha'rri E., Hofmann H., Kobel H., Pache W., Tscherter H. Cyclosporin A and C. New metabolites from Trichoderma polysporum (Link ex Pers.) Rifai. Eur. J. Appl. Microbiol. 1976. 3:125-133.

106. Dreyfuss M.M. Neue Erkenntnisse aus einem pharmakologischen Pilz-screening. Sydowia. 1986. 39:22-36.

107. Duddington C.L. Further records of British predacious fungi I // Trans. Brit. Mycol. Soc. 1950. V. 33. № 3-4. P. 209-214.

108. Eberl L. N-acyl homoserinelactone-mediated gene regulation in gram-negative bacteria II Syst. Appl. Microbiol. 1999. V. 22. №4. P. 493-506.

109. Ellis M. B. Dematiaceous Hyphomycetes. Commonwealth Myco logical institute Kew. Kew: Surrey. 1971. 608 p.

110. Endo A., Kuroda M., Tsujita Y. et al. ML-236A, ML-236B and ML-236C, new inhibitors of cholesterogenesis produced by Penicillium citrinum II J. Antibiot. 1976. V. 29. №.12. P. 1346-1348.

111. Endo A., Hasumi K., Negishi S. et al. Monacolins J and L, new inhibitors of cholesterol biosynthesis produced by Monascus ruber II J. Antibiot. 1985. V. 38. №3. P. 420-422.

112. Endo A., Hasumi K., Yamada A. et al. The synthesis of compactin (ML-236B) and monacolin K in fungi //J. Antibiot. 1986. V. 39. №11. P. 1609-1610.

113. Evidente A., Conti L., Altomare C. et al. Fusapyrone and deoxyfusapyrone, two antifungal a -pyrones from Fusarium semitectum. //Nat.Toxins.1994. V.2. P. 4—13.

114. Fugua C., Winans S.C., Greenberg E.P. Census and consensus in bacterial ecosystems the LuxR Luxl family of quorum-sensing transcriptional regulators // Ann. Rev. Microbiol. 1996. 10:727.

115. Fukuda T., Sakabe Y., Tomoda H., omura S. Fungal citridone D having a novel phenylfuropyridine skeleton// Chem. Pharm. Bull. 2006a. 54: 1659-1661.

116. Fukuda T, Hasegawa Y, Hagimori K, Yamaguchi Y, Masuma R, Tomoda H, o mura S. Tensidols, new potentiators of antifungal miconazole activity, produced by Aspergillus niger FKI-2342. J. Antibiot. 2006b. 59: 480-485.

117. Fukuda T., Hasegawa Y., Sakabe Y., Tomoda H., Omura S. Citrinamides, new potentiators of antifungal miconazole activity, produced by Penicillium sp. // J. Antibiot. 2008. V. 61. P. 550-555.

118. Gallagher L.A., McKnight S.L., Kuznetsova M.S., Pesci E.C., Manoil C. Functions required for extracellular quinolone signaling by Pseudomonas aeruginosa. II J. Bacteriol. 2002. V. 184. № 23. P. 6472-6480.

119. Gams W. Cephalosporium-artige Schimmelpilse (Hyphomycetes). Stuttgart: Fischer. 1971 b. 262 p.,

120. Gams W. Tolypocladium. Eine Hyphomycetengattung mit geschwollenen Phialiden // Persoonia. 1971 a. V. 6. P. 185-191.

121. Gams W. «Biodiversity of soil-inhabiting fungi» // Biodiversity and Conservation 2007. V. 16 P. 69-72.

122. Gibbons J.J., Abraham R.T., Yu K. Mammalian target of rapamycin: discovery of rapamycin reveals a signaling pathway important for normal and cancer cell growth // Semin. Oncol. 2009. V. 36. № 3. P. 3-17.

123. Gilson L., Kuo A., Dunlap P.V. AinS and a new family of autoinducer synthesis proteins// J. Bacteriol. 1995. V. 177. №23. P. 6946T6951.

124. Gray N.F. Ecology of nematophagous fungi: distribution and habitat // Ann. Appl. Biol., 1983. V. 102. №3. P. 501-508.

125. Gray N.F. Nematophagous fungi with particular reference to their ccology // Biol. Rev. 1987. V. 62. P. 245-304.

126. Greenspan M. D., Yudkovitz J. B. Mevinolinic acid biosynthesis by Aspergillus terreas and its relationship to fatty acid biosynthesis // J. Bacteriol. 1985. V. 162. №2. P. 704-707.

127. Harjai K, Kumar R, Singh S. Garlic blocks quorum sensing and attenuates the virulence of Pseudomonas aeruginosa // FEMS Immunol. Med. Microbiol. 2010. V. 58. №2. P. 161-168.

128. Hawksworth D.L. Fungal diversity and its implications for genetic resource collections // Studies in Mycology. 2004. 50: 9-18.

129. Hawksworth D.L., Rossman A.Y. Where are all the undescribed fungi? // Phytopathology. 1997. V. 87. P. 888-891.

130. Hibbett D.S., Thorn R.G. Nematode-trapping in Pleurotus tuberregium// Mycol. 1994. V. 86. №5. P. 696-699.146. Hogan 2006

131. Hoog G.S. Taxonomy of the Dactylaria complex, IV. Dactylaria, Neta, Subulispora and Scoleobasidium // Studies in Mycology. 1985. № 26. 122 p.

132. Hu J-F., Garo E., Goering M. G. Pasmore M., Hye-Dong Yoo, Esser T., Sestrich J., Cremin P. A., Hough G. W., Perrone P., Yin-Shi L. Lee, Ngoc-Tram Le, Mark

133. O'Neil-Johnson,. Costerton J. W., Eldridge G. R. Bacterial biofilm inhibitors from diospyros dendo 11 J. Nat. Prod. 2006. V.69. № 1. P. 118-120.

134. Huang J.J., Han J.I., Zhang L.H., Leadbetter J.R. Utilization of acyl-homoserine lactone quorum signals for growth by a soil pseudomonad and Pseudomonas aeruginosa PAOl // Appl. Environ. Microbiol. 2003. V. 69. №10. P. 5941-5949.

135. Hueck C.J. Type III secretion systems in bacterial pathogens of animals and plants. Microbiol. Mol. Biol. Rev. 1998. 62: 379-433.

136. Inoue H., Someno T., Kato T., Kumagai H., Kawada M., Ikeda D. Ceramidastin, a novel bacterial ceramidase inhibitor, produced by Penicillium sp. Mer-f17067 // J. Antibiot. 2009. V. 62. P. 63-67.

137. Isaac C.E., Jones A., Pickard M.A. Production of Cyclosporins by Tolypocladium niveum Strains// Antimicrobial agents and chemotherapy. 19901 V. 34. №.1. P. 121-127.

138. Jiao P., Swenson D.C., Gloer J.B., Wicklow D.T. Chloriolide, a 12-membered macrolide from Chloridium virescens var. chlamydosporum (NRRL 37636) // J. Nat. Prod. 2006. 69(4):636-639.

139. Kadlec Z., Simek P., Heydova A, Jegorov A., Mafha V. Landa Z., Eyal J. et al. Chemotaxonomic discrimination among the fungal genera Tolypocladium, Beauveria and Paecilomyces // Biochemical Systematics and Ecology. 1994. V. 22. P. 803-806.

140. Katz M.L., Mueller L.V., Polyakov M„ Weinstock S. F. Where have all the antibiotic patents gone?//Nat. Biotechnol. 2006. V. 24. P. 1529-1531.

141. Kendrick B. All about fungi. Fungi exploiting microscopic animals // Mycologue publications. 2003. P.

142. Kessler E., Safrin M., Abrams W. R., Rosenbloom J., Ohman D,E. Inhibitors and Specificity of Pseudomonas aeruginosa LasA // JBC. 1997. V. 272: №15. P.9884-9889.

143. Kirby WMM. Extraction of a highly potent penicillin inactivator from penicillin resistant staphylococci // Science. 1944. 99:452-455.

144. Klich M.A. Biogeography of Aspergillus species in soil and litter. Mycologia. 2002. 94:21-27.

145. Kontani M., Sakagami Y., Marumo S. First P-l,6-glucan biosynthesis inhibitor, bisvertinolone isolated from fungus, Acremonium strictum and its absolute stereochemistry // Tetrahedron lett. 1994. V. 35. P. 2577-2580.

146. Korzybski T., Kowszyk-cindifer Z., Kurilowicz W. Antybiotiky. Pochodzenie, rodzaje i wlasciwosci. 1969. T. 2. 1100 c.

147. Kuhnt M., Bitsch F., France J. Et al. Microbial biotransformation products of Cyclosporin A. J. Antibiotics. 1996. 49: 781 -787.

148. Kuo A., Sean M., Callahan, Dunlao P.V. Modulation of luminescence operon expression by JV-octanoyl-L-homoserine lactone in ainS mutants of Vibrio fischeri II J. of bacteriology. 1996. V. 178. № 4. P. 971-976.

149. Lin Y.H., Xu J.L., Hu J., Wang L.H., Ong S.L., Leadbetter J.R., Zhang L.H. Acyl-homoserine lactone acylase from Ralstonia sp. strain XJ12B represents a novel and potent class of quorum-quenching enzymes// Mol. Microbiol. 2003.47: 849-860.

150. Manefield M., Rasmussen T. B., Henzter M., Andersen J. B., Steinberg P., Kjelleberg S., Givskov M. Halogenated furanones inhibit quorum sensing through accelerated LuxR turnover//Microbiology. 2002. 148: 1119-1127.

151. Martinelli D., Grossmann G., Sequin U., Brandl. H., Bachofen R. Effects of natural and chemically synthesized furanones on quorum sensing in Chromobacterium violacium // BMC Microbiol. 2004. 4:25.

152. McClean K. H., Winson M. K., Fish L. et al. Quorum sensing and Chromobacterium violaceum: exploitation of violacein production and inhibition for the detection of jV-acylhomoserine lactones // Microbiology. 1997. Vol. 9, No. 143. P. 3703 -3711.

153. Miller M.B., Bassler B.L. Quorum sensing in bacteria // Annual review of microbiology. 2001. V. 55. P. 165-199.

154. Moreira M. A. S., Chartone de Souza E., Alencar de Moraes C. Multidrug efflux systems in Gram-negative bacteria // Braz. J. Microbiol. 2004. V.35. N.l-2. P. 19-28.

155. Morino T., Masuda A., Yamada M., Nishimoto M., Nishikiori T., Saito S., Shimada N. Stevastelins, novel immunosuppressants produced by Penicillium II J. Antibiot. 1994. V. 47. P. 1341-1343.

156. Moussaif M., Jacques P., Schaarwachter P. Cyclosporin C is the main antifungal compound produced by Acremonium luzulae // Applied and environmental microbiology. 1997. V. 63. P. 1739-1743.

157. Namatame I., Tomoda Hi, Ishibashi S., Omura S. Antiatherogenic activity of fungal beauveriolides, inhibitors of lipid droplet accumulation in macrophages // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2004! V. 101. P. 737 742.

158. Newman D., Cragg G. Natural products as sources of new drugs over the period 1981-2002 //J. Nat. Prod. 2003. V.66. P. 1022 1037.

159. Nickerson K., Atkin A. L., Hornby J. M. Quorum Sensing in Dimorphic Fungi: Farnesol and Beyond // Applied environmental microbiology. 2006. V. 72. №6. P.3805-3813.

160. Nisha G., Kuppusamy M., Balaraman K. Optimization of high-performance liquid chromatographic conditions for the determination of cyclosporins A, B and C in fermentation samples. J. Chromatography. 1992. V. 604. P. 285-289.

161. Nordbring Hertz B., Hans-Bo"rje J., Tunlid A. Nematophagous fungi. In: Encyclopedia of life sciences. John Wiley & Sons, Ltd: Chichester. 2006. http://www.els.net.

162. Pechere J. C. Azithromycin reduces the production of virulence factors in Pseudomonas aeruginosa by inhibiting quorum sensing. // J. Antibiot. 2001. V.54. P.87-89.

163. Persmark L., Banck A., Jansson H-B. Population dynamics of nematofagous fungi and nematodes in an arable soil: vertical and seasonal fluctuations // Soil. Biology and biochemistry. 28:1005-1014.

164. Pitt G. I. A laboratory guide to common Penicillium species (sec. ed.). North Ryde, U.S.W., Australia: CSIRO, Division of Food Processing. 1991. 188 p.

165. Poole K. Efflux-mediated antimicrobial resistance // J. Antimicrobial Chemotherapy. 2005. V. 56. P. 20-51.

166. Pramer D., Kuyama S. Nemin and the nematode-traping fungi // Bacteriol Rev. 1963. Vol.27. P.282-292.

167. Pramer D., Stoll. N.R. Nemin a morphogenetic Causing Trap Formation by Predaceous Fungi // Scince. 1959. V. 129. №3354. P. 966-967.

168. Putman M., van Veen H. W., Konings Wil N. Molecular Properties of Bacterial Multidrug Transporters // Microbiology and Molecular Biology. 2000. V. 64. № 4. P. 672-693.

169. Ramirez C. Manual and Atlas of the Penicillia. Oxford: Elsiveier Biomedical Press. 1982. 874 p.

170. Raper K.B., Fennel D.I. The genus Aspergillus. Baltimore: Williams, Wilkins. 1965.686 p.

171. Rasmussen T. B4., Givskov M. Quorum sensing inhibitors: a bargain of effects // Microbiology. 2006. V. 152. P. 895-904.

172. Rubner A. Revision of predaceous hyphomycetes in the Dactylella-Monacrosporium complex // Studies in Mycology. V.39. 1996. P. 1-134.

173. Samaranayake L.P. Candida krusei infections and fluconazole therapy // HKMJ. 1997. V.3. №3. P.312-314.

174. Sawai K., Okuno T., Terada Y. et al. 1981. Isolation and properties of two antifungal substances from Fusarium solani // Agric. Biol. Chem. 45:1223-1228.

175. Shadaba A., Opal S. M. Bench-to-bedside review: Quorum sensing and the role of cell-to-cell communication during invasive bacterial infection // Critical Care. 2008. 12:23.

176. Schaber A.J. Carty N.L., McDonald N. A., Graham E. D., Cheluvappa R., Griswold J. A., Hamood A.N. Analysis of quorum sensing-deficient clinical isolates of Pseudomonas aeruginosa II Med Microbiol. 2004. V. 53. P. 841-853.

177. Shaw L.M., Kaplan B., DeNofrio D., Korecka M., Brayman K.L. Pharmacokinetics and concentration-control investigations of mycophenolic acid in adults after transplantation // Ther drug monit. 2000. V. 22. №1. P. 14-19.

178. Shiomi K., Ryosuke M., Miki I., Chiba H., Sugai T., Yamaguchi Y., Masuma R., Tomoda H., Chiba T., Yan H., Kitamura Y., Sugiura W., Omura S., Tanaka H. Fungal Phenalenones Inhibit HIV-1 Integrase // J. Antibiot. 2005. V.58. P. 65-68.

179. Shiono Y., Murayama T. New eremophilane-type sesquiterpenoids, eremoxylarins A and B from xylariaceous endophytic fungus YTJA-026 // Z. Naturforsch. 2005. V.60. P.885-890 .

180. Shiono Y. Anthracobic acids A and B, two polyketides,produced by an endophytic fungus Anthracobia sp. // Chem Biodivers. 2006. V.3. P. 217-223.

181. Simmons E.G. Typification of Alternaria, Stemphylium and Ulocladium // Mycologia. 1967. Vol. 59. P. 67 92.

182. Sofer D, Gilboa-Garber N., Belz. A., Garber N.C. 'Subinhibitory' erythromycin represses production of Pseudomonas aeruginosa lectins, autoinducer and virulence factors // Chemotherapy. 1999. V.45. P.335-341.

183. Stalpers J.A. Identification of wood-inhabitating fungi in pure culture// Studies in mycology. 1978. № 16. P. 12-14.

184. Sunder A., Lysek G. Quantitative investigations on nematode-traping hyphomycetes from woodland soils // Microbiology Ecology. 1988.V. 53. P. 285-290.

185. Takesako K., Ikai K., Haruna F., Endo M., Shimanaka K.,Sono E., Nakamura T., Kato I., Yamaguchi H. Aureobasidins, new antifungal antibiotics. Taxonomy, fermentation, isolation, and properties // Journal of Antibiotics. 1991. V. 44. P. 919-924.

186. Teitzel G. M., Parsck M. R. Heavy Metal Resistance of Biofilm and Planktonic Pseudomonas aeruginosa II Microbiology. 2003. V. 69. № 4. P. 2313-2320.

187. Thorn C.A., Raper K.B. Manual of the Penicilla, N.Y.: Hefner Publishing Co. 1968. 875 p.

188. Tomoda H., Huang X.H., Cao J., Nishida H., Nagao R., Okuda S., Tanaka H., Omura S., Arai H., Inoue K. Inhibition of acyl-CoA: cholesterol acyltransferase activity by cyclodepsipeptide antibiotics // J. Antibiot. 1992. V. 45. 1626-1632.

189. Tomoda H., Tabata N., Masuma R., Si S.Y., Omura S. Erabulenols, inhibitors of cholesteryl ester transfer protein produced by Penicillium sp. FO-5637. I. Production, isolation and biological properties. J. Antibiot. 1998. V.51. №7. P. 618-623.

190. Tomoda H., Ömura S. Potential therapeutics for obesity and atherosclerosis: Inhibitors of neutral lipid metabolism from microorganisms // Pharmacol. Therapeut. 2007. V. 115. P. 375-389.

191. Tzean S.S., Estey R.H. Nematode-trapping Fungi as Mycopathogens // Phytopathology. 1978. V. 68. P 1266-1270.

192. Van Delden C, Iglewski В H. Cell-to-cell signaling and Pseudomonas aeruginosa infections // Emerg infect dis. 1998. 4:551-560.

193. Vincent J. L. Nosocomial infections in adult intensive-care units // Lancet. 2003. V. 361 P. 2068-2077.

194. Von Arx J. A. Tolypocladium, a synonym of Beauveria II Mycotaxon 1986. 25:153-158.

195. Von Wartburg A., Traber R. Cyclosporins, fungal metabolites with immunosuppressive activities // Progress in medicinal chemistry. 1998. 25:1-33.

196. Von Wartburg, A., R. Traber. Chemistry of the natural cyclosporine metabolites // Prog. Allergy. 1986. 38:28-45.

197. Wagner V. E., Bushneil D., Passador L., Brooks A. I., Iglewski В. H. Microarray analysis of Pseudomonas aeruginosa quorum-sensing regulons: effects of growth phase and environment // J. Bacteriol. 2003. №185. P. 2080 -2095.

198. Walker I.C., Mint er D.W. Taxonomy of Nematogonum, Gonatobotrys, Gonatobotryum and Gonatorrhodiella // Trans. Br. Mycol. Soc. 1981. V. 77. №2. P. 299 -319.

199. Wang L.II., Weng L.X., Dong Y.H., Zhang L.H. Specificity and enzyme kinetics of the quorum-quenching N-Acyl homoserine lactone lactonase (AHL-lactonase) // J. boil. Chem. 2004. 279:13645-13651.

200. Weizhong Liu, Qianqun Gu, Cul C., Fan G. Dihydrotrichodimerol and tetrahydrotrichodimerol, two new disorbicillinoids, from a marine-derived Penicillium terrestre//}. Antibiot. 2005. V. 58. P. 621-624.

201. Welch M., Mikkelsen H., Swatton J.E., Smith D., Gemma L.T., Freija G.G., David R.S. Cell-cell communication in Gram-negative bacteria // OverMol. BioSyst. 2005 V.l.P. 196-202.

202. Winzer K., Williams P. Quorum sensing and the regulation of virulence gene expression in pathogenic bacteria // International Journal of Medical Microbiology. 2001. V. 291. №2. P. 131-143.

203. Xaio J.Z., Kumazawa S., Yoshikawa N., et al. Dactylfiingins, novel antifungal antibiotics produced by Dactylariaparvispora II J. Antibiot. 1993. V.46. P. 48-55.

204. Yamada T., Minoura K., Tanaka R., Numata A. J. Cell-adhesion Inhibitors Produced by a Sea Hare-derived Periconia sp. II Absolute Stereostructures of Peribysins H and I // Antibiot. 2006. V. 59. №6. P. 345-350.

205. Yamazaki H., Omura S., Tomoda H. 6'-Hydroxy-3'-methoxy-mitorubrin, a New potentiator of antifungal miconazole activity, produced by Penicillium radicum FKI-3765-2 // Chemical and pharmaceutical bulletin. 2010. V. 58. №6. 820 p.

206. Yang Shu-Wei, Tze-Ming Chan, Terracciano J., Loebenberg D., Patel* M., Min Chu. Structure Elucidation of Sch 725674 from Aspergillus sp. // J. Antibiot., 2005. V. 58. P. 535-538.

207. Yoshikawa Y., Ikai K., Umeda Y., Ogawa A., Takesako K.,Kato I., Naganawa H. Isolation, structures, and antifungal activities of new aureobasidins // J. Antibiot. 1993. V.46. P. 347-1354.

208. Zak J.C., Visser S. An appraisal of soil fungal biodiversity: the crossroads between taxonomic and functional biodiversity. Biodiversity and Conservation. 1996. 5: 169-183.

209. Zheng Chang-Ji, Park Soo-Hee et al. Verticillin-G a New Antibacterial Compound from Bionectra byssicola // J. Antibiot. 2007. V.60. P. 61 — 64.

210. Zheng Chang-Ji, Yu Hyung-Eun, Eun-Hee Kim, Won-Gon Kim. Viridicatumtoxin B, a new anti-MRSA agent from Pénicillium sp. FR11 // J. Antibiot. 2009. V. 61.P.633-637.виды d(%) а (тыс.) I I (%)

211. Acremonium sp. 50 6.45 6.1

212. Aspergillus cervinus Massee 20 6.667 2.7

213. Aspergillus fumigatus Fresen. 30 5 0.2

214. A. nidulans (Eidam) G. Winter 10 10 2.7

215. A. ustus (Bainier) Thorn et Church 60 6.875 7.4

216. A. versicolor (Vuill.) Tirab. 30 7 4.7

217. Beauveria bassiana (Bals.-Criv.) Vuill. 30 8.75 4.7

218. Geomyces pannorum (Link) Sigler, Carmich. 50 12.308 21.6

219. Mortierella alpina Peyronel 20 5 2.0

220. Pénicillium citrinum Sopp. 30 5 1.4

221. P. aurcmtiogrise urn We stling 60 5.9 8.8

222. P. janczewskiiZalessky 40 13 8.8

223. P. purpurogenum Stoll 10 5 0.7

224. P. spinulosum Thorn 10 5 0.7

225. P. restrictum Gilman, Abbott 10 5 0.7

226. P. thomii Maire 10 7.5 0.2

227. P. variabile Mey. 10 5 0.7

228. Rhizopus stoloniferum Thorn 10 5 0.7

229. Tolypocladium inflatum Gams 20 13.75 7.4

230. T. microsporum (Jaap) Bissett 10 10 2.7

231. Trichoderma spirale Bissett 40 7.5 4.1

232. Trichoderma viride Pers. 20 5 1.4

233. Ulocladium sp. 30 6.25 3.4

234. Светлоокрашенный стерильный мицелий 20 7.5 2.0

235. Где <1-частота встречаемости (%), а количество грибных зародышей на 1 г почвы (в тыс.), И-обилие видов.