Идентификация новых экзометаболитов некоторых штаммов Pseudomonas spp. и технология биопрепаратов на их основе тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.01.06, доктор биологических наук Четвериков, Сергей Павлович

• Четвериков, Сергей Павлович
• доктор биологических наук
• 2012

Оглавление диссертации доктор биологических наук Четвериков, Сергей Павлович

ВВЕДЕНИЕ

1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

1.1. Ризобактерии рода Pseudomonas. Функционирование в системе растения - фитопатогены

1.1.1. Антагонистическая активность PGPR Pseudomonas

1.1.2. Метаболиты псевдомонад - агентов биологического контроля фитопатогенных грибов

1.1.2.1. Синтез антибиотиков

1.1.2.2. Продукция сидерофоров

1.1.3. Синтез фитогормонов PGPR Pseudomonas

1.1.4. Биопрепараты на основе бактерий рода Pseudomonas

1.2. Свойства метаболитов бактерий рода Pseudomonas, обладающих фунгицидной активностью

1.3. Механизмы комплексообразования метаболитов бактерий с органическими соединениями и ионами металлов

1.4. Оптимизация условий культивирования бактерий рода Pseudomonas

1.4.1. Условия культивирования, питательные среды для бактерий рода Pseudomonas - продуцентов метаболитов с фунгицидной активностью

1.4.2. Математическое моделирование для оптимизации условий культивирования микроорганизмов

2. ОБЪЕКТЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЙ

2.1. Объекты исследований

2.2. Условия хранения псевдомонад

2.3. Условия хранения и культивирования фитопатогенных грибов

2.4. Определение динамики роста бактерий в средах с различными источниками углерода

2.5. Изучение условий культивирования, влияющих на биосинтез метаболитов Pseudomonas, обладающих фунгицидной активностью

2.6. Оптимизация ферментационной питательной среды и условий культивирования псевдомонад

2.7. Приготовление автолизатов дрожжей

2.8. Определение содержание белка в дрожжевом автолизате

2.9. Определение массовой доли азота аминогрупп аминокислот и низших пептидов в дрожжевом автолизате

2.10. Определение массовой доли общего азота в дрожжевом автолизате

2.1 1. Выделение метаболитов Pseudomonas, обладающих фунгицидной активностью

2.12. Определение pH - стабильности и термостабильности низкомолекулярных фракций метаболитов Pseudomonas

2.13. Методы изучения состава и структуры метаболитов Pseudomonas, обладающих фунгицидной и фитогормональной активностью

2.14. Определение антигрибной активности штаммов Pseudomonas и их метаболитов, обладающих фунгицидной активностью

2.15. Определение спектра антагонистического действия культур Pseudomonas

2.16. Определение фитогормональной активности метаболитов Pseudomonas

2.17. Исследование комплексообразования метаболитов Pseudomonas с экссудатами растений

2.18. Исследование комплексообразования метаболитов Pseudomonas с ионами металло

2.19. Статистическая обработка результатов

3. структура и свойства экзометаболитов Pseudomonas, обладающих фунгицидной и фитогормональной активностью

3.1. Способность штаммов Pseudomonas к росту и их антигрибная активность в средах с различными источниками углерода

3.2. Влияние условий культивирования на биосинтез низкомолекулярных метаболитов штаммами бактерий Pseudomonas

3.2.1. Влияние углеродного и азотного питания на фунгицидную активность штаммов Pseudomonas

3.2.2. Влияние температуры культивирования на фунгицидную активность штаммов Pseudomonas

3.3. Динамика процессов периодического роста и образования антибиотических веществ штаммами Pseudomonas

3.4. Определение состава низкомолекулярных фракций метаболитов штаммов Pseudomonas

3.5. iii гамм Pseudomonas chlororaphis ИБ 6 -п ро д у це н т ц ито к и н и н о в

3.6. Характеристика физико-химических свойств низкомолекулярных фракций метаболитов штаммов Pseudomonas

3.7. Выделение метаболитов штаммов Pseudomonas, обладающих фунгицидной активностью, оценка их чистоты и гомогенности

3.8. Определение молекулярной массы метаболитов штаммов Pseudomonas, обладающих фунгицидной активностью

3.9. Аминокислотный и элементный составы метаболитов штаммов Pseudomonas, обладающих фунгицидной активностью

3.10. И К- и ЯМР 'С- спектроскопия метаболитов штаммов Pseudomonas, обладающих фунгицидной активностью

3.1 1. Ферментативный гидролиз метаболитов штаммов Pseudomonas, обладающих фунгицидной активностью

3.12. Антигрибная активность триглицеридпептидов Pseudomonas 13 1 3.12.1. Характеристика антигрибной активности триглицеридпептидов псевдомонад в средах с различными источниками углерода

4. КОМПЛЕКСООБРАЗОВАНИЕ ТРИГЛИЦЕРИДПЕПТИДОВ Pseudomonas С ЭКССУДАТАМИ РАСТЕНИЙ И ИОНАМИ МЕТАЛЛОВ

4.1. Исследование комплексообразования триглицеридпептидов Pseudomonas спекгрофотометрическими методами

4.1.1. Определение комплексных соединений методом Бснта-Френча

4.1.2.Определение комплексных соединений методом изомолярных серий

4.2. Исследование комплексообразования триглицеридпептидов Pseudomonas поляриметрическим методом

4.3. Исследование комплексообразования триглицеридпептидов Pseudomonas полярографическим методом

5. КУЛЬТИВИРОВАНИЕ БАКТЕРИЙ РОДА Pseudomonas, ОБЛАДАЮЩИХ ФУНГИЦИДНОЙ АКТИВНОСТЬЮ

5.1. Оптимизация питательных сред при культивировании бактерий рода Pseudomonas, обладающих фунгицидной активностью

5.1.1. Дрожжевой автолизат - компонент питательной среды

5.1.2. Получение математических моделей для трёх штаммов Pseudomonas

5.1.3. Определение оптимального состава питательных сред для культивирования бактерий Pseudomonas

5.2. Оптимизация условий культивирования грех штаммов Pseudomonas

5.3. Оценка антигрибной активности штаммов Pseudomonas, выращенных в оптимальных условиях

5.4. Изучение параметров культивирования штамма Pseudomonas chlororaphls ИБ 5 1 в периодических и непрерывных условиях

5.5. Питательные среды для промышленного культивирования псевдомонад и экономический эффект от использования новых сред

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Идентификация новых экзометаболитов некоторых штаммов Pseudomonas spp. и технология биопрепаратов на их основе»

Актуальность проблемы. Бактерии рода Pseudomonas - одна из наиболее изученных групп микроорганизмов с точки зрения объектов биологического контроля почвенных фитопатогенов и обладающих совокупностью полезных для растений свойств (Рубан, 1986; Смирнов, Киприанова, 1990; Воронин, 1998; Логинов и др., 2001; Weller, 1988; Dow ling, O'Gara, 1994; Bloemberg, Lugtenberg ,2001; Whipps, 2001).

Устойчивость растений к заболеваниям, вызываемым почвенными фитопатогенами, во многом определяется результатами взаимодействия между корневой системой растений и разнообразными микроорганизмами. Активная секреция клетками корня различных веществ обеспечивает питательными субстратами микроорганизмы, образующие с ними прочные ассоциации. В свою очередь, ризосферные бактерии обладают целым рядом механизмов, определяющих их способность ингибировагь развитие почвенных фитопатогенов: это, в первую очередь, синтез антифунгальных метаболитов, конкуренция за питательные субстраты и поверхность корней, а также индукция защитных систем растений.

Одним из факторов, позволяющих воздействовать на фитопатогеные микроорганизмы, заселяющие ризосферу растений, является продукция бактериями различных низкомолекулярных веществ, таких как сидерофоры и антибиотики. За последнее десятилетие учеными обнаружены и выделены новые метаболиты бактерий рода Pseudomonas, обладающие фунгицидной активностью, такие как фураноны, аеругин, меркапто-4-формилкарбостирил и др. (Shoji et al., 1990; Sokol et al., 1992; Lee et al., 1994; Jiao et al., 1996; Moon et al., 1996; Gamard et al., 1997; Suznmura et al., 1997; Thrane et al., 1999; Nielsen et al., 1999; Nielsen et al., 2000; Paulitz et al., 2000; Kim et al., 2000; Fakhouri et al., 2001; Sorensen et al., 2001: Quail et al., 2002: Lee et al., 2003), что в какой-то мере можно связать с привлечением новых физико-химических методов анализа. Эти антигрибные метаболиты имеют различную химическую структуру и некоторые из них обладают способностью к комплексообразованию с экзометаболитами растений, образуя с ними стабильные комплексы, недоступные для использования фитопатогенами, что приводит к ограничению их роста при улучшении роста растений. Также известны антибиотики депсипегггидной природы, выступающие как агенты, образующие комплексы с ионами металлов и транспортирующие их через природные и искусственные мембраны. Однако эта способность для метаболитов бактерий рода Pseudomonas практически не изучена. В тоже время, установление механизмов действия метаболитов бактерий рода Pseudomonas на фитопатогены необходимо для разработки эффективных способов защиты рас тений.

С другой стороны широкомасштабное использование в сельском хозяйстве биопрепаратов на основе ризосферных бактерий рода Pseudomonas сдерживается отсутствием стандартных технологий их производства. Нужно отметить, что при производстве биопрепаратов на основе бактерий рода Pseudomonas для практического использования в агробиотехнологии одной из главных проблем является высокая стоимость питательной среды.

Использование для оптимизации параметров технологии производства биопрепаратов в качестве методического аппарата методов математического планирования эксперимента позволяет не только одновременно изучить действие нескольких факторов на интересующий исследователей процесс, но и количественно оценить степень этого влияния. Что в итоге позволит производить высокоэффективные биопрепараты с высокой антигрибной и ростстимулирующей активностью даже с использованием в качестве компонентов сред вторичного сырья, например, автолизагов отработанных пивных дрожжей.

Учитывая, что потребность сельского хозяйства в средствах защиты растений увеличивается . с каждым годом, проблема совершенствования технологии биологической защиты растений также представляется актуальной.

Цель исследования. Целью работы явилось определение биологической роли экзометаболитов бактерий рода Pseudomonas в их взаимодействии с фитопатогенными грибами, установление их химической природы, а также разработка технологии промышленного культивирования псевдомонад для производства сельскохозяйственных биопрепаратов на их основе.

Задачи исследования.

1. Выделить биологически активные метаболиты исследуемых штаммов Pseudomonas chJovoraphis ИВ 51, Р. chlororaphis ИБ 6 и Р. put ¡da ИБ 17, исследовать их физико-химические свойства, определить состав и структуру.

2. Изучить способность комплексообразования метаболитов штаммов Pseudomonas с различными углеводами, органическими кислотами и аминокислотами, входящими в комплекс экссудатных выделений корней растений, а также с катионами тяжелых металлов: меди, цинка, кадмия, свинца.

3. Установить стехиометрические составы комплексов метаболит:экссудат, метаболит : катион. Оценить комплексообразующую способность триглицеридпептидов бактерий рода Pseudomonas как одного из механизмов их ингибирующего воздействия на фитопатогены.

4. Выявить условия максимальной продукции цитокининов штаммом бактерий Р. chJovoraphis ИБ 6 в зависимости от состава питательной среды, определить их химическую структуру.

5. Изучить влияние условий культивирования и отдельных компонентов питательной среды на накопление биомассы и продукцию метаболитов штаммами Pseudomonas. Определить оптимальный состав ферментационных сред для культивирования штаммов с максимальной антигрибной активностью и высоким титром клеток.

6. Оптимизировать условия периодического и непрерывного промышленного культивирования штаммов Pseudomonas.

Научная новизна.

Впервые показана способность триглицеридпептидов псевдомонад образовывать межмолекулярные комплексы с компонентами, входящими в корневые экссудаты растений: углеводами, органическими кислотами, аминокислотами, тем самым, лимитируя по субстрату фитопатогены. Установлено, что процесс комплексообразования триглицеридпептидов и компонентов экссудатов растений является одним из механизмов, ограничивающих развитие фитопатогенов в ризосфере сельскохозяйственных растений.

Впервые показано, что метаболиты псевдомонад способны к образованию ассоциатов различного стехиометрического состава с ионами тяжелых металлов: меди, цинка, кадмия и свинца.

Разработаны новые питательные среды (Патент РФ № 2303061, 2007) и технологии промышленного культивирования бактерий рода Pseudomonas для производства биопрепаратов сельскохозяйственного назначения с высокой антигрибной и ростстимулирующей активностью.

П р а кг Ii ч е с к а я з 11 а ч 11 м ость.

Определены условия максимальной продукции и активности метаболитов фунгицидной природы Pseudomonas, что может быть использовано при производстве биопрепаратов для защиты сельскохозяйственных растений.

Разработаны новые экономичные питательные среды и подобраны оптимальные условия для промышленной наработки биопрепаратов на основе бактерий рода Pseudomonas, предназначенных для защиты сельскохозяйственных растений.

Установленная комплексообразующая способность метаболитов бактерий Pseudomonas с ионами металлов позволяет рекомендовать применение препаратов на их основе для снижения загрязнения почв.

Основные положения, выносимые на защиту:

- исследуемые штаммы Pseudomonas spp. синтезируют новые экзометаболиты, обладающие фунгицидной и фитогормональной активностью;

- комплексообразование триглицеридпептидов с компонентами экссудатов растений является одним из механизмов, ограничивающих развитие фигопатогенов в ризосфере сельскохозяйственных растений; триглицеридпегггиды способны к образованию ассоциатов различного стехиометрического состава с ионами тяжелых металлов: меди, цинка, кадмия и свинца; новые экономичные ферментационные среды на основе автолизатов отработанных пивных дрожжей для промышленной наработки биопрепаратов сельскохозяйственного назначения на основе бактерий рода Pseudomonas с максимальной антигрибной активностью и высоким титром клеток;

- технология промышленного культивирования бактерий рода Pseudomonas для производства биопрепаратов сельскохозяйственного назначения с высокой антигрибной и ростстимулирующей активностью.

Апробация работы. Основные результаты работы были представлены на XV, XIX и XX Международных научно-технических конференциях «Химические реактивы, реагенты и процессы малотоннажной химии» (Уфа, 2002, 2006, 2008), I и II Международных конгрессах «Биотехнология - состояние и перспективы развития» (Москва, 2002, 2003), II Российской научно-практической конференции «Актуальные проблемы инноваций с нетрадиционными природными ресурсами и создания функциональных продуктов» (Москва, 2003), семинаре-презентации инновационных научно-технических проектов «Биотехнология - 2003» (Пущино, 2003), IV Всероссийской научной 1ЫТЕ11ЫР.Т-конференции «Интеграция науки и высшего образования в области био-и органической химии и биотехнологии» (Уфа, 2005), IV Всероссийской научной ¡п1егпе1:-конференции (Уфа, 2006), I Всероссийской научно-практической конференции «Питательные среды и методы культивирования клеток для биологии, медицины и биоиндустрии: фундаментальные и прикладные аспекты» (Пущино, 2007), II съезде микологов России «Современная микология в России» (Санкт-Петербург, 2008), 5-м Всероссийском научно-практическом совещании-семинаре, (Анапа, 2008), Международной научно-технической конференции «Китайско-российское научно-техническое сотрудничество. Наука-образование-инновации» (КНР, Харбин - Санья, 2008).

Публикации. По материалам работы опубликовано 34 научных работы, в том числе 16 работ в журналах, рекомендованных ВАК, два патента.

1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

El. Ризобактерии рода Pseudomonas. Функционирование в системе растения - фитопатогены

Устойчивость растений к заболеваниям, вызываемым почвенными фитопатогенами, во многом определяется результатами взаимодействия между корневой системой растений и разнообразными микроорганизмами. Совокупность корневой системы с почвой представляет собой сложную экологическую нишу, заселенную полезными, вредными и нейтральными для растений микроорганизмами. Активная секреция клетками корня различных веществ обеспечивает питательными субстратами микроорганизмы, образующие с ними прочные ассоциации как внутри корневых тканей, гак и на корневой поверхности (ризогшане), а также в почве, непосредственно окружающей корни (ризосфере). В ризосфере в отличие от свободной от корней почвы доминируют грамотрицательные бактерии, причем преобладают бактерии рода Pseudomonas (Воронин, 1998; Ligon et al., 2000; Danhorn, Fuqua, 2007).

Псевдомонады способны к синтезу целого ряда соединений, стимулирующих рост растений. Стимуляторы роста растений, образуемые псевдомонадами, представлены фитогормонами, такими как ИУК (индолил-3-уксусная кислота) и цитокинины. Кроме того, некоторые штаммы псевдомонад способны улучшать азотное и фосфорное питание растений.

В некоторых публикациях авторы отмечают наличие положительного комплексного действия на растение со стороны бактерий-антагонистов. Речь идет не только о биологическом контроле почвенных инфекций, использование культур штаммов-антагонистов способствует также индукции системной устойчивости растений, благоприятствует раннему росту и увеличению урожая сельскохозяйственных культур (Свешникова и др., 2003; Zehnder et al., 2001; Haas, Defago, 2005).

Известно, что бактерии рода Pseudomonas обладают целым рядом механизмов, определяющих их способность ингибировать развитие почвенных фигопатогенов: это, в первую очередь, синтез антифунгальных метаболитов, конкуренция за питательные субстраты и поверхность корней, а также индукция защитных систем растений.

Заключение диссертации по теме «Биотехнология (в том числе бионанотехнологии)», Четвериков, Сергей Павлович

выводы

1. Выделены новые метаболиты для трех штаммов Pseudomonas spp., различающихся по видовой принадлежности, обладающие фунгицидной активностью, представляющие по своей химической структуре трипегггиды глицерина с молекулярной массой 2,8-3,0 кДа. Определены минимальные ингибирующие концентрации триглицеридпептидов изучаемых псевдомонад для ряда фитопатогенных и фитотоксичных грибов, показывающие, что антигрибная активность выделенных метаболитов сопоставима величине активности известных антибиотиков бактерий рода Pseudomonas.

2. Метаболиты бактерий рода Pseudomonas способны к образованию межмолекулярных комплексов с компонентами экзометаболитов растений - органическими кислотами, аминокислотами и углеводами, лимитируя по субстрату фитопатогены. Метаболиты бактерий рода Pseudomonas также способны образовывать ассоциаты с ионами меди, цинка, кадмия и свинца.

3. Стехиометрические составы комплексов метаболит : экссудат для триглицеридпептидов штаммов бактерий Р. chlororaphis ИБ 51, Р. chlororaphis ИБ 6, Р. putida ИБ 17 с компонентами различных фракций корневых экссудатных экзометаболитов растений находятся в интервале 1:1 — 1:20. Оптимальные для снижения содержания солей металлов стехиометрические составы комплексов метаболит : катион находятся в интервале 1:1 - 1:9.

4. Образование межмолекулярных комплексов триглицеридпептидами изученных штаммов бактерий рода Pseudomonas ограничивает доступность источников углерода для фитопатогенных грибов и является одним из механизмов проявления антигрибной активности метаболитов.

5. Выявлены условия максимальной продукции штаммом Pseudomonas chlororaphis ИБ 6 веществ цитокининовой природы, позволяющие получать культуральную жидкость этих бактерий с концентрацией цитокининов свыше 1 100 иг/мл, в том числе и три - О - пропионил - N6 -(А2 - изопентенил)аденозина - новой формой цитокининоподобных веществ.

6. Показано, что антигрибная активность и накопление биомассы при культивировании штаммов Р. chlororaphis ИБ 51, Р. chlororaphis ИБ 6 и Р. putidci ИБ 17 главным образом зависят от концентрации дрожжевого автолизата и фосфатов в ферментационной среде.

7. Разработаны новые экономичные ферментационные среды на основе автолизатов отработанных пивных дрожжей, пекарских дрожжей для промышленной наработки биопрепаратов на основе бактерий рода Pseudomonas для защиты сельскохозяйственных растений от грибных фитопатогенов с максимальной антигрибной активностью и высоким титром клеток.

8. Оптимизированы условия периодического и непрерывного промышленного культивирования биопрепарата «Елена» и аналогичных биопестицидов на основе бактерий рода Pseudomonas. Показано, что антигрибная активность штамма Р. putida ИБ 17, выращенного в оптимальных условиях, максимальна среди исследуемых штаммов псевдомонад.

ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ И РЕКОМЕНДАЦИИ

При производстве биопрепаратов на основе штаммов бактерий Pseudomonas, предназначенных для защиты сельскохозяйственных растений от грибных фитопатогенов, рекомендуется использование питательных сред на основе автолизатов отработанных пивных дрожжей.

Определены условия максимальной продукции и активности метаболитов фунгицидной природы Pseudomonas, что может быть использовано при производстве биопрепаратов для защиты сельскохозяйственных растений.

Установленная комилексообразующая способность метаболитов бактерий Pseudomonas с ионами металлов позволяет рекомендовать применение препаратов на их основе для снижения загрязнения почв.

Методы современной аналитической химии рекомендуются для оценки характера антигрибной активности метаболитов бактерий рода Pseudomonas при изучении комплексообразования в биологических системах.

По результатам исследований разработана и утверждена в установленном порядке следующая нормативно-техническая документация:

- ТУ 9291 -01 7-22657427-2002. Биопрепарат «Елена», Ж;

- Лабораторный регламент на производство опытной партии препарата «ЕЛЕНА»;

- Временный технологический регламент на получение опытной партии биопрепарата «Елена».

Испытания оптимизированной среды на основе автолизата пивных дрожжей проводили для биопрепарата «ЕЛЕНА» на производственных площадях ГУН «Опытный завод Академии Наук Республики Башкортостан» в условиях спроектированной опытно-промышленной установки по производству биопрепаратов. Было наработано биопрепарата «Елена» 10 тонн.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

Болезни культурных растений, вызываемые фитопатогенными грибами, уничтожают до 30% потенциального урожая. Кроме того, заражая культурные растения, грибы загрязняют их продуктами своей жизнедеятельности - микотоксинами, которые ухудшают потребительские качества сельскохозяйственного пищевого сырья, что снижает его биологическую полноценность и безопасность. Применяемые химические фунгициды небезопасны, загрязняют окружающую среду, патогенные грибы вырабатывают к ним устойчивость. Поэтому в последние годы большое внимание уделяется развитию экологически чистых биологических методов борьбы с болезнями растений, которые рассматриваются как альтернатива традиционным методам защиты растений, связанным с применением химических фунгицидов. Аналогичная тенденция по использованию биопрепаратов в сельском хозяйстве наблюдается во всех развитых странах, где объемы применения химических препаратов в растениеводстве неуклонно снижаются.

Разработка новых типов биопрепаратов для сельского хозяйства, обладающих комплексным действием, сочетающим антагонистическую активность по отношению к фитопатогенам с продукцией ростстимулирующих веществ является актуальной задачей

Антагонистическая активность изученных бактерий связана с продукцией антибиотиков. Впервые показано, что метаболиты псевдомонад, обладающие фунгицидной активностью, представляют собой триглицеридпепгиды, способные к комплексообразованию с экзометаболигами растений, образуя с ними стабильные комплексы, недоступные для использования фитопатогенами, что приводит к ограничению их роста при улучшении роста растений. Комплексообразование с компонентами экссудатов растений является одним из механизмов, ограничивающих развитие фитопатогенов в ризосфере сельскохозяйственных растений.

Новые штаммы бактерий-антагонистов также способны синтезировать ряд фитогормонов, в том числе и их новые формы, стимулирующих развитие растений. Совокупность положительных свойств изученных штаммов позволяют считать их перспективной основой для создания биопрепаратов нового поколения.

С учетом того, что при производстве биопрепаратов на основе бактерий рода Pseudomonas для практического использования в агробиотехнологии одной из главных проблем является высокая стоимость питательной среды, была минимизирована ее доля в стоимости биопрепарата путем создания новых экономичных ферментационных сред на основе автолизатов отработанных пивных дрожжей с применением методов математического планирования эксперимента.

В условиях разработанных сред реализовано непрерывное культивирование с высокой производительностью процесса накопления биомассы по наработке штамма Pseudomonas chlororaphis ИБ 51 - основе биофунгицида «Елена», имеющего государственную регистрацию в Минсельхозе Российской Федерации.

Список литературы диссертационного исследования доктор биологических наук Четвериков, Сергей Павлович, 2012 год

1. Автономова А. В., Краснопольская Л. М., Максимов В. Н. Оптимизация состава питательной среды для погруженного культивирования Ccmodermci lucidum II Микробиология. 2006,- том 75, №2,-С. 186-192.

2. Багдасарян З.Н., Алексанян Г. А., Гукасян Г. С., Мирзоян А. М. Оптимизация среды и условий культивирования продуцента фумаразы и аспартазы Erwinia sp Н Прикладная биохимия и микробиология. 2000. -том 36, №5,-С. 545-548.

3. Безбородов А.М., Загустина Н.А., Попов В.О. Ферментативные процессы в биотехнологии. М. : Наука, 2008. - 335 с.

4. Бек М., Надьпал И. Исследование комплексообразования новейшими методами. М. : Мир, 1989.-413 с.

5. Белякова Л.А., Ляшенко Д.Ю. Комплексообразование бензолкарбо-новых кислот с Р-циклодекстрином // Журнал прикладной спектроскопии. 2008. - Т. 75. - № 3. - С. 299-303.

6. Блажевич О.В., Максимова Н.П. Биосинтез флуоресцирующего пигмента пиовердина Рм у ризосферных бактерий Pseudomonas putida M // Изв. РАН. Сер. биол. 1994. - № 2. - С. 205-209.

7. Воронин А.М. Ризосферные бактерии рода Pseudomonas, способствующие росту и развитию растений // Соросовский образовательный журнал,- 1998. № 10. - С. 25-31.

8. Брокерхоф X., Дженсен Р. Липолитические ферменты. М.: Мир, -1978. - 396 с.

9. Будников Г.К., Майстренко В.Н., Вяселев М.Р. Основы современного электрохимического анализа. М.: Мир: Бином ЛЗ. - 2003. -592 с.

10. Булатов М.И., Калинкин И.П. Практическое руководство по фотоколориметриметрическим и спектрофотометрическим методам анализа. Изд. 4-е. Л. : Химия. 1976. - 376 с.

11. Вебер Э., Фегтле Ф., Хингельфельд Р., Зэнгер В., Крам д. Дж. и др. Химия комплексов «гость хозяин». Синтез, структуры и применения. -М.: Мир, - 1988.- 512С.

12. Ветрова А.,А., Нечаева И., А., Игнатова А., А., Пунтус И.,Ф., и др. Влияние катаболических плазмид на физиологические параметры бактерий рода Pseudomonas и эффективность биодеструкции нефти // Микробиология. 2007.- №3,- С. 354-360.

13. Волчатова И. В., Медведева С. А., Бабкин В. А. Оптимизация состава питательной среды как способ регуляции синтеза лигниназы грибом Coriolus vi/losus II Прикладная биохимия и микробиология. 1997.- том 33, №1,-С.94-97.

14. Гущина Ю.А., Евдокимов E.B. Формальдегидрезистентные бактерии рода Pseudomonas как агенты биоконтроля и биостимуляции льна // Экология сегодня. 2001.- № 1.- С.65-67.

15. Додзин М. Е., Виноградова К. А., Котова И. Б. Новые продуценты L-глутаматоксидазы Streptomyces litmocidini и Streptomyces cremeus II

16. Долгова E.M., Манько О.П., Зубко И .Я. и др. Препараты псевдобактерин-2 и псевдобактерин-3 против болезней пшеницы // Химия в сельском хозяйстве. 1997.-№Г- С. 13-14.

17. Досон Р., Эллиот Д., Элиот У., Джонс К. Справочник биохимика. -М.: Мир, 1991.- 544 с.

18. Дурынина Е. П., Пахненко О. А., Злотников А. К., Злотников К. М. Влияние биопрепарата альбит на продуктивность ячменя и содержание биофильных элементов в урожае // Агрохимия. 2006 - №1.- С. 49-54.

19. Егорова Н.С. Практикум по микробиологии Учебное пособие. М, 1976. 307с.

20. Ермакова Н.И., Штерншис М.В. Новый биопрепарат РИД против болезней растений // Защита растений. 1994.- № 12,- С. 18.

21. Есипов С.Е., Аданин В.М., Баскунов Б.П. Новый антибиотически активный флороглюцид из Pseudomonas aurantiaca II Антибиотики. 1975. -Т. 20, № 12.-С. 1077-1081.

22. Квасников Е. И., Айзенман Б.Е., Соломко Э.Ф. и др. Рост и образование антибиотиков бактериями рода Pseudomonas на средах с низкомолекулярными н-алканами // Микробиология. 1975 - Т. 44, № 1 .С. 55-60.

23. Киприанова Е.А., Рабинович A.C., Бойко О.И., Каминская Л.Ю. Высокоактивное антибиотическое вещество, выделенное из бактерий рода Pseudomonas // Антибиотики. 1969. - Т. 14, №3. - С. 228-231.

24. Киприанова Е.А., Рабинович A.C., Каминская Л.Ю. Химическая и биологическая характеристика антибиотических веществ, образуемых Pseudomonas aurantiaca П Физиологически активные вещества. 1971. - № 3-С.283-290.

25. Климова В.А. Основные микрометоды онализа органических соединений. М.: Химия, 1967. - 208 с.

26. Кондратьева Т. Ф., Лобачёва Н. А. Оптимизация состава питательной среды методом математического планирования с целью увеличения количества синтезируемого Pullularia pullulans пуллулана // Микробиология. 1990. - Т. 59, Вып 6. - С. 1004-1009.

27. Королёва О.В., Степанова Е. В., Гаврилова В. П. и др. Оптимизация условий глубинного культивирования базидиомицета Coriolus hirsutus -продуцента внеклеточной лакказы // Прикладная биохимия и микробиология . 2000. - том 36, №1. - С. 30-36.

28. Коршунова Т.Ю., Силищев H.H., Галимзянова Н.Ф. Биофунгицид Елена для протравливания семян ячменя ярового и его влияние на урожайность и устойчивость к болезням // Башкирский химический журнал. 2007. - Т. 14. - № 4. - С. 92-94.

29. Кочетков В.В., Чигалейчик А.Г., Петрикевич С.Б. и др. Биопрепарат псевдобактерин-2 для защиты растений от широкого спектра фитопатогенов // Химия в сельском хозяйстве. 1997. - №1. - С. 15-16.

30. Кравченко Л.В., Азарова Т.С., Леонова-Ерко Е.И. и др. Корневые выделения томатов и их влияние на рост и антифунгальную активность штаммов Pseudomonas // Микробиология. 2003. - Т. 72. - № 1. - С. 48-53.

31. Кравченко Л.В., Шапошников А.И., Макарова Н.М. и др. Динамика численности антифугальных штаммов Pseudomonas в ризосфере огурцов,выращиваемых в условиях гидропоники на минеральном тепличном субстрате // Микробиология. 2006. - Т.75, №3. - С.404-409.

32. Кудоярова Г.Р., Веселов С.Ю., Еркеев М.И. и др. Иммуноферментное определение содержания индолилуксусной кислоты в семенах кукурузы с использованием меченых антител // Физиология растений. 1986. - Т. 33, вып. 6. - С. 1221 -1227.

33. Кудоярова Г.Р., Веселов С.Ю., Каровайко Н.И. и др. Иммуноферментная система для определения цитокининов // Физиология растений. 1990. - Т. 37, вып. 1. - С. 193-199.

34. Кузнецов Л. Е., Ховрычев М. П. Оптимизация синтетической среды для культивирования Bacillus ihuringiensis II Микробиология. 1984. - T.53 вып. 1 С. у54-57.

35. Кузнецова М.А., Филиппов A.B. Ризоплан и фитофтороз картофеля // Защита растений. -1995. № 8. - С. 19-20.

36. Кузьмина Л.10., Бойко Т.Ф., Исаев Р.Ф., Свешникова Е.В., Мелентьев А.И. Эффективность бактериальных препаратов при защите растений яровой пшеницы от твердой головни // Сельскохозяйственная биология. 2003. - № 5. - С. 69-73.

37. Кулаева О.Н. Как регулируется жизнь растений // Соросовский образовательный журнал. 1995. - № 1. - С. 20-27.

38. Куликов С.El., Алимова Ф.К., Захарова Н.Г., Немцев C.B., Варламов В. П. Биопрепараты с разным механизмом действия для борьбы с грибными болезнями картофеля // Прикладная биохимия и микробиология. -2006. -№1 С. 86-92.

39. Ленгелер Й., Дрейвс F., Шлегель Е. // Современная микробиология Прокариоты в 2-х томах. Т. 1.: Мир: 2005. - 656 с.

40. Логинов О.El. Бактерии Pseudomonas и Azotobacter как объекты сельскохозяйственной биотехнологии,- М.: Е1аука. 2005. - 166 с.

41. Логинов О.Н., Мелентьев А.И., Силищев H.H. и др. Роль бактерий -антагонистов фитопагогенов в защите сельскохозяйственных растений от болезней. Уфа: Г'илем, 2001. - 66 с.

42. Логинов О.Н., Пугачева Е.Г., Исаев Р.Ф., Силищев H.H., Бойко Т.Ф., Галимзянова Н.Ф. Биологические средства защиты картофеля от болезней // Аграрная наука. 2003. - № 7. - С. 24.

43. Логинов О.Н., Свешникова Е.В., Исаев Р.Ф., Силищев H.H., Галимзянова Н.Ф., Бойко Т.Ф. Биопрепараты против твердой головни пшеницы // Защита и карантин растений. 2002. - № 9. - С. 39.

44. Логинов О.Н., Четвериков С.Г1. Биосинтез низкомолекулярных метаболитов бактериями Pseudomonas aureofaciens ИБ 51 // Биотехнология. 2003,-№5.-С. 22-25.

45. Логинов О.Н., Четвериков С.П., Гусаков В.Н. Триглицеридпептиды -новая группа антигрибных метаболитов псевдомонад (.Pseudomonas) // Доклады Академии Наук. 2003. - Т. 393. - № 5. - С. 715-717.

46. Максимов В. IT., Федоров В. Д., О математическом планировании биологических экспериментов // Известия АН СССР, сер. биол. 1966. -№6,

47. Максимов В.Н., Федоров В.Д. Применение методов математического планирования эксперимента при отыскании оптимальных условий культивирования микроорганизмов. М, 1969;- 126 с.

48. Межераупе В. А. Использование картофельного сока для выращивания микроорганизмов. В кн.: Продуценты аминокислот и ферментов. Рига: Зинатие, 1987, С. 124-177.

49. Мелентьев А. И. Аэробные спорообразуюицие бактерии Bacillus Cohn в агроэкосистемах. -М.: Наука, 2007. 147 с.

50. Методы общей бактериологии. Под ред. Ф. Герхард Т. 2. М: Мир,1984. - С. 293-295, 356-358.

51. Мишке И. В. Микробные фитогормоны в растениеводстве. Рига: Зинатне, 1988. - 151 с.

52. Мишке И. В., Тевелева М. К., Миклашевиче Э. П. Некоторые свойства микробных цитокининов из Pseudomonas stutzeri II Микробиология. 1985.-вып. 5 - С. 774-777.

53. Монахова О. Ф. и Чернядьев И.И. Протекторное влияние цитокининовых препаратов на фотосинтетический аппарат растений пшеницы при водном дефиците // Прикладная биохимия и микробиология. 2007. -Т. 43, №6. -С. 720-729.

54. Мордухова Е. А., Скворцова Н. П., Кочетков В. В., Дубейковский А. Н., Воронин А. М. Синтез фитогормона Индол-3- уксусной кислоты ризосферными бактериями рода Pseudomonas II Микробиология. 1991. -вып З.-С. 494-499.

55. Мордухова Е.А., Кочетков В.В., Поликарпова Ф.Я. и др. Синтез индолил-3-уксусной кислоты ризосферными псевдомонадами: Влияние плазмид биодеградации нафталина // Прикладная биохимия и микробиология. 1998. -Т.34, № 3. - С.287-292.

56. Назарова Л.Н. Агат-25К на зерновых культурах // Защита и карантин растений. 2002. - № 1. - С. 21 -22.

57. Назарова Л.Н., Наговицин В.А., Черемисина В.Г. Против комплекса болезней озимой ржи // Защита растений. 1995. - № 8. - С. 18-19.

58. Нетрусов А.И., Егорова М.А., Захарчук Л.М. и др. Практикум по микробиологии: Учеб. пособие для студ. высш. учеб. заведений. М.: Издательский центр «Академия». - 2005. - 608 с.

59. Олюнина Л.Н., Шабаев В.П. Продуцирование индолил-3-уксусной кислоты ризосферными бактериями рода Pseudomonas в процессе роста // Микробиология. 1996. -Т.6, №6,-С.813-817.

60. Патент РФ № 2260951, Б.И. № 27, 2005. Штамм бактерий Pseudomonas aureofaciens ИБ 6 продуцент цитокининов / Логинов О.Н., Мелентьев А.И., Свешникова Е.В., Кузьмина Л.Ю., Четвериков С.П., Васильева Н.С., Силищев H.H.

61. Перт С. Дж. Основы культивирования микроорганизмов и клеток. М.: Мир, 1978.-С. 331.

62. Петренко М.Б., Боровков A.B. Производные феназина из Pseudomonas sp. штамм 2/3 // Химия природ, соединений. 1970. - №6. - С. 779.

63. Поморцева Н.В. Образование пиоцианина на средах с углеводородами // Микробиология. 1965. - Т. 34, № 3. - С. 473-476.

64. Попова Ж.П., Эськин С.Б., Матисова А.Н. О составе антифунгина -сырца // Бюл. ВНИИ с.-х. микробиологии. 1971. - Т. 15. - № 1. - С. 7980.

65. Редди Т.К., Боровков A.B. Moho-, ди- и триацетилфлороглюцины из Pseudomonas ßuorescens И Химия природ, соединений. 1969. - № 2. - С. 133.

66. Рубан E.J1. Физиология и биохимия представителей рода Pseudomonas. М.: Наука, 1986. - 200 с. С. 864-877.

67. Сакодынский К.П., Бражников В.В., Волков С.А., Зельвенский В.Ю., Ганкина Э.С., Шатц В.Д. Аналитическая хроматография. М.: Химия, 1993. 464 с.

68. Свешникова Е.В. Новые бактерии рода Pseudomonas анатагонисты фитопатогенов и перспективы их использования в сельскохозяйственной практике: автореф. дисс. . канд. биол. наук. - Уфа, 2003. - 23 с.

69. Сидоренко О.Д., Стороженко В., Кухаренкова О. Применение бактериальных препаратов при выращивании картофеля // Междунар. с-х. ж, 1996.-№ 6.-С.36-38.

70. Силищев H.H., Коршунова Т.Ю., Логинов О.Н. Биопрепарат Елена для защиты тепличных овощей от грибных фитопатогенов и повышения урожайности // Картофель и овощи. 2008. - № 2. - С. 28-30.

71. Сиунова Т.В., Кочетков В.В., Валидов ELI.3. и др. Продукция фенозиновых антибиотиков у штамма Pseudomonas aureofaciens,содержащего плазмиду резистентности к кобальту и никелю // Микробиология.-2002.-Т. 71.-№6.-С. 778-785.

72. Смирнов В.В., Киприанова Е.А. Бактерии рода Pseudomonas. Киев: Наук, думка, 1990. - 264 с.

73. Смирнов В.В., Киприанова Е.А., Гарагуля А.Д., Додатко Т.А., Клюев H.A. Антибиотики ароматической природы из Pseudomonas cepacia II Микробиол. журн. 1991. - Т. 53, № 5. - С. 41-45.

74. Смирнов В.В., Киприанова Е.А., Гарагуля А.Д., Додатко Т.А., Пиляшенко И.И. Антибиотическая активность и сидерофоры Pseudomonas cepacia II Прикл. биохимия и микробиол. 1990. - Т. 26, № 1. - С. 75-80.

75. Сторожук С.В., Сидоров И.А., Соколов М.С. Высокое качество биопрепарата залог успеха // Защита растений. - 1995. - № 8. - С. 1 7.

76. Струнникова О. К., Шахназарова В., Ю., Вишневская Н., А., Чеботарь В., К., Тихонович И. А. Развитие и взаимоотношения Fusarium culmorum и Pseudomonas ßuorescens в почве // Микробиология. 2007.-№5.-С. 675-681.

77. Сгыскин Е.Л., Ициксон Л.Б., Брауде Е.В. Практическая высокоэффективная жидкостная хроматография. М.: Химия, 1986. - 288 с. Теппер Е.З., Шилыникова В.К., Переверзева Г.И. Практикум по микробиологии. - М.: Колос, 1972.-200 с.

78. Титаренко Л.Н., Вяткина Г.Г., Алещенко М.Н. Применение ризоплана на Северном Кавказе // Защита растений. 1995. - № 8. - С. 17. урожай и качество растений // Агрохимия. - 2008. - №4. - С. 35-42.

79. Хеншен А., Хупе К.-П., Лотшпайх Ф., Вельтер В. Высокоэффективная жидкостная хроматография в биохимии. М.: Мир, 1988. - 688 с.

80. Холмецкая М.О., Лобанок Е.В., Чернин Л.С. Синтез индолилуксусной кислоты некоторыми фитопатогенными инепатогенными бактериями // Докл. АН Беларуси. 1996. - Т.40, № 2. - С. 80-83.

81. Худяков Я.П., Шкляр М.С., Савадеров е.П. Антибиотик антифунгин, образуемый бактериями рода Pseudomonas // Прикл. биохимия и микробиология, 1965.-Т. 1,№2.-С. 186-190.

82. Цевкелова Е. А., Климова С. 10., Чердынцева Т. А., Нетрусов А. И. Микроорганизмы продуценты стимуляторов роста растений и их практическое применение (обзор) // Прикладная биохимия и микробиология. - 2006. - том 42, №2. - С. 133-143.

83. Цевкелова Е. А., Климова С. Ю., Чердынцева Т. А., Нетрусов А. И. Гормоны и гормоноподобные соединения мокроорганизмов (обзор) // Прикладная биохимия и микробиология. 2006. - том 42, №3. - С.261 -268.

84. Четвериков С.П., Логинов О.Н. Триглицеридпептиды псевдомонад -новые агенты биологического контроля фитопатогенных грибов // Прикладная биохимия и микробиология. 2005. - том 41, №1. - С.90-94.

85. Четвериков С.П., Логинов О.ЕЕ Е1овые метаболиты Azotobacter vinelandii, обладающие фунгицидной активностью // Микробиология. -2009. Т. 78, № 4. - С. 428-432.

86. Шабаев В. П. Влияние инокуляции сахарной свеклы ростстимулирующими ризосферными бактериями рода Pseudomonas на

87. Ia6aeB В.EL, Олюнина Л.EL, Смолин В.Ю. Функциональная активность корней кукурузы при инокуляции стимулирующими рост растений ризосферными бактериями рода Pseudomonas // Изв. РАН.Сер. биол. 1999. - № 1. - С.39-46.

88. Широков А.В., Логинов О.Н., Мелентьев А.И., Актуганов Г.Э. Белковые и пептидные факторы Bacillus sp. 739 ингибиторы роста фитопатогенных грибов // Прикладная биохимия и микробиология. - 2002. - Т. 38, № 2. - С. 161-165.

89. Ahmadzadeh М, Afsharmanesh Н., Javan-Nikkhah М., Sharifi-Tehrani А. Identification of some molecular traits in fluorescent pseudomonads with antifungal activity // Iranian Journal of Biotechnology. 2006. - V. 4. - P. 245253.

90. Ali Siddiqui I, S.Ehetshamul-Haque, S. Shahid Shaukat. Use of rhizobacteria in the control of root rot-root knot disease complex of mungbean // J.Phytopathol. 2001. - N 6. - P.337-346.

91. Anthony U., Christophersen C., Nielse P.H., Gram L., Petersen B.O. Pseudomonine, an isoxazolidone with siderophoric activity from Pseudomonas fluorescens AH2 isolated from lake Victoria Nile perch // J. Nat. Prod. 1995. -V. 58. - P . 1786-1789.

92. Arima K., Imanaka H., Konsara M. et al. Pyrrolnitrin, a new antibiotic substans, produced by Pseudomonas II Agr. and Biol. Chem. 1964. - V. 28, N 8. - P. 575-582.

93. Balta D.K., Arsu N. Host/guest complex of (3-cyclodextrin/5-thia pentacene-14-one for photoinitiated polymerization of acrylamide in water // Journal of Photochemistry and Photobiology A: Chemistry. 2008. - V. 200. -P. 377-380.

94. Batchelor E., Klinowski Ja., Jones W .Crystal engineering using co-crystallisation of phenazine with dicarboxylic acids // Journal of Materials Chemistry. 2004. - V. 10. - N 4. - P. 839-848.

95. Bawden K., Broadbent J., Ross W. Some simple anthelmintics // Brit. J. Pharmacol, and Chemother. 1965. - V. 24. - P. 714-724.

96. Baysse C., De Vos D., Naudet Y., Vandermonde A., Ochsner U., Meyer J.M. et al. Vanadium interferes with siderophore-mediated iron uptake in Pseudomonas aeruginosa II Microbiology. 2000. - V. 146. - P. 2425-2434.

97. Becker J.O., Cook R.J. Role of siderophores in suppression of Pythium species and production of increased growth response of wheat by fluorescent Pseudomonas 11 Phytopathology. 1988. - V. 78. - P. 778-782.

98. Becker J.O., Hepfer C.A., Yuen G.V. et al. Effect of rhizobacteria and metham-sodium on growth root microflora of celery cultivars // Phytopathology-1990. Vol. 80, N2.-P. 206-211.

99. Bisacchi G.S., Hockstein D.R., Koster W.H., Parker W., Rathnum M.L, Unger S.E. Xylocandin: a new complex of antifungal peptides. II. Structural studies and chemical modifications // J. Antibiot. 1987. - V. 40. - P. 1520— 1529.

100. Bloemberg G.V., Lugtenberg B.J. Molecular basis of plant growth promotion and biocontrol by rhizobacteria // Curr. Opin. Plant. Biol. 2001. -V. 4. - P. 343-350.

101. Bonsall R.F., Weller D.M., Thomashow L. S. Quantification of 2,4 diacetylphloroglucinol produced by fluorescent Pseudomonas spp. in vitro and in the rhizosphere of wheat // Appl. Environ. Microbiol. 1997. - V. 63. - P. 951-955.

102. Box G. E. P., Hunter J. S. Multifactor experimental designs for exploring response surfaces // Ann. Math. Stat., 28, 1957, N1, 195

103. Box G. E. P., Wilson K. B. On the experimental attainment of optimum conditions//J. Roy. Stat.Soc., ser.B. 13.1951, N1

104. Budzikiewicz H. Secondary metabolites from fluorescent pseudomonads // FEMS Microbiol. Rev. 1993. - V. 104. - P. 209-228.

105. Budzikiewicz H. Siderophores of fluorescent pseudomonads // Z. Naturforsch. 1997,- V. 52,- P. 713-720.

106. Burkhead K.D., Schisler D.A., Slininger P.J. Pyrrolnitrin production by biological control agent Pseudomonas cepacia B37w in culture and in colonized wounds of potatoes // Appl. Environ. Microbiol. 1994. - V. 60. - P. 2031-2039.

107. Buyer J., Wright J., Leong J. Structure of pseudobactin A 214, a siderophore from a bean-deleterious Pseudomonas II Biochemistry. 1986. - V. 25. - P. 5492-5499.

108. Canesan P., Gnanamanickam S.S. Biological control of Sclerotium rolfsii Sacc. in peanut by inoculation with Pseudomonas fluorescens II Soil Biol. Biochem. 1987. - Vol. 19, N 1. - P. 35-38.

109. Chin-A-Woeng T.F.C., Bloemberg G.V., Lugtenberg B.J.J. Phenazines and their role in biocontrol by Pseudomonas bacteria // New Phytologist. 2003. - V. 157.-P. 503-523.

110. Choudhury S.D., Basu S. Caging of phenazine by 4,4'-bis(dimethylamino)diphenylmethane: A comparative study with phenazine-N,N-dimethylaniline // Chemical Physics Letters. 2004. - V. 383. - P. 533-536.

111. Clarke P., Ornston N. Metabolic pathways and regulation. Pt 1. In: Genetics and biochemistry of Pseudomonas N. Y.;L., - 1975. - P.366.

112. Compant S., Duffy B., Nowak J., Clement C., Barkal E.A. Use of plant growth-promoting bacteria for biocontrol of plant diseases: principles, mechanisms of action, and future prospects // Appl Environ Microbiol. 2005. -V. 71.-P. 4951-4959.

113. Corbell N., Loper J. E. A global regulator of secondary metabolite production in Pseudomonas jhiorescens Pf-5 // J. Bacterid. 1995. - V. 177. - P. 6230-6236.

114. Cornelis P., Matthiis S. Diversity of siderophore-mediated iron uptake systems in fluorescent pseudomonads: not only pyoverdines // Environ. Microbiol. 2002. - V. 12. - P. 787-798.

115. Cox C.D., Rinehart K.L., Moore M.L., Cook J.C. Pyochelin: novel structure of an iron chelating growth promoter for Pseudomonas aeruginosa II Proc. Natl. Acad. Sci. 1981. - V. 78. - P. 4256-4260.

116. Dakora F.D. & Phillips D.A. Root exudates as mediators of mineral acquisition in low-nutrient environments // Plant and Soil. 2002. - V. 245. - P. 35-47.

117. Danhorn T., Fuqua C. Biofilm formation by plantassociated bacteria // Annu Rev. Microbiol. 2007. - V. 61. - P. 401-422.

118. Dao K.H.T., Hamer K.E., Clark C.L., Harshman L.G. Pyoverdine production by Pseudomonas aeruginosa exposed to metals or an oxidative stress // Ecol. Appl. 2001. - V. 9. - P. 441-448.

119. De Souza J. T., De Boer M., De Waard P., Van Beek T. A., Raaijmakers J. M. Biochemical, genetic, and zoosporicidal properties of cyclic lipopeptide surfactants produced by Pseudomonasßuorescens. II Appl. Environ. Microbiol. -2003.-V. 69.-P. 7161-7172.

120. Dharumaduari D., Thajuddin N., Panneerselvam A. An antifungal compound: 4'phenyl-1-napthyl-phenyl acetamide from Streptomyces sp. DPTB16 // Medicine and Biology. 2008. - Vol. 15, N 1. - P. 7-12.

121. Dowling D.N., O'Gara F. Metabolites of Pseudomonas involved in the biocontrol of plant disease // Trends Biotechnol. 1994. - V. 12. - P. 133-141.

122. Dreja M., Kim In.T., Yin Ya., Xia Y. Multilayered supermolecular structures self-assembled from polyelectrolytes and cyclodextrin host-guest complexes // Journal of Materials Chemistry. 2000. - V. 10, N 3. - P. 603605.

123. Duffy B.K., Defago G. Environmental factors modulating antibiotic and siderophore biosynthesis by Pseudomonas ßuorescens biocontrol strains // Applied and Environmental Microbiology. 1999. - V. 65. - P. 2429-2438.

124. Dybas M.J., Tatara G.M., Criddle C.S. Localization and characterization of the carbon tetrachloride transformation activity of Pseudomonas sp. strain KC //Appl. Environ. Microbiol. 1995. -V. 61. - P. 758-762.

125. Elsherif M., Grossmann F. Versuche zur biologischen Bekämpfung einiger phytopathogener Pilze durch fluoreszierende Pseudomonaden unter

126. Anwendung verschiedener Applikationsverfahren HZ. Pflanzenkrankh. und Pflanzenschutz.-! 991.- Bd. 98, N 3. S. 236-249.

127. Fakhouri W., Walker F., Vogler B., Armbruster W., Buchenauer H. Isolation and identification of N-mercapto-4-formylcarbostyril, an antibiotic produced by Pseudomonas fluorescens II Phytochemistry. 2001. V. 58. - P. 1297-1303.

128. Fermeglia M., Ferrone M., Lodi A., Priel S. Host-guest inclusion complexes between anticancer drugs and ß-cyclodextrin: Computational studies // Carbohydrate Polymers. 2003. - V. 53, N 1. - P. 15-44.

129. Flavia P. D., Franga F.P., Lopes M. A.Optimization of culture conditions for exopolysacharides production in Rhizobium sp. using the response surface method // Electronic Journal of biotechnology. 2006. - Vol. 9, N4, July 15. -P. 391-399.

130. Gamard P., Belrhlid R., Labbe C., Belanger R., Paulitz T. Production of multiple antifungal compounds by PGPR strains of Pseudomonas fluorescens and Serratia plymuthica II Can. J. Plant Pathol. 1996. V. 18. - P. 89.

131. Gamard P., Sauriol F., Benhamou N., Belanger R.R., Paulitz T.C. Novel butyrolactones with antifungal activity produced by Pseudomonas aureofaciens strain 63-28 // J. Antibiot. 1997. V. 50. - P. 742-749.

132. Gao El., Wang Y.N., Fan Y.G., Ma J.B. Interactions of some modified mono- and bis-ß-cyclodextrins with bovine serum albumin // Bioorganic & Medicinal Chemistry. 2006. - V. 14, N. 1. - P. 131-137.

133. Garg S. K., Kumar Y.N., Kumar J. Gold-tolerant fluorescent Pseudomonas isolates from Garhwal Elimalayas as potential plant growthpromoting and boicontrol agents in pea // Current science. 2005. - Vol. 89, N12, 25, December. - P. 2151 -2156.

134. Gaur R., Shani N., Kawaljeet Johri B.N., Rossi P., Aragno, M. Diacetyl phloroglucinol-producing Pseudomonas do not influence AM fungi in wheat rhizosphere // Curr. Sei. 2004. - V. 86. - P. 453-457.

135. Ghysels B., Dieu B. T., Beatson S. A., Pirnay J. P., Ochsner U. A., Vasil M. L., Cornelis P. FpvB, an alternative type I ferripyoverdine receptor of Pseudomonas aeruginosa // Microbiology. 2004. - V. 150. - P. 1671-1680.

136. Gordon-Lennox G., Walther D., Gindral D. Utilisation d'antagonistes pour l'enrobage des semences: efficacité et mode d'action contre les agents de la fonte des semis//Bull. OEPP. Oxford etc. 1987. - Vol.l 7, N 4. - P. 631-637.

137. Gould W.D., Hagedorn C., Bardinelli T.R., Zablotowicz R.M. New selective media for enumeration and recovery of fluorescent pseudomonads from various habitats // Appl. Environ. Microbiol. 1985. - V. 49. - P. 28-32.

138. Grgurina I., Mariotti P., Fogliano V., Gallo M., Scaloni A., Iacobellis N.S., Cantore P.L. et al. A new syringopeptin produced by bean strains of Pseudomonas syringae pv. Syringae // Biochim. Biophys. Acta. — 2002. V. 1597.-P. 81-89.

139. Guo Ying, Pu Wang et al. Medium optimization for enzymatic production of 1-Cysteine by Pseudomonas sp.Zjwp-M using response surface methodology // Food Technology Biotechnology. 2008,- 46(4). -P. 395-401.

140. Haas D., De'fago G. Biological control of soilbome pathogens by fluorescent Pseudomonads 11 Nat. Rev. Microbiol. 2005. - V. 4. - P. 307-319.

141. Haas D., Keel C. Regulation of antibiotic production in root-colonizing Pseudomonas spp. and relevance for biological control of plant disease. // Annu Rev Phytopathol. 2003. - V. 41. - P. 117-153.

142. Hader R. J., Harward H. E., Mason D. D., Moore D. P. An investigation of some of relationships between copper, iron and molybdenum in the growth and nutrition of lettuce // Proceeding of Am. Soil Sei. Soc.21. 1957,- N 1,59.

143. Hasegawa S., Kodama F., Kaneshima Ii. et al. Biological control of Fusarium diseases, isolation of antagonistic microorganisms and seed bacterization on the control for Fusarium wilt of adzuki-bean // J. Pharmacobic-Dyn. 1987. -Vol. 10, N 3. - P. 57.

144. He Li, Xu Y., Zhang X.H. Medium factor optimization and fermentation kinetics for phenazine-1-carboxylic acid production by Pseudomonas sp. M-/8G // Biotechnol. Bioeng. 2008. - 100. - P.250-259.

145. Henriksen A., Anthoni (J., Nielsen T. H., Sorensen J., Christophersen C., Gajhede M. Cyclic lipoundecapeptide tensin from Pseudomonas fluorescens strain 96.578. // Acta Crystal. 2000. - V. 56. - P. 113-115.

146. Höfte M., Buysens S., Koedam N., Cornelis P. Zinc affects siderophore-mediated high affinity iron uptake systems in the rhizosphere Pseudomonas aeruginosa 7NSK2 // Bio/Metals. 1993. - V. 6. - P. 85-91.

147. Homma Y., Sato Z., Hirayama F., Konno K., Shirahama H., Suzui T. Production of antibiotics by Pseudomonas cepacia as an agent for biological control of soilborne plant pathogens // Soil Biot. and Biochem. 1989. - V. 21, N 5. - P. 723- 728.

148. Plosseiny Davarani S.S., Fakhari A.R., Shaabani A., Ahmar H., Maleki A., Sheijooni Fumani N. A facile electrochemical method for the synthesis of phenazine derivatives via an ECECC pathway // Tetrahedron Letters. 2008. -V. 49, N 39. - P. 5622-5624

149. Housley L., Anderson T., Sontag N., Song-Hee Han, David W. Britt, Anderson A.J. Pluronics' influence on pseudomonad biofilm and phenazine production // Federation of European Microbiological Societies. 2009. - V. 293. -P. 148-153.

150. James D.W., Gutterson N. 1. Multiple antibiotics produced by Pseudomonas fluorescens HV37a and their differential regulation by glucose // Appl. Environ. Microbiol. 1986,- V. 52. - P. 1 183-1 189.

151. Janisiewicz W.J., Roitman J. Biological control of blue mold and gray mold on apple and pear with Pseudomonas cepacia II Phytopathology. 1988. -V. 78. P. 1697-1700.

152. Janisiewicz W.J., Yourman L., Redman J., Mahone L. Postharvest control of blue mold and gray mold of apples and pears by dip treatment with pyrrolnitrin, a metabolite of Pseudomonas cepacia II Plant Dis. 1991. V. 75. -p. 490-494.

153. Jeschke P., Harder A., Etzel W., Schindler M., Thielking G. Synthesis and anthelmintic activity of cyclohexadepsipeptides with cyclohexylmethyl side chains // Bioorganic & Medicinal Chemistry Letters. 2007. - V. 1 7, N 13. - P. 3690-3695.

154. Jiao Y., Yoshihara T., Ishikuri S., Uchino H., Ichihara A. Structural identification of cepaciamide A, a novel fungitoxic compound from Pseudomonas cepacia D-202 // Tetrahedron Lett. 1996. V. 37. - P. 1039-1042.

155. Jones G., Zhou X., Lu L.N. Inclusion by ß-cyclodextrin of a pyrene-labeled dipeptide photoprobe // Tetrahedron Letters. 2002. - V. 43, N 34. - P. 6079-6082.

156. Joseph B., Patra R.R., Lawrence R. Characterization of plant growth promoting rhozobacteria associated with chickpea (Cicer arietinum L.) // International Journal of Plant Production. 2007. - 1(2), September. - P. 141152.

157. Kanner D., Gerber N., Bartha R. Pattern of phenazine pigment production by strain of Pseudomonas aeruginosa II J. Bacterid. 1978. - V. 134, N2. - P. 690.

158. Karakos S., Aksoz N. Some optimal cultural parameters for gibberilic acid biosyntesis by Pseudomonas sp. II Turkey Journal Biology. 2006. - 30. -P. 81-85.

159. Katoh K., Itoh K. New selective media for Pseudomonas strains producing fluorescent pigment // Soil Science and Plant Nutrition. 1983. - V. 29.-P. 525-532.

160. Kim K.K., Kang J.G., Moon S.S., Kang K.Y. Isolation and identification of antifungal N -butylbenzenesulphonamide produced by Pseudomonas sp AB2 //J. Antibiotics.-2000.-V. 53.-P. 131-136.

161. King E.O., Ward M.K., Raney D.E. Two simple media for the demonstration of pyocyanin and fluorescin // J. Lab. Clin. Med. 1954. - V. 44. -P. 301-307.

162. Kintaka K., Kitano K., Nosari Y. et al. Sulfazecin, a novel ß- lactam antibiotic of bacterial origin. Discovery, fermentation and biological characterization // J. Fernent. Technol. 1981. - V. 59, N 4. - P. 263-268.

163. Knight M., Elartman Ph., Hartman Z., Young V. A new method of preparation of piocyanin and demonstration of an unusual bacterial sensivity // An. Biochem. 1979.-V. 95, N 1. - P. 19-23.

164. Kuiper I., Lagendijk E.L., Pickford R. et al. Characterization of two Pseudomonas putida lipopeptide biosurfactants, putisolvin I and II, which inhibit biofilm formation and break down existing biofilms. // Mol. Microbiol.2004. V. 51.-P. 97-1 13.

165. MacDonald E.M.S., Powell G.K., Regier D.A., Glass N.L., Roberto F., Kosuge T., Morris R.O. Secretion of zeatin, ribosylzeatin, and ribosyl-1-methylzeatin by Pseudomonas savastanoi II Plant Physiology. 1986. - V 82. P. 742-747.

166. MacDonald J.C. Pyocyanine. Antibiotics. V. 2. Biosynthesis. London; New York: Springer Verl., 1967. - P. 52-65.

167. Manzini B., Flodge P. Polymer-supported syntheses of oxo-crown ethers and derivatives containing a-amino-acid residues // Reactive and Functional Polymers. 2008. - V. 68, N 9. - P. 1297-1306.

168. Mao G.H., Cappellini R.A. Postharvest biocontrol of gray mold of pear by Pseudomonas gladioli: Abstv. Present. 1989 Annu. Meet. Amer. Phytopathol. Soc., Richmond, Va, Aug. 20-24, 1989 //Phytopathology.-1989.-Vol. 79, N 10.-P. 1 153.

169. Martin J. Control of antibiotic synthesis by phosphate // Adv. Biochem. Eng. 1977,-V. 6, N 1. - P. 105-127.

170. Masuoka Y., Nagai A., Shin-ya K., Furihata K., Nagai K., Suzuki K.I., Hayakawa Y., Seto H. Spiruchostatins A and B, novel gene expression-enhancing substances produced by Pseudomonas sp. // Tetrahedron Letters. -2001,-V. 42.-N 1. P. 41-44.

171. Matthijs S., Tehrani K.A., Laus G., Jackson R.W., Cooper R.M., Cornelis P. Thioquinolobactin, a Pseudomonas siderophore with antifungal and anti-Pythium activity // Environmental Microbiology. 2007. - V. 9, N 2. - P. 425434.

172. Mc Laughlin R.J., Sequeira L. Evaluation of an avirulent strain of Pseudomonas solanacearum for biological control of bacterial wilt of potato // Am. Potato J. 1988. - Vol. 65, N 5. - P. 255-268.

173. Mc Laughlin R.J., Sequeira L., Weingartner D.P. Biocontrol of bacterial wilt of potato with an avirulent strain of Pseudomonas solanacearum: Interactions with root-knot nematodes // Am. Potato J. 1989. - Vol. 67, N 2. -P. 93-107.

174. Mew T.W. Bacterization of rice plants for control of sheath blight caused by Rhizoctonia solani / T.W Mew., A.M.Rosales //Phytopathology. 1986. -Vol. 76, N 1 1. - P. 1260-1264.

175. Meyer J.M. Pyoverdines: pigments, siderophores and potential taxonomic markers of fluorescent Pseudomonas species II Arch. Microbiol. 2000. - V. 174. - P. 135-142.

176. Meyer J.M., Abdallah M.A. The siderochromes of non-fluorescent pseudomonads: production of nocardamine by Pseudomonas stutzeri // J. Gen. Microbiol. 1980.-V. 1 18.-P. 125-129.

177. Meyer J.-M., Hohnadel D., Halle F. Cepabactin from Pseudomonas cepacia, a new type of siderophore // J. Gen. Microbiol. 1989. - V. 135, N 6. -p. 1479-1487.

178. Mislin G.L.A., Hoegy F., Cobessi D., Poole K., Rognan D., Schalk I.J. Binding properties of pyochelin and structurally related molecules to FptA of Pseudomonas aeruginosa // Journal of Molecular Biology. 2006. - V. 357, N 5. -P. 1437-1448.

179. Moon S.-S., Kang P.M., Park K.S., Kim C.H. Plant growt promoting and fungicidal 4-quinolines from Pseudomonas cepacia H Phytochemistry. 1996.-V. 42. - P. 365-368.

180. Mossialos D., Meyer J.M., Budzikiewicz H. et al. Quinolobactin, a new siderophore of Pseudomonas fluorescens ATCC 17400 whose production is repressed by the cognate pyoverdine // Appl. Environ. Microbiol. 2000. - V. 66.-P. 487-492.

181. Narajana K. J., Vijayalakshmi M. Optimization of antimicrobial metabolites production by Streptomyces albidoflavus II Research Journal of Pharmacology.-2008. 2( 1 ). - P.4-7.

182. Nazarov V.B., Avakyan V.G., Vershinnikova T.G., Alfimov M.V. Excimer fluorescence and structures of the inclusion complexes of (3-cyclodextrin with naphthalene and its derivatives // Russian Chemical Bulletin. 2008. - V. 49, N 10. - P. 1699-1706.

183. Neilands J.B. Siderophores: structure and function of microbial iron transport compounds // J. Biol. Chem. 1995. - V. 270. - P. 26723-26726.

184. Neilands J.B., Leong S.A. Siderophores in relation to plant growth and disease // Ann. Rev. Plant Physiol. 1986. - V 37. - P. 1 87-208.

185. Neu T.R., Hartner T., Poralla K. Surface active properties of viscosin: a peptidolipid antibiotic // Appl. Microbiol. Biotechnol. 1990. - V. 32. - P. 518520.

186. Neuenhaus W., Budzikiewicz H., Korth H., Pulverer G. 8-hydroxy-4-methoxy-monothiochinaldinsàure -eine weitere Thiosaure aus Pseudomonas II Z. Naturforsch. 1980.-V. 35.-P. 1569-1571.

187. Neupert-Laves K., Dobler M. Helv. Chim. Acta. 1975. - V. 58. - P. 432-437.

188. Nielsen Т.Н., Christophersen С., Anthoni U., Sorensen J. Viscosinamide, a new cyclic depsipeptide with surfactant and antifungal properties produced by Pseudomonas fluorescens DR54 // J. Appl. Microbiol. 1999. - V. 87. - P. 8090.

189. Novotnâ J. Antagonisticky vliv baktéric Pseudomonas fluorescens na nêkteré patogenni i saprofytické druhy hub fepky a Inu // Ochr. rostl. 1990. -Vol.26,N2.-P. 113-122.

190. Nowak-Thompson В., Gould S.J., Kraus J., Loper J.E. Production of 2,4-diacetylphloroglucinol by the biocontrol agent Pseudomonas fluorescens Pf-5 // Can. J. Microbiol. 1994. - V. 40. - P. 1064-1066.

191. Nybroe O., Sorensen J. Production of cyclic lipopeptides by fluorescent pseudomonads // Biosynthesis of Macromolecules and Molecular Metabolism. J.-L. Ramos, ed., Kluwer Academic / Plenum Publishers, New York, U.S.A. -2004.-P. 147-172.

192. Ogata K., Minami K., Tani Y. Образование 1-феназинкарбоновой кислоты и оксихлорорафина из углеводородов под влиянием микроорганизмов // J. Ferment. Technol. 1971. - V. 49. -P. 925-934.

193. Ohmori T., Hagiwara S., Ueda A. et al. Production of pyoluteorin and its derivatives from n- paraffin by Pseudomonas aeruginosa S 10B2 // Agr. and Biol. Chem. 1978. - V. 42. - P. 767-771.

194. Osburn R.M., Schroth M.N., Hancook J.G. et al. Dynamics of sugar beet colonization by Pythium ultimum and Pseudomonas species: effects on seed rot and damping-off// Phytopathology. 1989.-Vol. 79, N6.-P. 709-716.

195. Parker W.L., Rathnum M.L., Seiner V. et al. Cepacin A and cepacin B, two new antibiotics produced by Pseudomonas cepacia // J Antibiot. 1984. -V. 37. - P. 431-440.

196. Parker W.L., Rathnum M.L., Seiner V., Trejo W.H., Principe P.A., Sykes R.B. Cepacin A and cepacin B, two new antibiotics produced by Pseudomonas cepacia II J Antibiot. 1984. - V. 37. - P. 431-440.

197. Paulitz T., Nowak-Thompson B., Garnard P., Tsang E., Loper J. A novel antifungal furanone from Pseudomonas aureofaciens, a biocontrol agent of fungal plant patogens // J. Chem. Ecol. 2000. - V. 26. - P. 1515-1524.

198. Paulsen I. T., Press C. M., Ravel J., Kobayashi D. Y., Myers G. S. A. et al. Corrigendum: Biocontrol genome deciphered. // Nat. Bioltechnol. 2006. -Published online.

199. Paulsen I.T., Press C.M., Ravel J., Kobayashi D.Y., Myers G.S.A. et al. Complete genome sequence of the plant commensal Pseudomonas fluorescens Pf-5. // Nat. Biotechnol. 2005. - V. 23. - P. 873-878.

200. Pfeifer P. Organische Molekularferbindungen. Stutgart: Ferdinand Huge, 1927.- 288 p.

201. Philson S.B., Llinas M. Siderochromes from Pseudomonas fluoresceins. II. Structural homology as revealed by NMR spectroscopy // J. Biol. Chem. 1982.- V. 257. P. 8086-8090.

202. Pierson III L.S.P., Pierson E.A. Phenazine antibiotic production in Pseudomonas aureojaciens: role in rhizosphere ecology and pathogen suppression// FEMS Microbiology Letters. 1996.-V. 136.-P. 101-108.

203. Pietr S.J., Kempa R.Cucumber rhizosphere pseudomonads as antagonists of Fusarium // Interrelationships Between Microorganisms and Plants Soil: Proc. Int. Symp., June 22-27, 1987. -Praha, 1989. P. 411-417.

204. Pinkerton M., Steinrauf L.K., Dawkins P. // Biochem. Biophys. Res. Commun. 1969. -V.- 35.-512 p.

205. Quail J.W., Ismail N., Pedras M.S.C., Boyetchko S.M. Pseudophomins A and B, a class of cyclic lipodepsipeptides isolated from a Pseudomonas species II Acta Crystallographica. Section C: Crystal Structure Communications. 2002.- V. 58. P. 268-271.

206. Raaijmakers J. M., Vlami M., de Souza J. T. Antibiotic production by bacterial biocontrol agents. // Antonie Leeuwenhoek Int. J. Gen. Mol. Microbiol. -2002,-V. 81.-P. 537-547.

207. Raaijmakers J.M., Weller D. M., Thomashow L. S. Frequency of antibiotic-producing Pseudomonas spp. in natural environments // Appl. Environ. Microbiol. 1997. -V. 63. - P. 881-887.

208. Renato de Freitas J., Germida J.J. Pseudomonas cepacia and Pseudomonas putida as winter wheat inoculants for biocontrol of Rhizoctonia solcini II Can. J. Microbiol. 1991. -Vol. 37, N 10.-P. 780-784.

209. Rhodes D.J., Logan C. Effects of fluorescent pseudomonads on the potato blacked syndrome // Ann. Appl. Biol. 1986. - Vol. 108, N 3. - P. 511-518.

210. Sambrook J., Fritsch E.F., Maniatis T. Molecular cloning. New York: Cold Spring Flarbor Press; 1989. p. A1-A2.

211. Risse D., Beiderbeck H., Taraz K., Budzikiewicz H., Gustine D. Corrugatin, a lipopeptide siderophore from Pseudomonas corrugate II Z. Naturforsch. 1998. - V. 53. - P. 295-304.

212. Roitman J.N., Mahoney N.E., Janisiewicz W.J., Benson M. A new chlorinated phenylpyrrole antibiotic produced by the antifungal bacterium Pseudomonas cepacia // J. Agr. Food Chem. 1990. - V. 38, N 2. - P. 538-541.

213. Rosales A.M., Thomashow L., Cook R.J., Mew T.W. Isolation and identification of antifungal metabolites produced by riceassociated antagonistic Pseudomonas spp. II Phytopathology. 1995. - V. 85. - P 1028-1032.

214. Rossbach S., Wilson T.L., Kukuk M.L., Carty H.A. Elevated zinc induces siderophore biosynthesis genes and a zntA-like gene in Pseudomonas fluorescens II FEMS Microbiol. Lett. 2000. - V. 191. - P. 61-70.

215. Rudrappa T., Biedrzycki M.L., Bais FI.P. Causes and consequences of plant-associated biofilms // FEMS Microbiol. Ecol. 2008. - V. 64. - P. 153166.

216. Sakai T, Asai N, Okuda A, Kawamura N, Mizui, Y. Pladienolides, new substances from culture of Streptomyces platensis Mer- 11107.11. Physico-chemical properties and structure elucidation // J. Antibiot. 2004. - V. 57, N 3. -P. 180-187.

217. Savithiry S., Gnanamanickam S.S. Bacterization of peanut with Pseudomonas fluorescent for biological control of Rhizoctonia solani and for enhanced yield//Plant and Soil. 1987.-Vol. 102, N 1,-P. 11-15.

218. Sbrana C., Bagnoli G., Bedini S., Filippi C., Giovannetti M., Nuti M. P. Adhesion to hyphal matrix and antifungal activity of Pseudomonas strains isolated from Tuber borchii ascocarps // Can. J. Microbiol. 2000. - V. 46, N 3. -P. 259-268.

219. Schellenberg B., Bigler L., Dudler R. Identification of genes involved in the biosynthesis of the cytotoxic compound glidobactin from a soil bacterium // Environ. Microbiol. 2007. - V. 9. - P. 1640-1650.

220. Semenova I., Burakov A., Berardone N., Zaliapin I., Slepchenko B., Svitkina T., Kashina A., Rodionov V. Actin Dynamics Is Essential for Myosin-Based Transport of Membrane Organelles // Current Biology. 2008. - V. 18, N 20.-P. 1581-1586.

221. Serino L., Reimmann C., Visca P., Beyeler M., Chiesa V.D., Haas D. Biosynthesis of pyochelin and dihydroaeruginoic acid requires the iron-regulated pchDCBA operon in Pseudomonas aeruginosa II J. Bacteriol. 1997. - V. 179. - P. 248-257.

222. Sharma A., Bardham D., Patel R. Optimization of physical parameters for lipase production from Arthrobacter sp. BGCC# 490 // Indian Journal of Biochemistry and Biophysics.-2009. -Vol. 46, April.-P. 1 78-183.

223. Shoji J., Hinoo H, Terui Y., Kikuchi J., Flattori T., Ishii K., Matsumoto K., Yoshida T. Isolation of azomycin from Pseudomonas fluorescens II J. Antibiot. 1989. - V. 42. - P. 1513-1514.

224. Siunova T.V., Kochetkov V.V., Validov Sh.Z., Suzina N.E., Boronin A.M. The production of phenazine antibiotics by the Pseudomonas aureofaciensstrain with plasmid-controlled resistance to cobalt and nickel 11 Microbiology. -2002,- V. 71, N6.-P. 670-676.

225. Slininger P., Shea-Wilbur M.A. Liquid-culture pH, temperature, and carbon (not nitrogen) source regulate phenazine productivity of the take-all biocontrol agent Pseudomoncis fluoresceins 2-79 // Appl. Microbiol. Biotechnol.- 1995,-V. 43.-P. 794-800.

226. Slininger P.J., Jackson M.A. Nutritional factors regulating growth and accumulation of phenazine 1-carboxylic acid by Pseudomonas fluoresceins 2-79 // Appl. Microbiol. Biotechnol. 1992. - V. 37. - P. 388-392.

227. Smith G.D., Duax W.L. Crystallographic studies of valinomycin and A23187. In: Metal-ligand // Interactions in Organic Chemistry and Biochemistry. 1977. - Part 1. - P.291-3 15.

228. Sobiczewski Piotr., Bryk Llanna Mozliwosci i ograniczenia biologicznej ochronny jablek bakteriami Pantoea agglomerans i Pseudomonas sp. przed szara plesnia i mokra zgnilizna // Post. ochr. rosl. 1999. -Nl. - P. 139-147.

229. Sokol P.A., Lewis C.J., Dennis J.J. Isolation of a novel siderophore from Pseudomonas cepacia II J. Med. Microbiol. 1992. - V. 36. - P. 184-189.

230. Sorensen D., Nielsen T.H., Christophersen C., Sorensen J., Gajhede M. Cyclic lipoundecapeptide amphisin from Pseudomonas sp. strain DSS73 // Acta Crystallographica. 2001. - Section C: Crystal Structure Communications C 57.- P. 1 123-1 124.

231. Srivastava R., Srivastava S., Bridge V. Antifungal activity of Pseudomonas fluorescens against different plant pathogenic fungi // Electronic

232. Journal of Environmental, Agricultural and Food Chemistry. 2008. - V. 7, N 4. - P. 2789-2796.

233. Stolworthy J.C., Paszczynsk A., Korus R., Crawford R.L. Metal binding by pyridine-2,6-bis (monothiocarboxylicacid), a biochelator produced by Pseudomonas stutzeri and Pseudomonas putida // Biodegradation. 2001. - V. 12.-P. 41 1-418.

234. Sugimoto E.E., Hoitink H.A.J., Tuovinen O.H. Oligotro phic pseudomonads in the rhizosphere: Suppressiveness to Pythium damping-off of cucumber seedlings (Cucumis sativus L.) // Biol, and Fert. Soils -1990. Vol. 9, N 3.-P. 231-234.

235. Suzumura K., Takahashi I. et al. Structural elucidation of YM-75518, a novel antifungal antibiotic isolated from Pseudomonas sp. Q38009 // Tetragedron Lett. 1997. - V. 38, N 43. - P. 7573-7576.

236. Szejtli J. Past, present, and future of cyclodextrin research // Pure Appl. Chem. 2004. - V. 76, N 10. - P. 1 825-1 845.

237. Takeda R. Pseudomonads pigments (II). Two pigments, phenazine-carboxylic acid and oxy chlororaphine, produced by P. aeruginosa T 359 // J. Ferment. Technol. 1958,-V. 36, N2. - P. 286-290.

238. Takeda R. Pseudomonads pigments. IV. The structure of pyoluteorin //Bull. Agr. and Chem. Soc. Jap. 1959. - V. 23, N 3. - P. 165-171.

239. Takemoto J. Y., Brand J. G., Kaulin Y. A., Malev V. V., Schagina L. V., Blasko K. The syringomycins: lipodepsipeptide pore formers from plant bacterium, Pseudomonas syringae II Taylor and Francis. London. England. -2003. P. 260-271.

240. Tambong Ja.T., Flofte M. Phenazines are Involved in Biocontrol of Pythium myriotylum on Cocoyam by Pseudomonas aeruginosa PNA1 // European Journal of Plant Pathology. 2001. - V. 1 07, N 5. - P. 51 1 -521.

241. Taraz K., Seinsche D., Budzikiewicz H. Pseudobactin und Pseudobactin A - Varianten: Neue Peptidsiderophore vom Pyoverdin - Typ aus Pseudomonas fluorescens E2 // Z. Naturforsch. - 1991. - V. 46, N 7-8. - P. 522-526.

242. Teintze M., Leong J. Structure of pseudobactin A, a second siderophore from plant growth promoting Pseudomonas BIO // Biochemistry. 1981. - V. 20. - P. 6457-6462.

243. Thomashow L.S., Weller D.M. Role of a phenazine antibiotic from Pseudomonas fluorescens in biological control of Gaeumannomyces graminis var. tritici II J. Bacteriol. 1988. -V. 170.-P. 3499-3508.

244. Thomashow L.S., Weller D.M., Bonsall R.F., Pierson L.S. Production of the antibiotic phenazine-1-carboxylic acid by fluorescent Pseudomonas species in the rhizosphere of wheat // Appl. and Environ. Microbiol. 1990. - V. 56, N 4. - P. 908-912.

245. Thrane C, Nielsen T.H., Nielsen M.N., Sorensen J. Viscosinamide-producing Pseudomonas fluorescens DR54 exerts a biocontrol effect on Pythium ultimum in sugar beet rhizosphere // FEMS Microbiol Ecol. 1999. - V. 33. - P. 139-146.

246. Tjeerd van Rij E., Genevie' ve Girard, Lugtenberg B. J.J., Bloemberg G.V. Influence of fusaric acid on phenazine-1-carboxamide synthesis and gene expression of Pseudomonas chlororaphis strain PCL 1391 // Microbiology. -2005,-V. 151.-P. 2805-2814.

247. Tooney J.I., Nelson C.D., Krotrov G. Isolation and identification of two phenazines from a strain of Pseudomonas aureofasiens II Can. J. Bot. 1965. -V. 43, N 9. - P. 1055-1062.

248. Tosi L., Zazzerini A. Evaluation of some and bacteria for potential control of safflower rust // .1. Phytopathol. 1994. - N 2. - P. 131 -140.

249. Tsuyumu S., Tsuchida S., Nalcano T. et al. Antifungal activiti in cell-free culture fluid o{Pseudomonas solanacearum II Ann. Phytopathol. Soc. Japan.1989,-Vol. 55, N 1. P. 9-15.

250. Uhlig S., Ivanova L. Determination of beauvericin and four other enniatins in grain by liquid chromatography-mass spectrometry // Journal of Chromatography A. 2004. - V. 1050, N 2. - P. 173-178.

251. Upadhyay A., Srivastava S. Characterization of a new isolate of Pseudomonas fluorescens strain Psd as a potential biocontrol agent // The Society for Applied Microbiology, Letters in Applied Microbiology. 2008. -V. 47.-P. 98-105.

252. Wang J.H., Cai Z. Investigation of inclusion complex of miconazole nitrate with ß-cyclodextrin // Carbohydrate Polymers. 2008. - V. 72, N 2. - P. 255-260.

253. Weller D.M. Biological control of soil-borne plant pathogens in the rhizosphere with bacteria // Annu. Rev. Phytopathol. 1988. - V. 26. - P. 379407.

254. Weller D.M., Thomashow L.S. Antibiotics: Evidence for their operation and sites where they might by produced // J. Cell. Biochem. 1989. - Suppl. 13A.-P. 154.

255. Whipps J.M. Microbial interactions and biocontrol in the rhizosphere // J. Exp. Bot. 2001. - V. 52. - P. 487-511.

256. Willis D. K., Kinscherf T. G. Global regulation in Pseudomonas syringae. II Virulence and Gene Regulation. J.-L. Ramos, ed. Kluwer Academic/Plenum Publishers, New York, U.S.A. 2004. - V. 2. - P. 223-238.

257. Wilson C.L., Chalutz E. Postharvest biological control of Penicillium rots of citrus with antagonistic yeasts and bacteria // Sc. hortic. 1989. - Vol. 40, N 2.-P. 105-1 12.

258. Wright J. Viscosin, a potent peptidolipid biosurfactant and phytopathogenic mediator produced by a pectolytic strain of Pseudomonas fluoresce™ 11 J. Agric. Food Chem. 1991. - V. 39. - P. 483-489.

259. Yan A., Huang X., Liu H., Dong D., Zhang D., Zhang X., Xu Y. An rhl-like quorum-sensing system negatively regulates pyoluteorin production in Pseudomonas sp. M 1 8 // Microbiology. 2007. - V. 1 53. - P. 16-28.

260. Yan Wang DAG, Peigen Zhou PhD, Jianxing Yu MS, Xiaorong Pan MS, et al. Antimicrobial effect of chitooligosaccharides produced by chitosanase from Pseudomonas CUY // Asia Pac J Clin Nutr -2007.-16 (Suppl 1). C. 174177.

261. Yokokawa F., Inaizumi A., Shioiri T. Synthetic studies of the cyclic depsipeptides bearing the 3-amino-6-hydroxy-2-piperidone (Ahp) unit. Total synthesis of the proposed structure of micropeptin T-20 // Tetrahedron. 2005. - V. 61, N 6.-P. 1459-1480.

262. Yuan LL, Li YQ, Wang Y., Zhang XH, Xu YQ. Optimization of critical medium components using response surface methodology for phenazine-1-carboxylic acid production by Pseudomonas sp. M-I8Q II Journal Biosci. Bioeng. 2008. - March. 105(3). - P. 232-237.

263. Zaspel J. Isolierung und Selektion fluoreszierender Pseudomonas-Arten als Antagonisten gegen Gaeumannomyces graminis (Sacc.) Arx et Olivier II Arch. Phytopathol. Pflzschutz. 1989.-Bd. 25, H. 2. - S. 123-130.

264. Zehnder G., J.F. Murphy, E.J. Sikora and Kloepper. Application of rhizobacteria for induced resistance // European Journal of Plant Pathology. -2001. -V. 107. -P. 39-50.

265. Zheng Y., Yanful E., Bassi A. Investigation of effects of culture medium components on polyurethane (Impranil DLM) biodégradation by Pseudomonas chlororaphis II GPEC. 2004. - Paper Abstract #3 1.