Механизм повышения резистентности организма животных под действием растительных полисахаридов в норме и при патологии тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.00.13, доктор биологических наук Сычев, Игорь Анатольевич

• Сычев, Игорь Анатольевич
• доктор биологических наук
• 2008

Оглавление диссертации доктор биологических наук Сычев, Игорь Анатольевич

ВВЕДЕНИЕ.

Глава 1. ОПЫТ ИСПОЛЬЗОВАНИЯ ПОЛИСАХАРИДОВ РАСТИТЕЛЬНОГО И ЖИВОТНОГО ПРОИСХОЖДЕНИЯ ДЛЯ ПОВЫШЕНИЯ

РЕЗИСТЕНТНОСТИ ОРГАНИЗМА.

1.1. ПОЛИСАХАРИДЫ, ИХ РАЗНОВИДНОСТЬ И ФУНКЦИИ.

1.2. БИОЛОГИЧЕСКАЯ АКТИВНОСТЬ ПОЛИСАХАРИДОВ РАСТИТЕЛЬНОГО ПРОИСХОЖДЕНИЯ.

Глава 2. МА ТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ.

2.1. ИСПОЛЬЗУЕМЫЕ ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНЫЕ МОДЕЛИ.

2.2. ИСПОЛЬЗУЕМЫЕ ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНЫЕ МЕТОДЫ.

Глава 3. ДЕЙСТВИЕ ПОЛИСАХАРИДОВ НА ЗДОРОВЫХ ЖИВОТНЫХ.

3.1. ИЗМЕНЕНИЕ ОБЩЕГО СОСТОЯНИЯ ЖИВОТНЫХ.

3.2. ВЛИЯНИЕ ПОЛИСАХАРИДА ВРПК НА ФИЗИЧЕСКУЮ

РАБОТОСПОСОБНОСТЬ ЖИВОТНЫХ.

3.3. ИЗМЕНЕНИЕ СТРУКТУРЫ И КЛЕТОЧНОСТИ ЛИМФОИДНЫХ ОРГАНОВ ЗДОРОВЫХ ЖИВОТНЫХ.

3.4. ДЕЙСТВИЕ ПОЛИСАХАРИДОВ НА ИЗМЕНЕНИЕ СОСТАВА ПЕРИФЕРИЧЕСКОЙ КРОВИ.

3.5. ВЛИЯНИЕ ПОЛИСАХАРИДОВ НА СООТНОШЕНИЕ БЕЛКОВЫХ

ФРАКЦИЙ СЫВОРОТКИ КРОВИ ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНЫХ ЖИВОТНЫХ.

3.6. ВЛИЯНИЕ ПОЛИСАХАРИДОВ НА ИММУНОКОМПЕТЕНТНЫЕ КЛЕТКИ ПЕРИФЕРИЧЕСКОЙ КРОВИ ЖИВОТНЫХ И ФАГОЦИТОЗ.

3.7. ВЛИЯНИЕ ПОЛИСАХАРИДА ВРПК НА ХАРАКТЕР СУТОЧНЫХ

И СЕЗОННЫХ БИОРИТМОВ.

Глава 4. ВЛИЯНИЕ ПОЛИСАХАРИДОВ НА ПОКАЗАТЕЛИ КРОВИ И СТРУКТУРУ КРОВЕТВОРНЫХ ОРГАНОВ ЖИВОТНЫХ

С ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНОЙ АНЕМИЕЙ.

4.1. ДЕЙСТВИЕ ВРПК НА ЖИВОТНЫХ ПРИ ПАТОЛОГИИ КРОВИ.

4.2. МЕХАНИЗМ ВЛИЯНИЯ ПОЛИСАХАРИДОВ НА ПРОЦЕСС

КРОВЕТВОРЕНИЯ.

Глава 5. ПРОТИВОВОСПАЛИТЕЛЬНОЕ ДЕЙСТВИЕ ПОЛИСАХАРИДОВ.

5.1. ВОСПАЛИТЕЛЬНЫЙ ОТЕК.

5.2. ВЛИЯНИЕ ПОЛИСАХАРИДОВ НА ЛЕЙКОЦИТАРНЫЕ РЕАКЦИИ ОРГАНИЗМА.

5.3. ФАГОЦИТАРНАЯ АКТИВНОСТЬ.

5.4. ПЕРЕКИСНОЕ ОКИСЛЕНИЕ.

5.5. МЕХАНИЗМ ПРОТИВОВОСПАЛИТЕЛЬНОГО ДЕЙСТВИЯ

ПОЛИСАХАРИДОВ.

Глава 6. РАДИОПРОТЕКТОРНОЕ ДЕЙСТВИЕ ПОЛИСАХАРИДА ПЕКТИН.

6.1. ИЗМЕНЕНИЕ МАССЫ КЛЕТОЧНОСТИ И СТРУКТУРЫ ОРГАНОВ КРОВЕТВОРЕНИЯ И ЛИМФОИДНОЙ СИСТЕМЫ ОБЛУЧЕННЫХ

ЖИВОТНЫХ ПОД ДЕЙСТВИЕМ ПЕКТИНА.

6.2. ИЗМЕНЕНИЕ КЛЕТОЧНОГО СОСТАВА КРОВИ ОБЛУЧЕННЫХ ЖИВОТНЫХ ПОД ДЕЙСТВИЕМ ПОЛИСАХАРИДА ПЕКТИН.

6.3. ВЛИЯНИЕ ПЕКТИНА НА КОЛИЧЕСТВО РЕГУЛЯТОРНЫХ МОЛЕКУЛ КРОВЕТВОРНЫХ ОРГАНОВ ОБЛУЧЕННЫХ ЖИВОТНЫХ.

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Механизм повышения резистентности организма животных под действием растительных полисахаридов в норме и при патологии»

Актуальность проблемы

Лекарственные препараты, созданные из природного сырья, обладают целым рядом преимуществ перед синтетическими: они легко усваиваются организмом человека или животного; как правило, не обладают побочными эффектами; очень редко проявляют токсичность. Широко распространены в различных климатических зонах растения Донника желтого (Melilotus off.), издавна используемого в народной и в официальной медицине. Растения Донника входят в состав мягчительных и слабительных сборов, применяются в качестве припарок, как местное раздражающее и отвлекающее средство [Гаммерман А. Ф., Гром И. И., 1976]; его отвары и настои понижают возбудимость нервной системы и используются при неврастениях и кардиоспазмах, бессоннице, истерии; обладают свойствами антикоагулянтов и способны снижать артериальное давление.

Настой, отвар, а также мазь с цветками Донника применяют при фурункулезе, гнойных ранах, отеках суставов, при воспалении среднего уха [Чиков П. С., Стекольников JL И., Мурох В. И., 1972]; для лечения бронхита, бессонницы, мигрени в виде ванн и компрессов.

Мелиоцин (препарат из листьев Донника) является достаточно сильным биостимулятором, превосходящим биостимулирующее действие экстракта алоэ [Гаммерман А. Ф., Гром И. И., 1976].

Полисахариды стимулируют иммунную систему организма, усиливая процесс фагоцитоза, увеличивая количество антителообразующих клеток'и продукцию ими антител, повышают количество лимфоцитов крови, лимфоидных органов [Смолина Т. П. и др., 1994; Афанасьев В. А. и др., 1999; Мансимова О. В. и др., 1998; Конопля Е. Н. и др., 1998; Назарова И. В. и др., 1999].

Установлен факт активации процессов кроветворения некоторыми полисахаридами, особенно процесса эритропоэза [Гольдберг Е. Д. и др., 1997; Захаров Ю. М., 1994; Федорова И. М., 1996].

Полисахариды растений активизируют ферментные системы клеток крови, ускоряют заживление ран.

Растительные полисахариды повышают уровень обмена веществ, при введении в организм, что способствует процессам регенерации и роста, усилению пролиферации наиболее быстро делящихся клеток. Есть данные о том, что полисахариды растений защищают организм от облучения [Фриденштейн А. Я., Лурия Е. А., 1980; Филиппова С. А., 1990; Лебедев В. Г. и др., 2000; Симанина Е. В. и др. 1997; Иванов С. Д., 2000].

Механизм действия полисахаридов на организм человека и животных еще не достаточно изучен. Есть лишь некоторые отрывочные сведения о спектре биологической активности полисахаридов различных растений.

Поэтому важно изучение механизмов стимулирующего действия на организм биологически активных структурных полисахаридов растений Донника желтого: ВРПК - водорастворимого полисахаридного комплекса, и ПЕКТИНА - смеси пектиновых веществ - полисахаридных комплексов. ВРПК и ПЕКТИН образуют поверхностную часть клеточных- оболочек и межклеточный матрикс растительных фотосинтезирующих надземных частей растений.

Учитывая современное состояние фармацевтической промышленности, доступность сырья и низкую стоимость получения природных полисахаридов, изучение механизмов их действия и внедрение их для использования в медицине и ветеринарии является актуальной задачей.

Цель исследования

В условиях эксперимента выявить основные эффекты полисахаридов Донника желтого на организм здоровых животных и при патологии и изучить основные механизмы их реализации.

Задачи исследования

Исходя из цели в работе поставлены следующие задачи:

1. Исследовать влияние препаратов полисахаридов Донника желтого на организм здорового животного:

- физическую работоспособность;

- изменение массы тела;

- состояние органов иммунной системы; изменение массы и структуры тимуса, селезенки, костного мозга, их клеточного состава;

- процесс кроветворения;

- клеточный и биохимический состав крови;

- фагоцитоз;

- активность ферментных систем клеток крови и иммунной системы;

- роль РНК и протеогликанов и гликопротеинов клеток крови и кроветворных органов.

2. Изучить действие полисахаридов на процессы кроветворения в организме животных в условиях развития анемии:

- состав периферической крови;

- биохимический состав плазмы крови;

- состояние костного мозга и селезенки;

- количества и качества кроветворных эритробластических островков;

- роль РНК протеогликанов и гликопротеинов клеток крови и кроветворных органов.

3. Исследовать возможное противовоспалительное действие полисахаридов и их влияние на:

- состояние воспаленной конечности;

- состав периферической крови;

- активность ферментных систем клеток крови;

- активность фагоцитарной реакции;

- процесс перекисного окисления липидов;

- выраженность антиоксидантной реакции.

4. Выяснить возможное защитное действие полисахаридов Донника желтого от облучения и, в случае его обнаружения, изучить:

- состояние органов иммунной защиты - тимуса, селезенки, костного мозга;

- клеточный состав крови;

- уровень физиологической активности клеток тимуса, селезенки, костного мозга и уровень продуцируемых ими молекул.

Научная значимость и новизна работы

Впервые установлено, что полисахариды Донника желтого ВРПК и пектин повышают неспецифическую резистентность организма здоровых животных и усиливают их физическую работоспособность. Это происходит за счет активации ферментных систем АТФ-азы, оксидаз, усиления процессов синтеза веществ клетками организма, стимуляции процессов гемопоэза. Полисахариды стимулируют клетки моноцитарно-макрофагальной системы, увеличивая в них количество РНК и синтез молекул-регуляторов (гликопротеинов и протеогликанов, гликозаминогликанов и др.), повышают уровень функциональной активности и количество оксидазных и гидролитических ферментов и фагоцитоз. Возрастает количество молекул-регуляторов в плазме крови. Увеличивается количество эритробластических островков костного мозга и селезенки, клеточность этих органов и их масса. Полисахариды проявляют свойства слабых антигенов - стимулируют клетки иммунной системы, превосходя в этом отношении полисахариды других растений. В селезенке увеличивается количество лимфоидных фолликулов, клеточность Т- и В-зон белой пульпы. Нарастает численность антителообразующих клеток. В крови увеличивается количество эритроцитов и гемоглобина, лимфоцитов, моноцитов, меняется соотношение количеств Т- и В-клеток, в плазме крови повышается уровень у-глобулинов.

Полисахариды стимулируют гемопоэз не только в здоровом организме, но и при различных видах анемии и при частичном и, в меньшей степени, при полном облучении средними дозами у-лучей. Активация клеток моноцитарно-макрофагальной системы и клеток стромы кроветворных органов приводит к увеличению в них количества молекул РНК, синтезу и выделению молекул-регуляторов кроветворения: гликозаминогликанов, протеогликанов и гликопротеинов. Возрастает количество эритробластических островков, созревающих лейкоцитов, Т- и В-лимфоцитов, восстанавливается структура костного мозга и селезенки. Клеточный и биохимический состав крови нормализуется.

Полисахариды пектин и ВРПК оказывают противовоспалительное действие, что также связано с активацией ими клеток моноцитарно-макрофагальной системы, синтезирующих и выделяющих молекулы-регуляторы функций иммунной системы. В селезенке нарастает количество антителообразующих клеток, усиливается синтез антител, увеличивается масса, клеточность тимуса и селезенки. В крови меняется соотношение Т- и В-лимфоцитов, активируется Т-зависимый иммунный ответ.

Возрастает уровень фагоцитарной активности клеток за счет активации гидролитических ферментов и пероксидазной и каталазной ферментных систем. Повышается антиоксидантная активность мембранных ферментных систем клеток.

Мы показали, что в отличие от большинства известных растительных, дрожжевых и бактериальных полисахаридов, полисахариды Донника желтого стимулируют физическую работоспособность, процессы кроветворения в норме, при облучении и анемии, обладают иммуностимулирующим и противовоспалительным действием, что является ценными свойствами, предполагающими их использование в гематологии и лечении воспаления.

Теоретическая и практическая ценность работы

В экспериментальном исследовании определяли некоторые стороны механизмов действия полисахаридов, выделенных из Донника желтого. Получены новые важные данные о механизмах стимуляции полисахаридами процессов кроветворения в здоровом организме, при облучении и различных видах анемии. Вскрыты некоторые стороны механизма противовоспалительного и иммуностимулирующего действия молекул полисахаридов. Определены элементы механизма повышения работоспособности здорового организма.

Полученные в ходе исследований данные могут быть использованы для создания кормовых и пищевых добавок на основе полисахаридов Донника в медицине и в ветеринарии. Возможно создание на основе ВРПК и< пектина лекарственных препаратов, применяемых для стимуляции процессов кроветворения, лечения воспаления, анемии, стимуляции физической работоспособности. Результаты исследований биологической активности полисахаридов так же могут быть использованы в курсе лекций по органической химии, биохимии, физиологии для студентов и преподавателей, написания методических руководств по использованию лекарственных растений и биологически активных полисахаридов растительного происхождения.

Основные положения, выносимые на защиту

1. Полисахариды Донника желтого ВРПК и пектин повышают неспецифическую резистентность организма здоровых животных и усиливают их работоспособность за счет активации ферментных систем АТФ-азы, оксидаз, усиления процессов синтеза клетками, стимуляции процессов гемопоэза.

2. Полисахариды усиливают фагоцитарную активность клеток крови за счет повышения активности гидролитических ферментов и увеличения их количества.

3. Стимуляция полисахаридами процессов гемопоэза в здоровом организме, при различных видах облучения и в случае анемии осуществляется посредством действия полисахаридов на клетки моноцитарно-макрофагальной системы и клеток стромы кроветворных органов, синтезирующих молекулы гликозаминогликанов, протеогликанов и гликопротеинов — регуляторов процессов кроветворения.

4. Противовоспалительная активность полисахаридов связана с активацией ими ферментных систем, процессов фагоцитоза, усилением антиоксидантной активности мембран клеток, а так же с повышением функций иммунной системы (с усилением выработки антител, с активацией Т-зависимого иммунного ответа).

Внедрение

Внедрение, результатов исследований проведено на базе Рязанского областного института развития образования в курсах лекций: «Биологически активные вещества лекарственных растений», «Лекарственные растения, их использование в медицинской практике и учебном процессе», читаемых для преподавателей средних школ, лицеев, гимназий и при написании методического пособия «Лекарственные растения Рязанской области», учебного пособия «Строение и функции углеводов». Кроме того, данные исследования используются на базе Рязанского государственного медицинского университета в курсе лекций «Биологически активные полисахариды лекарственных растений» - для врачей и студентов.

Результаты, полученные в работе, вошли в монографию «Механизм повышения неспецифической резистентности организма под действием полисахаридов Донника желтого».

Апробация работы

Материалы диссертации были обсуждены на совместном заседании кафедры нормальной физиологии и кафедры патологической физиологии Российского государственного медицинского университета.

Публикации

По теме диссертации опубликовано: 3 монографии и 13 статей в рецензируемых журналах, а также 9 тезисов конференций.

Объем и структура диссертации

Текст диссертации изложен на 234 страницах с использованием 18 таблиц, 4 схемы, 59 рисунков и микрофотографии. Список литературы содержит 253 источника; из них 138 отечественных и 115 зарубежных.

ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

Заключение диссертации по теме «Физиология», Сычев, Игорь Анатольевич

Выводы

1. Полисахариды Донника желтого ВРПК и пектин повышают общую неспецифическую резистентность организма, стимулируя активность АТФ-азы и уровень обмена веществ, вызывают увеличение мышечной массы животного и, тем самым, улучшают общее состояние животных и повышают их физическую работоспособность.

2. Полисахариды ВРПК и пектин, увеличивая синтез РНК в клетках, стимулируют гемопоэз, увеличивая в периферической крови количество моноцитов (в 2,2-2,6 раза), лимфоцитов (на 11,6-21,5%) эритроцитов (на 26-32%) уровень гемоглобина (на 32-38%), а2-макроглобулинов (на 22-25%), активность ферментных систем клеток крови и фагоцитоз.

3. Полисахариды ВРПК и пектин, оказывают влияние на структуру костного мозга, селезенки и тимуса, повышая синтетическую активность в клетках стромы, что сопровождается увеличением их массы на 27-31% и 48-55%, соответственно.

• Увеличение массы костного мозга сопровождается увеличением в 1,5 раза его клеточности (количества эритробластических островков 1-2 класса зрелости, клеток лимфоидного ряда, кольцеядерных лейкоцитов, мегакариоцитов);

• Увеличение массы селезенки сопровождается увеличением на 37-43% ее клеточности (количества лимфоидных фолликулов -первичных вторичных и Т-лимфоцитов в структуре белой пульпы, плазматических клеток и «розеток», состоящих из центрального макрофага и лимфоцитов, клеток эритроидного ряда, кольцеядерных ■ лейкоцитов в области красной пульпы);

• Увеличение массы тимуса сопровождается увеличением на 45-54% клеточности корковой зоны и на 33-36% мозговой зоны.

4. Под влиянием полисахарида ВРПК меняются суточные и сезонные биоритмы, что проявляется изменением эритропоэза и массы иммуннокомпетентных органов.

5. Полисахариды ВРПК и пектин, оказывают выраженную антианемическую активность при экспериментальной анемии, увеличивая количество РНК в клетках кроветворных органов и усиливая синтез молекул гликозоаминогликанов и протеогликанов, что приводит к увеличению клеточности костного мозга, количества эритробластических островков, ускорению созревания клеток эритроидного и лимфоидного ряда, и нормализации клеточного состава крови.

6. Полисахариды ВРПК и пектин, обладают выраженным противовоспалительным действием, ускоряя синтез и выделение макрофагов и моноцитов и увеличивая их функциональную активность, что способствует усилению фагоцитоза, снижению проницаемости сосудистой стенки и нормализации на 7-8 сутки введения объема воспаленной конечности, СОЭ и количества лейкоцитов в крови.

7. Пектин обладает радиопротекторным действием на организм полностью или частично облученных животных, усиливая функциональную активность клеток моноцитарно-макрофагальной системы и клеток стром костного мозга и селезенки, повышая уровень РНК на 15,8-21%, гликозаминогликанов и протеогликанов в макрофагах и клетках стромы костного мозга на 13,3-16,1%. Под влиянием пектина количество эритробластических островков в костном мозге облученных животных возрастает на 8,5-17%, активируются процессы эритропоэза и лимфопоэза, что способствует восстановлению структуры органов и нормализации состава крови.

Список литературы диссертационного исследования доктор биологических наук Сычев, Игорь Анатольевич, 2008 год

1. Афанасьев В. А., Бровкина И. Л., Прокопенко Л. Г. Влияние полисахаридов ромашки аптечной на функциональное состояние иммунной системы при охлаждении // Человек и его здоровье: Сб. науч. работ. Курск, 1999.-71-73 с.-Вып. 2.

2. Афанасьев В. А. Иммуномодулирующее действие фосфолипидов и растительных гетерополисахаридов при холодовом стрессе: автореф. дис. . д-ра мед. наук: 14.00.36 / Рос. гос. мед. ун-т, Курский гос. мед. ун-т. М., 1999.-38 с.

3. Афанасьев В. А., Ласкова И. Л., Прокопенко Л. Г. Влияние растительных гетерополисахаридов, связанных с эритроцитарным носителем, на функциональное состояние иммунной системы при охлаждении организма

4. Человек и его здоровье: Сб. науч. работ. Курск, 1999. - 73-75 с.

5. Афанасьев В. А., Ласкова И. Л., Утешев Б. С. Иммуномодулирующее действие связанных с эритроцитарным носителем растительных гетерополисахаридов при иммерсионном охлаждении // Экспериментальная и клиническая фармакология. — 1999. № 5. — 31-34 с.

6. Базарный В. В., Ястребов А. П. Действие некоторых иммуномодуляторов на гемопоэз // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. — 1993. — № 1.

7. Баценовский В. А., Барышников А. Ю. Молекулы клеточной адгезии человека // Успехи современной биологии. 1994. - Т. 144. - № 6.

8. Бочков А. Ф., Афанасьев В. А., Зайков Г. Е. Угдеводы. М.: Наука, 1980.-С. 238.

9. Бышевский А. И., Терсенов О. А. Биохимия для врача. Изд. «Уральский рабочий», 1994. - 384 е.: ил.

10. Бычков С. М., Кузьмина С. А. Протеогликаны и клетки // Бюллетень экспер. биологии и медицины. 1996. - № 2. - С. 124-127.

11. Василенко Ю. К., Москаленко С. В., Кайшева Н. Ш., Фролова Л. М., Щербак С. Н., Мокин Ю. Н. Получение и изучение физико-химических и гепатопротекторных свойств пектиновых веществ // Химикофармацевтический журнал. 1997. - № 6. - 28-29 с.

12. Василенко Ю. К., Саджая JT. А., Компанцева Е. В., Москаленко С. В., Парфентьева Е. П., Фролова JI. М., Мокин Ю. Н. Биофармацевтическая эффективность гранул изониазида с пектином // Химико-фармацевтический журнал. 1999. - № 8. - 38-40 с.

13. Воргова JI. В., Захаров Ю. М. О взаимосвязи тренированности животных, порфиринового обмена и показателей эритрона // Физиологический журнал СССР им. И. М. Сеченова. 1989. - Т. 75. - № 6.

14. Воргова JI. В., Захаров Ю. М. О взаимосвязи тренированности животных, порфиринового обмена и показателей эритрона // Физиологический журнал СССР им. И. М. Сеченова. 1989. - Т. 75. -№12.-С. 1725-1729.

15. Воргова JI. В., Захаров Ю. М. О взаимосвязи тренированности животных, порфиринового обмена и показателей эритрона

16. Физиологический журнал СССР им. И. М. Сеченова. 1989. - Т. 76. - № 2. -С. 200-206.

17. Воротынская С. Л., Витовская Г. А., Гиршович М. 3., Фролова Н. Ю., Ивин Б. А. Гетерополисахариды с лекарственными средствами пуринового ряда // Химико-фармацевтический журнал. — 1995. -№4.-41-43 с.

18. Гаммерман А. Ф., Гром И. И. Лекарственные растения европейской части СССР. М.: Медицина, 1976. - 328 с.

19. Гольдберг Е. Д., Дыгай А. М., Захаров Ю. М. К вопросу о специфичности механизмов регуляции кроветворения при различных экспериментальных воздействиях // Патологическая физиология и экспериментальная терапия. 1991. — № 3. - С. 7-10.

20. Гребнева О. П., Анчикова Л. И. Применение микрокристаллической целлюлозы в лечении гиперплазии щитовидной железы у детей // Казан.медицинский журнал. 1999. - № 6. - 412-414 с.

21. Грудева-Попова Ж. Г., Цветкова Т. 3. Экспериментальное изучение влияния пектиновых веществ на неспецифическую защиту организма //Клинич. лаб. диагностика. 1999. -№ 3. — 15-18 с.

22. Давыдова М. С. и др. Изучение условий гидролиза водорастворимых полисахаридов вегетативной части топинамбура // Социально-гигиенический мониторинг здоровья населения. Рязань: РязГМУ. - Ч. 2. - С. 391-393.

23. Даффус Б., Даффус Д. Углеводный обмен растений. М.: Агропромиздат, 1986. - 185 с.

24. Домарацкая Е. И., Прянишникова О. Д., Хрущов Н. Г. Клоногенные кроветворные клетки (КОЕ-С) в пре- и постнатальном онтогенезе мыши //Онтогенез. 1996.-Т. 21.-№ 1.-С. 81-88.

25. Дьяконов И. А. Влияние иммобилизации в полисахаридные гранулы на функциональные свойства клеток животных: Автореф. дис. . канд. биол. наук: 03.00.25 / Ин-т цитологии Рос. АН. СПб., 1993. - 18 е.: ил.

26. Енгалычева Е. И., Рожкова В. Н., Ладыгина Е. Я. О противовоспалительной активности полисахаридов мать-и-мачехи // Фармация. 1982. - № 2. - С. 37-39.

27. Ермолаев В. В. Функциональная активность биоаминсодержащих структур костного мозга после действия малых доз рентгеновского излучения: Автореф. дис. . канд. мед. наук: 14.00.23 / Рос. гос. мед. ун-т. -М., 1997.-26 с.

28. Задорожнова Н. Н., Ляшенко В. А., Дроженников В. А. Активизирующее действие полисахаридов с различной молекулярной массой на макрофаги в эксперименте // Иммунология. — 1985. № 2. - С. 73-74.

29. Захаров Ю. М. Лекции по* физиологии' системы крови // Медицинский вестник. Челябинск, 1998. - № 19 (74). - 152 с.

30. Захаров Ю. М. Современный взгляд на регуляцию кроветворения // Физиологический журнал им. И. М. Сеченова. 1991. - Т. 77. - №12. -С. 91-101.

31. Захаров Ю. М., Варыпаева Л. П. Фагоцитарная активность, центрального макрофага эритробластического островка при экспериментальном торможении и стимуляции эритропоэза // Гематология и трнсфузиология. 1992. - Т. 37. - № 9. - С. 21-23.

32. Захаров Ю. М., Варыпаева Л. П. Эффект эритропоэтина на фагоцитарную активность центрального макрофага эритробластического островка у крыс // Российский физиологический журнал им. И. М. Сеченова. 1997. - Т. 83. -№ 4. - С. 86-91.

33. Захаров Ю. М. и др. О роли макрофагов костного мозга в регуляции эритропоэза при различных состояниях эритрона // Патологическая физиология и экспериментальная терапия. -1991.-Т. 3.-№3. — С. 36-38.

34. Захаров Ю. М. и др. Влияние секреторных продуктов нейтрофилов на эритропоэз в эритробластических островках костного мозга // Физиологический журнал им. И. М. Сеченова. 1995. - Т. 81. - № 2. -С. 53-57.

35. Захаров Ю. М., Медяник Б. В. О закономерностях реконструкции эритропоэза в эритробластических островках костного мозга у крыс // Физиологический журнал им. И. М. Сеченова. 1994. - Т. 80. - № 3. — С. 76-82.

36. Захаров Ю. М., Медяник Б. В. О пролиферативной активности эритробластов в эритробластических островках костного мозга у крыс

37. Физиологический журнал им. И. М. Сеченова. 1997. — Т. 83. - № 7.

38. Захаров Ю. М., Рассохин А. Г. Эритробластический островок. М.: Медицина, 2002. - 280 е.: ил.

39. Кисляк Н. С., Ленская Р. В. Клетки крови у детей в норме и патологии. М.: Медицина, 1978. - 256 с.

40. Кит Ю. Я., Семенов Д. В., Кулигина Е. В., Рихтер В. А. Влияние нуклеиновых кислот и полисахаридов на фосфотрансферазную активность препаратов секреторного иммуноглобулина А, выделенных из молока человека // Биохимия. 2000. - № 2. - С. 284-290.

41. Кодина Т. В., Юдин Г. В., Шишло В. К., Антропова Ю. Г. Реактивные преобразования лимфатических узлов при эндолимфатической перфузии реополиглюкина // Проблемы лимфологии и количественной патологии: Сб. ст. М., 1997. - С. 70-71

42. Комаров Ф. И., Коровкин Б. Ф., Меньшиков В. В. Биохимические исследования в клинике. М.: Медицина, 1984. - 407 е.: илл.

43. Константинова Н. А., Крылова Н. В., Цыбульский А. В., Оводов Ю. С., Елеков Г. Б. Фагоцитозстимулирующее действие полисахаридов, выделенных из культуры ткани женьшеня // Антибиотики и химиотерапия. 1989. - Т. 34. - № 10. - С. 755-760.

44. Конторова В. И. Пространственно-временная организация внеклеточного матрикса // Онтогенез. 1994. - Т. 25. - № 1. - С. 14-30.

45. Кочетков Н. К., Бочков А. Ф., Дмитриев Б. А., Усов А. И., Чижов А. С., Шибаев В. Н. Химия углеводородов. М.: Химия, 1967.

46. Лавренова Г. Ю. Влияние некоторых растительных полисахаридов на коагулянтную активность крови животных // Фармакология и токсикология. 1986. - Т. 49. - № 4. - С. 38-40.

47. Ларская И. А., Барышева Т. С., Заботин А. И. Особенности изменения внеклеточного матрикса клеток в процессе развития суспензионной культуры Triticum timopheevii zhuk // Цитология. 2005. -№7.-С. 602-608.

48. Лилли Р. Гистологическая техника и практическая гистохимия. -М.: Мир, 1969. 685 е.: илл.

49. Максимова О. В., Максимов М. Ф., Конопля Е. Н. Изучение механизмов реализации иммуномодулирующей активности полисахаридного комплекса лабазника шестилепестного // Человек и его здоровье: (Сб. науч. работ). Курск, 2000. - Вып. 3. С. 208-209.

50. Мансимова О. В. Иммуномодулирующая и регенерационная активность лабазника шестилепестного: Автореф. дис. . канд. мед. наук: 14.00.36 / Курский гос. мед. ун-т. Курск, 1999. - 22 е.: ил.

51. Мансимова О. В., Конопля Е. Н., Сухомлинов Ю. А. Влияние гетерополисахаридов лабазника шестилепестного на процессы репаративной регенерации в гепатоцитах // Человек и его здоровье: Сб. науч. работ. -Курск, 1998.- 120-121 с.

52. Маркизов П. В. Экспериментальная фармакотерапия полисахаридным комплексом алоэ древовидного повреждений поджелудочной железы: Автореф. дис. . канд. мед. наук: 14.00.25 / Рос. АН. Сиб. отд-ние. Ин-т общ. и эксперим. биологии. Улан-Удэ, 2000. - 24 с.

53. Муравьева Т. И. Фармакосанирующие эффекты полисахаридов растительного происхождения: Автореф. дис. . д-ра фармац. наук: 15.00.02, 14.00.25 / С.-Петерб. гос. хим.-фармац. акад., Моск. мед. акад. им. И. М. Сеченова. СПб., 1999. - 39 е.: ил.

54. Назарова И. В. Влияние полисахаридов из морских водорослей и трав на систему комплемента: Автореф. дис. . канд. мед. наук: 14.00.25 / Ин-т биологии моря Дальневост. отд-ния Рос. АН. Владивосток, 1999. -24 с.

55. Овчинников В. П. Биоорганическая химия. М.: Медицина, 1988.920 с.

56. Пальцев М. А., Иванов А. А. Межклеточные взаимодействия. М.: Медицина, 1995. - 224 е.: ил.

57. Попов Г. К., Вельский М. С., Починский А. Г. Роль гликозаминогликапов в регуляции гемопоэза // Материалы конференции института по итогам научных исследований в XII пятилетке. Челябинск, 1990.-90-92 с.

58. Попов С. В. Функциональные реакции нейтрофилов и макрофагов на растительные полисахариды: Автореф. дис. . канд. биол. наук: 03.00.13 / Ин-т физиологии Коми науч. центра Урал, отд-ния Рос. АН. Сыктывкар, 1999.- 19 с.: ил.

59. Потиевский Э. Г. Антибактериальное действие пектина: Эксперим. микробиол. исслед.: Автореф. дис. . д-ра мед. наук: 03.00.07 / Омская гос. мед. акад. Челябинск, 1996. - 27 е.: ил.

60. Потиевский Э. Г. Пектин комплексный антибактериальный и антидиарейный продукт // Мор. медицинский журнал. - 1999. — № 2. — С. 45-46.

61. Потиевский Э. Г. О возможных механизмах антимикробного действия пектина при острых инфекционных диареях // Антибиотики и химиотерапия. 1996. -№ 7-8. - 40-42 с.

62. Редько К. Г. Профилактика развития деформирующего артроза коленного сустава природными полисахаридами = Prevention of development of knee joint deforming arthrosis by natural polysaccharides: (Experimental study):

63. Эксперим. исслед.): автореф. дис. . канд. мед. наук: 14.00.22 / С.-Петерб, гос. мед. ун-т им. И. П. Павлова. СПб, 1996. 17 с.

64. Ремезова О. В., Рыженков В. Е., Лозовский В. Т. Гиполипидемическое действие некрахмального полисахарида крилапол // Эфферент. терапия. 1998. - № 2. - 27-32 с.

65. Ройт А., Бростофф Дж., Мейл Д. Иммунология. М.: Изд. «Мир», 2000.-592 е.: ил.

66. Руководство по иммунофармакологии / Под ред. М. М. Дейла, Дж. К. Формена. М.: Медицина, 1998. - 332 е.: ил.

67. Саджая Л. А. Биохимическое обоснование путей снижения гепатотоксичности изониазида на основе сочетания с полисахаридами: Автореф. дис. . канд. фармац. наук: 14.00.25 / Пятигор. гос. фармац. акад. — Пятигорск, 1999. 22 е.: ил.

68. Сапин М. Р., Этинген Л. Е. Иммунная система человека. М.: Медицина, 1996. - 304 е.: ил.

69. Синилова Н. Г., Дуплищева А. П., Ромашевская Е. И., Нысякин Е. В., Туманян М. А. Химическая структура и иммуномодулирующая активность высокомолекулярных полисахаридов // Вопросы мед. химии. 1987. - Т. 33. - Вып. 6. - С. 103-107.

70. Сливкин А. И., Лапенко В. Л., Сунцова Н. С., Сироткина Г. Г., Белохвостова А. Т. Синтез и иммуномодулирующая активность полиэлектролитов на основе гликанов // Химико-фармацевтический журнал. -1997.-№2.-28-30 с.

71. Смоляр В. И., Салий Н. С., Григоренко С. Н., Грачева Л. Ф., Лаврушенко Л. Ф., Цапко Е. В., Колесников М. М. Влияние нового экзополисахарида на организм животных // Вопросы питания. 1991. - № 2. -С. 60-63.

72. Спектор Е. Б., Ананенко А. А., Политова Л. Н. Определение общей антиокислительной активности плазмы крови и ликвора // Лабораторное дело. 1984. - № 1. - С. 26-28.

73. Справочник по клиническим лабораторным методам исследований. 2-е изд., испр. и доп. / Под ред. проф. Е. А. Кост. М.: Медицина, 1975.

74. Стекольников Л. И., Мурох В. И. Целебные кладовые природы. -Мн.: Ураджай, 1980.

75. Степаненко В. Н. Химия и биохимия углеводов (полисахариды): Т. 11. М.: Высшая школа, 1977. - С. 327.

76. Суркова В. К., Даутова 3. А., Басченко И. А., Вавилова О. В. Белково-полисахаридный состав тканей глаза при ожогах хлорацетофенономв эксперименте // Новые технологии в офтальмологии: Сб. науч. тр. Уфа, 2000.- 170-174 с.

77. Сухомлинов Ю. А., Мансимова О. В., Конопля Е. Н. Иммуномодулирующее действие гетерополисахаридов лабазника шестилепестного // Человек и его здоровье: Сб. науч. работ. — Курск, 1998. — 119-120 с.

78. Сычев И. А., Подобуев Г. А. Полисахариды донника / Сб. научных трудов по животноводству. Рязань: РСХИ, 1995. - С. 41-42.

79. Сычев И. А., Подобуев Г. А. Выделение водорастворимых полисахаридов из растений семейства бобовых / Сб. научных трудов по животноводству. Рязань: РСХИ, 1995. - С. 43-44.

80. Сычев И. А. Биологическая активность полисахаридов Донника желтого: Автореф. дис. . канд. биол. наук: 02.00.10 / Рос. гос. мед. ун-т. М., 1995.-22 е.: ил.

81. Сычев И. А. Влияние полисахарида ВРПК Донника желтого на некоторые свойства иммунной системы животных // Российский медико-биологический вестник им. акад. И. П. Павлова. — Рязань; М.: НПЦ «Информационные технологии», 2004. № 3-4. - С. 24-29.

82. Сычев И. А., Смирнов В. М. Состояние селезенки крыс при действии полисахаридов Донника желтого (пектина) // Вестник Российского государственного медицинского университета. 2004. — № 6(37). - С. 85-95.

83. Сычев И. А., Порядин Г. В., Смирнов В. М. Действие полисахаридов на систему крови крыс // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. 2006. - № 5. - С. 530-533.

84. Третьякова Т. Б. Гликозаминогликаны в регуляции кроветворения при кровопотере: Автореф. дис. . канд. мед. наук : 14.00.16

85. Урал. гос. мед. акад. Екатеринбург, 1999. - 28 е.: ил.

86. Тюкавкина Н. С., Бауков В. П. Биоорганическая химия. М.: Медицина, 1988. 412 с.

87. Уилсон Б., Уильяме К. Методы практической биохимии. М.: Мир, 1978.-С. 136-159.

88. Уистлер Р. А., Вольфром М. J1. Методы химии углеводов. М.: Мир, 1967.-512 с.

89. Фриденштейн А. Я., Лурия Е. А. Клеточные основыкроветворного м'икроокружения. -М.: Медицина, 1980.-216 е., ил.

90. Чиков П. С. Лекарственные растения. М.: Агропромиздат, 1989.

91. Шиффман Ф. Дж. Патофизиология крови. М.-СПб.: изд. «Binom», 2000.-446 е.: ил.

92. Шишкова И. В., Прокопенко Л. Г. Иммуномодулирующее действие растительных гетерополисахаридов при инфицированных ожогах кожных покровов // Актуальные вопросы дерматовенерологии. Курск, 2000.-161-163 с.

93. Шкурупий В. А., Лукьянова Е. С., Ефремов А. В. Влияние инфузий декстрана на деструктивные процессы в паренхиме печени присиндроме длительного сдавления // Бюлетень экспериментальной биологии и медицины. 1998. -№ 5. - 592-595 с.

94. Щепеткин И. А. Активация макрофагов растительными полисахаридами // Антибиотики и химиотерапия: Ежемесячный научно-практический журнал / МЗ РФ, Гос. научный центр по антибиотикам. М.: Медицина, 2004. - Т. 49. - № 1. - С. 35-42.

95. Яковлев А. И., Конопля А. И., Ласкова И. Л., Кедровская Н. Н. Изучение механизмов иммуностимулирующего действия некоторых растительных гетерополисахаридов // Фармакология и токсикология. 1988. -№ 5. — С. 68-71.

96. Яковлев А. И. О полисахаридном составе соцветий // Химия природных соединий. 1980. - № 2. - С. 248-249.

97. Яковлев Ф. А. Сравнительное изучение полисахаридного состава смолевки татарской и смолевки поникшей // Материалы итоговой научной студенческой конференции (25 апр. 2003 г.) / Ред. О. Е. Коновалов. Рязань: РязГМУ, 2003.-С. 19-20.

98. Яковлева Е. А., Яковлев А. И., Прокопенко Л. Г. Использование растительных гетерополисахаридов для коррекции иммунного ответа при действии на организм вибрации // Фармакология и токсикология. 1990. -Т. 53. -№ 3. - С. 43-46.

99. Adler К. L., Peng P. Н., Peng R. К., Klasing К. С. The kinetics of hemopexin and alphal-acid glycoprotein levels induced by injection of inflammatory agents in chickens. Avian Dis. 2001 Apr-Jun; 45(2): 289-96.

100. Backhouse N., Delporte C., Negrete R., Feliciano S. A., Lopez-Perez J. L. Bioactive phenolic derivatives from Acaena splendens methanol extract. Phytother Res. 2002 Sep; 16(6): 562-6.

101. Bonina F., Puglia C., Tomaino A., Saija A., Mulinacci N., Romani A., Vincieri FF. In-vitro antioxidant and in-vivo photoprotective effect of three lyophilized extracts of Sedum telephium L. leaves. J Pharm Pharmacol. 2000 Oct; 52(10): 1279-85.

102. Briskin B. S., Demidov D. A. Enterosorption with pectin-containing medication in the treatment of peritonitis. Khirurgiia (Mosk). 2005; (4): 14-9. Russian.

103. Chang G. Т., Min S. Y., Kim J. H., Kim S. H., Kim J. K., Kim С. H. Anti-thrombic activity of Korean herbal medicine, Dae-Jo-Whan and its herbs. Vascul Pharmacol. 2005 Oct; 43(4): 283-8. Epub 2005 Oct 14.

104. Chao K. P., Hua K. F., Hsu H. Y., Su Y. C., Chang S. T. Antiinflammatory activity of sugiol, a diterpene isolated from Calocedrus formosana bark. Planta Med. 2005 Apr; 71(4): 300-5.

105. Cho С. H., Mei Q. В., Shang P., Lee S. S., So H. L., Guo X., Li Y. Study of the gastrointestinal protective effects of polysaccharides from Angelica sinensis in rats. Planta Med. 2000 May; 66(4): 348-51.

106. Cho S. H., Kim Т. H., Lee N. H., Son H. S., Cho I. J., Ha T. Y. Effects of Cassia tora fiber supplement on serum lipids in Korean diabetic patients. J Med Food. 2005 Fall; 8(3): 311-8.

107. Choi D. Y., Huh J. E., Lee J. D., Cho E. M., Baek Y. H., Yang H. R., Cho Y. J., Kim К. I., Kim D. Y., Park D. S. Uncaria rhynchophylla induces angiogenesis in vitro and in vivo. Biol Pharm Bull. 2005 Dec; 28(12): 2248-52.

108. Cifiiente D. A., Simirgiotis M. J., Favier L. S., Rotelli A. E., Pelzer L. E. Antiinflammatory activity from aerial parts of Baccharis medullosa, Baccharis rufescens and Laennecia sophiifolia in mice. Phytother Res. 2001 Sep; 15(6): 529-31.

109. Cruz-Vega D. E., Aguilar A., Vargas-Villarreala J., Verde-Star M. J., Gonzalez-Garza M. T. Leaf extracts of Carlowrightia cordifolia induce macrophage nitric oxide production. Life Sci. 2002 Feb 1; 70(11): 1279-84.

110. Das M., Sur P., Gomes A., Vedasiromoni J. R., Ganguly D. K. Inhibition of tumour growth and inflammation by consumption of tea. Phytother Res. 2002 Mar; 16 Suppl 1: S40-4.

111. De Melo G. O., Muzitano M. F., Legora-Machado A., Almeida T. A.,

112. De Oliveira D. В., Kaiser C. R., Koatz V. L., Costa S. S. C-glycosylflavones from the aerial parts of Eleusine indica inhibit LPS-induced mouse lung inflammation. Planta Med. 2005 Apr; 71(4): 362-3.

113. Gao Y., Tang W., Dai X., Gao H., Chen G., Ye J., Chan E., Koh H. L., Li X., Zhou S. Effects of water-soluble Ganoderma lucidum polysaccharides on the immune functions of patients with advanced lung cancer. J Med Food. 2005 Summer; 8(2): 159-68.

114. Gertsch J., Schoop R., Kuenzle U., Suter A. Echinacea alkylamides modulate TNF-alpha gene expression via cannabinoid receptor CB2 and multiple signal transduction pathways. FEBS Lett. 2004 Nov 19; 577(3): 563-9.

115. Gokhale А. В., Damre A. S., Kulkami K. R., Saraf M. N. Preliminary evaluation of anti-inflammatory and anti-arthritic activity of S. lappa, A. speciosa and A. aspera. Phytomedicine. 2002 Jul; 9(5): 433-7.

116. Greenspan P., Bauer J. D., Pollock S. H., Gangemi J. D., Mayer E. P., Ghaffar A., Hargrove J. L., Hartle D. K. Antiinflammatory properties of the muscadine grape (Vitis rotundifolia). J Agric Food Chem. 2005 Nov 2; 53(22): 8481-4.

117. Gressley T. F., Armentano L. E. Effect of abomasal pectin infusion on digestion and nitrogen balance in lactating dairy cows. J Dairy Sci. 2005 Nov; 88(11): 4028-44.

118. Grzanna R., Phan P., Polotsky A., Lindmark L., Frondoza C. G. Ginger extract inhibits beta-amyloid peptide-induced cytokine and chemokine expression in cultured THP-1 monocytes. J Altern Complement Med. 2004 Dec; 10(6): 1009-13.

119. Guo R., Zhai L., Liu Z., Wang H., Zhao Y., Sun Y., Zou H. Study on inhibition on alpha-glucosidase and analysis of the hypoglycemic composition of lobster sauce. Zhong Yao Cai. 2005 Jan; 28(1): 38-40. Chinese.

120. Hai-Yang G., Ping S., Li J. I., Chang-Hong X., Fu T. Therapeutic effects of Lycium barbarum polysaccharide (LBP) on mitomycin С (MMC)-induced myelosuppressive mice. J Exp Ther Oncol. 2004 Oct; 4(3): 181-7.

121. Hegazy R. A., el-Faramawy A. A. Substitution of sugar cane bagasse in the chicken diet and immune response. Nahrung. 2001 Oct; 45(5): 364-7.

122. Hernandez-Perez M., Rabanal Gallego R. M. Analgesic and antiinflammatory properties of Sideritis lotsyi var. Mascaensis. Phytother Res. 2002 May; 16(3): 264-6.

123. Hernandez-Perez M., Rabanal R. M. Evaluation of the antinflammatory and analgesic activity of Sideritis canariensis var. pannosa in mice. J Ethnopharmacol. 2002 Jun; 81(1): 43-7.

124. Hong Т., Jin G. В., Cho S., Cyong J. C. Evaluation of the antiinflammatory effect of baicalein on dextran sulfate sodium-induced colitis in mice. Planta Med. 2002 Mar; 68(3): 268-71.

125. Ibrahim Т., Cunha J. M., Madi K., da Fonseca L. M., Costa S. S., Goncalves Koatz V. L. Immunomodulatory and anti-inflammatory effects of Kalanchoe brasiliensis. Int Immunopharmacol. 2002 Jun; 2(7): 875-83.

126. Ji Y. В., Ji C. F., Zou X., Gao S. Y. Study on the effects of two kinds of cactus polysaccharide on erythrocyte membrane protein and fluidity of the lipid in SI80 mice. Zhongguo Zhong Yao Za Zhi. 2004 Oct; 29(10): 967-70. Chinese.

127. Jin H. Z., Lee J. H., Lee D., Hong Y. S., Kim Y. H., Lee J. J. Inhibitors of the LPS-induced NF-kappaB activation from Artemisia sylvatica. Phytochemistry. 2004 Aug; 65(15): 2247-53.

128. Jantaratnotai N., Utaisincharoen P., Piyachaturawat P., Chongthammakun S., Sanvarinda Y. Inhibitory effect of Curcuma comosa on NOproduction and cytokine expression in LPS-activated microglia. Life Sci. 2006 Jan 2; 78(6): 571-7. Epub 2005 Aug 16.

129. Kaiho Т., Tanaka Т., Tsuchiya S., Yanagisawa S., Takeuchi O., MiuraM., Saigusa- N., Miyazalci M. Effect of the herbal medicine Dai-kenchu-to for serum ammonia in hepatectomized patients. Hepatogastroenterology. 2005 Jan-Feb; 52(61): 161-5.

130. Kasahara, Y., Yasukawa K., Kitanaka S., Khan M. Т., Evans F. J. Effect of methanol extract from flower petals of Tagetes patula L. on acute and chronic inflammation model. Phytother Res. 2002 May; 16(3): 217-22.

131. Kim J. S., Narula-A. S., Jobin C. Salvia miltiorrhiza water-soluble extract, but not its constituent salvianolic acid B; abrogates LPS-induced NF-kappaB signalling in intestinal epithelial cells. Clin Exp Immunol. 2005 Aug; 141(2): 288-97.

132. Kim M. High-methoxyl pectin has greater enhancing effect on glucose uptake in intestinal perfused rats. Nutrition. 2005 Mar; 21(3): 372-7.

133. Kim M. S., Shigenaga J. K., Moser A. H., Feingold K. R., Grunfeld C. Suppression of estrogen-related receptor alpha and medium-chain acyl-coenzyme A dehydrogenase in the acute-phase response. J Lipid Res. 2005 Oct; 46(10): 2282-8. Epub 2005 Aug 1.

134. Kodama N., Asakawa A., Inui A., Masuda Y., Nanba H. Enhancement of cytotoxicity of NK cells by D-Fraction, a polysaccharide from Grifola frondosa. Oncol Rep. 2005 Mar; 13(3): 497-502.

135. Kuduk-Jaworska J., Szpunar J., Gasiorowski K., Brokos B. Immunomodulating polysaccharide fractions of Menyanthes trifoliata L. ZNaturforsch С. 2004 Jul-Aug; 59(7-8): 485-93.

136. Kuo Y. C., Tsai W. J., Wang J. Y., Chang S. C., Lin C. Y., Shiao M. S. Regulation of bronchoalveolar lavage fluids cell function by the immunomodulatory agents from Cordyceps sinensis. Life Sci. 2001 Jan 19; 68(9): 1067-82.

137. Lazareva E. В., Smirnov S. V., Khvatov V. В., Spiridonova T. G.,

138. Bitkova E. E., Shramko L. U., Men'shikov D. D. Oral administration of pectins for prophylaxis and treatment of purulent septic complications in patients with burns. N. V. Sklifosovsky Clinical and Research Institute for Emergency Medicine, Moscow.

139. Letendre M., D'Aprano G., Delmas-Patterson G., Lacroix M. Isothermal calorimetry study of calcium caseinate and whey protein isolate edible films cross-linked by heating and gamma-irradiation. J Agric Food Chem. 2002 Oct 9; 50(21): 6053-7.

140. Lo H. C., Yang J. G., Liu В. C., Chen Y. W., Huang Y. L., Poon S. L., Liu M. Y., Huang В. M. The effects of Tremella aurantia on testosterone and corticosterone productions in normal and diabetic rats. Arch Androl. 2004 Nov-Dec; 50(6): 395-404.

141. Luk J. M., Tam P., Fan S. Т., Koo M. W. Immunosuppressive effects of Tripterygium wilfordii polysaccharide on LPS-stimulated human monocytes. Transplant Proc. 2000 Nov; 32(7): 2013-5. No abstract available.

142. Manna S. K., Sah N. K., Newman R. A., Cisneros A., Aggarwal В. B. Oleandrin suppresses activation of nuclear transcription factor-kappaB, activator protein-1, and c-Jun NH2-terminal kinase. Cancer Res. 2000 Jul 15; 60(14): 3838-47.

143. Marin-Rodriguez M. C., Orchard J., Seymour G. B. Pectate lyases, cell wall degradation and fruit softening. Horticulture Research International, Plant Genetics and Biotechnology Department, Wellesbourne, Warwickshire1. CV35 9EF, UK.

144. Muruganandan S., Srinivasan K., Chandra S., Tandan S. K., Lai J., Raviprakash V. Anti-inflammatory activity of Syzygium cumini bark. Fitoterapia. 2001 May; 72(4): 369-75.

145. Musial W., Kubis A. A. Some interactions of natural and synthetic anionic polymers with biologically active substances. Polim Med. 2005; 35(1): 39-46. Review. Polish.

146. Harada Т., Masuda S., Arii M., Adachi Y., Nakajima M., Yadomae Т., Ohno N. Soy isoflavone aglycone modulates a hematopoietic response in combination with soluble beta-glucan: SCG. Biol Pharm Bull. 2005 Dec; 28(12): 2342-5.

147. Harput U. S., Saracoglu I., Ogihara Y. Stimulation of lymphocyte proliferation and inhibition of nitric oxide production by aqueous Urtica dioica extract. PhytotherRes. 2005 Apr; 19(4): 346-8.

148. Nergard С. S. , Kiyohara H., Reynolds J. C., Thomas-Oates J. E.,

149. Matsumoto Т., Yamada H., Patel Т., Petersen D., Michaelsen Т. E., Diallo D.,i

150. Obara N., Hasegawa M., Kodama O. Induced volatiles in elicitor-treated and rice blast fungus-inoculated rice leaves. Biosci Biotechnol Biochem. 2002 Dec; 66(12): 2549-59.

151. Qiu Z., Jones K., Wylie M., Jia Q., Orndorff S. Modified Aloe barbadensis polysaccharide with immunoregulatory activity. Planta Med. 2000 Mar; 66(2): 152-6.

152. Olano-Martin E., Gibson G. R., Rastell R. A. Comparison of the in vitro bifidogenic properties of pectins and pectic-oligosaccharides. School of Food Biosciences, The University of Reading, Whiteknights, Reading, UK.

153. Pandey R., Maurya R., Singh G., Sathiamoorthy В., Naik S. Immunosuppressive properties of flavonoids isolated from Boerhaavia diffusa Linn. Int Immunopharmacol. 2005 Mar; 5(3): 541-53.

154. Popov S. V., Popova G. Y., Ovodova R. G., Ovodov Y. S. Antiinflammatory activity of the pectic polysaccharide from Comarum palustre. Fitoterapia. 2005 Jun; 76(3-4): 281-7.

155. Park E. J., Kim В., Eo H., Park K., Kim Y., Lee H. J., Son M., Chang Y. S., Cho S. H., Kim S., Jin M. Control of IgE and selective T(H)1 and T(H)2 cytokines by PG102 isolated from Actinidia arguta. J Allergy Clin Immunol. 2005 Nov; 116(5): 1151-7.

156. Rilantono L. I., Yuwono H. S., Nugrahadi T. Dietary antioxidative potential in arteries. Clin Hemorheol Microcirc. 2000; 23(2-4): 113-7.

157. Sandoval M., Charbonnet R. M., Okuhama N. N., Roberts J., KrenovaZ., Trentacosti A. M., Miller M. J. Cat's claw inhibits TNFalpha production and scavenges free radicals: role in cytoprotection. Free Radic Biol Med. 2000 Jul 1; 29(1): 71-8.

158. Shao W., Xu W., Li A., Xi Y., Wang C. Pharmacokinetic studies of quercetin-hydroxypropyl-beta-cyclodextrin inclusion compound in rats. Zhong Yao Cai. 2005 Jan; 28(1): 47-50. Chinese.

159. Shi H. Z., Gao N. N„ Li Y. Z., Yu J. G., Fan Q. C., Bai G. E. Effects of active fractions from Lycopus lucidus L. F04 on platelet aggregation and thrombus formation. Space Med Med Eng (Beijing). 2004 Oct; 17(5): 313-7.

160. Shi H. Z., Gao N. N., Li Y. Z., Yu J. G., Fan Q. C., Bai G. E., Xin В. M. Effects of L.F04, the active fraction of Lycopus lucidus, on erythrocytes rheological property. Chin J Integr Med. 2005 Jun; 11(2): 132-5.

161. Singh В., Sahu P. M., Sharma M. K. Anti-inflammatory and antimicrobial activities of triterpenoids from Strobilanthes callosus nees. Phytomedicine. 2002 May; 9(4): 355-9.

162. Shon Y. H., Kim J. H., Nam K. S. Effect of Astragali radix extract on lipopolysaccharide-induced inflammation in human amnion. Biol Pharm Bull. 2002 Jan; 25(1): 77-80.

163. Sun H., Zheng Q. Haemolytic activities and adjuvant effect of Gynostemma pentaphyllum saponins on the immune responses to ovalbumin in mice. Phytother Res. 2005 Oct; 19(10): 895-900.

164. Suyenaga E. S., Reche E., Farias F. M., Schapoval E. E., Chaves C. G., Henriques A. T. Antiinflammatory investigation of some species of Mikania. Phytother Res. 2002 Sep; 16(6): 519-23.

165. Tang X., Tian X., Ci L. Preparation and evaluation of pH-dependent , gradient-release pellets for TCM. Drug Dev Ind Pharm. 2004; 30(10): 1079-87.

166. Tingjun H., Rongliang Z. Promotion of Sophora subprosrate polysaccharide on nitric oxide and interleukin-2 production in murine T lymphocytes: implicated Ca2+ and protein kinase C. Int Immunopharmacol. 2004 Jan; 4(1): 109-18.

167. Trommer H., Neubert R. H. The examination of polysaccharides as potential antioxidative compounds for topical administration using a lipid model system. Int J Pharm. 2005 Jul 14; 298(1): 153-63.

168. Tuinier R., Rolin C., de Kruif C. G. Electrosorption of pectin onto casein micelles. Biomacromolecules. 2002 May-Jun; 3(3): 632-8.

169. Veiga V. F. Jr., Zunino L., Calixto J. В., Patitucci M. L., Pinto A. C. Phytochemical and antioedematogenic studies of commercial copaiba oils available in Brazil. Phytother Res. 2001 Sep; 15(6): 476-80.

170. Villasenor I. M., Canlas A. P., Pascua M. P., Sabando M. N., Soliven L. A. Bioactivity studies on Cassia alata Linn, leaf extracts. Phytother Res., 2002 Mar; 16 Suppl 1: S93-6.

171. Voegeling S., Fantuzzi G. Regulation of free and bound leptin and soluble leptin receptors during inflammation in mice. Cytokine. 2001 Apr 21; 14(2): 97-103.

172. Wu Y., Ou-Yang J. P., Wu K., Wang Y., Zhou Y. F., Wen C. Y. Hypoglycemic effect of Astragalus polysaccharide and its effect on PTP1B. Acta Pharmacol Sin. 2005 Mar; 26(3): 345-52.

173. Wu M. J., Weng C. Y., Wang L., Lian T. W. Immunomodulatory mechanism of the aqueous extract of sword brake fern (Pteris ensiformis Burm.). J Ethnopharmacol. 2005 Apr 8; 98(1-2): 73-81.

174. Xie W. G., Shao N. S., Ma X. C., Ding Q. X., Zhao X., Liu N. L., Wei Y. S., Wang H. X., Chen K. J. Study on serum proteome of rat endotoxemia treated by figwort root. Zhongguo Zhong Yao Za Zhi. 2004 Sep; 29(9): 877-82. Chinese.

175. Xue J. P., Shi L. Y., Zhang A. M. Microtuber induction in vitro from Rehmannia glutinosa. Zhongguo Zhong Yao Za Zhi. 2002 Nov; 27(11): 824-7. Chinese.

176. Yamamoto Y., Aoyama S., Hamaguchi N., Rhi G. S. Antioxidative and antihypertensive effects of Welsh onion on rats fed with a high-fat high-sucrose diet. Biosci Biotechnol Biochem. 2005 Jul; 69(7): 1311-7.

177. Yang Т., Jia M., Mei Q. Effect of Angelica sinensis polysaccharide on lymphocyte proliferation and cytokine induction. Zhong Yao Cai. 2005 May; 28(5): 405-7. Chinese.

178. Yang X. P., Schaper F., Teubner A., Lammert F., Heinrich P. C., Matern S., Siewert E. Interleukin-6 plays a crucial role in the hepatic expression of SOCS3 during acute inflammatory processes in vivo. J Hepatol. 2005 Oct; 43(4): 704-10.

179. Yao C., Wei W., Li X., Hosoi K. Acute phase protein induction by experimental inflammation in the salivary gland. J Oral Pathol Med. 2005 Jul; 34(6): 364-7.

180. Yesilada E., Bedir E., Calis I., Takaishi Y., Ohmoto Y. Effects oftriterpene saponins from Astragalus species on in vitro cytokine release. J Ethnopharmacol. 2005 Jan 4; 96(1-2): 71-7.

181. Zhao G., Kan J., Li Z., Chen Z. Characterization and immunostimulatory activity of an (1—>6)-a-D-glucan from the root of Ipomoea batatas. Int Immunopharmacol. 2005 Aug; 5(9): 1436-45.

182. Zhang G. L., Wang Y. H„ Ni W., Teng H. L., Lin Z. B. Hepatoprotective role of Ganoderma lucidum polysaccharide against BCG-induced immune liver injury in mice. World J Gastroenterol. 2002 Aug; 8(4): 728-33.