Лесоводственно-биологические основы выращивания in vitro саженцев березы пушистой в условиях стимулирующего воздействия наночастиц оксида меди тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 00.00.00, кандидат наук Евтушенко Надежда Александровна

• Евтушенко Надежда Александровна
• кандидат наук
• 2024

Оглавление диссертации кандидат наук Евтушенко Надежда Александровна

ОБЩАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА РАБОТЫ

1 КРАТКИЙ ОБЗОР СОСТОЯНИЯ ПРОБЛЕМЫ ИССЛЕДОВАНИЯ

1.1 Клональное микроразмножение древесных культур для интенсивного лесоводства

1.2 Проблемы культивирования растений in vitro

1.2.1 Загрязнение культур тканей растений

1.2.2 Задержка субкультуры и сожженные всходы

1.2.3 Потемнение культур растительных тканей

1.2.4 Трудности с укоренением in vitro и последующей акклиматизацией

1.2.5 Сомаклональные вариации

1.3 Наночастицы при культивировании растений in vitro

1.3.1 Наночастицы для стерилизации эксплантов

1.3.2 Наночастицы для индукции каллуса, органогенеза, роста побегов и укоренения

1.3.3 Влияние наноматериалов на сомаклональную изменчивость

1.4 Береза пушистая

1.4.1 Ботаническое описание

1.4.2 Хозяйственное значение

2 ОБЪЕКТЫ И МЕТОДИКИ ИССЛЕДОВАНИЙ

2.1 Синтез и характеризация наночастиц CuO

2.2 Получение и исследование питательных сред, содержащих наночастицы CuO

2.3 Методика оценки антифугальной активности наночастиц CuO

2.4 Исследование эффектов наночастиц CuO в технологии клонального микроразмножения березы пушистой

2.4.1 Получение эксплантов

2.4.2 Этап введения в культуру in vitro

2.4.3 Мультипликация (размножение)

2.4.4 Укоренение

2.4.5 Адаптация (пересадка в субстрат)

2.5 Исследование гистоморфологических и биохимических параметров 53 проростков в условиях in vitro

2.5.1 Анализ гистоморфологических показателей проростков

2.5.2 Анализ биохимических показателей проростков

2.6 Анализ маркеров устойчивости растений березы к неблагоприятным условиям окружающей среды и фитопатогенам

2.6.1 Постановка эксперимента по воздействию засоления

2.6.2 Постановка эксперимента по воздействию фитопатогена

2.6.3 Выделение РНК

2.6.4 Качественное и количественное исследования РНК

2.6.5 Постановка обратной транскрипции

2.6.6 Подбор праймеров к генам устойчивости березы

2.6.7 Проведение ПЦР в реальном времени

2.7 Оценка бионакопления наночастиц CuO в тканях растений

2.8 Оценка экономической эффективности

3 ХАРАКТЕРИЗАЦИЯ ПОЛУЧЕННЫХ НАНОЧАСТИЦ CuO, СУСПЕНЗИЙ И КУЛЬТИВАЦИОННЫХ СРЕД С НАНОЧАСТИЦАМИ

3.1 Характеризация наночастиц и суспензии CuO

3.2 Исследование питательных сред, содержащих наночастицы CuO

4 АНТИФУГАЛЬНАЯ АКТИВНОСТЬ НАНОЧАСТИЦ CuO

5 ИССЛЕДОВАНИЕ ЭФФЕКТОВ НАНОЧАСТИЦ CuO В ТЕХНОЛОГИИ КЛОНАЛЬНОГО МИКРОРАЗМНОЖЕНИЯ БЕРЕЗЫ ПУШИСТОЙ

5.1 Влияние наночастиц CuO на экспланты березы на стадии введения в

культуру in vitro

5.2 Влияние наночастиц CuO на этапе мультипликации

5.3 Влияние наночастиц CuO на этапе укоренения

5.4 Оценка приживаемости микроклонов березы при переводе в условия закрытого грунта

6 ГИСТОМОРФОЛОГИЧЕСКИЕ И БИОХИМИЧЕСКИЕ ПАРАМЕТРЫ ПРОРОСТКОВ В УСЛОВИЯХ IN VITRO

6.1 Гистоморфологическое исследование

6.2 Биохимическое исследование

7 АНАЛИЗ МАРКЕРОВ УСТОЙЧИВОСТИ РАСТЕНИЙ БЕРЕЗЫ К НЕБЛАГОПРИЯТНЫМ УСЛОВИЯМ ОКРУЖАЮЩЕЙ СРЕДЫ И ФИТОПАТОГЕНАМ

8 ОЦЕНКА БИОНАКОПЛЕНИЯ НАНОЧАСТИЦ CuO В ТКАНЯХ РАСТЕНИЙ

9 ПРАКТИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ ПО МОДИФИКАЦИИ МЕТОДИКИ КЛОНАЛЬНОГО МИКРОРАЗМНОЖЕНИЯ БЕРЕЗЫ ПУШИСТОЙ С ИСПОЛЬЗОВАНИЕМ НАНОЧАСТИЦ ОКСИДА МЕДИ И ЭКОНОМИЧЕСКОЕ ОБОСНОВАНИЕ ПРИМЕНЕНИЯ МЕТОДИКИ

9.1 Практические рекомендации по модификации методики клонального микроразмножения березы пушистой с использованием наночастиц оксида меди

9.2 Экономическое обоснование применения методики

ОСНОВНЫЕ ВЫВОДЫ

СПИСОК АББРЕВИАТУР И ОБОЗНАЧЕНИЙ

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

123

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Лесоводственно-биологические основы выращивания in vitro саженцев березы пушистой в условиях стимулирующего воздействия наночастиц оксида меди»

ОБЩАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА РАБОТЫ

Актуальность темы. Получение качественного посадочного материала для искусственного лесовосстановления и защитного лесоразведения в достаточном количестве является для регионов РФ актуальнейшей задачей. Неоспорима необходимость поиска новых эффективных, инновационных технологий ускоренного получения здорового посадочного материала древесных пород в условиях in vitro. Практическая реализация концепции клонального лесоразведения может привести к созданию более продуктивных и генетически разнообразных лесов (Thompson, 1984). Показано, что использование посадочного материала, полученного с помощью техники клонального микроразмножения с применением нанотехнологических подходов позволяет снизить производственные затраты на лесонасаждение и лесовосстановление и сделать облеснение территорий более экономически эффективным (Sijacic-Nikolic et al., 2020).

Мелколиственные леса (в составе насаждений которых доминируют породы с мелкими листьями - берёзы, осины, ольхи) играют важную роль в лесном покрове: улучшают качество почв, выполняют противоэрозионную и водорегулирующую функции, участвуют в стоке атмосферной углекислоты, формируют местообитания для многих видов живых организмов, поддерживают биоразнообразие, обладают высокой продуктивностью (Беляева и др., 2022). Береза является пионерным видом, быстро заселяющим пустые участки, впоследствии она заменяется более долгоживущими видами (Денисов, 1979). Береза положительно влияет на почвенные микроорганизмы и ферментативную активность, питательные вещества почвы и интенсивность биологического круговорота, а также обладает большим потенциалом для

фиторемедиации загрязненных почв (Jonczak et al., 2023; Jonczak et al., 2020) Древесина березы используется в различных областях промышленности, из нее изготавливаются строительные и отделочные материалы: фанера (березовая фанера составляет 95 процентов производства в РФ), шпон, строительные детали, фурнитура, паркетные доски и многое другое. Предполагается, что спрос на березовую фанеру к 2030 году вырастет на 2 млн. куб. метров преимущественно за счет рынков России и Европы (Распоряжение Правительства РФ от 11.02.2021 N 312-р). В химической отрасли из березовых опилок производят фурфурол, ксилозу и ксилит (Кузнецов и др., 2005; Клещевников и др., 2015).

Одной из ключевых задач Стратегии развития лесного комплекса Российской Федерации до 2030 года (Распоряжение Правительства Росси йской Федерации от 11.02.2021 N 312-р), главной целью которой является достижение устойчивого управления лесами, инновационного и эффективного использования, охраны, защиты и воспроизводства лесов, является совершенствование методов выращивания лесных культур, в том числе березы.

Имеется значительное число исследований, посвященных использованию нанотехнологий в культуре тканей растений. Применение наночастиц (частиц размером менее 100 нм) в культуре in vitro показало возможность устранения микробных контаминантов, выявило положительную роль наночастиц в индукции каллуса, соматическом эмбриогенезе, органогенезе, генетической трансформации, сомаклональной вариации и производстве вторичных метаболитов (Mahajan et al., 2022). В частности, отмечается мощное противомикробное (Ma et al., 2022; Zakharova et al., 2015; Godymchuk et al., 2015; Захарова и др., 2018; Zakharova et al., 2019) и ростостимулирующее (Рахимол и др., 2021; Malik et al., 2021; Zakharova et al., 2020; Talankova-Sereda et al., 2016) действие наночастиц оксида меди в условиях культуры тканей растений in vitro. Однако применение препаратов наночастиц CuO в клональном микроразмножении березы пушистой для

получения высококачественного посадочного материала до сих пор не получило экспериментального обоснования.

Целью исследования являлось изучение влияния наночастиц CuO в составе культивационных сред на рост и развитие микропроростков березы пушистой (Betula pubescens Ehrh., 1789) по морфометрическим, гистоморфологическим и биохимическим показателям с оценкой генноэкспресионных эффектов и бионакопления меди в тканях растений для разработки теоретических и практических основ использования нанопрепаратов CuO в клональном микроразмножении этой лесной культуры.

Задачи:

1. Разработать методику введения препаратов наноразмерных частиц оксида меди в среды для in vitro культивирования микропроростков березы пушистой.

2. Провести анализ антифунгальных эффектов наночастиц CuO.

3. Выявить морфометрические и гистоморфологические изменения, а также оценить сохранность растений березы пушистой в ходе клонального микроразмножения на средах, содержащих наночастицы CuO.

4. Исследовать биохимические и генноэкспресионные реакции микропроростков березы пушистой на наночастицы CuO в составе микроклональных сред, оценить бионакопление наночастиц в тканях растений.

5. Разработать практические рекомендации по модификации методики клонального микроразмножения березы пушистой с использованием наночастиц CuO и выполнить экономическое обоснование применения методики.

Научная новизна. Впервые, применительно к объекту исследования, выявлены положительные эффекты воздействия наночастиц CuO на приживаемость и морфометрические показатели, а также устойчивость к фитопатогенам. Впервые на основе оценки гистоморфологических хараткеристик устьиц, исследования активности каталазы и содержания в

тканях пролина, а также анализа генетических маркеров стрессоустойчивости выявлены закономерности, лежащие в основе механизмов формирования адаптивных свойств микропроростков березы пушистой под воздействием наночастиц оксида меди. Разработана оригинальная методика введения наночастиц CuO в культивационные среды для микроклонального размножения растений.

Теоретическая и практическая значимость работы. Результаты работы вносят вклад в развитие современных представлений об эффектах и механизмах воздействия наночастиц на основе переходных металлов на древесные растения на морфометрическом, гистоморфологическом, биохимическом и молекулярно-генетическом уровнях. Получены новые данные, касающиеся фунгицидных свойств наночастиц оксида меди и их способности к бионакоплению в тканях древесных растений. С практической стороны разработана модифицированная методика клонального микроразмножения березы пушистой с использованием наночастиц оксида меди и экономически обоснованы перспективы ее применения в ходе in vitro получения посадочного материала этой лесной культуры. Разработанный научно-технический подход защищен патентом на изобретение 2780830 C1 от 04.10.2022 «Способ стерилизации эксплантов березы in vitro с использованием наночастиц оксида меди» (Гродецкая и др., 2022). Результаты работы могут найти применение при разработке учебных и методических материалов по таким дисциплинам, как селекция и семеноводство лесных культур, биотехнологии растений.

Методология и методы исследования. При подготовке диссертации были использованы как классические, так и современные высокотехноогичные исследовательские методы, относящиеся к биотехнологии, нанотехнологии, морфологии растений, микробиологии, гистологии, биохимии, молекулярной биологии, а также статистическому анализу.

Защищаемые положения.

Использование водного коллоидного раствора наночастиц оксида меди в концентрации 4,5 мг/л на 10-20% увеличивало приживаемость проростков березы пушистой, на 15% - число стерильных эксплантов (вероятно, за счет выявленных антифунгальных свойств наночастиц CuO), на 41,7% -коэффициент размножения, а также положительно влияло на прирост побегов и число листьев на различных стадиях культивирования in vitro и в условиях закрытого грунта.

В основе повышения адаптивных свойств микропроростков березы пушистой под воздействием наночастиц оксида меди лежат такие механизмы, как рост экспрессии генов стрессустойчивости pal, DREB2, lea8 и, особенно, генов PR-10 и PR-1 в 5 и 13 раз соответственно в условиях искусственного заражения альтернариозом; активация антиоксидантной системы растений -увеличение активности каталазы на 52,6% и повышение концентрации аминокислоты пролин на 79,8%; гистоморфологические изменения -уменьшение размеров устьичных щелей при значительном росте их плотности на единицу площади листа - на 48,5%.

Разработанная модифицированная методика клонального микроразмножения березы пушистой с использованием наночастиц оксида меди и экономическое обоснование эффективности ее практического применения.

Личный вклад автора. Автором лично проводились экспериментальные исследования, осуществлялась статистическая обработка и анализ полученных результатов, формулировались выводы. Степень личного участия составляет не менее 90%.

Степень достоверности и апробация результатов. Достоверность результатов подтверждается использованием современных методик исследования, большого объема экспериментального материала, методов статистической обработки полученных данных. Результаты работы апробированы в ходе участия в 5 научных конференциях: Конференция:

«Подготовка кадров в условиях перехода на инновационный путь развития лесного хозяйства» (Воронеж, 2021); Международный лесной форум по лесным экосистемам как глобальному ресурсу биосферы: вызовы, угрозы, решения, лесное хозяйство FORESTRY 2020-2023 (Воронеж, 2020, 2021, 2022); III Международная научно-практическая конференция «Графен и родственные структуры: синтез, производство и применение» (Тамбов, 2019).

Публикации. Автором диссертационного исследования опубликовано 5 статей в рецензируемых изданиях, индексируемых в международных наукометрических базах Web of Science и Scopus, а также 3 статьи в журналах, входящих в перечень ВАК, в общей сложности 11 работ.

Структура и объем работы. Диссертационная работа включает такие разделы, как введение, 9 глав, выводы, список аббревиатур и обозначений, перечень используемой литературы. Работа изложена на 150 страницах машинописного текста, включает в себя 16 таблиц, а также 34 рисунка. Список использованной литературы содержит 238 источников, среди которых 189 зарубежных.

Благодарности. Автор выражает искреннюю благодарность коллективу лаборатории анализа полимеразной цепной реакции ВГЛТУ имени В.Ф. Морозова и лично к.б.н. П.М. Евлакову, а также коллективу Научно-исследовательского института экологии и биотехнологий ТГУ имени Г.Р. Державина и лично к.б.н. О.В. Захаровой за помощь в подготовке данной работы.

Работа выполнена при поддержке Российского фонда фундаментальных исследований (проект № 17-04-00315А).

1 КРАТКИЙ ОБЗОР СОСТОЯНИЯ ПРОБЛЕМЫ ИССЛЕДОВАНИЯ

1.1 Клональное микроразмножение лесных культур в лесном

хозяйстве

Достижения в области культуры клеток и тканей привели к созданию принципиально нового метода вегетативного размножения - клонального микроразмножения (получение неполовым путем растений, генетически идентичных исходному экземпляру в условиях in vitro). В основе метода лежит способность растительных клеток реализовывать присущую им тотипотентность, то есть под влиянием экзогенных воздействий давать начало целому растительному организму.

Несмотря на более чем вековое использование эффективных методов биотехнологиии, микроразмножение продолжает оставаться важным инструментом крупномасштабного производства клональных проростков нескольких важных видов растений, которые сохраняют генетическую верность и свободны от вредителей. В некоторых случаях микроразмножение является единственным методом, который поддерживает сохранение и повышает экономическую ценность конкретных сельскохозяйственных видов. Микрклональное размножение растений позволило решить многие фитосанитарные задачи, расширило и обеспечило доступ к высококачественным растительным культурам для производителей из разных стран и экономических слоев, что способствовало расширению сельскохозяйственного производства в этом и прошлом столетиях (Cardoso et al., 2018).

Метод клонального микроразмножения, имеет ряд существенных преимуществ перед традиционными способами размножения растений и позволяет:

- ускорить процесс селекциии - сроки получения товарной продукции сокращаются до 2 - 3 лет, вместо традиционных 10 - 12 лет;

- получить вегетативно неразмножаемые или трудноразмножаемые растения;

- ускорить переход от ювенильной к репродуктивной фазе развития при выращивании культур с длительной ювенильной фазой;

- за короткий промежуток времени получить большое количество оздоровленного растительного материала генетически идентичного материнскому;

- получить максимально большое число растений с единицы площади;

- осуществлаять круглогодичное культивирование растений в лабораторных условиях;

- исключать воздействие неблагоприятных абиотических и биотических факторов, так как размножение растений ведется практически без контакта с внешней средой;

- длительное время (1-3 года) сохранять растительный материал in vitro, без пересадки на свежую питательную среду;

- создавать банки длительного хранения ценных форм растений и отдельных их органов;

- разрабатывать способы криосохранения оздоровленного растительного материала (Жиленкова и Горлова, 2019).

В 1902 г Готлибом Хаберландтом в обращении к Немецкой академии наук были предложены теоретические основы культивирования тканей растений (Haberlandt, 1902). В безуспешных экспериментах с культурой изолированных фотосинтезирующих клеток листьев и других функционально различных клеток, он предсказал, что можно успешно культивировать искусственные эмбрионы из вегетативных клеток. Таким образом, он четко установил понятие тотипотентности и указал, что с помощью нового экспериментального подхода культивирования изолированных растительных

клеток в питательном растворе можно исследовать важные проблемы (Thorpe, 2006).

1940 - 1960 годы стали временем для разработки новых технологий и совершенствования уже имеющихся. Применение кокосовой воды позволило культивировать молодые эмбрионы (Overbeek et al., 1941) и другие растительные ткани, были также получены каллусные культуры многочисленных видов древесных и травяных растений (Gautheret, 1985). В это время было установленоо, что клетки в процессе культивирования претерпевают различные изменения, включая потерю чувствительности к применяемому ауксину (Gautheret et al., 1942, 1955; Nobecourt, 1955), а также показана изменчивость меристем, образующихся из каллуса.

Тем не менее, именно в этот период получили широкое развитие большинство методов in vitro, используемых сегодня.

Исследования Скуга и Тсуи (Skoog and Tsui, 1948) показали, что добавление аденина и большого количества фосфата позволяет культивировать немеристематические сердцевинные ткани и производить побеги и корни. Последующие работы с использованием нуклеиновых кислот привели к открытию кинетина - первого цитокинина, выделенного Миллером с коллегами, как соединение из автоклавированных сперматозоидов ДНК сельди, способствующее делению клеток (Miller, 1955) Доступность кинетина позволило увеличить количество видов, которые можно было культивировать бесконечно. Также было установлено, что баланс ауксина и кинетина в среде влияет на морфлогическое развитие табачного каллуса (Skoog and Miller, 1957). Так, высокий уровень ауксина по сравнению с благоприятным для укоренения содержанием кинетина приводил к образованию побегов, а промежуточные уровни - к пролиферации каллуса или ткани раневой паренхимы. Было показано, что эта морфогенетическая модель работает у многих видов (Evans et al., 1981)

Самые ранние питательные среды, используемые для выращивания растительных тканей in vitro, были основаны на составах, используемых для

целых растений, среди которых чаще всего использовались раствор Кнопа и раствор Успенского (Heller, 1953). Однако эти растворы не обеспечивали оптимальный рост тканей, и часто требовались сложные добавки, такие как дрожжевой экстракт, белковые гидролизаты и кокосовая вода (Thorpe, 2006). Используя другой подход, основанный на исследовании золы табачного каллуса, Мурасиге и Скуга разработали новую среду (МС), концентрация некоторых солей в которой в 25 раз превышала содержание их в растворе Кнопа (Murashige and Skoog, 1962). Среда имела очень высокое содержание нитратов и аммония, а также увеличенный набор микроэлементов. Разаработанная рецептура позволила расширить перечень видов растений, ктороые стало возможно культивировать in vitro (Gamborg et al., 1976). Состав среды МС в настоящее время является наиболее широко используемой питательной средой в культуре тканей растений.

Первые исследования, в которых упоминалась способность камбиальных тканей некоторых видов сосны и вяза к каллусогенезу in vitro, были представлены в середине 20-х годов XX века и связаны с именем французского учёного Готре. В дальнейших работах была показана способность различных тканей вяза к образованию адвентивных почек, при этом, стоит отметить, не удалось стимулировать дальнейшй рост и формирование побегов. Лишь к середине 60-х годов Матесом были получены первые регенеранты осины, которые удалось довести до культивирования в почве (Тимофеева и Невмержицкая, 2012).

В отличие от традиционных методов размножения, при которых из каждого исходного черенка, воздушного отводка или трансплантата создается только одна копия, методы культуры тканей производят несколько копий на культуру. В настоящее время доступна лишь ограниченная информация о стоимости и эффективности материала, размножаемого вегетативно. Хотя концепция клонального лесовосстановления может напугать некоторых лесоводов, ее использование может привести к созданию более продуктивных

и генетически разнообразных лесов, чем это возможно сейчас (Thompson, 1984).

Плантационное лесоводство является основным источником сырья для промышленных и бытовых изделий, обеспечивает возобновляемую энергию, волокно и древесину. Успешное плантационное лесное хозяйство зависит от эффективных исследований и разработок, ведущих к технологическому прогрессу. При создании плантаций твердых пород микроразмножение является предпочтительным способом для производства качественного посадочного материала из-за его очень высокой скорости размножения с мгновенным получением лесохозяйственной выгоды. Интеграция микроразмножения в улучшение деревьев имеет важное значение для репликации улучшенного генетического материала и быстрого выпуска качественных саженцев. Кроме того, размножение in vitro необходимо также для омоложения продуктивных клонов, которые трудно укоренить; спасения важных половозрелых особей и естественных гибридов; и производства исходных растений для создания банка клонов и сохранения важной зародышевой плазмы (Yasodha et al., 2004).

Плантационное лесное хозяйство, как интродуцированных, так и аборигенных видов, предполагает использование генетически усовершенствованных посадочных материалов, полученных в результате программ генетического улучшения деревьев. Основной задачей селекционера деревьев является быстрая передача постоянно улучшающегося материала из программ селекции на плантации. Основным методом достижения таких переносов является использование семян из садов или клональное размножение. Поскольку открытые опыляемые сады не подходят для получения генетически чистых культур, для получения выбранных генотипов обычно используется клональное микроразмножение.

Как и в случае с другими группами растений, многие исследования показывают, что микроразмножение возможно и на лесных деревьях; однако, за некоторыми исключениями, традиционные методы in vitro пока не

практичны и экономически нежизнеспособны для большинства лесных культур. Поэтому необходимо усовершенствовать существующие процедуры и расширить их масштабы. Основным препятствием для использования процедур in vitro в лесном хозяйстве является распространенное мнение о том, что с экологической точки зрения необходимо сохранять генетическое разнообразие лесов; отсюда и традиционное использование смешанных популяций саженцев для лесонасаждений. Существуют три основных исключения, для которых применение микроразмножения становится наиболее актуальным: (1) методы размножения in vitro имеют решающее значение в селекционной работе, как для ускорения процесса отбора происхождения, так и для создания отобранных материнских деревьев для дальнейшего разведения; (2) однородность деревьев (т. е. клональное размножение) желательна там, где лесоразведение практикуется для промышленных целей, например, для производства целлюлозы или специализированной древесины (например, определенных генотипов тополя и эвкалипта). В этих случаях микроразмножение может конкурировать с традиционными методами вегетативного размножения; (3) всякий раз, когда существует необходимость в быстром и крупномасштабном выращивании отдельных деревьев для лесонасаждения (Altman, 1997).

В России работы по культивированию древесных пород in vitro ведутся исследователями НИИ лесной генетики, селекции биотехнологии (г. Воронеж), в Институте леса КарНЦ РАН (г. Петрозаводск), в НИИ лесного хозяйства (г. Санкт-Петербург), в Институте биоорганической химии (г. Пущино) и др. (Бабикова и др., 2014).

К примеру, учеными из ФГБНУ «Северо - Кавказский федеральный научный центр садоводства, виноградарства, виноделия» были подобраны оптимальный состав питательной среды и сроки отбора эксплантов для введения в условия in vitro для выращивания эксплантов клоновых подвоев подвоев косточковых культур. При внесении эксплантов в культуру in vitro во второй декаде мая удалось получить высокий уровень регенерации

эксплантов: у подвоя ПК СК 1 - 94,6 %, у подвоя АИ 1 - 78,2 %, у ПК СК 2 -80,4 %, у Гизелы 5 (контроль) - 85,7 % (Vinter et al., 2020). Другими авторами показано, что для большинства использованных в исследовании сортов яблони наиболее благоприятной средой является среда Кворина-Лепуавра, содержащая 2,0 мг/л 6- бензиламинопурина (Tashmatova et al., 2021). В Биолого-почвенном институте Дальневосточного отделения РАН начиная с 2012 года ведутся работы по клональному микроразмножению древесных растений. Кроме каллусных культур в коллекции института имеются трансгенные и трансформированные линии рубии, женьшеня, тиса и др., а также трансформированные корни кодонопсиса и гиностеммы. В рамках программы по восстановлению приморской популяции женьшеня создана фондовая коллекция дикорастущего P. ginseng C.A. Meyer, на базе, которой разрабатываются технологии возрождения природных популяций культуры и отбора маточных растений для реинтродукции (Бабикова и др., 2014).

В целом, прогнозировать успешное внедрение культивирования in vitro древесных пород в практику плантационного лесовыращивания позволяют результаты многолетних исследований НИИ лесной генетики и селекции по культурам ив, гибридных тополей и осины (Машкина и др.,1999, 2000, 2010), работы НИИ лесного хозяйства по получению триплоидной осины и различных клонов березы (Бовичева и др., 2006; Жигунов и др., 2009; Жигунов, 2013), результаты исследований Института леса КарНЦ РАН по получению различных видов березы (Бондаренко и др., 2011), а также ив и ясеня в ИБХ РАН (Кравченко и др., 2012).

1.2 Проблемы культивирования растений in vitro

После реализации теории тотипотентности Хаберландта культивирование растений in vitro стало неотъемлемой частью достижений в области исследований растений. Методы культивирования тканей растений

позволяют осуществлять тщательный мониторинг и управление ростом и развитием растений, а наличие контролируемой среды in vitro позволяет анализировать конкретные источники вариаций и манипулировать ростом на уровне органов, тканей и клеток. Эти и другие преимущества придали культуре тканей и ее применению первостепенное значение. Теперь стало возможным понять рост растений и лежащие в его основе явления in vitro. Аспекты роста растений, которые почти не были понятны до развития науки о культуре тканей, такие как метаболизм и взаимодействие растительных гормонов, а также их физиологические эффекты, теперь хорошо документированы.

Разработка протоколов культуры тканей - это строгая процедура, которая включает оптимизацию различных химических, физических и экологических факторов. Он предполагает выращивание растений за пределами их естественной среды обитания. Искусственные условия выращивания ни в коем случае не являются идеальной заменой естественных. Более того, различия в физиологии и требованиях к росту среди различных растений требуют оптимизации протоколов для отдельных видов (Bairu et al.,2011).

Методы клонального микроразмножения, несомненно, имеют большое количество преимуществ, при этом имеются у них и недостатки. К примеру, они требуют значительных затрат ручного труда, причем более 50% времени тратится на работы, не связанные с растительным материалом. Кроме технических сложностей, клональное микроразмножение имеет много биологических проблем (Деменко, 2005). Несмотря на усилия по выращиванию растений in vitro и достижения в области культуры тканей растений, применение этого метода по-прежнему сдерживается различными физиологическими проблемами и проблемами развития. Проблемы варьируются от аномального роста до повышенной генетической изменчивости/нестабильности (Bairu et al.,2011). Перед исследователями в области клонального микроразмножения стоят две основные проблемы:

достижение экономически целесообразного коэффициента размножения, а также сведение к минимуму возможных отклонений от сорта (Деменко, 2005).

Список литературы диссертационного исследования кандидат наук Евтушенко Надежда Александровна, 2024 год

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

1. Abass, A.A. Evaluating the antibacterial effect of cobalt nanoparticles against multi-drug resistant pathogens / A.A. Abass, W.A.M. Abdulridha, W.K. Alaarage, N.H. Abdulrudha, J. Haider //J Med Life. - 2021. - V. 6. - P. 823-833.

2. Abdalla, N.A. A New Aspect for in vitro Propagation of Jerusalem Artichoke and Molecular Assessment Using RAPD, ISSR and SCoT Marker Techniques / M.E. Ragab, S.M. El-Miniawy, N.M. Arafa, H.S. Taha // Egypt. J. Bot. - 2021. - V. 61. - P. 203-218.

3. Abdi, G. H. Nano silver: A novel nanomaterial for removal of bacterial contaminants in valerian (Valeriana officinalis L.) tissue culture / G. H. Abdi, H. Salehiand, M. Khosh-Khui // Acta Physiol. Plant. - 2008. - V. 30. - P. 709 -714.

4. Abou Elyazid, D.M.A. in Vitro Propagation and Acclimatization of Banana Plants: Antioxidant Enzymes, Chemical Assessments and Genetic Stability of Regenerates as a Response to Copper Sulphate / D.M.A. Abou Elyazid, A.M. Salama, A.M.E. Zanaty, N. Abdalla // Plants. - 2021. - V. 10. - P. 1853.

5. Aboulila, A.A. Evaluation of silica nanoparticles (SiO2NP) and somaclonal variation effects on genome template stability in rice using RAPD and SSR markers / A.A. Aboulila, O.A. Galal. // Egyptian journal of genetics and cytology. - 2019. - V. 48. - № 1. - P. 11.

6. Aboulila, A.A. Enhancement of somaclonal variations and genetic diversity using graphite nanoparticles (GtNPs) in sweet potato plants / A.A. Aboulila, O.A. Galal, M.F.M. El-Samahy // African Journal of Biotechnology. -2018. - V. 17. - № 27. - P. 847-855.

7. Acquaah, G. Clonal propagation and in vitro culture / G. Acquaah // Hoboken. NJ. - 2012. - P. 146-170.

8. Adams, J. Cu from dissolution of CuO nanoparticles signals changes in root morphology / J. Adams, M. Wright, H. Wagner, A. Anderson // Plant Physiology and Biochemistry. - 2017. - V. 110. - P.108-117.

9. Aghdaei, M. Effects of silver nanoparticles on Tecomella undulate (Roxh.) Seem / M. Aghdaei, H. Salehi, M. K. Sarmast. // Micropropagation. Adv. Hortic. Sci.. - 2012. - V. 26. - P. 21 -24.

10. Ahamed, M. Synthesis, Characterization, and Antimicrobial Activity of Copper Oxide Nanoparticles / M. Ahamed, H.A. Khan, P. Karuppiah, Al-Dhabi // Journal of Nanomaterials. - 2014. - V. 2014 - P. 637858.

11. Ahmadpoor, F.; Sterilization protocols and the effect of plant growth regulators on callus induction and secondary metabolites production in in vitro cultures Melia azedarach L. / F. Ahmadpoor, N. Zare, R. Asghari, P. Sheikhzadeh // AMB Express. - 2022. - V. 12. - P. 3.

12. Ahmar, S. Advantage of Nanotechnology-Based Genome Editing System and Its Application in Crop Improvement / S. Ahmar, T. Mahmood, S. Fiaz, F. Mora-Poblete, M.S. Shafique, M.S. Chattha, K.H. Jung // Front Plant Sci. - 2021. - V. 12. - P. 663849.

13. Alagarsamy, K. Influence of media supplements on inhibition of oxidative browning and bacterial endophytes of Camellia sinensis var. sinensis / K. Alagarsamy, L.F. Shamala, S. Wei // 3 Biotech. - 2018. - V. 8. - P. 356.

14. Alghamdi, S.S. Micropropagation and germplasm conservation of four chickpea (Cicer arietinum L.) genotypes / S.S. Alghamdi, Y.H. Dewir, M.A. Khan, H. Migdadi, E.H. EL-Harty, A.A. Aldubai // Chil. J. Agric. Res. - 2020. - V. 80. -P. 487-495.

15. Alharby, H. F. Impact of application of zinc oxide nanoparticles on callus induction, plant regeneration, element content and antioxidant enzyme activity in tomato (Solanum lycopersicum Mill.) under salt stress / H. F. Alharby, E. M. R. Metwali, M. P. Fuller, Y. A. Aldhebiani // Arch. Biol. Sci. - 2016. - V. 68. -P. 723 -735.

16. Altman, A. Micropropagation: Clonal Plant Propagation in Vitro. -1997. - P. 25.

17. Antimicrobial Effect of Titanium Dioxide Nanoparticles / C. López de Dicastillo, M. Guerrero Correa, F. B. Martínez [et al.]. - Santiago, Chile: University of Santiago de Chile (USACH), 2020. - 18 p.

18. Arab, M. Effects of antimicrobial activity of silver nanoparticles on in vitro establishment of G*N15 (hybrid of almondxpeach) rootstock / M. Arab, M. Yadollahi, A. Hosseini-Mazinani, S. Bagheri //J. Genet. Eng. Biotechnol. - 2014. -V. 12. - P. 103 -110.

19. Arakha, M. Antimicrobial activity of iron oxide nanoparticle upon modulation of nanoparticle-bacteria interface / M. Arakha, S. Pal, D. Samantarrai // Sci Rep. - 2015. -V. 5. - P. 14813.

20. Avestan S. Application of nano-silicon dioxide improves salt stress tolerance in strawberry plants / S. Avestan, M. Ghasemnezhad, M. Esfahani, C.S. Byrt //Agronomy. - 2019. - V. 9 - P. 246.

21. Awad, K.M. In vitro Assessment of ZnO Nanoparticles on Phoenix dactylifera L. Micropropagation / K.M. Awad, A. M. W. Al-Mayahi, M. A. Mahdi, A.S.M. Al-Asadi, M. H. Abass // Scientific Journal of King Faisal University (Basic and Applied Sciences). - 2020. - V. 21. - № 1. - P. 149-161

22. Azizi-Lalabadi, M. Antimicrobial activity of Titanium dioxide and Zinc oxide nanoparticles supported in 4A zeolite and evaluation the morphological characteristic / M. Azizi-Lalabadi, A. Ehsani, B. Divband // Sci Rep. - 2019. - V. 9.

- P. 17439.

23. Bairu, M.W. Physiological and developmental problems encountered by in vitro cultured plants/ M.W. Bairu, M.E. Kane // Plant Growth Regul. - 2011.

- V. 63. - P. 101-103.

24. Bairu, M.W. Somaclonal Variation in Plants Causes and Detection Methods / M.W. Bairu, A.O. Aremu, J. Van Staden // Plant Growth Regulation. -2011. - V. 63. - P. 147-173.

25. Bates, L.S. Rapid determination of free proline for water stress studies / L.S. Bates, R.P. Waldren, I.D. Teare // Plant Soil. - 1973. - V. 39. - P.205-207.

26. Belteky P. Silver nanoparticles: aggregation behavior in biorelevant conditions and its impact on biological activity / P. Belteky, A. Ronavari, N. Igaz, B. Szerencses, I.Y. Toth, I. Pfeiffer // Int. J. Nanomedicine. - 2019. - V. 14. - P.667-687.

27. Bezza, F.A. Fabrication of monodispersed copper oxide nanoparticles with potential application as antimicrobial agents / F.A. Bezza, S.M. Tichapondwa, E.M.N. Chirwa // Sci. Rep. - 2020. - V. 10. - P. 16680.

28. Bruna, T. Silver Nanoparticles and Their Antibacterial Applications / T. Bruna, F. Maldonado-Bravo, P. Jara, N. Caro // Int. J. Mol. Sci. - 2021. - V. 4. -P. 7202.

29. Cantabella, D. Inoculation of in vitro cultures with rhizosphere microorganisms improve plant development and acclimatization during immature embryo rescue in nectarine and pear breeding programs / D. Cantabella, R. Dolcet-Sanjuan, M. Casanovas, C. Solsona, R. Torres, N. Teixido // Sci. Hortic. - 2020. -V. 273. - P. 109643.

30. Cardoso, J.C. Micropropagation in the twenty-first century / J.C. Cardoso, L.T. Sheng Gerald, J.A. Teixeira da Silva // Plant cell culture protocols. -

2018. - № 11. - P. 17-46.

31. Chang S. A simple and efficient method for isolating RNA from pine trees / S. Chang, J. Puryear, J. Cairney // Plant molecular biology reporter. - 1993.

- V. 11. - P. 113-116.

32. Chatterjee A.K. Mechanism of antibacterial activity of copper nanoparticles /A.K. Chatterjee, R. Chakraborty, T. Basu // Nanotechnology. - 2014.

- V. 25. - P. 135101.

33. Chen H., Preparation and antibacterial activities of copper nanoparticles encapsulated by carbon / H. Chen, J. Wu, M. Wu, H. Jia // New Carbon Mater. -

2019. - V.34. - P.382-389.

34. Chutipaijit, S. Titanium dioxide (TiO2) nanoparticles induced callus induction and plant regeneration of Indica rice cultivars (Suphanburi1 and

Suphanburi90)/ S. Chutipaijit, T. Sutjaritvorakul // Digest Journal of Nanomaterials and Biostructures. - 2018. - V.13. - P. 1003-1010.

35. De Araujo, R.C. Acclimatization of Musa spp. seedlings using endophytic Bacillus spp. and Buttiauxella agrestis strain / R.C. De Araujo, F.A. Rodrigues, M.C. Nadal, M.D. Ribeiro, C.A.C. Antonio, V.A. Rodrigues // Microbiol. Res. - 2021. -V. 248. - P. 126750.

36. Dev, R. Standardization of in vitro Hardening Strategies for Tissue Cultured Wine Grape (Vitis vinifera L.) Genotypes / R. Dev, S.K. Singh, V. Dayal, K. Kumar, T. Singh // Int. J. Curr. Microbiol. App. Sci. - 2019. - V. 8. - P. 21082117.

37. Dewir, Y.H. In vitro Rooting of Leguminous Plants: Difficulties, Alternatives, and Strategies for Improvement / Y.H. Dewir, H.N. Murthy, M.H. Ammar, S.S. Alghamdi, N.A. Al-Suhaibani, A.A. Alsadon, K.Y. Paek // Hortic. Environ. Biotechnol. - 2016. - V. 57. - P. 311-322.

38. Dewir, Y.H. Micropropagation of Cattleya: Improved in vitro rooting and acclimatization / Y.H. Dewir, M.E. El-Mahrouk, H.N. Murthy, H.P. Yoeup // Hortic. Environ. Biotechnol. - 2015. - V. 56. - P. 89-93.

39. Dewir, Y.H. Optimization of media formulation for axillary shoot multiplication of the red-peeled sweet potato (Ipomoea batatas Lam.) / Y.H. Dewir, A.A. Aldubai, M.M. Kher, A.A. Alsadon, S. El-Hendawy, N.A. Al-Suhaibani // Abees. Chil. J. Agric. Res. - 2020. - V. 80. - P. 3-10.

40. Dobranszki, J. Influence of aromatic cytokinins on shoot multiplication and their post-effects on rooting of apple cv. Husveti rozmaring / J. Dobranszki, K. Magyar-Tabori, E. Jambor-Benczur, J. Lazanyi, T. Buban, J. Szalai // Int. J. Hortic. Sci. - 2000. - V. 6. - P. 84-87.

41. Dobranszki, J. Micropropagation of apple-A review / J. Dobranszki, J.A. Teixeira da Silva // Biotechnol. Adv. - 2010. - V. 28. - P. 462-488.

42. Dobranszki, J. Model experiments for establishment of in vitro culture by micrografting in apple / J. Dobranszki, E. Jambor-Benczur, I. Hudak, K. Magyar-Tabori // Int. J. Hortic. Sci. - 2005. - V. 1. - P. 47-49.

43. Dumani, Y. Titanium dioxide nanoparticles affect somatic embryo initiation, development, and biochemical composition in Paulownia sp. seedlings / Y. Dumani, S.M.M. Mortazavian, A. Izadi-Darbandi, H. Ramshini, F. Amini // Industrial Crops and Products. - 2022. - V.176. - P. 114398.

44. El-Banna, A.N. Endophytic Bacteria in Banana in Vitro Cultures: Molecular Identification, Antibiotic Susceptibility, and Plant Surviva / A.N. ElBanna, M.E. El-Mahrouk, Y.H. Dewir, M.A. Farid, D.M. Abou Elyazid, H.M. Schumacher // Horticulturae. - 2021. - V. 7. - P. 526.

45. El-Mahrouk, M.E. Micropropagation of Banana: Reversion, Rooting, and Acclimatization of Hyperhydric Shoots / M.E. El-Mahrouk, A.R. El-Shereif, Y.M. Hafez, K.A. Abdelaal, A.S. El-Hendawy, H. Migdadi, R.S. Al-Obeed // HortScience. - 2019. - V. 54. - P. 1384-1390.

46. Evans, D. A. Growth and behavior of cell cultures: Embryogenesis and organogenesis, in Plant Tissue Culture: Methods and Applications in Agriculture / D. A. Evans, W. R. Sharp, C. E. Flick // Academic Press. - 1981. - P. 45-113.

47. Evlakov P.M., Influence of Copper Oxide and Silver Nanoparticles on Microclonal Sprouts of Downy Birch (Betula pubescens Ehrh.) / P.M. Evlakov, O.A. Fedorova, T.A. Grodetskaya, O.V. Zakharova, A.A. Gusev, Yu.A. Krutyakov, O.Yu. Baranov // Nanotechnologies in Russia. - 2020. - V. 15. - № 7-8. - P. 476482.

48. Ewais, E. A. Studies on callus induction, phytochemical constituents and antimicrobial activity of Solanum nigrum L. (Solanaceae) / E. A. Ewais, S. A. Desouky, E. H. Elshazly // Nanosci. Nanotechnol. - 2015. - V. 5. - P. 45 -56.

49. Fakhrfeshani, M. Disinfecting Effects of Nano Silver Fluids in Gerbera (Gerbera jamesonii) / M. Fakhrfeshani, A. Bagheri, A. Sharifi // Capitulum Tissue Culture Journal of Biological & Environmental Sciences. - 2012. - V. 6. - P. 121 -127.

50. Ferreira, M.d.S The Role of Somaclonal Variation in Plant Genetic Improvement: A Systematic Review / M.d.S. Ferreira, A.d.J. Rocha, F.d.S. Nascimento, W.D.d.S. Oliveira, J.M.d.S. Soares, T.A. Rebou?as, L.S. Morais Lino,

F. Haddad, C.F. Ferreira, J.A.d Santos-Serejo // Agronomy. - 2023. - V. 13 - P. 730.

51. Gamborg, O. L. Plant tissue culture media/ T. Murashige, T. A. Thorpe, I. K. Vasil // In Vitro. - 1976. - V.12. - P. 473-478.

52. Gangopadhyay, M. An efficient explant sterilization protocol for reducing microbial contamination of Solanum tuberosum CV / M. Gangopadhyay, S. Nandi, S.K.B. Roy // Basic Appl. Plant Sci. - 2017. - V. 1. - P. 25.

53. García-Ovando, A.E. Biosynthesized nanoparticles and implications by their use in crops: Effects over physiology, action mechanisms, plant stress responses and toxicity / A.E. García-Ovando, J.E.R. Piña, E.U.E. Naranjo, J.A.C. Chávez, K. Esquivel // Plant Stress. - 2022. - V. 6. - P. 100109.

54. Gaspar, T. Vitrification in Micropropagation. In High-Tech and Micropropagation I / T. Gaspar //Biotechnology in Agriculture and Forestry. Germany. -1991. - V. 17. - P. 116-126.

55. Gaucin-Delgado, J.M. CuO-NPs Improve Biosynthesis of Bioactive Compounds in Lettuce / J.M. Gaucin-Delgado, A. Ortiz-Campos, L.G. Hernandez-Montiel // Plants. - 2022. - V. 11. - P. 912.

56. Gautheret, R. J. History of plant tissue and cell culture: A personal account, in Cell Culture and Somatic Cell Genetics of Plants / R. J. Gautheret, I. K. Vasil // Academic Press. - 1985. - Vol. 2. - P. 1-59.

57. Gautheret, R. J. Sur la variabilité des propriétés physiologiques des cultures de tissues végétaux / R. J. Gautheret // Rev. Gén. Bot. 62. - 1955. - P. 5112.

58. Ghorbanpour, M. Multi-walled carbon nanotubes stimulate callus induction, secondary metabolites biosynthesis and antioxidant capacity in medicinal plant Satureja khuzestanica grown in vitro / M. Ghorbanpour, J. Hadian // Carbon. - 2015. - V. 94. - P. 749 -759.

59. Gimenez-Ingalaturre A.C. Contribution to optimization and standardization of antibacterial assays with silver nanoparticles: the culture medium

and their aggregation / A.C. Gimenez-Ingalaturre, E. Rubio, P. Chueca, F. Laborda, P. Goni // J. Microbiol. Methods. - 2022. - V. 203. - P. 106618.

60. Godymchuk, A. Antibacterial Properties of Copper Nanoparticle Dispersions: Influence of Synthesis Conditions and Physicochemical Characteristics / A. Godymchuk, G. Frolov, A. Gusev, O. Zakharova, E. Yunda, D. Kuznetsov, E. Kolesnikov // IOP Conf. Ser.: Mater. Sci. Eng. - 2015. - V. 98. - P. 012033.

61. Gouran, A. Effect of silver nanoparticles on grapevine leaf explants sterilization at in vitro conditions / A. Gouran, M. Jirani, A. A. Mozafari, M. K. Saba, N. Ghaderi, S. Zaheri // 2nd National Conference on Nanotechnology from Theory to Application. - 2014. - P. 1-6.

62. Gregorio, N. Forestry Development in Leyte / N. Gregorio, J. Herbohn, S. Harrison // Philippines: The Central Role of Nurseries. - 2004. - V. 3. - P. 337351.

63. Gudkov, S.V. Do Iron Oxide Nanoparticles Have Significant Antibacterial Properties? / S.V. Gudkov, D.E. Burmistrov, D.A. Serov, M.B. Rebezov, A.A. Semenova, A.B. Lisitsyn // Antibiotics (Basel). - 2021. - V. 10. - P. 884.

64. Haberlandt, G. Kulturversuche mit isolierten Pflanzenzellen / Sitzungsber. - 1902. - №111. - P. 69-92.

65. Hamad, A.M. Effect of sequential subcultures on in vitro proliferation capacity and shoot formation pattern of pineapple (Ananas comosus L. Merr.) over different incubation periods / A.M. Hamad, R.M. Taha // Sci. Hortic. - 2008. - V. 117. - P. 329-334.

66. Hasançebi, S. Micropropagation and root culture of Turkish endemic Astragalus chrysochlorus (Leguminosae) / S. Hasançebi, N.T. Kara, Ö. Çakir, §. Ari // Turk. J. Botany. - 2011. - V. 35. - P. 7.

67. Hassanein, A.M. Effect of anti-ethylene compounds on isoenzyme patterns and genome stability during long term culture of Moringa oleifera / A.M. Hassanein, J.M. Salem, F.A. Faheed, A. El-nagish // Plant Cell Tissue Organ Cult. - 2018. - V. 132. - P. 201-212.

68. Hayat S. Role of proline under changing environments / S. Hayat, Q. Hayat, M.N. Alyemeni // Plant Signal Behav. - 2012. - V. 7. - P. 1456-66.

69. Heller, R. Recherches sur la nutrition minerale des tissus végétaux cultivé in vitro / R. Heller // Ann. Sci. Nat. Bot. Biol. - 1953. - V. 14. - P. 1-223.

70. Hétéro-auxines et cultures de tissus végétaux / R. J. Gautheret // Bull. Soc. Chim. Biol 24. - 1942. - P. 13-41.

71. Hoang, N.N. Effects of supporting materials in in vitro acclimatization stage on ex vitro growth of wasabi plants / N.N. Hoang, Y. Kitaya, T. Shibuya, R. Endo // Sci. Hortic. - 2020. -V. 261. - P. 109042.

72. Isutsa, D.K. A protocol for rooting and growing apple rootstock microshoots / D.K. Isutsa, M.P. Pritts, K.W. Mudge // Fruit Var. J. - 1998. - V. 52. - P. 107-116.

73. Javed, R. Effect of zinc oxide (ZnO) nanoparticles on physiology and steviol glycosides production in micropropagated shoots of Stevia rebaudiana Bertoni / R. Javed, M. Usman, B. Yücesan, M. Zia, E. Gürel // Plant Physiol Biochem. - 2017. - V. 110. - P. 94-99.

74. Jeong, B. R. Direct adventitious shoot regeneration, in vitro flowering, fruiting, secondary metabolite content and antioxidant activity of Scrophularia takesimensis Nakai / B. R. Jeong, I. Sivanesan // Plant Cell, Tissue Organ Cult.. -2015. - V.123. - P. 607 -618.

75. Jevremovic, S. Clonal fidelity of chrysanthemum cultivars after long term micropropagation by stem segment culture / S. Jevremovic, A. Subotic, D. Miljkovic, M. Trifunovic // VII International symposium on in vitro culture and horticultural breeding. Acta Hortic. - 2012. - V. 961. - P. 211-216.

76. Jonczak, J. Soil organic matter transformation influenced by silver birch (Betula pendula Roth) succession on abandoned from agricultural production sandy soil / J. Jonczak, L. Oktaba, E. Pawlowicz // European Journal of Forest Research. -2023. - № 142. - P. 367-379.

77. Jonczak, J. The influence of birch trees (Betula spp.) on soil environment / J. Jonczak, U. Jankiewicz, M. Kondras, B. Kruczkowska, L. Oktaba, J. Oktaba // Forest Ecology and Management. - 2020. - V. 477. - P. 118486.

78. Juarez-Maldonado A. Nanoparticles and nanomaterials as plant biostimulants / A. Juarez-Maldonado, H. Ortega-Ortiz, A.B. Morales-Diaz // Int. J. Mol. Sci. -2019. - V. 20. - P. 162.

79. Jugreet, B.S. Essential oils from 9 exotic and endemic medicinal plants from Mauritius shows in vitro antibacterial and antibiotic potentiating activities / B.S. Jugreet, M.F. Mahomoodally // S. Afr. J. Bot. - 2020. - V. 132. - P. 355-362.

80. Kandhol N. Nanoparticles as potential hallmarks of drought stress tolerance in plants / N. Kandhol, M. Jain, D.K. Tripathi // Physiol. Plant. - 2022. -V. 174. - P. 13665.

81. Karkonen, A. Micropropagation of several Japanes woody plants for horticultural purposes / A. Karkonen // Societas Biologica Fennica. - 1999. - V. 36. - P. 21 - 31.

82. Kasana, R. Antifungal Activity of Copper Oxide Nanoparticles against the Fungal Pathogens Isolated from Arid Environment of Jodhpur / Kasana, R.; Singh, S.; Kumar, P. // International Journal of Current Microbiology and Applied Sciences. - 2021. - V. 9. - P. 901-909.

83. Khamushi, M. An efficient protocol for micropropagation of old cypress of Abarkuh (Cupressus sempervirens var. horizontalis) under in vitro condition / M. Khamushi, M.D. Ardakani, A. Zarei, K.K. Aliabad // Plant Cell Tissue Organ Cult. - 2019. - V. 138. - P. 597-601.

84. Khodakovskaya, M.V. Carbon nanotubes induce growth enhancement of tobacco cells / M.V. Khodakovskaya, K. de Silva, A.S. Biris, E. Dervishi, H. Villagarcia // ACS Nano. - 2012. - V. 6. - № 3. - P. 2128-2135.

85. Kim, D.H. Nanomaterials in plant tissue culture: the disclosed and undisclosed / D.H. Kim, J. Gopal, I. Sivanesan // RSC Adv. - 2017. - V. 7. - P. 36492-36505.

86. Kokina, I. Case Study of Somaclonal Variation in Resistance Genes Mlo and Pme3 in Flaxseed (Linum usitatissimum L.) Induced by Nanoparticles / I. Kokina, I. Mickevica, M. Jermalonoka, L. Bankovska, V. Gerbreders, A. Ogurcovs, I. Jahundovica // Int J Genomics. - 2017. - P. 1676874.

87. Kokina, I. Reaction of Flax (Linum Usitatissimum L.) Calli Culture to Supplement of Medium by Carbon Nanoparticles / I. Kokina, E. Siedevskis, V. Gerbreders, D. Grauda, M. Jermaionoka, K. Valaine, I. Gavarane, I. Pigioka, M. Filipovies, I. Rashal // Proc. Latv. Acad. Sci., Sect. B. - 2012. - V. 66. - P. 200 -209.

88. Krishna, H. Somaclonal variations and their applications in horticultural crops improvement / H. Krishna, M. Alizadeh, D. Singh, U. Singh, N. Chauhan, M. Eftekhari, R.K. Sadh // 3 Biotech. - 2016. - V. 6. - P. 54.

89. Krupa-Malkiewicz, M. Effect of nanosilver (nAg) on disinfection, growth, and chemical composition of young barley leaves under in vitro conditions / M. Krupa-Malkiewicz, J. Oszmianski, S. Lachowicz, M. Szczepanek, B. Jaskiewicz, K. Pachnowska, I. Ochmian // Journal of Integrative Agriculture. - 2019.

- V.18. - P. 1871-1881.

90. Kumari, M. Omics-Based Mechanistic Insight into the Role of Bioengineered Nanoparticles for Biotic Stress Amelioration by Modulating Plant Metabolic Pathways / M. Kumari, S. Pandey, S.K. Mishra // Front. Bioeng. Biotechnol. - 2020. - V. 8. - P. 242.

91. Kundu, M. Negative Electrode Comprised of Nanostructured CuO for Advanced Lithium Ion Batteries / M. Kundu, G. Karunakaran, E. Kolesnikov // J. Clust. Sci. - 2017. - V. 28. - P. 1595-1604.

92. Kushiro, T. The Arabidopsis cyto- chrome P450 CYP707A encodes ABA 8' hydroxylases: key enzymes in ABA ca- tabolism / T. Kushiro, M. Okamoto, K. Nakabayashi, K. Yamagishi, S. Kitamura // The EMBO journal. - 2004. - V. 23.

- №. 7. - P. 1647-1656.

93. Leifert, C., Morris C. E., Waites W. M. / Crit. Rev. Plant Sci. - 1994. -V. 13. - P. 139 -183.

94. Lequeux H. Response to copper excess in Arabidopsis thaliana: impact on the root system architecture, hormone distribution, lignin accumulation and mineral profile / H. Lequeux, C. Hermans, S. Lutts, V. Nathalie // Plant. Physiol. Biochem. - 2010. - V. 48. - P. 673-82.

95. Li, J. Development of a highly efficient callus induction and plant regeneration system for Dendrocalamus sinicus using hypocotyls as explants / J. Li, C. Gao, Y. Miao, Z. Liu, K. Cui // Plant Cell Tissue Organ Cult. - 2021. - V. 145. -P. 117-125.

96. Lin, C. Studies on toxicity of multi-walled carbon nanotubes on Arabidopsis T87 suspension cells / C. Lin, B. Fugetsu, Y. Su, F. Watari // J Hazard Mater. - 2009. - V. 170. - № 2-3. - P. 578-583.

97. Liu, J. Physiological Effects of Copper Oxide Nanoparticles and Arsenic on the Growth and Life Cycle of Rice (Oryza sativa japonica 'Koshihikari') / J. Liu, M. Simms, S. Song, R.S. King, G.P. Cobb // Environmental Science & Technology. - 2018. - V. 52. - P. 13728-13737.

98. Lloyd, G. Commercially-feasible micropropagation of mountain laurel, Kalmia latifolia, by use of shoot-tip culture / G. Lloyd, B. McCown // Int. Plant Propagators Soc. Comb. Proc. - 1980. - V. 30. - P. 421-427.

99. Ma, C. Defense mechanisms and nutrient displacement in Arabidopsis thaliana upon exposure to CeO2 and In2O3 nanoparticles / C. Ma, H. Liu, H. Guo, C. Musante, S. H. Coskun, B. C. Nelson, J. C. White, B. Xing, O. M. Dhankher // Environ. Sci.: Nano. - 2016. - V.3. - P. 1369 -1379.

100. Ma, C. Physiological and Molecular Response of Arabidopsis thaliana (L.) to Nanoparticle Cerium and Indium Oxide Exposure / C. Ma , S. Chhikara , B. Xing , C. Musante , J. C. White, O. P. Dhankher // ACS Sustainable Chem. Eng.. - 2013. - V.1. - P. 768 -778.

101. Magyar-Tabori, K. Effect of cytokinin content of the regeneration media on in vitro rooting ability of adventitious apple shoots / K. Magyar-Tabori, J. Dobranszki, I. Hudak // Sci. Hortic. - 2011. - V. 129. - P. 910913.

102. Mahajan, S. Application of silver nanoparticles in in-vitro plant growth and metabolite production: revisiting its scope and feasibility / S. Mahajan, J. Kadam, P. Dhawal // Plant Cell Tiss Organ Cult. - 2022. - V. 150. - P. 15-39.

103. Mahmoodi S. Copper Nanoparticles as Antibacterial Agents / S. Mahmoodi, A. Elmi, S. Hallaj Nezhadi // J. Mol. Pharm. Org. Process. Res. - 2018.

- V. 6. - P. 1-7.

104. Mahmoud, S.N. Effect of different sterilization methods on contamination and viability of nodal segments of Cestrum nocturnum L. / S.N. Mahmoud, N.K. Al-Ani // Int. J. Res. Studies Biosci. - 2016. - V.4. - №1. - P. 49.

105. Mahna, N. Plant In vitro Culture goes Nano: Nanosilver-Mediated Decontamination of Ex vitro Explants / N. Mahna, S. Z. Vahed, S. Khani, J. Nanomed // J. Nanomed Nanotechol. - 2013. - V.4. -№2. - P. 1000161.

106. Malik, W. A. Exploring potential of copper and silver nano particles to establish efficient callogenesis and regeneration system for wheat (Triticum aestivum L.) / W. A. Malik, I. Mahmood, A. Razzaq, M. Afzal, G. A. Shah, A. Iqbal, M. Zain, A. Ditta, S. A. Asad, I. Ahmad, N. Mangi // GM Crops & Food.

- 2021. - V. 12. - № 1. - P. 564-585.

107. Marttila, S. A barley (Hordeum vulgare L.) LEA3 protein, HVA1, is abundant in protein storage vacuoles / S. Marttila, T. Tenhola, A. Mikkonen // Planta. - 2014. - V. 199. - P. 602-611.

108. Mendonfa, E.G In vitro serial subculture to improve rooting of Eucalyptus urophylla/ E.G Mendonfa, T.R. Batista, V.C. Stein, F.P. Balieiro, R.J. de Abreu, M.F. Pires, P.A. de Souza, L.V. Paiva // New Forest. - 2020. - V. 51. -P. 801-816.

109. Miller, C. O. A cell division factorfrom desoxyribonucleic acid / C. Miller, F. Skoog, M. H. Von Saltza, F. M. Kinetin // Am. Chem. Soc. - 1955. -V.77. - №5. - P. 1392.

110. Moore T.L. Nanoparticle colloidal stability in cell culture media and impact on cellular interactions / T.L. Moore, L. Rodriguez-Lorenzo, V. Hirsch, S. Balog // Chem Soc Rev. - 2015. - V. 44. - P. 6287-305.

111. Munns, R. Mechanisms of salinity tolerance / R. Munns, M. Tester // Annu. Rev. Plant Biol. - 2008. - V. 59. - P. 651-681.

112. Murashige, T. A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures / T. Murashige, F. Skoog // Physiol. Plant. - 1962. -V.15. - P. 473-497.

113. Nair P.M.G., Chung I.M. Impact of copper oxide nanoparticles exposure on Arabidopsis thaliana growth, root system development, root lignificaion, and molecular level changes / P.M.G. Nair, I.M. Chung // Environ Sci Pollut Res. - 2014. - V. 21. - P. 12709-22.

114. Németh Z. Quality by Design-Driven Zeta Potential Optimisation Study of Liposomes with Charge Imparting Membrane Additives / Z. Németh, I. Csoka, R. Semnani Jazani, B. Sipos // Pharmaceutics. - 2022. - V. 14. - P. 1798.

115. Nobécourt, P. Variations de la morphologie et de la structure de cultures de tissues végétaux / Ber. Schweiz. Bot. Ges. - 1955. - V.65 - P. 475-480.

116. Norton, M.E. Change in shoot proliferation with repeated in vitro subculture of shoots of woody species of Rosaceae / M.E. Norton, C.R. Norton // Plant Cell Tissue Organ Cult. - 1986. - V. 5. - P. 187-197.

117. Overbeek, J., Factors in coconut milk essential for growth and development of very young Datura embryos / J. Overbeek, M. E. Conklin, A. F. Blakeslee // Science. - 1941. - V. 94. - P. 350-351.

118. Pääkkönen E. Induction of genes for the stress proteins PR-10 and PAL in relation to growth, visible injuries and stomatal conductance in birch (Betula pendula) clones exposed to ozone and/or drought / Pääkkönen E. Et al. //The New Phytologist. - 1998. - V.138. - № 2. - P. 295-305.

119. Pandey, S. Effects of sodium nitroprusside and growth regulators on callus, multiple shoot induction and tissue browning in commercially important

Valeriana jatamansi Jones / S. Pandey, S. Sundararajan, S. Ramalingam, B. Pant // Plant Cell Tissue Organ Cult. - 2020. - V. 142. - P. 653-660.

120. Pariona N. Green-synthesized copper nanoparticles as a potential antifungal against plant pathogens / N. Pariona, A.I. Mtz-Enriquez, D. Sanchez-Rangel // RSC Adv. - 2019. - V. 9. - P. 18835-18843.

121. Pawelkowicz, M.E. Molecular insight into somaclonal variation phenomena from transcriptome profiling of cucumber (Cucumis sativus L.) lines / M.E. Pawelkowicz, A. Skarzynska, T. Mroz, E. Bystrzycki, W. Pl^der // Plant Cell Tissue Organ Cult. - 2021. - V. 145. - P. 239-259.

122. Peng, X. Effect of subculture times on genetic fidelity, endogenous hormone level and pharmaceutical potential of Tetrastigma hemsleyanum callus / X. Peng, T.-T. Zhang, J. Zhang // Plant Cell Tissue Organ Cult. - 2015. - V. 122. - P. 67-77.

123. Qi M. Nano-TiO2 improve the photosynthesis of tomato leaves under mild heat stress / M. Qi, Y. Liu, T. Li // Biol. Trace Elem. Res. - 2013. - V. 156. -P. 323-328.

124. Rai M. Copper and copper nanoparticles: Role in management of insect-pests and pathogenic microbes / Rai M., Ingle A.P., Pandit R. // Nanotechnol. Rev. - 2018. - V. 7. - P. 303-315.

125. Rakgotho T. Green-synthesized zinc oxide nanoparticles mitigate salt stress in Sorghum bicolor / T. Rakgotho, N. Ndou, T. Mulaudzi // Agriculture. -2022. - V. 12. - P. 597.

126. Ranghoo-Sanmukhiya, V.M. Somaclonal Variation and Methods Used for Its Detection / V.M. Ranghoo-Sanmukhiya. - Singapore: Springer, 2021. - 18 p.

127. Rani, A. The future of plant pathogen diagnostics in a nursery production system / A. Rani, N. Donovan, N. Mantria // Biosens. Bioelectron. -2019. - V. 145. - P. 111631.

128. Ray, S.S. Biotic Contamination and Possible Ways of Sterilization: A Review with Reference to Bamboo Micropropagation / S.S. Ray, N. Ali // Braz. Arch. Biol. Technol. - 2016. - V. 59. - P. 1-11.

129. Remphrey, W.R. In vitro branching in relation to repeated subculture in two cultivars of Potentilla fruticose / W.R. Remphrey, C.E. Palmer, M.J. Blouw // Plant Cell Tissue Organ Cult. -1993. - V. 32. - P. 235-240.

130. Rescalvo-Morales, A. Telomere length in Agave tequilana Weber plants during the in vitro to ex vitro transition / A. Rescalvo-Morales, K. Monja-Mio, M.L. Robert, L.F. Sanchez-Teyer // Plant Cell Tissue Organ Cult. -2019. - V.136. - P. 133-140.

131. Rezali, N.I. The effects of different strength of MS media in solid and liquid media on in vitro growth of Typhonium flagelliforme / N.I. Rezali, N.J. Sidik, A. Saleh, N.I. Osman, N.A.M. Adam // Asian Pac. J. Trop. Biomed. - 2017. - V. 7. - P. 151-156.

132. Rini D.W. Sequence variation of DREB2 gene as a potential molecular marker for identifying resistant plants toward drought stress / Rini D.W. et al. // Nusantara Biosci- ence. - 2019. - V. 11. - № 1. - P. 35-43.

133. Rostami, A. A. Nano-Silver Particles Eliminate the in vitro Contaminations of Olive 'Mission' Explants Asian J. / A. A. Rostami, A. Shahsavar // Plant Sci. - 2009. - V.8. - P. 505 -509.

134. Sardar, M. Fungicidal synergistic effect of biogenically synthesized zinc oxide and copper oxide nanoparticles against Alternaria citri causing citrus black rot disease / W. Ahmed, A.l. Ayoubi, S. Nisa, S. Bibi, // Saudi Journal of Biological Sciences. - 2022. - V. 29. - P. 88-95.

135. Sarmast, M. K. Silver nanoparticles affect ACS expression in Tecomella undulata in vitro culture / M. K. Sarmast, A. Niazi, H. Salehi, A. Abolimoghadam // Plant Cell, Tissue Organ Cult.. - 2015. - V. 121. - P. 227 -236.

136. Sarmast, M.K. Nano silver treatment is effective in reducing bacterial contaminations of Araucaria excelsa R. Br. var. glauca explants / M.K. Sarmast, H. Salehi, M. Khosh-Khui //Acta Biol Hung. - 2011. - V. 62. - P. 477-84.

137. Seliem, M.K. Micropropagation of Philodendron selloum: Influence of copper sulfate on endophytic bacterial contamination, antioxidant enzyme activity, electrolyte leakage, and plant survival / M.E. El-Mahrouk, A.N. El-Banna, Y.M. Hafez, Y.H. Dewir // S. Afr. J. Bot. - 2021. - V. 139. - P. 230-240.

138. Seliem, M.K. Response of Phalaenopsis Orchid to Selenium and Bio-NanoSelenium: In Vitro Rooting and Acclimatization / M.K. Seliem, N.A. Abdalla, H.R. El-Ramady // Env. Biodiv. Soil Secur. - 2020. - V. 4. - P. 277-290.

139. Shah I.H. Co-application of copper oxide nanoparticles and Trichoderma harzianum with physiological, enzymatic and ultrastructural responses for the mitigation of salt stress / I.H. Shah, I.A. Sabir, A. Rehman // Chemosphere. - 2023. - V. 336. - P. 139230.

140. Shah, S. Piriformospora indica promotes the growth of the in-vitro-raised Cymbidium aloifolium plantlet and their acclimatization / S. Shah, B.B. Thapa, K. Chanda // Plant Signal. Behav. - 2019. - V. 14. - P.1596716.

141. Shaik, N.M. Improved method of in vitro regeneration in Leucaena leucocephala / N.M. Shaik, M. Arha, A. Nookaraju, S.K. Gupta, S. Srivastava, A.K. Yadav // Physiol. Mol. Biol. Plants. - 2009. - V. 15. - P. 311-318.

142. Shang, Y. Applications of Nanotechnology in Plant Growth and Crop Protection: A Review / Y. Shang, M.K. Hasan, G.J. Ahammed, M. Li, H. Yin, J. Zhou // Molecules. - 2019. - V. 24. - № 14. - P. 2558.

143. Sharma P., Bhatt D., Zaidi M.G., Saradhi P.P.., Khanna PK., Arora S. Silver nanoparticle-mediated enhancement in growth and antioxidant status of Brassica juncea / P. Sharma, D. Bhatt, M.G. Zaidi, P.P. Saradhi, P. K. Khanna, S. Arora // Appl Biochem Biotechnol. - 2012. - V. 167. - № 8. - P. 2225-2233.

144. Shukla, R.K. Genotoxic Potential of Nanoparticles: Structural and Functional Modifications in DNA / R.K. Shukla, A. Badiye, K. Vajpayee, N. Kapoor // Front Genet. - 2021. - V. 12. - P. 728250.

145. Siddique, I. Stimulation of in vitro organogenesis from epicotyl explants and successive micropropagation round in Cassia angustifolia Vahl.: An

important source of sennosides / I. Siddique, S.B. Javed, M.R. Al-Othman, M. Anis // Agrofor. Syst. - 2013. - V. 87. - P. 583-590.

146. Sijacic-Nikolic, M. Economic advantages of innovative technologies for accelerated forest regeneration in Russia / M. Sijacic-Nikolic, A. Ivanova, N. Sirotkina // International Forestry Forum "Forest ecosystems as global resource of the biosphere: calls, threats, solutions". - 2020. - V. 595. - P. 1-8.

147. Singh, C.R. Review on problems and its remedy in plant tissue culture / C.R. Singh // Asian J. Biol. Sci. - 2018. - V. 11. - P. 165-172.

148. Skoog, F. Chemical control of growth and bud formation in tobacco stem segments and callus cultured in vitro / F. Skoog, C. Tsui // Am. J. Bot. 35. -1948. - P. 782-787.

149. Skoog, F. Chemical regulation of growth and organ formation in plant tissue cultures in vitro / F. Skoog, C. Miller // Symp. Soc. Exp. Biol. - 1957. - V. 11. - P. 118-131.

150. Solano, M.C.P. Evaluation of in vitro shoot multiplication and ISSR marker based assessment of somaclonal variants at different subcultures of vanilla (Vanilla planifolia Jacks) / M.C.P. Solano, J.S. Ruiz, M.R. Arnao, O.C. Castro, M.E.G. Tovar, J.J.B. Bello // Physiol. Mol. Biol. Plants. - 2019. - V. 25. - P. 561567.

151. Spinoso-Castillo, J. L. Antimicrobial and hormetic effects of silver nanoparticles on in vitro regeneration of vanilla (Vanilla planifolia Jacks. ex Andrews) using a temporary immersion system / J. L. Spinoso-Castillo, R. A. Chavez-Santoscoy, N. Bogdanchikova, J. A. Pérez-Sato, V. Morales-Ramos, J. J. Bello-Bello // Plant Cell, Tissue Organ Cult.. - 2017. - V. 129. - P.195 -207.

152. Talankova-Sereda, T. E. The Influence of Cu and Co Nanoparticles on Growth Characteristics and Biochemical Structure of Mentha Longifolia in Vitro Nanosci / T. E. Talankova-Sereda, K. V. Liapina, E. A. Shkopinskij, A. I. Ustinov, A. V. Kovalyova, P. G. Dulnev, N. I. Kucenko // Nanoeng. - 2016. - V. 4. - P. 31 -39.

153. Tambarussi, E. V., M. Rogalski, F. T. S. Nogueira, G. E. Brondani, V. F. De Martin and H. Carrer , Ann. Forest Res. - 2015 - V. 58. - P. 177 -183.

154. Tan, X. M. Studies on toxicity of multi-walled carbon nanotubes on suspension rice cells / X. M. Tan, C. Lin, B. Fugetsu // Carbon. - 2009. - V. 47. -P. 3479 -3487.

155. Tashmatova, L. V. Optimization of individual elements of clonal micro-propagation of fruit and berry crops in the production system of healthy planting material / L. V. Tashmatova, O.V. Matsneva, T. M. Khromova, V. V. Shakhov //E3S Web of Conferences. - 2021. - V. 254. - P. 8.

156. Teixeira da Silva, J.A. Acclimatization of in Vitro-derived Dendrobium / J.A. Teixeira da Silva, M.M. Hossain, M. Sharma, J. Dobranszki, J.C. Cardoso, Z. Songjun // Hortic. Plant J. - 2017. - V.3. - P. 110-124.

157. Teixeira da Silva, J.A. In vitro tissue culture of apple and other Malus species: Recent advances and applications / J.A. Teixeira da Silva, A. Guly, K. Magyar-Tabori, M.R. Wang, Q.-W. Wang, J. Dobranszki // Planta. - 2019. - V. 249. - P. 975-1006.

158. Teixeira da Silva, J.A. Shoot tip necrosis of in vitro plant cultures: A reappraisal of possible causes and solutions / J.A. Teixeira da Silva, E. Nezami-Alanagh, M.E. Barreal, M.M. Kher, A. Wicaksono, A. Gulyas // Planta. - 2020. -V. 252. - P. 47.

159. Thakur, M. Genetic fidelity assessment of long term in vitro shoot cultures and regenerated plants in Japanese plum cvs Santa Rosa and Frontier through RAPD / M. Thakur, V. Sharma, A. Chauhan, // S. Afr. J. Bot. - 2020. - V. 140. - P. 428-433.

160. Thompson, D.G. Clonal Reforestation: Forests of the Future? / D.G. Thompson, M.L. Duryea, G.N. Brown // Seedling physiology and reforestation success. - 1984. - V. 14. - № 124. - P. 3-28.

161. Thorpe T.A. History of plant tissue culture / Methods Mol Biol. - 2006.

162. Tortella, G. Rubilar, O. Pieretti, J.C. Fincheira, P. Nanoparticles as a Promising Strategy to Mitigate Biotic Stress in Agriculture / G. Tortella, O. Rubilar, J.C. Pieretti, P. Fincheira // Antibiotics. - 2023. - V. 12. - P. 338.

163. Tripathi, D. Crosstalk of nanoparticles and phytohormones regulate plant growth and metabolism under abiotic and biotic stress / D. Tripathi, M. Singh, S. Pandey-Rai // Plant Stress. - 2022. - V. 6. - P. 100107.

164. Truong, H.T. Synthesis and antifungal activity of copper nanoparticles against Fusarium oxysporum pathogen of plants / H.T. Truong, L.C.T. Nguyen, L. Quang // Materials Research Express. - 2023. - V.10. - P. 065001.

165. Van Nguyen, D. Copper Nanoparticle Application Enhances Plant Growth and Grain Yield in Maize Under Drought Stress Conditions / D. Van Nguyen et al. // J. Plant Growth Regul. - 2022. - V. 41. - P. 364-375.

166. Varympopi A. Bactericides Based on Copper Nanoparticles Restrain Growth of Important Plant Pathogens / A. Varympopi, A. Dimopoulou, I. Theologidis // Pathogens. - 2020. - V. 5. - P. 1024.

167. Vasyukova, I. Silver nanoparticles for enhancing the efficiency of micropropagation of gray poplar (Populus x canescens Aiton. Sm.) / I. Vasyukova, A. Gusev, O. Zakharova, P. Baranchikov, N. Yevtushenko // IOP Conference Series: Earth and Environmental Science. - 2021. - P. 875.

168. Viet P.V. Fusarium Antifungal Activities of Copper Nanoparticles Synthesized by a Chemical Reduction Method / P.V. Viet, H.T. Nguyen, T.M. Cao // Journal of Nanomaterials. - 2016. - V. 2016. - P. 1957612.

169. Vinter, M. Micropropagation of rootstocks of stone fruit cultures in vitro / M. Vinter, S. Fedorovitch, M. Karpushina and S. Gridnev // BIO Web of Conferences. - 2020. - V. 25. - P. 6.

170. Vujovic, T. In vitro shoot multiplication as influenced by repeated subculturing of shoots of contemporary fruit rootstocks / T. Vujovic, D.J. Ruzic, R. Cerovic // Hort. Sci. - 2012. - V. 39. - P. 101-107.

171. Wang, L. Role of Silica Nanoparticles in Abiotic and Biotic Stress Tolerance in Plants / L. Wang, C. Ning, T. Pan, K. Cai // A Review. Int. J. Mol. Sci.

- 2022. - V. 23. - P. 1947.

172. Worrall, E.A Nanotechnology for Plant Disease Management / E.A. Worrall, A. Hamid, K.T. Mody, N. Mitter, H.R. Pappu // Agronomy. - 2018. - V. 8.

- P. 285.

173. Wu H.L. Cloning and stress response analysis of the PeDREB2A and PeDREB1A genes in moso bamboo (Phyllostachys edulis) / Wu H.L. et al. // Genetics and Molecu- lar Research. - 2015. - V.14. - P. 10206-10223.

174. Yadav L. Antibacterial activity of Cu nanoparticles against E. coli, Staphylococcus aureus and Pseudomonas aeruginosa / L. Yadav, R.M. Tripathi, R. Prasad, R.N. Pudake, J. Mittal // Nano Biomed. Eng. - 2017. - V.9. - P. 9-14.

175. Yasodha, R. Micropropagation for quality propagule production in plantation forestry / R. Yasodha, R. Sumathi, K. Gurumurthi // Indian Journal of Biotechnology. -2004. - V. 3. - P. 159-170.

176. Yin, I.X. The Antibacterial Mechanism of Silver Nanoparticles and Its Application in Dentistry / I.X. Yin, Zhang J., Zhao I.S., Mei M.L., Li Q., Chu C.H. // Int. J. Nanomedicine. - 2020. - V. 15. - P. 2555-2562.

177. Zafar, H. Effect of ZnO Nanoparticles on Brassica nigra Seedlings and Stem Explants: Growth Dynamics and Antioxidative Response / H. Zafar, A. Ali, J. S. Ali, I. U. Haq, M. Zia // Front. Plant Sci.. - 2016. - V. 10. - P. 3389.

178. Zakharova, O. Concentration-dependent stimulating and toxic effects of ZrS3 and TiS3 nanoribbons on forest woody plants in tissue culture in vitro / O. Zakharova, I. Vasyukova, D.S. Muratov, V. Korenkov, P. Baranchikov, A. Gusev // IOP Conference Series: Earth and Environmental Science. - 2021. - V. 875. - №2 1.

- P. 012052.

179. Zakharova, O. CuO nanoparticles effects on poplarxaspen hybrid clones at various stages of microclonal propagation / O. Zakharova, E. Kolesnikova, E. Kolesnikov, N. Yevtushenko, V. Morkovin, A. Gusev // IOP Conference Series: Earth and Environmental Science. - 2020. - V. 595. - P. 012001.

180. Zakharova, O. Effects of graphene oxide on white poplarxaspen (Populus alba x Populus tremula) hybrid microsprouts at various growth stages / O. Zakharova, E. Kolesnikova, D.S. Muratov, I. Il'inikh, E. Tsukanova, N. Yevtushenko, N. Strekalova, A. Gusev // IOP Conf. Series: Materials Science and Engineering. - 2019. - V.693 - P. 012037.

181. Zakharova, O. Effects of silver nanoparticles on morphometric parameters of hairy birch (Betula pubescens) at various stages of micro cloning / O. Zakharova, I. Vasyukova, N. Strekalova, A. Gusev // IOP Conf. Series: Earth and Environmental Science. - 2019. - V. 392. - № 1. - P. 012024.

182. Zakharova, O. Stimulating and toxic effects of graphene oxide on Betula pubescens microclones / O. Zakharova, E. Kolesnikova, D. Muratov, A. Gusev // IOP Conference Series: Earth and Environmental Science. - 2020. - V. 595. - № 1. - P. 012010.

183. Zakharova, O. The effects of CuO nanoparticles on wheat seeds and seedlings and Alternaria solani fungi: in vitro study / O. Zakharova, E. Kolesnikov, N. Shatrova, A. Gusev // IOP Conf. Series: Earth and Environmental Science. -2019. - V. 226. - № 1. - P. 012036.

184. Zakharova, O.V. Considerable Variation of Antibacterial Activity of Cu Nanoparticles Suspensions Depending on the Storage Time, Dispersive Medium, and Particle Sizes / O.V. Zakharova, A.Yu. Godymchuk, A.A. Gusev // BioMed Research International. - 2015. - V. 15. - P. 11.

185. Zakharova, O.V. Nanotoxicity of ZrS3 Probed in a Bioluminescence Test on E. coli Bacteria: The Effect of Evolving H2S / O.V. Zakharova, A.A. Gusev, J. Abourahma, N.S. Vorobeva, D. V. Sokolov, D.S. Muratov, D.V. Kuznetsov, A. Sinitskii // Nanomaterials. - 2020. - V. 10. - P. 1401.

186. Zakharova, O.V. The Conditions Matter: The Toxicity of Titanium Trisulfide Nanoribbons to Bacteria E. coli Changes Dramatically Depending on the Chemical Environment and the Storage Time / O.V. Zakharova, V.V. Belova, P.A. Baranchikov, A.A. Kostyakova, D.S. Muratov, G.V. Grigoriev, S.P. Chebotaryova, D.V. Kuznetsov, A.A. Gusev // Int. J. Mol. Sci. - 2023. - V. 24. - P. 8299.

187. Zakharova, O.V. Titanium Trisulfide Nanoribbons Affect the Downy Birch and Poplar x Aspen Hybrid in Plant Tissue Culture via the Emission of Hydrogen Sulfide / O.V. Zakharova, A.A. Gusev, D.S. Muratov, A.V. Shuklinov, N.S. Strekalova, S.M. Matveev // Forests. - 2021. - V. 12. - P. 713.

188. Zayova, E. Effect of Medium Salt Strength on the Micropropagation, Phenolic Content and Antioxidant Activity of Arnica montana L., Threatened Plant Species / E. Zayova, M. Petrova, M. Nikolova, L. Dimitrova // Bio. Bulletin. - 2016. - V. 2. - P. 6-13.

189. Zhao, S. The role of JrPPOs in the browning of walnut explants / S. Zhao, H. Wang, K. Liu, L. Li, Z. Zhang // Plant Biol. - 2021. - V. 21. - P. 9.

190. Абаимов, А. П. Леса Красноярского Заполярья / С. А. Шитова, О. А. Зырянова, А. И. Бондарев // Новосибирск: Наука. - 1997. - C. 196207.

191. Бабикова, А. В. Микроклональное размножение древесных лесных растений дальнего востока России: перспективы развития. Размножение лесных растений в культуре in vitro как основа плантационного лесовыращивания / А. В. Бабикова, И. В. Гафицкая, Ю. Н. Журавлев. // материалы международной научно-практической конференции. Йошкар-Ола: Поволжский государственный технологический университет. - 2014. - C. 172.

192. Багаев, С.Н. Воспроизводство березы карельской / С.Н. Багаев // Лесн. х-во. - 1987. - № 9. - С. 40 - 41.

193. Бандер, В.Л. Карельская береза в Карельской АССР / В.Л. Бандер // Тр. Латв. сельскохоз. акад. - 1959. - Вып. VIII. - С. 353 - 365.

194. Барсукова, Т.Л. Анатомическое строение побегов березы карельской [Текст] / Т.Л. Барсукова // Изв. вузов. Лесн. журн. - 1989. - № 5. -С. 14 - 17.

195. Беляева, Н. Г. Мелколиственные леса центра русской равнины: экология и перспективы возобновления коренных сообществ / О. В. Морозова, Т. В. Черненькова, К. А. Корзников // Лесоведение. - 2022. - №2 2. - С. 115-131.

196. Бовичева, Н.А. Выращивание саженцев триплоидной осины из регенерантов, полученных по технологии in vitro / Н.А. Бовичева, Д.А.

Шабунин, А.В. Жигунов, В.А. Подольская // Труды Санкт-Петербургского НИИ лесного хозяйства. - 2006. - Т. 3. - № 16. - С. 68-76.

197. Бовсуновский А. М. Нанотехнология как движущая сила аграрной революции / А. М. Бовсуновский, С. О. Вялый, В. Г. Каплуненко, Н. В. Косинов // Зерно. - 2008. - № 11 (31). - С. 80-83.

198. Бондаренко, А.С. Перспективы применения биотехнологий в лесном хозяйстве / А.С. Бондаренко, А.В. Жигунов, Д.А. Шабунин // Биотехнологии и вызовы времени: сб. материалов выставки-конференции. СПб.: Ленэкспо. - 2011. - С. 77.

199. Букина, Ю. А., Антибактериальные свойства и механизм бактерицидного действия наночастиц и ионов серебра / Ю. А. Букина, Е. А. Сергеева // Вестник Казанского технологического университета. - 2012. -№14. - С. 170-171.

200. Гаврилова, И.А. Сравнительная оценка анатомических особенностей древесины некоторых видов и гибридов тополей [Текст] / И.А. Гаврилова // Автореф. дис. канд. биол. наук: Л., - 1971. - 23 с.

201. Гигалошвили, Т.С. Условия микроклонирования формируют специфический культуральный фенотип [Текст] / Т.С. Гигалошвили, О.И. Родькин, В.Г. Реуцкий // Биология клеток растений in vitro, биотехнология и сохранение генофонда. - 1997. - С. 413.

202. Глоба-Михайленко Д.А. Промышленное разведение дуба изменчивого [Текст] / Д.А. Глоба-Михаленко, Е.Н. Коммерческий // Лесн. х-во. - 1995. - № 4. - С. 33.

203. Данченко А.М. Биология плодоношения и основы семеноводства березы / A.M. Данченко // Отв. ред. В. Н. Воробьев. Красноярск. - 1992. - 126 с.

204. Деменко В.И. Укоренение - ключевой этап размножения растений in vitro. [Текст]/ В.И. Деменко, К.А. Шестибратов, В.Г. Лебедев // Известия ТСХА. -2010. - С. 73-85.

205. Деменко, В.И. Проблемы и возможности микроклонального размножения садовых растений. введение в культуру/ В.И Деменко // Известия ТСХА. - 2005. - № 2. - С. 1-11.

206. Денисов, С.А. Регулирование роли березы в естественном возобновлении гарей / С.А. Денисов // Лесное хозяйство. -1979. - №27. - С. 1921.

207. Желтова, А. А. Использование солей и наночастиц серебра для поверхностной стерилизации семян ячменя перед проращиванием in vitro / А. А. Желтова, А. С. Попова, В. Г. Зайцев // Научно-агрономический журнал 4. -2022. - Т.119. - С. 94 - 100.

208. Жигунов, А.В. Применение биотехнологий в лесном хозяйстве России / А.В. Жигунов // Лесной журнал. - 2013. - №2. - С. 27 - 35.

209. Жигунов, А.В. Рост триплоидной осины в лесных культурах, созданных посадочным материалом, полученным по технологии in vitro / А.В. Жигунов, Д.А. Шабунин, Н.А. Бовичева, О.И. Антонов, О.Ю. Бутенко. // Тр. СПбНИИЛХ. - 2009. — Т. 1. - № 18. - С. 143-152.

210. Жиленкова Е.С., Микроклональное размножение как один из методов вегетативного размножения древесных и кустарниковых пород / Е.С. Жиленкова, А.К. Горлова // Материалы XI Международной студенческой научной конференции «Студенческий научный форум». - 2019. - С. 7.

211. Захарова, О.В. Биологические эффекты воздействия свежеприготовленных и суточных водных дисперсий наночастиц меди и оксида меди на бактерии E. coli / О.В. Захарова, А.А. Гусев, Ю.В. Алтабаева, С.Ю. Перова // Российские нанотехнологии. - 2018. - Т.13. - № 3-4.

212. Захарова, О.В. Фотокаталитически активные наночастицы оксида цинка и диоксида титана в клональном микроразмножении растений: перспективы / О.В. Захарова, А.А. Гусев // Российские нанотехнологии. -2019. - Т. 14. - № 9-10. - С. 3-17.

213. Зонтиков Д. Н. Проблемы стерильности сред и растительных эксплантов культуры in vitro лаборатории клонального микроразмножения

растений. [Текст] / Д. Н. Зонтиков, Э. В. Марамохин // Молодой ученый. -2014. - №8. - С. 317-320.

214. Исаков И.Ю. Дифференциация естественных популяций березы по системам размножения [Текст] / И.Ю. Исаков // Известия высших учебных заведений. Лесной журнал. - 2008. - № 6.- С. 83-82.

215. Исаков Ю.Н. Связь генотипа по некоторым аллозимным локусам и способности к самоопылению у сосны обыкновенной / Ю.Н. Исаков, В.Л. Семериков // Генетика. -1997. - Т. 33. - № 2. - с. 274-276.

216. Карасев В.Н. Активность каталазы как показатель жизненного состояния древесных растений в городских условиях / В.Н. Карасев, М.А. Карасева, Н.Е. Серебрякова, Д.А. Абрамова // Актуальные проблемы лесного комплекса. - 2015. - №43.

217. Кафи, М. Содеражание углеводов и пролина в листьях, корнях и апексах сортов пшеницы, устойчивых и чувствительных к засолению / М. Кафи, В.С. Стюарт, А.М. Борланд // Физиология растений. - 2003. - Т.50. -№2. - С. 174-182.

218. Клещевников, Л. И. Методы получения фурфурола и его применение / Л. И. Клещевников, И. В. Логинова, М. В. Харина, В. М. Емельянов // Вестник технологического университета. - 2015. - Т.18. - №19. -С. 95-101.

219. Кравченко, А.Н. Аллозимное разнообразие и дифференциация популяций ели сибирской в западном Забайкалье и Монголии / А.Н. Кравченко, А.К. Экарт, А.Я. Ларионова / Хвойные бореальной зоны. - 2012. -№ 1-2. - С. 97 - 101.

220. Кузнецов, Б.Н. Получение химических продуктов из древесины березы методами каталиического окисления и кислотного катализа / Б.Н. Кузнецов, С.А. Кузнецова, В.Г. Данилов, В.Е. Тарабанько // Химия в интересах устойчивого развития. - 2005. - №13. - С. 531 - 539.

221. Машкина О.С. Методические рекомендации по выращиванию посадочного материала сортов тополя сереющего с использованием

технологии in vitro / О.С. Машкина, А.И. Сиволапов, Т.М. Табацкая; Воронеж. гос. лесотех. акад. Воронеж. - 2011. - 30 с.

222. Машкина, О.С. Длительное микрочеренкование для массового клонального размножения карельской березы и тополя / О.С. Машкина, Т.М. Табацкая, Л.М. Стародубцева // Физиология растений. - 1999. - Т. 46 - № 6. -С. 950-952.

223. Машкина, О.С. Клональное размножение березы карельской / О.С. Машкина, Т.М. Табацкая, Ю.Н. Исаков // Лесн. хоз-во. - 2000. - № 4. - С. 3334.

224. Машкина, О.С. Методы клонального микроразмножения различных видов и гибридов ивы / О.С. Машкина, Т. М. Табацкая, А. И. Горобец, К. А. Шестибратов // Биотехнология. - 2010. - № 1. - С. 51-59.

225. Миленная, Л.А. Испытание потомств четырех видов березы в Орловской области [Текст] / Л.А. Миленная, И.Ю. Исаков // Опытная база в лесной селекции. Воронеж. - 1995. - С. 89-93.

226. Минеев, В. Г. Агрохимия: учебник. - 3-е изд. /В. Г. Минеев// М.: Изд-во Моск. ун-та. Наука. - 2006. - 720 с.

227. Николаева, О.Е. Анатомические и цитологические исследования ценных форм и гибридов осины [Текст] / О.Е. Николаева // Селекция быстрорастущих пород. -1965. - С. 58 - 80.

228. Об утверждении Стратегии развития лесного комплекса Российской Федерации до 2030 года: Распоряжение Правительства РФ от 11.02.2021 // Собрание законодательств РФ. - 2021. - № 312-р. - С. 17.

229. Патент № RU 2780830. Способ стерилизации эксплантов березы in vitro с использованием наночастиц оксида меди: № 2022104921: заявл. 202202-24: опубл. 2022-10-04 / Гродецкая Т. А., Евлаков П.М., Федорова О.А., Евтушенко Н.А., Гусев А.А., Захарова О.В. - 7 с.

230. Попов, В.К. Березовые леса Центральной лесостепи России: монография [Текст] / В.К. Попов. Воронеж. гос. лесотехн. академия. Воронеж: Изд-во Воронеж. гос. Университета. - 2003. - 424 с.

231. Практикум по микробиологии: учеб. пособие для студ. вузов. [Текст] / под ред. А. И. Нетрусова. М.: Академия. - 2005. - 602 с.

232. Рахимол, К. Р. Использование стабилизированных казеином наночастиц металлов и оксидов металлов для эффективного культивирования in vitro Scoparia dulcis L. / К. Р. Рахимол, C. Томас, Н. Калариккал, К. Джаячандран // Журнал СФУ. Биология. - 2021. - Т. 14. - № 4. - С. 498-509.

233. Редько, Г.И. Культура карельской березы: лекции для студентов спец. 1512 [Текст] / Г.И. Редько, А.П. Евдокимов. - Ленинград: ЛТА 1979. - 85 с.

234. Соколова К. И. Определение активности каталазы в почках древесных растений / К. И. Соколова, А. В. Конакова, С. В. Мухаметова // Международный журнал гуманитарных и естественных наук. - 2019. - №112. - С. 38.

235. Су М. Выделение высококачественной РНК из различных тканей Populus / М. Су, В. Цзан, Н. Яо //Физиология растений. - 2009. - №2 56 (5). - С. 791-795.

236. Тимофеева С. Н. Размножение Laburnum anagyroides Medik. в условиях in vivo и in vitro при интродукции в Нижнем Поволжье: Диссертация на соискание кандидата технических наук / Тимофеева С. Н.; - Саратов, 2021. - 161 с.

237. Тимофеева, О. А., Невмержицкая, Ю. Ю. Клональное микроразмножение растений: Учебно-методическое пособие / О. А. Тимофеева, Ю. Ю. Невмержицкая - Казань: Казанский университет, 2012 - 56 с.

238. Шевелуха В.С., Калашникова Е.А., Воронин Е.С. и др. Сельскохозяйственная биотехнология. Высш. шк.. - 2008. - 710 с.