Клональное микроразмножение и получение вторичных метаболитов рода VACCINIUM в культуре клеток и тканей растений тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.02.14, кандидат наук Мохамед Гамил Райян Абуэлдис

• Мохамед Гамил Райян Абуэлдис
• кандидат наук
• 2019

Оглавление диссертации кандидат наук Мохамед Гамил Райян Абуэлдис

СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ

ВВЕДЕНИЕ

ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

1.1. Общая характеристика рода Уасстшт

1.1.1. Происхождение рода Уасстшт

1.1.2. Систематика, распространение, краткая ботаническая характеристика голубики щитковая (Уасстшт corуmbosum L.)

1.2. Клональное микроразмножение

1.2.1. Функции фенольных соединений

1.2.2. Влияние внешних и внутренних факторов на содержание е фенольных соединений в растениях

1.2.3. Локализация фенольных соединений в клетках и тканях высших растений

1.2.4. Способность рода Уасстшт к синтезу фенольных соединений

1.3. Получение фенольных соединений с помощью культуры клеток и тканей растений

1.4. Индукция каллусов и получение фенольных соединений в культуре рода

Уасстшт

МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЙ

2.1. Материалы (объекты) исследований

2.1.1. Голубика щитковая У. согутЪо8ит (несортовая)

2.1.2. Голубика щитковая сорт «Блу Джайнт»

2.1.3. Голубика щитковая сорта «Блю Берри»

2.2. Методы исследований

2.2.1. Стерилизация эксплантов

2.2.2. Состав и приготовление питательных сред

2.3. Условия культивирования

2.4. Клональное микроразмножение Vaccinium corymbosum L. в культуре in vitro

2.4.1. Этап размножения

2.4.2. Этап укоренения

2.4.3. Этап акклиматизации

2.5. Индукция каллусогенеза

2.6. Получение суспензионной культуры из каллуса

2.6.1. Определение плотности суспензионной культуры и оценка ее ростовой активности

2.6.2. Расчетные показатели суспензионной культуры

2.7. Количественное определение суммарного содержания растворимых фенольных соединений

2.8. Определение антиоксидантной активности в каллусах V. corymbosum

2.9. Количественное определение содержания антоцианов

2.10. Количественное определение содержания проантоцианидинов

2.11. Изучение фенольных соединений методом ВЭЖХ

2.12. Спектральный состав света

2.13. Внесение элиситоров и предшественников

2.14. Статистическая обработка результатов

РЕЗУЛЬТАТЫ ЭКСПЕРИМЕНТОВ И ИХ ОБСУЖДЕНИЕ

3.1 Клональное микроразмножение Vaccinium corymbosum L. в культуре in

vitro

3.1.1. Подготовка эксплантов для введения в культуру

3.1.2. Стерилизация растительного материала

3.1.3. Особенности развития эксплантов голубики на этапе собственно микроразмножения

3.1.4. Влияние минерального состава питательных сред на показатели роста

и развития микропобегов на эксплантах

3.1.4.1. Влияние регуляторов роста на показатели роста и развития

микропобегов на эксплантах

3.1.5. Укоренения побегов

3.1.6. Адаптация растений-регенерантов

3.2. Индукция каллусогенеза

3.3. Получение суспензионной культуры

3.4. Влияние спектрального состава света на содержание разных групп фенольных соединений и антиоксидантную ативность в каллусах Уасстшт согутЪо8ит Ь

3.4.1.Влияние спектрального состава света на общее содержание растворимых фенольных соединений

3.4.2. Влияние спектрального состава света на содержание антоцианов и проантоцианидинов

3.4.3. Влияние спектрального состава света на антиоксидантную активность

в каллусах У. сorymbosum

3.5 Влияние предшественников на синтез антоцианов и проантоцианидинов

в суспензионной культуре Уассшит согутЪо8ит Ь

3.6.Влияние метил-жасмоната на накопление антоцианов и

проантоцианидинов в суспензионной культуре Уассшит согутЪо8ит Ь

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

ВЫВОДЫ

СПИСОК ИСПОЛЬЗОВАННЫХ ИСТОЧНИКОВ

СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ

1. 2,4-Д - 2,4-дихлорфеноксиуксусная кислота;

2. WPM - питательная среда для древесных растений;

3. АН - питательная среда Андерсона;

4. БАП - 6-бензиламинопурин;

5. ВЭЖХ - высокоэффективная жидкостная хроматография;

6. Зе - зеатин;

7. ИМК - индолил-3-масляная кислота;

8. ИУК - индолил-3-уксусная кислота;

9. Кин - кинетин;

10. МеЖ - метил-жасмонат;

11. МС - питательная среда Мурасиге и Скуга;

12. НУК - а-нафтилуксусная кислота;

13. Ь-Фен - Ь-Фенилаланин.

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Клональное микроразмножение и получение вторичных метаболитов рода VACCINIUM в культуре клеток и тканей растений»

ВВЕДЕНИЕ

Актуальность темы. Растения являются незаменимым источником получения очень многих полезных для человека веществ. Ведущее место страны по объему природных ресурсов в мировом масштабе не является гарантией эффективного их использования из-за неблагоприятного климата. В связи с этим все большее значение приобретает использование для этих целей биотехнологических подходов. Известно, что использование культур растительных клеток в качестве источника биологически активных веществ представляют достойную альтернативу традиционным методам получения вторичных метаболитов из растительного сырья. Производство метаболитов в клеточных культурах открывает возможности для оптимизации производства, независимо от климатических или экологических условий (Цыренов, 2003).

Голубика вид листопадных кустарников из рода Вакциниум (Vaccinium spp.) семейства Вересковые (Ericaceae) (Lyrene, 1990), ценная в пищевом и фармацевтическом отношении ягодная культура. Полезные свойства голубики не только издавна знакомы народным лекарям, но также признаны современной официальной медициной.

Обзор данных литературы показал, что голубика может использоваться при следующих заболеваниях: диабете (Lee et al., 2007; Yokozawa et al., 2012; Jiao et al, 2013; Ding et al, 2014) злокачественных опухолях (Samuel-Peterson, 2013) раке предстательной железы (Schmidt et al, 2006; Kim et al, 2014), раке молочной железы (Adams et al, 2010; Faria et al, 2010), колоректальном раке (Kim et al, 2005; Faria et al, 2010), раке пищевода (Kresty et al, 2008), мочеполовых инфекциях (Yamamoto et al., 1991; Kresty et al., 2008; Pinzon-Arango, 2008), эректильной дисфункции (Rohdewald, Ferrari, 2003), гепатите С (Suzuki et al., 2005; Takeshita et al., 2009; Yu et al., 2012), чуме плотоядных (Gallina et al, 2011), кори (Barnard, 2004), фиброзе печени (Wang et al, 2010), для профилактики сердечно-сосудистых заболеваний (Neto, 2007; Kim et al., 2012; Kruger et al., 2014), а ткже имеет антимикробную активность (Barnard, 2004), улучшает память и защищает от болезни Альцгеймера (Joseph et al.,

2003), защищает эпителиальные клетки роговицы от воспаления (Li et al., 2016), проявляет противовирусные свойства (Balde et al., 1990; Jassim, Naji, 2003; Xu et al, 2010; Vyas et al, 2015).

Все эти свойства голубики во многом обусловлены вторичными метаболитами. Накапливающиеся в растениях вторичные метаболиты, участвуют в формировании механизмов защиты растения от стресса (Dixon, Paiva, 1995). Голубика является источником таких вторичных соединений, как, фенолы, флавоноиды, антоцианы, проантоцианидины, обладающих высокой антиоксидантной активностью. Уникальный набор антоцианов, содержащихся в этой ягоде, делает ее особо привлекательной для нужд пищевой и фармацевтической промышленностей. В связи с этим в последние годы значительно вырос спрос на голубику, а ее продажи существенно увеличились за последние 20 лет (Rival, Parveez, 2005).

В условиях Республики Татарстан голубика Vaccinium uliginosum L. занесена в Красную Книгу и относится к видам, находящимся под угрозой исчезновения. Голубика щитковая Vaccinium corymbosum L., которая является более ценной культурой по содержанию полезных для здоровья человека соединений, в Татарстане не выращивается. В Египте голубика щитковая не встречается и не культивируется, хотя климатические условия благоприятны для ее выращивания. В связи с этим создание посадок голубики щитковой как для внутреннего использования, так и для экспорта этой ягоды, как для Египта, так и для Татарстана является актуальной стратегической задачей.

Голубику традиционно размножают классическими методами вегетативного размножения, т.е. зелеными и одревесневшими черенками, а также отводками. Однако успешному применению этих методов препятствуют некоторые ограничения. Так, например, размножение черенками относительно простой метод, но возникают проблемы с укоренением, которое оказывается возможным лишь после применения регуляторов роста. Кроме того, этот метод размножения трудоемок и требует значительных площадей. Применение альтернативного метода вегетативного

размножения, такого, как размножение in vitro, более оправдано и оказывается экономически выгодным. Этот метод позволяет ускоренно и с высоким коэффициентом размножать новые перспективные культуры, получать здоровый растительный материал, работать в лаборатории круглый год и планировать выпуск посадочного материала к определенному сроку. Применение культуры ткани для размножения in vitro различных представителей рода Vaccinium описано в ряде работ (Shibli et al., 1998; Fang et al., 1998; Clapa et al., 2008; Litwinczuk, 2012). Последние исследования на сортах голубики щитковой (Vaccinium corymbosum L.) Блю Кроп и Бригитта, показывают, что состав культуральной среды, зависит не только от вида, но и от сорта растений.

В качестве источника вторичных метаболитов каллусные или суспензионные культуры культуры in vitro могут стать альтернативой растениям из-за того, что при выращивании в контролируемых условиях и с помощью модификации питательных сред, эти культуры могут синтезировать значительное количество вторичных метаболитов, представляющих интерес для фармацевтической и пищевой промышленностей. Так, показано, что в клеточной культуре Vaccinium phalae синтезируется большой набор флавоноидов, включая антоциановые пигменты (Fang et al., 1999).

Цель работы - выявление условий, способствующих эффективному клональному микроразмножению и накоплению флавоноидов у разных сортов голубики Vaccinium corymbosum в культуре in vitro.

В соответствии с этим были поставлены следующие задачи:

1. изучить особенности клонального микроразмножения Vaccinuim spp L. в условиях in vitro;

2. исследовать эффективность разных регуляторов роста растений на индукцию каллусогенеза у разных типов эксплантов (лист, корень, стебель). Vaccinuim spp L. in vitro;

3. получить суспензионную культуру клеток Vaccinuim spp L.;

4. изучить эффекты спектрального состава света на накопление антоцианов и проантоцианидинов в каллусной ткани Vaccinium spp L.;

5. подобрать оптимальные концентрации предшественника (L-фенилаланин) для повышения количества антоцианов и проантоцианидинов в суспензионной культуре Vaccinium spp. L.;

6. исследовать влияние метил-жасмоната на содержание антоцианов и проантоцианидинов в суспензионной культуре Vaccinium spp. L.

Научная новизна работы. Впервые получены каллус и суспензионная культура из корневых эксплантов голубики щитковой V. corymbosum трех сортов (Блю Берри, Блу Джайнт и несортовой голубики): предложены питательные среды для индукции каллусогенеза, суспензионной культуры. Показана необходимость индивидуального подбора питательной среды для каждого сорта: для получения хорошо пролиферирующей каллусной ткани целесообразно добавлять в состав питательной среды WPM 1 мг/л НУК и 0,5 мг/л Кин для сорта Блю Берри; 2 мг/л НУК и 1,0 мг/л БАП для сорта Блу Джайнт, а для несортовой голубики - только 1,5 мг/л 2,4-Д. Разработана технология клонального микроразмножения голубики щитковой. Установлено, что в составе питательной среды для укоренения необходимо наличие активированного угля и ИМК. Выход адаптированных к условиям выращивания ex vitro составил 100 %.

Изучено влияние спектрального состава света на накопление антоцианов и проантоцианидинов в каллусной ткани Vaccinium spp. L. Показано, что красный свет наиболее эффективно усиливает образование антоцианов в каллусной культуре. Проведена модификация питательных сред с помощью предшественников (L-фенилаланин) и метил-жасмоната для улучшения накопления антоцианов и проантоцианидинов в суспензионной культуре V. corymbosum.

Теоретическая и практическая значимость работы. Создана коллекция клеточных культур V. corymbosum in vitro, различающихся по содержанию антоцианов и процианидинов, которая может служить

перспективным материалом для получения линий-продуцентов ценных соединений для различных областей промышленности. Предложены пути усиления синтеза антоцианов с помощью света, предшественников и метил-жасмоната. Предложены технологии ускоренного размножения У. сorymbosum, позволяющие в короткие сроки решить проблему размножения данного вида для промышленного выращивания. Кроме того, результаты могут быть применены в учебном процессе для студентов, обучающихся по направлению «Агрономия» и «Биотехнология», при чтении лекций и проведении практических занятий по таким дисциплинам как: «Культура тканей и органов растений», «Сельскохозяйственная биотехнология», «Прикладная биотехнология», «Основы биотехнологии», «Физиология растений».

Публикации по теме диссертации. Основные результаты диссертации изложены в 11 публикациях, из которых 3 статьи опубликованы в журналах из списка ВАК РФ.

Апробация работы. Материалы диссертации были представлены на следующих международных российских конференциях: годичном собрании Общества физиологов растений России «Научная конференция международным участием и школа молодых ученых» (Санкт-Петербург,

2016), научной конференции с международным участием, посвященная памяти профессора В.Е. Петрова (Казань, КФУ, 2018), 70-й Всероссийской с международным участием школе-конференции молодых ученых «Биосистемы: организация, поведение, управление» (Нижний Новгород,

2017), XXV Международной конференции студентов, аспирантов и молодых ученых «Ломоносов» (Москва, 2018), 71-й Всероссийской с международным участием школе-конференции молодых ученых «Биосистемы: организация, поведение, управление» (Нижний Новгород, 2018), 22-й Международной Пущинской школе-конференции молодых ученых «Биология - наука XXI века» (Пущино, 2018), итоговой научной конференции сотрудников Казанского университета за 2017 год. Секция: Актуальные проблемы

биологии растений (Казань, КФУ, 2018), 11-й Международной конференции «Биология клеток растений in vitro и биотехнология» (Минск, 2018).

Личный вклад автора. Все исследования на каждом этапе работы проведены диссертантом лично, на кафедре ботаники и физиологии растений Отделения биологии и биотехнологии Института фундаментальной медицины и биологии Казанского (Приволжского) федерального университета. Автором совместно с научным руководителем разработана программа, направление, выбраны методы исследований, а также проведено обсуждение результатов и подготовка публикаций.

Структура диссертации. Диссертация изложена на 162 страницах компьютерного текса, состоит из введения, литературного обзора, материалов и методов исследований, экспериментальной части (2 главы), выводов и списка цитированной литературы, который включает 289 источников. Диссертационная работа содержит 12 таблиц и 52 рисунков.

ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ 1.1 Общая характеристика рода Vaccinium 1.1.1 Происхождение рода Vaccinium

Ученые склоняются к мнению, что большинство видов рода Vaccinium появились в третичном периоде. По данным (Sleumer, 1941) и (Богдановская-Гиенэф, 1946) представители рода Vaccinium появились в период верхний миоцен-ранний плиоцен. Ссылаясь также на (Braun-Blanquet, 1923) и (Богдановская-Гиенэф, 1946) делает вывод, что большинство видов растений, произрастающих на бореальных болотах, в том числе и представители рода Vaccinium, появились в третичном периоде. По данным (Camp, Gilly, 1943) секции этого рода были сильно дифференцированы уже в меловой период мезозойской эры. Большинство видов семейства Vacciniaceae распространено в тропиках и, на основании морфологических признаков, также можно предположить, что листопадные формы Vaccinium из умеренного пояса могут быть частью некоторых вечнозеленых тропических групп или происходить от них. В 1838 г. Дюналем было описано 85 видов, в 1873 г. Бентамом и Гукером - 100 видов, в 1926 г. Браун-Бланке описывает уже 200 видов. Отличительными признаками, по Дюналю, при выделении видов являлись строение соцветий, форма венчика и листьев, а также форма пыльников. По Бентаму и Гукеру, главными изменяющимися признаками, по которым можно провести разделение на подроды, является строение венчика и пыльника. В результате исследования этих признаков они разделили род на девять секций. Более подробная систематическая характеристика рода была дана Друде. Он разделил род на пять подродов по тем же отличительным признакам, что и Бентам и Гукер. Каждый подрод, в свою очередь, был разделен на секции. Род Vaccinium отнесен Друде к подроду Euvaccinium, который делится на пять секций. Наиболее обширной секцией подрода является секция Myrtyllus.

1.1.2 Систематика, распространение, краткая ботаническая характеристика голубики щитковая (Vaccinium corymbosum L.)

Географическое распространение рода Vaccinium чрезвычайно обширно, но выделяются два центра: юго-восток Азии и Северная Америка. Растения предпочитают влажные, заболоченные почвы, но успешно растут и на сухих каменистых склонах Арктики и высоко в горах.

Данное ботаническое семейство состоит из 30 родов и 300 видов, распространенных от тропиков до Крайнего Севера (Britton, Brown, 1913). Род Vaccinium - кустарники или полукустарнички, как правило, с крупными вечнозелеными или опадающими листьями. Основным признаком, выделяющим группу голубик из остальных представителей рода, является плод синяя ягода с сизоватым налетом и зеленой мякотью. Род отличается большим полиморфизмом, распространен в умеренных и холодных широтах Северного полушария, а также высоко в горах в тропических странах. По данным (Sleumer, 1941) и (Elias, 1980), в Азии произрастает 99 видов Vaccinium, в Северной Америке - 36, в Центральной и Южной Америке 29 и по одному виду на Кавказе и на острове Мадейра. На Европейском континенте встречаются всего 3 наиболее распространенных вида: Vaccinium vitisidaea L., V. myrtyllus, V. uliginosum L. (Решетников с соавт., 2014)

В соответствии с современной классификацией все виды голубик относятся к роду Vaccinium L., принадлежащему, по мнению одних систематиков, к семейству вересковых (Ericaceae D. C.), других - к самостоятельному семейству брусничных (Vacciniaceae S. P. Gray), выделенному из вересковых, и характеризующемуся, в отличие от них, наличием нижней завязи. Семейство брусничных включает в себя растения разных жизненных форм - от небольших деревьев до прямостоячих или стелющихся кустарников и полукустарников, а также маленьких кустарничков.

Голубика считается одной из перспективных ягодных культур во многих странах мира. Культура голубики высокой является коммерчески важной и

успешно возделывается в странах Северной Америки и Европы (Рупасова с соавт., 2011). Существует большое разнообразие сортов голубики высокой (около 200), в основном селекции США, а также Германии, Польши и др. В США выведены три наиболее экономически важных вида семейства, а также два межвидовых гибрида, которые были вовлечены в селекционный процесс:

1. северная голубика высокая или высокорослая или щитковый (V. corymbosum L.);

2. голубика прутьевидная (rabbit eye blueberry, V. ashei Reade);

3. голубика узколистная (в основном V. angustifolium Ait., V. myrtilloides Michx., но сюда могут относить также V. Brittonii и V. Lamarckii);

4. южная голубика высокая (гибриды V. corymbosum х V. darrowi, V. Corymbosum х V. ashei и др.);

5. голубика полувысокая (half-high highbush, гибрид V. corymbosum х V. angustifolium).

Работа по интродукции культуры в Беларуси начата в Центральном ботаническом саду НАН Беларуси в 80-х годах ХХ в. В ряд особо ценных и экологически важных новых ягодных растений входит голубика высокая (высокорослая), впервые введенная в культуру в США и в настоящее время стремительно распространяющаяся по всему миру (США) 30 тыс. га, сбор 180 тыс. т; ФРГ - 2 тыс. га, сбор 11 тыс. т; Новая Зеландия 1 тыс. га, сбор 5 тыс. т; Польша - 1 тыс. га, сбор 5 тыс. т и др.), что обусловлено уникальным биохимическим составом ягод, широким спектром протекторных свойств, в том числе антиаллергенного действия, высокими вкусовыми качествами и урожайностью (до 10 т/га), долговечностью эксплуатации плантаций (до 50 лет).

Все большее внимание ей уделяется и в России. Ведется поисковая работа по маркированию ценных устойчивых генотипов голубики с целью создания новых высокопродуктивных селекционных образцов (сортов) в условиях России. Тестируются плантации на зараженность патогенами;

разработаны методы ускоренного микроклонального размножения оздоровленного посадочного материала голубики высокой.

1.2 Клональное микроразмножение Несмотря на более чем столетнюю историю исследований в области эффективных биотехнологических методов, клональное микрразмножение остается одним из самых эффективных подходов для размножения многих ценных видов растений, поддерживающий их генетическую стабильность и освобождающий от вирусной инфекции. В некоторых случаях микроразмножение является единственной техникой, позволяющей размножать и поддерживать определенные виды сельскохозяйственных растений. Микроразмножение растений решило многие фитосанитарные проблемы и расширило производителям из разных стран доступ к высококачественным растениям, тем самым эффективно способствуя расширению сельского хозяйства в этом и прошлом столетии. К проблемам микроразмножения в XXI веке относятся снижение затрат, повышение эффективности, разработка новых технологий и комбинирование микроразмножения с другими технологиями (Cardoso et al., 2018).

Тем не менее, микроразмножение имеет свои ограничения и может применяться только к некоторым важным садоводческим и лесным видам в следующих случаях:

• виды, не размножающиеся семенами (например, большинство сортов банана и ананаса); растения с ограниченным количеством семян (например, антуриум); растения с длинным ювенильным периодом (большинство фруктовых деревьев), растения с высокой гетерозиготностью, когда поддержание основных характеристик, представляющих интерес при размножении одними семенами, невозможно (антуриум, эвкалипт, орхидеи, ананас);

• виды с ограниченными технологиями вегетативного или бесполого размножения, например, банан или ананас. У этих растений период развития материнского растения длительный, при стандартном

вегетативном размножении образуется ограниченное количество новых побегов, и укоренение новых побегов происходит непосредственно от взрослых растений. В отличие от этого, микрооазмножение обеспечивает более эффективное и быстрое массовое распространение новых побегов;

• микроразмножение используется в промышленности для быстрого массового размножения и увеличения числа материнских растений. Подобные процедуры были применены к большому количеству промысловых видов как часть процесса размножения, но это не основной метод для массового размножения культуры. Некоторые примеры включают картофель, антуриум и другие декоративные растения, эвкалипт, древесные плоды и сахарный тростник;

• наличие вирусных инфекций у растений, размножающихся бесполым путем, обычно наносит огромный ущерб культуре, как, например, у картофеля. Массовое размножение картофеля практически невозможно из-за наличия большого количества вирусов и других бактериальных и грибковых заболеваний. Клональное микроразмножение позволяет получить растения без вирусных и бактериальных инфекций, Удаление вирусов и некоторых бактерий может потребовать дополнительной обработки антибиотиками, противовирусными средствами или тепловой обработки, наряду с культивированием апикальной меристемы побега;

• для размножения растений, полученных биотехнологическими методами, например, соматической гибридизации видов путем слияния протопластов (Citrus spp.), трансгенных растений (соя, кукуруза) или гаплоидов (кукуруза);

• у некоторых двудомных растений микроразмножение можно использовать для размножения только растений определенного пола, таких как папайя (Carica papaya), где для выращивания плодов требуются только гермафродитные и женские растения;

• этот метод может быть использован для сохранения и возобновления некоммерческих видов, редких и исчезающих видов растений в той или иной местности.

Микропроростки обладают многими преимуществами по сравнению с другими системами вегетативного размножения и дают высококачественные (физиологические и генетические) растения, которые не содержат вредителей и болезней, а также улучшают развитие и урожайность (Singh et al., 2011; de Souza et al., 2011).

Например, у картофеля, который является важным источником пищи, посев микроклубней, полученных in vitro, дает клубни обычного размера, что позволяет в конечном итоге значительно увеличить конечную продуктивность картофеля, потому что растения практически не содержат болезней и вредителей, что значительно увеличивает их урожайность (Ahloowalia, 1994). Другой альтернативой является комбинированное использование культуры апикальных меристем для получения маточных безвирусных растений с последующим их размножением с использованием более дешевой технологии микрочеренкования для достижения крупномасштабного производства картофеля без болезней (Haapala et al, 2008). Новые методы, такие как аэроника (рост почвы и без субстрата), могут увеличить урожай клонально размноженного картофеля, однако это требует дальнейшей проверки (Tierno et al, 2014).

Важный этап в клональном микроразмножении это подбор оптимальной питательной среды, состав которой часто зависит не только от вида, но и сорта растений. Однако использование конкретной культуральной среды только для одного сорта при микроразмножении в коммерческих лабораториях целесообразно только в том случае, если только этот сорт обладает высоким потенциалом или является незаменимым.

Таким образом, разработка и подготовка специфических сред для одного или нескольких сортов возможны только в тех случаях, когда сорт незаменим и имеет очень низкие темпы роста, или если он является одним из наиболее

важных коммерческих сортов этой лаборатории. Одним из примеров растения, которое требует особых процедур для выращивания определенного сорта, является Anthurium andraeanum cv., которая дает регенерацию in vitro только из сегментов листьев ювенильных и невозможна из тканей взрослого растения (Cardoso, Habermann, 2014). Этот сорт является единственным с полностью белыми пятнами вместо регулярных зелено-белых пятен, что приводит к интенсивному росту и отличным садоводческим и декоративным характеристикам в условиях теплицы.

Среда Мурасиге и Скуга продолжает оставаться преимущественно используемой смесью солей из-за ее высокой эффективности для различных видов и для множества разновидностей одного и того же вида. Тем не менее, используют и другие питательные среды среду (Lloyd, McCown, 1980), например, для некоторых древесных пород, таких как эвкалипт (Silva de Oliveira et al., 2015).

Различия в питательных средах влекут за собой добавление различных регуляторов роста растений и определенных сложных смесей и добавок, которые требуются для каждой культуры и стадии микропроизводства, Подбор концентрации и соотношения фитогормонов является необходимым этапом в технологии клонального микроразмножения растений. Высокая стоимость проростков, полученных путем клонального размножения, является основным ограничением их использования и распространения (Singh et al., 2011). Таким образом, снижение затрат является основной задачей для этой технологии в этом столетии.

1.3 Фенольные соединения высших растений Одними из наиболее распространенных в растениях вторичных метаболитов являются фенольные соединения, образование которых свойственно практически всем растительным клеткам. К их числу относятся соединения ароматической природы, содержащие одну или несколько гидроксильных групп в бензольном кольце. Такое строение значительно увеличивает реакционную способность этих веществ и обуславливает их

участие в основных физиологических процессах жизнедеятельности растений (Мартин, 1979; Запрометов, 1993; Harborne, 2000), Кроме того, природные полифенолы проявляют высокую биологическую активность в отношении широкого спектра патогенов, а также обладают капилляроукрепляющим, нейрорегуляторным, иммуномодулирующим, противоопухолевым действием, что позволяет использовать их в медицине и фармакологии для лечения и профилактики многих заболеваний (Lin et al., 2002; Куркин с соавт., 2005; Ehrhardt et al, 2007; Thangapazham et al, 2007; Antonio, Druse, 2008).

Наиболее многочисленная группа природных полифенолов представлена флавоноидами - соединениями Сб-С3-Сб-ряда, состоящими из двух бензольных ядер, связанных между собой трехуглеродной цепочкой. Согласно общепризнанной классификации флавоноиды делятся на 10 основных классов, исходя из степени окисленности или восстановленности пропанового фрагмента: катехины (флаван-3-олы), лейкоантоцианидины (флаван-3,4-днолы), дигидрохалконы, халконы, антоцианидины, флаваноны, флаванонолы (дигидрофлавонолы), флавоны, флавонолы и ауроны (Запрометов, 1993; Harborne, 2000). В последнее время выделяют еще один класс флавоноидов - незамещенные в пирановом ядре флаваны (Запрометов, 1993; Запрометов, 1996).

Огромное разнообразие флавоноидов достигается за счет наличия асимметрических атомов углерода в пирановом гетероцикле, а также различных схем гидроксилирования, метилирования, метоксилирования ароматических ядер. Повсеместное распространение в растительных тканях имеют такие флавоноиды, как антоцианидины (апигенин, лютеолин), катехины (эпикатехин), флавонолы (кверцетин, кемпферол, мирицетин и др.), большинство их которых находятся, преимущественно, в гликозилированной форме. При этом довольно часто происходит ацилирование сахарных фрагментов с участием различных органических кислот (Запрометов, 1996).

Помимо мономерных фенольных соединений, в растениях могут образовываться их димерные и полимерные формы.

Характерной особенностью всех фенольных соединений является их способность к формированию гликозидированных, метилированных и метоксилированных форм. Кроме того, благодаря наличию в их структуре гидроксильных и карбоксильных групп, они образуют конъюгаты с сахарами, органическими кислотами, терпенами, алкалоидами и растительными аминами (Запрометов, 1993). Именно этим обусловлено огромное разнообразие растительных полифенолов.

Список литературы диссертационного исследования кандидат наук Мохамед Гамил Райян Абуэлдис, 2019 год

СПИСОК ИСПОЛЬЗОВАННЫХ ИСТОЧНИКОВ

1. Барковский, Е. В. Современные проблемы биохимии. Методы исследований / Е. В. Барковский, С. Б. Бокуть, А. Н. Бородинский, В. У. Буко, О. И. Валентюкевич, А. И. Грицук, Е. О. Данченко [и др.]; под ред. проф. А. А. Чиркина. - Минск: Выш. шк., 2013. - 492 с.

2. Богдановская-Гиенэф, И. Д. О некоторых вопросах болотоведения / И. Д. Богдановская-Гиенэф // Бот. журнал. - 1946. - Т. 31. - №2 2. - С. 33-44.

3. Бутенко, Л. И. Исследования антоцианового комплекса ягод, прошедших криообработку / Л. И. Бутенко, Ж. В. Подгорная // Успехи современного естествознания. - 2016. - № 11-1. - С. 14-17.

4. Вечернина, Н. А. Методы биотехнологии в селекции, размножении и сохранении генофонда растений / Н. А. Вечернина // Вестник Алтайского государственного аграрного университета. - 2004. - 205 с.

5. Вечернина, Н. А. Ускоренное размножение голубики топяной in vitro/ Н. А. Вечернина, О. К. Тварткиладзе, А. А. Эрст, А. Б. Горбунов // Вестник Алтайского государственного аграрного университета. - 2008. - Т. 44. -№ 6. - С. 21-25.

6. Гончарук, Е. А. Изучение изменений в содержании фенольных соединений у каллусных культур диких и культурных видов растений льна при воздействии кадмия / Е. А. Гончарук, А. К. Алявина // Сборник тезисов VI Симпозиума по фенольным соединениям. - М.: 2004. - С. 2526.

7. Емельянова, Е. П. Влияние ауксинов на укоренение in vitro сортов Vaccinium uliginosum L. / Е. П. Емельянова // Известия Алтайского государственного университета. Серия Биологические науки. - 2010. -№ 3. - С. 25-28.

8. Загоскина, Н. В. Влияние ультрафиолетовой (УФ-Б) радиации на образование и локализацию фенольных соединений в каллусных культурах чайного растения / Н. В. Загоскина, Г. А. Дубравина, А. К.

Алявина, Е. А. Гончарук // Физиология растений. - 2007. - Т. 50. - С. 302-308.

9. Загоскина, Н. В. Изменения в образовании фенольных соединений при действии кадмия на каллусные культуры, инициированные из различных органов чайного растения / Н. В. Загоскина, Е. А. Гончарук, А. К. Алявина // Физиология растений. - 2007. - Т. 54. - №. 3. - С. 267274.

10. Запрометов М. Н. Фенольные соединения и методы их исследования / М.Н. Запрометов // Биохимические методы в физиологии растений / Под. Ред. Павлиновой О. А. М.: Наука -1971. - С. 185-197.

11. Загоскина, Н. В. К вопросу о способности диплоидных и полиплоидных сортов чайных растений к образованию фенольных соединений / Н. В. Загоскина, С. Ч. Фернандо, В. Г. Федосеева, М. Н. Запрометов // Сельскохозяйственная биология. - 1994. - № 5. - С.117-119.

12. Загоскина, н. в. способность различных сортов пшеницы (triticum aestivum L.) к образованию фенольных соединений / Н. В. Загоскина, Н. А. Олениченко, Юньвэй Чжоу, Е. А живухина. // прикл. биохим. и микробиол. - 2005. - Т. 41. - №. 1. - С. 113-116.

13. Зайцева, С. М. Образование и локализация фенольных соединений в растениях тисса (Taxus baccata L., Taxus canadensis Marsh.) и в инициированных из них каллусных культурах / С.М. Зайцева. Автореф. дис. ... канд. биол. наук: Российский государственный аграрный университет-МСХА имени КА Тимирязева. - М., 2007. - 22 с.

14. Запрометов, М. Н. Способность изолированных хлоропластов из листьев фасоли осуществлять биосинтез фенольных соединений / М. Н. Запрометов, Т. Н. Николаева //Физиология растений. -2003. - Т. 50. - № 5. - С. 699-702.

15. Запрометов, М. Н. Фенольные соединения и их роль в жизни растения / М. Н. Запрометов. 56-е Тимирязевское чтение. - М.: Наука, 1996. - 45 с.

16. Запрометов, М. Н. Фенольные соединения: распространение метаболизм и функции в растениях / М. Н. Запрометов. - М.: Наука, 1993. - 271 с.

17. Кузнецов, В. В. Молекулярно-генетические и биохимические методы в современной биологии растений / В. В. Кузнецов, Г. А. Романов; под ред. - М.: Бином. Лаборатория знаний, 2012. - 500 с.

18. Куркин, В. А. Фенилпропаноиды как биологически активные соединения и стандартные образцы лекарственного растительного сырья и фитопрепаратов / В. А. Куркин, Г. Г. Запесочная, В. Н. Ежков // II Всероссийский съезд фармацевтических работников: Материалы съезда. - Сочи. - 2005. - С. 93-95.

19. Лобакова, Е. С., Особенности образования и накопления фенольных соединений в апогеотропных корнях саговниковых растений / Е. С. Лобакова, Г. А. Дубравина, Н. В. Загоскина // Физиология растений. -2004. - Т. 51. - № 4. -С. 541-549.

20. Макаренко, О. А. Физиологические функции флавоноидов в растениях / О. А. Макаренко, А. П. Левицкий // Физиология и биохимия культурных растений. - 2013. - Т.45. - № 2 - С.100-112.

21. Маракаев, О. А. Техногенный стресс и его влияние на лиственные древесные растения (на примере парков г. Ярославля) / О. А. Маракаев, Н. С. Смирнова, Н. В. Загоскина // Экология. - 2006. - № 6. - С. 410414.

22. Носов, А. М. Регуляция синтеза вторичных соединений в культуре клеток растений / А. М. Носов // Биология культивируемых клеток и биотехнология растений. - М: Наука, -1991. - С. 5-18.

23. Носов, Н. А. Виртуальная реальность / Н. А. Носов // Вопросы философии. - 1999. - Т. 10. - С. 152-164.

24. Полякова, Л. В. Изменчивость фенольных соединений у некоторых травянистых и древесных растений от межпопуляционного до внутри

индивидуального (эндогенного) уровня / Л. В. Полякова, Э. А. Ершова // Химия растительного сырья. - 2000. - № 1. - С. 121-129.

25. Решетников, В. Н. Биотехнология растений и перспективы ее развития / В. Н. Решетников, Е. В. Спиридович, А. М. Носов // Физиология растений и генетика. - 2014. - Т. 46. - № 1. - С. 3-18.

26. Рупасова, Ж. А. Формирование биохимического состава плодов видов семейства Ericaceae (Вересковые) при интродукции в условиях Беларуси / Ж. А. Рупасова, В. Н. Решетников, Т. И. Василевская, А. П. Яковлев, Н. Б. Павловский. - Минск: Беларус. Наука, 2011. - 307 с.

27. Серегин, И. В. Физиологические аспекты токсического действия кадмия и свинца на высшие растения / И. В. Серегин, В. Б. Иванов // Физиология растений. - 2001. - Т. 48. - № 4. - С. 606-630.

28. Сидорович, Е. А. Клональное микроразмножение новых плодово-ягодных растений / Е. А. Сидорович, Е. Н. Кутас // - Минск: Наука и техника, 1996. - 242 с.

29. Соловченко, А. Е. Экранирование видимого и УФ излучения как механизм фотозащиты у растений / А. Е. Соловченко, М. Н. Мерзляк // Физиология растений. - 2008. - Т. 55. - С. 803-822.

30. Фуксман, И. Л. Фенольные соединения хвойных деревьев в условиях стресса / И. Л. Фуксман, Л. Л. Новицкая, В. А. Исидоров, В. И. Рощин // Лесоведение. - 2005. - № 3. - С. 4-10.

31. Цыренов, В. Ж. Основы биотехнологии: Культивирование изолированных клеток и тканей растений: учебно-методическое пособие / В. Ж. Цыренов. - Улан-Удэ: ВСГТУ, 2003. - 58 с.

32. Чередниченко, М. Ю. Трансформация картофеля и табака генами дефензинов и ингибитора протеиназ BWI-1А / М. Ю. Чередниченко. дис. д-ра биол. Наук, Московская сельскохозяйственная академия имени КА Тимирязева. - М, 2004.

33. Сирота Т. В. Способ определения антиоксидантной активности супероксидисмутазы и химических соединений / Т. В. Сирота. Патент РФ, 2144674. - 2000.

34. Чистяков, Ф. Е. Полифенолы Camellia sinensis L.: накопление и регуляция / Ф. Е. Чистяков. Выпускная квалификационная работа. Пид. Образование, биол. Наук, Московский городской пед.университет, Москова, 2016.

35. Aaby, K. Phenolic compounds in strawberry (Fragaria x ananassa Duch.) fruits: Composition in 27 cultivars and changes during ripening / K. Aaby, S. Mazur, A. Nes, G. Skrede // Food Chemistry - 2012. - Vol. 132. - № 1. - P. 86-97.

36. Adams, L. S. Blueberry phytochemicals inhibit growth and metastatic potential of MDA-MB-231 breast cancer cells through modulation of the phosphatidylinositol 3-kinase pathway / L. S. Adams, S. Phung, N. Yee, N. P. Seeram, L. Li, S. Chen, // Cancer research. - 2010. - Vol. 70. - № 9. - P. 3594-3605.

37. Adil, M. Effect of explant type and plant growth regulators on callus induction, growth and secondary metabolites production in Cnidium officinale Makino / M. Adil, X. Ren, D. I. Kang, B. R. Jeong // Molecular biology reports. - 2018. - Vol. 45. - № 6. - P. 1919-1927.

38. Agathokleous E. Hormetic dose responses induced by lanthanum in plants. Environmental pollution. E. Agathokleous, M. Kitao, Calabrese E. J. 2018.

39. Ahloowalia, B. S. Production and performance of potato mini-tubers / B. S. Ahloowalia // Euphytica. - 1994. - Vol. 75. - № 3. - P. 163-172.

40. Al Khateeb, W. In vitro propagation and characterization of phenolic content along with antioxidant and antimicrobial activities of Cichorium pumilum Jacq / W. Al Khateeb, E. Hussein, L. Qouta, M. Alu'datt, B. Al-Shara, A.

Abu-Zaiton // Plant Cell, Tissue and Organ Culture (PCTOC). - 2012. - Vol. 110. - № 1. - P. 103-110.

41. Alemanno, L. Localization and identification of phenolic compounds in Theobroma cacao L. somatic embryogenesis / L. Alemanno, T. Ramos, A. Gargadenec, C. Andary, N. Ferriere // Annals of botany. - 2003. - Vol. 92. -№ 4. - P. 613-623.

42. Ali, M. Light-induced fluctuations in biomass accumulation, secondary metabolites production and antioxidant activity in cell suspension cultures of Artemisia absinthiu L. / M. Ali, B. H. Abbasi // Journal of Photochemistry and Photobiology B: Biology. - 2014. - Vol. 140. - P. 223-227.

43. Almeida, R. In vitro micropropagation of endangered Rhododendron ponticum L. subsp. baeticum (Boissier & Reuter) Handel-Mazzetti / R. Almeida, S. Gonfalves, A., Romano // Biodiversity & Conservation. - 2005. - Vol. 14. - № 5. - P. 1059-1069.

44. Ananga, A. Production of anthocyanins in grape cell cultures: a potential source of raw material for pharmaceutical, food, and cosmetic industries / A. Ananga, V. Georgiev, J. Ochieng, B. Phills, V. Tsolova. BoD - Books on Demand. In The Mediterranean genetic code-grapevine and olive. IntechOpen, 2013. - 324 p.

45. Andarwulan, N. Phenolic content in differentiated tissue cultures of untransformed and Agrobacterium-transformed roots of anise (Pimpinella anisum L.) / N. Andarwulan, K. Shetty // Journal of agricultural and food chemistry. - 1999. - Vol. 47. - № 4. - P. 1776-1780.

46. Andersen, 0. M., Anthocyanins in fruits of Vaccinium japonicum / 0. M. Andersen // Phytochemistry. - 1987. - Vol. 26. - № 4. - P. 1220-1221.

47. Anderson, W. C., July. Tissue culture propagation of red and black raspberries, Rubus idaeus and R. occidentalis / W. C. Anderson // In Symposium on Breeding and Machine Harvesting of Rubus. - 1980. - Vol. 112. - P. 13-20.

48. Antonio, A. M. Antioxidants prevent ethanol-associated apoptosis in fetal rhombencephalic neurons / A. M. Antonio, M. J. Druse // Brain research. - 2008. - Vol.120. - P. 16-23.

49. Arab, M. M. Effects of nutrient media, different cytokinin types and their concentrations on in vitro multiplication of G* N15 (hybrid of almond* peach) vegetative rootstock / M. M. Arab, A. Yadollahi, A. Shojaeiyan, S. Shokri, S. M. Ghojah // Journal of genetic engineering and biotechnology. -2014. - Vol. 12. - № 2. - P. 81-87.

50. Ayaz, F. A. Separation, characterization, and quantitation of phenolic acids in a little-known blueberry (Vaccinium arctostaphylos L.) fruit by HPLC-MS / F. A. Ayaz, S. Hayirlioglu-Ayaz, J. Gruz, O. Novak, M. Strnad // Journal of Agricultural and Food Chemistry. - 2005. - Vol. 53. - № 21. - P. 8116-8122.

51. Bairu, M. W. Comparative phytochemical analysis of wild and in vitro-derived greenhouse-grown tubers, in vitro shoots and callus-like basal tissues of Harpagophytum procumbens / M. W. Bairu, S. O. Amoo, J. Van Staden // South African journal of botany. - 2011. - Vol. 77. - № 2. - P. 479-484.

52. Balde, A. M. Plant antiviral agents. VII. Antiviral and antibacterial proanthocyanidins from the bark of Pavetta owariensis / A. M. Balde, L. Van Hoof, L. A. Pieters, D. V. Berghe, A. J. Vlietinck // Phytotherapy research. -1990. - Vol. 4. - № 5. - P. 182-188.

53. Ball, E. Production of a group of anthocyanins in a callus culture under influence of an auxin / E. Ball // plant physiology. 15501-monona drive, Rockville, md 20855: amer soc plant physiologists. - 1967. - P. S24

54. Ballington, J. R. Anthocyanin, aglycone and aglycone-sugar content of the fruits of five species of Vaccinium section Myrtillus / J. R. Ballington, W. E. Ballinger, E. P. Maness, J. J. Luby // Canadian journal of plant science. -1988. - Vol. 68. - № 1. - P. 241-246.

55. Barnard, D. L. Inhibitors of measles virus / D. L. Barnard // Antiviral Chemistry and Chemotherapy. - 2004. - Vol. 15. - № 3. - P. 111-119.

56. Barros, L. Phenolic profiles of cultivated, in vitro cultured and commercial samples of Melissa officinalis L. / L. Barros, M. Dueñas, M. I. Dias, M. J. Sousa, C. Santos-Buelga, I. C. Ferreira // infusions. Food chemistry. - 2013.

- Vol. 136. - № 1. - P. 1-8.

57. Barros, L. Phenolic profiles of in vivo and in vitro grown Coriandrum sativum L. / L. Barros, M. Dueñas, M. I. Dias, M. J. Sousa, C. Santos-Buelga, I. C. Ferreira, // Food Chemistry. - 2012. - Vol. 132. - № 3. - P. 841-848.

58. Bieza, K. An Arabidopsis mutant tolerant to lethal ultraviolet-B levels shows constitutively elevated accumulation of flavonoids and other phenolics / K. Bieza, R. Lois // Plant Physiology. - 2001. - Vol. 126. - № 1. - P. 1105-1115.

59. Blando, F. Characterization of in vitro anthocyanin-producing sour cherry (Prunus cerasus L.) callus cultures / F. Blando, A. P. Scardino, L. De Bellis, I .Nicoletti, G. Giovinazzo // Food research international. - 2005. - Vol. 38.

- № 8-9. - P.937-942.

60. Blokhina, O. Antioxidants, oxidative damage and oxygen deprivation stress: a review / O. Blokhina, E. Virolainen, K. V. Fagerstedt // Annals of botany.

- 2003. - Vol. 91. - № 2. - P. 179-194.

61. Bolda, V. V. Studies on elemental composition and antioxidant capacity in callus cultures and native plants of Vaccinium myrtillus L. local populations / V. V. Bolda // Acta Biologica Szegediensis. - 2011. - Vol. 55. - № 2. - P. 255-259.

62. Botau, D. the selection of some tissue lines producers of anthocyanins in bilberry (Vaccinium mytillus L.) Callus culture / D. Botau, V. Bolda // Scientific Bulletin. Series F. Biotechnologies. - 2013. - Vol. 17. - P. 49-52.

63. Boudet, A. M. Lignins and lignification: selected issues / A. M. Boudet // Plant Physiology and Biochemistry. - 2000. - Vol. 38. - № 1-2. - P. 81-96.

64. Braun-Blanquet, J. L origine et le développement des flores dans le Massif Central de France avec aperçu sur les migrations des flores dans l'Europe Sud-Occidentale / J. Braun-Blanquet // In: Annales de la Société linnéenne de Lyon

et des Société botanique de Lyon, Société d'anthropologie et de biologie de Lyon réunies. Léon Lhomme, Beer et Cie, Paris, Zürich. - 1923. Vol. 69. - №2 1. - P. 1-16.

65. Brisson, L. Localization of partially methylated flavonol glucosides in Chrysosplenium americanum. II. Immunofluorescence / L. Brisson, W. E. K. Vacha, R. K. Ibrahim // Plant science. - 1986. - Vol. 44. - № 3. - P. 175181.

66. Britton, N. L. An illustrated flora of the northern United States, Canada, and the British possessions 2. Ed. 2. / N. L. Britton, A. Brown // Charles Schribner's Sons, New York. - 1913. - 735 p.

67. Broeckling, C. D. Comparative metabolomics of transgenic tobacco plants (Nicotiana tabacum var. Xanthi) reveals differential effects of engineered complete and incomplete flavonoid pathways on the metabolome / C. D. Broeckling, K. G. Li, D. Y. Xie. Transgenic Plants: Advances and Limitations. - BoD - Books on Demand, 2012. - 492 p.

68. Camp, W. H. The structure and origin of species / W. H Camp, C. L. Gilly // Brittonia. - 1943. - Vol. 4. - № 3. - P. 323-385.

69. Cappelletti, R. The use of TDZ for the efficient in vitro regeneration and organogenesis of strawberry and blueberry cultivars / R. Cappelletti, S. Sabbadini, B. Mezzetti, // Scientia horticulturae. - 2016. - Vol. 207. - P. 117124.

70. Cardoso, J. C. Adventitious shoot induction from leaf segments in Anthurium andreanum is affected by age of explant, leaf orientation and plant growth regulator / J. C. Cardoso, G. Habermann // Horticulture, Environment, and Biotechnology. - 2014. - Vol. 55. - № 1. - P. 56-62.

71. Cardoso, J. C. Micropropagation in the Twenty-First Century/ J. C. Cardoso, L. T. S. Gerald J. A. T. da Silva // In Plant Cell Culture Protocols. Springer. -2018. - P. 17-46.

72. Chattopadhyay, S. Bioprocess considerations for production of secondary metabolites by plant cell suspension cultures / S. Chattopadhyay, S. Farkya, A. K. Srivastava, V. S. Bisaria // Biotechnology and Bioprocess Engineering. - 2002. - Vol. 7. - № 3. - P. 138.

73. Chen, J. Y. Effect of salicylic acid on phenylpropanoids and phenylalanine ammonia-lyase in harvested grape berries / J. Y. Chen, P. F. Wen, W. F. Kong, Q. H. Pan, J. C. Zhan, J. M. Li, S. B. Wan, W. D. Huang // Postharvest Biology and Technology. - 2006. - Vol. 40. - № 1. - P. 64-72.

74. Chen, K. X. Exploring the structural requirements for jasmonates and related compounds as novel plant growth regulators: a current computational perspective / K. X. Chen, Z. G. Li // Plant signaling & behavior. - 2009. -Vol. 4. - № 11. - P. 1007-1009.

75. Cheniany, M. Content of different groups of phenolic compounds in microshoots of Juglans regia cultivars and studies on antioxidant activity / M. Cheniany, H. Ebrahimzadeh, K. Vahdati, J. E. Preece, A. Masoudinejad, M. Mirmasoumi // Acta Physiologiae Plantarum. - 2013. - Vol. 35. - № 2. - P. 443-450.

76. Chitra, D. V. Shoot regeneration via direct organogenesis from in vitro derived leaves of mulberry using thidiazuron and 6-benzylaminopurine / D. V. Chitra, G. Padmaja // Scientia Horticulturae. - 2005. - Vol. 106. - № 4. -P. 593-602.

77. Clapa, D. The use of Isubgol and Sequestrene 138 for the in vitro propagation of the highbush blueberry (Vaccinium corymbosum L.) / D. Clapa, A. Fira, T. Rusu, // Journal of food agriculture and environment. - 2008. - Vol. 6. № 1. - P. 145.

78. Cocetta, G. Methyl jasmonate affects phenolic metabolism and gene expression in blueberry (Vaccinium corymbosum). / G. Cocetta, M. Rossoni, C. Gardana, I. Mignani, A. Ferrante, A. Spinardi // Physiologia plantarum. - 2015. - Vol. 153. № 2. - P. 269-283.

79. Cohen, D. Application of micropropagation methods for blueberries and tamarillos / D. Cohen // Application of micropropagation methods for blueberries and tamarillos. - 1980. - Vol. 30. - P. 144-146.

80. Collin, H. A. Secondary product formation in plant tissue cultures / H.A. Collin // Plant Growth Regulation. - 2001. - Vol. 34. № 2. - P. 119-134.

81. Cuce, M. A. Micropropagation of Vaccinium myrtillus L. (Bilberry) naturally growing in the Turkish flora / M. Cuce, A. Sokmen // Turkish Journal of Biology. - 2015. - Vol. 39. - № 2. - P. 233-240.

82. Cuce, M. In vitro production protocol of Vaccinium uliginosum L. (bog bilberry) growing in the Turkish flora / M. Cuce, A. Sokmen // Turkish Journal of Agriculture and Forestry. - 2017. - Vol. 41. - № 4. - P. 294-304.

83. Cui, X. H. Production of adventitious root biomass and secondary metabolites of Hypericum perforatum L. in a balloon type airlift reactor / X. H. Cui, H. N. Murthy, Y. X. Jin, Y. H. Yim, J. Y. Kim, K.Y. Paek, // Bioresource technology. - 2011. - Vol. 102. - № 21. - P. 10072-10079.

84. De Souza, A. L. K. Desempenho de mudas de mirtilo obtidas por micropropaga?ao ou estaquia / A. L. K. de Souza, M. W. Schuch, L. E. C. Antunes, J. D. Schmitz, M. da Silveira Pasa, S. S. Camargo, B. Carra // Pesquisa Agropecuaria Brasileira. - 2011. - Vol. 46. . - № 8. - P. 868-874.

85. Debnath, S. C. An efficient adventitious shoot regeneration system on excised leaves of micropropagated lingonberry (Vaccinium vitis-idaea L.) / S. C. Debnath, K. B. McRae // The Journal of Horticultural Science and Biotechnology. - 2002. - Vol. 77. - № 6. - P. 744-752.

86. Debnath, S. C. An efficient in vitro shoot propagation of cranberry (Vaccinium macrocarpon Ait.) by axillary bud proliferation / S. C. Debnath, K. B. McRae // In Vitro Cellular & Developmental Biology-Plant. - 2001. - Vol. 37. - № 2. - P. 243-249.

87. Ding, Y. Proanthocyanidins protect against early diabetic peripheral neuropathy by modulating endoplasmic reticulum stress. / Y. Ding, X. Dai, Z.

Zhang, Y. Jiang, X. Ma, X. Cai, Y. Li, // The Journal of nutritional biochemistry. - 2014. - Vol. 25. - № 7. - P. 765-772.

88. Dixit, V. Differential antioxidative responses to cadmium in roots and leaves of pea (Pisum sativum L. cv. Azad) / V. Dixit, V. Pandey, R. Shyam // Journal of Experimental Botany. - 2001. - Vol. 52. - № 358. - P. 1101-1109.

89. Dixon, R. A. Stress-induced phenylpropanoid metabolism / R. A. Dixon, Paiva N. L. // the plant cell. - 1995. - Vol. 7. - № 7. - P. 1085.

90. Dougall, D. K. Anthocyanins from wild carrot suspension cultures acylated with supplied carboxylic acids / D. K. Dougall, D. C. Baker, E. G. Gakh, M. A. Redus, N. A. Whittemore // Carbohydrate research. - 1998. - Vol. 310. - № 3. - P. 177-189.

91. Dougall, D. K. Sinapic acid stimulator of anthocyanin accumulation in carrot cell cultures / D. K. Dougall // Plant Science. - 1989. - Vol. 60. - № 2. - P. 259-262.

92. Edahiro, J. I. Enhanced accumulation of anthocyanin in cultured strawberry cells by repetitive feeding of L-phenylalanine into the medium / J. I. Edahiro, M. Nakamura, M. Seki, S. Furusaki // Journal of bioscience and bioengineering. - 2005. - Vol. 99. - № 1. - P. 43-47.

93. Eibl R. Plant cell culture technology in the cosmetics and food industries: current state and future trends. Applied microbiology and biotechnology / R. Eibl, P. Meier, I. Stutz, D. Schildberger, T. Huhn, D. Eibl // Applied microbiology and biotechnology. - 2018. - Vol. 102. - № 20. - P. 8661-8675.

94. Edwards, R. Plant glutathione S-transferases: enzymes with multiple functions in sickness and in health / R. Edwards, D. P. Dixon, V. Walbot // Trends in plant science. - 2000. - Vol. 5. - № 5. - P. 193-198.

95. Ehrhardt, C. A polyphenol rich plant extract, CYSTUS052, exerts anti influenza virus activity in cell culture without toxic side effects or the tendency to induce viral resistance / C. Ehrhardt, E. R. Hrincius, V. Korte, I.

Mazur, K. Droebner, A. Poetter, S. Dreschers, M. Schmolke, O. Planz, S. Ludwig // Antiviral research. - 2007. - Vol. 76. - № 1. - P. 38-47.

96. Elias, T.S., The complete trees of North America. Field guide and natural history / T. S. Elias. - Van Nostrand Reinhold Company & Times Mirror Magazines Inc, New York, USA, 1980. - 948 p.

97. Ellis, C. The Arabidopsis mutant cev1 links cell wall signaling to jasmonate and ethylene responses / C. Ellis, I. Karafyllidis, C. Wasternack, J.G. Turner // The Plant Cell. - 2002. - Vol. 14. . - № 7. - P. 1557-1566.

98. Ellis, R. H. Towards a rational basis for testing seed quality / R. H. Ellis, E. H. Roberts // Proceedings-Easter School in Agricultural Science, University of Nottingham. - 1978. - P. 605-635.

99. Fan, L. Progressive inhibition by water deficit of cell wall extensibility and growth along the elongation zone of maize roots is related to increased lignin metabolism and progressive stelar accumulation of wall phenolics / L. Fan, R. Linker, S. Gepstein, E. Tanimoto, R. Yamamoto, P. M. Neumann // Plant physiology. - 2006. - Vol. 140. - № 2. - P. 603-612.

100. Fang, Y. Benzyl adenine restores anthocyanin pigmentation in suspension cultures of wild Vaccinium pahalae / Y. Fang, M. A. L. Smith, M.F. Pépin // Plant cell, tissue and organ culture. - 1998. - Vol. 54. - № 2. - P. 113.

101. Fang, Y. Effects of exogenous methyl jasmonate in elicited anthocyanin-producing cell cultures of ohelo (Vaccinium phalae) / Y. Fang, M. A. L. Smith, M.F. Pépin // In Vitro Cellular & Developmental Biology-Plant. -1999. - Vol. 35. - № 1. - P. 106-113.

102. Faria, A. Blueberry anthocyanins and pyruvic acid adducts anticancer properties in breast cancer cell lines / A. Faria, D. Pestana, D. Teixeira, V. De Freitas, N. Mateus, C. Calhau // Phytotherapy research. - 2010. - Vol. 24. -№ 12. - P.1862-1869.

103. Ferguson, L. R. Role of plant polyphenols in genomic stability / L.R. Ferguson // Mutation Research Fundamental and Molecular Mechanisms of Mutagenesis. - 2001. - Vol. 475. № 1-2. - P. 89-111.

104. Ferreira, R. R. Changes in antioxidant enzyme activities in soybean under cadmium stress / R. R. Ferreira, R. F. Fornazier, A. P. Vitoria, P. J. Lea, R. A. Azevedo // Journal of Plant Nutrition. - 2002. - Vol. 25. - № 2. - P. 327-342.

105. Fira, A. Aspects regarding the in vitro propagation of highbush blueberry cultivar blue crop / A. Fira, D. Clapa, C. Badescu // Bulletin UASVM, Horticulture. - 2008. - Vol. 65. - № 2. - P. 104-109.

106. Fu, B. The influence of light quality on the accumulation of flavonoids in tobacco (Nicotiana tabacum L.) leaves / B. Fu, X. Ji, M. Zhao, F. He, X. Wang, Y. Wang, P. Liu, L. Niu // Journal of Photochemistry and Photobiology B: Biology. - 2016. - Vol. 162. - P. 544-549.

107. Gaetke, L. M. Copper toxicity, oxidative stress, and antioxidant nutrients / L. M. Gaetke, Chow C. K. // Toxicology. - 2003. - Vol. 189. - № 1-2. P. 147163.

108. Gajdosova, A. Microclonal propagation of Vaccinium sp. and Rubus sp. and detection of genetic variability in culture in vitro / A. Gajdosova, M. G. Ostrolucka, G. Libiakova, E. Ondruskova, D. Simala // Journal of Fruit and Ornamental Plant Research. - 2006. - Vol. 14. - № 1. - P. 103-119.

109. Galbiati, M. Photoinduction of anthocyanin in maize: a genetic approach / M. Galbiati, A. Chiusi, P. Peterlongo, A. Mancinelli, G. Gavazzi // Maydica. -1994. - Vol. 39. - P. 89-95.

110. Gallina, L. Inhibition of viral RNA synthesis in canine distemper virus infection by proanthocyanidin A2 / L. Gallina, F. Dal Pozzo, V. Galligioni, E. Bombardelli, A. Scagliarini // Antiviral research. - 2011. - Vol. 92. - № 3. -P. 447-452.

111. Gerhardt, K. E. The effects of far-red light on plant growth and flavonoid accumulation in Brassica napus in the presence of ultraviolet B radiation / K.

E. Gerhardt, M. A. Lampi, B. M. Greenberg // Photochemistry and Photobiology. - 2008. - Vol. 84. - № 6. - P. 1445-1454.

112. Gleitz, J. Metabolic changes in carrot cells in response to simultaneous treatment with ultraviolet light and a fungal elicitor / J. Gleitz, J. P. Schnitzler, D. Steimle, H. U. Seitz // Planta. - 1991. - Vol. 184. - № 3. - P. 362-367.

113. Grzegorczyk, I. Antioxidant activity of extracts from in vitro cultures of Salvia officinalis L. / I. Grzegorczyk, A. Matkowski, H. Wysokinska // Food Chemistry. - 2007. - Vol. 104. - № 2. - P. 536-541.

114. Guo, B. Spectral composition of irradiation regulates the cell growth and flavonoids biosynthesis in callus cultures of Saussurea medusa Maxim / B. Guo, Y. G. Liu, Q. Yan, C. Z. Liu // Plant growth regulation. - 2007. - Vol. 52. - № 3. - P. 259-263.

115. Haapala, T. Production of disease-free seed tubers. International year of the potato (FAO). [Electronic resource] / T. Haapala, R. Cortbaoui, E. Chujoy. -2008. - URL: http://www.fao.org/potato-2008/en/potato/seedtubers.html (Accessed 20 Apr 2018).

116. Hall, R. D. Factors determining anthocyanin yield in cell cultures of catharanthusroseus L. / R. D. Hall, M. M. Yeoman // New phytologist. -1986.

- 103. - № 1. - P. 33-43.

117. Hamamatsu, S. Compositions of anthocyanin and other flavonoids in cultured cells of rabbiteye blueberry (Vaccinium ashei Reade cv. Tifblue) / S. Hamamatsu, K. Yabe, Y. Nawa // Food science and technology research. -2007. - Vol. 10. - № 3. - P. 239-246.

118. Hano, C. Differential accumulation of monolignol-derived compounds in elicited flax (Linum usitatissimum) cell suspension cultures / C. Hano, M. Addi, L. Bensaddek, D. Crônier, S. Baltora-Rosset, J. Doussot, S. Maury, F. Mesnard, B. Chabbert, S. Hawkins, E. Lamé // Planta. - 2006. - Vol. 223.

- № 5. - P. 975-989.

119. Hao, G. Fungal endophytes-induced abscisic acid is required for flavonoid accumulation in suspension cells of Ginkgo biloba / G. Hao, X. Du, F. Zhao, H. Ji // Biotechnology letters. - 2010. - Vol. 32. - № 2. - P. 305-314.

120. Harborne, J. B. Arsenal for survival: secondary plant products/ J. B. Harborne // Taxon. - 2000. - P. 435-449.

121. He, F. Biosynthesis and genetic regulation of proanthocyanidins in plants / F. He, Q.H. Pan, Y. Shi, C.Q. Duan, // Molecules. -2008. - Vol. 13. - № 10. -P. 2674-2703.

122. Hendry, G. A. Natural food colorants / G. A. Hendry, J. D. Houghton. -Springer Science & Business Media, 1996. - 348 P.

123. Hinderer, W. Inhibition of flavonoid biosynthesis by gibberellic acid in cell suspension cultures of Daucus carota L. / W. Hinderer, M. Petersen, H. U. Seitz, // Planta. - 1984. Vol. 160. - № 6. - P. 544-549.

124. Hoffmann, A. M. High blue light improves acclimation and photosynthetic recovery of pepper plants exposed to UV stress / A.M. Hoffmann, G. Noga, M. Hunsche // Environmental and Experimental Botany. - 2015. - Vol. 109. P. 254-263.

125. Horbowicz, M. Effects of methyl jasmonate on accumulation of flavonoids in seedlings of common buckwheat (Fagopyrum esculentum Moench) / M. Horbowicz, W. Wiczkowski, D. Koczkodaj, M.Saniewski // Acta Biologica Hungarica. - 2011. - Vol. 62. - № 3. - P. 265-278.

126. Hukkanen, A. T. Antioxidant capacity and phenolic content of sweet rowanberries / A. T. Hukkanen, S. S. Polonen, S. O. Karenlampi, H. I. Kokko // Journal of agricultural and food chemistry. - 2006. - Vol. 54. - № 1. - P. 112-119.

127. Iwashina, T. The structure and distribution of the flavonoids in plants / T. Iwashina // Journal of Plant Research. - 2000. - Vol. 113. - № 3. - P. 287299.

128. Jackman, R. L. Anthocyanins and betalains. Natural food colorants / R. L. Jackman, J. L. Smith // Natural Food colorants. Springer. - 1996. - P. 244309.

129. Jacygrad, E. Effect of medium type and plant growth regulators on the in vitro shoot proliferation of Cotinus coggygria Scop. 'Royal Purple' / E. Jacygrad, A. Ilczuk, M. Mikos, K. Jagiello-Kubiec // Acta Scientiarum Polonorum. Hortorum Cultus. - 2012. - Vol. 11. - № 5. - P. 143-151.

130. Jaleel, C. A. Triadimefon induced salt stress tolerance in Withania somnifera and its relationship to antioxidant defense system / C. A. Jaleel, G. M. A. Lakshmanan, M. Gomathinayagam, R. Panneerselvam // South African Journal of Botany. - 2008. - Vol. 74. - № 1. - P. 126-132.

131. Jassim, S.A. Novel antiviral agents: a medicinal plant perspective / S.A. Jassim, M. A. Naji // Journal of Applied Microbiology. - 2003. - Vol. 95. - № 3. - P. 412-427.

132. Jennings, D. L. Anthocyanin variation in the genus Rubus / D. L. Jennings, E. Carmichael // New Phytologist. - 1980. - Vol. 84. - № 3. - P. 505-513.

133. Jiao, L. Proanthocyanidins are the major anti-diabetic components of cinnamon water extract / L. Jiao, X. Zhang, L. Huang, H. Gong, B. Cheng, Y. Sun, Y. Li, Q. Liu, L. Zheng, K. Huang // Food and chemical toxicology. - 2013. - Vol. 56. P. 398-405.

134. Joseph, J. A. Blueberry supplementation enhances signaling and prevents behavioral deficits in an Alzheimer disease model / J. A. Joseph // Nutritional neuroscience. - 2003. - Vol. 6. - № 3. - P. 153-162.

135. Kadomura-Ishikawa, Y. Light and abscisic acid independently regulated FaMYB10 in Fragariax ananassa fruit / Y. Kadomura-Ishikawa, K. Miyawaki, A. Takahashi, T. Masuda, S. Noji // Planta. - 2015. - Vol. 241. - № 4. - P. 953-965.

136. Karuppusamy, S. A review on trends in production of secondary metabolites from higher plants by in vitro tissue, organ and cell cultures / Karuppusamy

S. // Journal of Medicinal Plants Research. - 2009. - Vol. 3. - № 13. - P. 1222-1239.

137. Kaume, L. The blackberry fruit: a review on its composition and chemistry, metabolism and bioavailability, and health benefits / L. Kaume, L. R. Howard L. Devareddy // Journal of agricultural and food chemistry. - 2011. - Vol. 60.

- № 23. - P. 5716-5727.

138. Khoo, H. E. Anthocyanidins and anthocyanins: colored pigments as food, pharmaceutical ingredients, and the potential health benefits / H. E. Khoo, A. Azlan, S. T. Tang, S. M. Lim //Food & nutrition research. - 2017. - Vol. 61.

- № 1. - P. 1-21.

139. Kim, H .J. Effect of methyl jasmonate on phenolics, isothiocyanate, and metabolic enzymes in radish sprout (Raphanus sativus L.) / H. J. Kim, F. Chen, X. Wang, J. H. Choi // Journal of agricultural and food chemistry. -2006. - Vol. 54. - № 19. - P. 7263-7269.

140. Kim, J. Proanthocyanidins from the American cranberry (Vaccinium macrocarpon) induce cell cycle alterations in DU145 human prostate cancer cells in vitro by affecting the expression of cell cycle-associated proteins / J. Kim, B. McKeown, K. Patel, A. Catalli, M. Kulka, C. Neto, R. Hurta // Functional Foods in Health and Disease. - 2014. - Vol.4. - № 4. - P. 130146.

141. Kim, K. K. Anti-angiogenic activity of cranberry proanthocyanidins and cytotoxic properties in ovarian cancer cells / K. K. Kim // International journal of oncology. - 2012. - Vol. 40. - № 1. - P. 227-235.

142. Kim, Y. J. Anticancer effects of oligomeric proanthocyanidins on human colorectal cancer cell line, SNU-C4 / Y. J. Kim, H. J. Park, S. H. Yoon, M. J. Kim, K. H. Leem, J. H. Chung, H. K. Kim // World Journal of Gastroenterology: WJG. - 2005. - Vol. 11. - № 30. - P. 4674.

143. Kitamura, S. Transparent testa 19 is involved in the accumulation of both anthocyanins and proanthocyanidins in Arabidopsis / S. Kitamura, N.

Shikazono, A. Tanaka // The Plant Journal. - 2004. - Vol. 37. - №№ 1. - P. 104114.

144. Kloet, S. V. Taxonomy of Vaccinium section Oxycoccoides (Ericaceae) / S. V. Kloet, B. A. Bohm // Rhodora. - 1991. - P.226-237.

145. Konczak-Islam, I. Composition of phenolics and anthocyanins in a sweet potato cell suspension culture / I. Konczak-Islam, S. Okuno, M. Yoshimoto, O. Yamakawa // Biochemical Engineering Journal. - 2003. - Vol. 14. - № 1.

- P. 155-161.

146. Kong, J. M. Analysis and biological activities of anthocyanins / J. M. Kong, L. S. Chia, N. K. Goh, T. F. Chia, R. Brouillard // Phytochemistry. - 2003. -Vol. 64. - № 5. - P. 923-933.

147. Koponen, J. M. Characterization and fate of black currant and bilberry flavonols in enzyme-aided processing / J. M. Koponen, A. M. Happonen, S. Auriola, H. Kontkanen, J. Buchert, K. S. Poutanen, A. R. Tôrrônen // Journal of Agricultural and Food Chemistry. - 2008 - Vol. 56. - №№ 9. - P. 3136-3144.

148. Koponen, J. M. Contents of anthocyanins and ellagitannins in selected foods consumed in Finland / J. M. Koponen, A. M. Happonen, P. H. Mattila, A. R. Tôrrônen // Journal of Agricultural and Food Chemistry. - 2007. - Vol. 55.

- № 4. - P. 1612-1619.

149. Koskela, A. K. Variation in the anthocyanin concentration of wild populations of crowberries (Empetrum nigrum L subsp. hermaphroditum) / A. K. Koskela, M. J. Anttonen, T. H. Soininen, N. M. Saviranta, S. Auriola, R. Julkunen-Tiitto, R. O. Karjalainen // Journal of agricultural and food chemistry. - 2010

- Vol. 58. - № 23. - P. 12286-12291.

150. Kouakou, T. H. Phenolic compounds and somatic embryogenesis in cotton (Gossypium hirsutum L.) / T. H. Kouakou, P. Waffo-Téguo, Y. J. Kouadio, J. Valls, T. Richard, A. Decendit, J. M. Mérillon // Plant cell, tissue and organ culture. - 2007. - Vol. 90. - № 1. - P. 25-29.

151. Koyama, K. Light quality affects flavonoid biosynthesis in young berries of Cabernet Sauvignon grape / K. Koyama, H. Ikeda, P. R. Poudel, N. Goto-Yamamoto // Phytochemistry. - 2012. - Vol. 78. - P. 54-64.

152. Kresty, L. A. Cranberry proanthocyanidins induce apoptosis and inhibit acid-induced proliferation of human esophageal adenocarcinoma cells / L. A. Kresty, A. B. Howell, M. Baird // Journal of agricultural and food chemistry. - 2008. - Vol. 56. - № 3. - P. 676-680.

153. Kruger, M. J. Proanthocyanidins, anthocyanins and cardiovascular diseases / M. J. Kruger, N. Davies, K. H. Myburgh, S. Lecour // Food Research International. - 2014. - Vol. 59. - P. 41-52.

154. Krzyzanowska, J. Determination of polyphenols in Mentha longifolia and M. piperita field-grown and in vitro plant samples using UPLC-TQ-MS / J. Krzyzanowska, B. Janda, L. Pecio, A. Stochmal, W. Oleszek, A. Czubacka, M. Przybys, T. Doroszewska // Journal of AOAC International. - 2011. - Vol. 94. - № 3. - P. 43-50.

155. Krzyzanowska, J. The effects of jasmonic acid and methyl jasmonate on rosmarinic acid production in Menthax piperita cell suspension cultures / J. Krzyzanowska, A. Czubacka, L. Pecio, M. Przybys, T. Doroszewska, A. Stochmal, W. Oleszek // Plant Cell, Tissue and Organ Culture (PCTOC). -2012. - Vol. 108. - № 3. - P. 73-81.

156. Ksouri, R. Salinity effects on polyphenol content and antioxidant activities in leaves of the halophyte Cakile maritime / R. Ksouri, W. Megdiche, A. Debez, H. Falleh, C. Grignon, C. Abdelly // Plant Physiology and Biochemistry. - 2007. - Vol. 45. - № 3-4. - P. 244-249.

157. Kusznierewicz, B. Phenolic composition and antioxidant properties of polish blue-berried honeysuckle genotypes by HPLC-DAD-MS, HPLC postcolumn derivatization with ABTS or FC, and TLC with DPPH visualization / B. Kusznierewicz, A. Piekarska, B. Mrugalska, P. Konieczka, J. Namiesnik, A.

Bartoszek // Journal of agricultural and food chemistry. - 2012. - Vol. 60. -№ 7. - P. 1755-1763.

158. Landete, J. M. Ellagitannins, ellagic acid and their derived metabolites: a review about source, metabolism, functions and health / J. M. Landete // Food research international. - 2011. - Vol. 44. - № 5. - P. 1150-1160.

159. Lee, H. S. Chromatographic analysis of anthocyanins / H. S. Lee, V. Hong // Journal of Chromatography A. - 1992. - Vol. 624. - № 1-2. - P. 221-234.

160. Lee, J. Comparison of anthocyanin pigment and other phenolic compounds of Vaccinium membranaceum and Vaccinium ovatum native to the Pacific Northwest of North America / J. Lee, C. E. Finn R. E. Wrolstad // Journal of agricultural and food chemistry. - 2004. - Vol. 52. - № 23. - P. 7039-7044.

161. Lee, J. Rubus fruit phenolic research: the good, the bad, and the confusing / J. Lee, M. Dossett, C. E., Finn //Food Chemistry. - 2012. - Vol. 130. - № 4. -P. 785-796.

162. Lee, Y. A. Inhibitory activities of proanthocyanidins from persimmon against oxidative stress and digestive enzymes related to diabetes / Y. A. Lee, E. J. Cho, T. Tanaka, T. Yokozawa // Journal of nutritional science and vitaminology. - 2007. - Vol. 53. - № 3. - P. 287-292.

163. Li, J. Blueberry component pterostilbene protects corneal epithelial cells from inflammation via anti-oxidative pathway / J. Li, R. Deng, X. Hua, L. Zhang, F. Lu, T. G. Coursey, S. C. Pflugfelder, D. Q. Li // Scientific Reports. - 2016. - Vol. 6. P.19408.

164. Lin, L. C. Immunomodulatory Proanthocyanidins from Ecdysanthera utilis / L. C. Lin, Y. C. Kuo, C. J. Chou // Journal of Natural Products. - 2002. - Vol. 65. - № 4. - P. 505-508.

165. Litwinczuk, W. Micropropagation of Vaccinium sp. by in vitro axillary shoot proliferation. In Protocols for Micropropagation of Selected Economically Important Horticultural Plants Humana Press / W. Litwinczuk // Springer. -2012. - Vol. 994. - P.63-76.

166. Liu, Y. Comparative study of phenolic compounds and antioxidant activity in different species of cherries / Y. Liu, X. Liu, F. Zhong, R. Tian, K. Zhang, X. Zhang, T. Li // Journal of food science. - 2011. - Vol. 76. - № 4. - P. 633638.

167. Lloyd, Commercially feasible micropropagation of mountain laurel, Kalmia latifolia, by use of shoot-tip culture / G. Lloyd, B. McCown // Combined Proceedings, International Plant Propagators' Society. - 1980. - Vol. 30. - P. 421-427.

168. Longo, L. Anthocyanins from Eugenia myrtifolia Sims / L. Longo, A. Scardino, G. Vasapollo, F. Blando // Innovative food science & emerging technologies. - 2007. - Vol. 8. - № 3. - P. 329-332.

169. Louis, K. S. Cell viability analysis using trypan blue: manual and automated methods. In Mammalian cell viability. Humana Press / K. S. Louis, A. C. Siegel // Springer. - 2011. - Vol. 740. - P. 7-12

170. Lozovaya, V. V. Cell wall-bound phenolics in cells of maize (Zea mays, Gramineae) and buckwheat (Fagopyrum tataricum, Polygonaceae) with different plant regeneration abilities / V. V. Lozovaya, T. A. Gorshkova, N. I. Rumyantseva, A. V. Ulanov, I. V. Al'fya, E. V. Yablokova, C. Mei, J. M Widholm // Plant science. - 2000. - Vol. 152. - № 1. - P. 79-85.

171. Lyrene, P. M. The Florida climate as it relates to blueberry production / P. M. Lyrene // In Proceedings of the annual meeting of the Florida State Horticulture Society (USA). - 1990. - Vol. 102. - P. 208-212.

172. Mââttâ-Riihinen, K. R. Distribution and contents of phenolic compounds in eighteen Scandinavian berry species / K. R. Mââttâ-Riihinen, A. Kamal-Eldin, P. H. Mattila, A. M. Gonzalez-Paramas, A. R. Tôrrônen // Journal of Agricultural and Food Chemistry. - 2004. - Vol. 52. - № 4. - P. 4477-4486.

173. Macheix, J. J. Phenolic compounds in fruit processing / J. J. Macheix, A. Fleuriet, J. Billot // Fruit phenolics. - 1990. - Vol. 1. - P. 295-358.

174. Madhavi, D. L. Expression of anthocyanins in callus cultures of cranberry (Vaccinium macrocarpon Ait) / D. L. Madhavi, M. A. L. Smith, M. D. Berber-Jimenez // Journal of food science. - 1995. - Vol. 60. - № 2. - P. 351-355.

175. Mansfield, J. L. Genotypic variation for condensed tannin production in trembling aspen (Populus tremuloides, Salicaceae) under elevated CO2 and in high-and low-fertility soil / J. L. Mansfield, P. S. Curtis, D. R. Zak, K. S. Pregitzer // American Journal of Botany. - 1999. - Vol. 86. - № 8. - P. 11541159.

176. Mason, H. S. Coregulation of soybean vegetative storage protein gene expression by methyl jasmonate and soluble sugars / H. S. Mason, D. B. DeWald, R. A. Creelman, J. E. Mullet // Plant physiology. - 1992. - Vol. 98.

- № 3. - P. 859-867.

177. Masoumian, M. Effect of precursors on flavonoid production by Hydrocotyle bonariensis callus tissues / Masoumian, M., Arbakariya, A., Syahida, Maziah, M. // African Journal of Biotechnology. - 2011. - Vol. 10. - № 32. - P. 60216029.

178. Mathur, S. Establishment and characterization of Stevia rebaudiana (Bertoni) cell suspension culture: an in vitro approach for production of stevioside / S. Mathur, G. S. Shekhawat // Acta Physiologiae Plantarum. - 2013. - Vol. 35.

- № 32. - P. 931-939.

179. Matkowski, A. Plant in vitro culture for the production of antioxidants - a review / A. Matkowski // Biotechnology advances. - 2008. - Vol. 26. - № 6.

- P. 548-560.

180. Mattila, P. Phenolic acids in berries, fruits, and beverages / P. Mattila, J. Hellstrom, R. Torronen // Journal of agricultural and food chemistry. - 2006.

- Vol. 54. - № 19. - P. 7193-7199.

181. Meiners, J. Efficient in vitro regeneration systems for Vaccinium species / J. Meiners, M. Schwab, I. Szankowski // Plant Cell, Tissue and Organ Culture.

- 2007. - Vol. 89. - № 2-3. - P. 169-176.

182. Mendoza, D. Effect of salicylic acid and methyl jasmonate in the production of phenolic compounds in plant cell suspension cultures of Thevetia peruviana / D. Mendoza, O. Cuaspud, J. P. Arias, O. Ruiz, M. Arias // Biotechnology reports. - 2018. - Vol. 19. - P. e00273.

183. Miao, L. Colored light-quality selective plastic films affect anthocyanin content, enzyme activities, and the expression of flavonoid genes in strawberry (Fragariax ananassa) fruit / L. Miao, Y. Zhang, X. Yang, J. Xiao, H. Zhang, Z. Zhang, Y. Wang, G. Jiang // Food chemistry. - 2016. - Vol. 207. - P. 93-100.

184. Mihaljevic, I. In vitro sterilization procedures for micropropagation of 'Oblacinska' sour cherry / I. Mihaljevic, K. Dugalic, V. Tomas, M. Viljevac, A. Pranjic, Z. Cmelik, B. Puskar, Z. Jurkovic // Journal of Agricultural Sciences. - 2013. - Vol. 58. - № 19. - P. 117-126.

185. Mohamed, G. R. A. Elaboration of Micropropagation Protocol for Vaccinium corymbosum cv. «Sunt Blue Giant» / G. R. A. Mohamed, L. Z. Khusnetdinova, O. A. Timofeeva // Asian Journal of Plant Science and Research. - 2018. - Vol. 8. - № 5. - P. 1-11.

186. Mohamed, G. R. A. A research approach supporting micropropagation and domestication of blueberry (Vaccinium corymbosum L.) in Egypt / G. R. A. Mohamed, B. Hugo, L. Z. Khusnetdinova, and O. A. Timofeeva // EurAsian Journal of BioSciences. - 2018. - Vol. 12. - № 2. - P. 205-210.

187. Moreno, P. R. Elicitor-mediated induction of isochorismate synthase and accumulation of 2, 3-dihydroxy benzoic acid in Catharanthus roseus cell suspension and shoot cultures / P. R. Moreno, R. van der Heijden, R. Verpoorte // Plant cell reports. - 1994. - Vol. 14. - № 2-3. - P.188-191.

188. Mori, T. Riboflavin affects anthocyanin synthesis in nitrogen culture using strawberry suspended cells / T. Mori, M. Sakurai // Journal of food science. -1996. - Vol. 61. - № 5. - P. 698-702.

189. Moscatiello, R. Plant Cell Suspension Cultures. Plant Mineral Nutrients. Methods in Molecular Biology (Methods and Protocols), Humana Press / R. Moscatiello, B. Baldan, L. Navazio // Totowa, NJ. Springer. - 2013 - Vol. 953. - P. 77-93

190. Moze, S. Phenolics in Slovenian bilberries (Vaccinium myrtillus L.) and blueberries (Vaccinium corymbosum L.) / S. Moze, T. Polak, L. Gasperlin, D. Koron, A. Vanzo, Poklar N. Ulrih, V. Abram // Journal of Agricultural and Food Chemistry. - 2011. - Vol. 59. - № 13. - P. 6998-7004.

191. Mueller, L. A. AN9, a petunia glutathione S-transferase required for anthocyanin sequestration, is a flavonoid-binding protein / L. A. Mueller, C. D. Goodman, R. A. Silady, V. Walbot // Plant physiology. - 2000. - Vol. 123.

- № 4. - P. 1561-1570.

192. Murashige, T. A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures / T. Murashige, F. Skoog // Physiologia plantarum. - 1962. -Vol. 15. - № 3. - P. 473-497.

193. Nawa, Y. Production of anthocyanins, carotenoids, and proanthocyanidins by cultured cells of rabbiteye blueberry (Vaccinium ashei Reade) / Y. Nawa, S. Asano, S. Motoori, T. Ohtani // Bioscience, biotechnology, and biochemistry. - 1993. - Vol. 57. - № 5. - P. 770-774.

194. Nemes, A. Determination of Flavonoid and Proanthocyanidin Profile of Hungarian Sour Cherry / A. Nemes, E. Szôllôsi, L. Stundl, A. Biro, J. Homoki, M. Szarvas, P. Balogh, Z. Cziaky, J. Remenyik. Molecules, 2018. - Vol. 23.

- N. (12). - 3278 P.

195. Neto, C. C. Cranberry and blueberry: evidence for protective effects against cancer and vascular diseases / C. C. Neto // Molecular nutrition & food research. - 2007. - Vol. 51. - N. (6). - P. 652-664.

196. Ng, T. L. M. Amino acid and secondary metabolite production in embryogenic and non-embryogenic callus of Fingerroot ginger (Boesenbergia rotunda) / T. L. M. Ng, R. Karim, Y. S. Tan, H. F. Teh, A. D. Danial, L. S.

Ho, N. Khalid, D. R. Appleton, J. A. Harikrishna // PloS one. - 2016. - Vol. 11. - P. 1-19.

197. Nyman, N. A. Determination of anthocyanidins in berries and red wine by high-performance liquid chromatography / N. A. Nyman, J. T. Kumpulainen // Journal of agricultural and food chemistry. - 2001. - Vol. 49. - N. (9). - P. 4183-4187.

198. Olsson, L. Differential flavonoid response to enhanced UV-B radiation in Brassica napus / L. Olsson, M. Veit, G. Weissenbock, J. Bornman // Phytochemistry. - 1998. - Vol. 49. - N. (4). - P. 1021-1028.

199. Ossipov, V. Gallic acid and hydrolysable tannins are formed in birch leaves from an intermediate compound of the shikimate pathway / V. Ossipov, J. Salminen, S. Ossipova, E. Haukioja, K. Pihlaja // Biochemical Systematics and Ecology. - 2003. - Vol. 31. - N. (1). - P. 3-16.

200. Ostrolucka, M. G. In vitro propagation of In vitro Vaccinium species Vaccinium / M. G. Ostrolucka, G. Libiakova, E. OndruBkova, A. GajdoBova // Acta Universitatis Latviensis. - 2004. - Vol. 676. - P. 207-676.

201. Ostrolucka, M. Protocol for micropropagation of selected Vaccinium spp. Protocols for micropropagation of woody trees and fruits / M. Ostrolucka, A. Gajdosova, G. Libiakova, K. Hrubikova, M. Bezo // Springer. - 2007. - P. 445-455.

202. Palacio, L. Phenolic compound production in relation to differentiation in cell and tissue cultures of Larrea divaricata (Cav.) / L. Palacio, J. J. Cantero, R. M. Cusido, M. E. Goleniowski // Plant science. - 2012. - Vol. 193. - P. 1-7.

203. Pellati, F. Analysis of phenolic compounds and radical scavenging activity of Echinacea spp. / F. Pellati, S. Benvenuti, L. Magro, M. Melegari, F. Soragni // Journal of Pharmaceutical and Biomedical Analysis. - 2004. - Vol. 35. - N. (2). - P. 289-301.

204. Pereira, M. J. Conservation of Vaccinium cylindraceum Smith (Ericaceae) by micropropagation using seedling nodal explants / M. J. Pereira // In Vitro

Cellular & Developmental Biology-Plant. - 2006. - Vol. 42. - N. (1). - P. 65-68.

205. Pi^tczak, E. Micropropagation of Rehmannia glutinosa Libosch.: production of phenolics and flavonoids and evaluation of antioxidant activity / E. Pi^tczak, I. Grzegorczyk-Karolak, H. Wysokinska // Acta physiologiae plantarum. - 2014. - Vol. 36. - N. (7). - P. 1693-1702.

206. Picariello, G. Profiling of anthocyanins for the taxonomic assessment of ancient purebred V. vinifera red grape varieties / G. Picariello, P. Ferranti, G. Garro, G. Manganiello, L. Chianese, L., R. Coppola, F. Addeo // Food chemistry. - 2014. - Vol. 146. - P. 15-22.

207. Pinzón-Arango P. A. Investigating the effects of cranberry juice on the physicochemical properties of Escherichia coli for the prevention of urinary tract infections / P. A. Pinzón-Arango. - M. Thesis, Biomedical Engineering, Worcester Polytechnic Institute, 2008. - 152 p.

208. Popa, V. Lignin and polyphenols as allelochemicals / V. Popa, M. Dumitru, I. Volf, N. Anghel // industrial crops and products. - 2008. - Vol. 27. - N. (2).

- p. 144-149.

209. Pourcel, L. Flavonoid oxidation in plants: from biochemical properties to physiological functions / L. Pourcel, J. M. Routaboul, V. Cheynier, L. Lepiniec, I. Debeaujon // Trends in plant science. - 2007. - Vol. 12. - N. (1).

- P. 29-36.

210. Prencipe, F. P. Metabolite profiling of polyphenols in Vaccinium berries and determination of their chemopreventive properties / F. P. Prencipe, R. Bruni, A. Guerrini, D. Rossi, S. Benvenuti, F. Pellati // Journal of pharmaceutical and biomedical analysis. - 2014. - Vol. 89. - P. 257-267.

211. Qui, J. A. Differential effects of phytotoxic metabolites from Alternaría tagetica on Tagetes erecta cell cultures / J. A. Qui, L. A. Castro-Concha, K. García-Sosa, L. M. Peña-Rodríguez, M. L. Miranda-Ham // Journal of general plant pathology. - 2009. - Vol. 75. - N. (5). - P. 331-339.

212. Rajendran, L. Enhancement of anthocyanin production in callus cultures of Daucus canota L. under the influence of fungal elicitors / L. Rajendran, G. Suvarnalatha, G. Ravishankar, L. Venkataraman // Applied microbiology and biotechnology. - 1994. - Vol. 42. - N. (2-3). - P. 227-231.

213. Rao, S. R. Phycocyanin, a new elicitor for capsaicin and anthocyanin accumulation in plant cell cultures / S. R. Rao, R. Sarada, G. Ravishankar // Applied microbiology and biotechnology. - 1996. - Vol. 46. - N. (5-6). - P. 619-621.

214. Rao, S. R. Plant cell cultures: chemical factories of secondary metabolites / S. R. Rao, G. Ravishankar // Biotechnology advances. - 2002. - Vol. 20. - N. (2). - P. 101-153.

215. Ravanel, P. Uncoupling activities of chalcones and dihydrochalcones on isolated mitochondria from potato tubers and mung bean hypocotyls / P. Ravanel, M. Tissut, R. Douce // Phytochemistry. - 1980. - Vol. 21. - N. (12).

- P. 2845-2850.

216. Rea, G. Integrated plant biotechnologies applied to safer and healthier food production: The Nutra-Snack manufacturing chain / G. Rea, A. Antonacci, M. Lambreva, S. Pastorelli, A. Tibuzzi, S. Ferrari, D. Fischer, U. Johanningmeier, W. Oleszek, T. Doroszewska // Trends in food science & technology. - 2011.

- Vol. 22. - N. (7). - P. 353-366.

217. Reynolds, T. The evolution of chemosystematics / T. Reynolds // Phytochemistry. - 2007. - Vol. 68. - N. (22-24). - P. 2887-2895.

218. Rieger, G. Influence of altitudinal variation on the content of phenolic compounds in wild populations of Calluna vulgaris, Sambucus nigra, and Vaccinium myrtillus / G. Rieger, M. MuLler, H. Guttenberger, F. Bucar // Journal of agricultural and food chemistry. - 2008. - Vol. 56. - N. (19). - P. 9080-9086.

219. Riihinen, K. Organ-specific distribution of phenolic compounds in bilberry

(Vaccinium myrtillus) and 'northblue'blueberry (Vaccinium corymbosum x V.

angustifolium) / K. Riihinen, L. Jaakola, S. Karenlampi, A. Hohtola // Food chemistry. - 2008. - Vol. 110. - N. (1). - P. 156-160.

220. Riseman, A. Genotypic variation in the micropropagation of Sri Lankan Exacum hybrids / A. Riseman, S. Chennareddy // Journal of the American Society for Horticultural Science. - 2004. - Vol. 129. - N. (5). - P. 698-703.

221. Rival, A. Biotechnology of fruit and nut crop / A. Rival, G. Parveez. Biotechnology of fruit and nut crops, CABI Publishing. Litz, FH, 2005. - 723 p.

222. Robberecht, R. Protective mechanisms and acclimation to solar ultraviolet-B radiation in Oenothera stricta / R. Robberecht, M. M. Caldwell // Plant, Cell & Environment. - 1983. - Vol. 6. - N. (6). - P. 477-485.

223. Rodrigues, L. R. Histology of embryogenic responses in soybean anther culture / L. R. Rodrigues, J. M. S. Oliveira, J. E. Mariath, M. H. Bodanese-Zanettini // Plant cell, tissue and organ culture. - 2005. - Vol. 80. - N. (2). -P. 129-137.

224. Rohdewald, P. Relieving symptoms of erectile dysfunction with proanthocyanidins / P. Rohdewald, V. Ferrari. U.S. Patent No 6,565,851, 2003.

225. Samuel-Peterson, N. Cultural Competence in the Prevention and Treatment of Cancer: The Case of Blueberries in North America / N. Samuel-Peterson // Advances in Anthropology. - 2013. - Vol. 3. - № 2. - P. 65.

226. Sandalio, L. M. Cadmium-induced changes in the growth and oxidative metabolism of pea plants / L. M. Sandalio, H. C. Dalurzo, M. Gomez, M. C. Romero-Puertas, L. A. Del Rio // Journal of experimental botany. - 2001. -Vol. 52. - № 3642. - P. 2115-2126.

227. Saw, N .M .M .T. Effect of elicitors and precursors on the synthesis of anthocyanin in grape Vitis vinifera cell cultures / N. M. M. T. Saw, H. Riedel, O. Kütük, K. Ravichandran, I. Smetanska // Energy Res J. - 2010. - Vol. 1. - № 2. - P. 189-191.

228. Scalbert, A. Polyphenols of Quercus robur: adult tree and in vitro grown calli and shoots / A. Scalbert, B. Monties, J. M. Favre // Phytochemistry. - 1988. -Vol. 27. - № 11. - P. 3483-3488.

229. Schmid, P. P. Ultrastructural localization of polyphenols in the sieve tubes of Prunus avium L. by ferric chloride / P. P. Schmid, H. C. Bartscherer, W. Feucht // Scientia horticulturae. - 1984. - Vol. 22. - № 1-2. - P. 105-111.

230. Schmidt, B. M. Differential effects of blueberry proanthocyanidins on androgen sensitive and insensitive human prostate cancer cell lines / B. M. Schmidt, J. W. Erdman Jr, M. A. Lila // Cancer letters. - 2006. - Vol. 231. -№ 2. - P. 240-246.

231. Sellappan, S. Phenolic compounds and antioxidant capacity of Georgia-grown blueberries and blackberries / S. Sellappan, C. C. Akoh G. Krewer // Journal of agricultural and food chemistry. - 2002. - Vol. 50. - № 8. - P. 2432-2438.

232. Shibli, R. A. Pigment recovery from encapsulated-dehydrated Vaccinium pahalae (ohelo) cryopreserved cells / R. A. Shibli, M. A. L. Smith, M. A. Shatnawi // Plant cell, tissue and organ culture. - 1998. - Vol. 55. - № 2. - P. 119-123.

233. Shinde, A. N. Enhanced production of phytoestrogenic isoflavones from hairy root cultures of Psoralea corylifolia L. using elicitation and precursor feeding / A. N. Shinde, N. Malpathak, D. P. Fulzele // Biotechnology and Bioprocess Engineering. - 2009. - Vol. 14. - № 3. - P. 288.

234. Silva, de Oliveira, L. Micropropagation of Eucalyptus cloeziana mature trees / L. Silva de Oliveira, G. E. Brondani, K. D. Batagin-Piotto, R. Calsavara, A. N. Gonfalves, M. de Almeida // Australian forestry. - 2015. - Vol. 78. - № 4. - P. 219-231.

235. Simoes, C. Anthocyanin production in callus cultures of Cleome rosea: modulation by culture conditions and characterization of pigments by means of HPLC-DAD/ESIMS / C. Simoes, C. H. B. Bizarri, L. da Silva Cordeiro, T. C. de Castro, L. C. M. Coutada, A. J. R. da Silva, N. Albarello, E. Mansur

// Plant Physiology and Biochemistry. - 2009. - Vol. 47. - № 10. - P. 895903.

236. Singh, H. P. Micropropagation for production of quality banana planting material in Asia-Pacific / H. P. Singh, S. Uma, R. Selvarajan, J. L. Karihaloo // Asia-Pacific Consortium on Agricultural Biotechnology (APCoAB). New Delhi. India. - 2011. - P. 92.

237. Siu, K.C. Enhanced release of tanshinones and phenolics by nonionic surfactants from Salvia miltiorrhiza hairy roots / K. C. Siu, J. Y. Wu // Engineering in Life Sciences. - 2014. - Vol. 14. - № 6. - P. 685-690.

238. Skoric, M. Cytotoxic activity of ethanol extracts of in vitro grown Cistus creticus subsp. creticus L. on human cancer cell lines / M. Skoric, S. Todorovic, N. Gligorijevic, R. Jankovic, S. Zivkovic, M. Ristic, S. Radulovic // Industrial Crops and Products. - 2012. - Vol. 38. - P. 153-159.

239. Sleumer, H. Vaccinioideen studien. Bot. Jahrb. - 1941. - Vol. 71. - P. 375510.

240. Slimestad, R. Flavonoids from black chokeberries, Aronia melanocarpa / R. Slimestad, K. Torskangerpoll, H. S. Nateland, T. Johannessen, N. H. Giske // Journal of Food Composition and Analysis. - 2005. - Vol. 18. - № 1. - P. 61-68.

241. Smillie, T. J. A comprehensive approach to identifying and authenticating botanical products / T. J. Smillie, I. A. Khan // Clinical Pharmacology & Therapeutics. - 2010. - Vol. 87. - № 2. - P. 175-186.

242. Stafford, A. Natural products and metabolites from plants and plant tissue cultures / A. Stafford // Plant cell and tissue culture. - 1991. - P. 124-162.

243. Stapleton, A. E. Flavonoids can protect maize DNA from the induction of ultraviolet radiation damage / A. E. Stapleton V. Walbot // Plant physiology. -1994. - Vol. 105. - № 3. - P. 881-889.

244. Sudberg, S., Fingerprint analysis and the application of HPTLC to the determination of identity and quality of botanicals, from an industry

perspective / S. Sudberg, E. M. Sudberg, J. Terrazas, S. Sudberg, K. Patel, J. Pineda, B. Fine // Journal of AOAC International. - 2010. - Vol. 93. - № 5.

- P. 1367-1375.

245. Sudha, G. Elicitation of anthocyanin production in callus cultures of Daucus carota and the involvement of methyl jasmonate and salicylic acid / G. Sudha, G.A. Ravishankar // Acta physiologiae plantarum. - 2003. - Vol. 25. - № 3.

- P. 249-256.

246. Sun, J. Effects of methyl jasmonate and abscisic acid on anthocyanin biosynthesis in callus cultures of red-fleshed apple (Malus sieversii f. niedzwetzkyana) / J. Sun, Y. Wang, X. Chen, X. Gong, N. Wang, L. Ma, Y. Qiu, Y. Wang, S. Feng // Plant Cell, Tissue and Organ Culture (PCTOC). -2017. - Vol. 130. - № 2. - P. 227-237.

247. Suvarnalatha, G. Elicitation of anthocyanin production in cell cultures of carrot (Daucus carota L) by using elicitors and abiotic stress / G. Suvarnalatha, L. Rajendran, G. A. Ravishankar, L. V. Venkataraman // Biotechnology letters. - 1994. - Vol. 16. - № 12. - P. 1275-1280.

248. Szopa, A. Accumulation of hydroxybenzoic acids and other biologically active phenolic acids in shoot and callus cultures of Aronia melanocarpa (Michx.) Elliott (black chokeberry) / A. Szopa, H. Ekiert, B. Muszynska // Plant Cell, Tissue and Organ Culture (PCTOC). - 2013. - Vol. 113. - № 2.

- P. 323-329.

249. Szopa, A. Production of biologically active phenolic acids in Aronia melanocarpa (Michx.) Elliott in vitro cultures cultivated on different variants of the Murashige and Skoog medium / A. Szopa, H. Ekiert // Plant growth regulation. - 2014. - Vol. 72. - № 1. - P. 51-58.

250. Tadhani, M. B. In vitro antioxidant activities of Stevia rebaudiana leaves and callus / M. B. Tadhani, V. H. Patel, R. Subhash // Journal of Food Composition and Analysis. - 2007. - Vol. 20. - № 3-4. - P. 323-329.

251. Takeshita, M. Proanthocyanidin from blueberry leaves suppresses expression of subgenomic hepatitis C virus RNA / M. Takeshita, Y. I. Ishida, E. Akamatsu, Y. Ohmori, M. Sudoh, H. Uto, H. Tsubouchi, H. Kataoka // Journal of biological chemistry. - 2009. - Vol. 284. - № 32. - P. 2116521176.

252. Taruscio, T. G. Content and profile of flavanoid and phenolic acid compounds in conjunction with the antioxidant capacity for a variety of northwest Vaccinium berries / T. G. Taruscio, D. L. Barney, J. Exon // Journal of agricultural and food chemistry. - 2004. - Vol. 52. - № 10. - P. 3169-3176.

253. Tetsumura, T. Evaluation of basal media for micropropagation of four highbush blueberry cultivars / T. Tetsumura, Y. Matsumoto, M. Sato, C. Honsho, K. Yamashita, H. Komatsu, Y. Sugimoto, H. Kunitake // Scientia Horticulturae. - 2008. - Vol. 119. - № 1. - P. 72-74.

254. Thangapazham, R. L. Green tea polyphenols and its constituent epigallocatechin gallate inhibits proliferation of human breast cancer cells in vitro and in vivo / R. L. Thangapazham, A. K. Singh, A. Sharma, J. Warren, J. P. Gaddipati, R. K. Maheshwari // Cancer letters. - 2007. - Vol. 245. - № 1-2. - P. 232-241.

255. Tierno, R. Differential growth response and minituber production of three potato cultivars under aeroponics and greenhouse bed culture / R. Tierno, A. Carrasco, E. Ritter, de J. I. R. Galarreta // American journal of potato research. - 2014. - Vol. 91. - № 4. - P. 346-353.

256. Toguri, T. Activation of anthocyanin synthesis genes by white light in eggplant hypocotyl tissues, and identification of an inducible P-450 cDNA / T. Toguri, N. Umemoto, O. Kobayashi, T. Ohtani // Plant molecular biology. -1993. - Vol. 23. - № 5. - P. 933-946.

257. Tomas-Barberan, F. A. Dietary hydroxybenzoic acid derivatives-nature, occurrence and dietary burden / F. A. Tomas-Barberan, M. N. Clifford

// Journal of the Science of Food and Agriculture. - 2000. - Vol. 80. - № 7. -P. 1024-1032.

258. Uleberg, E. Effects of temperature and photoperiod on yield and chemical composition of northern and southern clones of bilberry (Vaccinium myrtillus L.) / E. Uleberg, J. Rohloff, L. Jaakola, K. Trost, O. Junttila, H. Haggman, I. Martinussen // Journal of agricultural and food chemistry. - 2012. - Vol. 60.

- № 42. - P. 10406-10414.

259. Ullah, M. A. Monochromatic lights-induced trends in antioxidant and antidiabetic polyphenol accumulation in in vitro callus cultures of Lepidium sativum L. / M. A. Ullah, D. Tungmunnithum, L. Garros, C. Hano, B. H. Abbasi // Journal of Photochemistry and Photobiology B: Biology. - 2019. -Vol. 196. - P. 111505.

260. Valdez-Tapia, R. Effect of immersion cycles on growth, phenolics content, and antioxidant properties of Castilleja tenuiflora shoots / R. Valdez-Tapia, J. Capataz-Tafur, A. R. Lopez-Laredo, J. L. Trejo-Espino, G. Trejo-Tapia // In Vitro Cellular & Developmental Biology-Plant. - 2014. - Vol. 50. - № 4. -P. 471-477.

261. Van Beek, T. A. Chemical analysis of Ginkgo biloba leaves and extracts / T. A. Van Beek // Journal of Chromatography a. - 2002. - Vol. 967. - № 1. - P. 21-55.

262. Vasconsuelo, A. Molecular aspects of the early stages of elicitation of secondary metabolites in plants / A. Vasconsuelo, R. Boland // Plant Science.

- 2007. - Vol. 172. - № 5. - P. 861-875.

263. Vrhovsek, U. Identification and quantification of flavonol glycosides in cultivated blueberry cultivars / U. Vrhovsek, D. Masuero, L. Palmieri, F. Mattivi // Journal of Food Composition and Analysis. - 2012. - Vol. 25. - № 1. - P. 9-16.

264. Vvedenskaya, I. O. Flavonoid composition over fruit development and maturation in American cranberry, Vaccinium macrocarpon Ait / I. O.

Vvedenskaya, N. Vorsa // Plant Science. - 2004. - Vol. 167. - № 5. - P. 10431054.

265. Vyas, P. Antioxidant properties of lingonberry (Vaccinium vitis-idaea L.) leaves within a set of wild clones and cultivars / P. Vyas, N. H. Curran, A. U. Igamberdiev, S. C. Debnath // Canadian journal of plant science. - 2015. -Vol. 95. - № 4. - P. 663-669.

266. Wang, Y. P. Effects of blueberry on hepatic fibrosis and transcription factor Nrf2 in rats / Y. P. Wang, M. L. Cheng, B. F. Zhang, M. Mu, J. Wu // World journal of gastroenterology: WJG. - 2010. - Vol. 16. - № 21. - P. 2657.

267. Webster, S. A novel surface sterilization method for reducing fungal and bacterial contamination of field grown medicinal explants intended for in vitro culture / S. Webster, S. A. Mitchell, M. H. Ahmad // In Proceedings of 17th SRC conference entitled 'Science and Technology for Economic Development: Technology Driven Agriculture and Agro-Processing'SRC. Jamaica. - 2003.

268. Wei, Y. J. Improved quality control method for Fufang Danshen preparations through simultaneous determination of phenolic acids, saponins and diterpenoid quinones by HPLC coupled with diode array and evaporative light scattering detectors / Y. J. Wei, L.W. Qi, P. Li, H. W. Luo, L. Yi, L. H. Sheng // Journal of pharmaceutical and biomedical analysis. - 2007. - Vol. 45. - N. (5). - P. 775-784.

269. Woltering, E.J. Regulation of anthocyanin synthesis in Cymbidium flowers: effects of emasculation and ethylene / E. J. Woltering, D. Somhorst // Journal of plant physiology - 1990. - Vol. 136. - № 3. - P. 295-299.

270. Wu, X. Characterization of anthocyanins and proanthocyanidins in some cultivars of Ribes, Aronia, and Sambucus and their antioxidant capacity / X. Wu, L. Gu, R. L. Prior, S. McKay // Journal of agricultural and food chemistry. - 2004. - Vol. 52. - № 26. - P. 7846-7856.

271. Xu, F. Blue light irradiation affects anthocyanin content and enzyme activities involved in postharvest strawberry fruit / F. Xu, S. Cao, L. Shi, W. Chen, X. Su, Z. Yang // Journal of agricultural and food chemistry. - 2014. - Vol. 62.

- № 20. - P. 4778-4783.

272. Xu, X. A-type proanthocyanidins from lychee seeds and their antioxidant and antiviral activities / X. Xu, H. Xie, Y. Wang, X. Wei, // Journal of agricultural and food chemistry. - 2010. - Vol. 58. - № 22. - P. 11667-11672.

273. Yamamoto, L. J. Herpes simplex virus type 1 DNA in cerebrospinal fluid of a patient with Mollaret's meningitis / L. J. Yamamoto, D. G. Tedder, R. Ashley, M. J. Levin // New England Journal of Medicine. - 1991. - Vol. 325.

- № 15. - P. 1082-1085.

274. Yamasaki, H. Flavonoid-peroxidase reaction as a detoxification mechanism of plant cells against H2O2 / H. Yamasaki, Y. Sakihama, N. Ikehara // Plant Physiology. - 1997. - Vol. 115. - № 4. - P. 1405-1412.

275. Yavorska, N. Y. Microclonal propagation of the varieties of highbush blueberry Vaccinium corymbosum L. / N. Y. Yavorska, O. V. Lobachevska, N. Y. Kyyak // Biotechnologia Acta. - 2016. - Vol. 9. - № 5. - P. 30-37.

276. Yildirim, A. B. Effects of regeneration enhancers on micropropagation of Fragaria vesca L. and phenolic content comparison of field-grown and in vitro-grown plant materials by liquid chromatography-electrospray tandem mass spectrometry (LC-ESI-MS/MS) / A. B. Yildirim, A. U. Turker // Scientia Horticulturae.- 2014. - Vol. 169. - P. 169-178.

277. Yokozawa, T. Protective effect of proanthocyanidin against diabetic oxidative stress - a review / T. Yokozawa, E. J. Cho, C. H. Park, J. H. Kim // Evidence-based complementary and alternative medicine. - 2012. - 11 P.

278. Yu, X. Identification of hepatitis C virus inhibitors targeting different aspects of infection using a cell-based assay / X. Yu, B. Sainz, P. A. Petukhov, S. L. Uprichard // Antimicrobial agents and chemotherapy. - 2012. - Vol. 56. - № 12. - P. 6109-6120.

279. Zaprometov, M. N. The formation of phenolic compounds in plant cell and tissue cultures and the possibility of its regulation / M. N. Zaprometov // In Advances in Cell Culture. Elsevier. - 1989. - Vol. 7. - P. 201-260

280. Zhang, W. Integration ofjasmonic acid and light irradiation for enhancement of anthocyanin biosynthesis in Vitis vinifera suspension cultures / W. Zhang, C. Curtin, M. Kikuchi, C. Franco, // Plant Science. - 2002. - Vol. 162. - № 3. - P. 459-468.

281. Zhang, W. Production of anthocyanins by plant cell cultures / W. Zhang, S. Furusaki // Biotechnology and Bioprocess Engineering. - 1999. - Vol. 4. - № 4. - P. 231-252.

282. Zhang, Y. International multidimensional authenticity specification (IMAS) algorithm for detection of commercial pomegranate juice adulteration / Y. Zhang, D. Krueger, R. Durst, R. Lee, D. Wang, N. Seeram, D. Heber // Journal of agricultural and food chemistry. - 2009. - Vol. 57. - № 6. - P. 2550-2557.

283. Zhao, H. J. Protective effects of exogenous antioxidants and phenolic compounds on photosynthesis of wheat leaves under high irradiance and oxidative stress / H. J. Zhao, Q. Zou // Photosynthetica. - 2002. - Vol. 40. -№ 4. - P. 523-527.

284. Zhao, J. Diterpenoid tanshinones and phenolic acids from cultured hairy roots of Salvia miltiorrhiza Bunge and their antimicrobial activities / J. Zhao, J. Lou, Y. Mou, P. Li, J. Wu, L. Zhou // Molecules. - 2011. - Vol. 16. - № 3. -P. 2259-2267.

285. Zhao, J. Elicitor signal transduction leading to production of plant secondary metabolites / J. Zhao, L. C. Davis, R. Verpoorte, // Biotechnology advances. -2005. - Vol. 23. - № 4. - P. 283-333.

286. Zhao, P. Caffeoyl arbutin and related compounds from the buds of Vaccinium dunalianum / P. Zhao, T. Tanaka, K. Hirabayashi, Y. J. Zhang, C. R. Yang, I. Kouno // Phytochemistry. - 2008. - Vol. 69. - № 18. - P. 3087-3094.

287. Zhou, B. Quantification of the enzymatic browning and secondary metabolites in the callus culture system of Nigella glandulifera Freyn et Sint / B. Zhou, X. Wei, R. Wang, J. Jia // Asian traditional medicine.- 2010. - Vol. 5. - № 3. -P. 109-116.

288. Zidorn, C. Evaluation of chemosystematic characters in the genus Leontodon (Asteraceae) / C. Zidorn, H. Stuppner // Taxon. - 2001. - P. 115-133.

289. Zobel, A. Cytoplasmic and apoplastic location of phenolic compounds in the covering tissue of the Brassica napus radicle between embryogenesis and germination / A. Zobel, M. Kuras, T. Tykarska // Annals of Botany. - 1989. -Vol. 64. - № 2. - P. 149-157.