Исследование локализации гена предрасположенности к каталепсии у мышей с помощью полиморфных микросателлитных маркеров тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.00.15, кандидат биологических наук Базовкина, Дарья Владимировна

• Базовкина, Дарья Владимировна
• кандидат биологических наук
• 2006

Оглавление диссертации кандидат биологических наук Базовкина, Дарья Владимировна

ff ВВЕДЕНИЕ.

ГЛАВА 1. Обзор литературы. Использование полиморфных микросателлитов для ф Генетического анализа и картирования поведенческих признаков.

1.1. Микросателлиты и теория их использования.1G

1.1.1. Микросателлитные повторы, их локализация в геноме, полиморфизм, функции.

1.1.2. Микросателлитные повторы как генетические маркеры.

1.1.3. Сравнение микросателлитов с другими генетическими молекулярными маркерами.

1.2. Методы генетического анализа признаков поведения, использующие микросателлиты.

1.2.1. Особенности генетической структуры признаков поведения.

1.2.2. QTL анализ, его принципы, преимущества и недостатки. ф 1.2.3. Метод генов-кандидатов и принцип позиционного клонирования мутаций.

1.2.4. Генетический анализ реакции замирания. Применение QTL анализа для ф картирования галоперидоловой каталепсии.

ГЛАВА 2. Материалы и методы.

1.1. Экспериментальные животные.

1.1.1. Условия содержания.

1.1.2. Гибридологический эксперимент.

1.1.3. Селекционный эксперимент.

1.2. Измерение каталепсии.

1.3. Выделение ДНК.

Ш] 1.4. Выбор микросателлитных маркеров. ф 1.5. ДНК-типирование.

1.6. Тестирование функциональной активности 5HTia рецепторов.

1.7. Статистическая обработка результатов.

1.7.1. Оценивание выраженности каталепсии.

1.7.2. Проверка гипотезы о сцеплении альтернативнго признака с неполной пенетрантностью.

ГЛАВА 3. Результаты исследования.

1.1. Доля каталептиков у мышей линий СВА, AKR и их гибридов Fi и бэккроссов.

1.2. Локализация гена предрасположенности к каталепсии методом одномаркерного анализа. 1.3. Локализация гена предрасположенности к каталепсии методом интервального оценивания.

1.3.1. Картирование гена каталепсии по методу Brodkin et al. (2002).

1.3.2. Картирование гена каталепсии методом максимального правдоподобия и минимума %2.

1.4. Динамика выраженности каталепсии в ходе селекции на данный признак.

1.5. Изменение концентрации генотипов и соответствующих аллелей СВА и AKR у мышей в ходе селекции на каталепсию.

1.5.1. Бэккроссы.

1.5.2. Мыши поколения селекции Si и S2.

1.5.3. Мыши поколения SgH S12.

1.6. Изучение функциональной активности 5HTia рецепторов у мышей линий

СВА, AKR и S12 поколения селекции.

ГЛАВА 4. Обсуждение результатов.

ВЫВОДЫ.

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Исследование локализации гена предрасположенности к каталепсии у мышей с помощью полиморфных микросателлитных маркеров»

Актуальность проблемы

Основной задачей феногенетики поведения является выявление молекулярных, клеточных и физиологических механизмов трансдукции информации, закодированной в ДНК, в сложный поведенческий признак. Решение этой задачи включает выявление относительной доли наследственности и среды в формировании поведенческого фенотипа, исследование характера генетической детерминации поведенческих реакций на уровне целого организма, изучение физиологических и биохимических каналов, через которые реализуется генетическая информация на уровне поведения. Особенно важным является изучение генетической структуры патологий поведения и высшей нервной деятельности.

Каталепсия (реакция замирания, животный гипноз, мнимая смерть) является одной из форм пассивной защитной реакции замирания, поскольку в естественных условиях она связана со страхом (Gallup, 1977; Klemm, 1989; Dixon, 1998). Она представляет собой обездвиженность с пластическим мышечным тонусом и встречается у всех позвоночных, включая млекопитающих (Карманова, 1977). В чрезмерно выраженной форме у человека каталепсия является синдромом патологического поведения, характерного для некоторых аффективных растройств и ряда форм шизофрении (Singerman, Raheja, 1994; Kruger et al., 2003; Taylor, Fink, 2003).

Существуют различные типы каталепсии. В целом их можно объединить в две большие группы: фармакологические виды каталепсии, как морфинная (De Ryck et al., 1980) или галоперидоловая (Sanberg, 1980; Patel, Hitzemann, 1999), и наследственные типы реакции замирания. Из последних известны каталепсия крыс ГК (Барыкина и др., 1983; Kolpakov et al., 1996) и щипковая каталепсия у мышей.

Интересной для генетических исследований каталепсии является щипковая каталепсия (pinch-induced catalepsy) мышей. У некоторых особей этого вида кратковременную реакцию замирания можно вызвать раздражением рефлексогенной зоны шеи (Ornstein, Amir, 1981; Klemm, 1983).

Полагают, что эта рефлекторная реакция имеет адаптивное значение и в естественных условиях проявляется у самок при копуляции, у детенышей при их транспортировке матерью и т. д.

Выявлены межлинейные различия по скорости развития каталепсии у мышей (Ornstein, Amir, 1981). Высокая предрасположенность к щипковой каталепсии по сравнению с мышами других линий была обнаружена у мышей линии СВА (Куликов и др., 1989). У 54% самцов и самок этой линии развивалась стойкая реакция замирания. Для изучения закономерностей наследования предрасположенности животных к каталепсии был проведен гибридологический анализ признака на мышах двух контрастных линий: СВА - с максимальной его выраженностью и некаталептической AKR. Анализ показал, что этот признак является аутосомным, рецессивным, моно- или олигогенным с неполной пенетрантностью (Куликов, 1989; Kulikov et al., 1993).

Однако генетическая структура каталепсии и локализация гена или генов, определяющих данную патологию, до настоящего времени оставалась не выясненной. Общеизвестна ключевая роль дофаминовых (особенно D2 типа) рецепторов в проявлении каталепсии (Klemm, 1989). Работами, проводимыми в Институте цитологии и генетики СО РАН (Kulikov et al., 1995; Popova, Kulikov, 1995), показана важная роль серотониновой системы мозга, а именно: ключевой фермент биосинтеза серотонина, триптофангидроксилаза, 5-HTiA и 5-НТ2А рецепторы вовлечены в регуляцию каталепсии у мышей.

Большая часть поведенческих признаков являются количественными, контролируются полигенно и значительно зависят от факторов внешней среды (Мазер, Джинкс, 1985; Васильева, 1999; Crusio, 1999), но при этом можно выделить главные гены с большим вкладом в изменчивость признака, чем остальные гены (Мазер, Джинкс, 1985). Для изучения генетической структуры количественных признаков был разработан специальный подход -QTL (quantitative trait loci) анализ. JIокусы ДНК, для которых методом QTL показано статистически достоверное сцепление с поведенческим признаком, могут включать полигены, участвующие в определении наследственной изменчивости по данному признаку (Plomin et al., 1994; Le Roy, 1999; Moisan, 1999; Roubertoux, 2001).

Одними из лучших маркеров для QTL анализа являются микросателлитные последовательности, поскольку обладают такими свойствами, как полиморфность, кодоминантность и достаточно высокая частота встречаемости в геноме (Hearne et al., 1992; Bennett, 2000; Pitel, Riquet, 2000; Schlotterer, 2004).

Так, у мышей был проведен QTL анализ каталепсии, возникающей при введении галоперидола. В результате было показано, что этот тип реакции замирания связан с геном дофаминовых D2 рецепторов (Patel, Hitzemann, 1999). Такое заключение не являлось неожиданным, поскольку галоперидол по механизму воздействия является блокатором дофаминовых рецепторов, преимущественно D2 типа. Природа же генетических факторов, контролирующих щипковую каталепсию, до настоящего времен оставалась невыясненной. Сложность картирования щипковой каталепсии у мышей в том, что она относится к альтернативным признакам с неполной пенетрантностью, и для картирования ее генов не приемлемы существующие программы QTL подхода, основанные на регрессионном анализе.

Целью настоящего исследования было выявление генетической структуры щипковой каталепсии у мышей СВА и картирование генов или гена, определяющих у этих животных высокую предрасположенность к каталепсии. Для выполнения цели исследования были поставлены следующие задачи:

1. определить на хромосомах мыши локусы, ответственные за предрасположенность к каталепсии, при помощи полиморфных микросателлитных маркеров;

2. выявить гены-кандидаты и проверить их связь с наследственной предрасположенностью к каталепсии;

3. изучить в процессе селекции на каталепсию изменения параметров этого признака и особенности генотипов селектированных животных;

4. показать возможность картирования альтернативных поведенческих признаков с неполной пенетрантностью.

Научная новизна.

• впервые проведен генетический анализ наследственной щипковой каталепсии у мышей и определена ее генетическая структура, включающая один майорный ген и несколько полигенов;

• впервые установлено, что ген, определяющий высокую предрасположенность к каталепсии, находится в дистальном фрагменте хромосомы 13 мыши;

• селекция на каталепсию привела к фиксированию в потомстве локуса ДНК, полученного от каталептической линии СБА и тесно связанного с геном серотониновых 5-HTiA рецепторов;

• показана возможность картирования альтернативного признака с неполной пенетрантностью классическим подходом QTL анализа с использованием полиморфных микросателлитных маркеров.

Научно-практическая ценность.

Результатами данной работы установлена генная структура сложного поведенческого признака - щипковой каталепсии у мышей СБА, которая у данных животных выражается в гипертрофированной форме. Поскольку реакция замирания представляет собой важный элемент пассивно-оборонительного поведения, то изучение ее генетического механизма способствует более глубокому пониманию эволюционной значимости каталепсии.

Кроме этого, была продемонстрирована возможность картирования альтернативного признака с неполной пенетрантностью классическим подходом QTL анализа с помощью полиморфных микросателлитных маркеров.

В данном исследовании показана также тесная связь предрасположенности к каталепсии с участком ДНК мыши, несущим ген 5-НТ1А рецепторов нейромедиатора серотонина, что привлекает внимание исследователей к более детальному изучению функций этих рецепторов и их роли в формировании поведенческих признаков.

Получены в результате селекции на каталепсию мыши со стабильно высокой долей каталептиков, значительно большей, чем у родительской линии СВА. Возможно дальнейшее использование этих животных в изучении генетических и физиологических факторов каталепсии, а также ее связи с другими формами поведения.

Положения, выносимые на защиту. высокая предрасположенность к каталепсии у мышей инбредной линии СВА кодируется одним майорным геном, локализованным в дистальном участке хромосомы 13 (между 58 и 75 сМ) и рядом не сцепленных с ним полигенов, вклад главного гена в наследование склонности к реакции замирания составляет 18%, а полигенов - 32%, селекция на каталепсию привела к закреплению в потомстве аллеля микросателлитного маркера D13Mit76, полученного от родительской линии СВА и тесно связанного с геном 5-HTiA рецепторов, наиболее вероятным геном-кандидатом на роль главного гена каталепсии является ген, кодирующий 5-НТ1А рецептор нейромедиатора серотонина.

Апробация работы.

Результаты данной работы были представлены и обсуждены на Ученых Сессиях Института цитологии и генетики в 2000, 2003 годах, на XXXIX, XL и XLII международных научных студенческих конференциях "Студент и научно-технический прогресс" (Новосибирск, 2001, 2002, 2004), VII Всероссийской медико-биологической конференции молодых исследователей «Человек и его здоровье» (Санкт-Петербург, 2004), III Съезде генетиков и селекционеров "Генетика в XXI веке: современное состояние и перспективы развития" (Москва, 2004), Международной школе молодых ученых «Геномика человека и модельных объектов» (Звенигород, 2004), 9ой зимней школе CIMO (Хельсинки, 2005), V Съезде физиологов Сибири (Томск, 2005), Международной летней школе по нейрогенетике поведения (Москва, 2005).

Публикации.

Материал диссертации представлен в 9 публикациях, в том числе в 3 статьях в отечественных реферируемых журналах.

Структура и объем работы.

Работа включает все необходимые разделы: введение, обзор литературных данных, материалы и методы, результаты и их обсуждение, выводы и список использованной литературы. Общий объем составляет 95 машинописных листов. Представлено 13 рисунков и 8 таблиц.

Благодарности.

Автор выражает сердечную благодарность своим научным руководителям Поповой Н.К. и Куликову А.В. за помощь при написании этой диссертационной работы, а также аспирантке лаборатории нейрогеномики поведения Кондауровой Е.М. за помощь в проведении экспериментов. Отдельную благодарность за поддержку технического обеспечения работы над диссертацией автор приносит Антонову Д.JI.

Заключение диссертации по теме «Генетика», Базовкина, Дарья Владимировна

ВЫВОДЫ

Определен характер наследования щипковой каталепсии: высокая предрасположенность к этому признаку у мышей инбредной линии СВА кодируется одним майорным геном и рядом не сцепленных с ним полигенов, причем вклад главного гена составляет 18%, а полигенов -32%

При помощи QTL анализа с использованием микросателлитных маркеров майорный ген щипковой каталепсии у мышей локализован в интервале между 58 и 75 сМ хромосомы 13.

Отмечено быстрое увеличение доли каталептиков ответ на селекцию по каталепсии, что подтверждает результаты QTL анализа о наличии одного главного гена каталепсии.

Селекция на каталепсию привела к закреплению в потомстве аллеля микросателлитного маркера D13Mit76, полученного от родительской линии СВА.

Показано отсутствие сцепления признака щипковой каталепсии мышей с микросателлитными маркерами, локализованными вблизи генов, кодирующих дофаминовые D2 рецепторы, триптофангидроксилазу и серотониновые 5-НТ2а рецепторы, что позволяет не рассматривать каждый из данных генов в качестве майорного гена высокой склонности мышей к каталепсии.

Наиболее вероятным геном-кандидатом на роль майор-гена каталепсии является ген, кодирующий 5-HTiA рецептор нейромедиатора серотонина, расположенного в положении 58 сМ на хромосоме 13 мыши на расстоянии 3 сМ от микросателлитного маркера D13Mit76.

Список литературы диссертационного исследования кандидат биологических наук Базовкина, Дарья Владимировна, 2006 год

1. Базовкина Д.В., Куликов А.В., Кондаурова Е.М., Попова Н.К. Селекция на предрасположенность к каталепсии усиливает депрессивноподобное поведение у мышей. // Генетика. 2005. Т.41. № 9. С. 1222-1228.

2. Банникова А.А. Молекулярные маркеры и современный филогенез млекопитающих. // Журн. Общ. Биол. 2004. Т.65. № 4. С.278-305.

3. Барыкина Н.Н., Чепкасов И.Л., Алехина Т.А., Колпаков В.Г. Селекция крыс Вистар на предрасположенность к каталепсии // Генетика. 1983. Т.19. С.2014-2021.

4. Беляев Д.К. Генетические аспекты доместикации животных. // Проблемы доместикации животных и растений.-М: Наука, 1972. С. 39-45

5. Васильева JI.A. Количественные признаки: генетические свойства, методы анализа.- Новосибирск: Изд. НГУ, 1999. 127 С.

6. Жимулев И.Ф. Общая и молекулярная генетика,- Новосибирск: Сиб. унив. изд., 2003. 479 С.

7. Зорина З.А., Полетаева И.И., Резникова Ж.И. Основы этологии и генетики поведения.-М.: Изд. МГУ, 1999.- 383 С.

8. Карманова И.Г. Эволюция сна.-JI.: Наука, 1977. 174 С.

9. Колпаков В.Г., Куликов А.В., Алехина Т.А., Чугуй В.Ф., Петренко О.И., Барыкина Н.Н. Кататония или депрессия? Линия крыс ГК генетическая животная модель психопатологии // Генетика. 2004. Т.40. С.827-834.

10. Крамер Г. Математические методы статистики.-М.: Мир, 1975. 648 С.

11. Куликов А.В., Базовкина Д.В. Проверка гипотез о сцеплении в гибридологическом анализе альтернативных поведенческих признаков с неполной пенетрантностью // Генетика. 2003. Т.39. С.1066-1072.

12. Куликов А.В., Базовкина Д.В., Муазан М.-П., Мормэд П. Картирование гена предрасположенности к каталепсии у мышей с помощью полиморфных микросателлитных маркеров // Докл. Акад. Наук. 2003. Т.393. С. 134-137.

13. Куликов А.В., Козлачкова Е.Ю., Попова Н.К. Закономерности наследования каталепсии у мышей//Генетика. 1989. Т.25. С.1402-1408.

14. Мазер К., Джинкс Дж. Биометрическая генетика.-М.: Мир, 1985. 463 С.

15. Патрушев Л.И. Экспрессия генов. М.: Наука, 2000. 830 С.

16. Петрова Е.В. Особенности изменения врожденных и приобретенных форм поведения крыс с генетической каталепсией // Журн. высш. нервн. деят. 1990. Т.40. С.475-480.

17. Попова Н.К. Серотонин мозга в генетически детерминированном защитном поведении // Журн. Высш. Нервн, Деят. 1997. Т.47. С.93-97.

18. Попова Н.К. Роль серотонина мозга в экспрессии генетически детерминированного защитно-оборонительного поведения // Генетика. 2004. Т.40. С.770-778.

19. Попова Н.К., Науменко Е.В., Колпаков В.Г. Серотонин и поведение. Новосибирск :Наука, 1978. 304 с.

20. Сингер М., Берг П. Гены и геномы. М.: Мир, 1998. Т.2. С.156-315

21. Скринская Ю.А., Попова Н.К., Никулина Э.М., Куликов А.В. Участие дофаминергической системы стриатума в регуляции каталепсии у крыс и мышейразличных генотипов. // Журн. высш. нервн. деят. 1997. Т. 47. С. 1032-1039.

22. Трут Л.Н. Очерки по генетике поведения.-Новосибирск: Наука, 1978. 255 С.

23. Abbar М., Courtet P., Amadeo S., Caer Y., Mallet J., Baldy-Moulinier М., Castelnau D., Malafosse A. Suicidal behaviors and the tryptophan hydroxylase gene. // Arch Gen Psychiatry. 1995. V. 52. P. 846-849.

24. Abrams R., Taylor M.A., Coleman-Stolurow K. Catatonia and mania: patterns of cerebral dysfunction // Biol. Psychiatr. 1979. V. 14. P. 111-117.

25. Aghajanian G.K. Electrophysiology of serotonin receptor subtypes and signal transduction pathways // Psychopharmacology: The Fourth Generation of Progress / Bloom F.R., Kupfer D.J.(Eds.), N.Y.: Raven Press, 1995. P.1451-1459.

26. Allison D.B., Neale M.C. Joint tests of linkage and association for quantitative traits. // Theor Popul Biol. 2001. V.60. P.239-251.

27. Amir S., Brown Z.W., Amir Z., Ornstein K. Body-pinches induced long lasting cataleptic-like immobility in mice: Behavioral characterization and the effects of naloxone // Life Sci., 1981. V.10. P.l 189-1194.

28. Ashley C.T., Warren S.T. Trinucleotide repeat expansion and human disease. // Annu. Rev.Genet. 1995. V.29. P.703-728.

29. Atkin N.B. Microsatellite instability. // Cytogenet. and Cell Genet. 2001. V.92. P.177-181.

30. Balsara J.J., Jadhav J.H., Chandorkar A.G. Effect of drugs influencing central serotonergic mechanisms on haloperidol-induced catalepsy // Psychopharmacol., 1979. V.62. P.67-69.

31. Barinaga M. A new tool for examining multigenic traits. // Science. 1994. V. 264. P. 1691.

32. Barnes N.M., Sharp T. A review of central 5-HT receptors and their function // Neuropharmacol., 1999. V.38. P. 1083-1152.

33. Beckmann, J.S., Weber, J.L. Survey of human and rat microsatellites. // Genomics. 1992. V.12. P.627-631.

34. Belknap J.K., Hitzemann R., Crabbe J.C., Phillips T.J., Buck K.J., Williams R.W. QTL Analysis and Genomewide Mutagenesis in Mice: Complementary Genetic Approaches to the Dissection of Complex Traits. // Beh. Genetics. 2001. V.31.P.5-15.

35. Bennett P. Demystified microsatellites. // J. Clin Pathol: Mol Pathol. 2000. V.53. P.177-183.

36. Bensch S., Akesson M. Ten years of AFLP in ecology and evolution:why so few animals? // Molecular Ecology. 2005. V. 14. P.2899-2914.

37. Beuzen N.D., Stear M.J., Chang K.C. Molecular markers and their use in animal breeding. // The Veterinary Journal. 2000. V.160. P.42-52.

38. Biet E., Sun J., Dutreix M. Conserved sequence preference in DNA binding among recombination proteins: an effect of ssDNA secondary structure. // Nucl. Acids Res. 1999. V.27. P.596-600.

39. Blier P., de Montigny C. Current advances and trends in the treatment of depression//Trends Pharmacol. Sci. 1994. Y.15. P.220-226.

40. W 40. Braun A., Little D.P., Reuter D., Muller-Mysok В., Koster H. Improvedanalysis of microsatellites using mass spectrometry. // Genomics. 1997. V.46.1. P. 18-23.

41. Brodkin E.S., Goforth S.A., Keene A.H., Fossella J.A., Silver L.M. Identification of quantitative trait loci that affect aggressive behavior in mice // J. Neurosci. 2002. V.22.P.1165-1170.

42. Broekkamp C.L., Oosterloo S.K., Berendsen H.H., van Delf A.M. Effect of metergoline, fenfluramine and 8-OH-DPAT on catalepsy induced by haloperidol or morphine // Naunyn-Schmiedebergerg's Arch. Pharmacol. 1988. V.338.P. 191-195.

43. Brumfield R.T., Beerli P., Nickerson D.A., Edwards S.V. The utility of single nucleotide polymorphism in inferences of population history. // Trends Ecol. Evol. 2003. V. 18. P.249-256.

44. Buck K.J., Metten P., Belknap J.K., Crabbe J.C. Quantitative trait loci involved in genetic predisposition to acute alcohol withdrawal in mice. // J. Neurosci.-1997.-Vol. 17.-P. 3946-3955

45. Bunday B. Basic Optimasation Methods. London: Edward Arnold Ltd, 1984. 128 P.

46. Burchill S.A., Selby P.J. Molecular detection of low-level disease in patients with cancer. // J. Pathol. 2000. V. 190. P.6-14.

47. Calderon S.F., Sanberg P.R., Norman A.B. Quinolinic acid lesions of ratstriatum abolish Dl- and D2-dopamine receptor-mediated catalepsy // Brain Res., 1988. V.450. P.403-407.

48. Callan D.F., Thompson A.D., Shen Y., Phillips H.A., Richards R.I., Mulley J.C., Sutherland G.R. Incidence and origin of null alleles of the (AC)n microsatellite markers. // Am. J. Hum. Genet. 1993. V.52. P.922-927.

49. Campbell D., Duchesne P., Bernatchez L. AFLP utility for population assignment studies: analytical investigation and empirical comparison with microsatellites. // Mol. Ecol. 2003. V.12. P.1979-1991.

50. Cardon L.R., Bell L. Association study designs for complex diseases. // Nature• Rev. Gen. 2001. V.2. P.91-99.

51. Catasti P., Chen X., Mariappan S.V., Bradbury E.M., Gupta G. DNA repeats in the human genome. // Genetica. 1999. V.106. P.15-36.

52. Chambers G.K., MacAvoy E.S. Microsatellites: consensus and controversy. // Сотр. Biochem. Physiol. В Biochem. Mol. Biol. 2000. V.126. P.455-476.

53. Chang D.K., Metzgar D., Wills C., Boland C.R. Microsatellites in the eukaryotic DNA mismatch repair genes as modulators of evolutionary mutation rate. // Genome Res. 2001. V. 11. P. 1145-1146.

54. Chen X., Sullivan P.F. Single nucleotide polymorphism genotyping: biochemistry, protocol, cost and throughput. // Pharmacogenomics J. 2003. V.3. P.77-96.

55. Cifarelli R.A., Gallitelli M., Cellini F. Random amplified hybridization microsatellites (RAHM): isolation of a new class of microsatellite-containing DNA clones. //Nucleic Acids Res. 1995. V.23. P.3802-3803.

56. Collins F.S. Positional cloning: let's not call it reverse anymore. // Nature Genet. 1992. V.l.P.3-6.

57. Collins R.L., Fuller J.L. Audiogenic seizure prone (asp) a gene affecting behavior in linkage group 8 of the mouse. // Science. 1968. V.162. P.l 137-1139.

58. Copeland N.G., Gilbert DJ., Jenkins N.A., Nadeau J.H., Eppig G.T., Maltais L.J., Miller J.C., Dietrich W.F., Sting R.G., Lincoln S.E. et al. Genom maps IU 1993. Wall chart. // Science. 1993. V.262. P.67-82.

59. Cornall R.J., Aitman T.J., Hearne C.M. Todd J.A. The generation of a library of PCR-analyzed microsatellite variants for genetic mapping of the mouse genome.//Genomics. 1991. V.10. P.874-881.

60. Cousin E., Genin E., Mace S., Ricard S., Chansac C., del Zompo M., Deleuze J.F. Association studies in candidate genes: strategies to select SNPs to be tested. // Hum Hered. 2003. V.56. P.151-159.1. Ш)

61. Cunningham E.P., Meghen C.M. Biological identification systems: genetic markers. // Rev. sci. tech. Off. int. Epiz. 2001. V.20. P.491-499.

62. De Ryck M., Teitelbaum P. Morphine catalepsy as an adaptive reflex state in rats // Behav. Neurosci. 1984. V.98. P.243-261.

63. Di Chiara G., Morelli M. Output pathways mediating bazal ganglia function // Advances in Behavioral Biology / McKenzie J., Klemm W.R., Wilcock L. (eds.), NY : Plenum Press, 1984. P.443-446.

64. Dib C., Faure S., Fizames C., Samson D., Drouot N., Vignal A., Millasseau P., Marc S., Hazan J., Seboun E. A comprehensive genetic map of the human genome based on 5,264 microsatellites. // Nature. 1996. Y.380. P.152-154.

65. Dietrich W.F., Miller J., Steen R., Merchant M.A., Damron-Boles D., Husain Z., Dredge R., Daly M.J., Ingalls K.A., O'Connor T.J. A comprehensive genetic map of the mouse genome. //Nature. 1996. V.380. P. 149-152.

66. Dixon A.K. Ethological strategies for defense in animals and humans: Their role in some psychiatric disorders // Brain J. Med. Psychol., 1998. V.71. P.417- 445.

67. Eggen A. Cartographie fine d'un gene et clonage positionnel. // INRA Production Aimales, numero hors serie "Genetique moleculaire: principes et application aux populations animals", 2000. P.133-139.

68. Ellegren H. Microsatellite mutations in the germline: implications for evolutionary inference. // Trends Genet. 2000. V. 16. P.551-558.

69. Ellegren H. Microsatellites: simple sequences with complex evolution. // Nature Rev. Gen. 2004. V.5. P.435-445.

70. Elsen J.-M. Classical linkage analysis // Neurobehavioral Genetics. Methods and Applications / Jones В., Mormede P. (eds.), Boca Raton: CRC Press, 1999. P.43-55.

71. Emara M.G., Kim H. Genetic markers and their application in poultry breeding. // Poult. Sci. 2003. V.82. P.952-957.

72. Field D., Wills C. Long, polymorphic microsatellites in simple organisms. // Proc. R. Soc. Lond. 1996. V.263. P.209-215.

73. Flint J., Corley R., DeFries J.C., Fulker D.W., Gray J.A., Miller S., Collins A.C. A simple genetic basis for a complex psychological trait in laboratory ■mice// Science. 1995. V.269. P.1432-1435.

74. Frank D. The genetic basis of evolutionary changes in behavioral patterns. // In: The genetics of behavior/ Ed. J. H. F. van Abeelen.-Amsterdam., 1974. P.119-140.

75. Gallup G.G. Tonic immobility: The role of fear and predation // Psychol. Res. 1977. V.27.P.41-61.

76. Galvao R., Mendes-Soares L., Camara J., Jaco I., Carmo-Fonseca M. Triplet repeats, RNA secondary structure and toxic gain-of-function models for pathogenesis. // Brain Res. Bull. 2001. V.56. P.191-201.

77. Garant D., Kruuk L.E. How to use molecular marker data to measure evolutionary parameters in wild populations. // Mol. Ecol. 2005. V.14. P.1843-1859.

78. Garchon H.J., Bedossa P., Eloy L., Bach J.-F. Identification and mapping to chromosome 1 of a susceptibility locus for periinsulitis in non-obese diabetic mice.//Nature. 1991. V. 353. P. 260-262.

79. Gaudeul M., Till-Bottraud I., Barjon F., Manel S. Genetic diversity and differentiation in Eryngium alpinum L. (Apiaceae): comparison of AFLP and microsatellitemarkers. //Heredity. 2004. V.92. P.508-518.

80. Gebhardt F., Zanker K.S., Brandt B. Modulation of epidermal growth factor receptor gene transcription by a polymorphic dinucleotide repeat in intron 1. // J. of Biol. Chem. 1999. V.274. P.13176-13180.f

81. Gerber S., Mariette S., Streiff R., Bodenes C., Kremer A. Comparison of microsatellites and amplified fragment length polymorphism markers for parentage analysis. //Mol. Ecol. 2000. V.9. P.1037-1048.

82. Gerhardt C.C., van Heerikhuizen H. Functional characteristics of heterologously expressed 5-HT receptors // Eur. J. Pharmacol. 1997. V.334. P.1-23.

83. Gershenfeld H.K., Neumann P.E., Mathis C., Crawley J.N., Li X., Paul S.M. Mapping quantitative trait loci for open-field behavior in mice // Behav. Genet., 1997. V.27. P.201-210.

84. Gershenfeld H.K., Paul S.M. Mapping quantitative trait loci for fear-like behaviors in mice // Genomics, 1997. V.49. P. 1-8.

85. Gill P., Jeffreys A.J., Werrett D.J. Forensic application of DNA 'fingerprinting'. //Nature. 1985. V.318. P.577-579.

86. Groenen M.A., Cheng H.H., Bumstead N., Benkel B.F., Briles W.E., Burke Т., Burt D.W., Crittenden L.B., Dodgson J., Hillel J. A consensus linkage map of the chicken genome.//Genome Res. 2000. V.10. P.137-147.

87. Haley C.S., Knott S.A. A simple regression method for mapping quantitative trait loci in line crosses using flanking markers. // Heredity. 1992. V.69. P. 315-324.

88. Hancock J.M. Simple sequences in a 'minimal' genome. // Nat. Genet. 1996.1. V.14. P.14-15.

89. Harding R.M., Boyce A.J., Clegg J.B. The evolution of tandemly repetitive DNA: recombination rules. // Genetics. 1992. V.132. P.847-859.

90. Hartgraves S.L., Kelly P.H. Role of mesencephalic reticular formation in cholinergic-induced catalepsy // Brain Res., 1984. V.307. P.47-54.

91. Hearne C.M., Ghosh S., Todd J.A. Microsatellites for linkage analysis of genetic traits. // TIG. 1992. V.8. P .288-294.

92. Hearne C.M., McAleer M.A., Love J.M., Cornall R.J., Aitman T.J., Todd J.A Additional microsatellite markers for mouse genome mapping. // Mamm. Genome. 1991. V.l. P.273-282.

93. Henke L., Fimmers R., Joseph! E., Cleef S., Dulmer M., Henke J. Usefulnessof conventional blood groups, DNA minisatellites, and short tandem repeatpolymorphisms in paternity testing: a comparison. // Foren. Sci. Intern. 1999. V.103. P.133-142.

94. Hitzemann R., Demarest K., Koyner J., Cipp L., Patel N., Rasmussen E., McCaughran J. Jr. Effect of genetic cross on the detection of quantitative trait loci and a novel approach to mapping QTLs. // Pharmacol Biochem Behav. 2000. V.67. P.767-772.

95. Hoffman E.K., Trusko S.P., Murphy M., George D.L. An SI nuclease-sensitive homopurine/homopyrimidine domain in the c-Ki-ras promoter interacts with a nuclear factor. // Proceedings of the Nation. Acad, of Sci. USA. 1990. V.87. P.2705-2709.

96. Holmes N.G. Microsatellite markers and the analysis of genetic disease. // Br Vet J. 1994. V. 150. P.411-421.

97. Horn G.T., Richards В., Klinger K.W. Amplification of a highly polymorphic VNTR segment by the polymerase chain reaction. // Nucleic Acids Res. 1989. V.17. P.21-40

98. Ioannidis J.P., Ntzani E.E., Trikalinos T.A., Contopoulos-Ioannidis D.G. Replication validity of genetic association studies. // Nat. Genet. 2001. V.29. P.306-309.

99. Jasinska A., Michlewski G., Mezer M., Sobczak K., Kozlowski P., Napierala M., Krzyzosiak W. J. Structures of trinucleotide repeats in human transcripts and their functional implications. // Nucleic Acids Res. 2003. V.31. P.5463-5468.

100. Jeffreys A.J., Murray J., Neumann R. High-resolution mapping of crossovers in human sperm defines a minisatellite associated recombination hotspot. // Molec. Cell. 1998. V.2. P.267-273.

101. Jeffreys A.J., Wilson V., Thein S.L. Hypervariable minisatellite regions in human DNA. //Nature. 1985. V.314. P.67-73.

102. Kalendar R., Grob Т., Regina M.T., Suoniemi A., Schulman A. IRAP and REMAP: two new retrotransposon-based DNA fingerprinting techniques. // Theor. Appl. Genet 1999. V.98. P.704-711.

103. Kanes S., Dains K., Cipp L., Gatley J., Hitzemann В., Rasmussen E., Sanderson S., Silverman M., Hitzemann R. Mapping the genes for haloperidol-induced catalepsy. // J. Pharmacol. Exp. Ther. 1996. V.277. P.1016-1025.

104. Kantety R.V., La Rota M., Matthews D.E., Sorrells M.E. Data mining for simple sequence repeats in expressed sequence tags from barley, maize, rice, sorghum and wheat. // Plant. Mol. Biol. 2002. V.48. P.501-510.

105. Karl S.A., Avise J.C. PCR-based assays of mendelian polymorphisms from anonymous single-copy nuclear DNA: techniques and applications for population genetics. // Mol Biol Evol. 1993. V.10. P.342-361.

106. Kashi Y., King D., Soller M. Simple sequence repeats as a source of quantitative genetic variation. // Trends Genet. 1997. V.13. P.74-78.

107. Katti M.V., Ranjekar P.K., Gupta V.S. Differential distribution of simple sequence repeats in eukaryotic genome sequences. // Mol. Biol. Evol. 2001. V.18. P.1161-1167.

108. Kerem В., Rommens J.M., Buchanan J.A., Markiewicz D., Cox Т.К., Chakravarti A., Buchwald M., Tsui L.C. Identification of the cystic fibrosis gene: genetic analysis. // Science. 1989. V.245. P.1073-1080.

109. Klemm W.R. Drug effects on active immobility responses: What they tell us about neurotransmitter systems and motor functions // Progress in Neurobiology, 1989. V.32. P.403-422.

110. Klemm W.R. Behavioral inhibition // Brainstem Mechanisms of Behavior / Klemm W.R., Vertes R.P. (eds.), N.Y.: John Wiley & Sons, 1990. P.497-533.

111. Kolasiewicz W., Wolfarth S., Ossowska K. The role of the thalamic nucleus in the catalepsy evoked from the substantia nigra pars reticulata in rats // Neurochem. Lett. 1988. V.90. P.219-223.

112. Kolpakov V.5 Barykina N.N., Alekhina T.A., Ponomarev I.Yu. Some genetic animal models for comparative psychology and biological psychiatry.-Novosibirsk : Institute Cytology and Genetics, 1996. 172 P.

113. Koreth J., O'Leary J.J., O'D McGee J. Microsatellites and PCR genomic analysis. // J. Pathol. 1996. V.178. P.239-248.

114. Kostowski W., Gumulka W., Czlonkowski A. Reduced cataleptogenic effects of some neuroleptics in rats with lesioned midbrain raphe and treated with p-chlorophenylalanine // Brain Res., 1972. V.48. P.443-446.

115. Kovtun IV Goellner G., McMurray C.T. Structural features of trinucleotide repeats associated with DNA expansion. // Biochem. and Cell. Biology. 2001. V.79. P.325-326.

116. Kruger S., Bagby M., Hoffler J., Braunig P. Factor Analysis of the Catatonia Rating Scale and Catatonic Symptom Distribution Across Four Diagnostic Groups. // Compreh. Psychiatry. 2003. V.44. P.472-482.

117. Kruglyak L., McAllister L. Who needs genetic markers? // Nat. Genet. 1998. V.18. P.200-202.

118. Kuhner M.K., Beerli P., Yamato J., Felsenstein J. Usefulness of single nucleotide polymorphism data for estimating population parameters. // Genetics. 2000. V.156. P.439-447.

119. Kuklin A., Munson K., Gjerde D., Haefele R., Taylor P. Detection of single-nucleotide polymorphisms with the WAVE DNA fragment analysis system. // Genetical Testing. 1998. V.l. P.201-206.

120. Kulikov A, Kolpakov V, Maslova G, Kozintsev I, Popova N. Effect of selective 5-HT1A agonists and 5-HT2 antagonists on inherited catalepsy in rats // Psychopharmacology. 1994. V. 114. P. 172-174.

121. Kulikov A, Kozlachkova E, Kudryavtseva N, Popova N. Correlation between tryptophan hydroxylase activity in the brain and predisposition to pinch-induced catalepsy in mice // Pharmacol. Biochem. Behav. 1995. V.50. P.431-435.

122. Kulikov A.V., Kozlachkova E.Yu., Maslova G.B., Popova N.K. Inheritance of predisposition to catalepsy in mice // Behav. Genet. 1993. V.23. P.379-384.

123. Kulikov A., Kozlachkova E., Popova N. The activity of tryptophan hydroxylase in brain of hereditary predisposed to catalepsy rats // Pharmacol. Biochem. Behav. 1992. V.43. P.999-1003.

124. Kwok P.Y., Chen X. Detection of single nucleotide variations. // Genetic Engineering. 1998. V.20. P.125-134.

125. Kwok P.Y., Chen X. Detection of single nucleotide polymorphisms. // Curr Issues Mol Biol. 2003. V.5. P.43-60.

126. Lai E. Application of SNP technologies in medicine: lessons learned and future challenges. // Genome Res. 2001. V.ll. P.927-929.

127. Landegren U., Nilsson M., Kwok P.Y. Reading bits of genetic information: Methods for single-nucleotide polymorphism analysis. // Genome Res. 1998. V.8. V.169-116.

128. Lander E.S., Botstein D. Mapping Mendelian factors underlying quantitative traits using RFLP linkage maps // Genetics, 1989. V.121. P.185-199.

129. Lander E., Kruglyak L, Genetic dissection of complex traits: guidelines for interpreting and reporting linkages resultes. // Nature Genetics. 1995. V.l 1. P. 241-247.

130. Le Roy I. Quantitative trait loci (QTL) mapping // Neurobehavioral Genetics. Methods and Applications / Jones В., Mormede P. (eds.), Boca Raton: CRC Press, 1999. P.69-76.

131. Leal S.M. Genetic maps of microsatellite and single-nucleotide polymorphism markers: are the distances accurate? // Genet. Epidemiol. 2003. V.24. P.243-252.

132. Leung W.K., Kim J.J., Kim J.G., Graham D.Y., Sepulveda A.R. Microsatellite instability in gastric intestinal metaplasia in patients with and without gastric cancer. //American J. of Pathology. 2000. V.156. P.537-543.

133. Li Y.C., Korol A.B., Fahima Т., Beiles A., Nevo E. Microsatellites: genomic distribution, putative functions and mutational mechanisms: a review. // Mol. Ecology. 2002. V. 11. P.2453-2465.

134. Li Y.C., Korol A.B., Fahima Т., Nevo E. Microsatellites within genes: structure, function, and evolution. //Mol. Biol. Evol. 2004. V.21. P.991-1007.

135. Lin M.T., Tsay H.J., Su W.H., Chueh F.Y. Changes in extracellular serotonin in rat hypothalamus affect thermoregulatory function. // Am. J. Physiol. 1998. V. 274. P. 1260-1267.

136. Lipshutz R.J., Fodor S.P.A., Gingeras T.R., Lockhart D.J. High density synthetic oligonucleotide arrays. //Nature Genetics. 1999. Y.21. P.20-24.

137. Little P.J., Compton D.R., Mechoulam R., Martin B.R. Stereochemical effects of ll-hydroxy-dekta-8-THC-dimethylheptyl in mice and dogs // Pharmacol. Biochem. Behav. 1989. V.32. P.661-666.

138. Love J.M., Knight A.M., McAleer M.A, Todd J.A. Towards construction of a high resolution map of the mouse genome using PCR-analysed microsatellites. //Nucleic Acids Res. 1990. V.18. P.4123-4130.

139. Lynch M., Walsh B. Genetics and Analysis of Quantitative Traits.-Massachusetts: Sinauer Associates, 1998. 265 P.

140. MacClern G.E. A retrospect on neurobehavioral genetics. // Neurobehavioral Genetics. Methods and Applications / Jones В., Mormede P. (eds.), Boca Raton: CRC Press, 1999. P. 1-10.

141. Maes M., Meltzer H.Y. The serotonin hypothesis of major depression // Psychopharmacology. The fourth generation of progress / Bloom E.E., Kupfer N.N. (eds.), N.Y.: Raven Press, 1995. P.933-944.

142. Maj J., Mogilnicka E., Przewlocka B. Antagonistic effect of cyproheptadine on neuroleptic-induced catalepsy // Pharmacol. Biochem. Behav., 1975. V.3. P.25-27.

143. Marcotte E.M., Pellegrini M., Yeates Т.О., Eisenberg D. A census of protein repeats. //J. ofMol. Biology. 1999. V.293. P. 151-160.

144. Marklund S., Ellegren H., Eriksson S., Sandberg K., Andersson L. Parentage testing and linkage analysis in the horse using a set of highly polymorphic microsatellites. //Anim. Genet. 1994. V.25. P. 19-23.

145. Martin-Farmer J., Janssen G.R. A downstream CA repeat sequence increases translation from leadered and unleadered mRNA in Escherichia coli. II Mol. Micobiology. 1999. V.31. P.1025-1038.

146. Masiga D.K., Turner C.M. Amplified (restriction) fragment length polymorphism (AFLP) analysis. // Methods Mol. Biol. 2004. V.270. P.173-186.

147. McCarthy J.J. Advances in pharmacogenomic research and development. // Mol. Biotechnol. 2003. V.25. P.275-282.

148. McGraw C.P., Klemm W.R. Genetic differences in susceptibility of rats to immobility reflex ("animal hypnosis") // Behav. Genet. 1973. V.3. P.155-162.

149. Metzgar D., Bytof J., Wills C. Selection against frameshift mutations limits microsatellite expansion in coding DNA. // Genome Res. 2000. Y.10. P.72-80.

150. Meyer S., Weiss G., van Haeseler A. Pattern of nucleotide substitution and rate heterogeneity in the hypervariable regions I and II of human mtDNA. // Genetics. 1999. V.152. P.l 103-1110.

151. Milan D. Notion de gene candidat. // INRA Production Aimales, numero hors serie "Genetique moleculaire: principes et application aux populations animals", 2000. P.l 19-123.

152. Moisan M.-P. From QTL detection to gene identification // Neurobehavioral Genetics. Methods and Applications / Jones В., Mormede P. (eds.), Boca Raton: CRC Press, 1999. P.77-91.

153. Moisan M.-P., Courvoisier H., Bihoreau M.T., Gauguier D., Hendley E.D., Lathrop M., James M.R., Mormede P. A major quantitative trait locus influences hyperactivity in the WKHA rat. // Nat. Genet. 1996. V.14. P.471-473.

154. Morgante M., Hanafey M., Powell W. Microsatellites are preferentially associated with nonrepetitive DNA in plant genomes. // Nature Genet. 2002. V.30. P. 194-200.

155. Moxon E.R., Wills C. DNA microsatellites: agents of evolution? // Sci. Am. 1999. V.280. P.94-99.

156. Mullis 1С., Faloona F., Scharf S., Saika R., Horn G., Erlich H. Specific enzymatic amplification of DNA in vitro: the polymerase chain reaction. // Cold Spring Harb. Symp. quant. Biol. 1986. V.51. P.263-273.

157. Murphy T.D., Karpen G.H. Localization of centromere function in a Drosophila minichromosome. // Cell. 1995. V.82. P.599-609.

158. Naidoo R., Chetty R. The application of microsatellites in molecular pathology. //Pathol. Oncol. Res. 1998. V.4. P.310-315.

159. Nakamura Y., Leppert M., O'Connel P., Wolff R., Holm Т., Culver M., Martin C., Fujimoto E., Hoff M., Kumlin E., White R. Variable number tandem repeat (VNTR) markers for human gene mapping. // Science. 1987. V.235. P.1616-1622.

160. Nataraj A.J., Olivos-Glander I., Kusukawa N., Highsmith W.E. Single-strand conformation and heteroduplex analysis for gel-based mutation detection. // Electrophoresis. 1999. V.20. P.l 177-1185.

161. Neal-Beliveau B.S., Joyce J.N., Lucki I. Serotonergic involvement in haloperidol-induced catalepsy // J. Pharmacol. Exp. Ther. 1993. V.265. P.207-217.

162. Nielsen R., Signorovitch, J. Correcting for ascertainment biases when analyzing SNP data: applications to the estimation of linkage disequilibrium. // Theor. Popul. Biol. 2003. V.63. P.245-255.

163. Oda S., Maehara Y., Sumiyoshi Y., Sugimachi К Microsatellite instability in cancer: what problems remain unanswered? // Surgery. 2002. V.131. P.55-62.

164. Ohashi J., Tokunaga K. Power of genome-wide linkage disequilibrium testing by using microsatellite markers. // J. Hum. Genet. 2003. V.48. P.487-491.

165. Olson M.Y., Hood L., Cantor C., Botstein D. Isolation of single-copy human genes from library of yeast artificial chromosome clones. // Science. 1989. V.245. P.1348-1351.

166. Ornstein K., Amir S. Pinch-induced catalepsy in mice // J. Сотр. Physiol. Psychol., 1981. V.95. P.827-835.

167. Overstreet D.H. Genetic animal models of endogenous depression // Genetically Defined Animal Models of Neurobehavioral Dysfunctions / Driscoll P. (ed.), Boston: Birkhauser, 1992. P.253-276.

168. Papa R., Troggio M., Ajmone-Marsan P., Nonnis Marzano F. An improved protocol for the production of AFLP markers in complex genomes by means of capillary electrophoresis. // J. Anim. Breed. Genet. 2005. V.122. P.62-68.

169. Parsons Y.M., Shaw K.L. Mapping unexplored genomes: a genetic linkage map of the Hawaiian cricket Laupala. II Genetics. 2002. V.162. P.1275-1282.

170. Patel N., Hitzemann R. Detection and mapping of QTL for haloperidol-induced catalepsy in C57BL/6J and DBA/2 J F2 Intercross // Behav. Genet. 1999. V. 29. P.303-310.

171. Peripato A.C., De Brito R.A., Vaughn T.T., Pletscher L.S., Matioli S.R., Cheverud J.M. Quantitative trait loci for maternal performance for offspring survival in mice. // Genetics. 2002. V.162. P.1341-1353.

172. Pitel F., Riquet J. Les marqueurs anonyms et la detection de leur polymorphisme. // INRA Production Aimales, numero hors serie "Genetique moleculaire: principes et application aux populations animals", 2000. P.45-53.

173. Plomin R. The role of inheritance in behavior // Science. 1990. V.248. P.183-188.

174. Plomin R., McClearn G.E., Gora-Maslak G., Neiderhiser J.M. Use of recombinant inbred strains to detect quantitative trait loci associated with behavior. // Behav Genet. 1991. V.21. P.99-116.

175. Plomin R., Owen M.J., McGuffin P. The genetic basis of complex human behaviors.//Science. 1994. V.264. P.1733-1739.

176. Popova N.K. Brain serotonin in genetically defined defensive behaviour // Complex Brain Functions: Conceptual Advances in Russian Neuroscience / Millar R., Ivanitsky A.M., Balaban P.M. (eds.), Harwood Press, 1999. P.307-329.

177. Popova N, Kulikov A. On the role of brain serotonin in expression of genetic predisposition to catalepsy in animal models // Am. J. Med. Genetics (Neuropsychiatric Genetics). 1995. V.60. P.214-220.

178. Prinssen E.P., Colpaert F.C., Коек W. 5-HTIA receptor activation and anti-cataleptic effects: high-efficacy agonists maximally inhibit haloperidol-induced catalepsy //Eur. J. Pharmacol. 2002. V.453. P.217-221.

179. Pycock C., Horton R., Carter C. Interactions of 5-hydroxytryptamine and gamma-aminobutyric acid with dopamine. // Dophamine.-New York., 1978. P.323.

180. Qin Z.H., Zhou L.W., Zhang S.P., Wang Y., Weiss B. D2 dopamine receptor antitese oligodeoxynucleotide ingibits the synthesis of a functional pool of D2 dopamine receptors. //Mol. Pharmacol. 1995. V.48. P.730-737.

181. Raina A., Dogra T.D. Application of DNA fingerprinting in medicolegal practice. // J. Indian Med. Assoc. 2002. V.100. P.688-694.

182. Rassmann K., Schlotterer C., Tautz D. Isolation of simple-sequence loci for use in polymerase chain reaction-based DNA fingerprinting. // Electrophoresis. 1991. V.12. P.l 13-118.

183. Reichardt L.F., Tomaselli K.J. Extracellular matrix molecules and their receptors. Function in neuronal development. // Annu. Rev. Neurosci. 1991. Vol.14. P.531-570.

184. Rendel J.M., Sheldon B.L., Finlay D.E. Canalization of development of scutellar bristles in a Drosophila by control of the scute locus. // Genetics. 1965. V.52. P.1137-1151.

185. Richard G.F., Paques F. Mini- and microsatellite expansions: the recombination connection. // EMBO Rep. 2000. V.l. P. 122-126.

186. Richardson Т., Cato S., Ramser J., Kahl G., Weising K. Hybridization of microsatellites to RAPD: a new source of polymorphic markers. // Nucleic Acids Res. 1995. V.23. P.3798-3799.

187. Rohrer G.A., Alexander L.J., Hu Z., Smith T.P.L., Keele J.W., Beattie C.W. A comprehensive map of the porcine genome. // Genome Res. 1996. V.6. P.371-391.

188. Ross P.L., Lee K., Belgrader P. Discrimination of single-nucleotide polymorphisms in human DNA using peptide nucleic acid probes detected by MALDI-TOF mass spectrometry. // Analytical Chem. 1997. V.69. P.4197-4202.

189. Roubertoux P.L. What Can the Neurobiologist Learn from Mapping Genes Linked with Behavioral Traits? // Beh. Genetics. 2001. V.31. P. 1-4.

190. Rubinsztein D.C., Amos W., Leggo J., Goodburn S., Jain S., Li S.H., Margolis R.L., Ross C.A., Ferguson-Smith M.A. Microsatellite evolution evidence for directionality and variation in rate between species. // Nature Genetics. 1995. V.10. P.337-343.

191. Sanberg P.R., Bunsey M.D., Giordano M., Norman A.B. The catalepsy test: Its ups and downs //Behav. Neurosci. 1988. V.102. P.748-759.

192. Sarkar G., Paynton C., Sommer S.S. Segments containing alternating purine and pyrimidine dinucleotides: patterns of polymorphism in humans and prevalence throughout phylogeny. // Nucleic Acids Res. 1991. V.l9. P.631-636.

193. Schafer A.J., Hawkins J.R. DNA variation and the future of human genetics. // Nature. Biotech. 1998. V.16. P.33-39.

194. Schierwater В., Ender A. Different thermostable DNA polymerases may amplify different RAPD products. // Nucleic Acids Res. 1993. V.21. P.4647-4648.

195. Schlotterer C. Genome evolution: are microsatellites really simple sequences? // Curr. Biol. 1998. V.8. P.132-134.

196. Schlotterer C. Evolutionary dynamics of microsatellite DNA. // Chromosoma. 2000. V.109. P.365-371.

197. Schlotterer C. The evolution of molecular markers just a matter of fashion? // Nat Rev Genet. 2004. V.5. P.63-69.

198. Shastry B.S. SNP alleles in human disease and evolution. // J. Hum. Genet. 2002. V.47.P.561-566.

199. Singerman В., Raheja R. Malignant catatonia a continuing reality. // Ann. Clin. Psychiatry. 1994. V.6. P.259-266.

200. Smith R.H. Wildness and domestication in Mus musculus: A behavioural analysis // J. Сотр. Physiol. Psychol. 1992. V.79. P.22-29.

201. Stallings R.L., Ford A.F., Nelson D., Torney D.C., Hildebrand C.E., Moyzis R.K. Evolution and distribution of (GT)n repetitive sequences in mammalian genomes. // Genomics. 1991. V.10. P.807-815.

202. Stoll J., Kozak C., Goldman D. Characterization and chromosomal mapping of a cDNA encoding thryptophan hydroxylase from a mouse mastocytoma cell line.//Genomics. 1990. V.7. P.88-96.

203. Talbot C.J., Radcliffe R.A., Fullerton J., Hitzemann R., Wehner J.M., Flint J. Fine scale mapping of a genetic locus for conditioned fear. // Mammal. Genome. 2003. V.14. P.223-230.

204. Takahashi J.S., Pinto L.H., Vitaterna M.H. Forward and reverse genetic approaches to behavior in the mouse. // Science. 1994. V.264. P. 1724-1733.

205. Tautz D. Hypervariability of simple sequences as a general source for polymorphic DNA markers. //Nucleic Acids Res. 1989. V.17. P.6463-6471.

206. Tautz D. Genomic finger printing goes simple. // BioEssays. 1990. V.12. P.44-46.

207. Tautz D., Schlotterer C. Simple sequences. // Curr. Opin. Genet. Dev. 1994. V.4. P.832-837.

208. Taylor M.A., Fink M. Catatonia in psychiatric classification: a home of its own. //Am J Psychiatry. 2003. V.160. P. 1233-1241.

209. Terwilliger J.D., Haghighi F., Hiekkalinna T.S., Goring, H.H. A bias-ed assessment of the use of SNPs in human complex traits. // Curr. Opin. Genet. Dev. 2002. V.12. P.726-734.

210. Todd J.A., Aitman T.J., Cornall R.J., Ghosh S., Hall J.R., Hearne C.M., Knight A.M., Love J.M., McAleer M.A., Prins J.B. Genetic analysis of autoimmune type 1 diabetes mellitus in mice. // Nature. 1991. V.351. P.542-547.

211. Toth G., Gaspari Z., Jurka J. Microsatellites in different eukaryotic genomes: survey and analysis. // Genome Res. 2000. V.10. P.967-981.

212. Tsuchihashi Z., Dracopoli N.C. Progress in high throughput SNP genotyping methods. //Pharmacogenomics J. 2002. V.2. P. 103-110.

213. Vander-Wende С., Spoerlein M.T. Morphine-induced catalepsy in mice: modification by drugs acting on neurotransmitter systems // Neuropharmacol. 1979. V.18.P.633-637.

214. Veenstra-VanderWeele J., Anderson G.M., Cook E.H. Pharmacogenetics and the serotonin system: initial studies and future directions // Eur. J. Pharmacol. 2000. V.410. P.165-181.

215. Visscher P.M., Haley C.S. Power of a chromosomal test to detect genetic variation using genetic markers. // Heredity. 1998. V.81. P.317-326.

216. Vogt P. Potential genetic functions of tandem repeated DNA sequence blocks in the human genome are based on a highly conserved "chromatin folding code". // Human Genet. 1990. V.84. P.301-336.

217. Voight J.P., Kienzle F., Sohr R., Rex A., Fink H. Feeding and 8-OH-DPAT-related release of serotonin in the rat lateral hypothalamus. // Phamacol. Biochem. Behav. 2000. V.65. P.183-189.

218. Yos P., Hogers R., Bleeker M., Reijans M., van de Lee Т., Homes M., Frijters A., Pot J., Peleman J., Kuiper M., Zabeau M. AFLP: a new technique for DNA fingerprinting. // Nucleic Acids Res. 1995. V.23. P.4407-4414.

219. Wadenberg M.L. Serotonergic mechanisms in neuroleptic-induced catalepsy in the rat // Neurosci. Biobehav. Rev. 1996. V.20. P.325-339.

220. Wallnau L.B., Bordash G., Corso P. The effects of tryptophan and manipulations of serotonergic receptors on tonic immobility in chickens. // Pharmacol. Biochem. Behav. 1981. V. 14. P.463-468.

221. Walsh S.J. Recent advances in forensic genetics. // Expert Rev. Mo.l Diagn. 2004. V.4.P.31-40.

222. Walther D., Bader M. A unique central tryptophan hydroxylase isoform // Biochem. Pharmacol. 2003. V.66. P.1673-1680.

223. Walther D.J., Peter J.-U., Bashammakh S., Hortnagl H., Voits M., Fink H., Bader M. Synthesis of serotonin by a second thryptophan hydroxylase isoform // Science. 2003. V.299. P.76.

224. Wambebe C. Influence of (-)-sulpiride and YM-09151-2 on stereotyped behavior in chicks and catalepsy in rats // Jpn. J. Pharmacol. 1987. V.43. P.121-128.

225. Weber J.L., May P.E. Abundant class of human DNA polymorphisms which can be typed using the polymerase chain reaction. // Am. J. Hum. Genet. 1989. V.44. P.388-396.

226. Weber J.L. Informativeness of human (dC-dA)n.(dG-dT)n polymorphisms. // Genomics. 1990. V.7. P.524-530.

227. Weber J.L., Wong G. Mutation of human short tandem repeats. // Hum. Mol. Genet. 1993. V.2. P. 1123-1128.

228. Williams J.G.K., Kubelik A.R., Livak K.J., Rafalski J.A., Tingey S.V. DNA polymorphisms amplified by arbitrary primers are useful as genetic markers. Nucleic Acids Res. 1990. V.18. P.6531-6535.

229. Winter E., Varshavsky A. A DNA binding protein that recognizes oligo(dA) D oligo(dT) tracts. //EMBO Journal. 1989. V.8. P. 1867-1877.

230. Wuellner U., Klockgether Т., Schwarz M., Sontag K.-H. Behavioral actions of baclofen in the rat ventromedial thalamic nucleus: Antagonism by delta-aminovalerate // Brain Res. 1987. V.422. P.129-136.

231. Xie D-W., Deng Z-L., Ishigaki Т., Nakamura Y., Suzuki Y., Miyasato K., Ohara K. The gene encoding the 5-HT1A receptor is intact in mood disorders. // Neuropsychopharmacology. 1995. V.12. P.263-268.

232. Yamasaki M., Hattori Y., Konishi M., Itoh N. Spatially restricted expression of fibroblast growth factor-10 mRNA in the rat brain. // Brain Res. Mol. 1997. V.47. P.139-146.

233. Yue G., Li Y., Chen F., Cho S., Lim L.C., Orban L. Comparison of three DNA marker systems for assessing genetic diversity in Asian arowana (Scleropages formosus). II Electrophoresis. 2002. V.23. P.1025-1032.

234. Zabeau, M., Vos, P. Selective restriction fragment amplification: a general method for DNA fingerprinting. // European Patent. 1993. 0 534858 Al.

235. Zago M.A., Tavella M.H., Simoes B.P., Franco R.F., Guerreiro J.F., Santos S.B. Racial heterogeneity of DNA polymorphisms linked to the A and the О alleles of the ABO blood group gene. // Ann Hum Genet. 1996. V.60. P.67-72.

236. Zane L., Bargelloni L., Patarnello T. Strategies for microsatellite isolation: a review. // Mol Ecol. 2002. V.ll. P.l-16.

237. Zhang M., Creeze I. Antisense oligodeoxynucleotide reduces brain dopamine D2 receptors: behavioral correlates //Neurosci. Lett. 1993. V.161. P.223-226.

238. Zhang X., Beaulieu J.M., Sotnikova T.D., Gainetdinov R.R., Caron M.G. Tryptophan hydroxylase-2 controls brain serotonin synthesis // Science. 2004. V.305. P.217.

239. Zietkiewicz E., Rafalski A., Labuda D. Genome fingerprinting by simple sequence repeat (SSR)-anchored polymerase chain reaction amplification. // Genomics. 1994. V.20. P.176-183.