Эпизоотическая ситуация по бешенству животных в Московской области и совершенствование методов экспресс-диагностики тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.01.06, кандидат биологических наук Анисина, Ольга Владимировна

• Анисина, Ольга Владимировна
• кандидат биологических наук
• 2013

Оглавление диссертации кандидат биологических наук Анисина, Ольга Владимировна

СОДЕРЖАНИЕ

СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ

1. ВВЕДЕНИЕ

1.1 Актуальность темы

1.2 Цель и задачи исследования

1.3 Научная новизна

1.4 Основные положения работы, выносимые на защиту

1.5 Личный вклад соискателя

1.6 Апробация результатов работы

1.7 Публикация результатов исследования

1.8 Объем и структура диссертации

2.ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

2.1 Экология и география распространения бешенства

2.2 Эпизоотическая ситуация по бешенству в РФ

2.3 Экологическая обстановка и социально-экономическое положение МО

2.4 Эпизоотическая ситуация по бешенству в МО

2.5 Роль безнадзорных собак в эпизоотии бешенства в МО

2.6 Возбудитель бешенства

2.6.1 Классификация ЬуззауипБ

2.6.2 Морфология и свойства вируса бешенства

2.6.3 Восприимчивость к бешенству животных

2.7 Патогенез

2.8 Формирование иммунитета у животных при бешенстве

2.9 Диагностика бешенства

2.9.1. Традиционные методы диагностики бешенства

2.9.2. Метод иммунохроматографического анализа (ИХА)

2.10 Профилактика и меры борьбы с бешенством

2.11 Мероприятия по борьбе с бешенством

Заключение

2

3. СОБСТВЕННЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ

3.1. Материалы и методы

3.1.1 Материалы

3.1.2 Методы

3.2. Результаты исследований

3.2.1 Характеристика современной экологической обстановки и социально-экономического положения МО

3.2.2 Эпизоотическая ситуация по бешенству животных в МО за период 2008-2012 гг

3.2.3 Оценка роли собак в эпизоотическом процессе бешенства на территории МО

3.2.4 Заболевание людей гидрофобией в МО

3.2.5 Результаты определения эффективности вакцинации собак антирабическими вакцинами

3.2.6 Разработка тест-системы ИХА для выявления вируса бешенства

3.2.6.1 Получение компонентов тест-системы ИХА

3.2.6.2 Очистка нуклеокапсида вируса бешенства

3.2.6.3 Получение антирабических сывороток

3.2.6.4 Выделение ^О из антирабических сывороток

3.2.6.5 Получение анти-^О барана

3.2.6.6 Получение конъюгата высокоаффинных антирабических ^О с частицами коллоидного золота

3.2.6.7 Конструирование тест-системы ИХА

3.2.6.8 Определение условий проведения ИХА

3.2.6.9 Оценка эффективности тест-системы ИХА

4. ОБСУЖДЕНИЕ

5. ВЫВОДЫ

6. ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ

7. СПИСОК ИСПОЛЬЗОВАННОЙ ЛИТЕРАТУРЫ

3

8. ПРИЛОЖЕНИЯ

Приложение 1 Стандарт организации «Набор реагентов для количественного определения антител к антигену вируса бешенства в сыворотке крови животных в непрямом варианте иммуноферментного

анализа»

Приложение 2 Технологический регламент по изготовлению и контролю набора реагентов для количественного определения антител к антигену вируса бешенства в сыворотке крови животных в непрямом

варианте иммуноферментного анализа

Приложение 3 Временная инструкция по применению набора реагентов для количественного определения антител к антигену вируса бешенства в сыворотке крови животных в непрямом варианте

иммуноферментного анализа

Приложение 4 Акт комиссионной проверки набора реагентов для количественного определения антител к антигену вируса бешенства в сыворотке крови животных в непрямом варианте иммуноферментного

анализа

Приложение 5 Методические положения «Количественное определение антител к антигену вируса бешенства в сыворотке крови

животных в непрямом варианте иммуноферментного анализа»

Приложение 6 Стандарт организации «Набор реагентов для выявления вируса бешенства методом иммунохроматографического

анализа»

Приложение 7 Технологический регламент по изготовлению и контролю набора реагентов для выявления вируса бешенства методом

иммунохроматографического анализа

Приложение 8 Временная инструкция по применению набора реагентов для выявления вируса бешенства методом иммунохроматографического анализа

Приложение 9 Акт комиссионной проверки набора реагентов для выявления вируса бешенства методом иммунохроматографического анализа

Приложение 10 Методические положения по выявлению вируса

бешенства методом иммунохроматографического анализа

Приложение 11 Акт комиссионной проверки тест-системы на основе

(1о1-ЕЫ8А для выявления вируса бешенства в слюне

Приложение 12 Акт комиссионной проверки тест-системы на основе точечного анализа с применением иммунозолотого маркера для выявления

вируса бешенства в слюне

Приложение 13 Методические положения «Выявление антигена

вируса бешенства методом контрастной иммунофлюоресценции»

Приложение 14 Акт о взятии проб крови и слюны собак

Приложение 15 Свидетельство к серебряной медали за инновационную биотехнологическую разработку «Набор компонентов для определения уровня специфических антител в сыворотке крови вакцинированных против бешенства животных

СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ

ВНИТИБП - Всероссийский научно-исследовательский технологический институт биологической промышленности ВНА - вируснейтрализующие антитела ВОЗ - Всемирная организация здравоохранения ИФА - иммуноферментный анализ ИХА - иммунохроматографический анализ КСА - комплементсвязывающие антитела JIA - лизирующие антитела мкАТ - моноклональные антитела МО - Московская область МФА - метод флюоресцирующих антител НК - нуклеокапсид

ООПТ - особо охраняемые природные территории ОП - оптическая плотность

ОТ-ПЦР - обратнотранскриптазная полимеразная цепная реация

ПА - преципитирующие антитела

ПЦР - полимеразная цепная реация

РДП - реакция диффузионной преципитации

РН - реакция нейтрализации

РНК - рибонуклеиновая кислота

РНП - рибонуклеопротеин (рибонуклеокапсид)

РСК - реакция связывания комплемента

РФ - Российская Федерация

СП - санитарные правила

Т.н. - тысяча нуклеотидов

ТФ-ИФА - твердофазный иммуноферментный анализ

ФО - Федеральный округ

ЦНС - центральная нервная система

ABLY - Australian bat lyssavirus

CVS - Challenge Virus Standard

dot-ELISA - точечный иммуноферментный анализ

DUW - Duven-hage virus

EBLV - European Bat Lyssa Vims

FAVN - fluorescent antibody virus neutralisation

IgG - иммуноглобулины класса G

IRKV - Irkut virus

KHUV - Khujand virus

LBV - Lagos bat virus

MOKV - Mokola virus

RABV - rabies virus

RFFIT - rapid fluorescent focus inhibition test SAD - Street-Alabama-Dufferin WCBV - West Caucasian bat virus

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Эпизоотическая ситуация по бешенству животных в Московской области и совершенствование методов экспресс-диагностики»

1. ВВЕДЕНИЕ

1.1 Актуальность темы

К важнейшим задачам ветеринарной науки относится внедрение научных достижений в производство, разработка эффективных методов диагностики, профилактики и ликвидация инфекционных болезней животных, среди которых особое место занимает бешенство.

Особенностям проявления бешенства в Российской Федерации и в отдельных ее регионах посвящены работы ведущих отечественных специалистов по вопросам рабической инфекции: Селимов М.А. (1978, 1998); Кузнецов П.П., Таршис М.Г. (1981); Сочнев В.В. (1987); Кузьмин И.В. (2001); Авилов В.М. (2002); Джупина С.И. и др. (2002, 2007); Макаров В.В., Воробьев A.A. (2002, 2004); Ботвинкин А.Д. (2004); Иванов B.C. и др. (2004); Хрипунов Е.М. и др. (2005); Сидорова Д.Г. (2009); Сидоров Г.Н. и др. (1995, 1998, 2011); Ведерников В. А. и др. (2010); Иванов А. В., Хисматуллина H.A., Чернов А.Н., Гулюкин A.M. (2010); Самуйленко А .Я., Гринь С.А. и др. (2012), Дудников С.А. (2012) и др.

Эпизоотологические основы профилактики бешенства животных в Московской области в разные годы были изучены Цвиль Л.А., Родиной J1.B. и др. (2001, 2002); Балдиной И.В. (2003, 2004); Мовсесянц A.A. (2003, 2011); Заводских A.B. (2007). Причины сохранения напряженности эпизоотической обстановки по бешенству в таком быстроизменяющемся регионе, как Московская область, требуют дополнительного изучения. При этом необходимо проанализировать современную эпизоотическую ситуацию по бешенству с учетом влияния экологических и социальных факторов в сочетании с экспериментальными исследованиями.

Опасность распространения бешенства связана с особенностью патогенеза заболевания - передачей вируса зараженными животными при укусе или ослюнении. По данным Роспотребнадзора, в РФ за период 20082011 гг. зарегистрировано 57 летальных случаев среди людей.

На территории Московской области в 2011 году зарегистрировано 3 чрезвычайных ситуации, связанные с укусами и ослюнениями бешенными безнадзорными собаками и кошками, от которых пострадало 50 человек.

В этой связи постановка своевременного диагноза с применением экспресс-методов для обнаружения вируса бешенства является актуальной задачей.

1.2 Цель и задачи исследования

Целью настоящей работы является анализ эпизоотической ситуации по бешенству животных на территории Московской области и разработка иммунохроматографической тест-системы для экспресс-выявления антигена вируса бешенства.

Достижение поставленной цели включало решение следующих задач:

1. Провести анализ социально-экономического положения Московской области и оценить ситуацию по бешенству животных в регионе за период 2008-2012 гг.;

2. Изучить роль собак в проявлении бешенства в Московской области;

3. Разработать технологию получения компонентов для конструирования иммунохроматографической тест-системы;

4. Определить эффективность применения разработанной тест-системы для экспресс-диагностики бешенства.

1.3 Научная новизна

Охарактеризованы особенности эпизоотического и эпидемического проявления бешенства с учетом экологической ситуации и современного социально-экономического положения Московской области. Показано, что предпосылками к обострению эпизоотической обстановки по бешенству в Московской области за период 2008-2012 гг. служили активизация природных очагов инфекции, увеличение популяции лисиц и вовлечение в эпизоотии «городского» бешенства безнадзорных собак.

Получены компоненты, предложена схема и условия постановки иммунохроматографического анализа для индикации антигена вируса бешенства, основанные на использовании конъюгата антирабических антител с коллоидным золотом, антинуклеокапсидных и антивидовых антител.

Показана эффективность применения разработанной

иммунохроматографической тест-системы при выявлении антигена вируса бешенства в ткани мозга, слюне и культуре клеток. Предлагаемая тест-система, с использованием указанных реагентов, может быть использована в качестве экспресс-метода для диагностики бешенства.

1.4 Основные положения работы, выносимые на защиту

1. Анализ эпизоотической ситуации по бешенству животных в Московской области за период 2008-2012 гг. с учетом экологического и социально-экономического положения региона.

2. Разработка технологии получения компонентов иммунохроматографической тест-системы и оценка ее эффективности при выявлении антигена вируса бешенства.

1.5 Личный вклад соискателя

Диссертационная работа выполнена автором самостоятельно. Отдельные этапы работы проводились совместно с к.б.н. Истоминой М.А. Автор выражает благодарность заведующей отделом молекулярной биологии и вирусологии ГНУ ВНИТИБП РАСХН, доктору биологических наук, профессору Матвеевой И.Н., главному ветврачу ЗооВетЦентра «Лебеди» к.б.н. Масимову Э.Н., ветврачу питомника «Восторг» Вдовиной И.М., ветврачу клиники «Добрый доктор» Царьковой К.Г.

1.6 Апробация результатов работы

Основные положения работы и результаты исследований доложены и обсуждены на заседаниях Ученого совета и Методической комиссии ГНУ ВНИИТБП 2011-2013 гг. в виде ежегодных отчетов по теме задания 08.06.01 «Разработать технологию изготовления и применения новых

диагностикумов, средств профилактики и иммунокоррекции наиболее распространенных и экономически значимых инфекционных болезней животных на основе современного оборудования и технологических процессов».

Материалы диссертации представлены на: Международной научно-практической конференции «Актуальные аспекты интегрированной защиты животных от болезней», посвященной 50-летию ГНУ ВНИИВЭА (Тюмень, 2011); П-ой конференции молодых ученых «Актуальные проблемы инфекционной патологии в ветеринарной медицине» (Покров, 2012); Международной конференции «Научные основы производства и обеспечения качества биологических препаратов для АПК» (Щелково, 2012); Международном конгрессе «Инновации - основа модернизации АПК» (Санкт-Петербург, 2012); на секции «Ветеринарная биотехнология» Отделения ветеринарной медицины РАСХН (Щелково, 2011, 2013).

На Международной выставке «Биоиндустрия-2012», Санкт-Петербург, 11-13 октября 2012 г. «Набор компонентов для определения уровня специфических антител в сыворотке крови вакцинированных против бешенства животных» награжден серебряной медалью.

1.7 Публикации результатов исследований

По теме диссертационной работы опубликовано 12 научных работ, в том числе 3 в изданиях, рекомендованных ВАК Министерства образования и науки РФ («Ветеринарная медицина» - 1, «Ветеринария и кормление» - 2).

1.8 Объем и структура диссертации

Диссертация объемом 160 стр. машинописного текста состоит из введения, обзора литературы, собственных исследований, обсуждений, выводов, практических предложений, списка использованных источников литературы и приложений. Список литературы включает 242 источника, в том числе 126 зарубежных авторов. Работа иллюстрирована 20 рисунками и 14 таблицами.

Заключение диссертации по теме «Биотехнология (в том числе бионанотехнологии)», Анисина, Ольга Владимировна

5 ВЫВОДЫ

1. Анализ природных условий, социально-экономической характеристики МО и эколого-эпизоотической ситуации на современном этапе указывает на существование предпосылок формирования и поддержания эпизоотий бешенства, как природного, так и городского типа. Важнейшими предпосылками осложнения эпизоотической обстановки по бешенству в 2008-2012 гг. послужили процесс урбанизации городов Подмосковья, высокая численность лисиц и рост численности безнадзорных собак.

2. Бешенство животных регистрировалось на территории 40 муниципальных образований Московской области. Наиболее неблагополучными остаются северные и северо-западные районы Подмосковья: Рузский, Истринский, Лотошинский, Клинский, Дмитровский и Можайский. Существует вероятность заноса возбудителя болезни из неблагополучных по бешенству соседних Смоленской, Тверской, Калужской и Тульской областей Центрального ФО.

3. Анализ видовой структуры заболеваемости бешенством животных в Московской области свидетельствует о том, что наибольшее число случаев регистрируется среди диких плотоядных, из которых 60,8% приходится на долю лисиц, 16,2% - енотовидной собаки, с вовлечением в эпизоотические цепи домашних плотоядных - 12,5% собак и 7,1% кошек.

4. Процесс урбанизации Московского региона создал предпосылки для эпизоотии городского типа, главными медиаторами которой являются безнадзорные собаки. К негативным особенностям проявления бешенства собак следует отнести ежегодное увеличение числа лиц, укушенных бешеными животными: 230 человек (2009 год) против 119 человек (2008 год) и регистрация крупных групповых нападений больных животных на людей с числом пострадавших от 8 до 24 человек в 12 районах МО.

5. Полученные результаты свидетельствуют о неоднородности антирабического иммунитета у собак уличного и домашнего содержания. Показано, что ежегодные вакцинации моно- и комплексными вакцинами, поддерживают содержание антител в сыворотке крови выше порогового уровня у собак всех групп в течение последующих 1-3 лет (срок наблюдения). Установлено, что результаты антирабической вакцинации зависят от сопутствующих заболеваний собак и не обнаружено значительных различий применения импортных и отечественных антирабических вакцин.

6. Разработана технология получения компонентов иммунохроматографической тест-системы на основе очистки IgG из антисывороток методом ионообменной хроматографии. Установлено, что иммуноспецифические и контрольные компоненты, сорбированные на поверхность нитроцеллюлозной мембраны в оптимальной концентрации, сохраняют активность в течение 12 месяцев при 4°С.

7. Показана принципиальная возможность выявления антигена вируса бешенства «сэндвич» методом иммунохроматографического анализа с использованием нитроцеллюлозных мембран с фиксированным конъюгатом высокоаффинных антирабических IgG с частицами коллоидного золота (подушка конъюгата), антинуклеокапсидных IgG (тестовая линия) и кроличьими affra-IgG-6apaHa антителами (контрольная линия).

8. Показано, что результаты определения антигена вируса бешенства методом иммунохроматографического анализа находятся в прямой зависимости от концентрации вируса в пробе. Метод ИХА пригоден для исследования ткани мозга после хранения в 50% глицерине и после длительного (72 ч.) хранения при 20°С.

6 ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ

Разработаны и предложены:

• НТД на «Набор реагентов для количественного определения антител к антигену вируса бешенства в сыворотке крови животных в непрямом варианте иммуноферментного анализа (ИФА)», утверждена директором ГНУ ВНИТИБП РАСХН А.Я. Самуйленко, 05.04.2011 г.;

• «Методические положения по количественному определению антител к антигену вируса бешенства в сыворотке крови животных в непрямом варианте иммуноферментного анализа», утверждены академиком-секретарем Отделения ветеринарной медицины РАСХН, A.M. Смирновым, 08.08.2011 г.;

• НТД на тест-систему для выявления вируса бешенства методом иммунохроматографии, утверждена директором ГНУ ВНИТИБП РАСХН А.Я. Самуйленко, 16.07.2013 г.;

• «Методические положения по выявлению вируса бешенства методом иммунохроматографии», утверждены академиком-секретарем Отделения ветеринарной медицины РАСХН A.M. Смирновым, 02.07.2013 г.

• «Методические положения по выявлению антигена вируса бешенства методом контрастной иммунофлюоресценции», утверждены академиком-секретарем Отделения ветеринарной медицины РАСХН, A.M. Смирновым 8 августа 2011 г.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

Для формирования устойчивого благополучия в сфере жизнедеятельности человека существенную роль играют оценка современной эпизоотической ситуации и разработка эффективных методов и средств диагностики инфекционных болезней, среди которых особое место занимает бешенство. Широкое распространение бешенства в мире и РФ наносит большой экономический ущерб животноводству и является постоянной угрозой жизни человека.

За последние 10 лет в Подмосковье сложилась напряженная эпизоотическая ситуация по бешенству, резко возросло количество животных, заражённых вирусом бешенства, активизировались очаги бешенства смешанного типа, отмечено ежегодное увеличение числа пострадавших от бешеных животных, зарегистрированы случаи гибели людей. Однако, такие вопросы, как особенности современных эколого-эпизоотических аспектов бешенства на территории МО остаются мало изученными. Мониторинг современного состояния эко лого-эпизоотической ситуации по бешенству собак на территории МО и совершенствование диагностики данного заболевания являются необходимой и сложной задачей.

Рассмотренные достоинства и недостатки различных методов, применявшихся ранее и используемых в настоящее время в диагностике бешенства, обеспечивают достаточную чувствительность, но применение современных методом сопряжены с использованием дорогого стационарного оборудования и длительными процедурами пробоподготовки.

В связи с этим крайне актуален поиск чувствительного и специфичного теста, пригодного для индикации антигена вируса бешенства на основе ИХА, сочетающего экспрессность, низкую стоимость и простоту применения в безприборной диагностике.

3. СОБСТВЕННЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ

3.1 Материалы и методы

3.1.1 Материалы

Материалы. В работе использовали производственный штамм фиксированного вируса бешенства «Овечий-ВГНКИ» и стандартный штамм «CVS» (ВГНКИ). Инактивацию вируса бешенства проводили 0,025% В-пропиолактоном. Вирус бешенства штамм «CVS», репродуцированный в культуре клеток ВНК-21/13 с титром л инфекционности 6,5 lg LD50/0,03cm , предоставленный доктором биологических наук, профессором Матвеевой И.Н. Инфекционность вируса бешенства устанавливали на мышах по ГОСТ 26075-84.

Антисыворотки. Сыворотки, специфичные к вирусу бешенства и НК получали иммунизацией баранов и морских свинок по схеме, разработанной в отделе иммунологии ГНУ ВНИТИБП. Динамику накопления антирабических антител в сыворотке крови, полученной на 14, 21 и 28 сутки после окончания схемы иммунизации, определяли в РДП, РСК и непрямом ИФА. Иммуноглобулины антивидовые к IgG барана получали на кроликах согласно ТУ 46-21-78-85. В качестве референс-антирабической сыворотки в непрямом ИФА служила антирабическая сыворотка крови собак, откалиброванная относительно отраслевого стандартного образца - «Референс-сыворотка антирабическая сухая» (ГНУ ВНИТИБП РАСХН) ТУ 9388-131-00494189-05.

Иммунохроматографическая тест-система. Для конструирования тест-системы ИХА использовали набор нитроцеллюлозных мембран «Advanced Mikrodevicts» (Индия); Protran ВА83 «Sigma» (размер пор 0,20,45 мкм); нитроцеллюлозные мембраны производства «Millipore» (США), на которые с помощью диспенсера IsoFlow («Imagene Technology», США) наносили иммуноспецифические и контрольные реагенты.

Нитроцеллюлозные мембраны склеивали, нарезали на тест-полоски 0,5x6 см (ИХА-полоски) и хранили в плотно закрытых пластиковых тубах при 4°С.

Реактивы. Хлорид натрия, хч; натрий фосфорнокислый двузамещенный, 12-водн. хч; натрий углекислый, хч; натрий углекислый кислый, хч; кислота соляная, хч; кислота серная, хч; кислота лимонная, хч; о-фенилендиамин; перекись водорода; додецилсульфат натрия; твин-20, хч; тритон Х-100; трис-оксиметиламинометан, хч; спирт ректификат; ацетон; масло иммерсионное; масло ПЭС-300; кислота золотохлористоводородная водная (EAuCl4*nH20) ОАО «Аурат», Россия); цитрат натрия («Fluka»).

Лабораторное оборудование. Термостаты ТС-80 (+25°, +37°С); низкотемпературный

70°С) (UF-440 «Heto-Holten», Дания) и бытовой (+4°) холодильники; водяная баня; весы аналитические («Zaktady Meechaniki Precyzyjnej», Польша); высокоскоростная рефрижераторная центрифуга (Sorvall WX ultra series centrifuge, «Thermo Fishcer», Германия); люминесцентный микроскоп MJI-4; пластиковые 96-луночные планшеты для ИФА и культуральных работ («Costar», США); ридер с фильтром на 450-620 нм («Sigma», США); спектрофотометр - СФ-26 (JIOMO, Россия); л л л дозаторы с переменным объемом 0,02 см , 0,2 см и 1,0 см со сменными наконечниками (Ленпипет, Россия); рН-метр (рН-340); лабораторная посуда общего назначения.

Анализируемый материал. Антиген вируса бешенства выявляли методом ИХА в ткани мозга мышей, зараженных вирусом бешенства штамм

CVS» (5,6 lg LD50/0,03cm3) и баранов, зараженных вирусом о бешенства штамм «Овечий» (3,8 lg LD50/0,03cm ); в смеси вируса бешенства и слюны; в суспензии культурального вируса бешенства штамм «CVS» (6,5 lg LD50/0,03 cm3).

Контрольными препаратами служили слюна здоровых собак, ткань мозга незараженных мышей и баранов. Содержание антирабических антител (МЕ\мл) в сыворотке крови собак, полученных из ветлечебниц, приютов и питомников за период 2011-2013 гг., определяли непрямым вариантом ИФА. Пробы сыворотки хранили при -20°С и перед исследованием инактивировали при 37°С в течение 30 мин.

3.1.2 Методы

Индикация антигена вируса бешенства. Антиген вируса бешенства в ткани мозга мышей и баранов выявляли прямым методом флюоресцирующих антител с компонентами набора «Глобулин флюоресцирующий для диагностики бешенства животных» ТУ 9388-0300497963-97 (ГНУ ВНИИТИБП РАСХН).

Очистка вируса бешенства и выделение НК. Вирус бешенства очищали ступенчатым центрифугированием суспензии ткани мозга баранов, зараженных вирусом бешенства штамм «Овечий». Препарат НК получали центрифугированием суспензии частично очищенного и концентрированного вируса бешенства, обработанной тритоном Х-100 по методу A. Helenius (1973).

Выделение IgG. IgG из антирабической, анти-НК и нормальной сывороток выделяли методом ионообменной хроматографией на DEAE-TRISACRYL PLUS LS («Sigma») сефарозе, из кроличьей антивидовой (анти-IgG барана) на Protein A Agarose CL-4B («Fluka») по рекомендациям фирм изготовителей. Специфичность антирабических IgG подтверждали в непрямом МФА с конъюгатом кроличьих анти-IgG барана и морской свинки антител, меченных ФИТЦ (98% чистоты, «Sigma»), который готовили по ТУ 9388-003-00497963-97. Концентрацию белка в сыворотке крови, препаратах антигенов и антител определяли по методу О.Н. Lowry et al. (1958).

Анализ ситуации по бешенству в Московской области. В работе проанализированы доступные официальные данные Федеральной службы по ветеринарному и фитосанитарному надзору (г.Москва); Роспотребнадзора (г.Москва); ИАЦ ФГБУ «ВНИИЗЖ» (г.Владимир); Главного управления ветеринарии Московской области (г.Москва) и ФГБУ «Центр ветеринарии» (г.Москва) по заболеваемости животных бешенством. Анализ экологической ситуации в Московской области проводили на основе доступных данных отчетов Правительства Московской области.

Определение антирабических антител. Активность антирабической сыворотки устанавливали в РСК по методу Е. Ки\¥еЛ (1973), в РДП с «Набором компонентов для диагностики бешенства животных в реакции диффузионной преципитации» ТУ 9388-006-0049763-99 (ВНИТИБП).

Содержание антирабических антител (МЕ/мл) в сыворотке крови вакцинированных против бешенства собак определяли непрямым ИФА с сорбированным гликопротеином (в) вируса бешенства и пероксидазным конъюгатом протеина А (ГНУ ВНИТИБП, 2011).

Результат вакцинации оценивали как эффективный, если в сыворотке вакцинированных против бешенства собак содержание ВНА составляло не менее 0,5 МЕ/мл. о

В лунки планшетов вносили по 0,1 см гликопротеина вируса бешенства в рабочем разведении, инкубировали при +4°С в течение 18-20 ч. и промывали 3-4 раза раствором 10 мМ ФБР с 0,05% твин-20. о

Затем в лунки вносили по 0,1 см исследуемых, отрицательной контрольной сывороток и референс-антирабической сыворотки с активностью 0,5 и 5,0 МЕ/мл в разведении 1:100, инкубировали при температуре +37°С в течение 1 ч. и промывали 3-4 раза раствором для отмывания планшетов.

Во все лунки планшетов вносили по 0,1 см раствора конъюгата протеина А с пероксидазой хрена в рабочем разведении, инкубировали при +37°С в течение 1 ч., затем все лунки промывали 4 раза раствором для отмывания планшетов.

Субстрат-хромогенный раствор вносили во все лунки планшетов по 0,1 см3 и инкубировали 20 мин. при 20°С избегая воздействия прямых лучей света. Для остановки реакции во все лунки вносили по 0,05 см3 раствора серной кислоты и через 20 мин. и не позднее 3 ч. измеряли оптическую плотность с помощью спектрофотометра при длине волны 492 нм.

Результат вакцинации оценивали как эффективный, если в сыворотке вакцинированных против бешенства собак содержание ВНА составляло >0,5 МЕ/мл.

Иммунохроматографический анализ. «Сэндвич» вариант ИХА проводили по методу Lembo Т., et. al. (2006). Золь коллоидного золота получали по методу G. Frens (1973). Конъюгат антирабических IgG с частицами коллоидного золота готовили по методу G.T. Hermanson (1996). Оптимальные условия сорбции иммунореагентов, состав лизирующего буфера, условия постановки и учет результатов ИХА определяли экспериментально.

Чувствительность (предел обнаружения) ИХА определяли по результатам титрования в тест-системе инфицированной ткани мозга и суспензии вируса бешенства в слюне. Эффективность ИХА оценивали путем сравнения с результатами выявления антигена вируса бешенства в прямом МФА.

Статистическая обработка результатов. Статистическую обработку полученных результатов проводили общепринятыми методами (Г.Ф. Лакин, 1980). Графический анализ выполнен с использованием программного обеспечения «Microsoft Excel».

Список литературы диссертационного исследования кандидат биологических наук Анисина, Ольга Владимировна, 2013 год

7 СПИСОК ИСПОЛЬЗОВАННОЙ ЛИТЕРАТУРЫ

1. Аникеев М.А. Эпизоотологическая ситуация по бешенству мелких домашних и диких животных в Московской области // Российский ветеринарный журнал. - 2006. - №4. - С. 9-10.

2. Арутюнова И.П., Будкин Е.И., Швец О.М., Ермилов И.В. Бешенство антропургического типа - проблема больших городов. // Ветеринарная патология. - 2010. - № 1. С. 17-20.

3. Барсуков Ю.И. Доклад. «Итоги выполнения «Комплексного плана противоэпизоотических и противоэпидемических мероприятий по профилактике заболеваний бешенством людей и животных в Московской области на 2011-2012 гг.». Режим доступа http://guv.mosreg.ru/events_speech/497.litml. (проверено 8.07.2013).

4. Балдина И.В. Эпизоотологические основы совершенствования профилактики бешенства в Московском регионе // автореф. дис. канд. вет. наук. - Москва, 2004. - 20 с.

5. Бардина Н.С., Титов М.А., Караулов А.К. и др. Бешенство в России. Оценка риска: информ.-аналит. обзор // Владимир: ФГУ «ВНИИЗЖ», 2008. - 80 с.

6. Бельчихина A.B., Дудников С.А.. Эпизоотическая ситуация по бешенству в Российской Федерации в 2011 году // Ветеринария и кормление. - 2012. - №5. - С. 6-7.

7. Березина Е.С., Сидоров Г.Н., Полещук Е.М., Сидорова Д.Г. Бешенство собак в России во второй половине XX - начале XXI века // Российский ветеринарный журнал. - 2010. - №3. - С. 2-6.

8. Березина Е.С., Сидоров Г.Н., Полещук Е.М., Сидорова Д.Г. Значение мелких диких псовых в заболеваемости людей бешенством в России. // Российский ветеринарный журнал. Мелкие домашние и дикие животные. - 2011. - № 2. С. 26-29.

9. Березина Е.С. Популяционная структура, особенности поведения и морфологии свободноживущих собак и кошек и значение этих животных в эпизоотических и эпидемических процессах при бешенстве, токсокарозе и токсоплазмозе // Автореф. дис. доктора биол. наук. - Омск, 2012.- 39 с.

10. Ботвинкин А.Д., Селимов М.А., Клюева Е.В. и др. Антигенная характеристика полевых штаммов вируса бешенства из различных районов СССР с помощью антинуклеокапсидных моноклональных антител // ЖМЭИ. - 1990. - № 1. - С. 50-54.

11. Ботвинкин А.Д., Кузьмин И.В., Хисматуллина H.A. Итоги изучения антигенного разнообразия вируса бешенства на территории бывшего СССР // Ветеринарная патология. - 2004. - № 3. - С. 117-126.

12. Бирюков А.Г. и др. Совершенствование методов диагностики бешенства // Тез. док. Всерос. научно-прак. конф., посвященной 30-летию ВНИТИБП, Щелково. - 2000. - С. - 218-220.

13. Ведерников В.А. и др. Бешенство животных в Российской Федерации // Вакцинация. - 2005. - № 1. - С. 9-11.

14. Ведерников В.А., Балдина И.В. Краткая характеристика обстановки по бешенству животных, сложившейся в России в сентябре 2010 года // Ветеринарная жизнь. - 2010. - № 21. - С. 2.

15. Гавриленко O.JL, Россошанская Н.В., Предтеченский А.Б., Фролова С.И. Организация мероприятий по профилактике бешенства на территории Московской области. // Биозащита и биобезопасность. - 2011. Т. 3. - № 4. С. 9-15.

16. ГОСТ СССР 26075-84. Животные сельскохозяйственные. Методы лабораторной диагностики бешенства. - Введ. 9.01.1984. - М.: Государственный комитет СССР по стандартам, 1984. - 12 с.

17. Грибенча C.B., Лосин М.А., Грибенча Л.Ф., Непоклонова И.В. Новый принцип селекции вакцинного вируса на основе количественного

уровня экспрессии g-белка - главного иммуногена вируса бешенства. // Вопросы вирусологии. - 2012. Т. 57. - № 3. С. 44-48.

18. Гринь С.А., Акиньшина Т.В., Кузнецов Д.П., Кузнецова C.B., Сазанова Э.Я. Антиидиотипические антитела к антигенам культурального вируса бешенства. // Доклады Российской академии сельскохозяйственных наук.-2005.-№6. С. 52-53.

19. Груздев К.Н., Недосеков В.В. Бешенство животных // М.: Аквариум. - 2001. - 304 с.

20. Груздев К.Н., Груздева А.Е. Собаки, кошки - мишени и источники бешенства // Материалы 9-го Международного ветеринарного конгресса. - Москва. - 2001. - С. 32.

21. Гулюкин A.M., Хисматуллина H.A., Чернов А.Н. и др. Оценка эффективности вакцинопрофилактики бешенства с помощью иммуноферментной тест-системы // Биотехнология: экология крупных городов: матер. Московской международной научно-практической конференции. - Москва. - 2010. - С.465-466.

22. Гулюкин A.M. Эпизоотологический мониторинг и совершенствование серологического контроля эффективности вакцинопрофилактики бешенства // Автореф. дис. канд. биол. наук. Казань.-

2011.-21 с.

23. Гулюкин A.M., Хисматуллина H.A., Гафарова А.З., Сабирова В.В., Горлик А.О. Изучение иммунного статуса организма собак, вакцинированных против бешенства. // Ученые записки Казанской государственной академии ветеринарной медицины им. Н.Э. Баумана. -

2012.-№211. С. 52-56.

24. Доклад о состоянии окружающей среды Российской Федерации. Режим доступа http://www.mnr.gov.ru/ (проверено 8.04.2013)

25. Дресвянникова С.Г. Эпизоотологический мониторинг и меры борьбы с бешенством в Кировской области //Автореф. дис. канд. вет. наук. Щелково.- 2012.- 26 с.

26. Джупина С.И., Заводских A.B. Клиническое проявление бешенства у животных // Ветеринария.- 2002. - №6. - С. 9-11.

27. Дудников С. А. К вопросу о ситуации по бешенству в Российской Федерации в 1999 и 2000 гг. // Ветеринарная патология. - 2002. - №1. - С. 78-91.

28. Дыкман JI.A., Богатырев В.А., Щеголев С.Ю., Хлебцов Н.Г. Золотые наночастицы: синтез, свойства, биомедицинское применение // М. Наука, 2008.

29. Елаков A.JL, Уласов В.И., Баньковский Д.О., Сафонов Г.А. Изучение биологических свойств штамма ERA G333 вируса бешенства // Ветеринария. - 2011. - № 2. С. 22-24.

30. Емельянова Е.Ш. Особенности эпизоотического проявления рабической инфекции в лесостепной и степной зонах РФ // Автореф. дис. канд. вет. наук. - Н. Новгород, 2011.

31. Зайковская A.B. Резервуары лиссавирусов на территориях, стационарно неблагополучных по бешенству // Автореф. дис. канд. биол. наук / Институт экспериментальной ветеринарии Сибири и Дальнего Востока. Новосибирск, 2009 г.

32. Заводских A.B. Источники инфекции заболевания людей бешенством в Московской области//Ветеринария-2007. - №12. - С. 10-11.

33. ИАЦ Россельхознадзора. Эпизоотическая ситуация по бешенству в РФ (2010 год). - Режим доступа: http://www.fsvps.ru/fsvps-docs/ru/iac/2010 /files/iac2010 year.pdf (проверено 8.04.2013).

34. Иванов A.B., Хисматуллина H.A., Юсупов Р.Х., Чернов А.Н. Диагностика и профилактика бешенства животных // М.: Д 44 ФГНУ "Росинформагротех", 2007. - 60 с.

35. Иванов A.B., Хисматуллина H.A., Чернов А.Н., Гулюкин A.M. Бешенство: этиология, эпизоотология, диагностика: учебно-методическое пособие в иллюстрациях // М.: Колос, 2010. - 54 с.

36. Иванов A.B., Хисматуллина H.A., Гулюкин A.M. Эпизоотологический и иммунологический надзор за бешенством. // Ветеринарный врач. - 2010. - № 4. С. 3-6.

37. Иванов B.C., Школьников Е.Э. Состояние и перспективы борьбы с бешенством // Вестник РАСХН. - 2000. - №2. - С. 63-65.

38. Информация о практической деятельности России в области сохранения биоразнообразия. Режим доступа http://www.biodat.ru/ (проверено 8.04.2013)

39. Истомина М.А. Совершенствование методов диагностики и оценки эффективности вакцинопрофилактики бешенства животных. // Автореф. дис. канд. биол. наук. - Щелково, 2011. - 25 с.

40. Канторович P.A. Об эпидемиологических закономерностях бешенства в различных ландшафтных зонах СССР // Вопросы борьбы с бешенством: сб. ст. М., 1963. - С. 35-37.

41. Кинер Т.В. Эколого-географический анализ структуры и динамики ареала обыкновенной лисицы, (vulpes vulpes L., 1758) // автореф. дис. канд. геогр. наук. - Москва, 2010.

42. Ковалев H.A., Шашенько A.C. Иммунофлуоресцентное исследование отпечатков роговицы при бешенстве // Ветеринария. - 1970. -№ 9. - С. 44-46.

43. Кузнецова C.B., Кузнецов П.П., Иванов B.C. Субъединичная антирабическая вакцина // Научные основы технологии промышленного производства ветеринарных биологических препаратов: тез. докл. научн. конф. - Щелково. - 1996. - С. 54.

44. Кэтти Д., Райкундалиа Ч. Иммуноферментный анализ // Антитела. Кн. 2: Пер. с англ. - М.: Мир, 1991.-384 с.

45. Лакин Г.Ф. Биометрия // М.: Высшая школа, 1980. - 194 с.

46. Лаптева О.Г., Горшкова Т.Ф., Жестерев В.И. Инфекционная и антигенная активность вируса бешенства, выращенного в суспензии клеток ВНК-21 //Ветеринария.-2003. -№3.-С. 18-19.

47. Леонова Г.Н., Ченцова И.В., Петухова С.А. и др. Впервые выявленный случай лиссавирусной инфекции в Приморском крае // Тихоокеанский медицинский журнал. - 2010. - №3. С. 90-94.

48. Макаров В.В. Бешенство: очерк мирового нозоареала и общие элементы контроля // Ветеринарная патология. - 2002. - № 1. С. 12-20.

49. Макаров В.В. и др. Эпизоотологическая характеристика современного бешенства // Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. - 2002. - № 5. - С. 21-25.

50. Макаров В.В., Джупина С.И., Ведерников В.А. Численность лисицы как фактор риска эмерджентности бешенства // Ветеринарная патология. - 2002. - №1. - С. 123-126.

51. Макаров В.В., Недосеков В.В., Середа А.Д., Сошенко Л.П. Опыт серологического мониторинга городских популяций собак при бешенстве // Ветеринарная патология. - 2002. - №1. С. 140-143.

52. Макаров В.В., Джупина С.И., Заводских A.B. и др. Реальная эпизоотология бешенства // Вестник РАСХН. - 2002. - № 4. - С.71 - 73.

53. Макаров В.В. Теория саморегуляции паразитарных систем В. Д. Белякова — парадигма в учении об эпидемическом процессе // Ветеринарная патология. - 2004. - № 3 (10). - С. 10-13.

54. Макаров В.В., Воробьев A.A. Актуальные проблемы бешенства: природная очаговость, методология исследования и контроля в центре России // Ветеринарная патология. - 2004. - № 3 (10). - С. 102-116.

55. Макаров В.В., Сухарев О.И., Гулюкин A.M., Боев Б.В Бешенство в Восточной Европе: актуальный вектор развития эпизоотического процесса // Вестник РАСХН. - 2008. - № 4. - С.58 - 60.

56. Макаров В.В., Джупина С.И., Ведерников В.А., Заводских A.B. и др. Общая характеристика современной эпизоотологии бешенства. Статистический анализ обстановки. // Ветеринарная патология. - 2002. -№1. - С. 59-71.

57. Макаров В.В., Сухарев О.И., Гулюкин A.M., Боев Б.В. Бешенство енотовидных собак: статистический анализ заболеваемости // Ветеринария. - 2009. - №6. - С. 20-24.

58. Макаров В.В. Оральная вакцинация лисиц против бешенства безальтернативна. // Вестник Российской академии сельскохозяйственных наук.-2010.-№ 2. С. 57-58.

59. Международный центр экологии и продуктивности лесов РАН. Режим доступа www.mfd.cepl.rssi.ru/reports/report05/report05.htm (проверено 8.04.2013)

60. Международный фонд защиты животных в России. Режим доступа www.ifaw.ru (проверено 8.04.2013)

61. Метлин А.Е. Молекулярно-биологические характеристики полевых изолятов и аттенуированных штаммов вируса бешенства // Автореф. дис. канд. вет. наук. - Владимир., ФГУ , 2005. - 26 с.

62. Метлин А.Е. Меры борьбы с бешенством животных. // Ветеринария Кубани. - 2008. - № 1. С. 4-7.

63. Метлин А.Е., Рыбаков С.С., Михалишин В.В. Оральная вакцинация диких плотоядных животных против бешенства // Ветеринария. -2009.-№8.- С. 18-25.

64. Методы лабораторных исследований по бешенству. Под ред. М. Kaplan, Н. Koprowski. // Женева: ВОЗ. - 1975. - 358 с.

65. Министерство природных ресурсов и экологии Российской Федерации. Федеральные ООПТ. Режим доступа http://www.zapoved.ru/ (проверено 8.04.2013)

66. Министерство природных ресурсов и экологии Российской Федерации. Режим доступа www.mnr.gov.ru (проверено 8.04.2013)

67. Миронов А.Н. Усовершенствование средств диагностики бешенства и сравнительный анализ антирабической активности противовирусных препаратов в эксперименте // Автореф. дис. канд. биол. наук. - Казань, 2009.

68. Мишаева Н.П., Ковалев H.A., Бельгии С.О., Щерба В.В.. Использование корнеального теста для прижизненной экспресс диагностики бешенства у человека и животных // Минск. - 2008.

69. Мовсесянц A.A., Хадарцев О.С. Случаи гидрофобии в Российской Федерации // Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. - 2003. - № 5. - С. 112-116.

70. Мовсесянц A.A. Бешенство: особенности современной эпизоотической и эпидемиологической ситуации в России // Эпидемиология и вакцинопрофилактика. 2011. - № 5.- С. 4-5.

71. Назаров H.A., Михайлина Н.М., Молодкин A.B., Рыбаков С.С., Чепуркин A.B. Разработка реакции агглютинации латекса для диагностики бешенства животных. // Труды Федерального центра охраны здоровья животных. 2007. - Т. 5. С. 186-201.

72. Научный центр Российской академии естественных наук. Режим доступа http://www.ncob.ru/publ/5-l-0-61 (проверено 8.04.2013)

73. Недосеков В.В. Разработка и совершенствование средств и методов оценки эффективности вакцин против бешенства: автореф. дис. канд. вет. наук // Покров. - 1998. - 24 с.

74. Обзор «Состояние биоразнообразия природных экосистем России» под ред. Орлова В. А. Тишкова A.A. Режим доступа http://www.viems.ru/asnti/ntb/ntb502/bioresl.html (проверено 8.04.2013)

75. Орлянкин Б.Г., Алипер Т.И., Непоклонов Е.А. Специфическая профилактика вирусных болезней собак // Материалы 12-го Московского Всероссийского ветеринарного конгресса. Москва, 2004.

76. Пантюшенко М.С., Наумкина М.А., Недосеков В.В. и др. Использование полимеразной цепной реакции для выявления полевых изолятов вируса бешенства // Современные проблемы рабиологии: тез. докл. науч. конф. - М., 1998. - С. 26-27.

77. Пашкина Ю.В., Сочнев В.В. Рабическая инфекция: зоны риска и территориальные границы в условиях РФ в целом и в отдельных регионах // Ветеринарная патология. - 2005. - № 4. - С. 68-72.

78. Печенка А.М., Глей А.И. Эпидемическая и эпизоотическая ситуация по бешенству в Украине и мире. Бешенство у животных. // Клиническая инфектология и паразитология. - 2013. - № 1. С. 96-109.

79. Пилле Э.Р. Лиссавирусы // Вопросы вирусологии. - 1996. - № 1. -С. 2-6.

80. Плохинский H.A. Биометрия // Новосибирск: Изд-во АН СССР, 1961.-364 с.

81. Полещук Е.М., Сидоров Г.Н., Березина Е.С. Бешенство животных в России в 2007-2011 гг. // Российский ветеринарный журнал. Мелкие домашние и дикие животные. - 2012. - № 6. С. 8-12.

82. Программы «Научные основы сохранения биоразнообразия», «Фундаментальные основы управления биологическими ресурсами». Режим доступа http://www.sevin.ru (проверено 8.04.2013)

83. Пухова Н.М., Самуйленко А .Я., Зенов Н.И., Красуткин С.Н., Захарченко О.С. Совершенствование цельновирионных вакцин против бешенства животных // Ветеринарный врач. - 2012. - № 5. С. 5-7.

84. Рахманин П.В. Иммуноферментная тест-система определения уровня антирабических антител в сыворотках крови привитых против бешенства кошек и собак: дис. канд. биол. наук // Щелково. - 2008. - 104 с.

85. Рождественский И.К., Литвинов О.Б., Мачнев А.Н. и др. Эпизоотическая ситуация по карантинным и особо опасным болезням животных в Российской федерации за 2009 год // ЦЕНОВИК. - 2010. - № 5. - С. 6-7.

86. Роль Московского региона в возрождении Волги. Часть II. Московская область. Под ред. д.э.н., академика РЭА И. К. Комарова. Режим доступа http://old.nasledie.m^ibliot/kniga6/index.shtml (проверено 8.04.2013)

87. Санитарно-эпидемиологическая обстановка в РФ http://rospotrebnadzor/ru/epidemiologic_situation/ (проверено 8.04.2013)

88. Саввин A.B., Пашкина Ю.В., Груздев К.Н. и др. Основные принципы специфической профилактики бешенства, обеспечивающие эффективность антирабических мероприятий // Ветеринарная патология. -2005.-№4.-С. 102-106.

89. Сазанова Э.Я., Кузнецова C.B., Маслов Е.В. и др. Иммуноферментный анализ при индикации вируса бешенства и определении уровня антител // Ветеринария. - 1991. - № 8. - С. 62-64.

90. Самуйленко А.Я., Гринь С. А., Еремец В. И., Клюкина В. И. и др. // Инфекционная патология животных. Том II. Бешенство - Москва, ВНИТИБП. - 2012. - 153 с.

91. Самуйленко С. А. Использование флюоресцирующих моноклональных антител для выявления вируса бешенства // Мат. Междунар. научно-прак. конф. «Научные основы производства ветеринарных биологических препаратов». - Щелково. - 2003. С. 51-53.

92. Сафонов Г.А., Хрипунов Е.М. Перспективы искоренения случаев бешенства в Российской Федерации. // Вестник Российской академии сельскохозяйственных наук. - 2011. - № 5. С. 67-68.

93. Селимов М.А., Калинина Л.И., Аксенова Т.А. и др. Применение реакции связывания комплемента (РСК) для индикации вируса бешенства в

культуре ткани // Вопросы борьбы с бешенством. - М., 1967. - Т. 9. - С.70-79.

94. Селимов М.А. Бешенство // М.: Медицина. - 1978. - 336 с.

95. Сергеева Е.В. Тенденции эпизоотического и эпидемического проявления бешенства в Волго-Вятском регионе // Автореф. дис. канд. биол. наук. - Н. Новгород, 2010.

96. Сидоров Г.Н., Сидорова Д.Г., Колычев Н.М. и др. К вопросу о прогнозировании эпизоотического процесса при бешенстве на территории России // Ветеринарная патология. - 2007. - № 3. - С. 17-23.

97. Сидоров Г.Н., Сидорова Д. Г., Колычев Н. М. Эпизоотический процесс бешенства: роль диких млекопитающих, периодичность // Сибирский вестник сельскохозяйственной науки. - 2008. - №12. - С.67-73.

98. Сидорова Д.Г. Современные экологические особенности проявления эпизоотического процесса бешенства в природных очагах // Автореф. дис. канд. биол. наук. - Омск, 2009.

99. Современные методы индикации патогенов и токсинов в объектах окружающей среды и диагностики социально-значимых инфекционных заболеваний для обеспечения химической и биологической безопасности. Под ред. В.Н.Злобина // М., «ФГБУ «ГосНИИБП», 2010 г. с.216.

100. Староверов С.А., Видяшева И.В., Фомин A.C. и др. Разработка иммунозолотых диагностических систем для идентификации возбудителя туберкулеза in situ // Российский ветеринарный журнал. - 2011. - №2. С. 2932.

101. Сюрин В.Н., Самуйленко А .Я., Соловьев Б.В., Фомина Н.В.. Вирусные болезни животных // М.: ВНИТИБП, 1998. - 928 с.

102. Таршис М.Г., Ковалев М.А., Кузнецов П.П. Бешенство животных //Минск, - 1990.- 172 с.

103. Тетеричев В.И. Эпизоотологическая ситуация по бешенству в Тульской области и совершенствование мер борьбы с этой болезнью на современном этапе // Автореф. дис. канд. вет. наук. - Щелково, 2001. - 26 с.

104. Урусов А.Е. Разработка и сравнительная характеристика систем экспрессного иммунохимического определения микотоксинов // Автореф. дис. канд. хим. наук. - Москва, 2012.

105. Федеральное агентство лесного хозяйства Российской Федерации. Режим доступа www.rosleshoz.gov.ru (проверено 8.04.2013)

106. Хадарцев О.С., Федоров Ю.М., Жилина Н.Я. Информационный бюллетень «Бешенство в Российской Федерации в 2000-2005 гг.» // М.: Роспотребнадзор. - 2006. - 38 с.

107. Хисматуллина H.A., Разработка средств и методов иммунологического мониторинга и мер борьбы при бешенстве и лихорадки КУ животных // Автореф. дис. доктора биол. наук. - Казань, 2000. - 45 с.

108. Хисматуллина H.A., Петрова Т.П., Гулюкин A.M., Сабирова В.В., Гафарова А.З., Насыров Ш.М., Маркова М.И., Елаков A.JI. Контроль эффективности вакцинопрофилактики бешенства дикой фауны на территории Калининградской области РФ. // Ветеринарный врач. - 2012. - № 6. С. 8-11.

109. Хрипунов Е.М., Евсеева С.Д., Окрошидзе М.Г. Бешенство диких плотоядных животных // Вет. домаш. Животных. - 2005. - №5. С. 6-8.

110. Цвиль JI.A., Родина JI.B. Эпидемическая ситуация по бешенству в Москве // Вакцинация. - 2005. - №1 (37).

111. Целуева Н. И. Анализ изменений эпизоотической обстановки по важнейшим зооантропонозам в Смоленской области. // Автореф. дис. канд. вет. наук. - Москва, 2006. - 28 с.

112. Цыбанов Я.С. Разработка тест-системы для индикации арктического бешенства на основе методов анализа генома: автореф. дис. канд. биол. наук // Покров. - 2001. - 24 с.

113. Черкасский Б.Л., Хадарцев О.С., Мовсесянц А.А. Эпидемиологический надзор за бешенством в Российской Федерации // Вакцинация. - 2005. - № 1 (37). - С. 66-68.

114. Шиленко И.В., Ярков С.П., Кононенко А.Б. и др. Отечественный иммунохроматографический тест для выявления сальмонелл различных серогрупп //Веткорм. -2011. - №4. - с. 12-13.

115. Экви Б.П. Бешенство в Европе. Российский ветеринарный журнал. Сельскохозяйственные животные. -2008. - № 3. С. 17-19.

116. Ярков С.П., Третьяков С.И., Башарова Л.А., Злобин В.Н. Индикация возбудителей особоопасных заболеваний с помощью иммунохроматографии и видеоцифрового анализа // Вестник Российской АМН. - 2007. - №12. - с.22-26.

117. Al-Yousif Y., Anderson J., Chard-Bergstrom С., Kapil S., 2002. Development, evaluation, and application of lateral-flow immunoassay (immunochromatography) for detection of rotavirus in bovine fecal samples. Clin. Diagn. Lab. Immunol. 9, 723-724.

118. Arai Y.T., Kimura M., Sakaue Y., et al. Antibody responses induced by immunization with a Japanese rabies vaccine determined by neutralization test and enzyme-linked immunosorbent assay // Vaccine. - 2002. - Vol. 20, N 19-20. -P. 2448-2453.

119. Arai Y.T., Kuzmin I.V., Kameoka Y., Botvinkin A.D. New lyssavirus genotype from the lesser mouse-eared bat (Myotis blythi), Kyrghyzstan // Emerg. Infect. Dis. - 2003. - Vol. 9, N 3. - P. 333-337.

120. Arai Y.T. Epidemiology of rabies virus and other lyssaviruses // Nippon Rinsho. - 2005. - Vol. 63, N 12. - P. 2167-2172.

121. Atanasiu P., Perrin P., Delagneau J.F. Use of an enzyme immunoassay with protein A for rabies antigen and antibody determination // Develop. Biol. Stand. - 1980.-Vol. 46.-P. 207-215.

122. Aubert M.F.A. Practical significance of rabies antibodies in cats and dogs // Rev. Sci. Tech. Off. Int. Epis. - 1992. - Vol. 11, N 3. - P. 735-760.

123. Baer G.M., Neville N., Turner G.S., 1996. Rabbis and Rabies: A Pictoral History of Rabies Through the Ages. Laboratorios Baer, S.A. DE C.V., Mexico, D.F.

124. Bankovskiy D., Safonov G., Kurilchuk Y. Immunogenicity of the ERA G 333 rabies virus strain in foxes and raccoon dogs // Dev. Biol. - 2008. -Vol. 131.-P. 461^166.

125. Barrat J., Aubert M.F.A. Diagnostic de la rage animale en France de 1991 a 1993, bilan de CNEVA laboratoire d'etudes sur la rage et la pathologie des animaux sauvages en France // Revue Med. Vet., 1995, 146, 561- 566.

126. Benmansour A., Leblois H., Coulon P., et al. Antigenecity of rabies glycoprotein//!. Virol. - 1991. - Vol. 65, N 8.-P. 4198-4203.

127. Bhandari S. Epidemiology and control of Rabies in Nepal / Shrawan Bhandari. - 2005. - Режим доступа: http://homepage.usask.ca /~shb292/rabies_ in_nepal.pdf (проверено 8.04.2013)

128. Bingham J., Mlambo P. Ante-mortem diagnosis of human rabies by the skin biopsy technique: three case reports from Zimbabwe // Cent. Afr. J. Med. - 1995 - Vol. 41, N 8. - P. 258-260.

129. Bingham J. Canine rabies ecology in southern Africa // Emerg. Infect. Dis. - 2005. - Vol. 11, N 9. - P. 1337-1342.

130. Black E.M., McElhinney L.M., Lowings J.P. et al. Molecular methods to distinguish between classical rabies and the rabies-related European bat lyssaviruses // J. Virol. Meth. - 2000. -Vol. 87, N 1-2. - P. 123-131.

131. Black E.M., Lowings J.P., Smith J., et al. A rapid RT-PCR method to differentiate six established genotypes of rabies and rabies-related viruses using TaqMan technology // J. Virol. Meth. - 2002. -Vol. 105, N 1. - P. 25-35.

132. Bourhy Н., Reynes J.-M., Dunham E.J. et al. The origin and phylogeography of dog rabies virus // J. Gen. Virol. - 2008. - Vol. 89, N 11. - P. 2673 -2681.

133. Briggs D.J., Smith J.S., Mueller F.L., et al. A comparison of two serological methods for detecting the immune response after rabies vaccination in dogs and cats being exported to rabies-free areas // Biologicals. - 1998. - Vol. 26, N4.-P. 347-355.

134. Briggs D.J. Human vaccines. In: Jackson A.C., Wunner W.H., eds. Rabies, 2nd ed. // Amsterdam, Elsevier Academic Press, 2007:505-516.

135. Brookes S.M., Parsons G., Johnson N. et al. Rabies human diploid cell vaccine elicits cross-neutralising and cross-protecting immune responses against European and Australian bat lyssaviruses // Vaccine. - 2005. - Vol. 23, N 32. - P. 4101-4109.

136. Centers for disease control and prevention. Rabies. - Режим доступа: http://www.cdc.gov/rabies/transmission/virus.html (проверено 8.04.2013).

137. Cleaveland S. et al. A dog rabies vaccination campaign in rural Africa: impact on the incidence of dog rabies and human dog-bite injuries // Vaccine, 2003, 21:1965-1973.

138. Cliquet F., Aubert M., Sagne L. Development of a fluorescent antibody virus neutralisation test (FAVN test) for the quantitation of rabies-neutralising antibody // J.Immunol.Methods. - 1998. -Vol. 212, N 1. - P. 79-87.

139. Cliquet F. et al. ELISA test for rabies antibody titration in orally vaccinated foxes sampled in the fields // Vaccine, 2000, 18:3272-3279.

140. Cliquet F., Verdier Y., Sagne L. et al. Neutralising antibody titration in 25,000 sera of dogs and cats vaccinated against rabies in France, in the framework of the new regulations that offer an alternative to quarantine // Rev. sci. tech. Off. int. Epiz. - 2003. -Vol. 22, N 3. - P. 857-86.

141. Cliquet F., McElhinney L.M., Servat A. et al. Development of a qualitative indirect ELISA for the measurement of rabies virus-specific antibodies

from vaccinated dogs and cats // J. Virol. Methods. - 2004. - Vol. 117, N1. - P. 1-8.

142. Coslett D.G., Hollow B.P., Obijeski J.K. The structural proteins of rabies virus and evidence for their synthesis from separate monocitocistronic RNA species // J. Gen. Virol. - 1980. - Vol. 49, N 1. - P. 161-180.

143. Crepin P., Audry L., Rotivel Y. et al. Intravitam diagnosis of human rabies by PCR using saliva and cerebrospinal fluid // J. Clin. Microbiol. - 1998. -Vol. 36, N4.-P. 1117-1121.

144. Dar V.S., Ghosh S., Broor S. Rapid detection of rotavirus by using colloidal gold particles labeled with monoclonal antibody // J. Virol. Methods. -1994. - Vol. 47, N 1-2. - P. 51-58.

145. Dietzschold В., Gore M., Casali P. et al. Biological characterization of human monoclonal antibodies to rabies virus // J. Virol. - 1990. -Vol. 64, N 6. -P. 3087-3090.

146. Dietzschold В et al. Concepts in the pathogenesis of rabies // Future Virology, 2008, 3(5):481-490.

147. Faber M., Faber M.L., Papaneri A., et al. A single amino acid change in rabies virus glycoprotein increases virus spread and enhances virus pathogenicity // J. Virol. - 2005. - Vol. 79, N 22. - P. 14141-14148.

148. Feyssaguet M., Dacheux L., Audry L. et al. Multicenter comparative study of a new ELISA, PLATELIATM RABIES II, for the detection and titration of anti-rabies glycoprotein antibodies and comparison with the rapid fluorescent focus inhibition test (RFFIT) on human samples from vaccinated and non-vaccinated people // Vaccine. - 2007. - Vol. 25, N 12. - P. 2244-2251.

149. Flamand A., Wiktor T.J., Koprowski H. Use of hybridoma monoclonal antibodies in the detection of antigenic differences between rabies and rabies-related virus proteins // J. Gen. Virol. - 1980. - Vol. 48, N 1. - P. 97109.

150. Franka R. et al. Rabies virus pathogenesis in relationship to intervention with inactivated and attenuated rabies vaccines // Vaccine, 2009, 27:7149-7155.

151. Fraser G.C., Hooper P.T., Lunt A.R. et al. Encephalitis caused by a lyssavirus in fruit bats in Australia // Emerg. Infect. Dis. - 1996. - Vol. 2, N 4. -P. 327-331.

152. Frens G. Controlled nucleation for the regulation of the particle size in minodisperse gold suspension // Nat. Phys. Sci. - 1973. - Vol. 241, N 105. - P. 20-21.

153. Gautret P. et al. Rabies post-exposure prophylaxis in travellers returning from Bali, Indonesia, November 2008-March 2010 // Clinical Microbiology and Infection: the official publication of the European Society of Clinical Microbiology and Infectious Diseases, 2010.

154. Ge J., Wang X., Tao L. et al. Newcastle disease virus-vectored rabies vaccine is safe, highly immunogenic, and provides long-lasting protection in dogs and cats//J. Virol.-2011.-Vol. 85, N 16.-P. 8241 - 8252.

155. Gupta P.K., Sharma S., Walunj S.S. et al. Immunogenic and antigenic properties of recombinant soluble glycoprotein of rabies virus // Vet. Microbiol. -2005. - Vol. 108, N 3-4. - P. 207-214.

156. Hamir A.N., Moser G., Fu Z.F. et. al. Immunohistochemical test for rabies: identification of a diagnostically superior monoclonal antibody // Vet. Rec. - 1995. - Vol. 136, N 12. - P. 295-296.

157. Hanlon C.A., Kuzmin I.V., Blanton J.D. et al. Efficacy of rabies biologies against new lyssaviruses from Eurasia // Virus Res. - 2005. -Vol. Ill, N l.-P. 44-54.

158. Hawkes R.A., Niday E., Gordon J. A dot-immunobinding assay for monoclonal and other antibodies // Analyt. Biochem. - 1982. - Vol. 119, N 1. -P. 142-147.

159. Helenius A., Soderlund Н. Stepwise dissociation of the Semliki forest virus membrane with Triton X-100 // Biochim. Biophys. Acta. - 1973. - Vol. 307, N2.-P. 287-300.

160. Hermanson G.T. Preparation of colloidal-gold-labelled proteins. // Bio-conjugate Techniques. - NY: Academic Press, 1996. - P. 593-604.

161. Hooper C. et al. Collaboration of antibody and inflammation in clearance of rabies virus from the central nervous system. // Journal of Virology, 1998, 72:3711-3719.

162. Human and dog rabies prevention and control. Report of the WHO/Bill & Melinda Gates Foundation Consultation, Annecy, 7 September 2009. WHO /HTM/NTD/NZD/2010.1, pp. 37.

163. Jackson A.C., Wunner W.H. eds. Pathogenesis. In: Rabies, 2nd ed. Amsterdam, Elsevier Academic Press, 2007:341-381.

164. Johnson N., Phillpotts R., Fooks A.R. - Airborne transmission of Lyssaviruses. J med microbiol. 2006: 55(6); 785-790.

165. Kang B.K., Oh J.S., Lee C.S. et al. Evaluation of a rapid immunodiagnostic test kit for rabies virus // J. Virol. Meth. - 2007. - Vol. 145, N 1,- P. 30-36.

166. Kaplan M.M., Koprowski H. Laboratory techniques in rabies. WHO. 3rd ed. - Geneva, 1975.-365 p.

167. Kasempimolporn S., Saengseesom W., Lumlertdacha В., Sitprija V. Detection of rabies virus antigen in dog saliva using a latex agglutination test // J. Clin. Microbiol. - 2000. - Vol. 38, N 8. - P. 3098-3099.

168. Kissling R.E. The fluorescent antibody test in rabies. In: Baer G.M., ed. The Natural History of Rabies, 1st ed. Boca Raton, CDC Press, 1975, 1:401416.

169. Knobel DL et al. Re-evaluating the burden of rabies in Africa and Asia // Bulletin of the World Health Organization, 2005, 83:360-368.

170. Knoop E.V., Freuling С.М., Kliemt J. et al. Evaluation of a commercial rabies ELISA as a replacement for serum neutralization assays as part of the pet travel scheme and oral vaccination campaigns of foxes // Berl. Munch. Tierarztl. Wochenschr. - 2010. - Vol. 123, N 7-8. - P. 278-85.

171. Kulonen K., Fekadu M., Whitfield S., Warner C.K. An evaluation of immunofluorescence and PCR methods for detection of rabies in archival carnoy-fixed, paraffin-embedded brain tissue // J. Vet. Med. - 1999. - Vol. 46, N 3. - P. 151-155.

172. Kuroiwa Y., Nagai K., Okita L., Ukae S., Mori Т., Hotsubo Т., Tsutsumi H., 2004. Comparison of an immunochromatography test with multiplex reverse transcription-PCR for rapid diagnosis of respiratory syncytial virusinfections. J. Clin. Microbiol. 42, 4812-4814.

173. Kuwert E. The complement fixation test // Laboratory Techniques in Rabies. WHO. - 3rd ed. - Geneva, 1973. - P. 124-134.

174. Kuzmin I.V. et al. Complete genomes of Aravan, Khujand, Irkut and West Caucasian bat viruses, with special attention to the polymerase gene and non-coding regions. Virus Research, 2008, 136:81-90.

175. Kuzmin I.V. et al. Shimoni bat virus, a new representative of the Lyssavirus genus. Virus Research, 2010, 149:197-210. Epub. 6 February 2010.

176. Lafon M., Lafage M. Antiviral activity of monoclonal antibodies specific for the internal proteins N and NS of rabies virus. // J. Gen. Virol. -1987.-Vol. 68, N 12.-P. 3113-3123.

177. Lafon M. Immunology. Jackson A.C., Wunner W.H,. eds. Rabies, 2nd ed. Amsterdam, Elsevier Academic Press, 2007:489-504.

178. Lee K.K. Studies on molecular epidemiological characteristics of rabies virus isolated in Korea and development of its diagnostic methods. Ph.D. Thesis. Kyungpook National University, 2005. pp. 73-74.

179. Lembo T. et al. Evaluation of a direct, rapid immunohistochemical test for rabies diagnosis // Emerging Infectious Diseases, 2006, 12:310-313.

180. Lodmell D.L., Ray N.B., Ulrich J.T., Ewalt L.C. DNA vaccination of mice against rabies virus: effects of the route of vaccination and the adjuvant monophosphoryl lipid A (MPL) // Vaccine 2000. - Vol. 18, N 11-12. - P. 10591066.

181. Lodmell D.L., Ewalt L.C., Parnell M.J. et al. One-time intradermal DNA vaccination in ear pinnae one year prior to infection protects dogs against rabies virus // Vaccine. - 2006. - Vol. 24, N 4. - P. 412-416.

182. Lowry O.H., Rosebrough N.J., Farr A.L., Randall R.J. Protein measurement with the Folin phenol reagent // J. Biol. Chem. - 1951. - Vol. 193, N l.-P. 265-275.

183. Macfarlan R.I., Dietzschold В., Koprowski H. Stimulation of cytotoxic T-lymphocyte responses by rabies virus glycoprotein and identification of an immunodominant domain // Mol. Immunol. - 1986. - Vol. 23, N 7. - P. 73341.

184. Madhusudana S.N., Saraswati S. Development and evaluation of a latex agglutination test for rabies antibodies // J. Clin. Virol. - 2003. - Vol.27, N2.-P. 129-35.

185. Manual of diagnostic tests and vaccines for terrestrial animals // OIE Terrestrial Manual, 2011. - Part 2, section 1, chapter 2.1.13. - 20 p. - Режим доступа: http ://www.oie.int/fileadmin/Home/eng/Health_standards/tahm /2.01.13_RABIES.pdf (проверено 8.04.2013).

186. Mazarakis N.D., Azzouz M., Rohll J.B. et al. Rabies virus glycoprotein pseudotyping of lentiviral vectors enables retrograde axonal transport and access to the nervous system after peripheral delivery // Hum. Mol. Genet. - 2001. - Vol. 10, N 19. - P. 2109-2121.

187. Meslin F.X., Kaplan M.M. An overview of laboratory techniques in the diagnosis and prevention of rabies and in rabies research. In: Meslin F.X., Kaplan M.M., Koprowski H., eds. Laboratory techniques in rabies, 4th ed. // Geneva, World Health Organization, 1996:9-27.

188. McElhinney L.M., Fooks A.R., Radford A.D. Diagnostic tools for the detection of rabies virus // EJCAP - 2008. - Vol. 18, N 3. - P. 224-231.

189. Ming P., Yan J., Rayner S., et al. A history estimate and evolutionary analysis of rabies vims variants in China // J. Gen. Virol. - 2010. - Vol. 91, N 3. -P. 759-764.

190. Moore S.M. et al. Detection of cellular immunity to rabies antigens in human vaccines // Journal of Clinical Immunology, 2006, 26:533-545.

191. Moore S.M., Chandra C.R., Briggs D.J. Rabies serology. In: Jackson A.C., Wunner W.H., eds. Rabies, 2nd ed. // Amsterdam, Elsevier Academic Press, 2007:471^88.

192. Murphy A.F., Bell F.J., Bauer S.D. et al. Experimental chronic-rabies in the cat // Lab. Invest. - 1980. - Vol. 43, N 3. - P. 231-241.

193. Nadin-Davis S.A., Muldoon F., Wandeler A.E. A molecular epidemiological analysis of the incursion of the raccoom strain of rabies-virus into Canada // Epidemiol. Infect. - 2006 - Vol. 134, N 3. - P. 534-547.

194. Nandi S., Kumar M. Global perspective of rabies and rabies related viruses: a comprehensive review // Asian J. Anim. Vet. Adv. - 2011. - Vol. 6. -P. 101-116.

195. Nagaraj Т., Vasanth J.P., Desai A., et al. Ante mortem diagnosis of human rabies using saliva samples: Comparison of real time and conventional RT-PCR techniques // J. Clin. Virol. - 2006. - Vol. 36, N 1. - P. 17-23.

196. Osorio J.E., Tomlinson C.C., Frank R.S. et al. Immunization of dogs and cats with a DNA vaccine against rabies virus // Vaccine. - 1999. - Vol. 17, N 9-10.-P. 1109-1116.

197. Perrin P., Jacob Y., Tordo N. DNA-based immunization against Lyssaviruses // Intervirology. - 2000. - Vol. 43, N 4-6. - P. 302-311.

198. Perrin P. et al. The influence of the type of immunosorbent on rabies antibody EIA: advantages of purified glycoprotein over whole virus // Journal of Biological Standardization, 14:95-102.

199. Rupprecht С.Е. A tale of two worlds: public health management decisions in human rabies prevention. Clinical Infectious Diseases: an official publication of the Infectious Diseases Society of America, 2004, 39:281-283.

200. Rupprecht C.E. et al. Can rabies be eradicated? OIE. In: Dodet В et al., and the Scientific and Technical Dept of the OIE, eds. Toward the elimination of rabies in Eurasia. Basel, Karger, 2008, 131:95-122.

201. Saengseesom W., Kasempimolporn S., Akesowan S. et al. Use of latex agglutination test to determine rabies antibodies in production of rabies antisera in horses // Southeast Asian J. Trop. Med. Pub. Health. - 2010. - Vol. 41, N6.-P. 1387-1392.

202. Schneider L.G. The cornea test: a new method for the intra-vital diagnosis of rabies // Zentrabl.Veterinaer.Med. -1969. -Vol. 16, N 1. - P. 24-31.

203. Seganti L., Superti F., Bianchi S. et. al. Susceptibility of mammalian, avian, fish, and mosquito cell lines to rabies infection // Acta. Virol. - 1990. -Vol. 34,N2.-P. 155-163.

204. Selimov M.A., Tatarov A.G., Botvinkin A.D. et al. The rabies-related Yuli virus and identification with panel of the monoclonal antibodies // Acta virologica. - 1989.-Vol. 33, N6. - P. 517-521.

205. Servat A.A., Wasniewski M., Cliquet F. Tools for rabies serology to monitor the effectiveness of rabies vaccination in domestic and wild carnivores // Dev. Biol. - 2006. - Vol. 125. - P. 91-94.

206. Servat A., Feyssaguet M., Blanchard I., Morize J.L., Schereffer J.L., Boue F. & Cliquet F. A quantitative indirect ELISA to monitor the effectiveness of rabies vaccination in domestic and wild carnivores. J. Immunol. Methods, 2007,318, 1-10.

207. Smith J.S. Rabies serology. In: Baer G.M., ed. A natural history of rabies, 2nd ed. // Boca Raton, CDC Press, 1971:236-290.

208. Smith J.S., Yager Р.А., Baer G.M. A rapid reproducible test for determining rabies neutralizing antibody // Bull World Health Organ. - 1973. -Vol. 48, N5.-P. 535-541.

209. Smith J.S., Orciari L.A., Yager P.A. Molecular epidemiology of rabies in United States // Semin. Virol. - 1995. - Vol. 6, N 4. - P. 387-400.

210. Smith J.S. New aspects of rabies with emphasis on epidemiology, diagnosis and prevention of the disease in United States // Clin. Microbiol. Rew. -1996. - Vol. 9, N 2. - P. 166-176.

211. Sokol P., Stance D., Koprowski H. Structural proteins of rabies virus // J. Virol. - 1971. - Vol. 7, N 2. - P. 241-249.

212. Stantic-Pavlinic M., Hostnik P., Levicnik-Stezinar S., Zaletel-Kragelj L. Vaccination against rabies and protective antibodies - comparison of ELISA and fluorescent antibody virus neutralization (FAVN) assays // Veterinarski Arhiv. - 2006. - Vol. 76, N 4. - P. 281-289.

213. Talbi C., Holmes E.C., P. de Benedictis et al. Evolutionary history and dynamics of dog rabies virus in western and central Africa // J. Gen. Virol. - 2009 -Vol. 90, N4.-P. 783 -791.

214. Tatsis N., Blejer A., Lasaro M.O., et al. A CD46-binding chimpanzee adenovirus vector as a vaccine carrier // Mol. Ther. - 2007. - Vol. 15, N 3. - P. 608-617.

215. Tepsumethanon V., Sitprija V. Laboratory diagnosis of rabies in Bangkok and the Central Part of Thailand, 2001-2004 // J. Med. Ass. Thailand Chot. Thangt. - 2005. - Vol. 88, N 22. - P. 282-286.

216. Tims Т., Briggs D.J., Davis R.D., et al. Adult dogs receiving a rabies booster dose with a recombinant adenovirus expressing rabies virus glycoprotein develop high titers of neutralizing antibodies // Vaccine. - 2000. - Vol. 18, N 25. - P. 2804-2807.

217. Tollis М., Dietzschold В., Buona Volia С., Koprowski Н. Immunization of monkeys with rabies ribonucleoprotein (RNP) confers protective itmnunity against rabies // Vaccine. -1991. - Vol. 9, N2. - P. 134-136.

218. Torna В. Fox rabies in France // Euro Surveill. - 2005. - Vol. 10, N 11.-P. 220-222.

219. Tordo N. et al. Rhabdoviridae. In: Mayo CM et al, eds. Virus Taxonomy // London, Elsevier Academic Press, 2004:623-644.

220. Tordo N. et al. Rabies: Epidemiological tendencies and control tools. Developments in Biologicals, 2006, 125:3-13.

221. Trimarchi C.V., Nadin-Davis S.A. Diagnostic evaluation. In: Jackson A.C., Wunner W.H., eds. Rabies, 2nd ed. // Amsterdam, Elsevier, 2007:411-469.

222. Trimarchi C.V., Rudd R.D., Safford M. An in vitro virus neutralization test for rabies antibody. In: Meslin FX, Kaplan MM, Koprowski H, eds. Laboratory techniques in rabies, 4th ed. Geneva, World Health Organization, 1996:193-199.

223. Tsuguto F., Teruo О., Takao O., Masahiro I., Soichi N., Masatsugu C., Osamu N. Evaluation of a bedside immunochromatographic test for detection of adenovirus in respiratory samples, by comparison to virus isolation, PCR, and real-time PCR. J. Clin. Microbiol. 2004. 42, 5489-5492.

224. Turmelle A.S., Jackson F.R., Green D. et. al. Host immunity to repeated rabies virus infection in big brown bats // J.Gen. Virol. - 2010. - Vol. 91, N9. - P. 2360-2366.

225. Umoh J.U., Blenden D.C. Immunofluorescent staining of rabies virus antigen in formalin fixed tissue after treatment with trypsin // Bull. WHO. - 1981. -Vol. 59, N5.-P. 737-744.

226. Vengatesan D. et al. Detection of rabies virus antigen or antibody using flow cytometry // Cytometry. Part B, Clinical Cytometry, 2006, 70B:335-343.

221. Von Teichman B.F., W.C. De Koker, Bosch S.J. et al. Mokola virus infection: description of recent south African cases and a review of the virus epidemiology // J. S. Afr. Vet. Assoc. - 1998. - Vol. 69, N 4. - P. 169-171.

228. Wacharapluesadee S., Hemachudha T. Nucleic-acid sequence based amplification in the rapid diagnosis of rabies // Lance. - 2001. - Vol. 358, N 9285.-P. 892-893.

229. Wakeley P.R., Johnson N., McElhinney L.M. et al. Development of a real-time, TaqMan reverse transcription-PCR assay for detection and differentiation of Lyssavirus genotypes 1, 5, and 6 // J. Clin. Microbiol. - 2005. -Vol. 43,N6.-P. 2786-2792.

230. Wandeler A.I. Rabies vaccinology and immunology // Developments in Biologicals, 2006, 125:181-184.

231. Wiktor T.J., Doherty P.C., Koprowski H. In vitro evidence of cellmediated immunity after exposure of mice to both live and inactivated rabies virus // Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, 1977, 74:334-338.

232. Wilson M.B., Nakane P.K. Recent developments in the peroxidase method of conjugating horseradish peroxidase to antibodies // Immunofluorescence and related techniques. - Amsterdam: North Holland Publishing Co, 1978. - P. 215-224.

233. WHO Expert Consultationon Rabies. First Report. Geneva, World Health Organization, 2004 // WHO Technical Report Series, No. 931.

234. WHO Expert Committee on Biological Standardization. Fifty-sixth report. Geneva, World Health Organization, 2007, Annex 2.

235. WHO. Human and animal rabies. The World Health Organization. 2005.

236. OIE Terrestrial Manual, 2011, Chapter 2.1.13, Rabies.

237. WHO The Immunological Basis of Immunization Series, modulel7: Rabies, 2011.

238. Xu G., Weber Р., Ни Q., et al. A simple sandwich ELISA (WELYSSA) for the detection of lyssavirus nucleocapsid in rabies suspected specimens using mouse monoclonal antibodies // Biol. J. Int. Ass. Biol. Stand. -2007. - Vol. 35, N 4. - P. 297-302.

239. Yang L.M., Zhao L.Z., Ни R.L., et al. A novel double-antigen sandwich enzyme-linked immunosorbent assay for measurement of antibodies against rabies virus // Clin.Vaccine Immunol - 2006. - Vol.13, N8. - P.966-968.

240. Zhang S., Liu Y., Fooks A.R. et al. Oral vaccination of dogs (Canis familiaris) with baits containing the recombinant rabies-canine adenovirus type-2 vaccine confers long-lasting immunity against rabies // Vaccine. - 2008. - Vol. 26, N3.-P. 345-350.

241. Zhang S. et al. Competitive ELISA using a rabies glycoprotein-transformed cell line to semi-quantify rabies neutralizing-related antibodies in dogs // Vaccine, 2009, 27:2108-2113.

242. Zimmerman J. Zur brauchbarkein des cornea tested de Tollwut diagnose // Berl. Munch. Tieraztl. Eachr. - 1971. - B. 84, N 9. - S. 172-174.