Совершенствование методов диагностики и оценки эффективности вакцинопрофилактики бешенства животных тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.01.06, кандидат биологических наук Истомина, Мария Александровна

• Истомина, Мария Александровна
• кандидат биологических наук
• 2011

Оглавление диссертации кандидат биологических наук Истомина, Мария Александровна

Список сокращений.

Введение.б

Актуальность темы.

Цель и задачи исследований.

Научная новизна исследований.

Практическая значимость работы.

Основные положения, выносимые на защиту.

1 ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.

1.1 Бешенство. Характеристика болезни.

1.2 Эпизоотическая ситуация по бешенству на территории РФ.

1.3 Характеристика возбудителя бешенства.

1.3.1 Морфология и химический состав.

1.3.2 Иммуногенные свойства.

1.4 Профилактика и меры борьбы.

1.4.1 Специфическая профилактика.

1.5 Лабораторная диагностика.

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Совершенствование методов диагностики и оценки эффективности вакцинопрофилактики бешенства животных»

Актуальность темы. Бешенство остается одной из важнейших проблем ветеринарии и здравоохранения во многих странах мира. Несмотря на проводимые противоэпизоотические мероприятия в Российской Федерации, ограничить распространение бешенства не удается (C.B. Грибенча, 1993; H.A. Хисматуллина и др., 2000; В.М. Авилов и др., 2002; В.В. Макаров, A.A. Воробьев, 2004; А.Е. Метлин, 2008; В.А. Ведерников, И.В. Балдина, 2010; A.M. Гулюкин, 2011).

Противоэпизоотические мероприятия при бешенстве включают диагностику болезни и профилактическую иммунизацию домашних, диких плотоядных и сельскохозяйственных животных с последующим контролем эффективности вакцинации.

Методы диагностики бешенства, рекомендуемые Комитетом экспертов ВОЗ, требуют специального оборудования и предназначены, в основном, для постмортальных исследований (Manual of Diagnostic Tests and Vaccines for Terrestrial Animals, 2011).

Показана возможность индикации антигена вируса бешенства в слюне животных методом иммунохроматографии (B.K. Kang, et al., 2007), в эпителиальных клетках роговицы глаза (корнеальный тест) и биоптатах кожи методом иммунофлюоресценции (H.A. Ковалев, 1965; L.G. Schneider, 1969; H.A. Ковалев, A.C. Шашенько, 1970; J. Zimmerman 1971; J. Bingham, P. Mlambo, 1995; Н.П. Мишаева и др., 2008), а также вирусного генома в слюне и спинномозговой жидкости методом ПЦР (P. Crepin, et al., 1998; Я.С. Цыбанов, 2001).

Достижения биотехнологии на современном этапе позволяют совершенствовать методы иммуноанализа на основе реагентов, визуализирующих результат реакции. В связи с этим, представляет научный и практический интерес разработка тест-систем на основе точечного анализа на нитроцеллюлозной мембране с применением конъюгата специфических антител с пероксидазой (dot-ELISA) или с коллоидным золотом для

Введение выявления антигена вируса бешенства в слюне животных, что необходимо для оценки риска заражения человека или животных.

Объективным методом оценки эффективности вакцинопрофилактики бешенства является определение в сыворотке крови уровня вируснейтрализующих антител (Э.Я. Сазанова и др., 1991; C.B. Кузнецова, 1991; J.S. Smith, 1996; F. Cliquet, et al., 1998; H.A. Хисматуллина и др., 2000; К.Н. Груздев, В.В. Недосеков, 2001).

В 2007 году Комитет экспертов ВОЗ рекомендовал непрямой вариант иммуноферментного анализа (ИФА) для количественного определения поствакцинальных антирабических антител в сыворотке крови собак и кошек (Manual of standards Diagnostic Tests and Vaccines, 2011).

В связи с вышеизложенным, исследования в области совершенствования существующих и разработки новых методов диагностики и оценки эффективности вакцинопрофилактики бешенства животных являются актуальными и имеют научное и практическое значение. Цель и задачи исследований

Основной целью данной работы являлось совершенствование методов диагностики и оценки эффективности вакцинопрофилактики бешенства животных.

Для достижения указанной цели необходимо было решить следующие задачи:

- получить рибонуклеопротеин вируса бешенства и специфические к нему антитела, синтезировать на их основе конъюгаты с пероксидазой и коллоидным золотом;

- разработать тест-системы на основе dot-ELISA и точечного анализа с применением иммунозолотого маркера для выявления антигена вируса бешенства в слюне животных;

- получить препарат альбумина, меченного родамином, и отработать условия выявления антигена вируса бешенства в отпечатках роговицы глаза, мазках ткани мозга животных и в культуре клеток методом контрастной иммунофлюоресценции;

- усовершенствовать тест-систему на основе непрямого ИФА для определения уровня специфических антител в сыворотке крови вакцинированных против бешенства животных.

Научная новизна исследований

Показана принципиальная возможность выявления антигена вируса в слюне методами ёо^ЕЫБА и точечного анализа с применением иммунозолотого маркера и в эпителиальных клетках роговицы глаза животных методом контрастной иммунофлюоресценции.

Разработаны тест-системы на основе скЛ-ЕЫЗА и точечного анализа с применением иммунозолотого маркера для индикации антигена вируса бешенства в слюне.

Показано, что применение альбумин-родаминового конъюгата повышает эффективность метода иммунофлюоресценции при выявлении антигена вируса бешенства.

Усовершенствована тест-система на основе непрямого ИФА для определения уровня специфических антител в сыворотке крови вакцинированных против бешенства животных.

Практическая значимость работы

На основании проведенных исследований разработаны и предложены:

- тест-системы на основе ёо1-ЕЫ8А и точечного анализа с применением иммунозолотого маркера для индикации антигена вируса бешенства в слюне;

- набор реагентов для определения уровня специфических антител в сыворотке крови вакцинированных против бешенства животных методом непрямого ИФА;

Введение

- метод контрастной иммунофлюоресценции для выявления антигена вируса бешенства в отпечатках роговицы глаза, мазках ткани мозга животных и в культуре клеток.

Результаты исследований представляют практическую ценность для оптимизации противоэпизоотических мероприятий по борьбе с бешенством.

Основные положения, выносимые на защиту

- Индикация антигена вируса бешенства в слюне животных методами с!о1> ЕЫБА и точечного анализа с применением иммунозолотого маркера.

- Выявление антигена вируса бешенства в отпечатках роговицы глаза, мазках ткани мозга животных и в культуре клеток методом контрастной иммунофлюоресценции.

- Определение уровня специфических антител в сыворотке крови животных, вакцинированных против бешенства, методом непрямого ИФА.

1 ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

Заключение диссертации по теме «Биотехнология (в том числе бионанотехнологии)», Истомина, Мария Александровна

4 Выводы непрямого ИФА при исследовании проб сыворотки плотоядных относительно реакции нейтрализации составила 75%, специфичность -83,3%, проб сыворотки КРС - 77,8% и 85,7%, соответственно. 6. Показана эффективность непрямого ИФА в качестве скринирующего метода при серомониторинге антирабической вакцинации. Результаты исследований сывороток крови свидетельствуют о достаточном уровне протективного иммунитета у 93,3% КРС, 96,15% домашних плотоядных и 33,3% лисиц.

5 ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ

На основании проведенных исследований предлагаются для практики:

- «Методические положения по количественному определению антител к антигену вируса бешенства в сыворотке крови животных в непрямом варианте иммуноферментного анализа», утверждены академиком-секретарем Отделения ветеринарной медицины, академиком Россельхозакадемии A.M. Смирновым 8 августа 2011 г.

- «Методические положения по выявлению антигена вируса бешенства методом контрастной иммунофлюоресценции», утверждены академиком-секретарем Отделения ветеринарной медицины, академиком Россельхозакадемии A.M. Смирновым 8 августа 2011 г.

- Тест-система на основе dot-ELISA для индикации антигена вируса бешенства в слюне.

- Тест-система на основе точечного анализа с применением иМмунозолотого маркера для индикации антигена вируса бешенства в слюне.

- Набор реагентов для определения уровня специфических антител в сыворотке крови вакцинированных против бешенства животных методом непрямого иммуноферментного анализа.

- НТД на «Набор реагентов для количественного определения антител к антигену вируса бешенства в сыворотке крови животных в непрямом варианте иммуноферментного анализа»- утверждена директором ВНИТИБП 5.04.2011.

- Временная инструкция по применению «Набора реагентов для количественного определения антител к антигену вируса бешенства в сыворотке крови животных в непрямом варианте иммуноферментного анализа», утверждена директором ВНИТИБП 5.04.2011.

Заключение

Анализ литературных данных показал, что на сегодняшний день бешенство и его возбудитель изучены достаточно хорошо. Детально описаны морфология и физико-химические свойства вируса, его геном, иммуногенные свойства, эпизоотология, патогенез, клинические признаки болезни, разработаны средства специфической профилактики, методы диагностики и оценки эффективности вакцинации. Данные по эпизоотической ситуации в РФ показали, что несмотря на проводимые противоэпизоотические мероприятия, ограничить распространение бешенства- до конца не удается, и оно остается одной из важнейших проблем здравоохранения и ветеринарии.

Своевременная диагностика бешенства обеспечивает эффективность проведения лечебно-профилактических мероприятий, однако рекомендуемые Комитетом экспертов ВОЗ методы предназначены, в основном, для постмортальной диагностики бешенства. При этом некоторыми авторами показана эффективность прижизненного обнаружения вирусных агентов в слюне, эпителиальных клетках роговицы глаза, спинномозговой жидкости, биоптатах кожи животных, но в практику методы интравитальной диагностики бешенства не внедрены.

Основным методом профилактики бешенства является вакцинация восприимчивых животных. Показателем успешной вакцинации считается наличие в сыворотке крови достаточного уровня специфических вирунейтрализующих антител (не менее 0,5 МЕ/мл), одним из методов выявления которых является непрямой вариант ИФА с использованием в качестве антигена гликопротеина вируса бешенства. В настоящее время соответствующие тест-системы производятся за рубежом, в РФ коммерческие наборы, предназначенные для оценки эффективности вакцинопрофилактики бешенства, не выпускаются.

Анализ литературных данных определил цель и основные направления наших исследований.

2 Собственные исследования. 2.1 Материалы и методы

2 СОБСТВЕННЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ

2.1 МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ

Вирус бешенства. В работе использовали фиксированный вирус бешенства, штамм «Овечий», стандартный штамм «CVS», штамм «Щелково-51». Вирус бешенства инактивировали 0,025% раствором ß-пропиолактона.

Тест-система на основе dot-ELISA для индикации антигена вируса бешенства в слюне. Для оптимизации условий проведения dot-ELISA использовали пробы слюны от собак, в которые вносили суспензию очищенного мозгового вируса бешенства, штамм «CVS», с инфекционностью 3,8 lg LD50/0,03 мл [16].

Для сорбции на нитроцеллюлозной мембране и приготовления конъюгата с пероксидазой хрена получали антитела к рибонуклеопротеину (РНП) вируса бешенства, штамм «CVS». РНП выделяли из суспензии частично очищенного и концентрированного мозгового вируса, обработанной тритоном Х-100 [151], с последующим центрифугированием в градиенте сахарозы.

Сыворотку к рибонуклеопротеину вируса бешенства получали иммунизацией морских свинок препаратом РНП, активность сыворотки устанавливали в реакциях связывания комплемента по Е. Kuweit (1960) [172] и диффузионной преципитации с использованием «Набора компонентов для диагностики бешенства животных в реакции диффузионной преципитации» (ТУ 9388-006-00497963-99).

IgG из анти-РНП сыворотки и нормальной сыворотки крови морской свинки выделяли методом аффинной хроматографии на коммерческом сорбенте Protein А - Agarose CL-4B («Fluka»), согласно рекомендациям фирмы-изготовителя, и концентрировали методом диализа против 25% раствора декстрана Т-70 («Sigma»).

Конъюгат анти-РНП IgG с пероксидазой хрена Rz>3,0 (ООО «НИЦ Росбио») получали по В. Wilson, P. Nakane (1978) [267]. Молярное соотношение фермент/белок в конъюгате устанавливали методом

2 Собственные исследования. 2.1 Материалы и методы спектрометрии при 403 и 280 нм. Ферментативную активность конъюгата определяли по Д. Кэтти, Ч. Райкундалиа (1991) [39], специфическую i активность - методом прямого ИФА с сорбированным препаратом РНП вируса бешенства в лунках 96-луночного полистиролового планшета («Costar», США).

Dot-ELISA проводили по R. Hawkes, et al. (1982) [150] с использованием нитроцеллюлозной мембраны (Protran ВА 85, 20x20 см, размер пор 0,45 мкм), нарезанной на полоски размером 1x5 см. Для формирования тестируемой полоски сорбировали анти-РНП IgG, контрольной - IgG нормальной, сыворотки морской свинки.

Постановка dot-ELISA включала следующие этапы: нанесение проб слюны на тестируемую и контрольную полоски; инкубация полосок в растворе анти-РНП пероксидазного конъюгата; выявление связанного фермента субстратно-индикаторным раствором. О наличии антигена вируса бешенства в пробе судили по появлению окрашенного пятна на тестируемой полоске при отсутствии окраски на контрольной.

Для определения оптимальных условий выявления антигена вируса бешенства в слюне методом dot-ELISA в экспериментальных условиях изучали влияние различных факторов: сорбционная доза анти-РНП IgG и рабочее разведение специфического пероксидазного конъюгата; температурный режим и время инкубации компонентов; состав промывочного, блокирующего, лизирующего и субстратно-индикаторного растворов.

Тест-система на основе точечного анализа с применением иммунозолотого маркера для индикации антигена вируса бешенства в слюне. Коллоидное золото получали по G. Frens (1973) [143].

Конъюгат анти-РНП IgG с частицами коллоидного золота получали по G.T. Hermanson (1996) [152], рабочее разведение устанавливали титрованием в точечном иммуноанализе с постоянной дозой вируса.«

2 Собственные исследования. 2.1 Материалы и методы

Точечный анализ проводили по V.S. Dar, et al. (1994) [120] на нитроцеллюлозных полосках с сорбированными анти-РНП IgG и IgG нормальной сыворотки крови, реакцию проявляли с помощью коыъюгата анти-РНП IgG с коллоидным золотом. О наличии антигена вируса бешенства в пробе судили по появлению розовато-красного пятна на тестируемой полоске при отсутствии окраски на контрольной.

Чувствительность разработанных тест-систем устанавливали титрованием в слюне собак суспензии очищенного мозгового вируса бешенства с исходной инфекционностью 3,8 lg LD50/0,03 мл.

Выявление антигена вируса бешенства методом контрастной иммунофлюоресценции. Оптимальные условия приготовления конъюгата альбумина (Albumin from bovine serum, «Fluka») с родамином (Rhodamine В isothiocyanate, «Fluka») определяли путем подбора соотношения флюорохром/белок, времени конъюгирования и температурного режима. Непрореагировавший краситель удаляли методом гель-хроматографии на колонке 1,5x40, заполненной сефадексом G-50 в ЮмМ фосфатном буфере, pH 7,4-7,6. Соотношение родамин/альбумин в конъюгате устанавливали методом спектрометрии при 573 нм и 280 нм.

Рабочее разведение конъюгата альбумина с родамином устанавливали при одновременной его инкубации с глобулином флюоресцирующим (ТУ 9388-03-00497963-97) и отпечатками роговицы глаза клинически здоровых мышей и баранов, а также мазками ткани мозга мышей, павших после заражения вирусом бешенства, штамм «CVS», и баранов, павших после заражения вирусом бешенства, штамм «Овечий», при 37°С в течение 30 минут.

Метод контрастной иммунофлюоресценции апробировали при выявлении антигена вируса бешенства в отпечатках роговицы глаза, ткани мозга, в культуре клеток ВНК-21. Реакцию прямой иммунофлюоресценции и биопробу проводили по ГОСТ 26075-84 [16].

2 Собственные исследования. 2.1 Материалы и методы Набор реагентов для определения уровня специфических антител в сыворотке крови вакцинированных против бешенства животных методом непрямого ИФА. В качестве антигена для непрямого варианта ИФА использовали гликопротеин вируса бешенства, который выделяли из культуральной суспензии вируса, штамм «Щелково-51», по методу В. Dietzschold, et al. (1978) [164].

В качестве референс-антирабической сыворотки использовали отраслевой стандартный образец антирабической сыворотки крупного рогатого скота (КРС), серия NCA-03, с активностью 20 ME/мл (ВНИТИБП), и сыворотку крови собаки, иммунизированной вакциной антирабической инактивированной сухой культуральной из штамма "Щелково-51" (Рабикан). Вируснейтрализующую активность сыворотки собак определяли в реакции нейтрализации (РН) на мышах согласно «Методам лабораторных исследований по бешенству» [45] в сравнении с отраслевым стандартным образцом.

В качестве контроля использовали сыворотку крови от клинически здоровых собак и КРС, отрицательно реагирующую в PH in vivo.

Конъюгат протеина A St. aureus («Sigma») с пероксидазой хрена Rz>3,0 (ООО «НИЦ Росбио») получали по В. Wilson, P. Nakane (1978) [267]. Соотношение фермент/белок в конъюгате устанавливали методом спектрометрии при 403 и 280 нм, ферментативную активность - согласно Д. Кэтти, Ч. Райкундалиа (1991) [39].

Для исследования сыворотки крови КРС использовали «Иммуноглобулины диагностические против IgG (H+L) быка, меченные пероксидазой» (НИИЭМ им. Н.Ф. Гамалея).

Рабочее разведение конъюгатов устанавливали методом «шахматного» титрования в прямом варианте ИФА с использованием 96-луночного полистиролового планшета («Costar», США), сенсибилизированного сывороткой крови животных (собака, кошка, лисица, енотовидная собака, песец, КРС).

2 Собственные исследования. 2.1 Материалы ъе. метапы

Методика непрямого ИФА включала следующие этапы: инкубация контрольной отрицательной, референс-антирабической и исследуемых сывороток в разведении 1:100 в лунках полистироловых планшетов (стрипов) с сорбированным гликопротеином вируса бешенства; инкубация пероксидазного конъюгата; выявление связанного фермента субстратно-индикаторным раствором.

Результаты непрямого ИФА учитывали по величине оптической плотности при длине волны 492 нм на спектрофотометре фирмы «Sigma». Уровень специфических антител в исследуемых пробах устанавливали по ОП492 в исследуемых пробах в сравнении с ОП492 референс-антирабической сыворотки.

С использованием предложенного набора реагентов исследовали 250 проб сыворотки крови домашних, диких плотоядных и сельскохозяйственных животных.

Содержание общего белка определяли О.Н. Lowry, et al. (1951) [210].

Статистическая обработка результатов. При анализе и статистической обработке результатов использовали программу «Microsoft Excel», входящую в пакет программ «Microsoft Office, 2007». Статистическую обработку полученных данных проводили общепринятыми методами по Г.Ф. Лакин (1990) [40].

2 Собственные исследования. 2.2 Результаты исследований

Список литературы диссертационного исследования кандидат биологических наук Истомина, Мария Александровна, 2011 год

1. Аксенова, Т.А. Культивирование вакцинного вируса бешенства в линиях перевивараемых клеток зеленой мартышки / Т.А. Аксенова, Ю.Х. Хапчаев, JI.JL Миронова // Вопросы вирусологии. 1991. - №5. - С. 432438.

2. Анина-Радченко, Н.Д. К вопросу о применении реакции связывания комплемента для диагностики бешенства / Н.Д. Анина-Радченко // Симпозиум по бешенству: тез. докл. ин-та полиомиелита и вирус, энцефалитов АМН СССР. М., 1972. - С. 123-124.

3. Антигенная характеристика полевых штаммов вируса бешенства из различных районов СССР с помощью антинуклеокапсидных моноклональных антител / А.Д. Ботвинкин, М.А. Селимов, Е.В. Клюева и др. // ЖМЭИ. 1990. - № 1. - С. 50-54.

4. Белоусова, Р.В. Ветеринарная вирусология / Р.В. Белоусова, Э.А. Преображенская, И.В. Третьякова. М.: Колос, 2007. - 424 с.

5. Березина, Е.С. Бешенство собак в России во второй половине XX начале XXI века / Е.С. Березина, Г.Н. Сидоров, Е.М. Полещук, Д.Г. Сидорова // Российский ветеринарный журнал. - 2010. - №3. - С. 2-6.

6. Бешенство в Восточной Европе: актуальный вектор развития эпизоотического процесса / В.В. Макаров, О.И. Сухарев, A.M. Гулюкин, Б.В Боев // Вестник РАСХН. 2008. - № 4. - С.58 - 60.

7. Бешенство в России. Оценка риска: информ.-аналит. обзор / Н.С. Бардина, М.А. Титов, А.К. Караулов и др.. Владимир: ФГУ «ВНИИЗЖ», 2008. - 80 с.

8. Бешенство енотовидных собак: статистический анализ заболеваемости / В.В. Макаров, О.И. Сухарев, A.M. Гулюкин, Б.В. Боев // Ветеринария. -2009. №6. - С. 20-24.

9. Бешенство млекопитающих Омской области / Д.Г. Сидорова, Н.М. Колычев, Г.Н. Сидоров, Е.М. Полещук // Терио фауна России и1. Список литературысопредельных территорий. VIII съезд териологического общества. — М., 2007.-С. 453.

10. Ботвинкин, А.Д. Итоги изучения антигенного разнообразия вируса бешенства на территории бывшего СССР / А.Д. Ботвинкин, И.В. Кузьмин, H.A. Хисматуллина // Ветеринарная патология. 2004. - № 3. - С. 117-126.

11. Ботвинкин, А.Д. Природные очаги бешенства в Российской Федерации / А.Д. Ботвинкин, Г.Н. Сидоров // Этиология, эпидемиология и диагностика инфекционных заболеваний в Восточной Сибири. Иркутск, 1992.-С. 182-193.

12. Бучнев, К.Н. Вируснейтрализующая и преципитирующая активность сывороток крови лошадей, привитых рабическими вирус-антигенами / К.Н. Бучнев, И.Л. Квасов, Ш.Ж. Турсункулов // Вестник с/х науки Казахстана. 1985. - № 2.-С.72-75.

13. Бучнев, К.Н. Методы диагностики бешенства. Сравнительная оценка. / К.Н. Бучнев // Докл. сов. ученых. JI., 1971. - С. 3-5.

14. Ведерников, В.А. Краткая характеристика обстановки по бешенству животных, сложившейся в России в сентябре 2010 года / В.А. Ведерников, И'.В. Балдина // Ветеринарная жизнь. 2010. - № 21. - С. 2.

15. Вирусные болезни животных / В.Н. Сюрин, А.Я. Самуйленко, Б.В. Соловьев, Н.В. Фомина. М.: ВНИТИБП, 1998. - 928 с.

16. ГОСТ СССР 26075-84. Животные» сельскохозяйственные. Методы лабораторной диагностики бешенства. — Введ. 9.01.1984. — М.: Государственный комитет СССР по стандартам, 1984. 12 с.

17. Грибенча, C.B. Хроническая рабическая инфекция мышей, зараженных интрацеребрально уличным вирусом / C.B. Грибенча // Вопросы вирусологии. 1977. - №2. - С. 147-151.

18. Груздев, К.Н. Бешенство животных / К.Н. Груздев, В.В. Недосеков. М.: Аквариум, 2001. - 304 с.

19. Гулюкин, А.М. Пути усовершенствования мероприятий по борьбе с бешенством / А.М. Гулюкин // Актуальные вопросы инфектологии.1. Список литературы

20. Матер, юбилейной науч.-практич. конф., посвящ. 85-летию кафедры инфекционных болезней Казанского государственного медицинского университета,- Казань, 2010. С. 66-67.

21. Гулюкин, A.M. Эпизоотологический мониторинг и совершенствование серологического контроля эффективности вакцинопрофилактики бешенства: автореф. дис. . канд. биол. наук / Алексей Михайлович Гулюкин. Казань, 2011. - 21 с.

22. Диагностика и профилактика бешенства животных / A.B. Иванов, H.A. Хисматуллина, Р.Х. Юсупов, А.Н. Чернов. М.: Д 44 ФГНУ "Росинформагротех", 2007. - 60 с.

23. Значение енотовидной собаки в эпидемиологии и эпизоотологии бешенства на Дальнем Востоке / А.Д. Ботвинкин, В.П. Савицкий, Г.Н. Сидоров, В.Г. Юдин // Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. -1981. №. 12. - С. 79-81.

24. ИАЦ Россельхознадзора. Эпизоотическая ситуация в РФ (1-е полугодие 2011 года). Режим доступа: http://www.fsvps.ru/fsvps-docs/ru/iac/201 l/files/iac201 lhalf.pdf (проверено 8.11.2011).

25. ИАЦ Россельхознадзора. Эпизоотическая ситуация в РФ (2010 год). -Режим доступа: http ://www.fsvps.ru/fsvps-docs/ru/iac/2011 /files/iac2010 year.pdf. (проверено 8.11.2011).

26. Иванов, B.C. Состояние и перспективы борьбы с бешенством / B.C. Иванов, Е.Э. Школьников // Вестник РАСХН. 2000. - №2. - С. 63-65.

27. Идрисова, Н.Т. Чувствительность некоторых культур клеток к вирусу бешенства / Н.Т. Ирдисова // Бюл. ВИЭВ. 1991. - Вып. 75-76. - С. 119121.

28. Иммуноферментный анализ при индикации вируса бешенства и определении уровня антител / Э.Я. Сазанова, C.B. Кузнецова, Е.В. Маслов и др. // Ветеринария. 1991. - № 8. - С. 62-64.

29. Инфекционные болезни животных / Б.Ф. Бессарабов, A.A. Ватутин, Е.С. Воронин и др.. М.: Колос, 2007. - 671 с.

30. Использование корнеального теста для прижизненной экспресс -диагностики бешенства у человека и животных / Н.П. Мишаева, H.A. Ковалев, С.О. Бельгии, В.В. Щерба. Минск, 2008.

31. Использование полимеразной цепной реакции для выявления полевых изолятов вируса бешенства / М.С. Пантюшенко, М.А. Наумкина, В.В. Недосеков и др. // Современные проблемы рабиологии: тез. докл. науч. конф. М., 1998. - С. 26-27.

32. К вопросу о прогнозировании эпизоотического процесса при бешенстве на территории России / Г.Н. Сидоров, Д.Г. Сидорова, Н.М. Колычев, Е.М. Полещук // Ветеринарная патология. 2007. - № 3. - С. 17-23.

33. Калабеков, М.И. Характеристика эпизоотического процесса бешенства животных / М.И. Калабеков // Ветеринария. 1998. - № 4. - С. 62-64.

34. Ковалев, H.A. Иммунофлуоресцентное исследование отпечатков роговицы при бешенстве / H.A. Ковалев, A.C. Шашенько // Ветеринария. -1970.-№9.-С. 44-46.

35. Ковалев, H.A. О распространении и путях борьбы с бешенством диких животных / H.A. Ковалев, В.А. Седов // Матер. 8-й Всесоюзной конференции по природной очаговости болезней животных и охране их численности. Киров, 1972. - С. 34-35.

36. Ковалев, H.A. Радиоиммунологический метод определения напряженности антирабического иммунитета / H.A. Ковалев // Рекомендации МСХ СССР по внедрению достижений науки и передового опыта в. производстве. М., 1980. - № 1. - С. 73-74.

37. Крупальник, В.П. Бешенство собак в Шри-Ланке и меры борьбы с ним / В.П. Крупальник, С. Нагасинг // Актуальные вопросы инфекционных и1. Список литературыинвазионных болезней животных. Сб. науч. тр. МГАВМиБ. - 1995. - С. 130-131.

38. Кузнецова, C.B. Субъединичная антирабическая вакцина // C.B. Кузнецова, П.П. Кузнецов, B.C. Иванов // Научные основы технологии промышленного производства ветеринарных биологических препаратов-тез. докл. научн. конф. Щелково, 1996. - С. 54.

39. Кэтти, Д. Иммуноферментный анализ / Д. Кэтти, Ч. Райкундалиа // Антитела. Методы. В 2-х кн. Кн. 2: Пер. с англ. М.: Мир, 1991.-384 с.

40. Лакин, Г.Ф. Биометрия / Г.Ф. Лакин. М.: Высшая школа, 1990. - 352 с.

41. Лаптева, О.Г. Инфекционная и антигенная активность вируса бешенства, выращенного в суспензии клеток ВНЕС-21 / О.Г. Лаптева, Т.Ф. Горшкова,

42. B.И. Жестерев // Ветеринария. 2003. - №3. - С. 18-19.

43. Макаров, В.В. Актуальные проблемы бешенства: природная очаговость, методология исследования и-контроля в центре России / В.В. Макаров, A.A. Воробьев // Ветеринарная патология. 2004. - № 3. - С. 102-116.

44. Макаров, В.В. Численность лисицы как фактор риска эмеджентности бешенства / В.В; Макаров, С.И. Джупина, В. А. Ведерников // Ветеринарная патология. 2002. - №1. - С. 123-126.

45. Метлин, А.Е. Оральная вакцинация диких плотоядных животных против бешенства / А.Е. Метлин, С.С. Рыбаков, В.В. Михалишин // Ветеринария. -2009.- №8. -С. 18-25.

46. Методы лабораторных исследований по бешенству: пер. с англ., 3 изд. / под ред. М. Kaplan, H. Koprowski. Женева: ВОЗ, 1975. - 358 с.

47. Мицаев, Ш.Ш. Сезонность и цикличность эпизоотий бешенства в Юго-Восточном предкавказье / Ш.Ш! Мицаев // Ветеринария. 2009. - № 8. —1. C. 7-9.

48. Недосеков, В.В. Разработка и совершенствование средств и методов оценки эффективности вакцин против бешенства: автореф. дис. . канд. вет. наук / Виталий Владимирович Недосеков. Покров, 1998. - 24 с.

49. Определение титров антирабических антител у вакцинированных против бешенства людей и животных радиоиммунным методом / В.П. Остапчук, П.А. Ковалев, A.C. Шашенько и др. // Тр. Бел. ПИИЭВ им. П.Вышелесского. М., 1979. - Т. 17. - С. - 74-78.

50. Осидзе, Д.Ф. Репродукция культурального фиксированного вируса бешенства при разных способах культивирования / Д.Ф. Осидзе, Ю.Ф. Борисович // Ветеринария. 1990. - № 11. - С. 57.

51. Основные принципы специфической профилактики бешенства, обеспечивающие эффективность антирабических мероприятий / A.B. Саввин, Ю.В. Пашкина, К.Н. Груздев, В.В. Сочнев // Ветеринарная патология. 2005. - № 4. - С. 102-106.

52. Оценка эффективности вакцинопрофилактики бешенства с помощью иммуноферментной тест-системы / А.М. Гулюкин, H.A. Хисматуллина,

53. A.Н. Чернов и др. // Биотехнология: экология крупных городов: матер. Московской международной научно-практической конференции. — Москва, 2010. С.465-466.

54. Пашкина, Ю.В. Рабическая инфекция: зоны риска и территориальные границы в условиях РФ в целом и в отдельных регионах /Ю.В. Пашкина,

55. B.В. Сочнев // Ветеринарная патология. 2005. - № 4. - С. 68-72.

56. Пилле, Э.Р. Лиссавирусы / Э.Р. Пилле // Вопросы вирусологии. 1996. -№ 1.-С. 2-6.

57. Рахманин, П.В. Иммуноферментная тест-система определения уровня антирабических антител в сыворотках крови привитых против бешенства кошек и собак: дис. . канд. биол. наук / Рахманин Петр Владимирович. -Щелково, 2008. 104 с.

58. Селимов, М.А. Бешенство / М.А. Селимов. М.: Медицина, 1978. - 336 с.

59. Селимов, М.А. Применение реакции связывания комплемента (РСК) для индикации вируса бешенства в культуре ткани / М.А. Селимов, Л.И. Калинина, Т.А.Аксенова и др. // Вопросы борьбы с бешенством. — М., 1967. Т. 9. - С.70-79.

60. Селимов, М.А. Современная эпизоотическая ситуация и перспективы элиминации бешенства / М.А. Селимов // Вопросы вирусологии. 1998. -№5.-С. 196-198.

61. Сидоров, Г.Н. Аспекты исторического развития природных очагов бешенства в Европе и Северной Азии / Г.Н. Сидоров. // Ветеринарная патология. 2002. - № 1. - С.21-25.

62. Сидоров, Г.Н. Эпизоотический процесс бешенства: роль диких млекопитающих, периодичность / Г. Н. Сидоров, Д. Г. Сидорова, Н. М. Колычев // Сибирский вестник сельскохозяйственных наук. 2008. - №12. - С.67-73.

63. Система эпизоотологического мониторинга особо опасных, экзотических, малоизученных, в том числе зооантропонозных болезней животных / И.А. Бакулов, A.B. Книзе, В.М. Котляров и др. // Покров, ВНИИВВиМ. -2001.-72 С.1. Список литературы

64. Тенденция распространения бешенства в Восточной Европе / В.В. Макаров, О.И. Сухарев, A.M. Гулюкин и др. // Ветеринария. 2008. -№7.-С. 20-22.

65. Управление Роспотребнадзора по республике Дагестан. Надзор за бешенством. Режим доступа: http//www.dagsen.ru/newsshow.php?nid= 640 (проверено 8.11.2011).

66. Фоменко, М.В. Порядок и оценка результатов лабораторных исследований при диагностике бешенства / М.В. Фоменко, И.К. Тутов // Вестник ветеринарии. 1997. - № 6. - С. 47 - 50.

67. Цыбанов, Я.С. Разработка тест-системы для индикации арктического бешенства на основе методов анализа генома: автореф. дис. . канд. биол. наук / Цыбанов Ярали Содномович Покров, 2001. - 24 с.

68. Черкасский, Б.Л. Эпидемическая ситуация и меры профилактики бешенства / Б.Л. Черкасский, О.С. Хадарцев, A.A. Мовсесянц // Вет. и мед. аспекты зооантропонозов. Покров, 2003. - Ч. 1. - С. 98.

69. Шафаева, P.C. Репродукция вируса бешенства в культуре перевиваемых клеток Vero / P.C. Шафаева, A.B. Фролова // Цитология. 1994. - Т. 36, № 6.-С. 587-588.

70. Эпизоотическая ситуация и меры профилактики бешенства. Режим доступа: http//77.rospotrebnadzor.ru/index.php/press-centr/267-beshenstvo (проверено 8.11.2011).

71. Эпизоотическая ситуация по карантинным и особо опасным болезням животных в Российской федерации за 2009 год / И.К. Рождественский, О.Б. Литвинов, А.Н. Мачнев и др. // ЦЕНОВИК. 2010. - № 5. - С. 6-7.

72. A CD46-binding chimpanzee adenovirus vector as a vaccine carrier / N. Tatsis, A. Blejer, M.O. Lasaro, et al. // Mol. Iber. 2007. - Vol. 15, № 3. - P. 608617.

73. A comparison of two serological methods for detecting the immune response after rabies vaccination in dogs and cats being exported to rabies-free areas /1. Список литературы

74. D.J. Briggs, J.S. Smith, F.L. Mueller, et al. // Biologicals. 1998. - Vol. 26, №4. -P. 347-355.

75. A history estimate and evolutionary analysis of rabies virus variants in China / P. Ming, J. Yan, S. Rayner, et al. // J. Gen. Virol. 2010. - Vol. 91, № 3. - P. 759 - 764.

76. A new quantitative method for rabies virus by detection of nucleoprotein in virion using ELISA / S. Katayama, M. Yamanaka, S. Ota, Y. Shimizu // J. Vet. Med. Sci. 1999. - Vol. 61, № 4. - P. 411-416.

77. A novel double-antigen sandwich enzyme-linked immunosorbent assay for measurement of antibodies against rabies virus / L.M. Yang, L.Z. Zhao, R.L. Hu, et al. // Clin. Vaccine Immunol. 2006. - Vol. 13, № 8. - P. 966-968.

78. A quantitative indirect ELISA to monitor the effectiveness of rabies vaccination in domestic and wild carnivores / A. Servat, M. Feyssaguet, J.L. Morize, et al. // J. Immunol. Methods. 2007. - Vol. 318, № 1-2. - P. 1-10.

79. A rapid RT-PCR method to differentiate six established genotypes of rabies and rabies-related viruses using TaqMan technology / E.M. Black, J.P. Lowings, J. Smith, et al. // J. Virol. Meth. 2002. -Vol. 105, № 1. - P. 25-35.

80. A recombinant human adenovirus vaccine against rabies / C.L. Preve, J.B. Campbell, B.S. Christie, et al. // J. Infect. Dis. 1990. - Vol. 161, Ж 1. - P. 27-30.

81. A single amino acid change in rabies virus glycoprotein increases virus spread and enhances virus pathogenicity / M. Faber, M.L. Faber, A. Papaneri, et al. // J. Virol. 2005. - Vol. 79, № 22. - P. 14141-14148.

82. Adult dogs receiving a rabies booster dose with a recombinant adenovirus expressing rabies virus glycoprotein develop high titers of neutralizing antibodies / T. Tims, D J. Briggs, R.D. Davis, et al. // Vaccine. 2000^ - Vol. 18, №25. -P. 2804-2807.

83. An evaluation of immunofluorescence and PCR methods for detection of rabies in archival carnoy-fixed, paraffin-embedded brain tissue / K. Kulonen, M. Fekadu, S. Whitfield, C.K. Warner // J. Vet. Med. 1999. - Vol. 46, № 3. - P. 151-155.

84. An update on safety studies of SAD В19 rabies virus vaccine in target and nontarget species / A. Vos, A. Neubert, O. Aylan, et al. // Epidemiol. Infect. — 1999.-Vol. 123, №1.- P. 165-175.

85. Andral, L. Etudes experimentales sur la rage en Ethiopie / L. Andral, C. Serie // Ann. Inst. Past. 1957. - Vol. 93, № 4. - P. 475-478.

86. Ante mortem diagnosis of human rabies using saliva samples: Comparison of real time and conventional RT-PCR techniques / T. Nagaraj, J.P. Vasanth, A. Desai, et al. //J. Clin. Virol. 2006. - Vol. 36, № 1. -P. 17-23.

87. Antigenecity of rabies glycoprotein / A. Benmansour, H. Leblois, P. Coulon, et al. // J. Virol. 1991. - Vol. 65, № 8.-P. 4198-4203.

88. Application d'une méthode immunoenzymatique au titrage des anticorps rabiques neutralisants en culture cellulaire / P. Perrin, M. Lafon, P. Versmisse, P. Sureau // J. Biol. Stand. 1985. - Vol. 13, № 1. - P. 35-42.

89. Arai, Y.T. Epidemiology of rabies virus and other lyssaviruses / Y. T. Arai // Nippon Rinsho. 2005. - Vol. 63, № 12. - P. 2167-2172.

90. Arginine or lysine in position 333 of ERA and CVS glycoprotein is necessary for rabies virulence in adult mice / C. Tuffereau, H. Leblois, J. Benejean, et al. // Virology. 1989. - Vol. 172, № 1. - P. 206-212.

91. Atanasiu, P. Epreuve immunoenzymatique pour la détection rapide des anticorps anti rabiques / P. Atanasiu, V. Savy, P. Perrin // Ann. Microbiol. -1977. Vol. 128, № 4. - P. 489-498.

92. Atanasiu, P. Use of an enzyme immunoassay with protein A for rabies antigen and antibody determination / P. Atanasiu, P. Perrin, J.F. Delagneau // Develop. Biol. Stand. 1980. - Vol. 46. - P. 207-215.

93. Aubert, M.F.A. Practical significance of rabies antibodies in cats and dogs / M.F.A. Aubert // Rev. Sci. Tech. Off. Int. Epis. 1992. - Vol. 11, № 3. - P. 735-760.

94. Avirulent mutants of rabies virus and their use as live vaccine / A. Flamand, P. Coulon, F. Lafay, C. Tuffereau // Trends. Microbiol. 1993. - Vol. 1, № 8.- P. 317-320.

95. Bankovskiy, D. Immunogenicity of the ERA G 333 rabies virus strain in foxes and raccoon dogs / D. Bankovskiy, G. Safonov, Y. Kurilchuk // Dev. Biol. -2008.-Vol. 131.-P. 461-466.

96. Barnard, B.J.H. A simple technique for the rapid diagnosis of rabies in formalin-preserved brain / В J.H. Barnard, S.F. Voges // Ondersterpoort J. Vet. Res. 1982. - Vol. 49, № 4. - P. 193-194.1. Список литеуатууы

97. Bat lyssaviruses (Aravan and Khujand) from Central Asia: phylogenetic relationships according to N, P and G gene sequences / I.V. Kuzmin, L.A. Orciari, Y.T. Arai, et al. // Virus Res. 2003. - Vol. 97, № 2. - P. 65-79.

98. Bhandari, S. Epidemiology and control of Rabies in Nepal / Shrawan Bhandari. 2005. - Режим доступа: http://homepage.usask.ca/~shb292/rabies innepal.pdf (проверено 8.11.2011)

99. Bingham, J. Ante-mortem, diagnosis of human rabies by the skin biopsy technique: three case reports from Zimbabwe / J. Bingham, P. Mlambo // Cent. Afr. J. Med. 1995 - Vol. 41, № 8. - P. 258-260.

100. Bingham, J. Canine rabies ecology in southern Africa / J. Bingham // Emerg. Infect. Dis. 2005. - Vol. 11, №9. - P. 1337-1342.

101. Biological and immunogenic properties of rabies virus glycoprotein expressed by canine herpesvirus vector / X. Xuan, K. Tuchiya, I. Sato, et al. // Vaccine. 1998. - Vol. 16, № 9. - P. 969-976.

102. Biological characterization of human monoclonal antibodies to rabies virus / B. Dietzschold, M. Gore, P. Casali, et al. // J. Virol. 1990. -Vol. 64, № 6. -P. 3087-3090.

103. Buckley, S.M. Arbovirus infection of vertebrate and insect cell cultures, with special emphasis on Mokola, Obodhiang, and kotonkan viruses of the rabies serogroup / S.M. Buckley // Ann. N. Y. Acad. Sci. 1975. - Vol. 266. - P. 241-250.

104. Bussereau, F. Reproducible plaquing system for rabies virus in CER cells / F. Bussereau, A. Flamand, D. Pese-Part / J. Virol. Meth. 1982. - Vol. 4, № 4-5.-P. 277-282.

105. Centers for disease control and prevention. Rabies. Режим доступа: http://www.cdc.gov/rabies/transmission/virus.html (проверено 8.11.2011).

106. Characterisation of a novel lyssavirus isolated from Pteroid bats in Australia / A.R. Gould, A.D. Hyatt, R. Lunt, et al. // Virus research. 1998. - Vol. 54, №2.-P. 165-187.1. Список литературы

107. Characterisation of rabies virus nucleocapsids and recombinant nucleocapsid-like structures / F. Iseni, A. Barge, F. Baudin, et al. // J. Gen. Virol. 1998. - Vol. 79, № 12. - P. 2909-2919.

108. Characterization of an antigenic determinant of the glycoprotein that correlates with pathogenicity of rabies virus / B. Dietzschold, W.H. Wunner, TJ. Wiktor, et al. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1983. - Vol. 80, № 1. - P. 70-74.

109. Chronic recrudescent rabies in a cat / D.P. Perl, J.F. Bell, G.F. Moore, et. al. // Proc. Soc. Exp. Biol. Med. 1977. - Vol. 155, № 4. - P. 540-548.

110. Cliquet, F. Development of a fluorescent antibody virus neutralisation test (FAVN test) for the quantitation of rabies-neutralising antibody / F. Cliquet, M. Aubert, L. Sagne // J. Immunol. Methods. 1998. - Vol. 212, № 1. - P. 79-87.

111. Commercial antirabies vaccine used as antigen in a modified enzyme-linked immunosorbent assay / L. Szkudlarek, W. Gut, M. Jankowski, D. Serokowa // Acta Virol. 1982. - Vol. 26, № 1 -2. - P. 98-101.

112. Coons, A.H. Localization of antigen in tissue cells. II. Improvements in a method for the detection of antigen by means of fluorescent antibody / A.H. Coons, M.H. Kaplan // J. Exp. Med. 1950. - Vol. 91, № 1. - p. 1-13.

113. Coslett, D.G. The structural proteins of rabies virus and evidence for their synthesis from separate monocitocistronic RNA species / D.G. Coslett, В.Р. Hollow, J.K. Obijeski // J. Gen. Virol. 1980. - Vol. 49, № 1. - P. 161-180.

114. Cowley, R. Isolation of European bat lyssavirus in the U.K. / R. Cowley, P.R. Heaton // International European Meeting: Abstracts. Paris, 1997. - P. 403.

115. Cytopathic effect induced by rabies virus in McCoy cells / C.A. Consales, R.Z. Mendonca, N.M. Gallina, C.A. Pereira // J. Virol. Methods. 1990. - Vol. 27, №3.-P. 277-285.

116. Dar, V.S. Rapid detection of rotavirus by using colloidal gold particles labeled with monoclonal antibody / V.S. Dar, S. Ghosh, S. Broor // J. Virol. Methods. 1994. - Vol. 47, № 1-2. - P. 51-58.1. Список литературы

117. Detection of rabies virus antigen in dog saliva using a latex agglutination test / S. Kasempimolporn, W. Saengseesom, B. Lumlertdacha, V. Sitprija // J. Clin. Microbiol. 2000. - Vol. 38, № 8. - P. 3098-3099.

118. Determination of efficacy of rabies vaccine in the Saratov region / A.V. Borisov, A.V. Savvin, V.V. Mikhalishin, et al. // Dev. Biol. 2006. - Vol. 125.-P. 217-220.

119. Development of a qualitative indirect ELIS A for the measurement of rabies virus-specific antibodies from vaccinated dogs and cats / F. Cliquet, L.M. McElhinney, A. Servat, et al. // J. Virol. Methods. 2004. - Vol. 117, № 1. -P. 1-8.

120. Development of a real-time, TaqMan reverse transcription-PCR assay for detection and differentiation of Lyssavirus genotypes 1, 5, and 6 / P.R. Wakeley, N. Johnson, L.M. McElhinney, et al. // J. Clin. Microbiol. 2005. -Vol. 43, № 6. - P. 2786-2792.

121. DNA vaccination of mice against rabies virus: effects of the route of vaccination and the adjuvant monophosphoryl lipid A (MPL) / D.L. Lodmell, N.B. Ray, J.T. Ulrich, L.C. Ewalt // Vaccine 2000. Vol. 18, № 11-12. - P. 1059-1066.

122. Efficacy of rabies biologies against new lyssaviruses from Eurasia / C.A. Hanlon, I.V. Kuzmin, J.D. Blanton, et al. // Virus Res. 2005. - Vol. 111, № l.p. 44-54.

123. Elimination of rabies in the Czech Republic / O. Matouch, J Vitasek, Z. Semerad, M. Malena//Dev. Biol. 2006.-Vol. 125.-P. 141-143.

124. ELISA tests for rabies antibody titration in orally vaccinated foxes sampled in the fields / F. Cliquet, L. Sagne, J.L. Schereffer, M.F.A. Aubert // Vaccine. -2000. Vol. 18, № 28. - P. 3272-3279.1. Список литературы

125. Elton, С. Epidemics among sledge dogs in Canadian Arctic and their relation to disease in the arctic fox / C. Elton // Canad. J. Res. 1931. - Vol. 5, № 6. -P. 673-692.

126. Encephalitis caused by a lyssavirus in fruit bats in Australia / G.C. Fraser, P.T. Hooper, A.R. Lunt, et al. // Emerg. Infect. Dis. 1996. - Vol. 2, № 4. -P. 327-331.

127. Ermine, A. Rapid diagnosis of rabies infection by means of a dot hybridization assay / A. Ermine, N. Tordo, H. Tsiang // Molecular and Cellular Probes. 1988. - Vol. 2, № 1. - P. 75-82.

128. Ertl, C.J. T-helper cell epitope of rabies virus nucleoprotein defined by tri and tetrapeptides / C.J. Ertl, B. Dietzschold, L. Otvos // Euro. J. Immunol. -1991.-Vol. 21, № l.-P. 1-10.

129. Evaluation of a rapid immunodiagnostic test kit for rabies virus / B.K. Kang, J.S. Oh, C.S. Lee, et al. // J. Virol. Meth. 2007. - Vol. 145, № 1. - P. 30-36.

130. Evolutionary history and dynamics of dog rabies virus in western and central Africa / C. Talbi, E.C. Holmes, P. de Benedictis, et al. // J. Gen. Virol. 2009 -Vol. 90, №4.-P. 783 -791.

131. Experimental chronic-rabies in the cat / A.F. Murphy, F.J. Bell, S.D. Bauer, et al. // Lab. Invest. 1980. - Vol. 43, № 3. - P. 231-241.

132. Expression of rabies virus glycoprotein from a recombinant vaccinia virus / M.P. Kieny, R. Lathe, R.-Drillien, et al. //Nature. 1984. - Vol. 312, № 5990. -P. 163-166.

133. Expression of the rabies virus glycoprotein in transgenic tomatoes / P.B. McGarvey, J. Hammond, M.M. Dienelt, et al. // Biotechnology. 1995. -Vol. 13, № 13.-P. 1484-1487.1. Список литературы

134. Fekadu, М. Atypical rabies in dogs in Ethiopia. / M. Fekadu // Ethiop. Med. J. 1972. - Vol. 10, № 3. - P. 79-86.

135. First field trial of fox vaccination against rabies with a vaccinia-rabies recombinant virus / P.P. Pastoret, B. Brochier, B. Languet, et al. // Vet. Rec. -1988. Vol. 123, № 19. - P. 481^183.

136. Flamand, A. Use of hybridoma monoclonal antibodies in the detection of antigenic differences between rabies and rabies-related virus proteins / A. Flamand, T.J. Wiktor, H. Koprowski // J. Gen. Virol. 1980. - Vol. 48, № 1. -P. 97-109.

137. Frens, G. Controlled nucleation for the regulation of the particle size in minodisperse gold suspension / G. Frens // Nat. Phys. Sci. 1973.- Vol. 241, № 105.-P. 20-21.

138. Genovese, M.A. Comparaison de deux techniques utilisees pour le diagnostic de la rage: Pimmunofluorescence et rimmunoperoxydase / M.A. Genovese, L. Andral // Rec. Med. Vet. 1978. - Vol. 154, № 7-8. - P. 667671.

139. Goldwasser, R.A. Fluorescent antibody staining of street and fixed rabies virus antigens / R.A. Goldwasser, R.E. Kissling // Proc. Soc. Exp. Biol. Med. -1958. Vol. 98, Jfe 2. - P. 219-223.

140. Grassi, M. Enzyme-linked immunosorbent assay for determination of antibodies to the envelope glycoprotein of rabies virus / M. Grassi, A.I. Wandeler, E. Peterhans // J. Clin. Microbiol. 1989. - Vol. 27, № 3. - P. 899902.

141. Hanham, C.A. Evidence from the anti-idiotypic network that the acetylcholine receptor is a rabies virus receptor / C. A. Hanham, F. Zhao, G.H. Tignor//J. Virol. 1993. - Vol. 67, № 1. - P. 530-542.

142. Hawkes, R.A. dot-immunobinding assay for monoclonal and other antibodies / R. Hawkes, E. Niday, J. Gordon // Analyt. Biochem. 1982. -Vol. 119, № l.-P. 142-147.

143. Helenius, A. Stepwise dissociation of the Semliki forest virus membrane with Triton X-100 / A. Helenius, H. Soderlund // Biochim. Biophys. Acta. -1973. Vol. 307, № 2. - P. 287-300.

144. Hermanson, G.T. Preparation of colloidal-gold-labelled proteins. / G.T. Hermanson // Bio-conjugate Techniques. NY: Academic Press, 1996. - P. 593-604.

145. Hildegund, C.J. Novel vaccines to human rabies / С J. Hildegund // PLoS Negl. Trop. Dis. 2009. - Vol. 3, № 9. - P. 1-9.

146. Host immunity to repeated rabies virus infection in big brown bats / A.S. Turmelle, F.R. Jackson, D. Green, et. al. // J. Gen. Virol. 2010. - Vol. 91, № 9.-P. 2360-2366.

147. Immunization of dogs and cats with a DNA vaccine against rabies virus / J.E. Osorio, C.C. Tomlinson, R.S. Frank, et al. // Vaccine. 1999. - Vol. 17, №9-10.-P. 1109-1116.

148. Immunization of monkeys with rabies ribonucleoprotein (RNP) confers protective itmnunity against rabies / M. Tollis, B. Dietzschold, C. Buona Volia, H.Koprowski//Vaccine.- 1991.-Vol. 9,№2.-P. 134-136.

149. Immunogenic and antigenic properties of recombinant soluble glycoprotein of rabies virus / P.K. Gupta, S. Sharma, S.S. Walunj, et al. // Vet. Microbiol. -2005.-Vol. 108, №3-4.-P. 207-214.1. Список литературы

150. Immunogenic and protective properties of rabies virus glycoprotein expressed by baculovirus vectors / C. Prehaud, K. Takehara, A. Flamand, D.H. Bishop // Virology. 1989. - Vol. 173, № 2. - P. 390-399.

151. Immunohistochemical test for rabies: identification of a diagnostically superior monoclonal antibody / A.N. Hamir, G. Moser, Z.F. Fu, et. al. // Vet. Ree. 1995. - Vol. 136, № 12. - P. 295-296.

152. Induction of protective immunity against rabies by immunization with rabies virus ribonucleoprotein / B. Dietzschold, H.H. Wang, C.E. Rupprecht, et. al. // Proc. Natl. Acad. Sei. USA.- 1987. Vol. 84, № 24. - P. 9165-9169.

153. Intravitam diagnosis of human rabies by PCR using saliva and cerebrospinal fluid / P. Crepin, L. Audry, Y. Rotivel, et al. // J. Clin. Microbiol. 1998. -Vol. 36, №4.-P. 1117-1121.

154. Is the acetylcholine receptor a rabies virus receptor? / T.L. Lentz, T.G. Burrage, A.L. Smith, et al. // Science. 1982. - Vol. 215, № 4529. - P. 182184.

155. Isolamento de virus rabico de morcego insetivoro, Lasyurus borealis / L. F. A.Martorelli, E.A.C. Aquiar, M.F. Almeida, et al. // Rev. saude publ. 1996. -Vol. 30, № l.-P. 101-102.

156. Isolation and purification of a polymeric form of the glycoprotein of rabies virus / B. Dietzschold, J.H. Cox, L.G. Schneider, et al. // J. Gen. Virol. -1978.-Vol. 40, № l.-P. 131-139.

157. Jackson, A.C. Detection of rabies virus RNA in the central nervous system of experimentally infected mice using in situ hybridization with RNA probes / A.C. Jackson, D.L. Reimer, W.H. Wunner // J. Virol. Methods. 1989. - Vol. 25,№ l.-P. 1-11.

158. Kaplan, M.M. A field demonstration of rabies control using chicken-embryo vaccine in dogs / M.M. Kaplan, Y. Goor, E.S. Tierkel // Bull. World Health Organ. 1954. - Vol. 10, № 5. - P. 743-752.

159. Kaplan, M.M. Laboratory techniques in rabies. WHO / M.M. Kaplan, H. Koprowski 3rd ed. - Geneva, 1975. - 365 p.1. Список литературы

160. Kissling, R.E. Growth of rabies virus in non-nervous tissue culture / R.E. Kissling // Proc. Soc. Exp. Biol. Med. 1958. - Vol. 98, № 2. - P. 223-225.

161. Komarov, A. Studies on the pathogenicity of an avianized street rabies virus / A. Komarov, K. Homstein // Cornell. Vet. 1953. - Vol. 43, № 3. - P. 344361.

162. Koprowski, H. Studies on chick-embryo adapted rabies virus. / H. Koprowski, H.R. Cox // J. Immunol. 1948. - Vol. 60, № 4. - P. 533-554.

163. Koprowski, H. The mouse inoculation test / H. Koprowski // Laboratory techniques in rabies. 4th ed. - Geneva: WHO, 1996. - P. 80-87.

164. Kuwert, E. The complement fixation test / E. Kuwert // Laboratory Techniques in Rabies. WHO. 3rd ed. - Geneva, 1973. - P. 124-134.

165. Lafon, M. Antiviral activity of monoclonal antibodies specific for the internal proteins N and NS of rabies virus. / M. Lafon, M. Lafage // J. Gen. Virol. 1987. - Vol. 68, № 12. - P. 3113-3123.

166. Leist, C.H. Potential and problems of animal cells in suspension culture / C.H. Leist, H.P. Meyer, A. J. Fiechter // Biotechnol. 1990. - Vol. 15, № 1-2. - P. 1-46.

167. Lodmell, D.L. Gene gun particle-mediated vaccination with plasmid DNA confers protective immunity against rabies virus infection / D.L. Lodmell, N.B. Ray, L.C. Ewalt // Vaccine. 1998. - Vol. 16, № 2-3. - P. 115-118.

168. Lodmell, D.L. Rabies virus antinucleoprotein antibody protects against rabies virus challenge in vivo and inhibits rabies vims replication in vitro / D.L Lodmell, J.J. Esposito, L.C. Ewalt // J. Virol. 1993. - Vol. 67, № 10. - P. 6080-6086.

169. Low-affinity nerve-growth factor receptor (P75NTR) can serve as a receptor for rabies virus / C. Tuffereau, J. Benejean, D. Blondel, et al. // EMBO J. -1998. Vol. 17, № 24. - P. 7250-7259.

170. Macfarlan, R.I. Mol. Stimulation of cytotoxic T-lymphocyte responses by rabies virus glycoprotein and identification of an immunodominant domain /1. Список литературы

171. R.I. Macfarlan, В. Dietzschold, H. Koprowski // Mol. Immunol. 1986. - Vol. 23, №7.-P. 733-41.

172. Madhusudana, S.N. Development and evaluation of a latex agglutination test for rabies antibodies / S.N. Madhusudana, S. Saraswati // J. Clin. Virol. 2003. -Vol. 27, №2.-P. 129-35.

173. McElhinney, L.M. Diagnostic tools for the detection of rabies virus L.M. McElhinney, A.R. Fooks, A.D. Radford // EJCAP - 2008. - Vol. 18, № 3. - P. 224-231.

174. Mebatsion, T. Enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) using staphylococcal protein for the measurement of rabies in various species / T. Mebatsion, J.W. Frost, H. Krauss // J. Vet. Med. Ser. B. 1989. - Vol. 36, № 7. -P. 532-536.

175. Meslin, F.X. Laboratory Techniques in Rabies / F.X. Meslin, M.M. Kaplan, H. Koprowski // Laboratory techniques in rabies. WHO. 4-th ed. - Geneva, 1996.-P. 9-27.

176. Metlin, A. Genetic characteristics of field and attenuated rabies viruses and molecular epidemiology of rabies in Finland and Russia: academic dissertation / Artem Metlin. Helsinki, 2008. - 81 p.

177. Mokola virus infection: description of recent south African cases and a review of the virus epidemiology / B.F. Von Teichman, W.C. De Koker, S.J. Bosch, et al. // J. S. Afr. Vet. Assoc. 1998. - Vol. 69, № 4. - P. 169-171.1. Список литературы

178. Molecular methods to distinguish between classical rabies and the rabies-related European bat lyssaviruses / E.M. Black, L.M. McElhinney, J.P. Lowings, et al. // J. Virol. Meth. 2000. -Vol. 87, № 1-2. - P. 123-131.

179. Nadin-Davis, S.A. A molecular epidemiological analysis of the incursion of the raccoom strain of rabies-virus into Canada / S.A. Nadin-Davis, F. Muldoon, A.E. Wandeler // Epidemiol. Infect. 2006 - Vol. 134, № 3. - P. 534-547.

180. Nadin-Davis, S.A. Identification of regional variants of the Canadian province of Ontario / S.A. Nadin-Davis, G.A. Casey, A. Wandeler // J. Gen. Virol. 1993. - Vol. 74, № 5. - P. 829-837.

181. Nandi, S. Global perspective of rabies and rabies related viruses: a comprehensive review / S. Nandi, M. Kumar // Asian J. Anim. Vet. Adv. -2011.-Vol. 6.-P. 101-116.

182. New lyssavirus genotype from the lesser mouse-eared bat (Myotis blythi), Kyrghyzstan / Y.T. Arai, I.V. Kuzmin, Y. Kameoka, A.D. Botvinkin // Emerg. Infect. Dis. 2003. - Vol. 9, № 3. - P. 333-337.

183. Newcastle disease virus-vectored rabies vaccine is safe, highly immunogenic, and provides long-lasting protection in dogs and cats / J. Ge, X. Wang, L. Tao, et al. // J. Virol. 2011. - Vol. 85, № 16. - P. 8241 - 8252.1. Список литературы

184. Nicholson, K.G. Enzyme-linked immunosorbent assay: a rapid reproducible test for the measurement of rabies antibody / K.G. Nicholson, H. Prestage // J. Med. Virol. 1982. - Vol. 9, № 1. - P. 43-^5.

185. Nogueira, Y.L. Morphometric analysis of McCoy cells inoculated with cerebrospinal fluid from patients with rabies / Y.L. Nogueira // Mem. Inst. Oswaldo Cruz. 1998. - Vol. 93, № 4. - P. 509-514.

186. One-time intradermal DNA vaccination in ear pinnae one year prior to infection protects dogs against rabies virus I D.L. Lodmell, L.C. Ewalt, M.J. Parnell, et al. // Vaccine. 2006. - Vol. 24, № 4. - P. 412-416

187. Pastoret, P.P. Epidemiology and control of fox rabies in Europe / P.P. Pastoret, B. Brochier// Vaccine. 1999. - Vol. 17, № 13. - P. 1750-1754.

188. Pawan, J.L. The transmission of paralytic rabies in Trinidad by the vampire bat / J.L. Pawan // Ann. Trop. Med. Parasitol. 1936. - Vol. 30, № 1. - P. 101128.

189. Perrin, P. A rabies agglutination test (RAT) for rabies antibody detection / P. Perrin, P. Versmisse, P. Sureau // J. Biol. Stand. 1988. - Vol. 16, № 4. - P. 281-284.

190. Perrin, P. A rapid rabies enzyme immune-diagnosis (RREID) useful and simple technique for the routine diagnosis of rabies / P. Perrin, P.E. Rollin, P. Sureau // J. Biol. Stand. 1986. - Vol. 14, № 3. - P. 217-222.

191. Perrin, P. DNA-based immunization against Lyssaviruses / P. Perrin, Y. Jacob, N. Tordo // Intervirology. 2000. - Vol. 43, № 4-6. - P. 302-311.1. Список литературы

192. Phosphorylation of rabies virus nucleoprotein regulates viral by transcription and replication by modulating leader RNA encapsidation / J. Yang, H. Koprowski, B. Dietzschold, et al. // J. Virol. 1999. - Vol. 73, № 2. - P. 1661-1664.

193. Procedures for reproducible detection of rabies virus antigen mRNA and genome in situ in formalin-fixed tissues / C.K. Warner, S.G. Whitfield, M. Fekadu, H. Ho // J. Virol. Methods 1997. - Vol. 67, № 1. - P. 5-12.

194. Protection of mice with vaccinia virus recombinants that express the rabies nucleoprotein / J.W. Sumner, M. Fekadu, J.H. Shaddock, et. al. // Virology. -1991. Vol. 183, № 2. - P. 703-710.

195. Protective efficacy in mice of post-exposure vaccination with vaccinia virus recombinant expressing either rabies virus glycoprotein or nucleoprotein / H. Fujii, Y. Takita-Sonoda, K. Mifune, et. al. // J. Gen. Virol. 1994. - Vol. 75, №6.-P. 1339-1344.

196. Protein measurement with the Folin phenol reagent / O.H. Lowry, N.J. Rosebrough, A.L. Farr, RJ. Randall // J. Biol. Chem. 1951. - Vol. 193, № 1. -P. 265-275.

197. Rabies human diploid cell vaccine elicits cross-neutralising and cross-protecting immune responses against European and Australian bat lyssaviruses / S.M. Brookes, G. Parsons, N. Johnson, et al. // Vaccine. 2005. - Vol. 23, №32. -P. 4101-4109.

198. Rabies specific production of interleukin-2 by peripheral blood lymphocytes from human rabies vaccine / P. Perrin, M.L. Joffret, C. Zenetti, et al. // Vaccine. 1991. - Vol. 9, № 8. - P. 549-558.

199. Rabies virulence: effect of pathogenicity and sequence characterization of rabies virus mutants affecting antigenic site III of the glycoprotein / I.P. Seif, P. Coulon, P.E. Rollin, A. Flamand // J. Virol. 1985. - Vol. 53, № 3. - P. 926934.

200. Rabies virus nucleoprotein expressed in and purified from insect cells is efficacious as a vaccine / Z.F. Fu, B. Dietzschold, C.L. Schumacher, et. al. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA.- 1991. Vol. 88, № 5. - P. 2001-2005.

201. Raccoon poxvirus live recombinant feline panleukopenia virus VP2 and rabies virus glycoprotein bivalent vaccine / L. Ни, C. Ngichabe, C.V. Trimarchi, et al. II Vaccine. 1997. - Vol. 15, № 12-13. - P. 1466-1472.

202. Recognition of rabies and rabies-related viruses by T cells derived from human vaccine recipients / E. Celis , D. Ou ,B. Dietzschold ,HJ. Koprowski // J. Virol. 1988. - Vol. 62, № 9. - P. 3128-3134.

203. Rudd, R.G. Comparison of sensitivity of BHK-21 and murine neuroblastoma cells in the isolation of a street strain rabies vims / R.J. Rudd, C.V. Trimarchi // J. Clin. Microbiol. 1987. - Vol. 25, № 8. - 145-168.

204. Rudd, RJ. Tissue culture technique for routine isolation of street strain rabies vims / R.J. Rudd, C.V. Trimarchi, M.K. Abelseth // J. Clin. Microbiol. -1980. Vol. 12, № 4. - P. 590-593.

205. Rupprecht, C.E. Rabies re-examined / C.E. Rupprecht, C.A. Hanlon, T. Hemachudha // The Lancet Infectious Diseases. — 2002. — Vol. 2, №6. P. 327343.1. Список литературы

206. Sacramento, D. PCR technigue as an alternative method for diagnosis and molecular epidemiology of rabies virus / D. Sacramento, H. Bourhy, N.Tordo // Molecular and cellular probes. 1991. - Vol. 5, №3. - P. 229-240.

207. Sagara, J. Identification of heat shock protein in the rabies virion / J. Sagara, A. Kawai // Virology. 1992. - Vol. 190, №2. - P. 845-848.

208. Schneider, L.G. The cornea test: a new method for the intra-vital diagnosis of rabies / L.G. Schneider // Zentrabl. Veterinaer. Med. 1969. - Vol. 16, № 1. -P. 24-31.

209. Schoop, U. Praomys (mastomys) natalensis: an African mouse capable of sustaining persistent asymptomatic rabies infection / U. Schoop // Ann. Microbiol. 1977. - Vol. 128, № 2. - P. 289-296.

210. Screening of active Lyssavirus infection in wild bat populations by viral RNA detection on oropharyngeal swabs / J.E. Echevarria, A. Avellon, J. Juste, et al. // J. Clin. Microbiol. 2001. - Vol. 39, № 10. - P. 3678-3683.

211. Sensitivity of different cell lines for rabies virus isolation / M. Tollis, C. Buonavoglia, L. di Trani, E. Vignolo // J. Vet. Med. 1988. - Vol. 35, № 7. -P. 504-508.

212. Servat, A. Tools for rabies serology to monitor the effectiveness of rabies vaccination in domestic and wild carnivores / A. Servat, M. Wasniewski, F. Cliquet // Dev. Biol. 2006. - Vol. 125. - P. 91-94.

213. Smith, A. Bat rabies in the United Kingdom / A. Smith, J. Morris, N. Crowcroft // BMJ. 2005. - Vol. 330, № 7490. - P. 491-492.

214. Smith, J. Case report: Rapid ante-mortem diagnosis of a human case of rabies imported into the UK from the Philippines / J. Smith, L. McElhinney, G. Parsons, et al. // J. Med. Virol.-2003.-Vol. 69, № l.-P. 150-155.1. Список литературы

215. Smith, J.S. A rapid reproducible test for determining rabies neutralizing antibody /J.S. Smith, P.A. Yager, G.M. Baer // Bull World Health Organ. -1973.-Vol. 48, №5. -P. 535-541.

216. Smith, J.S. Molecular epidemiology of rabies in United States / J.S. Smith, L.A. Orciari, P.A. Yager // Semin. Virol. 1995. - Vol. 6, № 4. - P. 387-400.

217. Smith, J.S. New aspects of rabies with emphasis on epidemiology, diagnosis and prevention of the disease in United States /J.S. Smith // Clin. Microbiol. Rew. 1996. - Vol. 9, № 2. - P. 166-176.

218. Sokol, P. Structural proteins of rabies virus / P. Sokol, D. Stance, H. Koprowski // J. Virol. 1971. - Vol. 7, № 2. - P. 241-249.

219. Stantic-Pavlinic, M. Public health concerns in bat rabies across Europe / M. Stantic-Pavlinic // Euro Surveill. 2005. - Vol. 10, № 11. - P. 217-220.

220. Studies on the pathogenesis of rabies in insectinous bats. Role of brown adipose tissue / S.E. Sulkin, P.H. Krutsch, R. Allen, C. Wallis // J. Exp. Med. -1959. Vol. 110, № 3. - P. 369-388.

221. Studies on the structures and antigenic properties of rabies virus glycoprotein analogues produced in yeast cells / S. Sakamoto, T. Ide, S. Tokiyoshi, et al. // Vaccine. 1999. - Vol. 17, № 3. - P. 205-218.

222. Susceptibility of mammalian, avian, fish, and mosquito cell lines to rabies infection / L. Seganti, F. Superti, S. Bianchi, et. al. // Acta. Virol. 1990. -Vol. 34, №2.-P. 155-163.

223. Tepsumethanon, V. Laboratory diagnosis of rabies in Bangkok and the Central Part of Thailand, 2001-2004 / V. Tepsumethanon, V. Sitprija // J. Med. Ass. Thailand Chot. Thangt. 2005. - Vol. 88, № 22. - P. 282-286.

224. Thaenhart, O. Aktueller Stand der epidemioloque, diagnostik und pravention der tollwutt / O. Thaenhart // Prakt. Tierarzt. 1996. - B. 77, № 5. s. 433 -442.

225. The glycoprotein and the matrix protein of rabies virus affect pathogenicity by regulating viral replication and facilitating cell-to-cell spread / R.1. Список литературы

226. Pulmanausahakul, J. Li, M.J. Schnell, В. Dietzschold // J. Virol. 2008. - Vol. 82, №5. - P. 2330-2338.

227. The influence of the type of immunosorbent on rabies antibody EIA; advantages of purified glycoprotein over whole virus / P. Perrin, P. Versmisse, J.F. Delagneau, et al. // J. Biol. Stand. 1986. - Vol. 14, № 2. - P. 95-102.

228. The neural cell adhesion molecule is a receptor for rabies virus / M.I. Thoulouze, M. Lafage, M. Schachner, et al.,// J. Virol. 1998. - Vol. 72, № 9.-P. 7181-7190.

229. The origin and phylogeography of dog rabies virus / H. Bourhy, J.-M. Reynes, E.J. Dunham, et al. // J. Gen. Virol. 2008. - Vol. 89, № 11. - P. 2673 -2681.

230. The rabies-related Yuli virus and identification with panel of the monoclonal antibodies / M.A. Selimov, A.G. Tatarov, A.D. Botvinkin, et al. // Acta virologica. 1989. - Vol. 33, №6. - P. 517-521.

231. The rabies-related Yuli virus and identification with panel of the antinucleocapsid monoclonal antibodies (NC MKAb) / M.A. Selimov, A.G. Tatarov, A.D. Botvinkin, et al. // Rabies Information Exchange. USA, 1987.-P. 5-15.

232. The specificity of rabies virus RNA encapsidation by nucleoprotein / J. Yang, D.C. Hooper, W.H. Wunner, et al. // Virology. 1998. - Vol. 242, № l.-P. 107-117.

233. Toma, B. Fox rabies in France / B. Toma // Euro Surveill. 2005. - Vol. 10, №11.-p. 220-222.

234. Tordo, N. Characteristics and molecular biology of the rabies virus / N. Tordo // Laboratory techniques in rabies. WHO. 4-th ed. - Geneva, 1996. - P. 28-45.

235. Tordo, N. Structure of rabies virus / N. Tordo, O. Poch // Rabies. Boston: Kluwer Academic Publishers, 1988. - P. 25-45.1. Список литературы

236. Tordo, N. The polymerase chain reaction (PCR) for human viral diagnosis / N. Tordo, H. Bourhy, D. Sacramento // PCR technology for Lyssavirus diagnosis. London, 1995. - P. 125-145.

237. Tordo, N. The polymerase chain reaction (PCR) technique for diagnosis, typing and epidemiological studies of rabies / N. Tordo, D. Sacramento, H. Bourhy // Laboratory Techniques in Rabies. Geneva, 1996. - P. 157-170.

238. Tsiang, H. Current concept in rabies / H. Tsiang // Adv. Virus. Res. 1995. -Vol. 2.-P. 2-4.

239. Umoh, J.U. Immunofluorescent staining of rabies virus antigen in formalin fixed tissue after treatment with trypsin / J.U. Umoh, D.C. Blenden // Bull. WHO. 1981. - Vol. 59, № 5. - P. 737-744.

240. Use of a monoclonal antibody for quantitation of rabies vaccine glycoprotein by enzyme immunoassay / M. Lafon, P. Perrin, P. Versmisse, P. Sureau // J. Biol. Stand. 1985. - Vol. 13, № 4. - P. 295-301.

241. Use of anti-glycoprotein monoclonal antibodies to characterize rabies virus in formalin-fixed tissues / C. Warner, M. Fekadu, S. Whitfield, J. Shaddock // J. Virol. Methods. 1999. - Vol. 77, № 1. - P. 69-74.

242. Use of latex agglutination test to determine rabies antibodies in production of rabies antisera in horses / W. Saengseesom, S. Kasempimolporn, S. Akesowan, et al. // Southeast Asian J. Trop. Med. Pub. Health. 2010. - Vol. 41, №6.-P. 1387-1392.

243. Vaughn, J.B. Excretion of street rabies virus in the saliva of dogs / J.B. Vaughn, P. Gerhardt, K.W. Newell // JAMA. 1965. - Vol. 193. - P. 363-368.

244. Velden-de Groot, C.A.M. Microcarrier technology, present status and perspective / C.A.M. Velden-de Groot // Cytotechnology. 1995. - Vol. 18, № 1-2.-P. 51-56.1. Список литературы

245. Wacharapluesadee, S. Nucleic-acid sequence based amplification in the rapid diagnosis of rabies / S. Wacharapluesadee, T. Hemachudha // Lance. -2001. Vol. 358, № 9285. - P. 892-893.

246. Webster, L.T. Early diagnosis of rabies by mouse inoculation. Measurement of humoral immunity to rabies by mouse protection test / L. Webster, J.R. Dawson // Proc. Soc. Exp. Biol. Med. 1935. - Vol. 32, № 4. - P. 570-573.

247. Wictor, T.J. Grouth of rabies virus in cell culture / T.J. Wictor, H.F. Clark // The natural history of rabies. Vol. 1. NY: Academic Press, 1975. — P. 155178.

248. Wiktor, T.J. Radioimmunoassay procedure for rabies binding antibodies / TJ. Wiktor, H. Koprowsky, P. Dixen // J. Immunol. - 1972. - Vol. 109, № 3. -P. 464-470.

249. Wiktor, T. Monoclonal antibodies against rabies virus produced by somatic cell hybridization: detection of antigenic variants / T. Wiktor, H. Koprowski // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1978. - Vol. 75, № 8. - P. 3938-3942.

250. Wilson, M.B. Recent developments in the peroxidase method of conjugating horseradish peroxidase to antibodies / M.B. Wilson, P.K. Nakane // Immunofluorescence and related techniques. Amsterdam: North Holland Publishing Co., 1978. - P. 215-224.

251. World Health Organization Expert Committee on Rabies. Eighth report // World Health Organization Technical Report. Series № 824. - 1992. - 84 p.

252. Zavadova, J. Improving the laboratory diagnosis of rabies and titration of rabies viruses / J. Zavadova, S. Svrcek // Vet. Med. 1994. - Vol. 39, № 11.— P. 663-676.

253. Zimmerman, J. Zur brauchbarkein des cornea tested de Tollwut diagnose / J. Zimmerman // Berl. Munch. Tieraztl. Eachr. 1971. - B. 84, № 9. - S. 172174.