Выявление ротавирусов КРС группы А с помощью ПЦР и их характеристика на основе анализа генома тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.00.06, кандидат биологических наук Чупин, Сергей Александрович

• Чупин, Сергей Александрович
• кандидат биологических наук
• 2003

Оглавление диссертации кандидат биологических наук Чупин, Сергей Александрович

1. ВВЕДЕНИЕ.

2. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.

2.1. Краткая характеристика семейства Reoviridae.

2.2. Основные свойства ротавирусов.

2.2.1. Строение вириона.

2.2.2. Физико-химические свойства.

2.2.3. Структура генома.

2.2.4. Гены и протеины.

2.2.5. Репликация.

2.2.6. Антигенные свойства.

2.3. Эпизоотология ротавирусной инфекции.

2.4. Патогенез ротавирусной инфекции телят.

2.5. Выявление ротавирусов.

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Выявление ротавирусов КРС группы А с помощью ПЦР и их характеристика на основе анализа генома»

Актуальность темы. Ротавирусная инфекция крупного рогатого скота (КРС) является одной из наиболее частых причин возникновения диареи у телят. Данное заболевание зачастую приводит к падежу или вынужденному убою животных. Поражение желудочно-кишечного тракта способствует развитию вторичных инфекций. Поскольку заболевание распространено практически повсеместно, то, несмотря на относительно небольшой процент отхода животных (5-25%), оно причиняет значительный экономический ущерб животноводству.

Вызывающий данное заболевание вирус относится к роду Rotavirus семейства Reoviridae. На основании антигенных свойств белка VP6, который является основным структурным протеином вириона, ротавирусы (РВ) классифицируют на 7 групп (A-G). Крупный рогатый скот поражается ротавирусами групп А, В и С, но ущерб, причиняемый данной инфекцией, почти полностью обусловлен ротавирусами группы А.

Для предотвращения ущерба, наносимого ротавирусной инфекцией, применяют специфическую вакцинопрофилактику. Однако, как было показано различными исследователями, активная иммунизация телят не дает желаемых положительных результатов (9, 134). Поэтому для профилактики ротавирусной инфекции молодняка применяют вакцинацию стельных коров, которая приводит к увеличению количества вируснейтрализующих антител в молозиве, что обеспечивает защиту новорожденных телят (159, 211). По антигенным свойствам внешних белков VP7 и VP4 ротавирусы группы А классифицируют на G- и Р-серотипы (73). Было отмечено, что после иммунизации коров титр колостральных вируснейтрализующих антител, направленных против вирусов гомологичного серотипа, в несколько раз выше, чем титр антител против вирусов гетерологичных серотипов (37, 227). Было показано, что в первые и последующие дни после отела количество колостральных антител в молозиве стремительно уменьшается (35, 133) и вскоре становится недостаточным для пассивной защиты, особенно от ротавирусов гетерологичных серотипов (30, 226). Поэтому телята, полученные от коров, иммунизированных вакциной из одного вируса, имеют более длительную защиту от ротавирусов гомологичного серотипа. Таким образом, чем более выражено антигенное соответствие штамма, используемого для производства вакцины, и полевых изолятов, тем надежнее и продолжительнее защита при вакцинации, а значит, учитывая серотипы циркулирующих на данной территории ротавирусов, можно значительно повысить эффективность профилактики.

Определение серотипов ротавирусов с помощью серологических реакций требует наличия моноклональных антител или референтных штаммов на каждый серотип, что на практике трудновыполнимо. Кроме того, для изучения вируса в серологических реакциях необходимо сначала его выделить в культуре клеток, что для ротавирусов трудоемко и не всегда удается сделать. Вследствие этого распространение серотипов ротавирусов КРС на территории Российской Федерации остается неизученным. Поэтому разработка методов, позволяющих не только выявлять ротавирусы, но и изучать их наиболее важные с точки зрения профилактики биологические свойства, является в настоящее время актуальной задачей.

Одним из перспективных направлений, способствующих решению задачи выявления ротавируса в патологическом материале и установления его биологических характеристик, является метод полимеразной цепной реакции (ПЦР), позволяющий амплифицировать ДНК-копии (кДНК) фрагментов вирусного генома. Последующее определение нуклеотидной последовательности этих фрагментов способствует не только установлению видовой принадлежности исследованного вируса, но и при сопоставлении первичных структур аналогичных участков генома различных изолятов и штаммов с известными серотипами позволяет решать проблему определения серотипов, а также проводить штаммовую дифференциацию РВ КРС, что невозможно осуществить с помощью традиционных серологических реакций. Кроме того, определение степени сходства вновь изученного изолята со структурами исследованных ранее изолятов может помочь установлению возможного источника инфекции.

Перечисленные обстоятельства явились основанием при определении выбора темы диссертационной работы.

Цели и задачи исследований. Основной целью данной работы явилась разработка методов выявления ротавирусов КРС в образцах патологического материала и определения серотипов выявленных полевых изолятов, а также изучение распространения ротавирусов КРС и их серотипов на территории Европейской части Российской Федерации с помощью разработанных методов на основе полимеразной цепной реакции и нуклеотидного секвенирования.

Для достижения поставленной цели необходимо было решить следующие задачи:

Разработать методы: выявления ротавирусов КРС в патологическом материале и определения его наиболее распространенных G-типов на основе ПЦР; определения G-типов РВ КРС на основе ПЦР и нуклеотидного секвенирования; определения наиболее распространенных Р-типов РВ КРС на основе ПЦР; определения Р-типов РВ КРС на основе ПЦР и нуклеотидного секвенирования.

Исследовать полевые изоляты РВ КРС на территории Европейской части Российской Федерации и изучить их генетическую вариабельность; установить, какие G- и Р-типы ротавируса циркулируют на территории Европейской части Российской Федерации; определить частоту встречаемости ротавирусов каждого типа.

Научная новизна и теоретическое значение. Разработаны методы выявления ротавирусов КРС в патологическом материале с помощью ПЦР и определения G- и Р-типов РВ КРС на основе ПЦР и нуклеотидного секвенирования.

В результате проведенных исследований определена нуклеотидная последовательность фрагментов генов VP7 и VP4 выявленных полевых изолятов ротавирусов; 24 последовательности фрагмента гена VP7 депонированы в базе данных GenBank.

Изучена частота встречаемости ротавирусов КРС различных G- и Р-типов на территории Европейской части Российской Федерации.

Исследованы вероятные филогенетические отношения между изученными полевыми изолятами РВ КРС.

Практическая значимость. Практическая значимость проведенных исследований состоит в том, что на основании разработанных методов возможно выявление ротавирусов КРС в патологическом материале и показана возможность определения типов ротавирусов на основе ПЦР и нуклеотидного секвенирования.

Разработанные методы выявления ротавирусов КРС и дифференциации их G- и Р-серотипов на основе ПЦР проверены комиссионно, рассмотрены и одобрены Ученым советом, утверждены директором ВНИИЗЖ и используются для анализа патологического материала, поступающего на диагностическое исследование.

Проведено изучение частоты встречаемости РВ КРС каждого типа на территории Европейской части Российской Федерации.

Во Всероссийской государственной коллекции штаммов микроорганизмов, используемых в ветеринарии и животноводстве депонирован штамм ТЕ87 ротавируса КРС.

Положения, выносимые на защиту: методы выявления и дифференциации серотипов РВ КРС на основе ПЦР и нуклеотидного секвенирования; определение первичной структуры фрагментов генов VP7 и VP4 полевых изолятов РВ КРС и сравнительный анализ установленных структур с аналогичными структурами других штаммов вируса; распространение G- и Р-типов ротавирусов КРС на территории Европейской части Российской Федерации на основании изучения изолятов вируса из различных регионов.

Апробация работы. Основные материалы диссертации доложены на конференциях «Достижения молодых ученых - в ветеринарную практику» ВНИИЗЖ г. Владимир (2000 г.), «Актуальные проблемы патологии свиней, крупного и мелкого рогатого скота» ВНИИЗЖ г. Владимир (2002 г.), «Актуальные проблемы болезней молодняка в современных условиях» г. Воронеж (2002 г.), «Генодиагностика инфекционных заболеваний» г. Москва (2002 г.).

Публикации. По материалам диссертации опубликовано 5 научных работ.

Структура и объем работы. Диссертация изложена на 126 страницах и содержит следующие разделы: введение, обзор литературы, материалы и методы, результаты собственных исследований и их

Заключение диссертации по теме «Вирусология», Чупин, Сергей Александрович

5. ВЫВОДЫ

1. Разработаны методы выявления ротавирусов крупного рогатого скота в патологическом материале и определения G-серотипов ротавирусов КРС с использованием ПЦР и сравнительного анализа нуклеотидных последовательностей фрагментов гена VP7 после секвенирования.

2. Показано, что штаммы РВ КРС, относящиеся к разным G-серотипам, при анализе выбранного участка гена VP7 отличаются друг от друга более чем на 26%, у штаммов одного G-серотипа эти отличия не превышают 19%.

3. Определены G-серотипы 38 выявленных полевых изолятов РВ КРС, из которых 18 изолятов отнесены к серотипу G6, 11 изолятов - к серотипу G8, 7 изолятов - к серотипу G10, 1 изолят - к генотипу G15 и 1 изолят по первичной структуре гена VP7 отличается от всех известных штаммов РВ КРС более, чем на 34% и поэтому, предположительно, относится к ранее не описанному серотипу.

4. Установлено, что большинство изолятов при анализе предсказанных аминокислотных последовательностей имеют структуру белка VP7, характерную для известных ротавирусов, но два изученных изолята имеют делецию одного аминокислотного остатка в позиции 43, а один изолят - вставку двух аминокислотных остатков в положении 73-74.

5. Разработан метод определения наиболее распространенных Р-серотипов РВ КРС (Р1, Р5 и Р11) с помощью ПЦР и метод определения прочих Р-типов РВ путем сравнительного анализа фрагмента гена VP4.

6. При анализе 27 полевых изолятов РВ КРС установлено, что первичная структура фрагмента гена VP4 имеет особенности, характерные для ранее изученных ротавирусов. Показано, что штаммы относящиеся к разным Р-типам, отличаются друг от друга более чем на 27% при сравнении выбранного участка гена VP4, а штаммы одного Р-типа отличаются друг от друга менее чем на 21%, что позволяет определять Р-типы полевых изолятов РВ путем сравнительного анализа нуклеотидной последовательности фрагмента гена VP4.

7. С помощью разработанных методов были определены Р-типы 27 полевых изолятов РВ КРС, из которых тринадцать изолятов относились к типу Р5, 9 изолятов - к типу Р11, 3 изолята - к типу Р7, и по одному изоляту - к типам

Р1 и Р13. Ротавирусы с типами Р7 и Р13 впервые выявлены в патологическом материале от КРС.

8. Изучена частота встречаемости комбинаций G- и Р-типов среди российских изолятов РВ КРС. Наиболее распространенными являются комбинации G6P5 (30,4%) и G10P11 (26,1%), что согласуется с результатами исследований, проведенных в зарубежных регионах. Значительная доля ротавирусов (26,1%) с комбинацией типов G8P5 является отличительной чертой российских изолятов.

9. Изучена частота реассортации геномных сегментов РВ КРС. Установлено, что из 27 полевых изолятов, изученных по генам VP7 и VP4, 9 изолятов были вовлечены в реассортацию сравнительно недавно, что, очевидно, указывает на широкое распространение этого явления в полевых условиях.

10. Показано, что в ротавирусной популяции в пределах одного хозяйства может насчитываться несколько изолятов, отличающихся по первичной структуре генома. Основными факторами, обуславливающими гетерогенность ротавирусной популяции, вероятно, являются точечные мутации, разные источники происхождения членов популяции и реассортация геномных сегментов.

11. Изучение изменений, происходящих в геноме полевых изолятов РВ КРС, в процессе адаптации к культуре клеток MDBK, показало, что исследованные фрагменты белков VP7 и VP4 двух изолятов не претерпели изменений в ходе 9 пассажей, в то время как в гене VP4 одного изолята произошло 8 нуклеотидных замен, из которых 4 приводят к замене аминокислотных остатков, при этом мутации происходили на протяжении первых 5 пассажей, после чего исследованная часть генома РВ оставалась стабильной.

6. ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ

На основании проведенных исследований предлагаются для использования в практической работе рассмотренные и одобренные Ученым советом и утвержденные директором ВНИИЗЖ методики:

Выявление ротавируса КРС и определение его основных G-серотипов с помощью ПЦР фрагмента гена VP7» (утверждена в феврале 2000 г.);

Определение основных Р-серотипов ротавируса КРС с помощью ПЦР фрагмента гена VP4» (утверждена в феврале 2000 г.);

Выявление и определение G-серотипов ротавируса КРС с помощью ПЦР и секвенирования фрагмента гена VP7» (утверждена в апреле 2002 г.);

Определение Р-серотипов ротавируса КРС с помощью ПЦР и секвенирования фрагмента гена VP4» (утверждена в апреле 2002 г.).

Во Всероссийской государственной коллекции штаммов микроорганизмов, используемых в ветеринарии и животноводстве депонирован штамм ТЕ87 ротавируса КРС, выделенный в культуре клеток MDBK.

4. ЗАКЛЮЧЕНИЕ

Ротавирусы являются одной из основных причин, вызывающих диарею у молодняка крупного рогатого скота. Данные агенты отличаются чрезвычайным антигенным разнообразием. Поэтому, наряду с выявлением ротавирусов в патологическом материале, для профилактики этой инфекции, важное значение имеет установление их антигенных свойств, таких как G- и Р-серотипы.

Вследствие того, что ротавирусы отличаются большим антигенным разнообразием, серологические методы определения серотипов оказались малоэффективными. В настоящее время зарубежными исследователями разработано несколько методик по определению типов ротавирусов на основе молекулярно-биологических методов. Однако все эти методики обладают рядом недостатков или ограничений.

Для выявления РВ КРС наиболее распространенных G-серотипов (G6, G8 и G10) и дифференциации этих типов нами была разработана методика с использованием типоспецифических праймеров. При этом G-серотип РВ определяется по размеру фрагмента, полученного в реамплификации. Продукт реакции длиной 300, 600 или 171 п. н. свидетельствует о серотипе G6, G8 или G10. Методика была апробирована на примере референтного штамма Nebraska, культивируемого в культуре клеток MDBK, и позволяет выявлять ротавирус в материале с концентрацией 1,5 lg ТЦДбо/мл.

С помощью данной методики на основе ПЦР было проанализировано 220 проб патологического материала, в результате чего выявлено 37 полевых изолятов РВ КРС. По данным ПЦР были определены G-типы 36 выявленных полевых изолятов. G-серотип одного изолята (Киров/01/99) установить не удалось ввиду отсутствия продуктов реамплификации. Благодаря использованию пула типоспецифических праймеров с помощью данной методики возможно выявление нескольких изолятов в одном образце, что подтвердилось, когда в одной из проб было обнаружено 2 изолята РВ КРС с серотипами G8 и G10.

Была определена последовательность фрагмента гена VP7 выявленных изолятов РВ размером 252 п. н. Сравнительный анализ данного фрагмента штаммов РВ, доносящихся к разным G-типам, позволил установить, что внутри каждого серотипа штаммы отличаются между собой, как правило, не более чем на 19%, а штаммы, принадлежащие к разным серотипам, отличаются друг от друга, как правило, не менее чем на 26%. Анализ данного участка гена VP7 позволяет дифференцировать не только G-серотипы, но даже подтипы. Так, например, штамм KN-4, который относят к подтипу G6s, отличается от референтного штамма NCDV серотипа G6, на 19%. Таким образом, анализ первичной структуры фрагмента гена VP7 выявленных полевых изолятов позволяет установить G-тип РВ. С помощью анализа фрагмента гена VP7 были подтверждены G-типы изолятов, определенные в ПЦР, и установлен G-тип изолята Киров/01/99 (G11). Кроме того, было установлено, что 5 изолятов можно отнести к подтипу G6s.

Поскольку все изоляты, выявленные в разных хозяйствах, и даже некоторые изоляты, выявленные в одном и том же хозяйстве, отличаются друг от друга по первичной структуре выбранного для анализа фрагмента гена VP7, то очевидно, что разработанная методика имеет высокий потенциал для штаммовой дифференциации ротавирусов КРС.

Частота встречаемости различных G-серотипов, показанная в данном исследовании, в целом соответствует распределению G-серотипов, установленному рядом исследователей для других регионов. Так, везде, где проводились подобные исследования (141, 44, 106, 178, 228, 233), преобладающим является серотип G6 (47%), к которому относилось и большинство российских изолятов. Значительную долю среди российских изолятов занимают ротавирусы типа G8 (30%). За рубежом ротавирусы этого типа встречаются относительно редко. Тип G10 более характерен для зарубежных, чем для российских изолятов (19%).

Для дифференциации менее распространенных G-типов РВ КРС была разработана методика с использованием праймеров, универсальных для ротавирусов всех 14 G-серотипов, известных на данный момент. При этом для реамплификации используется продукт амплификации, полученный при исследовании материала с типоспецифическими праймерами.

С помощью нашей методики с участием универсальных праймеров были выявлены изоляты Собинка/12/01 и Гав.-Посад/10/02, и была определена первичная структура фрагмента гена VP7 этих изолятов размером 528 и 514 п. н. соответственно. Изолят Собинка/12/01 отличается от всех известных на данный момент штаммов более чем на 33,9%, что не позволяет отнести его ни к одному известному G-типу. Вероятно, данный изолят является представителем нового не описанного до сих пор G-серотипа.

Изолят Гав.-Посад/10/02 проявляет максимальный уровень гомологии со штаммом РВ КРС Нд18 (88%), который был выделен только в 2000 году, и информация о котором отсутствовала на момент разработки методики. Данный штамм предлагается относить к генотипу G15. Очевидно, что российский изолят относится к тому же типу.

Анализ предсказанной аминокислотной последовательности протеина VP7 выявленных изолятов показал, что он обладают рядом особенностей, характерных для ротавирусов группы А. А именно, в позиции 30 а.о. присутствует аминокислотный остаток метионина, кодируемый вторым инициирующим кодоном. Почти все изоляты имеют потенциальный сайт гликозилирования в позиции 69-71 а.о. Исключение составляет изолят Киров/01/99, у которого данный сайт отсутствует. Сохраняются консервативные аминокислотные остатки пролина в позициях 58 и 86 и цистеина в позиции 82 (за исключением протеина VP7 изолята Собинка/09/99/В, имеющего в позиции 82 аминокислотный остаток аргинина). Почти все изоляты имеют в позициях 57-62 а.о. консервативный мотив LPXTGS, который отвечает за удерживание протеина VP7 в ЭПР. Исключение составляет изолят Собинка/01/01/Д, у которого а.о. лейцина в позиции 57 заменен на а.о. серина. У всех выявленных полевых изолятов позицию 51 а.о. занимает глутамин, который является сайтом расщепления белка VP7 во время созревания этого белка в цитоплазме инфицированной клетки. Уникальной особенностью по сравнению с ранее изученными штаммами РВ обладают протеины VP7 изолятов Шуя/04/99 и Шуя/12/98 - в их последовательности отсутствует один аминокислотный остаток, который у других изолятов занимает позицию 43. Значительно выделяется на фоне других изолят Собинка/12/01. Ген VP7 данного изолята имеет вставку из 6 нукпеотидов в позициях 217-222, которые кодируют 2 аминокислотных остатка в позициях 73-74 (треонин и изолейцин). Потенциальный сайт гликозилирования в позиции 69-71 а.о., который присутствует у большинства изученных ротавирусов, у изолята Собинка/12/01 вследствие вставки 6 нукпеотидов смещен на 2 аминокислотных позиции. Кроме того, имеется и дополнительный потенциальный сайт гликозилирования в позиции, 147-149 а.о.

Для определения наиболее распространенных Р-серотипов ротавирусов КРС (Р1, Р5 и Р11) была разработана методика с использованием праймеров, комплементарных участкам гена VP4, консервативным у ротавирусов данных Р-типов. При этом размер продукта реамплификации (583, 494 и 364 п. н.) соответствует типам Р1, Р5 и Р11. С помощью данной методики были определены Р-типы 12 выявленных полевых изолятов. Была определена нуклеотидная последовательность фрагмента гена VP4 этих изолятов размером 300 п. н. Сравнительный анализ определенного фрагмента полевых изолятов и штаммов РВ КРС, относящихся к типам Р1, Р5 и Р11 позволил подтвердить результаты ПЦР для всех изолятов, кроме двух. Как показал сравнительный анализ этих изолятов и штаммов РВ, относящихся к различным Р-типам, один из этих изолятов (Меленки/11/99) относится к типу Р7, а другой (Киров/01/99) - к типу Р13. В одном случае в образце патологического материала было дифференцировано одновременно 2 Р-типа.

Для определения менее распространенных Р-типов ротавирусов КРС была разработана методика с использованием универсальных праймеров, способных отжигаться на участках гена VP4 ротавирусов всех известных на данный момент Р-типов. Р-тип ротавируса в этом случае определяется с помощью сравнительного анализа фрагмента гена VP4.

С помощью данной методики были определены Р-типы 15 изолятов. Анализ предсказанной аминокислотной последовательности белка VP4 показал, что все изоляты имели особенности, характерные для ротавирусов группы А, а именно, показано присутствие консервативных остатков цистеина в позиции 380 а.о. и пролина в позициях 390, 395, 435, 451 и 455 а.о.

Распределение российских изолятов по Р-типам в целом соответствует результатам зарубежных исследователей для различных регионов (44, 109, 178, 181, 233). Так, везде наиболее распространенным является тип Р5, менее часто выявляются ротавирусы типа Р11 и еще реже встречаются ротавирусы типа Р1. Исключение составляют изоляты с типами Р7 и Р13. На данный момент в литературе нет данных о выявлении РВ КРС с такими Р-типами, в то время как в нашем исследовании было выявлено 3 изолята с типом Р7 и один изолят с типом Р13.

Анализ первичной структуры фрагмента гена VP4 изолятов РВ КРС показывает, что разработанные методики могут применяться не только для дифференциации Р-типов, но также и для штаммовой дифференциации.

Анализ распространения различных комбинаций G- и Р-типов показывает, что результаты, полученные для России и для зарубежных регионов, в основном совпадают. Наиболее распространенной комбинацией является G6P5. Нередко встречается также комбинация G10P11. Отличительной чертой российских изолятов является значительная доля комбинации типов G8P5, а также то, что у всех изолятов, относящихся к типу G10, он сочетается исключительно с Р-типом 11.

Сравнительный анализ генов VP7 и VP4 показал, что из 27 изолятов, изученных по обоим генам, 9 изолятов были вовлечены в процесс реассортации геномных сегментов сравнительно недавно. Это показывает, что реассортация является обычным явлением в природных условиях.

Анализ генома изолятов, выявленных в отдельных хозяйствах позволил установить некоторые особенности структуры ротавирусной популяции. В частности, было показано, что ротавирусная популяция является гетерогенной. Гетерогенность ротавирусной популяции складывается, вероятно, под влиянием трех основных факторов: точечные мутации, разные источники происхождения членов популяции, реассортация геномных сегментов.

Были изучены изменения первичной структуры генов VP7 и VP4 изолятов, происходящие в ходе адаптации ротавирусов в культуре клеток. Из трех изученных изолятов изменения в гене VP7 отмечены для одного (1 нуклеотидная замена), а изменения в гене VP4 - для другого изолята (8 нуклеотидных замен).

По результатам проведенных исследований разработано 4 методики, которые были утверждены директором ВНИИЗЖ: «Выявление ротавируса КРС и определение его основных G-серотипов с помощью ПЦР фрагмента гена VP7», «Определение основных Р-серотипов ротавируса КРС с помощью ПЦР фрагмента гена VP4», «Выявление и определение G-серотипов ротавируса КРС с помощью ПЦР и секвенирования фрагмента гена VP7», «Определение Р-серотипов ротавируса КРС с помощью ПЦР и секвенирования фрагмента гена VP4». Все разработанные методики используются в настоящее время для тестирования патологического материала, поступающего на исследование в Лабораторию молекулярной диагностики болезней крупного рогатого скота.

Список литературы диссертационного исследования кандидат биологических наук Чупин, Сергей Александрович, 2003 год

1. Гращук В.Н. кДНК-гибридизационные зонды для идентификации рота- и коронавирусов крупного рогатого скота: Автореф. дис. . канд. биол. наук.-М., 1992.-20 с.

2. Грибанов О.Г., Щербаков А.В., Перевозчикова Н.А. и др. Использование аэросила А-300 и фильтров GF/F (GF/C) для очистки фрагментов ДНК, ДНК плазмид и РНК // Биохимия. 1996. - Т. 61, вып. 6. -С. 1064-1070.

3. Грибанов О.Г., Щербаков А.В., Перевозчикова Н.А. и др. Простой метод выделения и очистки РНК // Биоорган, химия. 1997. - Т. 23, №9. - С. 763-765.

4. Мищенко В.А., Прохорятова Е.В., Смелянская М.В. и др. Индикация рота- и коронавирусов методом флюоресцентных зондов // Вирусные и микробные болезни животных: Сб. науч. тр. Владимир, 1995. - С. 125-127.

5. Сюрин В.Н., Белоусова Р.В., Фомина Н.В. Ветеринарная вирусология. 2-е изд. -М.: Агропромиздат, 1991. -431 с.

6. Сюрин В.Н., Самуйленко А.Я., Соловьев Б.В., Фомина Н.В. Вирусные болезни животных. М.: ВНИТИБП, 1998. - 928 с.

7. Цилинский Я.Я. Популяционная структура и эволюция вирусов. М.: Медицина, 1988. - 240 с.

8. Acres S.D., Babiuk L.A. Studies оп rotaviral antibody in bovine serum and lacteal secretions, using radioimmunoassay // J. Am. Vet. Med. Assoc. -1978.-V. 173.-P. 555-559.

9. Albert M.J., Unicomb L.E., Tziperi S.R., Bishop R.F. Isolation and serotyping of animal rotaviruses and antigenic comparison with human rotaviruses //Arch. Virol. -1987. -V. 93, N 1-2. P. 123-130.

10. Allen A.M., Desselberger U. Reassortment of human rotaviruses carrying rearranged genomes with bovine rotavirus // J. Gen. Virol. 1985. - V. 66. - P. 2703-2714.

11. Almeida J.D., Hall Т., Babatvala J.E. e.a. The effect of trypsin on the growth of rotavirus // J. Gen. Virol. 1978. - V.40. - P. 213-218.

12. Almeida J.D., Bradburne A.F., Wreghitt T.G. The effect of sodium thiocyanate on virus structure // J. Med. Virol. -1979. V. 4. - P 269-277.

13. Altenburg B.C., Graham K.Y., Estes M.K. Ultrastructural study of rotavirus replication in cultured cells // J. Gen. Virol. -1980. V. 46. - P. 75-85.

14. Al-Yousif Y., Anderson J., Chard-Bergstrom C. e.a. Evaluation of a latex agglutination kit (Virogen Rotatest) for detection of bovine rotavirus in fecal samples // Clin. Diagn. Lab. Immunol. 2001. -V. 8, N3. - P. 496-498.

15. Arias C. F., Lopez S., Espejo R. T. Gene protein products of SA11 simian rotavirus genome // J. Virol.- 1982. V. 41. - P. 42-50.

16. Arias C.F., Lopez S., Bell J.R., Strauss J.H. Primary structure of the neutralization antigen of simian rotavirus SA11 as deduced from cDNA sequence // J. Virol. 1984. - V. 50. - P. 657-661.

17. Au K.-S., Chan W. K., Burns J. W., Estes M. K. Receptor activity of rotavirus nonstructural glycoprotein NS28 // J. Virol. 1989. - V. 63. -P. 45534562.

18. Au K.-S., Mattion N. M., Estes M. K. A subviral particle binding domain on the rotavirus nonstructural glycoprotein NS28 //Virology. 1993. - V. 194. - P. 665-673.

19. Bastardo J.E., Holmes I.G. Attachment of SA-11 rotavirus to erythrocyte receptors // Infect. Immun. -1980. -V. 29. P. 1134-1140.

20. Beards G.M.F. Polymorphism of genomic RNAs within rotavirus serotypes and subgroups // Arch. Virol. 1982. - V. 74. - P. 65-70.

21. Bican P., Cohen J., Charpilienne A., Scherrer R. Purification and characterization of bovine rotavirus cores // J. Virol. 1982. - V. 43. - P. 11131117.

22. Bishai F.R., Blaskovic P., Goodwin D. Physicochemical properties of Nebraska calf diarrhea virus hemagglutinin // Can. J. Microbiol. 1978. - V. 24. - P. 1425-1430.

23. Both G.W., Mattick J.S., Bellamy A.R. Serotype-specific glycoprotein of simian rotavirus: coding assignment and gene sequence // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1983. - V. 80, N10. - P. 3091 -3095.

24. Both G.W., Siegman L.J., Bellamy A.R. e.a. Comparative sequence analysis of rotavirus genomic segment 6 the gene specifying viral subgroups 1 and 2 // J. Virol. -1984. -V. 51, N1. - P. 97-101.

25. Boyle J.F., Holmes K.V. RNA-binding proteins of bovine rotavirus // J. Virol. -1986. -V. 58. P. 561-568.

26. Bremont M., Charpilienne A., Chabanne D., Cohen J. Nucleotide sequence and expression in Escherichia coli of the gene encoding the nonstructural protein NCVP2 of bovine rotavirus // Virology. 1987. - V. 161. - P. 138-144.

27. Bridger J.C., Woode G.N. Neonatal calf diarrhoea: identification of a reovirus-like (rotavirus) agents in faeces by immunofluorescense and immune electron microscopy // British Veterinary Jounal. 1975. - V. 131. - P. 528-535.

28. Bridger J.C., Woode G.N. Characterization of two particle types of calf rotavirus // J. Gen. Virol. 1976. -V. 31. - P. 245-250.

29. Bridger J.C. Non-group A rotaviruses // Viral Infections of the Gastrointestinal Tract / Ed. by A.Z. Kapikian. 2nd ed. - New York: Marcel Dekker, Inc., 1994. - P. 369-408.

30. Brottier P., Nandi P., Bremont M., Cohen J. Bovine rotavirus segment 5 protein expressed in the baculovirus system interacts with zinc and RNA // J. Gen. Virol.-1992.-V. 73.-P. 1931-1938.

31. Browning G.F., Fitzgerald T.A., Chalmers R.M., Snodgrass D.R. A novel group A rotavirus G serotype: serological and genomic characterization of equine isolate F123 // J. Clin. Microbiol. Rev. -1991. -V. 29, N9. P. 2043-2046.

32. Brussow H., Hilpert H., Walther I. e. a. Bovine milk immunoglobilins for passive immunity to infantile rotavirus gastroenteritis // J. Clin. Microbiol. 1987. -V. 25, N6. - P. 982-986.

33. Brussow H., Marc-Martin S., Eichhom W. e.a. Characterization of a second bovine rotavirus serotype // Arch. Virol. 1987. - V. 94, N1-2. - P. 29-41.

34. Brussow H., Walther I., Fryder V. e. a. Cross-neutralizing antibodies induced by single vaccination of cows with rotavirus // J. Gen. Virol. 1988. - V. 69, Pt. 7.-P. 1647-1658.

35. Brussow H., Eichhom W., Rohwedder A. e.a. Cattle develop neutralizing antibodies to rotavirus serotypes which could not be isolated from faeces of symptomatic calves // J. Gen. Virol. 1991. - V. 72. - P. 1559-1567.

36. Brussow H., Nakagomi 0., Gema G., Eichhom W. Isolation of avianlike group A rotavirus from a calf with diarrhea // J. Clin. Microbiol. 1992. - V. 30. -P. 67-73.

37. Brussow H., Nakagomi O., Minamoto M., Eichhorn W. Rotavirus 993/83, isolated from calf faeces, closely resembles an avian rotavirus // J. Gen. Virol. -1992.-V. 73.-P. 1873-1875.

38. Carpio M., Bellamy J.E.C., Babiuk L.A. Comparative virulence of different bovine rotavirus isolates // Can. J. Сотр. Med. 1981. - V. 45. - P. 3842.

39. Chan W.-K., Penaranda M.E., Crawford S.E., Estes M.K. Two glycoproteins are produced from the rotavirus neutralization gene // Virology. -1986. V. 151, N2. - P. 243-252.

40. Chan W.-K., Au K.S., Estes M.K. Topography of the simian rotavirus nonstructural glycoprotein (NS28) in the endoplasmic reticulum membrane II Virology. 1988. -V. 164. - P. 435-442.

41. Chang K.O., Parwani A.V., Saif L.J. The characterization of VP7 (G type) and VP4 (P type) genes of bovine group A rotaviruses from field samples using RT-PCR and RFLP analysis //Arch. Virol. 1996. -V. 141. - P. 1727-1739.

42. Chasey D. Different particle types in tissue culture and intestinal epithelium infected with rotavirus // J. Gen. Virol. 1977. - V. 37. - P. 443-451.

43. Chen D., Gombold J. S., Ramig R. F. Intracellular RNA synthesis directed by temperature-sensitive mutants of simian rotavirus SA11 // Virology. -1990. -V. 178. P. 143-151.

44. Chen D., Ramig R.F. Rescue of infectivity by in vitro transcapsidation of rotavirus single-shelled particles //Virology. 1993. -V. 192. - P. 422-429.

45. Chen D., Ramig R.F. Rescue of infectivity by sequential in vitro transcapsidation of rotavirus core particles with inner capsid and outer capsid protein //Virology. 1993. -V. 194. - P. 743-751.

46. Chen D., Zeng C.Q.Y., Wentz M.J. e.a. Template-dependent, in vitro replication of rotavirus RNAII J. Virol. -1994. V. 68. - P. 7030-7039.

47. Chinsangaram J., Akita G.Y., Castro A.E., Osburn B.I. PCR detection of group A bovine rotaviruses in feces II J. Vet. Diagn. Invest. 1993. - V.5. - P.516-521.

48. Clapp L.L., Patton J.T. Rotavirus morphogenesis: domains in the major inner capsid protein essential for binding to single-shelled particles and for trimerization //Virology. -1991. -V. 180. P. 697-708.

49. Clark S.M., Spendlove R.S., Barnett B.B. Role of two particle types in bovine rotavirus morphogenesis // J. Virol. -1980. V. 34. - P. 272-276.

50. Clark S.M., Roth J.R., Clark M.L. e.a. Trypsin enhancement of rotavirus infectivity: mechanism of enhancement II J. Virol. 1981. - V. 39, N3. - P. 816822.

51. Cohen J. Ribonucleic acid polymerase activity associated with purified calf rotavirus // J. Gen. Virol. 1977. - V. 36. - P. 395-402.

52. Cohen J., Laporte J., Charpilienne A., Scherrer R. Activation of rotavirus RNA polymerase by calcium chelation II Arch. Virol. 1979. -V. 60. - P. 177-186.

53. Cohen J., Charpilienne A., Chilmonczyk S., Estes M.K. Nucleotide sequence of bovine rotavirus gene 1 and expression of the gene product in baculovirus//Virology.-1989,-V. 171, N1.-P. 131-140.

54. Crawford S.E., Labbe M., Cohen J. e.a. Characterization of virus-like particles produced by the expression of rotavirus capsid proteins in insect cells // J. Virol. -1994. V. 68. - P. 5945-5952.

55. Derbyshire В., Woode G.N. Classification of rotaviruses: report from the World Health Organization/Food and Agriculture Organizaioin Comparative Virology Program II J. Am. Vet. Med. Assoc. 1978. -V. 173, N5, Pt.3. - P. 123125.

56. Desselberger U., McCrae M.A. The rotavirus genome II Rotaviruses I Ed. by R.F. Ramig. Berlin: Springer-Verlag, 1994. - P. 31-66.

57. Dormitzer P.R., Greenberg H.B. Calcium chelation induces a conformational change in recombinant herpes simplex virus-1 -expressed rotavirus VP7 // Virology. 1992. - V. 189. - P. 828-832.

58. Dunn S.J., Greenberg H.B., Ward R.L. e.a. Serotypic and genotypic characterization of human serotype 10 rotaviruses from asymptomatic neonates II J. Clin. Microbiol. 1993,- V. 31. - P. 165-169.

59. Elias M.M. Separation and infectivity of two particle types of human rotavirus//J. Gen. Virol. 1977.-V. 37. - P. 191-194.

60. Ericson B.L., Graham D.Y., Mason B.B., Estes M.K. Identification, synthesis, and modifications of simian rotavirus SA11 polypeptides in infected cells II J. Virol. 1982. - V. 42. - P. 825-839.

61. Ericson B.L., Graham D.Y., Mason B.B. e.a. Two types of glycoprotein precursors are produced by the simian rotavirus SA11 // Virology. 1983. - V. 127.-P. 320-332.

62. Espejo R.T., Lopez S., Arias C. Structural polypeptides of simian rotavirus SA11 and the effect of trypsin II J. Virol. 1981. - V. 37. - P. 156-160.

63. Estes M.K., Graham D.Y., Smith E.M., Gerba C.P. Rotavirus stability and inactivation II J. Gen. Virol. 1979. - V. 43. - P. 403-409.

64. Estes M.K., Graham D.Y., Mason B.B. Proteolytic enhancement of rotavirus infectivity: molecular mechanisms It J. Virol. 1981. - V.39, N3. - P. 879-888.

65. Estes M.K., Graham D.Y., Dimitrov D.H. The molecular epidemiology of rotavirus gastroenteritis II Prog. Med. Virol. 1984. - V. 29. - P. 1-22.

66. Estes M.K., Crawford S.E, Penaranda M. E. e.a. Synthesis and immunogenicity of the rotavirus major capsid antigen using a baculovirus expression system // J. Virol. 1987. -V. 61. - P. 1488-1494.

67. Estes M.K., Tanaka T. Nucleic acid probes for rotavirus detection and characterization II DNA probes for infectious diseases I Ed. by F. Tenomer. Boca Ration: CRC Press, 1989. - P. 79-100.

68. Estes M.K., Cohen J. Rotavirus gene structure and function // Microbiological Reviews. -1989. -V. 53, N4. P. 410-449.

69. Estes M.K. Rotaviruses and their replication // Fields Virology / Ed. by B.N. Fields, D.M. Knipe, P.M. Howley. 3rd ed. - Philadelphia: Lippincott-Raven Publishers, 1996. - P. 1625-1655.

70. Evans R.M., Hollenberg S.M. Zinc fingers: gilt by association // Cell. -1988. -V. 52. P. 1-3.

71. Fernelius A.L., Ritchie A.E., Classick L.G. e.a. Cell culture adaptation and propagation of a reovirus-like agent of calf diarrhea from a field outbreak in Nebraska//Arch. Ges. Virusforschung. -1972. -V. 37. P. 114-130.

72. Fiore L., Greenberg H.B., Mackow E.R. The VP8 fragment of VP4 is the rhesus rotavirus hemagglutinin //Virology. -1991. -V. 181. P. 553-563.

73. Flewett Т.Н., Bryden A.S., Savies H.A. e.a. Relation between viruses from acute gastroenteritis of children and new born calves // Lancet. 1974. - V. 2.-P. 61-63.

74. Flewett Т.Н., Woode G.N. The rotaviruses // Arch. Virol. 1978. - V. 57, N1.-P. 1-23.

75. Fukai K., Sakai Т., Hirose M., Itou T. Prevalence of calf diarrhea caused by bovine group A rotavirus carrying G serotype 8 specificity // Vet. Microbiol. -1999. -V. 66, N4. P. 301-311.

76. Fukudome K., Yoshie O., Konno T. Comparison of human, simian, and bovine rotaviruses for requirement of sialic acid in hemagglutination and cell adsorption // Virology. 1989. - V. 172. - P. 196-205.

77. Fukuhara N., Yoshie O., Kitaoka S., Konno T. Role of VP3 in human rotavirus internalization after target cell attachment via VP7 // J. Virol. 1988. - V. 62, N7.-P. 2209-2218.

78. Furuichi Y., Morgan M.A., Muthukrishnan S., Shatkin A.F. Reovirus messenger RNA contains a methylated, blocked 5'-terminal structure; m7GpppGmC // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. -1975. V. 72. - P. 362-366.

79. Gentsch J.R., Das B.K., Jiang B. e.a. Similarity of the VP4 protein of human rotavirus strain 116E to that of the bovine B223 strain // Virology. 1993. -V. 194. - P. 424-430.

80. Gerna G., Arista S., Passarani N. e.a. Electropherotype heterogeneity within serotypes of human rotavirus strains circulating in Italy // Arch. Virol. 1987. -V. 95.-P. 129-135.

81. Gombold J.L., Ramig R.F. Analysis of reassortment of genome segments in mice mixedly infected with rotaviruses SA11 and RRV // J. Virol. -1986.-V. 57.-P. 110-116.

82. Gombold J.L., Ramig R.F. Genetics of the rotaviruses // Rotaviruses / Ed. by R.F. Ramig. Berlin: Springer-Verlag, 1994. - P. 129-177.

83. Gorziglia M., Esparza J. Poly (A) polymerase activity in human rotavirus // J. Gen. Virol. -1981. -V. 53. P. 357-362.

84. Gorziglia M., Larea C., Liprandi F., Esparza J. Biochemical evidence for the oligomeric (possibly trimeric) structure of the major inner capsid polypeptide (45K) of rotaviruses // J. Gen. Virol. 1985. -V. 66. - P. 1889-1900.

85. Gorziglia M., Green K.Y., Nishikawa K. e.a. Sequence of the forth gene of human rotaviruses recovered from asymptomatic or symptomatic infections // J. Virol. 1988. -V. 62. - P. 2978-2984.

86. Gorziglia M., Larralde G., Kapikian A.Z., Chanock R.M. Antigenic relationship among human rotaviruses as determined by outer capsid protein VP4 // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1990. -V. 87. - P. 7155-7159.

87. Gouvea V., Glass R. I., Woods P. e.a. Polymerase chain reaction amplification and typing of rotavirus nucleic acid from stool specimens // J. Clin. Microbiol. -1990. V. 28, N2. - P. 276-282.

88. Gouvea V., Ramirez C., Li B. e.a. Restriction endonuclease analysis of the VP7 genes of human and animal rotaviruses II J. Clin. Microbiol. 1993. - V. 31, N4. - P. 917-923.

89. Gouvea V., Santos N., Timenetsky M.C. Identification of bovine and porcine rotavirus G types by PCR // J. Clin. Microbiol. 1994. - V. 32, N5. - P. 1338-1340.

90. Greenberg H.B., Kalica A.R., Wyatt R.G. e.a. Rescue of noncultivatable human rotavirus by gene reassortment during mixed infection with ts mutants of a cultivatable bovine rotavirus // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1981. - V. 78. - P. 420-424.

91. Greenberg H.B., Flores J., Kalica A.R. e.a. Gene coding assignments for growth restriction, neutralization and subgroup specificities of the W and DS-1 strains of human rotavirus II J. Gen. Virol. -1983. V. 64. - P. 313-320.

92. Hardy M.E., Woode G.N., Xu Z., Gorziglia M. Comparative amino acid sequence analysis of VP4 for VP7 serotype 6 bovine rotavirus strains NCDV, B641, and UK//J. Virol. 1991. -V. 65, N10. - P. 5535-5538.

93. Hardy M.E., Gorziglia M., Woode G.N. Amino acid sequence analysis of bovine rotavirus B223 reveals a unique outer capsid protein VP4 and confirms a third bovine VP4 type // Virology. -1992. V. 191. - P. 291 -300.

94. Heath R., Birch C., Gust I. Antigenic analysis of rotavirus isolates using monoclonal antibodies specific for human serotypes 1, 2, 3, and 4, and SA11 II J. Gen. Virol. 1986. -V. 67. - P. 2455-2466.

95. Heimberger-Jones M., Patton J.T. Characterization of subviral particles in cells infected with simian rotavirus SA11 // Virology. 1986. - V. 155. - P. 655665.

96. Holmes I.H. Rotaviruses II The Reoviridae I Ed. by W.K. Joklik. -New York: Plenum Publishing Corp., 1983. P. 359-423.

97. Hoshino Y., Sereno M.M., Midthun K. e.a. Independent segregation of two antigenic specificities (VP3 and VP7) involved in neutralization of rotavirus infectivity II Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1985. - V. 82. - P. 8701-8704.

98. Hua J., Chen X., Patton J.T. Deletion mapping of the rotavirus metalloprotein NS53 (NSP1): the conserved cysteine-rich region is essential for virus-specific RNA binding II J. Virol. 1994. - V. 64. - P. 3990-4000.

99. Hundley F., Biryahwaho В., Gow M., Desselberger U. Genome rearrangements of bovine rotavirus after serial passage at high multiplicity of infection //Virology. 1985. -V. 143. - P. 44-103.

100. Hurtado 0„ Parwani A.V., Tineo A. e.a. Serotypic analysis of group A bovine rotavirus field specimens using G1-, G2-, and G3-specific monoclonal antibodies in ELISA// J. Vet. Diagn. Invest. -1995. -V. 7. P. 251-254.

101. Hussein H.A., Parwani A.V., Rosen B.I. e.a. Detection of rotavirus serotypes G1, G2, G3, and G11 in feces of diarrheic calves by using polymerase chain reaction-derived cDNA probes II J. Clin. Microbiol. 1993. - V. 31, N9. - P. 2491-2496.

102. Hussein H.A., Frost E., Talbot B. e. a. Comparison of polymerase chain reaction and monoclonal antibodies for G-typing of group A bovine rotavirus directly from fecal material // Vet. Microbiol. 1996. - V. 51. - P. 11-17.

103. Imai M., Richardson M.A., Ikegami N. e.a. Molecular cloning of double-stranded RNA virus genomes II Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1983. - V. 80. - P. 373-377.

104. Isegawa Y., Nakagomi O., Nakagomi T. e.a. Determination of bovine rotavirus G and P serotypes by polymerase chain reaction II Mol. Cel. Probes. -1993.-V. 7.-P. 277-284.

105. Ishizaki H., Sakai Т., Shirahata T. e. a. The distribution of G and P types within isolates of bovine rotavirus in Japan //Vet. Microbiol. 1996. - V. 48.- P. 367-372.

106. Kabcenell A.K., Atkinson P.G. Processing of the rough endoplasmic reticulum membrane glycoproteins of rotavirus SA11 II J. Cell Biol. 1985. - V. 101. - P. 1270-1280.

107. Kabcenell A.K., Poruchynsky M.S., Bellamy A.R. Two forms of VP7 are involved in assembly of SA11 rotavirus in endoplasmic reticulum II J. Virol. -1988.-V. 62.-P. 2929-2941.

108. Kaijot K.T., Shaw R.D., Rubin D.H., Greenberg H.B. Infectious rotavirus enters cells by direct cell membrane penetration, not by endocytosis II J. Virol. 1988. - V. 62. - P. 1136-1144.

109. Kalica A.R., Garon C.F., Wyatt R.G. e.a. Differentiation of human and calf reovirus-like agents associated with diarrhea using polyacrylamide gel electrophoresis of RNA // Virology. 1976. - V. 74. - P. 86-92.

110. Kalica A.R., Sereno M.M., Wyatt R.G. e.a. Comparison of human and animal rotavirus strains by gel electrophoresis of viral RNA // Virology. 1978.- V. 87. P. 247-255.

111. Kalica A.R., Greenberg H.B., Wyatt R.G. e.a. Genes of human (strain Wa) and bovine (strain UK) rotaviruses that code for neutralization and subgroup antigens II Virology. 1981. - V 112. - P. 385-390.

112. Kantharidis P., Dyall-Smith M.L., Holmes I.H. Marked sequence variation between segment 4 genes of human RV-5 and simian SA11 rotaviruses //Arch. Virol. 1987.-V. 93, N1-2. - P. 111-121.

113. Kapahnke R., Rappold W., Desselberger U., Riesner D. The stiffness of dsRNA: hydrodynamic studies on fluorescence-labeled RNA segments of bovine rotavirus // Nucleic Acids Res. -1986. V. 14. - 3215-3228.

114. Kapikian A.Z., Chanock R.M. Rotaviruses // Fields Virology / Ed. by B.N. Fields, D.M. Knipe., P.M Howley. 3rd ed. - Philadelphia: Lippincott-Raven Publishers, 1996. - P. 1657-1708.

115. Kattoura M.D., Clapp L.L., Patton J.T. The rotavirus nonstructural protein, NS35, possesses RNA-binding activity in vitro and in vivo // Virology. -1992.-V. 191.-P. 698-708.

116. Keljo D.J., Smith A.K. Characterization of binding of simian rotavirus SA-11 to cultured epithelial cells // J. Pediatr. Gastroenterol. Nutr. 1988. - V. 7. -P. 249-256.

117. Kouvelos K., Petric M., Middleton P.J. Comparison of bovine, simian and human rotavirus structural glycoproteins // J. Gen. Virol. 1984. - V. 65. - P. 1211-1214.

118. Kouvelos K., Petric M., Middleton P.J. Oligosaccharide composition of calf rotavirus II J. Gen. Virol. 1984. - V. 65. - P. 1159-1164.

119. Kozak M. Possible role of flanking nucleotides in recognition of the AUG initiator codon by eukaryotic ribosomes // Nucleic Acids Res. 1981. - V. 9, N20. - P. 5233-5252.

120. Kozak M. Bifunctional messenger RNAs in eukaryotes // Cell. -1986. -V. 47.-P. 481-483.

121. Kuchino Y., Nishimura S., Smith R.E., Furuichi Y. Homologous terminal sequences in the double-stranded RNA genome segments of cytoplasmic polyhedrosis virus of silkworm // J. Virol. -1982. V. 44. - P. 538-543.

122. Kumar A., Charpilienne A., Cohen J. Nucleotide sequence of the gene encoding for the RNA binding protein (VP2) of RF bovine rotavirus // Nucleic Acids Res. 1989. - V. 17. - P. 2126.

123. Kurtz J.В., Lee T.W., Parsons A.J. The action of alcohols on rotavirus, astrovirus and enterovirus//J. Hosp. Infect. 1980. -V. 1. - P. 321-325.

124. Labbe M., Charpilienne A., Crawford S.E. e.a. Expression of rotavirus VP2 produces empty corelike particles // J. Virol. 1991. - V. 65. - P. 2946-2952.

125. Landschulz W.H., Johnson P.F., McKnight S.L. The leucine zipper: a hypothetical structure common to a new class of DNA binding proteins // Science. 1988. - V. 240. - P. 1759-1764.

126. Larratde G., Li В., Kapikian A.Z., Gorziglia M. Serotype-specific epitope(s) present on the VP8 subunit of rotavirus VP4 protein // J. Virol. 1991. -V. 65. - P. 3213-3218.

127. Larratde G., Gorziglia M. Distribution of conserved and specific epitopes on the VP8 subunit of rotavirus VP4 // J. Virol. 1992. - V. 66. - P. 74387443.

128. Lee J., Babiuk L.A., Harland R. e. a. Immunological response to recombinant VP8* subunit protein of bovine rotavirus in pregnant cattle // J. Gen. Virol. 1995. - V. 76. - P. 2477-2483.

129. Leeuw P.W., Ellens D.J., Talmon F.P. e.a. Rotavirus infections in calves: efficacy of oral vaccination in endemically infected herds // Res. Vet. Sci. -1980. -V. 29. P. 142-147.

130. Liu M., Offit P.A., Estes M.K. Identification of the simian rotavirus SA11 genome segment 3 product // Virology. 1988. - V. 163. - P. 26-32.

131. Lopez S., Arias C.F., Bell J.R. e.a. Primary structure of the cleavage site associated with trypsin enhancement of rotavirus SA11 infectivity // Virology. -1985.-V. 144, N1.-P. 11-19.

132. Lopez S., Arias C.F., Mendez E., Espejo R.T. Conservation in rotaviruses of the protein region containing the two sites associated with trypsin enhancement of infectivity//Virology. -1986. V. 154, N1. - P. 224-227.

133. Lopez S., Lopez I., Romero P. e.a. Rotavirus YM gene 4: analysis of its deduced amino acid sequence and prediction of the secondary structure of the VP4 protein // J. Virol. 1991. -V. 65, N7. - P. 3738-3745.

134. Lopez S., Greenberg H.B., Arias C.F. Mapping the subgroup epitopes of rotavirus protein VP6 //Virology. 1994. - V. 204. - P. 153-162.

135. Lucchelli A., Lance S.E., Bartlett P.B. e.a. Prevalence of bovine group A rotavirus shedding among dairy calves in Ohio // Am. J. Vet. Res. 1992. -V. 53.-P. 169-174.

136. Lucchelli A., Kang S.Y., Jayasekera M.K. e.a. A survey of G6 and G10 serotypes of group A bovine rotaviruses from diarrheic beef and dairy calves using monoclonal antibodies in ELISA // J. Vet. Diagn. Invest. 1994. -V. 6. - P. 175-181.

137. Maass D.R., Atkinson P.H. Rotavirus proteins VP7, NS28, and VP4 form oligomeric structures // J. Virol. 1990. - V.64, N6. - P. 2632-2641.

138. Maass D.R., Atkinson P.H. Retention by the endoplasmic reticulum of rotavirus VP7 is controlled by three adjacent amino-terminal residues // J. Virol. 1994. -V. 68, N1. - P. 366-378.

139. Mackow E.R., Vo P.Т., Broome R. e.a. Immunization with baculovirus-expressed VP4 protein passively protects against simian and murine rotavirus challenge // J. Virol. 1990. -V. 64, N1. - P. 1698-1703.

140. Malherbe H.H., Strickland-Cholmley M. Simian virus SA11 and the related О agent // Arch. Ges. Virusforschung. 1967. - V. 22. - P. 235-245.

141. Mansell E.A., Ramig R.F., Patton J. T. Temperature-sensitive lesions in the capsid proteins of the rotavirus mutants tsF and tsG that affect virion assembly // Virology. 1994. - V. 204. - P. 69-81.

142. Mason B.B., Graham D.Y., Estes M.K. In vitro transcription and translation of simian rotavirus SA11 gene products // J. Virol. 1980. - V. 33. - P. 1111-1121.

143. Mason B.B., Graham D.Y., Estes M.K. Biochemical mapping of the simian rotavirus SA11 genome // J. Virol. 1983. - V. 46, N 2. - P. 413-423.

144. Matsuda Y., Nakagomi O., Offit P.A. Presence of three P types (VP4 serotypes) and two G types (VP7 serotypes) among bovine rotavirus strains // Arch. Virol. 1990. - V. 115. - P. 199-207.

145. Matsuda Y., Isegawa Y., Woode G.N. e.a. Two-way cross-neutralization mediated by a shared P (VP4) serotype between bovine rotavirus strains // J. Clin. Microbiol. 1993. -V. 31, N2. - P. 354-358.

146. Matsuno S., Inouye S. Purification of an outer capsid glycoprotein of neonatal calf diarrhea virus and preparation of its antisera // Infect. Immun. 1983. -V. 39. - P. 155-158.

147. Mattion N.M., Mitchell D.B., Both G.W., Estes M.K. Expression of rotavirus proteins encoded by alternative open reading frames of genome segment 11 // Virology. 1991. - V. 181. - P. 295-304.

148. Mattion N.M., Cohen J., Estes M.K. The rotavirus proteins // Viral Infections of the Gastrointestinal Tract / Ed. by Kapikian A. New York: Marcel Dekker, 1994. - P. 1169-1249.

149. McCrae M.A., McCorquodale J.G. The molecular biology of rotaviruses. 2. Identification of the protein-coding assignments of calf rotavirus genome RNA species // Virology. 1982. - V. 117. - P. 435-443.

150. McCrae M. A., McCorquodale J.G. Molecular biology of rotaviruses. 5. Terminal structure of viral RNA species // Virology. 1983. - V. 126. - P. 204212.

151. McNulty M.S., Curran W.L., McFerran J.B. The morphogenesis of a cytopathic bovine rotavirus in Madin-Darby bovine kidney cells // J. Gen. Virol. -1976. -V. 33. P. 503-508.

152. McNulty M.S. Rotavirus infections in calves // Ann. Rech. Vet. -1983. V. 14, N4. - P. 427-432.

153. McNulty M. S., Logan E. F. Effect of vaccination of the dam on rotavirus infection in young calves // Vet. Rec. 1987. - V. 120, N11. - P. 250-252.

154. Mebus C.A., Underdahl N.R., Rhodes M.B., Twiehaus M.J. Calf diarrhea (scours): reproduced with a virus from a field outbreak // Univ. Nebraska Res. Bull.-1969,-V. 233. P. 1-16.

155. Mebus C.A., Stair E.L., Underdahl N.R., Twiehaus M.J. Pathology of neonatal calf diarrhoea induced by a reo-like virus // Vet. Pathol. 1971. - V. 8. -P. 490-505.

156. Mertens P.P.C., Sanger D.V. Analysis of the terminal sequence of the genome segments of four orbiviruses // Bluetongue and Related Orbiviruses / Ed. by T.L. Barger, M.M Yochim. New York: Alan R. Liss, 1985. - P. 371-387.

157. Meyer J.C., Bergman C.C., Bellamy A.R. Interaction of rotavirus cores with the nonstructural glycoprotein NS28 // Virology. 1989. - V. 171, N1. -P. 98-107.

158. Middleton P.J. Pathogenesis of rotavirus infection // J. Am. Vet. Med. Assoc. 1978. -V. 173. - P. 544-546.

159. Mitchell D.B., Both G.W. Simian rotavirus SA11 segment 11 contains overlapping reading frames // Nucleic Acids Res. 1988. - V. 16. - P. 6244.

160. Moerman A., De Leeuw P.W., van Zijderveld F.G. e.a. Prevalence and significance of viral enteritis in Dutch dairy calves // Proceedings Xllth World Congress on Diseases of Cattle. 1982. - P. 228-236.

161. Munro S., Pelham H.R.B. A C-terminal signal prevents secretion of luminal ER proteins // Cell. -1987. -V. 48. P. 899-907.

162. Murphy F.A., Gibbs E.P., Horziner M.C., Studdert M.J. Reoviridae // Vet. Virol. 1999. - P. 391-403.

163. Nandi P., Charpilienne A, Cohen J. Interaction of rotavirus particles with liposomes // J. Virol. -1992. -V. 66. P. 3363-3367.

164. Nishikawa K., Taniguchi K., Torres A. e.a. Comparative analysis of the VP3 gene of divergent strains of the rotaviruses simian SA11 and bovine Nebraska calf diarrhea virus // J. Virol. 1988. - V. 62, N11. - P. 4022-4026.

165. Nomenclature of human rotaviruses: designation of subgroups and serotypes // Bui. WHO. 1984. -V. 62, N3. - P. 501-503.

166. Novo E., Esparza J. Composition and topography of structural polypeptides of bovine rotavirus // J. Gen. Virol. 1981. - V. 56. - P. 325-335.

167. Nussbaum D.J., Salord J.R., Rimmele D.D. Evaluation of quantitative latex agglutination for detection of Cryptosporidium parvum, E. Coli K99, and rotavirus in calf feces // J. Vet. Diagn. Invest. 1999. -V. 11, N4. - P. 314-318.

168. Obijeski J.F., Palmer E.L., Martin M.L. Biochemical characterization of infantile gastroenteritis virus (IGV) II J. Gen. Virol. 1977. - V. 34. - P. 485497.

169. Offit P.A., Blavat G. Identification of the two rotavirus genes determing neutralization specificities // J. Virol. 1986. -V. 57, N 1. - P. 376-378.

170. Offit P.A., Blavat G., Greenberg H.B., Clark H.F. Molecular basis of rotavirus virulence: role of gene segment 4 // J. Virol. 1986. - V. 57, N1. - P. 4649.

171. Offit P.A., Clark H.F., Blavat G., Greenberg H.B. Reassortant rotaviruses containing structural proteins VP3 and VP7 from different parentsinduce antibodies protective against each parental serotype // J. Virol. 1986. - V. 60, N2. - P. 491-496.

172. Okada N., Matsumoto Y. Bovine rotavirus G and P types and sequence analysis of the VP7 gene of two G8 bovine roaviruses from Japan // Vet. Microbiol. 2002. - V. 84. - P. 297-305.

173. Palmer E.L., Martin M.L., Murphy F.A. Morphology and stability of infantile gastroenteritis virus: comparison with reovirus and bluetongue virus // J. Gen. Virol. 1977. -V. 35. - P. 403-414.

174. Parwani A.V., Rosen B.I., McCrae M.A., Saif L.J. Development of cDNA-probes for typing group A bovinen rotaviruses on the basis of the VP4 specificity//J. Clin. Microbiol. -1992. -V. 30, N10. P. 2717-2721.

175. Parwani A.V., Hussein H.A., Rosen B.I. e.a. Characterization of field strains of group A bovine rotaviruses by using polymerase chain reaction-generated G and P type-specific cDNA probes // J. Clin. Microbiol. 1993. - V. 31, N8. - P. 2010-2015.

176. Patton J.T. Synthesis of simian rotavirus SA11 double-stranded RNA in a cell-free system // Virus Res. 1986. - V. 6. - P. 217-233.

177. Patton J.T., Gallegos C.O. Structure and protein composition of the rotavirus replicase particle//Virology. 1988. -V. 166. - P. 358-365.

178. Patton J.Т., Hua J., Mansell E.A. Location of intrachain disulfide bonds in the VP5* and VP8* trypsin cleavage fragments of the rhesus rotavirus spike protein VP4 // J. Virol. 1993. - V.67, N8. - P.4844-4855.

179. Pearson G.R., McNulty M.S. Pathological changes in the small intestine of neonated pigs infected with a pig reovirus-like agent (rotavirus) II J. Сотр. Pathol. 1977. -V. 87. - P. 363-375.

180. Pearson G.R., Logan E.F., McNulty M.S. Comparison of enteropathogenic Escherichia coli and rotavirus infections of neonatal calves II Proceedings of the Second International Symposium on Neonatal Diarrhoea. -MIDO, Saskatoon, 1978. P. 331-344.

181. Petrie B.L., Graham D.Y., Estes M.K. Identification of rotavirus particle types // Intervirology. -1981. -V. 16. P. 20-28.

182. Petrie B.L., Graham D.Y., Hanssen H., Estes M.K. Localization of rotavirus antigens in infected cells by ultrastructural immunocytochemistry II J. Gen Virol. 1982. - V. 63. - P. 457-467.

183. Petrie B.L., Estes M.K., Graham D.Y. Effects of tunicamycin on rotavirus morphogenesis and infectivity // J. Virol. -1983. V. 46. - P. 270-274.

184. Petrie B.L., Greenberg H.B. Graham D.Y., Estes M.K. Ultrastructural localization of rotavirus antigens using colloidal gold // Virus Res. 1984. - V. 1. -P. 133-152.

185. Poncet D., Aponte C., Cohen J. Rotavirus protein NSP3 (NS34) is bound to the 3' end consensus sequence of viral mRNAs in infected cells // J. Virol. 1993. -V. 67. - P. 3159-3165.

186. Poruchynsky M.S., Tyndall C., Both G.W. e.a. Deletions into an NH2-terminal hydrophobic domain result in secretion of rotavirus VP7, a resident endoplasmic reticulum membrane glycoprotein II The J. Cell Biol. 1985. - V. 101, N6. - P. 2199-2209.

187. Poruchynsky M.S., Atkinson P.H. Primary sequence domains required for the retention of rotavirus VP7 in the endoplasmic reticulum // J. Cell Biol. 1988. - V. 107. - P. 1697-1706.

188. Poruchynsky M.S., Maass D.R., Atkinson P.H. Calcium depletion blocks the maturation of rotavirus by altering the oligomerization of virus-encoded proteins in the ER // J. Cell Biol. 1991. - V. 114. - P. 651 -661.

189. Poruchynsky V.S., Atkinson P.H. Rotavirus protein rearrangements in purified membrane-enveloped intermediate particles // J. Virol. 1991. - V. 65, N9. - P. 4720-4727.

190. Potter A.A., Cox G., Parker M., Babiuk L.A. The complete nucleotide sequence of bovine rotavirus C486 gene 4 cDNA // Nucleic Acids Res. 1987. -V. 15.-P. 4361.

191. Prasad B.V., Wang G.J., Clerx J.P., Chiu W. Three-dimensional structure of rotavirus II J. Mol. Biol. 1988. - V. 199. - P. 269-275.

192. Prasad B.V.V., Burns J. W., Marietta E. e.a. Localization of VP4 neutralization sites in rotavirus by three-dimensional cryo-electron microscopy // Nature. 1990. -V. 343. - P. 476-479.

193. Prasad B.V.V., Yamaguchi S., Roy P. Three-dimensional structure of single shelled bluetongue virus//J. Virol. 1994. -V. 66. - P. 2135-2142.

194. Pringle C.R. Virus taxonomy 1999: the universal system of virus taxonomy, updated to include the new proposals ratified by the International

195. Committee on Taxonomy of Viruses during 1998 // Arch. Virol. 1999. - V. 144, N2. - P. 421-429.

196. Ramig R.F. Genetic studies with simian rotavirus SA11 // Double-stranded RNA viruses / Ed. by R.W. Compans, D.H.L. Bishop. New York: Elsevier Science Publishing, 1983. - P. 321-327.

197. Ramig R.F. Isolation and genetic characterization of temperature-sensitive mutants that define five additional recombination groups in simian rotavirus SA11 //Virology. 1983. -V. 130. - P. 464-473.

198. Rao C.D., Gowda K., Reddy B.S. Sequence analysis of VP4 and VP7 genes of nontypeable strains identifies a new pair of outer capsid proteins representing novel P and G genotypes in bovine rotaviruses // Virology. 2000. -V. 276, N 1. - P. 104-113.

199. Redmond D.L., Inglis N.F., Fitzgerald T.A. e.a. A liquid-hybridization method for typing the VP4 and VP7 genes of bovine rotaviruses // J. Virol. Methods. -1992. -V. 39. P. 165-177.

200. Rodger S.V., Schnagl R.D., Holmes I.H. Biochemical and biophysical characterization of diarrhea viruses of human and calf origin И J. Virol. 1975. -V. 16.-P. 1229-1235.

201. Ruggeri F.M., Greenberg H.B. Antibodies to the trypsin cleavage peptide VP8* neutralize rotavirus by inhibiting binding of virions to target cells in culture II J. Virol. -1991. -V. 65. P. 2211-2219.

202. Ruiz M., Alonso-Torre S.R., Charpilienne A. e.a. Rotavirus interaction with isolated membrane vesicles // J. Virol. 1994. - V. 68. - P. 40094016.

203. Sabara M., Gilchrist J.E., Hudson G.R., Babiuk L.A. Preliminary characterization of an epitope involved in neutralization and cell attachment that is located on the major bovine rotavirus glycoprotein II J. Virol. 1985. - V. 53. - P. 58-66.

204. Saif L.J., Jiang В. Nongroup A rotaviruses of humans and animals II Rotaviruses I Ed. by R.F. Ramig. Berlin, Heidelberg: Springer-Verlag, 1994. - P. 339-371.

205. Sandino A.M., Jashes M., Faundez G., Spencer E. Role of the inner protein capsid on in vitro human rotavirus transcription // J. Virol. 1986. - V. 60, N2. - P. 797-802.

206. Sanger F., Nicklen S., Coulsen A.R. DNA sequencing with chain terminating inhibitors // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1977. - V. 74. - P. 54635467.

207. Sato Т., Suzuki H., Kitaoka S. e.a. Patterns of polypeptide synthesis in human rotavirus infected cells // Arch. Virol. 1986. - V. 90. - P. 29-40.

208. Sattar S.A., Raphael R.A., Lochnan H., Springthorpe V.S. Rotavirus inactivation by chemical disinfectants and antiseptics used in hospitals // Can. J. Microbiol. -1983. -V. 29. P. 1464-1469.

209. Schiff L.A., Nibert M.L., Co M.S. e.a. Distinct binding sites for zinc and double-stranded RNA in the reovirus outer capsid protein sigma 3 // Mol. Cell Biol. 1988. - V. 8. - P. 273-283.

210. Schroeder B.A., Streen J.E., Kalmakoff J., Bellamy A.R. Sequence relationships between the genome segments of human and animal rotavirus strains // J. Virol. -1982. V. 43. - P. 379-385.

211. Shahrabadi M.S., Lee P.W. Bovine rotavirus maturation is a calcium-dependent process // Virology. -1986. V 152. - P. 298-307.

212. Shahrabadi M.S., Babiuk L.A., Lee P.W. Further analysis of the role of calcium in rotavirus morphogenesis // Virology. 1987. - V. 158. - P. 103-111.

213. Shaw A.L., Rothnagel R., Chen D. e.a. Three-dimensional visualization of the rotavirus hemagglutinin structure II Cell. 1993. - V 74. - P. 693-701.

214. Shen S., Burke В., Desselberger U. Rearrangement of the VP6 gene of a group A rotavirus in combination with a point mutation affecting trimer stability II J. Virol. 1994. - V. 68. - P. 1682-1688.

215. Shirley J.A., Beards J.M., Thouless M.E., Flewett Т.Н. The influence of divalent cations on the stability of human rotavirus // Arch. Virol. -1981. V. 67. -P. 1-9.

216. Snodgrass D.R., Angus K.W., Gray E.W. Rotavirus infection in lambs: pathogenesis and pathology // Arch. Virol. 1977. - V. 55. - P. 263-274.

217. Snodgrass D.R., Ferguson A., Allan F. e.a. Small intestinal morphology and epithelial cell kinetics in lamb rotavirus infections // Gastroenterology. 1979. -V. 76. - P. 477-487.

218. Snodgrass D.R., Fahey K.J., Wells P.W. e.a. Passive immunity in calf rotavirus infections: maternal vaccination increases and prolongs immunoglobulin G1 antibody secretion in milk // Infect. Immun. 1980. - V. 28, N2. - P. 344-349.

219. Snodgrass D.R., Ojeh C.K., Campbell I., Herring A.J. Bovine rotavirus serotypes and their significance for immunization II J. Clin. Microbiol. -1984. -V. 20. P. 342-346.

220. Snodgrass D.R., Fitzgerald Т., Campbell I. e.a. Rotavirus serotypes 6 and 10 predominate in cattle // J. Clin. Microbiol. 1990. - V. 28, N3. - P. 504507.

221. Snodgrass D.R., Hoshino Y., Fitzgerald M. e.a. Identification of four VP4 serological types (P serotypes) of bovine rotavirus using viral reassortants // J. Gen. Virol. 1992. - V. 73. - P. 2319-2325.

222. Spencer E., Arias M.L. In vitro transcription catalyzed by heat-treated human rotavirus//J. Virol. -1981. -V. 40. P. 1-10.

223. Stirzaker S.C. Whitfeld P.L., Christie D.L. e.a. Processing of rotavirus glycoprotein VP7: implications for the retention of the protein in the endoplasmic reticulum // J. Cell Biol. 1987. - V. 105, N6, Pt. 2. - P. 2897-2903.

224. Suzuki H., Kitaoka S., Konno T. e.a. Two modes of human rotavirus entry into MA 104 cells // Arch. Virol. 1985. - V. 85. - P. 25-34.

225. Tam J.S., Szymanski M.T., Middleton P.J., Petrie M. Studies of the particles of infantile gastroenteritis virus (orbivirus group) // Intervirology. 1976. -V. 7. - P. 181-191.

226. Tan J.A., Schnagi R.D. Inactivation of a rotavirus by disinfectants // Med. J. Aust. -1981. V 1. - P. 19-23.

227. Taniguchi K., Urasawa Т., Urasawa S. Reactivity patterns to human rotavirus strains of a monoclonal antibody against VP2, a component of the inner capsid of rotavirus // Arch. Virol. 1986. - V. 87. - P. 135-141.

228. Taniguchi K., Urasawa Т., Morita Y. e.a. Direct serotyping of human rotavirus in stools by an enzyme-linked immunosorbent assay using serotype 1-, 2-, 3-, and 4-specific monoclonal antibodies to VP7 // J. Infect. Dis. 1987. - V. 155. - P. 1159-1166.

229. Taniguchi K., Maloy W.L., Nishikawa K. e.a. Identification of cross-reactive and serotype 2-specific neutralization epitopes on VP3 of human rotavirus // J. Virol. 1988. -V. 62. - P. 2421-2426.

230. Taniguchi K., Urasawa Т., Pongsuwanna Y. e.a. Molecular and antigenic analyses of serotypes 8 and 10 of bovine rotaviruses in Thailand // J. Gen. Virol. -1991. V. 72. - P. 2929-2937.

231. Taniguchi K., Wakasugi F., Pongsuwanna Y. e.a. Identification of human and bovine rotavirus serotypes by polymerase chain reaction // Epidemiol. Infect. 1992. - V. 109. - P. 303-312.

232. Taniguchi K., Urasawa Т., Urasawa S. Independent segregation of the VP4 and the VP7 genes in bovine rotaviruses as confirmed by VP4 sequence analysis of G8 and G10 bovine rotavirus strains // J. Gen. Virol. 1993. - V. 74, Pt. 6.-P. 1215-1221

233. Taniguchi K., Urasawa Т., Urasawa S. Species specificity and interspecies relatedness in VP4 genotypes demonstrated by VP4 sequence analysis of equine, feline, and canine rotavirus strains // Virology. 1994. - V. 200. - P. 390-400.

234. Taylor J.A., Meyer J.C., Legge M.A. e.a. Transient expression and mutational analyses of the rotavirus intracellular receptor: the C-terminal methionine residue is essential for ligand binding // J. Virol. 1992. - V. 66. - P. 3566-3572.

235. Taylor J.A., O'Brien J.A., Lord V.J. e.a. The RER-localized rotavirus intracellular receptor: a truncated purified soluble form is multivalent and binds virus particles // Virology. -1993. V. 194. - P. 807-814.

236. Timenetsky M.C., Gouvea V., Santos N. e. a. A novel human rotavirus serotype with dual G5-G11 specificity // J. Gen. Virol. 1997. - V. 78. -P. 1373-1378.

237. Todd D., McNulty V.S. Biochemical studies on a reovirus-like agent (rotavirus) from lambs // J. Virol. 1977. - V. 21. - P. 1215-1218.

238. Tosser G., Labbe M., Bremont M., Cohen J. Expression of the major capsid protein VP6 of group С rotavirus and synthesis of chimeric single-shelled particles by using recombinant baculoviruses //J. Virol. 1992. -V. 66. - P. 58255831.

239. Urasawa S., Urasawa Т., Taniguchi K. e.a. Survey of human rotavirus serotypes in different locales in Japan by enzyme-linked immunosorbent assay with monoclonal antibodies // J. Infect. Dis. 1989. -V. 160. - P. 44-51.

240. Vaughn J. V., Chen Y. S., Thomas M. Z. Inactivation of human and simian rotaviruses by chlorine // Appl. Environ. Microbiol. 1986. - V. 51. - P. 391394.

241. Ward C.W., Azad A.A., Dyall-Smith M.L. Structural homologies between RNA gene segments 10 and 11 from UK bovine, simian SA11, and human Wa rotaviruses //Virology. 1985. -V. 144. - P.328-336.

242. Ward R.L., Ashley C.S. Comparative study on the mechanisms of rotavirus inactivation by sodium dodecyl sulfate and ethylenediaminetetraacetate // Appl. Environ. Microbiol. -1980. V 39. - P. 1148-1153.

243. Weiss C., Clark H.F. Rapid inactivation of rotaviruses by exposure to acid buffer or acidic gastric juice // J. Gen. Virol. 1985. - V. 66. - P. 2725-2730.

244. Welch A., Thompson T.L. Physicochemical characterization of a neonatal calf diarrhea virus // Can. J. Compr. Med. 1973. -V. 37. - P 295-301.

245. Welch S.K., Crawford S.E., Estes M.K. Rotavirus SA11 genome segment 11 protein is a nonstructural phosphoprotein // J. Virol 1989. - V. 63. - P. 3974-3982.

246. Whitfield P.L., Tyndall C., Stirzaker S.C. e.a. Location of sequences within Rotavirus SA11 glycoprotein VP7 which direct it to the endoplasmic reticulum // Mol. Cell Biol. 1987. -V. 7, N7. - P. 2491-2497.

247. Willoughby R.E., Yolken R.H., Schnaar R.L. Rotaviruses specifically bind to the neutral glycosphingolipid asialo-GMI II J. Virol. 1990,- - V. 64. - P. 4830-4835.

248. Woode G.N. Epizootology of bovine rotavirus infection // Vet. Rec. -1978.-V. 103.-P. 44-46.

249. Woode G.N., Kelso N.E., Simpson T.F. e.a. Antigenic relationships among some bovine rotaviruses: serum neutralization and cross-protection in gnotobiotic calves // J. Clin. Microbiol. 1983. - V. 18. - P. 358-364.

250. Xu L., Harbour D., McCrae M.A. The application of polymerase chain reaction to the detection of rotaviruses in faeces // J. Virol. Methods. 1990. - V. 27. P. 29-38.

251. Yeager M., Berriman A., Baker T.S., Bellamy A.R. Three-dimensional structure of the rotavirus haemagglutinin VP4 by cryo-electron microscopy and difference map analysis //The EMBO J. 1994. - V. 13, N5. - P. 1011-1018.

252. Zeng Q., Labbe M., Cohen J. e.a. Characterization of rotavirus VP2 particles // Virology. -1994. V. 201. - P. 55-65.

253. Zhou Y., Burns J. W., Morita Y. e.a. Localization of rotavirus VP4 neutralization epitopes involved in antibody-induced conformational changes of virus structure // J. Virol. 1994. - V. 68. - P. 3955-3964.

254. Zygraich N., Georges A.M., Vascoboinic E. Etiologie des dearrhees neonatales du veau: resultats d'une enquete serologique relative aux virus reo-like et corona dans la population bovine Beige II Ann. Med. Vet. 1975. -V. 119. - P. 105-113.