Возрастные преобразования центров иннервации прямой кишки в норме и в условиях химической десимпатизации и деафферентации тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 14.00.02, кандидат медицинских наук Фоканова, Ольга Анатольевна

• Фоканова, Ольга Анатольевна
• кандидат медицинских наук
• 2006

Оглавление диссертации кандидат медицинских наук Фоканова, Ольга Анатольевна

Перечень условных обозначений

ВВЕДЕНИЕ

1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

1.1. Морфологические особенности и нейронная 13 организация интрамуральных ганглиев органов пищеварительной системы

1.2. Морфологические особенности и нейронная 21 организация тазовых ганглиев

1.3. Возрастные особенности интрамуральных ганглиев 25 органов пищеварения

1.4. Компенсаторно-приспособительные изменения 31 нейроцитов интрамуральных ганглиев при денервациях

2. МАТЕРИАЛ И МЕТОДИКИ ИССЛЕДОВАНИЯ

3. ВОЗРАСТНЫЕ ПРЕОБРАЗОВАНИЯ НЕЙРОЦИТОВ ИНТРАМУРАЛЬНЫХ ГАНГЛИЕВ ПРЯМОЙ КИШКИ БЕЛОЙ КРЫСЫ

3.1. Морфометрическая характеристика нейроцитов 46 межмышечных ганглиев прямой кишки у белых крыс разного возраста

3.2. Активность холинэстеразы в нейроцитах 52 интрамуральных ганглиев прямой кишки белых крыс разного возраста

3.3. Возрастные преобразования активности 55 моноаминоксидазы в интрамуральных ганглиях прямой кишки белых крыс

3.4. Активность НАДФ-Д в нейроцитах интрамуральных 56 ганглиев прямой кишки у белых крыс разного возраста

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Возрастные преобразования центров иннервации прямой кишки в норме и в условиях химической десимпатизации и деафферентации»

Согласно современным представлениям процессы пре- и постнатально-го развития организма протекают при непосредственном участии различных механизмов. Среди них значительное место отводится нейрогуморальной регуляции. Состояние и уровень развития ее отдельных звеньев во многом определяют возможности адаптации организма к среде обитания. Уже с момента закладки органов развивающаяся нервная система оказывает существенное влияние на их формообразование (Голуб Д.М., 1966; Корочкин Г.И., 1965; Амвросьев А.П., 1970; Волкова и соавт., 1971; Кнорре А.Г., Суворова JI.B., 1984; Леонтюк A.C., 1996). Ослабление нервных влияний определяет характер и темпы вторичных изменений в обмене, функции и структуре тканей и органов целостного организма (Bellinger D.L. с соавт., 1993; Andrews T.J. с соавт., 1996; Akoev G.N., ChalisovaN.I., 1997).

Нарушения иннервации органов таза остаются важной проблемой современной медицины.

Нервный аппарат прямой кишки длительное время является объектом особого внимания морфологов и физиологов. Вместе с тем вопросы структурно-функциональных изменений в системе её иннервации в различные периоды пре- и постнатального онтогенеза в полном объеме не разработаны. Совершенно недостаточны сведения о структурных и гистохимических изменениях, возникающих в процессе развития в экстра- и интрамуральных нервных образованиях прямой кишки, для которой характерны высокая степень иннервации (Амвросьев А.П., 1970, 1972, 1977) и централизации (Булы-гинИ.А., 1966).

До сих пор еще нет точных данных о возрастных преобразованиях ней-роцитов интрамуральных и экстрамуральных ганглиев прямой кишки, а также их гистохимической профилизации на этапах постнатального развития белой крысы - экспериментального животного, широко используемого в исследованиях. В литературе отсутствуют сведения об особенностях структурно-химических изменений в различных периферических звеньях иннервации этого органа на этапах постнатального онтогенеза.

Имеющиеся в настоящее время данные об иннервации прямой кишки, как правило, базируются на анатомических методах исследования, результатах невротомий, ганглиоэктомий, резекции части органа, которые имеют существенные недостатки.

Исследования отечественных нейроморфологов и физиологов показали различия влияний афферентных и симпатических центров на ткани-мишени, выделили специфику развития дистрофических и компенсаторных изменений при разных видах денервации (Пекарский М.И., 1963; Григорьева Т.А., 1966; Корытный Е.Я., 1966; Червова И.Д., 1966; Крыжановский Н.Г. с соавт., 1973, 1974; Строганова А.Б., 1972; Волкова О.В., 1978 и др.).

Известно, что нарушения симпатической иннервации приводят к нарушению адаптационных реакций (Гинецинский А.Г., 1923; Орбели JI.A., 1923; Червова И.А., 1966; Говырин В.А., 1967; Cannon с соавт., 1929, 1949), а деафферентация вызывает комплекс изменений, определяемых как асептическое воспаление и являющихся типичными для различного рода органов (Григорьева Т.А., 1951-1967; Зайденберг М.Д., 1963; Пекарский М.И., 1963; Волкова О.В., 1973, 1978; Елецкий Ю.К., 1984; и др.).

В меньшей степени изучены изменения нейроцитов и компенсаторные процессы в ганглиях, которые при нарушении межнейрональных связей также становятся мишенями нейродистрофического процесса (Милохин A.A., 1967; Зайко H.H., 1974; Румянцева Т.А., 2002).

Некоторые авторы указывали на реакцию нейроцитов в ганглиях при хирургической денервации органов (Рудик Е.А., 1952; Картавенко А.Н., 1955; Ярыгин Н.Е., Шепелева Н.С., 1957; Зайденберг М.Д., 1960; Мосеев В.П., 1970; Елецкий Ю.К., 1984; Когут Б.М., 1984; Шаширина М.И., 1986; Оррин Т. с соавт., 1998; Schmid W., van der Zypen E., KellerH., 1979; Suzuki Т. с соавт., 1997), в единичных работах показано влияние внутриутробной химической десимпатизации или химической десимпатизации половозрелых крыс на нейроциты чувствительных ганглиев (Руденок В.В., Сысов А.В., 1991; Шилкин В.В. с соавт., 1999; Румянцева Т.А., 2002), иммунологической де-симпатизации на интрамуральные нейроциты сердца и матки у мышей (Волкова О.В., 1978), химической деафферентации на симпатоциты шейно-грудных ганглиев, на нейроциты интрамуральных ганглиев желудка и двенадцатиперстной кишки (Румянцева Т.А., 2001; Воробьева О.Б., 2005).

Появление веществ, обладающих избирательным токсическим действием на нейроциты разной природы, позволяет моделировать «чистые» избирательные денервации, определить особенности влияния разных частей нервной системы на органы-мишени, выявить особенности дистрофических и компенсаторных процессов в развивающемся организме.

Вышеизложенное и определило цель и задачи настоящего исследования.

Цель работы: изучить преобразования различных центров иннервации прямой кишки в постнатальном онтогенезе белой крысы в норме и в условиях химической денервации.

Для достижения этой цели определены следующие задачи:

1. Получить нормативные данные о возрастных преобразованиях нейро-цитов интрамуральных ганглиев прямой кишки и большого тазового ганглия на протяжении первого полугодия жизни белой крысы.

2. Изучить влияние десимпатизации на нейроциты интрамуральных ганглиев прямой кишки и большого тазового ганглия развивающейся белой крысы.

3. Установить влияние деафферентации на нейроциты интрамуральных ганглиев прямой кишки и большого тазового ганглия развивающейся белой крысы.

4. Выявить особенности влияния десимпатизации и деафферентации на морфометрические и гистохимические характеристики нейроцитов интраму-рального нервного сплетения прямой кишки и большого тазового ганглия.

Работа выполнена на 495 самках белых крыс линии Вистар разного возраста.

Возрастные морфологические и гистохимические особенности нейро-цитов изучены в интрамуральных ганглиях ампулы прямой кишки и большого тазового ганглия. Возраст исследуемых крыс выбирался в соответствии с периодизацией онтогенеза крыс, предложенной И.П. Западнюком (1974), от 3 до 180 суток.

Десимпатизация проводилась путем длительного введения гуанетиди-на, что позволяет достичь 95-97% убыли нейроцитов в шейно-грудном ганглии, т.е. создать модель «полной десимпатизации».

Химическая деафферентация проводилась путем однократного введения капсаицина новорожденным крысам в дозе 100 мг/кг, что позволяет достичь гибели почти позволило достичь гибели 22-24% нейроцитов спинномозговых ганглиев (Порсева В.В., 2006), т.е. создать модель «частичной деаффе-рентации».

Животных выводили из опыта в разные сроки - от 3 до 180 суток жизни.

В работе использовались нейрогистологические (окраска по Нисслю), гистохимические (выявление активности холинэстеразы (ХЭ), моноаминок-сидазы (МАО), НАДФ-диафоразы (НАДФ-Д)), морфометрические и статистические методики.

Для оценки стабильности, упорядоченности, зрелости системы нейроцитов, для сопоставления состояния совокупности нейроцитов- ганглиев разной природы использовали информационный анализ (Кадыров Х.К., Анто-монов Ю.Г., 1974; Леонтюк A.C., Леонтюк Л.А., Сыкало А.И., 1981; Слука Б.А., 1983).

Анализ возрастных преобразований нейроцитов интрамуральных и тазовых ганглиев позволил установить общие и органоспецифичные черты их развития в первом полугодии жизни крысы, отличия в темпах роста и сроках достижения ими дефинитивного состояния.

Научная новизна исследования заключается в установлении общих и органоспецифичных черт развития нейроцитов интрамуральных ганглиев прямой кишки и больших тазовых ганглиев в первом полугодии жизни крысы, проявляющихся в темпах роста и сроках достижения ими дефинитивного состояния по размерам, и количественного состава отдельных ХЭ-, МАО-, НАДФ-Д-позитивных субпопуляций.

Впервые доказано, что дефинитивное состояние популяций нейроцитов интрамуральных ганглиев прямой кишки и тазовых ганглиев белой крысы по размерам клеток и активности ХЭ, МАО и НАДФ-Д достигается гетерохрон-но.

Информационный анализ позволил выявить, что для развивающейся системы нейроцитов в период активного роста характерно постепенное увеличение гетерогенности по метрическим параметрам и волнообразные изменения состояния системы по активности ферментов.

Доказано, что в изученных ганглиях существуют нейроциты чувствительные к гуанетидину. В результате исследования получены оригинальные данные о влиянии этого нейротоксина на нейроциты интрамуральных ганглиев прямой кишки и большого тазового ганглия белой крысы, выявлены органные особенности выраженности нейродистрофического процесса в изучаемых ганглиях при десимпатизации. С учетом количества нейроцитов, погибших в ранние сроки при первичном воздействии нейротоксина и в отдаленные сроки вследствие вторичного эффекта - нейродистрофического процесса, показано, что более устойчивой к десимпатизации является популяция нейроцитов интрамуральных ганглиев прямой кишки.

Впервые установлено, что часть нейроцитов интрамуральных ганглиев прямой кишки и большого тазового ганглия гибнут при первичном воздействии капсаицина. Их количество особенно велико в интрамуральных ганглиях, в которых более выражена и вторичная гибель нейроцитов вследствие развития дистрофического процесса.

Гибель афферентных нейроцитов приводит к задержке роста остальных клеток и к нарушению нормальной возрастной динамики активности ХЭ, МАО и НАДФ-Д в изученных ганглиях. Установлены органные особенности реакции ферменто-позитивных субпопуляций на введение нейротоксина и развитие вторичного дистрофического процесса.

В результате исследования установлено, что во всех ганглиях присутствуют капсаицин-чувствительные и гуанетидин-чувствительные нейроциты, гибель которых происходит непосредственно после введения нейротоксина. Первичной чувствительностью к гуанетидину обладают ХЭ и МАО-позитивные нейроциты, субпопуляция НАДФ-Д-позитивных нейроцитов устойчива к прямому воздействию этого симпатолитика. Первичной чувствительностью к капсаицину обладают НАДФ-Д-позитивная и МАО-позитивная субпопуляции, устойчивой к прямому действию нейротоксина является ХЭ-позитивная субпопуляция.

Выявлена степень нарушения состояния систем нейроцитов разных субпопуляций и оценена направленность патологического процесса, развивающегося в них.

В результате проведенного исследования впервые получены нормативные возрастные характеристики нейроцитов вегетативных ганглиев, участвующих в иннервации прямой кишки, у белой крысы первого полугодия жизни, которые могут служить основой для морфо-функциональных исследований органов и тканей в эксперименте, и значительно расширяют представления об особенностях возрастных изменений в системе иннервации прямой кишки. Установлено, что любой вид химической денервации (десим-патизация, деафферентация) является только относительно избирательным, приводя к развитию нейродистрофического процесса в других центрах, что необходимо учитывать в экспериментальной и клинической работе.

Результаты исследования нейроцитов различных ганглиев при химической денервации свидетельствуют о возможности использования десимпати-зации, деафферентации для моделирования состояний приобретенного в периоде раннего развития дефицита симпатоцитов и афферентных нейроцитов, в целях фундаментальных исследований структуры и функции органов, адаптивных возможностей организма в целом и его отдельных систем при воздействии различных факторов, а также механизмов действия лекарственных препаратов.

Полученные нормативные данные, данные о динамике развития нейро-дистрофического процесса и об особенностях компенсаторных преобразований в нервной ткани могут использоваться в учебном процессе при обучении специалистов медицинского и биологического профилей.

На защиту выносятся следующие положения:

1. Нейроциты интрамуральных ганглиев прямой кишки и большого тазового ганглия белой крысы гете рогенны по морфометрическим и гистохимическим характеристикам.

2. Достижение дефинитивного уровня морфометрических и энзи-могистохимических характеристик нейроцитов ганглиев, участвующих в иннервации прямой кишки у белых крыс, происходит гетерохронно и зависит от вида ганглия.

3. Нейроциты изученных ганглиев обладают различной чувствительностью к нейротоксинам. Первичное действие капсаицина и гуанетидина сопровождается ранней гибелью нейроцитов, отсроченная реакция нейроцитов на десимпатизацию и деафферентацию проявляется нейродистрофиче-скими изменениями.

1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

Заключение диссертации по теме «Анатомия человека», Фоканова, Ольга Анатольевна

193 ВЫВОДЫ

1. Интрамуральные межмышечные ганглии прямой кишки и большого тазового ганглия гетерогенны по составу нейроцитов. В них выявляются ХЭ-позитивные, НАДФ-диафораза-позитивные, МАО-позитивные и ферменто-негативные субпопуляции. Позитивность нейроцитов к НАДФ-Д и ХЭ выявляется с 3 суток, к МАО - с 10 суток жизни крысы.

2. Становление активности ХЭ, МАО, НАДФ-Д происходит в нейроцитах ганглиев прямой кишки и в большом тазовом ганглии волнообразно и имеет выраженные органоспецифичные черты, дефинитивное состояние нейроцитов по активности ферментов достигается гетерохронно. В нейроцитах интрамуральных ганглиев прямой кишки ранее других на 90 сутки стабилизируется активность ХЭ и МАО, НАДФ-Д на 120 сутки. В большом тазовом ганглии ранее других стабилизируется НАДФ-Д - позитивная субпопуляция - 90 сутки, вслед за ней - МАО-позитивная субпопуляция - 120 сутки, позже других - 150 сутки - ХЭ-позитивная субпопуляция нейроцитов.

3. Достижение нейроцитами ганглиев прямой кишки и больших тазовых ганглиев дефинитивного состояния по морфометрическим характеристикам происходит неодновременно, на 60 и 90 сутки соответственно, нейроциты интрамуральных ганглиев увеличиваются в течение первого полугодия жизни крысы в 4 раза, тазовых ганглиев - в 5,8 раза.

4. Изменения нейроцитов интрамуральных ганглиев прямой кишки и большого тазового ганглия по метрическим и гистохимическим параметрам позволяют выделить в течение первого полугодия жизни крысы по развитию центров иннервации прямой кишки ряд фаз: первая фаза - до 30 суток - характеризуется интенсивными процессами роста нейроцитов, выраженными колебаниями активности ферментов и количественного состава субпопуляций, вторая фаза продолжается до 90 суток в прямой кишке и до 120 суток в тазовом ганглии и характеризуется достижением ганглиями по части изучаемых параметров дефинитивного уровня, третья фаза, после 120 суток в прямой кишки и после 150 суток в большом тазовом ганглии и далее, - достижение дефинитивного состояния по всем изучаемым параметрам.

5. Информационные характеристики выявляют основные тенденции развития систем нейроцитов интрамуральных ганглиев прямой кишки и большого тазового ганглия в первом полугодии жизни у белой крысы - это повышение гетерогенности по большинству параметров, а также чередование периодов возрастания резервов системы и их активной мобилизации, что является одним из проявлений волнообразности становления структурно-функциональной организации ганглиев прямой кишки.

6. Десимпатизация вызывает в интрамуральных ганглиях прямой кишки и в большого тазового ганглия прогрессирующий дистрофический процесс, который затрагивает все популяции нейроцитов, особенно ХЭ- и МАО-позитивные, и продолжается в течение всего периода наблюдения, проявляясь гибелью нейроцитов в ранние сроки при первичном воздействии нейротоксина и в отдаленные сроки, вследствие вторичного эффекта, высоким «дистрофическим индексом», нарушением активности ферментов, задержкой роста сохранившихся нейроцитов. Изменения более выражены в большом тазовом ганглии, где они длительно не имели тенденции к компенсации.

7. Деафферентация приводит к нарушению нормальной возрастной динамики метрических и гистохимических характеристик нейроцитов ганглиев прямой кишки и большого тазового ганглия, что проявляется гибелью в ранние сроки части нейроцитов, особенно МАО- и НАДФ-Д-позитивных и является признаком первичного действия капсаицина, а также отсроченной гибелью преимущественно ХЭ-позитивных нейроцитов вследствие вторичного эффекта нейротоксина.

8. Органные различия в реакции на неонатальную деафферентацию капсаицин состоят в следующем: первичная реакция сильнее выражены в ганглиях прямой кишки, что связано, очевидно, с большей долей афферентных нейроцитов в составе интрамуральных ганглиев, но отсроченная реакция преобладает в большом тазовом ганглии, который реагирует, вероятно, на дефицит афферентных влияний персистирующими дистрофическими изменениями.

195

Список литературы диссертационного исследования кандидат медицинских наук Фоканова, Ольга Анатольевна, 2006 год

1. Автандилов Г.Г. Медицинская морфометрия. М: Медицина, 1990.-383 с.

2. Автандилов Г.Г. Морфология в патологии. М: Медицина, 1973. 248 с.

3. Аккуратов Е.Г., Воробьева О.Б., Ноздрачев А.Д., Обрезчикова М.Н., Румянцева Т.А., Филимонов В.И., Шилкин В.В. Морфология и реактивные изменения нервных структур при химической десимпатизации //Физи-ол.журн.им. И.М.Сеченова, 1995. -№10. С.44-50.

4. Амвросьев А.П. Анатомия афферентных систем пищеварительного тракта. Минск: Наука и техника, 1972. 312 с.

5. Амвросьев А.П. Закономерности развития и строение афферентных систем толстого кишечника. Автореф. дисс. докт.биол.наук. Л. 1968. 398 с.

6. Амвросьев А.П. Об изменениях активности щелочной фосфатазы в нейронах спинальных ганглиев кошки после резекции прямой и сигмовидной ободочной кишок // ДАН БССР, 1966.-т.10.-№ 9.-С.710-714.

7. Амвросьев А.П., Рыхликова Г.Г. Строение афферентного звена периферических висцеро-висцеральных рефлекторных механизмов поперечной ободочной кишки//ДАН БССР, 1973.-Т. 17.-№ 11.-С. 1061-1065.

8. Амвросьева С.П. Структурная организация иннервационного аппарата тощей кишки// Функциональная нейроморфология. Фундаментальные и прикладные исследования. К 100-летию академика Д.М. Голуба. Минск, 2001. С. 39-41.

9. Арчакова Л.И. Изучение передачи нервных импульсов по кишечнику в условиях его денервации на различном протяжении // В сб.: Нервные и гуморальные механизмы рефлекторных реакций. Минск, 1968. С.50.

10. Бабурин В.Э., Суворова Л.В. Ферментативная активность нейронов разных отделов пищеварительной трубки в постнатальном онтогенезе крыс // Архив анат.,гист.,эмбриол., 1988. Т. 95.- № 8. - С. 27-32.

11. Булыгин И.А. Цепные и кольцевые нейрогуморальные механизмы висцеральных рефлекторных реакций. Минск: Наука и техника, 1970. 289 с.

12. Булыгин И.А., Арчакова Л.И.; Бортник Э.М. Электронномикроскопиче-ский анализ представительства в спинном мозгу периферических афферентных нейронов желудка // ДАН БССР, 1972.- В.16.-№ 10.-С. 954.

13. Булыгин И.А., Солтанов В.В. Происхождение С-афферентов толстой кишки // Вести АН БССР, серия биол., 1971.-№ 6.-С. 121.

14. Виноградова О.Н. Рецепторы пищеварительного тракта лошади // Архив анат., гист., эмбр., 1952.- Т. 29.- №4.- С. 48-53.

15. Волкова О.В. Нейродистрофический процесс. М., Медицина, 1978. 256 с.

16. Воробьева О.Б. Возрастные преобразования сократительной активности двенадцатиперстной кишки белой крысы в норме и при химической де-нервации. Автореферат.дисс.канд.биол.наук, Ярославль, 2005.26 с.

17. Гилинский Е.Я. Материалы по морфологии рецепторного аппарата желудка позвоночных. М.-Л., 1958.

18. Говырин В.А. Трофическая функция симпатических нервов сердца и скелетных мышц. М.: Наука, 1967.

19. Голуб Д.М. Многоступенчатая чувствительная иннервация внутренних органов II Докл.АН БССР, 1966. Т. 10. - С.222-224.

20. Григорьева Т.А. Морфологические изменения лимфатических узлов при их чувствительной денервации // Лимфоидная ткань в восстановительных и защитных процессах. М., 1966.- С. 105.

21. Догель A.C. (Dogiel A.S.) Zwei Arten sympathischer Nervenzellen. Anat.Res. 1896. Bd. 11. - S.679-687.

22. Дьячкова Л.И. Чувствительная иннервация и состояние тканевых элементов в стенке желудка при перерезке блуждающих нервов // Архив анат., гист., эмбр., 1963.- № 12. С. 30-34.

23. Жаботинский Ю.М. Нормальная и патологическая морфология вегетативных ганглиев. М.: Изд-во АМН СССР, 1953. 292 с.

24. Жук В.В. Реиннервация желудка после ваготомии // Авто-реф.дисс.канд.мед.наук. Минск, 1988. 24 с.

25. Зайденберг М.Д. Об изменениях слизистой оболочки желудка при его чувствительной денервации // Бюлл. Москов. об-ва испыт. природы. Отдел биол., 1960.-Т.65.- № 2.- С. 159-160.

26. Западнюк И.П., Западнюк В.И., Захария Е.А. Лабораторные животные. Разведение, содержание, использование в эксперименте // Киев, «Вища школа», 1974, 304 с.

27. Зуга М.В. Нитрооксидситетаза легких и значение NO-ергического механизма в регуляции проходимости бронхов. Автореф.дисс.канд.мед.наук, Владивосток, 1996.-21 с.

28. Иванов Н.М., Чаиркин И.Н. Нервный аппарат мочевого пузыря в норме и при перевязке внутренней подвздошной артерии//В сб.: Структура и функции вегетативной нервной системы. Материалы 1-го международного симпозиума.- Воронеж, 1995. С.36-37.

29. Иванова Т.С. Рецепторная иннервация тонкой кишки. JL: Наука, 1967. 139 с.

30. Кадыров Х.К., Антомонов Ю.Г. Синтез математических моделей биологических и медицинских систем. Киев, Наукова думка, 1974. 224 е.

31. Калиниченко С.Г., Дудина Ю.В., Дюйзен И.В., Мотавкин П.А. Индукция NO-синтазы и глиального кислого фибриллярного белка в астроцитах височной коры крыс с аугенной эпилептиформной реакцией // Морфология, 2004. Т. 125. - №3. - С. 68-73.

32. Картавенко А.Н. Роль неврогенного фактора в патогенезе и клинике язвенной болезни желудка и 12-перстной кишки. Дисс.докт.мед.наук, Смоленск, 1955. 325 с.

33. Кнорре А.Г., Суворова JI.B. Развитие вегетативной нервной системы в эмбриогенезе. М.: Медицина, 1984. 272 с.

34. Князева JI.A., Ван Хэмин, Чарыева И.Г., Гаман С.А., Пылаев A.C. SIF-клетки вегетативных ганглиев // В сб.: Структура и функции вегетативной нервной системы. Материалы 1-го международного симпозиума.- Воронеж, 1995 С.43-44.

35. Ковалева Н.М. Структура ганглиев тазового сплетения самцов белых крыс в норме и в межорганном сращении. Автореф.канд дисс.биол. наук. Москва, 1983. 18 с.

36. Колосов Н.Г., Забусов Г.И. Zur Frage über den Bau des autonomen Nerversystems //Anat.Anz., 1932.- Bd. 74.- S. 417.

37. Корочкин Л.И. Дифференцировка и старение вегетативного нейрона. М.-Л.: Наука, 1965. 188 с.

38. Косицкий Г.И., Червова И.А. Сердце как саморегулирующаяся система. М., 1968. 131 с.

39. Крохина Е.М. Функциональная морфология и гистохимия вегетативной иннервации сердца. М., 1973. 136 с.

40. Кругляков П.П. Вегетативная система млекопитающих животных и человека в онтогенезе. Автореф.дисс.докт.биол.наук, Саранск. 1996. 36 с.

41. Кругляков П.П., Одыванова Л.Р. Чаиркина И.Н., Гуски Г., Швалев В.Н., Сосунов A.A. Межнейрональные взаимоотношения в вегетативных ганглиях (ультраструктурные аспекты) //Морфология, 1997.-T.III.,N. 1.-С. 35-39.

42. Кулькин С.Г. К эмбриогенезу нервного аппарата мочевого пузыря человека. Автореф. канд. дисс. Волгоград, 1957. 18 с.

43. Лакин Г.Ф. Биометрия. М., «Высшая школа», 1990, 352 с.

44. Лапша В.И. Роль интрамуральных ганглиев и сплетений в осуществлении периферических рефлексов с желудка на кишечник // В сб.: Нервные и гуморальные механизмы регуляции функций. Минск, 1969. С.61.

45. Ле-Ван Минь Строение и связи нервных сплетений желудка у человека и животных. Автореф.дисс.канд.мед.наук. Киев, 1978. 20 с.

46. Леонтюк A.C. Структурное разнообразие как критерий системной характеристики процессов морфогенеза. Морфология, 1996, т. 104, вып.2, с. 67.

47. Леонтюк A.C., Леонтюк Л.А., Сыкало А.И. Информационный анализ в морфологических исследованиях. Минск, 1981. 160 с.

48. Лойко Л.А. Структурно-функциональные особенности аффрентных систем илеоцекального отдела кишечника. Автореф.дисс.канд.мед.наук, Минск, 1972. 26 с.

49. Марков В.Н., Древаль A.A., Ярыгин В.Н. Радиографический и электрон-номикроскопический анализ симпатических невроцитов после частичной химической десимпатизации крыс разного возраста // Архив анат., гист., эмбр. 1982. -Т. 83. Вып. 10. - С. 35-42.

50. Мельман Е.П. Функциональная морфология иннервации органов пищеварения. М.: Медицина. 1970. 328 с.

51. Мещеряков A.M. Вегетативное нервное сплетение таза (экспериментально-морфологическое исследование). Автореф. докт. дисс. Казань, 1951. 26 с.

52. Милохин A.A. К вопросу о собственной рефлекторной дуге кишечника // Докл. АН СССР, 1953.-Т.93, №5.-С.933-935.

53. Милохин A.A. Чувствительная иннервация вегетативных нейронов. Л., «Наука», 1967, 68 с.

54. Мосеев В.П. Морфологические и функциональные изменения желудка после частичной его денервации. Дисс.канд.мед.наук, Ярославль, 1970. 269 с.

55. Мотавкин П.А., Зуга М.В. Окись азота и её значение в регуляции легочных функций // Морфология, 1998. Т. 114.- №5. - С. 99-111.

56. Никифоров А.Ф. Афферентный нейрон и нейродистрофический процесс. М., Медицина. 1973. - 192 с.

57. Николаев Г.М.и Шилкин В.В. Опыт определения активности ацетилхо-линэстеразы в структурах периферической нервной системы // Проблемы морфогенеза периферических нервов: сб. трудов ЯМИ.-Ярославль, 1983. -С. 64-72.

58. Ноздрачев А.Д. Адренэргические, холинэргические, серотонинэргиче-ские и пептидэргические нейроны метасимпатической нервной системы // Физиол. журн. СССР, 1984.-Т.70, N5.-C.649-661.

59. Ноздрачев А.Д. Анатомическая структура вегетативной нервной системы // Физиология вегетативной нервной системы. Л.: Наука, 1981. С. 31-34.

60. Ноздрачев А.Д. Физиология вегетативной нервной системы. Л.: Медицина, 1983. 296 с.

61. Ноздрачев А.Д. Химическая структура периферического автономного (висцерального) рефлекса // Успехи физиол. наук, 1996.-Т.27, N2.-C.28-60.

62. Пак Бон Ик Морфологические и гистохимические закономерности развития иннервации прямой кишки в онтогенезе белой крысы. Авто-реф.канд.биол.наук, Москва, 1985, 24 с.

63. Пилипенко В.И. Материалы к функциональной морфологии периферической нервной системы // Бюлл. экспер. биол. и мед., 1957.-Т.41, № 5.-С.70.

64. Реутов В.П., Сорокина Е.Г., Охотин В.Е., Косицын Н.С. Циклические превращения оксида азота в организме млекопитающих. М: Наука. 1997.

65. Родин В.Н. Морфологическая характеристика нервного аппарата стенки тонкой кишки в эмбриогенезе// Современные проблемы нейробиологии. Матер.З-го международ.симпозиума, 21-22 июня 2001 г., Саранск. Тез.докл. Саранск, 2001. С.67-68.

66. Родионов И.М., Ярыгин В.Н., Мухаммедов А.А Иммунологическая и химическая десимпатизация. М.: Наука, 1988. 152 с.

67. Руденок В.В., Сысов A.B. Строение нейронов шейных спинномозговых узлов плода белой крысы при химической десимпатизации гуанетидином беременной самки // 2-й съезд анатомов, гистологов, эмбриологов Белоруссии: Тез.докл. Минск, 1991. С. 150.

68. Рудик Е.А. Морфологические изменения желудка при перерезке блуждающих нервов. // Архив патол., 1952.-Т.14, №6.-С.59-63.

69. Румянцева Т.А. Влияние введения капсаицина на развитие нейроцитов чувствительных узлов белой крысы // Функциональная нейроморфология. Фундаментальные и прикладные исследования. К 100-летию академика HAH Беларуси Д.М.Голуба. Минск. 2001.-С.163-166.

70. Румянцева Т.А. Влияние химической десимпатизации и деафферента-ции на нейроциты экстра- и интрамуральных ганглиев в постнатальном онтогенезе белой крысы. Дисс. докт.мед.наук. Ярославль, 2002. 384 с.

71. Румянцева Т.А. Изменения нейроцитов интрамуральных ганглиев желудка у десимпатизированной и деафферентированной белой крысы // Мор-фология.-2001 -Т. 120, № 4.-С.82-83.

72. Румянцева Т.А. Энзимохимическая характеристика нейроцитов интрамуральных ганглиев желудка белой крысы при химической десимпатизации // Российские морфологические ведомости, 2001. № 1-2. - С. 77-79.

73. Румянцева Т.А., Шилкин В.В., Ковригина Т.Р., Филимонов В.И. Влияние введения капсаицина на нейроциты спинномозговых ганглиев белой крысы // Российские морфологические ведомости, 1999.-№1-2.-С.167-168.

74. Русова Э.М. Состояние интрамуральной нервной системы сердца при воздействии инадекватного раздражителя на некоторые органы // Вопросы морфологии в теоретической и клинической медицине. Труды Крымского медицинского института.-1982.-Т.91.-С.30-33.

75. Рыбаченко П.В. Микроциркуляторное русло межмышечного нервного сплетения толстой кишки в норме, при её парасимпатической децентрализации и моделировании проникающих ранений. Автореф.канд.мед.наук.

76. Ивано-Франковск, 1973, 24 с.

77. Ряховская Л.В., Адамацкий А.И. Связи нейронов симпатических ганглиев с миэнтеральным нервным сплетением ободочной кишки млекопитающих // Архив анат.,гист.,эмбриол., 1986.-Т.91, №10.-С. 15-21.

78. Слука Б.А. Информационный анализ нейроцитов некоторых периферических ганглиев и критические периоды их функционирования // Архив анат., гист., эмбр., 1983. Т.84. - №2. - С.16-22.

79. Слука Б.А. Структура нейронов симпатических ганглиев при химической десимпатизации гуанетидином // Архив анат.,гист.,эмбриол.-1987.-Т. 93, В.9.-С.64-70.

80. Смирнов В.М. Гипотеза о серотонинергической иннервации желудка и кишечника // В сб.¡Механизмы функционирования висцеральных систем. Тез.докл. междунар. Конференции, посвящен. 150-летию И.П.Павлова, СП6.-1999.-С.350-351.

81. Солтанов В.В. Электрофизиологический анализ афферентных систем желудочно-кишечного тракта. Автореф. дисс.докт.мед.наук, Минск, 1975. 24 с.

82. Сосунов A.A. Оксид азота как межклеточный посредник // Соросов-ский Образовательный Журнал, 2000 № 12 - с.27-34.

83. Столяров В.А. Микроморфология интрамуральной нервной системы тонкой кишки у новорожденных телят // Современные проблемы нейробиологии. Матер.З-го между народ, симпозиума, 21-22 июня 2001 г., Саранск. Тез.докл. Саранск, 2001.-С.72.

84. Струков А.И., Ярыгин Н.Е., Лапин С.К. Вопросы классификации структурных изменений элементов нервной системы // В кн.: Вопросы морфологии нервной системы. М.-1960.-С.69.

85. Тельцов Л.П., Кизим Э.В. Периодизация развития нервной ткани стенки тонкого и толстого кишечника// Современные проблемы нейробиологии. Матер.З-го международ.симпозиума, 21-22 июня 2001 г., Саранск. Тез.докл. Саранск.-2001.-С.74-75.

86. Червонная И.П. Сердечная деятельность у неонатально десимпатизи-рованных животных // В сб.: Механизмы функционирования висцеральных систем. Тез. докл. междунар. конференции, посвящен. 150-летию И.П.Павлова, СП6.-1999.-С.394-395.

87. Чернышевская И.А. Гистохимия холинэстераз коры головного мозга. М., Наука. 1983. 104 с.

88. Шаширина М.И. Реакция нейронов интрамуральных ганглиев поджелудочной железы морской свинки на нарушение их связей с ЦНС// Архив анат.,гист.,эмбр., 1986.-Т.91, №10.-С.11-15.

89. Ярыгин Н.Е., Шепелева Н.С. Отдаленные результаты при двусторонней ваготомии // Архив патол., 1957.-Т.19, № 7.-С.41-44.

90. Ярыгин Н.Е., Ярыгин В.Н. Патологические и приспособительные изменения нейрона. М., Медицина, 1973. 190 с.

91. Aberg G., Eranko O. Localization of noradrenaline and acetylcholinesterase in the taenia of the guinea-pig caecum // Acta Physiol. Scand. 1967.- V.69.- P. 383.

92. Adnot S., Raffestin В., Eddahibi S. NO in the lung // Respir.Physiol.-1995.1. V.101, № 2.-P.109-120.

93. Aigner F, Zbar A.P., Ludwikowski B., Kreczy A., Kovacs P., Fritsch H. The rectogenital septum: m orphology, function, and clinical relevance // Dis Colon Rectum. 2004, Feb. - 47(2).-P.131-40.

94. Akoev G.N., Chalisova N.I. Role of neurotrophic factors in adaptational processes of the nervous system // Neurosci. Behav. Physiol.-1997.-V.27, №3.-P.207-211.

95. Aim P., Ekstrom J. Outgrowth of cholinergic nerves in the rat urinary bladder either partially denervated or partially denervated and decentralized // Acta Physiol. Scand.-1981 .-V. 112, №2.-P. 179-183.

96. Andrews T.J., Thrasivoulou C., Nesbit W., Cowen T. Target-specific differences in the dendritic morphology and neuropeptide content of neurons in the rat SCG during development and aging // J. Comp. Neurol.-1996.-V.368(1), №22.-P.33-44.

97. Arbuckle J.B., Docherty R.J. Expression of tetrodotoxin-resistant sodium channels in capsaicin-sensitive dorsal root ganglion neurons of adult rats // Neurosci. Lett. 1995. - 185 (1).- P. 70-73.

98. Auberson S., Lundberg J.M. Lactic acid-induced plasma protein extravasation in rat airways by stimulation of sensory nerves and NK1 receptor activation // Pharmacol .Toxicol. 1993 - 73(6). - P. 305-310.

99. Bakal R.S., Wright L.L. Postnatal neuron death in the nodose ganglia of the rat // Dev. Neurosci.-1993.-V. 15, №1.- P.22-26.

100. Baltazar E.T., Kitamura N., Hondo E., Yamada J., Maala C.P., Simborio L.T. Immunohistochemical study of endocrine cells in the gastrointestinal tract of the Philippine carabao (Bubalus bubalis) // Anat. Histol. Embryol.-1998.-V.27, №6.-P.407-411.

101. Barbiers M., Timmermans J.P., Scheuermann D.W., Adriaensen D., Mayer B., De Groodt-Lasseel M.H. -1993

102. Boyd I.D. Intermediate sympathetic ganglia // Brit. Med. Bull.-1957.-V.13.-P.207.

103. Brzozowski Т., Kontirek S.J., Pytko-Polonczyk J., Warzecha Z. Gastric adaptation to stress: role of sensory nerves, salivary glands and adrenal glands // Scand. J. Gastroenterol., 1995. 30 (1). - P. 6-16.

104. Burnstock I. 1986. / Цит.: Гнетов A.B., Ноздрачев А.Д., Степанова Т.П. Механизмы регуляции активности продольного слоя гладких мышц кишки мальмы // Физиол. журн. им.И.М.Сеченова. 1991. - Т.77. - № 8. - С. 122129.

105. Carlstedt A., Fasth S., Hulten L., Nordgren S. The sympathetic innervation of the internal anal sphincter and rectum in the cat. // Acta Physiol Scand. -.1988,Jul. 133(3). -P 423-31.

106. Chard P.S., Bleakman D. Capsaicin-induced neurotoxicity in cultured dorsal root ganglion neurons: involvement of calcium-activated proteases // Neuroscience. 1995.-65 (4).-P. 1099-1108.

107. Collier В., Iohnson G., Quik M., Welner S. Effect of chemical destruction of mechanisms in adult rat sympathetic ganglia // Brit. J. Pharmacol. 1984. - Vol. 82,N4.-P. 639-646.

108. Costa M., Furness J.B. The origins of the adrenergic fibres which innervate the internal anal sphincter, the rectum, and other tissues of the pelvic region inthe guinea-pig.// Z Anat Entwicklungsgesch. 1973,Jul 25. - 140(2). - P. 12942.

109. Cracco C., Filogamo G. Quantitative study of the NADPH-diaphorase-positive myenteric neurons of the rat ileum // Neuroscience.-1994.-V.61, №2.-P. 351-359.

110. Crowe R., Burnstock G., Light J.K. Intramural ganglia in the human urethra // J. Urol.-1988.-V.140, №1.-P. 183-187.

111. Dang K., Bielefeldt K., Gebhart G.F. Differential responses of bladder lumbosacral and thoracolumbar dorsal root ganglion neurons to purinergic agonists, protons, and capsaicin // J Neurosci. 2005, Apr 13. - 25(15). - P.3973-84.

112. Dixon J.S., Jen P.Y., Gosling J.A. A double-label immuno-histochemical study of intramural ganglia from the human male urinary bladder neck // J. Anat.-1997.-V.90, №Pt 1.-P.125-134.

113. Domoto T., Gonda T., Oki M., Yanaihara N. Coexistence of substance P-and methionine5-enkephalin-like immunoreactivity in nerve cells of the myenteric ganglia in the cat ileum // Neurosci. Lett.-1984.-V.l, №47(1).-P.9-13.

114. Echteler S.M., Nofsinger Y.C. Development of ganglion cell topography in the postnatal cochlea//J.Comp.Neurol.-2000.-V.25, №425 (3).-P.436-446.

115. Ekblad E., Ekelund M., Grafftier H., Hakanson R., Sundler F. Peptide-containing nerve fibers in the stomach wall of rat and mouse // Gastroenterology.-1985.-V.89, №l.-P.73-85.

116. Ekblad E., Ekman R., Hakanson R., Sundler F. Projections of peptide-containing neurons in rat colon // Neuroscience.-1988.-V.27, №2.-P.655-674.

117. Ekblad E., Mei Q., Sundler F. Innervation of the gastric mucosa // Microsc. Res. Tech.-2000.-V.l, №48(5).-P.241-257.

118. Ekblad E., Winther C., Ekman R., Hakanson R., Sundler F. Projections of peptide-containing neurons in rat small intestine // Neuroscience.-1987.-V.20, №1.-P.169-188.

119. Eranko O., Eranko L. Histochemical evidence of chemical sympathectomy by guanethidine in newborn rats // Ibid.-1971.-V.3, №6.-P. 451-456.

120. Evans B.K., Burnstock G. Chronic guanethidine treatment of female rats including effects on the femus // J. Reprod. and Fert. 1979. - V. 56, N 2. - P. 715724.

121. Fang S., Christensen J. Distribution of NADPH diaphorase in intramural plexuses of cat and opossum esophagus // J. Auton. Nerv. Syst.-1994.-V.46, №1-2.-P.123-133.

122. Furness J.B., Costa M., Gibbins I.L., Llewellyn-Smith I.J., Oliver J.R. Neu-rochemically similar myenteric and submucous neurons directly traced to the mucosa of the small intestine // Cell Tissue Res.-1985.-V.241,№l. P.155-163.

123. Furness, J. B., Costa M. The Enteric Nervous SystemNew York // Churchill Livingstone. 1987. - P.306

124. Ganchrow J.R., Seltzer Z. The effect of neonatal treatment on gustatory behavior in the albino rat // Physiol. Behav., 1992 52 (6). - P.1037-1042.

125. Garrett J.R., Howard E.R. Myenteric plexus of the hind-gut: developmental abnormalities in humans and experimental studies. // Ciba Found Symp. 1981. -83. - P.326-54

126. Geirsson G., Fall M., Sullivan L. Clinical and urodynamic effects of intravesical capsaicin treatment in patients with chronic traumatic spinal detrusor hyperreflexia // J. Urol., 1995.-154 (5). P. 1825-1829.

127. Gillespie J.S., Maxwell J.D., Adrenergic innervation of sphincteric and non-sphincteric smooth musclein the rat intestine. // J Histochem Cytochem.1971,Nov. 19(11).-P.676-81.

128. Goldstein R. S. Axial level-dependent differences in size of avian dorsal root ganglia are present from gangliogenesis // J. Neurobiol.-1993.-V.24, №8.-P.l 121-1129.

129. Gonda T., Oki M., Distribution of cholinergic and catecholaminergic nerves in the colon of the rat with aganglionosis // Jikken Dobutsu. 1991,Oct. - 40(4). - P.471-84.

130. Gonella J. The physiological role of peripheral serotoninergic neurones. A review//J. Physiol. (Paris)-1981.-V.77, №2-3.-P.515-519.

131. Grunditz T., Ekman R., Hakanson R., Sundler F., Uddman R. Neuropeptide Y and vasoactive intestinal peptide coexist in rat thyroid nerve fibers emanating from the thyroid ganglion // Regul. Pept.-1988.-V.23, №2.-P. 193-208.

132. Guarini S., Bazzani C., Tagliavini S., Bertolini A., Ferrari W. Capsaicin prevents the adrenocorticotropin-induced improvement of cardiovascular function and survival in hemorrhage-shocked rats // Neurosci. Lett., 1992. 143 (1-2). -P. 181-184.

133. Hirose R., Nada O., Kawana T., Suita S. The intramural pelvic nerves im-munoreactive for calcitonin gene-peptide in the rectum of normal and aganglionosis rat // Anat. Embryol. (Berl).-1993.-V.187, №l.-P.37-44.

134. Hiura A., Ishizuka H., Sakamoto Y. Electron microscopic study of the effect of capsaicin on the mouse chorda tympani nerves // Arch.Oral.Biol.-1990.-V.35, №11.-P.913-916.

135. Hope B.T., Michael G.J., Knigge K.M., Vincent S.R. Neuronal NADPH diaphorase is a nitric oxide synthase. Neurobiology, 1991, v. 88, p. 2811-2814.

136. Jobling P., Gibbins I.L., Morris J.L., Functional organization of vasodilator neurons in pelvic ganglia of female guinea pigs: comparison with uterine motor neurons. // J Comp Neurol. 2003,May 5. - 459(3). - P.223-41

137. Johnson I.E., Manning P.T. Guanethidine-induced destruction of sympathetic neurons // Intern.Rev.Neurobiol.-1984.-V.25.-P.l-37.

138. Juul P., Melsaac R.L. The effect of guanethidine on the noradrenaline content of the adult rat superior cervical ganglion // Acta pharmacol.et toxicol.-1973.- V. 32.- N 5.-P. 382-389.

139. Kato A.C., Vrachliotis A., Fulpins B., Duant Y. Molecular forms of acetylcholinesterase in chick muscle and ciliary ganglion embryonic tissues and cultured cells // Develop.Biol., 1980. Vol. 76. - P. 222-228.

140. Keast J.R. Plasticity of pelvic autonomic ganglia and urogenital innervation. // Int Rev Cytol. 2006. - 248. - P. 141-208.

141. Keef K.D., Murray D.C., Sanders K.M., Smith T.K. Basal release of nitric oxide induces an oscillatory motor pattern in canine colon. // J. Physiol. (Lond). -1997. -V. 499. -P. 773-786.

142. Keller H. The development of the intramural nerve plexus of the gastrointestinal tract // Anat.Embryol.(Berl).-1976.-V.22, №150(l).-P.l-6.

143. Krantis, A., I. Glasgow, A. E. McKay, K. Mattar, F. Johnson. A method for simultaneous recording and assessment of gut contractions and relaxations in vivo // Can. J. Physiol. Pharmacol.-1996.-V. 74.-P. 894-903.

144. Kyosola K., Veijola L., Rechardt L. Cholinergic innervation of the gastric wall of the cat // Histochemistry.-1975.-V. 16, №44 (l).-P.23-30.

145. Kyosola K., Veijola L., Rechardt L. Immunohistochemical demonstration of choline acetyltransferase of a peripheral type (pChAT) in the enteric nervous system of rats // Acta Biol.Med.Ger.-1980.-V.39, №6.-P.687-696.

146. Lapsha V.I., Bocharova V.N. Microfluorimetric study of adrenergic structures in nerve plexuses of the pelvic cavity of the normal and decentralized cat. // Neirofiziologiia. 1986. - 18(4). -P.496-502.

147. Lerman S.H., Jacobowitz D.M., Mason G.R., Garber H.I., Ormsbee H.S. 3d. Gastric and pyloric motor response to sympathetic nerve stimulation after chemical sympathectomy // J.Auton.Nerv.Syst.-1981.-V.4, №3.-P.207-215.

148. Lolova I, Davidoff M, Itzev D, Apostolov A.Histochemical, immunocyto-chemical and ultrastructural data on the innervation of the smooth muscle of the large intestine in Hirschsprung's disease. // Acta Physiol Pharmacol Bulg. 1986. -12(2). -P.55-62

149. Luckensmeyer G.B., Keast J.R. Activation of alpha- and beta-adrenoceptors by sympathetic nerve stimulation in the large intestine of the rat. // J Physiol. -1998, Jul 15. 510 ( Pt 2). - P.549-61.

150. Luckensmeyer G.B., Keast J.R. Characterisation of the adventitial rectal ganglia in the male rat by their immunohistochemical features and projections. // J Comp Neurol. 1998,Jul 13. - 396(4). - P.429-41.

151. Luo M.H., Li S.W., Zheng X.M., Hu L.Q., Luo Y., Zheng H. Impacts of denervation on the morphology and expression of neuronal nitric oxide synthase of prostate of adolescent rats // Zhonghua Nan Ke Xue. 2006,Feb. - 12(2). -P/112-4,119.

152. Lychkova A.E. Gradients of serotoninergic innervation of the large intestine // Bull Exp Biol Med. 2005,May. - 139(5). - P.550-3.

153. Manzini S., Maggi C.A., Meli A. Pharmocological evidence that at least two different non-adrenergic non-cholinergic inhibitory systems are present in the rat small intestine. // Eur. J. Pharmacol. 1986. -V. 123. -P.229-236.

154. Matharu M.S., Hollingsworth M. Purinoceptors mediating relaxation and spasm in the rat gastric fundus. // Br. J. Pharmacol. -1992-V.106. -P.395-403.

155. Mercier-Parot L., Tuchmann-Duplessis H. Abortifactent and teratogenic effect of suramin, a trypanocide. // Comptes Rendus des Seances de la Societe de

156. Biologie et de Ses Filiates. 1973. - 167. - P. 1518-1522.

157. Nagy I., Pabla R. Cobalt uptake enables identification of capsaicin- and bra-dykinin-sensitive subpopulations of rat dorsal root ganglion cells in vitro // Neu-roscience.-1993 .-V.56, №1 .-P.241 -246.

158. Nakajima K., Tooyama I., Yasuhara O., Aimi Y., Kimura H. Immunohisto-chemical demonstration of choline acetyl transferase of a peripheral type (pChAT) in the enteric nervous system of rats. // J Chem Neuroanat. 2000,Feb. - 18(1-2). -P.31-40

159. Nakanishi Y, Tooyama I, Yasuhara O, Aimi Y, Kitajima K, Kimura H Im-munohistochemical localization of choline acetyltransferase of a peripheral type in the rat larynx // J. Chem. Neuroanat. 1999 - 17 (l).-21-32.

160. Nelson D.K., Service J.E., Studelska D.R., Brimijoin S., Go V.L. Gastrointestinal neuropeptide concentrations following guanethidine sympathectomy // J.Auton.Nerv.Syst.-l988.-V.22, №3.-P.203-210.

161. Nichols K., Staines W., Wu J.-Y., Krantis A. Immunopositive GABAergic neural sites display nitric oxide synthase-related NADPH diaphorase activity in the human colon. // J. Auton. Nerv. Syst. 1995. - V.50. - P.253-262.

162. Nielsen G.D. Guanethidine induced sympathectomy in the adult rat. I. Functional e ffects following s ubacute administration // Acta p harmacol. ettoxicol.-1977.-V.41,N3.-P 203-208.

163. Orloff L.A., Orloff M.S., Bunnett N.W., Walsh J.H. Dopamine and norepinephrine in the alimentary tract changes after chemical sympathectomy and surgical vagotomy // Life Sci.-1985.-V.29, №36 (17).-P.1625-1631.

164. Ouyang A., Zimmerman K., Wong K.L., Sharp D., Reynolds J.C. Effect ofceliac ganglionectomy on tachykinin innervation, receptor distribution and intestinal responses in the rat // J.Auton.Nerv.Syst.-1996.-V.14, №61 (3).-P.292-300.

165. Patterson J.T., Chung K., Coggeshall R.E. Further evidence for the existence of the long ascending unmyelinated primary afferent fibers within the dorsal funiculus: effects of capsaicin // Pain, 1992.- 49 (l).-P. 117-120.

166. Phillips R.J., Kieffer E.J., Powley T.L. Aging of the myenteric plexus: neuronal loss is specific to cholinergic neurons. // Auton Neurosci. 2003 Jul 31. -106(2).-P.69-83.

167. Sanders KM, Ordog T, Koh SD, Torihashi S, Ward SM.Development and plasticity of interstitial cell of Cajal // Neurogastroenterol Motil.-1999.-V. 1 l.-P. 311-338.

168. Santicioli P., Del-Bianco E., Geppetti P., Maggy C.A. Release of calcitonin gene-related peptide-like immunoreactivity from rat isolated soleus muscle by low PH, capsaicin and potassium // Neurosci. Lett.- 1992.- 143 (1-2).- P. 19-22.

169. Simonsen U., Triguero D., Garcia-Sacristan A., Prieto D. Cholinergic modulation of non-adrenergic, non-cholinergic relaxation in isolated, small coronary arteries from lambs // Pflugers.Arch.-1999.-V.438, №2.-P.177-186.

170. Smith D.C. Sinaptic sites in sympathetic and vagal cardioaccelerator nerves of the dog // AmerJ.Physiol.-1970.-Vol.218, №6.-P.16.

171. Timmermans J.P., Barbiers M., Scheuermann D.W., Bogers J.J., Adriaensen

172. D., Fekete E., Mayer B., Van Marck E.A., De Groodt-Lasseel M.H. Nitric oxide synthase immunoreactivity in the enteric nervous system of the developing human digestive tract. // Cell Tissue Res. 1994, Feb. - 275(2). - P.235-45.

173. Uno H., Arakawa T., Fukuda T., Higuchi K., Kobayashi K. Involvement of capsaicin-sensitive sensory nerves in gastric adaptive relaxation in isolated guinea-pig stomachs // Digestion.-1997.-V.58, №3.-P.232-239.

174. Vizzard M.A., Erdman S.L., de Groat W.C. Localization of NADPH diaphorase in bladder afferent and postganglionic efferent neurons of the rat // J.Auton.Nerv.Syst.-1993.-V.44,№l.-P.85-90.

175. Wakade A.R. Recent developments in degeneration of the sympathetic neuron// Gen.Pharmacol.-1979.-Vol. 10, №5.-P.351-357.

176. Wester T., O'Briain S., Puri P. Morphometric aspects of the submucous plexus in whole-mount preparations of normal human distal colon // J.Pediatr.Surg.-1998.-V.33, №4.-P.619-622.

177. White C.B., Roberts A.M., Joshua I.G. Arteriolar dilation mediated by capsaicin and calcitonin gene-related peptide in rats // Am.J.Physiol., 1993, 265 (4 pt.2), p.1411-1415.

178. Yamada M. Observations on the morphology of the pelvic ganglion of the female rat (Nippon Sanka Fujinka Gakkai Zasshi. 1986 May;38(5):685-92).

179. Yoshida N., Tanaka C., Taniyama K., Kondo M. Cyclic adenosine 3!,5'-monophosphate levels in response to norepinephrine in rectum of postnatal rats. // Jpn J Pharmacol. 1979,Oct. - 29(5). - P.781-7.

180. Zhou Y., Tan C.K., Ling E.A. Distribution of NADPH-diaphorase and nitric oxide synthase-containing neurons in the intramural ganglia of guinea pig urinary bladder//J.Anat.-1997.-V.190, Pt. 1.-P.135-145.

181. Zoucas E., Nilsson C., Aim P., Ihse I. Selective microsurgical sympathetic denervation of the rat pancreas // Eur.Surg.Res.-1996.-V.28, №5.-P.367-373.