Нейронная организация, проводящие пути и связи звездчатого ганглия кошки в постнатальном онтогенезе тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 14.00.02, доктор медицинских наук Маслюков, Петр Михайлович

• Маслюков, Петр Михайлович
• доктор медицинских наук
• 2003

Оглавление диссертации доктор медицинских наук Маслюков, Петр Михайлович

ВВЕДЕНИЕ

1. ОБЪЕКТ ИССЛЕДОВАНИЯ И ОБЩИЕ МЕТОДИЧЕСКИЕ 15 ПРИЕМЫ, ИСПОЛЬЗОВАННЫЕ В РАБОТЕ

1.1. Выбор объекта изучения

1.2. Применение методов исследования для решения конкретных 16 задач и постановка серий экспериментов

1.3. Общие приемы, используемые для решения поставленных 19 задач

1.3.1. Наркоз и обездвиживание животных

1.3.2. Искусственная вентиляция легких

1.3.3. Особенности экспериментальных доступов

1.3.4. Перфузия животных, изготовление срезов и выявление 22 изучаемых структур

1.3.5. Определение морфометрических параметров нейронов

1.3.6. Особенности электрофизиологических методов

1.3.7. Используемое оборудование

1.3.8. Обработка результатов

2. МОРФОЛОГИЧЕСКАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА НЕЙРОНОВ 28 ЗВЕЗДЧАТОГО УЗЛА У ЖИВОТНЫХ РАЗНЫХ ВОЗРАСТОВ

2.1. Литературная предпосылка

2.1.1. Особенности анатомии звездчатого ганглия

2.1.2. Онтогенез паравертебральных узлов

2.1.3. Гистологические особенности нейроцитов звездчатого 31 узла взрослых особей

2.1.4. Онтогенез нейронов узла

2.1.5. Локализация нейротрансмитгеров в паравертебральных узлах

2.1.6. Физиологические эффекты нейротрансмиттеров

2.1.7. Изменения нейромедиаторных и нейротрансмиттерных 44 особенностей нейронов в онтогенезе

2.2. Особенности методов исследования

2.2.1. Окраска нейронов раствором метиленового синего

2.2.2. Определение АХЭ-позитивных структур

2.2.3. Проведение реакции на НАДФН-диафоразу

2.3. Результаты исследований

2.3.1. Морфометрическая характеристика нейронов 50 звездчатого ганглия котят

2.3.2. Реакция нейроцитов на ацетилхолинэстеразу

2.3.3. НАДФН-диафоразопозитивные нейроны в звездчатом 66 узле котят

Заключительные замечания

3. СВЯЗИ НЕЙРОНОВ ЗВЕЗДЧАТОГО ГАНГЛИЯ С ОРГАНАМИ- 79 МИШЕНЯМИ И СПИННОМОЗГОВЫМИ УЗЛАМИ

3.1. Литературная предпосылка

3.1.1. Гетерогенность популяций нейронов в 79 паравертебральных узлах

3.1.2. Связи нейронов звездчатого ганглия с органами- 81 мишенями у взрослых животных

3.1.3. Собственные афферентные нейроны в 84 паравертебральных ганглиях и эфферентная иннервация спинальных узлов

3.1.4. Формирование связей с органами-мишенями нейронов 85 паравертебральных узлов в онтогенезе

3.2. Особенности методики исследования

3.2.1. Изучение связей ганглия с внутренними органами

3.2.2. Изучение локализации нейронов звездчатого ганглия, проецирующихся к спинномозговым узлам

3.3. Результаты исследования

3.3.1. Связи внутренних органов с звездчатым ганглием у 89 котят разного возраста

3.3.2. Эфферентные связи со спинномозговыми узлами 100 Заключительные замечания

4. АФФЕРЕНТНЫЕ И ЭФФЕРЕНТНЫЕ ВХОДЫ ЗВЕЗДЧАТОГО 110 УЗЛА В ОНТОГЕНЕЗЕ

4.1. Литературная предпосылка

4.1.1. Связи с нейронами спинного мозга

4.1.2. Развитие связей с преганглионарными нейронами 113 спинного мозга в постнатальном онтогенезе

4.1.3. Связи с нейронами спинальных ганглиев

4.1.4. Связи экстрамуральных симпатических ганглиев с 117 интрамуральными

4.2. Особенности методики исследования

4.3. Результаты исследований

4.3.1. Связи со спинным мозгом

4.3.2. Связи со спинномозговыми узлами

4.3.3. Связи с интрамуральными узлами

4.3.4. Локализация меченых нейронов в продолговатом мозге 134 Заключительные замечания

5. ПРОВОДЯЩИЕ ПУТИ ЗВЕЗДЧАТОГО ГАНГЛИЯ КОШКИ В 139 ОНТОГЕНЕЗЕ

5.1. Литературная предпосылка

5.1.1. Транзиторные эфферентные пути

5.1.2. Афферентные транзиторные пути

5.1.3. Синаптически переключающиеся пути

5.1.4. Онтогенез проводящих путей узла

5.2. Особенности методов исследования

5.3. Результаты исследований

5.3.1. Особенности проводящих путей новорожденного и 10- 152 дневного котенка

5.3.2. Характеристика проводящих путей звездчатого ганглия 159 20-дневного котенка

5.3.3. Характеристика проводящих путей звездчатого ганглия 164 у котят в возрасте один месяц и старше

Заключительные замечания

6. ЦЕНТРАЛЬНЫЕ ПРОЕКЦИИ АФФЕРЕНТОВ СПИНАЛЬНЫХ 184 ТРАНЗИТОРНЫХ ПУТЕЙ ЗВЕЗДЧАТОГО ГАНГЛИЯ

6.1.1. Центральные пути спинальной афферентной 184 иннервации внутренних органов

6.1.2. Функциональная организация заднего вентрального 187 ядра таламуса

6.1.3. Функциональная организация соматосенсорных зон 191 коры больших полушарий

6.1.4. Электрическая активность вызванных ответов в 195 структурах ЦНС в постнатальном онтогенезе

6.2. Особенности методов исследования

6.3. Результаты исследования

6.3.1. Проведение возбуждения по дорсальным столбам

6.3.2. Характеристика вызванных ответов в таламусе при 199 стимуляции афферентов звездчатого узла

6.3.3. Особенности вызванных ответов в коре больших 202 полушарий при стимуляции афферентов звездчатого узла

6.1. Литературная предпосылка f w П? £ J-S

Заключительные замечания

7. ФОНОВАЯ АКТИВНОСТЬ ОТДЕЛЬНЫХ НЕЙРОНОВ И 213 СИМПАТИЧЕСКИХ НЕРВОВ У ЖИВОТНЫХ РАЗНОГО ВОЗРАСТА

7.1.3. Электрофизиологические особенности нейронов в 218 постнатальном онтогенезе

7.1.4. Ритмические разряды в эфферентных симпатических 219 волокнах

7.1.5. Особенности афферентной импульсации в ветвях 225 паравертебральных узлов

7.2. Особенности методики исследования

7.3. Результаты исследования

7.3.1. Фоновая эфферентная активность волокон ветвей узла

7.3.2. Афферентная импульсация в симпатических нервах 241 котят в постнатальном онтогенезе

7.3.3. Фоновая активность нейронов звездчатого ганглия в 242 онтогенезе

Заключительные замечания

7.1. Литературная предпосылка

7.1.1. Электрофизиологические особенности нейронов

7.1.2. Фоновая активность симпатических нейронов

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Нейронная организация, проводящие пути и связи звездчатого ганглия кошки в постнатальном онтогенезе»

Современные представления об организации и функции автономной (вегетативной) нервной системы во многом базируются на результатах работы Дж. Ленгли (1925), ряда зарубежных и отечественных исследователей структуры и функции ее мозговых центров, узлов, сплетений, нейронейрональных и нейротканевых взаимоотношений (ЛАОрбели, 1934; Б.И.Лаврентьев, 1946; Гельгорн, 1948; Kuntz, 1953; В.Н.Черниговский, 1960; И.А.Булыгин, 1964, 1966, 1976, 1978, 1979; О.Г.Баклаваджян, 1967; А-Д.Ноздрачев, 1969, 1978, 1983; В.И.Скок, 1970; Pick, 1970; Н.Г.Колосов, 1972; Burnstock, Costa, 1975; Gabella, 1976; АГ.Кнорре, И.Д.Лев, 1977; И.АБулыгин, 1978, 1979; А.Д.Ноздрачев, Ю.П.Пушкарев, 1980; А.Д.Ноздрачев, М.П.Чернышева, 1989; Elfvin, 1983; В.И.Скок, АЯ.Иванов, 1989; В.Н.Швалев с соавт., 1992;).

Последние обзорные работы и монографии используют комплексный мультидисциплинарный подход с привлечением нейроморфологических, нейрофизиологических и биохимических методов (Hendry, Hill, 1992; А.Д.Ноздрачев, А.В.Янцев, 1995; McLachlan, 1995; А.Д.Ноздрачев. Е.И.Чумасов, 1999; Taylor et al., 1999; Gibbins et al., 2000; А.Д.Ноздрачев. 2001; А.Д.Ноздрачев, М.М.Фатеев, 2002). Однако, они далеко не исчерпывают рассмотрение перспективы расширения и углубления исследования строения и функции автономной нервной системы.

Результаты работ последних десятилетий заставили во многом пересмотреть взгляды на периферические узлы автономной нервной системы, и особенно ее симпатической части как на чисто эфферентные образования. В свете последних данных симпатические ганглии предстают не только в качестве промежуточного звена на пути импульсов от ЦНС к внутренним органам, но и низшего интегративного центра (Л.И.Арчакова, И.АБулыгин, 1980; Л.И.Арчакова с соавт., 1982). Имеются данные о наличии в структуре ганглия наряду с эфферентными, как полагали ранее, еще и чувствительных клеток (В.Н.Черниговский, 1960; Д.М.Голуб, 1962; И.А.Булыгин, 1964, 1966, 1976, 1978, 1979; А.Д.Ноздрачев, 1978, 1983; Н.Г.Колосов, А.Я.Хабарова, 1978), а также интернейронов (Castro de F., 1932; Williams, 1967; Weems and Szurszewski, 1978; Libet, 1979; Dector, Weems, 1981; McGill et al., 1982; Brandys et al., 1984; Hopkins, Armour, 1984; Armour, 1985; Bosnjak, Kampine, 1985).

Как известно, среди паравертебральных ганглиев особое место занимает звездчатый узел. Являясь образованием, формирующимся у млекопитающих в результате слияния нижнего шейного узла с двумя-тремя верхними узлами грудного отдела симпатического ствола (Reighart, Jennings, 1935; Ellenberger-Baum, 1943; Б.М.Эрез, 1957; В.Н.Самохвалова, 1958; А.С.Гусев, 1958; А.Д.Ноздрачев, 1973; А.Д.Ноздрачев, Е.Л.Поляков, 1998) звездчатый ганглий участвует в иннервации органов грудной полости, шеи и передней (верхней) конечности (Langley, 1891, 1893; Daly, Mount, 1951; Ю.М.Жаботинский, 1953; Б.М.Эрез, 1957; М.Г.Удельнов, 1961, 1975; Е.П.Мельман, 1970; В.И.Скок, 1970; Е.М.Крохина, 1973; Г.И.Косицкий, 1975; А.Я.Хабарова, 1975; А.Д.Ноздрачев, 1978, 1983; В.Н.Швалев с соавт., 1992; М.М.Фатеев с соавт., 1996; Taylor et al., 1999). Через этот ганглий проходят транзиторные эфферентные волокна к среднему и краниальному шейному ганглию и афферентные от внутренних органов к спинномозговым узлам и чувствительным ядрам спинного мозга (А.Я.Хабарова, 1961, 1975; В.И.Скок, 1970; Г.И.Косицкий, 1975; А.Д.Ноздрачев, 1978, 1983; Malliani, 1982; А.Д.Ноздрачев, Е.И.Чумасов, 1999; А.Д.Ноздрачев, М.М.Фатеев, 2002 и др.).

Изданные в последние годы монографии (В.Н.Швалев с соавт., 1992; Hendry, Hill, 1992; McLachlan, 1995; А.Д.Ноздрачев, М.М.Фатеев, 2002) позволили существенно дополнить прежние данные о морфологических и функциональных характеристиках нейронов паравертебральных ганглиев в процессе развития (И.ААршавский, 1967; В.С.Шевелева, 1977; АГ.Кнорре, Л.В.Суворова, 1984).

Известно, что нейронная организация периферических узлов автономной нервной системы сопровождается возрастной перестройкой, происходящей с увеличением размеров нейронов (Шевелева B.C., 1977), а также перестройкой медиаторного состава (В.Н.Швалев с соавт, 1992). Однако практически полностью отсутствуют данные о сроках окончания созревания нейроцитов и динамике изменения морфометрических и гистохимических характеристик нейроцитов.

Имеются лишь единичные работы, посвященные изучению связи звездчатого узла с органами-мишенями (Stuesse, Powell, 1982; Hopkins et al., 1997) и ядрами спинного мозга (Pyner, Coote, 1994b) в постнатальном онтогенезе. В большинстве своем эти исследования выполнены на разных животных и охватывают ограниченный возрастной диапазон.

Достаточно подробно исследованы морфологические и функциональные особенности шейного симпатического ствола у зрело- и незрелорождающихся животных разного возраста, в том числе фоновая активность, скорость проведения возбуждения, волоконный состав. В то же время, в связи с малыми размерами звездчатого узла у новорожденных животных и трудностью доступа к нему, сведения, касающиеся ветвей ганглия, практически отсутствуют.

Данные об импульсной активности нейронов в онтогенезе, полученные В.С.Шевелевой, зачастую противоречат материалам, полученным в онтогенезе на других животных: крысах, морских свинках и поросятах (Haddad, Armour, 1991; Gootman et al., 1992; Sicaet al., 1994).

Несмотря на обширный материал по проведению возбуждения по соматическим афферентам в центральной нервной системе при раздражении плечевого сплетения котят, у животных разного возраста нет также данных по особенностям функционирования проводящих путей, несущих афферентную информацию от звездчатого узла к коре больших полушарий.

Таким образом, сведёния об онтогенезе звездчатого ганглия и значительной степени являются неполными. В связи с этим возникла необходимость определения особенностей созревания морфологических и функциональных показателей нейронов, проводящих путей и связей звездчатого ганглия кошки в постнатальном онтогенезе.

Конкретными задачами исследования являлись:

1. Изучение морфометрических характеристик нейроцитов звездчатого узла в постанатальном онтогенезе.

2. Определение НАДФН-диафоразопозитивных и ацетилхолинэстеразо-позитивных (АХЭ-позитивных) нейронов и их морфологических особенностей у животных разных возрастов.

3. Определение локализации в ганглии эфферентных нейронов, связанных с органами шеи, грудной полости, передней конечности, а также нейронов, отростки которых направляются к спинномозговым ганглиям.

4. Установление связей узла со спинным мозгом, спинальными ганглиями, узлами метасимпатической нервной системы и их изменение в постнатальном онтогенезе.

5. Изучение проводящих путей ганглия: собственных синаптически переключающихся, эфферентных и афферентных тран^иторных, и определение локализации их источников.

6. Определение особенностей проведения возбуждения по проводящим путям в ЦНС.

7. Исследование фоновой электрической активности нейронов и основных ветвей узла у животных разных возрастов.

В результате комплексного исследования звездчатого ганглия кошки с применением различных методов исследования были впервые получены новые данные об особенностях постнатального онтогенеза важнейшего узла грудного отдела пограничного симпатического ствола и его связях.

При исследовании морфометрических параметров (площадь сечения, максимальный диаметр, степень округлости, плотность расположения) нейронов звездчатого ганглия установлено, что окончательное созревание нейронов происходит к концу шестого месяцу жизни животного. При возрастании размеров клеток в первом полугодии жизни параллельно происходит уменьшение плотности их расположения. На протяжении всех рассматриваемых периодов онтогенеза более мелкие клетки остаются локализованными в каудальной части узла. Число нейронов в ганглии является наибольшим у новорожденного котенка и затем уменьшается, оставаясь постоянным с 20 дня жизни.

АХЭ-позитивные нейроны обнаруживаются в ганглии уже с момента рождения, НАДФН-диафоразопозитивные - у 10-дневных котят. Количество АХЭ-позитивных нейроцитов возрастает до 20 дня жизни, затем снижается. Число НАДФН-диафоразопозитивных клеток линейно возрастает. Стабилизация количества нейронов в ганглии обоих фенотипов и их размеров происходит к второму месяцу жизни. АХЭ-позитивные и НАДФН-диафоразопозитивные нейроны у всех исследованных животных расположены у латерального края ганглия.

Скорость проведения возбуждения по нервным ветвям узла становится сопоставимой со скоростью проведения, характерной для взрослого животного к шестому месяцу жизни. Быстропроводящие волокна со скоростью проведения возбуждения свыше 3 м/с выявляются с 20-дневного возраста. С этого времени вызванные потенциалы приобретают многофазную форму, свойственную взрослым животным. У новорожденного и 10-дневного котенка вызванные ответы однородные и монофазные.

Электрофизиологические исследования вызванных потенциалов в таламусе и коре больших полушарий, полученные при раздражении афферентов ЗГ показали, что окончательно по своим характеристикам (латентный период, амплитуда и длительность фаз) вызванные ответы приближаются к параметрам, наблюдаемым у взрослых кошек, также к концу шестого месяца. Форма вызванных ответов меняется от монофазной негативной у новорожденных до позитивно-негативной у животных более старших возрастов.

По данным, полученными при помощи метода ретроградного аксонного транспорта пероксидазы хрена, связи клеток звездчатого узла с органами-мишенями оказываются полностью сформированными к первому месяцу жизни. При этом в 10- и 20-дневном возрасте в звездчатом ганглии наблюдается наибольшее число нейронов, посылающих свои волокна к органам шеи, грудной клетки, передней конечности по сравнению с новорожденными котятами и животными в возрасте 30 дней и старше. В дальнейшем, число таких нейронов уменьшается.

При исследовании связей звездчатого узла со спинальными ганглиями и нейронами спинного мозга выявлена большая их сегментарная протяженность у животных раннего возраста. Количество спинальных ганглиев и сегментов спинного мозга, связанных с узлом, возрастает от момента новорожденности до 10 дня жизни и, далее, уменьшается до конца первого месяца жизни. Доля преганглионарных нейроцитов в различных ядрах спинного мозга меняется в течение жизни и становится сопоставимой с взрослым организмом к шестому месяцу.

С момента рождения нейроциты звездчатого ганглия имеют связи с нейронами продолговатого мозга (п. vagus dorsalis, п. ambiguus, п. reticularis paramedianus). Прямые связи клеток звездчатого узла с нейронами интрамуральных метасимпатических узлов (с ганглиями трахеи, пищевода, сердца) формируются к концу первого месяца жизни.

Созревание паттерна фоновой ритмической активности в ветвях узла у котят носит различный характер. С периода новорожденности до конца второго месяца жизни возрастает амплитуда электрических колебаний. У новорожденных и 10-дневных животных разряды афферентных и эфферентных постганглионарных волокон представлены медленными низкоамплитудными разрядами. В возрасте 20-30 дней частота разрядов в постганглионарных волокнах увеличивается, а затем снижается и остается стабильной со второго месяца жизни. В афферентных волокнах с этого возраста до конца первого полугодия жизни увеличивается доля высокочастотных колебаний.

В отличие от этого, в преганглионарных волокнах уже с рождения имеются высокочастотные импульсы. В течение первого месяца жизни изменяется вид спектра мощности и возрастает амплитуда разрядов.

У новорожденных животных наибольший процент спектра мощности приходится на частоты, синхронные с сердечной деятельностью, начиная с 10 дня жизни преобладает дыхательная составляющая.

У всех исследованных возрастных групп животных в звездчатом узле обнаруживаются фоновоактивные нейроны, разряжающиеся апериодично, синхронно с ЭКГ и дыханием. В раннем постнатальном онтогенезе наибольшее число нейронов разряжается апериодично. В онтогенезе у котят увеличивается процент нейронов, разряжающихся синхронно с дыханием. Формирование спектра нейронной фоновой активное!;? у кошек завершается к 30 дню жизни. Амплитуда потенциалов наименьшая у новорожденных животных, далее возрастает вплоть до конца первого месяца жизни.

На защиту выносятся следующие положения:

1. Популяция нейронов в звездчатом узле кошки изначально является гетерогенной по размерам, гистохимическим характеристикам и связям с органами-мишеням.

2. Созревание морфологических и функциональных особенностей нейронов, проводящих путей и связей нейроцитов звездчатого ганглия кошки происходит геггерохронно. Каждая популяция нейронов характеризуется своей динамикой развития. Эти процессы полностью завершаются к шестому месяцу жизни.

3. Установление связей с органами-мишенями, спинальными ганглиями и спинным мозгом характеризуются нелинейной динамикой, проявляющейся в наличии процессов возрастания и снижения количества связей с мишенями на протяжении изучаемых периодов. Окончательное формирование таких связей приходится на второй месяц жизни.

4. Скорость проведения возбуждения по проводящим путям узла увеличивается с момента рождения до шестого месяца жизни. Вызванные потенциалы приобретают форму, свойственную взрослым животным не одновременно: в собственных проводящих путях с 30 дня жизни, в таламусе и коре больших полушарий с 10 дня.

5. Фоновая активность в ветвях звездчатого узла и у отдельных нейронов определяется с момента рождения. Частота колебаний становится максимальной к 20-30 дню жизни и затем снижается к двухмесячному возрасту.

Заключение диссертации по теме «Анатомия человека», Маслюков, Петр Михайлович

ВЫВОДЫ

1. Созревание морфологических и функциональных особенностей нейронов, проводящих путей и связей нейроцитов звездчатого ганглия кошки происходит гетерохронно. Нейроны звездчатого ганглия с момента рождения имеют связи с органами-мишенями, нейронами спинного и продолговатого мозга, спинномозговых узлов. Окончательное формирование связей с органами-мишенями, нейронами спинномозговых ганглиев происходит к первому месяцу жизни. С этого времени возникают и контакты с клетками мегасимпатической нервной системы. Морфометрические характеристики НАДФН-диафоразопозитивных и АХЭ-позитивных нейроцитов становятся сходными с аналогичными характеристиками взрослых животных у двухмесячных животных. Размеры нейронов, скорость проведения возбуждения по ветвям и проводящим путям ганглия, окончательно стабилизируются к шестому месяцу жизни. Также только к этому возрасту полностью формируются связи с нейронами спинного мозга.

2. Общий принцип расположения нейронов в узле сформирован уже к моменту рождения. Нейроны, связанные с органами-мишенями и спинномозговыми т>ми, расположены в определенных, перекрывающихся областях ганглия. НАДФН-диафоразопозитивные и АХЭ-позитивные нейроциты локализуются у латерального края узла.

3. В постнатальном онтогенезе возрастают размеры нейронов. Общее число нервных клеток в ганглии не остается постоянным и является максимальным у новорожденного котенка. Затем, число нейронов в узле уменьшается и не изменяется с 20 дня жизни. У новорожденного котенка число клеток в левом ганглии больше по сравнению с правым. Количество НАДФН-диафоразопозитивных нейронов возрастает до второго месяца жизни, в то время как АХЭ-позитивных нейроцитов лишь до 20 дня, затем уменьшается. Во всех исследованных возрастных периодах АХЭ-позитивные нейроциты являются более крупными, а НАДФН-диафоразопозитивные более мелкими по сравнению с основной популяцией нейронов узла.

4. Число нейронов звездчатого ганглия, посылающих свои волокна к органам-мишеням и спинномозговым узлам, в постнатальном онтогенезе изменяется не прямолинейно. Такой же характер носит преобразование числа нейронов спинного мозга и спинномозговых узлов, связанных со звездчатым узлом. Максимальное количество таких связей приходится на 10-20 день жизни и затем уменьшается.

5. В онтогенезе происходит изменение процентного соотношения нейронов ядер спинного мозга, которые посылают отростки к звездчатому узлу. При этом возрастает процент клеток в nucleus intermediolateralis thoracolumbalis pars principalis и уменьшается содержание нейронов в nucleus intermediolateralis thoracolumbalis pars funicularis, а также в вентральных рогах.

6. Сенсорная информация через звездчатый ганглий в ЦНС проводится у новорожденных животных по тому же пути, что и у взрослых кошек, включающему дорсальные столбы, ядра таламуса, соматосенсорные зоны S1 и S2 коры больших полушарий. Проведение возбуждения по волокнам звездчатого узла и проводящим путям ЦНС в онтогенезе во всех исследованных структурах сопровождается укорочением латентных периодов вызванных потенциалов. Вызванные ответы приобретают дефинитивную форму гетерохронно: в дорсальных столбах - к моменту рождения, в таламусе и коре больших полушарий - к 10 дню, в ветвях звездчатого узла - к 30 дню жизни.

7. Фоновая активность в ветвях звездчатого узла и у отдельных нейронов регистрируется с момента рождения. С этого периода онтогенеза определяются и высокочастотные колебания в преганглионарных волокнах, в то время как импульсация в постганглионарных структурах характеризуется увеличением частоты колебаний до 40 имп/с к 20-30 дню жизни и затем снижением до 10 имп/с в двухмесячном возрасте. При этом в ходе онтогенеза уменьшается доля нейронов, разряжающихся апериодично, и возрастает процент клеток, характеризующихся импульсацией, синхронной с дыхательной ритмикой. В нервных волокнах эта импульсация становится преобладающей с 10 дня жизни.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

В результате проведенных нами исследований определены основные морфометрические и гистохимические параметры нейроцитов звездчатого ганглия у котят разного возраста, электрофизиологические свойства проводящих путей узла, нейронов и нервных волокон ганглия в постнатальном онтогенезе. В процессе возрастного развития исследовано также становление связей звездчатого ганглия со структурами ЦНС, спинальными ганглиями и узлами метасимпатической нервной системы. Получены данные о локализации и размерах нейронов, посллающих волокна к различным органам-мишеням.

В работе использовались методы прямой и непрямой морфометрии, гистохимические и электрофизиологические подходы. При определении морфометрических свойств нейроцитов использовался програмно-аппаратный комплекс, представленный видеоанализатором, связанным с ЭВМ. Из группы гистохимических методов применялся метод ретроградного аксонного транспорта пероксидазы хрена, определение активности на АХЭ и НАДФН-диафоразу. Электрофизиологическими методами исследовались свойства проводящих путей, фоновая активность отдельных нейронов и целых волокон.

Установлено, что характеристики нейронов претерпевают изменения в постнатальном онтогенезе. Большинство исследованных параметров у котят становится сходными с характеристиками взрослых кошек к двухмесячному возрасту. Окончательно размеры нейроцитов и скорость проведения возбуждения по проводящим путям стабилизируются только к шести месяцам жизни. Также только к этому возрасту полностью формируются связи с нейронами спинного мозга.

Проведенные морфометрические и гистохимические исследования свидетельствуют о неоднородности клеточного состава нейронов звездчатого ганглия кошки уже к моменту рождения. Имеются отдельные популяции нейронов, различные по локализации, размерам, гистохимическим особенностям.

Различие в средних размерах клеток краниальной и каудальной областей узла имеет место с момента рождения. В краниальной зоне находятся более крупные клетки, в каудальной зоне, соответственно, более мелкие. У животных вплоть до двадцатого дня жизни краниальная область представлена зонами выхода позвоночного нерва, краниальной ветви подключичной петли, анастомоза с вагосимпатическим стволом, соединительной ветви к спинномозговому нерву сегмента Thi. Каудальная область включает в себя нейроны областей межганглионарной ветви симпатического ствола и соединительной ветви к спинномозговому нерву сегмента Thn. У котят в возрасте один месяц и старше краниальная область состоит из нейронов зон позвоночного нерва, краниальной ветви подключичной петли, анастомоза с вагосимпатическим стволом. Каудальная область представлена нейронами областей межганглионарной ветви симпатического ствола и соединительных ветвей к спиномозговым нервам сегментов Thi и Thn.

Все эти установленные нами особенности согласуются с результатами работ, проведенных на звездчатом ганглии взрослой кошки и человека, где было установлено наличие краниальной и каудальной популяций нейроцитов, различных по своим морфологическим признакам (Ю.М.Жаботинский, 1953; М.М.Фатеев с соавт., 1996). Функциональную роль группы клеток, находящихся в каудальной части узла, в зоне симпатического ствола, рассматривали Z.J.Bosnjak, J.P.Campine (1985), сделав вывод о том, что они являются интернейронами. Это предположение косвенно подтверждается данными, полученными при аппликации пероксидазы хрена на различные ветви звездчатого ганглия (М.М.Фатеев, 1992; М.М.Фатеев, А.Д.Ноздрачев, 1995). При этом также не метились нейроны, локализованные в области, прилегающей к симпатическому стволу.

Нами были определены также популяционные различия нейронов не только на основании их морфометрических характеристик, но и их гистохимических особенностей. Так, выявлены АХЭ-позитивные и НАДФН-диафоразопозитивные нейроны, различающиеся по локализации в ганглии и морфометрическим характеристикам. При этом оба типа нейронов располагаются в узле согласно топическому принципу, в области, прилегающей к латеральному краю ганглия.

Последние исследования свидетельствуют, что многие нейроны содержат одновременно несколько нейротрансмиттеров, число которых в одной клетке может достигать шести (Furness et al., 1989; Gibbins, 1989). Литературные данные (Klimaschewski et al., 1996) свидетельствуют, что интенсивно окрашенные АХЭ-позитивные клетки являются холинэргическими, а НАДФН-диафоразопозитивные являются нитроксидэргическими.

Вероятно, АХЭ-позитивные и НАДФН-диафоразопозитивные клетки, несмотря на то, что они относятся к некатехоламинэргическому фенотипу, представляют собой различные популяции нейронов, имеющие разные размеры. В популяции АХЭ-позитивных нейронов преобладают крупные нейроны, а НАДФН-диафоразопозитивные нейроциты в большинстве своем представлены наиболее мелкими клетками в общем нейронном пуле ганглия.

Топический принцип локализации нейроцитов в отдельных областях ганглия, продемонстрированный для нейронов с различными гистохимическими особенностями, подтвержден и для нейронов, посылающих волокна к различным органам-мишеням.

Нейроциты, принимающие участие в иннервации грудинноключично-сосцевидной мышцы, располагаются в краниальной части узла, в области выхода позвоночного нерва. Нейроны, участвующие в иннервации пищевода, трахеи и сердца выявляются у медиального края ганглия, в области выхода анастомоза с вагосимпатическим стволом. Нейроциты, посылающие свои аксоны к двуглавой мышце плеча, обнаруживаются на большей части центрального среза узла, за исключением области выхода симпатического ствола. В латеральной части ганглия находятся нейроны с отростками, идущими к спинномозговым узлам.

Такой же принцип распределения был выявлен у взрослых животных, в том числе и при аппликации пероксидазы хрена на ветви узла (Armour, Hopkins, 1981; Kuo et al., 1984; М.М.Фатеев, А.Д.Ноздрачев, 1995; А.Д.Ноздрачев с соавт., 2002). И что исключительно важно - указанный характер расположения нейронов, как показали наши исследования, определяется в ганглии с момента рождения.

Как уже было сказано, часть нейронов посылает свои волокна к спинномозговым узлам. Первые доказательства наличия собственных афферентных нейронов в симпатических узлах были получены классическими морфологическими методами для узлов солнечного сплетения (Ю.И.Слепков, 1954; Ross, 1958; Д.М.Голуб, 1962; А.П.Амвросьев, 1972). Морфологические данные были впоследствии подтверждены электрофизиологическими (И.А. Булыгин, 1966, 1976, 1978, 1979; А.В.Сыромятников, В.И.Скок, 1968; А.Д.Ноздрачев, 1969, 1970, 1976, 1978).

Вероятно, что нейроны звездчатого ганглия, образующие связи со спинномозговыми узлами, представляют смешанную популяцию, включающую афферентные и эфферентные нейроны. Существование афферентных нейронов в звездчатом узле доказывается в ряде работ (Bosnjak, Campine, 1982, 1985; М.М.Фатеев, 1998). При помощи ретроградного аксонного транспорта пероксидазы хрена нам удалось установить, что нейроны, посылающие волокна к спинномозговым узлам, обнаруживаются с периода новорожденное™. А это означает, что в момент рождения животные снабжены специальными нервными структурами, посредством которых осуществляется управление такими важнейшими висцеральными функциями, как сердечная деятельность. По крайней мере, на основе наших данных можно со всей определенностью вести речь о спинальном уровне регуляции. Что же касается более низких этажей -пара-, превертебрального, а также интрамурального метасимпатического, то в момент рождения, как утверждает А.Г.Кнорре и А.В.Суворова (1984), эти уровни управления собственными и сопряженными рефлексами являются хорошо сформированными.

Проведенное нами исследование морфометрических параметров нейроцитов звездчатого узла кошки позволило установить, что в постнатальном онтогенезе размеры нейронов к шестимесячному возрасту увеличиваются в несколько раз. Параллельно росту животного после рождения происходит последовательное увеличение площади сечения нейронов и их максимального диаметра, уменьшение плотности распределения на центральных срезах.

Некоторые литературные данные свидетельствуют об окончании функционального созревания симпатических узлов кролика и собаки к концу второго месяца жизни (Friedman et al., 1968; Haddad, Armour, 1991). У крысы размеры нейронов звездчатого узла могут стабилизироваться к третьему месяцу жизни (Т.А.Румянцева, 2002).

Нам удалось также показать, что в постнатальном периоде онтогенеза увеличивается доля средних и крупных клеток и, соответственно, уменьшается процент мелких. Так в ганглии новорожденного котенка крупные клетки практически полностью отсутствуют, имеется лишь незначительный процент средних, а основную массу составляют нейроны малых размеров. Крупные клетки (с площадью сечения до 1200 мкм2) появляются у 10 дневного котенка, а крупные нейроны с площадью свышс 1200 мкм2 появляются лишь на четвертом месяце жизни. В то же время среди АХЭ-позитивных нейронов в момент рождения преобладают более крупные нейроны.

Список литературы диссертационного исследования доктор медицинских наук Маслюков, Петр Михайлович, 2003 год

1. Аболтинь М.Д. Иннервация внутренних органов анастомозами блуждающего нерва с симпатическим стволом у кошек // Закономерности морфогенеза в норме, патологии и индивидуальном развитии. Рига, 1977. С. 5-16.

2. Автандилов Г.Г. Морфометрия в патологии. М, 1973. 248 с.

3. Автандилов Г.Г. Проблемы патогенеза и патологоанатомической диагностики болезней в аспектах морфометрии. М, 1984. 288 с.

4. Автандилов Г.Г. Медицинская морфометрия. М, 1990. 384 с.

5. Айрапетян А.А, Ваганян Л.Г, Татевосян И.Г. Конвергенция и взаимодействие соматической и висцеральной импульсации на нейронах вентрального заднелатерапьного ядра таламуса // Физиол. журнал СССР. 1982. Т. 68. № 7. С. 976-984.

6. Акоев Г.Н, Алексеев Н.П., Ильинский О.Б. Современные концепции электрорецепции // Успехи физиол. наук. 1971. Т. 2. № 3. С. 123-142.

7. Амвросьев А.П. Анатомия афферентных систем пищеварительного тракта. Минск, 1972. 312 с

8. Аршавский И.А. Очерки по возрастной физиологии. М, 1967. 476 с.

9. И. Бабминдра В.П. Афферентная иннервация верхнего шейного ганглия человека// ДАН СССР. 1957. т. 113. № 1. С. 187-190.

10. Бабминдра В.П, Брагина Т.А. Структурные основы межнейронной интеграции.-Л, 1982.- 164 с.

11. Бабминдра В.П., Брагина Т.А., Шабанов А.Н. Структурная организация преганглионарных симпатических нейронов // Физиол. журнал СССР. 1984. Т. 70. № 6. С. 773-778.

12. Багаев В.А., Александров В.Г. Висцеральное поле инсулярной области коры мозга крыс // Росс, физиол. журн. 2000. Т. 86. № 11. С. 1512-1520.

13. Баклаваджян О.Г. Вегетативная регуляция электрической активности мозга. Л., 1967. 237 с.

14. Баклаваджян О.Г. Висцеросоматические афферентные системы гипоталамуса. Л., Наука, 1985. 214 с.

15. Батуев А.С. Высшие интегративные системы мозга. Л., 1981. 255 с.

16. Башкова Т.Н. К возрастной морфологии звездчатого узла человека // Морфология и физиология нервной системы: / Сб. ст. Ижев. гос. мед. ин-т. Ижевск, 1970. С. 54-57.

17. Белецкий В.К. Техника микроскопического исследования // Руководство по неврологии. М,- Л. Т. 2. Вып. 2. 1941. 840 с.

18. Берсенев В.А. Шейные спинномозговые узлы. М., 1980. 208 с.

19. Блинков С.М., Глезер И.И. Мозг человека в цифрах и таблицах. М., 1964. 471 с.

20. Братусь Н.В. Мозжечок и висцерорецепторы. Л., 1969. 159 с.

21. Булыгин И.А. Замыкательная и рецепторная функции вегетативных ганглиев. Минск, 1964. 228 с.

22. Булыгин И.А. Афферентные пути интероцептивных рефлексов. Минск, 1966. 330 с.

23. Булыгин И.А. Рефлекторная функция вегетативных ганглиев. -Минск, 1976. 302 с.

24. Булыгин И.А. Механизмы нервной и гуморальной регуляции функций. Минск, 1978. 271 с.

25. Булыгин И.А. Новые принципы структурно-функциональной организации симпатических ганглиев. Минск, 1979. 231 с.

26. Булыгин И.А., Солтанов В.В. Электрофизиологический анализ висцеральных афферентных систем. Минск, 1973. 336 с.

27. Бурсиан А.В., Дмитриева Л.Е., Кулаев Б.С, Полякова Л.А., Семенова Ю.О., Сизонов В.А., Тимофеева О.П. Синхронизация эндогенной сомато- и висцеральной моторной активности у крыс в онтогенезе // Журн. эвол. биохим. физиол. 2001. Т. 37. № 3. С. 195200.

28. Вайль С.С. Практическое руководство по патолого-гистологической технике. Л., 1944. 264 с.

29. Василевский Н.Н. Нейрональные механизмы деятельности анализаторов // Механизмы деятельности центрального нейрона. М.; Л., 1966. С. 173-203.

30. Ватаев С.И. Фоновая и вызванная активность нейронов ганглиев подслизистого сплетения тонкой кишки // Физиол. журнал СССР. 1978. Т. 64. С. 213-219.

31. Велмере Л.О. Связи блуждающего нерва с симпатическим стволом у кошки // Закономерности морфогенеза в норме, патологии и индивидуальном развитии. Рига, 197/. С. 62-66.

32. Волошин М.Я. Электрофизиологические методы исследования головного мозга в эксперименте. Киев, 1987. 192 с.

33. Говырин В.А. Трофическая функция симпатических нервов сердца и скелетных мышц. Л., 1967. 100 с.

34. Гокин А.П. Особенности синаптической активации промежуточных нейронов грудных сегментов спинного мозга кожными, мышечными и висцеральными афферентами // Нейрофизиология. 1970. Т. 2. № 6. С. 563-572.

35. Голуб Д.М. Строение периферической нервной системы в эмбриогенезе человека. Атлас. Минск, 1962. 377 с.

36. Голуб Д.М. Многоступенчатая чувствительная иннервация внутренних органов // Докл. АН БССР. 1966. Т. 10. С. 222-224.

37. Гришан К.И. О возрастных особенностях строения верхнего шейного симпатического узла // Матер. 7-й науч. конф. по вопросам возрастной морфологии, физиологии, биохимии, М., 1965. С. 49-50.

38. Гулямов М.Г. К возрастной морфологии некоторых симпатических узлов // Науч. тр. высших учебных заведений Литовской ССР. Вильнюс, Медицина. 1964. Т. 5. С. 91-93.

39. Гурвич А.С. Морфология нервных элементов синокаротидной области у котят первого месяца жизни в норме и при кислородном голодании // Арх. анатом, гистол., эмбриол. 1963. Т. 44. № 1. С. 6974.

40. Дуринян P.A. Центральная структура афферентных систем. М., 1965. 175 с.

41. Дуринян Р.А. Корковый контроль неспецифических систем мозга. М., Медицина, 1975. 275 с.

42. Дуринян Р.А. Корковые механизмы модуляции болевого ощущения // Успехи физиол. наук. 1980. Т. 11. № 1. С. 3-18.

43. Жаботинский Ю.М. Нормальная и патологическая морфология вегетативных ганглиев. М., 1953. 292 с.

44. Забусов Г.И., Иванов И.Ф. Еще раз о симпатической иннервации поперечнополосатых мышц // Общая биология. 1944. Т. 5. № 4. С. 19-23.

45. Иванов И.Ф. О рецепторных элементах вегетативной нервной системы кишечника. Тр. Татарского ин-та теорет. и клин. мед. Казань. 1937. вып. 4. С. 262-358.

46. Иванов И.Ф. О некоторых спорных вопросах морфологии вегетативной иннервации. В кн.: Тр. IV Всесоюз. съезда анатомов, гистологов и эмбриологов. Харьков, 1958, Т. 1. С. 78.

47. Иванов И.Ф., Радостина Т.Н. Некоторые данные к вопросу об иннервации п. muscularis пищевода. Труды Татарск. ин-та теор. и практ. медиц., вып. 2, 1935. С. 72-96.

48. Иванченко В.П. Симпатические нервы грудного отдела пищевода: Автореф. дисс. канд. мед. наук Томск, 1955. 28 с.

49. Каданцева А.Г. Особенности строения шейных симпатических стволов и верхних шейных симпатических ганглиев в постнатальном периоде онтогенеза. Дисс. канд. биол. наук. Л., 1970. 171 с.

50. Казаков В.Н. О представительстве легочных рецепторов в коре головного мозга кошки // Физиол. журнал СССР им. И.М.Сеченова. 1966. Т. 52. № 7. С. 847-854.

51. Карамян А.И. Эволюция конечного мозга позвоночных. Л., Наука, 1976.

52. Карпенко В.П. Микроморфология ганглиев пограничного симпатического ствола: Автореф. дисс. . канд. мед. наук. Волгоград, 1966. 19 с.

53. Кичина Б.М. Развитие шейного отдела симпатического ствола // Арх. анатом, гистол., эмбриол. 1959. Т. 37. № 9. С. 23-28.

54. Кнорре А.Г., Лев И.Д. Вегетативная нервная система. Л., 1977. 207 с.

55. Кнорре А.Г., Суворова Л.В. Развитие вегетативной нервной системы в эмбриогенезе позвоночных и человека. М., 1984. 272 с.

56. Колосов Н.Г. Некоторые главы по морфологии автономной нервной системы. Саратов, 1948. 160 с.

57. Колосов Н.Г. Иннервация внутренних органов и сердечнососудистой системы. М.-Л., 1954. 267 с.

58. Колосов Н.Г. Дальнейшее наблюдение над нервной системой кишечника // Веста. ЛГУ. 1958. № 9. Вып. 2. С. 44-56.

59. Колосов Н.Г. Рецепторные нейроны в вегетативной нервной системе. Тр. ин-та физиол. им. И.П.Павлова АН СССР. Л., 1959. Т. VIII. С. 575-588.

60. Колосов Н.Г. Вегетативный узел. Л., 1972. 51 с.71. (Колосов Н.Г., Забусов Г.И.) Kolossow N.G., Sabussow G.I. Zur Frage uber den Bau des autonomen Nervensystems // Anat. Anz. 1932. Bd 74. N 23-24. S. 417-424.

61. Колосов Н.Г., Хабарова А.Я. Структурная организация вегетативных ганглиев. Л., 1978. 140 с.

62. Корытный Е.Я. Иннервация пищевода: Дисс. . канд. мед. наук. М.,1951.198 с.

63. Корытный Е.Я. О симпатической иннервации пищевода // Труды Смоленского медицинского института. Смоленск, 1955. Т. 5. С. 5059.

64. Косицкий Г.И. Афферентные системы сердца. М., 1975. 207 с.

65. Костина Т.Ф. Активность каудального брыжеечного ганглия в зависимости от приходящей к нему импульсации (возрастной аспект) //Нейрофизиология. 1971. Т. 3. № 5. С. 533-541.

66. Костюк П.Г. Интегративные процессы в спинном мозге. В кн.: Частная физиология нервной системы. Л., 1983. С. 5-60.

67. Костюк П.Г., Преображенский Н.Н. Механизмы интеграции висцеральных и соматических афферентных сигналов. Л., 1975. 221 с.

68. Крохина Е.М. Реакция чувствительных нервных волокон и рецепторов животных первого месяца жизни на кислородное голодание // Арх. анатом, гистол., эмбриол. 1961. Т. 35. № 8. С. 3745.

69. Крохина Е.М. Морфология барорецепторов дуги аорты щенков в постнатальном онтогенезе // Физиол. журн. СССР. 1963. Т. 41. № 12. С. 92-98.

70. Крохина Е.М. Холинэргический компонент эффекторной иннервации миокарда в постнатальном развитии // Труды инст. норм, и патол. физиологии АМН СССР. 1967. М., Т. 10, с. 10-18.

71. Крохина Е.М. Функциональная морфология и гистохимия вегетативной иннервации сердца. М., 1973. -228 с.

72. Кулаев Б.С. Рефлексогенная зона сердца и саморегуляция кровообращения. Д., 1972. 260 с.

73. Кулаев Б.С., Бурсиаи А.В., Тимофеева О.П., Дмитриева Л.Е., Полякова J1.A., Семенова Ю.О. Ритмические процессы в развивающемся организме и их синхронизация // Журн. эвол. биохим. и физиол. 1999. Т. 35. № 5. С. 368-375.

74. Кулешова Т.Ф. Об афферентных и эфферентных окончаниях в вегетативном ганглии // ДАН СССР. 1965. Т. 160. № 2. С. 451-453.

75. Кулланда К.М. Сравнительная характеристика зон представительства nn. pelvici et pudenti в коре больших полушарий кошек и собак // Физиол. журн. СССР. 1960. Т. 46. № 11. С. 13361344.

76. Лаврентьев Б.И. Чувствительная иннервация внутренних органов // Морфология чувствительной иннервации внутренних органов. М., 1948. С. 5-21.

77. Лаврентьев Б.И. Морфология антагонистической иннервации в нервной системе // Морфология автономной нервной системы. М., 1946. С. 13-83.

78. Лакин Г.Ф. Биометрия. М., 1980. 293 с.

79. Лашков В.Ф. Иннервация органов дыхания. М., 1963. 252 с.

80. Лебедев В.Г. Значение чувствительной иннервации сердца в формировании нервной регуляции сердечной деятельности в онтогенезе: Автореф. дисс. канд. мед. наук. Ярославль, 1969.14 с.

81. Лебедев В.П., Петров В.И., Басова А.Д. Особенности отдельных симпатических преганглионарных нейронов и их аксонов в верхнем грудном отделе спинного мозга // Физиол. журнал СССР. 1976. Т. 62 № 10. С. 1433-1442.

82. Лебедев В.П., Скобелев В.А. Неклассические симпатические преганглионарные нейроны спинного мозга // Докл. АН СССР. 1974. Т. 219. №2. С. 502-504.

83. Макаров Ф.Н., Маркова Л.А., Гранстрем Э.Э. Морфологический анализ формирования кластерной организации нейронов, образующих корково-корковые связи в зрительной коре у кошки в раннем постнаташльном онтогенезе // Морфология. 2001. Т. 120. № 6. С. 13-15.

84. Мельман Е.П. Функциональная морфология иннервации органов пищеварения. М., 1970. 328 с.

85. Мельниченко В.П. Выявление сердечных афферентных волокон в задних корешках спинного мозга электрофизиологическим методом // Кардиология. 1967. Т. 7. № 7. С. 137-141.

86. Мельниченко В.П. Выявление сердечных волокон в задних корешках спинного мозга (Электрофизиологическое исследование). Дисс. . канд. мед. наук. 1968.

87. Милохин А.А. К вопросу о собственной рефлекторной дуге кишечника // ДАН СССР. 1953. Т. 93. № 5. С. 933-935.

88. Михайлов C.E. Микроскопическое строение ганглиев солнечного сплетения и других ганглиев пограничного ствола симпатического нерва // Неврол. вестник. 1909. Т. 16. Вып. 2. С. 320-335.

89. Мусящикова С.С. Вызванные потенциалы в задне-вентральном ядре таламуса при раздражении брыжеечных нервов и рецепторов желудка и кишечника // Физиол. журнал СССР. 1967. Т. 53. № 5. С. 496-505.

90. Мусящикова С.С. Афферентное висцеральное представительство в центральной нервной системе. В кн.: Механизмы регуляции физиологических функций. JI, 1971. С. 258-277.

91. Мусящикова С.С, Синяя М.С. Взаимодействие висцеральных и кожномышечных афферентных систем в коре теменной доли мозга кошки // Физиол. журнал СССР. 1974. Т. 60. № 11. С. 1625-1633.

92. Мусящикова С.С, Синяя М.С. Взаимодействие висцеральных и кожномышечных афферентных систем во второй соматосенсорной зоне коры головного мозга кошки // Физиол. журнал СССР. 1975. Т. 61. №8. С. 1113-1120.

93. Мусящикова С.С, Черниговский В.Н. Кортикальное и субкортикальное представительство висцеральных систем. JI, 1973.

94. Николаев Г.М., Шилкии В.В. Опыт определения активности ацетилхолинэстеразы в структурах периферической нервной системы // Проблемы морфогенеза периферических нервов / Сборник научных трудов. Ярославль, 1983. С. 64-72.

95. Ноздрачев А.Д. Регистрация токов действия в вегетативных нервных проводниках в условиях хронического эксперимента // Физиол. журн. СССР. 1963. Т. 49. № 10. С. 1269-1278.

96. Ноздрачев А.Д. Электрофизиологичекая характеристика афферентной и эфферентной импульсации в вегетативных нервах в хроническом эксперименте // Физиол. журн. СССР. 1966. Т. 52. № 1. С. 46-56.

97. Ноздрачев А.Д. Электрическая активность каудального брыжеечного ганглия в условиях бодрствования // Бюлл. экспер. биол. и мед. 1967. Т. 53. № 3. С. 15-20.

98. Ноздрачев А.Д. Кортикостероиды и симпатическая нервная система. Л., 1969. 172 с.

99. Ноздрачев А.Д. Анатомия кошки. Л., 1973. 232 с.

100. Ноздрачев А.Д. Некоторые достижения и проблемы физиологии рецепторов пищеварительного тракта// Усп. физиол. наук. 1976. Т. 7. № 2. С. 43-68.

101. Ноздрачев А.Д. Функциональная организация ганглиев миентерального сплетения // Физиол. журн. СССР. 1977. Т. 63. № 2. С. 268-276.

102. Ноздрачев А.Д. Вегетативная рефлекторная дуга. Л., 1978, 232 с.

103. Ноздрачев А.Д. Физиология вегетативной нервной системы. Л., 1983.296 с.

104. Ноздрачев А.Д. (ред.) Начала физиологии. СПб, 2001. 1088 с.

105. Ноздрачев А.Д., Поляков Е.Л. Анатомия кошки. СПб, 1998. 400 с.

106. Ноздрачев А.Д., Пушкарев Ю.П. Характеристика медиаторных превращений. JI. 1980. 230 с.

107. Ноздрачев А.Д., Фатеев М.М. Звездчатый ганглий. Структура и функции. СПб, 2002. 239 с.

108. Ноздрачев А.Д., Чернышева М.П. Висцеральные рефлексы. JI, 1989. 168 с.

109. Ноздрачев А.Д., Чумасов Е.И. Периферическая нервная система. СПб, 1999. 281 с.

110. Ноздрачев А.Д., Янцев А.В. Автономная передача. СПб, 1995. 283 с.

111. Оленев С.Н. Конструкция мозга. JL, 1987. 208 с.

112. Орбели J1.A. Лекции по физиологии нервной системы. Л.-М., 1934. 226 с.

113. Отеллин В.А. Серотонин в онтогенезе и в регуляции функций висцеральных систем // Механизмы функционирования висцеральных систем / Тезисы докладов международной конференции, посвященной 150-летию академика И.П.Павлова. СПб, 1999. С. 273-274.

114. Плечкова Е.К. Рецепторы миокарда и коронарных сосудов // Морфология чувствительной иннервации внутренних органов. М., 1948. С. 46-69.

115. Поповиченко А.Л. К возрастной морфологии звездчатого узла: Автореф. .дисс. канд. мед. наук. Караганда, 1960. 18 с.

116. Преображенский Н.Н., Токин А.П. Синаптические механизмы взаимодействия соматической и висцеральной афферентных систем в центральной нервной системе // XII съезд Всесоюз. физиол. об-ва им. И.П.Павлова. Тбилисси, 1975. Т. 1. С. 138-139.

117. Радостина Т.Н. О морфологическом субстрате симпатической иннервации поперечнополосатых мышц // Труды Казанского гос. мед. института. 1943. Вып. 2. С. 176-181.

118. Радостина Т.Н. К вопросу о симпатической иннервации поперечнополосатых мышц. // Тр. АМН СССР. 1949. т. 3. с. 102-108.

119. Решетняк В.К., Кукушкин M.JI. Изменение болевой чувствительности после удаления соматосенсорных областей коры головного мозга // Бюлл. экспер. биол. и мед. 1986. Т. 102, вып. 12. С. 645-647.

120. Рогов Ю.И. Изменения нервноклеточного фонда и массы шейно-грудного ганглия человека при старении. Дисс. . канд. мед. наук. Минск, 1988. 179 с.

121. Румянцева Т.А. Влияние химической денервации на нейроциты экстра- и интрамуральных ганглиев в постнатальном онтогенезе белой крысы. Дисс. . докт. мед. наук. СПб, 2002. 423 с.

122. Самохвалова В.Н. Сравнительная анатомия пограничного ствола грудной области человека и некоторых животных // Избр. вопр. морфологии нервной системы и кровоснабжения нервов. Челябинск, 1958. С. 25-38.

123. Селивра А.И. Особенности "спонтанной" биоэлектрической активности верхнего шейного ганглия кошки в постнатальном онтогенезе // Физиол. журн. СССР. 1963. Т. 49. С. 558-565.

124. Семенов А.И. Электрофизиологический анализ афферентных путей химиорефлексов с перикарда // Физиол. журн. СССР. 1968. Т. 54. № 1.С. 47-54.

125. Семенова Г.С. Иннервация шртаноглотки и шейной части пищевода: Автореф. .дисс. канд. мед. наук. М., 1964. 22 с.

126. Скок В.И. Физиология вегетативных ганглиев. JL, 1970. 235 с.

127. Скок В.И., Иванов А.Я. Естественная активность вегетативных ганглиев. Киев, 1989. 179 с.

128. Слепков Ю.И. К вопросу о чувствительной иннервации нижнего брыжеечного узла человека. В сб.: Вопр. морфол. рецепторов внутр. органов и серд.-сосуд. системы. М., 1954. 219-224.

129. Стрелков А.А. Источники иннервации грудного отдела пищевода кошки // Морфология. 1998. Т. 113. № 3. С. 116.

130. Стрелков А.А. Источники иннервации грудного отдела трахеи кошки // Тезисы Первой Всероссийской конференции студентов и аспирантов морфологических кафедр медицинских ВУЗов и НИИ России, посвященная 200-летию ВМА. СПб, 1998. С. 106.

131. Стрелков А.А. Источники иннервации пищевода кошки // Российские морфологические ведомости. 1999. № 1-2. С.142.

132. Сыромятников А.В., Скок В.И. Проводящие пути симпатических ганглиев солнечного сплетения кошки // Физиол. журн. СССР. 1968. Т. 54. С. 1163-1170.

133. Удельнов М.Г. Нервная регуляция сердца. М., 1961. 384 с.

134. Удельнов М.Г. Физиология сердца. М., 1975. 303 с.

135. Фатеев М.М. Симпатическая иннервация сердца: локализация нейронов и центральные проекции афферентных волокон симпатических нервов. Автореф. . дисс. канд. биол. наук. Л., 1991. 24 с.

136. Фатеев М.М. Локализация нейронов в звездчатом ганглии кошки // Физиологический журнал им. И.М.Сеченова. 1992. Т. 72. N 12. С. 95100.

137. Фатеев М.М., Ноздрачев А.Д.) Fateev М.М., Nozdrachev A.D. Projections of stellate ganglion sympathetic neurons in cats // J. Auton. Nerv. Syst. 1995. V. 51. N 2. P. 129-134.

138. Фатеев М.М., Ноздрачев А.Д. Проводящие пути звездчатого ганглия кошки// ДАН. 1996. Т. 351. 6. С. 834-836.

139. Фатеев М.М., Маслюков П.М., Шилкин В.В. Морфологические особенности и нейронная организация звездчатого ганглия кошки // Российские морфологические ведомости. 1996. N 2(5). С. 125-130.

140. Фатеев М.М., Ноздрачев А.Д., Маслюков П.М., Стрелков А.А. Иннервация внутренних органов нейронами звездчатого ганглия кошки // ДАН. 1996. Т.348. N 1. С. 122-123.

141. Фатеев М.М. Эфферентные симпатические преганглионарные и афферентные спинальные транзиторные пути звездчатого ганглия кошки // Российский физиол. журн. 1997. Т. 83. № 4. С. 52-58.

142. Фатеев М.М. Структурно-функциональная организация звездчатого ганглия кошки: Автореф. дисс. . докт. биол. наук. СПб, 1998. 28 с.

143. Федин А.Н., Ноздрачев А.Д. Местно-рефлекторные ответы гладкой мышцы трахеи крысы // Физиол. журнал СССР. 1996. Т. 82. № 1. С. 104-110.

144. Федин А.Н., Ноздрачев А.Д., Бреслав И.С. Физиология респираторной системы. С.-Пб., 1997. 187 с.

145. Хабарова А.Я. Афферентная иннервация сердца. M.-JI, 1961. 191 с.

146. Хабарова А.Я. Иннервация сердца и коронарных сосудов. Д., 1975. 167 с.

147. Червова И.А. О нервных аппаратах правого предсердия // ДАН СССР. 1955. Т. 103. N 2. С. 321-324.

148. Черниговский В.Н. Рецепторы сердечно-сосудистой системы // Успехи совр. биол. 1947. Т. 23. № 2. С. 215-237.

149. Черниговский В.Н. Интероцепторы. М., 1960. 660 с.

150. Черниговский В.Н. Нейрофизиологический анализ кортико-висцеральной рефлекторной дуги. JT, 1967. 110 с.

151. Черниговский В.Н. Интероцепция. JI, 1985. 412 с.

152. Черниговский В.Н, Мусящикова С.С, Синяя М.С. Взаимодействие висцеральных и кожно-мышечных афферентных систем в коре головного мозга // Изв. АН СССР. Сер. биол. 1976. Вып. 1.С. 18-29.

153. Чурюканов В.В, Кукушкин M.JT. О влиянии соматосенсорной коры на развитие деафферентационного болевого синдрома // Бюлл. эксперим. биол. и мед. 1993. Т. 115. № 5. С. 473-475.

154. Шабанов А.Н. Структура и локализация симпатических нейронов в спинном мозгу у кошки // Архив анатом, гистол. и эмбриол. 1981. Т. 81. Вып. 8. С. 28-34.

155. Шаповалова К.Б. Конвергенция висцеральных и соматических влияний на нейронах задневентрального ядра таламуса // Журн. высш. нерв, деятельности им. И.П.Павлова. 1971. Т. 21. № 3. С. 559567.

156. Шаповалова К.Б, Ширяев Б.И. Особенности влияния висцеральной и соматической афферентной стимуляции на активность нейронов задневентрального ядра таламуса // ДАН СССР. 1969. Т. 184. № 4. С. 1007-1010.

157. Шевелева B.C. Эволюция функции симпатических ганглиев в онтогенезе. JI, 1977. 438 с.

158. Швалев В.Н, Сосунов А.А, Гуски Г. Морфологические основы иннервации сердца. М, 1992. 368 с.

159. Щербин Ю.И, Хрусталева Р.С, Цырлин В.А. Изучение тонической и вызванной электрической активности эфферентных волокон симпатического нерва у белых крыс // Российский физиол. журн. 2000. Т. 86. № 3. С. 320-328.

160. Эрез Б.М. Сравнительная анатомия иннервации сердца. Душанбе, 1957. 208 с.

161. Ярыгин Н.Е. Рецепторы чувствительных ганглиев и симпатических узлов // Сб. науч. работ, посвящ. 10-летию Ярославск. мед. ин-та. Ярославль, 1954. С. 291-292.

162. Ясиновская Ф.П. Зона первичных проекций при воздействии на рецепторный потенциал коронарных сосудов и перикарда // Бюлл. экспер. биол. и мед. 1961. Т. 51. в. 3. С. 8-13.

163. Abercrombie М. Estimation of nuclear population from microtome sections // Anat. Res. 1946. V. 94. N 2. P. 239-247.

164. Abraham A. The comparative histology of the stellate ganglion // Acta bid. Acad. Sci. Hung. 1951. V. 2. Pt4. S. 311-354.

165. Abraham A. Die mikroskopische Innervation des Herzens und der Blutgefasse von Vertebraten. Budapest, 1964. 218 p.

166. Adrian E.D. Afferent discharges to the cortex from peripheral sense organs // J. Physiol. 1941. V. 100. N 2. P. 159-191.

167. Adrian E.D., Bronk D.W., Philips G. Discharges in mammalian sympathetic nerves // J. Physiol. 1932. V. 74. P. 115-133.

168. Aidar O., Geohegan W., Ungewitter H. Splanchnic afferent pathways in the central nervous system // J. Neurophysiol. 1952. V. 15. N 2. P. 131141.

169. Ajmone-Marsan C. The thalamus data on its functional anatomy and on some aspects of thalamocortical integration // Arch. Ital. Biol. 1965. V. 103. N4. P. 847-882.

170. Al-Chaer E.D., Westlund K.N., Willis W.D. Nucleus gracilis: an integrator for visceral and somatic information // J. Neurophysiol. 1997. V. 78. P. 521-527.

171. Al-Chaer E.D., Lawand N.B., Westlund K.N., Willis W.D. Pelvic visceral input into the nucleus gracilis is largely mediated by the.postsynaptic dorsal column pathway // J. Neurophysiol. 1996a. V. 76. P. 2675-2690.

172. Al-Chaer E.D., Lawand N.B., Westlund K.N., Willis W.D. Visceral nociceptive input into the ventral posteriolateral nucleus of the thalamus: a new function for the dorsal column pathway // J. Neurophysiol. 1996b. V. 76. P. 2661-2674.

173. Amassian V.E. Cortical representation of visceral afferents // J. Neurophysiol. 1951. V. 14. N 6. P. 433-444.

174. Amassian V.E. Fiber groups and spinal pathways of cortically represented visceral afferents // J. Neurophysiol. 1951b. V. 14. N 6. P. 445-460.

175. Anderson C.R. NADPH-diaphorase-positive neurons in the rat spinal cord include a subpopulation of autonomic preganglionic neurons // Neurosci. Lett. 1992. V. 139. P. 280-284.

176. Anderson C.R., McLachlan E.M. The time course of the development of the sympathetic innervation of the vasculature of the rat tail // J. Auton. Nerv. Syst. 1991. V. 35. P. 117-132.

177. Andersson P.O., Bloom S.R., Edwards A.W. Parotid responses to stimulation of the parasympathetic innervation in bursts in weaned lambs // J. Physiol. 1982. V. 330. P. 163-174.

178. Anderson C.R., McAllen R.M., Edwards S.L. Nitric oxide synthase and chemical coding in cat sympathetic postganglionic neurons // Neuroscience. 1995. V. 68. P. 255-264.

179. Anderson R.I., Morris J.L., Gibbins I.L. Neurochemical differentiation of functionally distinct populations of autonomic neurons // J. Сотр. Neurol. 2001. V. 429 P. 419-435

180. Andrews T.J., Thrasivoulou C., Nesbit W., Cowen T. Target-specific differences in the dendritic morphology and neuropeptide content ofneurons in the rat SCG during development and aging // J. Сотр. Neurol. 1996 V. 368 P. 33-44.

181. Apkarian A.V., Bruggemann J., Shi Т., Airapetian L.R. A thalamic model for true and reffered visceral pain. In: Visceral Pain, Progress in Pain Research and Management. G.F. Gebhart (ed.). Seattle: IASP Press, 1995. V. 5. P. 217-259.

182. Armour J.A. Activity of in situ stellate ganglion neurons of dogs recorded extracellularly // Can. J. Physiol. 1986. V. 64. P. 101-111.

183. Armour J.A., Hopkins D.A. Localization of sympathetic postganglionic neurons of physiologically identified cardiac nerves in the dog // J. Сотр. Neurol.-1981.-V. 202. N2.-P. 169-184.

184. Arvidson B. Retrograde transport of horseradish peroxidase in sensory and adrenergic neurons following injection in to the anterior eye chamber // J. Neurocytol.- 1979,- V. 8,- P. 751-764.

185. Baffi J., Gores Т., Slowik F., Horvath M., Lekka N., Pasztor E., Palkovits M. Neuropeptides in the human superior cervical ganglion // Brain Res. 1992 V. 570. P. 272-278.

186. Bailey P., Bremer F. A sensory cortical representation of the vagus nerve // J. Neurophysiol. 1938. V. 1. N 3. P. 405-412.

187. Baker D.M., Santer R.M. Morphometry studies on pre- and paravertebral sympathetic neurons in the rat: changes with age // Mech. Ageing Dev. 1988. V. 42 N 2. P. 139-145.

188. Baker D.G., Coleridge H.M., Coleridge J.C.G., Nerdrum T. Search for a cardiac nociceptor: stimulation by bradykinin of sympathetic afferent nerve endings in the heart of cat // J. Physiol. 1980. V. 306. P. 519-536.

189. Baluk P., Gabella G. Innervation of the guinea pig trachea: a quantitative morphological study of intrinsic neurons and extrinsic nerves // J. Сотр. Neurol. -1989. V. 285. -N 1. - P. 117-132.

190. Barber R.P., Phleps P.E., Vaughn J.E. Generation patterns of immunocytochemically identified cholinergic neurons at autonomic levels of the rat spinal cord//J. Сотр. Neurol. 1991. V. 311. P. 509-519.

191. Barman S.M., Gebber G.L. Basis for synchronization of sympathetic and phrenic nerve discharges // Am. J. Physiol. 1976 V. 231 R1601-1607.

192. Barman S.M., Gebber G.L. Sympathetic nerve rhythm of brain stem origin // Am. J. Physiol. 1980 V. 239 R42-47.

193. Barman S. M., Gebber G. L. Sequence of activation of ventrolateral and dorsal medullary and sympathetic neurons // Am. J. Physiol. 1983. V. 245. R438-R447.

194. Barman S.M., Gebber G.L. Rostral ventrolateral medullary and caudal medullary raphe neurons with activity correlated to the 10-Hz rhythm in sympathetic nerve discharge // J. Neurophysiol. 1992 V. 68 P. 1535-1547.

195. Barman S. M., Gebber G. L. Lateral tegmental field neurons play a permissive role in governing the 10-Hz rhythm in sympathetic nerve discharge // Am. J. Physiol. 1993. V. 265. R1006-R1013.

196. Barman S. M., Gebber G. L. Subgroups of rostral ventrolateral medullary and caudal medullary raphe neurons based on patterns of relationship to sympathetic nerve discharge and axonal projections // J. Neurophysiol. 1997. V. 77. P. 65-75.

197. Barman S. M., Gebber G. L„ Zhong S. The 10-Hz rhythm in sympathetic nerve discharge // Am. J. Physiol. 1992. V. 262. R1006-R1014.

198. Barnes P.J. Regulatory peptides in the respiratory system // Experentia. 1987. V. 47. N7. P. 832-839.

199. Barnes P.J. Neuropeptides and airway smooth muscle // Pharmacol, and Therap. 1988. V. 36. N 1. P. 15-28.

200. Baron R., Janig W., With H. Sympathetic and afferent neurones projecting into forelimb and trunk nerves and the anatomical organizationof the thoracic sympathetic outflow of the rat // J. Auton. Nerv. Syst. 1995. V. 53. N. 2-3. P. 205-214.

201. Bartsch Т., Habler H.J., J8nig W. Functional properties of postganglionic sympathetic neurons supplying the submandibular gland in the anaesthetized rat //Neurosci. Lett. 1996. V. 214. P. 143-146.

202. Berkley K.J., Hubscher C.H. Are there separate central nervous system pathways for touch and pain? // Nature Med. 1995. V. 1. P. 766-773.

203. Bieger S., Unsicker K. Functions of fibroblast growth factors (FGF) in the nervous system. In: Chemical Factors in Neural Growth, Degeneration and Repair. Bell C. (ed). Chap. 14. pp. 339-375. Elsevier Science, Amsterdam, 1996.

204. Bishop G.H., Heinbecker P.A. A functional analysis of the cervical sympathetic nerve supply to the eye // Amer. J. Physiol. -1932. V. 100. -P. 519-528.

205. Bjorklund A., Cegrell L., Falck В., Ritzen M., Rosengren E. Dopamine-containing cells in sympathetic ganglia // Acta Physiol. Scand. 1970. V. 78. P. 334-338.

206. Black I.B. Regulation of autonomic development // Ann. Rev. Neurosci. 1978. V. l.P. 183-214.

207. Black I.B., Mytilineou C. Trans-synaptic regulation of the development of end organ innervation by sympathetic neurons // Brain Res. 1976. V. 101. P. 503-521.

208. Blackman J.G., Purves R.D. Intracellular recordings from ganglia of the thoracic sympathetic chain of the guinea-pig // J. Physiol. 1969. V. 203. P. 173-198.

209. Blair R.W. Responses of feline medial medullary reticulospinal neurons to cardiac input // J. Neurophysiol. V. 58. N 5. P. 1149-1167.

210. Blair R.W, Weber R.N., Foreman R.D. Characteristics of primate spinothalamic tract neurons receiving viscerosomatic convergent inputs in T3-T5 segments // J. Neurophysiol. 1981. V. 46. N 4. P. 797-811.

211. Bloom S.R, Edwards A.V. Vasoactive intestinal peptide in relation to atropine resistant vasodilatation in the submaxillary gland of the cat // J. Physiol. 1980. V. 300. P. 41-53.

212. Blumberg H, Hilbers K, Janig W. Viscero-sympathetic reflexes in postganglionic neurones supplying skin and skeletal muscle in brain intact cats // Nannyn-Schmiedeberg's Arch. Pharmacol. 1983. V. 322. suppl. P69.

213. Boatman D, Shaffer R, Dixon R, Brody M. Function of vascular smooth muscle and its sympathetic innervation in the neuborn dog // J. Clin. Investig.1965. V. 44. P. 241-265.

214. Bolem P, Fuxe K. Adrenergic and cholinergic nerve terminals in skeletal muscle vessels // Acta Physiol. Scand. 1970. V. 78. P. 53-59.

215. Bosnjak Z.J, Campine J.P. Intracellular recordings from the stellate ganglion of the cat // J. Physiol. 1982. V. 324. P. 273-283.

216. Bosnjak Z.J, Campine J.P. Electrophysiological and morphological characterization of neurons in stellate ganglion of cats // Am. J. Physiol. 1985. V. 248. R288-292.

217. Boczek-Funcke A, Dembowsky K, Habler H. J, Janig W, McAllen R. M, Michaelis, M. Classification of preganglionic neurones projecting into• the cat cervical sympathetic trunk // J. Physiol. 1992a. V. 453. P. 319-339.

218. Boczek-Funcke A, Dembowsky K, Habler H. J, Janig W, Michaelis M. Respiratory-related activity patterns in preganglionic neurones projecting into the cat cervical sympathetic trunk // J. Physiol. 1992b V. 457. P. 277-296.

219. Bosnjak Z.J, Campine J.P. Electrophysiological and morphological characterization of neurons in stellate ganglion of cats // Am. J. Physiol. -1985. -V. 248.-N 3,- Pt2.- R 288-292.

220. Botar J. L'innervation du miocarde chez les chines d'ages differentes // Bull. Assoc. anat. 1960. V. 106. P. 115-120.

221. Botar J. Ueber die innervation der Herzmuskulatur und ihre Verandenrungen //Z. Mikrosk. Anat. Forch. 1963. V. 70. N2. P. 168-173.

222. Bowers C.W., Zigmond R.E. Localization of neurons in the rat superior ganglion the project into different postganglionic trunks // J. Сотр. Neurol. -1979. -V. 185. N 2. - P.381-392.

223. Boyd H.D., McLachlan E.M., Keast J.R., Inokuchi H. Three electrophysiological classes of guinea pig sympathetic postganglionic neurone have distinct morphologies // J. Сотр. Neurol. 1996 V. 369 P. 372-387.

224. Brandys J.C., Hopkins D.A., Armour J.A. Cardiac responses to stimulation of discrete loci within canine sympathetic ganglia following hexametonium // J. Auton. Nerv. Syst. 1984. V. 11. P. 243-255.

225. Brodski C., Schnurch H., Dechant G. Neurotrophin-3 promotes the cholinergic differentiation of sympathetic neurons // Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. 2000. V. 97. P. 9683-9688.

226. Bronk D.W., Tower S.S., Solandt D.V., Larrabee M.G. The transmission of trains of impulses through a sympathetic ganglia and its postganglionic nerves // Amer. J. Physiol. 1938. - V. 122 - N 1. - P. 1-15.

227. Brooks V.B., Rudomin P., Slaymen C.L. Peripheral receptive fields of neurons in the cat's cerebral cortex // J. Neurophysiol. 1961. V. 24. N 3. P. 302-325.

228. Brown A.M. Afferent innervation of the coronary arteries and cardiac chambers. Ph.D. Thesis. Univ. London. 1964. 25 p.

229. Brown A.M. Mechanoreceptors in or near the coronary arteries // J. Physiol. 1965. V. 177. N 2. P. 203-214.

230. Brown A.M. The depressor rerflex arising from the left coronary artery of the cat // J. Physiol. 1966. V. 184. N 4. P. 825-836.

231. Brown A.M. Excitation of afferent cardiac sympathetic nerve fibres during myocardial ischaemia // J. Physiol. 1967. V. 190. N 1. P. 35-53.

232. Brown A.M., Malliani A. Spinal sympathetic reflexes initiated by coronary receptors // J. Physiol. 1971. V. 212. N 1. P. 685-705.

233. Brown D.A., Adams P.R. Muscarinic suppression of a novel voltage-sensitive K+ current in a vertebrate neurone // Nature. 1980. V. 283. P. 673-676.

234. Brown D.R., Brown L.V., Patwardhan A., Randall D.C. Sympathetic activity and blood pressure are tightly coupled at 0.4 Hz in conscious rats // Am. J. Physiol. 1994. V. 267. R1378-R1384.

235. Buckley G., Consolo S., Giacobini E., Sjoqvist F. Cholinacetylase in the in innervated and denervated sympathetic ganglia and ganglion cells of the cat//Acta Physiol. Scand. 1967. V. 71. P. 348-356.

236. Bulbring E., Burn J. Sympathetic vasodilatation in the skin and intestine of the dog // J. Physiol. 1936. V. 87. P. 254-274.

237. Burnstock G., Costa M. Adrenergic neurons. London: Chapman and Hall, 1975. 248 p.

238. Campbell G. Cotransmission // Ann. Rev. Pharmacol and Toxicol. Palo Alto, Calif., 1987. V. 27. P. 51-70.

239. Casati R., Lombardi F., Malliani A. Afferent sympathetic unmyelinated fibres with left ventricular endings in cats // J. Physiol. 1979. V. 292. P. 135-148.

240. Cassell J.F., Clark A.L., McLachlan E.M. Characteristics of phasic and tonic sympathetic ganglion cells of the guinea-pig // J. Physiol. 1986. V. 372. P. 457-483.

241. Castro F. de. Nota sobre cietas terminationes nerviosas en el ganglion cervical superior sympatico humano // Bol. Soc. espanola Biol. Madrid. 1918. t. 4. P. 34-37.

242. Castro F. de. Sympathetic ganglia normal and pathological. Trab. Labor. Rech. Biol. Univ. Madrid. 1923. t. 20. p. 113-208.

243. Castro F. de. Sympathetic ganglia normal and pathological. In: Cytology and cellular pathology of nervous system. / Ed. W. Penfield. Paul B. Hoeber, New York, 1932. P. 317-379.

244. Chandler M.J., Zhang J., Foreman R.D. Cardiopulmonary sympathetic input excites primate cuneothalamic neurons: comparison with spinothalamic tract neurons // J. Neurophysiol. 1998. V. 80. N 2. P. 628637.

245. Choate J.K., Paterson D.J. Nitric oxide inhibits the positive chronotropic and inotropic responses to sympathetic nerve stimulation in the isolated guinea-pig atria // J. Auton. Nerv. Syst. 1999. V. 75. N 2-3. P. 100-108.

246. Chung J.M., Chung K., Wurster R.D. Sympathetic preganglionic neurons of the cat spinal cord: horseradish peroxidase study // Brain Res. 1975. V. 91. P. 126-131.

247. Chung K., Chung J.M., LaVelle F.W., Wurster R.D. Sympathetic neurons in the cat spinal cord projecting to the stellate ganglion // J. Сотр. Neurol. 1979. V. 185. P. 23-30.

248. Claude P., Lillien L.E., Parada I., Presto S.K. Cell birthdays in the sympatoadrenal system: Relation to survival and differentiation in dissociated cell culture // Soc. Neurosci. Abstr. 1982. V. 8. P. 634.

249. Cochard, P., Goldstein, M., Black, I.B. Ontogenetic appearance and disappearance of tyrosine hydroxylase and catecholamines in the at embryo // Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. 1978. V. 75. P. 2986-2990.

250. Cochard, P., Goldstein, M., Black, I.B. Initial development of the noradrenergic phenotype in autonomic neuroblasts of the rat embryo in vivo // Dev. Biol. 1979. V. 71. P. 109-114.

251. Cohen M.I., Gootman P.M. Periodicities in efferent discharge of splanchnic nerve of the cat // Am. J. Physiol. 1970 V. 218 P. 1092-1101.

252. Cohen S.M., Grundfest H. Thalamic loci of electrical activity initiated by afferent impulses in cat // J. Meurophysiol. 1954. V. 17. N 3. P. 193-207.

253. Constanti A., Brown D.A. M-current in voltage-clamped mammalian sympathetic neurons //Neurosci. Lett. 1981. V. 24. P. 289-294.

254. Costa M., Furness J.B. Nervous control of intestinal motility // Mediators and drugs in gastrointestinal motility / Ed. G. Bertaccini. Berlin, Springer. 1982. P. 279-382.

255. Costa M., Furness J.B., Cfbbins I.L. Chemical coding of enteric neurons // Progress in Brain Research. 1986. V. 68. P. 217-239.

256. Coulombe J.N., Schwall R., Parent A.S., Eckenstein F.P., Nishi R. Induction of somatostatin immunoreactivity in cultured ciliary ganglion neurons by activin in choroid cell-conditioned medium // Neuron. 1993. V. 10. P. 899-906.

257. Dail W.G., Barraza C., Khoudary S., Murray H.M. Horseradish peroxidase studies on an autonomic ganglion // S.dc. Neurosci. Abstr.-1979,-V 5,-P. 332

258. Dale H.H., Feldberg W. The chemical transmission of secretory impulses to the sweat glands of the cat // J. Physiol. 1934. V. 82. P. 121-128.

259. Daly I. de Burgh, Mount L.E. The origin, course and nature of bronchomolor fibres in the cervical sympathetic nerve of the cat // J. Physiol. 1951. V. 113. P. 43-62.

260. Darian-Smith I. Cortical projections of thalamic neurons excited by mechanical stimulation of the face of the cat // J. Physiol. 1964. V. 171. N 2. P. 339-360.

261. Darland D.C., Link B.A., Nishi R. Activin A and follistalin expression in developing targets of ciliary ganglion neurons suggests a role in regulating neurotransmitter phenotype//Neuron. 1995. V. 15. P. 857-866.

262. Darvesh S., Nance D.M., Hopkins D.A., Armour J.A. Distribution of neuropeptide-like immunoreactivity in intact and chronically decentralized middle cervical and stellate ganglia of dogs // J. Auton. Nerv. Syst. 1987. V. 21. P. 167-180.

263. Davies D.C. The postnatal differenciation of sympathetic neurons in the rat superior cervical ganglion. // J.Anat. 1979. V. 129. N 4. P. 886.

264. De Castro F., Geijo-Barrientos E., Gallego R. Calcium-activated chloride current in normal mouse sympathetic ganglion cells // J. Physiol. 1997. V. 498. P. 397-408.

265. De Champlain J., Malmfors Т., Olson L., Sachs C. Ontogenesis of peripheral adrenergic neurons in the rat: pre- and postnatal observations // Acta Physiol. Scand. 1970. V. 80. P. 276-288.

266. Dector D.L., Weems W.A. A study of renal-efferent neurones and their neural connexions within cat renal ganglia using intracellular electrodes // J. Physiol. 1981. V. 321. P. 611-626.

267. Dell P., Olson R. Projections thalamiques, corticale et cerebelleuses des afferences viscerales vagales // C. r. Soc. biol. 1951. V. 145. Fasc. 13-14. P. 1084-1088.

268. Dembowsky K., Czachurski J., Seller H. Morphology of sympathetic preganglionic neurones in the thoracic spinal cord of the cat: an intracellular horseradish peroxidase study // J. Сотр. Neurol. 1985. V. 238. P. 453-465.

269. Dembowsky K., Czachurski J., Seller H. Electrophysiological properties of sympathetic preganglionic neurones in vivo // Organization of the autonomic nervous system: Central and peripheral mechanisms. New York: Alan R. Liss, 1987. P. 3-14.

270. Donato R. Perspectives in S-100 protein biology // Cell Calcium. 1991. V. 12 P. 713-726.

271. Downing S.E. Baroreceptor reflexes in newborn rabbits // J. Physiol. 1960. V.150. P. 201-213.

272. Downman C.B.B, Evans M.H. The distribution of splanchnic afferents in the spinal cord of cat // J. Physiol. 1957. V. 137. N 1. P. 66-79.

273. Due C, Barakat-Walter I, Philippe E, Droz B. Substance P-like-immunoreactive sensory neurons in dorsal root ganglia of the chick embryo: ontogenesis and influence of peripheral targets // Dev. Brain Res. 1991. V. 59. N2. P. 209-19.

274. Dumont Y, Martel J.C, Fournier A, St. Pierre S, Quirion R. Neuropeptide Y and neuropeptide Y receptor subtypes in brain and peripheral tissues // Prog. Neurobiol. 1992. V. 38. P. 125-167.

275. Dun N.J, Minota S. Effects of substance P on neurons of the inferior mesenteric ganglia of the guinea-pig // J. Physiol. 1981. V. 321. P. 155164.

276. Eccles R.M. Action potentials of isolated mammalian sympathetic ganglia//J. Physiol. 1952. V. 117. P. 181-195.

277. Edgeworth F.H. On a large-fibred sensory supply of the thoracic and abdominal viscera // J. Physiol. 1892 V. 13 P. 260-271.

278. Edvinsson L. Functional role of perivascular peptides in the control of cerebral circulation // Trends Neurosci. 1985. V. 8. P. 126-131.

279. Elfvin L.G. (Ed.) Autonomic Ganglia. John Wiley and Sons. Chichester, 1983. 385 p.

280. Ellenberger-Baum F. Handbuch der vergleichenden Anatomie der Haustiere. Berlin, 1943. 1155 S.

281. Emery D.G.R., Foreman R.D., Coggeshall R.E. Fiber analysis of the feline inferior cardiac sympathetic nerve // J. Сотр. Neurol. 1976. V. 166 P. 457-468.

282. Emery D.G.R., Foreman R.D., Coggeshall R.E. Categories of axons in the inferior cardiac sympathetic nerve of the cat // J. Сотр. Neurol. 1978. V. 177 N2 P. 301-310.

283. Enemar, A., Falck, В., Hakanson, R. Observations on the appearance of norepinephrine in the sympathetic nervous system of the chick embryo // Dev. Biol. 1965. V. 11. P. 268-283.

284. Ernsberger, U. The development of postganglionic sympathetic neurons: coordinating neuronal differentiation and diversification // Auton. Neurosci.: Basic and Clin. 2001. V. 94 P. 1-13.

285. Ernsberger U., Rohrer H. Development of the cholinergic neurotransmitter phenotype in postganglionic sympathetic neurons // Cell Tissue Res. 1999. V. 297. P. 339-361.

286. Euler von U.S. A specific sympathomimetic ergone in sympathetic nerve fibers (sympathin) and its relation to adrenaline and nor-adrenaline // Acta Physiol. Scand. 1946 V. 12. P. 73-97.

287. Ezerman E.B., Forehand C.J. Development and segmental organization of rostrocaudal dendrites of rat sympathetic preganglionic neurons // J. Auton. Nerv. Syst. 1996. V. 57. P. 29-35.

288. Faden A.I., Petras J.M. An intrasoinal sympathetic preganglionic pathway: anatomic evidence in the dog // Brain Res. 1978. V. 144. N 2. P. 358-362.

289. Fahrenkrug J., Haglund U., Jodal M., Lundgren O., Olbe L. Nervous release of vasoactive intestinal polypeptide in the gastrointestinal tract of cats: possible physiological implications // J. Physiol. 1978. V. 284. P. 291-305.

290. Fahrenkrug J. VIP and autonomic neurotransmission // Pharmacol, and Therap. 1989. V. 41. N 3. P. 515-534.

291. Fischer A., Mayer В., Kummer W. Nitric oxide synthase in vagal sensory and sympathetic neurons innervating the guinea-pig trachea // J. Auton. Nerv. Syst. 1996. V. 56. P. 157-160.

292. Fischer A., Mundel P., Mayer В., Preissler U., Philippin В., Kummer W. Nitric oxide synthase in guinea pig lower airway innervation // Neurosci. Lett. 1993. V. 149. P. 157-160.

293. Folan J.C., Heym C. Immunohistochemical evidence for different opioid systems in the rat superior cervical ganglion as revealed by imipramine treatment and receptor blocade // J. Chem Neuroanat. 1989. V. 2. P. 1-12.

294. Forehand C.J. Density of somatic innervation on mammalian autonomic ganglion cells is inversely related to dendritic complexity and preganglionic convergence // J. Neurosci. 1985. V. 5. N. 12. P. 3403-3408.

295. Foreman R.D. Mechanisms of cardiac pain // Annu. Rev. Physiol. 1999. V. 61. P. 143-167.

296. Fredricksson В., Sjoqvist F. A cytomorphological study of cholinesterase in sympathetic ganglia of the cat // Acta Morphol. Neerl. Scand. 1962 V. 5. P. 140-166.

297. Freidin M., Dougherty M., Kessler J.A. Cell density regulates neuropeptide Y expression in cultured sympathetic neurons // Brain Res. 1993. V. 615. P. 135-140.

298. Friedman W.F., Pool P.E., Jacobowitz D., Seagren S.G., Braunwald E. Sympathetic innervation of the developing rabbit heart // Circulation Res. 1968. V. 23. P. 23-32.

299. Fumess J.B., Morris J.L., Gibbins I.L., Costa M. Chemical coding of neurons and plurichemical transmission // Ann. Rev. Pharmacol. Toxicol. 1989. V. 29. P. 289-306.

300. Gabella G. Structure of the autonomic nervous system. London; New York, 1976.214 р.

301. Galvan M., Sedlmeir C. Outward currents in voltage clamped rat sympathetic neurones // J. Physiol. 1984. V. 356. P. 115-133.

302. Gaskell W.H. On the structure, distribution and function of the nerves which innervate the viscera and vascular system // J. Physiol. 1886 V. 7 P. 1-80.

303. Gazelius В., Edwards В., Olgart L., Lundberg J.M. Vasodilatator effects and coexistence of calcitonin gene-related peptide (CGRP) and substance P in sensory nerves of cat dental pulp // Acta Physiol. Scand. 1987. V. 130. N1. P. 33-40.

304. Gebber G.L. Central oscillators responsible for sympathetic nerve discharge // Am. J. Physiol. 1980 V. 239 H143-H155.

305. Gebber, G. L. Central determinants of sympathetic nerve discharge. In: Central Regulation of Autonomic Functions, pp 126-144. Eds. A. D. Loewy and К. M. Spyer. Oxford University Press. New York, 1990.

306. Gebber G.L., Barman S.M. Basis for 2-6 cycles/s rhythm in sympathetic nerve discharge // Am. J. Physiol. 1980 V. 239 R48-56.

307. Gebber, G.L., Barman S.M. Lateral tegmental field neurons of the cat medulla: a potential source of basal sympathetic nerve discharge // J. Neurophysiol. 1985. V. 54. P. 1498-1512.

308. Gebber G.L., Zhong S. and Paitel Y. Bispectral analysis of complex patterns of sympathetic nerve discharge. Am. J. Physiol. 1996. V. 271. R1173-R1185.

309. Gebber G.L., Zhong S., Barman S.M., Paitel Y., Orer H.S. Differential relationships among the 10-hz rhythmic discharges of sympathetic nerves with different targets // Am. J. Physiol. 1994 V. 267. R387-R399.

310. Gibbins I.L. Patterns of neuropeptide co-existence in cranial autonomic neurons innervating the facial skin and salivary glands of guinea-pigs // Neurosci. Lett. Suppl. 1989. V. 34. S85.

311. Gibbins I.L. Vasocomotor, pilomotor and secretomotor neurons distinguished by size and neuropeptide content in superior cervical ganglia of mice // J. AutonNerv. Syst. 1991. V. 34. P. 171-183.

312. Gibbins I.L. Vasoconstrictor, vasocodilatator and pilomotor pathways in sympathetic ganglia of guinea-pigs // Neuroscience 1992 V. 47 P. 657-672.

313. Gibbins I.L., Morris J.L. Co-existence of neuropeptides in sympathetic, cranial autonomic and sensory neurons innervating the iris of the guinea-pig// J. Auton. Nerv. Syst. 1987. V. 21. P. 67-82.

314. Gibbins I.L., Wattchow D., Coventry B. Two immunohistochemically identified populations of calcitonin gene-related peptide (CGRP)immunoreactive axons in human skin // Brain Res. 1987. V. 414. P. 143148.

315. Gibbins I.L., Jobling P., Messenger J.P., Тео E.H., Morris J.L. Neuronal morphology and the synaptic organisation of sympathetic ganglia // J. Aut. Nerv. Syst. 2000 V. 81 P. 104-109.

316. Goldhawk D.E., Meakin S.O., Verdi J.M. Subpopulations of rat B21 neuroblasts exhibit differential neurotrophin responsiveness during sympathetic development // Dev. Biol. 2000. V. 218. P. 367-377.

317. Goodman E.C., Iversen L.L. Calcitonin gene-related peptide: novel neuropeptide // Life Sci. 1986. V. 38. N 4. P. 2169-2178.

318. Gootman P.M., Cohen M.I. Efferent splanchnic activity and systemic arterial pressure // Am. J. Physiol. 1970 V. 219 P. 897-903.

319. Gootman P.M., Cohen M.I. Evoked potential produced by electrical stimulation of medullary vasomotor regions // Exp. Brain Res. 1971 V. 13 P. 1-14.

320. Gootman P.M., Cohen M.I. Sympathetic rhythms in spinal cats // J. Auton. Nerv. Syst. 1981. V. 3. P. 379-387.

321. Gootman P.M., Hundley B.W., Sica A.L. The presence of coherence in sympathetic and phrenic activities in a developing mammal // Acta Neurobiol. Exp. 1996 V. 56 N1 P. 137-145.

322. Gootman P.M., Gandhi M.R, Coren C.V., Kaplan N.M., Pisana F.M., Buckley B.J., Armour J.A., Gootman N. Cardiac responses elicited by stimulation of loci within stellate ganglia of developing swine // J. Auton. Nerv. Syst. 1992. V. 38. P. 191-200.

323. Green J.H., Heflron P.F. Observation of the origin and genesis of a rapid sympathetic rhythm // Arch. Int. Pharmacodyn. 1967 V. 169 P. 403-411.

324. Gregor M., Janig W. Effect of systemic hypoxia and hypercapnia on cutaneous and muscle vasoconstrictor neurones to the cat's hindlimb // Pflugers Arch. 1977. V. 368. P. 71-81.

325. Grosse M., Janig W. Vasoconstrictor and pilomotor fibres in skin nerves to the cat's tail // Pflugers Arch. 1976. V. 361. P. 221-229.

326. Grozdanovic Z., Baumgarten H.G., Bruning G. Histochemistry of NADPH-diaphorase, a marker for neuronal nitric oxide synthase, in the peripheral autonomic nervous system of the mouse // Neuroscience. 1992. V. 48. P. 225-235.

327. Guyenet P.G., Filtz T.M., Donaldson S.R. Role of excitatory amino acids in rat vagal and sympathetic baroreflexes // Brain Res. 1987. V. 407. P. 272-284.

328. Habecker B.A., Symes A.J., Stahl N., Francis N.J., Economides A., Fink Y.S., Yancopoulos G.D., Landis S.C. A sweat gland-derived differentiation activity acts through known cytokine signaling pathways // J. Biol. Chem. 1997. V. 272. P. 30421-30428.

329. Habler H.J., Janig W. Coordination of sympathetic and respiratory systems: neurophysiological experiments. Clin. Exp. Hypertens. 1995. V. 17. P. 223-235.

330. Habler H.J, Janig W, Peters O. Respiratory modulation of the activity in postganglionic neurons supplying skeletal muscle and skin of the rat hind limb // J. Neurophysiol. 1993. V. 70. P. 920-930.

331. Haddad C, Armour J.A. Ontogeny of canine intrathoracic cardiac nervous system. // Am. J. Physiol. 1991. V. 261. N 4. Pt2. R 920-927.

332. Hall A.K, MacPhedran S.E. Multiple mechanisms regulate sympathetic neuronal phenotype // Development. 1995. V. 121. P. 2361-2371.

333. Hancock M.B. Cells of origin of hypothalamospinal projections in the rat //Neurosci. Lett. 1976. V. 3. N 1. P. 179-184.

334. Hanko J, Tornebrandt K, Hardebo J.-E, Kahrstrom J. Neuropeptide Y induces and modulates vasoconstriction in intracranial and peripheral vessels of animals and man // J. Auton. Pharmacol. 1986. V. 6. P. 117-124.

335. Happola O, Soinila S, Paivarinta H, Panula P. Met.-enkephalin-arg-phe and [met]enkephalin-arg-gly-leu-immunoreactive nerve fibres and neurons in the superior cervical ganglia of the rat // Neuroscience. 1987. V. 21. P. 283-295.

336. Happola O, Lakomy M, Majewski M, Wasowicz K, Yanaihara N. Distribution of neuropeptides in the porcine stellate ganglion // Cell Tissue Res. 1993. V. 274. P. 181-187.

337. Hartman B.K. Immunofluorescence of dopamine-P-hydroxylase. Application of improved methodology to the localization of the peripheral and central noradrenergic nervous system // J. Histochem. Citochem. 1972. V. 21 P. 312-331.

338. Hayes K, Calaresu F.R. and Weaver L.C. Pontine reticular neurons provide tonic excitation to neurons in rostral ventrolateral medulla in rats // Am. J. Physiol. 1994. V. 266. R237-R244.

339. Hellstrom P.M. Mechanisms involved in colonic vasoconstriction and inhibition of motility induced by neuropeptide Y // Acta Physiol. Scand. 1987. V. 129. P. 549-556.

340. Hendry I.A. Cell division in the developing sympathetic nervous system // J. Neurocytol. 1977. V. 6. P. 299-309.

341. Hendry I.A., Hill C.E. (Eds.) Development, Regeneration and Plasticity of the Autonomic Nervous System. Harwood Academic Publishers. Chur, 1992.472 p.

342. Henion P.D., Landis S.C. Modulation of the enkephalinergic phenotype of rat sympathetic neurons by hormonal and transynaptic mechanisms // J. Neurobiol. 1993. V. 24. P. 1243-1251.

343. Heym C. Neuropeptides in paraganglia of various mammals // Fortschr. Zool. 1985. V. 30. P. 563-569.

344. Heym C., Lang R. Transmitters in sympathetic postganglionic neurons. In: Panula P., Paivarinta H., Soinila S. (eds) Neurohistochemistry: Modern Methods and Applications. Neurol. Neurobiol. V. 16. pp. 493-525. Alan Liss, New York, 1986.

345. Hirst, G.D.S., McLachlan, E.M. Post-natal development of ganglia in the lower lumbar sympathetic chain of the rat // J. Physiol. 1984. V. 349. P. 119-134.

346. Hirst, G.D.S., McLachlan, E.M. Development of dendritic calcium current in ganglion cells of the rat lower lumbar sympathetic chain. // J. Physiol. 1986. V. 377. P. 349-368.

347. Hodgkiss J.P., Lees G.M. Transmission in enteric ganglia // Autonomic and enteric ganglia. Transmission and its pharmacology // Eds A. Karczmar, K.K.Koketsu, S. Nishi. New York, London: Plenum press. 1986. P. 369-405.

348. Hokfelt Т., Broberger C., Xu Z.Q.D., Sergeyev V., Ubink R., Diez M. Neuropeptides — an overview // Neuropharmacology. 2000. V. 39. P. 1337-1356

349. Hokfelt Т., Elfvin L.G., Elde R., Schultzberg M., Goldstein M., Luft R. Occurrence of somatostatin-like immunoreactivity in some peripheral sympathetic noradrenergic neurons // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1977. V. 74. P. 3587-3591.

350. Holets V., Elde R. Sympathoadrenal preganglionic neurons: their distribution and relationship to chemically-coded fibers in the kitten intermediolateral cell column // J. Auton. Nerv. Syst. 1983. V. 7. P. 149163.

351. Hope B.T., Vincent S.R. Histochemical characterization of neuronal NADPH-diaphorase // J. Histochem. Cytochem. 1989. V. 37. N 5. P. 653661.

352. Hope B.T., Michael G.J., Knigge K.M., Vincent S.R. Neuronal NADPH-diaphorase is a nitric oxide synthase // Proc. Natl. Acad. Sci. 1991. V. 88. P. 2811-2814.

353. Hopkins D.A., Armour J.A. Localization of sympathetic postganglionic and parasympathetic preganglionic neurons which innervate different regions of the dog heart // J. Сотр. Neurol. 1984. V /29. P. 186-198.

354. Hopkins D.A., Losier A., Armour J.A. Distribution of NADPH-diaphorase in vagal, sympathetic and cardiac ganglia of dog, pig and guinea-pig//Endotelium 1993. V. 1. P. 215.

355. Hopkins, D.A., Gootman, P.M., Gootman, N., Armour, J.A. Anatomy of medullary and peripheral autonomic neurons innervating the neonatal porcine heart // J. Auton. Nerv. Syst. 1997. V. 64. P. 74-84.

356. Hudson L.C., Cummings J.F. The origins of innervation of the esophagus of the dog // Brain Res. 1985. V. 326. P. 125-136.

357. Hume R., Purves D. Apportioment of the terminals from single preganglionic axons to target neurones in the rabbit ciliary ganglion // J. Physiol.- 1983. V. 338,- P. 259-275.

358. Iggo A. A. single unit analysis of cutaneous receptors with С afferent fibers. In: Pain and Its Nervous Mechanisms. J. and A. Churchill, Ltd., London, 1959. P. 41-49.

359. Iggo A. A. Cutaneous mechanoreceptors with afferent С fibers. J. Physiol. 1960 V. 152. P. 337-353.

360. Iversen L.L., De Champlain J., Glowinski J., Axelrod J. Uptake, storage and metabolism of norepinephrine in tissues of the developing rat // J. Pharmacol. Exp. Ther. 1967. V. 157. P. 509-516.

361. Jacobowitz D. Catecholamine fluorescence studies of of adrenergic neurons and chromaffin cells in sympathetic ganglia// Fed. Proc.-1970. -V. 29 -N 6. -P. 1929-1944.

362. Janig W. Vasoconstrictor systems supplying sceletal muscle, skin and viscera//Clin. andExper. Hypertens. 1984. V. 6. P. 329-346.

363. Janig W. Organization of the lumbar sympathetic outflow to sceletal muscle and skin on the cat hindlimb and tail // Rev. Physiol. Biochem. and Pharmacol. 1985. V. 102. P. 1-213.

364. Janig W., Kiimmel H. Functional discrimination of postganglionic neurons to the cat's hindpaw with respect to the skin potentials recorded from the hairless skin // Pflugers Arch. 1977. V. 371. P. 217-225.

365. Janig W., Kiimmel H. Organization of the sympathetic innervation supplying the hairless skin of the cat's paw // J. Autonom. Nerv. Syst. 1981. V. 3. P. 215-230.

366. Janig W., McLachlan E. Identification of distinct topographical distributions of lumbar sympathetic and sensory neurons projecting to end organs with different functions in the cat // J. Сотр. Neurol. 1986. V. 246. P. 104-112.

367. Janig W., Rath B. Electrodermal reflexes in the cat's paws elicited by natural stimulation of skin // PflUgers Arch. 1977. V. 369. P. 27- 32.

368. Janig W., Sundlof G., Wallin B.G. Discharge patterns of sympathetic neurons supplying skeletal muscle and skin in man and cat // J. Autonom. Nerv. Syst. 1983. V. 7. P. 239-256.

369. Janssen B.J.A., Mabas S.C., Burke S.L., Head G.A. Frequency-dependent modulation of renal blood flow by renal nerve activity in conscious rabbits // Am. J. Physiol. 1997 V. 273 R. 597-R608.

370. Jarhult J., Hellstrand P., Sundler F. Immunohistochemical localization and vascular effects of vasoactive intestinal polypeptide in skeletal muscle of the cat // Cell Tissue Res. 1980. V. 207. P. 55-64.

371. Jarvi R., Pelto-Huikko M., Helen P., Hervonen A. Somatostatin-like immunoreactivity in human sympathetic ganglia Cell Tissue Res. 1987. V. 249. P. 1-5.

372. Jasper H.H. Diffuse projection systems: the integrative action of the thalamic reticular system // EEG and Clin. Neurophysiol. 1949. V. 1 N 4. P. 405-419.

373. Jasper H.H., Ajmone-Marsan C. Stereotaxic atlas of the diencephalon of the cat. Nat. Res. Council. Canada. Ottawa, 1954. 71 p.

374. Jobling P., Gibbins I.L. Electrophysiological and morphological diversity of mouse sympathetic neurons // J. Neurophysiol. 1999 V. 82 P. 27472764.

375. Kalia M., Mesulam M.M. Brain stem projections of sensory and motor components of the vagus complex in the cat: II. Laryngeal, tracheobronchial , pulmonary , cardiac and gastrointestinal branches // J. Сотр. Neurol. 1980. V. 193. N 2. P. 467-508.

376. Kawai Y. infrastructure of neuronal circuitry in sympathetic ganglia // Microsc. Res. Tech. 1996 V. 35 P. 146-156.

377. Kawai Y., Senba E. Noradrenaline-mediated lateral inhibition in the sympathetic ganglion // Neurosci. Lett. // 1997 V. 238 P. 87-89.

378. Kawatani M., Rutigliano M., De Groat W.C. Depolarization and muscarinic excitation induced in a sympathetic ganglion by vasoactive intestinal polypeptide // Science. 1985. V. 229. P. 279-281.

379. Kenney M.J., Barman S.M., Gebber G.L., Zhong S. Differential relationships among discharges of postganglionic sympathetic nerves // Am. J. Physiol. 1991. V. 260. R1159-R1167.

380. Kessler J.A. Adler J.E., Bohn M.C., Black I.B. Substance P in principal sympathetic neurons: Regulation by impulse activity // Science. 1981. V. 214. P. 335-336.

381. Klimaschewski L., Kummer W., Heym C. Localization, regulation and functions of neurotransmitters and neuromodulators in cervical sympathetic ganglia//Microsc. Res. Tech. 1996. V. 35. P. 44-68.

382. Knighton R.S. Thalamic relay nucleus for the second somatic sensory receiving area in the cerebral cortex of the cat // J. Сотр. Neurol. 1950. V. 92. N2. P. 183-191.

383. Kocsis B, Gebber G.L, Barman S.M, Kenney M.J. Relationships between activity of sympathetic nerve pairs: phase and coherence // Am. J. Physiol. 1990. V. 259. R549-R560.

384. Koelle G.B. The histochemical identification of acetylcholinesterase in cholinergic, adrenergic and sensory neurons // J. Pharmacol. Exp. Ther. 1955. V. 114. P. 167-184.

385. Konishi S, Tsunoo A, Otsuka M. Substance P and noncholinergic excitatory synaptic transmission in guinea-pig sympathetic ganglia // Proc. Jpn. Acad. 1979. V. 55. P. 525-530.

386. Krause D, Mews K, De Vries U, Dermietzel R. Zum Glucosetransport uber die Blut-Nerv-Schranke: morphologische und funktionelle Aspekte // Anat. Anz. Suppl. 1992. V. 174. P. 240.

387. Kummer W. Galanin- and neuropeptide Y-like immunoreactivies coexist in paravertebral sympathetic neurons of the cat // Neurosci. Lett. 1987. V. 78. P. 127-131.

388. Kummer W. Neuronal specifity and pasticity plasticity in the autonomic nervous system// Ann. Anat. 1992. V. 174. P. 409-417.

389. Kummer W. Sensory ganglia as a target of autonomic and sensory nerve fibres in the guinea-pig // Neuroscience. 1994. V. 59. N 3. P. 739-754.

390. Kummer W, Heym C. Neuropeptide distribution in the cervico-thoracic paravertebral ganglia of the cat with particular reference to calcitonin gene-related peptide immunoreactivity // Cell Tissue Res. 1988. V. 252. P. 463471.

391. Kummer W, Heym C. Different types of calcitonin gene-related peptide-immunoreactive neurons in the guinea-pig stellate ganglion as revealed bytriple-labelling immunofluorescence 11 Neurosci. Lett. 1991. V. 128. P. 187-190.

392. Kummer W., Oberst P. Neuronal projections to the guinea pig stellate ganglion investigated by retrograde tracing // J. Auton. Nerv. Syst. 1993. V. 42. P. 71-80.

393. Kummer W., Fischer A., Kurkowski R., Heym C. The sensory and sympathetic innervation of guinea-pig lung and trachea as studied by retrograde neuronal tracing and double-labeling immunohistochemistry // Neuroscience. 1992. V. 49. N 3. P. 715-737.

394. Kuntz A. The Autonomic Nervous System. Philadelphia, 1953. 605 p.

395. Kuo D.C., Nadelhaft I., Hisamitsu Т., Groat De W.C. Segmental distribution and central projections of renal afferent fibres in the cat studied by trans ganglionic transport of horseradish peroxidase // J. Сотр. Neurol. 1983. V. 216. NIP. 162-174.

396. Kuo D.C., Oravitz J.J., DeGroat W.C. Tracing of afferent and efferent pathways in the left inferior cardiac nerve of the cat using retrograde and transganglionic transport of horseradish peroxidase // Brain Res. 1984. V. 321. P. 111-118.

397. Lacroix J.S., Auberson S., Morel D.R., Theodorsson E., Hokfelt Т., Lundberg J.M. Vascular control of the pig nasal mucosa-distribution and effect of somatostatin in relation to noradrenaline and neuropeptide-Y // Regul. Pept. 1992. V. 40. P. 373-387.

398. Landis S.C. Development of sympathetic neurons: neurotransmitter plasticity and differentiation factors // Prog. Brain Res. 1994. V. 100. P. 19-23.

399. Landis S.C., Fredieu J.R. Coexistence of calcitonin gene-related peptide and vasoactive intestinal peptide in cholinergic sympathetic innervation of rat sweat glands // Brain Res. 1986. V. 377. P. 177-181.

400. Landis S.C., Siegel R.E., Schwab M. Evidence for neurotransmitter plasticity in vivo // Dev. Biol. 1988. V. 126. P. 129-140.

401. Langley J.N. On the course and connections of the secretory fibres supplying the sweat glands on the feet of the cat // J. Physiol. 1891 V. 12. P. 347-374.

402. Langley J.N. The arrangement of the sympathetic nervous system based chiefly on observations upon pilomotor nerves // J. Physiol. 1893. V. 15. P. 176-244.

403. Langley J.N., Anderson H.K. On reflex action from sympathetic ganglia // J. Physiol. 1894. V. 16. P. 410-440.432. (Langley J.N.) Ленгли Дж. Автономная нервная система. М. Л., 1925.70 с.

404. Larrabee M.G., Bronk D.W. Prolonged facilitation of synaptic excitation in sympathetic ganglia//J. Neurophysiol. 1947. V. 10. P. 139-154.

405. Lawson S.J., Davies H.J., Benett J.P., Lowrie M.B. Evidence that spinal interneurons undergo programmed cell death postnatally in the rat // Eur. J. Neurosci. 1997. V. 9. P. 794-799.

406. Leonard B.L., Navakatikyan M.A., Malpas S.C. Differential regulation of the oscillations in sympathetic nerve activity and renal blood flow following volume expansion // Auton. Neurosci.: Bas. and Clin. 2000 V. 83 P. 19-28.

407. Leong S.K., Wong W.C. An ultrastructural study of the stellate ganglion of the pigtailed monkey (Macacca nemestina) // J. Anat. 1989. V. 164. P. 1-18.

408. Leranth C., Williams Т.Н., Jew J.Y., Arimura A. Immunoelectron microscopic identification of somatostatin in cells and axons of sympathetic ganglia in the guinea pig // Cell Tissue Res. 1980. V. 212. P. 83-89.

409. Li Y.W., Guyenet P.G. Neuronal excitation by angiotensin II in the rostral ventrolateral medulla of the rat in vitro // Am. J. Physiol. 1995. V. 268. R272-R277.

410. Li Y.W., Guyenet P.G. Angiotensin II decreases a resting K+ conductance in rat bulbospinal neurons of the CI area // Circ. Res. 1996. V. 78. P. 274-282.

411. Li Y.W., Guyenet P.G. Effect of substance P on CI and other bulbospinal cells of the RVLM in neonatal rats // Am. J. Physiol. 1997. V. 273. R805-R813.

412. Libet B. Slow postsynaptic actions in ganglionic functions. In: Integrative functions of the autonomic nervous system. Ed. Brooks C.M., Koizumi C., Sato A. Elsevier, Amsterdam. 1979. pp. 197-222.

413. Lichtman J.W., Purves D. The elimination of redundant preganglionic innervation to hamster sympathetic ganglion cells in early postnatal life // J. Physiol. 1980. V. 301. P. 213-228.

414. Lichtman J.W., Purves D., Yip J.W. Innervation of sympathetic neurones in the guinea-pig thoracic chain // J. Physiol. 1980. V. 298. P. 285-299.

415. Lindth В., Lundberg J.M., Hokfelt T. NYP-, galanin-, VIP/PHI-, CGRP-and substance P-immunoreactive neuronal subpopulations in cat autonomic and sensory ganglia and their projections // Cell Tissue Res. 1989. V. 256. P. 259-273.

416. Lipski J., Merrill E.G. Electrophysiological demonstration of the projection from expiratory neurones in the rostral medulla to contralateral dorsal respiratory group // Brain Res. 1980. V. 197. P. 521-524.

417. Lipski J., Kanjhan R., Kruszewska В., Rong W.F. Properties of presympathetic neurones in the rostral ventrolateral medulla in the rat: an intracellular study in vivo. J. Physiol. 1996. V. 490. P. 729-744.

418. Lo L., Morin X., Brunet J.-F., Anderson D.J. Specification of neurotransmitter identity by Phox2 proteins in neural crest stem cells // Neuron. 1999. V. 22 P. 693-705.

419. Lombardi F., Delia Bella P., Casati R., Malliani A. Effects of intracoronary administration of bradykinin on the impulse activity of afferent sympathetic unmyelinated fibers with left ventricular endings in the cat // Circ. Res. 1981. V. 48. P. 69-75.

420. Lundberg J.M., Franko-Cereda A., Lacroix J.S., Pernow J. Neuropeptide Y and sympathetic neurotransmission // Ann. Rev. N.Y. Acad. Sci. 1990. V.611.P. 166-174.

421. Lundberg J.M., Terenius L., Hokfelt Т., Goldstein M. High levels of neuropeptide Y in peripheral noradrenergic neurons in various mammals including man //Neurosci. Lett. 1983. V. 42. P. 167-172.

422. Maggi C.A., Santicioli P., Theodorsson-Norheim E., Meli A. Immunoblockade of response to capsaicin in the rat vas deferens: evidence for the involvement of endogenous calcitonin gene-related peptide // Neurosci. Lett. 1987. V. 78. N 1. P. 63-68.

423. Malliani A.G. Afferent cardiovascular sympathetic nerve fibres and their function in the neural regulation of the circulation. In: Hainsworth R., Kidd C., Linden R.J. (eds) Cardiac receptors. Cambrige University Press. 1979. P. 319-338.

424. Malliani A. Cardiovascular sympathetic afferent fibres // Rev. Physiol., Biochem. and Pharmacol. 1982. V. 94. P. 11-74.

425. Malliani A.G., Pagani M. Afferent sympathetic nerve fibres with aortic endings // J. Physiol. 1976. V. 263. P. 157-169.

426. Malliani A.G., Recordati G., Schwartz P.J. Nervous activity of afferent cardiac sympathetic fibres with atrial and ventricular endings // J. Physiol. 1973 V. 229 P. 457-469.

427. Malliani A.G., Recordati G., Schwartz P.J., Pagani M. Tonical afferent sympathetic activity from the heart // Experientia. 1972. V. 28. P. 269-270.

428. Malliani A.G., Lombardi F., Pagani M., Recordati G., Schwartz P.J. Spinal sympathetic reflexes in the cat and the pathogenesis of arterial hypertension // Cli. Sci. Mol. Med. 1975. V. 48. 259s-260s.

429. Malpas S.C. A new model for the generation of sympathetic nerve activity // Clin. Exp. Pharmacol. Physiol. 1995. V. 22. P. 11-15.

430. Malpas S.C. The rhythmicity of sympathetic nerve activity // Prog. Neurobiol. 1998 V. 56. P. 65-96.

431. Malpas S.C. , Bendle R.D., Head G.A., Ricketts J.H. Frequency and amplitude of sympathetic discharges by baroreflexes during hypoxia in conscious rabbits // Am. J. Physiol. 1996 V. 271 H2563-H2574.

432. Malpas S., Evans R., Head G., Lukoshkova Ё. Contribution of renal nerves to renal blood flow variability during hemorrhage // Am. J. Physiol. 1998 V. 274 R1283-R1294.

433. Markham J.A., Vaughn J.N. Migration patterns of sympathetic preganglionic neurons in embryonic rat spinal cord // J. Neurobiol. 1991. V. 22. P. 811-822.

434. Marshak D.R. SI00 beta as a neurotrophic factor // Prog. Brain Res. 1990. V. 86. P. 169-181.

435. Marshall W.H., Woolsey C.N., Bard P. Observations on cortical somatic sensory mechanismsm of cat and monkey // J. Neurophysiol. 1941. V. 4. N l.P. 25-43.

436. Martling C.R., Saria A., Fischer J.A., Hokfelt T. Calcitonin gene-related peptide and the lung: neuronal coexistence with substance P, release by capsaicin and vasodilatator effect // Regul. Peptides. 1988. V. 20. N 2. P. 125-139.

437. McCall R.B., Gebber G.L Brain stem and spinal synchronization of sympathetic nervous discharge // Brain Res. 1975 V. 89 P. 139-143.

438. McGill M., Hopkins D.A., Armour J.A. Physiological studies of canine sympathetic ganglia and cardiac nerves // J. Auton. Nerv. Syst. 1982. V. 6. P. 157-171.

439. McLachlan E.M. The formation of synapses in mammalian sympathetic ganglia reinnervated with preganglionic or somatic nerve // J. Physiol. 1974. V. 237. P. 217-242.

440. McLachlan E.M. (Ed.) Autonomic Ganglia. Harwood Academic Publishers. Luxembourg, 1995. 471 p.

441. McLachlan E.M., Oldfield B.J., Sittiracha T. Localization of hind limb vasomotor neurons in the lumbar spinal cord of the guinea pig // Neurosci. Lett. 1985. V. 54. P. 269-275.

442. McLachlan E.M., Davies P.J., Habler H.J., Jamieson J. On-going and reflex synaptic events in rat superior cervical ganglion cells // J. Physiol. 1997. V. 501. P. 165-182.

443. McLachlan E.M., Habler H.J., Jamieson J, Davies P.J. Analysis of the periodicity of synaptic events in neurones in the superior cervical ganglion of anaesthetized rats // J. Physiol. 1998. V. 511. P. 461-478.

444. McLeod J.G. The representation of the splanchnic afferent pathway in the thalamus of the cat // J. Physiol. 1958. V. 140. N 3. P. 462-478.

445. Meckler R.L., Weaver L.C. Comparison of the distributions of renal and splenic neurons in sympathetic ganglia // J. Auton. Nerv. Syst. 1984. V. 11. P. 189-200.

446. Meckler R.L., Weaver L.C. Characteristics of ongoing and reflex discharges of single splenic and renal sympathetic postganglionic fibres in cats // J. Physiol. 1988. V. 396. P. 139-153.

447. Mesulam, M.M. The blue reaction products in horseradish peroxidase neurohistochemistry: incubation parameters and visibility // J. Histochem. Cytochem. 1976. V. 24. N 12. P. 1273-1280.

448. Millhorn D.E. Neural respiratory and circulatory interaction during chemoreceptor stimulation and cooling of ventral medulla // J. Physiol. 1986. 370, P. 217-231.

449. Miyata M., Kawakami Y. Induction of long-lasting potentiation in the secondary somatosensory cortex by thalamic stimulation requires cortico-cortical pathways from the primary somatosensory cortex // Neuroscience. 1995. V. 68. N1. P. 47-55.

450. Mo N, Wallis D.I, Watson A. Properties of putative cardiac and non-cardiac neurones in the rat stellate ganglion // J. Auton. Nerv. Syst. 1994. V. 47. N 1-2. P. 7-22.

451. Moriarty M, Gibbins I.L, Potter E.K, McCloskey D.I. Comparison of the inhibitory roles of neuropeptide Y and galanin in cardiac vagal actions in the dog // Neurosci. Lett. 1992. V. 136. P. 275-279.

452. Morris M, Kapoor V, Chalmers J. Plasma neuropeptide Y concentration is increased after hemorrhage in conscious rats: relative contributions of sympathetic nerves and adrenal medulla // J. Cardiovasc. Pharmacol. 1987. V. 9. P. 541-546.

453. Morris J.L, Zhu B.S, Gibbins I.L, Blessing W.W. Subpopulations of sympathetic neurons project to specific vascular targets in the pinna of the rabbit ear//J. Сотр. Neurol. 1999. V. 412. P. 147-160.

454. Morris J.L, Gibbins I.L, Furness J.B, Costa M, Murphy R. Co-localization of neuropeptide Y, vasoactive intestinal polypeptide anddynorphin in non-noradrenergic axons of the guinea-pig uterine artery // Neurosci. Lett. 1985. V. 62. P. 31-37.

455. Mountcastle V.B. Modality and topographic properties of single neurons of cat's somatic sensory cortex // J. Neurophysiol. 1957. V. 20. N 4. P. 408-434.

456. Nerdrum Т., Baker D.G., Coleridge H.M., Coleridge J.C.G. Interaction of bradykinin and prostaglandin Ei on cardiac pressor reflex and sympathetic afferents // Am. J. Physiol. 1986. V. 250. R815-822.

457. Nettlship W.A. Experimental studies of the afferent innervation of the cat's heart//J. Сотр. Neurol. 1936. V. 64. P. 115-131.

458. Newman P. Potential changes in the parietal cortex on stimulation of the splanchnic nerve // J. Physiol. 1952. V. 116. N 2. 8P.

459. Newman P.P. Single cortical unit activity evoked by splanchnic stimulation // J. Physiol. 1961. V. 156. N 2. P. 29-30.

460. Nilsson B.Y. Effects of sympathetic stimulation on mechanoreceptors of cat vibrissae // Acta Physiol. Scand. 1972. V. 85. P. 390-397.

461. Ninomiya I., Akiyama Т., Nishiura N. Mechanism of cardiac-related synchronized cardiac sympathetic nerve activity in awake cats // Am. J. Physiol. 1990 V. 259 R499-506.

462. Ninomiya I., Nishiura N., Matsukawa K., Akiyama T. Fundamental rhythm of cardiac sympathetic nerve activity in awake cats at rest and during body movement // Jpn J. Physiol. 1989 V. 39 P. 743-753.

463. Nishi K., Sakanashi M., Takenaka F. Afferent fibres from pulmonary arterial baroreceptors in the left cardiac sympathetic nerve of the cat // J. Physiol. 1974. V. 240. P. 53-66.

464. Nonidez J.F. Studies on innervation of heart. I. Distribution of cardiac nerves, with special reference to identification of the sympathetic and parasympathetic postganglionics // Am. J. Anat. 1939. V 65. N 3. P. 361413.

465. Nordstrom O., Melander Т., Hokfelt Т., Bartfai Т., Goldstein M. Evidence for an inhibitory effect of the peptide galanin on dopamine release from the rat median eminence //' Neurosci. Lett. 1987. V. 73. P. 2126.

466. North R.A. Electrophysiology of the enteric nervous system // Neuroscience. 1982. V. 7. N 2. P. 315-325.

467. Oldfield B.J., McLachlan E.M. Localization of sensory neurons traversing the stellate ganglion of the cat // J. Сотр. Neurol. 1978. V. 182. N 7. P. 915-922.

468. Olsson Y. Topographical differences in the vascular permeability of the peripheral nervous system // Acta Neuropatol. 1968. V. 10. P. 26-33.

469. Pardini B.J., Wurster R.D. Identification of the sympathetic preganglionic pathways to the cat stellate ganglion // J. Auton. Nerv. Syst. 1984. V. 11. P. 13-25.

470. Pardini B.J., Lund D.D., Schmid P.G. Organization of the sympathetic postganglionic innervation of the rat heart // J. Auton. Nerv. Syst. 1989. V. 28. P. 193-202.

471. Partanen M, Waller S.B, London E.D, Hervonen A. Indices of neurotransmitter synthesis and release in aging sympathetic nervous system // Neurobiol. Aging. 1985. V. 6. N 3. P. 227-232.

472. Passatore M., Filippi G.M. A dual effect of sympathetic nerve stimulation on jaw muscle spindles // J. Auton. Nerv. Syst. 1982. V. 6. P. 347-361.

473. Patton H.D., Amassian V.E. Thalamic relay of splanchnic afferent fibers //Amer. J.Physiol. 1951. V. 167. N3. P. 815-816.

474. Pernow J., Lundberg J.M., Kaijsen L., Hjemdahl P., Theodorsson-Northheim E. Plasma neuropeptide Y-like immunoreaclivity and catecholamines during various degrees of sympathetic activation in man // Clin. Physiol. 1986. V. 6. P. 561-578.

475. Persson P.B., Stauss H., Chung O., Wittman U., Unger T. Spectrum analysis of sympathetic nerve activity and blood pressure in conscious rats. // Am J Physiol Heart Circ Physiol 1992. V. 263 H1348-H1355.

476. Peruzzi D., Hendley E.D., Forehand C.J. Hypertrophy of stellate ganglion cells in hypertensive, but not hyperactive rats // Am. J. Physiol. 1991. V. 261. R. 979-984.

477. Peters S., Kreulen D.L., Fast and slow potentials produced in a mammalian sympathetic ganglion by colon distension // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1986. V. 83. P. 1941-1944.

478. Peterson D.F., Brown A.M. Pressor reflexes produced by stimulation of afferent fibers in the cardiac symathetic nerves of the cat // Circulation Res. 1971 28 605-610.

479. Petras J.M., Faden A. The origin of sympathetic preganglionic neurones in the dog // Brain Res. 1978. V. 144. P. 353-357.

480. Phillips J.G., Randall W.C., Armour J.A. Functional anatomy of the major cardiac nerves in cats // Anat. Rec. 1986. V.214.- N 4,- P. 362 -371.

481. Phleps P.E., Barber R.P., Vaughn J.E. Embrionic development of choline acetyltransferase in thoracic spinal motor neurons Somatic and autonomic neurons may be derived from a common cellular group // J. Сотр. Neurol. 1991. V. 307. P. 77-86.

482. Phleps P.E., Barber R.P., Vaughn J.E. Embrionic development of rat sympathetic preganglionic neurons: Possibly migratory substrates // J. Сотр. Neurol. 1993. V. 330. P. 1-14.

483. Pick Y. The autonomic nervous system: morphological, comparative, clinical and surgical aspects Philadelphia; Toronto, 1970. 483 p.

484. Pinna C, Rubino A., Burnstock G. Age-related changes in purinergic and adrenergic components of sympathetic neurotransmission in guinea-pig seminal vessels //Br. J. Pharmacol. 1997. V. 122. P. 1411-1416.

485. Pilowsky P. Good vibrations and respiratory rhythms in the central control of blood pressure // Clin. Exp. Pharmacol. Physiol. 1995. V. 22. P. 594-604.

486. Pilowsky P.M., Jiang C., Lipski J. An intracellular study of respiratory neurons in the rostral ventrolateral medulla of the rat and their relationshipto catecholamine-containing neurons /7 J. Сотр. Neurol. 1990. V. 301. P. 604-617.

487. Pilowsky P., Llewellyn-Smith I.J., Minson J., Chalmers J. Sympathetic preganglionic neurons in rabbit spinal cord that project to the stellate or the superior cervical ganglion //' Brain Res. 1992. V. 577. P. 181-188.

488. Pomeranz В., Wall P.D., Weber N.V. Cord cells responding to fine myelinated afferents from viscera, muscle and skin // J. Physiol. 1968. V. 199. N3. P. 511-532.

489. Purves D. Functional and structural changes in mammalian sympathetic neurones following interruption of their axons // J. Physiol. 1975. V. 252. P. 429-463.

490. Purves D., Hadley R.D. Changes in the dendritic branching of adult mammalian neurones revealed by repeated imaging in situ // Nature. 1985. V. 315. P. 404-406.

491. Purves D., Lichtman J.W. Principles of neural development. Massachysetts. Sinauer Assoc. 1985.

492. Purves D., Rubin E., Snider W.D., Lichtman J. Relation of animal size to convergence, divergence and neuronal number in peripheral sympathetic pathways // Neuroscience. 1986. V. 6. N 4. P. 158-163.

493. Pyner S., Coote J.H. Evidence that sympathetic preganglionic neurones are arranged in target-specific columns in the thoracic spinal cord of the rat // J Comp Neurol. 19<> V. 342. P. 15-22.

494. Pyner S., Coote J.H. Arrangement of dendrites and morphological characteristics of sympathetic preganglionic neurons projecting to thesuperior cervical ganglion and adrenal medulla in adult cat // J. Auton. Nerv. Syst. 1995. V. 52. P. 35-41.

495. Randall W.C. Neural regulation of the heart. New York, Oxford Univ. Press. 1977. 325 p.

496. Ramirez O.A, Chiapinelli V.A. Properties of tachykinin receptors examined by intracellular recordings from chick sympathetic ganglia // Brain Res. 1987. V. 414. P. 228-238.

497. Rao M.S., Tyrrell S, Landis S.C, Patterson P.H. Effects of ciliary neurotrophic factor (CNTF) and depolarization on neuropeptide expression in cultured sympathetic neurons // Dev. Biol. 1992. V. 150. P. 281-293.

498. Reighart J, Jennings H. Anatomy of the cat.- New-York; London, 1938.-367 p.

499. Reimann W, Schneider F. Galanin receptor activation attenuates norepinephrine release from rat spinal cord slices // Life Sci. 1993. V. 52. PL251-254.

500. Rohlicek C.V, Polosa C. Hypoxic responses of sympathetic preganglionic neurons in the acute spinal cat // Am. J. Physiol. 1981 V. 241 H679-H683.

501. Rohlicek C.V, Polosa C. Hypoxic responses of sympathetic preganglionic neurons in sinoaortic denervated cats // Am. J. Physiol. 1983 V. 244 H681-H686.

502. Rohlicek C.V, Polosa C. Observations on the hypoxic depression of sympathetic discharge in sinoaortic denervated cats // Can. J. Physiol. Pharmacol. 1988 V. 66 P. 413-418.

503. Ross G. On the presence of centripetal fibres in the superior mesenteric nerves of the rabbit // J. Anat. 1958. V.92. P. 189-197.

504. Rothman T.P., Gershon M.D., Holtzer H. The relationship of cell division to the acquisition of adrenergic characteristics by developing sympathetic ganglion precursors // Dev. Biol. 1978. V. 65. P. 322-341.

505. Rubin E. Development of the rat superior cervical ganglion: ganglion cell maturation // J. Neurosci. 1985. V. 5. P. 673-684.

506. Rtthle W., Dembowsky K., Czachurski J. and Seller H. Segmental distribution of afferent fibers in the left inferior cardiac nerve of the cat studied by anterograde transport of horseradish peroxidase // Neurosci. Lett. 1985. V. 56. P. 353-358.

507. Saccomanno G. 1943 The components of the upper thoracic sympathetic nerves // J. Сотр. Neur. V. 79 P. 355-379.

508. Sachs C., De Champlain J., Malmfors Т., Olson L. The postnatal development of noradrenaline uptake in the adrenergic nerves of different tissues from the rat // Eur. J. Pharmacol. 1970. V. 9. P. 67-79.

509. Schmitt М., Kummer W., Heym С. Calcitonin gene-related peptide (CGRP)-immunoreactive neurons in the human cervico-thoracic paravertebral ganglia // J. Chem. Neuroanat. 1988. V. 1. P. 287-292.

510. Schotzinger R. J., Landis S.C. Postnatal development of autonomic and sensory innervation of thoracic hairy skin in the rat. A histochemical, immunocytochemical and radioenzymatic study // Cell Tissue Res. 1990. V. 260. P. 575-587.

511. Schultzberg M., Hokfelt Т., Lundberg J.M. Peptide neurons in the autonomic nervous system// Adv. Biochem. Psychopharm. 1980. V. 25. P. 341-348.

512. Schultzberg M., Hokfelt Т., Terenius L., ElfVin L.G., Lundberg J.M., Brandt J., Elde R.P., Goldstein M. Enkephalin immunoreactive nerve fibres and cell bodies in sympathetic ganglia of the guines-pig and rat // Neuroscience. 1979. V. 4. P. 249-270.

513. Schwieler G., Douglas J., Bouhnys A. Postnatal development of autonomic efferent innervation in the rabbit. Amer. J. Physiol. 219: 391397. 1980.

514. Sedtner M., Caroll P., Holtmann В., Hughes R.A., Thoenen H. Ciliary neurotrophic factor//J. Neurobiol. 1994. V. 25. P. 1436-1453.564. (Shepherd G.) Шеперд Г. Нейробиология. M., 1987.

515. Shih С.J., Chuang K.S., Tsai S.H., Liu J.C. Horseradish peroxidase localization of the sympathetic postganglionic neurons innervating the cat heart // J. Auton. Nerv. Syst. 1985. V. 13. N 3. P. 179-189.

516. Sica A.L., Gandhi M.R Efferent phrenic nerve and respiratory neuron activities in the developing kitten: spontaneous discharges and hypoxic responses // Brain Res. 1990 V. 524 P. 254-262.

517. Sica A.L., Siddiqi Z.A. Respiration-related features of sympathetic discharges in the developing kitten // J. Auton. Nerv. Syst 1993 V. 44 P. 77-84.

518. Sica A.L., Gootman P.M., Gootman N., Armour J.A. Neuronal activity of the stellate ganglia in neonatal swine // J. Auton. Nerv. Syst. 1994. V. 48. P. 273-277.

519. Sica A.L., Siddiqi Z.A., Gandhi M.R., Condermi G. Evidence for central pattering of sympathetic discharge in kittens // Brain Res. 1990 V. 530 P. 349-352.

520. Smolen A J., Wright L.L., Cunningham TJ. Neuron numbers in the superior cervical sympathetic ganglion of the rat: a critical comparison of methods for cell counting // J. Neurocytol. 1983. - V. 12. - N 5. - P. 739750.

521. Snider W.D. Functions of neurotrophic during nervous system development: What the knockouts are taching us // Cell. 1994. V. 77. P. 627-638.

522. Stauss H.M., Kregel K.C. Frequency response characteristic of sympathetic-mediated vasomotor waves in conscious rats // Am. J. Physiol. 1996. V. 271. H1416-H1422.

523. Stauss H.M., Persson P.B., Johnson A.K., Kregel К. C. Frequency-response characteristics of autonomic nervous system function in conscious rats // Am. J. Physiol. 1997. V. 273. H786-H795.

524. Stjarne G.L., Lundberg J.M. On the possible role of noradrenaline adenosine 5'-triphosphate and neuropeptide Y as sympathetic cotransmitters in the mouse vas deferens // Progr. Brain Res. 1986. V. 68. P. 263-278.

525. Stofer W.D., Horn J.P. Neurogenesis and differentiation of sympathetic В and С cells in the bullfrog tadpole // J. Neurosci. 1993. V. 13. P. 801807.

526. Strack A.M., Sawyer W.B., Marubio L.M., Loewy A.D. Spinal origin of sympathetic preganglionic neurons in the rat // Brain Res. 1988. V. 455. N l.P. 189-191.

527. Stromberg I., Bjorklund H., Melander Т., Rokaeus A., Hokfelt Т., Olson L. Galanin-immunoreactive nerves in the rat iris: alterations induced by denervations // Cell Tissue Res. 1987. V. 250. P. 267-275. .

528. Sun M.K. Central neural organization and control of sympathetic nervous system in mammals // Prog. Neurobiol. 1995. V. 47. P. 157-233.

529. Sun M.K., Guyenet P.G. Medullospinal sympathoexcitatory neurons in normotensive and spontaneously hypertensive rats // Am. J. Physiol. 1986. V. 251. R798-R810.

530. Sun M.K., Young B.S., Hackett J.T., Guyenet P.G. Reticulospinal pacemaker neurons of the rostral ventrolateral medulla with putative sympathoexcitatory function: an intracellular study in vitro // Brain Res. 1988a. V. 442. P. 229-239.

531. Sun M.K., Young B.S., Hackett J.T., Guyenet P.G. Rostral ventrolateral medullary neurons with intrinsic pacemaker properties are not catecholaminergic // Brain Res. 1988b V. 451. P. 345-449.

532. Taguchi H., Masuda Т., Yokota T, Cardiac sympathetic afferent input onto neurons in nucleus ventralis posterolateralis in cat thalamus // Brain Res. 1987. V. 436. P. 240-252.

533. Takahashi M., Ogawa M., Ohta H., Idekda H. Vasoactive intestinal polypeptide presynaptically enhances the synaptic cotransmission in cultures sympathetic neurons // Brain Res. 1992. V. 579. P. 204-210.

534. Takita Т., Ikeda J., Sekiguchi Y., Demachi J., Li S.L., Shirato K. Nitric oxide modulates sympathetic control of left ventricular contraction in vivo in the dog // J. Auton. Nerv. Syst. 1998. V. 71. N 2-3. P. 69-74.

535. Taylor E.W., Jordan D., Coote J.H. Central control of the cardiovascular and respiratory systems and their interactions in vertebrates // Physiol. Rev. 1999. V. 79. N3. P. 855-916.

536. Teitelman, G., Baker, H., Joh, Т.Н., Reis, D.J. Appearance of catecholamine-synthesizing enzymes during development of rat sympathetic nervous system: possible role of tissue environment // Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. 1979. V. 76. P. 509-513.

537. Todd M.E. Development of adrenergic innervation in rat peripheral vessels: a fluorescence microscopic study // J. Anat. 1980. V. 131. P. 121133.

538. Turman A.B., Morley J.W., Rowe M.J. Interactions between cortical somatosensory areas I and II: effects of SII in acxtivation on evoked potentials in SI // Proc. Austral. Physiol. Pharmacol. Soc. 1989. V. 20. N 2. P. 143.

539. Uchida Y. Afferent sympathetic nerve fibres with mechanoreceptors in the right heart // Amer. J. Physiol. 1975. - V. 228. - N 1. - P. 223-229.

540. Uchida Y. Afferent aortic nerve fibres with their pathways in cardiac sympathetic nerves // Amer. J. Physiol. 1975. - V. 228. - N 1. - P. 990995.

541. Uchida Y, Murao S. Potassium induced excitation of afferent cardiac sympathetic nerve fibers // Amer. J. Physiol. 1974. - V. 226. - P. 603607.

542. Uchida Y. Murao S. Afferent sympathetic nerve fibres originating in left atrial wall // Amer. J. Physiol. 1974. - V. 227. P. 753-758.

543. Uchida Y. Murao S. Excitation of afferent cardiac sympathetic nerve fibers during coronary occlusion // Amer. J. Physiol. 1974. - V. 226. - N l.-P. 1094-1099.

544. Urabe M, Tsubokawa T, Watanabe Y, Kadoya L. Alteration of activity in the nucleus centrum medianum in the thalamus following the sensory stimulation // Jap. J. Physiol. 1965. V. 15. N 1. P. 28-41.

545. Uvnas B. Sympathetic vasodilatator outflow // Physiol. Revs. 1954. V. 34. P. 608-618.

546. Uvnas B. Cholinergic vasodilatator innervation to skeletal muscles // Circ. Res. 1967. V. 20/21. suppl. 1. P. 83-90.

547. Valbo A.B, Hagbarth K.E, Torebjork H.E, Wallin B.G. Somatosensory, proprioceptive and sympathetic activity in human peripheral nerves // Physiol. Rev. 1979. V. 59. P. 919-957.

548. Varley J.E, Wehby R.G, Rueger D.C, Maxwell G.D. Number of adrenergic and islet-1 immunoreactive cells is increased in avian trunk neural crest cultures in the presence of human recombinant osteogenic protein-1 //Dev. Dyn. 1995. V. 203 P. 434^147.

549. Verhofstad A.A, Steinbusch H.W.M, Pehke B. et al. Serotonin-immunoreactive cells in the S.C.G. of the rat. Evidence for the exitence of separate serotonin- and catecholamine-containing small ganglionic cells // Brain Res. -1981. -V. 212. -P.39-49.

550. Vidovic M, Hill C.E. Withdrawal of collaterals of sympathetic axons to the rat eye during postnatal development: the role of function // J. Auton. Nerv. Syst. 1988. V. 22 N 1. P. 57-65.

551. Vidovic M., Hill C.E., Hendry I.A. Developmental time course of the sympathetic postganglionic innervation of the rat eye // Brain Res. 1987. V. 429. P. 133-138.

552. Voyvodic J.T. Development and regulation of dendrites in the rat superior cervical ganglion// J. Neurosci. 1987. V. 7. P. 904-912.

553. Voyvodic J.T. Peripheral target regulation of dendritic geometry in the rat superior cervical ganglion // J. Neurosci. 1989. V. 9. P. 1997-2010.

554. Wang H.S., McKinnon D. Potassium currents in rat prevertebral and paravertebral sympathetic neurones: control of firing properties // J. Physiol. 1995. V. 485. P. 319-335.

555. Wahlestedt C., Yanaihara N., Hakanson R. Evidence for different pre-and post-junctional receptors for neuropeptide Y and related peptides // Regul. Peptides. 1986. V. 13. P. 307-318.

556. Wasicko M.J., Melton J.E., Neubauer J.A., Krawciw N., Edelman N.H. Cervical sympathetic and phrenic nerve responses to progressive brain hypoxia // J. Appl. Physiol. 1990 V. 68 P. 53-58.

557. Weaver L.C., Mecler R.L., Fry H.E., Donoghue S. Widespread neural excitation initiated from cardiac spinal afferent nerves // Amer. J. Physiol. 1983. V. 245. N 2. R241-R250.

558. Weems W.A., Szurszewski J.H. An intracellular analysis of some intrinsic factors controlling neural output from inferior mesenteric ganglion of guinea pigs // J. Neurophysiol. 1978. V. 41. P. 305-321.

559. Weiner N., Molinoff P.B. Catecholamines. In: Basic Neurochemistry. Siegel G.J., Agranoff B.W., Albers R.W., Molinoff P.B., eds. Raven Press, New York, pp. 233-251.

560. Wetts R., Vaughn J.E. Differences in developmental cell death between somatic and autonomic motor neurons of rat spinal cord // J. Сотр. Neurol. 1998. V. 396. P. 483-492.

561. Williams T.W. Electron microscopic evidence for an autonomic interneuron. Nature (London). 1967. V. 214. P. 309-310.

562. Wolff J.R., Joo F., Kasa P., Storm-Mathiesen J., Toldi J., Balcar V.J. Presence of neurons with GABA-like immunoreactivity in the superior cervical ganglion of the rat // Neurosci. Lett. 1986. V. 71. P. 157-162.

563. Wright L.L., Cunningham T.J., Smolen A.J. Developmental neuron death in the rat superior cervical sympathetic ganglion cell counts and ultrastructure // J. Neurocytol. 1983. V. 12, N 5. P. 727-738.

564. Woolsey C.N. Additional observations on "second"somatic receiving area in the cerebral cortex of the monkey // Fed. Proc. 1944. V. 3. N 1. P. 53.

565. Woolsey C.N. The somatic functions of the central nervous system // Amer. Rev. Physiol. 1947. V. 9. P.525-552.

566. Woolsey C.N. Organization of somatic sensory and motor areas of the cerebral cortex // Biological and Biochemical bases of bechavior. 1958. P. 63-81.

567. Yamamoto K., Senba E., Matsunaga Т., Tohyama M. Calcitonin gene-related peptide containing sympathetic preganglionic and sensory neurons projecting to the superior cervical ganglion of the rat // Brain Res. 1089. V. 487. P. 158-164.

568. Yarowsky P., Weinrich D. Loss of accomodation in sympathetic neurons from spontaneously hypertensive rats // Hypertension 1985 V. 7. P. 268276.

569. Yasunaga К., Nosaka S. Cardiac sympathetic nerves in rats: Anatomical and functional features. Jap. J. Physiol. 1979. P. 691-705.

570. Yokota Т., Horie H., Koyama N. Masuda T. Visceral pain neurons in the nucleus ventralis posterolateralis of the cat thalamus // Neuroscie. Res. Suppl. 1989. V. 9.P. 160.

571. Zhong S., Barman S.M., Gebber G.L. Effects of brain stem lesions on 10-Hz and 2- to 6-Hz rhythms in sympathetic nerve discharge // Am. J. Physiol. 1992 V. 262 R1015-R1024.

572. Zhong S., Zhou S., Gebber G.L., Barman S.M. Coupled oscillators account for the slow rhythms in sympathetic discharge and phrenic activity //Am. J. Physiol. 1997. V. 272. R1314-R1324.

573. Zhu Y., Ikeda S.R. VIP inhibits N-type Ca2+ channels of sympathetic neurons via a pertussis toxin-insensitive but cholera toxin-sensitive pathway //Neuron. 1994. V. 13. P. 657-669.