Влияние антропогенных факторов различной химической природы на процессы экзотрофии у рыб тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.03.01, кандидат наук Тарлева Анастасия Федоровна

• Тарлева Анастасия Федоровна
• кандидат наук
• 2021

Оглавление диссертации кандидат наук Тарлева Анастасия Федоровна

ВВЕДЕНИЕ

Глава 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

1.1. Современные представления о процессе экзотрофии у рыб

1.2. Пищевое поведение рыб

1.2.1. Особенности пищевого поведения рыб, различающихся по характеру питания

1.2.2. Спектр питания и биохимический состав пищи рыб, различающихся по характеру питания

1.2.2 Роль сенсорных систем в реализации пищевого поведения у рыб

1.3 Краткая характеристика структурно-функциональных основ процессов

1.3.1 Морфологические особенности пищеварительной системы рыб

1.3.2 Закономперности и особенности процессов пищеварения у рыб

1.3.3. Пептидазы пищеварительного тракта рыб, различающихся по типу питания

1.4 Влияние антропогенных факторов различной химической природы на процессы экзотрофии у рыб

1.4.1 Влияние тяжелых металлов на процессы экзотрофии у рыб

1.4.1.1 Влияние металлов на пищевое поведение рыб

1.4.1.2. Влияние металлов на процессы пищеварения

1.4.2 Краткая характиристика фенола и его производных

1.4.2.1. Влияние фенола и его производных на организм рыб

1.4.2.2. Влияние фенола и его производных на пищеварительную систему

1.4.3. Краткая характеристика глифосата и Раундапа

1.4.3.1. Влияние глифосата и Раундапа на организм рыб

1.4.3.2 Влияние глифосата и Раундап на пищеварительную систему рыб

1.5. Заключение

ГЛАВА 2. МАТЕРИАЛ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ

2.1 Материал исследования

2.2. Методы исследований

2.2.1. Изучение влияния тяжелых металлов и органических соединений на пищевое поведение рыб

2.2.3. Описание условий конкретных экспериментов

2.2.4 Статистическая обработка данных

ГЛАВА 3. ВЛИЯНИЕ МЕТАЛЛОВ, ПОСТУПАЮЩИХ С ПИЩЕЙ, НА ПИЩЕВОЕ ПОВЕДЕНИЕ КАРПА

3.1. Влияние поступающего с пищей цинка и меди на пищевое поведение карпа

3.2. Влияние поступающей с пищей ртути на пищевое поведение карпа

3.4. Заключение

ГЛАВА 4. ВЛИЯНИЕ МЕТАЛЛОВ, ПОСТУПАЮЩИХ С ПИЩЕЙ, НА АКТИВНОСТЬ ПЕПТИДАЗ КИШЕЧНИКА РЫБ

4.1. Влияние поступающего с пищей цинка на протеолитическую активность химуса и слизистой оболочки кишечника карпа

4.2. Влияние поступающей с пищей меди на протеолитическую активность химуса и слизистой оболочки кишечника карпа

4.3. Влияние поступающей с пищей ртути на протеолитическую активность слизистой оболочки кишечника карпа

4.4. Заключение

ГЛАВА 5. ВЛИЯНИЕ ФЕНОЛА И ЕГО ПРОИЗВОДНЫХ НА АКТИВНОСТЬ ПЕПТИДАЗ КИШЕЧНИКА РЫБ РАЗНЫХ ВИДОВ

5.1. Влияние высокой концентрации кристаллического фенола и его производных на активность пептидаз слизистой оболочка кишечника

5.2. Влияние различных кристаллического фенола и его производных в различных концентрациях на активность пептидаз слизистой оболочки кишечника и химуса у бентофагов

5.3. Влияние кристаллического фенола и его производных на активность пептидаз слизистой оболочка кишечника и химуса у типичных и факультативных ихтиофагов

5.4. Влияние аморфного фенола и его фракций на активность пептидаз слизистой оболочки кишечника и химуса у рыб разных видов

5.5. Заключение

6.1. Влияние Раундапа на активность пептидаз слизистой оболочки и химуса кишечника у типичных и факультативных бентофагов

6.2. Влияние Раундапа на активность пептидаз слизистой оболочки и химуса кишечника у типичных и факультативных ихтиофагов

6.3. Заключение

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Влияние антропогенных факторов различной химической природы на процессы экзотрофии у рыб»

ВВЕДЕНИЕ

Актуальность темы. Одной из острейших проблем современности является глобальное, прогрессирующее антропогенное загрязнение гидросферы. Под влиянием антропогенного пресса водные экосистемы претерпевают значительные изменения, приводящие к снижению биоразнообразия, трансформации структуры сообществ, нарушению трофических связей и другим негативным последствиям. Наиболее опасно химическое загрязнение. К приоритетным видам антропогенных загрязнителей водных экосистем относятся: металлы, фенолы, пестициды, нефтепродукты, органические растворители, лигнины и поверхностно активные вещества, большинство из которых попадает в воду с отходами различных производств (Батян и др., 2009; Руднева, 2016, 2018; Dragun et al., 2017; Maiti et al., 2018, Ahmed,et al., 2019).

Особую опасность для рыб и других гидробионтов представляют тяжелые металлы. Биогенные металлы, в частности цинк и медь, наряду с другими незаменимыми микроэлементами, входят в состав многих жизненно важных соединений организма рыб (Остроумова, 2001; Bury et al., 2003). Вместе с тем цинк и медь в высоких концентрациях, не подвергаясь биодеградации, оказывают существенное влияние на различные аспекты их жизнедеятельности (Лукьяненко, 1983;; Алабастер, Ллойд, 1984; Решетников, Шатуновский, 1997; Моисеенко, 1999; Кашулин, Терентьев, 2004; Немова, Высоцкая, 2004; Комов и др., 2004; Немова, 2005; Кузьмина, 2005; 2008, 2018). Степень воздействия тяжелых металлов на пищеварительную систему зависит как от их концентрации в воде, так и от других условий среды обитания.

Наиболее сильный токсический эффект на различные системы организма рыб оказывает органическая форма ртути - метилртуть ^eHg), поступающая в организм рыб по пищевым цепям (Hall et al.,1997; Немова, 2005). В результате увеличения концентрации тяжелых металлов в воде увеличивается смертность особей, снижается их плодовитость и жизнеспособность популяций рыб (Немова, 2005). Влияние тяжелых металлов активность пищеварительных гидролаз у рыб исследовано преимущественно в условиях in vitro (Кузьмина и др., 2005, Кузьмина,

Ушакова,2007; Голованова и др., 2011; Голованова и др., 2014, Кузьмина, 2018, 2019). Вместе с тем влияние тяжелых металлов, поступающих с пищей, на процессы экзотрофии (пищевое поведение и процессы пищеварения) у рыб до последнего времени не были исследованы.

Одними из приоритетных загрязнителей водоемов и водотоков являются фенол и его производные, поступающие со сточными водами предприятий целлюлозно-бумажной, коксохимической, деревообрабатывающей, нефтяной, сланцеперерабатывающей, металлургической, а также анилинокрасочной промышленности (Лукьяненко, 1983; Флеров, 1989; Орлов, 2002; Майстренко, 2004; Michalowicz, Duda, 2007). Распад фенольных соединений сопровождается резким поглощением из воды кислорода, что может приводить к заморам рыб (Лукьяненко, 1967). В многочисленных работах показано, что фенол вызывает резкие нарушения функций различных систем организма рыб, особенно центральной нервной системы (Лукьяненко, 1983; Флеров, 1989; Michalowicz, Duda, 2007). Влияние фенолов на процессы пищеварения, в частности активность пищеварительных ферментов у рыб до последнего времени отсутствовали.

Помимо тяжелых металлов и фенолов на процессы экзотрофии могут оказывать влияние гербециды, активно применяющиеся для уничтожения сорняков в сельском хозяйстве, а также для борьбы с зарастанием водохранилищ, прудов и каналов (Голованова и др., 2011, Аминов, 2017). Попадая в воду, а затем в организм гидробионтов, они включаются в метаболизм и могут вызывать нарушения различных процессов в организме рыб (Folmar et al., 1979; Smith, Oehme, 1992; Tsui, Chu, 2003; Cox, 2004; Голованова и др., 2011; Голованова, Аминов, 2013). В последние годы накоплено большое количество данных о токсичности гербицидов, созданных на основе глифосата. Наиболее известный препарат - Раундап. Как глифосат, так и содержащие его коммерческие продукты остро токсичны для рыб (Giesy et al., 2000; Brausch, Smith, 2007). Работ, касающихся влияния Раундапа на пищеварительные ферменты рыб, мало, при этом в большинстве из них исследована активность гликозидаз (Голованова и др., 2011, 2013, 2015; Аминов и др., 2013; Salbego et al., 2014 Аминов, 2017). Влияние

Раундапа на активность пищеварительных пептидаз у рыб, относящихся по типу питания к разным экологическим группам, ранее не исследовалось.

Поскольку функционирование экосистем и продуктивность водоемов в значительной мере зависят от трофических взаимоотношений, не вызывает сомнения необходимость изучения влияния таких антропогенных факторов, как тяжелые металлы, фенолы и гербициды на различные этапы экзотрофии рыб.

Степень разработанности темы. Современные представления о процессах экзотрофии у рыб и, в частности, таких его звеньях, как пищевое поведение и пишеварение были заложены благодаря многолетним исследованиям таких ученых как А.М. Уголев, В.В. Кузьмина, В.Г. Кассиль, Д.С. Павлов,

A.О. Касумян, Ю.В. Герасимов, А. А. Иванов, А.Г. Поддубный, М.Н. Иванова, Г.В. Девицина, И.А.Веригина, И.М. Жолдасова, А.Н. Неваленый. Рассмотрению вопросов влияния тяжелых металлов на организм рыб уделено пристальное внимание в работах В.И. Лукьяненко, И.И. Руднева, М.И. Шатуновский, Моисеенко, Н.А. Кашулин, П.М. Терентьев, Н.Н. Немова, Р.У. Высоцкая,

B.Т. Комов, В.В. Кузьмина, И.Л. Голованова, Н.В. Ушакова, в которых было, в частности, показано, что степень воздействия тяжелых металлов на пищеварительную систему зависит как от их концентрации в воде, так и от других условий среды обитания. Однако, влияние тяжелых металлов, поступающих с пищей, на процессы экзотрофии у рыб до последнего времени не были исследованы. В работах таких ученых как В.И. Лукьяненко, Е.А. Флерова, В.Р. Микряков, Е.А. Заботкина, В.Е. Матей, Л.И. Грищенко, М.А. Киселева, J. Michalowicz, W. Duda показано, что фенол вызывает резкие нарушения функций различных систем организма рыб, особенно центральной нервной системы. В то же время, влияние фенолов на процессы пищеварения, в частности, активность пищеварительных ферментов у рыб очень мало изучено. В настоящее время исследованием влияния гербициов на пищеварение у рыб занимаются В. А. Папченкова, И.Л. Голованова, А.И. Аминов, в работах которых выявлены особенности влияния гербицида Раундап на активность пищеварительных

гликозидаз. Однако влияние Раундапа на активность пищеварительных пептидаз у рыб с различным характером питания не изучено.

Цель работы: Определить влияние антропогенных факторов различной химической природы: тяжелых металлов (цинк, медь, ртуть) на пищевое поведение и активность пептидаз кишечника карпа; фенола и его производных (4-хлорфенола, 4-нитрофенола, 2,4-динитрофенола); гербицида Раундап на активность пептидаз, функционирующих в кишечнике у рыб разных видов.

Задачи исследования:

1. Выявить особенности влияния поступающих с пищей тяжелых металлов (цинк, медь, ртуть) на пищевое поведение карпа.

2. Определить влияние тяжелых металлов, поступающих с пищей, на активность пептидаз химуса и слизистой оболочки кишечника карпа.

3. Идентифицировать влияние кристаллического фенола и его производных (4-хлорфенола, 4-нитрофенола и 2,4-динитрофенола), а также аморфного фенола и его фракций на активность пептидаз химуса и слизистой оболочки кишечника у рыб разных видов.

4. Выявить особенности влияния гербицида Раундап на активность пептидаз химуса и слизистой оболочки кишечника у рыб разных видов, относящихся по типу питания к разным экологическим группам.

Научная новизна. Впервые в единых методических условиях получены и сопоставлены данные, касающиеся прямого и опосредованного влияния антропогенных факторов различной химической природы на разные этапы экзотрофии рыб в условиях in vivo. Установлено, что цинк, медь и ртуть, поступающие с пищей, значительно увеличивают латентное время питания рыб (снижают время достижения кормового пятна), а также снижают потребление пищи и активность пептидаз химуса и слизистой оболочки кишечника. Впервые показано, что в условиях in vitro кристаллический фенол и его производные (4-хлорфенол, 4-нитрофенол и 2,4-динитрофенол) в концентрациях, встречающихся в природе, как правило, значительно снижают активность пептидаз слизистой оболочки кишечника у рыб сем. Cyprinidae и Esocidae, но слабо влияют на

ферменты рыб сем. Percidae. Низкие концентрации кристаллического фенола и его производных могут вызывать стимулирующий эффект на активность пептидаз. Аморфный фенол и фракции, образующиеся при его переходе в жидкое состояние, реже оказывают ингибирующее влияние на активность пептидаз по сравнению с кристаллическим фенолом. Впервые показано, что гербицид Раундап в условиях in vitro оказывает ингибирующий эффект на активность пептидаз слизистой оболочки кишечника и химуса у рыб, относящихся по типу питания к разным таксономическим группам. Раундап в низких концентрациях может оказывать стимулирующий эффект. Величина и направленность эффекта Раундапа зависят от вида рыб, концентрации препарата и локализации ферментов. Устойчивость пептидаз к препарату видоспецифична. Установлено, что исследованные вещества оказывают больший эффект на пептидазы слизистой оболочки кишечника рыб, чем химуса.

Теоретическая и практическая значимость работы. Результаты работы важны для оценки характера влияния тяжелых металлов (цинка, меди и ртути) на пищевое поведение и процессы пищеварения, фенола и его производных (4-хлорфенола, 4-нитрофенола и 2,4-динитрофенола), аморфного фенола и фракций, образующихся при его переходе в жидкое состояние, а также гербицида Раундап на активность протеолитических ферментов. Полученные данные расширяют знания о действии антропогенных факторов различной химической природы на процессы экзотрофии у рыб, относящихся к разным таксономическим и экологическим группам. Выявленные в работе концентрации веществ, способных оказывать негативное воздействие на процессы экзотрофии, имеют не только теоретическое значение. Результаты работы необходимо учитывать при разработке рациональных условий питания рыб в современных экологических условиях. Данные, касающиеся биогенных металлов, могут способствовать оптимизации рецептуры кормов для рыб в условиях аквакультуры. Знания о характере влияния исследованных токсических веществ на процессы экзотрофии у рыб позволяют предвидеть последствия загрязнения водоемов и водотоков исследованными веществами на их рыбное население и разрабатывать

превентивные меры. Результаты работы могут быть использованы в курсах лекций по экологической биохимии и физиологии рыб, физиологии пищеварения, а также гидробиологии, ихтиологии и экологии.

Методология и методы исследования.

Методология диссертационной работы основана на исследовании пищевого поведения рыб и активности пептидаз в кишечнике у рыб разных видов, а также сравнении и анализе, позволяющем с помощью физиолого-биохимических методов оценить влияние загрязнения тяжелыми металламим, фенолами и гербицидами водной среды на процесс ассимиляции пищи у рыб. Для достижения поставленной цели и решения задач использовались стандартные физиологические и биохимические методы исследования с использованием современного оборудования и программного обеспечения.

Полученные данные были подвергнуты статистической обработке с помощью программных пакетов Statistica 10 и MS Excel 2010. В случае нормального распределения (тест Шапиро-Уилка) при сравнении результатов использовали однофакторный дисперсионный анализ ANOVA (LSD-тест или Tukey HSD). Если распределение отличалось от нормального, использовали критерий Краскела-Уоллиса.

Положения, выносимые на защиту:

1. Хроническое поступление тяжелых металлов (цинк, медь, ртуть) с пищей негативно влияет на пищевое поведение карпа: снижается как двигательная активность, так и потребление рыбами корма. В наибольшей степени тяжелые металлы влияют на латентное время питания рыб.

2. Тяжелые металлы (цинк, медь, ртуть), поступающие с пищей, снижают активность пептидаз химуса и слизистой оболочки кишечника карпа. Эффект биогенных металлов, поступающих с пищей, ниже по сравнению с таковым в экспериментах in vitro.

3. Кристаллический фенол и его производные (4-хлорфенол, 4-нитрофенол и 2,4-динитрофенол) в условиях in vitro, как правило, снижают активность пептидаз химуса и слизистой оболочки кишечника у рыб сем. Cyprinidae и Esocidae, но

слабо влияют на пептидазы рыб сем. Percidae, а в низких концентрациях могут вызывать стимулирующий эффект. Аморфный фенол реже оказывает ингибирующее влияние на активность пептидаз по сравнению с кристаллическим.

4. Гербицид Раундап в условиях in vitro оказывает ингибирующий эффект на активность пептидаз слизистой оболочка кишечника и химуса у большинства исследованных видов рыб. Величина и направленность эффекта Раундапа зависят от его концентрации препарата и локализации ферментов. Устойчивость пептидаз к препарату видоспецифична. Наиболее устойчивы к действию Раундапа пептидазы, функционирующие в кишечнике карпа и щуки.

Личный вклад автора. Тема, цель, задачи, объект, методы и программа исследований определены автором совместно с руководителями. Автор участвовал в сборе материала, получении исходных данных, их анализе, статистической обработке и интерпретации. Также проанализировал, обобщил и представил полученные данные, сформулировал выводы. Текст диссертации написан соискателем по плану, согласованному с научными руководителями.

Структура и объем работы. Диссертация изложена на 169 страницах, состоит из введения, основной части (обзор литературы, материалы и методы исследования, результаты собственных исследований и их обсуждение), заключения, списка литературы и приложения. Работа содержит 6 рисунков и 11 таблиц. Список литературы включает 401 источника, в том числе 110 на русском языке и 291 на иностранном языке.

Основное содержание диссертации, и ее научные положения изложены и опубликованы в 21 печатных работах, в том числе 7 статей в журналах, рекомендованных ВАК Министерства образования и науки РФ, для опубликования основных результатов исследований.

Степень достоверности и апробация результатов. Материалы были представлены и доложены на конференциях: IV - V Международной конференции «Геоэкологические и биоэкологические проблемы северного Причерноморья» (Тирасполь, 2012, 2014); XV школа-конференция молодых ученых «Биология внутренних вод» (Борок, 2013); V всероссийская конференция по водной

экотоксикологии, посвященной памяти Б. А. Флерова «Антропогенное влияние на водные организмы и экосистемы» (Борок, 2014); Материалы Международной научной конференции. «Природные и техногенно измененные экосистемы приграничных территорий в постчернобыльский период» (Чернигов, 2014); Матер. IV Международной конф. «Проблемы патологии, иммунологии и охраны здоровья рыб и других гидробионтов» (Борок, 2015). Второй Международный симпозиум. «Ртуть в биосфере: эколого-геохимические аспекты» (Новосибирск, 2015); Всероссийский симпозиум с международным участием. «Фундаментальные и прикладные аспекты физиологии пищеварения и питания» (Санкт-Петербург, 2016); Материалы Всероссийской молодежной гидробиологической конференции «Перспективы и проблемы современной гидробиологии» (Борок, 2016); Всероссийская научно-практическая конференция «Экология и рациональное природопользование» (Ярославль, 2017); Материалы VI-VII Всероссийской конференции по водной экотоксикологии, посвященной 80-летию со дня рождения д.б.н., проф. Б. А. Флерова, с приглашением специалистов из стран ближнего зарубежья. «Антропогенное влияние на водные организмы и экосистемы» (Борок, 2017, 2020); Международном биогеохимическом Симпозиуме, посвященном 125-летию со дня рождения акад. А.П. Виноградова и 90-летию образования Приднестровского университета. (Тирасполь, 2020), конференциях ППС Приднестровского государсвенного университета им. Т.Г. Шевченко. (2014-2018г.)

Благодарности. Автор выражает глубокую благодарность руководителям работы д.б.н., проф. В.В. Кузьминой и д.б.н., В.А. Шептицкому за неоценимую помощь и содейсвие на всех этапах выполнения работы, зав. лаб. экологии рыб д.б.н., проф. Ю.В. Герасимову и сотрудникам ИБВВ РАН, принимавшим участие в обсуждении докладов и сделавших ценные замечания, а также д.б.н., проф. В.Т. Комову и к.б.н. В.А. Гремячих за помощь в определении концентрации ртути в тканях рыб.

Глава 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

1.1. Современные представления о процессе экзотрофии у рыб

Потребление пищи - одна из важнейших сторон жизнедеятельности, обеспечивающая организм энергетическими и пластическими материалами. Под термином экзотрофия понимается совокупность процессов, включающих поиск и потребление пищевых объектов, подразделяющихся на три основных этапа: питание, пищеварение и всасывание (Уголев, 1985). В связи с этим изучение закономерностей экзотрофии у рыб должно включать как исследование отдельных звеньев этого процесса, так и взаимоотношение сенсорных и локомоторных систем с гидролитическими и транспортными системами на организменном и биоценотическом уровнях (Кузьмина, 2015).

1.2. Пищевое поведение рыб

Начальный этап экзотрофии - поиск и поглощение объектов питания включает в себя ряд сложных поведенческих актов, которые определяются функционированием различных отделов мозга («пищевого центра») на основании сигналов, поступающих из внешней и внутренней среды (Кассиль, 1990 Павлов, Касумян, 1998). Как известно, рыбы отличаются исключительным видовым разнообразием - более 32000 видов (Nelson et al., 2016) и широким спектром питании (Gerking, 1994; Pavlov, Kasumyan, 2002; Герасимов и др., 2015).

1.2.1. Особенности пищевого поведения рыб, различающихся по характеру питания.

По стратегии пищевого поведения рыб делят на охотников, способных вести активный поиск объектов питания и пастбищных рыб, не преследующих своих жертв (Gerking, 1994). Охотники (хищники) подразделяются на преследующих хищников и хищников засадчиков. Охотники отличаются способностью поддерживать высокие скорости двигательной активности и хорошо развитым зрением. Наибольшую роль в поиске жертвы играет зрение.

Засадчики подкарауливают добычу в укрытиях. При этом используется зрение, обоняние, боковая линия, слух, тактильная рецепция. Пастбищные рыбы не преследуют и активно не нападают на потенциальных жертв и, как правило, не схватывают их поштучно. Планктофаги плавают с открытым ртом, и планктон поступает в их жаберную полость вместе с водой, где отфильтровывается многочисленными жаберными тычинками, бентофаги имеют выдвижной рот, который позволяет им находить в грунте донных беспозвоночных (Поддубный, 1971; Никольский, 1974; Gerking, 1994; Pavlov, Kasumyan, 2002).

Для большинства видов рыб характерна значительная трофическая пластичность (Pavlov, Kasumyan, 2002; Balassa et al., 2004). Уменьшению внутривидовой конкуренции рыб способствует обилие пищи может, что обеспечивает лучшее сосуществование видов в одном и том же биотопе (Dias, Fialho, 2011; Uieda, Pinto, 2011).

1.2.2. Спектр питания и биохимический состав пищи рыб, различающихся по характеру питания

По преобладающим объектам питания рыб делят фитофагов, зоофагов и фитозоофагов. Кроме того, рыб подразделяют на более мелкие группы: растительноядные, питающиеся фитопланктоном (фитопланктофаги), высшей водной и прибрежно-водной растительностью (макрофитофаги), обрастаниями (перифитофаги), продуктами распада растительности и бактериями (детритофаги); животноядные, питающиеся зоопланктоном (зоопланктофаги), донными беспозвоночными животными (бентофаги) и позвоночными животными, в основном рыбой (ихтиофаги). Кроме того, существует деление рыб по предпочитаемым объектам питания. При этом выделяют следующие трофические группы рыб: ихтиофаги, икроеды, личинкоеды, чешуееды (лепидофаги), моллюскоеды, бактериофаги, в том числе рыбы чистильщики, паразиты, каннибалы и другие (Pavlov, Kasumyan, 2002). Перечисленные категории достаточно условны, так как большинству рыб свойственны значительные сезонные и возрастные изменения в составе пищи, определяемые их

физиологическими потребностями и численностью кормовых организмов (Pavlov, Kasumyan, 2002; Кузьмина и др., 2016; Кузьмина, 2019).

Преобладающие виды рыб, населяющие Рыбинское водохранилище, характеризуются хирономидно-олигохетным типом питания. Наибольшей численности в водоеме достигают бентофаги лещ Abramis brama, плотва Rutilus rutilus и густера Blicca bjoerkna. Также у этих видов в пище присутствуют моллюски (Поддубный, 1971; Иванова и др., 1978; Герасимов и др., 2015). Существуют значительные различия в соотношении потребляемых организмов, так в спектр питания леща, обитающего в водохранилищах Волжского каскада, входит до 70 видов объектов питания. Несмотря на то, что лещ преимущественно питается олигохетами и хирономидами, в состав пищи входят моллюски, ветвистоусые и веслоногие. Кроме того, в спектр питания рыб входят водоросли, макрофиты и детрит, а в состав пищевого комка леща Волгоградского водохранилища - гаммариды, мизиды и равноногие. При этом спектр питания рыб одного и того же вида из разных водоемов может значительно варьировать. Планктофаги в водохранилищах Верхней Волги в основном представлены такими видами, как синец Ballerus ballerus, тюлька Clupeonella cultriventris, уклея Alburnus alburnus, реже ряпушка Coregonus albula и корюшка Osmerus eperlanus. Спектр их питания близок. В него входят ветвистоусые и веслоногие рачки, коловратки, личинки насекомых, водоросли, части макрофитов (плоды, семена) (Иванова и др.,1978, Слынько, Терещенко, 2014; Герасимов и др., 2015).

Спектр питания типичных ихтиофагов (щука Esox lucius, судак Sander lucioperca, берш Sander volgens, сом Silurus glanis) значительно уже. Так, у типичного ихтиофага щуки Рыбинского водохранилища выявлено 9 видов объектов питания, преимущественно плотва, окунь Perca fluviatilis, лещ, а также молодь собственного вида. В пище взрослых особей судака преобладают окунь, плотва, молодь судака, лещ, уклея, чехонь Pelecus cultratus. Помимо типичных ихтиофагов широко представлены ихтиофаги-факультативные бентофаги (окунь, налим Lota lota, жерех Aspius aspius) и планктофаги-факультативные ихтиофаги (чехонь, тюлька). Если в пище крупного окуня доминирует плотва и собственная

молодь, то в пище мелкого присутствуют беспозвоночные - личинки насекомых, моллюски и зоопланктон (Поддубный, 1971; Иванова и др., 1978, Герасимов и др., 2015).

1.2.2 Роль сенсорных систем в реализации пищевого поведения у рыб

Начальные этапы пищевого поведения у рыб, как и у других позвоночных животных осуществляется при участии сенсорных систем - зрения, слуха, обоняния, вкуса, боковой линии, общего химического чувства и электрорецепции у электрических рыб (Касумян, 2002, 2011; Kasumyan, Doving, 2003; Кузьмина, 2005, 2015, 2019; Девицина и др., 2015, 2016).

Обоняние. Обонятельная система является одной из важнейших хемосенсорных систем у рыб, обеспечивающая поиск объектов питания, репродуктивное и социальное взаимодействие, способность выявлять и избегать хищников или других опасных ситуаций (Laberge at al., 2001; Sorensen et al., 2004; Hansen, 2005). В основе этого лежит способность обонятельной системы рыб реагировать на аминокислоты, желчные кислоты, пептиды, нуклеиновые кислоты и стероидные соединения (Hara, 1992). Морфология органа обоняния значительно варьирует у разных видов рыб (Zeiske et al., 1992; Hansen et al., 2005).

Орган обоняния у рыб, расположенный в носовой полости, представлен многослойной структурой, так называемой обонятельной розеткой. Поверхность складок обонятельной розетки покрыта обонятельным эпителием, толщина которого у разных рыб колеблется от 20 до 130 мкм. В состав обонятельного эпителия входят рецепторные, опорные, слизистые и базальные клетки (Zeiske еt al., 2003; Касумян, 2002; Ghosh et al., 2013) Существует три типа рецепторных клеток: реснитчатые и микровиллярные, общие для всех позвоночных, а также относительно малочисленные скрытые клетки, булава которых не достигает поверхности эпителия (Касумян, 2002; Ota et al., 2012; Lazzari et al., 2017). На поверхности обонятельных рецепторов расположены трансмембранные белки (первый компонент каскада обонятельной трансдукции), связывающие молекулы

и вызывающие каскад взаимодействий, которые преобразовывают первичный химический сигнал в электрический сигнал, вызывающий соответствующую реакцию (Azzouzi et al., 2014).

Первичные рецепторные клетки, являющиеся биполярными нейронами, имеют апикальный дендрит и базальный аксон. Аксоны рецепторных клеток после прохождения через базальную мембрану обонятельного эпителия объединяются в обонятельный нерв, связывающий обонятельный эпителий с первичными обонятельными центрами - парными обонятельными луковицами. Обонятельные луковицы состоит из нескольких концентрически расположенных клеточных и волокнистых слоев, структура которых значительно варьирует у рыб разных видов (Hara, 1971; Finger, 1997; Sorensen, Caprio, 1998; Андреева, Обухов, 1999; Касумян, 2002; Kasumyan, 2004).

Зрение - ведущий орган чувств у многих видов рыб. Величина и расположение глаз у рыб разных видов значительно варьирует. У большинства рыб глаз сильно уплощен в направлении главной зрительной оси. Структура глаз рыб близка таковой других позвоночных. К характерным особенностям глаз рыб относится неспособность зрачка сжиматься под действием света, а также выдвинутый вперед шарообразный хрусталик, делающий глаз рыб перископическим, что позволяет улавливать не только прямые, но и косые лучи, увеличивая поле зрения до 160-170° по горизонтали и 150° по вертикали. Глаза многих рыб имеют зеркальце (tapetum), повторно отражающее на зрительные клетки свет, прошедший через сетчатку, которая соединяется с головным мозгом волокнами зрительного нерва (Бабурина, 1972; Кузьмина, 2015; 2019). Свет фокусируется на сетчатку, затем детектируется на фоторецепторы, представленные палочками и колбочками. Палочки функционируют при слабом освещении, в то время как колбочки - при ярком освещении и цветовом зрении (Rodieck, 1998). Важную роль играют пигменты сетчатки (родопсин, порфиропсин, иодопсин, цианопсин). Как правило, существует несколько типов колбочек, содержащих различные зрительные пигменты, характеризующиеся максимальным поглощением света в разных частях спектра (Yokoyama, 2008). У

Список литературы диссертационного исследования кандидат наук Тарлева Анастасия Федоровна, 2021 год

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

1. Алабастер, Дж., Ллойд Р. Критерии качества воды для пресноводных рыб./ Дж.

Алабастер, Р. Ллойд. - М.: Легкая и пищевая промышленность, 1984. - 344 с.

2. Аминов, А.И. Влияние гербицида Раундап на гликозидазы рыб и объектов их

питания. Автореф. дисс. ... канд. биол. наук. / А.И. Аминов. - Нижний Новгород: Госун-т. им. Н.И. Лобачевского, 2018. - 24 с.

3. Аминов, А.И. Влияние гербицида Раундап на активность гликозидаз в

организме беспозвоночных животных и молоди рыб / А. И. Аминов, И. Л. Голованова, А. А. Филиппов // Биол. внутренних вод - 2013. - № 4. - С. 82-88.

4. Андреева, Н.Г. Эволюционная морфология нервной системы позвоночных. /

Н.Г. Андреева, Д.К. Обухов - С.-Пб. Изд. «Лань», 1999. -381 с.

5. Андрианов, Ю.Н. Органы боковой линии / Ю.Н. Андрианов, О.Б. Ильинский //

Руководство по физиологии. Эволюционная физиология Ч. 2. (отв. ред. П.Г. Костюк). - Л. Наука, 1983. - С. 110-160.

6. Антонов, В.К. Химия протеолиза / В.К. Антонов. - М. Наука, 1983. - 367 с.

7. Бабурина, Е.А. Особенности строения и функции глаз у рыб. / Е.А. Бабурина //

Труды совещания по вопросам поведения и разведки рыб. - М. Изд. АН СССР, 1955. - С. 90-104.

8. Бабурина, Е.А. Развитие глаз у круглоротых и рыб в связи с экологией / Е.А.

Бабурина. - М. Наука, 1972. -146 с.

9. Батян, А.В. Основы общей и экологической токсикологии / А.В. Батян, Г.

Фрумин, В. Базылев. - СПб: Спец-Лит., 2009. -590 с.

10. Бауман, В.К. Всасывание двухвалентных ионов / В.К., Бауман // Физиология всасывания. гл. Руководство по физиологии. - Наука. Л., 1977. -С. 152-161.

11. Бедняков, Д. А. Совместное влияние температуры и ионов металлов на уровень активности щелочной фосфатазы слизистой оболочки кишечника у рыб семейства acipenseridae / Д.А. Бедняков, Л.А. Неваленный, В.Ю. Новинский // Вестник Астраханского государственного технического университета. - 2011. - №2. - С. 74-77.

12. Бодрова, Н.В. Рецепторы химического чувства рыб / Н.В. Бодрова // Биологические процессы во внутренних водоемах. - М.; Л. Наука, 1965. - С. 148-162.

13. Веригина, И. А. Эколого-морфологические особенности пищеварительной системы костистых рыб / И.А. Веригина, И.М. Жолдасова. - Ташкент: ФАН, 1982. -154 с.

14. Высоцкая, Р.У. Лизосомы и лизосомальные ферменты рыб. / Р.У. Высоцкая, Н.Н. Немова - М.: Наука, 2008. - 284 с.

15. Герасимов, Ю.В. Пищевое поведение и некоторые биохимические показатели мозга леща при хроническом действии кадмия / Ю.В. Герасимов, Д.Ф. Павлов, Г.М. Чуйко // Тр. всес. совещ. по вопросам поведения рыб. - М.: ИЭМЭЖ, 1991. - С. 196-203.

16. Герасимов, Ю.В. Рыбы Рыбинского водохранилища: популяционная динамика и экология. / Ю.В. Герасимов. - Ярославль: Филигрань, 2015. - 417 с.

17. Голованова, И.Л. Влияние гербицида Раундап in vitro на активность карбогидраз молоди рыб / И.Л. Голованова, А.А. Филиппов, А.И. Аминов // Токсикол. вестн. - 2011. - № 5. - С. 31-35.

18. Голованова, И.Л. Влияние гербицида Раундап на активность гликозидаз молоди рыб и их кормовых объектов при различных значениях температуры и pH / И.Л. Голованова, А.И. Аминов // Вестник АГТУ. Сер. Рыбное хозяйство. - 2013. - № 1. - С. 129-134.

19. Голованова, И. Л. Влияние гербицида Раундап на активность гликозидаз в кишечнике рыб разных экологических групп / И.Л. Голованова, А.И. Аминов // Антропогенное влияние на водные организмы и экосистемы. ИБВВ РАН. Труды. вып. 77 (80). Ярославль: Филигрань, 2017. - С. 9-19.

20. Голованова, И.Л. Влияние гербицида Раундап на активность гликозидаз в кишечнике молоди теплолюбивых видов рыб в зависимости от температуры акклимации / И.Л. Голованова, Аминов А.И., Д.С. Капшай и др. // Вестник АГТУ. Сер. Рыбное хозяйство. - 2015. - № 2. - С. 90-97.

21. Грищенко, Л.И. Болезни рыб и основы рыбоводства / Л.И. Грищенко, М.Ш. Акбаев, Г.В. Васильков. - М.: Колос, 1999. - 456 с.

22. Громова, Л.В. Гидролазы мукозного, субмукозного и мышечного слоев тонкой кишки и их функции / Л.В. Громова, Гусев С.А., В.В. Егорова и др. // Физиол. ж. СССР им. И.М. Сеченова. 1991. Т. 77. № 11 С. 82-93.

23. Девицина, Г.В. Хемосенсорные системы рыб (Структурно-функциональная организация и взаимодействие): дис.... д-ра биол. наук / Галина Владимировна Девицына. - Москва, 2004 - 161 с.

24. Девицина, Г.В. Вкусовой аппарат орофарингиальной полости форели опсогЬупсЬш (рага8а1шо) шук188 / Г.В. Девицина, Т.В. Головкина // Вопросы ихтиологии. - 2011. - Т. 51. - № 01. - С. 113-123.

25. Девицина, Г. В. Взаимодействие интраоральной вкусовой субсистемы с сенсорными системами дистантного действия у рыб / Г.В. Девицина, Т.В. Головкина, Ф.С. Лобырев // Сенсорные системы. - 2015. - Т. 29. - № 3. -С. 201-212.

26. Девицина, Г.В. Тактильная рецепция наружных покровов головы серебряного карася (Сarassius auratus gibelio) / Г.В. Девицина, Д.Н. Лапшин // ДАН. - 2016. - Т. 466. - № 4. - С. 493-495.

27. Девицина, Г.В. Чувствительность и морфология внутриротовых вкусовых рецепторов радужной форели рага8а1шо (опсогЬупсЬш) шук188 /

Г.В. Девицина, Л.С. Червова, Д.Н. Лапшин // Сенсорные системы. - 2013. - Т. 27. - № 03. - С. 225-238.

28. Диксон, М. Ферменты / М. Диксон, Э. Уэбб. - М.: Наука, 1982. - Т.1. - С. 235-259.

29. Дину, М.И. Влияние комплексообразующих способностей фульвокислот и гуминовых кислот на содержание лабильных фракций отдельных металлов / М.И. Дину //Антропогенное влияние на водные организмы и экосистемы. Борок. ИБВВ РАН, 2008. - Т.1. - С. 26-30

30. Жиденко, А.А. Влияние гербицидов различной химической структуры на углеводный обмен в организме карпа / А.А. Жиденко, Е.В. Бибчук, О.Б. Мехед, В.В. Кривопиша // Гидробиологический журнал. - 2009. - Т. 45. - № 5. - С. 70-80.

31. Запрометов, М.Н. Основы биохимии фенольных соединений / М.Н. Запрометов. - М.: Изд. Высшая школа, 1974. - 214 с.

32. Зозуля, Л. В. Очистка и свойства пищеварительных ферментов белого толстолобика: автореф. дисс.... канд. биол. наук. / Л.В. Зозуля. - Ростов-на-Дону, 1996. - 22 с.

33. Золотарева, Г.В. Влияние среды обитания на активность и рН-зависимость пищеварительных гидролаз у рыб, их потенциальных объектов питания и микробиоты: автореф. дис. ... канд. биол. наук / Галина Викторовна Золотарева. - Астрахань, 2015. - 24 с.

34. Иванов, А.А. Физиология рыб/ А.А. Иванов. - М.: Мир, 2003. - 279 с.

35. Иванов, А.А. Экспериментальное обоснование роли структурирования и других характеристик химуса в определении функциональных возможностей желудочно-кишечного тракта при проведении энтерального питания / А.А. Иванов, Е.П. Полякова, Д.А. Ксенофонтов // Эксперементальная гастроэнрология. - 2009. - № 6. - С. 51-56.

36. Иванова, М.Н. Питание и пищевые взаимоотношения рыб в водохранилищах Волжского каскада / М.Н. Иванова, С.Н. Половкова, В.И. Кияшко и др. // Теоретические аспекты рыбохозяйственных исследований водохранилищ. - Л.: Наука, 1978. - С. 55-77.

37. Извекова, Г.И. Симбионтная микрофлора рыб различных экологических групп / Г.И. Извекова, Е.И. Извеков, А.О. Плотников // Известия РАН. Сер. биол. - 2007. - № 6. - С.728-737.

38. Ильина, И.Д. Развитие пищеварительной функции у рыб / И.Д. Ильина, В.И. Турецкий // Вопр. ихтиологии - 1987. - Т. 27. - № 5. - С. 835-843.

39. Ильмаст, Н.В. Введение в ихтиологию / Н.В. Ильмаст. - Петрозаводск: карельский научный центр РАН, 2005. - 148 с.

40. Кассиль В.Г. Пищевое поведение в онтогенезе / В.Г. Кассиль. - Л., 1990. - 220 с.

41. Касумян, А.О. Влияние тяжёлых металлов на пищевую активность и вкусовые поведенческие ответы карпа. I. Медь, кадмий, цинк и свинец / А.О. Касумян, А.М.Х. Морси // Вопр. ихтиол. - 1998. - Т. 38. - №3. - С. 393-409.

42. Касумян, А.О. Вкусовые стимуляторы рыб: новое решение старых проблем //2-й Международный научно производственный семинар. Ресурсосберегающие технологии в аквакультурею./ А.О. Касумян. -Краснодар, 1999. - 200 с.

43. Касумян, А.О. Воздействие химических загрязнителей на пищевое поведение и чувствительность рыб к пищевым стимулам / А.О. Касумян // Вопр. ихтиол. - 2001. - Том 1. - № 1. - С. 82-95.

44. Касумян, А.О. Обонятельная система рыб. / А.О.Касумян. - М.: МГУ, 2002. - 87 с.

45. Касумян, А.О. Боковая линия рыб./ А.О.Касумян. - МГУ, 2003. - 93 с.

46. Касумян, А.О. Тактильная рецепция и поведение рыб./ А.О. Касумян. -М. МАКС-ПРЕСС, 2011. - 162 с.

47. Касумян, А.О. Вкусовая привлекательность различных гидробионтов для плотвы Rutilus тМш, горчака Rhodeus sericeus amarus и радужной форели Parasalmo ^п^^п^ш) mykiss / А.О. Касумян, Т.В. Тинькова // Вопросы ихтиологии. - 2013. - Т. 53. - № 4. - С. 479-489.

48. Кашулин, Н.А. Влияние медно-никелевого производства на содержание основных тяжелых металлов в рыбе / Н.А. Кашулин, П.М. Терентьев // Мат. межд. конф. «Современные проблемы физиологии и биохимии водных организмов». - Петрозаводск, 2004. - С. 63-64.

49. Киселёва, М.А. Изучение возможности извлечения фенола и щавелевой кислоты из водных растворов природными сорбентами / М.А. Киселёва, Л.Б. Наумова, Л.Н. Скворцова и др. // Вестник ТГАСУ. - 2014. - № 1. - С. 109118.

50. Комов, В.Т. Содержание ртути в мышцах рыб из водоемов Северо-Запада России: причины интенсивного накопления и оценка негативного эффекта на состояние здоровья людей / В.Т. Комов, И.К. Степанова, В. А. Гремячих // Актуальные проблемы водной токсикологии. Борок. ИБВВ РАН. - 2004. - С. 99-123.

51. Коновалов, Ю.Д. Реакция белоксинтезирующей системы рыб на наличие в их организме катионов ртути, кадмия, меди и цинка / Ю.Д. Коновалов // Гидробиол. ж. - 2001. - Т. 37. - № 1. - С.95-105.

52. Корнева, Ж.В. Сравнительная характеристика ультраструктуры кишечного эпителия осетровых рыб / Ж.В. Корнева, Д. А. Бедняков // Биол. внутр. вод. - 2011. - № 4. - С. 48-57.

53. Кузьмина, В.В. Регуляция пищевого поведения рыб: роль гуморальной составляющей/ В.В. Кузьмина // Ж. эвол. биохим. и физиол. - 2005. - Т. 41. -№3. - С. 224-235.

54. Кузьмина, В.В. Физиология питания рыб. Влияние внешних и внутренних факторов / В.В. Кузьмина. - ИБВВ им. И.Д. Папанина РАН. Борок, 2008. - 276 с.

55. Кузьмина, В.В. Влияние цинка и меди на активность протеиназ пищеварительного тракта у ряда видов пресноводных костистых рыб / В.В. Кузьмина, М.М. Шишин, Н.В. Корюкаева и др. // Биол. внутр. вод. -2005. - № 4. - С. 102-109.

56. Кузьмина, В.В. Процессы экзотрофии у рыб. Организация. Регуляция. Адаптации. / В.В. Кузьмина - Москва: Полиграф-Плюс, 2015. - 260 с.

57. Кузьмина, В.В. Физиология питания рыб. Влияние внешних и внутренних факторов / В.В. Кузьмина (Ред. Ю.В. Герасимов). - Борок: ООО Принтхаус, 2008. - 276 с.

58. Кузьмина, В.В. Физиолого-биохимические основы экзотрофии рыб / В.В. Кузьмина. - М.: Наука, 2005. - 300 с.

59. Кузьмина, В.В. Активность пищеварительных гидролаз карпа Сурппш сагрю Ь. при различном содержании ртути в корме / В.В.Кузьмина, В.Т. Комов, В.Т. Гремячих а а1. // Вопр. ихтиол. - 2013. - Т. 53. - № 3. - С. 358-366.

60. Кузьмина, В.В. Влияние фенола и его производных на активность пептидаз слизистой оболочки и химуса у рыб / В.В. Кузьмина, Е.Л. Грачева,

A.Ф. Тарлева // Пробл. биол. продукт. жив. - 2015. - № 3. - С. 59-67.

61. Кузьмина В. В., Грачева Е.Л., Тарлева А.Ф., Тажимуратова У.Ж. Влияние фенола и его производных на активность гемоглобинлитических протеаз слизистой оболочки кишечника и химуса у рыб разных видов /

B.В. Кузьмина, Е.Л. Грачева, А.Ф. Тарлева и др. // Антропогенное влияние на водные организмы и экосистемы. Матер. V всерос. конф. по водной экотоксикологии, посвященной памяти Б.А. Флерова. - 2014. - ч. 2. - С. 6266.

62. Кузьмина, В.В. Роль объектов питания и микробиоты в процессах пищеварения рыб из разных экосистем / В.В. Кузьмина, Г.В. Золотарева, В. А. Шептицкий и др. - Государственное образовательное учреждение

Приднестровский государственный университет им. Т.Г. Шевченко -Тирасполь, 2016. - 190 с.

63. Кузьмина, В.В. Влияние различных концентраций фенола и его производных на активность пептидаз кишечника рыб / В.В. Кузьмина,

A.Ф. Тарлева, Е.Л. Грачева // Биол. внутр. Вод. - 2017. - №2. - С. 104-111.

64. Кузьмина, В.В. Процессы пищеварения у рыб. Новые факты и гипотезы /

B.В. Кузьмина - Ярославль: Филигрань, 2018. - 300 с.

65. Куливацкая, Е.А. Влияние фенола и его производных на активность гликозидаз кишечника рыб / Е.А. Куливацкая, Е.Л. Грачева, В.В. Чиркова // Проблемы патологии, иммунологии и охраны здоровья рыб и других гидробионтов: расшир. материалы IV Международной конференции Борок, 24-27 сентября 2015 г. / РАН, Федер. Агенство науч. орг. России, ФГБУН Ин-т биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина Ран; (ред. В.Р. Микряков, Е.А. Криксунов, Д.В. Микряков). Ярославль: Филигрань. - 2015. - С. 317324.

66. Лубянскене, В. Облигатный симбиоз микрофлоры пищеварительного тракта и организма / В. Лубянскене, Ю. Вирбицкас, К. Янкявичус и др. -Вильнюс: Мокслас., 1989. - 191 с.

67. Лукьяненко, В.И.Общая ихтиотоксикология / В.И. Лукьяненко. - М.: Легкая и пищевая промышленность, 1983. - 320 с.

68. Матей, В.Е. Влияние субтоксических концентраций фенола на условнорефлекторную деятельность гуппи / В.Е. Матей // Гидробиол. журн. -1970. - Т.6. - № 3. - С. 100-103.

69. Матей, В.Е. Жабры пресноводных костистых рыб: Морфофункциональная организация, адаптация, эволюция / В.Е. Матей. -СПб.: Наука, 1996. - 204 с.

70. Мехед, О.Б. Влияние загрязнения воды гербицидами зенкор и раундап на обмен веществ в печени рыб сем. Cyprinidae / О.Б. Мехед, А.А. Жиденко // Гидробиол. ж. - 2013. - Т. 49. - №. 3. - С. 82-88.

71. Микряков, В.Р. Реакция иммунной системы рыб на загрязнение воды токсикантами и закисление среды / В.Р. Микряков, П.В. Балабанова, Е.А. Заботкина и др. - М.: Наука, 2001. - 126 с.

72. Моисеенко, Т.И. Оценка опасности в условиях загрязнения вод металлами / Т.И. Моисеенко // Водные ресурсы. - 1999. - Т. 26. - №2. - С. 186-197.

73. Морси, А.М.Х. Вкусовая чувствительность карпа и ее изменение при действии тяжелых металлов: Дисс. канд. биол. наук / А.М.Х. Морси - М: МГУ, 1995. - 172 с.

74. Неваленный, А. Н. Функциональная организация и адаптивная регуляция процессов пищеварения у рыб / А.Н. Неваленный, А.В. Туктаров, Д. А. Бедняков. - Астрахань: Изд. АГТУ, 2003. - 152 с.

75. Немова, Н.Н. Внутриклеточные протеолитические ферменты у рыб / Н.Н. Немова. - Петрозаводск: Карельский научный центр РАН, 1996. - 104 с.

76. Немова, Н.Н. Биохимические эффекты накопления ртути у рыб / Н.Н. Немова. - М.: Наука, 2005. - 164 с.

77. Немова, Н.Н. Биохимическая индикация состояния рыб / Н.Н. Немова, Р.У. Высоцкая. - М.: Наука, 2004. - 215 с.

78. Никольский, В. Н. Экология рыб / В.Н. Никольский. - М.: Высшая школа, 1974. - 367с.

79. Остроумова, И.Н. Биологические основы кормления рыб / И.Н. Остроумова. - СПб: ГосНИОРХ, 2001. - 372с.

80. Папченкова, Г.А., Голованова И.Л., Ушакова Н.В. Репродуктивные показатели, размеры и активность гидролаз у Daphnia magna в ряду поколений при действии гербицида Раундап / Г.А. Папченкова,

И.Л. Голованова, Н.В. Ушакова // Биология внутренних вод, - 2009. - № 3. -С.105-110.

81. Поддубный, А.Г. Экологическая топография популяций рыб в водохранилищах / А.Г. Поддубный. - Л.: Наука, 1971. - 312 с.

82. Пономарев, С.В. Пономарева Е.Н. Биологические основы разведения осетровых и лососевых рыб на интенсивной основе / С.В. Пономарев, Е.Н. Пономарева. - Астрахань: Изд-во АГТУ, 2003. - 256 с.

83. Решетников, Ю.С. Атлас пресноводных рыб России (ред.) / Ю.С. Решетников. - Том 1. М.: Наука, 2003. - 378 с.

84. Решетников, Ю.С. Теоретические основы и практические аспекты мониторинга пресноводных экосистем / Ю.С. Решетников, М.И. Шатуновский // Мониторинг биоразнообразия. М.: Наука. - 1997. - С. 26-32.

85. Руднева, И.И. Экотоксикологические исследования прибрежной черноморской ихтиофауны в районе Севастополя (Ред.) / И.И. Руднева. -М.: ГЕО, 2016. - 360 с

86. Руднева, И.И. Оценка состояния ихтиоценозов прибрежных вод Крыма / И.И. Руднева // В сб. Крымский гуманитарный вестник. Отв. ред. А.Н. Рудяков; ГБОУ ДПО РК «Крымский республиканский институт постдипломного педагогического образования». - Симферополь. -2018. - С. 182-184.

87. Руднева, И.И. Применение молекулярных биомаркеров икры рыб для оценки влияния нефтяного загрязнения на прибрежные морские акватории крыма / И.И. Руднева, П.С.Подрезова, Т.Н. Климова // В сб. Крымский гуманитарный вестник. Сборник научных статей. Отв. ред. А.Н. Рудяков. Симферополь, 2019. - №3. - С. 156-158.

88. Рудченко, А.Е. Суточная динамика интенсивности питания и общей протеолитической активности ферментов в организме некоторых видов рыб

на ранних этапах онтогенеза / А.Е., Рудченко // Молодежь и наука: Сб. материалов VIII Всероссийской научно-технической конференции студентов, аспирантов и молодых учёныхх, посвященной 155-летию со дня рождения К. Э.Циолковского [Электронный ресурс]. Красноярск: Сибирский федеральный ун-т, 2012. Режим доступа: http://conf.sfu- kras.ru/sites/mn2012/ section31.html, свободный.

89. Семенов, Д. Ю. Экология окуня (Perca fluviatilis L.) центральной части Куйбышевского водохранилища: Дис. ... канд. биол. наук / Дмитрий Юрьевич Семенов. - Ульяновск, 2004. - 172 с.

90. Сорвачев, К.Ф. Основы биохимии питания рыб / К.Ф. Сорвачев. - М.: Легкая и пищевая промышленность, 1982. - 247 с.

91. Столбунов, И. А. Суточная динамика активности пептидаз в раннем онтогенезе уклейки Alburnus alburnus (L.) в прибрежном мелководье рыбинского водохранилища рыб / И. А. Столбунов, В.В. Кузьмина // Биол. внутр. Вод. - 2018. - №2. - C. 84-87.

92. Суханова, Е.В. Сообщества микроорганизмов, ассоциированных с лососевидными рыбами озера Байкал: автореф. дис.... канд. биол. наук / Елена Викторовна Суханова. - Иркутск, 2012. - 20 с.

93. Тинсли, И. Поведение химических загрязнителей в окружающей среде / И. Тинсли. - М. Мир, 1982. - 280 с.

94. Туктаров, А.В. Влияние ионов металлов на пищеваротельно-транспортную функцию кишечника осетровых рыб: автореф. Дис. ... канд. биол. наук / Андрей Валерьевич Туктаров. - Астрахань. АГУ, 2002. - 21 с.

95. Уголев, А.М. О существовании пристеночного (контактного) пищеварения / А.М. Уголев // Бюл. эксперим. биол. мед. - 1960. - Т. 49. - № 1. - С. 12- 17.

96. Уголев, А.М. Пищеварение и его приспособительная эволюция / А.М. Уголев. - М., 1961. - 306 с.

97. Уголев, А.М. Пристеночное (контактное) пищеварение / А.М. Уголев. -М., Л.: Изд. АН СССР, 1963. - 170 с.

98. Уголев, А.М. Мембранное пищеварение: Полисубстратные процессы, организация и регуляция / А.М. Уголев. - Л.: Наука, 1972. - 358 с.

99. Уголев, А.М. Эволюция пищеварения и принципы эволюции функций: Элементы современного функционализма / А.М. Уголев. - Л.: Наука, 1985. -544 с.

100. Уголев, А.М. Теория адекватного питания и трофология / А.М. Уголев. -СПб: Наука, 1991. - 271 с.

101. Уголев, А.М. Пищеварительные процессы и адаптации у рыб / А.М. Уголев, В.В. Кузьмина. - СПб. Гидрометеоиздат, 1993. - 238 с.

102. Фандж, Р. Пищеварение. В кн.: Биоэнергетика и рост рыб / Р. Фандж, Д. Гроув. - М., Легкая и пищевая промышленность, 1983. - С. 112-202.

103. Флерова (Назарова), Е.А. Токсическое действие сублетальных концентраций фенола и нафталина на мезонефрос серебряного карася (Сага881ш аиШш (Ь.) / Е.А. Флерова (Назарова), Е.А. Заботкина // Токсикол. вестник. - 2012. - № 4. - С. 49-51.

104. Фортунатова, К.Р. Питание и пищевые взаимоотношения хищных рыб в дельте Волги / К.Р. Фортунатова, О. А. Попова - М.: Наука, 1973. - 298 с.

105. Хаблюк, В.В., Проскуряков Т.М. Пищеварительные ферменты карпа и особенности их физико-химических свойств//Современные проблемы экологической физиологии и биохимии рыб. Вильнюс: Ин-т зоологии и паразитологии АН Литовской ССР. - 1988. - С. 249- 270.

106. Шатуновский, М.И. Экологические закономерности обмена веществ морских рыб / М.И. Шатуновский. - М.: Наука, 1980. - 288 с.

107. Шивокене, Я.С. Симбионтное пищеварение у гидробионтов и насекомых / Я.С. Шивокене. - Вильнюс: Мокслас, 1989. - 223 с.

108. Шишин, М.М. Влиян ие тяжелых металлов (медь, цинк) на скорость пищевой реакции карпа и активность протеиназ пищеварительного тракта рыб // автореф. дис.. .канд. биол. наук / М.М. Шишин. - Борок, 2006. - 22 с.

109. Шмидт-Ниельсен, К. Физиология животных: Приспособление к среде / К. Шмидт-Ниельсен. Кн. 2. (ред. Е.М.Крепс). - М.: Мир. - 1982. -384 с.

110. Шульман, Г.Е. Физиолого-биохимические особенности годовых циклов рыб / Г.Е.Шульман. - М.: Пищевая промышленность, 1972. - 368 с.

111. Abdel-Hameid, N.A.H. Physiological and Histopathological Alterations Induced by Phenol Exposure in Oreochromis aureus Juveniles / N.A.H. Abdel-Hameid // Turk. J. Fish. Aquat. - 2007. - V. 7. - P.131-138.

112. Abdel-Hameid, N.A.H. Effect of starving and feeding on some haematological and physiological responses of the Nile catfish, Clarias gariepinus exposed to copper at extreme seasons / N.A.H. Abdel-Hameid // Fish Physiol Biochem. -2011. - V. 37. - № 4. - P. 875-884.

113. Abolfathi, M. Compensatory growth in juvenile roach Rutilus caspicus: effect of starvation and re-feeding on growth and digestive surface area / M. Abolfathi, A., Hajimoradloo, R. Ghorbani et al. // J. Fish Biol. - 2012. - V. 81. - № 6. - P. 1880-1890.

114. Abolfathi, M. Effect of starvation and refeeding on digestive enzyme activities in juvenile roach, Rutilus rutilus caspicus / M.Abolfathi, A. Hajimoradloo, R. Ghorbani et al. // Comp. Biochem Physiol A Mol Integr. Physiol. - 2012 - V. 161. - № 2. - P. 166-173.

115. Adeyemo, O.K. Hematological and histopathologicaleffects of cassava mill effluent in Clarias gariepinus / O.K. Adeyemo // Afr. J. Biomed Res. - 2005. - V. 8. - P. 179-183.

116. Aguilera, C. Digestive enzymatic activity on tropical gar (Atractosteus tropicus) larvae fed different diets / C. Aguilera, R. Mendoza, I. Iracheta // Fish Physiol. Biochem. - 2012. - V. 38. - №3 - P. 679-691.

117. Ahmed, A.S.S. Hossain M.BBioaccumulation of heavy metals in some commercially important fishes from a tropical river estuary suggests higher potential health risk in children than adults / A.S.S. Ahmed, S. Sultana, A. Habib et al. // PLoS ONE - 2019. - V.14. - №10. - P. 1-21.

118. Ajima, M.N. Bioaccumulation of heavy metals in Mbaa River and the impact on aquatic ecosystem / M.N. Ajima, P.C. Nnodi, O.A. Ogo et al. // Environmental Monitoring and Assessment - 2015. - V. 187. - P. 768.

119. Akinrotimi, O.A. Haematological responses of Tilapia guineensis toacute stress / O.A. Akinrotimi, O.M.G. Abu, E.J. Ansa et al. // J. Nat Appi Sci. - 2009. -V. 5. - P. 338 -343.

120. Almeida-Val, V.M. Biochemical adjustments to hypoxia by Amazon cichids / V.M. Almeida-Val, I.P. Farias, M.N. Silva et al. // Braz J. Med Biol. Res. - 1995.

- V. 28. - P. 1257-1263.

121. Alvarez-Gonzalez, C.A. Development of digestive enzyme activity in larvae of spotted sand bass Paralabrax maculatofasciatus II: Electrophoretic analysis /

C.A. Alvarez-Gonzalez, F.J. Moyano-Lopez, R. Civera-Cerecedo et al. // Fish Physiol Biochem. - 2010. - V. 36. - № 1. - P. 29-37.

122. Alves, R.M. The scale epithelium as a novel, non-invasive tool forenvironmental assessment in fish: Testing exposure to linear alkylbenzene sulfonate / R.M. Alves, B.F. Pereira, R.G. Ribeiro et al. // Ecotoxicol. Environ. Saf.

- 2016. - V. 129. - P. 43-50.

123. Armiliato, N. Changes in ultrastructure and expression of steroidogenic factor-1 in ovaries of zebrafish Danio rerio exposed to glyphosate / N. Armiliato,

D. Ammar, L. Nezzi. et al. // J. Toxicol Environ Health A. - 2014. - V. 77. - №7.

- P. 405-414.

124. Arora, P.K. Bacterial degradation of chlorophenols and their derivatives / P.K. Arora, H. Bae // Microb Cell Fact. - 2014. - V.13. - №1. - P. 13-31.

125. Assem, H. Comparison of haematological effect of some toxicants on Clarias gariepinus / H. Assem, S. Abo-Hegab, I. Belal // J. Egypt. Germ. Soc.Zool. - 1992. -V.9 - P. 33-50.

126. Avallone, B. Cadmium effects on the retina of adult Danio rerio. / B. Avallone, R. Crispino, R. Cerciello et al. // C. R. Biol. - 2015. - V. 338. - № 1. -P. 40-47.

127. Azzouzi, N. Inventory of the cichlid olfactory receptor gene repertoires: identification of olfactory genes with more than one coding exon / N. Azzouzi, F. Barloy-Hubler, F. Galibert // BMC Genomics. - 2014. -V.586. - №15- P. 1-16.

128. Bakar, A.N. Evaluation of the neurotoxin effects of chronic embryonic exposure with inorganic mercury on motor and anxiety-like responses in zebrafish (Danio rerio) larvae / A.N. Bakar, N.S.A.M. Sata, N.F. Ramlan et al. // Neurotoxicol Teratol. - 2017. - V. 59. - P. 53-61.

129. Balassa, G.C.R. Dieta de e spécies do Anostomidae (Teleostei, Characiformes) na área de influência do reservatório de Manso, Mato Grosso, Brasil. / G. C. R. Balassa, N. S. Fugi, A. B. G. Hahn // Iheringia Série Zoologia -2004. - V. 94. - P. 77-82.

130. Barrington, E.J.W. The alimentary canal and digestion / E.J.W. Barrington // The Physiology of Fishes. New York - London . Acad. Press. -1957. - V. l. - P. 109-161.

131. Begam, M. Immunomodulation of intestinal macrophages by mercury involves oxidative damage and rise of pro-inflammatory cytokine release in the fresh water fish Channa punctatus Bloch / M. Begam, M. Sengupta // Fish Shellfish Immunol. - 2015. - V.45. - № 2. - P. 378-385.

132. Berntssen, M.H.G. Chronic dietary mercury exposure causes oxidative stress, brain lesions, and altered behaviour in Atlantic salmon (Salmo salar) parr / M.H.G. Berntssen, A. Aatland, R.D. Handy // Aquat. Toxicol. - 2003. - V. 65. - P. 55-72.

133. Bestman, J.E. The cellular and molecular progression of mitochondrial dysfunction induced by 2, 4-dinitrophenol in developing zebrafish embryos / J.E. Bestman, K.D. Stackley, J.J. Rahn // Differentiation. -2015. -V. 89. - № 3-4. -P. 51-69.

134. Bhandari, R. K. Effects of the environmental estrogenic contaminants bisphenol A and 17a-ethinyl estradiol on sexual development and adult behaviors in aquatic wildlife species / R. K. Bhandari, S. L. Deem, D. K. Holliday et al. // Gen. Compar. Endocrinol. -2015. - V. 214. - P. 195-214.

135. Bhattacharya, H. Toxicity studies of nonylphenol on rosy barb (Puntius conchonious): a biochemical and histopathological evaluation / H. Bhattacharya, Xiao Q., Lun L. // Tissue Cell. -2008. -V.40- №4. -P. 243-249.

136. Birceanu O., Mai T., Vijayan M.M. Maternal transfer of bisphenol A impacts the ontogeny of cortisol stress response in rainbow trout / O. Birceanu, Mai T., M.M. Vijayan //Aquat Toxicol. - 2015. -V.168. - P. 11-18.

137. Bleckmann, H. Lateral line system of fish / H. Bleckmann, R. Zelick // Integrative Zoology -2009. - V. 4. - P. 13-25.

138. Bloom, N.S. On the chemical form of mercury in edible fish and marine invertebrate tissue / N.S. Bloom // Can. J. Fish Aquat. Sci. - 1992. - V. 49. - № 5. - P. 1010-1017.

139. Borggaard, O.K. Fate of glyphosate in soil and the possibility of leaching to ground and surface waters: / O.K. Borggaard, A.L. Gimsing // a review Pest. Manag. Sci. - 2008. -V. 64. - P. 441-456.

140. Brausch, J.M., Toxicity of three polyethoxylated tallowamine surfactant formulations to laboratory and field collected fairy shrimp, Thamnocephalus platyurus / J.M. Brausch, P.N. Smith // Arch Environ. Contam. Toxicol. - 2007. -V.52. - №2. - P. 217-221.

141. Braz-Mota , S. Roundup exposure promotes gills and liver impairments, DNA damage and inhibition of brain cholinergic activity in the Amazon teleost fish

Colossoma macropomum / S. Braz-Mota, H. Sadauskas-Henrique, R.M. Duarte et al. // Chemosphere. - 2015. - V. 135. - P. 53-60.

142. Bretaud, S. Effects of carbofuran, diuron, and nicosulfuron on acetylcholinesterase activity in goldfish (Carassius auratus) / S. Bretaud, J.P.Toutant, P. Saglio // Ecotoxicol Environ Saf. - 2000. - V. 47. - № 2. - P. 117124.

143. Brijs, J. Effects of feeding on in vivo motility patterns in the proximal intestine of shorthorn sculpin (Myoxocephalus scorpius) / J. Brijs, G.W. Hennig, M. Axelsson et al.// J. Exp Biol. - 2014. - V. 217. - № 17. - P. 3015-3027.

144. Brijs, J. The presence and role of interstitial cells of Cajal in the proximal intestine of shorthorn sculpin (Myoxocephalus scorpius) / J. Brijs, G.W. Hennig, A.M. Kellermann et al. // J. Exp Biol. - 2017. - V. 220. - № 3. - P. 347-357.

145. Brix, K.V. Characterization of the effects of binary metal mixtures on short-term uptake of Ag, Cu, and Ni by rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) / K.V. Brix, M.S. Tellis, A. Cremazy et al. // Aquat Toxicol. - 2016. - V.180. - P. 236246.

146. Brodeur, J. Inhibition of oxygen consumption by pentachlorophenol and tetrachloroguaiacol in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) / J. Brodeur, D. Dixon, R. Mckinley // Aquat. Toxicol. - 2001. - V.54. - P. 143-148.

147. Budavari, S. The Merck Index 13th ed. NJ: Whitehouse station, Merck / S. Budavari // Co. Inc. - 2001. - P. 1299-1367.

148. Buddington, R.K. The intestines of carnivorous fish: structure and functions and relations with diet / R.K. Buddington, A. Krogdahl, Ä.I. Bakke-Mckellep // Acta Physiol. Scand. - 1997. - P. 67-80.

149. Buddington, R.K. Digestive system. Grose functional anatomiy / R.K.Buddington, V.V. Kuz'mina // The laboratory fish. Ch. 11. Eds G.K. Ostrander, J. Hopkins. Baltimore-Maryland, 2000 a. - P. 173-179.

150. Bury, N.R. Nutritive metal uptake in teleost fish / N.R. Bury, P.A Walker., Ch.N. Glover // J. Exp. Biol. - 2003. - V.206. - P.11-23.

151. Calfee, R.D. Acute sensitivity of white sturgeon (Acipenser transmontanus) and rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) to copper, cadmium, or zinc in water-only laboratory exposures / R.D. Calfee, E.E. Little , H.J. Puglis et. al. // Environ. Toxicol. Chem. - 2014. - V.33. - №10. - P. 2259-2272.

152. Calfee, R.D.,Quantifying Fish Swimming Behavior in Response to Acute Exposure of Aqueous Copper Using Computer Assisted Video and Digital Image Analysis / R.D. Calfee, H.J. Puglis, E.E. Little et al. // J. Vis Exp. - 2016. - № 108. 53477. doi: 10.3791/53477.

153. Campbell, H.A. Shifts in a fish's resource holding power during a contact paired interaction: the influence of a copper-contaminated diet in rainbow trout / H.A. Campbell, R.D. Handy, D.W. Sims // Physiol. Biochem. Zool. 2005. - V. 78. - № 5. - P. 706-714.

154. Caruso, G. Changes in digestive enzyme activities of red porgy Pagrus pagrus during a fasting-refeeding experiment / G. Caruso, M.G Denaro, R. Caruso et al. // Fish Physiol Biochem. -2014. - V. 40. - № 5. - P. 1373-1382.

155. Ghisi, N.de C. Genotoxic effects of the herbicide Roundup in the fishCorydoras paleatus (Jenyns 1842) after short-term, environmentally low concentration exposure / N.de C. Ghisi, M.M. Cestari // Environ Monit Assess. 2013. - V.185. - № 4. -P. 3201-3207.

156. Cavalcante, D. Genotoxic effects of Roundup® on the fish Prochilodus lineatus / D. Cavalcante, C. Martinez, S. Sofia // Mutat ResGenet Toxicol Environ Mutagen. - 2008. -V. 655. - № 1. - P. 41-46.

157. Cavas, T. Detection of cytogenetic and DNA damage in peripheral erythrocytes of goldfish (Carassius auratus) exposed to a glyphosate formulation using the micronucleus test and the comet assay / T. Cavas, S. Konen //Mutagenesis. - 2007. - V.22. - № 4. - P. 263-268.

158. Chen, B.N. Ontogenetic development of digestive enzymes in yellowtail kingfish Seriola lalandi larvae / B.N. Chen, J.G. Qin, M. S. Kumar et al. // Aquaculture - 2006. -V. 260. - P. 264-271.

159. Chen, H.M. ROS-triggered signaling pathways involved in the cytotoxicity and tumor promotion effects of pentachlorophenol and tetrachlorohydroquinone / H.M. Chen, Y.H. Lee, Y.J. Wang et al. // Chemical Research in Toxicology -2015. - V.28. - P. 339-350.

160. Chen, J. Cytotoxic effects ofenvironmentally relevant chlorophenols on L929 cells and their mechanisms. / J. Chen, J. Jiang, F. Zhang et al. // CellBiology & Toxicology.2004. -V. 20. -P. 183-196.

161. Chen, X. Pentachlorophenol reduces B lymphocyte function through proinflammatory cytokines in Carassius auratus / X. Chen, G. Yao, Y. Hou // Food & Chemical Toxicology 2005. - V43. - P. 239-245.

162. Chen, Y. Mitochondrial redox signaling and tumor progression / Y. Chen, H. Zhang, H.J. Zhou et al. // Cancers (Basel). - 2016. - V. 8. - № 4. pii: E40. doi: 10.3390/cancers8040040.

163. Cheng, Y. Relative developmental toxicities of pentachloroanisole and pentachlorophenol in a zebrafish model (Danio rerio) / Y. Cheng, M. Ekker, H. Chan // Ecotoxicol. Environ. Safety. - 2015. - V.112. - P. 7-14.

164. Claireaux, G. Physiological responses of Atlanticcod (Gadusmorrhna) to hypoxia at various environmental sa lenities / G. Claireaux, J.D. Dutil // J. Ep. Biol. -1992. - V. 163. - P. 97-118.

165. Clearwater, S.J. Bioavailability and toxicity of dietborne copper and zinc to fish / S.J. Clearwater, A.M. Farag, J.S Meyer //Comp. Biochem. Physiol. C Toxicol Pharmacol. - 2002. - V.132. - № 3. - P. 269-313.

166. Corrales, J. Global Assessment of Bisphenol A in the Environment: Review and Analysis of Its Occurrence and Bioaccumulation / J. Corrales, L.A. Kristofco, W.B. Steele et al. // J. Dose-Response. - 2015. - V. 13. - № 3. - P.1-29.

167. Correa, C.E. Patterns of niche breadth and feeding overlap of the fish fauna in the seasonal Brazilian Pantanal, Cuiabä River basin / C.E. Correa, M.P. Albrecht, N.S. Hahn // Neotropical Ichthyology - 2011. -V. 9. - №3. - P. 637-646.

168. Cox, C. Glyphosate / C. Cox // Journal of pesticide reform. -2004. - V. 24. -№ 4. - P.10-15.

169. Daidoji, T. Down regulation of bisphenol A glucuronidation in carp during the winter pre-breeding season / T. Daidoji , T. Kaino , H. Iwano .et al. //Aquat Toxicol. - 2006. -V. 77. -№ 4. - P. 386-392.

170. Daverat, F. Accumulation of Mn, Co, Zn, Rb, Cd, Sn, Ba, Sr, and Pb in the otoliths and tissues of eel (Anguilla anguilla) following long-term exposure in an estuarine environment / F. Daverat, L. Lanceleur , C. Pecheyran. et al. // Sci Total Environ. - 2012. - V. 437. - P. 323-330.

171. Davis, D.J. Lactobacillus plantarum attenuates anxiety-related behavior and protects against stress-induced dysbiosis in adult zebrafish. / D.J. Davis, H.M. Doerr , A.K. Grzelak et al. // Sci Rep. - 2016. -V.6. 33726. doi: 10.1038/srep33726.

172. De Felice, F.G. Novel Neuroprotective, Neuritogenic and Anti-amyloidogenic Properties of 2, 4-Dinitrophenol: The Gentle Face of Janus / F.G. De Felice, S.T. Ferreira // IUBMB Life. - 2006. -V. 58. №. 4. - P. 185-191.

173. Deforest, D.K. Are ambient water quality criteriafor copper protective of olfactory impairment in fish? / D.K. Deforest, J.S. Meyer, R.W. Gensemer et al. // Integr. Environ. Assess. Manage. - 2011. - V.7. - № 1. - P. 145-146.

174. Deivasigamani, S. Effect of herbicides on fish and histological evaluation of common carp (Cyprinus carpio) / S. Deivasigamani // Internat. J. Appl. Res. -2015. - V. 1. - № 7. - P. 437- 440.

175. Dias, T.S. Comparative dietary analysis of Eurycheilichthys pantherinus and Pareiorhaphis hystrix: two Loricariidae species (Ostariophysi, Siluriformes) from

Campos Sulinos biome, southern Brazil. / T.S. Dias, C.B. Fialho // Iheringia Série Zoologia - 2011. - V. 101. - P. 49-55.

176. Dong, Y. L. Induction of oxidative stress and apoptosis by pentachlorophenol in primary cultures of Carassius carassius hepatocytes / Y. L. Dong, P. J. Zhou, S.Y. Jiang et al. // Comp. Biochem.Physiol., Part C Toxicol. Pharmacol. - 2009. -V. 150. - P.179-185.

177. Dorea, J.G. Fish mercury bioaccumulation as a function of feeding behavior and hydrological cycles of the Rio Negro, Amazon / J.G. Dorea, A.C. Barbosa, G.S. Silva // Comp. Biochem. Physiol .C Toxicol Pharmacol. - 2006. - V.142. - № 3-4. -P. 275- 283.

178. Doving, K.B. Assessment of animal behavior as a method to indicate environmental toxicology. / K.B.Doving // Comp. Biochem. Physiol. -1999. - V. 100. - №1-2. - P. 247-252.

179. Dragun, Z. Malondialdehyde concentrations in the intestine and gills of Vardar chub (Squalius vardarensis Karaman) as indicator of lipid peroxidation / Z. Dragun, V. Filipovic Marijic, N. Krasnici et al. // Environ Sci Pollut Res Int. -2017. - V. 24. - №20. - P. 16917- 16926.

180. Du ,Y.B. Toxic Effects in Siganus oramin by dietary exposure to 4-tert-octylphenol / Y.B. Du, Y.Y. Li, Y.J. Zhen et al. // Bull. Environ. Contam. Toxicol. - 2008. -V. 80. - №6. - P. 534-558.

181. Duan, Z. Individual and joint toxic effect ofpentachlorophenol s and bisphenol A on the development of zebrafish (Danio rerio) embryo / Z. Duan, L. Zhu, Y. Kun et al.// Ecotoxicol. Environ. Safety. - 2008. - V.71. - P. 774-780.

182. Duke, S.O. Glyphosate: a once-in-a-ce tury herbicide / S.O. Duke, S.B. Powles // Pest Manag. Sci. - 2008. - V. 64. - P. 319-325.

183. Ekweozor, I.K.E. Sublethal effect of ammonial fertilizer effluents on the three commercial species from Niger Delta area / I.K.E. Ekweozor, N.O.K. Bobmanuel, U.U. Gabriel // J app Sci Environ Mange - 2001. - V 5. - P. 63-68.

184. Escobar-Camacho, D. Sensory modalities in cichlid fish behavior / D. Escobar-Camacho, K.L. Carleton // Curr. Opin. Behav. Sci. - 2015 - V. 1. -№6. - P. 115-124.

185. Falcinelli, S. Lactobacillus rhamnosus lowers zebrafish lipid content by changing gut microbiota and hosttranscription of genes involved in lipid metabolism / S. Falcinelli, S. Picchietti, A. Rodiles // Sci . Rep. - 2015. - V.5. 9336. DOI: 10.1038 / srep09336

186. Fang, Y. Comparative proteomic analysis of ovary for Chinese rare minnow (Gobiocypris rarus) exposed to chlorophenol chemicals / Y. Fang, X. Gao, F. Zhao et al. // J. Proteomics. - 2014. - V. 110. - P. 172-182.

187. Fange,R. Digestion / R. Fange,D. Grove // Fish physiology. (Eds. Hoar W.S., Randall D.J., Brett J. R.) Acad. Press New York; San Francisco-London: - 1979. -V. 8. - P. 162-260.

188. Fei, X.C. Transmembrane transports of acrylamide and bisphenol A and effects on development of zebrafish (Danio rerio) / X.C. Fei, C. Song, H.W. Gao //J. Hazard Mater. - 2010. - V. 184 - №. 1-3. - P. 81-88.

189. Felix, F.J. Impact of the Herbicide Glyphosate Roundup (41%) On The Haematology of the Freshwater Fish, Catla Catla (Hamilton) / F.J. Felix, N. Saradhamani // IOSR J. Environ.Sci., Toxicol. Food Technol. (IOSR-JESTFT). - 2015. - V. 9. 4. - P. 56-60.

190. Field, H.A. Analysis of gastrointestinal physiology using a novel intestinal transit assay in zebrafish / H.A. Field, K.A. Kelley, L. Martell et al. // Neurogastroenterol Motil. - 2009. - V 21. - № 3. - P. 304-312.

191. Filho, J.D.S. Mutagenicity and genotoxicity in gill erythrocyte cells of Poecilia reticulata exposed to a glyphosate formulation / J.D.S. Filho, C.C.N. Sousa, C.C. Da Silva et al. // Bull Environ Contam Toxicol. - 2013. - V. 91. - P. 583-587.

192. Finger, T. E. Evolution of Taste and solitary chemoreceptor cell systems / T.E. Finger // Brain Behav Evol. - 1997. - V.50. - № 4. - P. 234-243.

193. Fitzgerald, A.C. Bisphenol A and related alkylphenols exert nongenomic estrogenic actions through a G protein-coupled estrogen receptor 1 (Gper)/epidermal growth factor receptor (Egfr) pathway to inhibit meiotic maturation of zebrafish oocytes / A.C. Fitzgerald, C. Peyton, Dong. J. et al. // Biology of Reproduction - 2015. - V. 93. - №. 6. - P. 135. doi: 10.1095/biolreprod. 115.132316.

194. Flint, S. Bisphenol A exposure, effects, and policy: a wildlife perspective / S. Flint, T. Markle, S. Thompson etal. // J. Environ. Manag. - 2012. - V. 104. - P. 19-34.

195. Folmar, L.C. Toxicity of the herbicide glyphosate and several of its formulations to fish and aquatic invertebrates / L.C. Folmar, H.O. Sanders, A.M. Julin // Arch. Environ. Contam. Toxicoogy, - 1979. - V. 8. - P. 269-278.

196. Frías-Quintana, C.A. Development of digestive tract and enzyme activities during the early ontogeny of the tropical gar Atractosteus tropicus / C.A. Frías-Quintana, G. Márquez-Couturier, C.A. Alvarez-González et al. // Fish Physiol Biochem. - 2015. - V. 41. - № 5. - P. 1075-1091.

197. Froehlicher, M. Zebrafish (Danio rerio) neuromast: promising biological endpoint linking developmental and toxicological studies / M. Froehlicher, A. Liedtke, K.J. Groh et al. // Aquat Toxicol. - 2009. - V. 95. - №4. - P. 307-319.

198. Furgala-Selezniow, G., Jankun M., Kujawa R.J.et al. Histological Aspects of the Early Development of the Digestive System of Burbot Lota lota L. (Lotidae, Gadiformes) / G. Furgala-Selezniow, M. Jankun, R.J. Kujawa et al. // Folia Biol. (Krakow) - 2016. - V. 64. - №1. - P. 11-21.

199. Gad, N.S. Effect of environmental pollutionby phenol on some physiological parameters of Oreochromis niloticus / N.S. Gad, A.S. Saad // Global Veterin. -2008. - V. 2. - P. 312-319.

200. Galaviz, M.A. Expression and activity of trypsin and pepsin during larval development of the spotted rose snapper Lutjanus guttatus / M.A. Galaviz , A. Garcia-Ortega, E. Gisbert et al. // Comp. Biochem. Physiol. B Biochem Mol Biol. - 2012. - V. 161. - №1. - P. 9-16.

201. Ge, T. The toxic effects of chlorophenols and associated mechanisms in fish / T. Ge, J. Han, Y. Qi et al. // Aquat Toxicol. - 2017. - V. 184. - P. 78-93.

202. Gerking, S.D. Feeding ecology of fish / S.D. Gerking - Acad. Press. - 1994. -P. 416.

203. German, D.P. Feast to famine: The effects of food quality and quantity on the gut structure and function of a detritivorous catfish (Teleostei: Loricariidae) / D.P. German, D.T. Neuberger, M.N. Callahan et al.// Comp Biochem. Physiol. A Mol Integr. Physiol. - 2010. - V. 155. - № 33 -. P. 281-293.

204. Ghedira, J. Metallothionein and metal levels in liver, gills and kidney of Sparus aurata exposed to sublethal doses of cadmium and copper. / J. Ghedira, J. Jebali, Z. Bouraoui et al. // Fish Physiol Biochem. - 2010. - V. 36. - P. 101-107.

205. Ghosh, S.K., Topological organization and functional aspects of the olfactory epithelium of whipfin silver biddy Gerres filamentosus (Cuvier 1829)/ S.K. Ghosh, P. Chakrabarti // Pak J. Biol. Sci. - 2013. - V.16. - №5. - P. 245-50.

206. Giesy, J.P. Ecotoxicological risk assessment for Roundup® herbicide / J.P. Giesy, S. Dobson, K.R. Solomon // Rev Environ. Contam. Toxicol. - 2000. -V.167. - P. 35-120.

207. Glover, C. N. Amino acid modulation of in vivo intestinal zinc absorption in freshwater rainbow trout. / C. N. Glover, C. Hogstrand // J. Exp. Biol. - 2002. - V. 205. - P. 151-158.

208. Goutte, A. Trace elements in Antarctic fish species and the influence of foraging habitats and dietary habits on mercury levels / A. Goutte, Y. Cherel, C. Churlaud et al. // Sci. Total Environ. - 2015. - V. 538. - P. 738-744.

209. Grippo, M.A. The effect of mercury on the feeding behavior of fathead minnows (Pimephales promelas) / M.A. Grippo, A.G. Heath // Ecotoxicol. Environ. Safety. - 2003. - V. 55. - P. 187-198.

210. Guan, Y. Effects of bisphenol A on lipid metabolism in rare minnow Gobiocypris rarus / Y. Guan, J. Gao, Y. Zhang et al. // Compar. Biochem. Physiol. C. Toxicol Pharmacol. - 2016. - V. 179. - P. 144-149.

211. Guilherme, S. European eel (Anguilla anguilla) genotoxic and pro-oxidant responses following short-term exposure to Roundup®, a glyphosate-based herbicide. / S. Guilherme, I. Gaivao, M. Santos et al. // Mutagenesis. - 2010. -V.25. - №5. - P. 523-530.

212. Guilherme, S. Differential genotoxicity of Roundup formulation and its constituents in blood cells of fish (Anguilla anguilla): considerations on chemical interactions and DNA damaging mechanisms / S. Guilherme, M. Santos, C. Barroso et al. // Ecotoxicology. - 2012. - V.21. - № 5. - P. 1381-1390.

213. Guilherme, S. Are DNA-damaging effects induced by herbicide formulations (Roundup® and Garlon®) in fish transient and reversible upon cessation of exposure? / S. Guilherme, M. Santos, I. Gaivao et al. // Aquat Toxicol. - 2014. - V. 155. - P. 213-221.

214. Guo, Y. Thyroid endocrine system disruption by pentachlorophenol: An in vitro and in vivo assay / Y. Guo, B. Zhou // Aquat. Toxicol - 2013. - V. 142 - 143 - P. 138-145.

215. Gupta, P. Effects of sub-lethal concentrations of zinc on histological changes and bioaccumulation of zinc by kidney of fish, Channa punctatus (Bloch). / P. Gupta, S. Neera // J. Environ. Biol. - 2006. - V. 27. - P. 211-215.

216. Hahn, M.E. Nrf2 and Nrf2-related proteins in development and developmental toxicity: Insights from studies in zebrafish (Danio rerio). / M.E. Hahn, A.R. Timme-Larag., S.I. Karchner et al. // Free Radic Biol Med. - 2015. - V.88 (Pt B). - P. 275-289.

217. Hall, B.D. Food as the dominant pathway of methylmercury uptake by fish / B.D. Hall, R.A. Bolaly, R.J.P. Furge et al. // Water Air Soil Pollut. - 1997. - V. 100. - N 1-2. - P. 13-24.

218. Handy, R.D. Chronic effects of copper exposure versus endocrine toxicity: two sides of the same toxicological process? / R.D. Handy // Comp. Biochem. Physiol. Mol. Integrat. Physiol. - 2003. - V. 135A. - № 1. - P. 25-38.

219. Hansen, A. Diversity in the olfactory epithelium of bony fishes: development, lamellar arrangement, sensory neuron cell types and transduction components / A. Hansen, B.C. Zielinski // J. Neurocytol. - 2005. - V. 34. - P. 183-208.

220. Harayashiki, C.A.Y. Toxic effects of the herbicide Roundup in the guppy Poecilia vivipara acclimated to fresh water / C.A.Y. Harayashiki, J.A.S.Varela, M.A.A. de Souza et al. // Aquat. Toxicol. - 2013. - V. 142. - P. 176-184.

221. Harris, C.A. Nonylphenol affects gonadotropin levels in the pituitary gland and plasma of female rainbow trout / C.A. Harris, E.M. Santos, A. Janbakhsh et al. // Environ Sci Technol. - 2001. - V. 35. - №14. - P. 2909-2916.

222. Hashemi, S. The effect of starving and feeding on copper toxicity and uptake in Cu acclimated and non-acclimated carp / S. Hashemi, R. Blust, G. De Boeck // Aquat Toxicol. - 2008. - V. 86. - № 2. - P. 142-147.

223. Hashemi, S. Differential metallothionein induction patterns in fed and starved carp (Cyprinus carpio) during waterborne copper exposure / S. Hashemi, P.S.Kunwar, R. Blust et al. // Environ Toxicol. Chem. - 2008. - V. 27. - № 10. -P. 2154-2158.

224. Hauser-Davis, R.A. Fish bile a sa biomarker for metal exposure / R.A. Hauser-Davis, Bastos F.F., de Oliveira T.F. et al. // Mar Pollut Bull - 2012. -V. 64. - P. 1589-159.

225. Hauser-Davis, R.A., F.F. Bastos, B. Tuton et al. Bile and liver metallothionein behavior in copper-exposed fish. / R.A. Hauser-Davis, F.F. Bastos, B. Tuton et al. // Trace Elem Med Biol. - 2014. - V. 28. - №1. - P. 70-144.

226. Hentig J.T.', Byrd-Jacobs C.A. Exposure to Zinc Sulfate Results in Differential Effects on Olfactory Sensory Neuron Subtypes in Adult Zebrafish. / J.T. Hentig, C.A. Byrd-Jacobs // Int.J. Mol. Sci. - 2016. - V. 17. - P. 1-15 pii: E1445. doi: 10.3390/ijms17091445.

227. Hernández, P.P. Sub-lethal concentrations of waterborne copper are toxic to lateral line neuromasts in zebrafish (Danio rerio) / P.P.Hernández, V. Moreno, F.A,Olivari et al. // Hear Res. - 2006. - V. 213. - № 1-2. - P. 1-10.

228. Higgs, D.M. The Potential Overlapping Roles of the Ear and Lateral Line in Driving "Acoustic" Responses / D.M. Higgs, C.A. Radford // Adv. Exp. Med. Biol. - 2016. - V. 877. - P. 255-270.

229. Hori, T. Metabolical changes induced by chronic phenol exposure in matrinxa~ Brycon cephalus (Teleostei: Characidae) juveniles / T. Hori, I.M. Avilez, L.K. Inoue et al // Compar. Biochem. Physiol. - 2006. - V. 143. - №. 1. - P. 67-72.

230. Hori, T., I.M. Avilez, G.K Iwama et al. Impairment of the stress response in matrinxa juveniles (Brycon amazonicus) exposed to low concentrations of phenol / T. Hori. // Compar. Biochem. Physiology. -2008. Part C. - V.147 - P. 416-423.

231. Hosseini, M. Bioaccumulation of trace mercury in trophic levels of benthic, benthopelagic, pelagic fish species, and sea birds from Arvand River, Iran. / M. Hosseini, S.M. Nabavi, Y. Parsa // Biol. Trace Elem Res. - 2013. - V.156. - № 1-3. - P. 175-180.

232. Hou, J. Efficient biodegradation of chlorophenols in aqueous phase by magnetically immobilized aniline-degrading Rhodococcus rhodochrous strain / J. Hou, F Liu ., N. Wu et al. // J. Nanobiotechnology. - 2016 - V.14 - №.5 - P. 18.

233. Hued, A.C. "Exposure to a Commercial Glyphosate Formulation (Roundup) Alters Normal Gill and Liver Histology and Affects Male Sexual Activity of Jenynsia multidentata (Anablepidae, Cyprinodontiformes) / A.C. Hued,

S.Oberhofer, M de los A. Bistoni // Arch. Environ. Contam. Toxicol. - 2012. - V. 62. - P. 107-117.

234. Igbinosa, E.O. Toxicological Profile of Chlorophenols and Their Derivatives in the Environment: The Public Health Perspective / E.O. Igbinosa, E.E. Odjadjare, V.N. Chigor et al. // Sci.World J. Hindawi Publ. Corpor. - 2013. Article ID 460215, 11 http://dx.doi.org/10.1155/2013/460215.

235. Jagetia, G.C. Hydroquinone increasesthe frequency of miconuclei in a dose-dependent manner in mouse bone marrow / G.C. Jagetia, R. Aruna // Toxicol. Lett. - 1997. - V.39. - P. 205-213.

236. Jiraungkoorskul, W. Biochemical and histopathological effects of glyphosate herbicide on Nile tilapia (Oreochromis niloticus) / W. Jiraungkoorskul, E.S. Upatham, M. Kruatrachue et al. // Environ. Toxicol. - 2003. - V. 18. - P. 260- 267.

237. Jiraungkoorskul, W. Histopathological effects of Roundup, a glyphosate herbicide, on Nile tilapia (Oreochromis niloticus) / W. Jiraungkoorskul, E.S. Upatham, M. Kruatrachue et al. // Sci. Asia. - 2002 - V. 28. - P. 121-127.

238. Johnson, A. The effects of copper on themorphological and functional development of zebrafish embryos / A. Johnson, E. Carew, K.A. Sloman // Aquat.Toxicol. - 2007. - V. 84. - P. 431-438.

239. Kamunde, C.N. Copper metabolism and gut morphology in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) during chronic sublethal dietary copper exposure / C.N. Kamunde, M. Grosell, J.N.A. Lott et al. // Can. J. Fish. Aquat. Sci. - 2001. -V. 58. - P. 293-305.

240. Kamunde, C.N. The influence of metal-metal interactions of dietary cadmium, copper and zinc in rainbow trout, Oncorhynchus mykiss / C.N. Kamunde, C.R. MacPhail // Ecotoxicol. Environ Saf. - 2011. - V. 74. - № 4. - P. 658-667.

241. Kan, H. Correlations of Gut Microbial Community Shift with Hepatic Damage and Growth Inhibition of Carassius auratus Induced by Pentachlorophenol

Exposure / H. Kan, F. Zhao, X.X. Zhang // Environ Sci Technol. - 2015. - V. 49. -№19. - P. 11894-11902.

242. Kapoor, B.G. The alimentary canal and digestion in teleosts / B.G. Kapoor, H. Smit, I.A. Verighina // Adv. mar. biol. - 1975. - V. 13. - P. 109-239.

243. Kasumyan A.O. Tactile reception and behavior of fish / A.O. Kasumyan // J. Ichthyol. - 2011. - V. 51. - №. 11. - P. 1035-1103.

244. Kasumyan, A.O. The intraoral tactile reception and its interaction with the gustatory system in fish / A.O. Kasumyan // Dokl. Biol. Sci. - 2012. - V.447. - P. 374-376.

245. Kasumyan, A.O., Doving K.B. Taste preferences in fishes / A.O. Kasumyan, A.O. Doving // Fish Fisheries. - 2003. -V.4. - P. 289-347.

246. Kenduzler, E. Determination of mercury in fish otoliths by cold vapor generation inductively coupled plasma mass spectrometry (CVG-ICP-MS) / E. Kenduzler, M. Ates , Z. Arslan et al. // Talanta. - 2012. - V. 93. - P. 404-410.

247. Kessabi, K., Hwas Z., Sassi A. Said K., Messaoudi I. Heavy metal accumulation and histomorphological alterationsin Aphanius fasciatus (Pisces, Cyprinodontidae) from the Gulf of Gabes (Tunisia) / K. Kessabi, Z. Hwas, A. Sassi et al. // Environ Sci. Pollut Res. Int. - 2014. - V. 21. - № 24. - P. 14099-14109.

248. Kiaune L., Singhasemanon N. Pesticidal copper (I) oxide: environmental fate and aquatic toxicity / L. Kiaune, N. Singhasemanon // Rev Environ Contam Toxicol. - 2011. - V. 213. - P. 1-26.

249. Kinch, C. D. Low-dose exposure to bisphenol A and replacement bisphenol S induces precocious hypothalamic neurogenesis in embryonic zebrafish. / C.D. Kinch, K. Ibhazehiebo, J.H. Jeong et al. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. -2015.V-.112. - No 5. - P.1475-1480.

250. Kotrschal, K Solitary chemosensory cells: why doprimery aquatic vertebrates need another taste system? / K. Kotrschal // Trends Ecol Evol. - 1996 - V.11. -№3. - P. 110-144.

251. Kreutz, L.C. Altered hematological and immunological parameters in silver catfish (Rhamdia quelen) followingshort term exposure to sublethal concentration of glyphosate / L.C. Kreutz, L.J. Gil Barcellos, Valle S.de F.et al. // Fish Shellfish Immunol. - 2011. -V.30. -№1. -P.51-57.

252. Krishnani, K. K. Acute toxicity of some heavy metals to Lates calcarifer fry with a note on its histopathological manifestations / K.K. Krishnani, I.S. Azad, M. Kailasam et al. // J .Environ Sci Health A Tox Hazard Subst Environ Eng. - 2003. -V. 38. -№ 4. - P. 645-655.

253. Kunwar, P.S., Tudorache C., Eyckmans M. et al. Influence of food ration, copper exposure and exercise on the energy metabolism of common carp (Cyprinus carpio) / P.S. Kunwar, C. Tudorache, M. Eyckmans et al // Comp. Biochem. Physiol. C Toxicol Pharmacol. - 2009. - V.149. - № 1. - P. 113-119.

254. Kuperman, B.I. Ultrastructure of the intestinal epithelium in fishes with defferent type of feeding / B.I. Kuperman, V.V. Kuz'mina // J. Fish Biol. - 1994. -V. 44. - P. 181-193.

255. Kuz'mina, V.V. Classical and Modern conceptions of fish digestion. In: Feeding and Digestive Functions in Fishes. / V.V. Kuz'mina // (Eds. J.E.P. Cyrino, D. Bureau, B.G. Kapoor). Ch. 4. Enfield, NH etc.: Science Publishers. - 2008. - P. 85-154.

256. Kuz'mina, V.V. The influence of zinc and copper on the latency period for feeding and the food uptake in common carp, Cyprinus carpio L. / V.V. Kuz'mina // Aquat. Toxicol., - 2011, V. -1-2 - P. 73-78.

257. Laberge, F. Neurobiology of fish olfaction: a review / F. Laberge, T.J. Hara // Brain Res. Rev. - 2001. - V. 36. - P. 46-59.

258. Laing, L.V. Bisphenol A causes reproductive toxicity, decreases dnmt1 transcription, and reduces global DNA methylation in breeding zebrafish (Danio rerio) / L.V. Laing, J. Viana, E.L. Dempster et al. // Epigenetics. - 2016. - V. 11. - No. 7. - P. 526-538.

259. Lakhani, L. How to reduce impact of pesticides in aquatic environment / L. Lakhani // International Journal of Research - Granthaalayah Social Issues and Environmental Problems. ISSN- 2350-0530(O) ISSN- 2394-3629(P) - 2015. -V.3. - P. 1-5.

260. Lazo J.P., Holt G.J., Arnold C.R. Ontogeny of pancreatic enzymes in larval red drum Sciaenops ocellatus / J.P. Lazo, G.J. Holt, C.R. Arnold //Aquaculture Nutr. - 2000. - V. 6. - P. 183-192.

261. Lazo, J.P. Characterization of digestive enzymes during larval development of red drum (Sciaenops ocellatus) / J.P. Lazo, R. Mendoza, G. Holt et al. // Aquaculture. - 2007. - V. 265. - P. 194-205.

262. Lazzari, M., Differential response of olfactory sensory neuron populations to copper ion exposure in zebrafish / M. Lazzari, S. Bettini , L. Milani et al. // Aquat. Toxicol. - 2017. - V. 183. - P. 54-62.

263. Le Croizier, G. Significance of metallothioneins in differential cadmium accumulation kinetics between two marine fish species / G. Le Croizier, C. Lacroix , S. Artigaud et al. // Environ Pollut - 2018.- V. 236. - P. 462-476.

264. Lewis, S. Proposed Environmental Quality Standards for Phenol in Water / S. Lewis, M. Grimwood, A. Comber Wroath et .al. - Environment Agency Rio House Waterside Drive Aztec West Almondsbury Bristol BS32 4UD, 1995. -100 p.

265. Li, F. Hydroxyl radical generation and oxidative stress in Carassius auratus liver as affected by 2,4,6-trichlorophenol / F. Li , L. Ji, Y. Luo et al. // Chemosphere. - 2007. - V. 67. - № 1. - P. 13-19.

266. Li, H. 2,4-dichlorophenol induces apoptosis in primary hepatocytes of grass carp (Ctenopharyngodon idella) through mitochondrial pathway / H. Li., X. Zhang , Q. Qiu et al . //Aquat Toxicol. - 2013. - V. 140-141. - P. 117-122.

267. Li, T. Comparative analysis of the intestinal bacterial communities in different species of carp by pyrosequencing / T. Li, M. Long, F.J. Gatesoupe et al. // Microb Ecol. - 2015. - V. 69. - № 1. - P. 25-36.

268. Li, X. Gut microbiota contributes to the growth of fast-growing transgenic common carp (Cyprinus carpio L.) / X. Li, Q.Yan, S. Xie et al. // LoS One. -2013. - V.8. - № 5. - doi.org/10.1371/journal.pone.0064577.

269. Limaye, A. Modulation of signal transduction pathways in lymphocytes due to sub-lethaltoxicity of chlorinated phenol / A. Limaye, R. Kashyap, A. Kapley et al. // Toxicol. Letters. - 2008. - V. 179. - P. 23-28.

270. Lopes, F.M. Effect of glyphosate on the sperm quality of zebrafish Danio rerio / F.M. Lopes, A.S. Varela Junior, C.D. Corcini et al. // Aquat. Toxicol. - 2014. -V. 55. - P. 322-326.

271. López-Romero, F. Asymmetric patterns in the cranial skeletonof zebrafish (Danio rerio) exposed to sodium pentachlorophenate at different embryonic developmental stages / F. López-Romero, G. Zúñiga, F. Martínez-Jerónimo // Ecotoxicol. Environ. Safety. - 2012. - V.84. - P. 25-31.

272. Low, J. Sublethal effects of cadmium on auditory structure and function in fathead minnows (Pimephales promelas) / J. Low, D.M. Higgs // Fish Physiol Biochem. -2015. - V. 41. - № 2. - P. 357-369.

273. Lubzens, E. Oogenesis in teleosts: how eggs are formed / E. Lubzens, G. Young, J.Bobe et al. // Gen. Compar. Endocrin. - 2010. - V. 165. - № 3. - P. 367-389.

274. Ludgate, B.G. Responses of fish communities to sustained removals of perch (Perca fluviatilis) / B.G. Ludgate, G.P. Closs // Science for Conservation - 2003. -V. 210. - 38 p.

275. Luo, Y. Free radical generation and lipid peroxidation induced by 2,4-dichlorophenol in liver of Carassius auratus / Y. Luo, H.H. Shi, X.R. Wang et al. // Huan Jing Ke Xue. - 2005. - V. 26. - №.3. - P. 29-32.

276. Lush, M.E. Sensory hair cell regeneration in the zebrafish lateral line / M.E. Lush, T. Piotrowski // Dev Dyn. -2014. - V. 243. - № 10. - P. 1187-1202.

277. Lushchak, O.V. Low toxic herbicide Roundup induces mild oxidative stress in goldfish tissues / O.V. Lushchak , O.I. Kubrak , J.M. Storey et al. // Chemosphere. - 2009. - V. 76. - № 7. - P. 932-937.

278. Ma, H., Cahub C., Zambonino J. et al. Activities of selected digestive enzymes during larval development of large yellow croaker (Pseudosciaena crocea) / H. Ma, C. Cahub, J. Zambonino et al // Aquaculture - 2005. - V. 245. - P. 239248.

279. Ma, J. Immunological and histopathological responses of the kidney of common carp (Cyprinus carpio L.) sublethally exposed to glyphosate / J. Ma, Y. Bu, X. Li. // Environ. Toxicol. Pharmacol. - 2015. - V. 39. - P. 1-8.

280. Ma, Y. Disruption of endocrine function in in vitro H295R cell-based and in in vivo assay inzebrafish by 2,4-dichlorophenol / Y. Ma, J. Han, Y.Guo et al. // Aquat. Toxicol. - 2011. - V. 106-107. - P.173-181.

281. Mai, D. Ibrahem Experimental exposure of African catfish Clarias Gariepinus (Burchell, 1822) to phenol: Clinical evaluation, tissue alterations and residue assessment / D.Mai // J. Adv. Res. - 2012. - V. 3. - P. 177-183.

282. Manetta, G.I. Variability in the trophic position of larval fishes in the upper Paraná floodplain based on 515N / G.I Manetta, A. Bialetzki, L.A. Martinelli et al. // An Acad. Bras. Cienc. - 2011. - V. 83 - №2. - P. 567-574.

283. Mansilla-Rivera, I. Metal levels in fish captured in Puerto Rico and estimation of risk from fish consumption / I. Mansilla-Rivera, C.J. Rodríguez-Sierra // Arch Environ Contam Toxicol. - 2011. -V.60. - № 1. - P. 132-144.

284. Maradonna, F. A developmental hepatotoxicity study of dietary bisphenol A in Sparus aurata juveniles/ F. Maradonna, V. Nozzi, L. Dalla Valle et al // Comp Biochem Physiol C Toxicol Pharmacol. - 2014. - V. 166. - P. 1-13.

285. McKim, J. M., Kolanczyk R.C., Lien Gregory J. et al. Dynamics of renal excretion of phenol and major metabolites in the rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) / J. McKim, R.C. Kolanczyk, G. J. Lien //Aquatic Toxicology - 1999. - V. 45. - P. 265-277.

286. McNeely, R., N., Neimanis V.P., Dwyer L. Phenoliccompounds. In: Water quality sourcebook: A guide to water quality parameters / R.N. McNeely, V.P. Neimanis, L. Dwyer. - Environment Canada, Inland Waters Directorate, Water Quality Branch, Ottawa, 1979. - 89 p.

287. McNeil, P.L. Effects of metal nanoparticles on the lateral line system and behaviour in early life stages of zebrafish (Danio rerio) / P.L. McNeil, D Boyle, T.B. Henry .et al. // Aquat Toxicol. - 2014. - V.152. - P. 318-323.

288. Michalowicz, J. Phenols - Sources and Toxicity / J. Michalowicz, W. Duda // Polish J. Environ. Stud. - 2007. - V. 16. - № 3. - P. 347-362.

289. Mieiro, C.L. Mercury distribution in key tissues of fish (Liza aurata) inhabiting a contaminated estuary-implications for human and ecosystem health risk assessment / C.L. Mieiro, M. Pacheco, M.E. Pereira et al. // J. Environ Monit. - 2009. - V. 11. - № 5. - P. 1004-1012.

290. Mishra, A. Hematological changes in the Indian Murrel (Channa punctatus Bloch) in response to phenolic industrial wastes of the Bhilai Steel plant (Chhattisgarh, India) / A. Mishra, A.N. Poddar // J. Res. Chem. Environ. - 2011. -V. 1. -№2. - P. 83-91.

291. Modesto, K.A. Roundup causes oxidative stress in liver and inhibits acetylcholinesterase in muscle and brain of the fish Prochilodus lineatus / K.A. Modesto, C.B. Martinez // Chemosphere. - 2010. - V. 78. - № 3. - P. 294299.

292. Monfared, A.L. Histomorphometric and biochemical studies on the liver of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) after exposure to sublethal concentrations of

phenol / A.L Monfared, A.P. Salati // Toxicol Ind Health. - 2013. - V. 29. - №9. -P. 856-861.

293. Moreno, N.C. Genotoxic effects of the herbicide Roundup Transorb and its active ingredient glyphosate on the fish Prochilodus lineatus / N.C. Moreno, S.H. Sofia, C.B. Martinez // Environ Toxicol. Pharmacol. - 2014. - V.37. - № 1. -P. 448-454.

294. Morina, A. Common barbel (Barbus barbus) as a bioindicator of surface river sediment pollution with Cu and Zn in three rivers of the Danube River Basin in Serbia /A. Morina, F. Morina , V. Djikanovic et al. // Environ Sci. Pollut. Res. Int.

- 2016. - V. 23. - № 7. - P. 6723-6734.

295. Mukherjee, D. Impairment ofsteroidogenesi and reproduction in sexually mature. Cyprinus carpio byphenol and sulfide under laboratory condition / D. Mukherjee, D. Guha, V. Kumar et al. // Aquatic Toxicol. - 1991. - V.21. - P. 29-40.

296. Neskovic, N.K. Biochemical and histopathological effects of glyphosate on carp, Cyprinus carpio / N.K. Neskovic, V. Poleksec, I. Elozovic et al. // Bull. Environ. Contam. Toxicol. - 1996. - V. 56. - P. 295-302.

297. Neumeyer, C. Tetrachromatic color vision in goldfish: evidence from color mixture experiments. / C. Neumeyer // J. Comp Physiol A. - 1992. - V.171. - P. 639-649.

298. New, J.G. Strike feeding behavior in Esox masquinongy: contributions of sensory systems / J.G. New, L. Alborg Fewkes, A.N. Khan // J. Exp. Biol. - 2001.

- V.204. - №6. - P.1207-1221.

299. Ni, J. Factors influencing the grass carp gut microbiome and its effect on metabolism / J. Ni, Q. Yan, Y. Yu et al. // FEMS Microbiol. Ecol. - 2014. - V. 87.

- P. 704 -714.

300. Niwelinski, J. Enzyme histochemistry and microstructure of the human placenta as indicators of environmental pollution / J. Niwelinski, L. Zamorska, F. Kaczarski et al. // Archiwumochrony Srodowiska - 1990. -V.3. - P. 53-59.

301. Niyogi, S. Interactive effects of waterborne metals in binary mixtures on short-term gill-metal binding and ion uptake in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) / S. Niyogi, S.R. Nadella, C.M Wood // Aquat Toxicol. - 2015. - V. 165. -P. 109-119.

302. Noaillac-Depeyre, J. Fat absorption by the enterocytes of the carp (Cyprinus carpio L.) / J. Noaillac-Depeyre, N. Gas. // Cell. Tissue Res. -1974. -V. 155. - № 3. - P. 353-365.

303. Ogundiran, M. A. Adewoye Pathologic lesions in the gills of Clarias gariepinus exposed to sublethal concentrations of soap and detergent effluents / M. A. Ogundiran, O.O. Fawole, S.O. Adewoye // J. Cell and Animal Biology - 2009.

- V. 3. - № 5. - P. 78-82.

304. Olaniran, A.O., Igbinosa E.O. Chlorophenols and other related derivatives of environmental concern: properties, distribution and microbial degradation processes / A.O. Olaniran, E.O. Igbinosa // Chemosphere. - 2011. - V.83. - №10.

- P. 1297-1306.

305. Olden, T. Differentiation of the zebrafish enteric nervous system and intestinal smooth muscle / T. Olden , T. Akhtar, S.A. Beckman et. al. // Genesis. -2008. -V. 46. - № 9. - P. 484-498.

306. Olivari, F.A. Acute copper exposure induces oxidative stress and cVell death in lateral line hair cells of zebrafish larvae / F.A. Olivari, P.P. Hernández, M.L. Allende // Brain Res. -2008. - V. 1244. - P. 1-12.

307. Olsson, C. Development of enteric and vagal innervation of the zebrafish (Danio rerio) gut. / C. Olsson, A. Holmberg, S. Holmgren // J. Comp Neurol. -2008. - V. 508. -№ 5. - P. 756-770.

308. Ota, T. Characterization of V1R receptor (ora) genes in Lake Victoria cichlids / T. Ota, M. Nikaido, H. Suzuki et al. // Gene -2012. - V. 499. - P. 273-279.

309. Ott, M. Mitochondria, oxidative stress and cell death / M. Ott, V. Gogadze, S. Orrenius et al. // Apoptosis. -2007. - V. 12. - P. 913-922.

310. Owens, K.D. Modifications of the topical Japanese medaka (Oryzias latipes) embryo larval assay for assessing developmental toxicity of pentachlorophenol and p, p'-dichlorodiphenyltrichloroethane / K.D. Owens, K.N Baer // Ecotoxicol. Environ. Safety. - 2000. - V.47. - P. 87-95.

311. Pathiratne, A., Chandrasekera L.W., Pathiratne K.A. Use of biomarkers in Nile tilapia (Oreochromis niloticus) to assess the impacts of pollution in Bolgoda Lake, an urban water body in Sri Lanka / A. Pathiratne, L.W. Chandrasekera, K.A. Pathiratne // Environ Monit Assess. - 2009. -V. 156. - P. 361-375.

312. Pavlov, D.S., Kasumyan, A.O. Feeding diversity in fishes: trophic classification of fish // J. Ichthyol. - 2002. -V.42. - № 2. - P. 137-159.

313. Peixoto, F. Comparative effects of the Roundup and glyphosate on mitochondrial oxidative phosphorylation // Chemosphere. -2005. - V. 61. - № 8. -P. 1115-1122.

314. Pepelko, W. Gaylor D., Mukerjee D. Comparative toxic potency ranking of chlorophenols / W. Pepelko, D. Gaylor, D. Mukerjee // Toxicol. Indust. Health. -2005. - V. 21. - P. 93-111.

315. Pignatelli, V. Double cones are used for colour discri-mination in the reef fish, Rhinecanthus aculeatus / Pignatelli V., Champ C., Marshall J. et al. // Biol. Lett. -2010. - V.6. - № 4. - P. 537-539.

316. Popper, A.N. Rethinking sound detection by fishes /A.N. Popper A.N., R.R. Fay // Hear Res. - 2011. - V. 273. - P.25-36.

317. Popper, A.N. The auditory periphery in fishes. In: Fay, R.R., Popper, A.N. (Eds.), Comparative Hearing: Fish and Amphibians / A.N. Popper, R.R. Fay // Springer, New York. -1999. - P. 43-100.

318. Popper, A. N. Structure-function relationships in fish otolith organs / A.N.Popper, Z. Lu // Fish Res. - 2000. - V. 46. - P. 15-25.

319. Preziosa, E. Effect of nutrient restriction and re-feeding on calpain family genes in skeletal muscle of channel catfish (Ictalurus punctatus) / E. Preziosa, S. Liu, G. Terova et al. // PLoS One. - 2013. - V. 19- № 3. e59404. doi: 10.1371.

320. Quirós Orlich, J.R. The proteolytic digestive activity and growth during ontogeny of Parachromis dovii larvae (Pisces: Cichlidae) using two feeding protocols. / J.R. Quirós Orlich, S. Valverde Chavarría, J.B. Ulloa Rojas // Fish Physiol Biochem. - 2014. - V.40. - №4. - P. 1253-1261.

321. Ramírez-Duarte, W.F. Acute toxicity and histopathological alterations of Roundup® herbicide on "cachama blanca" (Piaractus brachypomus) / W.F. Ramírez-Duarte, I.S.Rondón-Barragán, P.R. Eslava-Mocha // Pesq. Vet. Bras. -2008. - V .28. - № 11. - P. 547-554.

322. Ramsden, R. Dual NRF2 paralogs in Coho salmon and their antioxidant response element targets /R. Ramsden, E.P. Gallagher // Redox Biol. - 2016. - V. 9. - P. 114-123.

323. Rangsin, W. Digestive enzyme activities during larval development of Striped catfish, Pangasianodon hypophthalmus (Sauvage, 1878) / W. Rangsin, N. Areechon, R. Yoonpundh // Kasetsart J. (Nat. Sci.) - 2012. - V. 46. - P. 217228.

324. Ray, A.K. Enzyme-producing bacteria isolated from fish gut: a review / A.K. Ray, K. Ghosh, E. Ringo // Aquacult. Nutr. 2012a. - V. 18. - № 5. - P. 465492.

325. Repossi, A. Bisphenol A in Edible Part of Seafood / A. Repossi , F. Farabegoli, T. Gazzotti et al. // Ital. J. Food Saf. - 2016. - V.5 - №2. doi: 10.4081/ijfs.2016.5666.

326. Rey Vázquez, G. Exposure to waterborne 4-tert-octylphenol induces vitellogenin synthesis and disrupts testis morphology in the South American

freshwater fish Cichlasoma dimerus (Teleostei, Perciformes) / G. Rey Vázquez,

F.J. Meijide, R.H. Da Cuña et al. // Comp. Biochem Physiol C Toxicol Pharmacol. - 2009. - V. 150. - № 2. - P. 298-306.

327. Rich, A. A new high-content model system for studies of gastrointestinal transit: the zebrafish /A.A. Rich // Neurogastroenterol Motil. - 2009. - V. 21. - № 3. - P. 225-228.

328. Roche, H. In vivo effects of phenolic compounds on blood parameters of a marine fish (Dicentrarchus labrax) / H. Roche, G. Boge // Comp. Biochem. Physiol. - 2000. - V. 125 C. - P. 345-353.

329. Rodieck, R.W. The First Steps in Seeing G. / R.W.Rodieck // Sinauer Associates Inc., 1998. - P. 562.

330. Roeselers, G. Evidence for a core gut microbiota in the zebrafish /

G. Roeselers, E.K. Mittge , W.Z. Stephens et. al. // I SME J. - 2011. - V. 5. - № 10. - P. 1595-1608.

331. Roszell, L.E. Inhibition of phagocytosis and superoxideproduction by pentachlorophenol in two leukocyte subpopulations from Fundulusheteroclitus. / L.E. Roszell, R.S. Anderson // Mar. Environ. Res. - 1994. - V.38. - P. 195-206.

332. Rotchell, J.M. Hepatic metallothionein as abiomarker for metal contamination: age effects and seasonal variation in European flounders (Pleuronectes flesus) from the Severn Estuary and Bristol Channel / J.M. Rotchell, K.R. Clarke, L.C. Newton // Mar Environ Res. - 2001. - V. 52. - P. 151-171.

333. Rzymski, P. The effect of glyphosate-based herbicide on aquatic organisms -a case study / P. Rzymski, P. Klimaszyk, T. Kubacki // Limnol. Rev. - 2013. - V. 13. - № 4. - P. 215-220.

334. Salbego, J. Glyphosate on digestive enzymes activity in piava (Leporinus obtusidens) / J. Salbego, A. Pretto, V.M.M. da Silva // Ciencia Rural. - 2014. - V. 44. № 9. - P. 1603-1607.

335. Sandheinrich, M.B. Sublethal copper effects on bluegill, Lepomis macrochirus, foraging behavior / M.B. Sandheinrich, G.J. Atchison // Can. J. Fish. Aquat. Sci. - 1989. - V. 46. - P. 1977-1985.

336. Sandrini, J.Z. Effects of glyphosate on cholinesterase activity of the mussel Perna perna and the fish Danio rerio and Jenynsia multidentata: in vitro studies / J.Z. Sandrini, F.M. Rola, H.F. Lopes, et al. // Aquat. Toxicol. -2013. - V.130 - 131. - P. 171-173.

337. Sannadurgappa, D. Effect of phenol on oxygen consumption and bioaccumulation in different tissues of freshwater fish Cyprinus carpio / D. Sannadurgappa , R.H. Aladakatti // J. Basic Clin. Physiol. Pharmacol. - 2010. -V. 21. - № 1. - P. 1-14.

338. Sannadurgappa, D. Toxicity, bioaccumulation and metabolism of phenol in the freshwater fish Oreochromis mossambicus. / D. Sannadurgappa, N.H. Ravindranath, R.H. Aladakatti // J. Basic Clin Physiol Pharmacol. - 2007. -V. 18. - №.1. - P. 65-77.

339. Schulz-Mirbach, T. Sensory epithelia of the fish inner ear in 3D: studied with high-resolution contrast enhancedmicroCT / T. Schulz-Mirbach, M. Heß, B.D. Metscher // Front Zool. - 2013. - V.10. 63-. №1. -P.1-10.

340. Schwalbe, M.A., Sensory basis for detection of benthic prey in two Lake Malawi cichlids / M.A. Schwalbe, J.F. Webb // Zoology (Jena) 2014. - V. 117. -№ 2. - P. 112-121.

341. Scott, G.R. The effects of environmental pollutants on complex fish behaviour: integrating behavioural and physiological indicators of toxicity / G.R. Scott, K.A. Sloman // Aquat Toxicol. - 2004. - V. 68. - P. 369-392.

342. Shafiuddin Ahmed, A.S. Bioaccumulation of heavy metals in commercially important fish species from the tropical river estuary suggests higher potential child health risk than adults / A. S. Shafiuddin Ahmed , Sharmin Sultana , Ahasan Habib //- 2019. - P. 1-47. - doi.org/10.1101/681478.

343. Scudiero, R. Retinoblastoma binding protein 6 and crystallin lambda 1 are cadmium-responsive genes in zebrafish embryos and adults retinae / R.Scudiero, M.G. Esposito , P.Simoniello et al. // C R Biol. - 2017. - V. 340. - №4. - P. 197203.

344. Sebert, P. Hydrostatic pressureinduces a state resembling histotoxic hypoxia in Anguilla Anguilla / P. Sebert, B. Simon, L. Barthelemy // Comp Biochem Physiol. - 1993. - V.105 B. - P. 255-258.

345. Semova, I. Microbiota regulate intestinal absorption and metabolism of fatty acids in the zebrafish / I.Semova, J.D. Carten, J.Stombaugh et al. // Cell Host Microbe. - 2012. - V. 12. - № 3. - P. 277-288.

346. Sihtmae, M. Ecotoxicological effects of different glyphosate formulation / M. Sihtmae, I. Blinova , K. Kunnis-Beres et al. // Appl. Soil Ecol. - 2013. - V. 72. - P. 215-224.

347. Simonato, J.D. Biomarkers of waterborne copper exposure in the Neotropical fish Prochilodus lineatus / J.D. Simonato, M. Mela, Doria H.B. et al. // Aquat Toxicol. 2016. V. 170. P. 31-41.

348. Smeets, J.M. Estrogenic potencies of several environmental pollutants, as determined by vitellogenin induction in a carp hepatocyte assay / J.M. Smeets, I.van Holsteijn, J.P. Giesy et al. // Toxicol Sci. - 1999. - V. 50. - №. 2. - P. 206213.

349. Smith, E.A. The biological activity of glyphosate to plants and animals: A literature review / E.A. Smith, F.W. Oehme // Vet. Hum. Toxicology. - 1992. V. 34. N 6. P. 531-543.

350. Sonnack, L. Effects of metal exposure on motor neuron development, neuromasts and the escape response of zebrafish embryos / L. Sonnack, S. Kampe, E. Muth-Köhne et al. // Neurotoxicol. Teratol. - 2015 - V. 50. - P. 33-42.

351. Sorensen, P.W. Brief review of fish pheromones and discussion of their possible uses in the control of non-indigenous teleost fishes / P. W. Sorensen, N. E. Stacey // N. Z. J. Mar. Freshw. Res. - 2001. - V.38. - P. 399-417.

V

352. Strbac, S. Bioaccumulation of Heavy Metals and Microelements in Silver Bream (Brama brama L.), Northern Pike (Esox lucius L.), Sterlet (Acipenser ruthenus L.), and Common Carp (Cyprinus carpio L.) From Tisza River, Serbia /

V

S. Strbac, M. Kasanin-Grubin, B. Jovancicevic et al. // J. Toxicol Environ Health A. - 2015. - V. 78. - № 11. - P. 663-665.

353. Sviridov, A.V. Microbial degradation of glyphosate herbicides (review) / A.V. Sviridov, T.V. Shushkova, I.T. Ermakova et al. // Appl. Biochem. Microbiol. -2015. - V. 51. - № 2. - P. 188-195.

354. Szarek, J. Effect of the herbicide Raundup TM on ultrastructural pattern of hepatocytes in carp (Cyprinus carpio) / J. Szarek, A.K. Siwicki, A. Andrzejewska et al. // Mar. Environ. Res. - 2000. - V. 50. - P. 263-266.

355. Tang, T. Thyroid Disruption in Zebrafish Larvae by Short-Term Exposure to Bisphenol A, F / T.Tang, Y.Yang , Y. Chen et al. // Int. J. Environ. Res. Public Health. - 2015. - V.12. - № 10. - P. 13069-13084.

356. Tenorio-Daussat, C.L. Evaluation and standardization of different purification procedures for fish bile and liver metallothionein quantification spectrophotometry and SDS-PAGE analyses. / C.L.Tenorio-Daussat, M.C.M Resende, R.L. Ziolli et al. // Talanta. 2014. - V. 120. - P.491-497.

357. Tierney, K.B. Olfactory toxicity in fishes / K.B. Tierney , D. H. Baldwin, T.J. Hara et al. // Aquat Toxicol. - 2010. - V. 96. - № 1. - P. 2-26.

358. Tisler, T. Hazard identification and risk characterization of bisphenols A, F and AF to aquatic organisms / T. Tisler, A. Krel, U. Gerzelj et al. // Environ Pollut. - 2016. - V. 212. - P. 472 - 479.

359. Tofoli, R.M. Hahn N.S., Alves G.H.Z., Novakowski G.C. Uso do alimento por duas especies simpätricas de Moenkhausia (Characiformes, Characidae) em um

riacho da Regiâo Centro-Oeste do Brasil. / R.M. Tófoli, N.S. Hahn, G.H.Z Alves.et al. // Iheringia Série Zoologia. - 2010. - V. 100. - № 3. - P. 201-206.

360. Tokumoto, T., Ishikawa K., Furusawa T. et al. Sonophotocatalysis of endocrine-disrupting chemicals / T. Tokumoto, K. Ishikawa, T. Furusawa et al. // Mar. Environ. Res. -2008. - V.66. - P. 372-377.

361. Toledo-Solís, F.J. Changes on digestive enzymes during initial ontogeny in the three-spot cichlid Cichlasoma trimaculatum / F.J. Toledo-Solís, A. Uscanga-Martínez , R. Guerrero-Zárate et al. // Fish Physiol. Biochem. -2014. - V. 41. - № 1. - P. 267-279.