Вертикальная передача бакуловирусов и закономерности проявления полиэдрозов у лесных насекомых-филлофагов тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 06.01.11, доктор биологических наук Ильиных, Александр Васильевич

• Ильиных, Александр Васильевич
• доктор биологических наук
• 2007

Оглавление диссертации доктор биологических наук Ильиных, Александр Васильевич

СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ

ВВЕДЕНИЕ.

ГЛАВА 1 ОБЪЕКТЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЙ.

1.1 Объекты исследований.

1.2 Культивирование насекомых на искусственной питательной среде.

1.3 Культивирование насекомых на естественном корме.

1.4 Инфицирование насекомых вирусом и активация латентной вирусной инфекции.

1.5 Диагностика ядерного полиэдроза.

1.6 Выделение и очистка вируса.

1.7 Идентификация вирусных изолятов.

1.8 Идентификация скрытой вирусной инфекции у насекомых.

1.9 Исследование вертикальной передачи бакуловируса.

1.10 Мониторинг непарного шелкопряда и шелкопряда-монашенки в очагах массового размножения.

1.11 Применение вируса ядерного полиэдроза для ограничения численности непарного шелкопряда

1.12 Ограничение численности шелкопряда-монашенки.

1.13 Планирование экспериментов и статистическая обработка данных

РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЙ.

ГЛАВА 2 СОВЕРШЕНСТВОВАНИЕ МЕТОДОВ ЛАБОРАТОРНОГО

КУЛЬТИВИРОВАНИЯ НЕПАРНОГО ШЕЛКОПРЯДА

2.1 Оптимизация состава искусственной питательной среды

2.2 Разработка методики культивирования непарного шелкопряда.

2.3 Получение лабораторных культур непарного шелкопряда.

ГЛАВА 3 ЛАТЕНТНОСТЬ БАКУЛОВИРУСОВ.

3.1 Преодоление насекомыми вирусной инфекции. Диагностика скрытого вируса.

3.2 Формирование латентности и локализация скрытого вируса.

3.3 Вертикальная передача вируса.

3.4 Скрытый вирус в популяциях насекомых.

ГЛАВА 4 ИНДУКЦИЯ ВИРУСНОЙ РЕПЛИКАЦИИ У НЕПАРНОГО

ШЕЛКОПРЯДА И ШЕЛКОПРЯДА-МОНАШЕНКИ.

4.1 Возрастная чувствительность гусениц непарного шелкопряда к активации бакуловирусной инфекции.

4.2 Индукция вирусной репликации в различные фазы градации численности непарного шелкопряда.

4.3 Индукция вирусной репликации в различные периоды онтогенеза шелкопряда-монашенки.

4.4 Возможность применения активации латентной вирусной инфекции в диагностике фаз градации численности шелкопряда-монашенки

ГЛАВА 5 ОСОБЕННОСТИ ПРОЯВЛЕНИЯ ПОЛИЭДРОЗА В

ОЧАГАХ МАССОВОГО РАЗМНОЖЕНИЯ НЕПАРНОГО ШЕЛКОПРЯДА В ЗАПАДНОЙ СИБИРИ.

5.1 Некоторые аспекты биологии и экологии непарного шелкопряда.

5.2 Особенности биологии и экологии непарного шелкопряда в Западной Сибири.

5.3 Роль полиэдроза в популяционной динамике непарного шелкопряда.

5.4 Персистенция вируса непарного шелкопряда в лесной экосистеме.

5.5 Идентификация бакуловирусных изолятов, выделенных в различные фазы градации численности непарного шелкопряда

5.6 Анализ причин затухания вспышки массового размножения непарного шелкопряда.

ГЛАВА 6 ВЛИЯНИЕ ПОЛИЭДРОЗА НА ПОПУЛЯЦИОННУЮ

ДИНАМИКУ ШЕЛКОПРЯДА-МОНАШЕНКИ.

6.1 Распространение, вредоносность и биология шелкопряда-монашенки

6.2 Особенности биологии и экологии шелкопряда-монашенки, способствующие проявлению полиэдроза в очагах массового размножения.

6.3 Роль полиэдроза в затухании вспышек массового размножения шелкопряда-монашенки.

6.4 Идентификация бакуловирусных изолятов, выделенных в различные фазы градации численности шелкопряда-монашенки

ГЛАВА 7 ОПТИМИЗАЦИЯ КУЛЬТИВИРОВАНИЯ ВИРУСОВ ШЕЛКОПРЯДА-МОНАШЕНКИ И НЕПАРНОГО ШЕЛКОПРЯДА И ИХ ПРИМЕНЕНИЕ В КАЧЕСТВЕ

АГЕНТОВ БИОЛОГИЧЕСКОГО КОНТРОЛЯ ЧИСЛЕННОСТИ НАСЕКОМЫХ-ХОЗЯЕВ.

7.1 Определение возрастной чувствительности гусениц шелкопряда-монашенки к вирусу.

7.2 Оценка способов культивирования вируса шелкопряда-монашенки.

7.3 Определение возрастной чувствительности гусениц непарного шелкопряда к вирусу и условий культивирования вирусной биомассы

7.4 Ограничение численности непарного шелкопряда с помощью вирусологического метода.

7.5 Ограничение численности шелкопряда-монашенки.

СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ

В Г - вирус гранулеза

ВЦП - вирус цитоплазматического полиэдроза

В ЯП - вирус ядерного полиэдроза

ДНК - дезоксирибонуклеиновая кислота

ИПС - искусственная питательная среда

J1B - летальное время

ЛД - летальная доза

J1K - летальная концентрация мРНК - матричная рибонуклеиновая кислота

ОТ-ПЦР - обратная транскрипция - полимеразная цепная реакция

РНК - рибонуклеиновая кислота

ЦЗЛ - центр защиты леса

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Вертикальная передача бакуловирусов и закономерности проявления полиэдрозов у лесных насекомых-филлофагов»

Актуальность проблемы. Леса России составляют около 22% мировой площади лесов, поэтому им принадлежит важная планетарная роль в процессах фотосинтеза, депонирования углерода, круговорота веществ в природе и многих других функциях (Колтунов, 2006). Одним из важнейших резервов сохранения лесного фонда и продуктивности лесного хозяйства является защита насаждений от насекомых. В России от различных негативных факторов (в основном пожаров) ежегодно погибает около 300 тыс. га лесов, на долю насекомых в этом процессе приходится в среднем 36 тыс. га, или более 10% (Матусевич, Гниненко, 2000). В отдельные годы влияние этого фактора увеличивается до 30-50%, то есть ущерб от деятельности насекомых становится сопоставим с лесными пожарами (Матусевич, Гниненко, 2000). Наиболее вредоносная роль принадлежит сибирскому шелкопряду Dendrolimus superans sibiricus Tschetv.; непарного шелкопряда Lymantria dispar L. и шелкопряда-монашенку Lymantria monacha L. также относят к группе наиболее опасных лесных фитофагов. Эти насекомые периодически дают крупномасштабные вспышки массового размножения в различных частях своего ареала, иногда на площадях, исчисляемых в миллионах гектаров (Marshall, 1981; Harris, Lavers, 1985). На территории России наибольшие по площади очаги среди дендрофильных насекомых образует непарный шелкопряд. Так, за последние 20 лет площадь его очагов в среднем ежегодно составляла 726 тыс. га (Матусевич, Гниненко, 2000), а шелкопряда-монашенки за последние 10 лет - 36,4 тыс. га (Сергеенко, 1999).

Комплексный подход к защите растений предполагает максимальное использование разнообразных естественных регуляторов, а при необходимости защитных мероприятий - применение искусственных факторов, сдерживающих численность насекомых на экономически неощутимом уровне при возможно меньшем нарушении равновесия среды. Такой подход представляется наиболее целесообразным и к настоящему времени он получил широкое признание (Знаменский, 1973; Рукавишников, 1973; 1979; Найт, Тетчер, 1986; Долгин, 1989; Кобзарь, 1991, 2004; Штерншис, 1995; Белицкая, 2004; Apple, Smith, 1976; Pimentel et al., 1984; Reardon, 1988; Filippov, 1989; Howarth, 1991; Cameron, 1991). Основу интегрированного управления численностью насекомых составляет детальное изучение биологии, динамики численности и вредоносности, а также выявление естественных регуляторов и их роли в ограничении численности насекомых.

Краткий анализ современного состояния проблемы.

В популяциях насекомых, дающих вспышки массового размножения, распространены болезни, вызываемые энтомопатогенными вирусами, которые имеют важное значение в регуляции численности своих хозяев (Воронцов, 1963; Воробьева, 1976; Гулий, Рыбина, 1988; Bird, 1955; Urguhart, 1966; Krieg, 1973; Anderson, May, 1980; Elkinton, 1990; Berriman, 1995; Hoch et al., 2001; Cooper et al., 2003a). Проблема, каким образом поддерживается перманентность вирусной инфекции в популяциях насекомых, и как инициируются массовые бакуловирусные заболевания при естественных эпизоотиях, является предметом длительной дискуссии. Одни исследователи полагают, что вирусы могут длительное время сохраняться в среде обитания насекомых, а эпизоотии возникают на пике численности популяции, когда увеличивается вероятность контактов насекомых с вирусом (Jagues, 1970; Doane, 1976; Crawford, Kalmakoff, 1977; Carruthers et al., 1988; Soikkonen, 1995; Richards et al., 1999). Альтернативная теория построена вокруг идеи, согласно которой в популяциях насекомых присутствует скрытый вирус, который активируется под воздействием различных факторов, вызывая смертность насекомых (Тарасевич, 1975; Steinhays, 1958; Aruga, 1963; Tanada, 1975;

Fuxa et al., 1999; Boots et al., 2003; Cooper et al., 2003b). Полярность точек зрения, вероятно, объясняется практически полным отсутствием работ, позволяющих в прямых экспериментах исследовать вертикальную передачу вирусов у насекомых и идентифицировать эндо- и экзогенную вирусные инфекции. Такое дифференцирование принципиально, поскольку на воздействие скрытого вируса ответ насекомого детерминирован в основном физиологическим статусом последнего и действием факторов, индуцирующих вирусную репликацию. При экзогенном инфицировании помимо физиологического статуса реакция насекомого обусловлена главным образом биологической активностью вируса и множественностью заражения.

Большое значение при изучении динамики численности насекомых уделяется трофическому фактору, поскольку при высокой плотности популяции уменьшается количество корма и изменяется его качество (Рафес, 1981; Haukioya, 1991; Larson et al., 2000 и др.), вызывающие изменение резистентности насекомых к вирусной инфекции (Shapiro et al., 1994; Boots, 2000). Однако и при оценке роли трофического фактора закономерности проявления вирозов во многом не ясны. Так, эпизоотии в популяциях массовых видов лесных фитофагов отмечались и при слабой степени дефолиации насаждений (Тулий, Рыбина, 1988; Ильиных и др., 2005), которая не вызывает существенных изменений биохимического состава корма. С другой стороны, даже при высокой и сплошной степени дефолиации основных кормовых пород непарного шелкопряда в Зауралье и Западной Сибири гибель насекомых от полиэдроза наблюдалась на энзоотическом уровне - спорадически и у незначительной части популяции, не превышающей нескольких процентов (Колтунов, 1993; Колтунов и др., 1998; Ильиных, 2005; Ilyinykh et al., 2004). В свою очередь, в североамериканских и европейских популяциях непарного шелкопряда полиэдроз является одним из ведущих факторов динамики численности, нередко приводящим к массовой гибели насекомых (Вейзер, 1972; Woods, Elkinton, 1987; Dwyer, Elkinton, 1995).

С помощью молекулярно-биологических методов была обнаружена интеграция бакуловирусного генома в клеточный геном насекомого-хозяина у таких видов, как большая вощинная огневка Galleria mellonella L. (Мирюта и др., 1985) и тутовый шелкопряд Bombyx mori L. (Кок и др., 1983; Yamao et al., 1999). Однако для других видов насекомых, включая фитофагов, дающих вспышки массового размножения, способ существования скрытой вирусной инфекции оставался неизвестным.

Первые сведения о проявлении спонтанного полиэдроза у насекомых получены более ста лет назад (Pogwaite, Mazzone, 1986), однако до настоящего времени отсутствовали прямые доказательства, подтверждающие регистрацию скрытой вирусной инфекции у насекомых и ее способность к переходу в острую форму, и все предположения строились по косвенным данным. Имеются отдельные работы по индуцированию скрытой вирусной инфекции у непарного шелкопряда (Luhl, 1974; Штерншис и др., 1977; Чернявская и др., 1979; Lindroth et al., 1991) и шелкопряда-монашенки (Yadava, 1970; Бахвалов и др., 1979), но оставалось невыясненным, насколько латентные вирусные инфекции распространены в популяциях названных насекомых. Малоисследованной оставалась и проблема индуцируемости скрытой вирусной инфекции в различные периоды онтогенеза и в динамике вспышки массового размножения насекомых. В результате практически отсутствуют представления о характере причинно-следственных связей, обуславливающих ту или иную степень сопряжения фитофагов с поражающими их бакуловирусами и, соответственно, закономерности проявления вирозов в популяциях насекомых.

Подробный анализ современного состояния проблемы по различным аспектам вертикальной передачи бакуловирусов и проявлению вирозов у насекомых дан в соответствующих главах.

Цель исследования заключалась в комплексном изучении основных механизмов вертикальной передачи бакуловирусов и формирования заболеваний полиэдрозом у непарного шелкопряда и шелкопряда-монашенки.

Для достижения указанной цели необходимо было решить следующие задачи:

1) Оптимизировать состав ИПС и разработать методику культивирования непарного шелкопряда в лабораторных условиях.

2) Изучить возможность вертикальной передачи бакуловируса в виде латентной инфекции, а также через инфицирование насекомых вирусом в среде обитания.

3) Исследовать индукцию вирусной репликации у непарного шелкопряда и шелкопряда-монашенки в экспериментальных условиях в различные периоды онтогенеза и фазы градации численности.

4) Выявить распространение скрытой вирусной инфекции в очагах массового размножения непарного шелкопряда и шелкопряда-монашенки.

5) Исследовать особенности проявления спонтанного полиэдроза у непарного шелкопряда и шелкопряда-монашенки в очагах массового размножения насекомых в различные фазы градации численности.

Научная новизна работы. Впервые с применением современных диагностических методов установлено, что вертикальная передача бакуловируса у одного и того же вида насекомого может осуществляться как в виде скрытого вируса, так и через внешнее инфицирование насекомых в среде обитания.

Впервые в прямом эксперименте продемонстрировано, что скрытая вирусная инфекция может формироваться у насекомых, выживших после воздействия бакуловируса, и может быть активирована в дочернем поколении.

Впервые показано, что тот или иной уровень скрытого вирусоносительства в популяциях лесных филлофагов поддерживается за счет особей, погибших от полиэдроза в предшествующих генерациях насекомых.

Впервые проведен анализ причинно-следственных связей, обуславливающих различную степень сопряжения насекомых с их бакуловирусами. Показано, что уровень проявления спонтанного полиэдроза в популяциях лесных филлофагов определяется биологической активностью вируса, множественностью заражения, биологическими особенностями и физиологическим состоянием насекомого, особенностями кормовой породы, а также факторами внешней среды.

Практическая значимость работы. Разработана оригинальная ИПС для выращивания гусениц непарного шелкопряда и методика культивирования, исключающая экзогенное инфицирование насекомых вирусом и позволяющая получить ряд генераций непарного шелкопряда в лабораторных условиях.

Показано, что количество погибших насекомых от индуцированного полиэдроза и выход полиэдров на одну особь могут служить характерными точками градационного цикла и наряду с традиционными показателями (масса куколок, плодовитость насекомых) применяться в качестве индикаторов фаз вспышки шелкопряда-монашенки.

Предложен метод получения ВЯП у шелкопряда-монашенки, заключающийся в содержании гусениц из природных популяций на пике численности или в фазу кризиса в условиях 100%-ной влажности воздуха для индукции вирусной репликации. Этот метод позволяет оптимизировать культивирование вирусного материала, поскольку получение вируса не связано с его расходом.

Концептуальные положения, которые выносятся на защиту.

1. Вертикальная передача бакуловируса может осуществляться как за счет передачи скрытого вируса, так и через экзогенное инфицирование насекомых в среде обитания.

2. Латентная вирусная инфекция может формироваться у насекомых, выживших после заражения бакуловирусом, и может быть активирована в дочернем поколении.

3. Уровень скрытого вирусоносительства в популяциях насекомых поддерживается за счет особей, погибших от полиэдроза в предшествующих генерациях.

4. Интенсивность эпизоотии у лесных филлофагов обусловлена главным образом биологическими особенностями насекомых и характером лесорастительных условий, при которых обеспечивается сохранность вируса в экосистеме и высокая вероятность контакта бакуловируса с насекомым-хозяином.

Апробация работы. Материалы диссертации были представлены на I и II Всесоюзных конференциях по промышленному разведению насекомых (Москва, 1986, 1989); на Всесоюзной конференции "Пути совершенствования микробиологической борьбы с вредными насекомыми и болезнями" (Оболенск, 1986); на отраслевом совещании "Биологические и технологические проблемы создания вирусных препаратов для интегрированной защиты растений" (Новосибирск, 1989); на II симпозиуме стран-членов СЭВ по микробным пестицидам (Москва, 1990); на Всероссийском научно-производственном совещании (Краснодар, 1994); на Международном конгрессе по химическим пестицидам (США, Вашингтон, 1994); на XIII Международном конгрессе по защите растений (Голландия, Гаага, 1995); на Всероссийском съезде по защите растений (Санкт-Петербург, 1995); на международном симпозиуме "Биологическая и интегрированная защита леса" (Пушкино, 1998); на XI и XI съездах

Русского Энтомологического Общества (Санкт-Петербург, 1998, 2002); на Международном симпозиуме "Сохранение и защита горных лесов" (Ош, 1999); на международном симпозиуме "Интегрированная защита растений: достижения и проблемы" (Кишинев, 2000); на международном симпозиуме "Молекулярные механизмы генетических процессов и биотехнология" (Москва, Минск, 2001); на международной конференции "Достижения биотехнологии для будущего человечества" (Самарканд, 2001); на научно-практической конференции, посвященной 100-летию профессора Е.В. Талалаева (Иркутск, 2002); на Сибирской зоологической конференции (Новосибирск, 2004); на XXV юбилейном конгрессе ВПС/МОББ (Венгрия, Будапешт, 2005); на II Межрегиональной научной конференции паразитологов Сибири и Дальнего Востока (Новосибирск, 2005), на VII Межрегиональном совещании энтомологов Сибири и Дальнего востока (Новосибирск, 2006).

Публикации. Материалы диссертации изложены в 74 научных работах, из них 22 в рецензируемых журналах.

Структура и объем работы. Диссертация изложена на 282 страницах машинописного текста, включает 45 таблиц и 22 рисунка. Работа состоит из введения, семи глав, заключения, выводов и списка литературы.

Заключение диссертации по теме «Защита растений», Ильиных, Александр Васильевич

ВЫВОДЫ

1. Скрытая вирусная инфекция может формироваться у насекомых, выживших после заражения бакуловирусом, и может быть активирована в дочернем поколении.

2. Показателями уровня латентного вирусоносительства у насекомых являются количество особей-вирусоносителей, выявляемых с помощью метода ОТ-ПЦР, и смертность от индуцированного полиэдроза.

3. Вертикальная передача бакуловируса может осуществляться как в виде скрытого вируса, так и через внешнее инфицирование насекомых в среде обитания.

4. Смертность от индуцированного полиэдроза у непарного шелкопряда и шелкопряда-монашенки в экспериментальных условиях зависит от периода онтогенеза, в котором действовал индуцирующий фактор, и способа воздействия на организм насекомых. Максимальная чувствительность к индукции вирусной репликации отмечена у гусениц III-IV-го возрастов.

5. Смертность от индуцированного полиэдроза у шелкопряда-монашенки из очагов массового размножения на территории Западной Сибири за период развития вспышки возрастает практически в 10 раз.

6. Количество погибших насекомых от индуцированного полиэдроза и выход полиэдров на одну особь могут служить характерными точками градационного цикла и индикаторами фаз вспышки массового размножения шелкопряда-монашенки.

7. Смертность от индуцированного полиэдроза у непарного шелкопряда из очагов массового размножения на территории Западной Сибири относительно невысока и слабо изменяется в динамике вспышки. Максимальное значение смертности насекомых составляет 17,5 + 3%.

231

8. Уровень скрытого вирусоносительства в популяциях непарного шелкопряда и шелкопряда-монашенки поддерживается за счет особей, погибших от полиэдроза в предшествующих генерациях насекомых.

9. Проявление вирозов в популяциях лесных филлофагов обусловлено комплексом факторов различной природы. Результат контакта бакуловируса и насекомого-хозяина определяется биологической активностью вируса, множественностью заражения, биологическими особенностями и физиологическим состоянием насекомого, особенностями кормовой породы, а также факторами внешней среды.

10. Интенсивность эпизоотических процессов у лесных филлофагов обусловлена главным образом биологическими особенностями насекомых и характером лесорастительных условий, при которых обеспечивается сохранность вируса в экосистеме и высокая вероятность контакта бакуловируса с насекомым-хозяином.

11. Вирус ядерного полиэдроза непарного шелкопряда может применяться в качестве агента контроля численности насекомого в Западной Сибири. Весенняя очаговая обработка яйцекладок вирусом в дозе 5-1010 полиэдров на гектар в течение двух лет на участках, где зимующий запас насекомого не превышает 3000 яйцекладок на гектар, приводит к затуханию действующих очагов.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

Анализ литературных данных и результаты собственных исследований показали, что взаимодействие насекомого-хозяина и его бакуловируса обусловлено комплексом биотических и абиотических факторов. Характер взаимодействия определяется биологическими особенностями насекомого-хозяина и его физиологическим статусом, а также множественностью заражения и патогенностью вируса. В свою очередь, степень сопряжения насекомого и его бакуловируса обуславливает эффект, который для насекомого может быть нейтральным, летальным или сублетальным (рисунок 22).

Впервые в прямом эксперименте нами продемонстрировано, что скрытая вирусная инфекция может формироваться у насекомых, выживших в результате воздействия бакуловируса, и может быть индуцирована в дочернем поколении. Однако присутствие скрытого вируса у насекомых не означает скорой и неизбежной гибели хозяев. В этом случае возможно несколько вариантов. Во-первых, часть вирусной ДНК может полностью утратить свою инфекционность, хотя и выявляться в анализируемых образцах насекомых. Во-вторых, возможно, что воздействие индуцирующего фактора не всегда приводит к выходу вируса из хромосомы хозяина и формированию репродуктивного цикла развития вируса. В-третьих, репликация вируса при выходе из хромосомы может подавляться механизмами преодоления вирусной инфекции в организме насекомого-хозяина. Поэтому вопрос о том, в течение какого периода (числа генераций насекомого) вирус может находиться в скрытом виде в организме хозяина, сохраняя при этом способность к репликации, на сегодняшний день остается открытым.

В будущем предстоит выяснить механизмы полного блокирования репликации и сборки вируса при латентных инфекциях, а также детально

Рисунок 22 - Схема формирования взаимодействия между насекомым и его бакуловирусом. исследовать способность скрытого вируса к инициации острой инфекции в прямых экспериментах. Тем не менее, есть все основания полагать, что уровень скрытого вирусоносительства в популяции насекомого поддерживается за счет экзогенного инфицирования особей предшествующих генераций.

Вероятно, латентность бакуловирусов является важной составляющей в системе взаимоотношений между насекомыми-фитофагами, дающими вспышки массового размножения, и их бакуловирусами. Не исключено, что латентность бакуловирусов - это один из факторов, который способствует успешному существованию в природе как вирусам, так и их хозяевам - насекомым. С одной стороны, латентность позволяет избегать вирусам элиминирующего воздействия факторов внешней среды и пережидать периоды депрессии численности хозяев, не нарушая жизненно важных функций насекомых, связанных с репродукцией и распространением. Однако при определенных условиях латентная инфекция может переходить в острую с летальным для насекомых исходом, выполняя в этом случае роль фактора отбора и регулятора численности.

Феномен интеграции клеточного и вирусного геномов, обнаруженный у некоторых видов насекомых, придает особый статус латентности бакуловирусов. Вероятно, при выходе из хромосомы насекомого вирусная ДНК может содержать фрагменты ДНК хозяина, которые передаются другим насекомым, что создает возможность для смешивания различных генофондов.

Высокий уровень скрытого вирусоносительства и проявления спонтанного полиэдроза в популяциях насекомых обусловлен сравнительно высокой нагрузкой экзогенного вируса на биотоп. При высокой плотности насекомых возрастает вероятность их экзогенного инфицирования вирусом, что, в свою очередь, увеличивает частоту получения насекомыми сублетальных доз, а также вероятность мутации или делеции вируса. Такая ситуация возникает при совпадении действия ряда факторов: хорошей сохранности вируса в среде обитания насекомых, относительно высокой активности в младших возрастах гусеницы и относительно невысоком сезонном дрейфе очагов массового размножения. Совпадением этих факторов объясняется высокая частота проявления спонтанного полиэдроза у шелкопряда-монашенки на территории Западной Сибири, что подтвердилось в лабораторных экспериментах с применением рестрикционного анализа вирусной ДНК (Ильиных, Чуйкова, 1989). Напротив, высокая миграционная активность непарного шелкопряда (в частности, способность бабочек к активному полету) является одним из факторов, приводящих к "ускользанию" популяции от бакуловируса.

Было подтверждено, что применение ВЯП в качестве агента биологического контроля шелкопряда-монашенки проблематично, поскольку шелкопряд-монашенка относительно устойчив к действию вируса. Поэтому представляется перспективным дальнейший поиск и применение активаторов скрытой вирусной инфекции в популяциях насекомого для ограничения его численности. Кроме того, индукция репликации вируса может найти применение в диагностике фаз вспышек массового размножения шелкопряда-монашенки, а также при культивировании вирусного материала.

Применение ВЯП наземно-очаговым способом (1-54010 полиэдров/ га) в качестве агента контроля численности непарного шелкопряда в Западной Сибири показало, что в течение двух лет, как правило, удавалось вызвать затухание действующих очагов непарного шелкопряда. Как показали исследования, в сопредельных территориях необработанные очаги насекомого на территории Западной Сибири действовали 3-4 года.

Список литературы диссертационного исследования доктор биологических наук Ильиных, Александр Васильевич, 2007 год

1. Анищенко, Б.И. Против шелкопряда-монашенки / Б.И. Анищенко, М.В. Торчик, О.Г. Флейшер // Защита растений. 1982. - № 4. - С. 17.

2. Ашмарин, И.П. Статистические методы в микробиологических исследованиях / И.П. Ашмарин, А.А. Воробьев // Л.: Медгиз, 1962. 350 с.

3. Баранчиков, Ю.Н. Трофическая специализация чешуекрылых / Ю.Н. Баранчиков // Красноярск, 1987. 171с.

4. Бахвалов, С.А. Биологическое подавление популяций шелкопряда-монашенки {Lymantria monacha L.) в Западной Сибири: опыт применения и анализ результатов / С.А. Бахвалов // Сибирский экологический журнал. -1995.-№5.-С. 466-473.

5. Бахвалов, С.А. Биологическое подавление шелкопряда-монашенки с применением аэрозольной технологии / С.А. Бахвалов, Г.Н. Загуляев, А.В. Ильиных, А.В. Лопаткин, Д.В. Логунов, Д.П. Осколков, В.Г. Плетнев // Лесное хозяйство. 1991. - № 9. - С. 50-51.

6. Бахвалов, С.А. Взаимоотношения шелкопряда-монашенки и поражающего его вируса ядерного полиэдроза / С.А. Бахвалов // Автореф. дисс. канд. биол. наук. Новосибирск, 1987. - 22 с.

7. Бахвалов, С.А. Взаимосвязь популяционной динамики непарного шелкопряда {Lymantria dispar L., Lym:. Lep.) и генетическогополиморфизма вируса ядерного полиэдроза / С.А. Бахвалов, В.Н. Бахвалова, О.В. Морозова // Экология. 2002. - № 6. - С. 455-459.

8. Бахвалов, С.А. Динамика популяций шелкопряда-монашенки Lymantria monacha L. (Lymantriidae: Lepidoptera) и поражающего его бакуловируса в Западной Сибири / С.А. Бахвалов, А.Н. Башев, И.Б. Кнорр //Лесоведение.-1998,- №4.- С. 26-33.

9. Бахвалов, С.А. Динамика численности шелкопряда-монашенки и непарного шелкопряда: роль кормовых ресурсов и вирусной инфекции / С.А. Бахвалов, А.В. Ильиных, В.Н. Жимерикин, В.В. Мартемьянов // Евразиат. энтомол. журн. -2002.- Т. 1. Вып. 1.- С. 101-108.

10. Бахвалов, С.А. Особенности морфогенеза бакуловирусов при генерализованных полиэдрозах у некоторых чешуекрылых в динамике инфекционного процесса / С.А. Бахвалов, С.В. Деветьярова // Изв. СО АН СССР. Сер. биол. наук. 1980.- Вып.1.- С. 58-65.

11. Бахвалов, С.А. Опыт применения сульфата меди для активации скрытой вирусной инфекции у шелкопряда-монашенки в очаге его массового размножения / С.А. Бахвалов, А.В. Ильиных, О. А. Чернявская,

12. B.Н. Бахвалова // Микробиологические исследования в Западной Сибири. -Новосибирск: Наука, 1989.- с. 91-95.

13. Бахвалов, С.А. Подавление очагов массового размножения шелкопряда-монашенки биологическими и химическими методами / С.А. Бахвалов, Г.В. Ларионов, Г.П. Пешков // Лесное хозяйство. 1986. - № 3.1. C. 65-66.

14. Бахвалов, С.А. Развитие индуцируемого ядерного полиэдроза у монашенки в экспериментальных условиях / С.А. Бахвалов, Г.В. Ларионов, В.Н. Жимерикин, О.А. Чернявская // Изв. СО АН СССР. Сер. биол. наук. -1979.- Вып.2. С. 65-70.

15. Бахвалов, С.А. Экология бакуловируса шелкопряда-монашенки (Ocneria monacha L., Lepidoptera, Lymantriidae). Персистенция вируса влесной экосистеме / С.А. Бахвалов, В.Н. Бахвалова // Известия СО АН СССР. Сериябиол. наук.- 1990 б,-№ 1,- С. 51-55.

16. Бахвалов, С.А. Экология бакуловируса шелкопряда-монашенки {Ocneria monacha L., Lepidoptera: Lymantriidae). Персистенция вируса в популяциях насекомого / С.А. Бахвалов, В.Н. Бахвалова // Экология. -1990 а. -№ 6.-С. 53-59.

17. Бахвалов, С.А. Экспериментальное исследование индуцируемости бакуловирусной инфекции в онтогенезе шелкопряда-монашенки / С.А. Бахвалов, А.В. Ильиных // Экология и география членистоногих Сибири. -Новосибирск: Наука, 1987. С. 136-137.

18. Бахов, Н.И. Клеточные системы защиты организма от вирусной инфекции: внутриклеточные механизмы защиты / Н.И. Бахов, А.А. Барсуков, В.М. Земсков // Успехи современной биологии. 2003. - Т. 123. -№ 2. - С. 161-174.

19. Беднова, О.В. Непарный шелкопряд и вирус ядерного полиэдроза: некоторые аспекты взаимодействия и эффективность биологического контроля / О.В. Беднова // Научные труды Моск. гос. унив. леса. 1998. -№294.-4. 1.- С. 165-175.

20. Бектемиров, Т.А. Гибридизация нуклеиновых кислот как средство быстрой вирусологической диагностики / Т.А. Бектемиров // Вопросы вирусологии. -1988. -№ 1.-С. 110-117.

21. Белицкая, М.Н. Экологические аспекты управления фитосанитарным состоянием лесоаграрных ландшафтов аридной зоны / М.Н. Белицкая // Автореф. дисс. док. биол. наук. Краснодар, 2004. - 40 с.

22. Бенкевич, В.И. К вопросу о прогнозе массовых появлений Ocneria monacha L. (Lepidoptera, Lymantriidae) в Московской области / В.И. Бенкевич//Энтомол. обозр.- I960. Т. 33.- Вып. 4. - С. 1321-1328.

23. Бенкевич, В.И. Массовые появления непарного шелкопряда в европейской части СССР / В.И. Бенкевич // М.: Наука, 1984. 142 с.

24. Берриман, А. Защита леса от насекомых вредителей / А. Берриман И М.: Агропромиздат, 1990. 288 с.

25. Божко, Н.А. Разработка и применение в народном хозяйстве вирусных энтомопатогенных препаратов / Н.А. Божко // Биотехнология. 1988.-№2.-С. 59-60.

26. Бойчук, Ю.Д. Принципы и методы отбора исходного материала для культивирования насекомых / Ю.Д. Бойчук, А.З. Злотин // Успехи современной биологии. 1999 а. - Т. 119. - № 6. - С. 590-598.

27. Бойчук, Ю.Д. Формирование стартовой колонии непарного шелкопряда при его лабораторном разведении / Ю.Д. Бойчук, А.З. Злотин // Лесное хозяйство. 1999 б. - № 3. - С. 49-50.

28. Большее, Л.Н. Таблицы математической статистики / Л.Н. Большее, Н.В. Смирнов // М.: Наука, 1983. 416 с.

29. Браунли, К.А. Статистическая теория и методология в науке и технике / К.А. Браунли // М.: Наука, 1977. 408 с.

30. Васечко, Т.Н. Развитие идей А.И. Ильинского в познании динамики численности непарного шелкопряда / Т.И. Васечко //Лесоведение. 1990. №6,- С. 41-48.

31. Васильева, В.Л. Результаты испытания вирусного препарата в борьбе с непарным шелкопрядом в садах: эффективность, безопасность / В.Л. Васильева, В.Г. Яценко, В.И. Трусов // Молекулярная биология. Киев, 1983. - Вып. 34. - С. 41-42.

32. Вейзер, Я. Микробиологические методы борьбы с вредными насекомыми (болезни насекомых) / Я. Вейзер // М.: Колос. 1972. - 640 с.

33. Верещагина, В.В. Роль света в поведении и распределении непарного шелкопряда и дубовой листовертки в условиях полезащитных лесных полос / В.В. Верещагина//Зоол. журн. 1952.-Т. 31.- Вып.1.-С. 25-32.

34. Викторов, Г.А. Динамика численности животных и управление ею / Г.А. Викторов // Зоол. журн. 1975. - Т. 54. - Вып. 6. - С. 804-821.

35. Викторов, Г.А. Колебания численности насекомых как регулируемый процесс / Г.А. Викторов // Журнал общей биологии. 1965. Т. 26.-№ 1.- С. 43-55.

36. Викторов, Г.А. Проблемы динамики численности насекомых на примере вредной черепашки / Г.А. Викторов // М.: Наука. 1967. -270 с.

37. Викторов, Г.А. Трофическая и синтетическая теории динамики численности насекомых / Г.А. Викторов // Зоол. журн. 1971. - Т. 50. -Вып. 3.- С. 361-372.

38. Воробьева, Н.Н. Энтомопатогенные вирусы / Н.Н. Воробьева // Новосибирск: Наука, 1976. 286 с.

39. Воронцов, А.И. Биологические основы защиты леса / А.И. Воронцов // М.: Высшая школа, 1963.- 324 с.

40. Воронцов, А.И. Биология непарного шелкопряда и меры борьбы с ним /А.И. Воронцов// Вестн. сел. хоз-ва. 1958.-№4.-С. 101-107.

41. Воронцов, А.И. Некоторые итоги изучения непарного шелкопряда / А.И. Воронцов // Насекомые вредители лесов Башкирии. - Уфа, 1977. -С.3-25.

42. Воронцов, А.И. Современные методы учета и прогноза хвое-листогрызущих насекомых / А.И. Воронцов, А.В. Голубев, Е.Г. Мозолевская // Тр. Всес. Энтомол. Общ ва. - 1983. - Т. 65. - С. 4-19.

43. Гайер, Г. Электронная гистохимия / Г. Гайер // М: Мир, 1974. 488 с.

44. Гар, К.А. Методы испытания токсичности и эффективности инсектицидов / К.А. Гар // М.: Сельхозиздат, 1963. 288 с.

45. Гершензон, С.М. Явление латентности у полиэдренных вирусов насекомых / С.М. Гершензон // Журнал общей биологии. 1961. - Т. 22. -Вып. 1. - С. 32-41.

46. Глупов, В.В. Механизмы резистентности насекомых при патогенезе / В.В. Глупов, С.А. Бахвалов // Успехи совр. биол. 1998. - Т. 118. - № 4. - С. 466-482.

47. Глупов, В.В. Структура и функции перитрофической мембраны и перитрофического геля насекомых / В.В. Глупов // Евразиат. энтомол. журн.- 2002. -Т.1. С. 11-16.

48. Гниненко, Ю.И. Вспышки массового размножения лесных насекомых в Сибири и на Дальнем Востоке в последней четверти XX века / Ю.И. Гниненко // Лесохоз. информ. 2003. - № 1. - С 46-57.

49. Гниненко, Ю.И. Географические формы непарного шелкопряда в Северной Азии / Ю.И. Гниненко // Защита и карантин растений. 1998. -№ 6. - С 35-36.

50. Горбунова, Е.Е. Сравнительная характеристика изолятов вируса ядерного полиэдроза непарного шелкопряда Lymantria dispar L. / Е.Е. Горбунова, А.В. Колосов, О.Д. Борисова, Б.Н. Зайцев, Н.А. Божко // Вопросы вирусологии. 1997. - № 1. - С. 41-43.

51. Гримальский, В.И. Причины устойчивости сосновых насаждений к хвоегрызущим вредителям / В.И. Гримальский // Зоол. журн. 1961. -Т.40. - Вып. 11.- С. 1656-1664.

52. Гримальский, В.И. Устойчивость древесных насаждений к хвое- и листогрызущим вредителям в связи с трофической теорией динамики численности насекомых / В.И. Гримальский // Зоол. журн. 1974. - Т.53. №2.- С. 189-198.

53. Гримальский, В.И. Устойчивость сосновых насаждений против хвоегрызущих вредителей / В.И. Гримальский // М., 1971. 136 с.

54. Гублер, Е.В. Вычислительные методы анализа и распознавания патологических процессов /Е.В. Гублер // Л.: Медицина, 1978. 294 с.

55. Гулий, В.В. Вирусы в защите леса от вредных насекомых / В.В. Гулий, М.А. Голосова // М.: Лесная промышленость, 1975. 168 с.

56. Гулий, В.В. Вирусные болезни насекомых и их диагностика / В.В. Гулий, С.Ю. Рыбина // Кишинев: Штиинца, 1988. 126 с.

57. Гулий, В.В. Особенности проявления вирусных эпизоотий в популяциях хвое- и листогрызущих насекомых / В.В. Гулий // Лесоведение.- 1974,-№4.- С. 63-68.

58. Гулий, В.В. Микроорганизмы, полезные для биометода /В.В. Гулий, Т.В. Теплякова, Г.М. Иванов //Новосибирск: Наука, 1981. 267 с.

59. Долгин, М.М. Биология паразитов лиственничной почковой галлицы /М.М. Долгин//Зоол. журн.- 1989.-Т.65. Вып. 12. - С. 131-134.

60. Дмитриев, П.П. Борьба с непарным шелкопрядом с помощью вирусного препарата Вирин ЭНШ / П.П. Дмитриев, И.А. Федоров // Лесное хозяйство. - 1981.-№ 1.- С. 56-57.

61. Закревская, М.В. Реактивация различных по глубине диапаузы яиц монашенки и их хранение / М.В. Закревская // Экология и защита леса. Лесные экосистемы и их защита. Л., 1984. - С. 57-66.

62. Закревская, М.В. Питательные среды: для шелкопряда-монашенки / М.В. Закревская // Защита растений.- 1983. № 10. - С. 33.

63. Земкова, Р.И. О возможности использования светоловушек для выявления вредных насекомых в горных лесах Западного Саяна / Р.И. Земкова // Защита лесов Сибири от насекомых-вредителей. -М., 1963. С. 78-85.

64. Зиновьева, Л.А. Авторское свидетельство СССР / Л.А. Зиновьева, Е.В. Орловская, И.С. Захарченко, Ю.А. Масюк // № 577001. -Кл. А. 01 К 67/00. - 1977.

65. Зиновьева, Л.А. Полусинтетическая питательная среда для гусениц непарного шелкопряда / Л.А. Зиновьева, И.С. Захарченко //Научные труды МЛТИ.-М., 1974.-С. 164-170.

66. Злотин, А.З. Селекция насекомых / А.З. Злотин // Итоги науки и техники. Серия: Энтомология.-М.: ВИНИТИ. - 1990. - Т. 10. - С. 96-179.

67. Злотин, А.З. Техническая энтомология / А.З. Злотин // Киев: Наукова думка, 1989. 183 с.

68. Знаменский, B.C. Влияние плотности популяции на качественные показатели динамики численности непарного шелкопряда / B.C. Знаменский, Н.И. Лямцев // Защита леса от вредителей и болезней. М., 1980.-С. 21-39.

69. Знаменский, B.C. Индикаторы массового размножения непарного шелкопряда / B.C. Знаменский, Н.И. Лямцев // Лесное хозяйство. 1985. -№ 2. - С. 60-62.

70. Знаменский, B.C. Принципы интегрированной борьбы с вредителями леса / B.C. Знаменский // Лесное хозяйство.- 1973. № 8.- С. 68-72.

71. Знаменский, B.C. Роль энтомофагов в динамике численности непарного шелкопряда / B.C. Знаменский // Биологическая и интегрированная борьба с вредителями в лесных биоценозах. М: Наука, 1989.-С. 60-65.

72. Егоров, Н.Н. Вспышки вредных насекомых в ленточных борах / Н.Н. Егоров //Лесное хозяйство. 1959. - № 7. - С. 47-50.

73. Егоров, Н.Н. Шелкопряд-монашенка в ленточных борах Алтайского края / Н.Н. Егоров // Научные записки Воронежского лесотехнического института, Воронеж, 1961.-Т.26.- С. 13-22.

74. Ермакова, Г.И. Применение метода флюоресцирующих антител для обнаружения полиэдренного агента в яйцах (грене) тутового шелкопряда / Г.И. Ермакова, Л.М. Тарасевич // Вопросы вирусологии. 1968.- № 1. - С. 89-93.

75. Иерусалимов, Е.Н. Зоогенная дефолиация и лесное сообщество / Е.Н. Иерусалимов // М.: Товарищество научных изданий КМК, 2004. -263 с.

76. Ильинский, А.И. Надзор, учет и прогноз массовых размножений хвое- и листогрызущих насекомых в лесах СССР / А.И. Ильинский, И.В. Тропин (ред.) // М.: Лесная промышленность, 1965. 526 с.

77. Ильинский, А.И. Непарный шелкопряд и меры борьбы с ним / А.И. Ильинский // М.: Гослесбумиздат, 1959. 63 с.

78. Ильинский, А.И. Организация надзора за хвое- и листогрызущими вредителями в лесах и прогнозирование их массовых размножений / А.И. Ильинский // Защита леса от вредителей и болезней. М.: Сельхозгиз, 1961,- С. 57-96.

79. Ильиных, А.В. Активация латентного вируса у непарного шелкопряда в различные периоды вспышки массового размножения / А.В. Ильиных // Биотехнология. 2000. - № 5. - С. 77-80.

80. Ильиных, А.В. Анализ причин затухания вспышки массового размножения непарного шелкопряда (Lymantria dispar L.) в Новосибирской области / А.В. Ильиных // Сибирский экол. журнал. 2002. - № 6. - С. 697702.

81. Ильиных, А.В. Вертикальная миграция гусениц непарного шелкопряда на юге Западной Сибири / А.В. Ильиных, С.А. Бахвалов, А.А. Шаров // Сохранение и защита горных лесов. Матер, межд. симп. Ош, 1999.-С. 57-59.

82. Ильиных, А.В. Влияние полиэдроза на популяции непарного шелкопряда и шелкопряда-монашенки / А.В. Ильиных, С.В. Кузьминов, Е.Г. Ульянова, Ф.А. Ильиных, Ш.С. Кожоев // Защита и карантин растений. 2005.-№3.-С. 53-54.

83. Ильиных, А.В. Естественное вирусоносительство у массовых видов лесных насекомых-фитофагов и его связь с жизнеспособностью хозяев / А.В. Ильиных, С.А. Бахвалов, С.М. Моховиков // Вопросы вирусологии. -1995.-№4.-С. 186-187.

84. Ильиных, А.В. Идентификация бакуловирусных изолятов непарного шелкопряда, выделенных в различные фазы градации численности насекомого / А.В. Ильиных, И.Д. Петрова, А.В. Колосов // Рук. деп. ред. жур. "Вопросы вирусологии" в ГЦНМБ 12.10. 2001. № 26897.

85. Ильиных, А.В. Идентификация природных изолятов вируса ядерного полиэдроза шелкопряда-монашенки / А.В. Ильиных, Г.В. Чуйкова // Вопросы вирусологии. 1989. - № 1. - С. 84-89.

86. Ильиных, А.В. Изучение трансгенерационной передачи вируса ядерного полиэдроза непарного шелкопряда / А.В. Ильиных, С.А. Мамонтова, B.C. Петров // Вопросы вирусологии. 1997. - № 2. - С. 88-90.

87. Ильиных, А.В. Индикация фаз вспышки массового размножения шелкопряда-монашенки / А.В. Ильиных, С.А. Бахвалов, Н.А. Божко // Лесное хозяйство. -1990. № 12. - С. 40-41.

88. Ильиных, А.В. Индуцируемость бакуловирусной инфекции в различные периоды онтогенеза непарного шелкопряда / А.В. Ильиных // Вопросы вирусологии. 2000. - № 1. - С. 42-45.

89. Ильиных, А.В. Латентность бакуловирусов / А.В. Ильиных, Е.Г. Ульянова // Известия РАН. Серия биологическая. 2005. - № 5. - С. 599606.

90. Ильиных, А.В. Методика культивирования непарного шелкопряда в лабораторных условиях / А.В. Ильиных // Биотехнология. 1997. - № 9, 10. -С. 27-29.

91. Ильиных, А.В. Оптимизация культивирования вируса ядерного полиэдроза шелкопряда-монашенки / А.В. Ильиных // Биотехнология. -2003.-№ 1.-С. 70-72.

92. Ильиных, А.В. Оптимизированная искусственная питательная среда для культивирования непарного шелкопряда / А.В. Ильиных // Биотехнология. 1996. - № 7. - С. 42-43.

93. Ильиных, А.В. Оценка чувствительности шелкопряда-монашенки к вирусу ядерного полиэдроза / А.В. Ильиных // Лесное хозяйство. 1997. -№ 3.-С. 50-51.

94. Ильиных, А.В. Последействие вирусов ядерного полиэдроза на вредных насекомых / А.В. Ильиных, А.В. Лопаткин // Микроорганизмы в сельском хозяйстве и промышленности. Новосибирск: СО ВАСХНИЛ, 1982.-С. 94- 98.

95. Ильиных, А.В. Регуляция численности непарного шелкопряда в Западной Сибири / А.В. Ильиных, С.А. Мамонтова, B.C. Петров, А.В. Колосов // Биотехнология. 1997. - № 3. - С. 45-47.

96. Ильиных, А.В. Экология вируса ядерного полиэдроза непарного шелкопряда (Lymantria dispar L.) в западносибирской популяции насекомого / А.В. Ильиных // Экология. 2005. - № 3. - С. 222-226.

97. Исаев, А.С. Динамика численности лесных насекомых / А.С. Исаев, Р.Г. Хлебопрос, Л.В. Недорезов, Ю.П. Кондаков, В.В. Киселев // Новосибирск: Наука, 1984. 224 с.

98. Исаев, А.С. Популяционная динамика лесных насекомых / А.С. Исаев, Р.Г. Хлебопрос, Л.В. Недорезов, Ю.П. Кондаков, В.В. Киселев, В.Г. Суховольский // М.: Наука, 2001. 374 с.

99. Исаев, А.С. Принцип стабильности в динамике численности лесных насекомых / А.С. Исаев, Р.Г. Хлебопрос // Докл. АН СССР. 1973. - Т. 208.-№ 1.-С. 225-228.

100. Исаев, А.С. Эффекты запаздывания в регуляции численности лесных насекомых / А.С. Исаев, Р.Г. Хлебопрос // Докл. АН СССР. 1977. - Т. 232. -№ 6.-С. 1448-1451.

101. Карпов, А.Е. Латентность бакуловирусов и ее практическое значение / А.Е. Карпов // Молекулярная биология. 1979.-Вып. 22. - С. 74-83.

102. Келус, О.Г. Географическое распространение и районы массового размножения непарного шелкопряда (Porthetria dispar L.) / О.Г. Келус // Вестн. защиты растений. 1941. - № 1. - С. 45-52.

103. Кендалл, М.Д. Статистические выводы и связи / М.Д. Кендалл, А. Стьюарт // М.: Наука., 1973. 899 с.

104. Киреева, И.М. Экология и физиология непарного шелкопряда / И.М. Киреева // Киев: Наукова Думка, 1983. 128 с.

105. Кобзарь, В.Ф. Особенности применения микробиологических инсектицидов и специфичность их действия на вредных насекомых / В.Ф. Кобзарь, М.И. Кобзарь // Матер. Всерос. научно-практич. конф. -Ставрополь, 2004. С. 432-437.

106. Кобзарь, В.Ф. Теоретические основы и разработка авиационного способа применения бактериальных препаратов против хвое- и листогрызущих насекомых / В.Ф. Кобзарь // Автореф. дисс. докт. с-х. наук. -Л., 1991. -34 с.

107. Кожанчиков, И.В. Биологическая специфика видов насекомых в их массовых размножениях / И.В. Кожанчиков // Успехи современной биологии. 1948. - Т. XXV. - Вып. 2. - С. 251-268.

108. Кожанчиков, И.В. Фауна СССР. / И.В. Кожанчиков // М.: АН СССР, 1950. -Т. 12.-582 с.

109. Кок, И.П. Обнаружение интеграции бакуловирусного и клеточного геномов (ДНК) при латентной инфекции / И.П. Кок, И.Н. Скуратовская, Л.И. Строковская, Н.Ю. Мирюта, Л.П. Алексеенко // Молекулярная биология. 1983. - Вып. 34. - С. 67-69.

110. Коли, Г. Анализ популяций позвоночных / Г. Коли // М.: Мир, 1979. -362с.

111. Коломиец, Н.Г. Враги леса (Самые опасные насекомые и грибные болезни в лесах Приобья) / Н.Г. Коломиец, И.С. Коссинская, Э.И. Майер // Томск, 1971.-71с.

112. Коломиец, Н.Г. Лесные насекомые Сибири, реагирующие на ультрафиолетовый свет / Н.Г. Коломиец, И.А. Терсков // Известия СО АН СССР. Сер. биол,- мед. наук. 1963. -№ 12. - Вып. 3. - С. 82-83.

113. Колтунов, Е.В. Насекомые-фитофаги лесных биоценозов в условиях антропогенного воздействия / Е.В. Колтунов // Екатеринбург: УИФ "Наука", 1993.-136с.

114. Колтунов, Е.В. О введении карантина против азиатской расы непарного шелкопряда / Е.В. Колтунов, В.И. Пономарев, С.И. Федоренко // Лесное хозяйство. 2001. - № 4. - С. 43-46.

115. Колтунов, Е.В. Проблемы популяционной экологии насекомых-фитофагов, образующих периодические крупномасштабные вспышки в лесах Урала/ Е.В. Колтунов //Екатеринбург, 1997. -С. 134-137.

116. Колтунов, Е.В. Экология непарного шелкопряда в лесах Евразии / Е.В. Колтунов // Екатеринбург, 2006. -232с.

117. Колтунов, Е.В. Экология непарного шелкопряда в условиях антропогенного воздействия / Е.В. Колтунов, В.И. Пономарев, С.И. Федоренко // Екатеринбург: УрО РАН, 1998. 212 с.

118. Кондаков, Ю.П. Непарный шелкопряд (Ocneria dispar L.) в лесах Красноярского края / Ю.П. Кондаков // Защита лесов Сибири от насекомых-вредителей. -М., 1963. С. 30-77.

119. Коников, А.С. Регуляторы численности лесных насекомых / А.С. Коников // Новосибирск: Наука, 1978. 95 с.

120. Корочкин, Л.И. Геном, клонирование, происхождение человека / Л.И. Корочкин (ред.) // Фрязино: "Век 2", 2004. 224 с.

121. Костомаров, А.В. Особенности аэрозольной обработки с использованием пиретроидов и биопрепаратов / А.В. Костомаров // Лесопатологическая обстановка в лесном фонде Уральского региона. -Екатеринбург: Изд-во "Екатеринбург", 2001. С. 66-71.

122. Крушев, Л.Т. Против шелкопряда-монашенки / Л.Т. Крушев, Я.И. Марченко // Защита растений. 1981. - № 11. - С. 35.

123. Ландау, С.М. Исследование возможности получения линий тутового шелкопряда, устойчивых к активации латентного вируса ядерного полиэдроза / С.М. Ландау, Г.Н. Добровольская, В.И. Киреева // Молекулярная биология. 1979.-Вып. 22.-С. 86-89.

124. Лисенков, А.Н. Математические методы планирования многофакторных медико-биологических экспериментов / А.Н. Лисенков // М.: Медицина. 1979. - 242 с.

125. Лиховидов, В.Е. Опыт применения Вирина ЭНШ в борьбе с непарным шелкопрядом в лесах Юго-западной части СССР / В.Е. Лиховидов // Микроорганизмы в защите растений. Кишинев: Тимпул, 1984. - С. 15-20.

126. Лямцев, Н.И. Влияние климата и погоды на динамику численности непарного шелкопряда в Европейской России / Н.И. Лямцев, А.С. Исаев, Н.В. Зукерт // Лесоведение. 2000. - № 1. - С. 62-67.

127. Лямцев, Н.И. Плодовитость как показатель динамики численности непарного шелкопряда / Н.И. Лямцев // Материалы 8-й научной конференции аспирантов и научных сотрудников ВНИИЛМ. М., 1985. -С. 126-129.

128. Максимов, С.А. О причинах массовых размножений шелкопряда-монашенки (Lymantria monacha L.) / С.А. Максимов // Экология. 1999. -№1.-С. 54-59.

129. Маниатис, Т. Молекулярное клонирование / Т. Маниатис, Э. Фрич, Дж. Сэмбрук // М.: Мир, 1984. 480с.

130. Марков, В. А. Длительная эмбриональная диапауза непарного шелкопряда / В.А. Марков // Непарный шелкопряд: итоги и перспективы исследований. Красноярск: ИЛиД, 1988.- С. 13-14.

131. Марков, В.А. Миграции как фактор динамики численности массовых видов листо- и хвоегрызущих насекомых / В.А. Марков // Зоол. журн. -1999.-Т. 78.-№ 1.-С. 49-56.

132. Марков, В.А. Многолетняя эмбриональная диапауза шелкопряда-монашенки (Lymantria monacha L.) / В.А. Марков // Зоол. журн. 1989. - Т. 68.-№ 1.-С. 52-59.

133. Марков, В.А. Развитие шелкопряда-монашенки Lymantria monacha L. (Lepidoptera, Lymantriidae) в период нарастания ее численности / В.А. Марков // Энтомол. Обозр. 1995.- Т. 74. -№ 2. - С. 323-341.

134. Марушина, Н.Г. Шелкопряд-монашенка / Н.Г. Марушина // Защита растений. 1978. -№ 3. - С. 38-39.

135. Марченко, Я.И. Восприимчивость гусениц шелкопряда-монашенки к бактериальной инфекции / Я.И. Марченко, Г.М. Емельянчик // Лесоведение. 1981. - № 5. - С. 85-89.

136. Матусевич, Л.С. Санитарное состояние лесов Росси и некоторые перспективы лесозащиты / Л.С. Матусевич, Ю.И. Гниненко // Лесное хозяйство. 2000. - № 4. - С. 52-53.

137. Мешкова, В.Л. Результаты исследования непарного шелкопряда на Украине / В.Л. Мешкова // Непарный шелкопряд: итоги и перспективы исследований. Красноярск: ИЛиД, 1988. - С. 24-25.

138. Мирюта, Н.Ю. Обнаружение ковалентно связанного с ДНК клетки генома бакуловируса у большой вощинной моли пражской линии / Н.Ю. Мирюта, Л.И. Строковская, И.П. Кок, И.Н. Скуратовская // Биополимеры и клетка. 1985. - Т. 1. - № 2. - С. 106-108.

139. Монастырский, А.Л. Массовое разведение насекомых для биологической защиты растений / А.Л. Монастырский, В.В. Горбатовский // М.: Агропромиздат, 1991. 239 с.

140. Найт, Ф.Б. Интегрированная защита леса в США / Ф.Б. Найт, Р.С. Тетчер // Лесное хозяйство. 1986. - № 9. - С. 70-74.

141. Обухов, А. Монашенка, совка и пилильщик в дачах Кыштымского горного округа / А. Обухов // Лесной журнал. 1894. - № 5. - С. 522-530.

142. Огиевский, В. Баварские исследования о монашенке / В. Огиевский // Лесной журнал. 1894. - № 6. - С. 588-605.

143. Орлинский, А.Д. Некарантинный вредитель стал карантинным / А.Д. Орлинский // Защита растений. 1993.- № 1. - С. 44-45.

144. Орловская, Е.В. Авторское свидетельство СССР / Е.В. Орловская, Ю.А. Масюк, Р.В. Моисеева, Н.И. Андрианова // № 731938. кл. А 01 К 67/00.- 1980.

145. Орловская, Е.В. Географическое распространение и проявление вирозов на территории Советского Союза / Е.В. Орловская // Энтомологическое обозрение. 1968. -№ 4. - С. 741-756.

146. Орловская, Е.В. Использование вирусов в борьбе с хвоегрызущими насекомыми в СССР / Е.В. Орловская // Информационный бюллетень МОББ. ВПС. 1989. № 27. - С. 69-72.

147. Пономарев, В.И. Закономерности взаимоотношений в системе "дерево-насекомое" и морфофизиологические особенности популяций непарного шелкопряда {Lymantria dispar L.) / В.И. Пономарев // Дисс. док. биол. наук. Екатеринбург, 2004.- 308 с.

148. Пономарев, В.И. Несколько замечаний к экологии зауральской популяции непарного шелкопряда / В.И. Пономарев // Лесопатологическая обстановка в лесном фонде Уральского региона. Екатеринбург: изд-во "Екатеринбург", 2001. - С. 93-104.

149. Пономарев, В.И. Популяционно-генетические особенности вспышек массового размножения непарного шелкопряда (Lymantria dispar L.) / В.И. Пономарев // Экология. 1994. ~№ 5.- С. 81-89.

150. Пономарев, В.И. Физиологический возраст листвы кормового растения и выживаемость гусениц непарного шелкопряда / В.И. Пономарев // Экология. 2003. - № 5. - С. 387-391.

151. Пономарев, В.И. Экологические и генетико-популяционные особенности непарного шелкопряда ) В.И. Пономарев // Екатеринбург, препринт УрО РАН. 1992. - 60 с.

152. Прозоров, С.С. Шелкопряд-монашенка в сосновых лесах Западной Сибири / С.С. Прозоров // Труды Сибирского лесотехнического института. -Красноярск, 1979. -Т. 5. -Вып. 4. -С. 19-42.

153. Райе, Э. Природные средства защиты растений от вредителей / Э. Райе // М.: Мир, 1986. 184 с.

154. Распопов, П.М. Динамика популяций, растительноядных членистоногих как причина и следствие изменений среды обитания / П.М. Распопов, П.М. Рафес // Биологические методы оценки природной среды. -М.: Наука, 1978.-С. 36- 57.

155. Рафес, П.М. Биогеоценологические исследования растительноядных лесных насекомых / П.М. Рафес // М.: Наука, 1980. 168 с.

156. Рафес, П.М. Взаимодействие насекомых, повреждающих листья, с кормовыми деревьями / П.М. Рафес // Итоги науки и техники. -Энтомология.-Т. 5,-М.: ВИНИТИ, 1981.-С. 140-152.

157. Рожков, А.С. Дерево и насекомое / А.С. Рожков // Новосибирск: Наука, 1981.- 176 с.

158. Рожков, А.С. Непарный шелкопряд в Восточной Сибири / А.С. Рожков, Т.Г. Васильева // Непарный шелкопряд в Средней и Восточной Сибири. Новосибирск, 1982.-С. 5-19.

159. Рубцов, Н.А. Об условиях массового размножения насекомых (влияние паразитов и хищников на колебание численности хозяев) / Н.А. Рубцов // Зоол. журнал. 1953. - Т. 32. - Вып. 3. - С. 321-328.

160. Руднев, Д.Ф. Влияние физиологического состояния растений на массовое размножение вредителей леса / Д.Ф. Руднев // Зоол. журн. 1962. -Т. 41.-Вып. 3.-С. 313-329.

161. Рыбин, А.В. Лесопатологическое состояние голесфонда сельскохозяйственной зоны Тюменской области / А.В. Рыбин, Т.В. Бучельникова // Леса и лесное хозяйство Западной Сибири. Тюмень: изд-воТГУ, 1998.-С. 120-127.

162. Сахаров, В.М. Эффективность термомеханических аэрозолей / В.М. Сахаров, К.П. Куценогий, Е.М. Киров, В.И. Макаров, О.В. Чанкина, Г.А. Махов, Г.В. Ларионов, В.Н. Жимерикин, С.А. Бахвалов, Л.А. Литвина // Защита растений. 1980. - № 8. - С. 36-37.

163. Сергеенко, В.Н. Пути повышения надежности и экономичности лесозащиты / В.Н. Сергеенко // Применение биологических препаратов для защиты лесных насаждений. -Бердск, 1999. С. 34-35.

164. Симонова, Э.Ж. Вирусы для защиты леса / Э.Ж. Симонова, JI.K. Новикова, Н.И. Никитина // Биологическая и интегрированная борьба с вредителями в лесных биоценозах.- М., 1989.-С. 105-109.

165. Соколов, Г.И. Непарный шелкопряд в Челябинской области и борьба с ним / Г.И. Соколов // Непарный шелкопряд: итоги и перспективы исследований. Красноярск, 1988. - С. 28-29.

166. Стадницкий, Г.В. Влияние качества пищи на выживаемость и темпы развития рыжего соснового пилильщика / Г.В. Стадницкий //Лесной журнал. 1969. - №5. - С. 159-161.

167. Стадницкий, Г.В. О дискретности популяций / Г. В. Стадницкий, А. М. Бортник // Научн. труды МЛТИ.- 1974.- Вып. 65. С. 19-34.

168. Стадницкий, Г.В. Стациальная теория динамики популяций насекомых / Г.В. Стадницкий, A.M. Бортник // Чтения памяти Холодковского. Л., 1977. - С. 44-63.

169. Старец, В.А. Метод оптимизации рецептов полусинтетических питательных сред для разведения насекомых-фитофагов Amathes C-nigrum L. (Lepidoptera, Lymantriidae) / В.А. Старец, B.M. Менчер // Зоол. журн. -1980.- Т. 59. -Вып. 5. С. 771-776.

170. Тамарина, Н.А. Техническая энтомология новая отрасль прикладной энтомологии / Н. А. Тамарина // Итоги науки и техники. Т. 7. Энтомология. - М., 1987. - С.7-144.

171. Таран, И.В. Леса и лесное хозяйство Новосибирской области / И.В. Таран, С.И. Кабалин, И.А. Бех, А.Э. Платаис // Новосибирск: Наука, 1979. -270 с.

172. Тарасевич, Л.М. Вирусы насекомых / Л.М. Тарасевич // М.: Наука, 1975.- 198 с.

173. Турова, Г.И. Непарный шелкопряд (Lymantria dispar L.) в лесах Дальнего Востока (Распространение, биология, хозяйственное значение, особенности надзора) / Г.И. Турова // Автореф. дисс. канд. биол. наук. -Красноярск, 1992. 20 с.

174. Турова, Г.И. О массовом размножении монашенки в хвойно-широколиственных лесах Дальнего Востока / Г.И. Турова, Г.И. Юрченко // Труды Дальневосточного НИИ лесного хозяйства. 1986. - № 28. - С. 130136.

175. Ульянова, Е.Г. Сублетальное действие вируса ядерного полиэдроза на непарного шелкопряда (Lymantria dispar L.) / Е.Г. Ульянова // Автореф. дисс. канд. биол. наук. Новосибирск, 2005. - 19 с.

176. Федоренко, С.И. Оценка устойчивости березовых древостоев Зауралья к дефолиации насекомыми-филлофагами / С.И. Федоренко // Лесопатологическая обстановка в лесном фонде Уральского региона. -Екатеринбург: изд-во "Екатеринбург", 2001. С. 133-140.

177. Ханисламов, М.Г. Массовые размножения непарного шелкопряда в Башкирии / М.Г. Ханисламов, Л.Н. Гирфанова, З.Ш. Яфаева, Р.К. Степанова // Исследование очагов вредителей леса Башкирии. Уфа, 1958. - С.5-45.

178. Ханисламов, М.Г. Условия развития массовых размножений шелкопряда-монашенки в Башкирии / М.Г. Ханисламов, Н.К. Латышев, З.Ш. Яфаева // Исследование очагов вредителей леса Башкирии. Уфа, 1962.-Вып. 2.-С. 5-31.

179. Холодилов, Н.Г. Изучение некоторых свойств вирусов ядерного полиэдроза капустной и хлопковой совок / Н.Г. Холодилов, Г.В. Рассказова, А.В. Лопаткин, Л.Я. Кренделева // Вопросы вирусологии. -1985.-№6. -С. 717-721.

180. Цветаева, И.А. Питательные среды / И.А. Цветаева // Защита растений. 1976. - № 3. - С. 27.

181. Челышева, Л.П. О вспышках массового размножения розового и непарного шелкопрядов в Приморье / Л.П. Челышева, Ю.М. Орлов // Труды Дальневосточного НИИ лес. х-ва. 1986. № 28. - С. 125-129.

182. Черепанов, А.И. Вредные насекомые полезащитных лесных полос / А.И. Черепанов // Новосибирск: Наука, 1952. 128 с.

183. Чернышев, В.Б. Массовое разведение насекомых в СССР // Тезисы докладов второй всесоюзной конференции по промышленному разведению насекомых / В.Б. Чернышев // М.: Издательство МГУ, 1989. С. 3-6.

184. Чернявская, О.А. Выращивание шелкопряда-монашенки / О.А. Чернявская // Интегрированная защита растений от вредителей. -Новосибирск: СО ВАСХНИЛ, 1987. С. 167-175.

185. Чугунин, Я.В. Очаговая цикличность массовых размножений непарного шелкопряда / Я.В. Чугунин // Зоол. журн. 1949. - Т. 28. - Вып. 5.- С. 431-438.

186. Шилов, И.А. Эколого-физиологические основы популяционных отношений у животных / И.А. Шилов // М.: Изд-во МГУ, 1977. 263 с.

187. Ширяев, Л.П. Об опыте работы аэрозольного отряда и радиологической лаборатории / Л.П. Ширяев // Лесопатологическая обстановка в лесном фонде Уральского региона. Екатеринбург: Изд-во "Екатеринбург", 2001. - С. 72-78.

188. Шовен, Р. Физиология насекомых / Р. Шовен // М.: Мир, 1953. 495с.

189. Штерншис, М.В. Повышение эффективности микробиологической борьбы с вредными насекомыми / М.В. Штерншис // Новосибирск: изд-во НГАУ, 1995.-194 с.

190. Штерншис, М.В. Применение химических стрессоров в вирусологической борьбе с непарным шелкопрядом / М.В. Штерншис,

191. B.В. Гулий, Н.И. Северина // Сибир. вестник с.-х. науки. 1977. - № 2. - С. 46-48.

192. Шумаков, Е.М. Современные представления о специфике питания насекомых-фитофагов / Е.М. Шумаков, Н.М. Эдельман // Успехи современной биологии. 1979. - Т. 88. - № 2(5). - С. 277-291.

193. Эдельман, Н.М. Возрастные изменения физиологического состояния личинок некоторых древоядных насекомых в связи с условиями их питания / Н.М. Эдельман // Энтомологическое обозрение. 1963. Т XLII.1.1. C. 11-21.

194. Эдельман, Н.М. Выращивание фитофагов с различными типами питания на питательных средах с проростками бобовых / Н.М. Эдельман // Труды ВИЗР. Л, 1974. - Вып. 40. - С. 128-134.

195. Эдельман, Н.М. Пути использования кормовой специализации непарного шелкопряда в целях обоснования профилактических мероприятий / Н.М. Эдельман // Зоологический журнал. 1957. - № 3. - С. 408-420.

196. Эпова, В.И. Зоны вредоносности насекомых-филло фагов в Азиатской России / В.И. Эпова, А.С. Плешанов // Новосибирск: Наука, 1995.-47с.

197. Юшков, В.И. Биохимическая характеристика ассимиляционного аппарата сосны и березы в условиях Северного Урала / В.И. Юшков // Второе Уральское совещание по экологии и физиологии древесных растений. Уфа, 1965. - С. 43-44.

198. Abul-Nasr, S.E. Effects of nuclear polyhedrosis virus on various developmental stages of the cotton leafworm Spodoptera littoralis (Boisd) / S.E. Abul-Nasr, E.D. Ammar, S.M. Abul-Ela // J. Appl. Entomol. 1979. - Vol. 88. -P. 181-187.

199. Aruga, H. Induction of virus infections / H. Aruga // Insect pathology. -N.-Y. and L.: Acad. Press, 1963. Vol. 1. - P. 499-530.

200. Alberts, B. Molecular biology of the cell / B. Alberts, D. Bray, J. Lewis, M. Raff, K. Roberts, J.D. Watson // N.-Y. and L.: Garland Publishing, Inc., 1994,- 1994 p.

201. Altenkirch, W. Die nonne in Nordwestdent-Schaland 1977-1980 / W. Altenkirch // Aus. Schadlingsk. 1986. - Vol. 59. - № 4. - S. 67-74.

202. Anderson, R.M. Infections diseases and populations cycles of forest insects / R.M. Anderson, R.M. May// Science. 1980. - Vol. 210. - P. 658-661.

203. Antonovics, J. The cost of resistance and maintenance of genetic polymorphism in host-pathogen systems / J. Antonovics, P.H. Thrall // Proc. Royal Soc. London B, Biol. Sci. 1994. - Vol. 257. - P. 105-110.

204. Apple, J. L. Integrated pest management / J. L. Apple, R.F. Smith (ed.) // N.-Y. and L.: Plenum Press, 1976. 200 p.

205. Bejer, В. Nun moth outbreaks in Denmark and their association with site factors and climate / B. Bejer // For. Comm. Res. Dev. Pap. 1985. - Vol. 135. -P. 21-26.

206. Bergold, G.H. Isolation and chemical composition of the membranes of an their relation to the virus and polyhedral bodies / G.H. Bergold, E. Wellington // J. Bacterid. 1954. - Vol. 67. - P. 210-216.

207. Bergold, G.H. Viruses of insects / G.H. Bergold // Hand-buch der Virusforschung. 1958. - № 4. - S. 60-142.

208. Berryman, A.A. Dynamics of forest insect populations / A.A. Berryman (ed). // N-Y.: PI. Press, 1988.-603 p.

209. Berryman, A.A. What causes population cycles of forest Lepidopteral / Berryman A.A. // Trends Ecol. Evol. 1995. - Vol. 11. - P. 28-32.

210. Bilimoria, S.L. Genomic divergence among single nucleocapsid nuclear polyhedrosis viruses of Plusiin hosts / S.L. Bilimoria // Virology. - 1983. - Vol. 127. -№ l.-P. 15-23.

211. Bird, F.T. A virus disease of the European pine sawfly, Neodiprion sertifer (Geoffr.) / F.T. Bird, M.M. Wallen // Can. Entomol. 1953. - Vol. 85. -P.433-437.

212. Bird, F.T. Transmission of some insect viruses with particular reference to ovarial transmission and its importance in the development of epizootics / F.T. Bird // J. Insect. Pathol. 1961. - Vol. 3. - P. 352-380.

213. Bird, F.T. Vims diseases of sawflies / F.T. Bird // Can. Entomol. 1955. Vol. 87.- P. 122-124.

214. Black, B.C. Potentiation of epizootic viral infections of insects / B.C. Black // Patent USA № 5879674. 1999. - P. 1-6.

215. Bogenschutz, H. The gypsy moth situation in Germany / H. Bogenschutz // Proceeding USDA.-NE-188.- 1994.-P. 8-9.

216. Bogenschutz, H. Untersuchungen zum Massenwechsel des Schwammspinners, Lymantria dispar L., Baden-Wurttemberg / H. Bogenschutz, M. Kamnerer// Mitt. Dtsch. Ges. Allg. Und Angew. Entomol. 1995. -Vol. 10. № 1-6.-P. 113-117.

217. Boots, M. Density-independent resource limitation and the transmission of an insect pathogen / M. Boots // Oecologia. 2000. -Vol. 124. - P. 172-175.

218. Boots, M. Resourse limitation and the letal and subllethal effects of a viral pathogen in the Indian meal moth / M. Boots, M. Begon // Ecol. Entomol.1994.-Vol. 19.-P. 319-326.

219. Boots, M. The population dynamical implications of covert infections in host-microparasite interactions / M. Boots, J. Greenman, D. Ross, R. Normann, R. Hails, S. Sait // J. Animal. Ecol. 2003. Vol. 72. P. 1064-1072.

220. Boucias, D.G. Interinstar susceptibility of the fall webworm, Hyphantria cunea, to its nucleopolyhedrosis and granulosis viruses / D.G. Boucias, G.L. Nordin H J. Ivertebr. Pathol. 1977. - Vol. 30. - № 1. -P. 68-75.

221. Burden, J.P. Covert infections as a mechanism for long-term persistence of baculoviruses / J.P. Burden, C.P. Nixon, A.E. Hodgkinson, R.D. Rossee, S.M. Sait, L.A. King, R.S. Hails // Ecol. Letters. 2003. -Vol. 6. - P. 524-531.

222. Burden, J.P. Vertical transmission of sublethal granulovirus infection in the Indian meal moth, Plodia interpunctella / J.P. Burden, C.M. Griffiths, J.S. Cory, P. Smith, S.M. Sait // Molecul. Ecol. 2002. -Vol. 11.- P. 547-555.

223. Busvine, I.A. Critical review of the techniques insecticides / I.A. Busvine //London, 1971.-267 p.

224. Capinera, J.L. Transmission of nuclear polyhedrosis virus to gypsy moth larvae by Calosoma sycophanta / J.L. Capinera, P. Barbosa // Ann. Entomol. Soc.Amer.-1975.-Vol. 68. №3.- P. 593-594.

225. Carruthers, W.R. Recovery of pine beauty moth (Panolis flammea) nuclear polyhedrosis vims from pine foliage / W.R. Carruthers, J.S. Cory, P.F. Entwistle // J. Invert. Pathol.- 1988. Vol. 52. - № 1. - P. 27-32.

226. Cameron, E.A. The gypsy moth: how integrated is pest management / E.A. Cameron // Forest Ecol. and Manag. 1991. - Vol. 39. - № 1-4. - P. 113118.

227. Cooper, D. Hierarchical spatial structure of genetically variable nucleopolyhedrovirus infecting cyclic populations of western tent caterpillars / D. Cooper, J.S. Cory, J.H. Myers // Mol. Ecol. 2003a. - Vol. 12. - P. 881-890.

228. Crawford, A.M. A host-vims interaction in a pasture habitat, Wiseanna spp. {Lepidoptera: Hepialidae) and its baculovimses / A.M. Crawford, J. Kalmakoff// J. Invertebr. Pathol. -1977. Vol. 29. - P. 81-87.

229. Crone, E.E. The dynamics of carbon nutrient balance: effects of cottonwood to short - and long - term shade on beetle feeding preferences / E.E. Crone, C.G. Jones // J. Chem. Ecol. - 1999. - Vol. 25. - № 3. - P. 635-656.

230. Davidson, J. The influence of rainfall, evaporation and atmospheric temperature on fluctuations in the size of a natural population of Trips imagines (Thysanoptera) / J. Davidson, H.G. Andrewartha // J. Anim. Ecol. 1948. - Vol. 17.-P. 200-222.

231. Dercsen, A.C.G. Alteration of a lepidopteran peritrophic membrane by baculovirus and enhancement of a viral infection / A.C.G. Dercsen, R.R. Granados // Virology. 1988. - Vol. 167. - P. 242-250.

232. Dreistadt, S.H. Gypsy moth Eradication in Pacific Coast States: History and Evaluation / S.H. Dreistadt, D.l. Dahlsten // Bull. Entomol. Soc. Amer. -1989.-Vol. 35.-P. 13-19.

233. Doane, C.C. Ecology of pathogens of the gypsy moth // Perspectives in Forest Entomology / C.C. Doane // Anderson J. F., Kaya H. (eds.). New York: Academic Press, 1976. P. 285-293.

234. Doane, C.C. Trans-ovum transmission of a nuclear- polyhedrosis virus in the gypsy moth and the inducement of vims susceptibility / C.C. Doane // J. Invertebr. Pathol. -1969. Vol. 14.-P. 199-210.

235. Dwyer, G. Host dispersal and the spatial spread of insect pathogens / G. Dwyer, J.S. Elkinton // Ecology. 1995. -Vol. 76.- № 4. - P. 1262-1275.

236. Eastwell, K.C. Charakterisation of Cydia pomonella granulovirus from codling moths in a laboratory colony and in orchards of British Columbia / K.C. Eastwell, J.E. Cossentine, M.G. Bernardy // Ann. App. Biol. 1999. - Vol. 134.-P. 285-291.

237. Eidmann, H.H. Vims mot insecter / H.H. Eidmann // Skogs agaren. -1970. -№ 12. -P. 7-9.

238. Elam, P. Infectivity of Autographa californica nuclear polyhedrosis vims extracted with digestive fluids of Heliothis zea, Estigmene acrea, and carbonatesolutions / P. Elam, P.V. Vail, F. Schreiber // J. Invertebr. Pathol. 1990. Vol. 55.-P. 278-283.

239. Elkinton, J.S. Population dynamics of gypsy moth in North America / J.S. Elkinton // Ann. Rev. Entomol. 1990. - Vol. 35. - P. 517-596.

240. Elmore, J.C. Natural versus artificial dissemination of nuclear-polyhedrosis virus by contaminated adult cabbage loopers / J.C. Elmore, A.F. Howland // J. Insect Pathol. 1964. - Vol. 6. - P. 430-438.

241. Else, Y. Uber die Polyederkrankheit von Dasychira pudipunda und deren ubertrafung / Y. Else, W. Truts // Ans. Schadlihgskunde. 1966. - Vol. 39. -№ 3.-S. 39-42.

242. Engelhard, E.K. Developmental resistance in fourth instar Trichoplusia ni orally inoculated with Autographa califomica M nuclear polyhedrosis virus / E.K. Engelhard, L.E. Volkman // Virology. -1995. Vol. 209. - P. 384-389.

243. Etsel, L.K. Studies of transovum and transstadial transmission of a granulosis virus of the codling moth / L.K. Etsel, L.A. Falkon // J. Invertebr. Pathol. 1976.-Vol. 27.-№1.-P. 13-26.

244. Evans, H.F. The influence of larval maturation on responses of Mamestra brassicae L. to nuclear polyhedrosis virus infection / H. F. Evans // Arch, of Virol. 1983.- Vol. 75. - № 3. - P. 163-170.

245. Evans, H.F. Quantitative assessment of relationships between dosage and response of nuclear polyhedrosis virus of Mamestra brassicae / H.F. Evans // J. Invertebr. Pathol. 1981.-Vol. 37.-P. 101-109.

246. Harrison, S. Persistent, localized outbreaks in the western tussock moth Orgyia vetusta: the roles of resourse quality, predation and poor dispersal / S. Harrison // Ecol. Entomol. 1997. - Vol. 22. - № 2. - P. 158-166.

247. Haukioja, E. Induction of defense in trees / E. Haukioja II Ann. Rev. Entomol. 1991. Vol. 36. - Palo Alto (Calif.). - P. 25-42.

248. Hochberg, M.E. Non-linear transmission rates and dynamics of infectious disease /М.Е. Hochberg // J. Theor. Biol. 1991. - Vol. 153.- P. 301-321.

249. Hurpin, В. Evolution de deutilisation en lutte biologigue de preparations base de vims / B. Hurpin, L. Falcon // Bull. Soc. Entomol. Fr. 1984. - Vol. 89. -№ 1-4.-P. 794-800.

250. Filippov, N.A. The present state and future outlook of biological control in the USSR / N.A. Filippov // Acta Entomol. Fenn. 1989. - Vol. 53.-P. 1118.

251. Fosberg, M.A. Modeling airborne transport of the gypsy moth (Lepidoptera: Lymantriidae) larvae / M.A. Fosberg, M. Peterson // Agricult. and ForestMeteorol. -1986.-Vol. 38.-P. 1-8.

252. Fuxa, J.R. Polyhedra without virions in a vertically transmitted nuclear polyhedrosis vims / J.R. Fuxa, E.H. Weidner, A.R. Richter // J. Invertebr. Pathol. 1992. - Vol. 60. - P. 53-58.

253. Fuxa, J.R. Selection for an increased rate of vertical transmission of Spodoptera frugiperda (.Lepidoptera: Noctuidae) nuclear polyhedrosis vims / J.R. Fuxa, A.R. Richter // Environ. Entomol. 1991.- Vol. 20. - P. 603-609.

254. Fuxa, J.R. Stressors and rearing diseases of Trichplusia ni: evidence of vertical transmission of NPV and CPV / J.R. Fuxa, J.-S. Sun, E.H. Weidner, L.R. LaMotte // J. Invertebr. Pathol. 1999. - Vol. 74. - P. 149-155.

255. Fuxa, J.R. Vertical transmission of TnSNPV, TnCPV, AcMNPV, and possibly recombinant NPV in Trichplusia ni / J.R. Fuxa, A.R. Richter, A.O. Ameen, B.D. Hammock // J. Invertebr. Pathol. 2002. - Vol. 79. - P. 44-50.

256. Gaylord, E.S. Interactions between host plants, endophytic fungi and a phytophagous insect in an oak (Quercus grisea) hybrid zone /E.S. Gaylord, R.W. Preszler, W.J. Boecklen // Oecologia. 1996. - Vol. 105.- № 3. - P. 336342.

257. Giese, R.L. Cartographic comparisons of eurasian gypsy moth distribution {Lymantria dispar L.; Lepidoptera: Lymantriidae) / R.L. Giese, M.L. Schneider // Ent. new. 1979. Vol. 90. - № 1. - P. 1-16.

258. Glowacka, B. Choroby epizootyczne brudnicy mniszki (Lymantria monacha L.) I mozliwosci mikrobiologicznego jej zwalczania / B. Glowacka // Prace Instytutu Badawczego Lesnictwa. Warszaw, 1989. - № 691. - 71 p.

259. Glowacka-Pilot, B. Zvalczanie gasienic brudnicy mniszki (Lymantria monacha L.) w drzewostanach sosnwych pray uzycin wirusa poliedrosy / B. Glowacka-Pilot // Prace Instytutu Badawczego Lesnictwa. Warszaw, 1983. -№618. - P. 55-65.

260. Goldberg, A.V. Effect of the epap granulovirus on its host, Epinotia aporema (Lepidoptera: Tortricida) / A.V. Goldberg, V. Romanowski, B.A. Federici, A. Sciocco de Cap // J. Invert. Pathol. 2002. - Vol. 80. - P. 148-159.

261. Goulson, D. Sublethal effects of baculovirus in the cabbage moth, Mamestra brassicae / D. Goulson, J.S. Cory // Biol. Control. 1995. - Vol. 5. -P. 361-367.

262. Hajek, A.E. Distribution of resting spores of the Lymantria dispar pathogen Entomophaga maimaiga in soil and on bark / A.E. Hajek, L. Bauer, M.L. McManus, M.M. Wheeler // BioControl. 1998. - Vol. 43. - P. 189-200.

263. Hajek, A.E. Effect of host insects on activation of Entomophaga maimaiga resting spores / A.E. Hajek// J. Invertebr. Pathol. 2001. - Vol. 77. -P. 290-291.

264. Hajek, A.E. Isolating Entomophaga maimaiga using resting spore-bearing soil / A.E. Hajek, M. Shimazu, B. Knoblauch // J. Invertebr. Pathol. 2000. -Vol. 75.-P. 298-300.

265. Harris, B. Poland: management of forest / B. Harris, A. Lavers // Span. 1985.-Vol. 28.-№ 1.-P. 8-10.

266. Haukioja, E. Induction of defense in trees / E. Haukioja // Ann. Rev. Entomol. 1991. - Vol. 36. - Palo Alto (Calif.). - P. 25-42.

267. Herniou, E.A. Ancient coevolution of baculoviruses and their insect hosts / E.A. Herniou, J.A. Olszewski, D.R. O'Reilly, J.S. Cory // J. Virol. 2004. -Vol. 78. - № 7. - P. 3244-3251.

268. Herniou, E.A. Use of whole genome sequence data to infer baculovirus phylogeny / E.A. Herniou, T. Luque, X. Chen, J.M. Vlak, D. Winstanley, J.S. Cory, D.R.O'Reilly//J. Virol. -2001. Vol. 75. - № 7. - P. 8117-8126.

269. Himeno, M. The occult virus of NPV of the silkworm larvae / M. Himeno, F. Matsubara, K. Hayashiya // J. Invertebr. Pathol. 1973. - Vol. 22. - № 2. -P. 292-295.

270. Hoover, K. Systemic component to intrastadial developmental resistance in Lymantria dispar to its baculovirus / K. Hoover, M.J. Grove, S. Su // Biol. Control. 2002. -Vol. 25. - P. 92-98.

271. Howarth, F.G. Environmental impacts of classical biological control / F.G. Howarth // Ann. Rev. Entomol. 1991. - Vol. 36. - P. 485-509.

272. Hoy, M.A. Rapid response to selection for nondiapausing gypsy moth / M.A. Hoy//Science.- 1977.-Vol. 196. -№ 4297. -P. 1462-1463.

273. Ноу, М.А. Development hatch dates, overwintering success, and spring emergence of a "non diapausing" gypsy moth strain in field cages / M.A. Hoy, N. F. Knop // Can. Entomol. 1978. - Vol. 110. - № 9. - P. 1003-1008.

274. Hughes, D.S. Activation and detection of a latent baculovirus resembling Mamestra brassicae nuclear polyhedrosis virus in M. brassicae insects / D.S. Hughes, R.D. Rossee, L.A. King//Virology. 1993.-Vol. 194.-P. 608-615.

275. Hughes, D.S. Evidence for the presence of a low-level, persistent baculovirus infection of Mamestra brassicae insects / D.S. Hughes, R.D. Possee, L.A. King // J.Gen. Virol. 1997. -Vol. 78. - P. 1801-1805.

276. Jaques, R.P. Application of viruses to soil and foliage for control of the cabbage looper and imported cabbage worm / R.P. Jaques // J. Invertebr. Pathol. 1970.-Vol. 15.-P. 360-365.

277. Jurkovicova, M. Activation of occult virus infections in larvae of Adoxophyes orana (Lepidoptera: Tortricidae) and Barathra brassicae (Lepidoptera: Noctuidae) by foreign polyhedra / M. Jurkovicova // J. Invertebr. Pathol.- 1979. Vol. 34. -P. 213-223.

278. Kaupp, W.J. Horseradish peroxidase-labelled probes and enhanced chemiluminescence to detect baculoviruses in gypsy moth and eastern spruce budworm larvae / W. J. Kaupp, P.M. Ebling // J. Virol. Methods. 1993. -Vol. 44.-P. 89-98.

279. Kaupp, W.J. Persistence of Neodiprion sertifer (Hymenoptera: Diprionidae) nuclear polyhedrosis virus on Pinus contorta foliage / W.J. Kaupp I I Can. Entomol. 1983. - Vol. 115. - № 8. - P. 869-873.

280. Kawabarata, T. Isolation and structure of nuclear polyhedrosis virus from polyhedra of the silkworm, Bombyx mori. / T. Kawabarata, K. Matsumoto // Appl. Entomol. Zool. 1973. - Vol. 8.- P. 227-233.

281. Keating, S.T. DNA hybridization assay for detection of gypsy moth nuclear polyhedrosis virus in infected gypsy moth {Lymantria dispar L.) larvae / S.T. Keating, J.P. Burand, J.S. Elkinton // Appl. Environ. Microbiol. 1989. -Vol. 55.-P. 2749 -2754.

282. Keating, S.T. Leaf phenolic inhibition of gypsy moth nuclear polyhedrosis virus. Role of polyhedral inclusion body aggregation / S.T. Keating, M.D. Hunter, J.C. Schults // J. Chem. Ecol. 1990. - Vol. 16. - № 5. - P. 1445-1457.

283. Keena, M. A. Effects of laboratory rearing on gypsy moth {Lepidoptera: Lymantriidae) / M.A. Keena, T.M. О 1 Dell // Gen. Tech. Rep. NE 181. Radnor, PA: USDA Forest Service, Northeastern Forest Experiment Station. 1994. -23 p.

284. Keena, M.A. Survival and development of Lymantria monacha {Lepidoptera: Lymantriidae) on North American and introduced Eurasian tree species / M.A. Keena // J. Econ. Entomol. 2003. - Vol. 96. - № 1. - P. 43-52.

285. Knell, R.J. Transmission of Plodia interpunctella granulesis vims does not conform to the mass action model / R.J. Knell, M. Begon, D.J. Thompson // J. Animal. Ecol. -1998. Vol, 67. - № 4. - P. 592-599.

286. Krieg A. Arthpopodenviren. / A. Krieg // Stuttgart: Thime, 1973. 238s.

287. Kudler, J. Vysledky pokusu о vyvolani nakasy populace Hrebenuie rysave /Neodiprion sertifer (Geoffr.) / rospthylen vim / J. Kudler 11 Lesnictvi. — 1981. — Vol. 27. № 7. - P. 621-627.

288. Kukan, B. DNA hybridization assay for detection of nuclear polyhedrosis virus in tent caterpillars / B. Kukan, J.H. Myers // J. Invertebr. Pathol. -1995. -Vol. 66.-P. 231-236.

289. Kukan, B. Vertical transmission of nucleopolyhedrovirus in insects / B. Kukan // J. Invertebr. Pathol. 1999. - Vol. 74. - P. 103-111.

290. Kunimi, Y. Transovum transmission of a nuclear polyhedrosis vims of the fall webvorn, Hyphantria cunea Drury, Lepidoptera: Arctiidae / Y. Kunimi // Appl. Entomol. and Zool. 1982. - Vol. 17. - № 3. - P. 410-417.

291. Magnoler, A. A wheat germ medium for rearing of the gypsy moth, Lymantria dispar L. / A. Magnoler // Entomol. Exp. App. 1970a. - Vol. 15. -P. 401-406.

292. Magnoler, A. Bioassay of nucleopolyhedrosis virus of the gypsy moth, Porthetria dispar / A. Magnoler // J. Invertebr. Pathol. 1974. - Vol. 25. - P. 343-348.

293. Magnoler, A. Susceptibility of gypsy moth larvae to Lymantria sp. nuclear and cytoplasmic viruses / A. Magnoler // Entomophaga. 19706. - Vol. 15. -P. 407-412.

294. Majunke, C. Waldschutzsituation 2000/2001 in Brandenburg und Berlin / C. Majunke, C. Walter // AFZ / Wald. 2001. - Vol. 56. - № 7. - P. 352-354.

295. Manji, G.A. Baculovirus inhibitor of apoptosis functions at or upstream of the apoptotic suppressor P 35 to prevent programmed cell death / G.A. Manji, R.R. Hozar, D.J. LaCount, P.D. Frisen // J. Virol. 1997. - Vol. 71. - P. 45094516.

296. Marovic, R. Results of the crossing inbred strain of gypsy moth, Lymantria dispar L., with wild moths / R. Marovic // Z. angew. Entomol. -1981.-Vol. 91.-№ l.-P. 107- 111.

297. Marshall, E. The summer of the gypsy moth / E. Marshall // Science. -1981.-Vol. 213.-№4511.-P. 991-993.

298. Mason, C.J. Larval dispersal of the Gypsy moth / C.J. Mason, M.L. McManus // The Gypsy Moth: Research Toward Integrated Pest Management. U. S. Department of Agriculture Technical Bulletin. Doane C.C., McManus M.L. (eds.).- 1981.-№ 1584.-P. 161-202.

299. Matthews, H.J. Lethal and sublethal effects of a granulovirus on the tomato moth Lacanobia oleracea / H.J. Matthews, I. Smith, J.P. Edwards // J. Invert. Pathol. 2001. - Vol. 80. - P. 73-80.

300. Meade, T. Interactions among plants, herbivores and entomopathogens: implications for pest management / T. Meade, G.W. Felton, S.Y. Young // Eur. Jorn. Plant Pathol. 1995. -XI11 Int. Plant Prot. Congr. - The Haque 2-7 July. - № 435.

301. Mellerik, D.M. Physical state of the latent herpes simplex virus genome in a mouse model system: evidence supporting an episomal state / D.M. Mellerik, N.M. Fraser // Virology. 1987. - Vol. 158. - P. 265-275.

302. McVean, R.I.K. Dietary stress reduces the susceptibility of Plodia interpunctella to infection by a granulovirus / R.I.K. McVean, S.M. Sait, D.J. Thompson, M. Begon // Biol. Control. 2002. - Vol. 25. - P. 81-84.

303. Milks, M.L. Costs and stability of cabbage looper resistance to a nucleopolyhedrovirus / M.L. Milks, J.M. Myers, M.K. Leptich // Evolution. Ecol. 2002. - Vol. 16. - P. 369-385.

304. Milks, M.L. Influence of larval age on the lethal and sublethal effects of nucleopolyhedrovirus of Trichoplusia ni in the cabbage looper / M.L. Milks I. Burnstyn, J.M. Myers//Biol. Control.- 1998.-Vol. 12.-P. 119-126.

305. Milks, M.L. The development of larval resistance to a nucleopolyhedrovirus is not accompanied by an increased virulence in the virus / M.L. Milks, J.M. Myers // Evolution. Ecol. 2001. - Vol. 14. - P. 645-664.

306. Miller, L.K. Insect viruses, sequences, insecticidal compositions and methods / L.K. Miller, B.C. Black, P.M. Dierks // Patent USA № 5858353. -1999.-P. 1-5.

307. Mohamed, M.A. Persistence in soil and on foliage of nucleopolyhedrosis virus of the European pine sawfly, Neodiprion sertifer (Heminoptera: Diprionidae) / M.A. Mohamed, H.C. Coppel, J.D. Podgwaite // Environ. Entomol. 1982. - Vol. 11.-P. 1116-1118.

308. Moran, P.J. Plant mediated interactions between insects and a fungal plant pathogen and the role of plant chemical responses to infection / P .J. Moran // Oecologia. - 1998. - Vol. 115. -№ 4.- P. 523-530.

309. Montgomery, M.E. The gypsy moth. A westward migrant / M.E. Montgomery, W.E. Wallner // Dynamics of forest insect populations. Berryman A. (Ed.). 1988. - P. 354-375.

310. Morewood, P. Towards pheromone-based detection of Lymantria monacha (Lepidoptera: Lymantriidae) in North America / P. Morewood, G. Gries, D. Haussler, K. Moller, J. Liska, P. Kapitola, H. Bogenschutz // Can. Entomol. Vol. 131. - P. 687-694.

311. Murray, K.D. Environmental contamination of egg masses as a major component of transgenerational transmission of gypsy moth nuclear polyhedrosis virus (LdMNPV) / K.D. Murray, J.S. Elkinton // J. Invertebr. Pathol. 1989. -Vol. 53. - № 3. - P. 324-334.

312. Murray, K.D. The effect of gypsy moth metamorphosis on the development of nuclear polyhedrosis vims infection / K.D. Murray, K.S. Shieds, J.P. Burand, J.S. Elkinton // J. Invertebr. Pathol. 1991. - Vol. 57. - P. 352-361.

313. Myers, J.H. Can a general hypothesis explain population of forest Lepidoptera / J.H. Myers // Adv. Ecol. Res. 1988. - Vol. 18. - P. 179-284.

314. Nair, K.P. Transmission of nuclear polyhedrosis virus of rice swarming caterpillar Spodoptera mauritia (Boisduvae) through egg / K.P. Nair, J.A. Vasudevan // Environ. Entomol. 1985. -Vol. 10. - № 1. - P. 1-6.

315. Neeglund, Y.F. Transmission of nuclear polyhedrosis virus in laboratory population of the armyworm, Mythimna (Pseudoletia) separata / Y.F. Neeglund, S.B. Mathad // J. Invertebr. Pathol. 1978. -Vol. 31. - P. 143-147.

316. Nicholson, A.J. An outline of the dynamics of animal populations / A.J. Nicholson // Aust. J. Zool. 1954. - Vol. 2. - P. 9-65.

317. Nicholson, A.J. The balance of animal populations / A.J. Nicholson // J. Anim. Ecol. 1933. -Vol. 2. - P. 132-178.

318. Novotny, J. The use of nucleopolyhedrosis virus (NPV) and microsporidia in the control of the gypsy moth {Lymantria dispar L.) / J. Novotny // Folia Parasitol. 1988. -Vol. 35. - № 3. - P. 199-208.

319. Oakland, J.S. Pest management: mead for integrated approach / J.S. Oakland//Pesticides.- 1981.-Vol. 18.-№ 9. P. 3-6.

320. O'Dell, T.M. A technique for rearing the gypsy moth, Porthetria dispar (L.) on an artificial diet / T.M. O'Dell, W.D. Rollinson // J. Econ. Entomol. -1966. Vol. 59. - № 3. - P. 741-742.

321. Olofsson, F. Environmental persistence of the European pine sawfly in relation to epizootics in Swedish Scots pine forests / F. Olofsson // J. Invertebr. Pathol.- 1988.-Vol. 52.-№ i. p. 119-129.

322. Oomens, A.G.P. The baculovirus gp64 envelope fusion protein: synthesis, oligomerization, and processing / A.G.P. Oomens, S.A. Monsma, G.W. Blissard // Virology. 1995. -Vol. 209. - P. 592-603.

323. O'Reilly, D.R. A baculovirus blocks insect molting by producing ecydysteroid UDP-glucosyl transferase / D.R. O'Reilly, L.K. Miller // Science. 1989. - Vol. 245. - P. 1110-1112.

324. Ossowski, L.L.J. The biological control of the wattle bagworm, Kotochalia junodi (Heyl) by a virus / L.L.J. Ossowski // Annu. Appl. Biol. -1960. Vol. 48.-P. 299-313.

325. Park, E.J. Baculovirus replication alters hormone regulated host development / E.J. Park, C.-M. Yin, J.P. Burand // J. Gen. Virol. - 1996. -Vol. 77. -№3.-P. 547-554.

326. Pearson, M.N. Identification of the Lymantria dispar nucleopolyhedrovirus envelope fusion protein provides evidence for a phylogenetic division of the Baculoviridae / M. N. Pearson, C. Groten, G.F. Rohrmann // J. Virol. 2000. - Vol. 74. - P. 6126-6131.

327. Pimentel, D. Environmental risks of biological pest controls / D. Pimentel, C. Glenister, S. Fast, D. Gallahan// Oikos. 1984. -Vol. 42.- № 3.- P. 283-290.

328. Podgwaite, J.D. Development of insect viruses as pesticides: the case of the gypsy moth (.Lymantria dispar L.) in North America / J.D. Podgwaite, H.M. Mazzone // Prot. Ecol. 1982. - Vol. 3. - P. 219-227.

329. Podgwaite, J.D. Efficacy of aerially-applied Gypchek against gypsy moth (Lepidoptera: Lymantriidae) in the Appalachian highlands / J.D. Podgwaite, R.C. Reardon, G.S. Walton, J. Witcosky // J. Entomol. Science. 1992. Vol. 27.-P. 337-344.

330. Podgwaite, J.D. Efficacy of ground application of the gypsy moth (Lepidoptera: Lymantriidae) nucleopolyhedrosis virus product, Gypchek / J.D.

331. Podgwaite, R.C. Reardon, D.M. Kolodny-Hirsch, G.S. Walton // J. Econ. Entomol. 1991. - Vol. 84. - P. 440-444.

332. Podgwaite, J.D. Environmental persistence of the nucleopolyhedrosis virus of the gypsy moth, Lymantria dispar / J.D. Podgwaite, S.K. Stone, R.T. Zerillo, R.B. Bruen // Environ. Entomol. 1979. - Vol. 8. - № 3. - P. 528-536.

333. Podgwaite, J.D. Gypchek. Biological insecticide for the gypsy moth / J.D. Podgwaite // J. Forestry. 1999.-Vol. 97. - № 3.- P. 16-19.

334. Podgwaite, J.D. Latency of insect viruses / J.D. Podgwaite, H.M. Mazzone // Adv. Virus Res. Orlando, 1986. - Vol. 31. - P. 293-320.

335. Popham, H.J.R. Both Lymantria dispar nucleopolyhedrovirus Enhancin genes contribute to viral potency H.J.R. Popham, D.S. Bischoff, J.M. Slavicek //J. Virol.-2001.-Vol. 75.-№ 18.-P. 8639-8648.

336. Raimo, B. Vectoring gypsy moth nuclear polyhedrosis vims by Apanteles melanoscelus (Нут/. Braconidae) / B. Raimo, R.C. Reardon, J.D. Podgwaite // Entomophaga. 1977. - Vol. 22. - № 2. - P. 207-215.

337. Reardon, R.C. Appalachian gypsy moth integrated pest management demonstration project / R.C. Reardon // 18th Int. Congr. Entomol. Vancouver, 1988.- P. 416.

338. Reardon, R.C. Summary of efficacy evaluations using aerially applied Gypchek against gypsy moth in the USA / R.C. Reardon, J.D. Podgwaite // J. Environ. Science and Health. 1994. - Vol. 29. - P. 739-756.

339. Reeson, A.F. Baculovims resistance in the noctuid Spodoptera exempta is phenotypically plastic and responds to population density / A.F. Reeson, K. Wilson, A. Gunn, R.S. Hails D. Goulson // Proc. R. Soc. Lond. B. -Vol. 265. -P. 1787-1991.

340. Reineke, A. Flight ability of gypsy moth females (Lymantria dispar L.) (Lep., Lymantriidae): a behavioural feature characterizing moths from Asia? / A. Reineke, C.P.W. Zebitz // J. Appl. Entomol. 1998. -Vol. 122. - P. 307-310.

341. Richards, A. Foraging in pathogen reservoir can lead to local host population exinction: a case study of Lepidoptera virus interaction / A. Richards, J. Cory, M. Speight, T. Williams // Oecologia. - 1999. - Vol. 118. - № l.-P. 29-38.

342. Richerson, J.V. Egg parameters as a measure of population qualityof the gypsy moth, Lymantria dispar / J.V. Richerson, E.A. Cameron, D.E. White, M. Walsh // Ann. Entomol. Soc. Amer. 1978. -Vol. 71. - № 1. - P. 60-64.

343. Ridet, J.M. Etude des conditions optimales d'elevage et d'alimentation de Lymantria dispar L. / J.M. Ridet // Ann. Soc. Entomol. de France. 1972. - Vol. 8.-P. 653-658.

344. Roelvink, P.W. Characterization of the Helicoverpa armigera and Pseudaletia unipuncta granulovirus enhancin genes / P.W. Roelvink, B.G. Corsaro, R.R. Granados // J. Gen Virol. 1995. Vol. 76. -P. 2693-2705.

345. Rothman, L.D. Debilitating effects of viral disease on host Lepidoptera / L.D. Rothman, J.H. Myers // J. Invertebr. Pathol. 1996. - Vol. 67. - P. 1-10.

346. Sait, S.M. Effect of a fertility-reducing baculovirus on sperm numbers and sizes in the indian meal moth, Plodia interpunctella / S.M. Sait, M.J.G. Gage, P.A. Cook // Function. Ecol. 1998. - Vol. 12. - P. 56-62.

347. Sait, S.M. Long-term population dynamics of the Indian meal moth Plodia interpunctella and its granulesis virus / S.M. Sait, M. Begon, D.J. Thompson // J. Animal. Ecol. 1994a. -Vol. 63. - P. 861-870.

348. Sait, S.M. The influence of a sublethal baculovirus infection in the indian meal moth Plodia interpunctella / S.M. Sait, M. Begon, D.J. Thompson // J. Animal Ecol. 1994b. - Vol. 63. - P. 541-550.

349. Schmidt, L. Granulosis a new virus disease of the fall webworm II L. Schmidt, G. Philips II Fac. Agr. Forestry. Inst. Entomol. - Zagreb, 1958. - № 1. -27 p.

350. Schowaiter, T.D. Herbivore in forested ecosystems / T.D. Schowalter, W.W. Hargrowe, D.A. Crossley // Ann. Rev. Entomol. -1986. Vol. 31. - P. 177-196.

351. Schults, J.C. Hostplant, larval age, and feeding behavior influence midgut pH in the gypsy moth (Lymantria dispar) / J.C. Schultz, M.J. Lechowicz // Oecologia.- 1986.-Vol. 71.-P. 133-137.

352. Schults, J.C. Impact of induced the responses on gypsy moth populations / J.C. Schults, M. Rossiter // Proc. 18th Int. Congr. Entomol. Vancouver, 1988. -P. 167.

353. Schults, J.C. Oak loaf quality delaines in response to defoliation by gypsy moth larvae / J.C. Schultz, J.T. Baldwin // Science. 1982. - Vol. 271. - № 9. -P. 149-150.

354. Schults, J.C. The multimillion-dollar gypsy moth question / J.C. Schults // Natur. Hist. 1991. - № 6. - P. 40-44.

355. Schwenke, W. Die Forstschadlinge Europas / W. Schwenke // Bd. 3. -Schmetterlinge, 1978. S. 349-368.

356. Shapiro, M. Biological activity of Lymantria dispar nucleopolyhedrosis virus from living and virus-killed larvae / M. Shapiro, R.A. Bell // Ann. Entomol Soc. Amer.- 1981.-Vol. 74.-№ 1.-P. 27-28.

357. Shapiro, M. Effect of nemm seed extract upon the gypsy moth (Lepidoptera, Lymantriidae) and its nuclear polyhedrosis virus / M. Shapiro, J. L. Robertson, R. E. Webb // J. Econ. Entomol. 1994. - Vol. 87. - № 2. P. -356-360.

358. Shapiro, M. Evalution of various artificial diets for in vivo production of the gypsy moth nucleopolyhedrosis virus / M. Shapiro, R.A. Bell, C.D. Owens // J. Econ. Entomol. 1981 a. - Vol. 74. - № 3. - P. 341-343.

359. Shapiro, M. Simplified efficient system for in vivo mass production of the gypsy moth nucleopolyhedrosis virus / M. Shapiro, C.D. Owens, R.A. Bell, H.A.Wood//J. Econ. Entomol.-1981 6. Vol. 74.-№ l.-P. 110-111.

360. Shapiro, M. Yield and activity of gypsy moth {Lepidoptera: Lymantriidae) nucleopolyhedrosis virus recovered from survivors of viral challenge / M. Shapiro, J.L. Robertson // J. Econ. Entomol. 1987. -Vol. 80. -P. 901-905.

361. Sheppard, R.F. Dosage-mortality and time- mortality studies of a granulesis virus in a laboratory strain of the codling moth, Laspeuresia pomonella / R. F. Sheppard, G.R. Stairs // J. Invertebr. Pathol. 1977. - Vol. 29.-№ 2.-P. 216-221.

362. Shieh, T. R. Production and efficacy of baculoviruses / T.R. Shieh, G.T. Bohmfalk // Biotechnol. and Bioeng. 1980. - Vol. 22.-№7.-P. 1357-1375.

363. Slavicek, J.M. Strain of gypsy moth virus with enhanced polyhedra and budded vims production / J.M. Slavicek, N. Hayes-Plasolles // Patent USA № 5582913.- 1999.-P. 1-7.

364. Sliva, E. Prognozovanie wystepewania brudnicy mniszki v latax 1978-1984/E. Sliva// Las. Pol. 1984.-№ 6.-P. 25-27.

365. Smirnoff, W.A. Trans-ovum transmission of virus of Neodiprion swainei Middleton / W.A. Smirnoff// J. Insect. Pathol. 1962. - Vol. 4. -№ 2. - P. 192200.

366. Smith, K.M. Insect virology / K.M. Smith // N.-Y. and L.: Acad. Press, 1967.- 256 p.

367. Smits, P.H. Biological activity of Spodoptera exigua nuclear polyhedrosis vims againts S. exigua larvae / P.H. Smits, J.M. Vlak // J. Invertebr. Pathol. -1988.-Vol. 51.- P. 107-114.

368. Soikkonen, K. Nuclear polyhedrosis virus of the European pine sawfly, Neodiprion sertifer (Geoffr.) retains infectivity in soil treated with simulated acid rain / K. Soikkonen // J. Appl. Entomol. 1995. -Vol. 119. - № 7. - P. 495-499.

369. Stairs, G.R. The effect of metamorphosis on nuclear polyhedrosis vims infection on certain Lepidoptera / G.R. Stairs // Can. J. Microbiol. 1965. - Vol. 11.-P. 509-512.

370. Steinhays, E.A. Crowding as a possible stress factor in insect disease / E.A. Steinhays // Ecology. 1958.- Vol. 39. - P. 503-514.

371. Tanada, Y. Recent advances in insect virology / Y. Tanada // Proc. Haw. Entomol. Soc. 1970. - Vol. 21.- № l.-P. 113-227.

372. Tatchell, G.M. The transmission of a granulosis vims folloving contamination of Pieris rapae adults / G.M. Tatchell // J. Invertebr. Pathol. -1981.-Vol. 37.-P. 210-213.

373. Teakle, R.E. Nuclear polyhedrosis vims productionin Heliothis armigera infected at different larval ages / R.E. Teakle, V.S. Byrne // J. Invertebr. Pathol. 1989.-Vol. 53.-№ l.-P. 21-24.

374. Thompson, W.R. The utility of mathematical methods in relation to work on biological control / W.R. Thompson // Ann.Appl. Biol. 1930. - Vol. 17. -P. 641-648.

375. Tinsley, T.W. The potential of insect pathogenic viruses as pesticidal agents / T.W. Tinsley // Ann. Rev. Entomol. 1979. - Vol. 24.-P. 63-87.

376. Urguhart, F.A. Virus-caused epizootic a factor in population fluctuations of the monarch butterfly / F.A. Urguhart // J. Invertebr. Pathol. 1966. - Vol. 8. -P. 492-495.

377. Vago, C. Phenomenes de "Latentia" dans une maladia a ultravirus des insects / C. Vago // Rev. Can. Biol. 1963. - Vol. 10. -№ 4. - P. 299-308.

378. Vail, P. V. Susceptibility of the pupa of the cabbage looper, Trichplusia ni, to nucleopolyhedrosis virus / P.V. Vail, I.M. Hall // J. Invertebr. Pathol. 1969. -Vol. 14.-P. 227-236.

379. Vlak, J. M. Identification of two nuclear polyhedrosis viruses from the cabbage moth, Mamestra brassicae / J. M. Vlak, A. Groner 11 J. Ivertebr. Pathol. 1980. - Vol. 35. -№ 2.-P. 269-278.

380. Wallner, W.E. Attractancy to light and flight behavior of asian gypsy moth females / W.E. Wallner // Proceeding of the 1993 annual gypsy moth review, 1993.-P. 30 33.

381. Wang, C.-H. Nested polymerase chain reaction and in situ hybridization for detection of nucleopolyhedrosis / C.-H. Wang, H.-N. Yang, H.-C. Liu // J.Virol. Methods. -2000. Vol. 24. - P. 65-75.

382. Wang, P. An intestinal mucin is the target for a baculovirus enhancin / P. Wang, R.R. Granados // Proc. Nat. Acad. Sci. USA. 1997. - Vol. 94 - P. 69776982.

383. Wang, P. Interaction of Trichoplusia ni granulesis virus-encoded enhancin with the midgut epithelium and peritrophic membrane of four lepidopteran insects / P. Wang, P.A. Hammer, R.R. Granados // J. Gen. Virol. -1994.-Vol. 66.-P. 541-550.

384. Wang, P. Observetions on the presence of the peritrophic membrane in larval Tricoplusia ni and its role in limiting baculovirus infection / P. Wang, R.R. Granados // J. Invertebr. Pathol. -1998. -Vol. 72. P. 57-62.

385. Ward, V.K. Comparison of a DNA DNA dot-blot hybridization assay with light microscopy and radioimmunoassay for detection of a nuclear polyhedrosis virus / V.K. Ward, S.B. Fleming, J. Kalmakoff // J. Virol. Methods. - 1987.-Vol. 15.-P. 65-73.

386. Washburn, J.O. Insect protection against viruses / J.O. Washburn, B.E. Kirkpatrick, L.E. Volkman // Nature. 1996. - Vol. 383. - P. 767.

387. Webb, R. Hydraulic spray application of Gypchek as a homeowner control tactic against gypsy moth (Lepidoptera: Lymantriidae) / R. Webb, J. Podgwaite, M. Shapiro, K. Tatman, L. Douglass // J. Entomol. Science. 1990. -Vol. 25.-P. 383-393.

388. Wellington, W.C. Population quality and the maintenance of nuclear polyhedrosis between outbreaks of Malacosoma pluviale (Dyar) / W.C. Wellington 11 J. Invertebr. Pathol. 1962. - № 4. - P. 285-305.

389. Weseloh, R.M. Epizootiology of the fungus Entomophaga maimaiga, and its imact on gypsy moth populations / R.M. Weseloh, T.G. Andreadis 11 J. Invertebr. Pathol. 1992.-Vol. 59. - P. 133-141.

390. Weseloh, R.M. Laboratory assessment of forest microhabitat substrates as sources of the gypsy moth nuclear polyhedrosis virus / R.M. Weseloh, T.G. Andreadis // J. Invertebr. Pathol. 1986. -Vol. 48. - P. 27-33.

391. Westwood, J.A. Analysis of alternative poly(A) signals for use in baculovirus expression vectors / J.A. Westwood, I.M. Jones, D.H.L. Bishop // Virology. 1993. -Vol. 195. - P. 90-99.

392. Wilson, K. Density-dependent prophylaxis: evidence from Lepidoptera baculovirus interaction? / K. Wilson, A.F. Reeson // Ecol. Entomol. 1998. -Vol. 23.- № 1. - P. 100-101.

393. Wood, H.A. Do latent baculoviruses exist and what is their importance? / H.A. Wood, I.R.L. Smith, N.E. Crook // Proc. 18th Int. Cong. Entomol. -Vancouver, 1988. P. 251.

394. Woods, S.A. Bimodal patterns of mortality from nuclear polyhedrosis virus in gypsy moth (Lymantria dispar L.) populations / S.A. Woods, J.S. Elkinton//J. Ivertebr. Pathol. 1987.-Vol. 50.-№ 2. P.-151-157.

395. Yamao, M. Gene targeting in the silkworm by use of a baculovirus I M. Yamao, N. Katayama, H. Nakazawa, M. Yamakawa, Y. Hayashi, S. Нага, K. Kamei, H. Mori // Genes $ Dev. 1999. - Vol. 13. - P. 511 -516.

396. Yadava, R.L. Studdien uber den einflub von temperatur und relativer luflfeuchtigkeit auf die entwickhmg der kernpoiyedrose der none / R.L. Yadava // Z. Angew. Entomol. 1970. - № 2. - P. 167-171.

397. Young, S.Y. Effect of nuclear polyhedrosis virus in Spodoptera ornitogalli larvae on post larval stages and dessimination of adults / S.Y. Young // J. Ivertebr. Pathol. 1990. -Vol. 55. - P. 69-75.

398. Young, S.Y. Nuclear polyhedrosis vims infection of Pseudoplusia includens (Lep.: Noctuidae) larvae: effect on post larval stages and transmission / S. Y. Young, W.C. Yearian // Entomophaga. 1982. - Vol. 27. - P. 61-66.