Вариабельность биохимического состава Brassica oleracea var. acephala в зависимости от условий выращивания и элементов минерального питания тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 00.00.00, кандидат наук Антех Джойс Дедеи

• Антех Джойс Дедеи
• кандидат наук
• 2024

Оглавление диссертации кандидат наук Антех Джойс Дедеи

СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ

ВВЕДЕНИЕ

Глава 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

1. 1 Капуста Кейл

1.1.1 Ботанико-биологические свойства семейства Brassicaceae

1.1.2 Фотохимическая активность капусты кейл

1.2 Вторичные метаболиты и факторы, влияющие на их накопление

1.2.1 Метаболиты

1.2.1.1 Фенольные соединения

1.2.1.2 Азот содержащие соединения

1.2.1.3 Терпеноиды

1.2.2 Факторы, влияющие на синтез вторичных метаболитов

1.3 Минеральные вещества

1.4 Пироуголь (биочар)

1. 5 Гуминовые вещества

Глава 2 МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЙ

2.1Объект исследования

2.2Схема экспериментов

2.3 Методы исследований

2.3.1Измерение сухой массы листьев

2.3.2 Определение содержания витамина С

2.3.4 Определение содержания каротиноидов

2.3.5 Определение суммарного содержания водорастворимых фенольных соединений

2.3.6 Количественное определение флавоноидов

2.3.7 Определение общей антиоксидантной активности (ОАА)

2.3.8 Определение содержания малонового диальдегида

2.3.9 Определение содержания Сахаров антронным методом

2.3.10 Определение содержания белка по методу Лоури

2.3.11 Определение содержания фенольных соединений методом высокоэффективной жидкостной хроматографии (ВЭЖХ)

2.3.12 Выделение тотальной РНК, синтез кДНК и анализ экспрессии генов HCT, F3 'H и CHS

2.3.13 Количественное определение уровня экспрессии

матричной РНК (мРНК)

2.3.13 Статистическая обработка данных

Глава 3 РЕЗУЛЬТАТЫ И ИССЛЕДОВАНИЙ И ИХ ОБСУЖДЕНИЕ

3.1 Фитохимический состав капусты кейл (B. oleracea var. acephala), выращенной в полевых условиях и в защищенном

грунте

3.2 Влияние органо-минеральных добавок н афитохимический состав и антиоксидантную активность капусты кейл

3.2.1 Влияние корневого питания на содержание аскорбиновой кислоты (витамина С)

3.2.2 Влияние корневого питания растений капусты кейл на содержание ß- каротина (провитамина А)

3.2.3 Влияние корневого питания растений капусты кейл на содержание растворимых фенольных соединений

3.2.4 Влияние корневого питания растений капусты кейл на содержание флавоноидов

3.2.5 Влияние корневого питания растений капусты кейл на антиоксидантную активность

3.2.6 Влияние корневого питания растений капусты кейл на содержание малонового диальдегида (МДА)

3.2.7 Влияние корневого питания капусты кейл на содержание

питательных веществ

3.2.8 Состав фенольных соединений капусты кейл Brassica oleracea var. acephala, выращенных с разными органо-минеральными подкоркомками

3.2.9 Влияние корневого питания на экспрессию генов шикимат О-гидроксицинамоилтрансферазы (HCT), флавоноидЗ'-гидроксилазы (F3 'Н)и халкон-синтазы (CHS) капусты кейл

3.3 Влияние корневого питания на антиоксидантные и питательные свойства капусты кейл на разных стадиях зрелости

3.3.1 Влияние корневого питания на содержание витаминаС в капусте кейл

3.3.2 Влияние корневого питания растений капусты кейл на содержание ß- каротина (провитамина А)

3.3.3 Влияние корневого питания растений капусты кейл на содержание растворимых фенольных соединений и флавоноидов

3.3.5 Влияние корневого питания растений капусты кейл на антиоксидантную активность

3.3.6 Влияние корневого питания растений капусты кейл на содержание малоновогодиальдегида (МДА)

3.3.7 Влияние корневого питания растений капусты кейл на содержание питательных веществ

3.4 Влияние пироугля (биочара) на антиоксидантные и питательные свойства капусты кейл

3.4.1 Влияние пироугля (биочара) на содержание витаминаС

3.4.2 Влияние пироугля (биочара) на содержание ß- каротина (провитамина А)

3.4.3 Влияние пироугля (биочара) на содержание фенольных соединении

3.4.4 Влияние пироугля (биочара) на содержание флавоноидов

3.4.5 Влияние пироугля (биочара) на антиоксидантную активность

3.4.6 Влияние пироугля (биочара) на содержание МДА

3.4.7 Влияние пироугля на содержание белков

3.4.8 Влияние пироугля на содержание сахаров

3.4.9 Изучение спектра фенольных соединений капусты кейл Brassica oleracea var. acephala при обработке пироуглем

3.4.10 Влияние пироугля (биочара) на экспрессию генов HCT,

F3 'H и CHS в капусте кейл при обработке биочаром

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

ВЫВОДЫ

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

ПРИЛОЖЕНИЕ

СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ

АФК - активныеформыкислорода

ОАА - Антиоксидантнаяактивность

БЛ - брассинолид

ТБК - тиобарбитуроваякислота

ТХУ - трихлоруксуснаякислота

АК - аскорбиноваякислота

МДА-малоновыйдиальдегид

ПОЛ - перекисноеокислениелипидов

ФС - фенольныесоединения

ФЛ - флавоноиды

УФ - ультрафиолетовоеизлучение

СОД - супероксиддисмутаз

ФАЛ - фенилаланин-аммиаклиаз

ВЭЖХ-высокоэффективнаяжидкостнаяхроматография

DBCS - Dwarf Blue Curled Scotch (сангл. «Скотч Синий Карлик»)

HCT - гидроксицинамоил трансфераза ген

F3'H - флаванон 3-гидроксилаза ген

CHS - халькон синтаза ген

ВВЕДЕНИЕ

Актуальность темы исследования и степень ее изученности

Почти половина заболеваемости и почти две трети смертности в современном мире обусловлены разнообразными хроническими заболеваниями, грозя перерасти в эпидемию. Все больше данных свидетельствует о том, что эти болезни связаны с образом жизни, стрессом, отсутствием физических упражнений, чрезмерным потреблением калорийных сгущенных продуктов, богатых насыщенными жирами, сахаром и крахмалом, а также недостаточным потреблением фруктов и овощей, богатых антиоксидантами. Неоптимальное питание по-прежнему является наиболее значительным фактором, способствующим глобальному росту болезней, на долю которого приходится больше смертей и болезней, чем на отсутствие физической активности, потребление алкоголя и курение вместе взятые (Gakidou et al., 2017; Campbell et al.,2020; Kimokoti et al., 2016). Понимание того, как диета влияет на болезни, создало рынок функциональных продуктов питания и нутроцевтиков, то есть продуктов, которые не только утоляют голод и обеспечивают людей необходимыми питательными веществами, но и помогают в профилактике и/или лечении заболеваний (Chiu et al., 2018; Santini et al., 2018; Weenen et al., 2013).

В связи с этим актуальным является поиск биологических ресурсов, и прежде всего, растительных, которые можно было бы использовать для получения таких функциональных продуктов питания. Листовая зеленая капуста привлекает огромное внимание ученых благодаря своему богатому химическому составу и полезным свойствам(Michalak et al., 2020). Этисвойства делают ее очень перспективной овощной культурой, которую можно использовать не только в качестве пищевого продукта, но, благодаря ее богатому фитохимическому составу, использовать для профилактики или лечения некоторых хронических заболеваний. Капуста кейл является лучшим источником витаминов A, B1, B2, Вб, C и E, содержит антиоксиданты, пребиотические углеводы, микроэлементы (Fe,

7

Zn и Mn) макроэлементы (K, Ca и Mg), жирные кислоты, клетчатку и белки (Reda et al., 2021; Aamec et al., 2019; Vale et al., 2015). Эти биохимические соединения жизненно важны для взаимодействия растения с окружающей средой. Поэтому как биотические, так и абиотические факторы влияют на содержание фитохимических веществ в растениях. Различные виды и разновидности Brassica обычно имеют сходный биохимический состав, но различаются количественно. Информация о содержании в различных сортах капусты (Brassica oleracea L. var. acephala) биологически активных соединений на сегодняшний день все еще недостаточна (Naikoo et al., 2019).

Капуста кейл обладает противодиабетическими,

противовоспалительными, антимутагенными, цитотоксическими, противогрибковыми, противовирусными, противоопухолевыми, противососудистыми свойствами и потенциальными свойствами против ожирения (Chang et al., 2019; Chen et al., 2018; Giorgetti et al., 2018; Okouchi et al., 2019). Капуста кейл входит в число немногих овощей, которые обладают потенциалом минимизации воздействия covid-19 (Ashok et al.,2020; Pastor etal.,2021).

Однако, несмотря на все положительные характеристики капусты, информация о содержании фитохимических веществ в различных сортах капусты кейл в зависимости от различных агрономических приемов все еще отсутствует.

Почвенное плодородие - это динамичная концепция, на которую влияют климат и культурные традиции. В настоящее время минеральные удобрения являются основным фактором поддержания плодородия почвы, а также основным фактором, способствующим увеличению урожайности сельскохозяйственных культур. Без применения минеральных удобрений почвы теряют свою плодородность из-за истощения. Поступление и усвоение минеральных веществ необходимы для роста и метаболизма растений (Chianu et al.,2012; Davydov et al.,2018; Francioli et al., 2016).

8

Основные питательные вещества, необходимые высшим растениям, являются исключительно неорганическими. Макроэлементы (N, P, S, K, Ca, Mg.) необходимы растениям в относительно больших количествах, чем микроэлементы (Fe, Mn , Cu , Zn , Mo, B, Cl и Ni). Макроэлементы являются важными компонентами макромолекул, таких как белки и нуклеиновые кислоты, а также компонентами многих малых молекул, в то время как микроэлементы входят в состав кофакторов ферментов. Применение минеральных питательных веществ может быть единичным или комбинированным. Если сочетание питательных веществ приводит к реакции роста, которая превышает сумму их индивидуальных эффектов, взаимодействие носит синергетический характер. Если комбинированный эффект меньше, взаимодействие носит антагонистический характер. Тип минерального удобрения, используемого в растениеводстве, играет ключевую роль в его росте и урожайности (Shikhamany et al.,2018).

В последнее время широкое распространение получили сложные подкормки для растений, содержащие, кроме минеральных элементов, еще и органические вещества, которые, с одной стороны, обеспечивают лучшее проникновение минеральных веществ, а с другой - стимулируют ростовые и защитные свойства растений.

В связи с этим было проведено исследование для оценки того, как корневое питание влияет на полезные для здоровья соединения капусты кейл (Brassica oleracea L. var. acephala) на территории Республики Тартастан.

Цель работы - изучение вариабельности химического состава капусты кейл (Brassica oleracea var. acephala) в зависимости от условий выращивания и корневого питания.

Для достижения цели решались следующие задачи исследования:

1. Сравнить фитохимический состав капусты кейл, выращенной в полевых условиях и в условиях защищенного грунта.

2. Исследовать изменения в содержании метаболитов и экспрессии

9

генов ключевых ферментов (HCT, F3'H и CHS), участвующих в синтезе фенольных соединений, в растениях кейл при обработке различными минеральными элементами.

3. .Определить возраст растений капусты кейл, обработанных различными минеральными элементами, с максимальным содержанием биологически активных веществ

4. Изучить влияние разных сроков внесения пироугля на содержание биологически активных соединений в капусте кейл.

Научная новизна работы

Установлено, что капуста кейл, выращенная в условиях Татарстана, обладает богатым фитохимическим составом и может быть рекомендована в качестве ресурса для производства функциональных продуктов питания. Показана возможность выращивания растений капусты кейл в условиях защищенного грунта без существенного ухудшения качества получаемого продукта. Были подобраны органо-минеральные вещества (биостим, энерген, гумат, NPK, пироуголь) для улучшения фитохимического состава капусты кейл и выявлены оптимальные сроки сбора урожая капусты кейл с максимальным содержанием биологически активных веществ в зависимости от типа внесенных минеральных (NPK) и минерально-органических добавок (биостим, энерген, гумат, пироуголь). Впервые показано, что пироуголь активирует гены ферментов, участвующих в синтезе фенольных соединения, повышает содержание фенольных соединений, витаминов, сахаров, увеличивает антиоксидантную активность капусты кейл. Полученные результаты способствуют установлению общих закономерностей регуляции химического состава капусты кейл, перераспределения ассимилятов межу первичным и вторичным метаболизмом и конструктивного регулирования факторами корневого питания для получения желаемых результатов.

Теоретическая и практическая значимость работы

Полученные результаты актуальны для разработки современных биотехнологических стратегий выращивания капусты кейл с целью оптимизации содержания ее фитохимического состава. Работа иллюстрирует возможности повышения содержания фитохимических соединений и улучшения биомедицинских свойств капусты кейл с помощью корневого питания. Полученные результаты могут способствовать расширению уже существующей базы данных и могут быть использованы в педагогической сфере в следующих областях: "Физиология и биохимия растений", "Сельскохозяйственная биотехнология", "Основы биотехнологии" и "Прикладная биотехнология".

Положения, выносимые на зашиту

1. Растения капусты кейл, выращенные в условиях защищенного грунта, содержат большое количество биологически активных соединений, что позволит выращивать ее в течение всего года

2. Пироуголь повышает питательную ценность капусты кейл. Наиболее эффективно внесение пироугля при посадке растений для достижения высоких показателей содержания биологически активных веществ.

3. Время сбора урожая капусты кейл зависит от типа используемых органо-минеральных добавок.

Публикация результатов исследования

По материалам диссертации опубликовано 11 печатных работ, в том числе 4 статьи в научных журналах из базы данных Scopus, 2 - в журналах, рекомендованных ВАК, 2- в базе данных РИНЦ и 5 тезисов докладов на Международных и Всероссийских конференциях и конгрессах.

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Вариабельность биохимического состава Brassica oleracea var. acephala в зависимости от условий выращивания и элементов минерального питания»

Апробация работы

Материалы диссертации были представлены на следующих

международных российских конференциях: III Международная школа-

конференция студентов, аспирантов и молодых ученых «Материалы и

11

технологии XXI века» (Казань, 2018), итоговая научная конференция сотрудников Казанского университета (Казань, КФУ, 2018, 2019, 2020, 2021), 72-я,73-я и 74-я Всероссийская с международным участием школа-конференция молодых ученых «Биосистемы: организация, поведение, управление» (Нижний Новгород, 2019, 2020, 2021), IX Съезд общества физиологов растений России «Физиология растений - основа создания растений будущего» (Казань, 2019), 24-я Международная Пущинская школа- конференция молодых ученых «Биология - Наука XXI Века» (Пущино 2020), XII Всероссийский конгресс молодых ученых-биологов с международным участием Пермь, 2020 «Симбиоз-Россия 2020».

Место выполнения работы и личный вклад автора

Основные экспериментальные данные получены непосредственно автором исследования за время работы в Институте фундаментальной медицины и биологии Казанского (Приволжского) федерального университета (2017-2021 годы). Диссертантом проведен анализ данных отечественной и зарубежной литературы по теме диссертациина кафедре ботаники и физиологии растений. Автором совместно с научным руководителем разработана программа, направление, выбраны методы исследований, а также проведено обсуждение результатов и подготовка публикаций, причем вклад диссертанта был определяющим.

Структура и объем диссертационной работы Материалы диссертационный работы изложены на 153 странице машинописного текста. Работа состоит из введения, литературного обзора, материалов и методов исследований, экспериментальной части, результатов и обсуждений, выводов и списка цитированной литературы. Библиография включает 241 источников среди которых 8 отечественных и 233 зарубежных источников. Диссертация содержит 3 таблицы и 43 рисунка.

1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

1.1 Капуста Кейл

1.1.1 Ботанико-биологические свойства семейства Brassicaceae

Капуста кейл (Brassica oleracea L. var. acephala) является зеленым листовым овощем семейства Brassicaceae (Casajъs et al., 2021). Первоначальные данные о капусте поступают из восточного Средиземноморья, регионов Малой Азии и Африки, где довольно мягкая зима, за которой следует жаркое и сухое лето. Внутри рода есть виды, которые хорошо приспособлены к более холодным регионам, и многие виды в настоящее время считаются интродуцированными во всем мире. Обычно это Западная Европа, Средиземноморье и умеренные регионы Азии. Капуста кейл считалась пищевой культурой с 2000 года до н. э., об этом свидетельствует отчет Теофраста в 350 году до н. э. о кудрявой капусте. Сообщается, что капуста распространилась на протяжении веков по всему миру (Ariaset al., 2014; Assimakopoulou et al., 2019; Montefrio, 2020).

Капуста кейл это двухлетняя культура, ее размер и разнообразие питательных веществ зависят от сорта и условий выращивания (W. Chen et al., 2019; Yoon et al., 2020). Рост этого растения зависит от применяемых методов ведения сельского хозяйства и геоклиматических условий. Созревает, как правило, через два месяца после посадкаа. У старых сортов Brassica oleracea L. var. acephala большие и приплюснутые листья, но новые сорта с темно-зелеными закрученными краями листьев (капуста кейл) доминировали на рынке в течение последнего столетия. Доступны различные сорта капусты, такие, как зеленая кейл, карликовая капуста, кольраби, капустатрончуда, шотландскаякапусту, и.т.д. По сравнению с другими овощами, капуста кейл пользуется широким признанием благодаря значительно высокому содержанию фитохимических веществ и, следовательно, считается жизненно важной для здоровья человека, что

делает ее очень интересной культурой с точки зрения потребителя (Jeon et al., 2018; Munthali & Tshegofatso, 2014). Экономическое значение для этих растений заключается в производстве пищевого масла (Cartea et al., 2019), приправ (Piyarach et al., 2020), фуража, а также в декоративных целях (Keim et al., 2020) и для питания. Листья капусты, как правило, употребляются в свежем и необработанном виде в виде салата или вареные в качестве гарнира. Обычно продаются в свежем, консервированном или замороженном виде (Samec et al.,2019).

Благодаря своим полезным для здоровья соединениям капуста кейл (Brassica oleracea var. acephala) приобрела большую популярность и высоко ценится во всем мире как суперфуд. Следовательно, разведение и выращивание капусты в последние годы значительно возросло (Casajъs et al., 2021; Eggersdorfer et al., 2018; Boerzhijin et al., 2020).

Кейл (Brassica oleracea L. acephala) считается отличным источником значительных минералов, накапливая высокие уровни Mn, Mg, Fe, Cu, Ca и K (Thavarajah et al., 2016). Согласно диетическим рекомендациям США на 2015-2020 годы, население испытывает значительный дефицит пищевых волокон, кальция, калия, жирных кислот, фолиевой кислоты, магния, цинка, белков витаминов В6, В12, С, D, Е и К, недостатко которых может привести к различного рода заболеваниям (Eggersdorfer et al., 2018). Это делает капусту кейл очень хорошим решением для решения проблем неоптимального питания.

Однако взаимодействие растения с окружающей средой, а также стадии развития влияют на уровень питательных веществ. Например, сообщили, что образцы капусты, собранные зимой, содержат более высокое количество Fe, Ca, Zn и Mg, чем образцы, собранные летом. Стадия зрелости также является важным фактором, влияющим на содержание макроэлементов, витаминов и минералов в овощах крестоцветных (Aзikgцz, 2014).

В крестоцветных широко представлен такой класс вторичных метаболитов, как глюкозинолаты. Глюкозинолаты это насыщенные серой анионные природные продукты, которые при гидролизе эндогенными тиоглюкозидазами, называемыми мирозиназами, производят несколько различных продуктов (например, изотиоцианаты, тиоцианаты и нитрилы). Продукты гидролиза обладают множеством различных биологических активностей, выступая в качестве защитных соединений и аттрактантов. Для людей эти соединения действуют как средства, предотвращающие рак, биопестициды и ароматизаторы (Madloo et al., 2019). Глюкозинолаты встречаются в основном у видов, принадлежащих к отряду Brassicales, к которому относится капуста кейл, что иллюстрирует большое значение этого семейства овощей. Несколько исследовательских групп продемонстрировали, что генотип, а также свойства почвы и факторы окружающей среды влияют на содержание глюкозинолатов в растениях. Из известных 200 алифатических, ароматических и индольных глюкозинолатов (Agerbirk & Olsen, 2012), было обнаружено, что основными глюкозинолатами в капусте являются алифатические глюкозинолаты с короткой цепью: З-(метилсульфинил) пропил, а также 2-пропенил и 4-(метилсульфинил) бутилглюкозинолат). В каждой разновидности Brassica содержится десять различных глюкозинолатов, хотя первостепенное значение имеют только 4. Соотношение индольных и алифатических глюкозинолатов зависит от географического положения сорта. Например, сообщалось, что сорта в Турции содержат значительно большее количество индольных, в то время как в польских сортахбольше содержание алифатических глюкозинолатов (Korus et al.,2014).

Капуста кейл считается богатым источником витаминов А, Е1, Е2,

Е6, С, К, Е (Becerra-Moreno et al.,2014; Korus, 2021).Согласно некоторым

исследованиям, около 120 мг аскорбиновой кислоты можно получить,

употребляя 100 г свежих листьев капусты ^^(Koms, 2021).Многие

витамины группы В, такие как ниацин, витамин В-6 (пиридоксин), тиамин,

15

пантотеновая кислота и т.д., которые играют важную роль в метаболизме организма, также присутствуют в этом зеленом декоративном овоще. По оценкам нескольких исследований, 100 г листьев капусты обеспечивает около 700% рекомендуемого потребления витамина К. Таким образом, мы можем сказать, что капуста кейл является отличным источником витамина К, который обладает способностью стимулировать остеотрофическую систему, то есть, формирование и укрепление костей. Правильное количество витаминаК в рационе ограничивает повреждение нейронов в головном мозге, что указывает на его необходимость в лечении пациентов, страдающих болезнью Альцгеймера. DL-a-токоферол одна из основных форм витамина Е, связанная со снижением риска сердечно-сосудистых заболеваний и нескольких видов рака, также содержится в этом крестоцветном овоще (Singh et al., 2007).

Капуста кейл богата белками и сахарами. Содержание белка в листьях капусты кейл хорошо соответствуетст стандарту WHO (Stebler et al., 2019; Thavarajah et al., 2016). Растворимые сахара играют ключевую роль в акклиматизации к холоду, поскольку низкомолекулярные осмолиты накапливаются в клетках морозо устойчивых растений. Накопление растворимых сахаров также может повлиять на вкус капусты кейл, увеличивая сладость и нежность листьев. Воздействие низких температур на капусту увеличивает содержание растворимых сахаров.

Во всем мире производство сахара, мяса и зерна значительно затмило производство более разнообразных и здоровых овощных культур, в том числе таких важных с питательной точки зрения сортов, как капуста и другая зелень брассики, что привело к недостаточному разнообразию питательных веществ (Migliozzi et al., 2015). Если капуста кейл будет внедрена в сельскохозяйственные системы в тех регионах, где зафиксированы нехватка калорий и дефицит микроэлементов, она может помочь населению в улучшении рациона питания и состояния здоровья.

1.1.2 Фитохимическая активность капусты кейл

Помимо того, что капуста кейл считается пищей, она ценится в медицинских целях для снижения риска хронических заболеваний, связанных с возрастом, таких как сердечно-сосудистые и других дегенеративных заболеваний, и нескольких видов рака, благодаря своей высокой антиоксидантной активности. Эпидемиологические данные и исследования in vitro убедительно свидетельствуют о том, что овощи, содержащие антиоксидантные фитохимические вещества, оказывают сильное защитное действие (Kolniak-Ostek, et al., 2013). Фенольные соединения и витамины, такие как аскорбиновая кислота, а-токоферол и ß-каротин, способствуют антиоксидантной активности капусты кейл (Nimse & Pal, 2015).

Большое количество исследований также показывают, что во многом антиоксидантная активность таких овощей связана с фенольными соединениями, такими, как флавоноиды, изофлавон, флавоны, антоциан, катехин и изокатехин. Экстракты семян капусты, содержащие фенольные соединения, были отмечены за их способность ингибировать активность ацетилхолинэстеразы (AChE). Ингибиторы ацетилхолинэстеразы (AChE) имеют терапевтическое применение при болезни Альцгеймера (БА), старческомслабоумии, атаксии, миастении

болезниПаркинсона(Biegahska-Marecik et al., 2017).

Результаты исследования с участием 11 493 контрольных и 12 469 пациентов с 12 разными типами рака, проведенного в Италии и Швейцарии с 1991 по 2009 год, показали значительное снижение риска развития рака пищеварительного тракта (полости рта и глотки, пищевода, прямой кишки), молочной железы и почек у людей, которые потребляли по крайней мере одну порцию около 125 г капусты кейл в неделю. Потребление капусты также снижает риск развития рака почек (Cohen et al., 2019; Khan et al., 2020; Ramirez et al., 2020).

Исследователив экспериментах in vitro и in vivo продемонстрировали, что включение капусты кейл в наш рацион уменьшает количество N-нитрозодиметиламина, канцерогенного соединения, которое образуется в организме человека при потреблении богатой нитратами и аминами пищи. Аналогичные медицинские исследования, связанных с антиканцерогенными свойствами капусты кейл, были проведены разными авторами (Khan et al., 2020; Liu et al.,2017).

Недавние работы свидетельствуют о том, что продукты распада глюкозинолатов играют значительную роль в профилактике заболеваний сердечно-сосудистой системы, т. е. гипертония, атеросклероза, благодаря их антиоксидантным и противовоспалительным свойствам (Ruhee et al., 2020). Добавление сока капусты в рацион может привести к улкчшению липидного профиля сыворотки крови, влияя на уровень холестерина ЛПВП и активность глутатионпероксидазы у пациентов с гиперхолестеринемией, тем самым снижая риск развития ишемической болезни сердца (Bieganska-Marecik et al., 2017).

Интерес к влиянию антиоксидантов, поглощающих свободные радикалы, на здоровье побудил исследователей в области садоводства и пищевой науки оценить антиоксидантные фитохимические вещества во фруктах и овощах. Активные формы кислорода (АФК) образуются во время аэробного дыхания клеток. В нормальных физиологических условиях окислительно-восстановительное состояние жестко контролируется антиоксидантами. Однако повышенная выработка АФК может подавлять антиоксидантную защиту, приводя к нарушению баланса и вызывая окислительный стресс в физиологических системах. Окислительное повреждение, вызванное АФК на липидах, белках и нуклеиновых кислотах, может спровоцировать различные хронические заболевания. Увеличение потребления пищевых антиоксидантов может способствовать поддержанию адекватного антиоксидантного статуса и, следовательно, нормального функционирования организма. Некоторые

18

продукты питания и овощи являются важными источниками экзогенных антиоксидантов. На самом деле, культуры брассики относятся к числу овощей, обладающих самой высокой антиоксидантной активностью (Habtemariam, 2018). Сравнение антиоксидантной активности основных культур Brassica (белокочанной капусты, брокколи и цветной капусты, листьев капусты кейл и капусты трончуда) NN выделялась среди остальных высокой антиоксидантной активностью. Вследствие этого, капуста привлекла большое внимание исследователей (Michalak et al., 2020).

1.2. Вторичные метаболиты и факторы, влияющие на их накопление

1.2.1 Метаболиты

Растительное царство вырабатывает сотни тысяч низкомолекулярных органических соединений. Исходя из предполагаемых функций этих соединений, их классифицируют на три основные группы: первичные метаболиты, которые непосредственно необходимы для роста растений; вторичные (или специализированные) метаболиты, которые обеспечивают взаимодействие растений с окружающей средой; и гормоны, которые регулируют процессы в организме и метаболизм. Однако четкие биохимические границы между этими различными классами метаболитов так и не были полностью установлены (Bhat et al., 2020; Taiz et al., 2015; Erb & Kliebenstein, 2020).

Новая волна генетических и химических исследований в настоящее время еще больше размывает эти границы, демонстрируя, что вторичные метаболиты многофункциональны; они могут функционировать как мощные регуляторы роста и защиты растений, а также первичные метаболиты в широком смысле. Многофункциональность вторичных метаболитов может дать новые объяснения закономерностям защитного ответа растений и расширить наши представления о взаимодействии

растений и насекомых (Cuny et al., 2019; Erb & Reymond, 2019; Jander, 2018; Pichersky & Raguso, 2018).

Вторичные метаболиты являются биологически активными соединениями, которые вырабатывают метаболическим путем, которые используются для защиты растений от травоядных животных и инфекции микробных патогенов или для привлечения опылителей или распространения семян (Bhat et al., 2020).

Вторичные метаболиты подразделяются на три основные группы, а именно терпены (или изопреноиды), фенольные соединения (фенилпропаноиды и флавоноиды) и азотсодержащие соединения (алкалоиды, глюкозинолаты и цианогенные гликозиды).

1.2.1.1. Фенольные соединения

Вторая основная группа вторичных метаболитов растений относится к ароматическим фенольным соединениям, которые имеют фенильное кольцо, содержащее одну или несколько кислых гидроксильных групп.

Фенолы являются вездесущими вторичными метаболитами, которые биосинтезируются через шикимовую кислоту/фенилпропаноид и ацетат/малонатные пути для получения фенилпропаноидов и простых фенолов соответственно (de la Rosa et al., 2019; Francenia et al., 2019). Термин "фенольный" может быть определен как вещество, которое обладает ароматическим кольцом, содержащим один или более гидроксильных заместителей, включая функциональные производные, такие как сложные эфиры, метиловые эфиры, гликозиды и т.д. (de la Rosa et al., 2019). Некоторые фенольные соединения широко распространены, а другие специфичны для определенных семейств растений или встречаются только в определенных органах растений на определенных стадиях развития. Например, антоциан является пигментом большинства красных и синих органов растений. Они содержатся в цветах и зрелых плодах и

играют важную роль в привлечении опылителей и помогают в опылении.

20

Присутствие антоциана в молодых листьях защищает их от фотоповреждений и способствует нормальному росту. Красное антоциановое покрытие листьев также защищает молодые листья от насекомых и травоядныхживотных. Фенольные соединения, такие как проантоцианидины и гидролизуемые дубильные вещества, также участвуют в защите растений от травоядных, грибов и вирусов (Gould, 2010).

В настоящее время известно более 8000 фенольных структур. Они могут варьироваться от простых молекул с низкой молекулярной массой (фенольные кислоты, флавоноиды и фенилпропаноиды) до высоко полимеризованных соединений (лигнины, меланины, лигнаны и дубильные вещества (Freile-Pelegran & Robledo, 2013).

Фенолы образуются тремя различными биосинтетическими путями: (а) шикимат/хорисмат или сукцинилбензоатный путь, который ведет к образованию производных фенилпропаноидов (C6-C3); (б) ацетат/мевалонатный путь, который производит ароматические терпеноиды, в основном монотерпены, и (в) ацетат/малонат или поликетидный путь, который производит фенилпропаноиды с удлиненной боковой цепью, включая большую группу флавоноидов (C6-C3-C6) и некоторые хиноны (Cheynier et al., 2013).

Фенольные кислоты являются одним из основных подклассов фенольных соединений растений, имеющих одну группу карбоновых кислот, и обычно находятся в связанных формах, таких как амиды, сложные эфиры или гликозиды, и редко в свободной форме. Фенольные кислоты подразделяются на две подгруппы: гидроксибензойные и гидроксикоричные кислоты (Rashmi & Negi, 2020). Фенольные кислоты обладают гораздо более высокой антиоксидантной активностью in vitro, чем известные антиоксидантные витамины. Гидроксикоричные кислоты, полученные из коричной кислоты, присутствуют в пищевых

продуктахвиде простых эфиров с хиновой кислотой или глюкозой.

21

Четырьмя наиболее распространенными гидроксикоричными кислотами являются феруловая, кофейная, п-кумаровая и синапсовая кислоты. С другой стороны, гидроксибензойные кислоты получают из бензойной кислоты. Они находятся в растворимой форме, которая конъюгирована с сахарами или органическими кислотами и связана с клеточным лигнином (Coman & Vodnar, 2020; Strack, 2010). По сравнению с гидроксикоричными кислотами, гидроксибензойные кислоты обычно содержатся в низкой концентрации в красных фруктах, луке, черной редьке и.т.д. Четыре наиболее часто встречающиеся гидроксибензойные кислоты-это п-гидроксибензойная, протокатехиновая, ванильная и сирингиновая кислоты (Rashmi & Negi, 2020).

Флавоноиды - это полифенольные соединения, состоящие из пятнадцати атомов углерода с двумя ароматическими кольцами, соединенными трехуглеродным мостиком (Silva et al., 2020). Биологическая активность флавоноидов, включая антиоксидантную активность, зависит от структурных различий и от характера гликозилирования. Они являются самыми распространенными из фенольных соединений и встречаются во всем растительном царстве. Они присутствуют в высоких количествах в эпидермисе листьев и плодов и играют важную и разнообразную роль в качестве вторичных метаболитов, участвуя в таких процессах, как защита от ультрафиолетового излучения, пигментация, стимуляция азотфиксирующих клубеньков и устойчивость к болезням (Wang et al., 2018; Panche et al., 2016).

Флавоноиды делятся на различные подгруппы в зависимости от

степени окисления или восстановления трехуглеродного кольца.

Основными флавоноидными группами являются флавонолы (например,

кверцетин, кемпферол), содержащиеся в луке, луке-порее, брокколи и

кейле; флавоны (например, апигенин, лютеолин), содержащиеся в

петрушке и сельдерее; изофлавоны (например, дайдзеин, генистеин),

которые в основном содержатся в сое и ее продуктах; флаваноны

22

(например, гесперетин, нарингенин), встречается в цитрусовых фруктах и помидорах, а также флаванолах (например, (+)- катехин, (-)- эпикатехин, эпигаллокатехин, галлат эпигаллокатехина (EGCG), которые в избытке присутствуют в зеленом чае, красном вине, шоколаде и антоцианидинах (например, пеларгонидин, цианидин, мальвидин), источники которых включают красное вино и ягодные фрукты. Хальконы относятся к семейству флавоноидов, в которых отсутствует гетероциклическое кольцо C (Marinov et al., 2020). Неофлавоноиды не часто встречаются в пищевых растениях, но дальбергия является относительно широко распространенным неофлавоном в растительном царстве (Kumar et al., 2020).

Флавонолы - наиболее распространенные из флавоноидов. кверцетин, кемпферол и изорамнетин, основные флавонолы в капусте кейл, чаще всего встречаются в виде О-гликозидов (Kamiloglu et al., 2020).

Подобно большинству вторичных метаболитов, фенольные соединения являются передовой линией защиты растений. Фенольные играют значительную роль в развитии и защите растений, участвуя в иммунитете растений против возросшего числа биотических и абиотических факторов, связанных с глобальным потеплением^гапшш & Sebastiani, 2019). Стрессорные сигналы распознаются рецепторами растений, которые обеспечивают защитные реакции, включающие накопление фенольных соединений, чтобы защитить их от этих стрессов. Транскрипционные факторы играют определенную роль в контроле защиты растений, распознавая сигналы стресса и регулируя последующую экспрессию защитных генов. Аналогичным образом, выживание, долговечность и продуктивность растения зависят от увеличения синтеза вторичных метаболитов (Jan et al., 2021; Mannino & Micheli, 2020).

Растительные фенольные соединения играют важную роль в

старении. В листьях растений общие морфологические показатели

старения чаще всего возникают на гораздо более поздней стадии, чем их

23

фактическое начало, но обычно характеризуются тем, что ткань мезофилла начинает терять свою зеленую окраску и становится желтой или красной. Изменение цвета связано с преимущественным разложением хлорофилла по сравнению с каротиноидами и с синтезом новых соединений, таких как антоцианы и другие фенольные соединения (МаШ1а et а1., 2018). Исследование зеленых листьев и красных листьев Ргипш показало, что антоцианы помогают красным листьям лучше функционировать на ранней стадии старения, а также участвуют в защите от фотоокисления.

Растительные фенольные кислоты являются природными антиоксидантами. Флавоноиды оказывают антиоксидантное действие путем непосредственного поглощения активных форм кислорода, хелатирования микроэлементов, повышения активности и эффективности антиоксидантных ферментов, ингибирования фермента оксидазы, снижения окислительного действия оксида азота, и предотвращения образования радикалов альфа-токоферола (ВгипеШ et а1., 2018; Prochбzkovб eta1.,2011).

Предполагается, что производные кверцетина модулируют сигналинг фитогормонов путем регуляции активности широкого спектра протеинкиназ, в том числе МАРК-киназ, которые участвуют в образовании АФК, регуляции роста и дифференцировки клеток ( ВгипеШ et а1., 2018).

Фенольные соединения действуют как сигнальные молекулы при инициировании симбиоза ризобий с бобовыми, создании арбускулярных микоризных симбиозов и могут действовать как агенты защиты растений. Фенольные соединения и другие органические молекулы из корневых и семенных экссудатов, листовых пластинок и разлагающихся растительных остатков играют важную роль в почвообразовании. Поскольку некоторые фенольные метаболиты являются фитотоксичными, их присутствие в более высоких концентрациях может повлиять на функцию почвы (Seneviгatne et а1., 2017).

Фенольные соединения выполняют двойную функцию. Они отталкивают и привлекают различные организмы в окружении растений. С одной стороны, они действуют как защитные агенты, ингибиторы, природные токсиканты для животных и других вторгающихся организмов, таких как насекомые, нематоды, насекомые-фитофаги, грибковые и бактериальные патогенны (РгаЬакагап et а1., 2019). Простые фенольные кислоты, сложные дубильные вещества и фенольные смолы на поверхности растений отпугивают птиц, взаимодействуя с микрофлорой их кишечника и снижая пищеварительную способность. С другой стороны, аромат и пигментация, придаваемые низкомолекулярными производными фенилпропанола, привлекают симбиотические организмы, опылителей и животных, которые рассеивают плоды (Damestoy et а1., 2019; Lattanzio et а1., 2015).

Неизбежные взаимодействия между растениями и их биотической и абиотической средой из-за их неподвижного образа жизни были основной движущей силой накопления фенольных соединений в тканях растений, что рассматривается как общая адаптивная реакция растений на неблагоприятные условия окружающей среды, повышающая эволюционную приспособленность.

Считается, что фенольные соединения растений играют ключевую роль в качестве защитных соединений, когда экологические стрессы, такие как высокая освещенность, низкие температуры, инфекция патогенов, травоядные и дефицит питательных веществ, могут привести к увеличению выработки свободных радикалов и других окислительных веществ в растениях. Данные исследований свидетельствуют о том, что растения реагируют на эти биотические и абиотические факторы стресса, увеличивая свою способность поглощать активные формы кислорода. Индукция экспрессии генов вторичного метаболизма при биотическом и абиотическом стрессе часто осуществляется путем интеграции сигнальных

Список литературы диссертационного исследования кандидат наук Антех Джойс Дедеи, 2024 год

Список литературы

1. Abuhajar, S. M. Vitamin C deficiency and risk of metabolic complications among adults with chronic respiratory diseases: A case-control study[Text] /S. M.Abuhajar, M. H.Taleb, M. S. Ellulu//Clinical Nutrition ESPEN. -2021. -V. 43. - P. 448-455.

2. Aзikgцz, F. E. Determination of vitamin C, crude protein and mineral material content in Canola greens suggested to consume as a vegetable (Brassica napus L.) and grown in different sowing times [Text] /F. E.A3ikg^ // Ziraat Fakultesi Dergisi, Uludag Universitesi. - 2014. - V. 28. - №. 1. - P. 43-51.

3. Adzraku, H.V. Use of biochar as media for propagation of some difficult-to-root ornamental plants [Text] / H.-V.Adzraku, P. Tandoh, L. Zurei// Environment, Earth and Ecology. - 2017. - V. 1. - №. 2.

4. Afzal, S. Role of soluble sugars in metabolism and sensing under abiotic stress. In Plant growth regulators / S. Afzal, N. Chaudhary, N. K. Singh // Springer, Cham.. - 2021-P.305-334.

5. Agati, G. Are flavonoids effective antioxidants in plants? Twenty years of our investigation [Text] / G. Agati, C. Brunetti, A. Fini, A. Gori., L. Guidi, M. Landi, M. Tattini// Antioxidants. - 2020. - V. 9. - №. 11. - P. 1098.

6. Agerbirk, N. Glucosinolate structures in evolution [Text] / N. Agerbirk, C. E. Olsen // Phytochemistry. -2012. - V. 77. - P. 16-45.

7. Ahanger, M. A. Integration of silicon and secondary metabolites in plants: A significant association in stress tolerance [Text] / M. A. Ahanger, J.A. Bhat, M.H. Siddiqui, J. Rinklebe, P. Ahmad // Journal of Experimental Botany. -2020. - V. 71. -№. 21. - P. 6758-6774.

8. Ahmad P. Calcium and potassium supplementation enhanced growth, osmolyte secondary metabolite production, and enzymatic antioxidant machinery in cadmium-exposed chickpea (Cicerarietinum L.) / P. Ahmad, A. A. Abdel Latef, E. F. AbdAllah, A. Hashem, M. Sarwat, N. A. Anjum, S.

Gucel // Frontiers in Plant Science. - 2016. -Vol.7. - P. 513. https://doi.org/10.3389/fpls.2016.00513.

9. Ahmad, P. Exogenous application of calcium to 24-epibrassinosteroid pre-treated tomato seedlings mitigates NaCl toxicity by modifying ascorbate-glutathione cycle and secondary metabolites[Text] / P. Ahmad, E. F. Abd Allah, M. N. Alyemeni, L. Wijaya, P. Alam, R. Bhardwaj, K. H. M. Siddique // Scientific Reports. - 2018- V. 8. - №. 1. - P. 1-15.

10. Almughraby E. Cabbage kale - a new functional food product: growing conditions and regulation of the phytochemical composition / E. Almughraby, M. I. Kalimullin, A. A. Mostyakova, O. A. Timofeeva // Journal of Experimental Biology and Agricultural Sciences. - 2020. - V. 8. -P. S264-S271.

11. Arias, T. Diversification times among Brassica (Brassicaceae) crops suggest hybrid formation after 20 million years of divergence[Text] / T. Arias, M. A. Beilstein, M. Tang, M. R. McKain, J. C. Pires // American Journal of Botany. -2014. -V. 101. -№. 1. - P. 86-91.

12. Ashok, A. D.Nutraceutical value of salad vegetables to combat COVID 19 [Text] / A. D. Ashok, J. Ravivarman, K. Kayalvizhi// Journal of Pharmacognosy and Phytochemistry. - 2020. - V. 9. - №. 3. - P. 2144-8.

13. Asigbaase, M. Decomposition and nutrient mineralisation of leaf litter in smallholder cocoa agroforests: a comparison of organic and conventional farms in Ghana [Text] /M. Asigbaase, E. Dawoe, S. Sjogersten, B. H. Lomax// Journal of Soils and Sediments. - 2021. - V. 21. - №. 2. - P. 10101023.

14. Assimakopoulou, A. The impact of ammonium to nitrate ratio on the growth and nutritional status of kale [Text] / A. Assimakopoulou, I. Salmas, N. Kounavis, A. I. Bastas, V. Michopoulou, E. Michail// NotulaeBotanicaeHortiAgrobotanici Cluj-Napoca. - 2019. - V. 47. - №. 3. -P. 848-859.

15. Ayaz, F. A. Nutrient contents of kale (Brassica oleraceae L. var. acephala DC.) [Text] / F. A. Ayaz, R. H. Glew, M. Millson, H. S. Huang, L. T. Chuang, C. Sanz, S. Hayirlioglu-Ayaz// Food Chemistry. - 2006. - V. 96. -№. 4. - P. 572-579.

16. Aziz, E. E. Effect of cobalt on growth and chemical composition of peppermint plant grown in newly reclaimed soil[Text] / E. E. Aziz, N. Gad, S. M. Khaled // Australian Journal of Basic and Applied Sciences. -2011.-V. 5. -№. 11. - P. 628-633.

17. Becerra-Moreno, A. Kale: An excellent source of vitamin C, pro-vitamin A, lutein and glucosinolates[Text] / A. Becerra-Moreno, P. A. AlanHs-Garza, J. L. Mora-Nieves, J. P. Mora-Mora, D. A. Jacobo-Vel6zquez// CYTA - Journal of Food. - 2014. - V. 12. - №. 3. - P. 298-303.

18. Bedon, F. Subgroup 4 R2R3-MYBs in conifer trees: Gene family expansion and contribution to the isoprenoid-and flavonoid-oriented responses [Text] / F. Bedon, C. Bomal, S. Caron, C. Levasseur, B. Boyle, S. D. Mansfield, J. MacKay// Journal of Experimental Botany. - 2010. - V. 61. - №. 14. - P. 3847-3864.

19. Bhat, B. A. Role of Micronutrients in Secondary Metabolism of Plants [Text] / B. A. Bhat, S. T. Islam, A. Ali, B. A. Sheikh, L. Tariq, S. U. Islam, T. U. Hassan Dar // Plant Micronutrients. - Springer, Cham, 2020. - P. 311329.

20. Bhattarai, B. Effect of different doses of micronutrients with phosphate solubilizing bacteria on growth, yield and quality of broccoli (Brassica oleraceae) [Text] / B. Bhattarai, G. Belbase, K. Bhattarai, R. Yadav, S. Pandey, R. Pathak, P. R. Poudel// Research on Crops. - 2020. - V. 21. - №. 4.

21. Biegañska-Marecik, R. Characterization of phenolics, glucosinolates and antioxidant activity of beverages based on apple juice with addition of frozen and freeze-dried curly kale leaves (Brassica oleracea L. var. acephala

L.) [Text] / R. Bieganska-Marecik, E. Radziejewska-Kubzdela, R. Marecik// Food Chemistry. - 2017. - V. 230. - P. 271-280.

22. Boerzhijin, S. Effect of perforation-mediated modified atmosphere packaging on the quality and bioactive compounds of soft kale (Brassica oleracea L. convar. acephala (DC) Alef. var. sabellica L.) during storage[Text] / S. Boerzhijin,Y. Makino, M. Y. Hirai, I. Sotome, M. Yoshimura // Food Packaging and Shelf Life. - 2020. - V. 23. - P. 100427.

23. Bona, D. Hydrochar and hydrochar co-compost from OFMSW digestate for soil application: 2. agro-environmental properties / D. Bona, D. Scrinzi, G. Tonon, M. Ventura, T. Nardin, F. Zottele, S. Silvestri. // Journal of Environmental Management. - 2022. -V. 312. - P. 114894.

24. Boncan, D. A. T. Terpenes and terpenoids in plants: Interactions with environment and insects [Text] / D. A. T. Boncan, S. S. K. Tsang, C. Li, I. H. T. Lee, H. M. Lam, T. F. Chan, J. H. L. Hui// International Journal of Molecular Sciences. - 2020. - V. 21. - №. 19. - P. 7382.

25. Boo, Y. C. p-coumaric acid as an active ingredient in cosmetics: A review focusing on its antimelanogenic effects [Text] / Y. C. Boo // Antioxidants. -2019. -V. 8. №. 8. - P. 275. https://doi.org/10.3390/antiox8080275

26. Brockm^ler, T. Nicotiana attenuata Data Hub (NaDH): An integrative platform for exploring genomic, transcriptomic and metabolomic data in wild tobacco [Text] / T. Brockmqller, Z. Ling, D. Li, E. Gaquerel, I. T. Baldwin, S. Xu// BMC Genomics. - 2017. - V. 18. - №. 1. - P. 1-11.

27. Brunetti, C. Modulation of phytohormone signaling: A primary function of flavonoids in plant-environment interactions [Text] /C. Brunetti, A. Fini, F. Sebastiani, A. Gori, M. Tattini// Frontiers in Plant Science. - 2018. - V. 9. -P. 1042.

28. Buccitelli, C. mRNAs, proteins and the emerging principles of gene expression control [Text] / C. Buccitelli, M. Selbach // Nature Reviews Genetics-2020.-V.21. -№.10.-P. 630-644.

29. Campbell, M. A critical review of diet-related surveys in England, 19702018 [Text] / M. Campbell, D. Smith, J. Baird, C. Vogel, E. G. Moon //Archives of Public Health. - 2020. - V. 78. - №. 1. - P. 1-18.

30. Caperta, A. D. Secretory structures in plants: Lessons from the Plumbaginaceae on their origin, evolution and roles in stress tolerance [Text] / A. D. Caperta, A. S. Ryis, G. Teixeira, P. Garcia-Caparros, T. J. Flowers // Plant Cell and Environment. - 2020. - V. 43. - №. 12. - P. 2912-2931.

31. Caretto, S. Carbon fluxes between primary metabolism and phenolic pathway in plant tissues under stress [Text] /S. Caretto, V. Linsalata, G. Colella, G. Mita, V. Lattanzio// International Journal of Molecular Sciences. -2015.-V. 16. -№. 11.-P. 26378-26394.

32. Cartea, E. Seed oil quality of brassica napus and brassica rapa germplasm from Northwestern Spain [Text] / E. Cartea, A. De Haro-Bailyn, G. Padilla, S. Obregyn-Cano, M. Del Rio-Celestino, A. Ord6s// Foods. - 2019. - V. 8. - №. 8. - P. 292.

33. Carter, S. The Impact of Biochar Application on Soil Properties and Plant Growth of Pot Grown Lettuce (Lactuca sativa) and Cabbage (Brassica chinensis) [Text] / S. Carter, S. Shackley, S. Sohi, T. Suy, S. Haefele// Agronomy. -2013. -V. 3. -№. 2. - P. 404-418.

34. Casajts, V. Harvesting at the end of the day extends postharvest life of kale (Brassica oleracea var. sabellica) [Text] / V. Casajts, M. Perini, R. Ramos, A. B. Lourenco, C. Salinas, E. S6nchez, G. MartHnez// ScientiaHorticulturae. - 2021. - V. 276. - P. 109757.

35. Casciaro, B. Naturally-occurring alkaloids of plant origin as potential antimicrobials against antibiotic-resistant infections / B. Casciaro, L. Mangiardi, F. Cappiello, I. Romeo, M. R. Loffredo, Iazzetti, A., D. Quaglio // Molecules. - 2020, - V. 25. - №. 16. - P. 3619.

36. Chang, J. Health-promoting phytochemicals and antioxidant capacity in different organs from six varieties of Chinese kale [Text] / J. Chang, M.

Wang, Y. Jian, F. Zhang, J. Zhu, Q. Wang, B. Sun// Scientific Reports. -2019. -V. 9. - №. 1. - P. 1-10.

37. Chen, G. C. Green leafy and cruciferous vegetable consumption and risk of type 2 diabetes: Results from the Singapore Chinese Health Study and meta-analysis [Text] / G. C. Chen, W. P. Koh, W. P., J. M. Yuan, L. Q. Qin, R. M. Van Dam // British Journal of Nutrition. - 2018. - V. 119. - №. 9. -P. 1057-1067.

38. Chen, W. Effects of methylene blue on microspore embryogenesis and plant regeneration in ornamental kale (Brassica oleracea var. acephala) [Text] / W. Chen, Y. Zhang, J. Ren, Y. Ma, Z. Liu, F. Hui// ScientiaHorticulturae. - 2019. - V. 248. - P. 1-7.

39. Cheynier, V. Plant phenolics: Recent advances on their biosynthesis, genetics, and ecophysiology[Text] / V. Cheynier, G. Comte, K. M. Davies, V. Lattanzio, S. Martens // Plant Physiology and Biochemistry. - 2013. - V. 72. - P. 1-20.

40. Chianu, J. N. Mineral fertilizers in the farming systems of sub-Saharan Africa. A review [Text] /J. N. Chianu, J. N. Chianu, F. Mairura// Agronomy for Sustainable Development. - 2012. - V. 32. - №. 2. - P. 545566.

41. Chiu, H. F. Popular functional foods and nutraceuticals with lipid lowering activity and in relation to cardiovascular disease, dyslipidemia, and related complications: an overview [Text] /H. F. Chiu, Y. C. Shen, K. Venkatakrishnan, C. K. Wang// Journal of Food Bioactives. - 2018. - V. 2. -P. 16-27-16-27.

42. Christensen, K. Dietary carotenoids and cognitive function among US adults, NHANES 2011-2014 [Text] / K. Christensen, C. E. Gleason, J. A. Mares//Nutritional Neuroscience. - 2020. - V. 23. -№. 7. - P. 554-562.

43. Chrysargyris, A. The combined and single effect of salinity and copper

stress on growth and quality of Menthaspicata plants [Text] / A.

126

Chrysargyris, E. Papakyriakou, S. A. Petropoulos, N. Tzortzakis// Journal of Hazardous Materials. - 2019. - V. 368. - P. 584-593.

44. Cohen, A. Cruciferous vegetables consumption and lung cancer prevention: epidemiological studies and molecular mechanisms [Text] / A. Cohen, M. A. Burgos-Aceves, N. Bar-Ziv, Y. Smith// Journal of Xiangya Medicine. -2019.-V. 4.-P. 21.

45. Coman, V. Hydroxycinnamic acids and human health: recent advances [Text] / V. Coman, D. C. Vodnar// Journal of the Science of Food and Agriculture. - 2020. - V. 100. - №. 2. - P. 483-499.

46. 46. Cuny, M.A.C. Role of cyanogenic glycosides in the seeds of wild lima bean, Phaseoluslunatus: defense, plant nutrition or both? [Text] / M. A. C. Cuny, D. La Forgia, G. A. Desurmont, G. Glauser, B. Benrey// Planta. -2019. -V. 250. -№. 4. - P. 1281-1292.

47. Da Piedade Melo, A. Mixed rhizobia and Herbaspirillumseropedicae inoculations with humic acid-like substances improve water-stress recovery in common beans. /A. Da Piedade Melo F. L Olivares, L. O. Mfidici, A. Torres-Neto, L. B. Dobbss& L. P. Canellas // Chemical and Biological Technologies in Agriculture. - 2017. - V8.- No. 4 -P e00764-17.

48. Damestoy, T. Oak genotype and phenolic compounds differently affect the performance of two insect herbivores with contrasting diet breadth. /T. Damestoy, B. Brachi, X. Moreira, H.Jactel, C. Plomion, &B. Castagneyrol. // Tree Physiology. - 2019. - V 39.- No. 4 -P 615-627.

49. Davydov, R. The application of pesticides and mineral fertilizers in agriculture. / R. Davydov, M. Sokolov, W. Hogland, A. Glinushkin, & A. Markaryan. // MATEC Web of Conferences. - 2018- V. 245- No. -P. 11003.

50. Dawid, C. Functional metabolomics-a useful tool to characterize stress-induced metabolome alterations opening new avenues towards tailoring food crop quality. / C. Dawid, K. Hille. // Agronomy. -2018. - V.8- No.8 -P. 138.

51. De Jests Rodraguez-Jimnnez, T. Urease and nickel in plant physiology. / T. De Jests Rodraguez-Jimnnez, D. L. Ojeda-Barrios, F. Blanco-MacHas, R. D. Valdez-Cepeda, & R. Parra-Quezada. // REVISTA CHAPINGO SERIE HORTICULTURA. -2016. - V.22- No.2 -P. 69-82.

52. De la Rosa, L. A. Chapter 12 - Phenolic Compounds. / L. A. De la Rosa, J. O. Moreno-Escamilla, J. Rodrigo-GarcHa, & E. Alvarez-Parrilla. // In Postharvest Physiology and Biochemistry of Fruits and Vegetables. -2019.

53. De Rijke, E. Analytical separation and detection methods for flavonoids. / E. De Rijke, P. Out, W. M. A. Niessen, F. Ariese, C. Gooijer, & U. A. T. Brinkman. // Journal of Chromatography. -2006. - V.1112- No.1-2 -P.31-63.

54. Dipierro, S. The ascorbate system and lipid peroxidation in stored potato (Solanum tuberosum L.) tubers. / S. Dipierro, S. De Leonardis. // Journal of Experimental Botany. -1997. - V.- No. -P.443-469.

55. Dong, J. Effects of growing location on the contents of secondary metabolites in the leaves of four selected superior clones of Eucommia ulmoides. / J. Dong, X. Ma, Q. Wei, S. Peng, S.& Zhang. // Industrial Crops and Products. -2011. - V.34- No.3 -P.1607-1614.

56. Durazzo, A. Polyphenols: A concise overview on the chemistry, occurrence, and human health. / A. Durazzo, M. Lucarini, E. B. Souto, C. Cicala, E. Caiazzo, A. A. Izzo, A. Santini. // Phytotherapy Research. -2019. - V.33-No.9 -P.2221-2243.

57. Eggersdorfer, M. Hidden hunger: Solutions for America's aging populations. / M. Eggersdorfer, U. Akobundu, R. L. Bailey, J. Shlisky, A. R. Beaudreault, G. Bergeron, K. L. Tucker. // Nutrients.-2018. - V.10- No.9 -P.1210.

58. Eilers, E. J. Flower Production, Headspace Volatiles, Pollen Nutrients, and Florivory in Tanacetum vulgare Chemotypes. / E. J. Eilers, S. Kleine, S.

Eckert, S. Waldherr, & C. Mtller. // Frontiers in Plant Science. -2021. - V.-No. -P.11.

59. Ekin, Z. Integrated Use of Humic Acid and Plant Growth Promoting Rhizobacteria to Ensure Higher Potato Productivity in Sustainable Agriculture. / Z. Ekin// Sustainability. -2021. - V.- No. -P

60. El-Naggar, A. Biochar composition-dependent impacts on soil nutrient release, carbon mineralization, and potential environmental risk: A review. / A. El-Naggar, A. H. El-Naggar, S. M. Shaheen, B. Sarkar, S. X. Chang, D. C. W. Tsang, Y. S. Ok. // Journal of Environmental Management. -2019. -V.241- No. -P.458-467.

61. El-Naqma, K. The Role of Humate Substances in Controlling Synergism and Antagonism of Nutrients Uptake by Potato Plants. / K. El-Naqma // Environment, Biodiversity and Soil Security. 2020. - V.4- No.2020 -P.149-165.

62. Erb, M. Molecular Interactions between Plants and Insect Herbivores. / M. Erb, P. Reymond. // Annual Review of Plant Biology. -2019. - V.70- No. -P.527-557.

63. Erb, M. Plant Secondary Metabolites as Defenses, Regulators, and Primary Metabolites: The Blurred Functional Trichotomy1[OPEN]. / M. Erb, J. D. Kliebenstein. // Plant Physiology. -2020. - V.184- No.1 -P.39-52.

64. Fernandez-Panchon, M. S. Antioxidant activity of phenolic compounds: From in vitro results to in vivo evidence. / M. S. Fernandez-Panchon, D. Villano, A. M. Troncoso, & M. C. Garcia-Parrilla. // Critical Reviews in Food Science and Nutrition. -2008. - V.48- No.7 -P649-671.

65. Flade, J. Occurrence of nine pyrrolizidine alkaloids in senecio vulgaris l. Depending on developmental stage and season. / J. Flade, H. Beschow, M. Wensch-Dorendorf, A. Plescher, & W. Wgtjen. // Plants. -2019. - V.8-No.3 -P.54.

66. Francenia Santos-SSnchez, N. Shikimic Acid Pathway in Biosynthesis of Phenolic Compounds. / N. Francenia Santos-S6nchez, R. Salas-Coronado,

B. Hern6ndez-Carlos, & C. Villanueva-Cacongo. // In Plant Physiological Aspects of Phenolic Compounds. -2019. - V.- No. -P

67. Francini, A. Abiotic stress effects on performance of horticultural crops. / A. Francini, L. Sebastiani. // Horticulturae. -2019. - V.- No. -P.67.

68. Francioli, D. Mineral vs. organic amendments: Microbial community structure, activity and abundance of agriculturally relevant microbes are driven by long-term fertilization strategies. / D. Francioli, E. Schulz, G. Lentendu, T. Wubet, F. Buscot, & T. Reitz. // Frontiers in Microbiology. -2016. - V.7-No. -P.1446.

69. Freile-PelegrHn, Y. Bioactive Phenolic Compounds from Algae. / Y. Freile-Pelegmn, D. Robledo. // In Bioactive Compounds from Marine Foods: Plant and Animal Sources. -2013. - V.- No. -P.467.

70. Gakidou, E.Global, regional, and national comparative risk assessment of 84 behavioural, environmental and occupational, and metabolic risks or clusters of risks, 1990-2016: A systematic analysis for the Global Burden of Disease Study 2016. / E. Gakidou, A. Afshin, A. A. Abajobir, K. H Abate,

C. Abbafati, K. M. Abbas, C. J. L. Murray. // The Lancet. -2017. -V.10100 - No. -P. 1345-1422.

71. Gill, S. S.Reactive oxygen species and antioxidant machinery in abiotic stress tolerance in crop plants. / S. S. Gill, N. Tuteja. // Plant Physiology and Biochemistry. -2010. - V.48 - No.2 -P.909-930.

72. Giorgetti, L.Screening and identification of major phytochemical compounds in seeds, sprouts and leaves of Tuscan black kale Brassica oleracea (L.) ssp acephala (DC) var. sabellica L. / L. Giorgetti, G. Giorgi, E. Cherubini, P. G. Gervasi, C. M. Della Croce, V. Longo&L. Bellani. // Natural Product Research. -2018. - V.32 - No. 14 -P.1817-1626.

73. Gould, K. S.Muriel Wheldale Onslow and the Rediscovery of Anthocyanin Function in Plants. / K. S. Gould, // In Recent Advances in Polyphenol Research. -2010. - V.2 - No. -P.206-225.

74. Gouvea, D. R.Seasonal variation of the major secondary metabolites present in the extract of eremanthusmatto grossensis less (asteraceae: Vernonieae) leaves. / D. Gouvea, L. Gobbo-Neto, H. T. Sakamoto, N. P. Lopes, J. L. C. Lopes, F. Meloni&J. G. Amaral. // QuimicaNova. -2012. -V.35 - No. -P.2139-2145.

75. Groenbaek, M. Influence of cultivar and fertilizer approach on curly kale (Brassica oleracea L. var. sabellica). 1. Genetic diversity reflected in agronomic characteristics and phytochemical concentration. / M. Groenbaek, S. Jensen, S. Neugart, M. Schreiner, U. Kidmose & H. Lakkenborg Kristensen. // Journal of Agricultural and Food Chemistry. -2016. - V.62 -No.47 -P.11393-11402.

76. Guijarro-Real, C. Growing conditions affect the phytochemical composition of edible wall rocket (Diplotaxis erucoides) C. Guijarro-Real,, A. M. Adalid-MartHnez, , K. Aguirre, J. Prohens, A. Rodmguez-Burruezo, A. Fita, Food Research International 2019, 121, 765-775.

77. Gulcin, i. Antioxidants and antioxidant methods: an updated overview. / Í. Gulcin // Archives of Toxicology. -2020. - V.94 - No.3 -P.651-715.

78. Habtemariam, S. Modulation of reactive oxygen species in health and disease. / S.Habtemariam. // Antioxidants. -2018. - V.- No. -P.513.

79. Hassan, M. U.Nickel toxicity in plants: Reasons, toxic effects, tolerance mechanisms, and remediation possibilities—a review. / M. U. Hassan, M. U. Chattha, I. Khan, M. B. Chattha, M. Aamer, M. Nawaz, T. A. Khan. // Environmental Science and Pollution Research. -2019. - V.26 - No.13 -P.12673-2688.

80. Hertzler, S. R. Plant proteins: Assessing their nutritional quality and effects on health and physical function. / S. R Hertzler, J. C. Lieblein-Boff, M.

Weiler& C. Allgeier. // Nutrients. -2020. - V.12 - No. 12 -P.3704.

131

81. Hodges, D. M.Improving the thiobarbituric acid-reactive-substances assay for estimating lipid peroxidation in plant tissues containing anthocyanin and other interfering compounds. / D. M Hodges, J. M. DeLong, C. F. Forney&R. K. Prange. //Planta. -1999. - V.207 - No.4 -P.604-611.

82. Hope, E.Opium poppy capsule growth and alkaloid production is constrained by shade during early floral development. / E. Hope, M. R. Carins-Murphy, C. Hudson, L. Baxter&A. Gracie. // Annals of Applied Biology. -2020. - V.176 - No.3 -P.296-307.

83. Huque, A. K. M. Overexpression of AtBBD1, Arabidopsis Bifunctional Nuclease, Confers Drought Tolerance by Enhancing the Expression of Regulatory Genes in ABA-Mediated Drought Stress Signaling [Text] / A. K. M. Huque, W. So, M. Noh, M. K. You, J. S. Shin //International journal of molecular sciences. - 2021. - V. 22. - №. 6. - P. 2936.

84. Ibrahim, M. H. Effect of cadmium and copper exposure on growth, secondary metabolites and antioxidant activity in the medicinal plant sambungnyawa (Gynura procumbens (Lour.) Merr). / M. H Ibrahim, Y. C. Kong&N. A. M. Zain. // Molecules. -2017. - V.22 - No. 10 -P. 1623.

85. Ignat, I.A critical review of methods for characterisation of polyphenolic compounds in fruits and vegetables. /1. Ignat, I. Volf, &V. I. Popa. // Food Chemistry. -2011. - V.126 - No.4 -P. 1821-1835.

86. Isah, T. Stress and defense responses in plant secondary metabolites production. / T. Isah. // Biological Research.-2019. - V.- 52.

87. Jabborova, D. Beneficial effects of biochar application on lettuce (Lactuca sativa L.) growth, root morphological traits and physiological properties / D. Jabborova, D. Kadirova, A. Narimanov, S. Wirth // Annals of Phytomedicine. - 2021. - V. - 10. - №. 2. - P. 93-100.

88. Jamiolkowska, A. Natural compounds as elicitors of plant resistance against diseases and new biocontrol strategies [Text] / A. Jamiolkowska //Agronomy. - 2020. - V. 10. - №. 2. - P. 173.

89. Jan, R. Plant Secondary Metabolite Biosynthesis and Transcriptional Regulation in Response to Biotic and Abiotic Stress Conditions [Text] / R. Jan, S. Asaf, M. Numan, K. M. Kim //Agronomy. - 2021. - V. 11. - №. 5. -P. 968.

90. Jander, G. Revisiting Plant-Herbivore Co-Evolution in the Molecular Biology Era [Text] / G. Jander //Annual Plant Reviews: Insect-Plant Interactions. - 2014. - V. 47. - P. 361-384.

91. Janpen, C. Physiological responses of hydroponically-grown Japanese mint under nutrient deficiency [Text] / C. Janpen, N. Kanthawang, C. Inkham, F. Y. Tsan, S. R. Sommano // PeerJ. - 2019. - V. 7. - P. e7751.

92. Jeon, J. Transcriptome analysis and metabolic profiling of green and red kale (Brassica oleracea var. acephala) seedlings [Text] / J. Jeon, J. K. Kim, H. R. Kim, Y. J. Kim, Y.J. Park, S. J. Kim, S. U. Park // Food chemistry. -2018.-V. 241.-P. 7-13.

93. Jindo, K. From Lab to Field: Role of Humic Substances Under Open-Field and Greenhouse Conditions as Biostimulant and Biocontrol Agent [Text] / K.Jindo, F. L. Olivares, D. J. D. P. Malcher, M. A. Sönchez-Monedero, C. Kempenaar, L. P. Canellas // Frontiers in plant science. - 2020. - V. 11. - P. 426.

94. Jurkow, R. Cold stress modifies bioactive compounds of kale cultivars during fall-winter harvests [Text] / R. Jurkow, A. Wurst, A. Kalisz, A. Sekara, S. Cebula //Acta Agrobotanica. - 2019. - V. 72. - №. 1.

95. Kalaiselvi, D. Altitude-related changes in the phytochemical profile of essential oils extracted from Artemisia nilagirica and their nematicidal activity against Meloidogyne incognita [Text] / D. Kalaiselvi, A. Mohankumar, G. Shanmugam, G. Thiruppathi, S. Nivitha, S. P. Sundararaj // Industrial Crops and Products. - 2019. - V. 139. - P. 111472.

96. Kamiloglu, S. Dietary Flavonols and O-Glycosides. In Handbook of Dietary [Text] / S. Kamiloglu, M. Tomas, E. Capanoglu // Handbook of Dietary Phytochemicals. - 2019. - P. 1-40.

97. Kannan, P. Biochars and its implications on soil health and crop productivity in semi-arid Environment [Text] / P. Kannan, D. Krishnaveni, S. Ponmani // Biochar Applications in Agriculture and Environment Management. - 2020. - P. 99-122.

98. Kazemi-Shahandashti, S. S. Global insights of protein responses to cold stress in plants: Signaling, defence, and degradation [Text] / S. S. Kazemi-Shahandashti, R. Maali-Amiri //Journal of plant physiology. - 2018. - V. 226.-P. 123-135.

99. Keim, J. P. Nutrient concentrations and profile of non-structural carbohydrates vary among different Brassica forages [Text] / J. P. Keim, M. Gandarillas, D. Benavides, J. Cabanilla, R. G. Pulido, O. A. Balocchi, A. Bertrand //Animal Production Science. - 2020. - V. 60. - №. 12. - P. 15031513.

100. Kessler, A. Plant secondary metabolite diversity and species interactions [Text] / A. Kessler, A. Kalske //Annual Review of Ecology, Evolution, and Systematics. -2018. - V. 49. - P. 115-138.

101. Khan, M. I. R. Reactive oxygen species and antioxidant systems in plants: Role and regulation under abiotic stress [Text] / M. I. R. Khan, N. A. Khan - Springer Singapore, 2017.

102. Khan, M. Inhibitory effect of phenolic compounds and plant extracts on the formation of advance glycation end products: A comprehensive review. [Text] / M. Khan, H. Liu, J. Wang, B. Sun // Food Research International. -2020.-V. 130.-P. 108933.

103. Khan, S. L.Discovery of Naturally Occurring Flavonoids as Human

Cytochrome P450 (CYP3A4) Inhibitors with the Aid of Computational

Chemistry. Indo Global Journal of Pharmaceutical Sciences [Text] / S. L.

Khan, G. M. Sonwane, F. A. Siddiqui, S. P. Jain, M. A. Kale, V. S. Borkar

134

// Indo Global Journal of Pharmaceutical Sciences. - 2020. - V. 10 - №. 4 -P. 58-69.

104. Khare, S. Plant secondary metabolites synthesis and their regulations under biotic and abiotic constraints [Text] / S. Khare, N. B. Singh, A. Singh, I. Hussain, K. Niharika, V. Yadav, N. Amist //Journal of Plant Biology. -2020. -V. 63. -№. 3. - P. 203-216.

105. Khoddami, A. Techniques for analysis of plant phenolic compounds. [Text] / A. Khoddami, M. A. Wilkes, M. A. T. H. Roberts //Molecules. - 2013. -V. 18. -№. 2. - P. 2328-2375.

106. Kimokoti, R. W. Nutrition for the Prevention of Chronic Diseases. [Text]

/ R. W. Kimokoti, B. E. Millen // Medical Clinics. - 2016. - V. 100. - №. 6. -P. 1185-1198.

107. Kolniak-Ostek, J.Antioxidants in fruits and vegetables - the millennium's health. [Text] /J. Kolniak-Ostek, J. Oszmianski, A. Wojdylo //European Food Research & Technology. - 2013.

108. Korus, A. Effect of preliminary processing and method of preservation on the content of glucosinolates in kale (Brassica oleraceaL. var. acephala) leaves [Text] / A. Korus, J. Slupski, P. Gebczynski, A. Banas // LWT-Food Science and Technology. - 2014. - V. 59. - №. 2. - P. 1003-1008.

109. Korus, A. Effect of pre-treatment and drying methods on the content of minerals, B-group vitamins and tocopherols in kale (Brassica oleracea L. var. acephala) leaves [Text] / A. Korus //Journal of Food Science and Technology. -2021. - P. 1-9.

110. Korus, A. Level of vitamin C, polyphenols, and antioxidant and enzymatic activity in three varieties of kale (Brassica oleracea l. var. Acephala) at different stages of Maturity [Text] / A. Korus //International Journal of Food Properties. -2011. -V. 14. -№. 5. - P. 1069-1080.

111.Kovacik J. Induction of phenolic metabolites and physiological changes in chamomile plants in relation to nitrogen nutrition. J. Kovacik, B. Klejdus // Food Chem. - V. 142. - P. 334-341.

135

112.Kov6cik, J. Changes of phenolic metabolism and oxidative status in nitrogen-deficient Matricaria chamomilla plants. / J. Kov6cik, M. Backor. // Plant Soil. - 2007. -Vol. 297. - P. 255-265.

113.Kumar, A. Total Phenolic and Antioxidant Activity of Catharanthus Roseus in Different Geographical Locations of Rajasthan [Text] / A. Kumar, K. C. Singhal, R. A. Sharma, G. K. Vyas, V. Kumar // Asian Journal of Experimental Biological Sciences. -2013. -V. 4. -№. 1. - P. 155-158.

114. Kumar, P. Plant neoflavonoids: Chemical structures and biological functions [Text] / P. Kumar, T. Ahamad, D. P. Mishra, M. F. Khan // Plant-derived Bioactives. - Springer, Singapore, 2020. - P. 35-57.

115. Kumar, S. Role of Phenolic Compounds in Plant-Defensive Mechanisms [Text] / S. Kumar, M. M. Abedin, A. K. Singh, S. Das // Plant Phenolics in Sustainable Agriculture. - Springer, Singapore, 2020. - P. 517-532.

116.Kumar, V. Copper bioavailability, uptake, toxicity and tolerance in plants: A comprehensive review. [Text] / V. Kumar, S. Pandita, G. P. S. Sidhu, A. Sharma, K. Khanna, P. Kaur, R. Setia // Chemosphere. - 2021. - V. 262. -P. 127810.

117. Lata B. Variability in enzymatic and non-enzymatic antioxidants in redand green-leafy kale in relation to soil type and N-level / B. Lata // Scientia Horticulturae. -2014. V. 168. - P. 8-45.

118. Lattanzio, V. Role of phenolics in the resistance mechanisms of plants against fungal pathogens and insects [Text] / V. Lattanzio, V. M. Lattanzio, A. Cardinali // Phytochemistry: Advances in research. - 2015. - V. 661. -№. 2. - . 23-67.

119. Li, Y. The effect of developmental and environmental factors on secondary metabolites in medicinal plants [Text] / Y. Li, D. Kong, Y. Fu, M. R. Sussman, H. Wu // Plant Physiology and Biochemistry. - 2020. - V. 148. -P. 80-89.

120. Liu, X. P. Genetics and fine mapping of a purple leaf gene, BoPr, in ornamental kale (Brassica oleracea L. var. acephala) [Text] / X. P. Liu, B.

Z. Gao, B. F. Q. Han, Z. Y. Fang, L. M. Yang, M. Zhuang, Y. Y. Zhang // BMC genomics. -2017. -V. 18. -№. 1. - P. 1-9.

121.Livak, K. J. Analysis of relative gene expression data using real-time quantitative PCR and the 2-AACT method [Text] / K. J. Livak, T. D. Schmittgen // Methods. - 2001. - V. 25. - №. 4. - P. 402-408.

122. Lopez, F. B. Plant Anatomy and Physiology [Text] / F. B. Lopez, G. F. Barclay // Pharmacognosy. - Academic Press, 2017. - P. 45-60.

123.Lowry, O.Protein measurement with the folin phenol reagent[Text] / O. Lowry, H. Schagger, W. A. Cramer, G. Vonjagow // Analytical Biochemistry. - 1994

124. Madloo, P.Role of Major Glucosinolates in the Defense of Kale against Sclerotinia sclerotiorum and Xanthomonas campestris pv. Campestris [Text] / P. Madloo, M. Lema, M. Francisco, P. Soengas // Phytopathology. - 2019. -V. 109. -№. 7. - P. 1246-1256.

125. Mageney, V.Intraspecific Variation in Carotenoids of Brassica oleracea var. sabellica. Journal of Agricultural and Food Chemistry [Text] / V. Mageney, S. Baldermann, D. C. Albach //Journal of agricultural and food chemistry. -2016. -V. 64. -№. 16. - P. 3251-3257.

126. Mannino, A. M. Ecological function of phenolic compounds from mediterranean fucoid algae and seagrasses: An overview on the genus Cystoseira sensu lato and Posidonia oceanica (L.) Delile [Text] / A. M. Mannino, C. Micheli //Journal of Marine Science and Engineering. - 2020. -V. 8. -№. 1. - P. 19.

127. Mannino, G. Anthocyanins: Biosynthesis, distribution, ecological role, and use of biostimulants to increase their content in plant foods—a review [Text] / G. Mannino, C. Gentile, A. Ertani, G. Serio, C. M. Bertea, C. M // Agriculture. -2021. -V. 11. -№. 3. - P. 212.

128.Marinov, R. Antiviral properties of chalcones and their synthetic derivatives: a mini review [Text] / R. Marinov, N. Markova, S. Krumova, K.

Yotovska, M. M. Zaharieva, P. Genova-Kalou // Pharmacia. - 2020. - V. 67. -P. 325.

129.Mattila, H. Degradation of chlorophyll and synthesis of flavonols during autumn senescence-the story told by individual leaves [Text] / H. Mattila, D. Valev, V. Havurinne, S. Khorobrykh, O. Virtanen, M. Antinluoma, E.Tyystjgrvi //AoB Plants. - 2018. - V. 10. - №. 3. - P. ply028.

130.Meraj, T. A. Transcriptional factors regulate plant stress responses through mediating secondary metabolism [Text] / T. A. Meraj, J. Fu, M. A. Raza, C. Zhu, Q Shen, D. Xu, Q. Wang //Genes. - 2020. - V. 11. - №. 4. - P. 346.

131. Michalak, M.Fermented curly kale as a new source of gentisic and salicylic acids with antitumor potential [Text] / M. Michalak, D. Szwajgier, R. Paduch, W. Kukula-Koch, A. Wasko, M. Polak-Berecka //Journal of Functional Foods. - 2020. - V. 67. - P. 103866.

132. Mierziak, J. Flavonoids as important molecules of plant interactions with the environment [Text] / J. Mierziak, K. Kostyn, A. Kulma // Molecules. -2014. -V. 19. -№. 10. - P. 16240-16265.

133.Migliozzi, M. Lentil and kale: Complementary nutrient-rich whole food sources to combat micronutrient and calorie malnutrition [Text] / M. Migliozzi, D. Thavarajah, P. Thavarajah, P. Smith //Nutrients. - 2015. - V. 7. -№. 11. - P. 9285-9298.

134.Mokhtar, M. The Influence of ripeness on the phenolic content, antioxidant and antimicrobial activities of pumpkins (Cucurbita moschata Duchesne) / M. Mokhtar, , S. Bouamar, , A. Di Lorenzo, , C. Temporini, , M. Daglia, , A. Riazi // Molecules. - 2021. - V. 26. - № 12. - P. 3623.

135.Montefrio, M. J. F. The 'queen of greens' comes to the tropics: (De)Territorialization of kale's socio-material relations in the Philippines [Text] / M. J. F. Montefrio // Geoforum. - 2020. - V. 116. - P. 24-32.

136.Morales, M. Malondialdehyde: Facts and artifacts. / M. Morales &S. Munnn-Bosch. // Plant Physiology. - 2019. - V. 180- No.3 -P. 1246-1250.

137.Mbller, J. Variation of the Main Alkaloid Content in Equisetum palustre L. in the Light of Its Ontogeny. / J. Mtller, P. M. Puttich, &T. Beuerle, T. // Toxins.-2020. - V. 12-No.11 -P. 710.

138.Munthali, D. C. Factors Affecting Abundance and Damage Caused by Cabbage Aphid, Brevicoryne brassicae on Four Brassica Leafy Vegetables: Brassica oleracea var. Acephala, B. chinense, B. napus and B. carinata. / D. C. Munthali, &A. B. Tshegofatso. // The Open Entomology Journal.- 2014. -V. 8- No. 1 -P.1-9.

139.Naikoo, M. I.Role and regulation of plants phenolics in abiotic stress tolerance: An overview. / M. I. Naikoo, M. I. Dar, F. Raghib, H. Jaleel, B. Ahmad, A. Raina, F. Naushin. // In Plant Signaling Molecules: Role and Regulation under Stressful Environments. - 2019. - V- No. -P. 157-168.

140.Namdeo, A. G. Influence of geographical and climatic conditions on camptothecin content of Nothapodytes nimmoniana. / A. G. Namdeo, A. Sharma, D. P. Fulzele &K. R. Mahadik. // Records of Natural Products.-2010. -V.4-No.1 -P. 64.

141.Nardi, S.Chemical structure and biological activity of humic substances define their role as plant growth promoters. / S. Nardi, M. Schiavon,&O. Francioso. // Molecules.- 2021. - V. 26- No.8 -P. 2256.

142. Naseem, U..Impact of geographical locations on Mentha spicata antibacterial activities. / U. Naseem // Journal of Medicinal Plants Research.-2012. -V. 6-No.7 -P.1201-1206.

143.Naser, B.Macroelements nutrition (NPK) of medicinal plants: A review. / B. Naser // Journal of Medicinal Plants Research.- 2012. - V.6- No.12 -P. 2249-2255.

144. Nawaz, H. Phytochemical Composition and Antioxidant Potential of Brassica. In Brassica Germplasm - Characterization, Breeding and

Utilization. / H. Nawaz, M. A. Shad, & S. Muzaffar, https://doi.org/10.5772/intechopen.76120-2018. -V. 1. -P. 7-26.

145.Neugart, S.Influence of light and temperature on gene expression leading to accumulation of specific flavonol glycosides and hydroxycinnamic acid derivatives in kale (Brassica oleracea var. sabellica). / S. Neugart, A. Krumbein &R. Zrenner. -2016. - V. 7- No. -P.236.

146. Ng, K. Antimicrobial and antioxidant activities of phenolic metabolites from flavonoid-producing yeast: Potential as natural food preservatives. / K. R. Ng, X. Lyu, R. Mark, W. N. Chen. // Food Chemistry.-2019. - V-270 No. -P. 123-129.

147.Nimse, S. B. Free radicals, natural antioxidants, and their reaction mechanisms. / S. B. Nimse&D. Pal. // RSC Advances. -2015. - V.5- No. 35-P. 27938-28006.

148. Nbtzmann, H. Metabolic gene clusters in eukaryotes. / H. W. Nbtzmann, C. Scazzocchio, A. Osbourn // Annual Review of Genetics. -2018. - V. 52-No. -P.159-183.

149.Okazaki K. Differences in the metabolite profles of spinach (Spinacia oleracea L.) leaf in different concentrations of nitrate in the culture solution / K. Okazaki, N. Oka, T. Shinano, M. Osaki, M. Takebe // Plant Cell Physiol. - 2008. - V. 49. - P. 170-177.

150. Okouchi, R.Simultaneous intake of Euglena gracilis and vegetables exerts synergistic anti-obesity and anti-inflammatory effects by modulating the gut microbiota in diet-induced obese mice. / R. Okouchi, E. Shuang, K. Yamamoto, T. Ota, K. Seki, M. Imai, T. Tsuduki // Nutrients. -2016. -V.11- No.1 -P.204.

151.Osuji M.. Biotechnological Induction of Shikimate-based Antioxidant Accumulation in Phyla dulcis //The Natural Products Journal. - 2017. -Vol. 7. -P.S264-S271104-111.

152.Owona, B. A.Natural compounds flavonoids as modulators of inflammasomes in chronic diseases. / B. A. Owona, W. A. Abia, P. F. Moundipa // International Immunopharmacology. -2020. - V.84- No. -P. 106498.

153. Panche, A. N.Flavonoids: An overview. / A. N. Panche, A. D. Diwan, S. R. Chandra// Journal of Nutritional Science.-2016. - V.1- No.2. -P.65-

154.Pandey, P.Impact of combined abiotic and biotic stresses on plant growth and avenues for crop improvement by exploiting physio-morphological traits. / P. Pandey, V. Irulappan, M. V. Bagavathiannan, M. Senthil-Kumar. //Frontiers in plant science. -2017. - V.8 -P.537.

155.Pandit, N. R.Biochar improves maize growth by alleviation of nutrient stress in a moderately acidic low-input Nepalese soil./ N. R. Pandit, J. Mulder, S. E. Hale, V. Martinsen, H. P. Schmidt, G. Cornelissen // Science of the Total Environment. -2018. - V.625- No. -P.1380-1389.

156.Pastor, N.Phytonutrient and nutraceutical action against COVID-19: Current review of characteristics and benefits. / N. Pastor, M. C. Collado, P. Manzoni. //Nutrients. -2021. - V.78-No. -P.451-458.

157.Patel, M. K.Enhancing Salt Tolerance of Plants: From Metabolic Reprogramming to Exogenous Chemical Treatments and Molecular Approaches. / M. K. Patel, M. Kumar, W. Li, Y. Luo, D. J. Burritt, N. Alkan, L. S. P. Tran// Cells. -2020. - V.9-No.11 -P.2492.

158.Pavlovic, I.Early Brassica crops responses to salinity stress: A comparative analysis between chinese cabbage, white cabbage, and kale. /1. Pavlovic, S. Mlinaric, D. Tarkowska, J. Oklestkova, O. Novak, H. Lepedus,B. Salopek-Sondi. // Frontiers in Plant Science. -2019. - V. 10-No. -P.450.

159. Peng, W. T.Magnesium promotes root nodulation through facilitation of carbohydrate allocation in soybean. W. T. Peng, L. D. Zhang, Z. Zhou, Z., C. Fu, Z. C. Chen, H. Liao// Physiologia Plantarum. -2018. - V-163.-No.3 -P.372-385.

160. Pereira, M. M. A.Humic Substances and Efficient Microorganisms: Elicitation of Medicinal Plants—A Review. / M. M. A. Pereira, L. C. Morais, E. A. Marques, A. D. Martins, V. P. Cavalcanti F. A. Rodrigues, J. Dyria // Journal of Agricultural Science. -2019. - V.11- No.7 -P.268-280.

161.Perveen, S.Assessing the Potential of Polymer Coated Urea and Sulphur Fertilization on Growth, Physiology, Yield, Oil Contents and Nitrogen Use Efficiency of Sunflower Crop under Arid Environment. / S. Perveen, S. Ahmad, M. Skalicky, I. Hussain, M. Habibur-Rahman, A. Ghaffar, A. EL Sabagh // Agronomy. -2021. - V.11- No.2 -P. 269.

162.Petrou, A. L.A possible role for singlet oxygen in the degradation of various antioxidants. A meta-analysis and review of literature data. / A. L. Petrou, P. L. Petrou, T. Ntanos, A. Liapis. // Antioxidants. -2018. - V. -7. -No.3 -P.

163. Piccolo, A.The Soil Humeome: Chemical Structure, Functions and Technological Perspectives. / A. Piccolo, R. Spaccini, D. Savy, M. Drosos, V. Cozzolino // In Sustainable Agrochemistry. -2019. - V- No. -P.183-222.

164. Pichersky, E.Why do plants produce so many terpenoid compounds? / E. Pichersky, R. A. Raguso // New Phytologist. -2018. - V.220-No.3 -P.692-702.

165.Piyarach, K.Effect of Drying on P-Carotene, a Carotene, Lutein and Zeaxanthin Content in Vegetables and Its Application for Vegetable Seasoning. / K. Piyarach, K. Nipawan, C. Chadapon, S. Daluwan & R. Kunjana // E3S Web of Conferences. -2020. - V. 141- No. -P.02007.

166.Poorter, H. Pampered inside, pestered outside? Differences and similarities between plants growing in controlled conditions and in the field. / H. Poorter, F. Fiorani, R. Pieruschka, T. Wojciechowski, W. H.van der Putten, M. Kleyer, J. Postma // New Phytologist. -2016. - V.212- No.4 -P.838-855.

167. Prabakaran, M.Analysis of selected phenolic compounds in organic, pesticide-free, conventional rice (Oryza sativa L.) using LC-ESI-MS/MS. / M. Prabakaran, I. M. Chung, N. Y. Son, H. Y. Chi, S. Y. Kim, Y. L Yang, S. H. Kim // Molecules. -2019. - V.24 -No.1 -P.67.

168. Prinsloo, G.The effects of season and water availability on chemical composition, secondary metabolites and biological activity in plants. / G. Prinsloo, N. Nogemane // PhytochemistryReviews. -2018. - V.17- No.4 -P.889-902.

169. ProchSzkovS, D.Antioxidant and prooxidant properties of flavonoids. D. Proch6zkov6, I. Bou^ov6&N. Wilhelmov6 // Fitoterapia. -2011. - V.82-No.524 -P.513-523.

170.Pyrzynska, K.Analysis of phenolic acids and flavonoids in honey. / K. Pyrzynska, M. Biesaga // TrAC - Trends in Analytical Chemistry. -2009. -V.28.- No.7 -P.893-902.

171. Qu, C. Differential accumulation of phenolic compounds and expression of related genes in black- and yellow-seeded Brassica napus. / C. Qu, F. Fu, K. Lu, K.Zhang, R. Wang, X. Xu, J. Li // Experimental Botany.-2020. -V.64.- No10. -P.2885-2898.

172. Radusiene J.Effect of nitrogen on herb production, secondary metabolites and antioxidant activities of Hypericum pruinatum under nitrogen application / J. Radusiene, M. Marksa, L. Ivanauskas, V. Jakstas, O. Qali§kan, D. Kurt, C. Qirak // Industrial Crops and Products. - 2019. -V.139. - P. 111519.

173.Radwan A. Impact of drought stress on specialised metabolism: Biosynthesis and the expression of monoterpene synthases in sage (Salvia officinalis) / A.Radwan, M. Kleinwgchter, & D. Selmar // Phytochemistry. -2017.-V.-№.-P.20-26.

174.Rakshit A. New frontiers in stress management for durable agriculture / A. Rakshit, H. B. Singh, A. K. Singh, U. S. Singh, & L. Fraceto // In New Frontiers in Stress Management for Durable Agriculture. - 2020.

175. Ramirez, D.Functional ingredients from brassicaceae species: Overview and perspectives / D. Ramirez, A. Abell6n-Victorio, V. Beretta, A. Camargo, D. A. Moreno // International Journal of Molecular Sciences. -2020. - V.21. -№.6. -P.1998.

176.Rashmi, H. B. Phenolic acids from vegetables: A review on processing stability and health benefits / H. B. Rashmi, P. S. Negi // Food Research International. - 2020. - №. 136 - P. 109298.

177.Rawat, J. A. Sustainable Approach for Improving Plant Growth and Soil Properties / J. Rawat, J. Saxena, P. Sanwal // In Biochar - An Imperative Amendment for Soil and the Environment. - 2019. -P. 1-17.

178. Reda, T. Reaching the highest shelf: A review of organic production, nutritional quality, and shelf life of kale (Brassica oleracea var. acephala ) / T. Reda, P. Thavarajah, R. Polomski, W. Bridges, E. Shipe, D. Thavarajah // Plants, People, Planet. - 2021. - V. - №. - P.

179.Rietra, R. P. J. J. Effects of Nutrient Antagonism and Synergism on Yield and Fertilizer Use Efficiency / R. P. J. J. Rietra, M. Heinen, C. O. Dimkpa, P. S. Bindraban // Communications in Soil Science and Plant Analysis. -2017. - V.48. -№.16. - P. 1895-1920.

180. Ruhee, R. T. Organosulfur Compounds: A Review of Their Antiinflammatory Effects in Human Health / R. T. Ruhee, L. A. Roberts, S. Ma, K. Suzuki // Frontiers in Nutrition. - 2020. - V.7. -P.64.

181.Sachdev, S. Abiotic stress and reactive oxygen species: Generation, signaling, and defense mechanisms / S. Sachdev, S. A. Ansari, M. I. Ansari, M. Fujita, M. Hasanuzzaman // Antioxidants. - 2021. - V.10. - №.8. -P.2711.

182. Said-Al Ahl, H. Humic acid and indole acetic acid affect yield and essential oil of dill grown under two different locations in Egypt / H. Said-Al Ahl, A. G. El Gendy, O. Ea // International Journal of Pharmacy and Pharmaceutical Sciences. -2016. - V.8. -№.7. -P.594

183.Samec D. Antioxidant potency ofwhite (Brassica oleracea L. var. capitata) and Chinese (Brassica rapaL. var. pekensis (Lour)) cabbage: The influence of development stage, cultivar choice and seed selection. / D. Samec, J. Piljac-Zegarac, M. Bogovi'c,, K. Habjanfc, J. Grúz // Sci. Hort. -2011. № 128. -P.78-83.

184. Samec, D. Kale (Brassica oleracea var. acephala) as a superfood: Review of the scientific evidence behind the statement / D. Samec, B. Urlic, B. Salopek-Sondi // Critical Reviews in Food Science and Nutrition. - 2019. -V.59. -№.15. -P.2411-2422.

185. Santas, J. Onion A natural alternative to artificial food preservatives / J. Santas, M. P. Almajano, R. Carby // Agro Food Industry Hi-Tech. - 2010. -V.21. -№.5. -P.44-46.

186.Santini, A. Nutraceuticals: opening the debate for a regulatory framework / A. Santini, S. M. Cammarata, G. Capone, A. Ianaro, G. C. Tenore, L. Pani, & E. Novellino // British Journal of Clinical Pharmacology. - 2018. - V.84. -№.4. -P.659-672.

187.Satheesh, N. Kale: Review on nutritional composition, bio-active compounds, anti-nutritional factors, health beneficial properties and value-added products / N. Satheesh, S. Workneh Fanta // Cogent Food & Agriculture. - 2020. - V.6. - № 1. -P.1811048.

188.Scheible W. Genome-Wide Reprogramming of Primary and Secondary Metabolism Protein Synthesis Cellular Growth Processes and the Regulatory Infrastructure of Arabidopsis in Response to Nitrogen / W. Scheible, R. Morcuende, T. Czechowski, C. Fritz, D. Osuna, N. Palacios-Rojas, D. Schindelasch, O. Thimm, M. K. Udvardi, M. Stitt // Plant Physiology. - 2004. - V. 136. - P. 2483-2499.

145

189. Schmidt S. Identification of complex naturally occurring flavonoid glycosides in kale (Brassica oleracea var. sabellica) by high- performance liquid chromatography diode-array detection/electro spray ionization multistage mass spectrometry / S. Schmidt, M. Zietz, M. Schreiner, S. L. Rohn, L. Kroh, A. Krumbein // Rapid Communications in Mass Spectrometry. -2010b. - V. 24. - P. 2009-2022.

190.Seneviratne, G. Microbial signaling in plant-microbe interactions and its role on sustainability of agroecosystems / G. Seneviratne, M. L. M. A. W. Weerasekara, D. Kumaresan, & J. S. Zavahir // In Agro-Environmental Sustainability. -2017.-P.1-17.

191. Shafi, M. I. Application of single superphosphate with humic acid improves the growth, yield and phosphorus uptake of wheat (Triticum aestivum L.) in calcareous soil / M. I. Shafi, M. Adnan, S. Fahad, F. Wahid, A. Khan, Z. Yue, R. Datta // Agronomy - 2020. - V.10 - №.9 - P. 1224.

192. Shah, A. Flavonoids in agriculture: Chemistry and roles in, biotic and abiotic stress responses, and microbial associations / A. Shah, D. L. Smith // Agronomy- 2020. - V.10. - №8. - P. 1209.

193.Shikhamany, S. Variation in the Relationship of Major Nutrients with Micronutrient Absorption in Grape due to Variety and Rootstock / S. Shikhamany, J. Kalbhor, T. Shelke, T. Mungare // International Journal of Horticulture. - 2018. - V.8 - №. 10.

194.Silva, A. S. Evaluation of the status quo of polyphenols analysis: Part I— phytochemistry, bioactivity, interactions, and industrial uses[Text] / S. A. Silva, P.Reboredo-RodrHguez, I.Stntar, A.Sureda,T. Belwal,M. R Loizzo,... S. M. Nabavi// Comprehensive Reviews in Food Science and Food Safety.-2020. - V. 19. -№ 3. -P.3191-3218.

195. Singh, J. Variability of carotenes, vitamin C, E and phenolics in Brassica vegetables [Text] /J. Singh, A. K.Upadhyay,K. Prasad, A. Bahadur, M. Rai //Journal of Food Composition and Analysis. - 2007. - V. 20. - № 2. -

P. 106-112.

196. Singh, S. Plant isoquinoline alkaloids: Advances in the chemistry and biology of berberine / S. Singh, N. Pathak, E. Fatima, A. S. Negi // European Journal of Medicinal Chemistry. - 2021. - V. 226. - P.113839.

197.Solaiman, Z. M.Poultry litter biochar increases mycorrhizal colonisation, soil fertility and cucumber yield in a fertigation system on sandy soil[Text]/ Z. M. Solaiman, M. I.Shafi, E.Beamont, H. M. Anawar // Agriculture. -2020. -V. 10.-№ 10.-P. 480.

198. Song, S.Biochar for urban agriculture: Impacts on soil chemical characteristics and on Brassica rapa growth, nutrient content and metabolism over multiple growth cycles [Text] / S. Song, S. Arora, A. K. C. Laserna, Y. Shen, B.W. Thian, J.C. Cheong, C. H. Wang //Science of the Total Environment. -2020. -V. 727. - P. 138742.

199.Sousa C. Screening of antioxidant compounds during sprouting of Brassica oleracea L.var. costata. / C. Sousa, G. Lopes, D. Pereira, M. Taveira, P. Valentao, R. Seabra, J. Pereira, P. Baptista, F. Ferreres, P. Andrade. // Chem. High Throughput Screen. - 2007, № 10. - P. 377-386.

200.Srivastava, A. K. Evolutionary mechanism for biosynthesis of diverse molecules. / A.K. Srivastava, A. Yadava,D. Singh // In Evolutionary Diversity as a Source for Anticancer Molecules.Academic Press. -2021 - P 1-27.

201.Stefanelli D. Minimal nitrogen and water use in horticulture: effects on quality and content of selected nutrients / D. Stefanelli, I. Goodwin, R. Jones // Food Research International. -2010. -V. 43. - P. 1833-1843.

202.Steindal, A. L. H. Effects of photoperiod, growth temperature and cold acclimatisation on glucosinolates, sugars and fatty acids in kale [Text] / A. L. H. R.Steindal, R. Rmdven, E. Hansen, J. Mmlmann // Food chemistry. -2015. -V. 174.-P.44-51.

203. Stracke, R. Analysis of PRODUCTION OF FLAVONOL GLYCOSIDES-dependent flavonol glycoside accumulation in Arabidopsis

thaliana plants reveals MYB11-, MYB12-and MYB111-independent flavonol glycoside accumulation [Text]/R. Stracke, O. Jahns, M. Keck,T. Tohge, K. Niehaus, A.R. Fernie,B. Weisshaar // New Phytologist. - 2010. -V. 188. -№ 4. -P. 985-1000.

204.Stbbler, A. S. Digestibility, antioxidative activity and stability of plant protein-rich products after processing and formulation with polyphenol-rich juices: kale and kale-strawberry as a model [Text] / U. Lesmes, V. Heinz,C. Rauh, A. Shpigelman,K. Aganovic// European Food Research and Technology. -2019. -V. 245-№ 11. -P. 2499-2514.

205. Sung J. Compositional changes of selected amino acids organic acids and soluble sugars in the xylems of N P or K-deficient tomato plants / J. Sung, Y. Sonn, Y. Lee, S. Kang, S. Ha, H. B. Krishnan T. K. Oh // Plant Nutrition and Soil Science. - 2015. - V. 178. - P. 792-797.

206.Taiz, L.Plant physiology and development[Text] / E. Zeiger, I.M. Mmller, A. Murphy // Sinauer Associates Incorporated. -2015.No. Ed. 6 -P. 761.

207. Thakur, M. Improving production of plant secondary metabolites through biotic and abiotic elicitation.[Text] /M. Thakur, S. Bhattacharya, P.K. Khosla, S. Puri // Journal of Applied Research on Medicinal and Aromatic Plants. -2019. - V. 12. -P. 1-12.

208.Thavarajah, P. Mineral micronutrient and prebiotic carbohydrate profiles of USA-grown kale (Brassica oleracea L. var. acephala) [Text] /A. Abare, S. Basnagala, C. Lacher, P. Smith, G. F. Jr. Combs //Journal of Food Composition and Analysis. -2016. - V. 52. -P. 9-15.

209.Tomczyk, A. Biochar physicochemical properties: pyrolysis temperature and feedstock kind effects [Text] /A. Tomczyk, Z. Sokotowska,P. Boguta // Reviews in Environmental Science and Bio/Technology. - 2020. - V. 19-№ 1.-P. 191-215.

210.Treml, J.Flavonoids as potent scavengers of hydroxyl radicals [Text] /J. Treml, K. Amejkal // Comprehensive reviews in food science and food

safety. -2016. - V. 15-№ 4 -P. 720-738.

211. U.S. Department of Agriculture. National nutrient database for standard reference, release 28. Washington, D.C., USA: U.S. Department of Agriculture. -2016.

212.Ueno, V. A. Influence of environmental factors on the volatile composition of two Brazilian medicinal plants: Mikania laevigata and Mikania glomerata [Text] /V.A. Ueno, A.C.H.F. Sawaya// Metabolomics. - 2019. - V. 15-№

6.-P. 1-11.

213. Vale, A. P. Phytochemical composition and antimicrobial properties of four varieties of Brassica oleracea sprouts. /A.P. Vale, J. Santos, N. Melia, V. Peixoto, N.V. Brito,M. B. P. Oliveira // Food Control. - 2015. - V. 15. -P. 248-256.

214.Vashisth, T. 2020-2021 FloridaCitrus Production Guide: Plant Growth Regulators [Text] /T. Vashisth, W.C. Oswalt, M. Zekri, F.M. Alferez, J.D. Burrow//EDIS. -2020.-№1.

215.Verma, N. Impact of various factors responsible for fluctuation in plant secondary metabolites. /N. Verma,S. Shukla//Journal of Applied Research on Medicinal and Aromatic Plants. -2015. - V. 2. -№ 4. -P. 105-113.

216. Verrillo, M. Humic substances from green compost increase bioactivity and antibacterial properties of essential oils in Basil leaves [Text] / M. Verrillo, V. Cozzolino, R. Spaccini,A. Piccolo // Chemical and Biological Technologies in Agriculture. -2021- V. 8. -№ 1. -P. 1-14.

217.Viger, M. More plant growth but less plant defence? First global gene expression data for plants grown in soil amended with biochar [Text] / M. Viger, R.D. Hancock, F. Miglietta, G. Taylor //Gcb Bioenergy. -2015. - V.

7. -№ 4.-P. 658-672.

218.Wan, Z. Customised fabrication of nitrogen-doped biochar for environmental and energy applications [Text] /Z. Wan, Y. Sun, D.C. Tsang, E. Khan, A.C. Yip, Y.H. Ng,Y.S. Ok //Chemical Engineering Journal. -

2020. -P. 126136.

219. Wang M. The critical role of potassium in plant stress response / M. Wang, Q. Zheng, Q. Shen, S. Guo // International journal of molecular sciences. -2013. -V. 14. - P. 7370-7390.

220. Wang, J. Preparation, modification and environmental application of biochar: a review [Text] / J.Wang, S. Wang //Journal of Cleaner Production. -2019. -V. 227. -P. 1002-1022.

221. Wang, T. Y. Bioactive flavonoids in medicinal plants: Structure, activity and biological fate. /T.Y. Wang, Q. Li, K. S. Bi //Asian Journal of Pharmaceutical Sciences. -2018. -V. 13. -№ 1.-P. 12-23.

222. Waterland, N. Differences in Leaf Color and Stage of Development at Harvest Influenced Phytochemical Content in Three Cultivars of Kale (Brassica oleracea L. and B. napus) / N. L Waterland, Y Moon, J. C Tou, D. A. Kopsell, M. J. Kim, S. Park // Journal of Agricultural Science. - 2019. -V.11. -P.14-21 https://doi.org/10.5539/jas.v11n3

223.Weenen, T. C. Food-pharma convergence in medical nutrition-best of both worlds? [Text] / T.C. Weenen, B. Ramezanpour, E.S. Pronker, H. Commandeur,E. Claassen // PloS one.-V. 8. -№ 12.-P. e82609.

224.Xie, K. Synergistic and antagonistic interactions between potassium and magnesium in higher plants. /K. Xie, I. Cakmak, S. Wang, F. Zhang, S. Guo // Crop J. -2020. -V. 9.-P. 249-256.

225.Xu, W.Transcriptional control of flavonoid biosynthesis by MYB-bHLH-WDR complexes [Text] /W. Xu, C.Dubos, L. Lepiniec // Trends in plant science. -2015. -V.20. -№ 3.-P. 176-185.

226. Yang, L. Response of plant secondary metabolites to environmental factors[Text] /L. Yang, K.S. Wen, X. Ruan, Y.X. Zhao, F. Wei,Q. Wang //Molecules. -2018. -V. 23. -№ 4.-P. 762.

227.Yoon, H. I.Spatial and temporal bioactive compound contents and chlorophyll fluorescence of kale (Brassica oleracea L.) under UV-B

exposure near harvest time in controlled environments [Text] /H. I. Yoon, D. Kim, J. E. Son // Photochemistry and photobiology. -2020.-V. 96. -№ 4.-P. 845-852.

228. Yuan, Y.Water deficit affected flavonoid accumulation by regulating hormone metabolism in Scutellaria baicalensis Georgi roots[Text] /Y. Yuan,Y. Liu,C. Wu,S. Chen, Z. Wang, Z. Yang, L. Huang// PLoS ONE. -2012.

229.Zanin, L. Humic substances contribute to plant iron nutrition acting as chelators and biostimulants[Text] / Zanin, L., Tomasi, N., Cesco, S., Varanini, Z., Pinton, R. //Frontiers in plant science. - 2019. -V. 10. -P. 675.

230. Zhang, S. Gene discovery of characteristic metabolic pathways in the tea plant (Camellia sinensis) using 'Omics'-based network approaches: a future perspective[Text] /L. Zhang, Y. Tai, X. Wang, C.T. Ho, X. Wan // Frontiers in plant science. -2018. -V. 9-P. 480.

231. Zhang, X. Y. Metabolic analysis in Malus halliana leaves in response to iron deficiency [Text] /X. M. Jia, R. Zhang, Z.L. Zhu, B. Liu, L.Y. Gao, Y.X. Wang// ScientiaHorticulturae. -2019. -258. -P. 108792.

232. Zhang, Y. Jasmonic acid promotes leaf senescence through MYC2-mediated repression of CATALASE2 expression in Arabidopsis [Text] / T. T.Ji, T. T.Li, Y.Y. Tian, L.F. Wang, W. C. Liu // Plant Science. -2020. -V. 299.-P. 110604.

233.Zulaikhah, S. T. The role of antioxidant to prevent free radicals in the body [Text] /S. T. Zulaikhah//Sains Medika.-2017. -V.8-№ 1-P. 39-45.

234.Алмуграби, И. Фитохимический состав и антиоксидантный статус Brassica oleraceae L. При действии природных и синтетических регуляторов роста растений, [Text] 2021.

235. Воробьев, В.Н. Практикум по физиологии растений: учебно-методическое пособие / В.Н. Воробьев, Ю.Ю. Невмержицкая, Л.З.

Хуснетдинова, Т.П. Якушенкова. - Казань: Казанский Федеральный университет, 2013. - 80 с.

236.236. Ефимова, М.В. Практикум по физиологии растений: учебно-методическое пособие:[для студентов агрономических специальностей] /М.В.Ефимова. 2018.

237.Запрометов, М.Н. Фенольные соединения: Распространение, метаболизм и функции в растениях / М.Н. Запрометов. - М.: Наука, 1993.-271 с.

238.Курынцева, П. А. Изменение токсикологических характеристик пироугля из куриного помета в процессе химической модификации. Ученые записки Казанского университета / П. А. Курынцева, И. Б. Выборнова, П. Ю. Галицкая, С. Ю. Селивановская, // Серия Естественные науки. 2019. - Т. 161 № 1. - С. 77-92.

239.Сибгатуллина, Г.В. Методы определения редокс-статуса культивируемых клеток растений: учебно-методическое пособие / Г. В. Сибгатуллина, Л. Р. Хаертдинова, Е. А. Гумерова, А. Н. Акулов, Ю. А. Костюкова, Н. А. Никонорова, Н. И. Румянцева // Казань: Казанский (Приволжский) Федеральный университет, 2011. - 61c.

240. Федосеева, Г.М. Фитохимический анализ растительного сырья, содержащего флавоноиды / Г.М. Федосеева, В.М. Мирович, Е.Г. Горячкина, М.Г. Переломова - Иркутск: Иркутский Государственный медицинский Университет минсоцразвития, 2009. - 67с.

241.Хасанова, С. Р.Сравнительное изучение антиоксидантной активности растительных сборов. Вестник Воронежского государственного университета [Text] / С. Р.Хасанова, Т. И.Плеханова, Д. Т.Гашимова, Э. Х.Галиахметова, Е. А. Клыш //Серия: Химия. Биология. Фармация.-2007.-№1.-P. 163-166.

Акт внедрения

результатов научно-исследовательских, опытно-конструкторских и технологических работ. Заказчик Учебно-производственный центр по изучению биоразнообразия Института фундаментальной медицины и биологии ФГАОУ ВО КФУ Настоящим актом подтверждается, что результаты работы: по теме «Вариабельность биохимического состава Brassica oleracea var. acephala в зависимости от условий выращивания и элементов минерального питания», выполненной на кафедре ботаники и физиологии растений Института фундаментальной медицины и биологии ФГАОУ ВО КФУ,

внедрены в учебно-производственном центре по изучению биоразнообразия Института фундаментальной медицины и биологии ФГАОУ ВО КФУ

1.Вид внедренных результатов интродукция и совершенствование технологии возделывания капусты кейл

2.Характеристика масштаба внедрения: разработка технологических приемов возделывания капусты кейл (оптимальные дозы удобрений, способы применения регуляторов роста).

3.Форма и объём внедрения: передано для выращивания 250 кустов рассады капусты кейл

4.Новизна результатов научно-исследовательской работ: Установлено, что капуста кейл, выращенная в условиях Татарстана, обладает богатым фитохимическим составом и может быть рекомендована в качестве ресурса для производства функциональных продуктов питания. Были подобраны органоминеральные вещества (биостим, энерген, гумат, NPK, пироуголь) для улучшения фитохимического состава капусты кейл и выявлены оптимальные сроки сбора урожая капусты кейл с максимальным содержанием биологически активных веществ в зависимости от типа внесенных минеральных (NPK) и минерально-органических добавок (биостим, энерген, гумат, пироуголь). Впервые показано, что пироуголь повышает содержание фенольных соединений, витаминов, Сахаров, увеличивает антиоксидантную активность капусты кейл. Полученные результаты способствуют установлению общих закономерностей регуляции биохимического состава капусты кейл и конструктивного регулирования факторами корневого питания для получения желаемых результатов.

5. Социальный и научно-технический эффект: переход к высокопродуктивному и экологически чистому arpo- и аквахозяйству, разработка и внедрение систем рационального применения средств химическойеэгЛ биологической защиты

ОБ РА 3 Qj^j,

сельскохозяйственных растений, создание бе^Ш^Ш® Таинственных, в том числе функциональных, продуктов питания.

УЧЕБНО ^ПРОИЗВОДСТВ

■'1 íé „ГТ1Т1

|Ш^ъ т

по изучению биоразнообразия КФУ ИФМш-.^"

Зав. центром, учебно-производ. центр

ахов Н.В.