Фитохимический состав и антиоксидантный статус Brassica oleraceae L. при действии природных и синтетических регуляторов роста растений тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.02.14, кандидат наук Алмуграби Есраа

• Алмуграби Есраа
• кандидат наук
• 2021

Оглавление диссертации кандидат наук Алмуграби Есраа

СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ

ВВЕДЕНИЕ

1 ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

1.1 Капуста Кейл

1.1.1 Ботанические и биологические особенности семейства Brassicaceae

1.1.2 Brassica oleracea var. acephala - представитель семейства Brassicaceae

1.1.3 Агрономические требования капусты кейл

1.1.4 Фитохимический состав Brassica oleracea var. acephala... 18 -Витамины

- Минеральные вещества

- Глюкозинолаты

1.1.5 Современное и традиционное использование капусты

кейл

1.1.6 Биологическая активность капусты кейл

- Фенольные соединения

- Биосинтез фенольных соединений в растениях

- Физиологическая роль фенольных соединений в растениях

1.2 Регуляторы роста растений

1.2.1 Природные регуляторы роста растений

- Брассиностероиды

- Гиббереллины

1.2.2 Синтетические регуляторы роста растений

- Аналог брассиностероидов - эпибрассинолид

- Аналог гиббереллинов - гибберсиб

- Новосил (Силк)

2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЙ

2.1 Объекты исследований

2.2 Схема экспериментов

2.2.1 Схема экспериментов с растениями капусты кейл

2.2.2 Схема эксперимента с крысами

2.2.3 Схема эксперимента со студентами

2.3 Методы исследований

2.3.1 Определение сухой биомассы листьев

2.3.2 Определение суммарного содержания растворимых фенольных соединений

2.3.3 Определение содержания флавоноидов

2.3.4 Определение содержания каротиноидов

2.3.5 Определение свободного пролина

2.3.6 Определение уровня перекисного окисления липидов (по содержанию малонового диальдегида)

2.3.6.1 в листьях капусты

2.3.6.2 в плазме крыс

2.3.7 Определение активности каталазы

2.3.7.1 в листьях капусты

2.3.7.2 в плазме крыс

2.3.8 Определение активности растворимой пероксидазы

2.3.8.1 в листьях капусты

2.3.8.2 в плазме крыс

2.3.9 Определение активности аскорбатпероксидазы

2.3.10 Определение антиоксидантной активности

2.3.10.1 в листьях капусты

2.3.10.2 в плазме крыс

2.3.11 Определение содержания белка

2.3.12 Определение содержания сахара

2.3.13 Определение содержания аскорбиновой кислоты

2.3.14 Измерение силы мышц кисти у студентов

2.3.15 Определение зрительной кратковременной памяти у

студентов

2.3.16 Определение умственной работоспособности у студентов

2.3.17 Определение физической работоспособности у студентов

2.3.18 Определение стрессорности у студентов

2.3.19 Статистическая обработка результатов

3 РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЙ И ИХ ОБСУЖДЕНИЕ

3.1 Фитохимический состав и антиоксидантная активность

разных сортов капусты кейл (B. oleracea var. acephala)

3.2 Фитохимический состав и антиоксидантная активность

свежей и замороженной капусты кейл (B. oleracea var. acephala)

3.3 Влияние обработки семян капусты кейл регуляторами роста на антиоксидантную активность и содержание питательных

веществ

3.3.1 Влияние природных регуляторов роста

3.3.1.1 Влияние природных регуляторов роста на содержание малонового диальдегида

3.3.1.2 Влияние природных регуляторов роста на содержание растворимых фенольных соединений

3.3.1.3 Влияние природных регуляторов роста на содержание аскорбиновой кислоты (Витамин С)

3.3.1.4 Влияние природных регуляторов роста на содержание ß-каротина (провитамина А)

3.3.1.5 Влияние природных регуляторов роста на содержание пролина

3.3.1.6 Влияние природных регуляторов роста на активность антиоксидантных ферментов

3.3.1.7 Влияние природных регуляторов роста на содержание питательных веществ

3.3.1.7.1 Содержание растворимых сахаров

3.3.1.7.2 Содержание белка

3.3.2 Влияние синтетических регуляторов роста на антиоксидантные свойства капусты кейл в онтогенезе

3.3.2.1 Влияние синтетических регуляторов роста на

содержание малонового диальдегида

3.3.2.2 Влияние синтетических регуляторов роста на

содержание растворимых фенольных соединений

3.3.2.3 Влияние синтетических регуляторов роста на

содержание аскорбиновой кислоты (витамин С)

3.3.2.4 Влияние синтетических регуляторов роста на

содержание Р-каротина (провитамина А)

3.3.2.5 Влияние синтетических регуляторов роста на

содержание пролина

3.3.2.6 Влияние синтетических регуляторов роста на активность

ферментных антиоксидантов

3.3.2.6 Влияние синтетических регуляторов роста на

содержание питательных веществ

3.3.2.6.1 Содержание растворимых сахаров

3.3.2.6.2 Содержание белка

3.4 Влияние опрыскивания на антиоксидантную активность и содержание питательных веществ в капусте кейл

3.5 Влияние капусты кейл на умственные и физические показатели у человека

3.6 Влияние капусты кейл на антиоксидантную активность

сыворотки крови крыс

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

ВЫВОДЫ

СПИСОК ИСПОЛЬЗОВАННЫХ ИСТОЧНИКОВ

СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ

АФК - активные формы кислорода

АА - Антиоксидантная активность

БЛ - брассинолид

БС - брассиностероиды

ЭБЛ - 24-эпибрассинолид

ГК - гиббереловая кислота

ИУК - индолилуксусная кислота

ТБК - тиобарбитуровая кислота

ТХУ - трихлоруксусная кислота

АБК -абсцизовая кислота

АК - аскорбиновая кислота

МДА- малоновый диальдегид

ПОЛ - перекисное окисление липидов

ФС - фенольные соединения

ФЛ - флавоноиды

УФ - ультрафиолетовое излучение

СОД - супероксиддисмутаз

СК - салициловая кислота

ФАЛ - фенилаланин-аммиак лиаз

ВЭЖХ - высокоэффективная жидкостная хроматография

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Фитохимический состав и антиоксидантный статус Brassica oleraceae L. при действии природных и синтетических регуляторов роста растений»

ВВЕДЕНИЕ

Актуальность темы. Одной из важнейших проблем современной науки является проблема правильного питания. В настоящее время общепризнанно, что питание - один из главных факторов, определяющих здоровье человека. Сейчас всё больше людей, беспокоящихся о своём здоровье, выбирают правильную полезную пищу, которая служит не только основой удовлетворения голода, но и источником питательных веществ. Что, в свою очередь, обеспечит организм физически полноценным развитием и функционированием, и как итог психическим благополучием человека.

Научные исследования свидетельствуют о том, что продукты питания могут улучшить общее состояние организма, снизить риск некоторых заболеваний. Пищевые продукты, которые рекомендуют для систематического употребления в составе пищевых рационов всеми возрастными группами здорового населения, известны под названием «функциональная пища». Этот термин был впервые использован тридцать лет назад в Японии и был принят во всем мире. Функциональные продукты питания, помимо возможности снизить стоимость медицинского обслуживания стареющего населения, могут также дать коммерческий потенциал для пищевой промышленности [Siro et al., 2008]. В целом население, как правило, использует термин для функционального питания -«суперпродукт». Овощи, которые часто входят в списки «самых полезных продуктов» или «суперпродуктов», - это капуста Кейл [Samec et al., 2018].

Скотч кейл (Brassica oleracea L. var. acephala) - зеленый, красный и фиолетовый листовый овощ, культивируется в Северной и Центральной Европе, а также в Северной Америке при низких температурах, а также при низких уровнях фотосинтетически активной радиации. Кудрявая капуста занимает заслуженно высокое место в списке функциональных продуктов из-за большого содержания биологически активных веществ, которые уменьшают риск возникновения хронических заболеваний [Balkaya, Yanmaz, 2005; Velasco et al., 2007; Batelja et al., 2009; Lemos et al., 2011]. Она является

7

очень перспективной овощной культурой, которую можно использовать не просто как пищевой продукт, но, благодаря богатому фитохимическому составу, может быть использована для укрепления здоровья [Samec et al, 2018].

Кейл содержит большое количество витаминов (А, С, К, Е, В1, В2, В6), минералов (кальция, магния, железа, меди и цинка), каротиноидов, антиоксидантных соединений, углеводов, ненасыщенных жирных кислот, белков и пищевых волокон [Kurilich et al., 1999; Heimler et al., 2006; Zhou, Yu, 2006; Podsedek, 2007; Olsen et al, 2010; Eryilmaz, 2011; Sikora, Bodziarczyk, 2013; Thavarajah et al, 2016]. Эти фитохимические вещества также играют важную роль во взаимодействии растений с окружающей средой. Например, в качестве соединений, защищающих от патогенов или различных абиотических стрессов, антиоксидантов или сигнальных молекул [Mittler, 2002; Gilland, Tuteja, 2010; Jaspers, Kangasjarvi, 2010].

Капусту кейл используют в народной медицине для ослабления симптомов воспалительных заболеваний кишечника и для лечения многих заболеваний, таках, как: сахарного диабета, ревматизма, остеопароза, офтальмологических проблем, заболеваниях печени, анемии, ожирении, желудочно-кишечных проблем и др [Albuquerque et al., 2010; Lemos et al., 2011; Gonfalves et al., 2012; Fahey et al., 2013; Kuerban et al., 2017; Samec, Salopek-Sondi, 2018]. Кейл снижает риск сердечно-сосудистых заболеваний [Kris-Etherton et al., 2004; Kim et al., 2008; Ciccone et al., 2013]. Обнаружена обратная зависимость между потреблением капусты кейл и риском развития рака [Goncalves et al., 2012; Dosz et al., 2014]. Кейл также обладает антимикробной активностью против Staphylococcus aureus, Enterococcus faecalis, Bacillus subtilis и Moraxella catarrhalis [Ayaz et al., 2008].

Однако несмотря на все положительные характеристики, на территории Россия в промышленных масштабах кейл не культивируется. Вместе с тем климатические условия Республики Татарстан вполне благоприятны для выращивания таких овощей. Однако фитохимический состав кейл может

сильно варьировать в зависимости от климатических и географических условий.

В последнее время все чаще для увеличения продуктивности культур используют регуляторы роста растений [Плешков, 1965; Гамбургь с соавт., 1979; Ладатко, 2004; Иванова с соавт., 2014; Рябчинская, Зимина, 2017].

Регуляторы роста растений применяются для изменения выраженности свойств растений в онтогенезе, замедления или ускорения их роста и развития, активации образования корней и цветков, обеспечения синхронного созревания урожая, улучшения его товарных качеств и повышения устойчивости растений к действию стрессовых факторов среды [Гамбургь с соавт., 1979; Ладатко, 2004; Иванова с соавт., 2014; Рябчинская, Зимина, 2017].

Природные гормоны (брассинолид и гибберелловая кислота) играют важную роль в регуляции многих физиологических процессов у растений [Miguel et al., 1998., Озолина, Продедова, 1999; Холл с соавт 2002; Хелдт, 2011; Li et al., 2011; Chiu et al, 2016b]. Но они не нашли широкого практического применения в сельском хозяйстве в связи с высокой стоимостью из-за трудоемкости их выделения и идентификации. Это привело к массовому поиску и синтезу аналогов природных фитогормонов и изучению перспективы использования синтетических регуляторов роста растений.

Цель работы - состояла в выявлении условий, способствующих улучшению фитохимического состава и антиоксидантной активности в растениях капусты кейл.

В соответствии с этим были поставлены следующие задачи:

1. Провести сравнительный анализ содержания фенольных соединений, флавоноидов, каротиноидов, витамина С, общего белка, сахаров, малонового диальдегида (МДА), пролина и активность антиоксидантных ферментов (каталазы, аскорбатпероксидазы и растворимой пероксидазы) в разных сортах капусты кейл;

2. Исследовать качественные изменения химического состава и антиоксидантной активности листьев капусты кейл у сорта «Скотч Синий Карлик» после хранения при температуре -18°С;

3. Изучить антиоксидантный статус и количественные изменения белков и сахаров в процессе развития капусты кейл;

4. Выявить действие регуляторов роста и оценить эффективность разных приемов обработки регуляторами роста на антиоксидантные свойства, содержание белков и сахаров в растениях капусты кейл;

5. Сравнить влияние природных и синтетических регуляторов роста на фитохимический состав и активность антиоксидантных ферментов капусты кейл;

6. Исследовать влияние капусты кейл на содержание МДА, антиоксидантную активность и активность ферментов (пероксидаз и каталаз) в сыворотке крови крыс, а также на физические и умственные способности человека.

Положения, выносимые на защиту

1. Brassica oleracea L. var. acephala, выращенная в условиях Республики Татарстан, содержит высокое количество первичных и вторичных метаболитов. В онтогенезе и после заморозков их содержание увеличивается и усиливаются антиоксидантные свойства капусты кейл.

2. Фитогормоны (гибберелловая кислота, брассинолид) и коммерческие препараты биостимуляторов роста (новосил, гибберсиб, эпин-экстра) улучшают фитохимический состав капусты кейл. Соединения терпеноидной природы (новосил, гибберелловая кислота и ее аналог гибберсиб) увеличивают активность антиоксидантных ферментов и повышают содержание каротиноидов, пролина, белков и сахаров, в то время как соединения стероидной природы (брасинолид и его аналог эпин-экстра) увеличивают содержание фенольных соединений и флавоноидов.

3. Употребление коктейля, в состав которого входит капуста кейл, улучшает умственную работоспособность и зрительную память человека. Добавление

к рациону питания крыс капусты кейл снижает содержание МДА и повышает антиоксидантную активность плазмы крови крыс.

Научная новизна работы. Впервые в условиях Татарстана провели интродукцию капусты кейл. Были подобраны фитогормоны (гибберелловая кислота, брассинолид) и коммерческие препараты биостимуляторов роста (новосил, гибберсиб, эпин-экстра) для улучшения фитохимического состава капусты кейл. Впервые продемонстрировано, что соединения терпеноидной природы (новосил, гибберелловая кислота и его аналог гибберсиб) увеличивают активность антиоксидантных ферментов (каталаз, аскорбатпероксидаз и пероксидаз) и повышают содержание каротиноидов, пролина, белков и сахаров. Соединения стероидной природы (брасинолид и его аналог эпин-экстра) увеличивают содержание фенольных соединений и флавоноидов. Однаружена положительная динамика содержания первичных вторичных метаболитов на поздних стадиях развития капусты кейл и после действия отрицательных температур.

Показано, что употребление коктейля, в состав которого входит капуста кейл, улучшает умственную работоспособность и зрительную память человека, а добавление данного овоща в рацион питания крыс снижает содержание МДА и повышает антиоксидантную активность в крови крыс.

Теоретическая и практическая значимость работы. Полученные результаты свидетельствуют о возможности улучшения вкусовых, питательных качеств B. oleracea var. acephala и повышения синтеза защитных соединений (ферментные и неферментные антиоксидантные), и тем самым, увеличения устойчивости растений капусты кейл к неблагоприятным факторам внешней среды, с одной стороны, а с другой -улучшения медико-биологических свойств капусты кейл с помощью регуляторов роста растений. Показана возможность замены природных гормонов на их аналоги с целью удешевления себестоимости продукции. Данные о положительном влиянии B. oleracea var. acephala на организм крыс

и человека могут лечь в основу разработок для пищевой промышленности по использованию капусты кейл как функционального продукта питания.

Результаты могут быть использованы в курсах лекций и проведении практических занятий для студентов, обучающихся по направлению: «Сельскохозяйственная биотехнология», «Прикладная биотехнология», «Основы биотехнологии» и «Физиология растений».

Публикации по теме диссертации. По теме диссертационной работы опубликовано 11 работ, в число которых входят 2 статьи в изданиях, индексируемых в международных цитатно-аналитических базах, данных Scopus, 4 статьи в российских рецензируемых научных журналах и 5 публикаций в материалах научных конференций.

Апробация работы. Материалы диссертации были представлены на следующих международных российских конференциях: X Международный симпозиум «Фенольные соединения: функциональная роль в растениях» (Москва, 2018), III Международная школа-конференция студентов, аспирантов и молодых ученых «Материалы и технологии XXI века» (Казань, 2018), итоговая научная конференция сотрудников Казанского университета за 2017 год. Секция: Актуальные проблемы биологии растений (Казань, КФУ, 2018), IX Съезд общества физиологов растений России «Физиология растений - основа создания растений будущего» (Казань, 2019), 72-я Всероссийская с международным участием школа-конференция молодых ученых «Биосистемы: организация, поведение, управление» (Нижний Новгород, 2019), итоговая научная конференция сотрудников Казанского университета за 2018 год. Секция: Актуальные проблемы биологии растений (Казань, КФУ, 2019), 73-я Всероссийская с международным участием школа-конференция молодых ученых «Биосистемы: организация, поведение, управление» (Нижний Новгород, 2020), XIII Международная научно-практическая конференция «Состояние и перспективы развития агропромышленного комплекса» (Донской, 2020), итоговая научная конференция сотрудников Казанского университета за 2019 год. Секция:

Актуальные проблемы биологии растений (Казань, КФУ, 2020), 10th International Conference Photosynthesis and Hydrogen Energy Research for Sustainability (Saint Petersburg, 2019).

Личный вклад автора. Содержание диссертации и все представленные в ней результаты получены лично автором на кафедре ботаники и физиологии растений отделения биологии и биотехнологии Института фундаментальной медицины и биологии Казанского (Приволжского) федерального университета. Автором совместно с научным руководителем разработана программа, направление, выбраны методы исследований, а также проведено обсуждение результатов и подготовка публикаций, причем вклад диссертанта был определяющим.

Структура диссертации. Диссертация изложена на 170 страницах компьютерного текста, состоит из введения, литературного обзора, материалов и методов исследований, экспериментальной части, выводов и списка цитированной литературы, который включает 339 источников. Диссертационная работа содержит 5 таблиц и 38 рисунков.

ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

1.1 Капуста Кейл

1.1.1 Ботанические и биологические особенности семейства Brassicaceae

Семейство Brassicaceae имеет очень сложную таксономию и систематику. Семейство Brassicaceae относится к отряду Brassicales и, по последним данным, включает 341 род и 3977 видов [Franzke et al., 2011]. Эти цифры меняются каждые несколько лет из-за находок новых видов или использования новых современных методов, которые могут более детально различать генетическое разнообразие этого семейства [Al-Shehbaz et al., 2006; Huang et al., 2015].

В последние годы было разработано несколько баз данных для классификации семейства Brassicaceae и родов Brassicaceae, таких, как BrassiBase (http://brassibase.cos.uni-heidelberg.de), которая охватывает всю таксономическую, систематическую и фило- и цитогенетическую литературу семейства Brassicaceae и родов Brassicaceae в мире, и (http://flora.huh.harvard.edu/Brassicaceae/intkey/WWW/Genera.htm), которая включает морфологическую и географическую идентификацию родов.

Вид Brassica oleracea L.

Название вида было впервые опубликовано Линнеем в его книге «Виды растений» (1753, с.667), он также присвоил десять сортовых названий различным культурным формам Brassica oleracea, включая капусту, цветную капусту, различные листовые капусты: кейл и кольраби [Gukov, Rozlomiy, 2018]. Brassica oleracea L. классифицируется следующим образом: порядок Brassicales (= Cruciales) Семейство Brassicaceae (= крестоцветные) Племя капуста Субплемя Brassicinae Род Brassica

Вид Brassica oleracea L. (2n=18) является членом семейства Brassicaceae, дикие виды которых были обнаружены на Атлантическом побережье Испании, Франции и Британских островах. Предполагается, что современные культуры Brassica получены из этих видов и ранний отбор сортов сельскохозяйственных культур произошел в районе Средиземноморья [Christensen et al., 2011]. Другие авторы тоже поддерживают представление о том, что происхождение культур Brassica происходит в Средиземноморском бассейне [Izzah et al., 2013].

Многочисленные данные свидетельствуют о значительном разнообразии представителей Brassica oleracea L [Spooner et al., 2003]. В частности, acephala включает листовые капусты без заголовка с общим названия - кале (кейл). Кале (слово) включает в себя различные разновидности, такие как: капуста кейл, скотч кейл, коллард, пальмовая кейл, костный мозг стебель кейл, тысячеголовая кейл и португальская трончуда капуста [Diederichsen, 2001]. Классификация представлена в базах, данных для рода Brassica, созданная Европейской программой по генетическим ресурсам сельскохозяйственных культур (http: //ecpgr. cgn. wur. nl/Brasedb) и согласуется с вышеуказанной таксономией.

Среди группы acephala можно найти полный спектр морфотипов. У коллард гладкие, широкие листья, у кейл темно-зеленые и курчавые листья, в то время как у скотч кейл - серо-зеленые и очень скрученные и смятые листья. Костный мозг стебель кейл или кормовая капуста используется в основном для животноводства, имеет мягкий стебель и различные типы листьев. Пальмовая кейл имеет темно-сине-зеленые и удлиненные листья. Тысячеголовая кейл - это многолетний кустарник, а португальская трончуда капуста - карликовое розеточное растение с изменяющейся рыхлой псевдоголовкой [Dias, Monteiro, 1994; Dias, 2012]. Важно упомянуть сибирскую капусту (Brassica napus L. var. Pabularia), которая является продуктом гибридизации Brassica oleracea L. var. acephala и Brassica rapa L

[Körber et al., 2012]. Ее можно отличить по голубовато-зеленой листве, менее скрученной и с изрезанной листовой поверхностью.

Различные виды капусты кейл имеют долгую историю широкого использования в садоводстве, что обеспечило их большую генетическую изменчивость и привело к большому количеству сортов кейл в мире. Эта изменчивость может быть результатом внутрипопуляционной изменчивости, вызванной перекрестным опылением растений, а также межпопуляционной изменчивости в результате выбора фермера и адаптации к местным экологическим условиям [Cartea et al., 2002].

В последние десятилетия морфологические, агрономические, генетические и фитохимические характеристики местных сортов кейл рассматриваются и исследуются во многих странах, таких, как Испания [Cartea et al., 2002], Португалия [Dias, Monteiro, 1994], Турция [Balkaya, Yanmaz, 2005], Хорватия [Urlic et al., 2016] и другие [Izzah et al., 2013; Hahn et al, 2016].

1.1.2 Brassica oleracea var. acephala - представитель семейства

Brassicaceae

Скотч кейл - зеленый, красный и фиолетовый листовый овощ, культивируется в Северной и Центральной Европе, а также в Северной Америке при низких температурных условиях, а также при низких уровнях фотосинтетически активной радиации.

Кудрявая капуста занимает заслуженно высокое место в списке функциональных продуктов из-за высокого содержания биологически активных веществ, которые уменьшают риск возникновения хронических заболеваний [Samec et al., 2018], Она является очень перспективной овощной культурой, которую можно использовать не просто как пищевой продукт, но, благодаря богатому фитохимическому составу, может быть использована для укрепления здоровья [Samec et al., 2018].

Кейл содержит большое количество витаминов (А, С, К, Е, В1, В2, В6), минералов (кальция, магния, железа, меди и цинка), каротиноидов, антиоксидантных соединений, углеводов и ненасыщенных жирных кислот. Кейл считается хорошим источником белков и пищевых волокон [Heimler et al, 2006; Zhou, Yu, 2006; Podsedek, 2007; Olsen et al, 2010; Sikora, Bodziarczyk, 2013]. Эти фитохимические вещества также играют важную роль во взаимодействии растений с окружающей средой. Например, в качестве соединений, защищающих от патогенов или различных абиотических стрессов, антиоксидантов или сигнальных молекул [Mittler, 2002; Gill, Tuteja, 2010; Jaspers, Kangasjarvi, 2010].

1.1.3 Агрономические требования капусты кейл

Агрономические требования для капусты кейл такие же, как и для всех культур Brassica. Рекомендуется производить севооборот с другими культурами, кроме Brassicaceae, и сажать их снова на одну и ту же почву каждые 3-4 года. Несмотря на то, что можно культивировать кейл в широком диапазоне почв, наилучшая продуктивность может быть достигнута на низко кислых или нейтральных почвах (pH 6-6.5), с суглинистой текстурой и соответствующей пропускной способностью воды и воздуха. Капуста кейл требует большого количества органических удобрений, она положительно реагируют на применение азотных удобрений, которые улучшают вегетативный рост [D'Antuono, Neri, 1997]. Кейл в основном проращивают из семян. У рассады образуется крепкий стержневой корень и несколько сильных боковых корней. В более теплом климате проростки обычно высаживают в конце лета или в начале осень. Некоторые сорта можно сажать весной и собирать урожай летом и осенью. Сорта с более высокой морозостойкостью дают съедобные листья всю зиму [Farnham, Garrett, 1996].

Таким образом, свежая капуста кейл может быть доступна на рынке круглый год. Кейл нашла широкое распространение в Европе, Азии и Соединенных Штатах. Ее огромная популярность в последнее время может

быть вызвана тем, что ее легко и дешево выращивать, и она устойчива к неблагоприятным климатическим условиям (повышенная соленость, засуха, высокая и низкая температура и т. д.). Урожай можно собирать через 4-6 недель после посадки в зависимости от желаемого размера листа и его нежности. Кейл собирают путем удаления старых листьев на стебле, что способствует росту новых и, соответственно, более высокой урожайности.

1.1.4 Фитохимический состав Brassica oleracea var. acephala

В последние десятилетия все больше накапливается фактов, свидетельствующих о том, что продукты питания и их компоненты значительно влияют на здоровье людей. Многие потребители считают, что пища, помимо выполнения основной задачи по удовлетворению голода и обеспечению питательными веществами, может непосредственно способствовать их здоровью посредством профилактики заболеваний, связанных с питанием, и улучшения физического и психического благополучия. Научные исследования свидетельствуют о том, что продукты питания могут улучшить общее состояние организма, снизить риск некоторых заболеваний. Пищевые продукты, которые рекомендуют для систематического употребления в составе пищевых рационов всеми возрастными группами здорового населения, известны под названием «функциональная пища». Этот термин был впервые использован тридцать лет назад в Японии и был принят во всем мире. Функциональные продукты питания, помимо возможности снизить стоимость медицинского обслуживания стареющего населения, может также дать коммерческий потенциал для пищевой промышленности [Siro et al., 2008]. В целом население, как правило, используемый термин для функционального питания - «суперпродукт». Овощи, которые часто входят в списки «самых полезных продуктов» или «суперпродуктов», - это капуста Кейл [Samec et al., 2018].

Показано, что положительное влияние крестоцветных овощей на профилактику рака может быть связано с наличием полезных для здоровья

соединений, таких как глюкозинолаты, полифенолы и каротиноиды [Ferreres et al., 2009; Bjorkman et al, 2011; Becerra-Moreno et al, 2014; Samec, Salopek-Sondi, 2018]. В настоящее время в капусте кейл было идентифицировано порядка 26 генов биосинтеза глюкозинолатов, 23 гена биосинтеза фенилпропаноидов и 22 гена биосинтеза каротиноидов, Это подтверждает, что кейл содержит основные вещества, полезные для здоровья [Jeon et al., 2018].

Согласно базам данных пищевых продуктов США, содержание витаминов А, С, К, Е, В1, В2, В6, фолиевой кислоты, кальция, магния, железа, меди и цинка в кейл выше, чем в других видах капусты. Кроме того, она содержит большое количество таких органических веществ, как белки, углеводы и ненасыщенные жирные кислоты [USDA, 2015]. Кейл считается хорошим источником белков и пищевых волокон, содержит в своем составе высокое количество незаменимых аминокислот, что делает полезным данный овощ для людей, не употребляющих животные белки [Vale et al., 2015].

Витамины

Капуста кейл является богатым источником витаминов A, В1, В2, В6, C и E. [Kurilich et al., 1999] проанализировали 50 образцов брокколи, 13 капусты, кейл, цветной капусты и брюссельской капусты и обнаружили, что кейл содержит самое большое количество Р-каротина, В том же исследовании было обнаружено, что кейл содержит самое высокое количество а-токоферола (витамина Е), который необходим для поддержания стабильности клеточных мембран и предотвращения окислительного повреждения тканей. Крестоцветные овощи являются хорошими источниками Р-каротина и лютеина, которые играют роль для поддержания здоровье глаз [Manikandan et al., 2016]. Как Р-, так и а-каротины являются предшественниками витамина А, которые важны для здоровой кожи, костей, желудочно-кишечного тракта и дыхательной системы. Основными каротиноидами в кейл являются лютеин, а-каротин, Р-каротин, виолаксантин,

неоксантин,13-цис-Р-каротин, 9-цис-Р-каротин и ликопин [Jeon et al., 2018]. Согласно [Becerra-Moreno et al., 2014] одна порция капусты Кейл обеспечивает более 100% рекомендуемой суточной нормы витамина А и более 40% витамина С.

Витамин С является важным первичным метаболитом растений, он удаляет супероксидные и гидроксильные радикалы и действует как антиоксидант, прерывающий цепь при перекисном окислении липидов [Wolucka et al, 2005; Khan et al., 2012].

Минеральные вещества

Капуста кейл также считается источником основных минеральных веществ (особенно K, Ca, Mg, Fe и Cu) [Ayaz et al., 2006; Jahangir et al., 2009; Eryilmaz Acikgoz, 2011; Thavarajah et al., 2016], но их уровень может зависеть от факторов окружающей среды и стадии онтогенеза [Fadigas et al., 2010; Bjorkman et al., 2011; Westwood et al., 2014]. Например, Fadigas et al. (2010) сообщили, что образцы капусты кейл, собранные в зимний период, имеют более высокую концентрацию микроэлементов (Fe, Zn и Mn) и макроэлементов (Ca и Mg), чем те, которые были собраны летом. Стадия зрелости также является важным фактором, который влияет на содержание питательных микроэлементов, витаминов и минералов в овощах семейства крестоцветных [Samec et al., 2011].

Глюкозинолаты

Это серосодержащие соединения, найденные в растениях Brassicaceae, которые в первую очередь определяют пользу этих овощей для здоровья человека. На сегодняшний день известно около 200 различных алифатических, ароматических и индольных глюкозинолатов, но их присутствие у разных видов Brassica, скорее всего, генетически предопределено. Всего у крестоцветных известно более десятка различных

глюкозинолатов, причем у каждого вида / сорта встречается 3-4 глюкозинолата [Fahey et al., 2001].

Продукты гидролиза глюкозинолатов, глюкобрассицин-индол-3-карбинол и 3,3'-дииндолилметан являются перспективными препаратами для химиотерапии различных видов рака [Fujioka et al., 2016]. Сообщается, что преобладающими алифатическими глюкозинолатами в кейл являются синигрин, глюкойберин и глюкорафанин [Velasco et al., 2007; Sasaki et al., 2012]. Синигрин и его продукт гидролиза аллилизотиоцианат имеют различные терапевтические применения [Mazumder et al., 2016], тогда как продукт гидролиза глюкорафанин, сульфорафан имеет потенциал для снижения риска различных видов рака, диабета, атеросклероза, респираторных заболеваний, нейродегенеративные расстройства, глазных расстройств и сердечно-сосудистых заболеваний [Elbarbry, Elrody, 2011].

Содержание глюкозинолатов зависит от условий культивирования, местоположения и стадии развития [Velasco et al., 2007; Cartea, Velasco, 2008; Steindal et al, 2015].

Доминирующими фенольными кислотами в сортах капусты кейл являются те, которые относятся к гидроксициннамовой группе (до 92,8% выявленных фенольных кислот) [Ayaz et al., 2008; Olsen et al., 2009; Olsen, et al., 2010]. Наиболее часто идентифицируемыми фенольными кислотами в кейл являются производные кофеиновой, феруловой и синапиновой кислот [Ayaz et al, 2008; Olsen et al, 2009; Olsen, et al, 2010].

Список литературы диссертационного исследования кандидат наук Алмуграби Есраа, 2021 год

СПИСОК ИСПОЛЬЗОВАННЫХ ИСТОЧНИКОВ

1. Авальбаев, А.М. Влияние 24-эпибрассинолида на гормональный статус растений пшеницы при действии хлорида натрия / А.М. Авальбаев, Р.А. Юлдашев, Р.А. Фатхутдинова, Ф.А. Урусов, Ю.В. Сафутдинова, Ф.М. Шакирова // Прикладная биохимия и микробиология. - 2010. - Т.46. - № 1. - С. 109-112.

2. Алиева, З.М. Протекторное действие эпибрассинолида на черенки различных культур в условиях засоления / З.М. Алиева, Л.Д. Прусакова, А.Г. Юсуфов // Агрохимия. - 2004. -№ 9. - С. 68-74.

3. Барабой, В.А. Растительные фенолы и здоровье человека / В.А. Барабой.- М.: Наука, 1984. - 160 с.

4. Будкевич, Т.А. Оценка биологической подвижности 241Am и 137Cs в агроценозах бобовых и злаковых растений при действии минеральных удобрений и эпибрассинолида / Т.А. Будкевич, А.И. Заболотный, В.П. Кудряшов // Агрохимия. - 2005. - № 10. - С. 71-81.

5. Будыкина, Н.П. Оценка препарата эпин экстра на способность индуцировать повышение устойчивости растений к охлаждению / Н.П. Будыкина, Л.В. Тимейко, Т.Ф. Алексеева, Т.С. Гоголева // Устойчивость экосистем и проблема сохранения биоразнообразия на Севере. Материалы Междунар. конф. (Кировск, 26- 30 авг. 2006 г.). Т. II. Кировск, 2006. С. 218-221.

6. Будыкина, Н.П. Использование препарата эпин экстра в агротехнологии выращивания томата в пленочных теплицах европейского Северо-Запада России / Н.П. Будыкина, Т.Ф. Алексеева, Н.И. Хилков // Материалы Междунар. науч.практ. конф. «Интенсификация и оптимизация продукционного процесса сельскохозяйственных растений». Орел, 2009. С. 48-52.

7. Будыкина, Н.П. Влияние эпина экстра - синтетического аналога 24-эпибрассинолида на стрессоустойчивость и продуктивность растений

огурица (Cucumis Sativus L.) / Н.П. Будыкина, Т.Г. Шибаева, А.Ф. Титов // Труды Карельского научного центра РАН. - 2012. - № 2. - С. 47-55.

8. Василенко, И.И. Повышение урожайности и качества зерна / И.И. Василенко. - М.: Знание, 1986. - 64 с.

9. «Возрастная физиология, анатомия и гигиена» / Казань: КФУ, 2013. - 166 с.

10.Воробьев, В.Н. Практикум по физиологии растений: учебно-методическое пособие / В.Н. Воробьев, Ю.Ю. Невмержицкая, Л.З. Хуснетдинова, Т.П. Якушенкова. - Казань: Казанский Федеральный университет, 2013. - 80 с.

11.Воронина, Л.П. Защитное действие 24-эпибрассинолида в комплексе с пестицидами / Л.П. Воронина, Н.Н. Малеванная, Л.К. Батурина, Т.И. Хуснетдинова, А.М. Фролова // Агрохимия. - 2015. - №6. - С. - 44-52.

12.Гамбург, К.З. Регуляторы роста растений / К.З. Гамбург, О.Н. Кулаева, Г.С. Муромцев. - М.: Колос, 1979. - 246 с.

13. «Государственный каталог пестицидов и агрохимикатов», разрешенных к применению на территории Российской Федерации. -М.: Минсельхоз России, 2016. - 931с. (1 часть). 51с. (2 часть).

14. Ермаков, А.И. Методы биохимического исследования растений / А.И. Ермаков, В.В. Арасимович, Н.П. Ярош, Ю.В. Перуанский, Г.А. Луковникова, М.И. Иконникова. - Л.: Агропромиздат, 1987. - 430 с.

15. Елагина, Е.М. Влияние гибберсиба на метаболические составляющие дыхания листьев томатов / Е.М. Елагина // Биологические науки в школе и вузе. -2015. - № 16. - С. 42-46.

16. Жуков, М.С. Влияние гиббереллина на рост, урожай и технические качества конопли / М.С. Жуков, М.Х. Чайлахян, В.Г. Кочанков, М.М. Сажко // Гиббереллины и их действие на растения. М.: Изд-во АН СССР, 1963. С. 261-269.

17. Жуков, Ю.П. Получение программированных урожаев зерна озимых культур при комплексном применении средств химизации / Ю.П.Жуков, Т.П. Дадабаева, С.А. Фирсов, И.М. Хайруллин // Известия ТСХА. -1991. - № 6. - С. 67-80.

18. Запрометов, М.Н. Фенольные соединения и методы их определения / М.Н. Запрометов // Биохимические методы в физиологии растений. М.: Наука, 1971. - С. 185-197.

19. Запрометов, М.Н. Фенольные соединения: Распространение, метаболизм и функции в растениях / М.Н. Запрометов. - М.: Наука, 1993. - 271 с.

20. Зыблев, С. Л. Состояние антиоксидантной активности крови при геморрагическом шоке в эксперименты / С.Л. Зыблев, З.А. Дундаров, А.И. Грицук // Проблемы здоровья и экологии. - 2013. - № 1. - С. 9397.

21. Иванова, Е.П. Всхожесть семян и продуктивность растений Амаранта под влиянием гибберсиба / Е.П. Иванова, Л.Л. Кириллова, Г.Н. Назарова // Сельскохозяйственная биология. -2014. - № 1. - С. 91-97.

22. Канделинская, О.Л. Влияние эпибрассинолида на активность белков лектинового типа и протеиназно-ингибиторной системы люпина (Lupinus angustifolius Ь.) при натрий-хлоридном засолении / О.Л. Канделинская, Е.Р. Грищенко, В.И. Домаш, А.Ф. Топунов // Агрохимия. - 2008. -№ 9. - С. 45-49.

23. Карначук, Р.А. Действие 24-эпибрассинолида на морфогенез и соотношение гормонов у проростков Arabidopsis на зеленом свету / Р.А. Карначук, И.Ф. Головацкая, М.В. Ефимова, В.А. Хрипач // Физиологии растений. - 2002. -Т. 49. - С. 591-595.

24. Кефели, В.И. Взаимодействие фитогормонов и природных ингибиторов при росте растений / В.И. Кефели // Физиология растений. - 1971. - Т.18. - С. 614.

25. Кефели, В.И. Химические регуляторы растений / В.И. Кефели, Л.Д. Прусакова. М.: Знание, 1985 . - 63 с.

26. Князева Т.В. Регуляторы роста растений в Краснодарском крае: монография / Т.В. Князева.- Краснодар: ЭДВИ, 2013.- 128 с.

27. Ковганко Н.В. Брассиностероиды в растительном мире/ Н.В. Ковганко // Химия природных соединений. - 1991. -Т. 2. - С. 159-173.

28. Коданев, И.М. Повышение качества зерна / И.М.Коданев. - М.: Колос, 1976. -304 с.

29. Кондрахин, И.П. Методы ветеринарной клинической лабораторной диагностики / И.П. Кондрахин, А.В. Архипов, В.И. Левченко, Г.А. Таланов, Л.А. Фролова, В.Э. Новиков.- Справочник - М.: Колос, 2004. - 520 с.

30. Королюк, М.А. Метод определения активности каталазы / М.А. Королюк, Л.И. Иванова, И.Г. Майорова, В.Е. Токарев // Лабораторное дело. - 1988. - № 1. - С. 16-19.

31. Кошкин, Е.И. Физиология устойчивости сельскохозяйственных культур / Е.И. Кошкин. - М.: Дрофа, 2010. - 638 с.

32. Крылова, А. В. «Физиология высшей нервной деятельности детей и подростков» / А.В. Крылова, Т.А. Аникина. - Казань. КФУ, 2014. - 69 с.

33. Ладатко, М.А. Обработка регуляторами роста - эффективная операция в технологии возделывания риса / М.А. Ладатко // Сборник научных трудов РАСХН, Краснодарский ордена Ленина и ордена Трудового Красного Знамени НИИСХ им. П.П. Лукъяненко. -Краснодар, 2004. - Т.3.- С. 255-260.

34. Лукаткин, А.С. Влияние эпибрассинолида термоустойчивость проростков кукурузы / А. С. Лукаткин, Н.Н. Каштанова, П. Духовскис // Агрохимия. - 2013. - № 6. - С. 24-31.

35. Макаренко, О.А. Физиологические функции флавоноидов в растениях / О.А. Макаренко, А.П. Левицкий // Физиология и биохимия культ. растений. - 2013. - Т. 45. №2. - С. 100-112.

36. Матевосян, Г. Л. Фиторегуляторные аспекты устойчивости цветной капусты к болезням (среднее за 2010-2012 гг.) / Г. Л. Матевосян, А.Д. Шишов, А.С. Садовников // Вестник Новгородского государственного университета. - 2015. - № 86. - С. 116-119.

37. Муромцев, Г.С. Основы химической регуляции роста и продуктивности растений / Г.С.Муромцев, Д.И. Чкаников, О.Н. Кулаева и др. - М.: Агропромиздат, 1987. - 383 с.

38. Овчаров, К.Е. Витамины растений / К.Е. Овчаров. - М.: Колос, 1969. -328 с.

39. Озолина, Н.В. Влияние брассиностероидов на протонные помпы тонопластов / Н.В. Озолина, Е.В. Продедова // Доклады академии наук. - 1999. - Т.367. - № 6. - С. 829-830.

40. Пашкевич, Л.В. Роль салициловой кислоты в формировании системенной приобретенной устойчевости растений при патогенезе / Л.В. Пашкевич, Л.Ф. Кабашникова // В1сник харювського нащонального аграрного ушверситету. - 2018. - Т.3. - № 45. - С. 31-48.

41. Плешков, Б.П. Биохимия сельскохозяйственных растений/ Б.П.Плешков. - М: Колос, - 1965. - 447 с.

42. Плотников, В.К. Генетико-физиологическая детерминация распада мРНК злаков in vitro / В.К. Плотников // Успехи современной биологии. - 2003. - Т. 123. - № 1. - С. 98-109.

43. Прусакова, Л.Д. Влияние эпибрассинолида и экоста на засухоустойчивость и продуктивность яровой пшеницы / Л.Д. Прусакова, С.И. Чижова, Л.Ф. Агеева, Е.Н. Голанцева, А.Ф. Яковлев // Агрохимия. - 2000. - № 3. - С. 50-54.

44. Прусакова, Л.Д. Применение брассиностероидов в экстремальных для растений условиях / Л.Д. Прусакова, С.И. Чижова // Агрохимия. - 2005.

- № 7. - С. 87-94.

45. Пустовойтова, Т.Н. Повышение засухоустойчивости растений под воздействием эпибрассинолида / Т.Н. Пустовойтова, Н.Е. Жданова, В.Н. Жолкевич // Доклады Российской академии наук. - 2001. - Т.376.

- № 5. - С. 697-700.

46. Радюкина, Н.Л. Сравнительный анализ функционирования защитных систем у представителей галофитной и гликофитной флоры в условиях прогрессирующего засоления / Н.Л. Радюкина, А.В. Карташов, Ю.В. Иванов, Н.И. Шевякова, Вл.В. Кузнецов // Физиология растений. -2007. - Т. 54. -№ 6. - С. 902-912.

47. Рецкий, М.И. Методические положения по изучению процессов свободнорадикального окисления и системы антиоксидантной защиты организма / М.И. Рецкий, С.В. Шабунин, Г.Н. Близнецова, Т.Е. Рогачева, Т.Г. Ермолова, О.Ю. Фоменко, Э.В. Братченко, В.Ю. Дубовцев, Н.Н. Каверин, О.И. Цебржинский.- ГНУ Всероссийский научно-исследовательский ветеринарный институт патологии, фармакологии и терапии Россельхозака- демии, 2010. - 780 с.

48. Рябчинская Т.А. Средства, регулирующие рост и развитие растений, в агротехнологиях современного растениеводства / Т.А. Рябчинская, Т.В. Зимина // Агрохимия. -2017. - № 12. - С.62-92.

49. Савельев, А.С. Влияние регулятора роста на продуктивность озимой ржи и устойчивость растений к биотическому и абиотическому стрессорам / А.С. Савельев, Н.В. Смолин, А.А. Синьков // Агро XXI. -2009. - № 10. - С. 19-20.

50. Сазанович, С.В. Силк не конкурент фингицидам, а помощник / С.В. Сазанович, Н.Г. Власенко // Защита и карантин растений. - 2003. - № 2. - С. 31-32.

51. Семенов, Г.В. Вакуумная сублимационная сушка. / Г.В. Семенов. -М.: ДеЛи плюс, 2013. -264 с.

52. Сибгатуллина, Г.В. Методы определения редокс-статуса культивируемых клеток растений: учебно-методическое пособие / Г.В. Сибгатуллина, Л.Р. Хаертдинова, Е.А. Гумерова, А.Н. Акулов, Ю.А. Костюкова, Н.А. Никонорова, Н.И. Румянцева.- Казань: Казанский Федеральный университет, 2011. - 61 с.

53. Сирота Т. В. Способ определения антиоксидантной активности супероксидисмутазы и химических соединений / Т. В. Сирота. Патент РФ, 2144674. - 2000.

54. Стадниченко, Л.И. Практикум по психофизиологии и профессиональной деятельности / Л.И. Стадниченко. - Воронеж: Воронежский государственный университет, 2008. - 15 с.

55. Судник А.Ф. Способы снижения фитотоксического действия фунгицидов на ранних этапах онтогенеза ячменя // Актуальные проблемы агрономии и пути их решения / Белорус. гос. с.-х. акад. Горки, 2005. Вып. 1. Ч. 1. С. 137-140.

56. Тарчевский, И.А. Сигнальные системы клеток растений / И.А. Тарчевский. - М.: Наука, 2002. - 294 с.

57. Тимофеева, О.А. Практикум по физиологии и биохимии растений / О.А. Тимофеева. - Казань: Казанский Федеральный университет, 1998. - 24 с.

58. Тимофева, О.А. Стевиозид предупреждает развитие окислительного стресса в проростках пшеницы / О.А. Тимофеева, Ю.Ю. Невмержицкая, А.Л. Михайлов, Г.Х. Шаймуллина // Доклады академии наук. - 2015. - Т. 465. - № 6. - С. 1-3.

59. Федосеева, Г.М. Фитохимический анализ растительного сырья, содержащего флавоноиды / Г.М. Федосеева, В.М. Мирович, Е.Г. Горячкина, М.Г. Переломова - Иркутск: Иркутский Государственный медицинский Университет минсоцразвития, 2009. - 67с.

60. Хелдт, Г.В. Биохимия растений/Г.В. Хелдт. М.: БИНОМ, 2011. - 372 с.

61. Холл, М.А. Протеинкиназы растений в трансдукции абиотических и биотических сигналов / М.А. Холл, Г.В. Новикова, И.Е. Мошкова // Физиология растений. - 2002. - Т.49. - № 1. - С. 212-135.

62. Хрипач, В.А. Перспективы практического применения брассиностероидов - нового класса фитогормонов / В.А. Хрипач, В.А. Жабинский, Ф.А. Лахвич // Сельскохозяйственная. - 1995. -Т. 1. - С. 311.

63. Чайлахян М.Х. Пол растений и его гормональная регуляция / М.Х. Чайлахян, В.Н. Хрянин. М.: Наука, 1982.- 176 с.

64. Чепраков А.В. Способ получения 24-эпибрассинолида / А.В. Чепраков, М. А. Филатов, Н. В. Лукашев, Н.Н. Малеванная // Патент на изобретение № 2272044. - 2006. - С.1.

65. Чистяков, Ф. Е. Полифенолы Camellia sinensis L.: накопление и регуляция / Ф. Е. Чистяков. Выпускная квалификационная работа. Пид. Образование, биол. Наук, Московский городской пед.университет, Москова, 2016.

66. Чупахина, Г.Н. Природные антиоксиданты (экологический аспект) / Г.Н. Чупахина, П.В. Масленников, Л.Н. Скрыпник. - Калининград: Изд-во БФУ им. И. Канта, 2011. - 111 с.

67. Шатилова, Т.И. Полученного с применением препаратов фиторегуляторов / Т.И. Шатилова, С.Л. Белопухов, Е.В. Романова, И.С. Витол, Г.П. Карпиленко // Известия ТСХА. - 2013. - Т. 3. - С. 31-38.

68. Шевелуха, В.С. Важнейшие проблемы увеличения производства,305 повышения качества и пути их решения / В.С. Шевелуха // Сборник научных трудов РАСХН, Научно-исследовательский институт сельского хозяйства центральных районов нечерноземной зоны, КНИИСХ им. П.П. Лукъяненко, Научно-исследовательский институт сельского хозяйства юго-востока. - М., 1998. - С. 5-15.

69. Яхин,О.И. Протекторная роль биорегулятора стифуна при негативном действии кадмия / О.И. Яхин, А.А. Лубянов, И.А. Яхин, В.А. Вахитов // Доклады Российской академии сельскохозяйственных наук . - 2007. -№ 4. - С. 19-21.

70. Aeby, H. Catalase in vitro / H. Aeby // Methods in Enzymology. - 1984. -Vol. 105. - P. 121-126.

71. Agati, G. Multiple functional roles of flavonoids in photoprotection / G. Agati, M. Tattini // New Phytologist. - 2010. - Vol. 186. - P. 786-793.

72. Agati, G. Flavonoids as antioxidants in plants: location and functional significance / G. Agati, E. Azzarello, S. Pollastri, M. Tattini // Plant Science.

- 2012. - Vol. 196. - P. 67-76.

73.Agati, G. Functional roles of flavonoids in photoprotection: new evidence, lessons from the past / G. Agati, C. Brunetti, M. Di Ferdinando, F. Ferrini, S. Pollastri, M. Tattini // Plant Physiology and Biochemistry. - 2013. - Vol. 72. - P. 35-45.

74. Ahammed, G. Role of brassinosteroid in plant adaptation to abiotic stresses and its interplay with other hormones / G. Ahammed, X. Xia, X. Li, K. Shi, J. Yu, Y. Zhou // Current Protein and Peptide Science. - 2014. - Vol. 16. -№ 5. -P. 462-473.

75. Albuquerque, C.L. Effect of kale and papaya supplementation in colitis induced by trinitrobenzenesulfonic acid in the rat / C.L. Albuquerque, M. Comalada, D. Camuesco, M.E. Rodríguez-Cabezas, A. Luiz-Ferreira, A. Nieto, A.R.M.S. Brito, A. Zarzuelo, J. Galvez // Clinical Nutrition and Metabolism. - 2010. - Vol. 5. -P. 111- 116.

76. Almagro, L. Effect of UV light on secondary metabolite biosynthesis in plant cell cultures elicited with cyclodextrins and methyl jasmonate. In: Vasanthaiah H., Kambiranda D. Plants and environment / L. Almagro, A.B. Sabater-Jara, S. BelchíNavarro, F. Fernández-Pérez, R. Bru, M.A. Pedreño.

- L.: InTechOpen, 2011. - P. 115-136.

77. Anjum, N.A. Plant Adaptation to Environmental Change: Significance of Amino Acids and Their Derivatives / N.A. Anjum, S.S Gill, R. Gill // CABI: Wallingford, UK, 2014.

78. Anwar, A. 24-Epibrassinolide Ameliorates Endogenous Hormone Levels to Enhance Low-Temperature Stress Tolerance in Cucumber Seedlings / A. Anwar, B. Longqiang, M. Li, L. Yumei, L. Shuzhen, Y. Xianchang, L. Yansu // International Journal of Molecular Sciences. - 2018. - Vol. 19, doi: 10.3390/ijms19092497.

79. Al-Shehbaz, I.A. Systematics and phylogeny of the Brassicaceae (Cruciferae)/ A. Al-Shehbaz, M.A. Beilstein, E.A. Kellogg // Plant Systematics and Evolution. - 2006. - Vol. 259. - № 2. - P. 89-120.

80. Apel, K. Reactive oxygen species: metabolism, oxidative stress, and signal transduction / K. Apel, H. Hirt // Annual Review of Plant Biology - 2004. -Vol. 55. - P. 373-399.

81. Asami, T. Brassinosteroid biosynthesis inhibitors / T. Asami, S. Yoshida // Trends Plant Science. - 1999. - Vol. 4. -P. 348-353.

82. Asami, D.K. Processing induced changes in total phenolics and procyanidins in clingstone peaches / D.K. Asami, Y.J. Hong, D.M. Barrett, A.E. Mitchell // Science Food Agriculture. - 2002. - Vol. 83. -P. 56-63.

83. Ayaz, F.A. Nutrient contents of kale (Brassica oleraceae L. var. acephala DC.) / F.A. Ayaz, R.H. Glew, M. Millson, H.S. Huang, L.T. Chuang, C. Sanz, S. Hayirhoglu-Ayaz // Food Chemistry. - 2006. - Vol. 96. - P. 572579.

84. Ayaz, F.A. Phenolic acid contents of kale (Brassica oleraceae L. var. acephala DC.) extracts and their antioxidant and antibacterial activities / F.A. Ayaz, S. Hayirlioglu-Ayaz, S. Alpay-Karaoglu, J. Gruz, K. Valentova, J. Ulrichova, M. Strnad // Food Chemistry. - 2008. - Vol. 107. - P. 19-25.

85. Azooz, M. M. Growth, Lipid Peroxidation and Antioxidant Enzyme Activities as a Selection Criterion for Salt Tolerance of Maize Cultivars Grown under Salinity Stress / M.M. Azooz, A.M. Ismail, M.F.A. Elhamd //

International Journal of Agriculture and Biology. - 2009. - Vol. 11. - P. 2126.

86. Bahramsoltani, R. Dietary polyphenols for atherosclerosis: A comprehensive review and future perspectives / R. Bahramsoltani, F. Ebrahimi, M.H. Farzaei, A. Baratpourmoghaddam, P. Ahmadi, P. Rostamiasrabadi, A.H. Rasouli Amirabadi, R. Rahimi // Critical Reviews in Food Science and Nutrition. - 2017. - Vol. 16. - P. 1-19.

87. Bahuguna, R.N. Temperature regulation of plant phenological development / R.N. Bahuguna, K.S.V. Jagadish // Environmental and Experimental Botany. - 2015. - Vol. 111. - P. 83-90.

88. Bajguz, A. Effect of brassinosteroids on nucleic acids and protein content in cultured cells of Chlorella vulgaris / A. Bajguz // Plant Physiology and Biochemistry. - 2000. - Vol. 38. -P. 209-215.

89. Bajguz, A. Brassinosteroids - occurence and chemical structures in plants. In: Brassinosteroids: A Class of Plant Hormone, Hayat S., Ahmad A (ed.) / A. Bajguz // Springer Science + Business Media B.V. - 2011. pp. 1-28.

90. Balas, A. Bioactive compounds extracted from Picea abies bark / A. Balas, V. Popa // Proceedings of the 10th European Workshop on Lignocellulosics and Pulp, Stockholm, Sweden, 25-28 August 2008; pp. 345-356.

91. Baleroni, C.R.S. Lipid Accumulation during Canola Seed Germination in Response to Cinnamic Acid Derivatives / C.R.S. Baleroni, M.L.L. Ferrarese, N.E. Souza, O. Ferrarese-Filho // Biol. Planta. - 2000. - Vol. 43. - P. 313316.

92. Balkaya, A. Promising kale (Brassica oleracea L. var. acephala) populations from Black Sea region, Turkey / A. Balkaya, R. Yanmaz // New Zealand Journal of Crop and Horticultural Science. - 2005. - Vol. 33. - P. 1-7.

93. Banarjee, S. Hormonal regulators of flowering and fruit development: effect of GA and ethereal on fruit setting and development of Momordica

charinata L / S. Banarjee, P.S. Basu // Plant Biology. - 1992. - Vol. 34. -P. 63-70.

94. Batelja, K. Autochtonous kale populations (Brassica oleraceae L. var. acephala) in Croatian coastal region / K. Batelja, S. Goreta Ban, K. Janic, B. Milos, G. Dumicic, Z. Matotan // Poljoprivreda. - 2009. - Vol. 15. - P. 8-14.

95. Bates, L.S. Rapid determination of free proline for water stress studies / L.S. Bates, R.P. Waldran, I.D. Teare // Plant and Soil. - 1973. - Vol. 39. -P. 205-207.

96. Becerra-Moreno, A. Kale: An excellent source of vitamin C, pro-vitamin A, lutein and glucosinolates / A. Becerra-Moreno, P.A. Alanís-Garza, J.L. Mora-Nieves, J.P. Mora-Mora, D.A. Jacobo-Velázquez // CyTA - Journal of Food. - 2014. - Vol. 12. - P. 298-303.

97. Berli, F.J. Solar UV-B and ABA are involved in phenol metabolism of Vitis vinifera L. increasing biosynthesis of berry skin polyphenols / F.J. Berli, M. Fanzone, P. Piccoli, R. Bottini // Agricultural and Food Chemistry. - 2011. - Vol. 59. - P. 4874-4884.

98. Bieganska-Marecik, R. Characterization of phenolics, glucosinolates and antioxidant activity of beverages based on apple juice with addition of frozen and freeze-dried curly kale leaves (Brassica oleracea L. var. acephala L.) / R. Bieganska-Marecik, E. Radziejewska-Kubzdela, R. Marecik // Food Chemistry. - 2017. - Vol. 230. - P. 271-280.

99. Bistgani, Z.E. Effect of salinity stress on the physiological characteristics, phenolic compounds and antioxidant activity of Thymus vulgaris L. and Thymus daenensis Celak / Z.E. Bistgani, M. Hashemi, M. DaCosta, L. Craker, F. Maggi, M.R. Morshedloo // Industrial Crops and Products. -2019. - Vol. 135. - P. 311-320.

100. Bjorkman, M. Phytochemicals of Brassicaceae in plant protection and human health - Influences of climate, environment and agronomic practice / M. Bjorkman, I. Klingena, A.N.E. Birchb, A.M. Bones, T.J.A. Bruce, T.J.

Johansen, R. Meadow, J. Molmann, R. Seljasen, L.E. Smart, D. Stewart // Phytochemistry. - 2011. - Vol. 72. - № 7. -P. 538-556.

101. Boivin, D. Antiproliferative and antioxidant activities of common vegetables: A comparative study / D. Boivin, S. Lamy, S. Lord-Dufour, J. Jackson, E. Beaulieu, M. Côté, A. Moghrabi, S. Barrette, D. Gingras, R. Béliveau // Food Chemistry. - 2009. - Vol. 112. -P. 374- 380.

102. Boudet, A.M. Evolution and current status of research in phenolic compounds / A.M. Boudet // Phytochemistry. - 2007. - Vol. 68. - P. 27222735.

103. Britton, G. Structure and properties of carotenoids in relation to function / G. Britton // FASEB. - 1995. - Vol. 9. - p. 1551-1558.

104. Bujor, O.C. Biorefining to recover aromatic compounds with biological Properties / O.C. Bujor, I.A. Talmaciu, I. Volf, V.I. Popa // TAPPI J. - 2015. - Vol. 14. - P. 187- 193.

105. Byun, M.R. TAZ is required for the osteogenic and anti-adipogenic activities of kaempferol / M.R. Byun, H. Jeong, S.J. Bae, A.R. Kim, E.S. Hwang, J.H. Hong // Bone. - 2012. - Vol. 50. - P. 364-372.

106. Cao, G. Antioxidant capacity of tea and common vegetables / G. Cao, E. Sofic, R.L. Prior // Agricultural and Food Chemistry. - 1996. -№ 44. - P. 3426-3431.

107. Cartea, M.E. Morphological characterization of kale populations from northwestern Spain / M.E. Cartea, A. Picoaga, P. Soengas, A. Ordas // Euphytica. - 2002. - Vol. 129. - P. 25 -32.

108. Cartea, M.E. Glucosinolates in Brassica foods: bioavailability in food and significance for human health / M.E. Cartea, P. Velasco // Phytochemistry Reviews. - 2008. - Vol. 7. - P. 213-229.

109. Carvalho, K. The accumulation of endogenous proline induces changes in gene expression of several antioxidant enzymes in leaves of transgenic Swingle citrumelo / K. Carvalho, M.K.Campos, D.S.Domingues,

L.F.Pereira, L.G. Vieira // Molecular Biology Reports. - 2013. - Vol. 40. -P. 3269-3279.

110. Chalker-Scott, L. Environmental significance of anthocyanins in plant stress responses / L. Chalker-Scott // Photochemistry and Photobiology. -1999. - Vol. 70. -P. 1-9.

111. Chen, Z. Changes of phenolic profiles and antioxidant activity in canaryseed (Phalaris canariensis L.) during germination / Z. Chen, L. Yu, X. Wang, Z. Gu, T. Beta // Food Chemistry. - 2016. - Vol. 194. -P. 608618.

112. Chen, S. Phenolic metabolism and related heavy metal tolerance mechanism in Kandelia Obovata under Cd and Zn stress / S. Chen, Q. Wang, H. Lu, J. Li, D. Yang, J. Liu, C. Yan // Ecotoxicol. Environ. Saf. -2019. - Vol. 169. -P.134-143.

113. Chen, S. NtMYB4 and NtCHS1 Are Critical Factors in the Regulation of Flavonoid Biosynthesis and Are Involved in Salinity Responsiveness / S. Chen, F. Wu, Y. Li, Y. Qian, X. Pan, F. Li, Y. Wang, Z. Wu, C. Fu, H. Lin // Frontiers in Plant Science. - 2019. - Vol. 10, doi: org/10.3389/fpls.2019.00178.

114. Cheynier, V. Plant phenolics: Recent advances on their biosynthesis, genetics, and ecophysiology / V. Cheynier, G. Comte, K.M. Davies, V. Lattanzio, S. Martens // Plant Physiology and Biochemistry. - 2013. - Vol. 72. - P. 1- 20.

115. Chiu, R.S. Inhibition of FUSCA3 degradation at high temperature is dependent on ABA signaling and is regulated by the ABA/GA ratio / R.S. Chiu, Y. Saleh, S. Gazzarrini // Plant signaling & behavior. - 2016b. - Vol. 11, doi: 10.1080/15592324.2016. 1247137.

116. Chiva-Blanch, G. Effects of Polyphenol Intake on Metabolic Syndrome: Current Evidences from Human Trials / G. Chiva-Blanch, L. Badimon // Oxidative Medicine and Cellular Longevity. - 2017. - Article ID 5812401, doi: 10.1155/2017/5812401.

117. Choudhary, S.P. Benefits of brassinosteroid crosstalk / S.P. Choudhary, J.Q. Yu, K. Yamaguchi-Shinozaki, K. Shinozaki, P.T. Lam Son // Trends in Plant Science. - 2012. - Vol. 17. -P. 594-605.

118. Christensen, S. AFLP analysis of genetic diversity in leafy kale (Brassica oleracea L. convar.acephala (DC.) Alef.) landraces, cultivars and wild populations in Europe / S. Christensen, R.von Bothmer, G. Poulsen, L. Maggioni, M. Phillip, B.A. Andersen, R.B. J0rgensen // Genetic resources and crop evolution. - 2011. - Vol. 58. - № 5. - P. 657- 666.

119. Christie, P.J. Impact of low-temperature stress on general phenylpropanoid and anthocyanin pathways: Enhancement of transcript abundance and anthocyanin pigmentation in maize seedlings / P.J. Christie, M.R. Alfenito, V. Walbot // Planta. - 1994. - Vol. 194. -P. 541-549.

120. Chun, O.K. Daily consumption of phenolics and total antioxidant capacity from fruit and vegetables in the American diet / O.K. Chun, D.O. Kim, N. Smith, D. Schroeder, J.T. Han, C.Y. Lee // Science of Food and Agriculture. - 2005. - № 85. - P.1715-1724.

121. Ciccone, M. M. Dietary Intake of Carotenoids and Their Antioxidant and Anti-Inflammatory Effects in Cardiovascular Care / M. M. Ciccone, F. Cortese, M. Gesualdo, S. Carbonara, A. Zito, G. Ricci, F. De Pascalis, P. Scicchitano, G. Riccioni // Mediators of Inflammation. - 2013. -Article ID 782137, doi: 10.1155/2013/782137.

122. Cingoz, G.S. Effects of salicylic acid on thermotolerance and cardenolide accumulation under high temperature stress in Digitalis trojana Ivanina / G.S. Cingoz, E. Gurel // Plant Physiology and Biochemistry. - 2016. - Vol. 105. -P. 145-149.

123. Cipollini, D. Costs of induced responses in plants / D. Cipollini, C.B. Purrington, J. Bergelson // Basic and Applied Ecology. - 2003. - Vol. 4. -P. 79-85.

124. Clouse, S.D. Physiological and molecular effects of brassinosteroids on Arabidopsis thaliana/ S.D. Clouse, M. Langford, A.F. Hall, T.C McMorris, M.E. Baker // Plant Growth Regulation. - 1993. - Vol. 12. -P. 61-66.

125. Conklin, P.L. Environmental stress sensitivity of an ascorbic acid-deficient Arabidopsis mutant / P.L. Conklin, E.H. Williams, R.L. Last // proceedings of national academy of science. - 1996. - Vol. 93. - p. 99709974.

126. Dai, J. Plant phenolics: extraction, analysis and their antioxidant and anticancer properties / J. Dai, R.J. Mumper // Molecules. - 2010. - Vol. 15.

- №10. - P. 7313-7352.

127. D'Antuono, F. Characterisation and potental new uses of palm tree kale (Brassica oleracea L, spp. acephala DC, var sabellica L.) / F. D'Antuono, R. Neri // International Symposium Brassica. - 1997. - Vol. 97. - P. 97- 104.

128. Davey, M. Plant L-ascorbic acid: chemistry, function, metabolism, bioavailability and effects of processing / M. Davey, M. Van Montagu, D. Inze, M. Sanmartin, A. Kanellis, N. Smirnoff, I. Benzie, J. Strain, D. Favell, J. Fletcher // Science of Food and Agriculture. - 2000. - Vol. 80. - № 7. -P.825-860.

129. De Azevedo Neto, A.D. Effect of salt stress on antioxidative enzymes and lipid peroxidation in leaves and roots of salt-tolerant and salt-sensitive maize genotypes / A.D. De Azevedo Neto, J.T. Prisco, J. Eneas-Filho, C.E.B.D. Abreu, E. Gomes-Filho // Environmental and Experimental Botany. - 2006.

- Vol. 56. - P. 87-94.

130. Demkura, P.V. Jasmonate-dependent and -independent pathways mediate specific effects of solar ultraviolet B radiation on leaf phenolics and antiherbivore defense / P.V. Demkura, G. Abdala, I.T. Baldwin, C.L. Ballare // Plant Physiology. - 2010. - Vol. 152. - P. 1084-1095.

131. Dias, J.S. Taxonomy of Portuguese Tronchuda cabbage and Galega kale landraces using morphological characters, nuclear RFLPs, and isozyme

analysis: a review / J.S. Dias, A.A. Monteiro // Euphytica. - 1994. - Vol. 79. - P. 115- 126.

132. Dias, J.S. Portuguese perennial kale: a relic leafy vegetable crop / J.S. Dias // Genetic resources and crop evolution. - 2012. - Vol. 59. - № 6. - P. 1201-1206.

133. Dias, M.I. Exploring plant tissue culture to improve the production of phenolic compounds: a review / M.I. Dias, M.J. Sousa, R.C. Alves, I.C.F.R. Ferreira // Industrial Crops and Products . - 2016. - Vol. 82. - P. 9-22.

134. Diederichsen, A. Cruciferae: Brassica. In: Mansfeld's encyclopedia of agricultural and horticultural crops, Hanelt P, Institute of Plant Genetics and Crop Plant Research (ed.) / A. Diederichsen // Springer: Berlin. - 2001. -pp. 1435-1446.

135. Dixon, R.A. Stress-induced secondary metabolism / R.A. Dixon, N.L. Paiva // Plant Cell. - 1995. - Vol. 7. - P. 1085- 1097.

136. Dkhil, B.B. Effect of salt stress on growth, anthocyanins, membrane permeability and chlorophyll fluorescence of Okra (Abelmoschus esculentus L.) seedlings / B.B. Dkhil, M. Denden // Plant Physiol. - 2012. - Vol. 7. - P. 174-183.

137. Dosz, E.B. Total Myrosinase Activity Estimates in Brassica Vegetable Produce / E.B. Dosz, K-M. Ku, J.A. Juvik, E.H. Jeffer // Agriculture and Food Chemistry. - 2014. - Vol. 62. -P. 8094- 8100.

138. Dresselhaus, T. Biotic and Abiotic Stress Responses in Crop Plants / T. Dresselhaus, R. Hückelhoven // Agronomy. - 2018. - Vol. 8, doi: 10.3390/agronomy8110267.

139. Edreva, A. The importance of non-photosynthetic pigments and cinnamic acid derivatives photoprotection / A. Edreva // Agriculture, Ecosystems & Environment. - 2005. - Vol.106. - p. 135-146.

140. Efimova M.V. Effects of 24-epibrassinolide and green light on plastid gene transcription and cytokinin content of barley leaves / M.V. Efimova, R. Vankova, V.V Kusnetsov, R.P. Litvinovskaya, I.E. Zlobin, P. Dobrev, N.P.

Vedenicheva, A.L. Savchuk, R.A. Karnachuk, N.V. Kudryakova, V.V. Kuznetsov // Steroids. - 2017. - Vol. 120. - p. 32-40.

141. Elbarbry, F. Potential health benefits of sulforaphane: A review of the experimental, clinical and epidemiological evidences and underlying mechanisms / F. Elbarbry, N. Elrody // Medicinal Plants Research. - 2011. -Vol. 5. - № 4. - P. 473-484.

142. Eryilmaz Acikgoz, F. Mineral, vitamin C and crude protein contents in kale (Brassica oleraceae var. acephala) at different harvesting stages / F. Eryilmaz Acikgoz // African Journal of Biotechnology. - 2011. - Vol. 10. -P. 17170-17174.

143. Fadigas, J.C. Use of multivariate analysis techniques for the characterization of analytical results for the determination of the mineral composition of kale / J.C. Fadigas, A.M.P. dos Santos, R.M. de Jesus, D.C. Lima, W.D. Fragoso, J.M. David, S.L.C. Ferreira // Microchemical . - 2010. - Vol. 96. - P. 352-356.

144. Fahey, J.W. The chemical diversity and distribution of glucosinolates and isothiocyanates among plants / J.W. Fahey, A.T. Zalcmann, P. Talalay // Phytochemistry. - 2001. - Vol. 56. - P. 5-51.

145. Fahey, J.W. Urease from Helicobacter pylori is inactivated by sulforaphane and other isothiocyanates / J.W. Fahey, K.K. Stephenson, K.L. Wade, P. Talalay // Biochemical and Biophysical Research Communications. - 2013. - Vol. 435. - P. 1-7.

146. Farhat, G. Polyphenols and Their Role in Obesity Management: A Systematic Review of Randomized Clinical Trials / G. Farhat, S. Drummond, E.A.S. Al-Dujaili // Phytotherapy Research. - 2017. - Vol. 31 -№ 7. - P. 1005-1018.

147. Farnham, M.W. Importance of collard and kale genotype for winter production in southeastern United States / M.W. Farnham, J.T. Garrett // Hort Science. - 1996. - Vol. 31. - № 7. - P. 1210-1214.

148. Ferreres, F. Metabolic and bioactivity insights into Brassica oleracea var. acephala / F. Ferreres, F. Fernandes, C. Sousa, P. Valentao, J.A. Pereira, P.B. Andrade // Agricultural and Food Chemistry. - 2009. - Vol. 57. - P. 8884- 8892.

149. Finkelstein, R.R. Abscisic Acid Signalling in Seeds and Seedlings / R.R. Finkelstein, S.S.L. Gampala, C. Rock // The Plant Cell. - 2002. - Vol. 18. -P. 15-45.

150. Fiol, M. Highly glycosylated and acylated flavonols isolated from kale (Brassica oleracea var. sabellica)—structure-anti oxidant activity relationship / M. Foil, S. Adermann, S. Neugart, S. Rohn, C. Mügge, M. Schreiner // Food Research International. - 2012. - Vol. 47. - P.80-89.

151. Fischer, R.S. Response of aromatic pathway enzymes of plant suspension cells to phosphate limitation / R.S. Fischer, C.A. Bonner, M.E. Theodorou, W.C. Paxton, G. Hrazdina, R.A. Jensen // Bioorganic & Medicinal Chemistry. - 1993. - Vol. 3. -P. 1415-1420.

152. Franke, A.A. Vitamin C and flavonoid levels of fruits and vegetables consumed in Hawaii / A.A. Franke, L.J. Custer, C Arakaki, S.P. Murphy // Food Composition and Analysis. - 2004. - Vol. 17. -P. 1-35.

153. Franzke, A. Cabbage family affairs: the evolutionary history of Brassicaceae / A. Franzke, M.A. Lysak, I.A. Al-Shehbaz, M.A. Koch, K. Mummenhoff // Trends in plant science. - 2011. - Vol. 16. - № 2. - P. 108116.

154. Fridman, Y. Brassinosteroids in growth control: How, when and where / Y. Fridman, S. Savaldi-Goldstein // Plant science. - 2013. - Vol. 209. -P. 24-31.

155. Friedrichsen, D. M. Steroid signaling in plants: from the cell surface to the nucleus / D. M. Friedrichsen, J. Chory // BioEssays. - 2001. - Vol. 23. -P. 1028-1036.

156. Fujioka, N. Research on cruciferous vegetables, indole-3-carbinol, and cancer prevention: A tribute to Lee W. Wattenberg / N. Fujioka, V. Fritz, P.

Upadhyaya, F. Kassie, S.S. Hecht // Molecular Nutrition & Food Research. - 2016. - Vol. 60. - P. 1228-1238.

157. Gao, H. Effect of 24-epibrassinolide on chilling injury of peach fruit in relation to phenolic and proline metabolisms / H. Gao, Z. Zhang, X. Lv, N. Cheng, B. Peng, W. Cao // Postharvest Biology and Technology. - 2016. -Vol. 111. - P. 390-397.

158. Giacoppo, S. Protective role of (RS )-glucoraphanin bioactivated with myrosinase in an experimental model of multiple sclerosis / S. Giacoppo, M. Galuppo, R. Iori, G.R. De Nicola, G. Cassata, P. Bramanti, E. Mazzon // CNS Neurosci Ther. - 2013. - Vol.19. - № 8. - P. 577-584.

159. Giacoppo, S. (RS)-glucoraphanin purified from Tuscan black kale and bioactivated with myrosinase enzyme protects against cerebral ischemia/reperfusion injury in rats / S. Giacoppo, M. Galuppo, R. Iori, G.R. De Nicola, P. Bramanti, E. Mazzon // Fitoterapia. - 2014. - Vol.99. - P. 166-177.

160. Gill, S. Reactive Oxygen Species and Antioxidant Machinery in Abiotic Stress Tolerance in Crop Plants / S. Gill, N. Tuteja //Plant Physiology Biochemistry. - 2010. - Vol. 48. - P. 909-930.

161. Goncalves, A.L.M. Evaluation of the genotoxic and antigenotoxic potential of Brassica oleracea L. var. acephala D.C. in different cells of mice / A.L.M. Goncalves, M. Lemos, R. Niero, S.F. Andrade, E.L. Maistro // Ethnopharmacology. - 2012. -Vol. 143. - P. 740- 745.

162. Gonzalez, E.M. Relation between bioactive compounds and free radical scavenging capacity in berry fruits during frozen storage / E.M. Gonzalez, B. de Ancos, M.P. Cano // Science Food Agriculture. - 2003. - Vol. 83. -P. 722-726.

163. Griffth, M. Antifreeze proteins in overwintering plants: A tale of two activities / M. Griffth, M.W. Yaish // Trends Plant Science. - 2004. - Vol. 9. -P. 399-405.

164. Groot, S.P.C. Gibberellins regulate seed germination in tomato by endosperm weakening: A study with gibberellin-deficient mutants / S.P.C. Groot, C.M. Karssen // Planta. - 1987. - Vol. 171. -P. 525-531.

165. Gruz, J. Rapid analysis of phenolic acids in beverages by UPLC- MS/MS / J. Gruz, O. Novak, M. Strnad // Food Chemistry. - 2008. - Vol. 111. - P. 789-794.

166. Guasch-Ferre, M. Dietary Polyphenols, Mediterranean Diet, Prediabetes, and Type 2 Diabetes: A Narrative Review of the Evidence / M. Guasch-Ferre, J. Merino, Q. Sun, M. Fito, J. Salas-Salvado // Oxidative Medicine and Cellular Longevity. - 2017. - Article ID 6723931, doi: 10.1155/2017/6723931.

167. Gukov, G.V. Karl Linnaeus contribution to the development of the Russian Far East Flora Systematics / G.V. Gukov, N.G. Rozlomiy // Pharmaceutical, Biological and Chemical Sciences. - 2018. - Vol. 9. - № 6. - P. 1812-1815.

168. Hahn, C. Diversity of kale (Brassica oleracea var. sabellica): glucosinolate content and phylogenetic relationships / C. Hahn, A.M. ller, N. Kuhnert, D. Albach // Agricultural and Food Chemistry. - 2016. - Vol. 64. -№ 16. - P. 3215-3225.

169. Han, B. Cruciferous vegetables consumption and the risk of ovarian cancer: a meta-analysis of observational studies / B. Han, X. Li, T. Yu // Diagnostic Pathology. - 2014. - Vol. 9. - № 7, doi: 10.1186/1746-1596-9-7.

170. Harborne, J.B. Plant phenolics. In: Encyclopedia of Plant Physiology, New Series, Secondary Plant Products, Bell E.A., Charlwood B.V (ed.) / J.B Harborne // Springer: Berlin. - 1980. - Vol. 8. pp. 329-402.

171. Handa, N. Selenium modulates dynamics of antioxidative defence expression, photosynthetic attributes and secondary metabolites to mitigate chromium toxicity in Brassica juncea L. plants / N. Handa, S.K. Kohli, A. Sharma, A.K. Thukral, R. Bhardwaj, E.F. Abd_Allah, A.A. Alqarawi, P.

Ahmad // Environmental and Experimental Botany. - 2019. - Vol. 161. - P. 79. 180-192.

172. Hare, P. Metabolic implications of stress induced proline accumulation in plants / P. Hare, W. Cress // Plant Growth Regulation. - 1997. - Vol. 21. -P. 79.

173. Hare, P. Dissecting the roles of osmolyte accumulation in plants / P. Hare, W. Cress, J. van Staden // Plant Cell Environ. - 1998. - Vol. 21. - P. 535-553.

174. Harmey, M.A. The Effect of Gibberellic Acid on Peroxidase Levels in Barley / M.A. Harmey, A.M. Murray // Planta. - 1968. - Vol. 83. - P. 387389.

175. Hasheminasab, H. Influence of Drought Stress on Oxidative Damage and Antioxidant Defense Systems in Tolerant and Susceptible Wheat Genotypes / H. Hasheminasab, M.T. Assad, A. Aliakbari, R. Sahhafi // Agricultural Science. - 2012. - Vol. 4. - P. 20-30.

176. Heimler, D. Antiradical activity and polyphenol composition of local Brassicaceae edible varieties / D. Heimler, P. Vignolini, M.G. Dini, F.F. Vincieri, A. Romani // Food Chemistry. - 2006. - Vol. 99. - P.464-469.

177. Hernandez, I. How relevant are flavonoids as antioxidants in plants? / I. Hernandez, L. Alegre, F. Van Breusegem, S. Munne-Bosch // Trends Plant Science. - 2009. - Vol. 14. - P. 125-132.

178. Hollman, P.C. Flavonols, flavones and flavanols—Nature, occurrence and dietary burden / P.C. Hollman, I.C. Arts // Science of Food and Agriculture. - 2000. - Vol. 80. - P. 1081-1093.

179. Hossen, S. Beneficial roles of honey polyphenols against some human degenerative diseases: A review / S. Hossen, Y. Ali, M.H.A. Jahurul, M.M. Abdel-Daim, S.H. Gan, I. Khalil // Pharmacological Reports. - 2017. - Vol. 69. - P.1194-1205.

180. Howard, L.A. ß-Carotene and ascorbic acid retention in fresh and processed vegetables / L.A. Howard, A.D. Wong, A.K. Perry, B.P. Klein // Food Science. - 1999. - Vol. 64. -P. 929-936.

181. Huang, C.H. Natural flavone kaempferol suppresses chemokines expression in human monocyte THP-1 cells through MAPK pathways / C.H. Huang, R.L. Jan, C. H. Kuo, Y.T. Chu, W.L. Wang, M.S. Lee, H.N. Chen, C.H. Hung // Food Science. - 2010. - Vol. 75. - P. 254-259.

182. Huang, C.H. Resolution of Brassicaceae phylogeny using nuclear genes uncovers nested radiations and supports convergent morphological evolution / C.H. Huang, R. Sun, Y. Hu, L. Zeng, N. Zhang, L. Cai, , Q. Zhang, M.A. Koch, I. Al-Shehbaz, P.P. Edger, J.C. Pires, D.Y. Tan, Y. Zhong, H. Ma // Molecular biology and evolution. - 2015. - Vol. 33. - № 2. - P. 394- 412.

183. Izzah, N.K. Microsatellite-based analysis of genetic diversity in 91 commercial Brassica oleracea L.cultivars belonging to six varietal groups / N.K. Izzah, J. Lee, S. Perumal, J.Y. Park, K. Ahn, D. Fu, K. Goon-Bo, Y.W. Nam, T.J. Yang // Genetic resources and crop evolution. - 2013. - Vol. 60. -№ 7. - P. 1967-1986.

184. Jahangir, M.H.K. Health- affecting compounds in Brassicaceae / M.H. K. Jahangir, Y.H. Kim, C. Choi, R. Verpoorte // Comprehensive Reviews in Food Science and Food Safety. - 2009. - Vol. 8. - P. 31- 43.

185. Jaspers, P. Reactive oxygen species in abiotic stress signaling / P. Jaspers, J. Kangasjarvi // Physiology Plant. - 2010. - Vol. 138. - № 4. - P. 405-413.

186. Jeon, J. Transcriptome analysis and metabolic profiling of green and red kale (Brassica oleracea var. acephala) seedlings / J. Jeon, H.K. Kim, H.R. Kim, Y.J. Kim, Y.J. Park, S.J. Kim, C. Kim and S.U. Park // Food Chemistry. - 2018. - Vol. 241. - P. 7-13.

187. Kagale, S. Brassinosteroid confers tolerance in Arabidopsis thaliana and Brassica napus to a range of abiotic stresses / S. Kagale, U.K. Divi, J.E. Krochko, W.A. Keller, P. Krishna // Planta. - 2007. - № 2. - P.353-364.

188. Kang, Y.Y. Effects of 24-epibrassinolide on antioxidant system and anaerobic respiratory enzyme activities in cucumber roots under hypoxia stress / Y.Y. Kang, S.R. Guo, J.J. Duan, X.H. Hu // plant physiology and plant molecular biology. - 2006. - Vol. 32. - № 5. - P. 535-542.

189. Kaur, C.H. Antioxidant activity and total phenolic content of some Asian vegetables / C.H. Kaur, H.C. Kapoor / International Journal of Food Science and Technology. - 2002. - Vol. 37. - № 2. - P. 153-161.

190. Kaur, G. Cold stress injury during the pod-filling phase in chickpea (Cicer arietinum L.): Effects on quantitative and qualitative components of seeds / G. Kaur, S. Kumar, H. Nayyar, H. Upadhyaya // Journal of Agronomy and Crop Science. - 2008. - Vol. 194. - № 2. - P. 457-464.

191. Kavi Kishor, P.B. Regulation of proline biosynthesis, degradation, uptake and transport in higher plants: Its implications in plant growth and abiotic stress tolerance / P.B. Kavi Kishor, S. Sangam, R.N. Amrutha, P. Sri Laxmi, K.R. Naidu, K.R.S.S. Rao, R. Sreenath, , K.J. Reddy, P. Theriappan, N. Sreenivasulu // Current Science. - 2005. - Vol. 88. - p. 424-438.

192. Khan, T.A. Potential of Ascorbic acid against oxidative burst in plants under biotic stress: a review / T.A. Khan, M. Mazid, F. Mohammad // Industrial Research & Technology. - 2012. - Vol. 2. - № 2. - P. 72- 80.

193. Khripach, V.A. New practical aspects of brassinosteroids and results of their ten-year agricultural use in Russia and Belarus. In: Brassinosteroids. Bioactivity and Crop Productivity, Hayat S., Ahmad A. (ed.) / V.A. Khripach, V.N. Zhabinskii, N.B. Khripach // Dordrecht: Kluwer. - 2003. pp. 189-230.

194. Khripach, V.A. Immunoassays of brassinosteroids. In: Brassinosteroids: a Class of Plant Hormones, Hayat S., Ahmad A. (ed.) / V.A. Khripach, V.N. Zhabinskii, R.P. Litvinovskaya // Springer Science+Business Media B.V. -2011. pp. 375-392.

195. Kisa, D. Responses of the phenolic compounds of Zea mays under heavy metal stress / D. Kisa, M. Elmasta,s, L. Öztürk, Ö. Kayir // Applied Biological Chemistry. - 2016. - Vol. 59. -P. 813-820.

196. Kim, S.Y. Kale Juice Improves Coronary Artery Disease Risk Factors in Hypercholesterolemic Men / S.Y. Kim, S. Yoon, S.M. Kwon, K.S. Park, Y.C. Lee-Kim // Biomedicinal and Environmental Sciences. - 2008. - Vol. 21. -P. 91- 97.

197. Kim, Y. Quercetin-induced Growth Inhibition in Human Bladder Cancer Cells Is Associated with an Increase in Ca-activated K-Channels / Y. Kim, W.J. Kim, E.J. Cha // Korean journal of phesiology and pharmacology. -2011. - Vol. 15. - P. 279-283.

198. Kim, S.Y. Production of Fermented Kale Juices with Lactobacillus Strains and Nutritional Composition / S.Y. Kim // Preventive Nutrition and Food Science. - 2017. - Vol. 22. -№ 3. - P. 231-232.

199. Kleemann, R. Anti-inflammatory, anti-proliferative and anti-atherosclerotic effects of quercetin in human in vitro and in vivo models / R. Kleemann, L. Verschuren, M. Morrison, S. Zadelaar, M.J. van Erk, P.Y. Wielinga,T. Kooistra // Atherosclerosis. - 2011. - Vol. 218. - P. 44-52.

200. Kolupaev, Y.E. Proline: physiological functions and regulation of the content in plants under stressful conditions / Y.E. Kolupaev, A.A. Weiner, T.O. Hawk // newsletter of Kharkiv national agricultural university of biology. - 2014. - Vol. 2. - № 32. - p. 6-22.

201. Kopsell, D.A. Air temperature affects biomass and carotenoid pigment accumulation in kale and spinach grown in a controlled environment / D.A. Kopsell, M.G. Lefsrud, D.E. Kopsell, J. Curran-Celentano // Hortscience. -2005. - Vol. 40. - № 7. - p. 2026-2030.

202. Körber, N. Seedling development in a Brassica napus diversity set and its relationship to agronomic performance / N. Körber, B. Wittkop, A. Bus, W. Friedt, R. J. Snowdon, B. Stich // Theoretical and applied genetics. - 2012. - Vol. 125. - № 6. - P. 1275-1287.

203. Korus, A. Effect of preliminary processing and method of preservation on the content selected antioxidative compounds in kale (Brassica oleracea L. var. acephala) leaves / A. Korus, Z. Lisiewska // Food Chemistry. - 2011. -Vol. 129. - P.149-154.

204. Korus, A. Effect of preliminary processing, method of drying and storage temperature on the level of antioxidants in kale (Brassica oleracea L. var. acephala) leaves / A. Korus // Food Science and Technology. - 2011. - Vol. 44. - P.1711-1716.

205. Kris-Etherton, P.M. Bioactive compounds in nutrition and health-research methodologies for establishing biological function: the antioxidant and anti-inflammatory effects of flavonoids on atherosclerosis / P.M. Kris-Etherton, M. Lefevre, G.R. Beecher, M.D. Gross, C.L. Keen, T.D. Etherton // Annual Review of Nutrition. - 2004. - Vol. 24. -P. 511- 538.

206. Kuerban, A. Therapeutic effects of phytochemicals of Brassicaceae for management of obesity / A. Kuerban, S.S. Yaghmoor, Y.Q. Almulaiky, Y.A. Mohamed, S.S.I Razvi, M.N. Hasan, S.S. Moselhy, A.B. Al-Ghafari, H.M. Alsufiani, T.A. Kumosani, A.L. Malki // Pharmaceutical Research International. - 2017. - Vol. 19. - № 4. - P. 1-11.

207. Kumar, G.N.M. Changes in lipid peroxidation and lipolitic and freeradical scavenging enzyme activities during aging and sprouting of potato (Solanum tuberosum) seed-tubers / G.N.M. Kumar, N.R. Knowles // Plant Physiology. - 1993. - Vol. 102. - P. 115-124.

208. Kumar, S. Chemistry and biological activity of flavonoids: an overview / S. Kumar, A.K. Pandey // Scientific World. - 2013. - Vol. 2013. doi: 10.1155/2013/162750.

209. Kumar, V. Differential distribution of polyphenols in plants using multivariate techniques / V. Kumar, A. Sharma, S.K. Kohli, S. Bali, M. Sharma, R. Kumar, R. Bhardwaj, A.K. Thukral // Biotechnology Research and Innovation. - 2019. - Vol. 3. - P. 1-21.

210. Kurilich, A.C. Carotene, Tocopherol, and Ascorbate Contents in Subspecies of Brassica oleracea / A.C. Kurilich, G.J. Tsau, A. Brown, L.Howard, B.P. Klein, E.H. Jeffery, M. Kushad, M.A. Wallig, J.A. Juvik // Agriculture and Food Chemistry. - 1999. - Vol. 47. - P. 1576-1581.

211. Landi, M. Multiple functional roles of anthocyanins in plant-environment interactions / M. Landi, M. Tattini, K.S. Gould // Environmental and Experimental Botany. - 2015. - Vol. 119. - P. 4-17.

212. Lathrop, P.J. Thermal degradation and leaching of vitamin C from green peas during processing / P.J. Lathrop, H.K. Leung // Food Science. - 1980. -Vol. 45. -P. 995-998.

213. Lattanzio, V. Role of phenolics in the resistance mechanisms of plants against fungal pathogens and insects. In: Phytochemistry: Advances in Research, Imperato, F (ed.) / V. Lattanzio, V.M.T. Lattanzio, A. Cardinali // Research Signpost: Trivandrum, India. - 2006. pp. 23-67.

214. Lattanzio, V. Plant phenolics: A biochemical and physiological perspective. In: Recent Advances in Polyphenols Research, Cheynier V., Sarni-Manchado P., Quideau S (ed.) / V. Lattanzio, A. Cardinali, V. Linsalata // Wiley-Blackwell Publishing: Oxford, UK. - 2012. - Vol 3. pp. 1-39.

215. Lebel, M. Drugs, nutrients, and phytoactive principles improving health span of rodent models of human age-related diseases / M. Lebel, F. Picard, G. Ferland, 150 P. Gaudreau // Gerontology Series A Biological Sciences and Medical Sciences.- 2012. - Vol. 67. - № 2. - P. 140- 151.

216. Lemos, M. Gastroprotective activity of hydroalcoholic extract obtained from the leaves of Brassica oleracea var. acephala DC in different animal models / M. Lemos, J.R. Santin, L.C.K. Júnior, R. Niero, S. Faloni de Andrade // Ethnopharmacology. - 2011. -Vol. 138. - P. 503- 507.

217. Leyva, A. Low temperature induces the accumulation of phenylalanine ammonia-lyase and chalcone synthase mRNAs of Arabidopsis thaliana in a

light-dependent Manner / A. Leyva, J.A. Jarillo, J. Salinas, J.M. Martinez-Zapater // Plant Physiology. - 1995. - Vol. 108. -P. 39-46.

218. Li, J. Mutation of rice BC12/GDD1, which encodes a kinesin-like protein that binds to a GA biosynthesis gene promoter, leads to dwarfism with impaired cell elongation / J. Li, J. Jiang, Q. Qian, Y. Xu, C. Zhang, J. Xiao // Plant Cell. - 2011. - Vol. 23. -P. 628-640.

219. Liu, B. Cruciferous vegetables intake and risk of prostate cancer: A metaanalysis / B. Liu, Q. Mao, M. Cao, L. Xie // International Journal of Urology. - 2012. - Vol. 19. - P. 134- 141.

220. Liu, B. The association of cruciferous vegetables intake and risk of bladder cancer: a meta-analysis / B. Liu, Q. Mao, Y. Lin, F. Zhou, L. Xie // World Journal of Urology. - 2013a. - Vol. 31. - P. 127- 133.

221. Liu, B. Cruciferous vegetables consumption and risk of renal cell carcinoma: A meta-analysis / B. Liu, Q. Mao, X. Wang, F. Zhou, J. Luo, C. Wang, Y. Lin, X. Zheng, L. Xie // Nutrition and Cancer. - 2013b. - Vol. 65. - № 5. - P. 668-676.

222. Lowry, B. The origin of land plants: a new look at an old problem / B. Lowry, D. Lee, C. Hebant // Taxon. - 1980. - Vol. 29. - P.183-197.

223. Lowry, O.H. Protein measurement with Folin phenol reagent / O.H. Lowry, N.J. Rosebrough, A.L. Farr, R.J. Randall // Biological Chemistry. -1951. - Vol. 193. - № 61. - P. 265-275.

224. Luo, H. Kaempferol induces apoptosis in ovarian cancer cells through activating p53 in the intrinsic pathway / H. Luo, G.O. Rankin, Z. Li, L. Depriest, Y.C. Chen // Food Chemistry. - 2011. - Vol. 128. - P. 513-519.

225. Machakova, I. Plant growth regulators I: introduction; auxins, their analogues and inhibitors. In: Plant propagation by tissue culture, George E.F., Hall M.A., de Klerk G.-J (ed.) / I. Machakova, E. Zazimalova, E.F. George // Dordrecht: Springer. - 2008. pp. 175-204.

226. Mahdavi, V. A targeted metabolomics approach toward understanding metabolic variations in rice under pesticide stress / V. Mahdavi, M.M.

Farimani, F. Fathi, A. Ghassempour // Analytical Biochemistry. - 2015. -Vol. 478. - P. 65-72.

227. Manikandan, R. Zeaxanthin and ocular health, from bench to bedside / R. Manikandan, R. Thiagarajan, G. Goutham, M. Arumugam, M. Beulaja, L. Rastrelli, K. Skalicka- Wozniak, S. Habtemariam, I. Erdogan Orhan, S.F. Nabavi, S. M. Nabavi // Fitoterapia . - 2016. - Vol. 109. - P. 58-66.

228. Mazumder, A. Sinigrin and its therapeutic benefits / A. Mazumder, A. Dwivedi, J. Plessis // Molecules. - 2016. - Vol. 21. - P. 416- 427.

229. Messina, F.J. Trade-off between plant growth and defense? A comparison of sagebrush populations / F.J. Messina, S.L. Durham, J.H. Richards, E.D. McArthur // Oecologia. - 2002. - Vol. 131. -P. 43-51.

230. Mishra, B. Amelioration of cadmium stress in Withania somnifera by ROS management: Active participation of primary and secondary metabolism / B. Mishra, N.S. Sangwan // Plant Growth Regulation. - 2019. - Vol. 87. - P. 403-412.

231. Mittler, R. Oxidative stress, antioxidants and stress tolerance / R. Mittler // Trends in Plant Science. - 2002. - Vol. 7. - P. 405- 410.

232. Mittler, R. Abiotic stress, the field environment and stress combination / R. Mittler // Trends in Plant Science. - 2006. - Vol. 11. - P. 15- 19.

233. Moheb, A. Changes in wheat leaf phenolome in response to cold acclimation / A. Moheb, R.K. Ibrahim, R. Roy, F. Andsarhan // Phytochemistry. - 2011. - Vol. 72 - p. 2294-2307.

234. Molassiotis, A.N. Changes in peroxidases and catalase activity during in vitro rooting / A.N. Molassiotis, K Dimassi, G. Diamantidis, I. Therios // Biology Plant. - 2004. - Vol. 48. - p. 1-5.

235. Moreno-Escamilla, J.O. Effect of elicitors in the nutritional and sensory quality of fruits and vegetables. In: Sddiqui M.W. Preharvest modulation of postharvest fruit and vegetable quality / J.O. Moreno-Escamilla, E. Alvarez-Parrilla, L.A. de la Rosa, J.A. Nunez-Gastelum, G.A. Gonzalez-Aguilar, J. Rodrigo-Garda. - L.: Acad. Press, 2018. - P. 71-91.

236. Mullen, W. Effect of freezing and storage on the phenolics, ellagitannins, flavonoids, and antioxidant capacity of red raspberries / W. Mullen, A.J. Stewart, M.E. Lean, P. Gardner, G.G. Duthie, A. Crozier // Agricultural and Food Chemistry. - 2002. - Vol. 50. - P.197-201.

237. Naikoo, M.I. Role and Regulation of Plants Phenolics in Abiotic Stress Tolerance: An Overview. In: Plant Signaling Molecules / M.I. Naikoo, M.I. Dar, F. Raghib, H. Jaleel, B. Ahmad, A. Raina, F.A. Khan, F. Naushin // Elsevier: Amsterdam, The Netherlands. - 2019; pp. 157-168.

238. Nakabayashi, R. Enhancement of oxidative and drought tolerance in Arabidopsis by overaccumulation of antioxidant flavonoids / R. Nakabayashi, k. Yonekura-Sakakibara, K. Urano, M. Suzuki, Y. Yamada, T. Nishizawa, F. Matsuda, M. Kojima, H. Sakakibara, K. Shinozaki // Plant Journal. - 2014. - Vol. 77. - P. 367-379.

239. Nichols, S.N. Physiological drought resistance and accumulation of leaf phenolics in white clover interspecific hybrids / S.N. Nichols, R.W. Hofmann, W.M. Williams // Environmental and Experimental Botany. -2015. - Vol. 119. - P. 40-47.

240. Nirmala, P. Effect of kaempferol on lipid peroxi-dation and antioxidant status in 1,2-dimethyl hydrazine induced colorectal carcinoma in rats / P. Nirmala, M. Ramanathan // European Journal of Pharmacology. - 2011. -Vol. 654. - P. 75-79.

241. Noel, J.P. Structure-function relationships in plant phenylpropanoid biosynthesis / J.P. Noel, M.B. Austin, E.K. Bomati // Current Opinion in Plant Biology. - 2005. - Vol. 8. - P. 249-253.

242. Oliveira, S.M. Effect of air-drying temperature on the quality and bioactive caracterisation of dried galega kale (Brassica oleracea L. var acephala) / S.M. Oliveira, I.N. Ramos, T.R.S. Brandao, C.L.M. Silva // Food Processing and Preservation. - 2015. - Vol. 39. - P. 2485-2496.

243. Olsen, H. Characterization and Quantification of Flavonoids and Hydroxycinnamic Acids in Curly Kale (Brassica oleracea L. Convar.

acephala Var. sabellica) by HPLC-DAD-ESI-MSn / H. Olsen, K. Aaby, G.I.A. Borge // Agricultural and Food Chemistry. - 2009- Vol. 58. -P.2816-2825.

244. Olsen, H. Characterization, quantification, and yearly variation of the naturally occurring polyphenols in a common red variety of curly kale (Brassica oleracea L. convar. acephala var. sabellica cv. 'Redbor') / H. Olsen, K. Aaby, G.I.A. Borge // Agricultural and Food Chemistry. - 2010. -Vol. 58. - P.11346-11354.

245. Oszman'ski, J. Polyphenols as antioxidants in food / J. Oszman'ski // Przem Spoz Science. - 1995. - Vol. 3. - P. 94- 96.

246. Pandjaitan, N. Antioxidant capacity and phenolic content of spinach as affected by genetics and maturation / N. Pandjaitan, L.R. Howard, T. Morelock, M. Gill // Agricultural and Food Chemistry. - 2005. - № 3. - P. 8618-8623.

247. Pandey, N. Effect of heavy metals Co2+, Ni2+ and Cd2+ on growth and metabolism of cabbage / N. Pandey, C.P. Sharma //Plant Science. - 2002. -№ 163. - P. 753-758.

248. Parr, A.J. Phenols in the plant and in man. The potential for possible nutritional enhancement of the diet by the modifying the phenols content or profile / A.J. Parr, G.P. Bolwell // Science of Food and Agriculture. - 2000.

- Vol. 80- №7. - P. 985-1012.

249. Peleg, Z. Hormone balance and abiotic stress tolerance in crop plants / Z. Peleg, E. Blumwald // Current Opinion in Plant Biology. - 2011. - Vol. 14.

- № 3. - P.290-295.

250. Pereira, D.M. Phenolics: from chemistry to biology / D.M. Pereira, P. Valentao, J.A. Pereira, P.B. Andrade // Molecules. - 2009. - Vol. 14 - № 6.

- P. 2202-2211.

251. Pereira, J.V. Use of cabbage leaves (Brassica oleracea var. acephala) in the stabilization of bone mass after menopause / J.V. Pereira, H.B. Santos,

M.F. Agra, D.N. Guedes, J. Modesto-Filho // Brazilian Journal of Pharmacognosy. - 2011. - Vol. 16. - № 3. - P. 345-349.

252. Podsedek, A. Natural antioxidants and antioxidant capacity of Brassica vegetables: A review / A. Podsedek // LWT— Food Science and Technology. - 2007. - Vol. 40. - P.1-11.

253. Pollastri, S. Flavonols: Old compounds for old roles / S. Pollastri, M. Tattini // Annals of Botany. - 2011. - Vol. 108. - P.1225-1233.

254. Puupponen-Pimia, R. Blanching and long-term freezing affect various bioactive compounds of vegetables in different ways / R. Puupponen-Pimia, S.T. Häkkinen, M. Aarni, T. Suortti, A.M. Lampi, M. Eurola, V. Piironen, A.M. Nuutila, C.K.M. Oksman // Science Food Agriculture. - 2003. - Vol. 83. -P. 1389-1402.

255. Prassad, T.K. Mechanisms of chilling-induced oxidative stress injury and tolerance developing maize seedlings: changes in antioxidant system, in oxidation of proteins and lipids, and protease activities / T.K. Prassad // Plant Journal. - 1996. - Vol.10. - P. 1017-1026.

256. Quideau, S. Chemistry and Biology of Ellagitannins, an Underestimated Class of Bioactive Plant Polyphenols / S. Quideau. - World Scientific: London, UK, 2009. - 395 p.

257. Quideau, S. Plant polyphenols: chemical properties, biological activities, and synthesis / S. Quideau, D. Deffieux, C. Douat-Casassus, L. Pouysegu / Angewandte Chemie International Edition. - 2011. - Vol. 50 - № 3. - P. 586- 621.

258. Radosevic, K. Assessment of glucosinolates, antioxidative and antiproliferative activity of broccoli and collard extracts / K. Radosevic, V. Gaurina-Srcek, M. Cvjetko Bubalo, S. Rimac Brncic, K. Takacs, I. Radojcic Redovnikovic // Food Composition and Analysis. - 2017. - Vol. 61. - P. 5966.

259. Ramakrishna, A. Influence of abiotic stress signals on secondary metabolites in plants / A. Ramakrishna, G.A. Ravishankar // Plant signaling & behavior. - 2011. - Vol. 6. -P. 1720-1731.

260. Rao, K.M. Physiology and Molecular Biology of Stress Tolerance in Plants / K.M. Rao, A. Raghavendra, K.J. Reddy // Springer Science & Business Media: New York, NY, USA, 2006.

261. Rappaport, L. Effect of Gibberellin on Growth, Flowering and Fruiting of the Earlypak Tomato, Lycopersicum Esculentum/ L. Rappaport // Plant Physiology. - 1957. - Vol. 32. - № 5. - P. 440-444.

262. Rehman, A. Seed priming of Zn with endophytic bacteria improves the productivity and grain biofortification of bread wheat / A. Rehman, M. Farooq, M. Naveed, A. Nawaz, B. Shahzad // European Journal of Agronomy. - 2018. - Vol. 94. - P. 98-107.

263. Rezayian, M. Differential responses of phenolic compounds of Brassica napus under drought stress / M. Rezayian, V. Niknam, H. Ebrahimzadeh // Iran Journal Plant Physiology. - 2018. - Vol. 8. - P. 2417-2425.

264. Rickman, J.C. Review Nutritional comparison of fresh, frozen and canned fruits and vegetables (Part 1)Vitamins C and B and phenolic compounds / J.C. Rickman, D.M. Barrett, C.M. Bruhn // Science of Food and Agriculture. - 2007. - Vol. 87. -P. 930-944.

265. Routray, W. Blueberries and their anthocyanins: factors affecting biosynthesis and properties / W. Routray, V. Orsat // Comprehensive Reviewsin Food Science and Food Safety. - 2011. - Vol. 10- № 6. - P. 303320.

266. Russo, G.L. Antioxidant polyphenols in cancer treatment: Friend, foe or foil? / G.L. Russo, I. Tedesco, C. Spagnuolo, M. Russo // Seminars in Cancer Biology. - 2017. - Vol. 46. - P. 1-13.

267. Saini, A. D. Growth regulators in relation to tailoring in wheat / A.D. Saini, A. Sud, R. Nanda // Indian journal of Plant Physiology. - 1975. - Vol. 18. - № 2. - P. 12.

268. Samec, D. Antioxidant potency of white (Brassica oleracea L. var. capitata) and Chinese (Brassica rapa L. var. pekinensis (Lour.)) cabbage: The influence of development stage, cultivar choice and seed selection / D. Samec, J. Piljac-Jegarac, M. Bogovic, K. Habjanic, J. Gruz // Scientia Horticulturae. - 2011. - Vol. 128. - P. 78-83.

269. Samec, D. Cruciferous (Brassicaceae) vegetables. In: Nonvitamin and Nonmineral Nutritional Supplements, Nabavi S.M., Sanches Silva T (ed.) / D. Samec, B Salopek-Sondi // Elsevier, in press. - 2018.

270. Samec, D. Kale (Brassica oleracea var. acephala) as a superfood: review of the scientific evidence behind the statement, Critical Reviews in Food Science and Nutrition / D. Samec, B. Urlic, B. Salopek-Sondi // Critical Reviews in Food Science and Nutrition. - 2018. - P. 1-12.

271. Sanchez-Rodriguez, E. Differential responses of five cherry tomato varieties to water stress: Changes on phenolic metabolites and related enzymes / E. Sanchez-Rodriguez, D.A. Moreno, F. Ferreres, M. Rubio-Wilhelmi Mdel, J.M. Ruiz // Phytochemistry. - 2011. - Vol. 72. - P. 723729.

272. Sankhari, J.M. Anthocyanin-rich red cabbage (Brassica oleracea L.) extract attenuates cardiac and hepatic oxidative stress in rats fed an atherogenic diet / J.M. Sankhari, M.C. Thounaojam, R.N. Jadeja, R.V. Devkar, A.V. Ramachandran // Science of food and agriculture. - 2012. -Vol. 92. - № 8. - P. 1688-1693.

273. Santner, A. Plant hormones are versatile chemical regulators of plant growth / A. Santner, L.I. Calderon-Villalobos, M. Estelle // Nature Chemical Biology. - 2009. - Vol. 5. - № 5. - P. 301-307.

274. Sardoei, A.S. Effects of foliar application of gibberellic acid on chlorophyll and carotenoids of Marigold (Calendula Officinalis L.) / A.S. Sardoei, M. Shahdadneghad // International Journal of Advanced Biological and Biomedical Research. - 2014. - Vol. 2. - № 6. - p. 1887-1893.

275. Sasaki, H. Changes in sugar content during cold acclimation and deacclimation of cabbage seedlings / H. Sasaki, K. Ichimura, M.nOda // Annals of Botany. - 1996. - №. 78. - P. 365-369.

276. Sasaki, K. Quantitative profiling of glucosinolates by LC-MS analysis reveals several cultivars of cabbage and kale as promising sources of sulforaphane / K. Sasaki, M. Neyazaki, K. Shindo, T. Ogawa, M. Momose // Chromatography. - 2012. - Vol. 903. - P. 171-176.

277. Sato, T. Inhibition of phenylalanine ammonia-lyase by flavonoids / T. Sato, U. Sankawa // Chemical and Pharmaceutical Bulletin. - 1983. - Vol. 31, № 1. - P. 149-155.

278. Schmidt, S. Genotypic and climatic influences on the concentration and composition of flavonoids in Kale (Brassica Oleracea Var. Sabellica) / S. Schmidt, M. Zietz, M. Schreiner, S. Rohn, L. Kroh, A. Krumbein // Food Chemistry - 2010. - Vol. 119. - P. 1293-1299.

279. Schmidt, S. Identification of complex, naturally occurring flavonoid glycosides in kale (Brassica oleracea var. sabellica) by high- performance liquid chromatography diode- array detection/electro spray ionization multistage mass spectrometry / S. Schmidt, M. Zietz, M. Schreiner, S. Rohn, L. Kroh, A. Krumbein // Rapid Commun Mass Spectrom. - 2010b. - Vol. 24-№14. - P. 2009-2022.

280. Schnablova, R. Transgenic ipt tobacco overproducing cytokinins overaccumulates phenolic compounds during in vitro growth / R. Schnablova, H. Synkova, A. Vicankova, L. Burketova, J. Eder, M Cvikrova // Plant Physiology and Biochemistry. - 2006. - Vol. 44- №10. - P. 526534.

281. Scott, C.E. Comparison of carotenoid content in fresh, frozen and canned corn / C.E. Scott, A.L. Eldridge // Food Composition and Analysis. - 2005. - Vol. 18. -P. 551-559.

282. Semenov, G.V. Influence of Freezing and Drying on Phytochemical Properties of Various Fruit / G.V. Semenov, O.A. Suvorov, N.D. Posokhov

// Biosciences Biotechnology Research Asia. - 2015. - Vol. 2. -№ 2. - P. 1311-1320.

283. Shahram, M. Investigating the effect of gibberellic acid and kinetin hormones on proline, protein and carbohydrates of leaf soluble in Maize hybrids under drought stress/ M. Shahram // Cumhuriyet University Faculty Of Science Journal. - 2015. - Vol. 36. - № 3. - p. 604-613.

284. Shankar, S. Allelopathic effects of phenolics and terpenoids extracted from Gimelina arborea on germination of Black gram (Vigna mungo) and Green gram (Vigna radiata) / S. Shankar, R. Girish, N. Karthik, R. Rajendran, V. Mahendran, V. // Allelopath. - 2009. - Vol. 23. - p. 323-332.

285. Sharma, A. Pre-sowing Seed Treatment with 24-Epibrassinolide Ameliorates Pesticide Stress in Brassica juncea L. through the Modulation of Stress Markers / A. Sharma, S. Thakur, V. Kumar, M.K. Kanwar, A.K. Kesavan, A.K. Thukral, R. Bhardwaj, P. Alam, P. Ahmad // Frontiers in Plant Science. - 2016. - Vol. 7, doi: 10.3389/fpls.2016.01569.

286. Sharma, A. Response of Phenylpropanoid Pathway and the Role of Polyphenols in Plants under Abiotic Stress / A. Sharma, B. Shahzad, A. Rehman, R. Bhardwaj, M. Landi, B. Zheng // Molecules. - 2019. - Vol. 24, doi: 10.3390/molecules24132452.

287. Shetty, K. Role of proline-linked pentose phosphate pathway in biosynthesis of plant phenolics for functional food and environmental applications: A review / K. Shetty // Process Biochemistry. - 2004. - Vol. 9. - p. 789-803.

288. Shui, Y.C. Advances in the study of flavonoids in Gingko bilobaleaves / Y.C. Shui, X. Feng, W. Yan // Medicinal Plant research. - 2009. - Vol. 3. -p. 248-1252.

289. Sikora, E. The antioxidant activity of selected cruciferous vegetables subjected to aquathermal processing / E. Sikora, E. Cieslik, T. Leszczynska, A. Filipiak-Florkiewicz, P.M. Pisulewski // Food Chemistry. - 2008. - Vol. 107. - P.55- 59.

290. Sikora, E. Composition and antioxidant activity of kale (Brassica oleracea L. var. acephala) raw and cooked / E. Sikora, I. Bodziarczyk // Acta scientiarum polonorum.Technologia alimentaria. - 2012. - Vol. 11. -№ 3. - P. 239- 248.

291. Sikora, E. Influence of diet with kale on lipid peroxides and malondialdehyde levels in blood serum of laboratory rats over intoxication with paraquat / E. Sikora, I. Bodziarczyk // Acta scientiarum polonorum.Technologia alimentaria. - 2013. - Vol. 12. - № 1. - P. 91- 99.

292. Simonetti, P. Effect of environmental factors and storage on vitamin content of Pisum sativum and Spinacia oleracea / P. Simonetti, M. Porrini,

G. Testolin // Italian Journal of Food Science. - 1991. - Vol. 3. -P. 187196.

293. Siro, I. Functional food. Product development, marketing and consumer acceptance: a review / I. Siro, E. Kapolna, B. Kapolna, A. Lugasi // Appetite. - 2008. - Vol. 51. - P. 456- 467.

294. Sk^pski, H. Growing vegetables in the field / H. Sk^pski, B. D^browska // Wyd. SGGW Warszawa. - 1994. - P. 76-81.

295. Smith, J.P. Packaging of fruits and vegetables. In: Processing Fruits, Barrett D.M., Somogyi L, Ramaswamy H.S (ed.) / J.P. Smith, D. Zagory,

H.S. Ramaswamy // CRC Press, Boca Raton. - 2005. pp. 355-395.

296. Solecka, D. Phenylpropanoid and anthocyanin changes in low-temperature treated oilseed rape leaves / D. Solecka, , A.M. Boudet, A. Kacperska // Plant Physiology and Biochemistry. - 1999. - Vol. 37. -P.491-496.

297. Sousa, C. Screening of Antioxidant Compounds During Sprouting of Brassica oleracea L. var. costata / C. Sousa, G. Lopes, D. Pereira, M. Taveira, P. Valentao, R. Seabra, J. Pereira, P. Baptista , F. Ferreres, P. Andrade // Chem. High Throughput Screen. - 2007. - № 10. - P. 377-386.

298. Spall Kaur Nirmal, K. Comparative Influence of Brassinosteroids Correspondents (24-Epibl and 28-Homobl) on the Morpho-physiological

Constraints of Brassica oleracea (Cabbage, Cauliflower and Broccoli) / K. Spall Kaur Nirmal, S. Geetika, S. Kumar // Biochemistry Physiology. -2015. -Vol. 5 - № 193, doi: 10.4172/2168-9652.1000193 P.

299. Spooner, D.M. Plant nomenclature and taxonomy: an horticultural and agronomic perspective / D.M. Spooner, W.L.A. Hetterscheid, R.G.Van den Berg, W. Brandenburg // Horticultural Reviews. - 2003. - Vol. 28. - P. 160.

300. Steindal, A.L. Effects of photoperiod, growth temperature and cold acclimatization on glucosinolates, sugars and fatty acids in kale / A.L. Steindal, R. Rodven, E. Hansen, J. Molmann // Food Chemistry. - 2015. -Vol. 174. - P. 44- 51.

301. Streb, P. Resistance of cold-hardened winter rye leaves (Secale Cereale L.) to photo-oxidative stress / P. Streb, W. Shang, J. Feierabend // Plant Cell and Environment. - 1999. - Vol. 22. - pp. 1211- 1223.

302. Sun, B. Effects of plant hormones on main health-promoting compounds and antioxidant capacity of Chinese kale / B. Sun, H. Yan, F. Zhang, Q. Wang // Food Research International. - 2012- Vol. 48. - p. 359-366.

303. Szabados, L. Proline: a multifunctional amino acid / L. Szabados, A. Savoure // Trends Plant Science. - 2010. - Vol. 15. -P. 89-97.

304. Ta'ibi, K. Effect of salt stress on growth, chlorophyll content, lipid peroxidation and antioxidant defence systems in Phaseolus vulgaris L / K. Taibi, F. Taibi, L. Ait Abderrahim, A. Ennajah, M. Belkhodja, J.M. Mulet // South African Journal of Botany. - 2016. - Vol. 105. -P. 306-312.

305. Tanase, C. Cytogenetical effect of some polyphenol compounds separated from industrial by-products / C. Tanase, C.I. Bara, V.I. Popa // Cellulose Chemistry and Technology. - 2015. - Vol. 49. -P. 799-805.

306. Tanase, C. Phenolic natural compounds and their influence on physiological processes in plants. In: Polyphenols in Plants, Watson, R.R (ed.) / C. Tanase, O.-C. Bujor, V.I. Popa // Academic Press: Cambridge, MA, USA. - 2019. pp. 45-58.

307. Taylor, L.P. Flavonoids as developmental regulators / L.P. Taylor, E. Grotewold // Current Opinion in Plant Biology. - 2005. - Vol. 8. - P. 317323.

308. Thavarajah, D. Mineral micronutrient and prebiotic carbohydrate profiles of USA-grown kale (Brassica oleracea L. var. acephala) / D. Thavarajah, P. Thavarajah, A. Abare, S. Basnagala, C. Lacher, P. Smith, G.F. Combs // Food Composition and Analysis. - 2016. - Vol. 52. - P. 9- 15.

309. Tobe, K. Characteristics of seed germination in five non-halophytic Chinese desert shrub species / K. Tobe, L. Zhang, G.Y. Qiu, H. Shimizu, K. Omasa // Arid Environments. - 2001. - Vol. 47. - P. 191-201.

310. Urlic, B. Phosphorus-use efficiency of kale genotypes from coastal Croatia / B. Urlic, G. Dumicic, SG. Ban, M. Romic // Plant Nutrition. -2016. - Vol. 39. - P. 389-398.

311. U.S. Department of Agriculture. National nutrient database for standard reference, release 28. Washington, D.C., USA: U.S. Department of Agriculture. -2016.

312. U.S. Department of Health and Human Services and U.S. Department of Agriculture. USDA Food Composition Databases, released September 2015, slightly revised May 2016. Available at https://ndb.nal.usda. gov/ndb/.

313. Vale, A.P. Light influence in the nutritional composition of Brassica oleracea sprouts / A.P. Vale, J. Santos, N.V. Brito, V. Peixoto, Rosa Carvalho, E. Rosa, M. Beatriz and P.P. Oliveira // Food Chemistry. - 2015. - Vol. 178. - P. 292-300.

314. Vardhini, B.V. Effect of brassinosteroids on growth, metabolite content and yield of Arachishypogaea / B.V. Vardhini, S.S. Ram Rao // phytochemistry. - 1998. - Vol. 48. -P. 927-930.

315. Velasco, P. Factors Affecting the Glucosinolate Content of Kale (Brassica oleracea acephala Group) / P. Velasco, M.E Cartea, C. Gonzalez, M.Vilar, A.Ooras // Agriculture and Food Chemistry. - 2007. - Vol. 55. -P. 955-962.

316. Verma, S. Lead toxicity induces lipid peroxidation and alert the activities of antioxidant enzymes in grooving rice plants / S. Verma, R.S. Dubey // Plant Science. - 2003. -Vol. 64. -P. 645-655.

317. Vreugdenhil, D. An Integrated View of the Hormonal Regulation of Tuber Formation in Potato (Solanum tuberosum) / D. Vreugdenhil, P.C. Struik // Physiology plant. - 1989. -Vol. 75. -P. 525-531.

318. Walkowiak-Tomczak, D. Changes in antioxidant activity of black chokeberry juice concentrate solutions during storage / D. Walkowiak-Tomczak // Acta Scientiarum Polonorum, Technologia Alimentaria. - 2007.

- Vol. 6. -P. 49-55.

319. Wang, J. Effects of exogenous abscisic acid on the level of antioxidants in Atractylodes macrocephala Koids under lead stress / J. Wang, J. Chen, K. Pan // Environmental science and pollution research. - 1999. - Vol. 12. -P. 112-119.

320. Wang, F. A grape bHLH transcription factor gene, VvbHLH1, increases the accumulation of flavonoids and enhances salt and drought tolerance in transgenic Arabidopsis thaliana / F. Wang, H. Zhu, D. Chen, Z. Li, R. Peng, Q. Yao // Plant Cell, Tissue and Organ Culture. - 2016. - Vol. 125. -P. 387398.

321. Wang, J. Differential Heat-Induced Changes in Phenolic Acids Associated with Genotypic Variations in Heat Tolerance for Hard Fescue / J. Wang, B. Yuan, B. Huang // Crop Science. - 2019. - Vol. 59. -P. 667-674.

322. Waterland, N.L. Differences in Leaf Color and Stage of Development at Harvest Influenced Phytochemical Content in Three Cultivars of Kale (Brassica oleracea L. and B. napus) / N.L. Waterland, Y. Moon, J.C. Tou, D.A. Kopsell, M.J. Kim, C. Park // Agricultural Science Chemistry. - 2019.

- Vol. 11. - № 3. - P. 14-21.

323. Weits, J. Nutritive value and organoleptic properties of three vegetables fresh and preserved in six different ways / J. Weits, M.A. van der Meer, J.B.

Lassche, J.C. Meyer, E. Steinbuch, L. Gersons //International Journal for Vitamin and Nutrition Research. - 1970. - Vol. 40. - P. 648-658.

324. Westwood, C.T. Effect of timing of harvest on nutritive value of four cultivars of kale (Brassica oleracea L. var. acephala) / C.T. Westwood, M.K. Cutts, R.J. Russell, K.M. O'Brien // Proceedings of the New Zealand Grassland Association. - 2014. - Vol. 76. - P. 136-140.

325. Whetten, R.W. Recent advances in understanding lignin biosynthesis / R.W. Whetten, J.J. Mackay, R.R Sederoff // Annual Review of Plant Physiology and Molecular Biology of Plants. - 1998. - Vol. 49. - p. 585609.

326. Williams, R.J. Flavonoids: Antioxidants or signalling molecules? / R.J. Williams, J.P.E. Spencer, C. Rice-Evans // Free Radical Biology and Medicine. - 2004. - Vol. 36. - P. 838-849.

327. Wolucka, B.A. Methyl jasmonate stimulates the de novo biosynthesis of vitamin C in plant cell suspensions / B.A. Wolucka, A. Goossens, D. Inze'// Experimental Botany. - 2005. - Vol. 56. - P. 2527-2538.

328. Wu, Q.J. Cruciferous vegetables intake and the risk of colorectal cancer: a meta analysis of observational studies / Q.J. Wu, Y. Yang, E. Vogtmann, J. Wang, L.H. Han, L. Li, Y.B. Xiang // Annals of Oncology. - 2013a. - Vol. 24. - P. 1079-1087.

329. Wu, Q.J. Cruciferous vegetables consumption and the risk of female lung cancer: a prospective study and a meta-analysis / Q.J. Wu, L. Xie, W. Zheng, E. Vogtmann, H.L. Li, G. Yang, B.T. Ji, Y.T. Gao, X.O. Shu, Y.B. Xiang // Annals of Oncology. - 2013b. - Vol. 24. -P. 1918-1924.

330. Wu, Q.J. Cruciferous vegetable consumption and gastric cancer risk: A meta-analysis of epidemiological studies / Q.J. Wu, Y. Yang, J. Wang, L.H. Han, Y.B. Xiang // Cancer Science. - 2013c. - Vol. 104. - № 8. - P. 10671073.

331. Xia, X.J. Interplay between reactive oxygen species and hormones in the control of plant development and stress tolerance / X.J. Xia, Y.H. Zhou, K.

Shi, J. Zhou, C.H. Foyer, J.Q. Yu // Experimental Botany. - 2015. - Vol. 66. -№ 10. - P. 2839-2856.

332. Xiao, H.B. Kaempferol regulates OPN-CD44 pathway to inhibit the atherogenesis of apolipoprotein E deficient mice / H.B. Xiao, X.Y. Lu, Z.L. Sun, H.B. Zhang // Toxicology and Applied Pharmacology. - 2011. - Vol. 257. - P. 405-411.

333. Xu, Y. Preharvest Ultraviolet C Irradiation Increased the Level of Polyphenol Accumulation and Flavonoid Pathway Gene Expression in Strawberry Fruit / Y. Xu, M.T. Charles, Z. Luo, B. Mimee, P.Y. Veronneau, D. Rolland, D. Roussel // Agricural and Food Chemestry. - 2017. - Vol. 65. - P. 9970-9979.

334. Yan, J. GmFNSII-controlled soybean flavone metabolism responds to abiotic stresses and regulates plant salt tolerance / J. Yan, B. Wang, Y. Jiang, L. Cheng, T. Wu // Plant Cell Physiology. - 2014. - Vol. 55. - P. 7486.

335. Yu, J.Q. A role for brassinosteroids in the regulation of photosynthesis in Cucumis sativus / J.Q. Yu, L.F. Huang, W.H. Hu, Y.H. Zhou, W.H. Mao, S.F. Ye, S. Nogues // Experimental Botany. - 2004. - Vol. 55. -P. 11351143.

336. Zhang, J. Flavones and flavonols play distinct critical roles during nodulation of Medicago truncatula by Sinorhizobium meliloti / J. Zhang, S. Subramanian, G. Stacey, O. Yu // Plant Journal. - 2009. - Vol. 57. -P. 171183.

337. Zheng, S.Y. Anticancer effect and apoptosis induction by quercetin in the human lung cancer cell line A-549 / S.Y. Zheng, Y. Li, D. Jiang, J. Zhao, J.F.Ge // Molecular Medicine Reports. - 2011. - Vol. 5. - P. 822-826.

338. Zhou, K. Total phenolic contents and antioxidant properties of commonly consumed vegetables grown in Colorado / K. Zhou, L. Yu // LWT. - 2006. -Vol. 39. - P.1155-1162.

339. Zhou, P. Integrated analysis of transcriptomic and metabolomic data reveals critical metabolic pathways involved in polyphenol biosynthesis in Nicotiana tabacum under chilling stress / P. Zhou, Q. Li, G. Liu, N. Xu, Y. Yang, W. Zeng, A. Chen, S. Wang // Functional Plant Biology. - 2018. -Vol. 46. - P. 30-43.